(57)【要約】  本発明は、物質及びタンパク質の共アモルファス形態に関する。本発明はまた、共アモルファス形態を含む医薬用、化粧品用、又は獣医学用の組成物、さらには共アモルファス形態の作製方法及び使用方法にも関する。【特許請求の範囲】
【請求項１】
原薬及びタンパク質の共アモルファス形態であって、前記タンパク質は、乳清タンパク質分離物、乳清タンパク質加水分解物、ダイズタンパク質分離物、ダイズタンパク質加水分解物、ミオグロビン、リゾチーム、卵タンパク質分離物、卵白タンパク質分離物、卵白タンパク質加水分解物、卵タンパク質分離物、卵白アルブミン、カゼイン、アルファ−ラクトアルブミン、ベータ−ラクトグロブリン、免疫グロブリンＧ、コメタンパク質分離物、コメタンパク質加水分解物、及びコラーゲン、又はこれらの混合物から選択される、共アモルファス形態。
【請求項２】
前記タンパク質が、乳清タンパク質分離物、乳清タンパク質加水分解物、アルファ−ラクトアルブミン、ベータ−ラクトグロブリン、免疫グロブリンＧ、及びラクトフェリン、並びにこれらの混合物から選択される、請求項１に記載の共アモルファス形態。
【請求項３】
前記タンパク質が、乳清タンパク質分離物及び／又は乳清タンパク質加水分解物である、請求項１又は２に記載の共アモルファス形態。
【請求項４】
前記タンパク質が、ベータ−ラクトグロブリン、アルファ−ラクトアルブミン、免疫グロブリンＧ、ウシ血清アルブミン、及び所望に応じてラクトフェリンを含む、請求項１から３のいずれか一項に記載の共アモルファス形態。
【請求項５】
前記タンパク質が：
ｉ）少なくとも約５０重量／重量のベータ−ラクトグロブリン、
ｉｉ）少なくとも約１０％重量／重量のアルファ−ラクトアルブミン、
ｉｉｉ）少なくとも約１０％重量／重量の免疫グロブリンＧ、
ｉｖ）最大で約１０％重量／重量のウシ血清アルブミン、若しくは
ｖ）少なくとも約１％重量／重量のラクトフェリン、又は
ｖｉ）これらの混合物、
を含む、請求項１から４のいずれか一項に記載の共アモルファス形態。
【請求項６】
前記タンパク質が：
ｉ）約５０〜約７０％重量／重量のベータ−ラクトグロブリン、
ｉｉ）約１０〜約２５％重量／重量のアルファ−ラクトアルブミン、
ｉｉｉ）約１０〜約２０％重量／重量の免疫グロブリンＧ、
ｉｖ）約１〜約１０％重量／重量のウシ血清アルブミン、
ｖ）約０〜約１０％重量／重量のラクトフェリン、
ｖｉ）及び約０〜５％重量／重量の他のタンパク質、ペプチド、炭水化物、脂質、ミネラル、ビタミン、又は水、
を含む、請求項１から５のいずれか一項に記載の共アモルファス形態。
【請求項７】
前記タンパク質が：
ｉ）約５５〜約６５％重量／重量のベータ−ラクトグロブリン、
ｉｉ）約１５〜約２１％重量／重量のアルファ−ラクトアルブミン、
ｉｉｉ）約１３〜約１４％重量／重量の免疫グロブリンＧ、
ｉｖ）約７％重量／重量のウシ血清アルブミン、及び
ｖ）約０〜約３％重量／重量のラクトフェリン、
を含む、請求項１から６のいずれか一項に記載の共アモルファス形態。
【請求項８】
前記タンパク質が：
ｉ）約６５％重量／重量のベータ−ラクトグロブリン、
ｉｉ）約１５％重量／重量のアルファ−ラクトアルブミン、
ｉｉｉ）約１３％重量／重量の免疫グロブリンＧ、
ｉｖ）約７％重量／重量のウシ血清アルブミン、及び
ｖ）約０％重量／重量のラクトフェリン、
を含む、請求項１から７のいずれか一項に記載の共アモルファス形態。
【請求項９】
前記タンパク質が：
ｉ）約５５％重量／重量のベータ−ラクトグロブリン、
ｉｉ）約２１％重量／重量のアルファ−ラクトアルブミン、
ｉｉｉ）約１４％重量／重量の免疫グロブリンＧ、
ｉｖ）約７％重量／重量のウシ血清アルブミン、及び
ｖ）約３％重量／重量のラクトフェリン、
を含む、請求項１から５のいずれか一項に記載の共アモルファス形態。
【請求項１０】
前記共アモルファス形態が、１０〜９０％重量／重量の前記原薬及び１０〜９０％重量／重量の前記タンパク質を含む、請求項１から９のいずれか一項に記載の共アモルファス形態。
【請求項１１】
前記共アモルファス形態が、２５〜７５％重量／重量の前記原薬及び２５〜７５％重量／重量の前記タンパク質を含む、請求項１から１０のいずれか一項に記載の共アモルファス形態。
【請求項１２】
医療での使用のための、請求項１から１１のいずれか一項に記載の共アモルファス形態。
【請求項１３】
化粧品での使用のための、請求項１から１１のいずれか一項に記載の共アモルファス形態。
【請求項１４】
噴霧乾燥、溶媒蒸発、凍結乾燥、超臨界流体からの析出、融液急冷、ホットメルト押出、エレクトロスピニング、２Ｄ印刷、３Ｄ印刷、並びにボールミリング及びクライオミリングなどのいずれかのミリングプロセスから選択される、請求項１から１１のいずれか一項に記載の共アモルファス形態の作製方法。
【請求項１５】
請求項１から１１のいずれか一項に記載の共アモルファス形態の作製方法であって、前記方法は：
ｉ）原薬及びタンパク質を容器に入れ、前記容器をシールすること、
ｉｉ）前記原薬及び前記タンパク質が完全に粉砕されて共アモルファス生成物となるまで、機械的活性化によって、前記原薬を前記タンパク質と一緒に物理的に無秩序化すること、
ｉｉｉ）同時に、前記物質及び前記タンパク質を混合すること、
を含み、前記原薬及び前記タンパク質を含む均質な共アモルファス単相系が得られる、方法。
【請求項１６】
請求項１から１１のいずれか一項に記載の共アモルファス形態の作製方法であって、前記方法は：
ｉ）原薬及びタンパク質を、溶媒又は溶媒混合物に溶解して、単相溶液を形成すること、
ｉｉ）工程ｉ）で得られた前記溶液から前記溶媒を除去すること、
を含み、前記原薬及び前記タンパク質を含む均質な単相共アモルファス混合物が得られる、方法。
【請求項１７】
請求項１から１１のいずれか一項に記載の共アモルファス形態の作製方法であって、前記方法は：
ｉ）原薬及びタンパク質を、溶媒又は溶媒混合物に溶解して、単相溶液を形成すること、
ｉｉ）工程ｉ）からの前記単相溶液を凍結すること、
ｉｉｉ）工程ｉｉ）で得られた前記凍結単相から、昇華によって前記溶媒又は溶媒混合物を除去すること、
を含み、前記原薬及び前記タンパク質を含む均質な単相共アモルファス混合物が得られる、方法。
【請求項１８】
前記溶媒が、水である、請求項１６又は１７に記載の方法。
【請求項１９】
請求項１から１１のいずれか一項に記載の共アモルファス形態の作製方法であって、前記方法は：
ｉ）物質及びタンパク質を混合して、両成分の物理的混合物を得ること、
ｉｉ）工程ｉ）で得られた前記物理的混合物を、前記物質、前記タンパク質、又は両方を合わせた融点を超えて前記混合物を加熱することによって無秩序化して、物質及びタンパク質の両方を含む均質な単相溶融物を得ること、
ｉｉｉ）工程ｉｉ）からの前記単相溶融物を、ガラス転移温度未満に冷却すること、
を含み、前記物質及び前記タンパク質を含む均質な単相共アモルファス混合物が得られる、方法。
【請求項２０】
請求項１から１１のいずれか一項に記載の共アモルファス形態、又は請求項１４から１９のいずれか一項に記載の通りに作製された共アモルファス形態、及び少なくとも１つの医薬的、化粧品的、又は獣医学的に許容される賦形剤を含む組成物。
【請求項２１】
前記共アモルファス形態が、デシケーター内でシリカゲル上、相対湿度０％及び１８〜２５℃の室温で保存し、ＸＲＰＤによって分析された場合、少なくとも５週間以上の安定性を有する、請求項１から１１のいずれか一項に記載の共アモルファス形態。
【請求項２２】
前記共アモルファス形態が、８週間以上の安定性を有する、請求項２１に記載の共アモルファス形態。
【請求項２３】
前記共アモルファス形態が、１５週間以上の安定性を有する、請求項２１に記載の共アモルファス形態。
【請求項２４】
前記共アモルファス形態の固有溶解試験の増加が、結晶原薬の前記溶解速度よりも少なくとも２倍高い、請求項１から１１、２１から２３のいずれか一項に記載の共アモルファス形態。
【請求項２５】
前記共アモルファス形態の固有溶解試験の前記増加が、前記結晶原薬の前記溶解速度よりも少なくとも５倍高い、請求項２４に記載の共アモルファス形態。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、物質及びタンパク質の共アモルファス形態に関する。本発明はまた、共アモルファス形態を含む、医薬用、化粧品用、獣医学用、食品又は食事用の組成物、さらには共アモルファス形態の作製方法及び使用方法にも関する。
【背景技術】
【０００２】
経口製剤は、安価に製造され、患者にとって都合の良いものであることから、薬物投与の好ましい方法は、経口送達である。しかし、水への溶解性が乏しい結晶原薬の経口製剤は、医薬品業界にとっての主要な課題であり、それは、これらの物質が、乏しい溶解性及び低い溶解速度を呈し、その結果、低い生体利用度及び乏しい治療性能となってしまうからである。
【０００３】
これらの課題に対処するために、アモルファス製剤がこれまでに用いられてきた。薬物の結晶形態をそのアモルファス対応物に変換することによって、原薬の溶解性及び溶解速度が高められ、生体利用度及び治療効果の改善に繋がる（Hancock et al., Pharm. Res. 17 (2000) pp. 397-404）。しかし、アモルファスの薬物形態は、物理的に不安定であり、保存の間に再結晶して溶解度の乏しい結晶形態に戻ってしまう傾向にある（Laitinen et al., Int. J. Pharm. 453 (2013) pp. 65-79）。したがって、アモルファスの薬物形態を安定化するための方法が、医薬品業界に必要である。特に、本技術分野において、共アモルファス製剤の安定性及び／又は溶解性をさらに改善することができる新規な賦形剤が求められている。
【発明の概要】
【０００４】
本発明は、タンパク質又はペプチド、特に天然ペプチド又は天然タンパク質が、溶解性の乏しい原薬などの溶解性の乏しい物質の共アモルファス形態の製造に用いられる場合、得られる共アモルファス形態が、物質とタンパク質とが分子レベルで組み合わされた完全に均質な単相系であるという驚くべき発見に基づいている。この方法により、タンパク質賦形剤をまったく含まない物質単独のアモルファス形態と比較して、水溶性及び経口吸収が改善される。さらに、共アモルファス形態の物理的安定性も、薬物単独のアモルファス形態、及び物質とタンパク質との物理的混合物と比較して、高められる。本発明の別の利点は、乳製品製造などの食品製造の過程での副産物として豊富に製造される安価なタンパク質又はタンパク質混合物を用いることができることである。したがって、本発明は、物質及びタンパク質の共アモルファス形態を提供する。しかし、本発明のコンテクストでは、原薬に焦点を当てる。
【０００５】
原薬のアモルファス形態、さらには原薬の固体分散体は公知である。そのような形態と比較して、原薬及びタンパク質の共アモルファス形態は、溶解性及び安定性の特性を改善したものである。共アモルファス形態が、医薬品又は化粧品用途のためである場合、タンパク質は、有害な薬理学的影響がまったくない生理学的に許容されるものであるべきである。
【０００６】
態様では、本発明は、物質及びタンパク質の共アモルファス形態を提供し、タンパク質は、乳清タンパク質分離物、乳清タンパク質加水分解物、ダイズタンパク質分離物、ダイズタンパク質加水分解物、グリシニン、ベータ−コングリシニン、レグミン、ビシリン、ミオグロビン、リゾチーム、ウシ血清アルブミン、卵白タンパク質分離物、卵白タンパク質加水分解物、卵タンパク質分離物、卵白アルブミン、オボムチン、オボグロブリン、アビジン、オボムコイド、オボトランスフェリン、カゼイン、アルファ−ラクトアルブミン、ベータ−ラクトグロブリン、免疫グロブリンＧ、ラクトフェリン、ケラチン、コメタンパク質分離物、コメタンパク質加水分解物、レンズマメタンパク質分離物、エンドウマメタンパク質分離物、ソラマメタンパク質分離物、ヒヨコマメタンパク質分離物、コオロギタンパク質、カイコタンパク質、カボチャ種子タンパク質、麻タンパク質、コラーゲン、及びゼラチンから選択される。
【０００７】
以下のタンパク質は、添付の例における共アモルファス形態に用いられたものであり、タンパク質は、乳清タンパク質分離物、乳清タンパク質加水分解物、ダイズタンパク質分離物、ダイズタンパク質加水分解物、ミオグロビン、リゾチーム、卵タンパク質分離物、卵白タンパク質分離物、卵白タンパク質加水分解物、卵タンパク質分離物、卵白アルブミン、カゼイン、アルファ−ラクトアルブミン、ベータ−ラクトグロブリン、免疫グロブリンＧ、コメタンパク質分離物、コメタンパク質加水分解物、及びコラーゲンである。
【０００８】
加水分解物は、典型的には、購入される。それらは、タンパク質分離物を高い熱及び酵素の混合物に曝露して、タンパク質を変性及び消化して数個のアミノ酸の小断片とすることによって作製されてもよい。乳清タンパク質加水分解物の供給業者は、自身のウェブサイトに、より小断片へとタンパク質を消化するのに酵素を用いていると記載しており、この目的のために酵素の混合物を用いているものと想定される。
【０００９】
本明細書における例では、トリプシン及びペプシンの２つの個別のタンパク質分解酵素のみを用いた。これらの酵素は、ヒトＧＩ管中に存在しており、そのような個別の酵素による消化が、得られる製品の性能に対する効果を有するかどうかを試験するためである。この方法により、特定の酵素によって開裂される鎖に基づく加水分解の効果を識別することがより容易となる。購入したＷＰＨ製品の場合など、一緒に用いられた複数の酵素による消化の個別の効果を識別することはより困難である。
【００１０】
購入されたＷＰＨと、本発明者らが作製したペプシン及びトリプシンで消化された乳清タンパク質との間に相違が存在することは自然なことである。加水分解物の供給業者は、これらをスポーツ用サプリメントとして用いる人々のために安全で良好に機能する製品を得るために、酵素の混合物及び比率を最適化した可能性が最も高い。
【００１１】
タンパク質及び物質、特に原薬の最良の組み合わせを選択するために、以下の全般的な観察を行った（実験セクション参照）。
【００１２】
タンパク質及び活性物質（原薬）の共アモルファス形態の溶解速度の、活性物質の結晶形態の溶解速度と比較した最も高い増加が、以下の場合に見られる。
ｉ）タンパク質及び薬物分子が、逆の電荷を有する場合。観察される効果は、引力又は反発力を起こさせる物質の電荷に基づくものである可能性が最も高い。タンパク質の場合、これはその正味の電荷である；又は、
ｉｉ）タンパク質の混合物を含有するタンパク質が選択される場合。そのようなタンパク質は、乳清タンパク質分離物、コメタンパク質分離物、卵タンパク質分離物、及びダイズタンパク質分離物である；又は、
ｉｉｉ）高分子量タンパク質が選択される場合；又は
ｉｖ）乳清タンパク質分離物が選択される場合。
【００１３】
乳清タンパク質分離物に関して、本明細書における例は、乳清タンパク質分離物が、全体として、試験した他のすべてのタンパク質よりも性能が優れていること、及び乳清タンパク質が非常に適した特性を有すると思われることから、上記で述べた一般的ガイドラインが必ずしも乳清タンパク質に当てはまるとは限らないこと、を示している。
【００１４】
共アモルファス形態の物理的安定性に関して（例６を参照）、本明細書における例は、乳清タンパク質分離物、乳清タンパク質加水分解物などのタンパク質を含有する共アモルファス形態は、全体として、非常に優れた安定性を有することを示している。興味深いことには、乳清タンパク質分離物又は乳清タンパク質加水分解物に基づく共アモルファス形態は、試験した他のタンパク質のいずれと比較しても、著しく改善された物理的安定性を有する。卵白アルブミン、カゼイン、コラーゲン、リゾチーム、ミオグロビンなどのタンパク質を含有する共アモルファス形態は、用いられる原薬に応じて、適切な安定性を有し得る。ウシ血清アルブミン又はゼラチンを用いた共アモルファス形態は、適切な安定性を有しないと思われる。
【００１５】
例において実証されるように、乳清タンパク質分離物及び乳清タンパク質加水分解物は、本発明のコンテクストでの使用に適するタンパク質であることが示された。これらのタンパク質は、個々のタンパク質／ペプチド／アミノ酸の混合物を含有することから、これらのタンパク質のいずれの組み合わせも使用に適することが考えられる。したがって、本発明との関連で特に妥当であるタンパク質は、ベータ−ラクトグロブリン、アルファ−ラクトアルブミン、免疫グロブリンＧ、ウシ血清アルブミン、及びラクトフェリン、並びにこれらの加水分解物から選択されるタンパク質である。ウシ血清アルブミンは、タンパク質の総重量に基づいて１０％重量／重量以下などの１５％重量／重量以下である組み合わせで存在するべきである。
【００１６】
特に、本発明は、原薬及びタンパク質の共アモルファス形態を提供し、タンパク質は、乳清タンパク質分離物又は乳清タンパク質加水分解物である。特に、天然乳清タンパク質分離物（未変性）が対象である。乳清タンパク質分離物は、通常、ベータ−ラクトグロブリン、アルファ−ラクトアルブミン、免疫グロブリンＧ、ウシ血清アルブミン、及びラクトフェリンを含む。しかし、乳清タンパク質分離物は、他のタンパク質、ペプチド、炭水化物、脂質、ミネラル、ビタミン、及び／又は水など（しかし、これらに限定されない）の他の構成成分を、より少ない度合いで（合計で、約０〜約５％重量／重量など、５％重量／重量を超えない）含んでいてもよい。
【００１７】
乳清タンパク質分離物は、通常、約５０〜約７０％のベータ−ラクトグロブリン、約１０〜約２５％のアルファ−ラクトアルブミン、約１０〜約２０％の免疫グロブリンＧ、約１〜約１０％のウシ血清アルブミン、及び約１〜約１０％のラクトフェリンを含む。
【００１８】
したがって、
ｉ）少なくとも約５０％重量／重量のベータ−ラクトグロブリン、
ｉｉ）少なくとも約１０％重量／重量のアルファ−ラクトアルブミン、
ｉｉｉ）少なくとも約１０％重量／重量の免疫グロブリンＧ、
ｉｖ）少なくとも約１％重量／重量のウシ血清アルブミン、
ｖ）少なくとも約１％重量／重量のラクトフェリン、又は
ｖｉ）これらの混合物、
を含有するタンパク質又はタンパク質混合物は、本発明の範囲内である。
【００１９】
市販の乳清タンパク質分離物の組成は、はっきりと分かってはいるが、含有量のある特定の変動が起こり得ることを除外することはできない。したがって、本発明の範囲内に含まれるのは、以下で定められる通りの乳清タンパク質分離物である：
ｉ）以下を含有する乳清タンパク質分離物：
５０〜７０％  ベータラクトグロブリン
１０〜２５％  アルファ−ラクトアルブミン
１０〜２０％  免疫グロブリンＧ
１〜１０％  ウシ血清アルブミン
１〜１０％  ラクトフェリン
ｉｉ）以下を含有する乳清タンパク質分離物：
５０〜７０％  ベータラクトグロブリン
１０〜２５％  アルファ−ラクトアルブミン
１０〜１５％  免疫グロブリンＧ
５〜１０％  ウシ血清アルブミン
１〜５％  ラクトフェリン
ｉｉｉ）以下を含有する乳清タンパク質分離物：
５２〜７２％  ベータラクトグロブリン
１４〜２２％  アルファ−ラクトアルブミン
１１〜１６％  免疫グロブリンＧ
２〜８％  ウシ血清アルブミン
２〜８％  ラクトフェリン
ｉｖ）以下を含有する乳清タンパク質分離物：
５３〜６８％  ベータラクトグロブリン
１４〜２２％  アルファ−ラクトアルブミン
１１〜１５％  免疫グロブリンＧ
４〜８％  ウシ血清アルブミン
２〜６％  ラクトフェリン
【００２０】
市販の乳清タンパク質分離物は、約５５〜約６５％のベータ−ラクトグロブリン、約１５〜約２１％のアルファ−ラクトアルブミン、約１３〜約１４％の免疫グロブリンＧ、約７％のウシ血清アルブミン、及び約３％のラクトフェリンを含むと記載されている（De Wit, Journal of Dairy Science 81 (1998) pp. 597-608及びJenness, Protein Composition of Milk in Milk Proteins V1 : Chemistry and Molecular Biology, Academic Press, 2012）。より具体的には、本発明に従う使用のための乳清タンパク質分離物としては、以下が挙げられる：
ｉ）以下を含有する乳清タンパク質分離物：
５５％  ベータラクトグロブリン、
２１％  アルファ−ラクトアルブミン、
１４％  免疫グロブリンＧ、
７％  ウシ血清アルブミン、及び
３％  ラクトフェリン
ｉｉ）以下を含有する乳清タンパク質分離物：
６５％  ベータラクトグロブリン、
１５％  アルファ−ラクトアルブミン、
１３％  免疫グロブリンＧ、
７％  ウシ血清アルブミン、及び
０％  ラクトフェリン
【００２１】
上記で述べたように、本発明に従う共アモルファス形態での使用に適する別の乳清タンパク質は、乳清タンパク質加水分解物である。乳清タンパク質加水分解物は、乳清タンパク質分離物の対応する分解生成物を含む加水分解物を得るために何らかの形の化学的、酵素的、物理的、又は機械的分解に掛けられ、所望に応じて精製された乳清タンパク質分離物から誘導されたタンパク質／ペプチド／アミノ酸の混合物である。
【００２２】
本発明は、低い水溶性を有し、水溶性又は溶解速度の増加が所望される物質を特に対象としている。本発明はまた、物質がアモルファス形態で用いられることが好ましいが、アモルファス形態が適切な保存安定性を有していない場合も対象としている。そのような物質としては、触媒、化学試薬、栄養素、食品成分、酵素、殺菌剤、殺虫剤、殺真菌剤、消毒剤、香料、香味料、肥料、及び微量栄養素、さらには原薬が挙げられる。
【００２３】
本発明は、物質が、治療活性、予防活性、及び／又は診断活性を有する原薬である場合を主たる焦点としている。別の選択肢として、物質は、治療、予防、又は診断目的のために有用であってもよい。
【００２４】
本発明のコンテクストにおいて、原薬の低い溶解性は、米国食品医薬品局（ＦＤＡ）が提供し、定める生物薬剤学分類システム（ＢＣＳ）に従って定められる。「溶解性」の用語は、本明細書において、化合物が溶媒中に溶解して溶液を形成する能力を意味する。本開示において特に該当するのは、薬物の以下の４つの異なるクラスに従う「乏しい溶解性又は不溶性」の用語の定義である。
クラスＩ−高い透過性、高い溶解性（透過性も溶解性も、薬物化合物の経口による生体利用度を制限しない）
クラスＩＩ−高い透過性、低い溶解性（低い溶解性が、薬物化合物の経口による生体利用度を制限する）
クラスＩＩＩ−低い透過性、高い溶解性（低い透過性が、薬物化合物の経口による生体利用度を制限する）
クラスＩＶ−低い透過性、低い溶解性（透過性及び溶解性の両方が、薬物化合物の経口による生体利用度を制限する）
【００２５】
この分類によると、原薬は、１〜７．５のｐＨ範囲にわたって最高投与量が２５０ｍｌ以下の水性媒体中に溶解しない場合、低い溶解性を有している。
【００２６】
物質の溶解性の特定に用いられる溶媒は、水性媒体である。水性媒体は、１〜７．５の範囲内の特定のｐＨを確保するために、１若しくは複数のｐＨ調節剤又は緩衝剤を含有していてよく、又はそれは水であってもよい。
【００２７】
ＢＣＳクラス４の薬物など経口経路による投与が通常はできない原薬を含有する本発明に従う共アモルファス形態が特に対象である。対象となる他の原薬は、例えば、原薬の取り込みを低下又は阻害する排出ポンプ又は類似の生理学的機構の存在に起因して、経口投与できない原薬であり得る。そのような原薬の場合、熟練した医療従事者が通常は関与する非経口経路のみによる投与を回避する目的で、著しく改善された製剤が所望される。
【００２８】
しかし、本発明の概念は、一般的な特徴であると考えられ、すなわち、溶解性の安定性の改善が有利であるすべての種類の原薬に対して適用することができる。そのような原薬は、アモキシシリンなどの抗生物質、
【００２９】
アシクロビル、アルベンダゾール、アニデュラファンギン、アジスロマイシン、セフジニル、セフジトレン、セフィキシム、セフォチアム、セフポドキシム、セフロキシムアキセチル、クラリスロマイシン（chlarithromycin）、クロロキン、シプロフロキサシン、クラリスロマイシン、クロファジミン、コビシスタット、ダプソン、ダプトマイシン、ジロキサニド、ドキシサイクリン、エファビレンツ、エルビテグラビル、エリスロマイシン、エトラビリン、グリセオフルビン、インジナビル、イトラコナゾール、イベルメクチン、リネゾリド、ロピナビル、メベンダゾール、メフロキン、メトロニダゾール、マイカミン、ナリジクス酸、ネルフィナビル、ネビラピン、ニクロサミド、ニトロフラントイン、ニスタチン、プラジカンテル、ピランテル、ピリメタミン、キニーネ、リファンピシン、リルピビリン、リトナビル、ロキシスロマイシン、サキナビル、スルファジアジン、スルファメトキサゾール、スルタミシリン、トスフロキサシン、及びトリメトプリムなどの抗感染薬、
【００３０】
ビカルタミド、シプロテロン、ドセタキセル、ゲフィチニブ、イマチニブ、イリノテカン、パクリタキセル、及びタモキシフェンなどの抗悪性腫瘍薬、アセタゾラミド、アトルバスタチン、アゼタコラミド（azetacolamide）、ベニジピン、カンデサルタン、シレキセチル、カルベジロール、シロスタゾール、クロピドグレル、エプロサルタン、イコサペント酸エチル、エゼチミブ、フェノフィブラート、フロセミド、ヒドロクロロチアジド、イルベサルタン、ロバスタチン、マニジピン、ニフェジピン、ニルバジピン、オルメサルタン、シンバスタチン、スピロノラクトン、テルミサルタン、チクロピジン、トリフルサル、バルサルタン、ベラパミル、及びワルファリンなどの心血管治療薬、
【００３１】
アセクロフェナク、アセトアミノフェン、アセチルサリチル酸、アプリプラゾール（apriprazole）、カルバマゼピン、カリソプロドール、セレコキシブ、クロルプロマジン、クロナゼパム、クロザピン、ジアゼパム、ジクロフェナク、フルルビプロフェン、ハロペリドール、イブプロフェン、ケトプロフェン、ラモトリジン、レボドパ、ロラゼパム、メロキシカム、メタキサロン、メチルフェニデート、メトクロプラミド、モダフィニル、ナビロン、ナブメトン、ニセルゴリン、ニメスリド、オランザピン、オキシカルバゼピン、オキシコドン、フェノバルビタール、フェニトイン、クエチアピン、リスペリドン、ロフェコキシブ、セルトラリン、スルピリド、バルプロ酸、及びズラトプロフェン（zlatoprofen）などのＣＮＳ薬、
【００３２】
イソトレチノインなどの皮膚科用薬、カベルゴリン、デキサメサゾン、エパルレスタット、硫酸エストロン、グリベンクラミド、グリクラジド、グリムピリド（glimpiride）、グリピジド、メドロキシプロゲステロン、酢酸ノルエチンドロン、ピオグリタゾン、プレドニゾン、プロピルチオウラシル、及びラロキシフェンなどの内分泌及び代謝薬、
【００３３】
ビサコジル、ファモチジン、メサラミエ（mesalamie）、モサプリド、オーリスタット、レバミピド、センノシドＡ、スルファサラジン、テプレノン、及びウルソデオキシコール酸などの胃腸薬、
【００３４】
葉酸、メナテトレノン、レチノール、及び、ニコチン酸トコフェロールなどの栄養薬、
【００３５】
エバスチン、ヒドロキシジン、Ｌ−カルボシステイン、ロラタジン、プランルカスト、及びテオフィリンなどの呼吸器薬、
【００３６】
アロプリノールなどの尿酸降下薬、
【００３７】
並びにシルデナフィル及びタダラフィルなどの勃起不全を治療するための薬、から選択され得る。
【００３８】
上述の原薬に関連して、これらの原薬のいずれか、及び本明細書で述べるタンパク質から、特に乳清タンパク質分離物若しくは乳清タンパク質加水分解物から、又はその構成成分若しくはそのいずれかの組み合わせ（すなわち、アルファ−ラクトアルブミン、ベータ−ラクトグロブリン、免疫グロブリンＧ、ウシ血清アルブミン、及びラクトフェリン）から選択されるタンパク質の共アモルファス形態は、改善された安定性及び溶解性などの改善された医薬特性に関する有益性を提供することが考えられる。特に、タンパク質は、乳清タンパク質分離物及び／又は乳清タンパク質加水分解物である。
【００３９】
本発明に従う物質及びタンパク質の共アモルファス形態は、１〜９５％重量／重量の物質及び５〜９９％重量／重量のタンパク質を含有し得る。したがって、共アモルファス形態は、約２．５〜９０％重量／重量、又は約１０〜約８０％重量／重量の物質を含有し得る。例から分かるように、様々な濃度の原薬及びタンパク質から所望される結果を得ることができる。適切な例としては、約２５〜約７５％重量／重量の原薬を含有する共アモルファス形態が挙げられる。
【００４０】
本発明に従う共アモルファス形態は、この形態の具体的な用途に応じて、適切な適用形態に製剤され得る。物質が医療用途又は化粧品用途のためである場合、共アモルファス形態は、医薬組成物又は化粧品組成物に製剤され得る。そのような組成物としては、経口、局所、粘膜、経肺、非経口、舌下、経鼻、眼内（occular）、及び経腸投与用の組成物が挙げられる。可能である場合は、経口投与経路が好ましい。
【００４１】
そのような組成物は、１又は複数の医薬的又は化粧品的に許容される賦形剤を含んでいてよい。医薬又は化粧品製剤の当業者であれば、例えば、Remington's Pharmaceutical Sciences, 18th edition, Mack Publishing Company, 1990をガイドとして、特定の組成物を製剤する方法が分かるであろう。
【００４２】
ある特定の物質がある場合、共アモルファス形態を形成するためのタンパク質は、個々の成分の物理化学的特性に基づいて選択され得る。そのような選択又はマッチングは、サイズ（例えば、分子量及び／又は流体力学的体積に関する）、疎水性（例：疎水性物質／疎水性タンパク質、又は親水性物質／親水性タンパク質）、並びに／又は静電相互作用（例：アニオン性物質／カチオン性タンパク質、カチオン性物質／アニオン性タンパク質、及び中性物質／中性タンパク質）に従って行われ得る。しかし、問題の物質に応じて、選択及びマッチングのための他の基準も想定され得る。
【００４３】
態様では、本発明は、物質及びタンパク質の共アモルファス形態を作製するための方法を提供し、共アモルファス形態は、噴霧乾燥、溶媒蒸発、凍結乾燥、超臨界流体からの析出、融液急冷、ホットメルト押出、２Ｄ印刷、及び３Ｄ印刷などの熱力学的方法によって、又はボールミリング及びクライオミリングを含むいずれかの種類のミリングプロセスなどの動力学的無秩序化プロセス（kinetic disordering processes）によって作製される。
【００４４】
本明細書における例から明らかなように、噴霧乾燥が、非常に優れた結果をもたらす。
【００４５】
本発明によって定められる共アモルファス形態を作製するための方法は：
ｉ）物質及びタンパク質を容器に入れ、容器をシールすること、
ｉｉ）物質及びタンパク質が完全に粉砕されて共アモルファス生成物となるまで、機械的活性化によって、物質をタンパク質と一緒に物理的に無秩序化すること、
ｉｉｉ）同時に、物質及びタンパク質を混合すること、
を含み、物質及びタンパク質を含む均質な共アモルファス単相系が得られる。
【００４６】
本発明によって定められる共アモルファス形態を作製するための別の方法は：
ｉ）物質及びタンパク質を、溶媒又は溶媒混合物に溶解して、単相溶液を形成すること、
ｉｉ）工程ｉ）で得られた溶液から溶媒を除去すること、
を含み、物質及びタンパク質を含む均質な単相共アモルファス混合物が得られる。
【００４７】
本発明によって定められる共アモルファス形態を作製するためのなお別の方法は：
ｉ）物質及びタンパク質を、溶媒又は溶媒混合物に溶解して、単相溶液を形成すること、
ｉｉ）工程ｉ）からの単相溶液を凍結すること、
ｉｉｉ）工程ｉｉ）で得られた凍結単相から、昇華によって溶媒又は溶媒混合物を除去すること、
を含み、物質及びタンパク質を含む均質な単相共アモルファス混合物が得られる。
【００４８】
本明細書の例から分かるように、適切な溶媒は、水溶液の水である。共アモルファス形態を得るために、ｐＨ制御は不要であると思われ、有機溶媒も不要であると思われる。例では、溶媒として水を用いた。
【００４９】
本発明で定められる共アモルファス形態を作製するためのなお別の方法は：
ｉ）物質及びタンパク質を混合して、両成分の物理的混合物を得ること、
ｉｉ）工程ｉ）で得られた物理的混合物を、薬物、タンパク質、又は両方の融点を超えて混合物を加熱することによって無秩序化して、物質及びタンパク質の両方を含む均質な単相溶融物を得ること、
ｉｉｉ）工程ｉｉ）からの単相溶融物を、ガラス転移温度未満に冷却すること、
を含み、物質及びタンパク質を含む均質な単相共アモルファス混合物が得られる。
【００５０】
原薬が胃腸系の排出ポンプに対する基質である原薬及びタンパク質の共アモルファス形態
特に対象となるのは、タンパク質、及び通常は経口経路によって投与されるが、治療効果及び患者コンプライアンスを改善するために別の選択肢としての製剤が求められている抗癌原薬などの原薬の共アモルファス形態である。
【００５１】
治療効果を有するためには、経口投与されたいずれの原薬も、まず腸液に溶解し、続いて腸壁を透過しなければならない。したがって、原薬の充分な水溶性及び腸透過性は、許容される生体利用度を得るために重要である。しかし、抗癌原薬などの多くの原薬は、水溶性に乏しく、その結果、経口での生体利用度が低く、したがって、非効率的な薬物作用となる。
【００５２】
生体利用度が乏しい別の理由は、腸吸収が乏しいからでもあり得る。一部の抗癌薬などの多くの原薬の乏しい吸収は、そのような原薬が、Ｐ−糖タンパク質（多剤耐性タンパク質又はＭＤＲ１としても知られ、胃腸管に加えて、肝臓及び腎臓、並びに血液脳関門にも存在する）などのいわゆる腸排出ポンプに対する基質であることに起因する。そのような排出ポンプは、典型的には、腸の吸収細胞層に位置しており、その主たる目的は、異物又は毒性物質を再度排出して腸管腔へと戻すことによって身体を保護することである。一部の抗癌原薬などの多くの原薬は、これらの排出ポンプに対する基質である。しかし、ビカルタミドなどの一部の抗癌原薬は、その抗癌効果に加えて、排出ポンプ阻害性も示す。
【００５３】
抗癌薬ドセタキセルなどの一部の原薬の場合、前記原薬が溶解性にも吸収性にも乏しく、その結果、２つの送達バリアが存在することになることから、状況はさらに困難となる。このため、これらの原薬に対する好ましい投与経路は、静脈内点滴である。しかし、原薬が溶解性に非常に乏しいことから、可溶化剤及び溶媒を添加することがそれでも必要であり、このことは、身体に対して有害である可能性があり、刺激及び重篤なアレルギー反応を引き起こし得る。注射用製剤は、さらに、無菌である必要があり、これは、コストが掛かり、それでも感染のリスクは存在する。さらに、点滴の間、患者は入院する必要があることから、投与には熟練したスタッフが必要とされる。そして、化学療法などの静注療法は、一般的に、その対応する経口療法ほど有利ではなく、その理由は、２〜３週間に１回の投与が通常であり、したがって、毎日の経口療法と比較して、原薬の血漿中プロファイルが均一ではなくなる結果となるからである。したがって、静注療法を経口療法に変えることを可能とする技術は、多くの利点を有する。
【００５４】
原薬及びタンパク質の共アモルファス形態などの共アモルファス形態は、通常は静脈内経路でしか利用可能ではない原薬を経口投与する方法を提供するものであり、それは、共アモルファス形態が、原薬の溶解性及び安定性を高め、その結果、生体利用度が高まるからである。
【００５５】
特に、共アモルファス形態は、Ｐ−糖タンパク質などの排出ポンプに対する基質であるドセタキセルなどの溶解性に乏しい原薬、及び治療効果に加えて前記排出ポンプの阻害剤でもあるビカルタミドなどの溶解性に乏しい別の原薬を共送達するために用いられ得る。そのような原薬を同じ共アモルファス形態中に含めることにより、原薬は、水素結合又はイオン性相互作用などの分子間相互作用を介して、アモルファス形態中で互いに安定化し得る。安定なアモルファス系の結果として、溶解性に乏しい両原薬は、より高い溶解性及び安定性を実現し、このことは、胃腸管中において吸収に利用可能である溶解した原薬の量の増加に繋がる。さらに、排出ポンプ基質及び排出ポンプ阻害剤を同じ共アモルファス形態中に含めることにより、排出ポンプ基質の取り込みが改善されることになり、経口による生体利用度が高まる結果となる。
【００５６】
ビカルタミド及びドセタキセルのペアに加えて、タリノロール及びナリンギン、並びにリトナビル及びケルセチンのペアが、排出ポンプ基質及び排出ポンプ阻害剤の組み合わせとして例示される。
【００５７】
他の例は、文献に見出すことができ、１又は複数の原薬がタンパク質と共に共アモルファス化された場合、本発明の範囲内である。
【００５８】
定義
「物質」：
本発明によると、共アモルファス形態のコンテクストにおける「物質」の用語は、１又は複数の物質として定義される。したがって、本発明によると、「物質及びタンパク質の共アモルファス形態」の用語は、１又は複数の物質を含む共アモルファス形態を表す。「原薬」の用語は、治療活性物質又は予防活性物質を表す。
【００５９】
「タンパク質」：
本発明によると、共アモルファス形態のコンテクストで用いられる「タンパク質」の用語は、単一のタンパク質、タンパク質混合物、タンパク質／ペプチド／アミノ酸混合物、タンパク質／アミノ酸混合物、及びペプチド／アミノ酸混合物などの１又は複数のタンパク質に関する。
【００６０】
「乳清タンパク質分離物」：
本発明によると、乳清タンパク質分離物（ＷＰＩ）は、ベータ−ラクトグロブリン、アルファ−ラクトアルブミン、免疫グロブリンＧ、ウシ血清アルブミン、及び／又はラクトフェリンを含むタンパク質の混合物として定義される。
【００６１】
通常、乳清タンパク質分離物は、約５０〜約７０％重量／重量のベータ−ラクトグロブリン、約１０〜約２５％重量／重量のアルファ−ラクトアルブミン、約１０〜約２０％重量／重量の免疫グロブリンＧ、約１〜約１０％重量／重量のウシ血清アルブミン、及び約１〜約１０％重量／重量のラクトフェリンを含む。所望に応じて、乳清タンパク質分離物は、他のタンパク質、ペプチド、炭水化物、脂質、ミネラル、ビタミン、又は水など（しかし、これらに限定されない）の他の構成成分を、より少ない度合いで（合計で、５％重量／重量を超えない）含んでいてもよい。
【００６２】
「乳清タンパク質加水分解物」
本発明によると、乳清タンパク質加水分解物は、乳清タンパク質分離物の対応する分解生成物を含む加水分解物を得るために何らかの形の化学的、酵素的、物理的、又は機械的分解プロセスに掛けられ、所望に応じて精製された乳清タンパク質分離物から誘導されたタンパク質／ペプチド／アミノ酸の混合物として定義される。
【００６３】
「共アモルファス」：
本発明によると、「共アモルファス」の用語は、均質なアモルファス単相系を形成する２つ以上の成分の組み合わせを意味し、成分は、分子レベルで密接に混合されている。「共アモルファス」サンプルは、熱力学的方法又は動力学的無秩序化プロセスによって作製され得る。ＤＳＣと共にＸＲＰＤを用いて、サンプルが作製後に「共アモルファス」であるかどうかが識別され得る。
【図面の簡単な説明】
【００６４】
【図１】インドメタシン（ＩＮＤ）、カルベジロール（ＣＡＲ）、パラセタモール（ＰＡＲ）、及びフロセミド（ＦＵＲ）と、乳清タンパク質分離物（ＷＰＩ）又は乳清タンパク質加水分解物（ＷＰＨ）のいずれかとの共アモルファス形態のＸＲＰＤディフラクトグラム。共アモルファス形態はすべて、噴霧乾燥によって得た。パネル（ｉ）：Ａ＝ＩＮＤ−ＷＰＩ、Ｂ＝ＣＡＲ−ＷＰＩ、Ｃ＝ＰＡＲ−ＷＰＩ、Ｄ＝ＦＵＲ−ＷＰＩ。パネル（ｉｉ）：Ａ＝ＩＮＤ−ＷＰＨ、Ｂ＝ＣＡＲ−ＷＰＨ、Ｃ＝ＰＡＲ−ＷＰＨ、Ｄ＝ＦＵＲ−ＷＰＨ。
【図２】結晶インドメタシン（Ｃ  ＩＮＤ）、アモルファスインドメタシン（Ａ  ＩＮＤ）、ボールミリングで得た共アモルファスインドメタシン−乳清タンパク質分離物（ＢＭ  ＩＮＤ−ＷＰＩ）、ボールミリングで得た共アモルファスインドメタシン−乳清タンパク質加水分解物（ＢＭ  ＩＮＤ−ＷＰＨ）、噴霧乾燥で得た共アモルファスインドメタシン−乳清タンパク質分離物（ＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩ）、及び噴霧乾燥で得た共アモルファスインドメタシン−乳清タンパク質加水分解物（ＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＨ）の固有溶解速度。
【図３】（ａ）結晶カルベジロール（Ｃ  ＣＡＲ）、アモルファスカルベジロール（Ａ  ＣＡＲ）、ボールミリングで得た共アモルファスカルベジロール−乳清タンパク質分離物（ＢＭ  ＣＡＲ−ＷＰＩ）、ボールミリングで得た共アモルファスカルベジロール−乳清タンパク質加水分解物（ＢＭ  ＣＡＲ−ＷＰＨ）、噴霧乾燥で得た共アモルファスカルベジロール−乳清タンパク質分離物（ＳＤ  ＣＡＲ−ＷＰＩ）、及び噴霧乾燥で得た共アモルファスカルベジロール−乳清タンパク質加水分解物（ＳＤ  ＣＡＲ−ＷＰＨ）；（ｂ）結晶パラセタモール（Ｃ  ＰＡＲ）、アモルファスパラセタモール（Ａ  ＰＡＲ）、ボールミリングで得た共アモルファスパラセタモール−乳清タンパク質分離物（ＢＭ  ＰＡＲ−ＷＰＩ）、ボールミリングで得た共アモルファスパラセタモール−乳清タンパク質加水分解物（ＢＭ  ＰＡＲ−ＷＰＨ）、噴霧乾燥で得た共アモルファスパラセタモール−乳清タンパク質分離物（ＳＤ  ＰＡＲ−ＷＰＩ）、及び噴霧乾燥で得た共アモルファスパラセタモール−乳清タンパク質加水分解物（ＳＤ  ＰＡＲ−ＷＰＨ）；（ｃ）結晶フロセミド（Ｃ  ＦＵＲ）、アモルファスフロセミド（Ａ  ＦＵＲ）、ボールミリングで得た共アモルファスフロセミド−乳清タンパク質分離物（ＢＭ  ＦＵＲ−ＷＰＩ）、ボールミリングで得た共アモルファスフロセミド−乳清タンパク質加水分解物（ＢＭ  ＦＵＲ−ＷＰＨ）、噴霧乾燥で得た共アモルファスフロセミド−乳清タンパク質分離物（ＳＤ  ＦＵＲ−ＷＰＩ）、及び噴霧乾燥で得た共アモルファスフロセミド−乳清タンパク質加水分解物（ＳＤ  ＦＵＲ−ＷＰＨ）の固有溶解速度。
【図４】（ａ）結晶インドメタシン（Ｃ  ＩＮＤ）、アモルファスインドメタシン（Ａ  ＩＮＤ）、噴霧乾燥で得た共アモルファスインドメタシン−乳清タンパク質分離物（ＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩ）、噴霧乾燥で得た乳清タンパク質分離物（トリプシンで消化）との共アモルファスインドメタシン（ＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩ  ＥＮＺ  Ｔ）、噴霧乾燥で得た乳清タンパク質分離物（トリプシン、続いてペプシンで消化）との共アモルファスインドメタシン（ＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩ  ＥＮＺ  Ｔ＋Ｐ）、噴霧乾燥で得た乳清タンパク質分離物（ペプシンで消化）との共アモルファスインドメタシン（ＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩ  ＥＮＺ  Ｐ）、噴霧乾燥で得た乳清タンパク質分離物（ペプシン、続いてトリプシンで消化）との共アモルファスインドメタシン（ＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩ  ＥＮＺ  Ｐ＋Ｔ）；（ｂ）結晶インドメタシン（Ｃ  ＩＮＤ）、アモルファスインドメタシン（Ａ  ＩＮＤ）、噴霧乾燥で得た共アモルファスインドメタシン−乳清タンパク質分離物（ＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩ）、噴霧乾燥で得た共アモルファスインドメタシン−ウシ血清アルブミン（ＳＤ  ＩＮＤ−ＢＳＡ）、噴霧乾燥で得た共アモルファスインドメタシン−アルファ−ラクトアルブミン（ＳＤ  ＩＮＤ−ａ  ラクトアルブミン）、及び噴霧乾燥で得た共アモルファスインドメタシン−ベータ−ラクトグロブリン（ＳＤ  ＩＮＤ−ｂ  ラクトグロブリン）の固有溶解速度。
【図５】結晶インドメタシン（Ｃ  ＩＮＤ）、アモルファスインドメタシン（Ａ  ＩＮＤ）、インドメタシン及び乳清タンパク質分離物の物理的混合物（ＰＭ  ＩＮＤ−ＷＰＩ）、ボールミリングで得たインドメタシン及び乳清タンパク質分離物の共アモルファス形態（ＢＭ  ＩＮＤ−ＷＰＩ）、並びに噴霧乾燥で得たインドメタシン及び乳清タンパク質分離物の共アモルファス形態（ＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩ）の粉末溶解実験。
【図６】それぞれ、インドメタシン（ＩＮＤ）、カルベジロール（ＣＡＲ）、パラセタモール（ＰＡＲ）、及びフロセミド（ＦＵＲ）との乳清タンパク質分離物（ＷＰＩ）の共アモルファス形態の安定性。Ｘ線粉末回折（ＸＲＰＤ）を用いて評価することにより、ＩＮＤ、ＣＡＲ、及びＦＵＲとのＷＰＩ混合物については、５ヶ月間の安定性データを測定し、ＰＡＲ−ＷＰＩについては、１ヶ月間の安定性を測定した。共アモルファス混合物はすべて、噴霧乾燥によって得た。Ａ＝ＰＡＲ−ＷＰＩ、Ｂ＝ＦＵＲ−ＷＰＩ、Ｃ＝ＣＡＲ−ＷＰＩ、Ｄ＝ＩＮＤ−ＷＰＩ。安定性実験は、原薬が再結晶を開始するまで、月ごとにさらに行い、データを表３に示す。
【図７】結晶フロセミド（結晶ＦＵＲ）、アモルファスフロセミド（アモルファスＦＵＲ）、噴霧乾燥で得た共アモルファスフロセミド−ポリビニルピロリドン（２５：７５  重量／重量）（ＳＤ  ＦＵＲ−ＰＶＰ（７５：２５））、フロセミド−乳清タンパク質分離物の物理的混合物（５０：５０  重量／重量）（ＰＭ  ＦＵＲ−ＷＰＩ（５０：５０））、噴霧乾燥で得た共アモルファスフロセミド−乳清タンパク質分離物（２５：７５  重量／重量）（ＳＤ  ＦＵＲ−ＷＰＩ（２５：７５））、噴霧乾燥で得た共アモルファスフロセミド−乳清タンパク質分離物（５０：５０  重量／重量）（ＳＤ  ＦＵＲ−ＷＰＩ（５０：５０））、及び噴霧乾燥で得た共アモルファスフロセミド−乳清タンパク質分離物（７５：２５  重量／重量）（ＳＤ  ＦＵＲ−ＷＰＩ（７５：２５））の絶対生体利用度。生体利用度は、ラットへの経口投与後に評価した。ポリビニルピロリドンを実験に含めたのは、溶解性及び／又は安定性に乏しい原薬の溶解性及び／又は安定性の最適化に関してアモルファス化と競合する主要な技術である固体分散体の作製に最も一般的に用いられる賦形剤だからである。ＷＰＩとＦＵＲとの比は、ＦＵＲの含有量を一定に保持した状態で、ＷＰＩの含有量を変化させることによって変動させた。
【図８】結晶フロセミド（結晶ＦＵＲ）、アモルファスフロセミド（アモルファスＦＵＲ）、噴霧乾燥で得た共アモルファスフロセミド−ポリビニルピロリドン（２５：７５  重量／重量）（ＳＤ  ＦＵＲ−ＰＶＰ（７５：２５））、フロセミド−乳清タンパク質分離物の物理的混合物（５０：５０  重量／重量）（ＰＭ  ＦＵＲ−ＷＰＩ（５０：５０））、噴霧乾燥で得た共アモルファスフロセミド−乳清タンパク質分離物（２５：７５  重量／重量）（ＳＤ  ＦＵＲ−ＷＰＩ（２５：７５））、噴霧乾燥で得た共アモルファスフロセミド−乳清タンパク質分離物（５０：５０  重量／重量）（ＳＤ  ＦＵＲ−ＷＰＩ（５０：５０））、及び噴霧乾燥で得た共アモルファスフロセミド−乳清タンパク質分離物（７５：２５  重量／重量）（ＳＤ  ＦＵＲ−ＷＰＩ（７５：２５））の血流中の最大濃度（Ｃｍａｘ）。Ｃｍａｘは、ラットへの経口投与後に評価した。ポリビニルピロリドンを実験に含めたのは、溶解性及び／又は安定性に乏しい原薬の溶解性及び／又は安定性の最適化に関してアモルファス化と競合する主要な技術である固体分散体の作製に最も一般的に用いられる賦形剤だからである。ＷＰＩとＦＵＲとの比は、ＦＵＲの含有量を一定に保持した状態で、ＷＰＩの含有量を変化させることによって変動させた。
【図９】結晶フロセミド（結晶ＦＵＲ）、アモルファスフロセミド（アモルファスＦＵＲ）、噴霧乾燥で得た共アモルファスフロセミド−ポリビニルピロリドン（２５：７５  重量／重量）（ＳＤ  ＦＵＲ−ＰＶＰ（７５：２５））、フロセミド−乳清タンパク質分離物の物理的混合物（５０：５０  重量／重量）及び（ＰＭ  ＦＵＲ−ＷＰＩ（５０：５０））、噴霧乾燥で得た共アモルファスフロセミド−乳清タンパク質分離物（２５：７５  重量／重量）（ＳＤ  ＦＵＲ−ＷＰＩ（２５：７５））、噴霧乾燥で得た共アモルファスフロセミド−乳清タンパク質分離物（５０：５０  重量／重量）（ＳＤ  ＦＵＲ−ＷＰＩ（５０：５０））、及び噴霧乾燥で得た共アモルファスフロセミド−乳清タンパク質分離物（７５：２５  重量／重量）（ＳＤ  ＦＵＲ−ＷＰＩ（７５：２５））の固有溶解速度。ポリビニルピロリドンを実験に含めたのは、溶解性及び／又は安定性に乏しい原薬の溶解性及び／又は安定性の最適化に関してアモルファス化と競合する主要な技術である固体分散体の作製に最も一般的に用いられる賦形剤だからである。ＷＰＩとＦＵＲとの比は、ＦＵＲの含有量を一定に保持した状態で、ＷＰＩの含有量を変化させることによって変動させる。
【図１０】様々なタンパク質とのインドメタシン（ＩＮＤ）の共アモルファス形態のＸＲＰＤディフラクトグラムである。共アモルファス形態はすべて、噴霧乾燥によって得た。Ａ：ＳＤ  ＩＮＤ−ダイズ、Ｂ：ＳＤ  ＩＮＤ−コメ、Ｃ：ＳＤ  ＩＮＤ−卵、Ｄ：ＳＤ  ＩＮＤ−ゼラチン、Ｅ：ＳＤ  ＩＮＤ−コラーゲン、Ｆ：ＳＤ  ＩＮＤ−ミオグロビン、Ｇ：ＳＤ  ＩＮＤ−リゾチーム、及びＨ：ＳＤ  ＩＮＤ−カゼイン
【図１１】（ｉ）ＳＤ  ＩＮＤ−ゼラチン、ＳＤ  ＩＮＤ−卵、ＳＤ  ＩＮＤ−ダイズ、Ｃ  ＩＮＤ、Ａ  ＩＮＤ；及び（ｉｉ）ＳＤ  ＩＮＤ−ミオグロビン、ＳＤ  ＩＮＤ−リゾチーム、ＳＤ  ＩＮＤ−コラーゲン、ＳＤ  ＩＮＤ−カゼイン、Ｃ  ＩＮＤ、Ａ  ＩＮＤの固有溶解速度。
【図１２】Ａ：ＳＤ  ＩＮＤ−卵白アルブミン、Ｂ：ＳＤ  ＣＥＬ−ＷＰＩ、Ｃ：ＳＤ  ＣＥＬ−ミオグロビン、Ｄ：ＳＤ  ＣＥＬ−リゾチーム、Ｅ：ＳＤ  ＣＥＬ−カゼイン、Ｆ：ＳＤ  ＣＥＬ−コラーゲンのＸＲＰＤディフラクトグラム。
【図１３】（ｉ）ＳＤ  ＩＮＤ−ミオグロビン、ＳＤ  ＩＮＤ−リゾチーム、ＳＤ  ＩＮＤ−コラーゲン、ＳＤ  ＩＮＤ−カゼイン、ＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩ；（ｉｉ）ＳＤ  ＣＥＬ−ミオグロビン、ＳＤ  ＣＥＬ−リゾチーム、ＳＤ  ＣＥＬ−コラーゲン、ＳＤ  ＣＥＬ−カゼイン、ＳＤ  ＣＥＬ−ＷＰＩ；及び（ｉｉｉ）ＳＤ  ＣＡＲ−ミオグロビン、ＳＤ  ＣＡＲ−リゾチーム、ＳＤ  ＣＡＲ−コラーゲン、ＳＤ  ＣＡＲ−カゼイン、ＳＤ  ＣＡＲ−ＷＰＩの固有溶解速度。
【図１４】（ｉ）ＳＤ  ＩＮＤ−卵、ＳＤ  ＩＮＤ−コメ、ＳＤ  ＩＮＤ−ダイズ、ＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩ、ＳＤ  ＩＮＤ−ゼラチン；及び（ｉｉ）ＳＤ  ＩＮＤ−ＢＳＡ、ＳＤ  ＩＮＤ−卵白アルブミン、ＳＤ  ＩＮＤ−カゼイン、ＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩの固有溶解速度。
【図１５】（ｉ）ＳＤ  ＩＮＤ−ミオグロビン、ＳＤ  ＩＮＤ−リゾチーム、ＳＤ  ＩＮＤ−コラーゲン、ＳＤ  ＩＮＤ−カゼイン、ＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩ；ｉｉ）ＳＤ  ＣＥＬ−ミオグロビン、ＳＤ  ＣＥＬ−リゾチーム、ＳＤ  ＣＥＬ−コラーゲン、ＳＤ  ＣＥＬ−カゼイン、ＳＤ  ＣＥＬ−ＷＰＩ；及びｉｉｉ）ＳＤ  ＣＡＲ−ミオグロビン、ＳＤ  ＣＡＲ−リゾチーム、ＳＤ  ＣＡＲ−コラーゲン、ＳＤ  ＣＡＲ−カゼイン、ＳＤ  ＣＡＲ−ＷＰＩの固有溶解速度（ＩＤＲ）；図中、ＩＤＲは、タンパク質の等イオン点（ｐＩ）の関数としてプロットされている。
【図１６】ＳＤ  ＩＮＤ−ＢＳＡ、ＳＤ  ＩＮＤ−卵白アルブミン、ＳＤ  ＩＮＤ−カゼイン、ＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩの固有溶解速度（ＩＤＲ）；図中、（ｉ）ＩＤＲは、タンパク質の分子量（Ｍｗ）の関数としてプロットされ、及び（ｉｉ）ＩＤＲは、タンパク質の等イオン点（ｐＩ）の関数として示されている。
【図１７】ＳＤ  ＩＮＤ−卵、ＳＤ  ＩＮＤ−コメ、ＳＤ  ＩＮＤ−ダイズ、ＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩ、ＳＤ  ＩＮＤ−ゼラチンの固有溶解速度（ＩＤＲ）；図中、ＩＤＲは、タンパク質の等イオン点（ｐＩ）の関数として示されている。
【図１８】Ａ：ＳＤ  ＣＡＲ−ミオグロビン、Ｂ：ＳＤ  ＣＡＲ−リゾチーム、Ｃ：ＳＤ  ＣＡＲ−コラーゲン、Ｄ：ＳＤ  ＣＡＲ−カゼインのＸＲＰＤディフラクトグラム。
【図１９】それぞれの共アモルファス製剤の作製の２０か月後における、ＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩ及びＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＨのＸＲＰＤディフラクトグラム。
【発明を実施するための形態】
【００６５】
略語
ＢＭ、ボールミリング
ＣＡＲ、カルベジロール
ＣＥＬ、セレコキシブ
ＦＵＲ、フロセミド
ＩＤＲ、固有溶解速度
ＩＮＤ、インドメタシン
ｐＩ、等イオン点
ＬＣ−ＭＳ、液体クロマトグラフィ−質量分析
ｍＤＳＣ、変調示差走査熱量測定
Ｍｗ、分子量
ＰＡＲ、パラセタモール
ＰＭ、物理的混合物
ＰＶＰ、ポリビニルピロリドン
ＳＤ、噴霧乾燥
ＴＧＡ、熱重量分析
ＵＶ  Ｖｉｓ、紫外線分光光度分析
ＸＲＰＤ、Ｘ線粉末回折
ＷＰＨ、乳清タンパク質加水分解物
ＷＰＩ、乳清タンパク質分離物
【００６６】
実験
材料
インドメタシン（ＩＮＤ）は、Hawkins,Inc.（ミネアポリス、ミネアポリス、米国）から購入した。カルベジロール（ＣＡＲ）は、Cipla Ltd.（ムンバイ、インド）から、パラセタモール（ＰＡＲ）は、Fagron（コペンハーゲン、デンマーク）から、フロセミド（ＦＵＲ）は、Sigma-Aldrich（セントルイス、ミズーリ州、米国）から。これらの粉末はすべて試薬グレードであり、受け取ったままの状態で用いた。乳清タンパク質分離物（ＷＰＩ）、乳清タンパク質加水分解物（ＷＰＨ）、コメタンパク質分離物、ダイズタンパク質分離物、及び卵タンパク質分離物は、LSP Sporternahrung（ボン、ドイツ、www.lsp-sports.de）から購入した。ポリビニルピロリドン（ＰＶＰ、Kollidon（登録商標）25）、ウシ乳由来のアルファ−ラクトアルブミン、及びベータ−ラクトグロブリンは、Sigma-Aldrich（シュネルドルフ、ドイツ）から受け取った。ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）、セレコキシブ（ＣＥＬ）、卵白アルブミン、コラーゲン、ゼラチン、ミオグロビン、リゾチーム、カゼイン、並びにブタ胃粘膜由来ペプシン及びウシ膵臓由来トリプシンは、Sigma-Aldrich（ブランビュー、デンマーク）から入手した。材料はすべて試薬グレードであり、受け取ったままの状態で用いた。
【００６７】
方法
噴霧乾燥：
ＩＮＤ、ＣＡＲ、ＰＡＲ、ＣＥＬ、及びＦＵＲとＷＰＩ又はＷＰＨのいずれかとの物理的混合物（容器中でスパチュラを用いて一緒に混合された粉末）を、１：１の重量比で調製した。次に、この混合物を、LabWater（ロサンゼルス、カリフォルニア州、米国）製MilliQ水システムで新しく調製したmilliQ水（１８．２ＭΩ、２３．８℃）の２５０ｍｌに溶解した。各対応する溶液の原薬−ＷＰＩ／ＷＰＨの濃度は、４ｍｇ／ｍｌであった。噴霧乾燥は、除湿装置（Buchi B296）を備えたBuchi B-290スプレードライヤー（Buchi Labortechnik AG、フラビル、スイス）を用いて行った。噴霧乾燥条件は、以下の通りとした：入口部温度：１２０℃；出口部温度：約６２℃；霧化空気流速：６６７ｌ／時間；乾燥空気流量（窒素）：４０ｍ３／時間、及びフィード流速：９ｍｌ／分。共アモルファス形態の溶解挙動をさらに試験するために、ＩＮＤを、ＷＰＩの主成分（それぞれ、アルファ−ラクトアルブミン、ベータ−ラクトグロブリン、及びウシ血清アルブミン（ＢＳＡ））と共に、及び酵素消化（それぞれ、トリプシン、ペプシン、トリプシンに続いてペプシン、及びペプシンに続いてトリプシン）を施したＷＰＩと共に噴霧乾燥した。酵素消化は、各１００ｍｇ  ＷＰＩに対して１ｍｇの酵素を用いて一晩行った。ペプシン消化は、ｐＨ８で行い、トリプシン消化は、ｐＨ３で行った。異なる特性のタンパク質との原薬の溶解挙動を分析するために、ＩＮＤを、コメタンパク質分離物、卵タンパク質分離物、ダイズタンパク質分離物、卵白アルブミン、コラーゲン、ゼラチン、ミオグロビン、リゾチーム、及びカゼインと共に噴霧乾燥し、並びにＣＥＬ及びＣＡＲを、ＷＰＩ、ミオグロビン、リゾチーム、コラーゲン、及びカゼインと共に噴霧乾燥した。
【００６８】
ボールミリング：
噴霧乾燥によって得られる共アモルファス形態を、ボールミリングによって得られる共アモルファス形態と比較するために、ＩＮＤ、ＣＡＲ、ＰＡＲ、及びＦＵＲとＷＰＩ又はＷＰＨのいずれかとの物理的混合物を、低温室（４℃）中でMixerMill MM400（Retsch GmbH & Co.、ハーン、ドイツ）を用いた振動ボールミリングに掛けた。ボールミリングによって得られる共アモルファス形態を、２個の１２ｍｍステンレス鋼ボールを入れた２５ｍｌミリング容器中に、１：１重量比（原薬−ＷＰＩ／ＷＰＨ）の合計質量７００ｍｇを投入することによって調製した。ミリングは、３０Ｈｚで、ＩＮＤ及びＣＡＲの場合は最大３０分間にわたって、ＦＵＲ及びＰＡＲの場合は最大６０分間にわたって行った。
【００６９】
固体形態の測定のためのＸ線粉末回折（ＸＲＰＤ）：
原薬−ＷＰＩ／ＷＰＨ混合物の分子相互作用を、X’Pert PANanalytical PRO  Ｘ線回折計（PANanalytical、アルメロ、オランダ）をＣｕＫα線：１．５４１８７Å、電流：４０ｍＡ、及び加速電圧：４５ｋＶで用いたＸＲＰＤによって調べた。噴霧乾燥又はボールミリングのいずれかによって得た共アモルファス形態の各々を、反射モードを用いて、２°〜３５°の２θでスキャンした（スキャン速度０．０６７°２θ／秒及びステップサイズ０．０２６°）。収集したデータを、X’Pert PANanalytical Collectorソフトウェア（PANanalytical、アルメロ、オランダ）を用いて分析した。
【００７０】
残留水分の測定のための熱重量分析：
熱重量分析は、TGA Discovery装置（TA Instruments、ニューキャッスル、米国）で行った。１０ｍｇのサンプルを、白金パンに入れ、フタで密封し、２５から３００℃まで、１０℃／分で加熱した。得られた重量−温度のグラフを、Triosソフトウェア（TA Instruments、ニューキャッスル、米国）を用いて分析して、２５から１５０℃での重量減少を算出した。
【００７１】
Ｔｇ及びＴｍの測定のための変調示差走査熱量測定（ｍＤＳＣ）：
熱分析は、Discovery DSC装置（TA Instruments、ニューキャッスル、米国）を用いて行った。約６〜８ｍｇに秤量した各サンプルを、アルミニウムパンに入れ、フタで密封した。装置の校正をインジウムで行い、次にサンプルを、４０秒間の０．２１２０℃の振幅に掛けた。２℃／分の昇温速度を用いて−２０℃から１８０℃の範囲内を測定した。各測定の間、５０ｍＬ／分の一定窒素流速を適用した。ガラス転移温度（Ｔｇ）は、収集したデータをTriosソフトウェア（TA Instruments、ニューキャッスル、米国）を用いて分析し、サンプルの開始及び終了温度の中点の半値を見ることによって見出した。
【００７２】
固有溶解速度：
固有溶解速度（ＩＤＲ）は、液圧プレス（PerkinElmer、Hydraulische Presse Model IXB-102-9、ユーバーリンゲン、ドイツ）を用いて得た圧縮粉から特定した。純薬物のボールミング粉末、及び薬物−タンパク質混合物の噴霧乾燥粉末を圧縮して錠剤とした。１５０ｍｇの錠剤を、固有溶解サンプルホルダーとして作用するステンレス鋼シリンダー中に、１２４．９ＭＰａの圧力で４５秒間直接圧入した。錠剤の圧入の結果、シリンダーの一方の端部が、表面積０．７８５４ｃｍ２の平坦面となった。次に、これらのシリンダーを、９００ｍｌの０．１Ｍリン酸緩衝（ｐＨ７．２、３７℃）溶解媒体中に入れ、５０ｒｐｍの回転速度でマグネティックスターラーバーで撹拌した。所定の時間点で（１、５、１０、１５、２０、２５、及び３０分、いくつかのＩＤＲの特定は、２０分までしか行わなかった）、５ｍｌのアリコートを取り出し、溶解緩衝液で直ちに置き換えた。得られたサンプルを、次に、ＵＶ分光光度計を用いて分析した（以下を参照）。溶解実験はすべて３つの反復サンプルで行った。
【００７３】
紫外線分光光度分析（ＵＶ  Ｖｉｓ）：
緩衝液中の各薬物の濃度は、Evolution 300  ＵＶ分光光度分析（Thermo Scientific，ケンブリッジ、英国）により、ＩＮＤ、ＣＡＲ、ＰＡＲ、ＣＥＬ、及びＦＵＲに対して、それぞれ３２０ｎｍ、２７２ｎｍ、２７０ｎｍ、２６５ｎｍ、及び２８５ｎｍで測定した。
【００７４】
粉末溶解（ＵＳＰ  ＩＩ装置）：
粉末溶解を、ＵＳＰ  ＩＩ型装置で行った。２００ｍｇの結晶ＩＮＤ、アモルファスＩＮＤ、ＳＤ、ＩＮＤ−ＷＰＩ、及び物理的混合物（ＰＭ）ＩＮＤ−ＷＰＩを、溶解媒体としてのｐＨ７．２のリン酸緩衝液５０ｍｌ（リン酸ナトリウム二塩基性七水和物及びリン酸ナトリウム一塩基性無水物）に添加して、３つの反復サンプルとした。溶解パドルを、５０ｒｐｍで１時間回転させ、１、３、５、７、１０、１５、２０、２５、３０、３５、４０、５０、６０、及び１２０分でサンプルを取り出した。５ｍｌの各サンプルを取り出し、溶解媒体で置き換えた。媒体からの粉末を分離するために、サンプルを０．４５μｍのシリンジフィルター（Qmax、Frisinette ApS）でろ過し、吸着によるロスを最小限に抑えるために、最初の２ｍｌを廃棄した。サンプルを、ＵＶ  Ｖｉｓを用いて検査して、薬物濃度を分析した。
【００７５】
安定性：
サンプルはすべて、デシケーター内でシリカゲル上（相対湿度０％）、室温で保存し、物理的安定性実験を、すべてのＳＤサンプルに対して行った。各サンプルを、第０日にＸＲＰＤによって分析し、続いてその後は、毎月１回行った。
【００７６】
生体内薬物動態実験：
この実験は、Danish Animal Experiments Inspectorate（認可番号２０１４−１５−０２０１−０００３１）によって認可された実験プロトコルの下で行った。この実験の目的は、（ｉ）結晶ＦＵＲの性能を、（ｉｉ）アモルファスＦＵＲ；（ｉｉｉ）物理的混合物ＦＵＲ−ＷＰＩ（５０％ＦＵＲ、５０％ＷＰＩ）；（ｉｖ）ＳＤ  ＰＶＰ−ＷＰＩ（７５％ＰＶＰ、２５％ＦＵＲ）；（ｖ）ＳＤ  ＦＵＲ−ＷＰＩ（７５％ＦＵＲ、２５％ＷＰＩ）；（ｖｉ）ＳＤ  ＦＵＲ−ＷＰＩ（５０％ＦＵＲ、５０％ＷＰＩ）；及び（ｖｉｉ）ＳＤ  ＦＵＲ−ＷＰＩ（２５％ＦＵＲ、７５％ＷＰＩ）と比較して試験することであった。比率はすべて重量％である。ＳＤ、ＸＲＰＤ、ＤＳＣ、及び固有溶解実験はすべて、セクション１．２で述べたものと同じ条件を用いて行った。
【００７７】
この実験では、体重２５０〜３４８ｇの雄の７週齢スプラーグドーリーラット（Charles River、デンマーク）を用いた。動物は、水及び餌を自由摂取可能とし、制御された環境条件下で飼育した（１２時間の明暗サイクルで、一定の温度及び湿度）。動物はすべて、薬物投与前の約１２時間の間、空腹状態とした。ラットを、無作為に８つの群に振り分け（各々６〜８体のラットから成る）、尾静脈注射によって生理食塩水中のＦＵＲを１．５ｍｇ／ラット（約５ｍｇ／ｋｇ）で静脈内投与された群を含む。残りの７群には、２．５ｍｍの錠剤厚さのサイズの経口強制投与を用いて経口投与した。各錠剤は、ラットあたり４．５ｍｇのＦＵＲの用量であり、これは、約１５ｍｇ／ｋｇに等しい。０．２５、０．５、１、２、４、及び２４時間後に、血液サンプル（０．２ｍｌ）を、尾への穿刺により尾静脈から採取した。これらの血液サンプルは、ＥＤＴＡコーティングチューブに採取、保存し、その後、血漿を、３６００ｇ（１２分間、４℃）での遠心分離によって回収し、マイクロチューブに移した。血漿サンプルは、さらなる分析に用いるまで、−８０℃で保存した。薬物投与の約８時間後に餌をラットに与えた。水は、実験の全期間にわたって、ラットが自由摂取可能とした。
【００７８】
液体クロマトグラフィ−質量分析（ＬＣ−ＭＳ）による血漿サンプルの定量分析：
血漿サンプル中のフロセミド含有量を、３０μｌの血漿に３００μｌのアセトニトリルを添加してタンパク質を析出させることによって評価した。３０μｌのフェノフィブル酸（ＦＡ）から成る内標準も、各サンプルに添加した。これらの最終混合物を、次に、８０００ｒｐｍで１０分間遠心分離した（室温）。遠心分離後、上清を注意深くＬＣ−ＭＳプレートに移し、6140四重極検出器を備えたAgilent technologies 1200システムを用いてＬＣ−ＭＳを行った。クロマトグラフィによる分離は、Agilent Zorbax XDB-C18カラム（２．１×５０ｍｍ、３．５μｍ）を用いて行った。サンプルは、milliQ水中の０．０４％氷酢酸（溶媒Ａ）及びアセトニトリル（溶媒Ｂ）の勾配混合物により、０．５ｍＬ／分の流速で溶出した。各勾配プログラムは：０〜８分、１５％溶媒Ｂ；８〜１０分、１５％〜８０％溶媒Ｂ；１０〜１１分、８０％溶媒Ｂ；１１〜１１．１０分、８０％〜１５％溶媒Ｂ；１１．１０〜１４分、１５％溶媒Ｂ。オートサンプラー温度は、８℃に維持し、各注入サンプルの体積は、５μｌに設定した。ＬＣ−ＭＳ法は、霧化を補助するための窒素の存在下で行った。
【００７９】
薬物動態分析：
時間に対する血漿中濃度の曲線下面積（ＡＵＣ）を、時間ｔ＝０分からｔ＝１４４０分（最終血漿中濃度）までの線形対数台形法によって特定した。ＡＵＣを用いて、絶対生体利用度（Ｆａ）を算出した：
【数１】
2020502086.tif 000002
数式中、Ｐ．Ｏ．は、経口送達を表し、Ｉ．Ｖ．は、静脈内投与の場合である。最大ＦＵＲ血漿中濃度のＣｍａｘも特定した。
【実施例】
【００８０】
例１：噴霧乾燥原薬−ＷＰＩ／ＷＰＨのＸ線粉末回折
ＸＲＰＤを用いて、すべてのサンプルに対してアモルファス（ＸＲＰＤにおけるハロー構造−ディフラクトグラムにブラッグピークなし）又は結晶相（ディフラクトグラムに明確なピーク）を分析した。図１は、各場合においてアモルファスのハローの出現を示しており、すべての薬物−ＷＰＩ／ＷＰＨ混合物のアモルファス化が成功したことを示している。
【００８１】
図１０は、ＩＮＤと、それぞれコメタンパク質分離物、ダイズタンパク質分離物、卵タンパク質分離物、コラーゲン、ゼラチン、ミオグロビン、リゾチーム、及びカゼインとが共アモルファス形態であった実験におけるアモルファスのハローの出現を示している。図は、すべての場合においてアモルファス化が成功したことを明らかに示している。これに加えて、図１２は、ＩＮＤと卵白アルブミン、並びにＣＥＬとミオグロビン、リゾチーム、カゼイン、コラーゲン、及びＷＰＩとの場合のハロー構造を示しており、共アモルファス製剤の形成が確認される。図１８におけるＣＡＲとミオグロビン、リゾチーム、カゼイン、コラーゲンとの場合のハロー構造からも、共アモルファス製剤であることが確認される。
【００８２】
例２：噴霧乾燥原薬−タンパク質混合物の熱分析
ＴＧＡから、すべてのアモルファス薬物及びＳＤ原薬−タンパク質混合物における残留水分含有量が、３．２〜８．３％であることが確認された。詳細な結果については、表１ａ及び１ｂを参照されたい。
【００８３】
【表１ａ】
2020502086.tif 000003
【００８４】
【表１ｂ】
2020502086.tif 000004
【００８５】
各ＳＤ原薬−タンパク質混合物は、単一のＴｇ（ガラス転移温度）を示し、このことは、単相の共アモルファス系が得られたことを示している。共アモルファス混合物はすべて、アモルファス薬物単独と比較してＴｇ値の上昇を示し、このことは、混合物中での混和性がより良好であることを示している。
【００８６】
例３：異なる形態のＩＮＤの固有溶解速度
図２に示されるように、アモルファスボールミリングＩＮＤの固有溶解速度（ＩＤＲ）（０．１３３３ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）は、結晶ＩＮＤのＩＤＲ（０．０７８７ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）よりも１．７倍高い。これと比較して、共アモルファスＩＮＤ−ＷＰＩ及びＩＮＤ−ＷＰＨ混合物の場合、非常により大きいＩＤＲの増加が観察された。噴霧乾燥ＩＮＤ−ＷＰＩの場合（１．４９４ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）、結晶ＩＮＤと比較すると、溶解速度は１９倍の増加であり、ボールミリングアモルファスＩＮＤと比較すると、１１倍の増加である。噴霧乾燥ＩＮＤ−ＷＰＨの場合（１．３０６６ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）、結晶ＩＮＤからは４倍の増加であり、ボールミリングアモルファスＩＮＤからは約２倍の増加である。また、噴霧乾燥ＩＮＤ−ＷＰＩの溶解の増加は、噴霧乾燥ＩＮＤ−ＷＰＨと比較した場合、１倍である。該当する直線式及び固有溶解速度については、表２ａを参照されたい。さらに、表２ｂは、共アモルファス混合物に対するさらなる直線式及び固有溶解速度を示す。
【００８７】
【表２ａ】
2020502086.tif 000005
【００８８】
【表２ｂ】
2020502086.tif 000006
【００８９】
図１１（ｉ）及び（ｉｉ）は、ＩＮＤと様々なタンパク質との共アモルファス形態における固有溶解速度（ＩＤＲ）を示し、この場合、共アモルファス形態は、噴霧乾燥によって調製されている。噴霧乾燥ＩＮＤ−ＷＰＩ（１．４９４ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）は、結晶ＩＮＤと比較すると、溶解速度が１９倍増加しており、ボールミリングアモルファスＩＮＤと比較すると、１１倍の増加である。噴霧乾燥ＩＮＤ−ＷＰＨの場合（１．３０６６ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）、結晶ＩＮＤからは４倍の増加であり、ボールミリングアモルファスＩＮＤからは約２倍の増加である。また、噴霧乾燥ＩＮＤ−ＷＰＩの溶解速度の増加は、噴霧乾燥ＩＮＤ−ＷＰＨと比較した場合、１倍である。ＳＤ  ＩＮＤ−卵白アルブミン、ＳＤ  ＩＮＤ−ゼラチン、ＳＤ  ＩＮＤ  リゾチーム、ＳＤ  ＩＮＤ−ミオグロビン、ＳＤ  ＩＮＤ−コラーゲン、及びＳＤ  ＩＮＤ−カゼインの溶解速度は、それぞれ、Ｃ  ＩＮＤよりも３．５、７．９、１３．５、１１．６、３．７、２．８倍高く、Ａ  ＩＮＤよりも２、４．７、８、６．８、２．２、１．７倍高い。一方、ＳＤ  ＩＮＤ−卵、ＳＤ  ＩＮＤ−コメ、及びＳＤ  ＩＮＤ−ダイズは、Ｃ  ＩＮＤよりも４．５、２．５、２．３倍高く、Ａ  ＩＮＤよりも２．６、１．５、１．４倍高い。
【００９０】
タンパク質は、その等イオン点（ｐＩ）、両性イオン分子が等しい数の正電荷及び負電荷を有するｐＨ値、に基づいて、酸性薬物ＩＮＤ（ｐＫａ：４．５）、中性薬物ＣＥＬ（ｐＫａ：１１．１）、及び塩基性薬物ＣＡＲ（ｐＫａ：７．８）とのペアとし、続いて、固有溶解速度（ＩＤＲ）を特定した（図１３（ｉ）、１３（ｉｉ）、１３（ｉｉｉ））。リゾチーム、ミオグロビン、コラーゲン、及びカゼインのｐＩは、それぞれ、１０．７、７．４、５．８、及び４．６である。ＷＰＩのｐＩは、約５であり、それは、ＷＰＩが、α−ラクトアルブミン、β−ラクトグロブリン、及びＢＳＡの混合物であり、これらがそれぞれ、５．０、５．２、及び５．２のｐＩを有するからである。ＩＮＤとの共アモルファス混合物の場合、ＳＤ  ＩＮＤ−リゾチーム（１．０６７６ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）が最も高いＩＤＲを有し、続いてＳＤ  ＩＮＤ−ミオグロビン（０．９１１３ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）、ＳＤ  ＩＮＤ−コラーゲン（０．２９２４ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）、及びＳＤ  ＩＮＤ−カゼイン（０．２２２４ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）であった。このことは、ｐＨ７．２において、負に帯電したＩＮＤが、高いｐＩを有するコフォーマータンパク質とのペアとされた場合に、より高いＩＤＲを実現することを示しており、負に帯電したＩＮＤと正味の正電荷を有するタンパク質との間の静電引力が、溶解速度に良好な影響を有することを示すものである。
【００９１】
ｐＨ７．２で正に帯電するＣＡＲの場合にも、同様のパターンが見出され、共アモルファス混合物の形成に用いたタンパク質のｐＩの低下と共に高くなるＩＤＲを示した。ＳＤ  ＣＡＲ−カゼイン（０．１９２５ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）、ＳＤ  ＣＡＲ−コラーゲン（０．１６９４ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）、及びＳＤ  ＣＡＲ−ＷＰＩ（０．１９４８ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）は、正味の正電荷を有するタンパク質、リゾチーム及びミオグロビンと混合されたＣＡＲと比較して、より高いＩＤＲを示した。ＳＤ  ＣＡＲ−カゼインは、ＳＤ  ＣＡＲ−リゾチーム（０．０７３７ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）よりも２．６倍高く、ＳＤ  ＣＡＲ−ミオグロビン（０．０９２ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）よりも２．１倍高く、一方ＳＤ  ＣＡＲ−コラーゲンは、ＳＤ  ＣＡＲ−リゾチーム及びＳＤ  ＣＡＲ−ミオグロビンよりも、それぞれ２．３倍及び１．８倍高かった。このことは、薬物分子とコフォーマータンパク質との間の静電引力が、静電反発力と比較して、得られるＩＤＲに対して良好な影響を有することを示唆している。興味深いことに、ｐＨ７．２で中性であるＣＥＬも、正味の負電荷を有するタンパク質をコフォーマーとして組み合わせた場合、より高いＩＤＲを示した。ＳＤ  ＣＥＬ−カゼイン（０．９７１４ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）が最も高いＩＤＲを示し、続いてＳＤ  ＣＥＬ−コラーゲン（０．６６２９ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）、ＳＤ  ＣＥＬ−ミオグロビン（０．２６２８ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）、及びＳＤ  ＣＥＬ−リゾチーム（０．２０１９ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）であった。これは、ｐＨ７．２での中性電荷、及びＣＥＬの他のさらなる特性に起因するものであり得る。
【００９２】
すべての場合において、ＷＰＩをコフォーマーとして用いた場合、ＩＤＲは、ｐＩに関わらず、及び薬物の性質（酸性、塩基性、又は中性）とも独立して、他のタンパク質で観察されたものよりも高いことが見出された。異なる電荷を有する薬物のＩＤＲと異なる正味の電荷を有するタンパク質との間の相関をさらに視覚化するために、異なる薬物−タンパク質の組み合わせのＩＤＲを、タンパク質のｐＩに対してプロットした（図１５ｉ〜ｉｉｉ）。タンパク質のｐＩと共アモルファス混合物の得られたＩＤＲとの間には、ＩＮＤとのコフォーマーとして用いられた場合のＷＰＩ以外は、良好な相関が存在する。このことは、ＷＰＩの組成及び特性によって説明され得る。述べたように、ＷＰＩは、複数のタンパク質の混合物から成っており、その結果、単一のタンパク質及び薬物から成る共アモルファス混合物と比較して、得られる共アモルファス混合物の不均質性が高くなり得る。このことは、薬物の溶解速度に良好な効果を有し得る。さらに、ＷＰＩのタンパク質のある特定の特性が、薬物分子との安定な相互作用を形成するのにそれらを特に好適としており、それによって、薬物の溶解速度が高められる結果となっているものと考えられる。
【００９３】
図１４（ｉ）は、複数のタンパク質を一緒にした混合物を表すＷＰＩ及び他のタンパク質と共に噴霧乾燥したＩＮＤの共アモルファス形態を示す。卵タンパク質分離物（卵）は、主として卵白アルブミン、オボムコイド、オボムチン、及びリゾチームから成る混合物であり、一方コメタンパク質分離物（コメ）は、グルテニン、グロブリン、アルブミン、及びプロラミンから成る。他方、ダイズタンパク質分離物（ダイズ）は、球状タンパク質、コングリシニン及びグリシニンの混合物であり、ゼラチンは、本質的に変性された加水分解コラーゲンである。ＳＤ  ＩＮＤ−卵のＩＤＲは、ＳＤ  ＩＮＤ−ダイズの１．９倍高く、ＳＤ  ＩＮＤ−コメの１．８倍高いことが見出された。さらに、ＳＤ  ＩＮＤ−ゼラチンは、ＳＤ  ＩＮＤ−卵よりも１．８倍高い固有溶解を示した。すべてのＩＮＤ−タンパク質混合物のなかで、ここでもＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩが最も高い固有溶解を示し、ＳＤ  ＩＮＤ−ゼラチンの２．４倍高かった。全体として、ＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩが最も高い溶解速度を有し、続いてＳＤ  ＩＮＤ−ゼラチン、ＳＤ  ＩＮＤ−卵、ＳＤ  ＩＮＤ−コメ、及びＳＤ  ＩＮＤ−ダイズであった。図１７は、これらのタンパク質の等イオン点（ｐＩ）が、観察されたＩＤＲとの直接の相関を有していなかったことを示しており、それは、これらのタンパク質が、複数の他のタンパク質の組み合わせであったことに起因する可能性が最も高い。しかし、ＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩは、最も高い溶解速度を有していた。ＷＰＩを構成する各タンパク質、特にα−ラクトアルブミンは、単独で薬物分子と用いられた場合（表２ａ）、比較的高いＩＤＲを示し、ＷＰＩとして混合された場合は、さらにより高いＩＤＲという結果であった。ＳＤ  ＩＮＤ−ゼラチンも、多くの他のタンパク質と比較して、高い溶解速度を示したが、ＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩ及びＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＨの両方は、それよりも高い溶解速度という結果であった。
【００９４】
図１４（ｉｉ）は、コフォーマータンパク質が、その分子量（Ｍｗ）に基づいて選択されたＳＤ  ＩＮＤ−タンパク質共アモルファス混合物を示しており、ＢＳＡが最も高いＭｗ（約６６５００）を有し、続いて卵白アルブミン（約４５０００）、カゼイン（約２３０００）、そしてＷＰＩ（約１５０００）である。これらの４つのタンパク質、ＢＳＡ、卵白アルブミン、カゼイン、及びＷＰＩは、それぞれ、５．２、４．８、４．６、及び約５という類似のｐＩも有する。興味深いことに、ＳＤ  ＩＮＤ−ＢＳＡの溶解速度は、比較的類似していたとは言え、ＳＤ  ＩＮＤ−卵白アルブミンの約１．０５倍高く、ＳＤ  ＩＮＤ−カゼインの１．３倍高いことが見出された。このことは、タンパク質のＭｗが、共アモルファス混合物の得られる溶解速度に僅かな影響を有することを示唆し得るものであり、恐らくは、高Ｍｗタンパク質と形成される相互作用の高い多様性に起因する。図１６（ｉ）も、この傾向を示している。ここでもやはり、ＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩは孤立値であり、そのより低いＭｗにも関わらず、より高いＩＤＲという結果であった。
【００９５】
例３：異なる形態のＣＡＲ、ＰＡＲ、及びＦＵＲの固有溶解速度
図３は、異なる形態のＣＡＲ（図３Ａ）、ＰＡＲ（図３Ｂ）、及びＦＵＲ（図３Ｃ）のＩＤＲを示す。該当する直線式については、表２を参照されたい。
【００９６】
図３は、ボールミリングアモルファスＣＡＲ（０．０２１４ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）、ＰＡＲ（０．２０１ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）、及びＦＵＲ（０．５１４ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）のＩＤＲが、結晶ＣＡＲ（０．０１１７ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）、ＰＡＲ（０．１６３２ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）、及び（０．１０２４ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）よりも、それぞれ、１．８、１．２、及び１．５倍高いことを示している。
【００９７】
さらに、共アモルファス原薬−ＷＰＩ／ＷＰＨ混合物のＩＤＲが大きく増加している。噴霧乾燥（ＳＤ）ＣＡＲ−ＷＰＩ及びＳＤ  ＣＡＲ−ＷＰＨのＩＤＲ（それぞれ、０．１９４ｍｇ・ｃｍ−２・分−１及び０．０７９４ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）は、結晶ＣＡＲと比較して、ほぼ１７倍（ＷＰＩ）及び７倍（ＷＰＨ）の増加を示し、ボールミリングアモルファスＣＡＲと比較して、９倍（ＷＰＩ）及び３．７倍（ＷＰＨ）の増加を示している。
【００９８】
ＳＤ  ＰＡＲ−ＷＰＩ及びＳＤ  ＰＡＲ−ＷＰＨの場合（０．５４３３ｍｇ・ｃｍ−２・分−１及び０．４６６４ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）、結晶ＰＡＲと比較して、３．３倍（ＷＰＩ）及び２．８倍（ＷＰＨ）の溶解速度の増加であり、個別のボールミリングアモルファスＰＡＲと比較して、２．７倍（ＷＰＩ）及び２．３倍（ＷＰＨ）の増加である。
【００９９】
ＳＤ  ＦＵＲ−ＷＰＩ及びＳＤ  ＦＵＲ−ＷＰＨでは（０．４１１５ｍｇ・ｃｍ−２・分−１及び０．２３５９ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）、結晶ＦＵＲと比較した場合、４倍（ＷＰＩ）及び２．３倍（ＷＰＨ）の溶解速度の増加が観察され、単独のアモルファス（ＢＭ）ＦＵＲと比較して、２．６倍（ＷＰＩ）及び１．５倍（ＷＰＨ）の増加であった。図２及び３から、噴霧乾燥薬物−ＷＰＩ混合物が、その結晶又はアモルファス対応物と比較した場合、最も高い溶解速度を有するものと結論付けることができる。
【０１００】
例４：異なるＷＰＩ成分とのアモルファスＩＮＤの固有溶解速度
図４は、ＷＰＩのＩＤＲ（３．８３１７ｍｇ・ｃｍ−２・分−１）が、その成分であるα−ラクトアルブミン、β−ラクトグロブリン、及びＢＳＡよりも、それぞれ３．４、１１、及び１３．４倍高いことを示している。ＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩは、トリプシンを用いたＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩよりも６倍高く、ペプシンを用いたＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩよりも１３．２倍高く、トリプシン＋ペプシン（トリプシンを先に添加）を用いたＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩよりも６．６倍多い。ＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩは、ペプシン＋トリプシン（ペプシンを先に添加）を用いたＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩよりも１．２５倍高い。したがって、未処理天然形態のＷＰＩが、酵素消化を行った共アモルファス形態と比較した場合、最も高い溶解速度を提供するものと結論付けることができる。
【０１０１】
例５：粉末溶解実験
図５に示されるように、共アモルファスＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩが、ＢＭ  ＩＮＤ−ＷＰＩと比較してより高い溶解速度を示すことが分かる。アモルファスＩＮＤ単独では、ＰＭ  ＩＮＤ−ＷＰＩよりも多い溶解を示している。アモルファス状態のＩＮＤの溶解性は、結晶ＩＮＤの値の２倍を超えている。これは、ギブス自由エネルギーがより高いために、アモルファス形態の化合物の溶解性が、より安定な結晶形態よりも高いことに起因している。アモルファス薬物単独からの溶解速度のこの増加は、共アモルファス化による分子相互作用の増加に起因する。
【０１０２】
例６：安定性実験
図６は、それぞれＩＮＤ、ＣＡＲ、ＦＵＲ、及びＰＡＲとのＷＰＩ及びＷＰＨの共アモルファス形態の物理的安定性を示す。アモルファスＩＮＤ、ＣＡＲ、ＦＵＲ、及びＰＡＲは、ＸＲＰＤから、再結晶によって示される１週間未満の安定性であることが見出された。対照的に、共アモルファス噴霧乾燥原薬−タンパク質混合物は、数ヶ月間にわたって安定であることが見出された。ＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＩ及びＳＤ  ＩＮＤ−ＷＰＨは、２０ヶ月間を超えて安定であることが見出され（図１９）、一方、例えばＳＤ  ＩＮＤ−ゼラチン、ＳＤ  ＩＮＤ−ＢＳＡ、及びＳＤ  ＩＮＤ−コラーゲンなどのほとんどの他のＳＤ  ＩＮＤ−タンパク質共アモルファス形態は（詳細な安定性実験については以下の表３を参照）、２〜３ヶ月間安定であるだけであった。薬物ＣＡＲ及びＦＵＲとのＷＰＩ及びＷＰＨの共アモルファス製剤も、それぞれ、最大で８ヶ月間及び１８ヶ月間安定であった。ＳＤ  ＣＥＬ−ＷＰＩの共アモルファス形態も、８ヶ月間を超えて安定であった。したがって、ＷＰＩ及びＷＰＨは、実験したすべての薬物において、最良の安定化特性を有する共アモルファス混合物のためのタンパク質でありコフォーマーであった。それはまた、より高い薬物濃度（薬物ロード量）であっても、ＰＶＰ（アモルファス製剤に対して一般的に用いられるコフォーマー）及び薬物を用いて調製した固体分散体よりも安定であった。このことは、ＷＰＩ及びＷＰＨが、溶解性の乏しい薬物と組み合わされて共アモルファス混合物又は固体分散体を形成した場合の溶解に関して、他のタンパク質及びタンパク質混合物と比較してより優れて機能するというだけではないことを示している。それらは、物理的安定性に関しても、他のタンパク質及びタンパク質混合物と比較してより優れて機能しており、数倍の安定性の増加がＷＰＩ及びＷＰＨにおいて観察された。
【０１０３】
【表３】
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【０１０４】
例７：生体内実験
図７は、ＦＵＲ及びＷＰＩの共アモルファス（噴霧乾燥）形態の、ラットへの経口投与後の生体利用度を示す。ＳＤ  ＷＰＩ：ＦＵＲ（７５％  ＷＰＩ、２５％  ＦＵＲ）が、最も高い生体利用度（１１．４％）を示し、それに近接して続いてＳＤ  ＷＰＩ：ＦＵＲ（５０％  ＷＰＩ、５０％  ＦＵＲ）（１１．３％）及びＳＤ  ＷＰＩ：ＦＵＲ（２５％  ＷＰＩ、７５％  ＦＵＲ）（１０．６％）であった。このことは、生体利用度が、ＷＰＩ含有量の増加と共に増加することを示している。ＳＤ  ＷＰＩ：ＦＵＲサンプルの生体利用度は、ＳＤ  ＰＶＰ：ＦＵＲ（６．３％）及び物理的混合物よりも著しく高かった。結晶ＦＵＲは、予想通りに最も低い生体利用度を示し（４．７％）、続いてアモルファスＦＵＲ（５．１％）であり、これらはいずれも、ＳＤ  ＷＰＩ：ＦＵＲサンプルよりも著しく低かった。ＷＰＩとＦＵＲとの比は、ＦＵＲの含有量を一定に保持した状態で、ＷＰＩの含有量を変化させることによって変動させた。
【０１０５】
図８は、ラットへの経口投与後の最大濃度（Ｃｍａｘ）を示す。Ｃｍａｘ値のパターンは、生体利用度の結果と一致していた。共アモルファス中のＷＰＩの量の増加は、Ｃｍａｘレベルの上昇という結果をもたらした。
【０１０６】
例８：生体内実験に用いた化合物の固有溶解速度
図９は、生体内実験に用いた組成物のＩＤＲを示す。ＳＤ  ＷＰＩ−ＦＵＲ（７５％  ＷＰＩ、２５％  ＦＵＲ）のＩＤＲは、最も高い溶解速度であることが見出された。それは、結晶ＦＵＲよりも５．６７倍高く、アモルファスＦＵＲよりも３．７倍高かった。続いては、ＳＤ  ＷＰＩ−ＦＵＲ（５０％  ＷＰＩ、５０％  ＦＵＲ）であり、結晶よりも４倍多く、アモルファスＦＵＲよりも２．６倍多かった。興味深いことに、従来から用いられていたＳＤ  ＰＶＰ／ＦＵＲ（７５％  ＰＶＰ、２５％  ＦＵＲ）の高さは、ＳＤ  ＷＰＩ−ＦＵＲ（２５％  ＷＰＩ、７５％  ＦＵＲ）の１倍でしかないことが見出された。アモルファスＦＵＲの高さは、ＰＭ  ＷＰＩ−ＦＵＲ（５０％  ＷＰＩ、５０％  ＦＵＲ）の０．６９倍であった。該当する直線式については、表４を参照されたい。
【０１０７】
【表４】
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【０１０８】
全体的結論：
上記の例から、様々なタンパク質、特にＷＰＩが、結晶原薬の共アモルファス化のための有望な新規の賦形剤であると結論付けることができる。薬物ＩＮＤ、ＣＡＲ、ＦＵＲ、ＰＡＲ、及びＣＥＬの共アモルファス形態は、原薬の結晶又は単独アモルファスの形態と比較して、しかし最も特筆すべきは、溶解性に乏しい原薬の溶解速度及び溶解性を改善するために開発された他の競合技術と比較しても、著しく高い溶解速度を示す。単独アモルファス原薬及び固体分散体（ＰＶＰと共に）及び物理的混合物と比較して改善された生体利用度及びＰＫプロファイルも、ＷＰＩとのすべての製剤で観察された。さらに、共アモルファス原薬−ＷＰＩの形態は、その単独アモルファスの対応物と比較して、物理的安定性の増加も示した。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【図１９】
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【国際調査報告】
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