(57)【要約】  Ｉ型インターフェロンタンパク質またはこの一部と、ＩＩＩ型インターフェロンタンパク質またはこの一部とから構成される融合分子、融合分子を含有する医薬組成物、ならびに感染を抑制すること、がんを抑制または処置すること、ＩＦＮ−αＲ１鎖を分解または下方調節する感染症を患う対象において、ＩＦＮ−αＲ２鎖を通してＩＦＮ誘導遺伝子の転写のシグナリングを誘導すること、および様々な疾患または疾病を処置することにおけるそれらの使用のための方法が提供される。
2020518588.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
Ｉ型インターフェロンタンパク質またはこの一部と、ＩＩＩ型インターフェロンタンパク質またはこの一部とを含む、融合分子。
【請求項２】
Ｉ型インターフェロンタンパク質またはこの一部が、インターフェロン アルファまたはこの一部である、請求項１に記載の融合分子。
【請求項３】
インターフェロン アルファまたはこの一部が、インターフェロン アルファ２またはこの一部である、請求項２に記載の融合分子。
【請求項４】
Ｉ型インターフェロンタンパク質またはこの一部が、インターフェロン ベータまたはこの一部である、請求項１に記載の融合分子。
【請求項５】
ＩＩＩ型インターフェロンタンパク質またはこの一部が、インターフェロン ラムダ１またはこの一部である、請求項１に記載の融合分子。
【請求項６】
ＩＩＩ型インターフェロンタンパク質またはこの一部が、インターフェロン ラムダ２またはこの一部である、請求項１に記載の融合分子。
【請求項７】
ＩＩＩ型インターフェロンタンパク質またはこの一部が、インターフェロン ラムダ３またはこの一部である、請求項１に記載の融合分子。
【請求項８】
Ｉ型インターフェロンタンパク質またはこの一部と、ＩＩＩ型インターフェロンタンパク質またはこの一部との間にリンカーをさらに含む、請求項１に記載の融合分子。
【請求項９】
そのＮ末端にシグナルペプチドをさらに含む、請求項１に記載の融合分子。
【請求項１０】
Ｉ型インターフェロンタンパク質またはＩＩＩ型インターフェロンタンパク質の成熟した一部を含む、請求項１に記載の融合分子。
【請求項１１】
Ｉ型インターフェロンタンパク質またはＩＩＩ型インターフェロンタンパク質のシグナルペプチドを包含する配列全体を含む、請求項１に記載の融合分子。
【請求項１２】
請求項１〜１１のいずれか一項に記載の融合分子および薬学的に許容し得る担体を含む、医薬組成物。
【請求項１３】
インターフェロン処置に反応する疾患または疾病を処置するための方法であって、該方法が、有効量の請求項１〜１１のいずれか一項に記載の融合分子または請求項１２に記載の医薬組成物を、処置を必要とする対象へ投与し、これによって対象の疾患または疾病を処置することを含む、前記方法。
【請求項１４】
対象における疾患または疾病を処置するための方法であって、該方法が、有効量の請求項１〜１１のいずれか一項に記載の融合分子または請求項１２に記載の医薬組成物を対象へ投与し、これによって対象の疾患または疾病を処置することを含み、ここで疾患または疾病が、ウイルス感染症、真菌感染症、細菌感染症、がん、炎症性疾患、または自己免疫疾患である、前記方法。
【請求項１５】
対象における感染症を抑制するための方法であって、該方法が、有効量の請求項１〜１１のいずれか一項に記載の融合タンパク質または請求項１２に記載の医薬組成物を対象へ投与することを含む、前記方法。
【請求項１６】
融合タンパク質が、対象における２以上の細胞型を標的にする、請求項１５に記載の方法。
【請求項１７】
２以上の細胞型が、対象の肺または呼吸器にある、請求項１６に記載の方法。
【請求項１８】
２以上の細胞型が、対象の腸にある、請求項１６に記載の方法。
【請求項１９】
２以上の細胞型が、対象の複数の器官にある、請求項１６に記載の方法。
【請求項２０】
対象におけるがんを抑制または処置するための方法であって、該方法が、有効量の請求項１〜１１のいずれか一項に記載の融合タンパク質または請求項１２に記載の医薬組成物を対象へ投与することを含む、前記方法。
【請求項２１】
ＩＦＮ−αＲ１鎖を分解または下方調節する感染症を患う対象において、ＩＦＮ−αＲ２鎖を通してＩＦＮ誘導遺伝子の転写のシグナリングを誘導するための方法であって、該方法が、有効量の請求項１〜１１のいずれか一項に記載の融合タンパク質または請求項１２に記載の医薬組成物を対象へ投与することを含む、前記方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本特許出願は、2017年5月1日に出願された米国仮出願第62/492,373号からの優先権の利益を主張するものであり、この内容は、その全体が参照されることによって本明細書に組み込まれる。
【０００２】
本発明は、国立衛生研究所によって授与されたR01 AI057468およびR01 AI104669の下、政府の支援でなされた。政府は、本発明において一定の権利を有する。
【背景技術】
【０００３】
背景
インターフェロン（ＩＦＮ）は、多面的な抗ウイルス応答の確立における基本的なサイトカインである。ＩＦＮの３つの別個の型は現在、それらの構造的な特色、受容体利用、および生物活性に基づき、（Ｉ、ＩＩ、およびＩＩＩ型）認識される。すべてのＩＦＮが抗ウイルス防御(protection)の重要なメディエーターであるが、抗ウイルス防護(defense)においてそれらの役割は変動する。Ｉ型ＩＦＮ（ヒトにおいてＩＦＮ−α／β／ω／ε／κ）は、強い固有の抗ウイルス活性を保有し、多種多様の細胞において強力な抗ウイルス状態を誘導することができる（Levy & Garcia-Sastre (2001) Cytokine Growth Factor Rev. 12(2-3):143-56；Samuel (2001) Clin. Microbiol. Rev. 14(4):778-809）。Ｉ型ＩＦＮ受容体ノックアウトマウスは高度に、多くのウイルス感染症を起こしやすいところ、抗ウイルス抵抗性の誘導におけるＩ型ＩＦＮの不可欠な役割は、かかる動物を使用して明確に実証されている（Mueller, et al. (1994) Science 264(5167):1918-21；Hwang, et al. (1995) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 92(24):11284-8；Steinhoff, et al. (1995) J. Virol. 69(4):2153-8）。対照的に、ＩＦＮ−γおよびＩＦＮ−γ受容体のノックアウトマウスを用いた研究（Dalton, et al. (1993) Science 259(5102):1739-42；Huang, et al. (1993) Science 259(5102):1742-5; Lu, et al. (1998) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 95(14):8233-8）ならびにＩＦＮ−γ受容体の遺伝性の遺伝子突然変異を保有するヒトの分析（Dorman, et al. (2004) Lancet 364(9451):2113-21；Novelli & Casanova (2004) Cytokine Growth Factor Rev. 15(5):367-77）によって、抗ウイルス活性がＩＦＮ−γの主要な生物学的機能ではないことが明らかにされた。
【０００４】
ＩＦＮ−γは、Mycobacterium tuberculosisなどの病原性細胞内微生物に対する宿主防御の発達にとって重大な細胞性(cell-mediated)免疫応答を刺激するＴｈ１型サイトカインとして分類される（Bach, et al. (1997) Annu. Rev. Immunol. 15:563-91；Boehm, et al. (1997) Annu. Rev. Immunol. 15:749-95；Pestka, et al. (1997) Cytokine Growth Factor Rev. 8(3):189-206）。ＩＦＮ−γはまた、抗腫瘍免疫応答の発達においても、中心的な役割を果たしており、ＩＦＮ−αもしくは−β、または−λによる抗ウイルス活性の誘導を増幅し得る。したがって、Ｉ型およびＩＩ型のＩＦＮはしばしば、有効な抗腫瘍免疫の誘導およびウイルス感染症の消失(elimination)をもたらす様々な自然免疫応答および適応免疫応答を活性化するように一緒にはたらく（Biron (2001) Immunity 14(6):661-4；Le Bon & Tough (2002) Curr. Opin. Immunol. 14(4):432-6；Pestka, et al. (2004) Immunol. Rev. 202:8-32）。
【０００５】
ＩＦＮは、６種のＩＬ−１０関連サイトカイン：ＩＬ−１０、ＩＬ−１９、ＩＬ−２０、ＩＬ−２２、ＩＬ−２４、およびＩＬ−２６（Kotenko (2002) Cytokine Growth Factor Rev. 13(3):223-40；Renauld (2003) Nat. Rev. Immunol. 3(8):667-76；Pestka, et al. (2004) Annu. Rev. Immunol. 22:929-979）ならびに数種のウイルスＩＬ−１０関連サイトカイン（Kotenko & Langer (2004) Int. Immunopharmacol. 4(5):593-608）もまた包含するクラスＩＩサイトカインの、より大きなファミリーの一員である。ＩＦＮおよびＩＬ−１０関連サイトカインは、それらがすべてそれらの細胞外ドメインに一般的なモチーフを共有する受容体を介してシグナルを送る(signal)ことから、同じファミリーにグループ化され得る。これらの受容体は、クラスＩＩサイトカイン受容体ファミリー（ＣＲＦ２）を包含する。その結果として、ＩＦＮおよびＩＬ−１０関連サイトカインは、「ＣＲＦ２サイトカイン」と称されることもある。ヒトのＩ型ＩＦＮファミリーは、１３のＩＦＮ−α種、ならびに単一種のＩＦＮ−β、ＩＦＮ−κ、ＩＦＮ−ω、およびＩＦＮ−εから構成される（LaFleur, et al. (2001) J. Biol. Chem. 276(43):39765-71；Hardy, et al. (2004) Genomics 84(2):331-45；Langer, et al. (2004) Cytokine Growth Factor Rev. 15(1):33-48；Pestka, et al. (2004) Immunol. Rev. 202:8-32）。ヒトのＩＩ型ＩＦＮには、ＩＦＮ−γとして知られている１つの種しかない。ＩＦＮ−γの３次構造はＩＬ−１０のものと似ているが、その１次構造は、すべてのＣＲＦ２リガンドと最も相違している。つい最近(the most recent)ＣＲＦ２ファミリーへ加えられたＩＩＩ型ＩＦＮまたはＩＦＮ−λは、ＩＬ−１０関連サイトカインの構造的特色を示す(demonstrate)が、様々な標的細胞において抗ウイルス活性もまた誘導し、このことが新型のＩＦＮとして、それらの機能的分類を裏付ける（Kotenko, et al. (2003) Nat. Immunol. 4(1):69-77；Sheppard, et al. (2003) Nat. Immunol. 4(1):63-8）。ヒトにおいて、別個のものではあるが密接な関係がある３つのＩＦＮ−λタンパク質、ＩＦＮ−λ１、−λ２、および−λ３（また夫々ＩＬ−２９、ＩＬ−２８Ａ、およびＩＬ−２８Ｂとしても知られている）が最初に同定された。2013年に、ＩＩＩ型ＩＦＮファミリーは、追加のメンバーＩＦＮ−λ４タンパク質で拡張されたが、これはＩＦＮ−λ１、−λ２、および−λ３とわずかな相同性しか共有しない（Prokunina-Olson, et al. (2013) Nat. Genet. 45(2):164-71）。系統発生的に、ＩＦＮ−λ遺伝子は、Ｉ型ＩＦＮファミリーとＩＬ−１０遺伝子ファミリーとの間のどこかに存在する（Donnelly & Kotenko (2010) J. Interferon Cytokine Res. 30:555-64）。アミノ酸配列比較は、ＩＩＩ型ＩＦＮが、Ｉ型ＩＦＮまたはＩＬ−１０関連サイトカインのいずれかと約~５％〜１８％の同一性を表す(exhibit)ことを示す(show)。
【０００６】
ＩＦＮ−λタンパク質は、ユニークなＩＦＮ−λＲ１鎖（またＩＬ−２８ＲＡとしても知られている）と、共通のＩＬ−１０Ｒ２鎖（これはまた、ＩＬ−１０、ＩＬ−２２、およびＩＬ−２６のための受容体複合体の一部分でもある）とから構成される受容体複合体に結合し、これを通してシグナルを送る（図１、およびKotenko, et al. (1997) EMBO J. 16(19):5894-903；Kotenko, et al. (2001) J. Biol. Chem. 276(4):2725-32；Xie, et al. (2000) J. Biol. Chem. 275(40):31335-9；Donnelly, et al. (2004) J. Leukoc. Biol. 76(2):314-21；Hor, et al. (2004) J. Biol. Chem. 279(32):33343-51；Sheikh, et al. (2004) J. Immunol. 172(4):2006-10を参照）。対照的に、すべてのＩ型ＩＦＮは、これらの生物活性を、ＩＦＮ−αＲ１（ＩＦＮＡＲ１）鎖とＩＦＮ−αＲ２（ＩＦＮＡＲ２）鎖とから構成されるヘテロダイマーの受容体複合体を通して発揮し（図１を参照）、ＩＩ型ＩＦＮ（ＩＦＮ−γ）は、その機能的な受容体複合体を構築する(assemble)ためにＩＦＮ−γＲ１（ＩＦＮＧＲ１）鎖およびＩＦＮ−γＲ２（ＩＦＮＧＲ２）鎖を関与させる(engages)。ＩＦＮ−λは、シグナリングのためにＩＦＮ−α受容体複合体を使用しないが、ＩＦＮ−λ受容体複合体またはＩＦＮ−α受容体複合体のいずれかを通したシグナリングは、同じＪａｋ−ＳＴＡＴシグナル伝達カスケードの活性をもたらす（図１を参照）。
【０００７】
ＩＦＮ−λは最初にＩＦＮ−λＲ１鎖へ結合し、ＩＦＮ−λがＩＦＮ−λＲ１鎖と結び付くこと(association)によって形成される２元複合体は、第２受容体鎖ＩＬ−１０Ｒ２の複合体への動員を容易にする立体配座の迅速な(rapid)変化を引き起こす。ひとたび３元複合体の構築(assembly)が完了すると、受容体関連(-associated)ＪａｎｕｓチロシンキナーゼであるＪａｋ１およびＴｙｋ２は、ＩＦＮ−λＲ１鎖の細胞内ドメイン（ＩＣＤ）上のホスホチロシン含有ペプチドモチーフ（これは、潜在的に予め形成された細胞質ＳＴＡＴタンパク質（ＳＴＡＴ１およびＳＴＡＴ２を包含する）のための一過性のドッキング部位を提供する）の形成をもたらす受容体鎖のトランスリン酸化を媒介する。Ｉ型（ＩＦＮ−α／β）またはＩＩＩ型（ＩＦＮ−λ）のＩＦＮ受容体複合体を通したシグナリングは、ＩＦＮ誘導遺伝子(IFN-stimulated gene)因子３（ＩＳＧＦ３）として知られている転写因子複合体の形成をもたらす。この複合体は、３つのタンパク質ＳＴＡＴ１、ＳＴＡＴ２、およびＩＦＮ調節因子９（ＩＲＦ−９）（またＩＳＧＦ３γまたはｐ４８としても知られている）から構成される。ひとたび構築されると、ＩＳＧＦ３は次いで核へ移行して、そこでそれは、様々なＩＦＮ誘導遺伝子（ＩＳＧ）のプロモーター中のＩＦＮ誘導応答要素へ結合する。その結果として、Ｉ型ＩＦＮまたはＩＩＩ型ＩＦＮのいずれかによって誘導される生物活性は、抗ウイルス活性の誘導、多くの細胞型上での主要組織適合遺伝子複合体（ＭＨＣ）クラスＩ抗原発現の上方調節、および抗腫瘍活性を包含しており、極めて似ている。その上、ＩＦＮ−αとＩＦＮ−λとの共投与(coadministration)は、肝細胞癌のマウスモデルにおいて相乗的な抗腫瘍効果を提供することが示されている（Lasfar, et al. (2008) Hepatology 48(4S):394A-395A；Lasfar, et al. (2016) Oncotarget 7(31):49259-49257）。
【発明の概要】
【０００８】
本発明の概要
本発明の側面は、Ｉ型ＩＦＮタンパク質またはこの一部と、ＩＩＩ型ＩＦＮタンパク質またはこの一部とから構成される融合分子に関する。非限定的な一態様において、融合分子のＩ型インターフェロンタンパク質分子は、インターフェロン アルファ、インターフェロン アルファ２、もしくはインターフェロン ベータ、またはこの一部である。非限定的な一態様において、融合分子のＩＩＩ型インターフェロンタンパク質は、インターフェロン ラムダ１、インターフェロン ラムダ２、もしくはインターフェロン ラムダ３、またはこの一部である。いくつかの非限定態様において、融合分子はさらに、Ｉ型インターフェロンタンパク質もしくはこの一部と、ＩＩＩ型インターフェロンタンパク質もしくはこの一部との間にリンカーを、および／または融合分子のＮ末端にシグナルペプチドを含む。
【０００９】
本発明の別の側面は、融合分子および薬学的に許容し得る担体を含む医薬組成物に関する。
【００１０】
本発明の別の側面は、対象における感染を抑制するための方法に関する。方法は、有効量の融合分子を対象へ投与することを含む。非限定的な一態様において、融合分子は、対象の２以上の細胞型における感染を標的にし、これを抑制する。
【００１１】
本発明の別の側面は、対象におけるがんを抑制または処置するための方法に関する。方法は、有効量の融合分子を対象へ投与することを含む。
【００１２】
本発明の別の側面は、ＩＦＮ−αＲ１鎖を分解または下方調節する感染症を患う対象において、ＩＦＮ−αＲ２鎖を通してＩＦＮ誘導遺伝子の転写に至るシグナリングを誘導するための方法に関する。方法は、有効量の融合分子を対象へ投与することを含む。
【００１３】
本発明の、更にもう１つの側面は、疾患または疾病を処置するための方法に関する。方法は、有効量の融合分子を、処置を必要とする対象へ投与し、これによって対象の疾患または疾病を処置することを含む。非限定的な一態様において、疾患または疾病は、インターフェロン処置に反応する。非限定的な一態様において、疾患または疾病は、ウイルス感染症、真菌感染症、細菌感染症、がん、炎症性疾患、または自己免疫疾患である。
【図面の簡単な説明】
【００１４】
図面の簡単な記載
【図１】図１は、ＩＩＩ型ＩＦＮ（ＩＦＮ−λ）受容体系およびＩ型ＩＦＮ（ＩＦＮ−α／β）受容体系のモデルを描いたものである。ＩＦＮ−λおよびＩ型ＩＦＮは、別個のヘテロダイマーの受容体複合体を使用する。ＩＦＮ−λは、そのユニークなＩＦＮ−λＲ１およびＩＬ−１０Ｒ２を関与させるが、ＩＦＮ−αＲ１およびＩＦＮ−αＲ２は、活性Ｉ型ＩＦＮ受容体複合体を形成する。ＩＦＮ−α受容体またはＩＦＮ−λ受容体の関与は、受容体関連ＪＡＫキナーゼＪＡＫ１およびＴｙｋ２のリン酸化をもたらし、ＤＮＡ結合タンパク質ＩＲＦ９と相互作用するＳＴＡＴ１およびＳＴＡＴ２のリン酸化がこれに続き、ＩＦＮ誘導遺伝子因子３（ＩＳＧＦ３）と名付けられた転写複合体の形成に至り、これはＩＦＮ誘導応答要素（ＩＳＲＥ）へ結合してＩＦＮ誘導遺伝子（ＩＳＧ）の転写を調節する。
【００１５】
【図２】図２Ａ、２Ｂ、２Ｃおよび２Ｄは、ヒトＩＦＮ−αＡ／Ｄ（ＩＦＮ−α；１μｇ（図２Ａおよび２Ｂ））またはマウスＩＦＮ−λ２（ＩＦＮ−λ；１μｇ（図２Ｃおよび２Ｄ））が皮下（ＳＱ）注射された野生型（ＷＴ）８日齢仔マウスまたは８週齢成体マウスの小腸におけるｐＳＴＡＴ１（ｐＴｙｒ７０１）のＩＨＣ染色を示す。黒色矢印はＩＦＮ処置上皮細胞におけるｐＳＴＡＴ１の核染色を、白色矢印は粘膜固有層内の炎症性細胞を、夫々示す。
【００１６】
【図３】図３Ａ、３Ｂおよび３Ｃは、ＩＡＶ感染マウスの気道におけるウイルス抗原についてのＩＨＣ染色（図３Ａ）、およびＩＦＮ−α（１μｇ；図３Ｂ）またはＩＦＮ−λ２（１μｇ；図３Ｃ）がＳＱ注射されたＷＴ成体マウスの気道におけるｐＳＴＡＴ１のＩＨＣ染色を示す。
【００１７】
【図４】図４Ａおよび４Ｂは、ＩＦＮ−α（１μｇ；図４Ａ）またはＩＦＮ−λ２（１μｇ；図４Ｂ）が鼻腔内に（ＩＮ）注射されたＷＴ成体マウスの気道におけるｐＳＴＡＴ１のＩＨＣ染色を示す。
【００１８】
【図５】図５は、in vivo腫瘍成長に対するＩＦＮ−αおよびＩＦＮ−λの相乗効果を示す。マウスには、元の腫瘍細胞（対照）、またはＩＦＮ−α、ＩＦＮ−λ、もしくはＩＦＮ−α＋ＩＦＮ−λのいずれかを発現する腫瘍細胞が注射された。腫瘍生存はモニタリングされた。結果は、腫瘍のない(tumor-free)マウスのパーセントを示す。
【００１９】
【図６】図６は、in vivo腫瘍成長に対するＩＦＮ−αおよびＩＦＮ−λの相乗効果を示す。マウスには１０６個の元のＢＮＬ細胞が注射され（肝細胞癌モデル）、腫瘍は４〜６週間形成させられた。腫瘍のおよそ９０％は外科的に除去され、マウスは続いて、ＩＦＮ−α、ＩＦＮ−λ、またはＩＦＮ−α＋ＩＦＮ−λのいずれかで、２日おきに２週間処置された。腫瘍サイズは、４〜６週間モニタリングされた。腫瘍退縮または腫瘍サイズの変化が示されている。
【００２０】
【図７】図７は、モック(mock)の投与と比較された、ＩＦＮ−α＋ＩＦＮ−λの局部投与および全身投与の腫瘍サイズに対する効果を示す。結果は、ＩＦＮ−α＋ＩＦＮ−λの局部投与が腫瘍サイズを劇的に低減させることを示す。
【００２１】
【図８】図８は、ＩＦＮ−αおよびＩＦＮ−λが、ＡＲＰＥ−１９細胞（ヒト網膜色素上皮細胞株）におけるヒトサイトメガロウイルス（ＨＣＭＶ）に対する防御を、細胞がＨＣＭＶ感染に先立つ０．１、６、２４および７２時間にＩＦＮで前処置されたときに誘導することを示す。
【００２２】
【図９】図９は、ＩＦＮ−αおよびＩＦＮ−λが、ＡＲＰＥ−１９細胞における水疱性口内炎ウイルス（ＶＳＶ）に対する防御を、細胞がＶＳＶ感染に先立つ０．１、６、２４、７２および９６時間にＩＦＮで前処置されたときに誘導することを示す。
【００２３】
【図１０】図１０は、Ｉ型ＩＦＮおよびＩＩＩ型ＩＦＮによって誘導される抗ウイルス応答の示差動態(differential kinetics)を説明したものである。Ｉ型ＩＦＮとＩＩＩ型ＩＦＮとの併用(the combined use)自体が、速く(fast)長く続く効率的かつ広範囲の抗ウイルス応答を提供する。
【００２４】
【図１１】図１１は、Ｉ型ＩＦＮ由来のシグナルペプチド（ＳＰ）をもつ、ヒトＩ型ＩＦＮ（ＩＦＮ−Ｉ）とＩＩＩ型ＩＦＮ（ＩＦＮ−ＩＩＩ）との融合分子の構造の概略図を示す。リンカー配列は、２種のＩＦＮタンパク質間に描かれる。
【００２５】
【図１２】図１２は、ヒト（ｈ）ＩＦＮ−α−ｈＩＦＮ−λ１融合分子のアミノ酸配列（配列番号51）を示す。グリシン／セリンリッチの(-rich)リンカーであるＮ末端のシグナルペプチド配列が枠で囲まれている。
【００２６】
【図１３】図１３は、ｈＩＦＮ−α−ｈＩＦＮ−λ３融合分子のアミノ酸配列（配列番号52）を示す。グリシン／セリンリッチのリンカーであるＮ末端のシグナルペプチド配列が枠で囲まれている。
【００２７】
【図１４】図１４は、ｈＩＦＮ−β−ｈＩＦＮ−λ３融合分子のアミノ酸配列（配列番号53）を示す。グリシン／セリンリッチのリンカーであるＮ末端のシグナルペプチド配列が枠で囲まれている。
【００２８】
【図１５】図１５は、ヒトＩ型ＩＦＮまたはＩＩＩ型ＩＦＮのいずれかについて、キメラの受容体複合体を発現するレポーターＣＨＯ細胞株の概略図を提供する。
【００２９】
【図１６】図１６は、本発明の融合ＩＦＮタンパク質（１０ｎｇ／ｍｌ）を用いたレポーターＣＨＯ細胞株の処置が、電気泳動移動度シフトアッセイ（ＥＭＳＡ）によって決定されたとおり、ＳＴＡＴ１活性化をもたらすことを示す。
【００３０】
【図１７】図１７は、負の調節因子ＵＳＰ１８の存在下でＩ型とＩＩＩ型との結合(combined)ＩＦＮ受容体複合体を通した融合ＩＦＮ分子のシグナル伝達能(the abilityの the fusion IFN molecules to signal)を実証するモデルを描いたものである。ＩＦＮに誘導されるＵＳＰ１８タンパク質は、ＩＦＮ−αＲ２との結び付きについて、ＪＡＫ１と競合してＩ型ＩＦＮシグナリングを抑制する。ＩＦＮ−λＲ１と結び付いたＪＡＫ１分子は、ＩＦＮ融合分子によってオリゴマー化される結合ＩＦＮ受容体複合体内で、Ｉ型およびＩＩＩ型両方のＩＦＮ受容体を通したシグナリングを後押しする。
【００３１】
【図１８】図１８は、ＩＦＮ−αＲ１鎖の不在下でＩ型とＩＩＩ型との結合ＩＦＮ受容体複合体を通した融合ＩＦＮ分子のシグナル伝達能を実証するモデルを描いたものである。感染は、下方調節および分解のためにＩＦＮ−αＲ１鎖を標的にしてＩ型ＩＦＮシグナリングを抑制する。ＩＦＮ融合分子は、残存する受容体サブユニットのクラスター化を誘導することで、受容体関連ＪＡＫキナーゼの交差(cross-)活性化およびＩＦＮシグナリングカスケードの誘導を可能にさせる。
【００３２】
【図１９】図１９は、４種すべての受容体サブユニットが存在するとき、本発明の融合ＩＦＮ分子が、Ｉ型およびＩＩＩ型の結合ＩＦＮ受容体複合体を通して、増強されたシグナリングの誘導能を有することを実証する。また本明細書に実証されたものには、受容体サブユニットが２種（または３種）しか存在しないときの、Ｉ型およびＩＩＩ型の結合ＩＦＮ受容体複合体を通した本発明の融合ＩＦＮ分子のシグナル伝達能もある。ＩＦＮ融合分子は、残存する受容体サブユニットのクラスター化を誘導することで、受容体関連ＪＡＫキナーゼの交差活性化およびＩＦＮシグナリングカスケードの誘導を可能にさせる。
【００３３】
【図２０】図２０Ａ、２０Ｂおよび２０Ｃは、融合ＩＦＮ分子ＩＦＮ−β−ＩＦＮλ２によってin vivo腫瘍成長が抑えられたことを示す。マウスの乳がん(breast cancer)Ｅ０７７１細胞は、マウスのＩＦＮ−λ２、ＩＦＮ−βまたはＩＦＮ−β−ＩＦＮλ２（ＩＦＮ−β−λ２）融合分子のいずれかを分泌するよう操作された(engineered)。改変(modified)Ｅ０７７１細胞の腫瘍原性は、同一遺伝子のＣ５７ＢＬ／６マウスにおいて査定された。マウスには、表示された５万個のＥ０７７１細胞が乳房(mammary)脂肪体中へ注射されて、腫瘍の発達がモニタリングされた。２つの実験の結果は、図２０Ａおよび２０Ｂに示される。融合ＩＦＮ−β−λ２分子を発現するＥ０７７１細胞が移植された(implanted)、５匹のマウスのうち３匹が（図２０Ａ）、および６匹のマウスのうち４匹が（図２０Ｂ）、腫瘍を発達させなかったのに対し（ＴＦ−腫瘍のない）、ＩＦＮ分子しか発現しないＥ０７７１細胞が移植されたすべてのマウスが、腫瘍を発達させていた。図２０Ｂにおいて、マウスにはまた、５０：５０パーセント比のＩＦＮ分子しか発現しないＥ０７７１細胞も注射された。図２０Ｃは、腫瘍細胞移植後の第２６日にて個々のマウスの各々における腫瘍体積を描く。図２０Ｄは、単一のＩＦＮ分子の組み合わせを発現する腫瘍をもつマウスにおける腹部皮膚の肥厚および増大した腹部体積（腹水貯留）、ならびに融合ＩＦＮ−β−λ２分子を発現する腫瘍をもつマウスにおけるこれらの兆し(signs)の欠如を示す。図２０Ｅは、単一のＩＦＮ分子の組み合わせを発現する腫瘍をもつマウスの腫瘍および他の組織（肝臓）における貧血症の兆し、ならびに融合ＩＦＮ−β−λ２分子を発現する腫瘍をもつマウスにおけるこれらの兆しの欠如を示す。
【００３４】
【図２１】図２１は、マウス（ｍ）ＩＦＮ−α−ｍＩＦＮ−λ２融合分子のアミノ酸配列（配列番号54）を示す。グリシン／セリンリッチのリンカーであるＮ末端のシグナルペプチド配列が枠で囲まれている。
【００３５】
【図２２】図２２は、ｍＩＦＮ−β−ｍＩＦＮ−λ２融合分子のアミノ酸配列（配列番号55）を示す。グリシン／セリンリッチのリンカーであるＮ末端のシグナルペプチド配列が枠で囲まれている。
【００３６】
【図２３】図２３は、検出および精製のためＣ末６×Ｈｉｓタグを含有する単一または融合のｍＩＦＮ分子を発現するＨＥＫ２９３細胞の上清について、抗Ｈｉｓ抗体使用での免疫ブロットの結果を示す。
【００３７】
【図２４】図２４は、マウス腸上皮細胞（ｍＩＥＣ）に対して試験されたＨＥＫ２９３細胞において産生されたＨｉｓタグ付きの単一または融合のｍＩＦＮ分子の抗ウイルス活性を示す。
【００３８】
【図２５】図２５は、ＨＥＫ２９３細胞において産生されたＨｉｓタグ付きの単一または融合のｍＩＦＮ分子に応答する、ｍＩＥＣにおけるＭＨＣクラスＩ抗原の上方調節を示す。
【発明を実施するための形態】
【００３９】
本発明の詳細な記載
本明細書に開示されるのは、インターフェロンタンパク質またはこれらの一部を含む融合分子、融合分子を含有する医薬組成物、ならびに、ＩＦＮ−αＲ１鎖を分解または下方調節する感染症を患う対象において、感染を抑制すること、がんを抑制または処置すること、ＩＦＮ−αＲ２鎖を通したＩＦＮ誘導遺伝子の転写のシグナリングを誘導すること、および様々な疾患または疾病を処置すること、におけるそれらの使用のための方法である。
【００４０】
本発明の目的上、用語「融合タンパク質」および「融合分子」は、互換的に使用され、異なる供給源からの部分で作られたポリペプチド、タンパク質、および／または分子を網羅することが意味される。かかる融合分子は、別々のタンパク質もしくはこれらの一部を本来はコードする２以上の遺伝子またはこれらのフラグメントを結び合わせること(joining)を通して創出される。これらの融合遺伝子またはこれらの一部の翻訳は、本来のタンパク質の各々に由来する機能特性をもつ単一のまたは複数のポリペプチドをもたらす。非限定的な一態様において、融合分子またはタンパク質は、生物学的な調査または治療法における使用のための組み換えＤＮＡ技術によって人工的に創出される。
【００４１】
本発明の目的上、「この一部」とは、完全長インターフェロンタンパク質より短い長さのフラグメントを意味するものであり、前記フラグメントは、完全長タンパク質に対して機能活性の少なくとも一部を、および／または受容体サブユニットの少なくとも１個への結合を維持している。
【００４２】
Ｉ型ＩＦＮ、ＩＦＮ−α／βは、ウイルス感染症、がん、および多発性硬化症（ＩＦＮ−ベータ）を包含する様々な病的な状態(pathological conditions)を処置するために診療所において使用されている。しかしながら、ＩＦＮ−α／βの使用には依然として、低い有効性および数多の著しい副作用に起因する問題が残っている。ＩＩＩ型ＩＦＮまたはＩＦＮ−λは、ウイルス感染症およびがんのマウスモデルにおいて、Ｉ型ＩＦＮに匹敵する抗ウイルス活性および抗腫瘍活性を保有していることが示された。Ｉ型およびＩＩＩ型のＩＦＮは同様の生物活性を有するが、これらは、シグナリングのためのユニークなＩＦＮ型特異的受容体複合体を利用する（図１）。Ｉ型およびＩＩＩ型のＩＦＮのための受容体は、細胞型および組織分布に別個のパターンをもつことを実証しているところ、これらのＩＦＮは、重複のおよび別個のＩＦＮ型特異的細胞集団の両方を標的にする。
【００４３】
Ｉ型ＩＦＮ受容体は、ほとんどの細胞型において発現されるが、ＩＦＮ−λＲ１は、発現に、より制限されたパターンがあること、主に呼吸器(respiratory tract)、胃腸管および生殖管の上皮細胞に対してＩＩＩ型ＩＦＮへの応答が限定的であることを実証している（Sommereyns, et al. (2008) PLoS Pathog. 4:e1000017；Lasfar, et al. (2006) Cancer Res. 66:4468-4477）。ＩＦＮ−λ応答のユニークな機能性組織の特異性は、ＩＦＮ−λＲ１発現の、細胞型に制限されたパターンに起因する；すべての細胞は、Ｉ型ＩＦＮのための受容体を発現するが、ＩＦＮ−λＲ１は主に、上皮細胞と免疫細胞の個別のサブセット(specific subsets)とにおいて発現される（Kotenko and Durbin (2017) J. Biol. Chem. 292(18):7295-7303）。実に、Ｉ型とＩＩＩ型との両方のＩＦＮ系は、ＩＦＮ両型のための受容体が発現される上皮組織を標的にする感染に対して、効率的な、同等の、および独立したin vivoでの抗ウイルス防御を提供することが可能であることが実証された（Sheppard, et al. (2003) Nat. Immunol. 4:63-68；Kotenko, et al. (2003) Nat. Immunol. 4:69-77；Doyle, et al. (2006) Hepatology 44:896-906；Ank, et al. (2006) J. Virol. 80:4501-4509）。しかしながら、胃腸（ＧＩ）ウイルスに対する腸上皮細胞の抗ウイルス防御は主として、ＩＩＩ型ＩＦＮ抗ウイルス系の作用に依存することが実証されている（Pott, et al. (2011) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 108:7944-49；Lin, et al. (2016) PLOS Path. 12:e1005600）。肺におけるインフルエンザＡウイルス感染とは違って、機能的ＩＦＮ−λ受容体複合体を欠くマウスは、経口ロタウイルス（ＲＶ）感染の制御を損なっていたこと；Ｉ型ＩＦＮ系は単独で、腸上皮細胞に感染するロタウイルスに対して弱い防御しか提供することができなかったことが、これらの研究によって明らかにされた。重要なことに、Ｉ型とＩＩＩ型との両方のＩＦＮ受容体が欠損しているマウスは、各ＩＦＮ受容体が欠損しているマウスよりＲＶ感染を起こしやすかった（Lin, et al. (2016) PLOS Path. 12:e1005600）。結果的に、ＩＦＮ−λまたはＩ型ＩＦＮの全身投与は、ロタウイルス複製の抑制をもたらす腸上皮細胞における抗ウイルス状態を誘導することができた。しかしながら、Ｉ型ＩＦＮしか、肝臓指向性のウイルスに対して防御しない。よって、Ｉ型およびＩＩＩ型のＩＦＮ系は、抗ウイルス防護全体においてユニークな機能を有する。Ｉ型ＩＦＮは、ＩＩＩ型ＩＦＮが最小限の活性を有するかまたは何ら活性を有さない肝臓、内皮細胞、線維芽細胞、および免疫細胞の抗ウイルス防御に必須とされるようである。対照的に、ＩＩＩ型ＩＦＮ系は、Ｉ型ＩＦＮ抗ウイルス系とは無関係かつ重複しない腸上皮の有効な抗ウイルス防御に必須とされるが、両型のＩＦＮは、肺において効率的かつ独立した抗ウイルス防御を提供し得る（Mordstein, et al (2010) J. Virol. 84:5670-7）。
【００４４】
Ｉ型およびＩＩＩ型のＩＦＮが別個の器官および組織を標的にすることを実証することが、Ｉ型およびＩＩＩ型のＩＦＮによって特異的かつユニークに誘導されるＭｘ２プロモーターによって制御されるルシフェラーゼレポーター遺伝子を有するトランスジェニックレポーターマウスの使用で、ウイルスの研究によって確認された（Pulverer, et al. (2010) J. Virol. 84:8626）。かかるレポーターマウスを使用して、胃、小腸および大腸、肺、および唾液腺などの粘膜表面をもつ器官において、ルシフェラーゼの最も強い発現を誘導したことが示された。対照的に、Ｉ型ＩＦＮ応答は、肝臓、脾臓、および腎臓において強かった。静脈内に投与されたＩ型ＩＦＮに対しＧＩ管および唾液腺においては最小限の応答が検出されたかまたは何らの応答も検出されなかったが、肺はＩ型ＩＦＮに応答した。興味深いことに、種々の器官を標的にすることに加えて、Ｉ型およびＩＩＩ型のＩＦＮは、応答に示差動態があることを実証した。全身ライブイメージングは、ルシフェラーゼ発現が、ＩＦＮ−βに応答して３時間で、ＩＦＮ−αに応答して６時間で、およびＩＦＮ−λ注射に応答して９時間でピークに達したことを示した。実際に、ＩＦＮ−λへの応答は早く、肺およびＧＩ管において３時間で明確に検出されて２４時間存続し得た。したがって、Ｉ型およびＩＩＩ型のＩＦＮの支配的な標的器官ならびにこれらの作用の動態は、明確に別個のものである。
【００４５】
腸上皮細胞は成体動物において、ＩＦＮ−λにしか応答しないが、ロタウイルスに誘導される下痢症を起こしやすいコホートである新生仔(neonates)においては当てはまらない。新生仔感染の間にロタウイルスから最適に防御するには、ＩＦＮＬＲとＩＦＮＡＲとの両方を必須とし、両ＩＦＮ経路は新生仔の腸において活発である（Lin, et al. (2016) PLOS Path. 12:e1005600）。図２Ａ〜２Ｄにおいて、ＩＦＮシグナリングは、ＩＦＮ−αまたはＩＦＮ−λの皮下（ＳＱ）注射の３０分後に検出された。ホルマリン固定化パラフィン包埋（ＦＦＰＥ）組織は、チロシンリン酸化ＳＴＡＴ１（ｐＳＴＡＴ１）に対するモノクローナル抗体で染色された。ｐＳＴＡＴ１の核局在化は、ＩＦＮＡＲまたはＩＦＮＬＲのいずれかを通したシグナリングの証拠である。ＩＦＮで処置された成体マウスの腸からのそれらの切片において、粘膜固有層内の造血細胞の核染色（白色矢印）は、ＩＦＮ−αでの処置後であって、かつＩＦＮ−λ処置後の腸上皮細胞（黒色矢印）のみに存在する。しかしながら、新生仔において、腸上皮細胞は、核局在化ｐＳＴＡＴ１によって判断されるとおり(as measured by)、ＩＦＮ−αまたはＩＦＮ−λのいずれかに十分に応答した。試験された腸に由来するすべての細胞株は、両型のＩＦＮに対して完全に感受性がある。よって、Ｉ型およびＩＩＩ型のＩＦＮ経路は、培養された細胞においては冗長であるように見えるが、in vivoでの効果は、特定の解剖学的区画(anatomic compartments)に特異的である。したがって、Ｉ型およびＩＩＩ型のＩＦＮは、ＧＩ管内の種々の細胞群(sets of cells)を標的にして、ＧＩ管内の効率的な抗ウイルス防御を、具体的に種々の細胞型において複製し得るウイルスに対して獲得するため、本発明などの融合分子を介するＩ型およびＩＩＩ型のＩＦＮの共投与(co-administration)は、具体的に有効であろう。
【００４６】
同様に、ＩＦＮ−αの皮下（ＳＱ）投与によって、気道（気管、気管支）上皮ではなく肺胞上皮において、ＳＴＡＴ１活性化に至った一方で、ＩＦＮ−λは優先的に、円柱状の気道内壁細胞(airway-lining cells)に作用する（図３Ａ〜３Ｃを参照）。示されるとおり、インフルエンザウイルスは、両細胞型において複製する（図３Ａ〜３Ｃ）。鼻腔内注射によるＩＦＮ−αまたはＩＦＮ−λのいずれかの投与は、肺胞細胞(alveoli cells)のサブセットにおいて、ＳＴＡＴ１リン酸化および核移行を誘導した（図４）。しかしながら、ＳＱ注射と同様、気道内壁の(lining airways)呼吸上皮細胞は、ＩＩＩ型ＩＦＮにしか応答しなかった（図４）。これらの結果は、Ｉ型およびＩＩＩ型のＩＦＮの作用が、ＧＩ管においてのみならず呼吸器においてもまた厳密に区分されていることを実証する。したがって、Ｉ型およびＩＩＩ型のＩＦＮが、種々のレベルの呼吸樹(respiratory tree)を優先的にin vivoで標的にする場合、最も有効な治療的アプローチは、本発明などの融合分子を介する両ＩＦＮ型での共処置(co-treatment)を伴うことで、肺胞上皮および気管支上皮の両方におけるウイルス複製を抑制するであろうことが期待される。その上、組み合わせで作用する各ＩＦＮと比較して増大した融合ＩＦＮ分子の親和性に起因し、ＩＦＮ融合分子は、４種すべてのＩＦＮ受容体サブユニットを発現する細胞において、増強されたＩＦＮシグナリングを誘導するであろうことが期待される。加えて、多くのウイルスは、感染した細胞において、選択されたＩＦＮ受容体サブユニットを下方調節するか、またはこれらを分解のため標的にすることで（図１８）ＩＦＮ媒介抗ウイルス応答を抑えるところ（Sen, et al. (2017) J. Virol. JVI.01394-17）、Ｉ型とＩＩＩ型との結合ＩＦＮ受容体複合体内の残存するＩ型およびＩＩＩ型のＩＦＮ受容体サブユニットを通したＩＦＮ融合分子のシグナル伝達能は（図１８および１９）、感染した細胞におけるＩＦＮシグナリングを依然として誘導できるようにするであろう。同様に、Ｉ型ＩＦＮシグナリングは、ＩＦＮに誘導される負の調節因子ＵＳＰ１８によって急速に(quickly)下方調節されるが、前記因子は、ＩＦＮ−αＲ２との結び付きからのＪＡＫ１と置き換えて、Ｉ型ＩＦＮシグナリングの終了に至らせる。ＩＦＮ融合分子は依然として、ＩＦＮ−λＲ１関連ＪＡＫ１をテトラマーのＩＦＮ受容体複合体に持ち込むこと(bringing)によって、ＩＦＮ−αＲ２を関与させて活性化させることができ、ＩＦＮ−αＲ２リン酸化と、したがってＵＳＰ１８を発現する細胞におけるＩ型ＩＦＮシグナリングの誘導とに至るであろうことが期待される（図１７）。
【００４７】
加えて、様々な細胞型は、種々のレベルの特異的なＩＦＮ受容体サブユニットを発現する。例えば、腸上皮細胞は、低レベルのＩＦＮ−αＲ２を発現するが、ＩＦＮ−αＲ１は、より高いレベルにて発現される（Mahlakoiv, et al. (2015) PLoS Pathog. 11(4):e1004782）。１種または２種の低レベルのＩＦＮ受容体サブユニットを発現する細胞において、ＩＦＮ融合分子は依然として、残存するＩＦＮ受容体サブユニットに結合して関与させ、ＩＦＮシグナリングを誘導することができるであろう（図１９）。
【００４８】
さらに、各ＩＦＮ型は、ユニークな生物学的な特色を有する。実例として(For instance)、ＩＦＮ−λ受容体の発現は、組織に制限されたパターンをもつことを実証する。上皮細胞は、ＩＩＩ型ＩＦＮのための主な標的である。よって、上皮が一次(primary)ウイルス感染にとっての主な障壁であるように、ＩＩＩ型ＩＦＮは、宿主防衛(host defense)において重大な役割を果たすことが期待され得る。多くのウイルスは、上部消化管、呼吸器、もしくは尿生殖路(genitourinary tracts)、または損傷した皮膚を介して宿主に入る。現在のデータは、ＩＩＩ型ＩＦＮが、気道および腸上皮細胞において、および角化細胞において極めて活性があることを実証し、これらの抗ウイルス力(antiviral potency)は、上皮様組織において最も強いであろうことが示唆される。その上、呼吸器の極性上皮細胞は、これらの頂端表面ではなくこれらの側底表面でしかＩ型ＩＦＮに応答しないが、前記細胞は依然として、これらの頂端（ルミナル）側にてＩＩＩ型ＩＦＮに対し感受性があることを示唆する証拠がある。このユニークな特色は、ＩＦＮ−λベースの治療法を、呼吸器系ウイルスの感染を予防、抑制、または処置するための鼻腔内送達の後に有効であるようにさせる。さらに、多くのウイルスが、粘膜下層組織中へ急速に広がって、線維芽細胞様細胞に感染することができることから、Ｉ型ＩＦＮは、粘膜下層組織を防御するためにユニークな場所に投入される(uniquely positioned)。本発明の融合分子を介するＩ型／ＩＩＩ型ＩＦＮの組み合わせの鼻腔内送達は、無傷細胞の頂端表面上、ＩＦＮ−λの作用を通して、非感染の気道上皮へ抗ウイルス防御を提供し得る。ウイルス感染が既に生じている気道部位にて、上皮障壁の完全性(integrity)は損なわれ得、Ｉ型ＩＦＮ（例として、共送達される(co-delivered)ＩＦＮ−αまたはＩＦＮ−β）は、上皮細胞の側底表面へ、ならびにＩＩＩ型ＩＦＮが有効ではない血管内の下層の結合組織、免疫細胞、および内皮細胞へアクセスし得る（図２〜４を参照）。
【００４９】
マイクロアレイ実験は、Ｉ型およびＩＩＩ型のＩＦＮが、ほぼ(nearly)同一の遺伝子群(sets of genes)を誘導することを実証していた。しかしながら、Ｍｘ２−ルシフェラーゼレポーターマウスを用いたin vivo実験と同様、ＩＦＮ誘導遺伝子発現の動態は異なっており、ＩＩＩ型ＩＦＮに応答してより長く続く抗ウイルス状態をもたらすが、Ｉ型ＩＦＮによって誘導される抗ウイルス状態は、処置から２４時間後に迅速に低下する（図１０を参照）。したがって、ＩＦＮ融合分子の投与は、同じ分子内でＩＩＩ型ＩＦＮの長く続く抗ウイルス効果をもつＩ型ＩＦＮの速い抗ウイルス作用を送達するであろう。上記に述べたとおり、Ｉ型ＩＦＮの一過的な作用は、ＩＦＮ誘導性の(-inducible)負の調節因子ＵＳＰ１８によって媒介される。しかしながら、融合ＩＦＮ分子は、この負の調節機序を克服すること、およびＩ型ＩＦＮ受容体を通した一連のシグナリングを提供することが期待される（図１７）。
【００５０】
ＩＦＮに誘導される調節機序は、Ｉ型およびＩＩＩ型のＩＦＮシグナリングに個別に(differentially)影響を及ぼす。例えば、ユビキチンプロテアーゼ４３（ＵＢＰ４３、またＵＳＰ１８としても知られている）を脱共役するＩＦＮ誘導性ＩＳＧ１５は、ＩＦＮ−αＲ２の細胞内ドメインへの結合に対してＪａｋ１と競合して、ＩＦＮ−αシグナリングを効率的に抑えることが示されているが（図１７；Malakhova, et al. (2006) EMBO J. 25:2358-67）、ＵＳＰ１８は、ＩＩＩ型ＩＦＮ受容体に関しては最小限の活性しか有さない。ＵＳＰ１８の作用のせいで、ＩＦＮで処置された細胞は、ＩＦＮ処置の６時間以内は、Ｉ型ＩＦＮに対して感受性がなくなり、最大７２時間まで不応期が続く。対照的に、細胞は、ＩＩＩ型ＩＦＮに絶えず応答する。よって、抗ウイルス抵抗性は、ＩＩＩ型ＩＦＮの存在下の細胞においては維持され得るが、Ｉ型ＩＦＮは、細胞中の抗ウイルスメディエーターの初期の発現を引き起こすのがより速い。
【００５１】
感染はまた、分解または下方調節のためＩＦＮ−αＲ１または他のＩＦＮ受容体をも標的にし、これによってこれらのＩ型ＩＦＮ媒介生物活性を抑制する（Sen, et al. (2017) J. Virol. JVI.01394-17）。ＩＦＮ融合分子の結合によって引き起こされる、Ｉ型とＩＩＩ型との両方のＩＦＮ受容体サブユニットの、一方の受容体複合体内でのオリゴマー化は、ＩＦＮ−λ受容体サブユニットと結び付いたキナーゼによるＩＦＮ−αＲ２関連ＪＡＫ１キナーゼの交差活性化をもたらし、ＩＦＮ−αＲ２サブユニットを通したシグナリングを、ＩＦＮ−αＲ１サブユニットの不在下で続行できるようにすることが期待される（図１８）。結果的に、本発明の融合分子は、ＩＦＮ−αＲ１鎖を分解または下方調節する感染症を患う対象におけるＩＦＮ−αＲ２鎖を通したＩＦＮ誘導遺伝子の転写を誘導するための方法において有用であることが期待される。
【００５２】
同様に、ウイルスに誘導されるＩＦＮ受容体サブユニットの下方調節または分解に起因する、ＩＦＮ−λＲ１もしくはＩＦＮ−αＲ２などの別のＩＦＮ受容体サブユニットまたは２つの受容体サブユニットのいずれかの組み合わせの欠如は依然として、ウイルスに感染した細胞を、ＩＦＮ融合分子に応答できるようにするであろう（図１９）。結果的に、本発明の融合分子は、１個または２個のＩＦＮ受容体鎖を分解または下方調節する感染症を患う対象における、いずれか２つのＩＦＮ受容体サブユニットを通したＩＦＮ誘導遺伝子の転写を誘導するための方法において、有用であることが期待される。
【００５３】
最終的に、ウイルスは、それら自身のＩＦＮ特異的な対抗策を発達させることで、ＩＦＮ媒介抗ウイルス防御を回避する。例えば、いくつかのウイルスは、ＩＩＩ型ＩＦＮに対してより脆弱であり得る。天然痘の原因病原体(causative agent)である天然痘ウイルスを包含する数種のポックスウイルスは、ＩＩＩ型ＩＦＮを抑制することができない分泌型(secreted)ＩＦＮアンタゴニストをコードする（Huang, et al. (2007) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 104:9822-27）。したがって、ＩＩＩ型ＩＦＮは、ポックスウイルス感染の処置により有効であり得る。
【００５４】
具体的には、病原体(bioagent)の正体(identity)が、ある期間(for a period of time)未知のままであるとの虞があるときの、生物兵器防衛(biodefense)の目的上、速くかつ長く作用する多様な抗ウイルス薬の開発に対して満たされていない明確なニーズがある。加えて、多くのウイルスは、複数の器官および細胞型に感染する。したがって、体全体というレベルで抗ウイルス応答を導くことが可能な抗ウイルス治療法は、かかるウイルスに対する有効な防御にとって具体的に有用である。ＩＦＮの各型が、ユニークな機能的特色を有すること、抗ウイルス状態の誘導のために、重複はするが別個の群の器官および組織を標的にすること、ならびにそれらの作用の動態が異なることを実証すること、を実証する証拠が相次いでいる(A growing body of evidence demonstrates that)。よって、Ｉ型およびＩＩＩ型のＩＦＮ抗ウイルス系は、個別のウイルス病原体(viral pathogens)に対して抗ウイルス防護を協調的に誘導するよう進化させてきており、両系は、有効な抗ウイルス防御にとって必須とされる。したがって、Ｉ型とＩＩＩ型とのＩＦＮの組み合わせは、複数の器官において最高レベルの抗ウイルス応答を獲得することが必須とされる。その上、速く作用するＩＦＮ−βの、より遅いがより長く作用するＩＦＮ−λ３、ＩＦＮ−λ１、またはＩＦＮ−λ２との適用は、生体全体に広範囲に及び(that is wide-spread and covers the entire organism)速くかつ長く続く最高レベルの抗ウイルス防御を提供するであろう。本発明のＩＦＮ併用治療(IFN combination therapy)は、複数の器官または複数の細胞型において複製することができるウイルスに対して具体的に有効である。
【００５５】
加えて、Ｉ型およびＩＩＩ型のＩＦＮは、がんのマウスモデルにおいて相乗的な抗腫瘍効果を有することが今や見出されている（図５および６を参照）。非限定的な一態様において、局部投与は、相乗的な効果を示した（図７を参照）。結果的に、本発明は、Ｉ型とＩＩＩ型とのＩＦＮの共投与を包含する併用治療を提供する。ある態様において、Ｉ型ＩＦＮは、ＩＦＮ−α（例として、ＩＦＮ−α２）またはＩＦＮ−βである。他の態様において、ＩＩＩ型ＩＦＮは、ＩＦＮ−λ、とりわけＩＦＮ−λ１、ＩＦＮ−λ２、またはＩＦＮ−λ３である。
【００５６】
重要なことに、図２０に提示される研究によって、融合ＩＦＮ−β−ＦＮ−λ２分子は、乳房腫瘍細胞の成長を抑制する点で、単一のＩＦＮ分子よりはるかに強力であったこと、ならびにＩＦＮ−βおよびＩＦＮ−λ２の組み合わせより強力であったことが明らかにされた。融合ＩＦＮ−β−ＦＮ−λ２タンパク質を発現する乳房腫瘍細胞が移植された６匹のマウスのうち４匹が、腫瘍がないままであるのに対し、ＩＦＮ−βまたはＦＮ−λ２のいずれかを発現する腫瘍細胞の混合物が注射されたすべてのマウスは、腫瘍を発生した。２匹のマウスにおいて発生したＩＦＮ−β−ＦＮ−λ２発現腫瘍は、ＩＦＮ−βまたはＦＮ−λ２のいずれかを発現する腫瘍細胞の混合物が移植されたマウスにおける腫瘍よりサイズが小さかった。したがって、ＩＦＮ融合分子は、Ｉ型とＩＩＩ型とのＩＦＮ併用治療と比較して、増強された相乗的な抗腫瘍活性を表した。その上、腫瘍および他の組織（肝臓）における増大した腹部の体積（腹水貯留）ならびに重症貧血の兆し(signs)は、単一のＩＦＮ分子の組み合わせを発現する腫瘍をもつマウスにおいて観察された。同様の兆候(symptoms)および兆しは、融合ＩＦＮ−β−λ２分子を発現する腫瘍をもつマウスにおいては観察されなかった（図２０Ｄおよび２０Ｅ）。貧血症は、造血および抗血管新生効果を抑えることを誘導したＩ型ＩＦＮに起因する、Ｉ型ＩＦＮ治療の知られている副作用である。本発明のＩＦＮ融合分子を発現する腫瘍をもつマウスにおけるこれらの副作用の欠如(lack)は、融合分子にとって、より安全なプロファイルに繋がる(indicative of)が、融合分子は、副作用がほとんどないか(lack)、またはＩ型ＩＦＮ治療と比較して、もしくはＩＦＮ Ｉ型とＩＩＩ型との併用治療と比較しても、より軽い副作用しか課さない場合があるからである。加えて、これらのデータは、ＩＦＮ融合分子がユニークな生物活性およびプロファイルを有し、これらはＩ型およびＩＩＩ型のＩＦＮの混合物のものとは別個であることを実証する。
【００５７】
ＩＦＮ−α単独またはＩＦＮ−λ単独のいずれかでのマウスの処置によって、抗ウイルス応答の活性化に至る（図８および９を参照）ということを考えると、とりわけ重複するが別個である器官、組織、および細胞型において、Ｉ型とＩＩＩ型とのＩＦＮの同時投与(simultaneous administration)は、長く続く効率的かつ広範囲の抗ウイルス応答を提供することが期待される（図１０）。したがって、Ｉ型とＩＩＩ型とのＩＦＮの組み合わせはまた、ウイルス感染症の予防および／または処置にも役立つ(of use)。Ｉ型とＩＩＩ型とのＩＦＮの共送達(co-delivery)を容易にするため、本発明の非限定的な一態様は、ＩＦＮ−αまたはＩＦＮ−βとＩＦＮ−λとの融合分子を提供する（例として、図１１〜１４および２１〜２２を参照）。ＩＦＮ−α２とＩＦＮ−λ１との融合分子の、Ｉ型またはＩＩＩ型のＩＦＮのいずれかに応答するレポーター細胞株においてＳＴＡＴ１の活性化を引き起こす能力によって実証されるとおり（図１５および１６）、この融合分子は、Ｉ型とＩＩＩ型との両方のＩＦＮの機能活性を保持する。このアッセイにおいて、ＳＴＡＴ１活性化は、細胞内シグナリングがＩＦＮ−γ受容体の細胞内ドメイン（単数または複数）によって媒介されるレポーター細胞株において査定され、ＩＦＮ融合分子によるＩ型およびＩＩＩ型のＩＦＮ受容体サブユニットのテトラマー化は伴わなかったが、このことは正常なヒト細胞においては起こるものと期待される（図１９）。ＳＴＡＴ１活性化は、ＩＦＮで誘導されるＳＴＡＴ１のダイマー化および放射性標識されたＤＮＡプローブへのＳＴＡＴ１ダイマーの結合を評価するＥＭＳＡにおいて測定された。ＳＴＡＴ１ダイマーの形成は、ＳＴＡＴ１のＴｙｒ７０１上のリン酸化を必須とする。ＩＳＧＦ３転写複合体の形成に至らせるＳＴＡＴ１およびＳＴＡＴ２のＴｙｒリン酸化は、Ｉ型とＩＩＩ型との両方のＩＦＮに誘導されるＪＡＫ−ＳＴＡＴシグナリングカスケードの特質であってユニークな特色でもあるが、メチル化、アセチル化、Ｓｅｒリン酸化等々を包含する数種の追加の翻訳後修飾は報告されており、ＩＳＧ発現の動態および大きさ、ならびにＩＳＧの特異的サブセットのための優先的選択性に影響を及ぼし得る。ＩＳＧＦ３複合体は、ＩＦＮ融合分子によって明確に活性化されるが、これは融合分子が、ＩＳＧＦ３活性化に左右される抗ウイルス防御を誘導するからである（図２４）。しかしながら、ＩＳＧＦ３内の二次翻訳後修飾のいくつかが、Ｉ型とＩＩＩ型とのＩＦＮシグナリング間で異なる可能性があることから、融合分子に応答して活性化されるＩＳＧＦ３は、単一のＩＦＮ分子に応答して誘導されるＩＳＧＦ３とは同一ではない場合があること、したがってＩＳＧ発現の代替プロファイルを、動態、大きさ、またはＩＳＧサブセット選択性の観点から引き起こす場合があることが期待される。
【００５８】
別々のＩＦＮタンパク質の組み合わせよりＩＦＮ融合分子を使用する特定の利点がある。
【００５９】
例えば、融合分子は、簡易的な(simplified)治療剤の産生および単一治療剤の送達を提供する。
【００６０】
さらに、上に述べるとおり、Ｍｘ２ルシフェラーゼレポーターマウスの使用による研究は、Ｉ型ＩＦＮが肝臓を優先的に標的にするのに対し、ＩＩＩ型ＩＦＮは、ＧＩ管および気道上皮においてユニークな活性をもつことを実証した。それにもかかわらず、様々なヒト肝細胞様細胞株ならびにＧＩ管および呼吸器に由来する細胞株は、Ｉ型とＩＩＩ型との両方のＩＦＮに応答する。その上、新鮮単離されたマウス肝細胞ならびに腸上皮細胞は、両型のＩＦＮに応答する。したがって、個別のＩＦＮに対する、選択された器官および組織の、ほとんどないかまたは弱いin vivoでの応答性は、Ｉ型およびＩＩＩ型のＩＦＮの差次的な送達性(differential deliverability)の結果であり得る。よって、融合分子は、すべての組織および器官へ、ＩＦＮ−αとＩＦＮ−λとの両方を送達するであろう。
【００６１】
加えて、Ｉ型およびＩＩＩ型のＩＦＮが、部分的にしか重複していない別個の細胞型を標的にするため、Ｉ型およびＩＩＩ型のＩＦＮの融合分子としての投与は、多種多様の細胞への作用を提供する。さらに、両型のＩＦＮに応答する細胞において、Ｉ型ＩＦＮとＩＩＩ型ＩＦＮとの間にはシグナリングの交差調節がある；例えば、両型のＩＦＮの作用は、侵襲性真菌成長を制御することにおいて、好中球を完全に機能的にさせることが必須とされる（Espinosa, et al., (2017) Sci. Immunol. (16) pii: eaan5357）。結果的に、Ｉ型とＩＩＩ型とのＩＦＮの融合分子としての投与は、本出願においても有用であろう。
【００６２】
上記に述べたとおり、ＩＦＮ融合分子は、ＩＦＮ誘導性ＵＳＰ１８タンパク質の負の調節効果を克服することで、Ｉ型ＩＦＮ経路を通した持続的なシグナリングを可能にさせることが期待される。ＩＦＮ−λＲ１の発現は個別の細胞型に限定されているが、ＩＬ−１０Ｒ２は遍在的に発現される。したがって、融合分子は、Ｉ型ＩＦＮ応答性細胞において３つの受容体サブユニットを関与させるであろう。この受容体は、それらトリマーのＩＦＮ受容体複合体を通したシグナリングを、ヘテロダイマーのＩ型ＩＦＮ受容体複合体を通したシグナリングより強くさせることができる、より高い親和性を有するはずである。同様に、主にＩＩＩ型ＩＦＮにのみ応答する様々な上皮細胞は依然として、より低レベルの、一方または両方のＩ型ＩＦＮ受容体サブユニットを発現している。３つまたは４つのＩＦＮ受容体サブユニットから構成されるいくつかの複合体をもたらす、Ｉ型ＩＦＮ受容体サブユニット（単数または複数）の、より低レベルでの発現に関与するであろう。これらの複合体は、高親和性の受容体複合体であり、上皮細胞においてより強いＩＦＮシグナリングに至らせるであろう。
【００６３】
さらにまた、融合分子は、鼻腔内送達に役立つ。上記に述べたとおり、気道上皮細胞の頂端表面は、主にＩＩＩ型ＩＦＮに応答する。したがって、Ｉ型とＩＩＩ型とのＩＦＮ融合分子の鼻腔内送達は、無傷細胞の頂端表面に対するＩＦＮ−λの作用を通して、非感染気道上皮細胞へ、抗ウイルス防御を提供する。頂端ＩＦＮ−λ受容体複合体が、ＩＦＮ融合分子への結合後に内在化され、次いで上皮細胞の側底表面へ融合分子と一緒にリサイクルされるとき、ＩＦＮ融合分子のＩ型ＩＦＮ部分は、気道内壁上皮細胞の最上層の側底表面へならびに下層の結合組織へアクセスし得る。
【００６４】
その上、融合分子は、受容体へのより高い結合親和性(affinity binding)に起因して、より高度な有効性を有するであろう。融合分子は、Ｉ型とＩＩＩ型とのＩＦＮ受容体複合体のオリゴマー化を誘導することで、この組み合わされた細胞表面受容体複合体に対する融合分子の増大した親和性がもたらされ、より強い抗ウイルス活性に繋がる(translate into)であろうことが期待される（図１９）。言い換えれば、融合ＩＦＮ分子は、テトラマーの受容体複合体へ結合するのに対し、単一ＩＦＮ分子は、ホモダイマーの受容体複合体へ結合する（図１９）。したがって、融合分子は、受容体に対して、単一ＩＦＮ分子より高い親和性を有するはずであることが期待される。加えて、ＵＳＰ１８が、Ｉ型受容体複合体からしかＪａｋ１を追い出さないから、ＩＦＮ融合分子によって一緒にされるＩ型とＩＩＩ型との結合ＩＦＮ受容体複合体（図１７）は依然として、ＩＦＮ−λ受容体と結び付いたＪａｋ１を有するであろう。このＪａｋ１は、ＩＦＮ−λＲ１鎖とＩＦＮ−αＲ２鎖との両方の細胞内ドメインをリン酸化（活性化）し得、これによって、Ｉ型とＩＩＩ型との両方のＩＦＮ受容体を通したシグナリングを、負の調節因子ＵＳＰ１８の存在下でさえも通常どおりに続行させることができるようにする。ＩＦＮ−αＲ１鎖が、感染によって下方調節されたときのケースにおいて、ＩＦＮ融合分子は同様に、ＩＦＮ−αＲ２鎖を通してシグナリングを誘導することができるはずである（図１８）。ＳＯＣＳ１およびＳＯＣＳ３等の他の負の調節因子もまた、Ｉ型・対・ＩＩＩ型のＩＦＮシグナリング経路の優先的抑制を示す。融合分子が、４つの受容体サブユニットに同時に結合してクラスター化させる(clusters)ことから、受容体サブユニット１つの欠如またはそれら２つの欠如でさえ、プロテアソームの分解に起因して、または抑制性分子の作用に起因して、残存する２つまたは３つの受容体サブユニットを通した融合ＩＦＮ分子のシグナル伝達能を遮断するはずはない。言い換えれば、４つの受容体サブユニットのうちいずれか２つの存在は、融合分子にとって、下流のシグナリングカスケードおよび生物活性を誘導するのに充分なはずであるのに対し、Ｉ型またはＩＩＩ型いずれかのＩＦＮ受容体複合体におけるたった１つの受容体サブユニットの除去またはブロッキングは、単一ＩＦＮ分子によるシグナリングの競合抑制に至らせる。テトラマーの受容体複合体に対する融合分子の増大した親和性ならびに抑制性シグナルに対するより低い感度は、ＩＦＮ融合分子を、ＩＦＮの組み合わせより生物学的に強力にさせるはずである。テトラマーの複合体内のＩＦＮ受容体サブユニットは、ＪＡＫキナーゼおよびＳＴＡＴなどの共通する下流のシグナリングに携わる分子(participants)に対して、異なる親和性を有し、限定された量のこれらシグナリング分子を得るために争う(compete for)であろうこともまた起こり得ることである。したがって、テトラマーのＩＦＮ受容体複合体内のシグナリングは、ＩＦＮの１つの型に特異的なシグナリング経路に向けて分岐され得る。加えて、ＩＦＮ−λシグナリングは、シグナル伝達事象の間に、ＪＡＫ２チロシンキナーゼを関与させるように見える（Lee, et al. (2012) Int. J. Mol. Med. 30:945-952）。融合分子はしたが��て、結合ＩＦＮ受容体複合体中へＪＡＫ２キナーゼを持ち込むであろうし、Ｉ型ＩＦＮシグナリングをモジュレートし得る。ＳＴＡＴ１活性化とは無関係に、ＩＩＩ型ＩＦＮが、血液−脳障壁の透過性を低減させるという報告もある（Lazear, et al. (2015) Sci. Transl. Med. 7:284ra259）。したがって、融合ＩＦＮ分子は、標準的な(canonical)ＪＡＫ−ＳＴＡＴシグナリングに対して優遇されるか(complimentary)または付加される経路を関与させることが期待される。上記に述べたとおり、標準的なＳＴＡＴ１およびＳＴＡＴ２のＴｙｒリン酸化に加えて、ＩＳＧＦ３転写複合体の翻訳後修飾はまた、ＩＦＮ融合分子・対・単一ＩＦＮへの応答においても異なることがあり、ＩＳＧ発現の動態、大きさ、およびサブセット選択性、ならびにこれに続く生物活性に影響を及ぼし得る。異常調節の(Dys-regulated)または過剰に悪化した(over-exacerbated)Ｉ型ＩＦＮ活性は、ループスなどの自己免疫疾病ならびに慢性ウイルス感染症に関連している。Ｉ型とＩＩＩ型との両方のＩＦＮによって誘導される抗ウイルスＩＳＧのサブセットに加えて、ＩＩＩ型ＩＦＮではなく、Ｉ型ＩＦＮもまた、炎症促進性メディエーターをコードするＩＳＧ群を誘導する（Galani, et al. (2017) Immunity 46(5):875-890.e6）。上記に述べたとおり、ＩＦＮ融合分子に応答するＩＳＧＦ３の翻訳後修飾におけるわずかな変化は、融合分子に応答するこの炎症促進性ＩＳＧ群の発現を消失または低減させ得る。その上、ＩＩＩ型ＩＦＮは、樹状細胞に対するこれらの作用を通して免疫抑制(immunosuppressive)Ｔ調節性細胞の発生および増殖を刺激することが報告された（Mennechet, et al. (2006) Blood 107(11):4417-23）。樹状細胞は両型のＩＦＮに応答し、Ｉ型ＩＦＮは、これらの細胞に対し免疫刺激活性を発揮させる。したがって、ＩＦＮ融合分子は、樹状細胞のＩＦＮへの応答性を変えることが期待され、よりバランスが取れかつより良好に調整された(better-tuned)活性化を細胞に導くことで、Ｉ型ＩＦＮによるこれらの過剰な活性化が避けられ得る。
【００６５】
示されるとおり、本発明は、Ｉ型ＩＦＮタンパク質またはこの一部と、ＩＩＩ型ＩＦＮタンパク質またはこの一部とから構成される融合分子を包含する。融合分子は、Ｉ型またはＩＩＩ型のいずれかをＮ末端に有し得る（すなわち、Ｉ型−ＩＩＩ型融合またはＩＩＩ型−Ｉ型融合）。非限定的な例示の融合分子は、図１２〜１４および図２１〜２２に描かれている。融合分子は、シグナルペプチドをそのＮ末端に包含していても、または包含していなくてもよい。当該技術分野において知られているように、「シグナルペプチド」は、新しく合成された分泌タンパク質または膜タンパク質のＮ末端に大抵存在しているペプチドであって、細胞の細胞膜（原核生物における原形質膜、および真核生物における小胞体膜）を越えてまたは前記膜中へタンパク質を向かわせる。続いてこれは大抵除去される。シグナルペプチドが包含されているとき、シグナルペプチドは、Ｉ型もしくはＩＩＩ型のいずれかのＩＦＮタンパク質を起源とし得るか、または分泌されることが知られている、いずれの知られているタンパク質からも得られ得る。非限定的な例示のシグナルペプチド配列は、表１に列挙される。いくつかの態様において、本発明の融合分子は、Ｎ末端シグナルペプチドを有する。特定の態様において、シグナルペプチドは、配列番号1で表される(set forth in)。
【表１−１】
2020518588.tif 000003
【表１−２】
2020518588.tif 000004
【００６６】
本発明の融合分子における使用のためのＩ型ＩＦＮタンパク質は、これらに限定されないが、ＩＦＮ−α（アルファ）、ＩＦＮ−β（ベータ）、ＩＦＮ−κ（カッパ）、ＩＦＮ−ε（イプシロン）、およびＩＦＮ−ω（オメガ）またはこれらの一部を包含する。これらタンパク質の遺伝学および構造は当該技術分野において周知であり、例として、Samarajiwa, et al. (2006) The Interferons: Characterization and Application, Wiley-VCH, pages 3-34に記載されている。いくつかの態様において、Ｉ型ＩＦＮは、哺乳動物のＩ型ＩＦＮである。ある態様において、Ｉ型ＩＦＮは、ヒトＩ型ＩＦＮである。特定の態様において、Ｉ型ＩＦＮは、ＩＦＮ−αタンパク質（例として、ＩＦＮ−α２）もしくはＩＦＮ−βタンパク質（例として、ＩＦＮ−β１）またはこの一部である。ＩＦＮ−βタンパク質は、線維芽細胞によって大量に産生され、抗ウイルス活性を発揮することが知られている。ＩＦＮ−βの２つの型、ＩＦＮ−β１（ＩＦＮＢ１）およびＩＦＮ−β３（ＩＦＮＢ３）は記載されている。ＩＦＮ−αタンパク質は、白血球によって産生される。これらは、主としてウイルス感染症に対する自然免疫応答に関わり、１３の亜型：IFNA1(GENBANKアクセッション番号BAM72353)、IFNA2(GENBANKアクセッション番号NP_000596)、IFNA4(GENBANKアクセッション番号NP_066546)、IFNA5(GENBANKアクセッション番号NP_002160)、IFNA6(GENBANKアクセッション番号NP_066282)、IFNA7(GENBANKアクセッション番号NP_066401)、IFNA8(GENBANKアクセッション番号NP_002161)、IFNA10(GENBANKアクセッション番号NP_002162)、IFNA13(GENBANKアクセッション番号AAH69427)、IFNA14(GENBANKアクセッション番号AAI04160)、IFNA16(GENBANKアクセッション番号NP_002164)、IFNA17(GENBANKアクセッション番号NP_067091)、およびIFNA21(GENBANKアクセッション番号NP_002166)を包含する。ヒトＩ型ＩＦＮタンパク質はまた、IFN-ω(GENBANKアクセッション番号NP_002168)、IFN-κ(GENBANKアクセッション番号NP_064509)、IFN-ε(GENBANKアクセッション番号NP_795372)も包含する。Ｉ型ＩＦＮタンパク質をコードする遺伝子は、第９染色体上のクラスターから一緒に見出された。市販ＩＦＮ産物の個別の例は、IFN-γ1b(ACTIMMUNE（登録商標）)、IFN-β1a(AVONEX（登録商標）、およびREBIF（登録商標）)、IFN-β1b(BETASERON（登録商標）)、IFN alfacon-1(INFERGEN（登録商標）)、IFN-α2(INTRON A（登録商標）)、IFN-α2a(ROFERON-A（登録商標）)、ペグインターフェロン アルファ-2a(PEGASYS（登録商標）)、およびペグインターフェロン アルファ-2b(PEG-イントロン（登録商標）)を包含するが、これらの各々は本発明における用途がある(find use)。非限定的な例示の成熟Ｉ型ＩＦＮタンパク質は、表２に列挙される
【表２】
2020518588.tif 000005
【００６７】
ＩＩＩ型ＩＦＮタンパク質もまた、当該技術分野において知られており、US 7,820,793（この全体を参照することによって本明細書に組み込まれる）に記載されている。ＩＩＩ型ＩＦＮは、ＩＦＮ−λ１、ＩＦＮ−λ２、およびＩＦＮ−λ３（夫々またＩＬ２９、ＩＬ２８Ａ、およびＩＬ２８Ｂとも呼ばれる）、ならびにこれらの一部を包含する。これらのＩＦＮは、ＩＬ１０Ｒ２（またＣＲＦ２−４とも呼ばれる）とＩＦＮＬＲ１（またＣＲＦ２−１２とも呼ばれる）とから構成される受容体複合体を通してシグナルを伝達する。一態様において、ＩＩＩ型ＩＦＮは、哺乳動物のＩＩＩ型ＩＦＮである。別の態様において、ＩＩＩ型ＩＦＮは、ヒトＩＩＩ型ＩＦＮである。いくつかの態様において、ＩＩＩ型ＩＦＮは、IFN-λ1(GENBANKアクセッション番号NP_742152および3OG6_A)、IFN-λ2(GENBANKアクセッション番号NP_742150およびAAN86126)、またはIFN-λ3(GENBANKアクセッション番号NP_742151およびAAN86127)である。例示の成熟ＩＦＮ−λタンパク質は、表３に列挙される。特定の態様において、ＩＩＩ型ＩＦＮは、ＩＦＮ−λ１である。ＩＦＮ−β、ＩＦＮ−ε、ＩＦＮ−κなどのＩ型ＩＦＮタンパク質、ならびにＩＦＮ−λ１、ＩＦＮ−λ−２、およびＩＦＮ−λ３などのＩＩＩ型ＩＦＮタンパク質のいくつかは、融合分子の折り畳みおよび精製を改善するために置換され得る不対Ｃｙｓ残基を有する。Ｉ型およびＩＩＩ型のＩＦＮのバリアント（これらの対応する受容体に対する親和性がより低い）はまた、（これらの個々のヘテロダイマーのＩＦＮ受容体複合体を通したそれらのシグナリング能力を低減させるが、テトラマーの結合ＩＦＮ受容体複合体を通したそれらの相乗的な活性を保護する）融合ＩＦＮタンパク質の生成のためにも使用され得る。非限定的な例示のＩＩＩ型ＩＦＮ配列は、表３に表される。
【表３−１】
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【表３−２】
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【００６８】
Ｉ型ＩＦＮおよびＩＩＩ型ＩＦＮタンパク質、またはこれらの一部が、互いに直接結び付けられていてもよい一方で、いくつかの態様において、Ｉ型ＩＦＮおよびＩＩＩ型ＩＦＮタンパク質、またはこれらの一部は、リンカーによって相互に結び合っている。この点において、本発明の融合分子は、Ｉ型ＩＦＮ−リンカー−ＩＩＩ型ＩＦＮまたはＩＩＩ型ＩＦＮ−リンカー−Ｉ型ＩＦＮの構造（Ｎ→Ｃ末端配向）を有し得る。本発明の融合分子における使用のリンカーは、好ましくは曲がりやすく(flexible)、５〜５０アミノ酸、またはより好ましくは１０〜３０アミノ酸の範囲にある長さを有する。ある態様において、リンカー要素は、グリシン／セリンリンカー、すなわちアミノ酸のグリシンおよびセリンから実質的に構成されるペプチドリンカーである。アミノ酸のトレオニンまたはアラニンもまた、リンカー内に使用され得る。融合分子のＮ末端にあるＩＦＮが、例としてＧｌｙですでに終了しているケースにおいて、かかるＧｌｙが、リンカー配列におけるリンカーの最初のＧｌｙを形成してもよいことは、当業者にとっては明確なことであろう。同じく、ＩＦＮのＣ末が、例としてＰｒｏから始まるケースにおいて、かかるＰｒｏ残基は、リンカー配列におけるリンカーの最後のＰｒｏを形成してもよい。個別のリンカー配列の非限定的な例は、表４に列挙される。特定の態様において、本発明の融合分子のリンカーは、配列番号36で表される。
【表４】
2020518588.tif 000008
【００６９】
Ｉ型インターフェロンとＩＩＩ型インターフェロンとの融合分子が、抗腫瘍活性を発揮し、抗ウイルス応答を活性化させるのに役立つことが実証される一方で、Ｉ型インターフェロンおよび／またはＩＩＩ型インターフェロンはまた、ＩＩ型インターフェロンとも融合されることで、免疫反応および炎症反応をモジュレートし得、ならびに真菌感染症および細菌感染症を抑制または処置し得ることが企図される。ＩＩ型インターフェロンは、ＩＦＮ−γとしてもまた知られており、ＩＦＮ−γ受容体（ＩＦＮＧＲ）複合体へ結合する逆平行のホモダイマーである。ＩＦＮ−γは、いくつかの抗ウイルス効果および抗腫瘍効果を有し、Ｉ型およびＩＩＩ型のＩＦＮの効果を強化する。ＩＦＮ−γは、感染の部位へ白血球を動員して、増大した炎症をもたらす。これはまた、マクロファージをも刺激することで、飲み込まれた細菌を殺傷する。ＩＦＮ−γはまた、Ｔｈ２応答も調節する。一態様において、ＩＩ型ＩＦＮは、哺乳動物のＩＩ型ＩＦＮである。別の態様において、ＩＩ型ＩＦＮは、ヒトＩＩ型ＩＦＮである。ヒトＩＩ型ＩＦＮは、GENBANKアクセッション番号NP_000610の下、当該技術分野において知られており、以下：
DPYVKEAENLKKYFNAGHSDVADNGTLFLGILKNWKEESDRKIMQSQIVSFYFKLFKNFKDDQSIQKSVETIKEDMNVKFFNSNKKKRDDFEKLTNYSVTDLNVQRKAIHELIQVMAELSPAAKTGKRKRSQMLFRGRRASQ（配列番号49）の成熟したアミノ酸配列を有する。
【００７０】
Ｉ型およびＩＩＩ型のＩＦＮのように、ＩＦＮ−γはシグナルペプチドを有し、その配列は：MKYTSYILAFQLCIVLGSLGCYCQ（配列番号50）である。ＩＩ型ＩＦＮを包含する融合分子は、ＩＩ型ＩＦＮ−リンカー−Ｉ型ＩＦＮ；Ｉ型ＩＦＮ−リンカー−ＩＩ型ＩＦＮ；ＩＩ型ＩＦＮ−リンカー−ＩＩＩ型ＩＦＮ；ＩＩＩ型ＩＦＮ−リンカー−ＩＩ型ＩＦＮ；Ｉ型ＩＦＮ−リンカー−ＩＩ型ＩＦＮ−リンカー−ＩＩＩ型ＩＦＮ；ＩＩ型ＩＦＮ−リンカー−Ｉ型ＩＦＮ−リンカー−ＩＩＩ型ＩＦＮ；ＩＩＩ型ＩＦＮ−リンカー−ＩＩ型ＩＦＮ−リンカー−Ｉ型ＩＦＮ；またはＩ型ＩＦＮ−リンカー−ＩＩＩ型ＩＦＮ−リンカー−ＩＩ型ＩＦＮの構造（Ｎ→Ｃ末端配向）を有し得る。
【００７１】
本発明の融合分子は、これらに限定されないが、E. coli、酵母、バキュロウイルス、昆虫、植物、または哺乳動物のタンパク質発現系を包含する、知られている発現系を使用する従来の組み換え発現手法によって産生され得る。融合分子は、いずれの有効なやり方で、組み換え細胞培養から回収および精製され得る。例えば、硫酸アンモニウムまたはエタノール沈殿、酸抽出、アニオンまたはカチオン交換クロマトグラフィー、ホスホセルロースクロマトグラフィー、疎水性相互作用クロマトグラフィー、親和性クロマトグラフィー、ヒドロキシルアパタイトクロマトグラフィー、およびレクチンクロマトグラフィー。例として、Lin, et al. (1986) Meth. Enzymol. 119: 183-192を参照。最も好ましくは、高速液体クロマトグラフィー（「ＨＰＬＣ」）が、精製のために採用される。さらに、本発明の融合分子の産生および単離のために使用されてもよい方法は、US 6,433,145に開示される。
【００７２】
加えて、本発明のポリペプチドは、いずれの有効な技法を使用して化学的に合成され得る（例として、Creighton (1983) Proteins: Structures and Molecular Principles, W.H. Freeman & Co., NY；Hunkapiller, et al. (1984) Nature 310:105-111を参照）。例えば、融合分子または融合分子のフラグメントは、ペプチドシンセサイザーを用いて合成され得る。
【００７３】
本発明はまた、例としてグリコシル化、アセチル化、リン酸化、アミド化、知られている保護基／ブロッキング基による誘導体化、タンパク分解的切断、抗体分子または他の細胞リガンド(cellular ligand)への連結等々によって翻訳中または翻訳後に修飾された融合分子も網羅する。無数にある化学的修飾のいずれも、これらに限定されないが、臭化シアン、トリプシン、キモトリプシン、パパイン、Ｖ８プロテアーゼ、ＮａＢＨ４による特異的な化学的切断；アセチル化、ホルミル化、酸化、還元；ツニカマイシンの存在下での代謝的合成等々を包含する、知られている技法によって実行されてもよい。
【００７４】
本発明によって網羅される追加の翻訳後修飾は例えば、例として、Ｎに連結されるかまたはＯに連結される炭水化物鎖、Ｎ末端またはＣ末端のプロセシング、アミノ酸主鎖への化学的成分(chemical moieties)の付着、Ｎに連結されるかまたはＯに連結される炭水化物鎖の化学的修飾、および原核生物宿主細胞発現の結果としてのＮ末メチオニン残基の付加または欠失を包含する。融合分子はまた、タンパク質の検出および単離を可能にさせる酵素標識、蛍光標識、同位体標識、または親和性標識などの検出可能な標識を用いて修飾されてもよい。
【００７５】
また本発明によって提供されるものには、増大した可溶性、安定性、およびポリペプチドの循環時間、または減少した免疫原性などの追加の利点を提供し得る、本発明の融合分子の化学的に修飾された誘導体もある（US 4,179,337を参照）。誘導体化のための化学的成分は、水可溶性ポリマー、たとえば、ポリエチレングリコール、エチレングリコール／プロピレングリコールコポリマー、カルボキシメチルセルロース、デキストラン、ポリビニルアルコール等から選択されてもよい。ポリペプチドは、分子内のランダムな位置にて、または分子内の予め決められた位置にて修飾されてもよく、１、２、３、またはそれ以上の付着された(attached)化学的成分を包含していてもよい。
【００７６】
ポリマーは、いずれの分子量であってもよく、分枝であっても非分枝であってもよい。ポリエチレングリコールについて、好ましい分子量は、処理(handling)および製造しやすいように、約１ｋＤａと約１００ｋＤａとの間にある（用語「約」は、ポリエチレングリコールの調製において、いくつかの分子が、規定された(stated)分子量より重く、またいくつかが軽いことを示す）。所望される治療的プロファイル（例として、所望される持続放出の継続時間(duration)、効果、もしあるなら生物学的な活性に対する効果、処理のしやすさ、抗原性の程度または欠如、および治療用タンパク質または類似体へのポリエチレングリコールの他の知られている効果）に左右して、他のサイズも使用され得る。例えば、ポリエチレングリコールは、約200、500、1000、1500、2000、2500、3000、3500、4000、4500、5000、5500、6000、6500、7000、7500、8000、8500、9000、9500、10,000、10,500、11,000、11,500、12,000、12,500、13,000、13,500、14,000、14,500、15,000、15,500、16,000、16,500、17,000、17,500、18,000、18,500、19,000、19,500、20,000、25,000、30,000、35,000、40,000、50,000、55,000、60,000、65,000、70,000、75,000、80,000、85,000、90,000、95,000、または100,000 kDaの平均分子量を有していてもよい。
【００７７】
上述のとおり、ポリエチレングリコールは、分枝構造を有していてもよい。分枝のポリエチレングリコールは、例えば、US 5,643,575；Morpurgo, et al. (1996) Appl. Biochem. Biotechnol. 56:59-72；Vorobjev, et al. (1999) Nucleosides Nucleotides 18:2745-2750；およびCaliceti, et al. (1999) Bioconjug. Chem. 10:638-646において記載されている。
【００７８】
ポリエチレングリコール分子（または他の化学的成分）は、タンパク質の機能ドメインまたは抗原ドメインに対する効果を考慮した上で、融合分子へ付着されるべきである。当業者に入手可能な付着方法には数多あり、例として、ＰＥＧのＧ−ＣＳＦへのカップリングを教示するEP 0 401 384、およびトレシルクロリドを使用するＧＭ−ＣＳＦのペグ化を記載するMalik, et al. (1992) Exp. Hematol. 20:1028-1035を参照。例えば、ポリエチレングリコールは、遊離のアミノ基またはカルボキシル基などの反応基を介するアミノ酸残基を通して共有結合されていてもよい。反応基は、活性化されたポリエチレングリコール分子が結合されていてもよい基である。遊離のアミノ基を有するアミノ酸残基は、リシン残基およびＮ末のアミノ酸残基を包含していてもよい；遊離のカルボキシル基を有するものは、アスパラギン酸残基、グルタミン酸残基、およびＣ末端のアミノ酸残基を包含していてもよい。スルフヒドリル基はまた、ポリエチレングリコール分子を付着させるための反応基としても使用されてもよい。治療目的にとって好ましいのは、Ｎ末端またはリシン基での付着などの、アミノ基での付着である。
【００７９】
上に示唆されるとおり、ポリエチレングリコールは、数多のアミノ酸残基のいずれかへの連結を介してタンパク質へ付着されていてもよい。例えば、ポリエチレングリコールは、リシン残基、ヒスチジン残基、アスパラギン酸残基、グルタミン酸残基、またはシステイン残基への共有結合を介してタンパク質へ連結され得る。１以上の反応化学が、タンパク質の個別のアミノ酸残基（例として、リシン、ヒスチジン、アスパラギン酸、グルタミン酸、もしくはシステイン）へ、またはタンパク質の１より多くのタイプのアミノ酸残基（例として、リシン、ヒスチジン、アスパラギン酸、グルタミン酸、システイン、およびこれらの組み合わせ）へ、ポリエチレングリコールを付着させるのに採用されてもよい。
【００８０】
一方で、Ｎ末端にて化学的に修飾されたタンパク質も具体的に切望されることがある。実例として(as an illustration)ポリエチレングリコールを使用すると、様々なポリエチレングリコール分子（分子量、分枝等々による）、反応ミックス中のポリエチレングリコール分子対タンパク質（ポリペプチド）分子の割合、実施されるべきペグ化反応のタイプ、およびＮ末端にペグ化された選択タンパク質を得る方法から選択されてもよい。Ｎ末端にペグ化された調製物を得る（すなわち、必要なら、この部分を他のモノペグ化された部分から分離する）方法は、ペグ化されたタンパク質分子の集団からの、Ｎ末端にペグ化された材料の精製によるものであってもよい。Ｎ末端修飾にて化学的に修飾された選択タンパク質は、特定のタンパク質の誘導体化に利用可能な種々のタイプの一級アミノ基の示差的反応性（リシン・対・Ｎ末）を利用する還元的アルキル化によって遂行され得る。適切な反応条件下で、カルボニル基含有ポリマーを用いるタンパク質のＮ末端での実質的に選択的な誘導体化が達成される。
【００８１】
上に示されるとおり、本発明の融合分子のペグ化は、いくつもの手段によって遂行され得る。例えば、ポリエチレングリコールは、直接的または介在リンカーのいずれかによって、タンパク質へ付着され得る。タンパク質へポリエチレングリコールを付着させるための無リンカー(Linkerless)系は、Delgado et al. (1992) Crit. Rev. Thera. Drug Carrier Sys. 9:249-304；Francis, et al. (1998) Intern. J. Hematol. 68:1-18；US 4,002,531；US 5,349,052；WO 95/06058;およびWO 98/32466に記載されている。
【００８２】
本発明の融合分子へ付着されているポリエチレングリコール部分の数（すなわち、置換度）もまた変動し得る。例えば、本発明のペグ化されたタンパク質は、平均すると、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１２、１５、１７、２０個、またはそれ以上のポリエチレングリコール分子へ連結されていてもよい。同様に、内部での平均置換度は、タンパク質１分子につき１〜３、２〜４、３〜５、４〜６、５〜７、６〜８、７〜９、８〜１０、９〜１１、１０〜１２、１１〜１３、１２〜１４、１３〜１５、１４〜１６、１５〜１７、１６〜１８、１７〜１９、または１８〜２０個などのポリエチレングリコール部分に及ぶ。置換度を決定するための方法は、例えば、Delgado, et al. (1992) Crit. Rev. Thera. Drug Carrier Sys. 9:249-304において述べられている。
【００８３】
示されるとおり、本発明の融合分子は、様々ながん、ウイルス疾患、および他の適応症の処置のために使用され得る。非限定的な一態様において、融合分子は、これらに限定されないが、真菌感染症、細菌感染症、自己免疫条件、および炎症などの、ＩＦＮ−αまたはＩＦＮ−λが使用される適応症において使用される。結果的に、本発明はまた、有効量のＩ型とＩＩＩ型とのＩＦＮ融合分子を、処置を必要とする対象へ投与することによって疾患または疾病を予防または処置するための方法をも提供する。特定の態様において、疾患または疾病は、ＩＦＮ−αまたはＩＦＮ−λに応答する疾患または疾病である。
【００８４】
「応答（して／する）」とは、本明細書に使用されるとき、インターフェロンの投与に対するいずれの細胞応答または対象によるいずれの応答をも網羅することを意味するが、前記インターフェロンは、疾病に関連する１以上の兆しまたは兆候を予防、寛解、低減、または消失するのに有用であるインターフェロンを示す(indicative of)。
【００８５】
本発明の目的上、「対象」は、哺乳動物、例として、ヒト、非ヒト霊長目の動物（例として、ヒヒ、オランウータン、サル）、マウス、ブタ、ウシ、ヤギ、ネコ、ウサギ、ラット、モルモット、ハムスター、ウマ、サル、ヒツジ、もしくは他の非ヒト哺乳動物；あるいは、例として、鳥類（例として、ニワトリもしくはアヒル）または魚類などの非哺乳類の脊椎動物、および非哺乳類の無脊椎動物を包含する、非哺乳動物を包含することが意図される。
【００８６】
本発明の方法に従うと、「有効量」は、融合分子の、または所望される結果を産生するのに充分な融合分子を含む医薬組成物の投薬量または量を意味する。所望される結果は、その投薬量または量を受けた対象における客観的なまたは主観的な改善を包含し得る。とりわけ、有効量は、疾患もしくは疾病に関連する１以上の兆しまたは兆候を予防、寛解、低減、あるいは消失する量である。処置は、これらに限定されないが、インフルエンザなどの一般的な再発性感染症、および生物兵器攻撃などの緊急予防法を必須とする状況を包含する、持病(an existing condition)の治療、または今後予測される感染の予防法を包含し得る。
【００８７】
いくつかの非限定態様において、本発明の方法は、これらに限定されないが、慢性Ｃ型肝炎感染症、慢性Ｂ型肝炎感染症、およびＡＩＤＳなどの、ウイルス感染症；有毛細胞白血病、悪性黒色腫、肝細胞癌、濾胞性リンパ腫、ＡＩＤＳ関連カポジ肉腫、非ホジキンリンパ腫、慢性骨髄性白血病、基底細胞癌、多発性骨髄腫、カルチノイド腫瘍、膀胱がん、皮膚Ｔ細胞性リンパ腫、および腎細胞癌などの、がん；これらに限定されないが、クローン病、多発性硬化症、および尖圭コンジローマなどの、自己免疫疾病；炎症；細菌感染症、および真菌感染症の処置に役立つ。特定の非限定的な態様において、本発明の融合分子および方法は、ウイルス感染症またはがんの処置に役立つ。別の非限定態様において、本発明の融合分子および方法は、対象における２以上の細胞型において感染を標的にして抑制することに役立つ。
【００８８】
いずれか有効な量の本発明の融合分子は、これを必要とする対象、例として、疾患もしくは疾病をもつ対象、または疾患もしくは疾病に罹るリスクのある対象へ投与されてもよい。一般命題として、１用量につき非経口的に投与される薬学的に有効な総量は、患者体重から起算して(of)約１μｇ／ｋｇ／日〜１０ｍｇ／ｋｇ／日の範囲にあるであろうが、上述のとおり、これは治療的な裁量に委ねられるであろう。より好ましくは、この用量は、少なくとも０．０１ｍｇ／ｋｇ／日、および最も好ましくは、ヒトにとって、約０．０１と１ｍｇ／ｋｇ／日との間である。持続的に投与される場合、組成物は、典型的には、１日につき１〜４回の注射または例えばミニポンプを使用する持続皮下注入のいずれかによって、約１μｇ／ｋｇ／時間〜約５０μｇ／ｋｇ／時間の投薬速度(a dose rate)にて投与される。静脈内溶液バッグ(intravenous bag solution)もまた使用され得る。変化を観察するのに必要な処置の長さ、および生じる応答のための処置後の間隔は、所望される効果に左右して変動し得る。
【００８９】
治療の目的上、本発明の融合分子は、好ましくは、薬学的に許容し得る担体と混和された融合分子を含有する医薬組成物として提供される。用語「医薬組成物」は、動物またはヒトを包含する対象における医薬的使用(pharmaceutical use)に好適な組成物を意味する。医薬組成物は一般に、有効量の活性剤、および、例として、非毒性固体の、半固体の、または液体の充填剤、希釈剤、いずれのタイプのカプセル化材料または製剤化補助剤(formulation auxiliary)などの薬学的に許容し得る担体を包含する担体を含む。
【００９０】
本発明の融合分子を含有する医薬組成物は、例えば、経口的に、経直腸的に、非経口的に、大槽内に、膣内に、腹腔内に、局所的に（粉末、軟膏、点滴薬、もしくは経皮パッチのように）、頬側に、または口腔スプレーもしくは鼻腔スプレーとして、いずれの有効なルートによっても、投与されてもよい。
【００９１】
用語「非経口の」は、本明細書に使用されるとき、静脈内の、筋肉内の、腹腔内の、胸骨下の、皮下の、および関節内の注射ならびに注入などの投与の様式を包含する、いずれの有効な投与の非経口様式を指す。
【００９２】
組成物はまた、持続放出系によって好適に投与されてもよい。持続放出組成物の好適な例は、成形された物品、例としてフィルムまたはマイクロカプセルの形態の、半透過性ポリマーマトリックスを包含する。持続放出マトリックスは、ポリラクチド（US 3,773,919、EP 58,481）、Ｌ−グルタミン酸およびガンマ−エチル−Ｌ−グルタマートのコポリマー（Sidman, et al. (1983) Biopolymers 22:547-556）、ポリ（２−ヒドロキシエチルメタクリラート）（Langer, et al. (1981) J. Biomed. Mater. Res. 15:167-277；Langer (1982) Chem. Tech. 12:98-105）、エチレン酢酸ビニルまたはポリ−Ｄ−（−）−３−ヒドロキシ酪酸（EP 133,988）を包含する。
【００９３】
好ましい態様において、本発明の組成物は、例えばUS 4,938,763；US 5,278,201；US 5,278,202；US 5,324,519；US 5,340,849；US 5,487,897；WO01/35929；WO00/24374;およびWO00/06117に記載のとおりの生分解性ポリマー薬物送達系において製剤化される。特定の好ましい態様において、本発明の組成物は、Atrix Laboratories, Inc.（Fort Collins, CO）のATRIGEL Biodegradable Systemを使用して製剤化される。
【００９４】
本発明の組成物の製剤化において使用され得る生分解性ポリマーの例は、これらに限定されないが、ポリラクチド、ポリグリコリド、ポリカプロラクトン、ポリ酸無水物(polyanhidrides)、ポリアミド、ポリウレタン、ポリエステルアミド、ポリオルトエステル、ポリジオキサノン、ポリアセタール、ポリケタール、ポリカーボネート、ポリオルトカーボネート、ポリホスファゼン、ポリヒドロキシブチラート、ポリヒドロキシバレラート、ポリアルキレンオキサラート、ポリアルキレンスクシナート、ポリ（リンゴ酸）、ポリ（アミノ酸）、ポリ（メチルビニルエーテル）、ポリ（無水マレイン酸）、ポリビニルピロリドン、ポリエチレングリコール、ポリヒドロキシセルロース、キチン、キトサン、およびコポリマー、ターポリマー、または上の材料の組み合わせもしくは混合物を包含する。好ましいポリマーは、より低い結晶化度を有し、およびより疎水性であるものである。これらのポリマーおよびコポリマーは、生体適合性溶媒中、水素結合度も高いポリグリコリドおよびキチンなどの高結晶質ポリマーより可溶性である。所望される溶解パラメータをもつ好ましい材料は、ポリラクチド、ポリカプロラクトン、および可溶性を増強するより多くのアモルファス領域があるグリコリドとのこれらのコポリマーである。特定の好ましい態様において、組成物の製剤化において使用され得る生分解性ポリマーは、ポリ（ラクチド−ｃｏ−グリコリド）である。
【００９５】
分子量、疎水性、およびラクチド／グリコリド比などのポリマー特性は、
所望される薬物放出プロファイルを得るために修飾されてもよい（例として、Ravivarapu, et al. (2000) J. Pharmaceut. Sci. 89:732-741を参照）。
【００９６】
生分解性ポリマーのための溶媒は、非毒性、水混和性、および、そうでなければ生体適合性であることもまた好ましい。かかる溶媒の例は、これらに限定されないが、Ｎ−メチル−２−ピロリドン、２−ピロリドン、エタノール、グリセリンプロピレングリコール、ブタノールなどのＣ２〜Ｃ６アルカノール、Ｃ１〜Ｃ１５アルコール、ジオール、トリオール、およびテトラオール；アセトン、ジエチルケトン、およびメチルエチルケトンなどのＣ３〜Ｃ１５アルキルケトン；酢酸メチル、酢酸エチル、乳酸エチルなどのＣ３〜Ｃ１５エステル；メチルエチルケトンなどのアルキルケトン、ジメチルホルムアミド、ジメチルアセトアミド、およびカプロラクタムなどのＣ１〜Ｃ１５アミド；テトラヒドロフラン、またはソルケタールなどのＣ３〜Ｃ２０エーテル；ツイーン、トリアセチン、プロピレンカーボネート、デシルメチルスルホキシド、ジメチルスルホキシド、オレイン酸、１−ドデシルアザシクロヘプタン−２−オンを包含し、他の好ましい溶媒は、ベンジルアルコール、安息香酸ベンジル、ジプロピレングリコール、トリブチリン、オレイン酸エチル、グリセリン、グリコフロール、ミリスチン酸イソプロピル、パルミチン酸イソプロピル、オレイン酸、ポリエチレングリコール、プロピレンカーボネート、およびクエン酸トリエチルである。最も好ましい溶媒は、溶媒和能およびそれらの相溶性のため、Ｎ−メチル−２−ピロリドン、２−ピロリドン、ジメチルスルホキシド、トリアセチン、およびプロピレンカーボネートである。
【００９７】
加えて、本発明の組成物および生分解性ポリマーを含有する製剤はまた、放出速度変更剤(release-rate modification agents)および／または細孔形成剤も包含していてもよい。放出速度変更剤の例は、これらに限定されないが、脂肪酸、トリグリセリド、他の同種の疎水性化合物、有機溶媒、可塑化化合物、および親水性化合物を包含する。好適な放出速度変更剤は、例えば、モノ−、ジ−、およびトリカルボン酸のエステル、たとえば、２−エトキシ酢酸エチル、酢酸メチル、酢酸エチル、フタル酸ジエチル、フタル酸ジメチル、フタル酸ジブチル、アジピン酸ジメチル、コハク酸ジメチル、シュウ酸ジメチル、クエン酸ジメチル、クエン酸トリエチル、クエン酸アセチルトリブチル、クエン酸アセチルトリエチル、グリセロールトリアセタート、セバシン酸ジ（ｎ−ブチル）等；ポリヒドロキシアルコール、たとえば、プロピレングリコール、ポリエチレングリコール、グリセリン、ソルビトール等；脂肪酸；トリグリセリドなどのグリセロールのトリエステル、エポキシ化大豆油、および他のエポキシ化植物油；コレステロールなどのステロール；Ｃ６〜Ｃ１２アルカノール、２−エトキシエタノールなどのアルコールを包含する。放出速度変更剤は、単一で、または他のかかる剤との組み合わせで使用されてもよい。放出速度変更剤の好適な組み合わせは、これらに限定されないが、グリセリン／プロピレングリコール、ソルビトール／グリセリン、エチレンオキシド／プロピレンオキシド、ブチレングリコール／アジピン酸等を包含する。好ましい放出速度変更剤は、これらに限定されないが、クエン酸ジメチル、クエン酸トリエチル、ヘプタン酸エチル、グリセリン、およびヘキサンジオールを包含する。ポリマー組成物において使用されてもよい好適な細孔形成剤は、これらに限定されないが、スクロースおよびデキストロースなどの糖、塩化ナトリウムおよび炭酸ナトリウムなどの塩、ヒドロキシルプロピルセルロース、カルボキシメチルセルロース、ポリエチレングリコール、およびポリビニルピロリドンなどのポリマーを包含する。塩または糖などの、一定の細孔サイズを提供するであろう固体結晶が、好ましい。
【００９８】
持続放出組成物はまた、リポソームに封入されたポリペプチドをも包含する。本発明のポリペプチドを含有するリポソームは、当該技術分野において知られている方法（DE 3,218,121；Epstein, et al. (1985) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 82:3688-3692；Hwang、et al. (1980) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 77:4030-4034；EP 52,322；EP 36,676；EP 88,046；EP 143,949；EP 142,641；JP 83-118008；US 4,485,045；US 4,544,545;およびEP 102,324）によって調製される。通常なら、リポソームは、小さい（約２００〜８００オングストローム）、単層型であるが、その脂質含量は、約３０ｍｏｌ．パーセントコレステロールより大きく、その選択される割合は、有効なポリペプチド治療のために調整される。
【００９９】
本発明の融合分子は、他の知られている抗ウイルス治療、免疫調節(modulatory)治療、および抗増殖治療、たとえば、ＩＬ−２、ＫＤＩ、リバビリン、およびテモゾロミドとの組み合わせで、投与されてもよい。
【０１００】
本発明はまた、本発明の医薬組成物の成分の１以上で満たされた１以上の容器を包含する医薬パック(pharmaceutical pack)またはキットをも提供する。医薬品(pharmaceuticals)もしくはバイオ製品(biological products)の製造、使用、または販売を規制する(regulating)政府機関によって定められた形式の通知書が、かかる容器（単数または複数）に結び付けられ得、その通知書は、ヒト投与のための製造、使用、または販売の前記機関による承認を反映している。加えて、本発明の融合分子は、他の治療的化合物と併せて採用されてもよい。
【０１０１】
以下の非限定例はさらに、本発明を説明する。
例
【０１０２】
例１：
数個のＩＦＮ融合分子を生成し、様々なアッセイで試験した。これらの分子は、以下：ｉ）hIFN-α-hIFN-λ1（図１２；配列番号51）；ii）hIFN-α-hIFN-λ3（図１３；配列番号52）；iii）hIFN-β-hIFN-λ3（図１４；配列番号53）；iv）mIFN-α-mIFN-λ2（図２１；配列番号54）；およびｖ）mIFN-β-mIFN-λ2（図２２；配列番号55）を包含する。これらの融合分子をコードする哺乳動物の発現プラスミドを、標準のＰＣＲ技法およびＤＮＡクローニング技法の使用により生成した。構築物のいくつか、具体的に言うと、融合mIFN-β-mIFN-λ2、ならびに単一のmIFN-βおよびmIFN-λ2をコードする構築物を、タンパク質の検出および精製のため、６×Ｈｉｓタグなし・ありで生成した。発現プラスミドをHEK293細胞中へ一過的にトランスフェクトし、これらの発現レベルを、Ｈｉｓ抗体を用いた免疫ブロッティング（図２３）および／または生物学的アッセイ（図１６、２４および２５）のいずれかによって評価した。
【０１０３】
例２：
ＩＦＮ融合分子を、i）ＭＨＣクラスＩ抗原発現の上方調節（図２５）；ii）抗ウイルス防御の誘導（図２４）；およびＳＴＡＴ１活性化（図１６）を包含する、ＩＦＮに特異的な生物活性のそれらの誘導能について試験した。ヒトＩＦＮ融合分子を、ヒトＩ型またはＩＩ型のキメラＩＦＮ受容体複合体を発現するヒト網膜色素上皮細胞またはＣＨＯレポーター細胞株に対して試験した（図１５）。これらの２つの別々のレポーター細胞株は、排他的かつ特異的に、ヒトＩ型ＩＦＮまたはヒトＩＩＩ型ＩＦＮのいずれかに応答するが、親ＣＨＯ細胞は、いずれの型のヒトＩＦＮにも応答しない。したがって、これらの細胞株を、ＩＦＮ融合分子がＩ型とＩＩＩ型との両方のＩＦＮの生物活性を保持することを実証するために使用した（図１６）。これらの実験において、レポーター細胞を、組み換えヒトIFN-αもしくはヒトIFN-λ1で、またはヒトIFN-α-IFN-λ1融合分子を発現するプラスミドが一過的にトランスフェクトされたＨＥＫ２９３細胞からの馴化培地で；陰性対照としての機能を果たす、空のプラスミドがトランスフェクトされた（モックがトランスフェクトされた）ＨＥＫ２９３細胞からの馴化培地で、処置した。レポーター細胞をＩＦＮで１５ｍｉｎ処置し、収集して溶解させた；および、ＳＴＡＴ１活性化を、電気泳動移動度シフトアッセイ（ＥＭＳＡ）によって査定した。このアッセイにおいて、ＳＴＡＴ１ Ｔｙｒ７０１リン酸化の際にしか形成しないＳＴＡＴ１ダイマーは、放射性標識された特異的なＤＮＡプローブへ結合する。ＤＮＡ：タンパク質複合体の存在は、ＳＴＡＴ１のリン酸化および活性化を示す(indicative of)。ＳＴＡＴ１活性化はまた、特異的Ｔｙｒ７０１ ＳＴＡＴ１抗体を用いる免疫ブロッティングによっても検出され得る。このアッセイについては、レポーターもしくは非修飾のヒトまたはマウスの細胞株あるいは初代細胞を、ＩＦＮ試料で１５ｍｉｎ処置し、溶解させて、免疫ブロッティングを実施する。マウスＩＩＩ型ＩＦＮが、ヒトＩＩＩ型ＩＦＮ受容体を通してシグナル伝達し得ることから、ＣＨＯレポーター細胞を、マウスＩＦＮ融合分子によるＩＩＩ型ＩＦＮシグナリングの誘導を実証するために使用した。マウス線維芽細胞はＩ型ＩＦＮにしか応答せず、これを、マウスＩＦＮ融合分子によるＩ型ＩＦＮシグナリングの誘導を実証するために使用した。ヒトＩ型およびＩＩＩ型のＩＦＮに応答するヒト網膜色素上皮ＡＲＰＥ−１９細胞と、マウスＩ型およびＩＩＩ型のＩＦＮに応答するマウス肺上皮ＭＬＥ細胞ならびにマウス腸上皮細胞（ｍＩＥＣ）もまた、これらのアッセイにおいて使用した。すべてのＩＦＮ融合分子を、ＥＭＳＡおよび／または免疫ブロッティングのいずれかにおいて、適切な細胞株に対してＳＴＡＴ１活性化を刺激するそれら分子の能力について試験し、Ｉ型とＩＩＩ型との両方のＩＦＮの活性を保持することを示した。融合ＩＦＮ分子を均一になるまで(homogeneity)精製し、タンパク質濃度を決定して、ＳＴＡＴ１活性化アッセイにおけるそれらの効力を、単一の組み換えＩＦＮ分子の効力と比較するつもりである。
【０１０４】
例３：
抗ウイルスアッセイについて、ＡＲＰＥ−１９細胞またはｍＩＥＣのいずれかを使用した。その種に適切な細胞(The species appropriate cells)を、ＩＦＮ融合分子もしくは各ＩＦＮを単独で含有するかまたは組み換えＩＦＮを含有するＨＥＫ２９３馴化培地の段階（１：３）希釈を用いて２４とおりに(for 24)予め処置した。次いで細胞を水疱性口内炎ウイルス（ＶＳＶ）に曝露させ(challenged with)、細胞生存率(cell viability)をクリスタルバイオレット染色によって測定した（図２４）。ＩＦＮ融合分子の精製の際、ＩＦＮ融合分子の抗ウイルス力を単一の組み換えＩＦＮ分子の前記効力と比較するために、追加の抗ウイルスアッセイを実施するつもりである。
【０１０５】
例４：
ＩＦＮ融合分子を、細胞表面ＭＨＣクラスＩ抗原発現のそれらの上方調節能についてもまた試験した。これらのアッセイについて、適切な細胞を、組み換えＩＦＮで、またはＩＦＮ融合分子もしくは各ＩＦＮを単独で含有するＨＥＫ２９３馴化培地で、処置した。７２時間後、細胞を収集して、ＭＨＣクラスＩ抗原発現のレベルをフローサイトメトリーによって決定した。ＩＦＮ非処置細胞、またはモックがトランスフェクトされたＨＥＫ２９３細胞からの馴化培地で処置された細胞を、対照として使用した。ＩＦＮ融合分子の精製の際、ＭＨＣクラスＩ抗原発現の上方調節についてＩＦＮ融合分子の効力を、単一の組み換えＩＦＮ分子の効力と比較するために、追加のアッセイを実施するつもりである。
【０１０６】
例５：
動物腫瘍成長実験について、単一のmIFN-βもしくはmIFN-λ2のいずれか、または融合mIFN-β-mIFN-λ2分子を構成的に発現するマウス乳がんE0771細胞を生成した。細胞に、対応する発現ベクターを安定にトランスフェクトし、同等レベルのＩＦＮ分子を発現するＧ４１８耐性細胞集団を選択した。改変細胞のin vitroでの成長動態において何の変化も観察されなかった。次に、８週齢の同一遺伝子の野生型C57BL/6（E0771）雌の未経産マウスの、右＃４鼠径の乳房脂肪体の中央に、１０５個の親のまたは改変されたＥ０７７１乳がん細胞（５０％マトリゲルに再懸濁された）を注射した。ＩＦＮ組み合わせの有効性を、ＩＦＮ融合分子の有効性に対して比較するために、１コホートのマウスに、mIFN-βまたはmIFN-λ2のいずれかを発現する腫瘍細胞の５０：５０混合物を注射した。原発腫瘍の体積を１日おきに評価、記録した。第２９日にて（図２０Ａ）または第２６日にて（図２０Ｂおよび２０Ｃ）、動物を、最終の腫瘍評価と組織学的分析および免疫学的分析とのためにサクリファイスした。
【０１０７】
例６：
別の乳房腫瘍マウスモデル（つまり、BALB/cマウスの乳房脂肪体中に移植したときに乳房腫瘍を形成する4T1乳がんであって、4T1がん細胞と同一遺伝子のマウス株）、およびB16黒色腫細胞をC57BL/6同一遺伝子マウス中にＳＱ移植した黒色腫のマウスモデルにおいて、追加の研究を行うつもりである。実験は、E0771乳がんモデルと同じ上に記載のプロトコルに従うものである。がん細胞を、単一のmIFN-βもしくはmIFN-λ2、または融合mIFN-β-mIFN-λ2分子を構成的に発現するよう操作するであろう。８週齢の同一遺伝子のマウスに、親のおよび改変された腫瘍を移植して、原発腫瘍の体積を１日おきに評価、記録するであろう。ＩＦＮ組み合わせの有効性を、ＩＦＮ融合分子の有効性に対して比較するために、１マウス群に、ｍＩＦＮ−βまたはｍＩＦＮ−λ２のいずれかを発現する腫瘍細胞の５０：５０混合物を移植するであろう。マウス群のいずれかにおいて原発腫瘍が１ｃｍ３体積に達したとき、すべての動物コホートを、最終の腫瘍評価と組織学的分析および免疫学的分析とのためにサクリファイスするであろう。もしあるなら、肺転移も定量化するであろう。原発腫瘍、ならびに肺、骨、脳、および他の主要器官の重さを量り、その半分を急速凍結させ(snap-froze)、もう半分を、増殖（Ki67）、アポトーシス（トンネル(Tunnel)）、微小血管（ＣＤ３１）、およびＰＡＳＲ染色を研究するためのさらなる生化学的分析および組織学的分析のために固定化した。腫瘍中のおよび腫瘍境界でのＰＭＮ、ＤＣ、ＭＰｈ、ＮＫ細胞、およびＴ細胞の細胞頻度(the cellular frequency)を探るために、原発腫瘍を、Nanostring、ＦＡＣＳ、およびＩＨＣベースの方法の組み合わせによってもまた査定するつもりである。それによって原発腫瘍を除去したとき、それらの一部もまた、ＩＦによってその境界を調べるために使用し、次いで、Ｆ４／Ｆ８０＋ＭＰｈ、ＧＲ１＋好中球、ＣＤ１１＋ＤＣ、ならびにＴ細胞、筋線維芽細胞および内皮細胞（ＰＥＣＡＭ＋細胞）をプロファイルするために酵素的に消化させることで、腫瘍および腫瘍浸潤細胞を単離するつもりである。腫瘍部位での白血球（ＤＣ、ＭＰｈ、ＮＫ細胞およびＴ細胞）浸潤およびＤＣ成熟状態(maturation status)を、ＤＣの場合ＣＤ８６（Alexa 350標識）、ＭＰｈの場合Ｆ４／Ｆ８０（Alexa 405標識）、ならびにＴ細胞の場合ＣＤ４＋（PE-Cy7標識）およびＣＤ８＋（Alexa 649標識）などの特異的なマーカーを用いて免疫細胞を染色し、これに続きＦＡＣＳ分析することによって定量化するつもりである。その上、腫瘍関連サイトカインおよびケモカインをＲＴ−ＰＣＲによって定量化し、タンパク質発現の測定を、特注のＭＳＤ−サイトカインアレイまたはＥＬＩＳＡによって分析するであろう。血液を収集することで、種々の腫瘍関連サイトカイン、ケモカイン、および炎症反応に関連するアディポカイン、ならびに間質刺激(stromal stimulation)について試験するであろう。動物のサブセットが原発腫瘍を発生させなかった場合、腫瘍のないこれらのマウスに元の腫瘍を注射することで、これらのマウスにおいて抗腫瘍免疫が発生したか試験するであろう。抗腫瘍応答の発生もまた、担腫瘍マウスにおける脾細胞の殺腫瘍活性を試験するために評価するであろう。腫瘍形成後、またはそれがなかった(the lack of it)後、マウ���のコホートをサクリファイスして脾細胞を単離し、in vitroで腫瘍細胞と共培養された脾臓細胞によるＩＦＮ−γ産生を測定することによって腫瘍に誘導されたＣＴＬの活性化および増殖を評価するために使用するであろう。加えて、脾細胞の腫瘍細胞殺傷能を、細胞傷害性アッセイの実施によって評価するであろう。前記アッセイにおいて、脾細胞を５１Ｃｒ標識された腫瘍細胞と共培養して５１Ｃｒ放出を測定する。無関係な腫瘍細胞（E0771の場合のB16、逆の場合も同じ）を対照として使用するであろう。
【０１０８】
例７：
＞９５％純度で内毒素のない組み換えＩＦＮ融合分子を、がん治療法として試験するつもりである。上記に記載の乳がんおよび黒色腫の成長のマウスモデルを利用するつもりである。マウスに親のがん細胞を注射し、腫瘍を〜０．５ｃｍ３まで形成できるようにするであろう。腫瘍担持マウスに、様々な用量のＩＦＮ融合分子、単一のＩＦＮ、または単一のＩＦＮの組み合わせをＩＶ注射するであろう。腫瘍進行および転移形成に対するＩＦＮ治療の効果を上記に記載のとおりにモニタリングするであろう。上に記載の様々な組織学的および免疫学的アッセイもまた実施するつもりである。
【０１０９】
例８：
ＩＦＮ融合分子の抗ウイルス力を、インフルエンザＡ感染のマウスモデルを使用して試験し、単一のＩＦＮまたはそれらの５０：５０の組み合わせの効力と比較するつもりである。予防法として、マウスに、マウスの感染の８時間前または２４時間前に、１ ＬＤ５０のインフルエンザＡウイルス株ＰＲ８、ＷＳＮ、Ｕｄｏｒｎまたは他の株を、様々な用量（０．１、０．３、１、３、１０μｇ／１成体〜２０ｍｇ ８週齢マウス；ＰＢＳを対照モック処置として使用するであろう）でＳＱまたは鼻腔内（ＩＮ）注射するであろう。生存率および重量減少を毎日モニタリングするつもりである。加えて、別々の実験において、ウイルスの力価および肺の組織病理を、感染から３、６、および９日後に決定するであろう。組織病理の検査によって、病的状態を査定するであろう。ウイルス抗原についてのＩＨＣ染色によって、処置によりウイルス伝播のパターンに変更があったかについて決定するであろう。感染後の生存率を増強するのに最適なＩＦＮ処置を決定するであろう。この実験において、インフルエンザＡウイルス（１ ＬＤ５０株ＰＲ８、ＷＳＮ、Ｕｄｏｒｎまたは他の株）による感染後の処置の効果を、多重(multiple)投薬レジメンを用いて査定するであろう。上記に記載のとおり、マウスを、様々な用量（０．１、０．３、１、３、１０μｇ／１成体〜２０ｍｇ ８週齢マウス；ＰＢＳを対照モック処置として使用するであろう）でＳＱまたは鼻腔内（ＩＮ）に注射したＩＦＮ融合分子、単一のＩＦＮ、またはこれらの組み合わせで処置するであろう。感染したマウスを、以下のスケジュール：第１、３、５日；第１〜４日；第２、４、６日；第２〜５日に従って処置するであろう。マウスを、上記に記載のとおりに分析することで、抗ウイルス防御ならびに疾患を判断するつもりである。
【０１１０】
例９：
Ｍｘ２−ルシフェラーゼレポーターマウス株を、ＩＳＧのin vivoでの誘導を評価するために使用するつもりである。Ｍｘ２−ルシフェラーゼトランスジェニックレポーターマウスは、ＩＦＮに誘導されるＭｘ２プロモーターによって制御されるルシフェラーゼレポーター遺伝子を有する。この系は、測径器(Caliper)IVIS 200ライブ動物イメージング系の使用による全身のライブイメージングの使用による高精度な(sensitive)in vivoモニタリングを可能にする。成体８週齢のＭｘ２−ルシフェラーゼレポーターマウスを、様々な用量（０．１、０．３、１、３、１０μｇ／１成体〜２０ｍｇ ８週齢マウス；ＰＢＳを対照モック処置として使用するであろう）でＳＱまたはＩＮ注射されたＩＦＮ融合分子、単一のＩＦＮまたはこれらの組み合わせで処置するであろう。ＩＦＮ刺激の継続時間および強度をライブイメージングすることによって決定するために、ルシフェラーゼ発現を、ＩＦＮ処置から３０ｍｉｎ後に、８時間は１時間後毎に、ならびに１６、２４、および４８時間後にモニタリングするつもりである。
【０１１１】
例１０：
ＩＦＮで処置されたマウスから得られた様々な組織のＩＨＣを、ｐＳＴＡＴ１のレベルおよび局在化を測定すために実施するつもりである。ＳＴＡＴ１は、Ｉ型およびＩＩＩ型のＩＦＮによって特異的に活性化されて（Ｔｙｒリン酸化、ｐＳＴＡＴ１）（図１）、活性化後に細胞核へ局在化する転写因子である。これらの実験について、野生型マウスを、様々な用量（０．１、０．３、１、３、１０μｇ／１成体〜２０ｍｇ ８週齢マウス；ＰＢＳを対照モック処置として使用するであろう）でＳＱまたはＩＮ注射されたＩＦＮ融合分子、単一のＩＦＮまたはこれらの組み合わせで処置するであろう。動物のコホートを、ＩＦＮ処置から５ｍｉｎ、１０ｍｉｎ、１５ｍｉｎ、３０ｍｉｎ後に、８時間は１時間後毎に、ならびに１６、２４、および４８時間後にサクリファイスするであろう。肺、大腸および小腸、腎臓、脾臓、ならびに肝臓を包含する様々な組織を切開し、ホルマリン固定化、およびパラフィン包埋するであろう。脱パラフィン化された(deparaffinized)５ミクロン切片に対して実施された、抗原回復および内在性ペルオキシダーゼ活性の遮断後、切片を次いでｐＳＴＡＴ１抗体（Ｔｙｒ７０１）で染色するであろう。免疫染色後、組織切片をマイヤーヘマトキシリンおよびスコット青み緩衝剤(Scott’s bluing buffer)で対比染色するであろう。単一のＩＦＮ、これらの組み合わせ、またはＩＦＮ融合分子を用いる個別のＩＦＮ処置レジメンに応答して引き起こされる(triggered)ＩＦＮシグナリングの組織分布、細胞標的、強度および継続時間を査定するために、ｐＳＴＡＴ１の核局在化を様々な組織および細胞型において調べるであろう。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【図１９】
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【図２０】
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【図２１】
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【図２２】
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【図２３】
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【図２４】
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【図２５】
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【配列表】
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【国際調査報告】
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