(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
処置が必要な哺乳動物における増殖性癌細胞および非増殖性癌細胞の両方を標的とする剤であって、パクリタキセルを、（Ｒ）−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−４−（２−チエニルスルホニル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン−７−カルボニトリルまたはその医薬的に許容し得る塩と組み合わせて用いるために含む、該剤。
【請求項２】
パクリタキセルを、（Ｒ）−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−４−（２−チエニルスルホニル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン−７−カルボニトリルまたはその医薬的に許容し得る塩を投与する前に投与する、請求項１に記載の剤。
【請求項３】
処置が必要な哺乳動物における増殖性癌細胞および非増殖性癌細胞の両方を標的とする剤であって、ＣＰＴ−１１を、（Ｒ）−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−４−（２−チエニルスルホニル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン−７−カルボニトリルまたはその医薬的に許容し得る塩と組み合わせて用いるために含み、前者を、後者を投与する前に投与する、該剤。
【請求項４】
処置が必要な哺乳動物における増殖性癌細胞および非増殖性癌細胞の両方を標的とする剤であって、ゲムシタビンまたはその医薬的に許容し得る塩を、（Ｒ）−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−４−（２−チエニルスルホニル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン−７−カルボニトリルまたはその医薬的に許容し得る塩と組み合わせて用いるために含み、前者を、後者を投与する前に投与する、該剤。
【請求項５】
処置が必要な哺乳動物における増殖性癌細胞および非増殖性癌細胞の両方を標的とする剤であって、４−（３−ブロモフェニルアミノ）−６，７−ビス（メトキシ）キナゾリンを、（Ｒ）−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−４−（２−チエニルスルホニル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン−７−カルボニトリルまたはその医薬的に許容し得る塩と組み合わせて用いるために含み、前者を、後者を投与する前に投与する、該剤。
【請求項６】
処置が必要な哺乳動物における増殖性癌細胞および非増殖性癌細胞の両方を標的とする剤であって、トラスツズマブを、（Ｒ）−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−４−（２−チエニルスルホニル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン−７−カルボニトリルまたはその医薬的に許容し得る塩と組み合わせて用いるために含み、前者を、後者を投与する前に投与する、該剤。
【請求項７】
処置が必要な哺乳動物における増殖性癌細胞および非増殖性癌細胞の両方を標的とする剤であって、４−（３−クロロ−４−フルオロフェニルアミノ）−７−メトキシ−６−（３−（４−モルホリニル）プロポキシ）キナゾリンを、（Ｒ）−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−４−（２−チエニルスルホニル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン−７−カルボニトリルまたはその医薬的に許容し得る塩と組み合わせて用いるために含み、前者を、後者を投与する前に投与する、該剤。
【請求項８】
処置が必要な哺乳動物における増殖性癌細胞および非増殖性癌細胞の両方を標的とする剤であって、タモキシフェンを、（Ｒ）−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−４−（２−チエニルスルホニル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン−７−カルボニトリルまたはその医薬的に許容し得る塩と組み合わせて用いるために含み、前者を、後者を投与する前に投与する、該剤。
【請求項９】
処置が必要な哺乳動物における増殖性癌細胞および非増殖性癌細胞の両方を標的とする剤であって、Ｎ−［５−［［［５−（１，１−ジメチルエチル）−２−オキサゾリル］メチル］チオ］−２−チアゾリル］−４−ピペリジンカルボキミドまたはその医薬的に許容し得る塩を、（Ｒ）−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−４−（２−チエニルスルホニル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン−７−カルボニトリルまたはその医薬的に許容し得る塩と組み合わせて用いるために含み、前者を、後者を投与する前に投与する、該剤。
【請求項１０】
パクリタキセルの１３５ｍｇ／ｍ２を３時間注入投与し、続いて（Ｒ）−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−４−（２−チエニルスルホニル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン−７−カルボニトリルまたはその医薬的に許容し得る塩の５０ｍｇ／ｍ２を１時間注入投与し、そして必要に応じてパクリタキセルおよび（Ｒ）−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−４−（２−チエニルスルホニル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン−７−カルボニトリルまたはその医薬的に許容し得る塩の両方を３週間間隔で投与する、請求項１に記載の剤。
【請求項１１】
パクリタキセルの８０ｍｇ／ｍ２を１時間注入投与し、続いて（Ｒ）−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−４−（２−チエニルスルホニル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン−７−カルボニトリルまたはその医薬的に許容し得る塩の８０ｍｇ／ｍ２を１時間注入投与し、そして必要に応じてパクリタキセルおよび（Ｒ）−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−４−（２−チエニルスルホニル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン−７−カルボニトリルまたはその医薬的に許容し得る塩の両方を１週間間隔で投与する、請求項１に記載の剤。
【請求項１２】
処置が必要な哺乳動物における増殖性癌細胞および非増殖性癌細胞の両方を標的とする剤であって、パクリタキセルおよびカルボプラチンを、（Ｒ）−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−４−（２−チエニルスルホニル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン−７−カルボニトリルまたはその医薬的に許容し得る塩と組み合わせて用いるために含み、パクリタキセルの１３５ｎｇ／ｍ２を３時間注入し、続いてＡＵＣが６に等しいカルボプラチンを２０分間注入投与し、そしてパクリタキセルおよびカルボプラチンを３週間間隔で投与し、
更に（Ｒ）−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−４−（２−チエニルスルホニル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン−７−カルボニトリルまたはその医薬的に許容し得る塩の８０ｍｇ／ｍ２を１週間投与する、該剤。
【請求項１３】
処置が必要な哺乳動物における癌の処置のための医薬組成物であって、
（１）パクリタキセル、
（２）（Ｒ）−２，３，４，５−テトロヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−４−（２−チエニルスルホニル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン−７−カルボニトリルまたはその医薬的に許容し得る塩、並びに医薬的に許容し得る担体を含有する、該医薬組成物。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
（技術分野）
本発明は、癌の処置のための療法に関するものであって、具体的には抗増殖性の細胞毒性活性および抗増殖性の細胞分裂停止活性を有する２つ以上の抗癌剤の相乗的な使用に関する。
【０００２】
（背景技術）
化学療法（これは、血液循環系によって体中に運搬される抗新生生物剤の全身投与であって、外科処置および／また放射線処置と共に、そして組み合わされることが多い）は、長年様々な癌の処置において広く使用されている。不運にも、そのような利用可能な化学療法薬は患者に役に立たないことが多い。その理由としては、それらは多数の健康な細胞を死滅させ、その結果、医師が投与することができる用量を制限する重大な副作用を生じるからである。
【０００３】
特に、癌性腫瘍は増殖性癌細胞および非増殖性癌細胞の両方を含んでいるので、癌性腫瘍は処置することが困難である。癌性腫瘍が増殖するにつれて、血管発生は悪性細胞個体群の速い増殖と足並みをそろえることができない。それゆえに、固形癌性腫瘍の塊は典型的には異常な血管のネットワークを示し、このものは、正常な組織の血管と異なって、該癌性腫瘍細胞に最適な増殖のための適当な栄養供給を与えることができない。ほとんどの癌性固形腫瘍において、非増殖性腫瘍細胞は全腫瘍細胞個体群の大部分を構成している。その上、腫瘍細胞の大きさが増大するにつれて、非増殖性腫瘍細胞の割合も比例して増加する。ほとんどの最新の抗癌剤は増殖性細胞を標的とするので、非増殖性腫瘍細胞個体群が、新生生物疾患を治癒するために単独でまたは一緒に使用される放射線療法または化学療法の失敗の主な一因であると考えられる。
【０００４】
上記の通り、腫瘍の大きさが増大するにつれて、典型的にほとんどの化学療法に対してより抵抗性となる。従って、多くの腫瘍根絶方法は抗新生生物剤を投与する前に、腫瘍の塊を減少させる減量手術の工程を含む。しかしながら、減量手術は強力な化学療法剤と組み合わせた場合でさえも、必ずしも腫瘍の根絶をもたらすわけではない。従って、当該分野において悪性の処置のための増殖性癌細胞および非増殖性癌細胞の両方を標的とする新規な処置に対する要求がある。
【０００５】
ＷＯ９８／５４９６６は、抗新生生物剤または放射線療法とプレニルタンパク質トランスフェラーゼのインヒビター（このものは、癌の処置に有用であり得る）とを組み合わせて使用する組み合わせ療法について開示している。しかしながら、ＷＯ９８／５４９６６は、本発明の式Ｉの化合物の使用については開示していない。
【０００６】
米国特許第６，０１１，０２９号では、本発明の式Ｉの化合物を開示しており、抗癌剤としてのそれらの使用法を提示している。加えて、該特許は一般的に、式Ｉの化合物が他の癌治療法と組み合わせて有用となり得ることを開示している。しかしながら、米国特許第６，０１１，０２９号は、いずれの具体的な組み合わせ処置をも開示しておらず、また抗癌処置として相乗的に作用する組み合わせ処置を開示も示唆もしていない。
【０００７】
従って、本発明の目的は、癌の処置のための相乗的な方法を提供することである。
【０００８】
また、本発明の目的は、癌の相乗的な処置のための医薬組成物を提供することである。
【０００９】
本発明のそれらの目的および他の目的は、以下の記載からより明らかになるであろう。
【００１０】
（発明の概要）
本発明は、癌の処置のための相乗的な方法を提供するものであって、該方法はその処置の必要な哺乳動物に、相乗的で治療学的に有効な量の、（１）抗増殖性細胞毒性剤および抗増殖性細胞分裂停止剤から選ばれる少なくとも１つの薬剤、並びに（２）式Ｉの化合物またはその医薬的に許容し得る塩を投与することを含むが、該細胞毒性剤および／または該細胞分裂停止剤を式Ｉの化合物と同時にまたはその前に投与する。
【化２】
0005110756.tif 000002
［式中、
Ｒ１は、Ｃｌ、Ｂｒ、ＣＮ、場合により置換されたフェニルまたは場合により置換された２−、３−もしくは４−ピリジルである。
Ｒ２は、場合により置換された低級アルキルまたは場合により置換されたアラルキルである。
Ｒ３およびＲ５は各々独立して、場合により置換された低級アルキル、場合により置換されたアリールまたは場合により置換されたヘテロ環である。
Ｒ４は、水素または低級アルキルである。
Ｚ１は、ＣＯ、ＳＯ２、ＣＯ２、またはＳＯ２Ｎ（Ｒ５）−である。そして、  ｎは、１または２である］
【００１１】
本発明は更に、癌の相乗的な処置のための医薬組成物を提供し、このものは抗増殖性細胞毒性剤および抗増殖性細胞分裂停止剤からなる群から選ばれる少なくとも１つの薬剤、並びに式Ｉの化合物および医薬的に許容し得る担体を含む。
【００１２】
本発明の好ましい態様において、細胞毒性剤または細胞分裂停止剤を式Ｉの化合物の投与前に投与する。本発明の別の態様において、細胞毒性剤または細胞分裂停止剤を式Ｉの化合物と同時に投与する。
【００１３】
（詳細な説明）
本発明は癌の相乗的な処置法を提供するものであって、該方法は該処置が必要な哺乳動物（ヒトが好ましい）に、相乗的で治療学的に有効な量の、（１）抗増殖性細胞毒性剤および抗増殖性細胞分裂停止剤からなる群から選ばれる少なくとも１つの薬剤、並びに（２）式Ｉの化合物を投与することを含む。
【００１４】
驚くべきことに、（１）少なくとも１つの抗増殖性細胞毒性剤および抗増殖性細胞分裂停止剤、並びに（２）式Ｉの化合物を組み合わせて使用することにより、癌の処置のための相乗的な方法を得ることを見出した。本明細書で使用する用語「相乗的」とは、本発明の方法および組成物を用いて得られる効果が、細胞毒性剤または細胞分裂停止剤、および本発明の式Ｉの化合物を別々に含む（それらは、本発明の方法および組成物において使用する量で含む）方法および組成物から得られる効果の合計よりも大きいことを意味する。有利なことに、活性成分の間のそのような相乗作用により、より少ない用量での一方もしくは両方の活性成分の使用が可能となり、抗新生生物剤もしくは放射線療法のより低い用量が可能となり、同じ用量でより大きな効能が得られ、および／または多剤耐性の確立を防止しもしくは遅延させる。
【００１５】
以前に開示されている方法よりも更に有利なことは、式Ｉの化合物および細胞分裂停止剤および細胞毒性剤からなる群から選ばれる少なくとも１つの薬剤の本組み合わせを、処置する癌細胞の性質に応じて個別に変えることができる可能性が含まれる。本組成物の治療学的な効果が、該抗新生生物剤および式Ｉの化合物を単独で投与する場合に必要とされるであろう量よりも少ない用量の細胞毒性剤または細胞分裂停止剤および式Ｉの化合物を用いて得ることができることも予想される。この方法により、いずれの機構によらない有害な毒性の影響（このものは、同じ治療学的な効果を得るのに十分な、抗新生生物剤、式Ｉの化合物または放射線療法の単独の量を投与することから生じ得る）をも避ける。該本発明の組成物は相乗的な治療学的効果を与え、該構成成分の化合物または方法のいずれかを単独で投与する場合の効果よりも予期しない治療学的な利点を示す。
【００１６】
２つ以上の抗癌剤（このものは、本発明の方法を含む）の選択性の大きさは、癌の処置のための単一の抗新生生物剤を用いた先に開示されている方法よりも治療学的な利点を与える。特に、２つ以上の独立な医薬的に活性な成分（これらのものは、相補的であって本質的に重なっていない活性を有する）を使用することにより、本発明の処置方法を用いて、該組み合わせの活性を独立して且つ正確に変えることができ、従って特定の医薬活性プロフィールを有する１つの薬物を合成する必要がない。加えて、該組み合わせは増殖性細胞および非増殖性細胞の両方を有効に標的とする。
【００１７】
抗増殖性細胞毒性剤（これは、放射線療法を含む）は、式Ｉの化合物と同時にまたはその前に投与することができる。本発明の好ましい態様において、抗増殖性細胞毒性剤および／または放射線療法を式Ｉの化合物よりも前に投与することができる。本明細書で使用する用語「同時」または「同時に」とは、抗増殖性細胞毒性剤または放射線療法、および式Ｉの化合物を互いに２４時間以内に（１２時間が好ましく、６時間がより好ましく、３時間よりも少ないことが最も好ましい）投与することを意味する。
【００１８】
上記の抗増殖性細胞毒性剤および放射線療法に加えて、細胞を「非増殖性」としたりまたは「停止」させる薬剤（このものは、本明細書において「抗増殖性細胞分裂停止剤」または「停止剤」と呼ばれる）は、場合によりそのような処置の必要な患者に投与される。そのような抗増殖性細胞分裂停止剤は式Ｉの化合物、放射療法または細胞毒性剤と同時にまたは連続して投与することができる。
【００１９】
本発明は、様々な癌の相乗的な処置のための方法を提供する。該癌は以下のものを含むが、これらに限定されない。
癌腫（これは、膀胱癌（これは、加速性および転移性の膀胱癌を含む）、乳癌、結腸癌（これは、結腸直腸癌を含む）、腎臓癌、肝臓癌、肺癌（これは、小細胞肺癌および非小細胞肺癌、並びに肺腺癌を含む）、卵巣癌、前立腺癌、精巣癌、尿生殖器管癌、リンパ系癌、直腸癌、喉頭癌、膵臓癌（これは、外分泌性膵臓癌腫を含む）、食道癌、胃癌、胆のう癌、頚部癌、甲状腺癌および皮膚癌（これは、扁平上皮細胞癌腫を含む）を含む）；
リンパ系統の造血性腫瘍（これは、白血病、急性リンパ球性白血病、急性リンパ芽球性白血病、Ｂ−細胞リンパ腫、Ｔ−細胞リンパ腫、ホジキンリンパ腫、非ホジキンリンパ腫、毛様細胞リンパ腫、細胞球性リンパ腫およびバーケットリンパ腫を含む）；
骨髄系統の造血性腫瘍（これは、急性および慢性の骨髄性白血病、骨髄形成異常症候群、骨髄性白血病および前骨髄性白血病を含む）；
中枢および末梢の神経系の腫瘍（これは、星細胞腫、神経芽細胞腫、神経こう腫およびシュワン細胞腫（schwannomas）を含む）；
間葉器官の腫瘍（これは、線維肉腫、横紋筋肉腫および骨肉腫を含む）、および
他の腫瘍（これは、メラノーマ、キセノデルマ（xenoderma）、色素沈着（pigmentosum）、角化きょく細胞腫（keratoactanthoma）、精上皮腫、甲状腺ろ胞腫および奇形癌腫を含む）。
【００２０】
本発明は、膀胱癌、膵臓癌、前立腺癌、非小細胞肺癌、結腸直腸癌および乳癌の加速性または転移性の癌を処置するのに使用するのがより好ましい。
【００２１】
本発明の好ましい態様において、癌性腫瘍の相乗的な処置法を提供する。有利なことに、本発明の相乗的な方法は、哺乳動物宿主における腫瘍の発生を減少したり、腫瘍の苦しみを軽減したり、または腫瘍の退行を与える。
【００２２】
本明細書で使用する用語「放射線療法」とは、外部適用される源（例えば、ビーム）から送達されるかまたは小さな放射線源を埋め込むことによって送達されるｘ−線またはガンマ線を含むが、これらに限定されない。放射線療法はまた、抗増殖性細胞毒性剤とみなすこともできる。
【００２３】
本明細書で使用する用語「抗新生生物剤」は化学療法剤と同義であり、このものは、癌細胞が増加することを防止する化合物（すなわち、抗増殖性剤）を意味する。一般的に、本発明の薬剤は２つのクラス、すなわち抗増殖性細胞毒性剤および抗増殖性細胞分裂停止剤に分類される。細胞毒性剤は、（１）細胞がＤＮＡを複製する能力を妨害することによって、および（２）癌細胞における細胞死および／またはアポトーシスを誘発させることによって、癌細胞が増加することを防止する。抗増殖性細胞分裂剤または静止剤は、細胞の増殖を調節する細胞によるシグナル伝達のプロセスをモジュレートしたり、妨害したりまたは抑制することによって機能する。大部分の化学療法剤は細胞毒性であって、且つ増殖性細胞を標的とする。
【００２４】
抗増殖性細胞毒性剤として使用することができる化合物のクラスは、以下のものを含む。
アルキル化剤（このものは、窒素マスタード、エチレンイミン誘導体、アルキルスルホネート、ニトロソウレアおよびトリアゼンを含むが、これらに限定されない）：ウラシルマスタード、クロルメチン（Chlormethime）、シクロホスファミド（サイトキサン（Cytoxan）（登録商標）、イフォサミド、メルファラン、クロラムブシル、ピポブロマン（Pipobroman）、トリエチレン−メラミン、トリエチレンチオホスファラミン、ブスルファン（Busulfan）、カルムスチン（Carmustine）、ロムスチン（Lomustine）、ストレプトゾシン（Streptozocin）、ダカルバジン（Dacarbazine）およびテモゾロミド（Temozolomide）；
抗代謝剤（このものは、葉酸拮抗剤、ピリミジンアナログ、プリンアナログおよびアデノシンデアミナーゼインヒビターを含むが、これらに限定されない）：メトトレキセート、５−フルオロウラシル、フロキシウリジン（Floxuridine）、シタラビン（Cytarabine）、６−メルカプトプリン、６−チオグアニン、フルダラビンホスフェート、ペントスタチン（Pentostatine）およびゲムシタビン（gemcitabine）；
天然物およびそれらの誘導体（例えば、ビンカアルカロイド、抗腫瘍抗生物質、酵素、リンフォカインおよびエピポドフィロトキシン）：ビンブラスチン（Vinblastine）、ビンクリスチン（Vincristine）、ビンデシン（Vindesine）、ブレオマイシン（Bleomycin）、ダクチノマイシン（Dactinomycin）、ダウノルビシン（Daunorubicin）、ドキソルビシン（Doxorubicin）、エピルビシン（Epirubicin）、イダルビシン（Idarubicin）、アラ（Ara）−Ｃ、パクリタキセル（パクリタキセルはタキソール（Taxol）（登録商標）として商業的に入手可能である）、ミトラミシン（Mithramycin）、デオキシコ（Deoxyco）−フォルミシン（formycin）、ミトマイシン（Mitomycin）−Ｃ、Ｌ−アスパラギナーゼ、インターフェロン（特に、ＩＦＮ−ａ）、エトポシドおよびテニポシド。
【００２５】
微小管に影響を及ぼす剤は細胞の有糸分裂を妨害し、このものは抗増殖性細胞毒性の活性のために当該分野においてよく知られている。本発明において有用な微小管に影響を及ぼす薬剤としては、例えば、アロコルチシン（allocolchine）（ＮＳＣ406042）、ハリコンドリン（Halichondrin）Ｂ（ＮＳＣ609395）、コルチシン（colchicine）（ＮＳＣ757）、コルチシン誘導体（例えば、ＮＳＣ33410）、ドラスタチン（dolastatin）１０（ＮＳＣ376128）、マイタンシン（maytansine）（ＮＳＣ153858）、リゾシン（rhizoxin）（ＮＳＣ332598）、パクリタキセル（タキソール（登録商標）、ＮＳＣ125973）、タキソール（登録商標）誘導体（例えば、誘導体（例えば、ＮＳＣ608832）、チオコルチシン（thiocolchicine）（ＮＳＣ361792）、トリチルシステイン（ＮＳＣ83265）、ビンブラスチンスルフェート（ＮＳＣ49842）、ビンクリスチンスルフェート（ＮＳＣ67574）、天然および合成のエポチロン（このものは、エポチロンＡ、エポチロンＢおよびヂスコーダーモリド（discodermolide）（例えば、サービス（Service）による（1996）、Science、274：2009）を含むが、これらに限定されない）、エストラムスチン（estramustine）、ノコダゾール（nocodazole）、ＭＡＰ４などを含むが、これらに限定されない。それらの薬剤の例についてはまた、科学文献および特許文献に記載されており、例えばブリンスキー（Bulinski）による(1997), J. Cell. Sci., 110: 3055, 3064; Panda (1997) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 94: 10560-10564 ; マーラト（Muhlradt）による(1997) Cancer Res., 57: 3344-3346;ニコラウ（Nicolaou）による(1997) Nature 387: 268-272;バスケス（Vasquez）による(1997) Mol. Biol. Cell. 8: 973-985;パンダ（Panda）による(1996) J. Biol. Chem., 271: 29807-29812を参照。
【００２６】
本明細書で使用する用語「パクリタキセル」とは、タキソール（登録商標）（ＮＳＣ番号：125973）として商業的に入手可能な薬物を意味する。タキソール（登録商標）は、チューブリン分子から安定化された微小管の束（このものは、有糸分裂に適当な構造に再構築することができない）ヘの重合を増大させることによって、真核生物細胞の複製を抑制する。多数の入手可能な化学療法剤において、パクリタキセルは薬物抵抗性の腫瘍（例えば、卵巣腫瘍および乳腺腫瘍を含む）についての臨床トライアルにおけるその効能のために関心を持たれている（ホーキンス（Hawkins）による(1992) Oncology, 6: 17-23, ホーヴィツ（Horwitz）（1992）によるTrends Pharmacol. Sci., 13: 134-146, ローヴィンスキー（Rowinsky）による（1990）, J. Natl. Canc. inst., 82: 1247-1259）。
【００２７】
特に好ましい抗増殖性細胞毒性剤は、パクリタキセルに似た活性を有する化合物である。これらとしては、パクリタキセルおよびパクリタキセル誘導体（パクリタキセル様化合物）、並びにそのアナログを含むが、これらに限定されない。パクリタキセルおよびその誘導体は商業的に入手することができる。加えて、パクリタキセルおよびパクリタキセル誘導体、並びにそのアナログの製造法は、当該分野の当業者にとってよく知られている（例えば、米国特許第5,569,729; 5,565,478; 5,530,020; 5,527,924; 5,508,447; 5,489,589; 5,488,116; 5,484,809; 5,478,854; 5,478,736; 5,476,120; 5,468,769; 5,461,169; 5,440,057; 5,422,364; 5,411,984; 5,402,972および5,296,506を参照）。
【００２８】
従って、本発明の方法および組成物における使用に適当な抗増殖性細胞毒性剤としては、微小管安定化剤（例えば、パクリタキセル（このものは、タキソール（登録商標）としても知られる））、ドセタキセル（docetaxel）（このものは、タキソテレ（Taxotere）（登録商標）としても知られる））、７−Ｏ−メチルチオメチルパクリタキセル（米国特許5,646,176号に開示されている）、４−デスアセチル-４−メチルカルボネートパクリタキセル、３’−ｔｅｒｔ−３’−Ｎ−ｔｅｒｔ−ブチルオキシカルボニル−４−デアセチル−３’−デフェニル−３’−Ｎ−デベンゾイル−４−Ｏ−メトキシカルボニルパクリタキセル（このものは、USSN60/179,965、２０００年２月３日に出願、本明細書の実施例１７）、Ｃ−４−メチルカルボネートパクリタキセル（このものは、ＷＯ94/14787に開示されている）、エポチロンＡ、エポチロンＢ、エポチロンＣ、エポチロンＤ、デスオキシエポチロンＡ、デスエポチロンＢ、［１Ｓ−［１Ｒ＊，３Ｒ＊（Ｅ），７Ｒ＊，１０Ｓ＊，１１Ｒ＊，１２Ｒ＊，１６Ｓ＊］］−７，１１−ジヒドロキシ−８，８，１０，１２，１６−ペンタメチル−３−［１−メチル−２−（２−メチル−４−チアゾリル）エテニル］−４−アザ−１７−オキサビシクロ［１４．１．０］ヘプタデカン−５，９−ジオン（このものはＷＯ99/02514に開示されている）、［１Ｓ−［１Ｒ＊，３Ｒ＊（Ｅ），７Ｒ＊，１０Ｓ＊，１１Ｒ＊，１２Ｒ＊，１６Ｓ＊］］−３−［２−［２−（アミノメチル）−４−チアゾリル］−１−メチルエテニル］−７，１１−ジヒドロキシ−８，８，１０，１２，１６−ペンタメチル−４，１７−ジオキサビシクロ［１４．１．０］ヘプタデカン−５，９−ジオン（このものは、ＵＳＳＮ09/506, 481（２０００年２月１７日に出願）に開示されている、本明細書における実施例７および８）、およびそれらの誘導体、並びに微小管分裂剤を含むが、これらに限定されない。
【００２９】
細胞毒性剤（例えば、エピドフィロトキシン）；抗新生生物性の酵素；トポイソメラーゼインヒビター；プロカルバジン；ミドザントロン；白金配位錯体（例えば、シスプラチンおよびカルボプラチン）；生物学的な反応のモディファイヤー；成長インヒビター；抗ホルモン性の治療剤；ロイコボリン；テガフール（tegafur）および造血性成長因子もまた適当である。
【００３０】
別の抗増殖性細胞毒性剤としては、例えばメルファラン（melphalan）、ヘキサメチルメラミン、チオテパ（thiotepa）、シタラビン（cytarabin）、イダトレキセート（idatrexate）、トリメトキセート（trimetrexate）、デカルバジン（decarbazine）、Ｌ−アスパラギナーゼ、カンプトテシン（camptothecin）、トポテカン（topotecan）、ビカルタミド（bicalutamide）、フルタミド（flutamide）、レウロプロリデ（leuroprolide）、ピリドベンゾインドール誘導体、インターフェロンおよびインターロイキンを含む。好ましいクラスの抗増殖性細胞毒性の剤はＥＧＦＲインヒビター、Ｈｅｒ−２インヒビター、ＣＤＫインヒビターおよびヘルセプチン（Herceptin）（登録商標）（トラスツズマブ（trastumab））を挙げられる。特に好ましい抗増殖性細胞分裂停止剤としては、パクリタキセル、シス−プラチン、カルボプラチン、エポチロン、ゲムシタビン、ＣＰＴ−１１、５−フルオロウラシル、テガフール（tegafur）、ロイコボリン（leucovorin）およびＥＧＦＲインヒビター（例えば、イレッサ（登録商標）（ＺＤ1839、４−（３−クロロ−４−フルオロフェニルアミノ）−７−メトキシ−６−（３−（４−モルホリニル）プロポキシ）キナゾリンおよびＯＳＩ−774（４−（３−エチニルフェニルアミノ）−６，７−ビス（２−メトキシエトキシ）キナゾリン）を挙げられる。
【００３１】
本発明の１態様において、本発明を用いた処置の前またはその間、細胞分裂停止剤を用いる処置より、増殖性の癌細胞を非増殖性にする。本明細書で使用する用語「細胞分裂停止剤」とは「静止剤」と同義であり、このものは細胞分裂または腫瘍の増殖の速度を緩和し、その結果細胞を非増殖性とするかまたは該細胞の挙動が非増殖性細胞の挙動に近似するいずれかの手法を意味する。本発明の典型的な非増殖性の細胞分裂停止剤または「停止」剤とは、例えばホルモンおよびステロイド（これは、合成アナログを含む）：１７−α−エニチルエストラジオール、ジエチルスチルベストロール（Diethylstillbestrol）、テストロステロン（Testosterone）、プレドニゾン（Prednisone）、フルオキシメステロン（Fluoxymesterone）、ドロモスタロノロン（Dromostanolone）プロピオネート、テストラクトン（Testrolactone）、メゲストロアセテート（Megestrolacetate）、メチルプレドニゾロン（Methylprednisolone）、メチル−テストステロン、プレドニゾロン、トリアムシノロン（Triamcinolone）、ホロトリアニセン（hlorotrianisene）、ヒドロキシプロゲステロン、アミノグルテチミデ（Aminoglutethimide）、エストラムスチン（Estramustine）、メドロキシプロゲステロンアセテート（Medroxyprogesteronacetate）、ロイプロリデ（Leuprolide）、フルタミド（Flutamide）、トレラミフェン（Toremifene）、ゾラデックス（Zoladex）を含むが、これらに限定されない。
【００３２】
細胞分裂停止剤として適当なものとしては、例えば抗血管形成剤（例えば、マトリックスメタロプロテナーゼインヒビター）が挙げられる。他のＶＥＧＦインヒビター（例えば、抗−ＶＥＧＦ抗生物質）および小分子（例えば、ＺＤ６４７４およびＳＵ６６６８）もまた含まれる。抗−Ｈｅｒ２抗生物質（ジェネテック（Genetech）製）もまた使用することができる。適当なＥＧＦＲインヒビターとしては、ＥＫＢ−５６９（このものは、可逆的なインヒビターである）を挙げられる。ＥＦＧＲについて免疫特異的なイムクロン（Imclone）抗体Ｃ２２５およびｓｒｃインヒビターをも含む。
【００３３】
抗増殖性細胞分裂停止剤としての使用に適当なものとしては、カソデックス（登録商標）（ビカルタミド（bicalutamide）、アストラゼネカ（Astra Zeneca）製）（このものは、アンドロゲン依存性の癌腫を非増殖性とする）を挙げられる。細胞分裂停止剤の更なる別例としては、抗エストロゲン性のタモキシフェン（このものは、エストロゲン依存性の乳癌の増殖または成長を抑制する）を挙げられる。細胞による増殖性シグナルの伝達のインヒビターとしては、細胞分裂停止剤を挙げられる。例えば、上皮細胞成長因子、Ｈｅｒ−２インヒビター、ＭＥＫ−１キナーゼインヒビター、ＭＡＰＫキナーゼインヒビター、ＰＩ３インヒビター、ＳｒｃキナーゼインヒビターおよびＰＤＧＦインヒビターを挙げられる。
【００３４】
上記の通り、細胞分裂停止剤はまた、抗血管形成剤および抗血管剤を含む。これらは、固形腫瘍への血流を遮断することによってそれらから栄養を奪うことにより、癌細胞を静止させる。去勢（これも、アンドロゲン依存性の癌腫を非増殖性とする）をも使用することができる。血流の外科的な遮断以外の方法による飢餓もまた、細胞分裂停止剤の別例である。特に好ましい種類の抗血管性細胞分裂停止剤としては、コンブレタスタチン（combretastatins）を挙げられる。他の典型的な細胞分裂停止剤としては、例えばＭＥＴキナーゼインヒビター、ＭＡＰキナーゼインヒビター、非受容性および受容性チロシンキナーゼのインヒビター、インテグリン情報伝達のインヒビター、並びにインスリン様成長因子受容体のインヒビターを含む。
【００３５】
本発明の好ましい態様において、該方法は２つ以上の抗新生生物剤の組み合わせの投与を含む。例えば、本明細書で提示するデータは、ヒト前立腺癌ＭＤＡ−ＰＣａ−２ｂ異種移植片を式Ｉの化合物を用いて処置する前に、宿主動物を外科的に去勢することによって、該移植片は静止することを示す。
【００３６】
これらの化学療法剤のほとんどの安全で且つ有効な投与の方法は、当該分野の当業者にとって知られる。加えて、それらの投与は標準的な文献に記載されている。例えば、化学療法剤の多数の投与については、「Physicians' Desk Reference」(PDR), 例えば1996編 (Medical Economics Company, Montvale, NJ 07645-1742, USA）（このものは本明細書の一部を構成する）に記載されている。
【００３７】
好ましい式Ｉの化合物は、式中、
Ｒ１は、ＢｒまたはＣＮであり；
Ｒ２は、場合により置換されたベンジルであり；
Ｒ３は、場合により置換された低級アルキル、場合により置換されたフェニル、場合により置換された２−チエニルまたは場合により置換された１−ピペリジニルであり；
Ｒ４は、水素またはメチルであり；
Ｚ１は、ＣＯ、ＳＯ２またはＳＯ２Ｎ（Ｒ５）−であり；
Ｒ５は、場合により置換された低級アルキルまたは場合により置換されたフェニルであり、そして
ｎは、１である。
【００３８】
本発明の方法および組成物において使用するのにより好ましい式Ｉの化合物は、式中、
Ｒ１は、ＣＮであり；
Ｒ２は、場合により置換されたベンジルであり；
Ｒ３は、場合により置換された低級アルキル、場合により置換されたフェニル、場合により置換された２−チエニルまたは場合により置換された１−ピペリジニルであり；
Ｒ４は、水素またはメチルであり；
Ｚは、ＣＯまたはＳＯ２であり；そして、
ｎは、１である。
【００３９】
本発明の方法において使用するのに最も好ましい化合物において、式中、
Ｒ１は、ＣＮであり；
Ｒ２は、ベンジルであり；
Ｒ３は、ｎ−プロピル、ｎ−ブチル、３−メトキシプロピル、２−チエニル、５−ブロモ−２−チエニル、フェニル、４−メトキシフェニルまたは１−ピペリジニルであり；
Ｒ４は、水素であり；
Ｚは、ＳＯ２であり；そして、
ｎは、１である。
【００４０】
本発明の方法および組成物において特に有用な式Ｉの化合物としては、以下の化合物およびそれらの医薬的に許容し得る塩を含む。
（Ｒ）−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−４−（２−チエニルスルホニル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン−７−カルボニトリル；
（Ｒ）−７−シアノー２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−４−（１−オキソブチル）−３−（フェニルメチル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン；
（Ｒ）−４−［（５−ブロモ−２−チエニル）スルホニル］−７−シアノ−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン；
（Ｒ）−７−シアノ−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−４−［（４−メトキシフェニル）スルホニル］−３−（フェニルメチル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン；
（Ｒ）−７−シアノ−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル−４−（フェニルスルホニル）−１Ｈ−１，４−ベンゾアゼピン；
（Ｒ）−７−シアノ−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−４−（プロピルスルホニル）−１Ｈ−１，４−ベンゾアゼピン；
（Ｒ）−４−（ブチルスルホニル）−７−シアノ−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−１Ｈ−１，４−ベンゾアゼピン；
（Ｒ）−７−シアノ−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−４−（１−ピペリジニルスルホニル）−１Ｈ−１，４−ベンゾアゼピン；
（Ｒ）−４−（３−メトキシプロピルスルホニル）−７−シアノ−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン。
【００４１】
（Ｒ）−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−４−（２−チエニルスルホニル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン−７−カルボニトリルのメタンスルホン酸塩は、本発明の方法および組成物における使用に特に好ましい。
【００４２】
本発明の好ましい態様において、抗増殖性細胞毒性剤はパクリタキセル、ドセタキセル、７−Ｏ−メチルチオメチルパクリタキセル、４−デアセチル−４−メチルカルボネートパクリタキセル、３’−ｔｅｒｔ−ブチル−３’−Ｎ−ｔｅｒｔ−ブチルオキシカルボニル−４−デアセチル−３’−デフェニル−３’−Ｎ−デベンゾイル−４−Ｏ−メトキシカルボニルパクリタキセル、Ｃ−４メチルカルボネートパクリタキセル、エポチロンＡ、エポチロンＢ、エポチロンＣ、エポチロンＤ、デスオキシエポチロンＡ、デスオキシエポチロンＢ、［１Ｓ−［１Ｒ＊，３Ｒ＊（Ｅ），７Ｒ＊，１０Ｓ＊，１１Ｒ＊，１２Ｒ＊，１６Ｓ＊］］−７，１１−ジヒドロキシ−８，８，１０，１２，１６−ペンタメチル−３−［１−メチル−２−（２−メチル−４−チアゾリル）エテニル］−４−アザ−１７−オキサビシクロ［１４．１．０］ヘプタデカン−５，９−ジオンおよび［１Ｓ−［１Ｒ＊，３Ｒ＊（Ｅ），７Ｒ＊，１０Ｓ＊，１１Ｒ＊，１２Ｒ＊，１６Ｓ＊］］−３−［２−［２−（アミノメチル）−４−チアゾリル］−１−メチルエテニル］−７，１１−ジヒドロキシ−８，８，１０，１２，１６−ペンタメチル−４，１７−ジオキサビシクロ［１４．１．０］ヘプタデカン−５，９−ジオンからなる群から選ばれる。式Ｉの化合物は、（Ｒ）−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−４−（２−チエニルスルホニル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン−７−カルボニトリルまたはその医薬的に許容し得る塩である。
【００４３】
別の好ましい態様において、細胞毒性剤はパクリタキセルであって、式Ｉの化合物は（Ｒ）−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−４−（２−チエニルスルホニル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン−７−カルボニトリルまたはその医薬的に許容し得る塩である。
【００４４】
本発明の別の好ましい態様において、細胞毒性剤は［１Ｓ−［１Ｒ＊，３Ｒ＊（Ｅ），７Ｒ＊，１０Ｓ＊，１１Ｒ＊，１２Ｒ＊，１６Ｓ＊］］−７，１１−ジヒドロキシ−８，８，１０，１２，１６−ペンタメチル−３−［１−メチル−２−（２−メチル−４−チアゾリル）エテニル］−４−アザ−１７−オキサビシクロ−［１４．１．０］ヘプタデカン−５，９−ジオンであって、式Ｉの化合物は（Ｒ）−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−４−（２−チエニルスルホニル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン−７−カルボニトリルまたはその医薬的に許容し得る塩である。
【００４５】
細胞分裂停止剤（このものは、イレッサ（登録商標）、ヘルセプチン（登録商標）、タモキシフェン、並びに外科的および化学的な去勢からなる群から選ばれる）を使用する方法は、本発明の組み合わせ方法において使用するのに特に好ましい。
【００４６】
本発明の化合物について記載する場合に、用語「低級アルキル」または「低級アルカ」（別の基の一部として）は、炭素数が１〜６個（１〜４個が好ましい）の無置換アルキル基を意味する。
【００４７】
用語「アラルキル」とは、低級アルキルによって直接に結合したアリール基を意味する。好ましいアラルキル基はベンジルである。
【００４８】
用語「アリール」とは、環部分内の炭素数が６〜１２個である単環式または二環式の芳香族炭化水素基を意味する。本明細書における典型的なアリールとしては、フェニル、ナフチルおよびビフェニル基を挙げられる。
【００４９】
用語「ヘテロ環」とは、完全に飽和または不飽和の芳香族性または非芳香族性の環状基を意味する。このものは、４〜７員の単環式、７〜１１員の二環式または１０〜１５員の三環式であって、少なくとも１つの炭素原子を含有する環内に少なくとも１つのヘテロ原子を有する。ヘテロ原子を含有するヘテロ環基の各々の環は、窒素、酸素および硫黄から選ばれるヘテロ原子を１、２、３または４個有し、ここで該窒素および硫黄のヘテロ原子もまた場合により酸化されていてもよく、該窒素ヘテロ原子もまた場合により４級化されていてもよい。該ヘテロ環基は、いずれかのヘテロ原子または炭素原子で結合することができる。
【００５０】
典型的な単環式のヘテロ環基としては、例えばピロリジニル、ピロリル、インドリル、ピラゾリル、オキセタニル、ピラゾリニル、イミダゾリル、イミダゾリニル、イミダゾリジニル、オキサゾリル、オキサゾリジニル、イソオキサゾリニル、イソキサゾリル、チアゾリル、チアジアゾリル、チアゾリジニル、イソチアゾリル、イソチアゾリジニル、フリル、テトラヒドロフリル、チエニル、オキサジアゾリル、ピペリジニル、ピペラジニル、２−オキシピペラジニル、２−オキソピペリジニル、２−オキソピロリジニル、２−オキサゼピニル、アゼピニル、４−ピペリドニル、ピリジル、Ｎ−オキソピリジル、ピラジニル、ピリミジニル、ピリダジニル、テトラヒドロチオピラニル、テトラヒドロピラニル、モルホリニル、チアモルホリニル、チアモルホリニルスルホキシド、テトラヒドロチオピラニルスルホン、チアモルホリニルスルホン、１，３−ジオキソラン、テトラヒドロ−１，１−ジオキソチエニル、ジオキサニル、イソチアゾリジニル、チエタニル、チイラニル（thiiranyl）、トリアジニル、トリアゾリルなどを含む。
【００５１】
典型的な二環式のヘテロ環基としては、例えばベンゾチアゾリル、ベンゾオキサゾリル、ベンゾチエニル、キノリニル、キノリニル−Ｎ−オキシド、テトラヒドロイソキノリニル、イソキノリニル、ベンゾイミダゾリル、ベンゾピラニル、インドリジニル、ベンゾフリル、クロモニル、クマリニル、キノリニル、キノキサリニル、インダゾリル、ピロロピリジニル、フロピリジニル（例えば、フロ［２，３−ｃ］ピリジニル、フロ［３．１−ｂ］ピリジニルまたはフロ［２，３−ｂ］ピリジニル）、ジヒドロイソインドリル、ジヒドロキナゾリニル（例えば、３，４−ジヒドロ−４−オキソキナゾリニル）、ベンゾイソチアゾリル、ベンゾイソオキサゾリル、ベンゾジアジニル、ベンゾフラニル、ベンゾチオピラニル、ベンゾトリアゾリル、ベンゾピラゾリル、ジヒドロベンゾフリル、ジヒドロベンゾチエニル、ジヒドロベンゾチオピラニル、ジヒドロベンゾチオピラニルスルホン、ジヒドロベンゾピラニル、インドリニル、イソクロマニル、イソインドリニル、ナフチリジニル（naphthylidinyl）、フタラジニル、ピペロニル、プリニル、ピリドピリジル、キナゾリニル、テトラヒドロキノリニル、チエノフリル、チエノピリジル、チエノチエニルなどを含む。
【００５２】
基が場合により置換されていると言う場合には、そのものは１〜５個（１〜３個が好ましい）の置換基で置換され得る。該置換基としては、例えばＦ、Ｃｌ、Ｂｒ、Ｉ、トリフルオロメチル、トリフルオロメトキシ、ヒドロキシ、低級アルコキシ、シクロアルコキシ、ヘテロシクロオキシ、オキソ、低級アルカノイル、アリールオキシ、低級アルカノイルオキシ、アミノ、低級アルキルアミノ、アリールアミノ、アラルキルアミノ、シクロアルキルアミノ、ヘテロシクロアミノ、ジ置換のアミン（ここで、２つのアミノ置換基は独立して、低級アルキル、アリールまたはアラルキルから選ばれる）、低級アルカノイルアミノ、アロイルアミノ、アルアルカノイルアミノ（aralkanoylamino）、置換低級アルカノイルアミノ、置換アリールアミノ、置換アルアルキルアノイルアミノ（substituted aralkylanoylamino）、チオール、低級アルキルチオ、アリールチオ、アラルキルチオ、シクロアルキルチオ、ヘテロシクロチオ、低級アルキルチオノ（lower alkyltiono）、アリールチオノ、アラルキルチオノ、低級アルキルスルホニル、アリールスルホニル、アラルキルスルホニル、スルホンアミド（例えば、ＳＯ２ＮＨ２）、置換されたスルホンアミド、ニトロ、シアノ、カルボキシ、カルバミル（例えば、ＣＯＮＨ２）、置換されたカルバミル（例えば、ＣＯＮＨ−低級アルキル、ＣＯＮＨ−アリール、ＣＯＮＨ−アラルキルまたは該窒素原子上に低級アルキル、アリールまたはアラルキルから独立して選ばれる置換基を２つ有する場合）、低級アルコキシカルボニル、アリール、置換されたアリール、グアニジノおよびヘテロ環（例えば、インドリル、イミダゾリル、フリル、チエニル、チアゾリル、ピロリジル、ピリジル、ピリミジルなど）が挙げられる。置換基が更に置換されていると上で記載する場合に、そのものはＦ、Ｃｌ、Ｂｒ、Ｉ、場合により置換された低級アルキル、ヒドロキシ、場合により置換された低級アルコキシ、場合により置換されたアリールまたは場合により置換されたアラルキルで置換される。
【００５３】
本発明の式Ｉの化合物の全ての立体異性体は、混合物または純粋もしくは実質的に純粋な形態であると企図する。式Ｉの化合物の定義は、全ての可能な立体異性体およびその混合物を含む。式Ｉの定義は、ラセミ形態および指定の活性を有する単離した光学異性体をとりわけ特に含む。
【００５４】
式Ｉの化合物は、米国特許第6.011,029号に記載の方法によって製造することができる。本明細書に記載する全ての刊行物および特許は、本明細書の一部を構成する。
【００５５】
式Ｉの化合物は様々な医薬的に許容し得る塩の形態で有用である。用語「医薬的に許容し得る塩」とは、薬化学者にとって明らかであろう塩形態、すなわち実質的に無毒であって所望する薬物動態学的な性質、嗜好性、吸収、分布（distribution）、代謝または分泌を示す形態を意味する。他の因子（このものは本来より実際的であって、選択の際にも重要である）としては、原料の費用、並びに得られるバルク薬物の結晶化の容易さ、収率、安定性および吸湿性が挙げられる。便利なことに、医薬組成物は活性成分またはその医薬的に許容し得る塩を、医薬的に許容し得る担体と組み合わせることから製造することができる。
【００５６】
本発明の方法および組成物において使用するのに適当な式Ｉの化合物、細胞毒性剤および細胞分裂停止剤の医薬的に許容し得る塩としては、様々な有機酸および無機酸（例えば、塩酸、ヒドロキシメタンスルホン酸、臭化水素酸、メタンスルホン酸、硫酸、酢酸、トリフルオロ酢酸、マレイン酸、ベンゼンスルホン酸、トルエンスルホン酸、スルファミン酸、グリコール酸、ステアリン酸、乳酸、リンゴ酸、パモ酸（pamoic acid）、スルファニル酸（sulfanillic acid）、２−アセトキシ安息香酸、フマル酸、トルエンスルホン酸、メタンスルホン酸、エタンジスルホン酸、シュウ酸、イセチオン酸（isethonic acid））と形成する塩を含むが、これらに限定されない。該医薬的に許容し得る塩としては、様々な他の医薬的に許容し得る塩（例えば、硝酸塩、リン酸塩、ホウ酸塩、酒石酸塩、クエン酸塩、コハク酸塩、安息香酸塩、アスコルビン酸塩、サリチル酸塩など）を含む。カチオン（例えば、４級アンモニウムイオン）は、アニオン性分子の医薬的に許容し得る対イオンとして企図する。
【００５７】
式Ｉの化合物の好ましい塩としては、塩酸塩、メタンスルホン酸塩およびトリフルオロ酢酸塩を含むが、メタンスルホン酸塩がより好ましい。加えて、式Ｉの化合物の医薬的に許容し得る塩は、アルカリ金属（例えば、ナトリウム、カリウムおよびリチウム）；アルカリ土類金属（例えば、カルシウムおよびマグネシウム）；有機塩基（例えば、ジシクロヘキシルアミン、トリブチルアミンおよびピリジン）およびアミノ酸（例えば、アルギニン、リシン）などと形成することができる。
【００５８】
本発明の医薬的に許容し得る塩は、通常の化学的な方法によって製造することができる。一般的に、該塩は遊離の塩基または酸を、化学量論的な量または過剰量の、所望の塩を形成する無機または有機の酸または塩基と、適当な溶媒まは溶媒の組み合わせ中で反応させることによって製造する。
【００５９】
本発明はまた癌の処理において有用な医薬組成物を包含する。このものは、医薬的に許容し得る担体または希釈物があるなしで本発明の組み合わせの治療学的に有効な量を投与することを含む。本発明の相乗的な医薬組成物は、任意の抗増殖性細胞毒性剤、任意の静止剤、式Ｉの化合物および医薬的に許容し得る担体を含む。該方法は、細胞毒性剤および／または細胞分裂停止剤を、式Ｉの化合物と組み合わせて使用することを包含する。本発明の組成物は、更に１つ以上の別の医薬的に許容し得る成分（例えば、ミョウバン、安定化剤、抗菌剤、緩衝化剤、着色剤、芳香剤、アジュバントなど）を含むことができる。抗新生生物剤、任意の細胞分裂停止剤（化学品）、式Ｉの化合物および本発明の組成物を、経口または非経口（例えば、静脈内、筋肉内、腹膜腔内、皮下、直腸および局所の投与経路を含む）で投与することができる。
【００６０】
経口的に使用する場合には、抗新生生物剤、細胞分裂停止剤、本発明の式Ｉの化合物および組成物を例えば、錠剤もしくはカプセル剤、散剤、分散可能な顆粒またはカシェ剤の形態で投与することができる。経口的に使用する錠剤の場合には、通常使用する担体としては、例えばラクトース、コーンスターチ、炭酸マグネシウム、タルクおよび糖を含み、そして滑沢剤（例えば、ステアリン酸マグネシウム）を通常加える。カプセル形態で経口投与する場合には、有用な担体は、例えばラクトース、コーンスターチ、炭酸マグネシウム、タルクおよび糖を含む。水性懸濁剤を経口投与に使用する場合には、乳化剤および／または懸濁化剤を通常加える。加えて、甘味剤および／または芳香剤を該経口組成物に加えることができる。筋肉内、腹膜腔内、皮下および静脈内で使用する場合には、活性成分の減菌した溶液を通常使用し、そして該溶液のｐＨを適当に調節して緩衝化すべきである。静脈内使用の場合には、該溶質の全濃度をコントロールして、該製剤を等張性とすべきである。本発明の好ましい態様の場合には、式Ｉの化合物またはその医薬的に許容し得る塩を静脈内投与のために、スルホブチルエーテル−７−β−シクロデキストリンまたは２−ヒドロキシプロピル−β−シクロデキストリンと一緒に製剤化する。
【００６１】
本発明に従って坐剤を製造する場合には、低融解ワックス（例えば、脂肪酸グリセリドまたはココアバターの混合物）を最初に融解し、活性成分を例えば撹拌によって、ワックス中に均一に分散する。次いで、該溶融した均一な混合物を便利な大きさの型に注ぎ、冷却する。そのことにより、固化する。
【００６２】
液体製剤としては、例えば液剤、懸濁剤および乳剤を含む。該製剤は、水または非経口注射のための水／プロピレングリコール液剤によって例示される。液体製剤としてはまた、鼻腔内投与のための溶液を含み得る。吸入に適当なエアロゾール製剤としては、例えば溶液および散剤形態の固体を含むことができ、これらは医薬的に許容し得る担体（例えば、不活性圧縮ガス）と組み合わせることができる。
【００６３】
使用直前に経口または非経口投与のための液体製剤に変換することを意図する固体の製剤をも含む。該液体形態としては、例えば溶液、懸濁液および乳濁液を含む。
【００６４】
式Ｉの化合物、並びに本明細書に記載の細胞毒性剤および細胞分裂停止剤を経皮運搬することもできる。該経皮組成物はクリーム剤、ローション剤、エアロゾール剤および／または乳剤の形態をとることができ、そしてこのものはこの目的のために当該分野で一般的であるマトリックスまたは貯蔵タイプの経皮パッチ中に含むことができる。
【００６５】
本発明の組み合わせはまた、処置する疾患についての特別の有用性で選択される他の公知の療法と組み合わせて使用することもできる。
【００６６】
一定の用量で製剤化する場合には、本発明の組み合わせ組成物の活性成分を以下に記載する用量範囲内で使用する。あるいは、細胞毒性剤、細胞分裂停止剤および式Ｉの化合物を以下に記載する用量範囲内で別々に投与することができる。本発明の好ましい態様においては、抗新生生物剤を以下に記載する用量範囲内で投与して、その後に式Ｉの化合物を以下に記載する用量範囲内で投与する。
【００６７】
表１は、本発明の方法において使用するのに好ましい化学療法の組み合わせおよび典型的な用量を記載する。「式Ｉの化合物」と記載する場合には、本明細書に記載する式Ｉのいずれかの改変を該化学療法の組み合わせにおいて使用することを企図する。化合物２を使用することが好ましい。
【表１】
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【表２】
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【表３】
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【表４】
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【００６８】
上の表１において、「５ＦＵ」は５−フルオロウラシルを意味する。「ロイコボリン」はロイコボリンカルシウムとして使用することができる。「ＵＦＴ」は、テガフールとウラシルのモル比が１：４である。そして、「エポチロン」はＷＯ９９／０２５１４またはＷＯ００／５０４２３（これらは本明細書の一部を構成する）に記載されている化合物であることが好ましい。
【００６９】
表１は本発明の医薬組成物を製剤化する場合の本発明の式Ｉの化合物およびある抗癌剤の典型的な用量を提示するが、、医師は処置する患者の病状によって正当化される好ましい用量を使用することができる。例えば、式Ｉの化合物が化合物２である場合は、処置を必要とする限り、３週間毎に約２５〜５００ｍｇ／ｍ２の範囲の用量で投与することが好ましい。シスプラチンの好ましい用量は約７５〜１２０ｍｇ／ｍ２であり、このものは３週間毎に投与する。カルボプラチンの好ましい用量は、約２００〜６００ｍｇ／ｍ２の範囲内であるか、またはＡＵＣが約０．５〜８ｍｇ／ｍｌ×分の範囲内であって、ＡＵＣが約４〜６ｍｇ／ｍｌ×分であることが最も好ましい。使用する方法が放射線を使用する場合には、好ましい用量は約２００〜６００ｃＧｙの範囲内である。ＣＰＴ−１１の好ましい用量は、１週間に１回、約１００〜１２５ｍｇ／ｍ２の範囲内である。パクリタキセルの好ましい用量は、２１日毎に約１３０〜２２５ｍｇ／ｍ２である。ゲムシタビンの好ましい用量は約８０〜１５００ｍｇ／ｍ２の範囲内であって、このものは１週間に１回投与する。ＵＦＴは、ロイコボリン投与と組み合わせて、毎日約３００〜４００ｍｇ／ｍ２の範囲で使用することが好ましい。ロイコボリンの好ましい用量は、１週間に１回、約１０〜６００ｍｇ／ｍ２で投与する。
【００７０】
使用する実際の用量は、患者の要求および処置する病気の激しさに応じて変えることができる。ある状況についての適当な用量の決定は当該分野の通常の知識の範囲内である。通常、処置は化合物の最適の用量よりも少ない用量を用いて開始する。その後に、そのような状況下での最適な効果が得られるまで、該用量を少量ずつ増加させる。便利のため、所望するならば、総１日用量を分けて、１日の間に数回投与することができる。間欠療法（例えば、３週間のうち１週間か、または４週間のうち３週間）をも使用することができる。
【００７１】
ある癌を、式Ｉの化合物および多数の抗癌剤を用いて有効に処置することができる。そのような３つおよび４つの組み合わせはより大きな効能を与えることができる。そのような３つおよび４つの組み合わせを使用する場合には、上記の用量を使用することができる。従って、上記表１における他のそのような組み合わせは、例えば「化合物２」と、（１）ミトザントロン＋プレドニゾン；（２）ドキソルビシン＋タキサン；または（３）ヘルセプチン＋タキサンとの組み合わせを含む。上記の組み合わせのいずれかにおいて、５−ＦＵをＵＦＴでおき代えることができる。
【００７２】
本発明の方法または組成物を使用する場合には、臨床ケースにおいて腫瘍の増殖または転移のモジュレートに使用する他の薬剤（例えば、鎮吐剤）をも所望に応じて投与することができる。
【００７３】
本発明の組み合わせ化学療法を使用する臨床研究もまた行うことができる。該研究において、３週間間隔でタキソール（登録商標）（１３５ｍｇ／ｍ２）を約３時間注入投与し、続いて化合物２（５０ｍｇ／ｍ２）を約１時間注入投与することが特に好ましい。別のプロトコールの場合には、タキソール（登録商標）（８０ｍｇ／ｍ２）を約１時間注入し、続いて化合物２（８０ｍｇ／ｍ２）を注入する。このプロトコールは、１週間に１回の投与を含む。別のプロトコールは、タキソール（登録商標）（１３５ｍｇ／ｍ２）を約３時間注入し、続いてカルボプラチン注入（ＡＵＣ＝６）を約２０分間注入することを含む３つの組み合わせの投与を含む。ここで、タキソール（登録商標）およびカルボプラチンは３週間毎にこの様式で投与する。本プロトコールにおいて、化合物２は８０ｍｇ／ｍ２を１時間の注入で、毎週患者に投与する。
【００７４】
本発明は癌の相乗処置の方法を包含し、ここで細胞毒性剤および／または細胞分裂停止剤、並びに式Ｉの化合物は同時にまたは連続して投与する。従って、抗新生生物剤および式Ｉの化合物を含む医薬製剤はある処置のための組み合わせを投与するのが有利となり得るが、別の処置においては該細胞毒性剤または細胞分裂停止剤の前投与が有利となり得る。本発明の抗新生生物剤および式Ｉの化合物の組み合わせは、癌（癌性腫瘍が好ましい）を処置する他の方法（例えば、放射線療法および手術を含むが、これらに限定されない）と組み合わせて使用することができるとも理解される。更に、細胞分裂停止剤を他の相乗療法のいずれかまたは全てを用いて連続してまたは同時に投与することができるとも理解される。
【００７５】
本発明の組み合わせは、他のよく知られている治療剤（このものは、処置する病気にたいするある有用性について選択する）と一緒に共投与することもできる。あるいは、複数の組み合わせ製剤が不適当である場合には、本発明の組み合わせを公知の医薬的に許容し得る薬剤を用いて連続して使用することができる。
【００７６】
化学療法剤および／または放射線療法を、当該分野でよく知られている治療学的なプロトコールに従って投与することができる。化学療法剤および／または放射線療法の投与は、処置する疾患および該疾患における該化学療法剤および／または放射線療法の公知の効果に応じて変えることができることは、当該分野の当業者にとって明らかであろう。また、当該分野の医師の知識に従って、治療学的なプロトコール（例えば、用量および投与時間）を、投与治療剤（すなわち、抗新生生物剤または放射線）が患者に及ぼす観察される効果を考慮して、および投与治療剤にたいする該疾患の観察される応答を考慮して変えることができる。
【００７７】
本発明の方法において、式Ｉの化合物を細胞毒性剤および／または放射線および／または細胞分裂停止剤と同時にまたは連続して投与する。従って、化学療法剤および式Ｉの化合物、または放射線および式Ｉの化合物を同時にまたは本質的に同時に投与することは必要ではない。同時投与または本質的に同時投与の利点は、当該分野の医師の決定の範囲内である。
【００７８】
また通常、式Ｉの化合物、任意の細胞分裂停止剤および任意の細胞毒性剤は同じ医薬組成物中で投与する必要はなく、そして物理的なおよび化学的な性質が異なるために、異なる経路で投与しなければいけない。例えば、式Ｉの化合物は経口投与して、それらの良好な血中レベルを得たり、維持することができ、一方で該化学療法剤は静脈内投与することができる。投与様式および（可能ならば、同じ医薬組成物での）投与の適否の決定は、当該分野の医師の知識の範囲内である。初期投与は当該分野で知られる確立されたプロトコールに従って行なうことができ、次いで観察された効果に基づいて、用量、投与様式および投与時間を当該分野の医師によって改変することができる。
【００７９】
式Ｉの化合物および細胞毒性剤および／または放射線および／または細胞分裂停止剤の特定の選択は、付き添いの医師の診断、患者の病状についての彼等の判断および適当な処置プロトコールによるであろう。式Ｉの化合物および／または細胞毒性剤および／または細胞分裂停止剤および／または放射線を、増殖性疾患の性質、患者の病気、並びに式Ｉの化合物と組み合わせる（すなわち、１回処置プロトコールで）化学療法剤および／または細胞分裂停止剤および／または放射線の実際の選択に応じて、併用して（例えば、同時に、本質的には同時に、または同じ処置プロトコールで）または連続して投与することができる。
【００８０】
式Ｉの化合物および細胞毒性剤および／または放射線および／または細胞分裂停止剤を同時にまたは本質的に同時に投与しない場合には、式Ｉの化合物、化学療法剤および／または細胞分裂停止剤および／または放射線の投与の開始順序を変えることができる。従って、例えば式Ｉの化合物をまず投与し、続いて細胞毒性剤および／または放射線を投与したり；あるいは、細胞毒性剤および／または放射線をまず投与し、続いて式Ｉの化合物を投与することができる。この交互の投与は、１回処置プロトコールの間に繰り返すことができる。患者の処置する疾患および病状の評価後の処置プロトコール間での各々の治療剤の投与順序および投与の反復回数の決定は、当該分野の医師の通常の知識の範囲内である。例えば、特に細胞毒性剤を使用する場合には、細胞分裂停止剤および／または放射線を最初に投与することができる。次いで、式Ｉの化合物を投与し、続けて場合により処置プロトコールが完結するまで細胞分裂停止剤を投与することによって、該処置を続ける。
【００８１】
従って、経験および知識にしたがって、医師は処置を進めるにつれて個々の患者の要求により、処置の成分（治療剤、すなわち式Ｉの化合物、細胞分裂停止剤、細胞毒性剤または放射線）を投与するための各々のプロトコールを改変することができる。
【００８２】
付き添いの医師は、投与用量で処置が有効であるかどうかを判断する際に、患者の一般的な幸福（well-being）、並びにより明確な徴候（例えば、疾患に関連する症状の軽減）、腫瘍の増殖の抑制、腫瘍の実際の縮小または転移の抑制を考慮するであろう。腫瘍の大きさは標準的な方法（例えば、ＣＡＴまたはＭＲＩスキャンなどの放射線学研究）によって測定することができる。そして、連続的な測定は腫瘍の増殖が遅延されているかまたは逆転さえされているか否かを判断するのに使用することができる。疾患に関連する症状（例えば、痛み）の軽減および症状の全体の改善も、処置の有効性を判断する助けとなる。
【００８３】
本発明の理解を更に容易にするために、主により具体的な詳細を例示する目的で、以下の実施例を提示する。本発明の範囲はそれら実施例によって限定されると考えるべきではなく、特許請求の範囲で定義される全ての内容を包含する。
【００８４】
実験プロトコール
化合物：
以下の記載は、実施例における試験化合物を同定するのに使用する。
化合物１：［１Ｓ−［１Ｒ＊，３Ｒ＊（Ｅ），７Ｒ＊，１０Ｓ＊，１１Ｒ＊，１２Ｒ＊，１６Ｓ＊］］−７，１１−ジヒドロキシ−８，８，１０，１２，１６−ペンタメチル−３−［１−メチル−２−（２−メチル−４−チアゾリル）エテニル］−４−アザ−１７−オキサビシクロ［１４．１．０］ヘプタデカン−５，９−ジオン
化合物２：（Ｒ）−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−４−（２−チエニルスルホニル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピンー７−カルボニトリル・塩酸塩
化合物３：（Ｒ）−４−（ブチルスルホニル）−７−シアノ−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン・塩酸塩
化合物４：（Ｒ）−４−（３−メトキシプロピルスルホニル）−７−シアノ−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン・塩酸塩
化合物５：（Ｒ）−４−［（５−ブロモ−２−チエニル）スルホニル］−７−シアノ−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン・塩酸塩
化合物６：（Ｒ）−７−シアノ−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−３−（フェニルメチル）−４−（１−ピペリジニルスルホニル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン・塩酸塩
化合物７：（Ｒ）−７−シアノ−２，３，４，５−テトラヒドロ−１−（１Ｈ−イミダゾール−４−イルメチル）−４−［（４−メトキシフェニル）スルホニル］−３−（フェニルメチル）−１Ｈ−１，４−ベンゾジアゼピン・塩酸塩
化合物８：４−（３−ブロモフェニルアミノ）−６，７−ビス（メトキシ）キナゾリン
化合物９：Ｎ−［５−［［［５−（１，１−ジメチルエチル）−２−オキサゾリル］メチル］チオ］−２−チアゾリル］−４−ピペリジンカルボキサミド
【００８５】
薬物投与：
化合物１（エポチロン）をげっ歯類ヘ投与する場合には、２つの異なる賦形剤：（１）エタノール／水（容量比が１：９）および（２）クレモフォア（登録商標）／エタノール／水（容量比が１：１：８）を使用した。化合物１をまず、エタノールまたはクレモフォア（登録商標）／エタノール（５０：５０）の混合物中に溶解した。薬物投与の１時間よりも短い前に、必要な用量の強さまでの最終的な希釈を行なった。非経口投与（ＩＶ）の場合には、希釈は水を用いて行って、その結果、該投与溶液は上に記載する指定の賦形剤構成成分を含む。経口投与（ＰＯ）の場合には、希釈は０．２５Ｍのリン酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ＝８．０）を用いて行って、容量比を３０／７０とした。パクリタキセルをエタノールおよびクレモフォア（登録商標）の５０／５０混合物に溶解し、４℃で保存した。パクリタキセルの最終的な希釈物は、ＮａＣｌ（０．９％）と一緒に薬物投与する直前に得た。注射した全ての化合物の容量は、０．０１ｍｌ／マウスｇおよび０．００５ｍｌ／ラットｇであった。
【００８６】
クローン産生性の細胞コロニー形成のアッセイ
化合物がインビトロでクローン産生性の腫瘍細胞（不確定に分裂してコロニーを形成することができる細胞）を死滅させることについての効力は、クローン産生性アッセイによって評価した。薬物に１６時間曝露させた終点で、該細胞を０．０５％トリプシンに３７℃で５分間曝露させることによって、単層細胞培養物を解離させた。細胞を完全培地（このものは１０％ＦＢＳを含有する）中に再懸濁し、コルターチャンネライザーを用いて計数し、希釈して希釈毎に５つの複製物を作製して、これらをプラスチック製の組織培養用ペトリ皿にプレートした。該細胞を加湿雰囲気下、３７℃で１０日間インキュベートした。細胞コロニーをクリスタルバイオレットを用いて染色し、コロニー当たり＞５０細胞を有するコロニーをスコアした。クローン産生性のＨＣＴ−１１６ヒト結腸癌細胞を９０％だけ死滅するのに必要な濃度（すなわち、ＩＣ９０）を測定した。
【００８７】
非同期的に増殖する腫瘍のＢｒｄＵｒｄ標識化
ＢｒｄＵｒｄを減菌したリン酸で緩衝化したサリン（ＰＢＳ）（ｐＨ  ７．４）中に溶解して、このものを用量が１００ｍｐｋでマウスに尾静脈から持続的に注入（２４時間）することによって投与した。腫瘍を有するマウスを注入期間の終わりで殺し、該腫瘍をＢｒｄＵｒｄ／ＤＮＡ分析のために切除した。
【００８８】
腫瘍の分散および細胞の染色
腫瘍を切除し、ハサミを用いて細かく分け、このものを酵素カクテル（これは、０．０２５％コラゲナーゼ（シグマ社、セントルイス、ＭＯ）、０．０５％プロナーゼ（pronase）（カルビオケム（Calbiochem）、ラ  ホーヤ（Lajolla）、ＣＡ）および０．０４％のＤＮＡ分解酵素（シグマ社）からなる）酵素カクテルを用いて３７℃で１時間解離した。該細胞懸濁液を７０μｍのナイロンスクリーンを通すことによってデブリを除去した後に、該細胞をＰＢＳ中で洗浄し、計数し、７５％メタノール中で再懸濁した。分析まで、該固定化させた細胞を４℃で冷蔵保存した。
【００８９】
アッセイの日には、７５％メタノール中に固定化させた細胞を、ＰＢＳ中で１回洗浄し、ペプシンの２Ｎ  ＨＣｌ（０．２ｍｇ／ｍｌ）中に再懸濁し、３７℃で２０分間インキュベートした。次いで、細胞をＰＢＳ（このものは、０．５％胎児ウシ血清（ＦＢＳ）および０．５％ツィーン８０を含有する）（１ｍＬ）を用いて２回洗浄した。２回洗浄後に、細胞をＰＢＳ（１ｍＬ）（このものは、２％ＦＢＳを含有する）に再懸濁し、このものを室温で２０分間インキュベートした。次いで、細胞を遠心沈殿し、該ペレットを抗−ＢｒｄＵｒｄ−ＦＩＴＣ（１０μｇ／ｍＬ、１００μｌ）（ベーリンガーマンハイム製）中で再懸濁した。４５分間インキュベート後に、細胞をＰＢＳ（これは、０．５％ＦＢＳおよび０．５％ツィーン８０を含有する）中で洗浄した。洗浄した細胞をＲＮＡ分解酵素（１ｍｇ／ｍｌ）中に再懸濁し、室温で３０分間インキュベートした。最後に、プロピジウムヨード（シグマ製）をＰＢＳ中、１０μｇ／ｍｌの濃度で加えた。
【００９０】
インビボ抗腫瘍試験
ヒト腫瘍異種移植片をＢａｌｂ／ｃヌードマウス中で保った。腫瘍は、ドナーマウスから得られる腫瘍断片を用いて適当なマウス系統に皮下移植として増殖させた。
【００９１】
意義ある応答（６〜１０）を検出するのに要求される動物の必要数を実験の開始時にプールし、各々に１３−ゲージトロカールを用いて腫瘍断片（〜５０ｍｇ）を皮下移植により与えた。初期の腫瘍の処置の場合には、該動物を再びプールし、その後に様々な処置群およびコントロール群に分配した。進行期の疾患を有する動物の処置の場合には、腫瘍を予め決めたサイズのウィンドウ（範囲外の腫瘍は除外した）にまで増殖させて、動物を様々な処置群およびコントロール群に均等に分配した。各々の動物の処置は個々の体重によった。処置した動物を、処置に関連する毒性／死亡率について毎日調べた。各群の動物を処置の開始前（Ｗｔ１）に計量し、次いで最後の処置投与後（Ｗｔ２）に再計量した。体重差（Ｗｔ２−Ｗｔ１）は、腫瘍に関連する毒性の基準を示した。
【００９２】
腫瘍が予め決めた０．５または１．０ｇの「標的」サイズに達するまで、週に２回ノギスを用いて測定することによって、腫瘍の応答を測定した。腫瘍の重量（ｍｇ）を、式：
腫瘍の重量＝（長さ×幅２）÷２
から算出した。最大許容用量（ＭＴＤ）は、過剰な毒性（すなわち、１匹以上の死）が起こるレベルを正に超える用量レベルとして定義する。該ＭＴＤは、最適用量（ＯＤ）に相当することが多かった。ＯＤ時の活性を記載する。腫瘍が標的サイズに達する前に死亡した処置したマウスは、薬物の毒性が原因で死亡したものと考えた。標的サイズよりも小さい腫瘍を有するコントロールマウスは全く死亡しなかった。薬物毒性が原因で１匹以上が死亡した処置群は、過度の毒性の処置であると考えられた。それらのデータは化合物の抗腫瘍効能の評価には含めなかった。
【００９３】
腫瘍応答の終点は、腫瘍の増殖の遅延（Ｔ−Ｃ値）として表わした。このものは、処置した腫瘍（Ｔ）が予め決めた標的サイズに達するのに必要とする時間（日）をコントロール群（Ｃ）の場合と比較した差異と定義した。
【００９４】
腫瘍細胞の死滅を評価するのに、腫瘍の大きさを２倍にする時間（ＴＶＤＴ）をまず、式：
ＴＶＤＴ＝コントロール腫瘍を標的サイズにするまでの時間（日）の中央値−コントロール腫瘍を標的サイズの半分にするまでの時間（日）の中央値
および、式：
細胞死滅の対数期（ＬＣＫ）＝Ｔ−Ｃ÷（３．３２×ＴＶＤＴ）
を用いて算出した。研究の終了時（腫瘍インプラントの＞７５日後）に検出することができる腫瘍が存在しない場合には、腫瘍は「治癒された」と定義する。研究の終了時および薬物処置の終点の間隔は、常にいずれかのある腫瘍タイプの大きさを２倍にする時間の１０倍を超えるようにした。
【００９５】
群の大きさは、典型的に全ての処置群およびコントロール群において８匹のマウスから構成した。応答データの統計学的な分析は、ゲハン（Gehan）により一般化されたウィルコックソン（Wilcoxon）検定を用いて行った。
【００９６】
実施例１
腫瘍は、増殖性細胞個体群および非増殖性細胞個体群の両方を含む
腫瘍が増殖するにつれて、血管形成は悪性細胞個体群の速い増殖と足並みをそろえることができないことが多い。それゆえに、固形腫瘍塊は典型的に異常な血管網を示し、このものは正常な組織の血管と違って、腫瘍細胞が最適に増殖するための十分な栄養の援助を与えることができない。従って、固形腫瘍は増殖性腫瘍細胞および非増殖性細胞の両方を含む。ほとんどの固形腫瘍において、非増殖性腫瘍細胞は、全腫瘍細胞個体群のほとんどを構成する。最新の抗癌剤は、増殖性細胞の生物化学的なプロセスを標的とする。非増殖性腫瘍細胞個体群および／または定常期細胞は、それらの薬剤によってほんのわずかに影響を受けるだけである。従って、放射線または化学療法が新生生物疾患を治癒することができない主な原因は、これらの化合物が静止状態の腫瘍細胞個体群を標的とすることができないことである。持続的な（２４時間）注入用のＢｒｄＵｒｄレジメを使用した、ＨＣＴ１１６ヒト結腸癌腫の異種移植片の場合に、インビボでの様々な腫瘍における増殖性細胞画分は全細胞個体群の少量画分を構成するのみであることが見積もられた。２００〜３００ｍｇのＨＣＴ−１１６腫瘍細胞において、わずかに２０％の細胞個体群が増殖性細胞を含んでおり、一方で残りの８０％は非増殖性細胞を含んでいた（図１）。多くの他の腫瘍もまた調べており、各々の場合において、非増殖性細胞は腫瘍に存在する細胞の大部分を構成する（表２）
表２
【表５】
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【００９７】
固形腫瘍における栄養が限られたミクロの環境は、培地の増殖条件をコントロールすることによって、インビトロでの細胞培地中で再利用することができる。従って、栄養供給を枯渇させる（培養の８日目）ことによって、腫瘍細胞は非増殖性状態または静止状態（これは、定常期であり、約９０％が非増殖性である）に誘発され得る。一方で、最適な栄養条件（培養の３日目）では、実際に全ての腫瘍細胞は指数関数的に増殖する（これは対数期であり、約９０％が増殖性である）。
【００９８】
実施例２
本発明の組成物は、非増殖性腫瘍細胞を選択的に死滅させる
化合物２がクローン産生性の腫瘍細胞（このものは、不確定に分裂してコロニーを形成することができる細胞である）をインビトロで死滅させることについての効力は、クローン産生性アッセイによって評価した。薬物に１６時間曝露させた終点で、該細胞を０．０５％トリプシンに３７℃で５分間曝露させることによって、単層細胞培養物を解離させた。細胞を完全培地（このものは１０％ＦＢＳを含有する）中に再懸濁し、コルターチャンネライザーを用いて計数し、希釈して希釈毎に５つの複製物を作製して、これらをプラスチック製の組織培養用のペトリ皿にプレートした。該細胞を加湿雰囲気下、３７℃で１０日間インキュベートした。細胞コロニーをクリスタルバイオレットを用いて染色し、コロニー当たり＞５０細胞を有するコロニーをスコアした。コロニー産生性のＨＣＴ−１１６ヒト結腸癌細胞を９０％だけ死滅するのに必要な濃度（すなわち、ＩＣ９０）を測定した。
【００９９】
化合物２およびそのアナログは、増殖性（対数期）細胞と比べて、非増殖性（定常期）ＨＣＴ−１１６ヒト結腸癌腫細胞を選択的に死滅させる（図２〜４および表３）。増殖性個体群および非増殖性の個体群の間での選択性の差異の大きさ（倍数）は、２．７〜１８１の範囲であった。
表３
【表６】
0005110756.tif 000008
【０１００】
ほとんどの抗癌薬物はＤＮＡ合成またはその機能に影響を及ぼすことによって機能し、従って増殖性細胞を標的とするが、一方静止細胞は薬物の曝露直後にそのような細胞が分裂しない限り、無傷のままである。それゆえに、抗癌剤の有用性は腫瘍細胞のこの抵抗性画分によって限定されることが多い。例えば、化合物２と直接的に比較して、通常使用される抗癌剤（例えば、パクリタキセル、エポチロンＢおよび５−フルオロウラシル）は増殖性腫瘍細胞にたいして優先的に細胞毒性であり、非増殖性細胞にたいして本質的に無効である（図５および６、並びに表４）。
表４
【表７】
0005110756.tif 000009
【０１０１】
実施例３
抗増殖性剤を本発明の化合物と組み合わせることにより、相乗的に作用してインビトロで腫瘍細胞を死滅させる
上記の通り、機構的な研究は化合物２が非増殖性腫瘍細胞にたいして選択的に細胞毒性であることを強く示唆した。この独特の特徴により、増殖性腫瘍細胞を主に標的とする現存する抗癌薬との相乗的な組み合わせ療法の見通しが立つ。例えば、パクリタキセルはインビトロで対数期のＨＣＴ−１１６にたいして非常に細胞毒性であって、ＩＣ９０値は１７．８ｎＭであった（図５）。しかしながら、非増殖性の定常期の細胞個体群にたいしては、１６２ｎＭという高い濃度で完全に非毒性であった（図５）。同様な劇的な差異は、エポチロンＢを用いた場合に観察され（図６）、ＩＣ９０は増殖性細胞および非増殖性細胞の場合にそれぞれ、１．３および＞１０８ｎＭであった（表３）。インビトロで、パクリタキセルと化合物２とを組み合わせることにより、相乗的な細胞毒性が得られ、その結果、該組み合わせは加成よりも大きな細胞の死滅を示した（図７）。その上、この相乗的な組み合わせを観察するためには、該２つの薬物は特定の順序で投与すべきであることを見出した。相乗作用は、細胞を該２つの薬剤を用いて同時に処置するかまたはパクリタキセルを化合物２よりも先に投与する場合に観察された。パクリタキセルの２４時間前に化合物２を投与した場合には、拮抗作用が観察された。同様な相乗作用および順序依存は、化合物２と化合物１との組み合わせを用いた場合にも観察された（図８〜１０）。
【０１０２】
実施例４
抗増殖性剤を本発明の化合物と組み合わせることにより、相乗的に作用してヒト腫瘍の異種移植片における腫瘍細胞を死滅させる
注入用の化合物２と静脈内ボーラス用のパクリタキセルとの組み合わせ療法は、ｓｃＨＣＴ−１１６腫瘍モデルを用いて行った（図１１）。個々の薬剤を単独で与えた場合は不活性であるが（化合物２およびパクリタキセルについて、それぞれ０．４および０．６ＬＣＫである）、該組み合わせ（化合物２を１２５ｍｋｐｋで２４時間静脈内注入し、そしてパクリタキセルを２４ｍｇ／ｋｇで静脈内注入する）はＬＣＫが１．８（相乗的な効果）であった。
【０１０３】
ボーラス投与により与えた化合物２およびパクリタキセルの組み合わせ療法もまた、タキソール（登録商標）にたいする抵抗性が生じた癌患者由来のＰａｔ−７ヒト卵巣癌腫細胞において相乗作用を示した。それぞれ最大許容用量で与えたパクリタキセルおよび化合物２は、単一薬物処置としてのこの抵抗性の腫瘍モデルにおいて、１より小さい対数の細胞死滅（ＬＣＫ）を示した。しかしながら、最大許容用量での化合物２とパクリタキセルとの組み合わせは、治療学的な相乗作用を示し、そして１．７  ＬＣＫの有意な抗腫瘍性活性を示した（図１２）。相乗的な抗腫瘍活性は、ＨＣＴ１１６ヒト結腸癌腫異種移植片においても観察された（図１３）。ヒト患者において観察された同様な全身性曝露を与えた用量レベル（２０〜８０μＭ、時間）の化合物２は、パクリタキセルの抗腫瘍作用と一緒になって相乗的に機能することが分かった。
【０１０４】
多剤耐性ヒト結腸癌腫異種移植片のＨＣＴ／ＶＭ４６においてインビボで化合物１および化合物２の組み合わせを用いた治療学的な相乗作用もまた、明白に実証された。化合物１および化合物２の両方は、単一薬物処置としてのこのモデルにおいて適度の抗腫瘍活性を有する（図１３）。両方の薬剤は、腫瘍応答が１よりも大きいＣＬＫを生ずるが（それぞれ、１．６および１．１  ＬＣＫ）、腫瘍の治癒を誘発しなかった。しかしながら、該２つの薬剤を組み合わせて投与した場合には（化合物１の投与２４時間後に化合物２を投与する）、抗腫瘍活性の劇的な改善が観察された。特に、腫瘍の増殖の遅延の非常に有意な増加（３．７ＬＣＫ）（このものは、治癒効果の増大を含む）が、７匹中３匹のマウスにおいて観察された（図１３）。
【０１０５】
そのような組み合わせの順序に依存することが実証された。化合物２の処置を化合物１の処置の２４時間前に投与した場合には、治療学的な相乗作用は観察されなかった（図１４）。単にそのような組み合わせを行なうだけでは、化合物１を単独で与えた場合と同様に全くそのような相乗作用は観察されなかった。
【０１０６】
実施例５
本発明の化合物は、ヒト固形癌腫にたいするトポイソメラーゼ１インヒビターＣＰＴ−１１のインビボ抗腫瘍活性を増大させる
ＣＰＴ-１１は、可逆１本鎖の開裂を誘発することによって、酵素トポイソメラーゼ１（このものは、ＤＮＡにおけるねじれのひずみを軽減する）と特に相互作用する、抗増殖性細胞毒性の抗癌剤である。ＣＰＴ−１１の細胞毒性は、三元複合体（このものは、複製酵素がトポイソメラーゼ−１とＣＰＴ−１１またはその活性代謝産物であるＳＮ−３８とによって形成する）と相互作用する場合のＤＮＡ合成の間に生じる二本鎖ＤＮＡの損傷が原因である。従って、ＣＰＴ−１１は、活性なＤＮＡ合成を起こす増殖性細胞を選択的に標的とする。我々はこの実験において、進行性のＨＣＴ１１６ヒト結腸癌腫異種移植片を有するマウス（３００〜５００ｍｇ）について化合物２の１時間前にＣＰＴ−１１を用いる組み合わせ処置により、単独で投与した各々の該薬剤よりもはるかに優れた相乗的な抗腫瘍活性を生じることを実証した（図１５Ａおよび１５Ｂ）。この研究において、ＣＰＴ−１１はＭＴＤが３０ｍｇ／ｋｇ／注射であるかまたはその付近で静脈内投与した。化合物２を２つの異なる用量レベル：６０および８０ｍｇ／ｋｇ／注射で与えた。化合物２のこれらの用量は、臨床的に達成し得る曝露に近い薬物曝露を与えるという理由で選択した。図１５Ａおよび１５Ｂに示す通り、両方の用量レベルの化合物２をＣＰＴ−１１と組み合わせることにより、各々の該薬剤を単独で与えた場合よりも、より有意に大きな抗腫瘍活性を示した。その上、該組み合わせは単一の薬物のみの場合よりも有意に高い部分的なおよび完全な腫瘍退縮速度を示した。
表５．進行性のＨＣＴ１１６ヒト結腸癌腫にたいする、化合物２とＣＰＴ−１１との組み合わせ化学療法の抗腫瘍活性
【表８】
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１薬物処置レジメは静脈内でＱ２Ｄ×５であった。ＣＰＴ−２２は、化合物２の１時間前に与えた。
２腫瘍は、処置の開始時では３００〜５００の範囲内であった（中央値は〜２００ｍｇ）。
３ＬＣＫとは、細胞死滅の対数（Log cell kill）である。
４ＰＲとは、腫瘍の大きさが５０％以上減少する部分的な応答（Partial responce）である。
５ＣＲとは、完全応答（Complete response）である。これは、全ての容易に測定することができる腫瘍を処置することによって根絶と定義する。３５ｍｇよりも小さい場合には、腫瘍は測定不能と定義される。完全な応答は、顕微なまたは潜在性の腫瘍が残ることがあり、これらが続いて腫瘍の進行となり得る点で治癒とは異なる。
【０１０７】
実施例６
本発明の化合物は、固形ヒト腫瘍にたいするゲムシタビン（ＧＥＭＺＡＲ）のインビボ抗腫瘍活性を増大させる
ゲムシタビンは、細胞期特異性を示す代謝拮抗タイプの抗増殖性の細胞毒性化学療法剤である。該剤は、ＤＮＡ合成を起こす（Ｓ−期）細胞を主に死滅させ、またＧ１／Ｓ−期境界を通る細胞の進行をも遮断する。従って、ゲムシタビンは、活発に分裂したりまたは増殖する細胞について選択的に毒性である。我々は、ゲムシタビンと化合物２との組み合わせ（ゲムシタビンを、化合物２の１時間前に投与する）がヌードマウスにおける進行性ＨＴ−２９ヒト結腸癌腫異種移植片にたいする抗腫瘍活性の増大を示すことを示した（図１６Ａおよび１６Ｂ）。重要なことに、抗腫瘍活性の増大は、増殖の遅延（ＬＣＫ）の点でだけ観察されるのではなく、より重要なことに応答速度（腫瘍の退縮）の著しい改善をも引き起こした。従って、化合物２とゲムシタビンとの組み合わせは全ての処置したマウスにおいて１００％のＰＲを示し、一方で単独の薬物である化合物２は１２．５％のＰＲを示し、そして単一薬物であるゲムシタビンは２４および６ｍｇ／ｋｇ／注射の用量でそれぞれ０および２５％の応答速度を示した（図１６Ｂ）。
【０１０８】
実施例７
本発明の化合物とパクリタキセルとの組み合わせは相乗的に作用して、ヒト結腸癌腫異種移植片を死滅させる。
パクリタキセルは、細胞分裂の有糸分裂周期に入ると、腫瘍細胞を死滅させる。従って、パクリタキセルは、増殖性細胞にたいして選択的に毒性である（図５）。我々は、化合物２とパクリタキセルとの組み合わせはヌードマウスにおけるヒト結腸癌腫モデルであるＨＣＴ１１６にたいして相乗的な抗腫瘍活性を与えることを実証した。図１７Ａおよび１７Ｂは、パクリタキセル（２０ｍｐｋ、１週間に１回×４）の静脈内投与の３時間後に化合物２（４０または８０ｍｐｋ）を静脈内投与することにより、いずれかの薬剤の単独の抗腫瘍効果が著しく増大することを示す。治療学的な増加の大きさは、該２つの薬剤が加成性の抗腫瘍活性を単に発揮した場合に得られるであろう大きさをも明らかに越えていた。この相乗的な相互作用は、単に増殖の遅延についてだけではなく、腫瘍応答におけるより臨床的に関連する基準、すなわち部分的なおよび完全な腫瘍の退縮（または、応答）（それぞれ、ＰＲおよびＣＲ）について、並びに腫瘍の治癒についても観察することができる。このことは、表６および図１７Ｃにおいて例示する。
表６．進行性ＨＣＴ１１６ヒト結腸癌腫にたいする、化合物２とパクリタキセルとの組み合わせ化学療法の抗腫瘍効果
【表９】
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１薬物処置レジメは静脈内でＱ７Ｄ×４であった。パクリタキセルは、化合物２の３時間前に与えた。
２腫瘍は、処置の開始時では１３０〜３００の範囲であった（中央値は〜２００ｍｇ）。
３ＬＣＫとは、細胞死滅の対数である。
４ＰＲとは、腫瘍の大きさが５０％以上減少する部分応答である。
５ＣＲとは、完全応答である。これは、全ての容易に測定することができる腫瘍を処置することによって根絶と定義される。３５ｍｇよりも小さい場合には、腫瘍は測定不能と定義される。完全な応答は、顕微なまたは潜在性の腫瘍が残ることがあり、これらが続いて腫瘍の進行となり得る点で治癒とは異なる。
６治癒とは、腫瘍インプラントの７７日後における生存可能な疾患について検死によって観察される形跡がないことを意味する。
【０１０９】
実施例８
Ｈｅｒ−１インヒビター（化合物８）と本発明の化合物との組み合わせは、相乗的に作用して、インビトロでのＳＡＬ−２癌細胞およびインビボでのＡ４３１扁平上皮細胞癌腫を死滅させる
上皮細胞成長因子（ＥＧＦまたはＨｅｒ−１）受容体は、多数のヒト上皮癌腫細胞および扁平上皮細胞細胞癌腫に関与する。腫瘍細胞におけるＥＧＦとその受容体との結合により、タンパク質チロシンキナーゼ活性およびチロシン自己リン酸化の活性化を生じる。これらの事象は、癌細胞の分裂促進的な（増殖性）シグナル伝達に関与する生化学的な応答のカスケードの活性化を生じる。ＥＧＦ受容体との結合の抑制は感作細胞において観察され、このことにより細胞による増殖の抑制、細胞周期の停止およびアポトーシスを生じる。従って、ＥＧＦインヒビターまたはＨｅｒ−１インヒビターは選択的に増殖性細胞を標的とし、そして有糸分裂シグナル伝達を妨害することによって、癌細胞を非増殖性細胞とする。非増殖性細胞を標的とする本発明の化合物の選択性を考えれば、我々はある概念を提案する。すなわち、我々はＨｅｒ−１インヒビターのこの特定の作用様式の利点を用いることができ、そのために癌細胞を非増殖性状態に進めることによって、該細胞を化合物２および本発明の同様な化合物のアポトーシス後活性に対して「感作する」であろうというものである。この仮説は、インビトロおよびインビボでの両方の実験条件において本当であることが証明された。インビトロでの場合には、Ｈｅｒ−１インヒビターを化合物２と組み合わせることの治療学的な効能を評価するために、Ｈｅｒ−１受容体の活性形態を本質的に（constitutively）過剰発現するＳＡＬ−２腫瘍細胞を用いて実験を行った。この目的のために、Ｈｅｒ−１インヒビターである化合物８を使用した。参照のために、増殖性細胞だけを標的とする薬剤の例としてパクリタキセルを使用した。我々の仮説によれば、パクリタキセルは本発明の実験条件（すなわち、連続的な薬物の曝露：まず、Ｈｅｒ−１インヒビターの曝露によって細胞の停止を誘発し、続いて化合物２またはパクリタキセルを曝露させる）においては十分に機能しないであろう。該データは、指数関数的に増殖するＳＡＬ２癌細胞は化合物２およびパクリタキセルの各々を単一薬物として投与した場合に、それらにたいしてかなり抵抗性であることを示した。このことを、図１８Ａ〜１８Ｇに示す。Ｈｅｒ−１インヒビターである’８３２および続くパクリタキセルとの連続的な組み合わせは、我々の仮説によって予想される通り、拮抗的であった（図１８Ｃ）。それに対して、Ｈｅｒ−１インヒビター（化合物８）および続く化合物２との連続的な組み合わせは、相乗的であった（図１８Ｄ）。
【０１１０】
Ｈｅｒ−１インヒビターと本発明の化合物を組み合わせることによるインビボでの効果を立証するために、我々はＨｅｒ−１インヒビターであるイレッサ（登録商標）を化合物２と組み合わせて、ヒト上皮扁平癌癌であるＡ４３１（このものは、Ｈｅｒ−１受容体を過剰発現することが知られる）にたいして使用した。図１８ＥおよびＦにおいて示す通り、化合物２の２つの別々の用量レベルはイレッサ（登録商標）と組み合わせて使用した場合には、各々の該薬剤を単独で与えた場合と比較して、抗腫瘍活性の増大を示した。イレッサを１日処置レジメであるＱ１Ｄ×１１で投与し、該処置の開始３日後に化合物２を用いた処置を開始することに注意すべきである。化合物２はＱ２Ｄ×５のスケジュールで投与した。重要なことは、連続的な薬物処置のレジメ（最初は、イッサ（登録商標）である）はパクリタキセルと組み合わせた場合ではあまり機能しなかった（図１８Ｇ）。イレッサ（登録商標）およびパクリタキセルの組み合わせは抗腫瘍効果を示すが、そのような効果は単一薬物を単独で使用したいずれの場合よりもよくなかった。
【０１１１】
実施例９
化合物２とＨｅｒ−２に関連するヘルセプチンとの組み合わせは、Ｈｅｒ−２を過剰発現するヒト乳癌細胞の増殖について相乗的な抑制効果を示す
ＨＥＲ−２（またはｃ−ｅｒｂＢ２）プロトオンコジーンは、１８５ＫＤａの膜貫通受容タンパク質（このものは、上皮成長因子受容体またはＨｅｒ−１に構造的に関連する）をコードする。ＨＥＲ２タンパク質の過剰発現は、主に乳癌の２５〜３０％において観察される。ヘルセプチン（登録商標）は組換えＤＮＡ由来のヒト化モノクローナル抗体であり、このものはＨｅｒ−２タンパク質の細胞外ドメインと選択的に結合する。ヘルセプチン（登録商標）は、インビトロアッセイおよび動物の両方においてＨｅｒ−２を過剰発現するヒト腫瘍細胞の増殖を抑制することが分かっている。従って、本発明において提案する概念によれば、ヘルセプチン（登録商標）はあるクラスの薬剤（このものは、癌細胞を非増殖性細胞とすることによって作用し、そのことによって腫瘍細胞を本発明の化合物の抗癌作用に感作させ、そしてまたこのものは非増殖性細胞を選択的に標的する）の１例である。従って、本実験において化合物２を用いて処置する前に、ヒト乳癌セルラインであるＢＴ−４７４（このものは、Ｈｅｒ−２を過剰発現する）を２時間前処置することにより、癌細胞の増殖において相乗的な抗増殖性効果を示した（図１９）。
【０１１２】
実施例１０
タモキシフェンを本発明の化合物と組み合わせることにより、相乗的に作用してエストロゲン依存性のヒト乳癌異種移植片における癌細胞を死滅させる
大部分のヒト乳癌細胞は、増殖および腫瘍の進行のためにエストロゲンを必要とする（エストロゲンに依存する）。エストロゲン依存性の乳癌の抗エストロゲン剤（例えば、タモキシフェン）を用いた処置は、インビトロおよびインビボの両方で腫瘍細胞の増殖を抑制することが知られる。ヒトの乳癌モデルにおける本発明の抗癌剤の組み合わせの効能を評価するために、ＭＣＦ−７異種移植片をヌードマウスにおいて増殖させ、本明細書に記載する通り処置した。化合物２およびタモキシフェンとの組み合わせ化学療法により、抗腫瘍活性が増大した。実際に、腫瘍の緩解が、ＭＣＦ−７ヒト乳癌異種移植片モデルにおいて８匹のマウス中３匹で観察された。図２０は、単一薬物として投与する化合物２が腫瘍増殖についてほんの全くささやかな（modest）効果を与えることを示す。タモキシフェンのみの場合は、このモデルでは著しくより活性であり、これはエストラジオール（estradial）ペレット除去の場合とおよそ同じ程度に有効であった。しかしながら、タモキシフェンまたはペレット除去を用いる処置後では、全ての腫瘍が再び増殖し、治癒は全く観察されなかった。それに対して、タモキシフェン（４０ｍｐｋ）を化合物２（経口、１００ｍｐｋ、ｑｄｘ×１０、２つの経路）と組み合わせることにより、上記の治癒に加えて腫瘍重量の中央値が著しく減少した。
【０１１３】
実施例１１
アンドロゲン切除療法（外科的または化学的）は、腫瘍細胞における非増殖性状態（静止状態）を誘発させることによって、アンドロゲン依存性のヒト前立腺癌の化合物２にたいする感受性を増大する
上記の通り、細胞を様々な生物学的な条件下で非増殖性または「静止状態」とする。ヒト前立腺癌の処置についての１つの通常の方法は、化学的な去勢である。本発明はいずれのある理論または機構に依存するものではないが、アンドロゲン依存性の前立腺癌において腫瘍の増殖にとって重要な増殖刺激を除去することによって、ホルモンの切除は静止状態後の薬剤として機能すると考えられる。従って、ヒト前立腺癌異種移植片モデルにおける本発明の抗癌剤の効能を評価した。
【０１１４】
アンドロゲン依存性のｓｃＭＤＡ−Ｐｃａ−２ｂヒト前立腺癌腫異種移植片モデルにおいて、化合物２（４００ｍｐｋ、経口、ｑ１ｄ×１０）を単独で用いる処置は、腫瘍増殖について適度な効果を有していた。このことを、図２１に示す。アンドロゲン切除療法（外科的な去勢）もまた腫瘍増殖の速度を低下させるが、縮退を生じなかった。データが示す通り（図２１）、去勢の３日後に化合物２を投与することにより、速い腫瘍の縮退が生じた。
【０１１５】
アンドロゲン依存性の前立腺癌腫細胞を非増殖性にする別方法は、化学的な抗アンドロゲン剤（例えば、カソデックス（登録商標））の使用である。実際に、いくつかの前立腺癌腫は、徐々にアンドロゲン非依存性となる後でさえもカソッデクス（登録商標）にたいしてなお感受性であり、その逆もまた同じであることが現在知られている。この現象は、アンドロゲン受容体における特定の突然変異（このものは、アンドロゲンと抗アンドロゲン受容体との結合と区別して影響を及ぼす）から生じると仮定される。カソデックス（登録商標）および化合物２を組み合わせることの抗腫瘍効能を試験するために、我々はカソデックス（登録商標）応答性であるが、アンドロゲン非依存性であるヒト前立腺癌モデルであるＰｃａ−２ｂ−Ａｌを用いた。図２２に示す通り、カソデックス（登録商標）および化合物２の組み合わせの効果は、この腫瘍モデルにおいて該薬剤のいずれかを単独で使用した場合の効果よりも有意に大きかった。ここで、それらは共にそれぞれの最大許容用量およびレジメ（それぞれ、化合物２は６００ｍｐｋ、経口、ｑ１ｄ×１０であり；カソデックス（登録商標）は１５０ｍｐｋ、経口、ｑ１ｄ×４である）で投与した。従って、限定することによってカソデックス（登録商標）および化合物２との組み合わせは、該薬剤の各々を単一で与える場合を越える相乗的な抗腫瘍活性を示した。
【０１１６】
実施例１２
化合物２とｃｄｋインヒビター（化合物９）との組み合わせは、厳密に順序に依存する様式で相乗的な細胞を死滅させる効果を示す（図２３）
哺乳動物の細胞の有糸分裂は、セリン／トレオニンタンパク質キナーゼの系統群（このものは、サイクリン依存性キナーゼ（ＣＤＫｓ）として知られる）の協調活性を必要とする。ＣＤＫｓ（特に、ＣＤＫ２）のインヒビターは細胞増殖を抑制し、そして細胞周期のＧ１／Ｓ境界期の細胞を停止させることが分かっている。ＣＤＫｓインヒビター（ＣＤＫＩ）および本発明の化合物との組み合わせ化学療法の効果を測定するために、指数的に増殖するＡ２７８０ヒト卵巣癌腫細胞を選択的なＣＤＫ２インヒビター（１．５μＭ）を用いて４時間処置することによって、研究を行った。化合物９（これは、非有効な用量である）を、化合物２の濃度を増加させながらの２０時間の処置と組み合わせた。２つの処置の順序：（１）化合物９を用いて４時間処置し、続いて化合物２を用いて２０時間処置すること；または、（２）化合物２を用いて２０時間処置し、続いて化合物９を用いて４時間処置することを使用した。図２３に示す通り、ＣＤＫＩを最初に投与した場合には、相乗的な細胞の死滅が観察された。一方で、化合物２を最初に与えた場合には、効果は全く観察されなかった。このことは、ＣＤＫＩを最初に投与することによって細胞は非増殖性となり、その後そのものは化合物２の細胞毒性作用に感作されたという仮説によって支持される。
【０１１７】
実施例１３
エポチロンＢのエポチロンＦヘの変換
【化３】
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（ｉ）エポチロンＢ（１．９８ｇ、３．９０ｍｍｏｌ）をアルゴン下に置き、乾燥ＣＨ２Ｃｌ２（６０ｍＬ）に溶解した。この溶液に、ｍＣＰＢＡ（０．７２０ｇ、４．１７ｍｍｏｌ、１．０７当量）を加えた。該混合物を２５℃で５．５時間撹拌させた。該反応混合物をＮａＨＣＯ３（６０ｍＬ）を用いてクエンチし、ＣＨＣｌ３（３×７５ｍＬ）を用いて抽出した。該有機相を水洗（１００ｍＬ）し、続いて５％Ｎａ２ＳＯ３水溶液（７０ｍＬ）、次いでブライン（７０ｍＬ）を用いて洗浄した。次いで、該有機相をＮａ２ＳＯ４を用いて乾燥した。該粗反応生成物をシリカゲルクロマトグラフィー精製（２％ＭｅＯＨ／ＣＨＣｌ３を用いて溶出）を行なって、白色のふわふわした固体のＮ−オキシド（０．９７６ｇ、４８％）を得た。
【０１１８】
（ｉｉ）アルゴン下の再封入可能な管に、乾燥ＣＨ２Ｃｌ２（３５ｍＬ）に溶解したＮ−オキシド（０．９７６ｇ、１．８６ｍｍｏｌ）、２，６−ルチジン（１．７３ｍＬ、１４．８８ｍｍｏｌ、８当量）および（ＣＦ３ＣＯ）２Ｏ（１．８４ｍＬ、１３．０２ｍｍｏｌ、７当量）を加えた。該管を封入し、７０℃で５分間加熱した。該混合物を冷却し、溶媒をアルゴン気流下で除去し、続いて真空下で濃縮して暗黄色溶液（数ｍＬ）を得た。該反応液をＭｅＯＨ（２５ｍＬ）を用いて希釈し、２８％ＮＨ４ＯＨ（水溶液）（２．９ｍＬ）を加えた。該混合物を４５℃まで２０分間加熱し、次いで室温まで冷却させた。該粗生成物を回転蒸発機を用いて濃縮し、シリカゲルクロマトグラフィー精製（４％ＭｅＯＨのＣＨＣｌ３溶液を用いて溶出）を行なって、エポチロンＦ（０．８１５ｇ、８４％）を得た。
【０１１９】
実施例１４
［１Ｓ−［１Ｒ＊，３Ｒ＊（Ｅ），７Ｒ＊，１０Ｓ＊，１１Ｒ＊，１２Ｒ＊，１６Ｓ＊］］−３−［２−［２−（アジドメチル）−４−チアゾリル］−１−メチルエテニル］−７，１１−ジヒドロキシ−８，８，１０，１２，１６−ペンタメチル−４，１７−ジオキサビシクロ［１４．１．０］ヘプタデカン−５，９−ジオンの製造
【化４】
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上記実施例１３のエポチロンＦ（９５７ｍｇ、１．８３ｍｍｏｌ）のテトラヒドロフラン（２０．０ｍＬ）の撹拌溶液に、アルゴン下、０℃で、ジフェニルホスホリルアジド（０．４７ｍＬ、６０４ｍｇ、２．１９ｍｍｏｌ、１．２当量）を加えた。該混合物を約３分間撹拌した。次いで、１，８−ジアザビシクロ［５．４．０］ウンデカ−７−エン（０．２７ｍＬ、２７８ｍｇ、１．８３ｍｍｏｌ、１当量）を加え、該混合物を０℃で撹拌した。２時間後、該混合物を２５℃まで昇温させて、２０時間撹拌した。該反応混合物を酢酸エチル（１５０ｍＬ）を用いて希釈し、Ｈ２Ｏ（５０ｍＬ）を用いて洗浄した。該水相を酢酸エチル（３５ｍＬ）を用いて抽出した。該有機相を組み合わせてＮａ２ＳＯ４を用いて乾燥し、真空下で濃縮した。該粗物質をシリカゲルクロマトグラフィー精製（５０％酢酸エチル／ヘキサンを用いて溶出）を行なって、透明で無色油状物である２１−アジドエポチロンＢ（９１３ｍｇ、９１％）を得た。
MS (ESI＋): 549.3 (M＋H)＋; 1H-NMR (300MHz, CDCl3); δ= 6.59 (bs, 17-H), 7.04 (s, 19-H), 4.63 (s, 21-H2)。HRMS (DSI)（C27H40N4O6Sとして計算）［M＋］理論値: 549. 2747, 実測値: 549.2768。
【０１２０】
実施例１５
［１Ｓ−［１Ｒ＊，３Ｒ＊（Ｅ），７Ｒ＊，１０Ｓ＊，１１Ｒ＊，１２Ｒ＊，１６Ｓ＊］］−３−［２−［２−（アミノメチル）−４−チアゾリル］−１−メチルエテニル］−７，１１−ジヒドロキシ−８，８，１０，１２，１６−ペンタメチル−４，１７−ジオキサビシクロ［１４．１．０］ヘプタデカン−５，９−ジオンの製造
リンドラー触媒（１８．０ｍｇ）をＨ２雰囲気下、エタノール（５００μＬ）に懸濁して、飽和とした。次いで、エタノール−メタノール混合液に溶解した上記実施例１４の２１−アジドエポチロンＢ（１５．９ｍｇ、２９．０μｍｏｌ）を加えた。室温で３０分間撹拌後に、該懸濁液を珪藻土を用いてろ過し、酢酸エチルを用いて洗浄した。該溶媒を有機相から除去し、高真空圧下で乾燥した。該粗生成物の精製は、ＰＳＣ（溶媒：ＣＨ２Ｃｌ２：メタノール＝９０：１０を使用）を用いて行なって、２１−アミノエポチロンＢ（１２．３ｍｇ、８１％）および抽出物（１ｍｇ、６％）を得た。
1H-NMR (300MHz, CDCl3); δ= 6.58 (bs, 17-H), 7.05 (s, 19-H), 4.15 (s, 21-H2)。HRMS (DSI)（C27H42N2O6Sとして計算）［M＋H＋］理論値: 522. 2764, 実測値: 522.2772。
【０１２１】
実施例１６
［１Ｓ−［１Ｒ＊，３Ｒ＊（Ｅ），７Ｒ＊，１０Ｓ＊，１１Ｒ＊，１２Ｒ＊，１６Ｓ＊］］−３−［２−［２−（アミノメチル）−４−チアゾリル］−１−メチルエテニル］−７，１１−ジヒドロキシ−８，８，１０，１２，１６−ペンタメチル−４，１７−ジオキサビシクロ［１４．１．０］ヘプタデカン−５，９−ジオンの製造（別法）
【化５】
0005110756.tif 000014
２１−アジドエポチロンＢ（実施例１４）（１．０７０ｇ、１．９５０ｍｍｏｌ）のテトラヒドロフラン（３０ｍＬ）撹拌溶液に、アルゴン下でトリメチルホスフィン（０．２２ｍＬ、０．１６３ｇ、２．１４５ｍｍｏｌ、１．１当量）を加えた。次いで、Ｈ２Ｏ（５．５ｍＬ）を加えて、該混合物を２５℃で撹拌させた。３時間後に該アジドは完全に消費されて、２８％のＮＨ４ＯＨ水溶液（３ｍＬ）を加えて、ホスホリルイミンからアミンヘの変換を完結させた。２５℃で１時間撹拌後、溶媒を真空下で除去した。該粗物質をシリカゲルクロマトグラフィー精製（１％Ｅｔ３Ｎ、２．５％ＭｅＯＨのＣＨＣｌ３を使用）を行なって、白色固体の２１−アミノエポチロンＢ（９２４ｍｇ、９１％）を得た。ＭＳ（ＥＤＩ＋）：５２３．３（Ｍ＋Ｈ）＋。
【０１２２】
実施例１７
（＋）−シス−４−ｔｅｒｔ−ブチル−１−ｔｅｒｔ−ブトキシカルボニル−３−トリエチルシリルオキシアゼチジン−２−オンの製造
【化６】
0005110756.tif 000015
トリメチルアセトアルデヒド（２０．３ｍＬ、１．２５当量）をｐ−アニシジン（１８．４ｇ、０．１５０ｍｏｌ）および無水Ｎａ２ＳＯ４（１５０ｇ）の無水ジクロロメタン（２５０ｍＬ）撹拌懸濁液に室温で加えた。２時間後に、このものをろ過し、該固体を更に無水ジクロロメタンを用いて洗浄した。該溶媒を該ろ液から除去し、結晶性の残渣を無水ジクロロメタン（７５０ｍＬ）に溶解し、このものを窒素雰囲気下に置いた。トリエチルアミン（４８．０ｍＬ、２．３当量）を加え、該反応液を−７８℃まで冷却した。ベンジルオキシアセチルクロリド（２７．２ｍＬ、１．１５当量）を滴下し、次いで該反応液を室温まで昇温させた。２４時間後に、このものを０．５Ｍ  ＨＣｌ（２回）、飽和ＮａＨＣＯ３溶液およびブラインを用いて洗浄し、乾燥（Ｎａ２ＳＯ４）した。該溶媒を除去し、残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー精製（２０％ジクロロメタン／ヘキサン（これは、０〜２０％のＥｔＯＡｃを含有）を用いて勾配溶出）を行なって、結晶性固体の（±）−シス−４−ｔｅｒｔ−ブチル−３−ベンジルオキシ−１−ｐ−メトキシベンジルアゼチジノン（４６．９ｇ、９２％）を得た。
1H-NMR (CDCl3); δ= 1.09 (s, 9H), 3.81 (s, 3H), 4.15 (d, 1H, J= 5.5Hz), 4.77 (d, 1H, J= 11.9Hz), 4.81 (d, 1H, J= 5.5Hz), 5.03 (d, 1H, J= 11.9 Hz), 6.87 - 7.43 (m, 9Hz)。LRMS (ESI) 340 (［M＋H＋］)。
硝酸アンモニウムセリウム（６０．４ｇ、３．６当量）の水（９００ｍＬ）溶液を、よく撹拌したアゼチジノン（１０．３８ｇ、３０．６ｍｍｏｌ）のアセトニトリル（６００ｍＬ）溶液に氷浴中、１時間かけて加えた。次いで、該反応液をＥｔＯＡｃを用いて抽出し（２回）、該有機抽出液を合わせて、飽和ＮａＨＣＯ３水溶液（２回）、２０％ＮａＨＳＯ３水溶液、飽和ＮａＨＣＯ３溶液およびブラインを用いて洗浄した。乾燥後（Ｎａ２ＳＯ４を使用）、該溶媒を除去し、該残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー精製（１０〜４０％のＥｔＯＡｃを含有するヘキサン溶液を用いて勾配溶出）を行なって、わずかに不純な（±）−シス−３−ベンジルオキシ−４−ｔｅｒｔ−ブチルアゼチジン−２−オン（５．６４ｇ）を得た。
1H-NMR (CDCl3); δ= 1.04 (s, 9H), 3.51 (d, 1H, J= 5.2Hz), 4.71 (m, 2H), 4.96 (d, 1H, J= 11.9Hz), 6.10 (brs, 1H), 7.35 (m, 5H)。
この物質（５．５４ｇ、２３．８ｍｍｏｌ）および１０％Ｐａ／木炭（２．５ｇ）の無水ＥｔＯＨ（１００ｍＬ）懸濁液を、水素添加（３４ｐｓｉのＨ２、パール装置）を２３時間行なった。更に該Ｐｄ触媒（２ｇ）を加え、該水素添加反応を５０ｐｓｉ  Ｈ２で更に１７時間続けた。該触媒をろ過することによって除去し、溶媒を該ろ液から除去することによって、粗（±）−シス−３−ヒドロキシ−４−（ｔｅｒｔ−ブチル）アゼチジン−２−オンが残った。
1H-NMR (CDCl3＋D2O（１滴）); δ= 1.05 (s, 9H), 3.48 (d, 1H, J= 5.0Hz), 4.98 (d, 1H, J= 5.0Hz)。
この物質を乾燥Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド（４０ｍＬ）に溶解し、イミダゾール（３．２４ｇ、２当量）およびトリエチルシリルクロリド（４．０ｍＬ、１当量）を加えた。１０分後、該反応液を水およびＥｔＯＡｃとヘキサン（１：１）の混合物との間で分配した。該有機相を水（２回）およびブラインを用いて洗浄し、次いで乾燥（Ｎａ２ＳＯ４）した。該溶媒を除去し、残渣をシリカゲルカラムクロマトグラフィー精製（２０〜２５％のＥｔＯＡｃ／ヘキサンを用いて勾配溶出）を行なって、（±）−シス−４−ｔｅｒｔ−ブチル−３−トリエチルシリルオキシアゼチジン−２−オン（３．８６ｇ）を得た。
1H-NMR (CDCl3); δ= 0.70 (m, 6H), 0.98 (m, 18H), 3.39 (d, 1H, J= 5.0Hz), 4.88 (dd, 1H, J= 2.1, 5.0Hz), 6.08 (brs, 1H)。
このアゼチジノン（２．０４ｇ、７．９２ｍｍｏｌ）、ジイソプロピルエチルアミン（１．６６ｍＬ、１．２当量）、二炭酸ジ−ｔｅｒｔ−ブチル（１．９０ｇ、１．１当量）およびｐ−ジメチルアミノピリジン（１９４ｍｇ、０．２当量）の乾燥ジクロロメタン（２４ｍＬ）溶液を室温で３時間撹拌した。該反応混合物をジクロロメタンを用いて希釈して、ブラインを用いて洗浄して乾燥（Ｎａ２ＳＯ４を使用）した。溶媒を除去して、続いてシリカゲルカラムクロマトグラフィー精製（０〜２０％のＥｔＯＡｃ／ヘキサンを用いて勾配溶出）を行なって、油状物の標題化合物（２．７１ｇ、９６％）を得た。
1H-NMR (CDCl3); δ= 0.70 (m, 6H), 1.00 (m, 9H), 1.09 (s, 9H), 1.53 (s, 9H), 3.90 (d, 1H, J= 6.5Hz), 4.93 (d, 1H, J= 6.5Hz)。
【０１２３】
実施例１８
バカチン（baccatin）誘導体Ａの製造
【化７】
0005110756.tif 000016
１０−デスアセチルバカチン（４７．４ｇ、８７ｍｍｏｌ）の無水Ｎ，Ｎ−ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）（５００ｍＬ）溶液に、イミダゾール（４７ｇ、６９１ｍｍｏｌ）を周囲温度で加えた。透明な溶液が観察されるまで、溶液を１０〜１５分間撹拌した。ジイソプロピルジクロロシラン（５８ｍＬ、３２２ｍｍｏｌ）を該反応混合物に滴下した。反応混合物を周囲温度で１６時間撹拌した。更なる量のジイソプロピルジクロロシラン（６ｍＬ）を該溶液に加え、該反応混合物を６０分間撹拌した。この時点でのＨＰＬＣは、反応の完結を示した。メタノール（３６ｍＬ）を該混合物に加え、該溶液を６０分間撹拌した。反応を停止させ、ｔｅｒｔ−ブチルメチルケトン（ＴＢＭＥ）（５００ｍＬ）および水（２００ｍＬ）の混合物を用いて希釈した。相分離し、有機相をブライン（２５０ｍＬ）を用いて洗浄し、乾燥（硫酸ナトリウムを使用）し、蒸発させて白色アモルファス状化合物である、トリシリル化されたバカチン誘導体Ａ（９１ｇ、収率＞１００％）を得た。このものは、更に精製することなく次の工程に使用した。
ＬＲＭＳ（ＥＳＩ）Ｍ＋（Ｃ５０Ｈ８４Ｏ１３Ｓｉ３として計算）理論値  ９７７；実測値  ９７７。
【０１２４】
実施例１９
バカチン誘導体Ｂの製造
【化８】
0005110756.tif 000017
（Ｂ）バカチン誘導体Ａ（９０ｇ、９２ｍｍｏｌ）のＤＭＦ（５００ｍＬ）溶液に、０℃でイミダゾール（２２ｇ、３２０ｍｍｏｌ）を加えた。ジメチルクロロシラン（３５ｍＬ、３２０ｍｍｏｌ）を０℃で滴下した。該化合物の沈降が、この時点で観察された。反応混合物（スラリー）を０℃で０，５時間撹拌した。固体をろ過し、このものを冷ＤＭＦ（３×１５０ｍＬ）を用いて洗浄した。風乾後、固体をＴＢＭＥ（７００ｍＬ）に再溶解し、該溶液を水（３×２００ｍＬ）およびブライン（２５０ｍＬ）を用いて洗浄し、乾燥した（硫酸ナトリウムを使用）。該溶液を短いシリカゲルパッドを通してろ過した。溶媒を真空下で除去することにより、Ｂ（収率７７％、７０ｇ）を得た。
ＬＲＭＳ（ＥＳＩ）Ｍ＋（Ｃ５０Ｈ９０Ｏ１３Ｓｉ４として計算）理論値  １０３５、実測値  １０３５。
【０１２５】
実施例２０
バカチン誘導体Ｃの製造
【化９】
0005110756.tif 000018
Ｂ（６６．３ｇ、６４ｍｍｏｌ）のトルエン（６８０ｍＬ）撹拌溶液に、−３４℃でレッド（Red）−Ａｌ（登録商標）（５０ｍＬ、１６０ｍｍｏｌ、６５重量％の水素化ビス（２−メトキシエトキシ）アルミニウムのトルエン溶液）を１０分間かけて滴下した。反応混合物を−２５℃まで昇温し、１．５時間撹拌した。メタノール（６２ｍＬ）を該反応混合物に滴下し、内部温度を−２０℃〜−２５℃に保った。溶液をＴＢＭＥ（５００ｍＬ）を用いて希釈し、続いて１Ｎ水酸化ナトリウム溶液（６０ｍＬ）およびブライン（６０ｍＬ）を用いて加えた。溶液を３０分間撹拌した。珪藻土（１２ｇ）を該混合物に加え、１０分間撹拌し、珪藻土のパッドを通してろ過した。相分離した。有機相を水、ブラインを用いて洗浄して、乾燥（硫酸ナトリウムを使用）した。次いで、溶液を短いシリカゲルパッドを通してろ過して、その後に溶媒を除去した。白色固体の該化合物を収率９７％（６２ｇ）で得た。
ＬＲＭＳ（ＥＳＩ）Ｍ＋（Ｃ５０Ｈ８８Ｏ１２Ｓｉ４として計算）理論値  ９９３、実測値  ９９３。
【０１２６】
実施例２１
バカチン誘導体Ｄの製造
【化１０】
0005110756.tif 000019
アルゴン雰囲気下で、バカチン誘導体Ｃ（６２ｇ、６２ｍｍｏｌ）の無水テトラヒドロフラン（ＴＨＦ）（６００ｍＬ）溶液に、−６０℃でリチウムビス（トリメチルシリル）アミド（１２５ｍＬ、１２５ｍｍｏｌ、１ＭのＴＨＦ溶液）を滴下した。溶液を１５分間撹拌し、続いてクロロギ酸メチル（９ｍＬ、１１６ｍｍｏｌ）を加えた。該溶液の内部温度を−６０℃に保った。反応液をゆっくりと０℃まで昇温させ、混合物を３時間撹拌した。反応の完結後、飽和塩化アンモニウム（３００ｍＬ）を加えた。反応混合物をＴＢＭＥ（１００ｍＬ）を用いて抽出した。有機相を飽和塩化アンモニウム（２００ｍＬ）、水（２００ｍＬ）およびブライン（２００ｍＬ）を用いて洗浄し、乾燥（硫酸ナトリウムを使用）し、蒸発させて油状物のＤ（６７ｇ、＞１００％）を得た。該粗物質を更に精製することなく、次の工程に使用した。
ＬＲＭＳ（ＥＳＩ）Ｍ＋（Ｃ５２Ｈ９０Ｏ１４Ｓｉ４として計算）理論値  １０５１、実測値  １０５１。
【０１２７】
実施例２２
バカチン誘導体Ｅの製造
【化１１】
0005110756.tif 000020
バカチン誘導体Ｄ（６２ｇ、５９ｍｍｏｌ）の乾燥ＴＨＦ（２６０ｍＬ）溶液に、トリエチルアミン・フッ化水素酸複合体（５６ｍＬ、３４４ｍｍｏｌ）を周囲温度で加えた。反応液を３時間撹拌した。反応混合物を酢酸エチル（３５０ｍＬ）を用いて希釈し、水（２００ｍＬ）およびブライン（２００ｍＬ）を用いて洗浄し、乾燥（硫酸ナトリウムを使用）し、蒸発させてＥ（４３ｇ、＞１００％の粗収率）を得た。該粗化合物を熱酢酸エチル（３５０ｍＬ）およびヘキサン（５０ｍＬ）混合液中に再スラリー化することにより、純粋なＥ（収率９０％、５０ｍＬ）を得た。
ＬＲＭＳ（ＥＳＩ）Ｍ＋（Ｃ２９Ｈ３６Ｏ１１として計算）理論値  ５６０、実測値  ５６０。
【０１２８】
実施例２３
バカチン誘導体Ｆの製造
【化１２】
0005110756.tif 000021
−６５℃のバカチン誘導体Ｅ（３２ｇ、５７ｍｍｏｌ）およびイミダゾール（１１．７ｇ、１７２ｍｍｏｌ）のＤＭＦ（２２０ｍＬ）撹拌溶液に、アルゴン下でジイソプロピルジクロロシラン（２６．８ｍＬ）を加えた。該反応混合物の温度を−６０℃に保ち、該混合物を２時間撹拌した。反応の完結後（ＨＰＬＣ）、メタノール溶液（このものは、イミダゾール（１１．７ｇ）をメタノール（３５ｍＬ）に溶解した）を加え、該溶液を０℃で３０分間撹拌した。混合物をＴＢＭＥ（５００ｍＬ）を用いて抽出した。有機相を水洗し（４×１５０ｍＬ）、乾燥し（硫酸ナトリウムを使用）、蒸発させて粗Ｆ（４ｇ）を得た。該粗物質を更にアセトニトリル（１５０ｍＬ）に溶解し、該溶液をヘキサン（３×１００ｍＬ）を用いて洗浄した。アセトニトリルを除去することにより、白色固体の純粋なＦ（３４ｇ、収率８４％）を得た。
ＬＲＭＳ（ＥＳＩ）Ｍ＋（Ｃ３６Ｈ５２Ｏ１２Ｓｉとして計算）理論値  ７０４、実測値  ７０４。
【０１２９】
実施例２４
４−デアセチル−７−［ビスイソプロピル（メトキシ）］シリルオキシ−４−メトキシカルボニルバカチンの製造
【化１３】
0005110756.tif 000022
バカチン誘導体Ｆ（３３．２ｇ、４７ｍｍｏｌ）のＤＭＦ（２００ｍＬ）溶液に、リチウムビス（トリメチルシリル）アミド（６１．２ｍＬ、６１．２ｍｍｏｌ、１ＭのＴＨＦ溶液）を−４３℃で滴下した。該反応混合物を１５分間撹拌し、続いて無水酢酸（５．８ｍＬ、６３ｍｍｏｌ）を加えた。該反応混合物を−４０℃で３０分間撹拌した。酢酸（３．６ｍＬ）を加え、冷浴を除いた。該反応混合物をＴＢＭＥ（３００ｍＬ）を用いて抽出した。有機相を分離し、このものを水（３×１５０ｍＬ）およびブライン（１５０ｍＬ）を用いて洗浄し、乾燥（硫酸ナトリウムを使用）し、蒸発させて粗生成物を得た。この化合物の精製は、ＴＨＦ：ヘキサン（１：６）混合物から結晶化することによって達成した。４０ｇから、標題生成物（２１ｇ、収率６０％）が結晶化した。
ＬＲＭＳ（ＥＳＩ）Ｍ＋（Ｃ３８Ｈ５４Ｏ１３Ｓｉとして計算）理論値  ７４６、実測値  ７４６。
【０１３０】
実施例２５
３’−ｔｅｒｔ−ブチル−３’−Ｎ−ｔｅｒｔ−ブチルオキシカルボニル−４−デアセチル−３’−デフェニル−３’−Ｎ−デベンゾイル−４−Ｏ−メトキシカルボニルパクリタキセルの製造
【化１４】
0005110756.tif 000023
（±）−シス−４−ｔｅｒｔ−ブチル−１−（ｔｅｒｔ−ブチルオキシカルボニル）−３−トリエチルシリルオキシアゼチジン−２−オン（２．７１ｇ、５当量）および４−デアセチル−７−［ビスイソプロピル（メトキシ）］シリルオキシ−４−メトキシカルボニルバカチン（１．１３ｇ、１．５２ｍｍｏｌ）の乾燥ＴＨＦ（１００ｍＬ）溶液をＮ２下、−５０℃まで冷却し、リチウムビス（トリメチルシリル）アミド（１．９７ｍＬ、１．３当量、１．０ＭのＴＨＦ溶液）を加えた。５分後に、このものを浴に移し、このものを−３５℃〜−３０℃に２０分間保ち、次いで−２５℃で２４時間保った。次いで、該反応液を飽和ＮＨ４Ｃｌ水溶液を用いてクエンチし、ＥｔＯＡｃおよびヘキサン（１：１）の混合物を用いて抽出した。該有機抽出物をブラインを用いて洗浄し、乾燥した（Ｎａ２ＳＯ４を使用）。該溶媒を除去し、残渣を円形クロマトグラフィー精製（６ｍｍのシリカゲルプレート、５〜２０％のＥｔＯＡｃ／ヘキサン溶液を用いて勾配溶出）を行なうことにより、２’，３’−ジアステレオマー混合物である、３’−ｔｅｒｔ−ブチル−３’−Ｎ−ｔｅｒｔ−ブチルオキシカルボニル−７−［ビスイソプロピル（メトキシ）シリルオキシ−４−デアセチル−３’−デフェニル−３’−Ｎ−デベンゾイル−４−Ｏ−メトキシカルボニル−２’−トリエチルシリルオキシパクリタキセル（１．５５ｇ）を得た。この混合物を乾燥ＴＨＦ（６０ｍＬ）に溶解し、トリエチルアミン・三フッ化水素（０．９２ｍＬ、４当量）を加えた。室温で２２時間後に、該反応混合物を飽和ＮａＨＣＯ３溶液を用いて飽和とし、次いでＥｔＯＡｃを用いて抽出した。該有機抽出液をブラインを用いて洗浄し、乾燥（Ｎａ２ＳＯ４を使用）し、溶媒を除去した。残渣を円形クトマトグラフィー精製（２ｍｍのシリカゲルプレート、１０〜５０％勾配のＥｔＯＡｃ／ヘキサン溶液を用いて勾配溶出）を行なって、２’Ｓ，３’Ｓ−３’−ｔｅｒｔ−ブチル−３’−Ｎ−ｔｅｒｔ−ブチルオキシカルボニル−４−デアセチル−３’−デフェニル−３’−Ｎ−デベンゾイル−４−Ｏ−メトキシカルボニルパクリタキセル（２１０ｍｇ、１８％）
【数１】
0005110756.tif 000024
および、標題化合物（６６８ｍｇ、５６％）
【数２】
0005110756.tif 000025
を得た。
【０１３１】
本発明は、上で具体的に記載した実施態様に限定されるものではなく、本特許請求の範囲から逸脱することなく、改変および修飾をすることができる。
【図面の簡単な説明】
【図１】  図１は、ヌードマウスで増殖させたＨＣＴ−１１６固形ヒト結腸癌腫モデルにおいて、大部分の腫瘍細胞が非増殖性の（Ｇ０）増殖期にあることを示すグラフである。皮下増殖させたＨＣＴ−１１６ヒト結腸癌腫固形腫瘍に存在する非増殖性細胞は、連続注入による長時間のＢｒｄＵｒｄ標識化（２４時間）によって同定した。該固形腫瘍から分散した腫瘍細胞の全個体群のわずかに２０％だけがＢｒｄＵｒｄに対して陽性に染色され、このことは増殖性細胞が選択的に標識化されたことを示す。
【図２】  図２は、非増殖性のＨＣＴ−１１６腫瘍細胞が化合物２によってインビトロで選択的に標的とされることを示すグラフである。指数的に増殖する腫瘍細胞（２日目の非集密的であって非常に増殖性である細胞）は、増殖の定常期にある腫瘍細胞（８日目の非常に集密的であって非増殖性である細胞）よりも化合物２に対して＞４４倍感受性が低かった（ＩＣ９０＝０．３μＭ）。
【図３】  図３は、非増殖性のＨＣＴ−１１６腫瘍細胞が化合物６によってインビトロで選択的に標的とされることを示すグラフである。指数的に増殖する腫瘍細胞（２日目の非集密的であって非常に増殖性である細胞）が定常期の腫瘍細胞（８日目の非常に集密的であって非増殖性である細胞）よりも化合物６に対して〜６７倍感受性が低かった（ＩＣ９０＝１．０４μＭ）。
【図４】  図４は、非増殖性のＨＣＴ−１１６腫瘍細胞が化合物４によってインビトロで選択的に標的とされることを示すグラフである。指数的に増殖する腫瘍細胞（２日目の非集密的であって非常に増殖性である細胞）が、定常期の腫瘍細胞（８日目の非常に集密的であって非増殖性である細胞）よりも化合物４に対して＞９１．２倍感受性が低かった（ＩＣ９０＝１．０５μＭ）。
【図５】  図５は、化合物２およびその同属種（congener）と異なって、抗増殖剤（例えば、パクリタキセル）がインビトロで増殖性のＨＣＴ−１１６腫瘍細胞を選択的に標的とすることを示すグラフである。指数的に増殖する癌細胞（２日目の非集密的であって非常に増殖性である細胞）が、定常期の腫瘍細胞（８日目の非常に集密的であって非増殖性である細胞）よりも＞＞１０倍感受性が高かった（ＩＣ９０＝１７．８ｎＭ）。
【図６】  図６は、エポチロン（このものは、抗新生生物である抗増殖性剤の別クラスである）は、増殖性細胞を選択的に標的とすることを示すグラフである。この例において、指数的に増殖するＨＣＴ１１６癌細胞（２日目の非集密的であって非常に増殖性である細胞）が定常期のＨＣＴ１１６細胞（８日目の非常に集密的であって非増殖性である細胞）よりもエポチロンＢに対して＞＞８３倍感受性が高かった（ＩＣ９０＝１．３ｎＭ）。
【図７】  図７は、ヒト結腸癌腫セルラインにおける、化合物２とパクリタキセルとの組み合わせ療法の結果を示すグラフである。これらのデータは、インビトロでのＨＣＴ１１６癌細胞の処置において化合物２およびパクリタキセルとの組み合わせ処置を使用することにより、明らかに相乗的な抗癌活性が得られることを示す。２つのそれら剤を与える順序は、相乗作用が得られるかどうかを決めるのに重要であることが分かった。まず、パクリタキセルを２０時間投与し、続いて化合物２（０．３３μＭ）を次の２０時間投与することは、明らかに相乗的であった。このことは、２つのそれら剤をその示す濃度で２０時間同時処置した場合と同様であった。それに対して、化合物２（０．３μＭ）および続くパクリタキセルの組み合わせは、拮抗的であることを見出した。
【図８】  図８は、ヒト結腸癌腫セルラインＨＣＴ１１６における、化合物２および化合物１との組み合わせ化学療法を示すグラフである。これらのデータは、インビトロでのＨＣＴ１１６癌細胞の処置において、化合物２および化合物１との組み合わせ処置を使用することにより、明らかに相乗的な抗癌活性が得られることを示す。まず化合物１を２０時間与え、続いて化合物２（１μＭ）を次の２０時間の処置期間で与えた。
【図９】  図９は、化合物２および化合物１を用いた組み合わせ化学療法による相乗作用を示すグラフである。相乗作用は、化合物１および化合物２の濃度の範囲で得られ、これは該組み合わせにおいて用いる各々の薬剤の特定の濃度に依存しないようであった。化合物２の場合では、濃度が１μＭ（図８）、０．３３μＭ（図９）および０．１１μＭ（図１０）である全ての場合が、様々な濃度の化合物１と相乗的な相互作用を示した。これらの実験において、まず化合物１を２０時間与え、続いて化合物２を次の２０時間の処置期間で与えた。
【図１０】  図１０は、図９と同様に化合物２および化合物１との組み合わせ化学療法による相乗作用を示すグラフである。
【図１１】  図１１は、ヌードマウスで増殖させたヒト腫瘍異種移植片（ＨＴＣ１１６ヒト結腸癌腫）における、化合物２およびパクリタキセルとの組み合わせ化学療法後に得られる、インビボでの相乗作用を示すグラフである。この実験において、化合物２は１２５ｍｇ／ｋｇ用量を持続的な（２４時間）静脈内注入によって与えた。化合物２の注入期間の終わりに、パクリタキセルを２４ｍｇ／ｋｇ用量で腹膜腔内投与した（これは、同時投与とみなす）。
【図１２】  図１２は、ヌードマウスで増殖させたパクリタキセル抵抗性のヒト腫瘍異種移植片（Ｐａｔ−７ヒト卵巣癌腫）における、化合物２およびパクリタキセルを用いる組み合わせ化学療法後のインビボでの相乗作用を示すグラフである。パクリタキセルおよび化合物２は同時に投与した。すなわち、パクリタキセルを静脈内投与経路で投与し、化合物２を腹膜腔内投与経路で投与した。示すデータは、最大限に許容されるレジメであった。ここで、パクリタキセル（３６ｍｇ／ｋｇ、静脈内、ｑ３ｄ×３）；化合物２（３５０ｍｇ／ｋｇ、腹膜腔内、ｑ３ｄ×３）であった。
【図１３】  図１３は、ヌードマウスで増殖させた多剤耐性のヒト腫瘍異種移植（ＨＣＴＶＭ４６ヒト結腸癌腫）における、化合物２および化合物１との組み合わせ療法後の、インビボでの治療学的な相乗作用を示すグラフである。化合物１を２４時間静脈内投与し、その後に化合物２を腹膜腔内投与した。示すデータは、最大限に許容されるレジメである。化合物１のみ（１５ｍｇ／ｋｇ、ｑ４ｄ×３）、化合物２のみ（４００ｍｇ／ｋｇ、ｑ４ｄ×３）、組み合わせ（化合物１を６ｍｇ／ｋｇ、その後に化合物２を４００ｍｇ／ｋｇで）。
【図１４】  図１４は、ヌードマウスで増殖させた多剤耐性のヒト腫瘍異種移植片（ＨＣＴＶＭ４６ヒト結腸癌腫）についてのインビボでの、化合物１および化合物２との組み合わせのスケジュール依存性を示すグラフである。上記の他の報告されたスケジュールと対照的に、化合物１の１日前に化合物２を投与することにより、治療学的な相乗作用は得られなかった。示すデータは、最大限に許容されるレジメである。すなわち、化合物１のみ（１０ｍｇ／ｋｇ、静脈内、ｑ４ｄ×３）、化合物２のみ（４００ｍｇ／ｋｇ、腹膜腔内、ｑ４ｄ×３）、組み合わせ（化合物２を３００ｍｇ／ｋｇ、続いて化合物１を１０ｍｇ／ｋｇ）である。
【図１５】  図１５は、化合物２およびＣＰＴ−１１との組み合わせ化学療法により、ヌードマウスで増殖させた進行性のヒト結腸癌腫ＨＣＴ１１６（３００〜５００ｍｇ）において相乗的な抗腫瘍活性を得ることを示すグラフである。ＣＰＴ−１１を投与し、その１時間後に化合物２を投与した。ＭＴＤが３０ｍｇ／ｋｇ／注射でまたはその付近で、ＣＰＴ−１１を静脈内投与した。化合物２を、２つの異なる用量レベル：６０および８０ｍｇ／ｋｇ／注射で静脈内で与えた。
【図１６】  図１６（Ａ）は、ゲムシタビン（Ｇｅｍ）および化合物２との組み合わせ化学療法により、ヒト結腸癌腫ＨＴ−２９の腫瘍増殖の抑制の増大を誘発することを示すグラフである。図１６（Ｂ）は、腫瘍の退縮を腫瘍応答の終点として使用する場合に、ゲムシタビンおよび化合物２との組み合わせ療法から得られる相乗的な抗腫瘍活性もまた観察されることを示すグラフである。Ｇｅｍを投与し、その１時間後に化合物２を投与した。Ｇｅｍを２つの用量レベル：２４および３６ｍｇ／ｋｇ／注射（ＭＴＤ＝３６ｍｇ／ｋｇ／注射）で静脈内投与した。化合物２を２つの異なる用量レベル：６０および８０ｍｇ／ｋｇ／注射で静脈内で与えた。
【図１７】  図１７（Ａ）は、パクリタキセル（Ptxl）および化合物２との組み合わせ化学療法は、ヒト結腸癌腫ＨＣＴ１１６について腫瘍の増殖の観点で相乗的な抗腫瘍活性を誘発することを示すグラフである。図１７（Ｂ）は、腫瘍退縮および治癒速度を腫瘍応答の終点として用いる場合に、パクリタキセルおよび化合物２との組み合わせ療法から得られる相乗的な抗腫瘍活性もまた観察されることを示すグラフである。パクリタキセルを投与し、その３時間後に化合物２を投与した。パクリタキセルを２０ｍｇ／ｋｇ／注射のＱ７Ｄ×４で静脈内投与した。化合物２を２つの異なる用量レベル：４０および８０ｍｇ／ｋｇ／注射で静脈内で与えた。
【図１８】  図１８（Ａ）〜１８（Ｇ）は、様々な新生生物剤を単独でまたは組み合わせて使用することによる抗癌効果を示すグラフである。該結果は、化合物２およびＨｅｒ−１インヒビター（化合物８）を組み合わせて使用することにより、Ｈｅｒ−１で活性化されたＳＡＬ−２癌セルラインについてインビトロで相乗的な細胞毒性効果を発揮することを示す（図１８Ｂを図１８Ｄと比較する）。図１８Ａは、示す濃度のパクリタキセルに２０時間曝露後の、ＳＡＬ−２セルラインのクローン原性生存を示すグラフである。図１８Ｂは、示す濃度の化合物２に２０時間曝露後の、ＳＡＬ−２セルラインのクローン産生性の生存を示すグラフである。図１８Ｃは、パクリタキセルと、Ｈｅｒ−１インヒビターである化合物８との間の拮抗的な相互作用を示すグラフである。ＳＡＬ−２細胞をまず化合物８に２０時間曝露させて、その後に更にパクリタキセルに２０時間曝露させた。図１８Ｄは、化合物２と、Ｈｅｒ−１インヒビターである化合物８との間の相乗的な相互作用を示すグラフである。ＳＡＬ−２細胞をまず化合物９に２０時間曝露させて、その後に化合物２に２０時間曝露させた。化合物２は、ヌードマウスでのＨｅｒ−１を過剰生産するＡ４３１ヒト扁平上皮癌腫異種移植片モデルにおいてＨｅｒ−１（ＥＧＦＲ）インヒビターであるイレッサ（登録商標）の抗腫瘍活性を増大させる。図１８Ｅは、イレッサ（登録商標）（２００ｍｇ／ｋｇ／投与、経口、Ｑ１Ｄ×１１）および化合物２（６０ｍｇ／ｋｇ／注射、静脈内、Ｑ２Ｄ×５）との組み合わせ効果を示すグラフである。イレッサ（登録商標）療法を開始し、その３日後に化合物２を用いた処置を開始した。図１８Ｆは、イレッサ（登録商標）（２００ｍｇ／ｋｇ／投与、経口、Ｑ１Ｄ×１１）および化合物２（８０ｍｇ／ｋｇ／注射、静脈内、Ｑ２Ｄ×５）との組み合わせ効果を示すグラフである。図１８Ｇは、イレッサ（登録商標）（２００ｍｇ／ｋｇ／投与、経口、Ｑ１Ｄ×１１）およびパクリタキセル（２４ｍｇ／ｋｇ／注射、静脈内、Ｑ２Ｄ×５）との組み合わせ効果を示すグラフである。
【図１９】  化合物２およびヘルセプチンとの組み合わせ処置により、ＢＴ４７４ヒト乳癌腫セルラインについて相乗的な抗増殖性活性を得ることを示すグラフである。図示する通り、ヘルセプチン（登録商標）処置を開始し、その２日後に化合物２の処置を開始した。
【図２０】  図２０は、化合物２がヌードマウスでのＭＣＦ−７エストロゲン依存性のヒト乳癌腫異種移植片モデルにおける、タモキシフェンの抗腫瘍活性を増大することを示すグラフである。タモキシフェンをＱ２Ｄ×１４で経口投与した。図示する通り、化合物２を２つの経路でＱ１Ｄ×１０で経口投与した。
【図２１】  図２１は、化合物２がヌードマウスでのアンドロゲン依存性のヒト精巣癌腫異種移植片モデルであるＭＤＡ−ＰＣａ−２ｂにおける、外科的な去勢の抗腫瘍活性を増大することを示すグラフである。外科的な去勢を、腫瘍のインプラントの２１日後に行なった。化合物２およびパクリタキセル療法を開始し、その３日後に外科的な去勢を開始した。化合物２を、Ｑ１Ｄ×１０で経口投与した。パクリタキセルを、Ｑ２Ｄ×５で静脈内で与えた。
【図２２】  図２２は、化合物２がヌードマウスでのアンドロゲン依存性であるカソデックス（Casodex）（登録商標）反応性のヒト精巣癌腫異種移植片モデルであるＭＤＡ−ＰＣａ−２ｂ−Ａｌにおける、アンドロゲン受容体インヒビターであるカソデックス（登録商標）の抗腫瘍活性を増大させることを示すグラフである。カソデックス（登録商標）は、Ｑ１Ｄ×１０で経口投与した。化合物２の療法を開始し、その３日後にカソデックス（登録商標）療法を開始した。化合物２を、Ｑ１Ｄ×１０で経口投与した。
【図２３】  図２３は、ＣＤＫインヒビター（ＣＤＫＩ）、化合物９と化合物２との組み合わせにより、インビトロでのＡ２７８０ヒト卵巣癌細胞において順序依存性の相乗的な細胞毒性効果を得ることを示すグラフである。１．５μＭ（効果のない用量）の化合物９を用いた４時間の処置を、濃度を増大させながら化合物２を用いた２０時間の処置と組み合わせた。コロニーの生成を１０日目にスコアした。パネルＡにおいては、ＣＤＫＩによる処置を化合物２による処置の前に行なった。パネルＢにおいては、化合物２による処置をＣＤＫＩによる処置の前に行なった。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８Ａ】
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【図１８Ｂ】
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【図１８Ｃ】
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【図１８Ｄ】
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【図１８Ｅ】
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【図１８Ｆ】
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【図１８Ｇ】
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【図１９】
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【図２０】
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【図２１】
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【図２２】
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【図２３】
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