(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
中性アミノ酸トランスポーターであって、中性アミノ酸であるグリシン、アラニン、セリン、システイン、スレオニン、グルタミン、アスパラギン、ロイシン、イソロイシン、バリン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、トリプトファン、ヒスチジンに対する広い基質選択性を有し、アミノ酸輸送活性化因子４Ｆ２ｈｃにより活性化され、配列番号２又は６で示されるアミノ酸配列、又は、配列番号２又は６で示されるアミノ酸配列において１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列からなるタンパク質。
【請求項２】
促通拡散型の中性アミノ酸トランスポーターである請求項１に記載のタンパク質。
【請求項３】
ヒト又はラット由来である請求項１又は２に記載のタンパク質。
【請求項４】
臓器、組織、もしくは培養細胞由来である請求項１〜３のいずれかに記載のタンパク質。
【請求項５】
請求項１〜４のいずれかに記載のタンパク質をコードする遺伝子。
【請求項６】
配列番号１又は５で示される塩基配列、又は、哺乳動物由来であり配列番号１又は５で示される塩基配列からなるＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし得る８０％以上の塩基配列のホモロジーを有する塩基配列からなり、中性アミノ酸であるグリシン、アラニン、セリン、システイン、スレオニン、グルタミン、アスパラギン、ロイシン、イソロイシン、バリン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、トリプトファン、ヒスチジンに対する広い基質選択性を有し、アミノ酸輸送活性化因子４Ｆ２ｈｃにより活性化されるタンパク質をコードする遺伝子。
【請求項７】
ヒト又はラット由来である請求項５又は６に記載の遺伝子。
【請求項８】
臓器、組織、もしくは培養細胞由来である請求項７に記載の遺伝子。
【請求項９】
請求項５〜８のいずれかに記載の遺伝子もしくは該遺伝子の中のタンパク質をコードする遺伝子を含むプラスミド。
【請求項１０】
プラスミドが、発現プラスミドである請求項９に記載のプラスミド。
【請求項１１】
請求項９又は１０に記載のプラスミドで形質転換された宿主細胞。
【請求項１２】
配列番号１又は５で示される塩基配列の中の連続する１４塩基以上の部分配列もしくはその相補的な配列を含み、請求項５〜８のいずれかに記載の遺伝子を検出するためのプローブとして使用するヌクレオチド。
【請求項１３】
配列番号１又は５で示される塩基配列の中の連続する１４塩基以上の部分配列もしくはその相補的な配列を含み、請求項５〜８のいずれかに記載の遺伝子の発現を変調させるために使用するヌクレオチド。
【請求項１４】
請求項１〜４のいずれかに記載するタンパク質に対する抗体。
【請求項１５】
請求項１〜４のいずれかに記載のタンパク質又は当該タンパク質を含有する細胞を用いて、該タンパク質の有する中性アミノ酸及びその類似物質を輸送する能力に対する被検物質の基質としての作用を測定する方法。
【請求項１６】
輸送活性化因子４Ｆ２ｈｃを併用する請求項１５に記載の方法。
【請求項１７】
被検物質が薬物又は毒物若しくは外来性異物である請求項１５又は１６に記載の方法。
【請求項１８】
請求項１５〜１７のいずれかに記載の方法により、腫瘍細胞型中性アミノ酸トランスポーターＬＡＴ１と対比して、請求項１〜４のいずれかに記載の非腫瘍細胞型中性アミノ酸トランスポーターにより細胞に取り込まれ易い又は取り込まれにくい物質をスクリーニングする方法。
【請求項１９】
腫瘍細胞型中性アミノ酸トランスポーターＬＡＴ１には取り込まれ易いが、請求項１〜４のいずれかに記載の非腫瘍細胞型中性アミノ酸トランスポーターＬＡＴ２には取り込まれにくい物質をスクリーニングする請求項１８に記載の方法。
【請求項２０】
脳、胎盤もしくは精巣におけるスクリーニングである請求項１８に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、中性アミノ酸及びその類似物質の輸送に関与する新規な蛋白質、それをコードする遺伝子、及びそれを用いた薬物のその遺伝子がコードするタンパク質に関する。また、本発明は、当該タンパク質を用いて被検物質の細胞内への取り込み又は細胞外への放出についての動態を測定する方法、及び当該方法を用いた被検物質のスクリーニング方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】
細胞は、栄養としてアミノ酸を常時取り込むことを必要するが、この機能は細胞膜に存在する膜タンパク質であるアミノ酸トランスポーターによって担われている。栄養としてアミノ酸を常時取り込むことがアミノ酸トランスポーターの元来の役割であるが、多細胞生物においてはアミノ酸トランスポーターが組織に組み込まれることにより、その組織の形態的特徴を反映した多彩な機能が賦与されている。例えば、上皮組織における上皮輸送と神経組織における放出された神経伝達物質の回収などが知られている。
アミノ酸トランスポーターは、輸送するアミノ酸の種類に応じて、大きく塩基性アミノ酸トランスポーター、酸性アミノ酸トランスポーター、及び中性アミノ酸トランスポーターに分けられる。塩基性アミノ酸は主にＮａ＋非依存性輸送系ｙ＋やｂ０，＋によって、酸性アミノ酸はＮａ＋依存性輸送系Ｘ−Ａ，Ｇによって輸送される。多くのアミノ酸が属する中性アミノ酸では、Ｎａ＋非依存性輸送系Ｌ、Ｎａ＋依存性輸送系Ａ、ＡＳＣ及びＢ０が重要であるとされている。
特に中性アミノ酸輸送系Ｌは、多くの必須アミノ酸の細胞への供給を担当することから、細胞栄養において最も重要な輸送機構のひとつであると同時に、腸管からの吸収、腎尿細管からの再吸収、血液・組織関門の通過においても重要な役割を果たしている。また、中性アミノ酸輸送系Ｌは、基質選択性が広いことから、中性アミノ酸類似物質もしくは中性アミノ酸類似の構造を有する薬物や毒物を輸送することでも知られていた。
【０００３】
中性アミノ酸輸送系Ｌは、もともとは、腫瘍細胞株で始めて記載され、その後、培養細胞、膜小胞標本、摘出臓器標本もしくは生体内（in vivo）標本を用いて検討されてきた［Christensen, Physiol.Rev.,70,43 (1990)］。中性アミノ酸輸送系Ｌは、ナトリウム非依存的な、すなわちその機能にナトリウムイオンを必要としないトランスポーターである。その輸送基質選択性や輸送特性は、細胞や組織により多少の差異があることが知られていた。
【０００４】
しかし、従来の方法では、中性アミノ酸及びその類似物質の輸送の詳細や、細胞の生存もしくは増殖に対する中性アミノ酸輸送系Ｌの役割を解析することは困難であり、中性アミノ酸輸送系Ｌの機能を担う中性アミノ酸トランスポーターの遺伝子を単離して詳細な機能解析を可能とすることが望まれていた。
【０００５】
中性アミノ酸トランスポーターとしては、ナトリウム依存的なトランスポーターとして、ＡＳＣＴ１およびＡＳＣＴ２がクローニングされている［Kanai,Curr.Opin.Cell Biol., 9,565 (1997)］。しかし、これらは、アラニン、セリン、システイン、スレオニン、グルタミンを主な基質とするものであり、中性アミノ酸輸送系Ｌとは基質選択性が異なっている。また、グリシントランスポーターとプロリントランスポーターがクローニングされているが［Amara and Kuhar,Annu.Rev.Neurosci., 16,73 (1993)］、これも中性アミノ酸輸送系Ｌとは異なる。
【０００６】
トランスポーター自体ではないが、アミノ酸トランスポーターの活性化因子であると考えられている膜貫通構造を一回しか持たない二型膜糖タンパク質であるｒＢＡＴ及び４Ｆ２ｈｃ（４Ｆ２ heavy chain（腫瘍細胞や活性化リンパ球の細胞表面抗原として見出された。））のｃＤＮＡがクローニングされており、それらをアフリカツメガエル卵母細胞に発現させると中性アミノ酸とともに塩基性アミノ酸の取り込みを活性化することが知られている［Palacin,J., Exp. Biol., 196,123 (1994)］。
【０００７】
中性アミノ酸輸送系Ｌの一つのアイソフォームとして中性アミノ酸トランスポーターＬＡＴ１がクローニングされた［Kanai, et al.,J.Biol.Chem., 273,23629 (1998)］。ＬＡＴ１は、補助因子４Ｆ２ｈｃと共存することによってのみ機能することが示された。ＬＡＴ１はＮａ＋に依存せず、ロイシン、イソロイシン、バリン、フェニルアラニン、チロシン、トリプトファン、メチオニン、ヒスチジンを輸送する交換輸送活性を示し、以前に腫瘍細胞で記載された輸送系Ｌの活性と類似の機能特性を示す。ＬＡＴ１は培養腫瘍細胞株およびヒト悪性腫瘍組織で高発現する。また、ＬＡＴ１は、グリシン、アラニン、セリン、システイン、スレオニンなどの小型の中性アミノ酸は輸送しない。
【０００８】
さらに、中性アミノ酸トランスポーターＬＡＴ１の類似蛋白質として、中性アミノ酸及び塩基性アミノ酸を輸送する輸送系ｙ＋Ｌの機能を有するｙ＋ＬＡＴ１とｙ＋ＬＡＴ２がクローニングされた［Torrents, et al.,J.Biol.Chem., 273,32437 (1998)］。また、ｙ＋ＬＡＴ１、ｙ＋ＬＡＴ２共に補助因子４Ｆ２ｈｃと共存することによってのみ機能することが示された。ｙ＋ＬＡＴ１とｙ＋ＬＡＴ２は、中性アミノ酸としてはグルタミン、ロイシン、イソロイシンを主に輸送し、中性アミノ酸に対する基質選択性は狭い。
【０００９】
【発明が解決しようとする課題】
本発明の目的は、広い基質選択性を有し、輸送系Ｌの機能を担う、ＬＡＴ１とは異なる中性アミノ酸トランスポーターの遺伝子及びその遺伝子がコードするポリペプチドである中性アミノ酸トランスポーターを提供することにある。その他の目的については、以下の記載より明らかである。
【００１０】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは、ＬＡＴ１のｃＤＮＡの翻訳領域の塩基配列を用いてＥＳＴ（expressed sequence tag）データベースを検索し、ＬＡＴ１と類似の塩基配列を同定した。それに相当するプローブを作製してｃＤＮＡライブラリーをスクリーニングし、新規タンパク質をコードする遺伝子をクローニングした。さらに、この遺伝子の産物をアフリカツメガエルの卵母細胞に発現させて、この遺伝子の産物が機能を発揮するためには４Ｆ２ｈｃが必須であること、及び発現する機能は、中性アミノ酸輸送系Ｌに相当するが、ＬＡＴ１とは異なり広い基質選択性を有することを確認し、新規な中性アミノ酸トランスポーターＬＡＴ２を見出し、本発明を完成するにいたった。
【００１１】
本発明は、中性アミノ酸トランスポーターであって、中性アミノ酸に対する広い基質選択性を有し、アミノ酸輸送活性化因子４Ｆ２ｈｃにより活性化され、かつ非腫瘍性であるタンパク質、好ましくはさらに促通拡散型の中性アミノ酸トランスポーターであるタンパク質に関する。本発明のヒト由来のタンパク質のアミノ酸配列を配列表の配列番号６に示し、ラット由来のタンパク質のアミノ酸配列を配列表の配列番号２に示す。したがって、本発明は、前記した性質を有する配列番号２又は６で示されるアミノ酸配列、又は、配列番号２又は６で示されるアミノ酸配列において１もしくは２個以上のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列からなる前記した性質を有するタンパク質に関する。
【００１２】
本発明は、前記したタンパク質をコードする遺伝子、それを含有するプラスミド、及び、当該プラスミドで形質転換された細胞に関する。本発明は、配列番号１又は５で示される塩基配列の中の連続する１４塩基以上の部分配列もしくはその相補的な配列を含むヌクレオチド、及びその使用に関する。
また、本発明は、前記したタンパク質に対する抗体に関する。
【００１３】
さらに本発明は、前記したタンパク質又は当該タンパク質を含有する細胞を用いて、該タンパク質の有する中性アミノ酸及びその類似物質を輸送する能力に対する被検物質の基質としての作用を測定する方法、及び、それらを用いて被検物質の生体内における中性アミノ酸及びその類似物質を輸送する能力に対する体内動態を測定するための方法に関する。また、本発明は、これらの方法により、中性アミノ酸トランスポーターにより細胞に取り込まれ易い又は取り込まれにくい物質をスリーニングする方法に関する。
【００１４】
本発明の中性アミノ酸を輸送する能力を有する新規タンパク質、すなわち中性アミノ酸トランスポーターＬＡＴ２（L-type amino acid transporter 2）は、アミノ酸輸送活性化因子４Ｆ２ｈｃと共存することにより、グリシン、アラニン、セリン、システイン、スレオニン、グルタミン、アスパラギン、ロイシン、イソロイシン、バリン、メチオニン、フェニルアラニン、チロシン、トリプトファン、ヒスチジンなどの中性アミノ酸を輸送する（取り込む）能力を有する。本発明のＬＡＴ２は、さらにＬ−ＤＯＰＡを受け入れることから、中性アミノ酸類似の構造を持つ薬物を輸送する広い基質選択性を有すると考えられる。
【００１５】
また、本発明の広い基質選択性を有する中性アミノ酸トランスポーターＬＡＴ２は、生体内においては小腸、腎、胎盤、脳、精巣、骨格筋に主に発現している。しかし、ＬＡＴ１の強発現の見られるラットＣ６グリオーマ細胞株には発現は認められない。ＬＡＴ１が腫瘍細胞型の輸送系Ｌ中性アミノ酸トランスポーターであるのに対し、ＬＡＴ２は非腫瘍細胞型の輸送系Ｌ中性アミノ酸トランスポーターである。さらに、アミノ酸及びそれと類似構造を持つ薬物、毒物、外来性異物の、腸管吸収、腎尿細管からの再吸収、血液・脳関門、胎盤関門、精巣関門の通過を担当する輸送系Ｌ中性アミノ酸トランスポーターであると考えられる。
【００１６】
【発明の実施の形態】
後記配列表の配列番号１は、ラット小腸由来の中性アミノ酸トランスポーター（ラットＬＡＴ２）の遺伝子の全長ｃＤＮＡ塩基配列（約４．１ｋｂｐ）を示し、配列番号２にはその翻訳領域にコードされたタンパク質のアミノ酸配列（５３３アミノ酸）を示す。配列番号３は、ラットの４Ｆ２ｈｃのｃＤＮＡの塩基配列（１９４０ｂｐ）を示し、配列番号４はそれによって翻訳される蛋白質（５２７アミノ酸）を示す。
配列番号５はヒト腎由来の中性アミノ酸トランスポーター（ヒトＬＡＴ２）の遺伝子の全長ｃＤＮＡ塩基配列（約４．２ｋｂｐ）を示し、配列番号６にはその翻訳領域にコードされたタンパク質のアミノ酸配列（５３５アミノ酸）を示す。配列番号７は、ヒト胎盤由来の４Ｆ２ｈｃ（ヒト４Ｆ２ｈｃ）の遺伝子の全長ｃＤＮＡ塩基配列（約１．９ｋｂｐ）を示し、配列番号８にはその翻訳領域にコードされたタンパク質のアミノ酸配列（５２４アミノ酸）を示す。
【００１７】
前記配列番号１、２、５及び６に示されるＬＡＴ２の塩基配列もしくはアミノ酸配列について、既知ＤＮＡデータベース（ＧｅｎＢａｎｋおよびＥＭＢＬ）及びプロテインデータベース（ＮＢＲＦ及びＳＷＩＳＳ−ＰＲＯＴ）に含まれるすべての配列に対してホモロジー検索を行った結果、一致するものはなく、これらの配列は、新規なものであると考えられる。
【００１８】
本発明のタンパク質としては、配列番号２又は６で示されたアミノ酸配列を有するもののほか、例えば配列番号２又は６で示されたアミノ酸配列において１もしくは数個のアミノ酸の欠失、置換もしくは付加されたアミノ酸配列を有するタンパク質が挙げられる。アミノ酸の欠失、置換もしくは付加は、中性アミノ酸輸送活性が失われない程度であればよく、通常１〜約１０６個、好ましくは１〜約５３個である。このようなタンパク質は、配列番号２又は６で示されたアミノ酸配列と通常、１〜８０％、好ましくは１〜９０％のアミノ酸配列のホモロジーを有する。
【００１９】
また、本発明の遺伝子としては、配列番号１又は５で示された塩基配列を有するもののほか、配列番号１又は５で示された配列番号１又は５で示された塩基配列からなるＤＮＡとストリンジェントな条件下でハイブリダイズし得るＤＮＡを含むものが挙げられる。このようにハイブリダイズし得るＤＮＡは、そのＤＮＡにコードされるタンパク質が中性アミノ酸を輸送する能力を有するものであればよい。このようなＤＮＡは配列番号１又は５で示された塩基配列と通常、７０％以上、好ましくは８０％以上の塩基配列のホモロジーを有する。このようなＤＮＡとしては、自然界で発見される変異型遺伝子、人為的に改変した変異型遺伝子、異種生物由来の相同遺伝子等が含まれる。
【００２０】
本発明において、ストリンジェントな条件下でのハイブリダイゼーションは、通常、ハイブリダイゼーションを、５×ＳＳＣ又はこれと同等の塩濃度のハイブリダイゼーション溶液中、３７〜４２℃の温度条件下、約１２時間行い、５×ＳＳＣ又はこれと同等の塩濃度の溶液などで必要に応じて予備洗浄を行った後、１×ＳＳＣ又はこれと同等の塩濃度の溶液中で洗浄を行うことにより実施できる。
【００２１】
本発明の中性アミノ酸トランスポーター遺伝子は、適当な哺乳動物の組織や細胞を遺伝子源として用いてスクリーニングを行うことにより単離取得できる。哺乳動物としては、イヌ、ウシ、ウマ、ヤギ、ヒツジ、サル、ブタ、ウサギ、ラット及びマウスなどの非ヒト動物のほか、ヒトが挙げられる。
遺伝子のスクリーニング及び単離は、ホモロジークローニング法などにより好適に実施できる。
【００２２】
例えば、ラット小腸やヒト腎臓を遺伝子源として用い、これからｍＲＮＡ（ポリ（Ａ）＋ＲＮＡ）を調製する。これからｃＤＮＡライブラリーを構築し、ＥＳＴ（expressed sequence tag）データベースの検索によって得られる  ＬＡＴ１類似配列（例えば、ＧｅｎＢａｎｋＴＭ／ＥＢＩ／ＤＤＢＪ  ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．Ｎ３２６３９）に相当するプローブを用いてｃＤＮＡ  ライブラリーをスクリーニングすることによってＬＡＴ２遺伝子のｃＤＮＡを含むクローンを得ることができる。
得られたｃＤＮＡについては、常法により塩基配列を決定し、翻訳領域を解析して、これにコードされるタンパク質、すなわち、ＬＡＴ２のアミノ酸配列を決定することができる。
【００２３】
得られたｃＤＮＡが、中性アミノ酸トランスポーター遺伝子のｃＤＮＡであること、すなわちはｃＤＮＡにコードされた遺伝子産物が中性アミノ酸トランスポーターであることは、例えば次のようにして検証することができる。すなわち、得られたＬＡＴ２遺伝子のｃＤＮＡから調製したこれに相補的なＲＮＡ（ｃＲＮＡ）（キャプ化されたもの）を４Ｆ２ｈｃのｃＲＮＡとともに卵母細胞内に導入して発現させ、中性アミノ酸を細胞内へ輸送する（取り込む）能力を、前記と同様、適当な中性アミノ酸を基質とする通常の取り込み試験［Kanai and Hediger,Nature,360,467-471 (1992)］により、細胞内への基質の取り込みを測定することにより確認できる。
【００２４】
得られたＬＡＴ２遺伝子のｃＤＮＡから調整した、これに相補的なＲＮＡ（ｃＲＮＡ）を用いて、インビトロ翻訳法［Hediger, et al.,Biochim.Biophys.Acta.,1064、360 (1991)］により、ＬＡＴ２  タンパク質を合成し、電気泳動によりタンパク質のサイズ、糖付加の有無等を検討することができる。
【００２５】
４Ｆ２ｈｃの遺伝子のｃＤＮＡはすでに報告されている［Broer、et al.,Biochem.J.,312,863項 (1995)］ので、この配列情報から、ＰＣＲ法などを用いて、容易に４Ｆ２ｈｃの遺伝子を得ることが可能である。得られた４Ｆ２ｈｃのｃＤＮＡから、ｃＲＮＡ（キャプ化されたもの）を合成できる。
【００２６】
また、発現細胞について、同様の取り込み実験を応用して、ＬＡＴ２の特性、例えば、ＬＡＴ２がアミノ酸の促通拡散型の輸送を行っているという特性や、ＬＡＴ２の基質選択性、ｐＨ依存性などを調べることができる。
得られたＬＡＴ２遺伝子のｃＤＮＡを用いて、異なる遺伝子源で作製された適当なｃＤＮＡライブラリー又はゲノミックＤＮＡライブラリーをスクリーニングすることにより、異なる組織、異なる生物由来の相同遺伝子や染色体遺伝子等を単離することができる。
【００２７】
また、開示された本発明の遺伝子の塩基配列（配列番号１又は５に示された塩基配列、もしくはその一部）の情報に基づいて設計された合成プライマーを用い、通常のＰＣＲ（Polymerase Chain Reaction）法によりｃＤＮＡライブラリー又はゲノミックＤＮＡライブラリーから遺伝子を単離することができる。
【００２８】
ｃＤＮＡライブラリー又はゲノミックＤＮＡライブラリー等のＤＮＡライブラリーは、例えば、「Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ｃｌｏｎｉｎｇ」［Sambrook,J.,Fritsh,E.F.及びManitis,T.著、Cold Spring Harbor Pressより１９８９年に発刊］に記載の方法により調製することができる。あるいは、市販のライブラリーがある場合はこれを用いてもよい。
【００２９】
本発明の広い基質選択性を有する中性アミノ酸トランスポーター（ＬＡＴ２）は、例えば、それをコードするｃＤＮＡを用い、遺伝子組換え技術により生産することができる。例えば、ＬＡＴ２をコードするＤＮＡ（ｃＤＮＡ等）を適当な発現ベクターに組み込み、得られた組換えＤＮＡを適当な宿主細胞に導入することができる。ポリペプチド生産するための発現系（宿主−ベクター系）としては、例えば、細菌、酵母、昆虫細胞及び哺乳類細胞の発現系等が挙げられる。このうち、機能タンパクを得るためには、昆虫細胞及び哺乳類細胞を用いることが好ましい。
【００３０】
例えば、ポリペプチドを哺乳類細胞で発現させる場合には、広い基質選択性を有する中性アミノ酸トランスポーターＬＡＴ２をコードするＤＮＡを、適当な発現ベクター（例えば、アデノウイルス系ベクター、レトロウイルス系ベクター、パピローマウイルスベクター、ワクシニアウイルスベクター、ＳＶ４０系ベクター等）中の適当なプロモーター（例えば、サイトメガロウイルスプロモーター、ＳＶ４０プロモーター、ＬＴＲプロモーター、エロンゲーション１ａプロモーター等）の下流に挿入して発現ベクターを構築する。次に、得られた発現ベクターで適当な動物細胞を形質転換し、形質転換体を適当な培地で培養することによって、目的とするポリペプチドが生産される。宿主とする哺乳動物細胞としては、サルＣＯＳ−７細胞、チャイニーズハムスターＣＨＯ細胞、又はヒトＨｅＬａ細胞などの細胞株などが挙げられる。
【００３１】
広い基質選択性を有する中性アミノ酸トランスポーターＬＡＴ２をコードするＤＮＡとしては、例えば、配列番号１又は５で示される塩基配列を有するｃＤＮＡを用いることができるほか、前記のｃＤＮＡ配列に限定されることなく、アミノ酸配列に対応するＤＮＡを設計し、ポリペプチドをコードするＤＮＡとして用いることもできる。この場合、ひとつのアミノ酸をコードするコドンは各々１〜６種類知られており、用いるコドンの選択は任意で良いが、例えば発現に利用する宿主のコドン使用頻度を考慮して、より発現効率の高い配列を設計することができる。設計した塩基配列を持つＤＮＡは、ＤＮＡの化学合成、前記ｃＤＮＡの断片化と結合、塩基配列の一部改変等によって取得できる。人為的な塩基配列の一部改変、変異導入は、所望の改変をコードする合成オリゴヌクレオチドからなるプライマーを利用して部位特異的変異導入法（site specific mutagenesis)[Mark,D.F. et al., Proceedings of National Academy of Sciences U.S.A., 81,5662 (1984)］等によって実施できる。
【００３２】
本発明の広い基質選択性を有する中性アミノ酸トランスポーター又はこれと免疫学的同等性を有するポリペプチドを用いて、その抗体を取得することができる。抗体は、広い基質選択性を有する中性アミノ酸トランスポーターの検出や精製などに利用できる。抗体は、本発明の広い基質選択性を有する中性アミノ酸トランスポーター、その断片、またはその部分配列を有する合成ペプチドなどを抗原として用いて製造できる。ポリクロナール抗体は、宿主動物（例えば、ラットやウサギ等）に抗原を接種し、免疫血清を回収する、通常の方法により製造することができ、モノクロナール抗体は、通常のハイブリドーマ法などの技術により製造できる。
【００３３】
本発明の広い基質選択性を有する中性アミノ酸トランスポーターＬＡＴ２、その遺伝子およびその発現細胞は、ＬＡＴ２により輸送される薬物（例えば、Ｌ−ＤＯＰＡ等）の、細胞膜通過や、ＬＡＴ２が存在すると予想される部位（例えば小腸上皮、腎尿細管上皮、血液・脳関門、胎盤関門もしくは精巣関門など）での透過効率についての、インビトロでの試験に使用できる。また、ＬＡＴ２を発現する細胞膜や、ＬＡＴ２が存在すると予想される部位（例えば小腸上皮、腎尿細管上皮、血液・脳関門、胎盤関門もしくは精巣関門など）を効率良く透過する薬物の開発に使用できる。さらに、ＬＡＴ２を発現する細胞膜や、ＬＡＴ２が存在すると予想される部位（例えば小腸上皮、腎尿細管脳皮、血液・脳関門、胎盤関門もしくは精巣関門など）での薬物間相互作用のインビトロでの試験に使用できる。
【００３４】
本発明の広い基質選択性を有する中性アミノ酸トランスポーターＬＡＴ２、その遺伝子およびその発現細胞は、ＬＡＴ２により輸送される毒物（例えば、メチル水銀のシステイン抱合体等）や外来性異物の、細胞膜通過や、ＬＡＴ２が存在すると予想される部位（例えば小腸上皮、腎尿細管上皮、血液・脳関門、胎盤関門もしくは精巣関門など）での透過効率についての、インビトロでの試験に使用できる。
【００３５】
本発明の広い基質選択性を有する中性アミノ酸トランスポーターＬＡＴ２を抑制することにより、ＬＡＴ２を発現する細胞膜や、ＬＡＴ２が存在すると予想される部位（例えば小腸上皮、腎尿細管上皮、血液・脳関門、胎盤関門もしくは精巣関門など）の毒物（例えば、メチル水銀のシステイン抱合体等）や外来性異物の透過を制限することができる。また、本発明の広い基質選択性を有する中性アミノ酸トランスポーターＬＡＴ２、その遺伝子およびその発現細胞は、ＬＡＴ２により輸送される毒物（例えば、メチル水銀のシステイン抱合体等）や外来性異物の、細胞膜通過や、ＬＡＴ２が存在すると予想される部位（例えば小腸上皮、腎尿細管上皮、血液・脳関門、胎盤関門もしくは精巣関門など）の透過を制限する薬物（ＬＡＴ２の特異的なインヒビター等）の開発に使用できる。
【００３６】
また、本発明の広い基質選択性を有する中性アミノ酸トランスポーターＬＡＴ２は非腫瘍細胞に発現するため、これと腫瘍細胞型中性アミノ酸トランスポーターＬＡＴ１とを用いて、腫瘍細胞の中性アミノ酸トランスポーターを抑制し、かつ非腫瘍細胞の中性アミノ酸トランスポーターは抑制しない薬物を開発することができる。腫瘍細胞型ＬＡＴ１の抑制薬は、腫瘍細胞増殖抑制効果を有するため、非腫瘍細胞ＬＡＴ２を用いることにより、正常細胞に対する作用（副作用）の少ない薬物を開発することができる。
【００３７】
したがって、本発明は、本発明の前記したタンパク質又は当該タンパク質を含有する細胞を用いて、該タンパク質の有する中性アミノ酸及びその類似物質を輸送する能力に対する被検物質の基質としての作用を測定する方法、又は、本発明の前記したタンパク質又は当該タンパク質を含有する細胞を用いて、被検物質の生体内における中性アミノ酸及びその類似物質を輸送する能力に対する体内動態を測定するための方法を提供するものである。本発明の前記したタンパク質を含有する細胞としては、本発明のタンパク質を細胞系に賦与して製造してもよく、また本発明のタンパク質をコードするＤＮＡを含有する遺伝子を用いて形質転換した細胞により製造してもよく、さらに、本発明の前記したタンパク質を含有する生体の細胞を使用することもできる。
【００３８】
さらに、本発明は、前記した方法により、中性アミノ酸トランスポーターにより細胞に取り込まれ易い又は取り込まれにくい物質をスリーニングする方法を提供するものであり、本発明のスクリーニング方法により薬物又は毒物の臓器又は組織に対する特異性をスクリーニングすることができる。
例えば、腫瘍細胞型中性アミノ酸トランスポーターＬＡＴ１との対比を行うことのより、腫瘍細胞に特異的に取り込まれる薬物又は毒物をスクリーニングすることができる。また、血液・脳関門、胎盤関門もしくは精巣関門などの生体内の各種関門に対する特異性をスクリーニングすることができる。
【００３９】
【実施例】
以下、実施例をもって本発明をさらに詳しく説明するが、これらの実施例は本発明を制限するものではない。
【００４０】
なお、下記実施例において、各操作は特に明示がない限り、「Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ｃｌｏｎｉｎｇ」［Sambrook,J.,Fritsh,E.F.及びManitis,T.著、Cold Spring Harbor Pressより１９８９年に発刊］に記載の方法により行うか、または、市販の試薬やキットを用いる場合には市販品の指示書に従って使用した。
【００４１】
実施例１  ラット中性アミノ酸トランスポーターＬＡＴ２のｃＤＮＡのクローニング
（１）ラット４Ｆ２ｈｃのｃＤＮＡの単離とｃＲＮＡの調製
ｃＤＮＡライブラリーはラット肝から精製したポリ（Ａ）＋ＲＮＡから、ｃＤＮＡ合成用キット（商品名：Superscript Choice System、ギブコ社製）を使用して作製し、ファージベクターλＺｉｐＬｏｘ（ギブコ社製）の制限酵素ＥｃｏＲＩ切断部位に組み込んだ。ＰＣＲ法にて、ラット４Ｆ２ｈｃ遺伝子［Broer, et al., Biochem.J., 312, 863 (1995)］の第１３５−５８０番目の塩基に相当するセグメントを増幅し、これを３２Ｐ−ｄＣＴＰでラベルしてプローブとして用いて、ラット肝ｃＤＮＡライブラリーをスクリーニングした。ハイブリダイゼーションは、３７℃のハイブリダイゼーション用溶液中一晩行い、フィルター膜は、３７℃で０．１ｘＳＳＣ／０．１％ＳＤＳで洗浄した。ハイブリダイゼーション用溶液としては、５ｘＳＳＣ、３ｘデンハード液（Ｄｅｎｈａｒｄ’ｓ液）０．２％ＳＤＳ、１０％硫酸デキストラン、５０％ホルムアミド、０．０１％Ａｎｔｉｆｏｒｍ  Ｂ（商品名、シグマ社）（消泡剤）、０．２ｍｇ／ｍｌサーモン精子変性ＤＮＡ、２．５ｍＭピロリン酸ナトリウム、２５ｍＭ  ＭＥＳを含むｐＨ６．５の緩衝液を用いた。ｃＤＮＡを組み込んだλＺｉｐＬｏｘファージのｃＤＮＡ部分を、プラスミドｐＺＬ１に組み込み、さらにプラスミドｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔ  ＩＩ  ＳＫ−（Stratagene社製）へサブクローン化した。
【００４２】
得られたクローンすなわち、ラット４Ｆ２ｈｃのｃＤＮＡを含むクローンについて、塩基配列決定のための合成プライマー、塩基配列決定用キット（商品名：Ｓｅｑｕｅｎａｓｅ  ｖｅｒ．２．０、アマシャム社製）を用いてダイデオキシ法により、ｃＤＮＡの塩基配列を決定した。これにより、クローニングしたｃＤＮＡがラット４Ｆ２ｈｃ遺伝子のものであることが確認できた。得られた４Ｆ２ｈｃの塩基配列を後記配列表の配列番号３に示した。そのアミノ酸配列を配列番号４に示した。
【００４３】
上記より得られたラット４Ｆ２ｈｃのｃＤＮＡを含むプラスミドから、Ｔ７ＲＮＡポリメラーゼを用いて。ｃＲＮＡ（ｃＤＮＡに相補的なＲＮＡ）調製した。
【００４４】
（２）ラット中性アミノ酸トランスポーターＬＡＴ２のｃＤＮＡの単離とｃＲＮＡの調製
ＬＡＴ１の翻訳領域の塩基配列を用いたＥＳＴ（expressed sequence tag）データベースの検索によって得られたＬＡＴ１類似配列  ＧｅｎＢａｎｋＴＭ／ＥＢＩ／ＤＤＢＪ  ａｃｃｅｓｓｉｏｎ  Ｎｏ．Ｎ３２６３９の３５−５４ｂｐに相当するセンスプライマー（5'-ctcttcacatgcatctccac-3'）と、３９７−４１６ｂｐに相当するアンチセンスプライマー（5'-ggtacacgaccacacacatc-3'）、およびＩＭＡＧＥ（Integrated and Molecular Analysis of Genoms and their Expression）ｃＤＮＡ  クローン  Ｎｏ．２６７６６６をテンペレートとして用い、ＤＮＡ断片をＰＣＲ法によって増幅した。得られた  ＤＮＡ断片を３２Ｐ−ｄＣＴＰでラベルしてプローブとして用いて、ラット小腸ｃＤＮＡライブラリーをスクリーニングした。
【００４５】
ｃＤＮＡライブラリーはラット小腸由来ポリ（Ａ）＋ＲＮＡから、ｃＤＮＡ合成用キット（商品名：Superscript Choice System、ギブコ社製）を使用して作製し、ファージベクターλＺｉｐＬｏｘ（ギブコ社製）の制限酵素ＥｃｏＲＩ切断部位に組み込んだ。３２Ｐ−ｄＣＴＰでラベルしてプローブによるハイブリダイゼーションは、３７℃のハイブリダイゼーション用溶液中一晩行い、フィルター膜は、３７℃で０．１×ＳＳＣ／０．１％ＳＤＳで洗浄した。ハイブリダイゼーション用溶液としては、５×ＳＳＣ、３×デンハード液（Ｄｅｎｈａｒｄ’ｓ液）０．２％ＳＤＳ、１０％硫酸デキストラン、５０％ホルムアミド、０．０１％Ａｎｔｉｆｏｒｍ  Ｂ（商品名、シグマ社）（消泡剤）、０．２ｍｇ／ｍｌサーモン精子変性ＤＮＡ、２．５ｍＭピロリン酸ナトリウム、２５ｍＭ  ＭＥＳを含むｐＨ６．５の緩衝液を用いた。ｃＤＮＡを組み込んだλＺｉｐＬｏｘファージのｃＤＮＡ部分を、プラスミドｐＺＬ１に組み込み込んだ。
【００４６】
得られたクローンすなわち、ラットＬＡＴ２のｃＤＮＡを含むクローンについて、塩基配列決定のための合成プライマーを用いてダイターミネーターサイクルシーケンシング法（Applied Biosystems社）により、ｃＤＮＡの塩基配列を決定した。
これにより、ラットＬＡＴ２遺伝子の塩基配列が得られた。また、ｃＤＮＡの塩基配列を常法により解析して、ｃＤＮＡの翻訳領域とそこにコードされるＬＡＴ２のアミノ酸配列を決定した。
これらの配列を、後記配列表の配列番号１に示した。そのアミノ酸配列を配列番号２に示した。
【００４７】
ＬＡＴ２はラットＬＡＴ１と５０％のアミノ酸配列の相同性を有していた。また、中性および塩基性アミノ酸輸送系ｙ＋Ｌに相当するヒトトランスポーターｙ＋ＬＡＴ１と４７％、ｙ＋ＬＡＴ２と４５％の相同性を有していた。これらのアミノ酸配列の比較を図１に示した。
【００４８】
図１は、本発明のラットＬＡＴ２と、公知のラットＬＡＴ１、ヒトｙ＋ＬＡＴ１およびヒトｙ＋ＬＡＴ２のアミノ酸配列の比較を示したものである。
ＳＯＳＵＩアルゴリズム［Hirokawa,T., et al., Bioinformatics, 14, 378 (1998年)］により、ＬＡＴ２のアミノ酸配列を解析した結果、図１に示したように、１２個の膜貫通領域（membrane-spanning domain）が予想された（図１に付線を付した部分。）。また、第２の親水性ループにチロシンリン酸化部位、Ｎ−末端細胞内領域、第８の親水性ループ、およびＣ−末端細胞内領域にプロテインキナーゼＣ依存性のリン酸化部位と考えられる部位があった。
【００４９】
（３）インビトロ翻訳による、ＬＡＴ２タンパク質の解析
インビトロ翻訳法［Hediger, et al., Biochim.Biophys.Acta., 1064, 360 (1991)］により、ＬＡＴ２のｃＲＮＡからＬＡＴ２タンパク質を合成し、電気泳動を行った。
その結果、４９ｋＤａのバンドが得られ、イヌ膵臓ミクロゾーム画分（Ｍｉｃｒｏｓｏｍｅｓ）の存在下で糖付加を受けず、糖鎖分解酵素エンドグリコシダーゼＨ（ＥｎｄｏＨ）によってバンドのサイズは変化しなかった（図２参照）。
したがって、ＬＡＴ２は、糖付加部位を持たないタンパク質であることが示された。
【００５０】
（４）ラットの種々の組織におけるＬＡＴ２遺伝子および４Ｆ２ｈｃ遺伝子の発現（ノーザンブロッティングによる解析）
ＬＡＴ２遺伝子の第１１２６−１５９１番目の塩基に相当するｃＤＮＡ断片を制限酵素ＨｉｎｃＩＩで切り出し、３２Ｐ−ｄＣＴＰでラベルしてプローブとして用いて、ラットの種々の組織及びラット由来の培養腫瘍細胞株Ｃ６グリオーマ細胞から抽出したＲＮＡに対してノーザンブロッティングを以下のようにして行った。３μｇのポリ（Ａ）＋ＲＮＡを１％アガロース／ホルムアルデヒドゲルで電気泳動したのち、ニトロセルロースフィルターにトランスファーした。このフィルターを４２℃で、３２Ｐ−ｄＣＴＰでラベルしたＬＡＴ２ｃＤＮＡ断片を含んだハイブリダイゼーション液で１晩ハイブリダイゼーションを行った。フィルターを、６５℃にて、０．１％ＳＤＳを含む０．１×ＳＳＣで洗浄した。
【００５１】
ノーザンブロッティングの結果（図３のａ）、小腸、腎、胎盤、精巣、脳、骨格筋において４．４  ｋｂ付近にバンドが検出された。ラット腫瘍細胞株Ｃ６グリオーマ細胞では、ＬＡＴ２の発現は検出されなかった。
さらに長時間感光で、肺および大腸において、４．４ｋｂ付近にＬＡＴ２のかすかなバンドが検出された。
【００５２】
４Ｆ２ｈｃ遺伝子の第２１１−６５６番目の塩基に相当するｃＤＮＡ断片をＰＣＲ法で増幅し、３２Ｐ−ｄＣＴＰでラベルしてプローブとして用いて、ラットの種々の組織及びラット由来の培養腫瘍細胞株Ｃ６グリオーマ細胞から抽出したＲＮＡに対してノーザンブロッティングを以下のようにして行った。３μｇのポリ（Ａ）＋ＲＮＡを１％アガロース／ホルムアルデヒドゲルで電気泳動したのち、ニトロセルロースフィルターにトランスファーした。このフィルターを４２℃で、３２Ｐ−ｄＣＴＰ  でラベルした４Ｆ２ｈｃのｃＤＮＡ断片を含んだハイブリダイゼーション液で１晩ハイブリダイゼーションを行った。フィルターを、６５℃にて、０．１％ＳＤＳを含む０．１×ＳＳＣで洗浄した。
【００５３】
ノーザンブロッティングの結果（図３のｂ）、あらゆる臓器に２．２ｋｂ付近にバンドが検出された。特に、腎、小腸、大腸、胎盤、脾臓において強い発現が検出された。
【００５４】
実施例２  中性アミノ酸トランスポーターＬＡＴ２の特徴づけ
（１）ＬＡＴ２の輸送活性における４Ｆ２ｈｃの役割
ラットＬＡＴ２遺伝子ｃＲＮＡを単独で卵母細胞に発現させた場合と、ラットＬＡＴ２遺伝子ｃＲＮＡとラット４Ｆ２ｈｃ遺伝子ｃＲＮＡを共に卵母細胞に発現させた場合のロイシンの取り込みを比較した。
ラットＬＡＴ２遺伝子ｃＲＮＡ  １７ｎｇ、ラット４Ｆ２ｈｃ遺伝子ｃＲＮＡ８ｎｇ、もしくはラットＬＡＴ２遺伝子ｃＲＮＡ１７ｎｇ／ラット４Ｆ２ｈｃ遺伝子ｃＲＮＡ８ｎｇを、卵母細胞に注入することによって発現させ３日間培養した。
【００５５】
ＬＡＴ２遺伝子ｃＲＮＡ、４Ｆ２ｈｃ遺伝子ｃＲＮＡ、もしくはＬＡＴ２遺伝子ｃＲＮＡと４Ｆ２ｈｃ遺伝子ｃＲＮＡを注入した卵母細胞について、基質としてロイシンを用い、基質の取り込み実験を金井らの方法（Kanai and Hediger, Nature, 360, 467-471 (1992)）に準じて以下のように行った。基質として１４Ｃ−ロイシン（５０μＭ）を含むＮａイオンを含まない取り込み用溶液（Ｎａ＋−free uptake solution）［１００ｍＭ塩化コリン、２ｍＭ塩化カリウム、１．８ｍＭ塩化カルシウム、１ｍＭ塩化マグネシウム、５ｍＭ  ＨＥＰＥＳ、ｐＨ７．４］中にて卵母細胞を１５分間放置して、細胞内に取り込まれた放射能のカウントで基質の取り込み率を測定した。
【００５６】
その結果を図４に示す。ロイシンの取り込みは、ＬＡＴ２のみを発現させた卵母細胞では、対照として水を注入した卵母細胞と同レベルであったが、ＬＡＴ２と４Ｆ２ｈｃを共に発現させた卵母細胞では大きなロイシンの取り込みを示しており、ＬＡＴ２が機能を発揮するためには、４Ｆ２ｈｃが必要であると考えられた。
【００５７】
（２）ＬＡＴ２の輸送活性の塩依存性
ラットＬＡＴ２遺伝子ｃＲＮＡと４Ｆ２ｈｃ遺伝子ｃＲＮＡを共に注入した卵母細胞によるロイシン取り込み実験において培地に添加する塩の影響を調べた。
ロイシンの取り込み実験は、ラットＬＡＴ２遺伝子ｃＲＮＡとラット４Ｆ２ｈｃ遺伝子ｃＲＮＡを共に注入した卵母細胞を用い、前記実施例２（１）に記載の方法に準じて実施した。但し、取り込み用溶液は、ナトリウムイオンの影響をみる場合は、Ｎａイオンを含まない取り込み用溶液（Ｎａ＋−free uptake solution）にかえて、標準取り込み用溶液（uptake solution）［１００ｍＭ塩化コリンを１００ｍＭ塩化ナトリウムに変えたもの］を用いた。塩素イオンの影響をみる場合は、標準取り込み用溶液（uptake solution）にかえて、グルコン酸取り込み用溶液（uptake solution）［１００ｍＭ塩化ナトリウムを１００ｍＭグルコン酸ナトリウムに変えたもの］を用いた。
【００５８】
その結果を図５に示す。細胞外のコリンをナトリウムに変えても、細胞外の塩素イオンをグルコン酸イオンに変えても、ロイシン取り込みに何ら影響を与えなかった。このことから、ＬＡＴ２はナトリウムイオン及び塩素イオンに非依存的に働くトランスポーターであることが示された。
【００５９】
（３）ＬＡＴ２のミカエリス−メンテン動力学試験
広い基質選択性を有する中性アミノ酸トランスポーターＬＡＴ２のミカエリス−メンテン動力学試験を行った。基質ロイシンの濃度の違いによるロイシン取り込み率の変化を調べることにより、ＬＡＴ２のミカエリス−メンテン動力学試験を行った。
ロイシンの取り込み実験は、ラットＬＡＴ２遺伝子ｃＲＮＡとラット４Ｆ２ｈｃ遺伝子ｃＲＮＡを共に注入した卵母細胞を用い、前記実施例２（１）記載方法に準じて実施した。その結果を図６に示す。
これに基づいてＫｍ値を算出すると、１１９．７±３３．６μＭ（平均±標準誤差、ｎ＝４）であった。
ロイシン以外のＬＡＴ２の基質となるアミノ酸においても同様にミカエリス−メンテン動力学試験を行い、Ｋｍ値とＶｍａｘ値を算出し、表１に示した。
【００６０】
【表１】
0004326626.tif 000002
表１は、ラットＬＡＴ２遺伝子のｃＲＮＡ及びラット４Ｆ２ｈｃ遺伝子のｃＲＮＡを注入した卵母細胞によるアミノ酸取り込みのＫｍ値とＶｍａｘ値をまとめて示したものである。表１中の各々のＶｍａｘ値は、ロイシンのＶｍａｘ値を１．００とした場合の比率で示されている。
【００６１】
（４）ＬＡＴ２の基質選択性（アミノ酸及びその類似物質添加による阻害実験）
ラットＬＡＴ２遺伝子ｃＲＮＡとラット４Ｆ２ｈｃ遺伝子ｃＲＮＡを共に注入した卵母細胞によるロイシンの取り込み実験において、系への各種アミノ酸及びその類似物質添加の影響を調べた。
ロイシンの取り込み実験は、ラットＬＡＴ２遺伝子ｃＲＮＡとラット４Ｆ２ｈｃ遺伝子ｃＲＮＡを共に注入した卵母細胞を用い、前記実施例２（１）記載方法に準じて実施した。但し、Ｎａイオンを含まない取り込み用溶液（Ｎａ＋−free uptake solution）を用い、５ｍＭの各種化合物（非標識）の存在下及び非存在下で、１４Ｃ−ロイシン（５０μＭ）の取り込みを測定した。
【００６２】
その結果を図７に示す。グリシンおよび各種の中性Ｌ−アミノ酸で、ｃｉｓ−阻害効果が観察された。特に、アラニン、セリン、スレオニン、システイン、アスパラギン、グルタミン、メチオニン、ロイシン、イソロイシン、バリン、フェニルアラニン、チロシン、トリプトファン、ヒスチジンはＬＡＴ２を介した１４Ｃ−ロイシンの取り込みを強く阻害した。
【００６３】
同様な方法により、Ｄ−アミノ酸を検討した。結果を図８に示す。Ｄ−アミノ酸のうち、Ｄ−セリン、Ｄ−システイン、およびＤ−アスパラギンは、ＬＡＴ２を介する１４Ｃ−ロイシンの取り込みを中等度に阻害した。
【００６４】
同様な方法により、アミノ酸類似物質を検討した。結果を図９及び図１０に示す。図９中における、ＢＣＨは２−アミノ−２−ノルボルナン−カルボン酸（2-amino-2-norbornane-carboxylic acid）を示し、ＡＩＢは２−アミノイソ酪酸（2-aminoisobutyric acid）を示し、ＭｅＡＩＢはα−（メチルアミノ）イソ酪酸（α-(methylamino)isobutyric acid）を示す。
標準アミノ酸以外の物質でも、中性アミノ酸取り込み阻害薬として知られていたＢＣＨもＬＡＴ２を介した１４Ｃ−ロイシンの取り込みを阻害した。また、アミノ酸類似薬物であるＬ−ＤＯＰＡ（パーキンソン病治療薬）も、ＬＡＴ２を介した１４Ｃ−ロイシンの取り込みを阻害した（図１０参照）。酸性アミノ酸、塩基性アミノ酸は、ＬＡＴ１を介した１４Ｃ−ロイシンの取り込みに影響を与えなかった（図７参照）。
【００６５】
（５）ＬＡＴ２の基質選択性（各種アミノ酸及びその類似物質を基質とする取り込み試験）
各種アミノ酸及びその類似物質を基質として、ＬＡＴ２による取り込みを調べた。
各種アミノ酸及びその類似物質の取り込み実験は、ラットＬＡＴ２遺伝子ｃＲＮＡとラット４Ｆ２ｈｃ遺伝子ｃＲＮＡを共に注入した卵母細胞を用い、前記実施例２（１）記載方法に準じて実施した。但し、基質としては、１４Ｃ−ロイシンに変えて、放射能ラベルされた各種の化合物を用いた。
【００６６】
その結果を図１１に示す。グリシン（１４Ｃ化合物）、Ｌ−アラニン（１４Ｃ化合物）、Ｌ−セリン（１４Ｃ化合物）、Ｌ−スレオニン（１４Ｃ化合物）、Ｌ−システイン（１４Ｃ化合物）、Ｌ−アスパラギン（１４Ｃ化合物）、Ｌ−グルタミン（１４Ｃ化合物）、Ｌ−メチオニン（１４Ｃ化合物）、Ｌ−ロイシン（１４Ｃ化合物）、Ｌ−イソロイシン（１４Ｃ化合物）、Ｌ−バリン（１４Ｃ化合物）、Ｌ−フェニルアラニン（１４Ｃ化合物）、Ｌ−チロシン（１４Ｃ化合物）、Ｌ−トリプトファン（１４Ｃ化合物）、Ｌ−ヒスチジン（１４Ｃ化合物）を基質とした場合に、卵母細胞への取り込みが認められた。
Ｌ−アスパラギン酸（１４Ｃ化合物）、Ｌ−グルタミン酸（１４Ｃ化合物）、Ｌ−リジン（１４Ｃ化合物）、Ｌ−アルギニン（１４Ｃ化合物）、Ｌ−プロリン（１４Ｃ化合物）、Ｌ−シスチン（１４Ｃ化合物）、Ｄ−ロイシン（１４Ｃ化合物）、Ｄ−フェニルアラニン（１４Ｃ化合物）、Ｄ−セリン（１４Ｃ化合物）に関しては、有意な取り込みは認められなかった。
【００６７】
（６）ＬＡＴ２の輸送活性のｐＨ依存性
ラットＬＡＴ２遺伝子ｃＲＮＡと４Ｆ２ｈｃ遺伝子ｃＲＮＡを共に注入した卵母細胞によるロイシン取り込み実験においてｐＨの影響を調べた。
ロイシンの取り込み実験は、ラットＬＡＴ２遺伝子ｃＲＮＡとラット４Ｆ２ｈｃ遺伝子ｃＲＮＡを共に注入した卵母細胞を用い、前記実施例２（１）に記載の方法に準じて実施した。
その結果を図１２に示す。ｐＨ６．２５においてロイシン取り込みが最大となり、ＬＡＴ２の機能はｐＨに依存することが明らかとなった。図１２中における＊印は、有意差（ｐ＜０．０５）があることを示す。
【００６８】
さらに、ｐＨ６．２５とｐＨ７．５においてロイシン取り込みの濃度依存性を比較した。結果を図１３に示す。図１３中の●はｐＨ７．５の場合における、また▲はｐＨ６．２５の場合におけるロイシン取り込みの濃度依存性を示す。
ｐＨを下げることにより、Ｖｍａｘは変化せずＫｍが低下する（ｐＨ７．５におけるＫｍは９６．６μＭ、Ｖｍａｘは６．７ｐｍｏｌ／ｏｏｃｙｔｅ／ｍｉｎであり、ｐＨ６．２５におけるＫｍは５７．２μＭ、Ｖｍａｘは７．０ｐｍｏｌ／ｏｏｃｙｔｅ／ｍｉｎ）、すなわち親和性が増加すことによりロイシン取り込みが増加することが明らかとなった。
【００６９】
（７）ＬＡＴ２を介するアミノ酸の放出試験
ラットＬＡＴ２遺伝子ｃＲＮＡと４Ｆ２ｈｃ遺伝子ｃＲＮＡを共に注入した卵母細胞において、前負荷した１４Ｃ−ロイシンのＬＡＴ２を介する放出を調べた。
ラットＬＡＴ２遺伝子ｃＲＮＡと４Ｆ２ｈｃ遺伝子ｃＲＮＡを共に注入した卵母細胞を１５０μＭの１４Ｃ−ロイシンを含むＮａイオンを含まない取り込み用溶液（Ｎａ＋−free uptake solution）中に３０分間放置することにより１４Ｃ−ロイシンを取り込ませ、氷冷のロイシンを含まないＮａイオンを含まない取り込み用溶液（Ｎａ＋−free uptake solution）で洗浄した後、室温（１８℃〜２２℃）のロイシン（１００μＭあるいは１ｍＭ）添加あるいは未添加のＮａイオンを含まない取り込み用溶液（Ｎａ＋−free uptake solution）に移し、細胞外に放出される１４Ｃ−ロイシンの量を測定した。また、ラットＬＡＴ１遺伝子ｃＲＮＡ  と４Ｆ２ｈｃ遺伝子ｃＲＮＡを共に注入した卵母細胞［Kanai, et al., J. Biol.Chem., 273, 23629 (1998)］を２０μＭの１４Ｃ−ロイシンを含むＮａイオンを含まない取り込み用溶液（Ｎａ＋−free uptake solution）中に３０分間放置することにより１４Ｃ−ロイシンを取り込ませ、氷冷のロイシンを含まないＮａイオンを含まない取り込み用溶液（Ｎａ＋−free uptake solution）で洗浄した後、室温（１８℃〜２２℃）のロイシン（１００μＭ）添加あるいは未添加のＮａイオンを含まない取り込み用溶液（Ｎａ＋−free uptake solution）に移し、細胞外に放出される１４Ｃ−ロイシンの量を測定した。
【００７０】
その結果を図１４（ＬＡＴ２の場合）及び図１５（ＬＡＴ１の場合）に示す。図１４の◯印はＮａイオンを含まない取り込み用溶液（Ｎａ＋−free uptake solution）へのロイシン未添加の場合を、▲印はロイシン１００μＭ添加の場合を、■印はロイシン１ｍＭ添加の場合を示す。図１５の◯印はロイシン未添加の場合を、▲印はロイシン１００μＭ添加の場合を示す。
交換輸送型トランスポーターであるＬＡＴ１においては細胞外にロイシンを添加した場合のみロイシンの放出が観察されたが（図１５参照）、ＬＡＴ２においては細胞外にロイシンを添加するしないにかかわらずロイシンの放出が生じることが明らかになり、ＬＡＴ２は促通拡散型のトランスポーターであることが示された（図１４参照）。
【００７１】
実施例３  広い基質選択性を有する中性アミノ酸トランスポーターのヒトｃＤＮＡのクローニング及び機能の確認
（１）ヒトＬＡＴ２のｃＤＮＡの単離とｃＲＮＡの調製
ｃＤＮＡライブラリーはヒト腎由来ポリ（Ａ）＋ＲＮＡ（クロンテック社から購入）から、ｃＤＮＡ合成用キット（商品名：Superscript Choice System、ギブコ社製）を使用して作製し、ファージベクターλＺｉｐＬｏｘ（ギブコ社製）の制限酵素ＥｃｏＲＩ切断部位に組み込んだ。実施例１（２）で使用したプローブを用いて、ヒト腎ｃＤＮＡライブラリーをスクリーニングした。ハイブリダイゼーションは、３７℃のハイブリダイゼーション用溶液中一晩行い、フィルター膜は、３７℃で０．１×ＳＳＣ／０．１％ＳＤＳで洗浄した。ハイブリダイゼーション用溶液としては、５×ＳＳＣ、３×デンハード液（Ｄｅｎｈａｒｄ’ｓ液）０．２％ＳＤＳ、１０％硫酸デキストラン、５０％ホルムアミド、０．０１％Ａｎｔｉｆｏｒｍ  Ｂ（商品名、シグマ社）（消泡剤）、０．２ｍｇ／ｍｌサーモン精子変性ＤＮＡ、２．５ｍＭピロリン酸ナトリウム、２５ｍＭ  ＭＥＳを含むｐＨ６．５の緩衝液を用いた。ｃＤＮＡを組み込んだλＺｉｐＬｏｘファージのｃＤＮＡ部分を、プラスミドｐＺＬ１に組み込んだ。
【００７２】
得られたクローンすなわち、ヒトＬＡＴ２のｃＤＮＡを含むクローンについて、塩基配列決定のための合成プライマーを用いてダイターミネーターサイクルシーケンシング法（Applied Biosystems社）により、ｃＤＮＡの塩基配列を決定した。
得られたヒトＬＡＴ２の塩基配列を後記配列表の配列番号５に、そのアミノ酸配列を配列番号６にそれぞれ示した。
上記より得られたヒトＬＡＴ２のｃＤＮＡを含むプラスミドから、ＳＰ６  ＲＮＡポリメラーゼを用いて、ｃＲＮＡ（ｃＤＮＡに相補的なＲＮＡ）を調製した。
【００７３】
（２）ヒト４Ｆ２ｈｃのｃＤＮＡの単離とｃＲＮＡの調製
ｃＤＮＡライブラリーはヒト胎盤由来ポリ（Ａ）＋ＲＮＡ（Clontech社から購入）から、ｃＤＮＡ合成用キット（商品名：Superscript Choice System、ギブコ社製）を使用して作成し、ファージベクターλＺｉｐＬｏｘ（ギブコ社製）の制限酵素ＥｃｏＲＩ切断部位に組み込んだ。ＰＣＲ法にて、ラット４Ｆ２ｈｃ遺伝子［Broer, et al., Biochem. J., 312, 863 (1995)］の第１３５−５８０番目の塩基に相当するセグメントを増幅し、これを３２Ｐ−ｄＣＴＰでラベルしてプローブとして用いて、ヒト胎盤ｃＤＮＡライブラリーをスクリーニングした。ハイブリダイゼーションは、３７℃のハイブリダイゼーション用溶液中一晩行い、フィルター膜は、３７℃で０．１×ＳＳＣ／０．１％ＳＤＳで洗浄した。ハイブリダイゼーション用溶液としては、５×ＳＳＣ、３ｘデンハード液（Ｄｅｎｈａｒｄ’ｓ液）０．２％ＳＤＳ、１０％硫酸デキストラン、５０％ホルムアミド、０．０１％Ａｎｔｉｆｏｒｍ  Ｂ（商品名、シグマ社）（消泡剤）、０．２ｍｇ／ｍｌサーモン精子変性ＤＮＡ、２．５ｍＭピロリン酸ナトリウム、２５ｍＭＭＥＳを含むｐＨ６．５の緩衝液を用いた。ｃＤＮＡを組み込んだλＺｉｐＬｏｘファージのｃＤＮＡ部分を、プラスミドｐＺＬ１に組み換えた。
【００７４】
得られたクローンすなわち、ヒト４Ｆ２ｈｃのｃＤＮＡを含むクローンについて、塩基配列決定のための合成プライマーを用いてダイターミネーターサイクルシーケンシング法（Applied Biosystems社）により、ｃＤＮＡの塩基配列を決定した。これにより、クローニングしたｃＤＮＡがヒト４Ｆ２ｈｃ遺伝子のものであることが確認できた。
得られたヒト４Ｆ２ｈｃの塩基配列を後記配列表の配列番号７に、アミノ酸配列を配列番号８にそれぞれ示した。
上記より得られたヒト４Ｆ２ｈｃのｃＤＮＡを含むプラスミドから、Ｔ７ＲＮＡポリメラーゼを用いてｃＲＮＡ（ｃＤＮＡに相補的なＲＮＡ）を調製した。
【００７５】
（３）ヒトＬＡＴ２の機能の確認
ヒトＬＡＴ２遺伝子ｃＲＮＡを単独で卵母細胞に発現させた場合と、ヒトＬＡＴ２遺伝子ｃＲＮＡとヒト４Ｆ２ｈｃ遺伝子ｃＲＮＡを共に卵母細胞に発現させた場合のロイシンの取り込みを比較した。
ヒトＬＡＴ２遺伝子ｃＲＮＡ  １７ｎｇ、ヒト４Ｆ２ｈｃ遺伝子ｃＲＮＡ  ８ｎｇ、もしくはヒトＬＡＴ２遺伝子ｃＲＮＡ  １７ｎｇ／ヒト４Ｆ２ｈｃ遺伝子ｃＲＮＡ  ８ｎｇを、卵母細胞に注入することによって発現させ３日間培養した。
ＬＡＴ２遺伝子ｃＲＮＡ、４Ｆ２ｈｃ遺伝子ｃＲＮＡ、もしくはＬＡＴ２遺伝子ｃＲＮＡと４Ｆ２ｈｃ遺伝子ｃＲＮＡを注入した卵母細胞について、基質としてロイシンを用い、基質の取り込み実験を実施例２（１）に準じて行った。
【００７６】
その結果、ロイシンの取り込みは、ラットと同様、ＬＡＴ２のみを発現させた卵母細胞では、対照として水を注入した卵母細胞と同レベルであったが、ＬＡＴ２と４Ｆ２ｈｃを共に発現させた卵母細胞では大きなロイシンの取り込みが観察された。よって、ヒトＬＡＴ２もラットＬＡＴ２と同様、４Ｆ２ｈｃと共存することにより始めて機能を発揮することが示された。
【００７７】
【発明の効果】
本発明の広い基質選択性を有する中性アミノ酸トランスポーターＬＡＴ２およびその遺伝子は、薬物や毒物の細胞膜通過や血液・組織関門通過のインビトロでの解析など、薬物動態や毒物動態の分子レベルでの解明、および細胞膜や血液・組織関門を効率良く透過する薬物や、毒物の透過を抑制する薬物の開発に有用と考えられる。さらに、腫瘍細胞型トランスポーターでＬＡＴ１の抑制薬に細胞増殖抑制効果があることから、ＬＡＴ１を抑制し、非腫瘍細胞型トランスポーターＬＡＴ２を抑制しない化合物を見い出すことにより、副作用の少ない抗腫瘍薬を開発し得ると考えられる。
【配列表】
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【図面の簡単な説明】
【図１】図１は、ラットＬＡＴ２とラットＬＡＴ１、ヒトｙ＋ＬＡＴ１およびヒトｙ＋ＬＡＴ２のアミノ酸配列の比較を示す。ラットＬＡＴ２の予想される膜貫通部位を付線で示している。
【図２】図２は、ラットＬＡＴ２  のインビトロ翻訳の結果を示す図面に代わる写真である。左側は分子量を示す。Ｍｉｃｒｏｓｏｍｅｓは、イヌ膵臓ミクロゾーム画分であり、ＥｎｄｏＨは糖鎖分解酵素エンドグリコシダーゼＨであり、＋は存在を−は非存在を示す。
【図３】図３は、ラットの各臓器組織におけるＬＡＴ２遺伝子ｍＲＮＡの発現（ａ）および４Ｆ２ｈｃ遺伝子ｍＲＮＡの発現（ｂ）をノーザンブロッティングにより解析した結果を示した図面に代わる写真である。
【図４】図４は、ラットＬＡＴ２遺伝子のｃＲＮＡ及び／又はラット４Ｆ２ｈｃ遺伝子のｃＲＮＡを注入した卵母細胞によるロイシン取り込み実験の結果を示す。
【図５】図５は、ラットＬＡＴ２遺伝子のｃＲＮＡ及びラット４Ｆ２ｈｃ遺伝子のｃＲＮＡを注入した卵母細胞によるロイシン取り込み実験において添加する塩の影響を調べた結果を示す。
【図６】図６は、ラットＬＡＴ２遺伝子のｃＲＮＡ及びラット４Ｆ２ｈｃ遺伝子のｃＲＮＡを注入した卵母細胞によるロイシン取り込み実験において基質ロイシンの濃度の影響を調べた結果を示す。
【図７】図７は、ラットＬＡＴ２遺伝子のｃＲＮＡ及びラット４Ｆ２ｈｃ遺伝子のｃＲＮＡを注入した卵母細胞によるロイシン取り込み実験において、系へのグリシンおよびＬ−アミノ酸添加の影響を調べた結果を示す。
【図８】図８は、ラットＬＡＴ２遺伝子のｃＲＮＡ及びラット４Ｆ２ｈｃ遺伝子のｃＲＮＡを注入した卵母細胞によるロイシン取り込み実験において、系への各種Ｄ−アミノ酸添加の影響を調べた結果を示す。
【図９】図９は、ラットＬＡＴ２遺伝子のｃＲＮＡ及びラット４Ｆ２ｈｃ遺伝子のｃＲＮＡを注入した卵母細胞によるロイシン取り込み実験において、系へのアミノ酸類似化合物添加の影響を調べた結果を示す。
【図１０】図１０は、ラットＬＡＴ２遺伝子のｃＲＮＡ及びラット４Ｆ２ｈｃ遺伝子のｃＲＮＡを注入した卵母細胞によるロイシン取り込み実験において、系へのＬ−ＤＯＰＡの影響を調べた結果を示す。
【図１１】図１１は、ラットＬＡＴ２遺伝子のｃＲＮＡ及びラット４Ｆ２ｈｃ遺伝子のｃＲＮＡを注入した卵母細胞による放射能標識アミノ酸の取り込みを調べた結果を示す。
【図１２】図１２は、ラットＬＡＴ２遺伝子のｃＲＮＡ及びラット４Ｆ２ｈｃ遺伝子のｃＲＮＡを注入した卵母細胞によるロイシン取り込み実験においてｐＨの影響を調べた結果を示す。
【図１３】図１３は、ｐＨ７．５（●印）とｐＨ６．２５（▲印）におけるロイシン取り込みの濃度依存性を比較した結果を示す。
【図１４】図１４は、ラットＬＡＴ２遺伝子のｃＲＮＡ及びラット４Ｆ２ｈｃ遺伝子のｃＲＮＡを注入した卵母細胞による１４Ｃ−ロイシンの放出を調べた結果を示す。◯印はＮａイオンを含まない取り込み用溶液（Ｎａ＋−free uptake solution）へのロイシン未添加の場合を、▲印はロイシン１００μＭ添加の場合を、■印はロイシン１ｍＭ添加の場合を示す。
【図１５】図１５は、ラットＬＡＴ１遺伝子のｃＲＮＡ及びラット４Ｆ２ｈｃ遺伝子のｃＲＮＡを注入した卵母細胞による１４Ｃ−ロイシンの放出を調べた結果を示す。◯印はロイシン未添加の場合を、▲印はロイシン１００μＭ添加の場合を示す。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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