(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
スルグリコチドまたはその薬学的に許容可能な塩を有効成分として含む、眼球乾燥症候群の予防用または治療用の医薬組成物。
【請求項２】
スルグリコチドまたはその薬学的に許容可能な塩が０．０１ｗ/ｖ％ないし３０ｗ/ｖ％の範囲の濃度で存在する、請求項１に記載の医薬組成物。
【請求項３】
点眼剤の剤形である、請求項１に記載の医薬組成物。
【請求項４】
前記点眼剤が水性溶液または水性懸濁液の形態である、請求項３に記載の医薬組成物。
【請求項５】
水性媒体中、スルグリコチドまたはその薬学的に許容可能な塩に加えて、緩衝剤、粘度調整剤、等張化剤、抗酸化剤、キレート化剤、およびｐＨ調整剤からなる群から選択される１種以上の担体または添加剤を含む、請求項３または４に記載の医薬組成物。
【請求項６】
前記粘度調整剤が、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、メチルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース、カルボキシメチルセルロース、およびヒドロキシプロピルセルロースからなる群から選択される１種以上である、請求項５に記載の医薬組成物。
【請求項７】
前記粘度調整剤が、ポリビニルピロリドンまたはヒドロキシプロピルメチルセルロースである、請求項６に記載の医薬組成物。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、スルグリコチドまたはその薬学的に許容可能な塩を含む、眼球乾燥症候群の予防用または治療用の医薬組成物に関する。
【背景技術】
【０００２】
眼球乾燥症候群は、乾性角結膜炎と呼ばれる眼疾患であり、世界的に成人の５．５ないし１５％が発症している。眼球乾燥症候群は、涙膜や眼球表面の多機能障害とされており、不快感、視覚障害、およびさらに涙膜の不安定化による眼表面損傷を引き起こす。涙膜の主な生理機能は、眼球表面および眼瞼内部の潤滑である。涙膜はまた、眼の表面に栄養素を供給し、眼に滑らかで平らな光学面を提供し、眼の表面を保護する。涙膜は、粘液成分、水性成分、および脂質で構成されている。涙腺の分泌異常により、眼球乾燥症候群が誘発される。眼球乾燥症候群は、涙液の不足だけでなく、涙や眼の表面（角膜と結膜）の炎症によって、眼球の不快感および涙液層の不安定化を引き起こし、それにより眼球表面に損傷を引き起こして、眼球の痛み、不規則な角膜表面、角膜潰瘍、視力の低下を引き起こす。慢性眼球乾燥症候群における角膜透過性の変化は、炎症を起こし、涙中の炎症を媒介するサイトカインを増加させる。多くの場合、患者は、疾患の重症度に応じて、可逆的な扁平上皮化生（squamous metaphase）や眼球上皮に点状びらん（punctate erosions）を呈する。眼球乾燥症候群によって誘発される続発性（secondary）疾患は、真菌性角膜炎、細菌性角膜炎、角膜血管新生、および眼球表面角質化を含む。
【０００３】
眼球乾燥症候群の治療のためのいくつかのアプローチが試みられている。通常のアプローチは、等張性緩衝食塩水溶液または水溶性ポリマーを含有する人工涙液を使用して、眼の涙液層を補充し安定化させるものである。人工涙液は、例えば、カルボキシメチルセルロースおよびそのナトリウム塩（CMC、カルメロース）、ポリビニルアルコール、ヒドロキシプロピルメチルセルロース（HPMC、ヒプロメロース）、ヒアルロン酸またはそのナトリウム塩、ならびにヒドロキシプロピルグアーガムなどを含む。他のアプローチは、人工涙液の代わりに潤滑物質を提供することを含む。例えば、米国特許第４，８１８，５３７号は、潤滑リポソーム組成物の使用を開示しており、米国特許第５,８００，８０７号は、グリセリンとプロピレングリコールを含有する眼球乾燥症候群の治療用の組成物を開示している。
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００４】
本発明者は、眼球乾燥症候群を効果的に予防または治療することができる治療薬を開発するために、様々な研究を行った。驚くべきことに、（消化性潰瘍、胃食道逆流疾患などの治療薬として通常使用される）スルグリコチドをドライアイの動物モデルに投与した場合、涙液の産生量が顕著に増加し、角膜表面の不整が改善され、結膜杯細胞の密度が増加し、また、眼球表面および涙腺の炎症性サイトカインが減少するということが、本発明によって発見され、したがって、スルグリコチドは、眼球乾燥症候群の治療に有用に適用することができるということが、本発明によって発見された。
【０００５】
したがって、本発明は、スルグリコチドまたはその薬学的に許容可能な塩を有効成分として含む、眼球乾燥症候群の予防用または治療用の医薬組成物を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
本発明の一様態によって、スルグリコチドまたはその薬学的に許容可能な塩を有効成分として含む、眼球乾燥症候群の予防用または治療用の医薬組成物が提供される。
【０００７】
本発明の医薬組成物において、スルグリコチドまたはその薬学的に許容可能な塩は０．０１ｗ/ｖ％ないし３０ｗ/ｖ％の範囲の濃度で存在してもよい。本発明の医薬組成物は、点眼剤の剤形であってもよい。前記点眼剤は、水性溶液または水性懸濁液の形態であってもよい。
【０００８】
本発明の医薬組成物は、水性媒体中、スルグリコチドまたはその薬学的に許容可能な塩に加えて、緩衝剤、粘度調整剤、等張化剤、抗酸化剤、キレート化剤、およびｐＨ調整剤からなる群から選択される１種以上の担体または添加剤を含んでもよい。
【０００９】
一実施形態において、前記粘度調整剤は、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、メチルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース、カルボキシメチルセルロース、およびヒドロキシプロピルセルロースからなる群から選択される１種以上であってもよく、好ましくは、ポリビニルピロリドンまたはヒドロキシプロピルメチルセルロースである。
【発明の効果】
【００１０】
スルグリコチドをドライアイの動物モデルに投与した場合、涙液の産生量が顕著に増加し、角膜表面の不整が改善され、結膜杯細胞の密度が増加し、また、眼球表面および涙腺の炎症性サイトカインが減少するということが、本発明によって明らかになった。したがって、本発明の医薬組成物は、眼球乾燥症候群の予防または治療に有用に適用することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１１】
【図１】図１は、ドライアイの動物モデル（ＤＥＤ）における、涙液の産生に対するスルグリコチド含有点眼剤の効果を示す。
【図２】図２は、ドライアイの動物モデル（ＤＥＤ）における、角膜表面の不整に対するスルグリコチド含有点眼剤の効果を示す。
【図３】図３は、ドライアイの動物モデル（ＤＥＤ）における、角膜蛍光染色に対するスルグリコチド含有点眼剤の効果を示す。
【図４】図４は、ドライアイの動物モデル（ＤＥＤ）における、角膜上皮細胞の剥離に対するスルグリコチド含有点眼剤の効果を示す。
【図５】図５は、ドライアイの動物モデル（ＤＥＤ）における、結膜杯細胞の密度に対するスルグリコチド含有点眼剤の効果を示す。
【図６】図６は、ドライアイの動物モデル（ＤＥＤ）における、炎症に対するスルグリコチド含有点眼剤の効果を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１２】
本発明は、スルグリコチドまたはその薬学的に許容可能な塩を有効成分として含む、眼球乾燥症候群の予防用または治療用の医薬組成物を提供する。
【００１３】
スルグリコチドは、豚の胃または十二指腸の粘膜から抽出されたグリコペプチドの多硫酸エステル（sulphuric polyester）として知られている物質である。スルグリコチドは、胃保護剤（gastro-protective agent）および抗潰瘍剤として使用され、胃腸管で吸収されず、胃の内腔でのみ効果を示すことが知られている。スルグリコチドは、一般的には、アスピリンおよびタウロコール酸のような薬剤または非ステロイド性抗炎症薬（ＮＳＡＩＤ）により胃壁が攻撃された患者に、胃保護剤として投与される。スルグリコチドをドライアイの動物モデルに投与した場合、涙液の産生量が顕著に増加し、角膜表面の不整が改善され、結膜杯細胞の密度が増加し、また、眼球表面および涙腺の炎症性サイトカインが減少するということが、本発明によって新たに明らかになった。
【００１４】
本発明の医薬組成物において、スルグリコチドは、非塩の形態（non-salt form）で使用されてもよい。また、スルグリコチドは、その薬学的に許容可能な塩の形態でも使用することができ、それは、本技術分野で通常の知識を有する者によって適切に製造することができる。
【００１５】
本発明の医薬組成物において、スルグリコチドまたはその薬学的に許容可能な塩の投与量は、患者の年齢、体重、性別、剤形、健康状態、および疾患の程度に応じて変化してもよい。例えば、前記投与量は、体重が７０ｋｇの成人患者に対して、０．１ないし３００ｍｇ/日、好ましくは０．５ないし１００ｍｇ/日、さらに好ましくは１ないし６０ｍｇ/日の範囲であってもよい。前記投与は、医師または薬剤師の判断に基づいて、適切な間隔で、例えば、一日に単回投与または分割投与で行われてもよい。一実施形態において、スルグリコチドまたはその薬学的に許容可能な塩は、０．０１ｗ/ｖ％ないし３０ｗ/ｖ％の範囲の濃度、好ましくは０．１ｗ/ｖ％ないし１０ｗ/ｖ％の範囲の濃度で存在してもよいが、それに限定されるものではない。
【００１６】
好ましくは、前記医薬組成物は、点眼剤の剤形であってもよい。前記点眼剤は、水性溶液または水性懸濁液の形態であってもよい。
【００１７】
本発明の医薬組成物は、点眼剤の分野で一般的に使用される担体または添加剤をさらに含んでもよい。例えば、本発明の医薬組成物は、水性媒体中、スルグリコチドまたはその薬学的に許容可能な塩に加えて、緩衝剤、粘度調整剤、等張化剤、抗酸化剤、キレート化剤、およびｐＨ調整剤からなる群から選択される１種以上の担体または添加剤を含んでもよい。
【００１８】
前記緩衝剤の例は、点眼剤の分野で一般的に使用される緩衝剤、例えば、リン酸またはその塩、ホウ酸またはその塩、炭酸またはその塩、クエン酸またはその塩、酢酸またはその塩、マレイン酸またはその塩、コハク酸またはその塩、酒石酸またはその塩などを含む。また、前記緩衝剤は、例えば、リン酸/リン酸塩緩衝液（phosphate buffer solution）、ホウ酸/ホウ酸塩緩衝液（borate buffer solution）などの緩衝液の形態であってもよい。
【００１９】
前記粘度調整剤の例は、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、メチルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース、カルボキシメチルセルロース、およびヒドロキシプロピルセルロースからなる群から選択される１種以上であってもよい。前記粘度調整剤は、好ましくはポリビニルピロリドンまたはヒドロキシプロピルメチルセルロース、さらに好ましくはヒドロキシプロピルメチルセルロースであってもよい。
【００２０】
前記等張化剤の例は、塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化カルシウム、ソルビトール、マンニトールなどを含む。
【００２１】
前記抗酸化剤の例は、アスコルビン酸またはそのエステル、重亜硫酸ナトリウム、ブチルヒドロキシトルエン、ブチルヒドロキシアニソール、トコフェロールなどを含む。
【００２２】
前記キレート化剤の例は、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）、エチレンジアミンなどを含む。
【００２３】
前記ｐＨ調整剤の例は、塩酸、アミノ酸、アルカリ金属水酸化物、アルカリ土類金属水酸化物などを含む。
【００２４】
本発明の医薬組成物は、前記した担体または添加剤に加えて、点眼剤の分野で一般的に使用される湿潤剤、甘味料、香味剤、乳化剤、懸濁剤、保存剤などを含んでもよい。点眼剤の形態の本発明の医薬組成物は、例えば、水性媒体（例えば、水または緩衝液）にスルグリコチドまたはその薬学的に許容可能な塩を攪拌下で溶解させ、前記した担体または添加剤を溶解または懸濁することによって製造することができる。典型的には、得られる溶液または懸濁液を滅菌ろ過して点眼剤形態を製造する。
【実施例】
【００２５】
以下、実施例および試験例により本発明についてさらに詳細に説明する。しかし、これらの実施例および試験例は、本発明を例示的に説明するためのものであり、本発明の範囲はそれらによって制限されるものではない。
【００２６】
実施例１
リン酸（0.0425g）、リン酸水素ナトリウム（4.43g）、およびリン酸二水素カリウム（0.29g）を精製水（400mL）に、５０ｒｐｍで攪拌しながら、溶解した後、スルグリコチド（5g）を溶解させた。得られた溶液に、塩化ナトリウム（2.6g）を溶解させた。得られた溶液に精製水を加えて、最終体積を５００ｍｌに調整した。得られた溶液を０．２２μｍＰＶＤＦシリンジフィルターで滅菌ろ過して、１ｗ/ｖ％の点眼液を製造した。
【００２７】
実施例２
リン酸（0.0425g）、リン酸水素ナトリウム（4.43g）、およびリン酸二水素カリウム（0.29g）を精製水（400mL）に、５０ｒｐｍで攪拌しながら、溶解した後、スルグリコチド（10g）を溶解させた。得られた溶液に、塩化ナトリウム（2.4g）を溶解させた。得られた溶液に精製水を加えて、最終体積を５００ｍｌに調整した。得られた溶液を０．２２μｍＰＶＤＦシリンジフィルターで滅菌ろ過して、２ｗ/ｖ％の点眼液を製造した。
【００２８】
実施例３
リン酸（0.0425g）、リン酸水素ナトリウム（4.43g）、およびリン酸二水素カリウム（0.29g）を精製水（400mL）に、５０ｒｐｍで攪拌しながら、溶解した後、スルグリコチド（15g）を溶解させた。得られた溶液に、塩化ナトリウム（2.2g）を溶解させた。得られた溶液に精製水を加えて、最終体積を５００ｍｌに調整した。得られた溶液を０．２２μｍＰＶＤＦシリンジフィルターで滅菌ろ過して、３ｗ/ｖ％の点眼液を製造した。
【００２９】
実施例４
リン酸（0.0425g）、リン酸水素ナトリウム（4.43g）、およびリン酸二水素カリウム（0.29g）を精製水（400mL）に、５０ｒｐｍで攪拌しながら、溶解した後、スルグリコチド（20g）を溶解させた。得られた溶液に、塩化ナトリウム（2.0g）を溶解させた。得られた溶液に精製水を加えて、最終体積を５００ｍｌに調整した。得られた溶液を０．２２μｍＰＶＤＦシリンジフィルターで滅菌ろ過して、４ｗ/ｖ％の点眼液を製造した。
【００３０】
実施例５
リン酸（0.0425g）、リン酸水素ナトリウム（4.43g）、およびリン酸二水素カリウム（0.29g）を精製水（400mL）に、５０ｒｐｍで攪拌しながら、溶解した後、スルグリコチド（10g）を溶解させた。得られた溶液に、ヒドロキシプロピルメチルセルロース（1g）および塩化ナトリウム（2.4g）を溶解させた。得られた溶液に精製水を加えて、最終体積を５００ｍｌに調整した。得られた溶液を０．２２μｍＰＶＤＦシリンジフィルターで滅菌ろ過して、２ｗ/ｖ％の点眼液を製造した。
【００３１】
実施例６ないし１５
表１で示した成分および含量にしたがって、点眼液を製造した。緩衝剤を精製水（800mL）に、５０ｒｐｍで攪拌しながら、溶解した後、スルグリコチドを溶解させた。得られた溶液に、等張化剤、粘度調整剤（実施例９および１４）、ならびに抗酸化剤（実施例１０および１５）を溶解させた。ｐＨ調整剤で、得られた溶液のｐＨを約ｐＨ7に調整した後、精製水を加えて、最終体積を１０００ｍｌに調整した。得られた溶液を０．２２μｍＰＶＤＦシリンジフィルターで滅菌ろ過して、点眼液を製造した。
【００３２】
【表１】
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【００３３】
試験例
１：試験方法
（１）ドライアイのマウスモデルおよび実験手順
ＮＯＤ.Ｂ１０.Ｈ２ｂマウスは、Ｊａｃｋｓｏｎ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ（Bar Harbor、ME、USA）から購入した。１２ないし１６週齢の雄性ＮＯＤ.Ｂ１０.Ｈ２ｂマウスに、１０日間、１日あたり１８時間、３０ないし４０％の周囲湿度で、ファン気流を曝露して乾燥ストレス（desiccation stress）を与え、左右の臀部に交互に一日４回（午前８時、午前１１時、午後２時、午後５時）０．５ｍｇ/０．２ｍｌスコポラミン臭化水素酸塩（Sigma-Aldrich、St. Louis、MO）の０．２ｍＬ皮下注射を実施して、ドライアイを誘発した。実験中、動物の行動や食事および水の摂取量は制限しなかった。ドライアイ誘発後、スコポラミン注射を中止し、通常の湿度および温度を有する環境でマウスを飼育することにより、乾燥ストレスを除去した。
【００３４】
非処理の正常ＮＯＤ.Ｂ１０.Ｈ２ｂマウスを対照群とした（Control、n=3）。ＳＯＳ１〜ＳＯＳ５のグループは、下記表2に示すように、ドライアイ誘発群および点眼剤投与群に分けた。ＳＯＳ１ないしＳＯＳ５のグループの点眼剤投与群は、乾燥ストレス除去した後、それぞれ実施例１ないし５の点眼剤（5μL/眼）を１０日間、一日に４回（午前８時、午前１１時、午後２時、午後５時）両眼に点眼した。
【００３５】
【表２】
0006982634.tif 000003
【００３６】
（２）涙液の産生量の測定
涙液の産生量は、既報の方法に基づいて、フェノールレッド含浸綿糸を使用して測定した（Oh HN、Kim CE、Lee JH、Yang JW. Effects of Quercetin in a Mouse Model of Experimental Dry Eye、Cornea、2015;34：1130-6）。フェノールレッド含浸綿糸（Zone-quick、Oasis、Glendora、CA）をジュエラーピンセットで挟み、外側眼角（lateral canthus）に２０秒間静置した。涙液量は、涙液によって濡れて赤色に変化した部分の綿糸の長さ（ミリメートル）で示され、その長さを顕微鏡（SZX7、Olympus Corp.、東京、日本）下で測定した。ミリメートルで示した涙液の吸収量（tear fluid uptake）を、基準液（stock basic solution）（0.9%生理食塩水1500mｌおよび5N NaOH 5mL）を用いた際に２０秒間で綿糸に吸収された既知の吸収量（uptake volumes）を元に作成された検量線と比較した。検量線は、マウスの涙液で予想される範囲で作成されたものである（Villareal AL、Farley W、Pflugfelder SC. Effect of topical ophthalmic epinastine and olopatadine on tear volume in mice、Eye Contact Lens、2006; 32：272-6; Chen Z、Li Z、Basti S、Farley WJ、Pflugfelder SC、Altered morphology and function of the lacrimal functional unit in protein kinase C alpha knockout mice、Invest Ophthalmol Vis Sci、2010; 51：5592-600）。涙液の産生量を両眼で測定し、両眼の平均値を分析した。
【００３７】
（３）角膜平滑度評価
マウスを安楽死させた後すぐに、ズーム実体顕微鏡の光ファイバーリング照明装置（fiber optic ring illuminator）により白色光リングを投影し、その反射画像（reflected image）を取得した。角膜平滑度の評価は、２名の盲検的観察者（blinded observers）が、従来の方法に基づいて、デジタル画像に記録された角膜上皮に反射した白色光リングの歪み（distortion）を点数化することにより行った（De Paiva CS、Corrales RM、Villarreal AL、Farley W、Li DQ、Stern ME、Pflugfelder SC、Apical corneal barrier disruption in experimental murine dry eye is abrogated by methylprednisolone and doxycycline、Invest Ophthalmol Vis Sci、2006; 47：2847-56）。両眼の角膜平滑度を測定し、両眼の平均値を求めた。角膜不整度のスコア（corneal irregularity severity score）は、反射したリングの歪み部分（４分割）の数に基づく５点尺度を使用して、以下のように点数化した：０、歪みなし（no distortion）；１、１/４の歪み（distortion in １ quarter of the ring）；２、２/４の歪み（distortion in ２ quarters）；３、３/４の歪み（distortion in ３ quarters）；４、４/４すべてで歪みあり（distortion in all ４ quarters）；および５、歪みがひどく、リングの一部分も認識できない（distortion so severe that no section of the ring was recognized）。
【００３８】
（４）角膜蛍光染色の測定
角膜蛍光染色は、Rashidなどの方法によって行った（Rashid S、Jin Y、Ecoiffier T、Barabino S、Schaumberg DA、Dana MR、Topical omega-3 and omega-6 fatty acids for treatment of dry eye、Arch Ophthalmol.、2008;126：219-25）。麻酔下のマウスの角膜に、フルオレセインナトリウム（1%）１μLを点眼した。３分後、眼球をＰＢＳで洗浄して、過剰のフルオレセインを除去した。コバルトブルー光を使用して、スリットランプ生体顕微鏡（SL-D7; Topcon、Tokyo、Japan）で、染色した角膜を評価および撮影した。角膜の５箇所でそれぞれ点状染色（punctate staining）の程度を０ないし３のｓｔａｎｄａｒｄｉｚｅｄ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｅｙｅ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｇｒａｄｉｎｇ ｓｙｓｔｅｍを用いて記録した（Lemp MA、Report of the National Eye Institute/ Industry Workshop on ClinicalTrials in Dry Eyes. Clao J.1995;21：221-32）。
【００３９】
（５）組織学
各グループのマウスの眼とその付属器を外科的に切除して、１０％ホルマリンに固定し、パラフィンに包埋した。６μｍの切片を、Ｈ＆Ｅ（ヘマトキシリン＆エオシン）とＰＡＳ（periodic-Schiff）でそれぞれ染色した。結膜では、０．１mm２の領域における剥離した上皮細胞の数を、Ｈ＆Ｅ染色により計算した。結膜組織では、下結膜円蓋の０．１mm２の領域における杯細胞の数を、ＰＡＳ染色により評価した。剥離した角膜上皮細胞の数および結膜杯細胞の数は、各グループ３匹または４匹のマウスの１匹あたり連続していない３つの切片スライド（non-consecutive cross-section slides）から得られたデータを平均して求めた。各グループの切片の分析および撮影には、バーチャル顕微鏡（Virtual Microscope）（NanoZoomer2.0 RS、Hamamatsu、Japan）を使用した。
【００４０】
（６）免疫組織化学
眼とその付属器を外科的に切除して、パラフィンに包埋し、液体窒素で急速凍結（flash frozen）した。クリオスタットで６μｍの切片に切断した。切片を、予め冷却したアセトンを使用して５分間固定し、ＴＮＦ−αに対する1次抗体（Abcam Inc.、Cambridge、MA）、ＭＭＰ−２に対する1次抗体（Abcam Inc.、Cambridge、MA）、ＭＭＰ−９に対する１次抗体（Lifespan Biosciences Inc.、Seattle、WA）、ＩＣＡＭ−１に対する１次抗体（Bioss Inc.、Woburn、MA）、およびＶＣＡＭ−１に対する１次抗体（Bioss Inc.、Woburn、MA）を加え、1時間室温でインキュベーションした。洗浄後、切片を２次抗体（DAKO Corp、Glostrup、Denmark）とともに３０分間インキュベーションした。免疫反応はジアミノベンジジン色素原を使用して視覚化し、切片はマイヤーヘマトキシリン（Mayer's hematoxylin）（Sigma）で３０秒間室温で対比染色した。切片の画像は、バーチャル顕微鏡（NanoZoomer2.0 RS、Hamamatsu、Japan）を使用して撮影した。
【００４１】
（７）統計分析
データは、ＳＰＳＳ ｖｅｒｓｉｏｎ １８．０（SPSS、Chicago、IL、USA）を用いて分析し、平均±ＳＤで表示した。グループ間の差は、２元配置分散分析（Tukey's testを使用した分析）を使用して分析し、統計学的有意性は、Ｐ＜０．０５として定義した。
【００４２】
２：試験結果
（１）涙液の産生量の変化に対するスルグリコチド含有点眼液の効果
図１に示すように、１０日後のＳＯＳ１グループは、ＤＳ１０Ｄグループ（0.025±0.008μL）に比べて、６．７倍の増加（0.165±0.027μL）を示し（P<0.05）；１０日後のＳＯＳ２グループは、ＤＳ１０Ｄグループ（0.021±0.009μL）に比べて、７．６倍の増加（0.157±0.027μL）を示し（P<0.05）；１０日後のＳＯＳ３グループは、ＤＳ１０Ｄグループ（0.021±0.009μL）に比べて、８．５倍の増加（0.176±0.030μL）を示し（P<0.05）；１０日後のＳＯＳ４グループは、ＤＳ１０Ｄグループ（0.017±0.008μL）に比べて、１４．６倍の増加（0.246±0.022μL）を示し（P<0.05）；１０日後のＳＯＳ５グループはＤＳ１０Ｄグループ（0.017±0.008μL）に比べて、１５．５倍の増加（0.262±0.018μL）を示した（P<0.05）。乾燥ストレス除去後、スルグリコチド含有点眼剤の点眼により、ＤＳ１０Ｄグループに比べて、涙液の産生量が徐々に改善した。特に、ＳＯＳ４およびＳＯＳ５のグループでは、涙液の産生量が対照群のレベルまで増加した。
【００４３】
（２）角膜表面の不整に対するスルグリコチド含有点眼液の効果
図２に示すように、ＤＳ１０Ｄグループの角膜不整スコア（3.375±0.479 score）は、対照群（0.250±0.289 score）に比べて、１３．５倍に増加し、ＳＯＳ１グループで観察された減少は、１０日目に７．４％（3.125±0.250 score、P<0.05）であった。また、ＳＯＳ２およびＳＯＳ３のグループで観察された角膜表面の不整は、ＤＳ１０Ｄグループに比べて、それぞれ１０日目に８％（2.875±0.250 score、P<0.05）および２０．７％（2.875±0.250 score、P<0.05）減少した。ＳＯＳ４およびＳＯＳ５のグループの不整は、ＤＳ１０Ｄグループに比べて、それぞれ10日目に８３．３％（0.625±0.479 score、P<0.05）および８７．９％（0.500±0.408 score、P<0.05）減少した。特に、ＳＯＳ４およびＳＯＳ５のグループでは、白色光リングの歪みが１０日目に対照群レベルまで改善した。
【００４４】
（３）角膜蛍光染色に対するスルグリコチド含有点眼液の効果
図３に示すように、対照群の角膜では、蛍光染色の取り込みが認められず、上皮障壁が損傷していないことを示している。しかし、ＤＳ１０Ｄの角膜は、斑状の（patchy）染色パターンを示し、上皮障壁が損傷していることを示している。ＤＳ１０Ｄグループの角膜蛍光スコア（9.333±1.155 score）は、対照群（0.333±0.577 score）に比べて、２８倍に増加し、ＳＯＳ１グループでは、１０日目でも減少しなかった（9.333±0.577 score、P<0.05）。しかし、ＳＯＳ２およびＳＯＳ３のグループで観察された角膜蛍光スコアは、ＤＳ１０Ｄグループに比べて、それぞれ１０日目に３．４％（9.333±0.577、P<0.05）および１０％（9.0±0 score、P<0.05）減少した。また、ＳＯＳ４およびＳＯＳ５のグループの角膜蛍光スコアは、ＤＳ１０Ｄグループに比べて、それぞれ１０日目に７２．４％（2.667±0.577、P<0.05）および８３．３％（1.667±0.577、P<0.05）減少した。特に、ＳＯＳ４およびＳＯＳ５のグループでは、角膜上皮障壁の損傷が１０日目に対照群レベルまで改善した。
【００４５】
（４）角膜上皮細胞の剥離に対するスルグリコチド含有点眼液の効果
図４に示すように、剥離した角膜上皮細胞の数は、対照群（0.190±0.165 cells/0.1mm2）に比べて、ＤＳ１０Ｄグループで８．５倍に増加した（1.619±0.165 cells/0.1mm2、P<0.05）。剥離した角膜上皮細胞の数は、ＤＳ１０Ｄグループに比べて、ＳＯＳ１グループでは、１．１倍に増加した（1.810±0.165 cells/0.1mm2、P<0.05）。一方、ＳＯＳ２およびＳＯＳ３のグループで観察された剥離した角膜上皮細胞の数（1.238±0.165および1.238±0.165 cells/0.1mm2）は、ＤＳ１０Ｄグループに比べて、それぞれ２３．５％および２３．５％減少した（P<0.05）。また、剥離した角膜上皮細胞の数は、ＤＳ１０Ｄグループに比べて、ＳＯＳ４およびＳＯＳ５のグループで、それぞれ７０．６％（0.476±0.165 cells/0.1mm2、P<0.05）および７６．５％（0.381±0.165 cells/0.1mm2、P<0.05）減少した。
【００４６】
（５）結膜杯細胞に対するスルグリコチド含有点眼液の効果
図５に示すように、結膜杯細胞の数は、対照群（17.333±0.873 cells/0.1mm2）に比べて、ＤＳ１０Ｄグループで５７．７％（7.333±1.288 cells/0.1mm2）減少したが、ＳＯＳ１グループでは、ＤＳ１０Ｄグループに比べて、１．１倍（8.095±0.165 cells/0.1mm2、P<0.05）に増加した。結膜杯細胞の数は、ＤＳ１０Ｄグループに比べて、ＳＯＳ２およびＳＯＳ３のグループでそれぞれ１．２倍（8.762±0.825 cells/0.1mm2、P<0.05）および１．４倍（10.381±0.436 cells/0.1mm2、P<0.05）に増加した。また、ＤＳ１０Ｄグループに比べて、ＳＯＳ４およびＳＯＳ５のグループで、それぞれ１．９倍（14.286±1.143 cells/0.1mm2、P<0.05）および２．４倍（17.714±2.268 cells/0.1mm2、P<0.05）に増加した。
【００４７】
（６）ドライアイのマウスモデルでのスルグリコチド含有点眼液の抗炎症効果
図６に示すように、涙腺の切片（sections）を用いて、ＴＮＦ−α、ＭＭＰ−２、ＭＭＰ−９、ＩＣＡＭ−１、およびＶＣＡＭ−１の免疫染色を行った。炎症マーカーであるＴＮＦ−αは、乾燥ストレスの除去後、涙腺で有意に過剰発現した。しかし、ＳＯＳ４およびＳＯＳ５のグループでは、ＴＮＦ−αの発現は抑制されていた。また、ＭＭＰ−２およびＭＭＰ−９の免疫染色についても、涙腺で強い染色が認められたが、この染色はＳＯＳ４およびＳＯＳ５のグループでは有意に抑制されていた。ＩＣＡＭ−１およびＶＣＡＭ−１の染色は、ＤＳ１０Ｄグループの涙腺に非常に限られていた。これらの涙腺の陽性マーカーは、ＤＳ１０Ｄグループに比べて、ＳＯＳ４およびＳＯＳ５のグループで抑制されていた。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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