(57)【要約】本発明は、半月板再生能が高い半月板再生用材料を提供することを目的とする。本発明の半月板再生用材料は、タンパク質（Ａ）を含む半月板再生用材料であって、前記タンパク質（Ａ）は、ポリペプチド鎖（Ｙ）及び／又はポリペプチド鎖（Ｙ’）を有し、前記タンパク質（Ａ）中の前記ポリペプチド鎖（Ｙ）と前記ポリペプチド鎖（Ｙ’）との合計個数が１〜１００個であり、前記ポリペプチド鎖（Ｙ）は、配列番号１に示されるアミノ酸配列であるＶＰＧＶＧ配列（１）、配列番号４に示されるアミノ酸配列であるＧＶＧＶＰ配列（４）、ＧＰＰ配列、ＧＡＰ配列及び配列番号３に示されるアミノ酸配列であるＧＡＨＧＰＡＧＰＫ配列（３）のうち少なくとも１つのアミノ酸配列（Ｘ）が２〜２００個連続したポリペプチド鎖であり、前記ポリペプチド鎖（Ｙ’）は、前記ポリペプチド鎖（Ｙ）中の５％以下のアミノ酸がリシン及び／又はアルギニンで置換されたポリペプチド鎖であり、前記リシン及び前記アルギニンの合計個数が１〜１００個であり、円二色性スペクトル法により求めた前記タンパク質（Ａ）のβターン構造とランダムコイル構造との合計割合が６０〜８５％であり、前記アミノ酸配列（Ｘ）中の６０％以下のアミノ酸がリシン及び／又はアルギニンで置換されたアミノ酸配列をアミノ酸配列（Ｘ’）とすると、前記タンパク質（Ａ）に含まれる前記アミノ酸配列（Ｘ）及び前記アミノ酸配列（Ｘ’）を構成するアミノ酸の合計個数が前記タンパク質（Ａ）の全アミノ酸数を基準として５０〜７０％である。【特許請求の範囲】
【請求項１】
タンパク質（Ａ）を含む半月板再生用材料であって、
前記タンパク質（Ａ）が、ポリペプチド鎖（Ｙ）及び／又はポリペプチド鎖（Ｙ’）を有し、
前記タンパク質（Ａ）中の前記ポリペプチド鎖（Ｙ）と前記ポリペプチド鎖（Ｙ’）との合計個数が１〜１００個であり、
前記ポリペプチド鎖（Ｙ）が、配列番号１に示されるアミノ酸配列であるＶＰＧＶＧ配列（１）、配列番号４に示されるアミノ酸配列であるＧＶＧＶＰ配列（４）、ＧＰＰ配列、ＧＡＰ配列及び配列番号３に示されるアミノ酸配列であるＧＡＨＧＰＡＧＰＫ配列（３）のうち少なくとも１つのアミノ酸配列（Ｘ）が２〜２００個連続したポリペプチド鎖であり、
前記ポリペプチド鎖（Ｙ’）が、前記ポリペプチド鎖（Ｙ）中の５％以下のアミノ酸がリシン及び／又はアルギニンで置換されたポリペプチド鎖であり、前記リシン及び前記アルギニンの合計個数が１〜１００個であり、
円二色性スペクトル法により求めた前記タンパク質（Ａ）のβターン構造とランダムコイル構造との合計割合が６０〜８５％であり、
前記アミノ酸配列（Ｘ）中の６０％以下のアミノ酸がリシン及び／又はアルギニンで置換されたアミノ酸配列をアミノ酸配列（Ｘ’）とすると、前記タンパク質（Ａ）に含まれる前記アミノ酸配列（Ｘ）及び前記アミノ酸配列（Ｘ’）を構成するアミノ酸の合計個数が前記タンパク質（Ａ）の全アミノ酸数を基準として５０〜７０％である半月板再生用材料。
【請求項２】
前記タンパク質（Ａ）が、配列番号２に示されるアミノ酸配列であるＧＡＧＡＧＳ配列（２）が２〜５０個連続して結合したポリペプチド鎖（Ｓ）を有する請求項１に記載の半月板再生用材料。
【請求項３】
タンパク質（Ａ）１分子中の、前記ＧＡＧＡＧＳ配列（２）の個数と、前記アミノ酸配列（Ｘ）及び前記アミノ酸配列（Ｘ’）の合計個数との比（ＧＡＧＡＧＳ配列（２）：アミノ酸配列（Ｘ）及びアミノ酸配列（Ｘ’）の合計）が、１：１．５〜１：２０である請求項２に記載の半月板再生用材料。
【請求項４】
前記タンパク質（Ａ）が、前記ＧＶＧＶＰ配列（４）が２〜２００個連続したアミノ酸配列中の１個のアミノ酸がリシンで置換されたポリペプチド鎖（Ｙ’１）を有するタンパク質（Ａ１１）である請求項１〜３のいずれか１項に記載の半月板再生用材料。
【請求項５】
前記タンパク質（Ａ）が、配列番号５に示される（ＧＡＧＡＧＳ）４配列（５）であるポリペプチド鎖（Ｓ１−１）、及び、配列番号６に示される（ＧＶＧＶＰ）４ＧＫＧＶＰ（ＧＶＧＶＰ）３配列（６）であるポリペプチド鎖（Ｙ’１１）を有するタンパク質（Ａ１１−２−１）である請求項１〜４のいずれか１項に記載の半月板再生用材料。
【請求項６】
前記タンパク質（Ａ）のＳＤＳ−ＰＡＧＥ（ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動）法による分子質量が１５〜２００ｋＤａである請求項１〜５のいずれか１項に記載の半月板再生用材料。
【請求項７】
前記タンパク質（Ａ）が、配列番号１６に示されるアミノ酸配列、配列番号１７に示されるアミノ酸配列、配列番号２０に示されるアミノ酸配列、配列番号２３に示されるアミノ酸配列、配列番号２６に示されるアミノ酸配列、配列番号２９に示されるアミノ酸配列、又は、これらのアミノ酸配列との相同性が７０％以上であるアミノ酸配列を有する請求項１に記載の半月板再生用材料。
【請求項８】
更に、半月板組織片（Ｂ）を含有する請求項１〜７のいずれか１項に記載の半月板再生用材料。
【請求項９】
前記半月板組織片（Ｂ）の１片あたりの体積の数平均が０．００１〜１，０００ｍｍ３である請求項８に記載の半月板再生用材料。
【請求項１０】
半月板再生用材料の重量を基準として、前記タンパク質（Ａ）の重量割合が５〜２５重量％であり、前記半月板組織片（Ｂ）の重量割合が５〜５０重量％である請求項８又は９に記載の半月板再生用材料。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、半月板再生用材料に関する。
【背景技術】
【０００２】
高齢者の「関節疾患」で最も多いのは、変形性関節症（ＯｓｔｅｏＡｒｔｈｒｉｔｉｓ：ＯＡ）である。ＯＡを有する人数は、２０１１年の統計で２，５３０万人とされ（非特許文献１）、その中の約８００万人が痛み等の症状を有するとされている。膝ＯＡには加齢性変化に基づいて生じる一次性ＯＡと、外傷による軟骨欠損、半月板損傷、前十字靭帯損傷等の原疾患に続発して生じる二次性ＯＡに分類される。特に半月板損傷は膝ＯＡの引き金の一つと考えられており、世界的に注目が集まってきている。【０００３】
膝ＯＡの治療は、これまで欠損した関節軟骨を再生することに焦点を置き様々な治療方法が考案・実用化されてきた（特許文献１）。一方、半月板を修復しない限り、関節軟骨を修復しても良好な状態を維持することは非常に難しくなる。そのため、膝ＯＡの究極の根治を実現するためには、アライメント矯正に加えて半月板修復・再生の治療法確立が必須である。【０００４】
半月板は膝関節において衝撃吸収、関節の安定化に加え、関節の滑らかな動きに非常に重要な組織である。組織学的には線維軟骨で構成されており、関節軟骨同様に血管に乏しい組織であることから修復能が著しく低く、またその力学的高負荷環境のため、一度損傷されると非常に修復が困難な組織として認識されている。症状（物理的引っかかり感及び痛み等）が強い症例にはいわゆる対症療法となる関節鏡視下半月部分切除が最も行われており、損傷された組織の修復・再生は非常に難しい状況にある。しかし、膝ＯＡの予防に向けて、“Ｓａｖｅ  ｔｈｅ  Ｍｅｎｉｓｃｕｓ”のスローガンの元、世界中で半月板縫合術による修復が試みられている。しかし、縫合術後の再手術例は３割に及び、治癒能力が低く、変性も加わった半月板の治療には限界がある。これを克服する先進的治療法として、自家培養滑膜幹細胞を移植する再生医療やコラーゲンを用いた半月板補填材の開発研究等が進められている（特許文献２）。しかし、軟骨損傷のそれと比較すると、選択肢は非常に限られており、半月板損傷に対する新たなアプローチが必要である。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】特許第６３３８２５９号公報
【特許文献２】特開２０１２−２３６１１２号公報
【非特許文献】
【０００６】
【非特許文献１】変形性関節症治療の国内外のガイドライン  日関病誌，３５（１）：１〜９，２０１６
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
本発明は、半月板再生能が高い半月板再生用材料を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明者らは、上記の目的を達成するべく検討を行った結果、本発明に到達した。即ち、本発明は、タンパク質（Ａ）を含む半月板再生用材料であって、
前記タンパク質（Ａ）が、ポリペプチド鎖（Ｙ）及び／又はポリペプチド鎖（Ｙ’）を有し、
前記タンパク質（Ａ）中の前記ポリペプチド鎖（Ｙ）と前記ポリペプチド鎖（Ｙ’）との合計個数が１〜１００個であり、
前記ポリペプチド鎖（Ｙ）が、配列番号１に示されるアミノ酸配列であるＶＰＧＶＧ配列（１）、配列番号４に示されるアミノ酸配列であるＧＶＧＶＰ配列（４）、ＧＰＰ配列、ＧＡＰ配列及び配列番号３に示されるアミノ酸配列であるＧＡＨＧＰＡＧＰＫ配列（３）のうち少なくとも１つのアミノ酸配列（Ｘ）が２〜２００個連続したポリペプチド鎖であり、
前記ポリペプチド鎖（Ｙ’）が、前記ポリペプチド鎖（Ｙ）中の５％以下のアミノ酸がリシン及び／又はアルギニンで置換されたポリペプチド鎖であり、前記リシン及び前記アルギニンの合計個数が１〜１００個であり、
円二色性スペクトル法により求めた前記タンパク質（Ａ）のβターン構造とランダムコイル構造との合計割合が６０〜８５％であり、
前記アミノ酸配列（Ｘ）中の６０％以下のアミノ酸がリシン及び／又はアルギニンで置換されたアミノ酸配列をアミノ酸配列（Ｘ’）とすると、前記タンパク質（Ａ）に含まれる前記アミノ酸配列（Ｘ）及び前記アミノ酸配列（Ｘ’）を構成するアミノ酸の合計個数が前記タンパク質（Ａ）の全アミノ酸数を基準として５０〜７０％である半月板再生用材料である。
【発明の効果】
【０００９】
本発明の半月板再生用材料は、半月板再生能に優れ、正常な半月板再生を実現できる。
【発明を実施するための形態】
【００１０】
本発明の半月板再生用材料は、タンパク質（Ａ）を含む半月板再生用材料であって、
前記タンパク質（Ａ）は、ポリペプチド鎖（Ｙ）及び／又はポリペプチド鎖（Ｙ’）を有し、
前記タンパク質（Ａ）中の前記ポリペプチド鎖（Ｙ）と前記ポリペプチド鎖（Ｙ’）との合計個数が１〜１００個であり、
前記ポリペプチド鎖（Ｙ）は、配列番号１に示されるアミノ酸配列であるＶＰＧＶＧ配列（１）、配列番号４に示されるアミノ酸配列であるＧＶＧＶＰ配列（４）、ＧＰＰ配列、ＧＡＰ配列及び配列番号３に示されるアミノ酸配列であるＧＡＨＧＰＡＧＰＫ配列（３）のうち少なくとも１つのアミノ酸配列（Ｘ）が２〜２００個連続したポリペプチド鎖であり、
前記ポリペプチド鎖（Ｙ’）は、前記ポリペプチド鎖（Ｙ）中の５％以下のアミノ酸がリシン及び／又はアルギニンで置換されたポリペプチド鎖であり、前記リシン及び前記アルギニンの合計個数が１〜１００個であり、
円二色性スペクトル法により求めた前記タンパク質（Ａ）のβターン構造とランダムコイル構造との合計割合が６０〜８５％であり、
前記アミノ酸配列（Ｘ）中の６０％以下のアミノ酸がリシン及び／又はアルギニンで置換されたアミノ酸配列をアミノ酸配列（Ｘ’）とすると、前記タンパク質（Ａ）に含まれる前記アミノ酸配列（Ｘ）及び前記アミノ酸配列（Ｘ’）を構成するアミノ酸の合計個数が前記タンパク質（Ａ）の全アミノ酸数を基準として５０〜７０％である半月板再生用材料である。
【００１１】
本発明の半月板再生用材料は、タンパク質（Ａ）を含む。また、タンパク質（Ａ）は、ポリペプチド鎖（Ｙ）及び／又はポリペプチド鎖（Ｙ’）を有する。そのため、後に詳述するゲル内の適度な湿潤環境を保つことができる。
【００１２】
ポリペプチド鎖（Ｙ）を構成するアミノ酸配列（Ｘ）の種類は１種類であってもよく、２種類以上であってもよい。
【００１３】
アミノ酸配列（Ｘ）としては、後に詳述するゲル内の適度な湿潤環境を保ち、半月板再生能を向上させる観点から、ＶＰＧＶＧ配列（１）及びＧＶＧＶＰ配列（４）が好ましい。
【００１４】
ポリペプチド鎖（Ｙ）としては、具体的には、（ＶＰＧＶＧ）ｂ配列、（ＧＶＧＶＰ）ｃ配列及び（ＧＡＨＧＰＡＧＰＫ）ｄ配列等が挙げられる。なお、ｂ〜ｄは、それぞれ、アミノ酸配列（Ｘ）の連続する個数であり、２〜２００の整数である。
タンパク質（Ａ）１分子中に、ポリペプチド鎖（Ｙ）を複数有する場合は、ポリペプチド鎖（Ｙ）は同一でも異なっていても良く、（ＶＰＧＶＧ）ｂ配列、（ＧＶＧＶＰ）ｃ配列及び（ＧＡＨＧＰＡＧＰＫ）ｄ配列からなる群から選ばれる１種を有してもよく、２種以上を有しても良い。
また、タンパク質（Ａ）中にポリペプチド鎖（Ｙ）を複数有する場合は、アミノ酸配列（Ｘ）の連続する個数は、ポリペプチド鎖（Ｙ）ごとに同一でも異なっていてもよい。すなわち、アミノ酸配列（Ｘ）の連続する個数ｂ〜ｄが同じポリペプチド鎖（Ｙ）を複数有してもよく、ｂ〜ｄが異なるポリペプチド鎖（Ｙ）を複数有してもよい。
ポリペプチド鎖（Ｙ）としては、後に詳述するゲル内の適度な湿潤環境を保つ観点から、（ＶＰＧＶＧ）ｂ配列及び（ＧＶＧＶＰ）ｃ配列が好ましい。
【００１５】
ポリペプチド鎖（Ｙ）は、アミノ酸配列（Ｘ）が２〜２００個連続した（上記ｂ〜ｄが２〜２００）ポリペプチド鎖であるが、ゲル内の適度な湿潤環境を保つ観点から、アミノ酸配列（Ｘ）が連続する個数は２〜１００個（上記ｂ〜ｄが２〜１００）が好ましく、更に好ましくは２〜５０個（上記ｂ〜ｄが２〜５０）、特に好ましくは２〜４０個（ｂ〜ｄが２〜４０）である。
【００１６】
ポリペプチド鎖（Ｙ’）は、ポリペプチド鎖（Ｙ）中の５％以下のアミノ酸がリシン及び／又はアルギニンで置換されたポリペプチド鎖であり、置換されたリシン及びアルギニンの合計個数が１〜１００個である。
【００１７】
ポリペプチド鎖（Ｙ’）であるかどうかは、タンパク質（Ａ）の配列中の全てのリシン（Ｋ）及びアルギニン（Ｒ）を、他のアミノ酸［グリシン（Ｇ）、アラニン（Ａ）、バリン（Ｖ）、プロリン（Ｐ）又はヒスチジン（Ｈ）］に置きかえたときに、ポリペプチド鎖（Ｙ）となるかによって判断する。
【００１８】
ポリペプチド鎖（Ｙ’）において、置換されたリシン及び／又はアルギニンの割合は、後に詳述するゲル内の適度な湿潤環境を保つ観点から、０．０６％〜５％であることが好ましく、０．５〜５％が更に好ましく、特に好ましくは１〜５％である。
【００１９】
また、ポリペプチド鎖（Ｙ’）は、アミノ酸配列（Ｘ）中の６０％以下のアミノ酸がリシン及び／又はアルギニンで置換されたアミノ酸配列（Ｘ’）を含んでいてもよい。
更に、ポリペプチド鎖（Ｙ’）を構成するアミノ酸配列（Ｘ）及び／又はアミノ酸配列（Ｘ’）の種類は、それぞれ１種類であってもよく、２種類以上であってもよい。
【００２０】
アミノ酸配列（Ｘ’）として、具体的には、配列番号７に示されるアミノ酸配列であるＧＫＧＶＰ配列（７）、配列番号８に示されるアミノ酸配列であるＧＫＧＫＰ配列（８）、配列番号９に示されるアミノ酸配列であるＧＫＧＲＰ配列（９）及び配列番号１０に示されるアミノ酸配列であるＧＲＧＲＰ配列（１０）等が挙げられる。
アミノ酸配列（Ｘ’）は、半月板欠損面を適度な湿潤環境を保つ観点から、ＧＫＧＶＰ配列（７）、ＧＫＧＫＰ配列（８）及びＧＲＧＲＰ配列（１０）からなる群から選ばれる少なくとも１種の配列が好ましく、更に好ましくはＧＫＧＶＰ配列（７）及びＧＫＧＫＰ配列（８）である。
【００２１】
タンパク質（Ａ）１分子中のポリペプチド鎖（Ｙ）とポリペプチド鎖（Ｙ’）との合計個数は、１〜１００個である。また、これらの合計個数は、１〜８０個であることが好ましく、１〜６０個であることがより好ましい。
タンパク質（Ａ）１分子中のポリペプチド鎖（Ｙ）とポリペプチド鎖（Ｙ’）との合計個数が上記範囲であると、後に詳述するゲル内の適度な湿潤環境を保つことができる。
【００２２】
なお、タンパク質（Ａ）中に、アミノ酸配列（Ｘ）の種類及び／又は連続する個数が異なるポリペプチド鎖（Ｙ）を有している場合は、それぞれを１個として数え、ポリペプチド鎖（Ｙ）の個数はその合計である。ポリペプチド鎖（Ｙ’）についても同様である。
【００２３】
本発明の半月板再生用材料では、タンパク質（Ａ）に含まれるアミノ酸配列（Ｘ）及びアミノ酸配列（Ｘ’）を構成するアミノ酸の合計個数がタンパク質（Ａ）の全アミノ酸数を基準として５０〜７０％である。
上記の割合が、５０％未満の場合は、後に詳述するゲル化性能が悪化し、７０％を超えると水溶性が悪化する。
上記の割合は、半月板再生能を向上させる観点から、５２．５〜６７．５％が好ましく、更に好ましくは５５〜６５％である。
上記の割合は、プロテインシークエンサーによって求めることができる。具体的には、下記の測定法により求めることができる。
＜タンパク質（Ａ）中の全アミノ酸数に対するアミノ酸配列（Ｘ）及びアミノ酸配列（Ｘ’）を構成するアミノ酸の合計個数の割合の測定法＞
特定のアミノ酸残基で切断出来る切断方法から２種類以上を用いて、タンパク質（Ａ）を３０残基以下程度まで分解する。その後、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）にて分離した後、プロテインシークエンサーにてアミノ酸配列を読み取る。得られたアミノ酸配列からペプチドマッピングして、タンパク質（Ａ）の全配列を決定する。その後、以下記載の測定式にてタンパク質（Ａ）中の全アミノ酸数に対する全てのアミノ酸配列（Ｘ）中のアミノ酸数及び全てのアミノ酸配列（Ｘ’）中のアミノ酸数の合計個数の割合を算出する。
タンパク質（Ａ）を構成する全てのアミノ酸配列（Ｘ）中のアミノ酸数及びタンパク質（Ａ）を構成する全てのアミノ酸配列（Ｘ’）中のアミノ酸数の合計数の割合（％）＝［｛アミノ酸配列（Ｘ）の数｝×｛アミノ酸配列（Ｘ）中のアミノ酸数｝＋｛アミノ酸配列（Ｘ’）の数｝×｛アミノ酸（Ｘ’）中のアミノ酸数｝］／｛タンパク質（Ａ）中の全アミノ酸数｝×１００
【００２４】
タンパク質（Ａ）は、後に詳述するタンパク質（Ａ）中のβターン構造とランダムコイル構造との合計の割合を所定の範囲にする観点、及び、ゲル内の適度な湿潤環境を保ち、半月板再生能を向上させる観点から、ＧＡＧＡＧＳ配列（２）が２〜５０個連続したポリペプチド鎖（Ｓ）を有することが好ましい。
ポリペプチド鎖（Ｓ）において、ＧＡＧＡＧＳ配列（２）が連続する個数は、ゲル内の適度な湿潤環境を保つ観点から、２〜４０個が好ましく、更に好ましくは２〜３０個であり、特に好ましくは２〜１０個である。
【００２５】
タンパク質（Ａ）において、タンパク質（Ａ）中の全アミノ酸数に対する全てのＧＡＧＡＧＳ配列（２）中のアミノ酸数の割合［｛タンパク質（Ａ）中のＧＡＧＡＧＳ配列（２）の数×６｝／｛タンパク質（Ａ）中の全アミノ酸数｝×１００］は、半月板再生能を向上させる観点から、５〜５０％が好ましく、更に好ましくは１０〜４７．５％であり、特に好ましくは２０〜４５％である。
タンパク質（Ａ）中の全アミノ酸数に対する全てのＧＡＧＡＧＳ配列（２）中のアミノ酸数の割合は、プロテインシークエンサーによって求めることができる。具体的には、下記の測定法により求める。
【００２６】
＜タンパク質（Ａ）中の全アミノ酸数に対する全てのＧＡＧＡＧＳ配列（２）中のアミノ酸数の割合＞
特定のアミノ酸残基で切断出来る切断方法の２種類以上を用いて、タンパク質（Ａ）を３０残基以下程度まで分解する。その後、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）にて分離した後、プロテインシークエンサーにてアミノ酸配列を読み取る。得られたアミノ酸配列からペプチドマッピングして、タンパク質（Ａ）の全配列を決定する。その後、以下記載の測定式にてタンパク質（Ａ）中の全アミノ酸数に対する全てのＧＡＧＡＧＳ配列（２）中のアミノ酸数の割合を算出する。
タンパク質（Ａ）中の全アミノ酸数に対する全てのＧＡＧＡＧＳ配列（２）中のアミノ酸数の割合（％）＝［｛ＧＡＧＡＧＳ配列（２）の数×６｝／｛タンパク質（Ａ）中の全アミノ酸の数｝］×１００
【００２７】
タンパク質（Ａ）が、ポリペプチド鎖（Ｙ）、ポリペプチド鎖（Ｙ’）及びポリペプチド鎖（Ｓ）からなる群より選ばれる少なくとも１種のポリペプチド鎖を合計２個以上有する場合は、これらの間に、介在アミノ酸配列（Ｚ）を有していてもいい。介在アミノ酸配列（Ｚ）は、アミノ酸が１個又は２個以上結合したペプチド配列であって、ＧＡＧＡＧＳ配列（２）、アミノ酸配列（Ｘ）及びアミノ酸配列（Ｘ’）ではないペプチド配列である。介在アミノ酸配列（Ｚ）を構成するアミノ酸の数は、後に詳述するゲル内の適度な湿潤環境を保つ観点から、１〜３０個が好ましく、更に好ましくは１〜１５個、特に好ましくは１〜１０個である。介在アミノ酸配列（Ｚ）として、具体的には、配列番号１１に示されるアミノ酸配列であるＶＡＡＧＹ配列（１１）、配列番号１２に示されるアミノ酸配列であるＧＡＡＧＹ配列（１２）及びＬＧＰ配列等が挙げられる。
タンパク質（Ａ）中の全アミノ酸数に対する全ての介在アミノ酸配列（Ｚ）中のアミノ酸数の割合［Σ｛（介在アミノ酸配列（Ｚ）中のアミノ酸の数）×（介在アミノ酸配列（Ｚ）の数）｝／｛タンパク質（Ａ）中の全アミノ酸数｝×１００］は、後に詳述するゲル内の適度な湿潤環境を保つ観点から、０〜２５％が好ましく、更に好ましくは０〜２２．５％であり、特に好ましくは０．０１〜１５％である。
【００２８】
タンパク質（Ａ）は、生体内での分解性の観点から、ＧＡＧＡＧＳ配列（２）、アミノ酸配列（Ｘ）、アミノ酸配列（Ｘ’）及び介在アミノ酸配列（Ｚ）以外にも、末端に末端アミノ酸配列（Ｔ）を有していてもよい。なお、末端アミノ酸配列（Ｔ）は、タンパク質（Ａ）の片末端にあってもよく、両末端にあってもよい。
なお、末端アミノ酸配列（Ｔ）には、後述の精製タグは含まれない。
タンパク質（Ａ）の末端の構造としては、ポリペプチド鎖（Ｙ）に末端アミノ酸配列（Ｔ）が結合した構造であることが好ましい。末端アミノ酸配列（Ｔ）は、アミノ酸が１個又は２個以上結合したペプチド配列であって、ＧＡＧＡＧＳ配列（２）、アミノ酸配列（Ｘ）及びアミノ酸配列（Ｘ’）ではないペプチド配列である。末端アミノ酸配列（Ｔ）を構成するアミノ酸の数は、生体内での分解性の観点から、１〜１００個が好ましく、更に好ましくは１〜５０個、特に好ましくは１〜４０個である。末端アミノ酸配列（Ｔ）として、具体的には、配列番号１３に示されるアミノ酸配列であるＭＤＰＶＶＬＱＲＲＤＷＥＮＰＧＶＴＱＬＮＲＬＡＡＨＰＰＦＡＳＤＰＭ配列（１３）等が挙げられる。
【００２９】
タンパク質（Ａ）中の全アミノ酸数に対する末端アミノ酸配列（Ｔ）のアミノ酸数の割合は、生体内での分解性の観点から、０〜２５％が好ましく、更に好ましくは０〜２２．５％であり、特に好ましくは０．０１〜１５％である。
【００３０】
タンパク質（Ａ）は、後述の通り、生物工学的手法により細菌を用いて製造することがある。このような場合、発現させたタンパク質（Ａ）の精製又は検出を容易にするために、タンパク質（Ａ）は末端アミノ酸配列（Ｔ）の他に、Ｎ又はＣ末端に特殊なアミノ酸配列を有するタンパク質又はペプチド（以下これらを「精製タグ」と称する）を有してもいい。精製タグとしては、アフィニティー精製用のタグが利用される。そのような精製タグとしては、ポリヒスチジンからなる６×Ｈｉｓタグ、Ｖ５タグ、Ｘｐｒｅｓｓタグ、ＡＵ１タグ、Ｔ７タグ、ＶＳＶ−Ｇタグ、ＤＤＤＤＫタグ、Ｓタグ、ＣｒｕｚＴａｇ０９ＴＭ、ＣｒｕｚＴａｇ２２ＴＭ、ＣｒｕｚＴａｇ４１ＴＭ、Ｇｌｕ−Ｇｌｕタグ、Ｈａ．１１タグ及びＫＴ３タグ等がある。
以下に、各精製タグ（ｉ）とそのタグを認識結合するリガンド（ｉｉ）との組み合わせの一例を示す。
（ｉ−１）グルタチオン−Ｓ−トランスフェラーゼ（ＧＴＳ）  （ｉｉ−１）グルタチオン
（ｉ−２）マルトース結合タンパク質（ＭＢＰ）  （ｉｉ−２）アミロース
（ｉ−３）ＨＱタグ  （ｉｉ−３）ニッケル
（ｉ−４）Ｍｙｃタグ  （ｉｉ−４）抗Ｍｙｃ抗体
（ｉ−５）ＨＡタグ  （ｉｉ−５）抗ＨＡ抗体
（ｉ−６）ＦＬＡＧタグ  （ｉｉ−６）抗ＦＬＡＧ抗体
（ｉ−７）６×Ｈｉｓタグ  （ｉｉ−７）ニッケル又はコバルト
前記精製タグ配列の導入方法としては、発現用ベクターにおけるタンパク質（Ａ）をコードする核酸の５’又は３’末端に精製タグをコードする核酸を挿入する方法や市販の精製タグ導入用ベクターを使用する方法等が挙げられる。
【００３１】
タンパク質（Ａ）において、タンパク質（Ａ）を構成する全ての介在アミノ酸配列（Ｚ）中のアミノ酸数、タンパク質（Ａ）を構成する全ての末端アミノ酸配列（Ｔ）中のアミノ酸数及び精製タグのアミノ酸数の合計数の割合は、生体内での分解性の観点から、タンパク質（Ａ）中の全アミノ酸数を基準として、０〜２５％が好ましく、更に好ましくは０〜２２．５％であり、特に好ましくは０．０１〜１５％である。
【００３２】
タンパク質（Ａ）において、ポリペプチド鎖（Ｙ）及び／又はポリペプチド鎖（Ｙ’）並びにポリペプチド鎖（Ｓ）を含む場合、欠損面を適度な湿潤環境を保つ観点から、ポリペプチド鎖（Ｙ）又はポリペプチド鎖（Ｙ’）とポリペプチド鎖（Ｓ）とが交互に化学結合していることが好ましい。
【００３３】
ＧＡＧＡＧＳ配列（２）の個数と、アミノ酸配列（Ｘ）及びアミノ酸配列（Ｘ’）の合計個数との比（ＧＡＧＡＧＳ配列（２）：アミノ酸配列（Ｘ）及びアミノ酸配列（Ｘ’）の合計）は、タンパク質（Ａ）中のβターン構造とランダムコイル構造との合計の割合を適度にする観点から、１：１．５〜１：２０が好ましく、１：１．５〜１：６が更に好ましく、１：２〜１：５が特に好ましい。
【００３４】
好ましいタンパク質（Ａ）の一部を以下に例示する。
（Ａ１）：アミノ酸配列（Ｘ）がＧＶＧＶＰ配列（４）であるタンパク質
（Ａ１１）：ＧＶＧＶＰ配列（４）が２〜２００個連続したアミノ酸配列中の１個のアミノ酸がリシン（Ｋ）で置換されたポリペプチド鎖（Ｙ’１）を有するタンパク質
（Ａ１１−１）ポリペプチド鎖（Ｙ’１）とＧＡＧＡＧＳ配列（２）が２〜２００個連続したポリペプチド鎖（Ｓ１）とを有するタンパク質
（Ａ１１−２）：ＧＶＧＶＰ配列（４）が８個連続した配列番号１４に示されるアミノ酸配列である（ＧＶＧＶＰ）８配列（１４）のポリペプチド鎖（Ｙ１１）の１個のアミノ酸がリシン（Ｋ）で置換された配列番号６に示されるアミノ酸配列である（ＧＶＧＶＰ）４ＧＫＧＶＰ（ＧＶＧＶＰ）３配列（６）（Ｙ’１１）と、ＧＡＧＡＧＳ配列（２）が２〜２００個連続したポリペプチド鎖（Ｓ１）を有するタンパク質
（Ａ１１−２−１）：ＧＡＧＡＧＳ配列（２）が４個連続した配列番号５に示されるアミノ酸配列である（ＧＡＧＡＧＳ）４配列（５）であるポリペプチド鎖（Ｓ１−１）と（ＧＶＧＶＰ）４ＧＫＧＶＰ（ＧＶＧＶＰ）３配列（６）とを有するタンパク質
具体的には、下記タンパク質が含まれる。
（ｉ）（ＧＡＧＡＧＳ）４配列（５）を１２個及び（ＧＶＧＶＰ）４ＧＫＧＶＰ（ＧＶＧＶＰ）３配列（６）を１３個有し、これらが交互に化学結合してなるものに、配列番号１５に示されるアミノ酸配列である（ＧＡＧＡＧＳ）２配列（１５）が化学結合した分子質量が約８０ｋＤａの配列番号１６に示されるアミノ酸配列である配列（１６）のタンパク質（ＳＥＬＰ８Ｋ）
（ｉｉ）（ＧＡＧＡＧＳ）２配列（１５）及び（ＧＶＧＶＰ）４ＧＫＧＶＰ（ＧＶＧＶＰ）３配列（６）をそれぞれ１７個有し、これらが交互に化学結合してなる構造を有する分子質量が約８２ｋＤａの配列番号１７に示されるアミノ酸配列である配列（１７）のタンパク質（ＳＥＬＰ０Ｋ）
（ｉｉｉ）（ＧＡＧＡＧＳ）４配列（５）及び（ＧＶＧＶＰ）４ＧＫＧＶＰ（ＧＶＧＶＰ）３配列（６）をそれぞれ４個有し、これらが交互に化学結合してなる分子質量が約３０ｋＤａの配列番号２９に示されるアミノ酸配列である配列（２９）のタンパク質（ＳＥＬＰ８Ｋ４）
【００３５】
（Ａ１１−３）：ＧＶＧＶＰ配列（４）が１２個連続したポリペプチド鎖の１個のアミノ酸がリシン（Ｋ）で置換された配列番号１８に示されるアミノ酸配列である（ＧＶＧＶＰ）６ＧＫＧＶＰ（ＧＶＧＶＰ）５配列（１８）（Ｙ’１２）と、ＧＡＧＡＧＳ配列（２）が２〜２００個連続したポリペプチド鎖（Ｓ１）を有するタンパク質
（Ａ１１−３−１）：ＧＡＧＡＧＳ配列（２）が４個連続した配列番号１９に示されるアミノ酸配列である（ＧＡＧＡＧＳ）４配列（１９）と（ＧＶＧＶＰ）６ＧＫＧＶＰ（ＧＶＧＶＰ）５配列（１８）とを有するタンパク質
（ｉ）（ＧＡＧＡＧＳ）４配列（１９）を１２個及び（ＧＶＧＶＰ）６ＧＫＧＶＰ（ＧＶＧＶＰ）５配列（１８）を１３個有し、これらが交互に化学結合してなるものに、（ＧＡＧＡＧＳ）２配列（１５）が化学結合した分子質量が約１０５ｋＤａの配列番号２０に示されるアミノ酸配列である配列（２０）のタンパク質
【００３６】
（Ａ２）：アミノ酸配列（Ｘ）がＶＰＧＶＧ配列（１）であるタンパク質
（Ａ２１）：ＶＰＧＶＧ配列（１）が２〜２００個連続したポリペプチド鎖（Ｙ２）とＧＡＧＡＧＳ配列（２）を有するタンパク質
（ｉ）ＧＡＧＡＧＳ配列（２）、配列番号２４に示されるアミノ酸配列である（ＶＰＧＶＧ）４配列（２４）及び配列番号２５に示されるアミノ酸配列である（ＶＰＧＶＧ）８配列（２５）をそれぞれ４０個有し、これらが（ＶＰＧＶＧ）４配列（２４）、ＧＡＧＡＧＳ配列（２）、（ＶＰＧＶＧ）８配列（２５）の順に結合したブロックが４０個化学結合してなる構造を有する分子質量約２００ｋＤａの配列番号２６に示されるアミノ酸配列である配列（２６）のタンパク質（ＥＬＰ１．１）
【００３７】
（Ａ３）：ＧＶＧＶＰ配列（４）が２〜２００個連続したポリペプチド鎖（Ｙ１）とＧＡＧＡＧＳ配列（２）が２〜２００個連続したポリペプチド鎖（Ｓ１）とを有するタンパク質
具体的には、下記タンパク質が含まれる。
（ｉ）配列番号２１に示されるアミノ酸配列である（ＧＡＧＡＧＳ）８配列（２１）及び配列番号２２に示されるアミノ酸配列である（ＧＶＧＶＰ）４０配列（２２）をそれぞれ５個有し、これらが交互に化学結合してなる構造を有する分子質量が約１１０ｋＤａの配列番号２３に示されるアミノ酸配列である配列（２３）のタンパク質（ＳＥＬＰ６．１）
【００３８】
これらの中では、配列（１６）のタンパク質（ＳＥＬＰ８Ｋ）、配列（１７）のタンパク質（ＳＥＬＰ０Ｋ）、配列（２０）のタンパク質、配列（２３）のタンパク質（ＳＥＬＰ６．１）、配列（２６）のタンパク質（ＥＬＰ１．１）又は配列（２９）のタンパク質（ＳＥＬＰ８Ｋ４）であることが好ましい。
また、タンパク質（Ａ）は、配列（１６）のタンパク質（ＳＥＬＰ８Ｋ）、配列（１７）のタンパク質（ＳＥＬＰ０Ｋ）、配列（２０）のタンパク質、配列（２３）のタンパク質（ＳＥＬＰ６．１）、配列（２６）のタンパク質（ＥＬＰ１．１）又は配列（２９）のタンパク質（ＳＥＬＰ８Ｋ４）のアミノ酸配列と相同性が７０％以上であるアミノ酸配列を有するタンパク質であっても良い。
また、この相同性は、８０％以上であることが好ましく、９０％以上であることがより好ましい。
【００３９】
本発明におけるタンパク質（Ａ）は、円二色性スペクトル法により求められるタンパク質（Ａ）中のβターン構造とランダムコイル構造との合計割合が６０〜８５％である。タンパク質の配列が同じでも、タンパク質の作製方法、タンパク質の精製方法、タンパク質を溶解させる溶媒のｐＨ及び溶媒の極性等により、タンパク質中のβターン構造とランダムコイル構造との合計割合は異なる。
βターン構造とランダムコイル構造との合計割合が６０％未満であると、水溶性が悪化する。また、８５％を超えると、後に詳述するゲル化性能が悪化する。
タンパク質（Ａ）中のβターン構造とランダムコイル構造との合計割合は、欠損面を適度な湿潤環境を保ち、半月板の再生を促進させる観点から、好ましくは６５〜８０％であり、更に好ましくは７０〜７５％である。
上記割合を制御する方法としては特に限定されないが、以下の方法により増加又は低下させることができる。
上記割合を増加させる場合には、例えば、タンパク質（Ａ）を例えば、単独のタンパク質（Ａ）を過剰量の緩衝液で希釈してからリフォールディングさせる希釈リフォールディング法（大希釈法）が挙げられる。
また、上記割合を低下させる場合には、例えば、タンパク質（Ａ）を変性剤や熱等により変性させる方法が挙げられる。
タンパク質（Ａ）中のβターン構造とランダムコイル構造との合計割合は、下記測定法によって求める。
【００４０】
＜タンパク質（Ａ）中のβターン構造とランダムコイル構造との合計の割合の測定方法＞
タンパク質を０．３ｍｇ／ｍｌとなるように脱イオン水（４℃）に溶解し、タンパク質の水溶液を作製する。作製したタンパク質の水溶液を円二色性スペクトル測定器（日本分光株式会社製、「Ｊ−８２０」）にて測定し（測定温度：４℃）、二次構造解析プログラム（ＪＷＳＳＥ型：日本分光株式会社製）にてβターン構造の割合とランダムコイル構造の割合とを算出し、これらの合計をβターン構造とランダムコイル構造との合計の割合とする。
【００４１】
タンパク質（Ａ）のＳＤＳ−ＰＡＧＥ（ＳＤＳポリアクリルアミドゲル電気泳動）法による分子質量は、生体内での分解性の観点から、１５〜２００ｋＤａが好ましく、更に好ましくは３０〜１５０ｋＤａであり、特に好ましくは７０〜１２０ｋＤａである。
【００４２】
本発明において、タンパク質（Ａ）の疎水性度は、半月板再生能を向上させる観点から、０．２〜１．２であることが好ましく、更に好ましくは０．４〜１．０であり、特に好ましくは０．４２〜０．８０である。
タンパク質（Ａ）の疎水性度は、タンパク質（Ａ）分子の疎水性の度合いを示すものであり、タンパク質（Ａ）分子を構成するそれぞれのアミノ酸残基の数（Ｍα）、それぞれのアミノ酸の疎水性度（Ｎα）及びタンパク質（Ａ）１分子中のアミノ酸残基の総数（ＭＴ）を、下記数式に当てはめることにより算出することができる。なお、それぞれのアミノ酸の疎水性度は、非特許文献（アルバート・Ｌ．レーニンジャー、デビット・Ｌ．ネルソン、レ−ニンジャ−の新生化学  上、廣川書店、２０１０年９月、ｐ．３４６−３４７）に記載されている下記の数値を用いる。
疎水性度＝Σ（Ｍα×Ｎα）／（ＭＴ）
Ｍα：人工タンパク質（Ａ）１分子中のそれぞれのアミノ酸残基の数
Ｎα：各アミノ酸の疎水性度
ＭＴ：人工タンパク質（Ａ）１分子中のアミノ酸残基の総数
Ａ（アラニン）：１．８
Ｒ（アルギニン）：−４．５
Ｎ（アスパラギン）：−３．５
Ｄ（アスパラギン酸）：−３．５
Ｃ（システイン）：２．５
Ｑ（グルタミン）：−３．５
Ｅ（グルタミン酸）：−３．５
Ｇ（グリシン）：−０．４
Ｈ（ヒスチジン）：−３．２
Ｉ（イソロイシン）：４．５
Ｌ（ロイシン）：３．８
Ｋ（リシン）：−３．９
Ｍ（メチオニン）：１．９
Ｆ（フェニルアラニン）：２．８
Ｐ（プロリン）：−１．６
Ｓ（セリン）：−０．８
Ｔ（トレオニン）：−０．７
Ｗ（トリプトファン）：−０．９
Ｙ（チロシン）：−１．３
Ｖ（バリン）：４．２
例えば、人工タンパク質（Ａ）が（ＧＶＧＶＰ）４ＧＫＧＶＰ（ＧＶＧＶＰ）３配列（６）である場合、人工タンパク質（Ａ）の疎水性度＝｛１６（Ｇの数）×（−０．４）＋１５（Ｖの数）×４．２＋８（Ｐの数）×（−１．６）＋１（Ｋの数）×（−３．９）｝／４０（アミノ酸残基の総数）＝１．０である。
【００４３】
本発明の半月板再生用材料は、上記のようなアミノ酸配列からなるタンパク質（Ａ）を含むものであることから、生体内の酵素により分解されるため、生分解性に優れている。
【００４４】
本発明において、タンパク質（Ａ）は、天然物からの抽出、有機合成法（酵素法、固相合成法及び液相合成法等）及び遺伝子組み換え法等によって得られる。有機合成法に関しては、「生化学実験講座１、タンパク質の化学ＩＶ（１９８１年７月１日、日本生化学会編、株式会社東京化学同人発行）」に記載されている方法、及び、「続生化学実験講座２、タンパク質の化学（下）（昭和６２年５月２０日、日本生化学会編、株式会社東京化学同人発行）」に記載されている方法等が適用できる。遺伝子組み換え法に関しては、特許第３３３８４４１号公報に記載されている方法等が適用できる。天然物からの抽出、有機合成法及び遺伝子組み換え法はともに、タンパク質（Ａ）を得られるが、アミノ酸配列を簡便に変更でき、安価に大量生産できるという観点等から、遺伝子組み換え法が好ましい。
【００４５】
本発明の半月板再生用材料は、半月板再生能を向上させる観点から、半月板組織片（Ｂ）を含有していることが好ましい。
前記の半月板組織片（Ｂ）としては、半月板（患者本人の半月板でも良く、患者本人ではない他人の半月板であっても良い）の一部採取して、細かく砕くことで得ることができる。
細かく砕く方法としては、メスでの裁断等の方法が挙げられる。
半月板組織片（Ｂ）の１片あたりの体積の数平均は、半月板再生能を向上させる観点から、０．００１〜１，０００ｍｍ３であることが好ましく、更に好ましくは０．００８〜９７０ｍｍ３であり、特に好ましくは１〜５００ｍｍ３である。
【００４６】
本発明の半月板再生用材料は、前記のタンパク質（Ａ）及び半月板組織片（Ｂ）以外に水、無機塩及び／又はリン酸（塩）を含んでいても良い。
【００４７】
無機塩としては、具体的には、塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化カルシウム、塩化マグネシウム、硫酸ナトリウム、硫酸カリウム、硫酸カルシウム、硫酸マグネシウム、炭酸水素ナトリウム、炭酸水素カリウム、炭酸水素カルシウム及び炭酸水素マグネシウム等が挙げられる。なお、本明細書においてリン酸（塩）は無機塩に含まない。
半月板再生用材料中の無機塩の含有量（重量％）は、半月板再生能を向上させる観点から、半月板再生用材料の重量を基準として０〜３重量％が好ましく、更に好ましくは０〜１重量％、特に好ましくは０．００１〜０．５重量％である。
【００４８】
リン酸（塩）は、リン酸及び／又はリン酸塩を意味する。
リン酸塩としては、リン酸のアルカリ金属塩及びアルカリ土類金属塩が挙げられ、具体的には、ナトリウム塩、カリウム塩、カルシウム塩及びマグネシウム塩等が挙げられる。
半月板再生用材料中のリン酸（塩）の含有量は、半月板再生能を向上させる観点から、半月板再生用材料の重量を基準として０．００１〜２重量％が好ましく、更に好ましくは０．００１〜０．５重量％、特に好ましくは０．００１〜０．０５重量％である。
【００４９】
本発明の半月板再生用材料が含有するタンパク質（Ａ）の重量割合は、半月板再生能を向上させる観点から、半月板再生用材料の重量を基準として、５〜２５重量％であることが好ましく、１０〜２０重量％であることが更に好ましい。
本発明の半月板再生用材料が含有する半月板組織片（Ｂ）の重量割合は、半月板再生能を向上させる観点から、半月板再生用材料の重量を基準として、５〜５０重量％であることが好ましく、１０〜４０重量％であることが更に好ましい。
また、半月板再生能を更に高める観点からは、本発明の半月板再生用材料が含有するタンパク質（Ａ）の重量と半月板組織片（Ｂ）との重量との比率［タンパク質（Ａ）の重量／半月板組織片（Ｂ）の重量］が、０．３０〜０．９０であることが好ましく、０．４０〜０．７５であることが更に好ましい。
【００５０】
本発明の半月板再生用材料は、半月板組織片（Ｂ）を、タンパク質（Ａ）を溶解した水溶液に加えて、ピペッティング等で混合して調整する等の方法で製造することができる。この時、細胞活性維持の観点から、４〜１０℃で上述の操作を実施することが好ましい。
【００５１】
本発明の半月板再生用材料の使用方法としては、以下の方法等が挙げられる。
（１）本発明の半月板再生用材料は、４〜４０℃（好ましくは２０〜４０℃）にすることで、ゲル化させることができる。
このゲル化させた半月板再生用材料を、切開等により露出させた半月板損傷部位に投与することで、半月板の再生を促すことができる。なお、半月板再生用材料投与後は、コラーゲン膜や患者の渇膜等により、切開部を縫合・封鎖することができる。
（２）本発明の半月板再生用材料を、関節鏡下で半月板損傷部に投与することで、半月板再生用材料が患者の体温によりゲル化し、上記の（１）と同様に、半月板の再生を促すことができる。
これらの方法は、本発明の半月板損傷部の治療方法でもある。
【００５２】
本発明の半月板再生用材料は、変形性関節症、軟骨欠損及び半月板損傷（外傷性半月板損傷等）等に用いることができる。
【００５３】
また、変形性関節症、軟骨欠損及び半月板損傷（外傷性半月板損傷）からなる群から選択される少なくとも１種の疾患に対する上記半月板再生用材料の使用は、本発明の半月板再生用材料の使用でもある。
【実施例】
【００５４】
以下に実施例として本発明を更に詳しく説明するが、本発明はこれら実施例のみに限定されるものではない。【００５５】
＜製造例Ａ１：ＳＥＬＰ８Ｋ（Ａ１１−２−１（ｉ））の作製＞
○ＳＥＬＰ８Ｋ（Ａ１１−２−１（ｉ））の生産
特許第４０８８３４１号公報の実施例記載の方法に準じて、ＳＥＬＰ８ＫをコードしたプラスミドｐＰＴ０３４５を作製した。
作製したプラスミドを大腸菌にトランスフォーメーションし、ＳＥＬＰ８Ｋ生産株を得た。以下、このＳＥＬＰ８Ｋ生産株を用いて、配列（１６）を有するタンパク質（Ａ）を生産する方法を示す。【００５６】
○ＳＥＬＰ８Ｋ生産株の培養
３０℃で生育させたＳＥＬＰ８Ｋ生産株の一夜培養液を使用して、２５０ｍｌフラスコ中のＬＢ培地５０ｍｌに接種した。カナマイシンを最終濃度５０μｇ／ｍｌとなるように加え、該培養液を３０℃で攪拌しながら（２００ｒｐｍ）培養した。培養液が濁度ＯＤ６００＝０．８（吸光度計ＵＶ１７００：（株）島津製作所製を使用）となった時に、４０ｍｌを４２℃に前もって温めたフラスコに移し、同じ温度で約２時間培養した。培養した培養液を氷上で冷却し、培養液の濁度ＯＤ６００を測定し、遠心分離にて大腸菌を集菌した。【００５７】
○ＳＥＬＰ８Ｋ（Ａ１１−２−１（ｉ））の精製
集菌した大腸菌を用い、下記１：菌体溶解、２：遠心分離による不溶性細片の除去、３：硫安沈殿、４：限外濾過、５：陰イオン交換クロマトグラフィー、６：限外濾過、７：凍結乾燥により大腸菌バイオマスからタンパク質を精製した。このようにして、分子質量が約８０ｋＤａの配列（１６）を有するタンパク質の精製物である製造例Ａ１に係るタンパク質（Ａ）（ＳＥＬＰ８Ｋ）を得た。【００５８】
１：菌体溶解
集菌した大腸菌１００ｇに対して、脱イオン水２００ｇを加えて、高圧ホモジナイザー（５５ＭＰａ）にて菌体溶解し、溶解した菌体を含む菌体溶解液を得た。その後、菌体溶解液を氷酢酸にてｐＨ４．０に調整した。【００５９】
２：遠心分離による不溶性細片の除去
更に菌体溶解液を遠心分離（６３００ｒｐｍ、４℃、３０分間）して、上清を回収した。【００６０】
３：硫安沈殿
回収した上清に硫安濃度が２５重量％となるように飽和硫安溶液を投入した。その後、８〜１２時間静置した後、遠心分離にて沈殿物を回収した。回収した沈殿物を脱イオン水に溶解した。溶解した液に対して、同様に硫安濃度が２５重量％となるように飽和硫安溶液を投入した。その後、８〜１２時間静置した後、遠心分離にて沈殿物を回収した。回収した沈殿物を脱イオン水に溶解し、溶液を得た。【００６１】
４：限外濾過
「３：硫安沈殿」で得た溶液を分子質量３０，０００Ｄａカットの限外濾過装置（ホロファーバー：ＧＥヘルスケア社製）に供した。「３：硫安沈殿」で得た溶液に対して、１０倍量の脱イオン水を用いて、限外濾過を実施し、限外濾過後のタンパク質を得た。【００６２】
５：陰イオン交換クロマトグラフィー
限外濾過後のタンパク質を１０ｍＭ酢酸ナトリウム緩衝液に溶解して２０ｇ／Ｌとし、陰イオン交換カラムＨｉＰｒｅｐＳＰ  ＸＬ１６／１０（ＧＥヘルスケア社製）をセットしたＡＫＴＡＰｒｉｍｅ（ＧＥヘルスケア社製）に供した。溶出液として５００ｍＭ  １０ｍＭ酢酸ナトリウム緩衝液を用いて、溶出画分を回収した。【００６３】
６：限外濾過
「５：陰イオン交換クロマトグラフィー」で得た溶液を上記「４：限外濾過」と同様にして処理し、限外濾過後のタンパク質を得た。【００６４】
７：凍結乾燥
タンパク質を脱イオン水に溶解して５ｇ／Ｌとし、水位が１５ｍｍ以下となるようにステンレス製のバットに入れた。その後、凍結乾燥機（日本テクノサービス（株）製）に入れて、−４０℃、１６時間かけて凍結させた。凍結後、真空度が８Ｐａ以下、−２０℃で、９０時間かけて１次乾燥、真空度が８Ｐａ以下、２０℃で、２４時間かけて２次乾燥させた。このようにして、製造例Ａ１に係るタンパク質（Ａ）（ＳＥＬＰ８Ｋ）を得た。【００６５】
○ＳＥＬＰ８Ｋ（Ａ１１−２−１（ｉ））の同定
製造例Ａ１に係るタンパク質（Ａ）を下記の手順で同定した。
ラビット抗ＳＥＬＰ８Ｋ抗体及びＣ末端配列の６×Ｈｉｓタグに対するラビット抗６×Ｈｉｓ抗体（Ｒｏｌａｎｄ社製）を用いたウエスタンブロット法により分析した。ウエスタンブロット法の手順は下記の通りとした。見かけ分子質量８０ｋＤａの位置に、各抗体に抗体反応性を示すバンドが見られた。
また、アミノ酸分析システム（Ｐｒｏｍｉｎｅｎｃｅ島津製作所製）を用いたアミノ酸組成分析より得られた製造例Ａ１に係るタンパク質（Ａ）のアミノ酸の組成物率（実測値）と、合成遺伝子配列から推測されるＳＥＬＰ８Ｋのアミノ酸の組成物率（理論値）を表１に示す。
これらから、製造例Ａ１に係るタンパク質（Ａ）はＧＶＧＶＰ配列（４）が８個連続したポリペプチド鎖（Ｙ）中のバリン（Ｖ）のうち１個がリシン（Ｋ）に置換された（ＧＶＧＶＰ）４ＧＫＧＶＰ（ＧＶＧＶＰ）３配列（６）のポリペプチド鎖（Ｙ’２）を１３個及びＧＡＧＡＧＳ配列（２）が４個連続した（ＧＡＧＡＧＳ）４配列（５）のポリペプチド鎖（Ｓ１−１）を１２個有し、これらが交互に化学結合してなる配列（１６）を有するタンパク質（ＳＥＬＰ８Ｋ）であることを確認した。【００６６】
【表１】
2020071208.tif 000002
【００６７】
＜ウエスタンブロット法＞
ウエスタンブロット用サンプル２０μＬに３×ＳＤＳ処理バッファ［１５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ  ＨＣｌ（ｐＨ６．８）、３００ｍＭ  ジチオスレイトール、６％  ドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）、０．３％  ブロモフェノールブルー、及び３０％  グリセロールを含む］１０μＬを添加して９５℃で５分間加温し、泳動用試料を調製した。この泳動用試料１５μＬを用いてＳＤＳ−ＰＡＧＥを行った。泳動後のゲルをフッ化ポリビニリデンメンブレンにトランスファー（以下、「メンブレン」と略記）し、これをブロッキングバッファ［２０ｍＭ  Ｔｒｉｓ（ｐＨ７．６）、１３７ｍＭ  ＮａＣｌ、０．１％  Ｔｗｅｅｎ２０、及び５％  スキムミルクを含む］に浸漬して１時間室温で振蕩することによりメンブレンのブロッキング処理を行った。ブロッキング処理後、メンブレンをＴＢＳ−Ｔ［２０ｍＭ  Ｔｒｉｓ（ｐＨ７．６）、１３７ｍＭ  ＮａＣｌ、及び０．１％  Ｔｗｅｅｎ２０を含む］で２分間洗浄した。次に、メンブレンを一次抗体溶液（一次抗体：抗ＳＥＬＰ８Ｋ抗体及び抗Ｈｉｓ−ｔａｇ抗体（Ｒｏｃｋｌａｎｄ社製）をＴＢＳ−Ｔで５００分の１に希釈した溶液）に浸漬し、４℃で一晩静置して抗体反応を行った。反応後、このメンブレンをＴＢＳ−Ｔで５分間、４回洗浄した後、一次抗体に結合可能であり且つ標識酵素として西洋ワサビペルオキシダーゼを結合させた二次抗体の溶液（二次抗体：ＥＣＬ  ａｎｔｉ−ｒａｂｂｉｔ  ＩｇＧ  ＨＲＰ  ｌｉｎｋｅｄ  Ｆ（ａｂ’）２  ｆｒａｇｍｅｎｔ（ＧＥヘルスケア社製）をＴＢＳ−Ｔで２０００分の１に希釈した溶液）にメンブレンを浸漬し、３０分間室温で静置して抗体反応を行った。反応後、メンブレンをＴＢＳ−Ｔで５分間、４回洗浄した後、ＥＣＬ−Ａｄｖａｎｃｅ  Ｗｅｓｔｅｒｎ  Ｂｌｏｔｔｉｎｇ  Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ  Ｋｉｔ（ＧＥヘルスケア社製）により酵素反応を行った。ルミノメーターＦｏｒＥＣＬ（ＧＥヘルスケア社製）を用いて、高感度インスタント黒白フィルム（富士フイルム株式会社製）に感光させ、バンドを可視化した。【００６８】
○βターン構造とランダムコイル構造の合計の割合の測定
製造例Ａ１に係るタンパク質（Ａ）を用いて下記の手順でβターン構造とランダムコイル構造の合計の割合を測定した。
＜βターン構造とランダムコイル構造の合計の割合の測定＞
製造例Ａ１に係るタンパク質（Ａ）を０．３ｍｇ／ｍｌとなるように脱イオン水（４℃）に溶解し、製造例Ａ１に係るタンパク質（Ａ）水溶液を作製した。作製した製造例Ａ１に係るタンパク質（Ａ）水溶液を円二色性スペクトル測定器（日本分光：Ｊ−８２０）にて測定し（測定温度：４℃）、二次構造解析プログラム（ＪＷＳＳＥ型：日本分光株式会社製）を用いて、βターン構造とランダムコイル構造の合計の割合を算出した。結果を表２に示す。【００６９】
【表２】
2020071208.tif 000003
【００７０】
＜製造例Ａ２＞
製造例Ａ１の「ＳＥＬＰ８Ｋ（Ａ１１−２−１（ｉ））の作製」において、「ＳＥＬＰ８Ｋ（Ａ１１−２−１（ｉ））の精製」の「５：陰イオン交換クロマトグラフィー」と「６：限外濾過」との間に、下記「５−２：リフォールディング（大希釈法）」を行う以外は同様にして、製造例Ａ２に係るタンパク質（Ａ）を作製し、βターン構造とランダムコイル構造との合計割合を測定した。結果を表２に示す。
５−２：リフォールディング（大希釈法）
陰イオン交換クロマトグラフィーの溶出画分をタンパク質変性剤である１０Ｍウレア溶液にて、６Ｍウレア溶液となるように調製し、１２時間、４℃で静置した。調製した溶液を透析膜（Ｖｉｓｋａｓｅ  Ｃｏｍｐａｎｉｅｓ，Ｉｎｃ．社製）に投入し、溶出画分の１０倍容量の脱イオン水にて１２時間、透析した。その後、脱イオン水を捨て、新たに溶出画分の１０倍容量の脱イオン水にて１２時間、透析した。この操作を残り３回、計５回繰り返した後、透析膜中の溶液を回収した。【００７１】
＜製造例Ａ３＞
製造例Ａ１の「ＳＥＬＰ８Ｋ（Ａ１１−２−１（ｉ））の作製」において、「ＳＥＬＰ８Ｋ（Ａ１１−２−１（ｉ））の精製」の「５：陰イオン交換クロマトグラフィー」と「６：限外濾過」との間に、下記「５−３：リフォールディング（大希釈法）」を行う以外は同様にして、製造例Ａ３に係るタンパク質（Ａ）を作製し、βターン構造とランダムコイル構造との合計割合を測定した。結果を表２に示す。
５−３：リフォールディング（大希釈法）
陰イオン交換クロマトグラフィーの溶出画分をタンパク質変性剤である１０Ｍウレア溶液にて、６Ｍウレア溶液となるように調製し、１２時間、４℃で静置した。調製した溶液を透析膜（Ｖｉｓｋａｓｅ  Ｃｏｍｐａｎｉｅｓ，Ｉｎｃ．社製）に投入し、溶出画分の１０倍容量の脱イオン水にて１２時間、透析した。その後、脱イオン水を捨て、新たに溶出画分の３倍容量の脱イオン水にて１２時間、透析した。溶出画分の３倍容量の脱イオン水による透析を残り５回繰り返した後、透析膜中の溶液を回収した。【００７２】
＜製造例Ａ４＞
製造例Ａ１の「ＳＥＬＰ８Ｋ（Ａ１１−２−１（ｉ））の作製」において、「ＳＥＬＰ８Ｋ（Ａ１１−２−１（ｉ））の精製」の「５：陰イオン交換クロマトグラフィー」に代えて下記「５’：アフィニティクロマトグラフィー」とする以外は同様にして、製造例Ａ４に係るタンパク質（Ａ）を作製し、βターン構造とランダムコイル構造との合計割合を測定した。結果を表２に示す。
５’：アフィニティクロマトグラフィー
「４：限外濾過」後のタンパク質を、Ｈｉｓ−ｔａｇを用いたアフィニティクロマトグラフィー（ＧＥヘルスケア社製、Ｎｉ  Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ  ６  Ｆａｓｔ  Ｆｌｏｗ）にて精製し、溶出画分を回収した。【００７３】
＜製造例Ａ５＞
製造例Ａ１において、「ＳＥＬＰ８ＫをコードしたプラスミドｐＰＴ０３４５」に変えて、「ＳＥＬＰ８Ｋ４をコードしたプラスミドｐＰＴ０３４５−４」を用いる以外は同様にして、分子質量が約３０ｋＤａの配列（２９）の製造例Ａ５に係るタンパク質（Ａ）を作製し、βターン構造とランダムコイル構造との合計割合を測定した。結果を表２に示す。【００７４】
＜比較製造例Ａ１＞
製造例Ａ１の「ＳＥＬＰ８Ｋ（Ａ１１−２−１（ｉ））の作製」において、「ＳＥＬＰ８Ｋ（Ａ１１−２−１（ｉ））の精製」の「５：陰イオン交換クロマトグラフィー」に代えて下記「５’’：アフィニティクロマトグラフィー」とする以外は同様にして、比較製造例Ａ１に係るタンパク質（Ａ’）を作製し、βターン構造とランダムコイル構造との合計割合を測定した。結果を表２に示す。
５’’：アフィニティクロマトグラフィー
「４：限外濾過」後のタンパク質を、Ｈｉｓ−ｔａｇを用いたアフィニティクロマトグラフィー（クロンテック社製、ＴＡＬＯＮ（登録商標）Ｓｉｎｇｌｅ  Ｓｔｅｐ  Ｃｏｌｕｍｎｓ）にて精製し、溶出画分を回収した。【００７５】
＜比較製造例Ａ２＞
製造例Ａ１の「ＳＥＬＰ８Ｋ（Ａ１１−２−１（ｉ））の作製」において、「ＳＥＬＰ８Ｋ（Ａ１１−２−１（ｉ））の精製」の「３：硫安沈殿、４：限外濾過、５：陰イオン交換クロマトグラフィー」を実施せず、上記「５’：アフィニティクロマトグラフィー」行う以外は同様にして、比較製造例Ａ２に係るタンパク質（Ａ’）を作製し、βターン構造とランダムコイル構造との合計割合を測定した。結果を表２に示す。【００７６】
＜比較製造例Ａ３＞
製造例Ａ１の「ＳＥＬＰ８Ｋ（Ａ１１−２−１（ｉ））の作製」において、「ＳＥＬＰ８Ｋ（Ａ１１−２−１（ｉ））の精製」の「５：陰イオン交換クロマトグラフィー」を実施しない以外は同様にして、比較製造例Ａ３に係るタンパク質（Ａ’）を作製し、βターン構造とランダムコイル構造との合計割合を測定した。結果を表２に示す。【００７７】
＜比較製造例Ａ４＞
製造例Ａ１において、「ＳＥＬＰ８ＫをコードしたプラスミドｐＰＴ０３４５」に変えて、「ＥＬＰ１．２をコードしたプラスミドｐＰＴ０１０２−２」を用いる以外は同様にして、分子質量が約３７ｋＤａの配列番号２７に示されるアミノ酸配列である配列（２７）の比較製造例Ａ４に係るタンパク質（Ａ’）を作製し、βターン構造とランダムコイル構造との合計割合を測定した。結果を表２に示す。【００７８】
＜比較製造例Ａ５＞
製造例Ａ１において、「ＳＥＬＰ８ＫをコードしたプラスミドｐＰＴ０３４５」に変えて、「ＳＬＰ４．１をコードしたｐＳＹ１３９８−１」を用いる以外は同様にして、分子質量が約９３ｋＤａの配列番号２８に示されるアミノ酸配列である配列（２８）の比較製造例Ａ５に係るタンパク質（Ａ’）を作製し、βターン構造とランダムコイル構造との合計割合を測定した。結果を表２に示す。【００７９】
＜製造例Ｂ１：半月板組織片（Ｂ）の作製＞
日本白色家兎（体重：３．０ｋｇ）から採取した半月板組織を、予めオートクレーブ滅菌したステージに固定する。
その後固定化した半月板組織を、メス刃が２００μｍ間隔で碁盤目状に配置されたメス刃ホルダーを用いて、切断した。その後、前記のメス刃ホルダーを用いて、１辺が約２００μｍの立方体形状となるように再度切断し、製造例Ｂ１に係る半月板組織片（Ｂ）を得た。
製造例Ｂ１に係る半月板組織片（Ｂ）の内、任意の１００個の組織片について、１辺毎の長さを光学顕微鏡下で測定し、１片あたりの体積を算出した。その結果、製造例Ｂ１に係る半月板組織片（Ｂ）の１片あたりの体積の数平均値は０．００８ｍｍ３であった。【００８０】
＜製造例Ｂ２＞
製造例Ｂ１において、メス刃の間隔を２００μｍから１，０００μｍに変更した以外は製造例Ｂ１と同様にして、１辺が約１，０００μｍの立方体形状となるように切断された製造例Ｂ２に係る半月板組織片（Ｂ）を得た。
製造例Ｂ２に係る半月板組織片（Ｂ）の内、任意の１００個の組織片について、１辺毎の長さを光学顕微鏡下で測定し、１片あたりの体積を算出した。その結果、製造例Ｂ２に係る半月板組織片（Ｂ）の１片あたりの体積の数平均値は１．１４１ｍｍ３であった。【００８１】
＜製造例Ｂ３＞
製造例Ｂ１において、メス刃の間隔を２００μｍから９，９００μｍに変更した以外は製造例Ｂ１と同様にして、１辺が約９，９００μｍの立方体形状となるように細切断された製造例Ｂ３に係る半月板組織片（Ｂ）を得た。
製造例Ｂ３に係る半月板組織片（Ｂ）の内、任意の１００個の組織片について、１辺毎の長さを光学顕微鏡下で測定し、１片あたりの体積を算出した。その結果、製造例Ｂ３に係る半月板組織片（Ｂ）の１片あたりの体積の数平均値は９７０ｍｍ３であった。【００８２】
＜製造例Ｂ４＞
製造例Ｂ１において、メス刃の間隔を２００μｍから９０μｍに変更した以外は製造例Ｂ１と同様にして、１辺が約９０μｍの立方体形状となるように細切断された製造例Ｂ４に係る半月板組織片（Ｂ）を得た。
製造例Ｂ４に係る半月板組織片（Ｂ）の内、任意の１００個の組織片について、１辺毎の長さを光学顕微鏡下で測定し、１片あたりの体積を算出した。その結果、製造例Ｂ４に係る半月板組織片（Ｂ）の１片あたりの体積の数平均値は０．０００７ｍｍ３であった。【００８３】
＜製造例Ｂ５＞
製造例Ｂ１において、メス刃の間隔を２００μｍから１０，５００μｍに変更した以外は製造例Ｂ１と同様にして、１辺が約１０，５００μｍの立方体形状となるように細切断された製造例Ｂ５に係る半月板組織片（Ｂ）を得た。
製造例Ｂ５に係る半月板組織片（Ｂ）の内、任意の１００個の組織片について、１辺毎の長さを光学顕微鏡下で測定し、１片あたりの体積を算出した。その結果、製造例Ｂ５に係る半月板組織片（Ｂ）の１片あたりの体積の数平均値は１１５２ｍｍ３であった。【００８４】
＜実施例１〜１８及び比較例１〜５：半月板再生用材料及び比較用の半月板再生用材料の作成＞
表３に示す割合（重量部）で、各製造例及び各比較製造例に係るタンパク質と、リン酸緩衝生理食塩水（以降、ＰＢＳと略記することがある。ｐＨ：７．２）とを混合し、タンパク質をＰＢＳに溶解させる。次いで、表３に示す割合（重量部）、各製造例に係る半月板組織片を、転倒混和にて混合し、各実施例に係る半月板再生用材料及び各比較例に係る半月板再生用材料を作製した。【００８５】
＜半月板再生用材料を用いた半月板再生試験＞
各実施例に係る半月板再生用材料、又は、各比較例に係る半月板再生用材料を、以下の方法により、ウサギを用いた半月板損傷モデルに適用した。
麻酔下の日本白色家兎（体重：３．０ｋｇ）に対して、膝を切開し、半月板の前角に、径２ｍｍの円柱状の欠損モデルを作製した。
作製した欠損部に、各半月板再生用材料を投与し、切開した膝は縫合糸で縫合した。
４週間後に十分に深い麻酔をウサギに行った後、二酸化炭素を充満した容器内で心臓の拍動および呼吸の停止したことを確認した。その後、欠損部を含む組織を摘出した。摘出した組織は１０％緩衝ホルマリン中に浸し、ホルマリン固定を実施した。
その後、組織をパラフィン包埋し、ミクロトーム［製品名：リトラトームＲＥＭ−７１０、大和光機工業（株）製］を用いて、円柱状欠損の円となる面と垂直な方向に、厚みが約４μｍの断面ができるように、スライスする操作を繰り返し、切片を採取した。
採取した切片の内、円柱状欠損の円となる面の中心を含む切片を評価用の試験片とし、ヘマトキシリンエオジン染色（評価項目１及び２）、サフラニンＯ染色（評価項目３）を実施した。評価は、以下の方法で実施するために、デジタルマイクロスコープ［ＶＨＸ−２０００，（株）キーエンス製］を用いて組織画像を撮影した。【００８６】
＜評価項目１：結合した修復組織＞
染色した欠損部を光学顕微鏡で観察し、以下の基準で評価した。試験は３匹のウサギを用いて試験し、そのスコアの平均値を表３に示す。
各項目点数が高い程、半月板再生能が高いことを示す。
２：試験片の断面において、円柱状欠損の両端から、修復組織が再生しており、両端から再生した修復組織同士が結合している。
１：試験片の断面において、円柱状欠損の両端から、修復組織が再生しているが、両端から再生した修復組織同士は結合していない。
０：試験片の断面において、円柱状欠損の両端から、修復組織が再生していない。
＜評価項目２：線維軟骨細胞の存在＞
染色した欠損部を光学顕微鏡で観察し、以下の基準で評価した。各項目点数が高い程、半月板再生能が高いことを示す。試験は３匹のウサギを用いて試験し、そのスコアの平均値を表３に示す。
２：試験片の断面において、線維軟骨細胞が、修復組織に広くに存在（単位面積あたりの線維軟骨細胞数：２，０００ｃｅｌｌ／ｍｍ２以上）。
１：試験片の断面において、線維軟骨細胞が、修復組織に部分的に存在（単位面積あたりの線維軟骨細胞数：１００ｃｅｌｌ／ｍｍ２以上、２，０００ｃｅｌｌ／ｍｍ２未満）。
０：試験片の断面において、線維軟骨細胞が、修復組織に存在しない（単位面積あたりの線維軟骨細胞数：１００ｃｅｌｌ／ｍｍ２未満）。
なお、「単位面積あたりの線維軟骨細胞数」は、以下の方法で算出した。蛍光顕微鏡［ＢＩＯＲＥＶＯ  ＢＺ−９０００、（株）キーエンス製］により、試験片の欠損部を観察し、０．５ｍｍ四方の面積中に存在する繊維軟骨細胞数を計測した。欠損部内の中心と四隅の５か所について計測し、その平均値を「単位面積あたりの線維軟骨細胞数」とした。
＜評価項目３：サフラニンＯ染色＞
染色した欠損部を光学顕微鏡で観察し、以下の基準で評価した。各項目点数が高い程、線維軟骨細胞からの軟骨基質産生量が多いことを示唆しており、半月板再生能が高いことを示す。試験は３匹のウサギを用いて試験し、そのスコアの平均値を表３に示す。
２：試験片の断面において、高密度に染色されている（染色強度割合：６５％以上）。
１：試験片の断面において、かすかに染色されている（染色強度割合：３３％以上、６５％未満）。
０：試験片の断面において、染色が確認できない（染色強度割合：３３％未満）。
なお、「染色強度割合」は、以下の方法で算出した。蛍光顕微鏡［ＢＩＯＲＥＶＯ  ＢＺ−９０００、（株）キーエンス製］により、試験片の欠損部を観察し、０．５ｍｍ四方の面積についてヒストグラム解析を行い、赤、緑及び青の輝度分布を得た。得られた分布中の輝度１５０以上を対象とし、赤、緑及び青の輝度の合計に対する赤の輝度の割合（％）を計算した（輝度が１５０未満のものは輝度０として計算した）。欠損部内の中心と四隅の５か所について計算し、その平均値を「染色強度割合」とした。【００８７】
【表３】
2020071208.tif 000004
【００８８】
評価の結果、実施例の症例では、欠損部を修復組織で再生されており、かつ修復組織内に線維軟骨細胞が広く局在していた。更に、線維軟骨細胞からの産生されたものと思われる軟骨基質で染まるサフラニンＯ染色でも良好な結果であった。
【産業上の利用可能性】
【００８９】
本発明の半月板再生用材料は、半月板損傷の再生治療において、膝関節の半月板の欠損部分に充填することで、半月板の再生を促進し、かつ、良質な軟骨組織を創り出すことが出来るため、半月板再生用の基材として有用である。
【配列表】
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【国際調査報告】
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2020071208.tif 000006
2020071208.tif 000007
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