(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
以下の特性を有する新規高分子物質（以下、ＡＰＲ−３という。）の生産能（以下、ＡＰＲ−３生産能という。）を有するブルセラｓｐ．ＫＹＭ−１株（ＦＥＲＭ  Ｐ−１１３３３）、コマモナス・テストステロニーＫＹＭ−４株（ＦＥＲＭ  Ｐ−１１３３６）、サルモネラｓｐ．ＫＹＭ−５株（ＦＥＲＭ  Ｐ−１１３３７）、セルロモナス・セルランスＫＹＭ−７株（ＦＥＲＭ  Ｐ−１１３５８）又はアグロバクテリウム・ツメファシエンスＫＹＭ−８株（ＦＥＲＭ  Ｐ−１６８０６）をサイアミン含有培地に培養し、ＡＰＲ−３を培地中に生産・蓄積させることを特徴とするＡＰＲ−３の生産方法。
（１）油水分離能を有する。
（２）凝集活性を有する。
（３）糖含有量（フェノール・硫酸法）：（６４±２）重量％
（４）アミノ糖（エルソン・モーガン法）：検出されない。
（５）ウロン酸（カルバゾール・硫酸法）：検出されない。
（６）蛋白質（ニンヒドリン法）：検出されない。
（７）元素分析：炭素Ｃ＝（４０±２）％、水素Ｈ＝（６±１）％、窒素Ｎ、リンＰ及び硫黄Ｓは痕跡。
（８）構成する糖及び有機酸の組成（モル比）：ガラクトース１、グルコース（５．６±０．１）、コハク酸（０．６±０．１）、ピルビン酸（２．５±０．１）。
（９）分子量：２×１０6以上。
（１０）粘度（ビスメトロン回転粘度計、ＳＳ−２ローター、２５℃、回転数３〜６０ｒｐｍ、溶媒は純水、Ｈ型ＡＰＲ−３の０．５重量％濃度溶液）：（９，０００±１，０００）ｃＰ。
（１１）溶媒溶解性：水に可溶、アルカリに易溶、メタノール、エタノール及びアセトンに不溶。
（１２）比旋光度（２０℃）：−１７〜−１５°
（１３）ＩＲスペクトル吸収帯（ｃｍ-1）：２，７００〜３，７００、１，７３０、１，６００、１，４００、１，１６０。
【請求項２】
以下の特性を有する新規高分子物質（以下、ＡＰＲ−３という。）の生産能（以下、ＡＰＲ−３生産能という。）を有するセルロモナス・セルランスＫＹＭ−７株（ＦＥＲＭ  Ｐ−１１３５８）とアグロバクテリウム・ツメファシエンスＫＹＭ−８株（ＦＥＲＭ  Ｐ−１６８０６）との少なくとも２株を含む複合微生物をサイアミン含有培地に培養し、ＡＰＲ−３を培地中に生産・蓄積させることを特徴とするＡＰＲ−３の生産方法。
（１）油水分離能を有する。
（２）凝集活性を有する。
（３）糖含有量（フェノール・硫酸法）：（６４±２）重量％
（４）アミノ糖（エルソン・モーガン法）：検出されない。
（５）ウロン酸（カルバゾール・硫酸法）：検出されない。
（６）蛋白質（ニンヒドリン法）：検出されない。
（７）元素分析：炭素Ｃ＝（４０±２）％、水素Ｈ＝（６±１）％、窒素Ｎ、リンＰ及び硫黄Ｓは痕跡。
（８）構成する糖及び有機酸の組成（モル比）：ガラクトース１、グルコース（５．６±０．１）、コハク酸（０．６±０．１）、ピルビン酸（２．５±０．１）。
（９）分子量：２×１０6以上。
（１０）粘度（ビスメトロン回転粘度計、ＳＳ−２ローター、２５℃、回転数３〜６０ｒｐｍ、溶媒は純水、Ｈ型ＡＰＲ−３の０．５重量％濃度溶液）：（９，０００±１，０００）ｃＰ。
（１１）溶媒溶解性：水に可溶、アルカリに易溶、メタノール、エタノール及びアセトンに不溶。
（１２）比旋光度（２０℃）：−１７〜−１５°
（１３）ＩＲスペクトル吸収帯（ｃｍ-1）：２，７００〜３，７００、１，７３０、１，６００、１，４００、１，１６０。
【請求項３】
サイアミン含有培地のサイアミン濃度が２〜２０００μｇ／ｌである請求項１又は２に記載のＡＰＲ−３の生産方法。
【請求項４】
請求項１、２又は３に記載の方法により得られる培養物からＡＰＲ−３を採取することを特徴とするＡＰＲ−３の生産方法。
【請求項５】
請求項１、２又は３に記載のＡＰＲ−３生産能を有する微生物を、サイアミン含有培地に保存することを特徴とするＡＰＲ−３生産能を有する微生物の保存方法。
【請求項６】
サイアミン含有培地のサイアミン濃度が２〜２０００μｇ／ｌである請求項５に記載のＡＰＲ−３生産能を有する微生物の保存方法。
【請求項７】
請求項１、２又は３に記載の方法により得られる培養物を主成分として含有してなることを特徴とする微生物産生凝集剤。
【請求項８】
カチオン性無機塩を１種以上含有する請求項７に記載の微生物産生凝集剤。
【請求項９】
請求項７又は８に記載の微生物産生凝集剤を懸濁物含有排水に接触せしめることを特徴とする排水凝集処理方法。
【請求項１０】
活性汚泥方法による排水凝集処理方法において、請求項７又は８に記載の微生物産生凝集剤を処理系に存在させ、活性汚泥と処理水との分離領域において、活性汚泥のバルキングを防止することを特徴とする排水凝集処理方法。
【請求項１１】
活性汚泥の分離領域のｐＨを、７〜９に保持する請求項９又は１０に記載の排水凝集処理方法。
【請求項１２】
被処理排水が糸状菌を発生しやすい排水である請求項９、１０又は１１に記載の排水凝集処理方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、新規高分子物質（以下、ＡＰＲ−３という）の生産方法、微生物産生凝集剤及び排水凝集方法に関し、更に詳しくは、油水分離能及び凝集活性を有するＡＰＲ−３の生産方法であり、ＡＰＲ−３の特性から、油環境汚染における油除去処理に用いる油水分離剤、活性汚泥方法における排水凝集処理に使用する微生物産生凝集剤、並びにそれを用いる排水処理方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】
従来から、活性汚泥方法における排水凝集処理に使用する微生物産生凝集剤の生産方法として、アルカリゲネス・レイタス（Alcaligenes latas）、アルカリゲネス・キュピダス（Alcaligenes cupidus）、ロドコッカス・エリスロポリス（Rhodococcus erythropolis）等の微生物を用いる方法が知られていた。それは、それらの微生物を培養して得られる培養液をそのものを、排水凝集処理に用いる微生物産生凝集剤とするものである。しかしながら、得られる培養液は凝集活性が低いものであった。ましてや、培養液の油水分離能について試されたことはなかった。
【０００３】
【発明が解決しようとする課題】
本発明の課題は、上記の問題に鑑み、人と環境に優しく安全であり、且つより優れた油水分離能及び凝集活性を有するＡＰＲ−３を、安定して、収率よく且つ簡便に生産する方法、及び当該方法により生産されるＡＰＲ−３を含有してなる微生物産生凝集剤並びにそれを用いる排水処理方法を提供することにある。
【０００４】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは、上記課題達成のために鋭意努力した結果、特定の微生物群が、従来知られていない高分子物質を生産すること、又、それらの特定微生物群をサイアミン含有培地に混合して複合的培養、若しくは複合培養すると、その高分子物質が培地中に安定して、著量生産・蓄積され、かつ長時間にわたって該物質の生産性が高いレベルで維持され、回分培養、連続的回分培養（回分培養において培養終了時の培養液を種培養液として次の培養に次々使用する形式の培養方法）、連続培養が可能であること、そして、その培養液はより優れた油水分離能及び凝集活性を有すること等の知見を得た。本発明は、この知見に基づいて完成された。
【０００５】
すなわち、本発明は、１）以下の特性を有するＡＰＲ−３の生産能（以下、ＡＰＲ−３生産能という。）を有するブルセラｓｐ．ＫＹＭ−１株（ＦＥＲＭ  Ｐ−１１３３３）、コマモナス・テストステロニーＫＹＭ−４株（ＦＥＲＭ  Ｐ−１１３３６）、サルモネラｓｐ．ＫＹＭ−５株（ＦＥＲＭ  Ｐ−１１３３７）、セルロモナス・セルランスＫＹＭ−７株（ＦＥＲＭ  Ｐ−１１３５８）又はアグロバクテリウム・ツメファシエンスＫＹＭ−８株（ＦＥＲＭ  Ｐ−１６８０６）をサイアミン含有培地に培養し、ＡＰＲ−３を培地中に生産・蓄積させることを特徴とするＡＰＲ−３の生産方法を提供する。
（１）油水分離能を有する。
（２）凝集活性を有する。
（３）糖含有量（フェノール・硫酸法）：（６４±２）重量％
（４）アミノ糖（エルソン・モーガン法）：検出されない。
（５）ウロン酸（カルバゾール・硫酸法）：検出されない。
（６）蛋白質（ニンヒドリン法）：検出されない。
（７）元素分析：炭素Ｃ＝（４０±２）％、水素Ｈ＝（６±１）％、窒素Ｎ、リンＰ及び硫黄Ｓは痕跡。
（８）構成する糖及び有機酸の組成（モル比）：ガラクトース１、グルコース（５．６±０．１）、コハク酸（０．６±０．１）、ピルビン酸（２．５±０．１）。
（９）分子量：２×１０6以上。
（１０）粘度（ビスメトロン回転粘度計、ＳＳ−２ローター、２５℃、回転数３〜６０ｒｐｍ、溶媒は純水、Ｈ型ＡＰＲ−３の０．５重量％濃度溶液）：（９，０００±１，０００）ｃＰ。
（１１）溶媒溶解性：水に可溶、アルカリに易溶、メタノール、エタノール及びアセトンに不溶。
（１２）比旋光度（２０℃）：−１７〜−１５°
（１３）ＩＲスペクトル吸収帯（ｃｍ-1）：２，７００〜３，７００、１，７３０、１，６００、１，４００、１，１６０。
【０００６】
又、本発明は、２）以下の特性を有する新規高分子物質（以下、ＡＰＲ−３という。）の生産能（以下、ＡＰＲ−３生産能という。）を有するセルロモナス・セルランスＫＹＭ−７株（ＦＥＲＭ  Ｐ−１１３５８）とアグロバクテリウム・ツメファシエンスＫＹＭ−８株（ＦＥＲＭ  Ｐ−１６８０６）との少なくとも２株を含む複合微生物をサイアミン含有培地に培養し、ＡＰＲ−３を培地中に生産・蓄積させることを特徴とするＡＰＲ−３の生産方法。
（１）油水分離能を有する。
（２）凝集活性を有する。
（３）糖含有量（フェノール・硫酸法）：（６４±２）重量％
（４）アミノ糖（エルソン・モーガン法）：検出されない。
（５）ウロン酸（カルバゾール・硫酸法）：検出されない。
（６）蛋白質（ニンヒドリン法）：検出されない。
（７）元素分析：炭素Ｃ＝（４０±２）％、水素Ｈ＝（６±１）％、窒素Ｎ、リンＰ及び硫黄Ｓは痕跡。
（８）構成する糖及び有機酸の組成（モル比）：ガラクトース１、グルコース（５．６±０．１）、コハク酸（０．６±０．１）、ピルビン酸（２．５±０．１）。
（９）分子量：２×１０6以上。
（１０）粘度（ビスメトロン回転粘度計、ＳＳ−２ローター、２５℃、回転数３〜６０ｒｐｍ、溶媒は純水、Ｈ型ＡＰＲ−３の０．５重量％濃度溶液）：（９，０００±１，０００）ｃＰ。
（１１）溶媒溶解性：水に可溶、アルカリに易溶、メタノール、エタノール及びアセトンに不溶。
（１２）比旋光度（２０℃）：−１７〜−１５°
（１３）ＩＲスペクトル吸収帯（ｃｍ-1）：２，７００〜３，７００、１，７３０、１，６００、１，４００、１，１６０。
【０００７】
又、本発明は、３）サイアミン含有培地のサイアミン濃度が２〜２０００μｇ／ｌである前記１）又は２）に記載のＡＰＲ−３の生産方法を提供する。
【００１３】
又、本発明は、４）前記１）、２）又は３）に記載の方法により得られる培養物からＡＰＲ−３を採取することを特徴とするＡＰＲ−３の生産方法を提供する。
【００１４】
又、本発明は、５）前記１）、２）又は３）に記載のＡＰＲ−３生産能を有する微生物を、サイアミン含有培地に保存することを特徴とするＡＰＲ−３生産能を有する微生物の保存方法を提供する。
又、本発明は、６）サイアミン含有培地のサイアミン濃度が２〜２０００μｇ／ｌである前記５）に記載のＡＰＲ−３生産能を有する微生物の保存方法を提供する。
【００１５】
又、本発明は、７）前記１）、２）又は３）に記載の方法により得られる培養物を主成分として含有してなることを特徴とする微生物産生凝集剤を提供する。
又、本発明は、８）カチオン性無機塩を１種以上含有する前記７）に記載の微生物産生凝集剤を提供する。
【００１６】
又、本発明は、９）前記７）又は８）に記載の微生物産生凝集剤を懸濁物含有排水に接触せしめることを特徴とする排水凝集処理方法を提供する。
【００１７】
又、本発明は、１０）活性汚泥方法による排水凝集処理方法において、前記７）又は８）に記載の微生物産生凝集剤を処理系に存在させ、活性汚泥と処理水との分離領域において、活性汚泥のバルキングを防止することを特徴とする排水凝集処理方法を提供する。
【００１８】
又、本発明は、１１）活性汚泥の分離領域のｐＨを、７〜９に保持する前記９）又は１０）に記載の排水凝集処理方法を提供する。
【００１９】
又、本発明は、１２）被処理排水が糸状菌を発生しやすい排水である前記９）、１０）、又は１１）に記載の排水凝集処理方法を提供する。
【００２０】
【発明の実施の形態】
次に実施形態を挙げて本発明を更に詳しく説明する。しかし、本発明はこの実施形態により何ら限定されるものではない。
本発明でいうＡＰＲ−３とは、次の特質を有する高分子物質である。
【００２１】
（１）油水分離能を有する。
（２）凝集活性を有する。
（３）糖含有量（フェノール・硫酸法）：（６４±２）重量％
（４）アミノ糖（エルソン・モーガン法）：検出されない。
（５）ウロン酸（カルバゾール・硫酸法）：検出されない。
（６）蛋白質（ニンヒドリン法）：検出されない。
（７）元素分析：炭素Ｃ＝（４０±２）％、水素Ｈ＝（６±１）％、窒素Ｎ、リンＰ及び硫黄Ｓは痕跡。
（８）構成する糖及び有機酸の組成（モル比）：ガラクトース１、グルコース（５．６±０．１）、コハク酸（０．６±０．１）、ピルビン酸（２．５±０．１）。
（９）分子量：２×１０6以上。
（１０）粘度（ビスメトロン回転粘度計、ＳＳ−２ローター、２５℃、回転数３〜６０ｒｐｍ、溶媒は純水、Ｈ型ＡＰＲ−３の０５重量％濃度溶液）：９，０００（±１，０００）ｃＰ。
（１１）溶媒溶解性：水に可溶、アルカリに易溶、メタノール、エタノール及びアセトンに不溶。
（１２）比旋光度（２０℃）：−１７〜−１５°
（１３）ＩＲスペクトル吸収帯（ｃｍ-1）：２，７００〜３，７００、１，７３０、１，６００、１，４００、１，１６０。
以上の特性を有する高分子物質は現在まで知られていないので、当該物質は新規物質である。
【００２２】
本発明において、油水分離能とは、油懸濁水（海水も含む。）を油相と水相とに分離する能力のことをいう。該油水分離能は次のようにして測定される。
Ａ）油水分離能の活性測定法
サラダ油１０ｇとノニオン系界面活性剤Ｔｗｅｅｎ８０（和光純薬社製：ソルビタンモノオレアートのエチレンオキシド縮合物）０．５ｇをビーカー中で２〜３分間超音波処理してサラダ油を乳化させる。この中に撹拌しながら海水を加えて全量を２リットルとし、これを油懸濁水の原水とする。
【００２３】
２リットルのビーカーに原水１リットルを移し、ｐＨを１０に調整する。この原水０．８リットルを加圧浮上装置（宮本製作所製ＭＳ９０００）に供給する。更にサンプル液２０ｍｌを添加して、室温で内容物を十分に撹拌した後、加圧水を０．３リットル添加する。１０〜２０分間静置後、水相のＣＯＤを重クロム酸カリウム法で測定する。活性はそのＣＯＤ値で示される。そして、油水分離能は次式により計算される。
油水分離能＝（（Ａ−Ｂ）／Ａ）×１００（％）、但し、Ａ：処理前の    ＣＯＤ値、Ｂ：処理後のＣＯＤ値。
【００２４】
又、本発明において、凝集活性とは懸濁物質の代表例としてカオリンを用いた。しかし懸濁物質はカオリン以外でもよい。例えば、カオリン懸濁液中のカオリン懸濁物を凝集させ、上澄液をつくる活性をいう。同様にして、排水中の懸濁物を凝集させ、上澄液をつくる活性をいう。そして、カオリン凝集活性は次のようにして測定される。
【００２５】
Ｂ）カオリン凝集活性の測定法
カオリン懸濁液（５，０００ｍｇ／ｌ）８０ｍｌを１００ｍｌ容メスシリンダーに分取し、これに１０重量％ＣａＣｌ2・２Ｈ2Ｏ水溶液１０ｍｌ添加した。これにサンプル液０．１２５ｍｌを加え、ｐＨを８．０に調整した。そのシリンダーを室温でゆっくり撹拌し、５分間静置した。そして、上澄液の濁度をＯＤ５５０ｎｍにて測定した。カオリン凝集活性は次式によって計算される。
カオリン凝集活性＝（１／Ｃ）−（１／Ｄ）
Ｃ：サンプル液についてのＯＤ５５０ｎｍ値
Ｄ：水（ブランク液）についてのＯＤ５５０ｎｍ値
【００２６】
本発明の第一の特徴は、ＡＰＲ−３の生産能を有する微生物の培養方法にある。即ち、本発明の微生物をサイアミン含有の固体若しくは液体の栄養培地に培養してＡＰＲ−３を培地中に安定して、著量生産・蓄積させるＡＰＲ−３の生産方法である。又、その培養物からＡＰＲ−３を採取するＡＰＲ−３の生産方法である。
【００２７】
サイアミン含有培地とは、培養開始から、即ち種培養若しくは前培養から、目的のＡＰＲ−３の生産活性を得るまで、固体若しくは液体の栄養培地中にサイアミンが含有していることを意味する。サイアミン濃度は、２〜２０００μｇ／ｌの濃度、好ましくは５〜１０００μｇ／ｌの濃度、より好ましくは５〜５００μｇ／ｌ濃度で培地中に含有していればよい。２μｇ／ｌ以下の場合はＡＰＲ−３生産活性が極端に低下する。２０００μｇ／ｌ以上の場合はＡＰＲ−３生産活性がそれ以上増加しないので、培地にそれ以上含有させることの意味がなくなる。
本発明のサイアミンとは、サイアミン自体、サイアミン塩酸塩等のサイアミンの各種塩類、サイアミンの各種誘導体、サイアミン含有物などをいう。
【００２８】
ＡＰＲ−３生産能を有する微生物とは、ＡＰＲ−３を生産できる能力を有する微生物であればよく、細菌、放線菌、酵母、カビ等のどのような微生物でも本発明に使用できる。本発明においては、特にフタル酸を資化できる特性とスライム形成性を目安にスクリーニングして得られたが、スクリーニング方法等に何ら限定されるものではない。
【００２９】
又、本発明の微生物の大きな特徴は、ＡＰＲ−３生産能を有する微生物の少なくとも１種を含む複数の微生物の混合物（以下、複合微生物という。）からなるものである。そしてそれを複合的培養若しくは複合培養して、ＡＰＲ−３を培養物中に著量生産・蓄積させる。複合微生物は、その中の各微生物を少なくとも１種を単離できるものでもよく、単離できないものでもよい。要するに、複合微生物自体がＡＰＲ−３生産能を有するものであればよい。又、当該複合微生物の中に本発明の微生物以外のものが混入していても、ＡＰＲ−３の生産を阻害しない限り、一向に差し支えない。このような複合微生物を用いて、有用物質を生産するという発想は本発明者らが初めて為したものである。
【００３０】
ＡＰＲ−３生産能を有する微生物の中でも、好ましいものとして細菌類を挙げることができる。より具体的には、ブルセラ属、ステノトロフォモナス属、ザントモナス属、アシネトバクター属、コマモナス属、サルモネラ属、大腸菌属、オーレオバクテリウム属、セルロモナス属及びアグロバクテリウム属に属する微生物である。
【００３１】
上記の属に属する微生物の中でも、特に好ましい菌株として、ブルセラ属に属する微生物としてブルセラｓｐ．ＫＹＭ−１株を、ステノトロフォモナス又はザントモナスのグループに属する微生物としてＫＹＭ−２株を、アシネトバクター属に属する微生物とそてアシネトバクターｓｐ．ＫＹＭ−３株を、コマモナス属に属する微生物としてコマモナス・テストステロニーと同種かそれに極めて近いＫＹＭ−４株を、サルモネラ属に属する微生物としてサルモネラｓｐ．ＫＹＭ−５株を、オーレオバクテリウム属に属する微生物としてオーレオバクテリウムｓｐ．ＫＹＭ−６株を、セルロモナス属に属する微生物としてセルロモナス・セルランスＫＹＭ−７株を、そしてアグロバクテリウム属に属する微生物としてアグロバクテリウム・ツメファシエンス若しくはそれに極めて近い種に属するＫＹＭ−８株等を挙げることができる。
【００３２】
上記の微生物の中でも、ＫＹＭ−１、ＫＹＭ−２、ＫＹＭ−３、ＫＹＭ−４、ＫＹＭ−５、ＫＹＭ−６、ＫＹＭ−７及びＫＹＭ−８の菌株番号が付されたものは、フタル酸資化性及びスライム形成性を指標として、活性汚泥及び土壌からのスクリーニングより、ＡＰＲ−３生産能を有する複合微生物として得られたものである。各々、単離してその性質を調べた結果を下記の表１〜４に示してある。各菌株は、生命工学研究所に寄託され、ＫＹＭ−１はＦＥＲＭ  Ｐ−１１３３３、ＫＹＭ−２はＦＥＲＭ  Ｐ−１１３３４、ＫＹＭ−３はＦＥＲＭ  Ｐ−１１３３５、ＫＹＭ−４はＦＥＲＭ  Ｐ−１１３３６、ＫＹＭ−５はＦＥＲＭ  Ｐ−１１３３７、ＫＹＭ−６はＦＥＲＭ  Ｐ−１１３５７、ＫＹＭ−７はＦＥＲＭ  Ｐ−１１３５８、ＫＹＭ−８はＦＥＲＭ  Ｐ−１６８０６の番号が付されている。
【００３３】
0004300266.tif 000002
0004300266.tif 000003
【００３４】
0004300266.tif 000004
0004300266.tif 000005
【００３５】
0004300266.tif 000006
0004300266.tif 000007
【００３６】
0004300266.tif 000008
0004300266.tif 000009
【００３７】
上記のＫＹＭ菌株を、表１〜４に記載の形態学的及び生理学的性質に基づいて、Bergey's Manual of Systematic Bacteriology（第１巻、第２巻、第３巻、第４巻）に記載の分類基準に従って、同定すると、
ＫＹＭ−１は、シュドモナス・ファギー（Pseudomonas faagi）、
ＫＹＭ−２は、ステノトロフォモナス・マルトフィリア（Xanthomonas maltophilia）、
ＫＹＭ−３は、アセネトバクター・カルコアセティカス（Acinetobactor calcoaceticus）、
ＫＹＭ−４は、ブルクホルデリア・セパシア（Burkholderia cepacia）、
ＫＹＭ−５は、ハフニア・アルベイア（Hafnia alveia）、
ＫＹＭ−６は、コリネバクテリウム・アクアチクム（Corynebacterium aquaticum）、
ＫＹＭ−７は、セルロモナス・カルタエ（Cellulomonas cartae）、
ＫＹＭ−８は、アグロバクテリウム・リゾゲネス（Agrobacterium rhizogenes）に属する菌株である。尚、ブルクホルデリア・セパシアは、旧名称シュドモナス・セパシアとされ、ハフニア・アルベイアは、旧名称サルモネラｓｐ．とされ、そしてセルロモナス・カルタエは、旧名称オエルスコビア属とされていた（再分類され現名称となっている）。
【００３８】
しかしながら、最近、１６Ｓ  ｒＤＮＡの塩基配列の相同性から、微生物を発生系統的に同定・分類する方法が行なわれている（日本微生物生態学会報（Bulletin of Japanese Society of Microbial Ecology）、１０巻、１１９〜１３６ページ、１９９５年、同報、１０巻、３１〜４２ページ、１９９５年）。上記の菌株をこの方法で解析し、その結果を表５に記載した。表５より同定・分類すると：
【００３９】
表５
0004300266.tif 000010
に属する菌株である。
尚、上記の１６Ｓ  ｒＤＮＡ解析法によると、サルモネラ属と大腸菌属に属する微生物は、同一属の微生物と見做されている。その故に本発明の微生物は、サルモネラ属又は大腸菌属のどちらの属に属する微生物でもよい。
【００４０】
以上の結果より、本発明の菌株は、
ＫＹＭ−１は、ブルセラｓｐ．又はシュドモナス・ファギー、
ＫＹＭ−２は、ステノトロホモナスｓｐ．又はザントモナス・マルトフィリア、
ＫＹＭ−３は、アセネトバクター・カルコアセティカス、
ＫＹＭ−４は、コマモナス・テストステロニー又はブルクホルデリア・セパシア、
ＫＹＭ−５は、サルモネラｓｐ．又はハフニア・アルベイア、
ＫＹＭ−６は、オーレオバクテリウムｓｐ．又はコリネバクテリウム・アクアチクム、
ＫＹＭ−７は、セルロモナス・セルランス又はセルロモナス・カルタエ、
ＫＹＭ−８は、アグロバクテリウム・ツメファシエンス（Agrobacterium tumefaciens）又はアグロバクテリウム・リゾゲネス
に属する菌株である。
【００４１】
本発明において、総合的に検討した結果、
ＫＹＭ−１株は、ブルセラｓｐ．に属する菌株、
ＫＹＭ−２株は、ステノトロフォモナス又はザントモナスのグループに属する菌株、
ＫＹＭ−３株は、アシネトバクターｓｐ．属に属する菌株、
ＫＹＭ−４株は、コマモナス・テストステロニーと同種かそれに極めて近い種に属する菌株、
ＫＹＭ−５株は、サルモネラ又は大腸菌のグループに属する菌株（本発明においては簡便化のためサルモネラ属という。）、
ＫＹＭ−６株は、オーレオバクテリウムｓｐ．に属する菌株、
ＫＹＭ−７株は、セルロモナス・セルランス若しくはそれに極めて近い種に属する菌株、又、
ＫＹＭ−８株は、アグロバクテリウム・ツメファシエンス若しくはそれに極めて近い種に属する菌株
であると判断した。
【００４２】
ＫＹＭ−１〜ＫＹＭ−７菌株は公知菌株であるが、ＫＹＭ−８菌株は新規微生物菌株である。それ故、それは本発明の一実施形態である。
以上のことから、本発明の方法で使用する微生物は、ＡＰＲ−３生産能を有する微生物であればよく、上記のような具体的な菌名をもって制限されるものではない。
【００４３】
本発明において、好ましい実施形態として、ＡＰＲ−３生産能を有する微生物を培養するにあたり、サイアミン含有培地にＡＰＲ−３生産能を有する微生物を、それら微生物の少なくとも１種を含む複合微生物を複合的培養若しくは複合培養することである。それ故、複合微生物とは、少なくとも上記の属に属する微生物の中の１種を含む。その中でも特に好ましい実施形態は、少なくともアグロバクテリウム属に属する微生物及び／又はセルロモナス属に属する微生物を含むものである。
【００４４】
本発明における複合微生物は、ブルセラｓｐ．ＫＹＭ−１株、ステノトロフォモナス又はザントモナスのグループに属するＫＹＭ−２株、アシネトバクターｓｐ．ＫＹＭ−３、コマモナス・テストステロニーと同種か極めて近いＫＹＭ−４、サルモネラ属に属するいずれかの微生物、オーレオバクテリウム属に属するいずれかの微生物及びセルロモナス属に属するいずれかの微生物からなる群から選ばれる少なくとも１種の微生物と、アグロバクテリウム・ツメファシエンス若しくはそれに極めて近いＫＹＭ−８との組合せを含む。
【００４５】
若しくは、ブルセラｓｐ．ＫＹＭ−１株、ステノトロフォモナス又はザントモナスのグループに属するＫＹＭ−２株、アシネトバクターｓｐ．ＫＹＭ−３、コマモナス・テストステロニーと同種か極めて近いＫＹＭ−４、サルモネラ属に属するいずれかの微生物及びオーレオバクテリウム属に属するいずれかの微生物からなる群から選ばれる少なくとも１種の微生物と、セルロモナス属に属するＫＹＭ−７株との組合せを含む。
【００４６】
更に特に好ましい実施形態は、上記の組合せの中でも、サルモネラ属に属するいずれかの微生物がＫＹＭ−５株、オーレオバクテリウム属に属するいずれかの微生物がＫＹＭ−６株、セルロモナス属に属するいずれかの微生物がＫＹＭ−７株である。
【００４７】
上記の組合せの詳しい具体例として一例を挙げるならば、次の如くである。
（ａ）ＫＹＭ−８、ＫＹＭ−７
（ｂ）ＫＹＭ−８、ＫＹＭ−７、ＫＹＭ−１
（ｃ）ＫＹＭ−８、ＫＹＭ−７、ＫＹＭ−５
（ｄ）ＫＹＭ−８、ＫＹＭ−７、ＫＹＭ−５、ＫＹＭ−４
（ｅ）ＫＹＭ−８、ＫＹＭ−７、ＫＹＭ−５、ＫＹＭ−４、ＫＹＭ−１
（ｆ）ＫＹＭ−８、ＫＹＭ−７、ＫＹＭ−６、ＫＹＭ−５、ＫＹＭ−４、
ＫＹＭ−３、ＫＹＭ−２、ＫＹＭ−１
（ｇ）ＫＹＭ−７、ＫＹＭ−４
（ｈ）ＫＹＭ−７、ＫＹＭ−４、ＫＹＭ−１
（ｉ）ＫＹＭ−７、ＫＹＭ−５、ＫＹＭ−４、
（ｊ）ＫＹＭ−７、ＫＹＭ−５、ＫＹＭ−４、ＫＹＭ−１
【００４８】
本発明で使用する微生物の中でも、ＫＹＭ−１株〜ＫＹＭ−８株の微生物は、単独の状態又は上記のいずれの組合せの複合状態で、寒天培地上で、又、液体培地中でスライムを形成するフロック状態になる。そして、フロック状態のまま、植えつぐことも、保存することもできる。又、便利に種培養菌として用いることもできる。
それで、上記の組合せの微生物の中でも、（ｆ）、（ａ）、（ｂ）、（ｃ）、（ｄ）、（ｅ）、（ｇ）、（ｈ）、（ｉ）及び（ｊ）は各々、Ｒ−３菌、Ｒ−４菌、Ｒ−５菌、Ｒ−６菌、Ｒ−７菌、Ｒ−８菌、Ｒ−９菌、Ｒ−１０菌、Ｒ−１１菌及びＲ−１２菌と略称される。
【００４９】
上記の菌は、寒天培地上でスライムを形成する。しかし、このスライム形成は本発明を何ら限定するものではない。尚、これらの組合せの菌株を用いて培養を行なう場合は、寒天培地上でスライムを形成させ、スライム形成微生物を種菌として用いると便利である。
【００５０】
本発明では、上記の本発明の微生物の植えつぎ、連続植えつぎ、又は保存にあたり、使用する培地として、液体培地、又寒天培地などの固体培地のどちらも採用出来る。そして十分な生育量を得ることが出来る。
しかしながら、本培養におけるＡＰＲ−３の生産活性を良好に得るには、上記の培地にもサイアミンを含有させることが好適である。そのサイアミンの濃度は、２〜２０００μｇ／ｌ、好ましくは５〜１０００μｇ／ｌである。２μｇ／ｌ以下の場合は、ＡＰＲ−３生産活性が極端に低下する。２０００μｇ／ｌ以上の場合はＡＰＲ−３生産活性がそれ以上増加しない。それでそれ以上の含有は意味がないものとなる。
更に良好なＡＰＲ−３生産活性を得るには、サイアミン含有培地で培養した菌体を、グリセロール、グルコース、マルトース、トレハロース等の糖類、又ＤＭＳＯ（ジメチルスルホオキシド）等、好ましくは１０重量％マルトースを含む液体培地中ないし溶液中又は緩衝液中に保存することが好適である。そしてそれらの糖類の濃度は５〜１５重量％である。
保存温度は−１００℃〜−３０℃、好ましくは−１００℃〜−４０℃、特に好ましくは−９０℃〜−６０℃である。
【００５１】
本発明の微生物を培養するにあたり、使用する培地は、本発明の微生物の栄養培地で、かつサイアミン含有培地であればどのようなものでもよく、特に制限されない。そして、通常の公知の方法に従って調製することができる。例えば、その組成は、炭素源として、デンプン、廃糖蜜、デキストリン、サッカロース、マルトース、マンニット、グルコース及びフラクトース等、窒素源として、硫安、塩安、尿素、肉エキス、ペプトン及び酵母エキス等、無機塩類として、リン酸塩、マグネシウム塩、食塩、鉄塩及びマンガン塩等、ビタミン類として、サイアミンの他各種ビタミン類、酵母エキス、コーンステープリカー及び廃糖蜜等が適当量含有していればよい。
【００５２】
上記の炭素原の中でもデンプン、マンニットは好ましいものとして挙げることができ、培地中に占める量として０．０１〜３０重量％、好ましくは、０．１〜２０重量％で使用する。ｐＨは５〜９位の範囲に調整すればよい。固体培地又は液体培地の種類は問われない。尚、農産物廃棄物、食品産業廃棄物、発酵廃液及び残渣類、都市ゴミ類等も炭素源、有機窒素源及びサイアミン及びその他のビタミン類等として使用することができる。培養は、振盪、通気撹拌等の操作で、２０〜４０℃で２〜１５日間行なえばよい。そして回分培養、連続的回分培養、或いは連続培養等の培養方法が採用できる。前培養なしの方法或いは前培養ありの方法等、どちらも採用できる。特に、本発明の方法は、連続的回分培養、連続培養などの培養方法において好適に用いられる。即ち、培養途中でサイアミンが消費されつくすと、本発明微生物のＡＰＲ−３生産能が低下するからである。
【００５３】
上記の如くして培地中に生産されたＡＰＲ−３は、アセトン、エタノール等の有機溶媒を用いる沈殿法、ゲル濾過法、ゲルクロマトグラフィー法、イオンクロマトグラフィー法、膜濃縮法、膜濾過法、cetylpyridium chloride（ＣＰＣ）等の塩基性物質とＡＰＲ−３との複合体形成による沈殿物法等を適当に組み合わせることにより、培養液中から採取することができる。
【００５４】
採取されたものは適当な溶媒又は溶液に溶かすか、乾燥するかして、又、適当な付加剤又は添加剤等を添加して、環境汚染の油除去処理等において使用する油水分離剤及び排水処理において使用する微生物産生凝集剤として使用することができる。又、本発明の微生物の培養物をそのまま油水分離剤及び微生物産生凝集剤とすることもできる。本発明において、培養物とは培養物自体の他に培養物の各種処理物をも含むものとする。例えば、培養液自体及びその濃縮物若しくはその乾燥物、、培養液から菌体を除いた上澄液及びその濃縮物若しくはその乾燥物、菌体自体及びその懸濁物若しくはその乾燥物等である。
そして、カルシウム、鉄、アルミニウム等のカチオン性無機塩を１種以上含有してなる微生物産生凝集剤は、凝集活性が向上するので好ましい添加剤の一つである。
本発明の微生物産生凝集剤は、それを懸濁物含有度が高い排水に接触せしめると、特に処理効果が上がる。又、活性汚泥方法による排水処理において、バルキング又は／及び糸状菌が発生し易い排水若しくは排水処理槽に本発明剤を適用すると処理効果が一層高まる。そして当該方法に本発明剤を適用する場合に活性汚泥の分離領域のｐＨを、７〜９に保持するとその処理効果は更に高まり、かつ安定化する。
【００５５】
【実施例】
次に実施例を挙げて本発明を更に具体的に説明する。尚、文中「％」とあるのは特に断りの無い限り重量基準である。
実施例１：本発明で使用する混合菌であるＲ−３菌の培養
本発明で使用する菌の種培養及び本培養に用いる培地の組成（％）：
デンプン＝１％
Ｋ2ＨＰＯ4＝０．５％
ＫＨ2ＰＯ4＝０．２％
ＭｇＳＯ4・７Ｈ2Ｏ＝０．０２％
（ＮＨ４）2ＳＯ4＝０．０５％
酵母エキス＝０．０５％
サイアミン塩酸塩＝２００μｇ／ｌ
蒸溜水＝残り
ｐＨ  ７．０（３Ｎ  ＫＯＨで調整）
殺菌条件：１２１℃（達温）及び１５〜２０分間
【００５６】
Ｒ−３菌を、サイアミン塩酸塩が０．１ｍｇ／ｌ含有する肉汁寒天平板培地に３０℃で５日間培養した。当該菌の１白金耳を液体培地８０ｍｌ（５００ｍｌ容振盪フラスコ）に添加し、３０℃で２日間培養し種培養を調製した。尚、ロータリーシェイカーを用いて当該フラスコを振盪した。当該培養液（６０ｍｌ）を５リットル容ジャーファメンター（培地３リットル）に添加し、３０℃で３リットル／ｍｉｎの通気量で、７日間撹拌（２００〜４００ｒｐｍ）しながら培養した。生育度（ＯＤ３１０ｎｍにおける濁度にて測定）、油水分離能及びカオリン凝集活性ともに３日間で最高値に達した後、若干減少傾向を示した。培養液の粘度は最後まで増加した。生育度１６．５（３１０ｎｍにおける濁度測定）、カオリン凝集活性２７７、粘度１，２００（ｃＰ）なる培養液を得た。尚、粘度はビスメトロン回転粘度計を用い、ＳＳ−２ローター使用し、２５℃及び回転数３〜６０ｒｐｍの条件で測定した。
【００５７】
実施例２：ＡＰＲ−３の分離精製
実施例１のようにしてＲ−３菌を培養して得た培養液３リットルを純水１２リットルで希釈し、菌体を遠心分離（２８，０００Ｇ及び３０ｍｉｎ）で除去し、その後、膜濃縮機を使用して２リットルまで濃縮した。当該濃縮液に２倍容のエタノールを添加し、繊維状の沈殿物（ＡＰＲ−３）を析出させた。当該沈殿物を遠心分離で採取し、シリカゲル入りのデシケーターの中で、一晩減圧乾燥した。
９．２ｇの粗ＡＰＲ−３を得た（対デンプン収率＝３０．５％）。
【００５８】
５００ｍｇの当該粗ＡＰＲ−３を蒸溜水１００ｍｌに溶解した。次、これに２％cetylpyridium chloride（ＣＰＣ）溶液５０ｍｌを撹拌しながら添加し、数時間静置し、ＡＰＲ−３とＣＰＣの複合体の沈殿物を形成させた。当該複合体の沈殿物を遠心分離により集め、０．５モルの食塩水に溶解した。これに２倍容のエタノールを添加し、繊維状の沈殿物を得た。当該沈殿物をエタノール及びアセトンで各々５回洗浄した後、上記のようにして減圧乾燥した。純度検定で９８％以上のＡＰＲ−３（３８０ｍｇ）のを得た（対デンプン収率、２１．０％）。このことから、Ｒ−３菌の培養液には約２ｍｇ／ｍｌのＡＰＲ−３が生産されていることが分かる。
【００５９】
上記の純度検定は次のようにして行なった。
上記の如くして精製されたＡＰＲ−３を、０．５ＮのＮａＯＨ水溶液で加水分解し、脱アセチル化した。得られた脱アセチル化ＡＰＲ−３について、酢酸セルロース膜を支持体として電気泳動を行った。その結果、当該ＡＰＲ−３は陽極側に移動し、単一のスポットを与えた（図１参照）。よって当該ＡＰＲ−３は純粋なものと判断した。
【００６０】
実施例３：ＡＰＲ−３の特質
上記の精製ＡＰＲ−３について分析した。
１．全糖
フェノール・硫酸法により測定した。その結果、６４（±２）％であった。
２．アミノ糖
エルソン・モーガン法により定性分析を行った。アミノ糖は検出されなかった。
３．ウロン酸
カルバゾル・硫酸法により検出を試みたが、検出されなかった。
【００６１】
４．蛋白質
ニンヒドリン法により検出を試みたが、検出されなかった。
５．元素分析
炭素Ｃ＝４０（±２）％、水素Ｈ＝６（±１）％、窒素Ｎ、痕跡、リンＰ、痕跡、硫黄、痕跡。
【００６２】
６．構成糖
上記の精製ＡＰＲ−３を２Ｍのトリフルオロ酢酸で４時間加水分解した。
定性分析：
当該加水分解物について、次の条件で薄層クロマトグラフィーを行った。その結果、グルコース及びガラクトースのみが検出された。条件：プレート＝シリカゲル６０（０．５Ｍ  ＮａＨ２ＰＯ4）、展開相＝イソプロピルアルコール：アセトン：０．１Ｍ乳酸（２：２：１  重量比）。
【００６３】
定量分析：
上記加水分解物について、ＴＭＳ誘導体を調製して、次の条件でガスクロマトグフィーによる分析を行った。その結果、ＡＰＲ−３は、ガラクトース１モルに対してグルコース５．６（±０．１）モルの割合で構成されていることが判明した。条件：装置＝島津（Shimadzu）ＧＣ−１５Ａ、検出器＝ＦＩＤ、カラム＝Hicap-CBPI（OV-1 chemical bonding）キャピラリーカラム。
【００６４】
７．構成有機酸
ＡＰＲ−３を、２Ｎの硫酸溶液で１００℃で２時間加水分解した。この加水分解物について、構成有機酸の薄層クロマトグラフィーによる定性及び同定分析を次の条件で行なった。その結果コハク酸とピルビン酸が検出された。
【００６５】
定性分析：
プレート＝セルロースＦ２５４Ｓ又はシリカゲルＦ２５４、展開相＝ブタノール：ギ酸：水（４：１．５：１  重量比）又はアミルアルコール：０．２５Ｍアンモニア（２：１  重量比）。
【００６６】
定量分析：
ＡＰＲ−３を２Ｍトリフルオロ酢酸溶液で１００℃で４時間加水分解し、その加水分解物をメチル化した。それをガスクロマトグラフィーで定量した。その結果、コハク酸とピルビン酸が、構成糖であるガラクトース１モルに対して各々０．６（±０．１）モル及び２．５（±０．１）モル含まれていることが分かった。
【００６７】
８．分子量
脱アセチル化したＡＰＲ−３について、トヨパールＨＷ７５Ｆゲルカラムを使用するゲルクロマトグラフィーでＡＰＲ−３の分子量を求めた（図２参照）。ブルーデキストランよりも先にＡＰＲ−３のピークが出現するので、分子量は２×１０6以上であると判断された。
【００６８】
９．比旋光度
比旋光度は−１７〜−１５°であった。
１０．ＩＲスペクトル
図３に当該スペクトルを示した。２，７００〜３，７００ｃｍ-1に水酸基の吸収、１７００ｃｍ-1及び１，１６０ｃｍ-1にカルボキシルエステル結合の吸収、そして１，６００ｃｍ-1及び１，４００ｃｍ-1にイオン化カルボキシル基の吸収を示した。
【００６９】
１１．溶媒に対する溶解性
水に可溶、アルカリに易溶、メタノール及びアセトンに不溶であった。
１２．粘度特性
ビスメトロン回転粘度計で、ＳＳ−２  ローターを使用し、２５℃及び回転数３〜６０ｒｐｍの条件で測定した。対照物質としてザンサンガムを用いた。ＡＰＲ−３はＮａ型（塩）、Ｃａ型（塩）及びＨ型（フリー型）にして測定した。ザンサンガム及びＡＰＲ−３の濃度は０．５重量％溶液とした。その結果を図４に示した。いずれの型のＡＰＲ−３もザンサンガムと同様に、シュードプラスチック流動特性を示した。又、ザンサンガムよりも高粘度であった。
以上の特性を有する高分子物質は、現在まで発見されていないので、新規物質と認定した。
【００７０】
実施例４
実施例１で得たＡＰＲ−３の粉末について、ＡＰＲ−３溶液（５０ｍｇ／１ｍｌ蒸留水）を調製し、その内の２０ｍｌを使用して、上記の油水分離能測定法により測定し、下記表６の通りの結果を得た。
【００７１】
表６
0004300266.tif 000011
表６から分かるように、本発明のＡＰＲ−３は油水分離能を有することは明らかである。又、下記の比較例実験の表６から分かるように、公知のロードコッカス・エリスロポレスＫＲ−２５６−２（ＦＥＲＭ  Ｐ  Ｎｏ．３９２３）のものより高活性を有する。
【００７２】
実施例５
Ｒ−３菌をＲ−４菌に代えること、及び培地にサイアミンを添加すること（以下、サイアミン含有系という。）並びに添加しないこと（以下、サイアミン非含有系という。）以外は、実施例１と同様に培養し、その培養の経時変化を調べた。その結果を図５及び６に示した。尚、図５はサイアミン含有系のものであり、図６はサイアミン非含有系のものである。図５及び６から分かるように、サイアミン非含有系では培養３日目でカオリン凝集活性は最高値に達し、その後減少傾向を示した。又、粘度（ｃＰ）は培養４日目で最高値に達し、その後減少傾向を示した。しかし、サイアミン含有系では、培養３日頃からカオリン凝集活性及び粘度（ｃＰ）の増加率が減少するものの、カオリン凝集活性及び粘度（ｃＰ）の値が減少することはなかった。尚、活性は培養液の上澄液について測定した。ＡＰＲ−３生産能を有しないが、微生物産生凝集剤を生産することが知られているロードコッカス・エリスロポレスＫＲ−２５６−２（ＦＥＲＭ  Ｐ−３９２３）を対照菌株として採用し、Ｒ−４菌のサイアミン含有系と同様の条件で培養した結果を図７に示した（比較例１参照）。図５、６及び７から分かるように、Ｒ−４菌は、カオリン凝集活性及び粘度（ｃＰ）が格段に高い培養液を生産すること、又、サイアミン含有系は、非含有系のものより培養液のカオリン凝集活性及び粘度（ｃＰ）が高く、且つ培養の安定性が優れているが分かる。尚、生育度は３１０ｎｍにおける濁度測定によった。
【００７３】
比較例１
ロードコッカス・エリスロポレスＫＲ−２５６−２（ＦＥＲＭ  Ｐ−３９２３）を、実施例１と同様な条件で培養して得た培養液の上澄液について、膜濃縮により２５倍の濃縮を行い、ＡＰＲ−３溶液（５０ｍｇ／１ｍｌ蒸留水）の調製条件と同様なものにした。実施例４と同様の条件で油水分離能を測定し、下記表７の結果を得た。
【００７４】
表７
0004300266.tif 000012
【００７５】
実施例６
Ｒ−３菌の代わりに、ＫＹＭ−１、ＫＹＭ−４、ＫＹＭ−５、ＫＹＭ−７、ＫＹＭ−８及びそれらを図７に示したような組み合わせた混合菌及び混合菌であるＲ−３〜Ｒ−１２を用いて、実施例１と同条件で培養した。そして、図８のような結果を得た。本実施例においては、各活性が粘度と相関する故、活性を粘度測定で行った。粘度測定条件は実施例１と同様である。これから、本発明の複合微生物は、ＡＰＲ−３の生産により効果的であることが分かる。そして、ＫＹＭ−７又は／及びＫＹＭ−８を含む複合微生物が特に効果的であることが分かる。
【００７６】
実施例７
実施例１で使用した培地において、酵母エキスの代わりにポリペプトン（商標名）（第五栄養化学ＫＫの製品）を０．５％を添加すること、サイアミン塩酸塩を添加すること又は添加しないこと、本発明の微生物としてＲ−３菌からＲ−４菌に変更すること、及び培養を回分培養方法から連続的回分培養方法に変更すること以外は実施例１と同様に培養して、ＡＰＲ−３の生産を行った。本実施例は連続的回分培養方法であるので、種培養は第一回目の培養においては実施例１と同様に行い、接種も実施例１と同様に行ったが、第二回目からは、前回培養終了時の培養液を種培養液として利用した。そして接種量は１０容量％とした。その結果を表８に示した。なお、データーは回分培養第５回目の培養１０日後の結果のものである。
【００７７】
表８
0004300266.tif 000013
このデーターからサイアミン添加すなわち培地のサイアミン含有がＡＰＲ−３の生産に必須であることが分かる。
【００７８】
実施例８
Ｒ−３菌をＲ−４菌に代えること及びサイアミンの濃度を表９記載のように変えること以外は、実施例１と同様にしてＡＰＲ−３生産を行った。その結果を表９に示す。なお、ＡＰＲ−３の生産量は培養液の粘度（ｍＰａ・Ｓ）と相関するので、ＡＰＲ−３の生産量を粘度で示した。
【００７９】
表９
0004300266.tif 000014
このデーターから分かるように、サイアミン含有培地のサイアミン濃度は    ２〜２０００μｇ／ｌの範囲でＡＰＲ−３生産に効果的であることが分かる。
【００８０】
【発明の効果】
本発明方法によって、油水分離能及びカオリン凝集活性を有するＡＰＲ−３を、本発明の微生物を用いて、安定して、収率よく、且つ、簡便に大量生産することが可能となった。本発明方法によって得られる培養物は、ＡＰＲ−３を高濃度で含有するので、そのまま又は濃縮、乾燥等の処理をするかして、排水処理若しくは油汚染環境における凝集剤、油水分離剤として用いることが出来ようになった。
【図面の簡単な説明】
【図１】  ＡＰＲ−３の電気泳動パターン。
【図２】  ＡＰＲ−３のゲルクマトグラフィーパターン。
【図３】  ＡＰＲ−３のＩＲスペクトル。
【図４】  ＡＰＲ−３の粘度特性。
【図５】  Ｒ−４菌における、サイアミン含有系の培養の経時変化。
【図６】  Ｒ−４菌における、サイアミン非含有系の培養の経時変化。
【図７】  ロードコッカス・エリスロポレスＫＲ−２５６−２（ＦＥＲＭ  Ｐ−３９２３）菌株における、サイアミン含有系の培養の経時変化。
【図８】  本発明のＫＹＭ−８菌、ＡＰＲ−３生産能を有するＫＹＭ各菌及びそれらの混合菌であるＲ−３〜Ｒ−１２菌の活性比較。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
0004300266.tif 000021
【図８】
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