(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
ａ）外血管から輸精管を分離するために、輸精管と輸精管上の外血管との間に存在する膜に溶媒を注入することによって実験動物の輸精管上の外血管を除去する工程；および
ｂ）前記血管が除去された輸精管から精液を採取する工程
を含む、精液採取法。
【請求項２】
前記工程ａ）が、前記輸精管の周囲の精巣動静脈を除去することを特徴とする、請求項１に記載の精液採取法。
【請求項３】
前記工程ａ）が、前記精巣動静脈から前記輸精管を分離するために、前記輸精管と前記精巣動静脈との間に存在する膜に溶媒を注入することによって前記精巣動静脈を除去することを特徴とする、請求項２に記載の精液採取法。
【請求項４】
前記溶媒が生理食塩水である、請求項３に記載の精液採取法。
【請求項５】
ａ）血液を流す（ｆｌｕｓｈ）ために、外血管に溶媒を注入することによって実験動物の輸精管上の外血管から血液を除去する工程；および
ｂ）前記血液が除去された輸精管から精液を採取する工程
を含む、精液採取法。
【請求項６】
前記工程ａ）が、前記輸精管の周囲の輸精管動静脈から血液を除去することを特徴とする、請求項５に記載の精液採取法。
【請求項７】
前記工程ａ）が、血液を流す（ｆｌｕｓｈ）ために、精巣動静脈に溶媒を注入することを特徴とする、請求項６に記載の精液採取法。
【請求項８】
前記溶媒が生理食塩水である、請求項７に記載の精液採取法。
【請求項９】
ａ）外血管から精巣上体を分離するために、精巣上体及び精巣上体上の外血管との間に存在する膜に溶媒を注入することによって実験動物の精巣上体上の外血管を除去する工程；および
ｂ）前記血管が除去された精巣上体から精液を採取する工程；
を含む、精液採取法。
【請求項１０】
前記工程ｂ）が、前記精巣上体を切断して精液を採取することを含む、請求項９に記載の精液採取法。
【請求項１１】
前記工程ａ）およびｂ）が、温度３０〜４５℃を維持することを特徴とする、請求項１〜１０のいずれか一項に記載の精液採取法。
【請求項１２】
前記実験動物が、ウサギ、マウス、ラット、イヌ、およびモルモットからなる群から選択されるいずれか１つである、請求項１〜１０のいずれか一項に記載の精液採取法。
【請求項１３】
請求項１〜１０のいずれか一項に記載の方法により採取された精液を雌に注入することを含む、人工授精法。
【請求項１４】
前記採取された精液が、希釈され、その後雌に注入されることを特徴とする、請求項１３に記載の人工授精法。
【請求項１５】
請求項１１に記載の方法により採取された精液を雌に注入することを含む、人工授精法。
【請求項１６】
前記採取された精液が、希釈され、その後雌に注入される、請求項１５に記載の人工授精法。
【請求項１７】
請求項１２に記載の方法により採取された精液を雌に注入することを含む、人工授精法。
【請求項１８】
前記採取された精液が、希釈され、その後雌に注入される、請求項１７に記載の人工授精法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、実験動物の精巣上体または精巣から精液を採取する方法およびその人工授精法に関する。
【背景技術】
【０００２】
ウサギは実験動物として用いられる重要な動物種であり、薬理学、免疫学、血液学、病理学、内分泌学等の種々の分野において研究または認可を目的として主に用いられている。生殖毒性の点から、ウサギは薬物の催奇形性を発見するのに有用な動物種として用いられている。雌のウサギでは、自然排卵は起こらないが、雄もしくはホルモンによる交配刺激または電気刺激により排卵が誘導されるので、交配時期および交配動物数を必要に応じて調整することができる。更に、雌ウサギの胎児の大きさは、ラットまたはマウスの胎児の大きさよりも比較的大きいので、雌ウサギには、胎児の形態検出時に、より正確な観察が可能であるという利点がある（非特許文献１）。これらの種々の利点のため、米国食品医薬品局（ＦＤＡ）、経済協力開発機構（ＯＥＣＤ）、および国立安全研究院（Ｎａｔｉｏｎａｌ  Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ  ｏｆ  Ｓａｆｅｔｙ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ）の毒性試験の指針も、非齧歯類を用いた催奇形性の評価にはウサギを用いねばならないと規定している。
【０００３】
ウサギを用いた催奇形性試験には、短期間に多くの妊娠動物が必要である。上記の目的のために現在２つの方法が用いられている。すなわち、雌雄のウサギを直接交配させる自然交配法と、雄ウサギの自然の乗駕行為により外部に射精される精液を人工膣で採取し、採取した精液を雌ウサギに注入する人工授精法である。
【０００４】
しかし、自然交配法には、多くの時間および手間が必要であり、多くの雄動物が必要であるという欠点がある。人工膣法を用いたウサギの人工授精法には、雄ウサギの状態によって精液の採取に必要な時間がとても不規則である；精液の射精および採取の速度が非常に遅い；および尿等の不純物により失敗の確率が高い、という問題点がある。更に、人工授精法は、乗駕行為を誘導するために非常に多くの不要な雄ウサギを必要とするため、施設の整備および飼育空間の利用の点から非常に非効率的である。
【０００５】
一方、精液の採取は動物の人工授精で最初に必要なことである。射精中枢を人為的に刺激して射精を起こさせて精液採取のために、動物種に応じて、例えばマッサージ法、電気刺激法、水圧法、人工膣法等の種々の方法が用いられる。
【０００６】
マッサージ法は、シチメンチョウまたは雄鳥（ｃｏｃｋ）に主に用いられ、雄鳥の場合、頭を逆さにし、恥骨と竜骨の間をマッサージした後、退化した交尾器官の基部を押すことで、漏出した精液を採取する。
【０００７】
電気刺激法は、ブタ、ウシ、ヒツジ、イヌ等に用いられ、仙骨部に電気刺激を与えて射精中枢を興奮させることで精液を採取する。
【０００８】
水圧法は、主にブタに用いられ、ブタの性欲を刺激し、擬牝台に乗駕させ、陰茎が出た時に手で圧力を加えることで、ブタに射精させる。
【０００９】
人工膣法は、主にウシ、ウマ、ヒツジ、およびウサギに用いられ、ブタに用いられることもあり、動物の生殖器と同様の温度および圧力条件を有する人工的に製造された膣を用いて人工膣内で射精させる。
【００１０】
一方、輸精管および精巣上体内では小血管が複雑に絡み合っているので、上記輸精管および精巣上体中に直接カテーテルを挿入して精液を採取すると精液と血液が混ざってしまうため純粋な精液を採取できないという問題がある。
【００１１】
そこで、本発明者らは、従来の実験動物の人工授精法の問題を改善する新規の人工授精法および精液採取法を研究することで、妊娠率および生産性の点で優れ；時間効率が良く；動物の大量飼育維持コストによる大きな経済的損失を防ぐことで経済的および産業的な点において優れた、実験動物の精巣上体または精巣から精液を採取する方法およびそれを用いた人工授精法に関する本発明を完成した。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【００１２】
【非特許文献１】Gibson, JP, Staples, RE and Newberne, JW (1966): Use of rabbit in teratogenecity studies. Toxicol and Appl Pharmacol, 9:398-408
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１３】
本発明の目的は、妊娠率および生産性の点で優れ；時間効率が良く；動物の大量飼育維持コストによる大きな経済的損失を防ぐことで経済的および産業的な点において優れた、実験動物の精巣上体または精巣から精液を採取する方法およびそれを用いた人工授精法を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【００１４】
上記の目的を達成するため、本発明は、実験動物の輸精管上の外血管を除去し、上記血管が除去された輸精管から精液を採取する方法を提供する。
【００１５】
更に、本発明は、実験動物の輸精管の外側に存在する精巣動静脈を除去し、精巣動静脈を除去した輸精管から精液を採取する方法を提供する。
【００１６】
更に、本発明は、輸精管と精巣動静脈との間に存在する膜に溶媒を注入し、その後、精巣動静脈が除去された輸精管から精液を採取する方法を提供する。前記溶媒は生理食塩水が好ましい。
【００１７】
更に、本発明は、実験動物の輸精管の外側の血管の血液を除去し、その後、上記血液が除去された輸精管から精液を採取する方法を提供する。
【００１８】
更に、本発明は、実験動物の輸精管の外側に存在する精巣動静脈の血液を除去し、その後、上記血液が除去された精巣動静脈から精液を採取する方法を提供する。
【００１９】
更に、本発明は、実験動物の輸精管の外側に存在する精巣動静脈に溶媒を注入し、血液を流して（ｆｌｕｓｈｉｎｇ）除去し、その後、血液が除去された精巣動静脈から精液を採取する方法を提供する。前記溶媒は生理食塩水が好ましい。
【００２０】
更に、本発明は、実験動物の腹部大動脈または腹部大静脈を切断して腹部大動脈または腹部大静脈から血液を除去し、その後、輸精管から精液を採取する方法を提供する。
【００２１】
更に、本発明は、実験動物の精巣上体上の外血管を除去し、その後、上記血管が除去された精巣上体から精液を採取する方法を提供する。
【００２２】
更に、本発明は、実験動物の精巣上体上の外血管を除去し、その後、上記血管を除去した精巣上体を切断して精液を採取する方法を提供する。
【００２３】
更に、本発明に係る精液採取法では、３０〜４５℃の温度を維持しながら血液または血管を除去して精液を採取することが好ましい。上記血液を除去する時は、温度を３０〜４５℃に維持することが好ましい。温度は輸精管および精巣上体中に存在する精子の活性に大きな影響を与えるので、注入針、生理食塩水等の血液除去に用いられる全ての要素の温度を、ウサギの体温と同様の３７〜４０℃の範囲内の温度に加熱した。
【００２４】
更に、本発明に係る精液採取法は、ウサギ、マウス、ラット、イヌ、またはモルモットの精液採取法として好ましい。
【００２５】
更に、本発明は、実験動物の輸精管上の外血管を除去し、その後、前記の血管が除去された輸精管から精液を採取し、採取した精液を雌に注入する、人工授精法を提供する。より具体的には、本発明は、輸精管と精巣動静脈との間に存在する膜中に溶媒を注入し、精巣動静脈から輸精管を分離して精巣動静脈を除去し、その後、上記の精巣動静脈が除去された輸精管から精液を採取し、採取した精液を雌に注入する、人工授精法を提供する。前記溶媒は生理食塩水が好ましい。
【００２６】
更に、本発明は、実験動物の輸精管上の外血管から血液を除去し、その後、上記血液が除去された輸精管から精液を採取し、採取した精液を雌に注入する、人工授精法を提供する。上記血管は、精巣動静脈であることが好ましい。より具体的には、本発明は、実験動物の輸精管の外側に存在する精巣動静脈中に溶媒を注入し、その後、血液が除去された輸精管から精液を採取し、採取した精液を雌に注入する、人工授精法を提供する。上記溶媒は生理食塩水が好ましい。更に、採取した精液を希釈して雌に注入することが好ましい。
【００２７】
更に、本発明は、実験動物の腹部大動脈または腹部大静脈を切断して腹部大動脈または腹部大静脈から血液を除去し、その後、輸精管から精液を採取し、採取した精液を雌に注入する、人工授精法を提供する。
【００２８】
更に、本発明は、実験動物の精巣上体上の外血管を除去し、その後、上記血管が除去された精巣上体から精液を採取し、採取した精液を雌に注入する、人工授精法を提供する。上記血管は、精巣動静脈であることが好ましい。より具体的には、本発明は、実験動物の精巣上体上の外血管を除去し、その後、血管が除去された精巣上体を切断し、精液を採取し、採取した精液を雌に注入する、人工授精法を提供する。上記溶媒は生理食塩水であることが好ましい。更に、採取した精液を希釈して雌動物に注入することが好ましい。
【００２９】
更に、本発明の人工授精法では、３０〜４５℃の温度を維持しながら血液または血管を除去して精液を採取することが好ましい。
【００３０】
更に、本発明の人工授精法は、ウサギ、マウス、ラット、イヌ、またはモルモットの人工授精法として好ましい。
【発明の効果】
【００３１】
本発明は、妊娠率および生産性の点で優れ；時間効率が良く；動物の大量飼育維持コストによる大きな経済的損失を防ぐことで経済的および産業的な点において優れた、実験動物の精巣上体または精巣から精液を直接採取する方法およびそれを用いた人工授精法を提供することができる。
【図面の簡単な説明】
【００３２】
【図１】（Ａ）は外側の血管が除去される前の輸精管を示し、（Ｂ）は外側の血管が除去された輸精管を示す。
【図２】（Ａ）は外側の血管の血液が除去される前の精巣上体および輸精管を示し、（Ｂ）は外側の血管の血液が除去された精巣上体および輸精管を示す。
【発明を実施するための形態】
【００３３】
本発明の理解のために以下に好ましい実施例を記載する。しかし、以下の実施例は本発明を理解し易くするためだけに記載するものであり、本発明の範囲は以下の実施例に限定されない。
【００３４】
実施例１：ウサギ輸精管からの精液の直接採取
【００３５】
（１）温度を３０〜４５℃に維持しながら、雄ウサギの輸精管外壁と輸精管動静脈との間に存在する膜に注入針を刺し、その後、生理食塩水を注入して輸精管動静脈から輸精管を分離することで、血管を除去した。上記血管が除去された輸精管にカテーテルを挿入し、生理食塩水を灌流することで精液を採取した。
【００３６】
（２）別の方法で、温度を３０〜４５℃に維持しながら、雄ウサギの輸精管の外壁中に位置する輸精管動静脈中に注入針を刺し、その後、生理食塩水を灌流することで血液を流した（ｆｌｕｓｈｅｄ）。上記血液が除去された輸精管にカテーテルを挿入し、生理食塩水を灌流することで精液を採取した。
【００３７】
（３）別の方法で、温度を３０〜４５℃に維持しながら、雄ウサギの腹部大動脈または腹部大静脈を切断し、その後、血液を除去した。上記血液が除去された輸精管にカテーテルを挿入し、生理食塩水を灌流することで精液を採取した。
【００３８】
実施例２：ウサギ精巣上体からの精液の直接採取
【００３９】
温度を３０〜４５℃に維持しながら、雄ウサギの精巣上体の血管を除去し、血管が除去された上記精巣上体を切断することで、精液を採取した。
【００４０】
上記実施例１または実施例２の方法により、各固体につき２０ｍｌの精液を採取した。上記方法により、精子と生理食塩水が混合した高純度の強い精子を得ることができる。
【００４１】
比較例１：人工授精法によるウサギの精液採取
【００４２】
内側のゴム筒と外側のプラスチック筒との間に水を満たすことで人工膣を完全に組み立てた。その後、人工膣内の水温が４５〜５０℃になるまで、５０℃の恒温槽中に人工膣全体を十分に浮かせた。
【００４３】
２頭の雄ウサギを上部の開いた飼育箱に入れた。交尾行動が始まった時に、恒温槽に浮いている人工膣を取り出し、その下部に精液採取管を取り付け、交尾行動を示している雄ウサギの後肢の間に置き、精液を採取した。このようにして、０．５ｍｌの精液を採取した。これは上記実施例１の容量の１／４０であった。
【００４４】
実験例１：精液採取法による精液特性の比較
【００４５】
精子運動性、精子数（濃度）、およびその他の形態的異常を比較するために、精子分析装置（米国のハミルトン−スローン社（Ｈａｍｉｌｔｏｎ−ｔｈｒｏｎ）製）を用いて実施例１または実施例２および比較例１の精子を比較および分析した。結果を表１に示す。
【００４６】
【表１】
0005087718.tif 000002
【００４７】
表１に示されるように、実施例および比較例は８０％以上の活発な精子運動性を示した。精子の形態については、実施例および比較例で正常な精子の数に大きな差は見られなかった。実施例では比較例より異常（％）が少なかった。
【００４８】
実験例２：ウサギの精巣上体または精巣から採取した精液を用いた人工授精法
【００４９】
注入管を用いて、実施例１または実施例２および比較例１の精液を、生理食塩水中に希釈してまたは希釈せずに、３．５ｋｇ以上の雌ウサギ（２０頭）の左と右の子宮にそれぞれ注入した。人工授精終了後、過剰排卵を誘導するため、ｈＣＧ（１０ｉｕ／ＫＧ／Ｂ．Ｗ．ウサギ）をウサギの耳静脈に注入した。人工授精日を妊娠０日目とし、妊娠から２８日後に妊娠ウサギの帝王切開を行い、受精率および着床率（数）、生存胎児、胎盤および胎児の重量、雌雄比、外観の異常、骨格および内臓の異常等を観察した。結果を表２に示す。
【００５０】
【表２】
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【００５１】
妊娠から２８日後に帝王切開を行った結果、最終的に２０頭の雌ウサギのうち２０母体（１００％）が妊娠（初期の中絶を含む。）していることが確認された。着床率は平均８４．９％であった。母体１頭当たりの生存胎児の平均数に関しては、初期に中絶した個体以外の母体１８頭から胎児１４６頭（８．１頭／母体１頭当たりの生存胎児の平均数）が確認された。胎児の雌雄比に関しては、雌と雄の比は１：０．９１と算出された。胎盤および胎児の重量を測定した結果、胎盤の平均重量は５．１３ｇであり、胎児の平均重量は３６．８４ｇであった。胎盤の外見に異常がないか観察した結果、特別な異常は観察されなかった。
【００５２】
更に、人工膣法による人工授精の場合、雄の精液採取から人工授精の終了まで平均４〜５時間以上かかった。一方、本発明の場合、３０分以内に全ての作業が完了し、動物の状態および条件に関係なく、人工授精の時間および期間を任意に調整することができた。
【産業上の利用可能性】
【００５３】
上記で概説したように、実験動物の精巣上体または精巣から直接精液を採取する方法およびそれを用いた人工授精法は、妊娠率および生産性の点で優れ、時間効率が良く、動物の大量飼育維持コストによる大きな経済的損失を防ぐことで経済的および産業的な点において優れている。
【図１】
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【図２】
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