(57)【要約】  本発明は、以下の（１）および（２）を含むエナンチオマー豊富化化合物の製造方法に関する。（１）エナンチオマー混合物を、ＮＡＤ＋（ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド）を補酵素とする立体選択的脱水素酵素と接触させ、一方のエナンチオマーを優先的に酸化し、他方のエナンチオマーを残存させ、ＮＡＤＨを生成させる。（２）（１）の酸化反応により生成したＮＡＤＨを、酸化的条件下で安定である水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼと接触させＮＡＤ＋へ変換する。  本発明によれば、脱水素酵素を用いるエナンチオマー混合物からエナンチオマー豊富化化合物の製造において、安定化剤を添加せずともＮＡＤ＋の再生が可能であり、効率的にエナンチオマー豊富化化合物を得ることができる。【特許請求の範囲】
【請求項１】
以下の（１）および（２）を含むエナンチオマー豊富化化合物の製造方法：
（１）エナンチオマー混合物を、ＮＡＤ＋（ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド）を補酵素とする立体選択的脱水素酵素と接触させ、一方のエナンチオマーを優先的に酸化し、他方のエナンチオマーを残存させ、ＮＡＤＨを生成させる。
（２）（１）の酸化反応により生成したＮＡＤＨを、酸化的条件下で安定である水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼと接触させＮＡＤ＋へ変換する。
【請求項２】
前記水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼが、ストレプトコッカス（Streptococcus）属微生物由来の酵素またはそれと実質的に同一の酵素である請求項１記載の製造方法。
【請求項３】
前記ストレプトコッカス属微生物が、ストレプトコッカス・ミュータンス（Streptococcus mutans）である請求項２記載の製造方法。
【請求項４】
前記ストレプトコッカス・ミュータンスが、ストレプトコッカス・ミュータンス（Streptococcus mutans）  ＮＣＩＢ１１７２３またはその変異株である請求項３記載の製造方法。
【請求項５】
前記水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼが、配列番号１に示すアミノ酸配列よりなるタンパク質またはそのタンパク質と実質的に同一のタンパク質を含む請求項４記載の製造方法。
【請求項６】
前記水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼの酵素源が、当該酵素を組換え発現した微生物の培養物又はその培養物の処理物である、請求項１〜５のいずれかに記載の製造方法。
【請求項７】
前記脱水素酵素の酵素源および水生成ＮＡＤＨオキシダーゼの酵素源が、それら両方の酵素を同一宿主内で発現した組換え微生物の培養物又はその培養物の処理物である、請求項１〜５のいずれかに記載の製造方法。
【請求項８】
前記エナンチオマー混合物が、２級アルコールまたはその誘導体である請求項１〜７のいずれかに記載の製造方法。
【請求項９】
前記エナンチオマー混合物が、アミノ酸またはその誘導体である請求項１〜７のいずれかに記載の製造方法。
【請求項１０】
ＮＡＤ＋（ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド）を補酵素とする立体選択的脱水素酵素によってエナンチオマー混合物のうちの一方の立体のエナンチオマーを優先的に酸化する反応において、当該反応に伴って生ずるＮＡＤＨをＮＡＤ＋に再変換するために、酸素存在下であっても酵素保護剤なしで安定であることを特徴とする水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼを利用する方法。
【請求項１１】
ＮＡＤ＋を補酵素とする立体選択的脱水素酵素と組み合わせて使用し得る、酸化的条件下で安定である水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼ。
【請求項１２】
ＮＡＤ＋を補酵素とする脱水素反応に伴って生ずるＮＡＤＨをＮＡＤ＋に再変換する補酵素再生機能を有し、かつ、酵素保護剤なしで用いられることを特徴とする補酵素再生系用の水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼ。
【請求項１３】
ＮＡＤ＋を補酵素とする立体選択的脱水素酵素の遺伝子と、酸化的条件下で安定である水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼの遺伝子とを含むベクター。
【請求項１４】
ＮＡＤ＋を補酵素とする立体選択的脱水素酵素の遺伝子と、酸化的条件下で安定である水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼの遺伝子とを含むベクターによって形質転換された形質転換体微生物。
【請求項１５】
ＮＡＤ＋を補酵素とする立体選択的脱水素酵素と、酸化的条件下で安定である水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼとを含む組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド（以下ＮＡＤ＋と略す）を補酵素とする脱水素酵素による酸化反応において、ストレプトコッカス属由来水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼを用いる補酵素ＮＡＤ＋の再生方法、並びに本ＮＡＤ＋再生方法を利用したエナンチオマー混合物からの光学活性化合物の製造方法に関する。
【関連出願の相互参照】
【０００２】
日本国特許２００４−２３０１３９号（２００４年８月６日出願）の明細書、請求の範囲、図面および要約を含む全開示内容は、これら全開示内容を参照することによって本出願に合体される。
【背景技術】
【０００３】
Ｅ．Ｃ．１．１やＥ．Ｃ．１．４に分類される酸化還元酵素（例えば脱水素酵素）には、ＮＡＤ＋などの補酵素存在下、アルコールやアミノ酸をケトンやケト酸へ酸化する反応を触媒するものがある。多くの場合、それら脱水素酵素による酸化反応は立体選択的であるため、アルコール類やアミノ酸類のエナンチオマー混合物にこれら酵素を作用させれば、一方のエナンチオマーのみ酸化され、残存するエナンチオマーが豊富化される。この反応は光学活性化合物の製造に有効な方法である。【０００４】
しかしながら、上記酸化反応の際には酸化型補酵素ＮＡＤ＋はＮＡＤＨへ変換されるため、反応には化学量論量のＮＡＤ＋が必要である。しかし、下の反応式１に示すように、脱水素酵素による酸化反応によって生じたＮＡＤＨをＮＡＤ＋へ変換する反応（ＮＡＤ＋再生系）を共役させる事により、ＮＡＤ＋の化学量論量の使用を避け、その使用量を減らす事が可能である（反応式１において、＊は不斉炭素を表し、この絶対配置は（Ｒ）でもよく、（Ｓ）でもよい）。【０００５】
【化１】
2006013802.tif 000002
【０００６】
従来より、ラクトバチルス・ブレビス（Lactobacillus brevis）由来の水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼを補酵素再生系に利用した光学活性化合物の合成方法が報告されている（特許文献１、非特許文献１、２）。オキシダーゼは、酸素でＮＡＤＨを酸化して、ＮＡＤ＋と水を生成する反応を触媒する酵素であり、その反応には酸素の存在が必須である。水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼによるＮＡＤＨからのＮＡＤ＋生成反応は非可逆的である。また、反応産物としてはＮＡＤ＋以外に水が生成するのみであり、ＮＡＤ＋再生系における本酵素の使用は好ましいといる。【０００７】
しかし、ラクトバチルス・ブレビス由来の水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼは、酸化に対する感受性が強く、その安定化にはＤＴＴ（ジチオスレイトール）などの添加が必要である（非特許文献１）。従って、本微生物由来の水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼをＮＡＤ＋再生系に使用する場合にも、反応系にＤＴＴなどの安定化剤を添加する必要がある。【０００８】
ラクトバチルス・ブレビス以外にラクトバチルス・サンフランシスセンシス（Lactobacillus sanfranciscensis）由来の水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼをＮＡＤ＋再生酵素に利用した光学活性化合物の合成方法が報告されているが、この場合も反応系にＤＴＴを添加している（非特許文献３）。
【特許文献１】特開２００３−１１６５８５
【非特許文献１】Enzyme and Microbial Technology 32, 205-211 (2003)
【非特許文献２】Org. Lett. Vol. 5, No20, 3649-3650 (2003)
【非特許文献３】Adv. Synth. Catal. 345, 707-712 (2003)
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
従来のラクトバチルス・ブレビス及びラクトバチルス・サンフランシスセンシス由来の水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼをＮＡＤ＋再生酵素として使用する場合、一般的には反応系にＤＴＴ添加が必要となる。ＤＤＴ添加が必要となる場合、（１）ＤＤＴ添加による余分なコストがかかる点、（２）反応に使用する基質、生成物によっては、添加したＤＴＴと反応してしまい収率が低下する可能性がある点、（３）そのようなＤＤＴとの反応の結果、ＤＴＴ濃度が低下し、ＮＡＤＨオキシダーゼの保護効果が減少してしまう点等の課題がある。これらの課題は、例えば工業的製法に適用する際には特に考慮する必要がある。【００１０】
本発明は、脱水素酵素による立体選択的酸化反応時のＮＡＤ＋再生系に、活性、安定性などの点で優れ、特に反応時にＤＴＴなどの酵素保護剤を必要としない水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼを使用することによる、効率的な光学活性アルコール、アミノ酸などの有用物質を製造する方法を提供することを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【００１１】
本発明者らは、上記課題につき、ストレプトコッカス属微生物、さらに詳しく言えばストレプトコッカス・ミュータンス由来のＮＡＤＨオキシダーゼが、安定化にＤＴＴなどの保護剤の添加も必要とせず、ＮＡＤ＋再生酵素として、非常に有利であることを見出し本発明を完成した。
（１）、本発明は、以下の（１）および（２）を含むエナンチオマー豊富化化合物の製造方法を対象とする。（１）エナンチオマー混合物を、ＮＡＤ＋（ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド）を補酵素とする立体選択的脱水素酵素と接触させ、一方のエナンチオマーを優先的に酸化し、他方のエナンチオマーを残存させ、ＮＡＤＨを生成させる。（２）（１）の酸化反応により生成したＮＡＤＨを、酸化的条件下で安定である水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼと接触させＮＡＤ＋へ変換する。【００１２】
本発明は、さらに以下の対象を含む。
（１０）ＮＡＤ＋（ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド）を補酵素とする立体選択的脱水素酵素によってエナンチオマー混合物のうちの一方の立体のエナンチオマーを優先的に酸化する反応において、
前記反応に伴って生ずるＮＡＤＨをＮＡＤ＋に再変換するために、酸素存在下であっても酵素保護剤なしで安定であることを特徴とする水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼを利用する方法。
（１１）ＮＡＤ＋を補酵素とする立体選択的脱水素酵素と組み合わせて使用し得る、酸化的条件下で安定である水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼ。
（１２）ＮＡＤ＋を補酵素とする脱水素反応に伴って生ずるＮＡＤＨをＮＡＤ＋に再変換する補酵素再生機能を有し、かつ、酵素保護剤なしで用いられることを特徴とする補酵素再生系用の水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼ。
（１３）ＮＡＤ＋を補酵素とする立体選択的脱水素酵素の遺伝子と、酸化的条件下で安定である水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼの遺伝子とを含むベクター。
（１４）ＮＡＤ＋を補酵素とする立体選択的脱水素酵素の遺伝子と、酸化的条件下で安定である水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼの遺伝子とを含むベクターによって形質転換された形質転換体微生物。
（１５）ＮＡＤ＋を補酵素とする立体選択的脱水素酵素と、酸化的条件下で安定である水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼとを含む組成物。
【発明の効果】
【００１３】
ストレプトコッカス属微生物由来の水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼをＮＡＤ＋再生系に用いることにより、還元剤などの酵素安定化剤を添加せずとも、ＮＡＤ＋の再生反応が効率良く進む。従って、該ＮＡＤ＋再生系を脱水素酵素による立体選択的酸化反応と共役させれば、エナンチオマー混合物から効率的にエナンチオマー豊富化化合物を得る事が可能となる。
【図面の簡単な説明】
【００１４】
【図１】実施形態としての組み換えベクターｐＮＴＮＸの作成方法を示す図である。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１５】
１．水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼ
本発明のＮＡＤ再生系に使用する「水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼ」は、酸化的条件下で安定である、すなわち，失活しないもの、または顕著な失活が抑制されるものを使用する。【００１６】
本明細書における「酸化的条件で安定である」とは、酸素存在下、例えば、特に脱気操作をしていない緩衝液中、又は酵素液を含んだ試験管を振盪するなどの酸素供給条件下において顕著な失活なく、ＮＡＤＨをＮＡＤ＋へと変換する反応を触媒する場合を含む概念である。また、酸素存在下において、酵素保護剤を利用しない場合であっても酵素保護剤を利用する場合と同様に安定である状態も、「酸化的条件で安定である」という概念に含まれる。【００１７】
本発明で使用する「酸化的条件で安定である水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼ」は、ＤＴＴなどの酵素保護剤非存在下で、酸素存在下、約２０℃、約３時間で約７０％以上、好ましくは約８０％以上、更に好ましくは約９０％以上の活性が保持される。【００１８】
本発明の「水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼ」の起源としては、例えばストレプトコッカス属微生物が挙げられ、好ましくはストレプトコッカス・ミュータンス、さらに好ましくはストレプトコッカス・ミュータンスＮＣＩＢ１１７２３を挙げることが出来る。ストレプトコッカス・ミュータンスＮＣＩＢ１１７２３由来の水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼのアミノ酸配列、およびそれをコードするＤＮＡの塩基配列は、既に報告されている（特許文献：特開平８−１９６２８１）。【００１９】
配列番号１、２は、ストレプトコッカス・ミュータンスＮＣＩＢ１１７２３由来の水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼのアミノ酸配列、およびそれをコードするＤＮＡの塩基配列を示す。当該ストレプトコッカス属は、野生株であってもよく、また変異株であってもよい。変異株は、定法に従い、ＵＶ照射や、Ｎ−メチル−Ｎ'ニトロ−Ｎ−ニトロソグアニジン（ＮＴＧ）、メチルエタンスルホネート（ＥＭＳ）等の変異剤による処理により取得することができる。変異株が本発明のＮＡＤＨオキシダーゼを生産しうる限り、当該変異株は本発明に用いるＮＡＤＨオキシダーゼの入手源として使用しうる。【００２０】
該ストレプトコッカス属微生物由来の水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼは、従来のラクトバチルス属由来の酵素とは異なり、安定化のためにＤＴＴなどの還元剤の添加を必要とせず、本発明の目的であるＮＡＤ＋再生系への使用に好ましいと言える。水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼは、ストレプトコッカス属細菌の培養液から酵素を調製して取得可能であり、その他、本酵素をコードするＤＮＡをベクターに組込み、これを宿主内に導入して得られる形質転換体内で酵素遺伝子を発現させることによって容易かつ大量に取得可能である。【００２１】
本発明では、「水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼ」として、配列番号１に示すアミノ酸配列からなる酵素タンパク質と実質的に同一の酵素タンパク質を使用できる。「実質的に同一」の酵素タンパク質とは、酵素タンパク質のアミノ酸配列において、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０またはそれ以上の置換、欠失および／または挿入を導入し、そのとき該酵素タンパク質が同等の機能を有する場合、当該酵素タンパクは実質的に同一であるといえる。また、本発明で使用する酵素タンパク質は配列番号１に示すアミノ酸配列と６０％以上、好ましくは８０％以上、より好ましくは９０％以上、そして最も好ましくは９９％以上のアミノ酸配列の同一性を有し、配列番号１に示すアミノ酸配列からなる酵素タンパク質と同等の機能を有する場合、当該酵素タンパク質は実質的に同一であると言える。【００２２】
上記アミノ酸配列の「同一性」とは、比較対象となる配列を最適な状態にアラインメントされた状態で比較することにより決定される。比較対象となる配列は、最適な状態にアラインメントされた場合に、付加または欠失を有していてもよい。アミノ酸配列の同一性は、例えば相同検索プログラムＦＡＳＴＡ（W.R. Pearson & D.J. Lipman P.N.A.S. (1988) 85:2444-2448）やＢＬＡＳＴ（Altschul et. al., J. Mol. Biol. (1990)  215:403-410）を用いて２つのアミノ酸配列を比較した場合に、Ｉｄｅｎｔｉｔｙの値で算出することができる。 ＢＬＡＳＴ分析を実施するためのソフトウェアは、National Center for Biotechnology Information(http://www.ncbi.nih.gov/)を通じて公衆に利用可能である。【００２３】
ここでいう同等の機能を有する酵素タンパク質は、それらをコードするヌクレオチド配列に相補的な配列を有するヌクレオチド鎖に、ストリンジェント条件下でハイブリダイズするヌクレオチド配列を含むＤＮＡによりコードされ得る。【００２４】
該ストリンジェント条件下のハイブリダイゼーション条件の例は：好ましくは約７％のドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）、約０．５ＭのSodium phosphate、１ｍＭのＥＤＴＡ中で約５０℃でハイブリダイゼーション、および約２ＸＳＳＣ、約０．１％のＳＤＳ中で５０℃の洗浄；より望ましくは約７％のドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）、約０．５ＭのSodium phosphate、約１ｍＭのＥＤＴＡで５０℃でハイブリダイゼーション、および約１ＸＳＳＣ、約０．１％のＳＤＳで約５０℃の洗浄；より望ましくは約７％のドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）、約０．５ＭのSodium phosphate、約１ｍＭのＥＤＴＡで約５０℃でハイブリダイゼーション、および約０．５ＸＳＳＣ、約０．１％のＳＤＳで約５０℃の洗浄；より好ましくは約７％のドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）、約０．５ＭのSodium phosphate、約１ｍＭのＥＤＴＡで約５０℃でハイブリダイゼーション、および約０．１ＸＳＳＣ、約０．１％のＳＤＳで約５０℃の洗浄；並びになおより好ましくは約７％のドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）、約０．５ＭのSodium phosphate、約１ｍＭのＥＤＴＡで約５０℃で、約０．１ＸＳＳＣ、約０．１％のＳＤＳで約６５℃の洗浄である。もっとも、該条件は、ヌクレオチド鎖の長さ、該配列、および異なる環境パラメーターに依存して異なり得る。より長い配列は、より高い温度で特異的にハイブリダイズする。【００２５】
核酸のハイブリダイゼーションの詳細なガイドは、例えばTijssen(1993) Laboratory Techniques in Biochemistry and Molecular Biology-Hybridization with Nucleic Acid Probes part I chapter 2, "Overview of principles of hybridization and the strategy of nucleic acid probe assay", Elsvier, New Yorkに見出される。【００２６】
２．ベクター
上記形質転転換体を得るために用いられるベクターとしては、適切な宿主内で本発明の酵素遺伝子を発現できるものであればいずれもが使用できる。このようなベクターとしては、例えば、プラスミドベクター、ファージベクター、コスミドベクターなどが挙げられる。また、他の宿主との間での遺伝子交換が可能なシャトルベクターも使用できる。このようなベクターは、作動可能に連結されたプロモーター（例えばｌａｃＵＶ５プロモーター、ｔｒｐプロモーター、ｔｒｃプロモーター、ｔａｃプロモーター、ｌｐｐプロモーター、ｔｕｆＢプロモーター、ｒｅｃＡプロモーター、ｐＬプロモーター）等の制御因子を含み、本発明のＤＮＡと作動可能に連結された発現単位を含む発現ベクターとして好適に使用できる。例えば、ｐＵＣＮＴ（国際公開第ＷＯ９４／０３６１３号パンフレット）等が好適に使用できる。【００２７】
本明細書で用いる用語「制御因子」は、機能的プロモーター及び、任意の関連する転写要素（例えばエンハンサー、ＣＣＡＡＴボックス、ＴＡＴＡボックス、ＳＰＩ部位など）を有する塩基配列をいう。本明細書で用いる用語「作動可能に連結」は、遺伝子が発現するように、ＤＮＡと、その発現を調節するプロモーター、エンハンサー等の種々の調節エレメントとが宿主細胞中で作動できる状態で連結されることをいう。制御因子のタイプ及び種類が宿主に応じて変わり得ることは、当業者に周知の事項である。【００２８】
３．形質転換体
本発明の遺伝子を含むＤＮＡを含有する組換えベクターを導入する宿主としては、細菌、酵母、糸状菌、植物細胞、動物細胞などが挙げられるが、大腸菌が特に好ましい。本発明のＤＮＡは定法により宿主細胞に導入できる。宿主細胞として大腸菌を用いる場合、例えば塩化カルシウム法により、本発明のＤＮＡを導入できる。【００２９】
本明細書における形質転換体（または組換え体）は、異種性核酸分子が導入された宿主生物を意味する。一般的に核酸分子は、宿主のゲノムに安定的に組み込まれるか、または、染色体外の分子と存在する。そのような染色体外の分子は、自己複製することができる。形質転換された細胞、組織または生物は、形質転換プロセスの最終産物のみならず、そのトランスジェニック後代もまた含まれる。【００３０】
４．反応
本発明の一つの実施形態では、脱水素酵素による立体選択的酸化によるエナンチオマー豊富化反応において、ストレプトコッカス属細菌由来水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼによるＮＡＤ＋再生系を利用することを特徴としている。したがって、本発明は、立体選択的酸化反応に、ストレプトコッカス属由来の水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼによるＮＡＤ＋再生系を共役させる点を一つの特徴とするものであり、製造するエナンチオマー豊富化化合物、更には反応に使用する脱水素酵素の種類によって、本発明はなんら限定されるものではない。【００３１】
５．基質
本発明により製造されるエナンチオマー豊富化化合物のための原料は、エナンチオマー混合物を含む。本発明の「エナンチオマー混合物」としては、不斉炭素を有し、その不斉炭素に、脱水素酵素で酸化され得る水酸基、アミノ基、ホルミル基等が結合した化合物が挙げられる。具体的には、ジオール誘導体などを含めたアルコール誘導体、ヒドロキシ酸誘導体、アミノ酸誘導体などが挙げられる。【００３２】
「誘導体」は、ある化合物に小部分の構造上の変化があってできる化合物である。化合物中の水素原子あるいは特定の原子団が、他の原子あるいは原子団によって置換された化合物は、該化合物の誘導体であると理解される。【００３３】
６．脱水素酵素
上記アルコール誘導体、ヒドロキシ酸誘導体の製造には、Ｅ．Ｃ．１．１．１に分類される酵素群で、その反応がエナンチオマー選択的でありＮＡＤ＋を補酵素として利用できるものであればいかなるものも使用し得る。上記アミノ酸誘導体の製造にはＥ．Ｃ．１．４．１に分類される酵素群で、その反応がエナンチオマー選択的でありＮＡＤ＋を補酵素として利用できるものであればいかなるものも使用し得る。例を挙げると、以前我々が見出したセルロモナス・スピーシーズ（Celluromonas sp.）株に由来する脱水素酵素（特願２００４−１８２９２６）は、ＮＡＤ依存性の酵素であり、１，２−ブタンジオール及び１，３−ブタンジオールの（Ｒ）体に対し立体選択的酸化活性を有する。また、上記酵素は、３−クロロ−１，２−プロパンジオールの（Ｓ）体に対し立体選択的酸化活性を有する。【００３４】
従って、本発明の脱水素酵素として上記酵素を使用すれば、１，２−ブタンジオールまたは１，３−ブタンジオールのエナンチオマー混合物から（Ｓ）体のエナンチオマー豊富化された上記ジオールを得る事ができる。また、（本発明の脱水素酵素として上記酵素を使用すれば、）３−クロロ−１，２−プロパンジオールのエナンチオマー混合物から（Ｒ）体のエナンチオマー豊富化された上記ジオールを得る事が出来る。【００３５】
また、キャンディダ・マリス（Candida maris）  ＩＦＯ１０００３株に由来する脱水素酵素（国際公開第ＷＯ０１／００５９９６号パンフレット）は１−フェニルエタノールの（Ｒ）体に対し立体選択的酸化反応を触媒する。【００３６】
したがって、本発明の脱水素酵素として上記酵素を使用すれば、１−フェニルエタノールのエナンチオマー混合物から（Ｓ）体のエナンチオマー豊富化化合物を得る事が出来る。また、Ｌ体またはＤ体特異的アミノ酸脱水素酵素を使用すれば、アミノ酸誘導体のエナンチオマー混合物からそれぞれＤ体、Ｌ体のエナンチオマー豊富化されたアミノ酸誘導体を得ることが出来る。【００３７】
７．エナンチオマー豊富化
本発明における「エナンチオマー豊富化化合物」とは、目的の対掌体が、もう一方の対掌体との混合物において５０％モル量以上、好ましくは約７０％以上、更に好ましくは約９０％以上の割合で存在するものを意味する。【００３８】
本発明のエナンチオマー豊富化反応は、以下のように行うことができる。まず、適当な溶媒中に、エナンチオマー混合物と、その一方のエナンチオマーに対し酸化活性を有する脱水素酵素と、水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼ及びＮＡＤ＋とを添加し攪拌する事により行うことができる。【００３９】
本発明の水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼは、ＮＡＤ＋を補酵素とする立体選択的脱水素酵素と組み合わせて使用し得る。ここで、「組み合わせて使用」とは、水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼおよび脱水素酵素の両酵素を反応液に同時に添加する場合のほか、両酵素が反応液中で共存する状態となる限り、両酵素を異なる時期に添加する場合も含まれる。【００４０】
反応条件は、用いる基質、酸化還元酵素などにより異なるが、通常、反応は約５〜８０℃好ましくは約１０〜５０℃の温度で行われ、またｐＨは約４〜１０、好ましくは約５〜９で行う。基質であるエナンチオマー混合物は約０．１〜８０％（ｗ／ｖ）、好ましくは約１〜６０％の仕込み濃度で添加できる。ＮＡＤ＋は基質に対して約０．００００１〜１モル％、好ましくは約０．００００１〜０．１％（ｗ／ｖ）の濃度で行う。また、ＮＡＤＨオキシダーゼの反応には、酸素が必要であるため、反応液が空気または比較的純粋な酸素存在下で行われる事が好ましい。また、反応液への酸素の溶解を促進するため、反応は、振盪あるいは攪拌条件下で行われる事が好ましい。さらに大気圧以上の加圧下で反応する事により、反応液への酸素の溶解度が向上し、反応がより効率に進む場合もある。【００４１】
８．酵素
本発明に使用する酵素、例えば脱水素酵素、水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼは、単一にまたは部分的に精製された酵素であってもよいし、これら酵素を産生する生物（例えば微生物）の培養物またはその培養物の処理物を使用することも可能である。ここで、「微生物の培養物」とは、菌体を含む培養液あるいは培養菌体を意味し、「処理物」とは、例えば、粗抽出液、凍結乾燥菌体、アセトン乾燥菌体、あるいはそれらの磨砕物、これらの混合物などを意味する。更にそれらは、酵素自体または菌体のまま公知の手段（例えば、架橋法、物理的吸着法、包括法など）で固定化されて使用できる。【００４２】
また、反応を行う際、脱水素酵素と水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼの両者を同一宿主細胞内に導入した形質転換体（例えば形質転換体微生物）の培養物またはその培養物の処理物を用いれば、別々に両酵素を発現する微生物を培養する必要はないため、より低コストでエナンチオマー豊富化化合物が製造できる。【００４３】
また、例えば、両酵素を同一細胞内に発現した形質転換微生物を用いれば、微生物細胞内のＮＡＤ＋を使用し、反応が進行することも可能となり、従って、外部から別途ＮＡＤ＋を添加する必要がない、または添加するＮＡＤ＋の量を大幅に減らす事が可能となる。このような形質転換体は、使用する脱水素酵素をコードするＤＮＡ及び水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼをコードするＤＮＡを、同一のベクターに組込み、これを宿主に導入することにより製造できるし、また、これら２種類のＤＮＡを不和合性グループの異なる２種のベクターにそれぞれ組込み、それらを同一の宿主に導入することによっても製造できる。【００４４】
すなわち、使用する脱水素酵素をコードするＤＮＡとＮＡＤＨオキシダーゼをコードするＤＮＡとを含有する組換えベクターを含む形質転換体や、使用する脱水素酵素をコードするＤＮＡを含有する第１の組換えベクターと、ＮＡＤＨオキシダーゼをコードするＤＮＡを含有する第２の組換えベクターとを含む形質転換体を使用できる。【００４５】
本発明のＮＡＤ＋を補酵素とする立体選択的脱水素酵素と水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼとを含む「組成物」は、両酵素、および所望により担体を混合することにより製造する。そのような組成物はまた、他の作用性物質、および慣行の添加物、例えば安定剤、湿潤剤、乳化剤、香味剤、緩衝剤などを含みうる。本発明の組成物は、本発明の方法のために使用しうる。【００４６】
以下に、実施例により本発明をさらに詳しく説明するが、本発明はこれら実施例になんら限定されるものではない。
【実施例】
【００４７】
（実施例１）ＮＡＤＨオキシダーゼ遺伝子を含む組換えベクターの作成及び組換え大腸菌の作成）
大腸菌においてストレプトコッカス・ミュータンス由来の水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼを発現させるために、形質転換に用いる組換えベクターを作成した。まずＮＡＤＨオキシダーゼの構造遺伝子の開始部分にＮｄｅＩ部位を付加し、かつ終止コドンの直後に新たな終止コドンとＰｓｔＩ部位を付加した二本鎖ＤＮＡを以下の方法により取得した。【００４８】
５’−gaggatttgcatatgagtaaaatcgttattg−３’（ｐｒｉｍｅｒ−１：配列番号３）及び５’−atgaaaacatgtgaattcccattgacatatc−３’（ｐｒｉｍｅｒ−２：配列番号４）記載の合成プライマーの組み合わせで、水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼ遺伝子を含有するプラスミドｐＳＳＷ６１（Biosci. Biotech. Biochem., 60(1), 39-43, 1996）を鋳型としてＰＣＲを行い二本鎖ＤＮＡ１を合成した。同様に、５’−gatatgtcaatgggaattcacatgttttcat−３’（ｐｒｉｍｅｒ−３：配列番号５）及び５’−tttctgcagttatcatttagcttttaatgct−３’（ｐｒｉｍｅｒ−４：配列番号６）の合成プライマーの組み合わせで、水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼ遺伝子を含有するプラスミドｐＳＳＷ６１（Biosci. Biotech. Biochem., 60(1), 39-43, 1996）を鋳型としてＰＣＲを行い、二本鎖ＤＮＡ２を合成した。【００４９】
更に前記２種の合成プライマー（ｐｒｉｍｅｒ−１、ｐｒｉｍｅｒ−４）を用い、上記で得た二本鎖ＤＮＡ１、２の混合物を鋳型にＰＣＲを行い、二本鎖ＤＮＡを得た。得られたＤＮＡ断片をＮｄｅＩ及びＰｓｔＩ消化し、プラスミドｐＵＣＮＴ（国際公開第ＷＯ９４／０３６１３号パンフレット）のｌａｃプロモーターの下流のＮｄｅＩ、ＰｓｔＩ部位に挿入することにより、組換えプラスミドｐＮＴＮＸを取得した。【００５０】
図１は、ｐＮＴＮＸの作製法及び構造を示す。本組換えベクターｐＮＴＭＸを用いて大腸菌ＨＢ１０１（宝酒造株式会社製）を形質転換し、組換え大腸菌ＨＢ１０１（ｐＮＴＮＸ）を得た。【００５１】
（実施例２）組換え大腸菌によるＮＡＤＨオキシダーゼの発現
実施例１で得た組換え大腸菌ＨＢ１０１（ｐＮＴＮＸ）を１００μｇ／ｍｌのアンピシリン及びグリセリン０．８％（ｗ／ｖ）を含む２×ＹＴ培地（バクト・トリプトン１．６％（ｗ／ｖ）、バクト・イーストエキス１．０％（ｗ／ｖ）、ＮａＣｌ０．５％（ｗ／ｖ）、１００μｇ／ｍｌのアンピシリン、ｐＨ７．０）で培養し、集菌後、１００ｍＭトリス塩酸緩衝液（ｐＨ７）に懸濁し、超音波破砕法により破砕し無細胞抽出液を得た。本無細胞中のＮＡＤＨオキシダーゼの比活性は３０Ｕ／ｍｇタンパクであった。
［ＮＡＤＨオキシダーゼ活性の測定条件］
１００ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）にＮＡＤＨ０．１７ｍＭ、ＥＤＴＡ０．２ｍＭ、ＦＡＤ０．０２ｍＭを含む反応液０．９５ｍｌに酵素液０．０５ｍｌを添加し、３０℃での波長３４０ｎｍの吸光度の減少を測定することにより行った。この反応条件において、１分間に１μｍｏｌのＮＡＤＨをＮＡＤ＋に酸化する酵素活性を１ｕｎｉｔと定義した。【００５２】
（実施例３）無細胞抽出液の調製
実施例１で得たＮＡＤＨオキシダーゼを発現する組換え大腸菌ＨＢ１０１（ｐＮＴＮＸ）を５００ｍｌ容坂口フラスコ中で滅菌した８０ｍｌの実施例２記載の培地に接種し、３０℃で３２時間振とう培養した。集菌後、１０ｍｌの１００ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）に懸濁し、超音波破砕法により破砕後、遠心分離を行い、ＮＡＤＨオキシダーゼを含む無細胞抽出液を得た。【００５３】
また、キャンディダ・マリス（Candida maris）由来脱水素酵素を発現するＥ．ｃｏｌｉ  ＨＢ１０１（ｐＮＴＦＰ）（受託番号ＦＥＲＭ  ＢＰ−７１１６）およびセルロモナス・スピーシーズ（Celluromonas sp.）由来脱水素酵素を発現するＥ．ｃｏｌｉ  ＨＢ１０１（ｐＴＳＣＳ）（ＦＥＲＭ  ＢＰ−１００２４）のそれぞれを、５００ｍｌ容坂口フラスコ中で滅菌した６０ｍｌの半合成培地（グリセリン１．５％（ｗ／ｖ）、イーストエキス０．３％（ｗ／ｖ）、Ｎａ2ＨＰＯ4０．６％（ｗ／ｖ）、ＫＨ2ＨＰＯ4０．３％（ｗ／ｖ）、ＮａＣｌ０．２％（ｗ／ｖ）、ＭＧＳＯ４・７Ｈ２Ｏ０．５％（ｗ・ｖ）、１００μｇ／ｍｌのアンピシリン、ｐＨ６．０）に植菌し、３７℃で３７時間培養した。集菌後、それぞれ１０ｍｌの１００ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）に懸濁し、超音波破砕法により破砕後、遠心分離を行い、２種のＮＡＤ依存性脱水素酵素を含む無細胞抽出液を得た。ＨＢ１０１（ｐＴＳＣＳ）及びＨＢ１０１（ｐＮＴＦＰ）から調製した無細胞抽出液中は、それぞれ１０Ｕ／ｍｇの１，２−ブタンジールに対する酸化活性、５Ｕ／ｍｇの１−フェニルエタノールに対する酸化活性を有していた。【００５４】
［１，２−ブタンジオールまたは１−フェニルエタノール酸化活性の測定条件］
１００ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）に１，２−ブタンジオールまたは１−フェニルエタノール２０ｍＭ、ＮＡＤ＋０．１７ｍＭを含む反応液０．９５ｍｌに酵素液０．０５ｍｌを添加し、３０℃での波長３４０ｎｍの吸光度の増加を測定することにより行った。この反応条件において、１分間に１μｍｏｌのＮＡＤＨをＮＡＤ＋に酸化する酵素活性を１ｕｎｉｔと定義した。【００５５】
なお、Ｅ．ｃｏｌｉ  ＨＢ１０１（ｐＮＴＦＰ）（ＦＥＲＭ−７１１６）は２０００年４月１１日に、Ｅ．ｃｏｌｉ  ＨＢ１０１（ｐＴＳＣＳ）（ＦＥＲＭ  ＢＰ−１００２４）は２００４年５月１２日に、それぞれ前記の受託番号にて独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター（ＩＰＯＤ：〒305-8566  茨城県つくば市東１−１−１  中央第６）に寄託されている。【００５６】
（実施例４）１，２−ブタンジオールの光学分割
実施例３で調整したＨＢ１０１（ｐＴＳＣＳ）無細胞抽出液（脱水素酵素）７０μｌ、ＨＢ１０１（ｐＮＴＮＸ）無細胞抽出液（ＮＡＤＨオキシダーゼ酵素）２８μｌ、１０ｍｇラセミ体１，２−ブタンジオール、３００ｍＭリン酸カリウム緩衝液（ｐＨ７．０）を含む反応液１ｍｌを試験管中で２０℃で振盪し２３時間反応を行った。反応液２００μｌを硫酸アンモニウムで飽和させた後、酢酸エチル４００μｌにより１，２−ブタンジオールを抽出した。本抽出液のうち１００μｌから減圧下で溶媒を除去し、残渣にトリフルオロ酢酸無水物２００μｌを加えて室温で１０分間静置する事によりトリフルオロアセチル化したのち、減圧下で未反応のトリフルオロ酢酸無水物を除去した。さらに酢酸エチル５００μｌを加えて、トリフルオロ化した１，２−ブタンジオールを溶解し、キャピラリーガスクロマトグラフィーにより光学純度を分析した。また、上記酵素反応液１００μｌを硫酸アンモニウムで飽和させた後、酢酸エチル１０００μｌにより１，２−ブタンジオールを抽出し、本抽出液中の１，２−ブタンジオール含量ををガスクロマトグラフィーにより分析した。その結果、光学純度９７％の（Ｓ）体−１，２ブタンジオールが収率４９％で生成していた。【００５７】
［光学純度の分析条件］
カラム：Ｃｈｉｒａｄｅｘ  Ｇ−ＴＡ（２０ｍ×０．２５ｍｍ）（ＡＳＴＥＣ社製）
カラム温度：６０℃
注入温度：１５０℃
検出温度：１５０℃
キャリアーガス：ヘリウム（１３０ｋＰａ）
スプリット比：１００／１
検出時間：１，２−ブタンジオール  Ｒ体５．０分、Ｓ体５．８分【００５８】
［含量の分析条件］
カラム：ＨＰ−５  ３０ｍ×０．３２ｍｍＩ．Ｄ．（Agilent Technologies社製）
検出：ＦＩＤ
カラム初期温度：５０℃、カラム最終温度：２００℃、昇温速度：６℃／分
注入温度：１５０℃
検出温度：３００℃
キャリアーガス：ヘリウム（７０ｋＰａ）
スプリット比：１００／１【００５９】
（実施例５）１−フェニルエタノールの光学分割
実施例３で調整したＨＢ１０１（ｐＮＴＦＰ）無細胞抽出液（脱水素酵素）１９μｌ、ＨＢ１０１（ｐＮＴＮＸ）無細胞抽出液（ＮＡＤＨオキシダーゼ酵素）２８μｌ、１０ｍｇラセミ体１−フェニルエタノール、３００ｍＭリン酸カリウム緩衝液を含む反応液１ｍｌを２０℃で振盪し２３時間反応を行った。反応液１００μｌを硫酸アンモニウムで飽和させた後、酢酸エチル７００μｌにより１−フェニルエタノールを抽出し、本抽出液中の１−フェニルエタノールの光学純度及び含量をＨＰＣＬにより分析した（カラム：ダイセル化学工業社製、Ｃｈｉｒａｌｃｅｌｌ  ＯＤ−Ｈ（０．４６×２５ｃｍ）、カラム温度：２５℃、溶離液：ｎ−ヘキサン／２−プロパノール＝９／１、流速：０．５ｍｌ／分、溶離時間：（Ｒ）体−１２．２分、  （Ｓ）体−１３．３分）。その結果、光学純度１００％の（Ｓ）体−１−フェニルエタノールが収率４８％で生成していた。【００６０】
［光学純度、含量の分析条件］
カラム：Ｃｈｉｒａｌｃｅｌｌ  ＯＤ−Ｈ  ０．４６×２５ｃｍ（ダイセル化学工業社製）
溶離液：ｎ−ヘキサン／２−プロパノール＝９／１
流速：０．５ｍｌ／分
溶離時間：（Ｒ）体−１２．２分、  （Ｓ）体−１３．３分）【００６１】
（実施例６）１−フェニルエタノールの光学分割（ＤＴＴ添加、無添加）
実施例３で調整したＨＢ１０１（ｐＮＴＦＰ）無細胞抽出液（脱水素酵素）１０μｌ、ＨＢ１０１（ｐＮＴＮＸ）無細胞抽出液（ＮＡＤＨオキシダーゼ）５μｌ、１０ｍｇラセミ体１−フェニルエタノール、３００ｍＭリン酸カリウム緩衝液を含む反応液１ｍｌおよび本反応液に５ｍＭＤＴＴを添加した反応液１ｍｌを２０℃で振盪し６時間反応を行った。その後、実施例５と同様の方法で反応液中の１−フェニルエタノールの含量、光学純度を測定した。その結果、ＤＴＴ無添加および添加した反応液中に、それぞれ光学純度９５％の１−フェニルエタノールが収率５０％、光学純度９４％の１−フェニルエタノールが収率５１％で生成していた。以上のように、反応液中にＤＴＴを添加しない場合も、ＤＴＴ添加した場合と同程度の反応が進行しており、実質的にＤＴＴの添加の必要性は無かった。【００６２】
（実施例７）酸素存在下での水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼの安定性
実施例３で調製した水生成型ＮＡＤＨオキシダーゼを含むＨＢ１０１（ｐＮＴＮＸ）無細胞抽出液０．１ｍｌを１００ｍＭリン酸緩衝液または５ｍＭのＤＴＴを含む１００ｍＭリン酸緩衝液０．９ｍｌに添加し、小型試験管中で静置または３００ｒｐｍでの振盪条件下（酸素供給条件下）、２０℃、３時間保存し、残存するＮＡＤＨオキシダーゼ活性を測定した。その結果を表１に示す。いずれの条件においても、９０％以上の活性が保持されていた。【００６３】
【表１】
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【図１】
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【配列表】
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【国際調査報告】
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