(57)【要約】本発明は、高度不飽和脂肪酸または高度不飽和脂肪酸の誘導体から高度不飽和脂肪酸または高度不飽和脂肪酸の誘導体の酸化物の高効率生成を可能とするリポキシゲナーゼを提供する。本発明は、アラキドン酸からの８−ヒドロキシエイコサテトラエン酸の高効率生成、エイコサペンタエン酸からの８−ヒドロキシエイコサペンタエン酸の高効率生成、および、ドコサヘキサエン酸からの１０−ヒドロキシドコサヘキサエン酸の高効率生成を可能とするリポキシゲナーゼを提供する。具体的には、配列番号１および３に示される核酸配列を含むポリヌクレオチドまたはそのホモログ、ならびに、配列番号２および４に示されるアミノ酸配列を含むポリペプチドまたはそのホモログを提供する。軟甲網（Ｍａｌａｃｏｓｔｒａｃａ）に属する生物の膜タンパク質を含む、リポキシゲナーゼ反応を行うための組成物もまた提供される。【特許請求の範囲】
【請求項１】
軟甲網（Ｍａｌａｃｏｓｔｒａｃａ）に由来する８−リポキシゲナーゼであって、以下：
（１）アラキドン酸の８位炭素を酸化する活性；
（２）エイコサペンタエン酸の８位炭素を酸化する活性；および
（３）ドコサヘキサエン酸の１０位炭素を酸化する活性
からなる群から選択される活性を有する、８−リポキシゲナーゼ。
【請求項２】
前記８−リポキシゲナーゼが、オキアミ目（Ｅｕｐｈａｕｓｉａｃｅａ）に由来する８−リポキシゲナーゼまたは十脚目（Ｄｅｃａｐｏｄａ）に由来する８−リポキシゲナーゼである、請求項１に記載の８−リポキシゲナーゼ。
【請求項３】
以下：
（ａ）配列番号２および配列番号４からなる群から選択されるアミノ酸配列を含むポリペプチド；
（ｂ）配列番号２および配列番号４からなる群から選択されるアミノ酸配列と少なくとも９０％同一であるアミノ酸配列からなるポリペプチド；
（ｃ）配列番号２および配列番号４からなる群から選択されるアミノ酸配列において１または数個の変異、置換、挿入または欠失を含むアミノ酸配列からなるポリペプチド；
（ｄ）配列番号１および配列番号３からなる群から選択される核酸配列を含む核酸によってコードされるポリペプチド；
（ｅ）配列番号１および配列番号３からなる群から選択される核酸配列を含む核酸の相補鎖と高度にストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸によってコードされるポリペプチド；
（ｆ）配列番号１および配列番号３からなる群から選択される核酸配列と少なくとも９０％同一である配列を含む核酸によってコードされるポリペプチド；
（ｇ）配列番号１および配列番号３からなる群から選択される核酸配列において１または数個の変異、置換、挿入または欠失を含む核酸配列を有する核酸配列によってコードされるポリペプチド；
からなる群から選択されるポリペプチドであって、以下：
（１）アラキドン酸の８位炭素を酸化する活性；
（２）エイコサペンタエン酸の８位炭素を酸化する活性；および
（３）ドコサヘキサエン酸の１０位炭素を酸化する活性
からなる群から選択される活性を有する、ポリペプチド。
【請求項４】
以下：
（ａ）配列番号２および配列番号４からなる群から選択されるアミノ酸配列を含むポリペプチド；ならびに、
（ｄ）配列番号１および配列番号３からなる群から選択される核酸配列を含む核酸によってコードされるポリペプチド；
からなる群から選択される、請求項３に記載のポリペプチド。
【請求項５】
請求項１〜４のいずれか一項に記載のポリペプチドを高度不飽和脂肪酸または高度不飽和脂肪酸の誘導体に作用させて、酸化物を生成する方法。
【請求項６】
請求項５に記載の方法であって、ここで：
・前記高度不飽和脂肪酸がアラキドン酸であり、前記酸化物が８−ヒドロキシエイコサテトラエン酸であるか；
・前記高度不飽和脂肪酸がエイコサペンタエン酸であり、前記酸化物が８−ヒドロキシエイコサペンタエン酸であるか；
・前記高度不飽和脂肪酸がドコサヘキサエン酸であり、前記酸化物が１０−ヒドロキシドコサヘキサエン酸であるか；あるいは、
・前記高度不飽和脂肪酸がドコサペンタエン酸であり、前記酸化物が１０−ヒドロキシドコサペンタエン酸である；
方法。
【請求項７】
請求項１〜４のいずれか一項に記載のポリペプチドを含有する、高度不飽和脂肪酸または高度不飽和脂肪酸の誘導体から高度不飽和脂肪酸または高度不飽和脂肪酸の誘導体の酸化物を生成するための組成物。
【請求項８】
請求項７に記載の組成物であって、ここで：
・前記高度不飽和脂肪酸がアラキドン酸であり、前記酸化物が８−ヒドロキシエイコサテトラエン酸であるか；
・前記高度不飽和脂肪酸がエイコサペンタエン酸であり、前記酸化物が８−ヒドロキシエイコサペンタエン酸であるか；あるいは、
・前記高度不飽和脂肪酸がドコサヘキサエン酸であり、前記酸化物が１０−ヒドロキシドコサヘキサエン酸である；
組成物。
【請求項９】
軟甲網（Ｍａｌａｃｏｓｔｒａｃａ）に由来する８−リポキシゲナーゼをコードする核酸であって、以下：
（１）アラキドン酸の８位炭素を酸化する活性；
（２）エイコサペンタエン酸の８位炭素を酸化する活性；および
（３）ドコサヘキサエン酸の１０位炭素を酸化する活性
からなる群から選択される活性を有する８−リポキシゲナーゼをコードする核酸。
【請求項１０】
前記８−リポキシゲナーゼが、オキアミ目（Ｅｕｐｈａｕｓｉａｃｅａ）に由来する８−リポキシゲナーゼまたは十脚目（Ｄｅｃａｐｏｄａ）に由来する８−リポキシゲナーゼである、請求項９に記載の核酸。
【請求項１１】
以下：
（ｈ）配列番号１および配列番号３からなる群から選択される核酸配列を含む核酸；
（ｉ）配列番号１および配列番号３からなる群から選択される核酸配列を含む核酸の相補鎖と高度にストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸；
（ｊ）配列番号１および配列番号３からなる群から選択される核酸配列と少なくとも９０％同一である配列を含む核酸；
（ｋ）配列番号１および配列番号３からなる群から選択される核酸配列において１または数個の変異、置換、挿入または欠失を含む核酸配列を有する核酸配列；
（ｌ）配列番号２および配列番号４からなる群から選択されるアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする核酸；
（ｍ）配列番号２および配列番号４からなる群から選択されるアミノ酸配列と少なくとも９０％同一であるアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードする核酸；ならびに、
（ｎ）配列番号２および配列番号４からなる群から選択されるアミノ酸配列において１または数個の変異、置換、挿入または欠失を含むアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードする核酸；
からなる群から選択される核酸であって、該核酸は、以下：
（１）アラキドン酸の８位炭素を酸化する活性；
（２）エイコサペンタエン酸の８位炭素を酸化する活性；および
（３）ドコサヘキサエン酸の１０位炭素を酸化する活性
からなる群から選択される活性を有するポリペプチドをコードする、核酸。
【請求項１２】
以下：
（ｈ）配列番号１および配列番号３からなる群から選択される核酸配列を含む核酸；
（ｌ）配列番号２および配列番号４からなる群から選択されるアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする核酸；
からなる群から選択される、請求項１１に記載の核酸。
【請求項１３】
請求項１１または１２に記載の核酸を含む組み換えベクター。
【請求項１４】
請求項１３に記載の組み換えベクターを含む形質転換体。
【請求項１５】
８−リポキシゲナーゼの製造方法であって、以下：
請求項１４に記載の形質転換体を培養する工程；
培養物中に請求項１〜４のいずれか一項に記載の８−リポキシゲナーゼを生成蓄積させる工程；および
生成蓄積された８−リポキシゲナーゼを回収する工程
を包含する、８−リポキシゲナーゼの製造方法。
【請求項１６】
軟甲網（Ｍａｌａｃｏｓｔｒａｃａ）に属する生物の膜タンパク質を含む、リポキシゲナーゼ反応を行うための組成物。
【請求項１７】
前記膜タンパク質が、オキアミ目（Ｅｕｐｈａｕｓｉａｃｅａ）に属する生物の膜タンパク質または十脚目（Ｄｅｃａｐｏｄａ）に属する生物の膜タンパク質である、請求項１６に記載の組成物。
【請求項１８】
前記膜タンパク質が、イサダの膜タンパク質である、請求項１６に記載の組成物。
【請求項１９】
請求項１６〜１８のいずれか一項に記載の、高度不飽和脂肪酸または高度不飽和脂肪酸の誘導体から高度不飽和脂肪酸または高度不飽和脂肪酸の誘導体の酸化物を生成するための組成物。
【請求項２０】
請求項１９に記載の組成物であって、ここで：
・前記高度不飽和脂肪酸がアラキドン酸であり、前記酸化物が８−ヒドロキシエイコサテトラエン酸であるか；
・前記高度不飽和脂肪酸がエイコサペンタエン酸であり、前記酸化物が８−ヒドロキシエイコサペンタエン酸であるか；あるいは、
・前記高度不飽和脂肪酸がドコサヘキサエン酸であり、前記酸化物が１０−ヒドロキシドコサヘキサエン酸である；
組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、新規の８−リポキシゲナーゼおよびこれをコードする核酸、ならびに、その使用法に関する。また本発明は、新規の８−リポキシゲナーゼを使用する高度不飽和脂肪酸の酸化方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
高度不飽和脂肪酸の代謝物の生理的機能が注目されている。例えば、８−ヒドロキシエイコサペンタエン酸（８−ＨＥＰＥ）はエイコサペンタエン酸（ＥＰＡ）の８位炭素の酸化（ヒドロキシル化）によって生成される誘導体であるが、８−ＨＥＰＥはＥＰＡよりも高いペルオキシソーム増殖因子活性化受容体（ＰＰＡＲ）活性化作用を有しており、肥満や糖尿病など代謝疾患の予防・改善効果が見込まれる化合物である（非特許文献１）。【０００３】
８−ＨＥＰＥは天然において多くは存在せず、例えば、イサダ（ツノナシオキアミ）は８−ＨＥＰＥをわずか数１０ｐｐｍ含有する（非特許文献２）。【０００４】
現在、イサダから８−ＨＥＰＥ濃縮素材を作製し、機能性食品素材としての実用化に取り組んでいるが、上記のとおりイサダから得られる８−ＨＥＰＥは微量である。イサダには８−ＨＥＰＥ以外にもアラキドン酸の８位に水酸基が導入された８−ヒドロキシエイコサテトラエン酸（８−ＨＥＴＥ）やドコサヘキサエン酸（ＤＨＡ）の１０位に水酸基の導入された１０−ヒドロキシドコサヘキサエン酸（１０−ＨＤｏＨＥ）が数ｐｐｍ含有されているが、これらの誘導体もまた、新規機能性成分や医薬品としての活用が期待されている（非特許文献３および非特許文献４）。【０００５】
しかしながら、イサダにおけるこれら誘導体の含有量が少ないことから、これらの誘導体を新規機能性成分や医薬品とすることは、困難であった。【０００６】
この出願の発明に関連する先行技術文献情報としては、次のものがある。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００７】
【非特許文献１】Ｙａｍａｄａ  Ｈら、Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｌｉｐｉｄ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ，５５，８９５−９０４，２０１４
【非特許文献２】Ｙａｍａｄａ  Ｈら、Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ  Ｒｅｐｏｒｔｓ，７，９９４４，２０１７
【非特許文献３】Ｋｌａｗｉｔｔｅｒ  Ｊら、Ｊ  Ｌｉｐｉｄ  Ｒｅｓ．２０１４Ｊｕｎ；５５（６）：１１３９−４９．
【非特許文献４】Ｈａｓｈｉｍｏｔｏ  Ｍら、Ｂｉｏｃｈｉｍ  Ｂｉｏｐｈｙｓ  Ａｃｔａ．２０１５Ｆｅｂ；１８５１（２）：２０３−９
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
そこで、新規機能性成分や医薬品として活用するために８−ＨＥＰＥの大量生産技術、例えば、酵素的産生技術が求められている。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
発明者らは、イサダにはエイコサペンタエン酸（ＥＰＡ）の８位炭素の酸化（ヒドロキシル化）によって生成される誘導体である８−ＨＥＰＥ以外にもアラキドン酸の８位に水酸基が導入された８−ヒドロキシエイコサテトラエン酸（８−ＨＥＴＥ）やドコサヘキサエン酸（ＤＨＡ）の１０位に水酸基の導入された１０−ヒドロキシドコサヘキサエン酸（１０−ＨＤｏＨＥ）が数ｐｐｍ含有されている点、ならびに、実際に、イサダのタンパク質とＥＰＡを２０℃でインキュベートすると、８−ＨＥＰＥが産生されることに着目し、イサダからリポキシゲナーゼ遺伝子を単離・同定し、エイコサペンタエン酸（ＥＰＡ）を８−ヒドロキシエイコサペンタエン酸（８−ＨＥＰＥ）に変換する酵素を同定することによって、本発明を完成した。【００１０】
発明者らは、次世代シークエンサー解析とバイオインフォマティックス解析を組み合わせた手法を採用し、イサダ（ツノナシオキアミ；Ｅｕｐｈａｕｓｉａ  ｐａｃｉｆｉｃａ  Ｐａｃｉｆｉｃ  ｋｒｉｌｌ）のリポキシゲナーゼ遺伝子配列を同定するためにイサダのｄｅ  ｎｏｖｏ  ＲＮＡ  Ｓｅｑｕｅｎｃｅ解析を行い、Ｂｌａｓｔ検索でリポキシゲナーゼ遺伝子候補配列を絞りこみ、イサダのリポキシゲナーゼ候補遺伝子であるＰａｃｉｆｉｃ  ｋｒｉｌｌ  Ｌｉｐｏｘｉｇｅｎａｓｅクローン１、２を得た。そのうちリポキシゲナーゼドメインがコードされていたのはクローン１であったので、これをＰＫ  ＬＯＸ１と称した。ＰＫ  ＬＯＸ２クローンは部分配列であると考えられたので、Ｒａｐｉｄ  ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｃＤＮＡ  ｅｎｄｓ（ＲＡＣＥ）法による完全長ｃＤＮＡ配列解析を行ない、完全長ｃＤＮＡ配列を得た。ＰＫ  ＬＯＸ１およびＰＫ  ＬＯＸ２について、昆虫細胞でのタンパク質発現を行い、７０〜８０ｋＤａのタンパク質発現とリポキシゲナーゼ活性を試験した。そのようにしてエイコサペンタエン酸（ＥＰＡ）の８位炭素を酸化して８−ヒドロキシエイコサペンタエン酸（８−ＨＥＰＥ）、アラキドン酸（ＡＲＡ）の８位炭素を酸化して８−ヒドロキシエイコサテトラエン酸（８−ＨＥＴＥ）、ドコサヘキサエン酸（ＤＨＡ）の１０位炭素を酸化して１０−ヒドロキシドコサヘキサエン酸（１０−ＨＤｏＨＥ）を生成する酵素を見出し、上記課題を解決した。
本発明において初めて同定されたイサダの８−リポキシゲナーゼと同様の効果を有するリポキシゲナーゼは、イサダのみならず軟甲網（Ｍａｌａｃｏｓｔｒａｃａ）に属する他の生物、例えば、オキアミ目（Ｅｕｐｈａｕｓｉａｃｅａ）に属する他の生物または十脚目（Ｄｅｃａｐｏｄａ）に属する他の生物においても存在し、そして、膜タンパク質として単離・調製することが可能であることが予測される。【００１１】
例えば、本発明によって以下が提供される。
（項目１）
軟甲網（Ｍａｌａｃｏｓｔｒａｃａ）に由来する８−リポキシゲナーゼであって、以下：
（１）アラキドン酸の８位炭素を酸化する活性；
（２）エイコサペンタエン酸の８位炭素を酸化する活性；および
（３）ドコサヘキサエン酸の１０位炭素を酸化する活性
からなる群から選択される活性を有する、８−リポキシゲナーゼ。
（項目２）
前記８−リポキシゲナーゼが、オキアミ目（Ｅｕｐｈａｕｓｉａｃｅａ）に由来する８−リポキシゲナーゼまたは十脚目（Ｄｅｃａｐｏｄａ）に由来する８−リポキシゲナーゼである、項目１に記載の８−リポキシゲナーゼ。
（項目３）
以下：
（ａ）配列番号２および配列番号４からなる群から選択されるアミノ酸配列を含むポリペプチド；
（ｂ）配列番号２および配列番号４からなる群から選択されるアミノ酸配列と少なくとも９０％同一であるアミノ酸配列からなるポリペプチド；
（ｃ）配列番号２および配列番号４からなる群から選択されるアミノ酸配列において１または数個の変異、置換、挿入または欠失を含むアミノ酸配列からなるポリペプチド；
（ｄ）配列番号１および配列番号３からなる群から選択される核酸配列を含む核酸によってコードされるポリペプチド；
（ｅ）配列番号１および配列番号３からなる群から選択される核酸配列を含む核酸の相補鎖と高度にストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸によってコードされるポリペプチド；
（ｆ）配列番号１および配列番号３からなる群から選択される核酸配列と少なくとも９０％同一である配列を含む核酸によってコードされるポリペプチド；
（ｇ）配列番号１および配列番号３からなる群から選択される核酸配列において１または数個の変異、置換、挿入または欠失を含む核酸配列を有する核酸配列によってコードされるポリペプチド；
からなる群から選択されるポリペプチドであって、以下：
（１）アラキドン酸の８位炭素を酸化する活性；
（２）エイコサペンタエン酸の８位炭素を酸化する活性；および
（３）ドコサヘキサエン酸の１０位炭素を酸化する活性
からなる群から選択される活性を有する、ポリペプチド。
（項目４）
以下：
（ａ）配列番号２および配列番号４からなる群から選択されるアミノ酸配列を含むポリペプチド；ならびに、
（ｄ）配列番号１および配列番号３からなる群から選択される核酸配列を含む核酸によってコードされるポリペプチド；
からなる群から選択される、項目３に記載のポリペプチド。
（項目５）
項目１〜４のいずれか一項に記載のポリペプチドを高度不飽和脂肪酸または高度不飽和脂肪酸の誘導体に作用させて、酸化物を生成する方法。
（項目６）
項目５に記載の方法であって、ここで：
・前記高度不飽和脂肪酸がアラキドン酸であり、前記酸化物が８−ヒドロキシエイコサテトラエン酸であるか；
・前記高度不飽和脂肪酸がエイコサペンタエン酸であり、前記酸化物が８−ヒドロキシエイコサペンタエン酸であるか；
・前記高度不飽和脂肪酸がドコサヘキサエン酸であり、前記酸化物が１０−ヒドロキシドコサヘキサエン酸であるか；あるいは、
・前記高度不飽和脂肪酸がドコサペンタエン酸であり、前記酸化物が１０−ヒドロキシドコサペンタエン酸である；
方法。
（項目７）
項目１〜４のいずれか一項に記載のポリペプチドを含有する、高度不飽和脂肪酸または高度不飽和脂肪酸の誘導体から高度不飽和脂肪酸または高度不飽和脂肪酸の誘導体の酸化物を生成するための組成物。
（項目８）
項目７に記載の組成物であって、ここで：
・前記高度不飽和脂肪酸がアラキドン酸であり、前記酸化物が８−ヒドロキシエイコサテトラエン酸であるか；
・前記高度不飽和脂肪酸がエイコサペンタエン酸であり、前記酸化物が８−ヒドロキシエイコサペンタエン酸であるか；あるいは、
・前記高度不飽和脂肪酸がドコサヘキサエン酸であり、前記酸化物が１０−ヒドロキシドコサヘキサエン酸である；
組成物。
（項目９）
軟甲網（Ｍａｌａｃｏｓｔｒａｃａ）に由来する８−リポキシゲナーゼをコードする核酸であって、以下：
（１）アラキドン酸の８位炭素を酸化する活性；
（２）エイコサペンタエン酸の８位炭素を酸化する活性；および
（３）ドコサヘキサエン酸の１０位炭素を酸化する活性
からなる群から選択される活性を有する８−リポキシゲナーゼをコードする核酸。
（項目１０）
前記８−リポキシゲナーゼが、オキアミ目（Ｅｕｐｈａｕｓｉａｃｅａ）に由来する８−リポキシゲナーゼまたは十脚目（Ｄｅｃａｐｏｄａ）に由来する８−リポキシゲナーゼである、項目９に記載の核酸。
（項目１１）
以下：
（ｈ）配列番号１および配列番号３からなる群から選択される核酸配列を含む核酸；
（ｉ）配列番号１および配列番号３からなる群から選択される核酸配列を含む核酸の相補鎖と高度にストリンジェントな条件下でハイブリダイズする核酸；
（ｊ）配列番号１および配列番号３からなる群から選択される核酸配列と少なくとも９０％同一である配列を含む核酸；
（ｋ）配列番号１および配列番号３からなる群から選択される核酸配列において１または数個の変異、置換、挿入または欠失を含む核酸配列を有する核酸配列；
（ｌ）配列番号２および配列番号４からなる群から選択されるアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする核酸；
（ｍ）配列番号２および配列番号４からなる群から選択されるアミノ酸配列と少なくとも９０％同一であるアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードする核酸；ならびに、
（ｎ）配列番号２および配列番号４からなる群から選択されるアミノ酸配列において１または数個の変異、置換、挿入または欠失を含むアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードする核酸；
からなる群から選択される核酸であって、該核酸は、以下：
（１）アラキドン酸の８位炭素を酸化する活性；
（２）エイコサペンタエン酸の８位炭素を酸化する活性；および
（３）ドコサヘキサエン酸の１０位炭素を酸化する活性
からなる群から選択される活性を有するポリペプチドをコードする、核酸。
（項目１２）
以下：
（ｈ）配列番号１および配列番号３からなる群から選択される核酸配列を含む核酸；
（ｌ）配列番号２および配列番号４からなる群から選択されるアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする核酸；
からなる群から選択される、項目１１に記載の核酸。
（項目１３）
項目１１または１２に記載の核酸を含む組み換えベクター。
（項目１４）
項目１３に記載の組み換えベクターを含む形質転換体。
（項目１５）
８−リポキシゲナーゼの製造方法であって、以下：
項目１４に記載の形質転換体を培養する工程；
培養物中に項目１〜４のいずれか一項に記載の８−リポキシゲナーゼを生成蓄積させる工程；および
生成蓄積された８−リポキシゲナーゼを回収する工程
を包含する、８−リポキシゲナーゼの製造方法。
（項目１６）
軟甲網（Ｍａｌａｃｏｓｔｒａｃａ）に属する生物の膜タンパク質を含む、リポキシゲナーゼ反応を行うための組成物。
（項目１７）
前記膜タンパク質が、オキアミ目（Ｅｕｐｈａｕｓｉａｃｅａ）に属する生物の膜タンパク質または十脚目（Ｄｅｃａｐｏｄａ）に属する生物の膜タンパク質である、項目１６に記載の組成物。
（項目１８）
前記膜タンパク質が、イサダの膜タンパク質である、項目１６に記載の組成物。
（項目１９）
項目１６〜１８のいずれか一項に記載の、高度不飽和脂肪酸または高度不飽和脂肪酸の誘導体から高度不飽和脂肪酸または高度不飽和脂肪酸の誘導体の酸化物を生成するための組成物。
（項目２０）
項目１９に記載の組成物であって、ここで：
・前記高度不飽和脂肪酸がアラキドン酸であり、前記酸化物が８−ヒドロキシエイコサテトラエン酸であるか；
・前記高度不飽和脂肪酸がエイコサペンタエン酸であり、前記酸化物が８−ヒドロキシエイコサペンタエン酸であるか；あるいは、
・前記高度不飽和脂肪酸がドコサヘキサエン酸であり、前記酸化物が１０−ヒドロキシドコサヘキサエン酸である；
組成物。【００１２】
本発明においては、配列番号１または配列番号３と相同な核酸配列を有するポリヌクレオチド、あるいは、配列番号２または配列番号４と相同なアミノ酸配列を有するポリペプチドを使用することができる。本発明においてはまた、Ｅｕｐｈａｕｓｉａ属に属する細胞から単離されたポリペプチドであって、（１）アラキドン酸の８位炭素を酸化する活性、（２）エイコサペンタエン酸の８位炭素を酸化する活性、および、（３）ドコサヘキサエン酸の１０位炭素を酸化する活性からなる群から選択される活性を有するポリペプチド、あるいは、このポリペプチドをコードするポリヌクレオチドもまた、利用可能である。
【発明の効果】
【００１３】
本発明によって提供されるリポキシゲナーゼ（８−リポキシゲナーゼ）によって、アラキドン酸からの８−ヒドロキシエイコサテトラエン酸の高効率生成、エイコサペンタエン酸からの８−ヒドロキシエイコサペンタエン酸の高効率生成、および、ドコサヘキサエン酸からの１０−ヒドロキシドコサヘキサエン酸の高効率生成が可能となった。
【図面の簡単な説明】
【００１４】
【図１】図１は、ツノナシオキアミから単離されたリポキシゲナーゼ遺伝子（ＰＫ  ＬＯＸ１）の核酸配列（配列番号１）を示す。
【図２】図２は、ツノナシオキアミから単離されたリポキシゲナーゼ（ＰＫ  ＬＯＸ１）のアミノ酸配列（配列番号２）を示す。
【図３】図３は、ツノナシオキアミから単離されたリポキシゲナーゼ遺伝子（ＰＫ  ＬＯＸ２）の核酸配列（配列番号３）を示す。
【図４】図４は、ツノナシオキアミから単離されたリポキシゲナーゼ（ＰＫ  ＬＯＸ２）のアミノ酸配列（配列番号４）を示す。
【図５】図５は、ヒスチジンタグを付加した本発明のＰＫ  ＬＯＸ１タンパク質およびＰＫ  ＬＯＸ２タンパク質を昆虫細胞を用いて発現させＳＤＳ  ＰＡＧＥにて分離し、抗ヒスチジン抗体を用いて検出した結果を示す。
【図６】図６は、本発明のＰＫ  ＬＯＸ１によるエイコサペンタエン酸の８−ＨＥＰＥへの変換を示す結果である。
【図７】図７は、本発明のＰＫ  ＬＯＸ２によるエイコサペンタエン酸の８−ＨＥＰＥへの変換を示す結果である。
【発明を実施するための形態】
【００１５】
以下、本発明を説明する。本明細書の全体にわたり、単数形の表現は、特に言及しない限り、その複数形の概念をも含むことが理解されるべきである。また、本明細書において使用される用語は、特に言及しない限り、当該分野で通常用いられる意味で用いられることが理解されるべきである。したがって、他に定義されない限り、本明細書中で使用される全ての専門用語および科学技術用語は、本発明の属する分野の当業者によって一般的に理解されるのと同じ意味を有する。矛盾する場合、本明細書（定義を含めて）が優先する。
【００１６】
（用語の定義）
以下に本明細書において特に使用される用語の定義を列挙する。
【００１７】
本明細書において使用される用語「不飽和脂肪酸」とは、１つ以上の不飽和の炭素結合を持つ脂肪酸をいう。不飽和炭素結合とは炭素分子鎖における炭素同士の不飽和結合、すなわち炭素二重結合または三重結合のことである。天然に見られる不飽和脂肪酸は１つ以上の二重結合を有しており、脂肪中の飽和脂肪酸と置き換わることで、融点や流動性など脂肪の特性に変化を与えている。
【００１８】
本明細書において使用される用語「高度不飽和脂肪酸」とは、炭素数が１６以上、かつ分子内に二重結合を２個以上有した不飽和脂肪酸を意味し、例えば、ドコサヘキサエン酸（Ｃ２２：６、ＤＨＡ）、エイコサペンタエン酸（Ｃ２０：５、ＥＰＡ）、アラキドン酸（Ｃ２０：４、ＡＡ）、ドコサペンタエン酸（Ｃ２２：５、ＤＰＡ）、ステアリドン酸（Ｃ１８：４）、リノレン酸（Ｃ１８：３）、リノール酸（Ｃ１８：２）、テトラコサヘキサエン酸（Ｃ２４：６）、エイコサテトラエン酸（Ｃ２０：４、ＥＴＡ）、および、エイコサトリエン酸（Ｃ２０：３）等が挙げられるがこれらに限定されない。高度不飽和脂肪酸は遊離型脂肪酸であってもよい。本発明の取得方法で得られる高度不飽和脂肪酸の誘導体としては、脂肪酸が遊離型でないものおよび遊離型であるものをいい、例えば、高度不飽和脂肪酸、高度不飽和脂肪酸を結合するリン脂質、高度不飽和脂肪酸を結合するトリグリセリド、ならびに、高度不飽和脂肪酸のメチルエステル、エチルエステル等のエステル型誘導体、エチルアミド、メチルアミド等のアミド型誘導体、脂肪アルコール型誘導体、トリグリセライド、ジグリセライド、および、モノグリセライド等が挙げられるがこれらに限定されない。不飽和脂肪酸誘導体、例えば、高度不飽和脂肪酸誘導体もまた、基質として利用可能である。高度不飽和脂肪酸の誘導体としては、例えば、高度不飽和脂肪酸のエチルエステル、高度不飽和脂肪酸を含むトリグリセリド、高度不飽和脂肪酸を含むジグリセリド、高度不飽和脂肪酸を含むモノグリセリド、高度不飽和脂肪酸を含むリン脂質、高度不飽和脂肪酸を含むリゾリン脂質、高度不飽和脂肪酸を含むスフィンゴ脂質、および、高度不飽和脂肪酸を含む糖脂質、ならびに、高度不飽和脂肪酸のアミド型誘導体（例えば、高度不飽和脂肪酸のエタノールアミドのような脂肪酸アミド）が挙げられるがこれらに限定されない。高度不飽和脂肪酸の誘導体はまた、高度不飽和脂肪酸のエステルを包含する。不飽和脂肪酸エステル（例えば、不飽和脂肪酸エチルエステル）、特に、高度不飽和脂肪酸エステル（例えば、高度不飽和脂肪酸エチルエステル）もまた、酵素反応の基質として利用可能である。
【００１９】
本明細書において使用される、不飽和脂肪酸の「酸化」とは、不飽和脂肪酸の官能基（例えば、炭素）が酸化される反応、特に、水素原子がヒドロキシル基に変換される反応をいう。
【００２０】
本明細書において使用される場合、「キット」とは、複数の容器、および製造業者の指示書を含み、そして各々の容器が、本発明の核酸および／またはポリペプチドを含む製品をいう。
【００２１】
「ポリヌクレオチド」、「核酸」または「核酸分子」は、一本鎖形態、二本鎖形態、または他の形態である、リン酸エステルポリマー形態のリボヌクレオチド（アデノシン、グアノシン、ウリジン、もしくはシチジン；「ＲＮＡ分子」）またはデオキシリボヌクレオチド（デオキシアデノシン、デオキシグアノシン、デオキシチミジン、もしくはデオキシシチジン「ＤＮＡ分子」）、またはそれらの任意のホスホエステルアナログ（例えば、ホスホロチオエートおよびチオエステル）を指し得る。「ポリヌクレオチド」、「核酸」または「核酸分子」は、「塩基配列」情報を保有する。
【００２２】
「ポリヌクレオチド配列」、「塩基配列」、「核酸配列」または「ヌクレオチド配列」は、核酸（例えば、ＤＮＡまたはＲＮＡ）中の一連のヌクレオチド塩基（「ヌクレオシド」とも呼ばれる）の配列であり、任意の鎖またはその相補鎖における２つの以上のヌクレオチドの配列を意味する。本発明の好ましい核酸は、配列番号１および／または配列番号３に示される核酸、ならびにその相補鎖、改変体およびフラグメントを包含する。
【００２３】
「相補鎖」とは、ある核酸配列に対して塩基対を形成し得るようなヌクレオチドの鎖を意味する。例えば、二本鎖ＤＮＡの各々の鎖は互いに相補的な塩基配列を有し、一方の鎖から見て他方の鎖は相補鎖である。
【００２４】
「コード配列」または発現生成物（例えば、ＲＮＡ、ポリペプチド、タンパク質、もしくは酵素）を「コードする」配列は、発現された場合にその生成物の生成をもたらすヌクレオチド配列である。
【００２５】
「タンパク質」、「ペプチド」または「ポリペプチド」は、２つ以上のアミノ酸の連続列を含む。本発明の好ましいペプチドは、配列番号２および／または配列番号４に示されるペプチド、ならびにその改変体およびフラグメントを包含する。
【００２６】
「タンパク質配列」、「ペプチド配列」、または「ポリペプチド配列」または「アミノ酸配列」は、タンパク質、ペプチド、またはポリペプチド中にある一連の２つ以上のアミノ酸の配列を指す。
【００２７】
本明細書において配列（核酸配列、アミノ酸配列など）の同一性とは、２以上の対比可能な配列の、互いに対する同一の配列（個々の核酸、アミノ酸など）の程度をいう。従って、ある２つの遺伝子の相同性が高いほど、それらの配列の同一性または類似性は高い。２種類の遺伝子が高い同一性を有するか否かは、配列の直接の比較、または核酸の場合ストリンジェントな条件下でのハイブリダイゼーション法によって調べられ得る。２つの遺伝子配列を直接比較する場合、その遺伝子配列間でＤＮＡ配列が、代表的には少なくとも５０％同一である場合、好ましくは少なくとも７０％同一である場合、より好ましくは少なくとも８０％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％同一である場合、それらの遺伝子は相同性を有する。あるいは、比較するアミノ酸配列間で、代表的には少なくとも５０％同一である場合、好ましくは少なくとも７０％同一である場合、より好ましくは少なくとも８０％、９０％、９５％、９６％、９７％、９８％または９９％同一である場合、それらのアミノ酸配列は相同性を有する。本明細書において、遺伝子（例えば、核酸配列、アミノ酸配列など）の「類似性」とは、上記相同性において、保存的置換をポジティブ（同一）とみなした場合の、２以上の遺伝子配列の、互いに対する同一性の程度をいう。従って、保存的置換がある場合は、その保存的置換の存在に応じて相同性と類似性とは異なる。また、保存的置換がない場合は、相同性と類似性とは同じ数値を示す。
【００２８】
本明細書では、アミノ酸配列および塩基配列の類似性、同一性および相同性の比較は、配列分析用ツールであるＢＬＡＳＴを用い、デフォルトパラメータを用いて算出される。あるいは、アミノ酸配列および塩基配列の同一性は、比較する２つの配列を整列させ、配列全体に対する同一残基の割合を計算することによっても算出することができる。
【００２９】
本明細書において「フラグメント」とは、全長のポリペプチドまたはポリヌクレオチド（長さがｎ）に対して、１〜ｎ−１までの配列長さを有するポリペプチドまたはポリヌクレオチドをいう。フラグメントの長さは、その目的に応じて、適宜変更することができ、例えば、その長さの下限としては、ポリペプチドの場合、３、４、５、６、７、８、９、１０、１５，２０、２５、３０、４０、５０およびそれ以上のアミノ酸が挙げられ、ここの具体的に列挙していない整数で表される長さ（例えば、１１など）もまた、下限として適切であり得る。また、ポリヌクレオチドの場合、５、６、７、８、９、１０、１５，２０、２５、３０、４０、５０、７５、１００およびそれ以上のヌクレオチドが挙げられ、ここの具体的に列挙していない整数で表される長さ（例えば、１１など）もまた、下限として適切であり得る。本明細書において、ポリペプチドおよびポリヌクレオチドの長さは、上述のようにそれぞれアミノ酸または核酸の個数で表すことができるが、上述の個数は絶対的なものではなく、同じ機能を有する限り、上限または下限としての上述の個数は、その個数の上下数個（または例えば上下１０％）のものも含むことが意図される。そのような意図を表現するために、本明細書では、個数の前に「約」を付けて表現することがある。しかし、本明細書では、「約」のあるなしはその数値の解釈に影響を与えないことが理解されるべきである。本明細書において有用なフラグメントの長さは、そのフラグメントの基準となる全長タンパク質の機能のうち少なくとも１つの機能が保持されているかどうかによって決定され得る。
【００３０】
本明細書において「単離された」生物学的因子（例えば、核酸またはタンパク質など）とは、その生物学的因子が天然に存在する生物体の細胞内の他の生物学的因子（例えば、核酸である場合、核酸以外の因子および目的とする核酸以外の核酸配列を含む核酸；タンパク質である場合、タンパク質以外の因子および目的とするタンパク質以外のアミノ酸配列を含むタンパク質など）から実質的に分離または精製されたものをいう。「単離された」核酸およびタンパク質には、標準的な精製方法によって精製された核酸およびタンパク質が含まれる。したがって、単離された核酸およびタンパク質は、化学的に合成した核酸およびタンパク質を包含する。
【００３１】
本明細書において「精製された」生物学的因子（例えば、核酸またはタンパク質など）とは、その生物学的因子に天然に随伴する因子の少なくとも一部が除去されたものをいう。したがって、通常、精製された生物学的因子におけるその生物学的因子の純度は、その生物学的因子が通常存在する状態よりも高い（すなわち濃縮されている）。
【００３２】
本明細書中で使用される用語「精製された」および「単離された」は、好ましくは少なくとも７５重量％、より好ましくは少なくとも８５重量％、よりさらに好ましくは少なくとも９５重量％、そして最も好ましくは少なくとも９８重量％の、同型の生物学的因子が存在することを意味する。
【００３３】
本明細書において、「ストリンジェントな条件でハイブリダイズするポリヌクレオチド」とは、当該分野で慣用される周知の条件をいう。本発明のポリヌクレオチド中から選択されたポリヌクレオチドをプローブとして、コロニー・ハイブリダイゼーション法、プラーク・ハイブリダイゼーション法あるいはサザンブロットハイブリダイゼーション法等を用いることにより、そのようなポリヌクレオチドを得ることができる。具体的には、コロニーあるいはプラーク由来のＤＮＡを固定化したフィルターを用いて、０．７〜１．０ＭのＮａＣｌ存在下、６５℃でハイブリダイゼーションを行った後、０．１〜２倍濃度のＳＳＣ（ｓａｌｉｎｅ−ｓｏｄｉｕｍ  ｃｉｔｒａｔｅ）溶液（１倍濃度のＳＳＣ溶液の組成は、１５０ｍＭ  塩化ナトリウム、１５ｍＭ  クエン酸ナトリウムである）を用い、６５℃条件下でフィルターを洗浄することにより同定できるポリヌクレオチドを意味する。ハイブリダイゼーションは、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ  ２ｎｄ  ｅｄ．，Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ  １〜３８、ＤＮＡ  Ｃｌｏｎｉｎｇ  １：Ｃｏｒｅ  Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，Ａ  Ｐｒａｃｔｉｃａｌ  Ａｐｐｒｏａｃｈ，Ｓｅｃｏｎｄ  Ｅｄｉｔｉｏｎ，Ｏｘｆｏｒｄ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  Ｐｒｅｓｓ（１９９５）等の実験書に記載されている方法に準じて行うことができる。ここで、ストリンジェントな条件下でハイブリダイズする配列からは、好ましくは、Ａ配列のみまたはＴ配列のみを含む配列が除外される。「ハイブリダイズ可能なポリヌクレオチド」とは、上記ハイブリダイズ条件下で別のポリヌクレオチドにハイブリダイズすることができるポリヌクレオチドをいう。ハイブリダイズ可能なポリヌクレオチドとして具体的には、本発明で具体的に示されるアミノ酸配列を有するポリペプチドをコードするＤＮＡの塩基配列と少なくとも６０％以上の相同性を有するポリヌクレオチド、好ましくは８０％以上の相同性を有するポリヌクレオチド、さらに好ましくは９５％以上の相同性を有するポリヌクレオチドを挙げることができる。
【００３４】
本明細書において「高度にストリンジェントな条件」は、核酸配列において高度の相補性を有するＤＮＡ鎖のハイブリダイゼーションを可能にし、そして多数のミスマッチを有意に有するＤＮＡのハイブリダイゼーションを除外するように設計された条件をいう。ハイブリダイゼーションのストリンジェンシーは、主に、温度、イオン強度、およびホルムアミドのような変性剤の条件によって決定される。このようなハイブリダイゼーションおよび洗浄に関する「高度にストリンジェントな条件」の例は、限定されることはないが、代表的には、（１）０．００１５Ｍ塩化ナトリウム、０．００１５Ｍ  クエン酸ナトリウム、６５〜６８℃、（２）０．０１５Ｍ  塩化ナトリウム、０．００１５Ｍクエン酸ナトリウム、および５０％  ホルムアミド、４２℃、（３）０．３Ｍ塩化ナトリウム、０．０３Ｍ  クエン酸ナトリウム、０．１％  ＳＤＳ、６５〜６８℃、（４）０．１５Ｍ塩化ナトリウム、０．０１５Ｍ  クエン酸ナトリウム、０．１％  ＳＤＳ、６５〜６８℃、あるいは、（５）０．０３Ｍ塩化ナトリウム、０．００３Ｍ  クエン酸ナトリウム、０．１％  ＳＤＳ、６５〜６８℃である。このような高度にストリンジェントな条件については、Ｓａｍｂｒｏｏｋｅｔ  ａｌ．，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ、第２版、Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ（ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ，Ｎ，Ｙ．１９８９）；およびＡｎｄｅｒｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．、Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ：ａ  Ｐｒａｃｔｉｃａｌ  ａｐｐｒｏａｃｈ、ＩＶ、ＩＲＬ  Ｐｒｅｓｓ  Ｌｉｍｉｔｅｄ（Ｏｘｆｏｒｄ，Ｅｎｇｌａｎｄ）．Ｌｉｍｉｔｅｄ，Ｏｘｆｏｒｄ，Ｅｎｇｌａｎｄを参照のこと。必要により、よりストリンジェントな条件（例えば、より高い温度、より低いイオン強度、より高いホルムアミド、または他の変性剤）を、使用してもよい。他の薬剤が、非特異的なハイブリダイゼーションおよび／またはバックグラウンドのハイブリダイゼーションを減少する目的で、ハイブリダイゼーション緩衝液および洗浄緩衝液に含まれ得る。そのような他の薬剤の例としては、０．１％ウシ血清アルブミン、０．１％ポリビニルピロリドン、０．１％ピロリン酸ナトリウム、０．１％ドデシル硫酸ナトリウム（ＮａＤｏｄＳＯ４またはＳＤＳ）、Ｆｉｃｏｌｌ、Ｄｅｎｈａｒｄｔ溶液、超音波処理されたサケ精子ＤＮＡ（または別の非相補的ＤＮＡ）および硫酸デキストランであるが、他の適切な薬剤もまた、使用され得る。これらの添加物の濃度および型は、ハイブリダイゼーション条件のストリンジェンシーに実質的に影響を与えることなく変更され得る。ハイブリダイゼーション実験は、通常、ｐＨ６．８〜７．４で実施されるが；代表的なイオン強度条件において、ハイブリダイゼーションの速度は、ほとんどｐＨ独立である。Ａｎｄｅｒｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．、ＮｕｃｌｅｉｃＡｃｉｄ  Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ：ａ  Ｐｒａｃｔｉｃａｌ  Ａｐｐｒｏａｃｈ、第４章、ＩＲＬ  Ｐｒｅｓｓ  Ｌｉｍｉｔｅｄ（Ｏｘｆｏｒｄ，Ｅｎｇｌａｎｄ）を参照のこと。
【００３５】
ＤＮＡ二重鎖の安定性に影響を与える因子としては、塩基の組成、長さおよび塩基対不一致の程度が挙げられる。ハイブリダイゼーション条件は、当業者によって調整され得、これらの変数を適用させ、そして異なる配列関連性のＤＮＡがハイブリッドを形成するのを可能にする。完全に一致したＤＮＡ二重鎖の融解温度は、以下の式によって概算され得る。
Ｔｍ（℃）＝８１．５＋１６．６（ｌｏｇ［Ｎａ＋］）＋０．４１（％Ｇ＋Ｃ）−６００／Ｎ−０．７２（％ホルムアミド）
ここで、Ｎは、形成される二重鎖の長さであり、［Ｎａ＋］は、ハイブリダイゼーション溶液または洗浄溶液中のナトリウムイオンのモル濃度であり、％Ｇ＋Ｃは、ハイブリッド中の（グアニン＋シトシン）塩基のパーセンテージである。不完全に一致したハイブリッドに関して、融解温度は、各１％不一致（ミスマッチ）に対して約１℃ずつ減少する。
【００３６】
本明細書において「中程度にストリンジェントな条件」とは、「高度にストリンジェントな条件」下で生じ得るよりも高い程度の塩基対不一致を有するＤＮＡ二重鎖が、形成し得る条件をいう。代表的な「中程度にストリンジェントな条件」の例は、０．０１５Ｍ塩化ナトリウム、０．００１５Ｍ  クエン酸ナトリウム、５０〜６５℃、または０．０１５Ｍ  塩化ナトリウム、０．００１５Ｍ  クエン酸ナトリウム、および２０％ホルムアミド、３７〜５０℃である。例として、０．０１５Ｍナトリウムイオン中、５０℃の「中程度にストリンジェントな」条件は、約２１％の不一致を許容する。
【００３７】
約２０ヌクレオチドまでのオリゴヌクレオチドプローブについて、１Ｍ  ＮａＣｌにおける融解温度の適切な概算は、Ｔｍ＝（１つのＡ−Ｔ塩基対につき２℃）＋（１つのＧ−Ｃ塩基対につき４℃）によって提供される。なお、６×クエン酸ナトリウム塩（ＳＳＣ）におけるナトリウムイオン濃度は、１Ｍである（Ｓｕｇｇｓら、Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔａｌ  Ｂｉｏｌｏｇｙ  Ｕｓｉｎｇ  Ｐｕｒｉｆｉｅｄ  Ｇｅｎｅｓ、６８３頁、ＢｒｏｗｎおよびＦｏｘ（編）（１９８１）を参照のこと）。
【００３８】
配列番号２および／または配列番号４のアミノ酸配列を有するポリペプチドまたはその改変体もしくはフラグメントなどのタンパク質をコードする天然の核酸は、例えば、配列番号１および／または配列番号３の核酸配列の一部またはその改変体を含むＰＣＲプライマーおよびハイブリダイゼーションプローブを有するｃＤＮＡライブラリーから容易に分離される。配列番号２および／または配列番号４のアミノ酸配列を有するポリペプチドまたはその改変体もしくはフラグメントなどをコードする核酸は、本質的に１％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）；５００ｍＭ  リン酸ナトリウム（ＮａＰＯ４）；１ｍＭ  ＥＤＴＡ；４２℃の温度で  ７％  ＳＤＳ  を含むハイブリダイゼーション緩衝液、および本質的に２×ＳＳＣ（６００ｍＭ  ＮａＣｌ；６０ｍＭ  クエン酸ナトリウム）；５０℃の０．１％  ＳＤＳを含む洗浄緩衝液によって定義される低ストリンジェント条件下、さらに好ましくは本質的に５０℃の温度での１％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）；５００ｍＭ  リン酸ナトリウム（ＮａＰＯ４）；１５％ホルムアミド；１ｍＭ  ＥＤＴＡ；  ７％  ＳＤＳ  を含むハイブリダイゼーション緩衝液、および本質的に５０℃の１×ＳＳＣ（３００ｍＭ  ＮａＣｌ；３０ｍＭ  クエン酸ナトリウム）；１％  ＳＤＳを含む洗浄緩衝液によって定義される低ストリンジェント条件下、最も好ましくは本質的に５０℃の温度での１％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）；２００ｍＭ  リン酸ナトリウム（ＮａＰＯ４）；１５％ホルムアミド；１ｍＭ  ＥＤＴＡ；７％ＳＤＳを含むハイブリダイゼーション緩衝液、および本質的に６５℃の０．５×ＳＳＣ（１５０ｍＭ  ＮａＣｌ；１５ｍＭ  クエン酸ナトリウム）；０．１％  ＳＤＳを含む洗浄緩衝液によって定義される低ストリンジェント条件下に配列番号１および／または配列番号３に示す配列またはその一部とハイブリダイズし得る。
【００３９】
本明細書において配列（アミノ酸または核酸など）の「同一性」、「相同性」および「類似性」のパーセンテージは、比較ウィンドウで最適な状態に整列された配列２つを比較することによって求められる。ここで、ポリヌクレオチド配列またはポリペプチド配列の比較ウィンドウ内の部分には、２つの配列の最適なアライメントについての基準配列（他の配列に付加が含まれていればギャップが生じることもあるが、ここでの基準配列は付加も欠失もないものとする）と比較したときに、付加または欠失（すなわちギャップ）が含まれる場合がある。同一の核酸塩基またはアミノ酸残基がどちらの配列にも認められる位置の数を求めることによって、マッチ位置の数を求め、マッチ位置の数を比較ウィンドウ内の総位置数で割り、得られた結果に１００を掛けて同一性のパーセンテージを算出する。検索において使用される場合、相同性については、従来技術において周知のさまざまな配列比較アルゴリズムおよびプログラムの中から、適当なものを用いて評価する。このようなアルゴリズムおよびプログラムとしては、ＴＢＬＡＳＴＮ、ＢＬＡＳＴＰ、ＦＡＳＴＡ、ＴＦＡＳＴＡおよびＣＬＵＳＴＡＬＷ（Ｐｅａｒｓｏｎ  ａｎｄ  Ｌｉｐｍａｎ，１９８８，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ  ８５（８）：２４４４−２４４８、  Ａｌｔｓｃｈｕｌ  ｅｔ  ａｌ．，１９９０，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２１５（３）：４０３−４１０、Ｔｈｏｍｐｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．，１９９４，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．２２（２）：４６７３−４６８０、Ｈｉｇｇｉｎｓ  ｅｔ  ａｌ．，１９９６，Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ｅｎｚｙｍｏｌ．２６６：３８３−４０２、Ａｌｔｓｃｈｕｌ  ｅｔ  ａｌ．，１９９０，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２１５（３）：４０３−４１０、Ａｌｔｓｃｈｕｌ  ｅｔ  ａｌ．，１９９３，Ｎａｔｕｒｅ  Ｇｅｎｅｔｉｃｓ  ３：２６６−２７２）があげられるが、何らこれに限定されるものではない。特に好ましい実施形態では、従来技術において周知のＢａｓｉｃ  Ｌｏｃａｌ  Ａｌｉｇｎｍｅｎｔ  Ｓｅａｒｃｈ  Ｔｏｏｌ（ＢＬＡＳＴ）（たとえば、Ｋａｒｌｉｎ  ａｎｄ  Ａｌｔｓｃｈｕｌ，１９９０，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ  ８７：２２６７−２２６８、Ａｌｔｓｃｈｕｌ  ｅｔ  ａｌ．，１９９０，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２１５：４０３−４１０、Ａｌｔｓｃｈｕｌ  ｅｔ  ａｌ．，１９９３，Ｎａｔｕｒｅ  Ｇｅｎｅｔｉｃｓ  ３：２６６−２７２、Ａｌｔｓｃｈｕｌ  ｅｔ  ａｌ．，１９９７，Ｎｕｃ．Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．２５：３３８９−３４０２を参照のこと）を用いてタンパク質および核酸配列の相同性を評価する。特に、５つの専用ＢＬＡＳＴプログラムを用いて以下の作業を実施することによって比較または検索が達成され得る。
【００４０】
（１）  ＢＬＡＳＴＰおよびＢＬＡＳＴ３でアミノ酸のクエリー配列をタンパク質配列データベースと比較；
（２）  ＢＬＡＳＴＮでヌクレオチドのクエリー配列をヌクレオチド配列データベースと比較；
（３）  ＢＬＡＳＴＸでヌクレオチドのクエリー配列（両方の鎖）を６つの読み枠で変換した概念的翻訳産物をタンパク質配列データベースと比較；
（４）  ＴＢＬＡＳＴＮでタンパク質のクエリー配列を６つの読み枠（両方の鎖）すべてで変換したヌクレオチド配列データベースと比較；
（５）  ＴＢＬＡＳＴＸでヌクレオチドのクエリ配列を６つの読み枠で変換したものを、６つの読み枠で変換したヌクレオチド配列データベースと比較。
【００４１】
ＢＬＡＳＴプログラムは、アミノ酸のクエリ配列または核酸のクエリ配列と、好ましくはタンパク質配列データベースまたは核酸配列データベースから得られた被検配列との間で、「ハイスコアセグメント対」と呼ばれる類似のセグメントを特定することによって相同配列を同定するものである。ハイスコアセグメント対は、多くのものが従来技術において周知のスコアリングマトリックスによって同定（すなわち整列化）されると好ましい。好ましくは、スコアリングマトリックスとしてＢＬＯＳＵＭ６２マトリックス（Ｇｏｎｎｅｔ  ｅｔ  ａｌ．，１９９２，Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２５６：１４４３−１４４５、Ｈｅｎｉｋｏｆｆ  ａｎｄ  Ｈｅｎｉｋｏｆｆ，１９９３，Ｐｒｏｔｅｉｎｓ  １７：４９−６１）を使用する。このマトリックスほど好ましいものではないが、ＰＡＭまたはＰＡＭ２５０マトリックスも使用できる（たとえば、Ｓｃｈｗａｒｔｚ  ａｎｄ  Ｄａｙｈｏｆｆ，ｅｄｓ．，１９７８，Ｍａｔｒｉｃｅｓ  ｆｏｒ  Ｄｅｔｅｃｔｉｎｇ  Ｄｉｓｔａｎｃｅ  Ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐｓ：  Ａｔｌａｓ  ｏｆ  Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｓｅｑｕｅｎｃｅ  ａｎｄ  Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ，Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ：  Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｆｏｕｎｄａｔｉｏｎを参照のこと）。ＢＬＡＳＴプログラムは、同定されたすべてのハイスコアセグメント対の統計的な有意性を評価し、好ましくはユーザー固有の相同率などのユーザーが独自に定める有意性の閾値レベルを満たすセグメントを選択する。統計的な有意性を求めるＫａｒｌｉｎの式を用いてハイスコアセグメント対の統計的な有意性を評価すると好ましい（Ｋａｒｌｉｎ  ａｎｄ  Ａｌｔｓｃｈｕｌ，１９９０，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ  ８７：２２６７−２２６８参照のこと）。
【００４２】
本明細書における「プライマー」とは、高分子合成酵素反応において、合成される高分子化合物の反応の開始に必要な物質をいう。核酸分子の合成反応では、合成されるべき高分子化合物の一部の配列に相補的な核酸分子（例えば、ＤＮＡまたはＲＮＡなど）が用いられ得る。
【００４３】
通常プライマーとして用いられる核酸分子としては、目的とする遺伝子の核酸配列と相補的な、少なくとも８の連続するヌクレオチド長の核酸配列を有するものが挙げられる。そのような核酸配列は、好ましくは、少なくとも９の連続するヌクレオチド長の、より好ましく１０の連続するヌクレオチド長の、さらに好ましくは１１の連続するヌクレオチド長の、１２の連続するヌクレオチド長の、１３の連続するヌクレオチド長の、１４の連続するヌクレオチド長の、１５の連続するヌクレオチド長の、１６の連続するヌクレオチド長の、１７の連続するヌクレオチド長の、１８の連続するヌクレオチド長の、１９の連続するヌクレオチド長の、２０の連続するヌクレオチド長の、２５の連続するヌクレオチド長の、３０の連続するヌクレオチド長の、４０の連続するヌクレオチド長の、５０の連続するヌクレオチド長の、核酸配列であり得る。プライマーとして使用される核酸配列には、上述の配列に対して、少なくとも７０％相同な、より好ましくは、少なくとも８０％相同な、さらに好ましくは、９０％相同な、最も好ましくは９５％相同な核酸配列が含まれる。プライマーとして適切な配列は、合成（増幅）が意図される配列の性質によって変動し得るが、当業者は、意図される配列に応じて適宜プライマーを設計することができる。そのようなプライマーの設計は当該分野において周知であり、手動でおこなってもよくコンピュータプログラム（例えば、ＬＡＳＥＲＧＥＮＥ，ＰｒｉｍｅｒＳｅｌｅｃｔ，ＤＮＡＳｔａｒ）を用いて行ってもよい。
【００４４】
本明細書において、ポリペプチドまたはポリヌクレオチドの「置換、付加または欠失」とは、もとのポリペプチドまたはポリヌクレオチドに対して、それぞれアミノ酸もしくはその代替物、またはヌクレオチドもしくはその代替物が、置き換わること、付け加わることまたは取り除かれることをいう。このような置換、付加または欠失の技術は、当該分野において周知であり、そのような技術の例としては、部位特異的変異誘発技術などが挙げられる。置換、付加または欠失は、１つ以上であれば任意の数でよく、そのような数は、その置換、付加または欠失を有する改変体において目的とする機能が保持される限り、多くすることができる。例えば、そのような数は、１個、２個、３個、４個、５個、６個、７個、８個、９個または数個であり得、そして好ましくは、全体の長さの２０％以内、１０％以内、または１００個以下、５０個以下、２５個以下などであり得る。
【００４５】
本明細書において用いられる分子生物学的手法、生化学的手法、微生物学的手法は、当該分野において周知であり慣用されるものであり、例えば、Ｓａｍｂｒｏｏｋ  Ｊ．ｅｔ  ａｌ．（１９８９）．Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒおよびその３ｒｄ  Ｅｄ．（２００１）；Ａｕｓｕｂｅｌ，Ｆ．Ｍ．（１９８７）．Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｇｒｅｅｎｅ  Ｐｕｂ．Ａｓｓｏｃｉａｔｅｓ  ａｎｄ  Ｗｉｌｅｙ−Ｉｎｔｅｒｓｃｉｅｎｃｅ；Ａｕｓｕｂｅｌ，Ｆ．Ｍ．（１９８９）．Ｓｈｏｒｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ：Ａ  Ｃｏｍｐｅｎｄｉｕｍ  ｏｆ  Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｆｒｏｍ  Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｇｒｅｅｎｅ  Ｐｕｂ．Ａｓｓｏｃｉａｔ  ＥＳ  ａｎｄ  Ｗｉｌｅｙ−Ｉｎｔｅｒｓｃｉｅｎｃｅ；Ｉｎｎｉｓ，Ｍ．Ａ．（１９９０）．ＰＣＲ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ：Ａ  Ｇｕｉｄｅ  ｔｏ  Ｍｅｔｈｏｄｓ  ａｎｄ  Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ，Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ；Ａｕｓｕｂｅｌ，Ｆ．Ｍ．（１９９２）．Ｓｈｏｒｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ：Ａ  Ｃｏｍｐｅｎｄｉｕｍ  ｏｆ  Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｆｒｏｍ  Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｇｒｅｅｎｅ  Ｐｕｂ．Ａｓｓｏｃｉａｔｅｓ；Ａｕｓｕｂｅｌ，Ｆ．Ｍ．（１９９５）．Ｓｈｏｒｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ：Ａ  Ｃｏｍｐｅｎｄｉｕｍ  ｏｆ  Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｆｒｏｍ  Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｇｒｅｅｎｅ  Ｐｕｂ．Ａｓｓｏｃｉａｔｅｓ；Ｉｎｎｉｓ，Ｍ．Ａ．ｅｔ  ａｌ．（１９９５）．ＰＣＲ  Ｓｔｒａｔｅｇｉｅｓ，Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ；Ａｕｓｕｂｅｌ，Ｆ．Ｍ．（１９９９）．Ｓｈｏｒｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ：Ａ  Ｃｏｍｐｅｎｄｉｕｍ  ｏｆ  Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｆｒｏｍ  Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｗｉｌｅｙ，ａｎｄ  ａｎｎｕａｌ  ｕｐｄａｔｅｓ；Ｓｎｉｎｓｋｙ，Ｊ．Ｊ．ｅｔ  ａｌ．（１９９９）．ＰＣＲ  Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ：Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｆｏｒ  Ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ  Ｇｅｎｏｍｉｃｓ，Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ、別冊実験医学「遺伝子導入＆発現解析実験法」羊土社、１９９７などに記載されており、これらは本明細書において関連する部分（全部であり得る）が参考として援用される。
【００４６】
人工的に合成した遺伝子を作製するためのＤＮＡ合成技術および核酸化学については、例えば、Ｇａｉｔ，Ｍ．Ｊ．（１９８５）．Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ  Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ：Ａ  Ｐｒａｃｔｉｃａｌ  Ａｐｐｒｏａｃｈ，ＩＲＬＰｒｅｓｓ；Ｇａｉｔ，Ｍ．Ｊ．（１９９０）．Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ  Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ：Ａ  Ｐｒａｃｔｉｃａｌ  Ａｐｐｒｏａｃｈ，ＩＲＬ  Ｐｒｅｓｓ；Ｅｃｋｓｔｅｉｎ，Ｆ．（１９９１）．Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｓ  ａｎｄ  Ａｎａｌｏｇｕｅｓ：Ａ  Ｐｒａｃｔｉｃａｌ  Ａｐｐｒｏａｃ，ＩＲＬ  Ｐｒｅｓｓ；Ａｄａｍｓ，Ｒ．Ｌ．ｅｔ  ａｌ．（１９９２）．Ｔｈｅ  Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ｏｆ  ｔｈｅ  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ，Ｃｈａｐｍａｎ＆Ｈａｌｌ；Ｓｈａｂａｒｏｖａ，Ｚ．ｅｔ  ａｌ．（１９９４）．Ａｄｖａｎｃｅｄ  Ｏｒｇａｎｉｃ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ｏｆ  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ，Ｗｅｉｎｈｅｉｍ；Ｂｌａｃｋｂｕｒｎ，Ｇ．Ｍ．ｅｔ  ａｌ．（１９９６）．Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  ｉｎ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ａｎｄ  Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｏｘｆｏｒｄ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ  Ｐｒｅｓｓ；Ｈｅｒｍａｎｓｏｎ，Ｇ．Ｔ．（Ｉ９９６）．Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ  Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ，Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓなどに記載されており、これらは本明細書において関連する部分が参考として援用される。
【００４７】
本明細書において核酸の存在を確認するには、放射能法、蛍光法、ノーザンブロット法、ドットブロット法、ＰＣＲ法などの分子生物学的測定方法を含む任意の適切な方法により評価され得る。
【００４８】
用語「発現する」および「発現」は、遺伝子、ＲＮＡ配列もしくはＤＮＡ配列中の情報が明らかになるのを可能にすることまたはそれを引き起こすこと（例えば、対応する遺伝子の転写および翻訳に関与する細胞機能を活性化することによって、タンパク質を生成すること）を意味する。ＤＮＡ配列は、細胞中でかまたは細胞によって、「発現生成物」（例えば、ＲＮＡ（例えば、ｍＲＮＡ）またはタンパク質）を形成するように発現される。その発現生成物自体はまた、その細胞によって「発現される」と言われ得る。
【００４９】
用語「形質転換」とは、核酸を細胞中に導入することを意味する。導入される遺伝子または配列は、「クローン」と呼ばれ得る。その導入されるＤＮＡまたはＲＮＡを受ける宿主細胞は、「形質転換」されており、これは、「形質転換体」または「クローン」である。宿主細胞に導入されるＤＮＡまたはＲＮＡは、任意の供給源由来であり得、宿主細胞と同じ属または種の細胞由来であっても、異なる属または種の細胞由来であってもよい。
【００５０】
用語「ベクター」は、宿主を形質転換し、必要に応じて導入された配列の発現および／または複製を促進するように、ＤＮＡ配列またはＲＮＡ配列が宿主細胞中に導入され得る媒体（例えば、プラスミド）を包含する。
【００５１】
本発明において使用され得るベクターとしては、プラスミド、ウイルス、バクテリオファージ、組込み可能なＤＮＡフラグメント、および宿主ゲノム中への核酸の導入を促進し得る他の媒体が挙げられる。プラスミドは、最も一般的に使用される形態のベクターであるが、同様の機能を提供しかつ当該分野で公知であるかまたは公知となる他のすべての形態のベクターが、本明細書中で野使用のために適切である。例えば、Ｐｏｕｗｅｌｓら、Ｃｌｏｎｉｎｇ  Ｖｅｃｔｏｒｓ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ，１９８５  ａｎｄ  Ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔｓ，Ｅｌｓｅｖｉｅｒ，Ｎ．Ｙ．およびＲｏｄｒｉｇｕｅｚら、（編），Ｖｅｃｔｏｒｓ：Ａ  Ｓｕｒｖｅｙ  ｏｆ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ  Ｖｅｃｔｏｒｓ  ａｎｄ  Ｔｈｅｉｒ  Ｕｓｅｓ  １９８８，Ｂｕｔｔｅｒｓｗｏｒｔｈ，Ｂｏｓｔｏｎ，ＭＡを参照のこと。
【００５２】
用語「発現系」とは、適切な条件下で、そのベクターにより保有されて宿主細胞中に導入されるタンパク質または核酸を発現し得る、宿主細胞および適合性ベクターを意味する。一般的な発現系としては、Ｅ．ｃｏｌｉ宿主細胞およびプラスミドベクター、昆虫宿主細胞およびバキュロウイルスベクター、ならびに哺乳動物宿主細胞およびベクターが挙げられる。
【００５３】
本発明の配列番号２および／または配列番号４に記載のポリペプチドをコードする核酸の発現は、好ましくは真核生物細胞において従来の方法によって実行され得る。核酸を発現するために適切な宿主細胞としては、高等真核生物が挙げられ、動物細胞（非哺乳動物起源（例えば、昆虫細胞）および哺乳動物起源（例えば、ヒト、霊長類、および齧歯類）の両方の動物細胞）由来の樹立された組織培養細胞株を包含する。
【００５４】
高等真核生物組織培養細胞もまた、本発明の配列番号２および／または配列番号４に記載のポリペプチド（あるいは、その改変体）の組換え生成のために使用され得る。任意の高等真核生物組織培養細胞株（昆虫バキュロウイルス発現系が挙げられる）が使用され得るが、哺乳動物細胞が、好ましい。このような細胞の形質転換、トランスフェクションおよび増殖は、慣用的手順となっている。有用な細胞株の例としては、ＨｅＬａ細胞、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞株、Ｊ７７４細胞、Ｃａｃｏ２細胞、ラット乳児腎臓（ＢＲＫ）細胞株、昆虫細胞株、鳥類細胞株、およびサル（ＣＯＳ）細胞株が挙げられる。そのような細胞株のための発現ベクターは、通常は、複製起点、プロモーター、翻訳開始部位、ＲＮＡスプライス部位（ゲノムＤＮＡが使用される場合）、ポリアデニル化部位、および転写終結部位を含む。これらのベクターはまた、通常は、選択遺伝子または増幅遺伝子を含む。適切な発現ベクターは、例えば、アデノウイルス、ＳＶ４０、パルボウイルス、ワクシニアウイルス、またはサイトメガロウイルスのような供給源に由来するプロモーターを保有する、プラスミド、ウイルス、またはレトロウイルスであり得る。発現ベクターの例としては、ｐＣＲ（登録商標）３．１、ｐＣＤＮＡ１、ｐＣＤ（Ｏｋａｙａｍａら、（１９８５）Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ．５：１１３６）、ｐＭＣ１ｎｅｏ  Ｐｏｌｙ−Ａ（Ｔｈｏｍａｓら、（１９８７）Ｃｅｌｌ  ５１：５０３）、ｐＲＥＰ８、ｐＳＶＳＰＯＲＴおよびそれらの誘導体、ならびにバキュロウイルスベクター（例えば、ｐＡＣ３７３またはｐＡＣ６１０）が挙げられる。
【００５５】
本明細書において「作動可能に連結された（る）」とは、所望の配列の発現（作動）がある転写翻訳調節配列（例えば、プロモーター、エンハンサーなど）または翻訳調節配列の制御下に配置されることをいう。プロモーターが遺伝子に作動可能に連結されるためには、通常、その遺伝子のすぐ上流にプロモーターが配置されるが、必ずしも隣接して配置される必要はない。
【００５６】
本明細書において、核酸分子を細胞に導入する技術は、どのような技術でもよく、例えば、形質転換、形質導入、トランスフェクションなどが挙げられる。そのような核酸分子の導入技術は、当該分野において周知であり、かつ、慣用されるものであり、例えば、Ａｕｓｕｂｅｌ  Ｆ．Ａ．ら編（１９８８）、Ｃｕｒｒｅｎｔ  Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｂｉｏｌｏｇｙ、Ｗｉｌｅｙ、Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ、ＮＹ；Ｓａｍｂｒｏｏｋ  Ｊら（１９８７）Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ，２ｎｄ  Ｅｄ．およびその第三版，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ，ＮＹ、別冊実験医学「遺伝子導入＆発現解析実験法」羊土社、１９９７などに記載される。遺伝子の導入は、ノーザンブロット、ウェスタンブロット分析のような本明細書に記載される方法または他の周知慣用技術を用いて確認することができる。
【００５７】
また、ベクターの導入方法としては、細胞にＤＮＡを導入する上述のような方法であればいずれも用いることができ、例えば、トランスフェクション、形質導入、形質転換など（例えば、リン酸カルシウム法、リポソーム法、ＤＥＡＥデキストラン法、エレクトロポレーション法、パーティクルガン（遺伝子銃）を用いる方法など）が挙げられる。
【００５８】
（イサダより抽出した膜タンパク質）
本発明においては、イサダより抽出した膜タンパク質（例えば、イサダより抽出した膜タンパク質を含む粗精製物）を、リポキシゲナーゼの供給源、および／または、リポキシゲナーゼを含む組成物として利用することができる。そのような組成物は、基質をリポキシゲナーゼ酵素反応に供するために使用することが可能である。イサダより膜タンパク質を抽出する方法としては、種々の周知の方法を利用することができる。例えば、イサダ（例えば、凍結保存したイサダであっても、冷蔵保存したイサダであってもよい）を緩衝液中で破砕し、遠心分離によって沈殿する膜タンパク質画分を緩衝液に再懸濁し、再懸濁液を再度遠心分離することによって、イサダ由来の膜タンパク質を含む粗精製物を調製することが可能である。
上記の遠心分離を用いる調製法以外にも、フィルター濾過、界面活性剤による沈殿、エタノール等の溶剤による沈殿、並びにそれらの組合せもまた、イサダより膜タンパク質を抽出するために利用可能である。この方法は、イサダの膜タンパク質の調製のみならず、軟甲網（Ｍａｌａｃｏｓｔｒａｃａ）に属する生物の膜タンパク質、オキアミ目（Ｅｕｐｈａｕｓｉａｃｅａ）に属する生物の膜タンパク質、または十脚目（Ｄｅｃａｐｏｄａ）に属する生物の膜タンパク質の調製にも利用可能である。本明細書において使用する軟甲網（Ｍａｌａｃｏｓｔｒａｃａ）に属する生物としては、例えば、オキアミ目（Ｅｕｐｈａｕｓｉａｃｅａ）に属する生物および十脚目（Ｄｅｃａｐｏｄａ）に属する生物が挙げられる。オキアミ目（Ｅｕｐｈａｕｓｉａｃｅａ）に属する生物としては、例えば、ツキナシオキアミ属（Ｅｕｐｈａｕｓｉａ）に属する生物およびＭｅｇａｎｙｃｔｉｐｈａｎｅｓに属する生物、例えば、イサダ（ツノナシオキアミ）（Ｅｕｐｈａｕｓｉａ  ｐａｃｉｆｉｃａ  Ｐａｃｉｆｉｃ  ｋｒｉｌｌ）、およびナンキョクオキアミ（Ｅｕｐｈａｕｓｉａ  ｓｕｐｅｒｂａ）、キタオキアミ（Ｍｅｇａｎｙｃｔｉｐｈａｎｅｓ  ｎｏｒｖｅｇｉｃａ）が挙げられるがこれらに限定されない。十脚目（Ｄｅｃａｐｏｄａ）に属する生物としては、例えば、アキアミ属（Ａｃｅｔｅｓ）に属する生物、クルマエビ属（Ｍａｒｓｕｐｅｎａｅｕｓ）に属する生物、ケガニ属（Ｅｒｉｍａｃｒｕｓ）に属する生物、および、タラバガニ属（Ｐａｒａｌｉｔｈｏｄｅｓ）に属する生物、例えば、アキアミ（Ａｃｅｔｅｓ  ｊａｐｏｎｉｃｕｓ）、クルマエビ（Ｍａｒｓｕｐｅｎａｅｕｓ  ｊａｐｏｎｉｃｕｓ）、毛ガニ（Ｅｒｉｍａｃｒｕｓ  ｉｓｅｎｂｅｃｋｉｉ）、および、タラバガニ（Ｐａｒａｌｉｔｈｏｄｅｓ  ｃａｍｔｓｃｈａｔｉｃｕｓ）が挙げられるがこれらに限定されない。
（本発明のリポキシゲナーゼを用いる酵素反応）
本発明のリポキシゲナーゼの反応としては、生理条件が挙げられるがこれに限定されない。本発明のリポキシゲナーゼの基質としては、不飽和脂肪酸、特に、高度不飽和脂肪酸が利用可能である。高度不飽和脂肪酸は遊離型脂肪酸であってもよい。不飽和脂肪酸誘導体、例えば、高度不飽和脂肪酸誘導体もまた、基質として利用可能である。高度不飽和脂肪酸の誘導体としては、例えば、高度不飽和脂肪酸のエチルエステル、高度不飽和脂肪酸を含むトリグリセリド、高度不飽和脂肪酸を含むジグリセリド、高度不飽和脂肪酸を含むモノグリセリド、高度不飽和脂肪酸を含むリン脂質、高度不飽和脂肪酸を含むリゾリン脂質、高度不飽和脂肪酸を含むスフィンゴ脂質、および、高度不飽和脂肪酸を含む糖脂質、ならびに、高度不飽和脂肪酸のアミド型誘導体（例えば、高度不飽和脂肪酸のエタノールアミドのような脂肪酸アミド）が挙げられるがこれらに限定されない。高度不飽和脂肪酸の誘導体はまた、高度不飽和脂肪酸のエステルを包含する。不飽和脂肪酸エステル（例えば、不飽和脂肪酸エチルエステル）、特に、高度不飽和脂肪酸エステル（例えば、高度不飽和脂肪酸エチルエステル）もまた、酵素反応の基質として利用可能である。高度不飽和脂肪酸としては、例えば、ドコサヘキサエン酸（Ｃ２２：６、ＤＨＡ）、エイコサペンタエン酸（Ｃ２０：５、ＥＰＡ）、アラキドン酸（Ｃ２０：４、ＡＡ）、ドコサペンタエン酸（Ｃ２２：５、ＤＰＡ）、ステアリドン酸（Ｃ１８：４）、リノレン酸（Ｃ１８：３）、リノール酸（Ｃ１８：２）、テトラコサヘキサエン酸（Ｃ２４：６）、エイコサテトラエン酸（Ｃ２０：４、ＥＴＡ）、および、エイコサトリエン酸（Ｃ２０：３）が挙げられるがこれらに限定されない。
また、酵素反応を行う場合には、精製タンパク質を用いても、膜タンパク質を含む粗精製物（例えば、イサダ膜タンパク質を含む組成物）を用いても、また、組換え発現したタンパク質を用いてもよい。
【００５９】
本発明のリポキシゲナーゼは、８−リポキシゲナーゼであることから、アラキドン酸からの８−ヒドロキシエイコサテトラエン酸の高効率生成、エイコサペンタエン酸からの８−ヒドロキシエイコサペンタエン酸の高効率生成、および、ドコサヘキサエン酸からの１０−ヒドロキシドコサヘキサエン酸の高効率生成を可能とする。
【００６０】
本明細書において使用する軟甲網（Ｍａｌａｃｏｓｔｒａｃａ）に属する生物としては、例えば、オキアミ目（Ｅｕｐｈａｕｓｉａｃｅａ）に属する生物および十脚目（Ｄｅｃａｐｏｄａ）に属する生物が挙げられる。オキアミ目（Ｅｕｐｈａｕｓｉａｃｅａ）に属する生物としては、例えば、ツキナシオキアミ属（Ｅｕｐｈａｕｓｉａ）に属する生物およびＭｅｇａｎｙｃｔｉｐｈａｎｅｓに属する生物、例えば、イサダ（ツノナシオキアミ）（Ｅｕｐｈａｕｓｉａ  ｐａｃｉｆｉｃａ  Ｐａｃｉｆｉｃ  ｋｒｉｌｌ）、およびナンキョクオキアミ（Ｅｕｐｈａｕｓｉａ  ｓｕｐｅｒｂａ）、キタオキアミ（Ｍｅｇａｎｙｃｔｉｐｈａｎｅｓ  ｎｏｒｖｅｇｉｃａ）が挙げられるがこれらに限定されない。十脚目（Ｄｅｃａｐｏｄａ）に属する生物としては、例えば、アキアミ属（Ａｃｅｔｅｓ）に属する生物、クルマエビ属（Ｍａｒｓｕｐｅｎａｅｕｓ）に属する生物、ケガニ属（Ｅｒｉｍａｃｒｕｓ）に属する生物、および、タラバガニ属（Ｐａｒａｌｉｔｈｏｄｅｓ）に属する生物、例えば、アキアミ（Ａｃｅｔｅｓ  ｊａｐｏｎｉｃｕｓ）、クルマエビ（Ｍａｒｓｕｐｅｎａｅｕｓ  ｊａｐｏｎｉｃｕｓ）、毛ガニ（Ｅｒｉｍａｃｒｕｓ  ｉｓｅｎｂｅｃｋｉｉ）、および、タラバガニ（Ｐａｒａｌｉｔｈｏｄｅｓ  ｃａｍｔｓｃｈａｔｉｃｕｓ）が挙げられるがこれらに限定されない。
【００６１】
以下、本発明のリポキシゲナーゼの単離、同定、および、その使用について、実施例等に基づき具体的に説明する。なお、本発明は、これらに限定するものではない。
【実施例】
【００６２】
（実施例１）
ツノナシオキアミ（学名：Ｅｕｐｈａｕｓｉａ  ｐａｃｉｆｉｃａ、英名：Ｐａｃｉｆｉｃ  ｋｒｉｌｌ）からリポキシゲナーゼ遺伝子を単離および同定
ツノナシオキアミ（Ｎ＝４）からＬｉｐｉｄ  ｔｉｓｓｕｅ  ＲＮＡ  ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ  ｋｉｔ  （キアゲン社製）を用いて、ｔｏｔａｌ  ＲＮＡを精製した。ツノナシオキアミＲＮＡの配列を次世代シークエンサーで解析するために、ツノナシオキアミＲＮＡを鋳型として、ＴｒｕＳｅｑ  ＲＮＡ  Ｌｉｂｒａｒｙ  Ｐｒｅｐ  Ｋｉｔ  ｖ２（イルミナ社製）を用いてライブラリーを作製した。イルミナ社製次世代シークエンサー（ＭｉＳｅｑ）を用いてライブラリーの塩基配列を解析し、約２０Ｇバイトの塩基配列データを得た。ツノナシオキアミの塩基配列断片データを塩基配列アッセンブルプログラム：Ｔｒｉｎｉｔｙ（ｈｔｔｐｓ：／／ｇｉｔｈｕｂ．ｃｏｍ／ｔｒｉｎｉｔｙｒｎａｓｅｑ／ｔｒｉｎｉｔｙｒｎａｓｅｑ／ｗｉｋｉ）にて解析し、４２，４３２のコンティグ配列を得た。得られたコンティグ配列のＮ５０サイズは１，４８７ｂであった。【００６３】
コンティグ配列の中から、ツノナシオキアミリポキシゲナーゼ遺伝子（Ｐａｃｉｆｉｃ  ｋｒｉｌｌ  Ｌｉｐｏｘｉｇｅｎａｓｅ，  略してＰＫ  ＬＯＸと呼ぶ）候補を絞り込むために、Ｂｌａｓｔ（ｈｔｔｐｓ：／／ｂｌａｓｔ．ｎｃｂｉ．ｎｌｍ．ｎｉｈ．ｇｏｖ／Ｂｌａｓｔ．ｃｇｉ）を用いて、ヒトおよびマウスのａｒａｃｈｉｄｏｎａｔｅ  ５−ｌｉｐｏｘｙｇｅｎａｓｅ，  ａｒａｃｈｉｄｏｎａｔｅ  １５−ｌｉｐｏｘｙｇｅｎａｓｅ，  ａｒａｃｈｉｄｏｎａｔｅ  １２−ｌｉｐｏｘｙｇｅｎａｓｅと類似のアミノ酸配列をコードするコンティグを検索した。検索の結果、３つのＰＫ  ＬＯＸ候補遺伝子を得、ＰＫ  ＬＯＸ１，２，３と名付けた。ＰＫ  ＬＯＸ１，２，３がコードするアミノ酸配列についてＧＥＮＥＴＹＸ−ＭＡＣ（ｈｔｔｐｓ：／／ｗｗｗ．ｇｅｎｅｔｙｘ．ｃｏ．ｊｐ／ｐｒｏｄｕｃｔｓ／ｇｅｎｅｔｙｘ＿ｍａｃ＿１９／ｎｅｗｓ．ｈｔｍｌ）を用いて解析し、ＰＫ  ＬＯＸ１が６９１アミノ酸配列からなるリポキシゲナーゼ様タンパク質をコードする遺伝子であることを明らかにした。ＰＫ  ＬＯＸ１の塩基配列を配列番号１（図１）に、アミノ酸配列を配列番号２（図２）に示す。【００６４】
次世代シークエンサーでの解析結果から得られたＰＫ  ＬＯＸ２およびＰＫ  ＬＯＸ３候補遺伝子のコードするアミノ酸配列が１００アミノ酸配列以下と短い断片であったことから、ＲＡＣＥ法による完全長ｃＤＮＡ配列の解析とサンガー法によるシークエンスによってＰＫ  ＬＯＸ２およびＰＫ  ＬＯＸ３  ＤＮＡ配列の解析を行った。再解析の結果得られたＰＫ  ＬＯＸ２遺伝子は６８６アミノ酸配列からなるリポキシゲナーゼ様タンパク質をコードする２０６１ｂｐのＤＮＡ配列でありＰＫ  ＬＯＸ２として同定した。ＰＫ  ＬＯＸ２の塩基配列を配列番号３（図３）に、アミノ酸配列を配列番号４（図４）に示す。ＰＫ  ＬＯＸ３においては、ＲＡＣＥおよびクローニング解析をおこなっても１００アミノ酸以上の長さのタンパク質をコードする塩基配列は確認できなかったため、擬遺伝子であると判断し、実施例２以降の実験からは除外した。【００６５】
（実施例２）
ＰＫ  ＬＯＸ１およびＰＫ  ＬＯＸ２の発現
制限酵素ＳｔｕＩ（タカラ社製）にてリニアライズしたｐＦａｓｔＢａｃ１プラスミド（インビトロジェン社製）に配列番号５のプライマー（（ＰＫＬＯＸ１  Ｆｏｒｗａｒｄ  Ｐｒｉｍｅｒ）（Ｈｉｓ＋ＰＫＬＯＸ１）５’−ＴＧＴＡＴＴＴＴＣＡＧＧＧＣＧＣＣＡＴＧＧＣＧＣＣＡＡＴＴＡＡＧＧＡＡＡＡＧＡＡ−３’）および配列番号６のプライマー（（ＰＫＬＯＸ１  Ｒｅｖｅｒｓｅ  Ｐｒｉｍｅｒ）５’−ａｇｔｇａｇｃｔｃｇｔｃｇａｃｇｔａｇｇｃｔａＴＡＣＡＣＴＧＡＴＧＧＣＡＴＴＴＧＧＡＡ−３’）を用いてＰＣＲ法にて増幅したＰＫ  ＬＯＸ１塩基配列および配列番号７のプライマー（（ＰＫＬＯＸ２  Ｆｏｒｗａｒｄ  Ｐｒｉｍｅｒ）（Ｈｉｓ＋ＰＫＬＯＸ２）５’−ＴＧＴＡＴＴＴＴＣＡＧＧＧＣＧＣＣＡＴＧＧＴＡＧＣＧＣＴＧＣＧＣＴＧＣＴＴＣＡＡ−３’）および配列番号８のプライマー（（ＰＫＬＯＸ２  Ｒｅｖｅｒｓｅ  Ｐｒｉｍｅｒ）５’−ａｇｔｇａｇｃｔｃｇｔｃｇａｃｇｔａｇｇｃｔａＡＡＴＡＣＴＴＡＴＴＧＣＡＴＴＴＧＧＡＡ−３’）を用いて増幅したＰＫ  ＬＯＸ２塩基配列の５’側に配列番号９に示す６ｘＨｉｓおよびＴＥＶ認識サイトをコードする塩基配列（ＡＴＧＴＣＧＴＡＣＴＡＣＣＡＴＣＡＣＣＡＴＣＡＣＣＡＴＣＡＣＧＡＴＴＡＣＧＡＴＡＴＣＣＣＡＡＣＧＡＣＣＧＡＡＡＡＣＣＴＧＴＡＴＴＴＴＣＡＧＧＧＣＧＣＣＡＴＧ）とともに、ＤＮＡ相同組み換え酵素のＮＥＢｉｌｄｅｒ（ＮＥＢ社製）を用いてクローニングした。ＰＫ  ＬＯＸ１および２をクローニングしたｐＦａｓｔＢａｃ１プラスミドを、ｂａｃｍｉｄとｈｅｌｐｅｒを有するＤＨ１０Ｂａｃ（インビトロジェン社製）に形質転換し、ＰＫ  ＬＯＸ１および２を発現するｂａｃｍｉｄを得た。ＥａｓｙＰｕｒｅ，ＮｕｃｌｅｏＢｏｎｄ  Ｘｔｒａ  Ｍｉｄｉ（ＭＡＣＨＥＲＥＹ−ＮＡＧＥＬ社）を用いて精製したｂａｃｍｉｄをＧｒａｃｅ’ｓ  ｉｎｃｅｃｔ  ｍｅｄｉｕｍ（インビトロジェン社製）を用いて培養したＳｆ９昆虫細胞（インビトロジェン社製）にＣｅｌｌｆｅｃｔｉｎＩＩ  Ｒｅａｇｅｎｔを用いて導入した。導入の一週間後にＢａｃｍｉｄ導入したＳｆ９昆虫細胞を回収した。この時の培地をＰ１ウィルスストックとした。回収したＳｆ９昆虫細胞をＲＩＰＡ  ｂｕｆｆｅｒを用いて氷上にて１時間溶解し、２０，０００ｇで１０分間遠心分離後の上澄みをタンパク質溶液とした。得られたタンパク質溶液をＳＤＳ  ｐａｇｅにて分離し、ＰＶＤＦ膜に転写の後に抗６ｘＨｉｓ抗体（アブカム社製）を用いて検出した。ＰＫ  ＬＯＸ１では７５〜８５ｋＤａの位置に、ＰＫ  ＬＯＸ２では７０〜７５ｋＤａの位置に、タンパク質のバンドが確認された（図５）。【００６６】
（実施例３）
ＰＫ  ＬＯＸ１の活性測定
ＰＫ  ＬＯＸ１を発現するｂａｃｍｉｄを遺伝子導入したＳｆ９昆虫細胞の培養上清を凍結保存した、Ｐ１バキュロウィルスストックをＳｆ９昆虫細胞の培地に添加し、１週間培養した。バキュロウィルス感染細胞の培地中に５０μＭのアラキドン酸、エイコサペンタエン酸もしくはドコサヘキサエン酸を添加し、４時間培養の後、細胞を遠心分離にて回収した。培地を除いたＳｆ９細胞にアセトニトリルを添加し、ソニケーションした後に、２０，０００ｇで１０分間遠心分離を行い、上清を抽出溶液とした。５μＬの抽出溶液を高速液体クロマトグラフ質量分析装置（ＬＣ−ＱＴＯＦＭＳ：アジレント社製）に供し、８−ＨＥＴＥ、８−ＨＥＰＥ、１０−ＨＤｏＨＥの解析を行なった。ＰＫ  ＬＯＸ１を発現したＳｆ９昆虫細胞にＥＰＡを添加し培養した細胞抽出液において、８−ＨＥＰＥの産生が観察された（図６Ａ）。ＰＫ  ＬＯＸ１発現Ｓｆ９細胞抽出液で検出されたｍ／ｚ＝３１７．２２のピークはただ一つであり、８−ＨＥＰＥ標準品とカラム保持時間が完全に一致していること（図６Ａ）、ＭＳ／ＭＳ解析で得られるイオンのパターンも８−ＨＥＰＥ標準物質と一致している（図６Ｂ）ことから、ＰＫ  ＬＯＸ１がＥＰＡの８位特異的酸化を触媒していることがわかる。コントロールに用いたＥＧＦＰ発現Ｓｆ９昆虫細胞の抽出液と比較して、ＰＫ  ＬＯＸ１を発現したＳｆ９昆虫細胞抽出液において、アラキドン酸添加時には８−ＨＥＴＥ、エイコサペンタエン酸添加時には８−ＨＥＰＥ、ドコサヘキサエン酸添加時には１０−ＨＤｏＨＥの含有量が高くなっており、ＰＫ  ＬＯＸ１発現によって８−ＨＥＴＥ，８−ＨＥＰＥおよび１０−ＨＤｏＨＥの産生が誘導されていることが確認された（図６Ｃ）。図６Ｃにおいて実証されたリポキシゲナーゼの比活性は、最大でおよそ２．５μｇ／ｍｇ（８−ＨＥＰＥ／ＰＫ  ＬＯＸ１発現Ｓｆ９細胞タンパク質）であり、従来技術において公知のリポキシゲナーゼの比活性よりも際立って強い活性であった。【００６７】
（実施例４）
ＰＫ  ＬＯＸ２の活性測定
実施例３のＰＫ  ＬＯＸ１と同様の方法で得たＰＫ  ＬＯＸ２を発現するバキュロウィルスのストックを作製し、Ｓｆ９細胞に感染させた。感染２日後のＳｆ９細胞をＰＢＳで洗浄、１５００ｇにて遠心分離後、ＰＢＳを取り除いて−８０℃で凍結した。氷上で解凍したＰＫ  ＬＯＸ２発現Ｓｆ９細胞ペレットに５０μＭの濃度でＥＰＡを添加した２００ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ７．４）を５０μＬ添加して、２７℃で４時間インキュベートした。インキュベート後の溶液に１５０μＬのアセトニトリル（１％ギ酸含有）を添加、ボルテックス後、２０，０００ｇ、４℃にて１０分間遠心分離を行い上清を回収し、５μＬをＬＣ−ＱＴＯＦＭＳに供し、８−ＨＥＰＥの解析を行なった。ＰＫ  ＬＯＸ２発現Ｓｆ９細胞において８−ＨＥＰＥ産生が確認された（図７）。図７において実証されたリポキシゲナーゼの比活性は、最大でおよそ３．２ｎｇ／ｍｇ（８−ＨＥＰＥ／ＰＫ  ＬＯＸ２発現Ｓｆ９細胞タンパク質）であり、従来技術において公知のリポキシゲナーゼの比活性よりも際立って強い活性であった。【００６８】
（実施例５）
イサダ膜タンパク質を利用した８−ＨＥＰＥ産生
−５０℃で凍結保存したイサダ２ｇを乳鉢と乳棒で潰し、１００ｍｇを２ｍＬチューブに分注しＮＰ−４０  Ｌｙｓｉｓ  Ｂｕｆｆｅｒ（１５０ｍＭ  ＮａＣｌ、１％  ＮＰ−４０、５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．０））を１ｍＬを加え、ダウンス型ホモジェナイザーを用いて破砕した。その後氷上に３０分間静置した後に、２０，０００ｇ、４℃にて１０分間遠心分離を行なった。沈殿した膜タンパク質画分を２００ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ  １ｍＬに再懸濁し、２００μＬ（２０ｍｇ）ずつ分注し、２０，０００ｇ、４℃にて１０分間遠心分離した。沈殿として得られたイサダ膜タンパク質を−８０℃に保存した。イサダ膜タンパク質２０ｍｇに１ｍＭのＥＰＡを含有する２００ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌを２５μＬ添加し、氷上で３時間反応させた。反応後の溶液に１％ギ酸を含有するアセトニトリルを７５μＬ添加し、ボルテックス後、２０，０００ｇ、４℃にて１０分間遠心分離した。遠心分離後の上清５μＬをＬＣ−ＱＴＯＦＭＳに供し、８−ＨＥＰＥの解析を実施した。イサダ膜タンパク質２０ｍｇを７３μｇのＥＰＡと氷上で３時間反応させることによって、４２ｎｇの８−ＨＥＰＥ産生が確認された。このようにして調製されたイサダ膜タンパク質は、リポキシゲナーゼ含有組成物として利用可能である。このリポキシゲナーゼの比活性は、最大でおよそ２．１ｎｇ／ｍｇ（８−ＨＥＰＥ／イサダ膜タンパク質）であり、従来技術において公知のリポキシゲナーゼの比活性よりも際立って強い活性であった。【００６９】
以上のように、本発明の好ましい実施形態を用いて本発明を例示してきたが、本発明は、この実施形態に限定して解釈されるべきものではない。本発明は、特許請求の範囲によってのみその範囲が解釈されるべきであることが理解される。当業者は、本発明の具体的な好ましい実施形態の記載から、本発明の記載および技術常識に基づいて等価な範囲を実施することができることが理解される。本明細書において引用した特許、特許出願および文献は、その内容自体が具体的に本明細書に記載されているのと同様にその内容が本明細書に対する参考として援用されるべきであることが理解される。
【産業上の利用可能性】
【００７０】
本発明によって提供されるリポキシゲナーゼによって、アラキドン酸からの８−ヒドロキシエイコサテトラエン酸の高効率生成、エイコサペンタエン酸からの８−ヒドロキシエイコサペンタエン酸の高効率生成、および、ドコサヘキサエン酸からの１０−ヒドロキシドコサヘキサエン酸の高効率生成が可能となった。
【配列表フリーテキスト】
【００７１】
配列番号１は、ツノナシオキアミから単離されたリポキシゲナーゼ遺伝子（ＰＫ  ＬＯＸ１）の核酸配列である。【００７２】
配列番号２は、ツノナシオキアミから単離されたリポキシゲナーゼ（ＰＫ  ＬＯＸ１）のアミノ酸配列である。【００７３】
配列番号３は、ツノナシオキアミから単離されたリポキシゲナーゼ遺伝子（ＰＫ  ＬＯＸ２）の核酸配列である。【００７４】
配列番号４は、ツノナシオキアミから単離されたリポキシゲナーゼ（ＰＫ  ＬＯＸ２）のアミノ酸配列である。【００７５】
配列番号５は、ＰＫ  ＬＯＸ１を増幅するためのフォワードプライマーの核酸配列である。【００７６】
配列番号６は、ＰＫ  ＬＯＸ１を増幅するためのリバースプライマーの核酸配列である。【００７７】
配列番号７は、ＰＫ  ＬＯＸ２を増幅するためのフォワードプライマーの核酸配列である。【００７８】
配列番号８は、ＰＫ  ＬＯＸ２を増幅するためのリバースプライマーの核酸配列である。【００７９】
配列番号９は、６ｘＨｉｓおよびＴＥＶ認識サイトをコードする核酸配列である。【００８０】
配列番号１０は、配列番号９によってコードされるアミノ酸配列である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図６−１】
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【図６−２】
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【図７】
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【配列表】
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【国際調査報告】
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