(57)【要約】遺伝子組換え法により導入した遺伝子がコードする異種タンパク質を産生させるための真核細胞微生物宿主を構築する方法において、宿主に異種タンパク質をコードする遺伝子を導入した形質転換体における異種タンパク質の産生効率を向上させる。形質転換体の培養環境下において該形質転換体の異種タンパク質産生に不要または有害な真核細胞微生物宿主のゲノム部分の一部または全部を削除または不活化する。この真核細胞微生物宿主としてはシゾサッカロマイセス・ポンベ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｐｏｍｂｅ）が好ましい。また削除または不活性化されるこの真核細胞微生物宿主のゲノム部分としては、エネルギー代謝関連遺伝子群およびプロテアーゼ関連遺伝子群から選ばれる遺伝子であることが好ましく、具体的には例えば、ピルビン酸デカルボキシラーゼ遺伝子、セリンプロテアーゼ遺伝子、アミノペプチダーゼ遺伝子、カルボキシペプチダーゼ遺伝子などがある。【特許請求の範囲】
【請求項１】
遺伝子組換え法により導入した遺伝子がコードする異種タンパク質を産生させるための真核細胞微生物宿主を構築する方法において、異種タンパク質の産生効率を向上させることを目的として、前記宿主の形質転換体の培養環境下において該形質転換体の異種タンパク質産生に不要または有害な真核細胞微生物宿主のゲノム部分の一部または全部を削除または不活化することを特徴とする真核細胞微生物宿主の構築方法。
【請求項２】
形質転換体の培養環境下において該形質転換体の異種タンパク質産生に不要または有害なゲノム部分が、真核細胞微生物宿主の、エネルギー代謝関連遺伝子群、プロテアーゼ関連遺伝子群、減数分裂関連遺伝子群、転写関連遺伝子群、細胞の成長、分裂、ＤＮＡ合成に関連する遺伝子群、タンパク質合成関連遺伝子群、膜輸送関連遺伝子群、細胞構造維持関連遺伝子群、情報伝達関連遺伝子群またはイオン恒常性関連遺伝子群である、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
真核細胞微生物が、シゾサッカロマイセス・ポンベ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｐｏｍｂｅ）である、請求項１または２に記載の方法。
【請求項４】
形質転換体の培養環境下において該形質転換体の異種タンパク質の産生に不要または有害なシゾサッカロマイセス・ポンベ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｐｏｍｂｅ）のゲノム部分が、エネルギー代謝関連遺伝子群およびプロテアーゼ関連遺伝子群から選ばれる遺伝子である、請求項３に記載の方法。
【請求項５】
請求項１または２に記載の構築方法で構築された、遺伝子組換え法により導入された遺伝子がコードする異種タンパク質を産生させるための真核細胞微生物宿主。
【請求項６】
真核細胞微生物が、シゾサッカロマイセス・ポンベ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｐｏｍｂｅ）である、請求項５に記載の宿主。
【請求項７】
異種タンパク質の産生効率を向上させることを目的として、形質転換体の培養環境下において該形質転換体の異種タンパク質産生に不要または有害なゲノム部分の一部または全部を削除または不活化した真核細胞微生物宿主に、異種タンパク質をコードする構造遺伝子を導入してなる形質転換体。
【請求項８】
形質転換体の培養環境下において該形質転換体の異種タンパク質産生に不要または有害なゲノム部分が、エネルギー代謝関連遺伝子群、プロテアーゼ関連遺伝子群、減数分裂関連遺伝子群、転写関連遺伝子群、細胞の成長、分裂、ＤＮＡ合成に関連する遺伝子群、タンパク質合成関連遺伝子群、膜輸送関連遺伝子群、細胞構造維持関連遺伝子群、情報伝達関連遺伝子群またはイオン恒常性関連遺伝子群である、請求項７に記載の形質転換体。
【請求項９】
真核細胞微生物が、シゾサッカロマイセス・ポンベ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｐｏｍｂｅ）である、請求項７または８に記載の形質転換体。
【請求項１０】
真核細胞微生物宿主が本来有しない異種タンパク質をコードする遺伝子を導入した該宿主の形質転換体に該異種タンパク質を産生させ、該異種タンパク質を採取する方法において、前記形質転換体の培養環境下において該形質転換体の異種タンパク質産生に不要または有害なゲノム部分の一部または全部を削除または不活化した真核細胞微生物宿主を用いて該形質転換体の異種タンパク質産生効率を向上させることを特徴とする異種タンパク質の製造方法。
【請求項１１】
形質転換体の培養環境下において該形質転換体の異種タンパク質の産生に不要または有害なゲノム部分が、エネルギー代謝関連遺伝子群、プロテアーゼ関連遺伝子群、減数分裂関連遺伝子群、転写関連遺伝子群、細胞の成長、分裂、ＤＮＡ合成に関連する遺伝子群、タンパク質合成関連遺伝子群、膜輸送関連遺伝子群、細胞構造維持関連遺伝子群、情報伝達関連遺伝子群またはイオン恒常性関連遺伝子群である、請求項１０に記載の方法。
【請求項１２】
真核細胞微生物が、シゾサッカロマイセス・ポンベ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｐｏｍｂｅ）である、請求項１０または１１に記載の方法。
【請求項１３】
形質転換体の培養環境下において該形質転換体の異種タンパク質の産生に不要または有害なゲノム部分が、エネルギー代謝関連遺伝子群およびプロテアーゼ関連遺伝子群から選ばれる遺伝子である、請求項１２に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
＜技術分野＞
本発明は、真核細胞微生物宿主の形質転換体による異種タンパク質の産生効率を向上させることを目的として真核細胞微生物のゲノム部分を改変した該宿主、該宿主の構築方法、該宿主の形質転換体、および該形質転換体を用いたタンパク質の製造方法に関する。該真核細胞微生物としては、分裂酵母と呼ばれるシゾサッカロマイセス・ポンベ（Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｐｏｍｂｅ、以下Ｓ．ｐｏｍｂｅという）が好ましい。
＜背景技術＞
組換えＤＮＡ技術を用いた異種タンパク質の生産はエッシェリシア・コリ（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ、以下Ｅ．ｃｏｌｉという）をはじめとした様々な微生物や動物細胞を宿主として行われている。また様々な生物由来のタンパク質（本明細書では、ポリペプチドを含む意味で使用する）が生産対象とされ、既に多くのものが工業的に生産され、医薬品等に用いられている。
異種タンパク質生産のための種々の宿主が開発されてきた中で酵母は真核細胞であるため、転写、翻訳などの点で動植物と共通性が高く動植物のタンパク質発現が良好であると考えられ、パン酵母（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ  ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）などが宿主として広く使用されている。酵母のうちでも特にＳ．ｐｏｍｂｅは進化過程で他の酵母とは早い時期に分かれ、別の進化をとげた結果、出芽ではなく分裂という手段で増殖することからもわかるように、動物細胞に近い性質を持つことが知られている。このため異種タンパク質を発現させる宿主としてＳ．ｐｏｍｂｅを用いることによって、動物細胞の場合と同様の、より天然体に近い遺伝子産物が得られることが期待される。
Ｓ．ｐｏｍｂｅを用いた遺伝子発現に関する研究は遅れていたが、最近Ｓ，ｐｏｍｂｅで働く強力なプロモーターの発見がなされたため、Ｓ．ｐｏｍｂｅを宿主とした発現系の開発が急速に進み、さらにより安定な効率の良い発現システムを開発するために発現ベクターに種々の改良が加えられている（特許２７７６０８５、特開平０７−１６３３７３、特開平１０−２１５８６７、特開平１０−２３４３７５、特開平１１−１９２０９４、特開平２０００−１３６１９９、特開平２０００−２６２２８４等参照）。その結果、現在Ｓ．ｐｏｍｂｅを宿主とした発現系としては高い生産能力を示すに至った。
酵母などの真核細胞微生物を用いた異種タンパク質生産系は、既に知られている微生物学の方法と組換えＤＮＡ技術を用いて容易に実施でき、かつ高い生産能力を示すため、既に大容量の培養も実施されて実生産に急速に利用されてきている。実生産にあたり、実験室で得られた菌体あたりの高い産生効率はスケールアップ後も維持される。
しかしながら、実生産の場合にしばしば求められる、より低コストの生産法を考えた場合、菌体の増殖効率そのものの向上、目的異種タンパク質の分解の抑制、真核細胞微生物特有の修飾の効率的実施、栄養源の利用効率の向上、などの異種タンパク質の産生効率を向上させる方策が必要と考えられる。たとえば、生育のために培地に添加した炭素源から目的とする異種タンパク質への変換効率をより高めることができれば、菌体増殖ひいては異種タンパク質の産生効率が格段に上昇することが期待される。なぜなら、菌体自身の生育や目的異種タンパク質の産生に不要である代謝系（たとえばエタノール醗酵系）に培地中の炭素源が消費（たとえばエタノール生産に使用）されることにより、目的異種タンパク質の産生のための炭素源の利用効率が低下していると考えられるからである。
＜発明の開示＞
本発明者は以上の点に鑑み検討を行った結果、形質転換体の異種タンパク質産生に不要または有害な宿主ゲノム部分の一部または全部を削除または不活化することにより異種タンパク質の産生効率を向上させうることを見い出した。本発明は、異種タンパク質の産生効率を向上させることを目的とした、真核細胞微生物宿主の構築方法、その構築方法により構築された宿主、その宿主に異種タンパク質をコードする遺伝子を導入した形質転換体、およびその形質転換体を用いた異種タンパク質の製造方法にかかわる下記の発明である。
（１）遺伝子組換え法により導入した遺伝子がコードする異種タンパク質を産生させるための真核細胞微生物宿主を構築する方法において、異種タンパク質の産生効率を向上させることを目的として、前記宿主の形質転換体の培養環境下において該形質転換体の異種タンパク質産生に不要または有害な真核細胞微生物宿主のゲノム部分の一部または全部を削除または不活化することを特徴とする真核細胞微生物宿主の構築方法。
（２）上記の構築方法で構築された、遺伝子組換え法により導入された遺伝子がコードする異種タンパク質を産生させるための真核細胞微生物宿主。
（３）異種タンパク質の産生効率を向上させることを目的として、形質転換体の培養環境下において該形質転換体の異種タンパク質産生に不要または有害なゲノム部分の一部または全部を削除または不活化した真核細胞微生物宿主に、異種タンパク質をコードする構造遺伝子を導入してなる形質転換体。
（４）真核細胞微生物宿主が本来有しない異種タンパク質をコードする遺伝子を導入した該宿主の形質転換体に該異種タンパク質を産生させ、該異種タンパク質を採取する方法において、前記形質転換体の培養環境下において該形質転換体の異種タンパク質産生に不要または有害なゲノム部分の一部または全部を削除または不活化した真核細胞微生物宿主を用いて該形質転換体の異種タンパク質産生効率を向上させることを特徴とする異種タンパク質の製造方法。
上記異種タンパク質産生に不要または有害なゲノム部分としては、エネルギー代謝関連遺伝子群、プロテアーゼ関連遺伝子群、減数分裂関連遺伝子群、転写関連遺伝子群、細胞の成長、分裂、ＤＮＡ合成に関連する遺伝子群、タンパク質合成関連遺伝子群、膜輸送関連遺伝子群、細胞構造維持関連遺伝子群、情報伝達関連遺伝子群またはイオン恒常性関連遺伝子群が好ましい。
真核細胞微生物としては、酵母が適当であり、そのうちでもＳ．ｐｏｍｂｅが特に好ましい。さらに、Ｓ．ｐｏｍｂｅにおける異種タンパク質の産生に不要または有害なゲノム部分における遺伝子としては、エネルギー代謝関連遺伝子群（ピルビン酸デカルボキシラーゼ遺伝子など）およびプロテアーゼ関連遺伝子群（セリンプロテアーゼ遺伝子などのエンドペプチダーゼおよびアミノペプチダーゼやカルボキシペプチダーゼなどのエキソペプチダーゼ）から選ばれる遺伝子が好ましい。
＜発明を実施するための最良の形態＞
本発明において、真核細胞微生物としては菌類が好ましく、特に単細胞性菌類（すなわち、酵母）が好ましい。酵母としては、前記パン酵母などのサッカロマイセス属の酵母、Ｓ．ｐｏｍｂｅなどのシゾサッカロマイセス属の酵母、ピキア属の酵母などが好ましい。その他、アスペルギルス属、リゾープス属、ペニシリウム属、その他の真核細胞微生物がある。本発明において特に好ましい真核細胞微生物はシゾサッカロミセス属の酵母、特にＳ．ｐｏｍｂｅである。以下の説明において宿主とは特に言及しない限りこれら真核細胞微生物からなる宿主をいう。
宿主にその宿主が本来有しないタンパク質（すなわち、異種タンパク質）をコードする遺伝子（以下、異種遺伝子という）を遺伝子組換え法により導入し、異種遺伝子を導入した宿主（すなわち、形質転換体）にその異種タンパク質を産生させ、その異種タンパク質を採取する方法は近年広く行われている。形質転換体を培養して異種タンパク質を産生させる場合、形質転換体の培養環境下において異種タンパク質の産生に不要または有害なゲノム部分が存在する。このゲノム部分は遺伝子であってもよく非遺伝子部分であってもよい。好ましくは、ゲノムの遺伝子部分であり、その遺伝子を削除または不活性化して形質転換体の異種タンパク質の産生効率を向上させる。このような不要または有害な遺伝子はゲノムに多数存在すると考えられる。本発明においてはこのような多数の遺伝子の一部を削除または不活性化することによって充分目的を達成しうる。
形質転換体の異種タンパク質の産生に不要または有害なゲノム部分は宿主が野生の環境下において生存、増殖するために必須の遺伝子であってもよい。そのような必須の遺伝子は、形質転換体培養環境下においては必ずしも必須とされないからである。例えば、炭素源からある栄養源に転換するために必要な遺伝子は、培養環境（培養液）にその栄養源を添加することにより不要となる場合がある。また、酵母などにおいては、増殖は出芽や分裂によって行われ、減数分裂を経ることなく増殖可能である。したがって、減数分裂に関連する遺伝子群は形質転換体の培養環境下においては必ずしも必要とされない。このような不要な遺伝子の存在は形質転換体の増殖や異種タンパク質の産生に負荷となり、したがって、このような遺伝子を削除または不活性化することにより負荷が低減され、異種タンパク質の産生効率を向上できる。
一方、例えば、プロテアーゼ関連遺伝子群の遺伝子は、異種タンパク質の産生に対し阻害要因となりやすい。異種タンパク質は本来宿主にとって不要な産生物であることより、形質転換体は産生した異種タンパク質をプロテアーゼにより分解する傾向がある。異種タンパク質の分解は異種タンパク質の産生効率を低下させる要因の一つと考えられ、したがって、このようなプロテアーゼを産生する遺伝子を削除または不活性化することにより異種タンパク質の産生効率を向上できる。
上記のような異種タンパク質の産生に不要または有害な遺伝子としては、エネルギー代謝関連遺伝子群、プロテアーゼ関連遺伝子群、減数分裂関連遺伝子群、転写関連遺伝子群、細胞の成長、分裂、ＤＮＡ合成に関連する遺伝子群、タンパク質合成関連遺伝子群、膜輸送関連遺伝子群、細胞構造維持関連遺伝子群、情報伝達関連遺伝子群またはイオン恒常性関連遺伝子群などの遺伝子が好ましい。特に好ましい遺伝子はエネルギー代謝関連遺伝子群およびプロテアーゼ関連遺伝子群から選ばれる遺伝子である。
エネルギー代謝関連遺伝子群の遺伝子としては、エタノール醗酵に関連した遺伝子が好ましい。エタノール醗酵に関連した遺伝子の代表例としてピルビン酸デカルボキシラーゼをコードする遺伝子（ピルビン酸デカルボキシラーゼ遺伝子）がある。ピルビン酸デカルボキシラーゼ遺伝子を削除または不活性化することにより、形質転換体の培養においてエタノール醗酵が生じにくくなり、その分エネルギーがシンテターゼ等に配分されやすくなって異種タンパク質の産生効率が向上すると考えられる。
プロテアーゼ関連遺伝子群の遺伝子としては、セリンプロテアーゼ、カルボキシルプロテアーゼ、メタルプロテアーゼなどのエンドペプチダーゼをコードする遺伝子やアミノペプチダーゼ、カルボキシペプチダーゼなどのエキソペプチダーゼをコードする遺伝子がある。特にセリンプロテアーゼをコードする遺伝子（セリンプロテアーゼ遺伝子）、アミノペプチダーゼをコードする遺伝子（アミノペプチダーゼ遺伝子）、カルボキシペプチダーゼをコードする遺伝子（カルボキシペプチダーゼ遺伝子）が好ましい。このようなプロテアーゼ関連遺伝子の削除または不活性化は、前記のように異種タンパク質の分解を抑制して異種タンパク質の産生効率を向上させると考えられる。
宿主のゲノム部分の削除や不活性化は公知の方法で行うことができる。また、削除や不活性化を行う部分はゲノムの１ヶ所であってもよく、２ヶ所以上の部分であってもよい。削除や不活性化を行う部分が遺伝子の場合、１つの遺伝子について削除や不活性化を行ってもよく、２以上の遺伝子のそれぞれについて削除や不活性化を行ってもよい。また遺伝子の削除や不活性化を行う部分は構造配列部分であってもよく、調節配列部分であってもよい。
遺伝子の削除は遺伝子の全体を削除してもよく、遺伝子の一部を削除して遺伝子を不活性化してもよい。また遺伝子の不活性化は、遺伝子の一部を削除することに限られず、遺伝子を削除なしに改変する場合も意味する。また、不活性化の対象である遺伝子の配列の中に他の遺伝子やＤＮＡを挿入して遺伝子を不活性化することもできる。いずれの場合も、対象遺伝子を活性のないタンパク質をコードするものとしたり、対象遺伝子が転写や翻訳できないものにしたりして、不活性なものとする。
異種タンパク質としては、限定されるものではないが、多細胞生物である動物や植物が産生するタンパク質が好ましい。特に哺乳動物（ヒトを含む）の産生するタンパク質が好ましい。このようなタンパク質はＥ．ｃｏｌｉなどの原核細胞微生物宿主を用いて製造した場合活性の高いタンパク質が得られない場合が多く、またＣＨＯなどの動物細胞を宿主として用いた場合には通常産生効率が低い。本発明における遺伝子改変した真核細胞微生物を宿主とする場合はこれらの問題が解決されると考えられる。
実施例
以下に本発明を具体的な実施例によりさらに詳細に説明する。
［実施例１］（ピルビン酸デカルボキシラーゼ遺伝子ｐｄｃｌの不活化による、オワンクラゲ由来の緑色蛍光タンパク質の産生効率の向上）
分裂酵母Ｓ．ｐｏｍｂｅのピルビン酸デカルボキシラーゼをコードする遺伝子ｐｄｃｌ（ＳＰＡＣ１Ｆ８．０７ｃ）のＯＲＦ（タンパク質をコードする部分）１７８５ｂｐ内にＳ．ｐｏｍｂｅのオロチジンリン酸デカルボキシラーゼ遺伝子断片１．８ｋｂｐを挿入し、該遺伝子破壊ベクターを作製した。本ベクターを用いてウラシル要求性緑色螢光タンパク質生産株（特開２０００−２６２２８４公報記載の８重組込み型生産系における酵母菌株に対してそのオロチジンリン酸デカルボキシラーゼ活性を遺伝子破壊法によって不活性化したもの）を形質転換した。最小培地にコロニーを形成するウラシル非要求性の株を取得し、ＰＣＲ増幅法によってそのゲノムＤＮＡを調べたところ、ピルビン酸デカルボキシラーゼ遺伝子が破壊されていた。
この形質転換体を用いた緑色螢光タンパク質生産試験を、培地をＹＰＤ液体（酵母エキス（ＤＩＦＣＯ社製）１％、バクトペプトン（ＤＩＦＣＯ社製）２％、ブドウ糖（和光純薬社製）２％）とし、培養器の形状を試験管にて行ったところ、単位菌体あたりの生産量が元株に比べて増加していた。すなわち、マイクロプレートリーダー（コロナ社製ＭＴＰ−３２＋ＭＴＰＦ２）を用いた励起波長４９０ｎｍ螢光波長５３０ｎｍの観察において、その値が上昇した。
［実施例２］（セリンプロテアーゼ遺伝子ｉｓｐ６の不活化による、オワンクラゲ由来の緑色蛍光タンパク質の産生効率の向上）
分裂酵母Ｓ．ｐｏｍｂｅのセリンプロテアーゼ遺伝子をコードする遺伝子ｉｓｐ６（ＳＰＡＣ４Ａ８．０４）のＯＲＦ（１４０４ｂｐ）内にＳ．ｐｏｍｂｅのオロチジンリン酸デカルボキシラーゼ遺伝子断片１．８ｋｂｐを挿入し、該遺伝子破壊ベクターを作製した。本ベクターを用いて実施例１と同じウラシル要求性緑色螢光タンパク質生産株を形質転換した。最小培地にコロニーを形成するウラシル非要求性の株を取得し、ＰＣＲ増幅法によってそのゲノムＤＮＡを調べたところ、セリンプロテアーゼ遺伝子が破壊されていた。
この形質転換体を用いた緑色螢光タンパク質生産試験を、実施例１と同様に培養したところ、単位菌体あたりの生産量が元株に比べて増加していた。すなわち、マイクロプレートリーダー（コロナ社製ＭＴＰ−３２＋ＭＴＰＦ２）を用いた励起波長４９０ｎｍ螢光波長５３０ｎｍの観察において、その値が上昇した。
［実施例３］（アミノペプチダーゼ遺伝子ＳＰＡＣ４Ｆ１０．０２（ａｍｉｎｏｐｅｐｔｉｄａｓｅ  Ｉ）の不活性化による、オワンクラゲ由来緑色蛍光タンパク質の産生効率の向上）
分裂酵母Ｓ．ｐｏｍｂｅのアミノペプチダーゼをコードする遺伝子ＳＰＡＣ４Ｆ１０．０２（Ｎａｔｕｒｅ  ４１５，８７１−８８０（２００２））のＯＲＦ（１５００ｂｐ）に隣接する５’側および３’側の４００ｂｐのゲノムＤＮＡ配列をそれぞれ、塩基配列［ＡＣＡＡＧＣＡＧＡＴＣＴＣＣＣＡＧＴＣＡ］と［ＡＧＣＣＡＧＴＧＧＧＡＴＴＴＧＴＡＧＣＴＴＴＴＴＣＣＡＴＧＴＡＡＴＴＧＣＡＴＴＴ］および塩基配列［ＡＡＡＡＧＴＴＴＣＧＴＣＡＡＴＡＴＣＡＣＴＴＴＡＣＣＡＡＧＴＴＴＧＴＴＴＡＴＧＴ］と［ＧＣＴＴＴＣＧＴＴＧＡＡＡＧＡＣＴＴＧ］をプライマーとしてＰＣＲ増幅法で作製した。さらに塩基配列［ＡＣＡＡＧＣＡＧＡＴＣＴＣＣＣＡＧＴＣＡ］と［ＧＣＴＴＴＣＧＴＴＧＡＡＡＧＡＣＴＴＧ］をプライマーとしたＰＣＲ増幅法によってこれらのＤＮＡ断片とマーカー遺伝子であるｕｒａ４遺伝子断片１．８ｋｂｐとを連結することにより、アミノペプチダーゼ遺伝子のＯＲＦがｕｒａ４遺伝子と入れ替わったゲノムＤＮＡ配列に相当する遺伝子破壊ベクターを作製した。
本ベクターを用いてＳ．ｐｏｍｂｅ（ｌｅｕ１−３２，ｕｒａ４−Ｄ１８）菌株を形質転換した。最少培地にコロニーを形成するウラシル非要求性の株を取得し、ＰＣＲ増幅法により目的遺伝子が破壊されていた場合のみＤＮＡ断片が増幅する方法でゲノムＤＮＡを調べたところ、アミノペプチダーゼ遺伝子ＳＰＡＣ４Ｆ１０．０２が破壊されていた。
さらに、分裂酵母用発現ベクター（特開平７−１６３３７３）にオワンクラゲ由来緑色螢光タンパク質遺伝子を挿入してできた発現ベクターで上記形質転換体を形質転換し、スクリーニング後、発現培地を１００ｍｇ／Ｌの抗生物質Ｇ４１８を含んだＹＰＤ液体とし、培養器の形状を試験管にて培養を行なったところ、単位菌体あたりの生産量が元株に比べて増加していた。すなわち、マイクロプレートリーダー（コロナ社製ＭＴＰ−３２＋ＭＴＰＦ２）を用いた励起波長４９０ｎｍ螢光波長５３０ｎｍの観察において、その値が２３１を示し、非破壊株に同じ遺伝子を導入した株での発現量の２倍程度上昇した。
［実施例４］（カルボキシペプチダーゼＳＰＢＣ１６Ｇ５．０９（ｃａｒｂｏｘｙｐｅｐｔｉｄａｓｅ）の不活性化による、オワンクラゲ由来緑色蛍光タンパク質の産生効率の向上）
分裂酵母Ｓ．ｐｏｍｂｅのカルボキシペプチダーゼをコードする遺伝子ＳＰＢＣ１６Ｇ５．０９（Ｎａｔｕｒｅ  ４１５，８７１−８８０（２００２））のＯＲＦ（１６４７ｂｐ）に隣接する５’側および３’側の４００ｂｐのゲノムＤＮＡ配列をそれぞれ塩基配列［ＣＧＴＡＴＴＡＧＣＧＡＴＴＧＡＡＣＴＧ］と［ＡＧＣＣＡＧＴＧＧＧＡＴＴＴＧＴＡＧＣＴＧＣＴＣＴＣＡＣＡＡＴＣＡＡＡＴＣＧＡＣ］および塩基配列［ＡＡＡＡＧＴＴＴＣＧＴＣＡＡＴＡＴＣＡＣＡＣＴＧＴＡＴＡＴＡＡＡＴＣＴＴＴＴＣＴ］と［ＣＡＧＧＧＡＡＧＡＡＣＧＴＴＣＣＡＡＧＡ］をプライマーとしてＰＣＲ増幅法で作製した。さらに塩基配列［ＣＧＴＡＴＴＡＧＣＧＡＴＴＧＡＡＣＴＧ］と［ＣＡＧＧＧＡＡＧＡＡＣＧＴＴＣＣＡＡＧＡ］をプライマーとしたＰＣＲ増幅法によってこれらのＤＮＡ断片とマーカー遺伝子であるｕｒａ４遺伝子断片１．８ｋｂｐとを連結することにより、カルボキシペプチダーゼ遺伝子のＯＲＦがｕｒａ４遺伝子と入れ替わったゲノムＤＮＡ配列に相当する遺伝子破壊ベクターを作製した。
本ベクターを用いてＳ．ｐｏｍｂｅ（ｌｅｕ１−３２，ｕｒａ４−Ｄ１８）菌株を形質転換した。最少培地にコロニーを形成するウラシル非要求性の株を取得し、ＰＣＲ増幅法により目的遺伝子が破壊されていた場合のみＤＮＡ断片が増幅する方法でゲノムＤＮＡを調べたところ、カルボキシペプチダーゼＳＰＢＣ１６Ｇ５．０９が破壊されていた。
さらに、分裂酵母用発現ベクター（特開平７−１６３３７３）に緑色螢光タンパク質を挿入してできた発現ベクターで上記形質転換体を形質転換し、スクリーニング後、発現培地を１００ｍｇ／Ｌの抗生物質Ｇ４１８を含んだＹＰＤ液体とし、培養器の形状を試験管にて培養を行なったところ、単位菌体あたりの生産量が元株に比べて増加していた。すなわち、マイクロプレートリーダー（コロナ社製ＭＴＰ−３２＋ＭＴＰＦ２）を用いた励起波長４９０ｎｍ螢光波長５３０ｎｍの観察において、その値が２１５を示し、非破壊株に同じ遺伝子を導入した株での発現量の１．６倍程度上昇した。
［実施例５］
分裂酵母Ｓ．ｐｏｍｂｅの各種遺伝子（Ｎａｔｕｒｅ  ４１５，８７１−８８０（２００２））のＯＲＦに隣接する５’側および３’側４００ｂｐのゲノムＤＮＡ配列をプライマー（Ａ〜Ｄの４種）を用いてＰＣＲ増幅法で作製した。さらに、プライマー（上記４種の内のＡおよびＤの２種）を用いたＰＣＲ増幅法によってこのＤＮＡ断片にマーカー遺伝子であるｕｒａ４遺伝子断片１．８ｋｂｐを連結し、遺伝子のＯＲＦがｕｒａ４遺伝子と入れ替わったゲノムＤＮＡ配列に相当する遺伝子破壊ベクターを作製した。本ベクターを用いてＳ．ｐｏｍｂｅ（ｌｅｕ１−３２，ｕｒａ４−Ｄ１８）菌株を形質転換した。最少培地にコロニーを形成するウラシル非要求性の株を取得し、ＰＣＲ増幅法により目的遺伝子が破壊されていた場合のみＤＮＡ断片が増幅する方法でゲノムＤＮＡを調べたところ、当該遺伝子が破壊されていた。
実施例３、４と同様に、オワンクラゲ由来緑色螢光タンパク質を挿入してできた発現ベクターで上記遺伝子が破壊されたＳ．ｐｏｍｂｅを形質転換し、形質転換体を培養してその緑色螢光タンパク質の生産量を励起波長４９０ｎｍ螢光波長５３０ｎｍの観察で測定することにより、非破壊株に同じ遺伝子を導入した株で得られた吸光度より高い値を得ることができる。
以下に、破壊した各種遺伝子と使用したプライマー（４種）を示す。
（１）
遺伝子名：アスパラギン酸プロテアーゼ遺伝子ＳＰＣＣ１７９５．０９（ｐｕｔａｔｉｖｅ  ａｓｐａｒｔｉｃ  ｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ）
ＯＲＦの長さ：１５６６ｂｐ
2002101038.tif 000002
（２）
遺伝子名：細胞質アミノペプチダーゼ遺伝子ＳＰＡＣ１３Ａ１１．０５（ｃｙｔｏｓｏｌ  ａｍｉｎｏｐｅｐｔｉｄａｓｅ）
ＯＲＦの長さ：１５４２ｂｐ
2002101038.tif 000003
（３）
遺伝子名：ジペプチジルアミノペプチダーゼ遺伝子ＳＰＡＣ１４Ｃ４．１５ｃ（ｄｉｐｅｐｔｉｄｙｌ  ａｍｉｎｏｐｅｐｔｉｄａｓｅ）
ＯＲＦの長さ：２６０６ｂｐ
2002101038.tif 000004
（４）
遺伝子名：カルボキシペプチダーゼ遺伝子ＳＰＢＣ３３７．０７ｃ（ｐｕｔａｔｉｖｅ  ｃａｒｂｏｘｙｐｅｐｔｉｄａｓｅ）
ＯＲＦの長さ：１６６５ｂｐ
2002101038.tif 000005
（５）
遺伝子名：液胞カルボキシラーゼＳ遺伝子ＳＰＡＣ２４Ｃ９．０８（ｐｕｔａｔｉｖｅ  ｖａｃｕｏｌａｒ  ｃａｒｂｏｘｙｐｅｐｔｉｄａｓｅ  ｓ）
ＯＲＦの長さ：１７９１ｂｐ
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（６）
遺伝子名：亜鉛プロテアーゼ遺伝子ＳＰＡＣＵＮＫ４．１２ｃ（ｐｕｔａｔｉｖｅ  ｚｉｎｃ−ｐｒｏｔｅａｓｅ）
ＯＲＦの長さ：２９１０ｂｐ
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（７）
遺伝子名：亜鉛プロテアーゼ遺伝子ＳＰＣＣ１４４２．０７ｃ（ｐｕｔａｔｉｖｅ  Ｚｎ−ｐｒｏｔｅａｓｅ）
ＯＲＦの長さ：８４９ｂｐ
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（８）
遺伝子名：メタロプロテアーゼ遺伝子ＳＰＣＣ９６５．０４ｃ（ｐｕｔａｔｉｖｅ  ｍｅｔａｌｌｏｐｅｐｔｉｄａｓｅ）
ＯＲＦの長さ：２２３１ｂｐ
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（９）
遺伝子名：亜鉛メタロプロテアーゼ遺伝子ＳＰＡＣ１７Ａ５．０４ｃ（ｐｕｔａｔｉｖｅ  ｚｉｎｃ  ｍｅｔａｌｌｏｐｅｐｔｉｄａｓｅ）
ＯＲＦの長さ：１６１０ｂｐ
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（１０）
遺伝子名：ＣＡＡＸプレニルプロテアーゼＩ遺伝子ＳＰＡＣ３Ｈ１．０５（ｐｕｔａｔｉｖｅ  ＣＡＡＸ  ｐｒｅｎｙｌ  ｐｒｏｔｅａｓｅ）
ＯＲＦの長さ：１４９５ｂｐ
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（１１）
遺伝子名：ジペプチジルペプチダーゼ遺伝子ＳＰＢＣ１７１１．１２（ｐｕｔａｔｉｖｅ  ｄｉｐｅｐｔｉｄｙｌ  ｐｅｐｔｉｄａｓｅ）
ＯＲＦの長さ：２０５２ｂｐ
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（１２）
遺伝子名：ジペプチダーゼ遺伝子ＳＰＣＣ９６５．１２（ｐｕｔａｔｉｖｅ  ｄｉｐｅｐｔｉｄａｓｅ）
ＯＲＦの長さ：１２５１ｂｐ
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（１３）
遺伝子名：メチオニンメタロペプチダーゼ遺伝子ＳＰＢＣ１４Ｃ８．０３（ｐｕｔａｔｉｖｅ  ｍｅｔｈｉｏｎｉｎｅ  ｍｅｔａｌｌｏｐｅｐｔｉｄａｓｅ）
ＯＲＦの長さ：１２８１ｂｐ
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（１４）
遺伝子名：メチオニンアミノペプチダーゼ遺伝子ＳＰＢＣ３Ｅ７．１０（ｐｕｔａｔｉｖｅ  ｍｅｔｈｉｏｎｉｎｅ  ａｍｉｎｏｐｅｐｔｉｄａｓｅ）
ＯＲＦの長さ：１３０１ｂｐ
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（１５）
遺伝子名：シグナルペプチダーゼ遺伝子ＳＰＡＣ１０７１．０４ｃ（ｐｕｔａｔｉｖｅ  ｓｉｇｎａｌ  ｐｅｐｔｉｄａｓｅ）
ＯＲＦの長さ：５０４ｂｐ
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（１６）
遺伝子名：ミトコンドリアプロセッシングペプチダーゼβサブユニット遺伝子ＳＰＢＰ２３Ａ１０．１５ｃ（ｍｉｔｏｃｈｏｎｄｒｉａｌ  ｐｒｏｃｅｓｓｉｎｇ  ｐｅｐｔｉｄａｓｅ  ｂｅｔａ  ｓｕｂｕｎｉｔ）
ＯＲＦの長さ：１３７４ｂｐ
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＜産業上の利用可能性＞
分裂酵母Ｓ．ｐｏｍｂｅのピルビン酸デカルボキシラーゼ遺伝子やプロテアーゼ遺伝子を不活性化することにより、分裂酵母Ｓ．ｐｏｍｂｅを宿主とする形質転換体の異種タンパク質の産生効率が向上した。このように、真核細胞微生物を宿主とし、遺伝子組換え法により異種タンパク質をコードする遺伝子を導入した形質転換体の異種タンパク質生産系において、形質転換体の培養環境下において異種タンパク質の産生に不要または有害なゲノム部分を削除または不活性化することにより、異種タンパク質の産生効率が向上する。
【配列表】
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【国際調査報告】
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