(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
Ｌ−グルタミン酸生産能を有し、かつ、染色体上のトレハロース−６−リン酸シンターゼをコードする遺伝子、マルトオリゴシルトレハロースシンターゼをコードする遺伝子もしくはこれらの両方の遺伝子に変異が導入されるか、又はこれらの一方もしくは両方の遺伝子が破壊されたことによりトレハロース合成能が低下又は欠失したコリネ型細菌であって、前記トレハロース−６−リン酸シンターゼをコードする遺伝子が下記（Ａ）又は（Ｂ）に示す蛋白質をコードするＤＮＡであり、前記マルトオリゴシルトレハロースシンターゼをコードする遺伝子が下記（C）又は（D）に示す蛋白質をコードするＤＮＡである、コリネ型細菌。
（Ａ）配列番号３０に記載のアミノ酸配列を有する蛋白質。
（Ｂ）配列番号３０に記載のアミノ酸配列において、１〜２０個のアミノ酸の置換、欠失、挿入、又は付加を含むアミノ酸配列からなり、かつ、トレハロース−６−リン酸シンターゼ活性を有する蛋白質。
（C）配列番号３２に記載のアミノ酸配列を有する蛋白質。
（D）配列番号３２に記載のアミノ酸配列において、１〜４０個のアミノ酸の置換、欠失、挿入、又は付加を含むアミノ酸配列からなり、かつ、マルトオリゴシルトレハロースシンターゼ活性を有する蛋白質。
【請求項２】
請求項１に記載のコリネ型細菌を培地に培養し、同培地中にＬ−グルタミン酸を生成、蓄積させ、同培地からＬ−グルタミン酸を採取することを特徴とするＬ−グルタミン酸の製造法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、新規なＬ−グルタミン酸生産菌及びそれを用いた発酵法によるＬ−グルタミン酸の製造法に関する。Ｌ−グルタミン酸は、食品、医薬品等として重要なアミノ酸である。
【０００２】
【従来の技術】
従来、Ｌ−グルタミン酸は、主としてブレビバクテリウム属、コリネバクテリウム属、ミクロバクテリウム属に属するいわゆるコリネ型Ｌ−グルタミン酸生産菌またはそれらの変異株を用いた発酵法により製造されている（アミノ酸発酵、学会出版センター、１９５〜２１５頁、１９８６年）。
【０００３】
発酵法によるＬ−グルタミン酸の製造においては、トレハロースが副生することが知られている。そこで、生成したトレハロースを分解又は代謝させる技術が開発されている。そのような技術として、トレハロース上での増殖能が誘発されたコリネ型細菌を用いてアミノ酸を発酵生産する方法（特開平5-276935）、及び、トレハロース分解酵素遺伝子が増幅されたコリネ型細菌を用いてアミノ酸を発酵生産する方法（大韓民国特許公報（B1）特165836）が知られている。しかし、Ｌ−グルタミン酸生産菌において、トレハロースの生成自体を抑制することは知られていない。
【０００４】
エシェリヒア・コリにおいては、トレハロースの合成は、トレハロース−６−リン酸シンターゼによって触媒される。これらの酵素は、otsA遺伝子によってコードされていることが知られている。また、エシェリヒア・コリのotsA遺伝子破壊株は、高浸透圧培地にてほとんど生育できなくなることが報告されている（H. M. Glaever, et al., J. Bacteriol., 170(6), 2841-2849(1998)）が、otsA遺伝子の破壊と物質生産との関係は知られていない。
【０００５】
一方、ブレビバクテリウム属細菌では、ブレビバクテリウム・ヘルボルムにおいてtreY遺伝子は知られているが、otsA遺伝子は知られていない。尚、マイコバクテリウム属細菌では、トレハロース生合成系酵素遺伝子として、otsA遺伝子及びtreY遺伝子とは別のtreS遺伝子によってコードされる産物（トレハロースシンターゼ（TreS））による反応を経由する経路が知られている（De Smet K. A., et al., Microbiology, 146(1), 199-208 (2000)）。しかし、この経路はマルトースを基質としており、グルコース、フルクトース又はシュークロースを原料とする通常のＬ−グルタミン酸発酵には関連性がない。
【０００６】
【発明が解決しようとする課題】
本発明の課題の一つは、コリネ型細菌を用いた発酵法によるＬ−グルタミン酸の製造において、トレハロースの副生を抑制し、Ｌ−グルタミン酸の生産効率を向上させることにある。
【０００７】
【課題を解決するための手段】
本発明者は、上記課題を解決するために鋭意検討を行った結果、ブレビバクテリウム属細菌はマイコバクテリウム・ツベルクロシスと同様にotsA遺伝子及びtreY遺伝子を保持していること、及び、少なくともこれらの遺伝子の一方を破壊することによって、Ｌ−グルタミン酸の生産効率が向上することを見出し、本発明を完成するに至った。
すなわち本発明は、以下のとおりである。
【０００８】
（１）Ｌ−グルタミン酸生産能を有し、かつ、トレハロース合成能が低下又は欠失したコリネ型細菌。
（２）染色体上のトレハロース合成系酵素遺伝子に変異が導入又は破壊されたことによりトレハロース合成能が低下又は欠失した（１）のコリネ型細菌。
（３）トレハロース合成系酵素遺伝子が、トレハロース−６−リン酸シンターゼをコードする遺伝子、マルトオリゴシルトレハロースシンターゼをコードする遺伝子又はこれらの両方の遺伝子である（２）のコリネ型細菌。
（４）トレハロース−６−リン酸シンターゼをコードする遺伝子が配列番号３０に記載のアミノ酸配列をコードし、マルトオリゴシルトレハロースシンターゼをコードする遺伝子が配列番号３２に記載のアミノ酸配列をコードする（３）のコリネ型細菌。
（５）（１）〜（４）のいずれかのコリネ型細菌を培地に培養し、同培地中にＬ−グルタミン酸を生成、蓄積させ、同培地からＬ−グルタミン酸を採取することを特徴とするＬ−グルタミン酸の製造法。
【０００９】
（６）下記（Ａ）又は（Ｂ）に示す蛋白質をコードするＤＮＡ。
（Ａ）配列番号３０に記載のアミノ酸配列を有する蛋白質。
（Ｂ）配列番号３０に記載のアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸の置換、欠失、挿入、又は付加を含むアミノ酸配列からなり、かつ、トレハロース−６−リン酸シンターゼ活性を有する蛋白質。
（７）下記（ａ）又は（ｂ）に示すＤＮＡである（６）のＤＮＡ。
（ａ）配列番号２９に記載の塩基配列のうち、少なくとも塩基番号４８４〜１９３８からなる塩基配列を含むＤＮＡ。
（ｂ）配列番号２９に記載の塩基配列のうち、少なくとも塩基番号４８４〜１９３８からなる塩基配列とストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、同塩基配列と５５％以上の相同性を有し、かつ、トレハロース−６−リン酸シンターゼ活性を有する蛋白質をコードするＤＮＡ。
（８）下記（Ａ）又は（Ｂ）に示す蛋白質をコードするＤＮＡ。
（Ａ）配列番号３２に記載のアミノ酸配列を有する蛋白質。
（Ｂ）配列番号３２に記載のアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸の置換、欠失、挿入、又は付加を含むアミノ酸配列からなり、かつ、マルトオリゴシルトレハロースシンターゼ活性を有する蛋白質。
（９）下記（ａ）又は（ｂ）に示すＤＮＡである（８）のＤＮＡ。
（ａ）配列番号３１に記載の塩基配列のうち、塩基番号８２〜２５１４からなる塩基配列を含むＤＮＡ。
（ｂ）配列番号３１に記載の塩基配列のうち、塩基番号８２〜２５１４からなる塩基配列又は同塩基配列から調製され得るプローブとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、同塩基配列と６０％以上の相同性を有し、かつ、マルトオリゴシルトレハロースシンターゼ活性を有する蛋白質をコードするＤＮＡ。
【００１０】
尚、トレハロース−６−リン酸シンターゼ活性とは、ＵＤＰ−グルコースとグルコース６−リン酸からα，α−トレハロース６−リン酸とＵＤＰへの反応を触媒する活性を、マルトオリゴシルトレハロースシンターゼ活性とは、マルトペンタオースからマルトトリオシルトレハロースの反応を触媒する活性をいう。
【００１１】
【発明の実施の形態】
以下、本発明を詳細に説明する。
本発明のコリネ型細菌は、Ｌ−グルタミン酸生産能を有し、かつ、トレハロース合成能が低下又は欠失したコリネ型細菌である。
【００１２】
本発明でいうコリネ型細菌としては、バージーズ・マニュアル・オブ・デターミネイティブ・バクテリオロジー（Bergey's Manual of Determinative Bacteriology）第8版599頁（1974）に定義されている一群の微生物であり、好気性，グラム陽性，非抗酸性，胞子形成能を有しない桿菌であり、従来ブレビバクテリウム属に分類されていたが現在コリネバクテリウム属細菌として統合された細菌を含み（Int. J. Syst. Bacteriol., 41, 255 (1981)）、またコリネバクテリウム属と非常に近縁なブレビバクテリウム属細菌及びミクロバテリウム属細菌を含む。Ｌ−グルタミン酸の製造に好適に用いられるコリネ型細菌の菌株としては、例えば以下に示すものが挙げられる。
【００１３】
コリネバクテリウム・アセトアシドフィラム
コリネバクテリウム・アセトグルタミカム
コリネバクテリウム・アルカノリティカム
コリネバクテリウム・カルナエ
コリネバクテリウム・グルタミカム
コリネバクテリウム・リリウム（コリネバクテリウム・グルタミカム）
コリネバクテリウム・メラセコーラ
コリネバクテリウム・サーモアミノゲネス
コリネバクテリウム・ハーキュリス
ブレビバクテリウム・ディバリカタム（コリネバクテリウム・グルタミカム）
ブレビバクテリウム・フラバム（コリネバクテリウム・グルタミカム）
ブレビバクテリウム・インマリオフィラム
ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム（コリネバクテリウム・グルタミカム）
ブレビバクテリウム・ロゼウム
ブレビバクテリウム・サッカロリティカム
ブレビバクテリウム・チオゲニタリス
ブレビバクテリウム・アンモニアゲネス（コリネバクテリウム・アンモニアゲネス）
ブレビバクテリウム・アルバム
ブレビバクテリウム・セリヌム
ミクロバクテリウム・アンモニアフィラム
【００１４】
具体的には、下記のような菌株を例示することができる。
コリネバクテリウム・アセトアシドフィラム  ＡＴＣＣ１３８７０
コリネバクテリウム・アセトグルタミカム  ＡＴＣＣ１５８０６
コリネバクテリウム・アルカノリティカム  ＡＴＣＣ２１５１１
コリネバクテリウム・カルナエ  ＡＴＣＣ１５９９１
コリネバクテリウム・グルタミカム  ＡＴＣＣ１３０２０、１３０３２、１３０６０
コリネバクテリウム・リリウム（コリネバクテリウム・グルタミカム）  ＡＴＣＣ１５９９０
コリネバクテリウム・メラセコーラ  ＡＴＣＣ１７９６５
コリネバクテリウム・サーモアミノゲネス  ＡＪ１２３４０（ＦＥＲＭ  ＢＰ−１５３９）
コリネバクテリウム・ハーキュリス  ＡＴＣＣ１３８６８
ブレビバクテリウム・ディバリカタム（コリネバクテリウム・グルタミカム）ＡＴＣＣ１４０２０
ブレビバクテリウム・フラバム（コリネバクテリウム・グルタミカム）  ＡＴＣＣ１３８２６、ＡＴＣＣ１４０６７
ブレビバクテリウム・インマリオフィラム  ＡＴＣＣ１４０６８
ブレビバクテリウム・ラクトフェルメンタム（コリネバクテリウム・グルタミカム）  ＡＴＣＣ１３６６５、ＡＴＣＣ１３８６９、
ブレビバクテリウム・ロゼウム  ＡＴＣＣ１３８２５
ブレビバクテリウム・サッカロリティカム  ＡＴＣＣ１４０６６
ブレビバクテリウム・チオゲニタリス  ＡＴＣＣ１９２４０
ブレビバクテリウム・アンモニアゲネス（コリネバクテリウム・アンモニアゲネス）  ＡＴＣＣ６８７１
ブレビバクテリウム・アルバム  ＡＴＣＣ１５１１１
ブレビバクテリウム・セリヌム  ＡＴＣＣ１５１１２
ミクロバクテリウム・アンモニアフィラム  ＡＴＣＣ１５３５４
【００１５】
上記のようなコリネ型細菌のトレハロース合成能を低下又は欠失させることは、突然変異処理又は遺伝子組換え技術を利用して、トレハロース合成系酵素をコードする遺伝子を変異又は破壊することによって行うことができる。前記変異は、トレハロース合成系酵素をコードする遺伝子の転写又は翻訳を妨げる変異であってもよいし、活性の消失又は低下したトレハロース合成系酵素を産生するような変異であってもよい。トレハロース合成系酵素としては、トレハロース−６−リン酸シンターゼ、マルトオリゴシルトレハロースシンターゼ、又はこれらの両方が挙げられる。
【００１６】
トレハロース合成系酵素をコードする遺伝子の破壊は、相同組換えを利用した遺伝子置換によって行うことができる。トレハロース合成系酵素をコードする遺伝子の一部を欠失し、トレハロース合成系酵素が正常に機能しないように改変した遺伝子（欠失型遺伝子）を含むＤＮＡでコリネ型細菌を形質転換し、欠失型遺伝子と染色体上の正常遺伝子との間で組換えを起こさせることにより、染色体上の遺伝子を破壊することができる。このような相同組換えによる遺伝子破壊は既に確立しており、直鎖状もしくはコリネ型細菌中で複製しない環状のＤＮＡを用いる方法や温度感受性複製開始点を含むプラスミドを用いる方法などがあるが、コリネ型細菌中で複製しない環状ＤＮＡ、もしくは温度感受性複製開始点を含むプラスミドを用いる方法が好ましい。
【００１７】
トレハロース合成系酵素をコードする遺伝子としては、例えば、otsA遺伝子、treY遺伝子又はこれらの両方の遺伝が挙げられる。ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタムのotsA遺伝子及びtreY遺伝子は、本発明によりそれらの遺伝子及びそれらの隣接領域の塩基配列が明らかにされたので、同配列に基づいてプライマーを作製し、ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム染色体ＤＮＡを鋳型とするＰＣＲ（ポリメラーゼチェインリアクション：polymerase chain reaction； White,T.J. et al., Trends Genet., 5,185 (1989)参照）を行うことによって、容易に取得することができる。
【００１８】
後記実施例で取得されたブレビバクテリウム・ラクトファーメンタムのotsA遺伝子を含む塩基配列及びtreY遺伝子を含む塩基配列を、それぞれ配列番号２９及び配列番号３１に示す。また、これらの塩基配列がコードし得るアミノ酸配列を、それぞれ配列番号３０及び配列番号３２に示す。
【００１９】
otsA遺伝子及びtreY遺伝子は、コードされるトレハロース−６−リン酸シンターゼ又はマルトオリゴシルトレハロースシンターゼの活性が損なわれない限り、１若しくは複数の位置での１若しくは数個のアミノ酸の置換、欠失、挿入又は付加を含む蛋白質をコードするものであってもよい。ここで、「数個」とは、アミノ酸残基のタンパク質の立体構造における位置や種類によっても異なるが、好ましくは１〜４０個、より好ましくは１〜２０個、さらに好ましくは１〜１０個である。
【００２０】
上記のようなトレハロース−６−リン酸シンターゼ又はマルトオリゴシルトレハロースシンターゼと実質的に同一の蛋白質をコードするＤＮＡは、例えば部位特異的変異法によって、特定の部位のアミノ酸残基が置換、欠失、挿入、付加、又は逆位を含むように塩基配列を改変することによって得られる。また、上記のような改変されたＤＮＡは、従来知られている変異処理によっても取得され得る。変異処理としては、トレハロース−６−リン酸シンターゼ又はマルトオリゴシルトレハロースシンターゼをコードするＤＮＡをヒドロキシルアミン等でインビトロ処理する方法、及びトレハロース−６−リン酸シンターゼ又はマルトオリゴシルトレハロースシンターゼをコードするＤＮＡを保持する微生物、例えばエシェリヒア属細菌を、紫外線照射またはN−メチル−N'−ニトロ−N−ニトロソグアニジン（NTG）もしくは亜硝酸等の通常変異処理に用いられている変異剤によって処理する方法が挙げられる。
【００２１】
また、上記のような塩基の置換、欠失、挿入、付加、又は逆位等には、トレハロース−６−リン酸シンターゼ又はマルトオリゴシルトレハロースシンターゼを保持する微生物の個体差、種や属の違いに基づく場合などの天然に生じる変異（mutant又はvariant）も含まれる。
【００２２】
上記のような変異を有するＤＮＡを、適当な細胞で発現させ、発現産物のトレハロース−６−リン酸シンターゼ活性又はマルトオリゴシルトレハロースシンターゼ活性を調べることにより、トレハロース−６−リン酸シンターゼ又はマルトオリゴシルトレハロースシンターゼと実質的に同一のタンパク質をコードするＤＮＡが得られる。
【００２３】
また、変異を有するトレハロース−６−リン酸シンターゼをコードするＤＮＡまたはこれを保持する細胞から、例えば配列番号２９に記載の塩基配列のうち、塩基番号４８４〜１９３８からなる塩基配列を有するＤＮＡ、またはこの塩基配列から調製され得るプローブと、ストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、同塩基配列と５５％以上、好ましくは６５％以上、より好ましくは７５％以上の相同性を有し、かつ、トレハロース−６−リン酸シンターゼ活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡを単離することによっても、トレハロース−６−リン酸シンターゼと実質的に同一のタンパク質をコードするＤＮＡが得られる。同様に、変異を有するマルトオリゴシルトレハロースシンターゼをコードするＤＮＡまたはこれを保持する細胞から、例えば配列番号３１に記載の塩基配列のうち、塩基番号８２〜２５１４からなる塩基配列、またはこの塩基配列から調製され得るプローブと、ストリンジェントな条件下でハイブリダイズし、同塩基配列と６０％以上、好ましくは７０％以上、より好ましくは８０％以上の相同性を有し、かつ、マルトオリゴシルトレハロースシンターゼ活性を有するタンパク質をコードするＤＮＡを単離することによっても、マルトオリゴシルトレハロースシンターゼと実質的に同一のタンパク質をコードするＤＮＡが得られる。
【００２４】
上記でいう「ストリンジェントな条件」とは、いわゆる特異的なハイブリッドが形成され、非特異的なハイブリッドが形成されない条件をいう。この条件を明確に数値化することは困難であるが、一例を示せば、相同性が高いＤＮＡ同士、例えば５５％以上、好ましくは６０％の相同性を有するＤＮＡ同士がハイブリダイズし、それより相同性が低いＤＮＡ同士がハイブリダイズしない条件、あるいは通常のサザンハイブリダイゼーションの洗いの条件である６０℃、１×ＳＳＣ，０．１％ＳＤＳ、好ましくは、０．１×ＳＳＣ、０．１％ＳＤＳに相当する塩濃度でハイブリダイズする条件が挙げられる。
【００２５】
プローブとして、各遺伝子の一部の配列を用いることもできる。そのようなプローブは、各遺伝子の塩基配列に基づいて作製したオリゴヌクレオチドをプライマーとし、各遺伝子を含むＤＮＡ断片を鋳型とするＰＣＲ反応によって作製することができる。プローブとして、３００ｂｐ程度の長さのＤＮＡ断片を用いる場合には、ハイブリダイゼーションの洗いの条件は、５０℃、２×ＳＳＣ、０．１％ ＳＤＳが挙げられる。
【００２６】
このような条件でハイブリダイズする遺伝子の中には途中にストップコドンが発生したものや、活性中心の変異により活性を失ったものも含まれるが、それらについては、市販の活性発現ベクターにつなぎ、トレハロース−６−リン酸シンターゼ活性又はマルトオリゴシルトレハロースシンターゼ活性を測定することによって容易に取り除くことができる。
【００２７】
尚、otsA遺伝子又はtreY遺伝子を、コリネ型細菌の染色体上のこれらの遺伝子の破壊に用いる場合は、コードされるトレハロース−６−リン酸シンターゼ又はマルトオリゴシルトレハロースシンターゼが活性を有する必要はない。また、遺伝子破壊に用いるotsA遺伝子又はtreY遺伝子は、コリネ型細菌のこれらの遺伝子との相同組換えが可能である限り、他の微生物に由来する遺伝子であってもよい。例えば、エシェリヒア属細菌又はマイコバクテリウム属細菌のotsA遺伝子、アースロバクター属細菌、ブレビバクテリウム・ヘルボルム、又はリゾビウム属細菌のtreY遺伝子が挙げられる。
【００２８】
otsA遺伝子もしくはtreY遺伝子又はこれらの一部を含むＤＮＡ断片から、一定の領域を制限酵素により切り出し、コード領域又はプロモーター等の発現調節配列の少なくとも一部を欠失させることによって、欠失型遺伝子を作製することができる。
【００２９】
また、遺伝子の一部を欠失するように設計したプライマーを用いてＰＣＲを行うことによっても、欠失型遺伝子を取得することができる。さらに、欠失型遺伝子は、一塩基変異、例えばフレームシフト変異によるものであってもよい。
【００３０】
以下に、otsA遺伝子の遺伝子破壊について説明するが、treY遺伝子の遺伝子破壊も同様にして行うことができる。
欠失型otsA遺伝子を、宿主染色体上のotsA遺伝子と置換するには以下のようにすればよい。すなわち、コリネ型細菌中で自律複製できないプラスミドに、欠失型otsA遺伝子と、カナマイシン、クロラムフェニコール、テトラサイクリン、ストレプトマイシン等の薬剤に耐性を示すマーカー遺伝子とを挿入して、組換えＤＮＡを調製し、この組換えＤＮＡでコリネ型細菌を形質転換し、形質転換株を薬剤を含む培地で培養することにより、組換えＤＮＡが染色体ＤＮＡに組み込まれた形質転換株が得られる。また、プラスミドとして、温度感受性プラスミドを用い、形質転換株を温度感受性プラスミドが複製できない温度で培養してもよい。
【００３１】
上記のようにして染色体に組換えＤＮＡが組み込まれた株は、染色体上にもともと存在するotsA遺伝子配列との組換えを起こし、染色体otsA遺伝子と欠失型otsA遺伝子との融合遺伝子２個が組換えＤＮＡの他の部分（ベクター部分及び薬剤耐性マーカー）を挟んだ状態で染色体に挿入されている。
【００３２】
次に、染色体ＤＮＡ上に欠失型otsA遺伝子のみを残すために、２個のotsA遺伝子の組換えにより１コピーのotsA遺伝子を、ベクター部分（薬剤耐性マーカーを含む）とともに染色体ＤＮＡから脱落させる。その際、正常なotsA遺伝子が染色体ＤＮＡ上に残され、欠失型otsA遺伝子が切り出される場合と、反対に欠失型otsA遺伝子が染色体ＤＮＡ上に残され、正常なotsA遺伝子が切り出される場合がある。いずれの遺伝子が染色体ＤＮＡ上に残されたかは、染色体上のotsA遺伝子の構造をPCR又はハイブリダイゼーション等で調べることによって、確認することができる。
【００３３】
本発明に用いるコリネ型細菌は、トレハロース合成能が低下又は欠失したことに加えて、Ｌ−グルタミン酸生合成を触媒する酵素の活性が増強されていてもよい。このようなＬ−グルタミン酸生合成を触媒する酵素としては、グルタミン酸デヒドロゲナーゼ、グルタミンシンテターゼ、グルタミン酸シンターゼ、イソクエン酸デヒドロゲナーゼ、アコニット酸ヒドラターゼ、クエン酸シンターゼ、ピルビン酸カルボキシラーゼ、ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ、ホスホエノールピルビン酸シンターゼ、エノラーゼ、ホスホグリセロムターゼ、ホスホグリセリン酸キナーゼ、グリセルアルデヒド−３−リン酸デヒドロゲナーゼ、トリオースリン酸イソメラーゼ、フルトースビスリン酸アルドラーゼ、ホスホフルクトキナーゼ、グルコースリン酸イソメラーゼ等がある。
【００３４】
また、本発明に用いるコリネ型細菌は、Ｌ−グルタミン酸の生合成経路から分岐してＬ−グルタミン酸以外の化合物を生成する反応を触媒する酵素の活性が低下あるいは欠損されていてもよい。このような酵素としては、α−ケトグルタル酸デヒドロゲナーゼ、イソクエン酸リアーゼ、リン酸アセチルトランスフェラーゼ、酢酸キナーゼ、アセトヒドロキシ酸シンターゼ、アセト乳酸シンターゼ、ギ酸アセチルトランスフェラーゼ、乳酸デヒドロゲナーゼ、Ｌ−グルタミン酸デカルボキシラーゼ、１−ピロリン酸デヒドロゲナーゼ等が挙げられる。
【００３５】
さらに、Ｌ−グルタミン酸生産能を有するコリネ型細菌に、界面活性剤等のビオチン作用抑制物質に対する温度感受性変異を付与することにより、過剰量のビオチンを含有する培地中にてビオチン作用抑制物質の非存在下でＬ−グルタミン酸を生産させることができる（WO96/06180号参照）。このようなコリネ型細菌としては、WO96/06180号に記載されているブレビバクテリウム・ラクトファーメンタムAJ13029が挙げられる。AJ13029株は、1994年9月2日付けで工業技術院生命工学工業技術研究所に、受託番号FERM P-14501として寄託され、1995年8月1日にブダペスト条約に基づく国際寄託に移管され、受託番号FERM BP-5189が付与されている。
【００３６】
Ｌ−グルタミン酸生産能を有し、かつ、トレハロース合成能が低下又は欠失したコリネ型細菌を好適な培地で培養すれば、Ｌ−グルタミン酸が培地に蓄積する。
Ｌ−グルタミン酸を製造するのに用いる培地は、炭素源、窒素源、無機イオン及び必要に応じその他の有機微量栄養素を含有する通常の培地である。炭素源としては、グルコース、ラクトース、ガラクトース、フラクトース、シュクロース、マルトース、廃糖蜜、澱粉加水分解物などの炭水化物、エタノールやイノシトールなどのアルコール類、酢酸、フマール酸、クエン酸、コハク酸等の有機酸類を用いることができる。
【００３７】
窒素源としては、硫酸アンモニウム、硝酸アンモニウム、塩化アンモニウム、リン酸アンモニウム、酢酸アンモニウム等の無機アンモニウム塩、アンモニア、ペプトン、肉エキス、酵母エキス、酵母エキス、コーン・スティープ・リカー、大豆加水分解物などの有機窒素、アンモニアガス、アンモニア水等を用いることができる。
【００３８】
無機イオンとしては、リン酸カリウム、硫酸マグネシウム、鉄イオン、マンガンイオン等が少量添加される。有機微量栄養素としては、ビタミンＢ1などの要求物質または酵母エキス等を必要に応じ適量含有させることが望ましい。
【００３９】
培養は、振とう培養、通気撹拌培養等による好気的条件下で１６〜７２時間実施するのがよく、培養温度は３０℃〜４５℃に、培養中ｐＨは５〜９に制御する。尚、ｐＨ調整には無機あるいは有機の酸性あるいはアルカリ性物質、更にアンモニアガス等を使用することができる。
【００４０】
発酵液からのＬ−グルタミン酸の採取は、例えばイオン交換樹脂法、晶析法等によることができる。具体的には、Ｌ−グルタミン酸を陰イオン交換樹脂により吸着、分離させるか、または中和晶析させればよい。
【００４１】
【実施例】
以下、本発明を実施例によりさらに具体的に説明する。
【００４２】
【実施例１】
ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタムのotsA遺伝子破壊株の構築
＜１＞otsA遺伝子のクローニング
ブレビバクテリウムラクトファーメンタムのotsA遺伝子は知られていないため、他の微生物のotsA遺伝子の塩基配列を利用して、その取得を行った。これまでに、エシェリヒア属、マイコバクテリウム属のotsA遺伝子は全塩基配列が明らかにされている（Kaasen, I., et al., Gene, 145(1), 9-15 (1994); De Smet K.A., et al., Microbiology, 146(1), 199-208 (2000)）。そこでまず、これらの塩基配列から推定されるアミノ酸配列を参考にして、PCR法のためのDNAプライマーP1（配列番号１）、P2（配列番号２）を合成した。DNAプライマーP1、P2は、それぞれエシェリヒア・コリのotsA遺伝子の塩基配列（GenBank accession X69160）における塩基番号1894から1913番目、2531から2549番目の位置に相当する。一方、マイコバクテリウム・ツベルクロシスのotsA遺伝子（GenBank accession Z95390）においては、塩基番号40499〜40518、41166〜41184の位置に相当する。
【００４３】
続いてプライマーP1とP2を用いて、ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム ATCC13869の染色体DNAを鋳型として、94℃ 0.5分、50℃ 0.5分、72℃ 4分の反応30サイクルのPCRを行った。その結果、およそ0.6Kbpのほぼ単一の増幅断片を取得した。この増幅断片を、Invitrogen社製の「Original TA cloning Kit」を用いて、プラスミドベクターpCR2.1にクローニングし、pCotsAを得た。続いて、クローニング断片の塩基配列を決定した。
【００４４】
以上のようにして取得したotsA遺伝子の部分断片の塩基配列をもとに、新たにDNAプライマーP10（配列番号８）、P12（配列番号１０）を合成し、「inverse PCR」(Triglia, T. et al., Nucleic Acids Res., 16, 81-86 (1988), Ochman, H., et al., Genetics, 120, 621-623 (1988))により、前記部分断片に隣接する未知領域を増幅した。ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム ATCC13869の染色体DNAを制限酵素BamHI, BglII, ClaI, HindIII, KpnI, MluI, MunL, SalI, XhoIにより切断後、T4 DNAリガーゼ（宝酒造（株）製）を用いて分子内結合させたものを鋳型として、DNAプライマーP10、P12を用いて、94℃ 0.5分、55℃ 1分、72℃ 4分の反応30サイクルのPCRを行った。その結果、制限酵素としてClaIおよびBglIIを使用した場合に、それぞれ4Kbp、4Kbpの増幅断片を得た。この増幅断片を、DNAプライマーP5〜9（配列番号３〜７）、P11〜15（配列番号９〜１３）を用いて直接塩基配列を決定し、配列番号２９に示すようなブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム ATCC13869のotsA遺伝子の全塩基配列を決定した。同塩基配列によってコードされるアミノ酸配列を、配列番号２９及び３０に示す。
【００４５】
前記otsA遺伝子の配列と、前記エシェリヒア・コリのotsA遺伝子（GenBank accession X69160）、及びマイコバクテリウム・ツベルクロシスのotsA遺伝子（GenBank accession Z95390）の配列との相同性を調べたところ、塩基配列では各々46.3%、55.9%であり、アミノ酸配列では各々30.9%、51.7%であった。尚、相同性の算出は、プログラムとしてLipman-Person法（Science, 227, 1435-1441 (1985)を用い、ソフトウェア「GENETIX-WIN」（ソフトウェア開発（株））を用いて行った。
【００４６】
＜２＞otsA遺伝子破壊用プラスミドの作製
コリネ型細菌のトレハロース生合成系酵素遺伝子破壊による、Ｌ−グルタミン酸生産性向上効果の有無を検討するために、otsA遺伝子破壊プラスミドの作製を行った。otsA遺伝子破壊用プラスミドの作製は、以下のようにして行った。先のotsA遺伝子のクローニングの際に構築したプラスミドpCotsAを鋳型として、ClaIサイトを挿入したプライマーP29（配列番号３３）とP30（配列番号３４）を用いて、94℃ 0.5分、55℃ 0.5分、72℃ 8分の反応30サイクルのPCRを行った。増幅断片をClaIで処理し、T4 DNAポリメラーゼ（宝酒造（株）製）を用いて平滑末端処理を行った後、T4 DNAリガーゼ（宝酒造（株）製）を用いて分子内結合させ、otsA遺伝子のほぼ中央部にフレームシフト変異（配列番号２９において1258〜1300番目の塩基が欠失）が導入されたプラスミドpCotsACを構築した。
【００４７】
＜３＞otsA遺伝子破壊株の作製
遺伝子破壊用プラスミドpCotsACを用いて、Ｌ−グルタミン酸生産菌ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム ATCC13869を電気パルス法により形質転換し、カナマイシンを20mg/L含有したCM2B培地にて生育できることを指標に、形質転換体を取得した。このotsA遺伝子破壊用プラスミドpCotsACは、ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム中で機能する複製起点を有さないため、同プラスミドによって得られる形質転換体はブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム染色体上のotsA遺伝子と、遺伝子破壊用プラスミドpCotsACとが相同組換えを起こしたものである。こうして得られた相同組換え株より、再度相同組換えを起こしたことによって、遺伝子破壊用プラスミドpCotsACのベクター部分が除去された株を、カナマイシンに対して感受性となったことを指標に取得した。
【００４８】
上記のようにして得られた株の中から、目的のフレームシフト変異が導入された株を選択した。このような菌株の選択は、カナマイシン感受性となった菌株より抽出した染色体DNAを鋳型として、DNAプライマーP8（配列番号１４）とP13（配列番号１１）を用いて、94℃ 0.5分、55℃ 0.5分、72℃ 1分の反応30サイクルのPCRを行い、得られた増幅断片をDNAプライマーP8を用いて塩基配列の決定を行い、フレームシフト変異が導入され、otsA遺伝子が機能しなくなっていることを確認することによって行った。以上のようにして得られた菌株を、ΔOA株と命名した。
【００４９】
【実施例２】
treY遺伝子破壊株の構築
＜１＞treY遺伝子のクローニング
ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタムのtreY遺伝子は知られていないために、他の微生物のtreY遺伝子の塩基配列を利用して、その取得を行った。これまでに、アースロバクター属、ブレビバクテリウム属、リゾビウム属のtreY遺伝子は塩基配列が明らかにされている（Maruta, K., et al., Biochim. Biophys. Acta, 1289(1), 10-13 (1996); Genbank accession AF039919; Maruta, K., et al., Biosci. Biotechnol. Biochem., 60(4), 717-720 (1996)）。そこでまず、これらの塩基配列から推定されるアミノ酸配列を参考にしてPCR法のためのDNAプライマーP3（配列番号１４）、P4（配列番号１５）を合成した。DNAプライマーP3、P4はそれぞれアースロバクター・スピーシーズのtreY遺伝子（GenBank accession D63343）の塩基配列における塩基番号975〜992、2565〜2584の位置に相当する。また、ブレビバクテリウム・ヘルボルムのtreY遺伝子（GenBank accession AF039919）の塩基配列においては、塩基番号893〜910、2486〜2505の位置に相当する。一方、リゾビウム・スピーシーズのtreY遺伝子（GenBank accession D78001）の塩基配列においては、塩基番号862〜879、2452〜2471の位置に相当する。
【００５０】
続いてプライマーP3とP4を用いて、ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム ATCC13869の染色体DNAを鋳型として、94℃ 0.5分、55℃ 0.5分、72℃ 2分の反応30サイクルのPCRを行った。その結果、およそ1.6Kbpのほぼ単一の増幅断片を取得した。この増幅断片をInvitrogen社製の「Oriinal TA cloning Kit」を用いてプラスミドベクターpCR2.1にクローニングし、続いて約0.6Kbの塩基配列を決定した。
【００５１】
以上のようにして取得したtreY遺伝子の部分断片の塩基配列をもとに、新たにDNAプライマーP16（配列番号１６）、P26（配列番号２６）を合成し、「inverse PCR」(Triglia, T., et al. Nucleic Acids Res.,16,81-86(1988)、Ochman,H., et al., Genetics,120,621-623(1988))により、前記部分断片に隣接する未知領域を増幅した。ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム  ATCC13869の染色体を制限酵素BamHI, HindIII, SalI, XhoIにより切断後、T4 DNAリガーゼ（宝酒造（株）製）を用いて分子内結合させたものを鋳型として、DNAプライマーP16、P26を用いて、94℃ 0.5分、55℃ 1分、72℃ 4分の反応30サイクルのPCRを行った。その結果、制限酵素としてHindIIIおよびSalIを使用した場合に、それぞれ0.6Kbp、1.5Kbpの増幅断片を得た。この増幅断片をDNAプライマーP16〜28（配列番号１６〜２８）を用いて直接塩基配列を決定し、配列番号３１に示すようなブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム ATCC13869のtreY遺伝子の全塩基配列を決定した。同塩基配列によってコードされるアミノ酸配列を、配列番号３１及び３２に示す。
【００５２】
前記treY遺伝子の配列と、前記アースロバクター・スピーシーズのtreY遺伝子（GenBank accession D63343）、ブレビバクテリウム・ヘルボルムのtreY遺伝子（GenBank accession AF039919）、及びリゾビウム・スピーシーズのtreY遺伝子（GenBank accession D78001）の配列との相同性を調べたところ、塩基配列では各々52.0%、52.3%、51.9%であり、アミノ酸配列では各々40.9%、38.5%、39.8%であった。尚、相同性の算出は、プログラムとしてLipman-Person法（Science, 227, 1435-1441 (1985)を用い、ソフトウェア「GENETIX-WIN」（ソフトウェア開発（株））を用いて行った。
【００５３】
＜２＞treY遺伝子破壊用プラスミドの作製
コリネ型細菌のトレハロース生合成系酵素遺伝子破壊による、Ｌ−グルタミン酸生産性向上効果の有無を検討するために、treY遺伝子破壊プラスミドの作製を行った。まず、DNAプライマーP17（配列番号１７）とP25（配列番号２５）を用いて、ATCC13869の染色体DNAを鋳型にして、94℃ 0.5分、60℃ 0.5分、72℃ 2分の反応30サイクルのPCRを行った。増幅断片をEcoRIで消化し、EcoRIで処理したpHSG299（宝酒造（株）製）とT4 DNAリガーゼ（宝酒造（株）製）を用いて結合させ、プラスミドpHtreYを取得した。さらに、このpHtreYをAflII（宝酒造(株)製）で処理し、T4 DNAポリメラーゼ（宝酒造（株）製）を用いて平滑末端処理を行った後、T4 DNAリガーゼ（宝酒造（株）製）を用いて分子内結合させ、treY遺伝子のほぼ中央部にフレームシフト変異（配列番号３１において1145番目の後ろに４塩基挿入）が導入されたプラスミドpHtreYAを構築した。
【００５４】
＜３＞treY遺伝子破壊株の作製
遺伝子破壊用プラスミドpCtreYAを用いて、Ｌ−グルタミン酸生産菌ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム  ATCC13869を電気パルス法により形質転換し、カナマイシンを20mg/L含有したCM2B培地にて生育できることを指標に、形質転換体を取得した。このtreY遺伝子破壊用プラスミドpCtreYAは、ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム中で機能する複製起点を有さないため、同プラスミドによって得られる形質転換体はブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム染色体上のtreY遺伝子と、遺伝子破壊用プラスミドpCtreYAとが相同組換えを起こしたものである。こうして得られた相同組換え株より、再度相同組換えを起こしたことによって、遺伝子破壊用プラスミドpCtreYAのベクター部分が除去された株を、カナマイシンに対して感受性となったことを指標に取得した。
【００５５】
上記のようにして得られた株の中から、目的のフレームシフト変異が導入された株を選択した。このような菌株の選択は、DNAプライマーP19（配列番号１９）とP25（配列番号２５）を用いて、94℃ 0.5分、55℃ 0.5分、72℃ 1.5分の反応30サイクルのPCRを行い、得られた断片をDNAプライマーP21またはP23を用いて塩基配列の決定を行い、フレームシフト変異が導入され、treY遺伝子が機能しなくなっていることを確認することによって行った。以上のようにして得られた菌株を、ΔTA株と命名した。
【００５６】
【実施例３】
ΔOA株及びΔTA株のＬ−グルタミン酸生産能の評価
ATCC13869株、ΔOA株及びΔTA株のＬ−グルタミン酸の生産培養を、以下の様に行った。これらの菌株をCM2Bプレート培地にて培養してリフレッシュを行い、リフレッシュされた各菌株を、グルコース 80ｇ、KH2PO4 1ｇ、MgSO4 0.4ｇ、(NH4)2SO4 30ｇ、FeSO4・7H2O 0.01ｇ、MnSO4・7H2O  0.01ｇ、大豆加水分解液 15ml、サイアミン塩酸塩 200μｇ、ビオチン 3μｇ、及びCaCO3 50ｇを純水 1L中に含む培地（KOHを用いてpHは8.0に調整されている）において、31.5℃にて培養した。培養後に培地中のＬ−グルタミン酸の蓄積量、及び51倍希釈した培養液の620nmにおける吸光度を測定した結果を、表１に示す。
【００５７】
otsA遺伝子又はtreY遺伝子を破壊したブレビバクテリウム・ラクトファーメンタムは、親株と同程度の生育を示す一方、Ｌ−グルタミン酸生産量は親株に比べて増大した。
【００５８】
【表１】
0004304837.tif 000002
【００５９】
〔配列表の説明〕
配列番号１：otsA増幅用プライマーP1
配列番号２：otsA増幅用プライマーP2
配列番号３：プライマーP5
配列番号４：プライマーP6
配列番号５：プライマーP7
配列番号６：プライマーP8
配列番号７：プライマーP9
配列番号８：プライマーP10
配列番号９：プライマーP11
配列番号10：プライマーP12
配列番号11：プライマーP13
配列番号12：プライマーP14
配列番号13：プライマーP15
配列番号14：treY増幅用プライマーP3
配列番号15：treY増幅用プライマーP4
配列番号16：プライマーP16
配列番号17：プライマーP17
配列番号18：プライマーP18
配列番号19：プライマーP19
配列番号20：プライマーP20
配列番号21：プライマーP21
配列番号22：プライマーP22
配列番号23：プライマーP23
配列番号24：プライマーP24
配列番号25：プライマーP25
配列番号26：プライマーP26
配列番号27：プライマーP27
配列番号28：プライマーP28
配列番号29：otsA遺伝子塩基配列
配列番号30：OtsAアミノ酸配列
配列番号31：treY遺伝子塩基配列
配列番号32：TreYアミノ酸配列
配列番号33：プライマーP29
配列番号34：プライマーP30
【００６０】
【発明の効果】
本発明によれば、コリネ型細菌を用いた発酵法によるＬ−グルタミン酸の製造において、トレハロースの副生を抑制し、Ｌ−グルタミン酸の生産効率を向上させることができる。
【００６１】
【配列表】
0004304837.tif 000003
【００６２】
0004304837.tif 000004
【００６３】
0004304837.tif 000005
【００６４】
0004304837.tif 000006
【００６５】
0004304837.tif 000007
【００６６】
0004304837.tif 000008
【００６７】
0004304837.tif 000009
【００６８】
0004304837.tif 000010
【００６９】
0004304837.tif 000011
【００７０】
0004304837.tif 000012
【００７１】
0004304837.tif 000013
0004304837.tif 000014
【００７２】
0004304837.tif 000015
【００７３】
0004304837.tif 000016
【００７４】
0004304837.tif 000017
0004304837.tif 000018
【００７５】
0004304837.tif 000019
【００７６】
0004304837.tif 000020
【００７７】
0004304837.tif 000021
【００７８】
0004304837.tif 000022
0004304837.tif 000023
【００７９】
0004304837.tif 000024
【００８０】
0004304837.tif 000025
【００８１】
0004304837.tif 000026
0004304837.tif 000027
【００８２】
0004304837.tif 000028
【００８３】
0004304837.tif 000029
【００８４】
0004304837.tif 000030
【００８５】
0004304837.tif 000031
【００８６】
0004304837.tif 000032
0004304837.tif 000033
【００８７】
0004304837.tif 000034
【００８８】
0004304837.tif 000035
【００８９】
0004304837.tif 000036
0004304837.tif 000037
0004304837.tif 000038
0004304837.tif 000039
0004304837.tif 000040
【００９０】
0004304837.tif 000041
0004304837.tif 000042
0004304837.tif 000043
【００９１】
0004304837.tif 000044
0004304837.tif 000045
0004304837.tif 000046
0004304837.tif 000047
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0004304837.tif 000049
0004304837.tif 000050
【００９２】
0004304837.tif 000051
0004304837.tif 000052
0004304837.tif 000053
0004304837.tif 000054
【００９３】
0004304837.tif 000055
【００９４】
0004304837.tif 000056