(57)【要約】  本発明は、食品、医薬および化学工業の分野における多糖類の分解方法に関する。特に、多糖類の分子鎖は、オゾンにより、低分子量の多糖類、オリゴースおよび／またはオリゴ糖類に切断される。多糖類は、植物、伝統中国薬用材料、動物、真菌、または微生物から抽出された直鎖または分岐グリカン、およびその硫酸化またはエステル化により形成された硫酸化多糖類またはエステル化多糖類を含む。反応における酸化剤として、オゾンは、単独で使用することができ、または、反応を促進するために塩基、金属イオン、過酸化水素、紫外線、もしくは活性炭の触媒作用下で使用することができる。本発明における多糖類の分解方法は、従来の酸触媒分解方法と比較して穏やかな反応条件を使用し、高い反応効率および制御可能な反応過程を有し、酸の使用を必要とせず、かつ、環境汚染を低減させる。【特許請求の範囲】
【請求項１】
多糖類の糖鎖を酸化分解反応に供するように、多糖類の水溶液をオゾンと接触させることを特徴とする、水溶性多糖類の制御可能な分解方法。
【請求項２】
オゾンの消費量を制御して、標的分子量を有する分解された多糖類またはオリゴ糖類を製造する、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
オゾンの流速および導入時間を制御することにより、オゾン消費量の制御を行う、請求項１または２に記載の方法。
【請求項４】
分解反応を加圧反応器中で行い、ここで、反応器の圧力が０．１〜１．０ＭＰａである、請求項１〜３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項５】
反応を常圧反応器中で行う、請求項１〜４のいずれか一項に記載の方法。
【請求項６】
多糖類が、１〜４０％、好ましくは４〜３０％、より好ましくは８〜２５％水溶液に含まれる、請求項１〜５のいずれか一項に記載の方法。
【請求項７】
分解反応の時間が４時間を超えない、好ましくは３時間を超えない、請求項１〜６のいずれか一項に記載の方法。
【請求項８】
反応を２０〜６０℃、好ましくは２０〜５０℃の温度で行う、請求項１〜７のいずれか一項に記載の方法。
【請求項９】
多糖類の溶解を促進するために、多糖類水溶液の調製中にｐＨを３〜１０に調整することをさらに含んでなる、請求項１〜８のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１０】
多糖類が天然由来の水溶性多糖類である、請求項１〜９のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１１】
多糖類が、天然由来の多糖類の分解により得られた水溶性多糖類である、請求項１〜１０のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１２】
多糖類が化学修飾水溶性多糖類である、請求項１〜１１のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１３】
化学修飾多糖類が、硫酸化多糖類、リン酸化多糖類、ホルミル化多糖類およびアセチル化多糖類からなる群から選択される、請求項１〜１２のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１４】
多糖類が、ヤマブシタケ多糖類、マツホド多糖類、シロキクラゲ属多糖類、シイタケ多糖類、霊芝多糖類、ナガバクコ多糖類、ゲンゲ属多糖類、アルギン、ポリマンヌロン酸、およびポリグルロン酸を含む、植物または伝統中国薬用材料から抽出された多糖類である、請求項１〜１３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１５】
多糖類が、ヘパリン、ヘパラン硫酸、コンドロイチン硫酸、デルマタン硫酸、ヒアルロン酸、およびキトサンを含む動物由来の多糖類である、請求項１〜１４のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１６】
多糖類が、キサンタンガムを含む、微生物から抽出された多糖類である、請求項１〜１５のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１７】
オゾン消費量が、多糖類固体に対して１０〜５００ｍｇ／ｇの多糖類である、請求項１〜１６のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１８】
酸化分解反応を触媒の存在下または非存在下で行う、請求項１〜１７のいずれか一項に記載の方法。
【請求項１９】
酸化分解反応を触媒の存在下で２時間以内に行う、請求項１〜１８のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２０】
触媒が、塩基、金属イオン、過酸化水素、紫外線および活性炭の１以上である、請求項１〜１９のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２１】
塩基が、水酸化ナトリウムもしくは水酸化カリウム、炭酸ナトリウムもしくは炭酸カリウム、またはリン酸ナトリウムもしくはリン酸カリウムである、請求項１〜２０のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２２】
金属イオンが、鉄イオン、ニッケルイオン、コバルトイオン、またはマンガンイオンであり得る、請求項１〜２１のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２３】
反応停止後、エタノールを１０〜９０％の体積濃度（Ｖ／Ｖ）で加えて沈殿させる、請求項１〜２２のいずれか一項に記載の方法。
【請求項２４】
反応停止後、限外濾過膜を用いて濃縮を行い、ここで、選択される限外濾過膜は、１〜１００ＫＤａの範囲の分子量カットオフを有する、請求項１〜２３のいずれか一項に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、食品、医薬および化学工業の分野における多糖類の分解、特に、低分子量の多糖類、オリゴース(oligoses)またはオリゴ糖類を生成するためのオゾンの存在下での多糖類の酸化分解に関する。本発明の方法は、天然抽出多糖類ならびに硫酸化多糖類、リン酸化多糖類、ホルミル化多糖類またはアセチル化多糖類を含む化学修飾多糖類の両方に適用可能である。
【０００２】
発明の背景
タンパク質、核酸および脂質と同様に、多糖類は、生物体を構成する基本物質である。多糖類は、植物細胞壁および微生物細胞壁ならびに動物の背甲の構造物質うちの１つであり、例えば、植物細胞壁におけるセルロース、藻類細胞壁における藻類多糖類、および微生物細胞壁におけるＮ−アセチルアミノデキストランが挙げられる。多数の活性多糖類が動物細胞および体液中に存在しており、最も一般的なものはグリコサミノグリカンである。これらの多糖類は、形状が直鎖状、分岐状または網状であり得るグリコシド結合により結合された単糖類分子から形成されるポリマーである。多糖類はしばしば、ｉｎ  ｖｉｖｏにおいてアミノ酸、脂質などと関連しており、糖タンパク質および糖脂質を形成し、種々の生体機能を発揮する。
【０００３】
天然抽出多糖類は、食品、医薬、および日常的な化学工業において広く使用されており、例えば、食品におけるデンプン、医療製品におけるシイタケ多糖類および霊芝多糖類、抗凝固薬ヘパリン、ゼリーおよび練り歯磨きにおける増粘剤アルギン酸ナトリウムなどが挙げられる。天然抽出多糖類は、それらの物理化学的特性を変化させるために化学修飾することができる。例えば、酸性アルギン酸は、硫酸化時に酸性条件で大幅に改善した水溶性を有し、かつ、酢酸によるアセチル化アルギン酸の形成時に低い水溶性および大幅に増加した粘度を有する。化学修飾により、多糖類の薬理活性も変化する。例えば、ポリグルロン酸は硫酸化されて、抗腫瘍活性を有する硫酸化ポリグルロン酸を形成する。さらに、多糖類の分解は、慣用の多糖類修飾戦略でもある。すなわち、高分子量を有する多糖類が、低分子量を有する多糖類またはオリゴ糖類に分解され、それにより、多糖類の粘度が低下するか、または、ｉｎ  ｖｉｖｏにおけるその薬理活性が向上する。前者の例はオリゴキトサンであり、後者の例は低分子量ヘパリンである。
【０００４】
最も慣用の多糖類分解方法は、酸分解である。すなわち、加熱条件下で、グリコシド結合を酸性水中で加水分解し、糖鎖を切断する。酸加水分解の方法は、総ての多糖類に好適なわけではない。例えば、ヘパリンの構造は、水中での直接酸分解の場合は容易に破壊され得る硫酸塩を含有するため、ヘパリンから低分子量ヘパリンを調製する製造方法においては、酸加水分解を使用することはできない。低分子量ヘパリンを調製する既存の製造方法は、亜硝酸法、β脱離法および過酸化水素分解法を含む。さらに、ヘパリナーゼ、過ヨウ素酸および次亜塩素酸によるヘパリンの分解が報告されている。
【０００５】
オゾンは、有機物を除去するための有機物の完全酸化分解のための強力な酸化剤として使用され得る。例えば、オゾンは、下水処理に広く使用され、芳香環化合物および不飽和二重結合オレフィン化合物を現有する下水の処理に特に好適である（例えば、ＣＮ１１８２０４７ＣおよびＣＮ１１３５１１７Ｃを参照）。さらに、オゾンは、食品、医療機器、医薬品および環境の消毒および滅菌にも使用される。オゾンの下水処理能力ならびに滅菌効果および消毒効果を向上させるために、当業界で使用されるオゾン酸化方法は、例えば、ＣＮ１０４３１０５３４Ｂ、ＣＮ１２７５８８３Ｃ、ＣＮ１０２１５１５６７Ｂ、ＣＮ１０２８９７８９５Ｂ、ＣＮ１０４１９２９８１Ｂなどに記載のとおり、触媒の存在下で行われる。しかしながら、多糖類の制御可能な分解におけるオゾンの使用は、報告されていない。
【０００６】
上記のように、最も一般的な多糖類分解方法は、酸分解である。この方法は、多大な酸消費量を必要とする。反応過程は、反応を促進するために高温および高圧をしばしば必要とする。反応完了後、中和のために大量の塩基を加える必要がある。製造過程中、大量の塩が生成されるため、下水処理が比較的困難となる。酸分解は、ヘパリンなどの酸感受性の多糖類には好適ではない。既存の方法では、酵素性分解方法は、強力な特異性を有するが、反応効率が低く、コストが高いため、大規模工業生産には好適ではない。過酸化水素分解方法に関しては、過酸化水素は、高濃度で不安定であり、貯蔵条件の高い要求が提唱される。過剰な塩基またはチオ硫酸ナトリウムを加えることにより、過剰な過酸化水素を除去する必要がある。過ヨウ素酸または次亜塩素酸の分解方法は、相当なハロゲン元素汚染を生じさせる。亜硝酸法およびβ脱離法は、特異的な構造を有する多糖類に対してのみ好適であり、適用範囲が狭く、相当な環境汚染および高い製造コストをもたらす。
【発明の概要】
【０００７】
本発明は、オゾンによる多糖類の分解に基づいた、低分子量の多糖類またはオリゴ糖類を製造する製造方法を提供し、よって、多糖類を分解するための既存の製造技術システムを上回る重要な新規方法を提供する。この方法は、酸または塩基の使用量を大幅に減少させる。反応過程は、制御可能かつ効率が高く、高い水溶性を有する硫酸化多糖類の分解に特に好適であり、それにより、硫酸塩の損失が回避される。
【０００８】
本発明の１つの側面は、多糖類の糖鎖を酸化分解反応に供するように、多糖類の水溶液をオゾンと接触させることを特徴とする、水溶性多糖類の制御可能な分解方法に関する。本発明者らは、反応条件およびオゾン生成の流束を制御することにより、多糖類の酸化反応を効率的かつ制御可能に行うことができ、所望の範囲の分子量を有する分解された多糖類またはオリゴ糖類ですら高収率で得ることができることを見出した。本発明は、１〜１００ＫＤａの範囲にある分子量を有する分解された多糖類を得るのに特に好適である。
【０００９】
本発明は、以下の利点を提供する。１）オゾンを用いた多糖類を分解する新規方法は、酸分解で必要とされる高温および高圧の反応条件を必要とすることなく、穏やかな反応条件を有する。２）新規方法は、酸性およびアルカリ性両方の条件下での反応を可能とし、酸性条件下で不溶性である多糖類は、アルカリ性条件下で溶解された後、反応することができる。３）新規方法は、糖構造における酸または塩基感受性基に影響を及ぼさず、これらの重要な官能基を最大限まで保持し、これは、生物活性のある低分子量の炭水化物薬剤の調製にとって特に重要である。４）オゾン源は容易に入手可能であり、単純操作しか関与しない工業生産における工業グレードのオゾン発生器により調製することができる。５）オゾンは、自動的に酸素に分解され、環境中に一過性に存在するのみであり、生成物中には残存しない。未反応のオゾンは、環境汚染を生じさせることなく、排気ガス回収装置により処理することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１０】
【図１】図１は、多糖類の分解率に対する触媒の効果を示すグラフである。
【図２】図２は、多糖類のオゾン分解生成物の神経細胞に対する保護効果を示す。
【００１１】
発明の詳細な説明
本発明の種々の側面を以下に詳細に説明する。しかしながら、本発明は、これらの特定の実施形態に限定されない。当業者ならば、以下の実質的な開示を踏まえ、本発明に多少の改変および調整を行うことができ、このような改変も、本発明の範囲に包含される。
【００１２】
本発明は、酸化剤としてのオゾンを用いた、多糖類の酸化方法に関する。本発明に使用され得る多糖類は、植物、伝統中国薬用材料、動物または微生物から抽出された天然由来の多糖類、およびその化学修飾生成物を含み、その例としては、限定されるものではないが、以下のものが挙げられる。
１）ヤマブシタケ多糖類、マツホド多糖類、シロキクラゲ多糖類、シイタケ多糖類、霊芝多糖類、ナガバクコ多糖類、ゲンゲ属多糖類、アルギン、ポリマンヌロン酸、およびポリグルロン酸などの植物および伝統中国薬用材料から抽出された多糖類；
２）ヘパリン、ヘパラン硫酸、コンドロイチン硫酸、デルマタン硫酸、ヒアルロン酸、およびキトサンなどの動物多糖類；
３）キサンタンガムなどの微生物から抽出された多糖類；ならびに
４）硫酸化多糖類、リン酸化多糖類、ホルミル化多糖類およびアセチル化多糖類を含む、上記の１）、２）および３）に記載の多糖類の化学修飾生成物。
【００１３】
本発明のいくつかの実施形態では、多糖類の原料は、ヤマブシタケ多糖類、マツホド多糖類、シロキクラゲ多糖類、シイタケ多糖類、霊芝多糖類、ナガバクコ多糖類、ゲンゲ属多糖類などの伝統中国薬用材料から抽出される。
【００１４】
本発明の他の実施形態では、多糖類の原料は、アルギン、ヘパリン、ヘパラン硫酸、コンドロイチン硫酸、デルマタン硫酸、ヒアルロン酸、キトサン、キサンタンガムなど、市販されている。
【００１５】
本発明のさらに他の実施形態では、部分分解を受けている多糖類は、公知の抽出技術により得ることができ、例えば、ポリマンヌロン酸（ＰＭ）、ポリグルロン酸（ＰＧ）、硫酸化ポリマンヌロン酸（Ｓ−ＰＭ）、および硫酸化ポリグルロン酸（Ｓ−ＰＧ）が挙げられる。
【００１６】
特に断りのない限り、本発明は、以下の工程により、伝統中国薬用材料から多糖類を抽出する。１）薬用材料を乾燥させた後、粉砕する。薬用材料粉末５．０Ｋｇを蒸留水５０Ｌに１２時間浸漬する。２）液体を８時間加熱還流し、冷却し、濾布で濾過する。３）エタノール（９５％）１００Ｌを濾液に加えて沈殿させ、１２時間静置する。上清を除去し、沈殿を遠心分離により回収し、減圧下で真空乾燥させ、粉砕し、秤量して多糖類生成物を得る。例示的抽出により得た多糖類の重量を例１〜７に示す。
【００１７】
ポリマンヌロン酸（ＰＭ）およびポリグルロン酸（ＰＧ）の調製方法は、以下のように簡潔に記載することができる。ポリマンヌロン酸（ＰＭ）およびポリグルロン酸（ＰＧ）は、アルギン酸ナトリウム分子においてそれぞれポリマンヌロン酸断片およびポリグルロン酸断片である。それらは、アルギン酸ナトリウムを分解することにより調製することができ、次いで、酸沈殿による分画を行い、それぞれポリマンヌロン酸（ＰＭ）およびポリグルロン酸（ＰＧ）を得る。例示的抽出方法は、特許ＣＮ１００４６７４９２Ｃに示す。例示的抽出方法は、例９に示す。
【００１８】
硫酸化ポリマンヌロン酸（Ｓ−ＰＭ）および硫酸化ポリグルロン酸（Ｓ−ＰＧ）の調製方法は、以下のように簡潔に記載することができる。上記で得られたポリマンヌロン酸（ＰＭ）およびポリグルロン酸（ＰＧ）粉末を、別々にピリジンに分散させ、スルホン化剤としてのクロロスルホン酸と反応させる。反応完了後、それらを精製し、乾燥させ、それぞれ硫酸化ポリマンヌロン酸（Ｓ−ＰＭ）および硫酸化ポリグルロン酸（Ｓ−ＰＧ）を得る。例示的抽出方法は、特許ＣＮ１２１３０７１Ｃに示す。例示的抽出方法は、例１２および例１３にも示す。
【００１９】
多糖類の酸化反応を行うために、多糖類を最初に水に溶かし、場合により、加熱して溶解を促進させる。ｐＨを所望の範囲に調整し、溶液を加熱し、撹拌する。オゾン発生器の電源を入れ、生成されたオゾンを反応器に導入し、好ましくは、撹拌を伴う。反応中、不完全に反応したオゾンを、排気ガス回収装置により処理することができる。反応完了後、オゾンの導入を停止する。反応溶液を室温まで冷却した後、引き続き、精製、濃縮および乾燥工程を行う。
【００２０】
オゾンによる多糖類の酸化は、糖環のＣ−Ｃ結合またはグリコシド結合に作用する。
【００２１】
本発明の出願人は、オゾンは多糖類の末端に対する開環作用も有し、これは、多糖類の末端を酸化して、１以上のＣＨ−ＯＨ構造単位の損失を引き起こし得ることも見出した。多糖類の末端構造のこのような修飾は、分解された多糖類の生物活性を向上させることができる。
【００２２】
酸化反応に用いる多糖類の濃度は、水中で通常は１〜４０％、好ましくは４〜３０％、より好ましくは８〜２５％である。多糖類の濃度は、高すぎてはならない。濃度が高すぎると、反応系の粘度が大きくなりすぎる場合があり、これは、酸化剤の分散に対して伝導性ではない。その上、多糖類の濃度は、低くすぎてはならない。そうではない場合、酸化反応の効率が損なわれる。出願人は、多糖類溶液の濃度が１〜２０％であり、かつ、粘度が１〜１０ｍＰａ・ｓである場合に、酸化反応を円滑に行うことができることを見出した。本明細書に記載の粘度は、ウベローデ粘度計または回転粘度計により測定される（例えば、中国薬局方における粘度測定方法を参照）。
【００２３】
オゾンは、オゾン発生器により供給され得る。当業界で慣用のオゾン発生器は、高圧放電を通じて酸素を処理することにより、オゾンを提供する。オゾンの生成量は、ガス流速およびガス生成時間を考慮に入れ、オゾン濃度計を用いて出口のオゾン濃度を測定することにより、決定することができる。本発明において、オゾン発生器のオゾン生成速度は、オゾン発生器の操作電力および酸素ボンベの出口ガス流速を調整することにより、１ｇ／ｈｒ〜１０ｇ／ｈｒの間に制御される。加圧反応のために、酸素ボンベは、オゾンの調製に必要な酸素に加えて、圧力を提供することができる。本発明における反応系の圧力は、０．１ＭＰａ〜１．０ＭＰａの範囲である。常温および常圧では、約１ｇの純オゾンガスを１Ｌの水に溶かすことができる。圧力が増加するにつれ、オゾンの溶解度が増加し、それにより、溶液中のオゾン濃度が増加し、その結果、オゾンと反応基質との間の衝突確率が増加し、反応が促進される。常温および常圧では、溶液中のオゾン濃度は、中華人民共和国国家標準ＧＢ／Ｔ５７５０．１１−２００６「飲料水の標準試験法」に明示されているヨウ素滴定法により測定することができる。本発明におけるオゾン消費量は、多糖類固体に対して多糖類１０〜５００ｍｇ／ｇである。不完全に反応したオゾンは、水酸化ナトリウムおよびチオ硫酸ナトリウムを含んでなる排気ガス回収装置に順次導入する。本発明のいくつかの実施形態では、反応完了前に、オゾン濃度を４時間以下、好ましくは、３時間以下維持する。
【００２４】
酸化反応中、加熱およびｐＨの両方が、多糖類の溶解度および反応速度に影響を及ぼし得る。ほとんどの多糖類は、冷水中よりも熱水中において高い溶解度を有し、温度を上げると、反応を促進させることができる。一般に、反応中、温度は約２０〜６０℃、好ましくは２０〜５０℃に維持される。酸性条件下で難溶性である一部の弱酸性カルボキシル含有多糖類に関しては、ｐＨをアルカリ性に調整することができる。反応のｐＨは通常、３〜１０に維持される。アルギン酸ナトリウム、ポリグルロン酸、ポリマンヌロン酸などのカルボキシル含有多糖類に関しては、ｐＨは、７〜１１の間、好ましくは８〜１０の間、より好ましくは８〜９に調整することができる。
【００２５】
好ましい実施形態では、本発明の方法は、高圧下で行われる。本発明者らは、高い反応圧力下および連続撹拌下では、オゾン消費量が、多糖類固体に対して多糖類１０〜５００ｍｇ／ｇに制御される場合、８０％超、さらには９０％超または９５％以上の全収率を達成することができ、分解生成物の分子量分布は均一であることを見出した。好ましくは、反応は約４時間で完了することができ、これは、酸分解法および過酸化水素分解法の両方ではほとんど達成され得ない。いずれの理論にも縛られることなく、出願人は、本発明の方法は、強力な酸化作用を有する酸化剤を用いることにより、ならびに、反応圧力および反応時間ならびに溶液の濃度、酸化剤の量などを制御することにより、非常に高い多糖類の収率を達成できると考える。生成物は、均一な分布および重要な産業上の利用価値を有する。この方法は、製造コストおよび環境汚染を低減させることができる。
【００２６】
さらに重要なことに、本発明の方法により調製されたオリゴ糖類は、ヒトまたは動物体および正常細胞に対して低い毒性または無毒性を示し、大量寛容を示す生物活性生成物に調製することができる。例えば、本発明の方法による例１７において、マンヌロン二酸(mannuronic diacid)オリゴ糖生成物が得られ、これは、神経細胞を保護する重要な生物活性を示し、毒性は検出され得ない。
【００２７】
さらに好ましい実施形態では、本発明の方法を用いることにより、酸化反応器の圧力０．１〜１．０ＭＰａおよび多糖類水溶液の濃度８〜２５％という条件下で、生物活性のある分解された多糖類を高収率で得ることができる。オゾン消費量は、多糖類固体に対して多糖類１００〜３００ｍｇ／ｇに制御される。特に、本発明の方法は、アルギン酸ナトリウム、ポリグルロン酸、ポリマンヌロン酸などのカルボキシル含有多糖類の分解に好適である。限定されるものではないが、ヤマブシタケ、マツホド、シロキクラゲ、シイタケ、霊芝、ナガバクコ、ゲンゲ属などを含む天然の薬用材料から抽出される多糖類に関しては、本発明は、それらを約２０〜１００ｋＤａ、より好ましくは２０〜８０ｋＤａの分子量に分解するのに特に好適である。比較的低い分子量を有する多糖類に関しては、それらは、約０．５〜２０ｋＤａの分子量を有する分解生成物に分解され得る。さらに、多糖類の起源を問わず、本発明の制御可能な分解方法は、生成物の均一な分解を達成することができ、操作方法は頑強である。
【００２８】
反応中、多糖類の分解度を継続的にモニタリングし、多糖類の分子量が所望の範囲より低い場合、オゾンの導入を停止する。溶液を室温まで冷却した後、引き続き、処理を行う。具体的には、１）溶液を直接濃縮し、乾燥させ、固体生成物を得る；または、２）エタノールの最終体積濃度が１０％〜９０％の間に達するように、特定の容量の９５％エタノールを加える。溶液を静置して沈殿を得、必要に応じて、それを冷蔵庫内で４℃まで冷却し、沈殿をより完全にさせ、次いで、分離して目的生成物を得ることができる。さらに、必要に応じて、反応後の溶液を、限外濾過膜濃縮装置に投入し、所望の分子量カットオフ範囲を有する限外濾過膜を用いた濾過により濃縮することができる。膜濃縮方法は、分子量が低すぎる未分解の多糖類またはオリゴ糖断片を除去することができ、それにより、あまり大きくない分子量および分布を有する多糖類分解生成物が得られる。
【００２９】
本発明の方法は、穏やかな反応条件を使用する。ヘパリン、ヘパラン硫酸、硫酸化ポリグルロン酸などの酸および塩基に対して抵抗性ではない多糖類に関しては、反応を中性に近い条件および室温条件下で行うことができ、それにより、硫酸塩の損失に起因する生物活性の減少が避けられる。オゾンフリーラジカルの生成速度は、塩基、金属イオン、過酸化水素、紫外線照射などによって促進することができ、それにより、多糖類の分解反応が促進される。反応開始時または反応を一定時間行った後に、触媒を加えてもよい。好ましい実施形態では、酸化反応が完全変換の約５０〜８０％に達した際に、触媒を加えるが、これにより、多糖類の分解率および分解度を増加させることができ、かつ、均一なサイズ分布を有する（約１〜８ｋＤａ、好ましくは２〜６ｋＤａ、より好ましくは２．５〜５ｋＤａの分子量を有する）オリゴマーオリゴ糖類を得ることができる。
【００３０】
例示的実施形態では、本発明の方法は、以下の工程を含んでなる。
【００３１】
（１）多糖類溶液の調製：多糖類粉末を秤量し、１〜２０％の濃度まで水中で調合する。一部の多糖類は、加熱して溶解を促進する必要があるか、または、多糖類を完全に溶解できるように、水酸化ナトリウムを加えることにより、アルカリ性ｐＨに調整する必要がある。溶液を加熱および撹拌し、温度およびｐＨを調整する。
【００３２】
（２）オゾンの導入および酸化分解反応過程：多糖類溶液を調製したら、オゾン発生器の電源を入れ、オゾン濃度が約１０％となるように、酸素ボンベのガス出口のガス流速およびオゾン発生器の放電出力を調整する。この濃度で放電することにより、最高効率でオゾンが生成される。酸素流速を１Ｌ／ｍｉｎ〜１０Ｌ／ｍｉｎの範囲に調整し、対応する放電出力は１０Ｗ〜１００Ｗの間である。オゾン発生器が安定してオゾンを供給した後、溶液を連続的および速やかに撹拌しながら、オゾンを底部の多糖類溶液に導入する。密閉した反応器の上部に細孔を作製し、排気ガスを排気ガス処理装置に導く。
【００３３】
（３）多糖類分解生成物の処理：分解反応が事前に設定した時点まで進行したら、オゾンの導入を停止し、加熱装置を除去し、撹拌を継続する。室温まで冷却した後、１）多糖類分解生成物を濃縮装置に直接移し、濃縮後に真空でオーブン乾燥させる；あるいは、２）エタノールの終濃度が１０％〜９０％の間になるように、特定の容量の９５％エタノールを加えた後、アルコール沈殿し、静置し、沈殿を得、遠心分離し、減圧下乾燥を行う；あるいは、３）分解生成物を０．２２μｍ限外濾過膜で濾過し、濃縮のために限外濾過膜装置に移し、ロータリーエバポレーターでさらに濃縮し、減圧下で乾燥させる。
【００３４】
本発明で用いる分析および測定方法
分子量の測定
多糖類の分子量は一般に、ＧＰＣゲル結合示差屈折率検出器（ＲＩＤ）および／または多角度光散乱（ＭＡＬＬＳ）により測定する。本発明の例では、ＧＰＣ−ＲＩ−ＭＡＬＬＳ、すなわち、示差屈折率検出器および多角度光散乱計と組み合わせたＧＰＣゲルクロマトグラフィーを使用して、種々の多糖類の分子量を測定する（関連技術の詳細については、中国特許ＣＮ１０１２６１２０３Ｂを参照）。特定の手順を以下に記載する。
【００３５】
乾燥多糖類サンプル１００ｍｇを正確に量り、濃度１ｍｇ／ｍＬに達するまで水に溶かし、０．２２μｍ濾過膜に通して試験サンプル溶液を得る。分子量をゲル排除クロマトグラフィーにより測定する。試験条件は、以下のとおりである。
クロマトグラフィーカラム：ＴＳＫ３０００
移動相：０．１ｍｏｌ／Ｌ  ＮａＣｌ
注入量：１０μＬ
流速：１ｍＬ／ｍｉｎ
検出器：示差屈折率検出器、および１８角度光散乱計
【００３６】
検出結果およびデータ処理：クロマトグラムは、機器固有のクロマトグラム処理ソフトウエア（ＡＳＴＲＡ）により処理し、サンプルの分子量は、Ｚｉｍｍの外挿法により算出する。
【００３７】
多糖類の分解率に対する触媒の効果
オゾンによる多糖類の分解率に対する触媒の効果を調べるために、分解時間による多糖類の分子量の変化もモニタリングし、触媒の存在下で異なる時点で採取したサンプルの分子量を検出し、分解効果を、触媒を加えない時に認められたものと比較する。本発明において、オゾン酸化反応を触媒するために、以下の触媒または反応条件を使用する。塩基（水酸化物）、金属イオン、過酸化水素、活性炭および紫外線、ここで、金属イオンは、鉄イオンおよびその可溶性塩、ニッケルイオンおよびその可溶性塩、コバルトイオンおよびその可溶性塩、ならびにマンガンイオン（二酸化マンガン）を含む。例示的操作は、例１６および図１に示す。
【００３８】
硫酸塩含量の測定
硫酸化多糖類中の硫酸塩の含量は、以下のようにイオンクロマトグラフィーにより測定する。
【００３９】
硫酸塩標準溶液を用いて、濃度１、５、１０、２５、５０、および１００ｐｐｍの一連の標準溶液を調製し、標準曲線をプロットする。硫酸ポリグルロン酸多糖類のナトリウム塩１０ｍｇを、正確に２回量る。１つのアリコートを５ｍＬメスフラスコに入れ、溶解し、好適な量の脱イオン水で標線まで満たし、よく振り混ぜ、遊離硫酸塩測定用の試験液を得る。別のアリコートを２ｍＬアンプルに入れ、２ｍｏｌ／Ｌトリフルオロ酢酸溶液１ｍＬを正確に加え、加熱密封し、１２０℃で３時間加水分解する。０．２ｍＬを正確に量り、９０℃にて窒素で風乾させる。残渣を水１ｍＬに溶かし、高速で遠心分離する。上清０．２５ｍＬを５ｍＬメスフラスコに正確に量り、水で標線まで満たし、よく振り混ぜ、総硫酸塩測定用の試験液を得る。標準溶液および試験液を、分析のためのイオンクロマトグラフに別々に注入する。
【００４０】
クロマトグラフィー条件：
クロマトグラフィーカラム：Ｍｅｔｒｏｓｅｐ  Ａ  Ｓｕｐｐ  ５−１５０／４．０カラム；カラム温度：３０℃；移動相：３．２ｍｍｏｌ／Ｌ  Ｎａ２ＣＯ３−１ｍｍｏｌ／Ｌ  ＮａＨＣＯ３溶液；阻害剤：０．５％  Ｈ２ＳＯ４溶液；流速：０．７ｍＬ／ｍｉｎ；注入量：１０μＬ。
【００４１】
結果の計算：計算は、以下の計算式に従って、乾燥生成物に基づいて行う：
【数１】
2020507666.tif 000002
【００４２】
本発明の利点を、以下の限定されない例においてさらに示す。しかしながら、例で使用される特定の材料およびその量、ならびに他の試験条件は、本発明を限定するものと解釈してはならない。特に断りのない限り、部およびパーセンテージは両方とも、本発明において質量によって表される。
【実施例】
【００４３】
以下の例において、植物および伝統中国薬用材料から抽出された多糖類の重量、分解収率、ならびに分解前後の分子量などのデータは、表１に記載する。多糖類抽出方法は、伝統中国薬用材料１部を水１０部に加熱還流下で抽出すること、ならびに得られた多糖類を乾燥および秤量することを含んでなる。多糖類の分解は、オゾン条件下で行い、分解前後の分子量は、ＧＰＣ−ＲＩ−ＭＡＬＬＳ法により測定する。分解前後の残存する多糖類の分子量および収率などのデータは、表２に記載する。
【００４４】
例１：
工程（１）：ヤマブシタケ多糖類の抽出。薬用材料を乾燥および粉砕した後、凝縮水回収装置を備えた１００Ｌ反応器に５ｋｇを量り、水５０Ｌに１２時間浸漬し、撹拌し、加熱した。温度が１００℃まで上昇した時に、時間測定を開始した。抽出８時間時に、加熱を停止した。冷却水で５０℃未満まで冷却したら、抽出物を排出し、濾布で濾過した。エタノール（９５％）１００Ｌを加えることにより、濾液を沈殿させ、１２時間静置した。上清を除去し、沈殿を遠心分離により回収し、減圧下で真空乾燥させ、粉砕し、秤量して多糖類生成物５６０ｇを得た。
【００４５】
工程（２）：ヤマブシタケ多糖類の分解。上記で得た多糖類粉末４００ｇを秤量し、水４Ｌと混合し、加熱して溶解を促進させた。それを約４時間静置した。温度を３０℃まで戻すように調整した際、反応系の圧力が０．８ＭＰａに維持されるまで、酸素ボンベの出口圧力を調整した。オゾン発生器の電源を入れ、出力を調整し、オゾン質量濃度を測定し、０．５ｇ／Ｌであった。オゾンを底部の反応溶液に導入し、溶液を速やかに撹拌して、溶液をオゾンと十分に反応させた。反応装置の上部にある減圧弁を介して、排気ガスを排気ガス処理装置に導いた。排気ガス処理装置は、直列の６Ｍ  ＮａＯＨ溶液および１Ｍチオ硫酸ナトリウム溶液から構成される。オゾンを１時間連続供給した後、導入を停止し、撹拌を３０分間継続した。
【００４６】
工程（３）：ヤマブシタケ多糖類の分解生成物の処理：残存するオゾンを吸収させた後、反応装置を解体した。分解多糖類溶液を除去し、ロータリーエバポレーターに移して減圧下濃縮し、真空でオーブン乾燥させた。乾燥後、これを粉砕し、秤量して、多糖類分解生成物３５５．２ｇを得た。
【００４７】
工程（４）：分解前後のヤマブシタケ多糖類の分子量の測定：分解前後のサンプルの分子量を、上記のように測定した。Ｚｉｍｍの外挿法により算出したサンプルの分子量は、以下のとおりであった。ヤマブシタケ多糖類の分子量は、分解前６５０ＫＤａ、分解後６０ＫＤａであった。ヤマブシタケ多糖類およびその分解生成物の重量、分子量、および収率などのデータは、表１に記載する。
【００４８】
例２：
工程（１）：マツホド粉末５．０Ｋｇを秤量し、例１と同じ方法により抽出し、多糖類粉末６１０ｇを得た。
【００４９】
工程（２）における圧力は０．９ＭＰａに設定し、その他のパラメーターは、例１と同じとした。
【００５０】
工程（３）および（４）は、例１と同じであった。分解されたマツホド多糖類３６５．２ｇを、分解後に得た。分解前後の分子量は、それぞれ７４０ＫＤａおよび７７ＫＤａと測定された。結果を表１に示す。
【００５１】
例３：
工程（１）：シロキクラゲ粉末５．０Ｋｇを秤量し、例１と同じ方法により抽出し、多糖類粉末７２０ｇを得た。
【００５２】
工程（２）：圧力は０．２ＭＰａに設定し、分解時間は３時間とし、その他のパラメーターは、例１と同じとした。
【００５３】
工程（３）：反応後のサンプル処理がエタノール沈殿法であったことが、例１と異なる点であった。具体的には、９５％エタノール２容量を濾液に加え、撹拌して沈殿を均一にし、冷蔵庫内に４℃で一晩置いた。その後、上清を吸引し、下層を遠心分離し、沈殿を回収し、オーブンで乾燥させ、粉砕し、２９３．２ｇに秤量した。
【００５４】
工程（４）は、例１と同じであった。分解前後の分子量は、それぞれ５３０ＫＤａおよび４６ＫＤａと測定された。結果を表１に示す。
【００５５】
例４：
シイタケ多糖類の抽出、分解反応、生成物処理および分子量測定は、例３と同じであった。結果を表１に示す。
【００５６】
例５：
工程（１）：霊芝多糖類の抽出工程は、例３および４と同じであった。
【００５７】
工程（２）：圧力は常圧、すなわち０．１ＭＰａに設定し、分解時間は４時間とし、その他のパラメーターは、例３および４と同じとした。
【００５８】
工程（３）：反応後のサンプル処理が、限外濾過膜を介した濃縮であったことが、例３および４と異なる点であった。具体的には、反応溶液を０．２２μｍ濾過膜で濾過した後、２０ＫＤａの分子量カットオフを有する限外濾過膜で濾過し、保持液を回収した。回収した液体を、ロータリーエバポレーターで濃縮し、真空で乾燥させ、２７４．０ｇを得た。
【００５９】
工程（４）は、例３および４と同じであった。分解前後の分子量を、それぞれ測定した。多糖類の分子量は、分解前１，０００ＫＤａ超、分解後２２ＫＤａであった。結果を表１に示す。
【００６０】
例６：
ナガバクコ多糖類の抽出、分解反応、生成物処理および分子量測定は、例５と同じであった。結果を表１に示す。
【００６１】
例７：
工程（１）：ゲンゲ属多糖類の抽出工程は、例５および６と同じであった。
【００６２】
工程（２）：分解時間が３．５時間であったことが、例５および６と異なる点であった。
【００６３】
工程（３）：反応後のサンプル処理が、限外濾過膜を介した濃縮であったことが、例５および６と異なる点であった。具体的には、反応溶液を０．２２μｍ濾過膜で濾過した後、１００ＫＤａの分子量カットオフを有する限外濾過膜で濾過し、保持液を回収した。回収した液体を、ロータリーエバポレーターで濃縮し、真空で乾燥させ、２９３．２ｇを得た。
【００６４】
工程（４）は、例５および６と同じであった。分子量は、分解前７１０ＫＤａ、分解後７５ＫＤａと測定された。結果を表１に示す。
【００６５】
【表１】
2020507666.tif 000003
【００６６】
例８：
以下の８種類の多糖類に関する分解方法および処理方法は、以下のとおりであった。アルギン、ヘパリン、ヘパラン硫酸、コンドロイチン硫酸、デルマタン硫酸、ヒアルロン酸、キトサンおよびキサンタンガム４００ｇをそれぞれ秤量し、水１０Ｌに溶解させたまたはその中で膨張させた。オゾン酸化分解反応の圧力は０．３ＭＰａに設定し、残りの工程は、例５および６の工程（２）と同じであった。
【００６７】
反応後、サンプルを以下のように処理した。分解された反応溶液を、０．２２μｍ限外濾過膜で濾過した後、それを膜濃縮装置に移した。膜濃縮工程は、以下のとおりであった。１）それを最初に１００ＫＤａ限外濾過膜で濃縮し、サンプル容量が最初の容量の３分の１になるまで濃縮した。次に、濃縮を停止し、透過物を回収した。２）透過物を、２ＫＤａの分子量カットオフを有する膜でさらに濃縮した。それが最初の容量の３分の１まで濃縮されたら、水３部を加え、最初の容量の３分の１まで液体を再度濃縮した。次に、保持液を回収した。３）保持液を、ロータリーエバポレーターで濃縮し、真空でオーブン乾燥させ、粉砕し、秤量した。
【００６８】
分解前後の上記８種類の多糖類の分子量の測定方法は、例１〜７と同じであった。アルギン、ヘパリン、ヘパラン硫酸、コンドロイチン硫酸、デルマタン硫酸、ヒアルロン酸、キトサンおよびキサンタンガムの分子量、分解収率および分解後の分子量を、表２に示す。
【００６９】
例９：
ポリマンヌロン酸（ＰＭ）およびポリグルロン酸（ＰＧ）の調製方法は、以下のとおりであった。水２０Ｌをアルギン酸ナトリウム２Ｋｇに加え、加熱して、完全に膨張させた。希ＨＣｌを加え、ｐＨを約４に調整した。反応を１００℃で８時間行った後、加熱を停止し、ＮａＯＨ溶液を加えることにより、ｐＨを調整した。不溶物質を遠心分離により除去し、希ＨＣｌを加えることによりｐＨを２．８５に調整し、沈殿Ａを遠心分離により回収した。ＨＣｌを加えることにより、上清をｐＨ１．０に連続的に調整し、沈殿Ｂを遠心分離により回収した。上記の沈殿Ａおよび沈殿Ｂを、それぞれ減圧下で乾燥させ、粉砕し、秤量した。ポリグルロン酸８００ｇを沈殿Ａから得、ポリマンヌロン酸６００ｇを沈殿Ｂから得た。
【００７０】
例１０：
工程（１）：ポリマンヌロン酸（ＰＭ）の分解方法は、以下のとおりであった。ポリマンヌロン酸粉末４００ｇを秤量し、２０％の濃度まで水に溶かした。この溶液をｐＨ５．０に調整し、５０℃まで加熱し、オゾンで帯電させた。オゾン酸化分解装置は、例１〜８と同じであった。反応系の圧力を０．５ＭＰａに設定し、反応が完了するまで、オゾンを流速１０ｇ／ｈｒで計２時間導入した。
【００７１】
工程（２）：分解生成物の処理：分解された反応溶液を、０．２２μｍ限外濾過膜で濾過した後、それを膜濃縮装置に移した。膜濃縮工程は、以下のとおりであった。１）それを最初に５０ＫＤａ限外濾過膜で濃縮し、サンプル容量が最初の容量の３分の１になるまで濃縮した。次に、濃縮を停止し、透過物を回収した。２）透過物を、２ＫＤａの分子量カットオフを有する膜でさらに濃縮した。それが最初の容量の３分の１まで濃縮されたら、水３部を加え、最初の容量の３分の１まで液体を再度濃縮した。次に、保持液を回収した。３）保持液を、ロータリーエバポレーターで濃縮し、真空でオーブン乾燥させ、粉砕し、秤量した。
【００７２】
工程（３）：分解前後の分子量は、例１〜８と同じ方法で測定した。試験結果を表２に記載する。
【００７３】
例１１：
工程（１）：ポリグルロン酸（ＰＧ）の分解方法：ポリグルロン酸粉末４００ｇを秤量し、水とよく混合し、ＮａＯＨに溶かした。これを測定した結果、ｐＨ９．０であり、２５％の濃度まで調合した。これを７０℃まで加熱し、オゾンを導入した。オゾン酸化分解装置および設定は、例１０と同じであった。反応が完了するまで、オゾンを流速１０ｇ／ｈｒで計２時間導入した。
【００７４】
工程（２）：分解生成物は、例１０と同じ方法で処理した。
【００７５】
工程（３）：分解前後の分子量は、例１０と同じ方法で測定した。試験結果を表２に記載する。
【００７６】
例１２：
硫酸化ポリマンヌロン酸（Ｓ−ＰＭ）の調製方法は、以下のとおりであった。ポリマンヌロン酸２００ｇを秤量し、ピリジン２Ｌを加えた。混合物を撹拌し、均質な懸濁液を得た。懸濁液を約０℃まで濃縮し、予冷クロロスルホン酸−ピリジン溶液（クロロスルホン酸３００ｇを含有する）５００ｍＬをゆっくり加えた。添加完了後、反応が完了するまで撹拌を３時間継続した。混合物を一定時間静置した後、溶媒を濾別し、固体を９５％エタノール５Ｌで洗浄し、残渣ピリジン溶媒を除去した。エタノールを濾別した後、水５Ｌを加えて固形物を溶解し、ＮａＯＨを加えてｐＨを約１２に調整し、結合ピリジンを完全に揮発させた。エタノール５Ｌを加えることにより沈殿を得、遠心分離し、オーブン乾燥させ、粉砕し、秤量し、固体粉末２３０ｇを得た。分子量は、５ＫＤａと測定された。
【００７７】
例１３：
硫酸化ポリグルロン酸（Ｓ−ＰＧ）は、例１２と同じ方法で調製した。分子量が８ＫＤａの固体粉末２４０ｇを得た。
【００７８】
例１４：
硫酸化ポリマンヌロン酸（Ｓ−ＰＭ）の分解方法は、以下のとおりであった。ポリマンヌロン酸粉末２００ｇを秤量し、３０％の濃度まで水に溶かした。この溶液をｐＨ７．０に調整し、５０℃まで加熱し、オゾンで帯電させた。オゾン酸化分解装置および設定は、例１０と同じであった。反応が完了するまで、オゾンを流速１０ｇ／ｈｒで計３時間導入した。
【００７９】
分解生成物処理および分子量測定は、例１０と同じであった。分解前後の硫酸塩含量は、両方とも４０％であった。測定方法に関しては、上記に開示した「硫酸塩含量の測定」で用いた方法を参照のこと。その他の試験結果を表２に記載する。
【００８０】
例１５：
硫酸化ポリグルロン酸（Ｓ−ＰＧ）の分解方法、分解生成物処理および分子量測定は、例１４と同じであった。分解前後の硫酸塩含量は、両方とも３８％であった。その他の試験結果を表２に記載する。
【００８１】
【表２】
2020507666.tif 000004
【００８２】
例１６：
本例は、アルギンのオゾン酸化分解をモデルとして用いて、アルギンの分解率に対する触媒の効果を比較し、調べた。方法は、以下のとおりであった。
【００８３】
工程（１）：１部あたり２００ｇの等質量のアルギン９部を秤量し、それぞれ水２０Ｌに溶かし、加熱して溶解を促進させた。溶解後、温度が４０℃で安定化した際に、触媒を導入した。最初の部を除き、反応溶液の残りの８部の触媒条件は、１ｍＭ  ＦｅＣｌ３、１ｍＭ  ＮｉＳＯ４、１ｍＭ  ＣｏＣｌ３、１ｍＭ  ＭｎＯ２、１０ｍＭ  Ｈ２Ｏ２、２０Ｗ高性能紫外線ランプにより提供される光照射、活性炭微粉末１０ｇ、およびＮａＯＨ  ５ｇであった。
【００８４】
工程（２）：反応条件および反応中のサンプリング。オゾンの流速は、例１と同じであった。圧力は、常圧、すなわち０．１ＭＰａに設定した。オゾンを導入することにより反応を開始し、１０分毎にサンプリングを行い、分子量を測定した。
【００８５】
工程（３）：分子量測定：反応の出発材料であるアルギンの分子量は、０分における分子量であった。他の時点で採取したサンプル溶液を、１０ＫＤａの分子量カットオフを有する透析バッグ中で１２時間透析し、塩、金属イオンおよび反応した小分子断片を除去した。透析後のサンプルを０．２２μｍ濾過膜で濾過し、試験サンプルを得た。測定方法は、例１と同じであった。図１は、上記の反応条件下での多糖類の分子量の経時的変化を示すグラフである。図１から分かるように、選択された触媒は、多糖類の分解を有意に促進することができる。
【００８６】
例１７：
工程１）：マンヌロン二酸(mannuronic diacid)オリゴ糖生成物の調製
ポリマンヌロン酸（ＰＭ）を、例９に記載のとおりに調製した。特定の操作を以下に簡単に記載する。アルギン酸ナトリウム５Ｋｇを約１０％の溶液に調合し、希塩酸を加えることにより、ｐＨを約３．０に調整した。この溶液を８０℃まで加熱し、撹拌した。これを１０時間反応させた後、加熱を停止した。室温まで冷却した後、ＮａＯＨを加えることによりｐＨを９．０に調整し、希塩酸を加えることにより、さらに２．８５に調整した。この溶液を５０００ｒｐｍで１０分間遠心分離した。上清を回収し、ＨＣｌを加えることにより、ｐＨ１．０に調整した。遠心分離後、沈殿を回収し、ロータリーエバポレーターで濃縮し、真空乾燥して、Ｍセグメント中間体１，５００ｇを得た。Ｍセグメント中間体５００ｇを秤量し、蒸留水に溶かして、５Ｌの容量の溶液を調製した。溶液をＮａＯＨでｐＨ６．５に調整し、水浴中で加熱して、反応温度を７５℃に制御した。酸素ボンベの出口圧力を調整し、系の圧力が０．１ＭＰａに安定した際、オゾンを質量濃度流速８ｇ／ｈｒで反応溶液に導入するように、ガス出口のガス流速およびオゾン発生器の出力を調整した。反応の４時間後、オゾンの導入を停止し、好適な量の水を加えて、溶液の濃度を約１０％に調整した。２，０００Ｄａの分子量カットオフを有する限外濾過膜で溶液を濾過し、保持液を回収した。回収した液体を、ロータリーエバポレーターで濃縮し、真空下で乾燥させ、マンヌロン二酸(mannuronic diacid)生成物Ａ  ３５０ｇを得た。
【００８７】
工程２）薬理活性の評価
１．Ａβ誘導性神経細胞傷害に対する生成物Ａの保護効果
試験は、「細胞生存率評価用モデル」に従って行い、試験手順は以下のとおりであった。ＳＨ−ＳＹ５Ｙ細胞（神経芽腫細胞）を９６ウェルプレートに播種した（３，０００個／ウェル）。２４時間後、培地を除去し、投与群に対して、薬剤（１０ｍｇ／ｍＬ）１０μＬ／ウェルを加え、０．５時間前処理した（無血清培養培地に処方；１用量あたり３回）。次に、凝集したＡβ１−４２（Ａβ１−４２は、ＰＢＳ溶液中で１ｍｇ／ｍｌに調合し、インキュベーターにて４℃で２４時間インキュベートし、終濃度２μＭの凝集状態を作り出した）を加え、４８時間インキュベートした。細胞生存率は、ＣＣＫ８により検出した。
【００８８】
結果は、２μＭ  Ａβ１−４２によるＳＨ−ＳＹ５Ｙ細胞の４８時間処理は、有意な細胞損傷を誘発し得、細胞生存率を減少させたが、２５、５０および１００μｇ／ｍＬ生成物Ａは、Ａβにより誘導された細胞生存率の減少を有意に阻害し得たことを示した（図２参照）。上記の結果は、生成物Ａは、低濃度（２５μｇ／ｍＬ）、中濃度（５０μｇ／ｍＬ）、および高濃度（１００μｇ／ｍＬ）でＡβの毒性作用から神経細胞を保護し得ることを示す。
【図１】
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【図２】
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【国際調査報告】
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2020507666.tif 000008
2020507666.tif 000009
2020507666.tif 000010