(57)【要約】【課題】細胞に対して低毒性であり、かつ長時間安定に検出が可能な新規ステロール認識物質、並びに該物質を用いたステロールの検出方法の提供。【解決手段】ＴＮＭ類を含有してなるステロール検出試薬、並びに被験試料に該試薬を接触させる工程、およびＴＮＭ類を検出する工程を含む、該被験試料中のステロールの検出方法。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
ＴＮＭ類を含有してなるステロール検出試薬。
【請求項２】
ＴＮＭ類が蛍光標識されている、請求項１記載の試薬。
【請求項３】
蛍光標識されたＴＮＭ類が下記の化合物：
【化１】
2009109361.tif 000015
（式中、Ｒ１、Ｒ２およびＲ４はそれぞれ水素、水素およびＢｒを表すか、あるいはＯＨ、メチルおよび水素を表し、Ｒ３は水素またはＢｒを表し、Ｘ及びＹは、いずれか一方が、下記；
【化２】
2009109361.tif 000016
【化３】
2009109361.tif 000017
【化４】
2009109361.tif 000018
のいずれかを表し、もう一方が、アルデヒドを表す）
である、請求項２記載の試薬。
【請求項４】
被験試料に請求項１〜請求項３のいずれか１項に記載の試薬を接触させる工程、およびＴＮＭ類を検出する工程を含む、該被験試料中のステロールの検出方法。
【請求項５】
被験試料が細胞もしくは組織である、請求項４記載の方法。
【請求項６】
下式：
【化５】
2009109361.tif 000019
（式中、Ｒ１、Ｒ２およびＲ４はそれぞれ水素、水素およびＢｒを表すか、あるいはＯＨ、メチルおよび水素を表し、Ｒ３は水素またはＢｒを表し、Ｘ及びＹは、いずれか一方が、下記；
【化６】
2009109361.tif 000020
（この場合、該Ｒ１、Ｒ２およびＲ４はそれぞれ水素、水素およびＢｒを表す）
【化７】
2009109361.tif 000021
【化８】
2009109361.tif 000022
のいずれかであり、もう一方が、アルデヒドである）
で示されるＴＮＭ類化合物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、セオネラミド（ＴＮＭ）類を含有するステロール検出試薬、およびＴＮＭ類を用いたステロールの検出方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
ステロールは真核生物の生理機能において重要な役割を果たす。例えば、生体膜の重要な構成成分として、膜の流動性や生体物質の膜透過の調節などを司っている。また、発生シグナル伝達において二次情報伝達物質として働くことも知られている。
【０００３】
ステロールを認識する物質として、これまでにアンホテリシンＢ、ニスタチン、フィリピンなどのポリエン抗真菌薬、α−トマチンなどのサポニン類、さらにはθ−トキシンなどの蛋白質（例えば、非特許文献１）等が報告されている。しかしながら、それらを用いたステロールの検出は容易ではない。例えば、フィリピンの蛍光は消光が非常に早いため、蛍光顕微鏡下での経時的な観察には不向きである。また、アンホテリシンＢやニスタチンなどのポリエン抗真菌性化合物は、細胞溶解を引き起こしやすいという欠点がある。
【０００４】
一方、ＴＮＭ類は海綿動物から単離されたペプチド性の化合物であり（非特許文献２、３）、分裂酵母に対して生育阻害活性を示すことが知られている。本発明者らは、ＴＮＭ類が分裂酵母に特徴的な形態変化を誘導すること、強制発現によりＴＮＭ類への感受性に影響を与える蛋白質は小胞輸送、細胞壁合成、細胞極性の維持に関連するものであることを見出し、ＴＮＭ類の標的分子が細胞表層や分裂面に存在するらしいことを報告した（Pombe2007（2007年6月12日）にて発表）。
しかしながら、ＴＮＭ類の標的分子が何であるかについては未解明のままであった。
【非特許文献１】Cell, 89: 685 (1997)
【非特許文献２】J. Am. Chem. Soc., 111: 2582-8 (1989)
【非特許文献３】J. Org. Chem., 60: 1177-81 (1995)
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
したがって、本発明の目的は、細胞に対して低毒性であり、かつ長時間安定に検出が可能な新規ステロール認識物質を提供することであり、該物質を用いたステロールの検出方法を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
本発明者らは、上記の目的を達成すべく鋭意研究を重ねた結果、ＴＮＭ類の標的分子がステロールであることを見出した。さらに、各種蛍光物質を導入したＴＮＭ誘導体を合成し、これらを用いてインビトロおよびインビボの両方でステロールの検出が可能であることを実証して、本発明を完成するに至った。
【０００７】
すなわち、本発明は以下に関する。
（１）ＴＮＭ類を含有してなるステロール検出試薬、
（２）ＴＮＭ類が蛍光標識されている、上記（１）記載の試薬、
（３）蛍光標識されたＴＮＭ類が下記の化合物である、上記（２）記載の試薬、
【０００８】
【化１】
2009109361.tif 000002
【０００９】
（式中、Ｒ１、Ｒ２およびＲ４はそれぞれ水素、水素およびＢｒを表すか、あるいはＯＨ、メチルおよび水素を表し、Ｒ３は水素またはＢｒを表し、Ｘ及びＹは、いずれか一方が、下記のいずれかを表し、もう一方が、アルデヒドを表す。）
【００１０】
【化２】
2009109361.tif 000003
【００１１】
【化３】
2009109361.tif 000004
【００１２】
【化４】
2009109361.tif 000005
【００１３】
（４）被験試料に上記（１）〜（３）のいずれかに記載の試薬を接触させる工程、およびＴＮＭ類を検出する工程を含む、該被験試料中のステロールの検出方法、
（５）被験試料が細胞もしくは組織である、上記（４）記載の方法、および
（６）下式で示されるＴＮＭ類化合物、
【００１４】
【化５】
2009109361.tif 000006
【００１５】
（式中、Ｒ１、Ｒ２およびＲ４はそれぞれ水素、水素およびＢｒを表すか、あるいはＯＨ、メチルおよび水素を表し、Ｒ３は水素またはＢｒを表し、Ｘ及びＹは、いずれか一方が、下記のいずれかを表し、もう一方が、アルデヒドを表す。）
【００１６】
【化６】
2009109361.tif 000007
【００１７】
（この場合、上記Ｒ１、Ｒ２およびＲ４はそれぞれ水素、水素およびＢｒを表す。）
【００１８】
【化７】
2009109361.tif 000008
【００１９】
【化８】
2009109361.tif 000009
【００２０】
を提供する。
【発明の効果】
【００２１】
ＴＮＭ類はステロールを特異的に認識し得るので、ＴＮＭ類に安定な標識剤を導入した化合物を被験試料に接触させて該標識剤を検出することにより、フィリピン等のステロール検出試薬よりも、長時間にわたってステロールの存在を観察することができる。また、ＴＮＭ類はアンホテリシンＢやニスタチンなどのポリエン抗真菌薬と異なり、細胞溶解を引き起こし難いという利点を有する。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２２】
本発明はＴＮＭ類を含有してなるステロールの検出試薬を提供する。ここで「ＴＮＭ類」とは、下式で表されるＴＮＭ−Ａ〜ＴＮＭ−Ｆおよびそれらの任意の誘導体を意味する。
【００２３】
【化９】
2009109361.tif 000010
【００２４】
Ｒ１        Ｒ２        Ｒ３        Ｒ４        Ｒ５ 
ＴＮＭ−Ａ      ＯＨ       Ｍｅ       Ｂｒ       Ｈ       β-D-Gal
ＴＮＭ−Ｂ      ＯＨ       Ｍｅ       Ｂｒ       Ｂｒ        Ｈ
ＴＮＭ−Ｃ      Ｈ         Ｈ         Ｈ         Ｂｒ        Ｈ
ＴＮＭ−Ｄ      Ｈ         Ｈ         Ｂｒ       Ｂｒ     β-D-Ara
ＴＮＭ−Ｅ      Ｈ         Ｈ         Ｂｒ       Ｂｒ     β-D-Gal
ＴＮＭ−Ｆ      Ｈ         Ｈ         Ｂｒ       Ｂｒ        Ｈ     
Ｍｅ：メチル
β-D-Gal：β-D-ガラクトース
β-D-Ara：β-D-アラビノース
【００２５】
ＴＮＭ−Ａ〜ＴＮＭ−Ｆは、例えば、上記非特許文献２および３に記載されるようにして海綿動物から単離することにより得ることができるが、それらに限定されない。ＴＮＭ−Ａ〜ＴＮＭ−Ｆの誘導体としては特に制限はないが、例えば、ステロールの検出を容易にするために、標識剤が導入されたものが挙げられる。標識剤としては、例えば、蛍光物質、放射性同位元素、酵素、発光物質、ビオチンなどが用いられる。蛍光物質としては、例えば、ＡＭＣＡ、フルオレセイン（ＦＬ）、ＢＯＤＩＰＹ−ＦＬ、フルオレスカミン、フルオレセインイソチオシアネート（ＦＩＴＣ）、ＮＢＤ、ＣｙＤｙｅ、ＡｌｅｘａＦｌｕｏｒなどが用いられる。放射性同位元素としては、例えば、〔32P〕、〔3H〕、〔14C〕などが用いられる。酵素としては、安定で比活性の大きなものが好ましく、例えば、β−ガラクトシダーゼ、β-グルコシダーゼ、アルカリフォスファターゼ、パーオキシダーゼ、リンゴ酸脱水素酵素などが用いられる。発光物質としては、例えば、ルミノール、ルミノール誘導体、ルシフェリン、ルシゲニンなどが用いられる。好ましくは、標識剤としては蛍光物質が使用され、中でもＡＭＣＡ、ＢＯＤＩＰＹ−ＦＬ、ＦＬ等が好ましい。
【００２６】
標識剤が導入されるＴＮＭの部位は特に制限されないが、例えば、ＴＮＭ−Ａ、ＴＮＭ−ＤおよびＴＮＭ−ＥのようにＲ５位に糖官能基を有する化合物の場合、糖官能基を過ヨウ素酸ナトリウムで酸化してアルデヒド基を生じせしめ、該アルデヒド基とヒドラジド基を導入した標識剤（例えば、上記の蛍光物質）とを縮合反応させることにより、簡便にＲ５位に標識剤を導入することが可能である。例えば、ＴＮＭ−Ａを出発物質とした場合の蛍光官能基の導入反応の過程を図２に示す。
【００２７】
上記のようにして得られる本発明の蛍光標識されたＴＮＭ類化合物は新規化合物である。従って、本発明はまた、下式で表されるＴＮＭ類化合物を提供する。
【００２８】
【化１０】
2009109361.tif 000011
【００２９】
（式中、Ｒ１、Ｒ２およびＲ４はそれぞれ水素、水素およびＢｒを表すか、あるいはＯＨ、メチルおよび水素を表し、Ｒ３は水素またはＢｒを表し、Ｘ及びＹは、いずれか一方が、下記のいずれかを表し、他方が、アルデヒドを表す。）
【００３０】
【化１１】
2009109361.tif 000012
【００３１】
（この場合、上記Ｒ１、Ｒ２およびＲ４はそれぞれ水素、水素およびＢｒを表す。）
【００３２】
【化１２】
2009109361.tif 000013
【００３３】
【化１３】
2009109361.tif 000014
【００３４】
本発明のＴＮＭ類を含有してなるステロール検出試薬（以下、「本発明の試薬」ともいう）は、上記のようにして調製されるＴＮＭ類化合物をそれ自体として、あるいは、ＤＭＳＯ、ＤＭＦ、メタノール、エタノール、プロパノール、アセトニトリル等の有機溶媒中に、例えば、約0.01〜約10ｍＭの濃度となるように溶解した溶液の状態で提供され得る。
本発明の試薬は、必要に応じて、保存剤、安定化剤、等張化剤、ｐＨ調整剤などの通常使用され得る添加剤をさらに配合することもできる。
【００３５】
本発明の試薬により検出され得るステロールはステロール骨格（ステロイド核の３位にヒドロキシル基を持つ）を有する炭素数２７〜３０のものであれば特に限定されず、また、遊離型、脂肪酸などとのエステル型、あるいは配糖体型のいずれでもよい。例えば、動物においてはコレステロール、植物においてはスチグマステロールやβ−シスステロール、糸状菌や酵母などではエルゴステロール等が挙げられる。
【００３６】
本発明はまた、被験試料に本発明の試薬を接触させる工程、およびＴＮＭ類を検出する工程を含む、該被験試料中のステロールの検出方法を提供する。
被験試料としては、ステロールを含有することが予測されるものであれば特に制限はないが、例えば、生物、好ましくは真核生物由来の細胞や組織、あるいはその膜成分の分画物などが挙げられる。真核生物としては、哺乳類をはじめとする高等動物、昆虫、植物、糸状菌や酵母などの微生物のいずれであってもよい。
【００３７】
例えば、細胞を被験試料として用いる場合、該細胞の培養に適した自体公知の培地あるいは緩衝液中に細胞を懸濁し、これに本発明の試薬を、ＴＮＭ類化合物として約0.1〜約10μＭの濃度となるように添加し、使用する細胞の培養に適した温度条件下で、約5分〜約1時間インキュベートした後、ＴＮＭ類を検出する。ＴＮＭ類の検出は、それに導入される標識剤に応じて適宜選択され得るが、例えば、蛍光物質を導入したＴＮＭ類化合物を用いる場合には、細胞を蛍光顕微鏡下で観察して目的の蛍光を検出することにより行うことができる。ＴＮＭ類は分裂酵母などに対して細胞溶解を引き起こしにくいので、生細胞を用いたin situでの経時的な観察も可能である。
【００３８】
一方、被験試料が脂質混合液等の場合は、例えば、マイクロプレートなどの容器に被験試料液を添加して蒸発乾固した後、ＢＳＡやスキムミルク等のブロッキング液を添加してブロッキングを行う。次いで、本発明の試薬を上記と同様の濃度となるように添加して約30分〜約2時間インキュベートし、試料液を除去、洗浄した後、プレートリーダー等を用いて標識量を測定することにより、ＴＮＭ類の検出を行えばよい。
【００３９】
上記検出工程を実施した結果、ＴＮＭ類の標識剤が検出された場合、ステロールが存在すると判定することができる。
【００４０】
ＴＮＭ類は、フィリピンやアンホテリシンＢなどの従来のステロール認識物質と比較して、ステロールの比率がより高い脂質を効率よく認識することができる。したがって、ＴＮＭ類は細胞内のステロール含有比が高い脂質を選択的に検出するのに有効であろう。
【実施例】
【００４１】
以下に実施例を挙げて本発明をより具体的に説明するが、これらは単なる例示であって本発明の範囲を何ら限定するものではない。
【００４２】
実施例１  ＴＮＭ−Ｆによるステロールの検出
ＴＮＭ−Ｆ（上記非特許文献２に記載の方法に従って単離した）をＤＭＳＯに６００μＭとなるように溶解した。このＴＮＭ−Ｆ溶液をリン酸緩衝生理食塩水に1/100に希釈し、フォスファチジルコリン（ＰＣ）、ＰＣ／フォスファチジルエタノールアミン（ＰＥ）（４：１）、ＰＣ／フォスファチジルセリン（ＰＳ）（４：１）、ＰＣ／スフィンゴミエリン（ＳＭ）（４：１）、ＰＣ／エルゴステロール（Ｅｒｇ）（４：１）またはＰＣ／コレステロール（Ｃｈｏｌ）（４：１）を含む多重膜小胞（ＭＬＶ）を接触させて３０℃で３０分間インキュベートした後、分裂酵母（シゾサッカロミセス・ポンベＪＹ−１株；東京大学大学院理学系研究科生物科学専攻山本正幸博士より入手）の培養液に、ＴＮＭ−Ｆ濃度として３μＭ（０．５％（ｖ／ｖ）ＤＭＳＯ）となるように添加して、３０℃で３時間インキュベートした。次いで、細胞を固定し、カルコフルオールホワイトで染色して顕微鏡観察した。結果を図１に示す。ＴＮＭ−ＦをＰＣ／Ｅｒｇと予め接触させると、細胞表層における染色が顕著に阻害された。ＰＣ／Ｃｈｏｌでも同様の傾向が認められたが、ＰＣ、ＰＣ／ＰＥ、ＰＣ／ＰＳ、ＰＣ／ＳＭと接触させた場合にはＴＮＭ−Ｆの分裂酵母に対する形態変化作用は阻害されなかった。このことから、ＴＮＭ−Ｆはステロールを認識することが強く示唆された。
【００４３】
実施例２  蛍光標識ＴＮＭ誘導体の合成
常法に従って、ＴＮＭ−Ａ（上記非特許文献３に記載の方法に従って単離した）をＮａＩＯ４で酸化し、ＴＮＭ−Ａ−ｂｉｓ−ＣＨＯを得た。得られたＴＮＭ−Ａ−ｂｉｓ−ＣＨＯとヒドラジド基を有する各種蛍光物質（ＡＭＣＡ、ＢＯＤＩＰＹ−ＦＬおよびＦＬ）とをｐＨ５．０の条件下で縮合反応させ、ＴＮＭ−ＡＭＣＡ、ＴＮＭ−ＢＯＤＩＰＹ−ＦＬおよびＴＮＭ−ＦＬをそれぞれ得た（図２）。各化合物の物性データを下記に示す。
（ＴＮＭ−ＡＭＣＡ）
UV (75% aq DMSO) lmax (e) 290.0 (26,800), 354.5 (20,000) nm; MALDI-TOF-MS (positive) m/z 1960.74 [M+H]+, 1978.78 [M+H2O]+; HR-ESI-TOF-MS (positive) m/z 1008.8298 [M+H2O+H+K]2+(calcd for C87/2H109/279Br1/2N19/2K1/2O30/2, 1008.8204).
（ＴＮＭ−ＢＯＤＩＰＹ−ＦＬ）
UV (60% aq MeCN) lmax (e) 285.0 (28,000), 503.0 (81,000) nm; MALDI-TOF-MS (positive) m/z 2019.836 [M+H]+, 2037.865 [M+H2O+H]+; HR-ESI-TOF-MS (positive) m/z 1010.3594 [M+2H]2+ (calcd for C89/2H112/2B1/279Br1/2F2/2N20/2O27/21010.3625).
（ＴＮＭ−ＦＬ）
UV (MeCN:PBS = 6:4) lmax (e) 279.0 (45,000), 497.0 (61,000) nm; MALDI-TOF-MS (positive) m/z 2134.609 [M+H]+; HR-ESI-TOF-MS (positive) m/z 1067.8259 [M+2H]2+(calcd for C96/2H110/279Br1/2N19/2O31/2S1/21067.8260).
【００４４】
実施例３  インビトロでのステロールの検出
（ＤＯ）ＰＣ、（ＤＭ）ＰＥ、（ＤＭ）ＰＳ、スフィンゴミエリン（ＳＭ）、エルゴステロールまたはコレステロールの脂質溶液50μｌをマイクロプレートに添加して３０℃で約２時間蒸発乾固させた。１％ＢＳＡを加えて３０℃で１時間ブロッキングを行った後、実施例２で得られたＴＮＭ−ＡＭＣＡ（0.5μＭ、図３Ａ）、またはＴＮＭ−ＦＬ（0.5μＭ、図３Ｃ）を添加して、３０℃で１時間インキュベートした。反応液を除去し、１％ＢＳＡを用いて２回洗浄（３０℃、１５分）した後、プレートに固定された蛍光量を測定した。その結果、いずれのＴＮＭ誘導体もコレステロールおよびエルゴステロールを特異的に認識することが示された（図３Ａ、Ｃ）。ＴＮＭ−ＢＯＤＩＰＹ−ＦＬ（0.5μＭ）については、ブロッキング溶液に１％スキムミルク溶液を用いることでコレステロールおよびエルゴステロールを特異的に認識することが示された（図３Ｂ）。
【００４５】
実施例４  分裂酵母におけるインビボでのステロールの検出
分裂酵母（シゾサッカロミセス・ポンベＪＹ−１株；東京大学大学院理学系研究科生物科学専攻山本正幸博士より入手）の培養液に、ＴＮＭ−ＡＭＣＡ（３μＭ）、ＴＮＭ−ＢＯＤＩＰＹ−ＦＬ（１．３μＭ）またはＴＮＭ−ＦＬ（２．３μＭ）を添加し、ＴＮＭ−ＡＭＣＡの場合０．５、１および２時間、ＴＮＭ−ＢＯＤＩＰＹ−ＦＬの場合３０分間、ＴＮＭ−ＦＬの場合２．５時間インキュベートした後、顕微鏡観察した。比較のため、フィリピン（５μｇ／ｍｌ）を添加して５分以内に観察を行った。ＴＮＭ−ＡＭＣＡおよびＴＮＭ−ＢＯＤＩＰＹ−ＦＬは、既存のステロールマーカーであるフィリピンと類似した局在パターンを示した（図５Ａ、Ｂ）。ＴＮＭ−ＡＭＣＡの蛍光シグナルは２時間後でも持続していた。一方、ＴＮＭ−ＦＬは細胞壁にトラップされ、分裂酵母に対しては有効ではなかったが、これはＦＬが細胞壁を通過できないことによると推測されるので、細胞壁のない動物細胞ではＴＮＭ−ＦＬもインビボで有効に用い得る可能性がある。
【００４６】
実施例５  動物培養細胞におけるインビボでのステロールの検出
カバーグラス上にＨｅＬａ細胞を培養した。伸展を確認した後、細胞を３％パラホルムアルデヒド含有リン酸緩衝生理食塩液にて室温２０分固定した。細胞をＰＢＳで洗浄後、５０μｇ／ｍｌジギトニンのＰＢＳ溶液にて室温５分処理し、膜を透過性にした。次に、１μＭのｆＰＥＧ−Ｃｈｏｌ、１μＭのＴＮＭ−ＡＭＣＡ、抗ＧＭ１３０抗体を用いて細胞を三重標識した（図７）。ＴＮＭ−ＡＭＣＡはコレステロールの濃度の高い後期エンドソーム、リソゾーム、ゴルジ体等に分布し蛍光を発するｆＰＥＧ−Ｃｈｏｌと類似した局在を示し、特にゴルジ体に分布し蛍光を発した。
【００４７】
実施例６  ポリエン系抗真菌薬との比較
分裂酵母（シゾサッカロミセス・ポンベＪＹ−１株；東京大学大学院理学系研究科生物科学専攻山本正幸博士より入手）の培養液に、ＴＮＭ−Ｆ（５．０μｇ／ｍｌ）を添加し、３時間インキュベートした後、顕微鏡観察した。比較のため、ニスタチン（１．６μｇ／ｍｌ）またはアンホテリシンＢ（ＡＭＢ）（０．２５μｇ／ｍｌ）を添加して、同様の実験を行った。その結果、ＴＮＭ−Ｆはポリエン系抗真菌薬と異なり、分裂酵母に対して細胞溶解を引き起こしにくいことが示された（図６）。
【００４８】
実施例７  ＴＮＭ類が認識する脂質のステロール含有比の検討
ＴＮＭ−Ｆは脂質結合分子に一般的な特徴である溶血活性を示す。そこで、ＴＮＭ−Ｆを、エルゴステロールおよびコレステロールを種々のモル比で含有する混合脂質からなるＭＬＶと予め接触させた後、羊由来赤血球と接触させて、溶血活性を測定した。その結果、エルゴステロール、コレステロールのいずれの場合でも、ステロールのモル比が６０％以上の場合に溶血活性が顕著に阻害された（図４Ａ、Ｂ）。ＴＮＭ−ＡＭＣＡ（図４Ｄ）、ＴＮＭ−ＢＯＤＩＰＹ−ＦＬ（図４Ｅ），ＴＮＭ−ＦＬ（図４Ｃ）についても同様の実験を行ったところ、ステロールのモル比が３０−４０％以上の場合に溶血活性が顕著に阻害された。従って、ＴＮＭ類は高濃度のステロールを含有する脂質膜を効率よく認識し得ることが示唆された。
【産業上の利用可能性】
【００４９】
ＴＮＭ類はステロールを特異的に認識することができ、また容易に所望の蛍光官能基を導入し得ることから、長期間安定な蛍光を発するステロール検出試薬として有用である。また、ＴＮＭ類は分裂酵母などに対して細胞溶解を引き起こしにくいので、これらの細胞を生きた状態で経時的に観察できる点できわめて有用である。
【図面の簡単な説明】
【００５０】
【図１】各種脂質からなるＭＬＶに予め接触させたＴＮＭ−Ｆの分裂酵母に対する形態変化作用を示す図である。
【図２】ＴＮＭ−Ａから各種の蛍光標識ＴＮＭ誘導体を合成する反応を示した図である。
【図３】ＴＮＭ−ＡＭＣＡ（Ａ）、ＴＮＭ−ＢＯＤＩＰＹ−ＦＬ（Ｂ）またはＴＮＭ−ＦＬ（Ｃ）のインビトロでのステロール認識能を示す図である。
【図４】エルゴステロールおよびコレステロールを種々のモル含有比で含むＭＬＶに予め接触させたＴＮＭ−Ｆ（Ａ、Ｂ）、ＴＮＭ−ＦＬ（Ｃ）、ＴＮＭ−ＡＭＣＡ（Ｄ）、ＴＮＭ−ＢＯＤＩＰＹ−ＦＬ（Ｅ）の溶血活性を示す図である。
【図５】ＴＮＭ−ＡＭＣＡ（Ａ）およびＴＮＭ−ＢＯＤＩＰＹ−ＦＬ（Ｂ）の分裂酵母におけるインビボでのステロール認識能を示す図である。
【図６】ＴＮＭ−Ｆ、ニスタチンおよびＡＭＢによる分裂酵母の細胞溶解を示す図である。
【図７】ＴＮＭ−ＡＭＣＡの動物培養細胞におけるインビボでのステロール認識能を示す図である。
【図２】
2009109361.tif 000023
【図３】
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【図４】
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【図１】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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