(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
下記（Ａ）〜（Ｅ）から選択されるタンパク質を有効成分とし、ＵＤＰ−ＧａｌをＵＤＰ−Ｇｌｃに変換する能力を有する触媒：
（Ａ）配列番号２におけるアミノ酸番号２６〜３４１で示されるアミノ酸配列を含むタンパク質。
（Ｂ）上記（Ａ）のアミノ酸配列における１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は転位したアミノ酸配列を含み、かつ、ＵＤＰ−ＧａｌをＵＤＰ−Ｇｌｃに変換する活性を有するタンパク質。
（Ｃ）配列番号２におけるアミノ酸番号２６〜３４１で示されるアミノ酸配列からなるタンパク質。
（Ｄ）上記（Ａ）〜（Ｃ）に記載のタンパク質と他のペプチドとの融合タンパク質。
（Ｅ）配列番号２におけるアミノ酸番号１〜３４１で示されるアミノ酸配列からなるタンパク質。
【請求項２】
下記（Ａ）〜（Ｅ）から選択されるタンパク質を、Ｇａｌヌクレオチドに接触させる工程を少なくとも含む、Ｇｌｃヌクレオチドの生産方法：
（Ａ）配列番号２におけるアミノ酸番号２６〜３４１で示されるアミノ酸配列を含むタンパク質。
（Ｂ）上記（Ａ）のアミノ酸配列における１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は転位したアミノ酸配列を含み、かつ、ＵＤＰ−ＧａｌをＵＤＰ−Ｇｌｃに変換する活性を有するタンパク質。
（Ｃ）配列番号２におけるアミノ酸番号２６〜３４１で示されるアミノ酸配列からなるタンパク質。
（Ｄ）上記（Ａ）〜（Ｃ）に記載のタンパク質と他のペプチドとの融合タンパク質。
（Ｅ）配列番号２におけるアミノ酸番号１〜３４１で示されるアミノ酸配列からなるタンパク質。
【請求項３】
「ヌクレオチド」がＵＤＰ又はｄＴＤＰであることを特徴とする、請求項２に記載の生産方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、新規なGlcヌクレオチドの生産方法等に関する。
【０００２】
【従来の技術】
まず、本明細書中で共通して用いる略号について説明する。
【０００３】
ＡＤＰ：アデノシン 5'-二リン酸
ＤＭＡＢ：ｐ−ジメチルアミノベンズアルデヒド(p-dimetylaminobenzaldehyde)
ｄＴＤＰ：デオキシチミジン5'-二リン酸
ＥＤＴＡ：エチレンジアミン四酢酸
Ｇａｌ：ガラクトース
ＧａｌＮＡｃ：Ｎ−アセチルガラクトサミン
Ｇｌｃ：グルコース
ＧｌｃＮＡｃ：Ｎ−アセチルグルコサミン
ＩＰＴＧ：イソプロピル 1-チオ-β-D-ガラクトシド（isopropyl 1-thio-β-D-Galactoside）
ＮＡＤ＋：ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド
ＵＤＰ：ウリジン5'-二リン酸
非特許文献１には、バチルス・サブチリス（Bacillus subtilis）のytcB遺伝子の全ヌクレオチド配列が開示されている。
【０００４】
【非特許文献１】
クンスト，Ｆ．（Kunst,F.） ら、“Z99119  バチルス・サブチリス 全体のゲノム（セクション21中の16）（Bacillus subtilis complete genome (section 16 of 21)”、Z99119、[online]、平成９年１１月２６日、ＮＣＢＩ、[平成１５年３月３日検索]、インターネット＜http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?cmd=Retrieve&db=nucleotide&list_uids=2635411&dopt=GenBank＞
しかしytcB遺伝子の発現産物であるYtcBが、UDP-GlcとUDP-Galとを相互に変換する活性を有すること、及び、YtcBが有するこの活性は、UDP-GlcをUDP-Galに変換する活性よりも、UDP-GalをUDP-Glcに変換する活性の方がより高いことについては、開示も示唆もない。
【０００５】
【発明が解決しようとする課題】
本発明は、YtcBやその融合タンパク質、YtcBを有効成分とする触媒、YtcBを用いるGlcヌクレオチドの生産方法等を提供することを課題とする。
【０００６】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意検討を行った結果、YtcBやその融合タンパク質、YtcBを有効成分とする触媒、YtcBを用いるGlcヌクレオチドの生産方法等を提供するに至った。
【０００７】
すなわち本発明は、下記（Ａ）又は（Ｂ）のタンパク質（以下「本発明タンパク質」という）を提供する。
（Ａ）配列番号２におけるアミノ酸番号２６〜３４１で示されるアミノ酸配列を含むタンパク質。
（Ｂ）上記（Ａ）のアミノ酸配列における１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は転位したアミノ酸配列を含み、かつ、UDP-GalをUDP-Glcに変換する活性を有するタンパク質。
【０００８】
本発明タンパク質は、配列番号２におけるアミノ酸番号２６〜３４１で示されるアミノ酸配列からなることが好ましい。
【０００９】
また本発明は、本発明タンパク質と他のペプチドとの融合タンパク質（以下「本発明融合タンパク質」という）を提供する。本発明融合タンパク質は、配列番号２におけるアミノ酸番号１〜３４１で示されるアミノ酸配列からなることが好ましい。
【００１０】
また本発明は、本発明タンパク質又は本発明融合タンパク質を有効成分とし、UDP-GalをUDP-Glcに変換する能力を有する触媒（以下「本発明触媒」という）を提供する。
【００１１】
また本発明は、本発明タンパク質、本発明融合タンパク質又は本発明触媒を、Galヌクレオチドに接触させる工程を少なくとも含む、Glcヌクレオチドの生産方法（以下「本発明生産方法」という）を提供する。
【００１２】
本発明生産方法における「ヌクレオチド」は、UDP又はdTDPであることが好ましい。
【００１３】
【発明の実施の形態】
以下、本発明を、発明の実施の形態によって詳説する。
本発明タンパク質
本発明タンパク質は、下記（Ａ）又は（Ｂ）のタンパク質である。
（Ａ）配列番号２におけるアミノ酸番号２６〜３４１で示されるアミノ酸配列を含むタンパク質。
（Ｂ）上記（Ａ）のアミノ酸配列における１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は転位したアミノ酸配列を含み、かつ、UDP-GalをUDP-Glcに変換する活性を有するタンパク質。
【００１４】
なお、天然に存在するタンパク質には、それをコードするＤＮＡの多型や変異の他、生成後のタンパク質の細胞内及び精製中の修飾反応などによってそのアミノ酸配列中にアミノ酸の置換、欠失、挿入又は転位等の変異が起こりうるが、それにもかかわらず変異を有しないタンパク質と実質的に同等の生理、生物学的活性を示すものがあることが知られている。このように（Ａ）のタンパク質に対して構造的に若干の差違があってもその機能については大きな違いが認められない（Ｂ）のタンパク質も、本発明タンパク質に包含される。人為的にタンパク質のアミノ酸配列に上記のような変異を導入した場合も同様であり、この場合にはさらに多種多様の変異体を作製することが可能である。例えば、ヒトインターロイキン２（IL-2）のアミノ酸配列中の、あるシステイン残基をセリンに置換したポリペプチドがインターロイキン２活性を保持することが知られている(Science,224,1431(1984))。また、ある種のタンパク質は、活性には必須でないペプチド領域を有していることが知られている。例えば、細胞外に分泌されるタンパク質に存在するシグナルペプチドや、プロテアーゼの前駆体等に見られるプロ配列などがこれにあたり、これらの領域のほとんどは翻訳後、又は活性型タンパク質への転換に際して除去される。このようなタンパク質は、一次構造上は異なった形で存在しているが、最終的には（Ａ）のタンパク質と同等の機能を有するタンパク質である。上記の（Ｂ）のタンパク質は、このようなタンパク質を規定するものである。
【００１５】
本明細書において「数個のアミノ酸」とは、UDP-GalをUDP-Glcに変換する活性が失われない程度の変異を起こしてもよいアミノ酸の数を示し、例えば６００アミノ酸残基からなるタンパク質の場合、２〜３０程度、好ましくは２〜１５、より好ましくは２〜８以下の数を示す。
【００１６】
（Ｂ）のタンパク質は、UDP-GalをUDP-Glcに変換する活性を有する必要がある。
【００１７】
このような活性を有するか否かは、UDP-Galを基質として、目的のタンパク質を作用させることにより、UDP-Glcが産生されるか否かを検出することによって判定できる。例えば、後述の実施例に示すようなＤＭＡＢアッセイや、ＨＰＬＣによる解析、キャピラリー電気泳動による解析等によって調べることができる。
【００１８】
このような方法によって、UDP-GalをUDP-Glcに変換する活性を保持しているアミノ酸の欠失、置換、挿入又は転位を有する変異体を容易に選択することができる。
【００１９】
本発明タンパク質は、なかでも配列番号２におけるアミノ酸番号２６〜３４１で示されるアミノ酸配列からなることが好ましい。
【００２０】
本発明タンパク質の製造方法は特に限定されず、天然物から上記（Ａ）又は（Ｂ）のタンパク質を単離してもよく、化学合成等によって上記（Ａ）又は（Ｂ）のタンパク質を製造してもよく、遺伝子工学的手法によって上記（Ａ）又は（Ｂ）のタンパク質を製造してもよい。遺伝子工学的手法によって本発明タンパク質を製造する具体的方法については、後述する「本発明融合タンパク質」の説明を参照されたい。
＜２＞本発明融合タンパク質
本発明融合タンパク質は、本発明タンパク質と他のペプチドとの融合タンパク質である。
【００２１】
本明細書における「他のペプチド」という用語は、「ポリペプチド」を含む概念として用いる。
【００２２】
本発明融合タンパク質としては、本発明タンパク質とマーカーペプチドとの融合タンパク質等が例示される。このような本発明融合タンパク質は、精製又は分析を容易にすることができるというメリットがある。上記マーカーペプチドとしては例えばプロテインＡ、インスリンシグナル配列、His、FLAG、CBP（カルモジュリン結合タンパク質）、GST（グルタチオン Ｓ−トランスフェラーゼ）などが挙げられる。例えばプロテインＡとの融合タンパク質は、ＩｇＧを結合させた固相を用いたアフィニティークロマトグラフィーによって簡便に精製することができる。同様に、Hisタグとの融合タンパク質については磁性ニッケルを結合させた固相を用いることができ、FLAGとの融合タンパク質については抗FLAG抗体を結合させた固相を用いることができる。またインスリンシグナルとの融合タンパク質は、細胞外（培地等）に分泌されることから、細胞破砕等の抽出操作が不要となる。
【００２３】
ここで好ましいのは、配列番号４のアミノ酸配列で示されるペプチド（Hisタグ）との融合タンパク質である。このＨｉｓタグは、配列番号２におけるアミノ酸番号２６〜３４１で示されるアミノ酸配列の直前に融合させることが好ましい。すなわち本発明融合タンパク質は、配列番号２におけるアミノ酸番号１〜３４１で示されるアミノ酸配列からなることが好ましい。
【００２４】
この融合タンパク質は、後述の実施例に示す通り、配列番号３のヌクレオチド配列を、配列番号１の第７６番目のヌクレオチドの直前の位置に連続して結合させたＤＮＡを発現させることによって製造することができる。
【００２５】
本発明融合タンパク質（本発明タンパク質）は、以下の通り製造することができる。
【００２６】
まず、本発明タンパク質のうち、前記（Ａ）のタンパク質（配列番号２におけるアミノ酸番号２６〜３４１で示されるアミノ酸配列を含むタンパク質）をコードするＤＮＡ（以下「ＤＮＡ（ａ）」という）を用意する。このＤＮＡは、配列番号２におけるアミノ酸番号２６〜３４１で示されるアミノ酸配列を含むタンパク質をコードするものである限りにおいて特に限定されない。このようなＤＮＡとしては、遺伝暗号の縮重によって種々の異なったヌクレオチド配列を有するＤＮＡが存在するが、配列番号１におけるヌクレオチド番号７６〜１０３２で示されるヌクレオチド配列によって特定されるＤＮＡが好ましい。このＤＮＡは、GenBank accession No. Z99119として登録されている。
【００２７】
また、本発明タンパク質のうち、前記（Ｂ）のタンパク質をコードするＤＮＡ（以下「ＤＮＡ（ｂ）」という）についても、前記（Ａ）のアミノ酸配列における１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入又は転位したアミノ酸配列を含み、かつ、ＵＤＰ−Ｇａｌ をＵＤＰ−Ｇｌｃに変換する活性を有するタンパク質をコードするものである限りにおいて特に限定されない。
【００２９】
上記ＤＮＡ（ａ）又はＤＮＡ（ｂ）のいずれかを保持するＤＮＡを用いたタンパク質の発現は、当該ＤＮＡが保持されたベクター（好ましくは発現ベクター）を用いて行うことが好ましい。ＤＮＡのベクターへの組込みは、通常の方法によって行うことができる。
【００３０】
ＤＮＡを導入するベクターとしては、例えば、導入したＤＮＡを発現させることができる適当な発現ベクター（ファージベクター或いはプラスミドベクター等）を使用することができ、本発明ベクターを組込む宿主細胞に応じて適宜選択できる。このような宿主−ベクター系としては、大腸菌（E. coli）と、pET15b（Novagen社製）、pTrcHis（インビトロゲン社製）、pGEX（ファルマシア  バイオテック社製）、pTrc99（ファルマシア  バイオテック社製）、pKK233-3（ファルマシア  バイオテック社製）、pEZZZ18（ファルマシア  バイオテック社製）、pCH110（ファルマシア  バイオテック社製）、pBAD（インビトロゲン社製）、pRSET（インビトロゲン社製）又はpSE420（インビトロゲン社製）等の原核細胞用の発現ベクターとの組み合わせ、COS細胞や3LL-HK46細胞などの哺乳類細胞と、pGIR201（Kitagawa, H., and Paulson, J. C. (1994) J. Biol. Chem. 269, 1394-1401）、pEF-BOS（Mizushima, S., and Nagata, S. (1990) Nucleic Acid Res. 18, 5322）、pCXN2(Niwa, H., Yamanura, K. and Miyazaki, J. (1991) Gene 108, 193-200)、pCMV-2（イーストマン  コダック(Eastman Kodak)製）、pCEV18、pME18S（丸山ら,Med. Immunol., 20, 27(1990)）又はpSVL（ファルマシア  バイオテック社製）等の哺乳類細胞用発現ベクターの組み合わせのほか、宿主細胞として昆虫細胞、酵母、枯草菌などが例示され、これらに対応する各種ベクターが例示される。上述の宿主−ベクター系の中でも特に原核細胞（特に大腸菌細胞）とpET15bとの組み合わせが好ましい。
【００３１】
ＤＮＡを組込むベクターは、目的とするタンパク質とマーカーペプチドとの融合タンパク質を発現するように構築されたものを用いることができる。ＤＮＡからのタンパク質の発現及び発現されたタンパク質の採取も、通常の方法に従って行うことができる。
【００３２】
例えば、目的とするＤＮＡが組み込まれた発現ベクターを適当な宿主に導入することによって宿主を形質転換し、この形質転換体を生育させ、その生育物から発現されたタンパク質を採取することによって行うことができる。
【００３３】
ここで「生育」とは、形質転換体である細胞や微生物自体の増殖や、形質転換体である細胞を組み込んだ動物・昆虫等の生育を含む概念である。また、ここでいう「生育物」とは、形質転換体を生育させた後の培地（培養液の上清）及び培養された宿主細胞・分泌物・排出物等を包含する概念である。生育の条件（培地や培養条件等）は、用いる宿主に合わせて適宜選択できる。
【００３４】
生育物からのタンパク質の採取も、タンパク質の公知の抽出・精製方法によって行うことができる。
【００３５】
例えば目的とするタンパク質が、培地（培養液の上清）中に分泌される可溶性の形態で産生される場合には、培地を採取し、これをそのまま用いてもよい。また目的とするタンパク質が細胞質中に分泌される可溶性の形態、又は不溶性（膜結合性）の形態で産生される場合には、窒素キャビテーション装置を用いる方法、ホモジナイズ、ガラスビーズミル法、音波処理、浸透ショック法、凍結融解法等の細胞破砕による抽出、界面活性剤抽出、又はこれらの組み合わせ等の処理操作によって目的とするタンパク質を抽出することができ、その抽出物をそのまま用いてもよい。
【００３６】
これらの培地や抽出物から、タンパク質をさらに精製することもできる。精製は、不完全な精製（部分精製）であっても、完全な精製であってもよく、目的とするタンパク質の使用目的等に応じて適宜選択することができる。
【００３７】
精製方法として具体的には、例えば硫酸アンモニウム（硫安）や硫酸ナトリウム等による塩析、遠心分離、透析、限外濾過法、吸着クロマトグラフィー、イオン交換クロマトグラフィー、疎水性クロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィー、ゲルろ過法、ゲル浸透クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、電気泳動法等や、これらの組み合わせ等の処理操作が挙げられる。
【００３８】
目的とするタンパク質が製造されたか否かは、アミノ酸配列、作用、基質特異性等を分析することによって確認することができる。
＜３＞本発明触媒
本発明触媒は、本発明タンパク質又は本発明融合タンパク質を有効成分とし、UDP-GalをUDP-Glcに変換する能力を有する触媒である。本発明触媒は、本発明タンパク質及び本発明融合タンパク質の少なくとも一方を含有していればよい。すなわち本発明触媒としては、本発明タンパク質又は本発明融合タンパク質自体をそのまま本発明触媒としてもよく、両者の混合物を用いてもよく、本発明タンパク質又は本発明融合タンパク質に加えて、これらのタンパク質に悪影響を与えず、かつ、本発明の効果に影響を与えない限りにおいて、他の成分を含有させてもよい。
【００３９】
本発明触媒の形態も限定されず、溶液形態、凍結形態、凍結乾燥形態、担体と結合し、又は担体に包括させた固定化酵素形態のいずれであってもよい。
【００４０】
本発明触媒はGalヌクレオチドをGlcヌクレオチドに変換する際に用いることができる。
＜４＞本発明生産方法
本発明生産方法は、本発明タンパク質、本発明融合タンパク質又は本発明触媒を、Galヌクレオチドに接触させる工程を少なくとも含む、Glcヌクレオチドの生産方法である。
【００４１】
本発明生産方法における「ヌクレオチド」は、UDP又はdTDPであることが好ましい。
すなわち、GlcヌクレオチドやGalヌクレオチドは、UDP-GlcやUDP-Gal、あるいはdTDP-GlcやdTDP-Galであることが好ましい。
【００４２】
本発明生産方法においては、本発明タンパク質、本発明融合タンパク質及び本発明触媒の少なくともいずれか１つを、Galヌクレオチドに接触させればよい。これらのタンパク質と、Galヌクレオチドとの「接触」の方法は、これらの分子が相互に接触して酵素反応が生ずる状態となる限りにおいて特に限定されず、例えば前者に後者を添加してもよく、後者に前者を添加してもよく、両者を同時に添加してもよい。
【００４３】
また、本発明タンパク質、本発明融合タンパク質又は本発明触媒を担体（例えば、ゲル、ビーズ、膜、プレート等）に固定させ、これにGalヌクレオチドを接触させてもよい。
【００４４】
両者を接触させた後の反応の条件は、本発明タンパク質、本発明融合タンパク質又は本発明触媒が作用する条件である限りにおいて特に限定されない。
【００４５】
例えばこれらのタンパク質の至適ｐＨ付近で反応させることが好ましく、当該ｐＨ下で緩衝作用を有する緩衝液中で反応を行うことがより好ましい。
【００４６】
またこのときの温度も、これらのタンパク質の活性が保持されている限りにおいて特に限定されないが、３５℃〜３７℃程度が例示される。
【００４７】
また本発明タンパク質、本発明融合タンパク質又は本発明触媒の活性を増加させる物質がある場合には、その物質を添加してもよい。例えばＮＡＤ＋を添加することが好ましい。ただし、本発明タンパク質や本発明融合タンパク質によるUDP-GalからUDP-Glcへの反応においては必ずしもＮＡＤ＋を要しないことから、この反応においてはＮＡＤ＋を添加しなくても差し支えない。
【００４８】
反応時間は、ｐＨ条件、温度条件、作用させるタンパク質及び基質の量、並びにどの程度の生産量を所望するか等によって適宜調節することができる。反応時間を長くすれば生産量を増すことができ、反応時間を短くすれば生産量を減ずることができる。
【００４９】
また本発明生産方法には、このような接触工程が少なくとも含まれていればよく、さらに他の工程が含まれていてもよい。
【００５０】
本発明生産方法により、Galヌクレオチドから、Glcヌクレオチドを生産することができる。Glcヌクレオチドが生産されたか否かは、例えば、後述の実施例に示すようなＤＭＡＢアッセイや、ＨＰＬＣによる解析、キャピラリー電気泳動による解析等によって調べることができる。
【００５１】
また、生成物中からGlcヌクレオチドを単離する方法等は、公知の方法によって行うことができる。
【００５２】
【実施例】
以下に、本発明の実施例を具体的に説明する。しかしながら、これらによって本発明の技術的範囲が限定されるものではない。
１．YtcBタンパク質の調製
（１）ytcBのクローニングと発現
Bacillus subtilis 168のytcB遺伝子（配列番号１のヌクレオチド番号76から1032で示されるＤＮＡ）を、常法に従ってPCR増幅した。なお、ＰＣＲに用いたプライマーは以下の通りである。
【００５３】
ytcB15-F    ggatcccatgaaaatactcgtcacag（配列番号５）
ytcB15-R    ggatccttattccccctgatacagcg（配列番号６）
964bpのPCR増幅断片をpUC19に挿入した後、シーケンスを確認した。これをpET15b（N-terminal histidin tag, Novagen）のNde1-BamH1サイトに挿入して発現プラスミドpETytcB15を構築した。この発現プラスミドでE.coli BL21(DE3)株を形質転換し、YtcB発現株を作製した。
【００５４】
YtcBタンパク質の発現は、以下の通り行った。
【００５５】
YtcB発現株を、アンピシリン(33μg/100ml)を含有する100ml LB培地(１Ｌ中に、10g ポリペプトン、5g 酵母抽出物、10g NaClを含有する)中、37℃で4時間培養した。OD600nmが0.5付近に達した時、IPTGを終濃度が0.4mMになるよう添加した。IPTG添加後37℃で4時間培養した後、6,000rpm、４℃で10分間遠心し、20mM Tris-HCl(pH8.0)で洗浄して菌体を回収した。
（２）YtcBタンパク質の精製
回収した菌体を20mM Tris-HCl(pH8.0)に懸濁し、超音波破砕した。超音破砕の強度は「180」とし、4℃で５分間破砕した。破砕液を15,000rpm、４℃で10分間遠心して細胞抽出液を回収した。磁性ニッケルカラム（Ni-NTAカラム；QIAGEN社製）を、25％グリセロールを含有するBuffer(10mM Tris-HCl；pH8.0、300mM NaCl、10mMイミダゾール；pH8.0で平衡化した。細胞抽出液をカラムに流し、イミダゾール濃度を50mM、250mM、500mMの順に徐々に上昇させてタンパク質を溶出させた。その後、Ni-NTAカラムへの結合物をSDS-PAGEで解析した。
【００５６】
発現されたYtcBタンパクが含まれる画分を透析した。カットオフ 3000 Daの透析膜を使用し、透析外液としては25％グリセロールを含有する20mM Tris-HCl(pH8.0)を使用した。この透析後の液を「YtcB溶液」として、酵素活性を測定した。
（３）酵素活性の測定
上記の（２）で得られたYtcB溶液を用いて、酵素活性を測定した。酵素活性の測定は、以下の(a)又は(b)の方法で行った。
(a)ＤＭＡＢアッセイ
(i)「YtcB溶液」(20mM Tris HCl(pH8.0)溶液)に、終濃度1.0mM となるように基質(17.1μg/35μl)を添加して50μlとした。この溶液中に含まれるタンパク質（YtcB）の量は、1μgであった。
(ii)37℃で20分間〜60分間インキュベートした後、0.1M HClを10μl添加し、次いで6分間煮沸することによって反応を完全に停止させた。その後0.1M NaOHを10μl添加して中和した。
(iii)0.2Mの4-ホウ酸ナトリウム(pH9.1)を140μl添加して、すぐに3分間煮沸した。
(iv)1050μlのDMAB試薬を添加して、37℃で30分間インキュベートした。DMAB試薬は以下の通り調製した。
【００５７】
氷酢酸／HCl＝９／1(v/v)の溶液でDMABの10％溶液を調製し、このDMAB溶液を使用直前にさらに氷酢酸で1／10に希釈して、DMAB試薬とした。
(v)インキュベート後、595nmにおける吸光度を測定した。
(b)UDP-グルコースオキシダーゼ-結合アッセイ（UDP-glucose oxidase-coupled assay）
(i)「YtcB溶液」(20mM Tris-HCl(pH8.0)溶液)に、終濃度1.0mM となるように基質を添加して44μlとした。この溶液中に含まれるタンパク質（YtcB）の量は、1.4μgであった。
【００５８】
また、UDP-Glc及びUDP-Galの相互変換には、NAD+の存在が必須と考えられるこ
とから、反応液中に1mMのNAD+を含有するものについても同様にして測定した。
(ii)37℃で30分〜２時間インキュベートした後、0.1M HClを添加し、次いで6分間煮沸することによって反応を完全に停止させた。その後0.1NのNaOHを添加して中和した。
(iii)以下の試薬を50mM酢酸ナトリウムに溶解し、この溶液400μlを反応液に添加した。
【００５９】
22U/ml グルコースオキシダーゼ（glucose oxidase(pH5.5)）
7U/ml ペルオキシダーゼ（peroxidase）
0.3mg o-ジアニシジン（o-dianisidine）
(iv)37℃で30分間インキュベートした後、6M HClを600μl添加した。
(v)その後、540nmにおける吸光度を測定した。
２．実験の結果
（１）Ni-NTAカラムへの結合物をSDS-PAGEで解析した結果、約37.6kDa付近に一本のバンドが出現したことから、YtcBの発現及び精製が確認された。
（２）基質としてUDP-GalNAc又はUDP-GlcNAcを用いて、DMABアッセイを行ったが、活性は確認できなかった。
（３）UDP-グルコースオキシダーゼ-結合アッセイを行った結果を図１に示す。
左側の図はＮＡＤ＋の非存在下で、右側の図は１ｍＭのＮＡＤ＋の存在下でそれぞれ反応を行った結果を示す。図１における「菱形印」は基質としてUDP-Glc図１における「四角印」は基質としてUDP-Galを用いた場合の、「菱形印」は基質としてUDP-Glcを用いた場合の結果をそれぞれ示す。
【００６０】
この結果、発現されたYtcBは、UDP-GalとUDP-Glcに対して活性（触媒能）を持つことが確認された。また図１からUDP-Galが優先的にUDP-Glcに変換されていることが示された。このことから、発現されたYtcBを用いるとUDP-GalをUDP-Glcに変換する反応の方が進みやすいことが確認された。
また、YtcBによる反応はNAD+依存性ではないことが示唆された。
0004270907.tif 000002
0004270907.tif 000003
0004270907.tif 000004
0004270907.tif 000005
0004270907.tif 000006
0004270907.tif 000007
0004270907.tif 000008
0004270907.tif 000009
【００６１】
【発明の効果】
本発明タンパク質及び本発明融合タンパク質は本発明触媒に利用することができ極めて有用である。また本発明触媒を用いると、Glcヌクレオチドを工業的規模で大量かつ安価に製造でき、これによって本発明生産方法が提供されることから極めて有用である。本発明生産方法も、Glcヌクレオチドを簡便、迅速、大量、安価に生産することができ極めて有用である。
【図面の簡単な説明】
【図１】  基質としてUDP-Gal又はUDP-Glcを用い、UDP-グルコースオキシダーゼ-結合アッセイを行った結果を示す。
【図１】
0004270907.tif 000010