(57)【要約】本発明は、精製された動物用の富化アレルゲンエキスに関する。特に、本発明は、Ｄｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８に富む動物用精製アレルゲンエキスに関する。本発明はさらに、該アレルゲンエキスの動物用製品としての使用、ならびに、アレルギー、特に哺乳動物、さらに詳しくはイヌのイエダニアレルギーの治療におけるその使用に関する。【選択図】図１
2020529476.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
５０ｋＤａより大きい分子量を有するタンパク質に富む動物用ダニアレルゲンエキス。
【請求項２】
エキスがコナヒョウヒダニから誘導される、請求項１に記載の動物用ダニアレルゲンエキス。
【請求項３】
エキスが、ヒト用エキスと比べてアレルゲンＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８に富み、及び／又は、エキスが、ヒト用エキスと比べて低レベルのアレルゲンＤｅｒ  ｆ  １及びＤｅｒ  ｆ  ２を有する、請求項１又は請求項２に記載の動物用ダニアレルゲンエキス。
【請求項４】
５０％阻害  ＥＬＩＳＡ  ＩｇＥアッセイにおいて、動物用ダニアレルゲンエキスが、ヒト用エキスより少なくとも１．５倍、好ましくは少なくとも２．０倍、最も好ましくは２．０〜２．５倍効力が高い、前記請求項のいずれかに記載の動物用ダニアレルゲンエキス。
【請求項５】
イムノブロットデンシトメトリー分析において、Ｄｅｒ  ｆ  １５の濃度が、ヒト用エキスより少なくとも１．５倍、好ましくは少なくとも２．０倍、最も好ましくは２．０〜３．０倍高い、及び／又はＤｅｒ  ｆ  １８の濃度が、ヒト用エキスより少なくとも１．５倍、好ましくは少なくとも２．０倍、最も好ましくは２．０〜３．５倍高い、前記請求項のいずれかに記載の動物用ダニアレルゲンエキス。
【請求項６】
動物用ダニアレルゲンエキスが、組換えＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８を含み、好ましくはその組換えＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８は、それぞれ非組換えＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８と少なくとも７０％、さらに好ましくは少なくとも８０％、なおさらに好ましくは少なくとも９０％の相同性を有し、動物用ダニアレルゲンエキスが、末梢血単核細胞中のＩＦＮ−γ及びＩＬ−１０の発現をアップレギュレートする、前記請求項のいずれか１項に記載の動物用ダニアレルゲンエキス。
【請求項７】
動物用ダニアレルゲンエキスの製造法であって、
ａ）ダニアレルゲンを含む原料物質をアレルゲン抽出剤と接触させて、液相中に溶解されたアレルゲンと、非アレルゲン残渣を含む固相との混合物を製造し；
ｂ）該混合物を分離工程に付して、液相中に溶解されたアレルゲンを単離して粗アレルゲンエキスを製造し；
ｃ）該粗アレルゲンエキスを中分子画分除去工程に付して、５０ｋＤａ未満のサイズを有する分子を除去し、そして除去工程中１．８ｂａｒの圧力を印加し；
ｄ）工程ｃ）を、３〜５℃で、アレルゲンエキスが１０５０μｓ／ｃｍ未満の導電率を有するまで、及び／又は特定量の蒸留水が使用されるまで実施して、富化アレルゲンエキスを得る
ことを含む方法。
【請求項８】
ダニアレルゲンがコナヒョウヒダニである、請求項７に記載の方法。
【請求項９】
分離工程が遠心分離である、請求項７又は請求項８に記載の方法。
【請求項１０】
中分子画分除去工程が、限外ろ過工程、透析ろ過工程、透析工程、又はろ過を含む、請求項７〜９のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１１】
請求項７〜１０のいずれか１項に記載の方法に従って得られる又は得ることが可能な動物用ダニアレルゲンエキス。
【請求項１２】
原料物質がコナヒョウヒダニである、請求項１１に記載の動物用ダニアレルゲンエキス。
【請求項１３】
動物、好ましくは哺乳動物、さらに好ましくはイヌ及び／又はネコのダニアレルギーの治療に使用するための請求項１〜６、１１又は１２のいずれか１項に定義された動物用ダニアレルゲンエキスであって、この場合、ネコは、イムノブロットアッセイで、分子量が４０ｋＤａより高く、Ｄｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８又は組換えＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８を含む（好ましくは、組換えＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８は、非組換えＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８とそれぞれ少なくとも７０％、さらに好ましくは少なくとも８０％、なおさらに好ましくは少なくとも９０％の相同性を有する）コナヒョウヒダニアレルゲンと反応する血清ＩｇＥ抗体を含む動物用ダニアレルゲンエキス。
【請求項１４】
請求項１〜６、１１又は１２のいずれか１項に記載の動物用ダニアレルゲンエキスを含む医薬組成物。
【請求項１５】
請求項１〜６、１１又は１２のいずれか１項に記載の動物用ダニアレルゲンエキスを含むワクチン。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、精製された動物用の富化アレルゲンエキスに関する。特に、本発明は、Ｄｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８に富む動物用精製アレルゲンエキスに関する。本発明はさらに、該アレルゲンエキスの動物用製品としての使用、ならびに、アレルギー、特に哺乳動物、さらに詳しくはイヌのイエダニアレルギーの治療におけるその使用に関する。
【背景技術】
【０００２】
アトピー性皮膚炎は、イヌのおよそ１０％が罹患する掻痒性アレルギー性皮膚疾患で、環境アレルゲンに対するＩｇＥ抗体の産生に関連する。イヌにおける非季節性アレルギーの主因は、イエダニ（ＨＤＭ）、特にコナヒョウヒダニ(Dermatophagoides farinae)の種である。アレルギーのイヌは、症状をコントロールするための薬物で治療されるが、代替療法は、免疫寛容を誘導することを目的としてアレルゲンエキスを少しずつ増量して投与することを含む特異的免疫療法（ＳＩＴ）などである。アレルゲン免疫療法は、アレルギー反応によって誘発される症状を改善するというより、アレルゲンに対する免疫応答を調節するので、薬物治療の必要性を低減する、症状の重症度を軽減する、又は過敏性を完全に取り除く、のいずれかが可能となる。
【０００３】
ヒト及びイヌのＨＤＭアレルゲンプロフィールに関する重要な差異が報告されている。ヒトの主アレルゲン（Ｄｅｒ  ｆ  １及びＤｅｒ  ｆ  ２）は比較的低分子量のタンパク質であるが、アトピー犬におけるコナヒョウヒダニ(D.farinae)の最も重要なアレルゲン（Ｄｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８）は、ダニの高分子量画分に属するグループ１５及び１８に含まれる。このような差異にも関わらず、イヌのためのアレルゲン特異的免疫療法は常に、ヒトの免疫療法用に開発及び特徴付けされたアレルゲンエキスを用いて直接調製されている。ヒトの免疫療法用に開発及び特徴付けされたアレルゲンエキスでイヌを治療することの一つの問題は、Ｄｅｒ  ｆ  １及びＤｅｒ  ｆ  ２のような、以前は問題を引き起こさなかったアレルゲンに感作される可能性が十分にあることである。
【０００４】
そこで、動物用、特にイヌ用のイエダニに対する特異的免疫療法の開発が求められている。
【発明の概要】
【０００５】
本発明者らは、高分子量画分に富む動物用ダニエキスを開発した。この画分は、ダニに感作されたイヌの血清サンプルによって認識されるアレルゲンを含有している。
本発明の第一の側面において、５０ｋＤａより大きい分子量を有するタンパク質に富む動物用ダニエキスを提供する。
【０００６】
一態様において、動物用ダニエキスは、ヒト用エキスと比べてアレルゲンＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８に富む。
一態様において、該エキスは、ヒト用エキスと比べて、低レベルのアレルゲンＤｅｒ  ｆ  １及びＤｅｒ  ｆ  ２を有する。
【０００７】
本発明の更なる側面において、動物用ダニアレルゲンエキスの製造法を提供し、該方法は、
ａ）動物用ダニアレルゲンを含む原料物質（原料）をアレルゲン抽出剤と接触させて、液相中に溶解されたアレルゲンと、非アレルゲン残渣を含む固相との混合物を製造し；
ｂ）該混合物を分離工程に付して、液相中に溶解されたアレルゲンを単離して粗アレルゲンエキスを製造し；
ｃ）該粗アレルゲンエキスを中分子画分除去工程に付して、５０ｋＤａ未満のサイズを有する分子を除去し、そして除去工程中１．８ｂａｒの圧力を印加し；
ｄ）工程ｃ）を、３〜５℃で、アレルゲンエキスが室温での測定で１０５０μｓ／ｃｍ未満の導電率を有するまで、及び／又は特定量の蒸留水が使用されるまで実施して、精製天然アレルゲンエキス(native allergen extract)を得る
ことを含む。
【０００８】
本発明の第三の側面に従って、アレルギーの治療における活性治療物質として使用するための動物用ダニアレルゲンエキスを提供する。
【図面の簡単な説明】
【０００９】
【図１】図１は、コナヒョウヒダニエキスの１０μｇタンパク質のＳＤＳ−ＰＡＧＥを示す。低領域ＭＷ標準（１）；ヒト用エキス（２）；エキス１（３）；エキス２（４）；及びエキス３（５）。
【図２】図２は、コナヒョウヒダニエキスの１０μｇタンパク質のＡｎｙ  ｋＤ  ＴＧＸゲルでのＳＤＳ−ＰＡＧＥを示す。ＨｉＭａｒｋ予備染色マーカー（Ｌｉｆｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社）（１）；ヒト用エキス（２）；エキス１（３）；エキス２（４）；エキス３（５）；及び広領域ＭＷ標準（Ｂｉｏ−Ｒａｄ社）（６）。
【図３】図３は、浄化手順後のコナヒョウヒダニエキス５μｌのＳＤＳ−ＰＡＧＥを示す。低領域ＭＷ標準（１）；エキス１（２）；エキス２（３）；及びエキス３（４）。
【図４】図４は、コナヒョウヒダニの１７０μｇタンパク質の２Ｄを示す。エキス１（Ａ）；エキス２（Ｂ）；エキス３（Ｃ）；ヒト用エキス（Ｄ）；低領域ＭＷ標準は各ゲル中に示されている。
【図５】図５は、コナヒョウヒダニエキスのクロマトグラフィープロフィールを示す。ヒト用エキス（Ａ）；エキス１（Ｂ）；エキス２（Ｃ）；及びエキス３（Ｄ）。
【図６】図６は、エキス１（Ａ，Ｂ）、エキス２（Ｃ，Ｄ）及びエキス３（Ｅ，Ｆ）動物用エキス由来のＤｅｒ  ｆ  １５（Ａ，Ｃ，Ｅ）（配列番号１）及びＤｅｒ  ｆ  １８（Ｂ，Ｄ，Ｆ）（配列番号２）の配列決定ペプチドを示す。
【図７】図７は、コナヒョウヒダニエキスの１０μｇタンパク質のイムノブロットを示す。低領域ＭＷ標準（１）；ヒト用エキス（２）；エキス１（３）；エキス２（４）及びエキス３（５）。
【図８】図８は、ヒト用（ＰＲＩ  ６７５６ＬＮバッチ）及び動物用（各エキス１、２及び３のそれぞれについて０８０６１６ＬＮ、０９０６１６ＬＮ、２９０６１６ＬＮ）コナヒョウヒダニエキスとインキュベートされたイヌ血清プールの特異的ＩｇＥ光学濃度を示す。
【図９】図９は、動物用コナヒョウヒダニエキス４及びヒト用コナヒョウヒダニエキスに対する個別血清サンプルの特異的ＩｇＥ光学濃度を示す。
【図１０】図１０は、動物用コナヒョウヒダニエキス４のＥＬＩＳＡ効力アッセイを示す（二重サンプル）。
【図１１】図１１は、ヒト用コナヒョウヒダニエキスと動物用コナヒョウヒダニエキス４のＥＬＩＳＡ効力アッセイを示す。
【図１２】図１２は、ＩｍａｇｅＱｕａｎｔによって分析されたイムノブロット画像を示す。コナヒョウヒダニエキス：動物用エキス４（２）、ヒト用エキス（３）、及び動物用エキス２（４）。１：低領域ＭＷ標準（ｋＤａ）。Ｄｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８に対応するバンドが指し示されている。
【図１３】図１３は、ＩｍａｇｅＱｕａｎｔによって分析されたイムノブロット画像を示す。コナヒョウヒダニエキス：動物用エキス５（２）、動物用エキス４（３）、及びヒト用エキス（４）。１：低領域ＭＷ標準（ｋＤａ）。Ｄｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８に対応するバンドが指し示されている。
【図１４】図１４は、図１２（左側画像）及び図１３（右側画像）のイムノブロット画像で同定されたバンドを示す。
【図１５】図１５は、ヒト用コナヒョウヒダニエキスと動物用コナヒョウヒダニエキス４の１０μｇタンパク質のイムノブロットを示す。ＳＴＤ：低領域ＭＷ標準。Ａ）陽性血清１、２；Ｂ）陽性血清３、４と陰性対照Ｃ１；Ｃ）陽性血清５〜７と陰性対照Ｃ２。
【図１６】図１６は、陰性対照、ヒト用エキス又は動物用エキス２と２４時間（ＩＬ−１０）又は４８時間（ＩＦＮ―γ）インキュベーション後のアトピー群及び対照群の末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）によって産生されたＩＬ−１０及びＩＦＮ―γを示す（有意差（ｐ値）は中央値及び四分位範囲を示す各グラフ中に示されている）。
【発明を実施するための形態】
【００１０】
本明細書中に記載の方法によって、コナヒョウヒダニ(D.farinae)に起因するアトピー性皮膚炎を患う哺乳動物の血清サンプルのＩｇＥ結合増大を示す動物用ダニアレルゲンエキスが得られる。
【００１１】
本発明のアレルゲンエキスは、動物においてＩｇＥ媒介性免疫反応を引き起こすことが知られているダニアレルゲンを含む任意の原料物質から誘導される。特に、該原料物質は、イヌにＩｇＥ媒介性免疫反応を引き起こすことが知られているダニアレルゲンである。
【００１２】
本発明の第一の側面において、５０ｋＤａより大きい分子量を有するタンパク質に富む動物用ダニエキスを提供する。
一態様において、動物用ダニエキスは、コナヒョウヒダニから誘導される。
【００１３】
一態様において、動物用ダニエキスは、ヒト用エキスに比べて、アレルゲンＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８に富む。アレルゲンＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８は、アトピー犬におけるコナヒョウヒダニの主アレルゲンであると共に、他のダニ種、例えばヤケヒョウヒダニ(Dermatophagoides pteronyssinus)中の重要なアレルゲンでもありうる。
【００１４】
一態様において、該エキスは、ヒト用エキスに比べて、低レベルのアレルゲンＤｅｒ  ｆ  １及びＤｅｒ  ｆ  ２を有する。エキス中に存在するアレルゲンのレベルは、ＳＤＳからデンシトメトリー分析によって決定できる。Ｄｅｒ  ｆ  １及びＤｅｒ  ｆ  ２の場合、これらのアレルゲンは、Ｉｎｄｏｏｒ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ  Ｉｎｃ社（米国バージニア州シャーロッツビル）から入手できるような市販のキットによって定量することもできる。
【００１５】
“富化された”という用語は、ヒト用エキスと比べた場合に、５０ｋＤａより大きい分子量を有するタンパク質の濃度が高い、特にＳＤＳからデンシトメトリー分析による決定で高レベルのアレルゲンＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８を有する動物用ダニアレルゲンエキスを意味する。
【００１６】
“ヒト用エキス”という用語は、本明細書中に開示された工程ａ）〜ｄ）から得られるエキスを意味するが、ここでは、工程ｃ）で、３ｋＤａの分子量カットオフ透析膜を使用し、およそわずか１ｂａｒの圧力を印加することにより、３ｋＤａ未満のサイズを有する分子が除去される。
【００１７】
一態様において、５０％阻害ＥＬＩＳＡ  ＩｇＥアッセイで、本発明の第一の側面の動物用ダニアレルゲンエキスは、ヒト用エキスより、少なくとも１．５倍、好ましくは少なくとも２．０倍、最も好ましくは２．０〜２．５倍効果的である。
【００１８】
別の態様において、イムノブロットデンシトメトリー分析で、動物用ダニアレルゲンエキス中のＤｅｒ  ｆ  １５の濃度は、ヒト用エキスより、少なくとも１．５倍、好ましくは少なくとも２．０倍、最も好ましくは２．０〜３．０倍高く、及び／又はその場合においてＤｅｒ  ｆ  １８の濃度は、ヒト用エキスより、少なくとも１．５倍、好ましくは少なくとも２．０倍、最も好ましくは２．０〜３．５倍高い。
【００１９】
さらに別の態様において、動物用ダニアレルゲンエキスは、組換えＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８を含み、好ましくはその組換えＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８は、非組換えＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８とそれぞれ少なくとも７０％、さらに好ましくは少なくとも８０％、なおさらに好ましくは少なくとも９０％の相同性を有し、動物用ダニアレルゲンエキスは、末梢血単核細胞中のＩＦＮ−γ及びＩＬ−１０の発現をアップレギュレートする。
【００２０】
組換えタンパク質は、本発明によれば、細菌、酵母、昆虫、植物、鳥類又は哺乳動物発現系などのタンパク質発現系を用いて発現させることができる。適切な系は当業者にはよく知られている。タンパク質の発現及び精製は、当業者に公知のように、例えば構造ゲノミクスコンソーシアム(Structural Genomics Consortium)らによる“タンパク質の製造と精製(Protein Production and Purification)”，Ｎａｔｕｒｅ  ｍｅｔｈｏｄｓ，５，２，１３５（２００８）に概説されているように実施される。
【００２１】
本発明の更なる側面において、動物用ダニアレルゲンエキスの製造法を提供し、該方法は、
ａ）ダニアレルゲンを含む原料物質をアレルゲン抽出剤と接触させて、液相中に溶解されたアレルゲンと、非アレルゲン残渣を含む固相との混合物を製造し；
ｂ）該混合物を分離工程に付して、液相中に溶解されたアレルゲンを単離して粗アレルゲンエキスを製造し；
ｃ）該粗アレルゲンエキスを中分子画分除去工程に付して、５０ｋＤａ未満のサイズを有する分子を除去し、そして除去工程中１．８ｂａｒの圧力を印加し；
ｄ）工程ｃ）を、３〜５℃で、アレルゲンエキスが１０５０μｓ／ｃｍ未満の導電率を有するまで、及び／又は特定量の蒸留水が使用されるまで実施して、富化アレルゲンエキスを得る
ことを含む。
【００２２】
原料物質は、コナヒョウヒダニ、ヤケヒョウヒダニ及びシワチリダニ(Euroglyphus maynei)の種を含むヒョウヒダニ科(family Pyroglyphidae)、及び／又はコナダニ科(family Acaridae)から選ぶことができる。
【００２３】
一態様において、原料物質はコナヒョウヒダニである。
本発明の好適な態様において、原料物質は、＞８０％のコナヒョウヒダニ虫体を有するダニ培養物である。原料物質の残りのパーセンテージはダニの糞及び／又は培地を含みうる。ダニ虫体のパーセンテージは、顕微鏡下でダニ培養物を観察し、ダニ培養物中の他の粒子に対してダニ虫体の数を数えることによって決定できる。
【００２４】
アレルゲンは、原料物質から、アレルゲン抽出剤で抽出して、液相中に溶解されたアレルゲンと“不要の”非アレルゲン残渣を含む固相とを含む粗アレルゲンエキスを製造することによって得られる。アレルゲン抽出剤は水溶液であり得、好ましくは緩衝剤を含む。アレルゲン抽出剤は、ＰＢＳ及び／又はＮａＣｌ、例えば０．０１ＭのＰＢＳ／０．１５ＭのＮａＣｌの溶液、又は炭酸水素アンモニウム（ＮＨ４）ＨＣＯ３及び／又はＮａＣｌ、例えば０．１２５Ｍの（ＮＨ４）ＨＣＯ３／０．１５ＭのＮａＣｌの溶液を含みうる。原料物質は、アレルゲン抽出剤中で、アレルゲン抽出剤の重量が原料物質の重量を上回る任意の比率、例えば１：２、１：３、１：５、１：１０、１：２０、１：５０、１：８０で抽出されうる。好ましくは、原料物質は、アレルゲン抽出剤中で、１：１０の原料物質：アレルゲン抽出剤（ｗｔ／ｗｔ）の比率で抽出される。抽出工程（工程ａ）における原料物質対アレルゲン抽出剤の比率は変動しうるが、原料物質残渣中のアレルゲンがアレルゲン抽出剤中に溶解できるようなものにすべきである。アレルゲン抽出剤による原料物質の抽出は、好ましくは、原料物質残渣中のアレルゲンがアレルゲン抽出剤中に溶解するのに足る時間実施され、それは、３０分〜１２時間、好ましくは１〜６時間、さらに好ましくは２〜５時間、最も好ましくはおよそ４時間でありうる。アレルゲン抽出工程は２０〜２５℃で実施できるが、好ましくは２〜６℃、最も好ましくは３〜５℃の低温で実施される。アレルゲン抽出工程中、原料物質は好ましくはアレルゲン抽出剤と共にかき混ぜる又は撹拌される。
【００２５】
アレルゲン抽出工程後、液相中に溶解されたアレルゲンを原料物質残渣から分離して、粗アレルゲンエキスを製造する。分離工程は、好ましくは遠心分離であるが、液体から固体を分離するための多くの技術が適用可能であり、これらは当業者に周知である。好ましくは、液相中に溶解されたアレルゲンは、２〜６℃、好ましくは３〜５℃で、原料物質残渣がペレットとして沈降するのに足る時間、例えば１分〜１時間、又は１時間を超えて遠心分離される。粗アレルゲンエキス（すなわち溶解アレルゲンを含有する上清）は２〜６℃で保存できる。原料物質残渣ペレットは、最初のアレルゲン抽出工程（工程ａ）と同じ条件を用い、好ましくはより長い抽出時間、例えば４〜８時間、８〜１２時間、又は１２時間を超えて、アレルゲン抽出剤でさらに抽出されてもよい。第二のアレルゲン抽出工程後、液相中に溶解されたアレルゲンを原料物質残渣から分離して、粗アレルゲンエキスを製造する。第一及び第二のアレルゲン抽出工程からの粗アレルゲンエキスは、好ましくは更なる処理のためにプールされる。
【００２６】
粗アレルゲンエキスは、例えば０．８〜１．２μｍ細孔径のフィルタを用いてろ過できる。粗アレルゲンエキスは、その後、中分子画分除去工程に付され、中分子サイズを有する分子、例えば低分子量アレルゲン、塩及びその他の非アレルゲン化合物が除去される。工程ｃ）で、５０ｋＤａ未満の分子サイズを有する分子が除去できる。
【００２７】
中分子画分除去工程中、圧力は１．２〜１．８ｂａｒに固定される。中分子画分除去工程中に約１．２〜１．８ｂａｒの圧力を印加する工程は本発明にとって重要である。先行技術の１ｂａｒでの抽出法と比べて高い圧力の印加は、工程の効率を改良する。好ましくは、圧力は１．８ｂａｒに固定される。
【００２８】
中分子画分除去工程は、好ましくは、アレルゲンエキスの導電率が１０５０μＳ／ｃｍ未満、又は９００μＳ／ｃｍ未満、又は８００μＳ／ｃｍ未満、又は７００μＳ／ｃｍ未満、又は６００μＳ／ｃｍ、又は好ましくは５００μＳ／ｃｍ未満（室温での測定）になるまで３〜５℃で継続される。さらに、又はあるいは、中分子画分除去工程は、特定量の蒸留水が使用されるまで継続される。透析ろ過に必要な蒸留水の適切な量（体積）は、次式：ろ過エキスのｍｌ数×１０＝蒸留水の量  を用いて計算できる。この結果、高分子量タンパク質に富む精製天然アレルゲンエキスが得られる。
【００２９】
中分子量除去工程は、限外ろ過工程、透析ろ過工程、透析工程、又はろ過を含む。好ましくは、中分子量除去工程（工程ｃ）は透析ろ過工程を含む。
得られた天然アレルゲンエキスは、例えば０．２２μｍ細孔径を用いてろ過され、貯蔵のために凍結又は凍結乾燥されうる。
【００３０】
本発明はさらに、動物のダニアレルギーの治療及び動物のダニアレルギーの診断用エキスも含み、どちらも活性成分として本発明の方法によって製造されるアレルゲンエキスを含む。動物のダニアレルギーは、本明細書中で論じているようにＩｇＥ媒介性アレルギー反応を引き起こすコナヒョウヒダニなどのダニアレルゲンへの暴露と関連付けることができる。
【００３１】
本発明の更なる側面に従って、本明細書中に記載の方法に従って得られる又は得ることが可能な動物用ダニアレルゲンエキスを提供する。
動物用ダニアレルゲンエキスは、動物のダニアレルギーの治療に使用できる。好適な態様において、該アレルゲンエキスはイヌのダニアレルギーの治療に使用できる。別の好適な態様において、該アレルゲンエキスはネコのダニアレルギーの治療にも使用できるが、この場合、ネコは、イムノブロットアッセイで、分子量が４０ｋＤａより高く、Ｄｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８又は組換えＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８を含む（好ましくは、組換えＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８は、非組換えＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８とそれぞれ少なくとも７０％、さらに好ましくは少なくとも８０％、なおさらに好ましくは少なくとも９０％の相同性を有する）コナヒョウヒダニアレルゲンと反応する血清ＩｇＥ抗体を含む。
【００３２】
本発明のアレルゲンエキスは、下記の物理化学的及び生物学的性質によって特徴付けることができる。
ｉ．コナヒョウヒダニヒト用エキスと比べて、Ｂｒａｄｆｏｒｄ法による測定で、タンパク質含量の増大；
ii．ヒト用エキスと比べて、３０ｋＤａ未満の分子量を有するタンパク質含量の低減（還元条件下でのＳＤＳ−ＰＡＧＥによりバンドとして識別）、ただし約２０ｋＤａのバンドは動物用エキスにも依然存在する；
iii．ヒト用エキスと比べて、Ｉｎｄｏｏｒ社の定量ＥＬＩＳＡキットによる測定で、Ｄｅｒ  ｆ  １（約３０ｋＤａ）及びＤｅｒ  ｆ  ２（約１５ｋＤａ）含量の低減；
iv．ヒト用エキスと比べて、還元条件下でのイムノブロットによる同定で、３０ｋＤａ未満の分子量を有するＩｇＥ認識バンドの減少（約２０ｋＤａのバンドを除く）；
ｖ．ヒト用エキスと比べて、サイズ排除クロマトグラフィーによる測定で、分子量（ＭＷ）分布プロフィールの変更；
vi．ヒト用エキスと比べて、感作個人の特定血清プールを使用したＩｇＥ  ＥＬＩＳＡ実験による測定で、ＩｇＥ結合の増加；
vii．質量分析による同定で、イヌの主アレルゲンであるＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８の存在；
viii．ヒト用エキスと比べて、ターゲットプロテオミクスによる相対的タンパク質定量による測定で、Ｄｅｒ  ｆ  １５含量の増加；
ix．ヒト用エキスと比べて、感作個人の特定血清プールを使用したイムノブロットデンシトメトリー分析による測定で、Ｄｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８含量の増加；
ｘ．ヒト用エキスと比べて、感作個人の特定血清プールを使用したＥＬＩＳＡ  ５０％阻害アッセイによる測定で、生物学的効力(biological potency)の増大；
xi．コナヒョウヒダニに感作されたイヌの末梢血単核細胞におけるＩＬ−１０及びＩＦＮ−γサイトカイン産生の誘導。
【００３３】
本発明のアレルゲンエキスは、ある種のダニアレルゲンに対する寛容を誘導することを目的として、アレルギー動物を治療するための医薬の活性成分として使用することができる。
【００３４】
本発明によるアレルゲンエキスを、免疫障害の診断、好ましくはアレルギー性疾患の検出に使用することを提供する。本発明によるアレルゲンエキスを、ダニアレルギーの治療又はダニアレルギーの治療のための医薬の製造に使用することを提供する。使用は免疫療法のための使用でありうる。使用は、標準化、診断、合成及びワクチン接種を目的とした使用でありうる。使用は、動物の療法的治療、好ましくは免疫療法における使用でありうる。使用は、免疫療法中の動物のモニタリングにおける使用でありうる。
【００３５】
本発明の更なる側面に従って、本発明によるアレルゲンエキスを含む医薬組成物を提供する。また、活性成分として薬学的に有効な量の本発明による動物用ダニアレルゲンエキスと少なくとも一つの薬学的に許容可能な担体又は希釈剤とを含むダニアレルギー治療のための医薬組成物を提供する。活性成分として診断学的に有効な量の本発明によるアレルゲンエキスを含むダニアレルギーの診断用組成物も提供する。
【００３６】
本発明の更なる側面に従って、本発明による動物用ダニアレルゲンエキスを含むワクチンを提供する。医薬組成物及びワクチンはさらに、一つ又は複数のアジュバント、希釈剤、保存剤又はそれらの混合物を含みうる。医薬組成物又はワクチンは、生理学的に許容可能な担体を含みうる。本明細書において使用されている“薬学的に許容可能な”という語句は、好ましくは、政府の規制機関によって認可されているか、又は、欧州もしくは米国薬局方もしくは動物に使用するための別の一般的に承認されている薬局方に掲載されていることを意味する。
【００３７】
そのような薬学的に許容可能な担体は、無菌の液体、例えば、水、及び石油由来、動物由来、植物由来又は合成由来のものを含む油、例えば、落花生油、大豆油、鉱油、ゴマ油などでありうる。生理食塩水及び水性デキストロース及びグリセロール溶液も液体担体として、特に注射用溶液として使用できる。適切な薬学的賦形剤は、マンニトール、デンプン、グルコース、ラクトース、スクロース、ゼラチン、麦芽、米、小麦粉、チョーク、シリカゲル、炭酸マグネシウム、ステアリン酸マグネシウム、ステアリン酸ナトリウム、モノステアリン酸グリセロール、タルク、塩化ナトリウム、乾燥スキムミルク、グリセロール、プロピレン、グリコール水、エタノールなどである。
【００３８】
本発明の第一の側面の方法に従って得ることができるワクチンを提供する。ワクチンは、皮下用、舌下用又は経皮(epicutaneous)用でありうる。
本発明によるワクチンの、ダニアレルギーの治療又はダニアレルギーを治療するための医薬の製造における使用を提供する。
【００３９】
本発明の更なる側面に従って、アレルゲン感作の予防法を提供し、該方法は、動物を本発明の有効量のアレルゲンエキス、医薬組成物又はワクチンに暴露する手順を含む。
本発明の更なる側面に従って、感作哺乳動物におけるダニアレルギーの治療法を提供し、該方法は、該哺乳動物に、本発明の有効量のアレルゲンエキス、医薬組成物又はワクチンを投与することを含む。アレルゲンエキス、医薬組成物又はワクチンは、皮下又は舌下投与でき、増量しながら又は一定の投与量で投与できる。“哺乳動物”という用語はヒトを除く。
【００４０】
好ましくは、哺乳動物はイヌである。好ましくは、哺乳動物はネコであるが、この場合、ネコは、イムノブロットアッセイで、分子量が４０ｋＤａより高く、Ｄｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８又は組換えＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８を含む（好ましくは、組換えＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８は、非組換えＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８とそれぞれ少なくとも７０％、さらに好ましくは少なくとも８０％、なおさらに好ましくは少なくとも９０％の相同性を有する）コナヒョウヒダニアレルゲンと反応する血清ＩｇＥ抗体を含む。
【００４１】
本発明を、アレルゲンを含むエキスの製造法について詳述した以下の実施例によって説明する。
【実施例】
【００４２】
エキス製造に使用される原料物質（原料と呼ぶこともできる）は、Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｏｓ  ＬＥＴＩによって培養され、市販されている＞８０％のコナヒョウヒダニ虫体を含むダニ培養物であった。以下の方法に従って３つの動物用エキスを製造した。
【００４３】
Ａ．抽出Ｉ
・抽出する原料を秤量し、重量を書き留めた；
・必要な抽出剤の体積を次式：
原料（ｇ）×２０＝抽出剤（ｍｌ）
を用いて計算した；
・前の手順で計算した抽出剤体積の半量とともに原料を容器に入れ、３〜５℃で４時間、磁気撹拌しながら抽出した：
抽出剤（全体積）（ｍｌ）÷２＝抽出剤（体積Ｉ）（ｍｌ）；
・混合物を、１０，０００ｒｐｍ、５℃で、少なくとも３０分間遠心分離した；
・次に、上清を回収し、その体積を書き留めた。上清はラベル付き密閉容器の中で３〜５℃に維持した。最大透明度を確保するために、ペレットの残りが上清に移動しないように注意を払った。
【００４４】
Ｂ．抽出II
・抽出Ｉのペレットを残りの抽出剤体積（体積II）とともに容器に加えた。混合物を３〜５℃で少なくとも８時間、撹拌しながら抽出した；
・次に、混合物を、１０，０００ｒｐｍ、５℃で、少なくとも３０分間遠心分離した；
・上清を回収し、その体積を書き留め、ペレットを廃棄した；
・抽出Ｉ及びIIの上清を合わせ、合計体積を書き留めた；
・合わせた上清を０．８〜１．２μｍフィルタを通してろ過した。ろ過後に得られた体積を書き留めた。
【００４５】
Ｃ．透析ろ過
・エキス溶液の透析ろ過を５０ｋＤａの限外ろ過カセット膜で実施した。この工程で、５０ｋＤａ未満の分子サイズを有する分子は除去された；
・透析ろ過に必要な蒸留水の体積を、次式：
ろ過エキスのｍｌ数×１０＝蒸留水の体積
に従って計算した；
・透析ろ過の開始後は圧力を１．８ｂａｒに固定し、エキス溶液は一定撹拌しながら氷上に維持した；
・次に、透析ろ過エキスの導電率をチェックし、１０５０μＳ／ｃｍ未満になっているかどうか調べた。導電率が高ければ、追加量の水を用いて透析ろ過を継続した；
・透析ろ過エキスを０．２２μｍフィルタを通してろ過した；
・次に、ろ過エキスを分割してトパーズクリスタルバイアルに入れ、その後−８０℃に凍結した。バイアルは、最大１５日間、−４０℃以下に維持した；
・次に、エキスを凍結乾燥した。
【００４６】
最終生成物は、凍結乾燥された動物用エキスからなり、凍結乾燥状態で４℃で保存される。
免疫化学的特性分析
タンパク質含量
タンパク質含量は、Ｂｒａｄｆｏｒｄ法により、製造業者の説明書に従って決定された。
【００４７】
ドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲル電気泳動（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）
タンパク質プロフィールを、ＳＤＳ−ＰＡＧＥにより、アクリルアミド−ビスアクリルアミドゲル（２．６７％Ｃ、１５％Ｔ）中、還元条件下（サンプルをβ−メルカプトエタノールとインキュベート、９５℃で１０分間加熱）で同定した。サンプルと低分子量標準（ＢｉｏＲａｄ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社、米国カリフォルニア州ハーキュリーズ）を同じゲル中で泳動させた。ゲルを０．１％クマシーブリリアントブルーＲ−２５０（ＢｉｏＲａｄ社）で染色した。タンパク質プロフィールは、Ａｎｙ  ｋＤ  ＴＧＸゲル（ＢｉｏＲａｄ）でも分析された。サンプル、ＨｉＭａｒｋ予備染色マーカー（Ｌｉｆｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社、米国カリフォルニア州）及び広領域分子量標準（Ｂｉｏ−Ｒａｄ社）を同じゲル中で泳動させた。
【００４８】
２Ｄ
２−Ｄ電気泳動の場合、エキスは、４０％及び８０％の飽和パーセントが達成されるまで、二つの別工程で硫酸アンモニウム溶液を用いて精製及び濃縮された。次に、サンプルを遠心分離し、ペレットを回収して、超純水中で再構成した。濃縮エキスを、ＲｅａｄｙＰｒｅｐ  ２−Ｄ  Ｃｌｅａｎｕｐ  Ｋｉｔ（ＢｉｏＲａｄ社）を用い、製造業者の説明書に従って洗浄した。タンパク質を、Ｐｒｏｔｅａｎ  ＩＥＦ  Ｃｅｌｌ（ＢｉｏＲａｄ社）を用い、３〜１０のｐＨ範囲でＲｅａｄｙＳｔｒｉｐ  ＩＰＧストリップ（ＢｉｏＲａｄ社）上にそれらの等電点に従って分離した。一次元目の後、ストリップをＲｅａｄｙＰｒｅｐ  ２−Ｄ  Ｋｉｔ緩衝液（ＢｉｏＲａｄ社）で平衡化し、二次元目でタンパク質をそれらの分子量に従って第二次元に分離した。ゲルを、製造業者の説明書に従って、Ｏｒｉｏｌｅ蛍光溶液（ＢｉｏＲａｄ社）で染色した。
【００４９】
炭水化物含量
炭水化物含量の決定は“Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｆｏｏｄ  Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  Ｅ．１．１．１．−Ｅ．１．１．８，Ｅｒｉｃ  Ｆｏｕｒｉｅｒ（２００１）”に記載の手順に基づく。簡潔に述べると、異なるグルコース濃度（０〜１ｍｇ／ｍｌ）の標準曲線と、４ｍｇ／ｍｌのダニエキスを起点とした少なくとも４種類の希釈を調製した。０．５ｍｌ体積の４％フェノールと２．５ｍｌのＨ２ＳＯ４を全サンプルに加え、室温で２０分間、渦撹拌及びインキュベートした。次に、４９５ｎｍで吸光度を測定した。グルコースサンプルの結果を用いて標準曲線を得、サンプル濃度を補間して結果を得た。
【００５０】
エンドトキシン含量
エンドトキシン含量（ＥＵ／ｍｌ）は、カブトガニ血球抽出物(Limulus Amebocyte Lysate)アッセイに基づく測色技術により、Ｅｎｄｏｓｃａｎ  Ｖシステム（Ｃｈａｒｌｅｓ  Ｒｉｖｅｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社）を用いて決定した。この目的のために、サンプルをエンドトキシンを含まない水中に１ｍｇ／ｍｌで溶解し、１／１００希釈及び１／５００希釈を調製した。
【００５１】
酵素活性
１９種類の異なる酵素（後述）の酵素活性を、ＡＰＹ−Ｚｙｍ  Ｓｙｓｔｅｍ（Ｂｉｏｍｅｒｉｅｕｘ社）を用い、製造業者の説明書に従って、コナヒョウヒダニエキス中で評価した。さらに、キチナーゼ活性もＣｈｉｔｉｎａｓｅ  Ａｓｓａｙ  Ｋｉｔ（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ社）を用い、製造業者の説明書に従って分析した。
【００５２】
イムノブロット
電気泳動的に分離されたタンパク質（ＳＤＳ−ＰＡＧＥによる）をＰＶＤＦ（ポリビニリデンジフルオリド）膜（Ｔｒａｎｓ−Ｂｌｏｔ（登録商標）  Ｔｕｒｂｏ  ＴＭ  Ｔｒａｎｓｆｅｒ  Ｐａｃｋ，ＢｉｏＲａｄ社）に転写し、リン酸緩衝液（ＰＢＳ）０．０１ｍｏｌ／Ｌ−Ｔｗｅｅｎ  ０．１％中５％スキムミルクで１時間ブロックし、０．０１Ｍ  ＰＢＳ−０．１％Ｔｗｅｅｎ中に希釈された、アレルゲンに陽性のイヌの血清と一晩インキュベートした。エキスに対する特異的ＩｇＥ結合を、ペルオキシダーゼ結合抗体、抗イヌ−ＩｇＥ−ＰＯ（Ａｂｄ  Ｓｅｒｏｔｅｃ社）で検出し、ルミノール溶液（Ｗｅｓｔｅｒｎ  Ｉｍｍｕｎ−ＳｔａｒＴＭ  Ｗｅｓｔｅｒｎ  ＣＴＭ  Ｋｉｔ，Ｂｉｏ−Ｒａｄ社）で発現させ、化学発光により検出した（ＣｈｅｍｉＤｏｃ  ＸＲＳ，Ｂｉｏ−Ｒａｄ社）。
【００５３】
主アレルゲン定量
主アレルゲンは、酵素結合免疫吸着アッセイ検出キット（Ｉｎｄｏｏｒ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社、米国バージニア州）を用い、ＥＬＩＳＡサンドイッチ法を用いて定量した。簡潔に述べると、Ｎｕｎｃ  Ｍａｘｉｓｏｒｐプレート（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社、米国マサチューセッツ州ウォルサム）に、炭酸塩／炭酸水素塩緩衝液（ｐＨ＝９．６）中に希釈された特異的モノクローナル抗体をコーティングし、４℃で一晩インキュベートした。その後、プレートを、ＰＢＳ  ０．０１Ｍ−Ｔｗｅｅｎ  ０．０５％中のＢＳＡ（ウシ血清アルブミン）１％でブロックした。次に、サンプル及び標準をＰＢＳ  ０．０１Ｍ−Ｔｗｅｅｎ  ０．０５％中ＢＳＡ  １％で段階的に１／２希釈して加えた。二次特異的モノクローナル抗体（ビオチン化）を加え、最後にストレプトアビジンを使用した。硫酸で停止後、発色溶液（色素源）との反応を光学濃度（ＯＤ）４５０ｎｍで測定した。最小二乗法により４パラメーターロジスティックフィットを用いて標準曲線を得た。ここにサンプル濃度を補間して結果を得た。
【００５４】
ＥＬＩＳＡアッセイ
コナヒョウヒダニに対する特異的ＩｇＥを直接ＥＬＩＳＡ法によって血清プールで測定した。簡潔に述べると、マイクロプレート（Ｉｍｍｕｌｏｎ  ＩＶ；Ｔｈｅｒｍｏ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）に、同量のコナヒョウヒダニエキスのタンパク質をコーティングし、室温で一晩インキュベートした。プレートを、ＰＢＳ  ０．０１ｍｏｌ／Ｌ−Ｔｗｅｅｎ  ０．１％中５％スキムミルクで１時間ブロックした。血清プールを段階的に希釈し、２時間インキュベートした。洗浄後、ヤギ抗イヌＩｇＥ：ＨＲＰ（西洋ワサビペルオキシダーゼ）からなる二次抗体（１：１００００希釈）を加えた。最後に、マイクロプレートを洗浄し、反応を発色させ、ＯＤを自動ＥＬＩＳＡプレートリーダーで４５０ｎｍで測定した。
【００５５】
サイズ排除クロマトグラフィー
エキスを、４０ｍＭのｐＨ７．４リン酸緩衝液；ＮａＣｌ  １５０ｍＭに溶解し、０．４５μｍフィルタを通してろ過した。エキスのタンパク質１ｍｇをＳｕｐｅｒｄｅｘ  ７５  １６／６０（ＧＥ  Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社）カラムに装填し、ＡＫＴＡエクスプローラーシステム（ＧＥ  Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社）で分析した。２８０ｎｍにおける吸光度を１２０分間記録し、クロマトグラムをＵｎｉｃｏｒｎソフトウェアで解析した。
【００５６】
アレルゲン同定
ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル（クマシー染色）からバンドを切り取り、ＤＴＴ  １０ｍＭで還元し、ヨードアセトアミドで処理し、トリプシンで消化した。得られたペプチドを、５６００  ＴＲＩＰＬＥ  ＴＯＦＦ質量分光光度計に接続された液体クロマトグラフィーによって分析した。生データは、ＮＣＢＩのダニ目(Acari)データベースに対してＭＡＳＣＯＴサーバーを用いて分析された。
【００５７】
相対的タンパク質定量
タンパク質消化：エキスを５０ｍＭのＮＨ４ＨＣＯ３（ｐＨ８．５）中に再懸濁させた。タンパク質を超音波プローブ分離−可溶化(ultrasonic probe disgregation-solubilization)によって抽出し、沈殿させ、ペレットを８Ｍの尿素／５０ｍＭのＮＨ４ＨＣＯ３（ｐＨ８．５）中に再懸濁させた。タンパク質を還元し（ＤＴＴ  ２０ｍＭ）、アルキル化した（ヨードアセトアミド  ３５ｍＭ）。その後、サンプルをブタトリプシンで消化し、浄化し、乾燥させ、次のナノＵＰＬＣ−質量分析による分析まで−２０℃で保存した。
【００５８】
ＬＣ−ＭＳＭＳ分析：ペプチド混合物を、ＬＴＱ−Ｏｒｂｉｔｒａｐ  Ｖｅｌｏｓ（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）質量分析計に接続されたｎａｎｏＡｃｑｕｉｔｙ液体クロマトグラフィー装置（Ｗａｔｅｒｓ社）で分析した。ペプチドはＳｙｍｍｅｔｒｙ  Ｃ１８ＴＭトラップカラム（Ｗａｔｅｒｓ社）にトラップされ、Ｃ１８逆相キャピラリーカラム（Ｗａｔｅｒｓ社）を用いて分離された。
【００５９】
データ依存解析（ＤＤＡ）：溶出ペプチドを、エミッタニードル（ＰｉｃｏＴｉｐＴＭ，Ｎｅｗ  Ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ社）でエレクトロスプレーイオン化に付した。ペプチド質量（ｍ／ｚ  ３００〜１７００）を、フルスキャンＭＳがＯｒｂｉｔｒａｐに取得されるデータ依存モードで解析した。生成した生データファイルをＴｈｅｒｍｏ  Ｘｃａｌｉｂｕｒ（ｖ．２．２）で収集し、コナヒョウヒダニのデータベースに対して検索した。
【００６０】
ターゲット分析：取得データと検索をＳｋｙｌｉｎｅ（ｖ．３．１）で評価した。試験期間中安定であると証明されたことが高い信頼性で確認されたペプチドが選択された。サンプルは、定量化の目的のために、並列反応モニタリング−ターゲットＭＳ／ＭＳ (Parallel Reaction Monitoring-Targeted MS/MS)法で三重に取得された。標準化の目的のためにフィブリノペプチドＢ標準（Ｇｌｕｆｉｂ）（Ｗａｔｅｒｓ社）を各サンプルに加えた。
【００６１】
照会(query)サンプル（動物用エキス）を、スチューデントＴ−検定を用い、ペプチドレベルで９５％の信頼度で、二つの条件間の統計的有意性を利用することにより、対照サンプル（ヒト用エキス）に対して比較した。
【００６２】
ＥＬＩＳＡ効力アッセイ
簡潔に述べると、マイクロプレート（Ｉｍｍｕｌｏｎ  ＩＶ；Ｔｈｅｒｍｏ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）に、動物用コナヒョウヒダニエキス（２μｇ／ウェル）をコーティングし、室温で一晩インキュベートした。プレートを、ＰＢＳ  ０．０１ｍｏｌ／Ｌ；Ｔｗｅｅｎ  ０．１％中５％スキムミルクで１時間ブロックした。阻害アッセイの場合、血清をＮｕｎｃプレート（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）で２時間、段階希釈された阻害エキスとともにプレインキュベートした後、Ｉｍｍｕｌｏｎ  ＩＶに加えた。血清プールを２時間インキュベートした。洗浄後、ヤギ抗イヌＩｇＥ：ＨＲＰからなる二次抗体（１：１００００希釈）を加えた。最後に、マイクロプレートを洗浄し、反応を発色させ、自動ＥＬＩＳＡプレートリーダーで４５０ｎｍで光学濃度（ＯＤ）を測定した。血清の阻害パーセントは、５０％阻害を生じるμｇを計算するために、対数μｇエキスに対して表された。
【００６３】
ネコイムノブロット
動物用及びヒト用コナヒョウヒダニエキスを電気泳動的に分離し（ＳＤＳ−ＰＡＧＥによる）、ＰＶＤＦ（ポリビニリデンジフルオリド）膜（Ｔｒａｎｓ−Ｂｌｏｔ（登録商標）  Ｔｕｒｂｏ  ＴＭ  Ｔｒａｎｓｆｅｒ  Ｐａｃｋ，ＢｉｏＲａｄ社）に転写し、膜を室温で乾燥させることによって１時間ブロックし、０．０１Ｍ  ＰＢＳ中１／６に希釈されたネコ由来血清と一晩インキュベートした。エキスに対する特異的ＩｇＥ結合を、膜をビオチン化抗体抗ネコＩｇＥ（Ｇｒｅｅｒ社）と２時間インキュベートして検出し、次いでストレプトアビジンと１時間インキュベートし、ルミノール溶液（Ｗｅｓｔｅｒｎ  Ｉｍｍｕｎ−ＳｔａｒＴＭ  Ｗｅｓｔｅｒｎ  ＣＴＭ  Ｋｉｔ，Ｂｉｏ−Ｒａｄ社）で発現させ、化学発光により検出した（ＣｈｅｍｉＤｏｃ  ＸＲＳ，Ｂｉｏ−Ｒａｄ社）。
【００６４】
ＳＤＳ−ＰＡＧＥ
凍結乾燥サンプルのタンパク質１０μｇを、ＳＤＳ−ＰＡＧＥにより、還元条件下、１５％アクリルアミドゲル（図１）及びＴＧＸ市販ゲル（Ｂｉｏ−Ｒａｄ社）（図２）を用いて分析した。サンプル中に確認された主アレルゲンを図に示す。
【００６５】
動物用エキス１、２及び３に同じタンパク質プロフィールが観察され（図１）、ヒト用エキスと比べて、Ｄｅｒ  ｆ  ２バンド（約１５ｋＤａ）及びＤｅｒ  ｆ  １バンド（約３０ｋＤａ）に顕著な減少と、４０ｋＤａより高いタンパク質の強度に増加が見られた。以前の研究でフェリチンと確認された約２０ｋＤａのバンドも、ヒト用エキスと比べて３つの動物用エキスでさらに強かった。
【００６６】
ＴＧＸゲル（図２）に関しても、エキス１、２及び３に同じタンパク質プロフィールが観察された。さらに、ヒト用エキスと動物用エキスの間の関係アレルゲンに同じ差異も観察された。
【００６７】
２Ｄ
動物用エキスのタンパク質プロフィールの分析に関する追加の研究として、２Ｄ電気泳動を実施した。各エキスの同量のタンパク質を浄化し、ＳＤＳ−ＰＡＧＥにより分析した（図３）。
【００６８】
次に、各サンプル１７０μｇを一次元目の等電点分画電気泳動に付した。次に、全エキスをＳＤＳ−ＰＡＧＥ及びＯｒｉｏｌｅ染色により、二次元目に付した。図４に示されている通り、３つの動物エキスについてほぼ同一のタンパク質プロフィールが得られた。ヒト用エキス（ヒト用エキスの２Ｄタンパク質プロフィールは以前の研究から得られた）に比べて、動物用エキスでは、酸性ｐＨで２０〜１００ｋＤａのタンパク質の割合が高いことが観察された。
【００６９】
サイズ排除クロマトグラフィー
最後に、ヒト用エキスと比較した動物用エキスのＭＷ分布の変更についての追加分析として、全サンプルをサイズ排除クロマトグラフィーによって分析した。各エキスの同量のタンパク質（１ｍｇ）をＳｕｐｅｒｄｅｘ  ７５  １６／６０カラムに注入し、ＡＫＴＡエクスプローラーシステムで分析して、非還元条件下で各サンプルのＭＷ分布を得た。エキスをリン酸緩衝液４０ｍＭ  ｐＨ７．４  ＮａＣｌ  １５０ｍＭ中に溶解し、およそ２ｍｌの体積をカラムに注入した。全エキスについて得られたクロマトグラフィープロフィールを図５に示す。
【００７０】
すべてのエキスで２つの主クロマトグラフィーピークが観察された。一つはおよそ５６分時点で、二つ目は１００分時点である。しかしながら、動物用エキスのクロマトグラフィープロフィール（図５Ｂ〜Ｄ）をヒト用エキスで得られたもの（図５Ａ）と比較すると、動物用エキスは、遅い方の溶出時間で２８０ｎｍの吸光度シグナル（ピーク２）に低下を示した。これは低ＭＷタンパク質に対応する。他方、高ＭＷタンパク質を含有するピーク１は、ヒト用エキスと比べて動物用エキスで増大した。
【００７１】
主アレルゲン定量
ヒトの主アレルゲンであるＤｅｒ  ｆ  １及びＤｅｒ  ｆ  ２を、ヒト用エキスと比較して３つの動物用エキスで定量した。μｇ／ｍｇ凍結乾燥エキスで表された両アレルゲンの平均含量を表１に示す。
【００７２】
表１：ヒト用エキスと動物用エキス（ｎ＝２）のＤｅｒ  ｆ  １及びＤｅｒ  ｆ  ２含量（μｇ／ｍｇ±ＳＤ）
【００７３】
【表１】
2020529476.tif 000003
【００７４】
Ｄｅｒ  ｆ  １は３つの動物用エキス中に４μｇ／ｍｇ未満で、ヒト用エキスに対して平均で４．５倍の減少を経験した。Ｄｅｒ  ｆ  ２はすべての動物エキス中で１．５μｇ／ｍｇ未満であることが見出され、ヒト用エキスと比べて２２倍の減少を示した。
【００７５】
炭水化物含量
全エキスについて、グルコースに相当する炭水化物含量は、硫酸とフェノールを試薬として用いる分光光度法によって決定された。μｇグルコース／ｍｇ凍結乾燥エキスで得られた結果を表２に示す。
【００７６】
表２：ヒト用エキスと動物用エキス（ｎ＝２）のグルコース含量（μｇ／ｍｇ±ＳＤ）
【００７７】
【表２】
2020529476.tif 000004
【００７８】
３つの動物用エキスはヒト用エキスと比べて非常に類似した炭水化物含量を示したが、エキス３はアッセイ間の変動（ばらつき）が大きかった。
エンドトキシン含量
エンドトキシン中のエキスの含量を決定した。４つのエキスを１ｍｇ／ｍｌの濃度で溶解した。各ケースで１／１００及び１／５００の希釈を使用した。表３に、各希釈及び各エキスについて得られた、ＥＵ／ｍｌ及びＥＵ／ｍｇ凍結乾燥エキスで表された平均エンドトキシン含量を示す。
【００７９】
表３：ヒト用及び動物用エキス（ｎ＝２）のエンドトキシン含量
【００８０】
【表３】
2020529476.tif 000005
【００８１】
エキス１は、試験された二つの希釈間で大きい変動を示した。しかしながら、すべてのエンドトキシン含量値は、３０〜９０ＥＵ／ｍｇ凍結乾燥エキスの類似範囲内にあり、エキス間の差異は、各エキスの製造に使用された異なる原料によるものと思われる。
【００８２】
酵素活性
ほとんどのダニアレルゲンは酵素活性を有している。そのため、エキスの酵素活性を分析することは重要である。ＡＰＩ−ＺＹＭシステムを用いて１９種類の異なる酵素、すなわち、アルカリホスファターゼ、エステラーゼ（Ｃ４）、エステラーゼリパーゼ（Ｃ８）、リパーゼ（Ｃ１４）、ロイシンアリルアミダーゼ、バリンアリルアミダーゼ、シスチンアリルアミダーゼ、トリプシン、α−ガラクトシダーゼ、β−ガラクトシダーゼ、α−グルクロニダーゼ、α−グルコシダーゼ、β−グルコシダーゼ、Ｎ−アセチル−β−グルコサミニダーゼ、α−マンノシダーゼ、及びα−フコシダーゼの活性を評価した。サンプルは蒸留水中タンパク質１ｍｇ／ｍｌで調製した。各サンプルを基質とインキュベーション後、酵素活性を１０分間発現させた。結果を、取扱説明書に従って０〜５の範囲で光学的に解釈した（０は無色を意味し、５は非常に強い色を意味する）。２以下の結果は陰性と見なされた。様々な酵素活性の半定量的測定結果は、分析された酵素の種類に応じてグループ分けされた。
【００８３】
ホスファターゼ（表４）は全エキスで陽性で、最も強い活性は酸ホスファターゼで見られた。ヒト用エキスと動物用エキスの間に差は見出されなかった。
表４：ＡＰＩＺＹＭによって測定されたヒト用及び動物用エキスのホスファターゼ活性
【００８４】
【表４】
2020529476.tif 000006
【００８５】
プロテアーゼに関しては（表５）、いずれのエキスにもシステインアリルアミダーゼ活性は見られなかったが、バリン及びロイシンアリルアミダーゼは全エキスで陽性かつ同様であった。トリプシン活性は、ヒト用エキスに比べて動物用エキスでは低いか又はさらには陰性であり、α−キモトリプシンは全エキスで陽性であった（これは、ヒト用コナヒョウヒダニエキスでα−キモトリプシン活性を見出さなかったＭｏｒａｌｅｓらの結果（Ｅｎｚｙｍａｔｉｃ  Ａｃｔｉｖｉｔｙ  ｏｆ  Ａｌｌｅｒｇｅｎｉｃ  Ｈｏｕｓｅ  Ｄｕｓｔ  ａｎｄ  Ｓｔｏｒａｇｅ  Ｍｉｔｅ  Ｅｘｔｒａｃｔｓ，Ｊ．Ｍｅｄ．Ｅｎｔｏｎｏｌ．，２０１３，５０，１４７−５４）とは対照をなす）。
【００８６】
表５．ＡＰＩＺＹＭによって測定されたヒト用及び動物用エキスのプロテアーゼ活性
【００８７】
【表５】
2020529476.tif 000007
【００８８】
表６にはリパーゼに関する情報が含まれている。リパーゼ活性はエキスに見出されなかったが、エステラーゼ及びエステラーゼリパーゼは、エキス２がエステラーゼに関して陰性であった以外、全エキスで陽性かつ同様であった。
【００８９】
表６．ＡＰＩＺＹＭによって測定されたヒト用及び動物用エキスのリパーゼ活性
【００９０】
【表６】
2020529476.tif 000008
【００９１】
最後に、表７にグルコシダーゼ活性をまとめた。この活性は全エキスで明白であり、試験された酵素の全タイプについて陽性であった。ヒト用と動物用エキスの間に関連性のある差異は見出されなかったが、β−ガラクトシダーゼとα−グルクロニダーゼは、ヒト用エキス（レベル４）と比べて、すべての動物用エキスでＡＰＩＺＹＭレベル５を示した。
【００９２】
表７．ＡＰＩＺＹＭによって測定されたヒト用及び動物用エキスのグルコシダーゼ活性
【００９３】
【表７】
2020529476.tif 000009
【００９４】
従って、一般に、酵素活性に関してヒト用エキスと動物用エキスとの間には何らかの差異があったと言うことができる。この結果は、動物用エキス中のある種のタンパク質（その多くはおそらく酵素活性を有していた）が透析過程中に失われたことによって説明される。他方、３つの動物用エキスは非常に類似した酵素活性プロフィールを示し、製品の高い一貫性を示している。
【００９５】
ＡＰＩＺＹＭシステムに加えて、エキスのキチナーゼ活性も、キチナーゼアッセイキット（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ社）を用い、製造業者の説明書に従って評価した。このキットは、キチナーゼ基質の酵素的加水分解を基にしたもので、これによってｐ−ニトロフェノールが放出され、それが塩基性ｐＨで４０５ｎｍで測定できる。キットは、様々なタイプのキチン分解活性を検出するために、３種類の異なる基質を提供している。サンプルは試験のために５ｍｇ／ｍｌの濃度で調製された。表８に、各サンプルについての及び加水分解された各基質に対するキチナーゼ活性を示す。
【００９６】
表８．３種類の異なる基質に対するヒト用及び動物用エキスのキチナーゼ活性（ｎ＝２）
【００９７】
【表８】
2020529476.tif 000010
【００９８】
基質１：４−ニトロフェニル  Ｎ−アセチル−β−Ｄ−グルコサミニド；基質２：４−ニトロフェニル  Ｎ，Ｎ’−ジアセチル−β−Ｄ−キトビオシド；基質３：４−ニトロフェニル  β−Ｄ−Ｎ，Ｎ’，Ｎ”−トリアセチルキトトリオース。
【００９９】
基質１と３に関しては、エキス間で、キチナーゼ活性のｍＵ／ｍｇタンパク質に関連性のある差異はなかった。基質３については、アッセイ間で高い標準偏差が観察されたが、おそらく異なるインキュベーション時間のためであろう。基質２は、エキソキチナーゼ活性検出に適切であるが、動物用エキスに比べてヒト用エキスで高かった。従って、Ｄｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８はキチナーゼであると説明されてきたという事実にも関わらず、動物用エキスにキチナーゼ活性の増大は検出されなかった。
【０１００】
アレルゲン同定（質量分析配列決定）
３つの動物用エキス中にイヌの主アレルゲンＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８が存在することを確認するために、１０９／９６ｋＤａ（Ｄｅｒ  ｆ  １５）及び６０ｋＤａ（Ｄｅｒ  ｆ  １８）の予想ＭＷを有するタンパク質バンドをクマシー染色されたＳＤＳゲルから切り取り、ＣＳＩＣ（“Ｃｅｎｔｒｏ  Ｎａｃｉｏｎａｌ  ｄｅ  Ｂｉｏｔｅｃｎｏｌｏｇｉａ”、スペイン、マドリード）のプロテオミクス部門に送った。タンパク質をトリプシンで消化し、得られたペプチドを質量分析により配列決定し、ＭＡＳＣＯＴにより知識ベースと比較した。
【０１０１】
図６に、Ｄｅｒ  ｆ  １５（配列番号１）及びＤｅｒ  ｆ  １８（配列番号２）から得られた配列を、一致したペプチドにアンダーラインを引いて示す。各動物用エキスの配列包括度(sequence coverage)のパーセンテージも示す。
【０１０２】
アレルゲンの相対的定量
動物用エキス中にイヌの主アレルゲンＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８の増加が達成されたことを実証するために、ターゲットプロテオミクス（ＬＣ−ＭＳ／ＭＳ）による相対的タンパク質定量のための新しい方法論が開発された。この研究は、“Ｐａｒｃ  Ｃｉｅｎｔｉｆｉｃ  ｄｅ  Ｂａｒｃｅｌｏｎａ”（スペイン、バルセロナ）のプロテオミクス部門によって実施された。
【０１０３】
この目的のために、ヒト用エキスを標準として、動物用エキスのエキス２を照会(query)サンプルとして選択した。どちらのサンプルもトリプシンで消化し、得られたペプチド溶液を上記方法論に従ってナノＵＰＬＣ−質量分析によって分析した。得られた生のデータファイルをＵｎｉｐｒｏｔのコナヒョウヒダニデータベースに対して検索した。Ｄｅｒ  ｆ  １５から３種類及びＤｅｒ  ｆ  １８から２種類のペプチド（表９）が、試験(sets)の間を通して安定であり、検出性、分解又は非最適イオン化に関する問題を提起しないことが証明されたので、定量アッセイのために選ばれた。３つの異なる分析で得られた各ペプチドのピーク面積を計算し、統計分析のために使用した。
【０１０４】
表９．定量アッセイのために獲得されたペプチドの特性分析
【０１０５】
【表９】
2020529476.tif 000011
【０１０６】
Ｄｅｒ  ｆ  １５については、ヒト用エキスと比べて動物用エキスのエキス２に顕著な２．９７倍の増加、すなわち×２．９７があったが、Ｄｅｒ  ｆ  １８については、ヒト用エキスと比べてエキス２に０．２４という顕著な倍数変化(fold change)、すなわち×０．２４があった。
【０１０７】
これらの結果から、動物用エキスは、ヒト用コナヒョウヒダニエキスと比べて、より高含量のＤｅｒ  ｆ  １５アレルゲンを含有することが確認された。
イムノブロット
各エキスのタンパク質１０μｇを、このダニに感作されたイヌの血清プール（１／５に希釈）を用いてイムノブロットによって分析した（図７）。イムノブロットの結果、ヒト用エキスと動物用エキス間の認識タンパク質プロフィールの変更が確認され、３つのエキス間の一貫性が浮き彫りにされた。
【０１０８】
直接ＥＬＩＳＡ法
全エキスは、同じ血清プールを用い、直接ＥＬＩＳＡ法によっても分析された（各エキスのタンパク質８μｇ／ｍｌをプレートのコーティングに使用した）。ヒト用エキスに比べて、３つの動物用エキスの場合、より高い特異的ＩｇＥレベルが見出された（図８）。このことは、アトピー性皮膚炎を有するイヌ由来の血清プールの動物用エキスに対するより高い親和性を示している。
【０１０９】
まとめ
コナヒョウヒダニの３つの一貫性あるエキスの製造及び特性分析から得られた主な結果は次の通りである。
・５０ｋ  Ｐｅｌｌｉｃｏｎ（登録商標）膜と高圧を使用した最適化限外ろ過法により、様々な分析法で実証されたような高い一貫性を有する３つのコナヒョウヒダニエキスを得ることができた；
・動物用エキスの製造法における収率は低かったが、ヒト用エキスと比べて高いタンパク質含量を有していた；
・３つのエキスは、ヒト用エキスと比べて、電気泳動、サイズ排除クロマトグラフィー及びヒト主アレルゲン定量によって実証されたように、高ＭＷタンパク質の割合が高く、ヒト主アレルゲンが顕著に少ないという変更されたタンパク質プロフィールを示した；
・炭水化物含量及びエンドトキシン含量などのその他のエキス特性に関しては、ヒト用エキスと動物用エキスとの間に弁別的差異は見出されなかった。ヒト用エキスと動物用エキスとの間で一部の酵素活性にわずかな差異があったが、キチナーゼ活性に関しては、動物用エキスでこの酵素活性の増大はなかった；
・イヌの主アレルゲンＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８は、質量分析により全エキスで確認された。さらに、エキスの特性分析にこれまで使用されたことのない新しい方法論が、ターゲットプロテオミクスによる相対的タンパク質定量のために最適化された。この技術により、動物用エキスの一つで、Ｄｅｒ  ｆ  １５がヒト用エキスと比べてこのサンプルで顕著に増加したことが実証できた；
・免疫学的観点から、このダニに感作されたイヌ由来の血清プールは、ヒト用天然エキスと比べて３つの動物用エキスに高い特異的ＩｇＥレベルを示した。
【０１１０】
動物用コナヒョウヒダニエキスの標準化
１．１  インビボ研究
先の動物用エキス１〜３と同様にして製造された動物用エキス４を用いて、コナヒョウヒダニに感作されたイヌで皮内試験をするための溶液を調製した。この目的のために、エキスの溶液を１ｍｇ／ｍｌの濃度でＳＳＦＡ（アルブミン入り生理食塩水フェノール化溶液）中に調製し、撹拌下で２時間維持し、０．２２μｍフィルタでろ過した。動物用エキス４と共に、ヒスタミン塩酸塩(histamine chlorhydrate)０．０５ｍｇ／ｍｌ（陽性対照）と、陰性対照としてＳＳＦＡでイヌを試験した。
【０１１１】
・研究に含められた動物
アトピー性皮膚炎と臨床診断され、コナヒョウヒダニに対する特異的ＩｇＥが＞１０００ＥＬＩＳＡ吸光度単位（ＥＡＵ）（Ｇｒｅｅｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社のＥＬＩＳＡ試験）を示す１〜６歳齢の１４匹のイヌ。下記の特徴を有するイヌは除外された。すなわち、コルチコイド、シクロスポリンＡ、免疫抑制化合物で治療されたイヌ；免疫療法で治療されたイヌ；細菌、ウィルス又は寄生虫感染、免疫不全又は免疫病を患うイヌ。
【０１１２】
インビトロ分析用に各動物から５ｍｌの血清サンプルを採取した。
・皮内試験手順：
５０μｌの１ｍｇ／ｍｌエキス溶液又は対照を、事前に剃毛した動物の胸部に二重に皮内注射した。注射１５分後、生じた膨疹を紙に写し取った。
【０１１３】
・膨疹サイズ分析
膨疹の面積をＰＣ  Ｄｒａｆｔ（Ｍｉｃｒｏｓｐｏｔ社）ソフトウェアを用いて測定した。膨疹サイズは、面積が≧７ｍｍ２の場合、陽性と見なされた。
【０１１４】
結果：
全動物とも動物用エキス４に対して陽性で、平均膨疹サイズは１１５．３±６６．８ｍｍ２であった。
【０１１５】
１．２  インビトロ研究
・血清サンプルの特性分析
各血清サンプルの特異的ＩｇＥを、直接ＥＬＩＳＡ法（方法論については前述）により、動物用エキス４及び以前使用されたヒト用エキスに対して分析した。すべての血清サンプルは、ヒト用コナヒョウヒダニエキスと比べて動物用エキス４で著しく高い特異的ＩｇＥ値を示した（図９）。
【０１１６】
・生物学的効力
全血清サンプルを用いてプールを作成し、ＥＬＩＳＡ効力アッセイによりインビトロ標準化を実施した。表１０に、５つの異なるアッセイから得られた、血清プールの５０％阻害を得るために必要な動物用エキス４の量（μｇ）を示す。
【０１１７】
表１０：５つの異なるアッセイから得られた、イヌ血清プールの５０％阻害を得るために必要な動物用エキス４の量（μｇ）
【０１１８】
【表１０】
2020529476.tif 000012
【０１１９】
５０％阻害のために得られた平均値は０．０６２±０．００６μｇであった。このアッセイで得られた曲線の一例を図１０に示す。５０％阻害は、前述のようにして製造された動物用エキスの異なるバッチ（エキス５）についても計算された。得られた値は０．０６６μｇであった。この結果は、生物学的効力（ＩｇＥ全アレルゲン活性）の観点から見て、異なる動物用エキスバッチの一貫性を実証している。
【０１２０】
ヒト用エキスと比較した動物用エキスの生物学的効力
前述のＥＬＩＳＡ効力アッセイを用いて、動物用エキス４の効力をヒト用エキスと比較して分析した。図１１に、このアッセイで得られた曲線を示す。
【０１２１】
アトピー犬（“動物用コナヒョウヒダニエキスの標準化”で述べられているのと同様にして選択）の血清プールの５０％阻害を達成するのに必要なヒト用エキスの量は０．１３２μｇであった。これは、動物用エキス４（０．０６２μｇ）と比べて、２．１３倍の増加を示し、動物用エキス４が、生物学的効力の観点から見て、ヒト用エキスと比べておよそ２倍の効力があることを実証している。
【０１２２】
Ｄｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８含量を推定するためのイムノブロットデンシトメトリー分析
デンシトメトリーによるタンパク質及びアレルゲンプロフィールの分析は、エキス中のアレルゲンの量を推定するための手段として使用することができる。このため、“ヒト用エキスと比較した動物用エキスの生物学的効力”に記載の血清プールで得られたアレルゲンプロフィールにおけるＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８アレルゲンのバンド強度を分析した。様々な動物用エキスとヒト用コナヒョウヒダニエキスのイムノブロット実験に対応する画像をＩｍａｇｅＱｕａｎｔソフトウェア（ＧＥ  Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ社）によって分析した。各タンパク質バンドのデンシトメトリーボリュームならびにその分子量を分析し、様々なサンプルで比較した。
【０１２３】
図１２及び図１３は、ＩｍａｇｅＱｕａｎｔソフトウェアによって分析されたイムノブロット画像を示しており、分析に含められたサンプルと主アレルゲンＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８を示している。図１４は、ＩｍａｇｅＱｕａｎｔソフトウェアによって両画像に確認されたバンドを示している。分析された様々なパラメーター及び各サンプルについて得られた値を表１１及び１２に示す。
【０１２４】
表１１．図１２の画像で確認された各バンドのボリューム及びＭＷ。Ｄｅｒ  ｆ  １５（番号１及び２）及びＤｅｒ  ｆ  １８（バンド番号４）アレルゲンに対応するバンドを太字で示す。
【０１２５】
【表１１】
2020529476.tif 000013
【０１２６】
表１２．図１３の画像で確認された各バンドのボリューム及びＭＷ。Ｄｅｒ  ｆ  １５（番号１及び２）及びＤｅｒ  ｆ  １８（バンド番号４）アレルゲンに対応するバンドを太字で示す。
【０１２７】
【表１２】
2020529476.tif 000014
【０１２８】
表１１及び１２のバンド番号１及び２はすべてのサンプルでＤｅｒ  ｆ  １５アレルゲンに対応しているが、Ｄｅｒ  ｆ  １８はバンド番号４に対応している。表１３及び１４に、これらのアレルゲンのボリューム（強度）及びヒト用エキスと比べた増加倍数に対応する情報をまとめた。
【０１２９】
表１３．Ｄｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８のボリューム及びヒト用エキスと比べた増加倍数（括弧内）（図１２）
【０１３０】
【表１３】
2020529476.tif 000015
【０１３１】
表１４．Ｄｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８のボリューム及びヒト用エキスに対する増加倍数（括弧内）（図１３）
【０１３２】
【表１４】
2020529476.tif 000016
【０１３３】
Ｄｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８アレルゲンの認識を示す強度のボリュームは、ヒト用エキスに比べて動物用エキスで高い増加を示した（２．２〜３．４倍の増加、すなわち×２．２〜×３．４）。これらの結果は、コナヒョウヒダニのヒト用エキスに比べて動物用エキスでこれらのアレルゲンの量が増加していることを裏付けている。
【０１３４】
他の哺乳動物：ネコのアレルギー治療のための動物用エキス
動物用エキスがイヌ以外の哺乳動物のアレルギーの治療に使用できるかどうかを評価するために、コナヒョウヒダニに感作されたネコの感作プロフィールを分析した。
【０１３５】
コナヒョウヒダニに対して陽性（ＥＡＵ＞１５０；Ｇｒｅｅｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社のＥＬＩＳＡ試験）の７匹の動物（１〜７）及び２匹の陰性対照（Ｃ１、Ｃ２）（ＥＡＵ＜１５０）が本研究に含められた。
【０１３６】
図１５に、本研究に含まれた異なる動物のアレルゲンプロフィールを示す。すべての陽性動物（１〜７番）は、動物用エキス４及び／又はヒト用エキス中の１４から１００ｋＤａを超える分子量を有するバンドを認識したが、陰性対照（Ｃ１、Ｃ２）は何のバンド認識も示さなかった。
【０１３７】
陽性動物の間で２つの主なアレルゲンプロフィールが見出され、認識バンドのＭＷに明らかな差があった。２匹の動物は低ＭＷのバンドを認識したが、数匹の動物はほとんど４０ｋＤａより高いタンパク質を認識した。２番のネコは主に２０ｋＤａのバンドを認識し、７番のネコは、ヒトの主アレルゲンＤｅｒ  ｆ  １及びＤｅｒ  ｆ  ２に対応しうる３０及び１４ｋＤａのバンドを認識した。これに対し、１、３、４、及び６番のネコは、主にイヌの主アレルゲンＤｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８を含む４０ｋＤａより高いタンパク質を認識した。最後に、５番のネコは、高及び低ＭＷのタンパク質を認識した。
【０１３８】
この情報によれば、４０ｋＤａより高く、Ｄｅｒ  ｆ  １５及びＤｅｒ  ｆ  １８アレルゲンを含むバンドのアレルゲンプロフィールを示すネコは、動物用ダニアレルゲンエキスで治療できると考えられる。
【０１３９】
インビトロ細胞アッセイ
本研究の目的は、アトピー犬及び非アトピー犬の末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）でサイトカイン産生を誘導する動物用コナヒョウヒダニエキス２及びヒト用コナヒョウヒダニエキスの能力を評価することであった。
【０１４０】
１．１．方法論
ＰＢＭＣ培養物の上清を４匹のアトピー犬及び３匹の健常対照から得た。４匹のアトピー犬は、アトピー性皮膚炎の病歴と、コナヒョウヒダニに対して＞１０００ＥＡＵ（Ｇｒｅｅｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社のＥＬＩＳＡ試験）という特異的ＩｇＥレベルを示していた。下記の特徴を有するイヌは除外された。すなわち、コルチコイド、シクロスポリンＡ、免疫抑制化合物で治療されたイヌ；免疫療法で治療されたイヌ；細菌、ウィルス又は寄生虫感染、免疫不全又は免疫病を患うイヌ。３匹の健常犬は何の臨床症状も示さず、コナヒョウヒダニに対して＜１５０ＥＡＵという特異的ＩｇＥレベルを有していた。
【０１４１】
上清中のサイトカイン含量は、製造業者の説明書に従って実施されたＥＬＩＳＡベースのＭｉｌｌｉｐｌｅｘ（登録商標）Ｍａｇ  Ｄｏｇキット（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ社）によって測定された。簡潔に述べると、ドナー（４匹のアトピー犬と３匹の非アトピー対照）からのＰＢＭＣ（２．５×１０６細胞／ウェル）を、ヒト用エキス又は動物用エキス２（４０μｇタンパク質／ｍｌ）で三重に刺激し、ＩＦＮ―γ及びＩＬ−１０の産生を、５％ＣＯ２雰囲気中３７℃で２４及び４８時間インキュベートした後、培養物上清中で二重に測定した。培地ＲＰＭＩ−１６４０（ＳｉｇｍａーＡｌｄｒｉｃｈ社）を陰性対照として使用し、コンカナバリンＡ（Ｃｏｎ  Ａ、３μｇ／ｍｌ）及びＬＰＳ（リポ多糖類、３μｇ／ｍｌ）を陽性対照として使用した。
【０１４２】
サイトカイン定量に関しては、標準データを５パラメーターロジスティック曲線に適合させ、Ｕ  Ｍａｎｎ−Ｗｈｉｔｎｅｙ統計分析を実施した。ｐ値＜０．０５が統計的に有意と見なされた。
【０１４３】
１．２．結果
細胞研究により、アトピー犬及び対照犬においてヒト用及び動物用エキスによるＩＦＮ―γ及びＩＬ−１０の同様の誘導が示された（図１６）。２４時間後、ヒト用及び動物用エキスは、陰性対照より有意に高レベルのＩＬ−１０を誘導した（ヒト用エキスの場合、メジアン（ＩＱ）１１７０［５５９−１５０２］ｐｇ／ｍｌ及び動物用エキスの場合１７４８［１１２２−１９９８］ｐｇ／ｍｌ）。４８時間のインキュベーション後のＩＦＮ―γも、ヒト用（５２．１［１５−１１３．２］ｐｇ／ｍｌ）及び動物用エキス（５０．４［２０−７６．３］ｐｇ／ｍｌ）で処置されたアトピー犬の細胞で陰性対照より有意に高かった。
【０１４４】
陽性対照（Ｃｏｎ  Ａ及びＬＰＳ）からの結果は、すべての例で陰性対照より有意に高かった（ｐ＜０．０５）（データ示さず）。
アトピー犬と非アトピー犬も比較した。ヒト用及び動物用エキスで処置された非アトピー犬に、アトピー犬と比べて高いレベルの両サイトカインが観察された。
【０１４５】
アレルゲン免疫療法の成功は、制御性Ｔ細胞（Ｔｒｅｇ）の誘導と、Ｔｈ２応答からＴｈ１応答へのシフトを伴うべきである。さらに、免疫療法の成功は、アレルゲンワクチンがＩＬ−１０及びＩＦＮ―γの産生（それぞれＴｒｅｇ及びＴｈ１応答に関係する）及びＩＬ−４の減少を特異的に刺激する能力にも関係していた。この研究は、ヒト用及び動物用コナヒョウヒダニエキスがこのダニに感作されたイヌのＰＢＭＣでＩＬ−１０及びＩＦＮ―γの産生を誘導する能力を実証しており、Ｔｈ１及びＴｒｅｇ応答の誘導、従って寛容に導くことができる有益な免疫応答を示唆している。
【０１４６】
本研究に含められたイヌはこれまで免疫療法で治療されたことがないので、ヒト用エキスで処置されたイヌと比べて、動物用エキスで処置されたイヌのＴｈ１能力の変更が今のところ観察されないのは当然である。しかしながら、ＩＬ−１０のアップレギュレーションは、動物用エキスがＴｈ１−Ｔｈ２平衡を再確立する能力を有していることを実証している。動物用エキスで処置されたイヌのＩＦＮ―γレベルは、免疫療法による治療の後にヒト用エキスで処置されたイヌと比べて、著しく増加することが期待されるであろう。
【０１４７】
非アトピー動物は、Ｔｈ１／Ｔｈ２応答間のバランスが正しく取れている免疫学的状態にあるので、サイトカイン産生のプロフィールも異なる。従って、非アトピー犬でより高いレベルのＩＬ−１０及びＩＦＮ―γが観察されたのは、非アトピー犬が基礎状態でアトピー犬よりも多くのこれらの制御性サイトカインを産生するためであり、ヒト用及び動物用コナヒョウヒダニエキスによる刺激後は、産生がさらに増大する。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【国際調査報告】
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2020529476.tif 000034
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