(57)【要約】  【解決手段】  当該発明は、哺乳類細胞と、全体的に正電荷を帯び、高密度で細胞が存在している細胞培養液の中にある目的の生物学的分泌物とを、清澄化する方法に関連しており、その方法は、細胞培養液を陰イオン交換物質に接触させ、適切な培養時間を確保しそれにより細胞のペレットを形成し、結果として得られるペレットとその上清層を分離させる。当該発明はさらに、前述のステップを踏み、次に目的の生物学的分泌物を上清層から摘出することで、目的の生物学的分泌物を、細胞培養液が全体的に正電荷を帯びている目的の生物学的分泌物を分泌する哺乳類細胞を高密度に含む細胞培養液から回復させる方法にも関連する。  【選択図】      図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
哺乳類細胞と、細胞培養液中において全体的に正電荷を帯びている目的の生物学的分泌物とを含む細胞培養液を清澄化する方法であって、前記細胞は、少なくとも１５×１０６細胞／ｍｌの初期細胞密度であり、当該方法は、
ａ．前記細胞培養液を微粒子陰イオン交換物質と接触させる工程と、
ｂ．細胞ペレットと上清層を形成させるのに十分な時間培養させる工程と、
ｃ．得られた細胞ペレットを上清層から分離させる工程と
を有する方法。
【請求項２】
目的の生物学的分泌物を、細胞培養液中において全体的に正電荷を帯びている目的の生物学的分泌物を分泌する細胞を含む細胞培養液から、目的の生物学的分泌物を回収する方法であって、前記細胞は、細胞培養中少なくとも１５×１０６細胞／ｍｌの初期細胞密度がであり、当該方法は、
ａ．前記細胞培養液を微粒子陰イオン交換物質と接触させる工程と、
ｂ．細胞ペレットと上清層を形成するのに十分な時間培養させる工程と、
ｃ．得られた細胞ペレットを前記上清層から分離する工程と、
ｄ．目的の生物学的分泌物をその上清層から抽出する工程と
を有する方法。
【請求項３】
請求項２記載の方法において、前記得られた細胞ペレットは、さらに、
ｅ．前期得られた細胞ペレットを再懸濁する工程と、
ｆ．細胞ペレットと上清層を形成するのに十分な時間培養させる工程と、
ｇ．得られたペレットを前記上清層から分離させる工程と、
ｈ．目的の生物学的分泌物を前記上清層から抽出する工程と
によって処理されるものである。
【請求項４】
請求項３記載の方法において、前記工程ｅ〜ｈは、繰り返されるものである。
【請求項５】
請求項３又は４記載の方法において、前記各上清層は、目的の生物学的分泌物が抽出される前に混合されるものである。
【請求項６】
請求項２〜５のいずれかに記載の方法において、前記目的の生物学的分泌物は、陽イオン交換クロマトグラフィーにより抽出されるものである。
【請求項７】
請求項３又は４記載の方法において、前記得られた細胞ペレットは、塩類水溶液に再懸濁されるものである。
【請求項８】
請求項６記載の方法において、前記塩類水溶液はＰＢＳである。
【請求項９】
請求項１〜８のいずれかに記載の方法において、前記初期細胞密度は１３０×１０６細胞／ｍｌ未満である。
【請求項１０】
請求項１〜８のいずれかに記載の方法において、前記所期細胞密度は１００×１０６細胞／ｍｌより大きいものであり、前記工程"ａ"の前の段階において、前記細胞は８０×１０６未満の密度に希釈されるものである。
【請求項１１】
上述のいずれかの請求項に記載の方法において、前記目的の生物学的分泌物は免疫グロブリンもしくはその一部である。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本願発明は細胞培養液の清澄化方法および目的の生物学的分泌物を目的の生物学的分泌物を産生する細胞を含む細胞培養液から回復する方法に関連する。
【背景技術】
【０００２】
薬剤、特に単クローン抗体などの生物学的物質の発酵的生成は、複雑な細胞培養液をもたらすものであり、その培養液から生物学的物質が、多段階ステップにより分離され精製される。
【０００３】
最初のステップとして、細胞や細胞片などの個体の物質は細胞培養液の液体から分離され、これを清澄化と称する。多くの場合、生物学的物質は細胞外に存在し、そのため細胞培養液中に存在することになる。
【０００４】
最新の清澄化方法の例には、遠心分離、濾過（例えば精密濾過、深層濾過、および絶対的細孔径膜濾過）、および膨張層クロマトグラフィーが含まれる。これらの清澄化方法を強化するために、軟凝集が、特に濾過と組み合わせて用いられることもできる。
【０００５】
この目的のための軟凝集剤として知られているものは単純な電解質から合成高分子電解質（例えばＤＥＡＥデキストラン、アクリル質ポリマー、およびポリエチレンアミン）または無機質（例えば珪藻土または真珠岩）までにわたる。この目的のための最近の進歩はキトサンの使用である。
【０００６】
軟凝集剤を多用することによる不都合な点には、とりわけ、それらが目的の生物学的分泌物に結合する可能性があること、目的の生物学的分泌物を不活性化させる可能性があること、軟凝集プロセスに時間がかかる可能性があること、および／または医学上必要とされる高品質にするためには軟凝集剤が得難いまたは高価で準備できない可能性があることが挙げられる。加えて、凝集剤は最終生成分子から取り除かれる必要があり、そのプロセスは除去を実証するため、しばしば高価で時間を費やす分析試験を必要とする。
【０００７】
当該発明に従った方法はこれらの不都合な点は一つもない。
【０００８】
さらに、これらの現存する方法は比較的低い細胞密度のみでしか清澄化を成立されることが示されていなかった。加えて、これらの方法のほとんどは哺乳類細胞、特に目的の生物学的分泌物を生み出す哺乳類細胞、への成功した適用が示されていなかった。
【発明の概要】
【課題を解決するための手段】
【０００９】
当該発明の目的はコスト効率がよく、生物反応器から採取されかつ目的の生物学的分泌物とともに哺乳類細胞を含む細胞培養液を清澄化する方法を提供することである。
【００１０】
当該発明のさらなる目的は高密度に哺乳類細胞を含む細胞培養液の清澄化の方法を提供することである。ある特定の実施形態においては、当該発明は、細胞の初期密度が最低でも１５×１０６細胞／ｍｌであり、細胞培養液中に全体的に正電荷を帯びている目的の生物学的分泌物とともに哺乳類細胞と培地を含む細胞培養液を下記のステップによって行う清澄化の方法に関連し、この方法は、
ａ．細胞培養液を微粒子陰イオン交換物質と接触させる工程と、
ｂ．細胞のペレットと上清層を形成させるのに十分な時間培養させる工程と、
ｃ．得られたペレットを前記上清層から分離させる工程と
を有するものである。
【００１１】
米国特許出願第２００３／１７０８１０号では、未加工の細胞溶解物を溶解物と陰イオン交換樹脂とバッチの中で混合させ、次に不溶性物質（樹脂とそれに結合するものと細胞と細胞片を含む）を溶性物質から濾過、遠心分離、または重力分離により分離することで清澄される方法が説明されている。この米国特許出願による公開とは違って、当該発明によると、陰イオン交換樹脂と混合される前に細胞は溶解しておらず、清澄化は特に高い細胞密度にて行われ、細胞培養液中の目的の生物学的分泌物は全体的に正の電荷を帯びている。当該発明により高い細胞密度の細胞培養液で清澄化が達成されることは驚くべきことと考えられる。
【００１２】
当該発明の中で、"細胞培養液"とは無傷な哺乳類細胞を植え付けた細胞培養のことを意味し、目的の生物学的分泌物とともに以下に定義する培地を含む可能性がある。当該発明のプロセスの中で、特に細胞密度が極めて高いときに、生物反応器からの出発物質を好ましい細胞密度に希釈することも望ましい可能性がある。当該発明の目的のためには、そのように希釈された物質でも未だに細胞培養液の言葉に含まれる。
【００１３】
"生物学的分泌物"とはここでは哺乳類細胞による生成により大部分が（能動的または受動的に）培地に放出される生物学的物質を意味する。
【００１４】
"目的の"とはここでは生物学的物質が意図的に哺乳類細胞を使って生成されていることを意味する。
【００１５】
目的の生物学的分泌物が"全体的に正電荷を帯びている"とはここでは、正および負に電荷を帯びたイオノゲングループが細胞培養液中の溶媒の条件下で生物学的物質に静電気を与えることで結果的に全体で正電荷を帯びること意味する。生物学的物質の全体的な電荷は酸性および塩基性の残基のｐＫａと溶液のｐＨ−この場合は細胞培養液のｐＨ−に基づく。生物学的物質が細胞培養液で全体に正電荷を帯びるためには、物質のｐＩ（全体の電荷がゼロになるところのｐＨ）が細胞培養液のｐＨより高くなければならない。
【００１６】
"培地"とはここでは細胞の細胞外の環境を意味し、それは細胞の増殖や生成を補助する栄養分や他の構成物質を含み、また老廃物、宿主細胞由来タンパク質（ＨＣＰ）、および溶解した細胞の物質を含む可能性がある。培地の構成は細胞培養の経過中に時間とともに変化する可能性があり、また清澄化の段階で元来の構成物を一つまたはそれ以上枯渇させてしまう可能性がある。
【００１７】
"接触させる"とはここでは陰イオン交換物質を細胞培養液および細胞の沈殿に（例えば重力下または遠心分離にて）導入することを意味する。
【００１８】
"陰イオン交換物質"とはここでは微粒の弱いまたは強い陰イオン交換クロマトグラフィー媒体のことを意味する。陰イオン交換物質は一般的にはキャリアを含み、それは有機物、無機物、または有機物と無機物の混合であることができる。適切な有機物は、アガロースを基礎とした培地やメタクリルである。適切な無機物はケイ土、セラミック、および金属である。粒子は好ましくは１５μｍと１５０μｍの間の大きさである。より好ましくは１５μｍと７０μｍの間の大きさである。粒子は細胞培養液からの細胞の堆積を比較的早く達成するのに適した密度であることができるが、あまりに高密度であると堆積が達成させないことが観察されているので粒子は高密度すぎてはいけない。
【００１９】
"適切な培養時間"とはここでは細胞の沈殿がはっきりとした細胞ペレット量と上清層を生み出す時間を意味する。
【００２０】
"分離させる"とはここでは、静注、上清吸出し、または例えば底部の吸排気口を通じて管からペレットの水を切るなどの、上清を細胞ペレットから取り除くいずれか方法を意味する。
【００２１】
"上清層"とはここでは沈殿の結果上部を覆う液体を意味する。上清層は、最初の密度よりは著しく低い密度であろうとも、未だ細胞を含む可能性がある（一般的には含む）
当該発明のプロセスの最初の細胞密度は最低でも１５×１０６細胞／ｍｌであり、より好ましくは最低でも８０×１０６細胞／ｍｌである。実用的な上限としては、当該発明によるプロセスは細胞密度が１７５×１０６細胞／ｍｌ、より好ましくは１３０×１０６細胞／ｍｌまで実施することができる。
【００２２】
細胞密度は、例えばＶｉ−ＣＥＬＬ（商標）（トリパンブルー排除法）といった細胞カウンターによって計測できるが、他の適切な方法には血球計算、血中血球容積測定、またはコールターカウンター（電気検出ゾーン法による）を含む。
【００２３】
最初の細胞密度が１３０×１０６細胞／ｍｌの場合、まず細胞培養液を希釈することが望ましい。実行する上で、最初の細胞密度が１００×１０６細胞／ｍｌより大きい細胞培養液の場合はまず希釈することが好ましい。希釈は好ましくは細胞密度が８０×１０６細胞／ｍｌを超えないようにすることができる。細胞培養液は哺乳類細胞の溶解を引き起こさないように細胞の環境を大きく変えない溶液、例えばＰＢＳなどの等張液で行うことができる。
【００２４】
さらなる実施形態によると、当該発明は、下記のように目的の生物学的分泌物を、細胞培養液が全体的に正電荷を帯びている目的の生物学的分泌物を分泌する、最低でも最初の密度が１５×１０６細胞／ｍｌで哺乳類細胞を含む細胞培養液から回復させる方法にも関連し、この方法は、
ａ．細胞培養液を微粒の陰イオン交換物質と接触させる工程と、
ｂ．細胞のペレットと上清層を形成させるのに十分な時間培養させる工程と、
ｃ．得られたペレットをその上清層から分離させる工程と、
ｄ．目的の生物学的分泌物をその上清層から抽出する工程と
を有するものである。
【００２５】
"回復"とはここでは目的の物質を原則的に副産物や不要物なしに獲得することを意味する。
【００２６】
当該発明はさらに、目的の生物学的分泌物を、上述のように目的の生物学的分泌物を分泌する細胞培養液から回復させる方法にも関連し、その細胞培養液は最低でも最初の密度が１５×１０６細胞／ｍｌで哺乳類細胞を含み、結果として得られるペレットは
ｅ．得られるペレットを再懸濁する工程と、
ｆ，適切な培養時間を確保しそれにより細胞のペレットと上清層を形成し、
ｇ．得られるペレットを前記上清層から分離させる工程と、
ｈ．目的の生物学的分泌物を前記上清層から抽出する工程と
により処理される。
【００２７】
当該発明のさらなる実施形態では、上述のプロセスのステップｅ．からｈ．にかけては一回以上繰り返される。
【００２８】
当該発明のさらなる好ましい方法では、結果として得られるペレットは、哺乳類細胞の溶解を引き起こさないように細胞の環境を大きく変えない溶液、例えば塩水溶液（好ましくは等張液）、さらに好ましくはＰＢＳ、に再び懸濁される。
【００２９】
好ましくは上清層は回収され、目的の生物学的分泌物は集められた上清から摘出される。
【００３０】
哺乳類細胞の例にはＣＨＯ（チャイニーズハムスター卵巣）細胞、ハイブリドーマ、ＢＨＫ（ベイビーハムスター腎臓）細胞、骨髄腫細胞、例えばＨＥＫ−２９３細胞などのヒト細胞、ヒトリンパ芽球様細胞、Ｅ１不死化ＨＥＲ細胞、例えばＮＳ０細胞などのマウス細胞が含まれる。さらに好ましくは、Ｅ１不死化ＨＥＲ細胞、最も好ましくはＰＥＲ．Ｃ６細胞が用いられる。
【００３１】
ある好ましい実施形態では、当該発明のプロセスにある細胞はＥ１不死化ＨＥＲ細胞、最も好ましくはＰＥＲ．Ｃ６細胞（ここでその内容が参考として組み込まれている米国特許登録第５９９４１２８号参照）。ＰＥＲ．Ｃ６細胞はＥＣＡＣＣ  Ｎｏ．９６０２２９４０のもとに預け入れられている細胞に例示されている（ここでその内容が参考として組み込まれている文献、例えば米国特許登録第５９９４１２８号、ＥＰ０８３３９３４参照）
清澄化のための細胞培養液は哺乳類細胞密度を最低でも１５×１０６細胞／ｍｌとなるのに適したいかなる細胞培養方法をもちいても得ることができる。この点において適した方法は、例えば国際公開第ＷＯ２００５０９５５７８号パンフレット、国際公開第ＷＯ２００４０９９３９６号パンフレット、および国際公開第ＷＯ２００８００６４９４号パンフレットなどに記述されている。その内容は参考として組み込まれている。
【００３２】
生物学的物質は、（例えば（組換え）遺伝子をコードして発現させるなどして）当該発明の細胞にて生成されうるが、ウィルスまたは（組換え）タンパク質、特に受容体、酵素、融合タンパク質、例えば血液凝固カスケード中の血液タンパク質、赤血球生成促進因子などの多機能タンパク質、ワクチン生産などに使用されるウィルスやバクテリアのタンパク質、ＩｇＧやＩｇＭといった免疫グロブリンとそれらに類似するものが例として挙げられる。好ましくはタンパク質、さらに好ましくは免疫グロブリンまたはその一部が細胞により生成される。好ましくはタンパク質やワクチンといった細胞により生成される生物学的物質は調合薬の製剤において活性成分として使用される。当該発明の中では、'生成物質'と'生物学的物質'は交換可能である。
【００３３】
目的の生物学的分泌物を上清層から摘出する適切な方法には例えば濾過（例えば深層濾過、精密濾過、限外濾過、および血液透析濾過）、クロマトグラフィー（例えばサイズ排除クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、陽イオン交換クロマトグラフィー、疎水性相互作用クロマトグラフィー、および固定化金属クロマトグラフィー）、水性二層摘出、沈殿、または遠心分離、がある。有利なことには、陽イオン交換クロマトグラフィーにより目的の生物学的分泌物は非常に効率的に摘出される。免疫グロブリンが目的の生物学的分泌物の場合、アフィニティークロマトグラフィー、特にプロテインＡクロマトグラフィー、と陽イオン交換クロマトグラフィーが特に適切な分離方法である。
【図面の簡単な説明】
【００３４】
【図１】図１は、Ｓｉ−ＰＥＩによる最初の沈殿による生成物質の回復とそれに続くＰＢＳによる洗浄のステップを示すものである。
【図２ａ】図（ａ）は、種々の陰イオン交換物質の時間の関数としての上清細胞密度を示すものである。
【図２ｂ】（ｂ）は、種々の陰イオン交換物質の時間の関数としての上清の量を示すものである。
【発明を実施するための形態】
【００３５】
記号
Ｘｔ＝全体細胞密度細胞／ｍｌ
Ｓｉ−ＰＥＩ＝Ｂａｋｅｒｂｏｎｄ  Ｗｉｄｅ−Ｐｏｒｅ  ＰＥＩ（ＰｏｌｙＥｔｈｙｌｅｎｅＩｍｉｎ）Ｐｒｅｐ  ＬＣ  Ｐａｃｋｉｎｇ移植シリカビーズ（ＪＴ  Ｂａｋｅｒ）
ＤＥＡＥ  Ｈｙｐｅｒ  Ｄ＝ジエチルアミノエチル移植セラミックビーズ（Ｐａｌｌ）
Ｓｔｒｅａｍｌｉｎｅ  ＤＥＡＥ＝ジエチルアミノエチル移植アガロースビーズ（ＧＥ  Ｈｅａｌｔｈｃａｒｅ）
ＰｒＡ  ＨＰＬＣ＝分析プロテインＡ高圧液体クロマトグラフィー
ＰＢＳ＝ＰＥＲ．Ｃ６リン酸緩衝生理食塩水
下記の清澄化実験はＰＥＲ．Ｃ６（登録商標）細胞を種々の細胞密度で用いて行われ、ＷＯ２００８００６４９４で説明する手順に従って準備された。ＰＥＲ．Ｃ６（登録商標）細胞は抗体を生成した。上清層の抗体の濃度はＰｒＡ  ＨＰＬＣを用いて計測された。濃度は必要な場合には、すなわち細胞密度が極めて高い場合に細胞が作業中の量に貢献する場合には、生物量に基づき訂正された。
【実施例１】
【００３６】
低細胞密度での清澄化
異なる量のＳｉ−ＰＥＩが培養細胞１０ｍｌを含む個々のバイアルに加えた。Ｘｔ＝６３．５×１０６細胞／ｍｌであった。細胞は１０分間沈殿させた。５％（量）のＳｉ−ＰＥＩのみが９７％の細胞を沈殿させるのに必要であった。１０％（量）のＳｉ−ＰＥＩを加えると９９％の細胞が沈殿した。生成物質の回復は１００％であった。
【００３７】
Ｓｉ−ＰＥＩを加えることで細胞が沈殿する時間を大幅に減少させた。さらに、Ｓｉ−ＰＥＩを加えることでコントロール対照群（Ｓｉ−ＰＥＩが加えられていないもの）と比べペレットがよりコンパクトになった。
【実施例２】
【００３８】
中間の細胞密度での清澄化
異なる量のＳｉ−ＰＥＩが培養細胞５ｍｌを含む個々のバイアルに加えた。Ｘｔ＝６３．５×１０６細胞／ｍｌであった。細胞は３０分間沈殿させた。５％（量）のＳｉ−ＰＥＩのみが８７％の細胞を沈殿させるのに必要とされた。１０％（量）のＳｉ−ＰＥＩを加えると８９％の細胞が沈殿した。２０％（量）のＳｉ−ＰＥＩを加えると８５％の細胞が沈殿した。各々の場合において、得られた細胞密度は１０×１０６細胞／ｍｌより低く、深層濾過への供給に適した密度であった。生成物質の回復は９７％であった。
【００３９】
Ｓｉ−ＰＥＩを加えることで細胞が沈殿する時間を大幅に減少させた。さらに、Ｓｉ−ＰＥＩを加えることでコントロール対照群（Ｓｉ−ＰＥＩが加えられていないもの）と比べペレットがよりコンパクトになった。
【実施例３】
【００４０】
高細胞密度での清澄化
１０％（量）のＳｉ−ＰＥＩが培養細胞３４５ｍｌを含む個々のバイアルに加えた。Ｘｔ＝１２３×１０６細胞／ｍｌであった。高い細胞密度により、細胞は２時間の沈殿時間を与えた。２時間後、得られた上清の細胞密度は１３．６×１０６細胞／ｍｌであった。ペレットの量は全体の量５３％（Ｓｉ−ＰＥＩが加えられていないコントロール対照群では９３％）であった。上清を静注し、ペレットは、等張のＰＢＳで二度洗浄し、個々洗浄ののち１時間沈殿した。生成物質の回復は９３％であった。全体のプロセスの時間は４時間であった。上清を集めた後、最終プロセスの量は６００ｍｌで細胞密度は９．９×１０６細胞／ｍｌであった。
【実施例４】
【００４１】
繰り返し洗浄により生成物の回復を最大化
１０％（量）のＳｉ−ＰＥＩが培養細胞３４５ｍｌを含む個々のバイアルに加えた。Ｘｔ＝７８×１０６細胞／ｍｌもしくは１２０×１０６細胞／ｍｌであった。おおよそ２００ｍｌの上清層が最初の沈殿の後に静注した。この量は同じ量のＰＢＳで置き換え、細胞は６０分沈殿させた。再びおおよそ２００ｍｌの上清層を静注し、同じ量のＰＢＳで置き換え、続いて６０分沈殿させた。そして再び２００ｍｌの上清層が静注した。
【００４２】
数回の洗浄ステップによる生成物質の回復は図１にまとめた。２回の洗浄後、上清から生成物質を回収することにより、生成物質の回復は非常に大幅な改善を示した。
【実施例５】
【００４３】
高細胞密度で種々の陰イオン交換物質を用いた清澄化
１０％（量）の陰イオン交換物質、Ｓｉ−ＰＥＩ、ＤＥＡＥ  ＨｙｐｅｒＤ、またはＳｔｒｅａｍｌｉｎｅ  ＤＥＡＥが最初の細胞密度Ｘｔ＝１２３×１０６細胞／ｍｌである培養細胞２０ｍｌのサンプルに加えた。
【００４４】
細胞は２時間沈殿させた。
【００４５】
図２ａは時間の関数としての、個々の陰イオン交換物質および陰イオン交換物質が加えられていないコントロール対照群の、上清層中の細胞密度とを示している。
【００４６】
図２ｂは時間の関数としての上清層中の量を示している。陰イオン交換物質が加えられることでペレットはよりコンパクト化、つまり上清層の量が増加した。
【実施例６】
【００４７】
極めて高細胞密度での清澄化
清澄化は集められたＸｔ＝１５０×１０６細胞／ｍｌの細胞で試みられた。この細胞密度では希釈しないと非常に少ない沈殿しか観察されなかった。細胞培養を１：１にＰＢＳで希釈することで沈殿が促進された。この目的を達成するために、１０ｍｌの培地は最終量２０ｍｌになるように希釈され１０％（全体量の）のＳｉ−ＰＥＩが加えられた（２ｍｌ）。生成物質の回復は２回の洗浄の後で９２．６％であった。ＨＣＰの濃度は２８％減少した。全体のプロセスの時間は４時間であった。上清を集めた後、最終プロセスでの量は４８ｍｌ（４．８倍の増加）で細胞密度は６．１×１０６細胞／ｍｌであった。
【実施例７】
【００４８】
目的の生物学的物質の浄化
最初の細胞密度Ｘｔ＝１７５×１０６細胞／ｍｌである培養細胞は〜７５×１０６細胞／ｍｌになるようにＰＢＳで希釈された（最初の量は１．７Ｌ）。希釈後Ｓｉ−ＰＥＩクロマトグラフィー培地が培養物に加えられた（１Ｌの希釈された培養物につき０．１ＬのＳｉ−ＰＥＩ）。細胞は〜６０分沈殿させられた。上清を含む生成物質は静注され、沈殿した細胞はＰＢＳで２度洗浄された。最初の上清は、生成物質の回復を最大化するため（〜９５％）２回の洗浄と共に集められた。回収したものを合わせたものは５×１０６より少ない細胞密度でＨＣＰ量は５９％減少した。
【００４９】
Ｓｉ−ＰＥＩ沈殿の後回復した生成物質はさらに深層濾過により浄化される。深層濾過は（典型的には１０または５μｍの孔径の）さらに細胞量を減少させるために使われる第一フィルター、続いてさらに小さい分子を取り除き、清澄化された培養物を、典型的には０．８／０．２μｍの勾配フィルターで行う除菌濾過に向けて準備をする（典型的には３または１μｍの孔径で）第二フィルターからなる。一連の深層濾過は、Ｄ０ＨＣなどの、培地を含むミリポアミリスタックプラスＨＣフィルター（第一）、続いてＸ０ＨＣ（第二）、または１０Ｍ０２などの、培地を含むＣＵＮＯ  ＺｅｔａＰｌｕｓフィルター（第一）、続いて６０ＺＡ０５Ａ（第２）で行うことができる。どちらの場合も清澄化した培養物はさらに０．８／０．２μｍのフィルター（Ｓｕｐｏｒ，Ｐａｌｌ）で濾過される。
【００５０】
加えて、８５％のＨＣＰの減少が深層濾過の第二フィルターを通じて観察された。第二フィルターを通じたＨＣＰの減少はこれらのフィルターが電荷を帯びているという性質に起因する可能性があり、それはすでに文献に報告されている（Ｙａｇｚａｗ  Ｙ，Ｐｉｐｅｒ  Ｒ，Ｔｒａｎ  Ｍ，Ｓｈｕｋｌａ  ＡＡ．２００６．Ｅｘｐｌｏｉｔａｔｉｏｎ  ｏｆ  Ａｄｓｏｒｐｔｉｖｅ  Ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ  ｏｆ  Ｄｅｐｔｈ  Ｆｉｌｔｅｒｓ  ｆｏｒ  Ｈｏｓｔ  Ｃｅｌｌ  Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ｒｅｍｏｖａｌ  Ｄｕｒｉｎｇ  Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ  Ａｎｔｉｂｏｄｙ  Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  Ｐｒｏｇｒｅｓｓ  ２２（１）：２８８−２９６）。
【００５１】
清澄化された物質はさらに例えばＧｉｇａＣａｐＳ（Ｔｏｓｏｈ）などの陽イオン交換クロマトグラフィーにより浄化される。単クローン抗体（生成物質）は樹脂の上に>９５ｇ／Ｌクロマトグラフィー培地の容量で固定化される。抗体を固定化する条件はやや酸性（ｐＨ〜５．３）で伝導性は〜４．５ｍＳ／ｃｍである。固定化した後、抗体は平衡バッファーにて洗浄され、最後は１００ｍＭの塩化ナトリウムを含むバッファーステップにて溶出される。追加的なＨＣＰ量の減少（７８％）がこのステップで得られる。
【００５２】
溶出された抗体はさらにクロマトグラフィーと濾過技術の組み合せにより求められる純度明細が満たされるまで純化することができる。
【００５３】
ＣＥＸによる宿主細胞由来タンパク質の細胞培養物からの全体的な減少は下にまとめられている。
【００５４】
【表１】
2012505863.tif 000003
【図１】
2012505863.tif 000004
【図２ａ】
2012505863.tif 000005
【図２ｂ】
2012505863.tif 000006
【国際調査報告】
2012505863.tif 000007
2012505863.tif 000008