(57)【要約】  軸方向が互いに平行になるように接して配置された複数の管と、前記複数の管の少なくとも１つの内部に配置された対象物質と、を含み、前記複数の管はアニオン性ハイドロゲルで構成されており、前記複数の管同士が接する面は、カチオン性水溶性ポリマーで表面が被覆されたナノ粒子を含む接着剤で接着されている、アレイ。
2019123886.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
軸方向が互いに平行になるように接して配置された複数の管と、
前記複数の管の少なくとも１つの内部に配置された対象物質と、を含み、
前記複数の管はアニオン性ハイドロゲルで構成されており、前記複数の管同士が接する面は、カチオン性水溶性ポリマーで表面が被覆されたナノ粒子を含む接着剤で接着されている、アレイ。
【請求項２】
前記複数の管のうち、一部の管は内部に対象物質を含み、残部の管は対象物質を含まない、請求項１に記載のアレイ。
【請求項３】
前記対象物質が細胞である、請求項１又は２に記載のアレイ。
【請求項４】
前記細胞が化学物質に応答する細胞を含む、請求項３に記載のアレイ。
【請求項５】
前記複数の管のうち、隣接する２個の管の内部に細胞が配置され、前記２個の管の周囲の管が細胞を含まない、請求項３又は４に記載のアレイ。
【請求項６】
請求項５に記載のアレイを培地中でインキュベートする工程を含み、その結果、前記隣接する２個の管の内部に配置された細胞がそれぞれ増殖して互いに接触し、接触面を形成する、細胞培養方法。
【請求項７】
非凍結状態の細胞を生きたまま輸送する方法であって、
請求項３〜５のいずれか一項に記載のアレイ及び培地を収容した容器を輸送する工程を含む方法。
【請求項８】
アレイの製造方法であって、
アニオン性ハイドロゲルで構成されたチューブの内部に対象物質を含むファイバを、軸方向が互いに平行になるように複数個接触させて配置し、カチオン性水溶性ポリマーで表面が被覆されたナノ粒子を含む接着剤で接着して、ファイバのバンドルを得る工程と、
前記バンドルを支持材に包埋する工程と、
前記バンドルを前記支持材とともに切断して切片を得る工程と、を含み、
前記切片がアレイである、製造方法。
【請求項９】
前記支持材の貯蔵弾性率を損失弾性率で割った商（貯蔵弾性率／損失弾性率）が１０より大きく、且つ前記貯蔵弾性率が１００ｋＰａ以下である、請求項８に記載の製造方法。
【請求項１０】
前記ファイバは、アニオン性ハイドロゲルで構成されたチューブの内部に、漏斗型デバイスを通して対象物質を入れる工程により製造される、請求項８又は９に記載の製造方法。
【請求項１１】
前記対象物質が細胞である、請求項８〜１０のいずれか一項に記載の製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、アレイ及びその使用に関する。より詳細には、本発明は、アレイ、細胞培養方法、非凍結状態の細胞を生きたまま輸送する方法、及び、アレイの製造方法に関する。本願は、２０１７年１２月２３日に、米国に仮出願された米国特許第６２／６１０，１６０号明細書に基づき優先権を主張し、その内容をここに援用する。
【背景技術】
【０００２】
アレイは、基板上に対象物質を配置したものである。例えば、細胞アレイ、ＤＮＡアレイ、タンパク質アレイ等が知られている。例えば、特許文献１には、試験化合物のスクリーニング、毒物学アッセイ、単一細胞分化研究、細胞機能研究等に細胞アレイを利用することが記載されている。特許文献１にはまた、化学修飾されたガラススライドの上面に複数の独立したスポットがスポットされ、各スポットがマトリックス底面層及びマトリックス表面層を含み、マトリックス表面層が細胞を含む、細胞アレイが記載されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００３】
【特許文献１】特表２００９−５１３１６０号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００４】
しかしながら、特許文献１に記載の細胞アレイは、製造工程において細胞をスポットする必要がある。このため、例えば、複数種類の細胞からなる細胞アレイを作製する場合に、１つのスポットに異種細胞が混合する場合がある。また、スフェロイド等の細胞凝集塊のアレイを作製する場合、スフェロイドができるまでに長時間を必要とする。本発明は、新たなアレイを提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００５】
本発明は以下の態様を含む。
［１］軸方向が互いに平行になるように接して配置された複数の管と、前記複数の管の少なくとも１つの内部に配置された対象物質と、を含み、前記複数の管はアニオン性ハイドロゲルで構成されており、前記複数の管同士が接する面は、カチオン性水溶性ポリマーで表面が被覆されたナノ粒子を含む接着剤で接着されている、アレイ。
［２］前記複数の管のうち、一部の管は内部に対象物質を含み、残部の管は対象物質を含まない、［１］に記載のアレイ。
［３］前記対象物質が細胞である、［１］又は［２］に記載のアレイ。
［４］前記細胞が化学物質に応答する細胞を含む、［３］に記載のアレイ。
［５］前記複数の管のうち、隣接する２個の管の内部に細胞が配置され、前記２個の管の周囲の管が細胞を含まない、［３］又は［４］に記載のアレイ。
［６］［５］に記載のアレイを培地中でインキュベートする工程を含み、その結果、前記隣接する２個の管の内部に配置された細胞がそれぞれ増殖して互いに接触し、接触面を形成する、細胞培養方法。
［７］非凍結状態の細胞を生きたまま輸送する方法であって、［３］〜［５］のいずれかに記載のアレイ及び培地を収容した容器を輸送する工程を含む方法。
［８］アレイの製造方法であって、アニオン性ハイドロゲルで構成されたチューブの内部に対象物質を含むファイバを、軸方向が互いに平行になるように複数個接触させて配置し、カチオン性水溶性ポリマーで表面が被覆されたナノ粒子を含む接着剤で接着して、ファイバのバンドルを得る工程と、前記バンドルを支持材に包埋する工程と、前記バンドルを前記支持材とともに切断して切片を得る工程と、を含み、前記切片がアレイである、製造方法。
［９］前記支持材の貯蔵弾性率を損失弾性率で割った商（貯蔵弾性率／損失弾性率）が１０より大きく、且つ前記貯蔵弾性率が１００ｋＰａ以下である、［８］に記載の製造方法。
［１０］前記ファイバは、アニオン性ハイドロゲルで構成されたチューブの内部に、漏斗型デバイスを通して対象物質を入れる工程により製造される、［８］又は［９］に記載の製造方法。
［１１］前記対象物質が細胞である、［８］〜［１０］のいずれかに記載の製造方法。
【発明の効果】
【０００６】
本発明によれば、新たなアレイを提供することができる。
【図面の簡単な説明】
【０００７】
【図１】アレイの構造の一例を示す模式図である。
【図２】ファイバの製造方法の一例を説明する模式図である。
【図３】アレイの製造方法の一例を説明する模式図である。
【図４】実験例１の結果を示すグラフである。
【図５】実験例２において、蛍光ビーズアレイを蛍光顕微鏡で観察した写真である。
【図６】実験例２において、蛍光ビーズアレイを蛍光顕微鏡で観察した写真である。
【図７】（ａ）は、実験例２において細胞アレイ中の生細胞を検出した結果を示す写真である。（ｂ）は、実験例２において細胞アレイ中の死細胞を検出した結果を示す写真である。（ｃ）は、実験例２において細胞アレイ中の核を検出した結果を示す写真である。（ｄ）は、（ａ）〜（ｃ）をマージした写真である。
【図８】（ａ）は、実験例３においてカルシウムプローブの蛍光を撮影した蛍光顕微鏡写真である。（ｂ）は、実験例３においてムスカリンの添加後のカルシウムプローブの蛍光強度を経時的に測定した結果を示すグラフである。
【図９】（ａ）は、実験例４において輸送前の細胞アレイを観察した顕微鏡写真である。（ｂ）は、実験例４において輸送後の細胞アレイを観察した顕微鏡写真である。（ｃ）は、、実験例４において輸送後の生細胞を検出した結果を示す写真である。（ｄ）は、実験例４において輸送後の死細胞を検出した結果を示す写真である。
【発明を実施するための形態】
【０００８】
以下、場合により図面を参照しつつ、本発明の実施形態について詳細に説明する。なお、図面中、同一又は相当部分には同一又は対応する符号を付し、重複する説明は省略する。なお、各図における寸法比は、説明のため誇張している部分があり、必ずしも実際の寸法比とは一致しない。
【０００９】
［アレイ］
１実施形態において、本発明は、軸方向が互いに平行になるように接して配置された複数の管と、前記複数の管の少なくとも１つの内部に配置された対象物質と、を含み、前記複数の管はアニオン性ハイドロゲルで構成されており、前記複数の管同士が接する面は、カチオン性水溶性ポリマーで表面が被覆されたナノ粒子を含む接着剤で接着されている、アレイを提供する。
【００１０】
対象物質としては、特に限定されず、動物細胞、植物細胞、微生物等の細胞、ＤＮＡ、ＲＮＡ、タンパク質等の生体分子、生体由来の組織片、低分子化合物等の化合物等が挙げられる。
【００１１】
化合物としては例えば医薬が挙げられる。化合物はライブラリであってもよい。例えば、天然化合物ライブラリ、合成化合物ライブラリ、既存薬ライブラリ、代謝物ライブラリ等が挙げられる。
【００１２】
例えば、対象物質がＤＮＡである場合、本実施形態のアレイをＤＮＡアレイとして利用することができる。同様に、対象物質がタンパク質である場合、本実施形態のアレイをタンパク質アレイとして利用することができる。以下、対象物質が細胞であるアレイを特に「細胞アレイ」という場合がある。
【００１３】
例えば、３次元細胞構造であるスフェロイド等の細胞凝集塊は２次元培養細胞に比べてより生体に近いことから、薬剤スクリーニングや毒性試験等において今後更に使用されることが期待されている。本実施形態のアレイは、細胞凝集塊アレイとして利用することができ、生体模倣性の高い３次元組織アレイであるといえる。後述するように、本実施形態のアレイは、化学物質センサ、細胞の輸送手段、効率的な薬剤スクリーニング系等として利用することができ、また、野外等細胞培養が困難な場所での細胞試験等に利用することもできる。
【００１４】
図１は、本実施形態のアレイの構造を示す模式図である。図１に示すように、アレイ１００は、軸方向が互いに平行になるように接して配置された複数の管１２０と、前記複数の管１２０の少なくとも１つの内部に配置された対象物質１１０と、を含み、前記複数の管１２０はアニオン性ハイドロゲルで構成されており、前記複数の管１２０同士が接する面１３０は、カチオン性水溶性ポリマーで表面が被覆されたナノ粒子を含む接着剤で接着されている。本明細書において、管の軸方向とは、管の中心軸に沿った方向を意味する。
【００１５】
対象物質が細胞である場合、細胞に酸素や栄養分を供給する観点から、アレイの厚さは８００μｍ以下であることが好ましく、２００μｍ程度であることがより好ましい。
【００１６】
ハイドロゲルとは、多量の水を含んだ３次元の網目構造体である。本実施形態のアレイにおいて、アニオン性ハイドロゲルとしては、アルギン酸ハイドロゲルを好適に用いることができる。アルギン酸ハイドロゲルとは、アルギン酸と二価の金属イオン（カルシウムイオンやバリウムイオン等）とが塩を形成して得られるハイドロゲルを意味する。
【００１７】
アニオン性ハイドロゲルは、水、培地、緩衝液等の水系溶媒中において水和するため、水系溶媒中でアニオン性ハイドロゲル同士の接着状態を保つことは困難である。これに対し、発明者らは、以前に、カチオン性水溶性ポリマーで表面が被覆されたナノ粒子（以下、「ＣＮＰ」という場合がある。）を含む接着剤で、アニオン性ハイドロゲル同士を接着することができることを見出した。ＣＮＰで接着したアニオン性ハイドロゲルは、水系溶媒中でも安定に接着状態を維持することができる。また、ＣＮＰは細胞に対する毒性がほとんどない。ＣＮＰを含む接着剤については後述する。
【００１８】
本実施形態のアレイが含む対象物質の種類は任意であり、１種類であってもよいし、２種類以上であってもよい。また、本実施形態のアレイは、複数の管のすべてに対象物質を含んでいてもよい。あるいは、複数の管のうち、一部の管は内部に対象物質を含み、残部の管は対象物質を含まなくてもよい。対象物質を含む管と対象物質を含まない管の配置を制御することにより、対象物質の配置を任意に制御することができる。例えば、図１のアレイの例では、対象物質は格子状に配置されていないが、対象物質を含む管と対象物質を含まない管の配置を制御することにより、対象物質を格子状に配置することができる。
【００１９】
本実施形態のアレイにおいて、対象物質が細胞であってもよい。また、細胞の少なくとも一部が化学物質に応答する細胞であってもよい。細胞を用いた化学物質センサはその感度の高さと選択性の高さから有用である。近年、遺伝子導入技術の発達により、細胞膜表面に任意の化学物質に対する受容体を発現させることが可能になり、細胞を用いた化学物質センサへの注目は更に高まっている。
【００２０】
実施例において後述するように、例えば、ムスカリン性アセチルコリン受容体を発現させた細胞を配置した細胞アレイにムスカリンを反応させ、細胞内部へのカルシウムの流入を検出することができる。
【００２１】
本実施形態のアレイは、複数の管のうち、隣接する２個の管の内部に細胞が配置され、前記２個の管の周囲の管が細胞を含まないものであってもよい。このようなアレイを培地中でインキュベートすると、隣接する２個の管の内部に配置された細胞がそれぞれ増殖して管からはみ出した細胞塊として成長し、互いに接触して接触面を形成する。内部に細胞が配置された、隣接する２個の管の組は、他の組と十分離れている限り、アレイ内に複数存在していてもよい。すなわち、本実施形態のアレイは、内部にそれぞれ細胞が配置された、隣接する２個の管のアレイであってもよい。
【００２２】
生体の発生において、異なる種類の幹細胞同士が接触面を形成し、相互作用により器官を形成する場合があることが知られている。このような発生をインビトロで再現することは困難であるが、このようなアレイを用いることにより、異なる細胞同士に接触面を形成させ、解析することが可能である。
【００２３】
したがって、１実施形態において、本発明は、複数の管のうち、隣接する２個の管の内部に細胞が配置され、前記２個の管の周囲の管が細胞を含まないアレイを培地中でインキュベートする工程を含み、その結果、前記隣接する２個の管の内部に配置された細胞がそれぞれ増殖して互いに接触し、接触面を形成する、細胞培養方法を提供する。
【００２４】
（細胞）
本実施形態のアレイが細胞を含む場合、細胞としては、特に限定されず、例えば、細胞株、初代細胞、遺伝子改変細胞、ｉｎｄｕｃｅｄ  ｐｌｕｒｉｐｏｔｅｎｔ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ（ｉＰＳ細胞）、ｅｍｂｒｙｏｎｉｃ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌｓ（ＥＳ細胞）、組織幹細胞、幹細胞から分化誘導した細胞、これら細胞から形成された細胞塊（スフェロイド）、生体から分離された組織片等が挙げられる。
【００２５】
（ＣＮＰを含む接着剤）
カチオン性水溶性ポリマーで表面が被覆されたナノ粒子（以下、「ＣＮＰ」という場合がある。）を含む接着剤について説明する。ナノ粒子とは、平均粒子径が１μｍ未満である粒子をいう。ＣＮＰの平均粒子径は、１〜１００ｎｍであることが好ましく、５〜７０ｎｍであることがより好ましく、２０〜５０ｎｍであることがさらに好ましい。平均粒子径が上記範囲であることにより、アニオン性ハイドロゲルをより強固に接着できる傾向にある。また、可視光を通すことができ、接着剤の存在部位を透明にすることができる。
【００２６】
また、ＣＮＰの表面の電荷は、例えば１０〜５０ｍＶ程度であることが好ましい。
【００２７】
ＣＮＰは、表面を被覆するカチオン性水溶性ポリマーと、コアとからなる。カチオン性水溶性ポリマーは、カチオン性官能基を有するポリマーであればよい。カチオン性官能基としては、例えば、第１級〜第４級アミノ基、グアニジン基等が挙げられ、これらに限定されない。
【００２８】
カチオン性水溶性ポリマーは、上記カチオン性官能基を有するモノマー（カチオン性モノマー）を重合させて得られる重合体である。カチオン性モノマーとしては、例えば、ビニルアミン、アリルアミン、エチレンイミン、３−（Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノプロピル）−（メタ）アクリルアミド、３−（Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノプロピル）−（メタ）アクリレート、アミノスチレン、２−（Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノエチル）−（メタ）アクリルアミド、２−（Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノエチル）−（メタ）アクリレート、及びそれらの塩、並びに、ハロゲン化ジアリルジアルキルアンモニウム等が挙げられる。これらのカチオン性モノマーは、１種を単独用いてもよく、２種以上を組み合わせて用いてもよい。
【００２９】
カチオン性水溶性ポリマーは、上記カチオン性モノマーと、他のモノマーとを共重合させたポリマーであってもよい。他のモノマーとしては、親水性モノマーであってもよく、配合割合によっては、疎水性モノマーであってもよい。
【００３０】
親水性モノマーとしては、水系溶媒中で中性のものであればよく、例えば、ジメチルアクリルアミド、ポリエチレングリコール側鎖を有するアクリル酸やメタクリル酸等が挙げられる。これらは１種を単独で用いてもよく、２種類以上を組み合わせて用いてもよい。
【００３１】
疎水性モノマーとしては、例えば、以下の（ｉ）〜（ｖ）に示すものが挙げられる。これらは１種を単独で用いてもよく、２種類以上を組み合わせて用いてもよい。
（ｉ）アクリル酸メチル、アクリル酸エチル、アクリル酸イソプロピル、アクリル酸−ｎ−ブチル、アクリル酸−２−エチルヘキシル等のアクリル酸エステル類；
（ｉｉ）メタクリル酸メチル、メタクリル酸エチル、メタクリル酸イソプロピル、メタクリル酸−ｎ−ブチル、メタクリル酸イソブチル、メタクリル酸−ｎ−ヘキシル、メタクリル酸シクロヘキシル、メタクリル酸ラウリル、メタクリル酸グリシジル等のメタクリル酸エステル類；
（ｉｉｉ）スチレン、α−メチルスチレン等の芳香族オレフィン；
（ｉｖ）酢酸ビニル等のビニルエステル；
（ｖ）アクリロニトリル、メタアクリロニトリル等のビニルニトリル。
【００３２】
カチオン性水溶性ポリマーは、中でも、エチレンイミンを重合させて得られるポリエチレンイミン又はその塩であることが好ましい。ポリエチレンイミンは、エチレンイミンを公知の方法で開環重合して得られる重合体である。また、ポリエチレンイミンの塩は、ポリエチレンイミン中のアミノ基の一部又は全部が酸で中和されたものである。中和に使用する酸は、無機酸であってもよく、有機酸であってもよい。無機酸としては、例えば、塩酸、硫酸、リン酸、硝酸等が挙げられる。有機酸としては、例えば、酢酸、ギ酸、プロピオン酸等が挙げられる。
【００３３】
ＣＮＰにおいて、コアを構成する材料は、疎水性ポリマーであることが好ましい。疎水性ポリマーであることにより、後述に示す製造方法により球状のＣＮＰを含むエマルションを簡便に製造することができる。疎水性ポリマーは、疎水性モノマーを重合させて得られる重合体である。疎水性モノマーは、２５℃での水への溶解度が１０ｇ／ｄＬ以下のものであればよく、具体的には、カチオン性水溶性ポリマー構成材料に含むことができる疎水性モノマーとして上述したものが挙げられる。
【００３４】
また、疎水性ポリマーは、上記疎水性モノマーと架橋性モノマーとを共重合させたポリマーであってもよい。架橋性モノマーとしては、例えば、エチレングリコールジ（メタ）アクリレート、ヘキサンジオールジ（メタ）アクリレート、ジビニルベンゼン、メチレンビスアクリルアミド、トリメチロールプロパントリ（メタ）アクリレート、テトラアリルエタン等が挙げられる。これらは１種を単独で用いてもよく、２種類以上を組み合わせて用いてもよい。
【００３５】
疎水性ポリマーは、中でも、スチレンを重合させて得られるポリスチレンであることが好ましい。
【００３６】
ＣＮＰは、上述したカチオン性モノマーと疎水性モノマーとを水系溶媒中でラジカル重合開始剤の存在下において乳化重合させることで得ることができる。乳化重合において、上記疎水性モノマーの質量に対するカチオン性モノマーの配合量は、０．５〜３０質量％以下であることが好ましく、０．５〜１５質量％以下であることがより好ましく、０．５〜５質量％以下であることがさらに好ましい。カチオン性モノマーの配合量が上記下限値以上であることにより、より安定して水系溶媒に分散したＣＮＰを得ることができる。一方、カチオン性モノマーの配合量が上記上限値以下であることにより、適度に正の電荷を帯びたＣＮＰを得やすい傾向にある。
【００３７】
ラジカル重合開始剤としては、例えば、以下の（ｉ）〜（ｖ）に示すものが挙げられる。これらは１種を単独で用いてもよく、２種類以上を組み合わせて用いてもよい。
（ｉ）２，２’−アゾビスイソブチロニトリル、２，２’−アゾビス（２，４−ジメチルバレロニトリル等の油溶性アゾ化合物；
（ｉｉ）２，２’−アゾビス（２−アミ ジノプロパン）又はその塩酸塩、４，４’−アゾビス（４−シアノバレリン酸）又はそのアルカリ金属塩、２，２’−アゾビス［２−（２−イミダゾリン−２−イル）プロパン］又はその塩酸塩、２，２’−アゾビス［２−メチル−Ｎ−（２−ヒドロキシエトル）プロピオンアミド］等の水溶性アゾ化合物；
（ｉｉｉ）ベンゾイルオキシパーオキサイド、ジターシャリイブチルパーオキサイド等の有機過酸化物；
（ｉｖ）過硫酸カリウム、過硫酸ナトリウム、過硫酸アンモニウム等の無機過酸化物；
（ｖ）：上記（ｉｖ）と還元性物質（亜硫酸ナトリウム、ジメチルアミノエタノール、ジメチルアミノ安息香酸等）とを組み合わせたレドックス開始剤
【００３８】
ラジカル重合開始剤は、中でも、上記（ｉｉ）に示すものであることが好ましく、２，２’−アゾビス（２−アミジノプロパン）塩酸塩、２，２’−アゾビス［２−（２−イミダゾリン−２−イル）プロパン］若しくはその塩酸塩、又は、２，２’−アゾビス［２−メチル−Ｎ−（２−ヒドロキシエトル）プロピオンアミド］であることが好ましい。
【００３９】
乳化重合において、上記疎水性モノマーの質量に対するラジカル重合開始剤の配合量は、例えば０．００１〜２質量％以下とすることができる。また、乳化重合において用いられる水系溶媒としては、水を主成分とするものであればよく、例えば、蒸留水、イオン交換水、水道水、工業用水等が挙げられる。
【００４０】
また、乳化重合としては、ソープフリー乳化重合と呼ばれる低分子の乳化剤を使用しない方法であることが好ましい。この方法では、カチオン性水溶性ポリマーと、疎水性ポリマーとの親水性及び疎水性のバランスをとることにより、ポリマーが水系溶媒中で微粒子を形成するため、簡便にＣＮＰを得ることができる。
【００４１】
乳化重合において、重合系全体の質量に対するカチオン性水溶性ポリマー及び疎水性ポリマーの合計配合量は、通常、１〜７０質量％以下であり、１０〜６０質量％以下であることが好ましく、２０〜６０質量％以下であることがより好ましい。
【００４２】
また、ＣＮＰを製造する系としては、例えばバッチ式重合系、連続チューブ式重合系、半連続重合系等の方法が挙げられる。バッチ式重合系の場合、原料を仕込む手順としては以下の（ｉ）〜（ｉｉｉ）に示すもの等が挙げられ、これらに限定されない。
（ｉ）カチオン性モノマー、疎水性モノマー及びラジカル重合開始剤を一括して反応槽に仕込んで重合を行う方法；
（ｉｉ）カチオン性モノマー、疎水性モノマー及びラジカル重合開始剤をそれぞれ個別に滴下しつつ重合する方法；
（ｉｉｉ）疎水性モノマー及びラジカル重合開始剤の混合物を（カチオン性モノマー）を含む水中に滴下しつつ重合する方法
【００４３】
重合温度と時間は、モノマーの重合性、並びに、開始剤の分解温度及び半減期等により選択される。重合温度は、通常３０〜１３０℃とすることができ、５０〜１００℃であることが好ましい。重合時間は、通常１〜１０時間とすることができる。
【００４４】
ＣＮＰを含む接着剤は、粉末状であってもよく、液体状であってもよい。また、ＣＮＰを含む接着剤は、ＣＮＰ以外に、ＣＮＰのカチオン性を損なわない程度に、その他の成分を含んでいてもよい。その他の成分としては、例えば、安定剤、増粘剤、防腐剤等が挙げられる。
【００４５】
ＣＮＰを含む接着剤が液体状である場合、例えば、水系溶媒を含んでいてもよい。水系溶媒としては、特に限定されず、例えば、水、生理食塩水、緩衝効果のある生理食塩水等が挙げられる。前記緩衝効果のある生理食塩水としては、例えば、リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）、トリス緩衝生理食塩水（ＴＢＳ）、ＨＥＰＥＳ緩衝生理食塩水等が挙げられる。
【００４６】
また、水系溶媒以外に、水溶性の有機溶剤を含んでいていてもよい。水溶性の有機溶剤としては、例えば、低級アルコール、アセトン、ジオキサン、エチレングリコール等が挙げられる。前記低級アルコールとしては、炭素数１〜３の１価のアルコールであればよく、具体的には、例えば、メタノール、エタノール、プロパノール等が挙げられる。
【００４７】
［非凍結状態の細胞を生きたまま輸送する方法］
１実施形態において、本発明は、非凍結状態の細胞を生きたまま輸送する方法であって、上述した細胞アレイ及び培地を収容した容器を輸送する工程を含む方法を提供する。実施例において後述するように、本実施形態の方法により、非凍結状態の細胞を生きたまま輸送することができる。
【００４８】
輸送期間中、細胞アレイは基板上に固定されていることが好ましい。基板は、ガラスであってもよく、樹脂であってもよく、金属等であってもよいが、顕微鏡で観察しやすい観点から、透明なガラス又は樹脂が扱いやすい。細胞アレイの基板上への固定には、上述したＣＮＰを利用することができる。
【００４９】
輸送期間中、細胞アレイ及び培地を収容した容器を断熱材等で包み、細胞アレイ及び培地の温度を、３３〜３６℃に保つことが好ましい。また、細胞アレイ及び培地を収容した容器とともにＣＯ２ガス発生剤を同包し、ＣＯ２濃度を細胞培養環境に保つことが好ましい。少なくとも２日間の輸送については、細胞を生きたまま且つ細胞の機能を保ったまま輸送できることが確認されている。
【００５０】
［アレイの製造方法］
１実施形態において、本発明は、アレイの製造方法であって、アニオン性ハイドロゲルで構成されたチューブの内部に対象物質を含むファイバを、軸方向が互いに平行になるように複数個接触させて配置し、カチオン性水溶性ポリマーで表面が被覆されたナノ粒子を含む接着剤で接着して、ファイバのバンドルを得る工程と、前記バンドルを支持材に包埋する工程と、前記バンドルを前記支持材とともに切断して切片を得る工程と、を含み、前記切片がアレイである、製造方法を提供する。本実施形態の製造方法により、上述したアレイを製造することができる。
【００５１】
（ファイバ）
まず、対象物質を含むファイバの製造方法を説明する。ファイバは、アニオン性ハイドロゲルで構成されたチューブの内部に対象物質を含む繊維状の構造体である。アニオン性ハイドロゲルについては上述したものと同様である。また、対象物質も特に限定されず、上述したものと同様である。
【００５２】
ファイバの製造方法は特に限定されないが、例えば、図２に示すような二重の同軸マイクロ流体装置（ｃｏａｘｉａｌ  ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃ  ｄｅｖｉｃｅ）を用いることにより簡便に製造することができる。２つの流体を同軸となるようにコア部及びシェル部に分けて射出することができるマイクロ流体装置は、例えば、Wonje Jeong, et al., Hydrodynamic microfabrication via "on the fly" photopolymerization of microscale fibers and tubes, Lab Chip, 2004, 4, 576-580 のＦｉｇ．１にも具体的に説明されている。
【００５３】
図２は、ファイバ３００の製造方法の一例を説明する模式図である。ここでは、対象物質が細胞であり、コア部の材料に培地、細胞及び細胞外マトリックスの混合液（以下、「細胞混合液」という。）を用い、シェル部の材料に架橋前のアルギン酸ナトリウム溶液を用いた場合について説明する。細胞外マトリックスとしては、マトリゲル、コラーゲンゲル等を利用することができる。
【００５４】
まず、マイクロ流体装置２００の導入口２１０から、細胞混合液を導入して射出する。また、マイクロ流体装置２００の導入口２２０から、架橋前のアルギン酸ナトリウム溶液を導入して射出する。また、マイクロ流体装置２００の導入口２３０から、塩化カルシウム溶液を導入して射出する。すると、シェル部のアルギン酸ナトリウム溶液がゲル化し、コア部３１０が細胞を含むハイドロゲルであり、シェル部３２０がアルギン酸ハイドロゲルであるファイバを製造することができる。
【００５５】
導入口２１０及び２２０における溶液の射出速度は特に限定されないが、マイクロ流体装置２００の口径が５０μｍ〜２ｍｍ程度である場合には、１０〜５００μＬ／分程度であってもよい。導入口２１０及び２２０における溶液の射出速度を調節することにより、コア部の直径及びシェル部の被覆厚みを適宜調節できる。導入口２３０における溶液の射出速度は特に限定されないが、例えば１〜１０ｍＬ／分程度であってもよい。
【００５６】
また、対象物質を含まないハイドロゲルファイバを製造する場合には、上述した細胞混合液の代わりに対象物質を含まないハイドロゲルを用いればよい。また、対象物質が細胞以外の物質である場合、コア部の材料として、当該対象物質及び当該対象物質に適したハイドロゲル材料の混合物を用いればよい。
【００５７】
ファイバの製造方法は上述したものに限られない。例えば、ファイバに含ませる対象物質が貴重で少量しか用意できない場合がある。このような場合には、アニオン性ハイドロゲルで構成されたチューブの内部に、漏斗型デバイスを通して対象物質を入れる工程により、ファイバを製造することが有効である。これにより、ファイバの作製に必要な対象物質の量を減らすことができる。
【００５８】
（ファイバのバンドル）
図３は、本実施形態の製造方法を説明する模式図である。まず、ファイバのバンドルを製造する。図３に示すように、まず、上述したファイバ３００を、軸方向が互いに平行になるように複数個接触させて配置する。続いて、上述したＣＮＰを含む接着剤で接着してファイバ３００のバンドル４００を得る。
【００５９】
ここで、一部の管が内部に対象物質を含み、残部の管は対象物質を含まないアレイを製造する場合には、一部のファイバ３００の代わりに対象物質を含まないハイドロゲルファイバを用いてバンドル４００を製造すればよい。
【００６０】
（支持材）
続いて、ファイバのバンドル４００を支持材５００に包埋する。バンドル４００を直接切断しても、うまくアレイを切り出すことができない。バンドル４００を支持材５００に包埋し、支持材とともに切断することにより、バンドル４００を構成するファイバを、軸線方向に対して垂直に切断することが可能になる。また、対象物質を含む層を確実に切断し、アレイを得ることが可能になる。
【００６１】
支持材５００の貯蔵弾性率を損失弾性率で割った商（貯蔵弾性率／損失弾性率）は、１０より大きく、且つ前記貯蔵弾性率が１００ｋＰａ以下であることが好ましい。
【００６２】
実施例において後述するように、支持材５００の貯蔵弾性率を損失弾性率で割った商（貯蔵弾性率／損失弾性率）が１０より大きく、且つ前記貯蔵弾性率が１００ｋＰａ以下である場合に、アレイを正確に切り出すことができる傾向にある。
【００６３】
支持材５００の貯蔵弾性率及び損失弾性率は、市販のレオメーターを用いて動的粘弾性試験を行い、１Ｈｚで測定された値を用いるとよい。
【００６４】
（アレイの切り出し）
続いて、バンドル４００を支持材５００とともに切断して切片を得る。例えば、ミクロトーム用のブレード６１０を２枚重ねたカッター６００を、支持材５００の切断線５１０に沿って押し当て、バンドル４００を支持材５００とともに切断することにより、切片が得られる。この切片がアレイである。カッター６００において、２枚のブレード６１０の間の距離が２００μｍである場合、アレイの厚さは２００μｍとなる。
【実施例】
【００６５】
以下、実験例により本発明を説明するが、本発明は以下の実験例に限定されるものではない。【００６６】
［実験例１］
（支持材の検討）
上述したように、ファイバのバンドルを切断する時には支持材に包埋する必要がある。本実験例では、支持材の検討を行った。支持材としては、アルギン酸ハイドロゲルを使用した。【００６７】
アルギン酸ハイドロゲルの材料であるグルコン酸の割合、マンヌロン酸の割合、アルギン酸ナトリウムの濃度、カルシウムイオンの濃度を変化させて、ＧＥＬ１〜５の５種類のアルギン酸ハイドロゲルを作製して支持材とし、ファイバのバンドルを包埋した。【００６８】
続いて、レオメーター（型式「ＭＣＲ３０２」、アントンパール社）を用いて、各支持材の動的粘弾性試験を行い、貯蔵弾性率（Ｇ’）及び損失弾性率（Ｇ’’）を１Ｈｚで測定した。図４は、各支持材の貯蔵弾性率（Ｇ’）及び損失弾性率（Ｇ’’）の測定結果を示すグラフである。【００６９】
また、各支持材に包埋したファイバのバンドルを切断し、アレイを切り出した。その結果、ＧＥＬ１〜３を支持材に用いた場合には、アレイを切り出すことができることが明らかとなった。一方、ＧＥＬ４、５を支持材に用いた場合には、アレイを切り出すことができなかった。【００７０】
以上の結果から、支持材の貯蔵弾性率（Ｇ’）を損失弾性率（Ｇ’’）で割った商が１０より大きく（Ｇ’／Ｇ’’＞１０）、且つ貯蔵弾性率（Ｇ’）が１００ｋＰａ以下（Ｇ’≦１００ｋＰａ）である場合に、アレイを正確に切り出すことができることが明らかとなった。【００７１】
［実験例２］
（アレイの作製）
《蛍光ビーズアレイ》
まず、対象物質として蛍光ビーズを使用して蛍光ビーズアレイの作製を試みた。蛍光ビーズとして、ＦｌｕｏＳｐｈｅｒｅｓ  Ｃａｒｂｏｘｙｌａｔｅ−ｍｏｄｉｆｉｅｄ  ｍｉｃｒｏｓｐｈｅｒｅｓ  ｒｅｄ、ｙｅｌｌｏｗ−ｇｒｅｅｎ、ｂｌｕｅ（いずれもサーモフィッシャーサイエンティフィック社）を使用した。【００７２】
続いて、各蛍光ビーズを含むファイバを作製した。続いて、作製したファイバを、上述したＣＮＰを含む接着剤で接着してバンドルを作製した。続いて、バンドルを支持材に包埋し、２枚重ねたミクロトーム用のブレードで切断し、蛍光ビーズアレイを得た。【００７３】
図５は、作製した蛍光ビーズアレイを蛍光顕微鏡で観察した写真である。その結果、顕微鏡で観察可能な蛍光ビーズアレイを作製できたことが確認された。【００７４】
また、図６は、同様の方法で作製した複数の蛍光ビーズアレイを蛍光顕微鏡で観察した写真である。図６中、左下には、蛍光ビーズアレイの１つを拡大した写真を示す。その結果、本実験例の方法により、均一な蛍光ビーズアレイを多数作製できることが確認された。【００７５】
《細胞アレイ》
続いて、対象物質として細胞を使用して細胞アレイの作製を試みた。蛍光ビーズの代わりにヒト胎児腎由来の細胞株であるＨＥＫ２９３Ｔ細胞を使用した以外は上記と同様にして、細胞アレイを作製した。続いて、作製した細胞アレイ中の細胞が生きているか否かを検討した。具体的には、細胞アレイを、生細胞染色試薬である、カルセインＡＭ（タカラバイオ株式会社）、死細胞染色試薬であるエチジウムブロマイド（タカラバイオ株式会社）、及び、核を染色する試薬であるＨｏｅｃｈｓｔ３３３４２（サーモフィッシャーサイエンティフィック社）で染色し、蛍光顕微鏡で観察した。【００７６】
図７（ａ）〜（ｄ）は、細胞アレイを蛍光顕微鏡で観察した写真である。図７（ａ）は生細胞を検出した結果を示す写真である。図７（ｂ）は死細胞を検出した結果を示す写真である。図７（ｃ）は核を検出した結果を示す写真である。図７（ｄ）は図７（ａ）〜（ｃ）をマージした写真である。その結果、細胞アレイ中の細胞が生きていることが確認された。【００７７】
［実験例３］
（細胞を用いた化学物質センサ）
細胞アレイ中の細胞にムスカリン受容体を発現させ、ムスカリンに対する応答性を検討した。【００７８】
具体的には、まず、実験の２日前に、ヒト胎児腎由来の細胞株であるＨＥＫ２９３Ｔ細胞に、ヒトムスカリン性アセチルコリン受容体（ムスカリン受容体）の発現ベクターを導入し、一過性に発現させた。続いて、この細胞を用いて細胞アレイを作製した。【００７９】
続いて、この細胞アレイの培地に１００ｍＭムスカリンを添加し、細胞へのカルシウムイオンの流入を測定した。細胞へのカルシウムイオンの流入は、カルシウムプローブであるＦｌｕｏ−８，ＡＭ（ＡＡＴ  Ｂｉｏｑｕｅｓｔ社）を培地に添加し、その蛍光を蛍光顕微鏡で観察することにより検出した。【００８０】
図８（ａ）は培地に添加したムスカリンに反応して、カルシウムプローブが蛍光を発している様子を撮影した蛍光顕微鏡写真である。図８（ｂ）は、ムスカリンの添加後のカルシウムプローブの蛍光強度を経時的に測定した結果を示すグラフである。【００８１】
その結果、ムスカリン受容体を発現させた細胞がムスカリンに応答する様子を観察できることが確認された。この結果は、細胞アレイを化学物質センサとして利用できることを示す。【００８２】
［実験例４］
（細胞の輸送）
細胞アレイの形態で、細胞を生きたまま輸送できるか否かを検討した。具体的には、まず、上述したＣＮＰを含む接着剤で細胞アレイをガラス基板に固定し、培地とともに６ウェルプレートに収容した。続いて、６ウェルプレートをＣＯ２ガス発生剤（商品名「カルチャーパル」、コスモバイオ株式会社）とともに市販の保温輸送用ボックス（サンプラテック社）に入れて梱包した。この保温輸送用ボックスは、外気温が２５℃の条件で、内部の温度を３３〜３６℃に１５０時間以上維持することができる。【００８３】
続いて、保温輸送用ボックスを宅配便で輸送し、神奈川県と京都府の間を往復した。２日間の輸送の後、細胞アレイの状態を評価した。【００８４】
具体的には、輸送後の細胞アレイを、生細胞染色試薬である、カルセインＡＭ（タカラバイオ株式会社）及び死細胞染色試薬であるエチジウムブロマイド（タカラバイオ株式会社）で染色し、蛍光顕微鏡で観察した。【００８５】
図９（ａ）〜（ｄ）は、細胞アレイを顕微鏡で観察した写真である。図９（ａ）は輸送前の細胞アレイを観察した顕微鏡写真である。図９（ｂ）は輸送後の細胞アレイを観察した顕微鏡写真である。図９（ｃ）は輸送後の生細胞を検出した結果を示す写真である。図９（ｄ）は輸送後の死細胞を検出した結果を示す写真である。【００８６】
その結果、輸送後も細胞アレイの位置関係が維持されていることが確認された。また、輸送後もほとんどの細胞が生存していることが確認された。【００８７】
また、同様の実験を、ムスカリン受容体安定発現細胞で作製した細胞アレイで行った結果、輸送後にムスカリンに対する応答性を維持していることが確認された。【００８８】
以上の結果は、細胞アレイの形態で輸送することにより、非凍結状態の細胞を生きたまま且つ細胞の機能を保ったまま輸送することができることを示す。
【産業上の利用可能性】
【００８９】
本発明によれば、新たなアレイを提供することができる。
【符号の説明】
【００９０】
１００…アレイ、１２０…管、１１０…対象物質、１３０…面、２００…マイクロ流体装置、２１０，２２０，２３０…導入口、３１０…コア部、３２０…シェル部、３００…ファイバ、４００…バンドル、５００…支持材、５１０…切断線、６１０…ブレード、６００…カッター。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【国際調査報告】
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