(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
混合物から１〜１０００ｋＤａの分子量を有する所望の種を分離する方法であって、混合物の他の種と所望の種の間の分子量の相違が１０倍未満であり、該方法は流束を転移点での流束の５から１００％の範囲のレベルに維持し、濾過のトランスメンブラン圧を、該濾過の転移点でのトランスメンブラン圧より大きくないレベルで膜に沿って実質的に一定に保ちながら、混合物から１〜１０００ｋＤａの所望の種を分離する孔径を有する膜による接線フロー濾過（タンジェンシャルフローフィルトレーション）により混合物を濾過することを特徴とする、方法。
【請求項２】
膜が同じ孔径を有する平行に積層された複数の膜からなる請求項１に記載の方法。
【請求項３】
膜が同じ孔径の２つの膜からなる請求項２に記載の方法。
【請求項４】
所望の種のサイズが最高１０ミクロンである請求項１に記載の方法。
【請求項５】
流束が転移点での流束の５０〜１００％である請求項１に記載の方法。
【請求項６】
流束が転移点での流束の７５〜１００％である請求項１に記載の方法。
【請求項７】
種が、蛋白質、ポリペプチド、アミノ酸、コロイド、マイコプラスマ、エンドトキシン、ウイルス、炭水化物、ＲＮＡおよびＤＮＡからなる群より選択される生物学的物質である請求項１に記載の方法。
【請求項８】
混合物が希釈されない請求項１に記載の方法。
【請求項９】
濾過の保留物を、分離しようとする混合物を入れたタンクに再循環させ、このプロセスを繰り返す請求項１に記載の方法。
【請求項１０】
更に、第二接線フロー濾過段階において濾過からの濾液を第一濾過段階で用いた膜より小さな孔径を有する膜を通して濾過し、この第二濾過段階の濾液を第一濾過段階に戻し、このプロセスを繰り返すことからなる多段階である請求項１に記載の方法。
【請求項１１】
第二濾過段階の流束が転移点での流束の１００％より大きい請求項１０に記載の方法。
【請求項１２】
両濾過段階が限外濾過である請求項１１に記載の方法。
【請求項１３】
更に、第二濾過段階からの濾液を第三接線フロー濾過段階において、第二膜より小さな孔径を有する濾過膜を通して濾過し、第三濾過段階から得られた濾液を第一濾過段階に戻し、このプロセスを繰り返すことからなる請求項１０に記載の方法。
【請求項１４】
第三濾過段階の流束が転移点での流束の１００％より大きい請求項１３に記載の方法。
【請求項１５】
３つの濾過段階がすべて限外濾過である請求項１４に記載の方法。
【請求項１６】
濾過の進行とともにトランスメンブラン圧を減少させる請求項１に記載の方法。
【請求項１７】
トランスメンブラン圧が濾過の進行に伴い一定に保たれる請求項１に記載の方法。
【請求項１８】
請求項１〜１７のいずれかに記載の方法を行うための接線フロー濾過装置であって、その装置は
（ａ）濾過ユニットをそれぞれ入口および出口を有する濾過および濾液室に隔てる、１〜１０００ｋＤａの所望の種を分離する複数の同一孔径を有する隣接した平行な限外膜を含む濾過ユニットと液体連絡している液体容器；
（ｂ）液体を容器から該濾過室の入口に送り出す手段を含む、濾過室の入口を容器に接続する手段；
（ｃ）濾液室内に圧力勾配を発生させる手段；および
（ｄ）該濾液室の出口から濾液を集める手段；
を含む接線フロー濾過装置。
【請求項１９】
２枚の膜を含む請求項１８に記載の装置。
【請求項２０】
発生手段が濾液を濾過室の液体の方向に平行な濾液室を通して再循環させる手段である請求項１８に記載の装置。
【請求項２１】
再循環手段がポンプであり、収集手段が第二容器である請求項２０に記載の装置。
【請求項２２】
複数の積層された濾過および濾液室を有する濾過ユニットを含有する請求項１〜１７に記載のいずれかの方法を実施するための接線フロー濾過装置であって、積層順で最後の濾液室以外はすべて別の容器と液体連絡している入口および出口手段を有し、最後の濾液室は積層順での第一濾過室に液体連絡している容器に濾液を循環させるための出口手段を有し、各室は容器から液体を室の入口手段に送り出す手段を有し、各室は１〜１０００ｋＤａの所望の種を分離する孔径を有する濾過膜により隣接する室から隔てられており、
全室の入口手段から出口手段への液体の流れが平行かつ同一方向であり、積層順で最初の濾過膜は最大サイズの種を保持する孔径を有し、積層順で最後の濾過膜は最小サイズの種を保持する孔径を有し、積層順で中間の濾過膜は中間層膜の最初から最後へと大きさが減少するサイズの種を保持する孔径を有する装置。
【請求項２３】
各濾過膜が複数の同一孔径を有する平行して隣接する膜からなる請求項２２に記載の装置。
【請求項２４】
各膜が２枚の同一孔径を有する平行して隣接する膜からなる請求項２３に記載の装置。
【請求項２５】
濾過ユニットが３室および２容器からなる請求項２２に記載の装置。
【請求項２６】
濾過ユニットが４室および３容器からなる請求項２２に記載の装置。
【請求項２７】
請求項１〜１７のいずれかに記載の方法を行うための接線フロー濾過装置であって、その装置は
（ａ）第一濾過ユニットをそれぞれ入口および出口を有する第一の濾過および濾液室に隔てる、１〜１０００ｋＤａの所望の種を分離する孔径を有する第一濾過膜を有する第一濾過ユニットと液体連絡している第一容器；
（ｂ）液体を第一容器から第一濾過室の入口に送り出す手段を含む、第一濾過室の入口を第一容器に接続する手段；
（ｃ）第一濾液室内に圧力勾配を発生させる手段；
（ｄ）第二濾過ユニットをそれぞれ入口および出口を有する第二の濾過および濾液室に隔てる、１〜１０００ｋＤａの所望の種を分離する孔径を有する第二濾過膜を有する第二濾過ユニットと液体連絡している第二容器；
（ｅ）濾液を第一濾液室の出口から第二容器に循環させる手段；
（ｆ）液体を第二容器から第二濾過室の入口に送り出す手段を含む、第二濾過室の入口を第二容器に接続する手段；
（ｇ）第二濾液室内に圧力勾配を発生させる手段；
（ｈ）第三濾過ユニットをそれぞれ入口および出口を有する第三の濾過および濾液室に隔てる、１〜１０００ｋＤａの所望の種を分離する孔径を有する第三濾過膜を有する第三濾過ユニットと液体連絡している第三容器；
（ｉ）濾液を第二濾液室の出口から第三容器に循環させる手段；
（ｊ）液体を第三容器から第三濾過室の入口に送り出す手段を含む、第三濾過室の入口を第三容器に接続する手段；および
（ｋ）濾液を第三濾液室の出口から第一容器に循環させるための手段；
を含有する接線フロー濾過装置であって、第一濾過膜が最大サイズの種を保持する孔径を有し、第二濾過膜が第一および第三濾過膜の孔径の中間のサイズの種を保持し、そして第三濾過膜が最小サイズの種を保持する孔径を有する接線フロー濾過装置。
【請求項２８】
第三濾液室内に圧力勾配を発生させる手段を更に含む請求項２７に記載の装置。
【請求項２９】
すべての発生手段が濾液を濾過室内の液体の方向に平行な濾液室を通して再循環させるための手段である請求項２７に記載の装置。
【請求項３０】
再循環手段がポンプである請求項２９に記載の装置。
【請求項３１】
膜がカスケードにおいて孔径が減少する限外濾過膜である請求項２７に記載の装置。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、物質、特に生物学的に重要な物質を、改良された接線フロー濾過法および装置を用いて該物質を含む混合物から精製および分離することに関する。
【０００２】
【従来の技術】
蛋白質などの生物学的対象分子をその混合物から分離するために、現在数種類の方法が利用可能である。このような重要な技術の一つに、アフィニティークロマトグラフィーがあるが、これは親和性マトリックスまたはゲルに対する所望の分子の特異的および選択的結合に基づいて分離するものである。親和性ゲルは、通常、ゲル支持体に固定されたリガンド結合部分からなる。例えば、ＧＢ  ２，１７８，７４２号では、ヘモグロビンおよびその化学的に修飾された誘導体の精製に、天然の（オキシ）ヘモグロビンがある種の親和性ゲルのポリアニオン基に特異的に結合するという事実に基づいてアフィニティークロマトグラフィーを利用している。この方法においては、修飾されていないヘモグロビンは親和性ゲルにより保持され、一方、ポリアニオン結合部位が修飾試薬と共有結合しているためにゲルに結合できない修飾されたヘモグロビンは溶出される。アフィニティークロマトグラフィーカラムは非常に特異的で、従って、非常に純粋な生成物が得られるが、アフィニティークロマトグラフィーカラムは比較的高価につく方法である。
【０００３】
別の公知の分離方法は膜濾過法であり、これは、溶解・懸濁した溶質をその大きさに基づいて分離するものである。この方法の最も簡単な形態においては、溶液を加圧下に所定の大きさの孔を有する濾過膜を通過させる。濾過膜の孔の大きさより大きい溶質は保持され、小さい溶質は、溶媒と共に膜を通過して対流により運ばれる。
【０００４】
このような膜濾過法は、一般に膜の孔径によって、逆浸透、限外濾過、および精密濾過の範疇に分類される。通常、限外濾過では分子量が約１〜１０００ｋＤａの溶質を保持するグレードの膜を用い、逆浸透では塩および他の低分子量溶質を保持することができる膜を用い、精密濾過または微多孔濾過では通常コロイドおよび微生物を保持するのに用いられる孔径範囲が０．１〜１０マイクロメーター（ミクロン）の膜を用いる。
【０００５】
過去２５年以上にわたって、限外濾過は小規模な実験室用具から１時間あたり数千リットルを処理することができる大規模なユニット操作に至るまで発展した。限外濾過は、蛋白質の濃縮ならびに塩およびアルコールの除去、ならびに水、食塩水溶液、および低分子量添加物の処理および洗浄の熱の除去に広く用いられる。限外濾過の利点としては、エネルギーコストが低いこと、設備投資が低いこと、および生成物の変性が非常に低く、操作が効率的かつ制御可能であることが挙げられる。
【０００６】
しかし、限外濾過において達成される蛋白質の精製の程度には限界がある。これら限界は主に濃度分極、目詰まりおよび膜の孔径分布が広いことによる。従って溶質の分別力が低い。例えば、Ｐｏｒｔｅｒ編のＨａｎｄｂｏｏｋ  ｏｆ  Ｉｎｄｕｓｔｒｉａｌ  Ｍｅｍｂｒａｎｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ（Ｎｏｙｅｓ  Ｐｕｂｌｉｃａｔｉｏｎｓ，Ｐａｒｋ  Ｒｉｄｇｅ，Ｎｅｗ  Ｊｅｒｓｅｙ，１９９０）、１６４−１７３頁を参照。
【０００７】
溶質の分極層はもとの限外濾過膜と連続した別のフィルターとして機能し、溶媒の濾過に対して著しい抵抗を示す。分極度は、供給原料中の保持溶質の濃度が増加すると増加し、現実のシステムにおいて多くの見かけの異常または予想外の影響が見られる。例えば、分極度の高い条件下では、濾過率は圧力の増加に伴って極く僅かしか増加しないが、分極していない条件下では、濾過率は圧力の増加に比例するのが普通である。分極層は濾過に対し制限的抵抗を示すので、よりオープンな高流量膜を用いても濾過率は増加しない。保持される溶質および溶出される溶質の間の相互作用により、状況は一層複雑になる。
【０００８】
濃度分極および目詰まり過程の結果、血漿蛋白質のような巨大分子混合物の大規模な分離のための限外濾過膜の巨大分子分画能力の有効な利用ができない。Ｍｉｃｈａｅｌｓの“限外濾過法の１５年：若い技術の問題と将来の展望”［Ａｎｔｈｏｎｙ  Ｒ．Ｃｏｏｐｅｒ編，Ｕｌｔｒａｉｌｔｒａｔｉｏｎ  Ｍｅｍｂｒａｎｅｓ  ａｎｄ  Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ，Ｐｏｌｙｍｅｒ  Ｓｃｈｉｅｎｃｅ  ａｎｄ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，１３（Ｐｌｅｎｕｍ  Ｐｒｅｓｓ，ＮＹ，１９７９），１−１９頁中の９頁］を参照。従って、ゲル透過、吸着、またはイオン交換クロマトグラフィー、選択的沈殿、または電気泳動等の技術により現在行われている大規模な複合巨大分子混合物の分離用の限外濾過膜の使用は不確実と考えられる。
【０００９】
種々の多段階およびカスケード化交差フロー濾過法の利点が論文で検討され、若干の改良効果が見られる。ＭｉｃｈａｅｌｓおよびＭａｔｓｏｎ［Ｄｅｓａｌｉｎａｔｉｏｎ，５３：２３１−２５８（１９８５）、特に２３５頁］を参照。また、ｖａｎ  Ｒｅｉｓら［Ｊ．Ｉｎｔｅｒｆ．Ｒｅｓ．，２：５３３−５４１（１９８２）］の５３５頁の第１図の実験的フローサーキットおよびＭ．ＣｈｅｒｙａｎのＵｌｔｒａｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ  Ｈａｎｄｂｏｏｋ（Ｔｅｃｈｎｏｍｉｃ  Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ  Ｃｏ．，Ｉｎｃ．：Ｐｅｎｎｓｙｌｖａｎｉａ，１９８６）の３１１頁（異なる分子サイズの蛋白質加水分解物分画を得るためのカスケード膜リサイクルバイオリアクターシステムが記載されている）を参照。
【００１０】
濃度分極の影響を避けるために、供給血漿源を修飾して選択性および流束（濾過速度を膜面積で割った値と定義される）を改善する方法が開発されている。例えば、イギリス特許出願第２，０６５，１２９号には、限外濾過の前にｐＨを３．８〜４．７に調節しつつ血清を希釈して全体の蛋白質および塩濃度を下げる分離技術が記載されている。Ｂａｅｙｅｒら［Ｊ．Ｍｅｍｂｒａｎｅ  Ｓｃｉ．，２２：２９７〜３１５（１９８５）］は、限外濾過の前に血漿をまずファクター１２で希釈する方法を記載している。アメリカ合衆国特許第４，３５０，１５６号には血漿を約１０℃に冷却して血漿から巨大分子を除去し、次に冷却した血漿から巨大分子を濾過して低分子量血漿流を得る方法が開示されている。この方法では限外濾過膜を用いない。
【００１１】
限外濾過システムにおいて濃度分極に着目した主なアプローチは、液体の流動パターンを調節して保持されている溶質を膜表面から除去して供給原料中に戻す量を増加させるものである。接線フロー限外濾過（ＴＦＦ）として知られている方法においては、供給原料の流れは膜面に対して接線方向に高速で再循環され、逆拡散に対する物質移動係数を増加させる。Ｇａｂｌｅｒ［ＡＳＭ  Ｎｅｗｓ，５０：２９９（１９８４）］を参照。フィルター膜に対して平行な方向に流れる液体は連続的にフィルター表面を清浄し、濾過できない溶質による目詰まりを防ぐ。ＴＦＦと同じ効果が得られる別の濾過装置は、外部および内部シリンダーを有する回転式濾過装置で、内部シリンダーが回転して渦を起こし、圧力を変化させずに高速を達成する。
【００１２】
ＴＦＦにおいては、差圧勾配［トランスメンブラン圧（ＴＭＰ）と称する］を膜の長さ方向に適用して液体および濾過可能な溶質をフィルターを通過させる。流束は経験的に決定できる一定の最低値より大きいＴＭＰに依存しない。最大流束を得るためには、限外濾過システムをこの最低値に等しいかまたはそれを越える出口圧をかけて行うのが普通である。従って、流束は膜の長さ方向に一定であり、一方ＴＭＰは変化する。層流および乱流法の両方が用いられてある程度の成果をあげているが、通常のＴＦＦではなお分子サイズ分離に劣っている。
【００１３】
親和性分離をＴＦＦと組合せてＴＦＦの生物学的差異に基づく選択的分離能力を増加させる試みが為されている。ＷＯ８７／０４１６９（１９８７年７月１６日公開）参照。ＴＦＦ限外濾過においては、可溶性の親和性ポリマーは濾過膜の上流側の分離しようとする分画を含有する混合物中に存在する。ポリマーは溶質粒子よりはるかに大きいので、未結合の溶質をフィルターから通過させるが、ポリマーおよびポリマーに結合したすべての物質の通過を妨げるフィルターを選択することができる。しかし、通常のＴＦＦの問題のために、この方法も余りよい結果は得られていない。
【００１４】
アメリカ合衆国特許第４，１０５，５４７号（１９７８年８月８日発行）は、濾過法、特に限外濾過用に設計された濾過法を開示しているが、ここでは、濾過可能な液体をフィルターの１方の側に添って伸びるフィルター通路を通して加圧下に流し、流動方向のフィルター面に沿ってかなりの圧力減少が起こるようにする。用いた装置では、フィルターの両側の圧力差を全フィルター面にわたって実質的に一定に保つ。特許権者は流れを減少させる傾向を与えるフィルターの目詰まりを、流束対ＴＭＰ曲線の圧力非依存性領域以下のレベルに運転圧を連続的に増加させることによって相殺しうることを教示している。この運転圧の増加により、濾過速度は一定になるが、より高い選択性は得られない。更に、特許権者は、トランスメンブラン圧は濾過を行うと同時に増加させるべきことを開示している。特許権者の示唆している他の態様としては、より良く膜を清浄にすることが挙げられる。
【００１５】
アメリカ合衆国特許第４，１９１，１８２号（１９８０年３月４日発行）は、血液を血漿および細胞成分分画に連続的に分離する方法および装置を開示している。この方法は、全血を抜取り、これを濾過セルの濾過室に送り込み、これを一定の孔径の膜上で平行に、特定のＴＭＰ範囲内で膜の界面で所定の剪断応力が得られるのに十分な流速で流すことにより全血を連続的に濾過することからなる。次に細胞成分分画を実質的に分離された血漿分画と等しい置換液体と連続的に混合し、細胞成分分画および置換液体混合物を連続的にドナーの血管に戻す。
【００１６】
１つの具体例においては、全血から分離された血漿分画の一部を、全血の流れから膜の反対方向ではなく、濾過膜上の全血の流れと平行かつ同方向の流れに再循環して、膜の全長にわたって実質的に均一なＴＭＰを得る。この具体例の目的は、血漿濾液がそのような再循環をせずに濾液室から除去された場合の２倍に濾過速度を増加させることである。これにより、長い濾過室流路およびコイル型濾過セルの設計が可能になる。
【００１７】
最近、アメリカ合衆国特許第４，７８９，４８２号（１９８８年１２月６日）は血漿を高分子量流および低分子量流に分離する方法を記載している。血漿を、限外濾過が行われる壁を有するいくつかの細溝または中空糸を有する分離ユニットの入口部分に一定の剪断速度で導入する。高分子量流および低分子量流を該ユニットから分離し、高分子量流を分離ユニットの入口部分に再循環して再循環流を形成し、再循環流速度の透過流速度に対する比を５〜１００に調整し、分離ユニットの出口でのＴＭＰの入口でのＴＭＰに対する比は約０〜０．８５に調整する。この方法は、限外濾過を考慮する上での通常の考え、即ち、出口および入口ＴＭＰは異なっていなければならないという考えを用いたものであり、従って、限外濾過に固有の濃度分極の問題を克服するものではない。
【００１８】
これらのすべての改良の試みにもかかわらず、濃度分極は変えることができ、そして適切な流動条件が与えられる場合には非常に濃縮された溶液からでも非常に高い濾過速度が得られるが、分極層は完全には除去されない。このことは、多くの蛋白質混合物に関して観察され、単純な限外濾過による蛋白質混合物の分画は、種が分子量において少なくとも１０のファクターで異なっていなければ恐らくはとんど効果がないことが経験上わかる。いくつかのより精密な分離が時により報告されているが、これらは通常極めて実際的でないほど希薄な条件下で行われる。Ｎｅｌｓｅｎの”血漿分画における限外濾過”Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ  ｏｆ  ｔｈｅ  Ｉｎｔｅｒｎａｔ．Ｗｏｒｋｓｈｏｐ  ｏｎ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  ｆｏｒ  Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｓｅｐａｒａｔｉｏｎ  ａｎｄ  Ｉｍｐｒｏｖｅｍｅｎｔ  ｏｆ  Ｂｌｏｏｄ  Ｐｌａｓｍａ  Ｆｒａｃｔｉｏｎａｔｉｏｎ中，Ｒｅｓｔｏｎ  Ｖａ，１９７７年９月７日〜９日，Ｓａｎｄｂｅｒｇ編，ＮＩＨ，ＤＨＥＷ  Ｐｕｂ．Ｎｏ．ＮＩＨ  ７８−１４２２、１３７頁；Ｆｌａｓｃｈｅｌらの”生物触媒の分離のための限外濾過”，Ｆｉｅｃｈｔｅｒ編のＡｄｖａｎｃｅｓ  ｉｎ  ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ／Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｖｏｌ．２６（Ｄｏｗｎｓｔｒｅａｍ  Ｐｒｏｃｅｓｓｉｎｇ）中，７３−１４２頁（１９８３），特に１２４頁；Ｃｈｅｒｙａｎ（前掲）、Ｐ２１８−２１９頁を参照。
【００１９】
【発明が解決しようとする課題】
（発明の要旨）
本発明の目的は、大きさによって粒子および分子などの種を分離するための接線フロー濾過法を提供することである。この方法は対象となる種に関して選択的であり、そのため高い精製倍率が得られる。
【００２０】
もう一つの目的は、蛋白質などの生物学的巨大分子を分離するための改良された濾過法（限外濾過法を含む）を提供することである。この方法は、濃度分極を最小にし、濾過速度を増加させない。
【００２１】
もう一つの目的は、大きさの相違が１０倍未満である種を大きさ（サイズ）によって分離することができ、濾過前に混合物の希釈を必要としない濾過法を提供することである。
【００２２】
これらおよび他の目的は当業者には自明である。
【００２３】
【課題を解決するための手段】
これらの目的は、混合物から所望の種を分離する方法において達成され、該方法は流束を転移点での流束の約５〜１００％の範囲のレベルに保ちながら、混合物から所望の種を分離する孔径を有する膜を通して接線フロー濾過により混合物を濾過することからなる。
【００２４】
好ましくは、濾過のトランスメンブラン圧を、濾過の転移点でのトランスメンブラン圧より大きくないレベルで膜に沿って実質的に一定に保つ。
【００２５】
より具体的な態様において、対象となる種の大きさは最高約１０ミクロンまでである。更に具体的な態様において、本発明は、約１〜１０００ｋＤａの分子量を有する対象種を混合物から分離する方法であって、流束を転移点での流束の約５〜１００％のレベルに保ちながら、混合物から該対象種を分離する孔径を有する濾過膜を通して接線フロー濾過により混合物を濾過し、それにより対象種を混合物から選択的に分離する方法を提供する。
【００２６】
更に別の態様において、本発明は、約０．１〜１０ミクロンの大きさの対象種を混合物から分離する方法であって、転移点での流束の約５〜１００％の範囲のレベルに流束を保ちながら、混合物から該対象種を分離する孔径を有する濾過膜を通して接線フロー濾過により混合物を濾過することからなる方法を提供する。
【００２７】
更に別の態様において、本発明は：
（ａ）濾過ユニットをそれぞれ入口および出口を有する濾過および濾液室に隔てる、複数の同一孔径を有する隣接した平行な濾過膜を含む濾過ユニットと液体連絡している液体容器；
（ｂ）液体を容器から該濾過室の入口に送り出す手段を含む、濾過室の入口を容器に接続する手段；
（ｃ）濾液室内に圧力勾配を発生させる手段；および
（ｄ）該濾液室の出口から濾液を集める手段；
からなる接線フロー濾過装置を提供する。
【００２８】
好ましくは、膜の孔は１ｋＤａから１０ミクロンの範囲の大きさである。また好ましくは、該発生手段は、濾過室中の液体の方向と平行な濾液室を通って濾液を再循環する手段であり、より好ましくはポンプである。
【００２９】
更に別の態様においては、本発明は、複数の積層された濾過および濾液室を有する濾過ユニットを含有する接線フロー濾過装置であって、積層順で最後の濾液室以外はすべて別の容器と液体連絡している入口および出口手段を有し、最後の濾液室は積層順での第一濾液室に液体連絡している容器に濾液を循環させるための出口手段を有し、各室は容器から液体を室の入口手段に送り出す手段を有し、各室は濾過膜により隣接する室から隔てられており、
全室の入口手段から出口手段への液体の流れが平行かっ同一方向であり、積層順で最初の濾過膜は最大サイズの種を保持する孔径を有し、積層順で最後の濾過膜は最小サイズの種を保持する孔径を有し、積層順で中間の濾過膜は中間層膜の最初から最後へと大きさが減少するサイズの種を保持する孔径を有する濾過装置を提供する。
【００３０】
更に別の態様において、本発明は
（ａ）第一濾過ユニットをそれぞれ入口および出口を有する第一の濾過および濾液室に隔てる、第一濾過膜を有する第一濾過ユニットと液体連絡している第一容器；
（ｂ）液体を第一容器から第一濾過室の入口に送り出す手段を含む、第一濾過室の入口を第一容器に接続する手段；
（ｃ）第一濾液室内に圧力勾配を発生させる手段；
（ｄ）第二濾過ユニットをそれぞれ入口および出口を有する第二の濾過および濾液室に隔てる、第二濾過膜を有する第二濾過ユニットと液体連絡している第二容器；
（ｅ）濾液を第一濾液室の出口から第二容器に循環させる手段；
（ｆ）液体を第二容器から第二濾過室の入口に送り出す手段を含む、第二濾過室の入口を第二容器に接続する手段；
（ｇ）第二濾液室内に圧力勾配を発生させる手段；
（ｈ）第三濾過ユニットをそれぞれ入口および出口を有する第三の濾過および濾液室に隔てる、第三濾過膜を有する第三濾過ユニットと液体連絡している第三容器；
（ｉ）濾液を第二濾液室の出口から第三容器に循環させる手段；
（ｊ）液体を第三容器から第三濾過室の入口に送り出す手段を含む、第三濾過室の入口を第三容器に接続する手段；および
（ｋ）濾液を第三濾液室の出口から第一容器に循環させるための手段；
を含有する接線フロー濾過装置であって、第一濾過膜が最大サイズの種を保持する孔径を有し、第二濾過膜が第一および第三濾過膜の孔径の中間のサイズの種を保持し、そして第三濾過膜が最小サイズの種を保持する孔径を有する接線フロー濾過装置を提供する。
【００３１】
所望により最後の装置は第三濾液室内に圧力勾配を発生させる手段を含む。
【００３２】
好ましくは、すべての発生手段は濾過室中の液体の方向に平行な濾液室を通って濾液を再循環する手段である。
【００３３】
また好ましくは、この最後の装置のすべての膜はカスケード中で孔サイズが小さくなる限外濾過膜である。
【００３４】
現在までの文献の多くは、サイズ分離は流束対ＴＭＰ曲線の圧力非依存領域で行われなければならないという仮定のもとで書かれている。本発明のサイズ分離は流束対ＴＭＰ曲線の圧力依存領域で接線フロー濾過を行うことにより達成される。一般に、流束対ＴＭＰ曲線の圧力非依存領域で濾過を行った場合に得られる速度に比べて、本発明の過程における濾過速度は実際には減少する。更に、ＴＭＰが時間に関してほぼ一定に保たれるか、または濾過中に減少するように濾過を行うことができる。
【００３５】
ＴＭＰをこの圧力依存領域内に保つことにより、膜よりも低い分子量を有する分子の保持が著しく減少する。更に、この特徴により、精製することが所望である種に対するシステムの全体的な選択性が著しく向上し、それにより、濃度分極層の問題を克服できる。従って、流束が転移点での流束の約１００％より大きな通常の接線フロー濾過の何倍もの所望の種の精製度が得られる。この方法の更に別の利点は、混合物の大きな種よりも分子量が１０倍未満小さな種を分離することにある。
【００３６】
これらはすべて、運転圧を、それ以上では濾液フローが運転圧に依存しないレベルより低いレベルに上げる必要なしに達成される。これらの特徴は、濾過の前に混合物を希釈する必要がない。このように、本方法はＴＦＦ工程を導入するプロセスの段階での蛋白質の濃度レベルに対して実施することができ、この段階での蛋白質濃度の希釈を回避することができる。
【００３７】
【発明の実施の形態】
（Ａ．定義）
本明細書において用いる「種」なる用語は、流体、例えば液体中の溶液または懸濁液から分離される粒子または分子を意味する。粒子または分子は流体から分離され、多くの場合は、流体中の他の粒子または分子から分離される。分離される対象となる種の大きさにより用いる膜の孔の大きさが決まる。好ましくは、種は天然の生物学的または生化学的起源の生物学的物質、あるいは生物学的または生化学的方法により生成する生物学的物質である。好ましい種の例としては、哺乳類細胞、およびバクテリア、菌類および酵母などの微生物（細胞および微生物の両方が精密濾過技術に適用できる）、ならびに限外濾過に適した大きさの種［ポリペプチド、蛋白質、細胞成分、ＤＮＡ、コロイド、マイコプラズマ、エンドトキシン、ウイルス、炭水化物、および他の生物学的対象の分子（グリコシル化されているか否かによらない）］が挙げられる。
【００３８】
限外濾過の対象となる種は好ましくは分子量が最低約１０００ダルトンの生物学的巨大分子であって、最も好ましくは、ポリペプチドおよび蛋白質である。対象となる（所望の）種が、分離される種より１０倍未満大きいか（例えば汚染物質）、または分離される種より１０倍未満小さいものが好ましい。
【００３９】
本明細書において用いる「接線フロー濾過」なる用語は、濾過により分離される成分を含有する流体混合物が膜の面に対して接線方向に高速で再循環され、逆拡散の物質移動係数が増加する方法を意味する。このような濾過においては、差圧（ＴＭＰ）を膜の長さ方向に適用して、流体および濾過可能な溶質をフィルター通過させる。この濾過は回分法および連続流動法により適切に行われる。例えば、溶液を膜上を繰り返し通過させ、フィルターを通過する流体を連続的に別のユニットに抜き取るかまたは溶液を一旦膜上に流し、フィルターを通過する流体を連続的に下流で処理する。
【００４０】
本明細において用いる「限外濾過」なる用語は、分子量が約１ｋＤａ〜１０００ｋＤａの間にある保持溶質に合わせた膜を用いたプロセスに用いられる。
【００４１】
本明細書において用いる「逆浸透」なる用語は、塩等の分子量が１ｋＤａ未満の溶質および他の低分子量の溶質を保持できる膜を用いる方法を意味する。
【００４２】
本明細書において用いる「精密濾過」なる用語は、０．１から１０ミクロンの孔径範囲の膜を用いる方法を意味する。
【００４３】
本明細書において用いる「トランスメンブラン圧」あるいは「ＴＭＰ」なる表現は、液体および濾過可能な溶質をフィルターを通して流すために濾過膜の長さ方向に加えられる差圧勾配を意味する。
【００４４】
本明細書において用いる、ＴＭＰに関して用いられる「実質的に一定」なる表現は、膜の長さ方向に平均ＴＭＰが約１０ｐｓｉ以上、好ましくは約５ｐｓｉ以上増加または減少しないＴＭＰを意味する。濾過中のＴＭＰのレベルに関しては、ＴＭＰを一定に保つかまたは濃縮段階中に低下させて、高濃度での選択性を保持する。従って、「実質的に一定のＴＭＰ」は濾過時間に対してではなく、膜長に対するＴＭＰを意味する。
【００４５】
本明細書において、濾過膜に関して用いる「同一孔径」なる表現は、膜の実際の孔径が幾分違っても、同一の孔径を有するとみなされているかあるいは同一の孔径を有するとして市販されている膜を意味する。
【００４６】
本明細書において用いる、濾過膜を記載する場合の「隣接する」なる表現は、膜が実質的に隣接していて各々の上にまたは若干の間隔をおいて物理的に積み重ねられていることを意味する。
【００４７】
本明細書において用いる「濾過室内に圧力勾配を発生させる手段」なる表現は、圧力に勾配を発生させ、トランスメンブラン圧力が流束対ＴＭＰ曲線の圧力依存領域において実質的に一定のレベルで操作できるようにする機構を意味する。
【００４８】
本明細書において用いる「濾過室内の液体の方向に平行な濾液室を通って濾液を再循環するための手段」なる表現は、濾液室からの液体の一部が濾過室の入口から出口へ隣接する濾過室を通って流れる液体の流れと平行で実質的に同じ方向に流れる様にする機構または構成を意味する（流れに一部うずを発生させる）。好ましくは、これはポンピング手段を意味する。
【００４９】
本明細書において用いる「容器」なる表現は、液体の貯蔵、分配、および／または収容のための容器またはタンクを意味する。
【００５０】
本明細書において用いる「転移点」なる表現は、以下のように求められる流動率対ＴＭＰ曲線の所定の点を意味する：流束（Ｊｆ）対ＴＭＰの実験値を、入口および出口ＴＭＰが互いの±１０％である短路長モジュールかまたは再循環濾液を用いて同じ条件が得られる完全長モジュールにおいて集める。実験値を式：
Ｊｆ＝Ｊｍａｘ×ＴＭＰ／（ｋ＋ＴＭＰ）  （式１）
［式中、Ｊｍａｘ（漸近値）およびｋは１／Ｊｆ対１／ＴＭＰの直線回帰により決定し、これによりｋ／Ｊｍａｘの勾配と１／Ｊｍａｘのインターセプトが得られる］により得られる曲線にあてはめる。第１Ａ図に関して、転移点は次の基準によりグラフから求められる。Ｊｆ＝Ｊｍａｘと式１により得られる曲線に対する原点を通る接線（接線はＪｆ＝Ｊｍａｘ  ｘ  ＴＭＰ／ｋ）のインターセプトを求める。次に、インターセプトを通っておよび上記曲線上の接線に垂直に直線を引く。この後者の直線および曲線の交点により、転移点での流束が定義される。数学的には、この転移点（Ｊｆ＊）は実験値の次式：
（Ｊｍａｘ−Ｊｆ＊）4＝−Ｊｍａｘ  ｘ  ｋ2（Ｊｍａｘ−２Ｊｆ＊）  （式２）
の実数解として得られる。
【００５１】
（Ｂ．本発明実施の様式）
最も広範囲の態様において、本明細書において記載する高性能接線フロー濾過法は分離する種の混合物を一定のＴＭＰおよび流束条件下に接線フロー濾過の一種に関して設計された装置または、モジュール中の１以上の濾過膜を通すことを含む。ＴＭＰを流束対ＴＭＰ曲線の圧力依存領域中の範囲、即ち転移点におけるＴＭＰ値以下の範囲に保持する。このようにして濾過を転移点での流束の約５％から最高１００％の範囲の流束で操作する。第１Ａ図および第１Ｂ図参照（図中、流束対ＴＭＰ曲線を転移点とともに示す）。その結果、対象となる種は保持物として膜により選択的に保持され、一方、より小さい種は濾液として膜を通過するか、または対象となる種が濾液として膜を通過し、混合物中の異物が膜により保持される。
【００５２】
ＴＭＰは濾過時間と共に増加せず、濾過中に必ずしも一定に保たれる必要がないとは重要である。ＴＭＰは時間に関してほぼ一定に保たれるか、または、濾過の進行とともに減少してもよい。保持される種が濃縮される場合、濃縮段階の工程にわたって、ＴＭＰが減少することが好ましい。
【００５３】
それぞれの膜は好ましくは孔径が最高約１０ミクロン、より好ましくは１ｋＤａから１０ミクロンまでの種を保持する大きさを有するのが好ましい。限外濾過により分離される種の例としては、蛋白質、ポリペプチド、コロイド、マイコプラズマ、エンドトキシン、ウイルス、アミノ酸、ＤＮＡ、ＲＮＡおよび炭水化物が挙げられる。精密濾過により分離される種の例としては、哺乳動物細胞およびバクテリアなどの微生物が挙げられる。
【００５４】
膜フィルターは完全ではなく、ある種の保持されるべき分子をもらす孔を有する場合もあるので、本明細書の好ましい態様では、互いに平行に、好ましくは互いの上に積み重ねられた同じ孔径を有する１以上の膜を用いる。好ましくは、この目的のための膜の数は２枚である。
【００５５】
前記過程において圧力を維持する流束は約５から１００％の範囲であるのが適切であるが、流束が低いほどより広い膜の表面積が必要になる。従って、膜のコストを最少にするためには、流束がスペクトルの最高値になるような圧力にて行うのが好ましい。好ましい範囲は転移点での流束の約５０から１００％であり、より好ましくは約７５から１００％である。
【００５６】
ＴＭＰは膜表面に添って実質的に一定に保たれる必要はないが、ＴＭＰを実質的に一定に保つのが好ましい。このような条件は、一般に膜の濾液側に圧力勾配を発生させることにより達成される。従って、濾液を濾過装置の濾液区画を通して装置の残留物区画中の混合物の流れと同じ方向に平行に再循環させる。再循環された物質の入口および出口圧は濾液区画全体にわたる圧力降下が残留物区画全体にわたる圧力降下に等しくなるようなものである。
【００５７】
この濾液圧力勾配を達成するためにいくつかの実用的な手段を用いることができる。その１つの例としては第２Ａ図に示す構造である。このように、分離される混合物が分離される生成物が発酵ブロス中にある場合は発酵槽（図示せず）に結合している入口管１を通して装置に入る。これはまた細胞溶解物または細胞収穫後の上清をいれた容器（図示せず）に結合していてもよい。管１中の流速は残留物ポンピング手段３により調整される。ポンプは当業界で公知のいかなる適当なポンプでもよく、流速は当業者に公知のように濾過の性質に従って調節することができる。
【００５８】
ポンピング手段３からの流れの入口圧を測定するために圧力計５を適宜用いてもよい。入口管１中の流体は濾過ユニット７に入る。この濾過ユニット７はその上部に濾過室７ａおよび底部に濾液室７ｂを有する。これらの２つの区画は濾過膜９により分離されている。送入流体は濾過室７ａ内の濾過膜９に平行な方向に流れる。上部の濾過室７ａは対象となる種を含有する混合物を受容する。小さな種は膜９を通過して低部の室７ｂにはいる。濃縮された残留物は濾過ユニット７から出口管１１を通るが、所望の対象種を得るためにここで集められ、必要なら更に処理してもよい。あるいは、混合物が流れ出るタンクまたは発酵槽に残留物流を戻し、更に精製する為に入口管を通して再循環させる。
【００５９】
膜９を通して濾液室７ｂに入る分子を含有する溶液は残留流体が出口管１１を通って出るのと濾過ユニット７の同じ端から出口管１３を通って濾過ユニット７を出る。この濾液の一部は管１３を通ってシステムから排出されて捨てられるか、あるいはより小さい孔径の膜を通しての濾過の形態のカスケードで更に処理するために第二タンクまたは容器に送られる。所望により、精密濾過のために、濾液ポンピング手段１５をこの目的のために管１３中に設ける。別の部分は管１７を通して濾液ポンピング手段１９に再循環し、これにより濾液圧力勾配ができる。液体のこの部分を入口管２１を通して濾液室７ｂの入口端に再循環させ、濾過室７ａ中の分離される混合物と平行に、かつ同じ方向に、濾液室７ｂ中で濾液が流れるようにする。
【００６０】
ポンピング手段１９の操作速度を調節して、濾液が室７ｂに導入される圧力（濾液入口圧）および濾液が出口管１３から排出される圧力（濾液出口圧）を調節して膜の長さ方向のＴＭＰが実質的に一定になるようにすることができる。好ましい方法は、室７ｂの圧力差をユニットの室７ａの圧力の減少と等しくなるように調節し、ＴＭＰが膜全体にわたってほぼ等しくなるようにする。圧力の減少をモニターし、必要ならば調節するために濾液室７ｂを通して濾液の再循環流のループの入口および出口にそれぞれ感圧手段２３ａおよび２３ｂを用いることができる。濾過室７ａに関する圧力減少をモニターするために出口管１１に感圧手段２３ｃを適宜用いる。適当な圧力勾配を得、一方濾液の循環速度を最小にするために濾液室７ｂに制限流路を設けてもよい。この構造の結果、膜の表面全体にわたって実質的に一定なＴＭＰが得られる。
【００６１】
この場合に有用な濾過ユニットは、特に精密濾過および限外濾過用の適当な濾過モジュールとして機能するあらゆる公知のまたは将来開発されるユニットである。好ましい限外濾過ユニットは中空糸またはフラットシート装置である。これらのサンドイッチ濾過ユニットを積み重ねて複合セルを形成することができる。長方形濾過板型セルの好ましい例の１っは、Ｆｉｌｔｒｏｎ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ［Ｎｏｒｔｈｂｏｒｏｕｇｈ，ＭＡ］からＣｅｎｔｒａｓｅｔｔｅの商品名で入手できる。
【００６２】
別の適当な限外濾過ユニットは、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ［Ｂｅｄｆｏｒｄ，ＭＡ］から入手可能なＭｉｌｌｉｐｏｒｅ  Ｐｅｌｌｉｃｏｎ限外濾過システムである。
【００６３】
第２Ａ図に示す構造においては、膜を室７ａおよび７ｂに設けて所定の流速および膜の差圧が得られるようにする必要がある。本発明の方法において有用な膜は一般にフラットシート、ロールドアップシート、円筒、同心円筒、種々の断面および他の構造の管の一種またはグループで集成され、濾過ユニット内で直列または平行に結合した形態である。装置は一般に濾過および濾液室が膜の長さ方向になるように構成される。
【００６４】
適当な膜は所望の種を混合物中の望ましくない種から実質的に目詰まりの問題を起こすことなく、システムの連続的操作に十分な速度で分離するものである。例は、Ｇａｂｌｅｒ（前掲）により記載されている。これらは典型的には微小孔または限外濾過型のいずれかの合成膜である。微孔性膜は、通常は０．１から１０マイクロメーターの孔径を有し、この寸法より大きなすべての粒子を保持するように作成することができる。限外濾過膜はより小さな孔を有し、保持する蛋白質の大きさにより特徴付けられる。１，０００から１，０００，０００ダルトンの公称分子量の増分が用いられる。
【００６５】
限外濾過膜は本発明の方法において用いるのに最も一般的に適している。限外濾過膜は通常上流表面で薄膜またはスキンに関して非対照的であり、これがその分解力に関与している。これらは一般に再生セルロースまたはポリスルホンで作られている。
【００６６】
接線フロー濾過用の膜フィルターは、取り扱う液体の体積に応じて異なる構造のユニットとして種々の孔径のものが利用できる。本発明における比較的大規模な使用に特に適当なものは、公知の市販の接線フロー濾過ユニットである。
【００６７】
別の好ましい装置においては、既に示した理由により、第２Ａ図の濾過ユニット７は複数の、好ましくは２つの濾過膜からなる（第２Ｂ図においてそれぞれ膜９ａおよび９ｂで示す）。これらの膜は平行に積層される。
【００６８】
本発明はまた多段階のカスケードプロセスであり、このプロセスにおいては、前記プロセスで得られた濾液を第二接線フロー濾過装置中で第一装置の膜よりも小さな孔径を有する濾過膜を通過させ、この第二濾過より得られた濾液を第一装置に再循環され、このプロセスを繰り返す。
【００６９】
このカスケードプロセスにおいて、第二濾過は典型的には通常の濾過であり、流束は転移点での流束の約１００％より高いレベルに維持し、一般に、ＴＭＰは膜に添って実質的に一定に維持されない。
【００７０】
カスケードプロセスのより好ましい具体例において、両段階は孔径が１から１０００ｋＤａである接線フロー限外濾過を含む。
【００７１】
三段階カスケードプロセスに於て、第二濾過から得られた濾液を第三接線フロー濾過装置の第二膜より小さな孔径を有する濾過膜を通過させ、第三濾過より得られた濾液を第一濾過装置に再循環させ、このプロセスを繰り返す。カスケードプロセスにおいて２つの高性能濾過のみが必要な場合、第三段階は通常のように、即ち、流束をこの第三段階の転移点での流束の約１００％より高いレベルに維持する。
【００７２】
この三段階カスケードプロセスのより好ましい具体例において、三段階のすべてにおいて接線フロー限外濾過を行う。
【００７３】
カスケードプロセスを行うのに適した接線フロー装置の一例を第３図に示す。図中、第一容器３１を入口管３３を通して濾過ユニット３７中に置かれた濾過室３５ａに接続する。第一供給ポンピング手段３９は第一容器３１および濾過室３５ａ間に配置する。濾過室３５ａは出口管４１を通して第一容器３１に接続される。濾過室３５ａは第一濾過膜４３により濾過ユニット３７中直接その下に置かれた第一濾過／濾液室３５ｂから分離される。第一濾過／濾液室３５ｂは管４７に設置された濾液ポンピング手段４９を有する室３５ｂの入口に接続された出口管４７を有する。また、出口管４７に接続された管４５は第二容器５１に接続されている。
【００７４】
この容器５１は入口管５３を通して第二濾過ユニット５７中に設置された第二濾過室５５ａに接続される。第二供給ポンピング手段５９は第二容器５１および濾過室５５ａ間に設置される。濾過室５５ａは第二濾過膜６３により濾過ユニット５７中直接その下に置かれた第二濾過／濾液室５５ｂから分離される。第二濾過／濾液室５５ｂは管６７に設置された濾液ポンピング手段６９を有する室５５ｂの入口に接続された出口管６７を有する。出口管６７に接続された管６５はまた第三容器７１に接続されている。
【００７５】
この容器７１は入口管７３を通して第三濾過ユニット５７中に設置された第三濾過室７５ａに接続される。第三供給ポンピング手段７９は第三容器７１および濾過室７５ａ間に設置される。濾過室７５ａは第三濾過膜８３により濾過ユニット７７中直接その下に置かれた第三濾過／濾液室７５ｂから分離される。第三濾過／濾液室７５ｂは管８５に接続された出口管８７を有し、該出口管は第一容器３１に接続され、これにより濾液は元のタンクに再循環される。
【００７６】
所望により、第三濾過／濾液室７５ｂの出口管８７は、管８７中に設置された濾液ポンピング手段８９を有する室７５ｂの入口に接続される。すべての室の入口から出口への流体の流れは平行で、同一方向である。更に、第一濾過膜４３は第二および第三濾過膜（それぞれ６３および８３）よりも大きな寸法の種を保持する孔径を有し、第二濾過膜６３は第三濾過膜８３よりも大きな寸法の種を保持する孔径を有する。
【００７７】
カスケードプロセスを行うのに適した第二接線フロー装置を第４Ａ図に示す。図中、第一容器９１は入口管９３を通して濾過ユニット９７中に置かれた濾過室９５ａに接続される。第一供給ポンピング手段９９は第一容器９１および濾過室９５ａ間に設置される。濾過室９５ａは出口管１０１を通して第一容器９１に接続される。濾過室９５ａは第一濾過膜１０３により濾過ユニット９７中直接その下に置かれた第一濾過／濾液室９５ｂから分離される。第二容器１０５は濾過／濾液室９５ｂに入口管１０７を通して接続される。第二供給ポンピング手段１０９は、第二容器１０５および第一濾過／濾液室９５ｂ間に設置される。第一濾過／濾液室９５ｂは出口管１１１を通して第二容器１０５に接続される。第一濾過／濾液室９５ｂは第二濾過膜１１３により濾過ユニット９７中直接その下に置かれた第二濾過／濾液室９５ｃから分離される。
【００７８】
第三容器１１５は第二濾過／濾液室９５ｃに入口管１１７を通して接続される。第三供給ポンピング手段１１９は、第三容器１１５および第二濾過／濾液室９５ｃ間に設置される。第二濾過／濾液室９５ｃは出口管１２１を通して第三容器１１５に接続される。第二濾過／濾液室９５ｃは第三濾過膜１２３により濾過ユニット９７中直接その下に置かれた濾液室９５ｄから分離される。
【００７９】
濾液室９５ｄは出口管１２５を通して第一容器９１接続され、これにより濾液は元の容器に再循環される。すべての室の入口から出口への流体の流れは、平行で同じ方向である。更に、第一濾過膜１０３は第二および第三濾過膜（それぞれ１１３および１２３）よりも大きな寸法の種を保持する孔径を有し、第二濾過膜１１３は第三濾過膜１２３よりも大きな寸法の種を保持する孔径を有する。
【００８０】
第４Ａ図のカスケード装置により、あらゆる利点を有し、第３図に示す高性能接線フロー濾過カスケードシステムに必要な５または６つのポンプおよび３つの装置ではなく３つのポンプおよび１つの装置しか必要でない高性能接線フロー濾過が可能になる。
【００８１】
所望により、第４Ａ図の装置は、各濾過膜が複数の膜、好ましくは第４Ｂ図に示すように濾過ユニット９７中平行に互いの上に積層された２つの膜（第一膜９３ａに関しては膜９３ｂ、第二膜１１３ａに関しては膜１１３ｂ、第三膜１２３ａに関しては膜１２３ｂ）から構成される。
【００８２】
第３および４図に示すカスケード装置では、第一膜（４３または１０３）は第二膜（それぞれ６３または１１３）よりも大きなカットオフの孔径を有し、これは次に第三膜（それぞれ８３または１２３）よりも大きなカットオフ孔径を有するようになっている。最も好ましくは、３つの膜はすべて限外濾過膜である。
【００８３】
第３図および第４Ａ図の装置は、３つの濾過膜を用いた三段階分離を行うために設計されている。本発明は、２つの濾過膜および２つの容器しか用いない装置である。例えば、第４Ａ図においては第二濾過／濾液室９５ｃは出口管を有する濾液室であり、要素９５ｄ、１２１、１２３、１１５、１１７および１１９は存在しない。他の変形例の場合、第３図および第４Ａ図の装置は、３以上の濾過膜および３以上の容器を有し、例えば、第４Ａ図の第二濾過／濾液室９５ｃは第四濾過膜を通して、第四容器と流体を伝達する入口および出口を備えた第三濾過／濾液室に接続され、従って、最後または最底部の室は第４Ａ図に示すように、第一容器９１を有する管１２５と流体を伝達する９５ｄと同じような濾液室になるようにする。
【００８４】
本発明のプロセスは、商業的および半商業的規模によく適合する。バッチまたは連続操作、あるいは半連続的方法、例えば全バッチが濾過されるまで、濾過の段階の間に洗浄段階をはさんで、所望の種を含有する溶液の連続流に基づき接線フローフィルターを通過させる。次に、溶液の新しいバッチを処理する。このようにして、連続的サイクルプロセスを行って、所望の生成物を許容可能な純度の形態で比較的短い時間で大量に得ることができる。
【００８５】
本明細書において記載したように、フィルターの目詰まりを起こさずに固体含有溶液の連続的濾過を可能にする接線フロー濾過の能力により、接線フロー濾過の特徴から連続的および商業的規模の使用のための生物学的反応生成物の分離および精製のための非常に有利なプロセスが得られる。更に、このプロセスは広範囲に及ぶ生物分子、例えば天然のまたは遺伝子操作した微生物の発酵の蛋白生成物、高分子量抗体、細胞分泌物などに応用できる。
【００８６】
以下の実施例は本発明を更に詳細に例示するものであって、制限するものではない。
【００８７】
【実施例】
（実施例１）
本実施例において、通常および高性能の接線フロー限外濾過法におけるチトクロムＣ（約１２．５ｋＤａ）からの組換えｔ−ＰＡ（約６５ｋＤａ）の精製を比較した。
【００８８】
０．００２％Ｔｗｅｅｎ８０を含有する０．２Ｍアルギニンホスフェート緩衝液（ｐＨ７．２）（「緩衝液」）中の組換えｔ−ＰＡ（アメリカ合衆国特許第４，７６６，０７５号、第４，８５３，３３０号、第４，７７７，０４３号および第４，９０８，２０５号）の試料を水で希釈し、２リットルのｒｔ−ＰＡの０．９ｍｇ／ｍｌ溶液を得た。チトクロムＣ（Ｓｉｇｍａ）を添加して最終濃度の計算値が０．１ｍｇ／ｍｌとなるようにした。
【００８９】
以下のテストＮｏ．２に関しては、基本的に第２Ａ図に示したものと同じである高性能ＴＦＦ（ＨＰ−ＴＦＦ）リサーチモジュールを、約０．４２ｆｔ2の３０ｋＤａ  Ｈｏｅｃｈｓｔ  Ｋａｌｌｅ再生セルロースを含む膜を用いて、混合物中のチトクロムＣからｒｔ−ＰＡを分離するのに用いた。出口管１１は流体を入口管１に接続された混合物を含有するバルク容器（３０ｋＤａ）に戻し、出口管１３は１０ｆｔ2の５ｋＤａ再生セルロース膜を含む通常のＭｉｌｌｉｐｏｒｅ  Ｐｅｌｌｉｃｏｎ限外濾過システムを有する閉じたループカスケードモード中のタンク（５ｋＤａ）に接続している。この膜は、チトクロムＣを保持し、ＨＰ−ＴＦＦモジュールに等しい適度な濾過速度が得られる。５ｋＤａシステムからの濾液を、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅシステムの５ｋＤａ容器中の５ｋＤａ残留物に結合したものおよび７０１６  Ｍａｓｔｅｒｆｌｅｘポンプにより３０ｋＤａバルク容器に接続した残りに分割した。このポンプを用いて、３０ｋＤａおよび５ｋＤａ容器の両方において一定の液体レベルに保持する。リサーチおよびＰｅｌｌｉｃｏｎモジュールに水を流し、排水し、次に緩衝液を注入する。３０ｋＤａシステムを次に排水し、７５０ｍｌのすでに記載したｒｔ−ＰＡおよびチトクロムＣの混合物で満たし、一方５ｋＤａシステムを排水し、結合性を試験し、７５０ｍｌの緩衝液で満たす。
【００９０】
比較のための通常のモードを示すテストＮｏ．１に対しては、前記のＨＰ−ＴＦＦモードの代わりに通常の限外濾過モードにおいて操作されるリサーチモジュールを用いた３０ｋＤａのリサーチモジュール／５ｋＤａ  Ｐｅｌｌｉｃｏｎカスケードを用いる。
【００９１】
両テストに用いたリサーチモジュールのパラメーターを以下に示す：
【００９２】
【表１】
0003828143.tif 000002
【００９３】
テスト１および２を以下に列挙した異なる条件下で行った。ここで、Ｑｓは供給速度、ＱＨ2Ｏは水の濾過速度、Ｑｆはプロセスの濾過速度、およびＱｒｆは再循環濾液速度である。
【００９４】
（テストＮｏ．１）
３０ｋＤａ結合性テスト：Ｐ0＝５ｐｓｉで１分間に△Ｐ＝０．１ｐｓｉ；ＱＨ2Ｏ／ＴＭＰ＝１０．７１ｍｌ／分，ｐｓｉ；残留物温度＝２３℃
５ｋＤａ結合性テスト：Ｐ0＝５ｐｓｉで１分間に△Ｐ＝０．１ｐｓｉ；ＱＨ2Ｏ／ＴＭＰ＝７．５０ｍｌ／分，ｐｓｉ；残留物温度＝２２℃
【００９５】
【表２】
0003828143.tif 000003
【００９６】
３０ｋＤａ結合性テスト：Ｐ0＝５ｐｓｉで１分間に△Ｐ＝０．１ｐｓｉ；残留物温度＝２８℃
５ｋＤａ結合性テスト：Ｐ0＝５ｐｓｉで１分間に△Ｐ＝０．２ｐｓｉ；残留物温度＝２３℃
（テストＮｏ．２）
３０ｋＤａ結合性テスト：Ｐ0＝５ｐｓｉで１分間に△Ｐ＝０．１ｐｓｉ（ここで、Ｐ0は出口圧）；ＱＨ2Ｏ／ＴＭＰ＝１０．８６ｍｌ／分，ｐｓｉ；残留物温度＝２３℃
５ｋＤａ結合性テスト：Ｐ0＝５ｐｓｉで１分間に△Ｐ＝０．２ｐｓｉ；ＱＨ2Ｏ／ＴＭＰ＝８．８９ｍｌ／分，ｐｓｉ；残留物温度＝２３℃
【００９７】
【表３】
0003828143.tif 000004
【００９８】
３０ｋＤａ結合性テスト：Ｐ0＝５ｐｓｉで１分間に△Ｐ＝０．１ｐｓｉ；残留物温度＝３３℃
５ｋＤａ結合性テスト：Ｐ0＝５ｐｓｉで１分間に△Ｐ＝０．１ｐｓｉ；残留物温度＝４０℃
テスト１および２に関して２つの異なる分析を行った。第一分析において、Ａ２８０ｎｍおよびＡ４１０ｎｍを出発および最終のバルクに対して測定した。チトクロムＣ濃度をＡ４１０ｎｍ（ｔ−ＰＡは４１０ｎｍにおいて吸収がない）により決定した。ｔ−ＰＡ濃度を次にチトクロムＣによるＡ２８０ｎｍ吸収を引いた後のＡ２８０ｎｍで決定した。
【００９９】
第二の分析において、出発バルク（再循環前の混合物）および最終バルク（５ｋＤａシステムを通して再循環した後の緩衝液）および残留物および３０ｋＤａおよび５ｋＤａタンクに関する１、５および９のダイアボリュームでの濾液を２１４ｎｍで検出するＴＳＫ−２００サイズ専用ＨＰＬＣにより測定した。
【０１００】
結果は以下の通りである：
0003828143.tif 000005
【０１０１】
【表４】
0003828143.tif 000006
【０１０２】
0003828143.tif 000007
【０１０３】
これらの結果により、ＨＰ−ＴＦＦにより実質的にＣ−ＴＦＦの何倍もの精製ができることがわかる。
【０１０４】
ｒｔ−ＰＡからのチトクロムＣの除去を示す一連のＨＰＬＣクロマトグラムを第５図に示す。このグラフから、分子量がｔ−ＰＡの１０倍未満より小さい分子であるチトクロムＣからｔ−ＰＡが明瞭に分離されることがわかる。
【０１０５】
（実施例２）
本実施例は３０ｋＤａ分子量カットオフ膜を用いた通常および高性能接線フロー限外濾過の両方におけるＴＭＰの関数としての混合物中のｒｔ−ＰＡおよびチトクロムＣの篩い分けを測定するために実施した研究を示す。流束を各操作条件に対して測定した。シービング値に基づいて、いずれかの接線フロー限外濾過法により得られた理論的精製度および収率を、実施例１に記載した３０ｋＤａ／５ｋＤａカスケード接線フロー限外濾過システムを用いてダイアボリュームの関数として求めた。
【０１０６】
更に、本実施例において、精製に対する増加した再循環率の影響を調べた。
【０１０７】
実施例１からの残留物および濾液を再び合わせ、５ｋＤａＰｅｌｌｉｃｏｎシステムで濃縮した。この濃縮により得られた残留物を０．２μｍで濾過し、冷室（２〜８℃）中で保存した。
【０１０８】
実施例１に記載したリサーチモジュール（約０．４２ｆｔ2の３０ｋＤａ  Ｈｏｅｃｈｓｔ  Ｋａｌｌｅ再生セルロース）を全リサイクルモードで操作した。リサーチモジュールに水を流し、抜き取り、次に緩衝液を注入した。３０ｋＤａシステムを次に抜き取り、結合性を試験し、約７５０ｍｌの実施例１のｒｔ−ＰＡおよびチトクロムＣの混合物で満たした。
【０１０９】
各テストに対して、安定な流束条件を確実にするために、５および１０分で流束測定を行って濾過を１０分間行った。残留物および濾液のサンプルを１０分目に抜き取り、ＨＰＬＣ分析にかけた。
【０１１０】
すべての実験は約２０ｐｓｉの出口圧（Ｐ0）および３５または５０ｐｓｉのいずれかの入口圧（Ｐｉ）（ＤＰ約１５および３０ｐｓｉ）で行った。再循環濾液ポンプを有するＨＰ−ＴＦＦに関しては、ＴＭＰを１５および３０ｐｓｉの両方のＤＰで５および１０にセットした。テストはまた再循環濾液ポンプ無しのＨＰ−ＴＦＦを用いてＰ0＝１ｐｓｉおよび約１５および３０ｐｓｉのＤＰでも行った。３０ｋＤａ再循環ポンプ、濾過ポンプ、再循環濾液ポンプ、残留物チャンネル、濾液支持体、再生セルロース膜、および流体は実施例１に記載したのと同じである。
【０１１１】
３０ｋＤａ結合性テスト：Ｐ0＝５ｐｓｉで１分間に△Ｐ＝０．１ｐｓｉ；ＱＨ2Ｏ／ＴＭＰ＝測定せず；残留物温度＝２２℃
（テスト１：）
テスト１はＰ0＝２０ｐｓｉ、△Ｐ約３０ｐｓｉ、およびＴＭＰ約５ｐｓｉにて高性能モードで操作したリサーチモジュールを用いる。低ＴＭＰ条件は、濾液出口で再循環濾液に背圧をかけることにより得られる。
【０１１２】
【表５】
0003828143.tif 000008
【０１１３】
0003828143.tif 000009
【０１１４】
（テスト２）
テスト２はＰ0＝約２０ｐｓｉ、△Ｐ約３０ｐｓｉ、およびＴＭＰ約１０ｐｓｉにて高性能モードで操作したリサーチモジュールを用いる。
【０１１５】
【表６】
0003828143.tif 000010
【０１１６】
（テスト３）
テスト３は通常モードでＰ0約２０ｐｓｉ、△Ｐ約３０ｐｓｉで操作したリサーチモジュールを用いる。
【０１１７】
【表７】
0003828143.tif 000011
【０１１８】
（テスト４）
テスト４は高性能モードでＰ0約２０ｐｓｉ、△Ｐ約１５ｐｓｉ、ＴＭＰ約５ｐｓｉで操作したリサーチモジュールを用いる。
【０１１９】
【表８】
0003828143.tif 000012
【０１２０】
0003828143.tif 000013
【０１２１】
（テスト５）
テスト５は高性能モードでＰ0＝２０ｐｓｉ、△Ｐ＝１５ｐｓｉ、ＴＭＰ約１０ｐｓｉで操作したリサーチモジュールを用いる。
【０１２２】
【表９】
0003828143.tif 000014
【０１２３】
（テスト６）
テスト６は通常モードでＰ0＝２０ｐｓｉ、△Ｐ＝１５ｐｓｉで操作する。
【０１２４】
【表１０】
0003828143.tif 000015
【０１２５】
（テスト７）
テスト７はＰ0＝１ｐｓｉ、△Ｐ＝１５ｐｓｉで操作した。
【０１２６】
【表１１】
0003828143.tif 000016
【０１２７】
（テスト８）
テスト８はＰ0＝１ｐｓｉ、△Ｐ＝３０ｐｓｉで操作した。
【０１２８】
【表１２】
0003828143.tif 000017
【０１２９】
各テストの後、洗浄前に、結合性テストを行った：Ｐ0＝５ｐｓｉで１分間に△Ｐ＝０．１ｐｓｉ。
【０１３０】
洗浄後の濾過速度／貯蔵溶液のＴＭＰは、３０ｋＤａ  Ｑｆ／ＴＭＰ＝９．６ｍｌ／分ｐｓｉであった。
【０１３１】
以下のサンプルをテスト中に抜き取り、実施例１に記載したＨＰＬＣ法により測定した。
【０１３２】
（サンプル）
ｒｔ−ＰＡ／チトクロムｃ混合物（再循環前）
３０ｋＤａバルク、テスト１〜８
３０ｋＤａ濾液、テスト１〜８
データを以下にまとめる。
【０１３３】
【表１３】
0003828143.tif 000018
【０１３４】
「モード」は高性能［ＨＰ］または通常［Ｃ］のいずれか。
「△Ｐ」は入口から出口への圧力降下。
「ＴＭＰ」は平均トランスメンブラン圧。
「Ｊｆ」は測定した流束。
「ＬＳＦＨ」は１／ｆｔ2・時。
「温度」は流束測定時のバルク温度。
「Ｊｆ，３０℃」はＰｒｏｓｔａｋTM  Ｍａｉｎｔｅｎａｎｃｅ  ｐ．１５からの補正ファクターに基づいて計算した３０℃での補正流束。
「ＲｔＰＡ」はピークを２１４ｎｍで積分するＴＳＫ−２０００  ＨＰＬＣにより測定したｒｔ−ＰＡ保持。
「ＲＣｙｔＣ」はピークを２１４ｎｍで積分するＴＳＫ−２０００  ＨＰＬＣにより測定したチトクロムＣ保持。
「収率」は３０ｋＤａ高性能接線フロー限外濾過第一段階の閉じたループカスケードシステムにおけるｒｔ−ＰＡの理論的収率。以下の式により計算する：
収率＝１００％ｅDV(RtPA-1)
「精製」は以下の式：
精製度＝ｅDV(1-Rcytc)
を用いた同一システムにおけるｒｔ−ＰＡの計算した精製倍率（チトクロムＣの除去）である。
【０１３５】
（結果）
３０℃での流束（白丸）およびチトクロムＣ保持（黒丸）対前記データから得た平均ＴＭＰのグラフを第６図に示す。チトクロムＣ保持はＴＭＰが１０ｐｓｉから２７Ｐｓｉに増加すると共に増加し、流束が４ｐｓｉから１０ｐｓｉＴＭＰ
で劇的に増加し、１０から２７ｐｓｉＴＭＰで横ばいになることがわかる。
【０１３６】
テスト１、２、４および５ではＨＰ−ＴＦＦモードで再循環濾液を用い、ここではＴＭＰは全膜表面にわたって実質的に一定である。結果から、これらのテストに関してチトクロムＣの保持は再循環濾液を用いないＨＰ−ＴＦＦ（テスト７〜８）およびＣ−ＴＦＦ（テスト３および６）より低いことがわかる。
【０１３７】
テストＮｏ．７〜８は、曲線の圧力非依存部分で操作する通常のＣ−ＴＦＦと比較して、良好な精製が流束対ＴＭＰ曲線の圧力依存部分において再循環濾液を用いない（ＴＭＰは全膜表面にわたって減少する）で得られるかどうかを見るために行った。
【０１３８】
テスト１〜３および８では平均６００ｍｌ／分の再循環速度を用い、テスト４〜７では平均４２５ｍｌ／分の再循環速度を用いる。再循環ポンプを用いた再循環濾液の計算結果をテストＮｏ．５〜６および２〜３に関してそれぞれ第７図および第８図に示す。白四角は通常の精製を用いた低倍率精製（黒四角）に対して、高性能ＴＦＦを用いて達成できる理論的高倍率の精製を示す。白丸で示したの生成物の収率は混合物のダイアボリュームの増加に伴って大きく異なることはない。第７図は、Ｃ−ＴＦＦおよびＨＰ−ＴＦＦの低再循環速度における違いを示す。ＴＦＦに伴う濃度分極を減少させるための試みの一つとしては、直線速度（再循環速度）を増加させることによる。テストＮｏ．２〜３は、ＨＰ−ＴＦＦはより高い再循環速度で通常のＴＦＦより優れているかどうか示すために行った。第８図はＨＰ−ＴＦＦにより高い直線速度の同一条件下で、Ｃ−ＴＦＦより高い倍率の精製ができることを示す。
【０１３９】
要約すると、計算により、保持される種は、閉じたループ限外濾過カスケードシステムで、２５ダイアボリュームでよい収率（＞９０％）で得られることがわかる。
【０１４０】
保持データにより、ｒｔ−ＰＡ（Ｒ＝０．９９７）からチトクロムＣ（Ｒ＝０．７９）の１９０倍除去は、２５ダイアボリュームのカスケードモードで、第一段階でＨｏｅｃｈｓｔ  Ｋａｌｌｅ３０ｋＤａ再生セルロース膜を用い、第二段階（通常の限外濾過モードで操作）でチトクロムＣの保持膜を用いることにより操作した新規限外濾過接線フロー限外濾過法を用いて得られる。
【０１４１】
（実施例３）
本実験はアルギニン（分子量１７４ダルトン）、チトクロムＣ（１２．５ｋＤａ）、ｒｈ−ＧＨ（２２ｋＤａ）、およびｒｔ−ＰＡ（６５ｋＤａ）対ＴＭＰの３０ｋＤａ再生セルロース膜を用いたショートパス実験モジュール中の保持を測定するために行う。入口および出口ＴＭＰの差を最小にするためにショートパスを用いた。これらの分子のリサーチモジュールにおける分離効率をＨＰ−ＴＦＦおよびＣ−ＴＦＦ条件下で比較した。
【０１４２】
用いた蛋白質溶液は、０．２Ｍアルギニンホスフェート緩衝液（ｐＨ７．５）中の１ｍｇ／ｍｌ  ｒｔ−ＰＡ（実施例１参照）、１μｇ／ｍｌ組換えヒト成長ホルモン（Ｎ−末端メチオニンを含まない）、および０．１ｍｇ／ｍｌチトクロムＣからなる。
【０１４３】
用いたショートパス実験モジュールは以下のようなパラメーターを有する：
0003828143.tif 000019
このモジュールは実施例１で用いたりサーチモジュールとはチャンネルの長さが１５２ｃｍでなく６ｃｍである点で異なる。
【０１４４】
Ｃ−ＴＦＦおよびＨＰ−ＴＦＦを用いた分離の比較のために、実施例１のリサーチモジュールを用いた。Ｃ−ＴＦＦに対しては、出口圧を２０ｐｓｉｇにセットする。得られる入口圧は、供給速度が７６０ｍｌ／分のときに５０ｐｓｉｇであった。平均ＴＭＰは３５ｐｓｉであった。ＨＰ−ＴＦＦに関しては、ＴＭＰを１７ｐｓｉにセットした。再循環濾液速度は膜の長さに沿って最も一定なＴＭＰが得られるように調節した。
【０１４５】
第９図は流束対ＴＭＰ曲線を示し、これは約２４ｐｓｉのＴＭＰで転移点を示す。第１０図は混合物の４種に関する保持対ＴＭＰを示し、ｒｔ−ＰＡは完全に膜に保持され、アルギニンはあらゆるＴＭＰにおいて自由に流れることを示す。第１０図は、２４ｐｓｉより高いＴＭＰ（圧力非依存流束）では、チトクロムＣ、ｒｈ−ＧＨおよびｒｔ−ＰＡはすべて高度に保持されることを示す。２０ｐｓｉ未満のＴＭＰ（圧力依存流束）ではこれらの種の保持は分子量に依存する。
【０１４６】
第１１図は、混合物中の４つの種の保持対対数分子量のグラフである（白丸：ＨＰ−ＴＦＦ、黒丸：Ｃ−ＴＦＦ）。第１１図はチトクロムＣ、ｒｈ−ＧＨ、およびｒｔ−ＰＡがすべてＣ−ＴＦＦモード中に高度に保持され、これらの蛋白質はほとんどまたは全く分離されないことを示す。しかし、ＨＰ−ＴＦＦモードにおいては、これら蛋白質の分離が分子量の相違に基づいて得られる。
【０１４７】
すべての実施例において限外濾過速度が全般に減少したことは重要である。
【０１４８】
本発明の方法および装置は完全細胞からの細胞片の分離にも用いられる。連続潅流培養においては、培地成分を交換し、生成物を除去するだけでなく、そうしなければ実験中に蓄積する細胞片を除去することが望ましい。これはパージ流を加えることにより達成されるが、このような流れは細胞片および完全細胞の両方を除去する。本発明の装置は完全細胞の大きさに近い孔径を有する膜、即ち微孔質膜を用いて行われる。本発明は前記実施例において示した限外濾過法に類似した精密濾過法においてより良好な寸法分離を行うために用いることができる。
【０１４９】
本発明の範囲は本明細書に記載した例示的態様により制限されるものではなく、請求の範囲によって規定される。また、本発明の範囲内にある変法も、請求の範囲に記載した本発明の本質から逸脱することなく当業者により実施することができる。
【０１５０】
【発明の効果】
本発明により、大きさによって粒子および分子などの種を分離するための接線フロー濾過法が提供され、この方法は対象となる種に関して選択的であり、そのため高い精製倍率が得られる。
【図面の簡単な説明】
【図１Ａ】第１Ａ図は、単一膜を用いた接線フロー濾過の流束（Ｊｆ）対ＴＭＰのグラフを示す。このグラフにおいて、転移点での流束の５から１００％の領域ならびに転移点（Ｊｆ＊）および以下に更に規定する転移点を求めるのに用いた直線および曲線を示す。
【図１Ｂ】第１Ｂ図は単一および二重膜の転移点を示す。
【図２Ａ】第２Ａ図は、２つのポンプを濾過ユニットの濾液室に用い、１つのポンプを濾過ユニットの保留物区画において用いた本発明の高性能接線フロー濾過法を行うのに有用な装置の該略図を示す。
【図２Ｂ】第２Ｂ図は、２つの積層された平行な膜を１つの膜の代わりに用いる第２Ａ図の濾過ユニットを示す。
【図３】第３図は、三段階カスケード接線フロー濾過プロセスに用いることができる装置の該略図を示す。
【図４Ａ】第４Ａ図は、三段階カスケード接線フロー濾過プロセスに用いることができる３つのポンプしか必要としない別の装置の該略図である。
【図４Ｂ】第４Ｂ図は２つの積層された平行な膜を第４Ａ図に示した各膜の代わりに用いる第４Ａ図の濾過ユニットを示す。
【図５】第５図は、出発バルク溶液（３０ｋＤバルク）、濾過の１、５および９ダイアボリューム（ＤＶ）、ならびに最終バルク溶液に対する第６図に用いられるのと同様な操作から得られる保持サンプルのＨＰＬＣクロマトグラムを示し、第１ピークはｔ−ＰＡを示し、第２ピークはチトクロムＣを示す。
【図６】第６図は、３０℃での流束（白丸）およびチトクロムＣ保持（黒丸）対チトクロムＣからｔ−ＰＡを分離するための平均ＴＭＰのグラフを示す。
【図７】第７図は、第５図に例示される一定のＴＭＰを用いない通常の接線フロー限外濾過（Ｃ−ＴＦＦ）（収率は黒丸、精製は黒四角）および第６図に示す高性能接線フロー限外濾過（ＨＰ−ＴＦＦ）（収率は白丸、精製は白四角）に対する収率の計算値および精製倍率対ダイアボリュームを示す。
【図８】第８図は、第７図を得るのに用いた再循環速度よりも高い再循環速度を用いた第５図および第６図に例示されるＣ−ＴＦＦおよびＨＰ−ＴＦＦの計算収率（％）および精製倍率対ダイアボリュームを示す。
【図９】第９図は３０ｋＤａ再生セルロース膜を用いた短路実験ＴＦＦモジュールの流動率対ＴＭＰのグラフである。
【図１０】第１０図はチトクロムＣ（白四角）、ｒｈ−ＧＨ（△）、ｒｔ−ＰＡ（黒三角）およびアルギニン（白丸）を含有する混合物の保持対ＴＭＰのグラフである。
【図１１】第１１図は、Ｃ−ＴＦＦ（黒丸）およびＨＰ−ＴＦＦ（白丸）を用いたチトクロムＣ、ｒｈ−ＧＨ、ｒｔ−ＰＡおよびアルギニンを含有する混合物の保持対対数分子量のグラフである。
【図１Ａ】
0003828143.tif 000020
【図１Ｂ】
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【図２Ａ】
0003828143.tif 000022
【図２Ｂ】
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【図３】
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【図４Ａ】
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【図４Ｂ】
0003828143.tif 000026
【図５】
0003828143.tif 000027
【図６】
0003828143.tif 000028
【図７】
0003828143.tif 000029
【図８】
0003828143.tif 000030
【図９】
0003828143.tif 000031
【図１０】
0003828143.tif 000032
【図１１】
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