(57)【要約】  比較的大きな原子半径を有する原子を含め多様な原子による標識が可能であり、腎臓への集積を投与早期から低減できる放射性薬剤が得られる化合物等に関する。〔１〕式（１）で表される化合物等、〔２〕上記〔１〕に記載の化合物等に、標的分子認識素子を結合させてなる化合物等、〔３〕放射性金属及び放射性原子標識金属からなる群から選ばれる１種の金属と、前記金属に配位した〔１〕又は〔２〕に記載の化合物等と、を有する金属錯体化合物等、〔４〕上記〔１〕又は〔２〕に記載の化合物等を含む、放射性薬剤の調製用薬剤、〔５〕上記〔１〕又は〔２〕に記載の化合物等の放射性薬剤の製造のための使用、〔６〕上記〔３〕に記載の金属錯体化合物等を含む、放射性薬剤、〔７〕上記〔３〕に記載の金属錯体化合物等を含む放射線治療薬及び〔８〕上記〔３〕に記載の金属錯体化合物等を含む放射性画像診断薬。2019065774.tif 000072
2019065774.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
下記式（１）で表される化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩。
【化１】
2019065774.tif 000063
〔式中、
Ａ1、Ａ2は、それぞれ独立にアミノ酸残基であり、
ｍは、０〜３の整数であり、
Ａ3は、側鎖にアミノ基又はカルボキシ基を有するアミノ酸残基であり、
Ａ4は、アミノ酸残基であり、
ｎは、０〜３の整数であり、
Ｒ1は、Ａ3の側鎖のアミノ基又はカルボキシ基と結合し、標的分子認識素子又はその連結基と結合可能な官能基を有する基、又は、Ａ3の側鎖のアミノ基若しくはカルボキシ基の水素原子であり、ただし、Ｒ1は、環構成原子の一つとしてＡ3の側鎖のアミノ基の窒素原子を含む炭素数３〜１０の複素環基を形成していてもよく、
Ｌは、式（Ｌ１）：
【化２】
2019065774.tif 000064
（式中、Ｒ3，Ｒ4，Ｒ5，Ｒ6は、それぞれ独立に、水素原子、−ＣＨ2ＣＯＯＲ10基、又は炭素数１〜８の炭化水素基であり、Ｒ10は、水素原子又は炭素数１〜８の炭化水素基であり、＊は結合部位である。ただし、Ｒ3，Ｒ4，Ｒ5，Ｒ6のうち、少なくとも３個以上は−ＣＨ2ＣＯＯＨ基である。）で表される基、又は、式（Ｌ２）：
【化３】
2019065774.tif 000065
（式中、＊は結合部位である。）で表される基である。〕
【請求項２】
Ａ１からＡ４のアミノ酸配列（ただし、ｎ＝０の場合、Ａ１からＡ３のアミノ酸配列）が、腎刷子縁膜酵素の基質配列の一部と同一の配列である、請求項１に記載の化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩。
【請求項３】
Ｒ3，Ｒ4，Ｒ5，Ｒ6のうち、３個が−ＣＨ2ＣＯＯＨ基である、請求項１又は２に記載の化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩。
【請求項４】
Ａ3が、リシン、オルニチン又はアルギニンの残基である、請求項１〜３のいずれか１項に記載の化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩。
【請求項５】
ｍが、１である、請求項１〜４のいずれか１項に記載の化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩。
【請求項６】
ｎが、０である、請求項１〜５のいずれか１項に記載の化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩。
【請求項７】
前記化合物が、下記式（１ａ）で表される、請求項１〜６のいずれか１項に記載の化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩。
【化４】
2019065774.tif 000066
〔式中、
Ｌは、式（Ｌ１）：
【化５】
2019065774.tif 000067
（式中、Ｒ3，Ｒ4，Ｒ5，Ｒ6は、それぞれ独立に、水素原子、−ＣＨ2ＣＯＯＲ10基、又は炭素数１〜８の炭化水素基であり、Ｒ10は、水素原子又は炭素数１〜８の炭化水素基であり、＊は結合部位である。ただし、Ｒ3，Ｒ4，Ｒ5，Ｒ6のうち、少なくとも３以上は−ＣＨ２ＣＯＯＨ基である。）で表される基、又は、式（Ｌ２）：
【化６】
2019065774.tif 000068
（式中、＊は結合部位である。）で表される基であり、
Ｒ7は、水素原子又はメチル基であり、
Ｒ8，Ｒ9は、それぞれ独立に、水素原子、又は、官能基を有する総炭素数２〜２０のアシル基、官能基を有する総炭素数２〜２０のアルキル基、官能基を有する総炭素数２〜２０のアルキルカルバモイル基、若しくは官能基を有する総炭素数２〜２０のアルキルチオカルバモイル基である。ただし、Ｒ8及びＲ9は、隣接する窒素原子を含む複素環を形成していてもよく、その場合、式：
【化７】
2019065774.tif 000069
で表される基は、式：
【化８】
2019065774.tif 000070
で表される基である。〕
【請求項８】
Ｌが、式（Ｌ１）：
【化９】
2019065774.tif 000071
（式中、Ｒ3，Ｒ4，Ｒ5，Ｒ6は、それぞれ独立に、−ＣＨ2ＣＯＯＨ基、イソブチル基であり、＊は結合部位である。ただし、Ｒ3，Ｒ4，Ｒ5，Ｒ6のうち、３個が−ＣＨ2ＣＯＯＨ基であり、１個がイソブチル基である。）で表される基である、請求項１〜７のいずれか１項に記載の化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩。
【請求項９】
請求項１〜８のいずれか１項に記載の化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩に、標的分子認識素子を結合させてなる化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩。
【請求項１０】
放射性金属及び放射性原子標識金属からなる群から選ばれる１種の金属と、前記金属に配位した請求項１〜９のいずれか１項に記載の化合物又はその薬理的に許容可能な塩と、を有する金属錯体化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩。
【請求項１１】
前記金属が、111In、223Ra、67Ga、68Ga、44Sc、90Y、177Lu、225Ac、212Bi、213Bi、212Pb、227Th、64Cu、又は67Cuである、請求項１０に記載の金属錯体化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩。
【請求項１２】
請求項１〜１１のいずれか１項に記載の化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩を含む、放射性薬剤の調製用薬剤。
【請求項１３】
請求項１〜１１のいずれか１項に記載の化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩の放射性薬剤の製造のための使用。
【請求項１４】
請求項１０又は１１に記載の金属錯体化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩を含む、放射性薬剤。
【請求項１５】
請求項１０又は１１に記載の金属錯体化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩を含む、放射線治療薬。
【請求項１６】
請求項１０又は１１に記載の金属錯体化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩を含む、放射性画像診断薬。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、新規化合物、それを含む放射性薬剤、及び当該放射性薬剤の調製用薬剤等に関する。
【背景技術】
【０００２】
放射性同位元素(RI)標識抗体等の放射性薬剤は、抗体の高い特異性と親和性を利用して、RIを腫瘍選択的に集積することが可能である。このため、アイソトープ治療などの放射線治療や画像診断に利用されている(非特許文献１)。しかしながら放射性薬剤を生体に投与すると、標的組織への特異的な集積の他に腎臓への非特異的な集積が観察される。腎臓への放射活性の集積（以下「腎集積」ともいう）は、RI標識低分子ペプチドが腎臓に取り込まれた後、リソソームに運ばれ、代謝された後に生成する放射性代謝物が腎臓に残存することに基因する。
これに対して、特許文献１では、腎臓への集積を投与早期から低減できる放射性標識薬剤として、NOTA（1,4,7,10-テトラアザシクロドデカン-1,4,7,10-テトラ酢酸）等のキレート試薬と結合したポリペプチド部位を有する化合物及びそれを用いた放射性薬剤が報告されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００３】
【特許文献１】国際公開WO2017/150549号
【非特許文献】
【０００４】
【非特許文献１】Molecular Oncology 8: 799-812, 2014
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
特許文献１の放射性薬剤によれば、ガリウム-67や、テクネチウム-99mの放射性同位元素を使用できる。しかしながら、現在、治療用の放射性同位元素として汎用されているルテチウム-177、イットリウム-90への応用やそのコンパニオン薬剤となるインジウム-111等の比較的大きな原子半径を有する原子を含め多様な原子への応用が可能な標識薬剤は開発されていない。
そこで本発明は、比較的大きな原子半径を有する原子を含め多様な原子による標識が可能であり、腎臓への集積を低減できる放射性薬剤が得られる化合物等に関する。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
本発明は、以下の実施形態に関する。
〔１〕下記式（１）で表される化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩。
【化１】
2019065774.tif 000003
〔式中、
Ａ1、Ａ2は、それぞれ独立にアミノ酸残基であり、
ｍは、０〜３の整数であり、
Ａ3は、側鎖にアミノ基又はカルボキシ基を有するアミノ酸残基であり、
Ａ4は、アミノ酸残基であり、
ｎは、０〜３の整数であり、
Ｒ1は、Ａ3の側鎖のアミノ基又はカルボキシ基と結合し、標的分子認識素子又はその連結基と結合可能な官能基を有する基、又は、Ａ3の側鎖のアミノ基若しくはカルボキシ基の水素原子であり、ただし、Ｒ1は、環構成原子の一つとしてＡ3の側鎖のアミノ基の窒素原子を含む炭素数３〜１０の複素環基を形成していてもよく、
Ｌは、式（Ｌ１）：
【化２】
2019065774.tif 000004
（式中、Ｒ3，Ｒ4，Ｒ5，Ｒ6は、それぞれ独立に、水素原子、−ＣＨ2ＣＯＯＲ10基、又は炭素数１〜８の炭化水素基であり、Ｒ10は、水素原子又は炭素数１〜８の炭化水素基であり、＊は結合部位である。ただし、Ｒ3，Ｒ4，Ｒ5，Ｒ6のうち、少なくとも３以上は−ＣＨ2ＣＯＯＨ基である。）で表される基、又は、式（Ｌ２）：
【化３】
2019065774.tif 000005
（式中、＊は結合部位である。）で表される基である。〕
〔２〕上記〔１〕に記載の化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩に、標的分子認識素子を結合させてなる化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩。
〔３〕放射性金属及び放射性原子標識金属からなる群から選ばれる１種の金属と、前記金属に配位した〔１〕又は〔２〕に記載の化合物又はその薬理的に許容可能な塩と、を有する金属錯体化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩。
〔４〕上記〔１〕又は〔２〕に記載の化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩を含む、放射性薬剤の調製用薬剤。
〔５〕上記〔１〕又は〔２〕に記載の化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩の放射性薬剤の製造のための使用。
〔６〕上記〔３〕に記載の金属錯体化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩を含む、放射性薬剤。
〔７〕上記〔３〕に記載の金属錯体化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩の放射線治療薬。
〔８〕上記〔３〕に記載の金属錯体化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩の放射性画像診断薬。
〔９〕前記化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩が、放射性薬剤の調製用である、上記〔１〕又は〔２〕に記載の化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩。
〔１０〕上記〔３〕に記載の金属錯体化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩の放射性薬剤の製造のための使用。
〔１１〕上記〔３〕に記載の金属錯体化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩の放射線治療のための使用。
〔１２〕上記〔３〕に記載の金属錯体化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩の放射線画像診断のための使用。
〔１３〕上記〔３〕に記載の金属錯体化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩を投与する放射線治療方法。
〔１４〕上記〔３〕に記載の金属錯体化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩を投与する放射線画像診断方法。
〔１５〕上記〔１〕に記載の化合物若しくはその薬理学的に許容可能な塩、又は、上記〔１〕に記載の化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩に、標的分子認識素子を結合させてなる化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩と、放射性金属及び放射性原子標識金属からなる群から選ばれる１種の金属を含む薬剤とを、別々の包装単位として含む、キット。
【発明の効果】
【０００７】
本発明によれば、比較的大きな原子半径を有する原子を含め多様な原子による標識が可能であり、腎臓への集積を低減できる放射性薬剤が得られる化合物等が提供できる。
【図面の簡単な説明】
【０００８】
【図１】図１は、111In-CDO3AEt-FGK(Boc)とBBMVsのインキュベートの実験結果を示す。
【図２】図２は、111In-CDOTA-Bn-CO-FGK(Boc)溶液とBBMVsのインキュベートの実験結果を示す。
【図３】図３は、111In-DO3A-Bn-SCN-MVK(Bzo)とBBMVsのインキュベートの実験結果を示す。
【図４】図４は、111In-DO3A-Bn-CO-FGK(Boc)とBBMVsのインキュベートの実験結果を示す。
【図５】図５は、111In-CDO3AiBu-FGK(Boc)とBBMVsのインキュベートの実験結果を示す。
【図６】図６は、111In-CDO3AEt-FGK-Fab（Rabbit serum IgG由来）と111In-DO3A-EDA-Fab（Rabbit serum IgG由来）との結果の比較を示す。
【図７】図７は、111In-CDO3AiBu-FGK-Fab（抗c-kit IgG由来）、111In-DOTA-Bn-SCN-Fab（抗c-kit IgG由来）、及び111In-CDO3AEt-FGK-Fab（抗c-kit IgG由来）の結果の比較を示す。
【図８】図８は、111In-CDO3AEt-FGK-Fab（Rabbit serum IgG由来）をマウスに投与後24時間までに排泄された尿中放射活性の化学形の分析結果を示す。
【図９】図９は、111In-CDOTA-Bn-CO-FGK-Fab(抗c-kit IgG由来)をマウスに投与後6時間までに排泄された尿中放射活性の化学形の分析結果を示す。
【図１０】図１０は、111In-CDO3AEt-FGK-Fab（Rabbit serum IgG由来）をマウスに投与後24時間までに排泄された尿中放射活性の化学形の分析結果を示す。
【図１１】図１１は、111In-CDO3AiBu-FGK-Fab(Rabbit serum IgG由来)をマウスに投与後24時間までに排泄された尿中放射活性の化学形の分析結果を示す。
【図１２】図１２は、111In-DO3A-Bn-SCN-MVK-Fab （抗c-kit IgG由来）溶液を、又は111In-CDO3AEt-FGK-Fab（抗c-kit IgG由来）溶液をSY皮下腫瘍モデルマウスに投与後2.5時間のSPECT/CT画像である。
【発明を実施するための形態】
【０００９】
［化合物等］
＜化合物（１）等＞
本発明の化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩（以下、単に「化合物（１）等」ともいう）は、下記式（１）で表される。
【化４】
2019065774.tif 000006
〔式中、
Ａ1、Ａ2は、それぞれ独立にアミノ酸残基であり、
ｍは、０〜３の整数であり、
Ａ3は、側鎖にアミノ基又はカルボキシ基を有するアミノ酸残基であり、
Ａ4は、アミノ酸残基であり、
ｎは、０〜３の整数であり、
Ｒ1は、Ａ3の側鎖のアミノ基又はカルボキシ基と結合し、標的分子認識素子又はその連結基と結合可能な官能基を有する基、又は、Ａ3の側鎖のアミノ基若しくはカルボキシ基の水素原子であり、ただし、Ｒ1は、環構成原子の一つとしてＡ3の側鎖のアミノ基の窒素原子を含む炭素数３〜１０の複素環基を形成していてもよく、
Ｌは、式（Ｌ１）：
【化５】
2019065774.tif 000007
（式中、Ｒ3，Ｒ4，Ｒ5，Ｒ6は、それぞれ独立に、水素原子、−ＣＨ2ＣＯＯＲ10基、又は炭素数１〜８の炭化水素基であり、Ｒ10は、水素原子又は炭素数１〜８の炭化水素基であり、＊は結合部位である。ただし、Ｒ3，Ｒ4，Ｒ5，Ｒ6のうち、少なくとも３以上は−ＣＨ2ＣＯＯＨ基である。）で表される基、又は、式（Ｌ２）：
【化６】
2019065774.tif 000008
（式中、＊は結合部位である。）で表される基である。〕
本発明によれば、インジウム-111による標識が可能であり、腎臓への集積を低減できる放射性薬剤が得られる化合物等が提供できる。更に、本発明の放射性薬剤は、標的分子認識素子を有するため、標的部位に特異的に結合することができ、そのため標的部位に効率的に集積する。このような性質のため、本発明の放射性薬剤は、放射線治療において腫瘍部位に特異的に集積し、放射線画像診断においては、その感度、精度を向上させることができる。
【００１０】
本発明の効果が得られる理由は定かではないが、以下のように考えられる。
放射性薬剤の投与後、当該薬剤が腎細胞に取り込まれる際に、効率よく尿排泄性の放射性代謝物を遊離することができれば、腎臓への放射活性の集積を低減することができると考えられる。そのため、放射性薬剤が腎細胞に取り込まれる際に、効率よく放射性標識元素を包摂するキレート配位子部位を遊離できるように、ポリペプチドとキレート配位子部位との間に腎刷子縁膜酵素の基質配列を導入する。そうすることで、腎細胞に取り込まれる前に、ポリペプチドとキレート配位子部位がポリペプチドから遊離され、腎臓への放射性物質の取り込みを抑制し投与早期から腎臓への集積を低減することができるものと推測される。
インジウム-111による標識を可能とするため、式（Ｌ１）又は式（Ｌ２）で表される基を、キレート配位子部位として、導入することを検討した。この場合、例えば、特許文献１に記載された化合物のように、キレート薬剤部位と、ポリペプチド部位とを連結する構造として、チオウレア構造を導入することも考えられた。しかしながら、キレート薬剤として、式（Ｌ１）又は式（Ｌ２）で示される基を有する化合物を用いた場合には、当該チオウレア構造を有する連結基を導入すると、腎刷子縁膜酵素による分解が進行しないことが、発明者らの実験から明らかになった。これに対して、式（１）で示される化合物のように特定構造の連結基を導入することで、腎刷子縁膜酵素による分解が進行し、腎臓への放射活性の集積を低減することができることが明らかになった。
【００１１】
本発明の化合物（１）等は、式（１）において、Ａ１からＡ４のアミノ酸配列（ただし、ｎ＝０の場合、Ａ１からＡ３のアミノ酸配列）は、腎臓への集積を投与早期から低減する観点から、好ましくは腎刷子縁膜酵素の基質配列の一部と同一の配列である。
Ａ1は、腎臓への集積を投与早期から低減する観点から、好ましくは、フェニルアラニン、メチオニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、プロリン、チロシン、グリシン、アラニン又はトリプトファンの残基であり、より好ましくは、フェニルアラニン、グリシン、アラニン又はメチオニンの残基であり、腎臓への集積を投与早期から低減する効果をより顕著にする観点から、更に好ましくはフェニルアラニンの残基である。
【００１２】
Ａ2は、腎臓への集積を投与早期から低減する観点から、好ましくは、グリシン、フェニルアラニン、メチオニン、バリン、ロイシン、イソロイシン、プロリン、チロシン、アラニン又はトリプトファンの残基であり、より好ましくは、グリシン、フェニルアラニン、アラニン、バリン又はイソロイシンの残基であり、腎臓への集積を投与早期から低減する効果をより顕著にする観点から、更に好ましくはグリシンの残基である。
なお、ｍは、０〜３の整数であり、好ましくは１である。
【００１３】
Ａ3は、アミノ酸配列の側鎖に、ポリペプチド又はその連結基と結合可能な官能基を導入する観点から、側鎖にアミノ基又はカルボキシ基を有するアミノ酸残基であり、好ましくは、リシン、オルニチン、アルギニン、アスパラギン酸又はグルタミン酸の残基であり、より好ましくは、リシン、オルニチン又はアルギニンの残基であり、更に好ましくはリシンの残基である。
なお、Ａ4として、他のアミノ酸残基を有していてもよい。Ａ4としては、任意のアミノ酸が用いられる。
ｎは、０〜３の整数であり、好ましくは０である。
【００１４】
Ｒ1は、標的分子認識素子又はその連結基と結合可能な官能基を有する基、又は、Ａ2の側鎖のアミノ基若しくはカルボキシ基の水素原子であり、Ａ3の側鎖のアミノ基又はカルボキシ基と結合する。ただし、Ｒ1は、環構成原子の一つとしてＡ3の側鎖のアミノ基の窒素原子を含む炭素数３〜１０の複素環基を形成していてもよい。
Ｒ1は、スペーサーとして機能し、官能基を介してポリペプチド等の標的分子認識素子を本発明の化合物に結合することができる。Ｒ1は、Ａ3の側鎖のアミノ基又はカルボキシ基と結合することで、アミノ酸配列末端を化学修飾せず、本発明の化合物とポリペプチドとを結合することができる。
Ｒ1は、側鎖のアミノ基の窒素原子と結合していてもよいし、側鎖のカルボキシ基とエステル結合を形成していてもよい。
Ｒ1の標的分子認識素子又はその連結基と結合可能な官能基は、特に限定されないが、例えば、カルボキシ基又はその活性エステル；マレイミド基、アクリロイル基等のC=C結合を有する基；カルバモイル基、イソチオシアナート基、及びアミノ基からなる群から選ばれる少なくとも１種の官能基（以下「官能基ａ」ともいう）が挙げられる。カルボキシ基の活性エステルとしては、クロロアセチル基、ブロモアセチル基、ヨードアセチル基等が挙げられる。これらの中でも、官能基ａは、C=C結合を有する基、カルバモイル基が好ましい。
Ｒ1の総炭素数は、特に限定されないが、例えば、好ましくは１以上、より好ましくは２以上、更に好ましくは３以上であり、そして、好ましくは２０以下、より好ましくは１０以下、更に好ましくは８以下である。
Ｒ1としては、例えば、官能基ａを有する総炭素数２〜２０のアシル基、官能基ａを有する総炭素数２〜２０のアルキル基、官能基ａを有する総炭素数２〜２０のアルキルカルバモイル基、官能基ａを有する総炭素数２〜２０のアルキルチオカルバモイル基が挙げられる。
Ｒ1が複素環基を形成する場合、複素環基はマレイミド基が好ましい。
Ｒ1が複素環基を形成する場合、複素環基の炭素数は、好ましくは３〜１０、より好ましくは３〜５、更に好ましくは４又は５である。
Ｒ1は、Ａ3の側鎖のアミノ基若しくはカルボキシ基の水素原子であってもよい。つまり、Ａ3のアミノ基若しくはカルボキシ基は、修飾されていなくてもよい。
Ｒ1の中でも、環構成原子の一つとしてＡ3の側鎖のアミノ基の窒素原子を含む炭素数３〜１０の複素環基が好ましく、環構成原子の一つとしてＡ3の側鎖のアミノ基の窒素原子を含むマレイミド基がより好ましい。
【００１５】
Ｌは、式（Ｌ１）：
【化７】
2019065774.tif 000009
で表される基、又は、式（Ｌ２）：
【化８】
2019065774.tif 000010
で表される基である。
式（Ｌ１）で表される基に関して、Ｒ3，Ｒ4，Ｒ5，Ｒ6のうち、好ましくは３個以上４個以下が−ＣＨ2ＣＯＯＨ基であり、より好ましくは３個が−ＣＨ2ＣＯＯＨ基である。
−ＣＨ2ＣＯＯＲ10基として、Ｒ10は、水素原子又は炭素数１〜８の炭化水素基である。
Ｒ3，Ｒ4，Ｒ5，Ｒ6のうち、−ＣＨ2ＣＯＯＨ基以外の基は、好ましくは炭素数１〜８の炭化水素基であり、より好ましくは炭素数１〜４の炭化水素基である。
Ｒ3，Ｒ4，Ｒ5，Ｒ6のうち、少なくとも１つの基は、腎臓への集積を低減する観点から、好ましくは炭素数３〜８の炭化水素基であり、より好ましくは炭素数４〜６の炭化水素基である。
当該炭化水素基は、好ましくは、脂肪族炭化水素基であり、より好ましくは分岐鎖脂肪族炭化水素基である。
当該炭化水素基としては、例えば、メチル基、エチル基、n-プロピル基、イソプロピル基、n-ブチル基、sec-ブチル基、イソブチル基が挙げられる。
これらの中でも、腎臓への集積を低減する観点から、エチル基、n-ブチル基、sec-ブチル基、イソブチル基が好ましく、n-ブチル基、sec-ブチル基、イソブチル基がより好ましく、イソブチル基が更に好ましい。
これらの中でも、Ｌは、好ましくは、式（Ｌ１）：
【化９】
2019065774.tif 000011
（式中、Ｒ3，Ｒ4，Ｒ5，Ｒ6は、−ＣＨ2ＣＯＯＨ基、又は炭素数１〜８の炭化水素基であり、＊は結合部位である。ただし、Ｒ3，Ｒ4，Ｒ5，Ｒ6のうち、３個は−ＣＨ2ＣＯＯＨ基である。）で表される基である。
Ｌとしては、式（Ｌ１−１），式（Ｌ１−２），式（Ｌ１−３），式（Ｌ１−４），式（Ｌ１−５），式（Ｌ１−６），式（Ｌ１−７），式（Ｌ１−８），式（Ｌ１−９）及び式（Ｌ２）からなる群から選ばれる少なくとも１種が好ましい。
【化１０】
2019065774.tif 000012
【化１１】
2019065774.tif 000013
（以上、式中、＊は結合部位である。）
【００１６】
以上の本発明の化合物（１）の中でも、下記式（１ａ）で表される化合物が好ましい。
【化１２】
2019065774.tif 000014
〔式中、
Ｌは、式（Ｌ１）：
【化１３】
2019065774.tif 000015
（式中、Ｒ3，Ｒ4，Ｒ5，Ｒ6は、それぞれ独立に、水素原子、−ＣＨ2ＣＯＯＲ10基、又は炭素数１〜８の炭化水素基であり、Ｒ10は、水素原子又は炭素数１〜８の炭化水素基であり、＊は結合部位である。ただし、Ｒ3，Ｒ4，Ｒ5，Ｒ6のうち、少なくとも３個以上は−ＣＨ2ＣＯＯＨ基である。）で表される基、又は、式（Ｌ２）：
【化１４】
2019065774.tif 000016
（式中、＊は結合部位である。）で表される基であり、
Ｒ7は、水素原子又はメチル基であり、
Ｒ8，Ｒ9は、それぞれ独立に、水素原子、又は、官能基ａを有する総炭素数２〜２０のアシル基、官能基ａを有する総炭素数２〜２０のアルキル基、官能基ａを有する総炭素数２〜２０のアルキルカルバモイル基、若しくは官能基ａを有する総炭素数２〜２０のアルキルチオカルバモイル基である。ただし、Ｒ8及びＲ9は、隣接する窒素原子を含む複素環を形成していてもよく、その場合、式：
【化１５】
2019065774.tif 000017
で表される基は、式：
【化１６】
2019065774.tif 000018
で表される基である。〕
Ｒ8，Ｒ9は、好ましくは官能基ａを有する総炭素数２〜２０のアシル基であり、より好ましくはカルバモイル基を有する総炭素数３〜６のアシル基である。カルバモイル基を有する総炭素数３〜６のアシル基としては、例えば、式：―Ｃ（＝Ｏ）（ＣＨ2）ａ（＝Ｏ）ＮＨ２〔式中、ａは１〜４の整数である。〕で表される基が挙げられる。
【００１７】
上記式（１ａ）で表される化合物は、好ましくは、式中、Ｌが、式（Ｌ１）：
【化１７】
2019065774.tif 000019
（式中、Ｒ3，Ｒ4，Ｒ5，Ｒ6は、それぞれ独立に、−ＣＨ2ＣＯＯＨ基、又は炭素数１〜８の炭化水素基であり、＊は結合部位である。ただし、Ｒ3，Ｒ4，Ｒ5，Ｒ6のうち、３個が−ＣＨ2ＣＯＯＨ基であり、１個が炭素数１〜８の炭化水素基である。）で表される基であり、
より好ましくは、式中、Ｌが、式（Ｌ１）：
【化１８】
2019065774.tif 000020
（式中、Ｒ3，Ｒ4，Ｒ5，Ｒ6は、それぞれ独立に、−ＣＨ2ＣＯＯＨ基、エチル基、又はブチル基であり、＊は結合部位である。ただし、Ｒ3，Ｒ4，Ｒ5，Ｒ6のうち、３個が−ＣＨ2ＣＯＯＨ基であり、１個がエチル基、又はブチル基である。）で表される基であり、
更に好ましくは、式中、Ｌが、式（Ｌ１）：
【化１９】
2019065774.tif 000021
（式中、Ｒ3，Ｒ4，Ｒ5，Ｒ6は、それぞれ独立に、−ＣＨ2ＣＯＯＨ基、イソブチル基であり、＊は結合部位である。ただし、Ｒ3，Ｒ4，Ｒ5，Ｒ6のうち、３個が−ＣＨ2ＣＯＯＨ基であり、１個がイソブチル基である。）で表される基である。
【００１８】
上記本発明の化合物（１）の好ましい具体例として、下記の化合物１−１〜化合物１−６が挙げられる。
【００１９】
【化２０】
2019065774.tif 000022
【００２０】
【化２１】
2019065774.tif 000023
【００２１】
【化２２】
2019065774.tif 000024
【００２２】
【化２３】
2019065774.tif 000025
【００２３】
本発明の化合物（１）等は、上記化合物の薬理学的に許容可能な塩であってもよい。
薬理学的に許容可能な塩としては、例えば、酸付加塩、塩基付加塩が挙げられる。
酸付加塩としては、無機酸塩、有機酸塩のいずれであってもよい。
無機酸塩としては、例えば、塩酸塩、臭化水素酸塩、硫酸塩、ヨウ化水素酸塩、硝酸塩、リン酸塩が挙げられる。
有機酸塩としては、例えば、クエン酸塩、シュウ酸塩、酢酸塩、ギ酸塩、プロピオン酸塩、安息香酸塩、トリフルオロ酢酸塩、マレイン酸塩、酒石酸塩、メタンスルホン酸塩、ベンゼンスルホン酸塩、パラトルエンスルホン酸塩が挙げられる。
塩基付加塩としては、無機塩基塩、有機塩基塩のいずれであってもよい。
無機塩基塩としては、例えば、ナトリウム塩、カリウム塩、カルシウム塩、マグネシウム塩、アンモニウム塩が挙げられる。
有機塩基塩としては、例えば、トリエチルアンモニウム塩、トリエタノールアンモニウム塩、ピリジニウム塩、ジイソプロピルアンモニウム塩が挙げられる。
【００２４】
＜化合物（２）等＞
本発明の化合物（２）等は、化合物（１）、又はその薬理学的に許容可能な塩に、標的分子認識素子を結合させてなる化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩である。標的分子認識素子は、化合物（１）、又はその薬理学的に許容可能な塩に、連結基を介して結合していてもよいし、直接結合していてもよい。連結基としては、2-イミノチオランから誘導されるイミノチオールが挙げられる。
【００２５】
〔標的分子認識素子〕
「標的分子認識素子」とは、生体内において、標的分子に結合する等の標的分子を認識可能な分子、置換基、官能基又は原子団である。
標的分子認識素子としては、例えば、ポリペプチド、その他、標的分子に結合するリガンドが挙げられる。
ポリペプチドは、通常、標的分子に結合するポリペプチドであり、好ましくは標的分子に特異的に結合するポリペプチドである。特異的に結合するとは、標的分子に結合するが、標的分子以外の分子には結合しないか、弱い結合であることをいう。
標的分子とは、放射性薬剤による診断の対象となる標的部位、例えば、組織や細胞に存在する分子、好ましくは特異的に発現する分子をいう。「特異的に発現する」とは、標的部位に発現するが、標的部位以外の部位には発現しないか、低い発現であることをいう。
【００２６】
標的分子認識素子としては、例えば、炎症や腫瘍細胞浸潤等に伴う組織構築において高い発現が認められるタンパク質や腫瘍細胞に特異的に発現するタンパク質に結合するリガンド、並びに、抗体及び抗体の抗原結合領域断片が挙げられる。
【００２７】
抗体としては、例えば、抗CD25抗体、抗CD20抗体等のモノクローナル抗体が挙げられる。
抗体の抗原結合領域断片としては、例えば、Fab断片（以下単に「Fab」ともいう）、F(ab')2断片、F(ab)2断片、可変領域断片（以下、「Fv断片」ともいう）が挙げられる。
Fab断片とは、抗体のパパイン分解により生ずるN末端側の産物及びこれと同様のドメイン構造を有する断片を意味する。
F(ab')2断片とは、抗体のF(ab')2のヒンジ領域のジスルフィド結合を還元することにより得られる断片及びこれと同様のドメイン構造を有する断片を意味する。
F(ab)2断片とは、2分子のFab断片が互いにジスルフィド結合で結合した二量体を意味する。
Fv断片とは、抗体の断片であって抗原との結合活性を有する最小の断片を意味する。
抗体の抗原結合領域断片としては、より具体的には、特定のがん細胞に特異的に発現するタンパク質に対する抗体、及び、そのFab断片若しくはFv断片が挙げられる。
【００２８】
その他の標的分子認識素子としては、がんの新生血管に高発現が認められるインテグリンに親和性を有する環状ペンタペプチド、例えばシクロ-Arg-Gly-Asp-D-Phe-Lys（以下、「c(RGDfK)」ともいう）が挙げられる。その他、造骨性のがん（骨転移）に多く存在するヒドロキシアパタイトへの親和性を有するビスフォスフォン酸やオリゴアスパラギン酸、オリゴグルタミン酸、マクロファージの表面に存在する走査因子の受容体と親和性があるペプチドであるfMet-Leu-Phe（fMLP）、がん細胞に発現が認められる葉酸受容体と結合する葉酸とその誘導体等が挙げられる。
なお、標的分子認識素子は、これら例示されたポリペプチドに限定されず、標的分子に結合するポリペプチドであればいずれを使用することもできる。
【００２９】
標的分子認識素子は、例えば、2-イミノチオラン等のチオール化試薬を用いて、化合物の官能基と反応する連結基を導入して結合させてもよい。Fab断片への当該連結基の導入は、上記チオール化試薬をpH7-9の条件で反応させることによって、Fab断面のアミノ基に対してするスルフヒドリル基を付加させることができる。
【００３０】
標的分子認識素子としては、例えば、Asn-urea-Lys 部位又はGlu-urea-Lys 部位を有するリガンドを用いてもよい。当該リガンドによれば、前立腺がんにおいて発現が著しく上昇する前立腺特異的膜抗原（prostate specific membrane antigen）のレセプターに選択的に結合する。
Asn-urea-Lys 部位とは、式：
【化２４】
2019065774.tif 000026
〔式中、＊は結合部位である。〕で表される部位である。
Glu-urea-Lys 部位とは、式：
【化２５】
2019065774.tif 000027
〔式中、＊は結合部位である。〕で表される部位である。
【００３１】
上述の他、例えば、特定の官能基ｆ１を導入した上述のポリペプチド、その他、標的分子に結合するリガンドを、炎症や腫瘍細胞浸潤等に伴う組織構築において高い発現が認められるタンパク質や腫瘍細胞に特異的に発現するタンパク質等の標的分子に結合させ、標的分子認識素子として、官能基ｆ１と反応し結合を形成する官能基ｆ２を有する化合物（２）等を投与し、標的分子を認識する方法が挙げられる［Chemical Society Reviews 45: 6409-6658, 2016, Chemical Society Reviews 42: 5131-5142, 2013］。
【００３２】
官能基ｆ１としては、例えば、下記の式（ｆ１−１），式（ｆ１−２），又は式（ｆ１−３）で表される基が挙げられる。
【化２６】
2019065774.tif 000028
〔式中、＊は結合部位である。〕
【００３３】
官能基ｆ２としては、例えば、下記の式（ｆ２−１），式（ｆ２−２），式（ｆ２−３），式（ｆ２−４），又は式（ｆ２−５）で表される基が挙げられる。
【化２７】
2019065774.tif 000029
〔式中、＊は結合部位である。〕
【００３４】
本発明の化合物（２）等を使用して、当該化合物を含む放射性薬剤の調製用薬剤を提供できる。
放射性薬剤の調製用薬剤は、当該化合物の他に、水性緩衝液などのｐＨ調節剤、アスコルビン酸、p-アミノ安息香酸等の安定化剤等を含んでいてもよい。
【００３５】
本発明の化合物（２）等としては、例えば、以下の式（２）で表される化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩が挙げられる。
【００３６】
【化２８】
2019065774.tif 000030
〔式中、Ａ1，Ａ2，m，Ａ3，Ａ4，n，Ｒ1，Lは式（１）と同様であり、
Ｌ1は、Ｒ1とＰ1を連結する連結基であり、
ｐは０又は１であり、
Ｐ1は、標的分子認識素子である。〕
Ｌ1は、Ｒ1の連結基と連結可能な官能基により結合を形成し、標的分子認識素子とも結合を形成する。Ｌ1は、好ましくは、2-イミノチオランから誘導されるイミノチオール等である。
ｐは、好ましくは１である。
P1は、例えば、上述の標的分子認識素子であり、好ましくはポリペプチド、その他標的分子に結合するリガンド、又は、式（ｆ２−１），式（ｆ２−２），式（ｆ２−３），式（ｆ２−４），又は式（ｆ２−５）で表される官能基ｆ２である。
【００３７】
上記本発明の化合物（２）の好ましい具体例として、下記の化合物２−１〜化合物２−４が挙げられる。ただし、下記の式中Ｆａｂは、Ｆａｂ断片部位を意味する。
【００３８】
【化２９】
2019065774.tif 000031
【００３９】
【化３０】
2019065774.tif 000032
【００４０】
【化３１】
2019065774.tif 000033
【００４１】
【化３２】
2019065774.tif 000034
【００４２】
＜金属錯体化合物（３）等＞
本発明の金属錯体化合物、又はその薬理学的に許容可能な塩（以下「金属錯体化合物（３）等」ともいう）は、放射性金属及び放射性原子標識金属からなる群から選ばれる１種の金属と、前記金属に配位した本発明の化合物又はその薬理的に許容可能な塩と、を有する。
【００４３】
本発明の金属錯体化合物（３）等を含む、放射性薬剤は、金属錯体化合物（３）等の他に未反応物や不純物を含んでいてもよいし、製造後に高速液体クロマトグラフィ（HPLC）法等により精製された金属錯体化合物（３）等を含むものであってもよい。
【００４４】
用語「錯体」とは、金属及び金属類似元素の原子又はイオンを中心にして、配位子が配位した物質を意味し、配位化合物ともいう。配位とは、配位子が中心の金属と配位結合を形成して中心金属の周囲に配列することをいう。錯体は、配位子と金属との配位結合により形成される。配位子と金属による錯体の形成を、錯形成と称することがある。配位結合とは、1本の結合にあずかる2個の原子価電子が、一方の原子のみから提供されている結合をいう。
【００４５】
〔金属〕
金属としては、例えば、111In、223Ra、67Ga、68Ga、44Sc、90Y、177Lu、225Ac、212Bi、213Bi、212Pb、227Th、64Cu、67Cuが挙げられる。
金属は、好ましくは111In、223Ra、67Ga、68Ga、90Y、177Lu、225Ac、212Bi、213Bi、212Pb、及び227Thからなる群から選ばれる少なくとも１種であり、より好ましくは111In、90Y、177Lu、225Ac、212Bi、213Bi及び212Pbからなる群から選ばれる少なくとも１種であり、更に好ましくは111In、90Y、177Lu及び225Acである。
【００４６】
金属は、これら具体例に限定されず、放射性薬剤を用いた診断等の目的に適当な放射線、放射線量、半減期を有する限りにおいていずれも使用することができる。放射線画像診断において正常な組織や細胞への影響を少なくするという観点から、短半減期金属放射性同位体が好ましく使用される。
【００４７】
金属錯体化合物（３）等の製造は、標的分子認識素子と結合させた上記化合物を配位子として用い、金属放射性同位体とインビトロで錯形成させることにより実施できる。錯形成は、従来知られている錯形成反応を利用する簡便な操作で実施できる。
【００４８】
本発明の金属錯体化合物（３）としては、例えば、化合物（１）のＬが、式（Ｌ１−４）、式（Ｌ１−５）、式（Ｌ１−９）又は式（Ｌ２）で表される基である場合を例にとれば、以下の式（３−１）で表される金属錯体化合物が挙げられる。
【００４９】
【化３３】
2019065774.tif 000035
〔式中、Ａ1，Ａ2，m，Ａ3，Ａ4，n，Ｒ1は、式（１）と同様であり、
Ｌ’は、式（Ｌ１’−４）、式（Ｌ１’−５）、式（Ｌ１’−９）、又は式（Ｌ２’）：
【化３４】
2019065774.tif 000036
（式中、Ｍは、111In、223Ra、67Ga、68Ga、44Sc、90Y、177Lu、225Ac、212Bi、213Bi、212Pb、227Th、64Cu、又は67Cuである。）で表される基である。〕
【００５０】
本発明の金属錯体化合物（３）としては、例えば、化合物（２）のＬが、式（Ｌ１−４）、式（Ｌ１−５）、式（Ｌ１−９）、又は式（Ｌ２）で表される基である場合を例にとれば、以下の式（３−２）で表される金属錯体化合物が挙げられる。
【００５１】
【化３５】
2019065774.tif 000037
〔式中、Ａ1，Ａ2，m，Ａ3，Ａ4，n，Ｒ1は、式（１）と同様であり、
Ｌ1，p，Ｐ1は、式（２）と同様であり、
Ｌ’は、式（Ｌ１’−４）、式（Ｌ１’−５）、式（Ｌ１’−９）又は式（Ｌ２’）：
【化３６】
2019065774.tif 000038
（式中、Ｍは、111In、223Ra、67Ga、68Ga、44Sc、90Y、177Lu、225Ac、212Bi、213Bi、212Pb、227Th、64Cu、又は67Cuである。）で表される基である。〕
【００５２】
本発明の放射性薬剤は、上記放射性標識ポリペプチドを有効成分として含む他、必要に応じて、１種類又は２種類以上の医薬的に許容される担体（医薬用担体）を含む医薬組成物として調製できる。医薬用担体として、水性緩衝液、酸、及び塩基などのpH調節剤、アスコルビン酸やp-アミノ安息香酸などの安定化剤、D-マンニトールなどの賦形剤、等張化剤、並びに保存剤などを例示できる。また、放射化学的純度を改良するのに役立つクエン酸、酒石酸、マロン酸、グルコン酸ナトリウム、グルコヘプトン酸ナトリウムなどの化合物を添加してもよい。本発明の放射性薬剤は、水溶液の形態、凍結溶液の形態、及び凍結乾燥品のいずれでも提供が可能である。
【００５３】
本発明のキットは、上記化合物と、上記金属を含む薬剤とを、別々の包装単位として含む。
本発明のキットは、例えば、化合物（１）等と、標的分子認識素子を含む薬剤と、放射性金属及び放射性原子標識金属からなる群から選ばれる１種の金属を含む薬剤とを、別々の包装単位として含むキット；化合物（１）等に標的分子認識素子を結合させてなる化合物（２）等と、放射性金属及び放射性原子標識金属からなる群から選ばれる１種の金属を含む薬剤とを、別々の包装単位として含むキットが挙げられる。
キットに含まれる化合物及び薬剤はいずれも、必要に応じて、上記のような1種類又は2種類以上の医薬的に許容される担体（医薬用担体）を含むことができる。
【００５４】
［製造方法］
本発明の化合物（１）等、及び、当該化合物（１）等に標的分子認識素子を結合させてなる化合物（２）等は、公知の方法を用いて合成することができ、例えば、本明細書の実施例に記載された方法により製造することができる。
本発明の金属錯体化合物（３）等は、化合物（２）等を配位子として用い、金属放射性金属又は放射性原子標識金属とインビトロで錯形成させることにより、製造することができる。錯形成は、公知の方法を用いて行うことができる。
【００５５】
［用法容量］
本発明の金属錯体化合物等は、例えば、放射線治療又は放射線画像診断に用いられる放射性薬剤として使用される。
【００５６】
本発明の金属錯体化合物等は、その有効量をヒトを含む哺乳動物に投与することによって癌を抑制する放射線治療に使用することができる。抗癌剤として使用する場合、例えば、癌の発生、又は転移・着床、再発を防止するという予防的作用、並びに癌細胞の増殖を抑制したり、癌を縮小することによって癌の進行を阻止したり、症状を改善させるという治療的作用の両方を含む最も広い意味を有し、いかなる場合においても限定的に解釈されるものではない。
放射線治療薬として用いられる、放射性金属及び放射性原子標識金属からなる群から選ばれる１種の金属は、例えば、アルファ線放出核種、ベータ線放出核種、ガンマ線放出核種、ポジトロン放出核種が挙げられる。これらの中でも、放射線治療の用途では、ベータ線放出核種（即ち、β線を放出する核種）が好ましい。
【００５７】
放射線画像診断としては、例えば、単一光子放射断層撮影（Single Photon Emission Computed Tomography, 以下単に「SPECT」ともいう）、陽電子放射断層撮影（Positron Emission Tomography, 以下単に「PET」ともいう）等が挙げられる。
診断としては、特に限定されず、腫瘍、炎症、感染症、心循環器疾患、脳・中枢系疾患等の各種疾患及び臓器・組織の放射線画像診断等に用いられ、好ましくは、がんの放射線画像診断に使用される。
診断の対象となる標的の特性にしたがって、標的分子認識素子を選択することにより、多種類多様な標的の診断や治療が可能であり、本発明の放射性薬剤は診断の分野で放射性画像診断薬として広く使用できる。
【００５８】
本発明の放射性薬剤の投与経路としては、例えば、静脈内投与若しくは動脈内投与などの非経口投与、経口投与が挙げられ、静脈内投与が好ましい。
投与経路はこれら経路に限定されず、放射性薬剤の投与後に、その作用が有効に発現し得る経路であればいずれも利用できる。
【００５９】
本発明の放射性薬剤の放射活性強度は、本薬剤を投与することにより目的を達成し得る強度であり、且つ、被験者の放射線被爆が可能な限り低い臨床投与量である限りにおいて任意である。
放射性強度は、放射性薬剤を使用する一般的な診断方法や治療方法で使用されている放射活性強度を参考にして決定できる。その投与量は患者の年齢、体重、適当な放射線イメージング装置、及び対象疾患の状態等の諸条件を考慮し、イメージングが可能と考えられる放射能及び投与量が決定される。
【００６０】
ヒトを対象とする場合、放射性薬剤における放射能量は、以下のとおりである。
通常、放射線治療に使用されることが想定され、その診断薬剤の投与量は、特に限定されないが、例えば、放射性金属（例えば111In）の放射能量として1.0MBq/kg〜3.0MBq/kgである。
【００６１】
以上、本発明によれば、腎臓への集積を投与早期から低減できる放射性薬剤が得られる化合物が提供できる。
【実施例】
【００６２】
以下に説明する本発明の実施例は例示のみを目的とし、本発明の技術的範囲を限定するものではない。なお、以下の実験は、千葉大学の動物倫理委員会によって承認された後に実施された。【００６３】
下記実施例及び比較例で、置換基、化合物、及び有機溶媒について、下記の略号を使用した。
Fmoc：フルオレニルメトキシカルボニル基
Boc：tert-ブトキシカルボニル基
THF:テトラヒドロフラン
NMM:N-メチルモルフォリン
DMF：ジメチルホルムアミド
Tfa:トリフルオロアセテイト基
DCC: N,N'-ジシクロヘキシルカルボジイミド
Trt(2-Cl)：２-クロロトリチル基
Cl-Trt(2-Cl)Resin：２‐クロロトリチルクロライドレジン（2-Chlorotrityl chloride resin）
Fmoc-Lys(Dde)-OH：N-α-(9-フルオレニルメトキシカルボニル)-N-ε-[1-(4,4-ジメチル-2,6-ジオキソシクロヘキシリデン)エチル]-L-リシン
TFA：トリフルオロ酢酸
MeCN：アセトニトリル
DIPEA：N,N-ジイソプロピルエチルアミン
DIC：N,N'-ジイソプロピルカルボジイミド
HOBt：1-ヒドロキシベンゾトリアゾール
NMCM：N-メトキシカルボニルマレイミド
EDTA：エチレンジアミン四酢酸
DPS：2,2'-ジピリジルジスルフィド
EtOH：エタノール
FBS：ウシ胎児血清
D-PBS：ダルベッコリン酸緩衝生理食塩液
EGTA：グリコールエーテルジアミン四酢酸【００６４】
［測定方法、実験動物］
下記実施例及び比較例において、各種物性等の測定方法は下記の方法で行った。【００６５】
〔NMR（核磁気共鳴）〕
1H-NMRによる分析はJEOL ECS - 400 spectrometer (日本電子株式会社)を使用した。
〔ESI-MS（エレクトロスプレーイオン化質量分析）〕
ESI-MSによる分析はHPLC1200 series-6130 quadrupole LC/MS mass spectrometer (アジレント・テクノロジー株式会社)を使用した。【００６６】
〔薄層クロマトグラフィ(TLC)〕
薄層クロマトグラフィ(TLC)による分析にはシリカプレート (TLC aluminium sheets Silica gel 60 RP-18 F254s, メルク株式会社)を使用し、0.1 M 酢酸アンモニウム水溶液:メタノール= 1 : 1の展開溶媒で10 cm展開したものを5 mmずつ切断し、オートウェルガンマシステム(WIZARD3, パーキンエルマー社)によりそれぞれの画分の放射活性を測定した。【００６７】
〔セルロースアセテート膜電気泳動(CAE)〕
セルロースアセテート膜電気泳動(以下「CAE」ともいう)では泳動膜に11 cm x 1 cmの大きさに切ったセルロースアセテート膜(ADVANTEC SELECA-V, 東洋濾紙株式会社), 緩衝液に(veronal buffer, pH 8.6, I=0.06)又はsolvent 2 (20 mM P.B. (pH 6.0))を用いて、一定電流(1 mA/cm)にて泳動した。泳動後のセルロースアセテート膜を5 mmずつ切断し、オートウェルガンマシステムによりそれぞれの画分の放射活性を測定した。【００６８】
〔逆相高速液体クロマトグラフィ(RP-HPLC)及び分子ふるい高速液体クロマトグラフィ(SE-HPLC)〕
（分析）
逆相高速液体クロマトグラフィ(以下「RP-HPLC」ともいう)による分析はUV検出器としてL-7405 (株式会社日立製作所)、送液ポンプとしてL-7100(株式会社日立製作所)、分析用カラムとしてCosmosil 5C18-AR-300 column (4.6 x 150 mm，ナカライテスク株式会社)を使用した。
移動相には0.1% (v/v) TFA/H2O (A相)と0.1% (v/v) TFA/MeCN (B相)を用い、0-20 minまでA相95% (v/v)、B相5%(v/v)からA相70%(v/v)、B相30%(v/v)まで変化させ、20-40 minでA相70%(v/v)、B相30%(v/v)からA相0%(v/v)、B相100%(v/v)まで変化させる直線グラジエント法により流速1.0 mL/minで溶出した。【００６９】
（分取）
RP-HPLCによる分取にはガードカラムCadenza 5CD-C18 guard column (10 x 8 mm，インタクト株式会社)を連結したCadenza 5CD-C18 column (20 x 150 mm，インタクト株式会社)を使用した。
移動相には0.1%(v/v) TFA/H2O (A相)と0.1%(v/v) TFA/MeCN (B相)を用い、0-30 minまでA相90%(v/v)、B相10%(v/v)からA相20%(v/v)、B相80%(v/v)まで変化させ、30-40 minでA相20%(v/v)、B相80%(v/v)からA相0%(v/v)、B相100%(v/v)まで変化させる直線グラジエント法により流速5.0 mL/minで溶出した。【００７０】
分子ふるいHPLC (以下「SE-HPLC」ともいう)による分析はCosmosil 5 Diol-300II (7.5×600 mm, ナカライテスク株式会社)にCosmosil 5 Diol-300II ガードカラム (7.5×50mm, ナカライテスク株式会社) を接続し、移動相に0.1 M リン酸緩衝液 (pH 6.8) を使用して流速1.0 mL/minで溶出した。【００７１】
溶出液はRP-HPLCでは254 nm、SE-HPLCでは280 nmの吸光度を計測し、67Ga標識化合物の分析にはγ線検出器 Gabi star (Raytest社) をオンラインで接続、若しくは溶出液をフラクションコレクター (Frac-920, GEヘルスケア・ジャパン株式会社) により0.5分間隔で分取後、オートウェルガンマシステムにより放射活性を測定することで分析した。【００７２】
〔試薬〕
下記合成例における、「DO3A-EDA (Mal)」は、下記の式で表される化合物であり、Macrocyclics社製の商品名「B-272」を使用した。
【化３７】
2019065774.tif 000039
【００７３】
〔実験動物〕
動物実験は、雄性のddY系SPFマウス6週齢 及び雄性のBALB/c-nu/nuマウス(日本エスエルシー株式会社)を使用した。【００７４】
［CDO3AEt-FGK, CDO3AEt-FGK(Mal), CDO3AEt-FGK(Boc)の合成］
合成例L1：化合物(a13)の合成
【化３８】
2019065774.tif 000040
【００７５】
合成例L1(a): 化合物(a3)の合成
化合物(a1)（7.97 g、20.4 mmol）をTHF 40 mLに溶解し-15°Cに冷却後、アルゴン雰囲気下、 N-メチルモルフォリン（NMM, 3.36 mL、30.5 mmol）及びクロロギ酸イソブチル（4.01 mL、30.5 mmol）を順に加えた。5分間攪拌した後、化合物(a2)（5.87 g、30.5 mmol）とNMM （3.36 mL、30.5 mmol）のDMF溶液24 mLを滴下し、冷却下で30分、室温で1 時間攪拌した。溶媒を減圧留去後、残渣を酢酸エチル100 mL及び5質量%炭酸水素ナトリウム水溶液100 mLにて溶解し、5質量%炭酸水素ナトリム水溶液（50 mL × 3）、5質量%クエン酸水溶液（50 mL × 3）で洗浄した。有機層に無水硫酸マグネシウムを加えて乾燥した後、溶媒を除去して得られた結晶を減圧乾燥することで化合物(a3)（10.6 g、20.0 mmol、収率98.0%）を淡黄色結晶として得た。
1H NMR (CDCl3) : δ 1.42 [9H, s, Boc], 2.96-3.03 [2H, m, CHCH2], 3.39-3.51 [4H, CH2CH2], 4.22-4.24 [1H, dd, NHCH], 4.85, 6.42, 7.74 [3H, t, NH], 6.93-6.95 [2H, d, CCH], 7.62-7.66 [2H, d, ICCH].
ESI-MS (M+Na)+: m/z 552.07. found 552.09.【００７６】
合成例L1(b): 化合物(a4)
化合物(a3)（10.6 g、20.0 mmol）を4 N塩酸/酢酸エチル50 mLに溶解し、室温で3 時間攪拌した。溶媒を減圧留去し、減圧乾燥することで化合物(a4)（8.08 g、20.0 mmol、収率99.8%）を淡黄色結晶として得た。
1H NMR (CDCl3) : δ 3.42-3.55 [6H, overlapped, CH2], 3.86-3.88 [1H, dd, CH2CH], 7.04-7.06 [2H, d, CCH], 7.62-7.64 [2H, d, ICCH].
ESI-MS (M+Na)+: m/z 452.02. found 452.03.【００７７】
合成例L1(c): 化合物(a6)
化合物(a5)（4.45 g、19.1 mmol）をTHF 70 mLに溶解し、溶液を氷冷した後、アルゴン雰囲気下でDCC（4.30 g、20.8 mmol）のTHF 溶液20 mLを滴下した。滴下完了後、室温で1時間攪拌し、反応液をろ過することでジシクロヘキシル尿素(以下、「DC-urea」ともいう)を除去し、ろ液を化合物(a5)の無水物溶液として次の反応に用いた。化合物(a4)（8.08 g、17.4 mmol）を酢酸エチル80 mLに懸濁し、Et3N（3.63 mL、26.0 mmol）を加えて冷却、10分間攪拌した後、アルゴン雰囲気下、先に調製した化合物(a5)の無水物溶液を滴下した。滴下完了後、室温にて1 時間攪拌し、反応液を5質量%クエン酸水溶液（50 mL × 3）で洗浄した。有機層に無水硫酸マグネシウムを加えて乾燥した後、溶媒を減圧留去して得られた残渣を、酢酸エチルを溶出溶媒とするシリカゲルカラムクロマトグラフィーにより精製を行うことで化合物(a6)（10.2 g、15.8 mmol、収率91.2%）を淡黄色結晶として得た。
1H NMR (CDCl3) : δ 1.37 [9H, s, Boc], 3.00-3.19 [2H, m, CHCH2], 3.42-3.52 [5H, overlapped, NCH2, NHCH2], 3.77-4.03 [2H, m, COCH2], 4.11-4.16 [1H, dd, NCH2], 4.60-4.62 [1H, t, CH2CH], 6.96-7.01 [2H, d, CCH], 7.58-7.60 [2H, d, ICCH].
ESI-MS (M+Na)+: m/z 667.09. found 667.02.【００７８】
合成例L1(d): 化合物(a7)
化合物(a6)（3.52 g、5.46 mmol）を25質量%アンモニア水50 mLに溶解し、室温で3 時間攪拌した。溶媒を減圧留去後、減圧乾燥して得られた油状物をDMF 90 mLに溶解したものをA液とした。O-(7-アザ-1H-ベンゾトリアゾール-1-イル)-N,N,N',N'-テトラメチルウロニウムヘキサフルオロホスフェート(HATU, 3.12 g、8.21 mmol）をDMF 90 mLに溶解したものをB液とした。DMF 1600 mLにDIEA（3.81 mL、21.9 mmol）、1-ヒドロキシ-7-アザベンゾトリアゾール（1.12 g、8.22 mmol）を溶解し、A液及びB液を、シリンジポンプを用いて1.2 mL/hにて低速同時滴下し、滴下終了後24 時間攪拌した。溶媒を減圧留去して得られた残渣を酢酸エチル及びヘキサンで洗浄することで化合物(a7)（1.57 g、2.96 mmol、収率54.2%）を白色結晶として得た。
1H NMR (CD3OD) : δ 1.46 [9H, s, Boc], 2.82-2.89 [1H, m, CH2], 2.91-2.96 [2H, m, CH2], 3.03-3.14 [1H, m, CH2], 3.56-3.64 [2H, m, CH2], 3.82-4.02 [3H, m, CH2], 4.10-4.18 [1H, m, CH2], 4.46-4.50 [1H, dd, CH], 7.02-7.04 [2H, d, CH], 7.60-7.62 [2H, d, CH]. 
ESI-MS (M+Na)+: m/z 553.09. found 553.10.【００７９】
合成例L1(e): 化合物(a8)
化合物(a7)（1.57 g、2.96 mmol)を4 N塩酸/酢酸エチル40 mLに懸濁し、室温にて4 時間攪拌した。溶媒を減圧留去して得られた結晶をヘキサンで洗浄し、減圧乾燥することで化合物(a8)（1.36 g、2.92 mmol、収率98.4%）を白色結晶として得た。
1H NMR (CDCl3) : δ 2.83-2.89 [1H, m, CH2], 2.96 [1H, s, CH2], 3.12-3.19 [1H, m, CH2], 3.40-3.52 [2H, m, CH2], 3.62-3.59 [2H, m, CH2], 4.07-4.13 [1H, m, CH2], 4.19-4.42 [1H, m, CH2], 4.60-4.62 [1H, dd, CH], 6.11 [1H, s, NH], 6.54 [1H, s, NH], 6.96-7.01 [2H, d, CH], 7.58-7.60 [2H, d, CH]. 
ESI-MS (M+H)+: m/z 431.06. found 431.03.【００８０】
合成例L1(f): 化合物(a9)
化合物(a8)（880 mg、2.04 mmol）をDMF13.5mLに懸濁し、さらに炭酸カリウム（424 mg、 3.06 mmol）を加えて懸濁させた。溶液を氷冷し、アルゴン雰囲気下ヨードエタン（327 μL、 4.08 mmol）を滴下した。滴下完了後、80℃で四日間攪拌した。溶媒を減圧留去して得られた残渣を酢酸エチルに懸濁しろ過を行った。ろ液を5質量%炭酸水素ナトリウム水溶液で洗浄した。有機層に硫酸ナトリウムを加えて乾燥した後、溶媒を減圧留去して得られた残渣をクロロホルムとメタノールを用いたフラッシュクロマトシステムにより生成を行うことで化合物(a9)（340 mg、 0.742 mmol、収率36.3%）を白色結晶として得た。
1H NMR (CDCl3) : δ 1.10 [3H, t, CH3], 2.76-2.84 [2H, q, CH2], 2.85-2.89 [1H, m, CH2], 3.08-3.25 [6H, m, CH2], 3.37-3.43 [1H, m, CH2], 3.53-3.57 [1H, m, CH2], 3.69-3.75 [1H, m, CH2], 4.61-4.66 [1H, dd, CH], 6.59 [1H, s, NH], 6.84 [1H, s, NH], 6.97-6.99 [2H, d, CH], 7.16 [1H, s, NH], 7.58-7.60 [2H, d, CH]. 
ESI-MS (M+H)+: m/z 459.09. found 459.17.【００８１】
合成例L1(g): 化合物(a10)
化合物(a9)（340 mg、0.742 mmol）をTHF 1.4 mLに懸濁し、溶液を氷冷した後、アルゴン雰囲気下、0.95 Mのボラン-THF錯体/THF溶液13.5 mLを緩徐に加え、1時間攪拌した後、24時間還流した。溶液を氷冷し、メタノール13.5 mLを加えた後、1時間攪拌し、溶媒を減圧留去した。その後、残渣に再度メタノール13.5 mLを加え、溶媒を減圧留去した。残渣に濃塩酸13.5 mLを加え、24 時間室温で攪拌した後、1 時間還流した。溶液を氷冷し、12.5 N水酸化ナトリウム水溶液を加えて塩基性とした後、クロロホルムで抽出した。有機層に硫酸ナトリウムを加えて乾燥した後、溶媒を減圧留去して得られた残渣をクロロホルム：メタノール：25質量%アンモニア水（10：1：0.1）を溶出溶媒とするフラッシュクロマトシステムにより精製を行うことで化合物(a10)（163 mg、0.391 mmol、収率52.7%）を黄色油状物として得た。【００８２】
合成例L1(h): 化合物(a11)
化合物(a10)（197 mg、0.401 mmol）をアセトニトリル2.75 mLとDMF 0.55 mLの混液に溶解し、さらに炭酸カリウム（229 mg、1.65 mmol）を加えて懸濁させた。溶液を氷冷し、アルゴン雰囲気下、ブロモ酢酸tert-ブチル（229 μL、1.40 mmol）を滴下した。滴下完了後、室温で48時間攪拌し、懸濁液をろ過した後、ろ液から溶媒を減圧留去した。残渣を少量のクロロホルムに溶解し、厚さ1 mmの分取用TLCにアプライし、クロロホルム：メタノール＝8：1を展開溶媒とすることで精製し、化合物(a11)（306 mg、 0.403 mmol、100%）を赤褐色油状物として得た。
1H NMR (CDCl3) : δ 0.98-1.03 [3H, t, CH3], 1.41-1.48 [27H, m, tBu], 1.90-4.90 [27H, m, CH2, DOTA], 6.89-7.07 [2H, m, CH], 7.50-7.61 [2H, m, CH]. 
ESI-MS (M+H)+: m/z 759.36. found 759.24.【００８３】
合成例L1(i): 化合物(a12)
化合物(a11)（306 mg、0.403 mmol）をDMF 2.8 mLに懸濁し、Pd(OAc)2（9.1 mg、0.0403 mmol）、1,2-ビス(ジフェニルホスフィノ)エタン（24.12 mg、0.0604 mmol）、Et3N（168 μL、1.21 mmol）、ベンジルアルコール（840 μL、8.06 mmol）を加え、一酸化炭素雰囲気下、24時間還流した。反応後、溶媒を減圧留去し、酢酸エチルに溶解後、ろ過を行い、ろ液を5質量%炭酸水素ナトリウム水溶液で洗浄した。有機層に硫酸ナトリウムを加え乾燥した後、溶媒を減圧留去して得られた残渣をクロロホルムとメタノールを用いたフラッシュクロマトシステムにより精製することで化合物(a12)（113 mg、 0.166 mmol、収率41.4%）を黄色油状物として得た。
ESI-MS (M+H)+: m/z 767.50. found 767.60.【００８４】
合成例L1(j): 化合物(a13)
化合物(a12)（46 mg、0.0600 mmol）をメタノール1 mLに溶解した後、10質量% Pd/Cを100mg加えて水素雰囲気下、室温で2時間攪拌した。反応溶液をろ過後、溶媒を減圧留去することで化合物(a13)（25.5mg、0.0377 mmol、収率62.8%）を黄色油状物として得た。
ESI-MS (M+H)+: m/z 677.45. found 677.62.【００８５】
合成例L2：CDO3AEt-FGK(化合物(a16)(上述の化合物１−１と同じ)), CDO3AEt-FGK-Boc (化合物(a17)), CDO3AEt-FGK(Mal) (化合物(a18) (上述の化合物１−２と同じ))の合成
【化３９】
2019065774.tif 000041
【００８６】
合成例L2(I)及び(II): 化合物(a16)
Fmoc固相合成法を用いてペプチドを伸長した樹脂(a14) (22 μmol)、1-ヒドロキシ-7-アザベンゾトリアゾール(15.1 mg、110 μmol)、化合物(a13) (15 mg、22 μmol)をDMF溶解し、N,N'-ジイソプロピルカルボジイミド(17.2 μL、110 μmol)を加えて室温で16時間緩やかに攪拌した。反応終了後DMF及びCH2Cl2を用いて樹脂を洗浄した。
得られた樹脂(a15)をトリフルオロ酢酸: トリイソプロピルシラン: 水= 95 : 2.5 : 2.5を組成とする溶液に懸濁し2時間緩やかに攪拌した。反応終了後、ろ過にて樹脂を除去し、ろ液を減圧留去することで白色結晶を得た。さらにHPLCにてImtakt Cadenza 5CD-C18 150×20 mmを用い移動相にはA相に0.1%TFA/MilliQ、B相に0.1% TFA/MeCNを使用し、0-35分でA相95%、B相5%からA相70%、B相30%まで変化させ、35-40分でA相70%、B相30%からA相0%、B相100%まで変化させる直線gradient法により流速5 mL/minで精製することで目的とする化合物(a16)(以下、「CDO3AEt-FGK」ともいう)(5.7 mg、6.78 μmol、収率30.8%)を得た。
ESI-MS (M-H)-: m/z 839.4, found: 839.3【００８７】
合成例L2(III): 化合物(a17) 
化合物(a16)を飽和炭酸水素ナトリウム水溶液100 μLに溶解し、1.5当量の(Boc)2Oを溶解したジオキサン100 μLを加え、室温で二時間激しく攪拌した。減圧留去によりジオキサンを除去後、水層をクロロホルムにより洗浄を行った。さらに水層をHPLCにてImtakt Cadenza 5CD-C18 150×20 mmを用い移動相にはA相に0.1%TFA/MilliQ、B相に0.1% TFA/MeCNを使用し、2分までA相 100%に保った後に、2-5分でA相 100%、B相 0%からA相 95%、B相 5%まで変化させ、5-40分でA相 95%、B相 5%からA相 70%、B相 30%まで変化させ、40-45分でA相 70%、B相 30%からA相 0%、B相 100%まで変化させる直線gradient法により流速5 mL/minで精製することで目的とする化合物(a17)(以下、「CDO3AEt-FGK-Boc」ともいう)を得た。
ESI-MS (M-H)-: m/z 939.5, found: 940.49【００８８】
合成例L2(IV): 化合物(a18)  CDO3AEt-FGK(Mal)
化合物(a16)（2.2 mg、 2.6 μmol）を飽和炭酸水素ナトリウム水溶液200 μLに溶解し、氷冷下N-メトキシカルボニルマレイミド（0.8 mg、 5.2 μmol）を加え、氷冷下で二時間攪拌した。反応終了後、10質量%クエン酸水溶液で酸性に調整した。さらにHPLCにてImtakt Cadenza 5CD-C18 150×20 mmを用い移動相にはA相に0.1%TFA/MilliQ、B相に0.1% TFA/MeCNを使用し、5分までA相 100%に保った後に、5-35分でA相 100%、B相 0%からA相 55%、B相 45%まで変化させ、35-50分でA相 55%、B相 45%からA相 0%、B相 100%まで変化させる直線gradient法により流速5 mL/minで精製することで目的とする化合物(a18) (以下、「CDO3AEt-FGK(Mal)」ともいう)（0.8 mg、 0.870 μmol、収率33.4%）を得た。
ESI-MS (M-H)-: m/z 919.42, found: 919.45.【００８９】
［DO3A-Bn-SCN-MVK(Bzo)及びDO3A-Bn-SCN-Met-OH, DO3A-Bn-SCN-MVK(Mal)の合成］
合成例L3：化合物(b5)及び化合物（b7）の合成
【化４０】
2019065774.tif 000042
【００９０】
合成例L3(a): 化合物(b1)の合成
サイクレン(523.6 mg, 3.04 mmol)をアセトニトリル(25 mL)に溶解し、NaHCO3 (893.6 mg, 10.6 mmol)を加え、Ar雰囲気下、氷冷した後、ブロモ酢酸tert-ブチル(1.39 mL, 3.34 mmol)を滴下した。室温で48時間攪拌した後、反応液をろ過し、ろ液を減圧留去した。残渣をトルエンを用いた再結晶により精製することで化合物(b1) (672.4 mg, 収率43.1%)を白色結晶として得た。
1H NMR (CDCl3): δ 1.44 (27H, s, tBu), 2.86-3.35 (22H, overlapped, CH2). 
ESI-MS (M+H)+: m/z 515.3, found: 515.3.【００９１】
合成例L3(b): 化合物(b2)の合成
化合物(b1) (212.9 mg, 413.6 μmol)をアセトニトリル(4.0 mL)に溶解し、Na2CO3 (87.7 mg, 827.4 μmol)を加え、Ar雰囲気下、氷冷した後、アセトニトリル(1.0 mL)に溶解した4-ニトロベンジルブロミド(134.1 mg, 620.7 μmol)を滴下した。60 ℃で18時間攪拌した後、反応液をろ過し、溶媒を減圧留去した。残渣をクロロホルム:メタノール=10:1を溶出溶媒とするシリカゲルクロマトグラフィーにより精製することで化合物(b2) (263.4 mg, 収率98.0%)を黄色油状物質として得た。
1H NMR (CDCl3): δ 1.36 (27H, s, tBu), 2.06-3.58 (24H, overlapped, CH2), 7.61-7.63 (2H, d, aromatic), 8.07-8.09 (2H, d, aromatic). 
ESI-MS (M+Na)+: m/z 672.4, found: 672.3.【００９２】
合成例L3(c): 化合物(b3)の合成
化合物(b2) (150 mg, 231 μmol)をメタノール(3.5 mL)に溶解した後、1 N NaOH (0.5 mL)、10%Pd/C (15.4 mg)を加えた。水素雰囲気下、室温で1.5時間攪拌した。溶液をろ過した後、ろ液からメタノールを減圧留去し、クロロホルム(5 mL×3)により抽出した。有機層にNa2SO4を加えて乾燥した後、溶媒を減圧留去することで化合物(b3) (124.6 mg, 収率87.2%)を黄色油状物質として得た。
1H NMR (CDCl3): δ 1.43 (27H, s, tBu), 2.85-3.35 (24H, overlapped, CH2), 6.59-6.61 (2H, d, aromatic), 6.93-6.95 (2H, d, aromatic). 
ESI-MS (M+H)+: m/z 620.4, found: 620.5.【００９３】
合成例L3(d): 化合物(b4)の合成
化合物(b3) (124.6 mg, 201 μmol)を10% アニソール/トリフルオロ酢酸(TFA) (2 mL)に溶解し、室温で4時間攪拌した。溶媒を減圧留去し、ジエチルエーテル(5 mL)を加えることで結晶化させた。結晶をろ取し、ジエチルエーテルで洗浄した後、減圧乾燥することで化合物(b4)のTFA塩(118.4 mg, 収率64.9%)を赤褐色結晶として得た。
1H NMR (D2O): δ 2.50-3.50 (24H, overlapped, CH2), 6.78-6.81 (2H, d, aromatic), 7.36-7.38 (2H, d, aromatic).【００９４】
合成例L3(e): 化合物(b5)の合成
化合物(b4) (82.5 mg, 80.8 μmol)をmilliQ水(1 mL)に溶解し、1 M チオホスゲン/クロロホルム (1 mL)を加えた。室温で2時間攪拌した後、クロロホルム(5 mL×4)で洗浄した。水層を凍結乾燥することで化合物(b5) (57.4 mg, 収率74.9%)を淡黄色結晶として得た。
1H NMR (D2O): δ 2.50-3.65 (24H, overlapped, CH2), 7.18-7.22 (2H, d, aromatic), 7.38-7.41 (2H, d, aromatic).【００９５】
合成例L3(f): 化合物(b6)の合成
化合物(b1) (100.0 mg, 194.4 μmol)をアセトニトリル(2.0 mL)に溶解し、Na2CO3 (26.5 mg, 252.9 μmol)を加え、Ar雰囲気下、氷冷した後、アセトニトリル(0.5 mL)に溶解したメチル-4-(ブロモメチル)ベンゾエート(58.0 mg, 253.0 μmol)を滴下した。60 ℃で18時間攪拌した後、ろ過し、溶媒を減圧留去した。残渣をクロロホルム:メタノール=10:1を溶出溶媒とするシリカゲルクロマトグラフィーにより精製することで化合物(b6) (106.1 mg, 収率82.6%)を黄色油状物質として得た。
1H NMR (CDCl3): δ 1.46 (27H, s, tBu), 2.01-3.58 (24H, overlapped, CH2), 3.88 (3H, s, OCH3), 7.53-7.55 (2H, d, aromatic), 7.95-7.97 (2H, d, aromatic). 
ESI-MS (M+H)+: m/z 663.4, found: 663.4【００９６】
合成例L3(g): 化合物(b7)の合成
化合物(b6) (106.1 mg, 160.0 μmol)をメタノール(1 mL)に溶解した後、1 N NaOH (1 mL)を加えて室温で2時間攪拌した。溶液からメタノールを減圧留去した後、クロロホルム(5 mL×3)により抽出した。有機層にNa2SO4を加えて乾燥した後、溶媒を減圧留去することで化合物(b7) (50.5 mg, 収率48.6%)を黄色油状物質として得た。
1H NMR (CDCl3): δ 1.44 (27H, s, tBu), 2.13-3.58 (24H, overlapped, CH2), 7.31-7.33 (2H, d, aromatic), 8.09-8.11 (2H, d, aromatic). ESI-MS (M+Na)+: m/z 671.4, found: 671.5【００９７】
合成例L4：DO3A-Bn-SCN-MVK(Bzo)（化合物(b13)）及びDO3A-Bn-SCN-Met-OH（化合物(b14)）の合成
【化４１】
2019065774.tif 000043
【００９８】
合成例L4(a): 化合物(b8)の合成
安息香酸 (560 mg, 4.59 mmol)とN-ヒドロキシスクシンイミド(NHS, 581 mg, 5.05 mmol)をCH2Cl2 (15 mL)に溶解し、氷冷した後、CH2Cl2 (8 mL)に溶解したN,N’-ジシクロヘキシルカルボジイミド (DCC, 1.05 g, 5.05 mmol)を滴下した。室温で3時間攪拌した後、ろ過し、溶媒を減圧留去した。残渣を酢酸エチル(10 mL)に溶解し、sat. NaHCO3 (10 mL×3)で洗浄した。有機層にMgSO4を加えて乾燥した後、溶媒を減圧留去することで化合物(b8) (749.7 mg, 収率74.7%)を白色結晶として得た。
1H NMR (CDCl3): δ 2.89 (4H, s, succinimide), 7.47-7.51 (2H, m, aromatic), 7.64-7.68 (1H, m, aromatic), 8.11-8.13 (2H, m, aromatic)【００９９】
合成例L4(b): 化合物(b9)の合成
Fmoc-Lys-OH (86.7 mg, 100 μmol)をDMF (1.5 mL)に溶解し、N,N-ジイソプロピルエチルアミン(DIPEA, 40 μL, 246 μmol)を加え、Ar雰囲気下、氷冷したのち、DMF (0.5 mL)に溶解した化合物(b8)を滴下した。室温で3時間攪拌した後、溶媒を減圧留去した。残渣を酢酸エチル(5 mL)に溶解し、10質量% クエン酸(5 mL×3)で洗浄した。有機層にNa2SO4を加え乾燥した後、溶媒を減圧留去し、クロロホルム:メタノール=5:1を展開溶媒とするTLC分取により精製することで、化合物(b9) (82.0 mg, 収率82.0%)を白色結晶として得た。
ESI-MS (M+Na)+: m/z 473.2, found: 473.2【０１００】
合成例L4(c): 化合物(b10)の合成
Cl-Trt(2-Cl)Resin (62.5 mg, 100 μmol、渡辺化学工業株式会社)を出発物質として、Fmoc-Lys(Bzo)-OH (47.2 mg, 100 μmol)及びDIPEA (65 μL, 400 μmol)をジクロロメタン(1.5 mL)中1.5時間反応させた。メタノール(1.5 mL)及びDIPEA (65 μL)を加えて反応を停止させた。樹脂をDMF次いでジクロロメタンで洗浄した。樹脂を乾燥させた後、ピペリジン処理の際に生成するN-(9-フルオレニルメチル)ピペリジンのA301における吸光度を測定することによりFmoc-Lys(Bzo)-OHの樹脂への導入量を定量(0.96 mmol/g)した。20% ピペリジン/DMF (mL)を加え、室温で20分間攪拌することで、化合物(b10)を作製した。樹脂の一部を採取してkaiser testを行い、Nα-Fmoc基の脱保護を確認した。【０１０１】
合成例L4(d): 化合物(b11)の合成
化合物(b10) (22.9 mg, 22.0 μmol)を出発物質として、Fmoc固相合成法により2.5等量のFmoc-Met-OH (55.0 μmol)、N,N’-ジイソプロピルカルボジイミド(DIC, 8.5 μL, 55.0 μmol)、1-ヒドロキシベンゾトリアゾール一水和物(HOBt, 8.43 mg, 55.0 μmol)をDMF中、室温で2時間攪拌した。樹脂の一部を採取してKaiser testを行うことで、縮合反応の終了を確認した後、20% ピペリジン/DMF (2 mL)を加え、20分間室温で攪拌した。樹脂の一部を採取してKaiser testを行いNα-Fmoc基の脱保護を確認した。さらに、保護アミノ酸Boc-Met-OHを用いて同様の操作を行うことで、化合物(b11)を作製した。【０１０２】
合成例L4(e): 化合物(b12)の合成
化合物(b11)をTFA:トリイソプロピルシラン(TIS):H2O=95:2.5:2.5 (1 mL)の混液中室温で2時間攪拌した。樹脂をろ去した後、ろ液を減圧留去して得られた残渣にジエチルエーテルを加えることで結晶化させた。結晶をろ取し、ジエチルエーテルで洗浄した後、減圧乾燥することで化合物(b12)のTFA塩(9.7 mg, 収率69.0%)を白色結晶として得た。
ESI-MS (M+H)+: m/z 481.2, found: 481.2.【０１０３】
合成例L4(f): 化合物(b13)の合成
化合物(b5) (1.0 mg, 1.05 μmol)と化合物(b12) (1.58 μmol)を0.16 M ホウ酸緩衝液 pH 11.0 (100 μL)に溶解した後、1 N NaOHでpH 9.0に調整した。室温で2時間攪拌した後、分取用RP-HPLCにより精製し、化合物(b13)（以下、「DO3A-Bn-SCN-MVK(Bzo)」ともいう）のTFA塩(0.8 mg, 収率53.3%)を白色結晶として得た。
ESI-MS (M+H)+: m/z 974.4, found: 974.4.【０１０４】
合成例L4(g): 化合物(b14)の合成
化合物(b5) (5.5 mg, 5.78 μmol)とメチオニン(1.29 mg, 8.67 μmol)を出発物質として、合成例L4(f)と同様の操作を行うことで、化合物(b14)（以下、「DO3A-Bn-SCN-Met-OH」ともいう）のTFA塩(2.3 mg, 収率36.2%)を白色結晶として得た。
ESI-MS (M+H)+: m/z 643.2, found: .643.2【０１０５】
合成例L5：DO3A-Bn-SCN-MVK(Mal)（化合物(b21)）の合成
【化４２】
2019065774.tif 000044
【０１０６】
合成例L5(a): 化合物(b15)の合成
Cl-Trt(2-Cl)Resin (104.4 mg, 114.8 μmol、渡辺化学工業株式会社)を出発物質として、Fmoc-Lys(Dde)-OH (61.2 mg,  114.8 μmol)及びDIPEA (81 μL, 459.2 μmol)をジクロロメタン(2 mL)中1.5時間反応させた。メタノール及びDIPEAを加えて反応を停止させた。樹脂をDMF次いでジクロロメタンで洗浄した。合成例L4(c)と同様の方法でFmoc-Lys(Bzo)-OHの樹脂への導入量を定量(0.769 mmol/g)した。20% ピペリジン/DMF (2 mL)を加え、室温で20分間攪拌することで、化合物(b15)を作製した。樹脂の一部を採取してkaiser testを行い、Nα-Fmoc基の脱保護を確認した。【０１０７】
合成例L5(b): 化合物(b16)の合成
化合物(b15) (153.4 mg, 114.8 μmol)を出発物質として、保護アミノ酸を順次Fmoc-Val-OH、Boc-Met-OHと変えて、合成例L4(d)と同様の操作を行うことで、化合物(b16)を得た。【０１０８】
合成例L5(c): 化合物(b17)の合成
化合物(b16) (117. 9 μmol)を2% ヒドラジン/DMF (2 mL)中室温で1時間攪拌した後、樹脂の一部を採取しKaiser testを行い、反応の終了を確認した。樹脂をDMF次いでジクロロメタンで洗浄した後、減圧乾燥することで化合物(b17)を得た。【０１０９】
合成例L5(d): 化合物(b18)の合成
化合物(b17)を酢酸:2,2,2-トリフルオロエタノール(TFE):ジクロロメタン=3:1:6 (2 mL)の混液中室温で2時間攪拌した。樹脂をろ去した後、ろ液を減圧留去して得られた残渣にジエチルエーテルを加えることで結晶化させた。結晶をろ取し、ジエチルエーテルで洗浄した後、減圧乾燥することで化合物(b18)の酢酸塩(51.4 mg, 収率93.9 %)を白色結晶として得た。
ESI-MS (M+H)+: m/z 477.2, found: 477.2.【０１１０】
合成例L5(e): 化合物(b19)の合成
化合物(b18) (6.60 mg, 13.9 μmol)を氷冷化でsat.NaHCO3 (100 μL)に溶解し、N-メトキシカルボニルマレイミド(NMCM, 3.22 mg, 20.8 μmol)を加えた。氷冷下2時間攪拌した後、5質量% クエン酸を加え中和し、クロロホルム (5 mL×3)により抽出した。Na2SO4を加えて乾燥した後、溶媒を減圧留去することで、化合物(b19) (7.26 mg, 収率94.1 %)を白色結晶として得た。
ESI-MS (M+H)+: m/z 557.2, found: 557.2.【０１１１】
合成例L5(f): 化合物(b20)の合成
化合物(b19) (7.26 mg, 13.1μmol)を4 M HCl/酢酸エチル(1 mL)に溶解し、室温で1時間攪拌した。溶媒を減圧留去し、ヘキサンで共沸することにより、化合物(b20)の塩酸塩(5.92 mg, 収率92.4%)を白色結晶として得た。
ESI-MS (M+H)+: m/z 457.2, found: 457.2.【０１１２】
合成例L5(g): 化合物(b21)の合成
化合物(b20)の塩酸塩(3.38 mg, 4.74 μmol)をDMF(100 μL)に溶解し、トリエチルアミン (TEA, 6 μL, 43.3 μmol)を加えた。化合物(b5) (3.0 mg, 3.16 μmol)を加え、室温で2時間攪拌した後、H2Oで10倍に希釈し、分取用RP-HPLCにより精製することで化合物(b21)(以下「DO3A-Bn-SCN-MVK(Mal)」ともいう)のTFA塩(1.5 mg, 収率33.2%)を白色結晶として得た。
ESI-MS (M+H)+: m/z 972.5, found: 972.5.【０１１３】
［DO3A-Bn-CO-FGK、DO3A-Bn-CO-FGK(Boc)、DO3A-Bn-CO-FGK(Mal)、DO3A-Bn-CO-Phe-OHの合成］
合成例L6：DO3A-Bn-CO-FGK（化合物(b24)(上述の化合物１−３と同じ)）、DO3A-Bn-CO-FGK(Boc)（化合物(b25)）、DO3A-Bn-CO-FGK(Mal)（化合物(b26) (上述の化合物１−４と同じ)）、DO3A-Bn-CO-Phe-OH（化合物(b28)）の合成
【化４３】
2019065774.tif 000045
【０１１４】
合成例L6(a): 化合物(b22)の合成
Cl-Trt(2-Cl)Resin (22.1 mg, 24.3 μmol、渡辺化学工業株式会社)を出発物質として、Fmoc-Lys(Boc)-OH (17.1 mg, 36.5 μmol)及びDIPEA (16.5 μL, 97.2 μmol)をジクロロメタン (1 mL)中1.5時間反応させた。メタノール及びDIPEAを加えて反応を停止させた。樹脂をDMF次いでジクロロメタンで洗浄した。合成例L4(c)と同様の方法でFmoc-Lys(Boc)-OHの樹脂への導入量を定量(0.884 mmol/g)した。20% ピペリジン/DMF (2 mL)を加え、室温で20分間攪拌することで、化合物(b22)を作製した。樹脂の一部を採取してkaiser testを行い、Nα-Fmoc基の脱保護を確認した。【０１１５】
合成例L6(b): 化合物(b23)の合成
化合物(b22) (12.1 μmol)を出発物質として、保護アミノ酸を順次Fmoc-Gly-OH、Fmoc-Phe-OHと変えて、合成例L4(d)と同様の操作を行うことで、化合物(b23)を得た。【０１１６】
合成例L6(c): 化合物(b24)の合成
化合物(b23) (12.1 μmol)に対して、化合物(b7) (15.7 mg, 24.2 μmol)、DIC (3.7 μL, 24.2 μmol)、HOAt (3.29 mg, 24.2 μmol)をDMF中、室温で一晩攪拌した。樹脂の一部を採取しKaiser testを行うことで、縮合反応の終了を確認した後、TFA:TIS:H2O=95:2.5:2.5 (1 mL)の混液中室温で2時間攪拌した。樹脂をろ去した後、ろ液を減圧留去してえられた残渣にジエチルエーテルを加えることで結晶化した。結晶をろ取し、ジエチルエーテルで洗浄した後、減圧乾燥することで化合物(b24) （以下、「DO3A-Bn-CO-FGK」ともいう）のTFA塩(9.0 mg, 収率53.7%)を白色結晶として得た。
ESI-MS (M+H)+: m/z 813.4, found: 813.4.【０１１７】
合成例L6(d): 化合物(b25)の合成
化合物(b24) (2.17 μmol)をsat.NaHCO3 (100 μL)に溶解した後、ジオキサン(100 μL)に溶解した(Boc)2O (7.1 mg, 3.26 μmol)を加え室温で2時間激しく攪拌した。ジオキサンを減圧留去した後、クロロホルム(3 mL×3)で洗浄した。水層を分取用RP-HPLCにより精製することで化合物(b25)（以下、「DO3A-Bn-CO-FGK(Boc)」ともいう）のTFA塩(0.8 mg, 収率26.9%)を白色結晶として得た。
ESI-MS (M+H)+: m/z 913.5, found: 913.5.【０１１８】
合成例L6(e): 化合物(b26)の合成
化合物(b24) (2.17 μmol)をsat.NaHCO3 (100 μL)に溶解した後、氷冷しNMCM (0.5 mg,  3.26 μmol)を加えた。氷冷下2時間攪拌した後、分取用RP-HPLCにより精製することで化合物(b26)（以下、「DO3A-Bn-CO-FGK(mal)」ともいう）のTFA塩(1.3 mg, 収率44.4%)を白色結晶として得た。
ESI-MS (M+H)+: m/z 893.4, found: 893.4.【０１１９】
合成例L6(f): 化合物(b27)の合成
Cl-Trt(2-Cl)Resin (5 mg, 5.50 μmol、渡辺化学工業株式会社)を出発物質として、Fmoc-Phe-OH (6.01 μmol)及びDIPEA (3.73 μL, 21.9 μmol)をジクロロメタン (0.5 mL)中1.5時間反応させた。メタノール及びDIPEAを加えて反応を停止させた。樹脂をDMF次いでジクロロメタンで洗浄した。合成例L4(c)と同様の方法でFmoc-A.A.-OHの樹脂への導入量を定量した(0.917 mmol/g)。20% ピペリジン/DMF (2 mL)を加え、室温で20分間攪拌することで、化合物(b27)を作製した。樹脂の一部を採取してkaiser testを行い、Nα-Fmoc基の脱保護を確認した。【０１２０】
合成例L6(g): 化合物(b28)の合成
化合物(b27) (5.5 μmol)を出発物質として、合成例L6(c)と同様の操作をすることで化合物(b28) （以下、「DO3A-Bn-CO-Phe-OH」ともいう）のTFA塩(4.5 mg, 収率59.1%)を白色結晶として得た。
ESI-MS (M+H)+: m/z 628.3, found: 628.3.【０１２１】
［CDOTA-Bn-CO-FGK、CDOTA-Bn-CO-FGK(Boc)、CDOTA-Bn-CO-FGK(Mal)の合成］
合成例L7：CDOTA-Bn-CO-FGK（化合物(b29)）、CDOTA-Bn-CO-FGK(Boc)（化合物(b30)）、CDOTA-Bn-CO-FGK(Mal)（化合物(b31)）の合成
【化４４】
2019065774.tif 000046
【０１２２】
合成例L7(a): 化合物(b29)の合成
p-COOH-Bn-DOTA(tBu)4(52.4 μmol)を出発物質として、合成例L6(c)と同様の操作をすることで化合物(b29)（以下、「CDOTA-Bn-CO-FGK」ともいう）のTFA塩(2.4 mg, 収率1.3%)を白色結晶として得た。
ESI-MS ([M+K]-H)-: m/z 907.36, found: 907.31.【０１２３】
合成例L7(b): 化合物(b30)の合成
化合物(b29) (5.75 μmol)を出発物質として、合成例L6(d)と同様の操作をすることで化合物(b30) （以下、「CDOTA-Bn-CO-FGK(Boc)」ともいう）のTFA塩(0.4 mg, 収率71.8%)を白色結晶として得た。
ESI-MS ([M+K]-H)-: m/z 1007.41, found: 1007.31.【０１２４】
合成例L7(c): 化合物(b31)の合成
化合物(b29) (0.694 μmol)を出発物質として、合成例L6(e)と同様の操作をすることで化合物(b31) （以下、「CDOTA-Bn-CO-FGK(mal)」ともいう）のTFA塩(0.6 mg, 収率61.4%)を白色結晶として得た。
ESI-MS (M-H)-: m/z 949.39, found: 949.43.【０１２５】
［CDO3AiBu-FGK(Boc), CDO3AiBu-FGK(mal)，CDO3AiBu-Pheの合成］
合成例L8：化合物(a23)の合成
【化４５】
2019065774.tif 000047
【０１２６】
合成例L8(a):化合物(a19)の合成
化合物(a8) (913 mg、1.96 mmol)をTHF (20 mL)に溶解し、isobutylaldehyde (357 μL、3.91 mmol) 、sodium triacetoxyborohidride (498 mg、2.35 mmol)を加え、Ar雰囲気下、室温で一晩拌した。Isobutylaldehyde (179 μL、1.96 mmol) 、sodium triacetoxyborohidride (249 mg、1.18 mmol)を加えた後、さらに室温で2時間攪拌した。反応液を氷冷し、水を加えた後、THFを減圧留去して得られた水溶液からクロロホルムで三回抽出した。有機層に硫酸ナトリウムを加えて乾燥した後、溶媒を減圧留去して得られた残渣をクロロホルムとメタノールを用いたフラッシュクロマトシステムにより生成を行うことで化合物(a19) (403 mg、829 μmol, 42.4%)を白色結晶として得た。
1H NMR (CDCl3): δ 0.92-0.95 (6H, m, CH3), 1.68-1.71 (1H, m, CH), 2.40-2.44 (2H, m, CH2), 2.82-3.30 (8H, overlapped, CH2), 3.61-3.74 (2H, m, CH2), 4.58-4.62 (1H, m, CH), 6.48 (1H, s, NH), 6.66 (1H, s, NH), 6.96-6.98 (2H, d, CH2), 7.56-7.58 (2H, d, CH2), 8.00 (1H, s, NH). ESI-MS (M+H)+: m/z 487.12, found: 487.18. 【０１２７】
合成例L8(b):化合物(a20)の合成
化合物(a19) (403 mg、829 μmol)をTHF 2 mLに懸濁し、溶液を氷冷した後、アルゴン雰囲気下、0.95 Mのボラン-THF錯体/THF溶液13 mLを緩徐に加え、1時間攪拌した後、22時間還流した。溶液を氷冷し、メタノール13 mLを加えた後、1時間攪拌し、溶媒を減圧留去した。その後、残渣に再度メタノール13 mLを加え、溶媒を減圧留去した。残渣に濃塩酸13 mLを加え、24 時間室温で攪拌した後、1 時間還流した。溶液を氷冷し、12.5 N水酸化ナトリウム水溶液を加えて塩基性とした後、クロロホルムで抽出した。有機層に硫酸ナトリウムを加えて乾燥した後、溶媒を減圧留去して得られた残渣をクロロホルム：メタノール：25質量%アンモニア水（10：1：0.1）を溶出溶媒とするフラッシュクロマトシステムにより精製を行うことで化合物(a20)（275 mg、619 μmol、収率74.7%）を黄色油状物として得た。
1H NMR (CDCl3): δ 0.89-0.92 (6H, m, CH3), 1.80-1.84 (1H, m, CH), 2.06-2.89 (19H, overlapped, CH, CH2), 6.92-6.94 (2H, d, CH2), 7.58-7.60 (2H, d, CH2).【０１２８】
合成例L8(c):化合物(a21)の合成
化合物(a20) (275 mg、619 μmol)をアセトニトリル 2 mLに懸濁し、炭酸ナトリウム(428 mg、3.10 mmol)を加えた。溶液を氷冷し、アルゴン雰囲気下、ブロモ酢酸tert-ブチル（272 μL、1.86 mmol）を滴下した。滴下完了後、室温で24時間攪拌し、懸濁液をろ過した後、ろ液から溶媒を減圧留去した。残渣をクロロホルムとメタノールを用いたフラッシュクロマトシステムにより生成を行うことで化合物(a21) (286 mg、364 μmol、58.8%)を黄色油状物として得た。 
1H NMR (CDCl3): δ 0.86-0.89 (6H, m, CH3), 1.41-1.50 (27H, m, tBu), 1.86-3.90 (26H, overlapped, CH, CH2), 6.99-7.01 (2H, d, CH2), 7.59-7.61 (2H, d, CH2). ESI-MS (M+H)+: m/z 787.39, found: 787.45.【０１２９】
合成例L8(d):化合物(a22)の合成
化合物(a21) (286 mg、364 μmol)をDMF 3.0 mLに懸濁し、Pd(OAc)2（16.3 mg、0.0728 mmol）、1,2-ビス(ジフェニルホスフィノ)エタン（58.0 mg、0.146 mmol）、Et3N（156 μL、1.12 mmol）、ベンジルアルコール（753 μL、7.28 mmol）を加え、一酸化炭素雰囲気下、一晩還流した。反応後、溶媒を減圧留去して得られた残渣をクロロホルムとメタノールを用いたフラッシュクロマトシステムにより精製することで化合物(a22)（73.8 mg、92.8 μmol、収率25.5%）を黄色油状物として得た。
ESI-MS (M+H)+: m/z 795.53, found: 795.40.【０１３０】
合成例L8(e):化合物(a23)の合成
化合物(a22) (73.8 mg、92.8 μmol) をメタノール1.5 mLに溶解した後、10質量% Pd/Cを150 mg加えて水素雰囲気下、室温で5時間攪拌した。反応溶液をろ過後、溶媒を減圧留去することで化合物(a23)（31.9 mg、45.3 μmol、収率48.8%）を白色結晶として得た。
ESI-MS (M+H)+: m/z 705.48, found: 705.40.【０１３１】
合成例L9：化合物(a28)の合成
【化４６】
2019065774.tif 000048
【０１３２】
合成例L9(a):化合物(a24)の合成
化合物(a23) (23.7 mg、33.6 μmol) をDMF 0.9 mLに溶解した後、2,3,5,6-テトラフルオロフェノール (8.4 mg、50.6 μmol)、トリエチルアミン (9.3 μL、66.9 μmol)を加えた。溶液を氷冷し、EDC (9.6 mg、50.6 μmol)を加えた後、室温に戻し、4時間攪拌した。溶媒を減圧留去した後、残渣を酢酸エチルに溶解し、飽和塩化アンモニウム水溶液で三回洗浄した。有機層に硫酸ナトリウムを加えて乾燥した後、溶媒を減圧留去することで化合物(a24)（18.3 mg、23.2 μmol、収率68.9%）を黄色油状物として得た。【０１３３】
合成例L9(b)及び(c): 化合物 (a26)の合成 
Fmoc固相合成法を用いてペプチドを伸長した樹脂(64.0 mg、57.6 μmol)、N,N-ジイソプロピルエチルアミン(23.6 μL、135 μmol)、化合物(a24) (18.3 mg、23.2 μmol)をDMFに溶解し、室温で16時間緩やかに攪拌した。反応終了後DMF及びCH2Cl2を用いて樹脂を洗浄した。
得られた樹脂(a25)を酢酸: 2,2,2-トリフルオロエタノール: ジクロロメタン= 3 :1 : 6を組成とする溶液に懸濁し2時間緩やかに攪拌した。反応終了後、ろ過にて樹脂を除去し、ろ液を減圧留去し、さらにトルエンで三回共沸した。残渣をHPLCにてImtakt Cadenza 5CD-C18 150×20 mmを用い移動相にはA相に0.1%TFA/MilliQ、B相に0.1% TFA/MeCNを使用し、0-35分でA相95%、B相5%からA相50%、B相50%まで変化させ、35-45分でA相50%、B相50%からA相0%、B相100%まで変化させる直線gradient法により流速5 mL/minで精製（保持時間  34.7分）することで目的とする化合物(a26)(以下、「CDO3AiBu-FGK(Boc)」ともいう) (1.0 mg、0.70 μmol、収率2.1%)を得た。
ESI-MS (M+H)+: m/z 969.53, found: 969.51.【０１３４】
合成例L9(d): 化合物(a27)の合成
Fmoc固相合成法を用いてペプチドを伸長した樹脂(48.3 mg、43.4 μmol)、N,N-ジイソプロピルエチルアミン(17.8 μL、102 μmol)、化合物(a24) (18.3 mg、17.5 μmol)を用いて作製した上記と同様の方法で作製した樹脂(a25)をトリフルオロ酢酸: トリイソプロピルシラン: 水= 95 : 2.5 : 2.5を組成とする溶液に懸濁し2時間緩やかに攪拌した。反応終了後、ろ過にて樹脂を除去し、ろ液を減圧留去し、さらにトルエンで三回共沸した。残渣を水に溶解し、ジエチルエーテルで三回洗浄して得られた水溶液を凍結乾燥させて得られた白色結晶をHPLCにてImtakt Cadenza 5CD-C18 150×20 mmを用い移動相にはA相に0.1%TFA/MilliQ、B相に0.1% TFA/MeCNを使用し、0-35分でA相95%、B相5%からA相50%、B相50%まで変化させ、35-45分でA相50%、B相50%からA相0%、B相100%まで変化させる直線gradient法により流速5 mL/minで精製（保持時間  24.8分）することで目的とする化合物(a27)(以下、「CDO3AiBu-FGK」ともいう)(1.8 mg、1.25 μmol、収率6.4%)を得た。ESI-MS (M+H)+: m/z 869.48, found: 869.38.【０１３５】
合成例L9(e): 化合物(a28)の合成例 
化合物 (a27)（1.8 mg、2.6 μmol）を飽和炭酸水素ナトリウム水溶液150 μLに溶解し、氷冷下N-メトキシカルボニルマレイミド（1.0 mg、 6.5 μmol）を加え、氷冷下で二時間攪拌した。反応終了後、5質量%クエン酸水溶液で酸性に調整した。さらにHPLCにてImtakt Cadenza 5CD-C18 150×20 mmを用い移動相にはA相に0.1%TFA/MilliQ、B相に0.1% TFA/MeCNを使用し、5分までA相 100%に保った後に、5-35分でA相 100%、B相 0%からA相 40%、B相 60%まで変化させ、35-50分でA相 40%、B相 60%からA相 0%、B相 100%まで変化させる直線gradient法により流速5 mL/minで精製（保持時間  30.7分）することで目的とする化合物(a28) (以下、「CDO3AiBu-FGK(Mal)」ともいう)（0.8 mg、0.57 μmol、収率45.5%）を得た。
ESI-MS (M+H)+: m/z 949.47, found: 949.36.【０１３６】
合成例L9(f): 化合物(a29)の合成
化合物 (a23)（2.7 mg、3.83 μmol）をDMF（0.3 mL）に溶解し、H-Phe-OtBu・HCl（1.5 mg、5.75 μmol）、N,N-ジイソプロピルエチルアミン（2.9 μL、17.2 μmol）、(1-シアノ-2-エトキシ-2-オキソエチリデンアミノオキシ)ジメチルアミノ-モルホリノ-カルベニウムヘキサフルオロリン酸塩（4.9 mg、11.5 μmol）を添加し、室温で一晩攪拌した。溶媒を減圧留去した後、残渣を酢酸エチルに再溶解し、5質量%炭酸水素ナトリウム水溶液で三回、5質量%クエン酸水溶液で三回洗浄した。有機層に硫酸ナトリウムを加えて乾燥した後、溶媒を減圧留去することで得られた残渣に10質量%アニソール／TFA溶液（2.0 mL）を加えて、室温で2時間攪拌した。溶媒を減圧留去した後、トルエンで三回共沸した。残渣を水に溶解し、ジエチルエーテルで三回洗浄して得られた水溶液から溶媒を減圧留去して得られた白色結晶をHPLCにてImtakt Cadenza 5CD-C18 150×20 mmを用い移動相にはA相に0.1%TFA/MilliQ、B相に0.1% TFA/MeCNを使用し、0-30分でA相100%、B相0%からA相40%、B相60%まで変化させ、30-35分でA相40%、B相60%からA相0%、B相100%まで変化させる直線gradient法により流速5 mL/minで精製（保持時間  25.2分）することで目的とする化合物(a29)(以下、「CDO3AiBu-Phe」ともいう) (0.1 mg、8.8 μmol、収率2.3%)を得た。
ESI-MS (M+H)+: m/z 684.36ound: 684.27【０１３７】
[二官能性キレート試薬結合Fabの作製]
合成例F1: Fab(Rabbit serum IgG由来)及びIT-Fab(Rabbit serum IgG由来)の作製
(Fab(Rabbit serum IgG由来)の作製）
Rabbit serum IgG (9 mg)を10 mM Na2EDTA及び20 mM cysteineを含む20 mMリン酸緩衝液(pH 7.0) 1.5 mLに溶解し、immobilized papain 50% slurry (Thermo Scientific, Yokohama, Japan) 500 μLを加え、37°Cで42時間インキュベートした。反応終了後、10 mMトリス塩酸緩衝液(pH 7.5)を2 mL加え、0.45 μmのフィルターでろ過し、ろ液を回収した。ろ液を10 kDaの限外ろ過膜を用いて20 mMリン酸緩衝液(pH 7.0)に置換し、1 mLに濃縮した。その後、protein Aカラムを用いて精製を行い、Fabを得た。得られたFabは、0.1 Mリン酸緩衝液(pH 6.8)を溶出溶媒とした流速1.0 mL/minで溶出するSE-HPLCにより生成を確認し、A280を測定することで濃度を算出した。【０１３８】
（IT-Fab(Rabbit serum IgG由来)の作製）
十分に脱気した2 mM EDTA含有0.16 Mホウ酸緩衝液(pH 8.0)を用いてFab溶液(100 μL, 5 mg/mL)を調製し、同じ緩衝液に溶解した2-イミノチオラン(2-IT) (5 μL, 2.88 mg/mL)を1 μLずつ攪拌しながら加え、37 ℃で静かに30分間攪拌した。反応後、十分脱気した2 mM EDTA含有0.1 Mリン酸緩衝液(pH 6.0)で平衡化したSephadex G-50 Fineを用いるスピンカラム法[Analytical Biochemistry,  1984, 142, 68-78]により反応溶液中の過剰の2-ITを除去し、IT-Fab(Rabbit serum IgG由来)溶液を得た。Fab一分子あたりに導入されたチオール基の数は2,2’-ジピリジルジスルフィドを用いて測定した[Archives of Biochemistry and Biophysics, 1967, 119, 41-49]。【０１３９】
合成例F2: Fab(抗c-kit IgG由来)及びIT-Fab(抗c-kit IgG由来)の作製
Rabbit serum IgG (9 mg)を、抗c-kit IgG (9 mg)とした以外は、合成例F1と同様の方法で、Fab(抗c-kit IgG由来)及びIT-Fab(抗c-kit IgG由来)を作製した。【０１４０】
[Fabが結合した配位子の作製]
合成例：CDO3AEt-FGK-Fab(Rabbit serum IgG由来)、CDO3AEt-FGK-Fab(抗c-kit IgG由来)、DO3A-EDA-Fab(Rabbit serum IgG由来)、CDOTA-Bn-CO-FGK-Fab(抗c-kit IgG由来)、DO3A-Bn-SCN-MVK-Fab(Rabbit serum IgG由来)、DO3A-Bn-CO-FGK-Fab(Rabbit serum IgG由来)、CDO3AiBu-FGK-Fab(Rabbit serum IgG由来) 及びCDO3AiBu-FGK-Fab(抗c-kit IgG由来)の作製
IT-Fab(Rabbit serum IgG由来)溶液(100 μL)にH2Oに溶解したCDO3AEt-FGK(Mal) (5 μL, チオール基に対して20等量)を1 μLずつ加え、37 ℃で2時間反応した。次いで、0.1 Mリン酸緩衝液(pH 6.0)を用いてヨードアセトアミド溶液を調製し、これを残存チオール基に対して500等量加えた後、37 ℃で1時間反応を行い、未反応のチオール基をアルキル化した。その後、0.25 M酢酸緩衝液(pH 5.5)で平衡化したSephadex G-50 Fineを用いるスピンカラム法で精製し、CDO3AEt-FGK-Fab(Rabbit serum IgG由来)溶液を得た。Fab一分子あたりに導入されたCDO3AEt-FGK(Mal)由来の単位数は、ヨードアセトアミドを加える前にDPSを用いて測定した[Archives of Biochemistry and Biophysics, 1967, 119, 41-49]チオール数を先に求めたチオール数を差し引くことにより求めた。
CDO3AEt-FGK(Mal)を、DO3A-EDA (Mal)、DO3A-Bn-SCN-MVK(Mal)、DO3A-Bn-CO-FGK(Mal)、及びCDO3AiBu-FGK(Mal)にそれぞれ変更し、その他は上記と同様の方法で、DO3A-EDA-Fab(Rabbit serum IgG由来)溶液、DO3A-Bn-SCN-MVK-Fab(Rabbit serum IgG由来)溶液、DO3A-Bn-CO-FGK-Fab(Rabbit serum IgG由来)溶液、及びCDO3AiBu-FGK-Fab(Rabbit serum IgG由来)溶液を得た。
IT-Fab(Rabbit serum IgG由来)溶液を、IT-Fab(抗c-kit IgG由来)溶液に変更し、その他は上記と同様の方法で、CDO3AEt-FGK-Fab(抗c-kit IgG由来)溶液を得た。
IT-Fab(Rabbit serum IgG由来)溶液を、IT-Fab(抗c-kit IgG由来)溶液に変更し、CDO3AEt-FGK(Mal)を、CDOTA-Bn-CO-FGK(Mal)に変更し、その他は上記と同様の方法で、CDOTA-Bn-CO-FGK-Fab(抗c-kit IgG由来)溶液を得た。
IT-Fab(Rabbit serum IgG由来)溶液を、IT-Fab(抗c-kit IgG由来)溶液に変更し、CDO3AEt-FGK(Mal)を、CDO3AiBu-FGK(Mal)に変更し、その他は上記と同様の方法で、CDO3AiBu-FGK-Fab(抗c-kit IgG由来)溶液を得た。【０１４１】
合成例：DOTA-Bn-SCN-Fab(抗c-kit IgG由来)の作製
0.16 Mホウ酸緩衝液(pH 8.5)を用いてFab溶液(100 μL, 5.0 mg/mL)を調整し、同じ緩衝液に溶解したDOTA-Bn-SCN (Macrocyclics, USA) (14 μL, 10mg/mL)を加え、4℃で一晩静置した。反応後、十分に脱気した0.25 M酢酸緩衝液 (pH 5.5)で平衡化したSephadex G-50 Fineを用いるスピンカラム法により過剰のDOTA-Bn-SCNを除去し、DOTA-Bn-SCN-Fab(抗c-kit IgG由来)を得た。
なお、上述のCDO3AEt-FGK-Fab、DO3A-Bn-CO-FGK-Fab、CDOTA-Bn-CO-FGK-Fab、CDO3AiBu-FGK-Fabの化学構造は上述のとおりである。また、DO3A-EDA-Fab、DO3A-Bn-SCN-MVK-Fab、及びDOTA-Bn-SCN-Fabの化学構造は以下のとおりである。【０１４２】
【化４７】
2019065774.tif 000049
【０１４３】
【化４８】
2019065774.tif 000050
【０１４４】
【化４９】
2019065774.tif 000051
【０１４５】
[金属錯体化合物の作製]
合成例：111In-CDO3AEt-FGK-Fab(Rabbit serum IgG由来)、111In- CDO3AEt-FGK-Fab(抗c-kit IgG由来)、111In-DO3A-EDA-Fab(Rabbit serum IgG由来)、111In-CDOTA-Bn-CO-FGK-Fab(抗c-kit IgG由来)、111In-DO3A-Bn-SCN-MVK-Fab(Rabbit serum IgG由来)、111In-DO3A-Bn-CO-FGK-Fab(Rabbit serum IgG由来)、111In-CDO3AiBu-FGK-Fab(Rabbit serum IgG由来)、111In-CDO3AiBu-FGK-Fab(抗c-kit IgG由来)、111In-DOTA-Bn-SCN-Fab(抗c-kit IgG由来)、111In-CDO3AEt-FGK(Boc)、111In-CDOTA-Bn-CO-FGK(Boc)、111In-DO3A-Bn-SCN-MVK(Bzo)、及び111In-DO3A-Bn-CO-FGK(Boc)の作製
111InCl3(45 μL)を1 M酢酸緩衝液(pH 5.5, 5 μL)に混和し、室温で5分間静置した。CDO3AEt-FGK-Fab(Rabbit serum IgG由来)溶液(30 μL)を混合した後、40 oCで90分間インキュベートした。最終濃度が10 mMとなるようにDTPAを加えた後、室温で18時間静置した。0.1 M D-PBS (pH 7.4)で平衡化したSephadex G-50 Fineを用いるスピンカラム法で精製することで、111In-CDO3AEt-FGK-Fabを作製した。CDO3AEt-FGK-Fab(Rabbit serum IgG由来)溶液を、CDO3AEt-FGK-Fab(抗c-kit IgG由来)溶液、DO3A- EDA -Fab(Rabbit serum IgG由来)溶液、CDOTA-Bn-CO-FGK-Fab(抗c-kit IgG由来)溶液、DO3A-Bn-SCN-MVK-Fab溶液(Rabbit serum IgG由来)、DO3A-Bn-CO-FGK-Fab(Rabbit serum IgG由来)溶液、CDO3AiBu-FGK-Fab(Rabbit serum IgG由来)溶液、DOTA-Bn-SCN-Fab(抗c-kit IgG由来)溶液、CDO3AEt-FGK(Boc)溶液、CDOTA-Bn-CO-FGK(Boc)溶液、DO3A-Bn-SCN-MVK(Bzo)溶液、及びDO3A-Bn-CO-FGK(Boc)溶液にそれぞれ変更し、その他は上記と同様の方法で、111In-CDO3AEt-FGK-Fab(抗c-kit IgG由来)、111In-DO3A-EDA-Fab(Rabbit serum IgG由来)、111In-CDOTA-Bn-CO-FGK-Fab(抗c-kit IgG由来)、111In-DO3A-Bn-SCN-MVK-Fab(Rabbit serum IgG由来)、111In-DO3A-Bn-CO-FGK-Fab(Rabbit serum IgG由来)、111In-CDO3AiBu-FGK-Fab(Rabbit serum IgG由来)、111In-DOTA-Bn-SCN-Fab(抗c-kit IgG由来)、111In-CDO3AEt-FGK(Boc)、111In-CDOTA-Bn-CO-FGK(Boc)、111In-DO3A-Bn-SCN-MVK(Bzo)、及び111In-DO3A-Bn-CO-FGK(Boc)、を作製した。【０１４６】
[特性の検討]
〔BBMVsとのインキュベート試験〕
（腎刷子縁膜小胞）
腎刷子縁膜小胞(BBMVs)はWistar系雄性ラット (200-250 g) の腎臓からHoriらの方法に従って作製した[Biochemical Pharmacology 45: 1763-1768, 1993]。全ての操作は氷上で行った。皮質に重量で4-5倍の300 mM mannitol、及び5 mM EGTA を含む12 mM トリス-塩酸緩衝液 (pH 7.1) を加え、ポリトロンホモジナイザー(PT-3100 Kinematica GmgH Littau, Switzerland)で2分間ホモジナイズし，同じ緩衝液で希釈することで10%ホモジネートとした。次いで、蒸留水で2倍に希釈した後，最終濃度が10 mM となるよう、1.0 Mに調整したMgCl2水溶液を加え、15分間放置した。その後、ホモジネートを1,900 gで遠心し、上清をさらに30分間24,000 gで遠心した。沈殿を皮質重量の20倍に相当する150 mM mannitol、及び2.5 mM EGTA を含む6 mM トリス-塩酸緩衝液 (pH 7.1) に再懸濁し、テフロン（登録商標）ホモジナイザー (1,000 rpm, 10 strokes) によりホモジナイズした。次いで、最終濃度が10 mMとなるように1.0 M MgCl2水溶液を加え、懸濁液を15分間放置し、その後、ホモジネートを1,900 gで遠心し、上清をさらに30分間24,000 gで遠心した。得られた沈殿を皮質重量の10倍に相当する0.1 M リン酸緩衝液 (pH 7.0) に懸濁し、再度テフロン（登録商標）ホモジナイザー (1,000 rpm, 10 strokes) によりホモジナイズした。次いで。ホモジネートを30分間24,000 gで遠心し、BBMVsを沈殿として得た。次いで、BBMVsの沈殿を0.1 Mリン酸緩衝液 (pH 7.0) に再懸濁し、0.4 x 19 mmの針に10回通すことで小胞の大きさを一定にした。インキュベート実験にはタンパク質濃度が10 mg/mLとなるように希釈して用いた。調製したBBMVsについて、リソソームマーカー酵素であるβ-galactosidase活性をp-nitrophenyl-β-D-galacto- pyranosideを用いて測定することにより、リソソーム酵素の混入を評価した[Plant Physiology 55: 94-98, 1975]。また、γ-glutamyl  transferase、aminopeptidaseの活性を、Glossmannら[FEBS Letters 19: 340-344, 1972]、Kramersら[European Journal of Biochemistry 99: 345-351, 1979]の方法に従い、L-γ-glutamyl- p-nitroanilide、L-leucine-p-nitroanilideを用いて測定した。【０１４７】
（インキュベート試験）
BBMVsと111In標識低分子モデル基質のインキュベート実験は以下の方法で行った。タンパク質濃度を10 mg/mLとなるように調製したBBMVs (10 μL)を、37 ℃で10分間プレインキュベートした。その後、逆相HPLCによって過剰の配位子を除去してPBSに溶解した111In-CDO3AEt-FGK(Boc)溶液(10 μL)を加え、37 ℃で二時間インキュベートした。BBMVs溶液に対してエタノール濃度が60%となるようにエタノールを加え、5000rpmで10分間遠心した。上清を回収後、沈殿に60%エタノールを加え再度同様の方法で遠心した後に、上清を回収した。得られた上清を、HPLCにてImtakt Unison US-C18 150×4.6 mmを用い移動相にはA相に0.1%TFA/MilliQ、B相に0.1% TFA/MeCNを使用し、0-30分でA相 100%、B相 0%からA相 55%、B相 45%まで変化させる直線gradient法により流速1 mL/minで分析を行った。
図１は、111In-CDO3AEt-FGK(Boc)とBBMVsのインキュベートの実験結果を示す。
111In-CDO3AEt-FGK(Boc)溶液を、111In-CDOTA-Bn-CO-FGK(Boc)溶液、111In-DO3A-Bn-CO-FGK(Boc)溶液、111In-DO3A-Bn-SCN-MVK(Bzo)溶液、111In-CDO3AiBu-FGK(Boc)溶液に代えて同様のインキュベート実験及びBBMVsを使用せずコントロール実験を行った。
図２は、111In-CDOTA-Bn-CO-FGK(Boc)溶液とBBMVsのインキュベートの実験結果を示す。
図３は、111In-DO3A-Bn-SCN-MVK(Bzo)とBBMVsのインキュベートの実験結果を示す。
図４は、111In-DO3A-Bn-CO-FGK(Boc)とBBMVsのインキュベートの実験結果を示す。
図５は、111In-CDO3AiBu-FGK(Boc)とBBMVsのインキュベートの実験結果を示す。
上記の実験結果から、連結基として、本願発明の化合物と同様に、ベンジルアミド構造を有する、111In-CDO3AEt-FGK(Boc)、111In-CDOTA-Bn-CO-FGK(Boc)、111In-DO3A-Bn-CO-FGK(Boc)、111In-CDO3AiBu-FGK(Boc)では、BBMVsのインキュベートにより、キレート配位子部位が遊離されることが理解できる。これに対して、連結基としてチオウレア構造を有する化合物111In-DO3A-Bn-SCN-MVK(Bzo)では、遊離物が観測されない。【０１４８】
〔金属錯体化合物のマウス血漿中安定性の検討〕
PBSに溶解した111In-CDO3AEt-FGK-Fab(Rabbit serum IgG由来) (10 μL)をマウス血漿(90 μL)に加え、37 ℃でインキュベートした。1、3、6、24時間後に溶液の一部を採取しメタノール：10質量% 酢酸アンモニウム水溶液＝3：2を展開溶媒とするRP-TLCにより分析することで、未変化体（111In-CDO3AEt-FGK-Fab）の放射活性の割合を算出し、表１に示した。【０１４９】
【表１】
2019065774.tif 000052
【０１５０】
111In-CDO3AEt-FGK-Fab(Rabbit serum IgG由来)を、111In-CDO3AEt-FGK-Fab(抗c-kit IgG由来)に変更し、その他は上記と同様の方法で、マウス血漿中安定性試験を行った。インキュベート2時間後、未変化体（111In-CDO3AEt-FGK-Fab）の放射活性の割合は、95.2±0.3%であった。
111In-CDO3AEt-FGK-Fab(Rabbit serum IgG由来)を、111In-CDOTA-Bn-CO-FGK-Fab(抗c-kit IgG由来)に変更し、その他は上記と同様の方法で、マウス血漿中安定性試験を行った。インキュベート2時間後、未変化体（111In-CDOTA- Bn-CO-FGK-Fab）の放射活性の割合は、95.2±0.3%であった。【０１５１】
111In-CDO3AEt-FGK-Fab(Rabbit serum IgG由来)を、111In-CDO3AiBu-FGK-Fab（Rabbit serum IgG由来）に変更し、その他は上記と同様の方法で、マウス血漿中安定性試験を行った。表２に実験結果を示す。【０１５２】
【表２】
2019065774.tif 000053
【０１５３】
〔金属錯体化合物のマウス体内動態の検討〕
実施例及び比較例で作製した金属錯体化合物をD-PBS(-) (pH 7.4)を用いて希釈した。6週齢のddY系雄性マウス尾静注により、未修飾Fab濃度を5 μg/100 μLに調整した111In-CDO3AEt-FGK-Fab（Rabbit serum IgG由来）溶液(0.3 μCi/100 μL/匹)を投与した。投与後10、30分、1、3、6、24時間後に各群3匹のマウスを屠殺し、関心臓器を採取、重量を測定後、オートウェルガンマシステムにより放射活性を測定した。また、6、24時間後までの糞尿をそれぞれ採取し、放射活性を測定した。同様の方法にて111In-CDO3AEt-FGK-Fab（抗c-kit IgG由来）溶液を用いて、6週齢のddY系雄性マウス尾静注により、関心臓器、糞尿について、放射活性を測定した。対照化合物として同様の方法にて調製した111In-DO3A-EDA-Fab（Rabbit serum IgG由来）を用いた。
表３は、111In-CDO3AEt-FGK-Fab（Rabbit serum IgG由来）によるマウス体内の放射活性の測定結果を示す。
表４は、111In-CDO3AEt-FGK-Fab（抗c-kit IgG由来）によるマウス体内の放射活性の測定結果を示す。
表５は、111In-DO3A-EDA-Fab（Rabbit serum IgG由来）によるマウス体内の放射活性の測定結果を示す。
上記と同様の方法にて111In-CDOTA-Bn-CO-FGK-Fab（抗c-kit IgG由来）溶液、111In-DO3A-Bn-SCN-MVK-Fab（Rabbit serum IgG由来）溶液、111In-DO3A-Bn-CO-FGK-Fab（Rabbit serum IgG由来）溶液、111In-CDO3AiBu-FGK-Fab（Rabbit serum IgG由来）溶液、111In-CDO3AiBu-FGK-Fab（抗c-kit IgG由来）溶液、111In-DOTA-Bn-SCN-Fab（抗c-kit IgG由来）溶液を用いて、6週齢のddY系雄性マウス尾静注により、関心臓器、糞尿について、放射活性を測定した。
表６は、111In-CDOTA-Bn-CO-FGK-Fab（抗c-kit IgG由来）によるマウス体内の放射活性の測定結果を示す。
表７は、111In-DO3A-Bn-SCN-MVK-Fab（Rabbit serum IgG由来）によるマウス体内の放射活性の測定結果を示す。
表８は、111In-DO3A-Bn-CO-FGK-Fab（Rabbit serum IgG由来）によるマウス体内の放射活性の測定結果を示す。
表９は、111In-CDO3AiBu-FGK-Fab（Rabbit serum IgG由来）によるマウス体内の放射活性の測定結果を示す。
表１０は、111In-CDO3AiBu-FGK-Fab（抗c-kit IgG由来）によるマウス体内の放射活性の測定結果を示す。
表１１は、111In-DOTA-Bn-SCN-Fab（抗c-kit IgG由来）によるマウス体内の放射活性の測定結果を示す。
図６Ａ〜Ｃに、111In-CDO3AEt-FGK-Fabと111In-DO3A-EDA-Fabとの結果の比較を示した。
これら本発明の化合物である111In-CDO3AEt-FGK-Fabと比較化合物である111In-DO3A-EDA-Fabとの結果から、111In-CDO3AEt-FGK-Fabは、111In-DO3A-EDA-Fabと同程度の血中濃度を示しながら、腎臓への蓄積が抑制され、低い腎臓-血液比が得られることがわかる。
上記の実験結果から、連結基として、ベンジルアミド構造を有する本願発明の化合物111In-CDO3AEt-FGK-Fab（Rabbit serum IgG由来）、111In-CDO3AEt-FGK-Fab（抗c-kit IgG由来）、111In-CDOTA-Bn-CO-FGK-Fab（抗c-kit IgG由来）、111In-DO3A-Bn-CO-FGK-Fab（Rabbit serum IgG由来）では、腎臓での放射活性が顕著に抑えられているのに対して、連結基としてチオウレア構造を有する比較化合物111In-DO3A-Bn-SCN-MVK-Fab、及びエチレン構造を有する111In-DO3A-EDA-Fab（Rabbit serum IgG由来）では、腎臓での放射活性が高い値を示す。上記結果及びBBMVsとのインキュベート試験の試験結果から、ベンジルアミド構造を有する本願発明の化合物では、酵素による代謝が行われ、腎臓に取り込まれる前に、放射性金属部位が遊離されたものと考えられ、一方で、チオウレア構造を有する比較化合物では、酵素認識されず、代謝物の遊離がなかったと考えられる。
図７Ａ〜Ｃに、111In-CDO3AiBu-FGK-Fab（抗c-kit IgG由来）、111In-DOTA-Bn-SCN-Fab（抗c-kit IgG由来）、及び111In-CDO3AEt-FGK-Fab（抗c-kit IgG由来）の結果の比較を示した。
これらの結果から、111In-CDO3AiBu-FGK-Fabは、111In-CDO3AEt-FGK-Fabよりも、更に腎臓への蓄積が抑制され、より低い腎臓-血液比が得られることがわかる。【０１５４】
【表３】
2019065774.tif 000054
【０１５５】
【表４】
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【０１５６】
【表５】
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【０１５７】
【表６】
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【０１５８】
【表７】
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【０１５９】
【表８】
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【０１６０】
【表９】
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【０１６１】
【表１０】
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【０１６２】
【表１１】
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【０１６３】
〔尿中放射活性の分析〕
111In-CDO3AEt-FGK-Fab（Rabbit serum IgG由来）をD-PBS (-)で希釈した。マウス尾静脈より、Fab濃度を5 μg/100 μLに調整した111In-CDO3AEt-FGK-Fab（Rabbit serum IgG由来）溶液(4 μCi/100 μL/匹)を投与し、24時間後までに集積した尿を0.45 μmのフィルターで濾過した後、SE-HPLCにて化学形を分析した。また、回収した尿に2倍量のEtOHを加えることでタンパクを沈殿させ、15,000 gで5分間遠心した後に上清を回収した。上清を回収した後に66% EtOH溶液100 μLを用いてペレットを洗浄し、再度遠心して上清を回収する作業を2回行い、放射活性の上清への回収率を算出した。その後、EtOH濃度が15％以下になるよう上清をD-PBS (-)で希釈し、RP-HPLCによる分析を行った。
図８は、111In-CDO3AEt-FGK-Fab（Rabbit serum IgG由来）をマウスに投与後24時間までに排泄された尿中放射活性の化学形の分析結果を示す。以上、尿中の放射活性の分析により図８Ａに示すSE-HPLCによる分析で、大部分の放射活性が低分子画分で排泄され、図８Ｂに示すRP-HPLCの結果から、111In-CDO3AEt-FGK-Fabでは、低分子画分における主たる放射活性111In-CDO3AEt-Phe(111In-CDO3AEt-FGK-Fabがフェニルアラニン−グリシン間で切断された化合物)であることがわかる。
111In-CDO3AEt-FGK-Fab（Rabbit serum IgG由来）を、111In-CDOTA-Bn-CO-FGK-Fab（抗c-kit IgG由来）に変更し、投与後6時間後までに排泄された尿を集積し分析した以外は、上記と同様の方法で、尿中放射活性の分析を行った。
図９は、111In-CDOTA-Bn-CO-FGK-Fab(抗c-kit IgG由来)をマウスに投与後6時間までに排泄された尿中放射活性の化学形の分析結果を示す。RP-HPLCの結果から、111In-CDOTA-Bn-CO-FGK-Fabでは、低分子画分における主たる放射活性111In-CDOTA-Phe (111In-CDOTA-Bn-CO-FGK-Fabがフェニルアラニン−グリシン間で切断された化合物)であることがわかる。
111In-CDO3AEt-FGK-Fab（Rabbit serum IgG由来）を、111In-DO3A-Bn-CO-FGK-Fab(Rabbit serum IgG由来)に変更した以外は、上記と同様の方法で、尿中放射活性の分析を行った。
図１０は、111In-DO3A-Bn-CO-FGK-Fab(Rabbit serum IgG由来)をマウスに投与後24時間までに排泄された尿中放射活性の化学形の分析結果を示す。RP-HPLCの結果から、111In-DO3A-Bn-CO-FGK-Fabでは、低分子画分における主たる放射活性111In-DO3A-Phe (111In-DO3A-Bn-CO-FGK-Fabがフェニルアラニン−グリシン間で切断された化合物)であることがわかる。
111In-CDO3AEt-FGK-Fab（Rabbit serum IgG由来）を、111In-CDO3AiBu-FGK-Fab(Rabbit serum IgG由来)に変更した以外は、上記と同様の方法で、尿中放射活性の分析を行った。
図１１は、111In-CDO3AiBu-FGK-Fab(Rabbit serum IgG由来)をマウスに投与後24時間までに排泄された尿中放射活性の化学形の分析結果を示す。以上、尿中の放射活性の分析により図１１Ａに示すSE-HPLCによる分析で、大部分の放射活性が低分子画分として排泄され、図１１Ｂに示すRP-HPLCの結果から、111In-CDO3AiBu-FGK-Fab（Rabbit serum IgG由来）では、低分子画分における主たる放射活性が111In-CDO3AiBu-Phe (111In-CDO3AiBu-FGK-Fabがフェニルアラニン−グリシン間で切断された化合物)であることがわかる。【０１６４】
〔SPECT/CT撮像〕
上述の方法により調製した111In-CDO3AEt-FGK-Fab（抗c-kit IgG由来）をD-PBS (-)で希釈した。上記SY皮下腫瘍モデルマウスの尾静脈より、Fab濃度を25 μg/100 μLに調整した111In- CDO3AEt-FGK-Fab溶液(45 μCi/100 μL/匹)を投与した。各群2匹のマウスをSPECT/CT装置（SPECT4CT, Trifoil Imaging, CA）を用いて、開口径1 mm、5穴ピンホールコリメータを360度収集、16プロジョエクション、14分/プロジェクションの条件にて、投与後2.5時間から撮像した。
111In-CDO3AEt-FGK-Fab（抗c-kit IgG由来）溶液(45 μCi/100 μL/匹)を111In-DO3A-Bn-SCN-MVK-Fab（抗c-kit IgG由来）溶液(14 μCi/100 μL/匹)に変更した以外は、同様にして、SY皮下腫瘍モデルマウスの尾静脈より投与して、投与後2.5時間から撮像した。
図１２は、111In-DO3A-Bn-SCN-MVK-Fab（抗c-kit IgG由来）溶液を、又は111In-CDO3AEt-FGK-Fab（抗c-kit IgG由来）溶液をSY皮下腫瘍モデルマウスに投与後2.5時間のSPECT/CT画像である。
投与2.5時間後において、111In-CDO3AEt-FGK-Fabは腎臓への集積が低く、腫瘍を明瞭に画像化した。一方で、111In-DO3A-Bn-SCN-MVK-Fabでは、腫瘍を画像化したが、腎臓にも高い放射活性が観察された。
以上、放射性標識薬剤は、腎臓への集積が低く、放射線画像診断の感度、精度を向上させることができる。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【国際調査報告】
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