(57)【要約】１つまたは複数の脂質クラスからの１つまたは複数の脂質種の存在、非存在または量を質量分析によってサンプル中で決定する方法が、本明細書において記載される。１つまたは複数の脂質クラスが、ワックスエステル（ＷＥ）、スクワレン（ＳＱ）、トリアシルグリセロール（ＴＡＧ）、ジアシルグリセロール（ＤＡＧ）、遊離脂肪酸（ＦＦＡ）、コレステリルエステル（ＣＥ）、コレステロール（ＣＨ）およびその組み合わせからなる群から選択される。方法は、ａ）脂質種のうちの１つまたは複数の各々から質量分析によって検出可能な１つまたは複数のイオンを産生するのに好適な条件下で、イオン化源へサンプルをかけること；ｂ）１つまたは複数の脂質種の各々からの１つまたは複数のイオンの量を質量分析によって測定すること；およびｃ）１つまたは複数のイオンの測定された量を使用して、サンプル中の１つまたは複数の脂質種の各々の存在、非存在または量を決定することを含む。【選択図】図１
2020512559.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
サンプルにおいて、質量分析によって、１つまたは複数の脂質クラスからの１つまたは複数の脂質種の存在、非存在または量を決定する方法であって、
前記１つまたは複数の脂質クラスが、ワックスエステル（ＷＥ）、スクワレン（ＳＱ）、トリアシルグリセロール（ＴＡＧ）、ジアシルグリセロール（ＤＡＧ）、遊離脂肪酸（ＦＦＡ）、コレステリルエステル（ＣＥ）、コレステロール（ＣＨ）およびその組み合わせからなる群から選択され、
ａ）前記１つまたは複数の脂質種の各々から質量分析によって検出可能な１つまたは複数のイオンを産生するのに好適な条件下で、イオン化源へ前記サンプルをかけること；
ｂ）前記１つまたは複数の脂質種の各々からの前記１つまたは複数のイオンの量を質量分析によって測定すること；および
ｃ）前記１つまたは複数のイオンの前記測定された量を使用して、前記サンプル中の前記１つまたは複数の脂質種の各々の存在、非存在または量を決定すること、
を含む、前記方法。
【請求項２】
ワックスエステル（ＷＥ）、スクワレン（ＳＱ）、トリアシルグリセロール（ＴＡＧ）、ジアシルグリセロール（ＤＡＧ）、遊離脂肪酸（ＦＦＡ）、コレステリルエステル（ＣＥ）、コレステロール（ＣＨ）およびその組み合わせからなる群から選択される１つまたは複数の脂質クラスからの１つまたは複数の脂質種、ならびに
α−トコフェロール、β−トコフェロール、γトコフェロールおよびδ−トコフェロール、ならびにその組み合わせからなる群から選択される１つまたは複数のトコフェロール
の存在、非存在または量を質量分析によってサンプル中で決定する方法であって、
ａ）前記１つまたは複数の脂質種および１つまたは複数のトコフェロールの各々から質量分析によって検出可能な１つまたは複数のイオンを産生するのに好適な条件下で、イオン化源へ前記サンプルをかけること；
ｂ）前記１つまたは複数の脂質種および１つまたは複数のトコフェロールの各々からの前記１つまたは複数のイオンの量を質量分析によって測定すること；ならびに
ｃ）前記１つまたは複数のイオンの前記測定された量を使用して、前記サンプル中の前記１つまたは複数の脂質種および１つまたは複数のトコフェロールの各々の存在、非存在または量を決定すること、
を含む、前記方法。
【請求項３】
前記１つまたは複数の脂質クラスが、ワックスエステル（ＷＥ）、トリアシルグリセロール（ＴＡＧ）、ジアシルグリセロール（ＤＡＧ）、コレステリルエステル（ＣＥ）またはその組み合わせを含み、前記方法が、前記１つまたは複数の脂質種の１つまたは複数の脂肪酸の炭素および二重結合の数を決定することをさらに含む、請求項１または２に記載の方法。
【請求項４】
前記サンプルが、皮脂サンプルまたは脂腺細胞サンプルである、請求項１〜３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項５】
前記１つまたは複数の脂質クラスからの前記１つまたは複数の脂質種の存在、非存在または量が、単一インジェクションから決定される、請求項１に記載の方法。
【請求項６】
前記１つまたは複数の脂質クラスからの前記１つまたは複数の脂質種の存在、非存在または量、および前記１つまたは複数のトコフェロールの存在、非存在または量が、単一インジェクションから決定される、請求項２に記載の方法。
【請求項７】
前記１つまたは複数の脂質クラスからの１つまたは複数の脂質種がワックスエステルを含み、前記方法が前記ワックスエステルの脂肪アルコール組成を決定することをさらに含む、請求項１、２または３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項８】
前記１つまたは複数の脂質クラスからの前記１つまたは複数の脂質種がジアシルグリセロールを含み、前記方法が前記ジアシルグリセロールの２つの脂肪酸についての炭素および二重結合の数を決定することをさらに含む、請求項１、２または３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項９】
少なくとも２つの脂質クラスからの１つまたは複数の脂質種の量が決定される、請求項１、２、３、７または８のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１０】
前記少なくとも２つの脂質クラスが、スクワレンおよびワックスエステルを含む、請求項９に記載の方法。
【請求項１１】
前記少なくとも２つの脂質クラスが、スクワレンおよびジアシルグリセロールエステルを含む、請求項９に記載の方法。
【請求項１２】
前記少なくとも２つの脂質クラスが、スクワレンおよびトリアシルグリセロールエステルを含む、請求項９に記載の方法。
【請求項１３】
前記少なくとも２つの脂質クラスが、スクワレンおよび遊離脂肪酸を含む、請求項９に記載の方法。
【請求項１４】
前記少なくとも２つの脂質クラスが、スクワレンおよびコレステリルエステルを含む、請求項９に記載の方法。
【請求項１５】
前記少なくとも２つの脂質クラスが、スクワレンおよびコレステロールを含む、請求項９に記載の方法。
【請求項１６】
前記少なくとも２つの脂質クラスが、ワックスエステルおよびトリアシルグリセロールエステルを含む、請求項９に記載の方法。
【請求項１７】
前記少なくとも２つの脂質クラスが、ワックスエステルおよびジアシルグリセロールエステルを含む、請求項９に記載の方法。
【請求項１８】
前記少なくとも２つの脂質クラスが、ワックスエステルおよび遊離脂肪酸を含む、請求項９に記載の方法。
【請求項１９】
前記少なくとも２つの脂質クラスが、ワックスエステルおよびコレステリルエステルを含む、請求項９に記載の方法。
【請求項２０】
前記少なくとも２つの脂質クラスが、ワックスエステルおよびコレステロールを含む、請求項９に記載の方法。
【請求項２１】
３以上の脂質クラスからの１つまたは複数の脂質種の量が決定される、請求項１、２、３、７または８のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２２】
４以上の脂質クラスからの１つまたは複数の脂質種の量が決定される、請求項１、２、３、７または８のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２３】
５以上の脂質クラスからの１つまたは複数の脂質種の量が決定される、請求項１、２、３、７または８のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２４】
６以上の脂質クラスからの１つまたは複数の脂質種の量が決定される、請求項１、２、３、７または８のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２５】
前記脂質クラスＣＨ、ＣＥ、ＷＥ、ＳＱ、ＴＡＧ、ＤＡＧおよびＦＦＡの各々からの１つまたは複数の脂質種の量が決定される、請求項１、２、３、７または８のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２６】
ＣＨ、ＣＥ、ＷＥ、ＳＱ、ＴＡＧ、ＤＡＧおよびＦＦＡからなる群から選択される１つまたは複数の脂質種の量が決定され、α−トコフェロール、β−トコフェロール、γトコフェロールおよびδ−トコフェロールからなる群から選択される１つまたは複数のＴＯＣ種の量が決定される、請求項２、３、７または８のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２７】
２０以上の脂質種の量が決定される、請求項１、２、３、７または８のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２８】
１つまたは複数の内部標準を使用して、前記サンプル中の前記１つまたは複数の脂質種の量を決定する、請求項１〜２７のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２９】
前記１つまたは複数の内部標準が、ワックスエステル（ＷＥ）、スクワレン（ＳＱ）、トリアシルグリクリド（ｔｒｉａｃｙｌｇｌｙｃｒｉｄｅ）（ＴＡＧ）、ジアシルグリセロール（ＤＡＧ）、遊離脂肪酸（ＦＦＡ）、コレステリルエステル（ＣＥ）およびその組み合わせからなる群から選択される１つまたは複数の脂質クラスから選択される、請求項２８に記載の方法。
【請求項３０】
前記１つまたは複数の内部標準がワックスエステル（ＷＥ）の前記脂質クラスから選択され、前記内部標準がＷＥ（ＦＡ１９：１／ＯＨ８：０）およびＷＥ（ＦＡ１７：１／ＯＨ８：０）からなる群から選択される、請求項２８に記載の方法。
【請求項３１】
ワックスエステル（ＷＥ）、スクワレン（ＳＱ）、トリアシルグリクリド（ｔｒｉａｃｙｌｇｌｙｃｒｉｄｅ）（ＴＡＧ）、ジアシルグリセロール（ＤＡＧ）、遊離脂肪酸（ＦＦＡ）、コレステロール（ＣＨ）、コレステリルエステル（ＣＥ）およびその組み合わせからなる群から選択される、１つまたは複数の脂質クラスの各々についての１つまたは複数の内部標準、ならびにパッケージ材料およびキットの使用のための指示を含む、キット。
【請求項３２】
ワックスエステル（ＷＥ）、スクワレン（ＳＱ）、トリアシルグリクリド（ｔｒｉａｃｙｌｇｌｙｃｒｉｄｅ）（ＴＡＧ）およびジアシルグリセロール（ＤＡＧ）、遊離脂肪酸（ＦＦＡ）、コレステロール（ＣＨ）、コレステリルエステル（ＣＥ）およびその組み合わせからなる群から選択される、１つまたは複数の脂質クラスの各々についての、ならびにα−トコフェロール、β−トコフェロール、γトコフェロールおよびδ−トコフェロールならびにその組み合わせからなる群から選択される、１つまたは複数のトコフェロール（ＴＯＣ）の各々についての、１つまたは複数の内部標準、ならびにパッケージ材料およびキットの使用のための指示を含む、キット。
【請求項３３】
前記サンプルが皮脂サンプルであり、皮脂テープ、スワブまたは濾紙を使用して収集される、請求項１、２、３、７または８のいずれか一項に記載の方法。
【請求項３４】
コレステロールの量を決定することをさらに含む、請求項１、２、３、７または８のいずれか一項に記載の方法。
【請求項３５】
サンプルにおて、質量分析によって、スクワレン（ＳＱ）、遊離脂肪酸（ＦＦＡ）、複合脂質およびその組み合わせからなる群から選択される、１つまたは複数の脂質種の存在、非存在または量を決定する方法であって、
ａ）前記１つまたは複数の脂質種の各々から質量分析によって検出可能な１つまたは複数のイオンを産生するのに好適な条件下で、イオン化源へ前記サンプルをかけること；
ｂ）前記１つまたは複数の脂質種の各々からの前記１つまたは複数のイオンの量を質量分析によって測定すること；および
（ｃ）前記１つまたは複数のイオンの前記測定された量を使用して、前記サンプル中の前記１つまたは複数の脂質種の各々の量を決定すること、
を含む、前記方法。
【請求項３６】
前記１つまたは複数の複合脂質が、ＷＥ、ＴＡＧ、ＤＡＧおよびＣＥからなる群から選択される、請求項３５に記載の方法。
【請求項３７】
前記１つまたは複数の複合脂質種の１つまたは複数の脂肪酸の炭素および二重結合の数を決定することをさらに含む、請求項３６に記載の方法。
【請求項３８】
前記サンプルが皮脂サンプルまたは脂腺細胞サンプルである、請求項３５に記載の方法。
【請求項３９】
前記１つまたは複数の脂質クラスからの前記１つまたは複数の脂質種の量が、単一インジェクションから決定される、請求項３５に記載の方法。
【請求項４０】
前記サンプルが皮脂サンプルであり、皮脂テープ、スワブまたは濾紙を使用して収集される、請求項３５に記載の方法。
【請求項４１】
コレステロールの量を決定することをさらに含む、請求項３５に記載の方法。
【請求項４２】
サンプル中の１つまたは複数の脂質種の存在、非存在または量を検出する方法であって、前記脂質種が、ＳＱ、ＷＥ、ＤＡＧ、ＴＡＧ、ＦＦＡ、コレステロールおよびＣＥからなる脂質クラスの群から選択され、
事前の分離ステップまたは精製ステップ無しに抽出物サンプルの単一インジェクションを質量分析装置の中へ注入すること；ならびに
前記質量分析装置を使用して、前記サンプル中の前記１つまたは複数の脂質種を同定し、前記１つまたは複数の脂質種の濃度を決定すること、
を含む、前記方法。
【請求項４３】
サンプル中の１つまたは複数の脂質種および１つまたは複数のＴＯＣの存在、非存在または量を検出する方法であって、前記脂質種が、ＳＱ、ＷＥ、ＤＡＧ、ＴＡＧ、ＦＦＡ、コレステロールおよびＣＥからなる脂質クラスの群から選択され、前記１つまたは複数のＴＯＣが、α−トコフェロール、β−トコフェロール、γトコフェロールおよびδ−トコフェロールからなる群から選択され、
事前の分離ステップまたは精製ステップ無しに抽出物サンプルの単一インジェクションを質量分析装置の中へ注入すること；ならびに
前記質量分析装置を使用して、前記サンプル中の前記１つまたは複数の脂質種を同定し、前記１つまたは複数のＴＯＣを同定し、前記１つまたは複数の脂質種の濃度および前記１つまたは複数のＴＯＣの濃度を決定すること、
を含む、前記方法。
【請求項４４】
前記サンプル中の１つまたは複数の脂肪酸異性体の存在、非存在または量を決定することをさらに含む、請求項１に記載の方法。
【請求項４５】
前記サンプル中の前記１つまたは複数の脂肪酸異性体の存在、非存在または量が、ＧＣ−ＦＡＭＥ（ガスクロマトグラフィー脂肪酸メチルエステル）分析を使用して決定される、請求項４４に記載の方法。
【請求項４６】
前記サンプルが、事前の分離ステップまたは精製ステップ無しに前記質量分析装置の中へ直接注入される、請求項１、２または３５のいずれか一項に記載の方法。
【請求項４７】
前記１つまたは複数の内部標準のうちの少なくとも１つは同位体標識される、請求項２８に記載の方法。
【請求項４８】
前記１つまたは複数の内部標準のうちの少なくとも１つは同位体標識される、請求項３１または３２に記載のキット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
関連出願の相互参照
本出願は、２０１７年３月３１日に出願された米国仮特許出願第６１／９７０，７３７号、２０１７年５月３１日に出願された米国仮特許出願第６２／５１２，７７６号、２０１７年９月１４日に出願された米国仮特許出願第６２／５５８，４１５号、および２０１７年１１月３０日に出願された米国仮特許出願第６２／５９２，６３９号の利益を主張し、その各々の内容全体は参照として本明細書に援用される。
【背景技術】
【０００２】
本発明の背景を記載する以下の情報は本発明の理解を支援するために提供され、本発明の先行技術を構成または記載するという承認ではない。
【０００３】
皮脂は、脂腺細胞（脂線の特殊化された細胞）によって産生される脂質の多い分泌物である。ヒトにおいて、皮脂は、皮膚の表面をコーティングし、抗微生物防御、水分保持、光防護および創傷治癒に寄与する。皮脂リピドームは脂質の複雑な混合物から構成される。皮脂脂質組成は種間で異なり、様々な機能的要求の結果である可能性が高い。ヒト皮脂脂質は、遊離脂肪酸（ＦＦＡ）、コレステロール（ＣＨ）、コレステリル／コレステロールエステル（ＣＥ）、ならびにジアシルグリセロールおよびトリアシルグリセロール（ＤＡＧおよびＴＡＧ）だけではなく、ワックスエステル（ＷＥ）およびスクワレン（ＳＱ）（それらは皮脂に固有である）もまた含む。これらの脂質に加えて、皮脂は脂溶性分子（トコフェロール等）を含有する。皮脂の特徴づけは、脂質クラスを分離する薄層クロマトグラフィーに続いて、個別の脂質種の同定無しに各々のクラス内でバルクで脂肪酸組成を決定することを包含する（Ｓｔｅｗａｒｔ  ｅｔ  ａｌ．，Ｊ  Ｉｎｖｅｓｔ  Ｄｅｒｍａｔｏｌ．１９８６；８７（６）：７３３−６）。より最近では、液体クロマトグラフィー（ＬＣ）と質量分析（ＭＳ）を組み合わせる方法を使用して、皮脂脂質が特徴づけられている（Ｃａｍｅｒａ  ｅｔ  ａｌ，Ｊ  Ｌｉｐｉｄ  Ｒｅｓ．２０１０；５１（１１）；３３７７−８８）が、これらの方法は総計の組成のみを報告し、脂質種の脂肪酸組成を同定しない。さらに、これらの方法は相対的定量のみを提供し、皮脂リピドームの脂肪酸組成は脂質クラスにわたって定量化することができない。加えて、これらの方法は事前の分離ステップまたは精製ステップを要求する。本明細書において、皮脂中の主要な脂質種の脂肪酸組成を同時に同定し、これらの分子および脂溶性トコフェロールの絶対濃度を測定する方法を提示する。
【０００４】
皮脂サンプル中の脂質およびトコフェロールの検出および定量のための方法およびアッセイが、本明細書において記載される。
【発明の概要】
【０００５】
本発明の第１の態様において、サンプルにおいて質量分析によって、ワックスエステル（ＷＥ）、スクワレン（ＳＱ）、トリアシルグリセロール（ＴＡＧ）、ジアシルグリセロール（ＤＡＧ）、遊離脂肪酸（ＦＦＡ）、コレステリルエステル（ＣＥ）、コレステロール（ＣＨ）およびその組み合わせからなる群から選択される、１つまたは複数の脂質クラスからの１つまたは複数の脂質種の存在、非存在または量を決定する方法は、複数のステップを含む。ステップは、脂質種のうちの１つまたは複数の各々から質量分析によって検出可能な１つまたは複数のイオンを産生するのに好適な条件下で、イオン化源へサンプルをかけること；１つまたは複数の脂質種の各々からの１つまたは複数のイオンの量を質量分析によって測定すること；および１つまたは複数のイオンの測定された量を使用して、サンプル中の１つまたは複数の脂質種の各々の存在、非存在または量を決定することを含む。
【０００６】
本発明の第２の態様において、１つまたは複数の脂質種および１つまたは複数のトコフェロールの存在または非存在または量を質量分析によってサンプル中で決定する方法は、複数のステップを含む。１つまたは複数の脂質種は、１つまたは複数の脂質クラスからであり、それは、ワックスエステル（ＷＥ）、スクワレン（ＳＱ）、トリアシルグリセロール（ＴＡＧ）、ジアシルグリセロール（ＤＡＧ）、遊離脂肪酸（ＦＦＡ）、コレステリルエステル（ＣＥ）、コレステロール（ＣＨ）、トコフェロール（ＴＯＣ）およびその組み合わせからなる群から選択される。１つまたは複数のトコフェロールは、α−トコフェロール、β−トコフェロール、γトコフェロールおよびδ−トコフェロール、ならびにその組み合わせからなる群から選択される。ステップは、脂質種のうちの１つまたは複数および１つまたは複数のトコフェロールの各々から質量分析によって検出可能な１つまたは複数のイオンを産生するのに好適な条件下で、イオン化源へサンプルをかけること；１つまたは複数の脂質種および１つまたは複数のトコフェロールの各々からの１つまたは複数のイオンの量を質量分析によって測定すること；ならびに１つまたは複数のイオンの測定された量を使用して、サンプル中の１つまたは複数の脂質種および１つまたは複数のトコフェロールの各々の存在、非存在または量を決定することを含む。
【０００７】
第１の態様および第２の態様の特徴において、１つまたは複数の脂質クラスは、ワックスエステル（ＷＥ）、トリアシルグリセロール（ＴＡＧ）、ジアシルグリセロール（ＤＡＧ）、コレステリルエステル（ＣＥ）またはその組み合わせを含み、方法は、１つまたは複数の脂質種の１つまたは複数の脂肪酸の炭素および二重結合の数を決定することをさらに含む。
【０００８】
別の特徴において、サンプルは皮脂サンプルまたは脂腺細胞サンプルである。さらに別の特徴において、１つまたは複数の脂質クラスからの１つまたは複数の脂質種の存在、非存在または量は、単一インジェクションから決定される。さらなる特徴において、１つまたは複数の脂質クラスからの１つまたは複数の脂質種はワックスエステルを含み、方法はワックスエステルの脂肪アルコール組成を決定することをさらに含む。なおさらなる特徴において、１つまたは複数の脂質クラスからの１つまたは複数の脂質種はジアシルグリセロールを含み、方法はジアシルグリセロールの２つの脂肪酸についての炭素および二重結合の数を決定することをさらに含む。
【０００９】
追加の特徴において、少なくとも２つの脂質クラスからの１つまたは複数の脂質種の量が決定される。この特徴に関して、少なくとも２つの脂質クラスは、スクワレンおよびワックスエステルを含む。この特徴をさらに考慮すると、少なくとも２つの脂質クラスはスクワレンおよびジアシルグリセロールを含む。さらに、この特徴に関して、少なくとも２つの脂質クラスは、スクワレンおよびトリアシルグリセロール、スクワレンおよび遊離脂肪酸、スクワレンおよびコレステリルエステル、スクワレンおよびコレステロール、ワックスエステルおよびトリアシルグリセロール、ワックスエステルおよびジアシルグリセロール、ワックスエステルおよび遊離脂肪酸、ワックスエステルおよびコレステロールエステル、またはワックスエステルおよびコレステロールを含む。
【００１０】
さらなる特徴において、３以上、４以上、５以上、または６以上の脂質クラスからの１つまたは複数の脂質種の量が決定される。別の特徴において、脂質クラスＣＨ、ＣＥ、ＷＥ、ＳＱ、ＴＡＧ、ＤＡＧおよびＦＦＡの各々からの１つまたは複数の脂質種の量が決定される。さらに別の特徴において、ＣＨ、ＣＥ、ＷＥ、ＳＱ、ＴＡＧ、ＤＡＧおよびＦＦＡからなる群から選択される１つまたは複数の脂質種の量は決定され、α−トコフェロール、β−トコフェロール、γトコフェロールおよびδ−トコフェロールからなる群から選択される１つまたは複数のＴＯＣ種の量は決定される。なおさらなる特徴において、２０以上の脂質種の量が決定される。
【００１１】
別の特徴において、１つまたは複数の内部標準を使用して、サンプル中の１つまたは複数の脂質種の量を決定する。この特徴に関して、１つまたは複数の内部標準は、ワックスエステル（ＷＥ）、スクワレン（ＳＱ）、トリアシルグリクリド（ｔｒｉａｃｙｌｇｌｙｃｒｉｄｅ）（ＴＡＧ）、ジアシルグリセロール（ＤＡＧ）、遊離脂肪酸（ＦＦＡ）、コレステリルエステル（ＣＥ）およびその組み合わせからなる群から選択される１つまたは複数の脂質クラスから選択される。この特徴をさらに考慮すると、１つまたは複数の内部標準はワックスエステル（ＷＥ）の脂質クラスから選択され、内部標準はＷＥ（ＦＡ１９：１／ＯＨ８：０）およびＷＥ（ＦＡ１７：１／ＯＨ８：０）からなる群から選択される。加えて、この特徴に関して、１つまたは複数の内部標準のうちの少なくとも１つは同位体標識される。
【００１２】
追加の特徴において、サンプルは皮脂サンプルであり、皮脂テープ、スワブまたは濾紙を使用して収集される。さらなる特徴において、方法は、コレステロールの量を決定することをさらに含む。別の特徴において、方法は、サンプル中の１つまたは複数の脂肪酸異性体の存在、非存在または量を決定することをさらに含む。さらに別の特徴において、サンプルは、事前の分離ステップまたは精製ステップ無しに質量分析装置の中へ直接注入される。
【００１３】
本発明の他の態様において、キットは、ワックスエステル（ＷＥ）、スクワレン（ＳＱ）、トリアシルグリクリド（ｔｒｉａｃｙｌｇｌｙｃｒｉｄｅ）（ＴＡＧ）、ジアシルグリセロール（ＤＡＧ）、遊離脂肪酸（ＦＦＡ）、コレステロール（ＣＨ）、コレステリルエステル（ＣＥ）およびその組み合わせからなる群から選択される、１つまたは複数の脂質クラスの各々についての１つまたは複数の内部標準、ならびにパッケージ材料およびキットの使用のための指示を含む。この態様の特徴において、１つまたは複数の内部標準のうちの少なくとも１つは同位体標識される。
【００１４】
本発明のさらなる態様において、キットは、ワックスエステル（ＷＥ）、スクワレン（ＳＱ）、トリアシルグリクリド（ｔｒｉａｃｙｌｇｌｙｃｒｉｄｅ）（ＴＡＧ）およびジアシルグリセロール（ＤＡＧ）、遊離脂肪酸（ＦＦＡ）、コレステロール（ＣＨ）、コレステリルエステル（ＣＥ）およびその組み合わせからなる群から選択される、１つまたは複数の脂質クラスの各々についての、ならびにα−トコフェロール、β−トコフェロール、γトコフェロールおよびδ−トコフェロールならびにその組み合わせからなる群から選択される、１つまたは複数のトコフェロール（ＴＯＣ）の各々についての、１つまたは複数の内部標準、ならびにパッケージ材料およびキットの使用のための指示を含む。この態様の特徴において、１つまたは複数の内部標準のうちの少なくとも１つは同位体標識される。
【００１５】
本発明の追加の態様において、サンプルにおいて質量分析によって、スクワレン（ＳＱ）、遊離脂肪酸（ＦＦＡ）、複合脂質およびその組み合わせからなる群から選択される、１つまたは複数の脂質種の存在、非存在または量を決定する方法は、複数のステップを含む。ステップは、脂質種のうちの１つまたは複数の各々から質量分析によって検出可能な１つまたは複数のイオンを産生するのに好適な条件下で、イオン化源へサンプルをかけること；１つまたは複数の脂質種の各々からの１つまたは複数のイオンの量を質量分析によって測定すること；および１つまたは複数のイオンの測定された量を使用して、サンプル中の１つまたは複数の脂質種の各々の量を決定することを含む。
【００１６】
この態様の特徴において、１つまたは複数の複合脂質は、ＷＥ、ＴＡＧ、ＤＡＧおよびＣＥからなる群から選択される。さらなる特徴において、方法は、１つまたは複数の複合脂質種の１つまたは複数の脂肪酸の炭素および二重結合の数を決定することをさらに含む。追加の特徴において、サンプルは皮脂サンプルまたは脂腺細胞サンプルである。サンプルが皮脂サンプルである場合に、それは皮脂テープ、スワブまたは濾紙を使用して収集され得る。別の特徴において、１つまたは複数の脂質クラスからの１つまたは複数の脂質種の量は、単一インジェクションから決定される。なおさらなる特徴において、方法は、コレステロールの量を決定することをさらに含む。別の特徴において、サンプルは、事前の分離ステップまたは精製ステップ無しに質量分析装置の中へ直接注入される。
【００１７】
本発明の追加の態様において、サンプル中のＳＱ、ＷＥ、ＤＡＧ、ＴＡＧ、ＦＦＡ、コレステロールおよびＣＥからなる脂質クラスに分類される１つまたは複数の脂質種の存在、非存在または量を検出する方法は、事前の分離ステップまたは精製ステップ無しに抽出物サンプルの単一インジェクションを質量分析装置の中へ注入すること；ならびに質量分析装置を使用して、サンプル中の１つまたは複数の脂質種を同定し、１つまたは複数の脂質種の濃度を決定することを含む。
【００１８】
本発明のさらなる態様において、サンプル中の１つまたは複数の脂質種および１つまたは複数のＴＯＣの存在、非存在または量を検出する方法（脂質種は、ＳＱ、ＷＥ、ＤＡＧ、ＴＡＧ、ＦＦＡ、コレステロールおよびＣＥからなる脂質クラスから選択され、１つまたは複数のＴＯＣは、α−トコフェロール、β−トコフェロール、γトコフェロールおよびδ−トコフェロールからなる群から選択される）は、事前の分離ステップまたは精製ステップ無しに抽出物サンプルの単一インジェクションを質量分析装置の中へ注入すること、ならびに質量分析装置を使用して、サンプル中の１つまたは複数の脂質種を同定し、１つまたは複数のＴＯＣを同定し、１つまたは複数の脂質種の濃度および１つまたは複数のＴＯＣの濃度を決定することを含む。
【００１９】
この態様の特徴において、サンプル中の１つまたは複数の脂肪酸異性体の存在、非存在または量は、ＧＣ−ＦＡＭＥ（ガスクロマトグラフィー脂肪酸メチルエステル）分析を使用して決定される。
【図面の簡単な説明】
【００２０】
【図１】指示された脂質クラス内の脂質種の直線性の研究からのＲ２値を示すチャートである。
【図２】スタンダードな分析方法（ＦＡＭＥ−ＧＣ／ＭＳの分析）に比較した、実施例１中で記載される方法により分析された皮脂サンプルについてのパーセント脂肪酸組成（すべての脂質クラスにわたる）を示すチャートである。
【図３】本明細書において記載される方法を使用して測定された、皮脂サンプル中の２９８のＷＥ脂質種の濃度を示すグラフである。種はＸ軸上であり、濃度（ｎｍｏｌ／テープで）はＹ軸上で示される。
【図４】本明細書において記載される方法を使用して測定された、皮脂サンプル中の５７５のＴＡＧ脂質種の濃度を示すグラフである。種はＸ軸上であり、濃度（ｎｍｏｌ／テープで）はＹ軸上で示される。
【図５】本明細書において記載される方法を使用して測定された、皮脂サンプル中の４７のＤＡＧ脂質種の濃度のマトリックスを示す表である。１つの脂肪酸が縦列でおよび第２の脂肪酸が横列でリストされて、２つの脂肪酸の理論上の組み合わせの各々が示される。サンプル中の測定された脂質種の量は、対応するボックス中のＤＡＧ脂質種の濃度（ｎｍｏｌ／テープで）により示される。
【発明を実施するための形態】
【００２１】
サンプル中の１つまたは複数の脂質クラスからの１つまたは複数の脂質種の存在、非存在または量を質量分析によって測定するための方法が、記載される。いくつかの実施形態において、脂質種は、スクワレン（ＳＱ）、ワックスエステル（ＷＥ）、遊離脂肪酸（ＦＦＡ）、トリアシルグリセロール（ＴＡＧ）、ジアシルグリセロール（ＤＡＧ）、コレステリルエステル（ＣＥ）、コレステロール（ＣＨ）およびその組み合わせからなる脂質クラスから選択され得る。単一インジェクション方法を使用して、サンプル中の１つまたは複数の脂質クラスからの脂質種を定量化するための質量分析方法が、記載される。加えて、記載される方法を使用して、１つまたは複数の脂質種の１つまたは複数の構成脂肪酸（すなわち脂肪酸組成）中の炭素および二重結合の数を決定することができる。方法は事前の分離ステップまたは精製ステップ無しに遂行され得る。一例において、方法は、クロマトグラフィーステップ無しに遂行され得る。
【００２２】
他の実施形態において、サンプル中のスクワレン（ＳＱ）、ワックスエステル（ＷＥ）、遊離脂肪酸（ＦＦＡ）、トリアシルグリセロール（ＴＡＧ）、ジアシルグリセロール（ＤＡＧ）、コレステリルエステル（ＣＥ）、コレステロール（ＣＨ）および１つまたは複数のトコフェロール（ＴＯＣ）からなる脂質クラスから選択される、１つまたは複数の脂質クラスからの１つまたは複数の脂質種の存在、非存在または量を質量分析によって測定するための方法が、記載される。トコフェロールは、α−トコフェロール、β＼γ−トコフェロール、δ−トコフェロールおよびその組み合わせから選択され得る。
【００２３】
記載される方法は、皮脂の主要な脂質クラスの分子構成を同時に定量化および分離することができる。より完全に以下に記載されるように、健康なボランティアから収集された皮脂サンプルは、有機溶媒抽出へかけられ、続いて、多重反応モニタリング（ＭＲＭ）モードで操作される質量分析装置（フローインジェクション分析−質量分析またはＦＩＡ−ＭＳと本明細書において称される）の中へ自動フローインジェクションされる。２，５００を超える分子種の広範囲のコンビナトリアルリストからスタートして、およそ１，０００の特異的な脂質種が同定された。同定された種は、再現性良く各々の脂質クラス中の全シグナルの大部分を占める。さらに、１つのクラスあたり少なくとも１つ内部標準が含まれていた。アッセイの分析再現性、回収率および直線性が検証された。総合すると、これらの至適化されたハイスループット方法は、皮脂のリピドーム組成への先例がない洞察を提供する。
【００２４】
記載される方法を使用して、複数の脂質クラスからの２，５００を上回る脂質種（皮脂サンプル中の、スクワレンおよびワックスエステルに加えて、ジアシルグリセロール、トリアシルグリセロール、コレステリルエステル、コレステロール、遊離脂肪酸および１つまたは複数の脂溶性トコフェロールまたは全トコフェロールを包含する）は、事前の精製ステップの使用無しに（例えばクロマトグラフ分離無しに）、質量分析の分析単独によって決定することができる。様々な組み合わせにおける、複数の脂質分子および全トコフェロールまたは１つまたは複数のトコフェロールを、単一インジェクションでおよびクロマトグラフィーまたは精製無しで測定する能力は、解析結果を得るのに要求される時間を低減し、研究室の使い捨て製品（例えば有機溶媒、チューブ、ピペットチップ、試薬）、研究室器機および人的資源に関してより少ない資源を使用する。これらの改善は、アッセイの費用を減少させ、サンプル分析のための器機および研究室能力を増加させることによって、節約を導く。
【００２５】
記載される方法は、ＧＣ−ＦＡＭＥ分析（それは脂肪酸の異性体種（同じ脂肪酸の直鎖異性体および分岐鎖異性体等）を識別することができる）と組み合わせて使用され得る。ＧＣ−ＦＡＭＥを使用して検出された脂肪酸は、キャリブレーションカーブを使用して定量化される。脂質はＧＣ−ＦＡＭＥ分析の前に破壊され、そのため、アッセイは個別の複合脂質種を測定しないか、または各々の脂肪酸が各々の脂質クラスの組成にどれくらい寄与したかを示さない。その代りに、ＧＣ−ＦＡＭＥ分析は、皮脂の全脂肪酸組成を報告する。一緒に使用された場合に、ＦＩＡ−ＭＳアッセイおよびＧＣ−ＦＡＭＥアッセイは、皮脂リピドームの包括的な特徴づけを可能にする相補的な情報を提供する。
【００２６】
本発明をさらに詳細に記載する前に、以下の用語が定義される。
【００２７】
定義：
「脂質」または「脂質分子」は、水または他の極性溶媒中で不溶性であるが、無極性溶媒（例えばエーテル）中で可溶性の有機小分子を指す。脂質は、細胞シグナリング、エネルギー貯蔵、および細胞膜の構造構成要素の提供を含む、生物学的機能を有する構造的に多様な分子である。脂質の非限定例としては、スクワレン（ＳＱ）、脂肪酸（ＦＡ）、ワックスエステル（ＷＥ）、コレステロール（ＣＨ）、コレステロールエステル（ＣＥ）、トリアシルグリセロール（ＴＡＧ）、およびジアシルグリセロール（ＤＡＧ）が挙げられる。いくつかの脂質は単一構造（すなわち１つの構造構成要素のみからなる）から構成され、本明細書において「単純脂質」と称される。いわゆる単純脂質の非限定例はＳＱおよびＣＨである。いくつかの脂質は、１つまたは複数の脂肪酸を含む複数の構造構成要素から構成され、本明細書において「複合脂質」（ＣＬ）と称される。ＤＡＧ、ＴＡＧ、ＣＥおよびＷＥは複合脂質の非限定例である。本明細書において使用される時、「脂質種」は、化学式（例えばＳＱ、ＣＨ、ＦＦＡ（１６：０））のレベルで定義されるか、または、１つもしくは複数の脂肪酸もしくは脂肪酸の組み合わせから構成される複合脂質（ＣＬ）については、少なくとも１つの構成脂肪酸中の炭素および二重結合の数（例えばＷＥ（ＦＡ１９：１／ＯＨ８：０）、ＤＡＧ（１６：０／１６：０）、ＤＡＧ（１８：０／１８：４）、ＴＡＧ（３９：０−ＦＡ１２：０）など）を同定して定義される、個別の脂質分子を指す。
【００２８】
「脂質クラス」は、本明細書において使用される時、構造類似性を有しており、したがって、クラスとしてグループ化される脂質分子を指す。本明細書において使用される時、脂質クラスの非限定例としては、スクワレン（ＳＱ）、ワックスエステル（ＷＥ）、コレステロール（ＣＨ）、遊離脂肪酸（ＦＦＡ）、コレストリル（ｃｈｏｌｅｓｔｒｙｌ）／コレステロールエステル（ＣＥ）、トリアシルグリセロール（ＴＡＧ）およびジアシルグリセロール（ＤＡＧ）が挙げられる。いくつかのクラスは単一の脂質種のみを包含する。例えば、スクワレン（ＳＱ）はＳＱクラス中の単一の脂質種である。他のクラスは複数の脂質種を包含する。例えば、遊離脂肪酸クラス（ＦＦＡ）は、複数の脂質種（例えばＦＦＡ（１４：０）、ＦＦＡ（１６：０）、ＦＦＡ（１６：１）およびＦＦＡ（１８：０））を包含する。さらに他の脂質クラスは、複合脂質を含む複数の脂質種を包含する。サンプルとしては、１つまたは複数のクラスの複合脂質（ＣＬ）にわたる各々の脂肪酸の濃度は、その脂肪酸を含有する各々の複合脂質の濃度を総計することによって決定され得る。この値は「ＣＬ脂肪酸濃度」と称される。加えて、１つまたは複数のクラスの複合脂質にわたる各々の脂肪酸のパーセント寄与率が決定され得る。この値は「ＣＬ脂肪酸組成」と称される。
【００２９】
「リピドーム」は、細胞、組織、生物学的液または生物体内の完全な脂質プロファイルを指す。脂質プロファイルは、複数の別個の構造の脂質クラス中の脂質から構成される。本明細書において使用される時、「皮脂リピドーム」は、皮脂または皮脂サンプル中に存在する複数の脂質クラス中の脂質を指す。
【００３０】
「クロマトグラフィー」という用語は、２つの相（そのうちの１つ（静止相）は静止しているが他のもの（移動相）は一定方向で動く）の間で分離される構成要素（すなわち化学物質構成物）が分配される、分離の物理的方法を指す。移動相は、気体（「ガスクロマトグラフィー」、「ＧＣ」）または液体（「液体クロマトグラフィー」、「ＬＣ」；「薄層クロマトグラフィー」、「ＴＬＣ」）であり得る。
【００３１】
「質量分析」（ＭＳ）という用語は、標的分子をイオン化するかまたはイオン化およびフラグメント化し、次いでイオンをそれらの質量／電荷比に基づいて分析して、「分子指紋」として供される質量スペクトルを産生することを伴う、分子の測定および分析のための技法を指す。イオンの質量対電荷比を決定する複数の共通して使用される方法があり、あるものは電磁波とイオン軌道の相互作用を測定し、他のものはイオンが所与の距離を移動するのにかかる時間を測定し、または両方の組み合わせがある。これらの断片質量測定からのデータはデータベースに対して検索されて、標的分子を同定することができる。
【００３２】
「負モードでの操作」または「負イオン化モードでの操作」という用語は、負イオンが生成され検出される質量分析方法を指す。「正モードでの操作」または「正イオン化モードでの操作」という用語は、正イオンが生成され検出される質量分析方法を指す。
【００３３】
「質量分析器」という用語は、イオンの混合物を、それらの質量対電荷（「ｍ／ｚ」）比によって分離する質量分析装置中のデバイスを指す。
【００３４】
「ｍ／ｚ」という用語は、電荷数によってイオンの質量数を割ることによって形成される無次元量を指す。それは「質量対電荷」比と長らく呼ばれていた。
【００３５】
本明細書において使用される時、「源」または「イオン化源」という用語は、分析されるサンプルをイオン化する質量分析装置中のデバイスを指す。イオン化源の例としては、エレクトロスプレーイオン化（ＥＳＩ）、大気圧化学イオン化（ＡＰＣＩ）、加熱エレクトロスプレーイオン化（ＨＥＳＩ）、大気圧光イオン化（ＡＰＰＩ）、フレームイオン化検出器（ＦＩＤ）、マトリックス支援レーザー脱離イオン化（ＭＡＬＤＩ）などが挙げられる。
【００３６】
本明細書において使用される時、「検出器」という用語は、イオンを検出する質量分析装置中のデバイスを指す。
【００３７】
「イオン」という用語は、例えば、物体への電子の付加または物体からの電子の除去によって形成することができる、電荷を含有する任意の物体を指す。
【００３８】
「質量スペクトル」という用語は、典型的にはＸ軸上のｍ／ｚ値およびＹ軸上の強度値を含有する、質量分析装置によって産生されたデータのプロットを指す。
【００３９】
「タンデムＭＳ」という用語は、ＭＳ選択の複数のステージが関与し、断片化がステージ間で起こる操作を指す。第１のＭＳのステージにおいて、イオンは源において形成される。特定の質量電荷比のイオン（各々は１つの（およびおそらく１を超える）化学物質構成物を表す）が選択され、フラグメントイオンが生成される。次いでもたらされたイオンは分離され、質量分析の第２のステージにおいて検出される。第１のＭＳのステージにおける対象となるイオンは「親」イオンまたは前駆イオンに対応する一方で、第２のＭＳのステージ（複数可）の間に生成されたイオンは、親イオンのサブコンポーネントに対応し、本明細書において「娘」イオンまたは「生成」イオンと称される。
【００４０】
したがって、タンデムＭＳは、複雑な混合物中の化学物質構成物の親−娘の関係性を表わすデータ構造の生成を可能にする。この関係性は、互いの親イオンおよび娘イオンの関係性を説明する樹状構造（そこでは、娘イオンは、親イオンのサブコンポーネントを表わす）によって提示され得る。例えば、タンデムＭＳを娘イオンに対して反復して、「孫娘」イオンを決定することができる。したがって、タンデムＭＳは２レベルの断片化に限定されないが、マルチレベルＭＳ（「ＭＳｎ」とも称される）を指すように総称的に使用される。「ＭＳ／ＭＳ」という用語は「ＭＳ２」についての同義語である。単純化のために、「娘イオン」という用語は、二次または高次の（すなわち第１のものではない）ＭＳによって生成された任意のイオンを以後指す。
【００４１】
１つまたは複数の脂質分子の「量」は、サンプル中の測定された脂質分子の化学濃度または質量濃度を意味する。例えば、量または濃度は、モル濃度、質量分率、モル分率、重量モル濃度、パーセンテージとして表現され得る。
【００４２】
「サンプル」または「生物学的サンプル」は、被験体から単離された生物学的材料を意味する。生物学的サンプルは所望されるバイオマーカーの検出に好適な任意の生物学的材料を含有し、被験体からの細胞材料および／または非細胞材料を含み得る。サンプルは、任意の好適な生物学的液または組織（例えば皮脂、細胞（例えば脂腺細胞細胞）、血液、血液血漿（血漿）、血液血清（血清）、尿、脳脊髄液（ＣＳＦ）または組織等）から単離され得る。
【００４３】
「被験体」は任意の動物を意味するが、好ましくは哺乳動物（例えばヒト、サル、マウス、ウサギまたはラット等）である。
【００４４】
Ｉ．サンプル調製および品質管理（ＱＣ）
抽出物サンプルは、サンプル中に存在し得る他の分子（例えばタンパク質、核酸、他の小分子代謝物質）から脂質を隔離することによって調製される。一実施例において、サンプルは皮脂サンプルであり、サンプルは、皮脂テープ（例えばｓｅｂｕｔａｐｅ）、スワブ（例えばコットンスワブ）または濾紙を使用して収集される。別の例において、サンプルは脂腺細胞である。脂質分子は、当業者に既知の方法を使用して（例えばメタノールの使用によって）、サンプルから抽出され得る。サンプル中のいくつかまたはすべての脂質分子は、タンパク質に結合され得る。様々な方法を使用して、ＭＳの分析の前に脂質分子とタンパク質との間の相互作用を破壊することができる。例えば、脂質分子をサンプルから抽出して液体抽出物を産生することができる一方で、存在するタンパク質は沈殿させることができる。タンパク質は、例えばメタノール溶液または酢酸エチル溶液を使用して沈殿させることができる。例示的な方法において、サンプル中のタンパク質を沈殿させるために、メタノールまたは酢酸エチルの溶液がサンプルに添加され、次いで混合物は遠心分離機中で遠心されるかまたは遠心濾過されて、沈殿させたタンパク質と液体上清（それは抽出された脂質分子を含有する）が分離され得る。
【００４５】
他の実施形態において、脂質分子はタンパク質を沈殿させずに、タンパク質から遊離され得る。例えば、蟻酸溶液をサンプルに添加して、タンパク質と脂質分子との間の相互作用を破壊することができる。あるいは、酢酸アンモニウム、硫酸アンモニウム、エタノール中の蟻酸の溶液、またはメタノール中の蟻酸の溶液を、サンプルへ添加して、タンパク質を沈殿させずに、タンパク質と脂質分子との間のイオン相互作用を破壊することができる。
【００４６】
いくつかの実施形態において、抽出物サンプルを、クロマトグラフィー（液体クロマトグラフィー、ガスクロマトグラフィーまたは薄層クロマトグラフィー等）の事前の使用無しに質量分析装置の中へ直接注入して、脂質分子の量を精製またはエンリッチすることができる。
【００４７】
いくつかの実施形態において、抽出されたサンプルは、一部がＦＩＡ−ＭＳ分析のために使用されるように分けられ、別の一部はＧＣ−ＦＡＭＥ分析のために使用される。
【００４８】
例えば脂質分子を検出および定量化する方法の精度、正確性、キャリブレーション範囲または分析感度を査定するために、品質管理（ＱＣ）サンプルが使用され得る。かかるＱＣサンプルは実験サンプルと同じ抽出方法にかけられる。
【００４９】
ＩＩ．質量分析および定量
１つまたは複数の脂質クラスからの１つまたは複数の脂質種は、質量分析によって検出され得る。質量分析は、サンプルのイオン化およびさらなる分析のための荷電分子の生成のためのイオン源を含む質量分析装置を使用して遂行される。サンプルのイオン化は、例えばエレクトロスプレーイオン化（ＥＳＩ）によって遂行され得る。他のイオン源としては、例えば、大気圧化学イオン化（ＡＰＣＩ）、加熱エレクトロスプレーイオン化（ＨＥＳＩ）、大気圧光イオン化（ＡＰＰＩ）、フレームイオン化検出器（ＦＩＤ）、またはマトリックス支援レーザー脱離イオン化（ＭＡＬＤＩ）が挙げられ得る。イオン化方法の選択は多くの考慮で基づいて決定され得る。例示的な考慮としては、測定される脂質分子、サンプルのタイプ、検出器のタイプ、および正モードまたは負モードの選択が挙げられる。
【００５０】
サンプルがイオン化された後に、正にまたは負に荷電したイオンを分析して質量対電荷比を決定することができる。質量対電荷比の決定に好適な例示的な分析器としては、四重極分析器、イオントラップ分析器、および飛行時間型分析器が挙げられる。イオンは、例えば選択的モードまたは走査モードを使用して検出され得る。例示的な走査モードとしては、多重反応モニタリング（ＭＲＭ）および選択反応モニタリング（ＳＲＭ）が挙げられる。
【００５１】
抽出物サンプルは、質量分析装置のイオン化源の中へ直接注入され得る。サンプルは、約５μｌ／分〜約１０μｌ／分の流速で注入され得る。ランタイムは７分間未満であり得、サンプルインジェクション間の全時間は１４分間未満であり得る。
【００５２】
１つまたは複数の脂質クラスからの１つまたは複数の脂質種および１つまたは複数の脂溶性トコフェロールは、１つまたは複数のイオンを生成する正モードまたは負モードでイオン化され得る。例えば、スクワレン、ワックスエステル、ジアシルグリセロール、トリアシルグリセロールおよびコレステリルエステルの脂質クラスからの脂質種、ならびに１つまたは複数のトコフェロールは、正モードでイオン化され得る。別の例において、遊離脂肪酸の脂質クラスからの脂質種は、負モードでイオン化され得る。正モードでイオン化された脂質種およびＴＯＣ、および負モードでイオン化された脂質種は、抽出物サンプルの単一インジェクションで測定され得る。
【００５３】
一実施例において、質量分析はタンデムＭＳであり得、例えばＡＢ  Ｓｃｉｅｘ  ＱＴｒａｐ  ５５００タンデム型質量分析計を使用して遂行され得る。タンデムＭＳは、複雑な混合物中の化学物質構成物の親−娘の関係性を表わすデータ構造の生成を可能にする。この関係性は、互いの親イオンおよび娘イオンの関係性を説明する樹状構造（そこでは、娘イオンは、親イオンのサブコンポーネントを表わす）によって提示され得る。
【００５４】
質量分析装置の器機設定は、所与の方法について、および／または使用される特定の質量分析装置について至適化され得る。器機は、様々な気体（例えば窒素、ヘリウム、アルゴンまたはゼロエア）を使用し得る。一実施例において、質量分析装置は正イオン化モードで操作され得る。イオンスプレーの電圧設定は約０．５ｋＶ〜約５．０ｋＶの範囲であり得る。一実施形態において、電圧は４．１ｋＶで設定され得る。源の温度は約１００℃〜約６００℃の範囲であり得る。一実施形態において、源の温度は２５０℃で設定され得る。カーテンガスは約１０〜約５５ｐｓｉの範囲であり得る。一実施形態において、カーテンガスは１７ｐｓｉで設定される。ネブライザーガス流速および脱溶媒ガス流速は約０〜約９０ｐｓｉの範囲であり得る。一実施形態において、ネブライザーガスは１７．０ｐｓｉで設定され得、脱溶媒ガスは２５．０ｐｓｉで設定され得る。衝突活性化解離（ＣＡＤ）ガスの設定は高いものから低いものの範囲であり得る。一実施形態において、ＣＡＤガスは中庸で設定される。デクラスタリング電位は約１５Ｖ〜約１７０Ｖの範囲であり得る。衝突エネルギー（ＣＥ）は約１０ｅＶ〜約１００ｅＶの範囲であり得る。入口電位（ＥＰ）設定は約５Ｖ〜約３０Ｖの範囲であり得る。衝突セル出口電位（ＣＸＰ）設定は約８Ｖ〜約１６Ｖの範囲であり得る。
【００５５】
別の例において、器機は負イオン化モードで操作され得る。イオンスプレーの電圧設定は約−０．５ｋＶ〜約−５．５ｋＶの範囲であり得る。一実施形態において、電圧は−２．５ｋＶで設定され得る。源の温度は約１００℃〜約６００℃の範囲であり得る。一実施形態において、源の温度は２５０℃で設定され得る。カーテンガスは約１０〜約５５ｐｓｉの範囲であり得る。一実施形態において、カーテンガスは１７．０ｐｓｉで設定され得る。ネブライザーガス流速および脱溶媒ガス流速は約０〜約９０ｐｓｉの範囲であり得る。一実施形態において、ネブライザーガスは１７．０ｐｓｉで設定され得、脱溶媒ガスは２５．０ｐｓｉで設定され得る。ＣＡＤ気体は低いものから高いものの範囲であり得る。一例において、ＣＡＤは例えば中庸で設定され得る。デクラスタリング電位は約−３０Ｖ〜約−１０Ｖの範囲であり得る。衝突エネルギー（ＣＥ）は約−３０ｅＶ〜約−５ｅＶの範囲であり得る。入口電位は約−３０Ｖ〜約−５Ｖの範囲であり得る。衝突セル出口電位（ＣＸＰ）設定は約−２０Ｖ〜約−８Ｖの範囲であり得る。
【００５６】
一実施例において、ＭＳは精密質量ＭＳであり得る。例えば、精密質量の質量分析は四極子−飛行時間型（Ｑ−ＴＯＦ）分析器を使用し得る。例示的な実施形態において、精密質量ＭＳは精密質量タンデムＭＳであり得る。
【００５７】
質量分析装置は、典型的にはイオンスキャンを使用者に提供する（すなわち所与のタイムポイントの範囲にわたる特定の質量／電荷を備えた各々のイオンの相対的な存在量）。質量分析データは、多くの方法によって、もとのサンプル中の脂質分子またはＴＯＣ分子の量に関係づけられ得る。一実施例において、内部標準（ＩＳ）が使用され得る。内部標準は、試験サンプル、および個別のＴＯＣまたは脂質種の定量のための品質管理サンプルへ添加され得る。測定される各々の脂質クラスについて少なくとも１つの内部標準が使用され得る。サンプル中の内部標準イオン強度へのＴＯＣまたは脂質の分子イオン強度の比は、内部標準の既知の濃度と一緒に、定量のために使用され得る。１つまたは複数のＴＯＣならびにＴＡＧ、ＤＡＧ、ＦＦＡ、ＳＱ、ＷＥ、ＣＥおよびＣＨから選択される１つまたは複数の脂質クラスからの１つまたは複数の内部標準は、定量のために使用され得る。いくつかの実施形態において、内部標準は、例えば重水素（２Ｈ、「ｄ」と表示される）、１３Ｃまたは１５Ｎ同位体を使用して、同位体標識され得る。任意の原子、または内部標準の原子の任意の数が、同位体により標識され得る。いくつかの実施形態において、ＩＳはすべて同位体標識され得る。いくつかの実施形態において、ＩＳのどれも同位体標識されない。他の実施形態において、同位体標識されたＩＳおよび非標識ＩＳの組み合わせが使用され得る。一実施例において、内部標準のＴＡＧ（１６：０−ｄ９／１６：０／１８：１）、ＴＡＧ（１６：０−ｄ９／１８：０／１８：１）、ＴＡＧ（１６：０−ｄ９／１８：１／１８：１）、ＴＡＧ（１６：０−ｄ９／１８：２／１８：１）、ＴＡＧ（１６：０−ｄ９／１８：３／１８：１）、ＴＡＧ（１６：０−ｄ９／２０：３／１８：１）、ＴＡＧ（１６：０−ｄ９／２０：４／１８：１）、および／もしくはＴＡＧ（１６：０−ｄ９／２２：６／１８：１）は、トリアシルグリセロール脂質種の定量のために使用され得る；内部標準のＤＡＧ（１６：０−ｄ９／１６：０）、ＤＡＧ（１６：０−ｄ９／１８：０）、ＤＡＧ（１６：０−ｄ９／１８：１）、ＤＡＧ（１６：０−ｄ９／１８：２）、ＤＡＧ（１６：０−ｄ９／１８：３）、ＤＡＧ（１６：０−ｄ９／２０：４）、ＤＡＧ（１６：０−ｄ９／２０：５）、および／もしくはＤＡＧ（１６：０−ｄ９／２２：６）は、ジアシルグリセロール脂質種の定量のために使用され得る；内部標準のＦＦＡ（１６：０）−ｄ９、ＦＦＡ（１８：１）−ｄ１７、および／もしくはＦＦＡ（１７：１）は、遊離脂肪酸の定量のために使用され得；内部標準のＳＱ−ｄ６は、ＳＱの定量のために使用され得る；内部標準のＷＥ（ＦＡ１９：１／ＯＨ８：０）、ＷＥ、ＷＥ（ＦＡ１７：１／ＯＨ８：０）、ＦＡ１６：０−ｄ９／ＯＨ１６：０ｄ３７）、および／もしくはＷＥ（ＦＡ１６：１／ＯＨ１８：０−ｄ３７）は、ＷＥ脂質種の定量のために使用され得る；内部標準のＣＥ（１６：０）−ｄ７、ＣＥ（１６：１）−ｄ７、ＣＥ（１８：１）−ｄ７、ＣＥ（１８：２）−ｄ７、ＣＥ（２０：３）−ｄ７、ＣＥ（２０：４）−ｄ７、ＣＥ（２０：５）−ｄ７、および／もしくはＣＥ（２２：６）−ｄ７は、コレステロールエステル脂質種の定量のために使用され得る；内部標準のコレステロール−ｄ７は、コレステロールの定量のために使用され得る；ならびに／または、内部標準のα−トコフェロール−ｄ６、α−トコフェロール１３Ｃ６、α−トコフェロール１３Ｃ３、α−トコフェロール１３Ｃ９は、トコフェロールの定量のために使用され得る。
【００５８】
キャリブレーションスタンダードも定量のために使用され得る。所与のイオンの相対的存在量が検体（ＴＯＣ分子または脂質分子等）の絶対量に変換され得るように、キャリブレーションスタンダードを使用してスタンダードカーブ（キャリブレーションカーブ）を生成する。内部標準はキャリブレーションスタンダードに添加され得る。別の例において、キャリブレーションスタンダードは外部スタンダードであり、スタンダードカーブがそれらのスタンダードから生成されたイオンに基づいて生成されて、１つ以上のＴＯＣ分子または脂質分子の量を計算することができる。さらなる実施例において、外部スタンダードは非標識のＴＯＣ分子または脂質分子であり得る。
【００５９】
分析データはコンピューターへ送信され、コンピューターソフトウェアを使用してプロセシングされ得る。一実施例において、各々の個別のＴＯＣまたは脂質種は、標的化合物についてのシグナル強度対既知の濃度の割り当てられた内部標準についてのシグナル強度の比に基づいて定量化され得る。全ＴＯＣの濃度は、サンプル中で検出される各々のＴＯＣの総計から計算され得る。脂質種組成は、各々の脂質クラス内の個別の脂質種の比率の計算によって決定され得る。脂質クラス濃度は、脂質クラス内のすべての脂質種の総計から計算され、脂質クラス組成はサンプル内の脂質クラスの比率の計算によって決定され得る。脂肪酸濃度は、特異的な脂肪酸を含有する脂質クラス内のすべての脂質種の総計から計算され、脂肪酸組成は、各々の脂質クラス内の個別の脂肪酸の比率の計算によって決定され得る。
【００６０】
ＩＩＩ．キット
１つもしくは複数のＴＯＣ、ならびに／またはＷＥ、ＳＱ、ＴＡＧ、ＤＡＧ、ＦＦＡ、ＣＥ、ＣＨおよびその組み合わせからなる群から選択される１つもしくは複数の脂質クラスからの１つもしくは複数の脂質種のアッセイのためのキットが、本明細書において記載される。例えば、キットは、パッケージ材料、１つまたは複数の対照サンプル、サンプル収集レセプタクル、および１つまたは複数のアッセイのために十分な量で測定済みの量の１つまたは複数の内部標準を含み得る。分離したパッケージング中の追加のキット構成要素は、対象となるサンプル中で脂質分子の検出および／または定量化のためのバッファーおよび他の試薬を含み得る。キットは、１つまたは複数の脂質種を測定する試薬を使用するための、有形の形態で（例えば取扱説明書等の例えば紙または電子媒体で）記録された指示も含み得る。
【００６１】
他の実施形態において、ＷＥ、ＳＱ、ＴＡＧ、ＤＡＧ、ＦＦＡ、ＣＥ、ＣＨおよびその組み合わせからなる群から選択される、１つまたは複数の脂質クラスからの１つまたは複数の脂質種、ならびにα−トコフェロール、β−トコフェロール、γ−トコフェロールおよびδ−トコフェロールからなる群から選択される、１つまたは複数のＴＯＣのアッセイのためのキットが、本明細書において記載される。
【実施例】
【００６２】
試薬
ＨＰＬＣグレード（９９．９％）メタノールは、ＪＴ  Ｂａｋｅｒから得た。ＨＰＬＣグレード（９９．９％）ジクロロメタンは、Ｈｏｎｅｙｗｅｌｌ  Ｂｕｒｄｉｃｋ  ＆  Ｊａｃｋｓｏｎから得た。酢酸アンモニウム（ＢｉｏＵｌｔｒａ  ≧９９．０％）。ＴＡＧ（１６：０−ｄ９／１６：０／１８：１）、ＴＡＧ（１６：０−ｄ９／１８：０／１８：１）、ＴＡＧ（１６：０−ｄ９／１８：１／１８：１）、ＴＡＧ（１６：０−ｄ９／１８：２／１８：１）、ＴＡＧ（１６：０−ｄ９／１８：３／１８：１）、ＴＡＧ（１６：０−ｄ９／２０：３／１８：１）、ＴＡＧ（１６：０−ｄ９／２０：４／１８：１）、ＴＡＧ（１６：０−ｄ９／２２：６／１８：１）、ＣＥ（１６：０）−ｄ７、ＣＥ（１６：１）−ｄ７、ＣＥ（１８：１）−ｄ７、ＣＥ（１８：２）−ｄ７、ＣＥ（２０：３）−ｄ７、ＣＥ（２０：４）−ｄ７、ＣＥ（２０：５）−ｄ７およびＣＥ（２２：６）−ｄ７は、Ａｖａｎｔｉ  Ｐｏｌａｒ  ＬｉｐｉｄｓまたはＥｃｈｅｌｏｎ  Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓによって合成された。ＤＡＧ（１６：０−ｄ９／１６：０）、ＤＡＧ（１６：０−ｄ９／１８：０）、ＤＡＧ（１６：０−ｄ９／１８：１）、ＤＡＧ（１６：０−ｄ９／１８：２）、ＤＡＧ（１６：０−ｄ９／１８：３）、ＤＡＧ（１６：０−ｄ９／２０：４）、ＤＡＧ（１６：０−ｄ９／２０：５）、ＤＡＧ（１６：０−ｄ９／２２：６）は、Ａｖａｎｔｉ  Ｐｏｌａｒ  Ｌｉｐｉｄｓによって合成された。ＦＦＡ（１６：０）−ｄ９、ＦＦＡ（１７：１は、Ａｖａｎｔｉ  Ｐｏｌａｒ  Ｌｉｐｉｄｓから得た。ＳＱ−ｄ６は、Ｔｏｒｏｎｔｏ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｃｈｅｍｉｃａｌｓから得た。α−トコフェロール−ｄ６は、Ｓａｎｔａ  Ｃｒｕｚ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙから得た。ＷＥ（ＦＡ１９：１／ＯＨ８：０）は、インハウスで合成した。
【００６３】
ＧＣ−ＦＡＭＥ分析
表１中で示される３２の脂肪酸のメチルエステルの全脂肪酸含有量（ｎｍｏｌ／テープで）を、ＧＣ−ＦＡＭＥを使用して決定した。３２の脂肪酸のサンプルが提供され、同位体標識された内部標準をサンプルの各々へ添加した。サンプルを窒素気流下で蒸発乾固した。乾燥された脂質抽出物に９０℃で１時間メタノール／硫酸によるメチル化を行い、遊離脂肪酸の対応するメチルエステルおよびコンジュゲートされた脂肪酸の形成が起こった。反応混合物を炭酸カリウムにより中和し、ヘキサンにより抽出した。ヘキサン層のアリコートを取り出し、キャリアガスとして水素を使用して、ＤＢ−２２５カラム（Ａｇｉｌｅｎｔ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、ＣＡ）を装備した７８９０Ａ／５９７５Ｃ  ＧＣ／ＭＳシステム（Ａｇｉｌｅｎｔ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、ＣＡ）の上へ注入した。質量分析の分析を、電子イオン化による単イオンモニタリング（ＳＩＭ）正モードで遂行した。裏付けされたキャリブレーションスタンダードから生成した線形回帰分析または二次回帰分析を使用して、定量を遂行した。
【表１】
2020512559.tif 000003
【００６４】
実施例１：定量的な皮脂の脂質およびＴＯＣのアッセイのための質量分析方法
Ａ．サンプル調製
皮脂テープを使用して、ボランティアの被験体から皮脂サンプルを収集した。サンプル調製を、ガラスサンプルチューブ中で実行した。メタノールを使用して脂質分子を抽出した。３ｍｌのメタノールの添加に続いて、皮脂テープサンプルをボルテックスで撹拌し、次いで室温で１０分間インキュベーションした。サンプルをボルテックスで撹拌した後に、アリコートを随意のＦＡＭＥ−ＧＣ／ＭＳ分析のために取り出し、別のアリコートを各々の研究サンプルから取り、プールして品質管理のために使用する単一プールのサンプルを形成した。各々のサンプルチューブへ、適切な内部標準（複数可）を含有する７５μＬのジクロロメタン（ＤＣＭ）／メタノール（５０／５０）のワーキング内部標準（ＷＩＳ）溶液を添加した。ＷＩＳ溶液は、各々の脂質クラスおよびＴＯＣについての１つまたは複数の内部標準を含有していた。内部標準を表２中でリストする。サンプルブランクは、内部標準無しの７５μＬのＤＣＭ／メタノール（５０／５０）の添加によって抽出した。サンプルをボルテックスで撹拌し、皮脂テープをチューブから取り出した。サンプルを乾燥し、次いで３００μＬのＤＣＭ／メタノール（９０／１０）＋１０ｍＭの酢酸アンモニウム中で再構成した。サンプルをボルテックスで撹拌し、遠心濾過し、質量分析の分析のためのバイアルへ移した。脂質クラスおよびＴＯＣの各々のためのＷＩＳ濃度を表２中で示す。各々の内部標準についてのパーセンテージは、重量でのパーセントを指す。すべてのＷＩＳ溶液をＤＣＭ／メタノール（５０／５０）の溶液中で調製した。
【表２】
2020512559.tif 000004
【００６５】
Ｂ．ＭＲＭおよび脂質種選択
初期ステップにおいて、皮脂サンプル中におそらく存在し得る脂質種の数を計算した。この計算は、皮脂サンプル中に存在する文献中で記載される脂肪酸および脂質クラスに基づき、ＳＱ、ＷＥ、ＴＡＧ、ＤＡＧ、ＦＦＡおよびＣＥの脂質クラス内のすべての脂質種のリストを生成した。この分析から、２，５００を上回る可能性のある脂質種が皮脂サンプル中にあることが決定された。
【００６６】
脂溶性ＴＯＣ、ならびにＷＥ、ＴＡＧ、ＤＡＧ、ＦＦＡおよびＣＥの脂質クラスからの化学スタンダードを、質量分析によって分析して、皮脂サンプル中のＴＯＣおよび２，５００を上回る脂質種の各々をモニターするために有用なＭＲＭペアを決定した。この分析に基づいて、各々のＴＯＣおよび各々の脂質種をモニターするのに使用するＭＲＭペアを、選択した。脂質クラスのＷＥ、ＴＡＧ、ＤＡＧ、ＦＦＡおよびＣＥ中の１つの脂質種につき、１つの例示的な親イオンおよび娘イオンのペア（１つのＭＲＭペアを表す）を選択した。１つの例示的な親イオンおよび娘イオンのペアを、トコフェロールのα−トコフェロール、δ−トコフェロール、ならびにβ−トコフェロールおよびγ−トコフェロール（β／γ−トコフェロール）の組み合わせについても選択した。β−トコフェロールおよびγ−トコフェロールの親イオンおよび主要な娘イオンの両方は、同一のｍ／ｚを有し、記載される方法を使用して互いから識別することができないので、１つのＭＲＭをβ／γ−トコフェロールのために使用した。最も豊富なイオンをモニタリングのために選択した。ＳＱの質量分析の分析は１つの親イオンおよび２つの娘イオンをもたらし、最も低いバックグラウンドの娘イオンをモニタリングのために選択した。
【００６７】
次いで選択したＭＲＭを使用し、皮脂サンプルを使用して脂質種およびＴＯＣの量を測定した。抽出物サンプルを質量分析装置の中へ３回インジェクションすることが、これらのＭＲＭを使用してサンプル中の２，５００を上回る脂質種の量を測定するのに必要とされた。サンプル中の２，５００を超える脂質種の測定された量のデータの分析は、サンプル中の最も豊富な脂質種の選択によって、単一インジェクションにおいて皮脂サンプル中の脂質分子の９０％を上回るものを測定できることを示した。したがって、ＷＥ、ＴＡＧおよびＤＡＧ脂質クラスからの最も豊富な脂質種についてのＭＲＭは、ＳＱおよびＦＦＡのためのＭＲＭと一緒に、単一インジェクション分析方法における組み入れのために選択された。ＣＥについては、２６の共通の脂質種についてのＭＲＭが選択された。ＴＯＣについては、各々のα−トコフェロール、β／γ−トコフェロールおよびδ−トコフェロールについての１つのＭＲＭが選択された。この例において、９６５の脂質種（２，５００を上回るうちの）および３つのＴＯＣについてのＭＲＭが、単一インジェクション分析方法における組み入れのために選択された。ＭＲＭは、２９８のＷＥ種、４７のＤＡＧ種、５７５のＴＡＧ種、１８のＦＦＡおよび２６のＣＥおよびＳＱに加えて、３つのＴＯＣについて選択された。
【００６８】
Ｃ．脂質種および脂溶性トコフェロールの定量的検出のための質量分析方法
サンプルの同じ（単一）インジェクション中の、ＴＯＣ、ならびにＷＥ、ＳＱ、ＴＡＧ、ＤＡＧ、ＦＦＡおよびＣＥからなる脂質クラスからの脂質種のレベルを検出するＭＳ／ＭＳ方法が、開発された。
【００６９】
Ｔｕｒｂｏ  Ｖ源（ＥＳＩ）を備えたＡＢ  ＳｃｉＥｘ  ＱＴｒａｐ  ５５００質量分析装置を使用して、質量分析を抽出物サンプルで遂行した。抽出物サンプルを、７μｌ／分の流速で質量分析装置のイオン化源の中へ直接（すなわちクロマトグラフ分離無しに）導入した。器機は、１ＭＲＭあたり２０．０ミリ秒で１６サイクル、５０ミリ秒の設定時間、および５ミリ秒の質量範囲間の休止を使用して、多重反応モニタリング（ＭＲＭ）モードで操作した。器機の各々のサイクルは正イオン化モードおよび負イオン化モードを含んでいた。器機は、４．１ｋＶで設定されたイオンスプレー電圧の正イオン化モード、および−２．５ｋＶで設定されたイオンスプレー電圧の負イオン化モードで操作した。源温度を２５０℃で、カーテンガス（例えば窒素）を１７．０ｐｓｉで、ネブライザーガス（例えば窒素）を１７．０ｐｓｉで、脱溶媒ガス（例えば窒素）を２５．０ｐｓｉで、および衝突活性化解離（ＣＡＤ）ガス（例えば窒素）を中庸で設定した。ランタイムは７分間未満であり、１つのサンプルインジェクションから次のものへの全時間は１３．２５分であった。
【００７０】
生のデータを器機から取得し、インハウスのソフトウェアを使用してプロセシングした。定量のために、既知の濃度の内部標準は、各々の脂質種についての単一点のキャリブレーションを提供した。脂質種（検体）を以下のように定量し、値をμＭで報告した（ＩＳは内部標準を指す）。
【数１】
2020512559.tif 000005
【００７１】
以下の脂質種：ＳＱ、１８のＦＦＡ、２９８のＷＥ、４７のＤＡＧ、５７５のＴＡＧ、２６のＣＥおよび３のＴＯＣについて、ＭＲＭをモニターした。
【００７２】
実施例２：方法の検証（５つの脂質クラス）
１つまたは複数の脂質クラス中の１つまたは複数の脂質種を測定する方法の精度を、プールされた皮脂抽出物サンプルを使用して評価した。４つのサンプルを分析し、１サンプルあたり２つの技術的反復測定により全部で８つのサンプルであった。精度は、脂質クラス濃度について５．２％未満の相対標準偏差、脂質種濃度について８．０％未満の相対標準偏差、および脂質種組成について７．３％未満の相対標準偏差であった。結果を表３中で提示する。精度を脂肪酸の濃度および組成についても評価し、結果を表４中で提示する。
【表３】
2020512559.tif 000006
【表４】
2020512559.tif 000007
【００７３】
直線性を査定するために、プールされた皮脂サンプルを、０．１１１×、０．２２２×、０．３３３×、０．４４４×および０．６６７×で希釈した。各々のサンプル希釈における各々の脂質種について、濃度を計算して、各々の脂質種についてのＲ２値を得た。各々の脂質クラス内の脂質種についての結果を図１中で提示する。
【００７４】
実施例１（ＦＩＡ−ＭＳ）中で記載される方法を、現在使用されるＦＡＭＥ−ＧＣ／ＭＳ（ＦＡＭＥ）分析に比較した。皮脂テープを使用して２０名の被験体から収集された皮脂サンプルを、分析のために使用した。サンプルの全脂肪酸組成は、両方の方法を使用して測定した。全脂肪酸の％として報告された１７の脂肪酸の脂肪酸組成の比較を、図２中で示す。２つの方法を使用して生成されたデータの線形回帰についてのＲ２値は、０．９３６であり、各々の方法により測定された脂肪酸組成が匹敵したとことを指摘した。ＦＡＭＥ分析は全脂肪酸組成を報告し、脂質クラス内の脂肪酸組成を決定することができないので、脂質クラス内の脂肪酸組成の比較を行うことができなかった。
【００７５】
実施例３：脂質分析（５つの脂質クラス）
６つの皮脂テープ皮脂サンプルを、実施例１中で記載される方法を使用して分析した。脂質クラスのＤＡＧ、ＴＡＧ、ＷＥ、ＳＱおよびＦＦＡからの９３９の脂質種の量を測定し、濃度を皮脂テープあたりの脂質種のｎｍｏｌ（ｎｍｏｌ／テープ）で報告した。ＳＱの濃度は、６つの皮脂サンプルの各々中で、それぞれ２０１．７３１８５、６２．１５８６５、３６．４５８７、２２７．９１１０５、１３７．２６８１５および１２８．３４０３ｎｍｏｌ／テープであった。例示的な皮脂サンプルからの２９８のＷＥ脂質種の濃度を、図３中でプロットする。例示的な皮脂サンプルからの５７５のＴＡＧ脂質種の濃度を、図４中でプロットする。例示的な皮脂サンプルからの４７のＤＡＧ脂質種の濃度を、図５中で示す。６つの皮脂サンプルからの１８のＦＦＡの脂質種の濃度を、表５中で示す。６つのサンプルの各々についての脂質クラス濃度（ｎｍｏｌ／テープで報告される）を、表６中で報告する。脂質クラス濃度は、指示された脂質クラス内の脂質種の総計である。６つのサンプルの各々についての脂質クラス組成（％で）を、表７中で報告する。例示的な皮脂サンプルについての脂肪酸濃度（ｎｍｏｌ／テープで報告される）を、表８中で示す。脂肪酸濃度は、特異的な脂肪酸を含有する脂質クラス内のすべての脂質種の総計である。
【表５】
2020512559.tif 000008
【表６】
2020512559.tif 000009
【表７】
2020512559.tif 000010
【表８】
2020512559.tif 000011
【００７６】
実施例４：方法の検証（６つの脂質クラス）
別の例において、単一インジェクションにおいて６つまでの脂質クラスについて、方法を検証した。１つまたは複数の脂質クラス中の１つまたは複数の脂質種を測定する方法の精度を、プールされた皮脂抽出物サンプルを使用して評価した。５つの技術的反復測定サンプルを分析した。結果を表９中で提示する。
【表９】
2020512559.tif 000012
【００７７】
実施例５：脂質分析（６つの脂質クラス）
プールされた皮脂抽出物サンプルの５つの反復測定を、実施例１中で記載される方法を使用して分析した。脂質クラスのＣＥ、ＤＡＧ、ＴＡＧ、ＷＥ、ＳＱおよびＦＦＡからの９６５の脂質種の量を測定し、濃度を皮脂テープあたりの脂質種のｎｍｏｌ（ｎｍｏｌ／テープ）で報告した。５つの皮脂サンプルからの２６のＣＥ脂質種の濃度を、表１０中で示す。５つのサンプルの各々についての脂質クラス濃度（ｎｍｏｌ／テープで報告される）を、表１１中で報告する。脂質クラス濃度は、指示された脂質クラス内の脂質種の総計である。５つのサンプルの各々についての脂質クラス組成（％で）を、表１２中で報告する。例示的な皮脂サンプルについての脂肪酸濃度（ｎｍｏｌ／テープで報告される）を、表１３中で示す。脂肪酸濃度は、特異的な脂肪酸を含有する脂質クラス内のすべての脂質種の総計である。
【表１０】
2020512559.tif 000013
【表１１】
2020512559.tif 000014
【表１２】
2020512559.tif 000015
【表１３】
2020512559.tif 000016
【００７８】
実施例６：皮脂分析（６つの脂質クラスおよびＴＯＣ）
別の例において、単一インジェクションにおいて脂溶性ＴＯＣおよび６つまでの脂質クラスについて、方法を検証した。１つまたは複数の脂質クラス中の１つもしくは複数のＴＯＣおよび／または１つもしくは複数の脂質種を測定する方法の精度を、プールされた皮脂抽出物サンプルを使用して評価した。３つの技術的反復測定サンプルを分析した。ＴＯＣおよび６つの脂質クラスについての精度結果を、表１４中で提示す。精度を各々のトコフェロールについても査定した。精度は、α−トコフェロール、β／γ−トコフェロールおよびδ−トコフェロールについて、それぞれ１７．０８％、１５．３７％および１４．５７％の相対標準偏差であった。
【表１４】
2020512559.tif 000017
【００７９】
プールされた皮脂抽出物サンプルの３つの反復測定を、実施例１中で記載される方法を使用して分析した。脂質クラスのＣＥ、ＤＡＧ、ＴＡＧ、ＷＥ、ＳＱおよびＦＦＡからの３つの脂溶性ＴＯＣおよび９６５の脂質種の量を測定し、濃度を皮脂テープあたりの検体のｎｍｏｌ（ｎｍｏｌ／テープ）で報告した。各々のサンプル中の測定されたトコフェロールは、α−トコフェロール、δ−トコフェロール、ならびにβ−トコフェロールおよびγ−トコフェロールの組み合わせを含む。３つの皮脂サンプルからのトコフェロールの濃度を表１５中で示す。３つの重複したサンプルの各々についてのＴＯＣおよび脂質クラスの濃度（ｎｍｏｌ／テープ中の報告される）を、表１６中で報告する。脂質クラス濃度は、指示された脂質クラス内の脂質種の総計である。３つのサンプルの各々についてのＴＯＣおよび脂質クラス組成（％で）を、表１７中で報告する。脂肪酸濃度は、特異的な脂肪酸を含有する脂質クラス内のすべての脂質種の総計である。
【表１５】
2020512559.tif 000018
【表１６】
2020512559.tif 000019
【表１７】
2020512559.tif 000020
【図１】
2020512559.tif 000021
【図２】
2020512559.tif 000022
【図３】
2020512559.tif 000023
【図４】
2020512559.tif 000024
【図５】
2020512559.tif 000025
【国際調査報告】
2020512559.tif 000026
2020512559.tif 000027