(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
下記式（Ｉ）で表わされる２価反応性水溶性高分子誘導体。
0004385152.tif 000006
（式中、Ｐは水溶性高分子を表わす。
Ｎはスクシンイミドエステル、イソチオシアネート、スルフォニルクロライド又はカルボニルイミダゾールを表わす。
Ｒ１及びＲ２は任意の連結基を表わすが、Ｒ１及び／又はＲ２は必須ではない。）
【請求項２】
水溶性高分子がポリエチレングリコール、ポリアクリルアミド、ポリビニルピロリドン、ポリグリセリン、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、ポリアミノ酸、又はポリオキシ酸である請求項１記載の２価反応性水溶性高分子誘導体。
【請求項３】
水溶性高分子がポリエチレングリコールである請求項１記載の２価反応性水溶性高分子誘導体。
【請求項４】
Ｎがスクシンイミドエステルである請求項１〜３のいずれか記載の２価反応性水溶性高分子誘導体。
【請求項５】
下記式（II）で表される複合体。
0004385152.tif 000007
（式中、Ｌは作用性物質を表わす。
Ａはアミノ基を有するリガンドを表わし、当該アミノ基を介してＮ１と結合する。
Ｎ１は−ＣＯ−、−ＮＨ−ＣＯ−又は−ＳＯ２−を表わす。
Ｒ１、Ｐ及びＲ２は請求項１における意義と同義である。）
【請求項６】
作用性物質が低分子薬剤、マーカー分子、タンパク質、ミセル及びリポソームから選ばれる請求項５記載の複合体。
【請求項７】
作用性物質がリポソーム又はミセルである請求項５記載の複合体。
【請求項８】
アミノ基を有するリガンドが抗体である請求項５〜７のいずれか記載の複合体。
【請求項９】
Ｎ１が−ＣＯ−である請求項５〜８のいずれか記載の複合体。
【請求項１０】
作用性物質に、さらに、作用性物質と反応性を有する１価反応性水溶性高分子誘導体が結合した請求項５〜９のいずれか記載の複合体。
【請求項１１】
請求項５〜１０のいずれか記載の複合体を含有する医薬組成物。
【請求項１２】
抗腫瘍剤として使用することを特徴とする請求項１１記載の医薬組成物。
【請求項１３】
請求項５〜１０のいずれか記載の複合体を含有する診断薬組成物。
【請求項１４】
請求項１〜４のいずれか記載の２価反応性水溶性高分子誘導体を、アミノ基を有するリガンドに結合させ、次いで該水溶性高分子誘導体のアセチルチオ基をメルカプト基に変換して、作用性物質に結合させる工程からなる、請求項５〜１０のいずれか記載の複合体の製造方法。
【請求項１５】
さらに、作用性物質と反応性を有する１価反応性水溶性高分子誘導体を結合させる工程を含む請求項１４記載の製造方法。
【請求項１６】
２価反応性水溶性高分子誘導体と作用性物質が、２価反応性水溶性高分子誘導体のチオール基部分を介して作用性物質のチオール基反応性部分と結合している請求項１４又は１５記載の製造方法。
【請求項１７】
作用性物質が低分子薬剤、マーカー分子、タンパク質、ミセル及びリポソームから選ばれる請求項１４〜１６のいずれか記載の製造方法。
【請求項１８】
作用性物質がリポソームまたはミセルである請求項１４〜１６のいずれか記載の製造方法。
【請求項１９】
アミノ基を有するリガンドが抗体である請求項１４〜１８のいずれか記載の製造方法。
【請求項２０】
請求項１４〜１９のいずれか記載の製造方法で製造される複合体。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、スペーサーとして、リガンド（抗原、抗体等のタンパク質、ホルモン等）と低分子薬剤、マーカー分子、タンパク質、ミセル、またはリポソームなどの作用性物質が結合するヘテロな２価反応性水溶性高分子誘導体、それにより得られる複合体、該複合体を含有する医薬・診断薬組成物及び該複合体の製造方法に関する。本発明で得られる複合体は、医薬品運搬体、診断、検査等に用いることができる。
【０００２】
【従来の技術及び発明が解決しようとする課題】
近年、医薬品、同位元素、マーカ物質等に対し、抗原、抗体、トランスフェリン等のタンパク質やホルモンなどのリガンドを結合させることで特異性を付与する研究開発が多岐にわたる分野で行われている。
特に抗体等のタンパク質を抗癌剤等の医薬品や放射性同位元素、毒素等のタンパク質に結合させて部位特異的医薬品や特異性の高い診断薬として利用することが期待されている。また抗体とアルカリフォスファターゼ等の酵素を結合した複合体もアッセイ用試薬などで実用化されている。
【０００３】
これらの複合化は直接結合あるいはリポソーム等のキャリアを介して行われており、抗体を例にとれば抗体糖鎖をアルデヒドに酸化し、ヒドラジド基を付与した作用物質（酵素、リポソーム等）と結合させる方法や、抗体のアミノ基にマレイミド基を導入し作用物質にチオール基を導入し結合させる方法、還元剤により内在性のジスルフィド基を還元しチオールを生じさせ反応させる方法、アビジン・ビオチンを介して結合する方法などがある（総説、酵素免疫測定法第３版  石川ら医学書院（１９８７））。
【０００４】
一方、ポリエチレングリコール（以下、「ＰＥＧ」と称することもある。）はフレキシブルな水溶性高分子でありタンパク質修飾剤として多くの例が検討されきた。ＰＥＧは低毒性、低免疫源性であり、さらにＰＥＧ修飾によりタンパク質の血中滞留性を大きく改善する効果が公知となっている（「ＤＤＳの進歩１９９５−１９９６」中山書店  ｐ８２−９４（１９９５））。
【０００５】
最近、このＰＥＧを上記で述べたようなスペーサーとして使用する研究も行われており、特にリポソーム分野ではＰＥＧ部分をスペーサーとした抗体結合リポソームについての研究が盛んになっている。
また、極性基を有する脂質や両親媒性のポリマー等は、脂質ミセル、高分子ミセル、リポソーム、脂質ミセル閉鎖２重層等の微粒子を形成することが知られている。
【０００６】
これらの微粒子を薬剤や核酸等のキャリアーとして利用する試みが近年多くなされている。リポソームでは脂質相に脂溶性物質を、内部水相に水溶性物質を封入でき、低分子化合物のみならずタンパク質などの高分子物質まで担持できることから、薬剤、タンパク質、核酸などのＤＤＳ用キャリアーとして数多くの研究がなされている。近年、薬剤の封入による毒性低減等の効果に加え、リポソーム表面に抗体、糖鎖などを結合することによるターゲッティング機能等を付与されたリポソームの実用化研究も進展している。
【０００７】
一方、リポソームの一般的欠点である凝集、肝臓、脾臓等の網内系での非特異的捕捉に関してはポリエチレングリコール、ポリアクリルアミド、ポリビニルピロリドン、ポリグリセリン等の水溶性高分子をリポソームに導入することで改善されることが知られるようになった。特にポリエチレングリコール修飾に関しては非常に多くの研究がなされ、ポリエチレングリコール修飾による網内系での取り込み抑制が効果的であることは周知である。
【０００８】
さらにリポソームにターゲッティング機能と網内系回避効果を合わせ持たせるためにポリエチレングリコールで修飾したリポソームのポリエチレングリコール末端にさらに抗体等のターゲッティングリガンドを結合させたリポソームが開示されている。
すなわち、官能基を付与したポリエチレングリコール−脂質誘導体を介して抗体とリポソームを複合体化する方法が示されてきており、以下を例示することができる。（Ｋｌｉｂａｎｏｖら  Ｊ．Ｌｉｐｏｓｏｍｅ  Ｒｅｓ．２  （１９９２）３２１、特開平６−１２６１５２号公報、特開平６−２２００７０号公報、ＷＯ９４／２２４２９、Ｈａｎｓｅｎら  ＢＢＡ  １２３９（１９９５）１３３、Ｓｈａｈｉｎｉａｎら  ＢＢＡ  １２３７（１９９５）９９）。
【０００９】
これらは、脂質とポリエチレングリコール誘導体を有機溶媒中で反応し、脂質−ＰＥＧ−官能基なる化合物を合成する。さらに他の構成脂質と共にリポソーム化したのち抗体と結合させることで抗体−ＰＥＧ−リポソームの複合体を得る。
具体的なポリエチレングリコール脂質誘導体としては特開平６−１２６１５２号公報では脂肪族炭化水素−ＰＥＧ−カルボニルイミダゾールが、さらに特開平６−２２００７０号公報、ＢＢＡ  １２３７（１９９５）９９ではフォスファチジルエタノールアミン（ＰＥ）−ＰＥＧ−マレイミドが、また、ＷＯ９４／２２４２９、Ｈａｎｓｅｎら  ＢＢＡ  １２３９（１９９５）１３３ではＰＥ−ＰＥＧ−ＮＨ2 −Ｂｉｏｔｉｎ、ジステアロイルフォスファチジルエタノールアミン（ＤＳＰＥ）−ＰＥＧ−ヒドラジド（Ｈｚ）、ＤＳＰＥ−ＰＥＧ−３−（２−ピリジルチオ）プロピオニル（ＰＤＰ）を用いた抗体結合リポソームが開示された。
【００１０】
これらにより抗体の結合率が向上すること、また、血中動態が改善されることが示された。
しかしながら同時にいくつかの問題点も指摘された。すなわちＤＳＰＥ−ＰＥＧ−Ｈｚを用いた方法では抗体処理の過程で抗体活性の低下があり、また抗体の結合効率があまり改善されないことが示された。ＤＳＰＥ−ＰＥＧ−ＰＤＰではリポソーム化後に還元処理が必要であり封入薬剤への影響の可能性があり、かつ、操作が煩雑であることが、ＰＥ−ＰＥＧ−ＮＨ2 −ビオチンではアビジン／ビオチンを介した結合であり、生体内投与では異種蛋白としての免疫源性が考えられること、さらに、脂肪族炭化水素−ＰＥＧ−カルボニルイミダゾールではＰＥＧ誘導体が封入すべき薬剤のアミノ基と反応してしまう可能性があること等の問題が挙げられた。
【００１１】
さらに十分な効率で抗体を結合させるには抗体に対し過剰量のＰＥＧ脂質誘導体をリポソームに組み込まねばならず、そのため抗体結合後においても活性基を有するＰＥＧ部分が他成分（ｉｎ  ｖｉｖｏ投与の場合は生体成分）と反応し易い境界領域に過剰に残存することになる。またこのような量の脂質−ＰＥＧ−官能基誘導体をリポソームに組み込んだ場合、リポソーム内封物の漏れが加速されることも示されている（ＢＢＡ  １２３７（１９９５）９９）。
これらの点で従来技術は必ずしも十分満足いくものではなかった。
【００１２】
【課題を解決するための手段】
本発明者らはかかる従来の問題点を解決すべく検討した結果、合成水溶性高分子の誘導体であってアミノ基との反応性部位及びチオール基または潜在的なチオール基（例えばＳ−アセチルチオ基）を有することを特徴とするヘテロな２価反応性水溶性高分子をスペーサーとして用いることで従来の問題点を改善することができることを見いだした。
【００１３】
また、ヘテロな２価反応性の水溶性高分子誘導体をまずリガンドに結合し、ついでその他端を介してミセル等の作用性物質に結合する、さらに必要に応じて作用性物質と反応性を有する１価の水溶性高分子を結合する工程を用いて容易にリガンド結合体を製造する方法を見いだした。
即ち、本発明によれば、アミノ基との反応性部位及びチオール基部分または潜在的チオール基部分を有することを特徴とする２価反応性水溶性高分子誘導体；下記式（Ｉ）で表わされる上記の水溶性高分子誘導体；
【００１４】
【化３】
0004385152.tif 000002
【００１５】
（式中、Ｓはチオール基部分または潜在的チオール基部分を表わし、Ｐは水溶性高分子を表わし、Ｎはアミノ基との反応性部位を表わす。また、Ｒ1 及びＲ2 は任意の連結基を表わすが、Ｒ1 及び／またはＲ2 は必須ではない。）；潜在的チオール基がＳ−アセチルチオ基である上記の高分子誘導体；水溶性高分子が生分解性ポリマーまたはポリエチレングリコールである上記の高分子誘導体；水溶性高分子がポリエチレングリコールである上記の高分子誘導体；アミノ基との反応性部位がスクシンイミド基である上記の高分子誘導体；上記の高分子誘導体を介してリガンドと作用性物質が結合した複合体；下記式（II）で表される上記の複合体；
【００１６】
【化４】
0004385152.tif 000003
【００１７】
（式中、Ｌは作用性物質を表わし、Ａはリガンドを表わし、Ｓ，Ｒ1 ，Ｐ，Ｒ2 及びＮは前記と同義を表わす。）；作用性物質が低分子薬剤、マーカー分子、タンパク質、ミセル及びリポソームから選ばれる上記の複合体；作用性物質がリポソームまたはミセルである上記の複合体；リガンドが抗体である上記の複合体；リガンドが１−３−１抗体である上記の複合体；作用性物質に、さらに、作用性物質と反応性を有する１価反応性水溶性高分子誘導体が結合した上記の複合体が提供される。
【００１８】
さらに、上記の複合体を含有する医薬組成物；抗腫瘍剤として使用することを特徴とする上記の医薬組成物；上記の複合体を含有する診断薬組成物；上記の２価反応性水溶性高分子誘導体をリガンドに結合させ、次いで該水溶性高分子誘導体の他端を介して作用性物質に結合させる工程からなる上記の複合体の製造方法；さらに、作用性物質と反応性を有する１価反応性水溶性高分子誘導体を結合させる工程を含む上記の製造方法；２価反応性水溶性高分子誘導体とリガンドが、リガンドのアミノ基を介して結合している上記の製造方法；２価反応性水溶性高分子誘導体と作用性物質が、２価反応性水溶性高分子誘導体のチオール基部分を介して作用性物質のチオール基反応性部分と結合している上記の製造方法が提供される。
【００１９】
すなわち、本発明の水溶性高分子（以下、「本高分子化合物」または「本水溶性高分子」と称することもある。）をまずアミノ基を有するリガンドと結合しチオール基付与ＰＥＧ−リガンド複合体を得（Ｓアセチルチオ基の場合は穏和な条件で脱アセチル後）、さらにチオール反応性部位を付与されたリポソーム等の作用性物質と混合し反応させることで容易にリガンド−ＰＥＧ−作用性物質複合体を得ることができた。
【００２０】
これによれば抗体等リガンドの活性低下を招く恐れのある酸化や還元を必要としない。また作用性物質に影響をあたえる可能性の少ないチオール基を介した反応方法で複合体形成が可能となった。
驚くべきことに、本高分子化合物を介して、例えば、抗体とリポソームを結合すると、高分子部分を有しない同じ組み合わせの官能基を有する低分子化合物を介して結合した場合に比較しターゲット細胞に対する高い結合活性を示すことが見いだされた。さらに従来指摘されていた内封物の漏れを低減する効果も見いだされた。
【００２１】
また、本方法によれば先に抗体等のリガンド−ＰＥＧ誘導体を形成するため、従来法のような熱力学的に不安定な作用性物質に、過剰な官能基ＰＥＧ脂質誘導体を導入することなくリガンド−ＰＥＧ結合体形成が可能である。その為、従来の官能基ＰＥＧ脂質により生じる可能性のある影響をうけることなく、リポソーム等の作用性物質製造技術、薬剤等の封入技術等従来の知見を十分利用し、作用性物質を形成することが可能である。
【００２２】
また従来法ではリガンド結合後においても活性基を有するＰＥＧ部分が他成分（ｉｎ  ｖｉｖｏ投与の場合は生体成分）と反応し易い境界近傍に過剰に残存することになるがこの問題点も生じない。
またヘテロな２価反応性の水溶性高分子誘導体を用いることにより、抗体等リガンドの活性低下を招く恐れのある酸化や還元を行う必要がない。
【００２３】
【発明の実施の形態】
以下に本発明を詳細に説明する。
本発明の水溶性高分子誘導体は２価反応性である。本発明において、２価反応性とは、同一分子内にある官能基と反応し得る基が２つあり、かつ、それらが異なるものである場合をいう。
【００２４】
本発明に用いられる水溶性高分子はポリエチレングリコール、ポリアクリルアミド、ポリビニルピロリドン、ポリグリセリン、ポリ乳酸、ポリグリコール酸、ポリアミノ酸等の合成高分子であり、好ましくはポリエチレングリコールである。また、ポリアミノ酸、ポリオキシ酸等の生分解性ポリマーも好適に使用される。分子量は約５００〜２００００が好ましく、１５００〜１００００がより好ましく、さらに好ましくは２０００から６０００である。
【００２５】
本発明の水溶性高分子誘導体は上記のような水溶性高分子の一方の末端にチオール基部分あるいは潜在的チオール基部分を有し、他端にアミノ基との反応性部位を有する。
潜在的チオール基とは、保護されたチオール基のことであり、適当な処理により脱保護することができる。好ましくはアセチルチオ基が挙げられる。
チオール基あるいは潜在的チオール基は直接水溶性高分子に付加してもよく、あるいは連結基として中間にアルキレン、カルボニル、エステル、アミド等を介して結合してもよい。
【００２６】
アミノ基との反応性部位としては、そのカルボキシル基あるいは水酸基がアミノ基との縮合反応をすることができる部位をいう。具体的には、スクシンイミドエステル、イソチオシアネート、スルフォニルクロライド、カルボニルイミダゾール等を用いて達成することができるが、より好ましくは、スクシンイミドエステルである。なお、アミノ基との反応性部位も、直接水溶性高分子に付加してもよいし、上記のような連結基を介して結合しても良い。
【００２７】
本発明の水溶性高分子誘導体は、限定するものではないが、例えば、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミドエステルで活性化したポリエチレングリコールとメルカプトエチルアミンを反応することで得ることができる。またアミノ基及びカルボキシル基を有するポリエチレングリコールにＳ−アセチルチオグリコール酸Ｎ−ヒドロキシスクシンイミドエステル（ＳＡＴＡ）、Ｓ−アセチルチオプロピオン酸Ｎ−ヒドロキシスクシンイミドエステルあるいはＳ−アセチルチオ酢酸・無水物を反応させ、アミノ末端にＳ−アセチルチオ基を導入し、さらにカルボキシル基をＮ−ヒドロキシスクシンイミドとＮ，Ｎ′−ジクロロヘキシルカルボジイミド又はトリフルオロ酢酸ｐ−ニトロフェニルエステルで活性化することで得ることができる。
【００２８】
上記のようにして得られた本発明の２価反応性水溶性高分子誘導体は、リガンドと作用性物質を結合した複合体を形成することができる。
リガンドは好ましくはアミノ基を有している必要があり、本水溶性高分子のアミノ基との反応性部位と結合する。リガンドとしては、レクチン、抗原、抗体、ホルモン、伝達物質等が挙げられる。好ましくは抗体、より好ましくは大腸癌反応性の１−３−１抗体である。また、後述の複合体の製造方法の記述の欄で述べているようなリガンドも使用可能である。
【００２９】
アミノ基を有するリガンドと本水溶性高分子との結合は、水溶液中でリガンドと本水溶性高分子とを混合し常温で反応させることで容易に達成できる。リガンドに対する高分子誘導体のモル比は約０．３〜５０倍が好ましく、より好ましくは０．８〜３０倍程度である。
なお、本水溶性高分子としてＳ−アセチルチオ基を付与した高分子を用いる場合は、上記のようにしてリガンドに結合させた後、脱アセチルしてチオール基とした後、以下で述べる作用性物質との結合に供することができる。脱アセチル条件は実質的にリガンドが安定な穏和な条件であれば特に限定されるものではないが、好ましくはヒドロキシルアミンを用い中性の緩衝溶液中、常温で、終濃度でおよそ５ｍＭから２００ｍＭ好ましくは２０ｍＭから２００ｍＭ、より好ましくは２０ｍＭから１００ｍＭの範囲で反応させることで達成される。
【００３０】
上記のようにして、リガンドを結合させた後、本水溶性高分子の他端に、作用性物質を結合させることができる。
作用性物質とは、メトトレキセート、マイトマイシンＣ、ドキソルビシン、ダウノマイシン等の低分子薬剤、アミノフルオレッセイン、フルオレッセインカダベリン、ルシフェリルイエローカダベリン、ペルオキシダーゼ、アルカリフォスファターゼ等のマーカー分子、ネオカルシノスタチン、ジフテリアトキシンＡ鎖、リシンＡ鎖、ウロキナーゼ、エラスターゼ、アルギナーゼ、アスパラギナーゼ、スーパーオキシドジスムターゼ、プラスミノーゲンアクチベーター、インターロイキン２、ＴＮＦ等のタンパク質、エンドルフィン、カルシトニン、ブラジキニン、ＣＲＦ関連ペプチド等のペプチドミセル、リポソームが挙げられるが、本発明で好ましいのはミセル、リポソームである。なお、ミセル、リポソーム中には、医薬品や診断薬が封入されていても良い。ミセルについては後述する。
【００３１】
これらに封入しうる医薬品としてはアドリアマイシン、ダウノマイシン、ビンブラスチン、シスプラチン、マイトマイシン、ブレオマイシン、アクチノマイシン、５−ＦＵ（フルオロウラシル）等の抗腫瘍剤、チモロール等のアドレナリン遮断剤、クロニジン等の高血圧剤、プロカインアミド等の制吐剤、クロロキニーネ等の抗マラリア剤、アンフォテンシン等の抗生物質、並びにそれらの薬学的に許容しうる塩及び誘導体；リシンＡやジフテリアトキシン等の毒素タンパク質及びそれをコードするＤＮＡ、ＴＮＦ等のサイトカイン遺伝子をコードするＤＮＡ、アンチセンスＤＮＡ等にヌクレオチド類等が挙げられる。上記抗腫瘍剤等の薬学的に許容しうる塩としては、多価陰イオン性物質との塩、例えばクエン酸塩、酒石酸塩、グルタミン酸塩が好ましい。特に好ましくは抗腫瘍剤が挙げられる。
【００３２】
また、診断薬としては、放射性元素、例えばインジウム、テクネシウム等のイメージング薬剤；ホースラディシュパーオキシダーゼ、アルカリフォスファターゼ等の酵素；ガドリニューム等のＭＲＩ造影剤；ヨーソ等のＸ線造影剤；ＣＯ2 等の超音波造影剤；ユーロピウム誘導体、カルボキシフルオレッセイン等の蛍光体；Ｎ−メチルアクリジウム誘導体等の発光体等が挙げられる。
これら医薬品及び診断薬用のミセル、リポソームへの導入は、それ自体既知の通常用いられる方法で行うことができる。例えばミセル、リポソーム形成時にｐＨ勾配等の濃度勾配を形成させ、このポテンシャルを駆動力としてイオン化可能な薬剤を取り込ませる方法（Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．４９  ５９２２（１９８９））を用いてもよい。
【００３３】
作用性物質には既知の方法によりチオール基との反応性部位を付与させて用いる。すなわち、マレイミド基、アルキルハライド基、アジリディン基、ピリジルジチオ基等から選ばれる反応基を用いることができるが、好ましくはマレイミド基である。特に限定するものではないが、具体例としてはマレイミドカプロイルジパルミチルフォスファチジルエタノールアミン（特開平４−３４６９１８号公報）やマレイミドフェニルブチロイルフォスファチジルエタノールアミンなどのマレイミド基部分を有する脂質をフォスファチジルコリンやコレステロールとともに公知の方法にしたがってリポソーム化する（リポソーム  ２章  野島ら編江南堂（１９８８））ことでマレイミド基部分を有するリポソームを得ることができる。リポソームとしては、ＭＬＶ、ＬＵＶ、ＳＵＶ等の種々のリポソームを用いることができるが、好ましくはＬＵＶである。
【００３４】
またＮ−スクシンイミジル−６−マレイミドヘキサノエートと蛋白質を反応することでマレイミド部分を有する蛋白質を得ることができる。さらにマレイミドフルオレッセイン、エオシンマレイミド等の蛍光色素を用いることもできる。
これらチオール反応性基を付与した作用性物質は、上記で得られたチオール基を有する本水溶性高分子−リガンド複合体と中性付近の緩衝液中で混合することで容易に複合体化することができ、目的とするリガンド−ＰＥＧ−作用性物質からなる複合体を得ることができる。さらに必要に応じて限外ろ過、ゲル濾過クロマトグラフィーイオン交換クロマトグラフィー等の手法を用いて精製して使用することができる。
【００３５】
次に本発明の複合体の製造方法を詳細に説明する。
本発明の製造方法の概要を図５に示す。図中高分子１は、リガンド中の官能基Ａと反応性を有するＡ′部分及び作用性物質に組み込まれた反応性部分Ｂと結合するＢ′部分とからなる、即ち前述の２価反応性水溶性高分子誘導体である。高分子２はＢと結合するＢ″を有する。Ｂ′とＢ″は同一残基であってもよい。このように、本発明においては、作用性物質と反応性を有する１価反応性高分子が結合されていても良い。
【００３６】
本発明においては、まず、ヘテロな２価反応性の水溶性高分子１をリガンドに結合し、ついでその他端を介して作用性物質に結合する、さらに必要に応じて作用性物質と反応性を有する１価の高分子２を結合する工程を用いて複合体を製造することを特徴とする。
リガンド中のＡとしてはアミノ基、糖鎖部分を用いることができるが、好ましくはアミノ基である。アミノ基反応性の基としてＡ′は、前述のとおりである。
【００３７】
Ｂ及びＢ′の組み合わせは、実質的にＢがリガンドと反応することがなく、特異的にＢ−Ｂ′結合を生ずる組み合わせから選ばれるが、Ｂ′としてチオール基、Ｂとしてチオール反応性基とする組み合わせが好ましい。チオール基は前述のように反応前には保護された潜在的なチオール基、即ち、Ｓ−アセチルチオ基でもよく、この場合は、反応に際して脱保護して用いることができる。
【００３８】
本発明に用いられるリガンドは前述の他トランスフェリン、ＥＧＦ、アルファフェトプロテイン（ＡＦＰ）等のタンパク質、インシュリン等のペプチドまたはポリクロナール抗体、モノクロナール抗体等の抗体から選ばれるリガンドであり、その全体であっても、また酵素処理等によって得られるそのフラグメントであっても良い。各種疾患の治療用に用いる場合は、マウス−ヒトのキメラ抗体、ヒト抗体が好ましい。
【００３９】
水溶性高分子１及び２は前述の水溶性高分子として挙げたものが用いられ、高分子１及び２は異なった組み合わせでもまた同一の組み合わせでもよい。
リガンドと本高分子１との反応は前述のとおりである。
前述のように、Ｓ−アセチルチオ基を付与した高分子を用いる場合はリガンドに結合後、脱アセチルしてチオール基を得ることができる。
【００４０】
本発明において、作用性物質としては前記のようなものが挙げられるが、特にミセル、リポソームが好ましい。よって以下、複合体としてミセル、リポソームを代表例として本発明を説明することもあるが、作用性物質としてはミセル、リポソームに限定されるものではない。ミセルは、両親媒性分子から構成される。ミセルを構成する両親媒性分子としては、親水性部分及び疎水性部分を含み、それ自体既知の通常用いられる方法によりミセルを形成し得るものであれば如何なるものであってもよく、それらの中で好適な両親媒性分子としては脂質を挙げることができる。
【００４１】
本発明におけるミセルを形成し得る脂質としては、例えば、天然フォスファチジルコリン、例えば卵黄フォスファチジルコリン（ＥＹＰＣ）等；フォスファチジルコリン（ＰＣ）、例えばジパルミトイルフォスファチジルコリン（ＤＰＰＣ）、ジミリストイルフォスファチジルコリン（ＤＭＰＣ）、ジステアロイルフォスファチジルコリン（ＤＳＰＣ）、ジオレオイルフォスファチジルコリン（ＤＯＰＣ）等；天然フォスファチジルエタノールアミン、例えば卵黄フォスファチジルエタノールアミン（ＥＹＰＣ）；フォスファチジルエタノールアミン（ＰＥ）、例えばジパルミトイルフォスファチジルエタノールアミン（ＤＰＰＥ）、ジオレオイルフォスファチジルエタノールアミン（ＤＯＰＥ）等；フォスファチジルグリセロール（ＰＧ）、例えばジパルミトイルフォスファチジルグリセロール（ＤＰＰＧ）等；フォスファチジルセリン（ＰＳ）；フォスファチジルイノシトール（ＰＩ）；フォスファチジン酸（ＰＡ）等のリン脂質、スフィンゴ糖脂質、グリセロ糖脂質等を挙げることができる。これらの脂質は単独または２種以上、あるいはこれらとコレステロール等の非極性物質と組み合わせて用いられる。
【００４２】
本発明におけるミセルには、上記脂質や非極性物質の他に、リガンド−高分子１複合体及び高分子２との結合に供される脂質誘導体が組み込まれてなる。このような脂質誘導体としては、ミセルに組み込まれた反応性部位Ｂ、即ち、チオール基反応性部位としてマレイミド基、アルキルハライド基、アジリディン基、ピリジルジチオ基から選ばれる反応基を有するリン脂質誘導体を用いることができるが、好ましくはマレイミド基である。特に限定するものではないが、具体例としてはマレイミドカプロイルジパルミチルフォスファチジルエタノールアミン（特開平４−３４６９１８号公報）やマレイミドフェニルブチロイルフォスファチジルエタノールアミンなどのマレイミド基部分を有する脂質を用いることができる。
【００４３】
上記脂質誘導体は、ミセル形成両親媒性分子に対して０．１〜８ｍｏｌ％、好ましくは０．５〜３ｍｏｌ％、より好ましくは１〜３ｍｏｌ％の組成比で用いることができる。コレステロールはミセル形成両親媒性分子に対して０〜１００ｍｏｌ％、好ましくは４０〜７０ｍｏｌ％の組成比で用いることができる。
【００４４】
本発明におけるミセルは如何なる方法で製造されたものでもよく、上記素材を用いてそれ自体既知の通常用いられる製造技術を用いて製造できる。例えばガラス壁に付着させた脂質薄膜に水溶液を加え機械的振盪を加え形成するマルチラメラリポソーム（ＭＬＶ）や、超音波処理法、エタノール注入法、フレンチプレス法によって得られるスモールユニラメラリポソーム（ＳＵＶ）、界面活性剤除去法、逆相蒸発法（リポソーム  砂本順三ら  南洪堂  １９８８）、ＭＬＶを均一ポア経を有するメンブランを加圧して押し出すイクストゥルージョン法等から得られるラージユニラメラリポソーム（ＬＵＶ）を用いることができる（Ｌｉｐｏｓｏｍｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｖｏｌ．１  ２ｎｄ  Ｅｄｉｔｉｏｎ）。
【００４５】
さらに、ミセルには、医薬品や診断用薬剤が封入されていてもよい。
ミセルに封入しうる医薬品、診断薬としては前述のとおりである。
リガンド−高分子１複合体と上記リポソーム、ミセルとの反応は約４℃〜４０℃で中性の緩衝液中で混合することで容易に達成できる。またチオールが保護されている場合は反応前に前述のごとく脱保護して用いることができる。
反応時のｐＨは約５〜８が好ましく、より好ましくは５．５〜７．０である。反応時に１ｍＭ程度のＥＤＴＡを添加することもできる。
【００４６】
リガンド−高分子１複合体はミセルに組み込まれた反応性脂質に対して２ｍｏｌ当量以下、好ましくはｍｏｌ当量程度以下を用いて反応させることができる。少量のリガンドで目的とするターゲッティング能を得ることができる場合は、必ずしも多量のリガンドを結合させる必要はなく、残存するミセル上の反応性基に高分子２を加えて反応させることができる。なお、高分子２を添加することにより、例えば医薬品、診断薬として使用する場合ミセル−高分子１−リガンド複合体の血中での滞留性をもたせることができる。
【００４７】
本発明において高分子２としては、前述のとおりであるが、高分子２は実質的にミセルとの共有結合部位のみを有する。
限定するものではないが、高分子２として例えば、２，４−ビス（ポリエチレングリコール）−６−クロロ−Ｓ−トリアジンとシステインからなるチオール基を有するＰＥＧ誘導体（特開平４−３４６９１８号公報）、Ｎ−プロピオネート−３−（チオール）メトキシポリオキシエチレンアミン（Ｊ．Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ  Ｒｅｌｅａｓｅ  ２８（１９９４）１５５）等を用いることができる。
【００４８】
高分子２はミセルとリガンド−高分子１複合体の反応後さらに引き続き反応させてもよく、ミセル−リガンド−高分子１複合体を一旦精製してからさらに添加しても良い。
添加量はミセルに組み込まれた反応性脂質の０．２〜５ｍｏｌ当量、好ましくは０．５〜２ｍｏｌ当量であり、中性の緩衝液中で約４℃〜４０℃で混合することで容易に反応が達成できる。
【００４９】
反応時のｐＨは約５〜８が好ましく、より好ましくは５．５〜７．０である。反応時に１ｍＭ程度のＥＤＴＡを添加することもできる。
本発明で得られたリガンド結合ミセルは、さらに必要に応じて限外濾過、ゲル濾過クロマトグラフィーイオン交換クロマトグラフィー等の手法を用いて精製して使用することができる。
【００５０】
【実施例】
以下に実施例を示し、さらに詳細な説明を行うが、本発明はその要旨を越えない限りこれらに限定されるものではない。
【００５１】
実施例１
塩化メチレン１０ｍｌに溶解したポリ（エチレングリコール）−ビス−ω−アミノ−α−カルボキシル（ＰＥＧ平均分子量３４００、Ｓｈｅａｒｗａｔｅｒ  ｐｏｌｙｍｅｒｓ，Ｉｎｃ）  １ｇにＳ−アセチルチオグリコール酸Ｎ−ヒドロキシスクシンイミドエステル（Ｓｉｇｍａ）７４．８ｍｇ及びトリエチルアミン４１μｌを添加した。攪拌し溶解後、さらに１０ｍｇのＳ−アセチルチオグリコール酸Ｎ−ヒドロキシスクシンイミドを添加し室温で３．５時間攪拌し反応した。反応進行はＴＬＣ（クロロホルム／メタノール＝８５／１０、ヨーソ発色、以下ＴＬＣは同様の条件で行った）で添加したポリ（エチレングリコール）−ビス−ω−アミノ−α−カルボキシルの低Ｒｆのスポットが高Ｒｆ（約０．６）にシフトすることで確認した。
【００５２】
窒素下に溶媒を留去した反応物にクロロホルム１０ｍｌを添加し溶解した。クロロホルムで膨潤したｓｅｐ−ｐａｋ（ＳＩＬＩＣＡ  ＰＬＵＳ  Ｗａｔｅｓ社）に添加しクロロホルム／メタノール（４／１（ｖ／ｖ））で溶出することでサンプルを前処理した。再び窒素下に溶媒を留去しクロロホルムに溶解後、シリカゲルカラム（ローバーカラム  ＬｉＣｈｒｏｐｒｅｐ  Ｓｉ６０  ２５×３１０ｃｍ  関東化学）に添加した。クロロホルムで洗浄後、クロロホルム／メタノール（８５／１５（Ｖ／Ｖ））で展開溶離しＴＬＣのＲｆが約０．６の主生成物をプールし精製した。窒素下に溶媒を留去し５８３ｍｇを得た。５４３ｍｇを約２ｍｌの脱水した塩化メチレンに溶解しジエチルエーテルを加え沈殿化し濾取し真空ポンプで減圧乾燥した。脱水した塩化メチレン５ｍｌに溶解したのち、Ｎ−ヒドロキシスクシンイミド（Ｓｉｇｍａ）１７．８ｍｇを加え１０分間攪拌した。さらにＮ，Ｎ’−ジシクロヘキシルカルボジイミド３１．９ｍｇを添加し窒素雰囲気下、攪拌しつつ室温で一夜反応した。沈殿物を濾別後、窒素下に溶媒を留去し少量の脱水塩化メチレンに溶解した。エチルエーテルを加え析出した沈殿を濾取し真空ポンプで減圧乾燥しＴＬＣで単一な目的物３３７ｍｇ（以下「Ａｃ−Ｓ−ＰＥＧ−Ｓｕｃ」と表記）を取得した。 1Ｈ−ＮＭＲにより目的物生成を確認した。
【００５３】
【化５】
0004385152.tif 000004
【００５４】
【表１】
0004385152.tif 000005
【００５５】
さらにヒトγグロブリンへの結合実験で目的物生成を確認した。
すなわち、５０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）及び１ｍＭＥＤＴＡからなる緩衝液に溶解したヒトγグロブリン（ＩｇＧ、Ｆ（ａｂ′）2 ）（４．７ｍｇ／ｍｌ）０．９ｍｌに、脱水メタノールに溶解した３０ｍｇ／ｍｌのＡｃ−Ｓ−ＰＥＧ−Ｓｕｃを添加した。添加量は抗体モル比で０〜８倍とし、添加量とＰＥＧ導入量の関係を調べた。Ａｃ−Ｓ−ＰＥＧ−Ｓｕｃを添加し２５℃で１時間反応後、セファクリルＳ１００（ファルマシア社）を用い、同上緩衝液で展開することでゲルクロマトグラフィー精製し未反応のＡｃ−Ｓ−ＰＥＧ−Ｓｕｃ（ＰＥＧ分子量３．４Ｋ）と抗体（分子量１００Ｋ）を分離した。
【００５６】
得られた修飾抗体の一部についてヒドロキシルアミンで脱保護した。すなわち抗体溶液０．９ｍｌに０．１ｍｌのヒドロキシルアミン溶液（０．５Ｍ  ヒドロキシルアミン、０．５ＭＨＥＰＥＳ、２５ｍＭ  ＥＤＴＡ、ｐＨ７．０）を加え２５℃、１０分間反応し脱アセチル後、０．１Ｍリン酸緩衝液ｐＨ６．０  １ｍＭ  ＥＤＴＡで平衡化したＰＤ−１０（ファルマシア社）で低分子を除去しチオール基を有する抗体を得た。抗体に導入されたチオール基は４、４’ジチオピリジン（シグマ社）を用いる方法に準じて測定した（続生化学実験講座５  ｐ１０９  日本生化学編）。対照としてヒドロキシルアミンで脱保護処理をしていない各修飾抗体のチオール含量を同様に測定した。その結果、図１に示すようにＡｃ−Ｓ−ＰＥＧ−Ｓｕｃで修飾したヒトγグロブリンはヒドロキシルアミンで脱保護により生じる潜在的なチオール基、即ちＳ−アセチルチオ基を有しており、それはＡｃ−Ｓ−ＰＥＧ−Ｓｕｃの添加量に依存し増大することが確認された。
【００５７】
実施例２
抗ＣＥＡマウスモノクロナール抗体（ＩｇＧ1   Ｆ（ａｂ′）2 ）に実施例１と同様にＡｃ−Ｓ−ＰＥＧ−Ｓｕｃを反応させ修飾抗体を得たのち、陽イオン交換樹脂で抗体蛋白を精製した。即ち反応液（３．４ｍｇ／ｍｌ  ２ｍｌ）に０．１Ｍ酢酸を添加しｐＨ４に調整し、０．１Ｍ酢酸ｐＨ４．０の緩衝液で平衡化した２ｍｌベッドのＳＰセファロース（ファルマシア社）に添加した。同上の緩衝液４ｍｌで洗浄後５０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．５）でタンパク質を溶出した。セントリコン３０（アミコン社）限外ろ過器で緩衝液を５０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．０）、１ｍＭＥＤＴＡに調整した後、実施例１と同様にヒドロキシルアミンを加えて脱保護した。ＳＨ基を付与された抗体はＰＤ−１０で脱塩及び０．１Ｍリン酸緩衝液ｐＨ６．０、１ｍＭＥＤＴＡ溶液に交換し以下に述べるリポソームとの結合に用いた。なおＡｃ−Ｓ−ＰＥＧ−Ｓｕｃ及びＡｃ−Ｓ−ＰＥＧ−Ｓｕｃの加水分解物に相当するＡｃ−Ｓ−ＰＥＧ−ＣＯＯＨ（実施例１でスクシンイミド化前の化合物）は本条件でＳＰセファロースには結合しなかった。
【００５８】
また対照としてＡｃ−Ｓ−ＰＥＧ−Ｓｕｃの代わりにＳ−アセチル基とスクシンイミド基の間にＰＥＧ部分を持たないＳ−アセチルチオグリコール酸Ｎ−ヒドロキシスクシンイミドエステル（Ｓｉｇｍａ）（以下、「ＳＡＴＡ」と称することもある。）を本抗体と反応し、ＰＤ−１０で脱塩、ヒドロキシルアミン脱保護、ＰＤ−１０脱塩（０．１Ｍリン酸緩衝液ｐＨ６．０  １ｍＭＥＤＴＡ）し同様にチオール基を付与された抗体を調整した。
【００５９】
蛍光色素カルボキシフルオレッセインを封入し、チオールとの反応性を有するマレイミド化リン脂質を膜成分をして有するリポソームを用い上述抗体との結合を検討した。
即ち、ジパルミトイルフォスファチジルコリン（ＤＰＰＣ）／コレステロール（ＣＨＯＬ）／マレイミドカプロイルジパルミトイルフォスファチジルエタノールアミン（特開平４−３４６９１８号公報）  １８／１０／０．５（モル比）からなる固型脂質混合物１００ｍｇに０．１Ｍカルボキシフルオレッセイン水溶液（ｐＨ７付近に調整）１ｍｌを加え水和しマルチラメラリポソームを作製した。さらにｅｘｔｒｕｄｅｒ（Ｌｉｐｅｘ  Ｂｉｏｍｅｍｂｒａｎｅｓ）を用い０．１μｍのポリカーボネートメンブランで整粒した。
【００６０】
抗体とリポソームの結合は０．１Ｍクエン酸緩衝液ｐＨ６中、抗体終濃度０．４８ｍｇ／ｍｌ、リポソーム終濃度（脂質として）１９ｍｇ／ｍｌとして２５℃で１時間反応することで行い、反応後セファロースＣＬ６Ｂ（ファルマシア社）によりゲル濾過クロマト分離することで未反応抗体及び非封入カルボキシフルオレッセインを分離除去した。
【００６１】
作製した各イムノリポソームの活性は抗原を固定化した９６穴プラスチックスプレート上への結合量を内封したカルボキシフルオレッセインの蛍光量を測定することで行った。即ち、９６穴プレート（ファルコン社）に２０ｕｇ／ｍｌの抗原ＣＥＡを５０μｌ／穴添加し３７℃、２時間固定化した。ＣＥＡを除去後ＰＢＳで洗浄し５％ウシ血清アルブミンでブロッキングした。ＰＢＳで洗浄後、１％ウシ血清アルブミンで各濃度に希釈したリポソーム溶液を５０μｌ／穴添加し、４℃で９０分間反応した。ＰＢＳで十分に洗浄後、２％ｔｒｉｔｏｎ×１００含有ＰＢＳを１００μｌ／穴添加し３７℃で３０分インキュベートすることでリポソームからカルボキシフルオレッセインを溶出させた。その一部をとりＰＢＳで希釈し励起波長４９２ｎｍ、蛍光波長５２０ｎｍで蛍光測定を行い抗原プレートに結合したリポソーム量を比較した。
その結果、図２に示す様にＡｃ−Ｓ−ＰＥＧ−Ｓｕｃを用い抗体にＳＨを導入し作製したイムノリポソームで高い結合活性が示された。
【００６２】
実施例３
実施例２のリポソームに代えてマレイミド含有蛍光色素であるフルオレッセインマレイミド（フナコシ）を用い複合体を作製した。すなわち実施例２に示したＳＨ−ＰＥＧ−抗ＣＥＡ抗体（０．１Ｍリン酸緩衝液ｐＨ６．０、１ｍＭＥＤＴＡ溶液）に２．５ｍｇ／ｍｌ  ０．３５ｍｌにフルオレッセインマレイミドのＤＭＳＯ溶液３．８ｍｇ／ｍｌを５μｌ添加し攪拌しながら２５℃で３０分反応した。
【００６３】
反応後ＰＢＳで平衡化したＰＤ−１０（ファルマシア）でゲル濾過することで未反応のフルオレッセインマレイミドを除去した。４９５ｎｍと、２８０ｎｍの吸光度よりフルオレッセインマレイミドの導入率を算出したところ１抗体当たり０．９分子のフルオレッセインマレイミドが導入された。本蛍光ラベル抗体をヒト胃癌細胞株ＭＫＮ４５に添加し、ヒト血清中５０μｇ／ｍｌで氷冷下に１時間混合した。ＰＢＳで十分に洗浄した後、フローサイトメーターにより癌細胞への結合を観察した。その結果、図３に示す様に本複合体が癌細胞と結合し蛍光を示していることが確認された。
【００６４】
実施例４
クロロホルム１ｍｌにＰＥＧジスクシンイミジルスクシネート（日本油脂  サンブライト４００１  ＰＥＧ平均分子量５０００）を２０ｍｇ（４μｍｏｌ）溶解した。ＰＥＧ溶液を攪拌しながら脱水したメタノールに溶解したメルカプトエチルアミン塩酸塩（シグマ）４μｍｏｌを滴下した。さらに７２ｍＭトリエチルアミン（脱水メタノール中）５６μｌを添加した。窒素雰囲気下に室温で７時間反応したのちニンヒドリン反応によりアミノ基の消費をみたところ、ニンヒドリンネガティブでありジサクシンイミドＰＥＧと反応していることが確認された。得られたＳＨ−  ＰＥＧ−サクシンイミドを窒素気流下に乾固し脱水メタノール１ｍｌに再溶解した。不溶物をろ過し以下の抗体との反応に用いた。
【００６５】
ＰＥＧ誘導体４８．７μｌを５０ｍＭリン酸緩衝液ｐＨ７．５、１ｍＭ  ＥＤＴＡに溶解したヒトγグロブリン３．９ｍｇ／ｍｌ、０．５ｍｌに攪拌しながら添加し、３７℃で１時間振盪した。未反応のＰＥＧ誘導体と抗体は０．１Ｍリン酸緩衝液ｐＨ６．０  １ｍＭ  ＥＤＴＡで平衡化したセファデックスＧ７５カラム（１．２ｃｍ×１２ｃｍ）を用いたゲル濾過クロマトグラフィーにより行った。同緩衝液で展開し最初に溶出された抗体フラクションを集め導入されたチオール量を実施例１と同様に定量した。その結果、抗体１ｍｏｌあたり０．７５ｍｏｌのチオールが導入された。
さらに実施例２と同様にリポソームへ結合し、得られたリポソームをＳＤＳ電気泳動で解析したところ抗体の結合が確認された。
【００６６】
実施例５
カルボキシフルオレッセインの漏れ比較
実施例２と同様に作製した抗体結合０．１Ｍカルボキシフルオレッセイン封入リポソームにさらにチオール化ポリエチレングリコール（特開平４−３４６９１８号公報）を反応し抗体及びポリエチレングリコールを結合したイムノリポソームを作製した。２０ｍＭリン酸緩衝液（ｐＨ７．５）、０．３Ｍ  ＮａＣｌで平衡化したＰＤ−１０カラムでゲル濾過して未封入のカルボキシフルオレッセインを除去した。さらに３７℃でインキュベートしリポソームから漏れるカルボキシフルオレッセイン量を測定した。
【００６７】
カルボキシフルオレッセインの漏れはＳｈａｈｉｎｉａｎら（ＢＢＡ  １２３９（１９９５）１５７）の方法で定量化した。すなわちインキュベートしているリポソームから一定時間後にサンプリングし同上緩衝液で希釈し蛍光量（励起波長４９２ｎｍ  蛍光波長５２０ｎｍ）を測定した。同時にリポソームを２％ＳＤＳに加え可溶化（壊した）後の蛍光量を測定した。封入されているカルボキシフルオレッセインは自己消光しており蛍光強度はリポソームから漏れたカルボキシフルオレッセイン量を反映することから、両者の比で漏れ量を算出した。
【００６８】
図４に示す様に抗体−ＰＥＧ−リポソームは非修飾のリポソーム（ＥＭＣ−リポソーム）と同等以上の安定性が示された。
Ｓｈａｈｉｎｉａｎら（ＢＢＡ  １２３９（１９９５）１５７）はＰＥＧ先端にマレイミド基を導入したリポソーム（マレイミド−ＰＥＧ−リポソームあるいは抗体結合−ＰＥＧ−リポソーム）がＰＥＧ部分のないＥＭＣ−ＰＥを用いたリポソームより漏れが大きいことを示しているが、本方法で作製したリポソームでは対応するＥＭＣ−リポソームと同等以上の安定性を示した。
【００６９】
実施例６
実施例２と同様にしてカルボキシフルオレッセイン封入抗体結合リポソームを作製した。さらにリポソーム反応液に分子量６０００のＰＥＧを用い作製したチオール化ポリエチレングリコール（特開平４−３４６９１８号公報）を添加した。０．１Ｍリン酸緩衝液ｐＨ６．０  １ｍＭＥＤＴＡに溶解したチオール化ポリエチレングリコールを脂質１００ｍｇに対して２．５μｍｏｌ添加し１０℃で一夜反応した。反応後、セファロースＣＬ６Ｂ（ファルマシア社）によりゲル濾過クロマト分離することで未反応抗体、チオール化ポリエチレングリコール及び非封入カルボキシフルオレッセインを分離除去した。
【００７０】
さらに実施例２と同様に抗原を固定化した９６穴プラスチックスプレート上への結合量を内封したカルボキシフルオレッセインの蛍光量を測定した。その結果チオール化ポリエチレングリコールでコートした抗体結合リポソームにおいても図６に示す様にＡｃ−Ｓ−ＰＥＧ−Ｓｕｃを用い抗体にＳＨを導入して作製したイムノリポソームで高い結合活性が示された。
【００７１】
実施例７
リポソームとして下記に示すアドリアマイシン封入リポソーム及び抗体としてヒトＩｇＧを用いる以外は実施例５と同様にして抗体及びＰＥＧを結合したアドリアマイシン封入リポソーム（ＰＥＧイムノリポソーム）を作製した。対照としてチオール化ＰＥＧのみを結合したリポソーム（ＰＥＧリポソーム）及び、両者とも結合しないリポソーム（リポソーム）を作製した。
【００７２】
アドリアマイシン封入リポソームはジパルミトイルフォスファチジルコリン（ＤＰＰＣ）／コレステロール（ＣＨＯＬ）／マレイミドカプロイルジパルミトイルフォスファチジルエタノールアミン１８／１０／０．５（モル比）からなる固形脂質混合物１００ｍｇあたり１ｍｌの０．３Ｍクエン酸緩衝液ｐＨ４．０を加えボルテックスミキサーで水和しマルチラメラリポソームを作製、ついでこのリポソームを順次０．２μｍ及び０．１μｍのポアサイズのポリカーボネート膜を装着したｅｘｔｒｕｄｅｒ（Ｌｉｐｅｘ  Ｂｉｏｍｅｍｂｒａｎｅｓ）で６０℃で加温しつつ加圧濾過し、整粒したリポソームを作製した。さらに得られたリポソーム溶液を１Ｍ  ＮａＯＨで中和した後、脂質重量の１／１０重量のアドリアマイシン（協和発酵）を添加し、９７％以上のアドリアマイシンを封入することで作製された。
【００７３】
各リポソームの血中滞留性を比較するため、雄性ＢＡＬＢ／ｃマウスにアドリアマイシン量として２ｍｇ／ｋｇを尾静脈から投与した。各時間後に屠殺し血漿を採取した。アドリアマイシン量をＫｏｎｎｏらの方法（Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ．４７  ４４７１（１９８７））に従って塩酸エタノールで抽出後、蛍光測定により定量した。
【００７４】
なおｆｒｅｅのアドリアマイシンは投与後速やかに血漿より消失し、この条件では検出されないことから、検出されたアドリアマイシン量は各リポソーム体としての挙動を反映すると考えられる。
その結果を図７に示すが、本方法で作製した抗体及びＰＥＧを結合したアドリアマイシン封入リポソームは高い血中安定性を示した。
【００７５】
実施例８
アドリアマイシンを封入した本発明の２価反応性水溶性高分子誘導体を用いたイムノリポソームの腫瘍細胞に対する抗腫瘍活性をｉｎ  ｖｉｔｒｏで検証した。ヒト大腸癌に反応性を有するヒト抗体の例を用い、以下に示すように本イムノリポソームのターゲット細胞に対する選択的な抗腫瘍効果が確認された。
【００７６】
・大腸癌反応性１−３−１抗体
常法によりＩｇＧにクラススイッチしＣＨＯ細胞で発現した特開平５−３０４９８７号公報に記載のヒト大腸癌反応性ヒトモノクロナール抗体１−３−１をペプシン消化により（特開平４−３４６９１８号公報参照）Ｆ（ａｂ’）2 断片として使用した。
抗体の反応性を確認する目的でＦＩＴＣで蛍光標識した上記抗体を作製し、ヒト大腸癌細胞ＤＬＤ−１（大日本製薬社製）及び正常細胞としてヒト臍帯血管内皮細胞由来ＳＶ−３Ｔ細胞（Ａｇｒｉｃ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．５５（１１），２８４７−２８５３，１９９１）に対する反応性をフローサイトメーターにて測定した。
【００７７】
すなわち、本蛍光抗体をＢＳＡ溶液（１％牛血清アルブミン（ＢＳＡ）を含むＰＢＳ）で５０μｇ／ｍｌになるように調製し、細胞に加えて氷上で１時間反応させた。ＢＳＡ溶液で１回洗浄後、最終濃度２μｇ／ｍｌのプロピジウムアイオダイド（ＰＩ）を加えて、フローサイトメーター（ＦＡＣＳｃａｎ  ベクトンディッキンソン）にて測定した。
生細胞、すなわちＰＩ陰性細胞をゲーティング操作により選択し、ＦＩＴＣの蛍光強度を表す平均チャンネル値について、それぞれの細胞での抗体を含まない場合の値をバックグラウンド値として差し引いた値を図８に示す。
１−３−１抗体は、ＳＶ−３Ｔ細胞よりも、ＤＬＤ−１細胞に対して高い反応性が確認された。
【００７８】
・イムノリポソームの作製
実施例７と同様にしてアドリアマイシン封入ＰＥＧイムノリポソームを作製した。
・細胞増殖抑制活性（Ｃｙｔｏｔｏｘｉｃｉｔｙ）
本イムノリポソームを健常人由来血清で順次希釈しアドリアマイシン換算濃度で４０μｇ／ｍｌからの希釈系列を作製した。細胞に添加して３７℃１時間インキュベートした後、培地で１回洗浄し３７℃で培養した。リポソームサンプルを添加していないコントロールがコンフルエントになった時点でＭＴＴアッセイ（Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ，６５  ５５（１９８３））を行い細胞数を計測した。
各リポソーム濃度における細胞数をコントロールの細胞数を１００％として相対表示した。
図９にヒトＤＬＤ−１細胞及びＳＶ−３Ｔ細胞に対する増殖抑制活性を示す。本イムノリポソームはターゲットである大腸癌ＤＬＤ−１に対してより特異的な抑制効果を示した。即ち、本イムノリポソームは抗腫瘍効果を有することがわかる。
【００７９】
【発明の効果】
本発明の２価反応性水溶性高分子誘導体を用いると、リガンド及びリポソーム等の作用性物質と混合、反応させることで、容易にリガンド−高分子−作用性物質複合体を得ることができる。本発明の水溶性高分子誘導体によると、リガンドの活性低下や、作用性物質に対する影響を防止することができる。
本発明の製造方法によれば、抗体等のリガンドをＰＥＧ等の高分子誘導体に結合させた後ミセルに結合させるため、熱力学的に不安定なミセルに対しＰＥＧ等の高分子誘導体を過剰量導入することなく、従って、これらの影響を受けることなく、リガンド結合体を製造することができる。
さらに、本発明においてミセル中に薬物等を封入した場合、内封物の漏れを低減させることが可能であり、また、抗原等の標的分子に対し高い結合活性を示すことが可能である。
【図面の簡単な説明】
【図１】抗体へのＡｃ−Ｓ−ＰＥＧ−Ｓｕｃ導入と脱保護によるチオール基の生成を示す。横軸は抗体とＡｃ−Ｓ−ＰＥＧ−Ｓｕｃの反応時のモル比を、縦軸はそれによって生成した抗体１分子あたりのチオール基分子数を示す。白丸はＡｃ−Ｓ−ＰＥＧ−Ｓｕｃとの反応後ヒドロキシルアミンで脱保護した抗体を、黒丸はヒドロキシルアミンを用いた脱保護処理をしなかった抗体を示す。
【図２】Ａｃ−Ｓ−ＰＥＧ−Ｓｕｃまたは、ＳＡＴＡを用いてチオール基を導入した抗ＣＥＡ抗体を結合したカルボキシフルオレッセイン封入リポソームの結合活性を示す。各イムノリポソーム及び抗体非結合リポソームをＣＥＡ固定化プレートは反応させ、洗浄後プレートに結合したリポソーム量を蛍光により測定した。横軸は各リポソーム量（脂質量）をまた縦軸は励起波長４９２ｎｍ、蛍光波長５２０ｎｍでの蛍光強度を示す。丸印はＡｃ−Ｓ−ＰＥＧ−Ｓｕｃでチオール基を導入した抗体を用いたイムノリポソームを、四角は、ＳＡＴＡでチオール基を導入した抗体を用いたイムノリポソームを、また×印は抗体非結合のリポソームを示す。
【図３】Ａｃ−Ｓ−ＰＥＧ−Ｓｕｃでチオール基を導入した抗体とフルオレッセインマレイミドとを結合した蛍光抗体のＭＫＮ４５癌細胞への結合活性を示す。細胞と反応後フローサイトメータにより解析した。図中ａは蛍光抗体と未反応の、ｂは蛍光抗体と反応した細胞群を示す。また横軸は蛍光量、縦軸は細胞数を示す。
【図４】Ａｃ−Ｓ−ＰＥＧ−Ｓｕｃを用いたイムノリポソーム（白丸）からの内封カルボキシフルオレッセインの漏れと対応する非修飾リポソーム（黒四角）からの漏れの比較を示す。縦軸はリポソームに残存するカルボキシフルオレッセインの％を、横軸はインキュベーション時間を示す。
【図５】本発明によるリガンド結合ミセルの製造法の概略を示す。Ａはリガンド中の官能基を、Ａ′はＡと反応性を有する基を、Ｂはミセル粒子に導入した反応性基でありＢ′及びＢ″と特異的な反応性を有する。
【図６】Ａｃ−Ｓ−ＰＥＧ−ＳｕｃまたはＳＡＴＡを用いてチオール基を導入した抗ＣＥＡ抗体を結合し、さらに、チオール化ポリエチレングリコールをコートしたカルボキシフルオレッセイン封入リポソームの結合活性を示す。横軸は各リポソーム量（脂質量）を、また縦軸は励起波長４９２ｎｍ、蛍光波長５２０ｎｍでの蛍光強度を示す。丸印はＡｃ−Ｓ−ＰＥＧ−Ｓｕｃでチオール基を導入した抗体を用いたイムノリポソームを、四角は、ＳＡＴＡでチオール基を導入した抗体を用いたイムノリポソームを、また、×印は抗体非結合のリポソームを示す。
【図７】血中濃度推移の比較を示す。縦軸は血漿中のアドリアマイシン量濃度を、横軸は時間を示す。各点は一群四匹の平均及びＳＤを示す。図中、丸はＡｃ−Ｓ−ＰＥＧ−Ｓｕｃでチオール基を導入した抗体を用いたイムノリポソームを、四角はチオール化ＰＥＧのみを結合したリポソームを、×はチオール化ＰＥＧも結合していない、単純なリポソームを表す。
【図８】１−３−１抗体のＤＬＤ−１細胞及びＳＶ−３Ｔ細胞に対する反応性を示す図である。縦軸は平均チャンネル数から、抗体を含まない場合の値をバックグラウンド値として差し引いた値を示す。
【図９】実施例８で得られたイムノリポソームのＤＬＤ−１細胞及びＳＶ−３Ｔ細胞に対する細胞増殖抑制活性を示す図である。縦軸はリポソームサンプル添加時の細胞数（ＭＴＴアッセイにおける吸光度）をコントロールを１００％として示した。横軸はリポソームをアドリアマイシン濃度として示した。□はＤＬＤ−１細胞を、○はＳＶ−３Ｔ細胞の増殖率を示す。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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