(57)【要約】  細胞標識剤は、細胞のシアル酸生合成経路でシアル酸に代謝される６員環構造の単糖誘導体を含む。単糖誘導体における６員環を構成する炭素原子に結合した基のうち、シアル酸生合成経路で代謝されても変化しない少なくとも１つの基が、炭素と炭素との二重結合又は三重結合を有する環構造を含む。
2019151128.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
細胞のシアル酸生合成経路でシアル酸に代謝される６員環構造の単糖誘導体を含み、
前記単糖誘導体における６員環を構成する炭素原子に結合した基のうち、前記シアル酸生合成経路で代謝されても変化しない少なくとも１つの基が、
炭素と炭素との二重結合又は三重結合を有する環構造を含む、
細胞標識剤。
【請求項２】
前記単糖誘導体は、
前記環構造を含む基をＲとして、式（Ｉ）
【化１】
2019151128.tif 000012
で表される、
請求項１に記載の細胞標識剤。
【請求項３】
前記単糖誘導体は、
前記環構造を含む基をＲとして、式（ＩＩ）
【化２】
2019151128.tif 000013
で表される、
請求項１に記載の細胞標識剤。
【請求項４】
前記単糖誘導体は、
前記環構造を含む基をＲとして、式（ＩＩＩ）
【化３】
2019151128.tif 000014
で表される、
請求項１に記載の細胞標識剤。
【請求項５】
前記Ｒは、
下記（ａ）〜（ｍ）
【化４】
2019151128.tif 000015
からなる群から選択される、
請求項２から４のいずれか一項に記載の細胞標識剤。
【請求項６】
請求項１から５のいずれか一項に記載の細胞標識剤と、
前記細胞の外に提示された、前記シアル酸生合成経路で代謝されても変化しない前記基と反応して前記シアル酸に結合するレポーター物質と、
を備える、細胞標識キット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、細胞標識剤及び細胞標識キットに関する。
【背景技術】
【０００２】
シアル酸生合成経路による単糖類の代謝を利用して、細胞表面にある糖鎖を標識する代謝ラベリング法が知られている。代謝ラベリング法では、例えば、アジド基を有するＮ−アセチルマンノサミン（ＭａｎＮＡｃ）の誘導体（ペルアセチル化Ｎ−アジドアセチルマンノサミン、Ａｃ４ＭａｎＮＡｚ）が使用される。細胞内に取り込まれたＡｃ４ＭａｎＮＡｚは、細胞質で酵素によって脱アセチル化され、対応するＮ−アジドアセチルシアル酸（ＳｉａＮＡｚ）に代謝される。ＳｉａＮＡｚはシアロ糖複合体に組み込まれる。そして、ＳｉａＮＡｚは糖鎖とともに細胞表面に提示される。ＳｉａＮＡｚが有するアジド基には、銅触媒を用いたアジド−アルキンの付加環化反応（ＣｕＡＡＣ）等のクリック反応によって、蛍光色素等を有するレポーター物質を付加することができる。【０００３】
非特許文献１には、ペルアセチル化Ｎ−（４−ペンチノイル）マンノサミン（Ａｃ４ＭａｎＮＡｌ）を用いた代謝ラベリング法が開示されている。Ａｃ４ＭａｎＮＡｌは細胞において対応するシアル酸（ＳｉａＮＡｌ）に代謝され、ＳｉａＮＡｌが細胞表面に提示される。ＳｉａＮＡｌは末端にアルキンを有するため、当該アルキンとアジドとをＣｕＡＡＣで反応させることで、レポーター物質を細胞表面の糖鎖に付加することができる。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００４】
【非特許文献１】Ｃｈａｎｇ，Ｐａｍｅｌａ  Ｖ．、外６名、「Ｍｅｔａｂｏｌｉｃ  Ｌａｂｅｌｉｎｇ  ｏｆ  Ｓｉａｌｉｃ  Ａｃｉｄｓ  ｉｎ  Ｌｉｖｉｎｇ  Ａｎｉｍａｌｓ  ｗｉｔｈ  Ａｌｋｙｎｙｌ  Ｓｕｇａｒｓ．」、Ａｎｇｅｗ．Ｃｈｅｍ．Ｉｎｔ．Ｅｄ．Ｅｎｇｌ．、２００９年、４８、４０３０−４０３３
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
Ａｃ４ＭａｎＮＡｚ及びＡｃ４ＭａｎＮＡｌでは、細胞表面に提示されたシアル酸が有するアジド又はアルキンを介してレポーター物質を糖鎖に付加するためにＣｕＡＡＣを利用しなければならない。銅は生体に対して毒性を有するため、Ａｃ４ＭａｎＮＡｚ又はＡｃ４ＭａｎＮＡｌを用いた細胞への生体内でのレポーター物質の付加は安全であるとは言い難い。したがって、Ａｃ４ＭａｎＮＡｚ及びＡｃ４ＭａｎＮＡｌを臨床に応用するのは困難である。【０００６】
本発明は、上記実情に鑑みてなされたものであり、安全性が高く、臨床に応用することができる細胞標識剤及び細胞標識キットを提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明の第１の観点に係る細胞標識剤は、
細胞のシアル酸生合成経路でシアル酸に代謝される６員環構造の単糖誘導体を含み、
前記単糖誘導体における６員環を構成する炭素原子に結合した基のうち、前記シアル酸生合成経路で代謝されても変化しない少なくとも１つの基が、
炭素と炭素との二重結合又は三重結合を有する環構造を含む。【０００８】
この場合、前記単糖誘導体は、
前記環構造を含む基をＲとして、式（Ｉ）
【化１】
2019151128.tif 000003
で表される、
こととしてもよい。【０００９】
また、前記単糖誘導体は、
前記環構造を含む基をＲとして、式（ＩＩ）
【化２】
2019151128.tif 000004
で表される、
こととしてもよい。【００１０】
また、前記単糖誘導体は、
前記環構造を含む基をＲとして、式（ＩＩＩ）
【化３】
2019151128.tif 000005
で表される、
こととしてもよい。【００１１】
また、前記Ｒは、
下記（ａ）〜（ｍ）
【化４】
2019151128.tif 000006
からなる群から選択される、
こととしてもよい。【００１２】
本発明の第２の観点に係る細胞標識キットは、
上記本発明の第１の観点に係る細胞標識剤と、
前記細胞の外に提示された、前記シアル酸生合成経路で代謝されても変化しない前記基と反応して前記シアル酸に結合するレポーター物質と、
を備える。
【発明の効果】
【００１３】
本発明によれば、反応性に富む環構造を細胞表面に提示させることができるため、銅触媒を使用せず細胞を標識できる。よって、本発明に係る細胞標識剤及び細胞標識キットは安全性が高く、臨床に応用することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１４】
【図１】シアル酸生合成経路における一連の反応を示す模式図である。
【図２】本発明の実施例１に係る単糖誘導体の合成方法及び構造を示す図である。
【図３】実施例１に係る単糖誘導体と蛍光物質を含むレポーター物質とのクリック反応を示す図である。
【図４】実施例１に係る単糖誘導体に結合した蛍光物質の蛍光スペクトルを示す図である。
【図５】実施例１に係る単糖誘導体に結合した蛍光物質の蛍光スペクトルの経時変化を示す図である。
【図６】実施例１に係る単糖誘導体を介して蛍光物質を付加した細胞の蛍光画像を示す図である。
【図７】実施例１に係る単糖誘導体を２５μＭの濃度で含む培地で培養した細胞を、ＦＡＭ−テトラジンに暴露した場合（＋）及びＦＡＭ−テトラジンに暴露しない場合（−）の細胞の蛍光画像を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００１５】
本発明に係る実施の形態について説明する。なお、本発明は下記の実施の形態によって限定されるものではない。
【００１６】
（実施の形態）
本実施の形態に係る細胞標識剤は、細胞のシアル酸生合成経路でシアル酸に代謝される単糖誘導体を含む。本実施の形態における細胞は、シアル酸生合成経路が機能する細胞であれば特に限定されない。好ましくは、細胞は動物細胞である。細胞は、生体から採取した細胞、初代培養細胞又は細胞株であってもよい。細胞は、正常細胞であってもよいし、がん化した細胞、すなわちがん細胞であってもよい。
【００１７】
シアル酸生合成経路は、細胞内に取り込まれたＭａｎＮＡｃ等の単糖誘導体を、種々の酵素によって対応するシアル酸に代謝し、シアル酸を有する糖鎖に変換する経路である。シアル酸生合成経路でシアル酸に代謝される単糖類は、６員環構造を母体とする。よって、上記単糖誘導体は、６員環構造である。なお、シアル酸とは、ノイラミン酸の誘導体の総称で、特には、ノイラミン酸のアシル誘導体の総称である。
【００１８】
図１には、種々の酵素によってＡｃ４ＭａｎＮＡｌを代謝し、ＳｉａＮＡｌ（一点鎖線で包囲）が結合した糖鎖に変換するシアル酸生合成経路が示されている。Ａｃ４ＭａｎＮＡｌが細胞内に取り込まれると、細胞質でのＡ〜Ｅの反応を介して、核内でＣＭＰ−シアル酸となり、Ｆ及びＧの反応を経て、ＳｉａＮＡｌが結合した糖鎖が細胞表面に提示される。Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ、Ｅ、Ｆ及びＧの反応は、それぞれ非特異的エステラーゼ、ＭａｎＮＡｃ  ６−キナーゼ、シアル酸９−リン酸シンターゼ、シアル酸９−ホスファターゼ、ＣＭＰ−シアル酸シンテターゼ、ＣＭＰ−シアル酸ゴルジトランスポーター及びシアル酸トランスフェラーゼの作用による。
【００１９】
シアル酸生合成経路でシアル酸に代謝される単糖誘導体としては、例えば、マンノサミン誘導体、グルコサミン誘導体及びシアル酸が挙げられる。マンノサミン誘導体、グルコサミン誘導体及びシアル酸は、６員環を構成する炭素原子に結合した基のうち、シアル酸生合成経路で代謝されても変化しない基を少なくとも１つ有する。なお、本明細書での「基」とは、原子の集団、すなわち原子団を意味する。よって、「基」には、６員環を構成する炭素原子に直接結合した水素原子は含まない。
【００２０】
図１においてマンノサミン誘導体であるＡｃ４ＭａｎＮＡｌの構造と、代謝によって生成したＳｉａＮＡｌの構造とを比較すると、Ａｃ４ＭａｎＮＡｌのアミノ基を含む、二点鎖線で包囲された基は、ＳｉａＮＡｌにおいて維持されている。二点鎖線で包囲された当該基が、単糖誘導体における６員環を構成する炭素原子に結合した基のうち、Ａｃ４ＭａｎＮＡｌにおけるシアル酸生合成経路で代謝されても変化しない基である。
【００２１】
本実施の形態に係る単糖誘導体は、単糖誘導体における６員環を構成する炭素原子に結合した基のうち、シアル酸生合成経路で代謝されても変化しない少なくとも１つの基が、炭素と炭素との二重結合又は三重結合を有する環構造を含む。
【００２２】
単糖誘導体としてマンノサミン誘導体を用いる場合、環構造を含む基をＲとすると、単糖誘導体は、好ましくは、式（Ｉ）
【化５】
2019151128.tif 000007
で表される。
【００２３】
また、単糖誘導体としてグルコサミン誘導体を用いる場合、例えば、式（ＩＩ）
【化６】
2019151128.tif 000008
で表される単糖誘導体が好ましい。
【００２４】
式（Ｉ）で表されるマンノサミン誘導体及び式（ＩＩ）で表されるグルコサミン誘導体の場合、６員環を構成する炭素原子に結合した基のうち、単糖誘導体がシアル酸生合成経路でシアル酸に代謝されても変化しない基は、２位に結合したアミノ基を含む基（−ＮＨ−Ｃ（＝Ｏ）−Ｏ−Ｃ−Ｒ）である。Ｒは２位に結合した基に含まれている。
【００２５】
シアル酸の構造を例示すると、シアル酸は、式（ＩＶ）
【化７】
2019151128.tif 000009
で表される。式（ＩＶ）で表されるシアル酸において、６員環を構成する炭素原子に結合した基のうち、シアル酸生合成経路で代謝されても変化しない基は、２位に結合したカルボキシル基（１位の炭素を含む−ＣＯＯＨ）、４位に結合したヒドロキシ基（−ＯＨ）、５位に結合したアセチルアミド基（−ＮＨＡｃ）及び６位に結合した基（７位、８位及び９位の炭素を含む−Ｃ（ＯＨ）−Ｃ（ＯＨ）−Ｃ（ＯＨ））である。
【００２６】
単糖誘導体としてシアル酸を用いる場合、式（ＩＩＩ）
【化８】
2019151128.tif 000010
で表される単糖誘導体が好ましい。
【００２７】
式（ＩＩＩ）で表される単糖誘導体では、６員環を構成する炭素原子に結合した基のうち、シアル酸生合成経路で代謝されても変化しない基は、２位に結合したカルボキシル基、４位に結合したヒドロキシ基、５位に結合したアセチルアミド基及び６位に結合した基（−Ｃ（ＯＨ）−Ｃ（ＯＨ）−Ｃ−ＮＨ−Ｃ（＝Ｏ）−Ｏ−Ｃ−Ｒ）である。Ｒは６位に結合した基に含まれている。
【００２８】
単糖誘導体が式（ＩＩＩ）で表されるシアル酸の場合、単糖誘導体は細胞内に取り込まれて、核内に輸送される（図１におけるＥ）。その後、単糖誘導体は、Ａｃ４ＭａｎＮＡｌと同様に、ゴルジ体を経て、細胞表面に提示される。
【００２９】
上記のＲとしては、炭素と炭素との二重結合又は三重結合を有する環構造を含む種々の基が挙げられる。例えば、Ｒの構造は下記（ａ）〜（ｍ）に例示される。好適には、Ｒは（ａ）に示される。
【化９】
2019151128.tif 000011
【００３０】
本実施の形態に係る単糖誘導体は、単糖を出発物質として、構造に基づいて公知の方法により合成することができる。例えば、式（Ｉ）で表される単糖誘導体は、マンノサミン塩酸塩のアミノ基にＲを有する化合物を結合させ、得られたマンノサミン誘導体をアセチル化すればよい。同様に、式（ＩＩ）で表される単糖誘導体は、グルコサミン塩酸塩のアミノ基にＲを有する化合物を結合させ、得られたグルコサミン誘導体をアセチル化すればよい。合成した単糖誘導体の構造は、核磁気共鳴法（Ｎｕｃｌｅａｒ  Ｍａｇｎｅｔｉｃ  Ｒｅｓｏｎａｎｃｅ、ＮＭＲ）及び質量分析法（Ｍａｓｓ  Ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ、ＭＳ）等を用いた常法によって確認できる。
【００３１】
本実施の形態に係る細胞標識剤は、上記単糖誘導体のみを含んでもよいし、上記単糖体誘導体を有効成分として含み、薬理的に許容される担体をさらに含んでもよい。薬理的に許容される担体は、製剤材料として用いられる各種の有機担体物質又は無機担体物質である。細胞標識剤は、例えば、賦形剤、滑沢剤、結合剤、崩壊剤、溶剤、溶解補助剤、懸濁化剤、等張化剤及び緩衝剤等を含んでもよい。また、細胞標識剤は、必要に応じて、防腐剤、抗酸化剤、着色剤及び甘味剤等の添加物を含んでもよい。細胞標識剤の形態は、特に限定されず、例示すると、液剤、顆粒、錠剤及びカプセル剤等である。
【００３２】
細胞標識剤が、単糖誘導体とその他の成分との合剤とする場合、単糖誘導体とその他成分とを配合し、公知の方法で製剤化すればよい。細胞標識剤における単糖誘導体の含量は特に限定されず、例えば、細胞標識剤には単糖誘導体が１〜１００重量％、５〜９５重量％、１０〜９０重量％、２０〜８０重量％、３０〜７０重量％又は４０〜６０重量％含まれる。
【００３３】
上述のように、上記単糖誘導体がシアル酸生合成経路で代謝されることで、Ｒが細胞表面に提示される。したがって、本実施の形態に係る細胞標識剤によって細胞を標識することができる。Ｒは炭素と炭素との二重結合又は三重結合を有する環構造を含む基であるため、反応性に富む。Ｒは、通常は生体中に存在しない構造であるため、例えばテトラジン又はアジド等とＲとの間でクリック反応等のバイオオルソゴナルな反応に供することができる。これにより、Ｒを介して種々の機能性物質を細胞表面の糖鎖に特異的に付加することができる。
【００３４】
次に、本実施の形態に係る細胞標識剤の使用方法について説明する。上記細胞標識剤で細胞を標識するには、細胞を含む培地に細胞標識剤を添加し、細胞を細胞標識剤に暴露すればよい。培地に細胞標識剤を添加する際の濃度は、例えば、培地における単糖誘導剤の濃度が０．１〜１ｍＭ、０．１〜５００μＭ、０．１〜５０μＭ、０．１〜３０μＭ、又は１〜２５μＭである。
【００３５】
細胞を細胞標識剤に暴露する時間は、細胞の種類及び細胞におけるシアル酸生合成経路の活性に応じて適宜調整されるが、１２〜９６時間又は４８〜９６時間、好適には７２時間である。細胞標識剤への暴露後、培地に残存する単糖誘導体を除去し、細胞を洗浄すればよい。こうすることで、細胞表面に提示されたＲによって標識された細胞を得ることができる。
【００３６】
例えば、Ｒで標識された細胞は可視化することができる。細胞を可視化する場合、Ｒと反応するレポーター物質を用いればよい。レポーター物質としては、例えばテトラジン又はアジドに結合させた蛍光物質及び発光物質等が挙げられる。蛍光物質としては、ＦＡＭ、シアニン色素、Ｃｙ３、Ｃｙ５、ピレン及びローダミン等が挙げられる。Ｒで標識された細胞を、テトラジンに結合させた蛍光物質を含むレポーター物質に暴露することで、テトラジンがＲと反応し、細胞表面に蛍光物質を付加することができる。なお、Ｒで標識された細胞を溶解させて得たライセートにレポーター物質を反応させてもよい。
【００３７】
レポーター物質に蛍光物質を用いた場合、細胞を蛍光観察によって画像に捉えることができる。観察の方法としては、レポーター物質の種類に応じて、蛍光顕微鏡観察、蛍光内視鏡観察、共焦点内視鏡観察、多光子励起蛍光顕微鏡観察、狭帯域光観察及び共光干渉断層画像観察等が用いられる。
【００３８】
本実施の形態に係る細胞標識剤は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏに限らず、生体内（ｉｎ  ｖｉｖｏ）でも細胞を標識することができる。生体内の細胞を標識する場合、当該細胞標識剤を対象に投与すればよい。当該細胞標識剤の投与対象は、動物、例えばゼブラフィッシュ、メダカ、カエル、マウス、ラット、イヌ、ウサギ、チンパンジー、サル及びヒトである。
【００３９】
細胞標識剤の投与経路は特に限定されない。細胞標識剤は、経口的、又は非経口的に投与できる。細胞標識剤は、全身投与でも局所投与でもよい。ヒトに投与する場合、細胞標識剤は、例えば、血管内、舌下、直腸内、腹膣内、皮膚、皮下、皮内、膀胱内、気管、眼、鼻及び耳等への注射又はカテーテルを介しての注入、噴霧、あるいは塗布等の方法で投与される。
【００４０】
細胞標識剤の投与量は、標的とする細胞を標識できる量であれば特に限定されない。細胞標識剤を動物に投与する場合には、投与形態、投与経路及び投与量が対象となる動物の体重又は状態によって適宜選択される。また、細胞標識剤の投与量は、標的とする細胞及びレポーター物質の種類によっても調整される。ヒトに投与する場合、投与量は、例えば、１回あたり０．０１〜１０００ｍｇ／ｋｇ、０．１〜１００ｍｇ／ｋｇ、又は１〜１０ｍｇ／ｋｇである。
【００４１】
細胞標識剤を投与した動物、例えばマウスにおいてＲで標識された細胞を可視化又は検出するには、マウスから標的の細胞を採取し、上述のように当該細胞をレポーター物質に暴露すればよい。当該細胞表面にＲが付加されている場合は、レポーター物質によって細胞を可視化又は検出できる。なお、観察を容易にするため、細胞を固定化してもよい。また、細胞標識剤を投与したマウスの臓器等の組織から公知の方法で作製した組織切片をレポーター物質に暴露してもよい。
【００４２】
以上詳細に説明したように、本実施の形態に係る細胞標識剤によれば、Ｒが反応性に富むため、銅触媒を用いなくてもレポーター物質等の機能性物質を細胞表面に付加することができる。よって、細胞標識剤を生体に投与しても安全性が高く、臨床に広く応用することができる。
【００４３】
なお、式（ＩＩＩ）で表されるシアル酸においてＲが６位に結合した基に含まれる場合、Ｒは６位に結合した基の末端、すなわち９位の炭素に結合した基に限らず、７位又は８位の炭素に結合した基に含まれてもよい。単糖誘導体が式（ＩＩＩ）で表されるシアル酸の場合、図１に示すＡ〜Ｄの反応を経ずに核内に輸送され、細胞表面にシアル酸が提示される。このため、式（ＩＩＩ）で表される単糖誘導体によれば、マンノサミン誘導体及びグルコサミン誘導体よりも早く細胞表面に提示されるため、より高い効率で細胞を標識することができる。
【００４４】
なお、単糖誘導体が式（ＩＩＩ）で表されるシアル酸の場合、Ｒは、２位に結合したカルボキシル基を置換した基、４位又は５位に結合した基に含まれていてもよい。単糖誘導体が式（ＩＩＩ）で表されるシアル酸の場合、レポーター物質等と効率よく反応させるため、Ｒは５位又は９位に結合した基に含まれるのが好ましい。
【００４５】
なお、単糖誘導体は、式（ＩＶ）で表されるシアル酸であって、その６員環を構成する炭素原子に結合した基のうち、シアル酸生合成経路で代謝されても変化しない基にＲを含むものであってもよい。当該単糖誘導体であっても、式（ＩＩＩ）で表される単糖誘導体と同様に、細胞を効率よく標識することができる。
【００４６】
また、本実施の形態に係る細胞標識剤は、細胞又は細胞表面の糖鎖の捕捉にも有用である。細胞を捕捉する場合、例えば、クリック反応を利用してＲにビオチンを結合させればよい。表面にビオチンが付加された細胞は、例えばストレプトアビジンを担体に固定化したカラムで捕捉することができる。また、細胞表面の糖鎖にＲが付加されるので、細胞標識剤は糖鎖の検出又は定量にも有用である。
【００４７】
また、レポーター物質は、放射性核種を含んでもよい。放射性核種を細胞表面に付加することで、オートラジオグラフィー、陽電子放射断層法（ＰＥＴ）又はコンピュータ断層画像投影法（ＳＰＥＣＴ）によって細胞を検出又は可視化できる。放射性核種は、特に限定されず、使用の態様によって選択される。
【００４８】
例えば、ＰＥＴによる細胞の検出の場合は、１１Ｃ、１４Ｃ、１３Ｎ、１５Ｏ、１８Ｆ、１９Ｆ、６２Ｃｕ、６８Ｇａ及び７８Ｂｒ等の陽電子を放出する核種を用いればよい。ＳＰＥＣＴによる細胞の検出の場合は、例えば、９９ｍＴｃ、１１１Ｉｎ、６７Ｇａ、２０１Ｔｌ、１２３Ｉ及び１３３Ｘｅ等のγ線を放出する核種を用いればよい。
【００４９】
また、Ｒを介してフリーラジカルを与える官能基等を細胞表面に付加してもよい。がん細胞の表面にフリーラジカルを与える官能基を付加すれば、フリーラジカルによってがん細胞の増殖、腫瘍の成長等が抑制される。
【００５０】
なお、Ｒと反応させるために、アジド及びテトラジンの他に、シクロオクチン、シクロオクテン、シクロブテン及びシクロプロペンをレポーター物質に用いてもよい。
【００５１】
他の実施の形態では、細胞標識キットが提供される。当該細胞標識キットは、本実施の形態に係る細胞標識剤と、細胞の外に提示されたシアル酸生合成経路で代謝されても変化しない基、すなわちＲと反応してシアル酸に結合するレポーター物質と、を備える。
【００５２】
別の実施の形態では、本実施の形態に係る細胞標識剤を用いた疾患の診断方法が提供される。当該診断方法は、上記細胞標識剤を対象に投与する第１の投与ステップと、Ｒと反応してシアル酸に結合するレポーター物質を当該対象に投与する第２の投与ステップと、レポーター物質を検出又は定量する評価ステップと、を含む。
【００５３】
当該診断方法は、好適には、がん及び炎症等の診断に用いることができる。がん細胞及び炎症細胞では、正常な細胞と比較してシアル酸生合成経路が活性化しており、より多くのシアル酸が細胞表面に提示されている。よって、例えば、対象としての被験者で検出されたレポーター物質の量と、被験者の正常な組織の細胞又は健常者の細胞等で検出されたレポーター物質の量と、を比較することで、がん及び炎症等を診断することができる。当該細胞標識剤は、レポーター物質等を細胞表面に迅速に付加することができるため、素早く診断することができる。
【実施例】
【００５４】
以下の実施例により、本発明をさらに具体的に説明するが、本発明は実施例によって限定されるものではない。【００５５】
（実施例１：単糖誘導体ＢＣＮ−ＭａｎＮＡｃの合成）
Ｄ−マンノサミン塩酸塩３５．９ｍｇをナスフラスコに入れ、減圧及び窒素置換を３回繰り返し、反応系内を窒素で置換した。そこへ脱水ＤＭＦ（ジメチルホルムアミド）２ｍＬ、（１Ｒ，８Ｓ，９ｓ）−ビシクロ［６．１．０］ノン−４−イン−９−イルメチルＮ−スクシニミジルカーボネート（ＢＣＮ−ＮＨＳ）５３．３ｍｇ、及びＮ，Ｎ−ジイソプロピルエチルアミン（ＤＩＥＡ）５８μＬを加え、室温で１２時間撹拌した。反応後、エバポレーターで溶媒を除去し、次いでシリカカラムクロマトグラフィー（ジクロロメタン：メタノール＝４：１）で精製した。目的物を含むフラクションをナスフラスコに回収し、エバポレーターで溶媒を除去し、真空ポンプで乾燥させた。その結果、ＢＣＮ修飾マンノサミン（ＢＣＮ−Ｍａｎ）４２．２ｍｇを収率７１％で得た。【００５６】
ＢＣＮ−Ｍａｎ３５．０ｍｇをナスフラスコに入れ、反応系内を窒素で置換した。そこへ脱水ピリジン１ｍＬ、無水酢酸９３μＬを加え、室温で５時間撹拌した。反応後、エバポレーターで溶媒を除去し、次いでシリカカラムクロマトグラフィー（へキサン：酢酸エチル＝１：１）で精製した。目的物であるアセチル化ＢＣＮ修飾マンノサミン（ＢＣＮ−ＭａｎＮＡｃ）を含むフラクションをナスフラスコに回収し、エバポレーターで溶媒を除去し、真空ポンプで乾燥させた。【００５７】
（結果）
図２にＤ−マンノサミン塩酸塩、ＢＣＮ−Ｍａｎ及びＢＣＮ−ＭａｎＮＡｃの構造を示す。ＢＣＮ−ＭａｎＮＡｃ２７．２ｍｇを収率５３％で得ることができた。ＮＭＲ（ＡＶ−４００Ｍ、Ｂｒｕｋｅｒ社製）及びＭＳ（Ｅｘａｃｔｉｖｅ、ＴｈｅｒｍｏＦｉｓｈｅｒ社製）によるＢＣＮ−ＭａｎＮＡｃの同定結果を以下に示す。【００５８】
１Ｈ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３）  δ：６．０９（ｓ，１Ｈ），５．３０  （ｄｄ，Ｊ＝４．２，１０．２Ｈｚ，１Ｈ），５．２１−５．００（ｍ，３Ｈ），４．４８−４．０１（ｍ，４Ｈ），２．３０−２．２３（ｍ，４Ｈ），２．１７（ｓ，３Ｈ），２．１１−２．０２（ｍ，４Ｈ），２．１０（ｓ，３Ｈ），２．０５（ｓ，３Ｈ），２．０１（ｓ，３Ｈ），１．５７（ｍ，１Ｈ），１．３９（ｍ，１Ｈ），０．９７（ｍ，１Ｈ）
１３Ｃ−ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３）  δ：１７０．６１，１７０．０７，１６９．６５，１６８．１８，１５６．１１，９８．７５，９１．８８，７３．３９，７１．５３，７０．１９，６９．１５，６５．３３，６３．６５，６１．９７，５１．１１，２９．０１，２１．３９，２０．８９，２０．７５，２０．６４，２０．１９，１７．６２
Ｃ２５Ｈ３３Ｏ１１ＮＣｌに関するＥＳＩ−ＭＳ（Ｍ＋Ｃｌ）−、計算値：５５８．１７３７、実測値５５８．１８０６【００５９】
（実施例２：ｉｎ  ｖｉｔｒｏにおけるＢＣＮ−ＭａｎＮＡｃの反応性の確認）
ＢＣＮ−ＭａｎＮＡｃ２．０ｍｇを１９０μＬのＤＭＳＯに溶解し、２０ｍＭのＢＣＮ−ＭａｎＮＡｃ溶液とした。ＦＡＭ−テトラジン１．０ｍｇを１８０μＬのＤＭＳＯに溶解し、１０ｍＭのＦＡＭ−テトラジン溶液とした。マイクロチューブに８９μＬのリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）を準備し、そこにＢＣＮ−ＭａｎＮＡｃ溶液１μＬ、ＦＡＭ−テトラジン溶液１０μＬを加え、ボルテックスミキサーでよく撹拌し、混合液を得た。混合液におけるＢＣＮ−ＭａｎＮＡｃ及びＦＡＭ−テトラジンの終濃度は、それぞれ２００μＭ及び１μＭである。【００６０】
１００μＬの混合液を３７℃で１．５時間反応させた。コントロールとしてＢＣＮ−ＭａｎＮＡｃ２００μＭのみの試料１００μＬを調製した。分光蛍光光度計（ＪＡＳＣＯ  ＦＰ−８２００）を用いて混合液及びコントロールの蛍光スペクトルを測定した（λｅｘ＝４９２ｎｍ、λｅｍ＝５１７ｎｍ）。また、ＢＣＮ−ＭａｎＮＡｃ及びＦＡＭ−テトラジンの反応の時間依存性を評価するために、１００μＬの混合液の蛍光スペクトルを時間変化測定モードで４０００秒まで測定した。【００６１】
（結果）
図３に示すようにＦＡＭ−テトラジンがＢＣＮ−ＭａｎＮＡｃに結合すると、ＦＡＭの蛍光が強く発せられる。図４は、混合液及びコントロールの蛍光スペクトルを示す。ＢＣＮ−ＭａｎＮＡｃとＦＡＭ−テトラジンとが反応すると、蛍光強度が大きく増加することが示された。図５は、混合液の蛍光スペクトルの経時変化を示す。約１８００秒後には、蛍光強度がほぼ最大になることが示された。【００６２】
（実施例３：細胞の蛍光イメージング）
１×１０５個のＨｅＬａ細胞を含む培地にＢＣＮ−ＭａｎＮＡｃを加え、７２時間培養した。使用した培地は、１０％ＦＢＳ（Ｆｅｔａｌ  Ｂｏｖｉｎｅ  Ｓｅｒｕｍ）を含むＤＭＥＭ（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ  Ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｅａｇｌｅ’ｓ  Ｍｅｄｉｕｍ）である。培地に加えたＢＣＮ−ＭａｎＮＡｃの終濃度は、０、２．５、５、１０、２０、２５μＭとした。培養後、培地を除去し、ＰＢＳで細胞を３回洗浄した。３．７％パラホルムアルデヒドを加え、室温で２０分間細胞を固定化した。固定化した細胞を含むプレートに終濃度１μＭのＦＡＭ−テトラジンを加え、室温で２０分間インキュベートした。共焦点レーザー顕微鏡（Ｌｅｉｃａ  ＴＣＳ  ＳＰ８、Ｌｅｉｃａ  Ｍｉｃｒｏｓｙｓｔｅｍｓ社製）を用いて細胞に対する蛍光観察を行った。【００６３】
（結果）
図６は、共焦点レーザー顕微鏡で撮像した細胞の蛍光画像を示す。ＢＣＮ−ＭａｎＮＡｃに結合したＦＡＭの蛍光が観察された。ＦＡＭの蛍光は、ＢＣＮ−ＭａｎＮＡｃを含まない培地で培養した細胞では観察されず、ＢＣＮ−ＭａｎＮＡｃの濃度依存的に増加した。図７は、２５μＭのＢＣＮ−ＭａｎＮＡｃを含む培地で培養した細胞の蛍光画像を示す。ＦＡＭ−テトラジンに暴露した細胞（＋）が蛍光によって観察されたのに対し、ＦＡＭ−テトラジンに暴露していない細胞（−）は、観察されなかった。これにより、ＢＣＮ−ＭａｎＮＡｃを含む培地で培養した細胞は、ＦＡＭ−テトラジンへの暴露によって可視化できることが示された。【００６４】
本発明は、本発明の広義の精神と範囲を逸脱することなく、様々な実施の形態及び変形が可能とされるものである。また、上述した実施の形態は、本発明を説明するためのものであり、本発明の範囲を限定するものではない。すなわち、本発明の範囲は、実施の形態ではなく、特許請求の範囲によって示される。そして、特許請求の範囲内及びそれと同等な発明の意義の範囲内で施される様々な変形が、本発明の範囲内とみなされる。【００６５】
本出願は、２０１８年２月５日に出願された、日本国特許出願２０１８−１８１７２号に基づく。本明細書中に日本国特許出願２０１８−１８１７２号の明細書、特許請求の範囲、図面全体を参照として取り込むものとする。
【産業上の利用可能性】
【００６６】
本発明は、細胞の標識並びにがん及び炎症等の診断に好適である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【国際調査報告】
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