(57)【要約】 【課題】    脂肪細胞を長期間に亘り、安定に培養する方法に関する。【解決手段】    非水溶性ポリマーからなるハニカム状多孔質体に脂肪細胞を播種する工程、及び前記ハニカム状多孔質体上で前記脂肪細胞を増殖させる工程を含む、脂肪細胞の培養方法。本発明は、脂肪細胞、を長期間安定に培養することができ、また前駆脂肪細胞から成熟脂肪細胞を分化誘導することができる。また、本発明の方法を利用して、脂肪細胞への脂肪蓄積あるいは成熟脂肪細胞への分化誘導を抑制する物質をスクリーニングすることができる。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
非水溶性ポリマーからなるハニカム状多孔質体に脂肪細胞を播種する工程、及び前記ハニカム状多孔質体上で前記脂肪細胞を増殖させる工程を含む、脂肪細胞の培養方法。
【請求項２】
脂肪細胞が成熟内臓脂肪細胞である、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
脂肪細胞が前駆内臓脂肪細胞である、請求項１に記載の方法。
【請求項４】
脂肪酸、ビタミン及びインスリンを含む液体培地中で前駆内臓脂肪細胞を増殖させる、請求項３に記載の培養方法。
【請求項５】
さらにＩＧＦ−１を含み、かつインスリン濃度を０．８５〜１００ｎｇ／ｍＬとした前記液体培地中で前駆内臓脂肪細胞を増殖させる、請求項４に記載の培養方法。
【請求項６】
ハニカム状多孔質体の孔の平均孔径が２０μｍ〜５０μｍである、請求項１〜５の何れかに記載の培養方法。
【請求項７】
ハニカム状多孔質体上で脂肪細胞を１４日〜４０日間増殖させる、請求項１〜６の何れかに記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ハニカム状多孔質体を用いて、腸間膜内臓脂肪細胞を長期間に亘り、安定に培養する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
腸管から吸収された栄養成分は、腸間膜の門脈やリンパ管を通って肝臓へ運ばれ、さらに全身組織に分配される。この腸間膜には脂肪細胞（腸間膜内臓脂肪細胞）が多く存在している。脂肪細胞は、刺激に応じてレプチン、サイトカイン、ホルモンなどを産生、分泌して、脂肪の産生、貯留、代謝分解等に関与している細胞組織であり、大量の脂肪を蓄え、中性脂肪としてエネルギーを体内に貯える白色脂肪細胞と、エネルギーを熱として放出する褐色脂肪細胞がある。
【０００３】
脂肪細胞、特に白色脂肪細胞である腸間膜内臓脂肪細胞は、個体の加齢と共にその内部に過剰量の脂肪を蓄積しやすくなる傾向があることが知られている。そして、腸間膜内臓脂肪細胞への脂肪の過剰蓄積が、糖尿病、高脂血症、動脈硬化等の生活習慣病の原因となることが、近年になって検証されてきている。
【０００４】
脂肪細胞は、糖や脂質を処理する能力が著しく弱い前駆脂肪細胞から、かかる能力が高い成熟脂肪細胞に分化誘導され、インスリンなどのホルモンに対する感受性を獲得することが知られている。そのため、腸間膜内蔵脂肪細胞の特徴、特に脂肪の蓄積過程やそのメカニズム、さらには前駆脂肪細胞から成熟脂肪細胞への分化誘導のメカニズム等の解明は、前記の生活習慣病の病態像を理解し、さらに前記生活習慣病の予防法乃至治療法を研究する上で、極めて重要である。
【０００５】
Ｓｈｉｍｉｚｕらは、ラット腸間膜脂肪組織から調製した前駆脂肪細胞を成熟脂肪細胞に分化誘導する、新規な培養法を確立した（非特許文献１）。この方法は、通常使用されるデキサメタゾンやイソブチルメチルキサンチンなどを必要とせず、天然物である脂肪酸、ビタミンおよびインスリンを培地に添加することで、前駆脂肪細胞から成熟脂肪細胞への分化を可能にする方法である。また、このＳｈｉｍｉｚｕらの方法において、培地中のインスリン濃度を、生理的範囲を超えた高濃度とし、さらに脂肪成分を培地に添加することで、細胞内の脂肪滴の肥大化、すなわち脂肪細胞への脂肪蓄積をインビトロで再現できることが確認された。このことは、脂肪細胞の遺伝子改変を行うことなく、生活習慣というべき外的要因によって、インスリン抵抗性状態や肥満状態を反映したインビトロの系を構築することができることを意味するものであり、かかる系は、脂肪蓄積を伴う生活習慣病に効果を示す機能性食品や薬剤の開発に有用である。
【０００６】
しかしながら、長期間、例えば２週間を越えるインビトロ培養を経た脂肪細胞の多くは、培養容器から剥がれて培養基材への定着性が低下する、さらにはアディポネクチンの分泌その他の脂肪細胞としての機能が顕著に低下するなどの、機能性食品や薬剤の開発への脂肪細胞の利用にとって好ましくない傾向を示す。特に前駆脂肪細胞を成熟脂肪細胞へと分化誘導させ、さらに分化誘導された成熟脂肪細胞を用いて脂肪蓄積の抑制に効果を有する機能性食品や薬物の評価を行うには、２週間を越えるさらなる長期間の培養が必要となる。したがって、脂肪細胞、特に腸間膜内臓脂肪細胞を用いた機能性食品、薬剤あるいは診断薬の評価、スクリーニング、開発、さらにはヒトへの脂肪細胞移植技術の開発にとって、脂肪細胞を長期間に亘って安定に培養することは、重要な課題の一つである。
【０００７】
一方、ハニカム構造体、ハニカムシートあるいはハニカム状多孔質体とも呼ばれる、多数の微細な孔が蜂の巣（ハニカム）状に設けられた薄膜構造体が、血管内皮細胞、心筋細胞、肝細胞その他の動物細胞をインビトロで培養増殖するための良好な足場（ｓｃａｆｆｏｌｄ）となることが報告されている（例えば特許文献１、特許文献２、特許文献３）。しかし、ハニカム状多孔質体が脂肪細胞を長期間に亘って安定に培養する際の足場となり得ることについての報告はない。
【特許文献１】特開２００１−１５７５７４号公報
【特許文献２】特開２００２−３４７１０７号公報
【特許文献３】特開２００２−３３５９４９号公報
【非特許文献１】Ｓｈｉｍｉｚｕら、Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ． Ｉｎｔ．、２００６年、第３０巻、第３８１−３８８頁
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００８】
本発明は、脂肪細胞を長期間に亘って安定的に培養する方法、前駆脂肪細胞から成熟脂肪細胞を分化誘導する方法を提供し、さらに脂肪細胞を用いた機能性食品や薬物の効果的な評価方法乃至スクリーニング方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
本発明者らは、ハニカム状多孔質体、特に特定の孔径を有するハニカム状多孔質体上で脂肪細胞が長期間に亘って安定に増殖することを見いだし、以下の各発明を完成した。
【００１０】
（１）非水溶性ポリマーからなるハニカム状多孔質体に脂肪細胞を播種する工程、及び前記ハニカム状多孔質体上で前記脂肪細胞を増殖させる工程を含む、脂肪細胞の培養方法。
【００１１】
（２）脂肪細胞が成熟内臓脂肪細胞である、（１）に記載の方法。
【００１２】
（３）脂肪細胞が前駆内臓脂肪細胞である、（３）に記載の方法。
【００１３】
（４）脂肪酸、ビタミン及びインスリンを含む液体培地中で前駆内臓脂肪細胞を増殖させる、（３）に記載の培養方法。
【００１４】
（５）さらにＩＧＦ−１を含み、かつインスリン濃度を０．８５〜１００ｎｇ／ｍＬとした前記液体培地中で前駆内臓脂肪細胞を増殖させる、（４）に記載の培養方法。
【００１５】
（６）ハニカム状多孔質体の孔の平均孔径が２０μｍ〜５０μｍである、（１）〜（５）の何れかに記載の培養方法。
【００１６】
（７）ハニカム状多孔質体上で脂肪細胞を１４日〜４０日間増殖させる、（１）〜（６）の何れかに記載の方法。
【発明の効果】
【００１７】
本発明の方法は、脂肪細胞を長期間に亘って安定的に培養することができ、脂肪細胞を用いた脂肪細胞への脂肪の過剰蓄積を抑制することのできる機能性食品、薬剤、あるいは脂肪細胞への脂肪の過剰蓄積に起因する疾患の診断薬などのスクリーニング、評価、開発に利用可能な脂肪細胞を提供することができる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１８】
本発明は、非水溶性ポリマーからなるハニカム状多孔質体に脂肪細胞を播種する工程、及び前記ハニカム状多孔質体上で前記脂肪細胞を増殖させる工程を含む、脂肪細胞の培養方法を提供する。
【００１９】
本発明におけるハニカム状多孔質体（ハニカム構造体あるいはハニカムシートとも呼ばれる）とは、非水溶性の高分子（ポリマー）でできた多孔性の薄膜であって、膜の垂直方向に向けられたサブミクロンスケールないしミクロンスケールの微少な孔（くぼみを含む）が膜の平面方向に蜂の巣状に（ハニカム状に）設けられているものをいう。その代表的な部分構造を表した電子顕微鏡写真を図１に示す。
【００２０】
ハニカム状多孔質体の孔は、膜を垂直方向に貫通していてもよく、また平面方向に存在する周囲の孔と膜の内部で連通していてもよい。この様なハニカム状という規則的な配置で微細な孔が設けられている多孔質の薄膜は、孔の口径、形状あるいは深さなどがまちまちである不規則な孔を有する通常の多孔質体とは全く異なる構造体として理解される。
【００２１】
本発明で利用可能なハニカム状多孔質体の形状は、膜厚が０．０１μｍ〜１００μｍ、好ましくは０．１μｍ〜５０μｍ、より好ましくは１μｍ〜２０μｍであり、平均孔径が０．０１μｍ〜１００μｍ、好ましくは０．１μｍ〜５０μｍ、より好ましくは１μｍ〜５０μｍである。特に脂肪細胞を安定に培養するためには、平均孔径が２０μｍ〜５０μｍであることが好ましい。なお、平均孔径は、ハニカム状多孔質体の孔の垂直に交わる２直径の平均として測定した値を意味する。
【００２２】
この様な構造的特徴を有するハニカム状多孔質体は、種々の公知の方法に従って製造することができる。例えばフォトリソグラフィーやソフトリソグラフィー（ホワイトサイドら、Ａｎｇｅｗ．Ｃｈｅｍ．Ｉｎｔ．Ｅｄ．，１９９８年、第３７巻、第５５０−５７５頁）、ブロックコポリマーの相分離（アルブレヒトら、マクロモレキュール（Ｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ）、２００２年、第３５巻、第８１０６−８１１０頁）、サブミクロンのコロイド微粒子を集積することで２次元、３次元の周期構造を作製する方法（グら、ラングミュア（Ｌａｎｇｍｕｉｒ）、第１７巻）、これを鋳型にしてインバースドオパール構造を作製する方法（カルソら、ラングミュア（Ｌａｎｇｍｕｉｒ）、１９９９年、第１５巻、第８２７６−８２８１頁）などを挙げることができる。
【００２３】
また、これらの方法と製造原理を大きく異にする方法である前記特許文献１、特許文献２あるいは特許文献３に記載された方法も使用することができる。これらの方法は、高分子の水不溶性有機溶媒溶液表面上に水滴を結露させ、該水滴を鋳型としてハニカム状の多孔質体を調製するものであり、製造コストや効率等の点でその他の製造法に比べて有利である。以下、さらに詳しく説明する。
【００２４】
この方法では、水不溶性有機溶媒、特に５０ｄｙｎ／ｃｍ以下の表面張力γＬを有する水不溶性有機溶媒に非水溶性ポリマーを溶解した非水溶性ポリマーの水不溶性有機溶媒溶液を、表面の表面張力をγＳとし、塗布される水不溶性有機溶媒の表面張力γＬならびに該基板と該溶媒との間の表面張力γＬＳとした場合にγＳ−γＳＬ＞γＬの関係を満たす基板の表面に塗布し、さらに相対湿度３０％以上の空気の存在下で基板上に塗布された非水溶性ポリマーの水不溶性有機溶媒溶液を蒸発させることが好ましい。
【００２５】
ここにいう水不溶性有機溶媒は、５０ｄｙｎ／ｃｍ以下の表面張力を有し、かつ該溶液表面に結露した水滴を保持し得る程度の水不溶性と、大気圧下で０〜１５０℃、好ましくは１０〜９０℃の沸点を有する有機溶媒を言う。例えば四塩化炭素、ジクロロメタン、クロロホルム等のハロゲン化炭化水素、ベンゼン、トルエン、キシレンなどの芳香族炭化水素、酢酸エチル、酢酸ブチル等のエステル類、メチルイソブチルケトン等の非水溶性のケトン類、二硫化炭素などを挙げることができる。
【００２６】
また非水溶性ポリマーは、水に不溶性でかつ上記の水不溶性有機溶媒に可溶な、あるいは適当な界面活性剤の存在下で水不溶性有機溶媒に溶解し得るポリマーであれば特別の制限はなく、適宜選択して使用することができる。例えば、ポリ乳酸やポリヒドロキシ酪酸のような生分解性ポリマー、脂肪族ポリカーボネート、両親媒性ポリマー、光機能性ポリマー、電子機能性ポリマーなどを挙げることができる。本発明において好ましい生分解性ポリマーとしては、ポリ乳酸、ポリヒドロキシ酪酸、ポリカプロラクトン、ポリエチレンアジペート、ポリブチレンアジペートなどの生分解性脂肪族ポリエステル、並びにポリブチレンカーボネート、ポリエチレンカーボネート等の脂肪族ポリカーボネート等が、有機溶媒への溶解性の観点から好ましい。中でも、ポリ乳酸、ポリカプロラクトンが入手の容易さ、価格等の観点から望ましい。
【００２７】
本発明で用いることができる両親媒性ポリマーとしては、動物細胞に対して毒性のないポリマーであることが好ましい。その様なポリマーの例としては、ポリエチレングリコール／ポリプロピレングリコールブロック共重合体、アクリルアミドポリマーを主鎖骨格とし、疎水性側鎖としてドデシル基と親水性側鎖としてラクトース基或いはカルボキシル基を併せ持つ両親媒性ポリマー、或いはヘパリンやデキストラン硫酸、核酸（ＤＮＡ、ＲＮＡなど）などのアニオン性高分子と長鎖アルキルアンモニウム塩とのイオンコンプレックス、ゼラチン、コラーゲン、アルブミン等の水溶性タンパク質を親水性基とした両親媒性ポリマー等を挙げることができる。
【００２８】
また、生分解性かつ両親媒性を有する単独のポリマーとしては、例えば、ポリ乳酸−ポリエチレングリコールブロック共重合体、ポリε−カプロラクトン−ポリエチレングリコールブロック共重合体、ポリリンゴ酸−ポリリンゴ酸アルキルエステルブロック共重合体などが挙げられる。
【００２９】
上記の水不溶性有機溶媒と非水溶性ポリマーとの具体的な組み合わせの例としては、例えばポリスチレン、ポリカーボネート、ポリスルホン、ポリエーテルスルホン、ポリアルキルシロキサン、ポリメタクリル酸メチルなどのポリアルキルメタクリレートまたはポリアルキルアクリレート、ポリブタジエン、ポリイソプレン、ポリ−Ｎ−ビニルカルバゾール、ポリ乳酸、ポリ−ε−カプロラクトン、ポリアルキルアクリルアミド、およびこれらの共重合体よりなる群から選ばれるポリマーに対しては、四塩化炭素、ジクロロメタン、クロロホルム、ベンゼン、トルエン、キシレン、二硫化炭素などの有機溶媒を組み合わせて使用することができる。また、フッ素化アルキルを側鎖に持つアクリレート、メタクリレートおよびこれらの共重合体よりなる群から選ばれるポリマーに対しては、ＡＫ−２２５（旭硝子株式会社製）などのフッ化炭素溶媒、トリフルオロベンゼン、フルオロエーテル類などの使用も良好な結果を与える。これらの中から、具体的に使用する非水溶性ポリマーに対する溶解性を考慮して、適宜選択して使用することができる。
【００３０】
また、フッ素化アルキルを側鎖に持つポリアクリレートやメタクリレートの側鎖の水素をフッ素に置換したフッ素系ポリマーを用いてハニカム状多孔質体を製造する際には、フッ素系の有機溶媒（ＡＫ−２２５等）の使用も良好な結果を与える。
【００３１】
水不溶性有機溶媒溶液中の非水溶性ポリマー濃度は、製造されるハニカム状多孔質体に求める特性、物性並びに使用する水不溶性有機溶媒に応じて、適宜定めることができる。本発明において貫通孔を有するハニカム状多孔質体の作製に際しては、水不溶性有機溶媒溶液中の非水溶性ポリマーの濃度を０．１ｇ／Ｌ〜１０ｇ／Ｌ、特に０．５ｇ／Ｌ〜６．０ｇ／Ｌとすることが好ましい。
【００３２】
さらにかかる非水溶性ポリマーの水不溶性有機溶媒溶液を塗布する基板は、基板表面の表面張力γＳと塗布される水不溶性有機溶媒の表面張力γＬならびに該基板と該溶媒との間の表面張力γＬＳとの間で、γＳ−γＳＬ＞γＬの関係を満たす基板を選択して用いることが望ましい。これは、非水溶性ポリマー溶液の水不溶性有機溶媒溶液を塗布する基板自体の水不溶性有機溶媒に対する濡れ性が、基板上に形成される液膜の厚みに影響を与え得るためである。基板には、塗布される非水溶性ポリマーの水不溶性有機溶媒溶液との親和性が高いものであることが好ましい。具体的には、水不溶性有機溶媒の表面張力γＬを指標にして上記式で表すことのできる表面張力を示す表面を有する基板を利用すればよい。そのような基板の好適な例としては、ガラス板、シリコン製板あるいは金属板などを挙げることができる。
【００３３】
また、水不溶性有機溶媒溶液との親和性を高めることのできる加工を表面に施した基板の使用も可能である。この様な基板表面の濡れ性の改良は、基板と使用する水不溶性有機溶媒に合わせて、自体公知の方法、例えばガラス製や金属製の基板に対してはそれぞれシランカップリング処理やチオール化合物による単分子膜形成処理方法などを利用することができる。
【００３４】
例えば、クロロホルムなどの疎水性有機溶媒を水不溶性有機溶媒として用いる場合の基板としては、十分に洗浄されたＳｉ基板や、アルキルシランカップリング剤などで表面を修飾したガラス基板などの使用が好ましい。また、フッ素系溶媒を用いる場合は、テフロン（登録商標）でコーティングされた基板、あるいはフッ素化アルキルシランカップリング剤などで修飾したガラス基板などの使用が好ましい。
【００３５】
非水溶性ポリマーの水不溶性有機溶媒溶液を基板に塗付して同溶液の液膜を形成させる際の液膜厚としては１μｍ〜１０００μｍ、好ましくは７００μｍ以下とすることが望ましい。また基板に非水溶性ポリマーの水不溶性有機溶媒溶液を塗付する方法としては、基板に同溶液を滴下する方法の他、バーコート、ディップコート、スピンコート法などを挙げることができ、バッチ式、連続式の何れも利用することができる。
【００３６】
この様にして基板上に置いた薄膜から水不溶性有機溶媒を蒸発させることで、非水溶性ポリマーからなるハニカム状多孔質体を製造することができる。その際、溶媒の蒸発速度を調節することでも、ハニカム状多孔質体の孔径を調節することができる。
【００３７】
溶媒の蒸発速度は、相対湿度３０％以上の湿度を有する風速０．０１〜２０ｍ／秒の気流下に上記の基板上の薄膜を置くことで調節することができる。本願において使用する貫通した孔を有するハニカム状多孔質体の製造においては、相対湿度３０〜９９％、風速０．０１〜２０ｍ／秒の範囲内で調節した気流に非水溶性ポリマーの水不溶性有機溶媒溶液の液膜を置くことが好ましい。気流方向に対する薄膜の配置の仕方としては、基板上の薄膜に対して斜め上方向から、あるいは垂直方向から気流を当たるような配置では、気流による風圧によって薄膜に歪みや亀裂が発生することもあり得る。その様な場合には、薄膜は、気流に対して基板上の有機溶媒溶液の薄膜を平行に、あるいは上方向に生じさせることが好ましい。この場合、気流はその上流からの陽圧あるいは下流からの負圧の何れによって発生させても構わない。例えば、基板に向けて設置したノズルから所定の空気を噴射しても、基板上部の空気を一方向から吸引しても、何れでも良い。
【００３８】
上記の水滴を利用した方法によって製造される、孔が膜の垂直方向に貫通したハニカム状多孔質体は、１つの孔が６本の支柱で支えられた上下２枚のフィルムからなる２層構造を有しており、支柱は中心でくびれた構造を有する。これは、キャストした高分子溶液表面に、溶媒の蒸発潜熱によって空気中の水分が結露し、六方細密充填した水滴が細密充填した結果、水滴以外の空間で高分子の析出が生じるためと考えられる。
【００３９】
なお、ハニカム状多孔質体は、調製後脂肪細胞の播種前に、エタノール等を用いて滅菌し、さらに脂肪細胞の培養に好適な緩衝液あるいは液体培地に予め浸しておくことが好ましい。
【００４０】
本発明は、上記に説明したハニカム状多孔質体に脂肪細胞を播種する工程を含む。係る工程では、調製されたハニカム状多孔質体、好ましくは滅菌され、予め好適な緩衝液或いは液体培地に浸したハニカム状多孔質体を、プラスチックシャーレ、ウェルプレートその他の適当な培養容器に用意し、その上から脂肪細胞を播種することが好ましい。ハニカム状多孔質体の全体のサイズに特別な制限はない。
【００４１】
本発明において播種される脂肪細胞の例としては、腸間膜にある内臓脂肪細胞、胃の下部に存在する内臓脂肪細胞、皮下脂肪組織の脂肪細胞等を挙げることができるが、本発明で好適に使用される脂肪細胞は、腸間膜の内臓脂肪細胞、特に腸間膜の前記内臓脂肪細胞である。前駆内臓脂肪細胞は清水ら（Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌ．Ｉｎｔ．、２００６年、第３０巻、第３８１−３８８頁）に記載された方法に従って、腸間膜から分離することができる。
【００４２】
分離された内臓脂肪細胞は、適当な緩衝液あるいは液体培地に懸濁して、ハニカム状多孔質体の単位面積あたり、１．０×１０4 個／ｃｍ2 〜 １．０×１０6 個／ｃｍ2の範囲、好ましくは、０．５×１０5 個／ｃｍ2となるように播種すればよい。また適当な緩衝液あるいは液体培地としては、例えば生理的リン酸緩衝液（ＰＢＳ）、改変Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ Ｅａｇｌｅ培地（ＤＭＥＭ）、α−ＭＥＭ、ＲＰＭＩ１６４０等を挙げることができる。
【００４３】
本発明は、播種された脂肪細胞を、ハニカム状多孔質体上で前記脂肪細胞を増殖させる工程を含む。脂肪細胞の培養は、通常の動物細胞の培養条件で、好ましくは５％程度のＣＯ２の雰囲気下、３７℃前後の温度で、適当な液体培地に浸したハニカム状多孔質体を含む容器を静置又は振蕩して行えばよい。当該工程で利用可能な液体培地は、脂肪細胞を播種する工程で脂肪細胞を懸濁する際に利用可能な培地として例示した液体培地を利用することができる。
【００４４】
本発明によれば、脂肪細胞を長期間、具体的には１４日以上、さらに３０日間以上、さらには４０日以上に亘り、安定的に、すなわち培養中の脂肪細胞数を大きく減少させることなく、かつ脂肪細胞に特徴的なアディポネクチン、レプチンその他のサイトカインやホルモンなどの産生能、あるいは脂肪の産生、貯留、代謝分解能などの脂肪細胞の機能を維持したまま培養することができる。培養中の脂肪細胞のアディポネクチン、レプチンその他のサイトカインやホルモンなどの産生能、脂肪の代謝分解能は、脂肪細胞を対象とした多くの研究手法において用いられている公知の方法によってモニターすることができる。なお、係る公知の方法の詳細は、例えば金谷ら（Ｄｉａｔｅｔｅｓ、２００７年、第５６巻、第３号、第７９５−８０３頁）に記載されており、本明細書にそのまま取り込まれる。
【００４５】
本発明は、その一態様として、成熟内臓脂肪細胞を培養する方法を含む。すなわち、前駆内臓脂肪細胞をハニカム状多孔質体に播種する工程、及びハニカム状多孔質体上で前記前駆内臓脂肪細胞を成熟内臓脂肪細胞へ分化させ、前記成熟内臓脂肪細胞を維持する工程を含む方法である。この方法によって、成熟内臓脂肪細胞を１４日以上、さらに３０日間以上、さらには４０日以上に亘り、ハニカム状多孔質体上の成熟内臓脂肪細胞の数を減少させることなく、かつアディポネクチンの分泌量を低下させることなく、成熟内臓脂肪細胞を安定に培養することができる。ここで、培地に脂肪酸を添加することで、添加された脂肪酸を細胞内部に蓄積した成熟脂肪細胞を調製することもできる。
【００４６】
また本発明は、その一態様として、前駆内臓脂肪細胞を培養する方法を含む。すなわち、前駆内臓脂肪細胞をハニカム状多孔質体に播種する工程、及びハニカム状多孔質体上で前記前駆内臓脂肪細胞を増殖させる工程を含む方法である。
【００４７】
この前記内臓脂肪細胞を培養する方法において、脂肪酸、ビタミン及びインスリンを含む液体培地中で前駆内臓脂肪細胞を増殖させることで、前記前駆内臓脂肪細胞を、脂肪滴を内部に含む成熟内臓脂肪細胞へと分化誘導することができる。すなわち、本発明は、前駆内臓脂肪細胞から分化した成熟内臓脂肪細胞を調製する方法であって、非水溶性ポリマーからなるハニカム状多孔質体に前記前駆内臓脂肪細胞を播種する工程、脂肪酸、ビタミン及びインスリンを含む液体培地中で前記前駆内臓脂肪細胞を増殖させて分化した成熟内臓脂肪細胞を調製する工程を含む方法を提供するものである。この方法で使用される脂肪酸としては、例えばリノール酸、パルミチン酸等を、ビタミンとしてはパントテン酸、ビオチン、アスコルビン酸及びトリヨードチロニンを、それぞれ挙げることができ、それら及びインスリンの液体培地中の濃度は、前記非特許文献１に記載された設定に従えばよく、従って、前記非特許文献１の記載は本明細書にそのまま取り込まれる。
【００４８】
さらに、上記前駆内臓脂肪細胞を培養する方法において、インスリン濃度を０．８５〜１００ｎｇ／ｍＬとし、さらにＩＧＦ−１を好ましくは５０〜２５０nｇ／ｍＬの範囲で添加した液体培地を用いて前駆内臓脂肪細胞を増殖させることで、前駆内臓脂肪細胞を細胞内部に脂肪酸を過剰に蓄積した成熟内臓脂肪細胞へと分化誘導することができる。すなわち、本発明は、前駆内臓脂肪細胞から分化した成熟内臓脂肪細胞を調製する方法であって、非水溶性ポリマーからなるハニカム状多孔質体に前記前駆内臓脂肪細胞を播種する工程、脂肪酸、ビタミン、０．８５〜１００ｎｇ／ｍＬのインスリン及びＩＧＦ−１を含む液体培地中で前記前駆内臓脂肪細胞を増殖させて分化した成熟内臓脂肪細胞を調製する工程を含む方法を提供するものである。この方法によって、脂肪が過剰蓄積された成熟内臓脂肪細胞を調製することができる。
【実施例】
【００４９】
以下、実施例により本発明の実施の形態を説明するが、これらは本発明の発明を制限するものではない。
【００５０】
＜実施例１＞
（１）ハニカム状多孔質体の作製
ポリ（ε―カプロラクトン）（ＰＣＬ）（Ｗａｋｏ、Ｍ．Ｗ．７０，０００〜１００，０００）と両親媒性ポリアクリルアミド共重合体を重量比１０：１で５ｍｇ／ｍＬとなるようにクロロホルムに溶解した。この溶液４ｍｌ、８ｍｌ、ならびに１６ｍｌを、カバーガラス（φ1４mm）を敷き詰めたガラスシャーレ上にそれぞれキャストし、相対湿度８０％の雰囲気下でクロロホルムを蒸発させ、一定面積（φ1４mmのカバーグラス）にキャストする量を調節することで、平均孔径が５μｍ、１０μｍ、ならびに２０μｍの３種のハニカム膜（以下、ハニカムＡ、Ｂ、Ｃと表す）を作製した。なお、各膜の平均孔径は、走査型電子顕微鏡（ＳＥＭ）（ＨＩＴＡＣＨＩ，Ｓ−３５００）写真を用い、観察される孔の垂直に交わる２直径の平均として測定した。
【００５１】
（２）非水溶性ポリマーからなる平膜の作製
（１）のポリマー溶液２０μＬをカバーガラス上にキャストした後、カバーガラスをスピンコーター（ＭＩＫＡＳＡ １Ｈ−Ｄ７）で１，０００ｒｐｍ、３０秒間回転させ、カバーガラスの全面をポリマーで被覆、溶媒を蒸発させて孔のない平膜を作製し、細胞培養基材の比較コントロール（以下、平膜と表す）とした。
【００５２】
（３）脂肪細胞の調製
清水らの方法（前記）に従って、前駆脂肪細胞を調製した。すなわち、Ｓｐｒａｇｕｅ−Ｄａｗｌｅｙ ｒａｔｓを頸椎脱臼により安楽死させ、速やかに腸間膜内臓脂肪組織を摘出し、Ｈａｎｋｓ’ ｂａｌａｎｃｅｄ ｓａｌｔ ｓｏｌｕｔｉｏｎ（ＨＢＳＳ， Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）で洗浄してから、血管およびリンパ節を除いてハサミで小断片にした。 次に０．２％ ｃｏｌｌａｇｅｎａｓｅ （ＴｙｐｅＩＩ、Ｗｏｒｔｈｉｎｇｔｏｎ Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）及び１．０％ ＢＳＡを含むＤＭＥＭ培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ）を加え、３７℃で４０分間、震盪させながらインキュベートした。次に６００μｍナイロンメッシュで濾過して、未消化の組織塊片を除き、ＨＢＳＳを加えてから８００×ｇ、１０分間、４℃で遠心した。沈殿物にＤＭＥＭを加え、１００μｍナイロンメッシュで濾過して、再び未消化の組織塊片を除き、ＨＢＳＳを加えてから８００×ｇ、１０分間、４℃で遠心し、前駆脂肪細胞を調製した。
【００５３】
（４）脂肪細胞の培養
実施例１で作製したハニカムＡ、Ｂ、Ｃと（２）で調製した平膜を６ウェルプレートに置き、７０％エタノールで滅菌し、さらにＤＭＥＭ／Ｆ−１２培地で洗浄後、２ｍＬのＤＭＥＭ／Ｆ−１２培地を加えて各基材を浸した。各基材、及び接着細胞培養用の通常ディッシュ（ｇｒｅｉｎｅｒ ｂｉｏ−ｏｎｅ製、ＣＥＬＬＳＴＡＲ（登録商標）、以下、通常ディッシュと表す）に、（３）で調製した脂肪細胞を０．５×１０5個／ｃｍ２の播種密度でそれぞれ播種し、５％ＣＯ２、３７℃インキュベーター内で静置培養を開始した。
【００５４】
培養開始より１４日目（図２）では、通常ディッシュ（図２−１）、ハニカムＡ（図２−３）、ハニカムＢ（図２−４）、ハニカムＣ（図２−５）上で脂肪細胞の増殖が観察されたが、平膜（図２−２）上では、脂肪細胞は少なく、多くの細胞は繊維芽状の細胞であった。
培養開始より３０日目（図３）では、通常ディッシュ（図３−１）及び平膜（図３−２）上の脂肪細胞の数は顕著に減少したが、ハニカムＡ（図３−３）、ハニカムＢ（図３−４）、ハニカムＣ（図３−５）上では、依然として多数の脂肪細胞が観察された。平膜では脂肪細胞の数が減少することから、ハニカム状多孔質上で多数の脂肪細胞が維持されるということは、ハニカム状多孔質体の構成成分によるものではなく、微細な孔が規則的に配置されるというハニカム状多孔質体の構造が、２週間を超え長期間に亘り脂肪細胞を培養基材上に維持するために重要であると考えられる。
【００５５】
（５）アディポネクチン産生量の測定
各種培養基材上で培養した脂肪細胞の機能の指標として、アディポネクチン（ａｄｉｐｏｎｅｃｔｉｎ）の分泌量を、大塚製薬社製のａｄｉｐｏｎｅｃｔｉｎ ＥＬＩＳＡ ｋｉｔ ｆｏｒ ｒａｔ／ｍｏｕｓeを使用して測定した。アディポネクチンは、脂肪細胞が特異的に産生するサイトカインであり、インスリン抵抗性に起因する生活習慣病の改善効果を有する。
【００５６】
培養開始より１０日目（図４、１０ｄａｙｓ）では、通常ディッシュ（レーン1）で培養した場合にアディポネクチンの分泌量が最も多かった。一方、培養開始より４０日目（図４、４０ｄａｙｓ）では、通常ディッシュで培養した場合でアディポネクチンの分泌量が培養開始１０日目のそれと比較して顕著に減少しているのに対して、ハニカム膜で培養した場合ではアディポネクチンの分泌量が維持されていた（図４、レーン３−５）。また、ハニカム膜の孔径が大きくなる程、アディポネクチンの分泌量は高くなる傾向が認められた。一方、平膜では、培養開始１０日目及び４０日目のいずれにおいてもアディポネクチンの分泌量は低かった（図４、レーン２）。
【００５７】
また、４０日間培養した脂肪細胞からｍＲＮＡを回収し、Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ ７５００ Ｒｅａｌ Ｔｉｍｅ ＰＣＲ Ｓｙｓｔｅｍを用い、ＴａｑＭａｎ（登録商標）ＰＣＲ ｋｉｔ ｐｒｏｔｏｃｏｌの実験方法に従ったリアルタイムＰＣＲによって、アディポネクチン（図５）とＣ／ＥＢＰα（ＣＣＡＡＴ／ｅｎｈａｎｃｅｒ ｂｉｎｄｉｎｇ ｐｒｏｔｅｉｎ  α、図６）のｍＲＮＡ発現量をそれぞれ測定した。Ｃ／ＥＢＰαは成熟脂肪細胞に特異的な分化マーカーである。その結果、ハニカム膜の孔径が大きくなる程、いずれのｍＲＮＡ発現量も高くなる傾向が認められた。
【００５８】
以上の結果から、ハニカム膜の孔径が大きい方が脂肪細胞の指標であるアディポネクチンの発現量は高く、従って脂肪細胞の長期間培養用基材としては、平均孔径の大きい（２０μｍ）ハニカムＣの使用が好ましいことが確認された。
【産業上の利用可能性】
【００５９】
本発明は、上記のとおり、脂肪細胞、特に成熟内臓脂肪細胞及び前駆内臓脂肪細胞を長期間安定に培養することができ、また前駆内臓脂肪細胞から成熟内臓脂肪細胞を分化誘導することができる、さらにこうして分化誘導された成熟内臓脂肪細胞をさらに長期間に亘って安定に培養することができる。また本発明に方法において培地に脂肪酸が含まれる系では、当該脂肪酸を細胞内部に蓄積乃至過剰蓄積した脂肪細胞を調製することもできる。
【００６０】
また、本発明における増殖過程において、液体培地にある物質を加え、脂肪細胞内への脂肪の蓄積あるいは前駆内臓脂肪細胞から成熟脂肪細胞への分化誘導の抑制を観察することで、脂肪細胞への脂肪蓄積あるいは成熟脂肪細胞への分化誘導を抑制する物質をスクリーニングすることができる。従って本発明の方法は、脂肪細胞への脂肪の過剰蓄積を抑制する物質のスクリーニングに利用することができ、係る物質を有効成分とする機能性食品あるいは薬物の開発に寄与することができる。
【図面の簡単な説明】
【００６１】
【図１】本発明の軟骨組織再生用基材 であるハニカム フィルムの電子顕微鏡写真。
【図２】各種培養基材上で脂肪細胞を１４日間培養したときの脂肪細胞の様子を示す、走査型電子顕微鏡（ＳＥＭ）写真である。１：通常ディッシュ、２：平膜、３：ハニカムＡ、４：ハニカムＢ、５：ハニカムＣ。
【図３】各種培養基材上で脂肪細胞を３０日間培養したときの脂肪細胞の様子を示す、走査型電子顕微鏡（ＳＥＭ）写真である。１：通常ディッシュ、２：平膜、３及び６：ハニカムＡ、４及び７：ハニカムＢ、５及び８：ハニカムＣ。
【図４】各種培養基材上で脂肪細胞を１０日間及び４０日間培養したときの脂肪細胞からのアディポネクチンの分泌量を示すグラフである。レーン１：通常ディッシュ、レーン２：平膜、レーン３：ハニカムＡ、レーン４：ハニカムＢ、レーン５：ハニカムＣ。
【図５】ハニカムＡ〜Ｃ上で４０日間培養したときの脂肪細胞におけるアディポネクチンのｍＲＮＡ発現量をリアルタイムＰＣＲで測定した結果を示すグラフである。レーン１：ハニカムＡ、レーン２：ハニカムＢ、レーン３：ハニカムＣ。
【図６】ハニカムＡ〜Ｃ上で４０日間培養したときの脂肪細胞におけるＣ／ＥＢＰαのｍＲＮＡ発現量をリアルタイムＰＣＲで測定した結果を示すグラフである。レーン１：ハニカムＡ、レーン２：ハニカムＢ、レーン３：ハニカムＣ。
【図４】
2009165403.tif 000002
【図５】
2009165403.tif 000003
【図６】
2009165403.tif 000004
【図１】
2009165403.tif 000005
【図２】
2009165403.tif 000006
【図３】
2009165403.tif 000007