(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
アトピー性皮膚炎の局所病態を非侵襲的に評価する方法であって、
（ａ）非侵襲的な手法によって対象から採取された皮膚由来の角層細胞中に発現されたＴＡＲＣを特異的に蛍光標識する工程；
（ｂ）光学顕微鏡を用いる観察によって、観察視野中に存在するすべての角層細胞の画像を取得する工程；
（ｃ）前記すべての角層細胞の画像をデジタル画像解析することによって、前記すべての角層細胞の面積を測定する工程；
（ｄ）光学顕微鏡を用いる蛍光観察によって、前記工程（ｃ）における観察視野と同一の観察視野中に存在する蛍光標識されたＴＡＲＣの蛍光画像を取得する工程；
（ｅ）前記蛍光標識されたＴＡＲＣの蛍光画像をデジタル画像解析することによって、前記観察視野の蛍光強度を測定する工程；
（ｆ）前記工程（ｅ）において測定された蛍光強度を前記工程（ｃ）で測定されたすべての角層細胞の面積で除して、ＴＡＲＣ値を算出する工程
を含む方法。
【請求項２】
前記ＴＡＲＣを特異的に蛍光標識する工程（ａ）が、
（ａ−１）非侵襲的な手法によって対象から採取された皮膚由来の角層細胞中に発現されたＴＡＲＣに特異的に結合する抗ＴＡＲＣ抗体と接触させる工程；および
（ａ−２）前記抗ＴＡＲＣ抗体に特異的に結合する部位を有する蛍光発色団で前記ＴＡＲＣを特異的に蛍光標識する工程
を含む請求項１に記載の方法。
【請求項３】
さらに、
（ｇ）予め作成したＴＡＲＣ値とアトピー性皮膚炎の病態の重篤度との相関を参照して、工程（ｆ）において得られたＴＡＲＣ測定値に基づき、アトピー性皮膚炎の局所病態の重篤度を決定する工程
を含む請求項１に記載の方法。
【請求項４】
工程（ｅ）において、前記蛍光標識されたＴＡＲＣの蛍光画像の輝度をピクセルごとに黒から白の順序の０〜２５５グレーレベルで表示し；各グレーレベルを示すピクセル数を計数し；グレーレベルｉ以上のピクセル数のみ引用するために、グレーレベルに閾値ｉを設定し；グレーレベルｘ（ｉ≦ｘ≦２５５）を示すピクセル数をＮ（ｘ）と表したとき、蛍光強度Ｆを式（１）：
【数１】
0005065237.tif 000008
を用いて算出し；次いで、工程（ｃ）で測定されたすべての角層細胞の面積を全角層細胞面積Ｓと定義し、ＴＡＲＣ値を式（２）：
【数２】
0005065237.tif 000009
を用いて算出する、請求項１に記載の方法。
【請求項５】
工程（ａ）において、皮膚由来の角層細胞を採取するための非侵襲的な手法が、テープストリッピング法である請求項１に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、アトピー性皮膚炎の局所病態を非侵襲的に評価する方法に関する。より詳しくは、本発明は、対象の任意の局所から採取された角層細胞中に存在するＴＡＲＣ （Thymus and activation-regulated chemokine) を蛍光標識し、蛍光法によってＴＡＲＣ発現量を定量し、ＴＡＲＣ発現量からアトピー性皮膚炎の局所病態を評価する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
アトピー性皮膚炎の治療は、主に外用ステロイド剤の投与により行われる。ステロイド剤には大きな副作用があるため、アトピー性皮膚炎の重篤度に応じて投与量等を厳密に制御しなければならない。
長期にわたるアトピー性皮膚炎の治療の間、症状は増悪軽快を繰り返し、治癒後は保湿剤により維持するが、再発することもあるため、頻繁に重篤度を診断する必要がある。
さらに、アトピー性皮膚炎は局所的に発症するため局所ごとの診断が必要である。
【０００３】
日本皮膚科学会および厚生労働省により治療ガイドラインが発表されたことにより、アトピー性皮膚炎の診断は容易になったとはいえ、日本皮膚科学会の治療ガイドラインが皮膚科専門医に対するものであり、厚生労働省のガイドラインが専門医に限らず臨床医一般に対するものであることから、必ずしも、アトピー性皮膚炎の症状とその重篤度に対する評価が客観的であるとはいえない。
【０００４】
また、アトピー性皮膚炎用の治療薬や保湿剤、またはアトピー性皮膚炎患者が安心して使用できる化粧品等の開発において、専門医からの診断結果を参照しなければならないため、開発に時間がかかる。
【０００５】
したがって、専門医による診断に頼らずに、簡便にアトピー性皮膚炎の重篤度を数値化する試みが行われてきた。
これまで、ＩｇＥ、ＬＤＨ、好酸球などがアトピー性皮膚炎の病態の指標とされてきたが、近年、ＴＡＲＣのアトピー性皮膚炎への関連性が指摘された。
ＴＡＲＣとは、特定の白血球を遊走させるケモカイン群（白血球走化性因子）の一つで、７１個のアミノ酸より構成されるタンパク質であり、ケモカイン（Ｃ−Ｃモチーフ）リガンド１７（ＣＣＬ１７）としても知られている。
このＴＡＲＣがＴｈ２細胞を病変局所に誘引してアレルギー反応を亢進させることで、アトピー性皮膚炎の病態形成に関与し、症状を増悪させると考えられている。
ＴＡＲＣの産生細胞としては、血管内皮細胞、樹状細胞、リンパ球、線維芽細胞、表皮角化細胞などがあり、特に、アトピー性皮膚炎では、主に表皮角化細胞からＴＡＲＣが産生されることが知られている。
【０００６】
非特許文献１には、ＥＬＩＳＡ法を用いてアトピー性皮膚炎の患者から採取した角質層から抽出したＴＡＲＣを測定する方法が開示されている。しかしながら、この方法では、アトピー性皮膚炎患者の未発症部位からＴＡＲＣを検出することはできなかった。
【０００７】
非特許文献２には、血清中のＩｇＥ、ＬＤＨ、末梢血好酸球数と比較して、血清ＴＡＲＣ／ＣＣＬ１７値がアトピー性皮膚炎の重篤度と最も高い相関性を有することが示されている。しかしながら、この方法は血液採取が必要であり、侵襲的な方法のため、頻繁に測定することできない。また、全身的な測定であり、局所的な病態を観察するには適していない。
【０００８】
特許文献１には、アトピー性皮膚炎を特異的かつ非侵襲撃的に診断するために、テープストリッピング法を用いて採取した角層試料に含まれる神経成長因子などの存在量を測定する方法が開示されている。しかしながら、この方法もＥＬＩＳＡ法を用いていること、および採取した試料について細胞破砕を行って分画していることから、測定結果にバラツキがあることが予想される。
【０００９】
上記したように、これまでのアトピー性皮膚炎の診断は、血清中のＴＡＲＣの測定を必要とするため侵襲性であり、かつ、全身症状の指標となるが局所病態の指標とはならなかった。
【００１０】
客観的要素および主観的要素の各項目につき評価したポイントを総合してアトピー性皮膚炎の重篤度を判定するＳＣＯＲＡＤ (Scoring of Atopic Dermatitis) という評価法が確立された。ＳＣＯＲＡＤによれば、客観的要素として、皮疹範囲０〜１００％（数値Ａ）、重症度：紅斑、浮腫／丘疹、痂皮／滲出、苔癬化、掻破痕、皮膚の乾燥についてそれぞれ、３．重症、２．中等、１．軽症、０．なしで評価した合計ポイント（数値Ｂ）ならびに、主観的要素として、かゆみおよび不眠を０〜１０で評価した合計ポイント（数値Ｃ）に基づき評価する。この方法は、主観的要素も含まれるため、アトピー性皮膚炎の重篤度を簡便かつ正確に評価することはできなかった。
【００１１】
したがって、アトピー性皮膚炎の局所病態の重篤度を決定するための簡便かつ正確な非侵襲的評価方法が求められていた。
【００１２】
【特許文献１】特許第３８６３４６２号明細書
【非特許文献１】E. Morita et al., Journal of Dermatological Science, (2004) 34, 237-240
【非特許文献２】玉置ら、日皮会誌：１１６（１），２７−３９，２００６（平１８）
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【００１３】
本発明の目的は、アトピー性皮膚炎の局所病態の重篤度を決定するための簡便かつ正確な非侵襲的評価方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【００１４】
本発明は、アトピー性皮膚炎の局所病態を非侵襲的に評価する方法であって、
（ａ）非侵襲的な手法によって対象から採取された皮膚由来の角層細胞中に発現されたＴＡＲＣを特異的に蛍光標識する工程；
（ｂ）光学顕微鏡を用いる観察によって、観察視野中に存在するすべての角層細胞の画像を取得する工程；
（ｃ）前記すべての角層細胞の画像をデジタル画像解析することによって、前記すべての角層細胞の面積を測定する工程；
（ｄ）光学顕微鏡を用いる蛍光観察によって、前記工程（ｃ）における観察視野と同一の観察視野中に存在する蛍光標識されたＴＡＲＣの蛍光画像を取得する工程；
（ｅ）前記蛍光標識されたＴＡＲＣの蛍光画像をデジタル画像解析することによって、前記観察視野の蛍光強度を測定する工程；
（ｆ）前記工程（ｅ）において測定された蛍光強度を前記工程（ｃ）で測定されたすべての角層細胞の面積で除して、ＴＡＲＣ値を算出する工程
を含む方法を提供する。
【００１５】
本発明による方法の具体例において、前記ＴＡＲＣを特異的に蛍光標識する工程（ａ）が、
（ａ−１）非侵襲的な手法によって対象から採取された皮膚由来の角層細胞中に発現されたＴＡＲＣに特異的に結合する抗ＴＡＲＣ抗体と接触させる工程；および
（ａ−２）前記抗ＴＡＲＣ抗体に特異的に結合する部位を有する蛍光発色団で前記ＴＡＲＣを特異的に蛍光標識する工程
を含む。
【００１６】
本発明による方法の具体例において、さらに、
（ｇ）予め作成したＴＡＲＣ値とアトピー性皮膚炎の病態の重篤度との相関を参照して、工程（ｆ）において得られたＴＡＲＣ測定値に基づき、アトピー性皮膚炎の局所病態の重篤度を決定する工程
を含む。
【００１７】
本発明による方法によれば、工程（ｅ）において、前記蛍光標識されたＴＡＲＣの蛍光画像の輝度をピクセルごとに黒から白の順序の０〜２５５グレーレベルで表示し；各グレーレベルを示すピクセル数を計数し；グレーレベルｉ以上のピクセル数のみ引用するために、グレーレベルに閾値ｉを設定し；グレーレベルｘ（ｉ≦ｘ≦２５５）を示すピクセル数をＮ（ｘ）と表したとき、蛍光強度Ｆを式（１）：
【００１８】
【数１】
0005065237.tif 000002
を用いて算出し；次いで、工程（ｃ）で測定されたすべての角層細胞の面積を全角層細胞面積Ｓと定義し、ＴＡＲＣ値を式（２）：
【００１９】
【数２】
0005065237.tif 000003
を用いて算出する。
【００２０】
本発明による方法の工程（ａ）において、皮膚由来の角層細胞を採取するための非侵襲的な手法が、テープストリッピング法であることが好ましい。
【発明の効果】
【００２１】
本発明の方法によれば、非侵襲的な手法により採取した皮膚由来の角層細胞中に含まれるＴＡＲＣを特異的に蛍光標識し、角層細胞の顕微鏡観察画像の画像解析によってＴＡＲＣ発現量を数値化することができる。
すなわち、本発明の方法は、非侵襲的な手法で試料を採取するので、対象に負担がかからず、かつ、画像解析を用いるので、信頼性の高いＴＡＲＣ値を得ることができる。
さらに、得られたＴＡＲＣ値からアトピー性皮膚炎の局所的病態の重篤度を評価することができる。特に、アトピー性皮膚炎が未発症の場合でも発症の可能性を発見することができる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００２２】
本発明によれば、重篤度の異なるアトピー性皮膚炎患者および健常者の皮膚から非侵襲的な手法で採取された角層細胞を蛍光免疫染色法によりＴＡＲＣ発現量を検出する。
ＴＡＲＣ発現量は、角層細胞中に発現されたＴＡＲＣを特異的に蛍光標識し、蛍光標識ＴＡＲＣ由来の蛍光を蛍光顕微鏡観察により観察し、観察画像をデジタル画像解析ソフトウェアを用いて画像解析することにより測定する。
【００２３】
実験１：ＴＡＲＣ発現量の評価
［本発明による蛍光免疫染色法］
本発明の蛍光染色法による測定手順を以下に示す。
第１の実施形態：
（１）角層細胞の採取
粘着テープを用いて対象の皮膚からテープストリッピング法により角層細胞を採取する。対象の皮膚から角層細胞を採取できれば、市販のいずれの粘着テープも用いることができる。
【００２４】
（２）角層細胞のスライドガラス上への固定
マイクロテストチューブにＳＤＳ−Ｃ１２ＤＭＡＯ混合液を１ｍｌ入れる。角層細胞を採取した粘着テープを適当な長さ（例えば、５ｃｍ）に裁断し、ＳＤＳ−Ｃ１２ＤＭＡＯ溶液に浸漬する。恒温槽中、５０℃にて一晩静置する。
【００２５】
その後、マイクロテストチューブから粘着テープを取り除く。８０００ｇ（９１００ｒｐｍ）にて、１０分間遠心分離し、上清を取り除き、マイクロテストチューブの底部に沈殿したペレットを回収する。回収したペレットをＳＤＳ−Ｃ１２ＤＭＡＯ混合液１ｍｌに再懸濁し、遠心分離して上清を取り除いてペレットを得る工程を２回繰り返し、最後に、リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ、ｐＨ７．４）１ｍｌに再懸濁し、遠心分離して上清を取り除き、角層細胞のペレットを回収する。
【００２６】
回収した角層細胞のペレットにＰＢＳを添加して撹拌し、角層細胞溶液を調製する。ＡＰＳ（アミノシラン）コートしたスライドガラスの中央部に角層細胞溶液を１０μｌ滴下する。スライドガラスにドライヤーで冷風を１５分間あてて乾燥する。
【００２７】
次に、スライドガラスを−２０℃に冷却したアセトンに１０分間浸漬して、角層細胞をスライドガラス上に固定する。スライドガラスを冷却アセトンから取り出し、ドライヤーで冷風を２０分間あてて乾燥する。
【００２８】
（３）ＴＡＲＣの特異的蛍光標識
４℃のＰＢＳにスライドガラスを５分間浸漬する。新たなＰＢＳに交換し、再度スライドガラスを５分間浸漬する。
抗体の非特異的反応を防ぐため、３％牛血清アルブミン−ＰＢＳ溶液を３０分間反応させる。
【００２９】
直前に調製した１％牛血清アルブミン−ＰＢＳ溶液で、抗ＴＡＲＣ抗体を１００倍希釈する。
湿室を作り、水気を切ったスライドガラスを並べる。抗ＴＡＲＣ抗体溶液を１５０μｌスライドガラス上に滴下して、細胞固定部位をすべて覆う。湿室に蓋をし、抗体反応を完了させるため、４℃にて一晩静置する。
【００３０】
４℃のＰＢＳにスライドガラスを５分間浸漬する。新たなＰＢＳに交換し、再度スライドガラスを５分間浸漬することを２回繰り返す。
直前に調製した１％牛血清アルブミン−ＰＢＳ溶液で、ＦＩＴＣ標識抗マウスＩｇＧを１００倍希釈する。
【００３１】
遮光した湿室を作り、水気を切ったスライドガラスを並べる。ＦＩＴＣ標識抗マウスＩｇＧ溶液を１５０μｌスライドガラス上に滴下して、細胞固定部位をすべて覆う。湿室に蓋をし、抗体反応を完了させるため、室温にて１時間静置する。
【００３２】
（４）顕微鏡観察用試料の最終調製
４℃のＰＢＳにスライドガラスを５分間浸漬する。新たなＰＢＳに交換し、再度スライドガラスを５分間浸漬することを２回繰り返す。
スライドガラスに蛍光染色用封入剤を１滴滴下し、カバーガラス（２２×３２ｍｍ）で覆い、カバーガラスの縁をマニキュアで固定する。マニキュアが乾燥したら、すぐに遮光保存する。
【００３３】
上記のごとく調製した角層細胞固定スライドガラスにつき、光学顕微鏡による可視光観察および蛍光観察を行う。
【００３４】
第２の実施形態：
第２の実施形態は、テープストリッピング法により角層細胞を採取し、角層細胞中に発現されたＴＡＲＣを特異的に蛍光標識し、ＴＡＲＣ発現量を蛍光観察により検出する点で、第１の実施形態とほぼ同様の手法であるが、角層細胞を採取した粘着テープから直接スライドガラスに角層細胞を固定する点で相違する。
以下、第１の実施形態と相違する点のみ説明する。
【００３５】
角層細胞を採取した粘着テープを直接スライドガラスに貼付する。スライドガラスをｎ−ヘキサンに一晩浸漬して、テープの粘着層を溶解させる。
テープの支持フィルムを除去すると、角層細胞のみがスライドガラスに残存する。この状態で、自然乾燥させる。
【００３６】
その後、４℃のＰＢＳに５分間浸漬する洗浄工程を２回繰り返したあとは、第１の実施形態と同様に、抗ＴＡＲＣ抗体で反応させ、ＦＩＴＣ標識することによって、角層細胞固定スライドガラスを調製する。
【００３７】
上記のごとく調製した角層細胞固定スライドガラスにつき、光学顕微鏡による可視光観察および蛍光観察を行う。
【００３８】
［光学顕微鏡観察］
健常者およびアトピー性皮膚炎患者（軽微８人、軽症２人、中等症４人）の頬部から採取した角層細胞の顕微鏡観察画像を図１に示す。
アトピー性皮膚炎の重篤度は、日本皮膚科学会による治療ガイドラインに準じて、皮膚科専門医が評価した。今回の評価においては、軽微、軽症、中等症に分類した。また、健常者とは、アトピー性皮膚炎の発症の経験がなく、評価時点で自覚症状も発症もしていない者をいう。
【００３９】
本発明においては、対象の任意の局部から皮膚を採取することができるが、症状が小さい部位でのアトピー性皮膚炎の病態を数値化できるか否かを確認する目的のため、ここでは、対象に共通して症状が軽い部位である頬部から角層細胞を採取した。
【００４０】
左カラムは、角層細胞の明視野画像を示し、中央カラムは、ＦＩＴＣ標識ＴＡＲＣ由来の蛍光発光波長領域の光を通過させるバンドパスフィルターを用いて取得した抗ＴＡＲＣ抗体陽性細胞の蛍光画像である。右カラムは、同一視野で取得した角層細胞の明視野画像と陽性細胞の蛍光画像を重複させた合成画像である。また、上段は健常者由来の角層細胞の観察画像を示し、中段はアトピー性皮膚炎患者由来の角層細胞の観察画像を示す。さらに、下段は中段の観察画像の２倍拡大図を示す。
【００４１】
デジタル画像解析ソフトを用いて、角層細胞の観察画像を解析して、観察視野に含まれるすべての角層細胞の占める面積をピクセル数で計数した。この数値を「全角層細胞面積Ｓ」と定義する。
角層細胞の観察には、染色などの処理を行うことなく細胞の全景を観察できる手法を用い、明視野観察、暗視野観察、位相差観察、微分干渉観察等の可視光観察が含まれる。
【００４２】
デジタル画像解析ソフトを用いて、角層細胞の観察画像と同一の視野で観察された蛍光画像の輝度をピクセルごとに黒から白の順序の０〜２５５グレーレベルで表示する。
次に、各グレーレベル（０〜２５５）を示すピクセル数を計数する。このとき、グレーレベルに閾値ｉを設定してグレーレベルｉ以上のピクセル数のみ引用することができる。
グレーレベルごとに、グレーレベルにそのグレーレベルを示すピクセル数を乗じた積を求め、これら積の総和を「蛍光強度Ｆ」と定義する。より具体的には、グレーレベルｘ（ｉ≦ｘ≦２５５）を示すピクセル数をＮ（ｘ）と表したとき、本発明における蛍光強度Ｆは、式（１）で算出される。
【００４３】
【数３】
0005065237.tif 000004
【００４４】
本発明において、上記定義された蛍光強度Ｆを全角層細胞面積Ｓで除して得られた値を「ＴＡＲＣ値」と定義し（式２）、この値をＴＡＲＣの発現量を示すパラメータとして用いる。すなわち、本発明において、すべての角層細胞が均一に蛍光発光したと仮定した場合の平均輝度でＴＡＲＣ発現量を表現する。
【００４５】
【数４】
0005065237.tif 000005
【００４６】
本発明において、デジタル画像解析ソフトとしてＰｈｏｔｏｓｈｏｐＲ（アドビ社製）を用いたが、上記の全角層細胞面積Ｓおよび蛍光強度Ｆを求めることができるプログラムを備えたソフトウェアであれば、本発明に用いることができる。
【００４７】
［ＥＬＩＳＡ法による測定］
同一対象につき、従来のＥＬＩＳＡ法を用いて角層細胞に含まれるＴＡＲＣ濃度を測定した。ＥＬＩＳＡ法による測定手順を以下に示す。
粘着テープを用いて対象の頬部からテープストリッピング法により角層細胞を採取する。採取した角層細胞をＰＢＳ（ｐＨ７．４）に浸漬する。氷上で細胞破砕処理をし、遠心分離によって上清を回収する。ＥＬＩＳＡ法により上清中のＴＡＲＣ濃度を測定する。
【００４８】
本発明の蛍光免疫法および従来のＥＬＩＳＡ法の双方によりＴＡＲＣ発現量を評価した結果を表１に示す。
【００４９】
【表１】
0005065237.tif 000006
【００５０】
いずれの対象についても、ＴＡＲＣ発現量はＥＬＩＳＡ法の検出限界（７ｐｇ／ｍＬ）未満であり、測定不能であった。検出限界は検量線から得られた数値である。なお、一般的なＥＬＩＳＡ検出キットでは１００〜２００ｐｇ／ｍｌを検出限界としている。
一方、本発明の蛍光免疫測定法では、軽微のアトピー性皮膚炎患者でもＴＡＲＣ値を測定することが可能であった。
【００５１】
本発明で用いた試薬を以下に示す。
抗ＴＡＲＣ抗体：Mouse anti-human CCL17-TARC monoclonal antibody（R & D systems, Catalog Number MAB364）
ＦＩＴＣ標識抗マウスＩｇＧ：Anti Mouse IgG(H+L)（Polycsiences, Inc., Catalog Number 23806-2）
ＳＤＳ−Ｃ１２ＤＭＡＯ混液：２０ｍＭのドデシル硫酸ナトリウムおよび８０ｍＭのＮ,Ｎ−ジメチルドデシルアミンオキシドの混合液
ＰＢＳ：水１Ｌ中、８ｇのＮａＣｌ、２．９ｇのＮａ２ＨＰＯ４・１２Ｈ２Ｏ、０．２ｇのＫＣｌおよび０．２ｇのＫＨ２ＰＯ４を溶解した溶液、ｐＨ７．４
【００５２】
実験２：ＴＡＲＣ値によるアトピー性皮膚炎の病態評価
実験１によって、本発明の方法により得られたＴＡＲＣ値がアトピー性皮膚炎の病態評価に使用できる可能性が示されたので、ＴＡＲＣ値とアトピー性皮膚炎の重篤度との関連性を調べた。
改めて、健常者（１０人）およびアトピー性皮膚炎患者（軽微・軽症２８人、中等症６人）の頬部から角層細胞を採取して、ＴＡＲＣ値を算出した。
得られた結果を図２に示す。
【００５３】
図２から分かるように、健常者、軽微・軽症のアトピー性皮膚炎患者および中等症のアトピー性皮膚炎患者の間で、ＴＡＲＣ値に高い相関性が見られた。各重篤度の対象から得られたＴＡＲＣ値の差は、スチューデントの検定により、有意であることが確認された。
【００５４】
実験３：ＴＡＲＣ値によるアトピー性皮膚炎の局所病態評価
本発明の評価方法により、アトピー性皮膚炎の局所病態を評価することができることを示すために、同一対象において、発症の程度が異なる部位から採取した角層細胞につきＴＡＲＣ値を測定した。
日本皮膚科学会による治療ガイドラインに準じて、皮膚科専門医が重症であると評価したアトピー性患者５人につき、ＳＣＯＲＡＤの客観的要素である重症度スコアに準じて、角層細胞の採取部位ごとに重症度スコアを求めた。この実験における重症度スコアとして、紅斑、浮腫／丘疹、痂皮／滲出、苔癬化、掻破痕、皮膚の乾燥およびその他についてそれぞれ、３．重症、２．中等、１．軽症、０．なしで評価した合計ポイントを用いた。
重症度スコアおよびＴＡＲＣ値の結果を表２に示す。
【００５５】
【表２】
0005065237.tif 000007
【００５６】
表２の結果から、本発明の評価法により、アトピー性皮膚炎の局所的病態の重篤度を簡便かつ正確に評価することができた。
【図面の簡単な説明】
【００５７】
【図１】健常者およびアトピー性皮膚炎患者の頬部から採取した角層細胞の顕微鏡観察画像。
【図２】本発明の方法によって得られたＴＡＲＣ値とアトピー性皮膚炎の病態の重篤度との相関性を示すグラフ。
【図２】
0005065237.tif 000010
【図１】
0005065237.tif 000011