(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
分離した細胞外小胞体のゼータ電位および分離した細胞外小胞体の細胞への混入能力からなる群から選択される少なくとも一つの物性を増加するために、標的物質及び分離した細胞外小胞体を体外衝撃波に露出させる段階を含んでなり、前記体外衝撃波が０．０５〜０．９ｍＪ／ｍｍ２のエネルギー範囲を有する、分離した細胞外小胞体内へ標的物質を伝達する方法。
【請求項２】
前記標的物質は、核酸、タンパク質及び化合物からなる群から選択されるいずれか一つ以上であることを特徴とする、請求項１に記載の細胞外小胞体内へ標的物質を伝達する方法。
【請求項３】
前記細胞外小胞体は、エキソソーム（ｅｘｏｓｏｍｅ）、エクトソーム（ｅｃｔｏｓｏｍｅ）、マイクロベシクル（ｍｉｃｒｏｖｅｓｉｃｌｅ）とアポトーシス（ａｐｏｐｏｔｏｔｉｃ  ｂｏｄｙ）からなる群から選択されるいずれか一つ以上であることを特徴とする、請求項１に記載の細胞外小胞体内へ標的物質を伝達する方法。
【請求項４】
分離した細胞外小胞体のゼータ電位および分離した細胞外小胞体の細胞への混入能力からなる群から選択される少なくとも一つの物性を増加するために、標的物質及び分離した細胞外小胞体を体外衝撃波に露出させる段階を含んでなり、前記体外衝撃波が０．０５〜０．９ｍＪ／ｍｍ２のエネルギー範囲を有する、標的物質が導入された細胞外小胞体を製造する方法。
【請求項５】
前記細胞外小胞体が、分離した細胞外小胞体のゼータ電位の増加および分離した細胞外小胞体の細胞への混入能力の増加からなる群から選択される少なくとも一つの物性を有する、請求項４の方法により製造された、細胞外小胞体。
【請求項６】
前記製造された細胞外小胞体は、細胞への混入（ｉｎｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）能力が増加したことを特徴とする、請求項５に記載の細胞外小胞体。
【請求項７】
請求項５の細胞外小胞体を含む、薬物伝達体。
【請求項８】
（ａ）分離した細胞外小胞体のゼータ電位および分離した細胞外小胞体の混入能力からなる群から選択される少なくとも一つの物性を増加するために、標的物質及び分離した細胞外小胞体を体外衝撃波に露出させ、標的物質を細胞外小胞体内へ導入する段階、及び
（ｂ）前記標的物質が導入された細胞外小胞体を細胞に処理する段階
を含んでなり、前記体外衝撃波が０．０５〜０．９ｍＪ／ｍｍ２のエネルギー範囲を有する、細胞内へ標的物質を伝達する方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、標的物質及び細胞外小胞体を体外衝撃波に露出させる段階を含む、細胞外小胞体内へ標的物質を伝達する方法と、標的物質が導入された細胞外小胞体を製造する方法と、該方法によって製造された細胞外小胞体、該細胞外小胞体を含む薬物伝達体、並びに細胞内へ標的物質を伝達する方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
衝撃波は、特定の音波発生器によって生成される連続した単一音波であって、１００ＭＰａまでの高ピーク圧力振幅を有し、１μｓ未満の短い持続時間を有し、０．００５〜１．０ｍＪ／ｍｍ２範囲のエネルギー密度で特定の標的部位に伝達することができる。
【０００３】
高エネルギーの体外衝撃波結石破砕術（ｅｘｔｒａｃｏｒｐｏｒｅａｌ  ｓｈｏｃｋ−ｗａｖｅ  ｌｉｔｈｏｔｒｉｐｓｙ、ＥＳＷＬ）は、３５〜１００ＭＰａの圧力を人体の特定部位に照射する治療方法であって、腎臓と胆管の結石破砕に使用されて以来、様々な分野で新たな治療方法で試みられている。近来、体外衝撃波結石破砕術が筋骨格系疾患治療に利用され、抗炎症作用及び血流増加に効果を奏すると報告されている。
【０００４】
細胞外小胞体は、二重脂質膜からなる数十ｎｍ〜数百ｎｍのサイズのナノ小胞体であって、タンパク質、脂質、及び遺伝子などの生物学的に活性を有する物質で構成されている。従来は、このような細胞外小胞体は、細胞から分泌される残渣であるとされてきたが、最近は細胞外小胞体の臨床学的意味が台頭してきており、様々な研究が進められている。特に、細胞によって排出される球状小嚢であるエクソソームは、母細胞タンパク質、ＤＮＡなどの様々な情報を有しているので、これをバイオマーカーとして活用した癌検出用マーカー及びセンサーの開発に活発に取り組んでいる。一例として、患者の血液中に存在する細胞外小胞体から変異した形であるＥＧＦＲVIII遺伝子の検出に基づいて、膠芽腫の診断可能性を提示した研究結果がある。また、患者の尿中に存在する細胞外小胞体の中から、癌細胞由来の細胞外小胞体の誘電体解析を通じて前立腺癌の生体マーカーＰＣＡ−３及びＴＭＰＲＳＳ２：ＥＲＧの存在を確認した研究結果もある。併せて、体液内の細胞外小胞体内に存在する炎症性疾患に関連する遺伝子発現量を解析し、炎症性疾患を診断する方法が特許登録第１０−１７０４８２８号に開示されている。
【０００５】
一方、特許登録第１０−１７１９５６９号において、本発明者らは、本発明に先立って体外衝撃波を処理した細胞から目的の標的物質が導入されたエキソソームと、エクトソーム、マイクロベシクルまたはアポトーシスなどの細胞外小胞体の生成及び分泌が増加することを確認することによって、標的物質を含有する細胞を生成する方法を確立した。しかし、前記の方法は、形質転換過程が細胞に加えられた体外衝撃波によって産生された細胞外小胞体を媒介に行われることの確認に止まっており、細胞外小胞体、特にエキソソーム自体を利用する機転及びこれを直接用いた形質転換方法については開示されていなかった。細胞を用いた治療法に比べ、エキソソームを基盤とする薬物伝達又は治療は、血管の閉鎖効果がなく、二次微小血管血栓症を発生させる危険性及び腫瘍形成の危険性を低減し得る。また、エキソソームは、少量の細胞で多量得ることができ、前記のように収得した大量のエキソソームは安定であり、かつ保存が容易であり、免疫拒否反応を誘導しないので、臨床に適用しやすいという多くの利点が存在する。したがって、細胞を媒介とした治療法よりも改善されたエキソソーム自体を用いた細胞治療法を研究する必要性があった。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明者らは、形質転換の過程で標的物質を伝達する媒介体である細胞外小胞体内へ標的物質を伝達する方法を研究していたところ、従来登録特許である第１０−１７１９５６９号とは異なり、細胞外小胞体にエネルギーレベルの高い体外衝撃波を処理すれば、標的物質の細胞外小胞体への導入率が増加し、前記標的物質が導入された細胞外小胞体の細胞に対する混入能力の増加が発生する事実を確認した。また、標的物質を担持した細胞外小胞体として動物細胞、植物細胞、細菌及び真核細菌を含む微生物など、自然界の生物に由来する細胞外小胞体だけでなく、人工的に産生された細胞外小胞体も活用できることを確認しており、体外衝撃波を利用すれば、目標とする細胞への標的物質の伝達効率が高まることが明らかになった。このようにして、本発明を完成した。
【０００７】
したがって、本発明の目的は、標的物質及び細胞外小胞体を体外衝撃波に露出させる段階を含む、細胞外小胞体内へ標的物質を伝達する方法と、標的物質が導入された細胞外小胞体を製造する方法と、該方法によって製造された細胞外小胞体、該細胞外小胞体を含む薬物伝達体、並びに細胞内へ標的物質を伝達する方法を提供するものである。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
前記目的を達成するために、本発明は、標的物質及び細胞外小胞体を体外衝撃波に露出させる段階を含む、細胞外小胞体内へ標的物質を伝達する方法を提供する。
【０００９】
また、本発明は、標的物質及び細胞外小胞体を体外衝撃波に露出させる段階を含む標的物質が導入された細胞外小胞体を製造する方法を提供する。
【００１０】
また、本発明は、前記方法によって製造された細胞外小胞体を提供する。
【００１１】
また、本発明は、前記細胞外小胞体を含む薬物伝達体を提供する。
【００１２】
また、本発明は、（ａ）標的物質及び細胞外小胞体を体外衝撃波に露出させて標的物質を細胞外小胞体内へ導入する段階；及び（ｂ）前記標的物質が導入された細胞外小胞体を細胞に処理する段階；を含む、細胞内へ標的物質を伝達する方法を提供する。
【発明の効果】
【００１３】
本発明による方法は、動物細胞、植物細胞、細菌及び真核細菌を含む微生物など、自然界の生物に由来する細胞外小胞体だけでなく、人工的に製造した細胞外小胞体を細胞外から体外衝撃波に露出させるところ、強力なエネルギーレベルの体外衝撃波を使用することができるので、標的物質を体外小胞体内へ効率的に伝達させることができる。また、体外衝撃波を処理すると、前記標的物質が導入された細胞外小胞体の目的とする細胞への混入能力もまた増加する。その結果、本発明の方法によれば、標的物質を高い効率で細胞内へ伝達することができ、様々な分野に活用することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１４】
【図１】体外衝撃波処理の有無によるエキソソーム分散溶液のゼータ電位の変化を測定した結果を示す図である。
【図２】体外衝撃波処理の有無によるエキソソームのサイズの変化をナノ粒子トラッキング解析（ＮＴＡ）装置を用いて測定した結果を示す図である。
【図３】体外衝撃波を処理した血管内皮細胞ＨＵＶＥＣ由来のエキソソームをヒト血管内皮細胞ＨＵＶＥＣに処理し、体外衝撃波による細胞内エキソソーム混入（ｉｎｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）の程度をエネルギーレベルに応じて比較分析した実験の結果を示す図である。
【図４】様々なレベルの体外衝撃波によるｓｉＲＮＡ（ｓｉＧｌｏ）のエキソソームへの導入及び前記ｓｉＲＮＡが導入されたエキソソームの混入（ｉｎｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）能力を比較分析した結果を示す図である。
【図５】様々なレベルの体外衝撃波によるＲＦＰタンパク質のエキソソームへの導入及び前記タンパク質が導入されたエキソソームへの混入（ｉｎｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）能力を比較分析した結果を示す図である。
【図６】様々なレベルの体外衝撃波によるｍｉｃｒｏＲＮＡのエキソソームへの導入及び前記ｍｉｃｒｏＲＮＡが導入されたエキソソームの混入（ｉｎｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）能力を比較分析した結果を示す図である。
【図７】体外衝撃波によって核酸が導入されたＨＵＶＥＣ由来の細胞外小胞体（ＥＳＷ  Ｏ）を用いたｍｉｃｒｏ  ＲＮＡ（Ｃｅｌ−ｍｉＲ−３９）の形質転換率を様々な細胞で対照群（ＥＳＷ  Ｘ）と比較した結果を示す図である。
【図８】体外衝撃波によって核酸が導入されたＭＳＣ由来の細胞外小胞体（ＥＳＷ  Ｏ）を用いたｍｉｃｒｏ  ＲＮＡ（Ｃｅｌ−ｍｉＲ−３９）の形質転換率を様々な細胞で対照群（ＥＳＷ  Ｘ）と比較した結果を示す図である。
【図９】体外衝撃波によって核酸が導入されたＶＳＭＣ由来の細胞外小胞体（ＥＳＷ  Ｏ）を用いたｍｉｃｒｏ  ＲＮＡ（Ｃｅｌ−ｍｉＲ−３９）の形質転換率を様々な細胞で対照群（ＥＳＷ  Ｘ）と比較した結果を示す図である。
【図１０】体外衝撃波を処理した牛乳由来のエキソソームをヒトの血管内皮細胞ＨＵＶＥＣに処理し、体外衝撃波による細胞内エキソソームの混入（ｉｎｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）程度を対照群と比較分析した結果を示す図である。
【図１１】体外衝撃波を処理したグレープフルーツ由来エキソソームをヒトの血管内皮細胞ＨＵＶＥＣに処理し、体外衝撃波による細胞内エキソソームの混入（ｉｎｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）程度を対照群と比較分析した結果を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００１５】
本発明は、標的物質及び細胞外小胞体を体外衝撃波に露出させる段階を含む、細胞外小胞体内へ標的物質を伝達する方法を提供する。
【００１６】
以下では、本発明についてさらに詳しく述べる。
【００１７】
本発明において使用される用語「標的物質」、該標的物質は、細胞内へ伝達されることにより、これの目的とする効果を発現することができる物質であれば制限なく含むことが可能であるが、好ましくは、前記標的物質は、核酸、タンパク質及び化合物からなる群から選択されるいずれか一つ以上であることができる。また、前記核酸は、自然界に存在する核酸であるが、人工的に製造された核酸をすべて含むことができ、好ましくは、ＤＮＡ、ＲＮＡ、マイクロＲＮＡ（ｍｉｃｒｏＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ）、小さなＲＮＡ（Ｓｍａｌｌ  ＲＮＡ、ｓｍＲＮＡ）、小さな干渉ＲＮＡ（ｓｍａｌｌ  ｉｎｔｅｒｆｅｒｉｎｇ  ＲＮＡ、ｓｉＲＮＡ）、パイＲＮＡ（Ｐｉｗｉ−ｉｎｔｅｒａｃｔｉｎｇ  ＲＮＡ、ｐｉＲＮＡ）、核小体低分子ＲＮＡ（ｓｍａｌｌ  ｎｕｃｌｅｌａｒ  ＲＮＡ、ｓｎｏＲＮＡ）、ｔ−ＲＮＡ−由来小さなＲＮＡ（ｔＲＮＡ−ｄｅｒｉｖｅｄ  ｓｍａｌｌ  ＲＮＡ、ｔｓＲＮＡ）、小さなｒＤＮＡ−由来ＲＮＡ（ｓｍａｌｌ  ｒＤＮＡ−ｄｅｒｉｖｅｄ  ＲＮＡ、ｓｒＲＮＡ）、小核ＲＮＡ（ｓｍａｌｌ  ｎｕｃｌｅａｒ  ＲＮＡ、Ｕ−ＲＮＡ）及び長い非暗号化ＲＮＡ（ｌｏｎｇ  ｎｏｎｃｏｄｉｎｇ  ＲＮＡ、ｌｎｃＲＮＡ）であることができるが、これらに限定されない。
【００１８】
本発明において使用される用語「体外衝撃波」は、特定の音波発生器によって生成される連続した単一音波であって、１００ＭＰａまでの高ピーク圧力振幅を有し、１μｓ未満の短い持続時間を有し、０．００５〜１．０ｍＪ／ｍｍ２範囲のエネルギー密度にして、特定の標的部位に伝達させることができることを意味する。従来特許である第１０−１７１９５６９号とは異なり、本発明では、エキソソームに体外衝撃波を処理するところ、従来特許で生きている細胞に体外衝撃波を処理して細胞の死滅が起こり、使用することができなかった０．０９ｍＪ／ｍｍ２以上の体外衝撃波を活用することができ、従来の登録特許の実施例では、具体的に効果を確認できなかった、０．０５ｍＪ／ｍｍ２以上の体外衝撃波を使用できるという利点がある。
【００１９】
前記のような高エネルギーレベルの０．０５ｍＪ／ｍｍ２以上の体外衝撃波を用いた本発明の一実施例では、標的物質の細胞外小胞体への導入率が増加し、及び前記の標的物質が導入された細胞外小胞体が細胞への混入能力もまた高まることを確認し、これによる標的物質を目標とする細胞内へ伝達させる伝達効率の増加も同様に確認した。また、前記のような細胞外小胞体の由来を動物細胞だけでない植物細胞から収得した細胞外小胞体も利用することができることを確認して薬物伝達体としての活用性を広げることができることを確認した。
【００２０】
これにより、本発明で用いられる前記体外衝撃波は、０．０５〜０．９ｍＪ／ｍｍ２、具体的には、０．０５〜０．８９ｍＪ／ｍｍ２、更に具体的には、０．０５〜０．７０ｍＪ／ｍｍ２のエネルギー範囲で処理することができる。前記体外衝撃波は、体外衝撃波を加える細胞外小胞体の容積、細胞外小胞体が作成される細胞種、作成された細胞外小胞体の種類によって強度が異なり得る。本発明の一実施例では、前記体外衝撃波を０．０７ｍＪ／ｍｍ２以上の強度にして細胞外小胞体によって処理した。
【００２１】
本発明における用語「細胞外小胞体」は、細胞由来の膜に囲まれた小球体を指し、このような球体は、その名称が作成される細胞の起源や作成方法によって非常に多様である。本発明では、細胞から作成された方法に従って、名付けられたエキソソーム（ｅｘｏｓｏｍｅ）、エクトソーム（ｅｃｔｏｓｏｍｅ）、マイクロベシクル（ｍｉｃｒｏｖｅｓｉｃｌｅ）及びアポトーシス（ａｐｏｐｔｏｔｉｃ  ｂｏｄｙ）からなる群から選択されるいずれかを含むことができるが、これらに制限されない。前記細胞外小胞体は、自然界、例えば、植物、動物、微生物由来の細胞外小胞体または人工的に製造された細胞外小胞体であってもよい。また、前記細胞は、自然界の生物個体から分離された細胞であってもよい。また、前記細胞は、ヒト及び非ヒト哺乳類を含む任意の類型の動物、植物から由来することができ、様々な種類の免疫細胞、腫瘍細胞などであってもよい。また、本発明の一実施例では、前記細胞は、ヒト臍帯静脈内皮細胞（ｈｕｍａｎ  ｕｍｂｉｌｉｃａｌ  ｖｅｉｎ  ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ  ｃｅｌｌ、ＨＵＶＥＣ）、間葉幹細胞（ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌ、ＭＳＣ）または大動脈平滑筋細胞（ｖａｓｃｕｌａｒ  ｓｍｏｏｔｈ  ｍｕｓｃｌｅ  ｃｅｌｌ、ＶＳＭＣ）を使用した。
【００２２】
また、本発明の具体的な実施例で、本発明者らは、細胞外小胞体をエキソソームにし、前記エキソソームを植物又は動物から由来したものを使用して標的物質を導入し、細胞外小胞体内へ標的物質を効率的に伝達した。
【００２３】
したがって、体外衝撃波を加えて標的物質を細胞外小胞体内へ導入する場合が体外衝撃波を加えない場合よりも、その効率がより優れており、前記標的物質が導入された細胞外小胞体が、他の細胞内へ優れた形質転換効率を示すことが確認されたことにより、本発明の方法は、これに関連する様々な分野に活用されることができる。
【００２４】
また、本発明は、標的物質及び細胞外小胞体を体外衝撃波に露出させる段階を含む標的物質が導入された細胞外小胞体を製造する方法を提供する。
【００２５】
本発明の標的物質が導入された細胞外小胞体を製造する方法は、前記体外衝撃波を０．０５〜０．９ｍＪ／ｍｍ２、具体的には、０．０５〜０．８９ｍＪ／ｍｍ２、更に具体的には、０．０５〜０．７０ｍＪ／ｍｍ２のエネルギー範囲で処理させて標的物質を細胞内へ効率的に導入することができる。本発明の一実施例では、前記体外衝撃波を０．０７ｍＪ／ｍｍ２以上の強度で細胞外小胞体に対して処理して効率的に標的物質が導入された細胞外小胞体を製造した。
【００２６】
本発明の方法では、細胞外小胞体にエキソソーム（ｅｘｏｓｏｍｅ）、エクトソーム（ｅｃｔｏｓｏｍｅ）、マイクロベシクル（ｍｉｃｒｏｖｅｓｉｃｌｅ）及びアポトーシス（ａｐｏｐｔｏｔｉｃ  ｂｏｄｙ）からなる群から選択されるいずれかを使用することができるが、これに制限されない。前記細胞外小胞体は、細胞外小胞体を有する、ある植物、動物及び微生物からなる自然界の生物に由来する、または人工的に製造された可能性があり、本発明の一実施例では、エキソソームを使用した。
【００２７】
また、本発明は、前記の方法により製造された細胞外小胞体を提供する。
【００２８】
本発明の標的物質及び細胞外小胞体を体外衝撃波に露出させる段階を含む標的物質が導入された細胞外小胞体を製造する方法により製造された細胞外小胞体を使用すると、細胞外小胞体を破壊することなく標的物質を細胞外小胞体に伝達させることができる。
【００２９】
本発明の一実施例では、体外衝撃波を０．０２ｍＪ／ｍｍ２で処理した場合には、体外衝撃波未処理群である対照群との差はなかったが、体外衝撃波エネルギーレベルを０．０７ｍＪ／ｍｍ２で処理した場合には、対照群に比べエキソソーム分散溶液のゼータ電位値が２０％以上増加したことが確認された。また、前記方法により製造された細胞外小胞体を、本発明の一実施例にてエキソソームのサイズ分布が異ならして変化することが確認され、体外衝撃波によりエキソソームのサイズ分布が異なるなることが確認された。前記の結果により細胞外小胞体から目標とする細胞への混入に影響を与えない範囲内での細胞外小胞体自体の物性変化を確認することができた。
【００３０】
また、本発明の方法により製造された細胞外小胞体は、細胞への混入（ｉｎｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）能力が増加され、体外衝撃波に露出していない対照群よりゼータ電位（Ｚｅｔａ  ｐｏｔｅｎｔｉａｌ）が上昇したことを特徴とする。
【００３１】
また、本発明は、前記細胞外小胞体を含む薬物伝達体を提供する。
【００３２】
本発明の方法により製造された細胞外小胞体を利用することにより、細胞外小胞体を破壊することなく標的物質を細胞外小胞体に伝達させることができ、これにより、標的物質を目標細胞に効率的に伝達させることができるところ、効率的な薬物伝達体の製造が可能である。
【００３３】
したがって、本発明に係る細胞外小胞体は、細胞への混入能力が高まるという特徴を示すので、本発明の薬物伝達体を利用することにより、細胞内伝達を効果的に達成することができ、標的物質を目標細胞内へ効果的に伝達させることができるので、疾病の治療などの目的を達成することができる。
【００３４】
本発明の薬物伝達体に担持することができる薬物として、体外衝撃波によってエキソソーム内に伝達することができる物質である標的物質、すなわち、細胞内に伝達されることにより、これらの目的とする効果を発現することができる物質であれば、制限なく含むことができる。好ましくは、前記標的物質は、核酸、タンパク質及び化合物からなる群から選択されるいずれか一つ以上であることができる。また、前記核酸は、自然界に存在する核酸や、人工的に製造することができる核酸をすべて含むことができ、好ましくは、ＤＮＡ、ＲＮＡ、マイクロＲＮＡ（ｍｉｃｒｏＲＮＡ、ｍｉＲＮＡ）は、小さなＲＮＡ（Ｓｍａｌｌ  ＲＮＡ、ｓｍＲＮＡ）、小さな干渉ＲＮＡ（ｓｍａｌｌ  ｉｎｔｅｒｆｅｒｉｎｇ  ＲＮＡ、ｓｉＲＮＡ）、パイＲＮＡ（Ｐｉｗｉ−ｉｎｔｅｒａｃｔｉｎｇ  ＲＮＡ、ｐｉＲＮＡ）、小核小体ＲＮＡ（ｓｍａｌｌ  ｎｕｃｌｅｏｌａｒ  ＲＮＡ、ｓｎｏＲＮＡ）、ｔ−ＲＮＡ−由来小さなＲＮＡ（ｔＲＮＡ−ｄｅｒｉｖｅｄ  ｓｍａｌｌ  ＲＮＡ、ｔｓＲＮＡ）、小さなｒＤＮＡ−由来ＲＮＡ（ｓｍａｌｌ  ｒＤＮＡ−ｄｅｒｉｖｅｄ  ＲＮＡ、ｓｒＲＮＡ）、小核ＲＮＡ（ｓｍａｌｌ  ｎｕｃｌｅａｒ  ＲＮＡ、Ｕ−ＲＮＡ）及び長い非暗号化ＲＮＡ（ｌｏｎｇ  ｎｏｎｃｏｄｉｎｇ  ＲＮＡ、ｌｎｃＲＮＡ）であることができるが、これらに制限されない。
【００３５】
また、本発明は、（ａ）標的物質及び細胞外小胞体を体外衝撃波に露出させて標的物質を細胞外小胞体内に導入する段階；（ｂ）前記標的物質が導入された細胞外小胞体を細胞に処理する段階；を含む、細胞内に標的物質を伝達する方法を提供する。
【００３６】
本発明の細胞内へ標的物質を伝達する方法を利用すれば、標的物質が導入された細胞外小胞体が細胞に混入能力が高まるところ、これにより、標的物質を目標とする細胞内への伝達を増加させることができる。また、前記のような動物細胞だけでなく、植物細胞から収得した細胞外小胞体を制限なく利用することができるところ、薬物伝達体としての活用性を拡大することができる。
【００３７】
本発明の細胞内へ標的物質を伝達する方法の（ａ）段階において、体外衝撃波は、そのエネルギー範囲を０．０５〜０．９ｍＪ／ｍｍ２、具体的には、０．０５〜０．８９ｍＪ／ｍｍ２、更に具体的には、０．０５〜０．７０ｍＪ／ｍｍ２のエネルギー範囲で処理することができる。
【００３８】
以下では、本発明の理解を助けるために実施例を挙げ、詳細に述べることとする。ただし、以下の実施例は、本発明の内容を例示するものに過ぎず、本発明の範囲が以下の実施例に限定されるものではない。本発明の実施例は、当業界で平均的な知識を有する者に本発明をより完全に説明するために提供されるものである。
【実施例】
【００３９】
実施例１．エキソソームの分離
様々な細胞（ＨＵＶＥＣ、ＭＳＣ及びＶＳＭＣ）由来のエキソソームの分離
ヒト臍帯静脈内皮細胞（ｈｕｍａｎ  ｕｍｂｉｌｉｃａｌ  ｖｅｉｎ  ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ  ｃｅｌｌ、ＨＵＶＥＣ）由来のエキソソームを分離するために、ＨＵＶＥＣを、５％ＦＢＳ、及び１％抗生剤／抗真菌剤が含まれたＭ２００培地を用いて、５％ＣＯ２、３７℃の条件で培養した。このとき、細胞は、２〜３日に一回、直径が１０ｃｍのプレートに継代培養した。
【００４０】
細胞からエキソソームを分離するために培地の細胞の残骸（ｄｅｂｒｉｓ）を除去した後、０．２μＭ  ｐｏｒｅ サイズのシリンジフィルターを用いてエキソソームを分離した。エキソソームの分離実験は、３２，０００ｒｐｍで１時間３０分間、遠心分離したエキソソームが除去されたＦＢＳを用いて行われた。分離されたエキソソームを３，０００ｇの条件で３０分間遠心分離して濃縮させ、これをナノ粒子トラッキング解析（Ｎａｎｏｐａｒｔｉｃｌｅ  ｔｒａｃｋｉｎｇ  Ａｎａｌｙｓｉｓ、ＮＴＡ）で確認した後、使用した。
【００４１】
間葉幹細胞（ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ  ｓｔｅｍ  ｃｅｌｌ、ＭＳＣ）または大動脈平滑筋細胞（ｖａｓｃｕｌａｒ  ｓｍｏｏｔｈ  ｍｕｓｃｌｅ  ｃｅｌｌ、ＶＳＭＣ）からエキソソームを分離するために、分離を開始した細胞のみＭＳＣまたはＶＳＭＣにして、前記ＨＵＶＥＣの分離方法と同様の方法でエキソソームを分離した。
【００４２】
牛乳及びグレープフルーツ由来のエキソソームの分離
細胞以外の大量のエキソソームが得られる動物及び植物由来の材料として牛乳及びグレープフルーツを選択し、これらからエキソソームを分離した。牛乳由来のエキソソームを分離するために市販の牛乳を購入して使用した。２０，０００ｇの条件で２時間、遠心分離してｃｒｅａｍ  ｌａｙｅｒを除去した後、Ｄｅｎｓｉｔｙ  Ｇｒａｄｉｅｎｔ遠心分離方法（ＯｐｔｉＰｒｅｐ）によりエキソソームを分離した。分離方法は、Ｃｅｎｔｒｉｆｕｇｅ  ｔｕｂｅｓ下部に５０％Ｏｐｔｉｐｒｅｐ  ０．５ｍｌ、その上部に１０％Ｏｐｔｉｐｒｅｐ  １ｍｌ、残りの上部に牛乳１０ｍｌを入れ、１００，０００ｇの条件で１６時間遠心分離して５０％層、１０％層間で得られたエキソソームを分離した。
【００４３】
グレープフルーツ由来のエキソソームを分離するためにグレープフルーツを搾汁して使用した。３，０００ｇの条件で３０分間２回遠心分離してｄｅｂｒｉｓを除去した後、ＯｐｔｉＰｒｅｐ方法でエキソソームを分離した。分離方法は、Ｃｅｎｔｒｉｆｕｇｅ  ｔｕｂｅｓ下部に５０％Ｏｐｔｉｐｒｅｐ  １ｍｌ、その上部に１０％Ｏｐｔｉｐｒｅｐ  １ｍｌ、残りの上部にグレープフルーツジュース１０ｍｌを入れ、１００，０００ｇの条件で２時間遠心分離して、５０％層、１０％層間で得られたエキソソームを分離した。
【００４４】
牛乳とグレープフルーツのいずれからエキソソームを分離した後、ナノ粒子トラッキング解析（Ｎａｎｏｐａｒｔｉｃｌｅ  ｔｒａｃｋｉｎｇ  Ａｎａｌｙｓｉｓ、ＮＴＡ）により確認した後に使用した。
【００４５】
細胞、動物及び植物由来の材料から分離したエキソソームを下記の実施例で使用した。
【００４６】
実施例２．体外衝撃波処理によるエキソソームの物性変化
２．１  体外衝撃波処理によるエキソソームゼータ電位の変化の確認
体外衝撃波を処理した場合にエキソソームの物理的な特性が変化するのかを確認するために、体外衝撃波の大きさを異にして、これによる粒子の表面電位であるゼータ電位（Ｚｅｔａ  ｐｏｔｅｎｔｉａｌ）の変化を測定する実験を行った。ＨＵＶＥＣ由来の分離されたエキソソームを各実験群ウェル当り１×１０１０個を含むようにし、各実験群に体外衝撃波を未処理したり、それぞれエネルギーレベルを０．０２ｍＪ／ｍｍ２及び０．０７ｍＪ／ｍｍ２で処理し、体外衝撃波処理の有無によるエキソソーム分散溶液のゼータ電位の変化をゼータ電位測定システムＥＬＳＺ−２０００（Ｏｔｓｕｋａ  Ｅｌｅｃｔｒｏｎｉｃｓ  Ｃｏ．、Ｌｔｄ）を用いて測定し、その結果を図１に示した。
【００４７】
図１に示すように、体外衝撃波を０．０２ｍＪ／ｍｍ２で処理した場合には、体外衝撃波未処理群である対照群との差がなかったが、体外衝撃波エネルギーレベルを０．０７ｍＪ／ｍｍ２で処理した場合には、対照群に比べエキソソーム分散溶液のゼータ電位値が２０％以上増加したことが確認された。ゼータ電位の絶対値の増加は、液体中に浮遊しているコロイド粒子の電気的反発力が大きくなり、凝集現象なく液体に均一に浮遊することを意味する。エキソソームに０．０５ｍＪ／ｍｍ２以上の体外衝撃波を処理した場合には、エキソソーム分散溶液のコロイド粒子の電気的反発力が強くなることが確認されたところ、体外衝撃波処理は、エキソソームの物性の変化を誘導させることが確認できた。
【００４８】
２．２．体外衝撃波処理によるエキソソームのサイズの変化の確認
体外衝撃波を処理した場合にエキソソームの物理的な特性が変化するのかを確認するために、物性の一つであるエキソソームのサイズに対する影響を確認した。ＨＵＶＥＣ由来の分離されたエキソソームを各実験群ウェル当り３×１０９個となるように含めた。体外衝撃波を未処理した群を対照群とし、この外に体外衝撃波を０．０２ｍＪ／ｍｍ２、０．０７ｍＪ／ｍｍ２、０．０９ｍＪ／ｍｍ２及び０．１２ｍＪ／ｍｍ２とし、様々なエネルギーレベルを各実験群に処理した後、体外衝撃波処理の有無によるエキソソームのサイズの変化をナノ粒子トラッキング解析（ＮＴＡ）装置を用いて測定し、エキソソームのサイズの変化を図２に示した。
【００４９】
図２に示すように、体外衝撃波のエネルギーレベルが増加するにつれて体外衝撃波処理後、１００〜２００ｎｍサイズのエキソソーム数が大幅に増加する傾向にあることが確認された。特に、０．１２ｍＪ／ｍｍ２のエネルギーレベルが処理された場合には、１００〜２００ｎｍサイズのエキソソーム数が対照群に比べ１０倍程度増加し、この外に２００ｎｍ以上のエキソソームもすべて著しく増加したことを確認した。これによりエキソソームの体外衝撃波を処理した場合、そのエキソソームのサイズ分布度が異なるように変化することを確認し、体外衝撃波によりエキソソームのサイズ分布が異なるエキソソーム物性の変化を確認することができた。
【００５０】
２．３．体外衝撃波によるＨＵＶＥＣ由来エキソソームの混入能力の増加の確認
実施例１で分離されたヒト血管内皮細胞ＨＵＶＥＣ由来エキソソームを各ウェル当り３×１０９個を含むようにし、前記エキソソームをＰＫＨ２６で染色した後、体外衝撃波を未処理した群を対照群とし、これ以外の体外衝撃波を０．０２ｍＪ／ｍｍ２、０．０７ｍＪ／ｍｍ２、０．０９ｍＪ／ｍｍ２と０．１２ｍＪ／ｍｍ２とし、様々なエネルギーレベルを各実験群に処理した。この後、体外衝撃波処理エキソソームをヒト血管内皮細胞ＨＵＶＥＣに処理し、１時間後に体外衝撃波エネルギーレベルによる目標とする細胞内へのエキソソーム混入（ｉｎｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）を比較分析し、その実験の結果を図３に示した。
【００５１】
図３に示すように、体外衝撃波エネルギーレベルを０．０２ｍＪ／ｍｍ２で処理した場合、体外衝撃波処理による細胞内へのエキソソーム混入の変化を確認することができなかった。その一方、これ以外のエネルギーレベルを０．０７〜０．１２ｍＪ／ｍｍ２で体外衝撃波処理をしたエキソソーム実験群において、これを処理していない対照群に比べ著しいＨＵＶＥＣ細胞内へのエキソソーム混入増加が確認された。したがって、体外衝撃波をエキソソームで処理した場合、ヒト細胞由来のエキソソームの目標とする細胞内への混入能力の定量的に増加することを確認したところ、体外衝撃波の処理によるエキソソームの物性変化を確認することができた。
【００５２】
実施例３．体外衝撃波による様々な標的物質のエキソソーム内への導入とこれによる形質転換の確認
３．１．体外衝撃波によるｓｉＲＮＡ（ｓｉＧｌｏ）のエキソソームへの導入とこれによる形質転換の確認
体外衝撃波によれば、さまざまな標的物質をエキソソームに対して優れた効率で導入することができるが、前記の様々な標的物質を導入したエキソソームが体外衝撃波を処理した場合、他の細胞内への混入も同様に増加して目標とする標的細胞に標的物質を伝達することができるか否かを確認するために、標的物質をｓｉＲＮＡのいずれかであるｓｉＧｌｏにして実験を行った。赤い色で標識された５０ｎＭ  ｓｉＧｌｏと実施例１で分離した血管内皮細胞ＨＵＶＥＣ由来エキソソームを混合した後、体外衝撃波を未処理した群を対照群とし、これ以外の体外衝撃波を０．０２ｍＪ／ｍｍ２、０．０７ｍＪ／ｍｍ２、０．０９ｍＪ／ｍｍ２と０．１２ｍＪ／ｍｍ２とし、様々なエネルギーレベルを各実験群において処理した。その後、体外衝撃波処理エキソソームのヒト血管内皮細胞ＨＵＶＥＣで処理し、１時間後に体外衝撃波エネルギーレベルによる目標とする細胞内へのエキソソーム混入（ｉｎｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）を比較分析し、その実験の結果を図４に示した。
【００５３】
図４に示すように、体外衝撃波エネルギーレベルが０．０２ｍＪ／ｍｍ２であった場合には、体外衝撃波処理の有無による細胞内へのエキソソーム混入の変化が確認されなかった。その一方、それ以外のエネルギーレベルとして０．０７ｍＪ／ｍｍ２以上の体外衝撃波処理をしたエキソソーム実験群からは、対照群に比べ、細胞内へのエキソソーム混入が有意な程度に増加したことが確認された。したがって、０．０７ｍＪ／ｍｍ２以上の体外衝撃波処理をした場合には、標的物質であるｓｉＧｌｏのエキソソームへの導入が増加すると同時に、細胞内へのエキソソーム自体の混入も同様に定量的に増加することがあることが確認された。これに対し、体外衝撃波を用いれば、エキソソーム内へ導入された標的物質を目標細胞内へ効率的に伝達することができることが確認された。
【００５４】
３．２．体外衝撃波によるＲＦＰタンパク質のエキソソームへの導入及びこれによる形質転換を確認
体外衝撃波を介せば、種々の標的物質をエキソソームに対して優れた効率で導入することができるが、前記の種々の標的物質を導入したエキソソームが体外衝撃波を処理した場合、他の細胞内への混入も同様に増加し、目標とする標的細胞に標的物質を伝達することができるか否かを確認するために、標的物質をタンパク質であるＲＦＰにて実験を行った。赤色の２μｇ  ＲＦＰと実施例１において、分離した血管内皮細胞ＨＵＶＥＣ由来のエキソソームを混合した後、体外衝撃波を未処理した群を対照群とし、その外に体外衝撃波を０．０２ｍＪ／ｍｍ２、０．０７ｍＪ／ｍｍ２、０．０９ｍＪ／ｍｍ２及び０．１２ｍＪ／ｍｍ２とし、様々なエネルギーレベルを各実験群で処理した。この後、体外衝撃波処理エキソソームをヒト血管内皮細胞ＨＵＶＥＣに処理し、１時間後に体外衝撃波エネルギーレベルによる目標とする細胞内へのエキソソームの混入（ｉｎｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）を比較分析し、その実験の結果を図５に示した。
【００５５】
図５に示すように、体外衝撃波エネルギーレベルが０．０２ｍＪ／ｍｍ２であった場合には、体外衝撃波処理の有無による細胞内へのエキソソームの混入に変化が確認されなかった。その一方、それ以外のエネルギーレベルとして０．０９ｍＪ／ｍｍ２以上の体外衝撃波処理をしたエキソソーム実験群では、対照群に比べ、細胞内へのエキソソームの混入が有意な程度に増加したことを確認した。したがって、０．０９ｍＪ／ｍｍ２以上の体外衝撃波処理をした場合、標的物質であるタンパク質ＲＦＰのエキソソームへの導入が増加すると同時に、細胞内へのエキソソーム自体の混入も同様に定量的に増加し得ることを確認した。これに対し、体外衝撃波を用いれば、エキソソーム内に導入された標的物質を所望の目標とする細胞内へ効率的に伝達することができることを確認した。
【００５６】
３．３．体外衝撃波によるｍｉｃｒｏＲＮＡのエキソソームへの導入及びこれによる形質転換の確認
体外衝撃波を介せば、種々の標的物質をエキソソームに対して優れた効率で導入することができるが、前記の種々の標的物質が導入されたエキソソームを体外衝撃波を処理した場合、他の細胞内への混入も増加して目標とする標的細胞に標的物質を提供することができるか否かを確認するために、標的物質をｍｉｃｒｏＲＮＡにて実験を行った。緑色で標識された５０ｎＭ  ｍｉｃｒｏＲＮＡ  ｍｉｍｉｃと実施例１において、分離した血管内皮細胞ＨＵＶＥＣ由来のエキソソームを混合した後、体外衝撃波を未処理した群を対照群とし、この外の体外衝撃波を０．０２ｍＪ／ｍｍ２、０．０７ｍＪ／ｍｍ２、０．０９ｍＪ／ｍｍ２と０．１２ｍＪ／ｍｍ２とし、様々なエネルギーレベルを各実験群において処理した。その後、体外衝撃波処理エキソソームをヒト血管内皮細胞ＨＵＶＥＣに処理し、１時間後に体外衝撃波エネルギーレベルに応じた目標細胞内へのエキソソームの混入（ｉｎｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）を比較分析し、その実験の結果を図６に示した。
【００５７】
図６に示すように、体外衝撃波エネルギーレベルが０．０２ｍＪ／ｍｍ２である場合には、体外衝撃波処理の有無による細胞内へのエキソソームの混入に変化が確認されなかった。その一方、その外のエネルギーレベルで０．０７ｍＪ／ｍｍ２以上の体外衝撃波処理をしたエキソソーム実験群では、対照群に比べ、細胞内へのエキソソームの混入が有意な程度に増加したが、定量的に、少なくとも２倍以上の混入量の増加が示されることが確認できた。したがって、０．０７ｍＪ／ｍｍ２以上の体外衝撃波処理をした場合には、標的物質であるｍｉｃｒｏＲＮＡのエキソソームへの導入が増加すると同時に、細胞内へのエキソソーム自体の混入も同様に定量的に優良に増加し得ることを確認した。これに対し、体外衝撃波を利用すれば、エキソソーム内へ導入された標的物質を所望の目標とする細胞内へ効率的に伝達することができることを確認した。
【００５８】
実施例４．体外衝撃波による様々な細胞由来のエキソソーム内への核酸導入及び核酸が導入されたエキソソームによる細胞の形質転換効率の確認
４．１．体外衝撃波による様々な細胞由来のエキソソーム内への核酸の導入
ヒト臍帯静脈内皮細胞、間葉幹細胞及び血管平滑筋細胞（ＶＳＭＣ）から分離したエキソソームを３，０００ｇの条件で３０分間遠心分離して濃縮させ、これをナノ粒子トラッキング解析（ＮＴＡ）で確認した後に使用した。コニカルチューブに２ｍＬの培地、前記ＨＵＶＥＣ、ＭＳＣまたはＶＳＭＣで得られた１×１０８個／ｍＬのエキソソーム、及び２μＭのカエノラプディティス・エレガンス（Ｃａｅｎｏｒｈａｂｄｉｔｉｓ  ｅｌｅｇａｎｓ）のｍｉＲ−３９（Ｃｅｌ−ｍｉＲ−３９、Ｑｉａｇｅｎ）を入れて混合した。前記混合物に０．０７ｍＪ／ｍｍ２の強度で４分間１，０００ｓｈｏｔの体外衝撃波を加えて核酸が導入されたエキソソームを収得した。体外衝撃波を加えずに取得したエキソソームを対照群とした。エキソソーム分離実験を３２，０００ｒｐｍで１時間３０分間遠心分離したＦＢＳを用いて、細胞培養液に既に存在するエキソソームを除去した状態で実験を行った。
【００５９】
４．２．体外衝撃波によって核酸が導入されたエキソソームによる形質転換効率の確認
４．２．１．ＨＵＶＥＣ由来のエキソソームによる多様な細胞内への核酸伝達及び形質転換効率の確認
まず、６ウェルプレートにＨＵＶＥＣ、不死化マウスの大動脈内皮細胞（ｉｍｍｏｒｔａｌｉｚｅｄ  ｍｏｕｓｅ  ａｏｒｔｉｃ  ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ  ｃｅｌｌ、ｉＭＡＥＣ）、ＶＳＭＣまたは心筋細胞の細胞株（ｃａｒｄｉｏｍｙｏｃｙｔｅ  ｃｅｌｌ  ｌｉｎｅ）であるＨ９Ｃ２細胞を４×１０５ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌ濃度で分注した。これを２４時間培養した後、実施例４．１で製造したＨＵＶＥＣ由来のエキソソームをウェル当たり１×１０８個／ｍＬずつ添加した。エキソソームを添加した細胞を、３７℃で１時間培養した後、ＰＢＳで洗浄し、ウェル当たり２ｍＬずつ培地を添加した後、２４時間をさらに培養して培養された細胞を取得した。通常の方法によってＱＩＡｚｏｌ（ＱＩＡｚｅｎ）溶液を用いて前記細胞からＲＮＡを抽出し、抽出されたＲＮＡは、２６０ｎｍの紫外線吸収波長でナノドロップ（ＮａｎｏＤｒｏｐ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ  Ｉｎｃ．、ＵＳＡ）を用いて定量した。定量化したＲＮＡにジエチルピロカルボン酸（ＤＥＰＣ）が添加された蒸留水を添加して、ＲＮＡ濃度が１μｇ／μＬになるように準備した。１０μＬのＲＮＡ及びＤＥＰＣ蒸留水を混合し、４μＬの５Ｘ  ｍｉＳｃｒｉｐｔ  ＨｉＦｌｅｘ  ｂｕｆｆｅｒ（ＱＩＡＧＥＮ、Ｇｅｒｍａｎｙ）、２μＬの１０Ｘ  ｍｉＳｃｒｉｐｔ  Ｎｕｃｌｅｉｃｓ  Ｍｉｘ（ＱＩＡＧＥＮ、Ｇｅｒｍａｎｙ）、２μＬの１０Ｘ  ｍｉＳｃｒｉｐｔ  Ｒｅｖｅｒｓｅ  Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ  Ｍｉｘ（ＱＩＡＧＥＮ、Ｇｅｒｍａｎｙ）を添加して、３７℃で１時間逆転写反応を行った。前記合成されたｃＤＮＡ  １μＬに２μＬの下記表１のプライマー、２μＬの１０Ｘ  ｍｉＳｃｒｉｐｔ  Ｕｎｉｖｅｒｓａｌプライマー（ＱＩＡＧＥＮ、Ｇｅｒｍａｎｙ）、１０μＬの２Ｘ  ＳＹＢＲｇｒｅｅｎ  Ｉ  ｍｉｘｔｕｒｅ（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）及び５μＬの蒸留水を添加して混合した。該混合物をＡＢＩ  ７９００ＨＴ（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）を用いて、通常の方法でリアルタイムで重合酵素連鎖反応を行った。以降、ヒトの細胞には存在しないので、標的細胞から検出された場合、エキソソームによる伝達が行われたことを確認できるＣｅｌ−ｍｉＲ−３９の発現量を測定し、発現量の測定の結果を図７に示した。このとき、内部対照群であるＲＮＵ−６を基準にｍｉｃｒｏＲＮＡの発現量を定量し、すべての実験は３回繰り返しており、その結果は、マン−ホイットニーＵ検定法で検定し、平均値で示した。
【００６０】
【表１】
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【００６１】
図７に示すように、体外衝撃波によってｍｉｃｒｏ  ＲＮＡが導入されたＨＵＶＥＣ由来のエキソソームを処理したＨＵＶＥＣ、ｉＭＡＥＣ、ＶＳＭＣ及びＨ９Ｃ２細胞は、対照群に比べてＣｅｌ−ｍｉＲ−３９の発現量が有意に増加したことが確認された。すなわち、０．０７ｍＪ／ｍｍ２以上の体外衝撃波を加え、核酸を細胞外小胞体であるエキソソーム内へ導入する場合が、体外衝撃波を加えていない場合よりも、その効率がより優れており、様々な細胞内への導入もより起こり易いことを確認することができた。
【００６２】
４．２．２．ＭＳＣ由来のエキソソームによる多様な細胞内への核酸伝達及び形質転換効率を確認
実施例４．１で製造したＭＳＣ由来のエキソソームをＨＵＶＥＣ、ＭＳＣまたはＶＳＭＣ細胞に添加したことを除いては、実験を実施例４．２．１と同一条件及び方法で行い、その実験を行った結果を図８に示した。
【００６３】
図８で示すように、体外衝撃波によってｍｉｃｒｏ  ＲＮＡが導入されたＭＳＣ由来のエキソソームを処理したＨＵＶＥＣ、ＭＳＣ及びＶＳＭＣは、対照群に比べてＣｅｌ−ｍｉＲ−３９の発現量が３倍程度有意に増加することが確認された。すなわち、ＨＵＶＥＣ由来エキソソームだけでなく、ＭＳＣ由来のエキソソームに対しても０．０７ｍＪ／ｍｍ２以上の体外衝撃波を加え、核酸をＭＳＣ由来のエキソソーム内へ導入した場合には、体外衝撃波を加えていない場合よりも、その効率がより優れ、様々な細胞内への形質転換もまた、より起りやすいことが確認できた。
【００６４】
４．２．３．ＶＳＭＣ由来のエキソソームによる多様な細胞内への核酸伝達及び形質転換効率の確認
実施例４．１で製造したＶＳＭＣ由来のエキソソームをＨＵＶＥＣ、ｉＭＡＥＣまたはＶＳＭＣ細胞に添加したことを除いては、実験を実施例４．２．１と同じ条件及び方法で行い、その実験を行った結果を図９に示した。
【００６５】
図９に示すように、体外衝撃波によってｍｉｃｒｏ  ＲＮＡが導入されたＶＳＭＣ由来のエキソソームを処理したＨＵＶＥＣ、ｉＭＡＥＣ及びＶＳＭＣは、対照群に比べてＣｅｌ−ｍｉＲ−３９の発現量が有意に増加したことを確認した。したがって、０．０７ｍＪ／ｍｍ２以上の体外衝撃波を加え、核酸をＶＳＭＣ由来のエキソソーム内へ導入した場合が、体外衝撃波を加えていない場合よりも、その効率がより優れ、様々な細胞内への形質転換もまた、より起こり易いことを確認した。
【００６６】
実施例５．体外衝撃波の処理によるさまざまなソース由来のエキソソームの形質転換効率上昇の確認
５．１．体外衝撃波による動物由来エキソソームの形質転換効率の確認
ヒト細胞由来以外の他のソースから得たエキソソームにも体外衝撃波を処理する場合、細胞内へエキソソームの混入が増加することを確認するために、多くのエキソソームを収得できる動物由来の材料のいずれかである牛乳からエキソソームを分離して実験を行った。実施例１で分離した乳由来エキソソームを各ウェル当り３×１０９個を含むようにし、前記エキソソームをＰＫＨ２６で染色した後、体外衝撃波を未処理した群を対照群とし、体外衝撃波を０．０７  ｍＪ／ｍｍ２のエネルギーレベルで処理した群を実験群とした。この後、体外衝撃波処理エキソソームをヒトの血管内皮細胞ＨＵＶＥＣに処理し、１時間後に体外衝撃波エネルギーレベルによる目標細胞内へのエキソソームの混入（ｉｎｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）を比較分析し、その実験の結果を図１０に示した。
【００６７】
図１０に示すように、体外衝撃波未処理した対照群に比べ０．０７ｍＪ／ｍｍ２のエネルギーレベルの体外衝撃波を処理したエキソソームは、血管内皮細胞内への混入が２倍程度増加したことが確認された。したがって、体外衝撃波を動物由来のエキソソームに処理した場合にも、細胞内へのエキソソームの混入が定量的に増加できることが確認された。
【００６８】
５．２．体外衝撃波による植物由来のエキソソームの形質転換効率の確認
ヒト細胞由来以外の他のソースから得られたエキソソームにも体外衝撃波を処理する場合、細胞内へのエキソソームの混入が増加していることを確認するために、多くのエキソソームを得ることができる植物由来の材料のいずれかであるグレープフルーツからエキソソームを分離して実験を行った。実施例１で分離したグレープフルーツ由来エキソソームを各ウェル当り３ｘ１０９個を含むようにし、前記エキソソームをＰＫＨ２６で染色した後、体外衝撃波を未処理した群を対照群とし、体外衝撃波を０．０７ｍＪ／ｍｍ２のエネルギーレベルで処理した群を実験群とした。その後、体外衝撃波処理エキソソームをヒト血管内皮細胞ＨＵＶＥＣに処理し、１時間後に体外衝撃波エネルギーレベルによる目標とする細胞内へのエキソソームの混入（ｉｎｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）を比較分析し、その実験の結果を図１１に示した。
【００６９】
図１１に示すように、体外衝撃波未処理した対照群に比べ０．０７ｍＪ／ｍｍ２のエネルギーレベルの体外衝撃波を処理したエキソソームは、血管内皮細胞内への混入が２倍程度増加したことが確認された。したがって、体外衝撃波をグレープフルーツに代表される植物由来のエキソソームに処理した場合にも、細胞内へのエキソソームの混入が定量的に増加することが確認された。
【００７０】
結論として、０．０７ｍＪ／ｍｍ２のエネルギーレベル以上の体外衝撃波を処理した場合には、その由来を異にするエキソソームをいずれも所望の目標とする細胞への標的物質の伝達率が上昇することを確認したところ、本発明の方法は、エキソソームの由来に制限されることなく、普遍的に使用できる技術であることが確認できた。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【配列表】
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