(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
目的遺伝子をコードするｍＲＮＡとＲＮＡオリゴマーとの複合体であって、
ＲＮＡオリゴマーが、以下の（ａ）又は（ｂ）のＲＮＡ配列を含む少なくとも２種のＲＮＡオリゴマーであり、
少なくも２種のＲＮＡオリゴマーは、ｍＲＮＡの配列中のそれぞれ異なる配列にハイブリダイズ可能であり、
ＲＮＡオリゴマーの第１の配列が、ＲＮＡオリゴマーの第２の配列とは異なるｍＲＮＡにハイブリダイズすることで形成される、複合体。
（ａ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、前記第１の配列と同じ配列である第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列；
（ｂ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、前記第１の配列と同じ配列である第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
【請求項２】
前記ＲＮＡオリゴマーが、以下の（ａ）又は（ｂ）のＲＮＡ配列を含む少なくとも２種のＲＮＡオリゴマーである、請求項１に記載の複合体。
（ａ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１５〜２３塩基の第１の配列と、０〜３０塩基のリンカー配列と、前記第１の配列と同じ配列である第２の配列をこの順に含むＲＮＡ配列
（ｂ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１５〜２３塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズする第１の配列と、０〜３０塩基のリンカー配列と、前記第１の配列と同じ配列である第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
【請求項３】
前記ＲＮＡオリゴマーが、以下の（ａ）又は（ｂ）のＲＮＡ配列を含む少なくとも２種のＲＮＡオリゴマーである、請求項１に記載の複合体。
（ａ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１７塩基の第１の配列と、１０塩基のリンカー配列と、前記第１の配列と同じ配列である第２の配列をこの順に含むＲＮＡ配列
（ｂ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１７塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズする第１の配列と、１０塩基のリンカー配列と、前記第１の配列と同じ配列である第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
【請求項４】
前記リンカー配列の塩基が全てアデニンである、請求項１〜３のいずれか１項に記載の複合体。
【請求項５】
前記少なくとも２種のＲＮＡオリゴマーが、２〜８種のＲＮＡオリゴマーである、請求項１〜４のいずれか１項に記載の複合体。
【請求項６】
ｍＲＮＡが１μｇ／ｍＬ〜１０，０００μｇ／ｍＬ、ｍＲＮＡと少なくとも２種の各ＲＮＡオリゴマーとのモル比が１：０．０５〜０．０５：１となるようにｍＲＮＡと少なくとも２種のＲＮＡオリゴマーを含む、請求項１〜５のいずれか１項に記載の複合体。
【請求項７】
請求項１〜６のいずれか１項に記載の複合体を含有する、医薬組成物。
【請求項８】
目的遺伝子をコードするｍＲＮＡと、以下の（ａ）又は（ｂ）のＲＮＡ配列を含む少なくとも２種のＲＮＡオリゴマーとの複合体を形成させることを含み、
少なくも２種のＲＮＡオリゴマーは、ｍＲＮＡの配列中のそれぞれ異なる配列にハイブリダイズ可能なものであり、
複合体において、ＲＮＡオリゴマーの第１の配列は、ＲＮＡオリゴマーの第２の配列とは異なるｍＲＮＡにハイブリダイズする、
ｍＲＮＡの安定化方法。
（ａ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、前記第１の配列と同じ配列である第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
（ｂ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、前記第１の配列と同じ配列である第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
【請求項９】
目的遺伝子をコードするｍＲＮＡとＲＮＡオリゴマーとの複合体であって、
ＲＮＡオリゴマーが、以下の（ａ）又は（ｂ）のＲＮＡ配列を含む少なくとも１種のＲＮＡオリゴマーであり、
ＲＮＡオリゴマーの第１の配列が、ＲＮＡオリゴマーの第２の配列とは異なるｍＲＮＡにハイブリダイズすることで形成される、複合体。
（ａ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列であり、かつ第１の配列とは異なる第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列；
（ｂ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な配列であり、かつ第１の配列とは異なる第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
【請求項１０】
前記ＲＮＡオリゴマーが、以下の（ａ）又は（ｂ）のＲＮＡ配列を含む少なくとも１種のＲＮＡオリゴマーである、請求項９に記載の複合体。
（ａ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１５〜２３塩基の第１の配列と、０〜３０塩基のリンカー配列と、ｍＲＮＡの配列に相補的な１５〜２３塩基の配列であり、かつ第１の配列とは異なる第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
（ｂ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１５〜２３塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な第１の配列と、０〜３０塩基のリンカー配列と、ｍＲＮＡの配列に相補的な１５〜２３塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な配列であり、かつ第１の配列とは異なる第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
【請求項１１】
前記ＲＮＡオリゴマーが、以下の（ａ）又は（ｂ）のＲＮＡ配列を含む少なくとも１種のＲＮＡオリゴマーである、請求項９に記載の複合体。
（ａ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１７塩基の第１の配列と、１０塩基のリンカー配列と、ｍＲＮＡの配列に相補的な１７塩基の配列であり、かつ第１の配列とは異なる第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
（ｂ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１７塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な第１の配列と、１０塩基のリンカー配列と、ｍＲＮＡの配列に相補的な１７塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な配列であり、かつ第１の配列とは異なる第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
【請求項１２】
前記リンカー配列の塩基が全てアデニンである、請求項９〜１１のいずれか１項に記載の複合体。
【請求項１３】
前記少なくとも１種のＲＮＡオリゴマーが、２〜８種のＲＮＡオリゴマーである、請求項９〜１２のいずれか１項に記載の複合体。
【請求項１４】
ｍＲＮＡが１μｇ／ｍＬ〜１０，０００μｇ／ｍＬ、ｍＲＮＡと少なくとも１種の各ＲＮＡオリゴマーとのモル比が１：０．０５〜０．０５：１となるようにｍＲＮＡと少なくとも１種のＲＮＡオリゴマーを含む、請求項１１〜１３のいずれか１項に記載の複合体。
【請求項１５】
請求項１１〜１４のいずれか１項に記載の複合体を含有する、医薬組成物。
【請求項１６】
目的遺伝子をコードするｍＲＮＡと、以下の（ａ）又は（ｂ）のＲＮＡ配列を含む少なくとも１種のＲＮＡオリゴマーとの複合体を形成させることを含み、
複合体において、ＲＮＡオリゴマーの第１の配列は、ＲＮＡオリゴマーの第２の配列とは異なるｍＲＮＡにハイブリダイズする、
ｍＲＮＡの安定化方法。
（ａ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列であり、かつ第１の配列とは異なる第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列；
（ｂ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な配列であり、かつ第１の配列とは異なる第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
【請求項１７】
請求項１〜６及び１１〜１４のいずれか１項に記載の複合体を内包したｍＲＮＡの輸送担体。
【請求項１８】
輸送担体が、高分子ミセル又は脂質性ｍＲＮＡキャリアである、請求項１７に記載のｍＲＮＡの輸送担体。
【請求項１９】
請求項１７または１８に記載のｍＲＮＡの輸送担体を含む、医薬組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、ｍＲＮＡの安定化方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
ｍＲＮＡ送達は、治療用タンパク質を安全かつ持続的に供給するための手法として注目を集めている。一方でｍＲＮＡが生体内で速やかに酵素分解を受けてしまうことが大きな課題である。これに対して、ｍＲＮＡ輸送担体を用いてｍＲＮＡを分解から保護する方法、及びｍＲＮＡ分子自体を改良する方法が検討されているが、生体内でのＲＮＡ分解酵素が非常に強いため、さらなる技術革新が求められている。【０００３】
ｍＲＮＡ分子自体を改良する方法について、ｍＲＮＡ塩基の一部を化学修飾したものに置換する方法が検討されている（例えば、非特許文献１）。これまでに様々な化学修飾塩基が網羅的に検討されたが、ｍＲＮＡの酵素耐性を大幅に向上させることができるものは未だに報告されていない。また、修飾を行うことでしばしばｍＲＮＡからのタンパク質翻訳効率が大きく低下してしまうことから、自由な化学修飾は困難であった。【０００４】
ここで、特許文献１には、カチオン性ポリマーとｍＲＮＡのポリイオンコンプレックスが記載され、これをｍＲＮＡの送達に用いることが記載されている。また、非特許文献２には、高分子ミセル型ｍＲＮＡ輸送担体の安定性、酵素分解の評価、およびポリマーにコレステロール修飾を行う効果について記載されている。しかしながら、これらの文献には、生体内において、ｍＲＮＡからのタンパク質翻訳効率を大きく低下させることなく、ｍＲＮＡの酵素耐性を向上させることできる、ｍＲＮＡの安定化方法は記載されていない。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】ＷＯ２０１５／１２１９２４Ａ
【非特許文献】
【０００６】
【非特許文献１】Ｍｅｉｓ，Ｊ．Ｅ．ａｎｄ  Ｃｈｅｎ，Ｆ．（２００２）ＥＰＩＣＥＮＴＲＥ  Ｆｏｒｕｍ  ９（１），１０
【非特許文献２】Ｕｃｈｉｄａ，Ｓ．，ｅｔ  ａｌ．，Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ（２０１６）８２，ｐ．２２１-２２８．
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
本発明は、ｍＲＮＡの新たな安定化方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明者らは、鋭意検討を重ねた結果、ｍＲＮＡと相補的な第１の配列とリンカー配列と第１の配列と同じ配列である第２の配列を含む少なくとも２種のＲＮＡオリゴマーをｍＲＮＡにハイブリダイズさせることでｍＲＮＡとＲＮＡオリゴマーの複合体を得ることができ、この複合体がｍＲＮＡを安定化できることなどを見出し、本発明を完成するに至った。
すなわち、本発明は以下のとおりである。【０００９】
［１−１］  目的遺伝子をコードするｍＲＮＡとＲＮＡオリゴマーとの複合体であって、
ＲＮＡオリゴマーが、以下の（ａ）又は（ｂ）のＲＮＡ配列を含む少なくとも２種のＲＮＡオリゴマーであり、
少なくも２種のＲＮＡオリゴマーは、ｍＲＮＡの配列中のそれぞれ異なる配列にハイブリダイズ可能であり、
ＲＮＡオリゴマーの第１の配列が、ＲＮＡオリゴマーの第２の配列とは異なるｍＲＮＡにハイブリダイズすることで形成される（すなわち、ｍＲＮＡ同士がＲＮＡオリゴマーにより架橋された）、複合体。
（ａ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、前記第１の配列と同じ配列である第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列；
（ｂ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、前記第１の配列と同じ配列である第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
［１−２］  前記ＲＮＡオリゴマーが、以下の（ａ）又は（ｂ）のＲＮＡ配列を含む少なくとも２種のＲＮＡオリゴマーである、上記［１−１］に記載の複合体。
（ａ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１５〜２３塩基の第１の配列と、０〜３０塩基のリンカー配列と、前記第１の配列と同じ配列である第２の配列をこの順に含むＲＮＡ配列
（ｂ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１５〜２３塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズする第１の配列と、０〜３０塩基のリンカー配列と、前記第１の配列と同じ配列である第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
［１−３］  前記ＲＮＡオリゴマーが、以下の（ａ）又は（ｂ）のＲＮＡ配列を含む少なくとも２種のＲＮＡオリゴマーである、上記［１−１］に記載の複合体。
（ａ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１７塩基の第１の配列と、１０塩基のリンカー配列と、前記第１の配列と同じ配列である第２の配列をこの順に含むＲＮＡ配列
（ｂ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１７塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズする第１の配列と、１０塩基のリンカー配列と、前記第１の配列と同じ配列である第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
［１−４］  前記リンカー配列の塩基が全てアデニンである、上記［１−１］〜［１−３］のいずれか１項に記載の複合体。
［１−５］  前記少なくとも２種のＲＮＡオリゴマーが、２〜８種のＲＮＡオリゴマーである、上記［１−１］〜［１−４］のいずれか１項に記載の複合体。
［１−６］  ｍＲＮＡが１μｇ／ｍＬ〜１０，０００μｇ／ｍＬ、ｍＲＮＡと少なくとも２種の各ＲＮＡオリゴマーとのモル比が１：０．０５〜０．０５：１となるようにｍＲＮＡと少なくとも２種のＲＮＡオリゴマーを含む、上記［１−１］〜［１−５］のいずれか１項に記載の複合体。
［１−７］  上記［１−１］〜［１−６］のいずれか１項に記載の複合体を含有する、医薬組成物。【００１０】
［２−１］  目的遺伝子をコードするｍＲＮＡと、以下の（ａ）又は（ｂ）のＲＮＡ配列を含む少なくとも２種のＲＮＡオリゴマーとの複合体を形成させることを含み、
少なくも２種のＲＮＡオリゴマーは、ｍＲＮＡの配列中のそれぞれ異なる配列にハイブリダイズ可能なものであり、
複合体において、ＲＮＡオリゴマーの第１の配列は、ＲＮＡオリゴマーの第２の配列とは異なるｍＲＮＡにハイブリダイズする、
ｍＲＮＡの安定化方法。
（ａ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、前記第１の配列と同じ配列である第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
（ｂ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、前記第１の配列と同じ配列である第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
［２−２］  前記ＲＮＡオリゴマーが、以下の（ａ）又は（ｂ）のＲＮＡ配列を含む少なくとも２種のＲＮＡオリゴマーである、上記［２−１］に記載の方法。
（ａ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１５〜２３塩基の第１の配列と、０〜３０塩基のリンカー配列と、前記第１の配列と同じ配列である第２の配列をこの順に含むＲＮＡ配列
（ｂ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１５〜２３塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズする第１の配列と、０〜３０塩基のリンカー配列と、前記第１の配列と同じ配列である第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
［２−３］  前記ＲＮＡオリゴマーが、以下の（ａ）又は（ｂ）のＲＮＡ配列を含む少なくとも２種のＲＮＡオリゴマーである、上記［２−１］に記載の方法。
（ａ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１７塩基の第１の配列と、１０塩基のリンカー配列と、前記第１の配列と同じ配列である第２の配列をこの順に含むＲＮＡ配列
（ｂ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１７塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズする第１の配列と、１０塩基のリンカー配列と、前記第１の配列と同じ配列である第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
［２−４］  前記リンカー配列の塩基が全てアデニンである、上記［２−１］〜［２−３］のいずれか１項に記載の方法。
［２−５］  前記少なくとも２種のＲＮＡオリゴマーが、２〜８種のＲＮＡオリゴマーである、上記［２−１］〜［２−４］のいずれか１項に記載の方法。
［２−６］  ｍＲＮＡが１μｇ／ｍＬ〜１０，０００μｇ／ｍＬ、ｍＲＮＡと少なくとも２種の各ＲＮＡオリゴマーとのモル比が１：０．０５〜０．０５：１となるようにｍＲＮＡと少なくとも２種のＲＮＡオリゴマーを含む、上記［２−１］〜［２−５］のいずれか１項に記載の方法。【００１１】
［３−１］  目的遺伝子をコードするｍＲＮＡとＲＮＡオリゴマーとの複合体であって、
ＲＮＡオリゴマーが、以下の（ａ）又は（ｂ）のＲＮＡ配列を含む少なくとも１種のＲＮＡオリゴマーであり、
ＲＮＡオリゴマーの第１の配列が、ＲＮＡオリゴマーの第２の配列とは異なるｍＲＮＡにハイブリダイズすることで形成される（すなわち、ｍＲＮＡ同士がＲＮＡオリゴマーにより架橋された）、複合体。
（ａ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列であり、かつ第１の配列とは異なる第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列；
（ｂ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な配列であり、かつ第１の配列とは異なる第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
［３−２］  前記ＲＮＡオリゴマーが、以下の（ａ）又は（ｂ）のＲＮＡ配列を含む少なくとも１種のＲＮＡオリゴマーである、上記［３−１］に記載の複合体。
（ａ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１５〜２３塩基の第１の配列と、０〜３０塩基のリンカー配列と、ｍＲＮＡの配列に相補的な１５〜２３塩基の配列であり、かつ第１の配列とは異なる第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
（ｂ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１５〜２３塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な第１の配列と、０〜３０塩基のリンカー配列と、ｍＲＮＡの配列に相補的な１５〜２３塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な配列であり、かつ第１の配列とは異なる第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
［３−３］  前記ＲＮＡオリゴマーが、以下の（ａ）又は（ｂ）のＲＮＡ配列を含む少なくとも１種のＲＮＡオリゴマーである、上記［３−１］に記載の複合体。
（ａ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１７塩基の第１の配列と、１０塩基のリンカー配列と、ｍＲＮＡの配列に相補的な１７塩基の配列であり、かつ第１の配列とは異なる第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
（ｂ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１７塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な第１の配列と、１０塩基のリンカー配列と、ｍＲＮＡの配列に相補的な１７塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な配列であり、かつ第１の配列とは異なる第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
［３−４］  前記リンカー配列の塩基が全てアデニンである、上記［３−１］〜［３−３］のいずれか１項に記載の複合体。
［３−５］  前記少なくとも１種のＲＮＡオリゴマーが、２〜８種のＲＮＡオリゴマーである、上記［３−１］〜［３−４］のいずれか１項に記載の複合体。
［３−６］  ｍＲＮＡが１μｇ／ｍＬ〜１０，０００μｇ／ｍＬ、ｍＲＮＡと少なくとも１種の各ＲＮＡオリゴマーとのモル比が１：０．０５〜０．０５：１となるようにｍＲＮＡと少なくとも１種のＲＮＡオリゴマーを含む、上記［３−１］〜［３−５］のいずれか１項に記載の複合体。
［３−７］  上記［３−１］〜［３−６］のいずれか１項に記載の複合体を含有する、医薬組成物。【００１２】
［４−１］  目的遺伝子をコードするｍＲＮＡと、以下の（ａ）又は（ｂ）のＲＮＡ配列を含む少なくとも１種のＲＮＡオリゴマーとの複合体を形成させることを含み、
複合体において、ＲＮＡオリゴマーの第１の配列は、ＲＮＡオリゴマーの第２の配列とは異なるｍＲＮＡにハイブリダイズする、
ｍＲＮＡの安定化方法。
（ａ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列であり、かつ第１の配列とは異なる第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列；
（ｂ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な配列であり、かつ第１の配列とは異なる第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
［４−２］  前記ＲＮＡオリゴマーが、以下の（ａ）又は（ｂ）のＲＮＡ配列を含む少なくとも１種のＲＮＡオリゴマーである、上記［４−１］に記載の方法。
（ａ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１５〜２３塩基の第１の配列と、０〜３０塩基のリンカー配列と、ｍＲＮＡの配列に相補的な１５〜２３塩基の配列であり、かつ第１の配列とは異なる第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
（ｂ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１５〜２３塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な第１の配列と、０〜３０塩基のリンカー配列と、ｍＲＮＡの配列に相補的な１５〜２３塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な配列であり、かつ第１の配列とは異なる第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
［４−３］  前記ＲＮＡオリゴマーが、以下の（ａ）又は（ｂ）のＲＮＡ配列を含む少なくとも１種のＲＮＡオリゴマーである、上記［４−１］に記載の方法。
（ａ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１７塩基の第１の配列と、１０塩基のリンカー配列と、ｍＲＮＡの配列に相補的な１７塩基の配列であり、かつ第１の配列とは異なる第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
（ｂ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１７塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な第１の配列と、１０塩基のリンカー配列と、ｍＲＮＡの配列に相補的な１７塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な配列であり、かつ第１の配列とは異なる第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
［４−４］  前記リンカー配列の塩基が全てアデニンである、上記［４−１］〜［４−３］のいずれか１項に記載の方法。
［４−５］  前記少なくとも１種のＲＮＡオリゴマーが、２〜８種のＲＮＡオリゴマーである、上記［４−１］〜［４−４］のいずれか１項に記載の方法。
［４−６］  ｍＲＮＡが１μｇ／ｍＬ〜１０，０００μｇ／ｍＬ、ｍＲＮＡと少なくとも１種の各ＲＮＡオリゴマーとのモル比が１：０．０５〜０．０５：１となるようにｍＲＮＡと少なくとも１種のＲＮＡオリゴマーを含む、上記［４−１］〜［４−５］のいずれか１項に記載の方法。【００１３】
［５−１］  上記［１−１］〜［１−６］及び［３−１］〜［３−６］のいずれか１項に記載の複合体を内包したｍＲＮＡの輸送担体。
［５−２］  輸送担体が、高分子ミセル又は脂質性ｍＲＮＡキャリアである、上記［５−１］に記載のｍＲＮＡの輸送担体。
［５−３］  上記［５−１］又は［５−２］に記載のｍＲＮＡの輸送担体を含む、医薬組成物。
【発明の効果】
【００１４】
本発明は、ｍＲＮＡの新たな安定化方法を提供する。好ましくは、本発明は、生体内において、ｍＲＮＡからのタンパク質翻訳効率を維持したまま、ｍＲＮＡを安定化することができる。より好ましくは、本発明は、生体内でのｍＲＮＡの酵素分解を抑制することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１５】
【図１】ｍＲＮＡナノアッセンブリの概念図である。（Ａ）ｍＲＮＡナノアッセンブリの形成、（Ｂ）ＲＮＡオリゴマー。
【図２】実施例で使用したｍＲＮＡナノアッセンブリを示す図である。（Ａ）ｍＲＮＡナノアッセンブリの種類（ｍＲＮＡのみ、ｍＲＮＡ＋ｎｏｎ−ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ、及びｍＲＮＡ＋ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ）、（Ｂ）ハイブリダイズ条件。
【図３】実施例で作製したｍＲＮＡナノアッセンブリの物性解析を示す図である。（Ａ）ＦＣＳ（Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ  Ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ  Ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｙ）によるサイズ解析結果、（Ｂ）ＡＦＭ（Ａｔｏｍｉｃ  Ｆｏｒｃｅ  Ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｙ）写真。
【図４】実施例で作製したｍＲＮＡナノアッセンブリの酵素耐性試験及び無細胞系における翻訳活性解析の結果を示す図である。（Ａ）酵素耐性試験、（Ｂ）無細胞系における翻訳活性解析。
【図５】実施例で作製したｍＲＮＡナノアッセンブリの培養細胞への細胞内取り込み量及び細胞でのｍＲＮＡ発現量を示す図である。（Ａ）実験手順、（Ｂ）細胞内取り込み量、（Ｃ）ｍＲＮＡ発現量。
【図６】実施例で作製したガウシアルシフェラーゼ（Ｇｌｕｃ）のｍＲＮＡの配列である（配列番号２）。下線部がｏｐｅｎ  ｒｅａｄｉｎｇ  ｆｌａｍｅである。
【図７】実施例で使用したガウシアルシフェラーゼ（Ｇｌｕｃ）のコード配列である（配列番号１）。
【図８】実施例でＰＥＧ−ＰＡｓｐ（ＤＥＴ）を用いて作製した高分子ミセル（ＰＭｓ）の粒径を評価した結果を示す図である。
【図９】実施例でＰＥＧ−ＰＬｙｓを用いて作製した高分子ミセル（ＰＭｓ）の粒径を評価した結果を示す図である。
【図１０】実施例でＰＥＧ−ＰＡｓｐ（ＤＥＴ）を用いて作製したｍＲＮＡナノアッセンブリの、１０％血清培養下での酵素耐性試験の結果を示す図である。
【図１１】実施例でＰＥＧ−ＰＬｙｓを用いて作製したｍＲＮＡナノアッセンブリの、５０％血清培養下での酵素耐性試験の結果を示す図である。
【図１２】実施例で使用したＥＧＦＰのコード配列である（配列番号２１）。
【図１３】実施例で作製したＥＧＦＰｍＲＮＡナノアッセンブリのＦＣＳ（Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ  Ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ  Ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｙ）によるサイズ解析結果を示す図である（Ｎ＝５）。
【図１４】実施例で作製したＥＧＦＰｍＲＮＡナノアッセンブリの血清中での分解酵素耐性試験の結果を示す図である（Ｎ＝４）。
【図１５】実施例で作製したＥＧＦＰｍＲＮＡナノアッセンブリのＡＦＭ（Ａｔｏｍｉｃ  Ｆｏｒｃｅ  Ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｙ）によるサイズ解析結果を示す図である。（Ａ）および（Ｂ）ｕｎｈｙｂｒｉｄｉｚｅｄ、（Ｃ）および（Ｄ）Ｎａｎｏ−ａｓｓｅｍｂｌｙ。
【図１６】実施例で作製したＥＧＦＰｍＲＮＡナノアッセンブリのＦＦＦ（Ｆｉｅｌｄ  ｆｏｒｗａｒｄ  ｆｒａｃｔｉｏｎａｔｉｏｎ）によるサイズ解析結果を示す図である。（Ａ）ｕｎｈｙｂｒｉｄｉｚｅｄ、（Ｂ）Ｎａｎｏ−ａｓｓｅｍｂｌｙ。
【発明を実施するための形態】
【００１６】
以下、本発明を詳細に説明するが、以下の実施の形態は本発明を説明するための例示であり、本発明はその要旨を逸脱しない限りさまざまな形態で実施することができる。また、本明細書において引用した全ての刊行物、例えば、先行技術文献及び公開公報、特許公報その他の特許文献は、その全体が本明細書において参照として組み込まれる。また、本明細書は、本願の優先権主張の基礎となる米国仮出願Ｎｏ．６２／５８３，６９１（２０１７年１１月９日出願）の特許請求の範囲、明細書、及び図面の開示内容を参照して組み込むものとする。
【００１７】
１．概要
ここでは、目的遺伝子をコードするｍＲＮＡとＲＮＡオリゴマーとの複合体（「ｍＲＮＡナノアッセンブリ」という場合がある）が提供される（図１（Ａ））。いくつかの態様ではＲＮＡオリゴマーは、ｍＲＮＡの配列に実質的に相補的な第１の配列と場合によりリンカー配列と第１の配列と同じ配列である第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列である（図１（Ｂ））。ＲＮＡオリゴマーは少なくとも２種用いる。１種のｍＲＮＡに対して少なくとも２種のＲＮＡオリゴマーを用い、ｍＲＮＡとＲＮＡオリゴマーをハイブリダイズさせることで、ｍＲＮＡナノアッセンブリを作製できる。ｍＲＮＡナノアッセンブリにおいては、ｍＲＮＡ同士がＲＮＡオリゴマーの作用によって、すなわち、ｍＲＮＡ同士がＲＮＡオリゴマーによって架橋されることによって互いに近づく。ｍＲＮＡ同士が互いに近づくことによって、ｍＲＮＡ同士の間でも部分的にハイブリダイゼーションが形成される（図１（Ａ））。
【００１８】
ｍＲＮＡナノアッセンブリ中のｍＲＮＡは、その立体障害のために、一本鎖のｍＲＮＡと比較して分解酵素に認識されにくいと考えられる。実際に、ｍＲＮＡナノアッセンブリでは、酵素耐性が大きく向上した（図４（Ａ））。しかも、ｍＲＮＡナノアッセンブリは、細胞内取り込み効率がｍＲＮＡとほとんど変わらない一方で、翻訳活性が保たれていることがわかった（図４（Ｂ）、図５（Ｂ）及び（Ｃ））。
【００１９】
２．複合体
本発明は、目的遺伝子をコードするｍＲＮＡとＲＮＡオリゴマーとの複合体であって、
ＲＮＡオリゴマーが、以下の（ａ）又は（ｂ）のＲＮＡ配列を含む少なくとも２種のＲＮＡオリゴマーであり、
少なくも２種のＲＮＡオリゴマーは、ｍＲＮＡの配列中のそれぞれ異なる配列にハイブリダイズ可能であり、
ＲＮＡオリゴマーの第１の配列が、ＲＮＡオリゴマーの第２の配列とは異なるｍＲＮＡにハイブリダイズすることで形成される（すなわち、ｍＲＮＡ同士がＲＮＡオリゴマーにより架橋された）、複合体を提供する。
（ａ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、前記第１の配列と同じ配列である第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列；
（ｂ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、前記第１の配列と同じ配列である第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
【００２０】
また、本発明は、目的遺伝子をコードするｍＲＮＡとＲＮＡオリゴマーとの複合体であって、
ＲＮＡオリゴマーが、以下の（ａ）又は（ｂ）のＲＮＡ配列を含む少なくとも１種のＲＮＡオリゴマーであり、
ＲＮＡオリゴマーの第１の配列が、ＲＮＡオリゴマーの第２の配列とは異なるｍＲＮＡにハイブリダイズすることで形成される（すなわち、ｍＲＮＡ同士がＲＮＡオリゴマーにより架橋された）、複合体を提供する。
（ａ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列であり、かつ第１の配列とは異なる第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列；
（ｂ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な配列であり、かつ第１の配列とは異なる第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
【００２１】
目的遺伝子は、当業者であれば目的に応じて適宜選択することができる。目的遺伝子は、例えば、レポーター遺伝子、成長因子遺伝子、細胞増殖因子遺伝子、細胞増殖抑制因子遺伝子、細胞死促進因子遺伝子、細胞死抑制因子遺伝子、癌抑制遺伝子、転写因子遺伝子、ゲノム編集遺伝子又はワクチン抗原遺伝子である。例えば、特定の細胞を増殖させることが必要な対象に対して該特定の細胞の増殖因子遺伝子をコードするｍＲＮＡを含む複合体を投与することで、該対象における疾患や状態を処置することができる。
【００２２】
レポーターとしては、例えば、発光タンパク質、及び蛍光タンパク質が挙げられる。
成長因子としては、例えば、上皮成長因子（ＥＧＦ）、インスリン様成長因子（ＩＧＦ）、神経成長因子（ＮＧＦ）、脳由来神経栄養因子（ＢＤＮＦ）、血管内皮細胞増殖因子（ＶＥＧＦ）、顆粒球コロニー刺激因子（Ｇ−ＣＳＦ）、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）、血小板由来成長因子（ＰＤＧＦ）、エリスロポエチン（ＥＰＯ）、トロンボポエチン（ＴＰＯ）、塩基性繊維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ又はＦＧＦ−２）及び肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）が挙げられる。
【００２３】
細胞増殖抑制因子としては、例えば、ｐ２１、ｐ１７、ｐ１６及びｐ５３が挙げられる。
【００２４】
細胞死促進因子としては、例えば、Ｓｍａｃ／Ｄｉａｂｌｏ、アポトーシス誘導因子（ＡＩＦ）、ＨｔｒＡ２、Ｂａｄ、Ｂｉｍ、Ｂａｘ、ｐ５３、カスパーゼ１、２、３、４、５、６、７、８、９及び１０（例えば、カスパーゼ２、３、６、７、８、９及び１０、好ましくはカスパーゼ３、６及び７）、Ｆａｓリガンド（ＦａｓＬ）、腫瘍壊死因子関連アポトーシス誘導リガンド（ＴＲＡＩＬ）並びにＦｏｘＯ１が挙げられる。
細胞死抑制因子としては、例えば、抗アポトーシス因子（例えば、ＦＬＩＰ、Ｍｃｌ−１、Ｘｉａｐ、ｃｒｍＡ、Ｂｃｌ−２及びＢｃｌ−ｘＬ）が挙げられる。
癌抑制遺伝子としては、例えば、ｐ５３、網膜芽細胞腫遺伝子（Ｒｂ）、大腸腺腫症遺伝子（ＡＰＣ）、神経線維腫症１型遺伝子（ＮＦ１）、神経線維腫症２型遺伝子（ＮＦ２）、ＷＴ１、ＶＨＬ、ＢＲＣＡ１、ＢＲＣＡ２、ＣＨＥＫ２、マスピン、ｐ７３、Ｓｍａｄ４、ＭＳＨ２、ＭＬＨ１、ＰＭＳ２、ＤＣＣ、ホスファターゼテンシンホモログ（ＰＴＥＮ）、ＳＤＨＤ、ｐ１６、ｐ５７Ｋｉｐ２、ＰＴＣ、ＴＳＣ１、ＴＳＣ２、ＥＸＴ１及びＥＸＴ２が挙げられる。
【００２５】
転写因子としては、例えば、Ｒｕｎｔ関連転写因子１（Ｒｕｎｘ１）、ｐ５３、ｃ−ｆｏｓ、ｃ−Ｊｕｎ、ＣＲＥＢ、Ｃ／ＥＢＰ、ＭｙｏＤ、ｃ−Ｍｙｃ、ｃ−Ｍｙｂ、Ｏｃｔ３／４、ＮＦ−κＢ、ＮＦ−ＡＴ、Ｍｅｆ−２及び細胞外シグナル応答因子（ＳＲＦ）が挙げられる。
【００２６】
ゲノム編集遺伝子としては、例えば、ｚｉｎｃ  ｆｉｎｇｅｒ  ｎｕｃｌｅａｓｅ（ＺＮＦ）、ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ  ａｃｔｉｖａｔｏｒ  ｌｉｋｅ  ｅｆｆｅｃｔｏｒ  ｎｕｃｌｅａｓｅ（ＴＡＬＥＮ）及びｃｌｕｓｔｅｒｅｄ，ｒｅｇｕｌａｒｌｙ  ｉｎｔｅｒｓｐａｃｅｄ，ｓｈｏｒｔ  ｐａｌｉｎｄｒｏｍｉｃ  ｒｅｐｅａｔ（ＣＲＩＳＰＲ）／ＣＲＩＳＰＲ-ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ（Ｃａｓ）９遺伝子が挙げられる。
【００２７】
ワクチン抗原遺伝子としては、例えば、病原体抗原及び腫瘍特異的抗原が挙げられる。
【００２８】
ｍＲＮＡは、メッセンジャーＲＮＡを意味し、通常、５’非翻訳領域（５’ＵＴＲ）とコード領域と３’非翻訳領域（３’ＵＴＲ）とを含む。ｍＲＮＡは、さらに、通常、５’末端のキャップ構造（５’Ｃａｐ）と３’末端のｐｏｌｙ  Ａ配列を含む。
【００２９】
ここで用いるｍＲＮＡは、次のいずれかのものであってよい。
（１）５’Ｃａｐ、５’ＵＴＲ、コード領域、３’ＵＴＲ、及びｐｏｌｙ  Ａをこの順に含むｍＲＮＡ。
（２）５’Ｃａｐ、５’ＵＴＲ、コード領域、及びｐｏｌｙ  Ａをこの順に含むｍＲＮＡ。
（３）５’ＵＴＲ、コード領域、３’ＵＴＲ、及びｐｏｌｙ  Ａをこの順に含むｍＲＮＡ。
（４）５’ＵＴＲ、コード領域、及びｐｏｌｙ  Ａをこの順に含むｍＲＮＡ。
（５）５’Ｃａｐ、５’ＵＴＲ、コード領域、及び３’ＵＴＲをこの順に含むｍＲＮＡ。
（６）５’Ｃａｐ、５’ＵＴＲ、コード領域をこの順に含むｍＲＮＡ。
（７）５’ＵＴＲ、コード領域、及び３’ＵＴＲをこの順に含むｍＲＮＡ。
（８）５’ＵＴＲ、コード領域をこの順に含むｍＲＮＡ。
【００３０】
目的遺伝子をコードするｍＲＮＡは、公知の方法により、目的遺伝子をコードするテンプレートＤＮＡをｉｎ  ｖｉｔｒｏ環境下で転写することで作製することができる。例えば、Ｂｌｏｏｄ  １０８（１３）  （２００６）  ４００９−１７に記載の方法に従って、作製することができる。具体的には、タンパク質コード配列の下流にｐｏｌｙ  Ａ／Ｔ鎖が組み込まれた鋳型ＤＮＡをｐｏｌｙ  Ａ／Ｔ鎖のすぐ下流で切断し、翻訳酵素、ヌクレオシド、５’キャップアナログを含むバッファー溶液中にてｉｎ  ｖｉｔｒｏ転写を行い、その後、ｍＲＮＡを精製することで作製することができる。ｍＲＮＡのより具体的な調製方法は後述の実施例に記載した通りである。
【００３１】
いくつかの態様では、ｍＲＮＡ自体の塩基の化学修飾は行わない。この場合、ｍＲＮＡ自体は天然のものであるため、翻訳の過程はほとんど障害されないことが期待できる。別のいくつかの態様では、ｍＲＮＡ自体の塩基の化学修飾を行う。ｍＲＮＡ自体の塩基の化学修飾は、例えば、ｍＲＮＡの酵素耐性を向上させることや免疫原性を軽減できることが知られているものである。そのようなｍＲＮＡ自体の化学修飾塩基は、例えば、メチル化塩基（例えば、５−メチルシトシン）、硫黄修飾塩基（例えば、２−チオウリジン）、シュードウリジン、Ｎ１メチルシュードウリジン及び５メトキシウリジンが挙げられる。
【００３２】
いくつかの態様のＲＮＡオリゴマーは、以下の（ａ）又は（ｂ）の配列を含むＲＮＡ鎖である。
（ａ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、前記第１の配列と同じ配列である第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列；
（ｂ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、前記第１の配列と同じ配列である第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
【００３３】
別のいくつかの態様のＲＮＡオリゴマーは、以下の（ａ）又は（ｂ）の配列を含むＲＮＡ鎖である。
（ａ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列であり、かつ第１の配列とは異なる第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列；
（ｂ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な配列であり、かつ第１の配列とは異なる第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
【００３４】
ＲＮＡオリゴマーの第１の配列と第２の配列とは、１種のｍＲＮＡ上の同一の配列とハイブリダイズする同一の相補配列とし、同種のｍＲＮＡ間を架橋し複合体を形成する。しかし、複合体を形成することができれば、必ずしも第１の配列と第２の配列とは同一の配列でなくとも、第１の配列と第２の配列はそれぞれ、１種のＲＮＡ上の同一の配列とハイブリダイズするが、完全マッチ、ミスマッチ、バルジ構造を形成し得る相補配列から構成することもできる。また、ＲＮＡ／ＤＮＡのキメラ配列などを挿入することもできる。さらには、１種のｍＲＮＡ間を架橋するＲＮＡオリゴマーの設計において、第１の配列と第２の配列とがハイブリダイズするｍＲＮＡ上の配列は、一部が共通するもののずれた位置にハイブリダイズする相補配列とすることもできる。この場合にも、第１の配列と第２の配列は任意に完全マッチ、ミスマッチ形成、バルジ形成、ＤＮＡ／ＲＮＡキメラなどの設計を選択してもよい。
【００３５】
ＲＮＡオリゴマーが「第１の配列とは異なる第２の配列」を含むとき、第１の配列と第２の配列とでｍＲＮＡ上の標的配列が同じであることが好ましい。ｍＲＮＡ上の標的配列が同じであるとは、第２の配列がハイブリダイズ可能なｍＲＮＡ上の配列が、第１の配列と同じであることを意味する。そのような第１の配列と第２の配列は、公知の方法またはそれに準ずる方法にて適宜設定することができる。いくつかの態様では、第２の配列は、第１の配列と９０％以上（例えば、９０％以上、９１％以上、９２％以上、９３％以上、９４％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上、９９％以上、９９．１％以上、９９．２％以上、９９．３％以上、９９．４％以上、９９．５％以上、９９．６％以上、９９．７％以上、９９．８％以上、又は９９．９％以上）の同一性を有する。同一性の数値は、一般的に大きいほど好ましい。なお、ＲＮＡ配列の同一性は、ＢＬＡＳＴ（例えば、Ａｌｔｚｓｈｕｌ  Ｓ．Ｆ．ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２１５，４０３（１９９０）参照）等の解析プログラムを用いて決定できる。ＢＬＡＳＴを用いる場合は、各プログラムのデフォルトパラメーターを用いる。
【００３６】
２種のｍＲＮＡを架橋するＲＮＡオリゴマーの第１の配列と第２の配列では、第１の配列は一方の種のｍＲＮＡ上にのみハイブリダイズする配列とし、第２の配列は他方の種のｍＲＮＡ上にのみハイブリダイズする配列を選択することにより、２種のｍＲＮＡをＲＮＡオリゴマーにより架橋形成することができる。
【００３７】
ＲＮＡ配列において「９０％以上の同一性を有し」における「９０％以上」の範囲は、例えば、９０％以上、９１％以上、９２％以上、９３％以上、９４％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上、９９％以上、９９．１％以上、９９．２％以上、９９．３％以上、９９．４％以上、９９．５％以上、９９．６％以上、９９．７％以上、９９．８％以上、又は９９．９％以上である。上記同一性の数値は、一般的に大きいほど好ましい。なお、ＲＮＡ配列の同一性は、ＢＬＡＳＴ（例えば、Ａｌｔｚｓｈｕｌ  Ｓ．Ｆ．ｅｔ  ａｌ．，Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２１５，４０３（１９９０）参照）等の解析プログラムを用いて決定できる。ＢＬＡＳＴを用いる場合は、各プログラムのデフォルトパラメーターを用いる。
【００３８】
「ｍＲＮＡにハイブリダイズする」とは、後述のハイブリダイズ条件で、ＲＮＡオリゴマーがｍＲＮＡにハイブリダイズすることを意味する。
【００３９】
ＲＮＡオリゴマーの第１の配列及び第２の配列は、ｍＲＮＡの連続する１２〜４０塩基（１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２４、２５、２６、２７、２８、２９、３０、３１、３２、３３、３４、３５、３６、３７、３８、３９又は４０塩基）の配列にハイブリダイズするように設計されている。
【００４０】
ＲＮＡオリゴマーの第１の配列及び第２の配列のそれぞれの長さは、好ましくは、１２〜３０塩基、より好ましくは１５〜２３塩基、さらに好ましくは１７塩基である。いくつかの態様ではＲＮＡオリゴマーの第１の配列及び第２の配列の長さがこのような長さであることに加えて、リンカー配列の長さは、好ましくは、０〜１００塩基（０、１、２、３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２４、２５、２６、２７、２８、２９、３０、３１、３２、３３、３４、３５、３６、３７、３８、３９、４０、４１、４２、４３、４４、４５、４６、４７、４８、４９、５０、５１、５２、５３、５４、５５、５６、５７、５８、５９、６０、６１、６２、６３、６４、６５、６６、６７、６８、６９、７０、７１、７２、７３、７４、７５、７６、７７、７８、７９、８０、８１、８２、８３、８４、８５、８６、８７、８８、８９、９０、９１、９２、９３、９４、９５、９６、９７、９８、９９又は１００塩基）、より好ましくは０〜３０塩基、さらに好ましくは１０塩基である。いくつかの態様では、ＲＮＡオリゴマーの全体の長さは、例えば２４〜１８０塩基、好ましくは３０〜１５０塩基、より好ましくは４０〜１００塩基、さらに好ましくは４０〜７０塩基、特に好ましくは４４塩基である。
【００４１】
ここで、リンカー配列の長さが「０塩基」であることは、リンカー配列が存在しないことを意味する。
【００４２】
好ましくは、ＲＮＡオリゴマーの第１の配列及び第２の配列は、それぞれ、ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜３０塩基の配列からなる。より好ましくは、ＲＮＡオリゴマーの配列は、ｍＲＮＡの配列に相補的な１５〜２３塩基の配列からなるものである。さらに好ましくは、ＲＮＡオリゴマーの配列は、ｍＲＮＡの配列に相補的な１７塩基の配列からなるものである。
【００４３】
リンカー配列は、０〜１００塩基の鎖長の配列であれば特に限定されない。いくつかの態様では、リンカー配列はｍＲＮＡ上の配列にハイブリダイズしない、又はハイブリダイズし難いように設計される。リンカー配列は、好ましくは、ｍＲＮＡ上の配列と相補鎖を形成しない配列からなる。アデニン（Ａ）：ウラシル（Ｕ）結合はグアニン（Ｇ）：シトシン（Ｃ）結合より弱いので、リンカー配列に用いる塩基としてはＡやＵを用いるのが好ましい。特に、Ｕは、ｍＲＮＡ上のｐｏｌｙ  Ａ鎖とハイブリダイズする可能性があることから、Ａを用いるのがより好ましい。いくつかの好ましい態様では、リンカー配列は、塩基が全てアデニンである配列である。
【００４４】
ＲＮＡオリゴマーをハイブリダイズさせるｍＲＮＡ中の位置は、５’ＵＴＲ、コード領域、３’ＵＴＲ、及びｐｏｌｙ  Ａ配列のいずれの位置でもよい。ＲＮＡオリゴマーは、ｍＲＮＡの２次構造を予測し、ｍＲＮＡ鎖が２次構造を持たない部分に対してハイブリダイズするようにＲＮＡオリゴマーを設計するのが望ましい。すなわち、ＲＮＡオリゴマーは、ｍＲＮＡ全配列のうち２次構造を持たない部分に対してハイブリダイズするように設計するのが好ましい。ｍＲＮＡの２次構造を予測するソフトウエアとしては、例えば、後述の実施例に記載のものが挙げられる。
【００４５】
いくつかの態様では、ＲＮＡオリゴマーは、ｍＲＮＡのコード領域にハイブリダイズするように設計する。
【００４６】
複合体の作製に用いるＲＮＡオリゴマーは、１種のｍＲＮＡに対して、例えば、少なくとも２種である。「１種のｍＲＮＡ」は、同じ配列を含む１つのｍＲＮＡ群のことを示す。１種のＲＮＡオリゴマーは、第１の配列として同じ配列を含む１つのＲＮＡオリゴマー群のことを示す。「少なくとも２種のＲＮＡオリゴマー」とは、そのようなＲＮＡオリゴマー群が２つ以上あり、かつ、それぞれのＲＮＡオリゴマー群の間で第１の配列が異なることを示す。複合体の作製に用いるＲＮＡオリゴマーは、１種のｍＲＮＡに対して、好ましくは２〜５０種であり、より好ましくは２〜３０種であり、さらに好ましくは、２〜８種である。ＲＮＡオリゴマーの数が増えるにしたがって、ｍＲＮＡの安定性はさらに向上する。複合体の作製に用いるＲＮＡオリゴマーが２〜５０種の範囲であれば、ｍＲＮＡの翻訳効率を比較的高いレベルに維持することができる。
【００４７】
少なくとも２種のＲＮＡオリゴマーを用いる場合、いくつかの態様では、それぞれのＲＮＡオリゴマーがｍＲＮＡ上で重ならないようにＲＮＡオリゴマーを設計する。
【００４８】
いくつかの態様では、ＲＮＡオリゴマーは、１種のｍＲＮＡに対して、例えば、少なくとも１種である。この場合、複合体の作製に用いるＲＮＡオリゴマーは、１種のｍＲＮＡに対して、好ましくは１〜５０種であり、より好ましくは１〜３０種であり、さらに好ましくは、１〜８種である。ＲＮＡオリゴマーの数が増えるにしたがって、ｍＲＮＡの安定性はさらに向上する。複合体の作製に用いるＲＮＡオリゴマーが１〜５０種の範囲であれば、ｍＲＮＡの翻訳効率を比較的高いレベルに維持することができる。
【００４９】
いくつかの態様では、１つの複合体には、１種のｍＲＮＡが含まれる。別のいくつかの態様では、１つの複合体には、２種以上（例えば、２、３、４、５、６、７、８、９又は１０種）のｍＲＮＡが含まれる。
【００５０】
好ましくは、複合体の作製に用いるｍＲＮＡの濃度は、１種のｍＲＮＡについて、例えば１μｇ／ｍＬ〜１０，０００μｇ／ｍＬ、より好ましくは１０μｇ／ｍＬ〜１０，０００μｇ／ｍＬ、さらに好ましくは、５０μｇ／ｍＬ〜１０，０００μｇ／ｍＬである。複合体生成の際のｍＲＮＡの溶媒としては、例えばリン酸緩衝液、生理食塩水、蒸留水、Ｔｒｉｓ緩衝液、又はＨＥＰＥＳ緩衝液が挙げられ、好ましくは、リン酸緩衝液、又は生理食塩水が挙げられ、より好ましくは生理食塩水が挙げられる。塩濃度を高くすることで、静電相互作用が抑えられ、水素結合が支配的になり、ハイブリダイズしやすくなり、結果的に、複合体形成が促進されることが想定される。
【００５１】
このときの１種のｍＲＮＡと各ＲＮＡオリゴマーとのモル比は、例えば１：０．０５〜０．０５：１、好ましくは１：０．１〜０．１：１、より好ましくは１：０．３〜０．３：１である。ここで、１種のｍＲＮＡ：各ＲＮＡオリゴマーのモル比は、１：０．５が理論上、最も好ましい値である。モル比１：０．５は、ハイブリダイズが全て形成されたと仮定して、ｍＲＮＡとｌｉｎｋｅｒ上の相補配列が全て過不足なく結合した状態を意味する。
【００５２】
複合体は、ｍＲＮＡ同士がＲＮＡオリゴマーによって架橋されることによって複数のｍＲＮＡと複数のＲＮＡオリゴマーが集合した集合体である。複合体のサイズは、好ましくは１０ｎｍ〜１０，０００ｎｍ、より好ましくは３０ｎｍ〜１，０００ｎｍ、さらに好ましくは５０ｎｍ〜５００ｎｍである。複合体のサイズは、調製時のｍＲＮＡ濃度、塩濃度、ＲＮＡオリゴマーの数などの要素を考慮して適宜変更することができる。具体的には、調製時のｍＲＮＡ濃度が濃い方が、大きな集合体の形成が期待される。また、塩濃度が高い方が、静電相互作用が抑えられ、水素結合が支配的になり、ハイブリダイズしやすくなり、結果的に、大きな複合体の形成が想定される。また、調製に用いるＲＮＡオリゴマーの種類を多くすることで、図３（Ａ）に示すようにより大きな集合体の形成が期待される。
【００５３】
複合体の作製、すなわち、ＲＮＡオリゴマーのｍＲＮＡへのハイブリダイズは、公知の方法及び条件により行うことができる。ハイブリダイズでは、加温して、一定時間静置したのち、徐々に温度を低下させる。加温は、ｍＲＮＡやオリゴマーの分子内、分子間にあらかじめ存在する相補的結合を解くことで、ｍＲＮＡとオリゴマーをより効率的に結合させることを目的として行う。適切なハイブリダイズが保証されるならば、その温度時間は適宜調整可能である。温度低下は緩やかな方がハイブリダイズの特異性が増す。また、オリゴマー鎖長は、ハイブリダイズの条件設定に大きく影響しない。ハイブリダイズ効率を評価しながら、適宜条件を設定するべきである。例えば、後述の実施例に記載の方法及び条件が挙げられる。
【００５４】
また、本発明は、目的遺伝子をコードするｍＲＮＡと、以下の（ａ）又は（ｂ）のＲＮＡ配列を含む少なくとも２種のＲＮＡオリゴマーとの複合体を形成させることを含み、
少なくも２種のＲＮＡオリゴマーは、ｍＲＮＡの配列中のそれぞれ異なる配列にハイブリダイズ可能なものであり、
複合体において、ＲＮＡオリゴマーの第１の配列は、ＲＮＡオリゴマーの第２の配列とは異なるｍＲＮＡにハイブリダイズする、
ｍＲＮＡの安定化方法を提供する。
（ａ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、前記第１の配列と同じ配列をこの順に含むＲＮＡ配列
（ｂ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、前記第１の配列と同じ配列である第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
【００５５】
さらに、本発明は、目的遺伝子をコードするｍＲＮＡと、以下の（ａ）又は（ｂ）のＲＮＡ配列を含む少なくとも１種のＲＮＡオリゴマーとの複合体を形成させることを含み、
ＲＮＡオリゴマーの第１の配列が、ＲＮＡオリゴマーの第２の配列とは異なるｍＲＮＡにハイブリダイズする、
ｍＲＮＡの安定化方法を提供する。
（ａ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列であり、かつ第１の配列とは異なる第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列；
（ｂ）ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な第１の配列と、０〜１００塩基のリンカー配列と、ｍＲＮＡの配列に相補的な１２〜４０塩基の配列と９０％以上の同一性を有し、かつｍＲＮＡにハイブリダイズ可能な配列であり、かつ第１の配列とは異なる第２の配列とをこの順に含むＲＮＡ配列
【００５６】
安定化方法に用いる、ｍＲＮＡ、ＲＮＡオリゴマーは、前記複合体に関する説明で記載した通りである。
【００５７】
３．輸送担体
いくつかの態様では、ｍＲＮＡを含む複合体は、ネイキッドの形態である。すなわち、ｍＲＮＡを含む複合体は、輸送担体を伴わない。
【００５８】
別のいくつかの態様では、ｍＲＮＡを含む複合体は、輸送担体に内包される形態である。輸送担体は、ｍＲＮＡを含む複合体を内包して、対象の体内の好適な箇所に送達することができるものであればよく、特に限定されない。輸送担体は脂質性ｍＲＮＡキャリア、又はカチオン性ポリマー複合体であり、より好ましくは、高分子ミセル又は脂質性ｍＲＮＡキャリアである。
【００５９】
高分子ミセルは、凝縮した核酸とカチオン性ポリマーで形成される内核と親水性ポリマーで形成される外殻との二層構造を有している。カチオン性ポリマーは、例えば、ポリアミノ酸誘導体である。親水性ポリマーは、例えば、ポリエチレングリコール（「ＰＥＧ」）である。内核は、ｍＲＮＡを物理的又は化学的に封入する。外殻は、その物理化学的な性質によって、高分子ミセルの生体内環境での物理化学的性質を規定する。例えば、PEGの場合、周囲の物質の高分子ミセルへの非特異的吸着を抑制するほか、生体内での高分子ミセルの異物認識を回避することができる。高分子ミセルは、エンドサイトーシスによって細胞内に入り込むことができる。高分子ミセルは、例えば、ブロックポリマー上のポリカチオンと核酸の相互作用（ポリイオンコンプレックス（「ＰＩＣ」））を利用することもできるほか、それと無機分子とのハイブリットミセルを利用することもできる。ＰＩＣ型高分子ミセルとしては、例えば、ＰＥＧ−ＰＡｓｐ（ＤＥＴ）−Ｃｈｏｌ、ＰＥＧ−ＰＡｓｐ（ＤＥＴ）、ＰＥＧ-ＰＬｙｓとｍＲＮＡの多分子会合により形成されるＰＩＣミセルや、ＰＡｓｐ（ＴＥＴ），  ＰＡｓｐ（ＴＥＰ）といった別のポリカチオンをブロック共重合体に用いたもの（Ｕｃｈｉｄａ，  Ｓ．，  ｅｔ  ａｌ．，Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ  （２０１６）８２，ｐ．２２１-２２８）及びトリブロック共重合体を用いたもの（Ｏｓａｗａ，  Ｓ．，  ｅｔ  ａｌ．  Ｂｉｏｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ  １７，  ｐ３５４-３６１  （２０１６））が挙げられる。無機粒子とのハイブリッド型高分子ミセルとしては、例えば、ＰＥＧ化リン酸カルシウム（ＣａＰ）粒子（Ｐｉｔｔｅｌａ，ｅｔ  ａｌ．，Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ（２０１１）３２，ｐ．３１０６−３１１４）、ＰＥＧ化シリカ粒子（Ｍｉｙａｔａ，  Ｋ．，  ｅｔ  ａｌ．  Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ  （２０１０）３１，  ｐ４７６４-４７７０  ）が挙げられる。
【００６０】
脂質性ｍＲＮＡキャリアは、脂質またはカチオン性脂質をキャリアとして形成され、そしてｍＲＮＡが内包もしくは結合された形態にある。例えば、Ｎ−［１−（２，３−ジオレイルオキシ）プロピル］−Ｎ，Ｎ，Ｎ−トリメチルアンモニウムクロリド（ＤＯＴＭＡ）、２，３−ジオレイルオキシ−Ｎ−［２−（スペルミンカルボキシアミド）エチル］−Ｎ，Ｎ−ジメチル−１−プロパナミニウムトリフルオロ酢酸（ＤＯＳＰＡ）、１、２−ジオレオイルオキシ−３−（トリメチルアンモニウム）プロパン（ＤＯＴＡＰ）、Ｎ−［１−（２、３−ジミリスチルオキシ）プロピル］−Ｎ、Ｎ−ジメチル−Ｎ−（２−ヒドロキシエチル）アンモニウムブロミド（ＤＭＲＩＥ）又はＤＣ-ｃｈｏｌｅｓｔｅｒｏｌといったカチオン性脂質；ジステアロイルホスファチジルコリン（ＤＳＰＣ）又はジオレオイルホスファチジルエタノールアミン（ＤＯＰＥ）といった中性リン脂質；ＰＥＧ化脂質；及びコレステロールからなる群より選択される一つまたは複数からなり、それとｍＲＮＡを混合して得られるものである。
【００６１】
カチオン性ポリマー複合体は、例えば、直鎖状もしくは分枝状ポリエチレンイミン、ポリリジン、ポリアルギニン、キトサン誘導体、ポリメタクリル酸誘導体とｍＲＮＡの混合物である。
【００６２】
これらの輸送担体は、公知の方法又はそれに準ずる方法にて調製することができる。
いくつかの態様では、輸送担体に内包させるｍＲＮＡを含む複合体の量は、輸送担体中のカチオン電荷（＋）とｍＲＮＡを含む複合体のアニオン電荷（−）の比（＋／−比）において、例えば、０．５〜２００であり、好ましくは１〜５０であり、より好ましくは１〜１０である。
【００６３】
４．医薬組成物
本発明は、前記複合体を含有する医薬組成物を提供する。いくつかの態様では、複合体は輸送担体に内包されている形態である。医薬組成物は、前記複合体を、対象の体内に送達することに用いられる。
【００６４】
「対象」は、ヒト、又はヒト以外の生物、例えば、トリ及び非ヒト哺乳動物（例えば、ウシ、サル、ネコ、マウス、ラット、モルモット、ハムスター、ブタ、イヌ、ウサギ、ヒツジ、及びウマ）である。
【００６５】
医薬組成物は、対象に対し、静脈内投与、動脈内投与、経口投与、組織内投与（例えば、膀胱内投与、胸腔内投与、腹腔内投与、眼内投与、脳内投与）、経皮投与、経粘膜投与、経肺投与又は経直腸投与することができる。特に静脈内投与、経皮投与、経粘膜投与が望ましい。これらの投与に適した剤型、例えば、各種の注射剤、経口剤、点滴剤、吸入剤、点眼剤、軟膏剤、ローション剤、座剤で投与される。投与量、投与回数及び投与期間などの各条件は、ｍＲＮＡの種類、剤型、年齢や体重等の対象の状態、投与経路、疾患の性質や程度を考慮した上で、当業者であれば適宜設定することができる。
【００６６】
医薬組成物は、各種疾患の原因となる細胞に所望の遺伝子をコードするｍＲＮＡを導入する治療に用いることができる。よって、本発明は、医薬組成物を、各種疾患の治療を必要とする対象に投与することを含む、各種疾患の治療方法を提供することもできる。なお、投与量、投与回数及び投与期間などの各条件は前記と同様である。
【００６７】
治療する各種疾患は、例えば、癌、ウイルス性疾患、代謝性疾患、循環器疾患、神経疾患、腎泌尿器疾患、血液学的悪性疾患、アポトーシスの促進又は抑制が所望される疾患、膠原病、呼吸器疾患及び消化器疾患が挙げられる。
【００６８】
医薬組成物については、薬剤製造上一般に用いられる賦形材、充填材、増量剤、結合剤、湿潤剤、崩壊剤、潤滑剤、界面活性剤、分散剤、緩衝剤、保存剤、溶解補助剤、防腐剤、矯味矯臭剤、無痛化剤、安定化剤及び等張化剤等を適宜選択して使用し、常法により調製することができる。静脈内注射剤（点滴を含む）とする場合、例えば、単位投与量アンプル又は多投与量容器の状態等で提供される。
【００６９】
いくつかの態様では、ｍＲＮＡの投与量は、ｍＲＮＡの種類、剤型、年齢や体重等の対象の状態、投与経路、疾患の性質や程度を考慮した上で、例えば、成人に対して、１日当たり０．１ｍｇ〜５ｇ／ヒトの範囲内が、好ましくは１ｍｇ〜２ｇの範囲内が一般的である。この投与量は、標的とする疾患の種類、投与形態、標的分子によっても異なる場合がある。従って、場合によってはこれ以下でも十分であるし、また逆にこれ以上の用量を必要とするときもある。また１日１回から数回の投与又は１日から数日間の間隔で投与することができる。
【００７０】
５．ｍＲＮＡ送達用キット
本発明のｍＲＮＡ送達用キットは、前記複合体を含むことを特徴とするものである。いくつかの態様では、複合体は輸送担体に内包されている形態である。当該キットは、例えば、前記複合体を用いた各種疾患の治療方法に好ましく用いることができる。
【００７１】
キットにおいて、前記複合体の保存状態は、限定はされず、その安定性（保存性）及び使用容易性等を考慮して溶液状又は粉末状等の状態を選択できる。
【００７２】
キットは、前記複合体以外に、他の構成要素を含んでいてもよい。他の構成要素としては、例えば、各種バッファー及び使用説明書（使用マニュアル）を挙げることができる。
【００７３】
以下の実施例により本発明を更に詳述するが、本発明はこれら実施例に限定して理解されるべきものではない。
【実施例】
【００７４】
実施例１：ｍＲＮＡの調製
ｍＲＮＡは鋳型ＤＮＡよりｉｎ  ｖｉｔｒｏ転写により調製するが、ここで鋳型ＤＮＡは以下のように作製した。まず、Ｔ７−Ｇｌｕｃ  ｐｌａｓｍｉｄは、ｐＣＭＶ−Ｇｌｕｃ  ｃｏｎｔｒｏｌ  ｐｌａｓｍｉｄ（Ｎｅｗ  Ｅｎｇｌａｎｄ  ＢｉｏＬａｂｓ，Ｉｐｓｗｉｃｈ，ＭＡ，ＵＳＡ）からＧｌｕｃコード配列（図７；配列番号１）をｐＳＰ７３ベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ）のＨｉｎｄＩＩＩ，Ｘｂａ１サイトに挿入することで作製した。その後、Ｔ７−Ｇｌｕｃ  ｐｏｌｙ  Ａ１２０  ｐｌａｓｍｉｄを、Ｔ７−Ｇｌｕｃ  ｐｌａｓｍｉｄのＥｃｏＲ１−Ｂｇｌ２サイトにＡ１２０−（ＢｓｍＢＩ切断部位）を挿入することで作製した。その後、ＢｓｍＢＩで切断したのち、Ｔ４  ＤＮＡ  Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ（タカラバイオ）で末端の平滑化を用い、以下のｉｎ  ｖｉｔｒｏ転写に用いた。【００７５】
ｍＲＮＡは、ｍＭＥＳＳＡＧＥ  ｍＭＡＣＨＩＮＥ（商品名）  Ｔ７（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を用いてガウシアルシフェラーゼ（Ｇｌｕｃ）をコードした上述の制限酵素処理を行い、平滑化したテンプレートＤＮＡ（Ｔ７−Ｇｌｕｃ  ｐｏｌｙ  Ａ１２０  ｐｌａｓｍｉｄ）をｉｎ  ｖｉｔｒｏ環境下で転写することで作製した。転写されたｍＲＮＡはＲＮｅａｓｙ  Ｍｉｎｉ  Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ）を用いて精製、回収した。回収したｍＲＮＡ濃度はＮａｎｏＤｒｏｐ（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）により測定した。また、Ａｇｉｌｅｎｔ  ２１００バイオアナライザ（Ａｇｉｌｅｎｔ  ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）を用いた電気泳動法により目的のｍＲＮＡが作成されていることを確認した。【００７６】
ＮａｎｏＤｒｏｐにより、５００〜１，０００ｎｇ／μＬという高い濃度で、２６０ｎｍと２８０ｎｍの吸光度比が２．０〜２．２という高純度のｍＲＮＡの作製が確認された。また、バイオアナライザの解析で、意図した大きさのｍＲＮＡの作製が確認された。
作製したｍＲＮＡの配列（配列番号２）を、図６に示す。図６の配列において、下線部分がｏｐｅｎ  ｒｅａｄｉｎｇ  ｆｒａｍｅ（ＯＲＦ）であり、ＯＲＦの上流が５’ＵＴＲ（５４塩基）であり、ＯＲＦの下流に３’ＵＴＲ（５２塩基）があり、さらにその下流の１２０Ａがｐｏｌｙ  Ａ配列である。【００７７】
ここで、Ｐｏｌｙ  Ａの数について、理論上は鋳型ＤＮＡに１２０ｂｐに組み込まれ、ｍＲＮＡでは１１９塩基である。しかし、ＤＮＡ増幅や、ｍＲＮＡ調製の段階でその数は増減しうる。【００７８】
実施例２：ＲＮＡオリゴマーのハイブリダイゼーション
ＲＮＡオリゴマーを次のようにして設計し、調製した。ＲＮＡ２次構造予測ソフトウエア（ｈｔｔｐ：／／ｒｔｉｐｓ．ｄｎａ．ｂｉｏ．ｋｅｉｏ．ａｃ．ｊｐ／ｉｐｋｎｏｔ／）にて、Ｇｌｕｃ  ｍＲＮＡの２次構造を予測し、ＲＮＡ鎖が２次構造を持たない部分に対してＲＮＡオリゴマーを設計した。ＲＮＡオリゴマーは、５’末端又は３’末端のコレステロール修飾を含めて、北海道システムサイエンス社にて、依頼合成した。尚、下記ＲＮＡオリゴマーのうち「ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ」は、ｍＲＮＡにハイブリダイズし得る１７ｍｅｒの配列と、全てアデニン（Ａ）である１０ｍｅｒのリンカー配列と、１７ｍｅｒの配列と同じ配列とを、この順に含むＲＮＡオリゴマーである。「ｎｏｎ−ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ」は、ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒを半分にしたような構造であり、ｍＲＮＡにハイブリダイズし得る１７ｍｅｒの配列と、全てアデニン（Ａ）である５ｍｅｒのリンカー配列とを、この順に含むＲＮＡオリゴマーである。【００７９】
ＲＮＡオリゴマー
ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒｓ
ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ  １：ＵＣＵＵＵＧＡＧＣＡＣＣＵＣＣＡＧＡＡＡＡＡＡＡＡＡＡＵＣＵＵＵＧＡＧＣＡＣＣＵＣＣＡＧ（配列番号３）
ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ  ２：ＧＣＧＧＣＡＧＣＣＡＣＵＵＣＵＵＧＡＡＡＡＡＡＡＡＡＡＧＣＧＧＣＡＧＣＣＡＣＵＵＣＵＵＧ（配列番号４）
ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ  ３：ＡＣＵＣＵＵＵＧＵＣＧＣＣＵＵＣＧＡＡＡＡＡＡＡＡＡＡＡＣＵＣＵＵＵＧＵＣＧＣＣＵＵＣＧ（配列番号５）
ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ  ４：ＣＵＣＧＧＣＣＡＣＡＧＣＧＡＵＧＣＡＡＡＡＡＡＡＡＡＡＣＵＣＧＧＣＣＡＣＡＧＣＧＡＵＧＣ（配列番号６）
ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ  ５：ＧＵＧＧＧＡＣＡＧＧＣＡＧＡＵＣＡＡＡＡＡＡＡＡＡＡＡＧＵＧＧＧＡＣＡＧＧＣＡＧＡＵＣＡ（配列番号７）
ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ  ６：ＧＣＡＧＣＣＡＧＣＵＵＵＣＣＧＧＧＡＡＡＡＡＡＡＡＡＡＧＣＡＧＣＣＡＧＣＵＵＵＣＣＧＧＧ（配列番号８）
ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ  ７：ＵＵＧＡＡＧＵＣＵＵＣＧＵＵＧＵＵＡＡＡＡＡＡＡＡＡＡＵＵＧＡＡＧＵＣＵＵＣＧＵＵＧＵＵ（配列番号９）
ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ  ８：ＣＵＣＵＡＧＡＵＧＣＡＵＧＣＵＣＧＡＡＡＡＡＡＡＡＡＡＣＵＣＵＡＧＡＵＧＣＡＵＧＣＵＣＧ（配列番号１０）【００８０】
ｎｏｎ−ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒｓ
ｎｏｎ−ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ  １：ＵＣＵＵＵＧＡＧＣＡＣＣＵＣＣＡＧＡＡＡＡＡ（配列番号１１）
ｎｏｎ−ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ  ２：ＧＣＧＧＣＡＧＣＣＡＣＵＵＣＵＵＧＡＡＡＡＡ（配列番号１２）
ｎｏｎ−ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ  ３：ＡＣＵＣＵＵＵＧＵＣＧＣＣＵＵＣＧＡＡＡＡＡ（配列番号１３）
ｎｏｎ−ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ  ４：ＣＵＣＧＧＣＣＡＣＡＧＣＧＡＵＧＣＡＡＡＡＡ（配列番号１４）
ｎｏｎ−ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ  ５：ＧＵＧＧＧＡＣＡＧＧＣＡＧＡＵＣＡＡＡＡＡＡ（配列番号１５）
ｎｏｎ−ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ  ６：ＧＣＡＧＣＣＡＧＣＵＵＵＣＣＧＧＧＡＡＡＡＡ（配列番号１６）
ｎｏｎ−ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ  ７：ＵＵＧＡＡＧＵＣＵＵＣＧＵＵＧＵＵＡＡＡＡＡ（配列番号１７）
ｎｏｎ−ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ  ８：ＣＵＣＵＡＧＡＵＧＣＡＵＧＣＵＣＧＡＡＡＡＡ（配列番号１８）【００８１】
ｍＲＮＡ濃度５００ｎｇ／μＬのＮａＣｌ  １５０ｍＭ溶液(和光純薬)に対してそれぞれのＲＮＡオリゴマーをｍＲＮＡとのモル比で０．５等量で加え、６５℃で５分加熱し、９０分かけて３０℃まで冷却することで、ハイブリダイゼーションを行った（図２（Ｂ））。このようにして、ｍＲＮＡとＲＮＡオリゴマーの複合体を作製した（図２（Ａ）の「ｍＲＮＡ＋ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒｓ」）。同様に、「ｍＲＮＡ＋ｎｏｎ−ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒs」も作製したが、ただし、ＲＮＡオリゴマーはｍＲＮＡとのモル比で１等量加えた（図２（Ａ））。これはＲＮＡオリゴマーが形成されるものの、ｍＲＮＡ同士が架橋されずナノ集合体を形成しないコントロールである。尚、図２（Ａ）には、一本鎖のｍＲＮＡも示されている。【００８２】
以下、ハイブリダイゼーションにより生じたｍＲＮＡとＲＮＡオリゴマーの複合体をｍＲＮＡナノアッセンブリという。【００８３】
実施例３：ｍＲＮＡナノアッセンブリの物性解析
（１）ＦＣＳ（Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ  Ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ  Ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｙ、ＯＬＹＭＰＵＳ社製、ＭＦ２０）解析
ｍＲＮＡナノアッセンブリの大きさをＦＣＳ解析により評価し、最適なＬｉｎｋｅｒ数を検討した。ｍＲＮＡナノアッセンブリの作製方法は、実施例２に記載した通りである。【００８４】
用いたＲＮＡオリゴマーの種類
Ｌｉｎｋｅｒ数（すなわち、用いたＲＮＡオリゴマーの種類）が２、４、６、８個の実験では、それぞれ、実施例２に記載の以下のＲＮＡオリゴマーを用いた。
２個：ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ  ３及び５
４個：ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ  ２、４、６及び８
６個：ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ  １、２、４、５、６及び８
８個：ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ  １、２、３、４、５、６、７及び８【００８５】
ｍＲＮＡを蛍光Ｃｙ５で染色し、ｍＲＮＡナノアッセンブリを形成させたのち、５ｎg／μＬ(蒸留水中)にしてから測定した。ｍＲＮＡの蛍光染色にはＬａｂｅｌ  ＩＴ  ｔｒａｃｋｅｒ  Ｃｙ５  ｋｉｔ（Ｍｉｒｕｓ）を用いた。【００８６】
その結果を図３（Ａ）に示す。図３（Ａ）の縦軸（ｄｉｆｆｕｓｉｏｎ  ｔｉｍｅ（μｓｅｃ））の数値が大きいほど、拡散が遅く、ｍＲＮＡナノアッセンブリの粒子径が大きくなったことを意味する。Ｌｉｎｋｅｒ数が６個以降ではｍＲＮＡナノアッセンブリのサイズが一定になった。そこで、以降の実施例では、ある程度の余裕を見て主にＬｉｎｋｅｒ数８個を選択した。【００８７】
（２）ＡＦＭ（Ａｔｏｍｉｃ  Ｆｏｒｃｅ  Ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｙ、島津製作所、ＳＰＭ−９７００）解析
ｍＲＮＡ濃度を３ｎｇ／μＬ（１０ｍＭ  ＭｇＣｌ２溶液, (和光純薬)）にして、基板上に添加し、乾かしたのちＡＦＭにより測定した。【００８８】
その結果を図３（Ｂ）に示す。図３（Ｂ）の右にカラースケールを示すが、色が白に近ければ近いほど高さが増していること、すなわちサイズが大きいことを示す。Ｌｉｎｋｅｒ数８個のｍＲＮＡナノアッセンブリは、白い部分が多く、かつ１００ｎｍを越える粒径のものが散見される。一方で、ｍＲＮＡ単体では白い部分は少なく、かつ１００ｎｍを越える粒径のものはほとんどなく、ｍＲＮＡナノアッセンブリの方が、ｍＲＮＡ単体と比較して粒径が大きいことが分かる。【００８９】
実施例４：ｍＲＮＡナノアッセンブリの酵素耐性および無細胞翻訳系における翻訳活性
（１）酵素耐性試験
Ｆｅｔａｌ  Ｂｏｖｉｎｅ  Ｓｅｒｕｍ（ＦＢＳ、Ｄａｉｎｉｐｐｏｎ  Ｓｕｍｉｔｏｍｏ  Ｐｈａｒｍａ  Ｃｏ．，Ｌｔｄ．，Ｏｓａｋａ，Ｊａｐａｎ）中でのｍＲＮＡナノアッセンブリの酵素耐性を調べた。【００９０】
ウシ胎児血清（ＦＢＳ）をリン酸緩衝液（ＰＢＳ、和光純薬）で所定の濃度となるよう希釈し、そこにｍＲＮＡナノアッセンブリの溶液を、ｍＲＮＡの最終濃度が６．２５ｎｇ／μＬとなるように添加したのち、３７℃で１５分静置した。その後、ＲＮｅａｓｙ  Ｍｉｎｉ  Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ）を用いて溶液よりｍＲＮＡを抽出した。抽出したｍＲＮＡをコンプリメンタリーＤＮＡ（ｃＤＮＡ）に逆転写した後、ｑＲＴ−ＰＣＲにより残存しているｃＤＮＡを定量評価した。ＦＢＳ存在下で３７℃静置を行わなかった場合のｍＲＮＡ量を１００％として、ｍＲＮＡ量の相対値を求めた。【００９１】
ｑＲＴ−ＰＣＲでは以下のプライマーを用いた。
ＦｏｒｗａｒｄのＴａｒｇｅｔ  ｓｅｑｕｅｎｃｅ：ＴＧＡＧＡＴＴＣＣＴＧＧＧＴＴＣＡＡＧＧ（配列番号１９）
ＲｅｖｅｒｓｅのＴａｒｇｅｔ  ｓｅｑｕｅｎｃｅ：ＧＴＣＡＧＡＡＣＡＣＴＧＣＡＣＧＴＴＧＧ（配列番号２０）【００９２】
その結果を、図４（Ａ）に示す。「ｍＲＮＡ＋８  ｎｏｎ−ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒｓ」は、ｍＲＮＡにＲＮＡオリゴマーとして８つのｎｏｎ−ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ（ｎｏｎ−ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ  １〜８）を加えたものである。「ｍＲＮＡ＋８  ｎｏｎ−ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒｓ」ではｍＲＮＡよりもやや酵素安定性が向上した。これは、ｍＲＮＡとＲＮＡオリゴマーとの間で２本鎖が形成されたためであると考えられる。「ｍＲＮＡ＋８  ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒｓ」は、ｍＲＮＡにＲＮＡオリゴマーとして８つのｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ（ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ  １〜８）を加えたものである。「ｍＲＮＡ＋８  ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒｓ」での酵素安定性は、「ｍＲＮＡ＋８  ｎｏｎ−ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒｓ」よりも１００倍以上増えている。これは、５０％のｍＲＮＡが分解されるＦＢＳ濃度が、「ｍＲＮＡ＋８  ｎｏｎ−ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒｓ」では約０．００５％であるのに対して、「ｍＲＮＡ＋８  ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒｓ」では約１％であるという結果に基づいて計算することができる。以上のことから、ｍＲＮＡナノアッセンブリを形成させることで、酵素耐性が飛躍的に向上することがわかった。【００９３】
なお、統計解析は、ＡＮＯＶＡ（ａｎａｌｙｓｉｓ  ｏｆ  ｖａｒｉａｎｃｅ）検定ののち、Ｔｕｋｅｙ検定を行った。＊＊＊は、ｍＲＮＡ＋８  ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒｓ群が、ｍＲＮＡ単体群とｍＲＮＡ＋８  ｎｏｎ−ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒｓ群のどちらに対しても、ｐ＜０．００１であることを示す。【００９４】
（２）無細胞翻訳系における翻訳活性
Ｒａｂｂｉｔ  ｒｅｔｉｃｕｌｏｃｙｔｅ  ｌｙｓａｔｅ（Ｐｒｏｍｅｇａ）に添加し、３７℃で４時間ｉｎｃｕｂａｔｅした後のＧｌｕｃ発光強度を測定した。発光強度はＲｅｎｉｌｌａ  ｌｕｃｉｆｅｒａｓｅ  ａｓｓａｙ  ｋｉｔ（Ｐｒｏｍｅｇａ）を用いて測定した。ルミノメーターはＢｅｒｔｈｏｌｄ  ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社のＭｉｔｈｒａｓ  ＬＢ  ９４０を用いた。【００９５】
その結果を、図４（Ｂ）に示す。「＋８  ｌｉｎｋｅｒｓ」は、ｍＲＮＡにＲＮＡオリゴマーとして８つのｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ（ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏ  １〜８）を加えたものである。無細胞翻訳系に添加した時の翻訳活性は、ｍＲＮＡ単体と「＋８  ｌｉｎｋｅｒｓ」とではほとんど変わらなかった。
なお、統計学的解析は、Ｓｔｕｄｅｎｔのｔ検定を行い、ｎ．ｓ．はｎｏ  ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅを意味する。【００９６】
以上から、ｍＲＮＡナノアッセンブリは、翻訳活性を維持したまま、酵素耐性を大きく向上させることができることが分かる。【００９７】
実施例５：ｍＲＮＡナノアッセンブリの細胞内取り込み及び細胞でのｍＲＮＡ発現
９６  ｗｅｌｌ  ｐｌａｔｅに１０，０００  ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌ蒔いたＨｕＨ-７細胞（Ｒｉｋｅｎ  Ｃｅｌｌ  Ｂａｎｋ）に対して、２４ｈ後に無血清培地Ｏｐｔｉ−ＭＥＭ（Ｔｈｅｒｍｏ  Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）に置換した上で、２５０nｇのｍＲＮＡを添加した。その４ｈ後に測定を行なった（図５（Ａ））。【００９８】
（１）ｍＲＮＡナノアッセンブリの細胞内取り込み
細胞内取り込み量に関しては、ｍＲＮＡはＬａｂｅｌ  ＩＴ  ｔｒａｃｋｅｒ  Ｃｙ３  ｋｉｔ（Ｍｉｒｕｓ）で蛍光標識化した。ｍＲＮＡ導入４ｈ後にＰＢＳで２回細胞表面を洗浄した後、Ｌｙｓｉｓ  ｂｕｆｆｅｒ（Ｐｒｏｍｅｇａ）で細胞を溶かし、Ｉｎｆｉｎｉｔｅ  Ｍ１０００  ＰＲＯ  ｓｐｅｃｔｒｏｐｈｏｔｏｍｅｔｅｒ（Ｔｅｃａｎ  Ｇｒｏｕｐ  Ｌｔｄ．，Ｍａｎｎｅｄｏｒｆ，Ｓｗｉｔｚｅｒｌａｎｄ）にて励起波長５４３ｎｍ、検出波長５６８ｎｍとして、蛍光強度を観察した。【００９９】
その結果を、図５（Ｂ）に示す。「＋８  ｌｉｎｋｅｒｓ」は、ｍＲＮＡにＲＮＡオリゴマーとして８つのｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ（ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ  １〜８）を加えたものである。細胞内取り込み量は、ｍＲＮＡ単体と「＋８  ｌｉｎｋｅｒｓ」とではほとんど変わらなかった。【０１００】
なお、統計学的解析は、Ｓｔｕｄｅｎｔのｔ検定を行い、ｎ．ｓ．はｎｏ  ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅを意味する。【０１０１】
（２）細胞でのｍＲＮＡ発現
細胞でのｍＲＮＡ発現量については、ｍＲＮＡ導入の４時間後の培地を回収し、そこに含まれるＧｌｕｃ量をＲｅｎｉｌｌａ  ｌｕｃｉｆｅｒａｓｅ  ａｓｓａｙ  ｋｉｔ（Ｐｒｏｍｅｇａ）を用いて測定した。【０１０２】
その結果を、図５（Ｃ）に示す。「＋８  ｌｉｎｋｅｒｓ」は、ｍＲＮＡにＲＮＡオリゴマーとして８つのｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ（ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏ  １〜８）を加えたものである。細胞でのｍＲＮＡ発現効率は、ｍＲＮＡ単体と「＋８  ｌｉｎｋｅｒｓ」とではほとんど変わらなかった。【０１０３】
なお、統計学的解析は、Ｓｔｕｄｅｎｔのｔ検定を行い、ｎ．ｓ．はｎｏ  ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅを意味する。【０１０４】
以上から、ｍＲＮＡナノアッセンブリは、細胞内取り込み効率がｍＲＮＡと変わらない一方で、細胞での発現効率もｍＲＮＡと変わらないことがわかった。この結果は、細胞内においても、ｍＲＮＡナノアッセンブリの翻訳活性が、ｍＲＮＡ単体の翻訳活性とほぼ同程度であることを示唆している。【０１０５】
実施例６：ｍＲＮＡナノアッセンブリとブロック共重合体からなる高分子ミセル（ＰＭ）の調製
（１）ポリマー合成【０１０６】
【化１】
0006960641.tif 000002
【０１０７】
まず、α−メトキシ−ω−アミノ−ポリエチレングリコール（ＭｅＯ−ＰＥＧ−ＮＨ２，ＰＥＧのＭｗ：１２ｋＤａ）を開始剤としたβ−ベンジル−Ｌ−アスパルテート−Ｎ−カルボン酸無水物（ＮＣＡ−ＢＬＡ）の開環重合によって、ＰＥＧ−ｐｏｌｙ（β−ｂｅｎｚｙｌ  Ｌ−ａｓｐａｒｔａｔｅ）（ＰＥＧ−ＰＢＬＡ）を合成した。ＭｅＯ−ＰＥＧ−ＮＨ２を５０５ｍｇとり、ベンゼンに溶解させて一晩凍結乾燥させた。凍結乾燥後、Ａｒ雰囲気下においてＤｒｙジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）：Ｄｒｙジクロロメタン（ＤＣＭ）＝１：１０混合溶媒にＭｅＯ−ＰＥＧ−ＮＨ２及びＮＣＡ−ＢＬＡを完全に溶解させた。ＮＣＡ−ＢＬＡ溶液をＭｅＯ−ＰＥＧ−ＮＨ２溶液に添加し、２５℃で３日間撹拌した。反応溶液をｎ−ヘキサン／酢酸エチル（３：２）混合溶液に再沈殿させ、ＰＥＧ−ＰＢＬＡを回収した。その後、ＰＥＧ−ＰＢＬＡを真空乾燥させ、白色粉末を得た。ＰＢＬＡの重合度は６８（ｎ＝６８）であった。尚、上記式中、ｍ＝２９３であった。【０１０８】
ＰＥＧ−ＰＢＬＡ（２００ｍｇ）をベンゼンに溶解させて凍結乾燥し、乾燥した。ＰＥＧ−ＰＢＬＡ及びＤｒｙジエチレントリアミン（ＤＥＴ）（ＰＢＬＡに対して５０当量）を０．５ＭチオウレアとしたＤｒｙＮＭＰに溶解させた。これら溶液を１０℃に冷却し、ＰＥＧ−ＰＢＬＡ溶液をゆっくりＤＥＴ溶液に滴下し、１時間撹拌した。反応後、溶液温度を１０度以下に保ったまま反応溶液を５Ｎ  ＨＣｌ水溶液で中和し、０．０１Ｎ  ＨＣｌ水溶液で４℃にて１日透析を行った。その後、イオン交換水で４℃にてもう１日透析を行った。透析後、溶液を凍結乾燥することでＰＥＧ−ＰＡｓｐ（ＤＥＴ）白色粉末を得た。尚、上記式中、ｎ＝６８であり、ｍ＝２９３であった。【０１０９】
【化２】
0006960641.tif 000003
【０１１０】
ＭｅＯ−ＰＥＧ−ＮＨ２を４００ｍｇとり、ベンゼンに溶解させて一晩凍結乾燥させた。凍結乾燥後、Ａｒ雰囲気下において０．５ＭチオウレアとしたＤｒｙジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）溶媒にＭｅＯ−ＰＥＧ−ＮＨ２及びＮＣＡ−Ｌｙｓ（ＴＦＡ）を完全に溶解させた。ＮＣＡ−Ｌｙｓ（ＴＦＡ）溶液をＭｅＯ−ＰＥＧ−ＮＨ２溶液に添加し、２５℃で３日間撹拌した。反応溶液をジエチルエーテルに再沈殿させ、ＰＥＧ−ＰＬｙｓ（ＴＦＡ）を回収した。その後、ＰＥＧ−ＰＬｙｓ（ＴＦＡ）を真空乾燥させ、白色粉末を得た。その後、０．１Ｎ  ＮａＯＨを含むメタノール混合溶媒中において３５℃で６時間反応させ、ＴＦＡ基を脱保護し、０．０１Ｎ  ＨＣｌ水溶液で４℃にて１日透析を行った。その後、イオン交換水で４℃にてもう１日透析を行った。ＰＥＧ−ＰＬｙｓ白色粉末を得た。１Ｈ−ＮＭＲ分析より、回収したＰＥＧ−ＰＬｙｓのＰＬｙｓ重合度は６９であった。【０１１１】
（２）ミセル調製と粒子径測定
ＰＥＧ−ＰＡｓｐ（ＤＥＴ）とナノ集合体はそれぞれ独立して１０ｍＭ  ＨＥＰＥＳ  ｂｕｆｆｅｒ（ｐＨ７．４）に溶解させた。ＰＥＧ−ＰＡｓｐ（ＤＥＴ）の濃度は、ｐＨ７．４において（（ＰＡｓｐ（ＤＥＴ）の正電荷数）／（ｍＲＮＡナノ集合体の負電荷数））（Ｎ＋／Ｐ―比）が１．５となるように調整した。ｍＲＮＡ最終濃度が３３．３μｇ／ｍＬとなるようにＰＥＧ−ＰＡｓｐ（ＤＥＴ）溶液をｍＲＮＡナノ集合体溶液に添加し、高分子ミセルを調製した。ＰＥＧ−ＰＬｙｓの場合は、ｐＨ７．４において（（ＰＬｙｓの正電荷数）／（ｍＲＮＡナノ集合体の負電荷数））（Ｎ＋／Ｐ―比）が２となるように調整し、ＰＥＧ−ＰＡｓｐ（ＤＥＴ）の場合と同様にＰＭを調製した。ＰＭｓの粒径はＺｅｔａｓｉｚｅｒＮａｎｏ（Ｍａｌｖｅｒｎ  Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ）によって評価した。結果を図８および図９に示す。集合体を形成していないｍＲＮＡ（ｕｎｈｙｂｒｉｄｉｚｅｄ  ｍＲＮＡ）でも同様にＰＭを形成した。
ナノ集合体とブロック共重合体を形成させた場合でも、１００ｎｍ以下の粒子が形成された。生体に投与した際、様々な細胞に効率的に取り込まれるサイズである。【０１１２】
（２）血清中での安定性
ウシ胎児血清（ＦＢＳ）を１０ｍＭ  ＨＥＰＥＳ  ｂｕｆｆｅｒ（ｐＨ７．４）で所定の濃度となるよう希釈し、そこにＰＭ溶液を添加したのち、３７℃で１５分静置した。その後、ＲＮｅａｓｙ  Ｍｉｎｉ  Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ）を用いて溶液よりＲＮＡを抽出した。抽出したＲＮＡをコンプリメンタリーＤＮＡ（ｃＤＮＡ）に逆転写した後、ｑＲＴ−ＰＣＲにより残存しているｃＤＮＡを定量評価した。ＦＢＳ存在下で３７℃静置を行わなかった場合のｍＲＮＡ量を１００％として、相対値を示した。以下の実験はＮ＝４で行った（図１０および１１）。【０１１３】
ナノ集合体からなるＰＭは、集合体を形成していないｍＲＮＡからなるＰＭと比べて高い酵素耐性を示した。
尚、統計学的解析は、Ｓｔｕｄｅｎｔのｔ検定を行い、ｎ．ｓ．はｎｏ  ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅを意味する。【０１１４】
実施例７：ＧＦＰ  ｍＲＮＡからのナノアッセンブリの調製
前述の実施例ではＧＬｕｃ  ｍＲＮＡから調製したナノアッセンブリの解析結果を示したが、他のｍＲＮＡでも同様の戦略が有効であることを示すため、本実施例では、ＧＦＰ  ｍＲＮＡから調製したナノアッセンブリの解析を行った。ここで、ＧＦＰのコード配列（配列番号２１）を図１２に示す。【０１１５】
ＧＦＰ  ｍＲＮＡ（Ｔｒｉｌｉｎｋ社製）を購入し、北海道システムサイエンス社で合成した以下の８個のｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ（＃１７〜＃２４）を前述の実施例２のＧＬｕｃの場合と同様の方法でＧＦＰ  ｍＲＮＡにハイブリダイズすることでナノアッセンブリを調製した。ＧＦＰ  ｍＲＮＡは、ｏｐｅｎ  ｒｅａｄｉｎｇ  ｆｒａｍｅ（ＯＲＦ）の上流に５’ＵＴＲを含み、ＯＲＦの下流に３’ＵＴＲを含み、さらにその下流にｐｏｌｙ  Ａ配列を含む。
「ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ」は、ｍＲＮＡにハイブリダイズし得る１７ｍｅｒの配列と、全てアデニン（Ａ）である１０ｍｅｒのリンカー配列と、１７ｍｅｒの配列と同じ配列とを、この順に含むＲＮＡオリゴマーである。【０１１６】
ｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ
＃１７：  ＣＡＣＣＣＣＧＧＵＧＡＡＣＡＧＣＵＡＡＡＡＡＡＡＡＡＡＣＡＣＣＣＣＧＧＵＧＡＡＣＡＧＣＵ（配列番号２２）
＃１８：  ＣＧＣＵＧＡＡＣＵＵＧＵＧＧＣＣＧＡＡＡＡＡＡＡＡＡＡＣＧＣＵＧＡＡＣＵＵＧＵＧＧＣＣＧ（配列番号２３）
＃１９：  ＣＵＵＧＣＣＧＧＵＧＧＵＧＣＡＧＡＡＡＡＡＡＡＡＡＡＡＣＵＵＧＣＣＧＧＵＧＧＵＧＣＡＧＡ（配列番号２４）
＃２０：  ＧＵＧＧＵＣＧＧＧＧＵＡＧＣＧＧＣＡＡＡＡＡＡＡＡＡＡＧＵＧＧＵＣＧＧＧＧＵＡＧＣＧＧＣ（配列番号２５）
＃２１：  ＧＣＧＣＧＧＧＵＣＵＵＧＵＡＧＵＵＡＡＡＡＡＡＡＡＡＡＧＣＧＣＧＧＧＵＣＵＵＧＵＡＧＵＵ（配列番号２６）
＃２２：  ＧＣＣＡＵＧＡＵＡＵＡＧＡＣＧＵＵＡＡＡＡＡＡＡＡＡＡＧＣＣＡＵＧＡＵＡＵＡＧＡＣＧＵＵ（配列番号２７）
＃２３：  ＣＵＣＧＡＵＧＵＵＧＵＧＧＣＧＧＡＡＡＡＡＡＡＡＡＡＡＣＵＣＧＡＵＧＵＵＧＵＧＧＣＧＧＡ（配列番号２８）
＃２４：  ＣＵＵＣＵＣＧＵＵＧＧＧＧＵＣＵＵＡＡＡＡＡＡＡＡＡＡＣＵＵＣＵＣＧＵＵＧＧＧＧＵＣＵＵ（配列番号２９）【０１１７】
実施例８：ｍＲＮＡナノアッセンブリの解析
実施例７で調製したｍＲＮＡナノアッセンブリについて解析を行ったが、各方法は前述の実施例のＧＬｕｃ  ｍＲＮＡの場合と同様である。【０１１８】
（１）ＦＣＳ（Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ  Ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ  Ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｙ、ＯＬＹＭＰＵＳ社製、ＭＦ２０）解析
実施例３（１）と同様の方法によりｍＲＮＡナノアッセンブリの大きさをＦＣＳ解析により評価した。
その結果を図１３に示す。図１３の縦軸（ｄｉｆｆｕｓｉｏｎ  ｔｉｍｅ（μｓｅｃ））の数値が大きいほど、拡散が遅く、ｍＲＮＡナノアッセンブリの粒子径が大きくなったことを意味する。ＧＦＰ  ｍＲＮＡナノアッセンブリの粒子径は、ＧＬｕｃ  ｍＲＮＡナノアッセンブリの粒子径（図３（Ａ））とほぼ同じであることが分かる。【０１１９】
（２）酵素耐性試験
実施例４（１）と同様の方法によりＦｅｔａｌ  Ｂｏｖｉｎｅ  Ｓｅｒｕｍ（ＦＢＳ、Ｄａｉｎｉｐｐｏｎ  Ｓｕｍｉｔｏｍｏ  Ｐｈａｒｍａ  Ｃｏ．，Ｌｔｄ．，Ｏｓａｋａ，Ｊａｐａｎ）中でのｍＲＮＡナノアッセンブリの酵素耐性を調べた。ただし、ＦＢＳ濃度は１％に固定した。
ここでｑＲＴ−ＰＣＲでは以下のプライマーを用いた。
ＦｏｒｗａｒｄのＴａｒｇｅｔ  ｓｅｑｕｅｎｃｅ：ＡＧＡＡＣＧＧＣＡＴＣＡＡＧＧＴＧＡＡＣ（配列番号３０）
ＲｅｖｅｒｓｅのＴａｒｇｅｔ  ｓｅｑｕｅｎｃｅ：ＴＧＣＴＣＡＧＧＴＡＧＴＧＧＴＴＧＴＣＧ（配列番号３１）
その結果を、図１４に示す。「Ｎａｎｏ−ａｓｓｅｍｂｌｙ」は、ｍＲＮＡにＲＮＡオリゴマーとして８つのｌｉｎｋｅｒ  ＲＮＡ  ｏｌｉｇｏｍｅｒ（＃１７〜＃２４）を加えたものである。「Ｎａｎｏ−ａｓｓｅｍｂｌｙ」ではｍＲＮＡ（「Ｕｎｈｙｂｒｉｄｉｚｅｄ」）よりも酵素安定性が向上した。
尚、統計学的解析は、Ｓｔｕｄｅｎｔのｔ検定を行い、ｎ．ｓ．はｎｏ  ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｃｅを意味する。【０１２０】
（３）ＡＦＭ（Ａｔｏｍｉｃ  Ｆｏｒｃｅ  Ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｙ、島津製作所、ＳＰＭ−９７００）解析
実施例３（１）と同様の方法により、ｍＲＮＡナノアッセンブリをＡＦＭにより測定した。
その結果を図１５（Ａ）〜（Ｄ）に示す。図１５（Ｃ）の右にカラースケールを示すが、色が白に近ければ近いほど高さが増していること、すなわちサイズが大きいことを示す。Ｌｉｎｋｅｒ数８個のｍＲＮＡナノアッセンブリは、白い部分が多く、かつ１００ｎｍを越える粒径のものが散見される（図１５（Ｃ）および（Ｄ））。一方で、ｍＲＮＡ単体では白い部分は少なく、かつ１００ｎｍを越える粒径のものはほとんどない（図１５（Ａ）および（Ｂ））。これらのことから、ｍＲＮＡナノアッセンブリの方が、ｍＲＮＡ単体と比較して粒径が大きいことが分かる。【０１２１】
実施例９：ｍＲＮＡナノアッセンブリのＦＦＦ（Ｆｉｅｌｄ  ｆｏｒｗａｒｄ  ｆｒａｃｔｉｏｎａｔｉｏｎ）解析
ＦＦＦでは、ｍＲＮＡナノアッセンブリの大きさに従った分離が可能であり、時間を経るに従い大きい粒子が分離される。
具体的には、実施例７で調製したＧＦＰ  ｍＲＮＡナノアッセンブリについて以下の条件にて解析を行った。
・機器名：Ｅｃｌｉｐｓｅ  ＡＦ４（昭光サイエンティフィック（株））
・ｍＲＮＡ濃度：１００ｎｇ／μＬ
・注入量：２５μＬ
・流速は：ｄｅｔｅｃｔｏｒ  ｆｌｏｗを１ｍＬ／ｍｉｎとし、ｃｒｏｓｓ  ｆｌｏｗを２８分かけて１ｍＬ／ｍｉｎ〜０ｍＬ／ｍｉｎへ一定のペースで低下させた。
その結果を、図１６に示す。Ｎａｎｏａｓｓｅｍｂｌｙでは、ｕｎｈｙｂｒｉｄｉｚｅ（図１６（Ｂ））と比較して右にシフトしており、大きな粒子形成が確認された（図１６（Ａ））。また、この方法ではｎａｎｏａｓｓｅｍｂｌｙをサイズごとに分離することが可能である。
【産業上の利用可能性】
【０１２２】
ｍＲＮＡとＲＮＡオリゴマーとの複合体を用いたｍＲＮＡ送達は、治療用タンパク質を安全かつ持続的に供給するための手法として、その医療への応用が期待される。
【配列表フリーテキスト】
【０１２３】
配列番号１：合成ＤＮＡ
配列番号２〜１８：合成ＲＮＡ
配列番号１９〜２１：合成ＤＮＡ
配列番号２２〜２９：合成ＲＮＡ
配列番号３０〜３１：合成ＤＮＡ
【図１】
0006960641.tif 000004
【図２】
0006960641.tif 000005
【図３】
0006960641.tif 000006
【図４】
0006960641.tif 000007
【図５】
0006960641.tif 000008
【図６】
0006960641.tif 000009
【図７】
0006960641.tif 000010
【図８】
0006960641.tif 000011
【図９】
0006960641.tif 000012
【図１０】
0006960641.tif 000013
【図１１】
0006960641.tif 000014
【図１２】
0006960641.tif 000015
【図１３】
0006960641.tif 000016
【図１４】
0006960641.tif 000017
【図１５】
0006960641.tif 000018
【図１６】
0006960641.tif 000019
【配列表】
0006960641000001.app