(57)【要約】  本発明は、細胞外基質分解因子を発現する組換えアデノウイルスを含む抗がん用組成物に関する。本発明による組換えアデノウイルスは、腫瘍組織内の細胞外基質の主要構成成分であるコラーゲンＩ、コラーゲンＩＩＩ、ピブロネクチン、エラスチンなどを顕著に減少させ、ウイルスの増殖によって治療遺伝子を腫瘍細胞でのみ選択的に高発現させることにより、優れた抗腫瘍効果を示す。特に、前記組換えアデノウイルスは、既存の抗がん剤又は免疫チェックポイント阻害剤と併用投与される場合、既存の抗がん効果を有しながらも、併用投与された治療物質の腫瘍組織内での拡散及び分布を有意的に増加させて、抗腫瘍効果をさらに向上させることができるため、本発明は、がんの治療技術分野の核心技術として活用できるだろう。
2020500947.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
ＩＬ−１２（Ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ  １２）をコードする遺伝子；及びＤｅｃｏｒｉｎ又はＲｅｌａｘｉｎをコードする遺伝子を含む組換えアデノウイルスを含む、抗がん剤補助用薬学的組成物。
【請求項２】
前記組換えアデノウイルスは、Ｅ１及びＥ３領域からなる群から選ばれるいずれか一つ以上の領域が欠失されているものである、請求項１記載の薬学的組成物。
【請求項３】
前記ＩＬ−１２をコードする遺伝子は、組換えアデノウイルスのＥ１領域に挿入されるものである、請求項２記載の薬学的組成物。
【請求項４】
前記Ｄｅｃｏｒｉｎ又はＲｅｌａｘｉｎをコードする遺伝子は、組換えアデノウイルスのＥ１又はＥ３領域に挿入されるものである、請求項２記載の薬学的組成物。
【請求項５】
前記組成物は、免疫チェックポイント阻害剤と同時に、別途に、又は順次的に併用投与されるものである、請求項１記載の薬学的組成物。
【請求項６】
前記免疫チェックポイント阻害剤は、ＰＤ−１（ｐｒｏｇｒａｍｍｅｄ  ｃｅｌｌ  ｄｅａｔｈ−１）、ＰＤ−Ｌ１（ｐｒｏｇｒａｍｍｅｄ  ｃｅｌｌ  ｄｅａｔｈ−ｌｉｇａｎｄ  １）、ＰＤ−Ｌ２（ｐｒｏｇｒａｍｍｅｄ  ｃｅｌｌ  ｄｅａｔｈ−ｌｉｇａｎｄ  ２）、ＣＤ２７（ｃｌｕｓｔｅｒ  ｏｆ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ２７）、ＣＤ２８（ｃｌｕｓｔｅｒ  ｏｆ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ２８）、ＣＤ７０（ｃｌｕｓｔｅｒ  ｏｆ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ７０）、ＣＤ８０（ｃｌｕｓｔｅｒ  ｏｆ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ８０、ａｌｓｏ  ｋｎｏｗｎ  ａｓ  Ｂ７−１）、ＣＤ８６（ｃｌｕｓｔｅｒ  ｏｆ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ８６、ａｌｓｏ  ｋｎｏｗｎ  ａｓ  Ｂ７−２）、ＣＤ１３７（ｃｌｕｓｔｅｒ  ｏｆ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  １３７）、ＣＤ２７６（ｃｌｕｓｔｅｒ  ｏｆ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ２７６）、ＫＩＲｓ（ｋｉｌｌｅｒ−ｃｅｌｌ  ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ−ｌｉｋｅ  ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ）、ＬＡＧ３（ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅ−ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ  ｇｅｎｅ  ３）、ＴＮＦＲＳＦ４（ｔｕｍｏｒ  ｎｅｃｒｏｓｉｓ  ｆａｃｔｏｒ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｓｕｐｅｒｆａｍｉｌｙ、ｍｅｍｂｅｒ  ４、ａｌｓｏ  ｋｎｏｗｎ  ａｓ  ＣＤ１３４）、ＧＩＴＲ（ｇｌｕｃｏｃｏｒｔｉｃｏｉｄ−ｉｎｄｕｃｅｄ  ＴＮＦＲ−ｒｅｌａｔｅｄ  ｐｒｏｔｅｉｎ）、ＧＩＴＲＬ（ｇｌｕｃｏｃｏｒｔｉｃｏｉｄ−ｉｎｄｕｃｅｄ  ＴＮＦＲ−ｒｅｌａｔｅｄ  ｐｒｏｔｅｉｎ  ｌｉｇａｎｄ）、４−１ＢＢＬ（４−１ＢＢ  ｌｉｇａｎｄ）、ＣＴＬＡ−４（ｃｙｔｏｌｙｔｉｃ  Ｔ  ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅ  ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ  ａｎｔｉｇｎ−４）拮抗剤、及びこれらの組み合わせからなる群から選ばれるいずれか一つであるものである、請求項５記載の薬学的組成物。
【請求項７】
前記がんは、胃がん、肺がん、非小細胞性肺がん、乳がん、卵巣がん、肝がん、気管支がん、鼻咽頭がん、喉頭がん、膵臓がん、膀胱がん、結腸癌、子宮頸がん、骨がん、非小細胞性骨がん、血液がん、皮膚がん、頭部又は頸部がん、子宮がん、直腸がん、肛門付近がん、結腸がん、卵管がん、子宮内膜がん、膣がん、陰門がん、ホジキン病（Ｈｏｄｇｋｉｎ'ｓ  ｄｉｓｅａｓｅ）、食道がん、小腸がん、内分泌腺がん、甲状腺がん、副甲状腺がん、副腎がん、軟組織肉腫、尿道がん、陰茎がん、前立腺がん、慢性又は急性白血病、リンパ球リンパ腫、腎臓又は輸尿管がん、腎細胞癌腫、腎骨盤癌腫、唾液腺がん、肉腫がん、偽性粘液腫、肝芽腫、精巣がん、膠芽腫、口唇がん、卵巣生殖細胞腫瘍、基底細胞がん、多発性骨髄腫、胆のうがん、脈絡膜黒色腫、ファーター膨大部がん、腹膜がん、舌がん、小細胞がん、小児リンパ腫、神経芽細胞腫、十二指腸がん、尿管がん、星状細胞腫、髄膜腫、腎盂がん、外陰がん、胸腺がん、中枢神経系(ｃｅｎｔｒａｌ  ｎｅｒｖｏｕｓ  ｓｙｓｔｅｍ，  ＣＮＳ）腫瘍、１次中枢神経系リンパ腫、脊髄腫瘍、脳幹神経膠腫及び下垂体腺腫から構成された群から選ばれるいずれか一つであるものである、請求項１記載の薬学的組成物。
【請求項８】
前記がんは、再発がん（Ｒｅｃｕｒｒｅｎｔ  ｃａｎｃｅｒ）又は抗がん剤−耐性がん（Ａｎｔｉｃａｎｃｅｒ  ｄｒｕｇ−ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅｄ  ｃａｎｃｅｒ）であるものである、請求項１記載の薬学的組成物。
【請求項９】
前記組成物は、抗腫瘍免疫（Ａｎｔｉｔｕｍｏｒ  ｉｍｍｕｎｉｔｙ）を増進させることを特徴とする、請求項１記載の薬学的組成物。
【請求項１０】
ＩＬ−１２（Ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ  １２）をコードする遺伝子；及びＤｅｃｏｒｉｎ又はＲｅｌａｘｉｎをコードする遺伝子を含む組換えアデノウイルスを個体に投与する段階を含む、抗がん剤の治療効能増進方法。
【請求項１１】
ＩＬ−１２（Ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ  １２）をコードする遺伝子；及びＤｅｃｏｒｉｎ又はＲｅｌａｘｉｎをコードする遺伝子を含む組換えアデノウイルスと抗がん剤を個体に投与する段階を含む、がんの治療方法。
【請求項１２】
ＩＬ−１２（Ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ  １２）をコードする遺伝子；及びＤｅｃｏｒｉｎ又はＲｅｌａｘｉｎをコードする遺伝子を含む組換えアデノウイルスと免疫チェックポイント阻害剤を個体に投与する段階を含む、がんの治療方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、細胞外基質分解因子を発現する組換えアデノウイルスを含む抗がん用組成物に関する。
【０００２】
本発明は、大韓民国の未来創造科学部の支援の下で、課題番号２０１６００００００２１１６によってなされたものであって、前記課題の研究管理専門機関は、韓国研究財団、研究事業名は、理工分野基礎研究事業／中堅研究者支援事業／跳躍研究（転落−後続研究支援）、研究課題名は、選択的腫瘍制御のためのナノ物質ハイブリッド遺伝子伝達体の開発である。本発明は、大韓民国の未来創造科学部の支援の下で、課題番号２０１６００００００２５３６によってなされたものであって、前記課題の研究管理専門機関は、韓国研究財団、研究事業名は、源泉技術開発事業／バイオ、医療技術開発事業／次世代新薬基盤技術開発事業、研究課題名は、膵臓がん治療用の腫瘍殺傷アデノウイルス候補物質の開発及び実用化研究である。
【０００３】
本特許出願は、２０１６年１２月０９日に大韓民国特許庁に提出された大韓民国特許出願第１０−２０１６−０１６７２６５号に対して優先権を主張し、前記特許出願の開示事項は、本明細書に参照として挿入される。
【背景技術】
【０００４】
がんは、全世界的に疾病死亡の首位を占める疾病であって、手術、放射線治療、抗がん化学療法などの複合的な治療にもかかわらず、患者の５０％以上が死亡する難治疾患である（ＷＨＯ：Ｗｏｒｌｄ  Ｈｅａｌｔｈ  Ｒｅｐｏｒｔ，２００１）。がんの治療は、外科的手術、放射線治療、抗がん剤治療の順に発展した。初期のがんは、外科的手術が効果的であるが、転移がある殆どのがんは、手術以外の放射線治療又は抗がん剤治療の併用を必要とする。特に、これらの治療法は、正常細胞に及ぼす副作用が大きく、がん細胞の多重薬剤に対する耐性により完治率が非常に低いので、新しい抗がん治療法の開発が切実に求められている。特に、がんの再発や転移に伴う難治性耐性がんを対象とした治療剤の開発が急務である。このような現実的な必要性に応じて、２０１６年基準で総２３５６件の遺伝子治療に関する臨床試験のうち、がんを対象疾患として進行している臨床試験は、約６４.４％であり、いくつかの疾患の中で最も高い頻度の臨床試験が進行中である。
【０００５】
前述のように、現在使用されるがんの標準治療法には、外科的手術、放射線治療、抗がん剤治療がある。初期、すなわち、がんが局所及び近くのリンパ節まで転移したときには、外科的手術だけで完治が可能であるが、それ以上の転移が進行した場合には、治療に限界があるので、外科的手術により完治が可能ながん患者は、ごく少数に過ぎない。したがって、殆どのがんは、外科的手術のほかに、放射線と抗がん剤の治療を並行しなければならない。しかし、放射線と抗がん剤治療は両方ともに標的治療法ではないので、がん細胞と正常細胞を区分して治療できないので、一部の正常細胞も治療時に損傷を受けることになる。正常細胞の中でも急速に分裂及び増殖がなされる細胞、すなわち、骨髄で形成された血液細胞、口腔を含む胃腸管の上皮細胞、髪の毛細胞、及び精子、卵子を作り出す生殖細胞などに大きな影響を及ぼすことになる。このように、正常細胞に及ぼす副作用が大きいため、実際の腫瘍の治療率は、極めて低い状況である。
【０００６】
理想的な抗がん剤なら、正常細胞に損傷を与えずに、がん細胞を除去できなければならない。残念ながら、現在までに開発されたいかなる薬物もこのような条件を満たすことはなく、ただ好ましい治療のために毒性と効果を秤にかけているだけである。最近、重点的に開発されている化学療法剤を分類してみると、第一に、新生細胞の増殖能を無くしたり、終末期の細胞となるようにして、腫瘍細胞の成熟を遮断できる、分化誘導体；第二に、悪性腫瘍細胞の表面特性を変化させて侵襲と転移できる能力を混乱させることができる、抗転移薬物；第三に、固形がん細胞における酸素欠乏状態から還元反応を誘導する、低酸素腫瘍幹細胞特異性薬物；第四に、腫瘍細胞特異的放射線薬物などがある。
【０００７】
これらの新しい治療物質は、既存の抗がん化学療法に比べて抗がん効果が増進された。特に、より優れた潜在力を示している薬物としは、タキサン誘導体（例えば、ドセタキセル）、カンポセチン誘導体、チミジル酸合成阻害剤（例えば、ラルチトレックスド）、ヌクレオシド誘導体（ゲムシタビン）、５−ＦＵ経口用誘導体などがある。しかし、これらの化学療法剤の毒性は、未だに解決すべき問題として残っている。
【０００８】
最近、がんの分子生物学的特性が多く究明され、特定のがん細胞だけを攻撃する標的治療薬が開発されている。標的がん治療とは、がんの成長と発生に関与する特別な分子の活動を妨害して、がんが成長して広がることを防ぐ薬剤を用いることをいう。分子と細胞の変化に焦点を合わせてみると、標的治療は、比較的正常細胞の損傷を最小化しつつ、選択的にがん細胞だけを攻撃するために、副作用を最小化できるという長所がある。標的治療剤は、殆どのがん細胞が特徴的に持っている分子を標的としてその効果を示すことができるように作製された。前記分子的標的には、がん細胞の信号伝達経路（ｓｉｇｎａｌ  ｔｒａｎｓｄｕｃｔｉｏｎ  ｐａｔｈｗａｙ）、血管新生（ａｎｇｉｏｇｅｎｅｓｉｓ）、細胞間質（ｍａｔｒｉｘ）、細胞周期調節因子（ｃｅｌｌ  ｃｙｃｌｅ  ｒｅｇｕｌａｔｏｒ）、細胞死滅（ａｐｏｐｔｏｓｉｓ）などに関与する分子が用いられているが、これらの臨床的適用に至るまではさらなる研究が必要な状況である。
【０００９】
また、がんの治療のための新しいアプローチとして、身体の腫瘍特異的免疫活性を用いた免疫治療に対する研究が進行中である。しかし、がんは、腫瘍内の免疫抑制環境（ｉｍｍｕｎｏｓｕｐｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｔｕｍｏｒ  ｍｉｃｒｏｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ）を誘導することにより、様々な宿主免疫反応を巧妙に回避して破壊し、結果として腫瘍の生存を持続的に維持するだけでなく、免疫体系が活性化されても活性化された抗腫瘍免疫反応から逃避できる能力を持つという点で、免疫治療に困難性があるのが実情である。したがって、腫瘍内の免疫抑制環境を改善して、がん細胞に対する免疫反応を増進させるために、ＩＬ−１２、ＩＬ−１８、ＩＬ−２３、ＩＦＮ−γ（ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ−ｇａｍｍａ）、ＧＭ−ＣＳＦ（ｇｒａｎｕｌｏｃｙｔｅ−ｍａｃｒｏｐｈａｇｅ  ｃｏｌｏｎｙ−ｓｔｉｍｕｌａｔｉｎｇ  ｆａｃｔｏｒ）、ＴＮＦ−α（ｔｕｍｏｒ  ｎｅｃｒｏｓｉｓ  ｆａｃｔｏｒ  ａｌｐｈａ）のようなサイトカイン遺伝子、Ｂ７分子のような同時刺激誘発因子、直接的に抗原提示細胞（ａｎｔｉｇｅｎ  ｐｒｅｓｅｎｔｉｎｇ  ｃｅｌｌ；ＡＰＣ）の役割を果たす樹状細胞（ｄｅｎｔｒｉｔｉｃ  ｃｅｌｌ；ＤＣ）、腫瘍抗原で活性化させたＴ細胞、ナチュラルキラー細胞（ｎａｔｕｒａｌ  ｋｉｌｌｅｒ  ｃｅｌｌ；ＮＫ）などを用いた研究が多角的に進められている。特に、ＩＬ−１２は、主に単核細胞（ｍｏｎｏｃｙｔｅｓ）、マクロファージ（ｍａｃｒｏｐｈａｇｅｓ）、ＤＣなどのＡＰＣから分泌され、がん細胞を効果的に除去できる細胞毒性Ｔ細胞（ｃｙｔｏｔｏｘｉｃ  Ｔ  ｌｙｍｐｈｏｃｙｔe；ＣＴＬ）とＮＫ細胞に直接作用してこれらを活性化させてＩＦＮ−γの分泌を誘導するだけでなく、がん細胞に対する殺傷能力も増強させることが知られている。また、ナイーブ（ｎａｉｖｅ）ＣＤ４＋リンパ球に作用して、Ｔｈ１（Ｔ  ｈｅｌｐｅｒ  １）細胞への分化を促進させて、結局、抗がん免疫反応に重要な役割を果たす細胞媒介免疫反応（ｃｅｌｌ−ｍｅｄｉａｔｅｄ  ｉｍｍｕｎｅ  ｒｅｓｐｏｎｓｅ）を誘導して増強させることにより、抗がん免疫反応を活性化させるのに重要な役割を果たす。
【００１０】
このような技術的背景の下で、本発明者らは、Ｅ１Ｂ  ５５ｋＤａ遺伝子が消失した腫瘍選択的殺傷アデノウイルスであるＹＫＬ−１（Ａｄ−Ｅ１Ｂ  ５５）の抗腫瘍効果を報告したことがあり、Ｅ１Ｂ遺伝子の消失とＥ１ＡのＲｂ結合部位が変異されて、これより腫瘍選択的殺傷能が増進されたＲｄＢアデノウイルスを用いてＧＭ−ＣＳＦの抗腫瘍効果も報告したことがある（韓国公開特許第１０−２０１２−００１０６９７号）。しかし、腫瘍内の免疫抑制環境が改善されるとしても、腫瘍の低い免疫原性により、依然として、がんを完全に治療するには多くの限界点があるのが実情である。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１１】
本発明者らは、抗腫瘍効果を向上させることができる新しい治療法を開発するために鋭意努力した結果、細胞外基質分解因子を発現する腫瘍選択的殺傷組み換えアデノウイルスを製造し、前記組換えアデノウイルスは、既存の抗がん剤や免疫チェックポイント阻害剤との併用により、既存の抗がん剤治療の限界を克服するとともに、極めて顕著な抗腫瘍効果を示したため、これに基づいて本発明を完成させた。
【００１２】
したがって、本発明の目的は、細胞と基質分解因子を発現する組換えアデノウイルスを含む、抗がん剤補助用薬学的組成物を提供することにある。
【００１３】
本発明の他の目的は、免疫チェックポイント阻害剤と併用投与され、細胞外基質分解因子を発現する組換えアデノウイルスを含む、がん治療用薬学的組成物を提供することにある。
【００１４】
しかし、本発明が解決しようとする技術的課題は、以上で言及した課題に制限されず、言及されていないさらに他の課題は、下記の記載から当業者が明確に理解できるだろう。
【課題を解決するための手段】
【００１５】
前記のような本発明の目的を達成するために、ＩＬ−１２（Ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ  １２）をコードする遺伝子；及びＤｅｃｏｒｉｎ又はＲｅｌａｘｉｎをコードする遺伝子を含む組換えアデノウイルスを含む、抗がん剤補助用薬学的組成物を提供する。
【００１６】
本発明の一具現例として、前記組換えアデノウイルスは、Ｅ１及び／又はＥ３領域が欠失されていてもよい。
【００１７】
本発明の他の具現例として、前記ＩＬ−１２をコードする遺伝子は、組換えアデノウイルスのＥ１領域に挿入されてもよく、前記Ｄｅｃｏｒｉｎ又はＲｅｌａｘｉｎをコードする遺伝子は、組換えアデノウイルスのＥ１又はＥ３領域に挿入されてもよい。
【００１８】
本発明のさらに他の具現例として、前記組成物は、免疫チェックポイント阻害剤と同時に、別途に、又は順次的に併用投与されてもよく、前記免疫チェックポイント阻害剤は、ＰＤ−１拮抗剤、ＰＤ−Ｌ１拮抗剤、ＣＴＬＡ−４拮抗剤、ＰＤ−Ｌ２拮抗剤、ＣＤ２７拮抗剤、ＣＤ２８拮抗剤、ＣＤ７０拮抗剤、ＣＤ８０拮抗剤、ＣＤ８６拮抗剤、ＣＤ１３７拮抗剤、ＣＤ２７６拮抗剤、ＫＩＲｓ拮抗剤、ＬＡＧ３拮抗剤、ＴＮＦＲＳＦ４拮抗剤、ＧＩＴＲ拮抗剤、ＧＩＴＲＬ拮抗剤、４−１ＢＢＬ拮抗剤、及びこれらの組み合わせからなる群から選ばれるいずれか一つであってもよい。
【００１９】
本発明のさらに他の具現例として、前記がんとしては、胃がん、肺がん、非小細胞性肺がん、乳がん、卵巣がん、肝がん、気管支がん、鼻咽頭がん、喉頭がん、膵臓がん、膀胱がん、結腸癌、子宮頸がん、骨がん、非小細胞性骨がん、血液がん、皮膚がん、頭部又は頸部がん、子宮がん、直腸がん、肛門付近がん、結腸がん、卵管がん、子宮内膜がん、膣がん、陰門がん、ホジキン病、食道がん、小腸がん、内分泌腺がん、甲状腺がん、副甲状腺がん、副腎がん、軟組織肉腫、尿道がん、陰茎がん、前立腺がん、慢性又は急性白血病、リンパ球リンパ腫、腎臓又は輸尿管がん、腎細胞癌腫、腎骨盤癌腫、唾液腺がん、肉腫がん、偽性粘液腫、肝芽腫、精巣がん、膠芽腫、口唇がん、卵巣生殖細胞腫瘍、基底細胞がん、多発性骨髄腫、胆のうがん、脈絡膜黒色腫、ファーター膨大部がん、腹膜がん、舌がん、小細胞がん、小児リンパ腫、神経芽細胞腫、十二指腸がん、尿管がん、星状細胞腫、髄膜腫、腎盂がん、外陰がん、胸腺がん、中枢神経系腫瘍、１次中枢神経系リンパ腫、脊髄腫瘍、脳幹神経膠腫及び下垂体腺腫から構成された群から選ばれるいずれか一つであってもよく、又は再発がん又は抗がん剤−耐性がんであってもよい。
【００２０】
本発明の他の具現例として、前記組成物は、抗腫瘍免疫（Ａｎｔｉｔｕｍｏｒ  ｉｍｍｕｎｉｔｙ）を増進させることができる。
【００２１】
また、本発明は、ＩＬ−１２をコードする遺伝子；Ｄｅｃｏｒｉｎ又はＲｅｌａｘｉｎをコードする遺伝子を含む組換えアデノウイルスを個体に投与する段階を含む、抗がん剤の治療効能増進方法を提供する。
【００２２】
また、本発明は、ＩＬ−１２をコードする遺伝子と、Ｄｅｃｏｒｉｎ又はＲｅｌａｘｉｎをコードする遺伝子を含む組換えアデノウイルスを個体に投与する段階を含む、がんの治療方法を提供する。
【発明の効果】
【００２３】
本発明による組換えアデノウイルスは、腫瘍組織内の細胞外基質の主要構成成分であるコラーゲンＩ、コラーゲンＩＩＩ、ピブロネクチン、又はエラスチンなどを顕著に減少させ、ウイルスの増殖によって治療遺伝子を腫瘍細胞でのみ選択的に高発現させることにより、優れた抗腫瘍効果を示す。特に、前記組換えアデノウイルスは、既存の抗がん剤又は免疫チェックポイント阻害剤と併用投与される場合、既存の抗がん効果を有しながらも、併用投与された治療物質の腫瘍組織内での拡散及び分布を有意的に増加させて、抗腫瘍効果をさらに向上させることができるため、本発明は、がん治療技術分野の核心技術として活用できるだろう。
【図面の簡単な説明】
【００２４】
【図１】図１は、本発明による腫瘍選択的殺傷アデノウイルスの腫瘍細胞特異的作用機序を概略的に示す模式図である。
【図２】図２は、本発明による腫瘍選択的殺傷アデノウイルスの細胞外基質（ＥＣＭ）の分解機序を概略的に示す模式図である。
【図３】図３は、本発明による腫瘍選択的殺傷アデノウイルスの遺伝的構造を模式化したもので、図３（ａ）は、ＩＬ−１２とＤｅｃｏｒｉｎ（ＤＣＮ）を同時発現する腫瘍選択的殺傷アデノウイルス（ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮ）の遺伝的構造を示したものであり、図３（ｂ）は、ＩＬ−１２とＲｅｌａｘｉｎ（ＲＬＸ）を同時発現する腫瘍選択的殺傷アデノウイルス（ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ）の遺伝的構造を示したものである。具体的に、ＲｄＢは、変異されたＥ１Ａ（ｏｐｅｎ  ｓｔａｒ−Ｒｂタンパク質の結合部位の突然変異）を含み、Ｅ１Ｂ  １９及び５５  ｋＤａ（Ｅ１Ｂ）、及びＥ３領域（Ｅ３）が欠失されており；ＩＬ−１２及びＤＣＮ／ＲＬＸは、アデノウイルスゲノムのＥ１及び／又はＥ３部位にそれぞれ挿入された。
【図４】図４は、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮとｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅの併用投与による膵臓がん細胞株（ＰＡＮＣ−１、ＭＩＡ  ＰａＣａ−２、又はＡｓＰＣ−１）に対する殺傷能をＭＴＴ  ａｓｓａｙで確認した結果である。
【図５】図５は、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮとｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅの併用投与による抗腫瘍効果を膵臓がん同所移植動物モデルに形成された腫瘍のサイズの変化を介して確認した結果である。
【図６】図６は、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮとｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅの併用投与による抗腫瘍効果を組織学的に評価したもので、それぞれＨｅｍａｔｏｘｙｌｉｎ−ｅｏｓｉｎ（Ｈ＆Ｅ）染色、ＰＣＮＡ免疫組織染色、Ｅ１Ａタンパク質の抗体を用いた免疫組織染色、及びＴＵＮＥＬ  ａｓｓａｙを行った結果である。
【図７】図７は、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮと免疫チェックポイント阻害剤（抗−ＰＤ−Ｌ１）の併用投与による抗腫瘍効果を黒色腫皮下動物モデルに形成された腫瘍のサイズの変化を介して確認した結果である。
【図８】図８は、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮと免疫チェックポイント阻害剤（抗−ＰＤ−Ｌ１）の併用投与による抗腫瘍効果を黒色腫皮下動物モデルの生存率の変化を介して確認した結果である。
【図９】図９は、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮと免疫チェックポイント阻害剤（抗−ＰＤ−１、抗−ＰＤ−Ｌ１、又は抗−ＣＴＬＡ−４）の併用投与による抗腫瘍効果をハムスター膵臓がん皮下動物モデルに形成された腫瘍のサイズの変化を介して確認した結果である。
【図１０】図１０は、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮと免疫チェックポイント阻害剤（抗−ＰＤ−１、抗−ＰＤ−Ｌ１、又は抗−ＣＴＬＡ−４）の併用投与によるメモリー免疫反応（再発がんの治療効果）をハムスター膵臓がん皮下動物モデルに形成された腫瘍のサイズの変化を介して確認した結果である。
【図１１】図１１は、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮと免疫チェックポイント阻害剤（抗−ＰＤ−１）の併用投与による抗腫瘍効果を抗がん剤耐性誘導動物モデルに形成された腫瘍のサイズの変化を介して確認した結果である。
【図１２】図１２は、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸとｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅの併用投与による膵臓がん細胞株（ＭＩＡ  ＰａＣａ−２、又はＰＡＮＣ−１）に対する殺傷能をＭＴＴ  ａｓｓａｙで確認した結果である。
【図１３】図１３は、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸとｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅの併用投与による抗腫瘍効果をＴＵＮＥＬ  ａｓｓａｙで確認した結果である。
【図１４】図１４は、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸとｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅの併用投与による細胞外基質分解効果をコラーゲンＩ、又はコラーゲンＩＩＩの発現量の変化を介して確認した結果である。
【図１５ａ】図１５ａ及び図１５ｂは、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸとｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅの併用投与による細胞外基質分解効果をコラーゲンＩ、コラーゲンＩＩＩ、ピブロネクチン、又はエラスチンの発現量の変化を介して確認した結果である。
【図１５ｂ】図１５ａ参照。
【図１６ａ】図１６ａ及び図１６ｂは、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸとｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅの併用投与による抗腫瘍効果を組織学的に評価したもので、それぞれＭＴ染色、ｐｉｃｏｒｏｓｉｒｉｕｓ染色、及びＴＵＮＥＬ  ａｓｓａｙを行った結果である。
【図１６ｂ】図１６ａ参照。
【図１７ａ】図１７ａ〜図１７ｃは、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸとｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅの併用投与による抗腫瘍効果を膵臓がん皮下動物モデルに形成された腫瘍のサイズの変化を介して確認した結果である。
【図１７ｂ】図１７ａ参照。
【図１７ｃ】図１７ａ参照。
【図１８】図１８は、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸとｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅの併用投与による細胞外基質分解効果を膵臓がん異種移植動物モデルに形成された腫瘍組織内のコラーゲンＩ、コラーゲンＩＶ、ピブロネクチン、又はエラスチンの発現量の変化を介して確認した結果である。
【図１９】図１９は、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸとｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅの併用投与による抗腫瘍効果を組織学的に評価したもので、それぞれＨｅｍａｔｏｘｙｌｉｎ−ｅｏｓｉｎ（Ｈ＆Ｅ）染色、ＴＵＮＥＬ  ａｓｓａｙ及びｃｌｅａｖｅｄ  ｃａｓｐａｓｅ３免疫染色を行った結果である。
【図２０】図２０は、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸと免疫チェックポイント阻害剤（抗−ＰＤ−Ｌ１）の併用投与による抗腫瘍効果を黒色腫皮下動物モデルに形成された腫瘍のサイズの変化を介して確認した結果である。
【図２１】図２１は、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸと免疫チェックポイント阻害剤（抗−ＰＤ−Ｌ１）の併用投与による抗腫瘍効果を黒色腫皮下動物モデルの生存率の変化を介して確認した結果である。
【図２２】図２２は、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸと免疫チェックポイント阻害剤（抗−ＰＤ−１）の併用投与による抗腫瘍効果を黒色腫皮下動物モデルに形成された腫瘍のサイズの変化を介して確認した結果である。
【図２３】図２３は、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸと免疫チェックポイント阻害剤（抗−ＰＤ−１）の併用投与による抗腫瘍効果を黒色腫皮下動物モデルの生存率の変化を介して確認した結果である。
【図２４】図２４は、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ（1×１０９ＶＰ）と免疫チェックポイント阻害剤（抗−ＰＤ−１）の併用投与による抗腫瘍効果を黒色腫皮下動物モデルに形成された腫瘍のサイズの変化を介して確認した結果である。
【図２５】図２５は、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸと免疫チェックポイント阻害剤（抗−ＰＤ−Ｌ１、又は抗ＰＤ−１）の併用投与によるメモリー免疫反応（再発がんの治療効果）を黒色腫皮下動物モデルに形成された腫瘍のサイズの変化を介して確認した結果である。
【図２６】図２６は、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸと免疫チェックポイント阻害剤（抗−ＰＤ−１）の併用投与による抗腫瘍効果を抗がん剤耐性誘導動物モデルに形成された腫瘍のサイズの変化を介して確認した結果である。
【図２７】図２７は、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸの併用投与による胃腫瘍組織内の抗がん剤の浸透の増進効果を抗がん剤であるｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂと免疫蛍光染色を介して確認した結果である。
【図２８ａ】図２８ａ〜図２８ｃは、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸの併用投与による胃腫瘍組織内の抗がん剤の分布を評価したもので、前記図２７に示された領域を拡大して、腫瘍組織内のｍａｒｇｉｎ部位を基準に抗がん剤の分布を確認したものである。
【図２８ｂ】図２８ａ参照。
【図２８ｃ】図２８ａ参照。
【図２９ａ】図２９ａ〜図２９ｃは、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸの併用投与による胃腫瘍組織内の抗がん剤の分布を評価したもので、腫瘍組織内の血管を基準に抗がん剤の分布を確認したものである。
【図２９ｂ】図２９ａ参照。
【図２９ｃ】図２９ａ参照。
【図３０ａ】図３０ａと図３０ｂは、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸの併用投与による胃腫瘍組織内の抗がん剤の滞留時間を評価したもので、ＰＥＴイメージングを行った結果である。
【図３０ｂ】図３０ａ参照。
【発明を実施するための形態】
【００２５】
以下、本発明を詳細に説明する。
【００２６】
本発明は、ＩＬ−１２（Ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ  １２）をコードする遺伝子、及びＤｅｃｏｒｉｎ又はＲｅｌａｘｉｎをコードする遺伝子を含む組換えアデノウイルスを含む、抗がん剤補助用薬学的組成物；抗がん剤の治療効能を増進させるための前記組成物の用途；及び治療学的有効量の前記組成物と抗がん剤を併用投与する段階を含む、がんの治療方法を提供する。
【００２７】
本発明において用いられる用語の「治療」とは、本発明による薬学的組成物の投与により（腫瘍）に対する症状が好転したり有利に変更されるすべての行為を意味する。
【００２８】
本発明において「個体」とは、疾病の治療を必要とする対象を意味し、より具体的には、ヒト又は非−ヒトの霊長類、げっ歯類（ラット、マウス、ギニーピッグなど）、イヌ、ネコ、ウマ、ウシ、ヒツジ、ブタ、ヤギ、ラクダ、レイヨウなどの哺乳類を意味する。
【００２９】
本発明の薬学的組成物による治療対象の疾病である「がん（ｃａｎｃｅｒ）」は、細胞が正常な成長の限界を無視し、分裂及び成長する攻撃的な（ａｇｇｒｅｓｓｉｖｅ）特性、周囲の組織に浸透する浸透的（ｉｎｖａｓｉｖｅ）特性及び体内外の他の部位に広がる転移的（ｍｅｔａｓｔａｔｉｃ）特性を持つ細胞による疾病を総称する。本発明において、前記がんは、悪性腫瘍（ｍａｌｉｇｎａｎｔ  ｔｕｍｏｒ）、あるいは腫瘍（ｔｕｍｏｒ）と同じ意味で用いられ、固形腫瘍及び血液腫瘍（ｂｌｏｏｄ  ｂｏｒｎ  ｔｕｍｏｒ）を含んでもよい。例えば、本発明において、がんは、病変部位に応じて分類すると、胃がん、肺がん、非小細胞性肺がん、乳がん、卵巣がん、肝がん、気管支がん、鼻咽頭がん、喉頭がん、膵臓がん、膀胱がん、結腸癌、子宮頸がん、骨がん、非小細胞性骨がん、血液がん、皮膚がん、頭部又は頸部がん、子宮がん、直腸がん、肛門付近がん、結腸がん、卵管がん、子宮内膜がん、膣がん、陰門がん、ホジキン病、食道がん、小腸がん、内分泌腺がん、甲状腺がん、副甲状腺がん、副腎がん、軟組織肉腫、尿道がん、陰茎がん、前立腺がん、慢性又は急性白血病、リンパ球リンパ腫、腎臓又は輸尿管がん、腎細胞癌腫、腎骨盤癌腫、唾液腺がん、肉腫がん、偽性粘液腫、肝芽腫、精巣がん、膠芽腫、口唇がん、卵巣生殖細胞腫瘍、基底細胞がん、多発性骨髄腫、胆のうがん、脈絡膜黒色腫、ファーター膨大部がん、腹膜がん、舌がん、小細胞がん、小児リンパ腫、神経芽細胞腫、十二指腸がん、尿管がん、星状細胞腫、髄膜腫、腎盂がん、外陰がん、胸腺がん、中枢神経系腫瘍、１次中枢神経系リンパ腫、脊髄腫瘍、脳幹神経膠腫及び下垂体腺腫から構成された群から選ばれるいずれか一つであってもよく、又は病理学的特性によって分類する場合、再発がん又は抗がん剤−耐性がんであってもよいが、これらに限定されるものではない。
【００３０】
本発明に用いられる用語の抗がん剤補助用薬学的組成物は、既存のがん治療物質と併用されてがんの治療効能を向上させることを意味する。一例として、抗がん剤の治療学的有効投与量を減少させて抗がん剤による副作用を最小化させたり、腫瘍の成長を有意的に阻害させることを示す。前記抗がん剤補助用薬学組成物は、抗がん補助剤又は抗がん治療補助剤などと相互交換的に使用可能である。
【００３１】
本発明の一具体例において、前記抗がん剤は、代謝拮抗剤、アルキル化剤、トポイソメラーゼ拮抗剤、微小管拮抗剤、抗がん抗生剤、植物由来のアルカロイド、抗体抗がん剤又は分子標的抗がん剤であってもよく、より具体的には、タキソール、ナイトローゼンマスタード、イマチニブ、オキサリプラチン、リツキシマブ、エルロチニブ、トラスツズマブ、ゲフィチニブ、ボルテゾミブ、スニチニブ、カルボプラチン、ソラフェニブ、ベバシズマブ、シスプラチン、セツキシマブ、ビスクムアルブム、アスパラギナーゼ、トレチノイン、ヒドロキシカバマイド、ダサチニブ、エストラムスチン、ゲムツズマブオゾガマイシン、イブリツモマブチウキセタン、ヘプタプラチン、メチルアミノレブリン酸、アムサクリン、アレムツズマブ、プロカルバジン、アルプロスタジル、硝酸ホルミウムキトサン、ゲムシタビン、ドキシフルリジン、ペメトレキセド、テガフール、カペシタビン、ギメラシル、オテラシル、アザシチジン、メトトレキサート、ウラシル、シタラビン、フルオロウラシル、フルダラビン、エノシタビン、デシタビン、メルカプトプリン、チオグアニン、クラドリビン、カルモファー、ラルティトレックセッド、ドセタキセル、パクリタキセル、イリノテカン、ベロテカン、トポテカン、ビノレルビン、エトポシド、ビンクリスチン、ビンブラスチン、テニポシド、ドキソルビシン、イダルビシン、エピルビシン、ミトキサントロン、ミトマイシン、ブレオマイシン、ダウノルビシン、ダクチノマイシン、ピラルビシン、アクラウビシン、ペプロマイシン、テモゾロミド、ブスルファン、イホスファミド、シクロホスファミド、メルパラン、アルトレタミン、ダカルバジン、チオテパ、ニムスチン、クロラムブシル、ミトラクトール、ロムスチン及びカルムスティンイル、イメチニブ、ゲフィチニブ、エルトチニブ、トラスツズマブ、ロシレチニブ、ネシツムマブ、エバロリムス、ラムシルマブ、ダコミチニブ、フォレチニブ、ペムブロリズマブ、イピリムマブ、ニボルマブ、ダブラフェニブ、ベリパリブ、セリチニブ、カルムスチン、シクロホスファミド、イホスファミド、イキサベピロン、メルファラン、メルカプトプリン、ミトキサントロン、ティーエスワンであってもよいが、これらに限定されるものではない。
【００３２】
本発明の薬学的組成物に含まれる、腫瘍選択的殺傷組み換えアデノウイルスは、ＩＬ−１２をコードする遺伝子；細胞外基質分解因子であるＤｅｃｏｒｉｎ又はＲｅｌａｘｉｎをコードする遺伝子を含むことを特徴とする。
【００３３】
本発明の組換えアデノウイルスとしては、当業界で広く知られているｏｎｃｏｌｙｔｉｃアデノウイルスが用いられることができる。一具体例として、前記組換えアデノウイルスは、活性のＥ１Ａ遺伝子及び非活性化されたＥ１Ｂ  １９遺伝子、Ｅ１Ｂ  ５５遺伝子又はＥ１Ｂ  １９／Ｅ１Ｂ  ５５遺伝子を含む。本明細書において、遺伝子と関連して用いられる用語の非活性化は、その遺伝子の転写及び／又は解毒が正常になされていないため、その遺伝子によってコーディングされる正常なタンパク質の機能が表れないことを意味する。例えば、非活性化Ｅ１Ｂ  １９遺伝子は、その遺伝子に変異（置換、付加、部分的欠失又は全体的欠失）が発生して活性のＥ１Ｂ  １９  ｋＤａタンパク質を生成できない遺伝子である。Ｅ１Ｂ  １９が欠失される場合には、細胞枯死能を増加させることができ、Ｅ１Ｂ  ５５遺伝子が欠失した場合には、腫瘍細胞の特異性を有するようにする（参照：特許出願第２００２−２３７６０号及び図１）。特に、このような腫瘍選択的殺傷アデノウイルスは、一次感染細胞に対して治療効果を示すだけでなく、増殖されたウイルスが周囲の腫瘍細胞に二次的にそして三次的に連鎖的に感染して腫瘍細胞を殺傷することにより、その治療効果がドミノ現象のように続けて広がっていくことができるため、抗腫瘍効果が顕著に増大されることができる。本明細書において、ウイルスゲノム配列と関連して用いられる用語の欠失は、該当配列が完全に欠失したものだけではなく、部分的に欠失したものも含む意味を持つ。
【００３４】
本発明の一具現例によれば、前記組換えアデノウイルスは、Ｅ１Ａ領域を含み、Ｅ１Ｂ領域、すなわち、Ｅ１Ｂ  １９及び５５  ｋＤａ（Ｅ１Ｂ）が欠失されており、及び／又はＥ３領域（Ｅ３）が欠失されている。Ｅ１Ａ遺伝子を含む組換えアデノウイルスは、複製可能な特性を持つようになる。前記ＩＬ−１２をコードする遺伝子は、組換えアデノウイルスの欠失されたＥ１領域に挿入され、前記Ｄｅｃｏｒｉｎ又はＲｅｌａｘｉｎをコードする遺伝子は、Ｅ１又はＥ３領域に挿入されてもよいが、前記遺伝子の挿入部位は、適宜変更されてもよい。一方、前記Ｅ１Ａ部位は、Ｅ１Ａ遺伝子配列に位置したＲｂ結合部位をコーディングするヌクレオチド配列の中で４５番目のＧｌｕ残基がＧｌｙに置換された変異及び１２１−１２７番目のアミノ酸配列が、全体的にＧｌｙに置換された変異を有する。
【００３５】
一方、前記アデノウイルス以外の他のウイルスも、本発明で用いられることができる。本発明に用いられることができるウイルスは、好ましくは、アデノ−関連ウイルス（Ａｄｅｎｏ  ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ  ｖｉｒｕｓｅｓ：ＡＡＶ）（Ｌａｓｈｆｏｒｄ  ＬＳ．，ｅｔ  ａｌ．，  Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒａｐｙ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ  ａｎｄ  Ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎｓ  Ｅｄ．Ａ．Ｍｅａｇｅｒ（１９９９）），レトロウイルス（Ｇｕｎｚｂｕｒｇ  ＷＨ，ｅｔ  ａｌ．，  Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒａｐｙ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ  ａｎｄ  Ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎｓ  Ｅｄ．Ａ.Ｍｅａｇｅｒ（１９９９）），レンチウイルス（Ｗａｎｇ  Ｇ．ｅｔ  ａｌ．，  Ｊ.Ｃｌｉｎ.Ｉｎｖｅｓｔ.１０４（１１）：Ｒ５５−６２（１９９９）），単純ヘルペスウイルス（Ｃｈａｍｂｅｒ  Ｒ．，ｅｔ  ａｌ．，  Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃｉｄ．Ｓｃｉ  ＵＳＡ９２：１４１１−１４１５（１９９５）），ワクシニアウイルス（Ｐｕｈｌｍａｎｎ  Ｍ．ｅｔ  ａｌ．，  Ｈｕｍａｎ  Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒａｐｙ１０：６４９−６５７（１９９９）），レオウイルス、ポックスウイルス（ＧＣＥ,ＮＪＬ,Ｋｒｕｐａ  Ｍ，Ｅｓｔｅｂａｎ  Ｍ.，  Ｔｈｅ  ｐｏｘｖｉｒｕｓ  ｖｅｃｔｏｒｓ  ＭＶＡ  ａｎｄ  ＮＹＶＡＣ  ａｓ  ｇｅｎｅ  ｄｅｌｉｖｅｒｙ  ｓｙｓｔｅｍｓ  ｆｏｒ  ｖａｃｃｉｎａｔｉｏｎ  ａｇａｉｎｓｔ  ｉｎｆｅｃｔｉｏｕｓ  ｄｉｓｅａｓｅｓ  ａｎｄ  ｃａｎｃｅｒ  Ｃｕｒｒ  Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒ８（２）：９７−１２０（２００８）），セムリキフォーリスターウイルス、ポリマー（Ｈｗａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．，  Ｉｎ  ｖｉｔｒｏ  ａｎｄ  Ｉｎ  ｖｉｖｏ  Ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ  Ｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ  ｏｆ  Ｈｕｍａｎ  Ｏｓｔｅｏｐｒｏｔｅｇｅｒｉｎ  Ｇｅｎｅ  ｕｓｉｎｇ  Ｎｏｎ−Ｖｉｒａｌ  Ｐｏｌｙｍｅｒ  Ｃａｒｒｉｅｒｓ．，  Ｋｏｒｅａｎ  Ｊ.Ｂｏｎｅ  Ｍｅｔａｂ．１３（２）：１１９−１２８（２００６）），リポソーム（Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｖｏｌ  １９９，Ｓ．Ｃ．Ｂａｓｕ  ａｎｄ  Ｍ．Ｂａｓｕ（Ｅｄｓ．），Ｈｕｍａｎ  Ｐｒｅｓｓ  ２００２）、ナノ物質又はニオソームに適用されてもよいが、これらに限定されるものではない。
【００３６】
本発明で用いられる組換えアデノウイルスは、動物細胞、好ましくは、哺乳動物細胞で作動可能なプロモーターを含む。本発明に適したプロモーターは、哺乳動物ウイルスに由来するプロモーター及び哺乳動物細胞のゲノムに由来するプロモーターを含み、例えば、ＣＭＶ（Ｃｙｔｏｍｅｇａｌｏｖｉｒｕｓ）プロモーター、Ｕ６プロモーター、及びＨ１プロモーター、ＭＬＶ（Ｍｕｒｉｎｅ  Ｌｅｕｋｅｍｉａ  Ｖｉｒｕｓ）ＬＴＲ（Ｌｏｎｇ  ｔｅｒｍｉｎａｌ  ｒｅｐｅａｔ）プロモーター、アデノウイルス初期プロモーター、アデノウイルス後期プロモーター、ワクシニアウイルス７.５Ｋプロモーター、ＳＶ４０プロモーター、ＨＳＶのｔｋプロモーター、ＲＳＶプロモーター、ＥＦ１アルファプロモーター、メタロチオネインプロモーター、ベータ−アクチンプロモーター、ヒトＩＬ−２遺伝子のプロモーター、ヒトＩＦＮ遺伝子のプロモーター、ヒトＩＬ−４遺伝子のプロモーター、ヒトリンフォトキシン遺伝子のプロモーター、ヒトＧＭ−ＣＳＦ遺伝子のプロモーター、ｉｎｄｕｃｉｂｌｅプロモーター、がん細胞特異的プロモーター（例えば、ＴＥＲＴプロモーター、ｍｏｄｉｆｉｅｄ  ＴＥＲＴプロモーター、ＰＳＡプロモーター、ＰＳＭＡプロモーター、ＣＥＡプロモーター、Ｓｕｒｖｉｖｉｎプロモーター、Ｅ２Ｆプロモーター、ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｅ２Ｆプロモーター、ＡＦＰプロモーター、ｍｏｄｉｆｉｅｄ  ＡＦＰプロモーター、Ｅ２Ｆ−ＡＦＰ  ｈｙｂｒｉｄプロモーター、及びＥ２Ｆ−ＴＥＲＴ  ｈｙｂｒｉｄプロモーター）、及び組織特異的プロモーター（例えば、アルブミンプロモーター）、ヒトホスホグリセリン酸キナーゼ（ＰＧＫ）プロモーター、マウスホスホグリセリン酸キナーゼ（ＰＧＫ）プロモーターを含むが、これに限定されるものではない。最も好ましくは、ＣＭＶプロモーターである。トランス遺伝子を発現させるための発現コンストラクトでトランス遺伝子のダウンストリームにポリアデニル化配列が結合されていることが好ましい。前記ポリアデニル化配列は、ウシ成長ホルモンターミネーター（Ｇｉｍｍｉ,Ｅ．Ｒ．,ｅｔ  ａｌ．，  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．１７：６９８３−６９９８（１９８９）），ＳＶ４０由来のポリアデニル化配列（Ｓｃｈｅｋ，Ｎ，ｅｔ  ａｌ．，  Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ．１２：５３８６−５３９３（１９９２）），ＨＩＶ−１  ｐｏｌｙＡ（Ｋｌａｓｅｎｓ，Ｂ．Ｉ．Ｆ．，ｅｔ  ａｌ．，  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．２６：１８７０−１８７６（１９９８））、 β-グロビンｐｏｌｙＡ（Ｇｉｌ，Ａ.，ｅｔ  ａｌ，  Ｃｅｌｌ  ４９：３９９−４０６（１９８７）），ＨＳＶ  ＴＫ  ｐｏｌｙＡ（Ｃｏｌｅ，Ｃ．Ｎ．ａｎｄ  Ｔ．Ｐ．Ｓｔａｃｙ，Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．５：２１０４−２１１３（１９８５））又はポリオーマウイルスｐｏｌｙＡ（Ｂａｔｔ，Ｄ.Ｂ  ａｎｄ  Ｇ．Ｇ．Ｃａｒｍｉｃｈａｅｌ，Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．１５：４７８３−４７９０（１９９５））を含むが、これに限定されるものではない。
【００３７】
本発明で用いられる組換えアデノウイルスにおいて、ＩＬ−１２遺伝子配列と、Ｄｅｃｏｒｉｎ又はＲｅｌａｘｉｎ遺伝子配列は、プロモーターに作動的に連結されている。本明細書において、用語の「作動的に結合された」とは、核酸発現調節配列（例えば、プロモーター、シグナル配列、又は転写調節因子結合位置のアレイ）と他の核酸配列との間の機能的な結合を意味し、これにより前記調節配列は、前記他の核酸配列の転写及び／又は翻訳を調節するようになる。
【００３８】
本発明の組換えアデノウイルスは、選択標識として抗生剤耐性遺伝子及びレポーター遺伝子（例えば、ＧＦＰ（ｇｒｅｅｎ  ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ  ｐｒｏｔｅｉｎ）、ルシフェラーゼ及び β-グルクロニダーゼ）をさらに含んでもよい。前記抗生剤耐性遺伝子は、当業界で通常的に用いられる抗生剤耐性遺伝子を含み、例えば、アンピシリン、ゲンタマイシン、カルベニシリン、クロラムフェニコール、ストレプトマイシン、カナマイシン、ジェネティシン、ネオマイシン及びテトラサイクリンに対する耐性遺伝子があり、好ましくは、ネオマイシン耐性遺伝子である。前記選択標識は、別途のプロモーター又はＩＲＥＳ（ｉｎｔｅｒｎａｌ  ｒｉｂｏｓｏｍｅ  ｅｎｔｒｙ  ｓｉｔｅ）、２Ａ  ｓｙｓｔｅｍ（Ｆ２Ａ  ｓｙｓｔｅｍ、Ｐ２Ａ  ｓｙｓｔｅｍ、Ｔ２Ａ  ｓｙｓｔｅｍ）によって連結された発現システムによっても発現されることができ、本発明で用いることができるＩＲＥＳは、いくつかの種のウイルス及び細胞のＲＮＡｓで発見される調節配列である。
【００３９】
本発明で用いられる、「ＩＬ−１２をコードする遺伝子」は、ＩＬ−１２Ａ（ｐ３５）遺伝子配列及びＩＬ−１２Ｂ（ｐ４０）遺伝子配列を含み、Ｖｉｒａｌ  Ｐｒｏｔｅｉｎの効果的な翻訳のために、ＩＬ−１２Ａ（ｐ３５）遺伝子配列とＩＬ−１２Ｂ（ｐ４０）遺伝子配列の間にＩＲＥＳ配列を含んでもよい。好ましくは、前記ＩＬ−１２Ａ（ｐ３５）遺伝子配列は配列番号１、前記ＩＬ−１２Ｂ（ｐ４０）遺伝子配列は配列番号２、前記ＩＲＥＳ配列は配列番号３の塩基配列からなることができる。前記ＩＬ−１２は、Ｔ  ｈｅｌｐｅｒ  １細胞の分化を誘導し、細胞毒性Ｔリンパ球及びナチュラルキラー細胞の細胞毒性を活性化させることにより抗腫瘍免疫を増加させる役割を果たす。
【００４０】
本発明で用いられる、「Ｄｅｃｏｒｉｎ又はＲｅｌａｘｉｎをコードする遺伝子」は、好ましくは、前記Ｄｅｃｏｒｉｎ遺伝子配列は配列番号４、前記Ｒｅｌａｘｉｎ遺伝子配列は配列番号５からなることができる。治療効果が比較的低い殆どの腫瘍は、細胞外基質（ｅｘｔｒａ  ｃｅｌｌｕｌａｒ  ｍａｔｒｉｘ；ＥＣＭ）の発達により、アデノウイルスが腫瘍組織に均等に拡散されずに、投与した局所部位にとどまる場合が頻繁である。前記Ｄｅｃｏｒｉｎ又はＲｅｌａｘｉｎは細胞外基質の構成成分、例えば、コラーゲンＩ、コラーゲンＩＩＩ、ピブロネクチン、又はエラスチンなどを分解して、腫瘍組織内の治療物質の拡散と分布を増加させる役割を果たし（図２参照）、さらにＤｅｃｏｒｉｎの場合には、それ自体が抗腫瘍効果を持っている。特に、前記効果は、腫瘍選択的殺傷組換えアデノウイルスそれ自体だけでなく、併用投与される物質の拡散及び分布にも影響を及ぼすことができるため、既存のがん治療物質との併用により、抗腫瘍効果を極大化させることに寄与し得る。
【００４１】
すなわち、本発明の薬学的組成物は、このような一切の構成を含むことにより、組換えアデノウイルスそれ自体に起因する腫瘍選択的殺傷効能だけでなく、前記組成物と併用投与される抗がん剤の腫瘍組織内の浸透を継続的に向上させて、がんの治療効果を極大化させたという点において技術的特徴がある。つまり、遺伝子治療の効能は、そのまま維持しながら、従来の抗がん剤による治療効能を著しく増加させることにより、究極的には完治に近い治療効能を得ることができる。
【００４２】
前記遺伝子配列は、実質的な同一性（ｓｕｂｓｔａｎｔｉａｌ  ｉｄｅｎｔｉｔｙ）又は実質的な類似性（ｓｕｂｓｔａｎｔｉａｌ  ｓｉｍｉｌａｒｉｔｙ）を示す遺伝子配列も含んでいるものと解釈される。前記実質的な同一性は、前記本発明の配列と任意の他の配列を最大限に対応するように整列し、当業界で通常的に用いられるアルゴリズムを用いて整列された配列を分析した場合に、最小８０％の相同性、より好ましくは、９０％の相同性、最も好ましくは、９５％の相同性を示す配列を意味する。前記実質的な類似性は、１つ以上の塩基の欠損又は挿入のような遺伝子配列の変化が、組換えアデノウイルスベクターとの相同性組換えを最小化する本発明の目的に影響を及ぼさない変化を総称する。したがって、本発明の遺伝子配列は、例示された配列番号１〜配列番号５に限定されず、本発明が目的とする最終生成物の活性に実質的に影響を与えない限り、本発明の権利範囲に含まれると解釈される。
【００４３】
また、本発明の薬学的組成物は、免疫チェックポイント阻害剤（Ｉｍｍｕｎｅ  ｃｈｅｃｋｐｏｉｎｔ  ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ）と同時に、別途に、又は順次的に投与されてもよい。
【００４４】
本発明で用いられる用語の「免疫チェックポイント」は、免疫細胞の表面で免疫反応の刺激又は抑制信号を誘発するのに関与するタンパク質を総称し、がん細胞は、このような免疫チェックポイントを介して免疫反応の刺激及びこれによるがん細胞の抑制がうまく進行されないように操作して、免疫体系の監視網を回避することになり、すなわち、抗腫瘍免疫反応を無力化させる。好ましくは、前記免疫チェックポイントタンパク質は、ＰＤ−１（ｐｒｏｇｒａｍｍｅｄ  ｃｅｌｌ  ｄｅａｔｈ−１）、ＰＤ−Ｌ１（ｐｒｏｇｒａｍｍｅｄ  ｃｅｌｌ  ｄｅａｔｈ−ｌｉｇａｎｄ  １）、ＰＤ−Ｌ２（ｐｒｏｇｒａｍｍｅｄ  ｃｅｌｌ  ｄｅａｔｈ−ｌｉｇａｎｄ  ２）、ＣＤ２７（ｃｌｕｓｔｅｒ  ｏｆ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ２７）、ＣＤ２８（ｃｌｕｓｔｅｒ  ｏｆ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ２８）、ＣＤ７０（ｃｌｕｓｔｅｒ  ｏｆ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ７０）、ＣＤ８０（ｃｌｕｓｔｅｒ  ｏｆ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ８０、ａｌｓｏ  ｋｎｏｗｎ  ａｓ  Ｂ７−１）、ＣＤ８６（ｃｌｕｓｔｅｒ  ｏｆ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ８６，  ａｌｓｏ  ｋｎｏｗｎ  ａｓ  Ｂ７−２）、ＣＤ１３７（ｃｌｕｓｔｅｒ  ｏｆ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  １３７）、ＣＤ２７６（ｃｌｕｓｔｅｒ  ｏｆ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ２７６）、ＫＩＲｓ（ｋｉｌｌｅｒ−ｃｅｌｌ  ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ−ｌｉｋｅ  ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ）、ＬＡＧ３（ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅ−ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ  ｇｅｎｅ  ３）、ＴＮＦＲＳＦ４（ｔｕｍｏｒ  ｎｅｃｒｏｓｉｓ  ｆａｃｔｏｒ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｓｕｐｅｒｆａｍｉｌｙ，  ｍｅｍｂｅｒ  ４，  ａｌｓｏ  ｋｎｏｗｎ  ａｓ  ＣＤ１３４）、ＧＩＴＲ（ｇｌｕｃｏｃｏｒｔｉｃｏｉｄ−ｉｎｄｕｃｅｄ  ＴＮＦＲ−ｒｅｌａｔｅｄ  ｐｒｏｔｅｉｎ）、ＧＩＴＲＬ（ｇｌｕｃｏｃｏｒｔｉｃｏｉｄ−ｉｎｄｕｃｅｄ  ＴＮＦＲ−ｒｅｌａｔｅｄ  ｐｒｏｔｅｉｎ  ｌｉｇａｎｄ）、４−１ＢＢＬ（４−１ＢＢ  ｌｉｇａｎｄ）、又はＣＴＬＡ−４（ｃｙｔｏｌｙｔｉｃ  Ｔ  ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅ  ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ  ａｎｔｉｇｎ−４）であってもよいが、これらに制限されるものではない。
【００４５】
免疫チェックポイント阻害剤は、このような免疫チェックポイントタンパク質を標的とする拮抗剤又は抗体であって、免疫反応を刺激させるタンパク質を増進させたり、免疫反応を抑制するタンパク質を遮断して免疫反応による抗腫瘍効果を示す。免疫チェックポイント阻害剤は、一般的な細胞毒性抗がん剤よりも嘔吐や脱毛などの副作用が少なく、治療効果が大きいという長所に加えて、記憶機能に優れた免疫反応体系を用いるため、薬物投与を中止した後にも治療効果が長く持続され得る。しかし、免疫チェックポイント阻害剤は、免疫抑制環境では、その治療効果が顕著に減少し、特に、一部の患者では、腫瘍の再発が報告されたことがある。
【００４６】
一方、腫瘍に対する免疫遺伝子治療法は、過去数十年の間に有望なアプローチとして発展してきたが、腫瘍もこれらの免疫の監視体系を回避するための他の多くの戦略を立ててきた。これらの障害を克服し、抗腫瘍免疫の効果を増進させるために、本発明は、前述したように、ＩＬ−１２及び細胞外基質分解因子を含む腫瘍選択的殺傷アデノウイルスシステムを構築し（ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＤＣＮ、ＲｄＢ／ＩＬ１２／ＲＬＸ）、これとともに免疫チェックポイント阻害剤を併用することにより、本発明によるシステムがより効果的に作用できる環境を提供した。すなわち、抗腫瘍免疫反応を無力化させる腫瘍細胞の回避機序を遮断することにより、免疫遺伝子治療の効能を極大化させた。このような顕著な効果によって、本発明の薬学的組成物は、原発性がんだけでなく、従来の抗がん剤の限界として指摘されてきた再発がん及び抗がん剤耐性がんの治療に対しても有効な効果を示した。
【００４７】
本発明の薬学的組成物は、有効成分に加えて、薬学的に許容される担体を含んでもよい。このとき、薬学的に許容される担体は、製剤時に通常的に用いられるものであって、ラクトース、デキストロース、スクロース、ソルビトール、マンニトール、デンプン、アカシアゴム、リン酸カルシウム、アルギネート、ゼラチン、ケイ酸カルシウム、微結晶セルロース、ポリビニルピロリドン、セルロース、水、シロップ、メチルセルロース、メチルヒドロキシベンゾアート、プロピルヒドロキシベンゾアート、タルク、ステアリン酸マグネシウム、及びミネラルオイルなどを含むが、これに限定されるものではない。また、前記成分以外に潤滑剤、湿潤剤、甘味剤、香味剤、乳化剤、懸濁剤、保存剤などをさらに含んでもよい。適切な薬剤学的に許容される担体及び製剤は、Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ'ｓ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ（１９ｔｈ  ｅｄ．，  １９９５）に詳細に記載されている。
【００４８】
本発明の薬学的組成物は、目的とする方法によって経口投与したり、非経口投与（例えば、静脈内、皮下、腹腔、肺腔内又は局所に適用）することができ、本発明の一具現例によると、本発明による薬学的組成物は、好ましくは、腫瘍内（ｉｎｔｒａｔｕｍｏｒａｌｌｙ）に直接投与されてもよい。投与量は、患者の状態及び体重、疾病の程度、薬物形態、投与経路、及び時間によって異なるが、当業者によって適切に選択されてもよい。
【００４９】
本発明の薬学的組成物は、薬学的に有効な量で投与する。本発明において、薬学的に有効な量は、医学的治療に適用可能な合理的な恩恵／リスク比で疾患を治療するのに十分な量を意味し、有効容量レベルは、患者の疾患の種類、重症度、薬物の活性、薬物の敏感度、投与時間、投与経路及び排出比率、治療期間、同時に用いられる薬物を含む要素及びその他の医学分野でよく知られている要素に応じて決定されてもよい。本発明に他の薬学的組成物は、個別治療剤で投与したり、他の治療剤と併用して投与されてもよく、従来の治療剤とは順次的又は同時に投与されてもよく、単一又は多重投与されてもよい。前記要素をすべて考慮して副作用なしに最小限の量で最大の効果を得ることができる量を投与することが重要であり、これは当業者によって容易に決定されてもよい。
【００５０】
一方、本発明の他の態様として、本発明は、ＩＬ−１２（Ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ  １２）をコードする遺伝子、及びＤｅｃｏｒｉｎ又はＲｅｌａｘｉｎをコードする遺伝子を含む組換えアデノウイルスを含み、免疫チェックポイント阻害剤と併用投与される、がん治療用薬学的組成物；がんの治療のための組成物の用途；及び前記組成物及び免疫チェックポイント阻害剤を個体に併用投与する段階を含むがんの治療方法を提供する。
【００５１】
本発明によるがん治療用薬学的組成物などは、前述した抗がん剤補助用薬学的組成物で記述したことがある技術的構成を用いるため、この両者の間に共通の内容は、本明細書の過度な複雑性を避けるため、その記載を省略する。
【００５２】
以下、本発明の理解を助けるために好ましい実施例を提示する。しかし、下記実施例は、本発明をより容易に理解するために提供されるものであるだけで、下記実施例により本発明の内容が限定されるものではない。
【００５３】
［実施例］
実施例１．腫瘍選択的殺傷アデノウイルスの作製
１−１．ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮ及びＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸの作製
アデノウイルスＥ３部位にｄｅｃｏｒｉｎ又はｒｅｌａｘｉｎを発現するアデノウイルスシャトルベクターを作製するために、ｄｅｃｏｒｉｎ又はｒｅｌａｘｉｎをコードする配列をｐＳＰ７２  Ｅ３／ＣＭＶ−ｐｏｌＡアデノウイルスＥ３シャトルベクター（Ｙｕｎ  ＣＯ．ｅｔ  ａｌ．，  Ｃａｎｃｅｒ  Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒ，２００５.１２（１）：ｐ．６１−７１）にそれぞれクローニングして、ｐＳＰ７２  Ｅ３／ＤＣＮとｐＳＰ７２  Ｅ３／ＲＬＸ  Ｅ３シャトルベクターを作製した。相同組換えのために、前記ｐＳＰ７２  Ｅ３／ＤＣＮとｐＳＰ７２  Ｅ３／ＲＬＸと、それぞれアデノウイルスベクトル全体ベクターであるｐｄＥ１を大腸菌ＢＪ５１８３に同時形質転換させ、ｐｄＥ１／ＤＣＮとｐｄＥ１／ＲＬＸアデノウイルスプラスミドを作製した。
【００５４】
ＩＬ−１２を発現するＡｄ  Ｅ１シャトルベクターを構築するために、ｐＣＡ１４／ＩＬ１２（Ｌｅｅ  ＹＳ．ｅｔ  ａｌ．，  Ｃｌｉｎ  Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ，２００６．１２（１９）：ｐ．５８５９−６８）からマウスＩＬ−１２遺伝子を切り取り、これをｐＸＣ１ＲｄＢ  Ｅ１シャトルベクターにサブクローニングして、ｐＸＣ１ＲｄＢ／ＩＬ１２Ｅ１シャトルベクターを作製した。相同組換えのために、前記ｐＸＣ１ＲｄＢ／ＩＬ１２Ｅ１シャトルベクターとｐｄＥ１／ＤＣＮ又はｐｄＥ１／ＲＬＸを大腸菌ＢＪ５１８３に同時形質転換させ、これによりｐＲｄＢ／ＩＬ１２／ＤＣＮとｐＲｄＢ／ＩＬ１２／ＲＬＸ  Ａｄベクターを作製した。アデノウイルスの精製、滴定（ｔｉｔｒａｔｉｏｎ）及び品質分析は、先行技術に基づいて行った（Ｌｅｅ  ＹＳ．ｅｔ  ａｌ．，  Ｃｌｉｎ  Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ，２００６．１２（１９）：ｐ．５８５９−６８，Ｃｈｏｉ  ＫＪ．ｅｔ  ａｌ．，  Ｇｅｎｅ  Ｔｈｅｒ，２０１２．１９（７）：ｐ．７１１−２３）。
【００５５】
実施例２． Ｄｅｃｏｒｉｎを発現する腫瘍選択的殺傷アデノウイルスと抗がん剤の併用
２−１．膵臓がん細胞に対する殺傷能の確認
Ｒｅｌａｘｉｎを発現する腫瘍選択的殺傷アデノウイルス（以下、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮという）と膵臓がんの標準治療剤であるｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅを併用投与した場合、膵臓がん細胞に対する殺傷能が著しく増加できるかを検証した。このために、ヒトの膵臓がん細胞株であるＰＡＮＣ−１、ＭＩＡ  ＰａＣａ−２、及びＡｓＰＣ−１に本発明のＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮをそれぞれ０.５又は２  ＭＯＩの力価で感染させ、これとともにｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ（０.０５、０.２、１、２、５、２０、又は１００μｇ／ｍｌ）をともに処理した後、細胞死滅の程度をＭＴＴ  ａｓｓａｙを介して観察した。
【００５６】
図４に示すように、ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅを単独で処理した場合、ＰＡＮＣ−１、ＭＩＡ  ＰａＣａ−２、及びＡｓＰＣ−１の全部で、高濃度の１００μｇ／ｍｌの濃度でも最大３０％未満の殺傷能のみが観察されたが、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮをｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅと併用投与した場合、０.２μｇ／ｍｌの低いｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ濃度でも前記膵臓がん細胞株に対する殺傷能が著しく増加した。特に、このような効果は、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮを単独投与した場合に比べても優れており、組換えアデノウイルスの濃度が高くなるほど（２  ＭＯＩ）、その効果はより顕著であった。したがって、前記実験結果は、既存の抗がん剤と本発明によるＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮの併用投与は、抗腫瘍治療のための抗がん剤の投与容量を減らすことができるだけでなく、より強力な抗腫瘍効果を示すことを示唆するものである。
【００５７】
２−２．膵臓がん同所移植動物モデルにおける抗腫瘍効果の確認
（１）腫瘍のサイズの変化の確認
膵臓がん同所移植動物モデルを構築するために、ｈｕｍａｎ  ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ  ｃａｎｃｅｒ  ｃｅｌｌ  ｌｉｎｅであるＭＩＡ  ＰａＣａ−２−Ｆｌｕｃを選定して実験に使用した。腫瘍細胞をマウスの膵臓に注入し、これから２週間後、ＩＶＩＳイメージングマシンを介して腫瘍の生成を確認した。以後、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮを２×１０１０  ＶＰ／５００μＬずつ２日間隔で腹腔内に３回投与し、ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅは、１００ｍｇ／ｋｇで一週間に２回ずつ、総３週間投与した。一方、陰性対照群としてはＰＢＳ単独投与群を使用した。ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮ投与前の腫瘍のサイズ及びｐｈｏｔｏｎ値をＩＶＩＳイメージングマシンを用いて確認し、投与後１週間、２週間、及び３週間目、腫瘍のサイズの変化を定量的に比較した。
【００５８】
図５に示すように、陰性対照群（ＰＢＳ）及びｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ単独投与群（ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ）では、腫瘍のサイズの急激な増加が観察された反面、併用投与群（Ａｄ＋  ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ）では、これらの腫瘍の成長が鈍化されただけでなく（１週間及び２週間）、さらに３週間目には、むしろ、腫瘍のサイズが著しく減少されることを確認できた。前記実験の結果は、既存の抗がん剤とＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮの併用投与による抗腫瘍効果は、これら夫々の単独投与に比べて非常に顕著であることを示すものである。
【００５９】
（２）抗腫瘍効果の組織学的評価
前記実験における抗腫瘍効果を組織学的に評価した。まず、ｈｕｍａｎ  ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ  ｃａｎｃｅｒ  ｃｅｌｌ  ｌｉｎｅであるＭＩＡ  ＰａＣａ−２−Ｆｌｕｃをマウス膵臓に注入して、腫瘍の形成を誘導した後、ＰＢＳ、ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮ、又はｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ＋ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮをそれぞれ投与した。以後、前記腫瘍組織を回収してＨｅｍａｔｏｘｙｌｉｎ−ｅｏｓｉｎ（Ｈ＆Ｅ）染色、ＰＣＮＡ免疫組織染色を行った。また、腫瘍細胞の死滅程度を確認するためにＴＵＮＥＬ  ａｓｓａｙを行い、前記抗腫瘍効果が、腫瘍組織内に存在するアデノウイルスの複製によるものかを確認するために、アデノウイルスのＥ１Ａタンパク質に対する抗体を用いた免疫組織染色を行った。
【００６０】
図６に示すように、ＰＢＳ又はｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ単独投与群では、細胞壊死が殆ど観察されなかった反面、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮ単独、又はｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ＋ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮを併用投与した場合、腫瘍内の細胞の壊死が非常に活発に進行された。特に、ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅとＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮを併用投与した群は、腫瘍の大部分で細胞壊死が起こったことを確認した。また、前記結果と同様に、ＰＢＳ又はｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ単独投与群に比べて、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮ単独、又はｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ＋ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮ投与群で腫瘍細胞の増殖が顕著に減少されることをＰＣＮＡ免疫組織染色を介して観察し、ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅとＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮを併用投与した群では、その効果が最も顕著であった。併せて、細胞死滅程度もまたＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮ単独、又はｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ＋ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮ投与群、特に、ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅとＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮを併用投与した群で高レベルの細胞死滅を確認した。最後に、アデノウイルスのＥ１Ａタンパク質に対する抗体を用いた免疫組織染色を行った結果、ＰＢＳ又はｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅのみ投与したマウスの腫瘍に比べて、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮ単独、又はｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ＋ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮを投与したマウスの腫瘍でアデノウイルスのＥ１Ａタンパク質が著しく増加したことを確認できた。
【００６１】
これらの結果を総合してみると、ｄｅｃｏｒｉｎによってＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮの腫瘍組織内分布が増加し、これによって腫瘍選択的殺傷アデノウイルスの活発な複製及び腫瘍細胞に対する殺傷が誘導される。また、腫瘍組織内に分布するＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮの活発な増殖によってｄｅｃｏｒｉｎの遺伝子が高発現されることによって、再び腫瘍細胞の死滅がさらに促進され、併用投与された抗がん剤の効能を増進させて強力な抗腫瘍効果を引き起こすことが分かる。
【００６２】
実施例３．Ｄｅｃｏｒｉｎを発現する腫瘍選択的殺傷アデノウイルスと免疫チェックポイント阻害剤の併用
３−１．黒色腫皮下動物モデルにおける抗腫瘍効果の確認
黒色腫細胞株であるＢ１６−Ｆ１０マウス皮下に１匹あたり５×１０５ｃｅｌｌs／５０μＬを注入した後、約１０日後、腫瘍のサイズが約１００ｍｍ３に到達したとき、５×１０９  ＶＰのＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮを単独、又は２００μｇの力価で免疫チェックポイント阻害剤（抗−ＰＤ−Ｌ１）とともに併用投与しつつ、これによる腫瘍のサイズの変化を観察した。併用投与時、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮを１日、３日、及び５日目に総３回腫瘍内に投与し、免疫チェックポイント阻害剤は、３日、６日、及び９日目に総３回腹腔内に投与した。一方、陰性対照群としては、ＰＢＳ単独投与群を使用した。
【００６３】
図７及び図８に示すように、腫瘍選択的殺傷アデノウイルス（ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮ）を免疫チェックポイント阻害剤と併用投与した場合、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮ又は免疫チェックポイント阻害剤の単独投与群に比べて、腫瘍のサイズの増加が著しく減少され、黒色腫皮下動物モデルの生存率が大幅に向上されることを確認した。したがって、前記実験結果は、本発明によるＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮと免疫チェックポイント阻害剤の併用投与は、より強力で効果的な抗がん治療剤として用いられることを示すものである。
【００６４】
３−２．ハムスター膵臓がん皮下動物モデルにおける抗腫瘍効果の確認
体内の免疫機能を保有しつつ、組換えウイルスの体内複製が可能なハムスターモデルを用いて、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮと免疫チェックポイント阻害剤の併用投与による抗腫瘍免疫反応を確認した。ハムスターの膵臓がん細胞株であるＨａｐ−Ｔ１をハムスターの皮下に注入した後、腫瘍のサイズが約１００ｍｍ３に到達したとき、２×１０９ＶＰのＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮを単独、又は７００μｇの力価で免疫チェックポイント阻害剤（抗−ＰＤ−１、抗−ＰＤ−Ｌ１、又は抗−ＣＴＬＡ−４）とともに併用投与しつつ、これによる腫瘍のサイズの変化を観察した。併用投与時、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮを２日おきに総３回腫瘍内に投与し、免疫チェックポイント阻害剤は、総３回腹腔内に投与した。一方、陰性対照群としては、ＰＢＳ単独投与群を使用した。
【００６５】
図９に示すように、腫瘍選択的殺傷アデノウイルス（ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮ）を免疫チェックポイント阻害剤併用投与した結果、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮ又は免疫チェックポイント阻害剤単独投与群に比べて、腫瘍サイズの増加が著しく減少され、このような傾向は、３種類の免疫チェックポイント阻害剤（抗−ＰＤ−１、抗−ＰＤ−Ｌ１、又は抗−ＣＴＬＡ−４）の全部において同一に示された。具体的に、投与２１日経過後、免疫チェックポイント阻害剤単独投与群それぞれは（抗−ＰＤ−１、抗−ＰＤ−Ｌ１、又は抗−ＣＴＬＡ−４）、陰性対照群に比べて腫瘍の成長を約３５.４％、３８.８％、又は７.２％抑制させるに止まったが、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮ単独投与群それぞれの場合、腫瘍の成長を約８９.８％、５７.７％、又は４８.２％まで抑制させることができた。特に、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮと免疫チェックポイント阻害剤を併用投与した場合には、陰性対照群に比べて腫瘍の成長をそれぞれ９５.７％、８２.１％、又は７８.１％まで抑制させることができたため、前述の抗腫瘍効果を再度検証できた。
【００６６】
３−３．ハムスター膵臓がん皮下動物モデルにおけるメモリー免疫反応の確認
腫瘍選択的殺傷アデノウイルスと免疫チェックポイント阻害剤の併用投与による抗腫瘍メモリー免疫反応を検証した。最初に腫瘍が生成されてから４９日後、腫瘍が完全に消えたマウス（ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮ単独、又はＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮと免疫チェックポイント阻害剤の併用投与群）を対象に、以前と同じ条件でＨａｐ−Ｔ１細胞を注入して腫瘍を再度形成した。以後、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮを単独、又は免疫チェックポイント阻害剤（抗−ＰＤ−１、抗−ＰＤ−Ｌ１、又は抗−ＣＴＬＡ−４）とともに併用投与しつつ、以前と同様に腫瘍の成長を観察した。
【００６７】
図１０に示すように、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮを単独処理した群では、ｒｅｃｈａｌｌｅｎａｇｅした腫瘍が再び急激に成長した反面、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮと免疫チェックポイント阻害剤（抗−ＰＤ−１、抗−ＰＤ−Ｌ１、又は抗−ＣＴＬＡ−４）を併用投与した場合には、依然として腫瘍の成長が抑制されることを確認した。したがって、前記実験結果は、本発明によるＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮと免疫チェックポイント阻害剤の併用投与は、強力な抗腫瘍メモリー免疫反応を誘導して、再発がん治療にも効果的であることを示す。
【００６８】
３−４．抗がん剤耐性誘導動物モデルにおける抗腫瘍効果の確認
抗がん剤の耐性などにより抗がん剤による抗腫瘍効果が微々たる条件で、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮと免疫チェックポイント阻害剤（抗ＰＤ−１抗体；αＰＤ−１）の併用投与による生体内の抗腫瘍効果を検証した。Ｂ１６−Ｆ１０マウス黒色腫細胞株をＣ５７ＢＬ／６マウスの脇腹皮下に注射（５×1０５ｃｅｌｌs）した後、形成された腫瘍（ｄａｙ１、約５０ｍｍ３）にｔａｘｏｌ（ｄａｙ１、２、３；１０ｍｇ／ｋｇ）を腹腔内注射し、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮ単独（ｄａｙ３、５、７、９、５×1０５ＶＰ）、αＰＤ−１単独（ｄａｙ４、７、８、１０、２００μｇ）、又はＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮ及びαＰＤ−１併用投与（それぞれ同じ条件）した後、腫瘍の成長を観察した。一方、陰性対照群としては、ＰＢＳ単独投与群を使用した。
【００６９】
図１１に示すように、抗がん剤を最初に投与した後、１５日目（ｄａｙ１６）、ＰＢＳ、ｔａｘｏｌ、又はαＰＤ−１のみを単独投与した場合、腫瘍のサイズがそれぞれ７６４９.０±７９８.５ｍｍ３、５３９４.５±２８８.２ｍｍ３、又は５８１４.２±４７１.６ｍｍ３で腫瘍の急激な成長を確認した反面、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮ単独、又はＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮ及びαＰＤ−１併用投与群では、腫瘍のサイズがそれぞれ２３７４.０±７７６.２ｍｍ３又は６６９.８±３３５.２ｍｍ３で有意的な抗腫瘍効果を示した。特に、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮ及びαＰＤ−１の併用投与群は、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮ単独投与群に比べて、腫瘍のサイズが約７１.８％減少されたため、その効果が非常に顕著であった（Ｐ＜０.０１）。これらの実験の結果は、本発明によるＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮと免疫チェックポイント阻害剤の併用投与は、従来の抗がん剤の抗腫瘍効果をより向上させる水準に止まるのではなく、抗がん剤の耐性などの生体内の要因により抗がん剤の効果が微々たる場合でも、有意的な抗腫瘍効果を付与する、顕著な効果を示すものである。
【００７０】
実施例４．Ｒｅｌａｘｉｎを発現する腫瘍選択的殺傷アデノウイルスと抗がん剤の併用
４−１．膵臓がん細胞に対する殺傷能の確認
Ｒｅｌａｘｉｎを発現する腫瘍選択的殺傷アデノウイルスと膵臓がんの標準治療剤であるｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅを併用投与した場合、膵臓がん細胞に対する殺傷能が著しく増加できるかを検証した。このために、膵臓がん細胞株であるＭＩＡ  ＰａＣａ−２とＰＡＮＣ−１にＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸをそれぞれ０.１、０.５、１又は２ＭＯＩの力価で感染させ、ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ０.０１μＭ又は０.０５μＭを同時に処理した後、細胞死滅の程度をＭＴＴ  ａｓｓａｙを介して観察した。一方、陰性対照群としては、非処理群を使用した。
【００７１】
図１２に示すように、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ（ＹＤＣ００２）をｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅと併用投与した場合、ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅを単独で処理した場合に比べて、膵臓がん細胞株に対する殺傷能が著しく増加した。特に、このような効果は、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸを単独投与した場合に比べても優れており、組換えアデノウイルスの濃度が高くなるほど（２ＭＯＩ）、その効果はより顕著であった。したがって、前記実験結果は、既存の抗がん剤と本発明によるＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸの併用投与は、抗腫瘍治療のための抗がん剤の投与量を減らすことができるだけでなく、より強力な抗腫瘍効果を示すことを示唆するものである。
【００７２】
４−２．抗腫瘍効果の組織学的評価
前記実験における抗腫瘍効果を組織学的に評価した。まず、膵臓がん細胞株であるＭＩＡ  ＰａＣａ−２又はＰＡＮＣ−１にＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ単独（０.５又は１ＭＯＩ）、ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ単独（０.０２又は０.０５μＭ）、又はＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸとｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅを併用投与した後、腫瘍細胞の死滅程度を確認するために、ＴＵＮＥＬ  ａｓｓａｙを行った。一方、陰性対照群としては、非処理群を使用した。また、膵臓がん細胞株でＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸによる細胞外基質（ＥＣＭ；ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ  ｍａｔｒｉｘ）の変化を確認した。前記腫瘍細胞内のコラーゲンＩ、コラーゲンＩＩＩのｍＲＮＡ発現量を測定するためにｑＰＣＲを行い、膵臓がん組織（球状体）内の細胞外基質の変化及びこれによる細胞死滅効果を免疫組織染色、ＭＴ染色、及びＰｉｃｏｒｏｓｉｒｉｕｓ染色などを介して確認した。
【００７３】
図１３に示すように、ＭＩＡ  ＰａＣａ−２及びＰＡＮＣ−１細胞の全部で、対照群又はｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ単独投与群に比べて、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ単独、又はＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ及びｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ併用投与群で腫瘍細胞の死滅が著しく増加されることを観察し、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ及びｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅを併用投与した群でその効果が最も顕著であった。ヒト膵臓がん細胞株であるＭＩＡ  ＰａＣａ−２及びＰＡＮＣ−１にＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸを１  ＭＯＩで感染させた後、７２時間目、コラーゲンI及びコラーゲンIIIのｍＲＮＡ発現量を比較した結果、図１４に示すように、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ単独、又はＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ及びｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ併用投与群では、前記ｍＲＮＡ発現量が他の群に比べて著しく減少した。これと同様に、図１５ａ、図１５ｂ、図１６ａ及び図１６ｂに示すように、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ単独、又はＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ及びｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ併用投与群で、コラーゲンＩ、コラーゲンＩＩＩ、ピブロネクチン、及びエラスチンの発現量が大きく減少されることを確認し、これによって、腫瘍細胞の死滅が大きく向上されることを確認した。
【００７４】
これらの結果を総合してみると、ｒｅｌａｘｉｎによって細胞外基質の発現が減少し、これによって、腫瘍選択的殺傷アデノウイルス及び併用投与された抗がん剤の効能を増進させて抗腫瘍効果を極大化させることが分かる。
【００７５】
４−３．膵臓がん皮下動物モデルにおける抗腫瘍効果の確認
ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸとｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅの併用投与による抗腫瘍効果を膵臓がん皮下動物モデルで検証した。ＰＡＮＣ−１、ＭＩＡ  ＰａＣａ−２、又はＢｘＰＣ−３細胞をマウスの皮下に注入して腫瘍の形成を誘導した後、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸを単独、又はｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ（１０ｍｇ／ｋｇ）とともに併用投与（腫瘍内に投与）しつつ、これによる腫瘍のサイズの変化を観察した。一方、陰性対照群としてはＰＢＳ単独投与群を使用した。
【００７６】
図１７ａ〜図１７ｃに示すように、膵臓がん皮下動物モデル（ＰＡＮＣ−１、ＭＩＡＰａＣａ−２、又はＢｘＰＣ−３）の全部で共通して、陰性対照群（ＰＢＳ）及びｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ単独投与群（Ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ）では、腫瘍サイズの急激な増加が観察された反面、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸを単独又はＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸとｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅを併用投与した群では、腫瘍の成長が大きく鈍化したことを確認し、特に、このような効果は、併用投与した場合、非常に顕著である。前記実験の結果は、既存の抗がん剤とＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸの併用投与による抗腫瘍効果は、これらそれぞれの単独投与に比べて非常に顕著であることを示すものである。
【００７７】
４−４．膵臓がん異種移植動物モデルにおける抗腫瘍効果の確認
膵臓がん異種移植動物モデルを構築するために、マウス皮下にＭＩＡ  ＰａＣａ−２を５×1０５で注入した後、腫瘍のサイズが５０−１００ｍｍ３に到達したとき、２×１０６ｐｆｕのＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸを単独、又は１.５ｍｇ／ｋｇのｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅとともに併用投与しつつ、これによる細胞外基質の変化及び細胞死滅効果を観察した。併用投与時、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸは、２日おきに総３回腫瘍内に投与し、ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅは、１回腹腔内に投与した。以後、免疫組織染色及びＨｅｍａｔｏｘｙｌｉｎ−ｅｏｓｉｎ（Ｈ＆Ｅ）染色を行い、細胞死滅の程度を確認するために、ＴＵＮＥＬ  ａｓｓａｙ及びｃｌｅａｖｅｄ  ｃａｓｐａｓｅ３の免疫染色を行った。一方、陰性対照群としては、ＰＢＳ単独投与群を使用した。
【００７８】
図１８に示すように、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸとｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅを併用投与した群では、他の群に比べて、ＭＩＡ  ＰａＣａ−２腫瘍組織内のコラーゲンＩ、コラーゲンＩＶ、ピブロネクチン、及びエラスチンの全部が著しく減少した。また、図１９に示すように、陰性対照群、ｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅ又はＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ単独投与群では、腫瘍内の細胞の壊死又は死滅がほとんど進行しなかったり、微弱だった反面、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸとｇｅｍｃｉｔａｂｉｎｅを併用投与した群では、細胞壊死又は死滅が活発に進行されることが分かった。すなわち、前記実験結果は、前記抗がん剤と本発明によるＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸの併用投与による抗腫瘍効果を再度検証するものである。
【００７９】
実施例５．Ｒｅｌａｘｉｎを発現する腫瘍選択的殺傷アデノウイルスと免疫チェックポイント阻害剤の併用
５−１．黒色腫皮下動物モデルにおける抗腫瘍効果の確認
黒色腫細胞株であるＢ１６−Ｆ１０マウス皮下に１匹あたり５×1０５ｃｅｌｌs／５０μＬを注入した後、約７−１４日後、腫瘍のサイズが１００−１５０ｍｍ３に到達したとき、５×１０９ＶＰのＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸを単独、又は２００μｇの力価で免疫チェックポイント阻害剤（抗−ＰＤ−Ｌ１又は抗−ＰＤ１）とともに併用投与しつつ、これによる腫瘍のサイズの変化及び前記動物モデルの生存率を評価した。併用投与時、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸを１日、３日、及び５日目に総３回腫瘍内に投与し、免疫チェックポイント阻害剤は、３日、６日、及び９日目に総３回腹腔内に投与した。一方、陰性対照群としては、ＰＢＳ単独投与群を使用した。
【００８０】
図２０〜図２３に示すように、腫瘍選択的殺傷アデノウイルス（ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ）を免疫チェックポイント阻害剤（抗−ＰＤ−Ｌ１又は抗−ＰＤ１）と併用投与した結果、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ又は免疫チェックポイント阻害剤の単独投与群よりも腫瘍サイズの増加が著しく減少され、黒色腫皮下動物モデルの生存率が大幅に向上されることを確認した。また、前記実験において、腫瘍選択的殺傷アデノウイルスであるＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ単独投与による抗腫瘍効果が非常に強力で、併用投与の優れた効果を証明することに困難性があった。したがって、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ投与濃度を５倍減少させ（１×１０９ＶＰ）、再実験を行った結果、図２４に示すように、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸと免疫チェックポイント阻害剤（抗−ＰＤ１）を併用投与した群の抗腫瘍効果がＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ単独投与群に比べて顕著であることを確認できた。したがって、前記実験結果は、本発明によるＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸと免疫チェックポイント阻害剤の併用投与は、より強力で効果的な抗がん治療剤として用いられることを示すものである。
【００８１】
５−２．黒色腫皮下動物モデルにおけるメモリー免疫反応の確認
腫瘍選択的殺傷アデノウイルスと免疫チェックポイント阻害剤の併用投与による抗腫瘍メモリー免疫反応を検証した。最初に腫瘍が生成されてから５０日後、腫瘍が完全に消えたマウス（ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ及び免疫チェックポイント阻害剤の併用投与群）を対象に、以前と同じ条件でＢ１６−Ｆ１０細胞を注入して、腫瘍を再度形成した。以後、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸを単独、又は免疫チェックポイント阻害剤（抗−ＰＤ−１、及び抗−ＰＤ−Ｌ１）とともに併用投与しつつ、以前と同様に腫瘍の成長を観察した。
【００８２】
図２５に示すように、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸと免疫チェックポイント阻害剤（抗−ＰＤ−１、抗−ＰＤ−Ｌ１）を併用投与した場合には、腫瘍の成長が格段に減少されることを確認した。したがって、前記実験結果は、本発明によるＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸと免疫チェックポイント阻害剤の併用投与は、強力な抗腫瘍メモリー免疫反応を誘導して、再発がんの治療にも効果的であることを示す。
【００８３】
５−３．抗がん剤耐性誘導動物モデルにおける抗腫瘍効果の確認
抗がん剤耐性などにより抗がん剤による抗腫瘍効果が微々たる条件で、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸと免疫チェックポイント阻害剤（抗ＰＤ−１抗体；αＰＤ−１）の併用投与による生体内抗腫瘍効果を検証した。Ｂ１６−Ｆ１０マウス黒色腫細胞株をＣ５７ＢＬ／６マウスの脇腹皮下に注射（５×１０５ｃｅｌｌs）した後、形成された腫瘍（ｄａｙ１、約５０ｍｍ３）にｔａｘｏｌ（ｄａｙ１、２、３；１０ｍｇ／ｋｇ）を腹腔内に注射し、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮ単独（ｄａｙ３、５、７、９；５×１０５ＶＰ）、αＰＤ−１単独（ｄａｙ４、７、８、１０；２００μｇ）、又はＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＤＣＮ及びαＰＤ−１併用投与（それぞれ同じ条件）した後、腫瘍の成長を観察した。一方、陰性対照群としては、ＰＢＳ単独投与群を使用した。
【００８４】
図２６に示すように、抗がん剤を最初に投与した後、1５日目（ｄａｙ  １６）、ＰＢＳ、ｔａｘｏｌ、又はαＰＤ−１のみ単独投与した場合、腫瘍のサイズがそれぞれ７６４９.０±７９８.５ｍｍ３、５３９４.５±２８８.２ｍｍ３、又は５８１４.２±４７１.６ｍｍ３で腫瘍の急激な成長を確認した反面、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ単独、又はＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ及びαＰＤ−１併用投与群では、腫瘍のサイズがそれぞれ２８１７.１±７７６.２ｍｍ３又は６３３.９±１４１.９ｍｍ３で有意的な抗腫瘍効果を示した。特に、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ及びαＰＤ−１の併用投与群は、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ単独投与群に比べて、腫瘍のサイズが約７７.５％減少されたため、その効果が非常に顕著であった（Ｐ＜０.０１）。これらの実験の結果は、本発明によるＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸと免疫チェックポイント阻害剤の併用投与は、従来の抗がん剤の抗腫瘍効果をより向上させるレベルにとどまるものではなく、抗がん剤耐性などの生体内の要因により抗がん剤の効果が微々たる場合でも、有意的な抗腫瘍効果を付与する、顕著な効果を示すものである。
【００８５】
実施例６．Ｒｅｌａｘｉｎを発現する腫瘍選択的殺傷アデノウイルスの腫瘍組織内浸透効果の確認
免疫蛍光染色を行って腫瘍組織内の治療物質の浸透及び拡散程度を確認した。ＮＣＩＮ８７胃腫瘍組織にＰＢＳ、ＰＢＳ及びｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂ（１５０μｇ／ｍｉｃｅ）、又はＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ（２.５×１０１０ＶＰ）及びｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂを併用投与した後、Ａｌｅｘａ４８８で標識されたｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂの腫瘍組織内浸透及び分布様相を比較した。
【００８６】
図２７に示すように、ＰＢＳ及びｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂを投与した腫瘍組織の場合、ｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂの分布が腫瘍組織の中心部よりも枠の部位で集中的に分布していた反面、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ及びｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂを併用投与した場合、ｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂが腫瘍全体にかけて均等に分布されることを確認し、特に、腫瘍組織の中心部まで拡散されていることが分かる。また、図２７に示された領域を拡大して観察してみると、図２８ａ〜図２８ｃに示すように、ＰＢＳ及びｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂを投与した腫瘍組織の場合、陰性対照群に比べてｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂの浸透が増加されたが、腫瘍組織のｍａｒｇｉｎ部位から離れるほどｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂの蛍光が陰性対照群の水準に減少した。しかし、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ及びｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂを併用投与した腫瘍組織の場合、ｍａｒｇｉｎ部位だけでなく、ｍａｒｇｉｎ部位から遠く離れた中心部でもｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂの浸透が高い水準で維持されることを確認した。併せて、腫瘍組織の血管を中心に拡大して観察してみると、図２９ａ〜図２９ｃに示すように、ＰＢＳ及びｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂを投与した腫瘍組織の場合、ｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂが血管周囲でのみ増加している反面、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ及びｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂを併用投与した腫瘍組織の場合、血管周囲だけでなく、血管から遠く離れた地域にもｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂが浸透していることを確認した。最後に、ｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂの腫瘍組織内の標的と滞在時間を調べるために、ｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂを６４Ｃｕ−ＤＯＴＡで標識した後、ＰＥＴイメージングを行った。その結果、図３０ａ及び図３０ｂに示すように、ＰＢＳ及びｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂ（１５０μｇ／ｍｉｃｅ）を投与した場合に比べて、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸ（２.５×１０１０ＶＰ）及びｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂを併用投与した場合、投与後１５時間が経過し始めつつ、生体内に分布するｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂが腫瘍組織に集中され、投与後６０時間が経過するまでｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂが腫瘍組織に依然として残っていることを確認した。
【００８７】
これらの結果を総合してみると、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸによる腫瘍組織内の細胞外基質の発現阻害は、ｔｒａｓｔｕｚｕｍａｂの腫瘍内の浸透及び拡散効果をより増進させて抗腫瘍効果を向上させることができるため、ＲｄＢ／ＩＬ−１２／ＲＬＸは、既存の抗がん剤などと併用投与する形態で用いることにより、より強力な抗腫瘍効果を提供する。
【００８８】
前述した本発明の説明は、例示のためのものであり、本発明が属する技術分野の通常の知識を有する者は、本発明の技術的思想や必須の特徴を変更せずに、他の具体的な形態で容易に変形が可能であることが理解できるだろう。したがって、以上で記述した実施例は、すべての面で例示的なものであり、限定的ではないものと理解すべきである。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
2020500947.tif 000009
【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５ａ】
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【図１５ｂ】
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【図１６ａ】
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【図１６ｂ】
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【図１７ａ】
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【図１７ｂ】
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【図１７ｃ】
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【図１８】
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【図１９】
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【図２０】
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【図２１】
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【図２２】
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【図２３】
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【図２４】
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【図２５】
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【図２６】
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【図２７】
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【図２８ａ】
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【図２８ｂ】
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【図２８ｃ】
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【図２９ａ】
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【図２９ｂ】
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【図２９ｃ】
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【図３０ａ】
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【図３０ｂ】
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【配列表】
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【手続補正書】
【提出日】令和1年8月8日(2019.8.8)
【手続補正１】
【補正対象書類名】特許請求の範囲
【補正対象項目名】全文
【補正方法】変更
【補正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
ＩＬ−１２（Ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ  １２）をコードする遺伝子；及びＤｅｃｏｒｉｎ又はＲｅｌａｘｉｎをコードする遺伝子を含む組換えアデノウイルスを含む、抗がん組成物。
【請求項２】
ＩＬ−１２（Ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ  １２）をコードする遺伝子；及びＤｅｃｏｒｉｎ又はＲｅｌａｘｉｎをコードする遺伝子を含む組換えアデノウイルスを含む、抗がん剤又は免疫チェックポイント阻害剤を補助するための薬学的組成物。
【請求項３】
前記組換えアデノウイルスは、Ｅ１及びＥ３領域からなる群から選ばれるいずれか一つ以上の領域が欠失されているものである、請求項１又は２記載の組成物。
【請求項４】
前記ＩＬ−１２をコードする遺伝子は、組換えアデノウイルスのＥ１領域に挿入されるものである、請求項３記載の組成物。
【請求項５】
前記Ｄｅｃｏｒｉｎ又はＲｅｌａｘｉｎをコードする遺伝子は、組換えアデノウイルスのＥ１又はＥ３領域に挿入されるものである、請求項３記載の組成物。
【請求項６】
前記組成物は、抗がん剤又は免疫チェックポイント阻害剤と同時に、別途に、又は順次的に併用投与されるものである、請求項１から５のいずれか一項記載の組成物。
【請求項７】
前記免疫チェックポイント阻害剤は、ＰＤ−１（ｐｒｏｇｒａｍｍｅｄ  ｃｅｌｌ  ｄｅａｔｈ−１）、ＰＤ−Ｌ１（ｐｒｏｇｒａｍｍｅｄ  ｃｅｌｌ  ｄｅａｔｈ−ｌｉｇａｎｄ  １）、ＰＤ−Ｌ２（ｐｒｏｇｒａｍｍｅｄ  ｃｅｌｌ  ｄｅａｔｈ−ｌｉｇａｎｄ  ２）、ＣＤ２７（ｃｌｕｓｔｅｒ  ｏｆ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ２７）、ＣＤ２８（ｃｌｕｓｔｅｒ  ｏｆ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ２８）、ＣＤ７０（ｃｌｕｓｔｅｒ  ｏｆ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ７０）、ＣＤ８０（ｃｌｕｓｔｅｒ  ｏｆ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ８０、ａｌｓｏ  ｋｎｏｗｎ  ａｓ  Ｂ７−１）、ＣＤ８６（ｃｌｕｓｔｅｒ  ｏｆ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ８６、ａｌｓｏ  ｋｎｏｗｎ  ａｓ  Ｂ７−２）、ＣＤ１３７（ｃｌｕｓｔｅｒ  ｏｆ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  １３７）、ＣＤ２７６（ｃｌｕｓｔｅｒ  ｏｆ  ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ  ２７６）、ＫＩＲｓ（ｋｉｌｌｅｒ−ｃｅｌｌ  ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ−ｌｉｋｅ  ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ）、ＬＡＧ３（ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅ−ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ  ｇｅｎｅ  ３）、ＴＮＦＲＳＦ４（ｔｕｍｏｒ  ｎｅｃｒｏｓｉｓ  ｆａｃｔｏｒ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｓｕｐｅｒｆａｍｉｌｙ、ｍｅｍｂｅｒ  ４、ａｌｓｏ  ｋｎｏｗｎ  ａｓ  ＣＤ１３４）、ＧＩＴＲ（ｇｌｕｃｏｃｏｒｔｉｃｏｉｄ−ｉｎｄｕｃｅｄ  ＴＮＦＲ−ｒｅｌａｔｅｄ  ｐｒｏｔｅｉｎ）、ＧＩＴＲＬ（ｇｌｕｃｏｃｏｒｔｉｃｏｉｄ−ｉｎｄｕｃｅｄ  ＴＮＦＲ−ｒｅｌａｔｅｄ  ｐｒｏｔｅｉｎ  ｌｉｇａｎｄ）、４−１ＢＢＬ（４−１ＢＢ  ｌｉｇａｎｄ）、ＣＴＬＡ−４（ｃｙｔｏｌｙｔｉｃ  Ｔ  ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅ  ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ  ａｎｔｉｇｎ−４）拮抗剤、及びこれらの組み合わせからなる群から選ばれるいずれか一つであるものである、請求項２記載の組成物。
【請求項８】
前記がんは、胃がん、肺がん、非小細胞性肺がん、乳がん、卵巣がん、肝がん、気管支がん、鼻咽頭がん、喉頭がん、膵臓がん、膀胱がん、結腸癌、子宮頸がん、骨がん、非小細胞性骨がん、血液がん、皮膚がん、頭部又は頸部がん、子宮がん、直腸がん、肛門付近がん、結腸がん、卵管がん、子宮内膜がん、膣がん、陰門がん、ホジキン病（Ｈｏｄｇｋｉｎ'ｓ  ｄｉｓｅａｓｅ）、食道がん、小腸がん、内分泌腺がん、甲状腺がん、副甲状腺がん、副腎がん、軟組織肉腫、尿道がん、陰茎がん、前立腺がん、慢性又は急性白血病、リンパ球リンパ腫、腎臓又は輸尿管がん、腎細胞癌腫、腎骨盤癌腫、唾液腺がん、肉腫がん、偽性粘液腫、肝芽腫、精巣がん、膠芽腫、口唇がん、卵巣生殖細胞腫瘍、基底細胞がん、多発性骨髄腫、胆のうがん、脈絡膜黒色腫、ファーター膨大部がん、腹膜がん、舌がん、小細胞がん、小児リンパ腫、神経芽細胞腫、十二指腸がん、尿管がん、星状細胞腫、髄膜腫、腎盂がん、外陰がん、胸腺がん、中枢神経系(ｃｅｎｔｒａｌ  ｎｅｒｖｏｕｓ  ｓｙｓｔｅｍ，  ＣＮＳ）腫瘍、１次中枢神経系リンパ腫、脊髄腫瘍、脳幹神経膠腫及び下垂体腺腫から構成された群から選ばれるいずれか一つであるものである、請求項１から７のいずれか一項記載の組成物。
【請求項９】
前記がんは、再発がん（Ｒｅｃｕｒｒｅｎｔ  ｃａｎｃｅｒ）又は抗がん剤−耐性がん（Ａｎｔｉｃａｎｃｅｒ  ｄｒｕｇ−ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅｄ  ｃａｎｃｅｒ）であるものである、請求項１から８のいずれか一項記載の組成物。
【請求項１０】
前記組成物は、抗腫瘍免疫（Ａｎｔｉｔｕｍｏｒ  ｉｍｍｕｎｉｔｙ）を増進させることを特徴とする、請求項１から９のいずれか一項記載の組成物。
【国際調査報告】
2020500947.tif 000042
2020500947.tif 000043
2020500947.tif 000044
2020500947.tif 000045
2020500947.tif 000046
2020500947.tif 000047