(57)【要約】  本発明の目的は、ＮＭＲ測定によりリガンドあるいはリガンド候補化合物の結合および結合部位を同定する方法において、標的分子のより広範な範囲を観測し、リガンドやリガンド候補化合物の結合および結合部位の同定をより正確に行なえる方法を提供することである。本発明では、標的分子のアミノ酸残基の主鎖の炭素原子とアミドプロトンとの相関シグナル、あるいは主鎖の原子に結合した水素原子と標的分子中の他の水素原子との相関シグナルを取得し、該標的分子とリガンドあるいはリガンド候補化合物とを接触させた後に同じ相関シグナルを取得して、両シグナルを比較することによって標的分子とリガンドあるいはリガンド化合物との結合を検出する。【特許請求の範囲】
【請求項１】
（ａ）13Ｃ／15Ｎ二重標識化された標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｂ）該標的分子と、少なくとも１つのリガンド、リガンド化合物、あるいはリガンド候補化合物とを接触させる工程、
（ｃ）工程（ｂ）の標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、及び
（ｄ）工程（ａ）で得られた２次元相関スペクトルと工程（ｃ）で得られた２次元相関スペクトルとを比較する工程を含む、標的分子とリガンドあるいはリガンド化合物との結合の検出方法。
【請求項２】
（ａ）13Ｃ／15Ｎ二重標識化された標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｂ）該標的分子と、リガンド候補化合物の混合物とを接触させる工程、
（ｃ）工程（ｂ）の標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｄ）工程（ａ）で得られた２次元相関スペクトルと工程（ｃ）で得られた２次元相関スペクトルとを比較する工程、
（ｅ）工程（ｄ）で該２次元相関スペクトルに違いが見出された場合、該リガンド候補化合物の混合物中の化合物を個別に標的分子と接触させ、標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、及び
（ｆ）工程（ａ）で得られた２次元相関スペクトルと工程（ｅ）で得られた２次元スペクトルとを比較する工程を含む、標的分子に結合するリガンド化合物のスクリーニング方法。
【請求項３】
（ａ）13Ｃ／15Ｎ二重標識化された標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｂ）該標的分子と、少なくとも１つのリガンドまたはリガンド候補化合物とを接触させる工程、
（ｃ）工程（ｂ）の標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｄ）工程（ａ）で得られた２次元相関スペクトルと工程（ｃ）で得られた２次元相関スペクトルとを比較する工程、及び
（ｅ）工程（ｄ）で該２次元相関スペクトルに違いが見出された場合、違いが見られるシグナルに相当するアミノ酸を特定する工程を含む、標的分子に結合するリガンドまたはリガンド化合物の結合部位の同定方法。
【請求項４】
（ａ）13Ｃ／15Ｎ二重標識化された標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｂ）該標的分子と、各種濃度のリガンドまたはリガンド化合物を接触させる工程、
（ｃ）工程（ｂ）の標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｄ）工程（ａ）で得られる２次元相関スペクトルと、工程（ｃ）で得られる２次元相関スペクトルとを比較する工程、及び
（ｅ）該２次元相関スペクトルに違いが見られた場合、該スペクトルの違いをリガンドまたはリガンド化合物濃度の関数として定量する工程を含む、標的分子とリガンドまたはリガンド化合物との解離定数の測定方法。
【請求項５】
標的分子がポリペプチドである、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。
【請求項６】
２次元相関スペクトルが、標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子が存在するアミノ酸残基の１つ前のアミノ酸残基中の標識されたカルボニル炭素原子の２次元相関スペクトルである、請求項１〜５のいずれか１項に記載の方法。
【請求項７】
２次元相関スペクトルが、標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子が存在するアミノ酸残基の１つ前のアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子の２次元相関スペクトルである、請求項１〜５のいずれか１項に記載の方法。
【請求項８】
（ａ）少なくとも主鎖の窒素及び／または炭素が標識された標的分子中の、標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｂ）該標的分子と、少なくとも１つのリガンド、リガンド化合物、あるいはリガンド候補化合物とを接触させる工程、
（ｃ）工程（ｂ）の標的分子中の標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する工程、及び
（ｄ）工程（ａ）で得られた２次元相関スペクトルと工程（ｃ）で得られた２次元相関スペクトルとを比較する工程を含む、標的分子とリガンドあるいはリガンド化合物との結合の検出方法。
【請求項９】
（ａ）少なくとも主鎖の窒素及び／または炭素が標識された標的分子中の、標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｂ）該標的分子と、２つ以上のリガンド候補化合物を含むリガンド候補化合物の混合物とを接触させる工程、
（ｃ）工程（ｂ）の標的分子中の、標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｄ）工程（ａ）で得られた２次元相関スペクトルと工程（ｃ）で得られた２次元相関スペクトルとを比較する工程、
（ｅ）工程（ｄ）で該２次元相関スペクトルに違いが見出された場合、該リガンド候補化合物の混合物中の化合物を個別に標的分子と接触させ、標的分子中の、標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する工程、及び
（ｆ）工程（ａ）で得られた２次元相関スペクトルと工程（ｅ）で得られた２次元スペクトルとを比較する工程を含む、標的分子に結合するリガンド化合物のスクリーニング方法。
【請求項１０】
（ａ）少なくとも主鎖の窒素及び／または炭素が標識された標的分子中の、標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｂ）該標的分子と、１つ以上のリガンドまたはリガンド候補化合物とを接触させる工程、
（ｃ）工程（ｂ）の標的分子中の、標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｄ）工程（ａ）で得られた２次元相関スペクトルと工程（ｃ）で得られた２次元相関スペクトルとを比較する工程、及び
（ｅ）工程（ｄ）で該２次元相関スペクトルに違いが見出された場合、違いが見られるシグナルに相当するアミノ酸を特定する工程を含む、標的分子に結合するリガンドまたはリガンド化合物の結合部位の同定方法。
【請求項１１】
（ａ）少なくとも主鎖の窒素及び／または炭素が標識された標的分子中の、標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｂ）該標的分子と、各種濃度のリガンドまたはリガンド化合物を接触させる工程、
（ｃ）工程（ｂ）の標的分子中の、標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｄ）工程（ａ）で得られる２次元相関スペクトルと、工程（ｃ）で得られる２次元相関スペクトルを比較する工程、及び
（ｅ）該２次元相関スペクトルに違いが見られた場合、該スペクトルの違いをリガンドまたはリガンド化合物濃度の関数として定量する工程を含む、標的分子とリガンドまたはリガンド化合物との解離定数の測定方法。
【請求項１２】
標的分子がポリペプチドである、請求項８〜１１のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１３】
標的分子が、主鎖の窒素及び炭素が標識された標的分子で、標識された主鎖の原子に結合した水素原子が、標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子で、標的分子中の他の水素原子が、上記窒素原子が存在するアミノ酸残基の１つ前のアミノ酸残基中の標識された主鎖の炭素原子に結合した水素原子であることを特徴とする、請求項８〜１２のいずれか1項に記載の方法。
【請求項１４】
標的分子が、主鎖の窒素及び炭素が標識された標的分子で、標識された主鎖の原子に結合した水素原子が、標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子で、標的分子中の他の水素原子が、上記窒素原子が存在するアミノ酸残基、およびその１つ前のアミノ酸残基中の標識された主鎖の炭素原子に結合した水素原子であることを特徴とする、請求項８〜１２のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１５】
標的分子が、主鎖の窒素及び炭素が標識された標的分子で、標識された主鎖の原子に結合した水素原子が、標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子で、標的分子中の他の水素原子が、上記窒素原子が存在するアミノ酸残基の１つ前のアミノ酸残基中の標識された主鎖の炭素原子に結合した水素原子、および上記窒素原子が存在するアミノ酸残基の１つ前のアミノ酸残基中のβ炭素原子に結合した水素原子であることを特徴とする、請求項８〜１２のいずれか１項に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、標的分子とこれと結合するリガンドあるいはリガンド候補化合物との結合を検出する方法、標的分子に結合するリガンドの結合部位の同定方法、および標的分子とリガンドとの解離定数を測定する方法等に関する。
【背景技術】
【０００２】
ＮＭＲを用いて、標的分子に結合する基質やリガンドを同定したり、その結合部位を特定することは、これまでにも広く行われてきた。主に用いられている方法は、タンパク質中の窒素原子を、安定同位体でＮＭＲ観測可能な15Ｎを用いて標識し、1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣ（heteronuclear single quantum coherence）スペクトルを用いる方法（例えば、特許第３０３２３０１号公報を参照）である。具体的には、標的分子単独の状態において1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣを観測し、さらに標的分子に想定される基質やリガンドを共存させた状態で1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣを観測し、両者のスペクトルを比較し、シグナルの変化が見られるかどうかで標的生体分子に基質やリガンドが結合したかどうかを知ることができる。また、他のＮＭＲ測定を組み合わせ、1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルの各シグナルのアミノ酸の種類と番号まで含めた帰属を行い（例えば、Ikura, et al., Biochemistry, 30, 5498-5504（1992）を参照）、それらのデータを基に、基質やリガンドが標的生体分子に結合する部位の同定（例えば、Hensmann, et al., Protein Science, 3, 1020-1030（1994）を参照）を行う方法も開示されている。このような方法を、例えば標的分子を病因タンパク質とし、リガンドを低分子化合物として適用することにより、病因タンパク質を特異的に阻害する新規薬剤候補物質をスクリーニングしたり、スクリーニングの結果得られた化合物や他の方法によって得られた化合物が病因タンパク質のどの部位に結合しているかを同定することができ、迅速な薬剤設計に用いることができるため、産業上も非常に有用である。【０００３】
1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣ測定は、感度が比較的高いので、このような標的分子に対する基質やリガンドの結合を同定するのに試料濃度が比較的少なくて済み、測定時間も短くて済むなどの特徴が有る。しかし、標的分子が、例えば高分子量タンパク質の場合には、1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルの各シグナルが重なることが多く、想定された基質やリガンドが結合するか否かの判定、また結合する場合の結合部位の判定において、不具合が生じる場合があった。【０００４】
また、標的分子がタンパク質の場合1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣ測定において観測されるＮＭＲシグナルは、主にポリペプチド鎖の主鎖の1Ｈ−15Ｎ直接結合に由来するシグナルである。ポリペプチド鎖の主鎖においては、原子は、窒素原子、α炭素原子、カルボニル炭素原子の順番で繰り返し連結されているので、窒素原子は３原子に１つの割合でしか出現しない。すなわち、1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルにおいては、基質の結合を検出する部位が、３原子おきにしか存在しないことになる。また、1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルで検出されるシグナルは、直接結合した1Ｈと15Ｎの相関シグナルであり、これらの化学シフトの移動には相関関係があるので、２次元ＮＭＲ測定でありながら、一つのシグナルの変化は実質的に一つの原子の化学シフトの変化を見ていることになる。これらのことから、1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルを用いる方法は、実際には標的分子の限られた範囲における変化だけを検出していることになる。よって、基質やリガンドが標的分子に結合したかどうか、あるいは結合部位を正確に特定するためには、より広い部位を観測でき、しかもある程度感度の良い方法が望まれている。【０００５】
一方、タンパク質中の炭素原子を、安定同位体でＮＭＲ測定可能な13Ｃを用いて標識し、1Ｈ−13Ｃ  ＨＳＱＣ（heteronuclear single quantum coherence）スペクトルを用いる方法（例えば、特表２００４−５１０９５２号公報を参照）も開発されている。具体的には、標的分子の側鎖のメチル基の炭素原子と水素原子の間のHSQC測定を行い、さらに標的分子に想定される基質やリガンドを共存させた状態で標的分子の側鎖のメチル基の炭素原子と水素原子の間のHSQC測定を行って、両者のスペクトルを比較し、シグナルの変化を検出することにより、標的分子と基質やリガンドとの結合を検出する方法である。この方法では、標的分子の主にメチル基の炭素原子と水素原子の間のHSQC測定を行うことで、シグナルが重なることを防いでいるが、逆にメチル基を有するアミノ酸でしかHSQCシグナルを取得することができないので、標的分子と基質あるいはリガンドとの結合を限られた範囲でしか検出することができない。【０００６】
また、標識化していないタンパク質中の２つの水素原子間の２次元または多次元相関スペクトルを用いる方法（例えば、ＷＯ０３／０５４５３２号公報を参照）も開発されている。この方法では、ＮＭＲの測定感度が非常に低いこと、および高分子のタンパク質においてはスペクトルが取得できない等の問題があった。【０００７】
そこで、上記のようなＮＭＲ測定方法とは異なる、リガンドやリガンド候補化合物と標的分子との結合、および結合部位の同定を、より確実に、アミノ酸の種類などに限定されずに行える方法が求められていた。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
本発明が解決しようとする課題は、ＮＭＲ測定によりリガンドあるいはリガンド候補化合物の結合および結合部位を同定する方法において、標的分子のより広範な範囲を観測し、リガンドやリガンド候補化合物の結合および結合部位の同定をより正確に行える方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意検討した結果、標的分子であるヒトＦＫＢＰタンパク質を、15Ｎ／13Ｃ二重標識し、主鎖の窒素原子に結合した水素原子と該窒素原子が存在するアミノ酸残基の１つ前のアミノ酸残基中のカルボニル炭素原子の２次元相関スペクトル、及び主鎖の窒素原子に結合した水素原子と該窒素原子が存在するアミノ酸残基の１つ前のアミノ酸残基中のα炭素原子の相関スペクトルが取得可能な２次元ＮＭＲ測定を行い、さらに、標的分子とリガンド候補化合物として１−アセチルプロリンメチルエステル等とを共存させた状態で上記２次元ＮＭＲ測定を行って、得られた２つのシグナルを比較したところ、標的分子に、想定されるリガンド候補物質が結合するかどうか、また結合する場合には、リガンド物質が結合する標的分子の部位を精度良く同定することが可能なことを見出だした。さらに本発明者らは、標的分子であるヒトＦＫＢＰタンパク質を、15Ｎ／13Ｃ二重標識し、主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子が存在するアミノ酸残基の１つ前のアミノ酸残基中の標識された主鎖の炭素原子に結合した水素原子の２次元相関スペクトルが取得可能な２次元ＮＭＲ測定を行い、さらに、標的分子とリガンド候補化合物として１−アセチルプロリンメチルエステル等とを共存させた状態で上記２次元ＮＭＲ測定を行って、得られた２つのシグナルを比較したところ、標的分子に、想定されるリガンド候補物質が結合するかどうか、また結合する場合には、リガンド物質が結合する標的分子の部位を精度良く同定することが可能なことを見出だした。本発明は、これらの知見に基づいて成し遂げられたものである。【００１０】
即ち、本発明によれば以下の発明が提供される。
（１）  （ａ）13Ｃ／15Ｎ二重標識化された標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｂ）該標的分子と、少なくとも１つのリガンド、リガンド化合物、あるいはリガンド候補化合物とを接触させる工程、
（ｃ）工程（ｂ）の標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、及び
（ｄ）工程（ａ）で得られた２次元相関スペクトルと工程（ｃ）で得られた２次元相関スペクトルとを比較する工程を含む、標的分子とリガンドあるいはリガンド化合物との結合の検出方法。【００１１】
（２）  （ａ）13Ｃ／15Ｎ二重標識化された標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｂ）該標的分子と、リガンド候補化合物の混合物とを接触させる工程、
（ｃ）工程（ｂ）の標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｄ）工程（ａ）で得られた２次元相関スペクトルと工程（ｃ）で得られた２次元相関スペクトルとを比較する工程、
（ｅ）工程（ｄ）で該２次元相関スペクトルに違いが見出された場合、該リガンド候補化合物の混合物中の化合物を個別に標的分子と接触させ、標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、及び
（ｆ）工程（ａ）で得られた２次元相関スペクトルと工程（ｅ）で得られた２次元スペクトルとを比較する工程を含む、標的分子に結合するリガンド化合物のスクリーニング方法。【００１２】
（３）  （ａ）13Ｃ／15Ｎ二重標識化された標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｂ）該標的分子と、少なくとも１つのリガンドまたはリガンド候補化合物とを接触させる工程、
（ｃ）工程（ｂ）の標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｄ）工程（ａ）で得られた２次元相関スペクトルと工程（ｃ）で得られた２次元相関スペクトルとを比較する工程、及び
（ｅ）工程（ｄ）で該２次元相関スペクトルに違いが見出された場合、違いが見られるシグナルに相当するアミノ酸を特定する工程を含む、標的分子に結合するリガンドまたはリガンド化合物の結合部位の同定方法。【００１３】
（４）  （ａ）13Ｃ／15Ｎ二重標識化された標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｂ）該標的分子と、各種濃度のリガンドまたはリガンド化合物を接触させる工程、
（ｃ）工程（ｂ）の標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｄ）工程（ａ）で得られる２次元相関スペクトルと、工程（ｃ）で得られる２次元相関スペクトルとを比較する工程、及び
（ｅ）該２次元相関スペクトルに違いが見られた場合、該スペクトルの違いをリガンドまたはリガンド化合物濃度の関数として定量する工程を含む、標的分子とリガンドまたはリガンド化合物との解離定数の測定方法。【００１４】
（５）  標的分子がポリペプチドである、（１）〜（４）のいずれかに記載の方法。
（６）  ２次元相関スペクトルが、標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子が存在するアミノ酸残基の１つ前のアミノ酸残基中の標識されたカルボニル炭素原子の２次元相関スペクトルである、（１）〜（５）のいずれかに記載の方法。
（７）  ２次元相関スペクトルが、標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子が存在するアミノ酸残基の１つ前のアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子の２次元相関スペクトルである、（１）〜（５）のいずれかに記載の方法。【００１５】
（８）  （ａ）少なくとも主鎖の窒素及び／または炭素が標識された標的分子中の、標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｂ）該標的分子と、少なくとも１つのリガンド、リガンド化合物、あるいはリガンド候補化合物とを接触させる工程、
（ｃ）工程（ｂ）の標的分子中の標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する工程、及び
（ｄ）工程（ａ）で得られた２次元相関スペクトルと工程（ｃ）で得られた２次元相関スペクトルとを比較する工程を含む、標的分子とリガンドあるいはリガンド化合物との結合の検出方法。【００１６】
（９）  （ａ）少なくとも主鎖の窒素及び／または炭素が標識された標的分子中の、標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｂ）該標的分子と、２つ以上のリガンド候補化合物を含むリガンド候補化合物の混合物とを接触させる工程、
（ｃ）工程（ｂ）の標的分子中の、標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｄ）工程（ａ）で得られた２次元相関スペクトルと工程（ｃ）で得られた２次元相関スペクトルとを比較する工程、
（ｅ）工程（ｄ）で該２次元相関スペクトルに違いが見出された場合、該リガンド候補化合物の混合物中の化合物を個別に標的分子と接触させ、標的分子中の、標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する工程、及び
（ｆ）工程（ａ）で得られた２次元相関スペクトルと工程（ｅ）で得られた２次元スペクトルとを比較する工程を含む、標的分子に結合するリガンド化合物のスクリーニング方法。【００１７】
（１０）  （ａ）少なくとも主鎖の窒素及び／または炭素が標識された標的分子中の、標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｂ）該標的分子と、１つ以上のリガンドまたはリガンド候補化合物とを接触させる工程、
（ｃ）工程（ｂ）の標的分子中の、標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｄ）工程（ａ）で得られた２次元相関スペクトルと工程（ｃ）で得られた２次元相関スペクトルとを比較する工程、及び
（ｅ）工程（ｄ）で該２次元相関スペクトルに違いが見出された場合、違いが見られるシグナルに相当するアミノ酸を特定する工程を含む、標的分子に結合するリガンドまたはリガンド化合物の結合部位の同定方法。【００１８】
（１１）  （ａ）少なくとも主鎖の窒素及び／または炭素が標識された標的分子中の、標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｂ）該標的分子と、各種濃度のリガンドまたはリガンド化合物を接触させる工程、
（ｃ）工程（ｂ）の標的分子中の、標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する工程、
（ｄ）工程（ａ）で得られる２次元相関スペクトルと、工程（ｃ）で得られる２次元相関スペクトルを比較する工程、及び
（ｅ）該２次元相関スペクトルに違いが見られた場合、該スペクトルの違いをリガンドまたはリガンド化合物濃度の関数として定量する工程を含む、標的分子とリガンドまたはリガンド化合物との解離定数の測定方法。【００１９】
（１２）  標的分子がポリペプチドである、（８）〜（１１）のいずれかに記載の方法。
（１３）  標的分子が、主鎖の窒素及び炭素が標識された標的分子で、標識された主鎖の原子に結合した水素原子が、標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子で、標的分子中の他の水素原子が、上記窒素原子が存在するアミノ酸残基の１つ前のアミノ酸残基中の標識された主鎖の炭素原子に結合した水素原子であることを特徴とする、（８）〜（１２）のいずれかに記載の方法。【００２０】
（１４）  標的分子が、主鎖の窒素及び炭素が標識された標的分子で、標識された主鎖の原子に結合した水素原子が、標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子で、標的分子中の他の水素原子が、上記窒素原子が存在するアミノ酸残基、およびその１つ前のアミノ酸残基中の標識された主鎖の炭素原子に結合した水素原子であることを特徴とする、（８）〜（１２）のいずれかに記載の方法。【００２１】
（１５）  標的分子が、主鎖の窒素及び炭素が標識された標的分子で、標識された主鎖の原子に結合した水素原子が、標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子で、標的分子中の他の水素原子が、上記窒素原子が存在するアミノ酸残基の１つ前のアミノ酸残基中の標識された主鎖の炭素原子に結合した水素原子、および上記窒素原子が存在するアミノ酸残基の１つ前のアミノ酸残基中のβ炭素原子に結合した水素原子であることを特徴とする、（８）〜（１２）のいずれかに記載の方法、
【発明を実施するための最良の形態】
【００２２】
以下、本発明をさらに詳細に説明する。
（１）標的分子とリガンドあるいはリガンド候補化合物との結合の検出方法
本発明の第一の態様によれば、（ａ）13Ｃ／15Ｎ二重標識化された標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、（ｂ）該標的分子と、少なくとも１つのリガンド、リガンド化合物、あるいはリガンド候補化合物とを接触させる工程、（ｃ）工程（ｂ）の標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、及び（ｄ）工程（ａ）で得られた２次元相関スペクトルと工程（ｃ）で得られた２次元相関スペクトルとを比較する工程を含む、標的分子とリガンドあるいはリガンド化合物との結合の検出方法が提供される。【００２３】
本発明の第二の態様によれば、（ａ）少なくとも主鎖の窒素及び／または炭素が標識された標的分子中の、標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する工程、（ｂ）該標的分子と、少なくとも１つのリガンド、リガンド化合物、あるいはリガンド候補化合物とを接触させる工程、（ｃ）工程（ｂ）の標的分子中の標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する工程、及び（ｄ）工程（ａ）で得られた２次元相関スペクトルと工程（ｃ）で得られた２次元相関スペクトルとを比較する工程を含む、標的分子とリガンドあるいはリガンド化合物との結合の検出方法が提供される。【００２４】
「標的分子」とは、（１）アミノ酸が連結した主骨格を有し、（２）上記した本発明の第一の態様の場合には、13Ｃ／15Ｎ二重標識化することができ、また上記した本発明の第二の態様の場合には、その主鎖の炭素原子あるいは窒素原子を13Ｃあるいは15Ｎ等のＮＭＲ測定可能な標識で標識化することができ、かつ（３）後述する２次元相関スペクトルが取得できるものであれば何れのものでもよい。具体的には、ポリペプチド、タンパク質、糖タンパク質、その部分フラグメント、あるいはその誘導体、リポタンパク質、その部分フラグメント、あるいはその誘導体等が挙げられる。また、その分子量も、後述する２次元相関スペクトルが取得できる範囲であれば特に制限はないが、ポリペプチドあるいはタンパク質の場合、１０〜１０００アミノ酸残基からなるものが好ましい。また、糖タンパク質あるいはリポタンパク質等の場合には、分子量が１〜１００ｋＤ程度のものが好ましく用いられる。ポリペプチドまたはタンパク質の場合は、化学合成、組換え体を用いた合成、無細胞タンパク質合成系等如何なる方法で取得されたものでもよい。【００２５】
上記した本発明の第一の態様において、標的分子を13Ｃ／15Ｎ二重標識化する場合、標的分子中の全ての炭素原子あるいは窒素原子が上記安定同位体である必要はなく、少なくとも、後述する２次元相関スペクトルを取得するのに必要な主鎖の窒素原子が15Ｎで、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中のα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子が13Ｃであればよく、その他の部分の窒素原子および炭素原子は、15Ｎあるいは13Ｃで標識化されていてもされていなくてもよい。また、主鎖の標識化された窒素原子に結合する水素原子は1Ｈであることが必要であるが、それ以外の水素原子は、重水素等で標識化されていてもいなくてもよい。ここで、特に高分子量の標的分子の場合には、感度の低下を防ぐために、窒素原子に結合した水素原子以外の水素原子の一部または全部が重水素等で標識化されていることが好ましい。【００２６】
上記した本発明の第二の態様において、標的分子を13Ｃ及び／または15Ｎで標識化する場合、標的分子中の全ての炭素原子あるいは窒素原子が上記安定同位体である必要はなく、少なくとも、後述する２次元相関スペクトルを取得するのに必要な原子が15Ｎあるいは13Ｃであればよく、その他の部分の窒素原子および炭素原子は、15Ｎあるいは13Ｃで標識化されていてもされていなくてもよい。後述する２次元相関スペクトルを取得するのに標識が必要な原子は、少なくとも主鎖窒素及び／または炭素であり、主鎖以外の窒素または炭素に結合した水素原子を後述する２次元相関スペクトルの取得に用いる場合には、該水素原子が結合した窒素または炭素も標識されていることが好ましい。具体的には、標的分子中の主鎖の窒素原子に結合した水素原子と標的分子中の他の水素原子（以下、これを「第２の水素原子」と称することがある）の２次元相関スペクトルを取得する場合は主鎖の窒素原子と、好ましくは、第２の水素原子が結合した窒素または炭素も標識されている標的分子が用いられる。また、標的分子中の主鎖の炭素原子に結合した水素原子と標的分子中の他の水素原子の２次元相関スペクトルを取得する場合は主鎖のα炭素原子と、好ましくは、第２の水素原子が結合した窒素あるいは炭素も標識されている標的分子が用いられる。また、後述する２次元相関スペクトルを取得する水素原子は1Ｈであることが必要であるが、それ以外の水素原子は、重水素等で標識化されていてもいなくてもよい。ここで、特に高分子量の標的分子の場合には、感度の低下を防ぐために、ＮＭＲシグナルを観測する水素原子以外の水素原子の一部または全部が重水素等で標識化されていることが好ましい。【００２７】
また、標的分子に含まれるアミノ酸のうち、上記窒素原子および炭素原子の15Ｎあるいは13Ｃによる標識化が必要なアミノ酸は、リガンドまたはリガンド化合物が結合するアミノ酸が既に同定されていたり、または想定されている場合には、そのアミノ酸のみの窒素原子及び／または炭素原子が15Ｎあるいは13Ｃによって標識化（以下、これを「標識化」と称することがある）されていればよく、それ以外のアミノ酸については標識化されていてもされていなくてもよい。下述する２次元ＮＭＲ測定において、主鎖の窒素原子に結合する水素原子と、該窒素原子が存在するアミノ酸残基に隣接するアミノ酸残基の炭素原子または該窒素原子が存在するアミノ酸残基に隣接するアミノ酸残基の炭素原子に結合した水素原子との２次元相関スペクトルを取得する場合には、リガンドあるいはリガンド化合物が結合するアミノ酸およびそれに隣接するアミノ酸が上記標識化をされている必要がある。また、リガンドまたはリガンド化合物が結合するアミノ酸が既に同定されていたり、または想定されていない場合には、全てのアミノ酸について上記標識化がされていることが好ましい。このように標識化された標的分子を、本明細書中では、「標識化標的分子」と称することがある。【００２８】
標的分子の標識化は、上記の窒素原子および炭素原子が標識化される方法で、通常用いられる方法により行うことができる。また、市販の標識化アミノ酸（Cambridge Isotope Laboratories社製等）を用いることができる。標的分子がポリペプチドあるいはタンパク質である場合には、標識化および非標識化アミノ酸を基質としてタンパク質合成を行なうことにより標識化標的分子を製造する方法が好ましく用いられる。タンパク質合成系は、安定同位体を用いたタンパク質合成であるため、無細胞タンパク質合成系が好ましく用いられ、特にコムギ胚芽抽出液を用いる無細胞タンパク質合成系が好ましく用いられる。コムギ胚芽抽出液としては、例えば、Sawasaki,et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA., 97, 559-564(2000)、特開２０００−２３６８９９６号公報、特開２００２−１２５６９３号公報、特開２００２−２０４６８９号公報等に従って調製されたものや、あるいはPROTEIOSTM（TOYOBO社製）等の市販のもの等が挙げられる。【００２９】
コムギ胚芽抽出液を用いたタンパク質の合成は、通常用いられる方法で行うことができるが、具体的には、例えば、Sawasaki,et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA., 97, 559-564(2000)に記載の方法等が挙げられる。この場合、標識化基質および非標識化基質の濃度としては、０．０５〜０．４ｍＭの範囲が適当である。【００３０】
コムギ胚芽抽出液を上記標識化標的分子の合成に用いる場合、該抽出液中に含まれるアミノ酸代謝酵素による影響を考慮する必要がある。コムギ胚芽抽出液中のアミノ酸代謝酵素によれば、アラニンがアスパラギン酸およびグルタミン酸に代謝され、アスパラギン酸がグルタミン酸に代謝され、さらにグルタミン酸がアスパラギン酸またはグルタミンに代謝される。そこで、標的分子中のアラニン、アスパラギン酸、グルタミン酸を選択的に標識化する場合には、それぞれのアミノ酸代謝酵素の活性を阻害して、かつ該タンパク質合成系における翻訳反応を阻害しない条件下で標識化標的分子を合成する必要がある。具体的には、アラニンあるいはアスパラギン酸を選択的に標識化する場合、無細胞タンパク質合成系の翻訳反応液に、トランスアミナーゼ阻害剤を、タンパク質合成活性を阻害しない濃度範囲で存在させる方法等が用いられる。トランスアミナーゼの具体例としては、アミノオキシ酢酸等が用いられ、翻訳反応液中の好ましい濃度範囲は０．０１〜１０ｍＭである。また、グルタミン酸を選択的に標識化する場合には、無細胞タンパク質合成系の翻訳反応液に、トランスアミナーゼ阻害剤およびグルタミン合成阻害剤を、タンパク質合成活性を阻害しない濃度範囲で存在させる方法等が用いられる。トランスアミナーゼの具体例としては、アミノオキシ酢酸等が用いられ、翻訳反応液中の好ましい濃度範囲は０．０１〜１０ｍＭである。また、グルタミン合成酵素の具体例は、例えば、Ｌ−メチオニンサルフォキシイミン等が用いられ、翻訳反応液中の好ましい濃度範囲は０．０１〜２０ｍＭである。【００３１】
かくして合成された標識化標的分子は、これを翻訳反応液から回収し、必要であれば適当な方法により精製することにより取得することができる。しかし、コムギ胚芽抽出液で合成された標的分子をＮＭＲ測定に用いる場合には、精製は必ずしも必要なく、それ自体公知の方法により適当な濃度に濃縮して、かつ緩衝液をＮＭＲ測定用に交換することで十分なことが多い。濃縮方法としては、例えば、限外濾過濃縮装置を用いる方法が挙げられる。また、緩衝液の交換は、市販のスピンカラムを用いる方法等が好ましく用いられる。【００３２】
本発明の第一の態様の方法では、まず（ａ）13Ｃ／15Ｎ二重標識化された標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトル（以下、これを「1Ｈ−13Ｃ相関スペクトル」あるいは「1Ｈ−13Ｃ相関シグナル」と称することがある）を測定する。標的分子中の標識された窒素原子に結合した水素原子（以下、これを「アミドプロトン」と称することがある）と２次元相関スペクトルを取得する炭素原子は、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子のいずれでもよい。用いられるＮＭＲ測定方法は、上記アミドプロトンおよび炭素原子の相関スペクトルが取得できるものであれば如何なるものでもよいが、シグナルが多いと、それらが重なりあってしまい、解析が困難になるので、１つのアミドプロトンに対しては、１つまたは２つの炭素原子の相関スペクトルが得られるＮＭＲ測定方法が好ましく、さらには１つのアミドプロトンに対して１つの炭素原子の相関スペクトルが得られるＮＭＲ測定方法が最も好ましい。具体例を以下に示す。【００３３】
アミドプロトンと、１つ前のアミノ酸残基のカルボニル炭素原子の２次元相関スペクトルを取得する方法としては、Ｈ（Ｎ）ＣＯ法（Cavanagh, W. J., et al., Protein NMR Spectroscopy, Principles and Practice. Academic Press (1996)に記載のNHCO３次元測定法において、Ｎの展開時間を省略した２次元測定：図１）等が用いられる。また、アミドプロトンと同一アミノ酸残基中のカルボニル炭素原子、及び１つの前のアミノ酸残基中のカルボニル炭素原子の２次元相関スペクトルを取得する方法としてＨ（ＮＣＡ）ＣＯ法（Cavanagh, W. J., et al., Protein NMR Spectroscopy, Principles and Practice. Academic Press (1996)に記載のHN(ＣＡ)ＣＯ３次元測定法において、Ｎの展開時間を省略した２次元測定：図１）が用いられる。また、アミドプロトンと、１つの前のアミノ酸残基のα炭素原子の２次元相関スペクトルを取得する方法としてはＨ（ＮＣＯ）ＣＡ法（Cavanagh, W. J., et al., Protein NMR Spectroscopy, Principles and Practice. Academic Press (1996)に記載のHN(CO)CA３次元測定法において、Ｎの展開時間を省略した２次元測定：図１）等が用いられる。また、アミドプロトンと同一アミノ酸残基中のα炭素原子、及び１つ前のアミノ酸残基中のα炭素原子の２次元相関スペクトルを取得する方法としてＨ（Ｎ）ＣＡ法（Cavanagh, W. J., et al., Protein NMR Spectroscopy, Principles and Practice. Academic Press (1996)に記載のHNCA３次元測定法において、Ｎの展開時間を省略した２次元測定：図１）、アミドプロトンと同一アミノ酸残基中のα炭素原子とβ炭素原子、また１つ前のアミノ酸残基中のα炭素原子とβ炭素原子との２次元相関スペクトルを取得する方法としてＨ（Ｎ）ＣＡＣＢ法（Cavanagh, W. J., et al., Protein NMR Spectroscopy, Principles and Practice. Academic Press (1996)に記載のHNCACB３次元測定法において、Ｎの展開時間を省略した２次元測定：図１）、及びＣＢＣＡ（Ｎ）Ｈ法（Cavanagh, W. J., et al., Protein NMR Spectroscopy, Principles and Practice. Academic Press (1996)に記載のＣＢＣＡＮＨ３次元測定法において、Ｎの展開時間を省略した２次元測定：図１）等が用いられる。さらに、アミドプロトンと１つ前のアミノ酸残基中のα炭素原子とβ炭素原子との２次元相関スペクトルを取得する方法としては、Ｈ（ＮＣＯ）ＣＡＣＢ法（Cavanagh, W. J., et al., Protein NMR Spectroscopy, Principles and Practice. Academic Press (1996)に記載のHN(CO)CACB３次元測定法において、Ｎの展開時間を省略した２次元測定：図１）、及びＣＢＣＡ（ＣＯＮ）Ｈ法（Cavanagh, W. J., et al., Protein NMR Spectroscopy, Principles and Practice. Academic Press (1996)に記載のCBCA(CO)NH３次元測定法において、Ｎの展開時間を省略した２次元測定：図１）等が用いられる。また、アミドプロトンと同一アミノ酸残基中のβ炭素原子及び１つ前のアミノ酸残基中のβ炭素原子の２次元相関スペクトルを取得する方法としてはＨ（ＮＣＡ）ＣＢ法（Yamazaki, T. et al., J. Am. Chem. Soc. 116 (1994) 11655-11666に記載のHNCACB３次元測定法において、Ｎの展開時間を省略した２次元測定：図１）等が用いられる。さらにアミドプロトンと１つ前のアミノ酸残基中のβ炭素原子との２次元相関スペクトルを取得する方法としてはＨ（ＮＣＯＣＡ）ＣＢ法（Yamazaki, T. et al., J. Am. Chem. Soc. 116 (1994) 11655-11666に記載のHN(COCA)CB３次元測定法において、Ｎの展開時間を省略した２次元測定：図１）等が用いられる。高分子量の蛋白質の場合は、上記全ての測定方法にＴＲＯＳＹ（Pervushin, K. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 94 (1997) 12366-12371）を組み合わせたＴＲＯＳＹ−Ｈ（Ｎ）ＣＯ、ＴＲＯＳＹ−Ｈ（ＮＣＡ）ＣＯ、ＴＲＯＳＹ−Ｈ（ＮＣＯ）ＣＡ、ＴＲＯＳＹ−Ｈ（Ｎ）ＣＡ、ＴＲＯＳＹ−Ｈ（Ｎ）ＣＡＣＢ、ＴＲＯＳＹ−ＣＢＣＡ（Ｎ）Ｈ、ＴＲＯＳＹ−Ｈ（ＮＣＯ）ＣＡＣＢ、ＴＲＯＳＹ−ＣＢＣＡ（ＣＯ）ＮＨ、ＴＲＯＳＹ−Ｈ（ＮＣＡ）ＣＢ、ＴＲＯＳＹ−Ｈ（ＮＣＯＣＡ）ＣＢ法等を用いる事が望ましい。これらの測定方法のうち、Ｈ（Ｎ）ＣＯ法、Ｈ（ＮＣＯ）ＣＡ法、Ｈ（Ｎ）ＣＡ法が好ましく、Ｈ（Ｎ）ＣＯ法が最も好ましい。【００３４】
また、本発明の第二の態様の方法では、まず（ａ）少なくとも主鎖の窒素及び／または炭素が標識された標的分子中の、標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子との２次元相関スペクトル（以下、これを「1Ｈ−1Ｈ相関スペクトル」あるいは「1Ｈ−1Ｈ相関シグナル」と称することがある）を測定する。「標的分子中の標識された主鎖の原子に結合した水素原子」とは、主鎖の窒素原子に結合した水素原子（以下、これを「アミドプロトン」と称することがある）、標識された主鎖のα炭素原子に結合した水素原子（以下、これを「α水素原子」と称することがある）の何れでもよい。また、「標的分子中の他の水素原子」とは、標的分子中のいずれの水素原子でもよい。具体的には、例えば、現在ＮＭＲにより２次元相関スペクトルが取得できる範囲である、上記窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子やβ炭素原子に結合した水素原子等が挙げられる。この場合、該水素原子が結合している窒素原子あるいは炭素原子が上記標識化されていることが好ましい。【００３５】
用いられるＮＭＲ測定方法は、上記水素原子間の２次元相関スペクトルが取得できるものであれば如何なるものでもよいが、シグナルが多いと、それらが重なりあってしまい、解析が困難になるので、１つの標識された主鎖の原子に結合した水素原子に対しては、１つまたは２つの水素原子の相関スペクトルが得られるＮＭＲ測定方法が好ましく、さらには１つの標識された主鎖の原子に結合した水素原子に対して１つの水素原子の相関スペクトルが得られるＮＭＲ測定方法が最も好ましい。具体例を以下に示す。【００３６】
アミドプロトンと、１つ前のアミノ酸残基のα水素原子の２次元相関スペクトルを取得する方法としては、ＨＡ（ＣＡＣＯＮ）Ｈ法（Boucher, W. et al., J. Am. Chem. Soc. 114 (1992) 2262-2264に記載のＨＣＡ（ＣＯ）ＮＨ４次元測定法において、Ｃα及びＮの展開時間を省略した２次元測定：図１）またはＨ（ＮＣＯＣＡ）ＨＡ法（Kay, L. E. et al., J. Magn. Reson. 98 (1992) 443-450に記載のＮＨ（ＣＯ）ＣＡＨＡ４次元測定法において、Ｃα及びＮの展開時間を省略した２次元測定：図１）等が用いられる。また、アミドプロトンと同一アミノ酸残基中のα水素原子、及び１つ前のアミノ酸残基中のα水素原子の２次元相関スペクトルを取得する方法としてＨＡ（ＣＡＮ）Ｈ法（Kay, L. E. et al., J. Magn. Reson. 91 (1991) 84-92に記載のＨＡ（ＣＡ）ＮＨ３次元測定法において、Ｎの展開時間を省略した２次元測定：図１）またはＨ（ＮＣＡ）ＨＡ法（Clubb, R. T. et al., J.Biomol. NMR2 (1992) 203-210に記載のＨＮ（ＣＡ）ＨＡ３次元測定法において、Ｎの展開時間を省略した２次元測定：図１）等が用いられる。【００３７】
また、アミドプロトンと１つ前のアミノ酸残基中のα水素原子、及びβ炭素原子に結合した水素原子（以下、これを「β水素原子」と称することがある）との２次元相関スペクトルを取得する方法としては、ＨＢＨＡ（ＣＢＡＣＡＣＯＮ）Ｈ法（Grzesiek, S., J. Biomol. NMR3 (1993) 185-204に記載のＨＢＨＡ（ＣＢＣＡＣＯ）ＮＨ３次元測定法において、Ｎの展開時間を省略した２次元測定：図１）等が用いられる。さらに、アミドプロトンと同一アミノ酸残基中のα水素原子とβ水素原子、また１つ前のアミノ酸残基中のα水素原子とβ水素原子との２次元相関スペクトルを取得する方法としてＨＢＨＡ（ＣＢＣＡＮ）Ｈ法（Wang. A.C. et al., J.Magn. Reson. B105 (1994) 196-198に記載のＨＢＨＡ（ＣＢＣＡ）ＮＨ３次元測定法において、Ｎの展開時間を省略した２次元測定：図１）等が用いられる。さらに、アミドプロトンと１つ前のアミノ酸残基中のα水素原子、β水素原子及びその他の水素原子との２次元相関スペクトルを取得する方法としては、Ｈ（ＣＣＣＯＮ）Ｈ法（Sattler, M.et al., Prog. Nuc. Magn. Reson. Spectroscopy 34(1999)93-158に記載のＨ（ＣＣＣＯ）ＮＨ３次元測定法において、Ｎの展開時間を省略した２次元測定：図１）等が用いられる。高分子量の蛋白質の場合は、上記の測定方法にＴＲＯＳＹ（Pervushin, K. et al.,Proc. Natl. Acad. Sci. USA 94(1997)12366-12371）を組み合わせた測定法を用いる事が望ましい。これらの測定方法のうち、Ｈ（ＮＣＯＣＡ）ＨＡ法またはＨＡ（ＣＡＣＯＮ）Ｈ法が最も好ましい。この測定法によれば、標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子が存在するアミノ酸残基の１つ前のアミノ酸残基中の標識された主鎖の炭素に結合した水素原子との２次元相関スペクトルが取得される。さらには、上記ＨＡ（ＣＡＮ）Ｈ法またはＨ（ＮＣＡ）ＨＡ法が好ましい。この測定法によれば、標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、上記窒素原子が存在するアミノ酸残基、およびその１つ前のアミノ酸残基中の標識された主鎖の炭素原子に結合した水素原子との２次元相関スペクトルが取得できる。【００３８】
上記ＮＭＲ測定において、用いられる緩衝液および標的分子の濃度等は通常ＮＭＲ測定法において用いられている範囲で適宜選択することができる。具体的には、例えば、ＮＭＲ測定用緩衝液としては、２５ｍＭリン酸カリウムｐＨ６．５、５０ｍＭ ＮａＣｌ、５ｍＭ ＤＴＴのもの等が好ましく用いられる。該緩衝液に標的分子を適当な濃度で溶解することによりＮＭＲ測定用試料として用いる。標的分子の濃度はＮＭＲ測定が行い得る範囲であれば特に制限はないが、具体的には、例えば１０μＭ〜１０ｍＭの範囲が好ましい。【００３９】
本発明では、次に（ｂ）該標的分子と、少なくとも１つのリガンド、あるいはリガンド候補化合物とを接触させる工程を行なう。「リガンド」とは、上記標的分子が生体内分子である場合、これに生体内で結合している物質またはその誘導体を意味する。また、「リガンド候補化合物」とは、標的分子に結合して、標的分子の機能を制御する可能性のある化合物を意味する。このような可能性のある化合物であれば如何なる構造を有するものでもよい。「リガンド化合物」とは、標的分子に結合してその機能を制御する活性のある化合物を意味する。リガンドあるいはリガンド化合物は、必ずしも１分子で標的分子に結合するものでなくてもよく、同一のまたは異なる２分子以上が融合して標的分子と複合体を形成するものでもよい。２つ以上の分子が融合して標的分子と複合体を形成するものである場合、これらと標的分子との結合状態を解析して新たなリガンド化合物の設計を行なうことができる。具体的には、例えば、特許第３０３２３０１号に記載の方法等が用いられる。【００４０】
標的分子とリガンド、リガンド化合物、あるいはリガンド候補化合物を接触させる方法は、これらが結合し得る条件下であれば如何なる方法でもよい。具体的には、上記標的分子を適当濃度で含むＮＭＲ測定用緩衝液にリガンド、リガンド化合物、あるいはリガンド候補化合物を添加する方法等が挙げられる。リガンド、リガンド化合物、あるいはリガンド候補化合物の濃度は、標的分子と該物質との関係により適宜選択することができるが、例えば１０μＭ〜１００ｍＭ程度の範囲が好ましい。標的分子に接触させるリガンド、リガンド化合物、あるいはリガンド候補化合物は、少なくとも１つである。また、リガンド候補化合物の混合物を標的分子と接触させれば一度に多数の化合物の標的分子への結合を検出することができる。リガンド候補化合物の混合物とは、例えば、ある化合物の誘導体群や、医薬品等の候補化合物ライブラリー等複数の化合物が混在しているもの等を用いることができる。【００４１】
本発明の第一の態様の方法では、次に、（ｃ）上記のＮＭＲ測定用試料中の標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程を行う。ＮＭＲ測定方法は、上記のとおりである。また、本発明の第二の態様の方法では、次に、（ｃ）上記のＮＭＲ測定用試料中の標的分子中の標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、該標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する工程を行なう。ＮＭＲ測定方法は、上記のとおりである。【００４２】
本発明の第一の態様の方法では、次に、（ｄ）上記工程（ａ）で得られた1Ｈ−13Ｃ相関スペクトルと上記工程（ｃ）で得られた1Ｈ−13Ｃ相関スペクトルとを比較する工程を行う。また、本発明の第二の態様の方法では、次に、（ｄ）上記工程（ａ）で得られた1Ｈ−1Ｈ相関スペクトルと、上記工程（ｃ）で得られた1Ｈ−1Ｈ相関スペクトルとを比較する工程を行なう。ここで、比較する２つの２次元相関スペクトルは、上記のＮＭＲ測定法のうち、同一の測定方法により測定されたものである必要がある。1Ｈ−13Ｃ相関スペクトルまたは1Ｈ−1Ｈ相関スペクトルの比較は、２つのスペクトルの相違が検出できる方法であれば如何なるものでもよい。具体的には２つのスペクトルを重ねあわせ、目視により相違を検出する方法等が用いられるし、スペクトル中のシグナルの化学シフトを一般的なＮＭＲ解析ソフトウェアを用いて同定し、その値を比較しても良い。【００４３】
具体的な1Ｈ−13Ｃ相関スペクトルを用いて説明すると、例えば、15Ｎ／13Ｃ標識化標的分子（ヒトＦＫＢＰタンパク質）について、上記Ｈ（Ｎ）ＣＯ法によりＮＭＲ測定した２次元相関スペクトルは、図４に示すとおりである。標的分子に結合することがわかっている１−アセチルブロリンメチルエステルを接触させた後に、同じＨ（Ｎ）ＣＯ法によりＮＭＲ測定して得られた２次元相関スペクトルを図４に重ね合わせたものが図８である。重ね合わせることにより両スペクトルを比較すると、図８に示されるように３つのシグナルにおいて相違があることがわかる。このように、両スペクトルにおいて相違が見られた場合、標的分子に接触させたリガンドまたはリガンド候補化合物と標的分子との結合を検出することができる。【００４４】
具体的な1Ｈ−1Ｈ相関スペクトルを用いて説明すると、例えば、15Ｎ／13Ｃ標識化標的分子（ヒトＦＫＢＰタンパク質）について、上記ＨＡ（ＣＡＣＯＮ）Ｈ法によりＮＭＲ測定した２次元相関スペクトルは、図２０に示すとおりである。標的分子に結合することがわかっている１−アセチルブロリンメチルエステルを接触させた後に、同じＨＡ（ＣＡＣＯＮ）Ｈ法によりＮＭＲ測定して得られた２次元相関スペクトルを図２０に重ね合わせたものが図２４である。重ね合わせることにより両スペクトルを比較すると、図２４に示されるように相違があることがわかる。このように、両スペクトルにおいて相違が見られた場合、標的分子に接触させたリガンドまたはリガンド候補化合物と標的分子との結合を検出することができる。【００４５】
（２）標的分子に結合するリガンド化合物のスクリーニング方法
本発明の別の側面によれば、（ａ）13Ｃ／15Ｎ二重標識化された標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、（ｂ）該標的分子と、リガンド候補化合物の混合物とを接触させる工程、（ｃ）工程（ｂ）の標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、（ｄ）工程（ａ）で得られた２次元相関スペクトルと工程（ｃ）で得られた２次元相関スペクトルとを比較する工程、（ｅ）工程（ｄ）で該２次元相関スペクトルに違いが見出された場合、該リガンド候補化合物の混合物中の化合物を個別に標的分子と接触させ、標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、及び（ｆ）工程（ａ）で得られた２次元相関スペクトルと工程（ｅ）で得られた２次元スペクトルとを比較する工程を含む、標的分子に結合するリガンド化合物のスクリーニング方法が提供される。【００４６】
さらに本発明によれば、（ａ）少なくとも主鎖の窒素及び／または炭素が標識された標的分子中の標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、（ｂ）該標的分子と、２つ以上のリガンド候補化合物を含むリガンド候補化合物の混合物とを接触させる工程、（ｃ）工程（ｂ）の標的分子中の標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、（ｄ）工程（ａ）で得られた２次元相関スペクトルと工程（ｃ）で得られた２次元相関スペクトルとを比較する工程、（ｅ）工程（ｄ）で該２次元相関スペクトルに違いが見出された場合、該リガンド候補化合物の混合物中の化合物を個別に標的分子と接触させ、標的分子中の標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する工程、及び（ｆ）工程（ａ）で得られた２次元相関スペクトルと工程（ｅ）で得られた２次元相関スペクトルとを比較する工程を含む、標的分子に結合するリガンド化合物のスクリーニング方法が提供される。【００４７】
「リガンド化合物」とは、標的分子に結合して標的分子の機能を制御する活性を有する化合物を意味する。リガンド化合物のスクリーニング方法における上記工程（ａ）〜（ｄ）は、（１）に説明したものである。ここで「リガンド候補化合物の混合物」は、如何なる化合物の混合物であってもよいが、同一のＮＭＲ測定の条件で標的分子に結合し得るものの集まりであることが必要である。また、工程（ｅ）で上記リガンド候補化合物群に含まれる個々の化合物について標的分子との結合を検出するので、個々に分離し得る集団であることも必要である。【００４８】
上記の工程（ｅ）においては、工程（ｄ）で該1Ｈ−13Ｃ相関スペクトルに相違が見られた場合、工程（ｂ）のリガンド候補化合物の混合物中の個々の化合物を個別に標的分子と接触させ、標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定するか、あるいは、工程（ｄ）で該1Ｈ−1Ｈ相関スペクトルに相違が見られた場合、工程（ｂ）のリガンド候補化合物の混合物中の個々の化合物を個別に標的分子と接触させ、標的分子中の標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する。標的分子との接触方法およびＮＭＲ測定方法は、上述のとおりである。【００４９】
さらに工程（ｆ）においては、工程（ａ）で得られた1Ｈ−13Ｃ相関スペクトルと工程（ｅ）で得られた1Ｈ−13Ｃ相関スペクトルとを比較する工程を行なうか、あるいは工程（ａ）で得られた1Ｈ−1Ｈ相関スペクトルと工程（ｅ）で得られた1Ｈ−1Ｈ相関スペクトルとを比較する工程を行なう。２つの1Ｈ−13Ｃ相関スペクトルの比較方法及び２つの1Ｈ−1Ｈ相関スペクトルの比較方法は上述のとおりである。この比較により1Ｈ−13Ｃ相関スペクトルまたは1Ｈ−1Ｈ相関スペクトルに相違が見られた場合、標的分子と接触させたリガンド候補化合物はリガンド化合物として選択される。【００５０】
（３）標的分子に結合するリガンドの結合部位の同定方法
本発明のさらに別の側面によれば、（ａ）13Ｃ／15Ｎ二重標識化された標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、（ｂ）該標的分子と、少なくとも１つのリガンドまたはリガンド候補化合物とを接触させる工程、（ｃ）工程（ｂ）の標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、（ｄ）工程（ａ）で得られた２次元相関スペクトルと工程（ｃ）で得られた２次元相関スペクトルとを比較する工程、及び（ｅ）工程（ｄ）で該２次元相関スペクトルに違いが見出された場合、違いが見られるシグナルに相当するアミノ酸を特定する工程を含む、標的分子に結合するリガンドまたはリガンド化合物の結合部位の同定方法が提供される。【００５１】
本発明によればさらに、（ａ）少なくとも主鎖の窒素及び／または炭素が標識された標的分子中の標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する工程、（ｂ）該標的分子と、少なくとも１つのリガンドまたはリガンド候補化合物とを接触させる工程、（ｃ）工程（ｂ）の標的分子中の標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する工程、（ｄ）工程（ａ）で得られた２次元相関スペクトルと工程（ｃ）で得られた２次元相関スペクトルとを比較する工程、及び（ｅ）工程（ｄ）で該２次元相関スペクトルに違いが見出された場合、違いが見られるシグナルに相当するアミノ酸を特定する工程を含む、標的分子に結合するリガンドまたはリガンド化合物の結合部位の同定方法が提供される。【００５２】
上記方法の工程（ａ）〜（ｄ）は（１）で説明したとおりである。但し、標的分子は、上記ＮＭＲ測定を行なった場合に得られる1Ｈ−13Ｃ相関スペクトルまたは1Ｈ−1Ｈ相関スペクトルの各シグナルがどのアミノ酸に由来するものであるかが帰属されている必要がある。工程（ｄ）で1Ｈ−13Ｃ相関スペクトルまたは1Ｈ−1Ｈ相関スペクトルに違いが見出されたアミノ酸は、標的分子とリガンドまたはリガンド化合物との結合に関連していると決定することができる。各シグナルの帰属は、上記ＮＭＲ測定を行なう前でも後でもよい。標的分子の各シグナルの帰属方法はそれ自体公知の通常用いられる方法で行うことができるが、以下に説明する方法で行えば効率良く帰属付けを行なうことができる。【００５３】
例えば、以下のように、1Ｈ−15Ｎ相関スペクトルの各シグナルの帰属を決定した後に、これをもとに、標的分子のアミノ酸のアミドプロトンと13Ｃの相関シグナルを決定することができる。具体的には、（ｉ）蛋白質のアミドプロトンと15Ｎの相関シグナルについて下述の方法によりその帰属を決定し、（ii）標的分子のアミノ酸配列上で、同定しようとするアミノ酸のα炭素原子またはカルボニル炭素原子が13Ｃで標識されたものを調製し、（iii）該蛋白質について、同定しようとするアミノ酸中のアミドプロトンと、同じアミノ酸の13Ｃで標識された炭素原子との相関シグナルを取得し、（iv）上記（i）のアミドプロトンと15Ｎの相関シグナルと（iii）のアミドプロトンと13Ｃに共通するアミドプロトンの化学シフトが同じであることを指標として、アミドプロトンと13Ｃとの相関シグナルを該アミドプロトンと15Ｎの相関シグナルに対応付けて、アミドプロトンと13Ｃとの相関シグナルの帰属を決定する方法である。【００５４】
また、例えば、以下のように、1Ｈ−15Ｎ相関スペクトルの各シグナルの帰属を決定した後に、これをもとに標的分子の標識された主鎖の原子に結合した水素原子と標的分子の他の水素原子間の相関シグナルを決定することができる。具体的には、（ｉ）蛋白質のアミドプロトンと15Ｎの相関シグナルについて下述の方法によりその帰属を決定し、（ii）標的分子の主鎖のアミドプロトンと、標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを取得して、（iii）上記（ｉ）のアミドプロトンと15Ｎの相関シグナルと（ii）のアミドプロトンと水素原子間の２次元相関スペクトルに共通する、アミドプロトンの化学シフトが同じであることを指標として、アミドプロトンと他の水素原子間の相関シグナルを、該アミドプロトンと15Ｎの相関シグナルに対応付けて、アミドプロトンと他の水素原子との相関シグナルの帰属を決定する方法である。【００５５】
同定しようとするアミノ酸とは、１種類でもよく、複数種類でもよく、また、全部のアミノ酸でもよいが、後述するシグナルの対応付けでシグナルが重ならずに対応付けが可能な範囲であれば何れでもよい。まず、1Ｈ−15Ｎ相関スペクトルの各シグナルの帰属の決定方法を以下に詳細に説明する。【００５６】
シグナルの帰属を行う標的分子は、その主要骨格であるアミノ酸配列が同定されていることが必要である。まず、シグナルの帰属を決定しようとするアミノ酸について、標的分子のアミノ酸配列上で該アミノ酸に隣接するどちらか一方のアミノ酸を特定し、該隣接アミノ酸についてはそのα炭素原子およびカルボニル炭素原子が13Ｃで、また主鎖の窒素原子が15Ｎで二重標識されていて（以下、これを「二重標識化アミノ酸」と称することがある）、それ以外のアミノ酸については、主鎖の窒素原子のみが15Ｎで標識されたアミノ酸からなるもの（以下、これを「13Ｃ／15Ｎ二重標識化標的分子」と称することがある）を調製する。標的分子がポリペプチドまたはタンパク質の場合には、該隣接アミノ酸についてはそのα炭素原子およびカルボニル炭素原子が13Ｃで、また主鎖の窒素原子が15Ｎで二重標識されていて、それ以外のアミノ酸については、主鎖の窒素原子のみが15Ｎで標識されたアミノ酸を基質として、標的分子を合成することで調製することができる。【００５７】
次に、上記の13Ｃ／15Ｎ二重標識化標的分子について、13Ｃ／15Ｎ二重標識化アミノ酸に隣接するアミノ酸残基のアミドプロトンと主鎖の窒素原子の２次元相関スペクトルのみ（以下、これを「1Ｈ−15Ｎ相関シグナル」と称することがある）が取得可能なＮＭＲ解析を行う。具体的には、ＨＮ（ＣＯ）法（Cavanagh, W. J., et al., Protein Spectroscopy, Principles. Press(1996)に記載のＨＮＣＯ３次元測定法において、ＣＯの展開時間を省略した２次元測定）等が挙げられる。ＨＮ（ＣＯ）測定により得られたシグナルは、二重標識化アミノ酸のＣ末側に隣接するアミノ酸残基のものである。ここでは、二重標識化アミノ酸のＣ端側に隣接するアミノ酸の1Ｈ−15Ｎ相関シグナルのみを取得できるＨＮ（ＣＯ）測定を行っているが、二重標識化アミノ酸のＮ端側に隣接するアミノ酸の1Ｈ−15Ｎ相関シグナルのみを取得できる測定法が有れば、その測定法を用いてもよい。【００５８】
これらのシグナルの中から、目的アミノ酸のシグナルを選択する方法としては、目的アミノ酸の主鎖の窒素原子のみが15Ｎで標識されたアミノ酸を基質として目的タンパク質を合成し、該タンパク質についてＮＭＲ測定により1Ｈ−15Ｎ相関シグナルを取得して、ＨＮ（ＣＯ）測定と比較することにより行うことができる。【００５９】
上記の同定しようとするアミノ酸の1Ｈ−15Ｎ相関シグナルは、以下の方法で取得してもよい。まず、同定しようとするアミノ酸は13Ｃ／15Ｎ二重標識化アミノ酸、その他は15Ｎ標識化アミノ酸を基質として目的タンパク質を合成し、該タンパク質について二重標識化アミノ酸の1Ｈ−15Ｎ相関シグナルと、それに隣接するアミノ酸残基の1Ｈ−15Ｎ相関シグナルの両方が検出されるＮＭＲ測定、具体的にはＨＮ（ＣＡ）法（Cavanagh, W. J., et al., Protein Spectroscopy, Principles. Press(1996)に記載のＨＮＣＡ３次元測定法において、ＣＡの展開時間を省略した２次元測定）等で測定する。また、同じタンパク質についてＨＮ（ＣＯ）法で測定してシグナルを取得し、ＨＮ（ＣＡ）法で得られたシグナルと比較する。ここで、重なっていないシグナルが目的アミノ酸を含む同じアミノ酸のシグナルである。また、二重標識化アミノ酸を２種類以上用いて合成した目的タンパク質を用いても、上記方法と同様の方法を用いて、アミノ酸番号の帰属が可能である。この場合には、帰属の手順が若干複雑にはなるが、試料の数を２０種類より減らすことが可能である。【００６０】
ここで、同定しようとするアミノ酸と隣接するアミノ酸の組み合わせがその目的タンパク質配列中に１つしか存在しないようなアミノ酸残基についてのみ帰属を行えば良い場合には、同定しようとするアミノ酸に隣接するアミノ酸の標識は、必ずしも13Ｃ／15Ｎの二重の標識が必要ではない。すなわち、そのカルボニル炭素原子が13Ｃ標識されていればよい。この場合には、目的タンパク質として、さらに同定しようとするアミノ酸を含む複数のアミノ酸の主鎖の窒素原子が15Ｎで標識されているものを合成する。合成されたタンパク質をＨＮ（ＣＯ）法等で測定してシグナルを取得し、これらのシグナルの組み合わせと、同定しようとするアミノ酸の主鎖の窒素原子だけを15Ｎで標識化したタンパク質の1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルと比較することによって、上記と同様にシグナルを帰属することができる。この方法を用いることによれば、カルボニル炭素原子が13Ｃ標識されていて、同定しようとするアミノ酸の主鎖の窒素原子が15Ｎで標識されているものを合成し、このＨＮ（ＣＯ）法等により測定して得られたシグナルを取得していく従来の方法に比べて、標識タンパク質の種類が少なくてすむという効果がある。上記の方法は、これを繰り返すことによって、標的分子中の全てのアミノ酸に対してＮＭＲで得られるシグナルの帰属を行うことができるが、同定しようとするアミノ酸と隣接するアミノ酸の組み合わせがその目的タンパク質配列中に１つしか存在しない場合にのみ用いることができる方法である。【００６１】
標的分子中に同定しようとするアミノ酸と隣接するアミノ酸の組み合わせが２つ以上存在する場合、以下に示す方法により帰属を行うことができる。まず、（ｉ）標的分子のアミノ酸配列上で同定しようとするアミノ酸に隣接するどちらか一方のアミノ酸について、その特定の原子とアミドプロトンとの相関シグナルを上記の方法で帰属を決定する。次に、（ii）帰属が決定されたアミノ酸残基中の特定の原子とアミドプロトンとの相関シグナルと、（iii）同定しようとするアミノ酸中の（ｉ）と同じ特定の原子とアミドプロトンとの相関シグナルを、（iv）それらの間に存在する原子とアミドプロトンとの相関シグナルを取得して、共通する原子の化学シフトが同じであることをもとに対応付けていくことにより、帰属が決定されたアミノ酸に隣接するアミノ酸の相関シグナルであることを同定して帰属を決定することができる。【００６２】
具体的には、まず、（ａ）標的分子のアミノ酸配列上で、同定しようとするアミノ酸に隣接するどちらか一方のアミノ酸について、上記の方法でその帰属を決定する。次に（ｂ）同定しようとするアミノ酸に隣接するアミノ酸のα炭素原子およびカルボニル炭素原子が13Ｃで、また主鎖の窒素原子が15Ｎで二重標識され、さらに少なくとも同定しようとするアミノ酸の主鎖の窒素原子が15Ｎで標識された標的分子を調製する。（ｃ）得られた二重標識化標的分子について、二重標識されたアミノ酸残基の13Ｃとアミドプロトンとの２次元相関スペクトルと、二重標識されたアミノ酸残基の13Ｃと隣接する同定しようとするアミノ酸残基のアミドプロトンとの２次元相関スペクトルが取得可能なＮＭＲ測定、例えば、Ｈ（Ｎ）ＣＡ法等で測定し、シグナルを取得する。さらに、（ｄ）同定しようとするアミノ酸残基と、上記で二重標識したアミノ酸残基のアミドプロトンと主鎖の窒素原子の相関シグナルをＨ（ＮＣＯ）ＣＡ法（Cavanagh, W. J., et al., Protein Spectroscopy, Principles. Press(1996)に記載のＨＮ（ＣＯ）ＣＡ３次元測定法において、Ｎの展開時間を省略した２次元測定）等で取得する。【００６３】
次に、（ｅ）（ｄ）で取得したシグナル中の帰属が決定されているアミノ酸のアミドプロトンの化学シフトと同一の化学シフトを有するシグナルを（ｃ）で得られたシグナルの中から選択する。さらに、（ｆ）選択されたシグナルの13Ｃの化学シフトと同一の化学シフトを有するシグナルを（ｃ）で得られたシグナルの中から選択し、（ｇ）選択されたシグナルのアミドプロトンの化学シフトと同一の化学シフトを有するシグナルを（ｄ）で得られたシグナルの中から選択する。ここで、選択されたシグナルが、もとのシグナルに帰属されるアミノ酸と隣接するアミノ酸のシグナルであると決定される。【００６４】
上記のシグナルの帰属法における標識方法についてであるが、上記標識法ではアミノ酸Ｃ（任意のアミノ酸）だけを13Ｃ／15Ｎ二重標識化しその他のアミノ酸は15Ｎ標識化した目的タンパク質を調製したが、実際に測定シグナルを与えるのはアミノ酸Ｃ及びその一つ後ろにあるアミノ酸残基だけであるから、目的タンパク質のアミノ酸配列から、アミノ酸残基Ｃの後ろにあるアミノ酸の種類のみを15Ｎ標識化してもＨＮ（ＣＯ）、ＨＮ（ＣＡ）、ＨＮ（ＣＯ）ＣＡに関して、残りのアミノ酸全てを15Ｎ標識化したものと全く同じスペクトルが得られる。また、13Ｃ／15Ｎ二重標識化するアミノ酸の種類は一タンパク質試料に一種類である必要はなく、適宜数種類のアミノ酸を13Ｃ／15Ｎ二重標識化し、他のアミノ酸を15Ｎ標識化しても、シグナルの帰属は可能である。この場合は、必要な標識タンパク質が２０種類より減らすことができるが、解析が若干複雑になるので、必要に応じて標識の仕方を変更すればよい。【００６５】
本発明の一態様によれば、上記の方法を用いることにより、タンパク質中の1Ｈ−15Ｎ相関スペクトルの各シグナルが帰属されるが、上記の標識を行った標的分子に対して、1Ｈ−13Ｃ相関シグナルを取得する。具体的には、Ｈ（Ｎ）ＣＯ、Ｈ（ＮＣＯ）ＣＡ法等で測定を行う。例えば、Ｈ（Ｎ）ＣＯでは二重標識化アミノ酸と次のアミノ酸残基のアミドプロトンと二重標識化アミノ酸のカルボニル炭素との相関シグナル相関シグナルが、Ｈ（ＮＣＯ）ＣＡでは、二重標識化アミノ酸の次の残基のアミドプロトンと二重標識化アミノ酸のα炭素原子との相関シグナルが得られる。これらのシグナルのアミドプロトンの化学シフトに注目し、すでに帰属されている1Ｈ−15Ｎシグナルのアミドプロトンのうち同一の化学シフトをもつシグナルを選択して帰属を参照することにより、Ｈ（Ｎ）ＣＯ、Ｈ（ＮＣＯ）ＣＡの測定で得られるシグナルの帰属が容易に行える。Ｈ（Ｎ）ＣＯ、Ｈ（ＮＣＯ）ＣＡの測定だけではなく、Ｈ（ＮＣＡ）ＣＯ、Ｈ（Ｎ）ＣＡ等の測定を行っても、全く同様の方法により、シグナルの帰属が可能である。【００６６】
上記の方法は、1Ｈ−15Ｎシグナルの帰属を行った後に、1Ｈ−13Ｃシグナルの帰属を行う方法であるが、帰属の方法はこれに限らない。例えば、上記と同じ標識を行った目的タンパク質のＨ（Ｎ）ＣＡとＨ（ＮＣＯ）ＣＡのスペクトルの組み合わせ、あるいはＨ（Ｎ）ＣＯとＨ（ＮＣＡ）ＣＯのスペクトルの組み合わせを順次取得し、前後の残基のα炭素原子またはカルボニル炭素の化学シフトとアミドプロトンの化学シフトの相関関係を上記と同様の方法によって順次連結していくことによっても、α炭素原子或いはカルボニル炭素原子とアミドプロトンの相関シグナルの帰属を行うことが可能である。【００６７】
本発明の別の態様によれば、上記の方法を用いることにより、タンパク質中の1Ｈ−15Ｎ相関スペクトルの各シグナルが帰属されるが、上記の標識を行った標的分子に対して、1Ｈ−1Ｈ相関シグナルを取得する。具体的には、上述したＨ（ＮＣＯＣＡ）ＨＡ、ＨＡ（ＣＡＣＯＮ）Ｈ、ＨＢＨＡ（ＣＢＣＡＣＯＮ）Ｈ法等で測定を行う。例えば、Ｈ（ＮＣＯＣＡ）ＨＡやＨＡ（ＣＡＣＯＮ）Ｈではアミドプロトンと該アミドプロトンが結合している窒素原子が存在する１つ前のアミノ酸残基のα水素原子との相関シグナルが、ＨＢＨＡ（ＣＢＣＡＣＯＮ）Ｈではアミドプロトンと該アミドプロトンが結合している窒素原子が存在する１つ前のアミノ酸残基のα水素原子及びβ水素原子との相関シグナルが得られる。これらのシグナルのアミドプロトンの化学シフトに注目し、すでに帰属されている1Ｈ−15Ｎシグナルのアミドプロトンのうち同一の化学シフトをもつシグナルを選択して帰属を参照することにより、Ｈ（ＮＣＯＣＡ）ＨＡ、ＨＡ（ＣＡＣＯＮ）Ｈ、ＨＢＨＡ（ＣＢＣＡＣＯＮ）Ｈの測定で得られるシグナルの帰属が容易に行える。Ｈ（ＮＣＯＣＡ）ＨＡ、ＨＡ（ＣＡＣＯＮ）Ｈ、ＨＢＨＡ（ＣＢＣＡＣＯＮ）Ｈの測定だけではなく、Ｈ（ＮＣＡ）ＨＡ、ＨＡ（ＣＡＮ）Ｈ、ＨＢＨＡ（ＣＢＣＡＮ）Ｈ等の測定を行っても、全く同様の方法により、シグナルの帰属が可能である。【００６８】
上記の方法は、1Ｈ−15Ｎシグナルの帰属を行った後に、1Ｈ−1Ｈシグナルの帰属を行う方法であるが、帰属の方法はこれに限らない。例えば、上記と同じ標識を行った目的タンパク質のＨ（ＮＣＯＣＡ）ＨＡまたはＨＡ（ＣＡＣＯＮ）ＨとＨ（ＮＣＡ）ＨＡまたはＨＡ（ＣＡＮ）Ｈのスペクトルの組み合わせ、あるいはＨＢＨＡ（ＣＢＣＡＣＯＮ）ＨとＨＢＨＡ（ＣＢＣＡＮ）Ｈのスペクトルの組み合わせを順次取得し、前後の残基のα水素原子またはβ水素原子の化学シフトとアミドプロトンの化学シフトの相関関係を上記と同様の方法によって順次連結していくことによっても、α水素原子或いはβ水素原子とアミドプロトンの相関シグナルの帰属を行うことが可能である。【００６９】
（４）標的分子とリガンドまたはリガンド化合物との解離定数の測定方法
本発明のさらに別の側面によれば、（ａ）13Ｃ／15Ｎ二重標識化された標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、（ｂ）該標的分子と、各種濃度のリガンドまたはリガンド化合物を接触させる工程、（ｃ）工程（ｂ）の標的分子中の標識された主鎖の窒素原子に結合した水素原子と、該窒素原子と同一または隣接するアミノ酸残基中の標識されたα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子との２次元相関スペクトルを測定する工程、（ｄ）工程（ａ）で得られる２次元相関スペクトルと、工程（ｃ）で得られる２次元相関スペクトルとを比較する工程、及び（ｅ）該２次元相関スペクトルに違いが見られた場合、該スペクトルの違いをリガンドまたはリガンド化合物濃度の関数として定量する工程を含む、標的分子とリガンドまたはリガンド化合物との解離定数の測定方法が提供される。【００７０】
本発明によればさらに、（ａ）少なくとも主鎖の窒素及び／または炭素が標識された標的分子中の標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する工程、（ｂ）該標的分子と、各種濃度のリガンドあるいはリガンド化合物を接触させる工程、（ｃ）工程（ｂ）の標的分子中の標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中の他の水素原子間の２次元相関スペクトルを測定する工程、（ｄ）工程（ａ）で得られる２次元相関スペクトルと、工程（ｃ）で得られる２次元相関スペクトルを比較する工程、及び（ｅ）該２次元相関スペクトルに違いが見られた場合、該スペクトルの違いをリガンドまたはリガンド化合物濃度の関数として定量する工程を含む、標的分子とリガンドまたはリガンド化合物との解離定数の測定方法が提供される。【００７１】
工程（ａ）〜（ｄ）までは上記（１）に記載のとおりであるが、工程（ｂ）において、異なる濃度のリガンド、またはリガンド化合物と標的分子を接触させたものについて同じＮＭＲ測定を行なう。リガンドまたはリガンド化合物濃度は適当に異なる濃度のものを接触させるが、最も高くは、飽和する濃度で接触させたものを調製してＮＭＲ測定を行なうことが好ましい。飽和濃度では飽和の極限化学シフト値（δsat）を測定する。飽和濃度のリガンドまたはリガンド化合物を接触させた標的分子について上記ＮＭＲ測定を行なった場合、標的分子と該リガンドあるいはリガンド化合物との解離定数は下記数式１で算出される。【００７２】
【化１】
2006082963.tif 000002
【００７３】
上記式中、［Ｐ］0は標的分子の総モル濃度であり、［Ｌ］0はリガンドあるいはリガンド化合物の総モル濃度であり、ｘは下記数式２で算出される。【００７４】
【化２】
2006082963.tif 000003
【００７５】
式中、δfreeは遊離種の化学シフトであり、δobsは観察された化学シフト値であり、Δは飽和の場合の極限化学シフト値とリガンドまたはリガンド化合物を含まない標的分子の化学シフト値との差である。【００７６】
このように測定した解離定数を測定データに対するベストフィットが標準の曲線あてはめ統計法を用いて得られるまでその値を変化させて測定する。δsatが既知でない場合には、ＫＤ及びδsatを変化させて同じ曲線当てはめ法にかける。さらに、このような解離定数の測定により、より好ましいリガンドの誘導体あるいはリガンド化合物を選択することもできる。【００７７】
以下、実施例を挙げて本発明を詳細に説明するが、本発明の範囲はこれらの実施例により限定されるものではない。
【実施例】
【００７８】
実施例１ ヒトＦＫＢＰタンパク質とリガンドとの結合の検出
（１）鋳型ｍＲＮＡの調製
ヒトＦＫＢＰタンパク質（アミノ酸配列は、配列表の配列番号３に示される）の遺伝子（Ｇｅｎｂａｎｋ  ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．Ｍ５４８８１）は、Ｈｕｍａｎ  Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ  Ｑｕｉｃｋ  Ｃｌｏｎｅ  ｃＤＮＡ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社製）を鋳型として、配列番号１および２に記載の塩基配列からなるプライマーを用いてＰＣＲ法を用いて増幅し、Ｇｌｕｔａｔｈｉｏｎｅ  Ｓ−ｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ（Ａｍｅｒｓｈａｍ社製）との融合タンパク質となるように連結後、プラスミドｐＥＵ３ｂ（Ｓａｗａｓａｋｉ，Ｔ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ．，９９（２３），１４６５２−１４６５７（２００２））のＳｐｅ ＩとＳａｌ Ｉの部位に導入した。１６ｍＭのマグネシウムイオン存在下で上記プラスミドを鋳型として、Ｇｌｕｔａｔｈｉｏｎｅ  Ｓ−ｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅとヒトＦＫＢＰの融合タンパク質のｍＲＮＡをＳＰ６  ＲＮＡ  ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（Ｐｒｏｍｅｇａ社製）で転写し、合成した。【００７９】
（２）均一に13Ｃ／15Ｎ二重標識化されたアミノ酸を基質に用いた目的タンパク質合成
上記（１）で合成したｍＲＮＡを１００μｇ／５０μｌに成るように濃縮し、コムギ胚芽抽出液（ＰｒｏｔｅｉｏｓTM、ＴＯＹＯＢＯ社製）と混合した（４．８ｍｌ）。その混合液を、２０種類すべてのアミノ酸が13Ｃ／15Ｎ二重標識化された（Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ  Ｉｓｏｔｏｐｅ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社製）透析緩衝液に対して、２日間反応を行い、透析緩衝液を交換し、さらに３日間のタンパク質合成反応を行った。反応液を、あらかじめ緩衝液（５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ  ｐＨ７．２、５ｍＭ  Ｄｉｔｈｉｏｔｈｒｅｉｔｏｌ、１００ｍＭ  ＮａＣｌ）で平衡化されたＧｌｕｔａｔｈｉｏｎｅ  Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ  ４Ｂ（Ａｍｅｒｓｈａｍ社製）に結合させ、ＰｒｅＳｃｉｓｓｉｏｎ  Ｐｒｏｔｅａｓｅ（Ａｍｅｒｓｈａｍ社製）で融合タンパク質を切断後、溶出することにより精製ヒトＦＫＢＰタンパク質溶液を得た。このタンパク質溶液をミリポア社製のＣｅｎｔｒｉｃｏｎ−３限外濾過濃縮装置で８００μｌまで濃縮し、ＮＭＲ測定用緩衝液（２５ｍＭ  リン酸カリウムｐＨ６．５、５０ｍＭ  ＮａＣｌ、５ｍＭ  ＤＴＴ）に置換後、最終的に２５０μｌまで濃縮してＮＭＲ測定試料とした。この濃縮液中のヒトＦＫＢＰタンパク質は７０μＭとなった。【００８０】
（３）ＮＭＲ測定
ＮＭＲ測定には、Ｂｒｕｋｅｒ社製Ａｖａｎｃｅ−５００スペクトロメーターを用い、測定試料には磁場の安定性を保つためのＮＭＲロック用に５％Ｄ2Ｏを添加し、測定を行った。測定温度は３０℃とした。【００８１】
アミドプロトン、主鎖の窒素原子、カルボニル炭素原子、α炭素原子の化学シフトの帰属は、文献（Ｒｏｓｅｎ  ｅｔ  ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，３０，４７７４−４７８９；Ｘｕ  ｅｔ  ａｌ．，Ｂｉｏｐｏｌｙｍｅｒｓ，３３，５３５−５５０（１９９３））の値を参考とし、ＨＮＣＡ、ＨＮ（ＣＯ）ＣＡ、ＨＮ（ＣＯ）、ＨＮ（ＣＡ）ＣＯの測定を行った。【００８２】
薬剤を作用させる前のＦＫＢＰタンパク質の２次元相関スペクトルとして、13Ｃ／15Ｎ二重標識したヒトＦＫＢＰタンパク質の1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトル（図３）、Ｈ（Ｎ）ＣＯスペクトル（Cavanagh, W.J., et al., Protein NMR Spectroscopy. Principles and Practice, Academic Press (1996)に記載のＮＨＣＯ３次元測定法において、Ｎの展開時間を省略した２次元測定）（図４）、Ｈ（ＮＣＯ）ＣＡスペクトル（Cavanagh, W.J., et al., Protein NMR Spectroscopy. Principles and Practice, Academic Press (1996)に記載のＮＨ（ＣＯ）ＣＡ３次元測定法において、Ｎの展開時間を省略した２次元測定）（図５）を測定した。【００８３】
（４）ＦＫＢＰタンパク質と１−アセチルプロリンメチルエステルとの複合体の形成およびＮＭＲ測定
次に、ＦＫＢＰタンパク質に結合することがわかっている１−アセチルプロリンメチルエステル（ＡＣＰＭ）を１ｍＭになるようにＦＫＢＰタンパク質に混合し、1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルを測定した。ＡＣＰＭ存在下と非存在下における1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルを重ね合わせたものを図６に示した。この２つのスペクトルを比較し、移動が見られるシグナルに対応する残基は、図７の立体構造上で示すように、ある特定の領域に集中しており、この領域がＡＣＰＭの結合部位であることが同定された。【００８４】
次に、ＡＣＰＭ存在下で、Ｈ（Ｎ）ＣＯ２次元相関スペクトルを測定し、非存在下におけるスペクトルと重ね合わせたものを図８に示した。図８においてシグナルの移動が見られた残基は1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルにおいてシグナルの移動が見られた残基とほぼ一致していた。【００８５】
また、ＡＣＰＭ存在下で、Ｈ（ＮＣＯ）ＣＡ２次元相関スペクトルを測定し、非存在下におけるスペクトルと重ね合わせたものを図９に示した。図９においてシグナルの移動が見られた残基は1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルにおいてシグナルの移動が見られた残基とほぼ一致していた。【００８６】
（５）ＦＫＢＰタンパク質と１−ホルミルピペリジンとの複合体の形成およびＮＭＲ測定
同様にして、ＦＫＢＰタンパク質に結合することがわかっている１−ホルミルピペリジン（ＦＯＰＩ）を１ｍＭになるようにＦＫＢＰタンパク質に混合し、1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルを測定した。ＦＯＰＩ存在下と非存在下における1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルを重ね合わせたものを図１０に示した。この２つのスペクトルを比較し、移動が見られるシグナルに対応する残基は、図１１の立体構造上で示すように、ある特定の領域に集中しており、この領域がＦＯＰＩの結合部位であることが同定された。【００８７】
次に、ＦＯＰＩ存在下で、Ｈ（Ｎ）ＣＯ２次元相関スペクトルを測定し、非存在下におけるスペクトルと重ね合わせたものを図１２に示した。図１２においてシグナルの移動が見られた残基は1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルにおいてシグナルの移動が見られた残基とほぼ一致していた。【００８８】
また、ＦＯＰＩ存在下で、Ｈ（ＮＣＯ）ＣＡ２次元相関スペクトルを測定し、非存在下におけるスペクトルと重ね合わせたものを図１３に示した。図１３においてシグナルの移動が見られた残基は1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルにおいてシグナルの移動が見られた残基とほぼ一致していた。【００８９】
（６）ＦＫＢＰタンパク質と１−ピペリジンカロボキサミドとの複合体の形成およびＮＭＲ測定
さらに、ＦＫＢＰタンパク質に結合することがわかっている１−ピペリジンカロボキサミド（ＰＩＣＡ）を１ｍＭになるようにＦＫＢＰタンパク質に混合し、1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルを測定した。ＰＩＣＡ存在下と非存在下における1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルを重ね合わせたものを図１４に示した。この２つのスペクトルを比較し、移動が見られるシグナルに対応する残基は、図１５の立体構造上で示すように、ある特定の領域に集中しており、この領域がＰＩＣＡの結合部位であることが同定された。【００９０】
次に、ＰＩＣＡ存在下で、Ｈ（Ｎ）ＣＯ２次元相関スペクトルを測定し、非存在下におけるスペクトルと重ね合わせたものを図１６に示した。図１６においてシグナルの移動が見られた残基は1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルにおいてシグナルの移動が見られた残基とほぼ一致していた。【００９１】
また、ＰＩＣＡ存在下で、Ｈ（ＮＣＯ）ＣＡ２次元相関スペクトルを測定し、非存在下におけるスペクトルと重ね合わせたものを図１７に示した。図１７においてシグナルの移動が見られた残基は、1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルにおいてシグナルの移動が見られた残基とほぼ一致していた。【００９２】
以上のことより、Ｈ（Ｎ）ＣＯあるいはＨ（Ｎ）ＣＡ２次元測定法を用いることにより、標的分子に基質や化合物が結合したかどうかを同定すること、および結合する場合に、標的分子のどの部位に結合するのかを同定することが可能であることがわかった。【００９３】
実施例２ ヒトＦＫＢＰタンパク質とリガンドとの結合の検出
（１）鋳型ｍＲＮＡの調製
ヒトＦＫＢＰタンパク質（アミノ酸配列は、配列表の配列番号３に示される）の遺伝子（Ｇｅｎｂａｎｋ  ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．Ｍ５４８８１）は、Ｈｕｍａｎ  Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ  Ｑｕｉｃｋ  Ｃｌｏｎｅ  ｃＤＮＡ（Ｃｌｏｎｔｅｃｈ社製）を鋳型として、配列番号１および２に記載の塩基配列からなるプライマーを用いてＰＣＲ法を用いて増幅し、Ｇｌｕｔａｔｈｉｏｎｅ  Ｓ−ｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅ（Ａｍｅｒｓｈａｍ社製）との融合タンパク質となるように連結後、プラスミドｐＥＵ３ｂ（Ｓａｗａｓａｋｉ，  Ｔ．，Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ．，９９（２３），１４６５２−１４６５７（２００２））のＳｐｅ ＩとＳａｌ Ｉの部位に導入した。１６ｍＭのマグネシウムイオン存在下で上記プラスミドを鋳型として、Ｇｌｕｔａｔｈｉｏｎｅ  Ｓ−ｔｒａｎｓｆｅｒａｓｅとヒトＦＫＢＰの融合タンパク質のｍＲＮＡをＳＰ６  ＲＮＡ  ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（Ｐｒｏｍｅｇａ社製）で転写し、合成した。【００９４】
（２）均一に13Ｃ／15Ｎ二重標識化されたアミノ酸を基質に用いた目的タンパク質合成
上記（１）で合成したｍＲＮＡを１００μｇ／５０μｌに成るように濃縮し、コムギ胚芽抽出液（ＰｒｏｔｅｉｏｓTM、ＴＯＹＯＢＯ社製）と混合した（４．８ｍｌ）。その混合液を、２０種類すべてのアミノ酸が13Ｃ／15Ｎ二重標識化された（Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ  Ｉｓｏｔｏｐｅ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社製）透析緩衝液に対して、２日間反応を行い、透析緩衝液を交換し、さらに３日間のタンパク質合成反応を行った。反応液を、あらかじめ緩衝液（５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ  ｐＨ７．２、５ｍＭ  Ｄｉｔｈｉｏｔｈｒｅｉｔｏｌ、１００ｍＭ  ＮａＣｌ）で平衡化されたＧｌｕｔａｔｈｉｏｎｅ  Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ  ４Ｂ（Ａｍｅｒｓｈａｍ社製）に結合させ、ＰｒｅＳｃｉｓｓｉｏｎ  Ｐｒｏｔｅａｓｅ（Ａｍｅｒｓｈａｍ社製）で融合タンパク質を切断後、溶出することにより精製ヒトＦＫＢＰタンパク質溶液を得た。このタンパク質溶液をミリポア社製のＣｅｎｔｒｉｃｏｎ−３限外濾過濃縮装置で８００μｌまで濃縮し、ＮＭＲ測定用緩衝液（２５ｍＭ  リン酸カリウムｐＨ６．５、５０ｍＭ  ＮａＣｌ、５ｍＭ  ＤＴＴ）に置換後、最終的に２５０μｌまで濃縮してＮＭＲ測定試料とした。この濃縮液中のヒトＦＫＢＰタンパク質は７０μＭとなった。【００９５】
（３）ＮＭＲ測定
ＮＭＲ測定には、Ｂｒｕｋｅｒ社製Ａｖａｎｃｅ−５００スペクトロメーターを用い、測定試料には磁場の安定性を保つためのＮＭＲロック用に５％Ｄ2Ｏを添加し、測定を行った。測定温度は３０℃とした。アミドプロトン、主鎖の窒素原子、カルボニル炭素原子、α炭素原子の化学シフトの帰属は、文献（Ｒｏｓｅｎ  ｅｔ  ａｌ．，Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，３０，４７７４−４７８９；Ｘｕ  ｅｔ  ａｌ．，Ｂｉｏｐｏｌｙｍｅｒｓ，３３，５３５−５５０（１９９３））の値を参考とし、ＨＡ（ＣＡＣＯＮ）Ｈ、ＨＡ（ＣＡＮ）Ｈの測定を以下のように行った。【００９６】
薬剤（リガンド化合物）を作用させる前のＦＫＢＰタンパク質の２次元相関スペクトルとして、13Ｃ／15Ｎ二重標識したヒトＦＫＢＰタンパク質の1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトル（図１９）、ＨＡ（ＣＡＣＯＮ）Ｈスペクトル（Ｂｏｕｃｈｅｒ，Ｗ．ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．１１４（１９９２）２２６２−２２６４に記載のＨＣＡ（ＣＯ）ＮＨ４次元測定法において、Ｃα及びＮの展開時間を省略した２次元測定）（図２０）、ＨＡ（ＣＡＮ）Ｈ法（Ｋａｙ，Ｌ．Ｅ．ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｍａｇｎ．Ｒｅｓｏｎ．９１（１９９１）８４−９２に記載のＨＡ（ＣＡ）ＮＨ３次元測定法において、Ｎの展開時間を省略した２次元スペクトル）（図２１）を測定した。【００９７】
（４）ＦＫＢＰタンパク質と１−アセチルプロリンメチルエステルとの複合体の形成およびＮＭＲ測定
次に、ＦＫＢＰタンパク質に結合することがわかっている１−アセチルプロリンメチルエステル（ＡＣＰＭ）を１ｍＭになるようにＦＫＢＰタンパク質に混合し、1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルを測定した。ＡＣＰＭ存在下と非存在下における1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルを重ね合わせたものを図２２に示した。この２つのスペクトルを比較し、移動が見られるシグナルに対応するアミノ酸残基を確認した。図中、移動が見られたシグナルをアミノ酸番号とアミノ酸の名前（Ｖ２４、Ｔ２７、Ｇ２８、Ｆ４８、Ｌ５０、Ｇ５１、Ｑ５３、Ｉ５６、Ｒ５７、Ｅ６０、Ｅ６１、Ｇ６２、Ａ６４、Ｑ６５、Ｙ８０、Ｉ９０、Ｆ９９、Ｄ１００）で示した。これらの、シグナルが移動したアミノ酸残基は、図２３の立体構造上で示すように、ある特定の領域に集中しており、この領域がＡＣＰＭの結合部位であることが同定された。【００９８】
次に、ＡＣＰＭ存在下で、ＨＡ（ＣＡＣＯＮ）Ｈ２次元相関スペクトルを測定し、非存在下におけるスペクトルと重ね合わせたものを図２４に示した。図２４に示した両スペクトルを比較し、移動が見られるシグナルに対応するアミノ酸残基を確認した。図中、移動が見られるシグナルをアミノ酸番号とアミノ酸の名前（Ｖ２４、Ｔ２７、Ｇ２８、Ｆ４８、Ｌ５０、Ｇ５１、Ｑ５３、Ｉ５６、Ｒ５７、Ｅ６０、Ｅ６１、Ｇ６２、Ａ６４、Ｑ６５、Ｙ８０、Ｉ９０、Ｆ９９、Ｄ１００）で示した。図２４においてシグナルの移動が見られた残基は1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルにおいてシグナルの移動が見られた残基とほぼ一致していた。【００９９】
また、ＡＣＰＭ存在下で、ＨＡ（ＣＡＮ）Ｈ２次元相関スペクトルを測定し、非存在下におけるスペクトルと重ね合わせたものを図２５に示した。図２５に示した両スペクトルを比較し、移動が見られるシグナルに対応するアミノ酸残基を確認した。図中、大文字で書かれたアミノ酸番号に対応するシグナルは、残基内のアミドプロトンとα水素原子の相関シグナル、小文字で書かれたアミノ酸番号に対応するシグナルはアミドプロトンとそのアミドプロトンの属する残基の一つ手前の残基に属するα水素原子との相関シグナルを表している。ここで、移動が見られるシグナルをアミノ酸番号とアミノ酸の名前（Ｖ２４、Ｔ２７、Ｇ２８、Ｆ４８、Ｌ５０、Ｇ５１、Ｑ５３、Ｉ５６、Ｒ５７、Ｅ６０、Ｅ６１、Ｇ６２、Ａ６４、Ｑ６５、Ｙ８０、Ｉ９０、Ｆ９９、Ｄ１００）で示した。図２５においてシグナルの移動が見られた残基は1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルにおいてシグナルの移動が見られた残基と一致していた。【０１００】
（５）ＦＫＢＰタンパク質と１−ホルミルピペリジンとの複合体の形成およびＮＭＲ測定
同様にして、ＦＫＢＰタンパク質に結合することがわかっている１−ホルミルピペリジン（ＦＯＰＩ）を１ｍＭになるようにＦＫＢＰタンパク質に混合し、1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルを測定した。ＦＯＰＩ存在下と非存在下における1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルを重ね合わせたものを図２６に示した。この２つのスペクトルを比較し、移動が見られるシグナルに対応する残基を確認した。図中、移動が見られるシグナルをアミノ酸番号とアミノ酸の名前（Ｇ１９、Ｖ２４、Ｙ２６、Ｔ２７、Ｇ２８、Ｓ３８、Ｒ４２、Ｋ４７、Ｆ４８、Ｌ５０、Ｇ５１、Ｋ５２、Ｑ５３、Ｅ５４、Ｖ５５、Ｉ５６、Ｒ５７、Ｗ５９、Ｅ６０、Ｅ６１、Ｇ６２、Ｖ６３、Ｑ６５、Ｍ６６、Ｑ７０、Ｔ７５、Ｉ７６、Ｙ８０、Ｖ９８、Ｆ９９、Ｄ１００、Ｌ１０３）で示した。これらは、図２７の立体構造上で示すように、ある特定の領域に集中しており、この領域がＦＯＰＩの結合部位であることが同定された。【０１０１】
次に、ＦＯＰＩ存在下で、ＨＡ（ＣＡＣＯＮ）Ｈ２次元相関スペクトルを測定し、非存在下におけるスペクトルと重ね合わせたものを図２８に示した。この２つのスペクトルを比較し、移動が見られたシグナルに対応する残基を確認した。図中、移動が見られるシグナルをアミノ酸番号とアミノ酸の名前（Ｇ１９、Ｖ２４、Ｙ２６、Ｔ２７、Ｇ２８、Ｓ３８、Ｒ４２、Ｋ４７、Ｆ４８、Ｌ５０、Ｇ５１、Ｑ５３、Ｅ５４、Ｖ５５、Ｉ５６、Ｒ５７、Ｇ５８、Ｅ６０、Ｅ６１、Ｇ６２、Ｑ６５、Ｍ６６、Ｔ７５、Ｉ７６、Ｙ８０、Ｖ９８、Ｆ９９、Ｄ１００、Ｌ１０３）で示した。図２８においてシグナルの移動が見られた残基は1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルにおいてシグナルの移動が見られた残基とほぼ一致していた。【０１０２】
また、ＦＯＰＩ存在下で、ＨＡ（ＣＡＮ）Ｈ２次元相関スペクトルを測定し、非存在下におけるスペクトルと重ね合わせたものを図２９に示した。図２９に示した両スペクトルを比較し、移動が見られるシグナルに対応するアミノ酸残基を確認した。図中、大文字で書かれたアミノ酸番号に対応するシグナルは、残基内のアミドプロトンとα水素原子の相関シグナル、小文字で書かれたアミノ酸番号に対応するシグナルはアミドプロトンとそのアミドプロトンの属する残基の一つ手前の残基に属するα水素原子との相関シグナルを表している。ここで、移動が見られるシグナルをアミノ酸番号とアミノ酸の名前（ｇ１９、Ｖ２４、Ｙ２６、Ｔ２７、ｇ２８、Ｓ３８、Ｒ４２、Ｋ４７、Ｆ４８、Ｌ５０、ｇ５１、Ｑ５３、Ｅ５４、Ｖ５５、Ｉ５６、Ｒ５７、Ｅ６０、Ｅ６１、ｇ６２、Ｖ６３、Ｑ６５、Ｍ６６、Ｔ７５、Ｉ７６、Ｙ８０、Ｖ９８、Ｆ９９、Ｄ１００、Ｌ１０３）で示した。図２９においてシグナルの移動が見られた残基は1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルにおいてシグナルの移動が見られた残基と一致していた。【０１０３】
（６）ＦＫＢＰタンパク質と１−ピペリジンカロボキサミドとの複合体の形成およびＮＭＲ測定
さらに、ＦＫＢＰタンパク質に結合することがわかっている１−ピペリジンカロボキサミド（ＰＩＣＡ）を１ｍＭになるようにＦＫＢＰタンパク質に混合し、1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルを測定した。ＰＩＣＡ存在下と非存在下における1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルを重ね合わせたものを図３０に示した。この２つのスペクトルを比較し、移動が見られるシグナルに対応する残基を確認した。図中、移動が見られるシグナルをアミノ酸番号とアミノ酸の名前（Ｇ１９、Ｖ２４、Ｙ２６、Ｔ２７、Ｇ２８、Ｅ３１、Ｓ３８、Ｒ４２、Ｋ４７、Ｆ４８、Ｌ５０、Ｇ５１、Ｋ５２、Ｑ５３、Ｖ５５、Ｉ５６、Ｒ５７、Ｗ５９、Ｅ６１、Ｇ６２、Ｖ６３、Ａ６４、Ｑ６５、Ｍ６６、Ｉ７６、Ｉ９１、Ｆ９９）で示した。図３０においてシグナルの移動が見られたアミノ酸残基は、図３１の立体構造上で示すように、ある特定の領域に集中しており、この領域がＰＩＣＡの結合部位であることが同定された。【０１０４】
次に、ＰＩＣＡ存在下で、ＨＡ（ＣＡＣＯＮ）Ｈ２次元相関スペクトルを測定し、非存在下におけるスペクトルと重ね合わせたものを図３２に示した。図３２においてシグナルの移動が見られた残基を確認した。図中、移動が見られるシグナルをアミノ酸番号とアミノ酸の名前（Ｇ１９、Ｖ２４、Ｙ２６、Ｔ２７、Ｇ２８、Ｅ３１、Ｓ３８、Ｒ４２、Ｋ４７、Ｆ４８、Ｌ５０、Ｇ５１、Ｋ５２、Ｑ５３、Ｖ５５、Ｉ５６、Ｒ５７、Ｗ５９、Ｅ６１、Ｇ６２、Ａ６４、Ｑ６５、Ｍ６６、Ｉ７６、Ｉ９１、Ｆ９９）で示した。図３２においてシグナルの移動が見られたアミノ酸残基は、1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルにおいてシグナルの移動が見られた残基と一致していた。【０１０５】
また、ＰＩＣＡ存在下で、ＨＡ（ＣＡＮ）Ｈ２次元相関スペクトルを測定し、非存在下におけるスペクトルと重ね合わせたものを図３３に示した。図３３においてシグナルの移動が見られた残基を確認した。図中、大文字で書かれたアミノ酸番号に対応するシグナルは、残基内のアミドプロトンとα水素原子の相関シグナル、小文字で書かれたアミノ酸番号に対応するシグナルはアミドプロトンとそのアミドプロトンの属する残基の一つ手前の残基に属するα水素原子との相関シグナルを表している。ここで、移動が見られるシグナルをアミノ酸番号とアミノ酸の名前（ｇ１９、Ｖ２４、Ｙ２６、Ｔ２７、ｇ２８、Ｅ３１、Ｓ３８、Ｒ４２、Ｋ４７、Ｆ４８、Ｌ５０、ｇ５１、Ｋ５２、Ｑ５３、Ｖ５５、Ｉ５６、Ｒ５７、Ｅ６１、ｇ６２、Ｖ６３、Ａ６４、Ｑ６５、Ｍ６６、Ｉ７６、Ｉ９１、Ｆ９９）で示した。図３３においてシグナルの移動が見られたアミノ酸残基は、1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルにおいてシグナルの移動が見られた残基と一致していた。【０１０６】
以上のことより、ＨＡ（ＣＡＣＯＮ）ＨあるいはＨＡ（ＣＡＮ）Ｈ２次元測定法を用いることにより、標的分子に基質や化合物が結合したかどうかを同定すること、および結合する場合に、標的分子のどの部位に結合するのかを同定することが可能であることがわかった。
【産業上の利用可能性】
【０１０７】
本発明の標的分子とリガンドまたはリガンド候補化合物との結合の検出方法等は、その検出に用いる２次元ＮＭＲ測定が、主鎖の窒素原子に結合した水素原子と炭素原子との２次元相関スペクトル、又は標識された主鎖の原子に結合した１つの水素原子と、標的分子中の他の１つの水素原子との２次元相関スペクトルを取得するものである。主鎖の原子、即ち窒素原子あるいは炭素原子は、標的分子の全てのアミノ酸が有するものであるので、シグナルが全てのアミノ酸において取得することができる。つまり、標的分子とリガンドあるいはリガンド候補物質との結合がどのアミノ酸において起こっていても制限なく検出することができる。このことは、標的分子とリガンドあるいはリガンド候補化合物との結合部位の同定や、解離定数の測定方法等を行う上でも非常に有利な特徴である。
【図面の簡単な説明】
【０１０８】
【図１】図１は、標識された主鎖の窒素に結合した水素原子と、該窒素と同一または隣接するアミノ酸中のα炭素原子、β炭素原子またはカルボニル炭素原子の２次元相関スペクトルを取得するためのＮＭＲ測定方法を示した図である。
【図２】図２は、ヒトＦＫＢＰタンパク質のアミノ酸配列を示す図である。
【図３】図３は、ヒトＦＫＢＰタンパク質の1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルを示す図である。
【図４】図４は、ヒトＦＫＢＰタンパク質のＨ（Ｎ）ＣＯ法により得られた２次元相関スペクトルを示す図である。
【図５】図５は、ヒトＦＫＢＰタンパク質のＨ（ＮＣＯ）ＣＡ法により得られた２次元相関スペクトルを示す図である。
【図６】図６は、ヒトＦＫＢＰタンパク質単独及び、ヒトＦＫＢＰタンパク質に１−アセチルプロリンメチルエステル（ＡＣＰＭ）を作用させた後の1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルを示す図である。シグナルが移動した残基のみアミノ酸番号を記している。
【図７】図７は、１−アセチルプロリンメチルエステル（ＡＣＰＭ）の構造式、および、ヒトＦＫＢＰタンパク質に１−アセチルプロリンメチルエステル（ＡＣＰＭ）を作用させた後に、シグナルの位置が変化した残基を示す（灰色に着色した部分）立体構造図である。
【図８】図８は、ヒトＦＫＢＰタンパク質単独及び、ヒトＦＫＢＰタンパク質に１−アセチルプロリンメチルエステル（ＡＣＰＭ）を作用させた後のＨ（Ｎ）ＣＯ法により得られた２次元相関スペクトルを示す図である。それぞれのアミノ酸番号は、アミド水素原子の属するアミノ酸の番号である。
【図９】図９は、ヒトＦＫＢＰタンパク質単独及び、ヒトＦＫＢＰタンパク質に１−アセチルプロリンメチルエステル（ＡＣＰＭ）を作用させた後のＨ（ＮＣＯ）ＣＡ法により得られた２次元相関スペクトルを示す図である。それぞれのアミノ酸番号は、アミド水素原子の属するアミノ酸の番号である。
【図１０】図１０は、ヒトＦＫＢＰタンパク質単独及び、ヒトＦＫＢＰタンパク質に１−ホルミルピペリジン（ＦＯＰＩ）を作用させた後の1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルを示す図である。シグナルが移動した残基のみアミノ酸番号を記している。
【図１１】図１１は、１−ホルミルピペリジン（ＦＯＰＩ）の構造式、および、ヒトＦＫＢＰタンパク質に１−ホルミルピペリジン（ＦＯＰＩ）を作用させた後に、シグナルの位置が変化した残基を示す（灰色に着色した部分）立体構造図である。
【図１２】図１２は、ヒトＦＫＢＰタンパク質単独及び、ヒトＦＫＢＰタンパク質に１−ホルミルピペリジン（ＦＯＰＩ）を作用させた後のＨ（Ｎ）ＣＯ法により得られた２次元相関スペクトルを示す図である。それぞれのアミノ酸番号は、アミド水素原子の属するアミノ酸の番号である。
【図１３】図１３は、ヒトＦＫＢＰタンパク質単独及び、ヒトＦＫＢＰタンパク質に１−ホルミルピペリジン（ＦＯＰＩ）を作用させた後のＨ（ＮＣＯ）ＣＡ法により得られた２次元相関スペクトルを示す図である。それぞれのアミノ酸番号は、アミド水素原子の属するアミノ酸の番号である。
【図１４】図１４は、ヒトＦＫＢＰタンパク質単独及び、ヒトＦＫＢＰタンパク質に１−ピペリジンカロボキサミド（ＰＩＣＡ）を作用させた後の1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルを示す図である。シグナルが移動した残基のみアミノ酸番号を記している。
【図１５】図１５は、１−ピペリジンカロボキサミド（ＰＩＣＡ）の構造式、および、ヒトＦＫＢＰタンパク質に１−ピペリジンカロボキサミド（ＰＩＣＡ）を作用させた後に、シグナルの位置が変化した残基を示す（灰色に着色した部分）立体構造図である。
【図１６】図１６は、ヒトＦＫＢＰタンパク質単独及び、ヒトＦＫＢＰタンパク質に１−ピペリジンカロボキサミド（ＰＩＣＡ）を作用させた後のＨ（Ｎ）ＣＯ法により得られた２次元相関スペクトルを示す図である。それぞれのアミノ酸番号は、アミド水素原子の属するアミノ酸の番号である。
【図１７】図１７は、ヒトＦＫＢＰタンパク質単独及び、ヒトＦＫＢＰタンパク質に１−ピペリジンカロボキサミド（ＰＩＣＡ）を作用させた後のＨ（ＮＣＯ）ＣＡ法により得られた２次元相関スペクトルを示す図である。それぞれのアミノ酸番号は、アミド水素原子の属するアミノ酸の番号である。
【図１８】図１８は、標識された主鎖の原子に結合した水素原子と、標的分子中のその他の水素原子間の２次元相関スペクトルを取得するためのＮＭＲ測定方法を示した図である。矢印でつながれている実線で囲んだ原子の組み合わせが相関シグナルを与える。点線で囲まれている原子は、炭素原子は13Ｃ、窒素原子は15Ｎで標識化されている必要が有る。
【図１９】図１９は、ヒトＦＫＢＰタンパク質の1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルを示す図である。
【図２０】図２０は、ヒトＦＫＢＰタンパク質のＨＡ（ＣＡＣＯＮ）Ｈ法により得られた２次元相関スペクトルを示す図である。
【図２１】図２１は、ヒトＦＫＢＰタンパク質のＨＡ（ＣＡＮ）Ｈ法により得られた２次元相関スペクトルを示す図である。
【図２２】図２２は、ヒトＦＫＢＰタンパク質単独及び、ヒトＦＫＢＰタンパク質に１−アセチルプロリンメチルエステル（ＡＣＰＭ）を作用させた後の1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルを示す図である。シグナルが移動した残基のみアミノ酸番号を記している。
【図２３】図２３は、１−アセチルプロリンメチルエステル（ＡＣＰＭ）の構造式、および、ヒトＦＫＢＰタンパク質に１−アセチルプロリンメチルエステル（ＡＣＰＭ）を作用させた後に、シグナルの位置が変化した残基を示す（灰色に着色した部分）立体構造図である。
【図２４】図２４は、ヒトＦＫＢＰタンパク質単独及び、ヒトＦＫＢＰタンパク質に１−アセチルプロリンメチルエステル（ＡＣＰＭ）を作用させた後のＨＡ（ＣＡＣＯＮ）Ｈ法により得られた２次元相関スペクトルを示す図である。それぞれのアミノ酸番号は、アミド水素原子の属するアミノ酸の番号である。
【図２５】図２５は、ヒトＦＫＢＰタンパク質単独及び、ヒトＦＫＢＰタンパク質に１−アセチルプロリンメチルエステル（ＡＣＰＭ）を作用させた後のＨＡ（ＣＡＮ）Ｈ法により得られた２次元相関スペクトルを示す図である。シグナルが移動した残基のみアミノ酸番号を記している。大文字で書かれたアミノ酸番号に対応するシグナルは、残基内のアミドプロトンとα水素原子の相関シグナル、小文字で書かれたアミノ酸番号に対応するシグナルはアミドプロトンとそのアミド水素原子の属する残基の一つ手前の残基に属するα水素原子との相関シグナルを表している。
【図２６】図２６は、ヒトＦＫＢＰタンパク質単独及び、ヒトＦＫＢＰタンパク質に１−ホルミルピペリジン（ＦＯＰＩ）を作用させた後の1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルを示す図である。シグナルが移動した残基のみアミノ酸番号を記している。
【図２７】図２７は、１−ホルミルピペリジン（ＦＯＰＩ）の構造式、および、ヒトＦＫＢＰタンパク質に１−ホルミルピペリジン（ＦＯＰＩ）を作用させた後に、シグナルの位置が変化した残基を示す（灰色に着色した部分）立体構造図である。
【図２８】図２８は、ヒトＦＫＢＰタンパク質単独及び、ヒトＦＫＢＰタンパク質に１−ホルミルピペリジン（ＦＯＰＩ）を作用させた後のＨＡ（ＣＡＣＯＮ）Ｈ法により得られた２次元相関スペクトルを示す図である。シグナルが移動した残基のみアミノ酸番号を記している。
【図２９】図２９は、ヒトＦＫＢＰタンパク質単独及び、ヒトＦＫＢＰタンパク質に１−ホルミルピペリジン（ＦＯＰＩ）を作用させた後のＨＡ（ＣＡＮ）Ｈ法により得られた２次元相関スペクトルを示す図である。シグナルが移動した残基のみアミノ酸番号を記している。大文字で書かれたアミノ酸番号に対応するシグナルは、残基内のアミドプロトンとα水素原子の相関シグナル、小文字で書かれたアミノ酸番号に対応するシグナルはアミドプロトンとそのアミドプロトンの属する残基の一つ手前の残基に属するα水素原子との相関シグナルを表している。
【図３０】図３０は、ヒトＦＫＢＰタンパク質単独及び、ヒトＦＫＢＰタンパク質に１−ピペリジンカロボキサミド（ＰＩＣＡ）を作用させた後の1Ｈ−15Ｎ  ＨＳＱＣスペクトルを示す図である。シグナルが移動した残基のみアミノ酸番号を記している。
【図３１】図３１は、１−ピペリジンカロボキサミド（ＰＩＣＡ）の構造式、および、ヒトＦＫＢＰタンパク質に１−ピペリジンカロボキサミド（ＰＩＣＡ）を作用させた後に、シグナルの位置が変化した残基を示す（灰色に着色した部分）立体構造図である。
【図３２】図３２は、ヒトＦＫＢＰタンパク質単独及び、ヒトＦＫＢＰタンパク質に１−ピペリジンカロボキサミド（ＰＩＣＡ）を作用させた後のＨＡ（ＣＡＣＯＮ）Ｈ法により得られた２次元相関スペクトルを示す図である。シグナルが移動した残基のみアミノ酸番号を記している。
【図３３】図３３は、ヒトＦＫＢＰタンパク質単独及び、ヒトＦＫＢＰタンパク質に１−ピペリジンカロボキサミド（ＰＩＣＡ）を作用させた後のＨＡ（ＣＡＮ）Ｈ法により得られた２次元相関スペクトルを示す図である。シグナルが移動した残基のみアミノ酸番号を記している。大文字で書かれたアミノ酸番号に対応するシグナルは、残基内のアミドプロトンとα水素原子の相関シグナル、小文字で書かれたアミノ酸番号に対応するシグナルはアミドプロトンとそのアミドプロトンの属する残基の一つ手前の残基に属するα水素原子との相関シグナルを表している。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【図１９】
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【図２０】
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【図２１】
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【図２２】
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【図２３】
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【図２４】
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【図２５】
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【図２６】
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【図２７】
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【図２８】
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【図２９】
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【図３０】
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【図３１】
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【図３２】
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【図３３】
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【配列表】
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【国際調査報告】
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