(57)【要約】  本発明は、成長因子受容体の恒常的活性型変異体をコードする遺伝子での細胞の安定的トランスフェクションを含む１種以上の対象タンパク質（ＰＯＩ）を発現する安定産生細胞株を選抜する方法、そのような安定産生細胞株における１種以上のＰＯＩを発現させる各々の方法、及び細胞の培養における選択マーカーとしての成長因子受容体の恒常的活性型変異体の使用に関する。【選択図】図１【特許請求の範囲】
【請求項１】
１種以上の対象タンパク質（ＰＯＩ）を発現する安定産生細胞株を選抜する方法であって、
（ａ）細胞株を準備する工程と、
（ｂ）前記細胞株を、
（ｉ）成長因子受容体の恒常的活性型変異体をコードする遺伝子であって、前記成長因子受容体の恒常的活性型変異体の発現の不存在下での前記細胞株の成長が前記成長因子受容体により認識される成長因子に依存する、遺伝子と、
（ｉｉ）前記ＰＯＩをコードする１種以上の対象遺伝子（ＧＯＩ）と、
で同時に安定的にトランスフェクションさせる工程と、
（ｃ）前記細胞株を、前記成長因子受容体により認識される成長因子を含有しない細胞培養培地又は前記成長因子受容体の恒常的活性型変異体の発現の不存在下で細胞の成長を持続させるには低すぎる濃度で前記成長因子を含有する細胞培養培地のいずれかにおいて培養する工程と、
を含む、方法。
【請求項２】
前記細胞株は、ＣＨＯ細胞、ＨＥＫ２９３細胞、ＣＡＰ細胞、Ｐｅｒ．Ｃ６細胞、ＢＨＫ細胞、Ｖｅｒｏ細胞、ＭＤＣＫ細胞、ハイブリドーマ細胞及び線維芽細胞からなる群より選択される、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記ＰＯＩは、細胞外マトリックスタンパク質、成長因子、ペプチドホルモン、サイトカイン、酵素、抗体、抗体フラグメント、血液凝固因子、プロテアーゼ阻害剤及びウイルス性タンパク質産物からなる群より選択される、請求項１又は２に記載の方法。
【請求項４】
前記ＰＯＩは、ヒト組み換えα１−アンチトリプシン（ｒｈＡＡＴ）、フィブリノゲン、ラミニン（ＬＡＭ）、インターフェロン（ＩＦＮ）、インターロイキン（ＩＬ）、免疫グロブリンＧ（ＩｇＧ）、免疫グロブリンＭ（ＩｇＭ）、二重特異性モノクローナル抗体（ＢｓＡｂ）、エリスロポエチン（ＥＰＯ）、第ＶＩＩ因子（ＦＶＩＩ）、第ＶＩＩＩ因子（ＦＶＩＩＩ）、第ＩＸ因子（ＦＩＸ）、フォン・ヴィレブランド因子（ｖＷＦ）、Ｃ１エステラーゼ阻害剤（Ｃ１阻害剤；Ｃ１  Ｉｎｈ）、ＨＩＶ−１、ＨＩＶ−２、ＥＩＡＶ、ＳＩＶ又はその他のレトロウイルス科由来のｇａｇ−ｐｏｌ（ｇａｇ−ｐｏｌ）、アデノ随伴ウイルス由来のｒｅｐタンパク質（ＲＥＰ）、アデノ随伴ウイルス由来のｃａｐタンパク質（ＣＡＰ）及びそれらの変異体からなる群より選択される、請求項１〜３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項５】
前記成長因子受容体の恒常的活性型変異体をコードする遺伝子と前記ＧＯＩとが同じベクター上に存在する、請求項１〜４のいずれか一項に記載の方法。
【請求項６】
前記成長因子受容体及び各々の成長因子は、ＩＧＦ−１Ｒ（インスリン様成長因子１受容体）、ＩＲ（インスリン受容体）並びにＩＧＦ−１、ＩＧＦ−２及び／又はインスリン、ＥＧＦＲ（上皮成長因子受容体）及び各々のＥＧＦＲリガンド、ＦＧＦＲ（線維芽細胞成長因子受容体）及びＦＧＦ、又はＰＤＧＦＲ（血小板由来成長因子受容体）及びＰＤＧＦである、請求項１〜５のいずれか一項に記載の方法。
【請求項７】
前記成長因子受容体の恒常的活性型変異体は、ヒトＣＤ８−ＩＧＦ−１Ｒ融合タンパク質である、請求項１〜６のいずれか一項に記載の方法。
【請求項８】
前記ヒトＣＤ８−ＩＧＦ−１Ｒ融合タンパク質は、配列番号１のアミノ酸配列を含む又はそのアミノ酸配列のみからなる、請求項７に記載の方法。
【請求項９】
前記ヒトＣＤ８−ＩＧＦ−１Ｒ融合タンパク質は、配列番号２のヌクレオチド配列を含む又はそのヌクレオチド配列のみからなる核酸によりコードされる、請求項７又は８に記載の方法。
【請求項１０】
工程（ｃ）は、選抜を起こさせる期間にわたり実施される、請求項１〜９のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１１】
安定産生細胞株における１種以上の対象タンパク質（ＰＯＩ）を発現させる方法であって、
（ａ）請求項１〜１０のいずれか一項に記載の方法を実施する工程と、
（ｂ）前記安定産生細胞株において前記ＰＯＩを発現させる工程と、
（ｃ）前記細胞又は前記細胞培養培地から前記ＰＯＩを回収する工程と、
を含む、方法。
【請求項１２】
細胞の培養における選択マーカーとしての成長因子受容体の恒常的活性型変異体の使用。
【請求項１３】
前記細胞は、請求項２に規定される細胞株である、請求項１２に記載の使用。
【請求項１４】
前記成長因子受容体は、ＩＧＦ−１Ｒ（インスリン様成長因子１受容体）、ＩＲ（インスリン受容体）、ＥＧＦＲ（上皮成長因子受容体）、ＦＧＦＲ（線維芽細胞成長因子受容体）又はＰＤＧＦＲである、請求項１２又は１３に記載の使用。
【請求項１５】
前記成長因子受容体の恒常的活性型変異体は、請求項７〜９のいずれか一項に規定される成長因子受容体の恒常的活性型変異体である、請求項１２〜１４のいずれか一項に記載の使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、成長因子受容体の恒常的活性型変異体をコードする遺伝子での細胞の安定的トランスフェクションを含む１種以上の対象タンパク質（ＰＯＩ）を発現する安定産生細胞株を選抜する方法、そのような安定産生細胞株における１種以上のＰＯＩを発現させる各々の方法、及び細胞の培養における選択マーカーとしての成長因子受容体の恒常的活性型変異体の使用に関する。
【背景技術】
【０００２】
選択マーカーは、安定産生細胞株、すなわち、例えばバイオ医薬品等の１種以上のＰＯＩを安定的に発現する細胞株の作製のための必須のツールである。通常、これらの選択マーカーは、発現ベクター上にコードされ、１種以上の対象遺伝子（ＧＯＩ）と一緒に（例えば、トランスフェクションにより）標的ゲノムに安定的に組み込まれる抗生物質耐性遺伝子である。各々の抗生物質の存在下でのトランスフェクションされた細胞の培養により、発現ベクターが組み込まれた産生細胞が選抜される。
【０００３】
哺乳動物の発現系のために通常使用される抗生物質に基づく選択マーカーとしては、例えば、バチルス・セレウス（Bacillus cereus）又はアスペルギルス・テレウス（Aspergillus terreus）由来のブラストサイジンＳ耐性遺伝子、トランスポゾンＴｎ５（ｎｅｏ）からのＧ４１８（ジェネティシン）耐性遺伝子、ストレプトマイセス属の複数の菌種（Streptomyces spp.）由来のピューロマイシン耐性遺伝子、エシェリキア・コリ（Escherichia coli）由来のハイグロマイシンＢ耐性遺伝子、及びストレプトアロテイカス・ヒンダスタヌス（Streptoalloteichus hindustanus）由来のゼオシン耐性遺伝子が挙げられる。
【０００４】
抗生物質耐性に基づく選択マーカーの不利点としては、一連の非常に限られた選択マーカーしか利用することができないことが挙げられる。さらに、特に非常に大きな多量体タンパク質の発現に際して、不安定な産生クローンでは問題があり、その際、標的タンパク質の組み換え発現が時間の経過に伴ってサイレンシングされて、産生の間に低い力価がもたらされる。サイレンシングを防ぐために、細胞は各々の抗生物質選抜剤の存在下で培養され得る。しかしながら、抗生物質の存在下でのＰＯＩの大規模産生は、産生後に大規模な除去工程及び分析工程が必要となるため望ましくない。
【０００５】
したがって、例えば幾つかの発現コンストラクトを安定的に組み込み、細胞株の安定性及び使用しやすさを高める必要がある場合に、新しい選択マーカーが緊急に必要とされる。そのような新しい選択マーカーは、選抜剤の不存在下でＰＯＩの持続的な発現を持続させることが理想的である。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
したがって、本発明の基礎を成す技術的課題は、各々の選択マーカー及び該選択マーカーを使用する方法を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
上記技術的課題に対する解決策は、特許請求の範囲で特徴づけられる実施の形態によって達成される。
【０００８】
特に第１の態様において、本発明は、１種以上の対象タンパク質（ＰＯＩ）を発現する安定産生細胞株を選抜する方法であって、
（ａ）細胞株を準備する工程と、
（ｂ）前記細胞株を、
（ｉ）成長因子受容体の恒常的活性型変異体をコードする遺伝子であって、前記成長因子受容体の恒常的活性型変異体の発現の不存在下での前記細胞株の成長が前記成長因子受容体により認識される成長因子に依存する、遺伝子と、
（ｉｉ）前記ＰＯＩをコードする１種以上の対象遺伝子（ＧＯＩ）と、
で同時に安定的にトランスフェクションさせる工程と、
（ｃ）前記細胞株を、前記成長因子受容体により認識される成長因子を含有しない細胞培養培地又は前記成長因子受容体の恒常的活性型変異体の発現の不存在下で細胞の成長を持続させるには低すぎる濃度で前記成長因子を含有する細胞培養培地のいずれかにおいて培養する工程と、
を含む、方法に関する。
【０００９】
通常、成長因子受容体は、各々のリガンド、すなわち各々の成長因子（例えば、ＩＧＦ−１Ｒの場合にＩＧＦ−１、ＩＦＧ−２又はインスリン）の結合とその後の二量体化とにより活性化され、こうして下流のリン酸化イベントとＭＡＰキナーゼ経路及びＮＦκＢ経路を含む成長促進経路及び抗アポトーシス経路の活性化とが引き起こされる。これらの成長因子は血清中に存在し、無血清成長培地中でのこれらの因子に依存する細胞培養の場合には該成長因子を補充する必要がある。ＩＧＦ−１及びインスリンに対して成長応答を示す細胞としては、ＣＡＰ、ＣＨＯ、ＢＨＫ、ＨＥＫ２９３、Ｖｅｒｏ、ＰＥＲ．Ｃ６（商標）、ＭＤＣＫ細胞、ハイブリドあｎーマ細胞及び線維芽細胞が挙げられる。そのような細胞の培養は通常、成長因子の補充を必要とし、それにより各々の産生過程のコストは高まる。本発明は、新しいアプローチ、すなわち恒常的活性型の成長因子受容体変異体の安定的組み込みと、細胞培養培地における成長因子の除去による正の選抜とを実現し、こうしてタンパク質不含培地における産生が可能となる。
【００１０】
本明細書で使用される「選抜」という用語は、選抜圧を設定することにより、すなわち本発明によれば、上記成長因子受容体により認識される成長因子を含有しない細胞培養培地又は上記成長因子受容体の恒常的活性型変異体の発現の不存在下で細胞の成長を持続させるには低すぎる濃度で上記成長因子を含有する細胞培養培地のいずれかにおいて上記細胞を培養することにより、所望の陽性細胞クローンの排他的な生存及び増殖を可能にするが、不所望な陰性細胞クローンは上記選抜圧下では生存及び増殖することができない過程を指す。この「選抜」という用語の使用は、より大きな細胞プールからの、例えばソーティング又は接着による所望の細胞の物理的分離及び／又は濃縮と明確に区別されるべきである。
【００１１】
本明細書で使用される「産生細胞株」という用語は、１種以上のＰＯＩを産生、すなわち発現する細胞株に関する。この点で「安定産生細胞株」という用語は、上記ＰＯＩをコードする１種以上の遺伝子（１種以上の対象遺伝子、ＧＯＩ）及び成長因子受容体の恒常的活性型変異体をコードする遺伝子が、細胞ゲノムへと安定的に組み込まれることを指す。
【００１２】
特定の実施の形態では、本発明の方法の工程（ａ）で準備される細胞株は、ヒト細胞株を含む哺乳動物細胞株である。好ましくは、細胞株は、ＣＨＯ細胞、ＨＥＫ２９３細胞、ＣＡＰ細胞、Ｐｅｒ．Ｃ６細胞、ＢＨＫ細胞、Ｖｅｒｏ細胞、ＭＤＣＫ細胞、ハイブリドーマ細胞及び線維芽細胞からなる群より選択される。より好ましくは、細胞はＣＡＰ細胞株である。
【００１３】
本発明において使用される細胞株により発現されるべきＰＯＩは、特に限定されない。ＰＯＩとしては、発現が望まれるであろうあらゆるタンパク質、例えば細胞外マトリックスタンパク質、成長因子、ペプチドホルモン、サイトカイン、酵素、抗体、抗体フラグメント、血液凝固因子、プロテアーゼ阻害剤及びウイルス性タンパク質産物からなる群より選択されるタンパク質が挙げられる。具体例としては、ヒト組み換えα１−アンチトリプシン（ｒｈＡＡＴ）、フィブリノゲン、ラミニン（ＬＡＭ）、インターフェロン（ＩＦＮ）、インターロイキン（ＩＬ）、免疫グロブリンＧ（ＩｇＧ）、免疫グロブリンＭ（ＩｇＭ）、二重特異性モノクローナル抗体（ＢｓＡｂ）、エリスロポエチン（ＥＰＯ）、第ＶＩＩ因子（ＦＶＩＩ）、第ＶＩＩＩ因子（ＦＶＩＩＩ）、第ＩＸ因子（ＦＩＸ）、フォン・ヴィレブランド因子（ｖＷＦ）、Ｃ１エステラーゼ阻害剤（Ｃ１阻害剤；Ｃ１  Ｉｎｈ）、ＨＩＶ−１、ＨＩＶ−２、ＥＩＡＶ、ＳＩＶ又はその他のレトロウイルス科由来のｇａｇ−ｐｏｌ（ｇａｇ−ｐｏｌ）、アデノ随伴ウイルス由来のｒｅｐタンパク質（ＲＥＰ）、アデノ随伴ウイルス由来のｃａｐタンパク質（ＣＡＰ）及びそれらの変異体が挙げられる。
【００１４】
本発明の方法の工程（ｂ）において、細胞株は、（ｉ）成長因子受容体の恒常的活性型変異体をコードする遺伝子であって、上記成長因子受容体の恒常的活性型変異体の発現の不存在下での上記細胞株の成長が上記成長因子受容体により認識される成長因子に依存する、遺伝子と、（ｉｉ）上記ＰＯＩをコードする１種以上のＧＯＩとで安定的にトランスフェクションされる。各々のトランスフェクション法は、特に限定されず、当該技術分野において知られている。
【００１５】
本明細書で使用される「安定的にトランスフェクションする」という用語は、各々の遺伝子が細胞ゲノムへと安定的に組み込まれることを示す。
【００１６】
「上記成長因子受容体の恒常的活性型変異体の発現の不存在下での上記細胞株の成長が上記成長因子受容体により認識される成長因子に依存する」という用語は、本発明の方法が望み通りに機能するために、天然の条件下、すなわちトランスフェクションされていない細胞における細胞の成長が上記成長因子及び各々の成長因子受容体シグナル伝達に依存するように、成長因子受容体／成長因子が選択される必要があることを示す。
【００１７】
「成長因子受容体の恒常的活性型変異体」という用語は、それらの各々の成長因子リガンドの不存在下でさえも活性化状態にある成長因子受容体変異体に関する。
【００１８】
好ましい実施の形態では、前記成長因子受容体の恒常的活性型変異体をコードする遺伝子と前記ＧＯＩとが同じベクター上に存在する。適切なベクターは、特に限定されず、当該技術分野において知られている。
【００１９】
特定の実施の形態では、前記成長因子受容体及び各々の成長因子は、ＩＧＦ−１Ｒ（インスリン様成長因子１受容体）、ＩＲ（インスリン受容体）並びにＩＧＦ−１、ＩＧＦ−２及び／又はインスリン、ＥＧＦＲ（上皮成長因子受容体）及び各々のＥＧＦＲリガンド、ＦＧＦＲ（線維芽細胞成長因子受容体）及びＦＧＦ、又はＰＤＧＦＲ（血小板由来成長因子受容体）及びＰＤＧＦである。
【００２０】
特定の実施の形態では、成長因子受容体の恒常的活性型変異体は、当該技術分野において知られるように、細胞外ドメインが欠失したＥＧＦＲ、ＺＮＦ１９８−ＦＧＦＲ１融合タンパク質、点突然変異を有するＰＤＧＦＲ、点突然変異を有するＩＲ、細胞外ドメインが欠失したＩＧＦ−１Ｒの恒常的活性型変異体（ＩＧＦ１Ｒ  ＴＭ−ｉｃｄ）及び活性化を高めるようなそれらの点突然変異体である。
【００２１】
特定の実施の形態では、前記成長因子受容体の恒常的活性型変異体は、ヒトＣＤ８−ＩＧＦ−１Ｒ融合タンパク質である。前記融合タンパク質は、配列番号１のアミノ酸配列を含む又はそのアミノ酸配列のみからなることが好ましい。さらに、前記ヒトＣＤ８−ＩＧＦ−１Ｒ融合タンパク質は、配列番号２のヌクレオチド配列を含む又はそのヌクレオチド配列のみからなる核酸によりコードされることが好ましい。
【００２２】
本発明の方法の工程（ｃ）においては、細胞株は、上記成長因子受容体により認識される成長因子を含有しない細胞培養培地又は上記成長因子受容体の恒常的活性型変異体の発現の不存在下で細胞の成長を持続させるには低すぎる濃度で上記成長因子を含有する細胞培養培地のいずれかにおいて培養される。この文脈において、この点で低すぎる各々の濃度は、具体的な成長因子及び成長因子受容体に依存し、当業者によって容易に決定され得る。この工程は、好ましくは、選抜を起こさせる期間、すなわち、成長因子受容体の恒常的活性型変異体を発現しない細胞の死を可能にするのに十分長い期間にわたり実施される。具体的な例では、工程（ｃ）は９代継代又は１０代継代にわたり実施される。この文脈において、選抜を起こさせる期間は、限定されるものではないが、細胞培養培地の組成、細胞株及び発現ベクター上に存在する調節エレメントを含む幾つかの要因に依存し、したがってこれらの要因に応じて変動し得る。各々の期間は、当業者によって容易に決定され得る。
【００２３】
第２の態様において、本発明は、安定産生細胞株における１種以上の対象タンパク質（ＰＯＩ）を発現させる方法であって、
（ａ）上記定義のように本発明の第１の態様に記載の方法を実施する工程と、
（ｂ）前記安定産生細胞株において前記ＰＯＩを発現させる工程と、
（ｃ）前記細胞又は前記細胞培養培地から前記ＰＯＩを回収する工程と、
を含む、方法に関する。
【００２４】
細胞株におけるＰＯＩの発現及びその回収のための方法は、特に限定されず、当該技術分野において知られている。
【００２５】
さらに、本発明の第１の態様について定義された全ての定義及び限定は、本発明のこの第２の態様に同様に当てはまる。
【００２６】
第３の態様において、本発明は、細胞の培養における選択マーカーとしての成長因子受容体の恒常的活性型変異体の使用に関する。
【００２７】
この態様において、本発明の第１の態様について定義された全ての定義及び限定は、本発明のこの第３の態様に同様に当てはまる。特に、細胞、成長因子受容体、成長因子及び成長因子受容体の恒常的活性型変異体は、上記定義の通りである。
【００２８】
本発明は、恒常的活性型の成長因子受容体（例えば、ＩＧＦ−１Ｒの）を選択マーカーとして使用するという着想に基づいている。これにより、有利には、特に哺乳動物発現系に関する現在利用可能な限られた選択マーカー群に、新しい効率的な選択マーカーが追加される。さらに、本発明は、産生細胞の培養の間に連続的な選抜圧を可能にすることで、後で選抜剤を除去する必要なくかつ最終産物中の選抜剤の不存在を立証するための時間のかかる高価な分析を必要とせずに、発現が困難な標的タンパク質の発現を安定化させる可能性がある。さらに、本発明は、有利には、無血清細胞培養培地に各々の成長因子を補充する必要がないため、大規模生産プロセスのコスト削減を可能にする。
【００２９】
追加の試薬を準備する必要なく上記の連続的な選抜圧を設定することができることは、本発明の方法及び使用の重要な利点である。特に産生細胞株が数代の継代にわたって上記タンパク質を安定的に発現しない場合に、組み換えタンパク質の高収率の発現の維持が可能となる。この文脈において、特にタンパク質発現が非常に高い場合に、そのような不安定な産生細胞株は非常に一般的であることに留意すべきである。それというのも、過剰なタンパク質発現は増殖速度に負の影響を及ぼし、タンパク質産生を停止する場合に細胞は生存的利点及び増殖の利点を有するからである。このサイレンシング効果は、本発明により連続的な選抜圧を設定することによって有利に効率的に打ち消される。
【図面の簡単な説明】
【００３０】
【図１】組み換えヒトα１−アンチトリプシン（ｒｈＡＡＴ）を安定的に発現するＣＡＰ細胞プールを、ｐＳｔｂｌ−ＣＤ８−ＩＧＦ１Ｒ−ＡＡＴ又はｐＳｔｂｌ−ｂｓｄ−ＡＡＴ（コントロール）のいずれかで親ＣＡＰ細胞をトランスフェクションし、続いてＩＧＦ−１が除去された又はブラストサイジン含有のＣＡＰ−ＣＤＭ成長培地中で選抜することにより作製した。モックトランスフェクションされたＣＡＰ細胞を、５０μｇ／ＬのＬｏｎｇ−Ｒ３−ＩＧＦを含むＣＡＰ−ＣＤＭ又はＩＧＦを含まないＣＡＰ−ＣＤＭ中で１０代継代にわたりコントロールとして培養した。全てのプールについて、細胞を１２５ｍＬ容の振盪フラスコ中で１８５ｒｐｍ、５％のＣＯ２及び３７℃で成長させ、生細胞密度（ＶＣＤ）を１×１０６細胞／ｍＬに調整しながら７２時間〜９６時間毎に継代した。
【図２】１０日目に採取されたＣＡＰ−ｂｓｄ−ＡＡＴプール細胞及びＣＡＰ−ＣＤ８−ＩＧＦ１Ｒ−ＡＡＴプール細胞の流加培養物からの細胞培養上清中のＲｈＡＡＴレベル。ＲｈＡＡＴ力価はＥＬＩＳＡによって定量化した。
【発明を実施するための形態】
【００３１】
本発明を以下の実施例により更に説明するが、本発明はそれらに限定されない。
【実施例】
【００３２】
実施例１
恒常的活性型のＣＤ８−ＩＧＦ１Ｒ変異体を選択マーカーとして使用することによる、ヒト組み換えα１−アンチトリプシン（ＡＡＴ）を安定的に発現するＣＡＰ細胞の作製
序論：
ＣＡＰ細胞は、ＩＧＦ−１又はインスリンを補充していない無血清培地において成長阻害を示すヒト羊膜細胞由来の懸濁細胞である。したがって、ＣＡＰ細胞は、本発明による新しい選択マーカーの実現に適した細胞株である。
【００３３】
ＩＧＦ−１Ｒは、ＰＩ３Ｋ／Ａｋｔキナーゼ＋ｍＴＯＲ及びＭＡＰキナーゼ経路を活性化することによる細胞成長及びタンパク質生合成に不可欠な膜貫通型受容体チロシンキナーゼである。ＩＧＦ−１Ｒは、２つのα−サブユニットと２つのβ−サブユニットとを含む四量体である。そのリガンドは、ＩＧＦ−１（最高の親和性）、ＩＧＦ−２及びインスリン（最低の親和性）である。リガンドのα−サブユニットへの結合は、コンフォメーション変化（α−サブユニットの二量体化）と、その後のβ−サブユニットの特定のチロシン残基（Ｔｙｒ１１３１、Ｔｙｒ１１３５、Ｔｙｒ１１３６、Ｔｙｒ９５０）の自己リン酸化とに続き、受容体基質（ＩＲＳ１〜４、ｓｈｃ）のそれらの結合部位への結合及び下流シグナル伝達経路の開始を引き起こす。
【００３４】
ＩＧＦ−１Ｒの恒常的活性化は、その細胞内ドメイン及び膜貫通型ドメインをヒトＴ細胞マーカーＣＤ８の細胞外ドメインに融合させることにより達成され得る。この方法は、当該技術分野において以前に記載されており、その際、ＣＤ８−ＩＧＦ１Ｒ融合コンストラクトが、マウスモデルにおける腫瘍発生のためのＩＧＦ１Ｒシグナル伝達の役割を調査するためのツールとして利用された。当該技術分野のいずれにおいても、ＣＤ８−ＩＧＦ１Ｒの組み換え発現及び関連するＩＧＦ１Ｒの恒常的活性化は、安定的な細胞株の作製のための選択マーカーとして用いられなかった。
【００３５】
α１−アンチトリプシン（ＡＡＴ）は、５２ｋＤａの糖タンパク質であり、特に好中球エラスターゼを標的とするセリンプロテアーゼ阻害剤である。遺伝性ＡＡＴ欠乏症は、重度の肺気腫を引き起こす。組み換えヒトＡＡＴ（ｒｈＡＡＴ）は、ＣＡＰ細胞において生成に成功しており、ここではＣＤ８−ＩＧＦ１Ｒを新しい選択マーカーとして伴う研究のモデルタンパク質として使用される。
【００３６】
実験手順：
発現コンストラクトのクローニング：
ＣＤ８−ＩＧＦ１Ｒ融合タンパク質の構成要素は、（ｉ）ヒトＣＤ８のα鎖（Ｕｎｉｐｒｏｔ  Ｐ０１７３２−１）のアミノ酸１〜２１８、及び（ｉｉ）ヒトＩＧＦ−１Ｒ（ＮＣＢＩタンパク質データベースＮＰ０００８６６）の細胞内ドメインのアミノ酸９６４〜１３６７である。これらを、リンカーを用いずインフレームで融合させて、ＣＤ８−ＩＧＦ１Ｒ融合タンパク質のアミノ酸配列（以下に示される配列番号１）が得られる。各々のｃＤＮＡは、以下に示される配列番号２である。
【００３７】
ｃＤＮＡを、ＧｅｎｅＡｒｔ（Thermo Fisher Scientific社）によって合成し、ｂｓｄ耐性遺伝子をＣＤ８−ＩＧＦ１Ｒコンストラクトにより置き換えることによってｐＳｔｂｌ発現ベクター（CEVEC Pharmaceuticals社、ドイツ）へとサブクローニングした。最終的な発現コンストラクトｐＳｔｂｌ−ＣＤ８−ＩＧＦ１Ｒ−ＡＡＴの構成要素は、（ｉ）ＣＭＶプロモーターの制御下にあるヒトα１−アンチトリプシン（ＡＡＴ）のｃＤＮＡ、（ｉｉ）ヒトＵｂｃプロモーターの制御下にあるＣＤ８−ＩＧＦ１Ｒを含む選抜カセット、（ｉｉｉ）組み込まれたＯＲＦの安定的な転写のための増強エレメント、（ｉｖ）Ｅ．コリ（E. coli）での増幅のためのｐＵＣのｏｒｉ、及び（ｖ）Ｅ．コリでの選抜のためのアンピシリン耐性カセットである。
【００３８】
プラスミドの検証は、Eurofins MWG Operon社により実施されたシーケンシングによるものであった。コントロールベクターとして、（ｉ）ｐＳｔｂｌ−ｂｓｄ−ＡＡＴ（ＣＭＶプロモーターの制御下にあるＡＡＴのｃＤＮＡ、ｂｓｄ選抜カセット）、及び（ｉｉ）ｐＳｔｂｌ−ｂｓｄ（空；ＧＯＩなし、ｂｓｄ選抜カセット）を使用した。
【００３９】
細胞培養：
親ＣＡＰ、ＣＡＰ−ｂｓｄ−ＡＡＴ及びＣＡＰモック細胞を、振盪インキュベーター上の振盪フラスコ（１２５ｍＬ容；Corning社）に入った６ｍＭのＬ−アラニル−Ｌ−グルタミン（Biochrom社、ドイツ）及び５０μｇ／ＬのＬｏｎｇ−Ｒ３−ＩＧＦ−Ｉ（SAFC社、ドイツ）が補充された化学的に定義された無血清ＣＡＰ−ＣＤＭ培地（Merck Millipore社、ドイツ）中で１８５ｒｐｍ（５ｃｍの軌道）、５％のＣＯ２及び３７℃で通常のように培養した。
【００４０】
ＣＡＰ−ＣＤ８−ＩＧＦ１Ｒ−ＡＡＴ細胞を、Ｌｏｎｇ−Ｒ３−ＩＧＦ−Ｉを含まず６ｍＭのＬ−アラニル−Ｌ−グルタミン（Biochrom社、ドイツ）が補充された化学的に定義された無血清ＣＡＰ−ＣＤＭ培地（Merck Millipore社、ドイツ）中で培養した。
【００４１】
通常の培養の間に、細胞を新鮮な培地で１×１０６細胞／ｍｌの生細胞密度になるまで７２時間〜９６時間毎に希釈した。生細胞密度及び生存率を、ＣＥＤＥＸ  ＸＳセルカウンター（Innovatis社、Roche Applied Science社）を使用してトリパンブルー色素排除により測定した。
【００４２】
発酵の間に３日目、５日目及び７日目に細胞に１０％（容量／容量）のＣＡＰ−ＣＤＭ  ｆｅｅｄ（Merck Millipore社、ドイツ）及び４ｍＭのＬ−アラニル−Ｌ−グルタミン（Biochrom社、ドイツ）を供給した。
【００４３】
ヌクレオフェクション及び安定的なプールの作製：
安定的なプールを、Lonza社のＮｕｃｌｅｏｆｅｃｔｏｒを使用して製造業者の使用説明書に従って作製した。各ヌクレオフェクション反応につき、１×１０７個の細胞を遠心分離（１５０×ｇ、５分）により採取した。細胞を１００μｌのｃｏｍｐｌｅｔｅ  ｎｕｃｌｅｏｆｅｃｔｏｒ  ｓｏｌｕｔｉｏｎ  Ｖ（Lonza社）中に再懸濁し、５μｇの線形化された発現ベクターと混合した。ＤＮＡ／細胞懸濁液をキュベットに移し、Ｘ００１プログラムを使用してヌクレオフェクションを実施した。トランスフェクションされた細胞を１２．５ｍＬの成長培地に移し、３７℃、５％のＣＯ２において１８５ｒｐｍで上記のように培養した。
【００４４】
安定的なプールを作製するために、細胞を遠心分離によりペレット化し、トランスフェクションの７２時間〜９６時間後に選抜培地（表１を参照）中に再懸濁し、引き続き振盪インキュベーター中で上記のように培養した。
【００４５】
ＩＧＦ−１が除去されたＣＡＰ−ＣＤＭ培地中で培養されたＣＡＰモック細胞を、ネガティブコントロールとして用いた。
【００４６】
【表１】
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【００４７】
ＥＬＩＳＡ：
ＣＡＰ細胞培養上清中の組み換えＡＡＴの濃度を、２部位ＥＬＩＳＡを使用して測定した。このマイクロプレートに基づくアッセイでは、ＡＡＴは、固定化されたヤギＡＡＴ特異的抗体によって捕捉され、西洋ワサビペルオキシダーゼに結合されたヤギＡＡＴ特異的二次抗体（Bethyl社、カタログ番号Ａ８０−１２２Ａ／Ｂ）によって検出される。
【００４８】
コーティングのために、９６ウェルマイクロタイタープレートを、希釈された捕捉抗体（Bethyl社、０．１ＭのＮａ２ＣＯ３／０．１ＭのＮａＨＣＯ３中で１．３３μｇ／ｍＬ、１００μＬ／ウェル）と一緒に３７℃で１時間インキュベートした。
【００４９】
ウェルを、ＴＢＳ＋０．０５％（容量／容量）のＴｗｅｅｎ−２０（＝ＴＢＳＴ；２００μｌ／ウェル）で４回洗浄し、ＴＢＳＴ＋５％（重量／容量）のスキムミルク粉末（＝ＴＢＳＴＭ；２００μＬ／ウェル）にて４℃で一晩ブロッキングした。ブロッキング後に、プレートをＴＢＳＴ（２００μＬ／ウェル）で２回洗浄し、ＡＡＴ標準（０．２ｎｇ／ｍＬ〜２００ｎｇ／ｍＬ、ＴＢＳＴ中での２倍連続希釈物）、試料及びネガティブコントロールを添加した（１００μＬ／ウェル）。プレートを密封し、３７℃で９０分間インキュベートした。
【００５０】
次に、そのプレートを上記のように４回洗浄した後に、検出抗体（ＴＢＳＴＭ中で６６．７ｎｇ／ｍＬ、１００μＬ／ウェル）を添加し、３７℃で１時間のインキュベーション工程を行った。ウェルを上記のように洗浄し、ＴＭＢＤ基質（２４ｍＭのクエン酸塩／５２ｍＭのＮａ２ＨＰＯ４／０．００６％のＨ２Ｏ２中で０．１ｍｇ／ｍＬ、ｐＨ５．０）を添加した（１００μＬ／ウェル）。
【００５１】
周囲温度で１０分間インキュベートした後に、０．５ＭのＨ２ＳＯ４（１００μＬ／ウェル）の添加により反応を止めて、４５０ｎｍでの吸光度（＝Ａ４５０）をBioRad社のマイクロタイタープレートリーダーを使用して計測した。標準曲線（４パラメーターフィット）を、ＡＡＴ標準希釈物のＡ４５０値から作成した。その曲線を、細胞培養上清中の組み換えＡＡＴの定量化のために使用した。
【００５２】
結果：
恒常的活性型のＩＧＦ１Ｒ受容体が安定的な（ＣＡＰ）産生細胞株の作製のための選択マーカーとして適切であることを証明するために、親ＣＡＰ細胞を、ＣＤ８−ＩＧＦ１Ｒ−ＡＡＴ発現ベクター又は選択マーカーとしてブラストサイジン耐性カセットを含むＡＡＴ発現ベクターのいずれかでトランスフェクションさせた。空のｐＳｔｂｌ−ｂｓｄプラスミドでトランスフェクションされたＣＡＰ（ＣＡＰモック）をコントロールとして用いた。ヌクレオフェクションの１代継代の後に、細胞を各々の選抜培地（表１）に移し、９代継代〜１０代継代の期間にわたり培養した。ＩＧＦ１が除去された成長培地中での８代継代〜９代継代の後に、選抜によりＣＡＰ−ＣＤ８−ＩＧＦ１Ｒ−ＡＡＴプールを回収し、ＩＧＦ１を含む完全成長培地中で培養されたＣＡＰモックプール（７２時間〜９６時間後の２×１０６細胞／ｍＬ超、８５％超の生存率）に匹敵する生細胞密度及び生存率に達した。それに対して、モックトランスフェクションされたＣＡＰ細胞は、ＩＧＦ−１が除去された成長培地中での培養に耐えられず、生細胞密度及び生存率は、７２時間〜９６時間後に３代継代後に既に２×１０６細胞／ｍＬ未満及び８５％未満の生存率に低下し始める（図１）。このデータは、ＣＡＰ細胞におけるＣＤ８−ＩＧＦ１Ｒの組み換え発現が実際にＣＤ８−ＩＧＦ１Ｒ及び関連する下流シグナル伝達経路の恒常的活性化をもたらすことと、この恒常的ＩＧＦ１Ｒ活性化がＩＧＦ１飢餓を補償することができ、それによりＩＧＦ１が除去された細胞培養培地中でのＣＡＰ細胞の成長を可能にすることとを指摘している。
【００５３】
従来のブラストサイジン選抜によって作製されたＣＡＰ細胞プール及び新規ＣＤ８−ＩＧＦ１Ｒ選択マーカーを使用して作製されたＣＡＰ細胞プールの生産性を比較するために、１０日間にわたる流加培養による生産運転を安定的なＣＡＰ細胞プールを用いて実施し、１０日目からの細胞培養上清中でのｒｈＡＡＴの濃度をＥＬＩＳＡにより定量化した。力価は両方のＣＡＰ細胞プールで同等（それぞれ５．６μｇのＡＡＴ／１×１０６細胞；図２）であったことから、ＣＤ８−ＩＧＦ１Ｒ融合コンストラクト及びＩＧＦ−１が除去された成長培地を使用する４週間以内の選抜により安定的なＡＡＴ発現ＣＡＰ細胞プールの作製に成功したことと、ＣＤ８−ＩＧＦ１Ｒコンストラクトが、ＧＯＩで同時トランスフェクションされた場合に安定的なＣＡＰ細胞を作製するための適切な選択マーカーであることとが指摘される。
【００５４】
本発明は、以下のヌクレオチド配列に関する。
【００５５】
配列番号１：
ヒトＣＤ８−ＩＧＦ１Ｒ融合タンパク質
MALPVTALLLPLALLLHAARPSQFRVSPLDRTWNLGETVELKCQVLLSNPTSGCSWLFQPRGAAASPTFLLYLSQNKPKAAEGLDTQRFSGKRLGDTFVLTLSDFRRENEGYYFCSALSNSIMYFSHFVPVFLPAKPTTTPAPRPPTPAPTIASQPLSLRPEACRPAAGGAVHTRGLDFACDIYIWAPLAGTCGVLLLSLVITLYCNHRNRRRVCKCPNSRLGNGVLYASVNPEYFSAADVYVPDEWEVAREKITMSRELGQGSFGMVYEGVAKGVVKDEPETRVAIKTVNEAASMRERIEFLNEASVMKEFNCHHVVRLLGVVSQGQPTLVIMELMTRGDLKSYLRSLRPEMENNPVLAPPSLSKMIQMAGEIADGMAYLNANKFVHRDLAARNCMVAEDFTVKIGDFGMTRDIYETDYYRKGGKGLLPVRWMSPESLKDGVFTTYSDVWSFGVVLWEIATLAEQPYQGLSNEQVLRFVMEGGLLDKPDNCPDMLFELMRMCWQYNPKMRPSFLEIISSIKEEMEPGFREVSFYYSEENKLPEPEELDLEPENMESVPLDPSASSSSLPLPDRHSGHKAENGPGPGVLVLRASFDERQPYAHMNGGRKNERALPLPQSSTC
【００５６】
配列番号２：
ヒトＣＤ８−ＩＧＦ１Ｒ融合タンパク質をコードするｃＤＮＡ
（ＣＤ８部分（イタリック体）、ＩＧＦ１Ｒ部分（下線）、コザック配列（太字））
GCCACCATGGCCTTACCAGTGACCGCCTTGCTCCTGCCGCTGGCCTTGCTGCTCCACGCCGCCAGGCCGAGCCAGTTCCGGGTGTCGCCGCTGGATCGGACCTGGAACCTGGGCGAGACAGTGGAGCTGAAGTGCCAGGTGCTGCTGTCCAACCCGACGTCGGGCTGCTCGTGGCTCTTCCAGCCGCGCGGCGCCGCCGCCAGTCCCACCTTCCTCCTATACCTCTCCCAAAACAAGCCCAAGGCGGCCGAGGGGCTGGACACCCAGCGGTTCTCGGGCAAGAGGTTGGGGGACACCTTCGTCCTCACCCTGAGCGACTTCCGCCGAGAGAACGAGGGCTACTATTTCTGCTCGGCCCTGAGCAACTCCATCATGTACTTCAGCCACTTCGTGCCGGTCTTCCTGCCAGCGAAGCCCACCACGACGCCAGCGCCGCGACCACCAACACCGGCGCCCACCATCGCGTCGCAGCCCCTGTCCCTGCGCCCAGAGGCGTGCCGGCCAGCGGCGGGGGGCGCAGTGCACACGAGGGGGCTGGACTTCGCCTGTGATATCTACATCTGGGCGCCCTTGGCCGGGACTTGTGGGGTCCTTCTCCTGTCACTGGTTATCACCCTTTACTGCAACCACAGGAACCGAAGACGTGTTTGCAAATGTCCCAACAGCAGGCTGGGGAATGGAGTGCTGTATGCCTCTGTGAACCCGGAGTACTTCAGCGCTGCTGATGTGTACGTTCCTGATGAGTGGGAGGTGGCTCGGGAGAAGATCACCATGAGCCGGGAACTTGGGCAGGGGTCGTTTGGGATGGTCTATGAAGGAGTTGCCAAGGGTGTGGTGAAAGATGAACCTGAAACCAGAGTGGCCATTAAAACAGTGAACGAGGCCGCAAGCATGCGTGAGAGGATTGAGTTTCTCAACGAAGCTTCTGTGATGAAGGAGTTCAATTGTCACCATGTGGTGCGATTGCTGGGTGTGGTGTCCCAAGGCCAGCCAACACTGGTCATCATGGAACTGATGACACGGGGCGATCTCAAAAGTTATCTCCGGTCTCTGAGGCCAGAAATGGAGAATAATCCAGTCCTAGCACCTCCAAGCCTGAGCAAGATGATTCAGATGGCCGGAGAGATTGCAGACGGCATGGCATACCTCAACGCCAATAAGTTCGTCCACAGAGACCTTGCTGCCCGGAATTGCATGGTAGCCGAAGATTTCACAGTCAAAATCGGAGATTTTGGTATGACGCGAGATATCTATGAGACAGACTATTACCGGAAAGGAGGGAAAGGGCTGCTGCCCGTGCGCTGGATGTCTCCTGAGTCCCTCAAGGATGGAGTCTTCACCACTTACTCGGACGTCTGGTCCTTCGGGGTCGTCCTCTGGGAGATCGCCACACTGGCCGAGCAGCCCTACCAGGGCTTGTCCAACGAGCAAGTCCTTCGCTTCGTCATGGAGGGCGGCCTTCTGGACAAGCCAGACAACTGTCCTGACATGCTGTTTGAACTGATGCGCATGTGCTGGCAGTATAACCCCAAGATGAGGCCTTCCTTCCTGGAGATCATCAGCAGCATCAAAGAGGAGATGGAGCCTGGCTTCCGGGAGGTCTCCTTCTACTACAGCGAGGAGAACAAGCTGCCCGAGCCGGAGGAGCTGGACCTGGAGCCAGAGAACATGGAGAGCGTCCCCCTGGACCCCTCGGCCTCCTCGTCCTCCCTGCCACTGCCCGACAGACACTCAGGACACAAGGCCGAGAACGGCCCCGGCCCTGGGGTGCTGGTCCTCCGCGCCAGCTTCGACGAGAGACAGCCTTACGCCCACATGAACGGGGGCCGCAAGAACGAGCGGGCCTTGCCGCTGCCCCAGTCTTCGACCTGCTGA
【図１−１】
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【図１−２】
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【図２】
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【配列表】
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【国際調査報告】
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