(57)【要約】      （修正有）【課題】複数の菌を含む検体から精度良く所望の菌を検出する方法の提供。【解決手段】菌を検出するプローブ以外にハイブリする可能性のあるクロスハイブリを無視する（判断対象からはずす）ことによりプローブ設計の高速化をはかる。設計した順Ａ→Ｂ→Ｃに菌の有無を確認し、存在した菌をプローブで全て吸着する。特定の核酸配列を特異的に捕捉可能な第１のプローブＡの単数または複数を用意して、該第１のプローブに前記検体中の核酸配列を捕捉させる第１の工程６２０と、第１のプローブが捕捉する核酸を除いた前記複数の核酸配列において、特定の核酸配列を特異的に捕捉可能な第２のプローブＢの複数または単数を用意して、該第２のプローブに前記第１の工程を経た検体中の核酸配列を捕捉させる第２の工程６２１と、前記第１及び第２の工程で捕捉した核酸配列のうち、少なくとも一方の存在有無または量を検出する工程とを有する、核酸の検出方法。【選択図】図６
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
検体中の核酸を検出する方法であって、
検体中に存在する可能性のある複数の核酸配列において、特定の核酸配列を特異的に捕捉可能な第１のプローブの単数または複数を用意して、該第１のプローブに前記検体中の核酸配列を捕捉させる第１の工程と、
第１のプローブが捕捉する核酸を除いた前記複数の核酸配列において、特定の核酸配列を特異的に捕捉可能な第２のプローブの複数または単数を用意して、該第２のプローブに前記第１の工程を経た検体中の核酸配列を捕捉させる第２の工程と、
前記第１及び第２の工程で捕捉した核酸配列のうち、少なくとも一方の存在有無または量を検出する工程と、を有することを特徴とする核酸の検出方法。
【請求項２】
前記プローブは、担体表面に固定されている請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記第１のプローブの複数は、複数種のプローブが担体表面上に固定されたプローブ担体の形態で保持されている請求項１に記載の方法。
【請求項４】
前記第１の工程及び第２の工程は、同一の反応場で行う請求項１に記載の方法。
【請求項５】
第１の反応場において前記第１の工程を行い、第１の工程の後に第２の反応場に検体を移動して前記第２の工程を行う請求項１に記載の方法。
【請求項６】
前記第１および第２の反応場、及び前記反応場間を液体が移動可能な流路が基板に形成されており、該基板上で液体の移動及び反応を行う請求項５に記載の方法。
【請求項７】
複数の対象塩基配列の中から、特定の塩基配列に特異的な部分配列を順次設計するプローブ設計方法であって、
前記複数の塩基配列の中から、第１の配列を選択する工程と、
前記第１の配列の有する部分配列のうち、前記第１の配列を除く対象塩基配列における部分配列の何れの部分にも合致しない第１の部分配列を決定し、該第１の部分配列を第１のプローブに決定する工程と、
前記第１の配列を前記対象塩基配列から除き、該対象配列のうちから第２の配列を選択する工程と、
前記第２の配列の有する部分配列のうち、前記第２の配列を除く対象塩基配列における部分配列の何れの部分にも合致しない第２の部分配列を決定し、該第２の部分配列を第２のプローブに決定する工程と、
を有するプローブ設計方法。
【請求項８】
対象配列の数をＮ（Ｎは整数）とした場合、前記第２のプローブを決定する工程の後に、第ｎ−１（ｎは３からＮまで）の配列を前記対象塩基配列から除き、該対象塩基配列のうちから第ｎの配列を選択する工程と、前記第ｎの配列の有する部分配列のうち、前記第ｎの配列を除く対象塩基配列における部分配列の何れの部分にも合致しない第ｎの部分配列を決定し、該第ｎの部分配列を第ｎの配列のプローブに決定する工程と、をｎが３からＮになるまで順次繰り返すことを特徴とする請求項５に記載のプローブ設計方法。
【請求項９】
前記第１の配列から第ｎの配列を選択する順序を、配列の特異性の高い順序で行う請求項５に記載のプローブ設計方法。
【請求項１０】
前記第１の配列から第ｎの配列を選択する順序を、出現頻度の高い配列から低い配列への順序で行う請求項５に記載のプローブ設計方法。
【請求項１１】
前記第１の配列から第ｎの配列を選択する順序を、重篤度の高い菌が有する配列の順序で行う請求項５に記載のプローブ設計方法。
【請求項１２】
ｎ種類の菌（但し、ｎは２以上の整数）を含んでいる可能性のある検体から、各々の菌を検出するためのプローブの設計システムであって、
該第１番目〜第ｎ番目の菌に対応する塩基配列のデータが記憶されている検出対象菌テーブルと、決定したプローブを登録するプローブテーブルと、
を持ち、
検出対象菌テーブルから読み出された検出対象菌のうちから第１番目の菌を選び、
前記第１番目の菌の遺伝子が有する塩基配列の部分塩基配列のうち、第１番目の菌を除くｎ−１種類の菌の遺伝子における部分塩基配列の何れの部分にも合致しない第１番目の塩基配列を決定し、該第１番目の塩基配列を第１番目の菌のプローブに決定し、
前記第１番目の菌をｎ種類の検出対象菌から除き、検出対象菌をｎ−１種類の検出対象菌を選ぶことを順次繰り返して、第１番目の菌から第ｎ番目の菌までのそれぞれの菌に対してのプローブを設計することを特徴とするプローブ設計システム。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は検体中の対象生物が有する核酸の検出方法、及びそれに用いるプローブの設計方法、プローブ設計システムに関する。更に詳しくは、血液などの検体中に存在する可能性のある菌などのＤＮＡを、新規なプローブ設計技術によって検出する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
複合感染が疑われる患者に対して、より迅速に適切な処置を行うことが要求されている。
【０００３】
その為には、当該患者がどのような菌に感染しているかを正確に同定する必要がある。その為の一つの手段として、患者から採取した血液などの検体から抽出したＤＮＡを、感染が疑われる菌に特異的なプローブとハイブリダイズさせ、その結果形成されたハイブリッド体を検出することで検体中の菌を同定する技術の検討が進められている。そして、検体中の菌の検出精度は、各菌の検出用プローブが如何に各々の菌に対応するＤＮＡに対して特異的に設計されているかによって決まる。例えば黄色ブドウ球菌と緑濃菌をともにハイブリダイズするプローブを用いては菌の正確な同定をおこなうことは不可能である。言い換えれば菌の正確な同定は、クロスハイブリダイゼーションを避け得るプローブを設計するかが重要である。本願出願人は、既に複数の感染症起炎菌を個別的に判別し得る塩基配列からなるプローブを出願している（特許文献１参照）。しかし、今後、これらの技術の延長では検体中のより多種多様な菌を検出することが求められた場合、その多種全ての菌に特異的な配列をそれぞれ個別に見出す必要がある。これは、プローブ設計の為の計算回数が増加し時間がかかることとなる。
【０００４】
また、特定の菌においては、対象となる菌の種類が増えるに従って、これを除く全ての対象菌からのクロスハイブリダイゼーションを完全に防止し得るようなユニークな塩基配列を選ぶことができない場合も想定される。
【特許文献１】特開２００４−３１３１８１号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
そこで本発明は、菌などのＤＮＡが複数種存在している可能性の有る検体中において、対象とするＤＮＡを精度よく且つ簡便に検出し得る方法を提供することを目的とする。
【０００６】
また本発明は、菌などのＤＮＡが複数種存在している可能性のある検体中において、対象とするＤＮＡをよりプローブ設計の自由度を持って検出する方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
上記の目的を達成するために本発明に係る、検体中の核酸を検出する方法は、
検体中に存在する可能性のある複数の核酸配列において、特定の核酸配列を特異的に捕捉可能な第１のプローブの単数または複数を用意して、該第１のプローブに前記検体中の核酸配列を捕捉させる第１の工程と、
第１のプローブが捕捉する核酸を除いた前記複数の核酸配列において、特定の核酸配列を特異的に捕捉可能な第２のプローブの複数または単数を用意して、該第２のプローブに前記第１の工程を経た検体中の核酸配列を捕捉させる第２の工程と、
前記第１及び第２の工程で捕捉した核酸配列のうち、少なくとも一方の存在有無または量を検出する工程と、
を有することを特徴とする。
【０００８】
また、本発明は上記の方法を好適に実施するためのプローブの設計方法をも提供する。
【０００９】
すなわち、本発明に係るプローブの設計方法は、
複数の対象塩基配列の中から、特定の塩基配列に特異的な部分配列を順次設計するプローブ設計方法であって、
前記複数の塩基配列の中から、第１の配列を選択する工程と、
前記第１の配列の有する部分配列のうち、前記第１の配列を除く対象塩基配列における部分配列の何れの部分にも合致しない第１の部分配列を決定し、該第１の部分配列を第１のプローブに決定する工程と、
前記第１の塩基配列を前記対象配列から除き、該対象配列のうちから第２の配列を選択する工程と、
前記第２の配列の有する部分配列のうち、前記第２の配列を除く対象塩基配列における部分配列の何れの部分にも合致しない第２の塩基配列を決定し、該第２の部分配列を第２のプローブに決定する工程と、
を有する。
【発明の効果】
【００１０】
本発明によれば、対象のＤＮＡの種類が多くても、互いに特異的な塩基配列を効率よく見出してプローブ設計できる。加えて、プローブの設計に対する制限を緩和することができ、各ＤＮＡにおける特異的な塩基配列の選択においてより自由度の高いプローブ設計が可能となる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１１】
以下に本発明を詳細に説明する。
【００１２】
本発明に係る、検体中の核酸を検出する方法は、
検体中に存在する可能性のある複数の核酸配列において、特定の核酸配列を特異的に捕捉可能な第１のプローブの単数または複数を用意して、該第１のプローブに前記検体中の核酸配列を捕捉させる第１の工程と、
第１のプローブが捕捉する核酸を除いた前記複数の核酸配列において、特定の核酸配列を特異的に捕捉可能な第２のプローブの複数または単数を用意して、該第２のプローブに前記第１の工程を経た検体中の核酸配列を捕捉させる第２の工程と、
前記第１及び第２の工程で捕捉した核酸配列のうち、少なくとも一方の存在有無または量を検出する工程と、
を有することを特徴とする。
【００１３】
上記においては、少なくとも上記の工程を備えていればよいが、第２の工程の後に、第１及び第２のプローブが捕捉する核酸配列を除いた複数の核酸配列において、特定の核酸配列を特異的に捕捉可能な第３のプローブで捕捉する第３の工程を設けてもよい。同様に、第４、第５・・第ｎ（ｎは整数）と検出すべき対象Ｎ種が全て捕捉できるようにプロセスを繰り返すことが好ましい。
【００１４】
本発明は、前工程で捕捉された標的配列を次の工程で捕捉する際の特異性の比較対象から除くことで、対象配列が有する特異性の選択基準を下げ、これにより各配列が有する部分配列の特異性を向上させることに特徴がある。
【００１５】
上記第１の工程によって、第１のプローブに捕捉された核酸配列は、実質的にサンプルから排除される。ただし、検体中の核酸をハイブリダイゼーション反応により捕捉しようとした場合、全ての核酸を完全に捕捉することは不可能である。すなわち、本工程における実質的にとは次工程で行われる第２のプローブによる捕捉に対して影響を与えない程度の割合で捕捉することを示す。影響の有無は、次工程で捕捉した核酸配列を検出することで判定することができるので、第１のプローブが捕捉する核酸が存在する状態での予備実験等により、予めその影響を測定しておくことが好ましい。
【００１６】
また、本発明において検出工程は、第１の工程後の第２の工程前であっても、第１、第２の工程が全て完了してからでも、いずれかの工程と同時であってもよい。
【００１７】
また、第１の工程および第２の工程での処理は、同じ反応場で行っても、異なる反応場で行っても良い。
【００１８】
本発明における検体とは、検査や検出の対象となる試料であり、対象となる核酸の単数または複数種が含まれている可能性を有しているものである。
【００１９】
検体は、液体や固体、ゲルなどの形態をとる。例えば感染症の原因菌の特定をする場合、ヒト、家畜等の動物由来の血液、喀痰、胃液、膣分泌物、口腔内粘液等の体液、尿及び糞便のような排出物等細菌が存在すると思われるあらゆる物が検体となる。また、食中毒、汚染の対象となる食品、飲料水及び温泉水のような環境中の水、空気清浄機や浄水器等のフィルタ等、細菌による汚染が引き起こされる可能性のある媒体が検体として用いられることもある。さらに、輸出入時における検疫等の動植物も検体としてその対象となる。
【００２０】
現在、ＤＮＡを検査対象とした検査方法は様々存在するが、例えば感染症起炎菌検出や、がん診断、多型遺伝子の検出などが挙げられる。
【００２１】
感染症の診断を目的とした場合には、検体は血液中や、患部に存在する感染症起炎菌のＤＮＡを含んだ試料のことになる。
【００２２】
がん細胞に特異的に発現する遺伝子を検出する場合には、検体は、その遺伝子およびその増幅産物等が含まれる試料となる。
【００２３】
ヒトが有する遺伝子多型を検出したい場合は、検体は対象とした遺伝子多型を有する核酸が含まれた試料となる。
【００２４】
これらの検体は通常、プローブによるハイブリダイゼーション、すなわち捕捉処理に好適なように前処理が施されている。例えば、ハイブリダイゼーション反応処理に影響を与える物質を除去する処理や、対象とするＤＮＡ以外のＤＮＡを特異的に増幅する処理等が行なわれたものを使用するとよい。
【００２５】
次に図１を用いて、本実施形態の検出方法について説明する。
【００２６】
以下、図１を用いて説明した実験の流れを感染症の原因菌特定の目的を想定した具体的実験操作として説明する。なお、本発明にかかわる生物種類判定方法は、以下に述べる感染症の原因菌特定に限ったものではなく、ＭＨＣなどの人間の体質判定や、癌などの疾病に関わるＤＮＡ、ＲＮＡの解析に用いてもよい。
【００２７】
まず、上記に示した検体を用意する（１０１）
次に、“生化学的増幅”方法を用いて検体１０１を増幅する（１０２）。例えば感染症の原因菌の特定をする場合、１６ｓ  ｒＲＮＡ検出用に設計されたＰＣＲ反応用プライマーを用いてＰＣＲ法によって対象核酸を増幅したり、或いはＰＣＲ増幅物を元にさらにＰＣＲ反応等を行なって調製したりする。また、ＰＣＲ以外のＬＡＭＰ法などの増幅方法により調製してもよい。
【００２８】
その後で、生化学的増幅１０２により増幅された核酸、または検体１０１そのものの中に含まれる核酸に、可視化のために各種標識法により標識する（ラベル混入１０３）。この標識物質としては、通常Ｃｙ３，Ｃｙ５，Ｒｏｄａｍｉｎなどの蛍光物質が用いられる。また、生化学的増幅１０２において標識分子を混入することもある。
【００２９】
こうして標識分子が付加された核酸は、ＤＮＡマイクロアレイ１０４とハイブリダイゼーション反応（１０５）を行う。この様子は、図３に示した通りである。
【００３０】
本発明におけるプローブは、担体表面上に固定されているものが好ましい。プローブを固定した担体をプローブ担体と呼び、さらに複数種のプローブがアレイ状に配置されているものをプローブアレイと呼ぶ。
【００３１】
例えば感染症の原因菌の特定をする場合、ＤＮＡマイクロアレイ１０４は菌に特異的なプローブを基板に固定したものとなる。ここで、各菌に対応したプローブの設計は、例えば１６ｓ  ｒＲＮＡをコーディングしているゲノム部分より、上記で説明した方法で行う。なお、ＤＮＡマイクロアレイ１０４のプローブを固定する担体（基板）は、ガラス基板、プラスチック基板、シリコンウェハー等の平面基板が考えられる。また、凹凸のある三次元構造体、ビーズのような球状のもの、棒状、紐状、糸状のもの等を用いても、本発明の実現形態、効果には影響ない。
【００３２】
通常、基板の表面はプローブＤＮＡの固定化が可能なように処理したものが使用される。特に、表面に化学反応が可能となるように官能基を導入した物は、ハイブリダイゼーション反応の過程でプローブが安定に結合している為に、再現性の点で好ましい形態である。本実施形態で用いられる固定化方法は、例えば、マレイミド基とチオール（−ＳＨ）基との組合わせを用いる例が挙げられる。即ち核酸プローブの末端にチオール（−ＳＨ）基を結合させておき、固相表面がマレイミド基を有するように処理しておくことで、固相表面に供給された核酸プローブのチオール基と固相表面のマレイミド基とが反応して核酸プローブを固定化する。マレイミド基の導入方法としては、まず、ガラス基板にアミノシランカップリング剤を反応させ、次にそのアミノ基とＥＭＣＳ試薬（Ｎ−（６−Ｍａｌｅｉｍｉｄｏｃａｐｒｏｙｌｏｘｙ）ｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｅ：Ｄｏｊｉｎ社製）との反応によりマレイミド基を導入する。ＤＮＡへのＳＨ基の導入は、ＤＮＡ自動合成機でＤＮＡを合成する際に５’−Ｔｈｉｏｌ−ＭｏｄｉｆｉｅｒＣ６（Ｇｌｅｎ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ社製）を用いることにより行なうことができる。固定化に利用する官能基の組合わせとしては、上記したチオール基とマレイミド基の組合わせ以外にも、例えばエポキシ基（固相上）とアミノ基（核酸プローブ末端）の組合わせ等が挙げられる。また、各種シランカップリング剤による表面処理も有効であり、該シランカップリング剤により導入された官能基と反応可能な官能基を導入したオリゴヌクレオチドが用いられる。さらに、官能基を有する樹脂をコーティングする方法も利用可能である。
【００３３】
ハイブリダイゼーション反応１０５を行った後、ＤＮＡマイクロアレイ１０４の表面を洗浄し、プローブと結合していない核酸を剥がした後で、（通常は）乾燥し、１０５の蛍光量を測定する。ここでは、ＤＮＡマイクロアレイ１０４の基板に励起光を照射し、蛍光強度を測定した画像を得る（１０６、１０７）。
【００３４】
プローブ担体を用いる場合、本発明においては以下の３種類の方法を採用することができる。
（１）第１及び第２の工程を、同一の反応場（反応容器、チャンバー）で行い、プローブ担体を処理する際に交換する。
（２）第１及び第２の工程を、異なる反応場で行い、各反応場にプローブ担体を配置して処理する検体を反応場間で移動させる。
（３）第１及び第２のプローブを流路中に所定方向に並べて固定し、検体が流路内を流れることによって第１の工程及び第２の工程が順次処理されるようにする。
【００３５】
また、複数の反応場を有するカセットのように構成しても好ましい。特開２００７−１０１３６４号公報に開示されるような構成のハイブリダイゼーションおよび検出が可能なカセットを構成すると良い。前記第１および第２の反応場、及び前記反応場間を液体が移動可能な流路が基板に形成されており、該基板上で液体の移動及び反応を行う構成である。
【００３６】
図２に示すような、連続して捕捉処理を行うために、第１の反応場である第１のチャンバー２０１と第２の反応場である第２のチャンバー２０２を有している構成が好ましい。
【００３７】
図２にカセットの断面図を示す。カセット２０３はハウジング２０４と第１のＤＮＡマイクロアレイ２０５と、第２のＤＮＡマイクロアレイ２０６とからなる。カセット２０３上面に注入口２０７があいており、ここから液体溜めチャンバー２０８へ混合液を分注する。注入口２０７の反対側には吸引口２０９があり、ここに吸引機構（不図示）を密着させて空気を吸引する。すると、混合液は流路２１０を通って反応チャンバー２０１に導入される。これにより、混合液はＤＮＡマイクロアレイ２０５と接触させることができる。さらに、温度調整手段（不図示）で反応チャンバー２０１内の混合液の温度を上昇させ、ハイブリダイゼーション反応を進行させる。
【００３８】
ハイブリダイゼーション反応が終了したら、吸引口２０９からさらに空気を引く。すると、混合液が第１及び第２のチャンバー間を移動可能な流路２１１を通り、第２のＤＮＡマイクロアレイ２０６を有する第２の反応チャンバー２０２に移動する。
【００３９】
これにより、混合液はＤＮＡマイクロアレイ２０６と接触させることができる。さらに、温度調整手段（不図示）で反応チャンバー２０２内の混合液の温度を上昇させ、２回目のハイブリダイゼーション反応を進行させる。
【００４０】
ハイブリダイゼーション反応が終了したら、吸引口２０９からさらに空気を引く。
【００４１】
すると、混合液が流路２１２を通り、廃液チャンバー２１３に移動する。次に、第１及び第２のＤＮＡマイクロアレイ２０５、２０６の表面を洗浄する。これは混合液の代わりに洗浄液を通過させればよい。
【００４２】
ハイブリダイゼーション反応終了後、ＤＮＡマイクロアレイ下部に検出系（不図示）４０を配置して、標的核酸とＤＮＡマイクロアレイに固定したプローブ核酸との反応の有無やその量を判定すればよい。標的核酸に蛍光標識を付与している場合は、蛍光標識を励起する光をＤＮＡマイクロアレイに照射して、各プローブ固定スポットにおける蛍光あるいは蛍光量を測定する。検出系が蛍光または蛍光量を検出するものであれば、カセット２０３は、励起光の照射及び蛍光の測定を可能とする光路を有する構成となっている。こうして得られた蛍光に関するデータに基づいて検体中における標的物質の有無またはその量を求める。
【００４３】
上記の構成は、２つのアレイであるが、第３、第４、もしくはそれ以上のアレイを配置したチャンバーを更に複数配置しても良い。
【００４４】
各工程で使用する核酸プローブは、単数であっても複数種であっても良い。
【００４５】
異なる２つの工程で捕捉処理を行うことで、従来に比べ以下のような効果を有する。
【００４６】
第１の塩基配列は計算対象から排除されるので、第２のプローブを設計する際の計算処理時間が短縮する。
【００４７】
第１の塩基配列が比較対照から排除されるので、第２のプローブを設計する際に第１の塩基配列が排除されて初めて特異的に判別できるようになった第２のプローブを見出すことができる。
【００４８】
第２のプローブにおいて、設計の自由度が増すので、よりハイブリット体形成に安定な位置関係（例えば、ＵＳ  ２００５／００５９０６９号公報参照）に設計されたプローブをより多く提供することのできるＤＮＡマイクロアレイを提供することが可能となる。
【００４９】
次に本発明に係る捕捉処理に利用する基本的な反応であるハイブリダイゼーション反応を説明する。
【００５０】
図３はＤＮＡマイクロアレイ上のハイブリダイゼーション（以降、ハイブリと略す場合がある）の様子を示した図である。生体内でほとんどの場合、ＤＮＡ塩基列は２重らせん構造をしていて、その２本鎖の間の結合は塩基間の水素結合で実現されている。一方、ＲＮＡ塩基列は１本で存在する場合が多い。塩基の種類はＤＮＡの場合はＡ（アデニン）Ｃ（シトシン）Ｇ（グアニン）Ｔ（チミン）の４種類、ＲＮＡの場合はＡＣＧＵ（ウラシル）の４種類であり、それぞれ水素結合ができる塩基対はＡ−Ｔ（Ｕ）、Ｇ−Ｃのペアとなっている。ハイブリダイゼーションとは、１本鎖状態の核酸分子同士が少なくともある部分の塩基配列を介して結合する状態をいい、本実施形態で想定している反応は、図３の上側の基板にくっついた核酸分子（プローブ）の方が下側の試料中にある核酸分子より短い。よって、試料中に存在する核酸分子がプローブ塩基配列を含む場合は、ハイブリダイゼーション反応が進み、試料中のターゲット核酸分子はトラップ（捕捉）されることとなる。
【００５１】
次に、図４を用いて感染症の菌を特定するＤＮＡマイクロアレイの原理を説明する。図４で示したＤＮＡマイクロアレイは、例えば、黄色ブドウ球菌を特定する目的で作られていると仮定する。図４の左側は、黄色ブドウ球菌野生株由来の処理系列であり、右側は大腸菌野生株由来の処理系列である。例えば、左側は黄色ブドウ球菌に感染した患者の血液を処理する流れで、右側は大腸菌に感染した患者の血液を処理する流れだと考えてよい。
【００５２】
どちらも基本的には同じ処理を行う。つまり、まず初めに例えば菌感染患者の血液や、痰などからＤＮＡを抽出する（４０１、４１１）。この際に、一般的には、患者の体細胞由来の人間のＤＮＡも含まれる可能性がある。抽出されたＤＮＡが少ない場合、ＰＣＲなどの方法で増幅を行う。この際に蛍光物質もしくは蛍光物質を結合させることができる物質を標識として混入させるのが一般的である（４０２、４１２）。
【００５３】
増幅をしない場合は、抽出されたＤＮＡを用いて、相補鎖を作りながら蛍光物質もしくは蛍光物質を結合させることができる物質を標識として混入させる、または、そのまま直接抽出されたＤＮＡに蛍光物質もしくは蛍光物質を結合させることができる物質を標識として付加させる（４０３、４１３）。
【００５４】
通常、ＰＣＲ増幅を行う場合、感染症の菌特定が目的であれば、いわゆる１６ｓといわれるリボゾームＲＮＡ（１６ｓ  ｒＲＮＡ）を構成する塩基配列の部分を増幅するのが一般的である。この場合、図４の左側の黄色ブドウ球菌のＰＣＲプライマーと右側の大腸菌のＰＣＲプライマーはほとんど同じものを使うこととなる。より具体的には、どんな菌の１６ｓ  ｒＲＮＡをコーディングしている部分でも増幅させることができるプライマーセットを用いて、マルチプレックスＰＣＲを行うことが好ましい。この場合、結果的に、図４における右と左のどちらのハイブリ溶液（４０４、４１４）も複数の種類の塩基配列を含むものとなる。
【００５５】
これに対して、より詳しい塩基配列解析を行いたい場合は、例えば、黄色ブドウ球菌用のＰＣＲプライマーセット、大腸菌用のＰＣＲプライマーセットを別々に設定する。この場合、仮に菌のゲノムの特定部分だけを選択的に増幅するようにプライマーを設定すれば、ハイブリ溶液に含まれる塩基配列の種類は非常に限定される。それでも通常、自然界に存在する菌の株は数種類に及ぶので、ハイブリ溶液に存在する塩基配列の種類が１種類となることは稀である。
【００５６】
ここで黄色ブドウ球菌を判定する目的のために設計されたＤＮＡマイクロアレイが正しく動作するならば、ハイブリ溶液４０４ではスポットがポジティブに反応し（４０５）、右側のハイブリ溶液４１４では、スポットがネガティブに反応する（４１５）。
【００５７】
これと全く同じように、大腸菌の存在を判定する目的のために設計されたＤＮＡマイクロアレイが正しく動作するならば、ハイブリ溶液４０４ではスポットがネガティブに反応し、ハイブリ溶液４１４ではスポットがポジティブに反応する。もちろん、いろんな菌に対してそれぞれ特異的に反応する数種類のスポットを同時に並べたＤＮＡマイクロアレイを用いて、感染菌の判定を行ってもかわまない。
【００５８】
（検出方法の処理手順）
次に、本発明の検出方法について、複数の菌を順次に検出する例を用いて詳細に説明する。
【００５９】
図５は本発明に係る複数種の菌検出の処理手順を示すフローである。
【００６０】
まず、最初に設計した第１番目の菌検出用プローブにより、検体中の第１番目の菌の有無を検出する。
【００６１】
以下設計した順番に、第１番目の菌の有無を検出する方法と同様に、対象菌検出プローブにより対象菌の有無検出を繰り返す。
【００６２】
図６に、本発明に係る検体中の菌の検出方法の仕組みを説明する。
【００６３】
ここで仮に、検出対象菌はＡ，Ｂ，Ｃの３菌、サンプルにはＡ，Ｃの菌が含まれているとする。そして、プローブ設計は、菌Ａ、Ｂ、Ｃの順に行ったとする。
【００６４】
サンプルとは対象としている菌由来のＤＮＡが含まれているはずの液体や個体である。（６０１）サンプルにはＡ，Ｃが含まれている。
（６０２）菌Ａを検出するプローブ６２０とサンプルとのハイブリを行う。
（６０３）菌Ａ由来のＤＮＡのみ、潤沢に存在するプローブ６２０と全てハイブリする。（６０４）プローブ６２０に菌Ａ由来のＤＮＡがハイブリしていることにより菌Ａの存在を確認する。必要に応じて菌Ａとプローブ６２０とのハイブリッド体を検体から除去する。この場合、プローブ６２０を、後述するように固相に固定したプローブ担体と検体とをハイブリダイゼーション反応させるようにすれば、ハイブリダイゼーション反応後の検体からの菌Ａ由来のＤＮＡの除去が容易となる。
（６０５）菌Ｂを検出するプローブ６２１とサンプルとのハイブリを行う。
（６０６）菌Ｂ由来のＤＮＡのみ潤沢に存在するプローブ６２１と全てハイブリする。
（６０７）例の場合は菌Ｂ由来のＤＮＡが存在しないのでプローブ６２１にはなにもハイブリせず菌Ｂの存在を否認する。
（６０８）菌Ｃを検出するプローブ６２２とサンプルとのハイブリを行う。
（６０９）菌Ｃ由来のＤＮＡのみ潤沢に存在するプローブ６２２と全てハイブリする。
（６１０）プローブ６２２に菌Ｃ由来のＤＮＡがハイブリしていることにより菌Ｃの存在を確認する。
【００６５】
本発明によって設計されたｎ番目の菌検出用のプローブは、（ｎ−１）番目以前の菌由来のＤＮＡに対しては、結合する可能性を含む。ひとつのプローブが２種類以上の菌を検出してしまうことをプローブが非特異的に結合する（クロスハイブリダイゼーション）と言う。
【００６６】
よって、この点に留意して検体中の複数菌の検出操作を行う必要がある。検出操作は、設定された順番、すなわち上記形態ではプローブの設計した順番に菌を検出することが重要である。
【００６７】
具体的には、ステップ（６０２）においては、菌Ａの検出用プローブ６２０は、検体中の菌Ａの全てがハイブリダイズするに十分な量を用いることが好ましい。これにより、引き続いて、検体と菌Ｂ検出用のプローブとをハイブリダイゼーション反応させたときに、仮に菌Ｂ検出用のプローブが、菌Ａ由来のＤＮＡと非特異的に結合し得るものであっても、菌Ａとハイブリダイズすることを避けることができ、検体中の菌Ｂの有無を精度よく検出し得る。
【００６８】
ただし、捕捉用のプローブは全てが検出用プローブである必要はなく、検出用プローブで捕捉できなかった核酸を大過剰の捕捉プローブで再度捕捉する工程を設けても良い。
【００６９】
そしてステップ（６０５）においても、検体とのハイブリダイゼーション反応に供する菌Ｂのプローブは、検体中に存在する可能性のある菌Ｂの全てがハイブリダイズするに十分な量を用いることが必要であり。引き続く菌Ｃの検出精度の確保のためである。
【００７０】
一般にプローブＰと検体Ｔのハイブリダイゼーション反応の化学平衡はハイブリダイゼーション生成物をＤ、ハイブリッド形成の平衡定数をＫとすると以下のようにあらわすことができる。
【００７１】
【数１】
2009000099.tif 000003
【００７２】
ＰとＴの総濃度と全濃度をＣｐ、Ｃｔ、Ｃａｌｌ、
平衡状態でのＰ、Ｔ、Ｄの濃度をＥｐ、Ｅｔ、Ｅｄとした場合、
Ｃａｌｌ＝Ｃｐ＋Ｃｔ
質量作用の法則より
Ｅｄ＝ＥｐＥｔＫ
濃度の保存則より
Ｃｐ＝Ｅｐ＋Ｅｄ
Ｃｔ＝Ｅｔ＋Ｅｄ
後述のプローブにおいて平衡定数Ｋは７×１０１６程度である。
【００７３】
プローブ濃度が検体がハイブリダイズするのに十分な状態である。
Ｃｐ＞＞Ｃｔ
においてＥｔはほぼゼロと予測されるので、ｎ番目の菌検出用のプローブに、残存している（ｎ−１）番目の菌由来のＤＮＡがハイブリダイズすることはないと推測される。
【００７４】
［プローブセットの設計例］
（第１の形態）
以下に、上記に説明した検出方法に好適なプローブを設計するための設計方法について、詳細に説明する。尚、以下においては対象の核酸配列を検体中に存在する可能性のある菌として説明する。
【００７５】
図７は第１実施形態によるプローブ設計方法が適用される情報処理装置の構成を示すブロック図である。本実施形態のプローブ設計方法は、外部記憶装置７０１、中央処理装置（ＣＰＵ）７０２、メモリ７０３、入出力装置７０４から構成される装置に実装される。すなわち、一般的なパーソナルコンピュータ、ワークステーション等に実装可能である。
【００７６】
図７において、外部記憶装置７０１は、本実施形態のプローブ設計方法を実現するプログラムや、各種塩基配列データ及びパラメータ（ＤＮＡ（オリゴヌクレオチド）プローブ長や融解温度等）を保持する。また、本実施形態によって選択されたプローブ配列そのものを保持する機能を持つ。中央処理装置（ＣＰＵ）７０２はプローブ設計のプログラムを実行したり、すべての装置の制御を行なったりする。メモリ７０３は中央処理装置（ＣＰＵ）７０２が使用するプログラム、及びサブルーチンやデータを一時的に記憶する。入出力装置７０４は、ディスプレイ、キーボード、ポインティングデバイス等を含み、ユーザとのインタラクションを行う。多くの場合、本実施形態のプローブ設計方法を実現するプログラム実行のトリガはこの入出力装置を介してユーザが出す。また、ユーザが結果を見たり、プログラムのパラメータ制御をこの入出力装置を介して行う。
【００７７】
図８は、第１実施形態によるプローブ設計方法を説明するフローチャートである。第１の工程としてステップ８０１において検出対象菌テーブル８０８の中から第１番目の菌を第１の配列として選ぶ。
【００７８】
検出対象菌テーブルには、対象塩基配列である複数の検出対象菌の塩基配列のデータが記憶されている。必要に応じて、プローブの設計工程の中で塩基配列のデータは呼び出される。本発明によってプローブとして用いられる塩基配列が決定した菌については、プローブテーブルに登録されることになる。
【００７９】
その際例えば一番特異性の高い菌を第１番目の菌として選んでもよい。検出対象菌の一つの部分塩基配列に注目したときに、他のいずれの検出対象菌の部分塩基配列にも合致しない場合、その部分塩基配列は特異性があると呼ぶことにする。そのような特異性のある部分塩基配列を多く持っていたり、特異性のある比較的長い塩基長の部分塩基配列をもっていたりする菌は、”特異性が高い菌”と言ってよい。
【００８０】
例えば１５００塩基長の黄色ブドウ球菌のＤＮＡを検出したい場合、黄色ブドウ球菌に対応したプローブを作成する必要がある。そのとき、作成するプローブが例えば５０塩基からなるものを作成したい場合は、プローブの候補として、１４５１種類の部分塩基配列が考えられる。このことは例えば１５００塩基からなるプローブを設計した場合は１種類、１４９９塩基からなるプローブを設計したい場合２種類、１塩基からなるプローブは１５００種となることから、容易に類推できる。
【００８１】
第２の工程として、ステップ８０２において検出対象菌塩基配列データ８０３が、当該第１番目の菌の塩基配列を読出し、該塩基配列のうち当該第１番目の菌に特異的な部分である、第１番目の菌の遺伝子の塩基配列以外には何れの部分にも合致しない塩基配列を求める。
【００８２】
検出対象菌塩基配列データとは、例えば黄色ブドウ球菌や緑濃菌などに対応する塩基配列を記録したものである。塩基長Ｍの第１番目の菌に含まれる全ての部分塩基配列はプローブの候補になりえる。したがってプローブとして使用されうる塩基配列は、合計すると１＋２＋３＋・・・＋Ｍ＝Ｍ（Ｍ＋１）×１／２種類ある。本発明においては、ある検出対象菌に含まれる全ての部分塩基配列をプローブ候補と呼ぶことにする。
【００８３】
次に検出対象菌が全部でｎ種類あるときには上で求めた第１番目の菌のプローブ候補に対して、自身を除くｎ−１種の検出対象菌の部分塩基配列の中に合致する配列が無いかどうかを確認する。このようにして第１番目の菌に対して、第１番目の塩基配列が決まる。
【００８４】
この確認工程は、先に説明した情報処理装置で実行される。さまざまな確認方法が考えられるが、ここでは詳しくは取り上げない。たとえばＡＴＴＧＡＴなる第１番目の菌中に含まれる部分塩基配列が他のｎ−１種の全ての部分塩基配列中に含まれていない場合、このＡＴＴＧＡＴなる塩基配列は第１番目の菌を特徴づける特異的な配列であることが分かる。
【００８５】
ステップ８０４において求めた第１番目の塩基配列を第１番目の菌を検出するためのプローブとしてプローブテーブル８０５に出力し登録する。こうして第１番目の菌に対するプローブの塩基配列が決定される。なお、菌の種類数に特に制限は無く、あらかじめどの菌に対するプローブを作成するかを決めておきさえすれば、任意のｎ種類（ｎは２以上）の菌に対して本発明のプローブの設計方法は適用できる。
【００８６】
次いで、第３の工程としてステップ８０６において、上記第１番目の菌を次処理以降の処理対象菌からはずす。これは、第１番目の菌は他の全ての検出対象菌に対して特異的であるからである。
【００８７】
ステップ８０７において、まだプローブを決定すべき検出対象菌が２種類以上残っているかチェックを行い、残っていればステップ８０１より、先に説明した第１の工程と同様に、すなわち、前記第１の配列を対象配列から除き、これを除いた対象配列のうちから第２番目の菌（第２の配列）を選択する。
【００８８】
そして、第２の工程と同様に、第２の配列の有する部分配列のうち、第２の配列を除く対象塩基配列における部分配列の何れの部分にも合致しない第２の塩基配列を決定し、該第２の部分配列を第２のプローブに決定する。
【００８９】
さらに、第３の工程と同様に第２番目の菌（第２の配列）を次処理以降の処理対象菌からはずす。
【００９０】
この工程を順次繰り返すことで、第１番目〜第ｎ番目の菌（ｎは２以上の整数）の各々に対するプローブが逐次決定される。即ち第ｎの配列に対して、第ｎの部分配列である第ｎの配列のプローブを設定できる。ここで、留意すべきは、第ｎ番目の菌用のプローブは、第（ｎ−１）番目の菌に対しては必ずしも特異的には設計されていないことである。これにより検出対象菌の数が増えてもプローブの設計に要する時間を短縮し得るという効果を奏する。ｎ種類の菌の、設定の順序は特に制限は無いが、プローブ設計時において感染症に罹患している総患者数における検出対象菌の感染者数の割合（出現頻度と称することがある）などを考慮して出現頻度の高い順に設定してもよいし、より重篤な症状を引き起こす重篤度の高い菌から行っても良い。
【００９１】
一方、ステップ８０７において、全ての検出対象菌に対してプローブとして使用される塩基配列が決定されれば処理を終了する。
【００９２】
もし、第１番目に選択した菌において特異的な塩基配列が見いだせなかった場合、他の配列を第１番目の菌として選択し直してもよい。これにより、特異的な配列を見出せなかった菌においても、対象菌が減少することで見出される可能性が高まる。
【００９３】
上記のように、複数の対象塩基配列の中から、特定の塩基配列に特異的な部分配列を順次設計していけばよい。
【００９４】
（第２の形態）
上述の第１の形態においては、１回の工程で対象菌を１菌ずつ選択してプローブを設計する方法について説明した。
本形態においては、１回の選択工程において複数種のプローブを有するプローブ群を選択し、各プローブを設計する形態を説明する。
【００９５】
第１の形態においては、第１の工程として（ステップ８０１）検出対象菌テーブル８０８の中から第１番目の菌を１つだけ選んでいたが、この第１番目の菌の代わりに、第１番目の菌群として複数種の菌を選択する。
【００９６】
第２の工程として、ステップ８０２において検出対象菌塩基配列データ８０３が、当該第１番目の菌群の塩基配列を読出され、該塩基配列のうち当該第１番目の菌群に特異的な部分に結合し、第１番目の菌群の遺伝子の塩基配列の何れの部分にも合致しない塩基配列を求める。
【００９７】
ここでは、第１番目の菌群それぞれの菌同士の塩基配列も判別の対象になることに注意が必要である。
【００９８】
以降は第１の形態と同様に、上記第１番目の菌群を次処理以降の処理対象菌からはずす。
【００９９】
ステップ８０７において、まだプローブを決定すべき検出対象菌が２種類以上残っているかチェックを行い、残っていればステップ８０１より、先に説明した第１の工程、第２の工程、第３の工程を順次繰り返す。
【０１００】
これにより第１番目〜第ｎ番目の菌群（ｎは２以上の整数）の各々に対するプローブが逐次決定される。
【０１０１】
本形態においては、菌群ごとにプローブを決定するので、プローブを配置したマイクロアレイを各菌群ごとにそれぞれ複数用意し、検体に順次捕捉処理をさせる図２のような形態に好適に利用できる。
【０１０２】
＜他の実施形態＞
なお、本発明の目的は、前述したプローブ設計方法の機能を実現するソフトウェアのプログラムコードを記録した記憶媒体を、システムあるいは装置に供給し、そのプローブ設計システムあるいは装置のコンピュータ（またはＣＰＵやＭＰＵ）が記憶媒体に格納されたプログラムコードを読出し実行することによっても、達成されることは言うまでもない。
【０１０３】
この場合、記憶媒体から読出されたプログラムコード自体が前述した実施形態の機能を実現することになり、そのプログラムコードを記憶した記憶媒体は本発明を構成することになる。
【０１０４】
プログラムコードを供給するための記憶媒体としては、例えば、フレキシブルディスク，ハードディスク，光ディスク，光磁気ディスク，ＣＤ−ＲＯＭ，ＣＤ−Ｒ，磁気テープ，不揮発性のメモリカード，ＲＯＭなどを用いることができる。
【０１０５】
また、コンピュータが読出したプログラムコードを実行することにより、前述した実施形態の機能が実現されるだけでなく、そのプログラムコードの指示に基づき、コンピュータ上で稼働しているＯＳ（オペレーティングシステム）などが実際の処理の一部または全部を行い、その処理によって前述した実施形態の機能が実現される場合も含まれることは言うまでもない。
【０１０６】
さらに、記憶媒体から読出されたプログラムコードが、コンピュータに挿入された機能拡張ボードやコンピュータに接続された機能拡張ユニットに備わるメモリに書込まれた後、そのプログラムコードの指示に基づき、その機能拡張ボードや機能拡張ユニットに備わるＣＰＵなどが実際の処理の一部または全部を行い、その処理によって前述した実施形態の機能が実現される場合も含まれることは言うまでもない。
【０１０７】
以下に本発明を実現するのに適したＤＮＡマイクロアレイの具体的実験操作について説明する。
【０１０８】
＜１．プローブＤＮＡの準備＞
エンテロバクター・クロアカエ（Ｅｎｔｅｒｏｂａｃｔｅｒ  ｃｌｏａｃａｅ）菌検出用プローブとして実施形態１に従い核酸配列を設計する。具体的には、１６ｓ  ｒＲＮＡをコーディングしているゲノム部分より、上記第１実施形態で説明した方法を用いて設計する。なお、データベースは、ＮＣＢＩデータベースを利用すればよい。検体中に存在する可能性のある菌としては、以下の１０菌種を判定対象とする。
（１）エンテロバクター・クロアカエ菌
（２）黄色ブドウ球菌
（３）表皮ブドウ球菌
（４）大腸菌
（５）肺炎桿菌
（６）緑膿菌
（７）セラチア菌
（８）肺炎連鎖球菌
（９）インフルエンザ菌
（１０）エンテロコッカス・フェカリス菌
続いて、（１）エンテロバクター・クロアカエ菌の塩基配列を対象配列から排除し、（２）から（１０）の９種菌の塩基配列のうちから、（２）黄色ブドウ球菌の塩基配列に特異的な配列を抽出し、黄色ブドウ球菌用プローブを設計する。
【０１０９】
同様に、（２）黄色ブドウ球菌の塩基配列を対象配列から排除し、（３）から（１０）の８種菌の塩基配列のうちから、（３）表皮ブドウ球菌の塩基配列に特異的な配列を抽出し、表皮ブドウ球菌用プローブを設計する。
【０１１０】
特異的な配列を抽出した菌種の配列を排除し、残りの塩基配列から特定の菌に特異的な配列を抽出する処理を（１）〜（１０）の菌において順次に繰り返すことで、（１）〜（１０）の菌種のプローブを全て設計できる。
【０１１１】
上記に示したプローブを、ＤＮＡマイクロアレイに固定するための官能基として、合成後、定法に従って核酸の５’末端にチオール基を導入する。官能基の導入後、精製し、凍結乾燥する。凍結乾燥したプローブは、−３０℃の冷凍庫に保存する。
【０１１２】
＜２．検体増幅用ＰＣＲ  Ｐｒｉｍｅｒの準備＞
起炎菌検出用の為の１６ｓ  ｒＲＮＡ核酸（標的核酸）増幅用ＰＣＲ  Ｐｒｉｍｅｒの核酸配列を設計する。
【０１１３】
具体的には、１６ｓ  ｒＲＮＡをコーディングしているゲノム部分を特異的に増幅するプライマーセット、つまり約１５００塩基長の１６ｓ  ｒＲＮＡコーディング領域の両端部分で、特異的な融解温度をできるだけ揃えたプライマーを設計する。なお、変異株や、ゲノム上に複数存在する１６ｓ  ｒＲＮＡコーディング領域も同時に増幅できるように複数種類のプライマーを設計すればよい。
【０１１４】
このＰｒｉｍｅｒは、合成後、高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）により精製し、Ｆｏｒｗａｒｄ  Ｐｒｉｍｅｒを３種、Ｒｅｖｅｒｓｅ  Ｐｒｉｍｅｒを３種混合し、それぞれのＰｒｉｍｅｒ濃度が、最終濃度１０ｐｍｏｌ／μｌとなるようにＴＥ緩衝液に溶解する。
【０１１５】
＜３．Ｅｎｔｅｒｏｂａｃｔｅｒ＿ｃｌｏａｃａｅ  Ｇｅｎｏｍｅ  ＤＮＡ（モデル検体）の抽出＞
〈３−１．微生物の培養＆Ｇｅｎｏｍｅ  ＤＮＡ  抽出の前処理〉
まず、Ｅｎｔｅｒｏｂａｃｔｅｒ  ｃｌｏａｃａｅ標準株を、定法に従って培養する。この微生物培養液を１．５ｍｌ容量のマイクロチューブに１．０ｍｌ（ＯＤ６００＝０．７）採取し、遠心分離で菌体を回収した（８５００ｒｐｍ、５ｍｉｎ、４℃）。上精を捨てた後、Ｅｎｚｙｍｅ  Ｂｕｆｆｅｒ（５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ：ｐ．Ｈ．８．０、２５ｍＭ  ＥＤＴＡ）３００μｌを加え、ミキサーを用いて再縣濁させる。再縣濁した菌液は、再度、遠心分離で菌体を回収した（８５００ｒｐｍ、５ｍｉｎ、４℃）。上精を捨てた後、回収された菌体に、以下の酵素溶液を加え、ミキサーを用いて再縣濁させる。
Ｌｙｓｏｚｙｍｅ  ５０μｌ（２０ｍｇ／ｍｌ  ｉｎ  Ｅｎｚｙｍｅ  Ｂｕｆｆｅｒ）
Ｎ−Ａｃｅｔｙｌｍｕｒａｍｉｄａｓｅ  ＳＧ  ５０μｌ（０．２ｍｇ／ｍｌ  ｉｎ  Ｅｎｚｙｍｅ  Ｂｕｆｆｅｒ）。
【０１１６】
次に、酵素溶液を加え再縣濁した菌液を、３７℃のインキュベーター内で３０分間静置し、細胞壁の溶解処理を行う。
【０１１７】
〈３−２．Ｇｅｎｏｍｅ抽出〉
以下に示す微生物のＧｅｎｏｍｅ  ＤＮＡ抽出は、核酸精製キット（ＭａｇＥｘｔｒａｃｔｏｒ−Ｇｅｎｏｍｅ−：ＴＯＹＯＢＯ社製）を用いて行う。
【０１１８】
具体的には、まず、前処理した微生物縣濁液に溶解・吸着液７５０μｌと磁性ビーズ４０μｌを加え、チューブミキサーを用いて、１０分間激しく攪拌する（ステップ１）。
【０１１９】
次に、分離用スタンド（Ｍａｇｉｃａｌ  Ｔｒａｐｐｅｒ）にマイクロチューブをセットし、３０秒間静置して磁性粒子をチューブの壁面に集め、スタンドにセットした状態のまま、上精を捨てる（ステップ２）。
【０１２０】
次に、洗浄液９００μｌを加え、ミキサーで５ｓｅｃ程度攪拌して再縣濁を行う（ステップ３）。
【０１２１】
次に、分離用スタンド（Ｍａｇｉｃａｌ  Ｔｒａｐｐｅｒ）にマイクロチューブをセットし、３０秒間静置して磁性粒子をチューブの壁面に集め、スタンドにセットした状態のまま、上精を捨てる（ステップ４）。
【０１２２】
ステップ３、４を繰り返して２度目の洗浄（ステップ５）を行った後、７０％エタノール９００μｌを加え、ミキサーで５ｓｅｃ程度攪拌して再縣濁させる（ステップ６）。
【０１２３】
次に、分離用スタンド（Ｍａｇｉｃａｌ  Ｔｒａｐｐｅｒ）にマイクロチューブをセットし、３０秒間静置して磁性粒子をチューブの壁面に集め、スタンドにセットした状態のまま、上精を捨てる（ステップ７）。
【０１２４】
ステップ６、７を繰り返して７０％エタノールによる２度目の洗浄（ステップ８）を行った後、回収された磁性粒子に純水１００μｌを加え、チューブミキサーで１０分間攪拌を行う。
【０１２５】
次に分離用スタンド（Ｍａｇｉｃａｌ  Ｔｒａｐｐｅｒ）にマイクロチューブをセットし、３０秒間静置して磁性粒子をチューブ壁面に集め、スタンドにセットした状態のまま、上精を新しいチューブに回収する。
【０１２６】
〈３−３．回収したＧｅｎｏｍｅ  ＤＮＡの検査〉
回収された微生物（Ｅｎｔｅｒｏｂａｃｔｅｒ  ｃｌｏａｃａｅ  株）のＧｅｎｏｍｅＤＮＡは、定法に従って、アガロース電気泳動と２６０／２８０ｎｍの吸光度測定を行い、その品質（低分子核酸の混入量、分解の程度）と回収量を検定する。
【０１２７】
本実験操作では、約１０μｇのＧｅｎｏｍｅ  ＤＮＡが回収され、Ｇｅｎｏｍｅ  ＤＮＡのデグラデーションやｒＲＮＡの混入は認められなかった。回収したＧｅｎｏｍｅ  ＤＮＡは、最終濃度５０ｎｇ／μｌとなるようにＴＥ緩衝液に溶解し、以下の実験操作に使用する。
【０１２８】
＜４．ＤＮＡマイクロアレイの作製＞
〈４−１．ガラス基板の洗浄〉
合成石英のガラス基板（サイズ：２５ｍｍｘ７５ｍｍｘ１ｍｍ、飯山特殊ガラス社製）を耐熱、耐アルカリのラックに入れ、所定の濃度に調製した超音波洗浄用の洗浄液に浸す。一晩洗浄液中で浸した後、２０分間超音波洗浄を行う。続いて基板を取り出し、軽く純水ですすいだ後、超純水中で２０分超音波洗浄をおこなう。次に８０℃に加熱した１Ｎ水酸化ナトリウム水溶液中に１０分間基板を浸す。再び純水洗浄と超純水洗浄を行い、ＤＮＡチップ用の石英ガラス基板を用意する。
【０１２９】
〈４−２．表面処理〉
シランカップリング剤ＫＢＭ−６０３（信越シリコーン社製）を、１％の濃度となるように純水中に溶解させ、２時間室温で攪拌する。続いて、先に洗浄したガラス基板をシランカップリング剤水溶液に浸し、２０分間室温で放置する。ガラス基板を引き上げ、軽く純水で表面を洗浄した後、窒素ガスを基板の両面に吹き付けて乾燥させる。次に乾燥した基板を１２０℃に加熱したオーブン中で１時間ベークし、カップリング剤処理を完結させ、基板表面にアミノ基を導入する。次いで同仁化学研究所社製のＮ−マレイミドカプロイロキシスクシイミド（Ｎ−（６−Ｍａｌｅｉｍｉｄｏｃａｐｒｏｙｌｏｘｙ）ｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｏ）（以下ＥＭＣＳと略す）を、ジメチルスルホキシドとエタノールの１：１混合溶媒中に最終濃度が０．３ｍｇ／ｍｌとなるように溶解したＥＭＣＳ溶液を用意する。ベークの終了したガラス基板を放冷し、調製したＥＭＣＳ溶液中に室温で２時間浸す。この処理により、シランカップリング剤によって表面に導入されたアミノ基とＥＭＣＳのスクシイミド基が反応し、ガラス基板表面にマレイミド基が導入される。ＥＭＣＳ溶液から引き上げたガラス基板を、先述のＭＣＳを溶解した混合溶媒を用いて洗浄し、さらにエタノールにより洗浄した後、窒素ガス雰囲気下で乾燥させる。
【０１３０】
〈４−３．プローブＤＮＡ〉
実験操作１で作製した微生物検出用プローブを純水に溶解し、それぞれ、最終濃度（インク溶解時）１０μＭとなるように分注した後、凍結乾燥を行い、水分を除く。
【０１３１】
〈４−４．ＢＪプリンターによるＤＮＡ吐出、および基板への結合〉
グリセリン７．５ｗｔ％、チオジグリコール７．５ｗｔ％、尿素７．５ｗｔ％、アセチレノールＥＨ（川研ファインケミカル社製）１．０ｗｔ％を含む水溶液を用意する。続いて、先に用意した７種類のプローブ（表１）を上記の混合溶媒に規定濃度なるように溶解する。得られたＤＮＡ溶液をバブルジェット（登録商標）プリンター（商品名：ＢＪＦ−８５０キヤノン社製）用インクタンクに充填し、印字ヘッドに装着する。
【０１３２】
なおここで用いたバブルジェット（登録商標）プリンターは平板への印刷が可能なように改造を施したものである。またこのバブルジェット（登録商標）プリンターは、所定のファイル作成方法に従って印字パターンを入力することにより、約５ピコリットルのＤＮＡ溶液を約１２０マイクロメートルピッチでスポッティングすることが可能となっている。
【０１３３】
続いて、この改造バブルジェット（登録商標）プリンターを用いて、１枚のガラス基板に対して、印字操作を行い、アレイを作製した。印字が確実に行われていることを確認した後、３０分間加湿チャンバー内に静置し、ガラス基板表面のマレイミド基と核酸プローブ末端のチオール基とを反応させる。
【０１３４】
本実施例においては、１０枚のスライドガラスを用意し、各菌種用のアレイを１枚ずつ作成する。
【０１３５】
〈４−５．洗浄〉
３０分間の反応後、１００ｍＭのＮａＣｌを含む１０ｍＭのリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）により表面に残ったＤＮＡ溶液を洗い流し、ガラス基板表面に一本鎖ＤＮＡが固定したＤＮＡマイクロアレイを得る。
【０１３６】
＜５．検体の増幅と標識化（ＰＣＲ増幅＆蛍光標識の取り込み）＞
検体となる微生物ＤＮＡの増幅、および、標識化反応を以下に示す。
【０１３７】
【数２】
2009000099.tif 000004
【０１３８】
上記組成の反応液を以下のプロトコールに従って、市販のサーマルサイクラーで増幅反応を行う。
【０１３９】
【数３】
2009000099.tif 000005
【０１４０】
反応終了後、精製用カラム（ＱＩＡＧＥＮ  ＱＩＡｑｕｉｃｋ  ＰＣＲ  Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ  Ｋｉｔ）を用いてＰｒｉｍｅｒを除去した後、増幅産物の定量を行い、標識化検体とする。
【０１４１】
＜６．ハイブリダイゼーション＞
＜４．ＤＮＡマイクロアレイの作製＞で作製したＤＮＡマイクロアレイと＜５．検体の増幅と標識化（ＰＣＲ増幅＆蛍光標識の取り込み）＞で作製した標識化検体を用いて検出反応を行う。
【０１４２】
〈６−１．ＤＮＡマイクロアレイのブロッキング〉
ＢＳＡ（牛血清アルブミンＦｒａｃｔｉｏｎ  Ｖ：Ｓｉｇｍａ社製）を１ｗｔ％となるように１００ｍＭ  ＮａＣｌ／１０ｍＭ  Ｐｈｏｓｐｈａｔｅ  Ｂｕｆｆｅｒに溶解し、この溶液に＜ＤＮＡマイクロアレイの作製＞で作製したＤＮＡマイクロアレイを室温で２時間浸し、ブロッキングを行う。ブロッキング終了後、０．１ｗｔ％ＳＤＳ（ドデシル硫酸ナトリウム）を含む２ｘＳＳＣ溶液（ＮａＣｌ  ３００ｍＭ、Ｓｏｄｉｕｍ  Ｃｉｔｒａｔｅ（ｔｒｉｓｏｄｉｕｍ  ｃｉｔｒａｔｅ  ｄｉｈｙｄｒａｔｅ，Ｃ６Ｈ５Ｎａ３・２Ｈ２Ｏ）３０ｍＭ、ｐ．Ｈ．７．０）で洗浄を行った後、純水でリンスしてからスピンドライ装置で水切りを行う。
【０１４３】
〈６−２．ハイブリダイゼーション〉
水切りしたＤＮＡマイクロアレイをハイブリダイゼーション装置（Ｇｅｎｏｍｉｃ  Ｓｏｌｕｔｉｏｎｓ  Ｉｎｃ．Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ  Ｓｔａｔｉｏｎ）にセットし、以下に示すハイブリダイゼーション溶液、条件でハイブリダイゼーション反応を行う。
【０１４４】
・ハイブリダイゼーション溶液
６ｘ  ＳＳＰＥ／１０％Ｆｏｒｍ  ａｍｉｄｅ／Ｔａｒｇｅｔ（２ｎｄ  ＰＣＲ  Ｐｒｏｄｕｃｔｓ  全量）
（６ｘＳＳＰＥ：ＮａＣｌ  ９００ｍＭ、ＮａＨ２ＰＯ４・Ｈ２Ｏ  ６０ｍＭ、ＥＤＴＡ６ｍＭ、ｐ．Ｈ．７．４）
・ハイブリダイゼーション条件
６５℃  ３ｍｉｎ→９２℃  ２ｍｉｎ→４５℃  ３ｈｒ→Ｗａｓｈ  ２ｘＳＳＣ／０．１％ＳＤＳ  ａｔ  ２５℃→Ｗａｓｈ  ２  ｘ  ＳＳＣ  ａｔ  ２０℃→（Ｒｉｎｓｅ  ｗｉｔｈ  Ｈ２Ｏ：Ｍａｎｕａｌ）→Ｓｐｉｎ  ｄｒｙ（６５℃で３分、９２度で２分、４５℃で３時間ハイブリダイゼーション反応させた後、２ｘＳＳＣ／０．１％  ＳＤＳ、２５℃で洗浄、２ｘＳＳＣ、２０℃で洗浄後、純水でリンスしスピンドライする）。
【０１４５】
＜７．微生物の検出（蛍光測定）＞
ハイブリダイゼーション反応終了後のＤＮＡマイクロアレイをＤＮＡマイクロアレイ用蛍光検出装置（Ａｘｏｎ社製、ＧｅｎｅＰｉｘ  ４０００Ｂ）を用いで蛍光測定を行う。
【０１４６】
以上説明したように、本実施形態によれば、ＤＮＡマイクロアレイシステムに最適なオリゴヌクレオチドプローブの設計が実現できる。このことにより、より確かな生物種、個体識別情報が得られるという効果がある。
【図面の簡単な説明】
【０１４７】
【図１】本発明の検出方法を説明する図である。
【図２】本発明の一形態であるカセットの断面図を示す。
【図３】ハイブリダイゼーション反応を説明する図である。
【図４】感染症の判定用ＤＮＡマイクロアレイの実験手順を説明する図である。
【図５】複数種の菌検出の処理手順を示すフローチャートである。
【図６】複数種の菌検出の仕組みの概要を説明する図である。
【図７】本発明に係るプローブ設計方法が適用可能な情報処理装置の構成を示すブロック図である。
【図８】本発明に係るプローブ設計方法を説明するフローチャートである。
【符号の説明】
【０１４８】
２０１  第１のチャンバー
２０２  第２のチャンバー
２０３  カセット
２０４  ハウジング２０４
２０５  第１のＤＮＡマイクロアレイ２０５
２０６  第２のＤＮＡマイクロアレイ２０６
２０７  注入口２０７
２０８  液体溜めチャンバー２０８
２０９  吸引口２０９
２１０  流路
２１１  流路
２１２  流路
２１３  廃液チャンバー
７０１  外部記憶手段
７０２  ＣＰＵ
７０３  メモリ
７０４  入出力装置
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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