(57)【要約】  本発明はＤ−フルクトースが結合する新規カチオン性ポリマーに関する。このポリマーは細胞表面の特定の構造エレメントと選択的に相互作用できる。本発明の課題は、生体適合性があり容易に製造可能であり、特定の細胞種に対して高い選択性を示す新規Ｄ−フルクトース結合カチオン性ポリマーを創出することであった。この課題を解決するために本発明は一般式（Ｉ）で表される、Ｄ−フルクトースが共有結合するカチオン性ポリマーを提案する。このポリマーは次の構成要素：ａ）カチオン性ポリマー：１以上の正電荷を有する繰り返し単位ｎ個の高分子化合物；ｂ）リンカー：Ｄ−フルクトース又はＤ−フルクトースの誘導体を、アルキル基又はアリール基のいずれか、アルケニル基又はアルキニル基のいずれか、エーテル、チオエーテル又はアミン、エステル、アミド又は他のカルボン酸誘導体、複素環（例えばチアゾール又はマレイミド）、ジスルフィド、イミン又はイミドによって前記カチオン性ポリマーに結合させる単位；ｃ）Ｄ−フルクトース：開放鎖のフラノイド構造又はピラノイド構造における５個の可能な炭素原子（１，３，４，５，６）の１個においてグリコシド結合していない、１以上のＤ−フルクトース又はＤ−フルクトース誘導体、を有する。【選択図】図５
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
一般式（Ｉ）で表される、Ｄ−フルクトースが共有結合するカチオン性ポリマーであって、次の構成要素：
ａ）カチオン性ポリマー：１以上の正電荷を有する繰り返し単位ｎ個の高分子化合物；
ｂ）リンカー：Ｄ−フルクトース又はＤ−フルクトースの誘導体を、アルキル基又はアリール基のいずれか、アルケニル基又はアルキニル基のいずれか、エーテル、チオエーテル又はアミン、エステル、アミド又は他のカルボン酸誘導体、複素環（例えばチアゾール又はマレイミド）、ジスルフィド、イミン又はイミドによって前記カチオン性ポリマーに結合させる単位；
ｃ）Ｄ−フルクトース：開放鎖のフラノイド構造又はピラノイド構造における５個の可能な炭素原子（１，３，４，５，６）の１個においてグリコシド結合していない、１以上のＤ−フルクトース又はＤ−フルクトース誘導体、
を有するカチオン性ポリマー。
【請求項２】
適切な条件下で正電荷を有する置換基を有する、請求項１に記載のＤ−フルクトースが共有結合するカチオン性ポリマー。
【請求項３】
正電荷を帯びることが可能な置換基を、前記ポリマーの異なる位置に１種又は多種含む、請求項１〜２の１項以上に記載のＤ−フルクトースが共有結合するカチオン性ポリマー。
【請求項４】
ホモポリマーとしてもコポリマー（統計的及び／又はブロック及び／又はグラジエント）としても表される、請求項１〜３の１項以上に記載のＤ−フルクトースが共有結合するカチオン性ポリマー。
【請求項５】
直鎖又は分岐鎖であり、後者の形状が例えば星状（デンドリマー）、ブラシ状、くし状等を包含する、請求項１〜４の１項以上に記載のＤ−フルクトースが共有結合するカチオン性ポリマー。
【請求項６】
１以上のＤ−フルクトース残基が請求項１のリンカーを介して単一、複数又は全てのカチオン性ポリマーの繰り返し単位に結合する、請求項１〜５の１項以上に記載のＤ−フルクトースが共有結合するカチオン性ポリマー。
【請求項７】
前記Ｄ−フルクトースは、フリーのＯＨ基に隣接する１、２、３、４、５及び／又は６位の炭素原子に更なる置換基を有する、請求項１〜６の１項以上に記載のＤ−フルクトースが共有結合するカチオン性ポリマー。
【請求項８】
核酸類の群から選ばれる生物学的活性物質が静電的及び／又は共有結合的に結合される、請求項１〜７の１項以上に記載のＤ−フルクトースが共有結合するカチオン性ポリマー。
【請求項９】
ＤＮＡ、ＲＮＡ、リボソーム及び／又はＤＮＡ−ＲＮＡ−ハイブリッドの群から選択される前記核酸が結合されており、更に二重結合及び／又は単結合で存在する、請求項８に記載のＤ−フルクトースが共有結合するカチオン性ポリマー。
【請求項１０】
請求項１〜９の１項以上に記載のＤ−フルクトースが共有結合するカチオン性ポリマーの、生細胞における生物学的活性物質の輸送及び伝達のための使用。
【請求項１１】
請求項１〜９の１項以上に記載のＤ−フルクトースが共有結合するカチオン性ポリマーの、特定の細胞種の選択的殺傷ための使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明はＤ−フルクトースが結合した新規カチオン性ポリマーに関する。このポリマーは、特異な構造エレメントを介して細胞表面と選択的に相互作用することができる。
【背景技術】
【０００２】
ポリエチレンイミン（ＰＥＩ）やポリ（Ｌ−リシン）（ＰＬＬ）等の公知のカチオン性ポリマーの主な問題点である「細胞に対する種々の非特異的な細胞毒性」及び「血液凝固誘発と赤血球溶血」については開示されている（非特許文献１）。
【０００３】
カチオン性ポリマーは高い正電荷密度により、例えばｓｉＲＮＡ（低分子干渉リボ核酸）やｐＤＮＡ（プラスミドデオキシリボ核酸）のような負帯電性の遺伝物質とコンプレックスを形成する能力を示す。このように形成されたカチオン性ポリマーと遺伝物質との付加体はポリプレックスと名付けられ、細胞内の遺伝物質（例えばｓｉＲＮＡ）の輸送はポリプレックスによって達成される。
【０００４】
カチオン性ポリマーは、化粧品用途において手触り肌触りや泡感触を向上させる目的で糖界面活性剤の添加物として既に添加されて実績を上げてきた（特許文献１）。
【０００５】
また、カチオン性ポリマーは短いタンパク質配列（例えばＲＧＤペプチド）で官能化することができ、この官能化ポリマーが細胞選択性に影響を与えることができる（非特許文献２）。この詳細なメカニズムは未確定であるが、インテグリン（動物細胞の輸送膜タンパク質）の存在が必須となる。
【０００６】
カチオン性ポリマーと糖類の共有結合も同様に知られている。
【０００７】
ポリプロピレンイミンポリマーはＤ−マンノースで官能化でき、このポリマーのＨＩＶに対する効果的な使用における特性が研究されている。この場合のアプローチは、レクチンレセプターを有する免疫細胞（所謂マクロファージ）の適切な制御に対してのみ役立つ（非特許文献３）。
【０００８】
肝細胞における遺伝物質のためのＤ−ガラクトース結合ポリエチレングリコール−ポリエチレンイミンコポリマーの合成が既に報告されている。この場合のアプローチは、ＡＳＧＰレセプターにのみ適切である（特許文献２、非特許文献４）。
【０００９】
家族性アミロイド性多発性ニューロパシーの治療を目的として、ラクトース及びα−シクロデキストリンを、カチオン性で放射状のポリアミドアミン（ＰＡＭＡＭ）デンドリマーにカップリングさせた。この場合のアプローチは、肝細胞におけるトランスサイレチン遺伝子発現のみを目標としている（非特許文献５）。
【００１０】
カチオン性リポソームはＤ−フコースで修飾され、アデノウイルスに誘起される免疫応答に対する影響が研究された。この場合のアプローチは、脾臓マクロファージ及び肝臓マクロファージに対する特異的転写因子ＮＦ−κＢのターゲット送達に対してのみ役立つ（非特許文献６）。
【００１１】
糖類がグリコシド結合したアクリレート／メタクリレートベースのカチオン性ポリマーが既に開示されている。このアプローチでは、このようなポリマーの化学的構造についてのみ記載されているが、生物学的に可能な適用についてはいかなる視点からも言及されていない。この記載によれば、細胞膜における糖トランスポーターとの相互作用が、グリコシド結合する糖残基によって達成されることもない（特許文献３）。
【００１２】
核酸及び、核酸とカチオン性ポリマーとのポリプレックスは既に報告されている。このアプローチでは、溶液中でポリプレックスの形成の際に糖分子が存在したものの、カチオン性ポリマーに共有結合はしていない。従って、直接のターゲット機能は実現されない（特許文献４）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１３】
【特許文献１】特許出願：糖界面活性剤含有調製物におけるカチオン性ポリマーのバイオポリマーの手触り肌触り向上のための使用。ＤＥ１９６０５３５５Ａ１、イエーグ・カーレ、ロルフ・ヴァヒター
【特許文献２】特許出願：細胞ターゲット性ポリエチレングリコールグラフト化ポリマー遺伝子キャリアー、ＷＯ２００３００８５５５Ａ２、相良一禎
【特許文献３】特許出願：新規糖ポリマー、その使用、その調製に有用なモノマー、ＵＳ２００８０２８１０６４Ａ１、ステファニー・シロン、マリピエール・ラボー、エチエンヌ・フルーリー、デヴィッド・ヴィエット、シルヴァン・コッタス、ウゲス・ドリゲス、サミ・ハリラ
【特許文献４】特許出願：核酸−カチオン性ポリマー組成物、及びその製造・使用方法、ＷＯ２０１６１７８２３３Ａ１、アブラハム・ホーホベルク、ジェニファー・ガッルーラ
【非特許文献】
【００１４】
【非特許文献１】Ｈ．Ｌｖら（２００６）：「遺伝子送達におけるカチオン性脂質及びカチオン性ポリマーの毒性」、ジャーナル・オブ・コントロールド・リリース  １１４：１００−１０９
【非特許文献２】Ｃ．Ｌ．ヴァイトら（２００９）：「ＰＡＭＡＭ−ＲＧＤコンジュゲートは悪性グリオーマの多細胞スフェロイドモデルを通じてｓｉＲＮＡ送達を向上させる」、バイオコンジュゲート・ケミストリー：２０：１９０８−１９１６
【非特許文献３】Ｔ．ドゥッタら（２００７）：「ラミブジンをロードしたマンノシル化ポリプロピレンイミンデンドリマーのターゲットポテンシャルと抗ＨＩＶ活性」、ビオキミカ・エ・ビオフィジカ・アクタ（ＢＢＡ）ジェネラルサブジェクツ：１７７０、６８１−６８６
【非特許文献４】Ｋ．サガラら（２００２）：「肝細胞への遺伝子送達のためのガラクトース−ポリエチレングリコール−ポリエチレンイミンの新規合成」、ジャーナル・オブ・コントロールド・リリース  ７９（１−３）：２７１−２８１
【非特許文献５】Ｙ．ハヤシら（２０１２）：「家族性アミロイド性多発性ニューロパシーの治療のための肝細胞特異的ｓｉＲＮＡキャリアーとしてのラクトシル化デンドリマー（Ｇ３）／α−シクロデキストリンコンジュゲートの潜在用途」、モレキュラー・ファーマシューティックス：９、１６４５−１６５３
【非特許文献６】Ｈ．ファンら（２００９）：「アデノウイルスベクターに誘起される先天的免疫応答に対する糖修飾カチオン性リポソーム／ＮＦ−κＢデコイコンプレックスの抑制効果」、ジャーナル・オブ・コントロールド・リリース：１３３、１３９−１４５
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１５】
本発明の課題は、生体適合性を有し、且つ容易に製造可能な新規Ｄ−フルクトース結合カチオン性ポリマーを提供することにある。このポリマーは特定種の細胞に対し高い選択性を示す。
【００１６】
ここで「選択性」という概念は、新規Ｄ−フルクトース結合カチオン性ポリマーと特定の構造エレメントとの細胞表面における相互作用の選択性を指すこともあり、特定の細胞タイプに対する細胞毒作用の選択性を指すこともある。例としては、特にＧＬＵＴ５が過剰発現する所定の細胞タイプ（例えば乳ガン細胞の殆どのタイプ）への選択的な細胞毒作用が挙げられるが、これに限定されない。
【課題を解決するための手段】
【００１７】
本発明によれば、前記課題は一般式（Ｉ）の基本構造からなる、Ｄ−フルクトース置換基を有するカチオン性ポリマーによって解決されることが見出された。
【００１８】
ここで、「カチオン性ポリマー」は１以上の正電荷を有し、ｎ個（好ましくはｎ＝１０〜１０００）の繰り返し単位の高分子化合物である。
【００１９】
カチオン性ポリマーの好ましい例としては、ポリ（Ｌ−リシン）（ＰＬＬ）、ポリエチレンイミン（ＰＥＩ）、デキストラン（ジエチルアミノエチルデキストラン（ＤＥＡＥ−Ｄ）、デキストラン−スペルミン（Ｄ−ＳＰＭ）等）、ポリメタクリレート（ポリ（２−ジメチルアミノ）エチルメタクリレート（ＰＤＭＡＥＭＡ）、ポリジメチルアミノエチルメタクリレート（ＰＤＡＭＡ）等）が挙げられるがこれらに限定されない。
【００２０】
ここで、「リンカー」とは１以上の原子又は官能基であって、Ｄ−フルクトース単位をカチオン性ポリマーに結合させる原子又は官能基である。好ましい例としては、アルキル基又はアリール基のいずれか、アルケニル基又はアルキニル基のいずれか、エーテル又はチオエーテル、アミン、エステル、アミド又は他のカルボン酸誘導体、複素環（例えばチアゾール又はマレイミド）、ジスルフィド、イミン、イミドが挙げられる。
【００２１】
Ｄ−フルクトース及びその誘導体は、Ｄ−フルクトースに基づく化学的分子であって、オープン型又はクローズ型における３、４、５位の立体化学が保存される全ての化学的分子と解釈される。本明細書において、３、４、５位の立体化学が保存される条件下での化学修飾、特に官能基導入後も同様にＤ−フルクトース誘導体と解釈される。官能基は例えば、糖類の１又は複数の位置（但しＤ−フルクトースのグリコシドＣ２原子を除く）におけるチオール基、アジド基、カルボン酸及びそれらの誘導体、及び／又はアミノ基である。
【００２２】
Ｄ−フルクトースは開放鎖型のケト官能基を有するので、その化学的性質が大きく変化する。他の糖類同様、特定の輸送タンパク質（ＧＬＵＴ）を細胞に侵入させ、物質代謝を行う。Ｄ−フルクトースに関与するトランスポーターはＧＬＵＴ５トランスポーターである（Ａ．ゴドイら（２００６）：「ヒトのガンにおけるグルコーストランスポーターＧＬＵＴ１−６及びＧＬＵＴ９の特異的細胞内分布：乳腫瘍組織におけるＧＬＵＴ１及びＧＬＵＴ５の超微細構造的局在化」、ジャーナル・オブ・セルラーフィジオロジー２０７（３）：６１４−６２７）。
【００２３】
驚くべきことに、Ｄ−フルクトース置換カチオン性ポリマーＰ３は次の利点を示す。
【００２４】
【化１】
2020512454.tif 000003
【００２５】
未修飾の場合に比べ、カチオン性ポリマーＰ３（例えばＬ−ＰＥＩ）は次の特性を有する。
‐高い水溶性；
‐乳ガン細胞（例えばＭＤＡ−ＭＢ−２３１等）に対する細胞毒性；
‐非ガン細胞（例えばＨＵＶＥＣ又はＬ９２９等）に対する細胞無毒性；
‐顕著に低減された血球溶血作用；
‐血液成分凝集の非誘発性；及び
‐負帯電の生体分子（例えばｐＤＮＡやｓｉＲＮＡ等）とのポリプレックス形成能力。
【００２６】
本発明を、Ｄ−フルクトース結合カチオン性ポリマー（直鎖ポリエチレンイミン（Ｌ−ＰＥＩ、（Ｉ））と分岐鎖ポリエチレンイミン（Ｂ−ＰＥＩ、（ＩＩ））とからなる）の合成に基づき、以下説明する。
【００２７】
（Ｉ）Ｄ−フルクトース結合カチオン性ポリマー（非分岐鎖）Ｌ−ＰＥＩの合成
１．ＳＨ官能化Ｄ−フルクトース誘導体の合成（４段階合成）
【００２８】
【化２】
2020512454.tif 000004
【００２９】
１−Ｏ−（２−メルカプトエチル）−２，３：４，５−ジ−Ｏ−イソプロピリデン−β−Ｄ−フルクトピラノシドの４段階合成スキーム：
ａ）ベンジル−２−ブロモエチルエーテル、ＮａＨ、ＴＨＦ、室温
ｂ）Ｈ２／Ｐｄ（Ｃ）、ＣＨ３ＯＨ、室温
ｃ）塩化メシル、Ｅｔ３Ｎ、４−ＤＭＡＰ、ＣＨ２Ｃｌ２、０℃
ｄ）１．チオ尿素、ブタノン、９５℃、２．Ｋ２Ｓ２Ｏ５、ＣＨ２Ｃｌ２／Ｈ２Ｏ、５０℃
【００３０】
Ｄ−フルクトース誘導体５を完全に特性化した。全てのステップが高収率で実行された。チオールの導入は、光触媒存在下でのチオール−エン−クリック反応を経由するポリマーへの糖類付加に役立つ。
【００３１】
２．その後のチオール−エン−クリックを利用するＤ−フルクトースとポリマー前駆体とのブロックコポリマーの合成及び糖単位の保護
【００３２】
【化３】
2020512454.tif 000005
【００３３】
Ｐ（ＥＩ−ｓｔａｔ−ＢｕｔＥｎＯｘ−ｓｔａｔ−ＦｒｕＢｕｔＯｘ）の合成スキーム：
ａ）６Ｍ  ＨＣｌ、１００℃、還流下；
ｂ）ピリジン、４−ＤＭＡＰ、８０℃；
ｃ）Ｄ−フルクトース誘導体（５）、メタノール、２，２−ジメトキシ−２−フェニルアセトフェノン、２５℃、ＵＶ＝３６５ｎｍ；
ｄ）ＴＨＦ／Ｈ２Ｏ、２Ｍ  ＨＣｌ、４０℃
【００３４】
前述のコポリマーと適切な中間体を特性化することができた。エチレンイミン（ＥＩ）と二重結合で官能化したＥＩからなるコポリマーを前駆体とした。最終ステップにおいて、光触媒存在下でのチオール−エン−クリック反応を経由する糖誘導体５の付加が起こった。水溶性ポリマーＰ３において酸保護が達成された。
【００３５】
（ＩＩ）Ｄ−フルクトース結合分岐ポリエチレンイミン（Ｂ−ＰＥＩ）の合成
１．エポキシ官能化Ｄ−フルクトースの合成
【００３６】
【化４】
2020512454.tif 000006
【００３７】
商業的に入手可能なイソプロピリデン保護Ｄ−フルクトースを出発として、エピクロロヒドリンを用いるウイリアムソンのエーテル合成法によってエポキシ官能化Ｄ−フルクトースを製造することができる。
【００３８】
２．エポキシ官能化Ｄ−フルクトースと分岐Ｂ−ＰＥＩとのカップリング
【００３９】
【化５】
2020512454.tif 000007
【００４０】
エポキシドと一級アミンとの一般的な開環反応の概略スキームを上に示す。
【００４１】
【化６】
2020512454.tif 000008
【００４２】
分岐ポリエチレンイミン（Ｂ−ＰＥＩ）の可能な繰り返し単位の概略構造式を上に示す。
【００４３】
メタノール中室温で３日間攪拌下において、Ｂ−ＰＥＩを先に合成したＤ−フルクトース誘導体との開環反応で官能化することができる。１４％、２３％、２８％、３９％及び７６％官能化一級アミノ基を有するＤ−フルクトース結合Ｂ−ＰＥＩ製造できた。
【００４４】
３．フルクトース残基における保護基の分離
イソプロピリデン保護基を水の存在下で酸分解した。具体的には、２Ｍ  ＨＣｌを用いて、Ｄ−フルクトース誘導体を結合するカチオン性ポリマーを約４０℃で加熱した。水に対して透析（セルロースエステル、ＭＷＣＯ：５００−１０００Ｄａ）し、Ｄ−フルクトース官能化Ｂ−ＰＥＩを得た。
【００４５】
ポリマーＰ３の生物学的評価を徹底的に行った。
【００４６】
ａ）細胞毒性及び血液適合性
図１は、ポリマーＰ１，Ｐ２及びＰ３のアラマーブルーアッセイによる、細胞タイプ依存の細胞毒性の研究結果を示す。未処理細胞の活力パーセンテージを１００％とした。細胞は特定のポリマー濃度で２４時間処理した。
【００４７】
驚くべきことに、Ｄ−フルクトース結合ポリマーＰ３は乳ガン細胞株ＭＤＡ−ＭＢ−２３１に対し高い毒性を示した一方、非ガン細胞（ＨＵＶＥＣ及びＬ９２９）に対しては細胞活力の顕著な低下を示さなかった。ポリマーＰ２及びＰ１は、いかなる選択性も示さなかった（図１）。
【００４８】
図２Ａは、特定濃度のポリマーの赤血球凝集アッセイを示す。Ｂ−ＰＥＩをポジティヴ対照とし、ＰＢＳをネガティヴ対照とした。図２Ｂは、特定濃度のポリマーとのインキュベーションに対する赤血球の溶血アッセイを示す。トリトンＸ−１００をポジティヴ対照（１００％溶血）とし、ＰＢＳをネガティヴ対照（１．９９％）とした。溶血２％未満の値を「非溶血性」、２〜５％を「軽溶血性」、＞５％を「溶血性」に分類する。これら数値は、３測定値の平均値（±標準偏差）を表す。
【００４９】
ポリマーＰ１及びＰ２とは対照的に、ポリマーＰ３は赤血球の凝集及び溶血を惹起しない（図２）。
【００５０】
ｂ）ポリプレックス形成の形成速度と安定性
遺伝物質をコンプレックス化する能力は、使用されるカチオン性ポリマーの主たる関心事である。これを検証する目的で、カチオン性ポリマーの全窒素原子の総計（Ｎ）と遺伝物質の全リン原子の総計（Ｐ）との比（Ｎ／Ｐ比）について、異なる数値で試験した。図３Ａ及び３ＢはポリマーＰ１、Ｐ２及びＰ３とｐＤＮＡとのポリプレックス形成と安定性を示す。図３Ａは、特定のＮ／Ｐ比（エチジウムブロマイドクエンチアッセイ）における結合親和性を示し、図３ＢはＮ／Ｐ比２０且つヘパリン（０〜６０ＵｍＬ−１）使用下でのポリプレックスの解離アッセイを示す。これら数値もまた、３測定値の平均値±Ｓ．Ｄ（ｎ＝３）を表す。
【００５１】
Ｄ−フルクトース結合ポリマーＰ３は、Ｎ／Ｐ比＞１５において安定なポリプレックス形成を示し、更にヘパリン存在下における遺伝物質の迅速な遊離を示す（図３）。
【００５２】
ｃ）ポリプレックスの大きさ
【００５３】
【表１】
2020512454.tif 000009
【００５４】
ＨＢＧバッファー中におけるＰ１〜Ｐ３（Ｎ／Ｐが２０）のポリプレックスの大きさとゼータ電位（動的及び電気泳動的光散乱により測定）を上の表に示す。
【００５５】
ｄ）細胞取り込み
細胞毒性の研究結果をサポートする目的にて、ポリマーを種々の染料（Ｃｙ−５及びローダニン−ＳＣＮ）でマークした。当該細胞株の細胞と共にインキュベートし、フローサイトメトリー（ＦＡＣＳ）と共焦点レーザー走査型顕微鏡（ＣＬＳＭ）にて結果を評価した。
【００５６】
図４に細胞取り込みの研究結果を示す。ポリマーＰ１〜Ｐ３のポリプレックスを、ＹＯＹＯ−１でマークしたｐＤＮＡ及びＬ９２９細胞、ＨＵＶＥＣ細胞又はＭＤＡ−ＭＢ−２３１細胞と共にインキュベートした。図４のグラフは、ポリマー無しのｐＤＮＡ対照（点で表す）に対する全生細胞の相対平均蛍光強度（ＭＦＩ）を示す。これら数値もまた、３測定値の平均値±Ｓ．Ｄ（ｎ＝３）を表す。
【００５７】
ここで、Ｐ１及びＰ２は全Ｎ／Ｐ比において、試験した全細胞株において非特異的な細胞取り込みを（５〜６０％）示す。これに反してＰ３は、Ｐ１及びＰ２（２０〜３０％）と比較して、乳ガン細胞株ＭＤＡ−ＭＢ−２３１において顕著に向上した細胞取り込み（６０％、Ｎ／Ｐ＝５０）を示す。更にＰ３は、非乳ガン細胞株Ｌ９２９及びヒトプラマリ細胞株ＨＵＶＥＣにおいて明確に低減した細胞取り込み（それぞれ２０％及び５％、Ｎ／Ｐ＝５０）を示す。直接の前駆体であるＰ２とＤ−フルクトース結合ポリマーＰ３の間におけるＭＤＡ−ＭＢ−２３１取り込み挙動の明確な差異は、糖分子の優れたターゲット機能を証明するものである。図４の柱状バーは細胞の取り込み分を反映すると同時に、ｐＤＮＡ取り込みによる蛍光のおよその値を示す。
【００５８】
これらの結果は、染料でマークされたポリマーと共に細胞をインキュベートした場合、共焦点レーザー走査型顕微鏡下の細胞でも観察された。Ｎ／Ｐが５０のとき、Ｌ９２９におけるＰ３の蛍光強度は小さく、ＭＤＡ−ＭＢ−２３１細胞において高かった。これに対し、ポリマーＰ１及びＰ２は逆な傾向を示した。生細胞での細胞取り込みの研究結果は、細胞毒性アッセイの結果と一致するため、Ｄ−フルクトース結合ポリマーＰ３の細胞タイプ選択性が明らかである。
【図面の簡単な説明】
【００５９】
【図１】
【図２Ａ】
【図２Ｂ】
【図３Ａ】
【図３Ｂ】
【図４】
【図５】
【図１】
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【図２Ａ】
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【図２Ｂ】
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【図３Ａ】
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【図３Ｂ】
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【図４】
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【図５】
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【国際調査報告】
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