【手続補正書】
【提出日】令和2年3月25日(2020.3.25)
【手続補正１】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００３８
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００３８】
従って、結論として、添加物としてエチレンジアミンテトラキス（エトキシレート−ブロック−プロポキシレート）テトロール（テトロニック９０Ｒ４）を含むこと（又はそれを表面上にあらかじめコーティングすること）は、そうでなければ数秒間を超えて移動させることが不可能である、高いタンパク質含有量の溶液（例えば、全血）の操作を可能にするという点で、非常に有利であることが示された。この界面活性剤の使用は、全てのタンパク質を含む溶液に対しＤＭＦデバイス寿命を延ばすよう作用し、この界面活性剤を使用して他のシステム（例えば、チャネル及び／又は２−フェイズマイクロ流体）でのバイオファウリングを減らし得ることが予期される。
参考文献
１．Ａｎｄｅｒｓｏｎ，Ｎ．Ｌ．  ＆  Ａｎｄｅｒｓｏｎ，  Ｎ．  Ｇ．  Ｔｈｅ  ｈｕｍａｎ  ｐｌａｓｍａ  ｐｒｏｔｅｏｍｅ：  ｈｉｓｔｏｒｙ，  ｃｈａｒａｃｔｅｒ，  ａｎｄ  ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃ  ｐｒｏｓｐｅｃｔｓ．  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ＆  ｃｅｌｌｕｌａｒ  ｐｒｏｔｅｏｍｉｃｓ  ：  ＭＣＰ  １，  ８４５−８６７  （２００２）．
２．Ｂｌａｓｚｙｋｏｗｓｋｉ，  Ｃ．，  Ｓｈｅｉｋｈ，  Ｓ．  ＆  Ｔｈｏｍｐｓｏｎ，  Ｍ．  Ｓｕｒｆａｃｅ  ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ｔｏ  ｍｉｎｉｍｉｚｅ  ｆｏｕｌｉｎｇ  ｆｒｏｍ  ｂｌｏｏｄ−ｂａｓｅｄ  ｆｌｕｉｄｓ．  Ｃｈｅｍ．  Ｓｏｃ．  Ｒｅｖ．  ４１，  ５５９９−５６１２  （２０１２）．
３．Ｊｏｒｄａｎ  ，  Ｃ．  Ｄ．，  Ｆｌｏｏｄ  ，  Ｊ．  Ｇ．，  Ｌａｐｏｓａｔａ  ，  Ｍ．  ＆  Ｌｅｗａｎｄｒｏｗｓｋｉ  ，  Ｋ．  Ｂ．  Ｎｏｒｍａｌ  Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｖａｌｕｅｓ．  Ｎ．  Ｅｎｇｌ．  Ｊ．  Ｍｅｄ．  ３２７，  ７１８−７２４  （１９９２）．
４．Ｌｅｓｌｉｅ，  Ｄ．  Ｃ．  ｅｔ  ａｌ．  Ａ  ｂｉｏｉｎｓｐｉｒｅｄ  ｏｍｎｉｐｈｏｂｉｃ  ｓｕｒｆａｃｅ  ｃｏａｔｉｎｇ  ｏｎ  ｍｅｄｉｃａｌ  ｄｅｖｉｃｅｓ  ｐｒｅｖｅｎｔｓ  ｔｈｒｏｍｂｏｓｉｓ  ａｎｄ  ｂｉｏｆｏｕｌｉｎｇ．  Ｎａｔ  Ｂｉｏｔｅｃｈ  ３２，  １１３４−１１４０  （２０１４）．
５．Ｎｇ，  Ａ．  Ｈ．  Ｃ．，  Ｕｄｄａｙａｓａｎｋａｒ，  Ｕ．  ＆  Ｗｈｅｅｌｅｒ，  Ａ．  Ｒ．  Ｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙｓ  ｉｎ  ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃ  ｓｙｓｔｅｍｓ．  Ａｎａｌ．  Ｂｉｏａｎａｌ．  Ｃｈｅｍ．  ３９７，  ９９１−１００７  （２０１０）．
６．Ｎｇ，  Ａ．  Ｈ．  Ｃ．  ｅｔ  ａｌ．  Ｄｉｇｉｔａｌ  Ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃ  Ｐｌａｔｆｏｒｍ  ｆｏｒ  ｔｈｅ  Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｒｕｂｅｌｌａ  Ｉｎｆｅｃｔｉｏｎ  ａｎｄ  Ｉｍｍｕｎｉｔｙ：  Ａ  Ｐｒｏｏｆ  ｏｆ  Ｃｏｎｃｅｐｔ．  Ｃｌｉｎ．  Ｃｈｅｍ．  （２０１４）．
７．Ｓｉｓｔａ，  Ｒ．  Ｓ．  ｅｔ  ａｌ．  Ｄｉｇｉｔａｌ  Ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃ  Ｐｌａｔｆｏｒｍ  ｆｏｒ  Ｍｕｌｔｉｐｌｅｘｉｎｇ  Ｅｎｚｙｍｅ  Ａｓｓａｙｓ：  Ｉｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ  ｆｏｒ  Ｌｙｓｏｓｏｍａｌ  Ｓｔｏｒａｇｅ  Ｄｉｓｅａｓｅ  Ｓｃｒｅｅｎｉｎｇ  ｉｎ  Ｎｅｗｂｏｒｎｓ．  Ｃｌｉｎ．  Ｃｈｅｍ．  ５７，  １４４４−１４５１  （２０１１）．
８．Ｍｏｕｓａ，  Ｎ．  Ａ．  ｅｔ  ａｌ．  Ｄｒｏｐｌｅｔ−Ｓｃａｌｅ  Ｅｓｔｒｏｇｅｎ  Ａｓｓａｙｓ  ｉｎ  Ｂｒｅａｓｔ  Ｔｉｓｓｕｅ，  Ｂｌｏｏｄ，  ａｎｄ  Ｓｅｒｕｍ．  Ｓｃｉ．  Ｔｒａｎｓｌ．  Ｍｅｄ．  １，  １ｒａ２−１ｒａ２  （２００９）．
９．Ｎｇ，  Ａ．  Ｈ．  Ｃ．，  Ｌｉ，  Ｂ．  Ｂ．，  Ｃｈａｍｂｅｒｌａｉｎ，  Ｍ．  Ｄ．  ＆  Ｗｈｅｅｌｅｒ，  Ａ．  Ｒ．  Ｄｉｇｉｔａｌ  Ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃ  Ｃｅｌｌ  Ｃｕｌｔｕｒｅ．  Ａｎｎｕ．  Ｒｅｖ．  Ｂｉｏｍｅｄ．  Ｅｎｇ．  １７，  ９１−１１２  （２０１５）．
１０．Ｌｕｋ，  Ｖ．  Ｎ．，  Ｍｏ，  Ｇ．  Ｃ．  ＆  Ｗｈｅｅｌｅｒ，  Ａ．  Ｒ．  Ｐｌｕｒｏｎｉｃ  ａｄｄｉｔｉｖｅｓ：  Ａ  ｓｏｌｕｔｉｏｎ  ｔｏ  ｓｔｉｃｋｙ  ｐｒｏｂｌｅｍｓ  ｉｎ  ｄｉｇｉｔａｌ  ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃｓ．  Ｌａｎｇｍｕｉｒ  ２４，  ６３８２−６３８９  （２００８）．
１１．Ｙｏｏｎ，  Ｊ．  Ｙ．  ＆  Ｇａｒｒｅｌｌ，  Ｒ．  Ｌ．  Ｐｒｅｖｅｎｔｉｎｇ  ｂｉｏｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ａｄｓｏｒｐｔｉｏｎ  ｉｎ  ｅｌｅｃｔｒｏｗｅｔｔｉｎｇ−ｂａｓｅｄ  ｂｉｏｆｌｕｉｄｉｃ  ｃｈｉｐｓ．  Ａｎａｌ．  Ｃｈｅｍ．  ７５，  ５０９７−５１０２  （２００３）．
１２．Ｓｒｉｎｉｖａｓａｎ，  Ｖ．，  Ｐａｍｕｌａ，  Ｖ．  Ｋ．  ＆  Ｆａｉｒ，  Ｒ．  Ｂ．  Ａｎ  ｉｎｔｅｇｒａｔｅｄ  ｄｉｇｉｔａｌ  ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃ  ｌａｂ−ｏｎ−ａ−ｃｈｉｐ  ｆｏｒ  ｃｌｉｎｉｃａｌ  ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃｓ  ｏｎ  ｈｕｍａｎ  ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ  ｆｌｕｉｄｓ．  Ｌａｂ．  Ｃｈｉｐ  ４，  ３１０−３１５  （２００４）．
１３．Ｂｒａｓｓａｒｄ，  Ｄ．，  Ｍａｌｉｃ，  Ｌ．，  Ｎｏｒｍａｎｄｉｎ，  Ｆ．，  Ｔａｂｒｉｚｉａｎ，  Ｍ．  ＆  Ｖｅｒｅｓ，  Ｔ．  Ｗａｔｅｒ−ｏｉｌ  ｃｏｒｅ−ｓｈｅｌｌ  ｄｒｏｐｌｅｔｓ  ｆｏｒ  ｅｌｅｃｔｒｏｗｅｔｔｉｎｇ−ｂａｓｅｄ  ｄｉｇｉｔａｌ  ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃ  ｄｅｖｉｃｅｓ．  Ｌａｂ  ｏｎ  ａ  Ｃｈｉｐ  −  Ｍｉｎｉａｔｕｒｉｓａｔｉｏｎ  ｆｏｒ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ  ａｎｄ  Ｂｉｏｌｏｇｙ  ８，  １３４２−１３４９  （２００８）．
１４．Ａｍｉｊｉ，  Ｍ．  ＆  Ｐａｒｋ，  Ｋ．  Ｐｒｅｖｅｎｔｉｏｎ  ｏｆ  ｐｒｏｔｅｉｎ  ａｄｓｏｒｐｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｐｌａｔｅｌｅｔ  ａｄｈｅｓｉｏｎ  ｏｎ  ｓｕｒｆａｃｅｓ  ｂｙ  ＰＥＯ／ＰＰＯ／ＰＥＯ  ｔｒｉｂｌｏｃｋ  ｃｏｐｏｌｙｍｅｒｓ．  Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ  １３，  ６８２−６９２  （１９９２）．
１５．Ａｕ，  Ｓ．  Ｈ．，  Ｋｕｍａｒ，  Ｐ．  ＆  Ｗｈｅｅｌｅｒ，  Ａ．  Ｒ．  Ａ  ｎｅｗ  ａｎｇｌｅ  ｏｎ  Ｐｌｕｒｏｎｉｃ  ａｄｄｉｔｉｖｅｓ：  Ａｄｖａｎｃｉｎｇ  ｄｒｏｐｌｅｔｓ  ａｎｄ  ｕｎｄｅｒｓｔａｎｄｉｎｇ  ｉｎ  ｄｉｇｉｔａｌ  ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃｓ．  Ｌａｎｇｍｕｉｒ  ２７，  ８５８６−８５９４  （２０１１）．
１６．Ｈｕｎｇ，  Ｐ．−Ｙ．，  Ｊｉａｎｇ，  Ｐ．−Ｓ．，  Ｌｅｅ，  Ｅ．−Ｆ．，  Ｆａｎ，  Ｓ．−Ｋ．  ＆  Ｌｕ，  Ｙ．−Ｗ．  Ｇｅｎｏｍｉｃ  ＤＮＡ  ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ  ｆｒｏｍ  ｗｈｏｌｅ  ｂｌｏｏｄ  ｕｓｉｎｇ  ａ  ｄｉｇｉｔａｌ  ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃ  （ＤＭＦ）  ｐｌａｔｆｏｒｍ  ｗｉｔｈ  ｍａｇｎｅｔｉｃ  ｂｅａｄｓ．  Ｍｉｃｒｏｓｙｓｔｅｍ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，  １−８  （２０１５）．
１７．Ｃｈｅｎ，  Ｙ．  ｅｔ  ａｌ．  Ａｇｇｒｅｇａｔｉｏｎ  ｂｅｈａｖｉｏｒ  ｏｆ  Ｘ−ｓｈａｐｅｄ  ｂｒａｎｃｈｅｄ  ｂｌｏｃｋ  ｃｏｐｏｌｙｍｅｒｓ  ａｔ  ｔｈｅ  ａｉｒ／ｗａｔｅｒ  ｉｎｔｅｒｆａｃｅ：  ｅｆｆｅｃｔ  ｏｆ  ｂｌｏｃｋ  ｓｅｑｕｅｎｃｅ  ａｎｄ  ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ．  Ｃｏｌｌｏｉｄ  ａｎｄ  Ｐｏｌｙｍｅｒ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２９３，  ９７−１０７  （２０１４）．
１８．Ｎｇ，  Ａ．  Ｈ．  Ｃ．，  Ｃｈｏｉ，  Ｋ．，  Ｌｕｏｍａ，  Ｒ．  Ｐ．，  Ｒｏｂｉｎｓｏｎ，  Ｊ．  Ｍ．  ＆  Ｗｈｅｅｌｅｒ，  Ａ．  Ｒ．  Ｄｉｇｉｔａｌ  Ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃ  Ｍａｇｎｅｔｉｃ  Ｓｅｐａｒａｔｉｏｎ  ｆｏｒ  Ｐａｒｔｉｃｌｅ−Ｂａｓｅｄ  Ｉｍｍｕｎｏａｓｓａｙｓ．  Ａｎａｌ．  Ｃｈｅｍ．  ８４，  ８８０５−８８１２  （２０１２）．  
１９．Ｆｏｂｅｌ，  Ｒ．，  Ｆｏｂｅｌ，  Ｃ．  ＆  Ｗｈｅｅｌｅｒ，  Ａ．  Ｒ．  ＤｒｏｐＢｏｔ：  Ａｎ  ｏｐｅｎ−ｓｏｕｒｃｅ  ｄｉｇｉｔａｌ  ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃ  ｃｏｎｔｒｏｌ  ｓｙｓｔｅｍ  ｗｉｔｈ  ｐｒｅｃｉｓｅ  ｃｏｎｔｒｏｌ  ｏｆ  ｅｌｅｃｔｒｏｓｔａｔｉｃ  ｄｒｉｖｉｎｇ  ｆｏｒｃｅ  ａｎｄ  ｉｎｓｔａｎｔａｎｅｏｕｓ  ｄｒｏｐ  ｖｅｌｏｃｉｔｙ  ｍｅａｓｕｒｅｍｅｎｔ．  Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｐｈｙｓｉｃｓ  Ｌｅｔｔｅｒｓ  １０２，  １９３５１３  （２０１３）．