(57)【要約】【課題】操作が簡便で、かつ測定精度、特異性、再現性に優れたラットＩｇＥの測定試薬を提供すること。【解決手段】被験試料中のラットＩｇＥを測定する試薬において、ラットＩｇＥを認識するが抗原認識部位を異にする２種のモノクローナル抗体を構成成分とすることを特徴とするラットＩｇＥ測定試薬が提供される。当該ラットＩｇＥ測定試薬としては、寄託番号ＦＥＲＭ  Ｐ−２１３７６で表されるハイブリドーマ細胞により産生されるモノクローナル抗体及び寄託番号ＦＥＲＭ  Ｐ−２１３７５で表されるハイブリドーマ細胞により産生されるモノクローナル抗体を構成成分とするラットＩｇＥ測定試薬が好適である。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
被験試料中のラットＩｇＥを測定する試薬において、ラットＩｇＥを認識するが抗原認識部位を異にする２種のモノクローナル抗体を構成成分とすることを特徴とするラットＩｇＥ測定試薬。
【請求項２】
モノクローナル抗体が寄託番号ＦＥＲＭ  Ｐ−２１３７６で表されるハイブリドーマ細胞により産生されるモノクローナル抗体及び寄託番号ＦＥＲＭ  Ｐ−２１３７５で表されるハイブリドーマ細胞により産生されるモノクローナル抗体である請求項１記載のラットＩｇＥ測定試薬。
【請求項３】
測定方法としてエンザイムイムノアッセイを用いる、請求項１又は２記載のラットＩｇＥ測定試薬。
【請求項４】
請求項１〜３いずれかに記載のラットＩｇＥ測定試薬を使用することを特徴とする、被験試料中のラットＩｇＥの測定方法。
【請求項５】
被験試料が、血漿、血清及び細胞培養物から選ばれる請求項４記載のラットＩｇＥの測定方法。
【請求項６】
寄託番号ＦＥＲＭ  Ｐ−２１３７６で表されるハイブリドーマ細胞又は寄託番号ＦＥＲＭ  Ｐ−２１３７５で表されるハイブリドーマ細胞により産生されるモノクローナル抗体。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明はラットイムノグロブリンＥ（ＩｇＥ）を認識し、ラットのその他のイムノグロブリン（ＩｇＧ、ＩｇＡ、ＩｇＭ、ＩｇＤ）を認識しない、特異性の高いモノクローナル抗体を使用する、高感度の被験試料中のラットＩｇＥ測定試薬に関する。
【背景技術】
【０００２】
血清蛋白のグロブリンの１つであるγ-グロブリンは免疫に関与していることから免疫グロブリン（Ｉｇ）と呼ばれ、ＩｇＧ、ＩｇＡ、ＩｇＭ、ＩｇＤ、ＩｇＥの５つが知られている。ＩｇＥはアレルギー反応に関与しており、最初体内に侵入したアレルゲンに対して、マクロファージ、Ｔ細胞及びＢ細胞の相互作用によってＩｇＥが過剰に産生され、このＩｇＥが組織の肥満細胞上のＦｃレセプターに固着して感作が成立する。次に、再びアレルゲンが体内に侵入すると、細胞のＦｃレセプターに固着したＩｇＥとアレルゲンが結合し、それによって肥満細胞が活性化され、ヒスタミン、ロイコトリエン等の炎症性化学伝達物質が血中に放出されて多彩なアレルギー症状を引きおこすことになる。よって、特定の物質に対するＩｇＥの抗体価を測定することで、アレルギーの原因物質（アレルゲン）を調べることができる。
【０００３】
また血中の総ＩｇＥ量を定量することはＩ型アレルギー疾患、特にアトピー性疾患においては重要な診断基準となる。さらに寄生虫感染、重症肝障害、湿疹、ＩｇＥミエローマでもＩｇＥが上昇することが知られており、血中総ＩｇＥ量を定量することはこれらの疾患を診断することにも役立つ。
【０００４】
ＩｇＥ関連疾患を研究するための動物モデルとしては、一般にマウスが用いられているが、マウスは血液量も少なく、近年ラットを用いた動物実験が多くなってきている。
ラットのＩｇＥを測定するには、抗ラットＩｇＥ抗体を使用するのが簡便であり、特許文献１にはポリクローナル抗体及びモノクローナル抗体を用いたラットＩｇＥ測定キット及び測定方法が開示されている。
【０００５】
【特許文献１】特開２０００−２６６７４７号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
しかしながらポリクローナル抗体をモノクローナル抗体と組み合わせてエンザイムノアッセイを行う場合は、ポリクローナル抗体中に夾雑抗原に対する抗体が含まれる可能性があり特異性の面で課題がある。また抗原吸収法によりポリクローナル抗体の交差反応性を除去する工程を経て測定試薬が調製されることから、一定品質の試薬を安定して製造し、供給する面でも課題があった。
そこで、本発明の課題は、操作が簡便で、かつ測定精度、特異性、再現性に優れたラットＩｇＥの測定試薬を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者らは鋭意努力を重ね、互いにエピトープを異にする抗ラットＩｇＥモノクローナル抗体を複数種取得することに成功し、さらにその中から選択した２種のモノクローナル抗体を組み合わせることにより高感度にラットＩｇＥを検出することができることを見出し、本発明を完成させた。
【０００８】
すなわち、本発明の第１の発明は、被験試料中のラットＩｇＥを測定する試薬において、ラットＩｇＥを認識するが抗原認識部位を異にする２種のモノクローナル抗体を構成成分とすることを特徴とするラットＩｇＥ測定試薬に関する。
本発明の第１の発明に使用されるモノクローナル抗体としては、モノクローナル抗体が寄託番号ＦＥＲＭ  Ｐ−２１３７６で表されるハイブリドーマ細胞により産生されるモノクローナル抗体及び寄託番号ＦＥＲＭ  Ｐ−２１３７５で表されるハイブリドーマ細胞により産生されるモノクローナル抗体が挙げられる。
さらに本発明の第１の発明の態様として、測定方法としてエンザイムイムノアッセイを用いるラットＩｇＥ測定試薬が挙げられる。
【０００９】
本発明の第２の発明は、第１の発明のラットＩｇＥ測定試薬を使用することを特徴とする、被験試料中のラットＩｇＥの測定方法に関する。
本発明の第２の発明において測定に供される試料としては、血漿、血清又は細胞培養物が例示される。
【００１０】
本発明の第３の発明は、寄託番号ＦＥＲＭ  Ｐ−２１３７６で表されるハイブリドーマ細胞又は寄託番号ＦＥＲＭ  Ｐ−２１３７５で表されるハイブリドーマ細胞により産生されるモノクローナル抗体に関する。
【発明の効果】
【００１１】
本発明により、操作が簡便で、測定精度が高く、特異性、再現性にも優れたラットＩｇＥの測定試薬が安定して提供される。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１２】
以下、本発明を具体的に説明する。
本発明で「ラットＩｇＥ」とはラットに由来する全てのＩｇＥを意味し、いかなる抗原を認識するものであってもよい。ラット血中には遊離のＩｇＥとして肥満細胞や好塩基球上のＩｇＥレセプター（ＦｃεＲＩ及びＦｃεＲＩＩ）に結合するものと、それらレセプターには結合しないものが存在するが、その何れであってもよく、その混合物であってもよい。またラットＢ細胞やラットミエローマ細胞などのラットＩｇＥを産生しうる細胞を人為的に培養して得られる培養上清中に遊離されるＩｇＥでもよい。更に、Ｂ細胞のｍＲＮＡやそのｃＤＮＡ等を用いて遺伝子工学的に作製したリコンビナントのラットＩｇＥでもよい。
【００１３】
本発明で「モノクローナル抗体」とは、単一クローンの抗体産生細胞が分泌する抗体を意味し、単クローン（性）抗体ともいう。単一の抗原決定基を認識する抗体であり、アミノ酸配列の一次構造が均一である。本発明のモノクローナル抗体は、細胞融合法により調製されるハイブリドーマが産生する抗体に加えて、抗体産生細胞のｍＲＮＡ等を用いて遺伝子工学的に作製された抗体も含まれる。
【００１４】
本発明の測定試薬は、ラットＩｇＥを認識するがラットのその他のイムノグロブリン（ＩｇＧ、ＩｇＡ、ＩｇＭ、ＩｇＤ）を認識しない、特異性の高い２種のモノクローナル抗体を構成成分とすることを特徴とする。また前記の２種のモノクローナル抗体は、それぞれ抗原上の異なる部位を認識する。
以下に上記のモノクローナル抗体について説明する。本発明で用いる抗体は、前述のラットＩｇＥを抗原として認識し、かつ当該ＩｇＥを高感度で検出できるモノクローナル抗体であればいかなるものでも良い。また得られたモノクローナル抗体をもとに、遺伝子工学的に製造される組換え抗体や、定常領域を他の抗体の定常領域に置換したキメラ抗体等であっても良い。更に、前記の抗体にペプシン、パパイン等のタンパク質分解酵素を作用させ、抗体のＦｃ部分を除去して得られる、Ｆ（ａｂ’）２、Ｆａｂ’、Ｆａｂ等のフラグメントやｓｃＦｖも本発明で使用する抗体に含まれる。
本発明に使用されるモノクローナル抗体は、例えば、固相サンドイッチ法などのような二段階の抗原抗体反応を行う測定方法においては、担体へのコーティングに用いられる固相モノクローナル抗体（一次抗体）、標識モノクローナル抗体（二次抗体）として使用することが出来る。本発明に使用されるモノクローナル抗体は、後者として使用する際には、適切な化合物、例えば放射性同位体、酵素、蛍光物質、発光物質、タンパク質等で標識される。
【００１５】
本発明に使用されるモノクローナル抗体は、いわゆる細胞融合法によって作製されたハイブリドーマを使用して製造される。前記のハイブリドーマは、抗体産生細胞の集団と骨髄腫細胞との融合ハイブリドーマを形成させ、該ハイブリドーマをクローン化し、ラットＩｇＥを認識する抗体を産生するクローンを選択し、さらに本発明の目的に好適なクローンを選別することによって樹立される。
抗体産生細胞には、例えばラットＩｇＥ又はその一部によって免疫された動物の脾細胞、リンパ節細胞、Ｂリンパ球等が利用できる。免疫させる動物としては、マウス、ハムスター等が挙げられる。抗原としてはラットＩｇＥやその断片が利用可能であり、例えば次のようにして製造され、免疫に使用される。免疫原として用いるラットＩｇＥを天然から得る場合は、ＩｇＥを含むラット血清画分あるいは血漿画分から塩析、透析やアフィニティークロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、疎水クロマトグラフィー等各種クロマトグラフィーを用いてＩｇＥを精製することが可能である。またＩｇＥを産生するラットミエローマ細胞等、適当な細胞を培養し、その培養上清から精製することも可能である。かくして得られたラットＩｇＥは、例えばＫＬＨ（Ｋｅｙｈｏｌｅ  Ｌｉｍｐｅｔ  Ｈｅｍｏｃｙａｎｉｎ）に代表されるキャリアタンパク質と結合後、又はＰＶＰ（ポリビニルピロリドン）と混合後、フロイントのアジユバントと混合し、動物の免疫に使用する。またはラットＩｇＥを直接フロイントのアジユバントと混合し、動物の免疫に使用する。免疫は動物の皮下、筋肉内あるいは腹腔内に、１回にラットＩｇＥ量として２０〜２００μｇ相当のＩｇＥ−アジュバント混合物を、２〜３週間に１回、３〜７回投与することにより行われる。最終免疫より約３〜５日後、免疫動物から抗体産生細胞を採取する。
【００１６】
骨髄腫細胞としてはマウス、ラット、ヒト等由来のものが使用される。細胞融合は例えばＧ．ケラー（Ｇ．Ｋｅｈｌｅｒ）［ネーチャー（Ｎａｔｕｒｅ）第２５６巻、第４９５頁（１９７５）］に記載の方法、又はこれに準ずる方法により行われる。この際、３０〜５０％ポリエチレングリコール（分子量１０００〜６０００）を用い、抗体産生細胞と骨髄腫細胞とを３０〜４０℃の温度下、約１〜３分間程度反応させる。細胞融合により得られたハイブリドーマはスクリーニングに付される。例えば、抗原としてラットＩｇＥを用いた酵素抗体法等により前記ＩｇＥを認識する抗体を産生するハイブリドーマのスクリーニングが行われる。得られた抗体産生ハイブリドーマは、例えば限界希釈法によりクローン化される。得られたクローンは、次いで目的とする高感度、高特異性のモノクローナル抗体を産生するクローンを選択するため、例えば酵素抗体法等によるスクリーニングに供される。
こうして選ばれたクローンは、例えばあらかじめプリスタン（２，６，１０，１４−テトラメチルペンタデカン）を投与したＢＡＬＢ／ｃマウスの腹腔内へ移植し、１０〜１４日後にモノクローナル抗体を高濃度に含む腹水を採取する。この腹水からのモノクローナル抗体の回収は、イムノグロブリンの精製法として従来既知の硫安分画法、ポリエチレングリコール分画法、イオン交換クロマトグラフ法、ゲルクロマトグラフ法、アフィニティークロマトグラフ法等を応用することで達成される。
【００１７】
本発明に使用されるラットＩｇＥに特異的なモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマの選抜には、ラットで作製した抗マウスＩｇＧラットモノクローナル抗体カクテル（３種の混合モノクローナル抗体）−ペルオキシダーゼ標識抗体が大いに威力を発揮する。このカクテルに使用するモノクローナル抗体は、それぞれ認識部位がマウスＩｇＧ特異的であり、当該カクテル−ペルオキシダーゼ標識抗体を使用することにより特異性の高いＩｇＧクラスのラットＩｇＥに特異的な抗体を産生するハイブリドーマの選抜を行うことができる。また当該ラットモノクローナル抗体は抗原（ラットＩｇＥ）及びブランク抗原（ラットＩｇＧ）と種を同じくすることから、マウスＩｇＧ以外への非特異的な反応を見せず、マウスＩｇＧ産生ハイブリドーマの選別を容易に行うことができる。多量にまた高力価で存在するマウスＩｇＭ産生ハイブリドーマの中から、目的のマウスＩｇＧ産生ハイブリドーマを選別することは困難であるが、本発明の抗体を産生するハイブリドーマはこの手法を駆使することによってはじめて単離することが可能になった。
また本発明で得られたモノクローナル抗体は、特にブランク抗原（ラットＩｇＧ）に対して直接的な結合反応を全く示さない。すなわち、ポリクローナルで作製した二次抗体では、相当な吸収操作を行わないと果たせない効果を発揮しうる点で、当該二次抗体を使用する試薬に対して優位性を持つ。
さらに、かくして得られた抗ＩｇＥモノクローナル抗体の種々の組み合わせを作成し、ラットＩｇＥの検出感度や交差反応を検証することによって、高感度で再現性よくラットＩｇＥを測定できるモノクローナル抗体の組み合わせが決定される。
【００１８】
本発明の測定試薬は、上記のようにして得た２種のモノクローナル抗体を構成成分とするが、該抗体は、例えば、固相抗体及び／又は標識抗体として、被験試料中の被検物質であるラットＩｇＥとの抗原抗体反応によって、被験試料中の被検物質ラットＩｇＥをトラップする為に使用されるのに好適である。前記の２種のモノクローナル抗体で構成されるラットＩｇＥ測定試薬は、試料中に０．１３ｎｇ／ｍＬの濃度で存在するＩｇＥを検出することが可能である。本発明の一態様として、これらのモノクローナル抗体は、ハイブリドーマ細胞ＲａｔＩｇＥ  ３２−１２Ｃにより産生されるモノクローナル抗体Ｒａｔ  ＩｇＥ  ３２−１２Ｃ及びハイブリドーマ細胞ＲａｔＩｇＥ  １６−９Ｅにより産生されるモノクローナル抗体Ｒａｔ  ＩｇＥ  １６−９Ｅである。ハイブリドーマ細胞ＲａｔＩｇＥ  ３２−１２Ｃは、平成１９年９月２７日（原寄託日）より独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター（日本国茨城県つくば市東１丁目１番地１中央第６（郵便番号３０５−８５６６））にＦＥＲＭ  Ｐ−２１３７６として寄託されている。ハイブリドーマ細胞ＲａｔＩｇＥ  １６−９Ｅは、平成１９年９月２７日（原寄託日）より独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センター（日本国茨城県つくば市東１丁目１番地１中央第６（郵便番号３０５−８５６６））にＦＥＲＭ  Ｐ−２１３７５として寄託されている。これら２種の抗体を構成成分とするラットＩｇＥ測定試薬は、非特異的な結合反応がなく、他のサブクラスにも交差することなく高感度にラットＩｇＥのみを測定できることから、広くラットＩｇＥの測定に適用することができる。
前記の抗体、すなわちモノクローナル抗体Ｒａｔ  ＩｇＥ  ３２−１２Ｃ及びモノクローナル抗体Ｒａｔ  ＩｇＥ  １６−９Ｅ、ならびにこれらの抗体を産生するハイブリドーマ細胞ＲａｔＩｇＥ  ３２−１２Ｃ、ＲａｔＩｇＥ  １６−９Ｅは、いずれも本発明に包含される。
【００１９】
本発明の測定試薬は、測定方法として二抗体サンドイッチ法などの固相酵素免疫検定法（ＥＬＩＳＡ）を含むエンザイムイムノアッセイに用いることができるラットＩｇＥ測定試薬である。またその一態様として、被験試料は血漿、血清又は細胞培養物等が挙げられる。
【００２０】
本発明の測定試薬は、上記のようにして得た２種のモノクローナル抗体を構成成分とするが、これらの抗体のうち、一方は固相モノクローナル抗体、他方は標識モノクローナル抗体として使用する。ここで、固相抗体とは適切な不溶性担体に固定化された抗体を意味し、標識抗体とは適切な標識物質により標識化された抗体を意味する。対象試料中の被検物質であるラットＩｇＥとの抗原抗体反応によって、対象試料中の被検物質ラットＩｇＥをトラップするために固相モノクローナル抗体が使用され、トラップされたラットＩｇＥを検出するために標識モノクローナル抗体が使用される。本発明に使用される標識モノクローナル抗体は、特に限定されるものではないが、放射性同位体、酵素、蛍光物質、発光物質、タンパク質等を用いて標識化される。放射性同位体としては、特に限定されるものではないが、例えば［１２５Ｉ］、［１３１Ｉ］、［３Ｈ］、［１４Ｃ］などが好ましい。酵素としては、特に限定されるものではないが、安定で比活性の大きなものが好ましく、例えばβ−ガラクトシダーゼ、β−グルコシダーゼ、アルカリフォスファターゼ、ペルオキシダーゼ、リンゴ酸脱水素酵素などが挙げられる。蛍光物質としては、特に限定されるものではないが、例えばフルオレスカミン、フルオレッセンイソチオシアネートなどが挙げられる。発光物質としては、特に限定されるものではないが、例えばルミノール、ルミノール誘導体、ルシフェリン、ルシゲニンなどが挙げられる。さらに、ビオチンのような化合物を用いることができる。
【００２１】
固相モノクローナル抗体は、ビーズ、マイクロタイタープレート、試験管、ニトロセルロース膜、ナイロン膜等の担体表面に、当業者には公知の方法によって、本発明の抗ラットＩｇＥモノクローナル抗体を結合させることによって調製される。また、固相モノクローナル抗体を調製するための抗体、担体および固相化に必要な試薬を、固定化する前の段階で提供しても良い。前記目的に使用される抗体も、本発明の固相モノクローナル抗体に含まれる。
【００２２】
本発明の一つの態様として、抗ラットＩｇＥ固相モノクローナル抗体、抗ラットＩｇＥ標識モノクローナル抗体、ラットＩｇＥ標準品を構成成分として含有するラットＩｇＥ測定キットが例示される。当該キットにおいて、標識モノクローナル抗体及びラットＩｇＥ標準品は、溶液又は凍結乾燥等の各種形態で提供することができる。さらに、本キットには前記の構成成分に加えて、様々な試薬、材料、器具等を適宜含有させることができる。例えば、標識した抗体を検出するための試薬、使用する際にコントロールとなる試薬を含んでいてもよい。
当該キットは、ラットを用いた動物モデル実験における各種アレルギー疾患の病勢や薬剤による治療効果の判定、疾患の診断に有用な情報を提供する。
【実施例】
【００２３】
以下に、本発明を実施例により更に具体的に説明するが、本発明は以下の実施例の範囲のみに限定されるものではない。
【００２４】
実施例１  抗体の作製
（１）抗原免疫・細胞融合
ミエローマ由来ラットＩｇＥ  １ｍｇ／ｍＬ溶液を抗原とし、マウス４匹に５０μｇ／ｓｈｏｔ／ｂｏｄｙの投与量で、初回免疫は、フロイント完全アジュバントとエマルジョンを形成させてから腹腔投与し、２回目以降は、市販の水溶性アジュバント（ＲＩＢＩ  Ａｄｊｕｖａｎｔ）と混合して、２週間隔合計４回の投与を行った。以上の免疫操作は、マウスを２匹ずつ２群に分け、２週間の時差をおいて実施した。先に免疫を開始した群のマウスについて、眼窩静脈血清中のラットＩｇＥに対する抗体価の上昇を確認した上で、両個体に最終免疫を実施した。最終免疫３日後にこの２個体の免疫動物の脾臓を摘出し、無血清培地で分散・洗浄した後、細胞融合用ミエローマ細胞株（Ｐ３Ｕ１）と細胞数の相対比５：１（脾臓：ミエローマ）の割合で混合した。混合後、無血清培地で遠心洗浄し、上清を除去した細胞混合物に適温に保温した５０％ＰＥＧ溶液１ｍＬを一定速度で、軽い振とうを加えながら混合し、合計３ｍＬまで加え、そのあとは、無血清培地７ｍＬを同様に一定速度で加え、１０ｍＬにフィルアップし、この操作で細胞融合を実施した。残る２匹のマウスも同様の最終免疫をさらに１回追加して、３日後に採取した脾臓を細胞融合に供した。
２回のチャレンジで、多数の融合細胞を取得した。この幅広い母集団より抗原に特異的な抗体をスクリーニングした。
【００２５】
（２）ＨＡＴ選択
融合細胞のスクリーニングには、クローニング培地（三光純薬社製）にＨＡＴ（Ｈ：ヒポキサンチン、Ａ：アミノプテリン、Ｔ：チミジン）を加えたものを用意し、融合日の翌日から３回の培地交換をこのＨＡＴ培地で行った。アミノプテリンは核酸のｄｅ  ｎｏｖｏ合成を阻害するので、ヒポキサンチンとチミジンを用いたサルベージ経路を利用しない限り細胞の生育ができない。上記経路に必須なＨＧＰＲＴ（ヒポキサンチン・グアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ）酵素を欠損しているミエローマ細胞はＨＡＴ培地中では生育できない。Ｂ細胞にはこの酵素があるので、融合したハイブリドーマのみがＨＡＴ培地中で生育できることになる。したがって、この培地交換操作で成長してきた細胞は、脾臓由来のｄｅ  ｎｏｖｏ合成系を持ちかつ不死化した融合細胞と言えた。
【００２６】
（３）スクリーニング
免疫原と同じラットＩｇＥを、５μｇ／ｍＬ  ＰＢＳ、５０μＬ／ｗｅｌｌで、イムノプレート（ナルジェヌンク社製）上に添加し、４℃で一晩放置してＩｇＥを物理吸着させた。ブランク用抗原として、ラット血清より精製したポリクローナルラットＩｇＧを準備し、５μｇ／ｍＬ  ＰＢＳ、５０μＬ／ｗｅｌｌで同様にコーティングした。上記の操作の後、抗原溶液を捨てて、５０％Ｂｌｏｃｋｅｒ  Ｃａｓｅｉｎ（ＰＩＥＲＣＥ社製）を２００μＬ／ｗｅｌｌになるように加えて、室温（２０〜３０℃）で１時間放置してブロッキング操作を行った。その後、ブロッキング溶液を捨て、上記（２）で得られた融合細胞の培養上清（原液使用）を、ナンバリングした上で抗原プレートに投入し、一次反応を室温（２０〜３０℃）で１時間行った。ＰＢＳで反応終了後の各ウェルを３回洗浄し、ペーパータオルで充分に液を切った。検出にはマウスＩｇＧでラットを免疫し作製した抗マウスＩｇＧラットモノクローナル抗体カクテル−ペルオキシダーゼ標識抗体を使用した。前記抗体を１μｇ／ｍＬ、５０μＬ／ｗｅｌｌで添加し、室温（２０〜３０℃）で１時間反応を行った。その後、標識抗体液を捨て、ウェルをＰＢＳで４回洗浄した。ペーパータオルに打ち付けて、洗浄液を充分に除き、ペルオキシダーゼ基質であるＡＢＴＳ［２，２’−アジノビス（３−エチルベンゾチアゾリン−６−スルホン酸）］溶液（ＰＩＥＲＣＥ社製）を５０μＬ／ｗｅｌｌ投入し、室温で１５〜３０分発色させ、強弱ある陽性株を幅広く検出した。等量の１５０ｍＭ  シュウ酸を加えて反応を停止させた後、肉眼及びプレートリーダーで陽性株を確認し、ブランク抗原に反応せず、目的のラットＩｇＥ蛋白に反応する株、総数５０株を選抜した。
【００２７】
（４）陽性株選抜とクローニング・株樹立
二次スクリーニングとして、マウスＩｇＥやモノクローナルラットＩｇＧ１、ＩｇＧ２ａ、ＩｇＧ２ｂ、ＩｇＧ２ｃ、ＩｇＭに対する交差反応がない株で、かつラットＩｇＥに強く反応する１０種類のハイブリドーマ元株を選び、直ちに限界希釈法によりクローニングを行った。１０種類のハイブリドーマはいずれも順調に生育し、それぞれクローンを各２種（本株・亜株）確保した。
【００２８】
（５）マウス腹水採取
上記の１０種類のハイブリドーマクローンは、本株・亜株ともに凍結細胞としてマスター細胞を保管し、ほぼ並行しながら、本株をＢＡＬＢ／ｃマウスの腹腔内で大量培養し、腹水として粗精製抗体を得た。腹水は、１個体あたりおよそ３〜５ｍＬであった。
【００２９】
（６）抗体精製
得られた腹水は、５０％飽和硫安塩析・透析を行い、その画分をＰｒｏｔｅｉｎ  Ａカラムに供した。平衡化緩衝液は、３Ｍ  ＮａＣｌ、１．５Ｍ  ｇｌｙｃｉｎ−ＮａＯＨ緩衝液（ｐＨ８．９）の高塩濃度のものを調製し、どのサブクラスのＩｇＧであっても良好に結合する条件を採用した。平衡化緩衝液で２倍希釈した腹水硫安塩析画分を腹水液量とほぼ等量の容積のＰｒｏｔｅｉｎ  Ａ樹脂にアプライし、溶出液の吸光度Ａ２８０がほぼゼロになるまで平衡化緩衝液でカラムを洗った。その後、クエン酸緩衝液（ｐＨ４．０）とクエン酸緩衝液（ｐＨ３．０）の２段階で溶出を行った。サブクラスＩｇＧ１、ＩｇＧ２ａ、ＩｇＧ３は主にｐＨ４．０で溶出され、ＩｇＧ２ｂは、ｐＨ３．０で溶出された。溶出画分は、ただちに１Ｍ  Ｔｒｉｓ緩衝液（ｐＨ９．０）で中和し、硫安塩析もしくは、遠心限外ろ過濃縮を行った。最終抗体は、ＰＢＳで透析し、０．２２μｍフィルターろ過により無菌化した。抗体を１０％ＳＤＳ−ＰＡＧＥ（還元加熱条件）により分析し、Ｈ鎖とＬ鎖以外のものがない良好な純度の抗体であることを確認した。
【００３０】
（７）抗体修飾
得られた精製抗体のうち、一定量（試験的に各抗体１ｍｇ）を用いて、過ヨウ素酸法によるペルオキシダーゼ標識を施した。過ヨウ素酸法は、ペルオキシダーゼの糖鎖ジオールを脱水素酸化させてシッフベースを形成させ、抗体側のアミノ基に結合させる方法である。１０種類の抗体は、すべてペルオキシダーゼ標識体とした。いずれの抗体も抗原ラットＩｇＥを固相化したプレート上で、これらの標識抗体の段階希釈物を反応させた後にペルオキシダーゼの検出反応に供すると、表１に示すような吸光度が得られたことから、抗原との結合活性を保持した状態で酵素標識体とすることができた。
【００３１】
【表１】
2009139372.tif 000002
【００３２】
実施例２  測定系の構築及び性能試験
（１）測定系構築
実施例１で得られた１０種類の抗体それぞれを固相抗体と標識抗体とに用い、合計１００とおりの組み合わせで、ラットＩｇＥを定量できる系をスクリーニングした。試験された抗ＩｇＥモノクローナル抗体の種々の組み合わせの中には非特異的な結合反応を示すものや、ＩｇＥ以外のサブクラスのラット抗体に反応するものが多数存在した。本スクリーニングによって、非特異的な結合反応がなく、他のサブクラスにも交差することなく高感度にラットＩｇＥのみを測りこむことのできる測定系をようやく１種類得ることに成功した。
【００３３】
（２）測定系の性能試験
実施例２−（１）でのスクリーニングから、固相抗体にモノクローナル抗体Ｒａｔ  ＩｇＥ  ３２−１２Ｃ、標識抗体にモノクローナル抗体Ｒａｔ  ＩｇＥ  １６−９Ｅを用いる組み合わせの測定系が確立した。その測定系を使用した測定方法を以下に示す。
（Ａ）イムノプレート器材（ナルジェヌンク社製）に、ＰＢＳで１０μｇ／ｍＬに希釈したモノクローナル抗体Ｒａｔ  ＩｇＥ  ３２−１２Ｃ溶液を１００μＬ／ｗｅｌｌで投入し、４℃で一晩放置する。
翌日、抗体溶液を捨て、２５％ブロックエース＋０．３Ｍマルトース／ＰＢＳ溶液（ブロッキング溶液）を２００μＬ／ｗｅｌｌで投入し、４℃で一晩放置し、器材余剰部分をタンパク質ブロックする。
翌日、ブロッキング溶液を捨て、以下の測定に使用する。
（Ｂ）各濃度の検体を１００μＬずつマイクロピペットで各ｗｅｌｌに２連ずつ加え、室温（２０〜３０℃）で１時間反応させる。（第一反応）
反応液を捨て、０．１％Ｔｗｅｅｎ２０含有ＰＢＳで３回洗浄後、モノクローナル抗体Ｒａｔ  ＩｇＥ  １６−９Ｅ標識抗体液を１００μＬずつ各ｗｅｌｌに加え、室温（２０〜３０℃）で一時間反応させる。（第二反応）
反応液を捨て、０．１％Ｔｗｅｅｎ２０含有ＰＢＳで４回洗浄後、３，３’，５，５’−テトラメチルベンジジン（ＴＭＢＺ）溶液（ＢｉｏＦＸ社製）を１００μlずつ各ｗｅｌｌに加え、室温（２０〜３０℃）で１５分反応させる。（第三反応）
１Ｎ  硫酸を１００μＬずつ、ＴＭＢＺ溶液を入れた順番に各ｗｅｌｌに加え、反応を停止させた後よく混和する。
蒸留水を対照としてマイクロプレートリーダーをゼロ調整し、波長４５０ｎｍで吸光度を測定する。標準曲線を作成し、検体の吸光度から対応するＲａｔ  ＩｇＥ濃度を読み取る。
上記測定系により、ラットＩｇＥ標準品を測定した結果を表２に示す。表２に示すように、この系では１ｎｇ／ｍＬ未満のラットＩｇＥであっても検出可能であり、試験された範囲での検出限界は０．１３ｎｇ／ｍＬであった。
【００３４】
【表２】
2009139372.tif 000003
【００３５】
（３）同時再現性試験
実施例２−（２）記載の測定系で同時再現性試験を行った。表３に結果を示すように、ＣＶ値は５％以下で良好な同時再現性を示した。
【００３６】
【表３】
2009139372.tif 000004
【００３７】
（４）日差再現性試験
実施例２−（２）記載の測定系で日差再現性試験を行った。表４に結果を示すように、ＣＶ値は５％以下で良好な日差再現性を示した。
【００３８】
【表４】
2009139372.tif 000005
【００３９】
（５）添加回収試験
実施例２−（２）記載の測定系でラットＩｇＥの添加回収試験を行った。各種濃度のラット血清検体に標準ラットＩｇＥを等量添加し、実測値から添加したＩｇＥ量の理論値との差（＝回収率）を求めた。表５に結果を示すように、添加回収率７９．５８％から１３０．４４％（平均値９８．７３％）と良好な結果が得られた。
【００４０】
【表５】
2009139372.tif 000006
【００４１】
実施例３  キットの応用例
以下、当該キットの応用例として、アレルギー治療におけるＩｇＧ療法の有効性を調べた例を示す。
本願明細書において、「ＩｇＧ療法」とは、Ｉ型アレルギーの原因となるアレルゲンを少量ずつアレルギー患者に皮下注射することによって、病因アレルゲンに対する感受性を低下させる治療法である。アレルゲンを少量ずつアレルギー患者に皮下注射すると、リンパ腺や脾臓でアレルゲンに対する特異的ＩｇＧが作られる。当該ＩｇＧは、肥満細胞表面に結合しているＩｇＥよりもアレルゲンと結びつき易い性質をもっており、アレルゲンが肥満細胞表面のＩｇＥと結びつく前にＩｇＧと結びつくため、アレルゲンとＩｇＥとの結合が阻害され、炎症性化学伝達物質の放出が抑制される。その結果、アレルギー症状が抑えられる。
【００４２】
（１）ラット・アレルギーモデルでのＩｇＧ療法の有効性の確認
感作抗原として卵白アルブミン（ＯＶＡ、ＳＩＧＭＡ社製）を使用して、アレルギーモデル（Ｉ型アレルギー）のラットを参考文献（Ｂｉｏｓｃｉ．  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．  Ｂｉｏｃｈｅｍ．，６７，９５１−９５７，２００３）に記載の方法に基づいて作製した。
具体的には、Ｂｒｏｗｎ  Ｎｏｒｗａｙ  Ｒａｔ（略してＢＮラット）６週令、雄２匹（Ｒａｔ  Ｎｏ．１、２）を使用し、以下のような感作方法で行った。初回免疫は、水酸化アルミニウムゲル（Ｉｍｊｅｃｔ  Ａｌｕｍ、ＰＩＥＲＣＥ社製、製品コード：７７１６１）とＯＶＡ溶液を混合した懸濁液をＤａｙ０とＤａｙ４の２回、腹腔内投与した（１００μｇ／ｍＬ  ＯＶＡ溶液１００μＬ＋水酸化アルミニウムゲル１００μＬ／ラット１匹）。
追加免疫は、Ｒａｔ  Ｎｏ．２の場合は、Ｄａｙ１０、１１、１２、１３、１４、１７、１８、１９、２０、２１、２５、２６、２７、２８、３１に午前と午後の２回、鼻にＯＶＡ溶液を投与して、経鼻感作した（２５０μｇ／ｍＬ  ＯＶＡ溶液１００μＬ／Ｒａｔ  Ｎｏ．２）。また、Ｒａｔ  Ｎｏ．１の場合は、上記の経鼻感作に加え、Ｄａｙ７にフットパッド免疫した［１００μｇ／ｍＬ  ＯＶＡ溶液１００μＬ＋フロイント完全アジュバント（ＦＣＡ、ＰＩＥＲＣＥ社製、製品コード：７７１４０）１００μＬ／Ｒａｔ  Ｎｏ．１］。
抗ＯＶＡ−ＩｇＧ抗体価及び総ラットＩｇＥ量を測定するために、Ｄａｙ０、１０、１４、１８、２５、３１、３２（Ｄａｙ３２は、Ｒａｔ  Ｎｏ．２のみ）に眼窩静脈より採血し、部分血清採取を行った。
抗ＯＶＡ−ＩｇＧ抗体価は、以下のようにして測定した。
（Ａ）イムノプレート器材（ナルジェヌンク社製）に、ＰＢＳで１０μｇ／ｍＬに希釈したＯＶＡ（ＳＩＧＭＡ社製）溶液を５０μＬ／ｗｅｌｌで投入し、４℃で一晩放置する。
翌日、抗原液を捨て、２５％ブロックエース＋０．３Ｍマルトース／ＰＢＳ溶液（ブロッキング溶液）を２００μＬ／ｗｅｌｌで投入し、４℃で一晩放置し、器材余剰部分をタンパク質ブロックする。
翌日、ブロッキング溶液を捨て、以下の測定に使用する。
（Ｂ）採血した血清をそれぞれ各濃度に調整し、プレートに５０μＬ／ｗｅｌｌで投入し、室温（２０〜３０℃）で１時間反応させる。（第一反応）
反応液を捨て、ＰＢＳで３回洗浄後、二次抗体である抗ラットＩｇＧ−ＰＯＤ（ＺＹＭＥＤ社製）を２５％ブロックエースで１０００倍に希釈して、５０μＬずつ各ｗｅｌｌに加え、室温（２０〜３０℃）で一時間反応させる。（第二反応）
反応液を捨て、ＰＢＳで４回洗浄後、３，３’，５，５’−テトラメチルベンジジン（ＴＭＢＺ）溶液（ＢｉｏＦＸ社製）を５０μＬずつ各ｗｅｌｌに加え、室温（２０〜３０℃）で１５分反応させる。（第三反応）
１Ｎ  硫酸を５０μＬずつ、ＴＭＢＺ溶液を入れた順番に各ｗｅｌｌに加え、反応を停止させた後よく混和する。
蒸留水を対照としてマイクロプレートリーダーをゼロ調整し、波長４５０ｎｍで吸光度を測定する。その結果を表６に示す。
また総ラットＩｇＥ量の測定は、実施例２−（２）記載の測定系を用い行った。その結果を表７に示す。
表６、７より、Ｒａｔ  Ｎｏ．１は、フットパッド免疫を行ったことで、ＯＶＡに対するＩｇＧクラスの抗体価が上昇し、それに呼応するようにＩｇＥの総量の増加は抑えられていた。一方、経鼻免疫を連続で行っただけのＲａｔ  Ｎｏ．２は、ＯＶＡに対するＩｇＧクラスの抗体価がＮｏ．１ほど上昇せず、ＩｇＥ血中濃度がＮｏ．１に比べて実験期間を通じて高かった。以上の結果から、アレルギー治療におけるＩｇＧ療法の有効性がＩｇＥを測定することにより確認できた。
【００４３】
【表６】
2009139372.tif 000007
【００４４】
【表７】
2009139372.tif 000008
【産業上の利用可能性】
【００４５】
本発明の測定試薬を使用する測定系は、ラット血清中の総ＩｇＥ量を測定することにおいて高感度、高特異性で安定な系である。
ラットＩｇＥを測定して得られる結果は、ラットを用いた動物モデル実験における各種アレルギー疾患の病勢や薬剤による治療効果の判定、疾患の診断に有用な情報を提供する。