(57)【要約】【課題】天然物からＬ−アラビノースを安価な製造コストにより、しかも高い遊離量で製造することができる製造方法を提供する。【解決手段】アラビナン、アラビノキシラン又はアラビノガラクタンを含有する天然物を硝酸、リン酸、硫酸又は塩酸と接触させ、７０℃〜１５０℃の温度で酸加水分解を行い、Ｌ−アラビノースを得ることを特徴とするＬ−アラビノースの製造方法を要旨とするものであり、好ましくは、０．２０規定以上の硫酸、０．１５規定以上の塩酸と接触させるものであり、さらに好ましくは、０．２規定〜１．０規定の硝酸、０．２規定〜１．０規定のリン酸、０．２規定〜１．０規定の硫酸又は０．２規定〜１．０規定の塩酸と接触させるものである。【選択図】図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
アラビナン、アラビノキシラン又はアラビノガラクタンを含有する天然物を硝酸、リン酸、硫酸又は塩酸と接触させ、７０℃〜１５０℃の温度で酸加水分解を行い、Ｌ−アラビノースを得ることを特徴とするＬ−アラビノースの製造方法。
【請求項２】
硫酸が０．２０規定以上の硫酸であり、塩酸が０．１５規定以上の塩酸である請求項１記載のＬ−アラビノースの製造方法。
【請求項３】
硝酸が０．２規定〜１．０規定の硝酸であり、リン酸が０．２規定〜１．０規定のリン酸であり、硫酸が０．２規定〜１．０規定の硫酸であり、塩酸が０．２規定〜１．０規定の塩酸である請求項１記載のＬ−アビノースの製造方法。
【請求項４】
アラビナン、アラビノキシラン又はアラビノガラクタンを含有する天然物が、オレンジファイバー、みかんジュース粕、アップルファイバー、りんごジュース粕、ビートファイバー、ビートパルプ、落花生粕、米糠、とうもろこし粕又大豆粕である請求項１〜３のいずれかに記載のＬ−アラビノースの製造方法。
【請求項５】
請求項１〜４のいずれかに記載のＬ−アラビノースの製造方法により得られたＬ−アラビノースを含むＬ−アラビノース含有物に、Ｌ−アラビノース資化能のない微生物を作用させてＬ−アラビノース以外の単糖を取り除く工程を含むＬ−アラビノースの製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、副産物として産出される植物由来の繊維分から生理機能的に非常に有用なＬ−アラビノースを効率よく安価に製造する方法に関するものである。
【背景技術】
【０００２】
Ｌ−アラビノースは、蔗糖に近い味質を持ち、難吸収性を示すノンカロリー甘味料である。また、蔗糖等の二糖を加水分解する酵素を阻害することから、蔗糖摂取時の血糖値上昇を抑制するという効果も知られている。このため、血糖値の気になる人のためのカロリー調節食品や、甘味料、糖尿病合併症抑制等の用途に注目されている。さらに、医薬品の合成原料としても有用な糖である。
【０００３】
Ｌ−アラビノースは、高等植物のヘミセルロース中にアラビナン、アラビノキシラン、アラビノガラクタンなどとして存在している。また遊離の状態では微量ではあるが味噌や酒などの発酵食品、インスタントコーヒーなどにも含まれる。
【０００４】
Ｌ−アラビノースの製造方法としては、アラビナン、アラビノキシラン又はアラビノガラクタンを含有する天然物に作用してＬ−アラビノースを遊離する活性を有する酵素を、アラビナン、アラビノキシラン又はアラビノガラクタン含有天然物に直接作用させる方法が開示されている（例えば、特許文献１参照）。ここでの実施例では、ビートパルプに酵素を添加し、撹拌しながら２４時間反応させている。このような酵素反応による製造方法では酵素が非常に高価であることと反応時間が２４時間と長いため製造コストが非常に高くなってしまうという問題があった。
【０００５】
また、Ｌ−アラビノースを含有する植物繊維に硫酸、塩酸、シュウ酸を接触させ酸加水分解を行い、Ｌ−アラビノースを製造する方法が開示されている（例えば、特許文献２参照）。ここでの実施例では、トウモロコシ外皮に硫酸または塩酸またはシュウ酸を加え加水分解を行っているが、原料に対してＬ−アラビノースが最大でも１０％程度しか遊離しておらず、遊離量が低いといった問題があった。また、シュウ酸については硫酸、塩酸に比べ価格が非常に高価であることから酵素反応と同様にコストが非常に高くなってしまうという問題があった。
【特許文献１】特開２００２−９５４９１号公報
【特許文献２】特許第３８３４１５２号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明は、天然物からＬ−アラビノースを安価な製造コストにより、しかも高い遊離量で製造することができる製造方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者らは、上記した課題を解決するために鋭意検討したところ、アラビナン、アラビノキシラン又はアラビノガラクタンを含有する天然物に硝酸やリン酸、硫酸、塩酸などの酸類を特定量作用させ、低コストでＬ−アラビノースを製造する方法を見出し、本発明を完成するに至った。
【０００８】
すなわち、本発明は、アラビナン、アラビノキシラン又はアラビノガラクタンを含有する天然物を硝酸、リン酸、硫酸又は塩酸と接触させ、７０℃〜１５０℃の温度で酸加水分解を行い、Ｌ−アラビノースを得ることを特徴とするＬ−アラビノースの製造方法を要旨とするものであり、好ましくは、０．２０規定以上の硫酸、０．１５規定以上の塩酸と接触させるものであり、さらに好ましくは、０．２規定〜１．０規定の硝酸、０．２規定〜１．０規定のリン酸、０．２規定〜１．０規定の硫酸又は０．２規定〜１．０規定の塩酸と接触させるものである。また、好ましくは前記した製造方法において、アラビナン、アラビノキシラン又はアラビノガラクタンを含有する天然物が、オレンジファイバー、みかんジュース粕、アップルファイバー、りんごジュース粕、ビートファイバー、ビートパルプ、落花生粕、米糠、とうもろこし粕又大豆粕であるものであり、さらに、前記した製造方法により得られたＬ−アラビノース含有物に、Ｌ−アラビノース資化能のない微生物を作用させてＬ−アラビノース以外の単糖を取り除く工程を含むＬ−アラビノースの製造方法である。
【発明の効果】
【０００９】
本発明によれば、従来副産物として廃棄されていた植物由来の繊維分から、純度の高いＬ−アラビノースを効率よく安価に製造することができる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１０】
以下、本発明を詳細に説明する。
【００１１】
本発明に用いるアラビナン、アラビノキシラン、アラビノガラクタン含有天然物には、リンゴ、ビート（甜菜）、大豆、トウモロコシ、コメ、麦などのほか、これらの残さであるアップルファイバー、オレンジファイバー、ビートパルプ、ビートファイバー、トウモロコシ粕、落花生粕、大豆粕、みかんジュース粕等の副産物が挙げられる。廃棄物や副産物などを原料として用いることは、安価に製造する目的に則するだけでなく、産業廃棄物の有効利用という環境保護的側面から見ても、非常に望ましい方法であるといえる。オレンジファイバーやミカンジュース粕は、みかんやオレンジからジュースを搾取した後の残さであり、約３〜１０質量％のＬ−アラビノースをアラビナンなどの形で含んでいる。アップルファイバーは、リンゴからリンゴ汁を搾取した後の残さであり、約４〜７質量％のＬ−アラビノースをアラビナンなどの形で含んでいる。ビートパルプは、ビートからビート糖液を搾取した後の残さであり、約１２〜１８質量％のＬ−アラビノースをアラビナンなどの形で含んでいる。落花生粕は、落花生のからなどであり、約５質量％のＬ−アラビノースをアラビナンなどの形で含んでいる。このほか、米糠やコーンファイバー、大豆粕などもよい原料となる。これらの原料の中でも酸加水分解物中にＤ−キシロース等のＬ−アラビノースとの分離が困難な成分が少なく、Ｌ−アラビノース純度が高いうえにＬ−アラビノース遊離量も高いビートパルプ、アップルファイバー、オレンジファイバー、好ましくはビートパルプが適している。
【００１２】
これらは通常の搾取操作において生じるものであれば、いかなる起源、製法のアラビナン、アラビノキシラン又はアラビノガラクタンを有する天然物であっても使用することができる。
【００１３】
本発明における好ましい酸加水分解条件としては、使用する酸が硝酸、リン酸である場合は濃度が０．０１規定〜２．００規定、好ましくは０．０５規定〜１．００規定であり、硫酸である場合は０．０５規定〜２．００規定、好ましくは０．２０規定〜１．００規定であり、塩酸である場合は０．０５規定〜２．００規定、０．１５規定〜１．００規定である。この中でも使用する酸としては製造設備への負荷が少ない硝酸、リン酸、硫酸、好ましくは硝酸、リン酸が適している。
【００１４】
酸加水分解時の温度は、いずれの酸においても７０℃〜１５０℃、好ましくは９０℃〜１２０℃である。
【００１５】
溶媒の量としては、いずれの酸においても原料に対して３倍〜３０倍量、好ましくは５〜２０倍量である。
【００１６】
酸加水分解反応時間は、使用するアラビナン、アラビノキシラン、アラビノガラクタン含有天然物と酸の濃度および量に依存するが、好ましくは２〜８時間、さらに好ましくは３〜５時間である。反応時間が２時間よりも短い場合はＬ−アラビノースが充分に遊離せず、８時間よりも長い場合は遊離したＬ−アラビノースの分解が起こり、収率の低下につながる。
【００１７】
上記したような酸加水分解反応によって得られた溶液は、常法によりそのまま又は中和剤としての塩基類の必要量を添加混合することで溶液のｐＨを中和することができる。中和剤としては酸と難溶性の塩を形成する物であればろ過等により塩類を除去できることからより好ましいが、中和できる物であれば特に限定されない。
【００１８】
本発明においては、酸加水分解によって得られたＬ−アラビノース含有物からこれに含まれるＬ−アラビノース以外の単糖を取り除き、Ｌ−アラビノースの純度を上げるために、微生物によってＬ−アラビノース以外の単糖を資化することが好ましい。ここで用いられる微生物は、実質的にＬ−アラビノース資化能のない微生物であることが必要であり、ここでいう実質的にＬ−アラビノース資化能のない微生物には、本願発明の目的を達成するために支障のない範囲で、わずかにＬ−アラビノースを資化する微生物も含まれる。実質的にＬ−アラビノース資化能のない微生物の具体例としては、酵母あるいは乳酸菌が挙げられる。酵母ではサッカロミセス（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ）属、クルベロミセス（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ）属、キャンディダ（Ｃａｎｄｉｄａ）属の酵母が本目的を達成するために最適である。
【００１９】
具体的にはサッカロマイセス セレビジエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）、サッカロマイセス カールスバージェンシィス（Ｓａｃｃｈ．ｃａｒｌｓｂｅｒｇｅｎｓｉｓ）、サッカロマイセス アセチ（Ｓａｃｃｈ．ａｃｅｔｉ）、サッカロマイセス アムルケ（Ｓａｃｃｈ．ａｍｕｒｃａｅ）、サッカロマイセス ベイリー（Ｓａｃｃｈ．ｂａｉｌｉｉ）、サッカロマイセス バヤナス（Ｓａｃｃｈ．ｂａｙａｎｕｓ）、サッカロマイセス ビスポーラス（Ｓａｃｃｈ．ｂｉｓｐｏｒｕｓ）、サッカロマイセス カペンシス（Ｓａｃｃｈ．ｃａｐｅｎｓｉｓ）、サッカロマイセス チェバリエリー（Ｓａｃｃｈ．ｃｈｅｖａｌｉｅｒｉ）、サッカロマイセス シドリ（Ｓａｃｃｈ．ｃｉｄｒｉ）、サッカロマイセス コレアヌス（Ｓａｃｃｈ．ｃｏｒｅａｎｕｓ）、サッカロマイセス ダイレンシス（Ｓａｃｃｈ．ｄａｉｒｅｎｓｉｓ）、サッカロマイセスデルブルッキー（Ｓａｃｃｈ．ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ）、サッカロマイセス ディアスタチカス（Ｓａｃｃｈ．ｄｉａｓｔａｔｉｃｕｓ）、サッカロマイセス ユーパジカス（Ｓａｃｃｈ．ｅｕｐａｇｙｃｕｓ）、サッカロマイセス エキシグス（Ｓａｃｃｈ．ｅｘｉｇｕｕｓ）、サッカロマイセス ファーメンタティ（Ｓａｃｃｈ．ｆｅｒｍｅｎｔａｔｉ）、サッカロマイセス フロレンティヌス（Ｓａｃｃｈ．ｆｌｏｒｅｎｔｉｎｕｓ）、サッカロマイセス グロボサス（Ｓａｃｃｈ．ｇｌｏｂｏｓｕｓ）、サッカロマイセス ヘテロジニカス（Ｓａｃｃｈ．ｈｅｔｅｒｏｇｅｎｉｃｕｓ）、サッカロマイセス ヒーニピエンシス（Ｓａｃｃｈ．ｈｉｅｎｉｐｉｅｎｓｉｓ）、サッカロマイセス インコンスピカス（Ｓａｃｃｈ．ｉｎｃｏｎｓｐｉｃｕｕｓ）、サッカロマイセス イヌシタトゥス（Ｓａｃｃｈ．ｉｎｕｓｉｔａｔｕｓ）、サッカロマイセス イタリカス（Ｓａｃｃｈ．ｉｔａｌｉｃｕｓ）、サッカロマイセス クロッケリアヌス（Ｓａｃｃｈ．ｋｌｏｅｃｋｅｒｉａｎｕｓ）、サッカロマイセス クルイベリ（Ｓａｃｃｈ．ｋｌｕｙｖｅｒｉ）、サッカロマイセス ミクロエリプソデス（Ｓａｃｃｈ．ｍｉｃｒｏｅｌｌｉｐｓｏｄｅｓ）、サッカロマイセス モンタヌス（Ｓａｃｃｈ．ｍｏｎｔａｎｕｓ）、サッカロマイセス ムラキー（Ｓａｃｃｈ．ｍｒａｋｉｉ）、サッカロマイセス ノルベンシス（Ｓａｃｃｈ．ｎｏｒｂｅｎｓｉｓ）、サッカロマイセスオレアセウス（Ｓａｃｃｈ．ｏｌｅａｃｅｕｓ）、サッカロマイセス オレアジノシス（Ｓａｃｃｈ．ｏｌｅａｇｉｎｏｓｉｓ）、サッカロマイセス プレトリエンシス（Ｓａｃｃｈ．ｐｒｅｔｏｒｉｅｎｓｉｓ）、サッカロマイセス プロストサードビー（Ｓａｃｃｈ．ｐｒｏｓｔｏｓｅｒｄｏｖｉｉ）、サッカロマイセス ロゼイ（Ｓａｃｃｈ．ｒｏｓｅｉ）、サッカロマイセス ロウキシー（Ｓａｃｃｈ．ｒｏｕｘｉｉ）、サッカロマイセス サイトアヌス（Ｓａｃｃｈ．ｓａｉｔｏａｎｕｓ）、サッカロマイセス テルリス（Ｓａｃｃｈ．ｔｅｌｌｕｒｉｓ）、サッカロマイセス トランスバーレンシス（Ｓａｃｃｈ．ｔｒａｎｓｖａａｌｅｎｓｉｓ）、サッカロマイセス ユニスポラス（Ｓａｃｃｈ．ｕｎｉｓｐｏｒｕｓ）、サッカロマイセスウバルム（Ｓａｃｃｈ．ｕｖａｒｕｍ）、サッカロマイセス ベイフ��ー８Ｓａｃｃｈ．ｖａｆｅｒ）、クルイベロマイセス エスツアリー（Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ ａｅｓｔｕａｒｉｉ）、クルイベロマイセス アフリカヌス（Ｋ．ａｆｒｉｃａｎｕｓ）、クルイベロマイセス ブルガリカス（Ｋ．ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓ）、クルイベロマイセス デルフェンシス（Ｋ．ｄｅｌｐｈｅｎｓｉｓ）、クルイベロマイセス ドブザンスキー（Ｋ．ｄｏｂｚｈａｎｓｋｉｉ）、クルイベロマイセスドロソフィラム（Ｋ．ｄｒｏｓｏｐｈｉｌａｒｕｍ）、クルイベロマイセス ラクティス（Ｋ．ｌａｃｔｉｓ）、クルイベロマイセス ロデリ（Ｋ．ｌｏｄｄｅｒｉ）、クルイベロマイセス ファフィー（Ｋ．ｐｈａｆｆｉｉ）、クルイベロマイセス ファゼオロスポラス（Ｋ．ｐｈａｓｅｏｌｏｓｐｏｒｕｓ）、クルイベロマイセス ポリスポラス（Ｋ．ｐｏｌｙｓｐｏｒｕｓ）、クルイベロマイセス バヌデニー（Ｋ．ｖａｎｕｄｅｎｉｉ）、クルイベロマイセス ベロネ（Ｋ．ｖｅｒｏｎａｅ）、クルイベロマイセス ウィッカーハミー（Ｋ．ｗｉｃｋｅｒｈａｍｉｉ）、クルイベロマイセス ウィケニー（Ｋ．ｗｉｋｅｎｉｉ）、カンジダ サルモンチセンティス（Ｃａｎｄｉｄａ ｓａｌｍａｎｔｉｃｅｎｓｉｓ）、カンジダ ベチー（Ｃ．ｂｅｅｃｈｉｉ）、カンジダ カカオイ（Ｃ．ｃａｃａｏｉ）、カンジダ カプスリジェナ（Ｃ．ｃａｐｓｕｌｉｇｅｎａ）、カンジダ カテヌラタ（Ｃ．ｃａｔｅｎｕｌａｔａ）、カンジダ クローセニー（Ｃ．ｃｌａｕｓｓｅｎｉｉ）、カンジダ ディバーサ（Ｃ．ｄｉｖｅｒｓａ）、カンジダ フレイシュッシー（Ｃ．ｆｒｅｙｓｃｈｕｓｓｉｉ）、カンジダ インターメディア（Ｃ．ｉｎｔｅｒｍｅｄｉａ）、カンジダ ケフィア（Ｃ．ｋｅｆｙｒ）、カンジダ クルゼイ（Ｃ．ｋｒｕｓｅｉ）、カンジダ ランビカ（Ｃ．ｌａｍｂｉｃａ）、カンジダ リシタニエ（Ｃ．ｌｉｓｉｔａｎｉａｅ）、カンジダ ノルベンシス（Ｃ．ｎｏｒｖｅｇｅｎｓｉｓ）、カンジダ マリチマ（Ｃ．ｍａｒｉｔｉｍａ）、カンジダ メリビオシカ（Ｃ．ｍｅｌｉｂｉｏｓｉｃａ）、カンジダ モギー（Ｃ．ｍｏｇｉｉ）、カンジダ オブツサ（Ｃ．ｏｂｔｕｓａ）、カンジダ オレゴネンシス（Ｃ．ｏｒｅｇｏｎｅｎｓｉｓ）、カンジダ パラプシロシス（Ｃ．ｐａｒａｐｓｉｌｏｓｉｓ）、カンジダ プルチェリマ（Ｃ．ｐｕｌｃｈｅｒｒｉｍａ）、カンジダ ラギー（Ｃ．ｒｈａｇｉｉ）、カンジダ サルモニコラ（Ｃ．ｓａｌｍｏｎｉｃｏｌａ）、カンジダ ラバウティー（Ｃ．ｒａｖａｕｔｉｉ）、カンジダ ロイカフィー（Ｃ．ｒｅｕｋａｕｆｆｉｉ）、カンジダ サケ（Ｃ．ｓａｋｅ）、カンジダ サンタマリエ（Ｃ．ｓａｎｔａｍａｒｉａｅ）、カンジダ ソラニ（Ｃ．ｓｏｌａｎｉ）、カンジダ ソルボサ（Ｃ．ｓｏｒｂｏｓａ）、カンジダ スロフィー（Ｃ．ｓｌｏｏｆｆｉｉ）、カンジダ ステラトイデア（Ｃ．ｓｔｅｌｌａｔｏｉｄｅａ）、カンジダ テヌイス（Ｃ．ｔｅｎｕｉｓ）、カンジダ トロピカリス（Ｃ．ｔｒｏｐｉｃａｌｉｓ）、カンジダ ユーティリス（Ｃ．ｕｔｉｌｉｓ）、カンジダ ビスワナチー（Ｃ．ｖｉｓｗａｎａｔｈｉｉ）等を用いることができる。
【００２０】
さらに、シゾサッカロマイセス マリデボランス（Ｓｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｍａｌｉｄｅｖｏｒａｎｓ）、ロデロマイセス エロンジスポラス（Ｌｏｄｄｅｒｏｍｙｃｅｓ ｅｌｏｎｇｉｓｐｏｒｕｓ）、ハンゼニアスポラ オスモフィラ（Ｈａｎｓｅｎｉａｓｐｏｒａ ｏｓｍｏｐｈｉｌａ）、デバロマイセス タマリ（Ｄｅｂａｒｙｏｍｙｃｅｓ ｔａｍａｒｉｉ）、デッケラ インターメディア（Ｄｅｋｋｅｒａ ｉｎｔｅｒｍｅｄｉａ）、エンドマイコプシス プラチポディス（Ｅｎｄｏｍｙｃｏｐｓｉｓ ｐｌａｔｙｐｏｄｉｓ）、ハンゼニアスポラ オスモフィラ（Ｈａｎｓｅｎｉａｓｐｏｒａ ｏｓｍｏｐｈｉｌａ）、リポマイセス コノネンコエ（Ｌｉｐｏｍｙｃｅｓ ｋｏｎｏｎｅｎｋｏａｅ）、ハンゼヌラ アノマラ（Ｈａｎｓｅｎｕｌａ ａｎｏｍａｌａ）、メチニコウィア プルテェリマ（Ｍｅｔｓｃｈｎｉｋｏｗｉａ ｐｕｌｃｈｅｒｒｉｍａ）、ナドソニア フルベンセンス（Ｎａｄｓｏｎｉａ ｆｕｌｖｅｓｃｅｎｓ）、ネマトスポラ コリリ（Ｎｅｍａｔｏｓｐｏｒａ ｃｏｒｙｌｉ）、ピチア ファリノサ（Ｐｉｃｈｉａ ｆａｒｉｎｏｓａ）、サッカロマイコーデス ルドウィギー（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｏｄｅｓ ｌｕｄｗｉｇｉｉ）、サッカロマイコプシス グツラタ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｏｐｓｉｓ ｇｕｔｔｕｌａｔａ）、シュワンニオマイセス オシデンタリス（Ｓｃｈｗａｎｎｉｏｍｙｃｅｓ ｏｃｃｉｄｅｎｔａｌｉｓ）、ウィッカーハミア フルオレセンス（Ｗｉｃｋｅｒｈａｍｉａ ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｓ）、ロイコスポリジウム カプスリジェナム（Ｌｅｕｃｏｓｐｏｒｉｄｉｕｍ ｃａｐｓｕｌｉｇｅｎｕｍ）、ブレッタノマイセス アノマラス（Ｂｒｅｔｔａｎｏｍｙｃｅｓ ａｎｏｍａｌｕｓ）、クロッケラ ジャバニカ（Ｋｌｏｅｃｋｅｒａ ｊａｖａｎｉｃａ）、トルロプシス ホルミー（Ｔｏｒｕｌｏｐｓｉｓ ｈｏｌｍｉｉ）、トリコスポロン ペニシァタム（Ｔｒｉｃｈｏｓｐｏｒｏｎ ｐｅｎｉｃｉｌｌａｔｕｍ）、チゴサッカロマイセス ロウキシー（Ｚｙｇｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ ｒｏｕｘｉｉ）等の酵母を用いることも可能である。これらの中ではパン酵母、ビール酵母、ワイン酵母、サケ酵母、味噌酵母、醤油酵母、トルラ酵母として一般的に食品工業に使用されているサッカロマイセス セレビジエ、サッカロマイコーデス ルドウィギー、チゴサッカロマイセス ロウキシー、カンジダ ユーティリスが好ましく、パン酵母、ビール酵母のサッカロマイセス セレビジエが最も好ましい。
【００２１】
一方、乳酸菌としてはラクトバチルス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ）属、ロイコノストック（Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ）属、ペディオコッカス（Ｐｅｄｉｏｃｏｃｃｕｓ）属等のＬ−アラビノース資化能のない乳酸菌が好適に使用できる。
【００２２】
具体的にはラクトバチルス ファーメンタム（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｆｅｒｍｅｎｔｕｍ）、ラクトバチルス ブレビス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｂｒｅｂｉｓ）、ラクトバチルス ケフィア（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｋｅｆｉｒ）、ラクトバチルス デルブルッキー（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｄｅｌｂｒｕｅｃｋｉｉ）、ラクトバチルス アシドフィルス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａｃｉｄｏｐｈｉｌｕｓ）、ラクトバチルス アミロフィルス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａｍｙｌｏｐｈｉｌｕｓ）、ラクトバチルス アニマリス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａｎｉｍａｌｉｓ）、ラクトバチルス ガッセリ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｇａｓｓｅｒｉ），ロイコノストック メセンテロイデス（Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ ｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ）、ロイコノストック ラクティス（Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ ｌａｃｔｉｓ）、ロイコノストック オエノス（Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ ｏｅｎｏｓ）、ロイコノストック パラメッセンテロイデス（Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ ｐａｒａｍｅｓｅｎｔｅｒｏｉｄｅｓ）、ロイコノストック デキストラニカム（Ｌｅｕｃｏｎｏｓｔｏｃ ｄｅｘｔｒａｎｉｃｕｍ）、ペディオコッカス ペントーサセウス（Ｐｅｄｉｏｃｏｃｃｕｓ ｐｅｎｔｏｓａｃｅｕｓ）、ペディオコッカス アシディラクチシ（Ｐｅｄｉｏｃｏｃｃｕｓ ａｃｉｄｉｌａｃｔｉｃｉ）、ペディオコッカス パービュラス（Ｐｅｄｉｏｃｏｃｃｕｓ ｐａｒｖｕｌｕｓ）、ペディオコッカス イノピナツス（Ｐｅｄｉｏｃｏｃｃｕｓ ｉｎｏｐｉｎａｔｕｓ）、ペディオコッカス ダムノーサス（Ｐｅｄｉｏｃｏｃｃｕｓ ｄａｍｎｏｓｕｓ）、ペディオコッカス デキストリニカス（Ｐｅｄｉｏｃｏｃｃｕｓ ｄｅｘｔｒｉｎｉｃｕｓ）、ペディオコッカス ハロフィルス（Ｐｅｄｉｏｃｏｃｃｕｓ ｈａｌｏｐｈｉｌｕｓ）、ペディオコッカスウリナエキー（Ｐｅｄｉｏｃｏｃｃｕｓ ｕｒｉｎａｅｅｑｕｉ）、ラクトバチルス ブルガリカス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｂｕｌｇａｒｉｃｕｓ）、ラクトバチルス ヘルベチカス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｈｅｌｖｅｔｉｃｕｓ）、ラクトコッカス サーモフィルス（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ）、ラクトコッカス ラクティス（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｌａｃｔｉｓ）、ラクトコッカス クレモリス（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｃｒｅｍｏｒｉｓ）、ラクトコッカス デアセチラクティス（Ｌａｃｔｏｃｏｃｃｕｓ ｄｅａｃｅｔｉｌａｃｔｉｓ）、ロイコノストック クレモリス（Ｌａｕｃｏｎｏｓｔｏｃ ｃｒｅｍｏｒｉｓ）、ラクトバチルス カゼイ（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｃａｓｅｉ）、ラクトバチルス クリスパタス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｃｒｉｓｐａｔｕｓ）、ラクトバチルス アミロボラス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａｍｙｌｏｖｏｒｕｓ）、ラクトバチルス ガリナルム（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｇａｌｌｉｎａｒｕｍ）、ラクトバチルス ジョンソニー（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ｊｏｈｎｓｏｎｉｉ）、ラクトバチルス アミロボラス（Ｌａｃｔｏｂａｃｉｌｌｕｓ ａｍｙｌｏｖｏｒｕｓ）、エンテロコッカス フェシウム（Ｅｎｔｅｒｏｃｏｃｃｕｓ ｆａｅｃｉｕｍ）、ビフィドバクテリウム ビ��ィダム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｂｉｆｉｄｕｍ）、ビフィドバクテリウム ロンガム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｌｏｎｇｕｍ）、ビフィドバクテリウム ブレイブ（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｂｒｅｖｅ）、ビオフィドバクテリウム インファンティス（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｉｎｆａｎｔｉｓ）、ビフィドバクテリウム アドレセンティス（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ａｄｏｌｅｓｃｅｎｔｉｓ）、ペディオコッカス ハロフィルス（Ｐｅｄｉｏｃｏｃｃｕｓ ｈａｌｏｐｈｉｌｕｓ）等が挙げられる。
【００２３】
本発明において用いられる微生物は、本発明の効果を損なわない限りいかなる形態で導入しても良く、微生物を液体培地で増殖させたものを液体培地ごと導入しても良いし、遠心、ろ過等によって培地を除去した後に導入しても良い。さらには、微生物を凍結乾燥して粉末状にしたものを導入しても良いし、凍結乾燥粉末、塊状製品として市販されているものをそのまま使用しても良い。これらの中で好ましいのは、他の成分が多量に混入されないことから、凍結乾燥粉末又は遠心、ろ過等によって培地を除去した微生物を導入する方法であり、それは市販品でも良い。
【００２４】
Ｌ−アラビノース資化能を実質的に有していない上記のような微生物菌体の添加濃度は、酸加水分解により得られたＬ−アラビノース含有物１ｇ当たり1白金耳〜２ｇ（乾燥重量）程度が適当であり、菌体を添加した糖混合物を処理する条件、例えば温度、時間などについては、不純物として混在する糖質が効率よく消失する条件を適用すればよい。一般的な処理温度としては５〜７０℃、好ましくは１０〜６０℃、さらに好ましくは２０〜５０℃が用いられる。一般的な処理時間としては１〜４８時間、好ましくは２〜２４時間、さらに好ましくは３〜１２時間が好適である。
【００２５】
使用する微生物によって、微生物処理を好気的環境で行った方が良いものと、嫌気的環境で行った方が良いものがある。例えば枯草菌、酢酸菌、カビ、酵母等は好気的環境で処理を行うことが好ましく、乳酸菌等は嫌気的環境で処理を行うことが好ましい。好気的処理は、攪拌や振とうを行うのみでも良いし、空気及び／又は酸素を導入しても良い。嫌気的処理は、静置しておくだけでも良いし、密閉反応、窒素、ヘリウム、アルゴン、二酸化炭素等を導入しても良い
本発明において微生物による処理を行うときのｐＨは特に限定されないが、好ましくは２．０〜１２．０、さらに好ましくは２．５〜８．０である。この範囲を外れると微生物の生育に支障をきたし、Ｌ−アラビノース以外の単糖の資化に時間がかかるか、資化できない可能性がある。
【００２６】
また、用いる微生物にとって好ましい環境とするために、Ｌ−アラビノース含有糖混合物を希釈、濃縮、脱塩等の操作により糖濃度や塩濃度の調節を行なうことができる。さらに、必要に応じて撹拌、超音波、振盪などの方法により菌体を均一に分散させても差し支えない。
【００２７】
Ｌ−アラビノース以外の単糖が１種類以上混在するＬ−アラビノース含有物をＬ−アラビノース資化能のない微生物で処理することにより得られるＬ−アラビノース含有量を高めた含有物は、必要に応じて各種の樹脂、膜、クロマトグラフィー、結晶化等の一般的な方法を用いてＬ−アラビノース含有量をさらに高めることが可能である。
【００２８】
本発明において、Ｌ−アラビノースは、以下の方法により求められた値である。すなわち、高速液体クロマトグラフィー法（ＨＰＬＣ法）により以下の条件で測定し、示差屈折検出器を用いて検出した。
ＨＰＬＣ：Ｗａｔｅｒｓ（株）製Ａｌｌｉａｎｃｅ
カラム：ＡｍｉｎｅｘＨＰＸ８７Ｈ（７．８×３００ｍｍ、ＢＩＯＲＡＤ製）
移動相：０．０５Ｎ硫酸
流速：０．６ｍｌ／分
温度：６０℃
以下の実施例に記載の分析についても同じ分析条件で行った。
【実施例】
【００２９】
以下、本発明を実施例により具体的に説明するが、本発明はこれに限定されるものではない。
【００３０】
実施例１
ビートパルプ１０ｇに０．０１〜２．００規定の硝酸溶液１００ｍｌを加え、密栓して９５℃で３時間酸加水分解させた。得られた酸加水分解物は冷却後遠心分離を行い、上清を高速液体カラムクロマトグラフィーで測定してＬ−アラビノース遊離量および各種単糖類の存在比率（％）を確認した。Ｌ−アラビノース遊離量、各種単糖類の存在比率（％）を表１、図１に示した。
【００３１】
【表１】
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実施例２
ビートパルプ１０ｇに０．０１〜２．００規定のリン酸溶液１００ｍｌを加え、密栓して９５℃で３時間酸加水分解させた。得られた酸加水分解物は冷却後遠心分離を行い、上清を高速液体カラムクロマトグラフィーで測定してＬ−アラビノース遊離量および各種単糖類の存在比率（％）を確認した。Ｌ−アラビノース遊離量、各種単糖類の存在比率（％）を表２、図２に示した。
【００３２】
【表２】
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実施例３
ビートパルプ１０ｇに０．０５〜２．００規定の硫酸溶液１００ｍｌを加え、密栓して９５℃で３時間酸加水分解させた。得られた酸加水分解物は冷却後遠心分離を行い、上清を高速液体カラムクロマトグラフィーで測定してＬ−アラビノース遊離量および各種単糖類の存在比率（％）を確認した。Ｌ−アラビノース遊離量、各種単糖類の存在比率（％）を表３、図３に示した。
【００３３】
【表３】
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実施例４
ビートパルプ１０ｇに０．０５〜 ２．００規定の塩酸液１００ｍｌを加え、密栓して９５℃で３時間酸加水分解させた。得られた酸加水分解物は冷却後遠心分離を行い、上清を高速液体カラムクロマトグラフィーで測定してＬ−アラビノース遊離量および各種単糖類の存在比率（％）を確認した。Ｌ−アラビノース遊離量、各種単糖類の存在比率（％）を表４、図４に示した。
【００３４】
【表４】
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実施例５
ビートパルプ、みかん外皮乾燥物、アップルファイバー（ニチロ製）、とうもろこし外皮乾燥物、大豆粕それぞれ１０ｇに０．２規定の硝酸液１００ｍｌを加え、密栓して９５℃で３時間酸加水分解させた。得られた酸加水分解物は冷却後遠心分離を行い、上清を高速液体カラムクロマトグラフィーで測定してＬ−アラビノース遊離量および各種単糖類の存在比率（％）を確認した。Ｌ−アラビノース遊離量、各種単糖類の存在比率（％）を表５、図５に示した。
【００３５】
【表５】
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実施例６
ビートパルプ、みかん外皮乾燥物、アップルファイバー（ニチロ製）、とうもろこし外皮乾燥物、大豆粕それぞれ１０ｇに０．２規定の硫酸液１００ｍｌを加え、密栓して９５℃で３時間酸加水分解させた。得られた酸加水分解物は冷却後遠心分離を行い、上清を高速液体カラムクロマトグラフィーで測定してＬ−アラビノース遊離量および各種単糖類の存在比率（％）を確認した。Ｌ−アラビノース遊離量、各種単糖類の存在比率（％）を表６、図６に示した。
【００３６】
【表６】
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比較例１
ビートパルプ１０ｇに０．５０規定のクエン酸液１００ｍｌを加え、密栓して９５℃で３ 時間酸加水分解させた。得られた酸加水分解物は冷却後遠心分離を行い、上清を高速液体カラムクロマトグラフィーで測定してＬ−アラビノース遊離量および各種単糖類の存在比率（％）を確認した。Ｌ−アラビノース遊離量、各種単糖類の存在比率（％）を表７に示した。
【００３７】
比較例２
ビートパルプ１０ｇに０．５０規定のリンゴ酸液１００ｍｌを加え、密栓して９５℃で３ 時間酸加水分解させた。得られた酸加水分解物は冷却後遠心分離を行い、上清を高速液体カラムクロマトグラフィーで測定してＬ−アラビノース遊離量および各種単糖類の存在比率（％）を確認した。Ｌ−アラビノース遊離量、各種単糖類の存在比率（％）を表７に示した。
【００３８】
比較例３
ビートパルプ１０ｇに０．５０規定の酢酸液１００ｍｌを加え、密栓して９５℃で３ 時間酸加水分解させた。得られた酸加水分解物は冷却後遠心分離を行い、上清を高速液体カラムクロマトグラフィーで測定してＬ−アラビノース遊離量および各種単糖類の存在比率（％）を確認した。Ｌ−アラビノース遊離量、各種単糖類の存在比率（％）を表７に示した。
【００３９】
比較例４
ビートパルプ１０ｇに５０℃のイオン交換水１００ｍｌ、スミチームＰＸ（新日本化学工業株式会社製ペクチナーゼ、力価６０００ユニット／ｍＬ、アラビナーゼ力価１００ユニット／ｍＬ）７５μｌを添加し、攪拌下（３６回／ｍｉｎ）５０℃で２４時間反応させた。得られた酵素処理物は遠心分離を行い、上清を高速液体カラムクロマトグラフィーで測定してＬ−アラビノース遊離量および各種単糖類の存在比率（％）を確認した。Ｌ−アラビノース遊離量、各種単糖類の存在比率（％）を表７に示した。
【００４０】
比較例５
ビートパルプ１０ｇに５０℃のイオン交換水１００ｍｌ、スミチームＡＲＳ（新日本化学工業株式会社製アラビナーゼ、力価４００ユニット／ｍＬ）５０μｌを添加し、攪拌下（３６回／ｍｉｎ）５０℃で２４時間反応させた。得られた酵素処理物は遠心分離を行い、上清を高速液体カラムクロマトグラフィーで測定してＬ−アラビノース遊離量および各種単糖類の存在比率（％）を確認した。Ｌ−アラビノース遊離量、各種単糖類の存在比率（％）を表７に示した。
【００４１】
【表７】
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実施例７
サッカロミセス セレビシエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）ＡＴＣＣ７７５４をＹＭ培地にて２８℃、１２時間培養し、遠心分離にて湿菌体６．２ｇを集菌した。実施例１で得た０．２０規定硝酸加水分解物を４Ｎ水酸化ナトリウムでｐＨ４．５に調製後にこの湿菌体０．６ｇを添加し、３５℃で１２時間振とうさせながら処理を行なった。得られた処理物は３分間煮沸し、酵母を失活させた後に遠心分離を行い、上清を高速液体カラムクロマトグラフィーで測定して糖類の含有量を確認した。各種単糖類の存在比率（％）を表８に示した。
【００４２】
実施例８
サッカロミセス セレビシエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）ＡＴＣＣ７７５４をＹＭ培地にて２８℃、１２時間培養し、遠心分離にて湿菌体６．２ｇを集菌した。実施例２で得た０．５０規定リン酸加水分解物を４Ｎ水酸化ナトリウムでｐＨ４．５に調製後にこの湿菌体０．６ｇを添加し、３５℃で１２時間振とうさせながら処理を行なった。得られた処理物は３分間煮沸し、酵母を失活させた後に遠心分離を行い、上清を高速液体カラムクロマトグラフィーで測定して糖類の含有量を確認した。各種単糖類の存在比率（％）を表８に示した。
【００４３】
実施例９
サッカロミセス セレビシエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）ＡＴＣＣ７７５４をＹＭ培地にて２８℃、１２時間培養し、遠心分離にて湿菌体６．２ｇを集菌した。実施例３で得た０．２０規定硫酸加水分解物を４Ｎ水酸化ナトリウムでｐＨ４．５に調製後にこの湿菌体０．６ｇを添加し、３５℃で１２時間振とうさせながら処理を行なった。得られた処理物は３分間煮沸し、酵母を失活させた後に遠心分離を行い、上清を高速液体カラムクロマトグラフィーで測定して糖類の含有量を確認した。各種単糖類の存在比率（％）を表８に示した。
【００４４】
実施例１０
サッカロミセス セレビシエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）ＡＴＣＣ７７５４をＹＭ培地にて２８℃、１２時間培養し、遠心分離にて湿菌体６．２ｇを集菌した。実施例４で得た０．５０規定塩酸加水分解物を４Ｎ水酸化ナトリウムでｐＨ４．５に調製後にこの湿菌体０．６ｇを添加し、３５℃で１２時間振とうさせながら処理を行なった。得られた処理物は３分間煮沸し、酵母を失活させた後に遠心分離を行い、上清を高速液体カラムクロマトグラフィーで測定して糖類の含有量を確認した。各種単糖類の存在比率（％）を表８に示した。
【００４５】
比較例６
サッカロミセス セレビシエ（Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ）ＡＴＣＣ７７５４をＹＭ培地にて２８℃、１２時間培養し、遠心分離にて湿菌体６．２ｇを集菌した。比較例１で得たスミチームＰＸ処理物を４Ｎ水酸化ナトリウムでｐＨ４．５に調製後にこの湿菌体０．６ｇを添加し、３５℃で１２時間振とうさせながら処理を行なった。得られた処理物は３分間煮沸し、酵母を失活させた後に遠心分離を行い、上清を高速液体カラムクロマトグラフィーで測定して糖類の含有量を確認した。各種単糖類の存在比率（％）を表８に示した。
【００４６】
【表８】
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【図面の簡単な説明】
【００４７】
【図１】本発明の実施例における硝酸加水分解時のＬ−アラビノースの単糖類組成比と遊離量を示す図である。
【図２】本発明の実施例におけるリン酸加水分解時のＬ−アラビノースの単糖類組成比と遊離量を示す図である。
【図３】本発明の実施例における硫酸加水分解時のＬ−アラビノースの単糖類組成比と遊離量を示す図である。
【図４】本発明の実施例における塩酸加水分解時のＬ−アラビノースの単糖類組成比と遊離量を示す図である。
【図５】本発明の実施例における硝酸加水分解時のＬ−アラビノースの単糖類組成比と遊離量を示す図である。
【図６】本発明の実施例における硫酸加水分解時のＬ−アラビノースの単糖類組成比と遊離量を示す図である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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