(57)【要約】窒素固定酵素をコードする、配列番号１の塩基配列又は配列番号１と５０％以上の同一性を有する塩基配列を備えるＤＮＡ断片。このＤＮＡ断片を含む組み換えベクター。この組み換えベクターにより形質転換された形質転換体。この形質転換体により発現された窒素固定酵素。配列番号３４〜６５のアミノ配列のいずれか１つ以上を備えた窒素固定酵素。
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
窒素固定酵素をコードする、配列番号１の塩基配列又は配列番号１と５０％以上の同一性を有する塩基配列を備えたＤＮＡ断片。
【請求項２】
前記配列番号１の塩基配列を備えたＤＮＡ断片は、シアノバクテリアのゲノムＤＮＡ由来である、請求項１に記載のＤＮＡ断片。
【請求項３】
窒素固定酵素をコードする、配列番号２〜３３の塩基配列のいずれか１つ以上を備えたＤＮＡ断片。
【請求項４】
前記ＤＮＡ断片は、シアノバクテリアのゲノムＤＮＡ由来である、請求項３に記載のＤＮＡ断片。
【請求項５】
前記シアノバクテリアは、Cyanothece sp. ATCC 51142である、請求項２又は請求項４に記載のＤＮＡ断片。
【請求項６】
請求項１〜５のいずれか１項に記載のＤＮＡ断片を含む組み換えベクター。
【請求項７】
前記ＤＮＡ断片はフォスミドベクターに組み込まれたものである、請求項６に記載の組み換えベクター。
【請求項８】
請求項６又は請求項７に記載の組み換えベクターにより形質転換された形質転換体。
【請求項９】
請求項８に記載の形質転換体により発現された窒素固定酵素。
【請求項１０】
請求項９に記載の窒素固定酵素と同一のアミノ酸配列又は前記アミノ酸配列と４０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を備えた窒素固定酵素。
【請求項１１】
配列番号３４〜６５のアミノ配列のいずれか１つ以上を備えた、請求項９又は請求項１０に記載の窒素固定酵素。
【請求項１２】
配列番号３４〜６５のアミノ配列のいずれか１つ以上を備えた窒素固定酵素。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、窒素固定酵素をコードするＤＮＡ断片、当該ＤＮＡ断片を含む組み換えベクター、当該組み換えベクターにより形質転換した形質転換体及び窒素固定酵素に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
一般的に、大腸菌は、窒素源（塩化アンモニウム、硝酸ナトリウム等）なしの培地では生育が阻害されるため、その増殖には窒素源を培地に添加することが必要とされている。【０００３】
窒素固定の方法としては、従来のハーバーボッシュ法のほかに、ニトロゲナーゼを用いた酵素法がある。この方法によれば、常温常圧の環境下で大気中の窒素をアンモニアとして固定化することができるため、ニトロゲナーゼ存在下においては、上記窒素源の添加を不要とすることができる。【０００４】
一方、上記ニトロゲナーゼは、Ｖ又はＭｏを含む金属酵素である（例えば、特許文献１参照）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】特開２０１６−１３６９７２号公報（段落〔０００６、０００７〕）
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
しかし、二トロゲナーゼを導入した大腸菌を用いて窒素固定を行なう場合には活性中心としてのＶやＭｏの金属元素が不足するので、二トロゲナーゼを導入した大腸菌が窒素源を含まない培地で増殖するには、ＶやＭｏの金属元素の添加が必須となる。【０００７】
本発明の目的は、大腸菌の増殖に必要とされている窒素源の培地への添加を不要とすることができる窒素固定酵素をコードするＤＮＡ断片、当該ＤＮＡ断片を含む組み換えベクター、当該組み換えベクターにより形質転換した形質転換体及び当該窒素固定酵素を提供することである。【０００８】
また、本発明の別の目的は、ＶやＭｏといった金属元素を培地に添加することなく大腸菌の増殖を可能とする窒素固定酵素をコードするＤＮＡ断片、当該ＤＮＡ断片を含む組み換えベクター、当該組み換えベクターにより形質転換した形質転換体及び当該窒素固定酵素を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
本発明の一実施の形態により、下記［１］〜［１２］のＤＮＡ断片、組み換えベクター、形質転換体及び窒素固定酵素が提供される。本明細書において、窒素固定酵素とは、窒素源（塩化アンモニウム、硝酸ナトリウム等）なしの培地で大腸菌の増殖（生育）を促進させる酵素を意味する。【００１０】
［１］窒素固定酵素をコードする、配列番号１の塩基配列又は配列番号１と５０％以上の同一性を有する塩基配列を備えたＤＮＡ断片。
［２］前記配列番号１の塩基配列を備えたＤＮＡ断片は、シアノバクテリアのゲノムＤＮＡ由来である上記［１］に記載のＤＮＡ断片。
［３］窒素固定酵素をコードする、配列番号２〜３３の塩基配列のいずれか１つ以上を備えたＤＮＡ断片。
［４］前記ＤＮＡ断片は、シアノバクテリアのゲノムＤＮＡ由来である上記［３］に記載のＤＮＡ断片。
［５］前記シアノバクテリアは、Cyanothece sp. ATCC 51142である上記［２］又は［４］に記載のＤＮＡ断片。
［６］上記［１］〜［５］のいずれか１つに記載のＤＮＡ断片を含む組み換えベクター。
［７］前記ＤＮＡ断片はフォスミドベクターに組み込まれたものである上記［６］に記載の組み換えベクター。
［８］上記［６］又は［７］に記載の組み換えベクターにより形質転換された形質転換体。
［９］上記［８］に記載の形質転換体により発現された窒素固定酵素。
［１０］上記［９］に記載の窒素固定酵素と同一のアミノ酸配列又は前記アミノ酸配列と４０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を備えた窒素固定酵素。
［１１］配列番号３４〜６５のアミノ配列のいずれか１つ以上を備えた上記［９］又は［１０］に記載の窒素固定酵素。
［１２］配列番号３４〜６５のアミノ配列のいずれか１つ以上を備えた窒素固定酵素。
【発明の効果】
【００１１】
本発明の一実施の形態によると、大腸菌の増殖に必要とされている窒素源の培地への添加を不要とすることができる窒素固定酵素をコードするＤＮＡ断片、当該ＤＮＡ断片を含む組み換えベクター、当該組み換えベクターにより形質転換した形質転換体及び当該窒素固定酵素を提供することができる。【００１２】
また、本発明の一実施の形態によると、ＶやＭｏといった金属元素を培地に添加することなく大腸菌の増殖を可能とする窒素固定酵素をコードするＤＮＡ断片、当該ＤＮＡ断片を含む組み換えベクター、当該組み換えベクターにより形質転換した形質転換体及び当該窒素固定酵素を提供することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１３】
【図１】図１は、本発明の実施の形態に係るＤＮＡ断片のゲノムＤＮＡにおける位置とＤＮＡ断片に含まれる３２個のオープンリーディングフレームを示す説明図である。
【図２】図２は、本発明の実施の形態に係るＤＮＡ断片のフォスミドベクターへの組み込み位置を示す説明図である。
【図３】図３は、実施例における窒素固定能力の評価結果を示すグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００１４】
〔ＤＮＡ断片〕
図１は、本発明の実施の形態に係るＤＮＡ断片のゲノムＤＮＡにおける位置とＤＮＡ断片に含まれる３２個のオープンリーディングフレームを示す説明図である。
【００１５】
本発明の実施の形態に係るＤＮＡ断片２は、窒素固定酵素をコードする、配列番号１の塩基配列又は配列番号１と５０％以上の同一性を有する塩基配列を備える。なお、本発明の実施の形態において、窒素固定酵素とは、大腸菌の増殖に必要とされている窒素源の培地への添加を不要とすることができる窒素固定酵素、又はＶやＭｏといったニトロゲナーゼに必要とされる金属元素を培地に添加することなく大腸菌の増殖を可能とする窒素固定酵素を意味する。より望ましい本発明の実施形態においては、藻類や植物といった酸素を発生する光合成生物内で機能することができる窒素固定酵素を意味する。
【００１６】
配列番号１の塩基配列を備えたＤＮＡ断片（図１の符号２）は、例えば、シアノバクテリア（藍藻ともいう。）のゲノムＤＮＡ（図１の符号１）由来である（2982634番目から3013880番目までの31247個の塩基配列）。シアノバクテリアとしては、例えば、Cyanothece sp. ATCC 51142が挙げられる。Cyanothece sp. ATCC 51142は、例えば、The American Type Culture Collection (ATCC)から入手できる。
【００１７】
窒素固定酵素をコードする塩基配列は、配列番号１と５０％以上の同一性を有する塩基配列であってもよい。好ましくは配列番号１と６０％以上の同一性を有する塩基配列であり、より好ましくは配列番号１と７０％以上の同一性を有する塩基配列であり、更に好ましくは配列番号１と８０％以上の同一性を有する塩基配列であり、更に好ましくは配列番号１と９０％以上の同一性を有する塩基配列であり、更に好ましくは配列番号１と９５％以上の同一性を有する塩基配列であり、更に好ましくは配列番号１と９８％以上の同一性を有する塩基配列である。
【００１８】
なお、配列番号１の塩基配列又は配列番号１と５０％以上の同一性を有する塩基配列を備えるＤＮＡ断片は、遺伝子工学的手法により人工的に合成したものであってもよい。
【００１９】
本発明の実施の形態に係るＤＮＡ断片は、窒素固定酵素をコードする、配列番号２〜３３の塩基配列のいずれか１つ以上を備える。配列番号２〜３３の塩基配列は、それぞれ図１に示すオープンリーディングフレーム（遺伝子ＩＤ：ｃｃｅ＿２９４３〜ｃｃｅ＿２９７４）に相当する。なお、遺伝子ＩＤとは、例えば、ＣｙａｎｏＢａｓｅ（[genome.microbedb.jp/cyanobase/]）、又はＫＥＧＧ, Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes（[http://www.genome.jp/kegg/]）で定義されている。
【００２０】
本発明の実施の形態に係るＤＮＡ断片は、配列番号２〜３３の塩基配列のうちの５個以上を備えることが好ましく、１０個以上を備えることがより好ましく、１５個以上を備えることが更に好ましく、２０個以上を備えることが更に好ましく、２５個以上を備えることが更に好ましく、２８個以上を備えることが更に好ましく、３０個以上を備えることが更に好ましい。配列番号２〜３３の塩基配列の順序は、入れ替えても構わないが、変更しないことが好ましい。
【００２１】
図１に示す本発明の実施の形態に係るＤＮＡ断片２は、配列番号１の塩基配列を備え、かつ配列番号２〜３３の塩基配列のすべてを備える。本発明の実施の形態に係るＤＮＡ断片２は、配列番号２〜３３の塩基配列のほかの塩基配列を含んでいても良く、例えば、ｔＲＮＡである塩基配列（遺伝子ＩＤ：ｃｃｅ＿ＲＮＡ０３７）を含んでいても良い。
【００２２】
配列番号２〜３３の塩基配列のいずれか１つ以上を備えるＤＮＡ断片は、例えば、シアノバクテリアのゲノムＤＮＡ由来である。シアノバクテリアとしては、例えば、Cyanothece sp. ATCC 51142が挙げられる。
【００２３】
ＤＮＡ断片２のシアノバクテリア・ゲノムＤＮＡからの単離は、一般的に行われている以下の操作手順１〜５に沿って行なうことができる。より詳細には、例えば、後述する実施例にしたがって行なうことができる。各操作の手法は特に限定されるものではなく、公知の種々の手法を採用可能である。
１．シアノバクテリアの大量培養
２．シアノバクテリアのゲノムＤＮＡの抽出及び断片化：断片化後、ＤＮＡの純度を上げるステップとして多糖の除去を行なっても良い。
３．クローニング
（１）ＤＮＡ断片の末端を修飾する。
（２）電気泳動（例えば、高分子分離用低融点アガロースで１８Ｖ，２４時間）によりサイズ分けする。
（３）約２５〜４０ｋｂのＤＮＡ断片を回収する。
（４）回収した各ＤＮＡ断片をそれぞれベクター（例えばフォスミドベクター）に挿入し、様々なＤＮＡ断片を持つベクター（組み換えベクター）を作製する。
４．形質転換体の作製
（１）様々なＤＮＡ断片を持つベクターをバクテリオファージに導入（パッケージング）する。
（２）上記（１）のバクテリオファージを大腸菌等の宿主に感染させ、ベクターを導入し、様々なＤＮＡ断片を持つベクターを持つ大腸菌（形質転換体）を得る。
（３）形質転換体を寒天培地で生育し、コロニーとして取得する。
５．スクリーニング
（１）窒素源（塩化アンモニウム、硝酸ナトリウム等の窒素化合物）を含まない培地で生育できる大腸菌を選抜する。
（２）大腸菌からベクターを抽出する。
（３）ベクターに挿入したＤＮＡ断片の遺伝子情報を解読する。
【００２４】
なお、配列番号２〜３３の塩基配列のいずれか１つ以上を備えるＤＮＡ断片は、遺伝子工学的手法により人工的に合成したものであってもよい。
【００２５】
〔組み換えベクター〕
図２は、本発明の実施の形態に係るＤＮＡ断片のフォスミドベクターへの組み込み位置を示す説明図である。
【００２６】
本発明の実施の形態に係る組み換えベクター３は、本発明の実施の形態に係る上記ＤＮＡ断片を含む。組み換えベクター３は、好ましくは当該ＤＮＡ断片がフォスミドベクターに組み込まれた（挿入された）ものであるが、これに限られない。例えば、プラスミドベクター、コスミドベクター、ウイルスベクター等に組み込まれたものであっても良い。
【００２７】
本発明の実施の形態に係る組み換えベクター３は、例えば、前述したＤＮＡ断片２のシアノバクテリア・ゲノムＤＮＡからの単離操作手順にしたがって取得できる。
【００２８】
〔形質転換体〕
本発明の実施の形態に係る形質転換体は、本発明の実施の形態に係る上記組み換えベクターにより大腸菌等の宿主を形質転換したものである。
【００２９】
本発明の実施の形態に係る形質転換体は、例えば、前述したＤＮＡ断片２のシアノバクテリア・ゲノムＤＮＡからの単離操作手順にしたがって取得できる。
【００３０】
〔窒素固定酵素〕
本発明の実施の形態に係る窒素固定酵素は、本発明の実施の形態に係る上記形質転換体により発現されたものである。本発明の実施の形態に係る窒素固定酵素は、配列番号２〜３３の塩基配列にそれぞれ対応する配列番号３４〜６５のアミノ配列（下記表１参照。配列番号２が配列番号３４に対応し、・・・・、配列番号３３が配列番号６５に対応する）をこの順番（配列番号３４が左端側、配列番号６５が右端側）で備えるものであることが好ましい。なお、配列番号３４〜６５のいずれか１以上のアミノ酸配列において、１又は複数個のアミノ酸の挿入、置換、欠失及び／又は付加されたアミノ酸配列を有して上記窒素固定酵素と機能的に同等な窒素固定酵素をコードするものであってもよい（以下、本発明の別の実施の形態に係る窒素固定酵素においても同様）。こうした窒素固定酵素は、例えば、１〜３０個、好ましくは１〜２０個、より好ましくは１〜１０個、さらに好ましくは１〜５個、最も好ましくは１〜２個のアミノ酸の挿入、置換、欠失及び／又は付加を備えることができる（以下、本発明の別の実施の形態に係る窒素固定酵素においても同様）。
【００３１】
【表１】
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【００３２】
また、本発明の実施の形態に係る窒素固定酵素は、配列番号３４〜６５のアミノ配列のいずれか１つ以上を備えたものであってもよい。
【００３３】
本発明の実施の形態に係る窒素固定酵素は、配列番号３４〜６５のアミノ配列のうちの５個以上を備えることが好ましく、１０個以上を備えることがより好ましく、１５個以上を備えることが更に好ましく、２０個以上を備えることが更に好ましく、２５個以上を備えることが更に好ましく、２８個以上を備えることが更に好ましく、３０個以上を備えることが更に好ましい。配列番号３４〜６５のアミノ配列の順序は、入れ替えても構わないが、変更しないことが好ましい。
【００３４】
また、本発明の別の実施の形態に係る窒素固定酵素は、本発明の実施の形態に係る上記形質転換体により発現されたものに限られず、本発明の実施の形態に係る上記窒素固定酵素と同一のアミノ酸配列を備えた窒素固定酵素であればよい。例えば、市販のタンパク質合成装置で合成されたものであってもよい。
【００３５】
上記窒素固定酵素は、本発明の実施の形態に係る上記窒素固定酵素と同一のアミノ酸配列のものに限られず、当該アミノ酸配列と４０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を備えた窒素固定酵素であってもよい。好ましくは当該アミノ酸配列と５０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を備えた窒素固定酵素であり、より好ましくは当該アミノ酸配列と６０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を備えた窒素固定酵素であり、更に好ましくは当該アミノ酸配列と７０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を備えた窒素固定酵素であり、更に好ましくは当該アミノ酸配列と８０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を備えた窒素固定酵素であり、更に好ましくは当該アミノ酸配列と９０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を備えた窒素固定酵素であり、更に好ましくは当該アミノ酸配列と９５％以上の同一性を有するアミノ酸配列を備えた窒素固定酵素であり、更に好ましくは当該アミノ酸配列と９８％以上の同一性を有するアミノ酸配列を備えた窒素固定酵素である。
【００３６】
なお、上記窒素固定酵素と４０％以上の同一性を有するアミノ酸配列を備える窒素固定酵素は、市販のタンパク質合成装置で人工的に合成したものであってもよい。
【００３７】
なお、本明細書において、塩基配列又はアミノ酸配列の「同一性」とは、比較される配列間において、各々の配列を構成する塩基又はアミノ酸残基の一致の程度の意味で用いられる。このとき、アミノ酸配列については、ギャップの存在及びアミノ酸の性質が考慮される（Wilbur, Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 80:726-730 (1983)）。同一性の計算には、市販のソフトであるＢＬＡＳＴ（Altschul: J. Mol. Biol. 215:403-410 (1990)）、ＦＡＳＴＡ(Peasron: Methods in Enzymology 183:63-69 (1990))等を用いることができる。「同一性」の数値はいずれも、当業者に公知の相同性検索プログラムを用いて算出される数値であればよく、例えば、全米バイオテクノロジー情報センター（ＮＣＢＩ）の相同性アルゴリズムＢＬＡＳＴ（Ｂａｓｉｃｌｏｃａｌ ａｌｉｇｎｍｅｎｔ ｓｅａｒｃｈ ｔｏｏｌ）http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/においてデフォルト（初期設定）のパラメーターを用いることにより、算出することができる。
【００３８】
〔本発明の実施の形態の効果〕
本発明の実施の形態によれば、以下の効果を奏する。
（１）大腸菌の増殖に必要とされている窒素源の培地への添加を不要とすることができる窒素固定酵素をコードするＤＮＡ断片、当該ＤＮＡ断片を含む組み換えベクター、当該組み換えベクターにより形質転換した形質転換体及び当該窒素固定酵素を提供できる。
（２）ＶやＭｏといった希少な金属元素を培地に添加することなく大腸菌の増殖を可能とする窒素固定酵素をコードするＤＮＡ断片、当該ＤＮＡ断片を含む組み換えベクター、当該組み換えベクターにより形質転換した形質転換体及び当該窒素固定酵素を提供できる。
（３）酸素を発生する光合成生物であるシアノバクテリア由来の遺伝子を用いて発現させた窒素固定酵素（ニトロゲナーゼとは異なる窒素固定酵素）であるため、藻類や植物といった酸素を発生する光合成生物内で窒素固定を行うことができる。
（４）高温高圧下の環境で大量のエネルギーを必要とするハーバーボッシュ法に比べて、常温常圧下で機能する省エネルギー型の窒素固定反応であるため、エネルギーコストを大幅に削減できる。
（５）本発明の実施の形態に係るＤＮＡ断片を産業上有用な細菌、藻類、植物に導入することにより、窒素肥料（アンモニア、塩化アンモニウム、硝酸ナトリウム等）を必要とせず生育可能な品種を得ることができる。
【実施例】
【００３９】
以下に、本発明を実施例に基づいて更に詳しく説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。【００４０】
〔本発明に係る窒素固定酵素をコードするＤＮＡ断片の単離〕
シアノバクテリアCyanothece sp. ATCC 51142（ＡＴＣＣ番号(受託番号)：５１１４２）より抽出したゲノムＤＮＡを物理剪断、具体的には抽出したゲノムＤＮＡ溶液を先の細いピペットチップ(QSP社)にて５回出し入れし、End-Repair Enzyme Mix （Epicentre製）により平滑末端化した。なお、物理剪断は、ボルテックスや超音波処理等により行なってもよい。平滑末端化したＤＮＡ断片は、電気泳動にてサイズ分けし、平均鎖長２５−４０ｋｂのＤＮＡ断片を抽出した。次いで、ＤＮＡ断片をクロラムフェニコール耐性遺伝子を有するCopyControlTM pCC2FOSTMフォスミドベクター(Epicentre製)（Eco72 Iサイト（382番目のＣと３８３番目のＧの間）で切断して直鎖化し、脱リン酸化したもの）にそれぞれライゲーションした（図２参照）。フォスミドベクターへのライゲーションにはＴ４ＤＮＡリガーゼ（ＴａＫａＲａ製)を使用した。このフォスミドベクターへライゲーションしたものを、MaxPlaxTMLambda Packaging Extracts(Epicentre製)を用いてin vitroパッケージングした。宿主微生物として大腸菌E. coli EPI-300T1R(Epicentre製) （以下、EPI300という）を使用した。そして、12.5 mg/mLのクロラムフェニコールを含むＬＢ培地(LB/Cm)寒天プレートで、形質転換された大腸菌（形質転換体）を得た。【００４１】
形質転換された大腸菌のコロニーをとり、12.5 mg/mLのクロラムフェニコールを含むＬＢ培地(LB/Cm) 4 mL中で、空気中、３７℃で１８時間、１８０ ｒｐｍで培養した。次いで、培養した大腸菌を回収して、窒素源(塩化アンモニウム、硝酸ナトリウム等の窒素化合物)を含まないM9-N培地(0.6% Na2HPO4、0.3% KH2PO4、0.05% NaCl、0.2% グルコース、0.00147% CaCl2×2H2O、0.05% MgSO4×7H2O、0.01% L-ロイシン)で３回洗浄した後、再度M9-N培地に懸濁した。調製した大腸菌懸濁液を、12.5 mg/mLのクロラムフェニコールを含むM9-N培地(M9-N/Cm)寒天プレートにプレーティングし、３７℃で７２時間培養した。得られたコロニーを再度M9-N培地(M9-N/Cm)寒天プレートに植え継ぎ、生育の見られた株について、窒素固定の表現型を与えるクローンとして単離した。クローン名を形質転換体１とした。【００４２】
次に、窒素固定の表現型を示すクローンが保持するフォスミドベクターに挿入されている塩基配列を解析した結果、前述した配列番号１の塩基配列が形質転換体１に挿入されていることが判明した。この塩基配列中には、前述した配列番号２〜３３の塩基配列を有する３２個のオープンリーディングフレームが含まれており、それぞれ前述した配列番号３４〜６５のアミノ配列をコードしていることが判明した。これらのタンパク質のアミノ酸配列は既知の窒素固定タンパク質（ニトロゲナーゼ）と相同性が無く、今回得られた窒素固定酵素及びこれをコードするＤＮＡ断片が新規なものであると判断された。なお、フォスミドベクターに挿入されている塩基配列の解析はプライマーpCC2 forward-bとpCC2 reverse-bを用いて行なった。使用したプライマーの塩基配列は以下のとおりである。
pCC2 forward-b; CCAGTCACGACGTTGTAAAACG
pCC2 reverse-b; CGCCAAGCTATTTAGGTGAGAC【００４３】
〔形質転換体の窒素固定能力の評価〕
形質転換体１の窒素固定能力を評価するため、窒素源を含まないM9-N培地で増殖試験を行った。形質転換体１（実施例１）及び前述のＤＮＡ断片挿入を行なっていないpCC2FOSTMフォスミドベクター(Epicentre製)を保持するEPI300（比較例１）をそれぞれ窒素源として0.1%の塩化アンモニウムをM9-N培地に含ませたM9+N培地(M9+N/Cm)で２４時間培養し、菌体を回収してM9-N培地で３回洗浄した後、5 mLのM9-N培地(M9-N/Cm)に、波長660nmでの光学濃度（optical density）（以下、OD660と記載)が0.02となるように植菌した。小型振盪培養装置［バイオフォトレコーダー（登録商標）TVS062CA、東洋製作所製］を用いて３７℃、４５ ｒｐｍで振とう培養を行ない、培養液のOD660を１時間ごとに測定した。増殖試験の結果を図３に示す。【００４４】
窒素源を含まないM9-N培地(M9-N/Cm)では、大腸菌EPI300(比較例1)は、増殖が著しく阻害されるのに対し、形質転換体１(実施例１)は、速い増殖を示した。この結果から、今回得られた窒素固定酵素をコードするＤＮＡ断片を大腸菌に導入することで、窒素固定能力を付与することができることが明らかとなった。【００４５】
なお、本発明は、上記実施の形態及び実施例に限定されず種々に変形実施が可能である。
【符号の説明】
【００４６】
１  ゲノムＤＮＡ
２  ＤＮＡ断片
３  フォスミドベクター（組み換えベクター）
【図１】
2019150919.tif 000004
【図２】
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【図３】
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【配列表】
2019150919000001.app
【国際調査報告】
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2019150919.tif 000008
2019150919.tif 000009
2019150919.tif 000010