(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
酵素失活処理したニンニクを麹菌で発酵させた組成物、あるいは酵素失活処理したニンニクに豆類及び／又は穀類を添加し、麹菌で発酵させた組成物を有効成分とする抗酸化剤。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、ニンニク発酵組成物を有効成分とする医薬に関する。
【０００２】
【従来の技術】
ニンニクは、古来より調味料、香辛料として利用されているが、近年、その中に種々の生理活性成分が含まれていることが明らかとなり、健康食品及び医薬品として広く使用されている。
しかし、ニンニクにはアリシン、ジアリルジスルフィド等の臭気成分の前駆物質が含まれ、容易にこれらに変換されるため、嗜好が合わず敬遠する人も多い。そのため、熱処理して無臭化する方法（特開昭５９−２１６５６５号公報、特開平４−１２６０４号公報）等が開発されたが、服用後にニンニク臭が発生する等、依然問題が残されている。
また、ニンニクは、加工条件の違いにより、含有成分や生理活性に差が生じるため、ニンニクの加工法を定めることは重要である（望月恵美子：FOODS & FOOD INGREDIENTS JOURNAL OF JAPAN 164, 36-45, 1995）。
【０００３】
一方、ニンニク以外に、従来から麹菌及び／又は紅麹菌を用いた発酵法があり、味噌、醤油及び酒等の製造に利用されている。この麹菌及び紅麹菌はいずれも長年にわたる食経験から安全性については既に実証されており、種々の生理活性を有することが報告されている（例えば、麹菌による抗酸化活性（山口直彦：日本食品工業学会誌 26, 71-75, 1979）、アンジオテンシンＩ変換酵素阻害活性（寺中毅頼他：日本農芸化学会誌 69, 1163-1169, 1995）又は紅麹菌によるコレステロール低下活性、降圧活性等が報告されている）。
【０００４】
そこで、本発明者はニンニクを麹菌及び／又は紅麹菌で発酵処理すれば、ニンニク臭がなく、かつ医薬又は食品として有用な組成物が得られると考え、検討したが、ニンニクはそれ自体で抗菌作用を有するため、麹菌及び／又は紅麹菌で発酵を行うことはできなかった。またぶどう酒の製造過程で少量のニンニクを添加した例（特開昭４８−５２９９５号公報）や少量のニンニクに多量の糖を添加して発酵させた例（特開昭５３−２６３６１号公報）はあるが、ニンニクを主原料とした発酵例はない。
【０００５】
【発明が解決しようとする課題】
従って、本発明の目的は、ニンニクを麹菌で発酵させることによりニンニク特有の臭気をなくし、医薬又は食品として有用な組成物を得ることにある。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
斯かる実状に鑑み本発明者らは鋭意研究を行った結果、ニンニクを予め酵素失活処理すれば、グルコース、デンプン等の栄養源を加えずニンニクのみでも麹菌で発酵できることを見出し、更に得られた発酵組成物はニンニク臭がなく、通常のニンニクに比べ抗酸化活性が約100倍強く、抗糖尿病作用、肝障害防護作用、抗癌作用、免疫増強作用、コレステロール低下作用等があり、糖尿病、肝臓病、癌、免疫疾患、高脂血症等の治療又は予防に有用であることも見出し、本発明を完成させるに至った。
【０００７】
【発明の実施の形態】
すなわち本発明は、酵素失活処理したニンニクを麹菌で発酵させた組成物、あるいは酵素失活処理したニンニクに豆類及び／又は穀類を添加し、麹菌で発酵させた組成物を有効成分とする医薬を提供するものである。
【０００８】
更に本発明は、酵素失活処理したニンニクを麹菌で発酵させた組成物、あるいは酵素失活処理したニンニクに豆類及び／又は穀類を添加し、麹菌で発酵させた組成物を有効成分とする糖尿病、肝臓病、癌、免疫疾患及び高脂血症から選ばれる疾患の予防・治療剤を提供するものである。
【０００９】
本発明においてニンニクとはユリ科(Liliaceae)、アリウム(Allium)属に属するアリウム・サチバム・リンネ(Allium sativum L.)を示す。
ニンニクのうち発酵に用いる部分は、とりわけ鱗茎部が好ましく、酵素失活処理した鱗茎をそのまま又は任意の大きさにスライスするか、あるいは破砕して破砕汁にしたものを発酵に供することができる。また、必要に応じて、米、大豆、麦、ハトムギ等の豆類及び／又は穀類を添加してもよい。
【００１０】
本発明のニンニク発酵組成物を製造するには、まずニンニクの酵素失活処理を行う。酵素失活処理は、ニンニクを熱、マイクロウエーブ、高圧処理、酵素、酸又はアルコールで処理することにより行うことができ、このうち熱処理が簡便であり好ましい。熱処理のための温度は、５０〜２００℃、１〜６０分が好ましく、特に９０〜１２１℃、１０〜３０分が好ましい。
【００１１】
酵素失活処理したニンニクは、例えばAspergillus oryzae、Aspergillus sojae、Aspergillus kawachi、Aspergillus awamori等の麹菌及びMonascus pilosus、Monascus anka、Monascus paxii、Monascus pubigerus、Monascus purpures、Monascus ruber、Monascus vitreus、Monascus major等の紅麹菌から選ばれる一種又は二種以上の菌により発酵させれば、目的とするニンニク発酵組成物を得ることができる。
具体的なニンニク発酵組成物の調製法としては、例えば次の工程に従って行う方法が挙げられる。
【００１２】
１）ニンニク培地／ニンニク含有培地の調製
ニンニクを水洗した後、等量の水を加え、２０〜３０分間煮沸し、必要に応じて、細断、破砕等の加工を行う（破砕する場合は、破砕汁のみを使用することもできる）。これに必要により、栄養源として適宜、米、大豆、麦、ハトムギ等の豆類及び／又は穀類を加えたり、補糖を行い、オートクレーブ等で滅菌（１２１℃、２０分）する。なお、豆類及び／又は穀類を加えたり、補糖を行う場合は、これらが全体の９０重量％（以下、単に「％」という）を超えないようにする。
【００１３】
２）発酵菌の前培養
発酵菌としては、麹菌（Aspergillus oryzae、Aspergillus sojae、Aspergillus kawachi、Aspergillus awamori等）及び紅麹菌（Monascus 属の菌株：M.pilosus、M.anka、M.paxii、M.pubigerus、M.purpures、M.ruber、M.vitreus、M.major等）から選ばれる一種又は二種以上を用いることが好ましい。
菌株は２％酵母エキス添加ポテトデキストロース寒天培地で継代し、それを次の培地に接種し、１０〜５０℃で２〜１４日、好ましくは２０〜４０℃で２〜４日間前培養する。
前培養用の培地は、サブロー培地（ペプトン１％、グルコース４％）、ポテトデキストロース培地（ジャガイモ煎汁（２００ｇ／l）グルコース２％）、グリセリン培地（グリセリン７％、グルコース３％、  Soybean meal ３％、ペプトン０．８％、硫酸マグネシウム０．１％、塩化ナトリウム０．２％）の他、任意の真菌用の培地を利用できるが、培地構成物としては食用可能な物が好ましい。
【００１４】
３）ニンニクの発酵
工程１で調製したニンニク培地に、工程２で調製した前培養菌液を０．１〜５０％、好ましくは０．５〜１０％添加し、１０〜５０℃で７日〜６０日間、更に好ましくは、２０〜４０℃で麹菌の場合は７日〜３５日間、紅麹菌の場合は１４日〜４２日間、振盪培養若しくは静置培養を行うことにより、ニンニク発酵組成物を調製することができる。また、培地の水分を４０〜６０％に減少させ、個体培養の形式で静置培養を行ってもよい。
【００１５】
４）ニンニク発酵組成物の処理
工程３の発酵が終了した段階で、発酵物を加熱滅菌した後、これを直接使用するか又は培養濾液と分離して別々に使用する。また、有効成分のみを抽出して使用することもできる。
【００１６】
このようにして得られた本発明の組成物は、常法により食品としたり、薬学的に許容される担体とともに種々の剤型の医薬とすることができる。
このうち経口用固形製剤を調製する場合は、ニンニク発酵組成物に賦形剤、必要に応じて結合剤、崩壊剤、滑沢剤、着色剤、矯味剤、矯臭剤等を加えた後、常法により錠剤、被覆錠剤、顆粒剤、散剤、カプセル剤等を製造することができる。そのような添加剤としては、当該分野で一般的に使用されるものでよく、例えば、賦形剤としては、乳糖、白糖、塩化ナトリウム、ぶどう糖、デンプン、炭酸カルシウム、カオリン、微結晶セルロース、珪酸等を、結合剤としては、水、エタノール、プロパノール、単シロップ、ブドウ糖液、デンプン液、ゼラチン液、カルボキシメチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、ヒドロキシプロピルスターチ、メチルセルロース、エチルセルロース、シェラック、リン酸カルシウム、ポリビニルピロリドン等を、崩壊剤としては乾燥デンプン、カルメロースカルシウム、アルギン酸ナトリウム、カンテン末、炭酸水素ナトリウム、炭酸カルシウム、ラウリル硫酸ナトリウム、ステアリン酸モノグリセリド、乳糖等を、滑沢剤としては精製タルク、ステアリン酸塩、ホウ砂、ポリエチレングリコール等を、矯味剤としては白糖、橙皮、クエン酸、酒石酸等を例示できる。
【００１７】
経口用液体製剤を調製する場合は、ニンニク発酵組成物に矯味剤、緩衝剤、安定化剤、矯臭剤等を加えて常法により内服液剤、シロップ剤、エリキシル剤等を製造することができる。この場合矯味剤としては上記に挙げられたもので良く、緩衝剤としてはクエン酸ナトリウム等が、安定化剤としてはトラガント、アラビアゴム、ゼラチン等が挙げられる。
【００１８】
本発明の食品又は医薬は糖尿病、肝臓病、癌、免疫疾患、高脂血症等の治療又は予防の目的で使用することができる。
投与量及び投与方法は、年齢、体重、症状等により適宜決定することができるが、通常成人１日当たり、本発明組成物を０．５〜２ｇを１回又は数回に分けて投与することが好ましい。
【００１９】
なお、本発明組成物は主成分であるニンニク、麹菌又は紅麹菌が通常食用に供されており、一般に低毒性である。また、本発明組成物を若齢ラットに、３週間にわたって３％混餌で与えたが、成長過程および、一般行動に何ら異常は認められず、安全性の高い物質であることが確認された。
【００２０】
本発明のニンニク発酵組成物は、強い抗酸化活性を有し、抗癌作用、ＮＫ活性等の免疫増強作用、アセトアミノフェン肝障害に対する防護作用、アロキサン糖尿病モデルに対する防護作用、耐糖能の増強作用による抗糖尿病作用、コレステロール低下作用等が認められ、現代社会に蔓延する成人病の治療又は予防にきわめて有用である。
また、本発明組成物は安全性が高く、かつニンニク臭が殆どない（アリナーゼを失活することによって得られる無臭ニンニクとは異なり、口の中でニンニク臭が発生することはない）ので健康食品及び医薬品として広く用いることができる。
【００２１】
【実施例】
次に実施例をあげて本発明を更に詳しく説明する。なお、本発明はこれによって限定されるものではない。また、本実施例で使用した麹菌及び紅麹菌株を表１に示す。
【００２２】
【表１】
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【００２３】
実施例１    麹菌を用いたニンニク発酵組成物の製造及びその抗酸化活性（発酵組成物（エキス）の調製）
ニンニクを水洗した後、等量の水を加え、３０分間煮沸した後、破砕し、破砕汁を得た。破砕汁に等量の水、及びグルコース２％を添加し、オートクレーブで１２１℃、２０分間滅菌した（ニンニク培地）。別に、麹菌（Aspergillus oryzae）を、サブロー培地（ペプトン１％、グルコース４％）で２７℃、１６０rpm振盪の条件下で３日間前培養し、ニンニク培地にこの培養液を１％添加し２７℃、１６０rpm 振盪の条件下で２日〜５週間培養し、３００rpm１０分間遠心分離した上清（エキス）を以下の試験に用いた。一方、米、大豆は、乾燥固形物としてニンニク培地と等しくなるように調製した。
【００２４】
（スーパーオキシドアニオン消去能の測定法）
65mM KH2PO4−ほう酸緩衝液（pH８．２）２００μl、５mMキサンチン水溶液２００μl、１０mMヒドロキシルアミン水溶液１００μl、水２００μlの混合液にサンプル１００μl及び、キサンチンオキシダーゼ２００μlを加え、３７℃で１５分間インキュベートした。インキュベート終了時に、反応停止及び発色の目的で、３０μＭ Ｎ−ナフチルエチレンジアミン−３mMスルファニル酸−２５％氷酢酸２mLを加えて室温で４５分間放置し、５５０nmで吸光度を測定した。本測定は、２回行い、サンプル添加による吸光度の減少から活性酸素消去活性（％）を求めた。なお、キサンチンオキシダーゼ（キサンチンオキシダーゼ懸濁液：和光純薬）は、吸光度の変化が０．０２０〜０．０２５／分になるように調製した（１５〜２０mU／mL）。
結果を図１及び２に示す。
【００２５】
（ＤＰＰＨラジカル消去能の測定法）
サンプルを０．５Ｍ酢酸緩衝液（pH５．５）で希釈し、その０．５mLにエタノール０．５mLを加え、更に０．５mM  ＤＰＰＨ（１，１−ジフェニル−１−２−ピクリルヒドラジル：和光純薬）エタノール溶液０．２５mLを加えてよく混合し、５２０nmにおける吸光度を経時的に測定し、サンプル無添加の対照に対する％を求めた。結果を図３〜５に示す。
【００２６】
（結果）
（１）ニンニク培地及び、ニンニク発酵エキスのスーパーオキシドアニオン消去能
ニンニク培地は、弱い消去活性を示したが、ニンニク発酵エキスは、発酵期間に応じて消去活性が増加した。また、グルコースの添加によって、ニンニク培地の活性は僅かに増加したが、発酵エキスは、ほとんど差が認められなかった（図１）。
ニンニク発酵エキスを希釈して、同様にスーパーオキシドアニオン消去能を測定した。ニンニク発酵エキスは、４週間発酵のサンプルで、１００倍希釈したものと、ニンニク培地の活性が等しくなり、発酵によってスーパーオキシドアニオン消去活性は、１００倍に増強された（図２）。
【００２７】
（２）ＤＰＰＨラジカル消去活性
１００倍希釈液を用いてＤＰＰＨラジカル消去活性を測定した。ニンニク培地（ＢＧ）は、殆ど活性は認められなかったが、ニンニク発酵エキスは、何れの麹菌でも、発酵期間に応じてＤＰＰＨラジカル消去活性が増加した。特にＡ−１、Ａ−６に強い活性が認められた（図３）。
【００２８】
（３）A-1、A-6 のＤＰＰＨラジカル消去活性物質産生に及ぼす培地の影響
米培地、大豆培地は殆どＤＰＰＨラジカル消去活性を示さなかった。Ａ−１は、米培地で若干のＤＰＰＨラジカル消去活性が認められ、大豆培地では更に弱いものであったが、ニンニク培地の発酵エキスでは、非常に強い活性が認められた。（図４）Ａ−６では、ニンニク培地での特異性が、更に顕著に認められた。（図５）
【００２９】
実施例２    紅麹菌を用いたニンニク発酵エキスの抗酸化活性
（発酵エキスの調製法）
ニンニクを水洗した後、等量の水を加え、３０分間煮沸した後、破砕し、破砕汁を得た。破砕汁に等量の水、及びグルコース２％を添加し、オートクレーブで１２１℃、２０分間滅菌した（ニンニク培地）。別に、紅麹菌（Monascus属）１白金耳を、グリセリン培地（グリセリン７％、グルコース３％、Soybean meal３％、ペプトン０．８％、硫酸マグネシウム０．１％、塩化ナトリウム０．２％）で培養し、ニンニク培地にこの培養液を１％添加し２５℃、１６０rpm 振盪の条件下で２〜５週間培養し、３００rpm １０分間遠心分離した上清を以下の試験に用いた。ニンニク培地の他、大豆を乾燥固形物としてニンニク培地と等しくなるように調製した大豆培地、ニンニクと大豆を混合した培地などを用いた。
【００３０】
（ＤＰＰＨラジカル消去能の測定法）
サンプルを０．５Ｍ酢酸緩衝液（pH５．５）で希釈し、その０．５mLにエタノール０．５mLを加え、更に０．５mM  ＤＰＰＨ（１，１−ジフェニル−１−２−ピクリルヒドラジル：和光純薬）エタノール溶液０．２５mLを加えてよく混合し、５２０nmにおける吸光度を経時的に測定し、サンプル無添加の対照に対する％を求めた。結果を図６及び７に示す。
【００３１】
（結果）
（１）紅麹培溶液のＤＰＰＨラジカル消去能
ニンニク：大豆（２：２）の混合培地は、弱い消去活性を示したが、紅麹菌で発酵した、ニンニク発酵エキスは、発酵期間に応じて消去活性が増加した。特に、Ａ−２４、Ａ−２６に強い活性が認められた（図６）。
Ａ−２４株を用いて、ニンニクと大豆の混合比を変えて検討した。 大豆のみの培地（０：４）では、ラジカル消去活性は、弱いものであったが、ニンニクの配合比が高くなるにしたがって、活性の増加が認められた。特に、ニンニクを２倍の濃度にした培地（８：０）で最も強い活性が認められた（図７）。
【００３２】
実施例３    ニンニク発酵組成物の抗腫瘍効果及び免疫増強作用
（ニンニク発酵組成物の調製法）
ニンニクを水洗した後、等量の水を加え、３０分間煮沸した後、破砕し、破砕汁を得た。破砕汁に、等量の水及びグルコース２％を添加し、オートクレーブで１２１℃、２０分間滅菌した（ニンニク培地）。別に、麹菌（Aspergillus oryzae）を、サブロー培地（ペプトン１％、グルコース４％）で２７℃、１６０rpm振盪の条件下で３日間前培養し、ニンニク培地にこの培養液を１％添加し２７℃、１６０rpm 振盪の条件下で２週間培養した。得られた発酵物は、１００℃１０分間加熱した後、凍結乾燥し、粉砕した。各種試験に際しては、ニンニク発酵組成物を水に懸濁して経口投与した。
【００３３】
（実験方法）
ＩＣＲ系雄性マウス（７週令:日本クレア）に、sarcoma-180 106cell/mouseを皮下移植し、翌日より被験物質を隔日で１０回経口投与し、最終投与の翌日に、腫瘍の大きさ（３／４×短径×短径×長径mm3）を測定した。その後、無菌的に脾臓を摘出し、常法に従って細胞浮遊液を調製し、赤血球除去用トリス緩衝液（１７mMトリスヒドロキシメチルアミノメタン０．７４７％、NH4Cl,pH７．６５）で処理後、ＲＰＭＩ １６４０で洗浄し、１０％ＦＣＳを含むＲＰＭＩ１６４０に懸濁した。
【００３４】
ＹＡＣ−１細胞、Salcoma １８０細胞の標識
１０％ＦＣＳを含むＲＰＭＩ １６４０で２×１０6cell／０．１mLに調製したＹＡＣ−１細胞又は、salcom−１８０細胞に、Na251CrO4１００μl（アマシャム、１μCi／μl in sterile０．９％NaCl）を加え、CO2インキュベータで２時間培養した。その後、１０％ＦＣＳを含むＲＰＭＩ  １６４０で４回洗浄し、３×１０5cell／mLに調製した。
【００３５】
ＮＫ活性、キラー活性
脾臓細胞を３×１０7cell／mL（ＹＡＣ−１細胞、Salcoma−１８０細胞の２００倍）に調製し、ＮＵＮＣ９６ウェルＵ底multi dishに１００μl（３×１０6cell）を入れ、３×１０5cell／mLに調製した51Cr標識ＹＡＣ−１細胞又は、Salcoma−１８０細胞５０μl（１．５×１０4cell）を加えた（Exp）。これ以外に、最大遊離用として、51Cr標識ＹＡＣ−１細胞又は、Salcoma−１８０細胞５０μl（１．５×１０4cell）に１N HCl １００μlを加えたもの（Tmax）、自然遊離用として、51Cr標識ＹＡＣ−１細胞又は、Salcoma−１８０細胞５０μl（１．５×１０4cell）に１０％ＦＣＳを含むＲＰＭＩ １６４０１００μlを加えたもの（Tspon）を用意した。このmulti dishをＣＯ2インキュベーターで２４時間培養後、遠心分離した上清１００μlをＲＩＡチューブにとり、ガンマーカウンターで遊離した51Crを測定した。次の式より、細胞毒性（％）を算出しＮＫ活性、キラー活性とした。
【００３６】
細胞毒性（％）＝（(Exp-Tspon)/(Tmax-Tspon)）×100
【００３７】
統計処理
Ｆ検定の後、Student's-T testもしくは、Aspin-Welch法で検定し危険率５％未満を有意とし＊印で示した。結果を以下に示す。
【００３８】
（結果）
（１）抗腫瘍効果
ガン細胞移植３週間後の腫瘍体積は、コントロール群の３９３mm3に対し、Ａ−１、Ａ−６投与群では統計的に有意な増殖抑制作用が認められた。クレスチンでも同様に有意な作用が認められた。
【００３９】
【表２】
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【００４０】
（２）ＮＫ活性
ガン細胞移植３週間後の脾臓細胞を用いて、ＮＫ活性を測定した。ＮＫ活性は、コントロール群の４．６％に対し、Ａ−１、Ａ−６投与群では、１７．８％、１４．１％となり統計的に有意な、ＮＫ活性の増強作用が認められた。クレスチン投与群でも同様に有意な増強作用が認められた。
【００４１】
【表３】
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【００４２】
（３）キラー活性
ガン細胞移植３週間後の脾臓細胞を用いて、キラー活性を測定した。キラー活性は、ＮＫ活性と同様に、Ａ−１、Ａ−６投与群では、顕著かつ、統計的に有意な、活性の増強作用が認められた。
【００４３】
【表４】
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【００４４】
実施例４    アセトアミノフェン肝障害防護効果
（実験方法）
実施例３と同じニンニク発酵組成物を用いて検討した。６週令のｄｄＹ系雄性マウス（日本ＳＬＣ）を一夜絶食した。アセトアミノフェン投与の２時間前と３０分前の２回被験物質を経口投与し、アセトアミノフェン（４００mg／kg）を腹腔内投与した。６時間後に、腹部大静脈より、ヘパリン処理したシリンジを用いて採血し、血漿ＧＰＴ活性を測定し、肝障害の指標とした。アセトアミノフェン（和光純薬）は、リン酸三カリウム水溶液（１００mg／mL）でpH１１に調製した生理食塩水に沸騰水浴中で溶解した。血漿中ＧＰＴ活性は、ＧＰＴ−ＵＶテストワコー（和光純薬）を用いて測定した。結果を以下に示す。
【００４５】
（結果）
アセトアミノフェンの投与により、コントロール群の血漿中ＧＰＴ活性は、４６８ＩＵ／ｌに増加し激しい肝障害が惹起された。一方、Ａ−１、Ａ−６投与群のＧＰＴ活性は、１４６、６８ＩＵ／ｌの増加に留まり、顕著な肝障害防護作用が認められた。
【００４６】
【表５】
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【００４７】
実施例５    抗糖尿病作用
（実験方法）
実施例３と同じニンニク発酵組成物を用いて検討した。６週令のｄｄＹ系雄性マウス（日本ＳＬＣ）を一夜絶食した。キヤピラリを用いて眼窩静脈叢より２０μl採血した。被験物質４ｇ／kgを経口投与し、１時間後にアロキサン（和光純薬）５０mg／kgを静脈内投与し、１時間後及び６時間後に同様に採血した。絶食は、アロキサン投与直後に解除し、被験物質は、アロキサン投与の前日から、３日後まで１日１回経口投与し、採血は、１、２、４日後に同様に行った。採血後、直ちにヘマトクリット用遠心機で血漿を分離し、グルコースＣII−テスト  ワコー（和光純薬）を用いて血糖値を測定した。
統計処理は実施例３と同様に行った。結果を図８に示す。
【００４８】
【表６】
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【００４９】
（結果）
ノーマルで示した、正常状態のマウスの血糖値は２００mg／dl程度であるが、アロキサンの投与により、コントロール群の血糖値は、１時間後で５４０mg／dlに激増し、その後も増加を続け、４８時間後では、６５０mg／dlに達した。一方、ニンニク発酵組成物Ａ−６投与群では、アロキサン投与１時間後の血糖値は、３８０mg／dlに留まり、コントロール群との間に、統計的に有意な血糖上昇の抑制作用が認められた。その後も、有意な低値が観察された。Ａ−１も同様に有意な血糖上昇の抑制作用が認められた。しかし、発酵の原料として用いた、ボイルニンニク（ニンニク培地：ＢＧ）では、アロキサン投与による血糖の上昇の抑制作用は認められなかった（図８）。
【００５０】
実施例６    血糖上昇抑制作用
（実験方法）
実施例３と同じニンニク発酵組成物を用いて検討した。８週令のｄｄＹ系雄性マウス（日本ＳＬＣ）を一夜絶食した後、キヤピラリを用いて眼窩静脈叢より２０μl採血し、以後実験終了時まで絶水とした。被験物質及びスターチを同時に経口投与し、３０、６０、１２０分後に同様に採血した。採血後、直ちにヘマトクリット用遠心機で血漿を分離し、グルコースＣII−テスト  ワコー（和光純薬）を用いて血糖値を測定した。統計処理は実施例３と同様に行った。結果を図９に示す。
【００５１】
【表７】
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【００５２】
（結果）
スターチを経口投与したコントロール群の血糖値は、３０分後で１５０mg／dl上昇したが、Ａ−１投与群では、１００mg／dlの上昇に留まり、コントロール群に対し有意な血糖上昇の抑制作用が認められた。その後の血糖値は、有意差は無いがコントロール群よりやや高値を推移し、血糖上昇の遅延が観察された。Ａ−６投与群でも、Ａ−１とほぼ同様の結果が得られた。一方、ボイルニンニク（ニンニク培地：ＢＧ）投与群は、コントロールと同様の血糖推移を示し、ニンニク発酵組成物とは明らかに異なる結果が得られた（図９）。
【００５３】
実施例７    紅麹菌を用いたニンニク発酵エキスのコレステロール合成阻害活性
実施例２と同じニンニク発酵エキスを用いて検討した。
（酵素標本の調製法）
Wistar系雄性ラット（６．５週令）を明時１７：００〜５：００の逆転照明下で、粉末のＥＣ−２（日本クレア製）で６日間の馴致飼育の後、２％コレスチラミン８％コーン油を配合したＣＥ−２で５日間飼育した。深夜に相当する、１０：００にラットを脱血致死後肝臓を摘出し、氷冷下で２倍量のリン酸バッファーを加えて、テフロンホモジナイザーで、ホモジネートを作成した。以下、次の様にミクロゾーム画分を調製しタンパク量１０mg／mLに調製後、−８０℃で保存した。
【００５４】
ラット肝ホモジネート
↓遠心分離（700g、５分）
遠心上清
↓遠心分離（12,000ｇ、30分）
遠心上清
↓遠心分離（105,000g、60分）
沈渣（洗浄）
↓遠心分離（105,000g、60分）
沈渣（ミクロゾーム画分）
リン酸バッファーに懸濁（タンパク量10mg／mL）
【００５５】
（HMG-CoA リダクターゼ阻害活性の測定法）
酵素反応液５０μl中、次の試薬を含むように調製し、３７℃、３０分反応させた。反応の開始は酵素液の添加、反応の停止は２Ｎ塩酸２０μlの添加により行い、塩酸添加後、更に３７℃、１５分間インキュベートした。次に、陽イオン交換樹脂（Bio Rex ５：Bio Rad 社製）の懸濁液（１ｇ／１０mL）４５０μlを加え、１時間振盪後、上清４００μlを液体シンチレーター（ACS II：Amersham社製）１０mLに加えＣｏＡより乖離した14Ｃをカウントした。
被験物質（実施例２に記載の方法により得た発酵エキス）は、反応液５０μl中に１０μl添加とし、無添加時の酵素反応に対し、５０％阻害を挟む３点以上のデータからLitchfild-Wilcoxon法によりＩＣ50値を算出した。
【００５６】
酵素反応液の組成
０．１１mM  dl［３−14Ｃ］ＨＭＧ−ＣｏＡ（2.25Ci/mol）
１００mM  リン酸カリウムバッファー（pH７．４）
１０mM  ＥＤＴＡ
１０mM  ジチオスレイトール
５mM  ＮＡＤＰＨ
３０〜４０μｇ  ミクロゾーム蛋白（反応液５０μl中）
【００５７】
（結果）
図１０に各培養液のＨＭＧ−ＣｏＡリダクターゼ阻害活性（ＩＣ50の逆数で表示）を示した。紅麹菌（Ａ−２４株）を大豆培地、ニンニク：大豆（１：１）の混合培地、ニンニク培地を用いて１３〜３４日間培養した。大豆培地では検討期間中殆ど阻害活性は認められなかったが、ニンニク：大豆の混合培地ではＩＣ50値０．０３〜０．０２mL／mLの阻害活性が認められた。更にニンニク培地では培養期間に依存した強い阻害活性（ＩＣ50値０．０２〜０．００７mL／mL）が認められた（図１０）。
【００５８】
この結果から、酵素失活処理ニンニクは、紅麹菌においてHMG-CoA reductase阻害活性物質を効率よく産生することが確認された。
【００５９】
実施例８    製剤例／錠剤
実施例３で調製したニンニク発酵組成物に乳糖、コーンスターチ、結晶セルロース、カルメロースカルシウム及びステアリン酸マグネシウムを下記の処方量で加え、ボーレコンテナミキサー（コトブキ技研工業製）で１０分間混合した。この混合末を打錠機（コレクト１９Ｋ、菊水製作所製）で圧縮成形し、径８mm、重量１８０mgの錠剤を製した。本錠剤は硬度及び胃内崩壊性に優れていた。
【００６０】
【表８】
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【００６１】
実施例９    製剤例／顆粒剤
実施例３で調製したニンニク発酵組成物にコーンスターチ、結晶セルロース、ヒドロキシプロピルセルロース及びカルメロースカルシウムを下記の処方量で加え混合した後、水を加えて練合した。この練合物を押し出し造粒機（DOME GRAN、不二パウダル製）で径０．８mmの柱状造粒物とし、整粒、乾燥、篩過した後、顆粒剤を製した。本顆粒は胃内崩壊性に優れ、分包等の包装形態で提供することができる。
【００６２】
【表９】
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【００６３】
実施例１０  製剤例／ドリンク剤
実施例２で得られたニンニク発酵組成物に下記の処方で甘味剤、酸味剤、香料、水を加えて滅菌した後、ガラス瓶に充填してドリンク剤を製した。
【００６４】
【表１０】
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【００６５】
【発明の効果】
本発明の組成物は臭気がなく、糖尿病、肝臓病、癌、免疫疾患、高脂血症等の予防・治療剤として有用である。
【図面の簡単な説明】
【図１】活性酸素消去活性を示す図である。
【図２】活性酸素消去活性を示す図である。
【図３】ＤＰＰＨラジカル消去活性を示す図である。
【図４】ＤＰＰＨラジカル消去活性を示す図である。
【図５】ＤＰＰＨラジカル消去活性を示す図である。
【図６】ＤＰＰＨラジカル消去活性を示す図である。
【図７】ＤＰＰＨラジカル消去活性を示す図である。
【図８】抗アロキサン糖尿病作用を示す図である。
【図９】耐糖能を示す図である。
【図１０】ＨＭＧ−ＣｏＡリダクターゼ阻害活性を示す図である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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