(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
(1)被検体生物のゲノムを鋳型として調製した2本鎖ＤＮＡを温度勾配ゲル電気泳動（ＴＧＧＥ）または変性剤濃度勾配ゲル電気泳動（ＤＧＧＥ）に付し、
(2)得られた前記2本鎖ＤＮＡの電気泳動パターンから、前記2本鎖ＤＮＡの特徴点を抽出し、
(3)抽出された特徴点に基づいて被検体生物の同定を行う方法であって、
(4)前記2本鎖ＤＮＡのゲル電気泳動を、前記2本鎖ＤＮＡに添加した、配列表に示す配列番号2の配列を有するDNA及び配列番号3の配列を有するDNAの組み合わせ、または配列表に示す配列番号4の配列を有するDNA及び配列番号5の配列を有するDNAの組み合わせである2種類の内部標準ＤＮＡとともに行い、
(5)前記2種類の内部標準ＤＮＡの電気泳動パターンから各内部標準ＤＮＡの融解開始点を抽出し、これらの融解開始点を基準点として、前記特徴点を規格化し、かつ
(6)規格化した特徴点に基づいて被検体生物の同定を行う
ことを特徴とする前記方法。
【請求項２】
(1)前記2本鎖ＤＮＡの調製は、ランダムＰＣＲにより行われ、１種又は２種以上の2本鎖ＤＮＡが調製される、請求項1に記載の方法。
【請求項３】
ランダムＰＣＲが、熱変性、アニーリング及び鎖伸長を繰り返し行うＰＣＲであって、アニーリングを２５℃〜３５℃で１〜２分で行い、かつ鎖伸長を４２℃〜４７℃で１〜２分で行う請求項２に記載の方法。
【請求項４】
前記2本鎖ＤＮＡの特徴点が、各2本鎖ＤＮＡの融解開始点である請求項１〜３のいずれか１項に記載の方法。
【請求項５】
(5)で得られた規格化した特徴点群からＰａＳＳ及び/又はゲノム準距離を求め、得られたＰａＳＳ及び/又はゲノム準距離に基づいて、被検体生物の同定を行う請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。
【請求項６】
生物の同定が、生物の種同定又は類縁性同定である請求項１〜５のいずれか１項に記載の方法。
【請求項７】
被検体生物が微生物である請求項１〜６のいずれか１項に記載の方法。
【請求項８】
配列表に示す配列番号2の配列を有するDNA及び配列番号3の配列を有するDNAの組み合わせ、または配列表に示す配列番号4の配列を有するDNA及び配列番号5の配列を有するDNAの組み合わせを含む、請求項1に記載の被検体生物の同定方法に用いるための内部標準用ＤＮＡ組成物。
【請求項９】
配列表に示す配列番号4の配列を有するDNA及び配列番号5の配列を有するDNAを含む、請求項1に記載の被検体生物同定方法に用いるための内部標準用ＤＮＡ組成物の製造方法であって、
ｐＢＲ３２２ＤＮＡを鋳型ＤＮＡとし、配列番号4の配列を有するDNA増幅用のプライマーセット及び配列番号5の配列を有するDNA増幅用のプライマーセットを用いてPCR反応を行うことを特徴とする方法。
【請求項１０】
配列番号4の配列を有するDNA増幅用のプライマーセットが、配列番号12及び配列番号13の配列を有するDNAからなり、配列番号5の配列を有するDNA増幅用のプライマーセットが、配列番号14及び配列番号15の配列を有するDNAからなる請求項９に記載の方法。
【請求項１１】
ＰＣＲサイクル条件として、
a前熱変性（95℃,2分）、
b熱変性（94℃,15秒）、
cアニーリング（55℃,30秒）、
d鎖伸長（72℃,30秒）、
eポスト鎖伸長（72℃,30秒）
を用い、かつb〜dを25回繰り返す請求項９または１０に記載の方法。
【請求項１２】
配列表に示す配列番号2の配列を有するDNAおよび配列番号3の配列を有するDNAを含む、請求項1に記載の被検体生物同定方法に用いるための内部標準ＤＮＡ組成物の製造方法であって、fd（M13）ファージＤＮＡを鋳型ＤＮＡとし、配列番号2の配列を有するDNA増幅用のプライマーセット及び配列番号3の配列を有するDNA増幅用プライマーセットを用いてPCR反応を行うことを特徴とする方法。
【請求項１３】
配列番号2の配列を有するDNA増幅用のプライマーセットが、配列番号8及び配列番号9の配列を有するDNAからなり、配列番号3の配列を有するDNA増幅用のプライマーセットが、配列番号10及び配列番号11の配列を有するDNAからなる請求項１２に記載の方法。
【請求項１４】
PCRサイクル条件として、
a前熱変性（94℃，5分）、
b熱変性（94℃，30秒）
cアニーリング（64℃〜65℃，30秒）
d鎖伸長（74℃，30秒）
eポスト鎖伸長（74℃，5分）
を用い、かつb〜dを30回繰り返す請求項１２または１３に記載の方法。
【請求項１５】
請求項８に記載の内部標準用ＤＮＡ組成物を含む、請求項1に記載の被検体生物同定方法に用いるための被検体生物同定用キット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、被検体生物の同定方法、この方法に使用する内部標準用ＤＮＡ組成物及びその製造方法に関する。特に本発明は、ランダムＰＣＲと電気泳動を組み合わせた遺伝子型による被検体生物の同定方法において、2種類の内部標準ＤＮＡを用い、被検体生物の同定精度を高めた方法である。
【背景技術】
【０００２】
従来、微生物を含む生物の同定は、基本的に表現型を用いて行われて来た。しかし、表現型による同定は、生物をより精密に区別することを目的とする同定には不向きであった。特に、種の数が膨大である微生物においては、表現型による同定（特定）には、現実問題として限界があった。一方、日常生活において微生物が係わることは多い。例えば、O157、結核、MRSA、コレラなどの微生物が原因となる疾患は多く、有効な治療法の確立や、感染経路の把握のためには、微生物の精密な同定技術が必要である。また、農産物の生産性や品質に土壌細菌が係わり、あるいは、ヒトの健康に腸内細菌叢の良否が大きく影響していると言われている。しかるに、農産物の生産性や品質と土壌細菌の種類や量、組合せとの関係、さらにはヒトの健康と腸内細菌叢との関係について、精密な検討が行われていないのが現状である。これは、これまでのように表現型による微生物の同定では、精密な同定、判別が不可能であることに起因している。そこで、表現型に代わるものとして遺伝子型による微生物の同定が提案されている。【０００３】
例えば、各微生物のゲノム(全体)同士を比較することにより微生物の種の同定、判別をすることは、現在のシーケンス技術レベルでは十分可能である。しかし、相当の手間と時間を掛ける必要が有り、簡便な方法ではない。従って、ゲノム(全体)同士の比較による微生物の種の同定、判別は、現実には広汎に行い得る方法ではない。また、より簡便な方法として、ゲノムの一部の配列比較をする方法がある。しかし、例えば、16S rRNAの配列比較では、種の同定、判別には十分な情報が得られない。【０００４】
そこで本発明者らは、ある程度簡便で現実に実行可能である、遺伝子型による微生物等の生物について、種や類似性等を同定する方法を先に発明し、特許出願した（特開2001-299398号公報、特許文献１）。この方法では、ランダムＰＣＲと電気泳動を組み合わせ、生物のゲノムの配列を比較することなく、遺伝子型により生物の同定を可能にした。【０００５】
上記方法では、温度勾配ゲル電気泳動法や変性剤濃度勾配ゲル電気泳動法等の二次元的ゲル電気泳動が用いられる。二次元的ゲル電気泳動は、核酸やタンパク質解析においてその分解能の高さゆえに有効である。しかしその分解能の高さの一方で、温度勾配装置の温度精度制御限界に起因する泳動毎の極わずかなゆらぎや、人の制御が不可能な極微の環境条件変化による泳動毎ゆらぎがある。これらのゆらぎに対して、既知の変性温度や移動度をもつシーケンスの核酸やタンパク質を共泳動させる内部標準試料を用いることで、補正・規格化が可能となる。上記特許文献１に記載の方法においても、内部標準ＤＮＡを用い、データを規格化することを提案している。
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
特許文献１に記載の方法においては、１種類の内部標準ＤＮＡを用い、この内部標準ＤＮＡの２つの特徴点を用いて、データの規格化を行っている。しかるに、その後の検討において、２つの特徴点の内、一方が不安定であり、その結果、規格化精度に問題があることが判明した。【０００７】
そこで本発明の目的は、上記遺伝子型による生物の同定方法であって、より規格化精度を高め、その結果、同定精度も高められた方法を提供することにある。【０００８】
さらに本発明の別の目的は、上記規格化精度を高めるための手段を提供することにある。【０００９】
本発明は以下のとおりである。
［１］(1)被検体生物のゲノムを鋳型として調製した2本鎖ＤＮＡを温度勾配ゲル電気泳動（ＴＧＧＥ）または変性剤濃度勾配ゲル電気泳動（ＤＧＧＥ）に付し、
(2)得られた前記2本鎖ＤＮＡの電気泳動パターンから、前記2本鎖ＤＮＡの特徴点を抽出し、
(3)抽出された特徴点に基づいて被検体生物の同定を行う方法であって、
(4)前記2本鎖ＤＮＡのゲル電気泳動を、前記2本鎖ＤＮＡに添加した、配列表に示す配列番号2の配列を有するDNA及び配列番号3の配列を有するDNAの組み合わせ、または配列表に示す配列番号4の配列を有するDNA及び配列番号5の配列を有するDNAの組み合わせである2種類の内部標準ＤＮＡとともに行い、
(5)前記2種類の内部標準ＤＮＡの電気泳動パターンから各内部標準ＤＮＡの融解開始点を抽出し、これらの融解開始点を基準点として、前記特徴点を規格化し、かつ
(6)規格化した特徴点に基づいて被検体生物の同定を行う
ことを特徴とする前記方法。
［２］(1)前記2本鎖ＤＮＡの調製は、ランダムＰＣＲにより行われ、１種又は２種以上の2本鎖ＤＮＡが調製される、［1］に記載の方法。
［３］ランダムＰＣＲが、熱変性、アニーリング及び鎖伸長を繰り返し行うＰＣＲであって、アニーリングを２５℃〜３５℃で１〜２分で行い、かつ鎖伸長を４２℃〜４７℃で１〜２分で行う［２］に記載の方法。
［４］前記2本鎖ＤＮＡの特徴点が、各2本鎖ＤＮＡの融解開始点である［１］〜［３］のいずれかに記載の方法。
［５］(5)で得られた規格化した特徴点群からＰａＳＳ及び/又はゲノム準距離を求め、得られたＰａＳＳ及び/又はゲノム準距離に基づいて、被検体生物の同定を行う［１］〜［４］のいずれか１項に記載の方法。
［６］生物の同定が、生物の種同定又は類縁性同定である［１］〜［５］のいずれかに記載の方法。
［７］被検体生物が微生物である［１］〜［６］のいずれかに記載の方法。
［８］配列表に示す配列番号2の配列を有するDNA及び配列番号3の配列を有するDNAの組み合わせ、または配列表に示す配列番号4の配列を有するDNA及び配列番号5の配列を有するDNAの組み合わせを含む、[1]に記載の被検体生物の同定方法に用いるための内部標準用ＤＮＡ組成物。
［９］配列表に示す配列番号4の配列を有するDNA及び配列番号5の配列を有するDNAを含む、[1]に記載の被検体生物同定方法に用いるための内部標準用ＤＮＡ組成物の製造方法であって、
ｐＢＲ３２２ＤＮＡを鋳型ＤＮＡとし、配列番号4の配列を有するDNA増幅用のプライマーセット及び配列番号5の配列を有するDNA増幅用のプライマーセットを用いてPCR反応を行うことを特徴とする方法。
［１０］配列番号4の配列を有するDNA増幅用のプライマーセットが、配列番号12及び配列番号13の配列を有するDNAからなり、配列番号5の配列を有するDNA増幅用のプライマーセットが、配列番号14及び配列番号15からなる［９］に記載の方法。
［１１］ＰＣＲサイクル条件として、
a前熱変性（95℃,2分）、
b熱変性（94℃,15秒）、
cアニーリング（55℃,30秒）、
d鎖伸長（72℃,30秒）、
eポスト鎖伸長（72℃,30秒）
を用い、かつb〜dを25回繰り返す［９］または[１０]に記載の方法。
［１２］配列表に示す配列番号2の配列を有するDNAおよび配列番号3の配列を有するDNAを含む、[1]に記載の被検体生物同定方法に用いるための内部標準ＤＮＡ組成物の製造方法であって、fd（M13）ファージＤＮＡを鋳型ＤＮＡとし、配列番号2の配列を有するDNA増幅用のプライマーセット及び配列番号3の配列を有するDNA増幅用プライマーセットを用いてPCR反応を行うことを特徴とする方法。
［１３］配列番号2の配列を有するDNA増幅用のプライマーセットが、配列番号8及び配列番号9の配列を有するDNAからなり、配列番号3の配列を有するDNA増幅用のプライマーセットが、配列番号10及び配列番号11の配列を有するDNAからなる［１２］に記載の方法。
［１４］PCRサイクル条件として、
a前熱変性（94℃，5分）、
b熱変性（94℃，30秒）
cアニーリング（64℃〜65℃，30秒）
d鎖伸長（74℃，30秒）
eポスト鎖伸長（74℃，5分）
を用い、かつb〜dを30回繰り返す［１２］または［１３］に記載の方法。
［１５］
［８］に記載の内部標準用ＤＮＡ組成物を含む、[1]に記載の被検体生物同定方法に用いるための被検体生物同定用キット。
【発明の効果】
【００１０】
ＧＰ等の二次元ゲル電気泳動で使用する従来の標準ＤＮＡは、１種類のＰＣＲ産物のみで、その第１特徴点と第２特徴点を使って規格化を行っていた。しかし、その後の検討において、第２特徴点の位置が泳動毎で不安定になることが判明し、その結果、ＧＰにおける規格化精度にも悪影響があることが分かった。それに対して、本発明では、安定な第１特徴点を２つ、すなわち２種類の標準ＤＮＡを用いることで規格化精度向上を図るために、標準ＤＮＡセットのシーケンス（物）とそれの調製法（方法）を改良・考案し、シーケンスの決定とともに、簡便な調製法を確立した。本発明で確立した調製法により作製した標準ＤＮＡセットを用いることで、ＧＰにおける規格化精度が従来の１種類の標準ＤＮＡを用いたときに比べ格段に向上した。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１１】
［被検体生物の同定方法］
本発明は、(1) 被検体生物のゲノムを鋳型として調製した2本鎖ＤＮＡを温度勾配ゲル電気泳動（ＴＧＧＥ）または変性剤濃度勾配ゲル電気泳動（ＤＧＧＥ）に付し、(2)得られた前記2本鎖ＤＮＡの電気泳動パターンから、前記2本鎖ＤＮＡの特徴点を抽出し、(3)抽出された特徴点に基づいて被検体生物の同定を行う方法である。上記(1)、(2)及び(3)の工程を含む被検体生物の同定方法は、前述の特許文献１に記載されている。従って、上記(1)、(2)及び(3)の工程については、特許文献1の記載に従って、実施することができる。【００１２】
具体的には、(1)における2本鎖ＤＮＡの調製は、ランダムＰＣＲにより行われ、１種又は２種以上の2本鎖ＤＮＡが調製される。ランダムＰＣＲは、熱変性、アニーリング及び鎖伸長を繰り返し行うＰＣＲであって、アニーリングを２５℃〜３５℃で１〜２分で行い、かつ鎖伸長を４２℃〜４７℃で１〜２分で行うことができる。ランダムＰＣＲは、通常のＰＣＲと同様に熱変性、アニーリング及び鎖伸長を繰り返し行うが、アニーリング及び鎖伸長の温度が低く、プライマーと鋳型とのハイブリダイゼーションの特異性を低くして行われる。熱変性は、通常のＰＣＲと同様に行えばよい。【００１３】
(2)において電気泳動パターンから抽出される2本鎖ＤＮＡの特徴点は、例えば、各2本鎖ＤＮＡの融解開始点であることができる。被検体生物の同定においては、融解開始点以外の特徴点、例えば、２本鎖ＤＮＡの変性過程途中で移動度が最も小さくなる点や、完全に１本鎖に変性しきった点を用いても良い。しかし、2本鎖DNAの融解開始点がゲル組成や泳動環境の微妙な影響を受けにくく、泳動毎に安定であることから、精度保持・再現性という観点から、特徴点として融解開始点を用いることが好ましい。【００１４】
さらに本発明は、上記(1)、(2)及び(3)の工程を含む被検体生物の同定方法において、(4)前記2本鎖ＤＮＡのゲル電気泳動を、2種類の内部標準ＤＮＡとともに行い、(5)前記2種類の内部標準ＤＮＡの電気泳動パターンから各内部標準ＤＮＡの融解開始点を抽出し、これらの融解開始点を基準点として、前記特徴点を規格化し、かつ(6)規格化した特徴点に基づいて被検体生物の同定を行うことを特徴とする。【００１５】
本発明においては、2本鎖ＤＮＡのゲル電気泳動を、2種類の内部標準ＤＮＡとともに行う。内部標準ＤＮＡの配列は、その配列がＧＰで表すパターン形状がランダムＰＣＲの断片群に紛れず、容易に識別できるものであることを考慮して決定される。同時に使用される2種類の内部標準ＤＮＡは、それぞれの融解開始点が、ある程度離れ、かつ塩基数に違いがあることが、規格化の精度を高めるという観点からは好ましい。具体的には、2種類の内部標準ＤＮＡは、融解開始点が、１℃以上、好ましくは５℃以上、より好ましくは９℃以上離れていることが適当である。また、2種類の内部標準ＤＮＡは、塩基数が２００以上、好ましくは３００以上、より好ましくは４００以上違うことが適当である。【００１６】
電気泳動させる2種類の内部標準ＤＮＡの量は、泳動後画像検出した際に、対象試料のランダムＰＣＲ断片群の識別のしやすさに影響がないように、対象試料のランダムＰＣＲ断片群の濃度に同等か、あるいはそれよりも濃度がわずかに小さくなるように考慮して適宜決定される。具体的には、電気泳動させる2種類の内部標準DNAの量は、例えば、それぞれ0.3〜0.6pmolの範囲であることが適当である。【００１７】
2種類の内部標準ＤＮＡは、例えば、配列表に示す配列番号1〜5のいずれかの配列を有する2つのDNAから選ばれることができる。より具体的には、2種類の内部標準ＤＮＡは、配列表に示す配列番号1の配列を有するDNA及び配列番号3の配列を有するDNAの組み合わせ、または配列表に示す配列番号4の配列を有するDNA及び配列番号5の配列を有するDNAの組み合わせであることが好ましい。【００１８】
本発明においては、2種類の内部標準ＤＮＡの電気泳動パターンから各内部標準ＤＮＡの融解開始点を抽出し、これらの融解開始点を基準点として、2本鎖ＤＮＡの特徴点を規格化する。2本鎖ＤＮＡの特徴点の規格化は、泳動ゲルのフレームを設け泳動距離間を設定し、その後2種類の内部標準試料の融解開始点をともに打点して座標補正を行うことができる。その後は各バンドの特徴点群を打点していくだけで、自動的に規格化された特徴点群に変換され、標準化された状態で2者間の比較が可能となる。【００１９】
規格化した特徴点に基づいて被検体生物の同定を行う。具体的には、(5)で得られた規格化した特徴点群からＰａＳＳ及び/又はゲノム準距離を求め、得られたＰａＳＳ及び/又はゲノム準距離に基づいて、被検体生物の同定を行う。ＰａＳＳ及び/又はゲノム準距離は、特許文献１（特開2001-299398号公報）に記載の方法を用いて行うことができる。【００２０】
ＰａＳＳとは、パターン類似度(Pattern Similarity Score)であり、ゲノム準距離とは、ＰａＳＳを用いた2種の微生物のゲノムの類縁状況を表す指標であり、（１−ＰａＳＳ）／ＰａＳＳで表される。ＰａＳＳ及びゲノム準距離は、上記のようにして抽出方法で得られ、かつ規格化された特徴点群（spiddos: species identification dots）から以下のように算出され、ＰａＳＳ及び／又はゲノム準距離を用いて遺伝子型により微生物を同定することができる。微生物の同定は、比較対象ゲノムについて得られた特徴点群と、同定対象である微生物のゲノムについて得られた特徴点群とを比較することにより行われる。【００２１】
同定対象である微生物の種が予め分かっている場合、その種を比較対象とする。また、同定対象である微生物の種が未知である場合、ゲノムプロフィリング画像の全体的な形態に基づいて予め選定された代表種（たとえば数十種）を仮の比較対象とする。あるいは、試料微生物の種が未知である場合、上述の特徴点抽出処理により得られた各特徴点について類似する特徴点を有する種を順次リストアップする。そして、リストアップされた種を仮の比較対象とする。ＰａＳＳ及びゲノム準距離の算出法、並びに被検体生物の同定方法は、特許文献1に記載の方法を参照して行うことができる。【００２２】
本発明の方法において、生物の同定は、生物の種同定又は類縁性同定であることができる。生物の種同定とは、検定対象の生物が、どの種に属するかを同定することであり、例えば、ＰａＳＳが０．９５以上である場合を同一種とすることができる。また、類縁性同定とは、検定対象の生物が、どの種に類縁性を有するかを同定することであり、例えば、ＰａＳＳが、０．９５未満で、０．８以上である場合を類縁性がある、とすることができる。この場合、数値が大きくなればなるほどそれだけ近縁種といえる。【００２３】
さらに、被検体生物は特に限定されないが、微生物であることができる。微生物以外にも、被検体生物は、基本的にゲノムＤＮＡをもつ生物あれば、すべての生物の比較がゲノムレベルで可能である。【００２４】
[内部標準用ＤＮＡ組成物]
本発明は、上記被検体生物の同定方法に用いられる内部標準用ＤＮＡ組成物を包含する。この内部標準用ＤＮＡ組成物は、配列表に示す配列番号1〜5のいずれかの配列を有する2つのDNAを含む。本発明の内部標準用ＤＮＡ組成物は、より具体的には、配列番号２と配列番号３の組み合わせ、配列番号２と配列番号５の組み合わせ、配列表に示す配列番号1の配列を有するDNA及び配列番号3の配列を有するDNAの組み合わせ、または配列表に示す配列番号4の配列を有するDNA及び配列番号5の配列を有するDNAの組み合わせ含むことができる。なかでも、配列表に示す配列番号1の配列を有するDNA及び配列番号3の配列を有するDNAの組み合わせ、または配列表に示す配列番号4の配列を有するDNA及び配列番号5の配列を有するDNAの組み合わせ含むことが好ましい。【００２５】
内部標準用ＤＮＡ組成物に含まれるDNAは、ラベルされたものであってもよい。ラベルとしては、蛍光ラベルや同位体ラベル等を挙げることができる。但し、これらのDNAが内部標準用であることから、ラベルによりＤＮＡの泳動に影響が出ないようにラベル物質は選択することが適当である。蛍光ラベル用の物質としては、これらに限定する意図ではないが、例えば、Ｃｙ５、Ｃｙ３、及びＦＩＴＣ等の蛍光色素を挙げることができる。これらの蛍光ラベル用の物質については、ＤＮＡの泳動に影響がないことは確認済みである。尚、本発明の方法では、2種類の内部標準用ＤＮＡを組み合わせて使用するが、2種類の内部標準用ＤＮＡのラベルは同色でも異色でもよい。但し、2種類の内部標準用ＤＮＡのラベルは、被検体ＤＮＡにラベルした蛍光色素とは異色にすることが適当である。また、ラベリングは、例えば、蛍光色素を作製用プライマーペアのどちらか片方の５'末端にラベルすることで、DNAに導入することができる。【００２６】
本発明は、上記本発明の内部標準用ＤＮＡ組成物を含む、被検体生物同定用キット。このキットには、ＤＮＡ合成時に使用するための緩衝液やＤＮＡ合成用の試薬、例えば、ＤＮＡポリメラーゼ、基質、プライマー等を含むこともできる。【００２７】
[内部標準用ＤＮＡ組成物の製造方法]
本発明は、配列表に示す配列番号4の配列を有するDNA及び配列番号5の配列を有するDNAを含む内部標準用ＤＮＡ組成物の製造方法を包含する。この製造方法は、ｐＢＲ３２２ＤＮＡを鋳型ＤＮＡとし、配列番号4の配列を有するDNA増幅用のプライマーセット及び配列番号5の配列を有するDNA増幅用のプライマーセットを用いてPCR反応を行うことを特徴とする。【００２８】
本発明の上記方法によれば、2種類の内部標準用ＤＮＡを含む組成物を、1つの鋳型から1回のPCRによる合成操作で調製することができるという利点がある。【００２９】
鋳型ＤＮＡとして用いられるｐＢＲ３２２ＤＮＡは、プラスミドとして当該分野で汎用されているＤＮＡである。PCR用のプライマーとして、配列番号4の配列を有するDNA増幅用のプライマーセットと配列番号5の配列を有するDNA増幅用のプライマーセットを用いる。配列番号4の配列を有するDNA増幅用のプライマーセットは、AGTGGTCCTGCAACTTTATC(配列番号12)及びAACATGGGGGATCATGTAAC(配列番号13)の配列を有するDNAからなることが好ましい。但し、何れのプライマーも、配列番号4の配列を有するDNAを増幅できる範囲で、配列を改変することができる。また、配列番号5の配列を有するDNA増幅用のプライマーセットは、GCCGGCATCACCGGCGCCACAGGTGCGGTTG(配列番号14)及びTAGCGAGGTGCCGCCGGCTTCCATTCAGGTC(配列番号15)からなることが好ましい。【００３０】
PCR反応は、常法により行うことができる。但し、配列番号4の配列を有するDNA及び配列番号5の配列を有するDNA以外のDNAの副生を抑制しつつ、目的とするDNAを増幅されるという観点から、ＰＣＲサイクル条件として、例えば、以下の条件を採用することが好ましい。尚、ＰＣＲサイクル条件は、配列番号4の配列を有するDNA及び配列番号5の配列を有するDNA以外のDNAの副生を抑制しつつ、目的とするDNAが増幅できる限りにおいて、変更することは可能である。【００３１】
a前熱変性（95℃,2分）、
b熱変性（94℃,15秒）、
cアニーリング（55℃,30秒）、
d鎖伸長（72℃,30秒）、
eポスト鎖伸長（72℃,30秒）
b〜dを25回繰り返す。
但し、c アニーリングは、55℃〜65℃、15秒〜30秒の範囲で変更することもできる。【００３２】
上記内部標準用ＤＮＡ組成物の製造方法は、配列表に示す配列番号4の配列を有するDNA及び配列番号5の配列を有するDNAを含む組成物を一度に合成する方法である。しかし、各内部標準用ＤＮＡを個別に合成することも可能である。
例えば、配列表に示す配列番号4の配列を有するDNAは、ｐＢＲ３２２ＤＮＡを鋳型とし、上記DNA増幅用のプライマーセットを用いてPCR反応を行うことで、合成できる。同様に、配列番号5の配列を有するDNAも、ｐＢＲ３２２ＤＮＡを鋳型とし、上記DNA増幅用のプライマーセットを用いてPCR反応を行うことで合成できる。【００３３】
さらに配列表に示す配列番号1〜3の配列を有する内部標準用DNAは、鋳型としてＤＮＡ ｆｄ（M１３）を用いることで、PCR反応により合成することができる。合成方法の詳細は、後述する実施例に示す。いずれにしても、内部標準用DNAは、鋳型ＤＮＡの特定領域をＰＣＲ法で増幅することで調製できる。【００３４】
特に、本発明は、配列表に示す配列番号１の配列を有するDNAおよび配列番号3の配列を有するDNAを含む内部標準ＤＮＡ組成物の製造方法を包含する。この製造方法は、fd（M13）ファージＤＮＡを鋳型ＤＮＡとし、配列番号１の配列を有するDNA増幅用のプライマーセット及び配列番号3の配列を有するDNA増幅用プライマーセットを用いてPCR反応を行うことを特徴とする。この製造方法によれば、2種類の内部標準用ＤＮＡを含む組成物を、1つの鋳型から1回のPCRによる合成操作で調製することができるという利点がある。【００３５】
鋳型ＤＮＡに用いられるfd（M13）ファージＤＮＡは、ＤＮＡシーケンシングに適したファージベクターとして、当該分野で汎用されているＤＮＡである。ＰＣＲ用のプライマーとして、配列番号１の配列を有するDNA増幅用のプライマーセット及び配列番号3の配列を有するDNA増幅用のプライマーセットを用いる。配列番号１の配列を有するDNA増幅用のプライマーセットは、CTACGTCTCTTCCGATGCTGT（配列番号６）及びTTGAATTCTATCGGTTTATCA（配列番号７）の配列を有するDNAからなることが好ましい。配列番号3の配列を有するDNA増幅用のプライマーセットは、AAATGCCGATGA（配列番号１０）及びTAATTGTGCGCT（配列番号１１）からなることが好ましい。【００３６】
PCR反応は、常法により行うことができる。但し、配列番号１の配列を有するDNA及び配列番号３の配列を有するDNA以外のDNAの副生を抑制しつつ、目的とするDNAを増幅させるという観点から、ＰＣＲサイクル条件として、例えば、以下の条件を採用することが好ましい。尚、ＰＣＲサイクル条件は、配列番号１の配列を有するDNA及び配列番号３の配列を有するDNA以外のDNAの副生を抑制しつつ、目的とするDNAが増幅できる限りにおいて、変更することは可能である。【００３７】
a前熱変性（94℃，5分）、
b熱変性（94℃，30秒）
cアニーリング（64℃〜65℃，30秒）
d鎖伸長（74℃，30秒）
eポスト鎖伸長（74℃，5分）
b〜dを30回繰り返す。
【実施例】
【００３８】
以下に本発明を実施例によりさらに詳細に説明する。
実施例１
内部標準用ＤＮＡの調製方法(1)
鋳型ＤＮＡ ｆｄ（M１３）ＤＮＡを用いたレファレンス１（ｒｅｆ１）、レファレンス３（ｒｅｆ３）、レファレンス４（ｒｅｆ４）の調製法【００３９】
ｒｅｆ１(塩基配列：配列番号1)の調製
プライマーMA1： 5'-CTACGTCTCTTCCGATGCTGT-3(配列番号6)とプライマーMA2：   5'-TTGAATTCTATCGGTTTATCA-3(配列番号7)を用い、以下のＰＣＲサイクル条件により、ＤＮＡ塩基長２００ｂｐのｒｅｆ１を増幅する。
具体的な実験は以下のように行った。
PCR反応液組成として、Tris-HCl 10mM、KCl 50mM、MgCl2 1.5mM、dNTP 200μM、プライマー 各120nM、fd（M13）ファージDNA 3.6pM、Taqポリメラーゼ0.03U/μlを調製する。
ＰＣＲサイクル条件として、a前熱変性（95℃,5分）、b熱変性（94℃,30秒）、cアニーリング（50℃,30秒）、d鎖伸長（72℃,30秒）、eポスト鎖伸長（72℃,5分）のb〜dを30回繰り返す。【００４０】
ｒｅｆ３(塩基配列：配列番号2)の調製
プライマーRef3-F：ACCTCCTGTCAATGC(配列番号8)とプライマーRef3-R (cy3)： TCACCGGAAC(配列番号9)を用い、以下のＰＣＲサイクル条件により、ＤＮＡ塩基長１３５ｂｐのｒｅｆ３を増幅する。
具体的な実験は以下のように行った。
PCR反応液組成として、Tris-HCl 10mM、KCl 50mM、MgCl2 1.5mM、dNTP 200μM、プライマー 各120nM、fd（M13）ファージDNA 3.6pM、Taqポリメラーゼ0.03U/μl  を調製する。
ＰＣＲサイクル条件として、a前熱変性（95℃,5分）、b熱変性（94℃,30秒）、cアニーリング（60℃,30秒）、d鎖伸長（74℃,30秒）、eポスト鎖伸長（74℃,5分）のb〜dを30回繰り返す。【００４１】
ｒｅｆ４(塩基配列：配列番号3)の調製
プライマーRef4-F：AAATGCCGATGA(配列番号10)とプライマーRef4-R：TAATTGTGCGCT(配列番号11)を用い、以下のＰＣＲサイクル条件により、ＤＮＡ塩基長６００ｂｐのｒｅｆ４を増幅する。
具体的な実験は以下のように行った。
PCR反応液組成として、Tris-HCl 10mM、KCl 50mM、MgCl2 1.5mM、dNTP 200μM、プライマー 各120nM、fd（M13）ファージDNA 3.6pM、Taqポリメラーゼ0.03U/μlを調製する。
ＰＣＲサイクル条件として、a前熱変性（95℃,5分）、b熱変性（94℃,30秒）、cアニーリング（67.5℃,30秒）、d鎖伸長（74℃,30秒）、eポスト鎖伸長（74℃,5分）のb〜dを25回繰り返す。【００４２】
上記方法により合成された3つの内部標準用DNAの温度勾配ゲル電気泳動（ＴＧＧＥ）結果を図1に示す。尚、ref1の融解開始点は約60.0℃であり、ref3の融解開始点は約70.1℃であり、ref4の融解開始点は約58.0℃である。電気泳動条件は、以下のとおりである。
100V (100mA)
泳動時間 10分
4%ゲル、8M尿素
1xTBE バッファー溶液
温度 20〜60℃【００４３】
実施例２
内部標準用ＤＮＡの調製方法(2)
鋳型ＤＮＡ ｐＢＲ３２２ＤＮＡを用いたレファレンス５（ｒｅｆ５(塩基配列：配列番号4)）、レファレンス６（ｒｅｆ６(塩基配列：配列番号5)）の調製法
プライマーRef5F：AGTGGTCCTGCAACTTTATC（配列番号１２）とプライマーRef5R：AACATGGGGGATCATGTAAC（配列番号１３）を用いてＤＮＡ塩基長２００ｂｐを、プライマーRef6F：GCCGGCATCACCGGCGCCACAGGTGCGGTTG（配列番号１４）とプライマーRef6R：TAGCGAGGTGCCGCCGGCTTCCATTCAGGTC（配列番号１５）を用いて９００ｂｐの以下の配列を一括増幅した。【００４４】
具体的な実験は以下のように行った。
PCR反応液組成として、Tris-HCl 10mM、KCl 50mM、MgCl2 1.5mM、dNTP 200μM、プライマー 各120nM、pBR322 DNA 3.6pM、Taqポリメラーゼ0.03U/μlを調製する。
ＰＣＲサイクル条件として、a前熱変性（95℃,2分）、b熱変性（94℃,15秒）、cアニーリング（55℃,30秒）、d鎖伸長（72℃,30秒）、eポスト鎖伸長（72℃,30秒）のb〜dを25回繰り返す。【００４５】
上記方法により合成された2つの内部標準用DNAの温度勾配ゲル電気泳動（ＴＧＧＥ）結果を図2に示す。尚、ref5の融解開始点は約52.2℃であり、ref6の融解開始点は約61.4℃である。電気泳動条件は、以下のとおりである。
100V
泳動時間 8分
6%(19:1)アクリルアミドゲル、6.5M尿素
1xTBE バッファー溶液
温度 15〜55℃【００４６】
実施例３
ダブル内部標準試料とシングル内部標準試料の座標補正における安定性の比較テスト
（テストの目的）
ＴＧＧＥにおけるＤＮＡ断片の変性過程は、泳動毎で第一変性（特徴）点に安定性あり、第二変性（特徴）点は不安定であることが経験的にわかっていた。しかし従来のシングル内部標準試料を用いた座標補正における2点の特徴点の取り方は、安定な第一特徴点と不安定な第二特徴点をとっていた。そのため泳動毎の座標補正の不安定性が問題であった。
今回完成したダブル内部標準試料を使用することで、従来型のシングル内部標準試料に比べ、どの程度安定性が改善されたかを定量的に調べることを目的とした。【００４７】
（テスト方法）
テストの方法は、実際に適当なランダムＰＣＲ産物を内部標準試料と共にTGGEを行う。そのときに使用した内部標準試料で規格化によるPaSS計算を行う際、ランダムＰＣＲ産物の特徴点の選択はあらかじめ同一の特徴点群を選ぶように決めておく。選択すべき特徴点群が決まったら、PaSS計算用ソフトを用いて計算を実行する。同一のランダムＰＣＲ産物で数回TGGEを行い、すべての組み合わせでPaSS値のバラツキ度をみていく。この一連の操作を従来の１種類のみの内部標準試料と今回開発した２種類の内部標準試料について行い、PaSSの平均値と標準偏差で安定性の比較を行う。【００４８】
同一ランダムＰＣＲ産物に対して、ダブル内部標準試料（ref5、ref6混合）とシングル内部標準試料（ref１）それぞれ用いてＴＧＧＥを行った。泳動後、解析ソフトを使用してランダムＰＣＲ産物の明瞭な特徴点（一定）を打点し、座標補正をダブル内部標準試料についてはref5、ref6のそれぞれの第一特徴点を、シングル内部標準試料についてはref1の第一特徴点と第二特徴点をとり、PaSS計算を行った。【００４９】
ＴＧＧＥはダブル内部標準試料、シングル内部標準試料それぞれ4回ずつ（W1〜W4、S1〜S4）行い、ダブル内の6通り（W1/W2，W1/W3，W1/W4，W2/W3，W2/W4，W3/W4）とシングル内の6通り（S1/S2，S1/S3，S1/S4，S2/S3，S2/S4，S3/S4）のPaSS計算を行い、PaSS計算結果からダブルとシングルの安定度の比較を行った。結果を表1及び２に示す。【００５０】
【表１】
0005024784.tif 000002
PaSS平均値  0.9898
標準偏差    0.003438【００５１】
【表２】
0005024784.tif 000003
PaSS平均値  0.9768
標準偏差    0.007727【００５２】
（結論）
ダブル内部標準試料とシングル内部標準試料の標準偏差を比較すると、ダブル内部標準試料はシングル内部標準試料の半分以下の値を示し、泳動毎のデータ処理におけるバラツキが減少して、データの精度が上昇したことが明らかになった。【００５３】
実施例４
（テスト方法）
実施例3と同様にして、同一ランダムＰＣＲ産物に対して、ダブル内部標準試料（ref3、ref4混合）とシングル内部標準試料（ref5）それぞれ用いてＴＧＧＥを行った。泳動後、解析ソフトを使用してランダムＰＣＲ産物の明瞭な特徴点（一定）を打点し、座標補正をダブル内部標準試料についてはref3、ref4のそれぞれの第一特徴点を対角形にとり、シングル内部標準試料についてはref5の第一特徴点と第二特徴点を対角形にとった。【００５４】
ＴＧＧＥはダブル内部標準試料、シングル内部標準試料についてそれぞれ4回ずつ（W1〜W4、S1〜S4）行った。ダブル内の6通り（W1/W2，W1/W3，W1/W4，W2/W3，W2/W4，W3/W4）とシングル内の6通り（S1/S2，S1/S3，S1/S4，S2/S3，S2/S4，S3/S4）の相同性（PaSS）計算を行い、PaSS計算結果からダブルとシングルの安定度の比較をPaSSの平均値と標準偏差で行った。つまり同一サンプルを用いて同一操作で繰り返しているので、理想的にはPaSS平均値は１により近づき、標準偏差はより０に近づくことが望ましい。結果を表３及び４に示す。【００５５】
【表３】
0005024784.tif 000004
PaSS平均値  0.9859
標準偏差    0.005581【００５６】
【表４】
0005024784.tif 000005
PaSS平均値  0.9404
標準偏差    0.02099【００５７】
（結論）
まずダブル内部標準試料とシングル内部標準試料の平均値を比較すると、前実施例同様ダブルのほうが大きく、同一サンプルを使用したときの一致度が高い。一方標準偏差を比較すると、ダブル内部標準試料はシングル内部標準試料の約１／４の値を示し、泳動毎のデータ処理におけるバラツキが減少して、データの精度が上昇したことが明らかになった。
【産業上の利用可能性】
【００５８】
本発明の方法によれば、遺伝子型により生物の同定が可能であり、例えば、微生物等の検出が容易に行えるため、医療や食品分野において、広く利用可能である。
【図面の簡単な説明】
【００５９】
【図１】実施例1において合成された3つの内部標準用DNAの温度勾配ゲル電気泳動（ＴＧＧＥ）結果。
【図２】実施例2において合成された2つの内部標準用DNAの温度勾配ゲル電気泳動（ＴＧＧＥ）結果。
【図１】
0005024784.tif 000006
【図２】
0005024784.tif 000007
【配列表】
0005024784000001.app