(57)【要約】  選択されたリンカーとの第１の複合体を形成するために設計されたアンカーをその形質膜外側表面上に発現した、細胞を作製し、使用するための組成物及び方法が提供される。前記リンカーは、前記アンカーによって認識されない標的タンパク質と第２の複合体を形成するように設計される。これらの細胞は、初代細胞又は不死化細胞の場合があり、ハイブリドーマ細胞を作製するための融合パートナーとして機能する場合がある。前記細胞は、前記アンカー−リンカーによって形成された免疫複合体を介して、分泌された標的タンパク質、例えば、分泌された抗体を細胞表面に結合させて、前記標的タンパク質の存在、抗原特異性、及び、抗原結合親和性、力価、量、又は、生物学的活性の同定を可能にするために設計される場合がある。特定の実施形態では、前記リンカーは前記アンカーの種と異なる種のものであり、前記標的タンパク質は、前記リンカー及び前記アンカーと異なる種のものである。【特許請求の範囲】
【請求項１】
予め選択された特徴を有するモノクローナル抗体を分泌するハイブリドーマ細胞を同定する方法であって、前記細胞は、前記特徴を有するモノクローナル抗体を分泌しない細胞の集団の中に存在し、前記方法は、
（ａ）
（ｉ）選択されたリンカーとの第１の複合体を形成するために設計されたアンカーをその形質膜外側表面上に発現した不死化細胞を、Ｂ細胞の細胞系譜の細胞と融合させることによって調製された、ハイブリドーマ細胞の集団を、
（ｉｉ）前記アンカーとの第１の複合体を形成し、かつ、単一のハイブリドーマ細胞によって分泌される単一のモノクローナル抗体との第２の複合体を形成するために設計されたリンカーと、
接触させる工程と、
（ｂ）前記リンカーはハイブリドーマ細胞によって分泌されるモノクローナル抗体と第２の複合体を形成し、かつ、前記モノクローナル抗体は、付着した第１及び第２の複合体を介してそれを分泌するハイブリドーマ細胞に結合する条件下で、前記リンカーの存在下で（ａ）の細胞を維持する工程と、
（ｃ）前記モノクローナル抗体の存在、抗原特異性、抗原結合親和性、力価、量、又は、生物学的活性を同定する工程と、
を含み、
前記モノクローナル抗体は前記アンカーによって認識されず、
前記接触は、第１の複合体において前記アンカーと結合することによって、前記リンカーが前記ハイブリドーマ細胞の形質膜外側に付着することを可能にし、
前記モノクローナル抗体は、前記ハイブリドーマ細胞によって分泌され、かつ、アンカー−リンカー−モノクローナル抗体によって形成された細胞結合多重免疫複合体によって結合される、
方法。
【請求項２】
工程（ａ）の後のいずれかの時点で前記ハイブリドーマ細胞を単離することを更に含む、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
（ａ）は、前記細胞を過剰濃度の前記リンカーと接触させることを更に含み、前記過剰は、前記モノクローナル抗体と、これを分泌しない他の細胞との結合に比べて、ハイブリドーマの細胞表面上の第１の複合体と、そのハイブリドーマ細胞によって分泌されるモノクローナル抗体との間の結合の特異性を増加させる、請求項１又は２に記載の方法。
【請求項４】
（ａ）は、前記分泌されたモノクローナル抗体と同じ種又は型の競合抗体と前記細胞を接触させることを更に含み、前記競合抗体は、異なる又は非特異的な抗原結合特異性を有し、前記競合抗体の存在は、過剰な非結合リンカーを結合することによって、モノクローナル抗体を分泌しない細胞へのそのモノクローナル抗体の結合に比べて、細胞表面上の第１の複合体と、前記細胞によって分泌されるモノクローナル抗体との間の結合の特異性を増加させる、請求項１〜３のいずれか１項に記載の方法。
【請求項５】
工程（ａ）は、第３の複合体において前記モノクローナル抗体が特異的に結合する、検出可能に標識された抗原に前記ハイブリドーマ細胞を接触させることと、第１の複合体アンカー−リンカーによって形成される多重複合体に結合する細胞を形成することとを更に含み、前記リンカーは、前記抗原に結合された前記分泌モノクローナル抗体にも結合し、工程（ｃ）は、細胞結合多成分複合体に会合する前記検出可能な標識を同定又は定量することによって、選択された抗原に特異的なモノクローナル抗体を分泌するハイブリドーマ細胞を同定することを含む、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。
【請求項６】
前記モノクローナル抗体はヒト抗体であり、前記アンカー分子は選択された非ヒト由来リンカーに特異的なｓｃＦｖを含み、前記リンカーは抗ヒトＩｇ抗体又は該ヒト抗体の抗体結合断片である、請求項１〜５のいずれか１項に記載の方法。
【請求項７】
前記リンカーは前記標的モノクローナル抗体のＦｃ分子部分に特異的に結合し、工程（ｂ）は、ハイブリドーマ細胞を
（ｉ）前記標的モノクローナル抗体の種と同じ種のＩｇＧ  Ｆｃドメイン競合体、
及び
（ｉｉ）前記標的モノクローナル抗体の種と同じ哺乳動物種のＩｇ  ＦＡｂドメインに特異的な、検出可能に標識された抗体、
に接触させることを更に含み、
前記ハイブリドーマ細胞によって分泌される標的モノクローナル抗体が、前記アンカー−リンカーとの複合体において前記細胞に結合され、かつ、培地中で過剰のリンカーによって結合され、
前記Ｉｇ  Ｆｃドメインは、標的抗体を分泌しないハイブリドーマ細胞へのインタクトな標的モノクローナル抗体の結合を減少させるために競合し、
前記抗Ｉｇ  ＦＡｂ抗体は、細胞表面に結合した前記分泌標的モノクローナル抗体に結合する、請求項１〜６のいずれか１項に記載の方法。
【請求項８】
リンカーが前記標的モノクローナル抗体の前記ＦＡｂ分子部分に特異的に結合し、工程（ｂ）が、
前記ハイブリドーマ細胞を
（ｉ）前記モノクローナル抗体の種と同じ種のＩｇ  ＦＡｂドメイン競合体、及び
（ｉｉ）前記標的モノクローナル抗体の種と同じ哺乳動物種の前記Ｉｇ  Ｆｃドメインに特異的な、検出可能に標識された抗体、
に接触させることを更に含み、
前記ハイブリドーマ細胞によって分泌される標的モノクローナル抗体が、前記アンカー−リンカーとの免疫複合体において前記細胞に結合され、かつ、培地中で過剰のリンカーによって結合され、
前記Ｉｇ  ＦＡｂドメインは、モノクローナル抗体を分泌しないハイブリドーマ細胞へのインタクトな標的モノクローナル抗体の結合を減少させるために競合し、
抗Ｉｇ  Ｆｃ抗体は、細胞表面に結合した前記分泌標的モノクローナル抗体に結合する、請求項１〜７のいずれか１項に記載の方法。
【請求項９】
アンカーをコードする核酸分子であって、前記アンカーは前記核酸分子を含む細胞の表面上での前記アンカーの発現を指示する調節配列と作動可能に会合し、前記アンカーは、選択されたリンカーと第１の複合体を形成するために設計され、前記リンカーは、前記アンカーによって認識されない標的タンパク質と第２の複合体を形成するために設計される、核酸分子。
【請求項１０】
前記アンカーは、
（ａ）前記リンカーに結合する細胞外領域ポリペプチド、
（ｂ）任意的なポリペプチドタグ、及び
（ｃ）内在性膜タンパク質に由来する膜貫通アミノ酸配列
を含む、請求項９に記載の核酸分子。
【請求項１１】
前記細胞外領域ポリペプチド（ａ）は、
ｉ．前記リンカー上の配列に特異的に結合する単鎖抗体可変領域（ｓｃＦｖ）、
ｉｉ．２〜６個のｓｃＦｖから形成されるタンデムｓｃＦｖであって、各々が前記リンカー上の配列に結合するために設計されている、タンデムｓｃＦｖ、
ｉｉｉ．細胞表面上で発現されるとき、１個又は２個の遊離Ｆｖ領域を有するＦａｂ、
又は
ｉｖ．細胞表面上で発現されるとき、１個又は２個の遊離Ｆｖ領域を有する抗体、
ｖ．単一ドメイン抗体、
ｖｉ．ラクダ抗体、又は
ｖｉｉ．アプタマー
を含む、請求項１０に記載の核酸分子。
【請求項１２】
前記細胞外領域は、各ｓｃＦｖの重鎖Ｆｖ及び軽鎖Ｆｖ配列を交互に含み、かつ、各鎖の間に介在するスペーサーを含む、請求項１１に記載の核酸分子。
【請求項１３】
プロモーター、リーダー配列、任意的なエンハンサー、及び、前記アンカーをコードする核酸配列を作動可能に会合させて含む、請求項９〜１２のいずれか１項に記載の核酸分子。
【請求項１４】
選択マーカータンパク質をコードする任意的な配列を更に含む、請求項１３に記載の核酸分子。
【請求項１５】
前記アンカーの発現を制御する前記プロモーターは、誘導性プロモーター又は抑制性プロモーターである、請求項１３に記載の核酸分子。
【請求項１６】
前記スペーサーは、約６個〜約２４個の連続したアミノ酸の配列を含む、請求項１２に記載の核酸分子。
【請求項１７】
前記ポリペプチドタグは、Ｍｙｃタグ、ＦＬＡＧタグ、ＮＥタグ、ＨＡタグ、Ｈｉｓタグ若しくはポリＨｉｓタグ、又は、タバコエッチウイルス（ＴＥＶ）プロテアーゼ認識部位である、請求項１０〜１６のいずれか１項に記載の核酸分子。
【請求項１８】
前記膜貫通配列は、ＰＤＧＦタンパク質に由来する膜貫通配列である、請求項１０〜１７のいずれか１項に記載の核酸分子。
【請求項１９】
前記リンカーは抗体又は抗体断片である、請求項９に記載の核酸分子。
【請求項２０】
前記抗体断片は、Ｆｖ断片、Ｆａｂ断片、Ｆｖ若しくは単鎖Ｆｖ、又は、単一ドメイン抗体と、それらの組換えバージョンとである、請求項１９に記載の核酸分子。
【請求項２１】
前記アンカーは前記リンカーの非存在下で前記標的タンパク質に結合しない、請求項９〜２０のいずれかに記載の核酸分子。
【請求項２２】
前記標的タンパク質は抗体である、請求項９〜２１のいずれかに記載の核酸分子。
【請求項２３】
アンカーをコードする核酸分子を調節配列と作動可能に会合させて含むベクターであって、前記調節配列は、前記核酸分子を含む細胞の表面上での前記アンカーの発現を指示し、前記アンカーは、選択されたリンカーと第１の複合体を形成するために設計され、前記リンカーは、前記アンカーによって認識されない標的タンパク質と第２の複合体を形成するために設計される、ベクター。
【請求項２４】
請求項９〜２２のいずれか１項に記載の核酸分子を含む、請求項２３に記載のベクター。
【請求項２５】
プラスミド又は組換えウイルスベクターである、請求項２３又は２４に記載のベクター。
【請求項２６】
選択マーカータンパク質をコードする配列も含む、請求項２３〜２５のいずれか１項に記載のベクター。
【請求項２７】
選択されたリンカーと第１の複合体を形成するために設計されたアンカーをその形質膜外側表面上に発現する細胞であって、前記リンカーは、前記アンカーによって認識されない標的タンパク質と第２の複合体を形成するために設計されている、細胞。
【請求項２８】
前記アンカーは、
（ａ）前記リンカーに結合する細胞外領域ポリペプチド、
（ｂ）任意的なポリペプチドタグ、及び
（ｃ）内在性膜タンパク質に由来する膜貫通アミノ酸配列
を含む、請求項２７に記載の細胞。
【請求項２９】
細胞の形質膜外側表面上に、前記アンカー及び前記リンカーを含む第１の免疫複合体を更に含む、請求項２７に記載の細胞。
【請求項３０】
前記リンカーは抗体又は抗体断片である、請求項２７〜２９のいずれか１項に記載の細胞。
【請求項３１】
前記抗体断片は、Ｆｖ断片、Ｆａｂ断片、Ｆｖ若しくは単鎖Ｆｖ、又は、単一ドメイン抗体と、それらの組換えバージョンとである、請求項３０に記載の細胞。
【請求項３２】
細胞の形質膜外側表面上に、前記リンカーに結合した前記アンカーを含む多重免疫複合体を更に含み、前記リンカーは前記標的タンパク質にも結合する、請求項２７〜３１のいずれか１項に記載の細胞。
【請求項３３】
前記リンカーは、前記アンカーの種と異種の哺乳動物種のものであり、前記標的タンパク質は前記リンカー及び前記アンカーと異なる種のものである、請求項２７〜３２のいずれかに記載の細胞。
【請求項３４】
前記リンカーは、前記リンカーの非存在下で前記標的タンパク質及び前記アンカーが互いに結合しない条件下で、前記アンカー及び前記標的タンパク質の両方に結合することができる、請求項２７〜３２のいずれかに記載の細胞。
【請求項３５】
前記標的タンパク質は抗体である、請求項２７〜３４のいずれかに記載の細胞。
【請求項３６】
請求項９〜２６のいずれか１項に記載の核酸分子又はベクターを含む、請求項２７〜３５のいずれかに記載の細胞。
【請求項３７】
不死化細胞である、請求項２７〜３６のいずれか１項に記載の細胞。
【請求項３８】
Ｂ細胞の細胞系譜の細胞である、請求項２７〜３７のいずれか１項に記載の細胞。
【請求項３９】
前記アンカーの発現は誘導性又は抑制性である、請求項２７〜３８のいずれか１項に記載の細胞。
【請求項４０】
組換え哺乳動物細胞であり、前記標的タンパク質は前記細胞によって組換え法で発現及び分泌される、請求項２７〜３８のいずれか１項に記載の細胞。
【請求項４１】
ハイブリドーマ細胞であって、選択されたリンカーと第１の複合体を形成するために設計されたアンカーをその形質膜外側上に固定されて含み、前記リンカーは、前記細胞によって分泌されるモノクローナル抗体と第２の複合体を形成するために設計され、前記モノクローナル抗体は前記アンカーによって認識されない、ハイブリドーマ細胞。
【請求項４２】
前記アンカーは、
（ａ）前記Ｉｇリンカーに結合する細胞外領域ポリペプチド、
（ｂ）任意的なポリペプチドタグ、及び
（ｃ）内在性膜タンパク質に由来する膜貫通アミノ酸配列
を含む、請求項４１に記載のハイブリドーマ細胞。
【請求項４３】
前記アンカー及び前記リンカーを含む第１の複合体をその細胞の形質膜外側表面上に更に含む、請求項４１又は４２に記載のハイブリドーマ細胞株。
【請求項４４】
前記リンカーは抗体又は抗体断片である、請求項４１〜４３のいずれか１項に記載のハイブリドーマ細胞。
【請求項４５】
前記抗体断片は、Ｆｖ断片、Ｆａｂ断片、Ｆｖ若しくは単鎖Ｆｖ、又は、単一ドメイン抗体と、それらの組換えバージョンとである、請求項４３に記載のハイブリドーマ細胞。
【請求項４６】
前記リンカーに結合した前記アンカーを含む多重免疫複合体を細胞の形質膜外側表面上に更に含み、前記リンカーはモノクローナル抗体に結合している、請求項４１〜４４のいずれか１項に記載のハイブリドーマ細胞株。
【請求項４７】
前記リンカーは前記アンカーの種と異種の哺乳動物種のものであり、前記モノクローナル抗体は、前記リンカー及び前記アンカーと異なる種のものである、請求項４１〜４６のいずれかに記載のハイブリドーマ細胞。
【請求項４８】
前記リンカーに結合した前記アンカーを含む免疫複合体を細胞の形質膜外側表面上に更に含み、前記リンカーは、前記細胞株によって分泌される前記モノクローナル抗体に結合し、前記リンカーは、前記モノクローナル抗体によって特異的に認識される前記抗原と免疫複合体を更に形成する、請求項４１〜４７のいずれか１項に記載のハイブリドーマ細胞株。
【請求項４９】
前記ハイブリドーマによって分泌される前記モノクローナル抗体はヒト抗体であり、前記アンカーは、選択された非ヒト種のリンカーに特異的なｓｃＦｖを含み、前記リンカーは、前記選択された非ヒト種の抗ヒト抗体又は結合断片である、請求項４１〜４８のいずれかに記載のハイブリドーマ細胞株。
【請求項５０】
請求項９〜２６のいずれか１項に記載の核酸分子又はベクターを、選択された細胞に送達することを含む、細胞の作製方法。
【請求項５１】
選択されたリンカーと複合体を形成するために設計されたアンカーをその形質膜外側表面上に発現している不死化細胞とＢ細胞の細胞系譜の細胞を融合させることを含む、ハイブリドーマ細胞を作製する方法であって、前記リンカーは、Ｂ細胞か、Ｂ細胞の細胞系譜の細胞に由来する細胞か、この方法によって作製されたハイブリドーマ細胞かによって分泌される抗体に結合するために設計され、前記抗体は前記アンカーによって認識されない、方法。
【請求項５２】
前記抗体はモノクローナル抗体である、請求項５１に記載の方法。
【請求項５３】
前記不死化細胞は、請求項２７〜３６のいずれかに記載の細胞である、請求項５０に記載の方法。
【請求項５４】
前記Ｂ細胞の細胞系譜の細胞内に由来する核酸配列から発現されるモノクローナル抗体を分泌し、前記不死化細胞によって提供される核酸配列からの前記アンカータンパク質を発現する、ハイブリドーマ細胞が作製される、請求項５１〜５３に記載の方法。
【請求項５５】
細胞によって分泌される標的タンパク質の特徴を検出又は測定する方法であって、
（ａ）
ｉ．細胞の集団であって、該集団の各細胞は、リンカーと第１の免疫複合体を形成するために設計されたアンカーをその形質膜外側表面上に発現している、細胞の集団を、
ｉｉ．第１の複合体を形成し、かつ、前記アンカーによって認識されない標的タンパク質と第２の複合体を形成するために設計されたリンカーと接触させる工程であって、
ｉｉｉ．前記接触は、第１の複合体において前記アンカーと結合することによって、前記リンカーが前記細胞の形質膜外側に付着することを可能にする、工程と、
（ｂ）前記細胞は標的タンパク質を分泌し、該標的タンパク質は、第２の複合体の形成を介して細胞付着した第１の複合体に結合する条件下で、前記リンカーの存在下で（ａ）の細胞を維持する工程と、
（ｃ）第１及び第２の複合体により前記細胞上に結合した、前記標的タンパク質の存在、抗原特異性、抗原結合親和性、力価、量、又は、生物学的活性を同定する工程と
を含む、方法。
【請求項５６】
前記リンカーは、前記アンカー及び前記標的タンパク質の両方に結合することができ、前記リンカーが存在しない場合、前記標的タンパク質は前記アンカーによって結合されない、請求項５５に記載の方法。
【請求項５７】
（ａ）は、前記細胞を過剰濃度の前記リンカーと接触させることを更に含み、前記過剰は、前記標的タンパク質を分泌しない前記集団中の他の細胞への前記標的タンパク質の結合に比べて、細胞表面上の第１の複合体と、前記細胞によって分泌される前記標的タンパク質との間の結合の特異性を増加させる、請求項５５又は５６に記載の方法。
【請求項５８】
（ａ）は、前記細胞を、前記分泌された標的タンパク質と同じ種又は型の競合タンパク質と接触させることを更に含み、前記競合タンパク質は、異なる又は非特異的な抗原結合特異性を有し、前記競合タンパク質の存在は、過剰な非結合リンカーを結合することによって、それを分泌しない細胞へのそのモノクローナル抗体の結合に比べて、細胞表面上の第１の複合体と前記細胞によって分泌される前記標的タンパク質との間の結合の特異性を増加させる、請求項５５〜５７のいずれか１項に記載の方法。
【請求項５９】
工程（ａ）は、第３の複合体において前記標的タンパク質が特異的に結合する検出可能に標識された抗原と前記細胞を接触させることと、第１の複合体のアンカー−リンカーによって形成される多成分複合体に結合する細胞を形成することとを更に含み、前記リンカーは前記標的タンパク質にも結合し、前記標的タンパク質は前記抗原に更に結合し、工程（ｃ）は、細胞結合多成分複合体に会合する前記検出可能な標識を同定又は定量することによって、前記標識された抗原に特異的に結合する標的タンパク質を分泌する細胞を同定することを含む、請求項５５〜５８のいずれか１項に記載の方法。
【請求項６０】
標的タンパク質を産生するための方法であって、
（ａ）請求項３２に記載の哺乳動物細胞において前記標的タンパク質を発現させる工程と、
（ｂ）前記アンカーの発現を誘導する化合物に（ａ）の細胞を接触させる工程と、
（ｃ）（ｂ）の細胞をリンカーと接触させる工程と
を含み、
前記リンカーは、前記細胞上の前記アンカーと、前記発現された標的タンパク質とに結合し、それによって前記タンパク質を前記細胞の表面に付着させる、
方法。
【請求項６１】
前記誘導化合物を除去することを更に含む、請求項６０に記載の方法。
【請求項６２】
前記免疫複合体の定量的検出に基づいて、大量の標的タンパク質を発現する細胞を同定又は単離することを更に含む、請求項６０又は６１に記載の方法。
【請求項６３】
前記アンカーを一過性に発現させることを含む、請求項６０〜６２のいずれかに記載の方法。
【請求項６４】
工程（ｃ）は、過剰濃度の前記リンカーと前記細胞を接触させることを更に含み、前記過剰は、標的タンパク質を分泌しない他の細胞への前記標的タンパク質の結合に比べて、細胞表面上の前記アンカー−リンカー複合体と、前記細胞によって分泌される前記標的タンパク質との間の結合の特異性を増加させる、請求項６０〜６３のいずれか１項に記載の方法。
【請求項６５】
（ｃ）は、前記分泌標的タンパク質と同じ種又は型の競合タンパク質と前記細胞を接触させることを更に含み、前記競合標的タンパク質は前記標的タンパク質と同じ種又は型を有し、前記競合タンパク質の存在は、過剰な非結合リンカーを結合することによって、これを分泌しない細胞へのそのモノクローナル抗体の結合に比べて、細胞表面上の第１の複合体と、前記細胞によって分泌される前記標的タンパク質との間の結合の特異性を増加させる、請求項６０〜６４のいずれか１項に記載の方法。
【請求項６６】
請求項４１に記載の２種以上のハイブリドーマ細胞株を含む、ハイブリドーマｍＡｂ発現ライブラリー。
【請求項６７】
請求項６６に記載のハイブリドーマｍＡｂ発現ライブラリーを維持するための方法であって、
（ａ）
ｉ．Ｂ細胞の細胞系譜の細胞を、選択されたリンカーとの第１の複合体を形成するために設計されたアンカーをその形質膜外側表面上に発現している不死化細胞と融合させることによって調製される、ハイブリドーマ細胞の集団を、
ｉｉ．前記アンカーとの第１の複合体を形成しかつ、単一のハイブリドーマ細胞によって分泌される単一のモノクローナル抗体との第２の複合体を形成するために設計された前記リンカーであって、前記モノクローナル抗体は前記アンカーによって認識されない、リンカーと
接触させる工程であって、
ｉｉｉ．前記接触は、第１の複合体において前記アンカーと結合することによって、前記リンカーが前記ハイブリドーマ細胞の形質膜外側に付着することを可能にする、接触させる工程と、
（ｂ）前記リンカーがハイブリドーマ細胞によって分泌される前記モノクローナル抗体と第２の複合体を形成し、前記モノクローナル抗体は、付着した第１及び第２の複合体を介してそれを分泌する前記ハイブリドーマ細胞に結合する条件下で前記リンカーの存在下で（ａ）の細胞を維持する工程と、
（ｃ）前記ハイブリドーマ細胞によって分泌され、アンカー−リンカー−モノクローナル抗体によって形成された細胞結合多重免疫複合体によってこれに結合された、前記モノクローナル抗体の存在、抗原特異性、抗原結合親和性、力価、量、又は、生物学的活性を同定する工程と、
（ｄ）所望の抗原特異性、抗原結合親和性、力価、量、又は、生物学的活性を有するモノクローナル抗体を分泌するハイブリドーマ細胞の集団を単離する工程と、
（ｅ）（ｄ）に由来する集団を培養する工程と、
含む、方法。
【請求項６８】
請求項６７（ｃ）において同定され、上記請求項６７（ｄ）において単離された細胞の特徴が、前記ハイブリドーマ細胞によって発現される前記モノクローナル抗体の発現の量（ａｍｏｕｎｔ）、量（ｑｕａｎｔｉｔｙ）、又は、速度（ｒａｔｅ）である、請求項６７に記載のハイブリドーマｍＡｂ発現ライブラリーを維持するための方法。
【請求項６９】
請求項６８に記載の融合パートナー細胞の集団又はそれに由来するハイブリドーマの少数クローン集団における異所性サイトカインシグナル伝達活性を監視及び最適化するための方法であって、
（ａ）前記細胞をｇｐ１３０  ΔＹＹ受容体分子に特異的な検出可能なモノクローナル抗体と接触させる工程と、
（ｂ）前記検出可能なモノクローナル抗体に結合した前記細胞を単離する工程と、
（ｃ）（ｂ）に由来する細胞を培養する工程と
を含む、方法。
【請求項７０】
請求項６９に記載の方法に由来する、ハイブリドーマ細胞の集団。
【請求項７１】
請求項６９に記載の方法に由来する、融合パートナー細胞の集団。
【請求項７２】
請求項７１に記載の融合パートナー細胞に由来する、ハイブリドーマ細胞の集団。
【請求項７３】
ｈＴＥＲＴ及びｇｐ１３０  ΔＹＹを発現する、融合パートナー細胞。
【請求項７４】
ＡＴＣＣ受託番号ＰＴＡ−１２４０６３によって指定される、細胞株ＬＣＸ株０３．０６．１７及びその子孫。
【請求項７５】
ｈＴＥＲＴ、アンカー、及び、ｇｐ１３０  ΔＹＹを発現する、融合パートナー細胞。
【請求項７６】
ＡＴＣＣ受託番号ＰＴＡ−１２４０６２によって指定される、細胞株ＬＣＸ−ＢＧＳ株０３．０６．１７及びその子孫。
【請求項７７】
ウイルス抗原に結合するモノクローナル抗体を同定するための方法であって、
（ａ）ハイブリドーマ細胞の集団を提供する工程であって、各ハイブリドーマ細胞は、選択されたリンカーと第１の複合体を形成するために設計されたアンカーをその形質膜外側上に固定されて含み、前記リンカーは、前記細胞によって分泌されるモノクローナル抗体と第２の複合体を形成するために設計され、前記モノクローナル抗体は、前記アンカーによって認識されない、工程と、
（ｂ）前記ウイルス抗原が前記細胞結合アンカー−リンカー−ｍＡｂ複合体に結合するために十分な時間、前記集団を多価ウイルス抗原と接触させ、細胞結合アンカー−リンカー−ｍＡｂ−ウイルス抗原複合体を生じる工程と、
（ｃ）前記細胞集団によって分泌される更なる免疫グロブリン（Ｉｇ）が、前記結合した多価ウイルス抗原上の他の結合部位に結合し、それによってアンカー−リンカー−ｍＡｂ−ウイルス抗原−Ｉｇの検出可能な免疫複合体を形成することを可能にする工程と、
（ｄ）細胞表面上の前記複合体のサイズ及び位置又は場所に基づいて、前記アンカー−リンカーｍＡｂウイルス抗原−Ｉｇ複合体が結合した細胞を同定することを含む、工程と
を含む、方法。
【請求項７８】
前記多価ウイルス抗原は、１個以上の精製ウイルス抗原、全ビリオン、又は、ウイルス様粒子（ＶＬＰ）である、請求項７７に記載の方法。
【請求項７９】
前記同定する工程（ｄ）は、一価ウイルス抗原との接触から生じる（ａ）の前記細胞か、ウイルス抗原と接触しないで生じる（ａ）の前記細胞かを比較することを含む、請求項７７又は７８に記載の方法。
【請求項８０】
前記一価ウイルス抗原はＦａｂ断片である、請求項７９のいずれか一項に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ハイブリドーマによって分泌されるモノクローナル免疫グロブリンの誘導性抽出細胞外膜捕捉のための方法及び組成物に関する。
【背景技術】
【０００２】
関連特許出願
本特許出願は、２０１７年３月２４日に出願された米国仮特許出願第６２／４７６，５９９号の利益を主張する。本特許出願は、２０１７年６月２９日に出願された米国仮特許出願第６２／５２６，６０８号の利益を主張する。前述の出願の全内容は、全てのテキスト、表、図面、及び、配列を含めて、参照により本明細書に組み込まれる。
【０００３】
寄託生物材料
以下の細胞株は、２０１７年３月２４日に、米国タイプカルチャーコレクション、１０８０１  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  Ｂｏｕｌｅｖａｒｄ、Ｍａｎａｓｓａｓ、Ｖｉｒｇｉｎｉａ、２０１１０、ＵＳＡに、特許手続の目的のための材料の寄託の国際承認に関するブダペスト条約の下で寄託された。
【０００４】
（ａ）受託番号ＰＴＳ−１２４０６３−細胞株ＬＣＸ（ＬＣＸ  ０３．０６．１７）（これは、本明細書に説明のとおり、ヒトテロメラーゼ触媒サブユニットと、構成的に活性なｇｐ１３０欠失変異体サイトカイン受容体タンパク質とを異所性に発現する、Ｋ６Ｈ６／Ｂ５細胞株由来の細胞株である）
及び
（ｂ）受託番号ＰＴＳ−１２４０６２−融合パートナー細胞株ＬＣＸ−ＢＧＳ（これは、ヒトテロメラーゼ触媒サブユニットと、構成的に活性なｇｐ１３０欠失変異体サイトカイン受容体タンパク質とを異所性に発現し、Ｋ６Ｈ６／Ｂ５細胞株由来し、本明細書に説明のとおり、その表面上にタンデムスコフアンカータンパク質ＢＧＳを発現する）。
【０００５】
電子形式で提出された資料の参照による組込み
本出願人は、ここに電子形式で提出された配列表資料を参照により本明細書に組み込む。このファイルには、「ＭＬＨ１０１ＰＣＴ＿ＳＴ２５．ｔｘｔ」というラベルが付けられ、平成３０年３月２０日に作成され、１５ｋＢである。
【０００６】
ハイブリドーマ法では、Ｂ細胞に由来する抗体を分泌する安定な実験室適合細胞株を作製するために、Ｂ細胞を融合パートナー細胞株に融合させる。この方法は、多大な有用性及び商業的可能性を有する高価値ｍＡｂを作製するために数十年間使用されてきた。その成功にもかかわらず、このような高価値抗体を産生するＢ細胞は、しばしば、免疫レパートリーにおいて非常に低い頻度で代表されることを考慮することが重要である。従って、ハイブリドーマｍＡｂクローニング手順は、一般に、多様な抗体構造を発現する細胞株のポリクローナルプールを作製するために、数千又は数百万の細胞を用いて行われる。次の課題は、これらの細胞のうちのどれが所望の特異性を有する抗体を分泌しているかを同定することである。
【０００７】
現在の技術水準では、各ハイブリドーマによって産生された抗体を含有する細胞培養上清を分析する間、交差汚染又は細胞異常増殖を防止するために、ハイブリドーマ細胞を互いに隔離して保持しなければならない。抗体分析の知見を、それらを分泌した細胞に関連付けることができるために、即ち、所望の特徴を有する抗体が存在し、目的が、サブクローニング及び更なる研究のためにそれを作製したハイブリドーマを同定することである場合、上清もまた、互いに隔離して保持される必要がある。このための方法は、典型的には、ハイブリドーマが維持されているアレイを反映するアレイ形式で抗体を配置することを含む。結果として、多数の無関係なハイブリドーマが、抗体が分析される間、単一又は少数クローン培養中で維持されなければならない。目的の抗体を分泌するハイブリドーマが同定され得る場合にのみ（その時点で、「モノクローナル抗体」又はｍＡｂ）、多数の無関係なハイブリドーマが放棄され得る。
【０００８】
更に、所望の結合特異性の抗体を分泌するいずれのハイブリドーマも、ｍＡｂ分泌を安定的に維持する子孫細胞株を同定するために、単一細胞クローニングの更なる工程を経なければならず、それ自体、数百の個々の細胞の維持及びｍＡｂ産生の個々の評価を必要とする。
【０００９】
これらの実際的な障害は、ハイブリドーマが個別の世話及び培地交換を必要とするので、ハイブリドーマプロセスのスループットに厳しい制限を課し、上清は、個別に得られ、分析されなければならない（また補充されなければならない）。分析することができるハイブリドーマの数に対する制限の結果として、貴重であるが稀なｍＡｂは、実質的に生成することが不可能な場合がある。更に、ハイブリドーマ法をハイスループットに適応させる費用は、ロボット工学及び自動化された液体処理への相当な投資を必要とし得る。
【００１０】
例えば、酵母、大腸菌、２９３Ｔ細胞における所望のタンパク質の組換え産生のための更なる方法は、組換え遺伝子ライブラリー構築を必要とし、一般に、免疫グロブリン（Ｉｇ）断片として提示される。細胞の表面上に全長Ｉｇを発現する既存の哺乳動物Ｉｇ細胞ディスプレイ法が説明されている（非特許文献１）。1しかしながら、哺乳動物宿主からのＢ細胞の単離と、これらのＢ細胞によって発現されるＩｇ分子の結合及び機能的特徴を評価し、従って所望の活性を有するｍＡｂを同定及び単離するためのアッセイの実施との間に、遺伝子単離、クローニング及び発現工程を介在させる必要性は、有用なｍＡｂの生成に対する実質的な障壁を与える。
【００１１】
Ｂ細胞から生成されたハイブリドーマ細胞は、ときには、それらの形質膜外側上にＩｇを発現するが、これらのレベルは一般に、低く、予測不可能であり、一定でない（非特許文献１）。2ハイブリドーマによって発現される表面Ｉｇの量を増大させる方法は、Ｂ細胞受容体成分を発現する融合パートナー細胞株を用いて、増強された表面Ｉｇ発現を有するハイブリドーマ細胞を生成することが知られている（非特許文献３）。3しかし、このような方法は、ハイブリドーマ細胞表面上にＩｇを一定レベルで構成的に捕捉し、従って、細胞表面へのＩｇ付着のタイミング及び程度の制御を可能にしない。
【００１２】
ハイブリドーマ細胞とのＩｇの結合は、種々の単離方法、例えばゲルマイクロドロップ（ＧＭＤ）及び親和性捕捉表面ディスプレイ（Ａｆｆｉｎｉｔｙ  Ｃａｐｔｕｒｅ  Ｓｕｒｆａｃｅ  Ｄｉｓｐｌａｙ）（ＡＣＳＤ）法によって達成される（非特許文献４）。4ＧＭＤ法では、ハイブリドーマ細胞は、分泌されたＩｇを捕捉するゲル微小液滴中に個々に封入される。ＡＳＣＤでは、ハイブリドーマ細胞をビオチンで標識し、これを用いて細胞にアビジン標識捕捉抗体又はビオチン化捕捉抗体に結合したアビジン架橋のいずれかを付着させ、次いで分泌Ｉｇを捕捉することができる。これらの方法は、処理及び分析のための特殊な装置と、分析に時間及び費用を追加する複数の細胞／液滴インキュベーション及び洗浄工程とを必要とする。これらの方法はまた、細胞を、細胞生存率及び実験収率を損ない得るストレスの多い条件及び毒性試薬に曝露することを必要とする。
【００１３】
不慣れな病原体又は未知の病原体への暴露のリスクがある軍隊、医療その他の職員は、しばしば、新興及び流行性のウイルス性疾患を罹患しやすく、暴露から彼らを保護するために利用可能な抗ウイルス療法はほとんど存在しない。有効な抗ウイルス戦略に対する重大な障害は、どのウイルスに遭遇するかを予測することが困難であることである。もう１つは、病原体が特定された後、創薬には何年もかかる可能性があるということである（非特許文献５）33。現場で新たなウイルス脅威に曝露された際に、そのような人員のリアルタイム保護（即ち、数年ではなく、数週間で数えられる）を可能にするペースで、新たな抗ウイルス薬の生成を可能にするための方法及び組成物が必要とされる。ウイルス感染を生き残った患者は、強力かつ特異的な抗ウイルス活性を有する抗体を産生する（非特許文献６、非特許文献７）34、35。これらの抗体は、同じ病原体に曝露された他のものを保護することができるｍＡｂとして単離することができ、それらの完全なヒト起源のために薬物として安全である可能性が高い。しかし、ほとんどのヒトｍＡｂ発見方法は、抗体遺伝子の単離及び発現を必要とし、これは相当な専門知識及び基盤を必要とする労働集約的な技術的過程である（非特許文献８）36。更に、従来のｍＡｂ発見は、ウイルス抗原が完全に特徴付けられ、ウイルス特異的ｍＡｂ結合アッセイに適合されることを必要とする。従って、抗ウイルスｍＡｂプロジェクトは、患者の血液及びウイルス抗原を関連する現地から非流行地域に輸送することから始まる。これは、ｍＡｂ発見が始まる前に克服されなければならない、実質的な実用的、制度的、及び、規制上の障壁を提示する。これらの障害を克服し、治療的抗ウイルスｍＡｂのリアルタイム発見を可能にすることができる、ヒトｍＡｂ発見の効率化された効率的なモデルが必要である。
【００１４】
迅速なスクリーニングと、新しいｍＡｂ及びハイブリドーマの獲得とに対する制限はまた、タンパク質の組換え産生に影響を及ぼす。従って、診断、治療及び研究用途のための細胞及びそれらの分泌タンパク質のより効率的な同定のための組成物及び方法が必要とされる。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【００１５】
【非特許文献１】Ｚｈｏｕ  Ｃ，ｅｔ  ａｌ．“Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  ｏｆ  ａ  ｎｏｖｅｌ  ｍａｍｍａｌｉａｎ  ｃｅｌｌ  ｓｕｒｆａｃｅ  ａｎｔｉｂｏｄｙ  ｄｉｓｐｌａｙ  ｐｌａｔｆｏｒｍ”，ｍＡｂｓ（２０１０），２：５，５０８−５１８，ＤＯＩ：１０．４１６１／ｍａｂｓ．２．５．１２９７０．
【非特許文献２】Ｍｃｋｉｎｎｅｙ，ＫＬ  ｅｔ  ａｌ．，“Ｍａｎｉｐｕｌａｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｈｅｔｅｒｏｇｅｎｅｏｕｓ  Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ  Ｃｕｌｔｕｒｅｓ  ｆｏｒ  Ｏｖｅｒｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ”，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ  Ｐｒｏｇ．（１９９１  Ｓｅｐ−Ｏｃｔ），７（５）：４４５−５４．
【非特許文献３】Ｐｒｉｃｅ，ＰＷ  ｅｔ  ａｌ．“Ｅｎｇｉｎｅｅｒｅｄ  ｃｅｌｌ  ｓｕｒｆａｃｅ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｏｆ  ｍｅｍｂｒａｎｅ  ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ  ａｓ  ａ  ｍｅａｎｓ  ｔｏ  ｉｄｅｎｔｉｆｙ  ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  ａｎｔｉｂｏｄｙ−ｓｅｃｒｅｔｉｎｇ  ｈｙｂｒｉｄｏｍａｓ．”Ｊ  Ｉｍｍｕｎｏｌ  Ｍｅｔｈｏｄｓ．（２００９  Ｍａｒ  ３１）；３４３（１）：２８−４１
【非特許文献４】Ｋｕｍａｒ  Ｎ，Ｂｏｒｔｈ  Ｎ，“Ｆｌｏｗ−ｃｙｔｏｍｅｔｒｙ  ａｎｄ  ｃｅｌｌ  ｓｏｒｔｉｎｇ：ａｎ  ｅｆｆｉｃｉｅｎｔ  ａｐｐｒｏａｃｈ  ｔｏ  ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅ  ｐｒｏｄｕｃｔｉｖｉｔｙ  ａｎｄ  ｃｅｌｌ  ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ  ｉｎ  ｍａｍｍａｌｉａｎ  ｃｅｌｌ  ｆａｃｔｏｒｉｅｓ”，Ｍｅｔｈｏｄｓ（２０１２  Ｍａｒ）；５６（３）：３６６−７４．ｄｏｉ：１０．１０１６／ｊ．ｙｍｅｔｈ．２０１２．０３．００４．
【非特許文献５】Ｆｌｙａｋ  ＡＩ，ｅｔ  ａｌ．，Ｍｅｃｈａｎｉｓｍ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ａｎｔｉｂｏｄｙ−ｍｅｄｉａｔｅｄ  ｎｅｕｔｒａｌｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｍａｒｂｕｒｇ  ｖｉｒｕｓ．Ｃｅｌｌ．２０１５；１６０（５）：８９３−９０３．Ｅｐｕｂ  ２０１５／０２／２８．
【非特許文献６】Ｊｉｎ  Ｙ，ｅｔ  ａｌ．Ｈｕｍａｎ  ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ  ａｓ  ｃａｎｄｉｄａｔｅ  ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ  ａｇａｉｎｓｔ  ｅｍｅｒｇｉｎｇ  ｖｉｒｕｓｅｓ．Ｆｒｏｎｔ  Ｍｅｄ．２０１７；１１（４）：４６２−７０
【非特許文献７】Ｄｅｓｓａｉｎ  ＳＫ，ｅｔ  ａｌ．Ｅｘｐｌｏｒｉｎｇ  ｔｈｅ  ｎａｔｉｖｅ  ｈｕｍａｎ  ａｎｔｉｂｏｄｙ  ｒｅｐｅｒｔｏｉｒｅ  ｔｏ  ｃｒｅａｔｅ  ａｎｔｉｖｉｒａｌ  ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ．Ｃｕｒｒ  Ｔｏｐ  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ  Ｉｍｍｕｎｏｌ．２００８；３１７：１５５−８３．
【非特許文献８】Ｔｉｌｌｅｒ  Ｔ，ｅｔ  ａｌ．Ｅｆｆｉｃｉｅｎｔ  ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ  ｆｒｏｍ  ｓｉｎｇｌｅ  ｈｕｍａｎ  Ｂ  ｃｅｌｌｓ  ｂｙ  ｓｉｎｇｌｅ  ｃｅｌｌ  ＲＴ−ＰＣＲ  ａｎｄ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｖｅｃｔｏｒ  ｃｌｏｎｉｎｇ．Ｊ  Ｉｍｍｕｎｏｌ  Ｍｅｔｈｏｄｓ．２００８；３２９（１−２）：１１２−２４．Ｅｐｕｂ  ２００７／１１／１３．
【発明の概要】
【課題を解決するための手段】
【００１６】
一局面において、組成物は、核酸分子を含む細胞の表面上でのアンカーの発現を指令する調節配列と作動可能に会合したアンカーをコードする核酸分子を含む。アンカーは、選択されたリンカーと第１の複合体を形成するために設計される。リンカーは、アンカーによって認識されない標的タンパク質と第２の複合体を形成するために設計される。
【００１７】
別の局面では、本明細書に説明の核酸分子を含む組換えベクターが提供される。
【００１８】
なお更なる局面において、選択されたリンカーとの第１の複合体を形成するために設計されたアンカーをその形質膜外側表面上に発現した細胞が提供される。リンカーは、アンカーによって認識されない標的タンパク質と第２の複合体を形成するために設計される。この細胞は、分泌と、アンカー−リンカー複合体への結合との際に、標的タンパク質が細胞に付着されることを可能にする。特定の実施形態では、細胞は初代細胞、Ｂ細胞の細胞系譜の細胞、又は、不死化細胞であってもよい。細胞は、本明細書に説明するような核酸分子又はベクターを更に含み得る。
【００１９】
別の局面では、選択された標的タンパク質を発現及び分泌する組換え哺乳動物細胞は、選択されたリンカーとの第１の複合体を形成するために設計されたアンカーをその形質膜外側表面上に発現させることによって特徴付けられる。しかしながら、アンカーはまた、標的タンパク質を認識しないか、標的タンパク質と結合しないか、あるいは、標的タンパク質と複合体を形成しないために設計される。リンカーは、分泌された標的タンパク質と第２の複合体を形成するために設計される。この細胞は、分泌及びアンカー−リンカー複合体への結合の際に、標的タンパク質が細胞に付着されることを可能にする。
【００２０】
更なる別の局面では、ハイブリドーマ細胞は、選択されたリンカーとの第１の複合体を形成するために設計されたアンカーを、その形質膜外側上にアンカーされて含む。リンカーは、細胞によって分泌されるモノクローナル抗体と第２の複合体を形成するために設計され、このモノクローナル抗体は、アンカーによって認識されない。このハイブリドーマ細胞は、その分泌されたモノクローナル抗体が分泌及びアンカー−リンカー複合体への結合の際に細胞に付着されることを可能にする。
【００２１】
更なる別の局面では、細胞を作製する方法は、本明細書に説明する核酸分子又はベクターを、選択された細胞に安定的に送達する工程を含む。
【００２２】
更なる局面において、ハイブリドーマ細胞を作製する方法は、選択されたリンカーと複合体を形成するために設計されたアンカーをその形質膜外側表面上に発現した不死化細胞とＢ細胞の細胞系譜の細胞とを融合させる工程を含む。リンカーは、Ｂ細胞又はＢ細胞に由来する細胞によって分泌される抗体に結合するために設計され、この抗体は、アンカーによって認識されない。
【００２３】
別の局面では、細胞によって分泌される標的タンパク質（例えば、抗体又はモノクローナル抗体）の特徴を検出又は測定する方法は、本明細書に説明する核酸分子、ベクター及び細胞を使用する。リンカーと第１の複合体を形成するために設計されたアンカーを、集団の各細胞がその形質膜外側表面上に発現した、細胞集団が提供される。前記集団を、アンカーによって認識されない標的タンパク質と第２の複合体を形成するためにも設計されたリンカーと接触させる。接触工程は、リンカーが第１の複合体においてアンカーと結合することによって、細胞の形質膜外側に付着することを可能にする。これらの得られた細胞は、細胞が標的タンパク質を分泌し、標的タンパク質がリンカーとの第２の複合体の形成を介して細胞付着アンカー−リンカー第１複合体に結合し、それによって標的タンパク質を細胞に固定する条件下で、リンカーの存在下で維持される。その後、細胞に結合した標的タンパク質の特定の特徴を評価することができる。
【００２４】
更なる別の局面では、分泌されたｍＡｂを、該分泌されたｍＡｂに特異的なＩｇによって固定された免疫複合体の形態で、誘導的に捕捉するための方法が説明されるが、ここで前記Ｉｇは、前記分泌されたｍＡｂを分泌する細胞の表面上の、異種Ｉｇ分子部分によってハイブリドーマ細胞の表面にそれ自体固定されている。
【００２５】
別の局面では、ウイルス抗原に結合するモノクローナル抗体を同定するための方法は、ハイブリドーマ細胞の集団を提供する工程を含み、各ハイブリドーマ細胞は、選択されたリンカーと第１の複合体を形成するために設計されたアンカーをその形質膜外側上に固定されて含み、リンカーは、細胞によって分泌されるモノクローナル抗体と第２の複合体を形成するために設計され、このモノクローナル抗体は、アンカーによって認識されない。前記集団を、前記ウイルス抗原が細胞結合アンカー−リンカー−ｍＡｂ複合体に結合するのに十分な時間、多価ウイルス抗原と接触させ、細胞結合アンカー−リンカー−ｍＡｂ−ウイルス抗原複合体を生じる。細胞集団によって分泌される更なる免疫グロブリン（Ｉｇ）は、結合した多価ウイルス抗原上の他の結合部位に結合することが可能であり、それによって、多価ウイルス抗原の非存在下で形成される免疫複合体と構造的及び機能的に異なる、アンカー−リンカー−ｍＡｂ−ウイルス抗原−Ｉｇの検出可能な免疫複合体を形成する。次いで、アンカー−リンカー−ｍＡｂ−ウイルス抗原−Ｉｇ複合体が結合した細胞を、細胞表面上の前記複合体のサイズ、コンホメーション、組成、及び／又は、位置若しくは場所に基づいて同定する。
【００２６】
これらの組成物及び方法の別の局面及び変形は、その好ましい実施形態の以下の詳細な説明において更に説明される。
【図面の簡単な説明】
【００２７】
【図１】図１は、実施例１に説明されるとおり、Ｇｌｙ−Ｓｅｒ連結アミノ酸（スペーサー）によって連結されたタンデムマウス抗ウサギｓｃＦｖと、ＰＤＧＦ受容体（ＰＤＧＦＲ）膜貫通（ＴＭ）ドメインと、Ｍｙｃタグと、リーダー配列とを含む膜アンカーの遺伝子マップを示す略図である。
【図２】図２Ａ及び２Ｂは、実施例３に説明されるとおりのとおり、Ｂ５−６Ｔ及びＬＣＸ融合パートナー細胞株の表面上にタンデムマウスｓｃＦｖ（これは、Ｂ細胞グロブリンスカフォールド、即ちＢＧＳの例である）が観察されたことを実証するフローサイトメトリーのグラフである。図２Ａは、トランスフェクション後のＢ５−６Ｔ細胞が細胞表面上にタンデムマウスｓｃＦｖ（ＢＧＳ）を首尾よく発現することを示す。図２Ｂは、トランスフェクション後のＬＣＸ細胞が細胞表面上にタンデムマウスｓｃＦｖ（ＢＧＳ）を首尾よく発現することを示す。
【図３】図３Ａ及び３Ｂは、実施例３に説明されるとおり、タンデムマウスｓｃＦｖ（ＢＧＳ）がウサギＩｇＧ（ＲＡＨ、リンカー）のＢ５−６Ｔ及びＬＣＸ融合パートナー細胞株への結合を媒介することを示すフローサイトメトリーのグラフである。図３Ａは、Ｂ５−６Ｔ  ＢＧＳ融合パートナー細胞はウサギＩｇＧに結合するが、Ｂ５−６Ｔ細胞は結合しないことを示す。図３Ｂは、ＬＣＸ  ＢＧＳ融合パートナー細胞はウサギＩｇＧに結合するが、ＬＣＸ細胞は結合しないことを示す。
【図４】図４Ａ及び４Ｂは、ヒトＩｇに特異的なウサギＩｇ（ＲＡＨ、リンカー）に結合した融合パートナー細胞株がポリクローナルヒトＩｇＧ（ｈＩｇＧ、標的タンパク質）に結合することを示すフローサイトメトリーのグラフである。図４Ａは、ＲＡＨに結合したＢ５−６Ｔ  ＢＧＳ融合パートナー細胞がヒトＩｇＧに結合することを示す。図４Ｂは、ＲＡＨに結合したＬＣＸ  ＢＧＳ融合パートナー細胞がヒトＩｇＧに結合することを示す。
【図５】図５Ａ及び５Ｂは、Ｂ５−６Ｔ  ＢＧＳ及びＬＣＸ  ＢＧＳ融合パートナー細胞株へのヒトＩｇの結合がヒトＩｇに特異的なウサギＩｇ（ＲＡＨ、リンカー）の存在に依存することを示すフローサイトメトリーのグラフである。図５Ａは、Ｂ５−６Ｔ  ＢＧＳ融合パートナー細胞がＲＡＨ（リンカー）の存在下でのみヒトＩｇＧ（標的タンパク質）に結合し、ＲＡＨが存在しない場合には結合しないことを示す。図５Ｂは、ＬＣＸ  ＢＧＳ融合パートナー細胞がＲＡＨ（リンカー）の存在下でのみヒトＩｇＧ（標的タンパク質）に結合し、ＲＡＨが存在しない場合には結合しないことを示す。
【図６】図６Ａ及び６Ｂは、融合パートナー細胞によるヒトＩｇＧのＲＡＨ媒介捕捉にタンデムマウスｓｃＦｖ（ＢＧＳ）が必要であることを示すフローサイトメトリーのグラフである。図６Ａは、Ｂ５−６Ｔ  ＢＧＳ細胞がＲＡＨの存在下でヒトＩｇＧを捕捉するが、Ｂ５−６Ｔ細胞は捕捉しないことを示す。図６Ｂは、ＬＣＸ  ＢＧＳ細胞がＲＡＨの存在下でヒトＩｇＧを捕捉するが、ＬＣＸ細胞は捕捉しないことを示す。
【図７】図７Ａ及び７Ｂは、ＲＡＨの存在下でのＢ５−６Ｔ  ＢＧＳ細胞が標的タンパク質としてヒトＩｇＧ  ｍＡｂ、Ａ１２（図７Ａ）及び１Ｂ８（図７Ｂ）を捕捉することを示すフローサイトメトリーのグラフである。
【図８】図８Ａ及び８Ｂは、ＢｏＮＴ特異的ｍＡｂ（標的タンパク質として）と複合体を形成したＢ５−６Ｔ  ＢＧＳ及びＬＣＸ  ＢＧＳ細胞がビオチン化ＢｏＮＴ抗原に結合するが、ビオチン化狂犬病ウイルス糖タンパク質（ＲＡＢＶ  ＧＰ）には結合しないことを示すフローサイトメトリーのグラフである。図８Ａは、Ｂ５−６Ｔ  ＢＧＳ融合パートナー細胞がリンカー捕捉ＢｏＮＴ抗原としてＲＡＨを介して６ＡヒトｍＡｂに結合したが、ＲＡＢＶ抗原には結合しなかったことを示す。図８Ｂは、ＬＣＸ  ＢＧＳ融合パートナー細胞がリンカー捕捉ＢｏＮＴ抗原としてＲＡＨを介して６ＡヒトｍＡｂに結合したが、ＲＡＢＶ  ＧＰには結合しなかったことを示す。
【図９】図９Ａ及び９Ｂは、実施例４に記載されるとおり、ヒトＩｇＧを分泌する８Ｃ５（図９Ａ）及び９Ｈ２（図９Ｂ）ハイブリドーマの表面上のタンデムマウスｓｃＦｖ（ＢＧＳ）の発現を実証するフローサイトメトリーのグラフである。
【図１０】図１０Ａ及び１０Ｂは、実施例４に記載されるとおり、タンデムマウスｓｃＦｖ（ＢＧＳ）が、ｍＡｂ分泌ハイブリドーマ８Ｃ５（図１０Ａ）及び９Ｈ２（図１０Ｂ）へのウサギＩｇＧ（リンカー）の結合を媒介することを各々示すフローサイトメトリーのグラフである。
【図１１】図１１Ａ及び１１Ｂは、リンカーとしてのＲＡＨの存在下でのタンデムマウスｓｃＦｖ（ＢＧＳ）の発現が、ｍＡｂ分泌ハイブリドーマ８Ｃ５（図１１Ａ）及び９Ｈ２（図１１Ｂ）に対するヒトＩｇＧ（標的タンパク質）の付着を増加させることを示すフローサイトメトリーのグラフである。
【図１２】図１２Ａ及び１２Ｂは、ＲＡＨが、タンデムマウスｓｃＦｖ（ＢＧＳ）を発現するハイブリドーマ細胞株による分泌ヒトＩｇＧ（標的タンパク質）の捕捉を増強することを示すフローサイトメトリーのグラフである。図１２Ａは、リンカーとしてのＲＡＨが８Ｃ５分泌ハイブリドーマによる分泌モノクローナルヒトＩｇＧの捕捉を増強することを示す。図１２Ｂは、リンカーとしてのＲＡＨが９Ｈ２分泌ハイブリドーマによる分泌モノクローナルヒトＩｇＧの捕捉を増強することを示す。
【図１３】図１３は、ＲＡＨの存在下でインキュベートされた８Ｃ５  ＢＧＳハイブリドーマが８Ｃ５ハイブリドーマよりも有意に良好にＲＡＢＶ  ＧＰに結合することを実証するフローサイトメトリーのグラフである。更に、Ｂ５−６Ｔ  ＢＧＳ融合パートナー細胞株は、実施例４に記載されるとおり、ＲＡＢＶ  ＧＰに結合しない。
【図１４】図１４は、ＬＣＸ細胞がｈＴＥＲＴを発現することを示すＲＴ−ＰＣＲゲルの結果である。
【図１５】図１５は、実施例２に記載されるとおり、ＬＣＸ細胞による構成的に活性なｇｐ１３０  ΔＹＹ突然変異タンパク質の表面発現を実証するフローサイトメトリーのグラフである。
【図１６】図１６は、タンデムマウスｓｃＦｖ（ＢＧＳ）を発現するＬＣＸ  ＢＧＳ細胞による構成的に活性なｇｐ１３０  ΔＹＹ突然変異タンパク質の表面発現を実証するフローサイトメトリーのグラフである。
【図１７】図１７Ａ〜１７Ｄは、ハイブリドーマ細胞株の２種の例：８Ｃ５  ＢＧＳハイブリドーマ細胞株及びＢ５−６Ｔ  ＢＧＳハイブリドーマ細胞株の蛍光顕微鏡写真であり、各々、過剰のＲＡＨ  Ｉｇリンカー、ビオチン化ＲＡＢＶ  ＧＰ、及び、Ａｌｅｘａ  ４８８標識ストレプトアビジンと共にインキュベートし、次いでパラホルムアルデヒドで固定し、ＤＡＰＩで染色した。図１７Ａは、Ａｌｅｘａ  ４８８（ＲＡＢＶ）で染色された８Ｃ５  ＢＧＳの画像である。画像中の細胞の多くは、その表面上に、Ａｌｅｘａ  ４８８標識ＲＡＢＶ  ＧＰを組み込んだ免疫複合体を有する。８Ｃ５  ＢＧＳ細胞上のＲＡＢＶ  ＧＰ染色の強度及びパターンの試験は、細胞が異なるレベルのシグナルを有すること、及び、互いに隣接する多くの細胞でさえ、異なるレベルのシグナルを有することを明らかにする。図１７Ｂは、Ａｌｅｘａ  ４８８で染色され、青色ＤＡＰＩ（核）染色画像と重ね合わされた８Ｃ５  ＢＧＳの画像である。図１７Ｃは、Ａｌｅｘａ  ４８８（ＲＡＢＶ）で染色されたＢ５−６Ｔ  ＢＧＳの画像である。図１７Ｄは、Ａｌｅｘａ  ４８８で染色され、青色ＤＡＰＩ染色画像と重ね合わされたＢ５−６Ｔ  ＢＧＳの画像である。８Ｃ５  ＢＧＳ細胞の多くは、ＲＡＢＶ  ＧＰの付着を示す蛍光シグナルを示すが、Ｂ５−６Ｔ  ＢＧＳ細胞は示さない。これは、８Ｃ５  ＢＧＳ細胞がＲＡＢＶ  ＧＰに特異的なｍＡｂを分泌しているが、Ｂ５−６Ｔ  ＢＧＳ細胞は、いずれのｍＡｂも分泌していないという事実と相関する。これは、フローサイトメトリーデータを裏付け、細胞の表面上に形成された３個の免疫複合体成分の存在を示し、抗体を含むｍＡｂ複合体は、その抗原結合特異性について分析され得、これは、次いで、それを分泌する細胞と相互参照され得る情報である。
【図１８】図１８Ａ〜１８Ｃは、３枚の一連の蛍光顕微鏡写真である。図１８Ａは、ＤＡＰＩで染色したＢ５−６Ｔ（左パネル）、ＲＡＨ及びＡｌｅｘａ  ４８８標識ヤギ抗ウサギＩｇＧ二次抗体と培養した細胞（中央パネル）、並びに２枚の画像を重ね合わせたもの（右パネル）を示す。図１８Ｂは、ＤＡＰＩで染色したＢ５−６Ｔ  ＢＧＳ（左パネル）、ＲＡＨ及びＡｌｅｘａ  ４８８標識ヤギ抗ウサギＩｇＧ二次抗体と培養した細胞（中央パネル）、並びに２枚の画像を重ね合わせたもの（右パネル）を示す。図１８Ｃは、ＤＡＰＩで染色した８Ｃ５  ＢＧＳ（左パネル）、ＲＡＨ及びＡｌｅｘａ  ４８８標識ヤギ抗ウサギＩｇＧ二次抗体と培養した細胞（中央パネル）、並びに２枚の画像を重ね合わせたもの（右パネル）を示す。この実験は、ＲＡＨに結合するその能力によって示されるとおり、細胞株による機能的アンカータンパク質発現の量に差があるか否かを決定するために行われた。Ｂ５−６Ｔ  ＢＧＳ細胞上のＡｌｅｘａ  ４８８標識の量及び分布は、全ての細胞で本質的に同じであり、これらの細胞上での機能的ＲＡＨの一貫した発現を実証する。この結果は、Ｂ５−６Ｔ  ＢＧＳ細胞株上でのアンカー発現の均一性を実証するフローサイトメトリーデータと一致する。８Ｃ５  ＢＧＳ細胞株の表面上のＲＡＨの分布は、ヒトＩｇＧ（８Ｃ５  ＢＧＳ細胞によって分泌される）の存在がヒトｍＡｂ（標的）の非存在下で形成されるものと構造的に異なる、細胞の表面上のＲＡＨ含有免疫複合体の形成をどのように誘導し得るかを示す。
【図１９】図１９は、普遍的な抗ウイルスｍＡｂアッセイプラットフォーム及び発見方法を示す概略図である。ウイルス結合は、ハイブリドーマ細胞表面上のｔｅｌｌ−ｔａｌｅ免疫複合体の形成によって検出される。ハイブリドーマ細胞は、ＢＧＳアンカーを発現し（概略図において「ＯＣＭＳタンデムｓｃＦｖ」と標識される）、顕微鏡下で、例えば、実施例４〜７に記載されるとおり）、従来の方法を介して赤色蛍光シグナルで可視化され得、これは、一価ウサギＦＡｂ（概略図においてＦＡｂと標識される）に結合する。ハイブリドーマによって分泌されたヒトＩｇＧ（概略図においてｈ−ｍＡｂとして標識される）は、例えば実施例１４に記載されるとおり）、顕微鏡下で緑色蛍光シグナルで可視化することができ、この場合、それは、リンカーによって捕捉され、それは、ウサギＦＡｂのような一価リンカーである。この概略図に示されるリンカーは、一価であるため、多価抗原が存在しない限り、複数のｈ−ｍＡｂを含む免疫複合体は形成されない。ｍＡｂがウイルス粒子に結合することができる場合、事象の１つが起こる。一実施形態では、ビリオンが大きな免疫複合体（ＣＡＰ様複合体）の形成の核となる。別の実施形態では、ｍＡｂｓは、ビリオンによって形質膜から離隔した（〜３０ｎｍ）部位でビリオンに結合する（層状複合体）。これは、もしｍＡｂが標識されていれば、例えば赤と緑の蛍光シグナルが融合して黄色のシグナルを生じることがないような距離である。
【図２０】図２０は、本明細書に説明され、実施例１６においてより詳細に説明される、普遍的な抗ウイルスヒトｍＡｂ発見方法を例示する４枚のパネルを示す。ＣＡＰ様免疫複合体形成は、抗ウイルスｍＡｂ発現を実証する。これらのＯＣＭＳハイブリドーマをウサギ抗ヒトＩｇ  ＦＡｂ及び３型ポリオウイルス（ＰＶ；左上のパネルは、ハイブリドーマ細胞株４Ｇ４  ＢＧＳでの結果を示す；左下のパネルは、ハイブリドーマ細胞株８Ｃ５  ＢＧＳでの結果を示す）又は狂犬病ウイルス糖タンパク質（右上のパネルは、４Ｇ４  ＢＧＳでの結果を示す；右下のパネルは、８Ｃ５  ＢＧＳでの結果を示す）のいずれかと一晩インキュベートした。ハイブリドーマ４Ｇ４  ＢＧＳは、ＰＶに特異的なヒトｍＡｂを産生する。ハイブリドーマ８Ｃ５  ＢＧＳは、狂犬病ＧＰに結合するヒトｍＡｂを産生する。ウイルス粒子は、細胞表面上のＣＡＰ様免疫複合体の形成の核となり、これは、ＦＩＴＣ標識抗ヒトＩｇＧ二次抗体で検出される。ウイルス結合の非存在下では、細胞は細胞膜上に均一に分布したＩｇＧスポットを示す。４Ｇ４  ＢＧＳハイブリドーマは、ＰＶの存在下でＣＡＰ様免疫複合体を形成するが、ＲＡＢＶ  ＧＰの存在下では形成しない。８Ｃ５  ＢＧＳハイブリドーマは、ＲＡＢＶ  ＧＰの存在下でＣＡＰ様免疫複合体を形成するが、ＰＶの存在下では形成しない。
【図２１】図２１Ａは、ヒトＩｇの２９３Ｔ  ＯＣＭＳ細胞への結合がヒトＩｇに特異的なウサギＩｇ（ＲＡＨ、リンカー）の存在に依存することを示すフローサイトメトリーのグラフを提供する。２９３Ｔ  ＯＣＭＳ細胞株は、ＢＧＳアンカータンパク質を発現する２９３Ｔ細胞株であり、ＯＣＭＳは、Ｏｎ−Ｃｅｌｌ  ｍＡｂスクリーニングの頭字語であり、また２９３Ｔ  ＢＧＳと命名される。２９３Ｔ  ＯＣＭＳ細胞は、ＲＡＨ（リンカー）の存在下でのみヒトＩｇＧに結合し、ＲＡＨが存在しない場合には結合しない。左端の曲線は、ウサギ抗ヒト抗体（ＲＡＨ）を含まない２９３Ｔ  ＯＣＭＳである。右端の曲線は、ＲＡＨを有する２９３Ｔ  ＯＣＭＳである。図２１Ｂは、ヒトＩｇに特異的なウサギＩｇ（ＲＡＨ、リンカー）に結合した２９３Ｔ  ＯＣＭＳ細胞がポリクローナルヒトＩｇＧに結合することを示すフローサイトメトリーのグラフを提供する。左端の曲線は、ヒトＩｇＧを有さない２９３−ＯＣＭＳである。右端の曲線は、ヒトＩｇＧを有する２９３Ｔ  ＯＣＭＳである。
【図２２Ａ】図２２Ａは、ＲＡＨリンカーの存在下で培養し、ヒトＩｇＧの結合について評価した後の、ヒトＩｇＧ遺伝子（抗ＰＶ  ｍＡｂ  Ａ１２）の２９３Ｔ  ＯＣＭＳ一過性トランスフェクションの４枚のパネルを示す。左上のパネルは、トランスフェクトされ、Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ＩｇＧで標識された２９３Ｔ  ＢＧＳを示す。左下のパネルは、トランスフェクトされず、Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ＩｇＧで標識された２９３Ｔ  ＢＧＳを示す。右上のパネルは、トランスフェクトされ、ＤＡＰＩ画像と重ね合わされた２９３Ｔ  ＢＧＳを示す。左下のパネルは、トランスフェクトされず、ＤＡＰＩ画像と重ね合わされた２９３Ｔ  ＢＧＳを示す。
【図２２Ｂ】図２２Ｂは、トランスフェクトされた２９３Ｔ  ＢＧＳ細胞がＰＶの検出に成功したことを示すグラフを示す。簡潔には、抗ＰＶ  ｍＡｂ  Ａ１２を発現するヒトＩｇＧ遺伝子でトランスフェクト又は非トランスフェクトした２９３Ｔ  ＢＧＳ細胞をビオチン化ＰＶ  Ｉ型とインキュベートし、そのようなＰＶ  Ｉ型との結合を評価し、その結果をプロットした。図２２Ｂに見られるとおり、トランスフェクトされた２９３Ｔ  ＢＧＳは、左のより低いピークに伸びる右側の曲線として検出され、一方、トランスフェクトされていない２９３Ｔ  ＢＧＳ細胞は、左側のより高い曲線として検出された。
【図２３】図２３Ａは、安定化ハイブリドーマ発現ライブラリー（ＳＨＥＬ）として定義される、ヒトＩｇＧの発現について高度に濃縮されたハイブリドーマの集団を示すフローサイトメトリーのグラフを提供する。簡潔には、選択のためにＦＡＣＳ選別を行った。ＬＣＸ−ＢＧＳ細胞と初代ヒトＢ細胞との融合によって産生されたハイブリドーマの集団を、以下の方法によってヒトＩｇＧを発現するものについての陽性選択に供した。それらを最初に洗浄し、培養培地中の過剰のリンカー、ウサギＦ（ａｂ’）2断片抗ヒトＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）（Ｓｏｕｔｈｅｒｎ  ｂｉｏｔｅｃｈカタログ番号６０００−０１）と共に一晩インキュベートした。次いで、細胞を１％  ＰＢＳ−ＢＳＡで２回洗浄し、ビオチン化タンパク質Ａ（ＳｉｇｍａＡｌｄｒｉｃｈカタログ番号２１６５）と混合し、氷上でインキュベートした。１時間後、細胞を１％  ＰＢＳ−ＢＳＡで洗浄し、次いでＡｌｅｘａ  Ｆｌｏｕｒ  ４８８結合ストレプトアビジン（Ｊａｃｋｓｏｎ  Ｉｍｍｕｎｏ  Ｒｅｓｅａｒｃｈカタログ番号０１６−５４０−０８４）と混合し、氷上で４５分間インキュベートし、次いで再び洗浄した。次いで、ヒトＩｇＧを発現している細胞の集団を、ＢＤ  ＦＡＣＳＡｒｉａＩＩ上のＦＡＣＳによって単離した。この陽性選択を更に２回繰り返し、その後、プロットされたフローサイトメトリーの結果が示すとおり、細胞集団は、ヒトＩｇＧ発現細胞について高度に濃縮された。ＩｇＧを発現する細胞について陽性に選択され、ＩｇＧ発現の安定化を示すこのポリクローナル細胞集団は、ヒトＩｇＧ  ＳＨＥＬ集団である。図２３Ｂは、高度に濃縮されたヒトＩｇＡ発現細胞を示すフローサイトメトリーのグラフを提供する。簡潔には、図２３Ａに示される実験と同様に、ＬＣＸ−ＢＧＳ細胞と初代ヒトＢ細胞との融合によって産生されたハイブリドーマの集団を、ヒトＩｇＡを発現するものについての陽性選択に供した。この陽性選択を更に２回繰り返し、その後、プロットされたフローサイトメトリーの結果が示すとおり、細胞集団は、ヒトＩｇＡ発現細胞について高度に濃縮された。ＩｇＧを発現する細胞について陽性に選択され、ＩｇＧ発現の安定化を示すこのポリクローナル細胞集団は、ヒトＩｇＡ  ＳＨＥＬ集団である。
【図２４】図２４は、実施例１６に説明されるとおり、ヒト抗ＰＶ  ＩｇＧ  ｍＡｂを分泌するＯＣＭＳハイブリドーマへのＩＩＩ型ＰＶの結合を示す９枚の顕微鏡パネルを示す。
【図２５】図２５は、実施例１６に説明されるとおり、抗ＰＶ  ＩｇＧ  ｍＡｂを分泌するＩＩＩ型ＰＶ結合ＯＣＭＳハイブリドーマのフローサイトメトリー分析を示す９枚の白黒フローサイトメトリーヒストグラムを示す。
【図２６】図２６は、実施例１６に説明されるとおり、抗ＰＶ  ｍＡｂを発現するハイブリドーマによるタンデムｓｃＦｖ及びヒトＩｇＧ発現を評価するフローサイトメトリーグラフを示す。
【発明を実施するための形態】
【００２８】
本明細書に説明する組成物及び方法は、新規モノクローナル抗体（ｍＡｂ）及びハイブリドーマの迅速なスクリーニングと、獲得と、タンパク質の組換え産生とにおいて有用な、方法及び組成物を提供する。これらの組成物及び方法は、診断、治療及び研究用途のための細胞と、該細胞が分泌するタンパク質とのより効率的な同定を可能にする。
【００２９】
ハイブリドーマ細胞と、該細胞が分泌するモノクローナル抗体との産生及び同定に様々な利点を付与する、核酸構築物及び分子、核酸構築物又は分子を担持する様々な型のベクター、細胞、細胞株、及び、方法が本明細書に開示される。この組成物及び方法は、ハイブリドーマを個別に培養する必要性を排除し、多数の細胞を維持及びスクリーニングするための障壁を減少させる。これらの組成物及び方法は、希少抗体の発見を可能にし、一方、ｍＡｂクローニングプロセスの速度を加速して、所望の特徴を有するものを単離し、特徴付ける。加えて、本方法及び組成物は、人件費及びインフラストラクチャ費を低減する。本明細書に詳細に説明される方法及び組成物の更なる利点は、Ｉｇスクリーニングのための細胞外ｍＡｂディスプレイを提供すること、及び、抗原駆動選別法によるポリクローナルハイブリドーマ集団のハイスループットスクリーニングを可能にすることを含む（即ち、ｍＡｂは、それを作製する細胞と物理的に関連づけられる）。これらの方法及び組成物は、組換えｍＡｂ発現を必要とするファージディスプレイ、酵母ディスプレイ、及び、哺乳動物ディスプレイに有用である。これらの方法及び組成物は、Ｉｇ発現及び安定性を最適化し、稀な結合特異性を有するｍＡｂの同定を容易にするためのハイブリドーマサブクローニング方法を効率化するために有用である。
【００３０】
一局面において、本明細書に説明するようなヒト抗ウイルスｍＡｂ発見のための方法は、オンセルｍＡｂスクリーニング（ＯＣＭＳ（商標））と称される。本明細書でより詳細に説明されるとおり、一実施形態では、ＯＣＭＳ法は、ハイブリドーマ法である。従来のハイブリドーマ法では、ヒトＢ細胞（例えばウイルス感染に応答して産生される抗体を作製する）は、融合パートナー細胞に融合され、これは、実験室で増殖し得るハイブリドーマ細胞を作製する。各々のハイブリドーマは、単一のモノクローナル抗体（ｍＡｂ）を分泌する37。従来のｍＡｂ発見は、完全なｍＡｂを作るものを見つけるために、数千から数百万の細胞を試験することを必要とする。対照的に、ＯＣＭＳ法では、分泌されたｍＡｂがｍＡｂを産生する細胞の表面に特異的に付着される。従って、抗ウイルス抗原特異的ｍＡｂを産生する細胞（例えば、ハイブリドーマ細胞）は、単にウイルス又はウイルス抗原を添加することによって、それらの表面上のｍＡｂがウイルスを捕捉するので、容易に同定及びスクリーニングされ得る。対象のＢ細胞からｍＡｂスクリーニング及びクローン単離までのこの効率化された作業フローは、遺伝子クローニング及び発現、即ち、作製された各ハイブリドーマ細胞の個々の培養及びその機能的スクリーニングを必要としない。一実施形態では、ＯＣＭＳ法は、６〜８週間で有効なヒトｍＡｂを産生することができる。これは、部分的には、ＯＣＭＳハイブリドーマがｍＡｂ分泌について遺伝的に安定化されていることに起因する22。別の実施形態では、ＯＣＭＳ細胞は、ウイルス結合に加えて、ウイルス中和についてのそれらのｍＡｂのスクリーニングにおける使用のために操作され得る。ＯＣＭＳ法を用いて、本発明者らは、ポリオウイルス（ＰＶ）及びヒトＮＭＤＡ受容体に特異的なヒトｍＡｂをクローニングした。
【００３１】
別の実施形態では、ＯＣＭＳ法は、全非標識ウイルスを用いてｍＡｂを発見するのに有用である。以下に詳細に説明されるとおり、ＯＣＭＳ法を使用して、抗ウイルスｍＡｂ発見のための普遍的なアッセイを作製した。以下の実施例１６を参照されたい。簡潔には、抗ウイルスｍＡｂを発現するハイブリドーマがウイルスと接触すると、ハイブリドーマの表面にｔｅｌｌ−ｔａｌｅ免疫複合体が形成される。これらの複合体は、Ｈｉｇｈ−Ｃｏｎｔｅｎｔ  Ｉｍａｇｉｎｇ（本質的には、強力な画像解析ソフトウェアを伴う共焦点顕微鏡検査）を使用して、ハイスループットスクリーニングのために検出することができる。他の従来の方法（例えば、フローサイトメトリー、セルソーティング）もまた、これらの複合体を検出し、ｍＡｂ発現ハイブリドーマを濃縮するために使用され得る。
【００３２】
以下に説明するような更なる別の実施形態では、ＯＣＭＳ法は、ハイブリドーマでない組換え細胞において使用され得る。
【００３３】
更なる別の方法及び組成物を以下に詳細に説明する。
【００３４】
Ｉ．本発明の組成物及び方法において使用される成分及び定義
本明細書で議論される組成物及び方法の説明において、種々の成分は、本発明が属する技術分野の当業者によって一般に理解されるのと同じ意味を有する技術用語及び科学用語の使用によって、並びに、公開されたテキストを参照することによって、定義され得る。このようなテキストは、当業者に、本出願で使用される用語の多くに対する一般的なガイドを提供する。本明細書に含まれる定義は、本明細書中の成分及び組成物を説明する際の明確さのために提供され、請求項に記載される発明を限定することを意図するものではない。
【００３５】
本明細書で使用される用語「アンカー」は、（ａ）リンカーに結合し、リンカーと複合体を形成する細胞外領域ポリペプチド、（ｂ）任意的なポリペプチドタグ、及び、（ｃ）内在性膜タンパク質に由来する膜貫通アミノ酸配列を含むタンパク質配列（又はそれをコードする核酸配列）を指す。更により具体的な実施形態において、アンカーは、配列番号１の核酸配列によってコードされる。
【００３６】
アンカーの一実施形態では、「細胞外領域ポリペプチド」は、リンカー上の配列を特異的に認識し、それに結合することができる単鎖抗体可変領域（ｓｃＦｖ）である。別の実施形態では、細胞外領域ポリペプチドは、２、３、４、５、又は、６個以上までのｓｃＦｖから形成されるタンデムｓｃＦｖであり、これは、適切な「スペーサー」ポリペプチドによって互いに分離され得、各ｓｃＦｖは、リンカー上の配列に結合するために設計される。更なる別の実施形態では、「細胞外領域ポリペプチド」は、Ｆａｂが細胞表面上で発現される場合、１個又は２個の遊離Ｆｖ領域を有するＦａｂである。更なる別の実施形態では、「細胞外領域ポリペプチド」は、細胞表面上で発現される場合、１個又は２個の遊離Ｆｖ領域を有する抗体である。別の実施形態では、アンカーの細胞外領域ポリペプチドは、単一ドメイン抗体である。別の実施形態では、アンカーの細胞外領域ポリペプチドは、ラクダ抗体である。更なる別の実施形態では、アンカーの細胞外領域ポリペプチドは、アプタマーである。特定の実施形態では、アンカーの細胞外ドメインポリペプチドは、各ｓｃＦｖの重鎖Ｆｖ及び軽鎖Ｆｖ配列と、各鎖の間に介在する「スペーサー」とを交互に含む。別の特定の実施形態では、アンカーの細胞外ドメインは、各ｓｃＦｖの重鎖Ｆｖ及び軽鎖Ｆｖ配列を交互に含み、適切なスペーサーが各鎖の間に挿入される。
【００３７】
「ポリペプチドタグ」とは、一般に、それが結合するポリペプチド配列の同定及び／又は精製を容易にする、異種ポリペプチド配列に組み込まれた短いアミノ酸配列を意味する。ポリペプチドタグは、アンカーの任意的な成分である。一例では、アンカーのための有用なポリペプチドタグは、Ｍｙｃタグである。別の例では、ポリペプチドタグは、ＦＬＡＧタグである。別の実施形態では、ポリペプチドタグは、ＮＥタグである。更なる別の実施形態では、ポリペプチドタグは、ＨＡタグである。更なる別の例では、ポリペプチドタグは、Ｈｉｓタグ又はポリＨｉｓタグである。他の適切なタグは、Ｈｉｓタグ若しくはポリＨｉｓタグ、又は、タバコエッチウイルス（ＴＥＶ）プロテアーゼ認識部位を含むが、これらに限定されない。更に他の適切なポリペプチドタグが、本明細書に説明する組成物及び方法において使用され得る。
【００３８】
「切断タグ」とは、一般に、異種ポリペプチド配列に組み込まれた短いアミノ酸配列を意味し、これは、ポリペプチドが酵素的又は他の機構によってその部位で切断されることを可能にする。一例において、有用な切断タグは、３Ｃ  ＰｒｅＳｃｉｓｓｉｏｎプロテアーゼ又はＰＳＰ切断タグである。別の例では、タグは、ＥＫＴ（エンテロキナーゼ）切断タグである。別の実施形態では、タグは、ＦＸａ（第Ｘａ因子）切断タグである。更なる別の実施形態では、タグは、ＴＥＶ（タバコエコーウイルス）切断タグである。更なる別の例では、タグは、トロンビン切断タグである。更に他の適切な切断タグが、本明細書に説明する組成物及び方法において使用され得る。
【００３９】
アンカーの別の成分は、内在性膜タンパク質に由来する膜貫通アミノ酸配列である。内在性膜タンパク質は、一般に、細胞のリン脂質二重層に埋め込まれた１個以上のセグメントを有する。ほとんどの内在性タンパク質は、膜リン脂質の脂肪アシル基と相互作用する疎水性側鎖を有する残基を含み、従ってタンパク質を膜に固定する。ほとんどの内在性タンパク質は、リン脂質二重層全体にわたって存在する。これらの内在性膜タンパク質の膜貫通ドメインは、残基４個〜数百個の長さであり、二重層の各側の水性媒体中に伸びている。膜貫通ドメインは、αヘリックス又は複数のβ鎖である。有用な膜貫通タンパク質の例は、Ｉ型膜貫通受容体分子（例えば、血小板由来成長因子受容体（ＰＤＧＦ−Ｒ）、上皮成長因子受容体（ＥＧＦ−Ｒ）、インテグリン、インスリン受容体、血管内皮成長因子受容体（ＶＥＧＦ−Ｒ）又は他の内在性タンパク質を含むが、これらに限定されない、内在性膜タンパク質由来の選択されたドメインである。5、6明示的な例として、配列番号１のヌクレオチド１６０３〜１７５２によってコードされる配列を参照されたい（以下の表Ｉ参照）。
【００４０】
本明細書で使用される用語「スペーサー」は、アンカーの分子部分を分離するために使用される少なくとも１個〜約２４個のアミノ酸を指す。従って、種々の実施形態において、スペーサーは、少なくとも２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３個、最大約２４個のアミノ酸の配列から形成される。
【００４１】
「リンカー」とは、アンカーとの第１の複合体、及び、標的タンパク質との第２の複合体を形成するために設計されたアミノ酸配列（又はそれをコードするポリヌクレオチド配列）を意味し、該標的タンパク質は、アンカーによって認識されない。従って、リンカーの機能は、細胞の表面上で発現されるアンカーと、細胞によって分泌される標的タンパク質との間に架橋（又は連結）を形成することであり、それによって標的タンパク質を固定化し、その標的タンパク質を分泌する細胞の同定、及び、その細胞によって分泌される標的タンパク質の特徴付けを可能にする。「免疫グロブリンリンカー」又は「Ｉｇリンカー」とは、アンカーとの第１の免疫複合体、及び、標的タンパク質との第２の免疫複合体（前記標的タンパク質は、前記アンカーによって認識又は結合されない）を形成するために設計された抗体又はその断片（又はそれをコードするポリヌクレオチド配列）のアミノ酸配列を意味する。従って、Ｉｇリンカーの機能は、細胞の表面上で発現されるアンカーと、細胞によって分泌される標的タンパク質との間に架橋（又は連結）を形成し、それによって標的タンパク質を固定化し、その標的タンパク質を分泌する細胞の同定、及び、その細胞によって分泌される標的タンパク質の特徴付けを可能にすることである。一実施形態では、リンカーは、標的タンパク質及びアンカーがリンカーの非存在下で互いに結合しない条件下で、アンカー及び標的タンパク質の両方に結合することができる。一実施形態では、Ｉｇリンカーは、抗体又は抗体断片である。本明細書に示される特定の例では、Ｉｇリンカーは、抗体断片がＦｖ断片、Ｆａｂ断片、Ｆｖ若しくは単鎖Ｆｖ、又は、単一ドメイン抗体と、それらの組換えバージョンとである。一実施形態では、Ｉｇリンカーは、Ｉｇリンカーがアンカーと第１の複合体を形成する細胞によって分泌される標的タンパク質の種とは異なる種である。一実施形態では、リンカーは、ウサギＦＡｂである。
【００４２】
本明細書で使用される「抗体又は断片」は、モノクローナル抗体（ｍＡｂ）、合成抗体、組換え抗体、キメラ抗体、ヒト化抗体、ヒト抗体、ＣＤＲ移植抗体、２個以上の標的に結合し得る多重特異性結合構築物、二重特異性抗体、二特異性抗体、又は、多重特異性抗体、又は、親和性成熟抗体、単抗体鎖又はｓｃＦｖ断片、ダイアボディ、相補的ｓｃＦｖｓ（タンデムｓｃＦｖｓ）又は二特異性タンデムｓｃＦｖｓを含む単鎖、Ｆｖ構築物、ジスルフィド結合Ｆｖ、Ｆａｂ構築物、Ｆａｂ’構築物、Ｆ（ａｂ’）２構築物、Ｆｃ構築物、モノクローナル抗体機能に不可欠でないドメインが除去された一価又は二価構築物、１個のＶL、１個のＶH抗原結合ドメイン、及び、リンカードメインによって任意的に連結された１個又は２個の定常「エフェクター」ドメインを含む単鎖分子、ヒンジ領域を欠く一価抗体、単一ドメイン抗体、二重可変ドメイン免疫グロブリン（ＤＶＤ−Ｉｇ）結合タンパク質又はナノボディである。また、この定義には、親和性体（ａｆｆｉｂｏｄｙ）、即ち、いずれかの所定の標的に対する高い親和性及び特異性のために単離され得る、一般に小さい（〜６．５ｋＤａ）単一ドメインタンパク質である、操作された親和性タンパク質、及び、特定の標的に結合するアプタマー、ポリペプチド分子などの抗体模倣物も含まれる。本明細書中の組成物又は方法の説明において、用語「ｍＡｂ」が使用される場合は、いつでも、この用語は、同一又は類似の結果を達成するために、いずれかの他の形態の抗体又は抗原特異的／抗原結合断片によって置き換えることができることが理解されるべきである。抗体又はｍＡｂは、ＩｇＧ、ＩｇＡ、ＩｇＭ、又は、ＩｇＥの場合がある。
【００４３】
本明細書で使用される「標的タンパク質」又は「標的」は、細胞によって分泌されるいずれかの天然に存在するアミノ酸配列又は合成アミノ酸配列又は組換えアミノ酸配列を指す。一実施形態では標的は、抗体又はその断片である。以下の実施例において標的は、モノクローナル抗体又はその断片である。更なる別の実施形態では標的タンパク質は、細胞によって分泌されるいずれかのタンパク質又はポリペプチドの場合がある。一実施形態では、標的タンパク質は、ｍＡｂである。更なる実施形態では、標的タンパク質は、免疫グロビンである。別の実施形態では、標的タンパク質は、ＩｇＧである。更なる別の実施形態では、標的タンパク質は、ＩｇＡである。特定の実施形態では、標的タンパク質は、ヒトＩｇである。
【００４４】
本明細書で使用される「細胞」とは、標的タンパク質を分泌する哺乳動物又は非哺乳動物細胞を意味する。従って一実施形態では、細胞は初代細胞である。別の実施形態では細胞は不死化細胞である。特定の実施形態では細胞は哺乳動物細胞である。別の実施形態では細胞は、昆虫細胞、鳥類細胞、細菌細胞、酵母細胞、又は、他の非哺乳動物細胞であってもよい。一実施形態では哺乳動物細胞はヒト細胞である。
【００４５】
「Ｂ細胞の細胞系譜の細胞」又は「Ｂ細胞」とは、免疫グロブリン（例えば、抗体又はその断片）を産生し得る哺乳動物免疫系の細胞を意味する。本明細書に説明する本発明の文脈において、Ｂ細胞の細胞系譜の細胞は、標的タンパク質（即ち、抗体又はその断片）を産生し、分泌する。
【００４６】
「不死化」細胞とは、適切な条件下で維持された場合に無限の複製が可能である細胞を意味する。一実施形態において不死化細胞は、実験室において無期限に増殖状態で維持され得る哺乳動物細胞である。一実施形態において不死化細胞は、得られる不死化細胞を生成するために別の細胞（例えば、非不死化細胞）に融合され得る融合パートナー細胞である。別の実施形態では融合パートナー細胞は、アンカーを発現する核酸分子を有する不死化細胞（例えば、ＢＧＳ融合パートナー）の場合がある。別の実施形態では融合パートナー細胞はＢＧＳを発現しない。更なる別の例として不死化細胞は、Ｂ細胞と融合パートナー細胞との間の融合によって生成されるハイブリドーマ細胞株である。
【００４７】
一実施形態において、選択された細胞は、アンカーを発現する核酸分子を含む。この文脈における「含む」とは、核酸分子が、感染、レトロウイルス形質導入、エレクトロポレーション又はトランスフェクションによるその送達のために、細胞中で安定的に又はエピソーム的に運ばれることを意味する。別の実施形態では、細胞は、アンカーを発現し、宿主細胞ゲノムに安定的に組み込まれる複製不能組換えレトロウイルスで形質導入される。更なる別の実施形態では細胞は、核酸分子によるエレクトロポレーションのためにアンカーを含む。本明細書に説明するアンカーを発現する細胞は、「ＢＧＳ」（Ｂ細胞グロブリンスカフォールド）又はＯＣＭＳ細胞株と称される。特定の実施形態では、用語「ＢＧＳ」又は「ＯＣＭＳ」は、アンカーを指す。しかしながら、形成されたアンカー及び複合体が免疫複合体でない場合でさえ、用語「ＢＧＳ」、「ＢＧＳ＋」、「ＯＣＭＳ」、又は、「ＯＣＭＳ＋」は、にもかかわらず、細胞がアンカーを発現し、分泌された標的を捕捉するために複合体を形成する際に有用であることを示す。特定の実施形態では、用語「ＢＧＳ−」又は「ＯＣＭＳ−」は、細胞がアンカーを発現しない細胞であることを示す。
【００４８】
用語「種」又は「異種」が標的タンパク質又はリンカー又はＩｇリンカーの起源を定義するために使用される場合、種は、ヒト、マウス、ラット、ヤギ、ロバ、ウサギ、モルモット、ウシ、ヒツジ、ブタ、ラクダ種、及び、ニワトリから選択され得るが、これらに限定されない。更に他の非哺乳動物起源の種を、選択される標的タンパク質に依存して使用し得る。Ｉｇリンカー、アンカー、及び、標的タンパク質は、特定の実施形態では、互いに異種起源の各々であることが理解される。
【００４９】
本明細書で使用される「と複合体を形成する」、「に結合する」、又は、そのいずれかの文法的変形は、構成要素のランダムな関連付けではなく、特定の相互作用による構成要素の関連付けからエンティティを形成することを指す。特定の複合体内に含まれる相互作用は、相互作用に関与する構成要素又は構成要素の一部、及び、形成される相互作用又は結合のタイプによって定義される、ある特定のタイプの相互作用に限定される。当業者によって理解されるとおり、このような特異的相互作用は、共有結合（例えば、ジスルフィド結合）及び非共有結合（例えば、静電相互作用、水素結合、ファンデルワールス力及び疎水性相互作用）を含み得る。更なる実施形態では、本明細書で使用される「免疫複合体」は、その抗原に対する抗体の少なくとも１種類の相互作用を含む複合体を指す。これらの定義は、本明細書において、名詞、動詞又は形容詞としてのこれらの用語の使用の両方に適用される。
【００５０】
本明細書で使用される用語「ＣＡＰ様免疫複合体」は、ウイルス粒子が存在し、ＯＣＭＳハイブリドーマの表面上のｍＡｂに結合される場合、その細胞又は他の細胞によって分泌される更なるｍＡｂもまた、ウイルス粒子を被覆することを意味する。これは、ハイブリドーマ表面上のｍＡｂの分布を単に観察することによって検出することができるｔｅｌｌ−ｔａｌｅ免疫複合体（アンカー−リンカー−ｍＡｂ−ウイルス−追加ｍＡｂ）を作り出す。一実施形態では、ウイルスは１個を超えるエピトープを有する多価抗原であり、それは、抗原によって結合され得る。特定の実施形態では、そのようなエピトープの１個は、ウイルス上で複数回生じ得る。一実施形態では、標的タンパク質としてのｍＡｂが認識され、追加のｍＡｂのエピトープとは異なるエピトープに結合する。別の実施形態では、標的タンパク質としてのｍＡｂが認識され、更なるｍＡｂと同じであるがウイルスの異なる分子部分にあるエピトープに結合する。本明細書で使用される用語「エピトープ」又はそのいずれかの文法的変形は、免疫系（例えば、抗体、Ｂ細胞又はＴ細胞）によって認識される抗原の一部である抗原決定基を指す。ポリオウイルス等のウイルスの直径（３０ｎｍ）は、ｍＡｂの直径（約１５ｎｍ）よりも大きいことに留意されたい。ＣＡＰ様免疫複合体では、ビリオンがアンカーの細胞外領域ポリペプチド（例えば、タンデムｓｃＦｖ）によって結合されたｍＡｂの全てを細胞の１つの極上に隔離する大きな免疫複合体の形成の核となる（図２０参照）。従って、ＣＡＰ様複合体は、そのサイズ及び位置によって同定され得る。一実施形態では、ｔｅｌｌ−ｔａｌｅ、ウイルス依存性、ＣＡＰ様構造は、それらの幅（標識された隣接画素の数）、蛍光強度、及び、染色された（例えば、ＤＡＰＩ染色された）核からの距離に基づいて、ＯＣＭＳハイブリドーマ細胞の表面上で同定される。一実施形態では、ウイルス依存性ＣＡＰ様免疫複合体を提示するＯＣＭＳハイブリドーマを、Ｐｅｒｋｉｎ−Ｅｌｍｅｒ  Ｏｐｅｒｅｔｔａ  Ｈｉｇｈ  Ｃｏｎｔｅｎｔ  Ｉｍａｇｉｎｇ  Ｓｙｓｔｅｍ中の黒底ＣｅｌｌＣａｒｒｉｅｒプレート中で画像化する。ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒのＨａｒｍｏｎｙ  Ｈｉｇｈ  Ｃｏｎｔｅｎｔ  Ｉｍａｇｉｎｇ  ａｎｄ  Ａｎａｌｙｓｉｓ  Ｓｏｆｔｗａｒｅデータ処理ソフトウェア及びスポット検出アルゴリズムを使用して、画像を分析する。一実施形態では、ＣＡＰ様複合体形成は、ウイルス結合の前にアンカーの細胞外領域ポリペプチド（例えば、タンデムｓｃＦｖ）を凝集させることによって促進される。別の実施形態では、ＣＡＰ様複合体形成は、ウイルス結合の前にマウスタンデムｓｃＦｖを凝集させるために、ポリクローナル抗マウス血清を添加することによって促進される。
【００５１】
用語「層状免疫複合体」とは、ｍＡｂ分泌レベルが低い場合に優勢の場合がある複合体を指す。アンカーは、細胞膜のいたる所に（ａｃｒｏｓｓ  ｔｈｅ  ｃｅｌｌ  ｍｅｍｂｒａｎｅ）分布したままであるが、ｍＡｂ（例えば、ヒトＩｇＧ）は形質膜から離れた所に（ｆａｒ  ｆｒｏｍ  ｔｈｅ  ｐｌａｓｍａ  ｍｅｍｂｒａｎｅ）見え、細胞膜の遠位のビリオンに付着している。層状複合体では、ウイルスは、細胞表面から＞３０ｎｍに観察され得る層でｍＡｂに結合する。この距離では、ｍＡｂ及びアンカーの蛍光標識は重なり合わないので、複合体は、ＣＡＰ様複合体について上記した技術を用いて、例えば、アンカー（例えば、タンデムｓｃＦｖ）をＰＥウサギＩｇＧで標識し、ヒトｍＡｂをＦＩＴＣ二次ｍＡｂで標識することによってアッセイすることができる。層状構造は、ヒトｍＡｂがウイルス粒子によって細胞から隔てられる場合にのみ存在する緑色ＦＩＴＣシグナルに基づいて同定される。
【００５２】
用語「普遍的な抗ウイルスｍＡｂ発見」又は「普遍的な抗ウイルスｍＡｂ方法又はプラットフォーム」とは、例えばＯＣＭＳハイブリドーマ技術及び自動化Ｈｉｇｈ−Ｃｏｎｔｅｎｔ  Ｉｍａｇｉｎｇを使用して、全ビリオン及び単一の共通セットの診断試薬を使用して、多様なウイルスに結合するｍＡｂを同定する能力を指す。アッセイの原理を図１９に示す。ＯＣＭＳハイブリドーマ技術は、ヒトＢ細胞を実験室適合融合パートナー細胞株ＬＣＸに融合させることによってヒトＢ細胞を不死化し、それによってヒトＢ細胞に由来するモノクローナル抗体を発現するハイブリドーマ細胞を作製する。一実施形態では、ヒトＢ細胞は、アンカーを含む。別の実施形態では、融合パートナー細胞は、アンカーを含む。ＯＣＭＳハイブリドーマは、リンカー（例えば、ウサギＩｇＧ）に結合することができるアンカー（例えば、タンデムｓｃＦｖ）をその形質膜外側上に提示する。リンカー（例えば、ウサギＩｇＧ）が培養培地に添加される場合、それは、アンカー（例えば、タンデムｓｃＦｖ）によって捕捉される。現在のＯＣＭＳ法の一実施形態において、ヒトＩｇＧ（標的タンパク質）に特異的なウサギＦＡｂが使用され、その結果、ハイブリドーマによって分泌されるヒトＩｇＧは表面上に捕捉される。特定の実施形態では、これらのアッセイは、ハイブリドーマが分泌するヒトＩｇＧのみに結合するために、培地中の過剰のウサギＦＡｂを用いて行われる。例えば、培養物中の過剰のウサギＦＡｂは、培養物中の他の細胞によって分泌されたヒトＩｇＧを捕捉し得るが、そのＩｇＧは、目的の分泌ハイブリドーマから更に離れている。あるいは、ハイブリドーマ上のアンカーによって結合されたリンカーは、ハイブリドーマが分泌するｍＡｂ又はＩｇＧのみに結合するために選択され得る。試薬は非毒性であるので、実験は生きた細胞上で行われ、所望のｍＡｂを発現する細胞は、フローサイトメトリー又は他の一般的な方法を用いて単離することができる。最適な普遍的な抗ウイルスｍＡｂ発見プラットフォームにおいて、インプットは、回復期Ｂ細胞のサンプル及び病原性ウイルスのサンプルである。アウトプットは、臨床、診断、治療、又は、研究用途のためのｍＡｂを製造するために使用され得るハイブリドーマＲＮＡサンプルである。一実施形態では、最優先の目標は流行中断である：ウイルス感染を生き残った者からｍＡｂを同定し、それらを、流行の広がりを停止させるのに十分な速さで、ＲＮＡ治療剤の形態で軍隊その他の職員及び集団に送達することである40。特定の実施形態では、「ｍＡｂ」、「ＩｇＧ」及び「ヒトＩｇＧ」は、互換的に使用され得ることが、当業者によって理解されるであろう。
【００５３】
本明細書で使用される「安定化ハイブリドーマ発現ライブラリー（Ｓｔａｂｉｌｉｚｅｄ  Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ  Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  Ｌｉｂｒａｒｙ）又はＳＨＥＬ（商標）」とは、ｍＡｂのみを分泌するハイブリドーマ細胞のライブラリーを意味する。一実施形態ではＳＨＥＬ集団は、実質的な又は有意な数の非分泌細胞集団を含まない。一実施形態ではＳＨＥＬ集団は、非分泌細胞集団を含まない。対照的に従来のハイブリドーマライブラリーは、ｍＡｂを分泌するハイブリドーマがより速く増殖する非分泌ハイブリドーマ細胞によって圧倒される傾向があるため、ポリクローナル培養において維持することができない。ＳＨＥＬライブラリーは、ＯＣＭＳ法を用いて作製される。ＯＣＭＳ法は、ポリクローナルハイブリドーマ集団を分析し、選別して、ｍＡｂを分泌するだけの集団を作製することを可能にし、従って、培養物中で無期限に維持し、必要に応じて凍結保存することができる。従って、ＳＨＥＬ集団は、スクリーニング後に廃棄する必要がなく、各ハイブリドーマに対して実施することができる試験の数を増加させるという利点を有する。実施例１２を参照されたい。
【００５４】
本明細書で使用される用語「作動可能に会合する」又は「作動可能に連結された」は、哺乳動物細胞の形質膜上の所望の位置における、選択されたタンパク質（例えば、アンカー）又はいずれかの組換えタンパク質などをコードする所望の遺伝子又は核酸配列の発現を可能にするための、核酸分子の成分の関係を説明する。簡単にするために、コード核酸配列を「トランスジーン」と称する。アンカートランスジーンは、アンカーをコードするトランスジーンの転写、翻訳、適切な細胞内輸送、及び／又は宿主細胞における発現を可能にする様式で、調節成分に作動可能に連結される。本明細書で使用される「作動可能に会合する」又は「作動可能に連結された」配列は、目的のトランスジーン（例えば、アンカー又は発現が意図されるいずれかの組換えタンパク質）と連続する発現制御配列と、目的の遺伝子を制御するためにトランスで又は離れて作用する発現制御配列との両方を含む。
【００５５】
本明細書に説明する核酸配列において使用するための発現制御配列は、適切な転写開始、終結、プロモーター及びエンハンサー配列、スプライシング及びポリアデニル化（ｐｏｌｙＡ）シグナルなどの効率的なＲＮＡプロセシングシグナル、細胞質ｍＲＮＡを安定化する配列、ウイルス形質導入効率及び核−細胞質翻訳効率を増強する配列（即ち、Ｋｏｚａｋコンセンサス配列）、ＲＮＡ翻訳効率を増強する配列、改善されたタンパク質プロセシング、発現収率及び安定性を生じる配列、並びに所望の場合、コードされる産物の分泌を増強する配列を含む。天然、構成的、誘導性及び／又は組織特異的であるプロモーターを含む多数の発現制御配列が当該分野で公知であり、利用され得る。
【００５６】
核酸配列における使用のための適切な構成的又は誘導性プロモーター配列は、種々の商業的供給源（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃｌｏｎｔｅｃｈ及びＡｒｉａｄを含むがこれらに限定されない）から入手可能である。多くの他の系（例えば、天然プロモーター、組織特異的プロモーターなど）が説明されており7、8、9、当業者によって容易に選択され得る。特定の実施形態では、ＢＧＳをコードする核酸配列は、プロモーター／エンハンサー活性化、プロモーター／エンハンサー抑制、又は、エピジェネティック因子（例えば、特異的非コードＲＮＡ分子の発現）を介してそれらの発現レベルを制御し得る核酸配列との作動可能な会合を介する調節に従順である。
【００５７】
一実施形態では、ベクターを使用して、アンカーコード配列及びそれに作動可能に連結された調節配列を、細胞、例えば、融合パートナー細胞、Ｂ細胞、又は、ハイブリドーマ細胞に送達することができる。本明細書で使用される場合、ベクターは、裸のＤＮＡ、ファージ、トランスポゾン、コスミド、エピソーム、プラスミド、細菌、ウイルス又はナノ粒子を含むが、これらに限定されない、いずれかの遺伝子エレメントを含み得る。「ウイルスベクター」とは、非病原性ウイルス又は非複製ウイルスを意味する。一実施形態では、望ましいウイルスベクターは、レンチウイルスベクターなどのレトロウイルスベクターであってもよい。別の実施形態では、望ましいベクターは、アデノウイルスベクターである。更なる別の実施形態では、適切なベクターは、アデノ随伴ウイルスベクターである。種々の有用なレンチウイルスベクターと、細胞を形質導入し、異種を発現する際に使用するためのそのようなベクターを作製するための方法及び操作とが説明されている10。本明細書の教示を前提として本明細書に説明される組成物及び方法の成分を作製するために、多くの公知のベクターが当業者によって使用され得る。いずれかのこのようなベクター又は成分の使用は、これらの教示によって包含される。
【００５８】
「選択マーカータンパク質」とは、組換え配列の成分の検出のために慣用的に使用されるタンパク質を意味する。一実施形態ではこのような選択マーカーは、抗生物質耐性タンパク質である。一実施形態では選択マーカーは、ピューロマイシンに対する耐性を付与する。一実施形態では選択マーカーは、ブラスチシジンに対する耐性を付与する。別の適切なマーカーは、抗生物質Ｇ４１８に対する耐性を哺乳動物細胞に付与するカナマイシン耐性（ＫａｎＲ）である。更なる他の選択マーカーは、当業者に公知であり、本明細書に説明する使用に適する。
【００５９】
本明細書で使用される「標識」又は「レポーター分子」又は「検出可能な標識成分」は、アンカー、リンカー、二次抗体、標的（例えば、ｍＡｂ）、標的によって認識される分子（例えば、抗原）、又は、標的タンパク質の他の結合パートナータンパク質と関連して有用な化学的又は生化学的分子部分であり、単独で又は他の成分と協力して標的の検出を可能にする。このような標識又は成分は、蛍光剤、化学発光剤、発色剤、消光剤、放射性ヌクレオチド、酵素、酵素基質、補因子、阻害剤、放射性同位体、磁性粒子、及び、当技術分野で公知の他の分子部分を含むが、これらに限定されない。特定の実施形態では、「標識」又は「レポーター分子」は、リガンドと共有結合又は非共有結合する。このような標識は、測定可能なシグナル（例えば、放射能）を単独で、又は、別の成分（例えば、基質の存在下での酵素シグナル）と関連して生成することが可能である。標識を抗原に付着させる方法は、慣用的である。
【００６０】
組成物（核酸分子又は細胞）のいずれかの実施形態を構築するために使用される方法は、核酸操作の当業者に公知であり、遺伝子工学、組換え工学、及び、合成技術を含む。このような技術は、文献11に説明されているようなｃＤＮＡの従来のクローニング技術、ウイルスゲノムの重複オリゴヌクレオチド配列の使用、ポリメラーゼ連鎖反応、及び、所望のヌクレオチド配列を提供するいずれかの適切な手法を含む。標準的なトランスフェクション及び同時トランスフェクション技術、例えば、ＣａＰＯ4沈殿技術が使用される。使用される他の従来の方法は、相同組換え、シグナル生成を測定する方法などを含む。
【００６１】
「４Ｇ４」とは、３種類のセービンＰＶ血清型全てに結合するヒトｍＡｂを分泌するハイブリドーマ細胞株を意味する。特定の実施形態では、「４Ｇ４」は、４Ｇ４細胞によって分泌されるｍＡｂを指す。一実施形態では４Ｇ４細胞は、ＯＣＭＳ、ＢＧＳ又は他のアンカーを発現し得る。
【００６２】
「８Ｃ５」とは、狂犬病糖タンパク質に結合するヒトｍＡｂを分泌するハイブリドーマ細胞株を意味する。特定の実施形態では「８Ｃ５」は、８Ｃ５細胞によって分泌されるｍＡｂを指す。一実施形態では８Ｃ５細胞は、ＯＣＭＳ、ＢＧＳ又は他のアンカーを発現し得る。
【００６３】
用語「ａ」又は「ａｎ」は、１つ以上を指す。例えば、「発現カセット」は、１つ以上のこのようなカセットを表すと理解される。従って、用語「ａ」（又は「ａｎ」）、「１つ以上」、及び、「少なくとも１つ」は、本明細書では、互換的に使用される。
【００６４】
本明細書で使用される用語「約」は、特に明記しない限り、与えられた参照からの±１０％の変動を意味する。
【００６５】
用語「第１の」及び「第２の」は、本明細書全体を通して、組成物及び方法の様々な形態及び構成要素を区別するための参照用語として使用される。
【００６６】
単語「含む」及び「含んでいる」は、排他的ではなく包括的に解釈されるべきであり、即ち、他の特定されていない構成要素又はプロセス工程を含むべきである。
【００６７】
単語「からなる」、「からなっている」、及び、その変形は、包括的ではなく排他的に解釈されるべきであり、即ち、特に列挙されていない構成要素又は工程を排除するべきである。
【００６８】
本明細書で使用されるとおり、「から本質的になる」という語句は、説明した組成物又は方法の範囲を、特定の材料又は工程、並びに説明した又は請求項に記載された方法又は組成物の基本的かつ新規な特徴に実質的に影響を及ぼさないものに限定する。本明細書において、方法又は組成物が特定の工程又は特徴を「含む」ものとして説明されている場合は常に、それらの工程又は特徴から本質的になり、それらの工程又は特徴からなる同じ方法又は組成物を包含することも意図されている。
【００６９】
ＩＩ．組成物
以下及び実施例においてより詳細に説明されるとおり、種々の組成物及び成分は、標的タンパク質を分泌する特定の細胞を調製する際に有用であり、多成分複合体（ｍｕｌｔｉ−ｐａｒｔ  ｃｏｍｐｌｅｘ）の一部として細胞の形質膜外側上に標的タンパク質を捕捉するための方法において有用である。多成分複合体は、細胞結合アンカーとリンカーとの間の「第１の」複合体、及び、結合リンカーと標的タンパク質との間に形成される「第２の」複合体を含む。更なる他の複合体は、細胞に結合した多成分複合体の一部の場合がある。例えば、以下に説明するとおり、標的が抗体である場合、「第３の」複合体は、結合した標的タンパク質とその抗原との間で形成され得る。また、「第４の」複合体は、結合した抗原と更なる標的との間に形成され得る。本明細書中の教示を利用することによって、細胞を、それが分泌する標的タンパク質（例えば、ｍＡｂ、ＩｇＧ、ＩｇＡ、又は、ヒトＩｇ）に物理的に付着させることが可能である。その標的は、適切な特異性のリンカーが第１及び第２の複合体を形成することによってアンカーを介して細胞に結合される場合にのみ、標的を分泌する細胞に付着するであろう。
【００７０】
従って、１つの組成物は、以下に説明する方法における使用のための所望の細胞の構築に有用な核酸分子である。この核酸分子は、核酸分子を含む細胞の表面上でのアンカーの発現を指示する調節配列と作動可能に会合したアンカーをコードする。アンカーは、選択されたリンカーと第１の複合体を形成するために設計され、リンカーは、選択された標的タンパク質と第２の複合体を形成するために設計される。発現するアンカーが標的タンパク質に実質的に結合しないことは、この核酸分子の必要条件である。
【００７１】
アンカーは、リンカーに結合する細胞外領域ポリペプチドを含むので、そのポリペプチドは、リンカーとのみ複合体を形成しなければならない。例えば、細胞外領域ポリペプチドがリンカー上の配列（又は上記の定義で同定された他の細胞外ペプチドのいずれか）に特異的に結合する単鎖抗体可変領域（ｓｃＦｖ）を含む場合、そのポリペプチドは、標的タンパク質といかなる方法でも結合してはならない。実施例に示されるとおり、アンカーのｓｃＦｖは、特定の種の免疫グロブリン（例えば、ウサギ免疫グロブリン）のみを同定し得る。従って、リンカーがウサギ抗体（又は標的タンパク質に特異的なウサギ種抗体）であり、標的タンパク質がウサギ種抗体でない場合、アンカーは、リンカーに結合し、標的タンパク質には結合しない。実施例及び上記に説明したとおり、アンカーの細胞外領域は、各ｓｃＦｖの重鎖Ｆｖ及び軽鎖Ｆｖ配列と、各鎖の間に介在するスペーサーとを交互に含むことができる。例えば、図１を参照されたい。
【００７２】
本明細書に説明する核酸分子の一部はまた、プロモーター、リーダー配列、任意的なエンハンサー、及び／又は、選択マーカータンパク質をコードする任意的な配列を含む調節配列であり、これらは、アンカーをコードする核酸配列と作動可能に会合し、アンカーが選択された細胞において発現され、任意的にマーカータンパク質によって同定されることを可能にする。マーカータンパク質は、設計選択として、アンカー又は追加の調節配列を発現させるために使用されるのと同じ調節配列と関連させることができる。
【００７３】
特定の実施形態では、アンカーの発現を制御するプロモーターは、誘導性プロモーター又は抑制性プロモーターである。この実施形態は、アンカー発現が従来のインデューサー又はリプレッサーの使用によって制御されることを可能にし、このような制御は、以下の方法における使用のために所望される。
【００７４】
アンカーの調節配列、ポリペプチドタグ、切断タグ、膜貫通配列、スペーサー及び他の分子部分は、本明細書及び以下の実施例に指示されるとおり、上記に提供され、組み立てられたこれらの成分又は関連する引用の定義に提供されるリストから選択され得る。従って、一実施形態では核酸分子は、以下の表１に記載されるアンカー成分を含む。例えばアンカーは、ウサギ抗ヒト抗グロブリンであるＩｇリンカーに結合することができるＧｌｙ−Ｓｅｒスペーサーによって分離されたタンデムｓｃＦｖを含み、ポリペプチドタグは、Ｍｙｃタグであり、膜貫通タンパク質は、ＰＤＧＦ内在性膜タンパク質に由来する。
【００７５】
リンカーと細胞によって分泌されたｍＡｂとの相互作用によって、アンカー配列を発現する細胞の表面上に形成された複合体を細胞の表面から除去できることも有利な場合がある。一実施形態では、特に分泌されたｍＡｂが抗原に結合している場合、複合体の除去が望ましい。例えば、細胞が異なる抗原の集団に曝露され、抗原の１つがｍＡｂに結合することが認められる場合、細胞の表面から複合体全体を分離し、複合体中の分子の組成を分析する（例えば、質量分析法によって）ことにより、ｍＡｂによって結合された抗原の同定が可能になる。この理由のために、アンカー分子上への切断タグの組み込みが有用である。一実施形態では、アンカーがウサギ抗ヒト抗グロブリンであるＩｇリンカーに結合することができるＧｌｙ−Ｓｅｒスペーサーによって分離されたタンデムｓｃＦｖを含み、親和性タグはＭｙｃタグであり、膜貫通タンパク質は、ＰＤＧＦ内在性膜タンパク質に由来し、ＴｅＶ切断タグは、タンデムｓｃＦｖと膜貫通ドメインとの間に位置する。
【００７６】
特定の実施形態では、リンカーは抗体又は抗体断片である。抗体又は断片は、上記のものいずれかの場合があるが、一実施形態において抗体断片は、Ｆｖ断片である。別の実施形態では抗体断片はＦａｂ断片である。なお更なる実施形態では、Ｉｇリンカーは、Ｆｖ若しくは単鎖Ｆｖ、又は、単一ドメイン抗体、及び／又は、これらの例のいずれかの組換えバージョンである。
【００７７】
更なる別の実施形態では、アンカーは、リンカーがアンカーの種と異種の哺乳動物種のものであり、標的タンパク質がリンカー及びアンカーと異なる種のものになるために、リンカー及び標的タンパク質を念頭に置いて設計される。
【００７８】
この教示から容易に理解され得るとおり、多種多様なアンカー及びアンカーを発現する核酸分子は、標的タンパク質、細胞、及び、本明細書に説明する方法において有用な他の成分の選択に依存して構築され得る。
【００７９】
具体的には、本発明の特定の実施形態では、リンカー抗体の種がアンカーを発現する細胞によって分泌される抗体の種と異なる限り、アンカータンパク質の種結合特異性は、実際的には、リンカー抗体のいずれかの種に対して向けられる場合があることが明らかである。更なる別の実施形態では、リンカー抗体は、アンカータンパク質に組み込まれた抗体の種に特異的ではない。一実施形態では、アンカードメイン中のｓｃＦｖ分子部分はマウス起源であり、リンカーＩｇは、ウサギ起源であり、ヒトＩｇに対して強力な結合を示すが、マウスｓｃＦｖ分子部分に対する結合活性は、ほとんど又は全く示さなかった。この試薬のセットは、分泌されたヒトＩｇを、それを分泌する細胞株の表面に誘導的に付着させるために適する。別の実施形態では、アンカー抗体ドメインは、ラクダ抗体に特異的であるマウスｓｃＦｖドメインであり、ラクダ抗体は、ウシ抗体に特異的であるが、マウスＩｇに対しては反応性を有さない。この試薬のセットは、分泌されたウシＩｇを、それを分泌する細胞の表面に誘導的に付着させるのに適する。別の実施形態では、ラクダ抗体に特異的なウサギｓｃＦｖをアンカーポリペプチドに組み込み、ラクダ抗体はマウスＩｇに特異的である。この試薬のセットは、分泌されたマウスＩｇを、それを分泌する細胞の表面に誘導的に付着させるのに適する。試薬の更なるセットは、ラクダ抗体に特異的なマウスｓｃＦｖ配列を発現するアンカータンパク質を含み、ラクダＩｇは、ウサギＩｇに特異的に結合するが、マウスＩｇには結合しない。この試薬のセットは、分泌されたマウスＩｇを、それを分泌する細胞の表面に誘導的に付着させるのに適する。更なる例は、当業者には容易に明らかである。
【００８０】
以下に説明する方法において有用な更なる別の成分は、核酸分子を含む細胞の表面上でのアンカーの発現を指示する調節配列と作動可能に会合したアンカーをコードする核酸分子を含むベクターである。アンカーは、選択されたリンカーと第１の複合体を形成するために設計され、リンカーは、アンカーによって認識されない標的タンパク質と第２の複合体を形成するために設計される。特定の実施形態では、ベクターは、本明細書に説明する核酸分子のいずれか、又は、本明細書及び実施例によって一般的に又は具体的に教示される構築かを保有する。一実施形態では、ベクターはプラスミドである。別の実施形態では、レンチウイルスなどの組換えウイルスベクターが好ましい。ベクターは、核酸分子を細胞内に輸送するために一般的に使用される多くのベクターの中から選択され、選択可能なマーカータンパク質を含んでもよい。このようなベクターは、当業者の選択で、選択された細胞にトランスフェクト又は感染される。核酸分子を細胞に挿入するためのエレクトロポレーションは、本明細書に説明する方法において有用な細胞を提供する際に使用するための別の実施形態である。
【００８１】
従って、本明細書で提供される組成物は、各々が、選択されたリンカーと第１の複合体を形成するために設計されたアンカーをその形質膜外側表面上に発現した様々な細胞であり、リンカーは、アンカーによって認識されない標的タンパク質と第２の複合体を形成するために設計される。特定の実施形態では、これらの細胞は、本明細書に説明する核酸分子のいずれかを含む。別の実施形態では、これらの細胞は、本明細書に説明するベクターのいずれかを含む。更なる別の実施形態では組成物は、ｍＡｂｓの分泌のために実質的に濃縮されたハイブリドーマのＳＨＥＬ集団を含む。一実施形態では集団は、本明細書に説明のＯＣＭＳ法の使用によって作製される。
【００８２】
一実施形態において、標的タンパク質を単離又は同定するための方法のいくつかにおいて細胞が使用される前に、細胞は、その細胞表面上にアンカーの細胞外分子部分を含む。別の実施形態では、リンカーに曝露された細胞は、その形質膜外側表面上に、アンカーとリンカーとの間に形成された第１の複合体を含む。一例として細胞は、マウス抗ウサギ抗体又はそのｓｃＦｖのみをアンカーとして発現する。
【００８３】
別の実施形態では、細胞は、その細胞表面上に、リンカー上の配列と複合体で結合したアンカーのｓｃＦｖを含み、これは、アンカーのそれに対する異種抗体又は抗体断片である。例えば、一実施形態ではリンカーは、ウサギ抗ヒト抗体である。従って細胞は、例えば、Ｆｖ断片、Ｆａｂ断片、Ｆｖ若しくは単鎖Ｆｖ、又は、単一ドメイン抗体、及び、ウサギ抗ヒト抗体の組換えバージョンであるウサギリンカーに結合したマウスｓｃＦｖアンカー構築物をその表面に結合している。
【００８４】
更なる別の実施形態では、細胞は、その形質膜外側表面上に、リンカーに結合したアンカーを含む多重複合体を含み、分泌された標的タンパク質（例えば、抗体）の存在下では、複合体は、標的タンパク質にも結合したリンカーを更に含む。
【００８５】
上記のとおり特定の実施形態では、リンカーは、アンカーの種と異なる種のものであり、標的タンパク質は、リンカー及びアンカーに対して異なる種のものである。実施例に示すとおり、アンカーはマウス抗体に由来し、リンカーはウサギ抗ヒト抗体に由来し、標的タンパク質はヒト抗体である。
【００８６】
なお更なる実施形態では、細胞は、その表面上に、更により層状の複合体（例えば、アンカー−リンカー−標的タンパク質（抗体）の間の相互作用によって形成される複合体）を含み、これは、抗体が指向される抗原（例えば、裸の抗原、又は、標的タンパク質及びそれが分泌された細胞を単離、定量又は同定する際の更なる使用のために標識される抗原）に更に連結され得る。従って、更なる実施形態は、以下の成分：細胞、細胞表面上のアンカータンパク質、アンカータンパク質に結合したリンカー、及び、細胞によって分泌されたｍＡｂを含む細胞ベースの免疫複合体である。
【００８７】
更なる別の実施形態は、以下の成分：細胞、細胞表面上のアンカータンパク質、アンカータンパク質に結合したリンカー、細胞によって分泌されたｍＡｂ、及び、分泌されたｍＡｂが結合する抗原を含む、細胞ベースの免疫複合体である。更なる別の実施形態では、この複合体内の抗原は、標識された抗原に特異的な発現されたｍＡｂを含有する本発明の細胞ベースの免疫複合体の同定を可能にする標識（ビオチン、蛍光分子、又は、磁気ビーズなどの分子構造又は修飾）に関連するか、又は、それを含有する。あるいは、別の実施形態では、複合体は、ｍＡｂによって結合された抗原に対して親和性を有する同様に標識された分子を含み、従って、標識された抗原に特異的な発現されたｍＡｂを含む、本明細書に説明する細胞ベースの免疫複合体の同定を可能にする。
【００８８】
更なる別の実施形態では、これらの細胞のいずれかは、アンカーを発現する細胞に対して行われる従来の不死化技術の使用によって不死化された細胞である。あるいは、既に不死化された細胞が上記の核酸分子又はベクターを含むように操作され、その結果、得られる不死化細胞は、アンカー、及び／又は、本明細書に説明する多重免疫複合体の更なる成分のいずれかを発現する。細胞が不死化され、選択されたアンカーを発現し、不死ハイブリッド細胞を作製するために初代細胞に融合するのに適する場合、それは、融合パートナー細胞株と称される。
【００８９】
更なる別の実施形態では、上記の細胞のいずれかは、Ｂ細胞の細胞系譜の細胞の場合がある。細胞の別の実施形態は、細胞の種、例えば、ヒトその他の哺乳動物、又は、非哺乳動物において異なる。同様にいくつかの実施形態では、細胞は、調節配列がいずれかの方法の実施の間に、細胞におけるアンカー発現が誘導又は抑制されることを可能にする核酸分子を含む。
【００９０】
更なる別の実施形態では、上記の細胞のいずれかは、治療的、研究的又は診断的使用を有するいずれかの所望の標的タンパク質を組換え法で発現及び分泌するために、遺伝子工学技術によって操作された組換え哺乳動物細胞である。特定の実施形態では、標的タンパク質は、抗体ではないが、いずれかの選択されたタンパク質の高レベル産生又は分析のために、以下に説明する方法において使用される場合がある。
【００９１】
１つの特定の実施形態では、本明細書に説明する組成物及び成分は、その形質膜外側上に固定されたアンカーを含むハイブリドーマ細胞を提供し、アンカーは、選択された免疫グロブリン（Ｉｇ）リンカーと第１の免疫複合体を形成するために設計され、リンカーは、細胞によって分泌されるモノクローナル抗体と第２の免疫複合体を形成するために設計され、モノクローナル抗体はアンカーによって認識されない。別の実施形態では、ハイブリドーマ細胞は、その細胞の形質膜外側表面上に、アンカー及びＩｇリンカーを含む第１の免疫複合体を更に含む。この細胞は、アンカーを発現する元の細胞がＩｇリンカーの存在下にある場合に提供される。もう１つの特定の実施形態では、Ｉｇリンカーは、抗体若しくは抗体断片、又は、Ｆｖ断片、Ｆａｂ断片、Ｆｖ若しくは単鎖Ｆｖ、又は、単一ドメイン抗体、及び／又は、その組換えバージョンである。
【００９２】
別の実施形態では、ハイブリドーマによって分泌されるモノクローナル抗体に結合したリンカーと共に、リンカーに結合したアンカーを含む多成分免疫複合体をその細胞の形質膜外側表面上に更に含むハイブリドーマ細胞が提供される。アンカーを発現する元の細胞がリンカーの存在下にあり、ハイブリドーマがｍＡｂを分泌している場合、細胞を単離することができる。上記のとおり、これらのハイブリドーマ細胞では、リンカーがアンカーの種と異種の哺乳動物種のものであり、モノクローナル抗体がリンカー及びアンカーと異なる種のものである。
【００９３】
更なる別の実施形態では、ハイブリドーマ細胞は、その細胞の形質膜外側表面上に、リンカーに結合したアンカーを含む免疫複合体を含み、リンカーは、細胞株によって分泌されるモノクローナル抗体に結合し、モノクローナル抗体によって特異的に認識される抗原と免疫複合体を更に形成する。この細胞は、アンカーを発現する元の細胞がリンカーの存在下にあり、ハイブリドーマがｍＡｂを分泌しており、細胞が抗原の存在下にある場合に単離される場合がある。
【００９４】
以下に説明する方法において有用な組成物の特定の実施形態は、ｍＡｂを分泌し、そのｍＡｂを免疫複合体中のその形質膜外側上に捕捉する、哺乳動物細胞株であり、免疫複合体は、（１）アンカーとして、ハイブリドーマによって分泌される抗体の種とは異なる抗体の種に特異的であるハイブリドーマ細胞株の形質膜外側に付着した抗体、及び、（２）アンカーによって認識される種の抗体であり、それ自体がハイブリドーマによって分泌されるｍＡｂの種に特異的であるリンカーを含む。例えば、ハイブリドーマによって分泌されるモノクローナル抗体はヒト抗体であり、アンカーは、ウサギ免疫グロブリンに特異的なマウス抗ウサギｓｃＦｖを含み、リンカーはウサギ抗ヒト種抗体又は結合断片である。
【００９５】
本明細書に説明するとおり、一実施形態において、融合パートナーを生成するために使用される細胞株は、、転写−３タンパク質のシグナルトランスデューサー及びアクチベーター（ＳＴＡＴ３）を構成的に活性化し、サイトカイン依存性細胞株のサイトカイン非依存性増殖を誘導し得るサイトカイン受容体分子である、変異糖タンパク質１３０（ｇｐ１３０）を発現する細胞株である。重要なことに、ｇｐ１３０は、ＩＬ−６及びＩＬ−１１と、カルドプトリフィン１（ＣＴ−１）、白血球遊走阻止因子（ＬＩＦ）、毛様体神経栄養因子（ＣＮＴＦ）、及び、オンコスタチンＭ（ＯＳＭ）も含むような多様なサイトカインに対するヘテロ二量体クラスＩサイトカイン受容体のファミリーの共有要素である。ｇｐ１３０の突然変異型は、Ｙ−１８６からＹ−１９０までの５個のアミノ酸を欠失しており（ＹＳＴＶＹ欠失）、ｇｐ１３０  ΔＹＹと称される。19
【００９６】
本明細書に説明する組成物及び方法の特定の局面において、ｇｐ１３０  ΔＹＹを構成的に発現し、アンカーを発現する融合パートナー細胞株は、多くの方法において有用である。生きている細胞又は細胞集団によって発現されるｇｐ１３０  ΔＹＹの量は、標準的な免疫蛍光法及び蛍光活性化セルソーティング法（ＦＡＣＳ）によって容易に評価することができ、ｇｐ１３０  ΔＹＹの発現を失った集団内の細胞は、同じ方法によって容易に同定及び除去することができる。結果として、単純な試験によって、細胞融合実験の前に、集団中の融合パートナー細胞の全てが、必要とされる構成的サイトカインシグナル伝達活性を発現するか否かを容易に決定することができる。
【００９７】
サイトカイン活性の量は、培養培地中の分泌サイトカインの蓄積に依存しないため、培養条件が変化することにつれてｇｐ１３０  ΔＹＹ誘導シグナル伝達のレベルは、実質的に変化しないと予想され、これは、培養細胞へのストレスを減少させる。更に、ｇｐ１３０  ΔＹＹ発現融合パートナー細胞株とＢ細胞との融合によって作製されたハイブリドーマ細胞集団は、ハイブリドーマ細胞作製及び増殖の初期段階においてさえ、例えば、蛍光標識ｇｐ１３０抗体を培養培地に添加し、蛍光顕微鏡で分析することによって、標準的な免疫蛍光法によって容易に分析される。これは、特別な取り扱いで、重要なｍＡｂを発現するが、安定なｍＡｂ発現に重要である自律性サイトカイン活性を発現しない細胞を同定し、提供することを可能にするので、即座の利益を有する。
【００９８】
融合相手細胞株においてＩＬ−６又はＩＬ−１１を発現させることの最も重要な利点の１つは、サイトカイン発現が初代ヒトＢ細胞との細胞融合によって形成されたハイブリドーマにおけるヒトｍＡｂの発現を安定化させることができることである。13、22この作用は、異所性ｈＴＥＲＴ遺伝子も発現するヘテロミエローマ細胞株においてサイトカインが発現される場合に、とりわけ強力である。ｈＴＥＲＴ及びｇｐ１３０  ΔＹＹを発現するが、ＩＬ−６又はＩＬ−１１を含まない融合パートナー細胞株もまた、ヒトｍＡｂクローニングに有用である。
【００９９】
一実施形態では、ＬＣＸ細胞株が提供され、これは、レトロウイルスｈＴＥＲＴ遺伝子及びレトロウイルスｇｐ１３０  ΔＹＹ遺伝子で形質導入されたＫ６Ｈ６／Ｂ５細胞株である。ＬＣＸ細胞株、株名称０３．０６．１７は、１０８０１  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  Ｂｏｕｌｅｖａｒｄ、Ｍａｎａｓｓａｓ、ＶＡ  ２０１１０  ＵＳＡに位置するＡｍｅｒｉｃａｎ  Ｔｙｐｅ  Ｃｕｌｔｕｒｅ  Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）の受託番号ＰＴＡ−１２４０６３で、２０１７年３月２４日に寄託された。この細胞株及びその子孫では、ｇｐ１３０  ΔＹＹのレベルを容易に監視することができる。ＬＣＸ細胞株は、初代ヒトＢ細胞との細胞融合を介してヒトｍＡｂをクローニングするのに有効である。このＬＣＸ細胞株を使用して、実施例１に説明のとおりアンカーも発現させる場合、これは、ＬＣＸ−ＢＧＳと称される新規融合パートナー細胞株である。例示的なＬＣＸ−ＢＧＳ細胞株、株名称０３．０６．１７は、１０８０１  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  Ｂｏｕｌｅｖａｒｄ、Ｍａｎａｓｓａｓ、ＶＡ  ２０１１０  ＵＳＡに位置するＡｍｅｒｉｃａｎ  Ｔｙｐｅ  Ｃｕｌｔｕｒｅ  Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ（ＡＴＣＣ）の受託番号ＰＴＡ−１２４０６２で２０１７年３月２４日に寄託された。ＬＣＸ  ＢＧＳは、ヒトｍＡｂをクローニングするための融合パートナーとしての使用に適する。ＬＣＸ  ＢＧＳをＢリンパ球と融合させて、ヒトｍＡｂを分泌するハイブリドーマを生成することができ、本明細書に説明の方法を使用して、それらのｍＡｂをそれらの形質膜外側上に捕捉することができる。
【０１００】
フローサイトメトリーによってＬＣＸ−ＢＧＳ細胞株の表面上でｇｐ１３０  ΔＹＹ及びＢＧＳ分子部分の両方を同時に評価することができるので、この細胞株は、ヒトｍＡｂクローニングのためのハイブリドーマ法のハイスループットの、工業的規模の適用への適応に特に適する。ＬＣＸは、ｈＴＥＲＴの存在下及び異所的に発現されたＩＬ−６又はＩＬ−１１の非存在下でヒトｍＡｂの効率的なクローニングを可能にする、構成的に活性なサイトカイン受容体ｇｐ１３０  ΔＹＹを発現する細胞株の一例である。ＬＣＸ−ＢＧＳは、ｇｐ１３０  ΔＹＹ及び適切なアンカーを構成的に発現する細胞株の一例である。この細胞株は、分泌サイトカインを発現する融合パートナー細胞株の使用における重要な限界を克服し、工業的規模のハイスループットヒトｍＡｂクローニング方法への適応に理想的である細胞の実施形態である。
【０１０１】
細胞株ＬＣＸ及びＬＣＸ−ＢＧＳの実施形態は、ｇｐ１３０  ΔＹＹの量が生きている細胞の集団に対するフローサイトメトリーによって評価できるので、融合パートナー細胞株によって発現されるサイトカインシグナル伝達活性のより良好な標準化を可能にする。更にこの細胞株は、品質管理モニタリングのために、生細胞培養上の融合パートナー細胞株ｇｐ１３０  ΔＹＹ発現の保存の評価を可能にする。それは、更に、例えばｇｐ１３０  ΔＹＹの発現量（及びサイトカインシグナル伝達の大きさ）を滴定することによって、又は、ｇｐ１３０  ΔＹＹトランスジーンの発現を維持するハイブリドーマ細胞の割合を評価することによって、融合パートナー細胞株の最適化を可能にする。
【０１０２】
ＬＣＸ−ＢＧＳ又はＬＣＸに類似する細胞は、典型的なハイブリドーマ実験の場合によくあるとおり、少量培養（１００個未満の細胞）を含むポリクローナル細胞培養中の（ｇｐ１３０  ΔＹＹ発現の結果として）サイトカイン活性のリアルタイム評価を可能にする。これらの細胞はまた、これらの細胞に特別な取り扱いを与えるために、ｍＡｂ発現の不安定性の代用指標である構成的サイトカインシグナル伝達を有さないハイブリドーマのリアルタイム同定において有用である。最後に、ＬＣＸ−ＢＧＳは、融合パートナー細胞株及びそれらに由来するハイブリドーマに対して、より一貫した成長条件、例えば、培養培地中の細胞の密度、細胞が培養中に存在した時間、及び、何時培養培地が更新又は置換されたかに応じて、大きく変化しない、より安定したレベルのサイトカインシグナル伝達を使用することを可能にする。
【０１０３】
更に他の細胞株及び融合パートナー細胞株が、本明細書に説明する教示に従って開発される場合がある。
【０１０４】
更なる別の局面は、本明細書に説明する２種以上のハイブリドーマ細胞株、以下に説明する方法に由来するハイブリドーマ細胞の集団、以下に説明する方法に由来する融合パートナー細胞の集団、又は、融合パートナー細胞に由来するハイブリドーマ細胞の集団を含む、ハイブリドーマｍＡｂ発現ライブラリーを含む。一局面において、融合パートナー細胞は、ｈＴＥＲＴ及びｇｐ１３０  ΔＹＹを発現する。別の局面では、融合パートナー細胞は、ｈＴＥＲＴ、アンカー、及び、ｇｐ１３０  ΔＹＹを発現する。
【０１０５】
ＩＩＩ．方法
上記のこれらの核酸分子、ベクター及び細胞型のいずれか又は全ては、選択された分泌標的タンパク質の分析及び／又は生成又は産生のため、所望の特徴を有する細胞（例えば、標的タンパク質高産生体）の生成及び／又は同定のため、並びに、ハイブリドーマのハイスループットスクリーニング及び評価のためのいずれかの数の方法において使用される場合がある。これらの核酸によってコードされる遺伝子の安定な発現又は一過性の発現を生じる条件下で核酸を細胞に導入するための多様な方法は、一般的に使用されており、当業者に周知である。本明細書に説明する組成物は、以下の方法その他の類似の方法において使用される場合がある。
【０１０６】
一局面において、本明細書に説明するようなアンカーを発現する細胞を生成するための方法は、アンカーを発現する核酸分子又はベクターを、選択された細胞（哺乳動物、非哺乳動物、初代又は不死化）に安定的に又は一過性に送達することを含む。例えば、不死化細胞株におけるアンカータンパク質の異所性発現は、アンカータンパク質をコードする核酸配列を含有する複製欠損レトロウイルス又はレンチウイルスによる細胞の形質導入によって達成される場合がある。方法及びプラスミドベクター、並びに、有用な複製欠損レトロウイルス又はレンチウイルスを作製するために使用される場合がある方法の例は、ｐＭＳＣＶ及びｐＬＩＯＮ  ＩＩベクター並びにプラスミドを含み、説明されている。12、13、14
【０１０７】
特定の実施形態では、これらの方法を使用して作製されたレトロウイルス又はレンチウイルス粒子は、細胞に感染し、レシピエント細胞においてアンカータンパク質を発現し得る核酸配列を細胞に提供する。アンカーをコードするトランスジーンは、レシピエント細胞において安定な又は誘導可能な発現を可能にする核酸配列に作動可能に連結される。アンカーをコードする配列及び必要な調節エレメントを含む核酸を導入する代替的な方法もまた、当業者に周知であり、リン酸カルシウムトランスフェクション、エレクトロポレーション、及び、カチオン性脂質媒介トランスフェクションを含む。
【０１０８】
アンカーの異所性発現は、種々の方法を用いて確認される。一実施形態では、アンカーは、マウスＩｇに特異的な抗血清によって結合されるマウスｓｃＦｖドメインを含み、マウスＩｇは、蛍光分子部分で標識される。アンカータンパク質をコードする核酸配列を含む細胞集団をそのような抗血清と接触させることは、細胞がアンカータンパク質を発現する場合、蛍光抗血清を細胞の表面に結合させる。この手段により、アンカータンパク質を発現する細胞は、顕微鏡検査、フローサイトメトリーその他の方法によりそれらの蛍光シグナル伝達に基づいて同定される。別の実施形態では、更なる抗原がアンカータンパク質に組み込まれ、アンカータンパク質は、アンカー発現を評価するために使用される分子によって結合される。一実施形態では、アンカータンパク質がＭｙｃタグを有する場合、Ｍｙｃタグに特異的な抗体を用いてアンカー発現を評価する。タグに結合する抗体の使用によるタンパク質発現の確認を可能にするために、目的のタンパク質に融合される他のポリペプチドタグ（例えば、ＦＬＡＧタグ、ＮＥタグ、ＨＡタグ、又は、Ｈｉｓタグ若しくはポリＨｉｓタグ）の使用及び検出は、当技術分野で周知である。
【０１０９】
この方法は、組換えタンパク質を発現及び分泌するハイブリドーマ細胞株その他の安定な細胞株を作製するための更なる改変に有用な成分のような種々の細胞の作製を可能にする。これらの方法は、細胞及びそれらが分泌するタンパク質の特徴（定量的、構造的、機能的、抗原的、触媒的、及び、相互作用的特徴を含む）を評価するための広範な有用性を有する。
【０１１０】
構成されるとおり、抗体又は他のタンパク質を分泌する細胞は、自発的であろうと組換え的に発現されようと、アンカータンパク質と組み合わせて、細胞を適切なリンカータンパク質と接触させることによって、分泌タンパク質が細胞の表面に誘導的に付着され得る能力を有する。アンカータンパク質を発現しない細胞に比べて、この型の細胞の一般的な有用性は、分泌タンパク質がそれを発現する細胞に物理的に連結されている間に分析できることである。これは、細胞が異なる分子を分泌する不均一な細胞集団によって発現される分泌タンパク質を分析する場合に特に有用であり、目的は、特定の特徴を有する分子を分泌する細胞集団の個々のメンバーを同定及び／又は単離することである。
【０１１１】
一実施形態では、ｍＡｂのポリクローン集団を分泌し、アンカータンパク質を発現する細胞集団を、分泌されたｍＡｂが細胞に付着する適切な培養条件下で、ｍＡｂに特異的なリンカー分子と接触させる。この細胞集団を、任意的に、蛍光標識抗原と接触させる。抗原に特異的なｍＡｂを分泌する細胞は、それらの膜に付着した蛍光シグナルに基づいて容易に同定される。この手段により、所望の抗原結合特異性を有するｍＡｂを分泌し、さもなければ容易に区別することができなかったハイブリドーマのポリクローン集団の中に存在するハイブリドーマを容易に同定し、単離することができる。
【０１１２】
アンカータンパク質を発現する細胞の別の用途は、全てが同じ分子を異なる速度で分泌する細胞の多様な集団の分析を容易にすることである。この実施形態において、目的は、特定の速度で分子を分泌する細胞集団の個々のメンバーを同定及び／又は単離することである。１つのこのような実施形態において、サイトカイン又はｍＡｂを分泌し、アンカータンパク質を発現する細胞集団は、分泌タンパク質がその産生速度に比例して細胞に付着する適切な培養条件において、サイトカイン又はｍＡｂに特異的なリンカー分子と接触する。これにより、集団の高発現メンバーが同定され、単離される。
【０１１３】
元の細胞が不死化されていない場合、この方法の別の実施形態は、従来の方法によって、現在核酸分子又はベクターを保有する細胞を不死化することを含む。従って、この方法は、分泌された標的タンパク質を固定化する目的のために、アンカーを発現する所望の不死化細胞を作製するために適合される場合がある。このような不死化細胞は、以下の実施例に説明されるとおり、ハイブリドーマの生成のための融合パートナー細胞の場合がある。
【０１１４】
本明細書に説明する方法及び組成物の特定の実施形態では、アンカーは、その細胞による分子の分泌の開始の前又は後のいずれかの時点で細胞に導入される。例えば、アンカータンパク質は、特定のタンパク質を分泌しない不死化細胞、例えば、ＣＨＯ又は２９３Ｔ細胞上で発現され、この細胞は、タンパク質及び他の生物学的分子の工業的産生のために一般的に使用される。これらの細胞上でのアンカータンパク質発現の確立に続いて、これらの細胞によって、標的（例えば、免疫グロブリン又はサイトカイン）の分泌を誘導するこれらの細胞の集団に更なる核酸が提供される。これらの細胞によって分泌される標的の量は、細胞集団を、分泌される標的に特異的なリンカーと接触させることによって評価され、所望の量の標的を特異的に分泌する細胞が同定される。この方法は、工業的有用性の一例において、最大量の商業的に価値のあるタンパク質を分泌する集団の中の細胞を迅速かつ効率的に同定することができる。
【０１１５】
更なる別の実施形態では、ハイブリッド細胞（又はハイブリドーマ）を作製するために別の細胞と融合されることが意図される細胞にアンカーが導入される。このような細胞は融合パートナー細胞と称される。融合パートナー細胞上でのアンカータンパク質発現の確立に続いて、細胞は、所望の標的タンパク質の多様なアイソフォームを分泌する細胞からなる別の細胞集団に融合される場合がある。本方法のこの実施形態は、アンカータンパク質及び所望の標的タンパク質の多様なアイソフォームの両方を発現する細胞のポリクローン集団を作製する。望ましいタンパク質の理想的なアイソフォームを分泌するハイブリドーマは、本発明によって提供される方法を使用して容易に同定及び単離される。
【０１１６】
従って、別の局面では、ハイブリドーマ細胞を作製する方法は、Ｂ細胞の細胞系譜の細胞を、このような融合パートナー細胞（例えば、選択されたリンカーと複合体を形成するために設計されたアンカーをその形質膜外側表面上に発現した不死化細胞）と融合させることを含み、前記リンカーは、Ｂ細胞又はＢ細胞に由来する細胞によって分泌される抗体に結合するために設計され、前記抗体（例えば、モノクローナル抗体）は、前記アンカーによって認識されない。
【０１１７】
細胞株を作製する方法に加えて、得られる細胞を使用することができる様々な異なる方法がある。一例として、細胞によって分泌される標的タンパク質の特徴を検出又は測定するための方法は、アンカーを発現する新規な細胞を使用することができる。１つのそのような方法では、細胞集団が提供され、該集団の各細胞は、リンカーと第１の複合体を形成するために設計されたアンカーをその形質膜外側表面上に発現している。次いで、この細胞集団を、第１の複合体を形成し、アンカーによって認識されない標的タンパク質との第２の複合体を形成するために設計されたリンカーと接触させる。該リンカーへの前記細胞集団の曝露は、リンカーが第１の複合体においてアンカーと結合することによって、細胞の形質膜外側に付着することを可能にする。この得られた細胞集団は、細胞が標的タンパク質を分泌する条件下でリンカーの存在下で維持される。標的タンパク質は、第２の複合体、即ち結合したリンカー−標的タンパク質複合体の形成を介して、細胞付着した第１の複合体に結合する。従って、標的タンパク質は、それを分泌した細胞に結合される。特定の実施形態では、次いで、結合した標的タンパク質を、第１及び第２の免疫複合体によって細胞に結合した標的タンパク質の存在、抗原特異性、抗原結合親和性、力価、量、又は、生物学的活性を同定することを目的とする種々のアッセイに供する。
【０１１８】
この方法では、成分及び細胞の生成について上述した要件が適用される。即ち、リンカーは、アンカーの種と異なる種のものであり、標的タンパク質は、リンカー及びアンカーに対して異なる種のものである。特定の実施形態では、異なる種のアンカー、リンカー、及び、標的タンパク質の使用は、本明細書に説明する方法及び組成物に必須である。一実施形態では、組成物及び方法は、マウス起源であり、ウサギ起源のＩｇリンカーに特異的に結合することができるアンカー分子を用いて実施するために具体化される。この場合、ウサギＩｇリンカーは、例えば、分泌された標的タンパク質に特異的なウサギｍＡｂ又はＦａｂである。従って、本発明の特定の実施形態は、より具体的には、次のとおり表現することができる。（１）アンカータンパク質は以下：分泌タンパク質に対する親和性が最小であること、及び、Ｉｇリンカータンパク質に結合することという特徴を有する。（２）Ｉｇリンカータンパク質は以下：アンカータンパク質及び分泌された標的タンパク質に結合することという特徴を有する。
【０１１９】
リンカー又はＩｇリンカーは、リンカーの重要な特性が２個の分子部分のいずれも関連しない条件下で２個の別個の分子部分に対する親和性を有すること、及び、２個の分子部分の存在下でＩｇリンカーが２個の分子部分を１個の分子複合体に組み込む免疫複合体を作製することを考慮すると、多くの構成において満たすことができる役割を有する。特定の実施形態では、アンカータンパク質は、カノニカル結合（即ち、アンカータンパク質ｓｃＦｖドメインの抗原結合部位がＩｇリンカー上の特異的抗原を認識する）、又は、非カノニカル結合を介して、Ｉｇリンカータンパク質のＦｃ又はＦａｂドメインに結合する。特定の実施形態では、分泌されたｍＡｂ上で認識される抗原が細胞の表面上のｓｃＦｖによって発現される抗原と同じである。この場合、分泌標的タンパク質上の１個の結合部位と、アンカータンパク質上の別の結合部位とに特異的なＩｇリンカーは、分泌タンパク質を分泌細胞上のアンカーに連結する。例えば、本実施形態のアンカー分子を発現し、マウスＩｇを分泌するハイブリドーマは、ウサギポリクローナル抗マウスＩｇ抗血清からなるＩｇリンカーと接触すると、分泌されたマウスＩｇを細胞表面に付着させる。この実施形態では、アンカーの本質的な特徴は、異なる種のＩｇに結合することではない。むしろ、それは、分泌された分子に結合しないが、Ｉｇリンカーによって結合される可能性がある分子である。この説明から、アンカーは、細胞によって分泌される分子と非常に類似しているか、又は、異なる場合があることが明らかである。
【０１２０】
アンカー分子が他の分子に結合する（例えば、免疫グロブリンに由来する抗原結合ドメインを有する）分子であるか、又は、単に機能性リンカーによって特異的に結合される場合があるタンパク質であるかにかかわらず、本発明において同等に機能できることが更に明らかである。本発明において、アンカーは、ＭＹＣタグを含み、それ自体は、ＭＹＣタグを認識するＩｇリンカーによって認識される場合がある。アンカーを発現する細胞がＭＹＣタグも有する組換えタンパク質を分泌する場合、適切なＩｇリンカーは、市販されているポリクローナル抗ＭＹＣタグ抗血清である。本明細書に説明するタグ、例えば、ＦＬＡＧタグ、ＮＥタグ、ＨＡタグ、又は、Ｈｉｓタグ、若しくは、ポリＨｉｓタグのいずれも、この目的のために有用である。別の実施形態では、いずれかの分子がタグとして使用される場合があることは明らかである。
【０１２１】
本明細書に説明する方法の更なる別の局面は、最適に大量の商業的に価値のあるタンパク質を発現する組換え細胞株の迅速かつ効率的な作製のための方法である。細胞ベースの系における組換えタンパク質の産生において、産生されたタンパク質の単離を容易にするために、ポリペプチドタグを分子の配列に組み込むことが一般的である。本発明の一実施形態では、アンカータンパク質（２９３Ｔ−アンカー）を発現する２９３Ｔ細胞株が作製される。２９３Ｔアンカー細胞は、ＭＹＣタグを含む分泌タンパク質をコードする核酸でのリン酸カルシウムトランスフェクションによって提供され、それによって、多様なレベルのＭＹＣタグ化タンパク質を分泌する細胞の集団を作製する。この細胞集団をポリクローナル抗ＭＹＣ  Ｉｇリンカーと接触させることは、分泌タンパク質上のＭＹＣタグをアンカータンパク質上のＭＹＣタグに結合させる分子複合体を作製することによって、分泌タンパク質を細胞に付着させる。
【０１２２】
この方法によって発現細胞の表面に付着する分泌タンパク質の量を測定することにより、各細胞によって個々に分泌されるタンパク質の量を直接測定することが可能になる。特定の実施形態では、この方法は、最大量の商業的に価値のあるタンパク質を分泌する集団の中で、細胞を迅速かつ効率的に同定するために有用である。
【０１２３】
アンカータンパク質を発現する細胞集団によって分泌されるタンパク質が評価される本発明の方法において、例えば、数万又は数千以上の個々のクローンを含む単一の容器内でポリクローナル細胞集団を維持することができることが有利である。リンカーの存在下で維持された分泌細胞が、該細胞自体が分泌した分子に優先的に結合し、前記細胞が分泌しなかった分子に比較的少なく結合することを確実にするために、この方法は、以下の工程を含むために改変できる。接触工程は、細胞を過剰濃度のリンカーと接触させることを含むことができる。過剰は、細胞表面上の第１の複合体と細胞によって分泌される標的タンパク質との間の結合の特異性を、それを分泌しない集団中の他の細胞への標的タンパク質の結合に比べて増加させる。これらの条件下で、アンカー分子は、ほとんど又は完全にリンカータンパク質に結合する。分泌された分子がそれを分泌する細胞に付着したリンカーによって捕捉されない場合、それは、（１）細胞が新たな非結合アンカー分子を産生した場合、又は、（２）細胞に既に結合したリンカー分子を置換した場合にのみ、非分泌細胞に結合する可溶性リンカータンパク質に結合する。これは、標的タンパク質の存在、抗原特異性、抗原結合親和性、力価、量、又は、生物学的活性を同定することに向けられたアッセイによって得られる結果の精度を改善する。更に、これらの方法工程は、単離されたクローン又は少数クローン集団として細胞を分析する必要性を軽減することによって、大きな細胞集団内の個々のメンバーの分析を単純化するので、有利である。この方法は、集団内の細胞の大部分又は全てが標的タンパク質を分泌している場合に特に適する。
【０１２４】
基本的な方法の更なる別の改変は、集団内の細胞のいくつかが標的タンパク質を分泌しておらず、従って、他の細胞によって分泌される標的タンパク質に結合するために利用可能な結合部位を有する場合に有用である。本方法のこの実施形態は、分泌標的タンパク質と同じ種又は型の競合タンパク質と組み合わせて、細胞をＩｇ−リンカーと接触させることを含む。この実施形態では、それらを産生した細胞に付着しない分泌分子は、細胞培養培地に入り、リンカータンパク質と複合体を形成する。それらはリンカー分子のプールに結合し、リンカー分子のいくつかは、分泌された分子に類似するタンパク質に結合するが、実施されるアッセイによって、分泌された分子から容易に区別可能である。本方法のこの変形において、競合タンパク質は、異なる構造、活性、又は、抗原結合特異性を有する。
【０１２５】
一実施形態では、標的タンパク質は、特定のヒト抗原に特異的なヒトモノクローナル抗体であり、競合タンパク質は、異なる抗原に結合するヒト抗体であり、細胞に結合した抗体は、特定のヒト抗原に結合する能力についてアッセイされる。別の実施形態では、標的タンパク質はＩｇ分子であり、リンカーはＩｇ分子のＦｃドメインに結合し、競合体はＩｇ  Ｆｃドメインであり、アッセイは、標的タンパク質に含まれるＩｇ  ＦＡｂドメインの存在を検出する。この実施形態は、個々の細胞によって分泌される標的タンパク質の量が、細胞の一部が標的タンパク質を発現し、細胞の一部が発現しないポリクローン集団内で評価される一般的なプロセスを例示する。この特定の実施形態は、ハイブリドーマ又は組換え細胞の集団によって分泌されるＩｇの量を測定するために特に適切であるが、適切なＩｇリンカータンパク質及び標的様競合分子の選択を介して、いずれかの分泌標的タンパク質の検出に容易に適合できる。リンカーがＩｇ  ＦＡｂドメインに結合し、競合体がＩｇ  ＦＡｂドメインであり、アッセイが、標的タンパク質のＦｃドメインの存在を検出する、逆の実施形態もこの目的に適する。これらの実施形態では、競合タンパク質の存在は、標的タンパク質の、それを分泌しなかった細胞への結合に比べて、細胞表面上の第１の複合体と、細胞によって分泌される標的タンパク質との間の結合の特異性を増加させる。競合タンパク質は、さもなければ標的タンパク質分子に結合するために利用可能である非分泌細胞上の標的タンパク質結合部位（即ち、リンカー分子）を占有することによって、そうする。この「競合」は、非分泌細胞上のアンカー分子に結合したリンカー分子上の結合部位によって結合した標的タンパク質の量を制限する。
【０１２６】
本明細書に説明する方法の別の改変は、リンカー及び標的タンパク質に予め又は同時に曝露された細胞を、標的タンパク質が第３の複合体結合反応において特異的に結合する検出可能に標識された抗原と接触させることを含む。従って、標的タンパク質に結合したリンカーに結合したアンカーを含む多成分複合体をその外膜表面上に有する細胞は、抗原と接触し、標的タンパク質とのその免疫複合体を介して抗原を細胞に結合する。この結合した多成分複合体中の細胞上の標識抗原の存在は、細胞結合した多成分複合体に関連する検出可能な標識を同定又は定量することによって、抗原に結合する標的タンパク質を分泌する細胞の迅速な同定を可能にする。
【０１２７】
本方法のこの改変において使用するための抗原は、標的タンパク質（例えば、抗体又は抗体断片）が天然に結合する抗原から選択される。一実施形態において、標的タンパク質がモノクローナル抗体である場合、標識のために選択される抗原は、単一の抗原である。標的タンパク質が、複数の抗原又は複数の相同分子によって共有される希少なエピトープに結合することができる抗体である場合、その標的タンパク質が結合するいくつかの抗原を、この使用のために標識することができる。
【０１２８】
本明細書に説明する細胞を使用する更なる別の方法は、予め選択された特徴を有するモノクローナル抗体を分泌するハイブリドーマ細胞を同定する方法であり、前記細胞は、前記特徴を有するモノクローナル抗体を分泌しない細胞の集団の中に存在する。この方法において、ハイブリドーマ細胞の集団は、本明細書に説明するとおり、選択されたリンカーとの第１の複合体を形成するために設計されたアンカーをその形質膜外側表面上に発現した不死化細胞とＢ細胞の細胞系譜の細胞を融合させることによって調製される。この細胞集団を、２つの結合事象、即ち、リンカーがアンカーと第１の複合体を形成すること、及び、集団中の単一ハイブリドーマ細胞によって分泌される単一モノクローナル抗体と第２の複合体を形成することに関与するために設計されたリンカーと接触させて、多成分複合体を形成する。モノクローナル抗体は、リンカーのものとは異なる種の場合がある。モノクローナル抗体は、アンカーによって認識されない。リンカーと細胞集団との接触は、リンカーがアンカーとの第１の複合体における結合によって、ハイブリドーマ細胞の形質膜外側に付着することを可能にする。これらの細胞は、ハイブリドーマ細胞がそのモノクローナル抗体を分泌する条件下でリンカーの存在下で維持される。ｍＡｂが分泌される場合、アンカーに結合したリンカーは、ハイブリドーマ細胞によって分泌されるモノクローナル抗体と第２の複合体を形成する。このようにして、モノクローナル抗体は、付着した免疫複合体を介してそれを分泌するハイブリドーマ細胞に結合する。その分泌されたｍＡｂが付着したハイブリドーマ細胞の集団の存在は、そのモノクローナル抗体の存在、抗原特異性、抗原結合親和性、力価、量、又は、生物学的活性の同定を可能にする。この方法はまた、所望の特徴（例えば、集団中の他の細胞よりも高度に細胞を発現及び分泌すること）を有する特定のｍＡｂを産生するハイブリドーマ細胞の同定を可能にする。従って、この方法の任意的な工程は、細胞がリンカーと接触した後のいずれかの時点でハイブリドーマ細胞を単離することを含む。
【０１２９】
この方法のなお更なる実施形態では、細胞の集団は、過剰濃度のＩｇリンカーと接触する。過剰なＩｇリンカーは、細胞表面上の第１の免疫複合体とそのハイブリドーマ細胞によって分泌されるモノクローナル抗体との間の結合の特異性を、それを分泌しない他の細胞へのモノクローナル抗体の結合に比べて増加させる。種々の実施形態において、Ｉｇリンカーは、異なるレベルの結合価を有する。例えばＩｇリンカーは、単量体ｓｃＦｖ、ラクダ抗体、又は、単一ドメインＦａｂである。この場合、全てのＩｇリンカーは、１個の標的タンパク質のみに結合する。別の実施形態では、Ｉｇリンカーが従来のＩｇＧ（２個の抗原結合部位を有する）、又は、標的タンパク質に特異的なポリクローナル抗血清である場合、過剰のＩｇリンカーの存在下で、標的分子に結合する複数のＩｇリンカー分子の連結を含む多量体複合体が細胞の表面上に形成され、それ自体、培養培地からより多くのＩｇリンカー分子を補充することができ、次いで、これらの分子は、より多くの標的分子に結合することができる。このような複合体がアビディティー効果によって安定化されることは、明らかである。
【０１３０】
更に、連結されたＩｇ分子のアセンブリは、免疫複合体中の複数の免疫グロブリン分子の存在から生じる生物学的効果について評価できる複合体を作製する。例えば、Ｔ細胞上の刺激分子に結合するｍＡｂは、しばしば、それらの最適な刺激活性について架橋又は表面固定化に依存することがよく知られている。15、16更に、ＩｇＧ免疫複合体は、古典的な補体系を活性化し、これは、強力な抗菌、抗ウイルス、炎症誘発、及び、抗腫瘍効果を奏することができる。17、18
【０１３１】
本明細書に説明する試薬及び方法によってハイブリドーマ細胞の表面上に構築された免疫複合体は、別の実施形態では、それらの免疫複合体に限定された効果を発揮する能力について評価される。これは、従来技術のハイブリドーマによって発現されるｍＡｂの免疫複合体依存性活性を評価するための既存の方法に比べて有利である。
【０１３２】
この方法の別の改変において、細胞は、分泌されたモノクローナル抗体と同じ種又は型の競合抗体と接触する。競合抗体は、異なる又は非特異的な抗原結合特異性を有する。競合抗体の存在は、過剰な非結合リンカーを結合することによって、細胞表面上の第１の複合体と細胞によって分泌されるモノクローナル抗体との間の結合の特異性を、それを分泌しない細胞へのそのモノクローナル抗体の結合に比べて増加させる。
【０１３３】
更なる別の改変は、より一般的な方法について上述したものに類似している。ハイブリドーマ細胞の集団を、モノクローナル抗体が別の免疫複合体結合において特異的に結合する検出可能に標識された抗原と更に接触させる。分泌されたｍＡｂが特異的に結合する標識された抗原を提供することによって、標識された多重免疫複合体が、所望のｍＡｂを分泌するハイブリドーマの外表面膜上に形成される。多重免疫複合体は、第１の免疫複合体アンカー−リンカーによって形成され、リンカーはまた分泌されたモノクローナル抗体に結合し、モノクローナル抗体はまた標識された抗原に結合する。これらの標識された細胞が提供された後、選択された抗原に特異的なモノクローナル抗体を分泌するハイブリドーマ細胞は、細胞結合多成分複合体に会合する検出可能な標識を検出及び／又は定量することによって迅速に同定される。
【０１３４】
この方法の特定の実施形態では、以下の実施例に例示されるとおり、モノクローナル抗体はヒト抗体であり、アンカーは１つの種（例えば、マウス）のｓｃＦｖを含み、Ｉｇリンカーは、ヒトでもマウスでもない抗ヒトＩｇ抗体（例えば、抗ヒトウサギ抗体）かヒト抗体の抗体結合断片かである。
【０１３５】
これらの方法の種々の改変は、核酸分子、ベクター、細胞の構成要素と、方法構成要素との選択に基づいてなされ得、このような改変は、本明細書の教示を考慮して、当該分野の技術の範囲内であると考えられる。そのような変形は、これらの方法の他の任意的な改変を提供する。
【０１３６】
ハイブリドーマ及びその分泌抗体を生成及びその特徴を同定する方法の１つの改変において、リンカーは、標的タンパク質（即ち、モノクローナル抗体）のＦｃ分子部分に特異的に結合する。従って、本方法の任意的な別の工程は、リンカー及び分泌された標的タンパク質に曝露されたハイブリドーマ細胞を、標的モノクローナル抗体と同じ種のＩｇＧ  Ｆｃドメイン競合体と接触させる工程を含む。また、接触反応には、標的モノクローナル抗体と同じ哺乳動物種のＩｇ  Ｆａｂドメインに特異的な検出可能に標識された抗体が添加される。接触混合物の種々の要素は、免疫複合体、即ち、リンカーを有するアンカー、標的ｍＡｂと結合した又は遊離のリンカー、ＩｇＧ  Ｆｃドメイン競合体と結合した又は遊離の標的ｍＡｂ、及び、検出可能に標識された抗体と結合した又は遊離の標的ｍＡｂ、を形成する。ハイブリドーマ細胞によって分泌される標的モノクローナル抗体のいくつかは、アンカー−リンカーとの免疫複合体において細胞に結合され、一方、標的ｍＡｂのいくつかは、過剰の非結合リンカーによって培地中で結合される。Ｉｇ  Ｆｃドメインは、標的ｍＡｂを分泌しないハイブリドーマ細胞へのインタクトな標的ｍＡｂの結合を減少させるために競合し、抗Ｉｇ  ＦＡｂ抗体は、細胞表面に結合した分泌された標的ｍＡｂに結合する。結合していない複合体を、結合した多重免疫複合体を有する細胞から分離し、標識された抗体を使用して、ハイブリドーマ細胞及びそれらの結合した標的ｍＡｂを同定し、その分析及び定量を可能にする。
【０１３７】
同様に、本方法は、以下のとおり改変される。標的モノクローナル抗体のＦＡｂ分子部分に特異的に結合するリンカーを選択する。リンカーと分泌された標的ｍＡｂとに暴露されたハイブリドーマ細胞は、標的ｍＡｂと同じ種のＩｇ  ＦＡｂドメイン競合体、及び、標的ｍＡｂと同じ哺乳動物種のＦｃドメインに特異的な検出可能に標識された抗体にも暴露される。ハイブリドーマ細胞によって分泌される標的モノクローナル抗体は、アンカー−リンカーとの免疫複合体において細胞に結合され、過剰のリンカーによって培地中で結合される。Ｉｇ  ＦＡｂドメインは、モノクローナル抗体を分泌しないハイブリドーマ細胞へのインタクトな標的ｍＡｂの結合を減少させるために競合する。標識抗Ｉｇ  ＦＡｂ抗体は、細胞表面に結合した分泌標的ｍＡｂに結合する。結合していない複合体を、結合した多重免疫複合体を有する細胞から分離し、標識された抗体を使用して、ハイブリドーマ細胞及びそれらの結合した標的ｍＡｂを同定し、その分析及び定量を可能にする。
【０１３８】
これらの説明した成分を使用する更なる別の方法は、選択された組換え標的タンパク質を産生するための方法である。このような方法では、上記の細胞は、誘導性又は抑制性プロモーター及び関連する調節配列の制御下で、適切なアンカーを発現するために作製される。しかしながら、前記細胞はハイブリドーマではなく、いずれかの所望の標的タンパク質（例えば、所望の治療タンパク質）を発現及び分泌するために遺伝子工学的方法によって改変された細胞である。標的タンパク質を発現及び分泌するための調節配列を有する適切な発現カセットの選択は周知であり、適切な配列及び選択された組換えトランスジーンを有する適切な遺伝子カセットは、エレクトロポレーション、ウイルスベクターによる感染、又は、プラスミドによるトランスフェクションによって、アンカーを発現するために作製された細胞に挿入できる。標的タンパク質を発現するための細胞の操作及びアンカーを発現するための細胞の説明した操作は、いずれかの順序で行われる場合がある。この細胞を培養して、標的タンパク質の発現及び哺乳動物細胞からのその分泌を可能にする。細胞はまた、アンカーの発現を誘導するか又はターンオンする化合物と同時に又は順番に接触する。次いで、この方法は、細胞を設計されたＩｇ−リンカーと接触させる工程を含み、Ｉｇ−リンカーは、細胞上のアンカー及び発現された組換え標的タンパク質に結合し、標的タンパク質がアンカー−Ｉｇリンカー免疫複合体を介して細胞の表面に付着することを可能にする。次いで、誘導化合物を除去する。この方法では、大量の標的タンパク質を発現する細胞を、免疫複合体の定量的検出に基づいて同定し、単離し、分析することができる。誘導化合物の使用は、アンカーが一過性に又は制御可能に発現されることを可能にする。
【０１３９】
この方法の更なる改変において、細胞を過剰濃度のリンカーと接触させる。過剰のリンカーは、細胞表面上のアンカー−リンカー複合体と、細胞によって分泌される標的タンパク質との間の結合の特異性を、それを分泌しない他の細胞への標的タンパク質の結合に比べて増加させる。上記の他の方法と同様の様式で、細胞はまた、分泌された標的タンパク質と同じ種又は型の競合タンパク質と接触される場合がある。競合タンパク質は、標的タンパク質と同じ種又は型のものである。競合タンパク質の存在は、過剰な非結合リンカーを結合することによって、細胞表面上の第１の免疫複合体と、細胞によって分泌される標的タンパク質との間の結合の特異性を増加させる。
【０１４０】
別の局面では、本明細書に説明するハイブリドーマｍＡｂ発現ライブラリーを維持するための方法は、以下の工程を含む。
【０１４１】
（ａ）
（ｉ）Ｂ細胞の細胞系譜の細胞を、選択されたリンカーとの第１の複合体を形成するために設計されたアンカーをその形質膜外側表面上に発現した不死化細胞と融合させることによって調製された、ハイブリドーマ細胞の集団を、
（ｉｉ）アンカーとの第１の複合体、及び、単一のハイブリドーマ細胞によって分泌される単一のモノクローナル抗体との第２の複合体を形成するために設計されたリンカーであって、モノクローナル抗体がアンカーによって認識されない、リンカーと接触させる工程であって、
前記接触は、第１の複合体においてアンカーと結合することによって、リンカーがハイブリドーマ細胞の形質膜外側に付着することを可能にする、工程、
（ｂ）（ａ）の細胞を、リンカーがハイブリドーマ細胞によって分泌されるモノクローナル抗体と第２の複合体を形成し、モノクローナル抗体が、付着した第１及び第２の複合体を介してそれを分泌するハイブリドーマ細胞に結合する条件下でリンカーの存在下で維持する工程、
（ｃ）ハイブリドーマ細胞によって分泌され、アンカー−リンカー−モノクローナル抗体によって形成された細胞結合多重免疫複合体によって結合されたモノクローナル抗体の存在、抗原特異性、抗原結合親和性、力価、量、又は、生物学的活性を同定する工程と、
（ｄ）所望の抗原特異性、抗原結合親和性、力価、量、又は、生物学的活性を有するモノクローナル抗体を分泌するハイブリドーマ細胞の集団を単離する工程、及び、
（ｅ）（ｄ）に由来する集団を培養する工程。
【０１４２】
別の局面では、本明細書に説明するハイブリドーマｍＡｂ発現ライブラリーを維持するための方法であって、細胞の特徴及び単離及び単離は、ハイブリドーマ細胞によって発現されるモノクローナル抗体の発現の量（ａｍｏｕｎｔ）、量（ｑｕａｎｔｉｔｙ）、又は、速度である。
【０１４３】
上述した融合パートナー細胞の集団又はそれに由来するハイブリドーマの少数クローン集団における異所性サイトカインシグナル伝達活性を監視び最適化するための別の方法は、以下の工程を含む。
（ａ）細胞をｇｐ１３０  ΔＹＹ受容体分子に特異的な検出可能なモノクローナル抗体と接触させる工程、
（ｂ）検出可能なモノクローナル抗体に結合した細胞を単離する工程、及び、
（ｃ）（ｂ）に由来する細胞を培養する工程。
【０１４４】
一局面において、ヒト抗ウイルスｍＡｂ発見のためのオンセルｍＡｂスクリーニング（ＯＣＭＳ（商標））法は、上記のようなＢＧＳ足場を産生するための細胞を作製する工程を含み、それは、それらの分泌されたｍＡｂを、ｍＡｂを産生する細胞の表面に特異的に付着する場合がある。細胞（例えば、既知又は未知の起源のウイルス感染から回復した患者のＢ細胞から生成されたハイブリドーマ細胞）が抗ウイルス抗原特異的ｍＡｂを産生する場合、これらは、この方法によって容易に同定及びスクリーニングできる。
【０１４５】
従って、別の実施形態として、抗ウイルスｍＡｂ発見のための普遍的なアッセイが提供される。現在、ウイルス表面抗原に結合するｍＡｂを同定するために、ｍＡｂのパネルがウイルス抗原への結合について試験される試験が実施される必要がある。この目的のために、ウイルス抗原は、ｍＡｂ結合アッセイ（例えば、ＥＬＩＳＡ、フローサイトメトリー、又は、Ｈｉｇｈ  Ｃｏｎｔｅｎｔ  Ｉｍａｇｉｎｇ）に組み込まれなければならない。現在の技術水準によれば、これらのアッセイ形式の各々は、試験されるべき抗原（又は複数の抗原）に特異的であり、組換えウイルス抗原分子又は精製ビリオン、蛍光標識、ビオチン、エピトープタグ、及び／又は、ウイルス抗原に特異的な捕捉若しくは二次抗体を含む場合がある。従って、ｍＡｂクローニングのためのウイルス抗原試験を調製するプロセスは、複雑であり、抗ウイルスｍＡｂを得る際の成功に対する重要な障壁となる場合がある。本発明によって提供される普遍的抗ウイルスｍＡｂ結合試験は、各ウイルス抗原に対する特異的結合アッセイを作製する必要なしに、ｍＡｂを得ることを可能にする。
【０１４６】
本発明の細胞は、異なるウイルス抗原についての共通の試薬、即ち、抗ウイルスｍＡｂ発見のための普遍的アッセイを使用して、ｍＡｂについてのスクリーニングを可能にする。アンカー／リンカーが分泌されたｍＡｂ（又は分泌されたタンパク質）を細胞表面に結合するＢＧＳ／ＯＣＭＳ細胞株又はハイブリドーマの集団が生成される。多価ウイルス抗原（精製ウイルス抗原、ビリオン又はウイルス様粒子（ＶＬＰ）など）を、これらの複合体を提示する細胞に添加する場合、ウイルス抗原は、その後、ハイブリドーマの表面上のｍＡｂに結合する。その細胞によって分泌される更なるｍＡｂは、ウイルス粒子を被覆するであろう。ハイブリドーマ細胞表面上のこれらの付加的なｍＡｂの位置と配置は、リンカー分子を介して細胞に密接に結合しているｍＡｂの場合とは異なる。結果として、ハイブリドーマ細胞の表面に結合したウイルス抗原の存在は、ハイブリドーマ形質膜に対するヒトｍＡｂの配置を観察することによって推測できる。ウイルス抗原の存在下又は非存在下でのハイブリドーマ表面上のｍＡｂ局在の相違は、ＦＡｂのような一価リンカータンパク質を使用することによって増幅される場合がある。以下の実施例１６に説明するとおり、ＯＣＭＳ法を使用して、Ｈｉｇｈ−Ｃｏｎｔｅｎｔ  Ｉｍａｇｉｎｇ（本質的に、強力な画像解析ソフトウェアを伴う共焦点顕微鏡検査）を使用するハイスループットスクリーニングを使用する普遍的なアッセイを作製した。図２０を参照されたい。
【０１４７】
ＢＧＳを介して細胞表面に結合したｍＡｂが抗ウイルスｍＡｂである場合、ｍＡｂは、ウイルス又はウイルス抗原を捕捉し、検出可能なＣＡＰ様免疫複合体を形成する。分泌されたｍＡｂが抗ウイルス性でない場合、それは、ウイルス抗原に結合せず、複合体は形成されないであろう。別の実施形態では、ウイルス抗原が多価である場合、それは、結合したｍＡｂと結合することによって、あるいは、細胞によって産生される他のＩｇ又は細胞に結合しない添加されたヒトＩｇＧ試薬と結合又は架橋することによって、大きな複合体を更に形成し、細胞に付着された更に大きなＣＡＰ様免疫複合体を形成するであろう。あるいは、ウイルス全体が使用される場合、ウイルスは抗体よりも大きい（例えば、約３０ｎｍ以上のオーダー）ため、更に大きな複合体が細胞に付着して産生されるであろう。従って、抗ウイルスｍＡｂを発現するハイブリドーマがウイルスと接触すると、ハイブリドーマの表面にｔｅｌｌ−ｔａｌｅ免疫複合体が形成される。このＯＣＭＳ法は、細胞上に形成された免疫複合体の形状及びサイズを画像化することによって、抗ウイルス抗体を分泌する細胞の同定を可能にする。従って、細胞表面上に形成されたＣＡＰ様又は層状免疫複合体の検出は、関連する有用な抗ウイルスｍＡｂが同定され、遺伝子クローニング及び発現なしに得られることを可能にする。別の実施形態では、ＯＣＭＳ法は、ウイルス結合に加えて、ウイルス中和のためのｍＡｂのスクリーニングに使用するために細胞を操作することによって改変することができる。
【０１４８】
ＯＣＭＳ法の別の実施形態では、ｍＡｂの構成及び機能が指向性進化（ｍＡｂの多様な集団を作製し、所望の特徴を有する集団を選択する）によって最適化される38。ウイルス性疾患を生き残った患者から単離されたヒトｍＡｂは、治療薬として有用である可能性が高いが、ｍＡｂの安定性、発現レベル、結合速度論、又は、結合特異性に関して理想的ではない可能性がある。細胞における活性化誘導シチジンデアミナーゼ（ＡＩＤ）の発現は、体細胞超変異を介して抗体多様化の自然メカニズムを活性化する39。ヒトｍＡｂのための指向性進化システムを使用して、ＡＩＤは、ハイブリドーマにおいて一過性に活性化され、得られた集団は、改善された結合活性を有する改変体についてスクリーニングされる。これらの実験は、従来のハイブリドーマ法では実用的ではないが、ＯＣＭＳのハイスループット能力によってのみ実施可能である。
【０１４９】
未知のウイルスであっても、ウイルス流行の迅速な評価及び診断並びに治療にこれらの方法は大きな価値を有することが予想される。ＯＣＭＳ法においてインタクトなビリオンを使用することができることにより、本方法を実施し、最初にウイルスの同一性を知らずに、ｔｅｌｌ−ｔａｌｅ免疫複合体の検出のために監視し、抗ウイルス抗体を発現する細胞を選択するであろう。治療用組成物を作製するための更なる分析なしに、抗体のクローニングに直接進むであろう。
【０１５０】
更なる別の実施形態では、ハイブリドーマ細胞以外の細胞を用いて同様の戦略を実行することができる。ＢＧＳ発現細胞を作製し、そのような細胞を組換えヒト重鎖配列及び軽鎖配列で一過性にトランスフェクトすることによって、抗原を発現する細胞を迅速に同定できる。簡潔には、ヒトＩｇＧも発現したＢＧＳ発現細胞がウサギ抗ヒトＩｇＧ及びヒトＩｇＧに特異的な蛍光標識二次抗体と接触する。この接触後、発現したヒトＩｇＧはＲＡＨによって細胞表面に捕捉され、蛍光二次抗体で標識される。このようなアッセイは、細胞表面へのその結合を同定することによって、組換え法で発現された抗体又は抗体（抗原結合）断片を発現する細胞の同定をわずか数時間で可能にし、このような抗体又は断片が、ＩｇＧをほとんど又は全く発現しない細胞から分離されることを可能にする。実施例１４を参照されたい。
【０１５１】
これらの方法及び組成物の他の改変は、当技術分野の知識と組み合わせて、本明細書に提供される教示を使用することによって設計できることが予想される。このような改変は、本発明に包含される。
【０１５２】
ＩＶ．実施形態
本明細書に提供される教示を使用して構築物において生成できる変形の数を考慮すると、これらの組成物を使用する多くの他の方法は、迅速かつ複雑な標的同定又は他の使用のために使用できる。例えば、組成物及び方法は、例えば、品質管理のために、細胞によって分泌されるいずれかの分子（例えば、タンパク質）を追跡するための方法において使用される場合がある。別の実施形態では、そのハイブリドーマ細胞に結合したモノクローナル抗体は、その抗原への結合について評価される場合があるか、又は、Ｔ細胞活性化のような免疫複合体に組み込まれた場合にのみ発現する場合がある活性について評価できる。
【０１５３】
これらの組成物及び方法は、選択された所望の特徴を有するｍＡｂの同定及び単離のための、ｍＡｂを分泌する多様なハイブリドーマのバルク培養及びスクリーニングのために使用される場合がある。この実施形態において、本明細書に説明する組成物及び方法は、ハイブリドーマ細胞によって分泌される抗体のハイスループットスクリーニングを容易にするための系を作製する。
【０１５４】
別の実施形態では、細胞−アンカー−リンカー（例えば、Ｉｇリンカー）−標的（例えば、ｍＡｂ）複合体は、標的によって認識及び結合される場合がある多様な分子（例えば、ポリペプチド）を産生する細胞（例えば、哺乳動物細胞、昆虫細胞、又は、酵母細胞）の集団の迅速なスクリーニングを可能にする。更により簡単には、これらの方法は、免疫複合体媒介機能について評価できる免疫複合体を作製する簡単な手段を提供する。
【０１５５】
以下の実施例に説明されるとおり、例示的な融合パートナー細胞株ＬＣＸ  ＢＧＳは、本明細書の教示によって生成される。ＬＣＸ  ＢＧＳをＢリンパ球と融合させて、ヒトｍＡｂを分泌し、アンカーを発現するハイブリドーマを生成する。本明細書に説明する方法によって生成される２種の例示的なハイブリドーマ細胞株は、ハイブリドーマ８Ｃ５  ＢＧＳ及びハイブリドーマ９Ｈ２  ＢＧＳと称される。
【０１５６】
Ｖ．実施例
以下の実施例は、リンカー分子と接触した場合に、細胞によって分泌される標的分子をそれらの形質膜外側上に捕捉する哺乳動物細胞の生成の証拠を提供する。また、これらの教示による特定の融合パートナー細胞及びハイブリドーマも開示される。以下の実施例は、本明細書に説明する方法及び組成物の特定の実施形態を開示する。これらの実施例は、本明細書に提供される教示の結果として明らかになるいずれかの及び全ての変形を包含すると解釈されるべきである。
【実施例１】
【０１５７】
アンカーをコードする核酸分子の生成
アンカーをコードする核酸分子は、下記の表中の以下の要素を用いて構築される。簡潔には、マウス抗ウサギ抗体重鎖（ＶH）の可変ドメインをコードする核酸配列を、（Ｇｌｙ4Ｓｅｒ）3をコードするスペーサーを介して抗体軽鎖（ＶL）の可変ドメインに連結し、単鎖可変断片（ｓｃＦｖ）をコードする配列を生じた。更に、ｓｃＦｖをコードする２個の核酸配列を、上記のスペーサーによって一緒に連結し、タンデムｓｃＦｖコード配列を生じた。核酸分子中の更なる配列は、細胞表面上でのｓｃＦｖの発現を確実にするためのκ軽鎖免疫グロブリンタンパク質由来のＮ末端リーダー配列（ＡＫＡ、シグナルペプチド）をコードする配列を含んでいた。配列は、ＮＣＢＩ参照配列：ＸＰ＿００３７５３１２９．１（Ｉｇκ鎖Ｖ−ＩＩＩ領域ＭＯＰＣ  ６３アイソフォームＸ２；種ドブネズミ（Ｒａｔｔｕｓ  ｎｏｒｖｅｇｉｃｕｓ））の下でＮＣＢＩデータベースに提供される。核酸分子又は構築物中の更なる配列は、エピトープタグ又はプロテアーゼタグ配列（即ち、ｃ−Ｍｙｃ）、及び、血小板由来成長因子受容体（ＰＤＧＦ受容体、ＰＤＧＦＲ）膜貫通（ＴＭ）ドメインをコードする配列である。５８．９２％のシトシン及びグアニンを含むヌクレオチド１７８１個を有する核酸分子／構築物を、マウス細胞発現について更に最適化した。アンカーの実施形態をコードする核酸分子／構築物の配列は、配列番号１として提供される。対応するタンパク質配列は、配列番号２である。核酸分子を、説明したプロトコルに従って、レトロウイルス導入プラスミドｐＭＳＣＶ及びレンチウイルス導入プラスミドｐＬＩＯＮ  ＩＩに連結した。13、14、15
【０１５８】
【表１】
2020515288.tif 000002
【実施例２】
【０１５９】
ＬＣＸ融合パートナー細胞株の確立
ＩＬ−６の異所性発現によるシグナル伝達は、ｈＴＥＲＴも発現するハイブリドーマによるヒト免疫グロブリンの安定な分泌に不可欠である。従って、ハイブリドーマプロトコルの最適化及び標準化は、バルク細胞集団における個々の細胞のＩＬ−６刺激活性がリアルタイムで効率的に評価可能であることを必要とする。しかし、ポリクローン集団における個々の細胞によるＩＬ−６の分泌速度を測定することは困難である。ＬＣＸ細胞株は、異所性ｈＴＥＲＴを発現し、ＩＬ−６様シグナルを形質導入する分子の表面発現を評価することによって監視することができるＩＬ−６シグナル伝達活性を提供するために作製された。親Ｋ６Ｈ６／Ｂ５細胞を、レトロウイルス形質導入によってｇｐ１３０  ΔＹＹタンパク質（ＩＬ−６受容体ファミリーの構成的に活性なメンバー）に加えてｈＴＥＲＴを発現するために改変し、ＲＴ−ＰＣＲを行って、説明されるとおりＬＣＸ細胞における異所性ｈＴＥＲＴ遺伝子の発現を確認した（図１４を参照されたい）。13
【０１６０】
フローサイトメトリーを用いて細胞表面抗原を検出するための従来の免疫蛍光染色を実施して、記載のとおりｇｐ１３０の発現を確認した。19
【０１６１】
モノクローナルマウス抗ｇｐ１３０抗体を、ＬＣＸ細胞、及び、陰性対照として、ｇｐ１３０を発現しないＫ６Ｈ６／Ｂ５細胞と共にインキュベートした。洗浄後、ＡＰＣ結合抗マウスＩｇＧを試験細胞と共にインキュベートした。次いで、フローサイトメトリーを実施して、試験細胞がそれらの細胞表面上にｇｐ１３０を発現したか否かを検出した。図１５に示される結果は、ｇｐ１３０がＬＣＸ細胞上で観察されたが、親Ｋ６Ｈ６／Ｂ５細胞上では観察されなかったことを実証する。
【実施例３】
【０１６２】
強力なポリオウイルス中和活性を有するヒトモノクローナル抗体を分泌する安定なハイブリドーマの確立
ＬＣＸ細胞株を使用して、初代ヒトＢ細胞との融合後にヒトＩｇを安定的に分泌するハイブリドーマを作製した。Ｂ５−６Ｔ融合パートナー細胞株の使用で標準化されたプロトコルに従って、本発明者らは、ポリオウイルス（ＰＶ）（１〜３型）に対して免疫性のある個体由来のＢ細胞にＬＣＸ細胞株を説明したプロトコルに従って融合させた。20これは、ポリオウイルスと免疫反応性のヒトＩｇＧの発現について評価された、ヒトを分泌するハイブリドーマの集団を作製した。ハイブリドーマ上清をＥＬＩＳＡによって評価し、ＰＶ結合可能なヒトｍＡｂを安定的に分泌するハイブリドーマの同定及びサブクローニングを可能にした。ＰＶ反応性ｍＡｂを、表２に列挙されるマイクロ中和試験を用いて、インビトロでの中和について試験した。多くのｍＡｂｓは、高い中性化能（ＬＸ−２Ｄ６、ＬＸ−５Ｇ５、ＬＸ−４Ａ４、ＬＸ−３Ｅ９、ＬＸ−１Ａ７、ＬＸ−１０Ｃ６及びＬＸ−２Ｅ１など）を有することが確認され、４個のｍＡｂｓは、２株以上を中性化することが確認された。
【０１６３】
従って、構成的に活性なＩＬ−６受容体ｇｐ１３０  ΔＹＹを発現する細胞株、ＬＣＸ細胞株が作製され、有用なヒトモノクローナル抗体を分泌する安定なハイブリドーマを作製するためのヒトＢ細胞との融合パートナーとして有効であることが実証された。
【０１６４】
【表２】
2020515288.tif 000003
【実施例４】
【０１６５】
アンカータンパク質を発現する融合パートナー細胞株の作製
Ｉｇリンカータンパク質と相互作用することができるアンカータンパク質を細胞の形質膜外側上に発現する哺乳動物細胞株を作製し、確立するために、以下の実験を行った。現在の実験環境では、アンカーは、実施例１に説明されるとおりＩｇリンカーとしてのウサギ抗ヒトＩｇＧ（ＲＡＨ）に結合し、第１の免疫複合体を形成するために設計された、タンデムマウス抗ウサギｓｃＦｖ分子部分を含んでいた。ＬＣＸ及びＢ５−６Ｔ細胞を培養し、説明のとおり維持した。21ＬＣＸ細胞を培養し、１０％ウシ胎仔血清を含むＡＴＣＣ処方ＲＰＭＩ−１６４０培地中で、３７℃で５％  ＣＯ2を含む大気中で維持した。
【０１６６】
第２の免疫複合体は、標的タンパク質としてアンカー及びヒト免疫グロブリンによって捕捉されたＲＡＨによって形成された。任意的な第３の免疫複合体は、ヒト免疫グロブリン及びそれらの対応する抗原によって形成された。上記の３個の免疫複合体における結合の存在、特異性、親和性、力価、量、及び、生物学的活性を分析した。ＬＣＸ及びＢ５−６Ｔ細胞を、実施例１に記載の構築物を用いてＤＮＡで生成した複製欠損レンチウイルス粒子で、従来の方法によって形質導入した。12、13
【０１６７】
形質導入細胞を一次ビオチン化抗マウスＩｇＧ、続いてストレプトアビジンＡＰＣで免疫染色することにより、形質膜外側上のタンデムｓｃＦｖの発現を検出した。タンデムｓｃＦｖを発現する細胞をフローサイトメトリーにより４回単離して、安定な高発現の、均一な細胞集団を生成した。フローサイトメトリーによる親（ＬＣＸ、Ｂ５−６Ｔ）対形質導入細胞株（ＬＣＸ  ＢＧＳ、Ｂ５−６Ｔ  ＢＧＳ）の抗マウスＩｇＧ染色の比較は、タンデムｓｃＦｖを発現する２個の融合パートナー細胞株の存在を確立する。
【０１６８】
これらの結果を、Ｂ５−６Ｔ細胞については、図２Ａに、ＬＣＸ細胞については、図２Ｂに各々プロットした。これらの実験はまた、哺乳動物細胞の外表面上のアンカータンパク質の発現が、マウス免疫グロブリン抗原と反応性のＩｇリンカーによって認識される場合があるマウス免疫グロブリン抗原を外表面に与えることを確立する。
【実施例５】
【０１６９】
ＬＣＸ  ＢＧＳ及びＢ５−６Ｔ  ＢＧＳ細胞の表面上でのヒトＩＧＧを含有する免疫複合体の生成
アンカーは、２つの方法のうちの１つでリンカーと相互作用することができる。一実施形態では、アンカーは、リンカーによって認識又は結合できる。例えば、アンカーは、抗原（例えば、ｃ−ｍｙｃタグ又はｓｃＦｖ配列自体（本実施形態におけるとおり））を含む場合があり、これは、リンカータンパク質（例えば、及び、ｍｙｃタグ又はｓｃＦｖ分子部分に特異的な抗体）によって認識される。例えば、細胞を、ｃ−ｍｙｃタグ配列に特異的なヤギ抗体、又は、マウスｓｃＦｖ抗原に特異的なヤギ抗体と接触させ、洗浄し、更にＡＰＣ標識抗ヤギ二次抗体とインキュベートし、次いでフローサイトメトリーによって分析し、リンカーとして使用してもよい抗体によって認識されるｃ−ｍｙｃタグ又はマウスＩｇエピトープの能力を実証する。あるいは、アンカーがそれ自体、リンカータンパク質上のエピトープに結合することができる抗原結合ドメインを含む場合がある。
【０１７０】
本実施形態において、このドメインは、ウサギＩｇに特異的に結合するタンデムｓｃＦｖである。本発明者らは、ＬＣＸ  ＢＧＳ及びＢ５−６Ｔ  ＢＧＳによって発現されるアンカーが、ヒトＩｇ（ＲＡＨ）に特異的なウサギＩｇＧから構成されるＩｇリンカーに結合する能力を、細胞表面タンパク質の免疫染色、続いてフローサイトメトリーにより試験した。ＬＣＸ、ＬＣＸ  ＢＧＳ、Ｂ５−６Ｔ、及び、Ｂ５−６Ｔ  ＢＧＳの生細胞をビオチン化ＲＡＨと共にインキュベートした。洗浄後、ＡＰＣ結合ストレプトアビジンを試験サンプルに適用した。次いで、ＡＰＣからの蛍光シグナルをフローサイトメトリーによって評価し、データを図３Ａ及び３Ｂにプロットした。ＬＣＸ  ＢＧＳ及びＢ５−６Ｔ  ＢＧＳ融合パートナー細胞は、ＬＣＸ及びＢ５−６Ｔ細胞に比べて、ＲＡＨに有意に結合した（図３Ａ及び３Ｂ）。これらの結果は、アンカーの発現されたタンデムマウスｓｃＦｖドメインがウサギＩｇに対するその予測される親和性を維持し、従ってＬＣＸ  ＢＧＳ及びＢ５−６Ｔ  ＢＧＳ融合パートナー細胞株の形質膜外側上にウサギＩｇを付着させようとしていることを実証する。
【０１７１】
ＬＣＸ  ＢＧＳ及びＢ５−６Ｔ  ＢＧＳ細胞株の表面上でのアンカー発現は、ヒトＩｇＧの誘導性付着を可能にする。ＬＣＸ  ＢＧＳ及びＢ５−６Ｔ  ＢＧＳ細胞株をＲＡＨと共にインキュベートし、洗浄し、次いで、ＲＡＨ後にポリクローナルヒトＩｇＧと共に、又は、それなしでインキュベートした。次いで、Ａｌｅｘａ  ４８８結合ヤギ抗ヒトＩｇＧを、フローサイトメトリーによる検出のために適用した。Ｂ５−６Ｔ  ＢＧＳ（図４Ａ）及びＬＣＸ  ＢＧＳ（図４Ｂ）融合パートナー細胞の両方において、ポリクローナルヒトＩｇＧが細胞表面上に観察された。ＬＣＸ  ＢＧＳ及びＢ５−６Ｔ  ＢＧＳ細胞株の表面へのヒトＩｇＧの結合がＲＡＨ  Ｉｇ−リンカーの存在に依存することを確認するために、本発明者らは、上記と同じ条件下で、ＲＡＨの存在下及び非存在下で、これらの細胞株へのヒトＩｇＧの結合を比較した（図５Ａ、５Ｂ）。これらのデータは、Ｂ５−６Ｔ（図５Ａ）及びＬＣＸ（図５Ｂ）融合パートナー細胞の両方の表面へのヒトＩｇＧの付着にＲＡＨが必要であることを実証する。
【０１７２】
更なる実験において、本発明者らは、ＬＣＸ及びＢ５−６Ｔ細胞株によるアンカータンパク質（タンデムマウスｓｃＦｖ）の発現がヒトＩｇＧのＲＡＨ媒介結合に必須であるか否かを試験した。ＲＡＨの存在下での、ＬＣＸ、ＬＣＸ  ＢＧＳ、Ｂ５−６Ｔ、及び、Ｂ５−６Ｔ  ＢＧＳ細胞株へのヒトＩｇＧの結合を、ＲＡＨ、ヒトＩｇＧ、及び、Ａｌｅｘａ  ４８８結合ヤギ抗ヒトＩｇＧを上記のとおり試験細胞とインキュベートすることによって評価した。フローサイトメトリーを実施し、ＬＣＸ  ＢＧＳ及びＢ５−６Ｔ  ＢＧＳ細胞株にヒトＩｇＧが結合するが、アンカーを発現しなかったＬＣＸ及びＢ５−６Ｔ細胞には結合しないことを実証した。従って、融合パートナー細胞株は、アンカーが存在する場合にのみ、ヒトＩｇＧの捕捉に成功した。
【０１７３】
これらのデータは、哺乳動物細胞の形質膜外側上に発現され、ＲＡＨに結合することができる機能性アンカータンパク質の存在を確立し、これは、アンカータンパク質がＩｇリンカーと第１の免疫複合体を形成できること、免疫複合体が細胞の外側分子部分上に形成されること、ＩｇリンカーがヒトＩｇＧと第２の免疫複合体を形成できること、及び、ヒトＩｇＧがアンカー又はＩｇリンカータンパク質のいずれかの非存在下で細胞に付着しないことを示す。更に、本発明は、細胞、その形質膜外側上で発現されるアンカータンパク質、アンカータンパク質によって結合されるリンカータンパク質、及び、アンカータンパク質によって複合体に結合される異種ＩｇＧという最小限４つの成分からなり、細胞及び細胞を含む免疫複合体と異種ＩｇＧとの相互作用のためにＩｇリンカーの存在を必要とする、新規免疫複合体の存在を確立する。
【実施例６】
【０１７４】
ヒトＩＧＧを分泌するハイブリドーマ細胞の表面上のアンカー分子の発現
本明細書に説明する組成物及び方法の新規かつ有用な能力は、それらが、細胞によって分泌されるタンパク質をその細胞の表面に誘導的に付着可能にすることである。細胞に付着されている間、タンパク質の構造的及び／又は機能的特徴は、タンパク質が表面に固定化されることを必要とするアッセイを使用して評価される。分泌タンパク質がｍＡｂである本実施例において、このようなアッセイは、抗原結合アッセイ、ｍＡｂグリコシル化又はアイソタイプについての試験、リンパ球刺激又は補体依存性細胞傷害性などの免疫複合体媒介機能、及び、触媒活性を含むが、これらに限定されない。
【０１７５】
分泌されたｍＡｂは、それを産生する細胞と物理的に関連しているので、所望の特徴を有するタンパク質が見出される場合、そのタンパク質を分泌する細胞が容易に同定及び単離される場合がある。分泌モノクローナル抗体を分泌するハイブリドーマ細胞の表面上での分泌モノクローナル抗体の誘導性捕捉を実証するために、本発明者らは、以前に生成され、ヒトｍＡｂ、８Ｃ５及び９Ｈ２を安定的に分泌することが見出された２種のハイブリドーマ上でアンカーの発現を誘導した。８Ｃ５は、狂犬病糖タンパク質（ＲＡＢＶ  ＧＰ）に特異的であり、９Ｈ２は、ポリオウイルス１型、２型及び３型に特異的である。この細胞を、タンデムマウスｓｃＦｖアンカー遺伝子を含むレトロウイルス粒子で形質導入し、ハイブリドーマ８Ｃ５  ＢＧＳハイブリドーマ及び９Ｈ２  ＢＧＳを得た。４種のハイブリドーマの細胞表面上のタンデムマウスｓｃＦｖ（ＢＧＳ）の発現を、実施例３に記載の実験と同様の方法によって評価した。ビオチン化抗マウスＩｇＧを試験細胞に適用し、続いてＡＰＣ結合ストレプトアビジンとインキュベートした。次いで、ｓｃＦｖの存在をフローサイトメトリーによって検出した。結果を各々図９Ａ及び図９Ｂにプロットした。８Ｃ５  ＢＧＳ及び９Ｈ２  ＢＧＳハイブリドーマは、両方とも、親ハイブリドーマ８Ｃ５及び９Ｈ２に比べて蛍光シグナルの陽性ピークを示し、それらの細胞表面上でのアンカーの発現を示した。
【０１７６】
ＢＧＳハイブリドーマへのＩｇリンカーとしてのＲＡＨの結合を、実施例３に記載のプロトコルを介して更にアクセスした。ビオチン化ＲＡＨを、８Ｃ５、８Ｃ５  ＢＧＳ、９Ｈ２、及び、９Ｈ２  ＢＧＳ細胞とインキュベートし、続いて洗浄し、ＡＰＣ結合ストレプトアビジンとインキュベートした。フローサイトメトリーの結果は、両方のアンカー発現ハイブリドーマ（８Ｃ５  ＢＧＳ、図１０Ａ及び９Ｈ２  ＢＧＳ、図１０Ｂ）がビオチン化ＲＡＨの捕捉に成功し、第２の免疫複合体を形成したが、８Ｃ５及び９Ｈ２ハイブリドーマは、捕捉しなかったことを示した。本発明者らは、ＲＡＨ  Ｉｇリンカーの存在下で９Ｈ２  ＢＧＳ及び８Ｃ５  ＢＧＳハイブリドーマによって産生されたｍＡｂの表面捕捉を評価した。８Ｃ５、８Ｃ５  ＢＧＳ、９Ｈ２、及び、９Ｈ２  ＢＧＳハイブリドーマを、ＲＡＨ  Ｉｇリンカーの存在下で、Ａｌｅｘａ  ４８８結合ヤギ抗ヒトＩｇＧと同時に培養した。８Ｃ５  ＢＧＳ（図１１Ａ）及び９Ｈ２  ＢＧＳ（図１１Ｂ）ハイブリドーマの両方からの蛍光シグナルのピークは、８Ｃ５及び９Ｈ２ハイブリドーマのものに比べて正のスケール範囲にシフトし、これは、タンデムマウスｓｃＦｖ（ＢＧＳ）がＲＡＨリンカーの存在下で、それらを分泌するハイブリドーマへの分泌モノクローナルヒトＩｇＧの付着を増加させる（アンカー）ことを示す。
【０１７７】
分泌されたｍＡｂのハイブリドーマへの結合におけるＲＡＨ  Ｉｇリンカーの役割を評価するために、更なる実験を行った。８Ｃ５  ＢＧＳ（図１２Ａ）及び９Ｈ２  ＢＧＳ（図１２Ｂ）ＢＧＳハイブリドーマの両方を、ＲＡＨの存在下又は非存在下で、Ａｌｅｘａ  ４８８結合ヤギ抗ヒトＩｇＧと共にインキュベートした。分泌されたヒトＩｇＧの増加した捕捉は、ＲＡＨ非存在下に比べてＲＡＨ存在下で、その中心がスケールの正の方向にシフトしたより広い蛍光ピーク、及び、たフローサイトメトリーのグラフにおける曲線下のより大きな面積によって示されるとおり、両方のハイブリドーマにおいて観察された。
【実施例７】
【０１７８】
ＭＡＢを分泌するハイブリドーマの表面上に捕捉された分泌ＭＡＢによる特異的抗原の結合、並びにハイブリドーマ細胞の表面上の第１、第２及び第３の免疫複合体の確立
ヒトＩｇＧ及び抗原によって形成される第３の免疫複合体の存在を確立するために、更なる実験を行った。上記のとおり、８Ｃ５  ｍＡｂは、ＲＡＢＶ  ＧＰに結合する。本発明者らは、Ｂ５−６Ｔ、８Ｃ５及び８Ｃ５  ＢＧＳ細胞を過剰のＲＡＨの存在下で一晩培養し、次いで細胞を洗浄し、追加のＲＡＨ、ビオチン化ＲＡＢＶ  ＧＰ抗原、及び、検出分子としてのＡＰＣ標識ストレプトアビジンを添加した。図１３に示される結果は、Ｂ５−６Ｔ融合パートナー細胞及び８Ｃ５ハイブリドーマに比べて、８Ｃ５  ＢＧＳハイブリドーマのサンプルにおいて、抗原陽性細胞のより高いパーセンテージ及び抗原のより強い結合を明らかにし、これは、第１、第２及び第３の免疫複合体の特異的な形成に成功したことを示す。この実験は、細胞によって分泌されるｍＡｂを含み、膜結合アンカータンパク質及びＩｇリンカータンパク質からなる架橋を介して細胞の形質膜外側に付着される有用かつ新規な細胞を含む免疫複合体の存在を確立し、ｍＡｂは、その抗原に結合し、抗原は、更に検出分子に結合する。本明細書に説明する方法及び組成物の使用によって、抗原に結合できるｍＡｂを分泌する細胞は、容易に同定され、単離される。
【０１７９】
細胞を含む免疫複合体の性質を、蛍光顕微鏡によって更に特徴付けた（図１７Ａ〜１７Ｄ）。本発明者らは、示された８Ｃ５及び８Ｃ５  ＢＧＳ及びＢ５−６Ｔ  ＢＧＳ細胞株を、過剰のＲＡＨ  Ｉｇリンカー、ビオチン化ＲＡＢＶ  ＧＰ、及び、Ａｌｅｘａ  ４８８標識ストレプトアビジンと共にインキュベートした。本発明者らは、細胞をパラホルムアルデヒドで固定し、ＤＡＰＩで染色し、蛍光顕微鏡で調べた。８Ｃ５  ＢＧＳ細胞の多くは、ＲＡＢＶ  ＧＰの付着を示す蛍光シグナルを示すが、８Ｃ５細胞は、同じｍＡｂを分泌しているにもかかわらず、示さない。これは、フローサイトメトリーデータを裏付け、細胞の表面上に形成される３個の免疫複合体成分の存在を示し、抗体を含むｍＡｂ複合体は、その抗原結合特異性について分析可能で、これは、次いで、それを分泌する細胞と相互参照可能な情報である。
【０１８０】
８Ｃ５  ＢＧＳ細胞上のＲＡＢＶ  ＧＰ染色の強度及びパターンの試験は、細胞が異なるレベルのシグナルを有することを明らかにする。この知見がクローンによるアンカータンパク質発現のレベルの差を反映するか否かを決定するために、８Ｃ５  ＢＧＳ細胞及びＢ５−６Ｔ  ＢＧＳ細胞を、ＲＡＨ及びＡｌｅｘａ  ４８８標識ヤギ抗ウサギＩｇＧ二次抗体と共に培養した（図１８）。Ｂ５−６Ｔ  ＢＧＳ細胞上のＡｌｅｘａ  ４８８標識の量及び分布は、全ての細胞で本質的に同じであり、その結果は、Ｂ５−６Ｔ  ＢＧＳ及び８Ｃ５  ＢＧＳ細胞株上のアンカー発現の均一性を実証するフローサイトメトリーデータと一致する（図３Ａ及び１０Ａ）。
【０１８１】
８Ｃ５  ＢＧＳ細胞の表面上の一貫したアンカー発現レベルにもかかわらず、ＲＡＢＶ  ＧＰ標識の量は、細胞間で広範に変化する（図１７）。これは、集団中の個々の８Ｃ５  ＢＧＳ細胞が異なるレベルのｍＡｂを発現すること、更に、細胞培養培地中の過剰なＲＡＨは、１個の細胞によって分泌されたｍＡｂが別の細胞に結合するのを防ぐのに十分であることを示唆する。
【０１８２】
図１８で観察されたＢ５−６Ｔ  ＢＧＳ及び８Ｃ５  ＢＧＳ細胞へのＲＡＨの結合パターンが異なることも有益である。Ｂ５−６Ｔ  ＢＧＳ細胞上の染色は、均一に分布しているが、８Ｃ５  ＢＧＳ細胞上の染色は、高度に局在化しており、細胞膜上に単一の高強度「キャップ」構造を形成する。この実験におけるＲＡＨはｍＡｂであるので、これは、８Ｃ５  ＢＧＳ細胞によって分泌されるヒトｍＡｂの存在が細胞の表面上のアンカードメインの免疫複合体媒介架橋を可能にすることを示唆する。これらの免疫複合体は、ヒトｍＡｂに結合するウサギｍＡｂを認識するアンカードメインからなり、ヒトｍＡｂは、各々培養培地及び細胞から更なるウサギ及びヒトｍＡｂを補充することができる。
【０１８３】
ウサギｍＡｂの二価の性質は、複数の複合体が形質膜外側上の局在性アレイにおいて互いに会合することを可能にする。８Ｃ５  ＢＧＳ細胞上のこの同じパターンにおけるＲＡＢＶ  ＧＰの結合（図１７）は、免疫複合体アレイ中のｍＡｂがそれらの標的抗原と相互作用することを妨げられないことを示す。従って、多価Ｉｇリンカーの存在下で、分泌されたｍＡｂの複数のコピーを含む免疫複合体が、アンカータンパク質を発現する細胞の表面上に形成される場合がある。更に、これらの免疫複合体中のｍＡｂは、それらの標的抗原へのカノニカル結合を可能にするために構成される。
【実施例８】
【０１８４】
細胞の不均一な集団の中からの望ましい量のタンパク質を安定的に分泌する細胞の同定及び単離。
【０１８５】
８Ｃ５  ＢＧＳ細胞集団を再び図１７に示す実験に供し、１００万個の細胞を１０ｃｍの培養皿に蒔く。８Ｃ５  ＢＧＳ細胞を、過剰のＲＡＨ  Ｉｇリンカー、ビオチン化ＲＡＢＶ  ＧＰ、及び、Ａｌｅｘａ  ４８８標識ストレプトアビジンと共に培養する。免疫複合体の形成に続いて、最高レベルの８Ｃ５  ｍＡｂ発現（Ａｌｅｘａ  ４８８蛍光のレベルによって示される）を有する細胞をプレートからピペットで移すか、又は、フローサイトメトリーによって単離し、それによって、最適量の８Ｃ５  ｍＡｂを産生するために培養可能な高発現サブクローンを同定する。
【０１８６】
この実験の変形において、発現されたＩｇＧの量は、特異的抗原結合の代わりに測定される。１００万個の８Ｃ５  ＢＧＳ細胞を１０ｃｍの培養皿に蒔き、（サブモル量の単離されたヒトＩｇＧ  Ｆｃドメインの存在下又は非存在下での）ヒトＩｇＧ  Ｆｃドメインに特異的な過剰のＲＡＨ  Ｉｇリンカー、ヒトＩｇＧ  ＦＡｂドメインに特異的なビオチン化マウスＩｇＧ、及び、Ａｌｅｘａ  ４８８標識ストレプトアビジンと共に培養する。これらの方法に従って、最適量のｍＡｂを分泌するハイブリドーマを同定し、単離する。
【０１８７】
ヒトエリスロポエチン（ＥＰＯ）をコードする遺伝子及びブラスチシジン耐性タンパク質をコードする遺伝子を発現するプラスミドを、アンカータンパク質を均一に発現するＣＨＯ細胞の集団に導入する。この細胞集団は、ブラスチシジンに耐性であり、従ってＥＰＯを発現可能なポリクローン集団が誘導されるまで、ブラスチシジンの存在下で継代される。細胞集団を洗浄し、ＥＰＯに特異的な過剰のウサギＩｇ及びヒトＥＰＯに特異的なＡｌｅｘａ  ４８８標識マウスｍＡｂの存在下で培養する。細胞を蛍光顕微鏡又はフローサイトメトリーによって分析し、最高レベルのＥＰＯ発現を発現する細胞を単離し、更なる研究のために増殖させる。
【０１８８】
同様の実験において、発現されたＥＰＯタンパク質は、タンパク質タグ（例えば、６Ｘ  ＨＩＳタグ）を組み込む。ブラスチシジン発現後、６Ｘ  ＨＩＳタグに特異的な過剰のウサギＩｇ、及び、Ａｌｅｘａ  ４８８標識マウス抗ＥＰＯ  ｍＡｂの存在下で細胞を培養する。分泌されたＥＰＯの、それを分泌しなかったいずれかの細胞への結合を減少させるために、抗６Ｘ  ＨＩＳ特異的ウサギＩｇの量の画分を、６Ｘ−ＨＩＳタグも含むがマウス抗ＥＰＯ  ｍＡｂによって認識されない異種ポリペプチドと混合する。
【０１８９】
この実験の更なる改変において、マウス抗ＥＰＯ  ｍＡｂをビオチンと結合させ、ＣＨＯ細胞を懸濁培養物中で維持する。免疫複合体の形成に続いて、細胞をすすぎ、ストレプトアビジンに結合した磁気ビーズと混合する。細胞複合体は、ＥＰＯを発現しない細胞からのＥＰＯ発現細胞の分離を可能にする磁場に供される。更なる改変体において、ＥＰＯ遺伝子は、Ｍｙｃタグを分泌ＥＰＯタンパク質に結合するために改変される。Ｉｇリンカーは、Ｍｙｃタグと免疫反応性のポリクローナル抗血清であり、その結果、アンカー及び分泌ＥＰＯ分子の両方におけるＭｙｃタグとの相互作用を介してＥＰＯを細胞表面に付着する。更に、検出分子は、ストレプトアビジンＡｌｅｘａ  ４８８のいずれかと結合したビオチン化マウス抗ＥＰＯ  ｍＡｂであるか、又は、ストレプトアビジン結合磁気ビーズである。
【実施例９】
【０１９０】
アンカータンパク質を発現する融合パートナー細胞株の最適化。
本明細書に説明する方法及び組成物によって可能にされるアンカータンパク質を発現するハイブリドーマは、異なる方法によって確立できる。一実施例では、アンカータンパク質の発現は、既存のｍＡｂ分泌ハイブリドーマのレトロウイルス遺伝子導入によって誘導される。あるいは、アンカーを発現する融合パートナー細胞をＢ細胞に融合させて、アンカータンパク質及びＢ細胞に由来するＩｇ遺伝子によってコードされるｍＡｂの両方を発現するハイブリドーマを産生する。
【０１９１】
上記の実施例におけるとおり、アンカータンパク質をコードする核酸は融合パートナー細胞株に導入され、融合パートナー細胞株を発現する細胞の均一な集団が確立される。その集団由来の単一細胞を単離し、増殖させる。個々のクローン由来のＤＮＡを単離し、制限酵素で消化し、サザンブロッティングによって試験する。サザンブロッティングデータは、各細胞クローン内に存在するアンカートランスジーンのゲノムコピーの数及び性質の決定を可能にし、異なるクローン集団のパネルが指定される。細胞を更なる研究のために増殖させる。アンカー発現融合パートナー細胞株の各々の異なる集団を、標準的な方法に従ってＢ細胞の細胞系譜の細胞に融合し、適切な希釈で９６ウェルプレートに蒔き、次いでＨＡＴ選択に供する。クローンの増殖に続いて、ウェル中の細胞を洗浄し、ウサギＩｇ結合Ａｌｅｘａ  ４８８と接触させ、洗浄し、蛍光顕微鏡で調べる。
【０１９２】
新たなハイブリドーマ（９０％以上）においてアンカーの最も一貫した発現を生じた融合パートナー細胞株を、更なる融合のために使用する。このマイルストーンを達成しない融合パートナー細胞株クローンは、アンカー遺伝子の更なるレトロウイルス形質導入を受ける。この第２のアンカー遺伝子は、Ｍｙｃタグの代わりにＨｉｓタグを有し、構築物は、追加の抗生物質耐性遺伝子を含んでも含まなくてもよい。アンカー発現細胞クローンを第２のアンカー構築物で形質導入した後、第２のアンカー構築物を発現する細胞を、それらのＨｉｓタグ配列の発現によって同定し、フローサイトメトリーによって単離し、先に説明した細胞融合実験において再試験する。
【実施例１０】
【０１９３】
モノクローナル抗体を発現するハイブリドーマライブラリーの作製及びスクリーニング
本発明の融合パートナー細胞株は、モノクローナル抗体を発現するハイブリドーマのライブラリーの作製及びスクリーニングのために使用できる。原則として、この方法は、いずれかの哺乳動物種由来のＢ細胞の細胞系譜の細胞と共に使用される場合があるが、Ｂ５−６Ｔ  ＢＧＳ及びＬＣＸ  ＢＧＳ細胞株は、ヒトｍＡｂを安定的に分泌するハイブリドーマを作製するために適する。Ｂ５−６Ｔ細胞株のような細胞を用いてハイブリドーマを作製する方法は、ヒトＢ細胞22、23、野生型マウス由来のマウスＢ細胞24、ヒト免疫グロブリン遺伝子配列に遺伝子導入されたマウス25、及び、ウサギ26を含む多くの様々な種由来のＢ細胞と共に使用するための最新技術として周知である。
【０１９４】
ヒト末梢血単核細胞を、不活化ポリオウイルスワクチン（ＩＰＶ）を受けた８日後にボランティアから入手し、Ｆｉｃｏｌｌ遠心分離を使用して単離し、次いで、使用するまで、９０％  Ｈｙｃｌｏｎｅ  Ｄｅｆｉｎｅｄ  ＦＢＳ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ、Ｃａｒｌｓｂａｄ、ＣＡ）及び１０％  ＤＭＳＯ（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ）中で液体窒素下で凍結保存する。細胞融合の前に、ＣＤ２７陽性細胞を、製造業者の説明書に従って、抗ＣＤ２７磁気ビーズ（Ｍｉｌｔｅｎｙｉ  Ｂｉｏｔｅｃ、Ａｕｂｕｒｎ、ＣＡ）で単離する。これらの細胞を、ＩＬ−２及び他のサイトカイン並びにｐｅｎ／ｓｔｒｅｐを補充したＩＭＤＭ中の多量体ＣＤ４０Ｌ（Ｕｌｔｒａ−ＣＤ４０Ｌ、Ｒｉｃｈａｒｄ  Ｋｏｒｎｂｌｕｔｈ、Ｍ．Ｄ．、Ｍｕｌｔｉｍｅｒｉｃ  Ｂｉｏｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ、Ｉｎｃ、Ｌａ  Ｊｏｌｌａ、ＣＡ、ＵＳＡの提供）の存在下で８日間培養する。培養細胞を、電気融合によりＢ５−６Ｔ  ＢＧＳ又はＬＣＸ  ＢＧＳ融合パートナー細胞株に融合し、細胞を、９６ウェルプレート中のウェル当たり１００〜２０００個の初代細胞で、又は、１０ｃｍ培養皿当たり１０，０００〜２００，０００個の細胞の密度で播種する。新生のハイブリッド細胞を、Ａｄｖａｎｃｅｄ  ＲＰＭＩ＋１％ウシ胎仔血清中のＨＡＴ（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ）で選択する。
【０１９５】
ＨＡＴ耐性ハイブリドーマの出現後、融合の約７〜１７日後に、細胞培養培地を除去し、ＲＡＨを、ビオチン化ポリオウイルス１型、２型及び３型、並びに、ストレプトアビジンＡｌｅｘａ  ４８８と共に添加する。細胞を１〜８時間インキュベートし、蛍光シグナルを獲得する細胞をピペッティングによって単離し、９６ウェルプレートに入れる。３〜１０日後、細胞を再びＰＶへの結合について試験する。別の方法では、ストレプトアビジン結合磁気ビーズを、ストレプトアビジン４８８ビーズに加えて、又は、その代わりにハイブリドーマに添加する。細胞インキュベーション後、ＰＶ  ｍＡｂを発現する細胞を、磁気アフィニティーカラム上で単離する。
【実施例１１】
【０１９６】
安定化されたハイブリドーマ発現ライブラリー（ＳＨＥＬ）の生成及び維持
ハイブリドーマ法によるｍＡｂクローニングの現在の技術水準における重要な弱点は、ｍＡｂを分泌するハイブリドーマがより速く増殖する非分泌ハイブリドーマ細胞によって圧倒される傾向があるため、ハイブリドーマライブラリーをポリクローナル培養物中で維持することができないことである。その結果、ハイブリドーマライブラリーは、典型的には、スクリーニング後に廃棄される。これは、各ハイブリドーマについて実施可能な試験の数に実際的な制限を課し、潜在的に価値のあるＢ細胞サンプルを失う。
【０１９７】
本明細書に説明する方法及び組成物は、ポリクローナルハイブリドーマ集団が分析され、選別されて、ｍＡｂのみを分泌し、従って、培養物中で無期限に維持でき、必要に応じて凍結保存できる集団を作製することを可能にする。前述のとおり、ヒト又はマウスＢ細胞を、アンカータンパク質を発現する融合パートナー細胞株に融合させ、ＨＡＴ選択に供し、１０ｃｍ皿当たり約０．１〜１０００万個のＢ細胞の密度で蒔く。ＨＡＴ耐性クローンの確立後、細胞を洗浄し、過剰のウサギ抗ヒト（ＲＡＨ）Ｉｇリンカー、分泌されたｍＡｂに特異的なビオチン化二次抗体（ヤギ抗ヒトＩｇ又はヤギ抗マウスＩｇ  Ｆｃドメインのいずれか）、及び、ストレプトアビジン結合磁気ビーズと共にインキュベートする。ハイブリドーマを培養皿から穏やかに除去し、ｍＡｂ分泌ハイブリドーマを磁気カラム上で陽性に選択する。
【０１９８】
別の方法では、ハイブリドーマをＡｌｅｘａ  ４８８結合ストレプトアビジンと接触させ、陽性細胞をフローサイトメトリーによって単離する。次いで、陽性に選択されたＩｇ発現培養を、増殖させ、維持し、本明細書に説明する方法に従って、アンカーの発現によって可能になるように、更なる抗原又は機能的アッセイでスクリーニングする。質の制御のために、ｍＡｂ集団の複雑さを評価し、免疫グロブリン遺伝子レパートリーのディープシーケンシング及びジニ指数の算出を含む一般的な方法によって前向きに監視する。27
【０１９９】
本明細書に示すこの実施例では、ヒト初代Ｂ細胞をＬＣＸ  ＢＧＳ融合パートナー細胞株に融合させ、ＨＡＴ耐性細胞集団を選択し、その後、ヒトＩｇＧを発現する細胞を非発現細胞から単離し、それによって安定化ハイブリドーマ発現ライブラリー（ＳＨＥＬ（商標））を作製した。ポリクローナルヒトＩｇＧを発現するＳＨＥＬライブラリーの作製において、本発明者らは、ヒトＢ細胞の集団をＬＣＸ  ＢＧＳ融合パートナー細胞株に融合させ、融合細胞を５枚の９６ウェルプレートに、１ウェル当たり約１０００個のＢ細胞の密度で蒔いた。融合の１４日後（１４日目）、プレートを、従来の方法に従って、ＰＶ抗体の発現についてスクリーニングした。６クローンのパネルを選択し、９６ウェルプレートから取り出した後、融合後１６日目に、残りのウェル中の細胞をプールし、ＨＡＴを含まない培養培地中で更に３日間培養した。
【０２００】
次いで、細胞を、以下の方法によりヒトＩｇＧを発現するものについて陽性選択に供した。まず細胞を洗浄し、培養培地中の過剰のリンカー、ウサギＦ（ａｂ’）2断片抗ヒトＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）（Ｓｏｕｔｈｅｒｎ  ｂｉｏｔｅｃｈカタログ番号６０００−０１）と共に一晩インキュベートした。次いで、細胞を１％  ＰＢＳ−ＢＳＡで２回洗浄し、ビオチン化プロテインＡ（ＳｉｇｍａＡｌｄｒｉｃｈカタログ番号２１６５）と混合し、氷上でインキュベートした。１時間後、細胞を１％  ＰＢＳ−ＢＳＡで洗浄し、次いでＡｌｅｘａ  Ｆｌｏｕｒ  ４８８結合ストレプトアビジン（Ｊａｃｋｓｏｎ  Ｉｍｍｕｎｏ  Ｒｅｓｅａｒｃｈカタログ番号０１６−５４０−０８４）と混合し、氷上で４５分間インキュベートし、次いで再び洗浄した。次いで、ヒトＩｇＧを発現している細胞の集団を、ＢＤ  ＦＡＣＳＡｒｉａＩＩ上のＦＡＣＳによって単離した。この陽性選択を更に２回繰り返し、その後、フローサイトメトリーによって示されるとおり、細胞集団は、ヒトＩｇＧ発現細胞について高度に濃縮された（図２３Ａを参照されたい）。
【０２０１】
異なるドナー由来のＢ細胞をＬＣＸ  ＢＧＳ細胞株に融合させて、同様の実験を行った。細胞融合の１６日目に、５枚の９６ウェルプレートからの細胞をプールし、３日間培養し、次いでヒトＩｇＡを発現するものについて陽性に選択した。細胞を洗浄し、過剰のリンカー、ウサギ抗ヒトＩｇＡ（Ａｂｃａｍカタログ番号ａｂ１９３１８９）と共に一晩インキュベートした。次いで、細胞を１％  ＰＢＳ−ＢＳＡで２回洗浄し、次いでヤギＦ（ａｂ）２抗ヒトＩｇＡ−Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ６４７（Ｓｏｕｔｈｅｒｎ  Ｂｉｏｔｅｃｈカタログ番号２０５２−３１）と混合し、氷上で４５分間インキュベートした。次いで、ヒトＩｇＡを発現している細胞を、ＦＡＣＳによって非発現細胞から分離した。細胞をこの陽性選択に２回かけた。第２の選別からのフローサイトメトリーデータを図２３Ｂに示す。
【実施例１２】
【０２０２】
免疫複合体依存性機能を有するＭＡＢＳの同定
抗体によって発揮される多くの機能が免疫複合体の形成に依存することは、周知である。例えば、複数のＩｇＧ抗体からなる免疫複合体は、古典的補体経路を活性化し、Ｔ細胞を活性化し、Ｆｃ受容体を介して、マクロファージ、ＮＫ細胞、及び、好中球におけるエフェクター応答を活性化することができる。28、16、29
【０２０３】
このような免疫複合体媒介機能を評価するための方法は、当技術分野で周知である。本実施例において、ハイブリドーマは、Ｔ細胞活性化刺激の検知のための確立されたプロトコルに従って、Ｔ細胞活性化、Ｔ細胞によるＣＤ１５４発現の誘発のための周知の試験を用いて、本発明を用いてそれらの形質膜外側上に提示された免疫複合体によって誘発されたＴ細胞活性化についてスクリーニングされる。30
【０２０４】
関節リウマチ又は癌を有するヒト対象から末梢血単核細胞を得、９６ウェルプレート中のウェル当たり約１０００個のＢ細胞の密度で蒔き、ＨＡＴ選択に供されたＢ５−６Ｔ  ＢＧＳ又はＬＣＸ  ＢＧＳ融合パートナー細胞株に融合する。ＨＡＴ耐性クローンの確立及びＨＴ含有培地への変換後、細胞を洗浄し、約１，０００〜１００，０００個のＰＢＭＣ又はＣＤ３＋Ｔ細胞を培養皿に添加する。細胞を、過剰のＲＡＨ  Ｉｇリンカー、マウス刺激性ＩｇＧ（抗ＣＤ２８、抗ＣＤ４９ｄ）、ヒトＣＤ１５４に特異的なビオチン化二次抗体、及び、ストレプトアビジンＡｌｅｘａ  ４８８と共にインキュベートする。免疫複合体を発現しているハイブリドーマに隣接するＴ細胞は、ＣＤ１５４の発現を活性化するであろう。ブドウ球菌（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃａｌ）エンテロトキシンＢを、いくつかのウェルにおいて陽性対照として使用する。Ｔ細胞活性化に関連するハイブリドーマ細胞を、陽性ウェルから単離し、増殖させ、上記の方法を使用して、Ｉｇ発現の継続について試験する。次いで、これらの細胞を、同じ条件下でＴ細胞活性化について再試験するが、ただし、ＲＡＨ  Ｉｇリンカーが、単量体ＲＡＨ  Ｉｇリンカーで置換されている陰性対照サンプルを含むが、ここで前記単量体ＲＡＨ  Ｉｇリンカーは、ｍＡｂ及びポリクローナルＩｇリンカーによって形成されるコンカテマー化多量体免疫複合体を誘導することができない。
【実施例１３】
【０２０５】
ＭＡＢ分泌ハイブリドーマに結合した抗原の特徴付け
本明細書に説明のとおり調製されたｍＡｂを分泌するハイブリドーマは、連結免疫複合体において、ｍＡｂをそれらの形質膜外側上に捕捉するが、ここで、前記連結免疫複合体は、アンカーが細胞表面から切断された後に残存するアビディティー効果によって安定化され、該アビディティー効果は、結合した抗原の特徴付けに使用することができる。以前に説明したＭｙｃタグの代わりにｔｅｖプロテアーゼタグを含むアンカー分子は、あまり特徴付けられていない抗原で、複数の抗原を含む抗原混合物内に存在することが知られている抗原に特異的なｍＡｂを分泌するハイブリドーマ細胞において発現される。抗原混合物を最初にビオチン化する。次いで、アンカー発現細胞株を、過剰のＩｇリンカーと共にインキュベートし、これは、分泌されたｍＡｂをハイブリドーマ細胞表面、ビオチン化抗原混合物、及び、ストレプトアビジンＡｌｅｘａ  ４８８に付着させる。抗原が細胞表面に結合したことを視覚的に確認した後、細胞を培養培地から取り出し、ＡｃＴＥＶプロテアーゼ（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ）による切断に好ましい条件下で処理する。切断反応に続いて、細胞を遠心分離により上清から除去し、所望により、ＡｃＴＥＶプロテアーゼをサイズ排除クロマトグラフィーにより除去する。得られたサンプルを分析して、質量分析又は結合した抗原の特徴付けに適切な他の方法によって、ｍＡｂに結合した抗原の組成を同定する。
【実施例１４】
【０２０６】
２９３  ＯＣＭＳ細胞株におけるＡ１２の一過性のトランスフェクション
２９３Ｔ又は２９３Ｔ  ＯＣＭＳ細胞を、２４ウェルプレート中の丸いＣｏｒｎｉｎｇ（商標）ＢｉｏＣｏａｔ（商標）１２ｍｍ  ＃１Ｇｅｒｍａｎ  Ｇｌａｓｓ  Ｃｏｖｅｒｓｌｉｐｓ（Ｃｏｒｎｉｎｇ、カタログ番号３５４０８７）上に細胞５×１０4個／ウェルで蒔き、５％Ｃ０２インキュベーター中、３７℃でインキュベートした。一晩インキュベートした後、Ｘ−ｔｒｅｍｅ  Ｇｅｎｅ  ９  ＤＮＡ遺伝子トランスフェクション試薬を使用して、Ａ１２重鎖及び軽鎖ＤＮＡの各々０．５μｇ又は１μｇで一過性トランスフェクションを行った。２４時間後、各ウェルから培地を除去し、１μｇ／ｍｌのウサギ抗ヒトＩｇＧ  Ｆｃ特異的ｍＡｂ（Ａｂｃａｍ  Ｈ１６９−１−５）を有する１０％  ＦＢＳを有する５００μｌのＤＭＥＭを加え、一晩インキュベートした。翌日（トランスフェクションの４８時間後）、細胞を、１％  ＢＳＡを含むＰＢＳ（ＰＢＳ−ＢＳＡ）で３回洗浄し、ＰＢＳ−ＢＳＡ中に１：２００希釈した、抗ヒトＩｇＧ  Ｆ（ａｂ）２断片特異的（Ｊａｃｋｓｏｎ  Ｉｍｍｕｎｏ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ、カタログ番号１０９−５４６−０９７）のＡｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ４８８結合ヤギＦ（ａｂ）２断片とともにＣＯ２インキュベーター中、３７℃で１時間インキュベートした。１時間のインキュベーション後、細胞をＰＢＳ−ＢＳＡで３回洗浄し、室温で１５分間ＰＢＳ中の４％パラホルムアルデヒドで固定した。固定後、細胞をＰＢＳで１回、ｄＨ２Ｏで１回洗浄し、次いでカバーガラスにＤＡＰＩを含むＰｒｏＬｏｎｇ（登録商標）Ｇｏｌｄ  Ａｎｔｉｆａｄｅ試薬（Ｐ３６９３５、Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）をマウントし、６３ｘ／１．３  ＮＡオイル対物レンズを有するＣ２＋ニコン共焦点顕微鏡で画像化し、画像をＩｍａｇｅＪソフトウェア（ｈｔｔｐｓ：／／ｉｍａｇｅｊ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ｉｊ／）で分析した。図１９を参照されたい。
【実施例１５】
【０２０７】
強力なポリオウイルス中和活性を有するヒトモノクローナル抗体を分泌する安定なハイブリドーマの確立
ＬＣＸ  ＢＧＳ細胞株を用いて、初代ヒトＢ細胞との融合後にヒトＩｇＧを安定的に分泌するハイブリドーマを作製した。Ｂ５−６Ｔ融合パートナー細胞株の使用により標準化されたプロトコルに従って、本発明者らは、ＬＣＸ  ＢＧＳ細胞株を、ポリオウイルス（ＰＶ）（１〜３型）に対して免疫性の２人の個体由来のＢ細胞に、説明されたプロトコルに従って融合させた。20実験は、全ＰＶビリオン、非標識ＰＶビリオン、生ＰＶビリオン又はＵＶ−Ｃ不活化ＰＶビリオン（セービンワクチン株）を用いて行われる41。これは、３型ポリオウイルスと免疫反応性のＩｇＧの発現について評価されたヒトＩｇＧを分泌するハイブリドーマの集団を生成した。ハイブリドーマ上清をＥＬＩＳＡによって評価し、ＰＶ結合可能なヒトｍＡｂを安定的に分泌するハイブリドーマの同定及びサブクローニングを可能にした。本発明者らは、マイクロ中和アッセイにおいて７種のヒトｍＡｂの中和力価（以下の表３）を試験し、１００  ＴＣＩＤ５０のセービン３及びサウケット３  ＰＶ株でのチャレンジに対して細胞培養物の５０％を保護する希釈の逆数として結果を表にした。全てのｍＡｂは、両方の株に対して３型ＰＶ中和活性を有していた。
【０２０８】
【表３】
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【０２０９】
本発明者らは、これらのハイブリドーマを、それらの分泌されたヒトＩｇＧの付着について試験した。図２４は、ヒト抗ＰＶ  ＩｇＧ  ｍＡｂを分泌するＯＣＭＳハイブリドーマへのＩＩＩ型ＰＶの結合を示す９枚の顕微鏡パネルを示す。ヒトＰＶ  ｍＡｂを分泌するハイブリドーマを、ＲＡＨリンカー抗体の存在下で一晩インキュベートした後、ビオチン標識ＩＩＩ型ＰＶへの結合について免疫蛍光によって分析した。Ａｌｅｘａ−Ｆｌｕｏｒ  ４８８ストレプトアビジンを用いてＰＶを検出し、共焦点顕微鏡で分析した。核をＤＡＰＩで染色した。スケールバー＝５μｍ。この実験で単離された７種のハイブリドーマ集団の全ては、ＬＣＸ  ＢＧＳ融合パートナー細胞株及び８Ｃ５  ＢＧＳハイブリドーマ（狂犬病糖タンパク質に特異的なＩｇＧを発現する）を除いて、それらの細胞の多くの周辺で緑色シグナルを示した。細胞の多くは、細胞の一方の極にキャップ様構造でＰＶを付着した。ＰＶの画像の各々において、細胞のいくつかは、それらが強陽性細胞に隣接していた場合でさえ、結合を示さず、示された条件（過剰のＲＡＨを含む）がハイブリドーマが分泌しなかったｍＡｂに結合することを妨げるのに十分であることを示した。
【０２１０】
本発明者らは、更に、これらのハイブリドーマを分析して、フローサイトメトリーによってそれらのＰＶ結合のレベルを評価した。図２５は、抗ＰＶ  ＩｇＧ  ｍＡｂを分泌するＩＩＩ型ＰＶ結合ＯＣＭＳハイブリドーマのフローサイトメトリー分析を示す９枚の白黒フローサイトメトリーヒストグラムを示す。ヒトＰＶ  ｍＡｂを分泌するハイブリドーマを、ビオチン標識ＩＩＩ型ＰＶへの結合についてフローサイトメトリーにより分析した。ＡＰＣ標識ストレプトアビジンを使用してＰＶを検出した。ＰＶハイブリドーマ中の細胞の大部分は、陰性対照ＬＣＸ  ＢＧＳ及び８Ｃ５  ＢＧＳ細胞株に比べて、いくらかの結合を示した。
【０２１１】
次に、本発明者らは、アンカーの存在の代理としてＲＡＨ結合を使用して、機能的アンカー分子部分の存在についてハイブリドーマを試験した。細胞をＲＡＨと一晩インキュベートした後、本発明者らは、フローサイトメトリーを用いて、ヒトＩｇＧ及びＲＡＨ結合を同時に評価した。図２６は、抗ＰＶ  ｍＡｂを発現するハイブリドーマによるタンデムｓｃＦｖ及びヒトＩｇＧ発現を評価するフローサイトメトリーグラフを示す。図２５で分析した抗ＰＶ−ｍＡｂを発現しているハイブリドーマを、ＲＡＨ（タンデムｓｃＦｖ融合タンパク質の機能的発現の指標）の結合、及び、ヒトＩｇＧの発現について評価した。ＲＡＨとのインキュベーション後、細胞を、アロフィコシアニン結合ＡｆｆｉｎｉＰｕｒｅ  Ｆ（ａｂ’）２断片ヤギ抗ウサギＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）検出試薬を用いてＲＡＨ結合について、並びに、ビオチン化タンパク質Ａ及びＡｌｅｘａ  Ｆｌｏｕｒ  ４８８結合ストレプトアビジン試薬を用いてヒトＩｇＧ結合について評価した。細胞の大部分は、細胞融合後にアンカーの発現を維持し、細胞によって分泌されたヒトＩｇＧを捕捉することができた。各パネルの二重陽性パーセントは：３Ａ３、６３％；５Ｅ１２、４８％；１Ａ９、５６％；５Ｈ３、８２．７％；５Ｆ６、５５％；４Ｇ４、８０％である。クローニング手順の間、これらの細胞は、アンカー及びＲＡＨを介したヒトＩｇＧ又はＰＶ結合について陽性に選択されなかったことに留意されたい。
【０２１２】
従って、ＢＧＳアンカータンパク質と共に、構成的に活性なＩＬ−６受容体ｇｐ１３０  ΔＹＹを発現する細胞株、ＬＣＸ細胞株が作製され、該細胞株は、有用なヒトモノクローナル抗体を分泌する安定なハイブリドーマを作製するために、ヒトＢ細胞との融合パートナーとして有効であることが実証された。更に、クローニング及びスクリーニング手順の間のアンカー発現についての陽性選択なしでさえ、ＬＣＸ  ＢＧＳ融合パートナー細胞株に由来するハイブリドーマは、有意なアンカー発現を維持し、ＯＣＭＳ法を用いた分析に対してそれらを適切なものとした。
【実施例１６】
【０２１３】
普遍的な抗ウイルスＭＡＢスクリーニング方法
上記のとおり、以下は、普遍的な抗ウイルスｍＡｂスクリーニング方法の例を提供する。本明細書に提供される特定の実施例において、狂犬病糖タンパク質ＧＰに特異的なヒトｍＡｂを分泌する８Ｃ５、及び、３型ポリオウイルス（ＰＶ）に結合するヒトｍＡｂを分泌する４Ｇ４の２種のハイブリドーマが示される。ハイブリドーマを洗浄し、ヒトＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）（Ｒｏｃｋｌａｎｄ、カタログ番号８０９−４１０２）及び３型ＰＶ又は狂犬病ＧＰに特異的な過剰のウサギＦＡｂ断片を含有する細胞培養培地中で一晩インキュベートした。それらをＰＢＳ＋ＢＳＡで洗浄し、ＰＢＳ−ＢＳＡ中で１：２００で、ヤギ抗ヒトＩｇＧ  Ｆｃ特異的（Ｊａｃｋｓｏｎ  Ｉｍｍｕｎｏ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ、カタログ番号１０９−５４６−１７０）Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ４８８結合Ｆ（ａｂ）２断片と共に１時間インキュベートした。１時間後、細胞をＰＢＳ−ＢＳＡで３回洗浄し、ＰＢＳ中４％パラホルムアルデヒドで１５分間室温にて固定した。固定後、細胞をＰＢＳで１回、ｄＨ2Ｏで１回洗浄し、次いで、カバーガラスに、ＤＡＰＩ（Ｐ３６９３５、Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を含むＰｒｏＬｏｎｇ（登録商標）Ｇｏｌｄ  Ａｎｔｉｆａｄｅ試薬（Ｐ３６９３５、Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）をマウントし、６３ｘ／１．３  ＮＡオイル対物レンズを有するＣ２＋ニコン共焦点顕微鏡で画像化し、画像をＩｍａｇｅＪソフトウェア（ｈｔｔｐｓ：／／ｉｍａｇｅｊ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ｉｊ／）で分析した。
【０２１４】
図２１において緑色シグナルは、ハイブリドーマ細胞に結合したヒトＩｇＧを示す。４Ｇ４  ｍＡｂについては、ＰＶＩＩＩ型の存在下で、ｔｅｌｌ−ｔａｌｅキャップ構造が形質膜外側上に現れ、これは、ハイブリドーマ表面上の４Ｇ４  ＩｇＧに結合したＰＶによって核形成された免疫複合体である。４Ｇ４は狂犬病ＧＰに結合しないので、ハイブリドーマ表面上のＩｇＧは、細胞核を取り囲むスポットに均一に分布する。逆の状況が８Ｃ５ハイブリドーマで観察される。ＧＰの存在下では、キャップ構造が形成され、これは、ＧＰに特異的な８Ｃ５  ＩｇＧ及びＧＰ自体を含む多価複合体である。ＰＶに暴露された８Ｃ５ハイブリドーマには、キャップは見られない。
【０２１５】
本発明の重要な特徴は、両方のウイルスに特異的なｍＡｂが単一セットの試薬で検出され、いずれの抗原も、使用前に標識又は改変される必要がなく、更なるウイルス特異的免疫試薬は必要とされなかったことである。従って、本発明の一実施形態は、検出試薬及びプロトコルの共通のセットを使用して、ウイルス抗原に特異的なｍＡｂを同定するための普遍的な方法である。
【０２１６】
ポリオウイルス３型（ＰＶ３）特異的ＯＣＭＳハイブリドーマの４Ｇ４−ＯＣＭＳ、又は、抗狂犬病糖タンパク質ＯＣＭＳハイブリドーマ（８Ｃ５  ＯＣＭＳ）細胞を、ウサギ抗ヒトＩｇＧ（Ｈ＋Ｌ）（Ｒｏｃｋｌａｎｄ、カタログ８０９−４１０２）の１μｇ／ｍｌ  Ｆａｂ断片及び１０μＬのＰＶ３（２×１０3ｐｆｕ／ウェル）又は１μｇ／ｍｌの狂犬病糖タンパク質（ＧＰ）を含む１％  Ａｄｖａｎｃｅｄ  ＲＰＭＩ中の２４ウェルプレート中の丸いＣｏｒｎｉｎｇ（商標）ＢｉｏＣｏａｔ（商標）１２ｍｍ  ＃１  Ｇｅｒｍａｎ  Ｇｌａｓｓ  Ｃｏｖｅｒｓｌｉｐｓ（Ｃｏｒｎｉｎｇ、カタログ３５４０８７）上に細胞５×１０4個／ウェルで蒔いた。このプレートを、ＣＯ2インキュベーター中、３７℃で一晩インキュベートした。翌日、細胞を、１％ＢＳＡを含むＰＢＳ（ＰＢＳ−ＢＳＡ）で３回洗浄し、ヤギ抗ヒトＩｇＧ  Ｆｃ特異的（Ｊａｃｋｓｏｎ  Ｉｍｍｕｎｏ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ、カタログ１０９−５４６−１７０）Ａｌｅｘａ  Ｆｌｕｏｒ  ４８８結合Ｆ（ａｂ）２断片をＰＢＳ−ＢＳＡ中で１：２００希釈して添加し、ＣＯ2インキュベーター中、３７℃で１時間インキュベートした。１時間後、細胞をＰＢＳ−ＢＳＡで３回洗浄し、ＰＢＳ中４％パラホルムアルデヒドで室温にて１５分間固定した。固定後、細胞をＰＢＳで１回、ｄＨ2Ｏで１回洗浄し、次いで、カバーガラスに、ＤＡＰＩ（Ｐ３６９３５、Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を含むＰｒｏＬｏｎｇ（登録商標）Ｇｏｌｄ  Ａｎｔｉｆａｄｅ試薬をマウントし、６３ｘ／１．３  ＮＡオイル対物レンズを有するＣ２＋ニコン共焦点顕微鏡で画像化し、画像をＩｍａｇｅＪソフトウェア（ｈｔｔｐｓ：／／ｉｍａｇｅｊ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／ｉｊ／）で分析した。
【０２１７】
レーザー出力及び画像捕捉時間は、３００〜３，０００の蛍光カウントを与えるために設定される。本発明者らは、最初に局所画素強度最大値を計算し、次いで全ての強度最大値の周りに４個の画素円を描いた。スポットは、ＳｐｏｔＴｏＣｅｌｌ強度（全ウェル計算）、そのコントラスト（隣接画素と比較）、及び、ＤＡＰＩ染色画素（核）からのその距離に基づいて、実数として指名した。データは、肉眼で確認した。最初の研究のために、９６ウェルプレートを使用し、収集されたデータは、ＤＡＰＩ染色された核の数と比較した、各ウェルにおける陽性シグナルの数である。陽性データポイントの数を結合ハイブリドーマと非結合ハイブリドーマについて比較し、スチューデントｔ検定を用いて有意性を計算した。
【０２１８】
使用することができる他の方法は、蛍光を発生させるために分子の対を一緒にする必要がある蛍光共鳴エネルギー移動（ＦＲＥＴ）試薬を使用して系を適合させることを含む42。ＦＲＥＴは、２個の分子が近接しているか否かについての詳細な情報を提供する。細胞又はｍＡｂへの非特異的ウイルス結合が起こり、これが偽陽性率を増加させ得る場合、培養培地は、更なる血清、精製アルブミン、又は、穏やかな界面活性剤などの結合手順の間、このようなバックグラウンドを減少させるために適合できる。
【実施例１７】
【０２１９】
ＭＡＢ分泌ハイブリドーマ上でウイルスマイクロ中和を試験するための方法
治療用ｍＡｂは、それらが臨床開発のために指定できる前に、インビトロでウイルス中和活性を示す必要がある。第１のこのような試験は、典型的には、培養細胞株をウイルスに感染させ、細胞変性作用を予防するｍＡｂの能力を測定するマイクロ中和試験である。20、43ＯＣＭＳ  ｍＡｂクローニング方法の利点の１つは、組換えｍＡｂ発現を必要とせずに、マイクロ中和アッセイで試験することができる全長ＩｇＧを安定的に産生することである。普遍的な抗ウイルスｍＡｂクローニングアッセイの必須のコンパニオンは、ウイルス中和を試験するために使用できる細胞株のパネルである。ＯＣＭＳハイブリドーマ自体がウイルス中和を試験するために使用されるならば、有利であろう。
【０２２０】
ｍＡｂｓの抗ウイルス中和活性を評価するために、それらを分泌するハイブリドーマを保護するそれらの能力をアッセイする。最初に本発明者らは、ハイブリドーマをウイルス誘導殺傷に対して感受性にする。次に、ｍＡｂ分泌ハイブリドーマを希釈系列のウイルスと共にインキュベートする。いずれかの生きているハイブリドーマは、中和ｍＡｂを分泌すると推定される。この概念は、白血球マーカーＰＳＧＬ−１を介して細胞に感染するエンテロウイルス７１（ＰＶ関連）の研究で最初に発生した。ＰＳＧＬ−１は本発明者らのハイブリドーマによっても発現される。本発明者らは、ＥＶ７１が３日間のインキュベーション期間にわたってＯＣＭＳハイブリドーマを死滅させるが、ＰＶは死滅させないことを見出した。ＬＣＸ  ＯＣＭＳ細胞株におけるＥＶ７１のＰＶに対する細胞毒性を比較する２４時間の実験において、本発明者らは、Ｆｉｘａｂｌｅ  Ｖｉａｂｉｌｉｔｙ  ｄｙｅ  ｅＦｌｕｏｒ  ７８０（ｅＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅ）を用いて細胞死を検出した。ＥＶ７１処理細胞の２５％が死滅したのに対し、モック処理細胞及びＰＶ暴露細胞は、各々６％及び４％であった。
【０２２１】
本発明者らは、ヒト抗ＰＶ  ｍＡｂを発現するハイブリドーマにＰＶ受容体（ＣＤ１５５）を導入し、細胞生存率がｍＡｂ中和力価と相関するか否かを試験する。本発明者らは、Ｏｐｅｒｅｔｔａ  Ｈｉｇｈ−Ｃｏｎｔｅｎｔ  Ｉｍａｇｉｎｇ  Ｓｙｓｔｅｍを用いてこの検出方法を最適化する。
【実施例１８】
【０２２２】
ウイルス性細胞変性効果を検出するための手順
ウイルスの細胞への感染能は、多数の因子、とりわけ、細胞表面上のウイルスに対する受容体の存在、及び、感染した細胞のサイトカイン応答に起因する44。ＥＶ７１誘導殺傷に対するＬＣＸ  ＯＣＭＳ細胞株の感受性は、それらがヒトＰＶ受容体（ｈＰＶＲ、ＣＤ１５５）を発現した場合、それらも殺傷されることを示唆する45。本発明者らは、レトロウイルス遺伝子形質導入を用いてＬＣＸ  ＯＣＭＳ細胞中でＣＤ１５５を発現させ、２ｌｏｇの範囲内のＣＤ１５５発現の６種の細胞クローンのパネルを単離する。本発明者らは、上記のＯｐｅｒｅｔｔａアッセイを用いてＰＶ感染についてこれらを試験し、ＣＤ１５５発現及びＰＶ用量（５０％組織培養感染用量、ＴＣＩＤ５０）の最適レベルを同定する。次いで本発明者らは、既知の中和能力を有するヒトＰＶ  ｍＡｂのパネル（９Ｈ２、８Ｈ４、７Ｅ２、及び、対照ｍＡｂ、６Ａ）22、20、46を、先に説明したとおり、１ｍｇ／ｍｌストックからの希釈系列において試験し、Ｋａｒｂｅｒ式を使用して中和力価を計算する46、47。
【０２２３】
次いで本発明者らは、ＣＤ１５５発現を、その最適レベルで、９Ｈ２、８Ｈ４、７Ｅ２、及び、６Ａハイブリドーマに導入する。９６ウェルプレートに蒔いたＣＤ１５５発現細胞を、希釈系列のウイルスの存在下で細胞変性について評価し、各々の細胞株についてＴＣＩＤ５０を計算する46、47。ＴＣＩＤ５０値は、従来のマイクロ中和試験を用いて得られたｍＡｂ中和力価と相関する。ＴＣＩＤ５０値はまた、（ａ）新鮮に洗浄されたハイブリドーマ、対、一晩インキュベートされたハイブリドーマ（低対高初期ｍＡｂ濃度）と、（ｂ）低密度対高密度でプレートされたハイブリドーマとを比較するために、異なるプロトコル下でハイブリドーマについて測定される。
【０２２４】
実施例１７〜１８は、ＯＣＭＳハイブリドーマの効率がウイルス中和試験のためにｍＡｂ発現ハイブリドーマ自体を使用することによって最大化できるか否かを示す。ハイブリドーマがｈＰＶＲの発現にもかかわらず、ＰＶによって致死的に感染されない場合、本発明者らは、細胞のＥＶ７１感染を用いて同じ実験を行う。細胞殺傷の分析は、Ｏｐｅｒｅｔｔａシステム（ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ）を用いて、又は、顕微鏡検査によって行われる。
【実施例１９】
【０２２５】
ＯＣＭＳプラットフォームは、ＭＡＢ構造及び機能を遺伝的に最適化するために適合される。
本明細書で同定されるヒトｍＡｂは、優れた抗ウイルス治療薬候補である可能性が高い。にもかかわらず、ｍＡｂの安定性、発現レベル、結合動力学、又は、結合特異性を改善するために、ヒトｍＡｂを改変することが重要な場合がある。ＯＣＭＳプラットフォームのハイスループットスクリーニング能力を使用して、本発明者らは、クローニングされたｍＡｂの指向性進化、即ち、突然変異誘発、続いて改善されたｍＡｂ変異体の選択を行う。
【０２２６】
体細胞超変異による抗体多様化の自然なメカニズムは、ＤＮＡ修飾タンパク質である活性化誘導シチジンデアミナーゼ（ＡＩＤ）の発現を介して、いずれかの細胞において誘導することができる39。本発明者らは、本明細書で参照されるヒトｍＡｂの能力を改善するためのシステムを確立する。ｍＡｂ発現ハイブリドーマにおいて、本発明者らは、タモキシフェン曝露によって活性化できる融合タンパク質としてＡＩＤを発現する。次いで、本発明者らは、ＡＩＤ発現を活性化し、結果として生じる変異ｍＡｂの結合活性を分析する。本発明者らは、本発明者らの実験モデルとして、ポリオウイルス株への交差反応性ｍＡｂ結合を使用する。この指向性進化実験では、本発明者らは、ハイブリドーマ細胞集団を処理し、次いで細胞集団を標識ＰＶビリオンと混合し、フローサイトメトリーを使用してそれらを分析して、改善されたＰＶ結合能力を有するクローンを同定する。突然変異クローンをＩｇ遺伝子配列決定により分析する。
【０２２７】
（ａ）タモキシフェンの存在下で抗体遺伝子変異を活性化することができるＡＩＤ−エストロゲン受容体融合タンパク質（ＡＩＤ−ＥＲ）を発現するレトロウイルス遺伝子構築物。
【０２２８】
本発明者らは、Ｄｏｉらの研究に基づいて、タモキシフェン処理によりＩｇ遺伝子に体細胞超変異を誘導することができる、公表されたＡＩＤ−ＥＲ融合タンパク質を発現するＤＮＡを合成する48。この構築物はＧＦＰカセットを含み、ベクターｐＢａｂｅ  Ｐｕｒｏ（Ａｄｄｇｅｎｅプラスミド＃１７６４）を使用して、線維芽細胞に導入される22。本発明者らは、ＥＲドメインに対する抗体を用いた免疫蛍光染色を用いて、線維芽細胞におけるＡＩＤ−ＥＲ融合タンパク質の局在を決定する。本発明者らは、このタンパク質が未処理の状態において、主に細胞質内に位置することを確認し、このタンパク質の核への移動を誘導するための最適な濃度及び時間経過を決定する。
【０２２９】
（ｂ）ＡＩＤ−ＥＲは、タモキシフェン処理により細胞質から核へ移動する。
【０２３０】
本発明者らは、抗ウイルスｍＡｂを発現するハイブリドーマにおいてＡＩＤ−ＥＲ遺伝子を発現し、タモキシフェン処理中の遺伝子突然変異の動態を確立する。ヒトｍＡｂを発現するハイブリドーマ細胞におけるＡＩＤ−ＥＲの活性を試験するために、本発明者らは、レンチウイルス遺伝子導入を用いて、以下のハイブリドーマ細胞株にＡＩＤ−ＥＲ遺伝子を導入する。この遺伝子は全て、ヒトｍＡｂをセービンＰＶ株に特異的とする。本発明者らは、突然変異誘発性変化について容易に評価することができる特有の結合活性を有するＩｇＧ  ｍＡｂを発現するハイブリドーマを選択した。２Ｈ５は、セービン１型及び２型に対して低い親和性結合及び中和活性を有する20。９Ｈ２は、セービン１型、２型及び３型に一般的な線状エピトープと結合するが、セービン３との結合は、やや少ない46。７Ｅ５及び８Ｈ４は、両方ともセービン１型及び２型のみに結合し、それらが非常に類似しており、それらの抗原結合ドメインにおいて３個のＡＡのみが異なるため、興味深い。特にそれらは、セービン１型ＰＶ上の同じエピトープに結合するが、セービン２型上の異なったエピトープに結合する46。本発明者らは、ピューロマイシン選択トランスファーベクターｐＣＤＨ−ＥＦ１−ＦＨＣ（Ａｄｄｇｅｎｅ  ＃６４８７４）49を用いて細胞集団を作製し、次いで免疫蛍光法及びウエスタンブロット法によるＡＩＤ−ＥＲ発現の評価のために個々のクローンを単離する。
【０２３１】
ハイブリドーマを異なる用量及びスケジュールでタモキシフェンで処理し、フローサイトメトリー及び精製したＡｌｅｘａ−Ｆｌｕｏｒ標識セービン１、２及び３ビリオンを用いてＰＶ結合活性について集団を試験する。この種の実験のためのモデルは、Ｂｏｗｅｒｓらに示されている38。本発明者らは、最初に、ＰＶ結合活性を失ったサブクローンの生成について高結合性ハイブリドーマを試験し、単位時間（例えば、時間、日、細胞分裂）当たりに生じる非結合性クローンの数を測定する。次いで、これらの集団におけるＩｇ遺伝子のディープシーケンシングを行って同義及び非同義突然変異の割合を経時的に計算し、この割合を将来の研究のためのベースラインとして使用する。
【０２３２】
本発明者らは、一連の機能獲得実験（指向性進化）を行って、現実世界の薬物発見努力をモデル化し、ｍＡｂ改善に必要な突然変異処理／割合を確立する。例えば、本発明者らは、ＰＶ１型及び２型に対する２Ｈ５の結合親和性と、ＰＶ３型に対する９Ｈ２の結合親和性とを増加させることを試みる。本発明者らは、改善された１型及び２型結合活性を有するサブクローンを同定するために、７Ｅ５及び８Ｈ４  ｍＡｂについて同様の実験を行う。これらの実験の全てについて、本発明者らは、集団をディープシーケンシングして、ベースライン変異率が予想されたものから変化するか否かを決定し、改善されたｍＡｂクローンを単離及び配列決定する。データは、ＩＧＭＴデータベース中の参照Ｉｇ配列を使用し、更にＲｅｐ−ｓｅｑ（Ｉｇ配列解析）ソフトウェアスイートを用いて解析される50。
【０２３３】
これらの実験は、天然の体細胞超突然変異プロセスを使用し、ＯＣＭＳ  ｍＡｂクローニングプラットフォームを使用して、稀な、改善された異常値を単離する、ヒト抗体の指向性進化のための基本的パラメーターを確立する。別の実施形態では、本発明者らは、全長ＡＩＤを試験する。異常サブクローンを直ちにＩｇ遺伝子配列決定及び組換え法で発現に供する。もしＡＩＤ−ＥＲが漏出性で、望ましくないときに突然変異を引き起こすならば、ドキシサイクリン誘導性プロモーターの制御下にある構築物にこの遺伝子を導入し、ＡＩＤ活性を２段階に制御する。
【０２３４】
米国仮特許出願第６２／４７６，５９９号及び第６２／５２６，６０８号を含む、各々及び全ての特許、特許出願及び明細書、並びに本明細書全体を通して引用されるウェブサイトを含む刊行物、並びに本明細書及び配列表において特定される配列は、参照により本明細書に組み込まれる。特定の実施形態を参照して本発明を説明してきたが、本発明の趣旨から逸脱することなく改変を行うことができることが理解されよう。そのような改変は、添付の特許請求の範囲の範囲内にあることを意図する。
【０２３５】
（配列表フリーテキスト）
以下の情報は、数値識別子＜２２３＞の下のフリーテキストを含む配列について提供される。
【０２３６】
【表４−１】
2020515288.tif 000005
【０２３７】
【表４−２】
2020515288.tif 000006
【０２３８】
【表４−３】
2020515288.tif 000007
【０２３９】
参考文献
１．Ｚｈｏｕ  Ｃ，ｅｔ  ａｌ．“Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  ｏｆ  ａ  ｎｏｖｅｌ  ｍａｍｍａｌｉａｎ  ｃｅｌｌ  ｓｕｒｆａｃｅ  ａｎｔｉｂｏｄｙ  ｄｉｓｐｌａｙ  ｐｌａｔｆｏｒｍ”，ｍＡｂｓ（２０１０），２：５，５０８−５１８，ＤＯＩ：１０．４１６１／ｍａｂｓ．２．５．１２９７０．
２．Ｍｃｋｉｎｎｅｙ，ＫＬ  ｅｔ  ａｌ．，“Ｍａｎｉｐｕｌａｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｈｅｔｅｒｏｇｅｎｅｏｕｓ  Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ  Ｃｕｌｔｕｒｅｓ  ｆｏｒ  Ｏｖｅｒｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ”，Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ  Ｐｒｏｇ．（１９９１  Ｓｅｐ−Ｏｃｔ），７（５）：４４５−５４．
３．Ｐｒｉｃｅ，ＰＷ  ｅｔ  ａｌ．“Ｅｎｇｉｎｅｅｒｅｄ  ｃｅｌｌ  ｓｕｒｆａｃｅ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｏｆ  ｍｅｍｂｒａｎｅ  ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ  ａｓ  ａ  ｍｅａｎｓ  ｔｏ  ｉｄｅｎｔｉｆｙ  ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  ａｎｔｉｂｏｄｙ−ｓｅｃｒｅｔｉｎｇ  ｈｙｂｒｉｄｏｍａｓ．”Ｊ  Ｉｍｍｕｎｏｌ  Ｍｅｔｈｏｄｓ．（２００９  Ｍａｒ  ３１）；３４３（１）：２８−４１
４．Ｋｕｍａｒ  Ｎ，Ｂｏｒｔｈ  Ｎ，“Ｆｌｏｗ−ｃｙｔｏｍｅｔｒｙ  ａｎｄ  ｃｅｌｌ  ｓｏｒｔｉｎｇ：ａｎ  ｅｆｆｉｃｉｅｎｔ  ａｐｐｒｏａｃｈ  ｔｏ  ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅ  ｐｒｏｄｕｃｔｉｖｉｔｙ  ａｎｄ  ｃｅｌｌ  ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ  ｉｎ  ｍａｍｍａｌｉａｎ  ｃｅｌｌ  ｆａｃｔｏｒｉｅｓ”，Ｍｅｔｈｏｄｓ（２０１２  Ｍａｒ）；５６（３）：３６６−７４．ｄｏｉ：１０．１０１６／ｊ．ｙｍｅｔｈ．２０１２．０３．００４．
５．Ｄｏｂｓｏｎ，Ｌ  ｅｔ  ａｌ．，“Ｔｈｅ  ｈｕｍａｎ  ｔｒａｎｓｍｅｍｂｒａｎｅ  ｐｒｏｔｅｏｍｅ”，Ｂｉｏｌ  Ｄｉｒｅｃｔ．２０１５  Ｍａｙ  ２８；１０：３１．ｄｏｉ：１０．１１８６／ｓ１３０６２−０１５−００６１−ｘ．ＰＭＩＤ：２６０１８４２７．
６．Ｔｈｅ  ｗｅｂｓｉｔｅ  ｆｏｒ  ｔｈｅ  Ｈｕｍａｎ  Ｔｒａｎｓｍｅｍｂｒａｎｅ  Ｐｒｏｔｅｏｍｅ  ｄａｔａｂａｓｅ，ｄａｔａｂａｓｅ  ｖｅｒｓｉｏｎ：ｄ．１．４，ｄａｔｅｄ  Ｊｕｎｅ  ２４，２０１６  ａｔ  ａｄｄｒｅｓｓ  ｈｔｔｐ：／／ｈｔｐ．ｅｎｚｉｍ．ｈｕ．
７．米国特許第７，９０６，１１１号
８．Ｋｈａｎ，ＫＨ，“Ｇｅｎｅ  Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｉｎ  Ｍａｍｍａｌｉａｎ  Ｃｅｌｌｓ  ａｎｄ  ｉｔｓ  Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ”，Ａｄｖ．Ｐｈａｒｍ  Ｂｕｌｌ，（２０１３  Ｄｅｃ）３９２）：２５７−２６３；
９．Ｇｒｅｅｎ  ＭＲ  ａｎｄ  Ｓａｍｂｒｏｏｋ  Ｊ，“Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ”，２０１２  Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ
１０．Ｍａｎｊｕｎａｔｈ  Ｎ  ｅｔ  ａｌ，Ａｄｖ．Ｄｒｕｇ  Ｄｅｌｉｖ．Ｒｅｖ．，（２００９）６１（９）：７３２−７４５
１１．Ｓａｍｂｒｏｏｋ  ｅｔ  ａｌ，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｐｒｅｓｓ，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ，ＮＹ
１２．Ｔｉｓｃｏｒｎｉａ  Ｇ  ｅｔ  ａｌ，“Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｌｅｎｔｉｖｉｒａｌ  ｖｅｃｔｏｒｓ．”Ｎａｔｕｒｅ  ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ（２００６）１：２４１−２４５；
１３．Ｄｅｓｓａｉｎ  ＳＫ  ｅｔ  ａｌ．，“Ｈｉｇｈ  ｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ  ｃｒｅａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  ａｎｔｉｂｏｄｙ−ｐｒｏｄｕｃｉｎｇ  ｈｙｂｒｉｄｏｍａｓ．”，Ｊ  Ｉｍｍｕｎｏｌ  Ｍｅｔｈｏｄｓ（２００４）２９１：１０９−１２２；
１４．Ｇａｒｒｙ  Ｎｏｌａｎ，ｈｔｔｐｓ：／／ｗｗｗ．ａｄｄｇｅｎｅ．ｏｒｇ／１７３０／．
１５．Ｖｉｔａｌｅ  ＬＡ  ｅｔ  ａｌ．，“Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  ｏｆ  ａ  ｈｕｍａｎ  ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  ａｎｔｉｂｏｄｙ  ｆｏｒ  ｐｏｔｅｎｔｉａｌ  ｔｈｅｒａｐｙ  ｏｆ  ＣＤ２７−ｅｘｐｒｅｓｓｉｎｇ  ｌｙｍｐｈｏｍａ  ａｎｄ  ｌｅｕｋｅｍｉａ．”Ｃｌｉｎ  Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ（２０１２），１８：３８１２−３８２１（２０１２）
１６．Ｗａｌｋｅｒ  Ｃ  ｅｔ  ａｌ，“Ｔ  ｃｅｌｌ  ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ  ｂｙ  ｃｒｏｓｓ−ｌｉｎｋｉｎｇ  ａｎｔｉ−ＣＤ３  ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ  ｗｉｔｈ  ｓｅｃｏｎｄ  ａｎｔｉ−Ｔ  ｃｅｌｌ  ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：ｄｕａｌ  ａｎｔｉｂｏｄｙ  ｃｒｏｓｓ−ｌｉｎｋｉｎｇ  ｍｉｍｉｃｓ  ｐｈｙｓｉｃａｌ  ｍｏｎｏｃｙｔｅ  ｉｎｔｅｒａｃｔｉｏｎ．”Ｅｕｒ  Ｊ  Ｉｍｍｕｎｏｌ（１９８７），１７：１６１１−１６１８
１７．Ｍｅｒｌｅ，ＮＳ  ｅｔ  ａｌ．“Ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ  Ｓｙｓｔｅｍ  Ｐａｒｔ  Ｉ  −  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ  ｏｆ  Ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ  ａｎｄ  Ｒｅｇｕｌａｔｉｏｎ．”Ｆｒｏｎｔｉｅｒｓ  ｉｎ  Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ（２０１５），６：２６２
１８．Ｔａｙｌｏｒ，ＲＰ  ｅｔ  ａｌ，“Ｔｈｅ  ｒｏｌｅ  ｏｆ  ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔ  ｉｎ  ｍＡｂ−ｂａｓｅｄ  ｔｈｅｒａｐｉｅｓ  ｏｆ  ｃａｎｃｅｒ．”Ｍｅｔｈｏｄｓ（２０１４）６５：１８−２７
１９．Ｓｏｍｍｅｒ  Ｊ  ｅｔ  ａｌ．，“Ｃｏｎｓｔｉｔｕｔｉｖｅｌｙ  ａｃｔｉｖｅ  ｍｕｔａｎｔ  ｇｐ１３０  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｐｒｏｔｅｉｎ  ｆｒｏｍ  ｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙ  ｈｅｐａｔｏｃｅｌｌｕｌａｒ  ａｄｅｎｏｍａ  ｉｓ  ｉｎｈｉｂｉｔｅｄ  ｂｙ  ａｎ  ａｎｔｉ−ｇｐ１３０  ａｎｔｉｂｏｄｙ  ｔｈａｔ  ｓｐｅｃｉｆｉｃａｌｌｙ  ｎｅｕｔｒａｌｉｚｅｓ  ｉｎｔｅｒｌｅｕｋｉｎ  １１  ｓｉｇｎａｌｉｎｇ．”Ｊ  Ｂｉｏｌ  Ｃｈｅｍ（２０１２）２８７：１３７４３−１３７５１．
２０．Ｐｕｌｉｇｅｄｄａ  ＲＤ  ｅｔ  ａｌ．，“Ｈｕｍａｎ  ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ  ｔｈａｔ  ｎｅｕｔｒａｌｉｚｅ  ｖａｃｃｉｎｅ  ａｎｄ  ｗｉｌｄ−ｔｙｐｅ  ｐｏｌｉｏｖｉｒｕｓ  ｓｔｒａｉｎｓ．”Ａｎｔｉｖｉｒａｌ  Ｒｅｓ（２０１４），１０８：３６−４３，Ｅｐｕｂ  ２０１４／０５／１６．
２１．米国特許第８，５５７，５７５号
２２．Ａｄｅｋａｒ  ＳＰ  ｅｔ  ａｌ．，“Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ  ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ  ｅｎｒｉｃｈｅｄ  ｆｏｒ  ａｆｆｉｎｉｔｙ−ｍａｔｕｒｅｄ  ｈｕｍａｎ  ＩｇＧｓ  ｙｉｅｌｄ  ｈｉｇｈ−ａｆｆｉｎｉｔｙ  ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ  ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｆｏｒ  ｂｏｔｕｌｉｎｕｍ  ｎｅｕｒｏｔｏｘｉｎｓ．”Ｊ  Ｉｍｍｕｎｏｌ  Ｍｅｔｈｏｄｓ（２００８），３３３：１５６−１６６．Ｅｐｕｂ  ２００８／０３／０４．
２３．Ｙｕ  Ｘ  ｅｔ  ａｌ，“Ａｎ  ｏｐｔｉｍｉｚｅｄ  ｅｌｅｃｔｒｏｆｕｓｉｏｎ−ｂａｓｅｄ  ｐｒｏｔｏｃｏｌ  ｆｏｒ  ｇｅｎｅｒａｔｉｎｇ  ｖｉｒｕｓ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｈｕｍａｎ  ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ．”Ｊ  Ｉｍｍｕｎｏｌ  Ｍｅｔｈｏｄｓ（２００８  Ｊｕｌ  ３１）３３６（２）：１４２−５１
２４．Ｇｒｅｅｎｆｉｅｌｄ  ＥＡ，“Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ．”Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ，ＮＹ，ｅｄ．２ｎｄ（２０１４）
２５．Ｍｏｍｐｏ  ＳＭ，Ａ．Ｇｏｎｚａｌｅｚ−Ｆｅｒｎａｎｄｅｚ，“Ａｎｔｉｇｅｎ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｈｕｍａｎ  ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ  ｆｒｏｍ  ｔｒａｎｓｇｅｎｉｃ  ｍｉｃｅ．”Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ｍｏｌ  Ｂｉｏｌ（２０１４）１０６０：２４５−２７６
２６．Ｓｐｉｅｋｅｒ−Ｐｏｌｅｔ  Ｈ  ｅｔ  ａｌ，“Ｒａｂｂｉｔ  ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：ｇｅｎｅｒａｔｉｎｇ  ａ  ｆｕｓｉｏｎ  ｐａｒｔｎｅｒ  ｔｏ  ｐｒｏｄｕｃｅ  ｒａｂｂｉｔ−ｒａｂｂｉｔ  ｈｙｂｒｉｄｏｍａｓ．”Ｐｒｏｃ  Ｎａｔｌ  Ａｃａｄ  Ｓｃｉ  Ｕ  Ｓ  Ａ（１９９５）９２：９３４８−９３５２
２７．Ｈｏｅｈｎ  ＫＢ  ｅｔ  ａｌ，“Ｔｈｅ  Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ  ａｎｄ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｂ−Ｃｅｌｌ  Ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ  ｄｕｒｉｎｇ  Ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ．”Ｍｏｌ  Ｂｉｏｌ  Ｅｖｏｌ（２０１６）３３：１１４７−１１５７
２８．Ｒａｖｅｔｃｈ  ＪＶ，Ｂｏｌｌａｎｄ  Ｓ，“ＩｇＧ  Ｆｃ  ｒｅｃｅｐｔｏｒｓ．”Ａｎｎｕ  Ｒｅｖ  Ｉｍｍｕｎｏｌ（２００１）１９：２７５−２９０．
２９．Ｃｈａｔｔｏｐａｄｈｙａｙ  ＰＫ，ｅｔ  ａｌ，“Ｌｉｖｅ−ｃｅｌｌ  ａｓｓａｙ  ｔｏ  ｄｅｔｅｃｔ  ａｎｔｉｇｅｎ−ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ＣＤ４＋  Ｔ−ｃｅｌｌ  ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ  ｂｙ  ＣＤ１５４  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ．”Ｎａｔｕｒｅ  ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ（２００６）１：１−６．
３０．Ｋｏｈｌｅｒ  Ｇ，Ｍｉｌｓｔｅｉｎ  Ｃ，“Ｃｏｎｔｉｎｕｏｕｓ  ｃｕｌｔｕｒｅｓ  ｏｆ  ｆｕｓｅｄ  ｃｅｌｌｓ  ｓｅｃｒｅｔｉｎｇ  ａｎｔｉｂｏｄｙ  ｏｆ  ｐｒｅｄｅｆｉｎｅｄ  ｓｐｅｃｉｆｉｃｉｔｙ．”Ｎａｔｕｒｅ（１９７５）２５６：４９５−４９７．
３１．Ｚｈｕ  Ｙ，ｅｔ  ａｌ．，“Ｉｍｐｒｏｖｅｄ  ｆｕｓｉｏｎ  ｐａｒｔｎｅｒｓ  ｔｒａｎｓｆｅｃｔｅｄ  ｗｉｔｈ  ＤＮＡ  ｆｒａｇｍｅｎｔ  ｅｎｃｏｄｉｎｇ  ＩＬ−１１  ｏｎ  ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  Ｂ  ｌｙｍｐｈｏｃｙｔｅ  ｈｙｂｒｉｄｏｍａｓ．”Ｈｕｍ  Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ（１９９９），９：１−７．
３２．Ｈａｒｒｉｓ  ＪＦ，ｅｔ  ａｌ，“Ｉｎｃｒｅａｓｅｄ  ｆｒｅｑｕｅｎｃｙ  ｏｆ  ｂｏｔｈ  ｔｏｔａｌ  ａｎｄ  ｓｐｅｃｉｆｉｃ  ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  ａｎｔｉｂｏｄｙ  ｐｒｏｄｕｃｉｎｇ  ｈｙｂｒｉｄｏｍａｓ  ｕｓｉｎｇ  ａ  ｆｕｓｉｏｎ  ｐａｒｔｎｅｒ  ｔｈａｔ  ｃｏｎｓｔｉｔｕｔｉｖｅｌｙ  ｅｘｐｒｅｓｓｅｓ  ｒｅｃｏｍｂｉｎａｎｔ  ＩＬ−６．”Ｊ  Ｉｍｍｕｎｏｌ  Ｍｅｔｈｏｄｓ（１９９２），１４８：１９９−２０７．
３３．Ｆｌｙａｋ  ＡＩ，ｅｔ  ａｌ．，Ｍｅｃｈａｎｉｓｍ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ａｎｔｉｂｏｄｙ−ｍｅｄｉａｔｅｄ  ｎｅｕｔｒａｌｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｍａｒｂｕｒｇ  ｖｉｒｕｓ．Ｃｅｌｌ．２０１５；１６０（５）：８９３−９０３．Ｅｐｕｂ  ２０１５／０２／２８．
３４．Ｊｉｎ  Ｙ，ｅｔ  ａｌ．Ｈｕｍａｎ  ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ  ａｓ  ｃａｎｄｉｄａｔｅ  ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ  ａｇａｉｎｓｔ  ｅｍｅｒｇｉｎｇ  ｖｉｒｕｓｅｓ．Ｆｒｏｎｔ  Ｍｅｄ．２０１７；１１（４）：４６２−７０
３５．Ｄｅｓｓａｉｎ  ＳＫ，ｅｔ  ａｌ．Ｅｘｐｌｏｒｉｎｇ  ｔｈｅ  ｎａｔｉｖｅ  ｈｕｍａｎ  ａｎｔｉｂｏｄｙ  ｒｅｐｅｒｔｏｉｒｅ  ｔｏ  ｃｒｅａｔｅ  ａｎｔｉｖｉｒａｌ  ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ．Ｃｕｒｒ  Ｔｏｐ  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌ  Ｉｍｍｕｎｏｌ．２００８；３１７：１５５−８３．
３６．Ｔｉｌｌｅｒ  Ｔ，ｅｔ  ａｌ．Ｅｆｆｉｃｉｅｎｔ  ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ  ｆｒｏｍ  ｓｉｎｇｌｅ  ｈｕｍａｎ  Ｂ  ｃｅｌｌｓ  ｂｙ  ｓｉｎｇｌｅ  ｃｅｌｌ  ＲＴ−ＰＣＲ  ａｎｄ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｖｅｃｔｏｒ  ｃｌｏｎｉｎｇ．Ｊ  Ｉｍｍｕｎｏｌ  Ｍｅｔｈｏｄｓ．２００８；３２９（１−２）：１１２−２４．Ｅｐｕｂ  ２００７／１１／１３．
３７．Ｓｍｉｔｈ  ＳＡ，Ｃｒｏｗｅ  ＪＥ，Ｊｒ．Ｕｓｅ  ｏｆ  Ｈｕｍａｎ  Ｈｙｂｒｉｄｏｍａ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  Ｔｏ  Ｉｓｏｌａｔｅ  Ｈｕｍａｎ  Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ．Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ  ｓｐｅｃｔｒｕｍ．２０１５；３（１）．Ｅｐｕｂ  ２０１５／０６／２５．ＰｕｂＭｅｄ  ＰＭＩＤ：２６１０４５６４．
３８．Ｂｏｗｅｒｓ  ＰＭ，ｅｔ  ａｌ．Ｍａｍｍａｌｉａｎ  ｃｅｌｌ  ｄｉｓｐｌａｙ  ｆｏｒ  ｔｈｅ  ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ  ａｎｄ  ｏｐｔｉｍｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  ａｎｔｉｂｏｄｙ  ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ．Ｍｅｔｈｏｄｓ．２０１４；６５（１）：４４−５６．Ｅｐｕｂ  ２０１３／０６／２５．
３９．Ｐａｖｒｉ  Ｒ，Ｎｕｓｓｅｎｚｗｅｉｇ  ＭＣ．ＡＩＤ  ｔａｒｇｅｔｉｎｇ  ｉｎ  ａｎｔｉｂｏｄｙ  ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ．Ａｄｖ  Ｉｍｍｕｎｏｌ．２０１１；１１０：１−２６．
４０．Ｒｏｍａｎｉ  Ｂ，ｅｔ  ａｌ．Ａｎｔｉｂｏｄｙ  ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ  ｂｙ  ｉｎ  ｖｉｖｏ  ＲＮＡ  ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ．Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ  ｒｅｐｏｒｔｓ．２０１７；７（１）：１０８６３．
４１．Ｌｏｒｅｎｚ  ＣＭ，ｅｔ  ａｌ．Ｔｈｅ  ｅｆｆｅｃｔ  ｏｆ  ｌｏｗ  ｉｎｔｅｎｓｉｔｙ  ｕｌｔｒａｖｉｏｌｅｔ−Ｃ  ｌｉｇｈｔ  ｏｎ  ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ  Ｐｒｏｇ．２００９；２５（２）：４７６−８２．
４２．Ｇａｂｏｒｉｔ  Ｎ，ｅｔ  ａｌ．Ｔｉｍｅ−ｒｅｓｏｌｖｅｄ  ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ  ｒｅｓｏｎａｎｃｅ  ｅｎｅｒｇｙ  ｔｒａｎｓｆｅｒ（ＴＲ−ＦＲＥＴ）ｔｏ  ａｎａｌｙｚｅ  ｔｈｅ  ｄｉｓｒｕｐｔｉｏｎ  ｏｆ  ＥＧＦＲ／ＨＥＲ２  ｄｉｍｅｒｓ：ａ  ｎｅｗ  ｍｅｔｈｏｄ  ｔｏ  ｅｖａｌｕａｔｅ  ｔｈｅ  ｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ  ｏｆ  ｔａｒｇｅｔｅｄ  ｔｈｅｒａｐｙ  ｕｓｉｎｇ  ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ．Ｊ  Ｂｉｏｌ  Ｃｈｅｍ．２０１１；２８６（１３）：１１３３７−４５．Ｅｐｕｂ  ２０１１／０２／０２．
４３．Ｌｅｅ  ＳＳ，ｅｔ  ａｌ．Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  ｏｆ  ａ  ｍｉｃｒｏ−ｎｅｕｔｒａｌｉｚａｔｉｏｎ  ａｓｓａｙ  ｆｏｒ  ｅｂｏｌａｖｉｒｕｓｅｓ  ｕｓｉｎｇ  ａ  ｒｅｐｌｉｃａｔｉｏｎ−ｃｏｍｐｅｔｅｎｔ  ｖｅｓｉｃｕｌａｒ  ｓｔｏｍａｔｉｔｉｓ  ｈｙｂｒｉｄ  ｖｉｒｕｓ  ａｎｄ  ａ  ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅ  ＰＣＲ  ｒｅａｄｏｕｔ．Ｖａｃｃｉｎｅ．２０１７；３５（４１）：５４８１−６．
４４．ＭｃＦａｄｄｅｎ  Ｇ，ｅｔ  ａｌ．Ｃｙｔｏｋｉｎｅ  ｄｅｔｅｒｍｉｎａｎｔｓ  ｏｆ  ｖｉｒａｌ  ｔｒｏｐｉｓｍ．Ｎａｔ  Ｒｅｖ  Ｉｍｍｕｎｏｌ．２００９；９（９）：６４５−５５．
４５．Ｍｅｎｄｅｌｓｏｈｎ  ＣＬ，ｅｔ  ａｌ．Ｃｅｌｌｕｌａｒ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ  ｆｏｒ  ｐｏｌｉｏｖｉｒｕｓ：ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ｃｌｏｎｉｎｇ，ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ  ｓｅｑｕｅｎｃｅ，ａｎｄ  ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｏｆ  ａ  ｎｅｗ  ｍｅｍｂｅｒ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎ  ｓｕｐｅｒｆａｍｉｌｙ．Ｃｅｌｌ．１９８９；５６（５）：８５５−６５．
４６．Ｐｕｌｉｇｅｄｄａ  ＲＤ，ｅｔ  ａｌ．Ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｚａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｈｕｍａｎ  ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ  ｔｈａｔ  ｎｅｕｔｒａｌｉｚｅ  ｍｕｌｔｉｐｌｅ  ｐｏｌｉｏｖｉｒｕｓ  ｓｅｒｏｔｙｐｅｓ．Ｖａｃｃｉｎｅ．２０１７．ｄｏｉ：１０．１０１６／ｊ．ｖａｃｃｉｎｅ．２０１７．０３．０３８．ＰｕｂＭｅｄ  ＰＭＩＤ：２８３４３７７１．
４７．Ｏｒｇａｎｉｚａｔｉｏｎ  ＷＨ．Ｍａｎｕａｌ  ｆｏｒ  ｔｈｅ  ｖｉｒｏｌｏｇｉｃａｌ  ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｐｏｌｉｏ．Ｇｅｎｅｖａ，Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ１９９７．
４８．Ｄｏｉ  Ｔ，ｅｔ  ａｌ．Ｔｈｅ  Ｃ−ｔｅｒｍｉｎａｌ  ｒｅｇｉｏｎ  ｏｆ  ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ−ｉｎｄｕｃｅｄ  ｃｙｔｉｄｉｎｅ  ｄｅａｍｉｎａｓｅ  ｉｓ  ｒｅｓｐｏｎｓｉｂｌｅ  ｆｏｒ  ａ  ｒｅｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ  ｆｕｎｃｔｉｏｎ  ｏｔｈｅｒ  ｔｈａｎ  ＤＮＡ  ｃｌｅａｖａｇｅ  ｉｎ  ｃｌａｓｓ  ｓｗｉｔｃｈ  ｒｅｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ．Ｐｒｏｃ  Ｎａｔｌ  Ａｃａｄ  Ｓｃｉ  Ｕ  Ｓ  Ａ．２００９；１０６（８）：２７５８−６３．
４９．Ｙｏｕｓｅｆｚａｄｅｈ  ＭＪ，ｅｔ  ａｌ．Ｍｅｃｈａｎｉｓｍ  ｏｆ  ｓｕｐｐｒｅｓｓｉｏｎ  ｏｆ  ｃｈｒｏｍｏｓｏｍａｌ  ｉｎｓｔａｂｉｌｉｔｙ  ｂｙ  ＤＮＡ  ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ  ＰＯＬＱ．ＰＬｏＳ  ｇｅｎｅｔｉｃｓ．２０１４；１０（１０）：ｅ１００４６５４．
５０．Ｌｅｆｒａｎｃ  ＭＰ．ＩＭＧＴ，ｔｈｅ  Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  ＩｍＭｕｎｏＧｅｎｅＴｉｃｓ  Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ  Ｓｙｓｔｅｍ．Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂ  Ｐｒｏｔｏｃ．２０１１；２０１１（６）：５９５−６０３．
【図１】
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【図２】
2020515288.tif 000009
【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【図１９】
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【図２０】
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【図２１】
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【図２２Ａ】
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【図２２Ｂ】
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【図２３】
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【図２４】
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【図２５】
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【図２６】
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【配列表】
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【国際調査報告】
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