(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
水中のテトラサイクリン系抗生物質の検出するための、テトラサイクリンバイオセンサ
ー菌接種物を含む試験紙の調製方法であって、
前記調製方法は、
１０％ラクトースおよびポリミキシンＢ（ＰＭＢ）の１／４ＬＢ培地にテトラサイクリン
バイオセンサー菌接種物を懸濁した懸濁液を調製する工程、
前記懸濁液を濾紙片に滴下して乾燥させて前記試験紙を調製する工程を含み、
前記試験紙において前記テトラサイクリンバイオセンサー菌接種物は、前記ラクトースお
よび前記ポリミキシンＢ（ＰＭＢ）の１／４ＬＢ培地によってラップされ、前記濾紙片上
に固定されており、
前記テトラサイクリンバイオセンサー菌接種物は、Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ
ＢＬ２１に対して、ｐＭＴＬａｃＺプラスミドを導入した、Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  
ｃｏｌｉ  ＢＬ２１／ｐＭＴＬａｃＺ組換え株であり、
前記ｐＭＴＬａｃＺプラスミドは図３に示される構造を有し、Ａｍｐｒ遺伝子、Ｔｅｔ
Ｒ遺伝子、ＴｅｔＯ遺伝子、ＴｅｔＭ遺伝子、およびＬａｃＺ遺伝子を含み、
前記Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ  ＢＬ２１／ｐＭＴＬａｃＺ組換え株は、異な
る濃度のテトラサイクリンの誘導下で異なる量のβ−ガラクトシダーゼを生成する株であ
り、
試験する水およびＬＢ培地の混合液に、前記試験紙およびＸ−ｇａｌを入れて反応させ
ると、前記試験する水中にテトラサイクリン系抗生物質が存在する場合に前記試験紙は青
に発色することを特徴とする、
前記調製方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、生物学的分析および検出の技術分野に属し、特にバイオセンサーを使用して水
中のテトラサイクリン系抗生物質を検出する試験紙片および方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
工業化の進展や各種化学製品による水質汚濁の急激な発生に伴い、各種化学物質の数が急
増しており、人間の生活環境に大きな影響を与えており、環境汚染物質の増加の急性毒性
の解明が急務となっている。
【０００３】
テトラサイクリン系薬物（Ｔｅｔｒａｃｙｃｌｉｎｅｓ、ＴＣｓ）は、スペクトルが広く
、高効率の殺菌効果と抗菌効果があり、魚の病気を予防および治療するための医薬品とし
て、または魚の成長を促進する飼料添加物として広く使用されている。ＴＣｓはほとんど
のグラム陽性菌および陰性菌を阻害できるため、天然で安定しており、安価で使いやすく
、副治療薬が病気を防ぎ、飼料の変換率を高め、魚の成長を促進するための飼料添加物と
してよく使用される。しかしながら、薬物の長期使用、家畜および家禽製品中の残留物、
薬物耐性の増加、および環境における生態学的影響によって引き起こされた副作用は、国
内外で広範な懸念を引き起こす。米国FDAは、動物の筋肉組織内のテトラサイクリン、オ
キシテトラサイクリン、およびクロルテトラサイクリンの総残留量が2μg/ kgを超えない
ように明確に規定する。従来の化学分析方法では、微生物学的方法、高速液体クロマトグ
ラフィー（HPLC）、酵素結合免疫測定法（ELISA）、高速毛管電気泳動法（HPCE）、ラジ
オイムノアッセイ、蛍光測光などで、汚染物質の主成分の含有量を正確に定量できる。た
だし、環境や生物に対するさまざまな毒性物質の包括的な影響を直接的かつタイムリーに
反映することはできない。従来の動物毒性実験では、哺乳類と魚を被験対象として使用し
、毒物による生物への直接的な影響を反映することはできるが、方法が煩雑であり、試験
期間が長く、水質の急性毒性試験のニーズを満たすことができない。従来の毒性検出方法
の欠点を考慮して、国内外の研究者は、水生生物に対する環境汚染物質の毒性を監視する
ために使用される微生物、藻類、底生軟体動物、プランクトン、魚など、さまざまな生物
学的実験方法を確立し、細菌バイオセンサーは、その独特の生理学的特性と最新の光電検
出法と完全に一致するという特性のため、多くの注目を集めている。
【０００４】
試験紙は、検出コストが低く、操作が簡単などの独自の特点を有するので、様々な分野で
広く応用され、例えば、ラボで使用されるｐＨ試験紙、ヨウ化カリウムでんぷん試験紙、
産業で使用される温度に敏感な試験紙、廃水検出試験紙、生活で使用される血糖試験紙な
どがある。試験紙を作成するための様々な材料および方法により、試験紙の検出分野およ
び検出感度も異なる。現在、全細胞バイオセンサーを使用してテストストリップを調製す
ることによって水中のテトラサイクリン抗生物質を検出する方法はない。
【発明の概要】
【０００５】
本発明は、全細胞バイオセンサーを使用して水中のテトラサイクリン抗生物質を検出する
ための試験片を調製するギャップを埋め、全細胞バイオセンサーを使用して水中のテトラ
サイクリン系抗生物質を検出する試験紙片および検出方法を提供することを目的とする。
本発明の技術的解決策は以下の通りである。
【０００６】
濾紙片、固定剤、増感剤、およびテトラサイクリンバイオセンサー菌接種物を含み、前記
テトラサイクリンバイオセンサー菌接種物はＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ  ＢＬ２
１／ｐＭＴＬａｃＺ株であり、Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ  ＢＬ２１／ｐＭＴＬ
ａｃＺ株が前記固定剤および増感剤によってラップされ前記濾紙片上に固定されるバイオ
センサーを使用して水中のテトラサイクリン系抗生物質を検出する試験紙片である。
さらに、上記解決策では、前記Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ  ＢＬ２１／ｐＭＴＬ
ａｃＺ株の調製方法は、以下のことを含む。
【０００７】
（１）ＰＣＲ法によりプラスミドｐＭＴｍＣｈｅｒｒｙからＳｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕ
ｓ  ｒｏｓｔｒｉ  ＲＳＴ１１：Ｔｎ９１６とトランスポゾンＴｎ１０上のテトラサイク
リン媒介調節システムのｐＭＴフラグメントの遺伝子シーケンスをクローニングし、
前記ｐＭＴプライマーの順方向プライマーシーケンスおよび逆方向プライマーシーケンス
は、ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．１およびＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．２に示され：
ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．１：ＴＣＧＴＧＣＣＡＧＣＴＧＣＡＴＴＡＡＴ
ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．２：ＴＴＣＡＣＴＴＴＴＣＴＣＴＡＴＣＡＣＴＧＡＴＡＧＧ、
表１  使用する株およびプラスミド
【０００８】
0006976508.tif 000002
【０００９】
（２）プライマーポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）を使用して、ｐＣＵ１９プラスミドか
らＬａｃＺ（３６８  ｂｐ）レポーター遺伝子フラグメントの遺伝子シーケンスをクロー
ニングし、アニーリング温度が６５℃であり、プラスミドｐＭＴｍＣｈｅｒｒｙからＴ７
フラグメント（２２０  ｂｐ）の遺伝子シーケンスをクローニングし、アニーリング温度
が６０℃であり、ＬａｃＺおよびＴ７ターミネーターシーケンスとの結合・融合によりＬ
ａｃＺ−Ｔ７融合フラグメント（５６８  ｂｐ）を得、プライマーを設計するときに、相
同フラグメントを添加する必要がある。
【００１０】
前記ＬａｃＺプライマーの順方向プライマーシーケンスおよび逆方向プライマーシーケン
スは、ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．３およびＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．４に示され、
ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．３：ＣＴＡＴＣＡＧＴＧＡＴＡＧＡＧＡＡＡＡＧＴＧＡＡＡＴＧＡ
ＣＣＡＴＧＡＴＴＡＣＧＣＣＡＡＧＣ
ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．４：ＧＴＧＧＣＡＧＣＡＧＣＣＴＡＧＧＴＴＡＡＣＴＡＴＧＣＧＧ
ＣＡＴＣＡＧＡＧＣＡＧ、
前記Ｔ７プライマーの順方向プライマーシーケンスおよび逆方向プライマーシーケンスは
、ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．５およびＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．６に示され、
ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．５：ＴＴＡＡＣＣＴＡＧＧＣＴＧＣＴＧＣＣ
ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．６：ＴＣＡＴＴＡＡＴＧＣＡＧＣＴＧＧＣＡＣＧＡＴＴＴＣＡＣＡ
ＣＡＧＧＡＡＡＣＡＧＣＴＡＴＧＡＣ、
ＬａｃＺ−Ｔ７の融合に用いられるプライマーの順方向プライマーシーケンスおよび逆方
向プライマーシーケンスは、ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．７およびＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．８に示
され、
ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．７：ＣＴＡＴＣＡＧＴＧＡＴＡＧＡＧＡＡＡＡＧＴＧＡＡ
ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．８：ＴＣＡＴＴＡＡＴＧＣＡＧＣＴＧＧＣＡＣ、
【００１１】
（３）前記のＬａｃＺ−Ｔ７およびｐＭＴを相同リコンビナーゼで接続し、遺伝子フラグ
メントをＰＣＲ管に入れ、ピペットで静かにピペッティングして混合し、すべての液体を
低速で遠心管の底まで遠心する。キャリアには１０−１００  ｎｇを使用する。キャリア
とインサートフラグメントのモル比は１：１〜１：１０である。複数のフラグメントを接
続する場合、各フラグメントのモル比は１：１である。
ｐｍｏｌｓ=  (質量ｎｇ×１０００)／(フラグメント長さｂｐ×６５０ｄａｌｔｏｎｓ)
、
混合液を５０℃で１５分間反応させる。複数のフラグメントクローニングの場合、反応時
間を延長できるが、総時間は６０分を超えないようにする必要がある。
【００１２】
１００μＬの融解したＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ  ＢＬ２１コンピテントセルを
氷浴で取り、ターゲットＤＮＡ（プラスミドまたは使用、ライゲーション生成物）を加え
、静かに混合し、氷上で25分間放置する。ウォーターバスで42°Cで30〜45秒間ヒートシ
ョックを行い、すぐに氷浴に移して2分間放置する。５００μＬの抗生物質を含まない無
菌ＬＢ培地を遠心管に加え、混合して、３７℃、２００ｒｐｍで１時間復活する。様々な
体積の復活液を吸引し、Ａｍｐ抗生物質を含むＬＢ培地に均一に塗布し、プレートを上下
逆に３７℃のインキュベーターに入れ、一晩培養する。
【００１３】
（４）培地上のスポットを選び、無菌の１０μＬピペットチップを使用して、アンピシリ
ン抗生物質を含むＬＢ培地およびアンピシリン、２０  ｍｇ／Ｌ  Ｘ−ｇａｌおよびテト
ラサイクリン抗生物質を含むＬＢ培地にそれぞれ線を引いて、２つの培地で増殖し、アン
ピシリン、２０ｍｇ／Ｌ  Ｘ−ｇａｌおよびテトラサイクリン抗生物質を含むＬＢ培地で
青い斑点を増殖させる株をスクリーニングし、プライマーＰＣＲを使用して組み換えプラ
スミドを同定し、アニーリング温度が５３℃であり、プラスミドのコアフラグメントが３
５９０ｂｐであることを確認する。
【００１４】
同定に使用したプライマーの順方向プライマーシーケンスおよび逆方向プライマーシーケ
ンスは、ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．９およびＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．１０に示され、
ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．９：ＡＣＴＧＴＣＡＡＴＴＴＧＡＴＡＧＣＧＧＧ
ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．１０：ＡＴＴＡＡＴＧＣＡＧＣＴＧＧＣＡＣＧＡ、
シーケンスを測定し、組み換えプラスミド株がＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ  ＢＬ
２１／ｐＭＴＬａｃＺであることを確認する。
【００１５】
さらに、上記解決策では、前記固定剤は１０％ラクトースである。
【００１６】
さらに、上記解決策では、前記増感剤はＰＭＢの１／４ＬＢ培地である。
【００１７】
本発明は、上記試験紙片の調製方法をさらに提供し、この方法は、
(ａ)濾紙片ベースを用意し、必要なサイズ、好ましくはｌｃｍ×４ｃｍにカットすること
と、
(ｂ)Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ  ＢＬ２１／ｐＭＴＬａｃＺ細菌および１０％ラ
クトースおよびＰＭＢの１／４  ＬＢ培地を一定の割合で混合させることと、
(ｃ)Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ  ＢＬ２１／ｐＭＴＬａｃＺ細菌および１０％ラ
クトースおよびＰＭＢの１／４  ＬＢ培地の混合物を試験紙ベース上に滴下することと、
(ｄ)試験紙を凍結乾燥機に入れ固定することと、を含む。
さらに、前記Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ  ＢＬ２１／ｐＭＴＬａｃＺ細菌および
１０％ラクトースおよびＰＭＢの１／４  ＬＢ培地の混合物の投与割合範囲は、３〜４ｍ
ｇの菌粉に対して１００μＬの１０％ラクトースおよびＰＭＢの１／４ＬＢ培地を混合す
る。
【００１８】
さらに、前記凍結乾燥機での固定時間は４時間である。
本発明は、上記試験紙片を使用して水中のテトラサイクリン系抗生物質を検出する方法を
さらに提供する。
測定する１００μＬの水サンプルおよび９００μＬのＬＢ培地の混合液を復活し（約１３
−１８分）、復活した後、前記試験紙に入れ、試験紙上の青の強度を検出する。
さらに、初期の発色および１．５時間後の色強度の比較により、色強度を得、該水体の６
種類のテトラサイクリン系抗生物質の検出を実現する。
さらに、選択可能に、
検出するには、カメラで発色写真を取得し、コンピューターに転送してＩｍａｇｅＪソフ
トウェアを使用して青色の強度を取得する。
【００１９】
従来技術と比較すると、本発明の有益な効果は以下の通りである。
（１）本発明のｐＭＴＬａｃＺプラスミドは、様々なテトラサイクリン系抗生物質によっ
て誘導できる、発明者が独自に設計した合成プラスミドであり、ｐＭＴＬａｃＺプラスミ
ドは、異なる濃度のテトラサイクリンの誘導下で異なる量のβ−ガラクトシダーゼを生成
し、試験紙片上に固定されたＸ−ｇａｌ発色剤を分解でき、サンプル中のテトラサイクリ
ン系抗生物質の濃度を直観的に示す。
（２）本発明の試験紙片は、有機化学試薬を導入することなく、水体中の６種類のテトラ
サイクリン系抗生物質（テトラサイクリン、オキシテトラサイクリン、クロルテトラサイ
クリン、ドキシサイクリン、ミノサイクリンおよびメトキシテトラサイクリン）の含有量
を同時に効果的に検出できる。
（３）本発明の検出方法は、単純、高速、直観的、正確で、持ち運びが容易で、環境に優
しく、適用範囲が広く、コストが低く、普及および使用が容易である。
【図面の簡単な説明】
【００２０】
【図１】遺伝子フラグメントのゲル電気泳動図であり、そのうち、図ａは組み換えプラスミドで使用される遺伝子フラグメントであり、図ｂは組み換えプラスミド確認フラグメントである。
【図２】Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ  ＢＬ２１／ｐＭＴＬａｃＺ菌の発色原理および効果であり、そのうち、図ａは組み換えプラスミド発色原理であり、図ｂはｘ−ｇａｌ化学反応であり、図ｃは発色結果図である。
【図３】ｐＭＴＬａｃＺプラスミド遺伝子マップである。
【図４】Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ  ＢＬ２１／ｐＭＴＬａｃＺ菌の試験紙の調製流れである。
【図５】Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ  ＢＬ２１／ｐＭＴＬａｃＺ菌の試験紙により６種類のテトラサイクリン系抗生物質を検出するカラーカードである。
【図６】Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ  ＢＬ２１／ｐＭＴＬａｃＺ菌の試験紙により水体の６種類のテトラサイクリン系抗生物質を検出する図である。
【図７】本発明の検出方法のフローチャートである。
【発明を実施するための形態】
【００２１】
１、Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ  ＢＬ２１／ｐＭＴＬａｃＺ株の調製：
（１）プライマーポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）を使用してプラスミドｐＭＴｍＣｈｅ
ｒｒｙからＳｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ  ｒｏｓｔｒｉ  ＲＳＴ１１：Ｔｎ９１６およ
びトランスポゾンＴｎ１０上のテトラサイクリン媒介調節システムのｐＭＴフラグメント
（５２５６  ｂｐ）の遺伝子シーケンスをクローニングし、アニーリング温度は５５℃で
ある（図１）。使用するプラスミドは表１に示される。
前記ｐＭＴプライマーの順方向プライマーシーケンスおよび逆方向プライマーシーケンス
は、ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．１およびＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．２に示され、
ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．１：ＴＣＧＴＧＣＣＡＧＣＴＧＣＡＴＴＡＡＴ
ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．２：ＴＴＣＡＣＴＴＴＴＣＴＣＴＡＴＣＡＣＴＧＡＴＡＧＧ、
表１  使用する株およびプラスミド
【００２２】
0006976508.tif 000003
【００２３】
（２）プライマーポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）を使用して、ｐＣＵ１９プラスミドか
らＬａｃＺ（３６８  ｂｐ）レポーター遺伝子フラグメントの遺伝子シーケンスをクロー
ニングし、アニーリング温度が６５℃であり、プラスミドｐＭＴｍＣｈｅｒｒｙからＴ７
フラグメント（２２０  ｂｐ）の遺伝子シーケンスをクローニングし、アニーリング温度
が６０℃であり、ＬａｃＺおよびＴ７ターミネーターシーケンスとの結合・融合によりＬ
ａｃＺ−Ｔ７融合フラグメント（５６８  ｂｐ）を得、プライマーを設計するときに、相
同フラグメントを添加する必要がある（図１）。
【００２４】
前記ＬａｃＺプライマーの順方向プライマーシーケンスおよび逆方向プライマーシーケン
スは、ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．３およびＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．４に示され、
ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．３：ＣＴＡＴＣＡＧＴＧＡＴＡＧＡＧＡＡＡＡＧＴＧＡＡＡＴＧＡ
ＣＣＡＴＧＡＴＴＡＣＧＣＣＡＡＧＣ
ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．４：ＧＴＧＧＣＡＧＣＡＧＣＣＴＡＧＧＴＴＡＡＣＴＡＴＧＣＧＧ
ＣＡＴＣＡＧＡＧＣＡＧ、
前記Ｔ７プライマーの順方向プライマーシーケンスおよび逆方向プライマーシーケンスは
、ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．５およびＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．６に示され、
ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．５：ＴＴＡＡＣＣＴＡＧＧＣＴＧＣＴＧＣＣ
ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．６：ＴＣＡＴＴＡＡＴＧＣＡＧＣＴＧＧＣＡＣＧＡＴＴＴＣＡＣＡ
ＣＡＧＧＡＡＡＣＡＧＣＴＡＴＧＡＣ、
融合ＬａｃＺ−Ｔ７所用プライマーの順方向プライマーシーケンスおよび逆方向プライマ
ーシーケンスは、ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．７およびＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．８に示され、
ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．７：ＣＴＡＴＣＡＧＴＧＡＴＡＧＡＧＡＡＡＡＧＴＧＡＡ
ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．８：ＴＣＡＴＴＡＡＴＧＣＡＧＣＴＧＧＣＡＣ、
【００２５】
（３）前記のＬａｃＺ−Ｔ７およびｐＭＴを相同リコンビナーゼで接続し、遺伝子フラグ
メントをＰＣＲ管に入れ、ピペットで静かにピペッティングして混合し、すべての液体を
低速で遠心管の底まで遠心する。キャリアには１０−１００  ｎｇを使用する。キャリア
とインサートフラグメントのモル比は１：１〜１：１０である。複数のフラグメントを接
続する場合、各フラグメントのモル比は１：１である。
ｐｍｏｌｓ=  (質量ｎｇ×１０００)／(フラグメント長さｂｐ×６５０ｄａｌｔｏｎｓ)
、
混合液を５０℃で１５分間反応させる。複数のフラグメントクローニングの場合、反応時
間を延長できるが、総時間は６０分を超えないようにする必要がある。
【００２６】
１００μＬの融解したＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ  ＢＬ２１コンピテントセルを
氷浴で取り、ターゲットＤＮＡ（プラスミドまたは使用、ライゲーション生成物）を加え
、静かに混合し、氷上で25分間放置する。ウォーターバスで42°Cで30〜45秒間ヒートシ
ョックを行い、すぐに氷浴に移して2分間放置する。５００μＬの抗生物質を含まない無
菌ＬＢ培地を遠心管に加え、混合して、３７℃、２００ｒｐｍで１時間復活する。様々な
体積の復活液を吸引し、Ａｍｐ抗生物質を含むＬＢ培地に均一に塗布し、プレートを上下
逆に３７℃のインキュベーターに入れ、一晩培養する。
【００２７】
（４）培地上のスポットを選び、無菌の１０μＬピペットチップを使用して、アンピシリ
ン抗生物質を含むＬＢ培地およびアンピシリン、２０  ｍｇ／Ｌ  Ｘ−ｇａｌおよびテト
ラサイクリン抗生物質を含むＬＢ培地にそれぞれ線を引いて、２つの培地で増殖し、アン
ピシリン、２０ｍｇ／Ｌ  Ｘ−ｇａｌおよびテトラサイクリン抗生物質を含むＬＢ培地で
青い斑点を増殖させる株をスクリーニングし、プライマーＰＣＲを使用して組み換えプラ
スミドを同定し、アニーリング温度が５３℃であり、プラスミドのコアフラグメントが３
５９０ｂｐであることを確認する（図１）。
【００２８】
同定に使用したプライマーの順方向プライマーシーケンスおよび逆方向プライマーシーケ
ンスは、ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．９およびＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．１０に示され、
ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．９：ＡＣＴＧＴＣＡＡＴＴＴＧＡＴＡＧＣＧＧＧ
ＳＥＱ  ＩＤ  Ｎｏ．１０：ＡＴＴＡＡＴＧＣＡＧＣＴＧＧＣＡＣＧＡ、
シーケンスを測定し、組み換えプラスミド株がＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ  ＢＬ
２１／ｐＭＴＬａｃＺであることを確認する。ｐＭＴＬａｃＺプラスミドマップは図３に
示される。
【００３０】
テトラサイクリンカラーカードの調製：
水体の６種類のテトラサイクリンを検出する場合、テトラサイクリンカラーカードが必要
であり、バイオセンサー細菌が固定された試験紙を異なる濃度のテトラサイクリン溶液で
測定し、カメラで発色写真を取得し、コンピューターに転送してＩｍａｇｅＪソフトウェ
アにより発色強度を取得する（図５）。
【００３１】
テトラサイクリン検出：
復活したＥｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ  ＢＬ２１／ｐＭＴＬａｃＺ菌試験紙を測定
する水サンプルに入れ、１５０分間反応した直後の光量を読み取り、そしてＸ−ｇａｌを
滴下して１．５時間待ち、バイオセンサーと水中のテトラサイクリン系抗生物質の反応が
完了した後、再び発色を読み取り、構築されたテトラサイクリンカラーカードの色度で算
出し、該水サンプルのテトラサイクリンの含有量を評価する（図７）。この新規な試験紙
の正確性および信頼性を証明するために、２種類の池の水（表２）で２５０μｇ／Ｌオキ
シテトラサイクリンおよび１００μｇ／Ｌドキシサイクリンをそれぞれ準備し、それぞれ
Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉ  ＢＬ２１／ｐＭＴＬａｃＺ菌試験紙のテストを実施
した。その結果、該試験紙の結果が安定し再現性があることを示した。したがって、この
方法は信頼性よく実現可能性があり、実用的な価値がある（図６）。
表２  池の水の物理的および化学的特性
【００３２】
0006976508.tif 000004
【００３３】
上記の実施例の説明は、本発明の方法およびその精神を理解するためのものである。当業
者にとって、本発明の原理から逸脱することなく、本発明をいくつかの改良および修正を
加えて実施することもでき、これらの改良および修正はすべて本発明の保護範囲に含まれ
ることは言うまでもない。
［配列表］
【００３４】
SEQUENCE LISTING
<110>  南京▲農業▼大学
<120>  バイオセンサーを使用して水中のテトラサイクリン系抗生物質を検出する試験紙
片および方法
<130>  無
<170>  PatentIn version 3.5
<210>  1
<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial sequence
<221>  misc_feature
<222>  (1)..(19)
<223>実験の要求に応じて設計し、pMTプライマーとしてのＦ−プライマー
<400>  1
tcgtgccagc tgcattaat                                                    19
<210>  2
<211>  25
<212>  DNA
<213>  Artificial sequence
<221>  misc_feature
<222>  (1)..(25)
<223>実験の要求に応じて設計し、pMTプライマーとしてのＲ−プライマー
<400>  2
ttcacttttc tctatcactg atagg                                             25
<210>  3
<211>  45
<212>  DNA
<213>  Artificial sequence
<221>  misc_feature
<222>  (1)..(45)
<223>実験の要求に応じて設計し、LacZプライマーとしてのＦ−プライマー
<400>  3
ctatcagtga tagagaaaag tgaaatgacc atgattacgc caagc                       45
<210>  4
<211>  39
<212>  DNA
<213>  Artificial sequence
<221>  misc_feature
<222>  (1)..(39)
<223>実験の要求に応じて設計し、LacZプライマーとしてのＲ−プライマー
<400>  4
gtggcagcag cctaggttaa ctatgcggca tcagagcag                              39
<210>  5
<211>  18
<212>  DNA
<213>  Artificial sequence
<221>  misc_feature
<222>  (1)..(18)
<223>実験の要求に応じて設計し、T7プライマーとしてのＦ−プライマー
<400>  5
ttaacctagg ctgctgcc                                                     18
<210>  6
<211>  45
<212>  DNA
<213>  Artificial sequence
<221>  misc_feature
<222>  (1)..(45)
<223>実験の要求に応じて設計し、T7プライマーとしてのＲ−プライマー
<400>  6
tcattaatgc agctggcacg atttcacaca ggaaacagct atgac                       45
<210>  7
<211>  24
<212>  DNA
<213>  Artificial sequence
<221>  misc_feature
<222>  (1)..(24)
<223>実験の要求に応じて設計し、融合LacZ-T7プライマーとしてのＦ−プライマー
<400>  7
ctatcagtga tagagaaaag tgaa                                              24
<210>  8
<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial sequence
<221>  misc_feature
<222>  (1)..(19)
<223>実験の要求に応じて設計し、融合LacZ-T7プライマーとしてのＲ−プライマー
<400>  8
tcattaatgc agctggcac                                                    19
<210>  9
<211>  20
<212>  DNA
<213>  Artificial sequence
<221>  misc_feature
<222>  (1)..(20)
<223>実験の要求に応じて設計し、鑑定用プライマーとしてのＦ−プライマー
<400>  9
actgtcaatt tgatagcggg                                                   20
<210>  10
<211>  19
<212>  DNA
<213>  Artificial sequence
<221>  misc_feature
<222>  (1)..(19)
<223>実験の要求に応じて設計し、鑑定用プライマーとしてのＲ−プライマー
<400>  10
attaatgcag ctggcacga                                                    19
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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