【手続補正書】
【提出日】平成20年12月25日(2008.12.25)
【手続補正１】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００４２
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００４２】
異なるアイソフォームの間及び異なる植物種内のアイソフォームの間には高度の相同性（約８５％）が存在するものの、異なるアイソフォームは３’ＵＴＲが互いに変動している。アイソフォームの間と同様種の間でもきわめて保存度の高い１つの領域は、ヒプシン部位と考えられている部域である。ヒプシン部位は、以下のアミノ酸であると考えられている：５’−ＣＫＶＶＥＶＳＴＳＫＴＧＫＨＧＨＡＫＣＨＦＶ−３’（配列番号３２）。さまざまなｅＩＦ−５Ａアイソフォーム及びいくつかの植物種の整列については図８５を参照のこと。
【手続補正２】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００４８
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００４８】
かくして、本発明の１つの実施形態は、Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ  ｔｈａｌｉａｎａ由来の単離された老化誘発型ｅＩＦ−５Ａにある。アミノ酸配列は図５９に提供されており、配列番号１６である。アミノ酸をコードするポリヌクレオチドは、図５９に提供されており、配列番号１５である。
【手続補正３】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００５０
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００５０】
本発明のもう１つの実施形態は、カーネーション由来の単離された老化誘発型ｅＩＦ−５Ａにある。アミノ酸配列は図５８に提供されており、配列番号１４である。アミノ酸をコードするポリヌクレオチドは、図５８に提供されており、配列番号１３である。
【手続補正４】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００５１
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００５１】
本発明のもう１つの実施形態は、アルファルファ由来の単離された老化誘発型ｅＩＦ−５Ａである。アミノ酸配列は図１３８に提供されており、配列番号１７５である。アミノ酸をコードするポリヌクレオチドは図１３８に提供されており、配列番号１７４である。
【手続補正５】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００６５
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００６５】
かくして、本発明の１つの実施形態は、アルファルファ由来の単離されたストレスｅＩＦ−５Ａにある。アミノ酸配列は図１３９に提供されており、配列番号１７７である。アミノ酸をコードするポリヌクレオチドは、図１３９に提供されており、配列番号１７６である。
【手続補正６】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００６６
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００６６】
かくして、本発明の１つの実施形態は、トマト由来の単離されたストレスｅＩＦ−５Ａである。アミノ酸配列は図１４６に提供されており、配列番号１９１である。アミノ酸をコードするポリヌクレオチドは図１４６に提供されており、配列番号１９０である。
【手続補正７】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００８２
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００８２】
本発明の１つの実施形態は、Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ  ｔｈａｌｉａｎａ由来の単離された創傷／病原体誘発型ｅＩＦ−５Ａにある。アミノ酸配列は図４１に提供されており、配列番号５５である。アミノ酸をコードするポリヌクレオチドは、図４１に提供されており、配列番号５４である。
【手続補正８】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００８３
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００８３】
本発明のもう１つの実施形態は、トマト由来の単離された創傷／病原体誘発型ｅＩＦ−５Ａである。アミノ酸配列は図１０３に提供されており、配列番号５７である。アミノ酸をコードするポリヌクレオチドは図１０３に提供されており、配列番号５６である。
【手続補正９】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００８４
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００８４】
本発明のもう１つの実施形態は、アルファルファ由来の単離された創傷／病原体誘発型ｅＩＦ−５Ａである。アミノ酸配列は図１３７に提供されており、配列番号１７３である。アミノ酸をコードするポリヌクレオチドは図１３７に提供されており、配列番号１７２である。
【手続補正１０】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００９６
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００９６】
本発明のもう１つの実施形態は、トマト由来の単離された成長ｅＩＦ−５Ａである。アミノ酸配列は図１０１に提供されており、配列番号６５である。アミノ酸をコードするポリヌクレオチドは図１０１に提供されており、配列番号６４である。
【手続補正１１】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００９７
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００９７】
本発明のもう１つの実施形態は、カノーラ由来の単離された成長ｅＩＦ−５Ａにある。アミノ酸配列は図９５に提供されており、配列番号６７である。アミノ酸をコードするポリヌクレオチドは、図９５に提供されており、配列番号６６である。
【手続補正１２】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００９８
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００９８】
本発明のもう１つの実施形態は、アルファルファ由来の単離された成長ｅＩＦ−５Ａである。アミノ酸配列は図１４０に提供されており、配列番号１７９である。アミノ酸をコードするポリヌクレオチドは図１４０に提供されており、配列番号１７８である。
【手続補正１３】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】０１１８
【補正方法】変更
【補正の内容】
【０１１８】
かくして、本発明の１つの実施形態は、Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ  ｔｈａｌｉａｎａ由来の単離されたＤＨＳにある。アミノ酸配列は図４６に提供されており、配列番号６である。アミノ酸をコードするポリヌクレオチドは、図４６に提供されており、配列番号５である。
【手続補正１４】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】０１１９
【補正方法】変更
【補正の内容】
【０１１９】
本発明のもう１つの実施形態は、トマト由来の単離されたＤＨＳである。アミノ酸配列は図４５Ａ及びＢに提供されており、配列番号２である。アミノ酸をコードするポリヌクレオチドは図４５Ａ及びＢに提供されており、配列番号１である。
【手続補正１５】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】０１２０
【補正方法】変更
【補正の内容】
【０１２０】
本発明のもう１つの実施形態は、カーネーション由来の単離されたＤＨＳにある。アミノ酸配列は図５４に提供されており、配列番号１０である。アミノ酸をコードするポリヌクレオチドは、図５４に提供されており、配列番号９である。
【手続補正１６】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】０１２１
【補正方法】変更
【補正の内容】
【０１２１】
本発明のもう１つの実施形態は、カノーラ由来の単離されたＤＨＳである。アミノ酸配列は図９７に提供されており、配列番号７１である。アミノ酸をコードするポリヌクレオチドは図９７に提供されており、配列番号７０である。
【手続補正１７】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】０１２２
【補正方法】変更
【補正の内容】
【０１２２】
本発明のもう１つの実施形態は、レタス由来の単離されたＤＨＳである。図１０５はレタスＤＨＳポリヌクレオチド配列の一部分を提供している。
本発明のもう１つの実施形態は、アルファルファ由来の単離されたＤＨＳにある。アミノ酸配列は図０１７Ａ及びＢに提供されており、配列番号７３である。アミノ酸をコードするポリヌクレオチドは、図１０７Ａ及びＢに提供されており、配列番号７２である。
【手続補正１８】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】０１２３
【補正方法】変更
【補正の内容】
【０１２３】
本発明のもう１つの実施形態は、バナナ由来の単離されたＤＨＳである。アミノ酸配列は図１０８Ａ及びＢに提供されており、配列番号７５である。アミノ酸をコードするポリヌクレオチドは図１０８Ａ及びＢに提供されており、配列番号７４である。
【手続補正１９】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】０１２４
【補正方法】変更
【補正の内容】
【０１２４】
本発明のもう１つの実施形態は、ハコヤナギ由来の単離されたＤＨＳにある。アミノ酸配列は図１０９Ａ及びＢに提供されており、配列番号７６である。アミノ酸をコードするポリヌクレオチドは、図１０９Ａ及びＢに提供されており、配列番号７７である。
【手続補正２０】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】０１５０
【補正方法】変更
【補正の内容】
【０１５０】
本発明は同様に、その他の植物及び真菌において老化誘発型ｅＩＦ−５Ａ、創傷／病原体誘発型ｅＩＦ−５Ａ、成長ｅＩＦ−５Ａ及びＤＨＳを同定する方法をも提供する。本明細書で記述されている方法及び提供されている配列を使用することにより、所望のアイソフォーム又はＤＨＳを単離／同定するようにプローブが設計される。ｅＩＦ−５Ａのアイソフォーム（老化誘発型ｅＩＦ−５Ａ、創傷／病原体誘発型ｅＩＦ−５Ａ、及び成長ｅＩＦ−５Ａ）はコーディング領域内で高い相同性を有することが多いことから（図２参照）、所望のアイソフォームの同定を確保しさらにはその増殖を改変させるべく、プローブ又はプライマーは好ましくは５’ＵＴＲの始めから、及び３”ＵＴＲの終りで設計される（図３、４及び５を参照のこと）。創傷／病原体誘発型ｅＩＦ−５Ａの増幅のためのプライマーと創傷／病原体誘発型ｅＩＦ−５Ａの同定のためのプローブの好ましいセットは、以下の通りである。下流プライマーは、５’ＧＡＧ  ＣＴＣ  ＡＡＧ  ＡＡＴ  ＡＡＣ  ＡＴＣ  ＴＣＡ  ＴＡＡ  ＧＡＡＡＣ３’（配列番号３３）である。上流プライマーは、５’ＣＴＣ  ＧＡＧ  ＴＧＣ  ＴＣＡ  ＣＴＴ  ＣＴＣ  ＴＣＴ  ＣＴＴ  ＡＧＧ３’（配列番号３４）である。
【手続補正２１】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】０１９１
【補正方法】変更
【補正の内容】
【０１９１】
抗体の産生及び精製
Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ  ｔｈａｌｉａｎａ（Ａｔ）の真核生物翻訳開始因子５Ａ（ｅＩＦ−５Ａ）アイソフォームは、アミノ酸レベル、特にタンパク質のＮ末端領域及び中央領域において高い相同性を有する（図１）。アイソフォーム特異的となる抗体を得るために、互いにユニークであると思われるＡｔｅＩＦ−５Ａのアイソフォーム内の領域と対照してペプチドを設計した。ＫＬＨと接合するためＮ末端で各ペプチドに対し付加的なシステイン残基を添加した。使用される配列は、老化誘発型ＡｔｅＩＦ−５ＡについてはＣＮＤＤＴＬＬＱＱＩＫＳ（配列番号３５）、創傷／病原体誘発型ＡｔｅＩＦ−５ＡについてはＣＴＤＤＧＬＴＡＱＭＲＬ（配列番号３６）、そして成長ＡｔｅＩＦ−５ＡについてはＣＴＤＥＡＬＬＴＱＬＫＮ（配列番号３７）であった。これらの配列がタンパク質ＢＬＡＳＴに付された場合（短くほぼ正確な配列；Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ  ｔｈａｌｉａｎａにより制限されているもの；予想数２００００；ワードサイズ２；マトリクスＰＡＭ９０；Ｇａｐコスト９１）、データベース内に見い出される有意な配列は、整合したＡｔｅＩＦ−５Ａのみであり、その他のものは全くなかった。ペプチドは、ウェスタンオンタリオ大学のペプチド合成施設で合成された。担体タンパク質、キーホールリンペットヘモシアニン（Ｓｉｇｍａ）を、Ｄｒｅｎｃｋｈａｈｎ  ｅｔ  ａｌ，（１９９３年）及びＣｏｌｌａｗｎ及びＰａｔｔｅｒｓｏｎ（１９９９年）に従ってｍ−マレイミドベゾイル−Ｎ−ヒドロキシスクシニミドエステルを用いて、ペプチドのＮ末端システインに接合させた。ウサギに２週間の間隔で、連結したペプチドを注射した。最後の注射から２週間後に、ウサギの放血及び収集血の凝固により血液を収集して、抗血清を蓄える。
【手続補正２２】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】０１９３
【補正方法】変更
【補正の内容】
【０１９３】
実施例１７
３つのｅＩＦ−５Ａアイソフォームを過剰発現する形質転換されたＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ  ｔｈａｌｉａｎａ植物の産生
プライマーの設計
Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ  ｔｈａｌｉａｎａ（Ａｔ）の真核生物翻訳開始因子５Ａ（ｅＩＦ−５Ａ）は、コーディング領域において高い相同性を有する（図２）。適正な遺伝子の増幅についての問題を回避するため、老化誘発型ＡｔｅＩＦ−５Ａ、創傷／病原体誘発型ｅＩＦ−５Ａ及び成長ｅＩＦ−５Ａのためのプライマーを、それぞれ図３、４及び５の中で示されているように、５’ＵＴＲのおおよその初めから及び３’ＵＴＲの終りで設計した。５’ＵＴＲ及び３’ＵＴＲを、ＥＳＴ情報及びＧｅｎＢａｎｋデータベース内のその他の配列情報に基づいて推定した。ｐＫＹＬＸ７１二成分ベクター内でセンス配向でライゲーションのためプライマーの末端に対し適切な制限部位を加えた（図６）。老化誘発型ＡｔｅＩＦ−５Ａについては、上流側プライマーは５’ＡＡＧＣＴＴＧＡＴＣＧＴＧＧＴＣＡＡＣＴＴＣＣＴＣＴＧＴＴＡＣＣ３’（配列番号３８）であり、下流側プライマーは５’ＧＡＧＣＴＣＡＧＡＡＧＡＡＧＴＡＴＡＡＡＡＡＣＣＡＴＣ３’（配列番号３９）である。創傷／病原体誘発型ＡｔｅＩＦ−５Ａについては、上流側プライマーは５’ＣＴＣＧＡＧＴＧＣＴＣＡＣＴＴＣＴＣＴＣＴＣＴＴＡＧＧ３’（配列番号４０）であり、下流側プライマーは５’ＧＡＧＣＴＣＡＡＧＡＡＴＡＡＣＡＴＣＴＣＡＴＡＡＧＡＡＡＣ３’（配列番号４１）である。成長ＡｔｅＩＦ−５Ａについての上流側プライマーは５’ＣＴＣＧＡＧＣＴＡＡＡＣＴＣＣＡＴＴＣＧＣＴＧＡＣＴＴＣＧＣ３’（配列番号４２）であり、下流側プライマーは５’ＧＡＧＣＴＣＴＡＧＴＡＡＡＴＡＴＡＡＧＡＧＴＧＴＣＴＴＧＣ３’（配列番号４３）である。プライマーに付加された制限部位は、以上に列挙したプライマー内で下線により表わされている通り、老化誘発型ＡｔｅＩＦ−５ＡについてはＨｉｎｄＩＩＩ及びＳａｃＩであり、創傷／病原体誘発型ＡｔｅＩＦ−５ＡについてはＸｈｏＩ及びＳａｃＩであり、成長ｅＩＦ−５ＡについてはＸｈｏＩ及びＳａｃＩであった。
【手続補正２３】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】０２２９
【補正方法】変更
【補正の内容】
【０２２９】
Ｔ３及びＴ７プライマー：
Ｔ３：５’−ＡＴＴ  ＡＡＣ  ＣＣＴ  ＣＡＣ  ＴＡＡ  ＡＧ−３’（配列番号２０）
Ｔ７：５’−ＡＡＴ  ＡＣＧ  ＡＣＴ  ＣＡＣ  ＴＡＴ  ＡＧ−３’（配列番号１８）
ＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓｅＩＦ−５Ａのための縮重プライマー
順方向（上流側）プライマー：５’−ＡＡＡ  ＲＲＹ  ＣＧＭ  ＣＣＹ  ＴＧＣ  ＡＡＧ  ＧＴ−３’（配列番号１７）
逆方向（下流側）プライマー：５’−ＴＣＹ  ＴＴＮ  ＣＣＹ  ＴＣＭ  ＫＣＴ  ＡＡＨ  ＣＣ−３’（配列番号１９）
【手続補正２４】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】０２３０
【補正方法】変更
【補正の内容】
【０２３０】
（ＳＡＧ１２プロモーターを含む）ｐＫＹＬＸ７１内へのＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓアンチセンス全長老化誘発型ｅＩＦ−５Ａのサブクローニング
Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ老化誘発型ｅＩＦ−５Ａアンチセンス全長構成体のための特異的（相同性）プライマー：順方向全長老化誘発型ｅＩＦ−５Ａプライマー（３０−ｍｅｒ）：５’−ＣＣＧＡＧＣＴＣＣＴＧＴＴＡＣＣＡＡＡＡＡＡＴＣＴＧＴＡＣＣ−３’（配列番号４８）（注：下線部分は、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔのＭｕｌｔｉｐｌｅ  Ｃｌｏｎｉｎｇ  Ｓｉｔｅ（ＭＣＳ）内でＳａｃＩ部位内にＰＣＲフラグメントの５’末端をライゲートするために用いられるＳａｃＩ認識配列である）。逆方向全長老化誘発型ｅＩＦ−５Ａプライマー（３６−ｍｅｒ）：５’−ＡＣＣＴＣＧＡＧＣＧＧＣＣＧＣＡＧＡＡＧＡＡＧＴＡＴＡＡＡＡＡＣＣＡＴＣ−３’（配列番号４９）（注：下線部分は、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔのＭＣＳ内へのライゲーションのために用いられるＮｏｔＩ認識配列である）。
【手続補正２５】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】０２３７
【補正方法】変更
【補正の内容】
【０２３７】
順方向ＳＡＧ１２プライマーは、５’−ＧＧＣＣＧＴＣＧＡＣＧＡＴＡＴＣＴＣＴＴＴＴＴＡＴＡＴＴＣＡＡＡＣ−３’（配列番号５０）であった（下線部分は、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔのＭｕｌｔｉｐｌｅ  Ｃｌｏｎｉｎｇ  Ｓｉｔｅ（ＭＣＳ）内のＳａｌＩ部位内にＰＣＲフラグメントの５’末端をライゲートするために用いられるＳａｌＩ認識部位である）。逆方向ＳＡＧ１２プライマーは５’−ＣＧＴＣＴＡＧＡＣＡＴＴＧＴＴＴＴＡＧＧＡＡＡＧＴＴＡＡＡＴＧＡ−３’（配列番号５１）であった（下線部分は、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔのＭｕｌｔｉｐｌｅ  Ｃｌｏｎｉｎｇ  Ｓｉｔｅ（ＭＣＳ）内のＳａｌＩ部位内にＰＣＲフラグメントの５’末端をライゲートするために用いられるＸｂａＩ認識部位である）。
【手続補正２６】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】０２３９
【補正方法】変更
【補正の内容】
【０２３９】
順方向全長老化誘発型ｅＩＦ−５Ａプライマーは、５’−ＣＣＧＡＧＣＴＣＣＴＧＴＴＡＣＣＡＡＡＡＡＡＴＣＴＧＴＡＣＣ−３’（配列番号４８）であった（注：下線部分は、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ−ＳＡＧ１２ベクターのＭｕｌｔｉｐｌｅ  Ｃｌｏｎｉｎｇ  Ｓｉｔｅ（ＭＣＳ）内のＳａｌＩ部位内にＰＣＲフラグメントの５’末端をライゲートするために用いられるＳａｌＩ認識配列である）。逆方向全長老化誘発型ｅＩＦ−５Ａプライマーは５’−ＡＣＣＴＣＧＡＧＣＧＧＣＣＧＣＡＧＡＡＧＡＡＧＴＡＴＡＡＡＡＡＣＣＡＴＣ−３’（配列番号４９）であった（下線部分は、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ−ＳＡＧ１２ベクターのＭｕｌｔｉｐｌｅ  Ｃｌｏｎｉｎｇ  Ｓｉｔｅ（ＭＣＳ）内へのライゲーションのために使用されるＮｏｔＩ認識配列である）。
【手続補正２７】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】０２８０
【補正方法】変更
【補正の内容】
【０２８０】
【図１】ｅＩＦ−５Ａ単離Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ  ｔｈａｌｉａｎａの老化誘発型ｅＩＦ−５Ａ（配列番号５８；系統１）（以前に米国特許第６，５３８，１８２号及び係属出願第０９／７２５，０１９号内で記述されたもの）；創傷／病原体誘発型ｅＩＦ−５Ａ（配列番号５９；系統２）；及び成長ｅＩＦ−５Ａ（配列番号６０；系統３）という３つのアイソフォームの整列を示す。
【図２】これら３つのＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ  ｔｈａｌｉａｎａアイソフォームのコーティング領域の整列を示す。系統１は老化誘発型ｅＩＦ−５Ａ（配列番号６１）である。系統２は創傷／病原体誘発型ｅＩＦ−５Ａ（配列番号６２）である。系統３は成長ｅＩＦ−５Ａ（配列番号６３）である。
【図３】Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ  ｔｈａｌｉａｎａの老化誘発型ｅＩＦ−５Ａのゲノム配列（配列番号７８）を提供する。
【図４】Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ  ｔｈａｌｉａｎａの創傷／病原体誘発型ｅＩＦ−５Ａのゲノム配列（配列番号７９）を提供する。
【図５】Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ  ｔｈａｌｉａｎａの成長ｅＩＦ−５Ａのゲノム配列（配列番号５２）を提供する。
【図６】二成分ベクターｐＫＹＬＸ７１−３５Ｓ2（配列番号８０）のマップである。
【図７】二成分ベクターｐＧＥＭ（登録商標）−Ｔ  Ｅａｓｙ  Ｖｅｃｔｏｒのマップである。
【図８】コロンビア生態系のＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ  ｔｈａｌｉａｎａ野生型の異なる組織内のｅＩＦ−５Ａの３つのアイソフォーム全てのウェスタンブロットを示す。
【図９】コロンビア生態系のＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ  ｔｈａｌｉａｎａ野生型の７２時間後の感染葉の創傷／病原体誘発型ｅＩＦ−５Ａ及び老化誘発型ｅＩＦ−５Ａについてのウェスタンブロットである。
【図１０】コロンビア生態系のＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ  ｔｈａｌｉａｎａ野生型の７２時間後の創傷葉の中のｅＩＦ−５Ａの３つのアイソフォームについてのノーザンブロットである。
【図１１】それぞれ、レーン１、２及び３にＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ老化誘発型ｅＩＦ−５Ａ（ＡＴｅＩＦ−５Ａ）、創傷／病原体誘発型ＡｔｅＩＦ−５Ａ、及び成長ＡｔｅＩＦ−５ＡのゲノミックＤＮＡからのＰＣＲ産物を描いている。
【図１２】ｐＧＥＭ内の老化誘発型ＡｔｅＩＦ−５Ａ、創傷／病原体誘発型ＡｔｅＩＦ−５Ａ、及び成長ＡｔｅＩＦ−５Ａゲノム配列を伴うアガロースゲルを示す。
【図１３】ｐＫＹＬＸ７１内の創傷／病原体誘発型ＡｔｅＩＦ−５Ａ、成長ＡｔｅＩＦ−５Ａ、ゲノム配列を伴うアガロースゲルを示す。
【図１４】センス創傷／病原体誘発型ＡｔｅＩＦ−５Ａを有する構成体で形質転換された植物のためのＴ１プレートの写真である。
【図１５】４週齢のセンス創傷／病原体誘発型ＡｔｅＩＦ−５Ａで形質転換されたＴ１植物の写真である。
【図１６】５．５週齢のセンス創傷／病原体誘発型ＡｔｅＩＦ−５Ａで形質転換されたＴ１植物の写真である。
【図１７】播種後１０日齢のセンス創傷／病原体誘発型ＡｔｅＩＦ−５Ａで形質転換されたＴ２植物の写真である。
【図１８】播種後１０日齢のセンス創傷／病原体誘発型ＡｔｅＩＦ−５Ａで形質転換されたＴ１植物の写真である。
【図１９】４週齢のセンス成長ＡｔｅＩＦ−５Ａで形質転換されたＴ１植物の写真である。
【図２０】センス成長ＡｔｅＩＦ−５Ａ系統で形質転換されたＴ２植物のウェスタンブロットである。
【図２１】４週齢（上）、５週齢（左下）、及び６週齢（右下）のセンス成長ＡｔｅＩＦ−５Ａ（系統１Ａ−１Ｄ）で形質転換されたＴ２植物である。
【図２２】４週齢（上）、５週齢（左下）、及び６週齢（右下）のセンス成長ＡｔｅＩＦ−５Ａ（系統２Ａ−１Ｄ）で形質転換されたＴ２植物である。
【図２３】４週齢（上）、５週齢（左下）、及び６週齢（右下）のセンス成長ＡｔｅＩＦ−５Ａ（系統４Ａ−Ｄ）で形質転換されたＴ２植物である。
【図２４】４週齢（上）、５週齢（左下）、及び６週齢（右下）のセンス成長ＡｔｅＩＦ−５Ａ（系統１５Ａ−Ｄ）で形質転換されたＴ２植物である。
【図２５】４週齢（上）、５週齢（左下）、及び６週齢（右下）のセンス成長ＡｔｅＩＦ−５Ａ（系統８Ａ−Ｄ）で形質転換されたＴ２植物である。
【図２６】４週齢（上）、５週齢（左下）、及び６週齢（右下）のセンス成長ＡｔｅＩＦ−５Ａ（系統９Ｅ−Ｈ）で形質転換されたＴ２植物である。
【図２７】４週齢（上）、５週齢（左下）、及び６週齢（右下）のセンス成長ＡｔｅＩＦ−５Ａ（系統１１Ａ−Ｄ）で形質転換されたＴ２植物である。
【図２８】４週齢（上）、５週齢（左下）、及び６週齢（右下）のセンス成長ＡｔｅＩＦ−５Ａ（系統１６Ａ−Ｄ）で形質転換されたＴ２植物である。
【図２９】さまざまな植物系統由来のＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ  ｔｈａｌｉａｎａ種子の写真である（野生型対照及びセンス成長ＡｔｅＩＦ−５Ａで形質転換された植物系統を含む）。
【図３０】センス成長ＡｔｅＩＦ−５Ａで形質転換された各々の植物亜系統についての平均種子サイズの棒グラフである。
【図３１】センス成長ＡｔｅＩＦ−５Ａで形質転換された各々の植物亜系統についての個々の種子重量の棒グラフである。
【図３２】個々の種子の重量と個々の種子の体積の比例関係を示すグラフである。
【図３３】センス成長ＡｔｅＩＦ−５Ａで形質転換された各々の植物亜系統についての１植物あたりの種子の収量を示す棒グラフである。
【図３４】センス成長ＡｔｅＩＦ−５Ａ植物内で表示された表現型のまとめである。
【図３５】野生型植物と遺伝子導入ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ（シロイヌナズナ）植物（アンチセンス全長老化誘発型ｅＩＦ−５Ａで形質転換されたもの）の比較を示す。遺伝子導入植物は老化の遅延を示している。
【図３６】（アンチセンス成長ｅＩＦ−５Ａで形質転換された）植物の写真を示す。
【図３７】（アンチセンス成長ｅＩＦ−５Ａで形質転換された）植物の写真を示す。
【図３８】（アンチセンス成長ｅＩＦ−５Ａで形質転換された）植物の写真を示す。
【図３９】アンチセンスａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ  ｔｈａｌｉａｎａ  ３'ＤＨＳを生成するためのベクタを構築するのに用いられるプライマー（配列番号８１−８２）を示す。増幅したａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ配列は、それぞれ、出現する順番で、配列番号８３−８４として開示されている。
【図４０】ベクター構成体を示す。
【図４１】ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓから単離された創傷／病原体因子ｅＩＦ−５Ａについての配列（配列番号５４として開示されるＤＮＡ配列；配列番号５５として開示されるタンパク質）及びアンチセンス構成体の場所を示す。プライマーは、配列番号８５−８６として開示される。
【図４２】ベクター構成体（出現する順番で、それぞれ配列番号８７−８９）を示す。
【図４３】緑膿菌（ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）の接種を受けた葉片のプレートカウントを示す。
【図４４】アンチセンス遺伝子導入植物対野生型におけるＣＦＵのグラフを示す。
【図４５Ａ】トマト葉ＤＨＳｃＤＮＡライブラリーから得た誘導アミノ酸配列（配列番号２）と共にトマト葉ＤＨＳｃＤＮＡ配列（配列番号１）のヌクレオチド配列を描く。
【図４５Ｂ】トマト葉ＤＨＳｃＤＮＡライブラリーから得た誘導アミノ酸配列（配列番号２）と共にトマト葉ＤＨＳｃＤＮＡ配列（配列番号１）のヌクレオチド配列を描く。
【図４６−１】Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ遺伝子バンク内の未同定ゲノム配列とトマトＤＨＳ配列を整列させることにより得られるＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓＤＨＳ遺伝子のヌクレオチド配列を描く（配列番号５；配列番号６として開示されるタンパク質）。アミノ酸配列間のギャップは、予測されたイントロンである。
【図４６−２】図４６Ｂは、誘導されたＤＨＳアミノ酸配列を描く（配列番号６）。図４６Ｃは、ＰＣＲにより得られた６００塩基対のＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓＤＨＳｃＤＮＡのヌクレオチド配列（配列番号２６）を描く。図４６Ｄは、ＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓＤＨＳｃＤＮＡフラグメントの誘導されたアミノ酸配列（配列番号９２）を描く。
【図４７】ヒト（配列番号３）、酵母（配列番号４５）、真菌（配列番号４４）及びＡｒｃｈａｅｏｂａｃｔｅｒｉａ（配列番号４６）のＤＨＳタンパク質の配列との、誘導された全長トマト葉ＤＨＳアミノ酸配列（配列番号２の１−３６９残基）及び誘導された全長Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ老化誘発型ＤＨＳアミノ酸配列（配列番号６）の整列である。配列のうち３つ又は４つのものの間の同一アミノ酸が囲みに入っている。
【図４８】トマトＤＨＳ  ｃＤＮＡの制限マップである。
【図４９】トマト葉から単離され32Ｐ−ｄＣＴＰ標識済み全長トマトＤＨＳ  ｃＤＮＡでプローブ探査されたゲノミックＤＮＡのサザンブロットである。
【図５０】異なる発育段階にあるトマトの花から単離したＲＮＡのノーザンブロットである。上図版は、総ＲＮＡの臭化エチジウム染色されたゲルである。各レーンは１０μｇのＲＮＡを含んでいる。下図版は、32Ｐ−ｄＣＴＰ標識済み全長トマトＤＨＳ  ｃＤＮＡでプローブ探査されたノーザンブロットのオートラジオグラフである。
【図５１】32Ｐ−ｄＣＴＰ標識済み全長トマトＤＨＳｃＤＮＡでプローブ探査されたさまざまな成熟段階にあるトマト果実から単離したＲＮＡのノーザンブロットである。
【図５２】６時間２Ｍのソルビトールでの処理による干ばつストレスを受けたトマト葉から単離されたＲＮＡのノーザンブロットである。各レーンは１０μｇのＲＮＡを含んでいる。ブロットは、32Ｐ−ｄＣＴＰ標識済み全長トマトＤＨＳｃＤＮＡでプローブ探査された。
【図５３】冷却温度に曝露されたトマト葉から単離されたＲＮＡのノーザンブロットである。図５３Ａは、総ＲＮＡの臭化エチジウム染色されたゲルである。各レーンは、１０μｇのＲＮＡを含んでいた。図５３Ｂは、32Ｐ−ｄＣＴＰ標識済み全長トマトＤＨＳｃＤＮＡでプローブ探査されたノーザンブロットのオートラジオグラフである。図５３Ｃは、葉分散体の伝導率として測定された対応する漏洩データを示す。
【図５４】Ｐｏｌｙ  Ａ尾部と５’末端非コーティング領域を含まないカーネーションＤＨＳ全長（１３８４塩基対）ｃＤＮＡクローンヌクレオチド配列（（配列番号９）である。誘導されたアミノ酸配列は、ヌクレオチド配列（３７３アミノ酸）の下に示されている。（配列番号１０）。
【図５５】32Ｐ−ｄＣＴＰ標識済み全長Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ  ＤＨＳ  ｃＤＮＡでプローブ探査された老化しつつあるＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ葉からの総ＲＮＡのノーザンブロットである。オートラジオグラフは最上部にある。エチジウム染色されたゲルが下にある。
【図５６】さまざまな段階におけるカーネーションの花の花弁から単離した総ＲＮＡのノーザンブロットである。ブロットは32Ｐ−ｄＣＴＰ標識済み全長カーネーションＤＨＳ  ｃＤＮＡでプローブ探査された。オートラジオグラフは最上部にあり、エチジウム染色したゲルが下にある。
【図５７】トマト果実老化誘発型ｅＩＦ−５Ａ遺伝子のヌクレオチド（最上部）（配列番号１１）及び誘導されたアミノ酸（下部）（配列番号１２）の配列である。
【図５８】カーネーション老化誘発型ｅＩＦ−５Ａ遺伝子のヌクレオチド（最上部）（配列番号１３）及び誘導されたアミノ酸（下部）（配列番号１４）の配列である。
【図５９】Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ老化誘発型ｅＩＦ−５Ａ遺伝子のヌクレオチド（最上部）（配列番号１５）及び誘導されたアミノ酸（下部）（配列番号１６）配列である。
【図６０】さまざまな発育段階におけるＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ植物の葉から単離された総ＲＮＡのノーザンブロットである。ブロットは、32Ｐ−ｄＣＴＰ標識済み全長Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ  ＤＨＳ  ｃＤＮＡ及び全長老化誘発型ｅＩＦ−５Ａでプローブ探査された。オートラジオグラフは最上部にあり、エチジウム染色したゲルが下にある。
【図６１】催色期（ＢＫ）、赤色硬質（ＲＦ）及び赤色軟質（ＲＳ）発育段階にあるトマト果実から単離された総ＲＮＡのノーザンブロットである。ブロットは32Ｐ−ｄＣＴＰ標識済み全長ＤＨＳ  ｃＤＮＡ及び全長老化誘発型ｅＩＦ−５Ａでプローブ探査された。ＤＨＳ及びｅＩＦ−５Ａは、果実の成熟と一致して赤色軟質果実において並行してアップレギュレートされる。オートラジオグラフは最上部にあり、エチジウム染色したゲルが下にある。
【図６２】干ばつストレスを誘発するべくソルビトールで処理されたトマトの葉から単離された総ＲＮＡのノーザンブロットである。Ｃは対照、Ｓはソルビトール処理済。ブロットは、32Ｐ−ｄＣＴＰ標識済み全長ＤＨＳ  ｃＤＮＡ及び全長老化誘発型ｅＩＦ−５Ａでプローブ探査された。ｅＩＦ−５Ａ及びＤＨＳは共に、干ばつストレスに応えてアップレギュレートされる。オートラジオグラフは最上部にあり、エチジウム染色したゲルが下にある。
【図６３】トマト植物の花のつぼみ及び開いた老化花から単離された総ＲＮＡのノーザンブロットである。ブロットは32Ｐ−ｄＣＴＰ標識済み全長老化誘発型ＤＨＳ  ｃＤＮＡ及び全長老化誘発型ｅＩＦ−５Ａでプローブ探査された。ｅＩＦ−５Ａ及びＤＨＳは両方共に開花／老化花の中でアップレギュレートされる。オートラジオグラフは最上部にあり、エチジウム染色したゲルが下にある。
【図６４】寒冷損傷を受けたトマト葉から単離された総ＲＮＡのノーザンブロットである。老化誘発型及びＤＨＳは両方共、再加温中寒冷損傷の発達と共にアップレギュレートされる。オートラジオグラフは最上部にあり、エチジウム染色したゲルが下にある。
【図６５】遺伝子導入植物における葉のサイズの増大を示すアンチセンス配向でのＤＨＳ遺伝子の３’末端（図８０で示されている配列）を発現する３．１週齢のＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ野生型（左）及び遺伝子導入植物の写真である。
【図６６】遺伝子導入植物における葉のサイズの増大を示すアンチセンス配向でのＤＨＳ遺伝子の３’末端（図８０で示されている配列）を発現する４．６週齢のＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ野生型（左）及び遺伝子導入植物の写真である。
【図６７】遺伝子導入植物における葉のサイズの増大を示すアンチセンス配向でのＤＨＳ遺伝子の３’末端（図８０で示されている配列）を発現する５．６週齢のＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ野生型（左）及び遺伝子導入植物の写真である。
【図６８】遺伝子導入植物における葉のサイズの増大を示すアンチセンス配向でのＤＨＳ遺伝子の３’末端（図８０で示されている配列）を発現する６．１週齢のＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ野生型（左）及び遺伝子導入植物の写真である。
【図６９】アンチセンス配向でＤＨＳ遺伝子を発現する３つのＴ1遺伝子導入Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ植物系統からの種子の収量の増大を示すグラフである。種子の収量は、種子の体積として表わされている。ｎ＝３０についてのＳＥが、野生型植物について示されている。
【図７０】遺伝子導入植物において葉のサイズの増大及び植物サイズの増大を示す、アンチセンス配向でＤＨＳ遺伝子の３’末端（図８０に示されている配列）を発現する遺伝子導入トマト植物（左）及び野生型植物（右）の写真である。該写真は、土壌に未発育植物を移した後１８日目に撮影したものである。
【図７１】遺伝子導入植物において葉のサイズの増大及び植物サイズの増大を示す、アンチセンス配向でＤＨＳ遺伝子の３’末端（図３６に示されている配列）を発現する遺伝子導入トマト植物（左）及び野生型植物（右）の写真である。該写真は、土壌に未発育植物を移した後３２日目に撮影したものである。
【図７２】野生型（上図版）及びアンチセンス配向で全長ＤＨＳ遺伝子を発現する遺伝子導入植物（下図版）からのトマト果実の写真である。果実は、催色期発育段階で収穫され成長チャンバー内で成熟された。収穫後の日数が各図版の左上コーナーに示されている。
【図７３】野生型（上図版）及びアンチセンス配向で全長ＤＨＳ遺伝子を発現する遺伝子導入植物（下図版）からのトマト果実の写真である。果実は、催色期発育段階で収穫され成長チャンバー内で成熟された。収穫後の日数が各図版の左上コーナーに示されている。
【図７４】野生型（上図版）及びアンチセンス配向で全長ＤＨＳ遺伝子を発現する遺伝子導入植物（下図版）からのトマト果実の写真である。果実は、催色期発育段階で収穫され成長チャンバー内で成熟された。収穫後の日数が各図版の左上コーナーに示されている。
【図７５】野生型（上図版）及びアンチセンス配向で全長ＤＨＳ遺伝子を発現する遺伝子導入植物（下図版）からのトマト果実の写真である。果実は、催色期発育段階で収穫され成長チャンバー内で成熟された。収穫後の日数が各図版の左上コーナーに示されている。
【図７６】野生型（上図版）及びアンチセンス配向で全長ＤＨＳ遺伝子を発現する遺伝子導入植物（下図版）からのトマト果実の写真である。果実は、催色期発育段階で収穫され成長チャンバー内で成熟された。収穫後の日数が各図版の左上コーナーに示されている。
【図７７】野生型（上図版）及びアンチセンス配向で全長ＤＨＳ遺伝子を発現する遺伝子導入植物（下図版）からのトマト果実の写真である。果実は、催色期発育段階で収穫され成長チャンバー内で成熟された。収穫後の日数が各図版の左上コーナーに示されている。
【図７８】野生型（上図版）及びアンチセンス配向で全長ＤＨＳ遺伝子を発現する遺伝子導入植物（下図版）からのトマト果実の写真である。果実は、催色期発育段階で収穫され成長チャンバー内で成熟された。収穫後の日数が各図版の左上コーナーに示されている。
【図７９】野生型（上図版）及びアンチセンス配向で全長ＤＨＳ遺伝子を発現する遺伝子導入植物（下図版）からのトマト果実の写真である。果実は、催色期発育段階で収穫され成長チャンバー内で成熟された。収穫後の日数が各図版の左上コーナーに示されている。
【図８０】植物を形質転換するためアンチセンス配向で使用されるＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ老化誘発型ＤＨＳ遺伝子の３’末端の誘導されたアミノ酸配列（下）（配列番号９）及びヌクレオチド配列（上）（配列番号３０）である。
【図８１】植物を形質転換するためアンチセンス配向で使用されるトマトＤＨＳ遺伝子の３’末端の、ヌクレオチド配列（上）（配列番号３１）及び誘導されたアミノ酸配列（下）（配列番号９１）である。
【図８２】全長Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ遺伝子を単離するのに用いられる６００塩基対のＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ  ＤＨＳプローブの、ヌクレオチド配列（上）（配列番号２６）及び誘導されたアミノ酸配列（下）（配列番号９２）である。
【図８３】全長カーネーション遺伝子を単離するのに用いられる４８３塩基のカーネーションＤＨＳプローブの誘導されたアミノ酸配列（下）（配列番号９３）及びヌクレオチド配列（上）（配列番号２７）である。
【図８４】アンチセンス配向でＤＨＳ遺伝子の３’末端（図８１に示されている配列）を発現する遺伝子導入トマト植物からのトマト果実（右）及び野生型植物からのトマト果実（左）の写真である。野生型果実は尻腐れを示すが、遺伝子導入果実はこれを示していない。
【図８５】複数の植物種からのｅＩＦ−５Ａのさまざまなアイソフォームの整列を示す。それは同様に、ヒプシン保存領域の整列をも提供している。図は、それぞれ、出現する順番で、配列番号４、９４−１０６及び１０８−１２５を開示している。
【図８６】トマト老化誘発型ｅＩＦ−５Ａポリヌクレオチド（配列番号１２６）及びアミノ酸配列（配列番号１２７）を提供する。
【図８７】Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ老化誘発型ｅＩＦ−５Ａ及びｐＫＹＬＸ７１−センス老化誘発型ｅＩＦ−５Ａの構築を提供している。プライマー配列は、それぞれ、出現する順番で、配列番号１２８−１２９として開示されている。ベクター配列は、それぞれ、出現する順番で、配列番号１３０−１３２として開示されている。
【図８８Ａ】トマト老化誘発型ｅＩＦ−５Ａ及びｐＫＹＬＸ７１−センス老化誘発型ｅＩＦ−５Ａの構築を提供している。プライマー配列は、それぞれ、出現する順番で、配列番号１３３−１３４として開示されている。ベクター配列は、それぞれ、出現する順番で、配列番号１３５−１３７として開示されている。
【図８８Ｂ】トマト老化誘発型ｅＩＦ−５Ａ及びｐＫＹＬＸ７１−センス老化誘発型ｅＩＦ−５Ａの構築を提供している。プライマー配列は、それぞれ、出現する順番で、配列番号１３３−１３４として開示されている。ベクター配列は、それぞれ、出現する順番で、配列番号１３５−１３７として開示されている。
【図８９】センスポリヌクレオチド老化誘発型ｅＩＦ−５Ａを含む遺伝子導入植物とＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ  ｔｈａｌｉａｎａの対照との比較写真を提供している。遺伝子導入植物は対照植物のものに比べて厚い花序茎を有する。
【図９０】センスポリヌクレオチド老化誘発型ｅＩＦ−５Ａ（図９０−ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ）を含む遺伝子導入植物が、遺伝子導入植物内の木質部の増大によって表わされるように、木質化を増大させたということを示している。
【図９１】センスポリヌクレオチド老化誘発型ｅＩＦ−５Ａ（図９１−トマト）を含む遺伝子導入植物が、遺伝子導入植物内の木質部の増大によって表わされるように、木質化を増大させたということを示している。
【図９２】センスポリヌクレオチド老化誘発型ｅＩＦ−５Ａを含むＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ  ｔｈａｌｉａｎａ遺伝子導入植物とＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ  ｔｈａｌｉａｎａ対照の比較写真を提供している。Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ  ｔｈａｌｉａｎａ内では、トマトセンスポリヌクレオチド老化誘発型ｅＩＦ−５Ａを使用した。遺伝子導入植物は対照植物のものに比べ厚い花序茎を有する。
【図９３】センスポリヌクレオチド老化誘発型ｅＩＦ−５Ａを含む遺伝子導入植物内の木質化の増大を示す棒グラフである。
【図９４】センスポリヌクレオチド老化誘発型ｅＩＦ−５Ａを含む遺伝子導入植物内の木質化の増大を示す棒グラフである。図９４は、トマトセンスポリヌクレオチド老化誘発型ｅＩＦ−５Ａの関するものであった。
【図９５】カノーラ成長ｅＩＦ−５Ａアミノ酸（配列番号６７）及びポリヌクレオチド（配列番号６６）配列を提供している。
【図９６】カノーラ成長ｅＩＦ−５Ａ及びｐＫＹＬＸ７１センス成長ｅＩＦ−５Ａの構築を提供している。プライマーは、配列番号１３８として開示されている。ベクター配列は、それぞれ、出現する順番で、配列番号１３９−１４１として開示されている。
【図９７Ａ】カノーラＤＨＳアミノ酸（配列番号７１）及びポリヌクレオチド（配列番号７０）配列を提供している。
【図９７Ｂ】カノーラＤＨＳアミノ酸（配列番号７１）及びポリヌクレオチド（配列番号７０）配列を提供している。
【図９８】カノーラＤＨＳ及びｐＫＹＬＸ７１−センスＤＨＳの構築を提供している。３’−ＵＴＲ配列は、配列番号１４２として開示されている。ベクター配列は、それぞれ、配列番号１４３−１４５として開示されている。
【図９９】ＤＨＳ発現の阻害がカノーラ内の種子の収量を増大させることを棒グラフで示している。
【図１００】左から右へのａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ、カノーラ、トマトのｅＩＦ−５Ａの成長アイソフォームのアップレギュレーション及びトマトＤＨＳのアップレギュレーションを棒グラフの形で示している。
【図１０１】トマト成長ｅＩＦ−５Ａアミノ酸（配列番号６５）及びポリヌクレオチド（配列番号６４）配列を提供している。
【図１０２Ａ】トマト成長ｅＩＦ−５Ａ及びｐＫＹＬＸ７１−センストマト成長ｅＩＦ−５Ａの構築を提供している。プライマー配列は、それぞれ、出現する順番で、配列番号１４６−１４７として開示されている。ベクター配列は、それぞれ、出現する順番で、配列番号１４８−１５０として開示されている。
【図１０２Ｂ】トマト成長ｅＩＦ−５Ａ及びｐＫＹＬＸ７１−センストマト成長ｅＩＦ−５Ａの構築を提供している。プライマー配列は、それぞれ、出現する順番で、配列番号１４６−１４７として開示されている。ベクター配列は、それぞれ、出現する順番で、配列番号１４８−１５０として開示されている。
【図１０３】トマト創傷／病原体誘発型ｅＩＦ−５Ａアミノ酸（配列番号５７）及びポリヌクレオチド（配列番号５６）配列を提供している。
【図１０４Ａ】トマト創傷／病原体誘発型ｅＩＦ−５Ａ及びｐＫＹＬＸ７１センストマト創傷／病原体誘発型ｅＩＦ−５Ａの構築を提供している。プライマー配列は、それぞれ、出現する順番で、配列番号１５１−１５２として開示されている。ベクター配列は、それぞれ、出現する順番で、配列番号１５３−１５５として開示されている。
【図１０４Ｂ】トマト創傷／病原体誘発型ｅＩＦ−５Ａ及びｐＫＹＬＸ７１センストマト創傷／病原体誘発型ｅＩＦ−５Ａの構築を提供している。プライマー配列は、それぞれ、出現する順番で、配列番号１５１−１５２として開示されている。ベクター配列は、それぞれ、出現する順番で、配列番号１５３−１５５として開示されている。
【図１０５】レタスＤＨＳポリヌクレオチド配列の一部分を提供している。プライマー配列は、それぞれ、出現する順番で、配列番号１５６−１５７として開示されている。レタス配列は、それぞれ、出現する順番で、配列番号１５８−１５９として開示されている。
【図１０６】ｐＴＡ７００１−３’ＵＴＲアンチセンスレタスＤＨＳの構成体を提供している。
【図１０７Ａ】アルファルファＤＨＳアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を提供する。図１０７Ａは、配列番号７３をコードする配列番号７２の１−１８６１ヌクレオチドを開示している。
【図１０７Ｂ】アルファルファＤＨＳアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を提供する。図１０７Ｂは、配列番号７２（ヌクレオチド）及び７３（タンパク質）を開示している。
【図１０８Ａ】バナナＤＨＳアミノ酸（配列番号７５）及びポリヌクレオチド（配列番号７４）配列を提供する。
【図１０８Ｂ】バナナＤＨＳアミノ酸（配列番号７５）及びポリヌクレオチド（配列番号７４）配列を提供する。
【図１０９Ａ】ハコヤナギ（Ｃｏｔｔｏｎｗｏｏｄ）ＤＨＳアミノ酸（配列番号７７）及びポリヌクレオチド（配列番号７６）配列を提供する。
【図１０９Ｂ】ハコヤナギ（Ｃｏｔｔｏｎｗｏｏｄ）ＤＨＳアミノ酸（配列番号７７）及びポリヌクレオチド（配列番号７６）配列を提供する。
【図１１０】部分的ｍｙｃｏｓｐｈａｅｒｅｌｌａ  ｆｉｊｉｅｎｓｉｓ  ＤＨＳアミノ酸及びポリヌクレオチド配列を提供する。図は、それぞれ、出現する順番で、配列番号６８、１６０、６９、１６１−１６３、１６５、１６４／５３をコードする１６３、４７（プライマー）、１０７及び５３を開示している。
【図１１１】ｅＩＦ−５Ａの活性化の概略図を示す。
【図１１２】カーネーションの加齢化及びｅＩＦ−５Ａの発現のノーザン分析である。
【図１１３−１】遺伝子導入カーネーション（アンチセンス老化誘発型ｅＩＦ−５Ａ）が、より長い切り花保管寿命を示すことを示している。
【図１１３−２】遺伝子導入カーネーション（アンチセンス老化誘発型ｅＩＦ−５Ａ）が、より長い切り花保管寿命を示すことを示している。
【図１１４】バナナ（アンチセンスＤＨＳを伴う遺伝子導入植物）の損傷遅延を示す。
【図１１５】トマト（アンチセンスＤＨＳを伴う遺伝子導入植物）の損傷遅延を示す。
【図１１６】子葉、葉及び花の中のａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ老化誘発型ｅＩＦ−５Ａ（ＡｔｅＩＦ−５Ａ１）の発現を示す。
【図１１７】遺伝子導入ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ（ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓアンチセンス老化誘発型ｅＩＦ−５Ａ）（ＡｔｅＩＦ−５Ａ１）におけるＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ葉の老化遅延を示す。
【図１１８】最初の本葉対におけるａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ老化誘発型ｅＩＦ−５Ａ：：ＧＵＳの発現を示す。
【図１１９】遺伝子導入植物（アンチセンス老化誘発型ｅＩＦ−５Ａ）が野生型植物に比べ少ない木質部を有することを示している。
【図１２０】遺伝子導入植物（老化誘発型ｅＩＦ−５Ａのセンス構成体）における木質部形成の増大を示す。
【図１２１】遺伝子導入植物（アンチセンス構成体を通したストレス誘発型ｅＩＦ−５Ａの発現の低下）における干ばつ耐性を示す。
【図１２２】干ばつストレス下の遺伝子導入Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ及び野生型における生存を示す棒グラフである。遺伝子導入植物（アンチセンス構成体を通したストレス誘発型ｅＩＦ−５Ａの発現の低下）は生存が増大した。
【図１２３】野生型カノーラ及び遺伝子導入カノーラ（アンチセンス構成体を通したストレス誘発型ｅＩＦ−５Ａの発現の低下）の比較を示し、遺伝子導入カノーラはバイオマスが増大しているということを示している。
【図１２４】遺伝子導入カノーラ系統（アンチセンス構成体を通したストレス誘発型ｅＩＦ−５Ａの発現の低下）が、野生型植物に比べ種子の収量の増加を有することを示している。
【図１２５】創傷／病原体誘発型ｅＩＦ−５ＡがＰ．ｓｙｒｉｎｇａｅでの感染の後にアップレギュレートされることを標示している。
【図１２６】ｅＩＦ−５Ａの創傷／病原体誘発型アイソフォームのアンチセンス抑制が、悪性病原体による感染を阻害することを示している。遺伝子導入植物は、対照植物に比べて、感染阻害の９９％強の増大を示した。
【図１２７】遺伝子導入カノーラ（ｅＩＦ−５Ａのアンチセンス創傷／病原体誘発型アイソフォーム）が、Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ  ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍによる感染に対する耐性を示す、ということを示している。「ＷＴ」は、野生型植物からの葉である。「ＴＧ−１」及び「ＴＧ−５」は、遺伝子導入植物由来の葉である。
【図１２８】遺伝子導入カノーラ（ｅＩＦ−５Ａのアンチセンス創傷／病原体誘発型アイソフォーム）が、Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ  ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍによる感染に対する耐性を示す、ということを示している。「ＷＴ」は、野生型植物からの葉である。「ＴＧ−１」及び「ＴＧ−５」は、遺伝子導入植物由来の葉である。
【図１２９】遺伝子導入カノーラ（ｅＩＦ−５Ａのアンチセンス創傷／病原体誘発型アイソフォーム）が、Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ  ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍによる感染に対する耐性を示す、ということを示している。「ＷＴ」は、野生型植物からの葉である。「ＴＧ−１」及び「ＴＧ−５」は、遺伝子導入植物由来の葉である。
【図１３０】遺伝子導入カノーラ（ｅＩＦ−５Ａのアンチセンス創傷／病原体誘発型アイソフォーム）が、Ｓｃｌｅｒｏｔｉｎｉａ  ｓｃｌｅｒｏｔｉｏｒｕｍによる感染に対する耐性を示す、ということを示している。「ＷＴ」は、野生型植物からの葉である。「ＴＧ−１」及び「ＴＧ−５」は、遺伝子導入植物由来の葉である。
【図１３１】遺伝子導入バナナ（アンチセンスＤＨＣ）（左側）及び野生型バナナ（右側）の写真を示し、遺伝子導入バナナ植物が野生型対照に比べて大きいバイオマスを有することを示している。
【図１３２】遺伝子導入トマト（センス配向での成長ｅＩＦ−５Ａ）（左側）が野生型対照植物（右側）に比べて増大したバイオマスを有することを示している。
【図１３３】遺伝子導入カノーラ（センス配向での成長ｅＩＦ−５Ａ）が野生型対照植物に比べて増大したバイオマスを有することを示している。
【図１３４】遺伝子導入カノーラ（センス配向での成長ｅＩＦ−５Ａ）が野生型対照植物に比べて増大した種子の収量を有することを示している。
【図１３５Ａ】レタスＤＨＳ配列を提供する。核酸は配列番号１６６であり、アミノ酸配列は配列番号１６７である。
【図１３５Ｂ】レタスＤＨＳ配列を提供する。核酸は配列番号  であり、アミノ酸配列は配列番号  である。
【図１３６】部分的ペチュニアＤＨＳヌクレオチド（配列番号１７０）及びアミノ酸配列（配列番号１７１）、ならびにＤＨＳ配列（配列番号１６８−１６９）を単離するのに用いられる２つのプライマーを提供する。
【図１３７Ａ】創傷／病原体ｅＩＦ−５Ａのためのアルファルファ核酸配列（配列番号１７２）及びアミノ酸配列（配列番号１７３）を提供する。
【図１３７Ｂ】創傷／病原体ｅＩＦ−５Ａのためのアルファルファ核酸配列（配列番号１７２）及びアミノ酸配列（配列番号１７３）を提供する。
【図１３８Ａ】老化ｅＩＦ−５Ａのためのアルファルファ核酸配列（配列番号１７４）及びアミノ酸配列（配列番号１７５）を提供する。
【図１３８Ｂ】老化ｅＩＦ−５Ａのためのアルファルファ核酸配列（配列番号１７４）及びアミノ酸配列（配列番号１７５）を提供する。
【図１３９】ストレスｅＩＦ−５Ａのためのアルファルファ核酸配列（配列番号１７６）及びアミノ酸配列（配列番号１７７）を提供する。
【図１４０Ａ】成長ｅＩＦ−５Ａのためのアルファルファ核酸配列（配列番号１７８）及びアミノ酸配列（配列番号１７９）を提供する。
【図１４０Ｂ】成長ｅＩＦ−５Ａのためのアルファルファ核酸配列（配列番号１７８）及びアミノ酸配列（配列番号１７９）を提供する。
【図１４１Ａ】レタス内のｅＩＦ−５Ａの異なるアイソフォーム（ＬＦ５Ａ−１）についての部分配列を提供する。図１４１は、配列番号１８０（ヌクレオチド）及び１８１（タンパク質）を開示している。
【図１４１Ｂ】レタス内のｅＩＦ−５Ａの異なるアイソフォーム（ＬＦ５Ａ−１）についての部分配列を提供する。図１４１は、配列番号１８０（ヌクレオチド）及び１８１（タンパク質）を開示している。
【図１４２Ａ】レタス内のｅＩＦ−５Ａの異なるアイソフォーム（ＬＦ５Ａ−３）についての部分配列を提供する。図１４２は、配列番号１８２（ヌクレオチド）及び１８３（タンパク質）を開示している。
【図１４２Ｂ】レタス内のｅＩＦ−５Ａの異なるアイソフォーム（ＬＦ５Ａ−３）についての部分配列を提供する。図１４２は、配列番号１８２（ヌクレオチド）及び１８３（タンパク質）を開示している。
【図１４３】レタス内のｅＩＦ−５Ａの異なるアイソフォーム（ＬＦＡ−２）についての部分配列を提供する。図１４３は、配列番号１８４（ヌクレオチド）及び１８５（タンパク質）を開示している。
【図１４４】レタス内のｅＩＦ−５Ａの異なるアイソフォーム（ＬＦＡ−１）についての部分配列を提供する。図１４４は、それぞれ、出現する順番で、配列番号１８６−１８７及び２１０−２１１を開示している。
【図１４５Ａ】トマトのための成長ｅＩＦ−５Ａ配列（核酸−配列番号１８８）及びアミノ酸（配列番号１８９）についての配列を提供する。
【図１４５Ｂ】トマトのための成長ｅＩＦ−５Ａ配列（核酸−配列番号１８８）及びアミノ酸（配列番号１８９）についての配列を提供する。
【図１４６Ａ】トマト内のストレスｅＩＦ−５Ａ配列（核酸−配列番号１９０）及びアミノ酸（配列番号１９１）についての配列を提供する。
【図１４６Ｂ】トマト内のストレスｅＩＦ−５Ａ配列（核酸−配列番号１９０）及びアミノ酸（配列番号１９１）についての配列を提供する。
【図１４７Ａ−１】ハコヤナギの木からの４つのｅＩＦ−５Ａ（「Ｆ１」（配列番号１９３をコードする配列番号１９２）、「Ｆ３」（配列番号１９５をコードする配列番号１９４）、「Ｆ３」（配列番号１９７をコードする配列番号１９６）及び「Ｆ４」（配列番号１９９をコードする配列番号１９８））から単離されたＮＣ及びアミノ酸ｅＩＦ−５Ａ配列を提供する。
【図１４７Ａ−２】ハコヤナギの木からの４つのｅＩＦ−５Ａ（「Ｆ１」（配列番号１９３をコードする配列番号１９２）、「Ｆ３」（配列番号１９５をコードする配列番号１９４）、「Ｆ３」（配列番号１９７をコードする配列番号１９６）及び「Ｆ４」（配列番号１９９をコードする配列番号１９８））から単離されたＮＣ及びアミノ酸ｅＩＦ−５Ａ配列を提供する。
【図１４７Ａ−３】ハコヤナギの木からの４つのｅＩＦ−５Ａ（「Ｆ１」（配列番号１９３をコードする配列番号１９２）、「Ｆ３」（配列番号１９５をコードする配列番号１９４）、「Ｆ３」（配列番号１９７をコードする配列番号１９６）及び「Ｆ４」（配列番号１９９をコードする配列番号１９８））から単離されたＮＣ及びアミノ酸ｅＩＦ−５Ａ配列を提供する。
【図１４７Ｂ−１】ハコヤナギの木からの４つのｅＩＦ−５Ａ（「Ｆ１」（配列番号１９３をコードする配列番号１９２）、「Ｆ３」（配列番号１９５をコードする配列番号１９４）、「Ｆ３」（配列番号１９７をコードする配列番号１９６）及び「Ｆ４」（配列番号１９９をコードする配列番号１９８））から単離されたＮＣ及びアミノ酸ｅＩＦ−５Ａ配列を提供する。
【図１４７Ｂ−２】ハコヤナギの木からの４つのｅＩＦ−５Ａ（「Ｆ１」（配列番号１９３をコードする配列番号１９２）、「Ｆ３」（配列番号１９５をコードする配列番号１９４）、「Ｆ３」（配列番号１９７をコードする配列番号１９６）及び「Ｆ４」（配列番号１９９をコードする配列番号１９８））から単離されたＮＣ及びアミノ酸ｅＩＦ−５Ａ配列を提供する。
【図１４７Ｂ−３】ハコヤナギの木からの４つのｅＩＦ−５Ａ（「Ｆ１」（配列番号１９３をコードする配列番号１９２）、「Ｆ３」（配列番号１９５をコードする配列番号１９４）、「Ｆ３」（配列番号１９７をコードする配列番号１９６）及び「Ｆ４」（配列番号１９９をコードする配列番号１９８））から単離されたＮＣ及びアミノ酸ｅＩＦ−５Ａ配列を提供する。
【図１４７Ｃ】ハコヤナギの木からの４つのｅＩＦ−５Ａ（「Ｆ１」（配列番号１９３をコードする配列番号１９２）、「Ｆ３」（配列番号１９５をコードする配列番号１９４）、「Ｆ３」（配列番号１９７をコードする配列番号１９６）及び「Ｆ４」（配列番号１９９をコードする配列番号１９８））から単離されたＮＣ及びアミノ酸ｅＩＦ−５Ａ配列を提供する。
【図１４８Ａ−１】種全体にわたるＤＨＳのきわめて保存度の高い性質を示すさまざまなＤＨＳのアミノ酸整列を提供する。図は、それぞれ、出現する順番で、配列番号４５、２、２００、７３、７７、２０１、１０、１６７、７５、２０２及び３を開示している。
【図１４８Ａ−２】種全体にわたるＤＨＳのきわめて保存度の高い性質を示すさまざまなＤＨＳのアミノ酸整列を提供する。図は、それぞれ、出現する順番で、配列番号４５、２、２００、７３、７７、２０１、１０、１６７、７５、２０２及び３を開示している。
【図１４８Ａ−３】種全体にわたるＤＨＳのきわめて保存度の高い性質を示すさまざまなＤＨＳのアミノ酸整列を提供する。図は、それぞれ、出現する順番で、配列番号４５、２、２００、７３、７７、２０１、１０、１６７、７５、２０２及び３を開示している。
【図１４８Ｂ−１】種全体にわたるＤＨＳのきわめて保存度の高い性質を示すさまざまなＤＨＳのアミノ酸整列を提供する。図は、それぞれ、出現する順番で、配列番号４５、２、２００、７３、７７、２０１、１０、１６７、７５、２０２及び３を開示している。
【図１４８Ｂ−２】種全体にわたるＤＨＳのきわめて保存度の高い性質を示すさまざまなＤＨＳのアミノ酸整列を提供する。図は、それぞれ、出現する順番で、配列番号４５、２、２００、７３、７７、２０１、１０、１６７、７５、２０２及び３を開示している。
【図１４９】ＤＨＳのダウンレギュレーションを有するレタスを成長させるために用いられる水耕条件を示す。
【図１５０】レタスＤＨＳの発現がダウンレギュレートされたカットレタスにおける褐変の遅延を示している。
【図１５１】レタスＤＨＳのアンチセンス３’末端を有する遺伝子導入レタスがＤＨＳ発現の低下を示すことを表わすウェスタンブロットを示す。
【図１５２】ＤＨＳのアンチセンス３’末端でＡｒａｂｉｄｏｐｓｉｓを形質転換するのに用いられるベクター構成体を示す。
【図１５３】ＤＨＳがダウンレギュレートされたａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ植物が、野生型植物に比べ増大した成長速度／バイオマスを有することを示している（図１５２に示されたベクターで生成された遺伝子導入ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ）。
【図１５４】ＤＨＳがダウンレギュレートされたａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ植物が、野生型植物に比べ増大した成長速度／バイオマスを有することを示している（図１５２に示されたベクターで生成された遺伝子導入ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ）。
【図１５５】ＤＨＳがダウンレギュレートされたａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ植物が、野生型植物に比べ増大した種子収量を有することを示している（図１５２に示されたベクターで生成された遺伝子導入ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ）。
【図１５６】ＤＨＳがダウンレギュレートされたａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ植物が、野生型植物に比べ増大した根発達を有することを示している（図１５２に示されたベクターで生成された遺伝子導入ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ）。
【図１５７】ＤＨＳがダウンレギュレートされたカノーラ植物が野生型植物に比べ増大した成長速度／バイオマスを有することを示している。
【図１５８】アンチセンスＤＨＳがＤＨＳの発現の減少をひき起こしたことを表わすウェスタンブロットを示す。
【図１５９】ＤＨＳがダウンレギュレートされたカノーラ植物が、野生型植物に比べた長角果サイズの増大を有することを示している。
【図１６０】ＤＨＳがダウンレギュレートされたカノーラ植物が、野生型植物に比べた種子収量の増大を有することを示している。
【図１６１】ＤＨＳがダウンレギュレートされたカノーラ植物において、種子１つあたりの油の量の変化及び油の脂肪酸組成の変化が全く無いことを示している。
【図１６２】成長ｅＩＦ−５Ａのアップレギュレーションを達成するためのセンス配向でａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ内にハコヤナギ成長ｅＩＦ−５Ａを導入することのもつ効果を示している。結果として得られた植物は、増大した成長速度／バイオマスを有している。
【図１６３】成長ｅＩＦ−５Ａのアップレギュレーションを達成するためのセンス配向でａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ内にハコヤナギ成長ｅＩＦ−５Ａを導入することのもつ効果を示している。結果として得られた植物は、増大した成長速度／バイオマスを有している。
【図１６４】成長ｅＩＦ−５Ａのアップレギュレーションを達成するためのセンス配向でａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ内にハコヤナギ成長ｅＩＦ−５Ａを導入することのもつ効果を示している。結果として得られた植物は、増大した成長速度／バイオマスを有している。
【図１６５】カノーラ植物中においてセンス配向でカノーラ又はａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ成長ｅＩＦ−５Ａのいずれかが使用された場合、カノーラ植物内に種子収量の増大が見られることを示している。
【図１６６】突然変異体老化ｅＩＦ−５Ａで形質転換された遺伝子導入ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ（ヒプシン化不可能）が野生型ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓに比べてバイオマスを増大させたということを示している。
【図１６７】突然変異体老化ｅＩＦ−５Ａで形質転換された遺伝子導入ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ（ヒプシン化不可能）が野生型ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓに比べてバイオマスを増大させたということを示している。
【図１６８】ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ内でセンス配向で発現されたハコヤナギ（ｐｏｐｕｌａｓ  ｄｅｌｔｏｉｄｅｓ）から単離された成長ｅＩＦ−５Ａが、対照植物に比べ種子収穫の増大を結果としてもたらすことを示している。
【図１６９】センス配向で発現されたハコヤナギ成長因子ｅＩＦ−５Ａを有する３つの異なる遺伝子導入ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ系統からの種子収穫を比較し、３つの系統が全て種子収穫の増加を有していたということを示している。
【図１７０】ｐｏｐｕｌａｓ  ｄｅｌｔｏｉｄｅｓ（ハコヤナギ）成長ｅＩＦ−５Ａの全長ｃＤＮＡ（配列番号２０３）及びタンパク質の全長アミノ酸配列（配列番号２０４）を提供する。図の説明は、配列番号２０３のヌクレオチド４０−５７及び５３０−５５０を開示している。
【図１７１】センス配向でハコヤナギ成長ｅＩＦ−５Ａを用いてａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓを形質転換するために用いられるベクター構成体を提供する。プライマー配列は、それぞれ、出現する順番で、配列番号２０５−２０６として開示されている。ベクター配列は、それぞれ、出現する順番で、配列番号２０７−２０９として開示されている。
【図１７２】（図１７１に示されたベクターで形質転換された）遺伝子導入ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ植物が、最善、次善及び超最善濃度を含めた異なるレベルの肥料で処理された場合に対照植物に比べて増大したバイオマスを有することを示している。
【図１７３】（図１７１に示されたベクターで形質転換された）遺伝子導入ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ植物が、最善、次善及び超最善濃度を含めた異なるレベルの肥料で処理された場合に対照植物に比べて増大したバイオマスを有することを示している。
【図１７４】（突然変異体老化誘発型ｅＩＦ−５Ａで形質転換された）遺伝子導入ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ植物が、最善、次善及び超最善濃度を含めた異なるレベルの肥料で処理された場合に対照植物に比べて増大したバイオマスを有することを示している。
【図１７５】（突然変異体老化誘発型ｅＩＦ−５Ａで形質転換された）遺伝子導入ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ植物が、最善、次善及び超最善濃度を含めた異なるレベルの肥料で処理された場合に対照植物に比べて増大したバイオマスを有することを示している。