(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
ケラチン１４プロモータの下流に副甲状腺ホルモン遺伝子リーダーシークエンス及び外来性のＩＬ−１８遺伝子を結合した組み換えＤＮＡを有し、持続的にアトピー性皮膚炎を生じ、血中に持続的に成熟型ＩＬ−１８を分泌するトランスジェニック非ヒト哺乳動物又はその子孫。
【請求項２】
当該組み換えＤＮＡが、ケラチン１４プロモータの下流に、β−グロビンイントロン、副甲状腺ホルモン遺伝子リーダーシークエンス、外来性のＩＬ−１８遺伝子、及びケラチンのポリＡを結合した組み換えＤＮＡである請求項１記載の動物又はその子孫。
【請求項３】
表皮細胞壊死及び肝障害をほとんど生じないものである請求項１又は２のいずれかに記載の動物又はその子孫。
【請求項４】
請求項１〜３のいずれか１項記載の動物又はその子孫に被験物質を投与し、アトピー性皮膚炎の改善効果を検定することを特徴とするアトピー性皮膚炎の予防又は治療用物質のスクリーニング方法。
【請求項５】
非ヒト哺乳動物の受精卵に、ケラチン１４プロモータの下流に副甲状腺ホルモン遺伝子リーダーシークエンス及び外来性のＩＬ−１８遺伝子を結合した組み換えＤＮＡを導入し、当該受精卵を当該動物の雌に着床させることを特徴とする請求項１〜３のいずれかに記載の動物又はその子孫の作製方法。
【発明の詳細な説明】
技術分野
本発明は、アトピー性皮膚炎、特に慢性アトピー性皮膚炎のモデル動物として有用なトランスジェニック動物に関する。
背景技術
アトピー性皮膚炎、喘息、アレルギー性鼻炎、アレルギー性結膜炎等のアトピー性疾患は正常人が反応しない環境抗原等に対して過敏に反応を示し、自己の免疫系による各臓器の破壊、障害を生ずる疾患である。これらの疾患の発生機序にはアレルギー反応を増強するＴｈ２型サイトカインの関与が想定されている。その誘導機序、調節機序の解明は生理学及び薬学上重要な意味を持つが、詳細なメカニズムは明らかにされていない。
現在、アトピー性疾患の治療には主として、抗原からの回避、ヒスタミン等のメディエーターの受容体の結合に拮抗する抗ヒスタミン剤、抗炎症ステロイド剤等によるものが知られているが、より特異的な作用機序をターゲットとした治療方法の開発は、適切な実験動物がないことにより妨げられている。
従来、実験動物にアレルギー反応を誘発させるためには、予め抗原又はアレルゲンを繰り返し免疫することにより動物を感作しておいてから当該抗原又はアレルゲンを投与する必要があった。この場合、同時に多数の動物を感作するのは多大な労力を要するばかりでなく、個々の動物間に反応性のばらつきが生じることがあり、実験の再現性の上で問題となることがあった。
近年、ＮＣ／Ｎｇａマウスがアトピー性皮膚炎のモデル動物として注目されているが、このマウスに起こる皮膚炎はダニ存在下で初めて発症するもので、その発症率も不安定であり、症状も一定しない。
アトピー性疾患の治療薬の開発には動物実験が不可欠で、特にアトピー性皮膚炎のモデル動物が希求されているが、遺伝的背景が確立され、免疫学的にも明らかで、特異的病原微生物を排除した条件下で各種治療法及び薬剤の開発研究に利用可能なアトピー性皮膚炎モデル動物は現在のところ存在せず、実用に供されていない。
従って、本発明の目的は、アトピー性皮膚炎モデルとして有用な動物を作製することにある。
発明の開示
そこで本発明者らはインターロイキン１８（ＩＬ−１８）に着目した。ＩＬ−１８は、カスパーゼ１（ＩＬ−１β変換酵素）と呼ばれるプロテアーゼによってプロセシングを受けて前駆型から成熟型に変換される。成熟型のＩＬ−１８の機能としては、（１）ＩＦＮ−γ産生の誘導、（２）Ｆａｓリガンド発現の増強によるＦａｓ介在性アポトーシスの増強、（３）ＧＭ−ＣＳＦの誘導、（４）ＩＬ−１２との共存によるＩｇＥ産生抑制等が知られている。また、ＩＬ−１８は免疫組織以外の骨芽細胞様間質細胞、ケラチノサイト、小腸上皮細胞、副腎皮質細胞、下垂体細胞といったさまざまな組織でも発現されており、その生理学的な役割について活発な研究が行われている（免疫１９９７−９８，中山書店，６２−７２；臨床免疫，３０（２），１９１−１９８，１９９８等参照）。近年、発明者等はＩＬ−１８単独で過剰発現した場合は、ＩＬ−４及びＩＬ−１３の産生を増強し、ＩｇＥ産生を誘導する知見を得た。このことは、ＩＬ−１８がアトピー性疾患の発症に関係するＴｈ２型サイトカインに深く関与していることを意味する。従って、ＩＬ−１８を成熟型に変換するカスパーゼ１の分泌が促進されたモデル動物が作製されれば、アトピー性疾患の発症メカニズムの解明、治療法の開発に有用であると考えた。しかし、カスパーゼ１はアポトーシス誘導酵素であるため、この遺伝子を導入して生体内で発現させるとＩＬ−１８分泌のみでなく細胞死効果も発生するという問題があった。
かかる観点から本発明者らはカスパーゼ１遺伝子を皮膚特異的に発現するように組み込んだＤＮＡを導入したトランスジェニック非ヒト哺乳動物を作製し、先に特許出願した（国際公開ＷＯ０１／９５７１０号）。このトランスジェニック動物はアトピー性皮膚炎の症状を呈し、モデル動物として有用である。しかし、このトランスジェニック動物も表皮細胞壊死症状が生じ急性期皮膚炎の症状が見られ、また細菌感染により全身性の肝障害を生じることがあった。
そこで本発明者らは、さらに検討した結果、直接、成熟型ＩＬ−１８を皮膚特異的に発現するように組み換えたＤＮＡを動物細胞に導入すれば、血中に持続的に成熟型ＩＬ−１８を分泌し、ダニ、カビ類等の特異的病原微生物を排除した条件下において飼育してもアトピー性皮膚炎の症状を呈するトランスジェニック動物が作製できること、さらに意外にも当該トランスジェニック動物が表皮細胞壊死症状や肝障害がなく、よりヒトのアトピー性皮膚炎に近いモデル動物として有用であることを見出し、本発明を完成するに至った。
すなわち、本発明は、外来性のＩＬ−１８遺伝子を皮膚特異的に発現するように組み込んだＤＮＡを有するトランスジェニック非ヒト哺乳動物又はその子孫、及びその作製方法を提供するものである。
また本発明は、上記トランスジェニック動物に被験物質を投与し、アトピー性皮膚炎の改善効果を検定することを特徴とするアトピー性皮膚炎の予防又は治療用物質のスクリーニング方法、及び当該スクリーニングによりアトピー性皮膚炎の改善効果を有すると判定される物質を含有するアトピー性皮膚炎の予防又は治療用医薬を提供するものである。
発明を実施するための最良の形態
本発明のトランスジェニック動物は、体細胞及び生殖細胞に外来性のＩＬ−１８遺伝子を皮膚特異的に発現するように組み込んだＤＮＡを有する。ここで外来性ＩＬ−１８遺伝子としては、ヒト又はマウスのＩＬ−１８遺伝子が好ましく、例えばヒト成熟型ＩＬ−１８（ｈＩＬ−１８）、マウス成熟型ＩＬ−１８（ｍＩＬ−１８）、ヒト前駆型ＩＬ−１８（ｈｐｒｏＩＬ−１８）、マウス前駆型ＩＬ−１８（ｍｐｒｏＩＬ−１８）等の遺伝子が挙げられるが、ｈＩＬ−１８又はｍＩＬ−１８が好ましく、ｍＩＬ−１８の完全なコード領域の０．６３ｋｂ  ｃＤＮＡが特に好ましい。
外来性のＩＬ−１８遺伝子を皮膚特異的に発現するように組み込んだＤＮＡとしては、外来性ＩＬ−１８遺伝子と皮膚特異的蛋白のプロモータとを含む組み換えＤＮＡが好ましい。ここで、皮膚特異的蛋白のプロモータとしては、皮膚に特異的に存在する蛋白のプロモータが挙げられ、例えばケラチン１４、ケラチン５、ケラチン１、ケラチン１０等のケラチンプロモータ、インボルクリン等のプロモータが挙げられるが、ケラチンプロモータが特に好ましい。また、ＩＬ−１８の分泌を促進させるため、副甲状腺ホルモン遺伝子、例えばｐｒｅｐｒｏ副甲状腺ホルモン（ｐｒｅｐｒｏ  Ｐａｒａｔｈｙｒｏｉｄ  ｈｏｒｍｏｎｅ：ＰＴＨ）遺伝子のリーダーシークエンスをＩＬ−１８遺伝子に結合するのが好ましい。成熟型ＩＬ−１８を皮膚特異的に発現させ、かつ良好に分泌させるにはケラチンプロモータの下流に副甲状腺ホルモン遺伝子及びＩＬ−１８遺伝子を結合させるのがより好ましい。さらに、遺伝子の発現効率を上げるためβ−ｇｌｏｂｉｎイントロン等のイントロンも結合するのが好ましい。
上記ＤＮＡは、遺伝子導入哺乳動物において、目的とするメッセンジャーＲＮＡの転写を終結する配列（ポリＡ、一般にターミネーターと呼ばれる）を有していることが好ましく、例えば、ウィルス由来、各種哺乳動物由来の各遺伝子の配列を用いて遺伝子発現を操作することができる。好ましくは、前記皮膚特異的蛋白のポリＡ、特に好ましくはケラチンのポリＡ等が用いられる。その他、目的の遺伝子をさらに高発現させる目的で、各遺伝子のスプライシングシグナル、エンハンサー領域、真核遺伝子のイントロンの一部を、プロモーター領域の５′上流、プロモーター領域と翻訳領域間あるいは翻訳領域の３′下流に連結することも可能である。
かくして得られる組み換えＤＮＡを導入するための非ヒト哺乳動物としては、ウシ、ブタ、ヒツジ、ヤギ、ウサギ、イヌ、ネコ、モルモット、ハムスター、ラット、マウス等が挙げられる。好ましくは、ウサギ、イヌ、ネコ、モルモット、ハムスター、マウス又はラットであり、なかでもモルモット、ハムスター、マウス、ラット等の齧歯目（Ｒｏｄｅｎｔｉａ）が好ましく、とりわけマウスが好ましい。
本発明のトランスジェニック動物は、例えば非ヒト哺乳動物の受精卵に、前記外来性のＩＬ−１８遺伝子を皮膚特異的に発現するように組み込んだＤＮＡを導入し、当該受精卵を当該動物の雌に着床させることにより作製される。ここで、受精卵としては、雄精前核時期（受精後約１２時間位）のものが好ましい。また組み換えＤＮＡの導入方法としては、リン酸カルシウム法、電気パルス法、リポフェクション法、凝集法、マイクロインジェクション法、パーティクルガン法、ＤＥＡＥ−デキストラン法等が挙げられるが、マイクロインジェクション法が特に好ましい。
組み換えＤＮＡを導入した受精卵は、当該受精卵と同種の動物の雌に着床させる。着床の手段は、偽妊娠雌性動物の卵管に人工的に移植、着床させる手段が好ましい。かくして、受精卵を着床させた動物から生まれた仔の中から、目的とする遺伝子を発現している個体を選別し、当該個体を継代すればよい。
得られたトランスジェニック動物に目的遺伝子が含まれているか否かの確認は、皮膚からＤＮＡを採取し、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）及びサザンブロッティング法による導入遺伝子の解析によって行うことができる。
かくして得られる本発明のトランスジェニック動物は、皮膚において外来性ＩＬ−１８遺伝子が発現されるため、特異的病原微生物の非存在下でもアトピー性皮膚炎の症状を呈し、かつ長期間生存するという特徴を有する。
すなわち、本発明のトランスジェニック動物は、外来性のＩＬ−１８遺伝子を皮膚のみに有し、他の組織、例えば肝臓、腎臓、肺、脳、脾臓では有さない。その結果、本発明のトランスジェニック動物の皮膚には、成熟型ＩＬ−１８が多量に分泌されている。さらに本発明のトランスジェニック動物の血中には成熟型ＩＬ−１８が正常動物に比べて大量に含まれている。
本発明のトランスジェニック動物は、２４週齢ぐらいからアトピー性皮膚炎の症状を、例えば苔癬化皮膚炎、びらん性皮膚炎等を呈する。このうち、苔癬化皮膚炎の症状は、前記のカスパーゼ１遺伝子導入動物の場合に比べてはっきり特徴的に生じており、本発明のトランスジェニック動物がヒトの慢性皮膚炎により近いものであることを示している。
また、皮膚組織の光学顕微鏡観察では、本発明トランスジェニック動物は２４週齢ぐらいから、潰瘍の周辺の厚い表皮には、過角化を伴った炎症又は表皮肥厚といった変化が生じ、病変の真皮には、単核細胞及び肥満細胞の浸潤が生じる。しかし、表皮細胞壊死はほとんど生じない。また、本発明トランスジェニック動物では肝障害がほとんどみられない。ヒトのアトピー性皮膚炎には表皮細胞壊死や肝障害は通常みられないことから、本発明のトランスジェニック動物は、ヒトのアトピー性皮膚炎に極めて近い症状を呈するものであることがわかる。
また、本発明のトランスジェニック動物は、正常動物及び前記のカスパーゼ１遺伝子導入動物に比べて極めて多くの皮膚掻破行動をくり返し、アトピー性皮膚炎特有の強い掻痒を伴うことがわかる。さらに、本発明のトランスジェニック動物は、血中のヒスタミンレベル及びＩｇＥが極めて高いという、アトピー性皮膚炎特有の症状を示す。
このように本発明のトランスジェニック動物は、特異的病原微生物非存在下で、アトピー性皮膚炎の症状を呈するので、アトピー性皮膚炎の症状モデルとして有用である。すなわち、本発明のトランスジェニック動物又はその子孫に被験物質を投与し、アトピー性皮膚炎の改善効果を検定すれば、アトピー性皮膚炎の予防又は治療用物質のスクリーニングが可能となる。ここで、アトピー性皮膚炎の改善効果は、前記血中成熟型ＩＬ−１８レベルの測定、皮膚中の成熟型ＩＬ−１８の検出、肉眼観察、皮膚組織の顕微鏡観察、血中ヒスタミンレベルの測定等を単独で又は適宜組み合せて検定すればよい。また当該スクリーニングによりアトピー性皮膚炎改善効果があると判定された被験物質はアトピー性皮膚炎の予防又は治療用の医薬として有用である。
実施例
次に実施例を挙げて本発明をさらに詳細に説明するが、本発明は何らこれに限定されるものではない。
まず、実施例に用いた各種試験方法及び材料について説明する。
（１）ノーザンブロット法
ｍＩＬ−１８のｃＤＮＡは、兵庫医大（岡村博士）より入手した（Ｎａｔｕｒｅ，３７８，ｐ８８−９１，１９９５）。全ＲＮＡは、後記実施例１により得られたｍＩＬ−１８トランスジェニックマウス（ＫＩＬ−１８Ｔｇ）及びコントロールマウスの組織からＩｓｏｇｅｎ試薬（ニッポンジーン社製）を使用して抽出した。ノーザンブロット解析では、１０μｇの全ＲＮＡを２重量％ホルムアルデヒド／アガロースゲル電気泳動により、サイズを分画した。ＲＮＡをナイロン膜（Ｉｍｍｏｂｉｌｏｎ−Ｎ、ミリポア社製）に移し、マウスのＩＬ−１８に対応する３２ＰでラベルしたｃＤＮＡをプローブに使用した。ハイブリダイゼーションの後、ブロットを４２℃、１×ＳＳＣ／０．１重量％ＳＤＳで２回、２×ＳＳＣ／０．１重量％ＳＤＳで２回洗浄した。その後、ブロットを−７０℃でＸ線フィルムに露光した。
（２）サイトカイン、サイトカインアッセイ及び抗体
ＩＬ−１８の生物学的活性は、ＩＬ−１８反応性マウスＮＫ細胞を使用してＩＦＮ−γ誘導活性で測定した。リコンビナントマウスＩＬ−１８（ｒｍＩＬ−１８）、ウサギ抗マウスＩＬ−１８中和抗体及びマウスＩＬ−１８ＥＬＩＳＡキットは林原研究所より入手した。マウスＩＬ−１８ＥＬＩＳＡキットでは１０〜１０００ｐｇ／ｍＬのＩＬ−１８を検出可能であった。
（３）免疫組織化学
トランスジェニックとワイルドタイプマウスからのバイオプシー標本は、リン酸緩衝ホルマリンで２時間固定した。次いで、パラフィン切片にカットした。サンプルは、直ちに、冷凍組織用包埋剤であるＯＣＴ  ｃｏｍｐｏｕｎｄ（Ｍｉｌｅｓ社製）中で、凍結し、−７０℃で保存した。クリオスタットの部分（５μｍ）は、アセトンで５分間、４℃で固定し、適度に希釈した一次抗体で１時間インキュベートした。洗浄後、結合した一次抗体を基質としてＡＥＣ（ダコジャパン社製）を使用してＶｅｃｔａｓｔｅｉｎ  Ｅｌｉｔｅキット（Ｖｅｃｔｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ社製）で視覚化した。
（４）イムノブロット
イムノブロットはＪ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．８７：１０６６（１９９１）に従って行った。Ｉｓｏｇｅｎキットを使用して、ＤＮＡとＲＮＡを除去した後、トランスジェニックとコントロールマウスからの表皮の細胞ライセートを還元条件下、ＳＤＳ−サンプルバッファーで懸濁した。電気泳動した蛋白質を、セミドライブロッター（Ｂｉｏ−Ｒａｄ社製）を使用してニトロセルロース膜（Ｓｃｈｅｉｃｈｅｒ  ＆  Ｓｃｈｕｅｌｌ社製）に転写した。膜を一次抗体で１時間インキュベートした後、アルカリホスファターゼ標識抗マウスＩｇＧ又は抗ウサギＩｇＧ抗体で二次インキュベートし、最後に、ウエスタンブルー基質（Ｐｒｏｍｅｇａ社製）で発色させた。
実施例１
（１）ＤＮＡ構成及びトランスジェニックマウスの作製
ｐｒｅｐｒｏ副甲状腺ホルモン遺伝子リーダーシークエンス（ＰＴＨ）と結合したｍＩＬ−１８の完全なコード領域の０．６３ｋｂ  ｃＤＮＡ（東大医科研、田原博士より入手。Ｇｅｎｅｔｈｅｒａｐｙ，６，８０８−８１５（１９９９）参照）を、ケラチン１４プロモータ（シカゴ大学、Ｅ．Ｆｕｃｈｓ博士より入手。Ｎａｔｕｒｅ，３７４，ｐ１５９（１９９５）参照）及びウサギβｇｌｏｂｉｎイントロン（京都大学、田中博士より入手。Ｎａｔｕｒｅ，３７４，ｐ１５９（１９９５）参照）に平滑末端ライゲーションによって結合させた（図１：図１中、Ｋ１４  ｐｒｏｍｏｔｅｒはケラチン１４プロモータを、βｇｌｏｂｉｎ  Ｉｎｔｒｏｎはウサギβｇｌｏｂｉｎイントロンを、ＰＴＨ−ｍＩＬ−１８は、ＰＴＨとｍＩＬ−１８の完全なコード領域０．６３ｋｂ  ｃＤＮＡを、Ｋ１４  ｐｏｌｙＡはヒトケラチン１４ポリＡを示す）。得られたＤＮＡフラグメントをＣ５７ＢＬ／Ｌ６マウス（日本チャールスリバー社）の受精卵へＤｅｖ．Ｇｒｏｗｔｈ  Ｄｉｆｆｅｒ．，３９：２５７（１９９７）記載の方法に準じてマイクロインジェクション法により注入した。
（２）トランスジェニックマウスにおける皮膚でのｍＩＬ−１８過剰発現の確認
尾部皮膚からのＤＮＡを使用したＰＣＲ及びサザンブロッティング法による導入遺伝子の取り込みによって仔をスクリーニングした。トータル５０匹誕生したマウスのうち２匹（♂２）がｍＩＬ−１８のトランスジェニックであった（以下、ＫＩＬ−１８Ｔｇと略す）。ＫＩＬ−１８Ｔｇは、誕生時より健康で、正常に成長した。２４週齢前においては同腹児のワイルドタイプよりやや小さかった。この時点の後、ＫＩＬ−１８Ｔｇは慢性活動性皮膚炎の症状が明確に発現した。２匹の♂ＫＩＬ−１８Ｔｇは、ワイルドタイプ♀と交配させた結果、♂：♀＝１：１でＫＩＬ−１８Ｔｇとワイルドタイプの仔が誕生した。すべての実験は、非トランスジェニックやワイルドタイプ同腹児と導入遺伝子のライン化されたヘテロ接合体との比較で行った。
（３）皮膚の症状
ＫＩＬ−１８Ｔｇは、特別な病原体の検出されない条件のもとで２４週から、目の周りの中程度の皮膚炎が著明となり、急速に広範囲の皮膚炎に進展した。これらの症状は、その後数週内に顔、耳、首、胴体、足に広がった。皮膚炎症の慢性化が起こり、皮膚炎は持続した。顔、体幹、四肢の毛は、多数の掻破痕を伴い消失した。
光学顕微鏡レベルでは、ＫＩＬ−１８Ｔｇの表皮は、２４週まで特に組織学的変化は認められなかった。２４週齢のＫＩＬ−１８Ｔｇの病変部の厚い表皮は、苔癬化を伴った慢性湿疹様の変化が認められた。病変の真皮には、多くの単核細胞と肥満細胞が浸潤していた。表皮細胞の壊死は認められなかった。
高レベルのＩＬ−１８が、ＫＩＬ−１８Ｔｇの厚い表皮組織中で検出された。一方、コントロールのマウスではそれは極小量検出されただけであった。
（４）皮膚における成熟型ＩＬ−１８の検出
ノーザンブロット解析及びＲＴ−ＰＣＲにより、ＫＩＬ−１８Ｔｇの耳表皮、背部表皮、肝臓、腎臓、結腸、肺、脳及び脾臓におけるｍＩＬ−１８のｍＲＮＡを測定した。その結果、０．６３ｋｂ  ｍＩＬ−１８のｍＲＮＡは、ＫＩＬ−１８Ｔｇの耳及び背部表面にのみ認められたが、他の組織（肝臓、腎臓、結腸、肺、脳及び脾臓）では認められなかった（図２及び３参照）。なお、図２中、レーン１はＫＩＬ−１８Ｔｇの、レーン２は非トランスジェニック（ワイルドタイプ）の耳表皮組織のｍＲＮＡの検出結果を示す。図３中、レーン１はλＨｉｎｄを、レーン２はＫＩＬ−１８Ｔｇを、レーン３は正常マウス、レーン４は陽性コントロールを示す。
（５）血中におけるＩＬ−１８レベル
外因性ＩＬ−１８による局所でのＩＬ−１８の活性化が、成熟型のサイトカインの全身性の蓄積をもたらすのかどうかを検討した。図４に示すように、高レベルのＩＬ−１８が有意に誕生後１２週及び３６週のＫＩＬ−１８Ｔｇの血清中で認められた。対照的に、ワイルドタイプ（ＷＴ）の同腹児では、生存期間中を通じて、血清中でのＩＬ−１８のレベルは、低かった（０．１ｎｇ／ｍＬ以下）。ＫＩＬ−１８Ｔｇの血清ＩＬ−１８濃度は、高値を維持した。また図４にはカスパーゼ１遺伝子を皮膚特異的に発現するように組み込んだＤＮＡを有するトランスジェニックマウス（国際公開ＷＯ０１／９５７１０号参照、ＫＣＡＳＰ１Ｔｇ）の血清中のＩＬ−１８濃度も示した。ＫＩＬ−１８Ｔｇの血清中ＩＬ−１８濃度は、ＫＣＡＳＰ１Ｔｇのそれよりも極めて高かった。
ＫＩＬ−１８Ｔｇの血清中ＩＬ−１８が成熟型ＩＬ−１８であることを確かめるために、ＫＩＬ−１８Ｔｇの血清中ＩＬ−１８の生物学的活性を検討した。その結果、ＫＩＬ−１８Ｔｇからの血清は、ＩＬ−１８反応性のクローン化されたナチュラルキラー細胞によるＩＦＮ−γ産生を誘導する能力があることがわかった。さらに、このＩＦＮ−γ誘導能力は、抗ＩＬ−１８抗体（中和抗体）により完全に阻害された。これは、ＫＩＬ−１８Ｔｇの血清中に活性型ＩＬ−１８を含んでいることを意味する。しかしながら、ＩＦＮ−γは定常状態では、ＫＩＬ−１８Ｔｇの血清中には検出されなかった。このように、ＫＩＬ−１８Ｔｇは循環血中に持続的に成熟型ＩＬ−１８を分泌していた。
（６）トランスジェニックマウスの皮膚掻破行動
目視法に従ってＫＩＬ−１８Ｔｇ及びワイルドタイプ（Ｃ５７ＢＬ／Ｌ６マウス）における皮膚掻破回数を６０分間測定した。
その結果、図５に示すように、ワイルドタイプの掻破回数は１０分間あたり５０回以下であるのに対し、ＫＩＬ−１８Ｔｇのそれは１０分間あたり３００回以上であり、本発明のトランスジェニックマウスには痒みを伴う強い皮疹が生じていることがわかった。またＫＩＬ−１８Ｔｇの掻破回数はＫＣＡＳＰ１Ｔｇのそれよりも多かった。
（７）血中におけるＩｇＥレベル
ＫＩＬ−１８Ｔｇ及びワイルドタイプの血中ＩｇＥ濃度（ＥＬＩＳＡ法）を３６週齢に測定した。その結果を図６に示す。この結果より、本発明のトランスジェニックマウスは、血中ＩｇＥレベルが３６週齢で１２０μｇ／ｍｍ以上と極めて高値となることがわかる。また、ＫＩＬ−１８Ｔｇの血中ＩｇＥレベルはＫＣＡＳＰ１Ｔｇのそれよりも極めて高かった。
産業上の利用可能性
本発明のトランスジェニック非ヒト哺乳動物は、特異的病原微生物の非存在下で自然発症的にアトピー性皮膚炎を発症するので疾患モデル動物として有用である。本発明のトランスジェニック動物を用いれば、自然免疫によるアトピー性皮膚炎の予防治療用医薬の開発、さらにはアトピー性疾患の発症メカニズムの解明が可能となる。
【図面の簡単な説明】
図１は、導入に用いた組み換えＤＮＡの結合状態を示す図である。
図２は、ＫＩＬ−１８Ｔｇの耳表皮組織中におけるｍＩＬ−１８のｍＲＮＡの発現を、ノーザンブロット解析した結果を示す図である。
図３は、ＫＩＬ−１８Ｔｇの耳表皮組織中におけるｍＩＬ−１８の同ｍＲＮＡの発現を、ＲＴ−ＰＣＲで解析した図である。
図４は、ＫＩＬ−１８Ｔｇ、ＫＣＡＳＰ１Ｔｇ及びワイルドタイプ（ＷＴ）における誕生後１２週及び３６週の血清中ＩＬ−１８濃度の変化を示す図である。
図５は、ＫＩＬ−１８Ｔｇ、ＫＣＡＳＰ１Ｔｇ及びワイルドタイプ（ＷＴ）における皮膚掻破回数の測定結果を示す図である。
図６は、ＫＩＬ−１８Ｔｇ、ＫＣＡＳＰ１Ｔｇ及びワイルドタイプ（ＷＴ）の血中のＩｇＥ濃度（３６週）を示す図である。
【図１】
0004381138.tif 000002
【図２】
0004381138.tif 000003
【図３】
0004381138.tif 000004
【図４】
0004381138.tif 000005
【図５】
0004381138.tif 000006
【図６】
0004381138.tif 000007