(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
ラクトバチルス・プランタラム（Lactobacillus plantarum）TY-1571株（NITE P-89）若しくはTY-1572株（NITE P-90）またはペディオコッカス・ペントサス(Pediococcus pentosaceus) TY-1573株（NITE P-91）を培養して得られる培養物、該培養物から集菌された菌体または該菌体の溶媒抽出物を有効成分とする、過酸化水素と、クメンヒドロペルオキシドまたはｔ−ブチルヒドロペルオキシドのうち少なくとも一つと、リノール酸ヒドロペルオキシドに対する分解特性を示す抗酸化剤。
【請求項２】
請求項１記載の抗酸化剤を含有する飲食品。
【請求項３】
請求項１記載の抗酸化剤を含有する飼料。
【請求項４】
請求項１記載の抗酸化剤を含有する化粧品。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、乳酸菌を培養して得られる培養物、該培養物から集菌された菌体または該菌体の溶媒抽出物を有効成分とする抗酸化剤に関する。
【背景技術】
【０００２】
生体内酸化を防止または低減する抗酸化剤や該抗酸化剤を含有する抗酸化食品は、生体内酸化が原因と目される疾患の予防・治療につながると考えられ、機能性食品あるいは健康食品として注目されている。
【０００３】
従来から、天然の抗酸化食品が数多く提案されており、例えば、緑色植物の緑葉から抽出した抗酸化活性画分を配合した飲食品類（特開平１１−１２３０７１号公報）、ヤマモモ科ヤマモモ属植物から炭素数１〜５までの脂肪族アルコール系有機溶媒および／またはその他の有機溶媒の１種以上を用いて抽出した抗酸化剤（特開平５−１５６２４９号公報）、オリーブ植物溶媒抽出物の加水分解物を有効成分とする抗酸化剤（特開平９−７８０６１号公報）等が報告されている。これら天然の抗酸化剤の原料は植物由来が多い。
【０００４】
また、植物由来の抗酸化物質のほかにも、乳酸菌の抽出物に抗酸化効果が見出されている（特開平４−２６４０３４号公報、特開平５−２７６９１２号公報、特開２００３−２５３２６２号公報）。
【０００５】
【特許文献１】特開平１１−１２３０７１号公報
【特許文献２】特開平５−１５６２４９号公報
【特許文献３】特開平９−７８０６１号公報
【特許文献４】特開平４−２６４０３４号公報
【特許文献５】特開平５−２７６９１２号公報
【特許文献６】特開２００３−２５３２６２号公報
【発明の開示】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
しかしながら、これらの乳酸菌の抽出物は、活性酸素やフリーラジカルにより発生した過酸化物や過酸化脂質のうちいずれか一つを低減もしくは消去する効果を確認したことをもって抗酸化剤として適用可能であることを示しているにすぎない。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
そこで、本発明者らは、種々の発酵食品を入手し、該発酵食品から乳酸菌を分離して過酸化物に対する分解特性について鋭意検討したところ、ラクトバチルス属（Lactobacillus）に属する乳酸菌およびペディオコッカス属(Pediococcus)に属する乳酸菌が広範囲の過酸化物に対して分解特性を示すことを見出し、本発明を完成した。
【０００８】
すなわち、本発明の要旨は以下のとおりである。
〔１〕  ラクトバチルス・プランタラム（Lactobacillus plantarum）TY-1571株（NITE P-89）若しくはTY-1572株（NITE P-90）またはペディオコッカス・ペントサス(Pediococcus pentosaceus) TY-1573株（NITE P-91）を培養して得られる培養物、該培養物から集菌された菌体または該菌体の溶媒抽出物を有効成分とする、過酸化水素と、クメンヒドロペルオキシドまたはｔ−ブチルヒドロペルオキシドのうち少なくとも一つと、リノール酸ヒドロペルオキシドに対する分解特性を示す抗酸化剤、
〔２〕  〔１〕記載の抗酸化剤を含有する飲食品、
〔３〕  〔１〕記載の抗酸化剤を含有する飼料、
〔４〕  〔１〕記載の抗酸化剤を含有する化粧品。
【発明の効果】
【０００９】
本発明によれば、広範囲の過酸化物に対して分解特性を示す乳酸菌由来の培養物、菌体または溶媒抽出物を有効成分とする抗酸化剤を提供することができる。また、前記抗酸化剤を飲食品、化粧品または飼料に含有させることにより、該飲食品などの酸化による品質低下を効果的に防止することが期待できる。
【発明を実施するための最良の形態】
【００１０】
以下、本発明について詳細に説明する。本発明の抗酸化剤は、ラクトバチルス・プランタラム（Lactobacillus plantarum）に属する乳酸菌またはペディオコッカス属(Pediococcus)に属する乳酸菌を培養して得られる培養物、該培養物から集菌された菌体または該菌体の溶媒抽出物を有効成分とするものである。
【００１１】
本発明の抗酸化剤の製造に用いられる乳酸菌はラクトバチルス・プランタラム（Lactobacillus plantarum）に属する乳酸菌またはペディオコッカス属(Pediococcus)に属する乳酸菌であって、広範囲の過酸化物に対して分解特性を示すものをいい、さらに好ましくは前記過酸化物分解特性に加えてヒドロキシルラジカルに対する消去作用を示すものをいう。なお、ペディオコッカス属(Pediococcus)に属する乳酸菌の菌種は、前記過酸化物分解特性を示す限り特に限定されず、例えば、ペディオコッカス・ペントサス(Pediococcus pentosaceus)、ペディオコッカス・アシディラクティシ（Pediococcus acidilactici）、ペディオコッカス・セレビシェ（Pediococcus cerevisiae）、ペディオコッカス・セレビシェ・バー・デキストリニカス（Pediococcus cerevisiae var. dextrinicus）、ペディオコッカス・クラウセニ（Pediococcus claussenii）、ペディオコッカス・ダムノサス（Pediococcus damnosus）、ペディオコッカス・デキストリニカス（Pediococcus dextrinicus）、ペディオコッカス・ハロフィラス（Pediococcus halophilus）、ペディオコッカス・オマリ（Pediococcus homari）、ペディオコッカス・イノピタナス（Pediococcus inopinatus）、ペディオコッカス・パルバラス（Pediococcus parvulus）、ペディオコッカス・サブスピーシーズ・インテルメディウス（Pediococcus pentosaceus subsp. intermedius）、ペディオコッカス・ソヤ（Pediococcus soya）、ペディオコッカス・ソヤエ（Pediococcus soyae）、ペディオコッカス・エスピー（Pediococcus sp.）、ペディオコッカス・ウリナエッキー（Pediococcus urinaeequi）が挙げられる。
【００１２】
本発明において「過酸化物」とは、親水性の高い過酸化物から親水性の低い（すなわち、疎水性の高い）過酸化物全般を意味し、具体的には、３種類の過酸化物、すなわち、過酸化水素、有機過酸化物および過酸化脂質を包含したものをいう。有機過酸化物としては、例えば、クメンヒドロペルオキシドやｔ−ブチルヒドロペルオキシドなどが挙げられる。また、過酸化脂質としては、不飽和脂肪酸の過酸化物であるリノール酸ヒドロペルオキシドやアラキドン酸ヒドロペルオキシドなどが挙げられる。そして、「広範囲の過酸化物に対して分解特性を示す」とは、上述した過酸化水素、有機過酸化物および過酸化脂質のうち、少なくとも、過酸化水素と、クメンヒドロペルオキシドまたはｔ−ブチルヒドロペルオキシドのうちいずれか一つと、リノール酸ヒドロペルオキシドに対して分解特性を示すことをいう。
【００１３】
広範囲の過酸化物に対して分解特性を示す乳酸菌は次のようにしてスクリーニングすることができる。すなわち、まず、各種発酵食品を分離源とし、該分離源を固形培地で培養して乳酸菌を単離し、該単離した乳酸菌を液体培地で培養して得られる培養物から菌体を回収し、次いで該菌体を含有する菌体懸濁液を被検液として、該被検液が、少なくとも、過酸化水素と、クメンヒドロペルオキシドまたはｔ−ブチルヒドロペルオキシドのうち少なくとも一つと、リノール酸ヒドロペルオキシドに対する分解特性を有するか否か調べることによりスクリーニングすることができる。
【００１４】
本発明において「発酵食品」とは、一般的に乳酸菌が含まれている動物性および植物性の発酵食品をいい、代表的な発酵食品を例示すれば、例えば、散麹、豆麹、餅麹、麹漬、味噌漬け、糠漬、野沢菜漬、すんき漬、ベッタラ漬、味噌、醤油、酒粕、納豆、米酢、バルサミコ酢、リンゴ酢、キムチ、腐乳、ナンプラー、とうふよう、ワイン粕、酒粕、ヨーグルト、ベジマイト、クワス、クミス、ギビヤック、ピクルス、クミス、サワークラウト等が挙げられる。そして、培養に際して、前記発酵食品を破砕し、例えば生理食塩水で希釈した食品懸濁液とすることが好ましい。
【００１５】
「固形培地」としては、乳酸菌の培養に通常用いられる培地であればよく、代表的なものを例示すれば、例えば、酵母エキスペプトン培地、ブドウ糖培地、フェネチルアルコール培地、アセテート培地、ＧＹＰ培地、ＭＲＳ培地、ＴＩＴＧ培地、ＳＬ培地、システイン・ミルク培地、ＬＢＳ培地、ＴＡＴＡＣ培地、ＭＧ培地、食塩18％-硝酸カリ培地、麹汁培地、ＢＣＰ培地、チオグリコレイト培地、稀釈ブドウ果汁培地、ＥＳＹ培地、吉栖氏培地、耐塩性乳酸菌用培地、耐塩性乳酸菌用醤油培地、上野培地、飯塚・山里培地、ＴＹＧ培地、ラクチック培地、Ｍ17培地、Lactic streptococciの分別培地、クエン酸を発酵するLactic streptococciの分別培地、PPYL培地、YPG培地、酸性トマト培地、Mayeux&ColmerのLeuconostoc検出培地、浜本らのLeuconostoc検出培地、Pearce&HaliganのLeuconostoc計測培地、APT培地、Briggsのトマトジュース培地、Rogosa培地、NAP培地等に、固形化剤として0.5〜2.0％の寒天を添加したものが挙げられる。また、培地上に乳酸菌を選択的に増殖させるため、好気性菌の発育を阻害する物質（例えば、アジ化ナトリウム）、グラム陰性菌の発育を阻害する物質（例えば、ポリミキシンＢ）、真菌の発育を阻害する物質（例えば、シクロヘキシミド）などを適宜組み合わせて前記固形培地に含有させてもよい。また、「液体培地」としては、乳酸菌の培養に通常用いられる培地であればよく、代表的なものを例示すれば、例えば、酵母エキスペプトン培地、ブドウ糖培地、フェネチルアルコール培地、アセテート培地、ＧＹＰ培地、ＭＲＳ培地、ＴＩＴＧ培地、ＳＬ培地、システイン・ミルク培地、ＬＢＳ培地、ＴＡＴＡＣ培地、ＭＧ培地、食塩18％-硝酸カリ培地、麹汁培地、ＢＣＰ培地、チオグリコレイト培地、稀釈ブドウ果汁培地、ＥＳＹ培地、吉栖氏培地、耐塩性乳酸菌用培地、耐塩性乳酸菌用醤油培地、上野培地、飯塚・山里培地、ＴＹＧ培地、ラクチック培地、Ｍ17培地、Lactic streptococciの分別培地、クエン酸を発酵するLactic streptococciの分別培地、PPYL培地、YPG培地、酸性トマト培地、Mayeux&ColmerのLeuconostoc検出培地、浜本らのLeuconostoc検出培地、Pearce&HaliganのLeuconostoc計測培地、APT培地、Briggsのトマトジュース培地、Rogosa培地、NAP培地等が挙げられる。
【００１６】
乳酸菌の培養は、常法にしたがって行えばよく、例えば、３０〜３７℃、１５〜２４時間の条件で好気的培養、静置培養または中和培養などを行えばよい。
【００１７】
培養終了後、乳酸菌のコロニーを１コロニーずつ単離し、常法にしたがって純化することが好ましい。そして、前記単離した乳酸菌株を常法にしたがって培養し、得られた培養物を遠心分離して菌体を回収し、該菌体に緩衝液を加えてOD660nm＝1.5〜1.7に濃度調節した菌体懸濁液を調製し、該菌体懸濁液が、少なくとも、過酸化水素と、クメンヒドロペルオキシドまたはｔ−ブチルヒドロペルオキシドのうち少なくとも一つと、リノール酸ヒドロペルオキシドに対する分解特性を示すか否か調べ、前記すべての過酸化物に対して分解特性を示す乳酸菌株を本発明の目的に適した乳酸菌とする。
【００１８】
過酸化物に対する分解特性は、前記菌体懸濁液に過酸化物（終濃度1.0〜3.0mM）および糖類（例えば、グルコース）（終濃度30〜100mM）をそれぞれ添加して、３７℃で３時間反応させ、反応終了後の反応液を遠心分離し、上清に含まれる過酸化物残量を測定することにより評価される。なお、前記糖類は、乳酸菌株の代謝によるエネルギーを供与するために添加するものである。本発明において、過酸化物残量の測定は、過酸化水素についてはSedewitzらの方法が適用され（Sedewitz et al.,Journal of Bacteriology,160,Oct.273-278. 1984）、有機過酸化物および過酸化脂質については、ヘモグロビン存在下における有機過酸化物（過酸化脂質）とメチレンブルー誘導体の等モル呈色反応を利用した八木別法が適用される。
【００１９】
本発明に適した乳酸菌株は、上述した過酸化物分解特性を示すものであるが、さらに好ましくは、該過酸化物分解特性に加えてヒドロキシルラジカルに対する消去活性を示すものである。ヒドロキシルラジカルに対する消去活性の判定には、ヒドロキシルラジカルとデオキシリボースの反応に由来するマロンジアルデヒド（ＭＤＡ）様物質をチオバルビツール酸と反応させて生成する赤色縮合物を比色定量するB. Halliwelらのデオキシリボース法が適用される（Analytical Biochemistry，Vol.165,pp.215-219 (1987)、Biochem Journal Vol.243,No.3;pp.709-714）。
【００２０】
以上のようにして分離した乳酸菌株の過酸化物分解特性などを評価した結果、過酸化物分解特性およびヒドロキシルラジカル消去活性を示すものとして、乳酸菌TY-1571株、乳酸菌TY-1572株および乳酸菌TY-1573株を選択することができた。そして、菌学的性質および遺伝学的特性の結果から、乳酸菌TY-1571株と乳酸菌TY-1572株は、それぞれラクトバチルス・プランタラム（Lactobacillus plantarum）と、乳酸菌TY-1573株は、ペディオコッカス・ペントサス(Pediococcus pentosaceus)と同定された。なお、これらの菌株は、下記の受託番号により独立行政法人製品評価技術基盤機構特許微生物寄託センターに寄託されている。
【００２１】
ラクトバチルス・プランタラム（Lactobacillus plantarum）TY1571（NITE P-89）
ラクトバチルス・プランタラム（Lactobacillus plantarum）TY1572（NITE P-90）
ペディオコッカス・ペントサス（Pediococcus pentosaceus）TY1573（NITE P-91）
【００２２】
本発明の抗酸化剤は、上述した乳酸菌株を培養して得られる培養物、該培養物を遠心分離して上清を除去して集菌された菌体、または該菌体の溶媒抽出物を有効成分とする。該菌体および溶媒抽出物は、必要に応じて常法にしたがい、凍結乾燥、噴霧乾燥などを行ってもよい。溶媒抽出物は、水またはメタノール、エタノール、アセトン、アセトニトリルなどの水系有機溶媒を用いて前記菌体を懸濁させて抽出を行い、次いで遠心分離やろ過などの処理をして菌体残渣を除去することにより調製される。さらに、前記培養物、菌体、溶媒抽出物は、そのままで用いてもよいが、過酸化物分解特性をさらに高めたい場合、グルコース等の糖類を配合してもよい。
【００２３】
上述のようにして得られた抗酸化剤の有効成分は、そのままで、若しくは食品成分とともに経口摂取するようにしたり、あるいはそのままで、若しくは化粧品成分とともに皮膚へ塗布するようにして用いることができる。該有効成分を食品成分または化粧品成分（以下、「食品成分等」という）とともに用いるにあたっては、前記有効成分を食品成分等に配合して飲食品、飼料または化粧品として用いてもよいし、前記有効成分を飲食品等の使用の前後若しくは使用と同時に用いてもよい。
【実施例】
【００２４】
以下に実施例を示して本発明を詳細に説明するが、本発明は当該実施例に限定されるものではない。
【００２５】
・  乳酸菌のスクリーニング
1.1  食品懸濁液の調製
乳酸菌の分離源として、散麹、豆麹、餅麹、麹漬、味噌漬け、糠漬、野沢菜漬、すんき漬、ベッタラ漬、味噌、醤油、酒粕、納豆、米酢、バルサミコ酢、リンゴ酢、キムチ、腐乳、ナンプラー、とうふよう、ワイン粕、酒粕、ヨーグルト、ベジマイト、クワス、クミス、ギビヤック、ピクルス、クミス、サワークラウト、果実、野菜、海藻、魚類を入手し、前記食品をそれぞれ破砕した後、生理食塩水で希釈して食品懸濁液とした。
【００２６】
1.2  スクリーニング
ＧＹＰ培地（１％ グルコース，１％ 酵母エキス，0.5％ ペプトン，0.2％ 酢酸ナトリウム・3H20，20ppm MgSO4・7H20，1ppm MnSO4・4H20，1ppm FeSO4・7H20，1ppm NaCl，50ppm Tween80）にアジ化ナトリウム（終濃度30ppm）、ポリミキシンＢ（終濃度30ppm）およびシクロヘキシミド（終濃度30ppm）を含む選択寒天培地に前記1.1で調製した食品懸濁液をそれぞれ添加し、３０℃で１６時間静置培養した。培養終了後、前記1.1に記載の分離源から調製した食品懸濁液添加試料からコロニーが生育していることが確認され、１コロニーずつ単離した。そして、得られた乳酸菌株のコロニーをＧＹＰ寒天培地上に植菌して常法にしたがい純化した。そして、上記食品群から分離した乳酸菌株をTY-1571株、TY-1572株、TY-1573株と命名した。
【００２７】
・  乳酸菌の菌学的性質
前記1.2で分離した３種類の乳酸菌株（TY-1571株、TY-1573株、TY-1573株）の菌学的性質を、乳酸菌実験マニュアル（小崎道雄監修、内村泰、岡田早苗著、朝倉書店）にしたがって検討した。結果を表１〜表３に示す。
【００２８】
【表１】
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【００２９】
【表２】
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【００３０】
【表３】
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【００３１】
３．乳酸菌の遺伝学的特性
前記1.2で分離した３種類の乳酸菌株（TY-1571株、TY-1573株、TY-1573株）について、常法にしたがい16S rDNAの塩基配列を決定し、BLASTプログラムおよびClustal Wプログラムを使用して、既存の乳酸菌のうちどの菌種の配列に最も近いか検索した。その結果、
乳酸菌TY-1571株と乳酸菌TY-1572株の16S rDNAの塩基配列がラクトバチルス・プランタラム（Lactobacillus plantarum）の16S rDNAの塩基配列と100％一致し、乳酸菌TY-1573株の16S rDNAの塩基配列がペディオコッカス・ペントサス(Pediococcus pentosaceus)の16S rDNAの塩基配列と100％一致した。以上の結果から、乳酸菌TY-1571株と乳酸菌TY-1572株はそれぞれラクトバチルス・プランタラム（Lactobacillus plantarum）と同定され、乳酸菌TY-1573株はペディオコッカス・ペントサス(Pediococcus pentosaceus)と同定された。
【００３２】
４．乳酸菌の過酸化物分解特性
前記３．で同定されたTY-1571株、TY-1572株およびTY-1573株の各菌体懸濁液に過酸化水素、有機過酸化物または過酸化脂質を添加し、所定時間経過後の反応液中に残存する過酸化水素等の残量を測定して、過酸化水素等に対する分解特性を調べた。
【００３３】
4.1  菌体懸濁液の調製
TY-1571株、TY-1572株およびTY1573株の各菌株をそれぞれＧＹＰ培地に接種して３７℃で約２４時間静置培養した。培養終了後、培養物を8,000rpmで１０分間遠心分離し、上清を除去することにより菌体を集菌した。次いで、集菌した菌体をリン酸緩衝液に懸濁し、OD660nm＝1.6に濃度調節したものを菌体懸濁液とした。
【００３４】
4.2  過酸化水素に対する分解特性
前記4.1で調製した菌体懸濁液に過酸化水素（終濃度3.0mM）とグルコース（終濃度50mM）をそれぞれ加え、水平震盪機にて３７℃で３時間反応させた。反応終了後、卓上遠心機にて反応液を遠心処理し、上清に含まれる未反応の過酸化水素を測定した。
【００３５】
過酸化水素の濃度測定には、Sedewitzらの方法を用いた（Sedewitz et al.,Journal of Bacteriology,160,Oct.273-278. 1984）。具体的には、まず、前記反応液（上清部分）を50μl、４-アミノアンチピリン（濃度24.4mg/20ml）を400μl、3,5-ジクロロベンゼンスルホン酸（濃度111.4mg/20ml）を400μlそれぞれ混合し、該混合液に西洋ワサビ由来ペルオキシダーゼを4μl（500unit）添加し、３０℃で１５分間反応させた。反応終了後、得られた被検液の546nmにおける吸光度を測定し、該被検液中に含まれる過酸化水素の濃度を求めた。そして、得られたデータに基づいて過酸化水素の分解量を算出した。結果を図１に示す。図１より、３種類の乳酸菌株は全て過酸化水素分解特性を有し、特にTY-1571株とTY-1573株の分解特性が大きいことが確認された。
【００３６】
4.3  有機過酸化物に対する分解特性
前記4.1で調製した菌体懸濁液にクメンヒドロペルオキシド（終濃度3.0mM）またはｔ−ブチルヒドロペルオキシド（終濃度3.0mM）（以下、これらの物質を特に区別しない場合、「有機過酸化物」という）とグルコース（終濃度50mM）をそれぞれ加え、水平震盪機にて３７℃で３時間反応させた。反応終了後、卓上遠心機にて反応液を遠心処理し、上清に含まれる未反応の有機過酸化物を測定した。
【００３７】
有機過酸化物の濃度測定には、ヘモグロビン存在下における有機過酸化物とメチレンブルー誘導体の等モル呈色反応を利用した八木別法を用いた。実際の測定は、デタミナーＬＰＯ（協和メデックス社）を使用して、使用マニュアルに記載の反応条件に準じて呈色反応を行った。具体的には、アスコルビン酸オキシダーゼを緩衝液に溶解した前処理液 1,000μlを試験管に分注し、次いでヘモグロビンと10-N-メチルカルバモイル-3,7-ジメチルアミノ-10H-フェノチアジン（MCDP）を緩衝液に溶解した発色液 2,000μlを分注した。そして、前記反応液（上清部分）を100μl前記試験管に分注して３０℃で１０分間反応させた。反応終了後、得られた被検液の675nmにおける吸光度を測定し、該被検液中に含まれる有機過酸化物の濃度を求めた。そして、得られたデータに基づいて有機過酸化物の分解量を算出した。結果を図２に示す。図２より、３種類の乳酸菌株は全てクメンヒドロペルオキシドとｔ−ブチルヒドロペルオキシドに対する分解特性を有し、さらに、相対的にクメンヒドロペルオキシドに対する分解特性の方が大きいことが確認された。
【００３８】
4.4  過酸化脂質に対する分解特性
前記4.3で使用した有機過酸化物に代えてリノール酸由来の過酸化脂質を実験に供した。過酸化脂質は、リノール酸溶液にリポキシゲナーゼを加えて湯浴中（３０℃）で約５分間、酸素を吹き込みながら激しく撹拌して得られたものを使用した。なお、過酸化脂質の確認には薄層クロマトグラフィーを用いた（参考文献：過酸化脂質実験法、金田尚志、植田伸夫編集、医歯薬出版株式会社、Agric.Biol.Chem. 45,P587−593,1981、汎用衛生試験法と解説、日本薬学会編、南山堂、P33、脂質分析法入門、藤野安彦、学会出版センター、P100）。実験に際しては、得られた過酸化脂質(リノール酸ヒドロペルオキシド)を乳化分散させて、過酸化脂質水溶液としたものを使用した。
【００３９】
前記4.1で調製した菌体懸濁液に上述した過酸化脂質水溶液（終濃度1mM）とグルコース（終濃度50mM）をそれぞれ加え、水平震盪機にて３７℃で３時間反応させた。反応終了後、卓上遠心機にて反応液を遠心分離し、上清に含まれる未反応の過酸化脂質を測定した。過酸化脂質の測定方法は前記4.3と同様に行った。結果を図３に示す。図３より、３種類の乳酸菌株は全てリノール酸ヒドロペルオキシドに対する分解特性を有し、特に、TY-1572株の分解能力が高いことが確認された。
【００４０】
５．ヒドロキシルラジカルに対する消去作用
まず、100mM デオキシリボース、100mM Fe2+-EDTA溶液、1％ 2-チオバルビツール酸/水酸化ナトリウム溶液および 2.8％ トリクロロ酢酸溶液をそれぞれ調製し、前記4.2で述べたように、前記4.1で調製した菌体懸濁液に過酸化水素（終濃度3.0mM）とグルコース（終濃度50mM）をそれぞれ加え、続いて前記デオキシリボースを(終濃度100mM)添加した。次いで、この被検液 50μlを 1.5mlのエッペンチューブに入れ、Fe2+-EDTAを50μl添加して３７℃で１時間反応させた。反応終了後、得られた反応液にチオバルビツール酸とトリクロロ酢酸をそれぞれ 500μlずつ添加して湯浴煮沸した。湯浴煮沸後において３種類の乳酸菌株由来の被検液はいずれも黄色を呈した。これに対し、前記菌体懸濁液を添加しない点を除いて同様の試薬を添加した対照サンプルは、湯浴煮沸後において赤色を呈した。このことから、３種類の乳酸菌株はいずれもヒドロキシルラジカルの消去作用を有することが確認された。
【００４１】
６．抗酸化剤の用途
6.1  抗酸化乳酸菌液の製造例
水97.5重量部、ブドウ糖1重量部、大豆ペプチド0.5重量部および酵母エキス1重量部から構成される培地にTY-1571株を接種して、３０℃で１６時間静置培養し、培養後の培養物を抗酸化乳酸菌液とした。この抗酸化乳酸菌液には、果汁、野菜汁、豆乳、乳製品、穀類などを配合することも可能である。
【００４２】
6.2  乳性飲料の製造例
水82.35重量部、ペクチン0.3重量部、砂糖10.5重量部、発酵乳5重量部、脱脂粉乳0.5重量部、抗酸化乳酸菌液1.305重量部、乳酸0.04重量部および香料0.005重量部を混合して乳性飲料を得た。なお、抗酸化乳酸菌液は前記6.1で製造したものを使用した。
【００４３】
6.3  化粧水の製造例
水70.99重量部、グリセリン5重量部、可溶化剤5重量部、界面活性剤1重量部、エタノール15.0重量部、抗酸化乳酸菌液3重量部、防腐剤0.005重量部および香料0.005重量部を混合して化粧水を製造した。なお、抗酸化乳酸菌液は前記6.1で製造したものを使用した。
【図面の簡単な説明】
【００４４】
【図１】過酸化水素の分解量を示した図である。
【図２】有機過酸化物の分解量を示した図である。
【図３】過酸化脂質の分解量を示した図である。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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