(57)【要約】  本発明はイチョウ科（family Ginkgoaceae）の形成層由来幹細胞及びその分離方法に関する。本発明に係るイチョウ科の形成層由来幹細胞は脱分化過程を経ないで未分化状態で分離され、長期培養時にも細胞生長率と生長パターンが変化することなく安定的に維持され、大量培養が可能であるため、有用である。また、本発明に係るイチョウ科の形成層由来幹細胞は、酸化剤処理によって生じるラジカル消去能を測定した結果、既存の合成抗酸化剤と同等か、さらに高い抗酸化効果を有することが明らかになり、優れた抗酸化用組成物として有用である。
2012527889.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
イチョウ科の形成層から由来し、脱分化を経ない先天的未分化細胞であることを特徴とするイチョウ科の形成層由来幹細胞。
【請求項２】
以下の少なくとも一つの特性をさらに有することを特徴とする請求項１に記載のイチョウ科の形成層由来幹細胞：
（ａ）懸濁培養時、イチョウ科の脱分化されたカルスに比べて、多数の単細胞を含むか、又は小さいサイズの細胞集合体を含むこと；
（ｂ）多数の液包を有する形態学的特徴を有すること；
（ｃ）イチョウ科の脱分化されたカルスに比べて、活性が増加したミトコンドリアを有すること；
（ｄ）イチョウ科の脱分化されたカルスに比べて、生長速度が速く、そして永く成長できること；及び
（ｅ）イチョウ科の脱分化されたカルスに比べて、生物反応器での剪断ストレスに対して低い感受性を有すること。
【請求項３】
前記（ａ）〜（ｅ）の特性の少なくとも二つの特性を有することを特徴とする請求項２に記載のイチョウ科の形成層由来幹細胞。
【請求項４】
前記（ａ）〜（ｅ）の特性の少なくとも三つの特性を有することを特徴とする請求項２に記載のイチョウ科の形成層由来幹細胞。
【請求項５】
前記（ａ）〜（ｅ）の特性の少なくとも四つの特性を有することを特徴とする請求項２に記載のイチョウ科の形成層由来幹細胞。
【請求項６】
前記（ａ）〜（ｅ）の特性を全て有することを特徴とする請求項２に記載のイチョウ科の形成層由来幹細胞。
【請求項７】
前記イチョウ科の形成層由来幹細胞は以下の工程を含む分離方法により分離されることを特徴とする請求項１に記載のイチョウ科の形成層由来幹細胞：
（ａ）イチョウ科植物から形成層含有組織を取得する工程；
（ｂ）前記取得された形成層含有組織を培地で培養する工程；及び
（ｃ）前記形成層から細胞を分離することによって形成層由来幹細胞を取得する工程。
【請求項８】
前記イチョウ科植物はイチョウ属であることを特徴とする請求項１〜７のいずれか一項に記載イチョウ科の形成層由来幹細胞。
【請求項９】
前記イチョウ科はイチョウであることを特徴とする請求項１〜７のいずれか一項に記載イチョウ科の形成層由来幹細胞。
【請求項１０】
以下の工程を含むイチョウ科の形成層由来幹細胞の分離方法：
（ａ）イチョウ科植物から形成層含有組織を取得する工程；
（ｂ）前記取得された形成層含有組織を培地で培養する工程；及び
（ｃ）前記形成層から細胞を分離することによって形成層由来幹細胞を取得する工程。
【請求項１１】
前記工程（ｂ）の培地は、オーキシンを含むことを特徴とする請求項１０に記載の方法。
【請求項１２】
前記培地は１〜５ｍｇ／Ｌの濃度のオーキシンを含むことを特徴とする特徴とする請求項１１に記載の方法。
【請求項１３】
前記工程（ｃ）は、培養された形成層を形成層以外の組織に由来する無定形に増殖するカルス層より分けた後、形成層から細胞を分離して形成層由来幹細胞を取得することを特徴とする請求項１０に記載の方法。
【請求項１４】
前記イチョウ科植物はイチョウ属であることを特徴とする請求項１０に記載の方法。
【請求項１５】
前記イチョウ科植物はイチョウであることを特徴とする請求項１０に記載の方法。
【請求項１６】
請求項１〜７のいずれか一項に記載イチョウ科の形成層由来幹細胞、その抽出物、その破砕物及びその培養物のいずれか一つ以上を含有する抗酸化用組成物。
【請求項１７】
前記培養物は、前記幹細胞を３〜５重量％の原糖または砂糖を含むか；またはジャスモン酸メチル、真菌類抽出物、細菌類抽出物、酵母抽出物、キトサン、グルコマンナン、グルカン、フェニルアラニン、安息香酸、サリチル酸、アラキドン酸、ＳＴＳ、モバロナロネイトＮ−ベンゾリグリシン、ＡＢＡ、ＳＮＰ、ＩＰＰ、ＢＨＴ、ＣＣＣ、エテホン、馬尿酸、硝酸二アンモニウムセリウム、ＡｇＮＯ３、硫酸バナジル、ｐ−アミノ安息香酸、ブラシノステロイド、アルギン酸ナトリウム及び酢酸ナトリウムからなる群から選択されるいずれか一つ以上を含む培地で追加培養して取得されたことを特徴とする請求項１６に記載の抗酸化用組成物。
【請求項１８】
前記イチョウ科植物はイチョウ属であることを特徴とする請求項１６に記載の抗酸化用組成物。
【請求項１９】
前記イチョウ科植物はイチョウであることを特徴とする請求項１６に記載の抗酸化用組成物。
【請求項２０】
請求項１〜７のいずれか一項に記載イチョウ科の形成層由来幹細胞、その抽出物、その破砕物及びその培養物のいずれか一つ以上を含有する抗酸化用機能性食品。
【請求項２１】
前記培養物は、前記幹細胞を３〜５重量％の原糖または砂糖を含むか；またはジャスモン酸メチル、真菌類抽出物、細菌類抽出物、酵母抽出物、キトサン、グルコマンナン、グルカン、フェニルアラニン、安息香酸、サリチル酸、アラキドン酸、ＳＴＳ、モバロナロネイトＮ−ベンゾリグリシン、ＡＢＡ、ＳＮＰ、ＩＰＰ、ＢＨＴ、ＣＣＣ、エテホン、馬尿酸、硝酸二アンモニウムセリウム、ＡｇＮＯ３、硫酸バナジル、ｐ−アミノ安息香酸、ブラシノステロイド、アルギン酸ナトリウム及び酢酸ナトリウムからなる群から選択されるいずれか一つ以上を含む培地で追加培養して取得されたことを特徴とする請求項１６に記載の抗酸化用機能性食品。
【請求項２２】
前記イチョウ科植物はイチョウ属であることを特徴とする請求項２０に記載の抗酸化用組成物。
【請求項２３】
前記イチョウ科植物はイチョウであることを特徴とする請求項２０に記載の抗酸化用機能性食品。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明はイチョウ科（family Ginkgoaceae）の形成層由来幹細胞及びその分離方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
植物は、過去食糧資源と認識されていたが、現在では薬剤、香料、色素、農薬、及び染料等を含む広範囲な化学物質の供給源として、その意義が拡大している。特に、植物由来有用物質の多くは、抗ウイルス、抗バクテリア、抗癌、抗酸化能力等の生理活性があって、新医薬品として開発可能な理想的な資源として注目されており、多くの植物由来物質の化学構造と活性との間の関係を解明するための研究が盛んに行われている。
【０００３】
しかし、現状では、生理活性物質は、医薬品として開発し難しく、その主な理由は次の通りである。第一に、植物内の生理活性物質の含有量が極めて限定的である。第二に、植物の生長速度は非常に遅い。第三に、植物由来生理活性物質は、植物の特定器官内にだけ少量存在する。第四に、自然破壊という環境問題が係わっている。第五に、植物由来生理活性物質の場合、化学的な構造が非常に複雑で、多段階重合プロセスが必要であり、生産費用が非常に高いという経済的な問題がある。従って、植物由来生理活性物質を商業的に安定的に供給することはかなり難しい。
【０００４】
ところが、生物工学技法の一つである植物細胞培養方法は、環境問題を誘発せずに、植物由来有用物質を安定的に供給できる、最も理想的な技術として永く評価されている。韓国公開特許１９９５−００００８７０（１９９５年１月３日）によれば、植物細胞培養による有用物質の生産は、植物から直接抽出する方法より数多くの長所がある。特に、既存の抽出法とは違って、外部環境の影響を受けずに持続的な生産が可能で、生態系破壊のような懸念される問題を解決できる最適な方法として考えられている。しかし、現状は植物細胞培養に対する大いなる関心と努力にもかかわらず産業化に成功した例はまだきわめて一部にすぎない。これは、数多くの植物細胞培養で細胞増殖と生産性の変異が主な問題として依然として残っているためである。
【０００５】
植物発現システムに植物細胞を利用する場合、植物細胞の分化組織、例えば葉、幹、種等は、分裂能を喪失した永久組織であるため、分裂能を有する細胞株に転換するために脱分化過程を必ず行う必要がある。前記脱分化過程は、植物体のある組織や器官を利用して培養した時、既に特定機能を行えるよう分化した組織や細胞の状態を脱分化することを意味する。しかし、このような脱分化過程中に染色体変異によって細胞株の深刻な変異が発生しうる。
【０００６】
特に、植物細胞培養を介した有用物質の生産は、長期間の培養期間において、早い細胞増殖と高い代謝物質生産能が安定的に維持されてこそ産業化が可能であるが、多くの細胞株は、継代培養によって本来とは異なる数多くの変異を受けるようになる。従って、このような変異の問題を克服して、植物細胞培養を介して有用物質生産において、遺伝的に安定した細胞株を獲得するための方法が切に望まれる。
【０００７】
そこで、本発明者の一部は、植物の幹から採取した形成層だけを利用してカルスを誘導する方法を開発したが（韓国登録特許第０５３３１２０号）、この登録特許は単に木本植物の幹形成層を利用してカルスを誘導しただけであった。カルス（callus）とは、脱分化が起きて形成された組織であるため、前記登録特許は依然として脱分化による変異問題は未解決のままであった。また、本発明者中の一部は、脱分化による変異の問題を解決し、安定的に増殖が可能な遺伝的安全性が高い細胞株の提供方法として国際特許出願ＰＣＴ／ＫＲ２００６／００１５４４号の発明を開発した。しかし、落葉樹に属するイチョウは、有用植物として知られており、これから脱分化による変異の問題を解決して安定的に増殖が可能な遺伝的安全性が高い細胞株を獲得することが求められている。
【０００８】
そこで、本発明者は、イチョウ科植物の形成層由来幹細胞を分離することによって有用な植物細胞株を提供しようと鋭意努力した結果、イチョウ科植物の形成層由来幹細胞を分離し、前記幹細胞が安定的に増殖して、培養時に変異がないことを確認して、本発明を完成した。
【発明の要約】
【０００９】
本発明の目的は、脱分化過程を経ていないイチョウ科の形成層由来幹細胞及びその分離方法を提供することである。
【００１０】
前記目的を達成するため、本発明はイチョウ科の形成層から由来し、脱分化を経ない先天的未分化細胞であることを特徴とするイチョウ科の形成層由来幹細胞を提供する。
【００１１】
本発明はまた、以下の工程を含むイチョウ科の形成層由来幹細胞の分離方法を提供する：
（ａ）イチョウ科植物から形成層含有組織を取得する工程；
（ｂ）前記取得された形成層含有組織を培地で培養する工程；及び
（ｃ）前記形成層から細胞を分離することによって形成層由来幹細胞を取得する工程。
【００１２】
本発明はまた、前記イチョウ科の形成層由来幹細胞、その抽出物、その破砕物及びその培養物のいずれか一つ以上を含有する抗酸化用組成物を提供する。
【００１３】
本発明はまた、前記イチョウ科の形成層由来幹細胞、その抽出物、その破砕物及びその培養物のいずれか一つ以上を含有する抗酸化用機能性食品を提供する。
【００１４】
本発明の他の特徴及び具現例は、以下の詳細な説明及び添付された特許請求の範囲からより一層明白になる。
【図面の簡単な説明】
【００１５】
【図１】材料植物（イチョウ）の横断面から形成層を観察した写真である。
【図２】本発明に係る幹細胞の誘導及び分離写真であり、Ａは幹細胞（矢印）と篩部（phloem）細胞（★印）の極めて異なる形態を示す写真であり、Ｂは幹細胞を分離してから、培養３週後の写真である。
【図３】本発明に係る幹細胞（Ａ）及びイチョウの樹皮切片体誘導カルス（Ｂ）の固体培養時写真である。
【図４】本培養過程の幹細胞（Ａ）及びイチョウの樹皮組織から誘導したカルス（Ｂ）の細胞凝集の程度を観察した顕微鏡写真である（×１００）。
【図５】本発明に係る幹細胞（Ａ）及びイチョウ体細胞（Ｂ）の顕微鏡写真であり、左側下段のスケールバーは２５μｍである。
【図６】ニュートラル・レッドを利用して液包を染色後観察した、本発明に係る幹細胞（Ａ）及びイチョウ樹皮組織から誘導したカルス（Ｂ）の顕微鏡写真であり、右側下段のスケールバーは２５μｍである。
【図７】本発明に係る幹細胞（Ａ）及びイチョウ樹皮組織から誘導したカルス（Ｂ）のミトコンドリアを観察した写真である。
【図８】本発明に係る幹細胞の生物反応器での細胞生長曲線を示したグラフである。
【図９】本発明に係る幹細胞（stem cell）及びイチョウ樹皮組織から誘導したカルスの生長速度比を示したグラフである。
【図１０】３Ｌ空気浮揚式生物反応器（Ａ）、２０Ｌ空気浮揚式生物反応器（Ｂ）及び２５０Ｌ空気浮揚式生物反応器（Ｃ）で１０日間培養した結果を示した写真である。
【図１１】本発明に係る幹細胞及びイチョウ樹皮組織から誘導したカルスの凍結保存後細胞生存率を示したグラフである。
【図１２】本発明に係る幹細胞抽出物（ＧＧ−Ｅ）及びエリシターを処理して、培養した培養物の抽出物（ＧＰ−Ｅ）の濃度別ラジカル消去能を示したグラフである。
【発明を実施するための形態】
【００１６】
他の方式で定義されない限り、本明細書において使用されたあらゆる技術的及び科学的用語は、本発明が属する技術分野に熟練した専門家によって通常理解されるものと同じ意味を有する。通常、本明細書において使用された命名法は、本技術分野において周知であり、しかも汎用されるものである。
本発明の詳細な説明などにおいて使用される主な用語の定義は、下記の通りである。
【００１７】
本願において維管束「形成層」は植物の維管束組織（vascular tissue）内に位置する側部分裂組織（lateral meristem）であり、幹と根元に位置する。形成層の活動によって植物の肥大生長が起き、その結果、１１，０００年以上の年輪を有する巨大植物体が存在できるようになる。発生学的に維管束形成層は、前形成層を起源とするため、分裂組織的連続性を維持しながら徐々に分化した同一分裂組織に便宜上区分されるだけで（植物形態学、イ・ジェド他７人共著、アカデミー書籍、第１０章、１９９３）、本発明において形成層は、前形成層を含むと解釈される。このような形成層と前形成層は、同じ一次分裂組織として、本発明において形成層及び前形成層組織を用いて同じ効果を得ることは明らかである。
【００１８】
本願において植物「幹細胞」とは、脱分化過程を経ておらず、遺伝的により安定した先天的な未分化細胞をいう。
【００１９】
本願において「破砕物」とは、細胞を界面活性剤（detergent）等を利用した化学的方法または物理的方法等で破砕して得た細胞溶解物を意味し、細胞株の「抽出物」とは、細胞を溶媒に溶かして分離した物質で、蒸留または蒸発を利用して濃縮される。また、細胞株「培養液」とは、細胞を培養させた後、細胞を除いて残った細胞培養溶液を意味する。さらに、本願において「培養物」とは、培養液及び／または培養された細胞株を含む物質として、この時培養された細胞株は培養条件によって分化したり、有用物質の生産能及び／または分泌能が向上した細胞株を全て含む概念である。
【００２０】
本願において「先天的な未分化状態（innately undifferentiated）」とは、脱分化過程を経て未分化状態にあることではなく、本来的に分化前状態を維持することをいう。
【００２１】
本願において「カルス」とは、脱分化過程を介して分化しない状態になった細胞または細胞塊（PNAS, 99(25):15843, 2002）をいう。
【００２２】
一観点において、本発明は、イチョウ科の形成層から由来し、脱分化を経ない先天的未分化細胞であることを特徴とするイチョウ科の形成層由来幹細胞に関する。
【００２３】
分化済みの組織である葉や幹、根元の部分を用いる場合、カルスを形成するためには、分化した組織から未分化組織に戻る（rejuvenilation）脱分化（dedifferentiation）過程を経るが、この脱分化過程中に体細胞に突然変異が起きて、細胞不安定性の原因となる。そこで、本発明者等は、体細胞変異が殆どない植物細胞システムを研究し、分裂組織である形成層だけで特異的に細胞株を誘導する場合、脱分化を経ずに分裂組織自体が有している旺盛な分裂能を用いることができるため、体細胞変異がなく遺伝的に安全性が高く、生理的に均一な細胞株を誘導できる点に着眼して形成層由来幹細胞の分離を行った。
【００２４】
本発明に係るイチョウ科の形成層由来幹細胞は以下の少なくとも一つの特性を有することを特徴とする：
（ａ）懸濁培養時、イチョウ科の脱分化されたカルスに比べて、多数の単細胞を含むか、又は小さいサイズの細胞集合体を含むこと；
（ｂ）多数の液包（vacuole）を有する形態学的特徴を有すること；
（ｃ）イチョウ科の脱分化されたカルスに比べて、多数のミトコンドリアを有すること；
（ｄ）イチョウ科の脱分化されたカルスに比べて、生長速度が速く、そして永く成長できること；
（ｅ）イチョウ科の脱分化されたカルスに比べて、生物反応器での剪断ストレス（shear stress）に対して低い感受性を有すること。
【００２５】
この時、「多数の液包」を有するとは、イチョウ科の脱分化されたカルス等と比較して二倍以上の多数の液包を有することをいう。また、本発明に係る幹細胞は、イチョウ科のカルス等と比較してサイズ面で小さい液包を有する。また、「多数のミトコンドリア」を有するとは、イチョウ科の脱分化されたカルスと比較してミトコンドリアを二倍以上多数有することをいう。
【００２６】
本発明において、前記幹細胞は前記（ａ）乃至（ｅ）の特性のうち少なくとも二つ以上の特性を有することを特徴とし、好ましくは前記（ａ）乃至（ｅ）の特性のうち少なくとも三つ以上の特性を有することを特徴とし、さらに好ましくは前記（ａ）乃至（ｅ）の特性のうち少なくとも四つ以上の特性を有することを特徴とする。また、本発明において、前記幹細胞は、前記（ａ）乃至（ｅ）の特性を全て有してもよい。
【００２７】
また、イチョウ科形成層由来幹細胞の分化を誘導して導管要素（tracheary elements）に分化できる分化能を有することを確認した。植物幹細胞を特徴づける特性としては、自己再生能力（self renewal）以外に分化能（pluripotency）があるが、これで本発明に係るイチョウ科形成層由来細胞が幹細胞であることを確認した。
【００２８】
一方、本発明に係る幹細胞は、（ａ）イチョウ科植物から形成層含有組織を取得する工程；（ｂ）前記取得された形成層含有組織を培地で培養する工程；及び（ｃ）前記形成層から細胞を分離することによって形成層由来幹細胞を取得する工程を含む分離方法によって得られる。この時、前記工程（ｂ）は、形成層含有組織を培養して形成層から増殖する培養された形成層を誘導することによって行ってもよく、前記工程（ｃ）は、培養された形成層を分離することによって形成層由来幹細胞を取得することによって行ってもよい。また、前記工程（ｂ）は、オーキシン（auxin）を含んだ培地で培養してもよく、この時、オーキシンとしては、ＮＡＡ（α-naphtalene acetic acid）またはＩＡＡ（indole-3-acetic acid）が用いてもよく、このようなオーキシンは１〜５ｍｇ／Ｌの濃度で含まれてもよい。また、前記工程（ｃ）は、形成層以外の部分から無定形に増殖するカルス層から前記培養された形成層を分離することによって形成層由来幹細胞を取得することによって行ってもよい。
【００２９】
本発明の一実施例ではイチョウ科イチョウ属のイチョウからイチョウの形成層由来幹細胞を分離し、そこで本発明は、好ましくはイチョウ属植物の形成層由来幹細胞であることを特徴とし、さらに好ましくはイチョウの形成層由来幹細胞であることを特徴とする。
【００３０】
また、本発明では、前記取得されたイチョウの形成層由来幹細胞の抗酸化効果を確認した。
【００３１】
他の観点において、本発明は、前記イチョウ科の形成層由来幹細胞、その抽出物、その破砕物及びその培養物のいずれか一つ以上を含有する抗酸化用組成物に関する。
【００３２】
本発明において、前記培養物は、前記幹細胞をエリシターとして、３〜５重量％の原糖または砂糖を含むか；及び／またはジャスモン酸メチル（methyl jasmonate）、キトサン、フェニルアラニン（phenylalanin）、安息香酸、ＡＢＡ、サリチル酸（salicylic acid）及び酢酸ナトリウム（sodium acetate）のうちいずれか一つ以上を含む培地で追加培養する工程を追加で行って取得されたことが好ましい。この時、好ましくは、前記培地は３〜５重量％の原糖または砂糖；及びジャスモン酸メチル、真菌類抽出物、細菌類抽出物、酵母（yeast）抽出物、キトサン、グルコマンナン（glucomanan）、グルカン（glucan）、フェニルアラニン（phenylalanine）、安息香酸（benzoic acid）、サリチル酸、アラキドン酸（arachonic acid）、ＳＴＳ、モバロナロネイトＮ−ベンゾリグリシン（mevalonalonate N-benzolyglycine）、ＡＢＡ、ＳＮＰ、ＩＰＰ、ＢＨＴ、ＣＣＣ、エテホン（ethephon）、馬尿酸（hippuic acid）、硝酸二アンモニウムセリウム（amminoium ceric nitrate）、ＡｇＮＯ３、硫酸バナジル（vanadyl sulfate）、ｐ−アミノ安息香酸（p-aminobenzoic acid）、ブラシノステロイド（brassinosteroids）、アルギン酸ナトリウム（sodium alginate）、酢酸ナトリウム（sodium acteate）でからなる群から選択された少なくとも１つの物質；を含む培地であることを特徴とする。
【００３３】
本発明においてまた、前記幹細胞にエリシターとして、紫外線、熱、エチレン、抗真菌剤、抗生剤、重金属塩及び高い塩濃度等を処理して物理的及び化学的ストレスを加えることによって、取得された培養物を利用できる。
【００３４】
本発明においてまた、前記抽出物は、蒸溜水、エタノール等のアルコール、アセトン、ＤＭＳＯ（dimethyl sulfoxide）及びこれらの混合溶媒でからなる群から選択された溶媒を利用して抽出されたことが好ましい。
【００３５】
本発明の一実施例では、本発明に係る幹細胞抽出物及びその培養物の抽出物が酸化剤ＤＰＰＨで酸化が開始されたラジカルに対する消去能力を有していた。それらのラジカルに対する消去能は、合成抗酸化剤として広く用いられているＢＨＴと類似またはより優れていることが確認できた。従って、本発明に係る幹細胞抽出物は、優秀な抗酸化用組成物として有用である。
【００３６】
従って、本発明では、前記幹細胞またはその破砕物を含有する組成物が、抗酸化活性を示すような具体的な実施例がなかったとしても、前記で調べたようにその幹細胞抽出物及びその培養物の抽出物が抗酸化活性を有することを確認したところ、本発明に係る幹細胞自体やその破砕物を含有した組成物も抗酸化活性を有し、酸化を抑制できることは当業界において通常の知識を有する者には明らかに理解できる。
【００３７】
本発明に係る幹細胞、その抽出物、その破砕物及びその培養物のいずれか一つ以上を有効性分として含有する抗酸化用組成物は、これらを各々単独で含むか一つ以上の薬学的に許容される担体、賦形剤または希釈剤を含んで医薬組成物として提供でき、前記幹細胞等は疾患及びこれの重症程度、患者の年令、体重、健康状態、性別、投与経路及び治療期間等に応じて適切な薬学的に有効な量で医薬組成物に含まれる。
【００３８】
前記において「薬学的に許容される」とは、生理学的に許容されヒトに投与される際に、通常胃腸障害、めまいのようなアレルギー反応またはこれと類似の反応を起こさない組成物をいう。前記担体、賦形剤及び希釈剤として、例えばラクトース、デキストロース、スクロース、ソルビトール、マンニトール、キシリトール、エリスリトール、マルチトール、澱粉、アカシアゴム、アルジネート、ゼラチン、カルシウムホスフェート、カルシウムシリケート、セルロース、メチルセルロース、ポリビニルピロリドン、水、メチルヒドロキシベンゾアート、プロフィルヒドロキシベンゾアート、タルク、マグネシウムステアレート及び鉱物油が挙げられる。
【００３９】
前記医薬組成物は、充鎮剤、抗凝集剤、滑剤、湿潤剤、香料、乳化剤及び防腐剤等を追加で含んでもよい。また本発明の医薬組成物は、ほ乳動物に投与された後、活性成分の迅速、持続または遅れた放出を提供できるように当業界に公知の方法を用いて剤形化できる。剤形は、粉末、顆粒、精剤、エマルジョン、シロップ、エアゾール、軟質または硬質ゼラチンカプセル、滅菌注射溶液、滅菌粉末状であってもよい。
【００４０】
他の観点において、本発明はまた、前記イチョウ科の形成層由来幹細胞、その抽出物、その破砕物及びその培養物のいずれか一つ以上を含有する抗酸化用機能性食品に関する。
【００４１】
本願において「機能性食品」とは、一般食品に本発明に係る幹細胞、その抽出物、その破砕物及びその培養物のいずれか一つ以上を添加することによって食品の機能性を向上したものを意味する。
【実施例】
【００４２】
以下、本発明を実施例を挙げて詳述する。これらの実施例は単に本発明をより具体的に説明するためのものであり、本発明の範囲がこれらの実施例に制限されないことは当業者において通常の知識を有する者にとって自明である。
特に、下記実施例ではイチョウの形成層由来幹細胞抽出物及びその培養物の抗酸化効果を確認したが、その幹細胞自体またはその破砕物を用いても類似の結果を得られることは当業界において通常の知識を有する者には明らかである。
【００４３】
《実施例１：イチョウ科の形成層由来幹細胞の製造》
１−１：植物材料の準備
イチョウ科イチョウ属のイチョウ（Ginkgo biloba、忠清（チュンチョン）南道  扶餘、韓国）は、図１のように、Ｐｈｌｏｒｏｇｌｙｃｉｎｏｌ染色を介して、木部（xylem）と篩部繊維を観察することができるが、その間に形成層（cambium）が存在することが確認できる。このようなイチョウから前記形成層由来幹細胞を取得するため、先ず、イチョウの幹を採取した後、直ちに抗酸化剤１００ｍｇ／Ｌアスコルビン酸（L-ascorbic acid、ＤＵＣＨＥＦＡ，Ｔｈｅ  Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ）溶液に沈積して、運搬及び保管した。この時、前形成層を利用して同様の幹細胞を取得するためには幹の代わりに小枝を採取する。
【００４４】
その後、１％ベノミル（benomyl、Ｄｏｎｇｂｕ  Ｈａｎｎｏｎｇ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ，Ｋｏｒｅａ）、１％ダコニール（daconil、Ｄｏｎｇｂｕ  Ｈａｎｎｏｎｇ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ，Ｋｏｒｅａ）、１％ストレプトマイシン（sterptomycin sulphate、ＤＵＣＨＥＦＡ，Ｔｈｅ  Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ）、０.１％セフォタキシム（cefotaxime sodium、ＤＵＣＨＥＦＡ，Ｔｈｅ  Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ）の混合溶液に２４時間前処理後、フェノール化合物（phenolic compound）と残存化学物質を取り除くために水道水（tap water）で３０分間洗浄した。そして、７０％エタノール（ethanol、ＤＣ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ，Ｋｏｒｅａ）に１分、３０％過酸化水素（hydrogen peroxide、ＬＧ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ，Ｋｏｒｅａ）に１５分、１％ＣＬＯＲＯＸ溶液に１５分、３％ＣＬＯＲＯＸ溶液に５分表面殺菌後、３〜４回洗浄した。
【００４５】
１−２：幹から形成層含む切片体の製造及び組織分離
実施例１−１の殺菌過程を経た幹（前形成層利用時小枝）の中央部位の木部をピンセットで保持して形成層が含まれた樹皮（bark）組織を持ち上げると、木部で簡単に剥がれた。剥がれた組織は形成層、篩部、皮層（cortex）、表皮（epidermis）を含む切片体を構成する。
【００４６】
１−３：イチョウの形成層由来幹細胞誘導工程
前記実施例１−２で準備した形成層を含む切片体は表１の幹細胞誘導培地（培地１）上で培養した。
【００４７】
【表１】
2012527889.tif 000003
【００４８】
培地に生長調節剤として、ＮＡＡ、ＩＡＡのようなオーキシンは１〜３ｍｇ／Ｌの濃度で添加することができるが、好ましくは２ｍｇ／Ｌの濃度で添加する。培養は、２５±１℃に調節された暗室で実施された。
【００４９】
初期培養４〜７日目に形成層から細胞分裂が肉眼で観察され、培養１５日以後に篩部・皮層及び表皮で形成された層から脱分化による無定形のカルスが誘導し始めた。培養３０日経過後、培養された形成層は篩部を含んだ層、即ち無定形のカルス層で分離し始め（図２Ａ：幹細胞（矢印）、篩部細胞（★印））、二つの層が自然に分離する時まで待ってから、完全に分離されると、各々異なったペトリ皿（petridish）に分離培養した。分離後、生長率が良い白くかつ柔らかい部分を誘導培地と同様の新しい培地で毎１４日目に継代培養した。図２Ｂは、前記形成層由来幹細胞を分離して、３週間培養した後の写真である。
【００５０】
一方、比較のためにイチョウの樹皮切片体を消毒した後、前記表１の培地で培養し、その結果、図３Ｂに示したように、樹皮切片体は、脱分化によってカルスを形成することを観察することができた。樹皮切片体から誘導されたカルスは、篩部を含む組織同様多数の細胞の間の分裂速度の差のために不規則な形になり、生長率が不安定で、簡単に褐変する傾向を示した。褐変及び凝集した樹皮切片体から誘導されたカルスは、最後は自身が分泌するフェノール化合物によって、生長が鈍くなって壊死した。即ち、６ヶ月後から樹皮から誘導されたカルスは、維持及び培養が難しかった。一方、図３Ａに示したように、イチョウの形成層由来幹細胞は、長期培養時細胞の生長率、生長パターン、凝集程度に変化なく安定的に維持され、大量培養が可能であった。
【００５１】
《実施例２：イチョウの中の形成層由来幹細胞の増殖及び特性観察》
前記実施例１から分離した形成層由来幹細胞を下記表２の液状培地が含まれていたフラスコに入れて、暗条件、２５±１℃、１００ｒｐｍの回転攪拌器（shaker）で培養した。継代培養周期は、２週間に固定することによって培養細胞が常に対数生長期状態で高い活力を維持することができるようにした。
【００５２】
【表２】
2012527889.tif 000004
【００５３】
細胞凝集の程度（biological microscope CX31、Ｏｌｙｍｐｕｓ，Ｊａｐａｎ）を見ると、本発明に係る幹細胞は、図４Ａに示したように、懸濁培養時多数の単細胞を含み、一部は小さいサイズの細胞集合体で存在することを確認できたが、対照群のイチョウの体細胞（樹皮組織から誘導されたカルス）の場合、図４Ｂに示したように凝集することを観察することができた。
【００５４】
一方、図５Ａに示したように、本発明に係る幹細胞は、多数の液包を有する形態学的特徴を観察することができた。このような特徴は、植物体内に存在する未分化細胞で圧力等のような原因によって現れる特徴であって、そのため本発明に係る幹細胞は未分化状態であることを確認することができた。一般のイチョウの体細胞（樹皮組織から誘導したカルス）の場合、図５Ｂに示したように、このような特徴を確認できなかった。これをさらに詳細に調べるため、液包をニュートラル・レッドで染めた結果、本発明に係る幹細胞は、図６Ａに示したように赤色の多数の小液包（vacuoles）を確認でき、一般のイチョウの体細胞（樹皮組織から誘導したカルス）の場合、図６Ｂに示したように、一つの大きい中心液包が存在することを確認することができた。
【００５５】
一方、本発明に係る幹細胞は、光学顕微鏡ＢＸ４１ＴＦで観察した結果、非常に活発に動くミトコンドリアを多数観察することができた。図７Ａは、本発明に係る幹細胞が多数のミトコンドリアを有することを示しており、矢印はミトコンドリアを示す。一方、一般のイチョウの体細胞（樹皮組織から誘導したカルス）の場合、図７Ｂに示したように、このような特徴を確認できなかった。
【００５６】
一方、培養期間別増殖速度を測定するために、３Ｌの内容積を有する空気浮揚式生物反応器（airlift bioreactor、サムソン科学，Ｋｏｒｅａ）を利用して、細胞培養物の生長速度を測定した結果、図８に示したように、１週間培養時２倍、２週間培養時３倍の生長率を確認することができた。この時、培地は表２の液状培地を用い、暗条件、２５±１℃に一定に維持した。また、これと同様の培地と条件で３Ｌの空気浮揚式生物反応器でイチョウ樹皮組織から誘導したカルスと本発明に係るイチョウの形成層由来幹細胞を培養して比較した。
【００５７】
【表３】
2012527889.tif 000005
【００５８】
その結果、表３及び図９に示したように、イチョウ樹皮組織から誘導したカルスの生長速度は、２．３倍で、ＧＩ（ｇｒｏｗｔｈ  ｉｎｄｅｘ  ＝  （ｍａｘｉｍｕｍ  ＤＣＷ  −  ｉｎｉｔｉａｌ  ＤＣＷ）／ｉｎｉｔｉａｌ  ＤＣＷ）は１．３に過ぎなかったが、本発明に係る形成層由来幹細胞は生長速度が３．１倍で、ＧＩが２．２７とイチョウ樹皮組織から誘導したカルスに比べて高いことを確認することができた。通常反応器の場合、反応器内における生長輪（growth ring）生成と培養中の植物培養体凝集性と細胞壁が固く、剪断に対する感受性によって細胞生存率（cell viability）が急激に減少するか、形成層由来幹細胞培養物は生物反応器内の生長輪面積を僅かに形成し、培養器に簡単な刺激を与えて、培地を動かすと、内壁のリング（ring）が簡単に解除された。また凝集が小さく、多くの液包を有し、剪断に対する感受性が低く、細胞生存率がほとんど減少しなかった。
【００５９】
【表４】
2012527889.tif 000006
【００６０】
また、表４及び図１０に示したように、３Ｌ空気浮揚式生物反応器、２０Ｌ空気浮揚式生物反応器及び２５０Ｌ空気浮揚式生物反応器で１０日間培養した結果、２５０Ｌのような大量培養時にも増殖することが確認でき、２５０Ｌの大量培養時、却ってリッター当り乾燥細胞量が増加したことが分かった。
【００６１】
即ち、本発明に係る形成層由来幹細胞は、大量培養のための生物反応器で剪断ストレスに対し低い感受性を有するため、生物反応器内における急速大量生長が可能であることを確認した。従って、本発明に係る形成層由来幹細胞がイチョウの脱分化されたカルス由来細胞株に比べて、剪断ストレスに対し低い感受性を有することが分かった。
【００６２】
一方、イチョウ樹皮組織から誘導したカルスと本発明に係るイチョウ形成層由来幹細胞に対し凍結保存を実施した。懸濁培養物として、培養６日から８日経過したものを用い、凍結保存剤は０．５Ｍグリセロール（ＤＵＣＨＥＦＡ，Ｔｈｅ  Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ）と０．５Ｍ  ＤＭＳＯ（ＤＵＣＨＥＦＡ，Ｔｈｅ  Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ）と１Ｍスクロース（ＤＵＣＨＥＦＡ，Ｔｈｅ  Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ）が含まれた培地で、５ｍＬクライオバイアル（Ｄｕｒａｎ，ＵＳＡ）に移した。凍結保存剤を処理される細胞接種量は、２００ｍｇ／ｍＬである。凍結保存剤で処理された懸濁細胞は、３０分間冷凍庫に維持した後、ディープフリーザーに３時間保管後、液体窒素に浸漬させて冷凍させた。
【００６３】
その後、解凍のために液体窒素に２０分以上維持された培養細胞を取り出して４０℃の恒温水槽に入れて１〜２分間解凍させた。細胞再生長のために、細胞懸濁液を無菌状態の漏斗及びろ過紙を用いてろ過した。ろ過された細胞は、ろ紙が含まれた固形生長培地上に置き、３０分間室温で安定化させた後、再度新鮮な固形生長培地に移された。
【００６４】
【表５】
2012527889.tif 000007
【００６５】
その結果、図１１及び表５に示したように、イチョウ樹皮組織から誘導したカルスは、本発明のイチョウ形成層由来幹細胞に比べて、非常に低い生存率を示すことが確認できた。
【００６６】
また、植物幹細胞を特徴づける特性としては、自己再生能力以外に分化能がある。そこで、イチョウ形成層由来幹細胞の導管要素分化を誘導するため、生長調節剤が含まれたＭＳ  ｍｅｄｉｕｍ条件で２５±１℃、暗条件で培養した結果、形成層由来幹細胞から導管要素が分化することが確認できた。
【００６７】
《実施例３：エリシターの処理及びイチョウの形成層由来幹細胞の抽出物製造》
３−１：エリシターの処理
実施例２のように１４日間懸濁培養した幹細胞を回収して、２種類の処理区に分けて実験を行った。即ち、（１）前記１４日間懸濁培養した細胞株（growth phase）、（２）前記１４日間懸濁培養した細胞株を滅菌水に原糖３〜５重量％（ｇ／Ｌ）及びジャスモン酸メチル１００μＭを添加した培地で１４日間暗培養した細胞株（elicitation phase）を利用した。
【００６８】
３−２：抽出物の製造
前記二つの細胞株を、各々培養液を取り除いた後、凍結乾燥した。凍結乾燥細胞株（dry）２ｇは、５０ｍＬの８０％エタノール中で、１５℃、４８時間攪拌しながら、溶解した。前記溶解後、３，０００ｒｐｍで２０分間遠心分離して得た上澄液を、凍結乾燥した。抽出粉末をＰＢＳに溶解することによって、前記二つの細胞株に対するエタノール抽出物を各々取得して用いた。
【００６９】
《実施例４：イチョウの形成層由来幹細胞抽出物の抗酸化効果確認》
本発明に係る幹細胞の抗酸化効果を確認するため、実施例３−２の各エタノール抽出物を、酸化剤であるＤＰＰＨで酸化させた後、実施例３−２の各エタノール抽出物のラジカル（radical）に対する消去能力を測定した。
【００７０】
即ち、９６−ウェルプレート（96-well plate）に実施例３−２の各エタノール抽出物２０μＬと１００μＭのＤＰＰＨ溶液１８０μＬをいれた後、常温で２０分反応させて、５２０ｎｍで吸光度を測定した。対照群としては、合成抗酸化剤として広く用いられているＢＨＴを用いて、ラジカル消去能は百分率（％）で示した。
【００７１】
その結果、図１２に示したように、エリシターを処理しない１４日間懸濁培養した細胞株から取得したエタノール抽出物（ＧＧ−Ｅ：growth phase ethanol extract）の場合、濃度が増加するほど抗酸化力が増加することが明らかになり、２．５ｍｇ／ｍＬでは合成抗酸化剤で広く用いられているＢＨＴと同様の抗酸化力を有することが明らかになり、優れた抗酸化力を有することが分かった。また、エリシターで原糖とジャスモン酸メチルを処理した細胞株から取得したエタノール抽出物（ＧＰ−Ｅ：elicitation phase ethanol extract）も濃度が増加するほど抗酸化力が増加し、２．５ｍｇ／ｍＬの濃度ではＢＨＴより高い抗酸化活性を示した。このような実験結果は、本発明に係る形成層由来幹細胞が優れた抗酸化効果があることを提示する。
【００７２】
《製造例１：薬学製剤製造例》
製剤例１−１：錠剤の製造
実施例３で製造された幹細胞抽出物１００ｍｇをトウモロコシ澱粉１００ｍｇ、乳糖１００ｍｇ及びステアリン酸マグネシウム２ｍｇを混合して、通常の錠剤製造方法により錠剤を製造した。
【００７３】
製剤例１−２：カプセル剤の製造
実施例３で製造された幹細胞抽出物５００ｍｇを軟質ゼラチンカプセルに充填して、カプセル剤を製造した。
【００７４】
製剤例１−３：シロップ剤の製造
実施例１で取得した幹細胞１ｇ、異性化糖１０ｇ、マンニトール５ｇ、適量の精製水の含有量で通常の液製剤の製造方法により１００ｍＬのシロップ剤を製造した。
【００７５】
製剤例１−４：注射剤の製造
実施例３で製造された幹細胞抽出物２００ｍｇをポリオキシエチレン水素化カストロオイルを含有する生理食塩水２００ｍｇに加熱溶解して、混合抽出物を０．１％の濃度で含有する注射剤を製造した。
【００７６】
《製造例２：機能性食品の製造》
製造例２−１：機能性飲物の製造
実施例１で取得した幹細胞２００ｍｇを９６ｍＬの水に溶解した後、補助剤としてビタミンＣ５００ｍｇ、矯味剤としてクエン酸、オリゴ糖を各々１ｇ加え、保存材として安息香酸ナトリウム０．０５ｇを加えた後、精製水を加えて、全量を１００ｍＬにして機能性飲物を製造した。
【００７７】
製造例２−２：機能性飲物の製造
実施例３で製造した幹細胞抽出物２００ｍｇを９６ｍＬの水に溶解した後、補助剤としてビタミンＣ５００ｍｇ、矯味剤としてクエン酸、オリゴ糖を各々１ｇ加え、保存材として安息香酸ナトリウム０．０５ｇを加えた後、精製水を加えて、全量を１００ｍＬにして、機能性飲物を製造した。
【産業上の利用可能性】
【００７８】
以上説明したように、本発明に係るイチョウ科の形成層由来幹細胞は脱分化過程を経ないで未分化状態に分離して、長期培養時にも細胞生長率と生長パターンが変化することなく安定的に維持され、大量培養が可能であるため、有用である。また、本発明に係るイチョウ科の形成層由来幹細胞は、酸化剤処理によって生じるラジカル消去能を測定した結果、既存の合成抗酸化剤と類似するか、さらに高い抗酸化効果を有することが明らかになり、優れた抗酸化用組成物として有用である。
【００７９】
以上、本発明の内容の特定の部分を詳述したが、当業界における通常の知識を持った者にとって、このような具体的な記述は単なる好適な実施態様に過ぎず、これにより本発明の範囲が制限されることはないという点は明らかである。よって、本発明の実質的な範囲は特許請求の範囲とこれらの等価物により定義されると言える。
【図１】
2012527889.tif 000008
【図２】
2012527889.tif 000009
【図３】
2012527889.tif 000010
【図４】
2012527889.tif 000011
【図５】
2012527889.tif 000012
【図６】
2012527889.tif 000013
【図７】
2012527889.tif 000014
【図８】
2012527889.tif 000015
【図９】
2012527889.tif 000016
【図１０】
2012527889.tif 000017
【図１１】
2012527889.tif 000018
【図１２】
2012527889.tif 000019
【国際調査報告】
2012527889.tif 000020
2012527889.tif 000021
2012527889.tif 000022
2012527889.tif 000023