(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
体液サンプル中の甲状腺刺激ホルモン（ＴＳＨ）レセプターに対する自己抗体のサンプルをスクリーニングする方法であって、自己抗体がＴＳＨと同様にＴＳＨレセプターの同じ部分と相互作用し、以下の工程：
（ａ）ＴＳＨレセプターの供給源を提供する工程；
（ｂ）該ＴＳＨレセプターを体液サンプルとともにインキュベートする工程；
（ｃ）該インキュベートされた体液サンプル中のＴＳＨレセプターに結合したＴＳＨレセプター抗体を定性的または定量的に検出する工程、
を包含し、
（ａ）のＴＳＨレセプターがさらにＴＳＨレセプターに対する少なくとも一つの抗体または抗体フラグメントと接触し、ここで抗体はＴＳＨおよびＴＳＨレセプター自己抗体を結合するＴＳＨレセプターの部分とは異なる部位でＴＳＨレセプターに結合し、それゆえ該抗体または抗体フラグメントが、（ｉ）ＴＳＨレセプターを固相に固定化し、それにより固定化されたＴＳＨレセプターがＴＳＨまたはＴＳＨレセプター自己抗体を同時に結合し得るか、または（ｉｉ）該ＴＳＨレセプターのための標識方法を提供し、それにより結果として生じる標識されたＴＳＨレセプターがＴＳＨまたはＴＳＨレセプター自己抗体を同時に結合し得るかのいずれかである、
方法。
【請求項２】
前記体液サンプルが、血液、血漿または血清を含む、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記固相がプラスチック材料、磁性材料または非磁性材料を含む、請求項１または２に記載の方法。
【請求項４】
ＴＳＨレセプターに対する前記抗体または抗体フラグメントが、モノクローナル抗体またはそのフラグメントを含む、請求項１〜３のいずれか１項に記載の方法。
【請求項５】
前記ＴＳＨレセプターに対する前記抗体または抗体フラグメントが固相に固定化されている、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。
【請求項６】
前記ＴＳＨレセプターに対する前記抗体または抗体フラグメントが標識されている、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。
【請求項７】
前記標識が、同位体標識を含む、請求項６に記載の方法。
【請求項８】
前記同位体標識が１２５Ｉを含む、請求項７に記載の方法。
【請求項９】
前記ＴＳＨレセプターに対する前記抗体または抗体フラグメントが、酵素、色素、蛍光物質または化学発光物質の手段で非同位体的に標識されている、請求項１〜４、または６のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１０】
ＴＳＨレセプターに対する前記抗体または抗体フラグメントが、有機化合物で間接的に標識されている、請求項１〜４、または６のいずれか１項に記載の方法。
【請求項１１】
前記有機化合物がビオチンを含む、請求項１０に記載の方法。
【請求項１２】
前記有機化合物が、該化合物について親和性を有するタンパク質と複合体化している、請求項１０または１１に記載の方法。
【請求項１３】
前記タンパク質が、アビジンまたはストレプトアビジンを含む、請求項１２に記載の方法。
【請求項１４】
請求項６〜１３のいずれか１項に記載の方法であって、工程（ｃ）が、抗ヒトＩｇＧ試薬を工程（ｂ）で得られるインキュベーション混合物に加えることを含む、方法。
【請求項１５】
工程（ｂ）で得られる前記インキュベーション混合物が、ＴＳＨをさらに含む、請求項１に記載の方法。
【請求項１６】
前記ＴＳＨが標識されている、請求項１５に記載の方法。
【請求項１７】
前記ＴＳＨが、固相に固定化されている、請求項１５に記載の方法。
【請求項１８】
請求項１５〜１７のいずれか１項に記載の方法であって、ＴＳＨレセプターに対する前記抗体または抗体フラグメントとの前記ＴＳＨレセプターの接触後、ＴＳＨがＴＳＨレセプターと接触させられる、方法。
【請求項１９】
請求項１５〜１７のいずれか１項に記載の方法であって、ＴＳＨレセプターに対する前記抗体または抗体フラグメントとの前記ＴＳＨレセプターの接触前に、ＴＳＨがＴＳＨレセプターと接触させられる、方法。
【請求項２０】
甲状腺刺激ホルモン（ＴＳＨ）レセプターに対する自己抗体について体液サンプルをスクリーニングするためのキットであって、自己抗体がＴＳＨと同様にＴＳＨレセプターの同じ部分と相互作用し、該キットが以下：
（ａ）ＴＳＨレセプターの供給源；
（ｂ）該ＴＳＨレセプターを体液サンプルとともにインキュベートするための手段；
（ｃ）該ＴＳＨレセプターに結合したＴＳＨレセプター自己抗体を定性的または定量的に検出するための手段、およびさらに、
（ｄ）ＴＳＨレセプターに対する少なくとも一つの抗体または抗体フラグメントであって、抗体がＴＳＨレセプターのＴＳＨを結合する部分とは異なる部位でＴＳＨレセプターを結合する抗体または抗体フラグメント、
を含み、
ここで該抗体または抗体フラグメントが、
（ｉ）ＴＳＨレセプターを固相に固定化し、それにより固定化されたＴＳＨレセプターがＴＳＨまたはＴＳＨレセプター自己抗体を同時に結合し得るか、または（ｉｉ）該ＴＳＨレセプターを標識し、それにより結果として生じる標識されたＴＳＨレセプターがＴＳＨまたはＴＳＨレセプター自己抗体を同時に結合し得るかのいずれかである、
キット。
【請求項２１】
前記体液サンプルが、血液、血漿または血清を含む、請求項２０に記載のキット。
【請求項２２】
前記固相がプラスチック材料、磁性材料または非磁性材料を含む、請求項２０または２１に記載のキット。
【請求項２３】
ＴＳＨレセプターに対する前記抗体または抗体フラグメントが、モノクローナル抗体またはそのフラグメントを含む、請求項２０〜２２のいずれか１項に記載のキット。
【請求項２４】
前記ＴＳＨレセプターに対する前記抗体または抗体フラグメントが、固相に固定化されている、請求項２０〜２３のいずれか１項に記載のキット。
【請求項２５】
前記ＴＳＨレセプターに対する前記抗体または抗体フラグメントが標識されている、請求項２０〜２３のいずれか１項に記載のキット。
【請求項２６】
前記標識が同位体標識を含む、請求項２５に記載のキット。
【請求項２７】
前記同位体標識が１２５Ｉを含む、請求項２６に記載のキット。
【請求項２８】
前記ＴＳＨレセプターに対する前記抗体または抗体フラグメントが、酵素、色素、蛍光物質または化学発光物質の手段で非同位体的に標識されている、請求項２０〜２３、または２５のいずれか１項に記載のキット。
【請求項２９】
ＴＳＨレセプターに対する前記抗体または抗体フラグメントが、有機化合物で間接的に標識されている、請求項２０〜２３、または２５のいずれか１項に記載のキット。
【請求項３０】
前記有機化合物がビオチンを含む、請求項２９に記載のキット。
【請求項３１】
前記有機化合物が、該化合物について親和性を有するタンパク質と複合体化している、請求項２９または３０に記載のキット。
【請求項３２】
前記タンパク質が、アビジンまたはストレプトアビジンを含む、請求項３１に記載のキット。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
本発明は、ＴＳＨレセプター自己抗体を検出またはモニターするためのアッセイ（キットおよび分析方法）に関する。
【０００２】
グレーブズ病と関連する甲状腺機能亢進は、甲状腺刺激ホルモン（ＴＳＨ）についての甲状腺レセプターに対する自己抗体に起因することが公知である。この自己抗体は、そのレセプターに結合し、そして天然のリガンド（ＴＳＨ）の作用を模倣し、それにより、甲状腺に高レベルの甲状腺ホルモンを産生させる（Ｅｎｄｏｃｒｉｎｅ  Ｒｅｖｉｅｗｓ  １９８８、第９巻、Ｎｏ．１、１０６−１１７頁に記載される）。
【０００３】
ＴＳＨレセプター自己抗体（ＴＲＡｂ）の検出またはモニターは、グレーブズ病の診断および管理において、重要であり、そして現在２つのタイプのアッセイが使用されている。すなわち、
（ａ）ＴＲＡｂがＴＳＨレセプターの調製物に対する125Ｉ標識ＴＳＨの結合を阻害する能力を測定する競合結合アッセイ；および
（ｂ）ＴＲＡｂが培養中の甲状腺細胞（またはＴＳＨレセプター遺伝子をトランスフェクトした他の細胞）を刺激する能力を測定するバイオアッセイ。
【０００４】
現在、競合結合アッセイ（上記のタイプ（ａ））がより広範に用いられている。なぜなら、上記（ｂ）で言及した型のバイオアッセイは、高価で、時間がかかり、非常に熟練したスタッフを必要とし、そして広範な慣用用途には適切ではないからである。現在の競合結合アッセイでは、一般的には試験血清サンプル（５０μｌ）が、界面活性剤で可溶化したブタＴＳＨレセプター（５０μｌ）とともにインキュベートされる。試験血清に存在するＴＲＡｂは、このインキュベーション中にそのＴＳＨレセプターと結合する。次いで、125Ｉ標識ＴＳＨを添加し、そしてそのインキュベーションを継続する。この第二のインキュベーションの間に、標識ＴＳＨは、まだＴＲＡｂに占有されていないＴＳＨレセプターに結合する。最後に、ＴＳＨレセプターに結合した125Ｉ標識ＴＳＨは、遊離の標識ＴＳＨから、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）の添加により分離される。ＰＥＧは、レセプターに結合したＴＳＨを沈澱させるが、遊離のＴＳＨは沈澱させない。次いで、沈澱物（遠心分離によって分離される）における放射能を計測する。このアッセイでは、試験サンプル中のＴＲＡｂがＴＳＨレセプターに対する標識ＴＳＨの結合を阻害し、そしてこれが沈殿物における放射能を低下させる。アッセイ結果は、標識ＴＳＨ結合の阻害指数として、または１セットのアッセイ標準物質の使用により表現され得る。
【０００５】
この従来のアッセイの主な制限は以下のとおりである。
【０００６】
（ａ）このアッセイは、標識ＴＳＨとＴＳＨレセプターとの間の競合を測定し、そしてこのレセプターとよく結合するがＴＳＨ結合を強くは阻害しないような方法ではないＴＲＡｂを検出しないかもしれない。
【０００７】
（ｂ）このアッセイは、ポリエチレングリコールを使用して結合したレセプターと遊離の標識ＴＳＨとを分離する。これは、すべての血清イムノグロブリンの共沈および比較的大きなペレットの形成をもたらす。このペレットは、放射能について計測され得るが、酵素または化学発光物質のような非放射性物質で標識したＴＳＨ（または他のタンパク質もしくはペプチド）を検出するには適切な調製物ではない。これは、そのペレット中の血清成分が発光のようなプロセスに干渉するからである。さらに、ＰＥＧ沈澱の使用は、遠心分離の使用を必要とし、
そしてこれは、自動化には不適切な、時間がかかり、かつ煩雑な手順であるからである。
【０００８】
本発明は、上記に言及した競合結合型のＴＲＡｂについてのアッセイのための手順およびキットに関する。本発明はまた、直接結合型のＴＲＡｂアッセイのための手順およびキットに関する。このアッセイでは、レセプターとＴＲＡｂとの間の直接の相互作用が使用される。
【０００９】
本発明に従って、体液サンプル中の甲状腺刺激ホルモン（ＴＳＨ）レセプターに対する自己抗体をモニターする方法が提供される。この方法は、以下の順で、以下の工程：
（ａ）（ｉ）固相に固定したブタＴＳＨレセプターもしくはそのフラグメント、または（ｉｉ）標識抗体と複合体化しているＴＳＨレセプターを提供する工程；
（ｂ）このＴＳＨレセプターを体液サンプルとインキュベートする工程；
（ｃ）このＴＳＨレセプターを含むこのインキュベートされた体液サンプルを、ＴＳＨレセプター自己抗体（ＴＲＡｂ）との競合反応においてこのＴＳＨレセプターと結合し得る結合剤の少なくとも１つと反応させる工程、または、このＴＳＨレセプターが（ｉｉ）である場合、このインキュベートされた体液サンプルを、工程（ｂ）の間または後に、このＴＲＡｂとこのＴＳＨレセプターとの結合に実質的に干渉しないような方法でＴＲＡｂと結合し得る結合剤の少なくとも１つと反応する工程；ならびに
（ｄ）この反応したインキュベートされた体液サンプル中の結合したＴＲＡｂを定性的または定量的に検出する工程、を包含する。
【００１０】
本発明の好ましい特徴に従って、この体液サンプルは血液、血漿または血清を含む。
【００１１】
本発明は、ＴＳＨレセプターを標識または固定化するための抗体の使用を包含し、この固定化または標識したＴＳＨレセプターは、それがＴＳＨおよび／またはＴＲＡｂを結合する能力を保持するように存在する。
【００１２】
本発明は好ましくは、このＴＳＨレセプターに対するモノクローナル（またはポリクローナル）抗体の使用に関し、この抗体は、ＴＳＨおよびＴＲＡｂを結合するレセプターの部分とは異なる部位にてこのレセプターと強力に結合している。この抗体は、ＴＳＨまたはＴＲＡｂと同時に強力にそのレセプターと結合し得、そしてこれを使用して現在のＴＲＡｂアッセイ方法の制限の多くを軽減し得る。
【００１３】
本発明の第一の実施態様において、この抗体は、標準的な手順を用いて、固相（例えば、プラスチックチューブまたはプラスチックプレートあるいは磁性粒子または非磁性粒子）に固定化され得る。次いで、この固相は、ＰＥＧの代わりに用いられて、遊離の標識ＴＳＨから、ＴＳＨレセプターに結合した標識ＴＳＨを分離し得る。ＴＳＨ（または類似のリガンド）は、同位体標識または非同位体標識で標識され得る。
【００１４】
この第一の実施態様にはいくつかの適用が存在し、このうち以下が模式的な例である。
【００１５】
【化１】
0004331403.tif 000002
【００１６】
【化２】
0004331403.tif 000003
（ｉｉｉ）  上記の（ｉ）および（ｉｉ）において、レセプターＡｂは、固相に「間接的」に結合され得る。例えば、Ａｂは、ビオチン化され得、そしてアビジンまたはストレプトアビジンを含む固相と反応し得る。
【００１７】
【化３】
0004331403.tif 000004
【００１８】
【化４】
0004331403.tif 000005
本発明の第二の実施態様において、この抗体は、125Ｉのような同位体標識で、または酵素、色素もしくは化学発光化合物のような非同位体標識で、直接標識され得る。あるいは、この抗体は、例えば、アビジン−ビオチン系を用いて間接的に標識され得る。次いで、この標識抗体を用いて、ＴＳＨレセプター自体を標識し、次いでレセプターと抗体とのこの複合体を用いてＴＲＡｂを検出および／またはモニターする（定性的または定量的のいずれかで）。
【００１９】
このアプローチの例を以下に模式的に記載する。
【００２０】
【化５】
0004331403.tif 000006
この系において、試験サンプル中の漸増量のＴＲＡｂは、最終複合体において漸増量の標識Ａｂをもたらす。
【００２１】
（ｉｉ）この例は、抗体（それ自体が同位体標識または非同位体標識で標識されている）で標識された固相（□−ＴＳＨ）レセプターとＴＳＨ（または類似のリガンド）との、直接または間接的な結合に依存する。この抗体は、この固定化したＴＳＨ（または類似のリガンド）と結合し得る。この結合は、以下のようにＴＲＡｂによって阻害される。
【００２２】
【化６】
0004331403.tif 000007
本発明の第一および第二の実施態様を参照して上記に記載されたスキームは、本発明の特定の利点を例示する。固定化された抗体を使用して、ＴＳＨレセプターを、そのレセプターが、それがＴＳＨおよび／またはＴＲＡｂを結合する能力を保持するような様式でＴＳＨレセプターを標識または固定し得る。あるいは、その固定化された抗体は、患者の血清においてＴＲＡｂ（またはＴＳＨレセプターと相互作用する他のリガンド）をモニターするため、またはＴＳＨレセプターの精製のために使用され得る。
【００２３】
特に、この抗体を用いてＴＳＨレセプターを標識する能力は、上記の本発明の第二の実施態様におけるように、ＴＲＡｂとＴＳＨレセプターとの直接の相互作用のモニターを可能にする。さらに、本発明は、ＴＳＨおよびＴＲＡｂとの相互作用の前、間または後のレセプターの固定化を可能にする。このレセプターを固定化するこの能力を使用して、ＰＥＧおよび／または同位体標識に依存しない新たなＴＲＡｂアッセイを作製し得る。このようなアッセイは、自動化および免疫クロマトグラフィー系に適切であり得る。
【００２４】
ＴＳＨレセプター（ＴＳＨＲ）は、甲状腺細胞の表面上にはほんのわずかな数しか存在しない（１細胞当たり約１０3レセプター）。このことで、天然の供給源からレセプターを精製することは非常に困難であった（「Ｂａｉｌｌｉｅｒｅ’ｓ  Ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｙ  ａｎｄ  Ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ」、１９９７、第ＩＩ巻、４５１〜４７４頁、Ｓａｎｄｅｒｓに記載される）。
【００２５】
対照的に、組換えＴＳＨＲは、哺乳動物細胞（例えば、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞）において、１細胞当たり約１０5〜１０6レセプターというはるかに高いレベルで発現され得る（Ｓａｎｄｅｒｓ）。さらに、非甲状腺細胞において産生される組換えＴＳＨＲ調製物には、サイログロブリンまたは甲状腺ペルオキシダーゼのような他の甲状腺自己抗原は混入していない（Ｓｐｒｉｎｇｅｒ  Ｓｅｍｉｎａｒｓ  ｉｎ  Ｉｍｍｕｎｏｐａｔｈｏｌｏｇｙ、１９９３、３０９−３１８頁、Ｆｕｒｍａｎｉａｋ）。
【００２６】
哺乳動物細胞において産生される組換えＴＳＨＲ調製物は、天然のレセプターのものと類似のＴＳＨおよびＴＲＡｂ結合特性を示す唯一のものである。例えば、このような結合特性は、酵母、昆虫細胞または細菌において産生されない。これは、ＴＳＨＲの構造とＴＳＨ／ＴＲＡｂの結合部位との間の非常に複雑な関係のためである。このＴＳＨＲの翻訳後プロセシングおよび「成熟」タンパク質の折り畳みは、哺乳動物細胞環境において最も良く達成される（Ｓａｎｄｅｒｓを参照のこと）。
【００２７】
そのＴＳＨおよびＴＲＡｂ結合活性がインタクトな、哺乳動物細胞からの組換えＴＳＨＲの大量精製は、報告されていない。主要な問題の一つは、ＴＳＨＲの細胞外部分と相互作用するマウスモノクローナル抗体との結合後のＴＳＨ／ＴＲＡｂ結合活性の欠失である（Ｓａｎｄｅｒｓ）。また、これまでに、ＴＲＡｂの慣用される測定についての新たな、そして簡便な戦略の開発には成功していない。
【００２８】
本発明の好ましい特徴は、以下の非限定的な詳細な実施例によって例示される。
【００２９】
（実施例）
（１．ブタＴＳＨＲ  ｃＤＮＡのクローニング）
ＲＮＡをブタ甲状腺組織から、グアニジウムチオシアネート−フェノールクロロホルム法（ＣｈｏｍｃｚｙｎｓｋｉおよびＳａｃｃｈｉ，Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．第１６２巻、１９８７、１５６−１５９頁）を用いて抽出した。ｍＲＮＡを総ＲＮＡから、ＤｙｎａｌビーズｍＲＮＡ精製キット（Ｄｙｎａｌ、Ｗｉｒｒａｌ  Ｌ６２  ＳＡＺ  ＵＫ）を用いて精製した。このｍＲＮＡを用いてｃＤＮＡライブラリを、ＺａｐＥｘｐｒｅｓｓ  ｃＤＮＡ  Ｇｉｇａｐａｃｋ  Ｃｌｏｎｉｎｇ  Ｋｉｔ  ＩＩＩ（Ｓｔｒａｔｅｇｅｎｅ  Ｌｔｄ．、Ｃａｍｂｒｉｄｇｅ  ＣＢ４  ４ＤＦ  ＵＫ）を用いて作製した。４つの縮重オリゴヌクレオチドを、公知のＴＳＨＲ配列（マウス、ラット、ヒト、イヌおよびウシ）に対して作製し、そしてブタＴＳＨＲの２つのフラグメントを、ＰＣＲを用いて増幅した。これらを配列決定して、ＴＳＨＲ  ｃＤＮＡとのそれらの相同性を確認し、そしてこれを用いて全長ブタＴＳＨＲクローンについてこのｃＤＮＡライブラリーをスクリーニングした。３つの全長クローンを得、そして全配列決定した。
【００３０】
（２．ＣＨＯ細胞におけるブタ組換えＴＳＨＲタンパク質の発現）
全長ｐＴＳＨＲ  ｃＤＮＡの５’非翻訳領域（５’ＵＴＲ）におけるＡＴＧ開始コドンをＰＣＲにより取り出し、そしてこのｃＤＮＡをｐｃＤＮＡ３．１（＋）（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ  ＢＶ、９３５１、ＮＶ、Ｌｅｅｋ、Ｔｈｅ  Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ）にクローニングした。全長ＴＳＨＲをコードするＤＮＡをＣＨＯ細胞（ＥＣＡＣＣ，Ｐｏｒｔｏｎ  Ｄｏｗｎ  ＳＰ４  ＯＪＧ  ＵＫからのＣＨＯ−ＫＩ）に、エレクトロポレーションによりトランスフェクトした。ＴＳＨＲを発現するクローンを、２４ウェルプレート上に増殖する細胞に対する直接的な125Ｉ  ＴＳＨ結合を用いて検出した。最高のＴＳＨ結合を示すクローンを増殖させ、そして限界希釈により二回再クローニングした。１細胞当たり約４×１０5ＴＳＨＲを発現する１つの安定な細胞株を、組換えＴＳＨＲの増殖および産生のために選択した。
【００３１】
（３．界面活性剤で可溶化した組換えブタＴＳＨＲの調製）
ＴＳＨＲを発現するＣＨＯ細胞をコンフルエントにまで増殖させ、ローラーボトルから剥離し、そしてこの細胞ペレットを、１ｍＭフェニルメチルスルホニルフルオリド（ＰＭＳＦ）を含む氷冷５０ｍＭ  ＮａＣｌ、１０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．５で洗浄し、次いで同一の緩衝液中にホモジナイズした。１２０００ｇで３０分間４℃で遠心分離した後の細胞膜を、１％Ｔｒｉｔｏｎ  Ｘ−１００を添加したことを除いてホモジナイズするために使用したのと同じ緩衝液（約４×１０8細胞について４ｍｌの緩衝液）中に可溶化した。可溶化したレセプター調製物を９０，０００ｇで２時間４℃で遠心分離し、そしてその上清を−７０℃で保存した。
【００３２】
（４．ブタＴＳＨＲタンパク質のＣ末端の発現）
Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ  ｃｏｌｉにおいて、グルタチオン  Ｓ−トランスフェラーゼ（ＧＳＴ）との融合タンパク質としての発現を、標準的なプロトコル（Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｙ（１９９８）第２０巻、２３３−２４４頁、Ｏｄａに記載される）を用いて、実施した。最後の１６０アミノ酸をコードする、ｃＤＮＡの３’末端（１８０９〜２２９５ｂｐ）をｐＧＥＸ２Ｔベクター（Ｐｈａｒｍａｃｉａ  Ｂｉｏｔｅｃｈ、Ｓｔ．Ａｌｂａｎｓ  ＡＬ１  ３ＡＷ  ＵＫ）においてＧＳＴ融合タンパク質とインフレームにクローニングした。ｐＧＥＸ−２Ｔ／ＴＳＨＲプラスミドで形質転換したＥ．ｃｏｌｉ（ＵＴ５８０株）の一晩培養物を、２×ＹＴＧ培地（１リットル当たり、１６ｇトリプトン、１０ｇ酵母抽出物、５ｇＮａＣｌ、２０ｇグルコース、ｐＨ７．０）中に１／５に希釈し、３０℃で３時間インキュベートした。その後、イソプロピル−３−Ｄ−チオガラクトピラノシド（ＩＰＴＧ）を、タンパク質発現を誘導するために１ｍＭの最終濃度で添加し、次いでさらに３時間インキュベートした。細菌ペレットを、１％  Ｔｒｉｔｏｎ  Ｘ−１００を含むＰＢＳ（１リットル当たり、８ｇ  ＮａＣｌ、０．２ｇ  ＫＣｌ、１．４４ｇ  Ｎａ2ＨＰＯ4および０．２４ｇ  ＫＨ2ＰＯ4、ｐＨ７．４）中に再懸濁し、そして氷上で１分間の超音波処理を３回行った。封入体をペレット化し、４Ｍ尿素で洗浄し、８Ｍ尿素中に可溶化し、そして９％ポリアクリルアミドゲル（ＳＤＳ−ポリアクリルアミド電気泳動、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）上で、還元条件下で分離した。ＴＳＨＲ／ＧＳＴ融合タンパク質（分子量４４ｋＤａ）を、０．１Ｍ  ＮａＨＣＯ3および０．１％  ＳＤＳ  ｐＨ７．８中でポリアクリルアミドゲルスライスから電気溶出し、５０ｍＭ  Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ（ｐＨ８．０）に対して透析し、そして−７０℃でアリコートで保存した。
【００３３】
（５．ブタＴＳＨＲに対するモノクローナル抗体の調製および精製）
電気溶出したＴＳＨＲ／ＧＳＴタンパク質を使用して、ＴＳＨＲに対する抗体力価が高くなるまでＢＡＬＢ  Ｃマウスを免疫した（マウス１匹１回の注射あたり５０μｇ）。マウス血清中のＴＳＨＲ抗体レベルを、インビトロ転写／翻訳系（Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ｅｎｄｏｃｒｉｎｏｌｏｇｙ  ａｎｄ  Ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ、第８２巻（１９９７）Ｎｏ．４、１２８８〜１２９２頁、Ｐｒｅｎｔｉｃｅに記載されている方法を参照のこと）において産生された35Ｓ標識したＴＳＨＲに基づく免疫沈降アッセイを用いて試験した。マウス脾細胞を、標準的な技術（Ｏｄａ）を用いて、マウスミエローマ細胞株（ＥＣＡＣＣからのＸ６３−Ａｇ８．６５３）と融合し、そしてクローニングしてＴＳＨＲ抗体を分泌する安定なハイブリドーマを産生した。抗体４Ｅ３１は、免疫沈降アッセイにおいて35Ｓ−ＴＳＨＲ抗体を沈降させること、およびウェスタンブロット分析においてＴＳＨＲと良好に反応することが見い出された。４Ｅ３１を、ハイブリドーマ培養上清から、Ｐｒｏｓｅｐ−Ａ（Ｂｉｏｐｒｏｃｅｓｓｉｎｇ、Ｃｏｎｓｅｔｔ  ＤＨ８  ６ＴＪ  ＵＫ）カラム上のクロマトグラフィーにより精製した。Ｆａｂ2フラグメントを、ペプシンによる消化（７０ｍＭ酢酸ナトリウム、５０ｍＭ  ＮａＣｌ  ｐＨ４．０中の１ｍｇ／ｍｌのペプシン濃度、ＩｇＧ対酵素比は５：１である）およびインタクトなＩｇＧを吸着するためのＰｒｏｓｅｐ  Ａ上のクロマトグラフィー後に得た。約１ｍｇ／ｍｌの４Ｅ３１  Ｆａｂ2調製物を、−７０℃でアリコートで保存した。
【００３４】
（６．４Ｅ３１抗体のＴＳＨレセプター結合特性）
可溶化した組換えブタＴＳＨレセプターを、125Ｉ標識ＴＳＨとインキュベートして、125Ｉ標識ＴＳＨ−ＴＳＨレセプター複合体を形成した。４Ｅ３１  ＩｇＧ（またはコントロールＩｇＧ）を、それを磁性ラテックスビーズに結合させることにより固定化し、そしてこれらのビーズ（１００μｌ；１μｇの４Ｅ３１）を、予め形成した125Ｉ標識ＴＳＨ−ＴＳＨレセプター複合体（１００μｌ）とインキュベートした。３７℃で１時間後、ビーズを、磁石上で分離し、洗浄しそして125Ｉについて計測した。125Ｉ標識ＴＳＨ−ＴＳＨレポーター複合体のサンプルをＰＥＧを用いて沈澱させて、存在する遊離の標識ＴＳＨの量を決定した。表１は得られた結果を示す。
【００３５】
【表１】
0004331403.tif 000008
（使用したコントロールＩｇＧは、グルタミン酸デカルボキシラーゼに対するマウスモノクローナル抗体であった）
これらの研究は、４Ｅ３１がＴＳＨと同時にＴＳＨレセプターと結合し得ることを明らかに示した。さらに、固体支持体に結合した４Ｅ３１を使用して、ＴＳＨレセプターに結合したＴＳＨを遊離のＴＳＨから分離して、ＰＥＧを用いて得られたものと類似の結果を得た。
【００３６】
表２は、個々の健常ヒトドナー血清の存在下で、添加した標識ＴＳＨのうちの約５５％が４Ｅ３１および組換えブタＴＳＨレセプターでコートしたチューブに結合したことを示す（本発明の第一の実施態様、上記のスキームｉｉに従う）。類似の結合が、橋本甲状腺炎の患者および全身性エリテマトーデス（ＳＬＥ）の患者の血清の場合においても観察された。しかし、グレーブズ病の５人の患者からの血清では、顕著に少ない標識ＴＳＨ結合（約３５％）が存在した。５つすべての血清は、天然ブタＴＳＨレセプターへのＴＳＨ結合の阻害およびＰＥＧを用いてレセプターに結合したＴＨＳと遊離のＴＳＨとの分離により判断される場合に容易に検出可能な量のＴＳＨレセプター自己抗体を含んでいた。
【００３７】
（表２．４Ｅ３１（Ｆａｂ）2、次いで組換えブタＴＳＨレセプターでコートしたプラスチックチューブに対する標識ＴＳＨの結合。異なる血清の効果）
【００３８】
【表２】
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表３は、４Ｅ３１を介して天然の（すなわち、組換えでない）ブタＴＳＨレセプターでコートしたチューブでの類似の結果を示す。ここでも、このコートされたチューブのアッセイで得られた結果は、ＰＥＧ分離法で得られた結果と類似する。
【００３９】
（表３．４Ｅ３１（Ｆａｂ）2、次いで天然の界面活性剤で可溶化したブタＴＳＨレセプターでコートしたプラスチックチューブに対する標識ＴＳＨの結合）
【００４０】
【表３】
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表２および表３に示した125Ｉ結合−ＴＳＨに対する阻害効果は、血清中のＴＲＡｂの濃度に依存していた。表４に示されるように、漸増量のＴＲＡｂの標準調製物（甲状腺刺激抗体、第一国際基準９０／６７２）は、ＴＳＨ結合阻害に対して、用量依存効果を有していた。
【００４１】
【表４】
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（125Ｉ−４Ｅ３１  Ｆａｂ2−ＴＳＨ複合体の直接の沈降）
本発明の別の実施例（本発明の第二実施態様、上記スキーム（ｉ）に従う）は、４Ｅ３１（Ｆａｂ）2が125Ｉで標識され、そしてＴＳＨレセプターと反応するアッセイである。次いで、この複合体を、患者血清中のＴＳＨレセプター自己抗体とインキュベートし、そして得られた三分子（ｔｅｒｍｏｌｅｃｕｌａｒ）複合体は、固相プロテインＡの添加により沈降する。１例を表５に示す。
【００４２】
（表５．125Ｉ−４Ｅ３１（Ｆａｂ）2で標識した組換えブタＴＳＨレセプターと、ＴＳＨレセプター自己抗体との間の反応）
【００４３】
【表５】
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（グレーブズ病の血清１８および１９は、天然のブタＴＳＨレセプターを用いたＰＥＧ沈降方法においてそれぞれ３１％および７３％のＴＳＨ結合の阻害値を与えた。
【００４４】
４Ｅ３１は、ビオチンで標識され得、ストレプトアビジンコートチューブに結合され得、次いでブタＴＳＨレセプターと反応され得る。本発明の第一の実施態様、スキーム（ｉｉｉ）ｂを参照のこと。この方法で固定化したレセプターは、容易に125Ｉ標識ＴＳＨに結合し、そしてこの結合は、患者の血清においてＴＳＨレセプター自己抗体によって阻害された。１例を表６に示す。
【００４５】
（表６  ビオチン化４Ｅ３１（Ｆａｂ）2を介してストレプトアビジンでコートしたチューブに結合したＴＳＨレセプターに対する標識ＴＳＨの結合、およびＴＲＡｂの効果）
【００４６】
【表６】
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本発明は、今や、例示の目的のみである以下の図面を参照することにより例示される。
【図面の簡単な説明】
【図１】  図１は、ＴＲＡｂでコートしたチューブを用いて甲状腺刺激ホルモンレセプターに対する自己抗体をモニターする方法を用いた結果と、ＰＥＧ沈降アッセイを用いる方法を用いた結果の間の相関を示す。ここで両方の方法は、125Ｉ標識ウシＴＳＨを使用する。さらに、ＴＲＡｂでコートしたチューブを用いた方法での異なる患者群における結果を示す。
【図２】  図２は、ＴＳＨレセプターでコートしたプレートを用いるＥＬＩＳＡ方法の結果を示す。２ａはＴＲＡｂ基準９０／６７２の、レセプターでコートしたプレートへのブタＴＳＨ結合に対する効果を示す。２ｂは、ＥＬＩＳＡ方法およびＰＥＧ沈降アッセイの比較を示す。そして、ウシＴＳＨを用いるＴＲＡｂ  ＥＬＩＳＡ方法での異なる患者群における結果を２ｃに示す。
【図３】  図３は、従来使用されているＴＲＡｂアッセイ方法と、本発明による直接沈降アッセイ方法との間の相関を示す。さらに、直接ＴＲＡｂアッセイでの異なる患者群における結果を示す。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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