(57)【要約】  本発明は、シュードモナス・プチダ株ＣＥＣＴ８５３８及びその変異体、並びに真菌及び細菌によって引き起こされる植物病の制御における殺虫剤としての該株の使用に関する。本発明の更なる態様は、上記株を含む殺虫組成物を作製する方法に関する。最後に、本発明は、植物及び／又はその種子若しくは該植物を成長させるのに使用される基質をＰ．プチダ株ＣＥＣＴ８５３８又はそれを含む組成物で処理することを含む、植物において真菌及び細菌によって引き起こされる様々な植物病を制御する方法に関する。【特許請求の範囲】
【請求項１】
アクセス番号ＣＥＣＴ８５３８によりスペイン・タイプ・カルチャー・コレクション（ＣＥＣＴ）に寄託されたシュードモナス・プチダ株又はその変異体であって、前記変異体の株がシュードモナス・プチダのＣＥＣＴ８５３８を使用して得られ、出発株の以下の特徴：
−エルウィニア・カロトボーラ・サブスピーシーズ．アトロセプチカ、ボトリチス・アクラダ、ピシウム・ウルチマム、リゾクトニア・ソラニ、スクレロチニア・スクレロチオラム、コレトトリカム・コッコデス、フザリウム・オキシスポラム、及びアルタナリア・ポリに対する出発株の拮抗活性、並びに；
−植物の地上部又は根においてコロニー形成する又は生存する能力、
を維持する、シュードモナス・プチダ株又はその変異体。
【請求項２】
植物における殺虫剤としての、請求項１に記載のシュードモナス・プチダ株ＣＥＣＴ８５３８又はその変異体の使用。
【請求項３】
植物において細菌又は真菌によって引き起こされる疾患の制御のための、請求項２に記載の使用。
【請求項４】
請求項１に記載のシュードモナス・プチダ株ＣＥＣＴ８５３８又はその変異体に由来する生細胞浮遊液を得る方法であって、（ｉ）培養培地に前記株を接種する工程、（ｉｉ）前記工程（ｉ）の接種された培養培地を、前記株の増殖に適した条件に供する工程、及び（ｉｉｉ）任意に、工程（ｉｉ）から得られた前記培養培地を濃縮工程に供する工程、を含む、方法。
【請求項５】
請求項１に記載の株を含む、接種生成物。
【請求項６】
請求項１に記載のシュードモナス・プチダ株ＣＥＣＴ８５３８若しくはその変異体、又は請求項５に記載の接種生成物と、１又は複数の農業的に許容可能な化合物と、を含む、組成物。
【請求項７】
前記１又は複数の農業的に許容可能な化合物が、植物強化剤、栄養素、湿潤剤、接着を改善する化合物、緩衝化合物、安定化剤、抗酸化剤、浸透圧保護剤、及び日焼け止めからなる群から選択される、請求項６に記載の組成物。
【請求項８】
少なくとも１つの追加の殺虫剤を含む、請求項６〜７のいずれかに記載の組成物。
【請求項９】
前記追加の殺虫剤が、抗真菌及び／又は抗菌の活性を有する菌株、殺真菌剤、殺菌剤、除草剤、殺虫剤又は殺線虫剤からなる群から選択される、請求項８に記載の組成物。
【請求項１０】
植物における殺虫剤としての、請求項１に記載の本発明の株、又は請求項５に記載の接種生成物、又は請求項６〜９のいずれかに記載の組成物の使用。
【請求項１１】
植物における真菌及び微生物の病原体の制御に対する、請求項１０に記載の使用。
【請求項１２】
植物において細菌又は真菌の病原体によって引き起こされる感染を制御する方法であって、請求項１に記載の株若しくはその変異体、又は請求項５に記載の接種生成物、又は請求項６〜９のいずれかに記載の組成物を、植物及び／又は種子の冒された部分、又は前記植物の成長に使用される基質若しくは土壌に対して適用することを含む、方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本出願は、２０１７年４月６日に出願された欧州特許出願第１７３８２１８８号の利益を主張する。
【０００２】
本発明は、植物衛生製品の分野、具体的には、シュードモナス・プチダの新たな株、並びに農学上関心のある作物における真菌性及び細菌性の疾患の生物学的制御におけるその使用に関する。
【背景技術】
【０００３】
最近、植物感染症の制御は、殺真菌剤及び殺菌剤が消費者の健康及び環境に対して有する既知の影響を最小限にすることに重点が置かれてきた。その理由で、この種の製品の合理的な使用及び毒性の低い方法の適用への移行が見られる。
【０００４】
抗生物質は植物における細菌性疾患を制御する際に最も効果が大きい植物衛生製品とされるが、その持続的な使用は耐性株の発生を促し、その効果を損なう。更に、これらの株で生じた抗生物質耐性は、ヒト病原体を含むその他の細菌に伝播される場合がある。この事実は、欧州連合を含む多くの国々で農業におけるその使用の禁止を説明する。抗生物質の代わりは、銅系化合物等の広域スペクトル抗菌剤であるが、この場合、それらの抗菌剤は、それらの毒性及び環境中の蓄積のため、限定的な有効性及び不利な環境影響を有する。
【０００５】
真菌性及び細菌性の植物病原体に拮抗する能力を有する土壌伝播性で非病原性の菌株は、化学的農薬に代わるものとして技術水準で報告されている。しかしながら、これらの菌株にはいくつかの欠点がある。その例は、毒性の２次代謝産物の産生、及び植物のコロニー形成に対する適切な生態学的な適性の欠如、すなわち一定の経時的な不安定性であり、これらの株を長期保存用の組成物へと製剤化することを困難にしている。
【０００６】
上に加えて、幾つかの場合には、これらの菌株は、感染した宿主の器官において効果的にコロニーを形成して生存することが困難であり、疾患制御の著しい効果を達成するには、高濃度の又は複雑な製剤化の適用を必要とすることが報告されている。更に、それらが生体を含むという事実は、その他の合成殺虫剤に対して利点を有するものの、環境及び宿主の状態はそれらの生物学的活性に影響を及ぼすことを意味し、それらの有効性を概して可変性で、参照化学製品よりも著しく低いものとする。更に、近年、ヒト又は動物に対する病原性株における耐性の出現を防止するため、ＢＣＡとして使用される抗生物質産生菌は減少している。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
上記を考慮すれば、努力がなされたにもかかわらず、植物病の制御の技術水準において既に知られている株によって示される制限の全て又は一部を克服する菌株に対するニーズが今も存在する。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明者らは、広域スペクトルの活性を有していることを特徴とするため、幅広い土壌ｐＨにおいて様々な真菌性及び細菌性の病原体を防除する、カヴァ（スペインの北東部、バルセロナ）から単離された種の新たな株シュードモナス・プチダ（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ  ｐｕｔｉｄａ）を単離した。
【０００９】
以下に図示されるように、本発明の株は、ボトリチス・アクラダ（Ｂｏｔｒｙｔｉｓ  ａｃｌａｄａ）、ピシウム・ウルチマム（Ｐｙｔｈｉｕｍ  ｕｌｔｉｍｕｍ）、リゾクトニア・ソラニ（Ｒｈｉｚｏｃｔｏｎｉａ  ｓｏｌａｎｉ）、スクレロチニア・スクレロチオラム（Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ  ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍ）、コレトトリカム・コッコデス（Ｃｏｌｌｅｔｏｔｒｉｃｈｕｍ  ｃｏｃｃｏｄｅｓ）、フザリウム・オキシスポラム（Ｆｕｓａｒｉｕｍ  ｏｘｙｓｐｏｒｕｍ）、及びアルタナリア・ポリ（Ａｌｔｅｒｎａｒｉａ  ｐｏｒｒｉ）の真菌株に対する、並びにエルウィニア・カロトボーラ・サブスピーシーズ．アトロセプチカ（Ｅｒｗｉｎｉａ  ｃａｒｏｔｏｖｏｒａ  ｓｕｂｓｐ．ａｔｒｏｓｅｐｔｉｃａ）の菌株に対する拮抗活性を示すことを特徴とする（図２、並びに表４及び表５）。また、本発明者らは、本発明の株が、作物条件下で植物においてエルウィニア・カロトボーラ・サブスピーシーズ．アトロセプチカによって引き起こされる感染を阻害し得ることを見出した（表４）。
【００１０】
本発明の株は、ロイシンアリールアミダーゼ活性及びアルカリホスファターゼ活性を提示し、いずれも、植物の成長、発生及び繁殖に対して有益な（ｂｅｎｅｆｉｃｉｏｕｓ）影響を有する。ロイシンアリールアミダーゼは、重合体高分子量化合物からアミノ酸を解放し、植物に対する必須栄養素である、溶解した有機窒素の供給源を提供する。さらに、アルカリホスファターゼ活性は、結合されたホスフェートの可溶化に重要な役割を果たし、それらを植物に対して利用可能として、植物の成長及び発生も支援する。
【００１１】
本発明の株の生物防除活性に関して、上に解説されるように、本発明の株は、種々の植物病原性物質に拮抗する能力を有する。これに関連して、表５に示されるように、本発明の株は、その他のＰ．プチダ株よりも真菌ボトリチス・アクラダの増殖をより効果的に拮抗することができ、より高く長く続く効果を有する。したがって、以下に報告されるデータから、生物防除活性を達成するため、より低濃度でのその使用を可能とし得ると結論づけることもできる。これは、本発明の株を含む種々の組成物の製剤化における利点と並んで、その工業生産と関係するコストの減少をもたらし得る。
【００１２】
本発明の株の拮抗活性は、部分的には、幾つかの微生物植物毒素を解毒する、植物細胞への真菌の侵入を阻害する、及び／又は植物防御応答の誘導因子としてのその活性により生物防除能力と関連づけられているエステラーゼ（Ｃ４）酵素（表３）の発現に起因し得る。
【００１３】
本発明の株の高い拮抗能力にもかかわらず、本発明の株は、驚いたことに、実施例４Ａ及び実施例４Ｂに記載されるように、抗菌化合物であるピロルニトリン、２，４−ジアセチルフロログルシノール（２，４−ＤＡＰＧ）、ピオルテオリン及びピオシアニンを発現も合成もしないことがわかった。これらの代謝産物は、シュードモナス属菌によって産生される最も一般的な抗菌化合物であると知られており、ヒト又は動物に対して病原性の株における耐性の出現に関与する。したがって、本発明の株によるこれらの代謝産物の発現の欠如は、本発明の株に対してより安全なプロファイルを与える。
【００１４】
更に、本発明の株は、４〜１０の範囲のｐＨを有する土壌におけるコロニー形成する能力及び生存する能力を有する（表２）。
【００１５】
土壌のｐＨ範囲は、３．５未満のｐＨを有する土壌である超酸性から９より高いｐＨを有する非常に強アルカリ性の土壌に及んでもよい。植物成長は微量栄養素及び多量栄養素の利用可能性に依存する。土壌ｐＨは有効態養分に明らかな影響を及ぼす。これは、なぜ或る土壌では成長することができる幾つかの種が存在し、その他の種はそれらの成長要件に依存し得ないのかということの理由である。一方、ｐＨ等の環境条件が特定の微生物の生存率／活性に悪い影響を与える場合があることは、当業者によって十分認識されている。発明者は、驚いたことに、本発明の株が４〜１０の間の非常に極端なｐＨ値で生存することができることを見出した。すなわち、本発明の株の有効性は、土のｐＨによって悪影響を受けず、本発明の株が任意の種類の植物作物においてその機能を発揮することができることを意味することから、それは更に価値のある利点である。
【００１６】
概して、本明細書で提供されるデータは、本発明の株が、その他のＰ．プチダ株に反して、土の性質と無関係に殺虫剤としてその作用を効率的に発揮することができる安全で多目的な株であると結論付けることを可能とする。
【００１７】
したがって、本発明は、第１の態様では、アクセス番号ＣＥＣＴ８５３８によりスペイン・タイプ・カルチャー・コレクション（ＣＥＣＴ）に寄託されたシュードモナス・プチダ株又はその変異体を提供し、該変異体の株はシュードモナス・プチダのＣＥＣＴ８５３８を使用して得られ、また上記出発株の以下の特徴：（ａ）拮抗活性、及び（ｂ）植物の部分においてコロニー形成する又は生存する能力を維持する。
【００１８】
カヴァ（スペインの北東部、バルセロナ）の土壌から単離された本発明のシュードモナス・プチダ株は、スペイン国バレンシア、ブルジャソット４６１００、バレンシア大学ブルジャソットキャンパス研究棟にあるスペイン・タイプ・カルチャー・コレクション（ＣＥＣＴ）に２０１４年１月２１日付でブダペスト条約に従って本出願人によって寄託された。生存可能であると認められた後、上記株にアクセス番号ＣＥＣＴ８５３８が付与された。
【００１９】
したがって、第２の態様では、本発明は、本発明の第１の態様に定義されるＰ．プチダ株ＣＥＣＴ８５３８又はその変異体の殺虫剤としての使用を提供する。
【００２０】
植物における殺虫剤としてのその使用に関して、上記株の生細胞を大量に得ることが重要である。実施例５に示されるように、一旦濃縮され凍結乾燥されると、上記組成物は９０％超の細胞生存率を示し、それは保存の間維持される。
【００２１】
第３の態様では、本発明は、第１の態様に定義されるシュードモナス・プチダ株ＣＥＣＴ８５３８又はその変異体に由来する生細胞浮遊液を得る方法を提供し、該方法は：（ｉ）培養培地に上記株を接種する工程、（ｉｉ）上記工程（ｉ）の接種された培養培地を、上記株の増殖に適した条件に供する工程、及び（ｉｉｉ）任意に、工程（ｉｉ）から得られた上記培養培地を濃縮工程に供する工程、を含む。
【００２２】
第４の態様では、本発明は、本発明の第１の態様に定義されるシュードモナス・プチダ株ＣＥＣＴ８５３８又はその変異体に由来する無細胞抽出物を提供し、該抽出物は、（ｉ）上記株を好適な培養培地中の株に接種する工程；（ｉｉ）接種された培養培地を適した増殖条件に供する工程；（ｉｉｉ）工程（ｉｉ）の培養培地から細胞を分離する工程；（ｉｖ）無細胞抽出物を収集する工程と；及び（ｖ）任意に、無細胞抽出物を濃縮工程に供する工程、を含む方法によって取得可能である。
【００２３】
代替的に、一旦上記株を接種させ、好適な増殖条件にそれを供すると、得られる接種生成物は、微生物の不活性化工程に供され得る。
【００２４】
第５の態様では、本発明は、不活性化された本発明の株を含む接種生成物を提供する。
【００２５】
本発明の第５の態様の接種生成物は、増殖工程の間に、その効果を担う代謝産物の分泌に起因して、拮抗作用を発揮する。
【００２６】
第６の態様では、本発明は、本発明の第１の態様に定義されるシュードモナス・プチダ株ＣＥＣＴ８５３８若しくはその変異体、又は本発明の第４の態様に定義される抽出物、又は本発明の第５の態様に定義される接種生成物と、１又は複数の農業的に許容可能な化合物とを含む組成物を提供する。
【００２７】
第７の態様では、本発明は、本発明の第１の態様に定義される本発明の株若しくはその変異体、又は本発明の第４の態様に定義される無細胞抽出物、又は本発明の第５の態様に定義される接種生成物、又は本発明の第６の態様に定義される組成物の殺虫剤としての使用を提供する。
【００２８】
最後に、第８の態様では、本発明は、植物において細菌性又は真菌性の病原体によって引き起こされる感染を制御する方法であって、第１の態様に定義される本発明の株若しくはその変異体、第４の態様に定義される抽出物、第５の態様に定義される接種生成物、又は第６の態様に定義される組成物を、該植物に投与することを含む、方法を提供する。
【図面の簡単な説明】
【００２９】
【図１】ＣＥＣＴ８５３８は２８℃でスウォーミング能力を有する。２８℃（右）又は３７℃（左）にて３０時間に亘ってＭ９又はＢＭ２と共にインキュベートされたＰ．プチダＣＥＣＴ８５３８の代表的な画像。
【図２】ＣＥＣＴ８５３８は抗真菌活性を有する。対照としてのＰＤＡ単独と比較した、２回投与量のＰ．プチダＣＥＣＴ８５３８を含むＰＤＡ上で増殖する植物病原性真菌の代表的な画像。Ａ：Ｂ．アクラダＣＥＣＴ２８５１、Ｂ：Ｒ．ソラニＤＳＭＺ６３０１０、Ｃ：Ｐ．ウルチマムＣＥＣＴ２０９０２、Ｄ：Ｓ．スクレロチオラムＣＥＣＴ２８２２、Ｅ：Ｓ．スクレロチオラム株Ｈ２４、Ｆ：Ｃ．コッコデス株Ｈ８２７、Ｇ：Ｆ．オキシスポラム株Ｈ８２８、及びＨ：Ａ．ポリ株Ｈ８３０。
【図３】指定のＰ．プチダ株に対して曝露された又は曝露されていないボトリチス・アクラダの真菌増殖の動態。グラフは、接種後３日目、７日目及び１０日目のＰＤＡ（対照；菱形）、ＣＥＣＴ８５３８が接種されたＰＤＡ（正方形）、ＣＥＣＴ３２４が接種されたＰＤＡ（三角形）、及びＤＳＭ６１２５が接種されたＰＤＡ（十字）で増殖するＢ．アクラダの増殖阻害％を示す。
【発明を実施するための形態】
【００３０】
本出願において本明細書で使用される全ての用語は、別段の定義がない限り、当該技術分野で知られているそれらの通常の意味において理解されるものとする。本出願で使用される特定の用語のその他のより特殊な定義を以下に述べ、述べられる定義が明らかにより広い定義を提供しない限り、本明細書及び特許請求の範囲を通して一様に当てはめられることを意図する。
【００３１】
第１の態様では、本発明は、アクセス番号ＣＥＣＴ８５３８によりスペイン・タイプ・カルチャー・コレクション（ＣＥＣＴ）に寄託されたシュードモナス・プチダ株又はその変異体に関する。
【００３２】
「変異体」の用語によって、開始材料として、本発明のＰ．プチダ株ＣＥＣＴ８５３８を使用して得られ、その拮抗活性及び植物の部分においてコロニー形成又は生存する能力に関する、上記寄託株の特性を維持する細菌と理解される。
【００３３】
異なった植物病原体に対する拮抗活性は、異なった方法によって分析され得る。これらの方法は、通常、有効成分若しくはＢＣＡとの接触における病原体の増殖能の分析、又は有効成分若しくはＢＣＡの曝露後の病原体感染によって引き起こされる疾患の重症度の評価に基づく。この活性を評価する幾つかの通例のプロトコルは、とりわけ汚染食物テクニック（ｐｏｉｓｏｎｅｄ  ｆｏｏｄ  ｔｅｃｈｎｉｑｕｅ）及び細菌性軟腐病の重症度の分析である。簡潔には、汚染食物テクニックには、生物防除剤を含有するポテトデキストロース寒天プレートの作製、先に調製された病原体株の菌糸体培養物に対するこのプレートの曝露、及び経時的な病原性株の増殖の評価がある。細菌性軟腐病重症度分析（ｂａｃｔｅｒｉａｌ  ｓｏｆｔ  ｓｅｖｅｒｉｔｙ  ａｎａｌｙｓｉｓ）の場合、プロトコルは以下：（ｉ）種子を消毒及び播種する工程；（ｉｉ）実生を４週間に亘って成長させる工程；（ｉｉｉ）得られた植物を病原株に曝露する工程；（ｉｖ）生物防除物質と共に上記植物をインキュベートする工程；及び（ｖ）４週間に亘って更にインキュベーションした後に疾患の重症度を評価する工程、を含む。下記の実施例６Ａ〜実施例６Ｃでは、本発明の株による種々の植物病原性物質を拮抗する能力を示す。図２、並びに表４及び表５は、本発明の株が、その他のＰ．プチダ株よりも効果的に種々の真菌株を拮抗することができるだけでなく、作物条件においてエルウィニア・カロトボーラ・サブスピーシーズ．アトロセプチカ等の細菌増殖に対しても有効であることを説明する。
【００３４】
コロニー形成能力は、ＢＣＡにとってその機能を適切に行うため必要である。この能力は、スウォーミングアッセイ、又は作物様条件下での拮抗活性の評価等の機能的アッセイを含む幾つかの手法を使用して研究され得る。スウォーミング運動性アッセイについて、菌株を、特定の培地（Ｍ９又はＢＭ２）プレートに蒔き、望ましい温度で一晩インキュベートする。インキュベーションの後、多細胞細菌の表面移動を分析する。さらに、コロニー形成する能力に関連して、その他の能力も、ｐＨ及び温度の許容性等の種々の環境条件に対する適応に関与する。これに関連して、本発明の株は、２６℃（図１）で種々の基質をコロニー形成する能力と並んで、感染した植物に対して適用される場合に細菌感染に対して作用する能力（表４）を示し、４〜１０の幅広いｐＨにおいて生存することができる（表２）。
【００３５】
また、Ｐ．プチダのＣＥＣＴ８５３８の「変異体」は、本発明によれば、Ｐ．プチダのＣＥＣＴ８５３８の「バリアント」として理解される。当業者は、本明細書に記載される特徴及び関連する利点を保持する変異体を、開始材料として本発明の株を使用して、例えば、自然突然変異誘発又は定向突然変異等によって通例に従って得ることができる。特定の菌株の変異体を得る方法は、当該技術分野で知られている。一例を、Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｊ．ａｎｄ  Ｒｕｓｓｅｌｌ，Ｄ．Ｗ．“Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ”，Ｃｈａｐｔｅｒ１３，“Ｍｕｔａｇｅｎｅｓｉｓ”，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ，３ｒｄ  Ｅｄ，２００１に見ることができる。
【００３６】
ここから、本発明において「本発明の株」という表現が参照される場合、該表現は、Ｐ．プチダ株ＣＥＣＴ８５３８及びその変異体を包含する。
【００３７】
植物は、とりわけ、ジャガイモ等の塊茎、又は木、特に西洋ナシ木等の果樹、トマト、カリフラワー、又はコショウであってもよい。
【００３８】
したがって、「害虫防除」及び「生物学的有害生物防除」という用語は、本明細書において同じ意味で使用され、総合的害虫防除を指す。
【００３９】
上記を考慮して、別の態様では、本発明は、植物におけるＰ．プチダ株ＣＥＣＴ８５３８又はその変異体の殺虫剤としての使用に関する。
【００４０】
本発明では、「殺虫剤」という用語は、害虫とみなされる生体を殺傷する、撃退する、調節する、又は増殖を妨害することを意図した製品として、作物栽培学の分野におけるその通常の意味によって理解される。明らかに、Ｐ．プチダ株ＣＥＣＴ８５３８又はその変異体の性質に起因して、本明細書では、「殺虫剤」はバイオ農薬とも称される生物学的又は生態学的な（有機）殺虫剤であることが理解される。本発明の範囲では、「殺虫剤」の用語は、「植物衛生」という用語と同じ意味を有し得る。
【００４１】
本発明では、「疾患の制御」という用語は、その疾患を予防する、軽減する、治癒させる、又は根絶することを意味する。
【００４２】
本発明の第２の態様の実施形態では、上記株は、植物において細菌又は真菌によって引き起こされる感染の予防において使用される。
【００４３】
第３の態様では、本発明は、（ｉ）本発明の株を好適な培養培地に接種する工程、（ｉｉ）工程（ｉ）の接種された培養培地を上記株の増殖に適切な条件に供する工程、及び（ｉｉｉ）任意に、工程（ｉｉ）から得られた培地を濃縮工程に供する工程、を含む、本発明の株に由来する生細胞浮遊液を得る方法に関する。
【００４４】
「本発明の株に由来する」という用語は、上記懸濁液が、本発明の目的の株から得られることを意味する。
【００４５】
本発明の株は、５％体積／体積〜７％体積／体積に含まれる最終濃度で培養培地に接種され得る。好ましくは、接種される培養物は、指数増殖期にある。細胞増殖は、好ましくは１０×１０９ＣＦＵ／ｍＬ〜１０×１０１０ＣＦＵ／ｍＬに含まれる細胞濃度を達成するように遅い。本発明の株の増殖に適した培養培地は、ＬＢ（溶原性ブロス）及びＰＭ（生理食塩水産生培地（ｓａｌｉｎｅ  ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ  ｍｅｄｉｕｍ））等の合成培地、又は糖蜜（例えばサトウキビ、ビート、その他）等の植物起源の培地である。上記株の増殖に適した条件は、２５℃〜３５℃に含まれる温度、６〜８に含まれるｐＨ、及び５０％〜１００％に含まれる酸素濃度である。本発明の株の増殖は、撹拌によってもたらされる。本発明の株から細胞を得る詳細な方法の一例は、実施例５に反映される。
【００４６】
懸濁液を得る方法の別の実施形態では、細胞を培地から分離して濃縮懸濁液を得る。好適な分離技術としては、培養物の遠心分離又は濾過が挙げられる。例えば、最小５０００ｒｐｍで培養物の遠心分離を実行して、細胞をペレットで得て、それを、株の濃度がおよそ約１×１０１１ＣＦＵ／ｍＬとなるように、培養培地の一部、又は好適な緩衝培地に再懸濁する。
【００４７】
一旦懸濁液が得られると、それを脱水工程に供してもよい。脱水を凍結乾燥プロセスによって行ってもよい。代替的には、上記懸濁液を、流動層乾燥によって脱水してもよい。別の選択肢は、噴霧乾燥又は真空下でオーブンにおいて乾燥させることによって懸濁液を脱水することである。この点で、本発明の株の別の有利な特徴は、それが、工業規模で微生物を得る際に通例となっている脱水プロセスに高い抵抗性を示すことである。細胞の生存率を改善するため、不活性の浸透圧保護剤である原料を、脱水工程を行う前に懸濁液に添加してもよい。
【００４８】
本発明の第３の態様の別の特定の実施形態では、上記プロセスは、分離工程から得られた細胞を好適なバッファーに再懸濁して、細胞濃縮懸濁液を得ることを含む。
【００４９】
第４の態様では、本発明は、本発明の第１の態様に定義されるＰ．プチダ株ＣＥＣＴ８５３８又はその変異体に由来する無細胞抽出物を提供し、上記抽出物は、（ｉ）上記株を好適な培養培地に接種する工程；（ｉｉ）接種された培養培地を好適な増殖条件に供する工程；（ｉｉｉ）工程（ｉｉ）の培養培地から細胞を分離する工程；（ｉｖ）無細胞抽出物を収集する工程；及び（ｖ）任意に該無細胞抽出物を濃縮工程に供する工程、を含むプロセスによって取得可能である。
【００５０】
上に記載される分離プロセスによって得られる無細胞培地を、直接に適切な製剤化に使用及び／又は導入してもよく、又はより好適な組成を達成するように濃縮工程に供してもよい。したがって、第４の態様の実施形態では、本発明は、脱水、濾過、限外濾過、遠心分離、超遠心分離、沈殿又はクロマトグラフィー等の使用され得る無細胞抽出物を濃縮するための種々のプロトコルに関する。
【００５１】
本発明の別の態様では、本発明は、第５の態様において、本発明の株を含む接種生成物を提供する。
【００５２】
「接種生成物」により、上記株を好適な培養培地に接種し、該接種された培養培地を好適な増殖条件に供した後に生成物が得られると理解される。
【００５３】
本発明の第５の態様の一実施形態では、接種生成物は濃縮形態である。別の実施の形態では、接種生成物は乾燥濃縮形態である。接種生成物を濃縮し乾燥する技術は通例のものであり、上に提供されている。
【００５４】
本発明の第５の態様の別の実施形態では、接種生成物は、不活性化された本発明の株を含む。
【００５５】
「不活性化された本発明の株を含む接種生成物」により、好適な培養培地に上記株を接種し、該接種された培養培地を好適な増殖条件に供し、その後、該株を不活性化させた後に得られる生成物を指す。「不活性化された」という用語は、上記微生物がコロニーを形成することができないことを意味する。一実施形態では、不活性化された微生物は、無傷又は破壊された細胞膜を有する。
【００５６】
第６の態様では、本発明の第１の態様に定義される株、第４の態様に定義される抽出物、又は第５の態様に定義される接種生成物と、１つ又は複数の農業的に許容可能な化合物とを含む組成物を提供する。
【００５７】
害虫防除における実用の観点から、殺虫剤物質は、通常、農業用途に適した添加剤も含む組成物に製剤化される。本発明の組成物は、固体（例えば、脱水した細菌濃縮物を含む）又は液体（細菌濃縮懸濁液を含む）であってもよい。
【００５８】
「農業的に許容可能な化合物」は、農業における使用に適しているそれらの化合物及び／又は材料を指す。一般に、上記化合物は、ヒトに無毒でなくてはならず、環境にやさしいことが好ましい。
【００５９】
本発明の第６の態様の特定の実施形態では、本発明の殺虫組成物は、処理される植物において上記株の接着を改善する化合物と並んで、植物強化化合物、栄養素、湿潤剤、安定化剤、浸透圧保護剤、抗酸化剤、日焼け止め、緩衝化合物、又はそれらの組み合わせを含んでもよい。
【００６０】
本発明の第６の態様の別の実施形態では、接着製品の例は、ゼラチン、デンプン、ペクチン、アルギン酸塩、及びキサンタン等の様々な種類のゴムである。また、これらの化合物の多くは湿潤剤である。日焼け止めの場合、コンゴレッド、炭酸カルシウム及びワックスエマルジョンを使用することができる。植物強化剤は、作物が、病原体又は悪環境条件に対して強健さ又は忍容性を発達させるのを促進することができる化合物、例えばジャスモン酸アナログ、及びハーピン、キトサン及びラミナリン等の幾つかの植物防御刺激物質である。さらに、浸透圧保護剤の例はトレハロース、ベタイン及びアミノ酸である。最後に、アスコルビン酸及びグルタチオンは抗酸化剤に含まれる。
【００６１】
本発明の第６の態様の更なる実施形態では、上記組成物は、少なくとも１つの追加の殺虫剤を含み、該追加の殺虫剤は、株ＣＥＣＴ８５３８の活性に悪影響を及ぼさない。本発明の第６の態様の別の実施形態では、追加の殺虫剤は、細菌又は真菌の感染を制御するのに有効な菌株、殺真菌剤、殺菌剤、除草剤、殺虫剤又は殺線虫剤からなる群から選択される。
【００６２】
本発明の第６の態様の組成物は、種々の原料の混合等の通例のプロトコルによって調製され得る。
【００６３】
第７の態様では、本発明は、本発明の第１の態様に定義される本発明の株、又は本発明の第４の態様に定義される無細胞抽出物、又は本発明の第５の態様に定義される接種生成物、又は本発明の第６の態様に定義される組成物の植物における殺虫剤としての使用に関する。
【００６４】
本発明の第７の態様の実施形態では、本発明は、植物において真菌性又は微生物性の病原体によって引き起こされる疾患の制御に対する第６の態様の組成物の使用に関する。
【００６５】
別の態様では、本発明は、細菌又は真菌の感染によって引き起こされる疾患を予防、治癒、軽減又は根絶のため、第１の態様に定義される本発明の株若しくはその変異体、又は第４の態様に定義される無細胞抽出物、又は第５の態様に定義される接種生成物、又は第６の態様に定義される組成物を、植物及び／又は種子の冒された部分、又は上記植物の成長に使用される基質若しくは土壌に対して投与することを含む方法を提供する。
【００６６】
本明細書及び特許請求の範囲を通して、「含む」及びその単語の変形は、その他の技術的特徴、付加物、構成要素、又は工程を排除することを意図するものでない。更に、「含む」という単語は、「からなる」の場合を包含する。本発明のさらなる目的、利点、特徴は、本明細書の検討により当業者に明らかとなるか、又は本発明の実施によって習得され得る。以下の実施例は、実例として提供され、それらは、本発明の限定を意図するものではない。さらに、本発明は、本明細書に記載される特定及び好ましい実施形態の全ての可能性のある組み合わせを包含する。
【実施例】
【００６７】
実施例１．シュードモナス・プチダ株ＣＥＣＴ８５３８の単離及び同定
【００６８】
上記単離株を得るため、土壌の試料をスペインの地方から集めた。全ての試料は地中海性気候の畑及び自然環境に由来した。従来の微生物学的方法（Ｍｏｒａら，“Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ  ｐｅｐｔｉｄｅ  ｇｅｎｅｓ  ｉｎ  Ｂａｃｉｌｌｕｓ  ｓｔｒａｉｎｓ  ｆｒｏｍ  ｐｌａｎｔ  ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔｓ”，Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，２０１１，ｖｏｌ．１４，ｐｐ．２１３−２２３）によって試料を処理し、シュードモナス属の細菌を２８℃で２４時間に亘りＮＡ培地において単離して、２４００個の単離物のコレクションを形成した。最初に１６Ｓ  ｒＤＮＡシーケンシングによってＣＥＣＴ８５３８を同定した。製造業者の指示に従って高性能ＤＮＡポリメラーゼ（Ｂｉｏｔａｑ、英国ロンドンのＢｉｏｌｉｎｅ）を用いるコロニーＰＣＲ（ＮＡ中の固形培養物に由来する１つのコロニーを無菌のピペットチップで取り；チップを５０μＬ滅菌水に漬け、９８℃で１０分間沸騰させ、ＰＣＲテンプレートとして使用するまで直ちに氷上に置いた）を使用し、配列配列番号１を有する細菌のフォワードプライマー８ｆ（フォワードプライマー８ｆ：ＡＧＴＴＴＧＡＴＣＣＴＧＧＣＴＣＡＧ）及び配列番号２を有するユニバーサル逆相補プライマー１４９２ｒ（リバースプライマー１４９２ｒ：ＡＣＧＧＴＴＡＣＣＴＴＧＴＴＡＣＧＡＣＴＴ）を用いて、１６Ｓ  ｒＤＮＡを増幅させた。アンプリコン配列番号：３（本発明ＣＥＣＴ８５３８の株のサブユニット１６Ｓ  ｒＤＮＡに対応する）を生成し、８ｆプライマーを使用して配列決定した。次いで、配列をＮＣＢＩヌクレオチドデータベース全体に対するＢＬＡＳＴｎホモロジー検索にサブミットした。１６Ｓ  ｒＤＮＡヌクレオチド配列に基づいて、当初、細菌の単離物をいわゆる「Ｐ．プチダ複合体」（Ｐ．プチダ／プレコグロシシダ（ｐｌｅｃｏｇｌｏｓｓｉｃｉｄａ）／タイワネンシス（ｔａｉｗａｎｅｎｓｉｓ））に密接に関係するシュードモナス（Ｐｓｕｄｏｍｏｎａｓ）属株として同定した。
【００６９】
菌株のより正確な同定のため、この属内でより識別力があると報告されているｒｐｏＤ及びｇｙｒＢのヌクレオチド配列を全ゲノムショットガン法（ＷＧＳ）により検索し、標的データベースがシュードモナス属菌のエントリー（ｔａｘｉｄ：２８６）に限定されるという点を除いて、１６Ｓに関して分析した。ｒｐｏＤ（配列番号４）及びｇｙｒＢ（配列番号５）のヌクレオチド配列は、ＣＥＣＴ８５３８がＰ．プチダ生物型のＡ又はＣに属するＰ．プチダ株であることを示す。生物型Ｃとは対照的に、生物型ＡのＰ．プチダ株は４℃で増殖することができない。ＣＥＣＴ８５３８が４℃で増殖することができなかったことから、生物型ＡのＰ．プチダ株であったと結論付けられた。
【００７０】
正確な分類を含む本発明の株に関する広範囲な情報を得るため、全ゲノム配列シーケンシングの実験を行った。これについて、ＤＮＡをＣＥＣＴ８５３８液体培養物から得て、製造業者の規格に従って、Ｎｅｘｔｅｒａ（商標）ＤＮＡライブラリ（英国ケンブリッジのＩｌｌｕｍｉｎａ）に対してＩｌｌｕｍｉｎａ技術（ＨｉＳｅｑ２５００）を使用して配列決定した。生成されたデータは、デノボとリファレンス支援が組み合わされたアッセンブリアプローチを使用して、注釈付けされた全ゲノムショットガン（ＷＧＳ）を生成する、特許のワークフローであるＲＥＣＯＮＳＴＲＵＣＴＯＲを適用することによってＳｅｑｕｅｎｔｉａ  Ｂｉｏｔｅｃｈ（スペイン国、バルセロナ）により分析された。Ｐ．プチダＫＴ２４４０（アクセッション番号ＮＣ＿００２９４７．４；ＤＳＭ６１２５）を、リファレンス支援アッセンブリの参照として使用した。
【００７１】
ＲＡＳＴを使用してＷＧＳ配列に注釈を付けた。ｒＲＮＡオペロンのスクリーニングに対しては、オンラインツールであるＷｅｂＭＧＡを使用した（ｈｔｔｐ：／／ｗｅｉｚｈｏｎｇ−ｌａｂ．ｕｃｓｄ．ｅｄｕ／ｍｅｔａｇｅｎｏｍｉｃ−ａｎａｌｙｓｉｓ／）。ｔＲＮＡの識別については、ＡＲＡＧＯＲＮ  ｖ１．２．３６を使用した。ｏｒｉＣ及び関連配列を、Ｏｒｉ−Ｆｉｎｄｅｒ及びＤｏｒｉＣのデータベースを使用して同定した。ゲノムアイランドを、ＩｓｌａｎｄＶｉｅｗｅｒ３を使用して同定した。
【００７２】
ＣＥＣＴ８５３８ゲノム配列のアッセンブリは、シュードモナス属菌においてＢＬＡＳＴヒット（ｅ−ｖａｌ．カットオフ０．０１）がない、又は最も良好なＢＬＡＳＴヒットを有するいずれかのコンティグから構築された、６３１５６５６個のヌクレオチドを含む１８６個のスキャフォルドをもたらした。１８６個のスキャフォルドから、第１のもの（本明細書では「染色体」と称される）は５８６０１６５塩基、すなわち配列決定された全塩基の９２．８％を含む。ＣＥＣＴ８５３８ゲノム全体のＧＣ含量は６１．７％である。ＩｓｌａｎｄＶｉｅｗｅｒは染色体中の１２個のゲノムアイランド（ＧＩ）を予測し、それらの幾つかはＧＣスキュー領域と一致し、そのうち少なくとも５つがプロファージ関連配列を持つ。これらのＧＩのうちの１つは約７００ｋｂｐに亘り、６００個超のＣＤＳを含む。
【００７３】
５Ｓ  ｒＤＮＡコピーのフラグメントのみがＣＥＣＴ８５３８染色体に集められる。５Ｓのフラグメントに隣接している１６Ｓ配列及び２３Ｓ配列全体が、（染色体以外の）最も大きなスキャフォルドの１つにコードされる。さらに、その他スキャフォルドは、それぞれフラグメント又は５Ｓ配列全体のいずれかを含む。おそらくは、ＲＥＣＯＮＳＴＲＵＣＴＯＲは、それらが重複する読み取りであることを考慮して、ｒＤＮＡのコピーを互いに整列させる。ＣＥＣＴ８５３８  ＷＧＳは、６７ｔＲＮＡをコードする配列を含む。これらから、５７個は染色体にコードされ、ｓｅＣ（セレノシステイン）を含む２２個のアミノ酸に対するｔＲＮＡ及び曖昧なｔＲＮＡ（ｓｅＣ又はＶａｌに対する）を含む。ＣＥＣＴ８５３８ゲノムのｏｒｉＣ配列は、ｒｐｍＨとｄｎａＡの遺伝子によって挟まれた５７３個ヌクレオチドを含み、４個のｄｎａＡボックスと、１個及び２個の不一致部位を含む２個の追加の配列とをそれぞれ含む。
【００７４】
ＲＡＳＴアノテーションツールは、６０ヌクレオチド長〜１４３９４ヌクレオチド長のＣＤＳ、９５０ヌクレオチド長〜８１９ヌクレオチド長の平均及びメジアンＣＤＳ、並びに１１９７ヌクレオチド長のＮ５０  ＣＤＳをそれぞれ有する、５５９５８１３個のヌクレオチドにコードされている５８９２個のＣＤＳ（すなわち、コーディング領域は、ゲノムの８８．６％を包含する）を予測した。全てのＣＤＳから、５０％を仮説のタンパク質として分類した。
【００７５】
さらに、参照ゲノム（ＫＴ２４４０；ＤＳＭ６１２５）と比較して、Ｓｅｑｕｅｎｔｉａ  Ｂｉｏｔｅｃｈは、ＣＥＣＴ８５３８において一塩基多型（ＳＮＰ：ｓｉｎｇｌｅ  ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ  ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｓｍ）、小さな挿入又は欠失（ＩＮＤＥＬ：ｉｎｓｅｒｔｉｏｎ  ｏｒ  ｄｅｌｅｔｉｏｎ）、及び大きな構造バリアント（ＳＶ：ｓｔｒｕｃｔｕｒａｌ  ｖａｒｉａｎｔ）を解明するためバリアントコーリング分析を行った。バリアントクオリティ及び遺伝子型深度によってフィルタリングすると、ＫＴ２４４０と比較して、ＣＥＣＴ８５３８は１１２９３１個のＳＮＰ及び８６７個のＩＮＤＥＬ（３３２個の小さな欠失及び５３５個の小さな挿入）を示す。さらに、実験で得られた全てのＣＥＣＴ８５３８の読み取りから、２２．３％はＫＴ２４４０ゲノムにマップしなかった。これらの読み取りをデノボアッセンブリとし、４０２個の完全なタンパク質を含む、アッセンブリされたスキャフォルド５１２ＯＲＦを予測した。デフォルトセッティングによるｍｅｇａｂｌａｓｔアルゴリズムは、２００個を超えるこれらのＯＲＦに対するＮＣＢＩデータベース中の任意のヌクレオチド配列と著しいアラインメントを示さず、ＣＥＣＴ８５３８がＫＴ２４４０と異なるのみならず、その他の株とも異なることを示した。
【００７６】
実施例２．シュードモナス・プチダ株ＣＥＣＴ８５３８の物理化学的性質の特性評価
【００７７】
特性評価アッセイのため、市販の栄養寒天（ＮＡ、Ｓｃｈａｒｌａｂ）、Ｍ９（カザミノ酸０．５％、２ｍＭ  ＭｇＳＯ４、０．１ｍＭ  ＣａＣｌ２、０．４％グルコースで補足して０．５％寒天で凝固させた）又はＢＭ２（６２ｍＭリン酸水素二カリウムバッファー、ｐＨ＝７．２ｍＭ  ＭｇＳＯ４、１０μＭ  ＦｅＳＯ４、０．５％［重量／体積］カザミノ酸、グルコース０．４％で補足し、０．５％寒天で凝固させた）の培地プレートに本発明の株を蒔いた。培地滅菌の後にプレートを準備し、一旦培地を十分に冷却して、プレートに注ぎ、半固形になるまで置いた。温度プロファイル評価のため、本発明の株を、１０８濃度（ＣＦＵｍｌ−１）でＮＡプレートに蒔き、種々の温度（すなわち、４℃、２６℃、３７℃及び４２℃）で５日間インキュベートした。２６℃及び３７℃の温度は単離物ＣＥＣＴ８５３８の増殖に最適であるが、２４時間のインキュベーションの後４℃及び４２℃で増殖しなかったことがわかった（表１を参照されたい）。上に記載されるように、ＣＥＣＴ８５３８をｒｐｏＤ及びｇｙｒＢのヌクレオチド配列に基づいてＰ．プチダの生物型Ａ又は生物型Ｃとしてクラスター化した。生物型Ｃに反して、Ｐ．プチダ生物型Ａ株の４℃で増殖する能力は比較的まれであり、本発明の株が生物型Ａに属することを支持する。
【００７８】
ＮＡ培地中にナリジキシン酸１５μｇ／ｍｌ、クロラムフェニコール５０μｇ／ｍｌ、硫酸ストレプトマイシン５０μｇ／ｍｌ、オキシテトラサイクリン（ｏｘｙｔｅｔｒａｃｉｃｌｉｎｅ）５０μｇ／ｍｌ、又はニトロフラントイン５０μｇ／ｍｌを組み込むことによって、抗生物質感受性を判断した。また、５％ＮａＣｌを含むＮＡ中で増殖する能力を判定した全ての条件において、プレートを２６℃で４８時間インキュベートした。Ｐ．プチダＣＥＣＴ８５３８は、ナリジキシン酸１５μｇ／ｍｌ及びクロラムフェニコール５０μｇ／ｍｌに耐性であった。しかしながら、本発明の株は、硫酸ストレプトマイシン５０μｇ／ｍｌ、オキシテトラサイクリン５０μｇ／ｍｌ又は５％ＮａＣｌを含むＮＡ中で増殖することができなかった。抗生物質であるニトロフラントインは、５０μｇ／ｍｌでの細菌増殖に対するわずかな効果を示した（表１を参照されたい）。
【００７９】
本発明の株を更に特性評価するため、製造業者（フランス国リヨンのＢｉｏＭｅｒｉｅｕｘ）によって記載される手順に従ってＡＰＩ  ＺＹＭキットで酵素活性を分析した。本発明の株は、エステラーゼ（Ｃ４）、ロイシンアリールアミダーゼ及びアルカリホスファターゼの酵素活性を示した。
【００８０】
表１．Ｐ  プチダＣＥＣＴ８５３８の物理化学的特徴
【表１】
2020515273.tif 000002
【００８１】
コロニー形成能力は、生物防除剤が根圏の環境内で適切に競合するのに決定的な特徴である。本発明の株のこの能力を試験するため、その細菌スウォーミング運動性を評価した。スウォーミングは、細菌によって表面の協調したコロニー形成を促進する特殊な多細胞の動きである。簡潔には、本発明の株の予備培養物を、Ｍ９又はＢＭ２のいずれかの培地を含むプレートに接種して、２８℃又は３７℃で３０時間インキュベートした（図１）。図１に示されるように、本発明の株は、３７℃ではなく２８℃で高いスウォーミング能力を有した。これは、本発明の株が、土壌平均温度である２８℃で代謝的に活性であることを示し、ヒト病原性微生物の最適なコロニー形成温度である３７℃ではその活性を有しないことを示す。
【００８２】
実施例３．種々のｐＨの細胞増殖能力の比較分析
【００８３】
異なるＰ．プチダ株内で種々のｐＨで生存する能力を比較するため、本発明の株ＣＥＣＴ８５３８及び参照Ｐ．プチダ株ＣＥＣＴ３２４及びＤＳＭ６１２５（ＫＴ２４４０）を、２８℃、１２０ｒｐｍの振盪機で一晩予備培養した。これらの予備培養物を、所望の調整されたｐＨ（表２を参照されたい）を含むＮＡペトリ皿に蒔き、２８℃で２４時間インキュベートした。ＮＡ培地の滅菌後、プレートに培地を注ぐ直前に、ｐＨ調整を行った。表２は、インキュベーションの２４時間後に観察された結果を示す。ＣＥＣＴ８５３８は、その他のＰ．プチダ株と比較した場合、より広いｐＨ範囲で生存することができた株であり、環境に対する本発明の株の高い適応能力を確認した。
【００８４】
表２．種々のｐＨにおけるＣＥＣＴ８５８３の細胞増殖能力の分析
【表２】
2020515273.tif 000003
【００８５】
実施例４．本発明の株による抗菌産生の分析
【００８６】
実施例４Ａ．Ｐ．プチダＣＥＣＴ８５３８による代謝産物産生の痕跡に関するＨＰＬＣ解析。
【００８７】
シュードモナス属菌によって産生される最も一般的な抗菌性代謝産物は、生物防除に重要な役割を果たすピロルニトリン、２，４−ＤＡＰＧ、ピオルテオリン及びフェナジンである。これらの代謝産物は、後期対数増殖期又は静止期の間にシュードモナス属菌によって合成され得る。
【００８８】
Ｐ．プチダ株ＣＥＣＴ８５３８の代謝産物の産生を評価するため、本発明の株を発酵プロセスに供して増殖させた。作業体積１００リットルの工業用バイオリアクターＦ３−１００（Ｆ３工業モデル、Ｂｉｏｎｅｔ）で、ＬＢ培養培地を用いて、温度を２８℃±１℃に調整し、通気８Ｌ／分、溶存酸素５０％超、及び２００ｒｐｍ〜４００ｒｐｍで撹拌して、大規模培養を行った。工業バイオリアクターと同じパラメータのもとで、実験室バイオリアクターＦ１−５（Ｆ１−実験室モデル、Ｂｉｏｎｅｔ）において２４時間増殖させた予備培養物５％体積／体積を培養物に接種した。
【００８９】
発酵の間、全てのパラメータ（すなわち温度、ｐＨ、酸素圧、撹拌、気流速度、気泡レベル及び光学密度）を制御し、測定した。一旦発酵が終了すると、細胞を遠心分離（Ｈｉｔａｃｈｉ  ＣＲ２２Ｎ）によって採取し、培養上清を４℃で保管し、細胞を、バイオマス生存率を保つため凍結乾燥した（Ｈｅｔｏ  Ｐｏｗｅｒ  Ｄｒｙ  ＬＬ  ３０００）。
【００９０】
可能性のある代謝性画分をＨＰＬＣ（ｅＡｌｌｉａｎｃｅシステム、Ｗａｔｅｒｓ）によって分析した。１５分間に亘って水中アセトニトリル０％〜８０％の線形勾配で溶出（１ｍｌ分−１）させる、ＸＢｒｉｄｇｅ  Ｃ１８逆相カラム（５μｍ  ４．６ｍｍ×１５０ｍｍ、Ｗａｔｅｒｓ）を使用してクロマトグラムを行った。溶媒はいずれも０．０５％トリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）を含んだ。代謝産物を、フォトダイオードアレイ検出器を用いるＵＶ分光法によって検出した［ピロルニトリンに対して、λ＝２４７ｎｍ及び保持時間（ｔｒ）＝１４．６分；２，４−ＤＡＰＧに対して、λ＝２７８ｎｍ及びｔｒ＝１２．６分；ピオルテオリンに対して、λ＝３０８ｎｍ及びｔｒ＝１０．６分；ピオシアニンに対して、λ＝２７８ｎｍ及びｔｒ＝５．５分］。
【００９１】
本発明の株に由来する種々の試料のＨＰＬＣクロマトグラムを、標準的な代謝産物であるピロルニトリン、２，４−ＤＡＰＧ、ピオルテオリン及びピオシアニンについて得られたクロマトグラムと比較した。各代謝産物に対応する４つのピークは、本発明の株から得られたクロマトグラムにはなかった。
【００９２】
実施例４Ｂ．本発明の株による、ピロルニトリン、２，４−ＤＡＰＧ、ピオルテオリン及びピオシアニンの代謝産物を合成する能力を判定するゲノム分析
【００９３】
ＣＥＣＴ８５３８がその他の増殖／貯蔵の特定条件下でこれらの代謝産物を合成する遺伝子機構を備えるかどうかを判断するため、相補的ゲノム研究を行った。
【００９４】
最初に、シュードモナス属菌における各代謝産物のコア生合成経路をＮＣＢＩデータベースから検索した。ピロルニトリン、２，４−ＤＡＰＧ、ピオルテオリン及びピオシアニンの生合成酵素に対するホモログを、ＣＥＣＴ８５３８のＷＧＳにおいて探索し、ＢＬＡＳＴｐを使用してタンパク質−タンパク質アラインメントを行った。カットオフパラメータとしてビットスコアを使用し、閾値４０を適用して、ＣＥＣＴ８５３８ゲノムから予測された遺伝子のｉｎ  ｓｉｌｉｃｏ翻訳（５８９２個のタンパク質コーディング遺伝子）で構成されるデータベースを得た。
【００９５】
ピロルニトリン生合成酵素は、ｐｒｎＡ（トリプトファンハロゲンをコードする）、ｐｒｎＢ（モノデクロロアミノピロールニトリン合成酵素をコードする）、ｐｒｎＣ（ハロゲナーゼをコードする）、及びｐｒｎＤ（アミノピロールニトリンオキシゲナーゼをコードする）を含むｐｒｎオペロンに位置する遺伝子によってコードされる。Ｐ．プチダ株ＣＥＣＴ８５３８は、ｐｒｎオペロンに由来するｐｒｎＡのホモログのみを有し、ＣＥＣＴ８５３８がピロルニトリンを合成することができないことを示唆する（表３）。
【００９６】
２，４−ＤＡＰＧのコア生合成経路は、ｐｈｌＡ（βケトアシル−ＡＣＰシンターゼＩＩＩをコードする）、ｐｈｌＢ（推定上の核酸結合酵素をコードする）、ｐｈｌＣ（縮合酵素をコードする）、及びｐｈｌＤ（ＩＩＩ型ポリケチド合成酵素；ＰＫＳをコードする）を含むｐｈｌ遺伝子座中の遺伝子によってコードされる。シュードモナス属菌における幾つかのＰｈｌＤタンパク質は、ＣＥＣＴ８５３８においてホモログを示したが、ＰｈｌＡ、ＰｈｌＢ又はＰｈｌＣのホモログは本発明の株では見られなかった（表３）。したがって、ＣＥＣＴ８５３８は２，４−ＤＡＰＧを合成することができないということが導き出される。
【００９７】
ピオルテオリン生合成遺伝子は、Ｐ．フルオレッセンス（Ｐ．ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｓ）Ｐｆ−５では、ｐｌｔ遺伝子群に分類される。これは１０個の遺伝子を含むが、７個：ｐｌｔＦ（アシルＣｏＡシンターゼをコードする）、ｐｌｔＥ（アシルＣｏＡデデヒドロゲナーゼ（ｄｅｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ）をコードする）、ｐｌｔＡ及びｐｌｔＭ（いずれもハロゲナをコードする）、ｐｌｔＢ（ＰＫＳ）、ｐｌｔＣ（ＰＫＳ）、並びにｐｌｔＧ（チオエステラーゼ）のみがコアピオルテオリン生合成経路を構成する。これらの７個のピオルテオリン生合成タンパク質より、ＰｌｔＦは、ＣＥＣＴ８５３８中にホモログを有し；幾つかの種／株のみで、ＰｌｔＡ、ＰｌｔＢ、ＰｌｔＣ、ＰｌｔＥ及びＰｌｔＭは、ＣＥＣＴ８５３８タンパク質と相同性を示し；ＰｌｔＧは本発明の株においてホモログを有しなかった。チオエステラーゼＰｌｔＧは、おそらくは、ポリケチドアッセンブリの終了を担い、したがって、ｐｌｔＧの欠如は、ＣＥＣＴ８５３８がピオルテオリンを合成することができないことを示唆する。
【００９８】
フェナジン−１−カルボン酸（ＰＣＡ）等のフェナジン及びピオシアニンは、Ｐ．アエルギノーザ（Ｐ．ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）のビルレンス因子である。いずれも酸化物質依存性機構によって、好中球の炎症反応、並びにケモカイン（ＩＬ−８）及び接着分子（ＩＣＡＭ−１）のアップレギュレートを刺激する。ピオシアニンの生合成は、ＰＣＡをもたらすコアフェナジン生合成経路と、ＰＣＡのピオアニンンへの変換を可能とするピオシアニン特異的生合成反応との協働作用によって達成される。これら２つの反応セットは、２つのそれぞれのオペロンにコードされる酵素によって触媒される。ｐｈｚ遺伝子クラスターの５つの遺伝子−ｐｈｚＢ／Ａ（ケトステロイドイソメラーゼをコードする；ｐｈｚＡはｐｈｚＢの非機能性コピーである）、ｐｈｚＤ（イソコリスマターゼをコードする）、ｐｈｚＥ（アントラニル酸（ａｎｔｈｒａｎｙｌａｔｅ）合成酵素に類似する）、ｐｈｚＦ（トランス−２，３−ジヒドロ−３−ヒドロキシアントラニラートイソメラーゼをコードする）及びｐｈｚＧ（フラビン依存性オキシダーゼをコードする）−が、ピオシアニンの前駆物質であるＰＣＡの生合成に必須である。さらに、ＰＣＡメチルトランスフェラーゼ及びフラビン依存性ヒドロキラーゼをそれぞれコードするｐｈｚＭ及びｐｈｚＳの作用もまた、ピオシアニンの生合成に必須である。
【００９９】
ＮＣＢＩデータベースでは、シュードモナス属菌に由来する数千ものＰｈｚＦ配列が存在し、そのうち２７個がＰ．プチダに対応する。ＣＥＣＴ８５３８は、その他のＰ．プチダ株のものに対してＰｈｚＦコピーホモログを有し（表３）、ＣＥＣＴ８５３８ゲノム配列から予測される遺伝子のｉｎ  ｓｉｌｉｃｏ翻訳は、この株におけるｐｈｚＦコピーの存在を予測した。
【０１００】
ＰｈｚＡ、ＰｈｚＢ及びＰｈｚＤに対するアクセッションに関して、探索は、Ｐ．プチダに対応するアクセッション、及びシュードモナス属菌（いずれもＰ．アエルギノーザに属する）における参照遺伝子に対応するものに限定された。Ｐ．プチダＮＪ−１０  ＰｈｚＤに対応するアクセッションは、ＣＥＣＴ８５３８においてホモログを示し、同じものがＰ．アエルギノーザＰＡＯ１に由来するＰｈｚＤタンパク質で観察された。一方、ＰｈｚＡ及びＰｈｚＢは、ＣＥＣＴ８５３８においてホモログを示さず、Ｐ．プチダＦＤＡＡＲＧＯＳに由来する配列にも、Ｐ．アエルギノーザＰＡＯ１に由来する配列にもホモログを示さなかった。
【０１０１】
ＰｈｚＥ、ＰｈｚＧ、ＰｈｚＭ及びＰｈｚＳのホモログは、どのＰ．プチダ株に由来するＮＣＢＩデータベースでも見られなかった。しかしながら、ＣＥＣＴ８５３８はＰ．アエルギノーザＰＡＯ１  ＰｈｚＥ対して予測されたタンパク質ホモログを示し、２つのＣＥＣＴ８５３８タンパク質は、シュードモナス属菌においてＰｈｚＧに対して見つかった３つのアクセッションに相同性を示した。さらに、シュードモナス属菌に由来する２つの参照ｐｈｚＭ遺伝子（いずれもＰ．アエルギノーザに属する）のいずれもがＣＥＣＴ８５３８にホモログを有しなかったのに対し、ｐｈｚＳ参照遺伝子（これもＰ．アエルギノーザに由来する）は本発明の株にホモログを有した。ピオシアニン前駆物質であるＰＣＡの生合成に不可欠なケトステロイドイソメラーゼであるＰｈｚＢの欠如、及びピオシアニンの生合成に必要なメチルトランスフェラーゼであるＰｈｚＭの欠如により、ＣＥＣＴ８５３８はピオシアニンを合成することができないと推定される。
【０１０２】
これらのデータはいずれも、ＨＰＬＣ解析が明らかにしたことを確認し、本発明の株がそれらの合成に必要な特定遺伝子の欠如のために幾つかの抗菌性代謝産物を産生することができないことを示す。これらの毒素を産生できないことは、ヒト病原体における抗生物質耐性の問題を説明することができ、本発明の株に対して、ヒト摂取を意図した植物を処理するために使用される適切なプロファイルを与える。
【０１０３】
表３．ピロルニトリン、２，４−ＤＡＰＧ、ピオルテオリン、及びピオシアニン生合成酵素に対するホモログ
【表３】
2020515273.tif 000004
【０１０４】
ａ数字は、ＣＥＣＴ８５３８中のホモログを含む配列の番号対シュードモナス属菌の配列検索の番号を示す。
ｂピオシアニンについて、数字は、ＣＥＣＴ８５３８対Ｐ．プチダの配列検索においてホモログを含む配列の番号示す。括弧内は、ＣＥＣＴ８５３８中のホモログを含む配列の番号対シュードモナス属菌に由来する参照遺伝子の番号を示す。
ｃＮＦ：検出されず
【０１０５】
実施例５．本発明の組成物の工業規模での産生。
【０１０６】
本発明の株を含む組成物の工業規模での産生のため、液体培地中でＦ３−１００型バイオリアクターを使用する下記の最適な発酵条件を使用することができるが、固体培地発酵に基づく技術も使用可能であり、それらはいずれも微生物産業で使用される標準法である。
【０１０７】
最適条件を決定するため、２８℃、ｐＨ７．０、ｐＯ２＞５０％ｒａｍｐにて、２００ｒｐｍ〜４００ｒｐｍで撹拌しながら、ＬＢ培地１０Ｌを含むＦ１〜Ｆ５のバイオリアクターを使用した。Ｐ．プチダＣＥＣＴ８５３８の対数培養物を５％体積／体積で接種し、バイオリアクターの操作パラメータをモニターし、増殖は１２時間で静止期にて終了し、２．０×１０９ＣＦＵ／ｍＬの細胞濃度を得た。次いで、培養物を５０００ｒｐｍにてＨｉｔａｃｈｉ  ＣＲ２２Ｎ遠心分離機で遠心分離して、細胞を無菌的に収集した。この工程の終わりに、バイオマスをバッファー５００ｍｌに再懸濁することによって濃縮し、約１リットルの２．０×１０１０ＣＦＵ／ｍＬ濃縮物を得た。不活性の浸透圧保護剤である原料（１Ｌ）を後に濃縮物に添加し、７２時間の標準条件のもとでＨｅｔｏ  Ｐｏｗｅｒ  Ｄｒｙ  ＬＬ  ３０００凍結乾燥装置で脱水し、１．０×１０１１ＣＦＵ／ｇｐ．ｓの濃度で、乾燥重量約１００ｇ（５０％の活性物質）を得た。かかる条件では、９０％近い細胞生存率を有し、安定で、保管及び取り扱いが容易な製品が得られ、５×１０７ＣＦＵ／ｍＬの操作用量で、保護される作物植物に対してすぐに適用される約２００Ｌの製品の調製を可能とする。その後、１年間超に亘ってその貯蔵寿命を維持する真空密封バッグで材料を包装し、４℃で保存した。
【０１０８】
実施例６．株ＣＥＣＴ８５３８の生物防除活性
【０１０９】
実施例６Ａ．ジャガイモ作物に対するエルウィニア・カロトボーラ・サブスピーシーズ．アトロセプチカに対する本発明の株の活性評価
【０１１０】
バイオ殺菌剤活性を、研究室内の分析方法によって評価した（ＭＡ１０“Ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｂｉｏｃｉｄｅ  ｏｒ  ｂｉｏｓｔａｔｉｃ  ａｃｔｉｖｉｔｙ  ｉｎ  ｖｉｖｏ”、Ｆｕｔｕｒｅｃｏ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ）。
【０１１１】
「軟腐病（ｂａｃｔｅｒｉａ  ｓｏｆｔ  ｒｏｔ）」として知られる細菌性疾患の病因である、エルウィニア・カロトボーラ・サブスピーシーズ．アトロセプチカ（ジャガイモ植物から単離された株ＤＳＭ３０１８４、ＤＳＭＺドイツコレクション）に対するＢＣＡシュードモナス・プチダ株ＣＥＣＴ８５３８の拮抗活性を評価するため、独立した３つのバイオアッセイを、ジャガイモ塊茎を用いて立ち上げた。これらの試験のため、スペインで最も一般的な栽培種の１つであることから、ジャガイモ品種「ケネベック」を選択した。技術的等級の有効成分（ＴＧＡＩ；生細胞５０％重量／重量と、スクロース５０％重量／重量とで構成される凍結乾燥材料からなる）、水和剤製剤（ＷＰ；ＴＧＡＩ１０％重量／重量と、沈降シリカシリカ（ＣＡＳ１３４３−９８−２）２％重量／重量と、カルボキシメチル（Ｃａｒｂｏｘｉｍｅｔｉｌ）セルロース（ＣＡＳ９００４−３２−４）３％重量／重量と、ナフタレン（Ｎａｐｈｔａｌｅｎｅ）及びアルキルナフタレンスルホン酸（ａｌｋｙｌ  ｎａｐｈｔａｌｅｎｅ  ｓｕｌｐｈｏｎｉｃ  ａｃｉｄ）、ナトリウム塩（ＣＡＳ６８４２５−９４−５）２％重量／重量と、２Ｒ）−３−（２−ヒドロキシ−３−メトキシフェニル）−２−［２−メトキシ−４−（３−スルホプロピル）フェノキシ］プロパン−１−スルホン酸（ＣＡＳ１０５８５９−９７−０）０．５％重量／重量と、ベントナイト（モンモリロナイト型、ＣＡＳ１３０２−７８−９）８２．５％重量／重量とで構成される）、及び油性分散性製剤（ＯＤ；ＴＧＡＩ１０％重量／重量と、沈降シリカ（ＣＡＳ１３４３−９８−２）１％重量／重量と、トリメチルノニルポリエチレングリコール（ＣＡＳ６０８２８−７８−６）２０％重量／重量と、精製されたアマニ油（ＣＡＳ６８６４９−９５−６）６９％重量／重量とで構成される）として製剤化された異なる３つの組成物を評価した。
【０１１２】
およそ（Ａｐｐｒｏｘｉｍａｔｅｌｌｙ）２ｃｍ×２ｃｍの発芽したジャガイモ塊茎を消毒し（市販の漂白液１．２％で５分間、次いで３回の蒸留水による洗浄）、播種し、４週間〜５週間の間、成長チャンバー条件（Ｆｉｔｏｃｌｉｍａ２００００、ＡＲＡＬＡＢ；１８℃〜２０℃；ＲＨ６０％〜７０％、日：夜１３時間：１１時間、ＰＡＲ２７０〜３００）で泥炭：バーミキュライト基質（１：１；体積／体積）上で成長させた。４週間後〜５週間後に、土壌：泥炭：パーライトの基質（２：１：０．５；体積／体積）を含む１Ｌの植木鉢に実生苗を移した。１つの処理当たり３つの複製物、１つの複製物当たり４つの植物（１つの処理当たり１２の植物）からなる乱塊法を行った。検査物質（ＴＧＡＩ、ＷＰ又はＯＤ）を、各バイオアッセイを通して３回適用した。移植後２４時間（病原体チャレンジの６日前）に種々の濃度の試験物質を含む２０ｍＬを基質に添加することによって、１回目の試験適用（Ａ）を行った（表４を参照されたい）。移植後７日目に１つの植物当たり２４時間の予備培養物に由来する病原体細菌懸濁液（２×１０９ＣＦＵ／ｍＬ；４×１０７ＣＦＵ／植物）２０ｍＬを添加することによって、病原体による接種を行った。１つの植物当たり２０ｍＬの速度で１回目の適用から１週間後及び２週間後に本発明の株を用いて、更に２回の適用（Ｂ及びＣ）を行った（Ｂ＝７ＤＡＡ；Ｃ＝１４ＤＡＡ；ＤＡＡは「Ａ処理後の日数」を意味する。３つのバイオアッセイにおいて、病原体に感染したが、本発明の株で処理しなかった対照を含んだ。
【０１１３】
成長チャンバー条件（Ｆｉｔｏｃｌｉｍａ  ２００００，ＡＲＡＬＡＢ）に４週間の間（２０℃（日）、１８℃（夜）；ＨＲ６０％〜７０％；日：夜１３時間：１１時間；ＰＡＲ２７０〜３００）植物を維持し、毎日給水した。１Ｌ植木鉢への移植から２２日後に、軟腐病の重症度（壊死性脈管病変としてのＢＳＲのパーセンテージ）について植物を等級付けした。
【０１１４】
最後の適用の７日後（７ＤＡＣ、Ｃ処理後の日数）の茎の全長に対する、褐色腐朽の被害がある茎のパーセンテージを測定することにより、有効性を評価した。
【０１１５】
有効性のパーセンテージをアボットの等式を使用して計算した：
【数１】
2020515273.tif 000005
【０１１６】
ＴＲ＝処理したプロットに対する被害を受けた茎のパーセンテージ
ＵＮＴＲ＝処理していないプロットに対する被害を受けた茎のパーセンテージ
【０１１７】
表４．ジャガイモ植物栽培品種ケネベックに対するエルウィニア・カロトボーラ・サブスピーシーズ．アトロセプチカに対する有効性
【表４】
2020515273.tif 000006
【０１１８】
表に示されるように、本発明の株は、ジャガイモの作物をコロニー形成する能力を有し、細菌エルウィニア・カロトボーラ・サブスピーシーズ．アトロセプチカに対する生物防除剤として作用する。これらのデータは、本発明の株が、感染した植物をコロニー形成し、そこで細菌感染によって引き起こされる疾患を拮抗する能力を有することを示す。
【０１１９】
実施例６Ｂ．シュードモナス・プチダ株ＣＥＣＴ８５３８のｉｎ  ｖｉｔｒｏ抗真菌活性
【０１２０】
本発明の株の生物防除能力を評価するため、汚染食物テクニックを使用して、真菌に対するその植物生病原性能力をｉｎ  ｖｉｔｒｏで試験した。評価のため、８種の真菌を選択し、微生物コレクションから４種の株（ボトリチス・アクラダＣＥＣＴ  ２８５１、リゾクトニア・ソラニＤＳＭＺ  ６３０１０、ピシウム・ウルチマムＣＥＣＴ  ２０９０２及びスクレロチニア・スクレロチオラムＣＥＣＴ  ２８２２）を取得し、感染した植物から単離されたＦｕｔｕｒｅｃｏ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅのカルチャーコレクションから４種の株（レタスから単離したスクレロチニア・スクレロチオラム株Ｈ２４、ジャガイモから単離したコレトトリカム・コッコデス株Ｈ８２７、トマトから単離したフザリウム・オキシスポラム株Ｈ８２８、及びタマネギから単離したアルタナリア・ポリ株Ｈ８３０）を取得した。
【０１２１】
上に言及されるように、真菌阻害試験を、汚染食物テクニックによって指定の植物病原体に対して行った。簡潔には、細菌を２８℃及び２００ｒｐｍにてＬＢ培地で一晩培養した。この静置培養物から、２つの最終細菌濃度３×１０６ＣＦＵｍｌ−１及び３×１０７ＣＦＵｍｌ−１に達するように、温かいポテトデキストロース寒天（ＰＤＡ）に生物防除剤ＣＥＣＴ８５３８の溶液を無菌的にピペットで移した。その後、培地を９ｃｍペトリ皿に注ぎ、固化させた後、菌糸体と汚染された培地とのより大きな接触を達成するため、病原体株の７日間培養物の活性な増殖エッジに由来する菌糸体を含有する寒天ディスク（直径６ｍｍ）を各プレートの中心に逆位置で置いた。各処理をそれぞれ３回反復して行った。プレートを２６℃の暗所でインキュベートし、真菌コロニーの放射状の菌糸成長に続いて、異なる日により短い及びより長い半径を測定した。アッセイを、各病原体に対して少なくとも２回繰り返した。ｉｎ  ｖｉｔｒｏでのＣＥＣＴ８５３８の効果を、対照プレート（細菌補正のないＰＤＡ）と比較した。
【０１２２】
本発明の株は、試験した全ての真菌性病原体に対して強い拮抗活性を示した（図２）。細菌を含むＰＤＡで増殖する真菌と対照（ＰＤＡのみ）との間の増殖区域の違いを、３日間のインキュベーションの後に観察したところ、より高用量のＣＥＣＴ８５３８を使用した場合、この増殖阻害はより良好であった。
【０１２３】
実施例６Ｃ．種々のＰ．プチダ株間のＢ．アクラダ拮抗活性の比較分析
【０１２４】
ボトリチス・アクラダはタマネギ首腐れ病（ｏｎｉｏｎ  ｎｅｃｋ  ｒｏｔ）の原因物質の１つであり、より高い生産量喪失の原因となっている。Ｂ．アクラダ感染と関係する症状はタマネギを貯蔵する間に現われるが、感染は畑で起こる。ＷＣＳ３５５８等の幾つかのＰ．プチダ株は、ブドウのような他の種類の果実作物に影響を及ぼすＢ・シネレアのようなその他のボトリチス種を阻害することができる。
【０１２５】
本発明者らは、本発明の株がＢ．アクラダＣＥＣＴ２８５１の増殖（実施例６Ｂ）を阻害する能力を有していると同定したが、この能力が本発明の株に特異的であったかどうか、又はその他のＰ．プチダ株が同じ効果を有し得たのかどうかは明らかではなかった。それを判断するため、本発明の株及び参照Ｐ．プチダ株ＣＥＣＴ３２４及びＤＳＭ６１２５（ＫＴ２４４０）を使用する比較分析を行った。
【０１２６】
上に記載される通り、増殖阻害能力を汚染食物テクニックによって測定し、真菌の増殖を３日目、７日目及び１０日目にモニターした（図３及び表５を参照されたい）。
【０１２７】
表５は、Ｐ．プチダ株接種後１０日目の最終結果を示す。本発明の株は、１０日間のインキュベーションの後、Ｂ．アクラダの増殖に対して顕著な効果を維持した特有のＰ．プチダ株であった。また、参照株は、接種後３日目にＢ．アクラダの増殖を阻害する能力を有したが、それらは接種後７日目及び１０日目に効果を失う（図３）。したがって、３つの試験した株は、上記アッセイの開始時に阻害効果を有したが、本発明の株のみがＢ．アクラダの増殖に対して長く続く効果を有した。さらに、本発明の株の量は比較株の量と同じ単位であり、本発明の株によって得られる阻害効果は著しく改善された。
【０１２８】
表５．試験した種々のＰ．プチダ株によるＢ．アクラダの増殖阻害の比較分析
【表５】
2020515273.tif 000007
【０１２９】
引用文献一覧
１．Ｍｏｒａ  ｅｔ  ａｌ．，“Ａｎｔｉｍｉｃｒｏｂｉａｌ  ｐｅｐｔｉｄｅ  ｇｅｎｅｓ  ｉｎ  Ｂａｃｉｌｌｕｓ  ｓｔｒａｉｎｓ  ｆｒｏｍ  ｐｌａｎｔ  ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔｓ”，Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，２０１１，ｖｏｌ．１４，ｐｐ．２１３−２２３
【０１３０】
【表６】
2020515273.tif 000008
【図１】
2020515273.tif 000009
【図２】
2020515273.tif 000010
【図３】
2020515273.tif 000011
【配列表】
2020515273000001.app
【国際調査報告】
2020515273.tif 000012
2020515273.tif 000013
2020515273.tif 000014