(57)【要約】  本発明は、眼内悪性リンパ腫に特異的な遺伝子変異を検出することを含む、眼内悪性リンパ種の診断を補助する方法の提供を目的とする。具体的には、本発明は、被験者由来の検体において、以下の（Ａ）ないし（Ｉ）のいずれかの遺伝子変異の1または複数を検出することを含む、眼内悪性リンパ種の診断を補助する方法である。（Ａ）CD79Bのc.586T>A変異、（Ｂ）CD79Bのc.586T>C変異、（Ｃ）CD79Bのc.587A>C変異、（Ｄ）CD79Bのc.587A>G変異、（Ｅ）BTG2のc.133G>A変異、（Ｆ）BTG2のc.142G>A変異、（Ｇ）MYD88のc.794T>C変異、（Ｈ）MYD88のc.728G>A変異、および（Ｉ）PIM1のc.550C>T変異【特許請求の範囲】
【請求項１】
被験者由来の検体において、以下の（Ａ）ないし（Ｉ）のいずれかの遺伝子変異の1または複数を検出することを含む、眼内悪性リンパ種の診断を補助する方法。
（Ａ）CD79Bのc.586T>A変異、
（Ｂ）CD79Bのc.586T>C変異、
（Ｃ）CD79Bのc.587A>C変異、
（Ｄ）CD79Bのc.587A>G変異、
（Ｅ）BTG2のc.133G>A変異、
（Ｆ）BTG2のc.142G>A変異、
（Ｇ）MYD88のc.794T>C変異、
（Ｈ）MYD88のc.728G>A変異、および
（Ｉ）PIM1のc.550C>T変異
【請求項２】
前記遺伝子変異が、少なくとも、前記（Ｅ）、（Ｆ）または（Ｉ）のいずれかであることを特徴とする請求項１に記載の方法。
【請求項３】
被験者由来の検体において、以下の（ａ）ないし（ｉ）のいずれかの遺伝子変異の1または複数を検出することを含む、眼内悪性リンパ種の診断を補助する方法
（ａ）CD79Bタンパク質のY196Nのアミノ酸置換を伴うCD79B遺伝子変異、
（ｂ）CD79Bタンパク質のY196Hのアミノ酸置換を伴うCD79B遺伝子変異、
（ｃ）CD79Bタンパク質のY196Sのアミノ酸置換を伴うCD79B遺伝子変異、
（ｄ）CD79Bタンパク質のY196Cのアミノ酸置換を伴うCD79B遺伝子変異、
（ｅ）BTG2タンパク質のA45Tのアミノ酸置換を伴うBTG2遺伝子変異、
（ｆ）BTG2タンパク質のE48Kのアミノ酸置換を伴うBTG2遺伝子変異、
（ｇ）MYD88タンパク質のL265Pのアミノ酸置換を伴うMYD88遺伝子変異、
（ｈ）MYD88タンパク質のS243Nのアミノ酸置換を伴うMYD88遺伝子変異、および
（ｉ）PIM1タンパク質のL184Fのアミノ酸置換を伴うPIM1遺伝子変異
【請求項４】
前記遺伝子変異が、少なくとも、前記（ｅ）、（ｆ）または（ｉ）のいずれかであることを特徴とする請求項３に記載の方法。
【請求項５】
前記遺伝子変異の検出を、デジタルPCR法により検出することを特徴とする請求項１ないし４のいずれかに記載の方法。
【請求項６】
請求項５の検出を行う前に、予め検体由来のDNAを増幅することを特徴とする請求項５に記載の方法。
【請求項７】
前記検体が眼内液、髄液、末梢血または骨髄であることを特徴とする請求項１ないし６のいずれかに記載の方法。
【請求項８】
眼内悪性リンパ種の診断を補助する方法を実施するためのキット。
【請求項９】
以下の（Ａ）ないし（Ｉ）のいずれかの遺伝子変異の1または複数を検出するためのプローブおよび／またはプライマーを含むことを特徴とする請求項８に記載のキット。
（Ａ）CD79Bのc.586T>A変異、
（Ｂ）CD79Bのc.586T>C変異、
（Ｃ）CD79Bのc.587A>C変異、
（Ｄ）CD79Bのc.587A>G変異、
（Ｅ）BTG2のc.133G>A変異、
（Ｆ）BTG2のc.142G>A変異、
（Ｇ）MYD88のc.728G>A変異、
（Ｈ）MYD88のc.794T>C変異、および
（Ｉ）PIM1のc.550C>T変異
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、眼内悪性リンパ腫の補助的診断法に関する。より具体的には、眼内悪性リンパ腫に特異的な遺伝子変異を指標とする補助的診断方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
眼内悪性リンパ腫は、脳中枢神経系へ60-80%と高率に播種し、5年生存率は30%から40%と眼疾患の中でも最も生命予後の悪い難治性疾患である（非特許文献１）。現在のところ、年間100万人に4.6人の希少疾患であることもあり、標準治療は世界的および本邦においても確立されていない。【０００３】
眼内悪性リンパ腫の診断は、診断自体が困難であるとされ、診断における平均期間は1年以上という報告がある。また、得られる検体が微量であり、組織診断が出来ないことから、通常のリンパ腫における病理診断が困難である。そのため、これまでに、IgHクローナリティ(免疫グロブリンH鎖)遺伝子再構成）、Il10/IL6、細胞診の特異度、感度を用いて診断確率を向上させてきた。近年では、MYD88やCD79Bの遺伝子変異が眼内悪性リンパ腫に認められることが報告されている。しかしながら、微量な検体から効率よく診断する診断方法は未だ確立されていない。【０００４】
上記診断方法とは別に、眼内悪性リンパ腫の標的遺伝子解析についても研究が進められている。眼内悪性リンパ腫の約7割でMYD88におけるL265P変異が検出され、約35％でCD79Bにおける Y196（F、E、D、CおよびN）変異をみとめている（非特許文献２〜非特許文献５）。しかしながら、高率に眼内悪性リンパ腫と補助診断できる遺伝子診断方法は未だ確立されてない。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００５】
【非特許文献１】Grimmら, Ann Oncol. 2007; 18: 1851-1855.
【非特許文献２】Yoneseら, E Eur J Haematol. 2019 Feb;102(2):191-196.
【非特許文献３】Lauraら, JAMA Ophthalmol. 2018 Oct 1;136(10):1098-1104.
【非特許文献４】Rajaら, Retina. 2016 Mar;36(3):624-628.
【非特許文献５】Bonzheimら, Blood. 2015 Jul 2;126(1):76-79.
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
上記事情に鑑み、本発明は、眼内悪性リンパ腫に特異的な遺伝子変異を検出することを含む、眼内悪性リンパ種の診断を補助する方法の提供を目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者らは、上記課題を解決するために、これまでに知られている眼内悪性リンパ腫特異的な遺伝子変異以外の検索を行ったところ、眼内悪性リンパ腫特異的な変異遺伝子として新規にBTG2およびPIM1を見出した。
さらに、本発明者らは、眼内悪性リンパ腫の遺伝子解析のために調製できるDNA量が非常に微量であることに鑑み、この点を解決すべく、複数の遺伝子変異を同時に検出可能とするために、デジタルPCR（digital PCR；digital polymerase chain reaction）等による解析の前に、微量検体由来のサンプルDNAをmultiplex PCR法などにより前増幅することによって、1回のデジタルPCR等による解析で複数の変異遺伝子が同時に検出可能となることを見出した。【０００８】
すなわち、本発明は、以下の（１）〜（９）である。
（１）被験者由来の検体において、以下の（Ａ）ないし（Ｉ）のいずれかの遺伝子変異の1または複数を検出することを含む、眼内悪性リンパ種の診断を補助する方法。
（Ａ）CD79Bのc.586T>A変異、
（Ｂ）CD79Bのc.586T>C変異、
（Ｃ）CD79Bのc.587A>C変異、
（Ｄ）CD79Bのc.587A>G変異、
（Ｅ）BTG2のc.133G>A変異、
（Ｆ）BTG2のc.142G>A変異、
（Ｇ）MYD88のc.794T>C変異、
（Ｈ）MYD88のc.728G>A変異、および
（Ｉ）PIM1のc.550C>T変異
（２）前記遺伝子変異が、少なくとも、前記（Ｅ）、（Ｆ）または（Ｉ）のいずれかであることを特徴とする上記（１）に記載の方法。
（３）被験者由来の検体において、以下の（ａ）ないし（ｉ）のいずれかの遺伝子変異の1または複数を検出することを含む、眼内悪性リンパ種の診断を補助する方法
（ａ）CD79Bタンパク質のY196Nのアミノ酸置換を伴うCD79B遺伝子変異、
（ｂ）CD79Bタンパク質のY196Hのアミノ酸置換を伴うCD79B遺伝子変異、
（ｃ）CD79Bタンパク質のY196Sのアミノ酸置換を伴うCD79B遺伝子変異、
（ｄ）CD79Bタンパク質のY196Cのアミノ酸置換を伴うCD79B遺伝子変異、
（ｅ）BTG2タンパク質のA45Tのアミノ酸置換を伴うBTG2遺伝子変異、
（ｆ）BTG2タンパク質のE48Kのアミノ酸置換を伴うBTG2遺伝子変異、
（ｇ）MYD88タンパク質のL265Pのアミノ酸置換を伴うMYD88遺伝子変異、
（ｈ）MYD88タンパク質のS243Nのアミノ酸置換を伴うMYD88遺伝子変異、および
（ｉ）PIM1タンパク質のL184Fのアミノ酸置換を伴うPIM1遺伝子変異
（４）前記遺伝子変異が、少なくとも、前記（ｅ）、（ｆ）または（ｉ）のいずれかであることを特徴とする上記（３）に記載の方法。
（５）前記遺伝子変異の検出を、デジタルPCR法により検出することを特徴とする上記（１）ないし（４）のいずれかに記載の方法。
（６）上記（５）の検出を行う前に、予め検体由来のDNAを増幅することを特徴とする（５）に記載の方法。
（７）前記検体が眼内液、髄液、末梢血または骨髄であることを特徴とする上記（１）ないし（６）のいずれかに記載の方法。
（８）眼内悪性リンパ種の診断を補助する方法を実施するためのキット。
（９）以下の（Ａ）ないし（Ｉ）のいずれかの遺伝子変異の1または複数を検出するためのプローブおよび／またはプライマーを含むことを特徴とする上記（８）に記載のキット。
（Ａ）CD79Bのc.586T>A変異、
（Ｂ）CD79Bのc.586T>C変異、
（Ｃ）CD79Bのc.587A>C変異、
（Ｄ）CD79Bのc.587A>G変異、
（Ｅ）BTG2のc.133G>A変異、
（Ｆ）BTG2のc.142G>A変異、
（Ｇ）MYD88のc.728G>A変異、
（Ｈ）MYD88のc.794T>C変異、および
（Ｉ）PIM1のc.550C>T変異
【発明の効果】
【０００９】
本発明により、微量検体による眼内悪性リンパ種特異的な変異遺伝子およびその変異の検出が可能となる。従って、本発明による診断補助方法を実施することで、予後不良とされる眼内悪性リンパ種の確度の高い診断が可能となる。【００１０】
これまでのMYD88やCD79Bの遺伝子変異では、眼内悪性リンパ腫の70%程度しか補助診断の役割を果たしていなかった。本発明にかかる方法は、4遺伝子9箇所の変異箇所の検出により、症例の96%を網羅できており、MYD88やCD79B だけでなく、BTG2、PIM1変異遺伝子の4つの疾患特異的遺伝子変異を用いることで高率に診断を補助できる補助的診断方法である。従って、BTG2、PIM1変異遺伝子を含む、本明細書よって初めて開示された新規な疾患特異的遺伝子を用いることでこれまで病理組織学的解析、病理細胞診では十分に診断できなかった症例に対して、補助診断として有用である。【００１１】
さらに、眼内悪性リンパ腫は、得られる検体量が微量であるため遺伝子解析が困難であったが、本発明において、multiplex PCR法を用いて、DNAの前増幅を行うことで、微量な検体量から変異遺伝子を検出する系を確立した。この増幅系を用いることで、微量な検体であってもデジタルPCR法等による測定可能となる。
【図面の簡単な説明】
【００１２】
【図１】眼内悪性リンパ種症例のデジタルPCR解析結果の代表例。プローブ6（BTG2 c.142G>A E48K）を用いて解析を行った。
【発明を実施するための形態】
【００１３】
本発明の第１の実施形態は、被験者由来の検体において、以下の（Ａ）ないし（Ｉ）のいずれかの遺伝子変異の1または複数を検出することを含む、眼内悪性リンパ種の診断を補助する方法である。
（Ａ）CD79B（CD79b Molecule）のc.586T>A変異、
（Ｂ）CD79Bのc.586T>C変異、
（Ｃ）CD79Bのc.587A>C変異、
（Ｄ）CD79Bのc.587A>G変異、
（Ｅ）BTG2（BTG Anti-proliferation Factor 2）のc.133G>A変異、
（Ｆ）BTG2のc.142G>A変異、
（Ｇ）MYD88（MYD88 Innate Immune Signal Transduction Adaptor；Myeloid Differentiation Primary Response 88）のc.794T>C変異
（Ｈ）MYD88のc.728G>A変異、および
（Ｉ）PIM1（Pim-1 Proto-oncogene, Serine/Threonine kinase）のc.550C>T変異
【００１４】
より具体的には、本発明の第１の実施形態は、前記（Ａ）ないし（Ｉ）のいずれかの遺伝子変異の1または複数を検出することを含み、遺伝子変異が検出されたときに、当該被験者は眼内悪性リンパ種であると判定し、眼内悪性リンパ種の診断を補助する方法である。第１の実施形態における遺伝子検出工程において、少なくとも前記（Ｅ）、（Ｆ）または（Ｉ）のいずれか１つの遺伝子変異を検出することが好ましい。
【００１５】
本発明の第２の実施形態は、被験者由来の検体において、以下の（ａ）ないし（ｉ）のいずれかの遺伝子変異の1または複数を検出することを含む、眼内悪性リンパ種の診断を補助する方法
（ａ）CD79Bタンパク質のY196Nのアミノ酸置換を伴うCD79B遺伝子変異、
（ｂ）CD79Bタンパク質のY196Hのアミノ酸置換を伴うCD79B遺伝子変異、
（ｃ）CD79Bタンパク質のY196Sのアミノ酸置換を伴うCD79B遺伝子変異、
（ｄ）CD79Bタンパク質のY196Cのアミノ酸置換を伴うCD79B遺伝子変異、
（ｅ）BTG2タンパク質のA45Tのアミノ酸置換を伴うBTG2遺伝子変異、
（ｆ）BTG2タンパク質のE48Kのアミノ酸置換を伴うBTG2遺伝子変異、
（ｇ）MYD88タンパク質のL265Pのアミノ酸置換を伴うMYD88遺伝子変異、
（ｈ）MYD88タンパク質のS243Nのアミノ酸置換を伴うMYD88遺伝子変異、および
（ｉ）PIM1タンパク質のL184Fのアミノ酸置換を伴うPIM1遺伝子変異
【００１６】
より具体的には、本発明の第２の実施形態は、前記（ａ）ないし（ｉ）のいずれかの遺伝子変異の1または複数を検出することを含み、遺伝子変異が検出されたときに、当該被験者は眼内悪性リンパ種であると判定し、眼内悪性リンパ種の診断を補助する方法である。第１の実施形態における遺伝子検出工程において、少なくとも前記（ｅ）、（ｆ）または（ｉ）のいずれか１つの遺伝子変異を検出することが好ましい。
なお、本明細書においては遺伝子名を表す場合には、遺伝子名に下線を付し、その遺伝子産物を表す場合には、遺伝子名に下線を付さずに記載する、または遺伝子名の後に「タンパク質」を記載することとする。
【００１７】
本実施形態において、遺伝子変異を検出する方法は、いかなる方法であってもよく、特に限定はしないが、例えば、デジタルPCR法、allele-specific PCR（ASPCR）法、metagenomic deep sequencing法などを挙げることができる。特に、検体量が微量の場合には、上記例示した解析を行う前に、検体から抽出した微量DNAを、予めPCR法（例えばmultiplex PCR法、デジタルPCR法を用いたmultiplex PCR法）で増幅（前増幅）し、得られた増幅産物を使用して上記解析を行うことで、効率的な検出が可能となり、複数の遺伝子変異箇所を一度に検出することが可能となる。また、ある程度の検体量が確保できる場合には、サンガーシークエンスや次世代シークエンス（next generation sequencing：NGS）などを用いても遺伝子変異の検出が可能である。
【００１８】
本実施形態において、被験者由来の検体は、眼内悪性リンパ種由来の染色体DNAが含まれている検体であればよく、特に限定はしないが、例えば、眼内液（例えば、硝子体液および前房水液など）、髄液、末梢血および骨髄などを挙げることができる。
【００１９】
本発明の第３の実施形態は、本実施形態にかかる方法を実施するためのキットである。第３の実施形態にかかるキットには、少なくとも、前記（Ａ）ないし（Ｉ）のいずれか、または、前記（ａ）ないし（ｉ）のいずれかの遺伝子変異を検出するために必要な要素が含まれる。特に、第２の実施形態のキットには、少なくとも、前記（Ｅ）、（Ｆ）または（Ｉ）のいずれか１つの遺伝子変異、あるいは、前記（ｅ）、（ｆ）または（ｉ）のいずれか１つの遺伝子変異を検出するために必要な要素が含まれることが好ましい。上記要素としては、特に限定はしないが、例えば、デジタルPCRやシークエンスを行うための、プライマーやプローブなどを挙げることができる。
【００２０】
本明細書が英語に翻訳されて、単数形の「a」、「an」および「the」の単語が含まれる場合、文脈から明らかにそうでないことが示されていない限り、単数のみならず複数のものも含むものとする。
以下に実施例を示してさらに本発明の説明を行うが、本実施例は、あくまでも本発明の実施形態の例示にすぎず、本発明の範囲を限定するものではない。
【実施例】
【００２１】
１．方法
１−１．硝子体液の検体処理とDNA抽出
眼内悪性リンパ腫と診断された患者の硝子体手術により得た硝子体液中に細胞を48 μmのナイロンメッシュのフィルターに通過させ、MACS bufferで洗浄し、1500 rpm、4℃で5分間遠心分離した。MACS bufferで更に2回洗浄し、2500rpm、4℃で5分間遠心分離し上清を破棄した。下液をAllPrep DNA/RNA Micro Kit (QIAGEN, Valencia, CA, USA)を用いてDNA抽出した。
上記眼内悪性リンパ種の診断は、以下の基準を用いて行った；（１）細胞診クラス４以上であること、または（２）細胞診クラス3、（３）IL10/IL6>1、（４）IgH遺伝子再構成（PCR法）陽性（LSIメディエンス）、（５）FACSでkappa/lambda ratio >3 or<05) (Davis et al, Am J Ophthalmol 2005, 140:822-29：Sagoo et al, Surv Ophthalmol 2014, 59:503-16)の（２）から（５）の4項目中2項目以上陽性であること。なお、細胞診クラス３とは異型性があり、悪性の疑いあり、クラス４とは悪性細胞の可能性が高いものをいう。【００２２】
１−２．変異遺伝子および解析箇所の選定
本実施例ではいくつかの眼内悪性リンパ腫と関連する候補遺伝子（CD79B、BTG2、MYD88および PIM1など）および変異箇所を選定し、表１に示す通り4遺伝子9箇所を解析箇所として選出した。4遺伝子9箇所はすべて一塩基置換である。
【表１】
2020138435.tif 000002
【００２３】
１−３．プライマーおよびプローブの作成
MYD88 L265P以外の4遺伝子8箇所のプローブおよびプライマー配列は、Custom TaqMan（登録商標）Assay Design Tool（Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA）を用いて合成した。MYD88 L265Pのプローブおよびプライマーは、中枢性悪性リンパ腫のMYD88 L265P検出を行った既報と同じ配列を設計した。
プライマーおよびプローブ配列（FAMは変異体のプローブ、VICは野生型のプローブを表す）を以下に示す。また、表２および表３には、各遺伝子の変異領域とDigital PCR解析のためのプライマーおよびプローブの設定位置を示す（なお、表２および表３に示す配列領域は、CD79B（c.586T>A、c.586T>C、c.587A>C、c.587A>G：配列番号３３）、BTG2（c.133G>A、c142G>A：配列番号３４）、MYD88（c.794T>c：配列番号３５、c.728G>A：配列番号３６）およびPIM1（c.550C>T：配列番号３７）として配列表に示す）。表２および３において、変異箇所を[T/A]（TからAへの変異）、[A/C]（AからCへの変異）などのように示した。【００２４】
＜プライマー配列＞
CD79B c.586T>A
Forward；5’- GGGCCTGCCCCTCTC -3’（配列番号１）
Reverse；5’- AGCAAGGCTGGCATGGA -3’（配列番号２）
CD79B c.586T>C
Forward；5’- GGGCCTGCCCCTCTC -3’（配列番号１）
Reverse；5’- AGCAAGGCTGGCATGGA -3’（配列番号２）
CD79B c.587A>C
Forward；5’- CTGACCCCGAGGACTCAGA -3’（配列番号３）
Reverse；5’- GGCTGGCATGGAGGAAGA -3’（配列番号４）
CD79B c.587A>G
Forward；5’- CTGACCCCGAGGACTCAGA -3’（配列番号３）
Reverse；5’- GGCTGGCATGGAGGAAGA -3’（配列番号４）
BTG2 c.133G>A
Forward；5’- GAGCAGAGGCTTAAGGTCTTCA -3’（配列番号５）
Reverse；5’- GGCATGCGCTCACCTG -3’（配列番号６）
BTG2 c.142G>A
Forward；5’- GAGCAGAGGCTTAAGGTCTTCAG -3’（配列番号７）
Reverse；5’- AGGCCCCTCGGCATG -3’（配列番号８）
MYD88 c.794T>C
Forward；5’- CCTTGGCTTGCAGGT -3’（配列番号９）
Reverse；5’- TCTTTCTTCATTGCCTTGT -3’（配列番号１０）
MYD88 c.728G>A
Forward；5’- GGTGGTGGTTGTCTCTGATGATTAC -3’（配列番号１１）
Reverse；5’- TGAGTGCAAATTTGGTCTGGAAGT -3’（配列番号１２）
PIM1 c.550C>T
Forward；5’- GAAAACATCCTTATCGACCTCAATCG -3’（配列番号１３）
Reverse；5’- CGTGTAGACGGTGTCCTTGAG -3’（配列番号１４）【００２５】
＜プローブ配列＞
CD79B c.586T>A
FAM；5’- AGATCACACCTTCGAGGTA -3’（配列番号１５）
VIC；5’- AAGATCACACCTACGAGGTA -3’（配列番号１６）
CD79B c.586T>C
FAM；5’- TCACACCTGCGAGGTA -3’（配列番号１７）
VIC；5’- AAGATCACACCTACGAGGTA -3’（配列番号１８）
CD79B c.587A>C
FAM；5’- CTTACCTCGTCGGTGTGA -3’（配列番号１９）
VIC；5’- TCCTTACCTCGTAGGTGTGA -3’（配列番号２０）
CD79B c.587A>G
FAM；5’- CTTACCTCGTGGGTGTG -3’（配列番号２１）
VIC；5’- CCTTACCTCGTAGGTGTG -3’（配列番号２２）
BTG2 c.133G>A
FAM；5’- CTCCAGGAGACACTCA -3’（配列番号２３）
VIC；5’- CTCCAGGAGGCACTCA -3’（配列番号２４）
BTG2 c.142G>A
FAM；5’- CACTCACAAGTGAGCG -3’（配列番号２５）
VIC；5’- CACTCACAGGTGAGCG -3’（配列番号２６）
MYD88 c.794T>C
FAM；5’- TGGGGATCGGTCGC -3’（配列番号２７）
VIC；5’- TGGGGATCAGTCGCTT -3’（配列番号２８）
MYD88 c.728G>A
FAM；5’- CACATTCCTTGTTCTGCA -3’（配列番号２９）
VIC；5’- CACATTCCTTGCTCTGCA -3’（配列番号３０）
PIM1 c.550C>T
FAM；5’- AAGTCGATGAACTTGAG -3’（配列番号３１）
VIC；5’- AAGTCGATGAGCTTGAG -3’（配列番号３２）【００２６】
【表２】
2020138435.tif 000003
【表３】
2020138435.tif 000004
【００２７】
１−４．遺伝子変異の検出
デジタルPCR解析において、複数の遺伝子変異の有無を確認する場合、これまで各遺伝子変異について、各々デジタルPCR解析を行うことが必須であったが、これには解析に十分なDNA量が必要であった。しかし、発明者らは、微量なDNA量しか得ることができない微量検体から、複数の遺伝子変異を、同時に検出可能なデジタルPCR解析の検出系を初めて確立した。すなわち、微量検体より抽出した微量DNAを、デジタルPCRのドロップレット内で、multiplex PCR法を応用して前増幅することで、増幅効率を上げ、解析箇所として選定した4遺伝子9箇所を、一度のデジタルPCR解析で検出することに成功した。具体的には、以下の方法となる。【００２８】
１−４−１．前増幅
デジタルPCR解析に当たり、DNA総量が10 ngに満たない場合、既報を参考にmultiplex PCR法による前増幅を行った。multiplex PCRは、各プライマーの終濃度が5μMになるよう調整し、Master mixである2xddPCR SuperMix For Probe (no dUTP; Bio-Rad Laboratories, Hercules, CA, USA)を用い、鋳型DNA、5μMのプライマー、nuclease free waterを含め20μlになるように調整した。この調整液20μlにDroplet Generator オイル For Probe (Bio-Rad Laboratories, Hercules, CA, USA)を70μl加え、QX200 Droplet Generator (Bio-Rad Laboratories, Hercules, CA, USA)にてドロップレットを作成した。このドロップレットを、MiniAmp Thermal Cycler applied biosystems (Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA)を用いて、95℃で10分反応させた後、94℃30秒と60℃1分を10サイクル行い、98℃で10分反応させ、PCRによる前増幅を行った。【００２９】
１−４−２．アンプリコンの精製
前増幅後のアンプリコンをDNA Clean & Concentrator -5 Kit（Zymo Research, Irvine, CA, USA）を用いて精製し、最終量が20 μlとなるように調整した。【００３０】
１−４−３．デジタルPCR解析
前増幅し生成したアンプリコンを鋳型として、以下のようにドロップレットを作製後、デジタルPCR解析を行い、蛍光強度を読み取り解析した。
まず、プローブ7（MYD88 c.794T>C L265P）のアッセイについては、溶出した20 μlのアンプリコンの内5 μlを、それ以外の8アッセイについては溶出した20 μlのアンプリコンを10倍希釈した5 μlを鋳型DNAとして用い、この鋳型DNAに、2xddPCR SuperMix For Probe（no dUTP；Bio-Rad Laboratories, Hercules, CA, USA）、TaqMan Assay 40x（Thermo Fisher Scientific, Waltham, Massachusetts, USA；FAMまたはVICのプローブ8 μM、各プライマー36 μMのミックス）、nuclease free waterを加え、全量が20 μlになるように調整した。この調整液20 μlにDroplet Generator オイル For Probe（Bio-Rad Laboratories, Hercules, CA, USA）を70 μl加え、QX200 Droplet Generator（Bio-Rad Laboratories, Hercules, CA, USA）にてドロップレットを作成した。このドロップレットを、MiniAmp Thermal Cycler applied biosystems（Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA）を用いて、95℃で10分反応させた後、94℃30秒と60℃1分を40サイクル行い、98℃で10分反応させ、QX200 Droplet Reader（Bio-Rad Laboratories, Hercules, CA, USA）にて蛍光強度を読み取り、QuantaSoft Software version 1.7（Bio-Rad Laboratories, Hercules, CA, USA）にて解析した。【００３１】
２．結果
デジタルPCR解析により、28例の眼の検体から変異遺伝子の検出を行った。プローブ6 （BTG2 c.142G>A E48K）を用いて解析した眼内悪性リンパ腫の代表的な解析結果を、図１に示す。本解析結果では、FAM陽性ドロップレットを多数みとめ、変異有りと判定できた。デジタルPCR解析結果から、変異遺伝子ごとに、変異をみとめた症例数と変異率を求めたところ、CD79Bは37%、BTG2は15%、MYD88は79%、PIM1は26%で変異をみとめ、眼内悪性リンパ腫と診断された症例の96%の症例で、4遺伝子9箇所のいずれかに少なくとも1つの変異が認められた。
以上の結果はから、MYD88やCD79B だけでなく、BTG2、PIM1変異遺伝子を用いることで、高率に眼内悪性リンパ腫の診断を補助できる補助的診断方法と考えられた。
【産業上の利用可能性】
【００３２】
本発明の方法を用いることで、眼内悪性リンパ種の診断確度が顕著に上昇すると考えられる。従って、本発明は、医療分野における利用が期待される。
【図１】
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【配列表】
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【国際調査報告】
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