(57)【要約】【課題】カードボード臭の主要因物質であるトランス−２−ノネナールを、従来よりもさらに低い濃度域において、充分な感度を示し、かつ高い精度で定量分析することができるトランス−２−ノネナールの分析方法の提供【解決手段】本発明による発酵麦芽飲料もしくはビール様飲料または麦汁中のトランス−２−ノネナールの分析方法は、発酵麦芽飲料もしくはビール様飲料または麦汁から得られた被検サンプルを、ヘッドスペース−固相マイクロ抽出（ＨＳ−ＳＰＭＥ）ガスクロマトグラフ質量分析法（ＧＣ／ＭＳ法）に付し、内部標準物質として、トランス−２−ノネナールの安定同位体を使用することを特徴とする。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
発酵麦芽飲料もしくはビール様飲料または麦汁中のトランス−２−ノネナールの分析方法であって、
発酵麦芽飲料もしくはビール様飲料または麦汁から得られた被検サンプルを、ヘッドスペース−固相マイクロ抽出（ＨＳ−ＳＰＭＥ）ガスクロマトグラフ質量分析法（ＧＣ／ＭＳ法）に付し、内部標準物質として、トランス−２−ノネナールの安定同位体を使用することを特徴とする、方法。
【請求項２】
トランス−２−ノネナールの安定同位体が、トランス−２−ノネナール中の水素原子の２以上が重水素で置換されてなるものである、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
トランス−２−ノネナールの安定同位体が、トランス−２−ノネナール中の２位および３位の水素が重水素置換されたトランス−２−ノネナール重水素置換体である、請求項１に記載の方法。
【請求項４】
被検サンプルを、予め、約ｐＨ４に調整後１００℃にて約２時間加熱しておくことによって、ノネナールポテンシャル（ＮＰ）量を測定する、請求項１〜３のいずれか一項に記載の方法。
【請求項５】
ＳＰＭＥファイバーに固定された誘導試薬としてのＰＦＢＯＡ（ｏ−（２，３，４，５，６−ペンタフルオロベンジル）−ヒドロキシアミン）と、被検サンプル中のトランス−２−ノネナールとを反応させてオキシム化し、得られた誘導体をＧＣ／ＭＳに付すことを含む、請求項１〜４のいずれか一項に記載の方法。
【請求項６】
ＳＰＭＥファイバーへのＰＦＢＯＡの固定を、ＰＦＢＯＡ溶液の入ったバイアルのヘッドスペースで行い、ＳＰＭＥファイバーに固定されたＰＦＢＯＡとトランス−２−ノネナールとオキシム化を被検サンプルの入ったバイアルのヘッドスペースで行い、かつ固定化およびオキシム化を３０〜７０℃の温度下にて実施する、請求項５に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【発明の背景】
【０００１】
発明の分野
本発明は、発酵麦芽飲料もしくはビール様飲料のような飲料または麦汁中のカードボード臭（段ボール臭）の主要因物質であるトランス−２−ノネナールの固相マイクロ抽出ガスクロマトグラフ質量分析（ＳＰＭＥ(Solid Phase Micro Extraction)−ＧＣ／ＭＳ）を用いた高精度でかつ高感度な分析方法に関する。
【０００２】
背景技術
ビールや麦芽を原料とする発泡酒などの麦芽発酵飲料、および麦芽以外の穀類を原料とするようなビール様飲料は、時間の経過、温度の上昇等により酸化等の化学反応が加速されて製品の劣化が進行することがある。劣化した製品では、飲料の本来の味覚や香り（すなわち風味）が損なわれ、品質の低下がもたらされる。この内、ビールの「カードボード臭」（段ボール臭ともいう）は、このような劣化臭の代表例であり、その主要因物質として、アルデヒド類、特に、トランス−２−ノネナール（trans-2-nonenal）（以下において「Ｔ２Ｎ」ということがある）が知られている。
【０００３】
麦芽発酵飲料、ビール様飲料、および麦汁中におけるトランス−２−ノネナールの量が多いと、好ましくない香味（特にカードボード臭）のする飲料および麦汁であることとなり、製品もしくは麦汁の鮮度が悪化していることを意味すると言える。このため、飲料および麦汁中のトランス−２−ノネナールを測定することは、製品管理の上からも重要である。
【０００４】
トランス−２−ノネナールの生成経路の一つとして、原料の脂質・脂肪酸に由来して麦汁調製過程でリポキシゲナーゼによる酵素的な酸化または非酵素的な酸化の両面を受けて、トランス−２−ノネナールの前駆体（ヒドロオキシド誘導体）が形成され、酸化的分解を経てトランス−２−ノネナールが生成される経路がある。製品ビールや発泡酒等でのトランス−２−ノネナールは、前記前駆体が、発酵・貯蔵過程でかなり除去されるものの最終的にはビールに移行して、その後の酸化で生成されるという説もあり、また、麦汁中で生成したトランス−２−ノネナールが、麦汁中のアミノ酸などの一級アミンとのシッフ塩基を形成して、その多くが発酵・貯蔵過程で除去されるものの、一部製品ビールまたは発泡酒等に移行し、温度やｐＨの条件によってトランス−２−ノネナールが遊離するとも考えられている（Lermusieau et al., J.Am.Soc.Brew.Chem.57, 1999, p29-33、およびＷＯ２００３／１６４５７（特許文献１））。
【０００５】
固相マイクロ抽出ガスクログラフ（ＳＰＭＥ−ＧＣ／ＭＳ）は、細いニードルに結合された固相（ＳＰＭＥファイバー）に試料中の化学物質を吸着させ、吸着後、ニードルをＧＣ／ＭＳの注入口に挿入して化学物質を加熱脱着させることにより測定する方法であり、極めて少量の試料によって短時間での測定を可能とするものである。
【０００６】
文献 B. W. Drost et al., Am. Soc. Brew. Chem. Journal, Vol.48, No.4, pp. 124-131 (1990)（非特許文献１）には、麦汁のリポキシゲナーゼ量およびノネナールポテンシャル量と、自然劣化した製品ビール中のトランス−２−ノネナール量とには、高い相関関係があり、これらの値はビール製品における製品劣化の可能性を予測するのに有用であることが開示されている。なおここでノネナールポテンシャルの量とは、麦汁等に含まれるトランス−２−ノネナールおよびその前駆体の総量であって、麦汁等に潜在的に含まれるトランス−２−ノネナール量を意味している。ここでは、ビール中のトランス−２−ノネナール量を、高速液体クロマトグラフ（ＨＰＬＣ）とガスクロマトグラフ（ＧＣ）とを用いて測定している。しかしながら、固相マイクロ抽出ガスクロマトグラフ質量分析法（ＳＰＭＥ−ＧＣ／ＭＳ法）については開示されていない。
【０００７】
文献 N. Ochiai et al., Journal of Chromatography A, 986 (2003), pp.101-110（非特許文献２）には、加熱脱着ガスクロマトグラフ質量分析法により、ビール中の劣化臭気を生ずるカルボニル化合物（Ｅ−２−ノネナールを含む）の測定について開示されている。ここには、固相マイクロ抽出（ＳＰＭＥ）を用いてＥ−２−ノネナールを測定したことも開示されている一方で、ＳＰＭＥ法では、感度が従来の方法より悪く、検出限界が臭気の閾値濃度まで到達できなかったことが開示されている（同文献の102頁左欄）。
【０００８】
文献 L. Goebl and H.-U. Meisch, Monatsschrift fur Brauwissenschaft, October 2004, pp. 56-60（非特許文献３）には、固相マイクロ抽出ガスクロマトグラフ（ＳＰＭＥ／ＧＣ）によるビール中の老化関連物質の測定について開示されている。ここでいう老化関連物質とは、ビール中の２０種のカルボニル化合物であり、この中の一つとしてトランス−２−ノネナールが挙げられている（表１の１８）。ここでは、質量分析器（ＭＳ）ではなく、電子捕獲型検出器（ＥＣＤ）が使用されており、測定対象もトランス−２−ノネナールに特定することなく、２０種のカルボニル化合物を一斉に測定することを目指している。しかしながらここには、測定精度や感度との関係での内部標準物質の選択の重要性や、実際に使用した内部標準物質について特に開示されていない。
【０００９】
文献 D.R.Bright et. al., EBC Congress, 1993, pp. 413-420, "Beer flavor stability improvement and correlations to carbonyl profile" （非特許文献４）には、製品ビール中における、香味に関連する、カルボニル化合物（アルデヒド類、ケトン類、エステル類、アルコール類等）のプロフィールのガスクロマトグラフ（ＧＣ）を使用した測定について開示されている。カルボニル化合物のリストの中に、ｔ−２−ノネナールが挙げられており、内部標準物質として３−メチルシクロヘキサノンを使用したことが開示されている。しかしながらここには、測定対象をトランス−２−ノネナールに特定することなく、多くのカルボニル化合物を一斉に測定することを目指している。また、測定精度や感度との関係での内部標準物質の選択の重要性について特に開示されていない。
【００１０】
特開２００２−２５３１９６号公報（特許文献２）には、麦汁のノネナールポテンシャルを指標とする麦芽の評価方法および麦芽アルコール飲料中に生成するトランス−２−ノネナール量を推定し、これを指標とする麦芽アルコール飲料の香味安定性を予測する方法が開示されている。ここには、ｏ−（２，３，４，５，６−ペンタフルオロベンジル）−ヒドロキシルアミン塩酸塩を用いて麦汁を誘導化した後、トランス−２−ノネナールを固相抽出した後ＧＣ／ＭＳを用いて、ノネナールポテンシャルを測定することが開示されている（同実施例）。しかしながら、使用している固相抽出法は、液体クロマトグラフの技術を応用した固相抽出カートリッジ（Sep-Pak C18）を使用するものであって、充填剤を含むカードリッジに試料液を透過させる。このため、試料液を入れたバイアルのヘッドスペースにＳＰＭＥファイバーを挿入して固定化を行う、ヘッドスペース−固相マイクロ抽出法（ＨＳ−ＳＰＭＥ）とは、本質的に異なる。またここでは、測定精度や感度との関係での内部標準物質の選択の重要性や、実際に使用した内部標準物質について特に開示されていない。
【００１１】
このため、トランス−２−ノネナールまたはノネナールポテンシャルを、高精度かつ高感度で分析可能な方法であって、比較的短時間で測定可能で、操作が簡便であり、さらに安全性に優れた方法が依然として望まれている。
【００１２】
【特許文献１】国際公開第ＷＯ２００３／１６４５７号
【特許文献２】特開２００２−２５３１９６号公報
【非特許文献１】B. W. Drost et al., Am. Soc. Brew. Chem. Journal, Vol.48, No.4, pp. 124-131 (1990)
【非特許文献２】N. Ochiai et al., Journal of Chromatography A, 986 (2003), pp.101-110
【非特許文献３】L. Goebl and H.-U. Meisch, Monatsschrift fur Brauwissenschaft, October 2004, pp. 56-60
【非特許文献４】D. R. Bright et. al., EBC Congress, 1993, pp. 413-420, "Beer flavor stability improvement and correlations to carbonyl profile"
【発明の概要】
【００１３】
本発明者らは今般、発酵麦芽飲料もしくはビール様飲料のような飲料または麦汁中のトランス−２−ノネナールを、固相マイクロ抽出ガスクロマトグラフ質量分析法、特にヘッドスペース−固相マイクロ抽出法による分析法によって分析することにより、迅速・簡便かつ、高精度および高感度で定量的に分析できることを見出した。このとき、使用する内部標準物質として、トランス−２−ノネナールの安定同位体、特に、トランス−２−ノネナールの特定の位置において水素が重水素で置換された重水素置換体を使用することによって、分析精度および感度を大幅に高めることに成功した。本発明はこれら知見に基づくものである。
【００１４】
よって本発明は、カードボード臭の主要因物質であるトランス−２−ノネナールを、従来よりもさらに低い濃度域において、充分な感度を示し、かつ高い精度で定量分析することができるトランス−２−ノネナールの分析方法の提供をその目的とする。
【００１５】
本発明による発酵麦芽飲料もしくはビール様飲料または麦汁中のトランス−２−ノネナールの分析方法は、発酵麦芽飲料もしくはビール様飲料または麦汁から得られた被検サンプルを、ヘッドスペース−固相マイクロ抽出（ＨＳ−ＳＰＭＥ）ガスクロマトグラフ質量分析法（ＧＣ／ＭＳ法）に付し、内部標準物質として、トランス−２−ノネナールの安定同位体を使用することを特徴とするものである。
【００１６】
本発明の好ましい態様によれば、トランス−２−ノネナールの安定同位体は、トランス−２−ノネナール中の水素原子の２以上が重水素で置換されてなるものである。より好ましくは、トランス−２−ノネナールの安定同位体は、トランス−２−ノネナール中の２位および３位の水素が重水素置換されたトランス−２−ノネナール重水素置換体である。
【００１７】
本発明の一つの好ましい態様によれば、本発明の方法において、被検サンプルを、予め、約ｐＨ４に調整後１００℃にて約２時間加熱しておくことによって、ノネナールポテンシャル（本明細書において「ＮＰ」ということがある）の量を測定する。
【００１８】
好ましくは、本発明による方法は、ＳＰＭＥファイバーに固定された誘導試薬としてのＰＦＢＯＡ（ｏ−（２，３，４，５，６−ペンタフルオロベンジル）−ヒドロキシアミン）と、被検サンプル中のトランス−２−ノネナールとを反応させてオキシム化し、得られた誘導体をＧＣ／ＭＳに付すことを含む。
【００１９】
さらに好ましくは、本発明の方法は、ＳＰＭＥファイバーへのＰＦＢＯＡの固定を、ＰＦＢＯＡ溶液の入ったバイアルのヘッドスペースで行い、ＳＰＭＥファイバーに固定されたＰＦＢＯＡとトランス−２−ノネナールとオキシム化を被検サンプルの入ったバイアルのヘッドスペースで行い、かつ、固定化およびオキシム化は３０〜７０℃の温度下にて実施される。
【００２０】
本発明の方法によれば、発酵麦芽飲料もしくはビール様飲料（製造工程の半製品を含む）または麦汁中に含まれ得るトランス−２−ノネナールを、高精度かつ高感度で迅速・簡便に定量的に分析することができる。本発明の方法によれば、従来の方法、例えば、ＨＰＬＣを利用する方法や、固相マイクロ抽出ガスクログラフ（ＳＰＭＥ−ＧＣ／ＭＳ）を用いる方法であって内部標準物質が本発明とは異なるシクロヘキサノン等を使用する方法に比べて、検出限界０．００５ｐｐｂ（＝μｇ／Ｌ）レベルまで大幅に下げることができ、測定のばらつきを示すＣＶ値も半分から数分の一のレベルにまで下げることができ、測定精度を大幅に高めることが出来る。本発明による方法は、ＨＰＬＣ法などに比べて、迅速かつ効率的に分析を行うことができ、操作やメンテナンスの煩雑さを低減できる。さらに従来のＨＰＬＣ法のように毒性のある溶媒（例えばアセトニトリルやダンシルヒドラジンなど）を使用する必要もないため、本発明の方法によれば、安全性も向上させることができる。このため、本発明の方法は、緻密な工程管理、品質管理に貢献できるものであり、さらにカードボード臭のような劣化臭を発生し難い製品の開発、工程条件の確立等に貢献し得るものである。
【発明の具体的説明】
【００２１】
本発明による方法は、前記したように、発酵麦芽飲料もしくはビール様飲料または麦汁中のトランス−２−ノネナールの分析方法であって、発酵麦芽飲料もしくはビール様飲料または麦汁から得られた被検サンプルを、ヘッドスペース−固相マイクロ抽出ガスクロマトグラフ質量分析法に付し、内部標準物質として、トランス−２−ノネナールの安定同位体を使用することを特徴とする。
【００２２】
本発明において、「発酵麦芽飲料」とは、麦芽を用いて得られた加ホップ麦汁を主成分とする原料を、発酵させることによって得られる飲料をいい、例えば、ビール、発泡酒等が挙げられる。
【００２３】
また、「ビール様飲料」には、前記した「発酵麦芽飲料」以外の飲料であって、発酵麦芽飲料と同等に、トランス−２−ノネナールによる劣化臭を発生し得る飲料、すなわちトランス−２−ノネナールもしくはその前駆体を含有し得る飲料であれば、いずれのものも包含される。「ビール様飲料」としては、例えば、ビールと同等もしくは類似した風味を有する、穀物を原料とする発酵飲料などが挙げられ、具体例として、大豆やエンドウ豆のような豆類由来成分とホップとを原料として発酵させることによって得られる飲料（いわゆる、酒税法上「その他雑酒２」に分類されるアルコール飲料を包含する）などが挙げられる。
【００２４】
またここでいう「飲料」には、製品としての飲料が含まれることは当然として、該飲料を製造する過程における半製品の状態のものや、飲料の評価の際等に使用されるトランス−２−ノネナールを含むコントロール溶液等も包含される。
【００２５】
本発明において、「麦汁」とは、当業者に麦汁として理解されうるもの、例えば、ビール等の発酵麦芽飲料の製造工程において得られる麦汁であれば特に制限はない。一般的に、ビール等の発酵麦芽飲料の製造工程は、麦芽を調製する製麦工程、麦芽を糖化槽で糖化後ろ過してろ過麦汁を得、さらにホップを添加し煮沸して最終的な仕上がり麦汁を得る仕込み工程を含む。具体的には、麦汁は、これら工程で得られる麦汁（全濾過麦汁）またはそれからさらに調製された麦汁を包含する。
【００２６】
本発明において、「ノネナールポテンシャル」量とは、飲料や麦汁のような被検サンプルに含まれるトランス−２−ノネナールおよびその前駆体の総量をいい、被検サンプル中に現実的および潜在的に含まれるトランス−２−ノネナールの総量を意味する指標である。またノネナールポテンシャルは、潜在的な劣化臭を知るための指標になり得るものである。ノネナールポテンシャル量の算出にあたっては、例えば、文献 B. W. Drost et al., Am. Soc. Brew. Chem. Journal, Vol.48, No.4, pp. 124-131 (1990)（非特許文献１）のノネナールポテンシャルの項目を参照してもよいが、本発明においては、ｐＨ４．０に調整した酢酸緩衝液に、一定量（緩衝液の１／５量）の被検サンプルを加えて、これを１００℃で２時間加熱（煮沸）し、生成したトランス−２−ノネナールの量を測定することにより、その被検サンプルのノネナールポテンシャル量を得ることができる。
因みに、麦汁の糖度を１１°Ｐ（プラトー）に調整した全濾過麦汁中のＮＰ量は、ビールの種類によっても異なるが通常７〜１０ｐｐｂ程度である。
【００２７】
本発明におけるヘッドスペース−固相マイクロ抽出（ＨＳ−ＳＰＭＥ）法は、慣用のＨＳ−ＳＰＭＥ用の装置・器具であればいずれのものにおいても実施することができる。したがって、本発明においては、市販のＨＳ−ＳＰＭＥ用の装置・器具を適宜使用することができる。また本発明におけるガスクロマトグラフ質量分析法（ＧＣ／ＭＳ法）も、慣用のＧＣ／ＭＳ装置であればいずれのものにおいても実施することができる。したがって、本発明においては、市販のＧＣ／ＭＳ装置を適宜使用することができる。
【００２８】
本発明におけるヘッドスペース−固相マイクロ抽出法の概略を示せば下記の通りである。まず、細いニードルに結合された固相（ファイバー）を有するＳＰＭＥファイバーを用意し、これを誘導試薬の溶液を採取したバイアル（例えば、ヘッドスペースを設けることができるＳＰＭＥ用バイアル）（例えば、５〜２０ｍｌ容量）のセプタムに貫通させ、ヘッドスペースの空間に、ファイバーを露出させて、例えば３０〜７０℃（好ましくは４０〜６０℃、より好ましくは約５０℃）の条件で１０〜２０分程度（例えば、約１０分）おき、誘導試料をＳＰＭＥファイバーに固定化する。
【００２９】
ここで、ＳＰＭＥファイバーとしては、ジビニルベンゼン誘導体（ＤＶＢ）、ポリジメチルシロキサン（ＰＤＭＳ）、カルボキセン、カルボワックス等またはそれらの組合せをシリカファイバーにコーティングしたものが好ましく使用される。より好ましくは、ＳＰＭＥファイバーは、ＤＶＢ、カルボキセンおよびＰＤＭＳを使用するタイプのものである。ＳＰＭＥファイバーは、市販品を使用でき、例えば、ＳＵＰＥＬＣＯ社等より入手可能である。
【００３０】
前記誘導試薬としては、トランス−２−ノネナールと結合して、Ｔ２Ｎとの間でオキシム化等により誘導体を形成して、アルデヒド基やケトン基を誘導抽出することができ、かつ、得られた誘導体をＧＣ／ＭＳでの測定に利用できるのであれば、いずれのものでも良いが、本発明では、ＰＦＢＯＡ（ｏ−（２，３，４，５，６−ペンタフルオロベンジル）−ヒドロキシアミン）が誘導試薬として好適に使用できる。
【００３１】
次に、誘導試薬を固定したＳＰＭＥファイバーを、被検サンプルの溶液を採取したバイアル（例えば、ヘッドスペースを設けることができるＳＰＭＥ用バイアル）（例えば、５〜２０ｍｌ容量）のセプタムに貫通させ、ヘッドスペースの空間に、ファイバーを露出させて、例えば３０〜７０℃（好ましくは４０〜６０℃、より好ましくは約５０℃）の条件で４０〜７０分程度（例えば、約４０分）おき、固定されている誘導試薬と、トランス−２−ノネナールとの間でオキシム化反応を進行させ、誘導体を形成させる。この反応は下式として表すことができる。このようにして、目的物質の誘導抽出を行う。
得られた誘導体を、得られた誘導体（誘導体が固定されたニードル）をＧＣ／ＭＳに付し、トランス−２−ノネナールまたはノネナールポテンシャルを測定する。
【００３２】
【化１】
2009047573.tif 000002
【００３３】
ここで、使用する被検サンプルは、分析を希望する飲料や麦汁をそのまま使用してもよいが、必要に応じて、飲料の場合には製品を模した５％エタノール溶液等を用いて希釈しても良い。また分析によってノネナールポテンシャルの測定を希望する場合には、予め、被検サンプルを約ｐＨ４に調整後、必要に応じて希釈して、１００℃にて約２時間加熱しておくことが望ましい。
【００３４】
よって、前記したように、本発明の好ましくは、本発明による方法は、ＳＰＭＥファイバーに固定された誘導試薬としてのＰＦＢＯＡ（ｏ−（２，３，４，５，６−ペンタフルオロベンジル）−ヒドロキシアミン）と、被検サンプル中のトランス−２−ノネナールとを反応させてオキシム化し、得られた誘導体をＧＣ／ＭＳに付すことを含む。さらに好ましくは、本発明の方法は、ＳＰＭＥファイバーへのＰＦＢＯＡの固定を、ＰＦＢＯＡ溶液の入ったバイアルのヘッドスペースで行い、ＳＰＭＥファイバーに固定されたＰＦＢＯＡとトランス−２−ノネナールとオキシム化を被検サンプルの入ったバイアルのヘッドスペースで行い、かつ、固定化およびオキシム化は３０〜７０℃の温度下にて実施される。
【００３５】
また前記したように、本発明の方法においては、内部標準物質として、トランス−２−ノネナールの安定同位体体を使用する。内部標準物質の使用濃度は、例えば、１０ｐｐｂ相当の濃度である。このような値であると、分析結果のＳＮ比に大きな影響を及ぼさない。
【００３６】
ここで、「トランス−２−ノネナールの安定同位体」とは、トランス−２−ノネナールを構成する元素の原子の少なくともいずれか一つが、その元素の安定同位体元素で置換されてなるものをいう。このような安定同位体元素としては、例えば、重水素原子（Ｄ）、三重水素原子（Ｔ）、Ｃ１３、Ｓ３４が挙げられる。好ましくは、トランス−２−ノネナールの安定同位体は、トランス−２−ノネナール中の水素原子の２以上が水素元素の同位体（Ｄ体、重水素）に置換されてなるものであり、より好ましくは、トランス−２−ノネナール中の２つの水素原子が、重水素（Ｄ体）により置換されてなるもの（Ｔ２Ｎ−ｄ２）であり、最も好ましくは、トランス−２−ノネナール中の２位および３位の水素が重水素置換されたトランス−２−ノネナール重水素置換体（下式（Ｉ）のＴ２Ｎ−ｄ２）である。
【００３７】
【化２】
2009047573.tif 000003
【００３８】
本発明において、このようなトランス−２−ノネナールの安定同位体は、慣用の方法によって、Ｔ２Ｎ上の原子を置換することにより調製することができる。あるいは、Ｔ２Ｎを合成する過程の中間体において、その中の原子を置換することによって調製することができる。例えば、式（Ｉ）のＴ２Ｎ−ｄ２は、下記のようなスキームに従って製造することができる。
【００３９】
【化３】
2009047573.tif 000004
【００４０】
本発明によるトランス−２−ノネナールの分析方法は、前記したように、従来よりもさらに低い濃度域において充分な感度と、高い精度でトランス−２−ノネナールを、定量的に分析することができるものである。ここで、分析の「精度」とは、繰返し分析した際の分析値の“ばらつき”の程度を意味し、高精度とは、そのばらつきが少ない場合を意味する。本発明においては、この精度を下記のように定義されるＣ．Ｖ．値で評価することができる。
Ｃ．Ｖ．値（％）＝
［繰返し測定したときの分析値の標準偏差］／［分析値の平均値］ Ｘ １００
【００４１】
本発明によれば、Ｃ．Ｖ．値は、５．０％以下となるものであり、好ましくは３．０％以下となる（例えば、後述する実施例では１．４〜２．２％であった）。このため本発明による方法は高い精度を有するものと言える。この値は、従来の方法の場合（ＨＰＬＣ法では例えば４．４％）に比べて１／２程度の値であることから、分析の効率を高める上で本発明の方法は有利であると言える。
【００４２】
またここで、分析の「感度」が高いとは、トランス−２−ノネナールの検出限界の下限値がより小さい値であることを意味する。検出限界値は、検出限度をＳ／Ｎ＝３を与える濃度とした場合の分析対象物質の濃度値と定義される。ここで、Ｓ／Ｎとはトランス−２−ノネナールのシグナルピークの高さとノイズの高さとの比で表わされる。本発明によれば、トランス−２−ノネナールの検出限界値、すなわちトランス−２−ノネナールの検出可能な濃度範囲は、好ましくは０．００５ｐｐｂ以上である。このような検出限界の下限値は、従来の方法の場合（ＨＰＬＣ法では０．０５ｐｐｂ）に比べて１／１０の値であることから、飲料や麦汁中に、従来の場合よりも微量に含まれるトランス−２−ノネナールを分析できるので、本発明の方法は優れた分析性能を有していると言える。
【００４３】
本発明の方法によれば、上記したトランス−２−ノネナールに加えて、ストレッカーアルデヒド類全般、例えば、プロパナール、ブタナール、２−メチルブタナール、３−メチルブタナール、メチオナール、フェニルアセタアルデヒド等の分析（定量的分析）を行うことも可能である。
【００４４】
なお本明細書において、「約」を用いた値の表現は、その値を設定することによる目的を達成する上で、当業者であれば許容することができる値の変動を含む意味である。
【実施例】
【００４５】
本発明を以下の例によって詳細に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
【００４６】
実験方法：
本実施例において、ビールのサンプルとしては、冷蔵の市販製品ビール（キリンビール株式会社製）を使用し、麦汁のサンプルとしては、冷蔵の市販製品ビール（キリンビール株式会社製）用の麦汁を使用した。
【００４７】
使用した装置および器具は下記の通りであった：
・ＳＰＭＥファイバー：  SUPELCO社製、Stable Flex DVB/Carboxen/PDMSファイバー（57328-U）；
・インレットライナー：  SUPELCO社製、ＳＰＭＥ用インレットライナー；
・20ｍｌ容ガラスバイアル：  GERSTEL社製；
・ＧＣ／ＭＳ：  Agilent社製、5973型。
【００４８】
実施例１：  内部標準物質の検討
被検サンプルとして、前記のビールおよび麦汁を使用し、誘導試薬としてのＰＦＢＯＡを使用し、ＳＰＭＥにおける、固定化およびオキシム化反応の条件としては、それぞれ１０分間−５０℃、および４０分間−５０℃であった。内部標準物質としては、下記のものをそれぞれ１０ｐｐｂの濃度で使用した。
【００４９】
内部標準物質：
(1)  シクロヘキサノン
(2)  トランス２−シス６−ノナジエナール
(3)  シス４−ヘプタナール
(4)  トランス−２−ノネナール−ｄ２（Ａ）
(5)  トランス−２−ノネナール−ｄ２（Ｂ）
ここでＴ２Ｎ−ｄ２（Ｂ）が、前記した式（Ｉ）のＴ２Ｎ−ｄ２に相当する。またこれら物質は、市販品を使用することが出来る。
これらの条件で、本発明による方法を実施し、内部標準物質毎の測定値のばらつき（Ｃ．Ｖ．値）および検出限界を求めた。
【００５０】
測定の結果、各内部標準物質について下記のような傾向が見られた：
(1)  シクロヘキサノン：  日間変動・ファイバーＬｏｔ間差が大きい。
(2)  トランス２−シス６−ノナジエナール：  目的とするイオンピークがＴ２Ｎと被る。
(3)  シス４−ヘプタナール：  ビール中に多量に含まれているヘプタナールとリテンションタイムが被る。
(4)  トランス−２−ノネナール−ｄ２（Ａ）：  目的としたｄ２置換イオンが含まれておらず、きれいなピークは見られない。
(5)  トランス−２−ノネナール−ｄ２（Ｂ）：  ｄ２置換イオンがきれいにピークに現れた。
【００５１】
下記で式で示したとおり、Ｔ２Ｎは、誘導試薬ＰＦＢＯＡとオキシム化反応すると、分子量３３５の分子となる。これがＭＳに入ると解離し、一番大きなピークとして現れるのが１８１のイオンであった。しかしながら、このイオンは他の物質にも多く含まれるもので、ノイズが大きく、定性を行うイオンには相応しくない。次いで大きいピークとして出るのが２５０のイオンであった。これは、元のＴ２Ｎ分子の二重結合直後、３位と４位の炭素の間で切れた分子が検出されたものである。Ｔ２Ｎの分析には通常２５０のイオンが用いられる。
Ｔ２Ｎ−ｄ２（Ａ）は、４位と５位の水素が重水素に置換されたものが５０％、５位と６位の水素が重水素に置換されたものが５０％という組成のものである。このＴ２Ｎ−ｄ２がオキシム化反応すると、分子量３３７の分子となる。これが、ＭＳの中で解離すると、まずＴ２Ｎ同様に１８１が現れ、次いで分子量２５０の分子が現れた。しかしながら、これは目的とするＴ２Ｎと同じイオン数になる為、検出が行うことはできなかった。
Ｔ２Ｎ−ｄ２（Ｂ）は、２位と３位の水素が重水素に置換されたＴ２Ｎ−ｄ２である。これがオキシム化反応すると、分子量３３７の分子となる。これがＭＳの中で解離すると、まず１８１の分子、次いで検出される分子の中に重水素が２つ含まれる形となり、ピークとしても、はっきりと２５２のイオンが確認できた。
【００５２】
【化４】
2009047573.tif 000005
【００５３】
また、内部標準物質として、シクロヘキサノンを使用した場合と、Ｔ２Ｎ-ｄ２（Ｂ）を使用した場合の繰り返し精度（Ｃ．Ｖ．値（ｎ＝１０））および検出限界（検出限界はＳ／Ｎ＝３として求めた）を算出した。結果は下記表のとおりであった。
【００５４】
表１
内部標準物質               
シクロヘキサノン    Ｔ２Ｎ-ｄ２（Ｂ） 
ビール（Ｃ．Ｖ．値）      ６．９  ％          １．４  ％
麦汁  （Ｃ．Ｖ．値）      ３．６  ％          ２．２  ％
検出限界                  ０．００５  ｐｐｂ                  
【００５５】
以上の結果から、前記(5)のＴ２Ｎ-ｄ２（Ｂ）を内部標準物質とするのが最も望ましいと考えられた。
【００５６】
実施例２：  ＰＦＢＯＡ固定時間とオキシム化反応時間の検討
ＰＦＢＯＡ固定時間とオキシム化反応時間とを下記のように変更した以外は、実施例１と同様にしてＳＰＭＥ−ＧＣ／ＭＳ法を実施し（ｎ＝３）、被検サンプル中のトランス−２−ノネナールを測定した。ＧＣ／ＭＳでの測定後、各場合のＳＮ比を算出した。
結果は下記表のとおりであった。
【００５７】
表２
ＰＦＢＯＡ固定時間    オキシム化反応時間    ＳＮ比      
(i)      １０  分            ４０  分            ３５５．７
(ii)     １０  分            ７０  分            ３６７．９
(iii)     ２０  分            ４０  分            ３８６．０
(iv)     ２０  分            ７０  分            ４７４．８  
【００５８】
実施例３：  ＰＦＢＯＡ固定とオキシム化反応の反応温度の検討
ＰＦＢＯＡ固定とオキシム化反応とにおける反応温度を下記温度のように変更した以外は、実施例１と同様にしてＳＰＭＥ−ＧＣ／ＭＳ法を実施し（ｎ＝３）、被検サンプル中のトランス−２−ノネナールを測定した。ＧＣ／ＭＳでの測定後、各場合のＳＮ比を算出した。
結果は下記表のとおりであった。
【００５９】
表３
反応温度（℃）      ＳＮ比      
(a)     ３０              ９４．７
(b)     ４０            １５８．４
(c)     ５０            ６９２．２
(d)     ６０            ７８７．６
(e)     ７０            ３７８．４    
【００６０】
実施例４：  内部標準物質の濃度の検討
内部標準物質の濃度を下記のように変更した以外は、実施例１と同様にしてＳＰＭＥ−ＧＣ／ＭＳ法を実施し（ｎ＝４）、被検サンプル中のトランス−２−ノネナールを測定した。ＧＣ／ＭＳでの測定後、各場合のＳＮ比を算出した。検討を行った濃度３点でＳＮ比にあまり差が無いことがわかった。
結果は下記表のとおりであった。
【００６１】
表４
内部標準濃度                ＳＮ比    
７．６（１／２倍）ｐｐｂ    ５．２
１５．２ｐｐｂ              ４．２
３０．４（２倍）ｐｐｂ      ６．４      
【００６２】
実施例５：  ＨＰＬＣ法との精度の比較
ＨＰＬＣ法については下記の条件にて、ビール中のトランス−２−ノネナールを測定した。具体的には、被検サンプル中のＴ２Ｎを抽出カラムに吸着、分離させ、誘導試薬ダンシルヒドラジンと反応させた後、ＵＶ計で測定を行った。ＮＰは、酢酸を用いてｐＨを４．０程度に調整し、１００℃で２時間加熱した後、同様の操作を行った。
ＨＰＬＣ法：
ＨＰＬＣ装置：  ＨＰ Agilent 1100シリーズ（Agilent社製）
バッファー／キャリアガス：  メタノール、酢酸、アセトニトリル、水
抽出カラム：  Sep-Pak C18 （Waters社製）
誘導試薬：  ダンシルヒドラジン
プレカラム：  Shim-pack SPC-RP3（Shimadzu社製）
本カラム：  Ymc-Pak Pro C18 AM302（ＹＭＣ社製）
本カラム：  Ymc-Pak Pro C18 AM303（ＹＭＣ社製）
【００６３】
ＳＰＭＥ−ＧＣ／ＭＳ法（本発明）については、実施例１に従って測定を行った。
両方の方法ついて、測定精度（Ｃ．Ｖ．値）を求め、さらに、検出限界を算出した。
結果は下記表のとおりであった。
【００６４】
表５
精度                検出限界            
ＨＰＬＣ法    ４．４％            ０．０５  ｐｐｂ
本発明        １．４〜２．２％    ０．００５  ｐｐｂ