(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
配列番号１の天然発生ＲＡＮＴＥＳのアミノ酸末端１−２に相当するＮＨ2-末端アミノ酸を欠き、ケモカインアンタゴニスト活性を有する、アミノ末端切除型ＲＡＮＴＥＳ。
【請求項２】
配列番号２のアミノ酸配列からなる、請求項１記載のアミノ末端切除型ＲＡＮＴＥＳ。
【請求項３】
グリコシル化型の、請求項１または２記載のアミノ末端切除型ＲＡＮＴＥＳ。
【請求項４】
請求項１から３のいずれか一項記載の本発明のアミノ末端切除型ＲＡＮＴＥＳをコードするＤＮＡ配列及び遺伝子コードの縮重により同じアミノ末端切除型ＲＡＮＴＥＳをコードするが異なる核酸配列の全てを含むＤＮＡ配列を含むＤＮＡ分子。
【請求項５】
任意の請求項４記載のＤＮＡ分子を含む、発現ベクター。
【請求項６】
請求項５の発現ベクターを含む宿主細胞。
【請求項７】
請求項６記載の細胞を適当な培養基内で培養することを含む、請求項１から３のいずれか一項に記載の任意のタンパク質を調製するための組換え方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
発明の分野
本発明は、天然発生ＲＡＮＴＥＳのアミノ酸残基１、１−２、１−３、または１−４に相当するＮＨ2-末端アミノ酸を欠き、ケモカインアンタゴニスト活性を有するアミノ末端切除型ＲＡＮＴＥＳ、ならびにそれらをコードするｃＤＮＡ配列、ケモカイン効果のアンタゴニスト活性を必要とする疾病の治療および／または診断へのそれらの使用、およびそれらを含む医薬組成物、に関する。
発明の背景
ケモカインは、白血球の走化性および活性化の性質と共に、小さい前炎症性サイトカインファミリーを構成する。第一のシステインの位置によって、サイトカインファミリーは、Ｃ−Ｃ、Ｃ−Ｘ−ＣおよびＣ−Ｘ3 −Ｃケモカインに分けることができる（Ｂａｇｇｉｏｌｉｎｉ  Ｍ．ら、１９９４；Ｂａｇｇｉｏｌｉｎｉ  Ｍ．ら、１９９７およびＴａｕｂ  Ｄ．ら、１９９６）。
【０００２】
インターロイキン−８（ＩＬ−８）の様な数多くのＣ−Ｘ−Ｃケモカインは、好中球に対して走化性であるが、単球走化性タンパク質−３（ＭＣＰ−３）の様なＣ−Ｃケモカインは、単球、リンパ球、好酸球、好塩基球、ＮＫ細胞および樹状突起細胞を含む、様々な白血球に活性である。
【０００３】
ケモカインのＮＨ2-末端ドメインは、レセプター結合ドメイン内に含まれ、ＮＨ2-末端のプロセシングは、ケモカインを活性化できる場合もあるが、活性を減少させるか、または完全に不活性化する場合もある。
【０００４】
Ｃ−Ｘ−Ｃケモカイン血小板塩基性タンパク質は、２４のＮＨ2-末端残基を除去した後にのみ、好中球走化性ペプチド(neutrophil chemotactic peptide)（ＮＡＰ−２）になる（Ｗａｌｚ  Ａ．ら、１９８９およびＶａｎ  Ｄａｍｍｅ  Ｊ．ら、１９９０）。
【０００５】
ＩＬ−８からの８残基までのＮＨ2-末端の欠損は、走化性活性を強化するが、すべての好中球走化性Ｃ−Ｘ−Ｃケモカインの最初のＣｙｓの前に位置するＧｌｕ−Ｌｅｕ−Ａｒｇモチーフのさらなる切断は、完全な不活性化の原因となる。（Ｃｌａｒｋ−Ｌｅｗｉｓ  Ｉ．ら、１９９１）。
【０００６】
別のＣ−Ｘ−Ｃケモカイン、顆粒球走化性タンパク質−２(Granulocyte chemotactic protein-2)（ＧＣＰ−２）、の同様のＮＨ2−末端タンパク質分解（最大で８アミノ酸）は、好中球走化性活性に影響を与えなかった（Ｐｒｏｏｓｔ  Ｐ．ら、１９９３ａ）。
【０００７】
ＲＮＡＴＥＳ［「活性化時に調節され、通常Ｔ細胞を発現し、多分分泌される」("Regulated upon Activation,Normally T Expressed,and Presumably Secreted")アクロニン(acronum) である］は、Ｃ−Ｃケモカインであり、そのｃＤＮＡクローンは、Ｔ細胞特異的配列に富むｃＤＮＡライブラリーより単離された（Ｓｃｈａｌｌ，Ｔ．Ｊ．ら、１９８８）。
【０００８】
８−９のＮＨ2-末端アミノ酸を欠いた合成Ｃ−ＣケモカインＭＣＰ−１、ＭＣＰ−３およびＲＡＮＴＥＳは、単球に不活性であるが、レセプターアンタゴニストとしては有効である（Ｇｏｎｇ  Ｊ．ら、１９９５およびＧｏｎｇ，Ｊ．ら、１９９５）
ＲＡＮＴＥＳに一つのメチオニンを延長すると、分子は完全に不活性化されるが、Ｍｅｔ−ＲＡＮＴＥＳは、標準のＲＡＮＴＥＳのアンタゴニストとして働く。（Ｐｒｏｕｄｆｏｏｔ  Ａ．Ｅ．ら、１９９６）。
発明の説明
本発明の主な目的は、天然発生ＲＡＮＴＥＳのアミノ酸残基１、１−２、１−３、または１−４に相当するＮＨ2-末端アミノ酸を欠き、ケモカインアンタゴニスト活性を有する、アミノ末端切除型ＲＡＮＴＥＳである。
【０００９】
本発明の一つの特別な目的は、図１および配列番号２に示すような、最初の２つのアミノ酸を欠くＲＡＮＴＥＳである、ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）である。
【００１０】
本発明のアミノ末端切除型ＲＡＮＴＥＳは、グリコシル化または非グリコシル化型で存在することができる。
【００１１】
用語「ケモカインアンタゴニスト」とは、「成熟型の全長の天然発生ケモカインに対してアンタゴニストとして作用する」ことを意味する。
【００１２】
本発明のもう一つの目的は、本発明のアミノ末端切除型ＲＡＮＴＥＳをコードするＤＮＡ配列を含むＤＮＡ分子であり、実質的に同一のヌクレオチド配列を含む。完全なＲＡＮＴＥＳのｃＤＮＡ配列は、Ｓｃｈａｌｌ  Ｔ．Ｊ．ｒａ（１９８８）に開示されており、切除型ＲＡＮＴＥＳのｃＤＮＡを容易に誘導することができる。
【００１３】
「実質的に同一のヌクレオチド配列」には、遺伝子コードの縮重により、与えられたアミノ酸配列をコードする、その他のすべての核酸配列が含まれる。
【００１４】
また、本発明は、上記のＤＮＡｓを含む発現ベクター、そのようなベクターでトランスフォームされた宿主細胞、および、上記の形質転換細胞の適当な培養基内での培養を通して、本発明のそのようなアミノ末端切除型ＲＡＮＴＥＳを調製する方法を含む。
【００１５】
本発明のタンパク質をコードするＤＮＡ配列を、適当なプラスミド内に挿入し連結することができる。できあがると、発現ベクターは適当な宿主細胞内に導入され、次にベクター（類）を発現させて、所望のタンパク質を得ることができる。
【００１６】
本明細書中に取り上げた本発明の任意の組換えタンパク質の発現は、適当な発現ベクターを用いて、真核生物細胞（例えば酵母、昆虫または哺乳動物細胞）または原核生物細胞内で達成することができる。この技術分野で既知の任意の方法を用いることができる。
【００１７】
例えば、任意の上記の方法によって得られたタンパク質をコードするＤＮＡ分子は、この技術分野で周知の技術によって、適当な構築発現ベクター内に挿入される（Ｓａｍｂｒｏｏｋら、１９８９を参照のこと）。二本鎖ｃＤＮＡを、ホモポリマーテイリングによって、または合成ＤＮＡリンカーの使用またはブラントエンド連結反応技術を含む制限連結法によって、プラスミドベクターに連結し：ＤＮＡリガーゼを用いてＤＮＡ分子を連結し、望ましくない結合をアルカリホスファターゼ処理により除去する。
【００１８】
所望のタンパク質を発現する能力を持たせるために、発現ベクターは、遺伝子の発現およびタンパク質の生成を許すような方法で所望のタンパク質をコードするＤＮＡと連結した転写および翻訳調節情報を含む具体的ヌクレオチド配列も含まねばならない。最初に、遺伝子が転写されるためには、ＲＮＡポリメラーゼによって認識されうるプロモーターが先行しなければならず、それにポリメラーゼが結合し、それによって転写プロセスが開始される。用いられるそのようなプロモーターは様々であり、異なる効率（強いプロモーターおよび弱いプロモーター）で働く。
【００１９】
真核生物宿主では、宿主の姿に依存して、異なる転写および翻訳調節配列を用いることができる。それらは、アデノウイルス、ウシパピローマウイルス、サルウイルスまたはその類似ウイルス等のような、ウイルス源より誘導することができ、調節シグナルは、高レベルで発現する特定の遺伝子と関連する。例として、ヘルペスウイルスのＴＫプロモーター、ＳＶ４０早期プロモーター、酵母ｇａｌ４遺伝子プロモーター等があげられる。抑制および活性化を可能にする転写開始調節シグナルを選択することができ、そうすることによって遺伝子の発現を調節することができる。
【００２０】
本発明のタンパク質をコードするヌクレオチド配列を含むＤＮＡ分子は、機能し得るように連結された転写および翻訳調節シグナルを持ち、宿主細胞に所望の遺伝子配列を組み込む能力を持つ、ベクター内に挿入される。
【００２１】
導入されたＤＮＡによって安定にトランスフォームされた細胞は、発現ベクターを含む宿主細胞の選択を可能にする一つ以上のマーカーを導入することによって、選択することができる。また、マーカーは、独立栄養宿主に、光栄養性、生命破壊耐性、例えば抗生物質あるいは銅のような重金属、またはその類似物を提供することができる。選択可能マーカー遺伝子を、発現されるＤＮＡ遺伝子配列に直接連結させるか、またはコトランスフェクションにより同一細胞内に導入することができる。さらなるエレメントもまた、本発明のタンパク質の最適な合成に必要とされるであろう。
【００２２】
特定のプラスミドまたはウイルスベクターの選択に重要な因子には：ベクターを含むレシピエント細胞を認識し、ベクターを含まないそのようなレシピエント細胞から選択する安易さ；特定の宿主に望ましいベクターのコピー数；および、異なる種の宿主細胞間をベクターがシャトルできることが望ましいか否か：が含まれる。
【００２３】
ひとたび、構築物（類）を含むベクター（類）またはＤＮＡ配列が発現用に調製されると、ＤＮＡ構築物（類）は、任意の様々な適当な方法：トランスフォーメーション、トランスフェクション、コンジュゲーション、プロトプラスト融合、エレクトロポレーション、リン酸カルシウム沈殿、直接ミクロインジェクション等；によって、適当な宿主細胞内に導入される。
【００２４】
宿主細胞は、原核生物細胞または真核生物細胞のいずれかであろう。正確な折り畳み又は適当な位置のグリコシル化を含む翻訳後修飾をタンパク質分子に提供するためには、真核生物宿主、例えば、ヒト、サル、マウスおよびチャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞のような哺乳動物細胞が好ましい。また、酵母細胞は、グリコシル化を含む翻訳後ペプチド修飾を遂行することができる。酵母内で、所望のタンパク質の生成に利用することのできる、強力なプロモーター配列および高コピー数のプラスミドを利用する、数多くの組換えＤＮＡストラテジーが存在する。酵母は、クローン化された哺乳動物遺伝子生成物上のリーダー配列を認識し、リーダー配列を持つペプチド（即ちプレペプチド）を分泌する。
【００２５】
ベクター（類）導入後、宿主細胞を選択培地内で増殖させ、ベクター含有細胞の増殖について選択する。クローン化された遺伝子配列（類）の発現は、結果として、所望のタンパク質を生成する。
【００２６】
本発明のアミノ末端切除型ＲＡＮＴＥＳは、本技術分野で周知の任意のその他の方法によって、特に、自動固相ペプチドシンセサイザー次にクロマトグラフ精製を用いる、充分に確立された化学合成方法によって、調製することができる。
【００２７】
本発明のケモカインは、例えば、Ｆｍｏｃ（９−フルオレニルメトキシカルボニル）、ｔＢｏｃ（ｔ−ブトキシカルボニル）、または、異なるアミノ酸上に適当な側鎖保護基を持つ或いは持たない、任意のその他の比較しうる化学合成によって、合成することができる。適当な側鎖保護基を持つまたは持たないアミノ酸を、例えばＨＢＴＵ／ＨＯＢｔ［２−（１Ｈ−ベンゾトリアゾール−１−イル）−１，１，３，３−テトラメチル−ウロミウム  ヘキサフルオロホスフェート／１−ヒドロキシベンゾチアゾール）で−、前もって活性化し、成長するペプチド鎖に結合する。次の残基を加える前に、保護基（例えばＦｍｏｃ）をα−アミノ基から除去する。合成後、すべての保護基を除去し、完全な全長ペプチドを精製し、本発明の相当するケモカインに化学的または酵素的に折り畳まれる（その中にはシステイン間のジスルフィド架橋の形成も含まれる）。
【００２８】
天然、合成または組換えタンパク質の精製は、この目的で既知の任意の一つの方法、即ち、抽出、沈殿、クロマトグラフィー、電気泳動、またはその類似法（例えばＰｒｏｏｓｔ  Ｐ．ら、１９９６を参照のこと）を含む任意の慣用的方法、によって遂行される。本発明のタンパク質を精製するために選択して用いることのできるさらなる精製方法は、標的タンパク質と結合する、およびカラム内に含まれるゲルマトリックス上で生成され固定化される、モノクローナル抗体またはヘパリンに対するアフィニティーを用いるアフィニティークロマトグラフィーである。タンパク質を含むが純粋でない調製物をカラムに通す。タンパク質は、特異的抗体によって、カラムに結合されるが、不純物は通過するであろう。洗浄後、ｐＨまたはイオン強度を変化させることにより、タンパク質をゲルから溶出する。
【００２９】
本発明のアミノ末端切除型ＲＡＮＴＥＳは、ケモカイン効果のアンタゴニスト活性を必要とする、疾病の治療および／または診断に有用である。そのような疾病の例として、炎症性疾患、脈管形成−および造血−関連疾患、腫瘍、ＨＩＶを含む感染病、自己免疫病、アテローム性動脈硬化症、肺動脈疾患、および皮膚障害；が含まれる。
【００３０】
従って、さらなる態様では、本発明は、上記疾病を治療するための薬剤製造での本発明のタンパク質の使用を提供する。
【００３１】
好ましくは、薬剤は、本発明のタンパク質を、一つ以上の医薬として許容しうるキャリヤーおよび／または賦形剤と共に含む、医薬組成物の形で存在する。そのような医薬組成物は、本発明のさらなる態様を形成する。
【００３２】
本発明のさらなる実施態様は、そのような疾病を発病する危険性を持つ患者またはそのような病状を既に示している患者に、薬理学的に活性な量の本発明のアミノ末端切除型ＲＡＮＴＥＳを投与することを含む、上記の疾病の治療方法である。
【００３３】
また、ＣＤ２６／ＤＰＰ  ＩＶは、インビトロでＮＨ2-末端切除型ＲＡＮＴＥＳを生成できることが、分かった。ＲＡＮＴＥＳは、その生物活性をＣＤ２６／ＤＰＰ  ＩＶによって修飾されると報告された最初のサイトカインである。
【００３４】
それ故、本発明のもう一つの目的は、炎症性疾患、免疫性疾患および伝染性疾病に特に焦点を合わせた、ケモカイン効果のアンタゴニスト活性を必要とする、疾病の治療および／または診断でのＣＤ２６／ＤＰＰ  ＩＶの使用である。
【００３５】
これは内因的に調節されたケモカイン修飾について始めて同定されたメカニズムの例を示しているが、同様の生物学的プロセシングも、他の因子（プロテアーゼ）によって仲介されていた。上記疾病の治療および／または診断でのそのような因子（プロテアーゼ）の使用もまた、本発明に含まれる。
【００３６】
上記の疾病の治療および／または診断でのそのようなファクター（プロテアーゼ）の使用もまた、この発明に含まれる。
【００３７】
以下の実施例によって、本発明はここに説明されるコトニナルが、如何なる場合も本発明を制限するものとして解釈されるべきではない。実施例は以下に示す図面を言及することになる。
実施例
実施例１：アミノ末端切除型ＲＡＮＴＥＳ
材料および方法
試薬
天然のヒトＲＡＮＴＥＳを、ヒトＭａｌａｖｕ肝臓肉腫細胞、ＭＧ−６３骨肉腫細胞または末梢血液白血球（Ｂｌｏｏｄ  ｔｒａｎｓｆｕｓｉｏｎ  ｃｅｎｔｅｒｓ  ｏｆ  Ａｎｔｗｅｒｐ  ａｎｄ  Ｌｅｕｖｅｎ）によって作り出し、前記の方法に従って精製した（Ｐｒｏｏｓｔ  Ｐ．ら、１９９６およびＰｒｏｏｓｔ  Ｐ．ら、１９９３）。ＭＣＰ−２、ＭＣＰ−３およびＧＣＰ−２を、Ｆｍｏｃ化学により合成し（Ｐｒｏｏｓｔ  Ｐ．ら、１９９５およびＷｕｙｔｓ  Ａ．ら、１９９７）、組換えヒトＲＡＮＴＥＳをＰｅｐｔｏｔｅｃｈ（Ｒｏｃｋｙ  Ｎｉｌｌ，ＮＪ）から得た。組換えＭＣＰ−１はＪ．Ｊ．Ｏｐｐｅｎｈｅｉｍ博士（ＮＣＩ−ＮＩＨ，Ｆｒｅｄｅｒｉｃｋ，ＭＤ）からのギフトである。
【００３８】
ＣＤ４でトランスフェクトされたヒト骨肉腫（ＨＯＳ）(Human osteosarcoma)細胞および一つのＣＣケモカインレセプターＣＣＲ１、ＣＣＲ３またはＣＣＲ５（Ｄｅｎｇ，Ｈ．ら、１９９６）を、ｇｌｕｔａｍａｘを含むＤＭＥＭ中で増殖させた。プロマイシン（１μｇ／ｍｌ）を選択試薬として培養基に加えた。１０％ＦＣＳを加えて、全培養基（Ｇｉｂｃｏ  ＢＲＬ／Ｌｉｆｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ，Ｐａｉｓｌｅｙ，ＵＫ）の栄養価を高めた。
【００３９】
ヒトＣＤ２６／ＤＰＰ  ＩＶは、プロスタソーム(prostasomes) (前立腺誘導オルガネラ）から得られ、精漿内に惜しげなく発生する。酵素は、イオン交換、次いで、アデノシンデアミナーゼ上でのアフィニティークロマトグラフィーを用いる前記の方法に従って、均一になるまで精製した（Ｄｅ  Ｍｅｅｓｔｅｒ  Ｉ．ら、１９９６）。
ケモカインとＣＤ２６／ＤＰＰ  ＩＶとのインキュベーションおよびタンパク質分解プロセシングの検出。
【００４０】
１００−１０００モル過剰のケモカインを１００ｍＭ  Ｔｒｉｓ／ＨＣｌ  ｐＨ７．７中、ＣＤ２６／ＤＰＰ  ＩＶと共に一晩インキュベートした。ケモカインを、前記の方法（Ｐｒｏｏｓｔ  Ｐ．ら、１９９６）に従って、Ｔｒｉｓ／ＴｒｉｃｉｎｅゲルシステムのＳＤＳ−ＰＡＧＥによって、ＣＤ２６／ＤＰＰ  ＩＶから分離した。
【００４１】
タンパク質を、ＰＶＤＦ（フッ化ポリビニリデン）(polyvinylidene fluoride)膜（Ｐｒｏｂｌｏｔｔ，Ｐｅｒｋｉｎ  Ｅｌｍｅｒ，Ｆｏｓｔｅｒ  Ｃｉｔｙ，ＣＡ）上にエレクトロブロットし、クーマシーブリリアントブルーＲ２５０で染色した。脱染後、膜を、超純水(ultrapure water) （Ｍｉｌｌｉ  Ｑ；Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ，Ｂｅｄｆｏｒｄ，ＭＡ）で、少なくとも５回、リンスした。
【００４２】
生物アッセイ用に充分な量の純粋な切除型ケモカインを得るために、約５０μｇの組換えケモカインを、ＣＤ２６／ＤＰＰ  ＩＶで処理し、切断生成物を０．１％トリフルオロ酢酸（ＴＦＡ）で酸性化した。Ｔｗｅｅｎ２０（０．０１％）を加え、ケモカインがチューブに粘着することを防ぐ。
【００４３】
ケモカインを、Ｃ−８  Ａｑｕａｐｏｒｅ  ＲＰ−３００カラム（１ｘ５０ｍｍ）（Ｐｅｒｋｉｎ  Ｅｌｍｅｒ）上、アセトニトリル勾配で、ＣＤ２６／ＤＰＰ  ＩＶから分離した。タンパク質を含むフラクションは、前記の方法に従ってＳＤＳ−ＰＡＧＥによって分析し、銀染色した。
【００４４】
ケモカインを処理し、ＲＰ−ＨＰＬＣで精製した、またはＰＶＤＦブロットから削りだした、ＣＤ２６／ＤＰＰ  ＩＶについて、カップリング塩基としてＮ−メチルピペリジンを用い、パルス液相４７７Ａ／１２０Ａタンパク質シークエンサー（Ｐｅｒｋｉｎ  Ｅｌｍｅｒ）上のＥｄｍａｎ分解によって、ＮＨ2-末端配列を分析した。
走化性活性の検出
Ｂｏｙｄｅｎミクロチャンバー内で、新たに単離した末梢血液好中球顆粒球（１０6細胞／ｍｌ）または培養された単球ＴＨＰ−１細胞（０．５ｘ１０6細胞／ｍｌ）へのケモカインの走化性潜在力について、ケモカインを試験した（Ｐｒｏｏｓｔ  Ｐ．ら、１９９６およびＰｒｏｏｓｔ  Ｐ．ら、１９９３）。
【００４５】
３７゜Ｃで４５分（顆粒球）または２時間（ＴＨＰ−１細胞）インキュベーションした後、細胞を、固定し染色した。５μｍポアサイズのポリカルボネート膜を通して移動した細胞を、１０倍の油浸場内、顕微鏡で計数した。
【００４６】
サンプルの走化性指数（ＣＩ）(chemotactic index) （個々のチャンバー当たり３通り）は、［試験サンプルに移動する細胞数］÷［対照培地に移動する細胞数］として計算された。脱感作実験では、細胞を、チャンバーに移す前に、生物学的に不活性なケモカイン変異体と共に、３７゜Ｃで１０分間、インキュベートした。
【００４７】
ＨＢＳＳ処理対照細胞での脱感作により得られたＣＩの阻害率（％）を、走化性脱感作の評価として計算した。
細胞内Ｃａ2+濃度の検出
細胞内Ｃａ2+濃度（［Ｃａ2+）i ］を、前記の方法に従って、測定した（Ｗｕｙｔｓ  Ａ．ら、１９９７）。簡単に言えば、精製された細胞を、蛍光指示薬ｆｕｒａ−２（２．５μＭ  ｆｕｒａ−２／ＡＭ、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｐｒｏｂｅｓ  Ｅｕｒｏｐｅ  ＢＶ，Ｌｅｉｄｅｎ，Ｔｈｅ  Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ）および０．０１％のＰｌｕｒｏｎｉｃ  Ｆ−１２７（Ｓｉｇｍａ，Ｓｔ  Ｌｏｕｉｓ  ＭＯ）と共に、インキュベートした。
【００４８】
３０分後、細胞を２度洗浄し、１ｍＭ  Ｃａ2+を含むＨＢＳＳ内に再縣濁し、３７゜Ｃで１０分間インキュベートし、その後、ｆｕｒａ−２蛍光をＬＳ５０Ｂ発光分光光度計（Ｐｅｒｋｉｎ  Ｅｌｍｅｒ）で測定した。
３４０ｎｍおよび３８０ｎｍで励起時、蛍光を５１０ｎｍで検出した。［Ｃａ2+］i をＧｒｙｎｋｉｅｗｉｃｚ方程式（Ｇｒｙｎｋｉｅｗｉｃｚら、１９８５）から計算した。
【００４９】
Ｒmax を測定するため、細胞を５０μＭジギトニンで溶解した。次に、ｐＨを２０ｍＭ  ＴｒｉｓでｐＨを８．５に調整し、溶解細胞に１０ｍＭ  ＥＧＴＡを加えることによって、Ｒmin を得た。計算に用いられたＫd は、２２４ｎＭであった。脱感作実験では、最初に、細胞を、バッファーまたは異なる濃度のケモカインで刺激した。第二の刺激として、バッファーで前刺激した後、［Ｃａ2+］i の有意の増加を誘導する濃度で、ケモカインを加えた。細胞の前刺激に対して第二の刺激に感応する［Ｃａ2+］i 増加の阻害率（％）を、計算した。
ＨＩＶ−１感染の阻害
ＨＩＶ−１  Ｍ−ｔｒｏｐｉｃ株ＢａＬおよびＳＦ１６２を、ＭＲＣ  ＡＩＤＳ  ｒｅａｇｅｎｔ  ｐｒｏｊｅｃｔ（Ｈｅｒｔｓ，ＵＫ）を通して得た。健康なドナーからの末梢血液単核細胞（ＰＢＭＣ）(peripheral blood mononuclear cells)を、密度勾配遠心分離（５、２３）により単離し、３７゜Ｃで３日間、ＰＨＡ  １μｇ／ｍｌ（Ｓｉｇｍａ，Ｂｏｒｎｅｍ，Ｂｅｌｇｉｕｍ）で刺激した。活性化された細胞（ＰＨＡ−刺激芽球）をＰＢＳで３回洗浄し、前記の方法に従って（Ｓｃｈｏｌｓ，Ｄ．，１９９７）、ウイルスを感染させた。ＨＩＶ−１感染または偽感染ＰＨＡ−刺激芽球を、２５Ｕ／ｍｌのＩＬ−２存在下、ＲＡＮＴＥＳ（１−６８）またはＲＡＮＴＥＳ（３−６８）の濃度を変化させて、培養した。細胞上清を、１０日目に集め、上清内のＨＩＶ−１コア抗原をｐ−２４  Ａｇ  ＥＬＩＳＡキット（ＤｕＰｏｎｔ／ＮＥＮ  Ｌｉｆｅ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  Ｐｒｏｄｕｃｔｓ，Ｂｒｕｓｓｅｌｓ，Ｂｅｌｇｉｕｍ）によって分析した。
結果
天然のＮ−末端切除型ＲＡＮＴＥＳの単離および生物学的特徴
異なるＮＨ2-末端切除型のヒトＧＣＰ−２が、以前に単離されている（Ｐｒｏｏｓｔ  Ｐ．ら、１９９３）。最少の切除型ＧＣＰ−２は、終わりから２番目の位置のＰｒｏの向こう側で切断されていた［ＧＣＰ−２（３−７５）］。Ｃ−ＣケモカインＲＡＮＴＥＳは、同様の標準精製法を用いて末梢血液白血球または肉腫細胞から精製されている（Ｐｒｏｏｓｔ Ｐ．１９９６）。
【００５０】
特に、サイトカイン混合物で誘導されたＭＧ−６３またはＭａｌａｖｕ肉腫細胞からの順化培地を分画し、天然型ケモカイン変異体を単離した。ケモカインは、順番に、抗体またはヘパリンアフィニティークロマトグラフィー、カチオン交換クロマトグラフィー（モノ−Ｓ  ＦＰＬＣ）およびＲＰ−ＨＰＬＣで精製し、免疫反応型を特異的ケモカインＥＬＩＳＡｓによって検出した。カチオン交換カラム上、ＩＬ−８は、ＲＡＮＴＥＳと非常に近い位置で溶出される（０．７−０．７５Ｍ  ＮａＣｌ）ことが分かった。が、両ケモカインは、ＲＰ−ＨＰＬＣによって互いに分離された（ＲＡＮＴＥＳおよびＩＬ−８はそれぞれ、２７．５％および３０％のアセトニトリルで溶出される）。純粋タンパク質のアミノ酸配列分析より、ＩＬ−８は、異なるＮＨ2-末端切除型であり、以前からそれらの走化性活性を基に単離されていた（Ｖａｎ  Ｄａｍｍｅ  Ｊ．ら、１９８９）ことが、確認された。しかしながら、ＲＡＮＴＥＳについては、一つの単一型のみが単離されており、それは、完全なＲＡＮＴＥＳと比較して２つのＮＨ2-末端残基が欠けていた。その顕著な出現から見て、このＲＡＮＴＥＳ（３−６８）をより詳細に分析して、単球および好酸球についてのその走化性活性を確かめた。特に、走化性および／または細胞内Ｃａ2+−放出活性について、ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）を試験し、その生物学的能力を、相当する完全なケモカインのそれと比較した。
【００５１】
ＲＡＮＴＥＳからの２つの残基のＮＨ2-末端欠損は、結果として、単球走化性およびＣａ2+−放出活性をかなり減少させる。完全な天然ＲＡＮＴＥＳ（最小有効投与量３−１０ｎｇ／ｍｌ）と比較して、天然ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）は、Ｂｏｙｄｅｎミクロチャンバー内、３００ｎｇ／ｍｌ程の濃度で試験した場合、全体的に不活性であった（図２）。さらに、同様のＣａ2+−応答を得るためには、ＲＡＮＴＥＳ（１−６８）と比較して、天然ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）では、１０倍高い濃度が必要であった（図３）。
ＣＤ２６／ＤＰＰ  ＩＶは、ケモカインのＮＨ2-末端ジペプチドを除去する
アミノペプチダーゼＣＤ２６／ＤＤＰ  ＩＶがＮＨ2-末端切除型ＲＡＮＴＥＳに応答することができるか否かを研究するため、完全なケモカインを、一晩ＣＤ２６／ＤＰＰ  ＩＶと共にインキュベートし、ＰＶＤＦ膜にブロットし、クマーシーブルーで染色し、自動エドマン分解にかけた。ＲＡＮＴＥＳをＣＤ２６／ＤＰＰ  ＩＶで処理すると、結果としてＮＨ2-末端ジペプチドが除去された。ＣＤ２６／ＤＰＰ  ＩＶを含まないバッファーでのケモカインの平衡インキュベーションは、影響を受けなかった。
【００５２】
その他のケモカインもＣＤ２６／ＤＰＰ  ＩＶに切断される共通配列を含むため、また、ＭＣＰｓのＮＨ2-末端は生物活性に極めて重要であることが分かった（Ｇｏｎｇ  Ｊ．ら、１９９６およびＧｏｎｇ  Ｊ．ら、１９９５）ため、ＭＣＰ−１、ＭＣＰ−２およびＭＣＰ−３もまた、ＣＤ２６／ＤＰＰ  ＩＶと共に、インキュベートした。
【００５３】
処理後、ＭＣＰｓをＰＶＤＦ膜上にブロットし、クマーシーブルー染色を行い、充分量のタンパク質をエドマン分解用に回収したことを確認した。
【００５４】
ＮＨ2-末端配列を検出することができなかったが、ＣＤ２６／ＤＰＰ  ＩＶは、ピログルタミン酸によってエドマン分解用にブロックされたＭＣＰｓのＮＨ2-末端を変化させなかったことが分かった。
完全−およびＣＤ２６／ＤＰＰ  ＩＶ処理−ＲＡＮＴＥＳの生物活性の比較
天然ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）と同様に、Ｃ−８  ＲＰ−ＨＰＬＣで精製したＣＤ２６／ＤＰＰ  ＩＶ処理−組換えＲＡＮＴＥＳは、Ｂｏｙｄｅｎミクロチャンバー走化性実験で、最大で１μｇ／ｍｌまでの濃度を用いた場合、不活性であったが、これに対して、有意の単球走化性応答が、３０−１００ｎｇ／ｍｌの完全な組換えＲＡＮＴＥＳで検出された（図２）。
【００５５】
切除による影響をＣａ2+−移動アッセイで試験したところ、ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）は、１００ｎｇ／ｍｌで低いが有意な増加を誘導した。しかしながら、完全なＲＡＮＴＥＳは、１０ｎｇ／ｍｌで既に活性であった（図３）。結論として、２つのＮＨ2-末端残基を除去しただけで、ＲＡＮＴＥＳの単球走化性およびＣａ2+−移動能力は、１０−１００倍、減少した。
ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）は、完全なＲＡＮＴＥＳに対する天然の走化性アンタゴニストである。
【００５６】
単球走化性実験で不活性であったＲＡＮＴＥＳ（３−６８）から見て、この切除型ＲＡＮＴＥＳがアンタゴニストとして作用することができるか否かについて試験した。ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）は、１μｇ／ｍｌで、１００ｎｇ／ｍｌの完全なＲＡＮＴＥＳの走化性効果をほぼ完全に（８２％）脱感作した（表１）。
【００５７】
３倍過剰量のＲＡＮＴＥＳ（３−６８）を上壁に加えた場合、完全なＲＡＮＴＥＳに対するＴＨＰ−１細胞の走化性は、約５０−７０％、阻害された。ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）は、３００ｎｇ／ｍｌで、尚、同濃度の完全なＲＡＮＴＥＳに対する走化性応答の約３０％を阻害することができた。
【００５８】
ＴＨＰ−１細胞でのＣａ2+−移動実験では（図４）、３０ｎｇ／ｍｌの完全なＲＡＮＴＥＳは、３０ｎｇ／ｍｌの完全なＲＡＮＴＥＳを３９±５％の影響で脱感作できた。同量の脱感作を得るためには、約１０倍高濃度のＲＡＮＴＥＳ（３−６８）が必要であった。しかしながら、３００ｎｇ／ｍｌで、ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）それ自身は、有意のＣａ2+−応答を与えた。このＣａ2+−応答は、３０ｎｇ／ｍｌの完全なＲＡＮＴＥＳで得られる応答に匹敵した。
【００５９】
【表１】
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【００６０】
ヒトの単球および好中球でのＲＡＮＴＥＳ（３−６８）の走化性活性阻害
表IIでは、天然型ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）の走化性能力を、単球走化性タンパク質ＭＣＰ−３および完全なＲＡＮＴＥＳ（１−６８）のそれと比較している。ＭＣＰ−３およびＲＡＮＴＥＳ（１−６８）は、それぞれ３ｎｇ／ｍｌおよび３０ｎｇ／ｍｌで、新たに単離された末梢血液単球に走化性であることが分かったが、天然型ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）は１００ｎｇ／ｍｌでも不活性のままであった。
【００６１】
この天然変異体の走化性能力の減少は、組換えＲＡＮＴＥＳ（３−６８）で確認された。単球への走化性は（１μｇ／ｍｌで）弱いが、精製された組換えＲＡＮＴＥＳ（３−６８）は、完全な組換えＲＡＮＴＥＳのそれより１０倍低い比活性を示した。
【００６２】
最終的に、ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）の走化性能力は、ヒト好酸球上で確かめられ、１００ｎｇ／ｍｌの完全なＲＡＮＴＥＳおよび３０ｎｇ／ｍｌのＭＣＰ−３になお応答した（図５）。単球と同様に、好酸球の遊走は、ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）１μｇ／ｍｌでのみ刺激された。
【００６３】
【表２】
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【００６４】
ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）は、ＣＣＲ５を通してＲＡＮＴＥＳ（１−６８）に信号を送り脱感作するが、ＣＣＲ１およびＣＣＲ３を通しては信号を送らず脱感作もされない。
【００６５】
ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）の走化性活性の減少を説明するために、ＲＡＮＴＥＳによって用いられる既知のレセプターを通して結合し信号を起こるこのケモカイン変異体の能力を確かめた。
【００６６】
ケモカインレセプターＣＣＲ１、ＣＣＲ３またはＣＣＲ５でトランスフェクトされたＨＯＳ細胞を、シグナル化アッセイに用い、細胞内カルシウム濃度の増加を測定した。最大で３０ｎｇ／ｍｌまでの濃度では、ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）は、ＣＣＲ１（表III ）またはＣＣＲ３（データは示していない）でトランスフェクトされたＨＯＳ細胞内の［Ｃｓ2+］i を増加しなかったが、３０ｎｇ／ｍｌおよび１００ｎｇ／ｍｌの完全ＲＡＮＴＥＳは、それぞれ、ＣＣＲ１およびＣＣＲ３トランスフェクタント内の［Ｃａ2+］i の増加を誘導するに充分であった。
【００６７】
しかしながら、完全型および切除型のＲＡＮＴＥＳは両方共、３０ｎｇ／ｍｌでＣＣＲ５トランスフェクタント内の［Ｃａ2+］i の充分な上昇を誘導することができた。さらに、３−２０倍過剰量のＲＡＮＴＥＳ（３−６８）または完全ＲＡＮＴＥＳのいずれかでＣＣＲ５トランスフェクト細胞をプレインキュベーションすると、その後、完全なＲＡＮＴＥＳ（１００ｎｇ／ｍｌ）による挑戦を受けても、［Ｃａ2+］i の上昇が等しく阻害された（約７５％）（図６）。
【００６８】
それとは対照的に、３００ｎｇ／ｍｌのＲＡＮＴＥＳ（３−６８）は、１００ｎｇ／ｍｌの完全なＲＡＮＴＥＳへのＣＣＲ１およびＣＣＲ３−トランスフェクト細胞のカルシウム応答を、僅かに脱感作したのみであるが、第一の刺激として３倍過剰量の完全なＲＡＮＴＥＳを用いると、次のＲＡＮＴＥＳ（１−６８）によるこれらの細胞内の［Ｃａ2+］i 上昇をほぼ完全に阻害した。ＲＡＮＴＥＳから２つのＮＨ2-末端残基を除去すると、ケモカインレセプターＣＣＲ１およびＣＣＲ３をもはや機能的に認識しないと言う、シグナルトランスダクションに有意のインパクトを持つ、と結論付けられるに違いない。それ故、ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）の走化性能力が害されることは、ＣＣＲ１およびＣＣＲ３を通して機能できないことによって説明できる。対照的に、ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）は、完全なＲＡＮＴＥＳのＣＣＲ５シグナル化特徴を完全に残している。ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）は、完全なＲＡＮＴＥＳと競合することによって抗炎症性であることができるが、ＣＣＲ５と結合するその能力を保持していることによって、ＨＩＶ−阻害剤として機能することができる。
【００６９】
【表３】
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【００７０】
ヒト単球細胞内でのＲＡＮＴＥＳ（３−６８）によるＣＣケモカイン誘導走化性の阻害
ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）によるＣＣケモカインシグナル化の阻害が、単球細胞内でも起こるか否かについて確かめるため、ＴＨＰ−１細胞内で阻害実験を行った。ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）は、完全なＲＡＮＴＥＳと比較して、単球細胞内で［Ｃａ2+］i を増加する能力を１０倍減少させることが証明された（データには示されていない）。さらに、単核細胞上での完全なＲＡＮＴＥＳ（３０ｎｇ／ｍｌ）の走化性効果は、表ＩＶに示すように、３００ｎｇ／ｍｌのＲＡＮＴＥＳと共に試験細胞をインキュベートすることによって、阻害された（７１％）。
【００７１】
さらに、ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）は、単球走化性タンパク質−３（ＭＣＰ−３）(monocyte chemotactic protein-3)、マクロファージ炎症性タンパク質−１ａ（ＭＩＰ−１α）(Macrophage inflammatory protein-1a)（６１％）およびＭＩＰ−１β（８０％）を含む、その他のＣＣケモカインへの走化性応答を減少させる。
【００７２】
このことは、単球細胞遊走の幅広いスペクトル阻害剤としてのＲＡＮＴＥＳ（３−６８）の機能が、その他のＣＣケモカインによって誘導されたことを、説明している。
【００７３】
【表４】
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【００７４】
ＣＤ２６−特異的切除型ＲＡＮＴＥＳは、その抗ウイルス活性に必要である。
最初、異なる型のＲＡＮＴＥＳによる影響を、健康なドナー血液から誘導されたヒトＰＢＭＣ内の２つの異なるＭ−ｔｒｏｐｉｃ  ＨＩＶ−１株（ＢａＬおよびＳＦ１６２）に対して評価した。ＢａＬ株に対する完全なＲＡＮＴＥＳ（１−６８）のＩＣ50は、３．４ｎＭであり、ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）についてのＩＣ50は、０．３９ｎＭであった。ＲＡＮＴＥＳ（１−６８）についてのＩＣ90値は、７１ｎＭであり、ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）についてのＩＣ90の約１０倍であった。ＳＦ１６２株に対してＰＢＭＣ内で評価した場合、ＲＡＮＴＥＳ（１−６８）（ＩＣ50：２３ｎＭ；ＩＣ90：９５ｎＭ）は、ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）（ＩＣ50：２ｎＭ；ＩＣ90：８．２ｎｍ）より１０倍以上少ない活性であった（表Ｖ）。ＰＢＭＣ内でのＨＩＶ−１  ＳＦ１６２複製に対する１３３から０．２ｎｍの範囲の濃度での両ケモカインの濃度依存効果を図８に示す。濃度５．２ｎＭのＲＡＮＴＥＳ（３−６８）は、ウイルス複製の減少に明らかに効果があったが、これに対してＲＡＮＴＥＳ（１−６８）は、この濃度では不活性であった。抗ウイルス活性での違いは、ＰｅｐｒｏＴｅｃｈまたはＲ＆Ｄ  Ｓｙｓｔｅｍｓから得られた完全なＲＡＮＴＥＳ間では、認められなかった。
【００７５】
２つの型のＲＡＮＴＥＳ間での抗ウイルス活性の顕著な違いは、ヒトＣＣＲ５トランスフェクト細胞で試験した場合、より一層、明らかになった。Ｕ７８．ＣＤ４．ＣＣＲ５細胞では、ＢａＬ株に対するＲＡＮＴＥＳ（１−６８）およびＲＡＮＴＥＳ（３−６８）のＩＣ50は、それぞれ、２１ｎＭおよび０．６５ｎＭであった。ＲＡＮＴＥＳ（１−６８）のＩＣ90は、１３３ｎＭより大きいが、これに対してＲＡＮＴＥＳ（３−６８）のＩＣ90は、６３ｎＭであった。また、表Ｖでは、ＲＡＮＴＥＳ（１−６８）は、ＨＯＳ．ＣＤ４．ＣＣＲ５細胞内で事実上不活性であった（ＩＣ50＞１３３ｎＭ）が、これに対してＲＡＮＴＥＳ（３−６８）は、これら細胞内でのＨＩＶ−１  ＢａＬ複製の潜在的阻害剤である（ＩＣ50：５．５ｎＭ）ことを、示している。しかしながら、ＩＣ90値は、これら細胞内の両方の型のＲＡＮＴＥＳでは、達成されなかった。
ＲＡＮＴＥＳの抗ウイルス活性は、膜結合または可溶性のＣＤ２６（ｓＣＤ２６）の存在に依存する。
【００７６】
２つの異なるＣＣＲ５−トランスフェクト細胞系上および新たに分離したＰＢＭＣ上でのＣＤ２６発現を評価した。ＨＯＳトランスフェクタントは、フローサイトメトリー分析によって定量したところ、ＣＤ２６発現（−）であったが、Ｕ８７トランスフェクタントは、抗−ＣＤ２６  ｍＡｂで弱いが有意に（＋）に染色された（図９）。さらに、新たに単離されたＰＭＢＣの亜集団は、ＣＤ２６発現に強陽性であることが分かった（図９）。
【００７７】
ｓＣＤ２６の存在下でのＨＯＳ．ＣＤ４．ＣＣＲ５トランスフェクト細胞内のＢａＬ株によるウイルスｐ２４  Ａｇ生成へのＲＡＮＴＥＳ（１−６８）およびＲＡＮＴＥＳ（３−６８）の濃度依存性影響を表１０に示す。ＨＩＶ感染開始時に、ＲＡＮＴＥＳ（１−６８）と共にｓＣＤ２６を加えると、ＨＯＳ．ＣＤ４．ＣＣＲ５細胞内の完全なＲＡＮＴＥＳの抗ウイルス活性を有意に強化した。５０Ｕ／ＩのｓＣＤ２６をＲＡＮＴＥＳと共に加えた場合、ＲＡＮＴＥＳのＩＣ50＝１３ｎＭであった。ｓＣＤ２６を単独で加えても、ウイルス複製に影響を与えなかった。また、ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）へのｓＣＤ２６の付加は、ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）の抗ウイルス活性を変化させなかった（データには示していない）。このように、ＣＤ２６の存在は、完全なＲＡＮＴＥＳに重要であり、抗ウイルス活性になる。
アミノ末端切除型の天然ＭＩＰ−１αは、その抗−ＨＩＶ−１走化性活性およびＣａ2+移動活性に影響を与えない。
【００７８】
大部分の天然型ＭＩＰ−１αは、ＮＨ2-末端切除型（４アミノ酸）であるので、我々は、この切除型ＭＩＰ−１α（５−７０）が別のＨＩＶ−１阻害能力を持つか否かについて研究した。ＲＡＮＴＥＳで得られた結果とは対照的に、ＰＭＢＣまたはＣＣＲ５−トランスフェクト細胞内での完全なＭＩＰ−１αおよびＭＩＰ−１α（５−７０）のＩＣ50値に有意の違いは、検出されなかった（表５、図８）。さらに、完全なＭＩＰ−１αおよび切除型ＩＰ−１α（５−７０）を、ＴＨＰ−１単球細胞上での走化性および細胞内Ｃａ2+−移動アッセイで比較した。表ＶＩは、［Ｃａ2+］i の上昇を誘導するＭＩＰ−１α（５−７０）の最小有効投与量が、完全なＭＩＰ−１αより僅かに低いのみであったことを示している。さらに、走化性アッセイで０．１３ｎＭと得られた最大遊走は、完全なＭＩＰ−１αでより高かったが、ＭＩＰ−１αのイソ型の両方の最少影響濃度は、むしろ類似していた。一緒にすると、ＲＡＮＴＥＳとは対照的にＭＩＰ−１αのＮＨ2-末端プロセシングは、その炎症性活性および抗−ＨＩＶ−１活性を最少限、弱めるのみであると断定されるはずである。
【００７９】
【表５】
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【００８０】
【表６】
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【００８１】
【表７】
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【図面の簡単な説明】
【図１】  ＲＡＮＴＥＳのアミノ酸配列を示している。シグナル配列を、イタリック体で、Ｃ−末端を太字で示している。矢印は、ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）と呼ばれる、本発明のアミノ末端切除型ＲＡＮＴＥＳの最初のアミノ酸を示している。
【図２】  単球ＴＨＰ−１細胞に対する完全、および天然または組換えのＮＨ2-末端切除型のＲＡＮＴＥＳの走化性能力を、Ｂｏｙｄｅｎミクロチャンバーアッセイで比較している：天然のＲＡＮＴＥＳ（１−６８）（△）、天然の切除型ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）（□）、完全な組換えＲＡＮＴＥＳ（１−６８）（▲）およびＣＤ２６／ＤＰＰ  ＩＶ切断組換えＲＡＮＴＥＳ（３−６８）（黒四角）。結果は、４回以上の独立した実験からの平均走化性指数（ＣＩ）(chemotactic index) ±ＳＥＭで表す。
【図３】  ＴＨＰ−１細胞内の［Ｃａ2+］i への天然ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）（□）、天然ＲＡＮＴＥＳ（１−６８）（△）、組換えＲＡＮＴＥＳ（１−６８）（▲）および組み換えＣＤ２６／ＤＰＰ  ＩＶ処理ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）（黒四角）の影響。
【図４】  完全なｒｅｃＲＡＮＴＥＳ（１−６８）対ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）のＣａ2+−移動活性の脱感作を示している。最初に、ＴＨＰ−１細胞をバッファーまたは異なる濃度の組換えＲＡＮＴＥＳ（１−６８）またはＲＡＮＴＥＳ（３−６８）で刺激した。第二の刺激として３０ｎｇ／ｍｌの完全な組換えＲＡＮＴＥＳに応答する結果を、［Ｃａ2+］i の増加として、平均±ＳＥＭ（三回以上の独立した実験）で表す。
【図５】  完全なＲＡＮＴＥＳ（１−６８）と切除型ＲＡＮＴＥＳ（３−６８）との走化性能力の比較。天然（ｎａｔ）および組換え（ｒｅｃ）の切除型ＲＡＮＴＥＳ、完全なＲＡＮＴＥＳおよび合成ＭＣＰ−３の好酸性顆粒球走化性活性を、ミクロチャンバーアッセイで定量した。結果は、２回以上の独立した実験（それぞれ３回づつ行った）からの平均走化性指数（ＣＩ）±ＳＥＭで表す。
【図６】  ＣＣＲトランスフェクタントでの完全なＲＡＮＴＥＳによるカルシウム移動性の脱感作。カルシウム移動実験は、ＣＤ４およびＣＣケモカインレセプターＣＣＲ１またはＣＣＲ５でトランスフェクトされたＨＯＳ細胞で行った。細胞は、最初に、異なる濃度の完全または切除型ＲＡＮＴＥＳで、次に１００ｎｇ／ｍｌの完全なＲＡＮＴＥＳで、刺激した。第二刺激により誘導される［Ｃａ2+］i の阻害率（％）を示す。この割合（％）は、バッファー（１００％）での刺激後に対するＲＡＮＴＥＳ（１−６８）またはＲＡＮＴＥＳ（３−６８）付加後の、１００ｎｇ／ｍｌの完全なＲＡＮＴＥＳの応答を比較することによって、計算した。結果を平均阻害率（％）±ＳＥＭ（２回以上の実験）で表す。
【図７】  ＨＩＶ−１による単核細胞感染へのＲＡＮＴＥＳ（３−６８）の潜在的阻害効果。様々な濃度のＲＡＮＴＥＳ（１−６８）またはＲＡＮＴＥＳ（３−６８）（１−１，０００ｎｇ／ｍｌを感染時に加える）の存在下で、ＰＨＡ−活性化ＰＢＭＣを、Ｍ−ｔｒｏｐｉｃ  ＨＩＶ−１  Ｂａ−Ｌ株に感染させた。１０日後、ウイルス収率を、ｐ−２４  Ａｇ  ＥＬＩＳＡ（４回の実験の内一回の実験を示す）により、細胞上澄液でモニターした。
【図８】  ＰＨＡ−活性化ＰＢＭＣ内へのＨＩＶ−１  ＳＦ１６２株による感染へのＲＡＮＴＥＳ（１−６８）およびＲＡＮＴＥＳ（３−６８）の影響。ウイルス収率は、感染１０日後、細胞上澄み液をｐ２４  Ａｇ  ＥＬＩＳＡによりモニターした。３回の実験の内１回の実験結果を示す。* ｐ２４  Ａｇ  ＥＬＩＳＡの検出限界以下（＜５ｐｇ／ｍｌ）。
【図９】  ＨＯＳ．ＣＤ４．ＣＣＲ５細胞、Ｕ８７．ＣＤ４．ＣＣＲ５細胞および新たに単離されたＰＢＭＣ上でのＣＤ２６の発現。ＣＤ２６陽性細胞の割合（％）を個々のヒストグラムに示す。
【図１０】  ＨＩＶ−１  ＢａＬ株によるＨＯＳ．ＣＤ４．ＣＣＲ５細胞の感染へのＲＡＮＴＥＳ（１−６８）、ＲＡＮＴＥＳ（１−６８）＋ｓＣＤ２６（５０Ｕ／Ｌ）、およびＲＡＮＴＥＳ（３−６８）の影響。ウイルス収率は、ｐ２４Ａｇ  ＥＬＩＳＡにより、感染８日後の細胞上澄み液をモニターした。３回行った実験の内１回の実験結果を示している。
【配列表】
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【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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