(57)【要約】  動物、例えば齧歯動物を殺傷するための組成物であって、（ｉ）動物に対して毒性のある１つ以上の毒素剤、例えばコレカルシフェロールまたは２５−ヒドロキシコレカルシフェロール（ビタミンＤ３）を含む毒性成分と、（ｉｉ）前記毒性成分のための担体系とを含み、ここで前記担体系（ｉｉ）は、（ａ）前記毒性成分のための少なくとも１つの溶媒または分散媒、例えばエタノールなどのアルコールと、（ｂ）少なくとも１つの皮膚撹乱成分、例えば、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）とを含む、組成物。前記組成物は、例えば罠または他の装置内で組成物が噴霧または送達される動物の皮膚内へのまたは皮膚を通じた毒物の皮膚浸透を増強させる。【特許請求の範囲】
【請求項１】
動物を殺傷するための組成物であって、
（ｉ）前記動物に対して毒性のある１つ以上の毒素剤を含む毒性成分と、
（ｉｉ）前記毒性成分のための担体系と
を含み、
ここで前記担体系（ｉｉ）は、
（ａ）前記毒性成分のための少なくとも１つの溶媒または分散媒と、
（ｂ）少なくとも１つの皮膚撹乱成分と、
を含むことを特徴とする組成物。
【請求項２】
請求項１に記載の組成物であって、前記担体系の前記少なくとも１つの皮膚撹乱成分が、前記動物の皮膚内へのおよび／または前記動物の皮膚を通じた前記毒性成分の皮膚浸透を促進させる物質であり、前記動物の皮膚内へのおよび／または前記動物の皮膚を通じた前記毒性成分の皮膚浸透を促進させるような量で存在することを特徴とする組成物。
【請求項３】
請求項１または２に記載の組成物であって、殺傷される前記動物が標的動物であって、前記１つ以上の毒素剤が、前記標的動物に特異的であり、前記標的動物以外の動物に対しては実質的に無毒性である毒性物から選択されることを特徴とする組成物。
【請求項４】
請求項１〜３のいずれか１項に記載の組成物であって、前記毒性成分が実質的に水不溶性であることを特徴とする組成物。
【請求項５】
請求項１〜４のいずれか１項に記載の組成物であって、前記１つ以上の毒素剤が、コレカルシフェロール、２５−ヒドロキシコレカルシフェロール、カルシフェロール、エルゴカルシフェロール、抗凝血剤、金属リン化物、α−ナフチルチオ尿素、ヒ素化合物、バリウム合成物、タリウム化合物、ブロメタリン、クロラローゼ、クリミジン、１，３−ジフルオロ−２−プロパノール、エンドリン、フルオロアセトアミド、ホサセチム、白リン、ピリヌロン、シリロシド、フルオロ酢酸ナトリウム、ストリキニーネ、テトラメチレンジスルホテトラミン、シアン化水素、シアン化ナトリウム、シアン化カリウム、および細菌またはウイルスの毒素の１つ以上から選択されることを特徴とする組成物。
【請求項６】
請求項５に記載の組成物であって、前記毒素剤が、コレカルシフェロールまたは２５−ヒドロキシコレカルシフェロール（ビタミンＤ３）であることを特徴とする組成物。
【請求項７】
請求項１〜６のいずれか１項に記載の組成物であって、前記毒性成分が、前記組成物の約０．００１重量％〜約９０重量％の量で前記組成物中に存在することを特徴とする組成物。
【請求項８】
請求項７に記載の組成物であって、前記毒性成分が、前記組成物の約１重量％〜約６０重量％の量で前記組成物中に存在することを特徴とする組成物。
【請求項９】
請求項１〜８のいずれか１項に記載の組成物であって、前記組成物中の前記毒性成分の濃度が、前記組成物の所定の１回用量または適用によって、致死量の前記毒性成分が動物に送達され、致死量を大きく超える量は送達されないように選択されることを特徴とする組成物。
【請求項１０】
請求項１〜９のいずれか１項に記載の組成物であって、前記皮膚撹乱成分が、非プロトン性溶媒を含むことを特徴とする組成物。
【請求項１１】
請求項１０に記載の組成物であって、前記皮膚撹乱成分が、スルホキシド、アミド、炭化水素、ケトン、エーテルからなる群から選択される１つ以上の物質を含むことを特徴とする組成物。
【請求項１２】
請求項１１に記載の組成物であって、前記皮膚撹乱成分が、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）であることを特徴とする組成物。
【請求項１３】
請求項１〜１２のいずれか１項に記載の組成物であって、前記皮膚撹乱成分が、前記担体系自体の約１重量％〜約９９重量％の量で前記組成物中に存在することを特徴とする組成物。
【請求項１４】
請求項１３に記載の組成物であって、前記皮膚撹乱成分が、前記担体系自体の約２０、３０または４０重量％〜約７０、８０または９０重量％の量で前記組成物中に存在することを特徴とする組成物。
【請求項１５】
請求項１〜１４のいずれか１項に記載の組成物であって、前記担体系の前記溶媒または分散媒が、前記担体系自体の約１重量％〜約９９重量％の量で存在することを特徴とする組成物。
【請求項１６】
請求項１５に記載の組成物であって、前記担体系の前記溶媒または分散媒が、前記担体系自体の約１０または２５重量％〜約６０または７０重量％の量で存在することを特徴とする組成物。
【請求項１７】
請求項１〜１６のいずれか１項に記載の組成物であって、１つ以上の性フェロモンなどのフェロモンまたは他の誘引化合物をさらに含むことを特徴とする組成物。
【請求項１８】
請求項１〜１７のいずれか１項に記載の組成物であって、
（ｉ）皮膚浸透促進剤、
（ｉｉ）湿潤剤、
（ｉｉｉ）粘度調整剤、
（ｉｖ）共溶媒、
（ｖ）さらに１つの乳化剤、安定剤、保存料、皮膚軟化剤、香料、着色剤、または色素、ｐＨ調整剤、ゲル形成剤、泡形成剤、薬剤から選択される他の付加的物質、
（ｖｉ）１つ以上のエアロゾル噴射剤から選択される送達促進成分、
のいずれかから選択される１つ以上の付加的成分をさらに含むことを特徴とする組成物。
【請求項１９】
請求項１８に記載の組成物であって、脂肪酸、２−ピロリドン、プロピレングリコール、アルコール、グリコール、グリコールエーテル、グリセロールホルマール、ポリエチレングリコール、液体ポリオキシエチレングリコール、ピロリドン、アセトン、アセトニトリル、アミド、フタル酸エステル、リン脂質、天然油、アゾン、テルペンおよびテルペノイド、精油、尿素、ならびに水のいずれかから選択される１つ以上の皮膚浸透促進剤を含むことを特徴とする組成物。
【請求項２０】
請求項１〜１９のいずれか１項に記載の組成物であって、齧歯動物、有袋動物、ウサギ科動物およびイタチ科動物からなる群から選択される害獣動物を殺傷するためのものであることを特徴とする組成物。
【請求項２１】
動物の殺傷方法であって、請求項１〜２０のいずれか１項に記載の組成物を、前記動物の皮膚に送達すること、好ましくは局所的に適用することを含むことを特徴とする方法。
【請求項２２】
１つ以上の毒素剤を動物の血流に経皮的に送達するための方法であって、前記動物の皮膚に、請求項１〜２０のいずれか１項に記載の組成物を適用することを含むことを特徴とする方法。
【請求項２３】
殺害獣剤または殺害獣組成物としての、請求項１〜２０のいずれか１項に記載の組成物の使用。
【請求項２４】
１つ以上の毒素剤を動物の血流に経皮的に送達するための、請求項１〜２０のいずれか１項に記載の組成物の使用。
【請求項２５】
１つ以上の毒素剤を動物の血流に経皮的に送達するための、前記１つ以上の毒素剤のための担体系の使用であって、前記担体系が、
（ａ）前記１つ以上の毒素剤のための少なくとも１つの溶媒または分散媒と、
（ｂ）少なくとも１つの皮膚撹乱成分と、
を含み、前記１つ以上の毒素剤および前記担体系が、前記動物の皮膚に適用するための組成物としてまたは組成物中で提供されることを特徴とする使用。
【請求項２６】
１つ以上の毒素剤を動物の皮膚に送達することによる動物の殺傷のための装置であって、
（ｉ）動物が入ることができる囲いと、
（ｉｉ）請求項１〜２０のいずれか１項に記載の組成物の供給物を含有する格納器手段と、
（ｉｉ）ある量の前記組成物を動物の皮膚に送達する送達手段と、
を含むことを特徴とする装置。
【請求項２７】
実質的に本明細書に記載されている通りであることを特徴とする組成物、または方法、または組成物の使用、または担体系の使用。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、害獣（ｖｅｒｍｉｎ）防除のための組成物に関する。より詳細には、排他的でないが、害獣、例えば齧歯動物や他の動物を殺傷するための組成物に関する。本発明は、さらに、これらの組成物を使用する害獣防除方法に関し、さらに、害獣防除のための、好ましくは害獣を殺傷するための方法において使用するためのこれらの組成物を含む装置に関する。
【背景技術】
【０００２】
多くの農業上、社会上および公衆衛生上の分野において、害獣の防除が広く必要とされている。害獣の中には、様々な種類の動物、例えば、齧歯動物および有害生物（ｐｅｓｔ）として分類される他の様々な哺乳動物または脊椎動物、例えば齧歯動物に加えて様々な有袋動物、ウサギ科動物（ｌｅｐｏｒｉｄｓ）およびイタチ科動物（ｍｕｓｔｅｌｉｄｓ）が含まれうる。
【０００３】
害獣を捕らえ、不能にし、および／または殺傷するための罠は周知であり、世界中の多くの場所で広範に使用されている。同様に様々な化学的または生物学的薬剤を使用して害獣を毒することによる、害獣防除に使用するための様々な殺有害生物組成物および殺鼠組成物も周知であり、広範に使用されている。殺有害生物剤の誤った標的化ならびにヒトおよび他の動物、例えば家畜への、望まないまたは不注意な曝露による危険性に関する頻繁な懸念から、害獣防除のための無保護な毒物の使用は段々と無くなり、選択的な罠を、多くは選択的な毒物と組み合わせて使用することがますます一般的になっている。
【０００４】
公衆衛生および農業的理由により害獣を防除することは認められているが、動物の福祉を考慮することがますます重要な要件となってきており、このことに留意して、近年では、害獣防除に使用するために、より人道的な罠および薬剤、特により効率的で苦痛の少ない罠および薬剤が、様々な進歩を見せている。
【０００５】
近寄ることが難しい広範囲な地理的領域および場所で害獣防除が望まれる特定の社会的および農業的状況では、例えば、殺傷した動物の除去だけでなく毒物の補充のためにも、罠または他の毒物餌付装置の管理および監視が容易かつ頻繁に行えるように、さらに検討が必要なことも多い。毒剤の使用度は、効率よい害獣防除管理にとって重要な因子であるため、低い取込み量、したがって低い総摂取率でも効率が良く、そのような毒物が必要な時と場所において製造および配備する費用が削減されるように、さらにより効果がある毒物の開発が所望される。
【０００６】
害獣、例えば齧歯動物を捕らえ、不能にし、および／または殺傷するための１つの既知の罠は、本発明者らの公開された国際特許出願である国際公開第２０１０／１０６３５２号に開示されている。開示された装置は、機械的罠中に、標的動物を殺傷するための毒剤と、標的動物を罠に誘引するためのフェロモン成分とを組み合わせで備える形態であり、ある用量の毒物を、動物に、典型的には外側に、つまり動物の皮膚に適用することで、意図する殺傷目的が達成される。毒剤のその有効な毒性は、毒剤が、動物を殺傷する全身的機能を発揮しうる動物の皮膚に浸透し、それにより動物の血流中に入る能力に依存しており、その機構は、その薬剤ならびに検討対象の動物の化学的および／または生物学的性質に依存しうる。
【０００７】
別の既知の開示は、ニュージーランド特許第５４８０８２号（アグニュー（Ａｇｎｅｗ））にあり、この文献では、様々な非ヒト有害動物を殺傷するための局所的殺有害生物組成物が提唱されている。この組成物は、特定の毒素剤、つまりコレカルシフェロールまたは２５−ヒドロキシコレカルシフェロール（ビタミンＤ３としても知られる）と、毒素剤を標的動物に経皮的に送達するように作用する少なくとも１つの担体、例えば様々なアルコール（特に無水エタノール）、グリコール、または特定の他の溶媒種との組み合わせを含む。
【０００８】
上記開示後の本発明者らの研究において、本発明者らは、動物の皮膚へのまたは皮膚を通じた動物の血流への殺有害生物毒素剤の浸透の程度および効率が、所定の毒素剤または所定の量により意図される標的動物の全身的な殺傷機能を発揮する効率を決定するための重要な因子になると予期しうることを見出した。しかしながら、これまで、所定の毒物または毒素剤が標的動物の皮膚に浸透する程度、さらにはそのような浸透レベルが、動物の外側に適用されうる任意の所定の薬剤またはその投薬量についてどのように改善または最適化されうるのかについてすら、公開された文献または検討はほとんどまたは全くなかった。本発明者らの最近の研究では当該領域に着目して、本発明を為すに至った。
【０００９】
特に、本発明者らの研究を通じて、本発明者らは、驚くべきことに、上記ニュージーランド特許第５４８０８２号で提案されているように従来の製剤で使用されてきたコレカルシフェロール（または２５−ヒドロキシコレカルシフェロール）を含め、多くの殺鼠剤または殺害獣剤が、アルコール系組成物中で既知のラット罠または他の動物殺傷装置で使用するとき、特に機能を発揮するように動物の血流中に毒性成分を経皮浸透させる有効性の観点において、理想または最適からはほど遠いことを見出した。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１０】
【特許文献１】国際特許出願公開第２０１０／１０６３５２号パンフレット
【特許文献２】ニュージーランド特許第５４８０８２号明細書
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１１】
したがって、本発明の課題は、殺害獣剤または他の毒素剤を、その毒素剤を含有する組成物から、経皮的に標的動物へ、特にその血流中に経皮的に送達することができる改善された手段を提供することであった。本発明者らは、驚くべきことに、毒素剤のための新規担体系を用いることにより、毒素剤の経皮送達レベルが改善または最適化されること、または少なくとも既知の先行技術の毒素剤送達組成物で新たに認識された欠点を改善しうることを見出した。
【課題を解決するための手段】
【００１２】
したがって、第１の態様において、本発明は、動物を殺傷するための組成物であって、
（ｉ）動物に対して毒性のある１つ以上の作用剤を含む毒性成分と、
（ｉｉ）毒性成分のための担体系と、
を含み、
ここで担体系（ｉｉ）は、
（ａ）毒性成分のための少なくとも１つの溶媒または分散媒と、
（ｂ）少なくとも１つの皮膚撹乱成分（ｄｅｒｍａｌ  ｄｉｓｒｕｐｔａｎｔ  ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ）と、
を含む、組成物を提供する。
【００１３】
好ましくは、担体系の少なくとも１つの皮膚撹乱成分は、動物の皮膚内へのおよび／または皮膚を通じた、１つ以上の毒素剤の皮膚浸透を促進させる物質であり、そのような量で存在する。本発明のこの態様の組成物の好ましい物質または量について、好ましい実施形態および実施例と関連させて、より詳細に下記で説明する。
【００１４】
第２の態様において、本発明は、本発明の第１の態様による組成物またはその任意の実施形態もしくは実施例による組成物を、動物の皮膚に送達すること、好ましくは、局所的に適用することを含む、動物の殺傷方法を提供する。
【００１５】
第３の態様において、本発明は、１つ以上の毒素剤を、動物に経皮的に送達する、好ましくは動物の血流に送達する方法であって、本発明の第１の態様による組成物またはその任意の実施形態もしくは実施例による組成物を、動物の皮膚に適用することを含む方法を提供する。
【００１６】
第４の態様において、本発明は、本発明の第１の態様による組成物またはその任意の実施形態もしくは実施例の、殺害獣剤または殺害獣組成物としての使用を提供する。
【００１７】
第５の態様において、本発明は、本発明の第１の態様による組成物またはその実施形態もしくは実施例の１つ以上の毒素剤を、動物に経皮的に、好ましくは血流中に、送達するための使用を提供する。より詳細には、この態様の使用は、１つ以上の毒素剤を動物に経皮的に、好ましくは動物の血流に送達するための、１つ以上の毒素剤のための担体系の使用であって、この担体系が、
（ａ）１つ以上の毒素剤のための少なくとも１つの溶媒または分散媒と、
（ｂ）少なくとも１つの皮膚撹乱成分と、
を含み、１つ以上の毒素剤および担体系は、動物の皮膚に適用するための組成物としてまたは組成物中で提供される、使用を含む。
【００１８】
本発明の第６の態様では、１つ以上の毒素剤を動物の皮膚に送達することにより動物を殺傷するための装置が提供され、この装置は、
（ｉ）動物が入ることができる囲いと、
（ｉｉ）本発明の第１の態様による組成物またはその実施形態もしくは実施例の組成物の供給物を含有する格納器手段（ｃｏｎｔａｉｎｅｒ  ｍｅａｎｓ）と、
（ｉｉ）ある量の前記組成物を動物の皮膚に送達する送達手段と、
を含む。
【００１９】
様々な態様における本発明のさらなる特徴、実施形態および実施例は、下記にさらに示す実施例を含め、以下の本発明の詳細な説明から明らかである。
【図面の簡単な説明】
【００２０】
【図１】合成膜を通じたコレカルシフェロールの送達のための様々な化学浸透増強剤の比較を示す図である。
【図２】異なる比率のＤＭＳＯおよびエタノールに溶解したときの、コレカルシフェロールの測定された浸透速度を示す図である。
【図３】琥珀色ボトル内に密封され、加速安定性キャビネット２５℃±２℃／６０％ＲＨ±５％に配置された場合のコレカルシフェロールの分解を示す図である。
【図４】ＤＭＳＯとエタノールとの共溶媒の氷点を調べて得られた結果を示す図である。
【図５】好ましい増粘剤のならびにコレカルシフェロール自体の、浸透促進剤に対する粘度増強効果を示す図である。
【図６】合成膜を通じたコレカルシフェロールの送達のための化学浸透増強剤のセルロース管ｉｎ−ｖｉｔｒｏモデルにおける比較を示す図である。
【図７】図６と同じモデルにおいて異なるＤＭＳＯとエタノールの比率を用いてコレカルシフェロールの浸透増強を示す図である。
【図８】合成膜を通じたコレカルシフェロールの送達のための化学浸透増強剤の拡散細胞ｉｎ−ｖｉｔｒｏモデルにおける比較を示す図である。
【図９】図８の拡散細胞モデルを使用したコレカルシフェロール濃度と拡散比率との用量応答相関を示す図である。
【図１０（ａ）】化学的に浸透を増加させた経皮コレカルシフェロール製剤についての生存率を示す図である。図１０（ａ）は、９０：１０ＤＭＳＯ／エタノールにおける２０％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロールに対する生存グラフを示す図である。
【図１０（ｂ）】図１０（ｂ）は、９０：１０ＤＭＳＯ／オレイン酸における２０％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロールに対する生存グラフを示す図である。
【図１０（ｃ）】図１０（ｃ）は、７０：３０ＤＭＳＯ／エタノールにおける４０％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロールに対する生存グラフを示す図である。
【図１０（ｄ）】図１０（ｄ）は、１００％エタノールにおける２０％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロールに対する生存グラフを示す図である。
【図１０（ｅ）】図１０（ｅ）は、１００％エタノールにおける４０％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロールに対する生存グラフを示す図である。
【図１０（ｆ）】図１０（ｆ）は、図１０（ａ）〜１０（ｅ）の全ての製剤に対する死亡率およびエンドポイントまでの時間の要約を示す図である。
【図１１（ａ）】図１０に使用した各製剤に曝露された各５匹の動物のセットの苦痛評点表を示す図である。図１１（ａ）は、実験セット１についての苦痛評点を示す図である。
【図１１（ｂ）】図１１（ｂ）は、実験セット２についての苦痛評点を示す図である。
【図１１（ｃ）】図１１（ｃ）は、実験セット３についての苦痛評点を示す図である。
【図１１（ｄ）】図１１（ｄ）は、実験セット４についての苦痛評点を示す図である。
【図１１（ｅ）】図１１（ｅ）は、実験セット５についての苦痛評点を示す図である。
【図１２】図１１で使用した全ての動物についてのエンドポイントでの平均苦痛を示す図である。
【図１３（ａ）】用量固定手法での生存分析を示す図である。図１３（ａ）は、９％および２０％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロール製剤についての生存グラフである。他の製剤は０％の死亡率を示すために含めなかった。
【図１３（ｂ）】図１３（ｂ）は、全ての製剤についての死亡率およびエンドポイントまでの平均時間を示す図である。
【図１４（ａ）】一定用量の処理プロトコルで試験した５製剤それぞれについての苦痛評点とラット体重を示す図である。
【図１４（ｂ）】一定用量の処理プロトコルで試験した５製剤それぞれについての苦痛評点とラット体重を示す図である。
【図１４（ｃ）】一定用量の処理プロトコルで試験した５製剤それぞれについての苦痛評点とラット体重を示す図である。
【図１４（ｄ）】一定用量の処理プロトコルで試験した５製剤それぞれについての苦痛評点とラット体重を示す図である。
【図１４（ｅ）】一定用量の処理プロトコルで試験した５製剤それぞれについての苦痛評点とラット体重を示す図である。
【図１５】本発明の例示的組成物により促進される、様々な代替的毒性物の合成膜を通じた送達性の程度を示すための、実施例２に対応するｉｎ−ｖｉｔｒｏ実験の結果を示す図である。
【図１６】本発明の例示的組成物により促進される、様々な代替的毒性物の合成膜を通じた送達性の程度を示すための、実施例２に対応するｉｎ−ｖｉｔｒｏ実験の結果を示す図である。
【図１７】本発明による組成物を標的動物へ送達するために有用な送達装置または害獣罠の第１の実施形態の斜視図である。
【図１８】図１７の装置または罠の部分断面図である。
【図１９】標的動物に本発明による組成物を送達するために有用な送達装置または害獣罠の第２の実施形態の斜視端面図である。
【図２０】図１９の装置または罠の斜視側面図である。
【図２１】標的動物に本発明による組成物を送達するために有用な送達装置または害獣罠の第３の実施形態の斜視端面図である。
【図２２】図２１の装置または罠の斜視側面図である。
【発明を実施するための形態】
【００２１】
本発明の組成物、ならびにその組成物を利用する方法および使用は、様々な種類の動物、特に害獣または有害生物として分類される任意の動物を殺傷するために使用しうる。典型的に、動物は脊椎動物、特に哺乳動物、より好ましくは比較的小さな哺乳動物でありうる。本明細書では、用語「殺」または「殺傷」は、動物を完全に（比較的短いまたは比較的長い全身毒性作用を通して）殺すことだけでなく、ヒトの介入によっておそらくは最後に放たれた後に動物が不能、無欲、麻痺、または意識不明になることを包含しうる。
【００２２】
本発明の使用によって殺傷が特に有用に達成されうる動物としては、害獣、例えばラットまたはマウスなどの齧歯動物、ならびに有袋動物、ウサギ科動物およびイタチ科動物に分類される群のメンバーなどの様々な他の害獣種が挙げられる。本発明は、これらのグループ以外の種を、殺傷または不能にするためにも有効に利用しうる。
【００２３】
［毒性成分］
本発明によれば、組成物は、殺傷される動物、つまり標的動物に毒性のある１つ以上の作用剤（毒素剤）を含む毒性成分を含んでいる。任意の適切な毒素剤または毒物が、毒素剤として使用しうる。
【００２４】
しかしながら、一定の実施形態において、標的動物に特異的な１つ以上の毒素剤、つまり、標的動物のみに実質的に毒性があり、標的動物以外の動物に対しては実質的に毒性がない毒性物を選択することが好ましくありうる。このようにして、他の種へ損害または被害を与えることなく、標的種の殺傷が達成される。特に所定の標的種を罠にはめて殺傷するための装置に、２種以上の動物が接近可能である場合に、おそらくは不注意に毒性成分に接触しうる他の種への損害または被害を与えることなく、標的種の殺傷が達成される。
【００２５】
様々な既知の毒物または毒素剤が、単独でまたは組合せで、本発明による組成物の毒性成分として使用されうる。本発明で使用するための適切な毒素剤としては、様々な既知の毒物、毒性物、または病原性薬剤が挙げられ、これらは天然物であっても合成物であってもよく、単独で使用してもまたは２種以上のそのような薬剤の組み合わせで使用してもよい。
【００２６】
本発明で使用するために特に好ましい毒素剤は、脂溶性（つまり、実質的に水に不溶性）の毒素剤でありうる。その理由は、脂溶性であることは、そのような毒素剤が、標的動物に適用される所定の地理的場所でまたはそこから離れた場所で、水中に溶解して環境中に容易に漏れ出すことを防ぐことに役立つためである。
【００２７】
本発明で使用しうる適切な毒素剤としては、コレカルシフェロール、２５−ヒドロキシコレカルシフェロール、カルシフェロール、エルゴカルシフェロール、抗凝血剤、金属リン化物、α−ナフチルチオ尿素、ヒ素化合物、バリウム合成物、タリウム化合物、ブロメタリン、クロラローゼ（例えばα−クロラローゼ）、クリミジン、１，３−ジフルオロ−２−プロパノール、エンドリン、フルオロアセトアミド、ホサセチム、白リン、ピリヌロン、シリロシド、フルオロ酢酸ナトリウム、ストリキニーネ、テトラメチレンジスルホテトラミン、シアン化水素、シアン化ナトリウム、シアン化カリウムの１つ以上が挙げられる。抗凝血剤としては、ワルファリン、クマテトラリル、ブロディファコム、ジフェナコウム、フロクマフェン、クロロファシノン、ピンドン、ダイファシノン、ジフェチアロン、およびクマリンが挙げられうる。金属リン化物は、リン化アルミニウム、リン化カルシウム、リン化マグネシウムおよびリン化亜鉛を含みうる。他の適切な毒素剤としては、１つ以上の生物学的薬剤、例えば、細菌またはウイルスの毒素が挙げられうる。
【００２８】
本発明で使用するために、特にラットなどの齧歯動物を殺傷するために有用でありうる特に好ましい毒素剤は、コレカルシフェロールまたはそのヒドロキシル化誘導体である２５−ヒドロキシコレカルシフェロールである（これらの化合物の両方が、ビタミンＤ３の前駆体であり、しばしばビタミンＤ３前駆体と称される）。
【００２９】
毒性成分は、本発明の組成物中に任意の適切な量で存在しうる。好ましくは、組成物中の毒性成分の量は、標的動物を殺傷するために、好ましくは動物へ組成物を単回投与または単回適用することにより殺傷するために、十分および有効であるように選択されうる。
【００３０】
好ましい実施形態において、組成物中の毒性成分の量は、組成物の約０．００１重量％〜約９０重量％、より好ましくは組成物の約０．０１重量％〜約７５重量％、さらにより好ましくは組成物の約０．１重量％〜約７０重量％、さらに一層好ましくは組成物の約１重量％〜約６０重量％である。
【００３１】
多くの実際上の実施形態において、送達される組成物は、本発明による所定の装置の使用において、組成物中の毒性成分の濃度が、組成物の所定の１回用量または適用によって、要求される致死量の毒性成分が動物に送達され、好ましくは致死量を大きく超える量は送達されないように選択されるように製剤化されることが好ましくありうる。このように、所定の標的動物に対して動物を殺傷するために十分な毒性成分の一用量のみが送達され、組成物はその中に含まれる毒性成分の濃度が致死的有効性および経済性の両方について最適化されるように製剤化されうる。
【００３２】
本発明の実施形態において、毒性成分は、いかなる様々な適切な物理的形態で組成物中に組み込まれうる。例えば、
（ｉ）毒性成分は、担体系の溶媒／分散媒成分、もしくは担体系自体の任意の他の成分に、溶液の様式で、例えばその中に解離されたイオン種として、溶解されていてもよく；または
（ｉｉ）毒性成分は、分散粒子として、例えば、毒性成分もしくは毒性成分と場合に応じて全組成物中の１つ以上の他の成分との懸濁液、エマルジョンもしくはコロイド混合物もしくは溶液の様式で、担体系に（または単にその溶媒／分散媒成分中に、または担体系自体の任意の他の成分中に）分散されていてもよく；または
（ｉｉｉ）毒性成分は、組成物もしくはその担体系中に、おそらくは、単にその溶媒／分散媒成分中に、もしくは担体系自体の任意の他の成分中に、任意の他の適切な物理的形態で、おそらくは全組成物の１つ以上の他の成分と共に組み込まれていてもよい。適切でありうるそのような他の物理的形態としては、例えば、リポソーム（例えば、１つ以上のリン脂質を含む二重層で形成されている）、ミセル（例えば、１つ以上の界面活性剤またはリン脂質を含む）、複合体（例えば、別の分子との、水素結合またはジスルフィド結合などの物理的相互作用を通じて）、塩類（例えば、毒性成分および／または毒性成分の溶解性または溶解特徴を変える皮膚撹乱成分との会合イオンの変化を含む）、ナノ粒子（例えば、毒性成分または皮膚撹乱成分の一方または両方との、例えば任意の分子量長の乳酸−グリコール酸共重合体−ＰＬＧＡ、ポリビニルアルコール−ＰＶＡを使用した沈殿したナノサイズ層を含む）、またはフェロイド（例えば、ビタミンＦエチルエステル（２．８％ｗ／ｖ）、Ｃｒｅｍｏｐｈｏｒ（登録商標）ＥＬ（１％ｗ／ｖ）およびＤ−α−トコフェロール（０．２％ｗ／ｖ））の性質を有する、粒子または実体が挙げられる。
【００３３】
［担体系］
本発明によれば、組成物の担体系は、
（ａ）毒性成分のための少なくとも１つの溶媒または分散媒と、
（ｂ）少なくとも１つの皮膚撹乱成分と、
を含む。
【００３４】
本発明の好ましい組成物において、少なくとも１つの溶媒または分散媒と、少なくとも１つの皮膚撹乱成分とは、異なる化学種である。
【００３５】
［溶媒または分散媒］
毒性成分のための溶媒または分散媒は、毒性成分のための溶媒または分散媒として作用しうる任意の適切な１つ以上の材料から選択しうる。
【００３６】
好ましい実施形態において、溶媒または分散媒は、毒性成分のための１つ以上の液体溶媒および／または分散媒を含み、ここで１つ以上の毒素剤は、それらに溶解および／または分散されている。適切な溶媒の例としては、以下のいずれか１つまたは２種以上の組み合わせのいずれかが挙げられる：
・アルコール、例えば、エタノール、イソプロパノール、メタノール、ベンジルアルコール、
・グリコール、例えば、ジエチレングリコール、プロピレングリコール、ブチルジグリコール、
・グリコールエーテル、例えば、ジエチレングリコールモノメチルエーテル、ジエチレングリコールモノエチルエーテル、ジエチレングリコールモノ−ｎ−ブチルエーテル、
・グリセロールホルマール、
・ポリエチレングリコール、
・液体ポリオキシエチレングリコール、
・ピロリドン、例えば、Ｎ−メチルピロリドン、２−ピロリドン、
・アセトン、
・アセトニトリル、
・アミド、例えばジメチルアセトアミド、ジメチルホルムアミド、モノメチルアセトアミド、
・フタル酸エステル、例えばフタル酸ジエチル。
【００３７】
特に好ましい溶媒または分散媒は、１つ以上の毒素剤のための溶媒、特に好ましくはエタノールである。
【００３８】
溶媒または分散媒は、任意の適切な量で本発明による組成物の担体系中に存在しえ、その量は好ましくは全体の組成物中に毒性成分を溶解または分散させるために十分な量でありうる。いくつかの実施形態において、溶媒または分散媒の適切な量は、担体系自体の約１重量％〜約９９重量％、より好ましくは担体系自体の約５重量％〜約８０または９０重量％、さらにより好ましくは担体系自体の約１０または２５重量％〜約６０または７０重量％である。
【００３９】
［皮膚撹乱成分］
本発明の組成物で使用される皮膚撹乱成分は、毒性成分の皮膚内へのおよび／または皮膚を通じた通過を、皮膚撹乱成分が存在しない場合と比較して促進または増強させるように、動物、好ましくは標的動物の皮膚の物理的および／または化学的性質を遮断または変更するように作用する任意の物質でありえ、そのように作用する任意の量で存在しうる。そのような皮膚撹乱物質は、好ましくは、皮膚に永久的もしくは不可逆的または皮膚細胞の死を生じさせるような方法で損傷を与える意味において動物の皮膚に損傷を与えるものではない。代わりに、そのような皮膚撹乱物質は、本発明の組成物の成分として使用するために定義されるとき、単に皮膚の挙動を変化させ、特に痛み、炎症、皮膚の腫れまたは皮膚の細胞死は実質的に生じさせず、そのため、単に増加した可逆的な層間細胞交換（ｃｅｌｌｕｌａｒ  ｅｘｃｈａｎｇｅ  ｂｅｔｗｅｅｎ  ｌａｙｅｒｓ）とは区別される皮膚の個々の脂質層間で生じるいくつかの不可逆的な細胞交換を生じる。
【００４０】
本発明者らの研究は、本発明に従って使用される好ましい皮膚撹乱成分によって生じる、損傷を生じさせるというよりは単に撹乱的な付随する皮膚の性質の変化が、皮膚の細胞を通じた毒性物の動きまたは移動のレベルの増強または延長を生じさせることを示した。結果として、動物の血流への毒性物取込の速度向上および効率改善が達成され、所定の量の毒性物から、増強された毒性作用を生じさせうる。
【００４１】
本発明者らは、皮膚撹乱成分として使用することが適切でありうる物質の好ましい種が、非プロトン性溶媒であることを見出した。本発明の組成物における皮膚撹乱成分として適切なそのような非プロトン性溶媒の好ましい例としては、以下の１つまたは以下の２種以上の組み合わせのいずれかが挙げられうる：
・スルホキシド、例えば、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、デシルメチルスルホキシド、
・アミド、例えば、ジメチルアセトアミド、ジメチルホルムアミド、
・炭化水素、例えば、ヘキサン、トルエン、
・ケトン、例えば、アセトン、
・エーテル、例えば、ジエチルエーテル。
【００４２】
特に好ましい皮膚撹乱成分は、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）である。
【００４３】
皮膚撹乱成分は、本発明による組成物の担体系中に、上記の皮膚撹乱効果を生じさせるための任意の適切な量で存在しうる。いくつかの実施形態において、皮膚撹乱成分の適切な量は、担体系自体の約１重量％〜約９９重量％、より好ましくは担体系自体の約１０または２０重量％〜約９５重量％、さらにより好ましくは担体系自体の約２０、３０または４０重量％〜約７０、８０または９０重量％でありうる。
【００４４】
本発明者らの研究は、本発明による組成物においてそのような皮膚撹乱成分をそのように比較的高用量で用いることが、毒性物分子の取り込みや通過を妨げると予測されるような皮膚の損傷を実質的に与えずに、毒性成分の標的動物の皮膚を通じた通過を促進または増強させるために特に効果的で有用であることを見出した。
【００４５】
担体系（ｉｉ）の皮膚撹乱成分（ｂ）は、好ましくは他の組成成分、特に、担体系（ｉｉ）の溶媒または分散媒成分（ａ）と（場合により毒性成分（ｉ）とも）同じ相で、本発明の組成物中に存在しうる。例えば、組成物の様々な成分は、実質的に単相の、均質なまたは均一な溶液、分散液、エマルジョンまたはコロイドの組成物中にまたはそれらとして存在しうる。
【００４６】
代替的に、担体系（ｉｉ）の皮膚撹乱成分（ｂ）は、本発明の組成物中に組成物の他の成分、特に担体系（ｉｉ）の溶媒または分散媒成分の１つ（ａ）（および場合により毒性成分（ｉ））とは、別個の、異なるまたは違う相としてまたは相中に存在しうる。例えば、担体系（ｉｉ）の溶媒または分散媒成分（ａ）または皮膚撹乱成分（ｂ）は（場合により毒性成分（ｉ）も一緒に）、組成物中に溶液層の成分として存在し、一方で、担体系（ｉｉ）の溶媒もしくは分散媒成分（ａ）または皮膚撹乱成分（ｂ）は（場合により毒性成分（ｉ）も一緒に）は、溶液相の成分とは区別される分散相、エマルジョン相、またはコロイド相成分として提供されうる。
【００４７】
さらに代替的にまたは付加的に、および上述のように、毒性成分のための担体系の様々な成分、例えば場合により皮膚撹乱成分は、本発明の組成物中に、リポソーム、ミセル、複合体、塩類、ナノ粒子またはフェロイドの性質の少なくとも１つの相を含むように存在しうる。
【００４８】
［組成物の場合に応じた任意選択の付加的成分］
本発明のいくつかの実施形態において、殺害獣組成物は、１つ以上の誘引化合物、例えば１つ以上のフェロモン（例えば、性フェロモン）と組み合わせて、提供されうる。そのようなフェロモンまたは他の誘引物質は、組成物自体の付加的成分として存在してもよく、または代替的に別個で、つまり、例えば本発明自体の殺害獣組成物と同じ装置とは独立におよび／またはそれに近接してもしくはその内部もしくは周辺において送達するために、組成物とは別個で提供されてもよい。
【００４９】
１つ以上のフェロモンまたは他の誘引化合物が、組成物自体の付加的成分として提供され、任意の適切な量、例えば、組成物の重量に対して、約０．０００１重量％〜約１、２、３、４または５重量％、より好ましくは組成物の重量に対して約０．００１重量％〜約０．０１または０．０５、さらには０．１重量％の量で含まれうる。
【００５０】
使用されるとき、１つ以上の誘引化合物、例えばフェロモンは、殺害獣組成物の誘因の対象となる所定の標的動物種に特異的であるように、選択されうる。したがって、適切な誘引化合物として、以下のいずれかの１つ以上が挙げられうる。
（ｉ）フェロモン、例えば、比較的高分子量（例えば、約２００，０００〜約３００，０００）の脂質ベースのフェロモンであり、好ましくは１つ以上の関連する標的哺乳生物または脊椎動物、特に、齧歯動物、例えばラットまたはマウスに特異的なフェロモン；または
（ｉｉ）有袋動物、ウサギ科動物およびイタチ科動物からなる群から選択される１つ以上の他の動物に特異的であるようなフェロモン；または
（ｉｉｉ）誘引化合物、例えば比較的低分子量（例えば、数百の桁数、例えば、約５００の領域）であり、好ましくは、１つ以上の関連する標的動物、例えば哺乳生物または脊椎動物、特に、齧歯動物に特異的な、誘引化合物。
【００５１】
適切な誘引化合物またはフェロモンの具体的な例としては、スクアレン、２−ヘプタノン、４−エチルフェノール、Ｅ，Ｅ−β−ファルネセン、Ｅ−α−ファルネセン、Ｒ，Ｒデヒドロ−ｅｘｏ−ブレビコミンおよびＳ−２−ｓｅｃ−ブチル−ジヒドロチアゾールのいずれかが挙げられうる。
【００５２】
本発明による組成物においては、１つ以上の付加的な任意の補助成分を、所望によりまたは必要に応じて、好ましくは少量で、例えば、組成物全体に対して約１、２、５または１０重量％以下で組成物中に含めてもよい。
【００５３】
そのような任意の付加的成分は、以下のいずれかの１つ以上が挙げられうる：
（ｉ）皮膚浸透促進剤：
−  例えば、１つ以上の活性成分の皮膚内へのおよび／または皮膚を通じた通過を促進または容易にするために使用することが既知の１つ以上の物質。そのような皮膚浸透促進剤の適切な例としては、以下の１つ以上またはその２つ以上の組み合わせが挙げられうる：
・脂肪酸、例えば、オレイン酸、リノール酸、リノレン酸、ラウリン酸、
・２−ピロリドン、
・プロピレングリコール、
・アルコール、例えば、エタノール、イソプロピルアルコール、メタノール、ベンジルアルコール、脂肪アルコール（例えば、飽和または不飽和Ｃ８〜Ｃ１４アルコール）、
・グリコール、例えば、ジエチレングリコール、プロピレングリコール、ブチルジグリコール、
・グリコールエーテル、例えば、ジエチレングリコールモノメチルエーテル、ジエチレングリコールモノエチルエーテルおよびジエチレングリコールモノ−ｎ−ブチルエーテル、
・グリセロールホルマール、
・ポリエチレングリコール、
・液体ポリオキシエチレングリコール、
・ピロリドン、例えば、Ｎ−メチルピロリドン（ＮＭＰ）、２−ピロリドン（２Ｐ）、
・アセトン、
・アセトニトリル，
・アミド、例えば、ジメチルアセトアミド、ジメチルホルムアミド、モノメチルアセトアミド、Ｎ，Ｎ−ジエチル−メタ−トルアミド（ＤＥＥＴ）、
・フタル酸エステル、例えば、フタル酸ジエチル、
・リン脂質、例えば、ホスファチジルコリン、水素化ダイズリン脂質、
・天然油、例えば、エミュー油、
・アゾン（１−ドデシルアザシクロヘプタン−２−オンまたはラウロカプラム）、
・テルペンおよびテルペノイド、
・精油、例えば、ユーカリ油、ケノポジ油、およびイランイラン、
・尿素、
・水。
【００５４】
上記の好ましいリストからの皮膚浸透促進剤が、組成物中に既に存在している好ましい溶媒または分散媒成分（または）毒性成分の担体系のための必須成分と同じ物質である実施形態においては、当該物質は両方の機能を有しうる。
【００５５】
（ｉｉ）湿潤剤：
・例えば１つ以上の界面活性剤、例えば、アニオン、カチオン、両性、両性イオンまたは非イオン界面活性剤）。
（ｉｉｉ）粘度調整剤：
・例えば、１つ以上の増粘剤または希薄成分、特に粘度増強剤について、特に１つ以上の物質は、好ましくは主要な有機材料（つまり実質的に水に不溶性の材料）に対して実質的に可溶であって、粘度を増加させることができ（つまり、前記物質を含まない物質の粘度と比較して）、例えばポリエチレングリコール、例えばＰＥＧ２００である。
（ｉｖ）共溶媒；
・例えば、１つ以上のプロトン性または非プロトン性溶媒、例えば水。
（ｖ）他の付加的物質：
・例えば、さらに１つの乳化剤、安定剤、保存料、皮膚軟化剤、香料、着色剤、または色素、ｐＨ調整剤、ゲル形成剤、泡形成剤、薬剤。
（ｖｉ）送達促進成分：
・例えば、１つ以上のエアロゾル噴射剤。その例は当該技術で周知である。
【００５６】
［組成物の送達のための送達装置］
本発明の一態様によれば、１つ以上の毒素剤を動物の皮膚に送達することにより動物を殺傷するための装置は、
（ｉ）動物が入ることができる囲いと、
（ｉｉ）本発明の第１の態様による組成物またはその実施形態もしくは実施例の組成物の供給物を含有する格納器手段と、
（ｉｉ）ある量の前記組成物を動物の皮膚に送達する送達手段と、
を含む。
【００５７】
そのような装置は、任意の既知の型、構造、および操作法のものでありうる。１つのそのような適切な装置は、本発明者らが先に行った国際特許出願である国際公開第２０１０／１０６３５２号に開示され説明されており、その出願の内容は、参照により本明細書に組み込まれる。標的動物に殺害獣剤（ｖｅｒｍｉｃｉｄｅ）または殺有害生物剤（ｐｅｓｔｉｃｉｄｅ）などの毒性物を送達するための送達装置について、他の様々な構成および設計が、当該技術で既知であり、本発明の組成物と共に使用するために適用可能であって、そのことは、当業者にとって容易に理解され、利用されうる。
【００５８】
したがって、本発明による組成物を送達するために使用する好ましいそのような装置において、囲いは、好ましくは罠の囲いでありえ、場合により、囲いの内部に置かれたまたは送達された餌または誘引可能物またはフェロモンにより誘引が促進されて、その囲いの中に標的動物が入りうる。
【００５９】
送達手段としては、好ましくは、スプレ、エアロゾル、または他の分配手段が挙げられ、これらにより、好ましくは液体組成物の適切な量、例えば、単回用量のみの標的動物を殺傷するために十分な量が、囲いの内部から、囲いの中に一旦入った標的動物上へ、特に局所的に標的動物の皮膚へ、送達される。そのようなスプレ、エアロゾル、または他の分配手段のための適切な構成および操作メカニズムは、例えば国際公開第２０１０／１０６３５２号（その開示は参照により本明細書に組み込まれる）の記載から、または標的動物に毒性物、例えば、殺有害生物剤を送達するための他の既知の害獣防除装置から、当該技術で周知である。
【００６０】
組成物の適切な体積または重量が、前記量または用量に適用されえ、それらの体積または重量は、例えば、組成物中の毒性成分の濃度および／または送達手段の大きさおよび／または性質に基づき選択されうる。非限定的な例として、例えば、約０．１ｍｌ（またはｇ）から約５または１０ｍｌ（またはｇ）、より好ましくは約０．５ｍｌ（またはｇ）から約２、３、４または５ｍｌ（またはｇ）程度の用量が、本発明による多くの実施形態組成物において、適切または一般的に配置されうる。
【００６１】
組成物自体は、液体の形態で、例えばスプレもしくはエアロゾルの形態で、または代替的にゲルもしくは泡形態で送達されうる。後者の目的のために、適切なゲル形成剤または発泡剤を用いることができ、このことは周知であり、当業者の知識の範囲内で容易に利用可能である。
【００６２】
格納器手段は、好ましくは、必要に応じてまたは必要な時に組成物を送達手段に供給できるように送達手段に連結されており、毒性物を標的動物に送達する既知の害獣防除装置における任意の適切な種類のものでありうる。
【００６３】
［本発明による組成物の調製］
本発明による組成物は、従来の装置および実験技術を使用して従来の方法で調製しうる。
【００６４】
特に多くの実施形態で、組成物の様々な成分が当該分野で広く使用されており、当業者に良く理解され使用されている既知の調製化学手法を使用して、単純混合されうる。
【００６５】
他の実施形態において、例えば、組成物が溶液、懸濁液、乳液、コロイド混合物もしくは溶液、リポソーム、ミセル、複合体、ナノ粒子またはフェロイドの形態の１つ以上の相を含む場合に、様々な相の様々な成分が、一般に利用可能で当業者に良く理解され使用されている既知の調製化学技術によって、同様に調製され、組み合わされて最終組成物を形成しうる。
【００６６】
本発明による組成物を作製するために使用される適切な調製技術の詳細な例は、下記の実施例で示される。
【００６７】
以下の実施例は、本発明の態様およびその好ましい特徴および実施形態をさらに例証するために提示され、添付の特許請求の範囲に定義される本発明の範囲を限定するように解釈されるものではない。
【実施例】
【００６８】
＜実施例１−組成物＞
１回の投与体積を１ｍｌとした本発明による殺鼠組成物を、以下の処方を用いて、列挙した成分を単純混合することにより調製した。：
成分                                  量
ビタミンＤ３（コレカルシフェロール）    ０．０９ｇ
エタノール＊                            ０．４０ｍｌ
ＤＭＳＯ＊                              ０．４０ｍｌ
ＰＥＧ２００                            ０．１５ｍｌ
水＊＊                                  ０．０４ｍｌ
＊  組成物は、５０：５０比率のエタノール／ＤＭＳＯで１ｍｌにする。
＊＊  存在する量の水は、組成物の好ましい成分ではない場合があるが、かなりの費用を掛けない限り除去できないため、容認される。
【００６９】
組成物は、粘度が４．０２センチポアズであり、ｐＨが７であった。
【００７０】
＜実施例２−コレカルシフェロール経皮送達のｉｎ−ｖｉｔｒｏ最適化＞
（Ａ）導入
コレカルシフェロール（ビタミンＤ３）は、夜行性小哺乳動物には低用量で毒性であるが、ヒトおよび鳥類に対しては比較的に許容限度の上限が高いことから、ヒトおよび多くの非標的脊椎動物および哺乳類に対しては安全な効果的な殺鼠剤となっている。経皮コレカルシフェロール送達を試験および最適化するために、合成膜を利用したｉｎ−ｖｉｔｒｏ試験を、皮膚撹乱成分として有用性が見込まれる様々な化学浸透促進剤を使用して、実施した。本発明での使用が適切な効果的かつ機能的な経皮製剤を提案するために、氷点、粘度および安定性などの製剤の物理的パラメータも調べた。
【００７１】
（Ｂ）材料と方法
Ｂ．１  材料
欧州薬局方等級のコレカルシフェロールおよびジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）をＦａｇｒｏｎ  ＵＫ  Ｌｔｄ（ＵＫ）から購入した。浸透促進剤であるエタノールおよびオレイン酸は、Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ  ＵＫ  Ｌｔｄ（Ｌｏｕｇｈｂｏｒｏｕｇｈ，ＵＫ）から購入し、一方で２−ピロリドン（２Ｐ）は、Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ  Ｃｏ（Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ，ＵＳＡ）から購入した。これらは全て、実験試薬等級であった。ｉｎ−ｖｉｔｒｏ試験のためのレシーバ相は、エタノール（Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ  ＵＫ  Ｌｔｄ（Ｌｏｕｇｈｂｏｒｏｕｇｈ，ＵＫ））、ポリエチレングリコール（ｍｗｔ２００，Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ  Ｃｏ（Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ，ＵＳＡ））および水で構成した。セルロース膜（Ｖｉｓｋｉｎｇ  ｔｕｂｉｎｇ）は、Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ  ＵＫ  Ｌｔｄ（Ｌｏｕｇｈｂｏｒｏｕｇｈ，ＵＫ）から購入した。氷点試験のために用いた熱電対はＫｔｙｐｅ（ＲＳ  Ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ  Ｌｔｄ，Ｎｏｒｔｈａｎｔｓ，ＵＫ）であり、一方、温度測定はデータロガー（ＲＳ  Ｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓ  Ｌｔｄ，Ｎｏｒｔｈａｎｔｓ，ＵＫ）を使用して記録した。
【００７２】
Ｂ．２  方法
Ｂ．２．１  ｉｎ−ｖｉｔｒｏ最適化試験
再生セルロース透析管（Ｖｉｓｋｉｎｇ  ｔｕｂｉｎｇ，Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ  ＵＫ  Ｌｔｄ（Ｌｏｕｇｈｂｏｒｏｕｇｈ，ＵＫ））が合成膜に使用されてきた（コリガン（Ｃｏｒｒｉｇａｎ），Ｏ．Ｉ．，ファーバー（Ｆａｒｖａｒ），Ｍ．Ａ．，＆  ヒグチ（Ｈｉｇｕｃｈｉ），Ｗ．Ｉ．（１９８０），“Ｄｒｕｇ  ｍｅｍｂｒａｎｅ  ｔｒａｎｓｐｏｒｔ  ｅｎｈａｎｃｅｍｅｎｔ  ｕｓｉｎｇ  ｈｉｇｈ  ｅｎｅｒｇｙ  ｄｒｕｇ  ｐｏｌｙｖｉｎｙｌｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ（ＰＶＰ）ｃｏ−ｐｒｅｃｉｐｉｔａｔｅｓ”，Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃｓ，５，２２９−２３８；ハイ（Ｈａｉｇｈ），Ｊ．Ｍ．，＆  スミス（Ｓｍｉｔｈ），Ｅ．Ｗ．（１９９４），“Ｔｈｅ  ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｕｓｅ  ｏｆ  ｎａｔｕｒａｌ  ａｎｄ  ｓｙｎｔｈｅｔｉｃ  ｍｅｍｂｒａｎｅｓ  ｆｏｒ  ｉｎ  ｖｉｔｒｏ  ｄｉｆｆｕｓｉｏｎ  ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｓ”，Ｅｕｒｏｐｅａｎ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，２（５−６），３１１−３３０；ワング（Ｗａｎｇ），Ｔ．，カシチャヤヌラ（Ｋａｓｉｃｈａｙａｎｕｌａ），Ｓ．，＆  グ（Ｇｕ），Ｘ．（２００６），“Ｉｎ  ｖｉｔｒｏ  ｐｅｒｍｅａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｒｅｐｅｌｌｅｎｔ  ＤＥＥＴ  ａｎｄ  ｓｕｎｓｃｒｅｅｎ  ｏｘｙｂｅｎｚｏｎｅ  ａｃｒｏｓｓ  ｔｈｒｅｅ  ａｒｔｉｆｉｃｉａｌ  ｍｅｍｂｒａｎｅｓ”，Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃｓ，３１０（１−２），１１０−７，ｄｏｉ：１０．１０１６／ｊ．ｉｊｐｈａｒｍ．２００５．１１．０３９）；ウィッシング（Ｗｉｓｓｉｎｇ），Ｓ．ａ，＆  ミューラー（Ｍｕｌｌｅｒ），Ｒ．Ｈ．（２００２），“Ｓｏｌｉｄ  ｌｉｐｉｄ  ｎａｎｏｐａｒｔｉｃｌｅｓ  ａｓ  ｃａｒｒｉｅｒ  ｆｏｒ  ｓｕｎｓｃｒｅｅｎｓ：ｉｎ  ｖｉｔｒｏ  ｒｅｌｅａｓｅ  ａｎｄ  ｉｎ  ｖｉｖｏ  ｓｋｉｎ  ｐｅｎｅｔｒａｔｉｏｎ”，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ  Ｒｅｌｅａｓｅ：Ｏｆｆｉｃｉａｌ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  ｔｈｅ  Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ  Ｒｅｌｅａｓｅ  Ｓｏｃｉｅｔｙ，８１（３），２２５−３３）。管を、細片に切断し、一端を閉じた。各製剤１ｍｌを、透析管に分配し、管を、４５ｍｌのレシーバ相を含有する５０ｍｌの遠心管に入れた。コレカルシフェロールは、疎水性化合物であり、実質的に水に不溶性であり、６％（ｖ／ｖ）ＰＥＧ２００を含有するエタノール水溶液（１：９（ｖ／ｖ））レシーバ相を使用した。レシーバ相の試料採取は、最初の４時間は１時間毎に行い、その後は２時間毎に実施した。各試料採取点で、５ｍｌのレシーバ相を除去し、ストックのレシーバ相と入れ換えた。抽出した５ｍｌのうち、１ｍｌを８回連続希釈（２５６倍希釈）して、ＨＰＬＣで分析した。レシーバ相の温度を、遠心管を熱水浴に浸漬することにより、２６℃に維持した。各製剤について、３つの複製物を用いた。
【００７３】
Ｂ．２．１．１  浸透促進剤および製剤調製
全部で５種の浸透促進剤ＤＭＳＯ、オレイン酸、エタノール、２Ｐ、および水を、膜を通じたコレカルシフェロールの移動の改善のために選択した。化学浸透促進剤、例えば、ＤＭＳＯ（ストートン（Ｓｔｏｕｇｈｔｏｎ），Ｒ．Ｂ．，＆  フリッツス（Ｆｒｉｔｓｃｈ），Ｗ．（１９６４），“Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ  ｏｆ  Ｄｉｍｅｔｈｙｌｓｕｌｆｏｘｉｄｅ（ＤＭＳＯ）ｏｎ  Ｈｕｍａｎ  Ｐｅｒｃｕｔａｎｅｏｕｓ  Ａｂｓｏｒｐｔｉｏｎ”，Ａｒｃｈ  Ｄｅｒｍａｔｏｌ，９０（５），５１２−５１７）は、抗ウイルス剤、ステロイドおよび抗生物質などの化合物の浸透を増強させることが示されている（ウィリアムス（Ｗｉｌｌｉａｍｓ），Ａ．Ｃ．，＆  バリー（Ｂａｒｒｙ），Ｂ．Ｗ．（２０１２），“Ｐｅｎｅｔｒａｔｉｏｎ  ｅｎｈａｎｃｅｒｓ”，Ａｄｖａｎｃｅｄ  Ｄｒｕｇ  Ｄｅｌｉｖｅｒｙ  Ｒｅｖｉｅｗｓ，６４，１２８−１３７；ｄｏｉ：１０．１０１６／ｊ．ａｄｄｒ．２０１２．０９．０３２）。ＤＭＳＯは、角質層の脂質チャネルを撹乱し、浸透剤の細胞間通過を促進させる。エタノールなどの有機溶媒は、角質層から脂質を抽出しながら同様の手法で浸透を増加させる。オレイン酸などの脂肪酸も、角質層に浸透剤が移動することのできる貯蔵所を作ることにより、皮膚透過を改善することが示されている（ラルセア（Ｌａｒｒｕｃｅａ），Ｅ．，アレラノ（Ａｒｅｌｌａｎｏ），ａ，サントヨ（Ｓａｎｔｏｙｏ），Ｓ．，＆  ヤルツア（Ｙｇａｒｔｕａ），Ｐ．（２００１），“Ｃｏｍｂｉｎｅｄ  ｅｆｆｅｃｔ  ｏｆ  ｏｌｅｉｃ  ａｃｉｄ  ａｎｄ  ｐｒｏｐｙｌｅｎｅ  ｇｌｙｃｏｌ  ｏｎ  ｔｈｅ  ｐｅｒｃｕｔａｎｅｏｕｓ  ｐｅｎｅｔｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｅｎｏｘｉｃａｍ  ａｎｄ  ｉｔｓ  ｒｅｔｅｎｔｉｏｎ  ｉｎ  ｔｈｅ  ｓｋｉｎ”，Ｅｕｒｏｐｅａｎ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃｓ  ａｎｄ  Ｂｉｏ  ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃｓ：Ｏｆｆｉｃｉａｌ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ａｒｂｅｉｔｓｇｅｍｅｉｎｓｃｈａｆｔ  ｆｕｒ  Ｐｈａｒｍａｚｅｕｔｉｓｃｈｅ  Ｖｅｒｆａｈｒｅｎｓｔｅｃｈｎｉｋ  ｅ．Ｖ，５２（２），１１３−９；メシュラム（Ｍｅｓｈｕｌａｍ），Ｙ．，カダール（Ｋａｄａｒ），Ｔ．，ウェニガー（Ｗｅｎｇｉｅｒ），Ａ．，ダヒア（Ｄａｃｈｉｒ），Ｓ．，＆  レヴィー（Ｌｅｖｙ），Ａ．（１９９３），“Ｔｒａｎｓｄｅｒｍａｌ  ｐｅｎｅｔｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｐｈｙｓｏｓｔｉｇｍｉｎｅ：Ｅｆｆｅｃｔｓ  ｏｆ  ｏｌｅｉｃ  ａｃｉｄ  ｅｎｈａｎｃｅｒ”，Ｄｒｕｇ  Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ，２８（４），５１０−５１５；モレイラ（Ｍｏｒｅｉｒａ），Ｔ．Ｓ．，ド・スーザ（ｄｅ  Ｓｏｕｓａ），Ｖ．Ｐ．，＆  ピエレ（Ｐｉｅｒｒｅ），Ｍ．Ｂ．Ｒ．（２０１０），“Ａ  ｎｏｖｅｌ  ｔｒａｎｓｄｅｒｍａｌ  ｄｅｌｉｖｅｒｙ  ｓｙｓｔｅｍ  ｆｏｒ  ｔｈｅ  ａｎｔｉ−ｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙ  ｌｕｍｉｒａｃｏｘｉｂ：ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ  ｏｆ  ｏｌｅｉｃ  ａｃｉｄ  ｏｎ  ｉｎ  ｖｉｔｒｏ  ｐｅｒｃｕｔａｎｅｏｕｓ  ａｂｓｏｒｐｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｉｎ  ｖｉｖｏ  ｐｏｔｅｎｔｉａｌ  ｃｕｔａｎｅｏｕｓ  ｉｒｒｉｔａｔｉｏｎ”，ＡＡＰＳ  ＰｈａｒｍＳｃｉＴｅｃｈ，１１（２），��２１−９；ｄｏｉ：１０．１２０８／ｓ１２２４９−０１０−９４２０−１）。
【００７４】
Ｂ．２．１．２  膜調製
セルロース膜を、使用前に、２％の重炭酸ナトリウム（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ  Ｃｏ（Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ，ＵＳＡ））と１ｍＭの蒸留水中エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）からなる１Ｌの洗浄液で洗浄した。セルロース膜を、溶液内に入れて温度を８０℃に上げ、その後、溶液をその温度で３０分（ｍ）維持した。洗浄後、膜を蒸留水で濯ぎ、蒸留水の浴中で最大５日間維持してから使用した。これは製造業者のガイドラインに従ったものである（Ｍｅｄｉｃｅｌｌ  Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  Ｌｔｄ，２００４）。
【００７５】
Ｂ．２．１．３  データ解析
ｉｎ−ｖｉｔｒｏ試験で使用した各製剤について、製剤の薬物フラックス（Ｊｓ）を計算した。この値は、レシーバチャンバの累積的薬物濃度を時間に対してプロットした後、以下の等式を用いて得た（バリー（Ｂａｒｒｙ），Ｂ．Ｗ．（１９８３），“Ｄｅｒｍａｔｏｌｏｇｉｃａｌ  Ｆｏｒｍｕｌａｔｉｏｎｓ”，ｐｐ．４９−９４，Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ，ＮＹ，Ｍａｒｃｅｌ  Ｄｅｋｋｅｒ  Ｉｎｃ．；グワァク（Ｇｗａｋ），Ｈ．Ｓ．，＆  チュン（Ｃｈｕｎ），Ｉ．Ｋ．（２００２），“Ｅｆｆｅｃｔ  ｏｆ  ｖｅｈｉｃｌｅｓ  ａｎｄ  ｐｅｎｅｔｒａｔｉｏｎ  ｅｎｈａｎｃｅｒｓ  ｏｎ  ｔｈｅ  ｉｎ  ｖｉｔｒｏ  ｐｅｒｃｕｔａｎｅｏｕｓ  ａｂｓｏｒｐｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｅｎｏｘｉｃａｍ  ｔｈｒｏｕｇｈ  ｈａｉｒｌｅｓｓ  ｍｏｕｓｅ  ｓｋｉｎ”，Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃｓ，２３６（１−２），５７−６４）：
【数１】
2017502958.tif 000002
ここで、Ａは断面積（ｃｍ２）を指し、（ｄＱ／ｄｔ）ｓｓは膜を横切る薬物の透過（ｐｅｒｍｕｔａｔｉｏｎ）の時間に対する速度（ｍｇ／ｈ）を示す。レシーバチャンバで受けた薬物の累積量を時間に対して構成して線をプロットすることにより、（ｄＱ／ｄｔ）ｓｓが、安定状態（つまり相関関係が直線になるとき）の線の勾配を決定することによって計算されうる。これに加えて、通常、遅延時間が計算される。しかしながら、合成膜の性質により、遅延時間は全ての製剤に対して一瞬であると考えられる。
【００７６】
Ｂ．２．１．４  ＨＰＬＣ解析
全てのコレカルシフェロール製剤の定量分析は、ダイオードアレイを使用して、高速液体クロマトグラフィで実施した（Ｐｒｏｍｉｎｅｎｃｅ  Ｍｏｄｕｌａｒ  ＨＰＬＣ（Ｓｈｉｍａｄｚｕ  Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ，Ｊａｐａｎ））。検出波長を２６５ｎｍに設定した。Ｌｕｎａ  ３μ  ＮＨ２  １００Ａカラム（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ，Ｃｈｅｓｈｉｒｅ，ＵＫ）、寸法：１５０×４．６ｍｍを、ＮＨ２  ３ｍｍ  ＩＤセキュリティーガードおよびホルダと共に使用した。全流速は２ｍｌ／分であり、ランタイムは６分であった。移動相は、９９：１（ｖ／ｖ）ヘキサン／イソプロパノールから構成した。ランの最初の３分は、１：９９〜５０：５０（ｖ／ｖ）の勾配比率を使用し、その後は、移動相を元の比率に戻した。コレカルシフェロールの濃度を、コレカルシフェロールについて２６５ｎｍで作成した標準曲線（ｒ２＝０．９９９）の勾配による等式を使用して、各アッセイについて計算した。
【００７７】
Ｂ．２．２  物理的最適化
適切な浸透促進剤の決定に加えて、有効性および実用性の両立のために製剤の物理的性質を最適化することも必要である。この目的のために、製剤を評価して完全なものにするために、一連の物理的パラメータ、つまり、安定性、氷点、粘度および溶解性についても同定した。これらのパラメータを最適化することにより、選択した化学浸透促進剤が最も効果的に作用すると考えられる。
【００７８】
Ｂ．２．２．２  安定性試験
選択した浸透促進剤におけるコレカルシフェロールの安定性は、製剤の物理的安定性を解析するときに、重要な考慮点である。不安定な製剤は、コレカルシフェロールの分解を生じさせ、致死量未満しか送達されない。コレカルシフェロールは、光、熱および空気に敏感であり、酸化防止剤を含まない溶液では不安定であると報告されている（Ｂｒｉｔｉｓｈ  Ｐｈａｒｍａｃｏｐｏｅｉａ．（２０１２），“Ｃｏｌｅｃａｌｃｉｆｅｒｏｌ”，英国薬局方）。結晶コレカルシフェロールは、酸化が促進される条件で分解する（フーバー（Ｈｕｂｅｒ），Ｗ．，＆  バーロウ（Ｂａｒｌｏｗ），Ｏ．Ｗ．（１９４３），“Ｃｈｅｍｉｃａｌ  ａｎｄ  ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ  ｓｔａｂｉｌｉｔｙ  ｏｆ  ｃｒｙｓｔａｌｌｉｎｅ  ｖｉｔａｍｉｎｓ  Ｄ２  ａｎｄ  Ｄ３  ａｎｄ  ｔｈｅｉｒ  ｄｅｒｉｖａｔｉｖｅｓ”，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ  Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，１４９，１２５−１３７）；結晶形態の分解を調べたところ、３５％および８５％の効力の減少が、それぞれ４０℃／４５％ＲＨおよび４０℃／８５％ＲＨで７日間維持された場合に示唆される（グラディ（Ｇｒａｄｙ），Ｌ．Ｔ．，＆  タッカー（Ｔｈａｋｋｅｒ），Ｋ．Ｄ．（１９８０），“Ｓｔａｂｉｌｉｔｙ  ｏｆ  ｓｏｌｉｄ  ｄｒｕｇｓ：Ｄｅｇｒａｄａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｅｒｇｏｃａｌｃｉｆｅｒｏｌ  ａｎｄ  ｃｈｏｌｅｃａｌｃｉｆｅｒｏｌ  ａｔ  ｈｉｇｈ  ｈｕｍｉｄｉｔｙ  ａｎｄ  ｅｌｅｖａｔｅｄ  ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｓ”，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，６９（９），１０９９−１１０２）。逆に、界面活性剤および油中のコレカルシフェロールは、４０℃で長期間安定であるといわれる。選択された浸透促進剤と組み合わせた時のコレカルシフェロールの安定性を評価するために、加速安定性試験を行った。様々な種類および濃度の透過促進剤を用いた合計６種の製剤を、２５℃±２℃／６０％ＲＨ±５％で加速安定キャビネットに保存した。各製剤には、１０％（ｗ／ｖ）のコレカルシフェロールを含めた。各製剤は、安定性試験の予定開始日の１日前までに作製し、水浴／シェーカ内に２５℃で一晩放置し、コレカルシフェロールを十分に溶解させた。琥珀色ボトルを使用して光分解を防ぎ、パラフィルムを使用してねじ蓋周辺を閉じ、空気による酸化分解を防いだ。各試料採取点で、蓋を取り、２００μｌを採取し、試料を８回連続希釈（２５６倍希釈）して、ＨＰＬＣ分析を行った。
【００７９】
Ｂ．２．２．２．１  氷点試験
コレカルシフェロールを含有する殺鼠剤製剤の実際的使用に関しては、製剤の氷点を決定する必要がある。殺鼠剤は、様々な範囲の温度に曝露され、所望しない相の変化が生じた場合には殺鼠剤が効果を失う可能性がある。浸透促進剤を含有する製剤の最大氷点を決定するために、製剤を−８０℃凍結機で凍結した。選択した８つの製剤それぞれを体積１ｍｌで９６ウェルプレートの別個のウェルに加えた。凍結曲線および対応する氷点は、Ｋ−型熱電対を使用して観測した。このプロセスを３回繰り返し、平均値を計算した。脱イオン水およびＤＭＳＯを使用して、熱電対の精度を決定した。
【００８０】
Ｂ．２．２．３  粘度試験
局所適用は、液体から粉体まで多くの形態をとりうる。しかしながら、皮膚への活性成分の生物学的利用能を増加させることが適用の目的にあるとき、理論により、薬剤をよく放出するゲル様製剤が指示される（オールトン（Ａｕｌｔｏｎ），Ｍ．Ｅ．（２００７），“Ａｕｌｔｏｎ’ｓ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃｓ：ｔｈｅ  ｄｅｓｉｇｎ  ａｎｄ  ｍａｎｕｆａｃｔｕｒｅ  ｏｆ  ｍｅｄｉｃｉｎｅｓ”，Ｅｄｉｎｂｕｒｇｈ；Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ：Ｃｈｕｒｃｈｉｌｌ  Ｌｉｖｉｎｇｓｔｏｎｅ）。これに対して、コレカルシフェロールの場合には、エタノールとの単純混合により、十分な皮膚の透過が可能となった。エタノールは比較的低い密度０．８０５〜０．８１２ｇ／ｃｍ３（Ｂｒｉｔｉｓｈ  Ｐｈａｒｍａｃｏｐｉｅａ，（２０１３），“Ｅｔｈａｎｏｌ  （９６  ｐｅｒｃｅｎｔ）”、２０１３年１月２９日にｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｐｈａｒｍａｃｏｐｏｅｉａ．ｃｏ．ｕｋ／ｂｐ２０１３／ｉｘｂｉｎ／ｂｐ．ｃｇｉ？ａ＝ｄｉｓｐｌａｙ＆ｒ＝５ｒ９ｗＩＬｂＷ９ｅｓ＆ｎ＝４５７＆ｉｄ＝７６１４＆ｔａｂ＝ｓｅａｒｃｈから読出）を有し、「水っぽい」製剤になる。製剤を最適化するために、粘度の増加が必要と思われる。粘度を増加させるためには、増粘剤が必要となる。したがって、最適な浸透促進剤を同定するために、一連の増粘剤について、適性と増粘効果を試験した。粘度測定は、１．６径のキャピラリーカラムを使用して、自動化Ｍｉｃｒｏ  Ｖｉｓｃｏｍｅｔｅｒ（Ａｎｔｏｎ  Ｐａａｒ，Ｓｔ  Ａｌｂａｎｓ，ＵＫ）で行った。測定前に、各製剤の密度を、残部（Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ  Ｍｅｃｈａｔｒｏｎｉｃｓ  ＵＫ  Ｌｔｄ，Ｓｕｒｒｅｙ，ＵＫ）に既知の体積の溶液を加えながら質量を記録することにより計算した。増粘剤の粘度測定に加えて、コレカルシフェロールの増粘効果も定量した。密度と粘度の両方の測定時点での温度を温度計で記録し、２０〜２１℃の範囲にした。
【００８１】
Ｂ．２．２．４  溶解性試験
提唱する製剤に対するコレカルシフェロールの溶解性を、英国薬局方を参照しながら試験し、１ｍｌ／ｇ未満の溶解性である場合は、極めて溶けやすい、１〜１０ｍｌ／ｇの溶解性である場合は、溶けやすい（ｆｒｅｅｌｙ  ｓｏｌｕｂｌｅ）、と分類した。最初に、コレカルシフェロールが関連する製剤によく溶解するかを決定するために、０．９９ｍｌの製剤を１ｇのコレカルシフェロールに添加した。溶液を水浴に入れ、２０℃で２４時間、維持した。各溶液を目視観察した後、各溶液について３つの試料を、１２回連続希釈（４０９６倍希釈）して、ＨＰＬＣで分析した。次いで溶液中のコレカルシフェロールの濃度を測定し、記録した。解析または目視検査により、コレカルシフェロールが十分に溶解していないことが示唆される場合には、さらに１ｍｌの製剤を加え、ＨＰＬＣで行われた３つの測定全てが一致するまで試験工程を繰り返した。
【００８２】
（Ｃ）結果
Ｃ．１  ｉｎ−ｖｉｔｒｏ最適化
図１は、適切な浸透促進剤、つまりコレカルシフェロールに対する担体系についての．ｉｎ−ｖｉｔｒｏ研究から得られた結果を示す。全ての製剤で１０％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロールを使用した；合計で１ｍｌを、下記表１に示されるように各製剤に使用した。拡散面積は、およそ４０ｃｍ２であった。
【００８３】
結果から、ＤＭＳＯ／エタノールの９０：１０（ｖ／ｖ）混合物で、コレカルシフェロールの膜を通じた最も迅速な拡散が得られることが示唆される。残りの浸透促進剤は、同様の浸透速度を示唆する。興味深いことに、２番目に良好な実施製剤は、９０：１０（ｖ／ｖ）のＤＭＳＯ／オレイン酸の組み合わせであり、これもＤＭＳＯの割合が高かった。これから、ＤＭＳＯ／エタノールの共溶媒についてさらに調べるべきと思われる。
【００８４】
【表１】
2017502958.tif 000003
【００８５】
図２は、コレカルシフェロールを異なる比率のＤＭＳＯおよびエタノールに溶解したときの測定された浸透速度を示す。先の実験から、ＤＭＳＯとエタノールとが、コレカルシフェロールの浸透速度を増加させることが考えられた。しかしながら、最適比率は不明であり、そのため、第２の実験は様々な比率のＤＭＳＯ／エタノールを使用して実施した。
【００８６】
図２は、異なるＤＭＳＯとエタノールの比率を用いたコレカルシフェロールの浸透増強を示す。全ての溶液は１０％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロールを含有する；合計で１ｍｌを下記表１Ａに示される各製剤で使用した。
【００８７】
【表２】
2017502958.tif 000004
【００８８】
図２の結果から、ＤＭＳＯとエタノールとが５０：５０（ｖ／ｖ）〜９０：１０（ｖ／ｖ）の範囲内の様々な比率で溶解される場合には、コレカルシフェロールの浸透増強に顕著な差異が無いことが示唆される。
【００８９】
Ｃ．２  安定性試験
図３には、様々な比率のＤＭＳＯとエタノールとに溶解したときの、コレカルシフェロールの加速安定性試験の結果が示される。全ての製剤が、１０％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロールを含んだ。図３は、琥珀色ボトル内に密封され、加速安定性キャビネット２５℃±２℃／６０％ＲＨ±５％に配置された場合のコレカルシフェロールの分解を示す。ＤＭＳＯとエタノールとの様々な比率を使用して、ＤＭＳＯを含めることにより、コレカルシフェロールの分解増加が生じるかを確かめた。
【００９０】
結果から、５０日の期間を超えると、２７．１１％（＋／−１．２９％）のコレカルシフェロール分解が全ての製剤にわたって生じ、このうち最初の１０日間に１６．８３％（＋／−１．４８％）の分解が生じることが示唆される。先に公開されたエタノール製剤（アグニュー（Ａｇｎｅｗ），Ｗ．Ｒ．（２０１１），“Ｔｏｐｉｃａｌ  Ｐｅｓｔｉｃｉｄｅ  Ｆｏｒｍｕｌａｔｉｏｎ”、米国特許）と比べると、ＤＭＳＯの含有は、分解を速めることはつながらない。
【００９１】
Ｃ．３  氷点試験
これらのｉｎ−ｖｉｔｒｏ試験から、ＤＭＳＯとエタノールとの混合物が、合成膜を通じてコレカルシフェロールを移動させるための最も効果的な浸透促進剤、つまり担体系であることが示唆された。許容されるエタノールとＤＭＳＯの氷点は、それぞれ−１１４．６℃と１８．３℃である。高濃度のＤＭＳＯは、浸透促進剤として非常に効果的である一方、高用量で使用することは実際的でない。この製剤の商業的使用は、その屋外での使用のために、この製剤が一連の温度範囲で液相でなければならないことを指示する。他方で、エタノールは氷点が低い。したがって、製剤が実用的になる比率を決定するために、２溶媒の組み合わせの氷点を調べた。
【００９２】
図４は、氷点を調べて得られた結果を示す。これらの結果は、溶質（この場合は活性成分）の添加により氷点が低下するときの最大氷点を示す。これらの測定値に加えて、実験系で、０．３２＋／−０．１１℃の脱イオン水の氷点を測定した。
【００９３】
５０／５０（ｖ／ｖ）および６０／４０（ｖ／ｖ）ＤＭＳＯ／エタノール混合物を含む製剤で、氷点はそれぞれ−３５．４５＋／−１．２６℃および−２０．０６＋／−１．８３℃であった。試験した残りの混合物は全て−７℃以上で凍結した。
【００９４】
Ｃ．４  粘度試験
選択した天然ゴムおよび半合成材料を、製剤への添加剤として使用した。一般的には、これらの化合物は、比較的低濃度で粘度への有意な効果を与えることができることから理想的な増粘剤である。しかしながら、コレカルシフェロールは、親油性化合物であるため、使用する溶媒は有機溶媒であり、多くの水溶性増粘剤は適切でない、少なくとも最適または好適でない可能性がある。下記表２に、製剤に対して適切でないまたは比較的好ましくない天然ゴムおよび半合成材料の選択を示す。表２には、増粘剤としての使用がそれほど適切でない試験材料を示す。
【００９５】
【表３】
2017502958.tif 000005
【００９６】
これらの材料に対するより好ましい代替物はポリエチレングリコールであり、一定範囲の分子量をもたらすことができ、有機溶媒に可溶である。
【００９７】
下記図５は、ＰＥＧ２００の浸透促進剤に対する粘度増強効果とコレカルシフェロール自体の増粘効果を示し、コレカルシフェロールと増粘剤の化学浸透促進剤に対する作用を示す。全ての粘度測定は、５０：５０ＤＭＳＯ／エタノール中の溶質パーセンテージであり、＋／−０．００３ｍＰａ．ｓのＳＤを有する。
【００９８】
下記表３は、製剤の粘度への、コレカルシフェロールとＰＥＧ２００の両方を組み合わせた増粘効果を示唆する。ＰＥＧ２００の最大量は、１５％（ｖ／ｖ）であり、これにより、５０：５０ＤＭＳＯ／エタノール浸透促進剤の使用が可能となり、コレカルシフェロールの十分な溶解が促進される。
【００９９】
【表４】
2017502958.tif 000006
【０１００】
高分子量ＰＥＧも使用しうるが、分子量の増加は氷点の増加を引き起こす。したがって、ＰＥＧ２００が好ましい増粘剤として同定された。
【０１０１】
Ｃ．５  溶解性試験
下記表４は、浸透促進剤（５０：５０（ｖ／ｖ）ＤＭＳＯ／エタノール）と、提案される増粘剤（１５％（ｖ／ｖ）ＰＥＧ２００）を含む浸透促進剤の両方についてのおよその溶解度と対応する分類を示す。エタノールは、参照物としても表に含まれる。結果から、ＰＥＧ２００を製剤に添加するときに溶解性が低下することが示唆される。
【０１０２】
【表５】
2017502958.tif 000007
【０１０３】
およその溶解性は、最初に０．９９ｍｌの溶媒を１ｇのコレカルシフェロールに加え、次いで溶液から得られる３つの別個の試料にＨＰＬＣ分析を行うことによって計算した。
工程はＨＰＬＣで分析した３つ試料で同じ濃度が示唆されるまで繰り返し、その点で添加された全体積を、ＨＰＬＣによって計算されるバイアル中のコレカルシフェロールの量で割った。エタノールについての分類は、英国薬局方から得られる（Ｂｒｉｔｉｓｈ  Ｐｈａｒｍａｃｏｐｉｅａ  （２０１３），“Ｃｏｌｅｃａｌｃｉｆｅｒｏｌ”，２０１３年１月３０日にｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｐｈａｒｍａｃｏｐｏｅｉａ．ｃｏ．ｕｋ／ｂｐ２０１３／ｉｘｂｉｎ／ｂｐ．ｃｇｉ？ａ＝ｄｉｓｐｌａｙ＆ｒ＝ｊＦＵｌｑｇ０ｂｌＹｊ＆ｎ＝３＆ｉｄ＝７８０３＆ｔａｂ＝ｓｅａｒｃｈから読出）。
【０１０４】
（Ｄ）考察
アグニュー（Ａｇｎｅｗ）（アグニュー（Ａｇｎｅｗ），Ｗ．Ｒ．（２０１０），“Ｔｏｐｉｃａｌ  ｐｅｓｔｉｃｉｄｅ  ｆｏｒｍｕｌａｔｉｏｎ”，国際公開第２０１０／０７１４５０  Ａ１号、世界知的所有権機関）は、エタノール中に２０％（ｗ／ｖ）のコレカルシフェロールを含む経皮製剤が、ｉｎ−ｖｉｖｏで効果を示すことを提唱している。本研究では、コレカルシフェロール薬物フラックスの増加を生じさせる改善された製剤を示すためにｉｎ−ｖｉｔｒｏ方法を使用している。
【０１０５】
結果から、ＤＭＳＯを高い割合（５０〜９０％）で含む製剤は、人工膜を通じた薬物フラックスの測定値を増加させることが示唆される。初期試験では、エタノール（０．１３＋／−０．００３５ｍｇ／ｃｍ２ｈ）と比較して、９０：１０（ｖ／ｖ）ＤＭＳＯ／エタノール（０．２５＋／−０．０１９ｍｇ／ｃｍ２ｈ）または９０：１０（ｖ／ｖ）ＤＭＳＯ／オレイン酸（０．１８＋／−０．０２２ｍｇ／ｃｍ２ｈ）の場合に薬物フラックスが増加することが示唆された。さらなる試験により、薬物フラックスの増加が、より低いエタノール中ＤＭＳＯ濃度で起こること（５０：５０（ｖ／ｖ）ＤＭＳＯ／エタノールについて０．１９＋／−０．０１１）が示唆される。このように、ＤＭＳＯとエタノールとの組み合わせが、先に公開されているエタノール製剤と比較して改善されたフラックスを示すことから、好ましい化学浸透促進剤、つまり担体系として選択された。
【０１０６】
エタノール製剤への水の添加（０．１６＋／−０．０２３ｍｇ／ｃｍ２ｈ）および２Ｐを含む製剤（０．０８３＋／−０．０１７ｍｇ／ｃｍ２ｈ）は、エタノールのみを含む（０．１３＋／−０．００３５ｍｇ／ｃｍ２ｈ）製剤との間で実質的な差異を示さなかった。これにより、これらの化学浸透促進剤は、残りの試験から排除した。これらの浸透促進剤、特にオレイン酸は、他の試験ではうまく作用しているが（ラルセア（Ｌａｒｒｕｃｅａ），Ｅ．，アレラノ（Ａｒｅｌｌａｎｏ），ａ，サントヨ（Ｓａｎｔｏｙｏ），Ｓ．，＆  ヤルツア（Ｙｇａｒｔｕａ），Ｐ．（２００１），“Ｃｏｍｂｉｎｅｄ  ｅｆｆｅｃｔ  ｏｆ  ｏｌｅｉｃ  ａｃｉｄ  ａｎｄ  ｐｒｏｐｙｌｅｎｅ  ｇｌｙｃｏｌ  ｏｎ  ｔｈｅ  ｐｅｒｃｕｔａｎｅｏｕｓ  ｐｅｎｅｔｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｅｎｏｘｉｃａｍ  ａｎｄ  ｉｔｓ  ｒｅｔｅｎｔｉｏｎ  ｉｎ  ｔｈｅ  ｓｋｉｎ”，Ｅｕｒｏｐｅａｎ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃｓ  ａｎｄ  Ｂｉｏｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃｓ：Ｏｆｆｉｃｉａｌ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ａｒｂｅｉｔｓｇｅｍｅｉｎｓｃｈａｆｔ  ｆｕｒ  Ｐｈａｒｍａｚｅｕｔｉｓｃｈｅ  Ｖｅｒｆａｈｒｅｎｓｔｅｃｈｎｉｋ  ｅ．Ｖ，５２（２），１１３−９；メシュラム（Ｍｅｓｈｕｌａｍ），Ｙ．，カダール（Ｋａｄａｒ），Ｔ．，ウェニガー（Ｗｅｎｇｉｅｒ），Ａ．，ダヒア（Ｄａｃｈｉｒ），Ｓ．，＆  レヴィー（Ｌｅｖｙ），Ａ．（１９９３），“Ｔｒａｎｓｄｅｒｍａｌ  ｐｅｎｅｔｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｐｈｙｓｏｓｔｉｇｍｉｎｅ：Ｅｆｆｅｃｔｓ  ｏｆ  ｏｌｅｉｃ  ａｃｉｄ  ｅｎｈａｎｃｅｒ”，Ｄｒｕｇ  Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ，２８（４），５１０−５１５；モレイラ（Ｍｏｒｅｉｒａ），Ｔ．Ｓ．，ド・スーザ（ｄｅ  Ｓｏｕｓａ），Ｖ．Ｐ．，＆  ピエレ（Ｐｉｅｒｒｅ），Ｍ．Ｂ．Ｒ．（２０１０），“Ａ  ｎｏｖｅｌ  ｔｒａｎｓｄｅｒｍａｌ  ｄｅｌｉｖｅｒｙ  ｓｙｓｔｅｍ  ｆｏｒ  ｔｈｅ  ａｎｔｉ−ｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙ  ｌｕｍｉｒａｃｏｘｉｂ：ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ  ｏｆ  ｏｌｅｉｃ  ａｃｉｄ  ｏｎ  ｉｎ  ｖｉｔｒｏ  ｐｅｒｃｕｔａｎｅｏｕｓ  ａｂｓｏｒｐｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｉｎ  ｖｉｖｏ  ｐｏｔｅｎｔｉａｌ  ｃｕｔａｎｅｏｕｓ  ｉｒｒｉｔａｔｉｏｎ”，ＡＡＰＳ  ＰｈａｒｍＳｃｉＴｅｃｈ，１１（２），６２１−９，ｄｏｉ：１０．１２０８／ｓ１２２４９−０１０−９４２０−１）、結果は、ＤＭＳＯが、コレカルシフェロールに対してより良好な代替物質であることを示唆する。これらの結果は、部分的に、使用した人工膜の結果でありうる。オレイン酸と２Ｐは、角質層中に貯蔵所を生じるように作用し、移動する浸透物に対してより大きな経路を与えることが示唆される。一方で、水は、皮膚に水和作用し、親水性化合物の薬物フラックスを増加させることが示唆される。この実験で使用したセルロース膜などの人工膜において、これらの浸透メカニズムは生じない：しかしながら、コレカルシフェロールは疎水性（実質的に水に不溶）であるので角質層の脂質薄膜を通って自由に移動することができる。したがってコレカルシフェロールについての最も有利なメカニズムは、膜が撹乱されうることである。おそらくは、こ���状況がセルロース膜で再現され、ＤＭＳＯが膜の孔径を増加させ、コレカルシフェロールのレシーバ相への迅速な拡散を促進させている。
【０１０７】
ＤＭＳＯは、浸透促進剤として広く認められている一方で、医薬品の経皮送達には一般的に使用されていない。ＤＭＳＯは、皮膚を軽度に刺激し、口内で不快な風味を生じさせる。但し、本製剤の目的は、殺鼠剤としての用途である。したがってこれらの要素は、重要ではあるが、効果と比較して考えるべきものである。代替的な化学浸透促進剤は、コレカルシフェロールの作用を延長させるためのもので、これらの初期的問題を無視しうる。
【０１０８】
ＤＭＳＯに関連する化学的問題に加えて、物理的問題も存在しうる。ＤＭＳＯの氷点は１８．３℃であり、室温では液体であるが、その温度未満では固体である。所望される使用のために、殺鼠剤は多種多様な環境で使用できなければならず、その１つが低温状態である。意図する標的が夜行性の種である場合、このことは特に問題でありえ、一晩の温度の低下により、高い割合でＤＭＳＯ製剤の効果が失われうる。製剤の氷点を下げるため、一連の比率のＤＭＳＯ／エタノールを調べて、浸透増強とエタノールの低い氷点（−１１４．６℃）の両方を利用しうる比率を決定した。この目的のために、５０：５０（ｖ／ｖ）ＤＭＳＯ／エタノールの比率に着目し、好ましい製剤の基礎としてさらなる試験を行った。
【０１０９】
薬物浸透理論によれば、ゲル様均質性を有する製剤により、皮膚の輪郭に添うことが可能になり、活性成分の生物学的利用能を増加させることが指示される。したがって、製剤の粘度を増加させることが、薬物フラックスを改善するために望ましいと考えられた。一連の増粘剤について、粘度を上げるために試験した。しかしながら、適切な薬剤の決定は、ほぼ全てが有機溶媒で構成される製剤では困難であった。最終的にＰＥＧ２００が好ましい増粘剤として際立った。しかしながら、粘度について顕著な効果を得るためには、高い割合の１５％（ｖ／ｖ）が必要であった。この量は、天然ガムでは０．１〜１％（ｗ／ｖ）の濃度範囲で粘度が顕著に増加されることに対して、特に高い。
【０１１０】
検討した最後の２つのパラメータは、改善の余地のある客観的な実施に役立つ。コレカルシフェロールのエタノールへの溶解性は、溶けやすいとして定義され、１〜１０ｍｌ／ｇが溶質を完全に溶解させるために使用しうることを意味する。アグニュー（Ａｇｎｅｗ）（アグニュー（Ａｇｎｅｗ），Ｗ．Ｒ．（２０１０），“Ｔｏｐｉｃａｌ  ｐｅｓｔｉｃｉｄｅ  ｆｏｒｍｕｌａｔｉｏｎ”，国際公開第２０１０／０７１４５０  Ａ１号、世界知的所有権機関）の提唱する製剤は、２０％（ｗ／ｖ）の高用量のコレカルシフェロールを必要とし、製剤に変化が生じるときに溶解度の損失が誘発されないことが重要となる。この点に関して、試験した全ての製剤について、コレカルシフェロールはやや溶けやすく、製剤操作により有効量の送達が妨げられないことが示唆される。
【０１１１】
最後に、市販品については、製品の安定性が、定義された時間で確認されなければならない。このパラメータに関して、結果から、２５℃±２℃／６０％ＲＨ±５％で５０日後に、２７．１１％（＋／−１．２９％）の能力低下があることが示唆される。コレカルシフェロールは光、熱、空気に対して敏感であるが、琥珀色のボトルの使用により、能力低下の原因となる光分解がなくなる。酸化、熱、またはこの２つの組み合わせが、能力低下の要因となることが提案される。これらの問題を無くすための様々な利用可能な選択肢があり、例えば、酸化分解に対向するために窒素またはいくつかの他の不活性ガス下で充填などの製造操作を実施すること、または化学的に酸化防止剤を添加することなどが考えられうる。
【０１１２】
（Ｅ）結論
コレカルシフェロールの最適化のためのｉｎ−ｖｉｔｒｏ試験の結果から、ＤＭＳＯとエタノールを含む担体系が、人工膜を通じたコレカルシフェロールの薬物フラックスを、先に公開されたエタノール製剤と比較して増加させることが示唆される（エタノールでの０．１３＋／−０．００３５ｍｇ／ｃｍ２ｈと比較して、５０：５０（ｖ／ｖ）ＤＭＳＯ／エタノールでは０．１９＋／−０．０１１ｍｇ／ｃｍ２ｈ）。
【０１１３】
氷点および粘度などのパラメータも、製剤を効果的かつ機能的にするために調整した。ＤＭＳＯとエタノールの比率が、溶質無しで−３５．４５＋／−１．２６℃の氷点を達成するために操作された（５０／５０（ｖ／ｖ）ＤＭＳＯ／エタノール）。一方、１５％のＰＥＧ２００の添加により、製剤の粘度が、９％（ｗ／ｖ）のコレカルシフェロールを含有する製剤に対して２．５８ｍＰａ．ｓに増加した。溶けやすい（１〜１０ｍｌ／ｇ）という溶解性分類はこの製剤でも維持され、有効量を溶液に溶解させることができた。
【０１１４】
＜実施例３−コレカルシフェロールのラット皮膚取込みのためのｉｎ−ｖｉｔｒｏ、ｉｎ−ｖｉｖｏモデル＞
（Ａ）導入
この実施例では、２つのｉｎ−ｖｉｔｒｏモデルと、真皮を通じたコレカルシフェロールの送達を最適化するよう設計した対応するｉｎ−ｖｉｖｏデータを提示する。
【０１１５】
（Ｂ）材料と方法
Ｂ．１  材料
欧州薬局方等級コレカルシフェロールを、Ｆａｇｒｏｎ  ＵＫ  Ｌｔｄ（Ｎｅｗｃａｓｔｌｅ  ｏｎ  Ｔｙｎｅ，ＵＫ）から購入した。浸透促進剤のエタノール、オレイン酸、およびジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）は、Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ  ＵＫ  Ｌｔｄ（Ｌｏｕｇｈｂｏｒｏｕｇｈ，ＵＫ）から購入し、一方、２−ピロリドンは、Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ  Ｃｏ（Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ，ＵＳＡ）から購入し、これらは全て実験試薬等級であった。メチルセルロース（Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ  ＵＫ  Ｌｔｄ（Ｌｏｕｇｈｂｏｒｏｕｇｈ，ＵＫ））およびポリエチレングリコール（ｍｗｔ２００，ＰＥＧ２００）（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ  Ｃｏ（Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ，ＵＳＡ））を粘度調整剤として使用した。ｉｎ−ｖｉｔｒｏ試験のためのレシーバ相は、エタノール（Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ  ＵＫ  Ｌｔｄ（Ｌｏｕｇｈｂｏｒｏｕｇｈ，ＵＫ））、ポリエチレングリコール（ｍｗｔ２００，Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ  Ｃｏ（Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ，ＵＳＡ））および脱イオン水で構成した。再生セルロース透析膜（Ｖｉｓｋｉｎｇ  ｔｕｂｉｎｇ，Ｆｉｓｈｅｒ  Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ  ＵＫ  Ｌｔｄ（Ｌｏｕｇｈｂｏｒｏｕｇｈ，ＵＫ））が合成膜に使用されてきた（コリガン（Ｃｏｒｒｉｇａｎ），Ｏ．Ｉ．，ファーバー（Ｆａｒｖａｒ），Ｍ．Ａ．，＆  ヒグチ（Ｈｉｇｕｃｈｉ），Ｗ．Ｉ．（１９８０），“Ｄｒｕｇ  ｍｅｍｂｒａｎｅ  ｔｒａｎｓｐｏｒｔ  ｅｎｈａｎｃｅｍｅｎｔ  ｕｓｉｎｇ  ｈｉｇｈ  ｅｎｅｒｇｙ  ｄｒｕｇ  ｐｏｌｙｖｉｎｙｌｐｙｒｒｏｌｉｄｏｎｅ（ＰＶＰ）ｃｏ−ｐｒｅｃｉｐｉｔａｔｅｓ”，Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃｓ，５，２２９−２３８；ハイ（Ｈａｉｇｈ），Ｊ．Ｍ．，＆  スミス（Ｓｍｉｔｈ），Ｅ．Ｗ．（１９９４），“Ｔｈｅ  ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｕｓｅ  ｏｆ  ｎａｔｕｒａｌ  ａｎｄ  ｓｙｎｔｈｅｔｉｃ  ｍｅｍｂｒａｎｅｓ  ｆｏｒ  ｉｎ  ｖｉｔｒｏ  ｄｉｆｆｕｓｉｏｎ  ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｓ”，Ｅｕｒｏｐｅａｎ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，２（５−６），３１１−３３０；ワング（Ｗａｎｇ），Ｔ．，カシチャヤヌラ（Ｋａｓｉｃｈａｙａｎｕｌａ），Ｓ．，＆  グ（Ｇｕ），Ｘ．（２００６），“Ｉｎ  ｖｉｔｒｏ  ｐｅｒｍｅａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｒｅｐｅｌｌｅｎｔ  ＤＥＥＴ  ａｎｄ  ｓｕｎｓｃｒｅｅｎ  ｏｘｙｂｅｎｚｏｎｅ  ａｃｒｏｓｓ  ｔｈｒｅｅ  ａｒｔｉｆｉｃｉａｌ  ｍｅｍｂｒａｎｅｓ”，Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃｓ，３１０（１−２），１１０−７，ｄｏｉ：１０．１０１６／ｊ．ｉｊｐｈａｒｍ．２００５．１１．０３９；ウィッシング（Ｗｉｓｓｉｎｇ），Ｓ．ａ，＆  ミューラー（Ｍｕｌｌｅｒ），Ｒ．Ｈ．（２００２），“Ｓｏｌｉｄ  ｌｉｐｉｄ  ｎａｎｏｐａｒｔｉｃｌｅｓ  ａｓ  ｃａｒｒｉｅｒ  ｆｏｒ  ｓｕｎｓｃｒｅｅｎｓ：ｉｎ  ｖｉｔｒｏ  ｒｅｌｅａｓｅ  ａｎｄ  ｉｎ  ｖｉｖｏ  ｓｋｉｎ  ｐｅｎｅｔｒａｔｉｏｎ”，Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ  Ｒｅｌｅａｓｅ：Ｏｆ��ｉｃｉａｌ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  ｔｈｅ  Ｃｏｎｔｒｏｌｌｅｄ  Ｒｅｌｅａｓｅ  Ｓｏｃｉｅｔｙ，８１（３），２２５−３３）。
【０１１６】
Ｂ．２  方法
Ｂ．２．１  透過試験
Ｂ．２．１．１  セルロース管ｉｎ−ｖｉｔｒｏモデル
管を、細片に切断し、一端を閉じた。各製剤１ｍｌを、透析管に分配し、管を、４５ｍｌのレシーバ相を含有する５０ｍｌの遠心管に入れた。コレカルシフェロールは、疎水性化合物であり、実質的に水に不溶性であり、６％（ｖ／ｖ）ＰＥＧ２００を含有するエタノール水溶液（１０：９０（ｖ／ｖ））レシーバ相を使用した。レシーバ相の試料採取は、最初の４時間は１時間毎に行い、その後は２時間毎に実施した。各試料採取点で、５ｍｌのレシーバ相を除去し、ストックのレシーバ相と入れ換えた。５ｍｌのうち、２００μｌを抽出し、希釈して、ＨＰＬＣ解析を行った。レシーバ相の温度を、遠心管を熱水浴に浸漬することにより、２６℃＋／−２℃に維持した。各製剤について、３つの複製物を用いた。
【０１１７】
Ｂ．２．１．２  拡散細胞ｉｎ−ｖｉｔｒｏモデル
膜を５×５ｃｍ四方に切り、固定した拡散細胞のドナーとレシーバチャンバとの間に置いた（Ｉｎｇｈａｍ  Ｇｒｏｕｐ，Ａｓｔｏｎ  Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，ＵＫ）。各製剤について、１５ｍｌのレシーバ溶液をレシーバチャンバに入れ、一方で５ｍｌのアッセイ物をドナーへ分配させた。６％（ｖ／ｖ）ＰＥＧ２００を含有するエタノール水溶液（１０：９０（ｖ／ｖ））レシーバ相を使用した。レシーバ相の試料採取は、最初の５時間は１時間毎に行い、その後は２時間毎に実施した。各試料採取点で、５ｍｌのレシーバ相を除去し、ストックのレシーバ相と入れ換えた。５ｍｌのうち、２００μｌを抽出し、希釈して、ＨＰＬＣ解析を行った。レシーバ相の温度は、加熱撹拌プレートにより、３７℃＋／−２℃に維持した。
【０１１８】
Ｂ．２．１．３  製剤
５製剤の２つのバッチを、セルロース管モデルを試験した。５製剤からなる１セットを、様々な濃度の一連の化学浸透促進剤で試験し、最適な化学浸透促進剤を決定した。５製剤からなる２バッチを、一連のＤＭＳＯ／エタノール共溶媒で試験した。
【０１１９】
２バッチの製剤を拡散細胞モデルで使用した；最初のセットでは、最適な化学浸透促進剤を決定するために、様々な濃度の一連の浸透促進剤を調べた。第２のバッチでは、コレカルシフェロール濃度を変えた。
【０１２０】
Ｂ．２．１．４  化学浸透増強
化学浸透促進剤、例えば、ＤＭＳＯ（ストートン（Ｓｔｏｕｇｈｔｏｎ），Ｒ．Ｂ．，＆  フリッツス（Ｆｒｉｔｓｃｈ），Ｗ．（１９６４），“Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ  ｏｆ  ｄｉｍｅｔｈｙｌｓｕｌｆｏｘｉｄｅ（ＤＭＳＯ）ｏｎ  ｈｕｍａｎ  ｐｅｒｃｕｔａｎｅｏｕｓ  ａｂｓｏｒｐｔｉｏｎ”，Ａｒｃｈ  Ｄｅｒｍａｔｏｌ，９０（５），５１２−５１７）は、抗ウイルス剤、ステロイド、および抗生物質などの化合物の浸透を増強させることが示されている（ウィリアムス（Ｗｉｌｌｉａｍｓ），Ａ．Ｃ．，＆  バリー（Ｂａｒｒｙ），Ｂ．Ｗ．（２０１２），“Ｐｅｎｅｔｒａｔｉｏｎ  Ｅｎｈａｎｃｅｒｓ”，Ａｄｖａｎｃｅｄ  Ｄｒｕｇ  Ｄｅｌｉｖｅｒｙ  Ｒｅｖｉｅｗｓ，６４，１２８−１３７）。ＤＭＳＯおよびスルホキシドファミリーは、角質層を撹乱し、浸透剤の細胞間通過を促進させる。エタノールなどの有機溶媒は角質層から脂質を抽出することにより、浸透を増加させる。オレイン酸などの脂肪酸も、角質層に浸透剤が移動することのできる貯蔵所を作ることにより、皮膚浸透を改善することが示されている（ラルセア（Ｌａｒｒｕｃｅａ），Ｅ．，アレラノ（Ａｒｅｌｌａｎｏ），Ａ．，サントヨ（Ｓａｎｔｏｙｏ），Ｓ．，＆  ヤルツア（Ｙｇａｒｔｕａ），Ｐ．（２００１），“Ｃｏｍｂｉｎｅｄ  ｅｆｆｅｃｔ  ｏｆ  ｏｌｅｉｃ  ａｃｉｄ  ａｎｄ  ｐｒｏｐｙｌｅｎｅ  ｇｌｙｃｏｌ  ｏｎ  ｔｈｅ  ｐｅｒｃｕｔａｎｅｏｕｓ  ｐｅｎｅｔｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｅｎｏｘｉｃａｍ  ａｎｄ  ｉｔｓ  ｒｅｔｅｎｔｉｏｎ  ｉｎ  ｔｈｅ  ｓｋｉｎ”，Ｅｕｒｏｐｅａｎ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃｓ  ａｎｄ  Ｂｉｏｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃｓ，５２（２），１１３−９；メシュラム（Ｍｅｓｈｕｌａｍ），Ｙ．，カダール（Ｋａｄａｒ），Ｔ．，ウェニガー（Ｗｅｎｇｉｅｒ），Ａ．，ダヒア（Ｄａｃｈｉｒ），Ｓ．，＆  レヴィー（Ｌｅｖｙ），Ａ．（１９９３），“Ｔｒａｎｓｄｅｒｍａｌ  ｐｅｎｅｔｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｐｈｙｓｏｓｔｉｇｍｉｎｅ：Ｅｆｆｅｃｔｓ  ｏｆ  ｏｌｅｉｃ  ａｃｉｄ  ｅｎｈａｎｃｅｒ”，Ｄｒｕｇ  Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ，２８（４），５１０−５１５；モレイラ（Ｍｏｒｅｉｒａ），Ｔ．Ｓ．，ド・スーザ（ｄｅ  Ｓｏｕｓａ），Ｖ．Ｐ．，＆  ピエレ（Ｐｉｅｒｒｅ），Ｍ．Ｂ．Ｒ．（２０１０），“Ａ  ｎｏｖｅｌ  ｔｒａｎｓｄｅｒｍａｌ  ｄｅｌｉｖｅｒｙ  ｓｙｓｔｅｍ  ｆｏｒ  ｔｈｅ  ａｎｔｉ−ｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙ  ｌｕｍｉｒａｃｏｘｉｂ：ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ  ｏｆ  ｏｌｅｉｃ  ａｃｉｄ  ｏｎ  ｉｎ  ｖｉｔｒｏ  ｐｅｒｃｕｔａｎｅｏｕｓ  ａｂｓｏｒｐｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｉｎ  ｖｉｖｏ  ｐｏｔｅｎｔｉａｌ  ｃｕｔａｎｅｏｕｓ  ｉｒｒｉｔａｔｉｏｎ”，ＡＡＰＳ  ＰｈａｒｍＳｃｉＴｅｃｈ，１１（２），６２１−９）。ＤＭＳＯ、エタノール、水、２−ピロリドンおよびオレイン酸が、有望な浸透促進剤として選択された。
【０１２１】
Ｂ．２．１．５  膜調製
セルロース膜を、使用前に、２％（ｗ／ｖ）の重炭酸ナトリウム（Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ  Ｃｏ（Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，ＭＯ，ＵＳＡ））と１ｍＭの蒸留水中エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）からなる１Ｌの洗浄液で洗浄した。セルロース膜を、溶液内に入れて温度を８０℃に上げ、その後、溶液をその温度で３０ｍ維持した。清浄後、膜を蒸留水で濯ぎ、蒸留水の浴中で最大５日間維持してから使用した。これは製造業者のガイドラインに従ったものである（Ｍｅｄｉｃｅｌｌ  Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  Ｌｔｄ，２００４）。
【０１２２】
Ｂ．２．１．６  データ解析
ｉｎ−ｖｉｔｒｏ試験で使用した各製剤について、製剤の薬物フラックス（Ｊｓ）を計算した。この値は、レシーバチャンバの累積的薬物濃度を時間に対してプロットした後、以下の等式を用いて得た（バリー（Ｂａｒｒｙ），Ｂ．Ｗ．（１９８３），“Ｄｅｒｍａｔｏｌｏｇｉｃａｌ  Ｆｏｒｍｕｌａｔｉｏｎｓ”，ｐｐ．４９−９４，Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ，ＮＹ，Ｍａｒｃｅｌ  Ｄｅｋｋｅｒ  Ｉｎｃ．；グワァク（Ｇｗａｋ），Ｈ．Ｓ．，＆  チュン（Ｃｈｕｎ），Ｉ．Ｋ．（２００２），“Ｅｆｆｅｃｔ  ｏｆ  ｖｅｈｉｃｌｅｓ  ａｎｄ  ｐｅｎｅｔｒａｔｉｏｎ  ｅｎｈａｎｃｅｒｓ  ｏｎ  ｔｈｅ  ｉｎ  ｖｉｔｒｏ  ｐｅｒｃｕｔａｎｅｏｕｓ  ａｂｓｏｒｐｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｅｎｏｘｉｃａｍ  ｔｈｒｏｕｇｈ  ｈａｉｒｌｅｓｓ  ｍｏｕｓｅ  ｓｋｉｎ”，Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃｓ，２３６（１−２），５７−６４）：
【数２】
2017502958.tif 000008
ここで、Ａは断面積（ｃｍ２）を指し、（ｄＱ／ｄｔ）ｓｓは、膜を横切る薬物の透過（ｐｅｒｍｕｔａｔｉｏｎ）の時間に対する速度（ｍｇ／ｈ）を示す。レシーバチャンバでレシーブした薬物の累積量を時間と比して構築される線をプロットすることにより、（ｄＱ／ｄｔ）ｓｓが、安定状態（つまり相関関係が直線になるとき）の線の勾配を決定することにより計算されうる。４０ｃｍ２の拡散面積をセルロース管計算に使用し、２．５４ｃｍ２を拡散細胞方法について使用した。遅延時間が、通常、この種の実験で計算される。しかしながら、合成膜の性質により、遅延時間は全ての製剤に対して一瞬であると考えられる。
【０１２３】
Ｂ．２．１．７  ＨＰＬＣ解析
全てのコレカルシフェロール製剤の定量分析は、ＵＶダイオードアレイを使用して、高速液体クロマトグラフィで実施した（Ｐｒｏｍｉｎｅｎｃｅ  Ｍｏｄｕｌａｒ  ＨＰＬＣ（Ｓｈｉｍａｄｚｕ  Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ，Ｊａｐａｎ））。検出波長を２６５ｎｍに設定した。Ｌｕｎａ  ３μ  ＮＨ２  １００Ａカラム（Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ，Ｃｈｅｓｈｉｒｅ，ＵＫ）、寸法：１５０×４．６ｍｍを、ＮＨ２  ３ｍｍ  ＩＤセキュリティーガードおよびホルダと共に使用した。全流速は２ｍｌ／分であり、ランタイムは６分であった。移動相は、９９：１（ｖ／ｖ）ヘキサン／イソプロパノールから構成された（ＨＰＬＣグレード）。ランの最初の３分は、９９：１〜５０：５０（ｖ／ｖ）ヘキサン／イソプロパノールの勾配比率を使用し、その後は、移動相を元の比率９９：１（ｖ／ｖ）ヘキサン／イソプロパノールに戻した。コレカルシフェロールの濃度を、コレカルシフェロールの２６５ｎｍで作成した標準曲線（ｒ２＝０．９９９）の勾配に由来する等式を使用して、各アッセイについて計算した。
【０１２４】
Ｂ．２．２  ｉｎ−ｖｉｖｏ試験
Ｂ．２．２．１  動物飼育
全てのｉｎ−ｖｉｖｏ研究は、Ｃｅｌｌｖａｘ  Ｐｈａｒｍａ（Ｐａｒｉｓ，Ｆｒａｎｃｅ）で行った。実験プロトコルは、Ｍｉｎｉｓｔｅｒｅ  ｄｅ  Ｌ’ｅｎｓｅｉｇｎｅｍｅｎｔ  Ｓｕｐｅｒｉｅｕｒ  ｄｅ  ｌａ  Ｒｅｃｈｅｒｃｈｅ（ＣｏｍＥｔｈ  Ａｎｓｅｓ／ＥＮＶＡ／ＵＰＥＣ  １６）により承認を受けた。７〜１０週齢の雄のＳｐｒａｇｕｅ  Ｄａｗｌｅｙラット（Ｈａｒｌａｎ，Ｆｒａｎｃｅ）を、プロトコルで使用した。それぞれのラットは２５０〜３５０ｇの間で秤量され、ＳＯＰＦ（特定および日和見病原体無し）状態であった。動物を、周囲条件および光を制御した環境下で、ポリエチレンケージ中に収容した。照明時間は、７：００〜１９：００であり、温度および湿度をそれぞれ２１＋／−１℃および７０％ＲＨに維持した。動物に周期的に食料と水を供給した。初期化学浸透増強試験（プロトコル１）の場合には、動物を一匹ごとに収容した。用量応答試験（プロトコル２）では、動物を、２匹および３匹のグループで収容し、毛を剃って各動物を識別した。全ての動物は、実験の開始前に少なくとも１週間、実験室に慣れさせた。
【０１２５】
Ｂ．２．２．２  プロトコル１（スクリーニング試験）
スクリーニング試験のプロトコルは、殺鼠剤の有効性評価（ＰＰ  １／１１３（２））（ＥＰＰＯ，１９９８）に組み入れられたヨーロッパ植物防疫機構（Ｅｕｒｏｐｅａｎ  Ｐｌａｎｔ  Ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ  Ｏｒｇａｎｉｓａｔｉｏｎ、ＥＰＰＯ）により立案されたガイドラインに基づいた。新しい殺鼠剤の試験について、ドブネズミ（Ｒａｔｔｕｓ  ｎｏｒｖｅｇｉｃｕｓ）またはハツカネズミ（Ｍｕｓ  ｍｕｓｃｕｌｕｓ）の５匹の雄の実験種を使用するスクリーニング試験が提案されている。全部で５種の製剤を、それぞれ５匹の動物に対して試験した。
【０１２６】
経皮殺鼠剤の適用のための手法では、経済協力開発機構（Ｏｒｇａｎｉｓａｔｉｏｎ  ｆｏｒ  Ｅｃｏｎｏｍｉｃ  Ｃｏ−ｏｐｅｒａｔｉｏｎ  ａｎｄ  Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ、ＯＥＣＤ）のガイドライン４３４（ＯＥＣＤ，２００４）に基づいて、製剤を、動物の首筋の１０ｃｍ２の領域に適用した。このプロトコルでは、適用部位の領域の毛を剃り、その部位を保護するよう助言されているが、この手段は「使用しながら」の適用が望ましい本研究では組み込まなかった。
【０１２７】
Ｂ．２．２．３  プロトコル２（用量固定手法（Ｆｉｘｅｄ  Ｄｏｓｅ  Ｐｒｏｃｅｄｕｒｅ））
最適な化学浸透増強組成物を同定するために、活性成分の最適用量を決定する必要がある。動物の数および試験条件も、殺鼠剤の有効性評価（ＰＰ  １／１１３（２））（ＥＰＰＯ，１９９８）で示唆されているスクリーニング試験に基づいた。ＯＥＣＤは、急性皮膚毒性の計算に関する詳細なガイドライン（ＯＥＣＤガイドライン４０２）（ＯＥＣＤ，１９８７）を示しており、ここでＬＤ５０は、活性成分の用量応答曲線から計算される。しかしながら、指令（Ｄｉｒｅｃｔｉｖｅ）はこのプロトコルを勧めておらず、したがって用量固定手法（ＯＥＣＤガイドライン４２０、４３４）（ＯＥＣＤ、２００１、２００４）を使用した。この手法での投与量は、５、５０、３００および２０００ｍｇ／ｋｇに相当する。
【０１２８】
Ｂ．２．２．４  データ解析
指令は、殺鼠剤が、齧歯動物の防除について考慮されるためには、その殺鼠剤が「十分有効である」ことが証明されなければならないと述べている。ＥＰＰＯガイドラインは、有効性の評価に関して、スクリーニング試験については、１００％の死亡率を示す製剤のみ、殺鼠剤として有効となりうることを示している。
【０１２９】
死亡率に加えて、動物の苦痛を、５日間にわたって１日に２〜３回、５日間にわたって観察し、次いでさらに９日間、１日に２回観察した。死亡率が１００％に満たない製剤は、有効でないとみなした。プロトコル中の動物の苦痛は、ウォルフェンソンら（ウォルフェンソン（Ｗｏｌｆｅｎｓｏｈｎ），Ｓ．，＆  ロイド（Ｌｌｏｙｄ），Ｍ．（２００３），“Ｈａｎｄｂｏｏｋ  ｏｆ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ａｎｉｍａｌ  Ｍａｎａｇｅｍｅｎｔ  ａｎｄ  Ｗｅｌｆａｒｅ”（３ｒｄ  ｅｄ．）、Ｂｌａｃｋｗｅｌｌ  Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ  Ｌｔｄ．），により提唱されている苦痛評点表を使用し、将来的な野外実験で重要な観点と思われる誘発応答に関する項目もこのチャートに追加して、観察した。
【０１３０】
用量固定手法では、動物に対する致死量未満の用量の影響を測定するために体重データを集めた。用量固定手法が完了した後に、殺鼠剤に、ＯＥＣＤ（ＯＥＣＤ、２００１、２００４）によって指示されたＬＤ５０カットオフ値に基づく分類を与えた。
【０１３１】
（Ｃ）結果
Ｃ．１  透過結果
ラット真皮を通じたコレカルシフェロールの送達に対する化学浸透促進剤の効果を調べるために、２つのｉｎ−ｖｉｔｒｏモデルを構築した。以下の結果は、時間に対してプロットしたレシーバ相におけるコレカルシフェロールの累積量を示唆する。各図に対応する表は、定常状態の勾配から決定された薬物フラックス計算値である。
【０１３２】
Ｃ．１．１  セルロース管ｉｎ−ｖｉｔｒｏモデル
Ｃ．１．１．１  化学浸透増強
図６は、時間に対してプロットした、レシーバ相から回収したコレカルシフェロールの累積量を示す。合計で５種の浸透促進化学物質ＤＭＳＯ、エタノール、オレイン酸、２−ピロリドンおよび水を、文献から選択した。結果から、ＤＭＳＯ／エタノールの９０：１０（ｖ／ｖ）混合物で、コレカルシフェロールの膜を通じた最大拡散速度が得られることが示唆される。残りの浸透促進剤は、同等の浸透速度を示唆する。ＤＭＳＯを含有する製剤は両方とも、最も高い計算された薬物フラックスを示す。
【０１３３】
図６は、合成膜を通じたコレカルシフェロールの送達のための化学浸透増強剤の比較を示す。全ての製剤（下記の表５に示される）で１０％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロールを使用した；合計で１ｍｌを各製剤に使用した。拡散面積は、およそ４０ｃｍ２であった。
【０１３４】
【表６】
2017502958.tif 000009
【０１３５】
Ｃ．１．１．２  ＤＭＳＯ／エタノール共溶媒浸透増強
図７を参照するに、この図は、様々な比率（下記表６に示すとおり）でＤＭＳＯとエタノールを浸透促進剤として使用したときの、コレカルシフェロールの浸透速度の測定値を示す。全ての溶液が１０％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロールを含有する；合計で１ｍｌを各製剤に使用した。前述の実験から、ＤＭＳＯおよびエタノール共溶媒が、薬物フラックスを増加させることが見出された。しかしながら、最適比率は不明であり、そのため、第２の実験では、様々な比率のＤＭＳＯ／エタノールを使用して実験した。
【０１３６】
【表７】
2017502958.tif 000010
【０１３７】
結果から、ＤＭＳＯとエタノールとが５０：５０（ｖ／ｖ）〜９０：１０（ｖ／ｖ）の範囲内で様々な比率の浸透促進剤として使用されるとき、コレカルシフェロールの浸透増強の間に有意な差異が無いことが示唆される。
【０１３８】
Ｃ．１．２  拡散細胞ｉｎ−ｖｉｔｒｏモデル
Ｃ．１．２．１  化学浸透増強
図８を参照するに、この図は、拡散細胞配置を使用した、合成膜を通じたコレカルシフェロールの拡散を示す。図８は、合成膜を通じたコレカルシフェロールの送達のための化学浸透増強剤の比較を示す。合計で５ｍｌの製剤をドナー相に分配した。点線は、計算した薬物フラックスからの最良適合直線を示す。下記表７に示すようなコレカルシフェロール濃度と化学浸透促進剤との組み合わせを用いた。セルロース管ｉｎ−ｖｉｔｒｏモデルからの結果に基づき、高い割合でＤＭＳＯを含有する製剤を、エタノール製剤と比較して検討した。
【０１３９】
結果から、両方のコレカルシフェロール濃度（２０％および４０％（ｗ／ｖ））について、エタノール媒体が、ＤＭＳＯ／エタノール共溶媒と比較して薬物フラックスを増加させたことが示唆される。
【０１４０】
【表８】
2017502958.tif 000011
【０１４１】
Ｃ．１．２．３  用量応答
図９を参照するに、この図は、拡散細胞モデルを使用したコレカルシフェロール濃度と拡散比率を関係づける用量応答相関関係を示す。合計で５ｍｌを各ドナーチャンバに加えた。全ての製剤に、示された量のコレカルシフェロールを含有させ、１５％（ｖ／ｖ）ＰＥＧ２００を含みＤＭＳＯ／エタノールの５０／５０共溶媒で体積を合わせた媒体を使用した。
【０１４２】
図９は、拡散細胞ｉｎ−ｖｉｔｒｏモデルにより測定される用量応答相関関係を示唆する。２０％、９％、１．５％および０．１５％（ｗ／ｖ）を含む一連のコレカルシフェロール濃度について調べた（下記表８に示す通り）。濃度を用量固定手法から得て、経口毒性を決定した（ＯＥＣＤガイドライン４２０）（ＯＥＣＤ、２００１）。結果から、２０％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロール濃度が最大の薬物フラックスを生じさせることが示唆される。全ての製剤について、１５％（ｖ／ｖ）ＰＥＧ２００を含む５０：５０（ｖ／ｖ）ＤＭＳＯ／エタノール共溶媒を使用した。
【０１４３】
【表９】
2017502958.tif 000012
【０１４４】
Ｃ．２  Ｉｎ−ｖｉｖｏ結果
以下は、ｉｎ−ｖｉｔｒｏモデルを有効にし、製剤の有効性を計量するための、指令９８／８／ＥＣ（欧州委員会、１９９８）を参照したｉｎ−ｖｉｖｏ研究の結果である。研究では、製剤が「十分に効果的」かどうかを決定するためのスクリーニングプロトコルと、有効量に必要なコレカルシフェロールの量を精査するために設計した用量固定手法とを、実施した。
【０１４５】
Ｃ．２．１  スクリーニング試験
合計５種の製剤に、スクリーニングプロトコルを実施した。これらの製剤は、ｉｎ−ｖｉｔｒｏ研究において、他の化学浸透促進剤と比較して高い薬物フラックスを示した。それらは、セルロース管モデルで示されたＤＭＯＳ／エタノール共溶媒を使用した２つの製剤と、拡散細胞モデルで示されたエタノールを使用した２つの製剤と、残りは両方のｉｎ−ｖｉｔｒｏモデルで強調されたＤＭＳＯおよびオレイン酸からなる製剤である。２つの異なるコレカルシフェロール濃度で実施し、４０％（ｗ／ｖ）を、エタノールと７０：３０（ｖ／ｖ）ＤＭＳＯ／エタノール共溶媒に、２０％（ｗ／ｖ）を、エタノールと、９０：１０（ｖ／ｖ）ＤＭＳＯ／エタノールと、９０：１０（ｖ／ｖ）ＤＭＳＯ／オレイン酸とに使用した。増粘剤（メチルセルロース）を、ＤＭＳＯを含有する全ての製剤に加え、１％（ｗ／ｖ）を、９０：１０（ｖ／ｖ）ＤＭＳＯ／エタノールおよび７０：３０（ｖ／ｖ）ＤＭＳＯ／エタノール製剤に加えた。一方で０．７５％（ｗ／ｖ）を、９０：１０（ｖ／ｖ）ＤＭＳＯ／オレイン酸製剤に加えた。死亡率およびエンドポイントまでの時間を、各製剤について記録した。製剤はそれぞれ５匹の動物に投与し、体積１ｍｌを各動物に投与した。
【０１４６】
図１０を参照するに、この図は、化学的に浸透を増加させた経皮コレカルシフェロール製剤についての生存率を示す。（ａ）９０：１０ＤＭＳＯ／エタノールにおける２０％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロールに対する生存グラフ；（ｂ）９０：１０ＤＭＳＯ／オレイン酸における２０％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロールに対する生存グラフ；（ｃ）７０：３０ＤＭＳＯ／エタノールにおける４０％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロールに対する生存グラフ；（ｄ）１００％エタノールにおける２０％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロールに対する生存グラフ；（ｅ）１００％エタノールにおける４０％コレカルシフェロールに対する生存グラフ；すべての実験でｎ＝５を使用した、（ｆ）全ての製剤に対する死亡率およびエンドポイントまでの時間の要約。
【０１４７】
図１０は、ラット皮膚を通じたコレカルシフェロールの移動を改善するように設計した５つの製剤それぞれについての生存率を示す。結果から、ＤＭＳＯを含有する製剤のみが１００％の死亡率を生じさせることを示唆する。ＥＰＰＯガイドラインに従って、これらの製剤は、さらなる研究が検討されうる。２０％および４０％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロールを含有するエタノール製剤は、それぞれ２０％および６０％の死亡率を生じた；したがって、これらの製剤は、殺鼠剤として有効とはされず、さらなる研究は正当化されない。結果から、ＤＭＳＯの含有により、エタノール製剤と比較してコレカルシフェロールの浸透が改善し、適用から５日以内で１００％の死亡率を生じさせることが示唆される。動物に対する製剤の効果を評価するため、ならびにあらゆる苦痛および苦渋を定量するために、苦痛評点表を使用して１日に２〜３回、苦痛の評価を行った。評点表では、苦痛が示されうる５つの主要な分野を考慮した。これらの分野は、全身所見、適用部位の所見、自然挙動、刺激された挙動、ならびに食品および水の摂取量である。これらの各分野に３つの点数を与え、最大で１５の苦痛を示すことを可能にした。評点０は、製剤に効果がないことを示す。評点１〜５は、挙動のわずかな変化を示し、評点５〜１０は、中程度の変化を示唆し、一方で、１０より上の評点は、立毛および意識不明など、挙動の顕著な変化を示唆する。
【０１４８】
図１１を参照するに、この図は、各製剤に曝露された各５匹の動物セットの苦痛評点表を示す。図１１（ａ）は、実験セット１についての苦痛評点を示す。図１１（ｂ）は、実験セット２についての苦痛評点を示す。図１１（ｃ）は、実験セット３についての苦痛評点を示す。図１１（ｄ）は、実験セット４についての苦痛評点を示す。および図１１（ｅ）は、実験セット５についての苦痛評点を示す。
【０１４９】
図１１は、苦痛評点表から得られた苦痛の定量結果を示す。動物には連続的に投与が行われ、グラフでは、示された投与周期についての各動物および製剤ごとに苦痛を示している。結果は、エンドポイントでの平均苦痛が５〜１０であることを示し、この結果は、エタノール中２０％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロールの場合の平均苦痛２とはかなり離れている。しかしながら、この製剤は、２０％の死亡率を生じたに過ぎなかった。これらの結果は、齧歯動物における挙動の中程度の変化、例えば、可動性の減少、ならびに食品および水の減少などを示していると示唆される。
【０１５０】
図１２は、全ての動物についてのエンドポイントでの平均苦痛を示す。全ての場合において、０は苦痛がないことであり、１５は苦痛が最大であること、ここでは動物が立毛、可動度の顕著な減少ならびに食品および水の摂取量の減少を示すことである。エンドポイントは、実験の終点も含んでおり、エタノール中２０％（ｗ／ｖ）のコレカルシフェロールの場合には、軽度の苦痛は死亡した動物の２０％のみであることが示唆された。
【０１５１】
Ｃ．２．２  用量固定手法
全部で５種の製剤を用量固定手法に使用した。ここではコレカルシフェロール濃度をＯＥＣＤガイドライン４２０（ＯＥＣＤ，２００１）に従って変化させ、ＧＨＳ分類と効果が維持されるために必要な最少用量とを決定した。濃度は２０％、９％、１．５％および０．１５％（ｗ／ｖ）で構成し、１５％（ｖ／ｖ）ＰＥＧ２００を含む５０：５０（ｖ／ｖ）ＤＭＳＯ／エタノール共溶媒の１ｍｌ体積中で投与した。負の対照として、１５％（ｖ／ｖ）ＰＥＧ２００を含む５０：５０ＤＭＳＯ／エタノール共溶媒を用いた。死亡率、死亡までの時間および苦痛を、各動物について記録した。共溶媒浸透促進剤としてＤＭＳＯ／エタノールを使用したが、その理由は、スクリーニングプロトコルの結果から、この製剤にさらなる研究の根拠があることが示唆されたためである。ＰＥＧ２００を製剤に添加して、製剤を増粘し、動物への付着が促進されるよう設定した。
【０１５２】
図１３を参照するに、この図は用量固定手法での生存分析を示す。図１３（ａ）は、９％および２０％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロール製剤についての生存グラフを示す。他の製剤は０％の死亡率を示すために含めなかった。図１３（ｂ）は、全ての製剤についての、死亡率およびエンドポイントまでの平均時間を示す；製剤０％、０．１５％および１．５％の場合は全て死亡の症状を示さなかった。
【０１５３】
図１３は、用量固定手法で得られた生存分析、死亡率、および死亡までの時間を示す。
検討した５つの製剤のうち、９％および２０％（ｗ／ｖ）のコレカルシフェロールのみが１００％の死亡率を示し、これらの製剤が、指令に従った殺鼠剤として検討するために十分有効であることが示唆される。これらの製剤は、スクリーニングプロトコルで投与されたＤＭＳＯ／エタノール共溶媒と比較してエンドポイントまでの時間の減少も示す（９０：１０ＤＭＳＯ／エタノール中２０％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロールで５日以内に１００％の死亡率、５０：５０ＤＭＳＯ／エタノール中９％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロールで３日以内に１００％の死亡率）。負の対照は何ら致死性を示さず、このことからコレカルシフェロールが致死作用を担うと結論しうる。
【０１５４】
図１４を参照するに、この図は、一定用量の処理プロトコルで試験した５製剤それぞれについての苦痛評点とラット体重を示す。全てのラットに、示された量のコレカルシフェロールを含む１ｍｌの製剤を投与した。図１４（ａ）は、対照群についての苦痛評点および平均ラット体重を示す。図１４（ｂ）は、０．１５％（ｗ／ｖ）に曝露された群の苦痛評点と平均ラット体重を示す。軽度の苦痛が示されたがラットの体重増加が示された。図１４（ｃ）は、１．５％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロールに曝露された群の苦痛評点と平均ラット体重を示す。ラットは苦痛の増加を示し、体重は減少した後でわずかに増加して、回復の兆候が示唆された。図１４（ｄ）は、９％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロールに曝露された群の苦痛評点と平均ラット体重を示す。結果は、２４時間後の苦痛の急激な増加と体重の顕著な低下を示唆する。図１４（ｅ）は、２０％（ｗ／ｖ）に曝露された群の苦痛評点と平均ラット体重を示す。結果は、苦痛の急激な増加と２４時間後の平均ラット体重の低下を示唆する。
【０１５５】
苦痛の定量は、スクリーニングプロトコルごとに実施し、さらなる体重データをコレカルシフェロール効果について更に情報を得るために測定した。負の対照および０．１５％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロール用量では、挙動の変化が無しまたは最少であることが示唆された。このことは、食料と水の摂取健常が示唆される体重の増加と合致する。９％（ｗ／ｖ）および２０％（ｗ／ｖ）では、挙動の顕著な変化が示された。但し、最初の１日間にはわずかな変化しか観察されず、その後に急速に悪化した。９％（ｗ／ｖ）のコレカルシフェロール用量では、３日以内に１００％の死亡率が示された。１．５％（ｗ／ｖ）のコレカルシフェロール用量では、挙動の中程度の変化が示されたが、平均体重の分析では、５日後に体重の増加が示唆される。このことは、動物が回復し始めていたことを示唆する。この用量範囲で示された明白な毒性により、製剤は、ＧＨＳカテゴリ２（ＯＥＣＤガイドライン４３４−新ガイドライン案４３４への提案（Ｐｒｏｐｏｓａｌ  ｆｏｒ  ａ  ｎｅｗ  ｄｒａｆｔ  ｇｕｉｄｅｌｉｎｅ  ４３４）−急性皮膚毒性−用量固定手法）と分類される。
【０１５６】
（Ｄ）考察
コレカルシフェロールのｉｎ−ｖｉｖｏ送達に関する従前の報告では、エタノールが、効果的な浸透促進剤であり、担体物質であると示唆されている（アグニュー（Ａｇｎｅｗ），Ｗ．Ｒ．（２０１０），“Ｔｏｐｉｃａｌ  ｐｅｓｔｉｃｉｄｅ  ｆｏｒｍｕｌａｔｉｏｎ”，国際公開第２０１０／０７１４５０  Ａ１号、世界知的所有権機関；アグニュー（Ａｇｎｅｗ），Ｗ．Ｒ．（２０１１），“Ｔｏｐｉｃａｌ  ｐｅｓｔｉｃｉｄｅ  ｆｏｒｍｕｌａｔｉｏｎ”，米国特許出願公開第２０１１／０２５７１３５  Ａ１号、米国特許）。エタノールの使用は、コレカルシフェロールが有機溶媒に「溶けやすい」（Ｂｒｉｔｉｓｈ  Ｐｈａｒｍａｃｏｐｏｅｉａ．（２０１２），“Ｃｏｌｅｃａｌｃｉｆｅｒｏｌ”、英国薬局方）ことから論理的であり、多量のコレカルシフェロールを製剤中で送達しうる。高濃度のコレカルシフェロールは、真皮に跨る高い拡散勾配を生じさせることによって、経皮送達を促進する。しかしながら、これらの報告は、体重が未知のラットへ単独で適用したときの知見に基づくものである。したがって、公開されたデータは、ＥＰＰＯガイドライン（ＥＰＰＯ、１９９８）、つまりは指令による有効性を根拠づけるために十分なものではない。
【０１５７】
さらに殺鼠剤としてのコレカルシフェロールの経皮送達を検討するために、製剤をスクリーニングするための２つのｉｎ−ｖｉｔｒｏモデルを開発した。両方のモデルで、先に公開された研究で記載された装置を使用した。セルロース管モデルとして、（オールトン（Ａｕｌｔｏｎ），Ｍ．Ｅ．（２００７），“Ａｕｌｔｏｎ’ｓ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃｓ：  Ｔｈｅ  ｄｅｓｉｇｎ  ａｎｄ  ｍａｎｕｆａｃｔｕｒｅ  ｏｆ  ｍｅｄｉｃｉｎｅｓ”，Ｅｄｉｎｂｕｒｇｈ；Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ，Ｃｈｕｒｃｈｉｌｌ  Ｌｉｖｉｎｇｓｔｏｎｅ；バリー（Ｂａｒｒｙ），Ｂ．Ｗ．（１９８３），“Ｄｅｒｍａｔｏｌｏｇｉｃａｌ  Ｆｏｒｍｕｌａｔｉｏｎｓ”，ｐｐ．４９−９４，Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ，ＮＹ，Ｍａｒｃｅｌ  Ｄｅｋｋｅｒ  Ｉｎｃ．）に記載されているものを最初に使用し、次に、いくつかの研究で使用されているように、拡散細胞装置を使用してさらに試験した。セルロース管モデルを使用したとき、ＤＭＳＯ／エタノール共溶媒中のコレカルシフェロール（１０％ｗ／ｖ  コレカルシフェロール）に対して、０．２５＋／−０．０１９ｍｇ／ｃｍ２ｈの薬物フラックスが達成された。アグニュー（Ａｇｎｅｗ）により提唱されたエタノール製剤（アグニュー（Ａｇｎｅｗ），Ｗ．Ｒ．（２０１０），“Ｔｏｐｉｃａｌ  ｐｅｓｔｉｃｉｄｅ  ｆｏｒｍｕｌａｔｉｏｎ”、国際公開第２０１０／０７１４５０  Ａ１号、世界知的所有権機関；アグニュー（Ａｇｎｅｗ），Ｗ．Ｒ．（２０１１），“Ｔｏｐｉｃａｌ  ｐｅｓｔｉｃｉｄｅ  ｆｏｒｍｕｌａｔｉｏｎ”、米国特許出願公開第２０１１／０２５７１３５  Ａ１号、米国特許）もこのモデルを使用して試験した。０．１３＋／−０．００３５ｍｇ／ｃｍ２ｈ（１０％ｗ／ｖ  コレカルシフェロール）の低い薬物フラックスとなった。しかしながら、これらの製剤を拡散細胞モデルで試験したときは、反対の結果が観察された（２０％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロール濃度で、９０：１０ｖ／ｖＤＭＳＯ／エタノールについて３．４６＋／−０．０３３ｍｇ／ｃｍ２ｈの薬物フラックスおよびエタノールについて２．５７＋／−０．１６ｍｇ／ｃｍ２ｈの薬物フラックス）。拡散細胞モデルでは、２つのコレカルシフェロール濃度（２０％および４０％ｗ／ｖ）について、ＤＭＳＯ／エタノール共溶媒と比較してエタノール製剤の薬物フラックスがより高いことが示唆された。モデル間の差異は、おそらくは拡散面積によるものである。セルロース管モデルは、４０ｃｍ２の拡散面積を有し、一方で、拡散細胞モデルは、小さい２．５４ｃｍ２の面積を有する。ＤＭＳＯは、膜の撹乱と孔径の増加により、拡散を促進させる。セルロースバッグ内の拡散面積の増加は、ＤＭＳＯ製剤を区別するために十分であるが、拡散細胞モデルは十分でない。代替的な駆動メカニズムが拡散細胞モデル内に存在し、モデル間に矛盾する結果を生じさせている可能性もある。
【０１５８】
ｉｎ−ｖｉｔｒｏデータに加えて、いずれかのモデルを有効にし、指令に応じた必要な実験有効性データを得るために、ｉｎ−ｖｉｖｏ研究も実施した。ＥＰＰＯガイドライン（Ｐ１／１１３（２））（ＥＰＰＯ（１９９８），“Ｅｆｆｉｃａｃｙ  ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｒｏｄｅｎｔｉｃｉｄｅｓ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  ｔｅｓｔｓ  ｆｏｒ  ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｈｅ  ｔｏｘｉｃｉｔｙ  ａｎｄ  ａｃｃｅｐｔａｂｉｌｉｔｙ  ｏｆ  ｒｏｄｅｎｔｉｃｉｄｅｓ  ａｎｄ  ｒｏｄｅｎｔｉｃｉｄｅ  ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎｓ”（ＰＰ１／１１３（２）））は、殺鼠剤が「十分に有効」と考えられるためには、スクリーニングプロトコル中で１００％の死亡率が観察されなければならないと述べている。スクリーニングプロトコルは、ＤＭＳＯ共溶媒とエタノール製剤とを比較することと、これらの製剤にさらなる研究のための根拠があるかを判定することとの両方に役立った。２０％および４０％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロールを含むエタノール製剤は、スクリーニングプロトコル中にそれぞれ２０％および６０％の死亡率を示した。一方で、ＤＭＳＯを含有するすべての製剤は、１００％の死亡率（９０：１０（ｖ／ｖ）ＤＭＳＯ／エタノール、７０：３０（ｖ／ｖ）ＤＭＳＯ／エタノールおよび９０：１０（ｖ／ｖ）ＤＭＳＯ／オレイン酸）を示した。全ての製剤が、適用から５日以内に致死させ、挙動に中程度の変化を生じさせた。ＥＥＰＯガイドラインによれば、エタノールに基づく製剤は、十分な致死性を生じさせるものでないため、殺鼠剤として使用するものとはみなされないであろう。これらの研究と、アグニュー（Ａｇｎｅｗ）の研究（アグニュー（Ａｇｎｅｗ），Ｗ．Ｒ．（２０１０），“Ｔｏｐｉｃａｌ  ｐｅｓｔｉｃｉｄｅ  ｆｏｒｍｕｌａｔｉｏｎ”、国際公開第２０１０／０７１４５０  Ａ１号、世界知的所有権機関；アグニュー（Ａｇｎｅｗ），Ｗ．Ｒ．（２０１１），“Ｔｏｐｉｃａｌ  ｐｅｓｔｉｃｉｄｅ  ｆｏｒｍｕｌａｔｉｏｎ”，米国特許出願公開第２０１１／０２５７１３５  Ａ１号、米国特許）との差異は、齧歯動物の種の違いに存在しうる。この試験では、体重が２５０〜３５０ｇのＳｐｒａｇｕｅ  Ｄａｗｌｅｙ齧歯動物を使用しており、一方、アグニュー（Ａｇｎｅｗ）の特許では、体重不明のＮｏｒｗａｙラット（ドブネズミ（Ｒａｔｔｕｓ  ｎｏｒｖｅｇｉｏｕｓ））が使用されているが、Ｎｏｒｗａｙラットは一般に実験系統より体重が少ない。その結果は、２０％（ｗ／ｖ）のコレカルシフェロール用量は、より体重の少ない齧歯動物に対してはより強力であろうことを意味する。スクリーニングプロトコルからのｉｎ−ｖｉｖｏ結果も、セルロース管ｉｎ−ｖｉｔｒｏモデルがｉｎ−ｖｉｖｏ結果とより密接に相関することを示唆している。
【０１５９】
第２のプロトコルは、ＯＥＣＤガイドライン４２０（ＯＥＣＤ（２００１）、ＯＥＣＤガイドライン４２０−急性経口毒性−用量固定手法）で示されている用量固定手法に基づいて実施し、ここでは４つの用量のコレカルシフェロールを投与した。この研究は、殺鼠剤が該当するＧＨＳカテゴリの決定と少ない用量での有効性の決定の両方のために設計した。低用量の０．１５％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロールは毒性の根拠を示さず、負の対照も同様であることから、実際には、実質的な量のコレカルシフェロールが致死作用を担うことが示唆される。明白な毒性は、１５％（ｖ／ｖ）ＰＥＧ２００を５０：５０（ｖ／ｖ）ＤＭＳＯ／エタノールで１ｍｌにした中で１．５％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロールを投与した齧歯動物で示された。これにより、急性皮膚毒性ＧＨＳカテゴリ２（ＯＥＣＤガイドライン４３４）（ＯＥＣＤ（２００４）、ＯＥＣＤガイドライン４３４−新ガイドライン案４３４への提案−急性皮膚毒性−用量固定手法）であることが示唆される。９％（ｗ／ｖ）のコレカルシフェロール用量で、１００％の死亡率に至ったことは、この特定の製剤が、商業的殺鼠剤として使用するにあたって十分有効であることを示唆している。この特定の用量で３日以内に１００％の死亡率が示されたが、これはスクリーニング試験で示された結果よりも速い。但し、苦痛評点は、投与後２４時間で齧歯動物が急速に悪化することを示唆する。
【０１６０】
ｉｎ−ｖｉｖｏ研究から、セルロース管ｉｎ−ｖｉｔｒｏモデルが、製剤比較についてより正しい結果を示していることが示唆される。その理由は、このモデルとｉｎ−ｖｉｖｏ研究が、ＤＭＳＯが、薬物フラックスがより高く、最も有効であると示唆されることを示しているからである。
【０１６１】
ＤＭＳＯおよびオレイン酸は、従前に、コレカルシフェロールと共に試験されていない。しかしながらそれらは、抗炎症薬などの化合物に関して（グワァク（Ｇｗａｋ），Ｈ．Ｓ．，＆  チュン（Ｃｈｕｎ），Ｉ．Ｋ．（２００２），“Ｅｆｆｅｃｔ  ｏｆ  ｖｅｈｉｃｌｅｓ  ａｎｄ  ｐｅｎｅｔｒａｔｉｏｎ  ｅｎｈａｎｃｅｒｓ  ｏｎ  ｔｈｅ  ｉｎ  ｖｉｔｒｏ  ｐｅｒｃｕｔａｎｅｏｕｓ  ａｂｓｏｒｐｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｅｎｏｘｉｃａｍ  ｔｈｒｏｕｇｈ  ｈａｉｒｌｅｓｓ  ｍｏｕｓｅ  ｓｋｉｎ”，Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃｓ，２３６（１−２），５７−６４；ラルセア（Ｌａｒｒｕｃｅａ），Ｅ．，アレラノ（Ａｒｅｌｌａｎｏ），Ａ．，サントヨ（Ｓａｎｔｏｙｏ），Ｓ．，＆  ヤルツア（Ｙｇａｒｔｕａ），Ｐ．（２００１），“Ｃｏｍｂｉｎｅｄ  ｅｆｆｅｃｔ  ｏｆ  ｏｌｅｉｃ  ａｃｉｄ  ａｎｄ  ｐｒｏｐｙｌｅｎｅ  ｇｌｙｃｏｌ  ｏｎ  ｔｈｅ  ｐｅｒｃｕｔａｎｅｏｕｓ  ｐｅｎｅｔｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｔｅｎｏｘｉｃａｍ  ａｎｄ  ｉｔｓ  ｒｅｔｅｎｔｉｏｎ  ｉｎ  ｔｈｅ  ｓｋｉｎ”，Ｅｕｒｏｐｅａｎ  Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃｓ  ａｎｄ  Ｂｉｏｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃｓ，５２（２），１１３−９；メシュラム（Ｍｅｓｈｕｌａｍ），Ｙ．，カダール（Ｋａｄａｒ），Ｔ．，ウェニガー（Ｗｅｎｇｉｅｒ），Ａ．，ダヒア（Ｄａｃｈｉｒ），Ｓ．，＆  レヴィー（Ｌｅｖｙ），Ａ．（１９９３），“Ｔｒａｎｓｄｅｒｍａｌ  ｐｅｎｅｔｒａｔｉｏｎ  ｏｆ  ｐｈｙｓｏｓｔｉｇｍｉｎｅ：Ｅｆｆｅｃｔｓ  ｏｆ  ｏｌｅｉｃ  ａｃｉｄ  ｅｎｈａｎｃｅｒ”，Ｄｒｕｇ  Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ，２８（４），５１０−５１５；モレイラ（Ｍｏｒｅｉｒａ），Ｔ．Ｓ．，ド・スーザ（ｄｅ  Ｓｏｕｓａ），Ｖ．Ｐ．，＆  ピエレ（Ｐｉｅｒｒｅ），Ｍ．Ｂ．Ｒ．（２０１０），“Ａ  ｎｏｖｅｌ  ｔｒａｎｓｄｅｒｍａｌ  ｄｅｌｉｖｅｒｙ  ｓｙｓｔｅｍ  ｆｏｒ  ｔｈｅ  ａｎｔｉ−ｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙ  ｌｕｍｉｒａｃｏｘｉｂ：ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ  ｏｆ  ｏｌｅｉｃ  ａｃｉｄ  ｏｎ  ｉｎ  ｖｉｔｒｏ  ｐｅｒｃｕｔａｎｅｏｕｓ  ａｂｓｏｒｐｔｉｏｎ  ａｎｄ  ｉｎ  ｖｉｖｏ  ｐｏｔｅｎｔｉａｌ  ｃｕｔａｎｅｏｕｓ  ｉｒｒｉｔａｔｉｏｎ”，ＡＡＰＳ  ＰｈａｒｍＳｃｉＴｅｃｈ，１１（２），６２１−９）、浸透を改善することが示されてきた（ウィリアムス（Ｗｉｌｌｉａｍｓ），Ａ．Ｃ．，＆  バリー（Ｂａｒｒｙ），Ｂ．Ｗ．（２０１２），“Ｐｅｎｅｔｒａｔｉｏｎ  Ｅｎｈａｎｃｅｒｓ”，Ａｄｖａｎｃｅｄ  Ｄｒｕｇ  Ｄｅｌｉｖｅｒｙ  Ｒｅｖｉｅｗｓ，６４，１２８−１３７）。ＤＭＳＯは、浸透促進剤として証拠づけられたが、皮膚に浸透する際に口中で不快な味を生じさせて使用を減退させるという付随的な作用により、一般的には使用されていない。このことは多くの経皮送達適用において検討事項となるかもしれないが、殺鼠剤としての使用に関しては、死亡するまでの時間と製剤の人道性が優先事項である。この点に関して、透過試験とｉｎ−ｖｉｖｏでの結果の両方が、コレカルシフェロールに対して検討された最も有効な浸透促進剤であることを示唆しており��さらなる検討を行うことを正当化する。
【０１６２】
最後に、この結果は、コレカルシフェロールの経皮送達が、抗凝血剤による餌付方法に対する代替手段を提供しうることを示唆している。餌付方法は、成功裡に使用されてきたが、この方法は齧歯動物が致死量の餌を摂取することに依存する。この餌付は必ずしも行われるとはいえず、抗凝血剤耐性を発生させる原因ともなりうる。１回投与の経皮適用は、毒素を皮膚に送達するより効率的な方法でありうる：最適化された最少用量は、環境への無駄で不必要な曝露を減少させうる。この取組の困難な点は、殺鼠剤の適用にある。しかしながら、皮膚送達に利用しうる装置は提案されている（グーディ（Ｇｏｏｄｅ），Ｓ．Ｌ．（２０１０），“Ｖｅｒｔｅｂｒａｔｅ  Ｔｒａｐ”、国際公開第２０１０／１０６３５２  Ａ１号、世界知的所有権機関）。したがって、この点を考慮すると、コレカルシフェロールの経皮送達は、抗凝血剤餌付の実現可能な代替手段である。
【０１６３】
（Ｅ）結論
この研究の課題は、殺鼠剤としての使用を目的としたコレカルシフェロールの経皮送達を促進するための、適切な化学浸透促進剤を同定することであった。
【０１６４】
ｉｎ−ｖｉｔｒｏおよびｉｎ−ｖｉｖｏの両方の研究を通して、９％（ｗ／ｖ）のコレカルシフェロールを含む１ｍｌの用量の５０：５０（ｖ／ｖ）ＤＭＳＯ／エタノール１５％（ｖ／ｖ）、ＰＥＧ２００媒体（０．３５０ｋｇラットに対して２５７ｍｇ／ｋｇの用量に相当）が、指令９８／８／ＥＣで示唆されている有効性実験ガイドラインに基づいて十分に有効であることが証明された。この用量は、５匹の動物に適用したときに、３日以内で１００％の死亡率を生じさせた。投与は、動物の首筋に１ｍｌの製剤を適用することにより実施され、抗凝血剤を用いた殺鼠剤食餌による汎用の方法に対して代替的方法を提供する。
【０１６５】
実験的な有効性評価と並行して、用量固定手法も、製剤についてのＧＨＳ分類を決定するために行った。明白な毒性が、１．５％（ｗ／ｖ）コレカルシフェロール用量を１ｍｌで適用した５匹の動物で決定され、カテゴリ２の分類となった。
【０１６６】
ｉｎ−ｖｉｖｏ研究に先行して、２つのｉｎ−ｖｉｔｒｏモデルを、タンパク質製剤をスクリーニングするために開発した。セルロース管モデルは、ＤＭＳＯ／エタノール共溶媒が、コレカルシフェロールが高いフラックスを促進することを示唆する一方、拡散細胞モデルは、エタノール製剤がフラックスを増加させることを示唆した。セルロース管モデルは、ｉｎ−ｖｉｖｏデータとより高い相関を示し、より正確な様式であることが示唆される。
【０１６７】
この研究は、コレカルシフェロールの経皮送達が、指令に基づいて十分に有効と分類されることと、活性成分も送達様式も異なる抗凝血剤食餌手法に対して代替手段を提供することとを示唆している。
【０１６８】
＜実施例４−代替毒性物＞
本発明の組成物の使用による合成膜を通じた送達促進の能力の程度を示すために、様々な代替的毒性物に対して、実施例２に対応するｉｎ−ｖｉｔｒｏ実験を実施した。試験した毒性物は、抗凝血剤ワルファリンおよびジフェナコウムであった。
【０１６９】
結果を図１５および１６ならびに下記表９に示す。
【０１７０】
【表１０】
2017502958.tif 000013
【０１７１】
上記結果は、ワルファリンが最も高い薬物フラックスを示すことを示唆する。但し、ワルファリンは、小さい１日用量で、最も効果的である。
【０１７２】
＜実施例５−送達装置の例＞
本発明の組成物を標的動物の殺傷のために標的動物に送達する送達装置について、いくつかの実際の例を、添付の図面の図１７〜２２に示した。これらの装置は、本発明者らの先の国際特許出願である国際公開第２０１０／１０６３５２号に開示されている脊椎動物罠の例示的実施形態のいくつかに相当するが、これらは非限定的な例証としてのみ本願に引用して援用する。ある用量または量の殺有害生物または殺害獣組成物（または他の毒物性の薬剤を含有する組成物）を動物に送達することにより作用する任意の既知の送達装置または齧歯動物（もしくは他の動物）罠が、本発明の組成物を送達するために、同様のまたは対応する様式で使用しうることが理解されるべきである。
【０１７３】
図１７は、脊椎動物罠、つまり、この実施形態においては、囲い２と、加圧推進剤またはキャリアガス格納器３とを含む齧歯動物罠１を示す。格納器３は、さらに、本発明による殺害獣組成物の供給物を含んでおり、囲い２の中に入る動物の表面上に適用するために、囲い２内に送達されるよう準備されている。囲い２は、第１の開放端４と第２の開放端５を有する中空の管状部材を含んでいる。囲い２は、支持体７および８により、ベース６上に据え付けられている。
【０１７４】
ガス格納器３は、囲い２に固定されたクリップ１０により囲い２上に据え付けられている。格納器３は、ノズル１１を含んでいる。ノズル１１は、接続用素子１３によって導管またはチューブ１２に接続されている。接続用素子１３は、例えば、ねじ接続または他の適切な接続手段により、ノズル１１を取り外し可能に接続している。
【０１７５】
格納器３は、格納器３内のガス圧を感じることのできる圧力センサ１７と、基地、制御局または監視局（図示せず）へ、格納器３のガス圧を示す無線信号を送信することができる無線送信器１８とをさらに含んでいる。但し、任意の適切な形態のセンサおよび無線機が使用しうることを理解されたい。
【０１７６】
囲い２は、さらにＧＰＳ受信機１９を無線送信機２０との組み合わせで含んでおり、ここで送信機２０は、基地、制御局または監視局へ、罠の位置を示す無線信号を送信する。繰り返すが、任意の代替的な適切な位置決定手段および関連する発信機が使用しうることを理解されたい。
【０１７７】
図１８について、この図は、図１７の罠の囲い２の部分断面図を示しており、導管１２は、囲い２の下に位置する放出チャンバ１４に接続されている。放出チャンバ１４は、ベント１５を介して、囲い２の内部と連通している。ベント１５は、加圧された格納器３の内容物を、チャンバ１４を介して囲い２に通すことのできる複数の（ａ  ｐｌｕｒａｌｉｔｙ  ｏｒ）穴を有する積層部材を含む。チャンバ１４は、格納器３の内容物のチャンバ１４への流れを制御する放出部１６も収容している。放出部１６は、活性化装置（図示せず）から受け取る指示に応答して移動する作動装置（図示せず）と連結されている。囲い２は、さらに、齧歯動物などの脊椎動物の存在を検知する動きセンサである検知器２１をさらに含む。但し、任意の適切な検知器を使用しうることを理解されたい。
【０１７８】
上記罠または図１７および１８の組成物送達装置は、様々な方法で改変しうる。例えば、囲い２の管状部材は、その第１の開放端と第２の開放端との間に位置する湾曲した中央部分を有してもよい。そのような構成の実例は、下記に示し議論する図２２に示された実施形態の内容で示されている。別の改変例では、囲い２の管状部材の１つまたは（好ましくは）両方の開放端部分が、端部分の１方の側からその反対側に及んで延びている１つ以上のバリヤバー３１、３２を含みうる。そのようなバリヤバーは、例えば、管状部材の端部の壁を通って延びる細孔内に据え付けられている。バリヤバーは、好ましくは、齧歯動物よりも大きな動物が囲い２に入ることが実質的に妨げられるように配置されている。そのようなバリヤバーを利用したそのような構成の実例は、下記に示し議論する図１９および図２２に示された実施形態の内容で示されている。
【０１７９】
図１９および２０は、齧歯動物罠１の第２の実施形態を示す。同じ参照数字を、両方の実施形態について、同じ特徴のために使用している。第２の実施形態において、加圧されたガス格納器３は、ベース６内に形成されたポート５０内で受け取られる。ポート５０は、格納器３のねじ型ノズル１１を確実に受け取るためのねじ穴を含んでいる。導管またはチューブ１２は、ポート５０から放出チャンバ１４に伸びている（これらの図では隠れている）。さらに、この実施形態において、ベント１５は、囲い２の壁内に位置し、オリフィス導管５２によって放出チャンバ１４と接続された放出オリフィス５１によって置き換えられている。バリヤバー３１および３２は垂直に延び、囲い２の各端で隣接して位置している。
【０１８０】
図２１および２２の第３の実施形態において、ベース６は、作動筐体７０と置き換えられる。筐体は、格納器３のノズル１１を受け取るためのポート７１を備える。先の実施形態において、ポート７１は、格納器３のねじ型ノズル１１と相補的に係合するねじ穴を含んでいる。筐体７０は、格納器の内容物（本発明による殺害獣組成物を含む）を囲い２の下の放出チャンバに移すためのチャネル（図示せず）を含んでいる。
【０１８１】
使用に際し、本発明の組成物を含有する格納器３は、接続用素子１３またはポート５０もしくは７１のいずれかに接続されている。罠の制御装置は、放出部を定期的に作動させて、組成物の一定用量が、格納器３から囲い２の内部へ、放出チャンバ１４およびベント１５またはオリフィス５１を介して、放出されるように取り付けられている。例えば、誘引物質またはフェロモン成分が組成物に含まれるとき、その成分は好ましくは空気伝達性であるため、齧歯動物を罠へ誘引するために、囲い２から周囲の空気中へ発散されうる。代替的にまたは付加的に、いくつかの他の適切な形態の餌を、齧歯動物を罠に誘い込むために囲いの中に置いてもよい。
【０１８２】
齧歯動物が囲い２に入ったら、第１のセンサを作動させ、信号を制御装置に送る。第１のセンサが作動しつづける場合、第２のセンサが活性化され、制御装置が放出部を動かして、殺害獣組成物が、加圧された格納器３から囲い２の中へ流れるようにする。制御装置は、齧歯動物が致死的に毒されるために十分な用量に相当する所定の時間の間、放出部が作動するように取り付けられる。所定の時間が満了したら、放出部が元の位置に戻り、導管１２が閉鎖され、さらなる組成物２が囲い２に入ることが妨げられる。制御装置は、所定の時間が経過してから、再び第１のセンサおよび第２のセンサを受け取る信号に作用するようにプログラム化されている。これにより、齧歯動物が罠から離れる時間ができ、殺傷のために必要な量を上回る組成物の毒性成分が組成物に送達されることが妨げられる。
【０１８３】
上述のように、上記の送達装置の様々な代替的な種類、構成、および配置が、本発明ならびにその様々な態様における様々な実施形態による組成物の送達または方法もしくは使用の実施のために利用しうる。
【０１８４】
上記本発明の好ましい実施形態、特徴、および態様、ならびにその例証的実施例の説明は、非限定的な例示にすぎず、様々な変形が、詳細に説明され議論されたそれら実施形態、特徴および態様から為されうること、また一方でそれら変形も、添付の特許請求の範囲で定義される本発明の範囲内にあることが理解されるべきである。
【図１】
2017502958.tif 000014
【図２】
2017502958.tif 000015
【図３】
2017502958.tif 000016
【図４】
2017502958.tif 000017
【図５】
2017502958.tif 000018
【図６】
2017502958.tif 000019
【図７】
2017502958.tif 000020
【図８】
2017502958.tif 000021
【図９】
2017502958.tif 000022
【図１０（ａ）】
2017502958.tif 000023
【図１０（ｂ）】
2017502958.tif 000024
【図１０（ｃ）】
2017502958.tif 000025
【図１０（ｄ）】
2017502958.tif 000026
【図１０（ｅ）】
2017502958.tif 000027
【図１０（ｆ）】
2017502958.tif 000028
【図１１（ａ）】
2017502958.tif 000029
【図１１（ｂ）】
2017502958.tif 000030
【図１１（ｃ）】
2017502958.tif 000031
【図１１（ｄ）】
2017502958.tif 000032
【図１１（ｅ）】
2017502958.tif 000033
【図１２】
2017502958.tif 000034
【図１３（ａ）】
2017502958.tif 000035
【図１３（ｂ）】
2017502958.tif 000036
【図１４（ａ）】
2017502958.tif 000037
【図１４（ｂ）】
2017502958.tif 000038
【図１４（ｃ）】
2017502958.tif 000039
【図１４（ｄ）】
2017502958.tif 000040
【図１４（ｅ）】
2017502958.tif 000041
【図１５】
2017502958.tif 000042
【図１６】
2017502958.tif 000043
【図１７】
2017502958.tif 000044
【図１８】
2017502958.tif 000045
【図１９】
2017502958.tif 000046
【図２０】
2017502958.tif 000047
【図２１】
2017502958.tif 000048
【図２２】
2017502958.tif 000049
【手続補正書】
【提出日】平成28年4月7日(2016.4.7)
【手続補正１】
【補正対象書類名】特許請求の範囲
【補正対象項目名】全文
【補正方法】変更
【補正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
動物を殺傷するための組成物であって、
（ｉ）前記動物に対して毒性のある１つ以上の毒素剤を含む毒性成分であり、組成物の一用量が前記動物の皮膚に適用された場合に前記動物を殺傷するために十分な量で前記組成物中に存在する毒性成分と、
（ｉｉ）前記毒性成分のための担体系と
を含み、
ここで前記担体系（ｉｉ）は、
（ａ）前記毒性成分のための少なくとも１つの溶媒または分散媒と、
（ｂ）スルホキシド、アミド、炭化水素、ケトン、エーテルからなる群から選択される１つ以上の物質を含む、少なくとも１つの皮膚撹乱成分と、
を含み、
前記少なくとも１つの皮膚撹乱成分（ｂ）と、前記少なくとも１つの溶媒または分散媒（ａ）とは異なる化学種であり、
前記少なくとも１つの皮膚撹乱成分（ｂ）は、前記担体系自体の２０重量％〜９０重量％の量で前記組成物中に存在し、前記量の前記皮膚撹乱成分（ｂ）は、前記動物の皮膚内へのおよび／または前記動物の皮膚を通じた前記毒性成分の通過を、前記少なくとも１つの皮膚撹乱成分が存在しない場合と比較して促進または増強させるように前記動物の皮膚の撹乱を生じさせるために十分であることを特徴とする組成物。
【請求項２】
請求項１に記載の組成物であって、殺傷される前記動物が、齧歯動物、有袋動物、ウサギ科動物およびイタチ科動物からなる群から選択される標的動物であって、前記１つ以上の毒素剤が、前記標的動物に特異的であり、前記標的動物以外の動物に対しては実質的に無毒性である毒性物から選択されることを特徴とする組成物。
【請求項３】
請求項１または２に記載の組成物であって、前記毒性成分が実質的に水不溶性であることを特徴とする組成物。
【請求項４】
請求項１〜３のいずれか１項に記載の組成物であって、前記１つ以上の毒素剤が、コレカルシフェロール、２５−ヒドロキシコレカルシフェロール、カルシフェロール、エルゴカルシフェロール、抗凝血剤、金属リン化物、α−ナフチルチオ尿素、ヒ素化合物、バリウム合成物、タリウム化合物、ブロメタリン、クロラローゼ、クリミジン、１，３−ジフルオロ−２−プロパノール、エンドリン、フルオロアセトアミド、ホサセチム、白リン、ピリヌロン、シリロシド、フルオロ酢酸ナトリウム、ストリキニーネ、テトラメチレンジスルホテトラミン、シアン化水素、シアン化ナトリウム、シアン化カリウム、および細菌またはウイルスの毒素の１つ以上から選択されることを特徴とする組成物。
【請求項５】
請求項４に記載の組成物であって、前記毒素剤が、コレカルシフェロールまたは２５−ヒドロキシコレカルシフェロール（ビタミンＤ３）であることを特徴とする組成物。
【請求項６】
請求項１〜５のいずれか１項に記載の組成物であって、前記毒性成分が、前記組成物の０．００１重量％〜９０重量％の量で前記組成物中に存在することを特徴とする組成物。
【請求項７】
請求項６に記載の組成物であって、前記毒性成分が、前記組成物の１重量％〜６０重量％の量で前記組成物中に存在することを特徴とする組成物。
【請求項８】
請求項２を通じて従属する請求項１〜７のいずれか１項に記載の組成物であって、前記組成物中の前記毒性成分の濃度が、前記組成物の所定の１回用量または適用によって、致死量の前記毒性成分が前記標的動物に送達され、致死量を大きく超える量は送達されないように選択されることを特徴とする組成物。
【請求項９】
請求項１〜８のいずれか１項に記載の組成物であって、前記皮膚撹乱成分が、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）であることを特徴とする組成物。
【請求項１０】
請求項１〜９のいずれか１項に記載の組成物であって、前記皮膚撹乱成分が、前記担体系自体の３０または４０重量％〜７０または８０重量％の量で前記組成物中に存在することを特徴とする組成物。
【請求項１１】
請求項１〜１０のいずれか１項に記載の組成物であって、前記担体系の前記溶媒または分散媒が、前記担体系自体の１重量％〜９９重量％の量で存在することを特徴とする組成物。
【請求項１２】
請求項１１に記載の組成物であって、前記担体系の前記溶媒または分散媒が、前記担体系自体の１０または２５重量％〜６０または７０重量％の量で存在することを特徴とする組成物。
【請求項１３】
請求項１〜１２のいずれか１項に記載の組成物であって、１つ以上のフェロモンまたは他の誘引化合物をさらに含むことを特徴とする組成物。
【請求項１４】
請求項１〜１３のいずれか１項に記載の組成物であって、
（ｉ）皮膚浸透促進剤、
（ｉｉ）湿潤剤、
（ｉｉｉ）粘度調整剤、
（ｉｖ）共溶媒、
（ｖ）さらに１つの乳化剤、安定剤、保存料、皮膚軟化剤、香料、着色剤、または色素、ｐＨ調整剤、ゲル形成剤、泡形成剤、薬剤から選択される他の付加的物質、
（ｖｉ）１つ以上のエアロゾル噴射剤から選択される送達促進成分、
のいずれかから選択される１つ以上の付加的成分をさらに含むことを特徴とする組成物。
【請求項１５】
請求項１４に記載の組成物であって、脂肪酸、２−ピロリドン、プロピレングリコール、アルコール、グリコール、グリコールエーテル、グリセロールホルマール、ポリエチレングリコール、液体ポリオキシエチレングリコール、ピロリドン、アセトン、アセトニトリル、アミド、フタル酸エステル、リン脂質、天然油、アゾン、テルペンおよびテルペノイド、精油、尿素、ならびに水のいずれかから選択される１つ以上の皮膚浸透促進剤を含むことを特徴とする組成物。
【請求項１６】
動物の殺傷方法であって、請求項１〜１５のいずれか１項に記載の組成物を、前記動物の皮膚に送達することを含むことを特徴とする方法。
【請求項１７】
１つ以上の毒素剤を動物の血流に経皮的に送達するための方法であって、前記動物の皮膚に、請求項１〜１５のいずれか１項に記載の組成物を適用することを含むことを特徴とする方法。
【請求項１８】
殺害獣剤または殺害獣組成物としての、請求項１〜１５のいずれか１項に記載の組成物の使用。
【請求項１９】
１つ以上の毒素剤を動物の血流に経皮的に送達するための、請求項１〜１５のいずれか１項に記載の組成物の使用。
【請求項２０】
１つ以上の毒素剤を動物の血流に経皮的に送達するための、前記１つ以上の毒素剤のための担体系の使用であって、
前記１つ以上の毒素剤および前記担体系が、前記動物の皮膚に適用するための組成物としてまたは組成物中で提供され、前記担体系が、
（ａ）前記１つ以上の毒素剤のための少なくとも１つの溶媒または分散媒と、
（ｂ）スルホキシド、アミド、炭化水素、ケトン、エーテルからなる群から選択される１つ以上の物質を含む、少なくとも１つの皮膚撹乱成分と、
を含み、
前記少なくとも１つの皮膚撹乱成分（ｂ）と、前記少なくとも１つの溶媒または分散媒（ａ）とは異なる化学種であり、
前記少なくとも１つの皮膚撹乱成分（ｂ）は、前記担体系自体の２０重量％〜９０重量％の量で前記組成物中に存在し、前記量の前記皮膚撹乱成分（ｂ）は、前記動物の皮膚内へのおよび／または前記動物の皮膚を通じた前記毒性成分の通過を、前記少なくとも１つの皮膚撹乱成分が存在しない場合と比較して促進または増強させるように前記動物の皮膚の撹乱を生じさせるために十分であることを特徴とする使用。
【請求項２１】
１つ以上の毒素剤を動物の皮膚に送達することによる動物の殺傷のための装置であって、
（ｉ）動物が入ることができる囲いと、
（ｉｉ）請求項１〜１５のいずれか１項に記載の組成物の供給物を含有する格納器手段と、
（ｉｉｉ）ある量の前記組成物を動物の皮膚に送達する送達手段と、
を含むことを特徴とする装置。
【手続補正２】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００１１
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００１１】
したがって、第１の態様において、本発明は、動物を殺傷するための組成物であって、
（ｉ）動物に対して毒性のある１つ以上の作用剤を含む毒性成分であり、組成物の一用量が前記動物の皮膚に適用された場合に動物を殺傷するために十分な量で前記組成物中に存在する毒性成分と、
（ｉｉ）毒性成分のための担体系と、
を含み、
ここで担体系（ｉｉ）は、
（ａ）毒性成分のための少なくとも１つの溶媒または分散媒と、
（ｂ）スルホキシド、アミド、炭化水素、ケトン、エーテルからなる群から選択される１つ以上の物質を含む、少なくとも１つの皮膚撹乱成分（ｄｅｒｍａｌ  ｄｉｓｒｕｐｔａｎｔ  ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ）と、
を含み、
少なくとも１つの皮膚撹乱成分（ｂ）と、少なくとも１つの溶媒または分散媒（ａ）とは異なる化学種であり、
少なくとも１つの皮膚撹乱成分（ｂ）は、担体系自体の約２０重量％〜約９０重量％の量で組成物中に存在し、前記量の皮膚撹乱成分（ｂ）は、動物の皮膚内へのおよび／または動物の皮膚を通じた毒性成分の通過を、少なくとも１つの皮膚撹乱成分が存在しない場合と比較して促進または増強させるように動物の皮膚の撹乱を生じさせるために十分である、組成物を提供する。
【手続補正３】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００１３
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００１３】
担体系の少なくとも１つの皮膚撹乱成分は、動物の皮膚内へのおよび／または皮膚を通じた、１つ以上の毒素剤の皮膚浸透を促進させる物質であり、そのような量で存在する。本発明のこの態様の組成物の好ましい物質または量について、好ましい実施形態および実施例と関連させて、より詳細に下記で説明する。
【手続補正４】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００１７
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００１７】
第５の態様において、本発明は、本発明の第１の態様による組成物またはその実施形態もしくは実施例の１つ以上の毒素剤を、動物に経皮的に、好ましくは血流中に、送達するための使用を提供する。より詳細には、この態様の使用は、１つ以上の毒素剤を動物に経皮的に、好ましくは動物の血流に送達するための、１つ以上の毒素剤のための担体系の使用であって、１つ以上の毒素剤および担体系が、動物の皮膚に適用するための組成物としてまたは組成物中で提供され、この担体系が、
（ａ）１つ以上の毒素剤のための少なくとも１つの溶媒または分散媒と、
（ｂ）スルホキシド、アミド、炭化水素、ケトン、エーテルからなる群から選択される１つ以上の物質を含む、少なくとも１つの皮膚撹乱成分と、
を含み、
少なくとも１つの皮膚撹乱成分（ｂ）と、少なくとも１つの溶媒または分散媒（ａ）とは異なる化学種であり、
少なくとも１つの皮膚撹乱成分（ｂ）は、担体系自体の約２０重量％〜約９０重量％の量で組成物中に存在し、前記量の皮膚撹乱成分（ｂ）は、動物の皮膚内へのおよび／または動物の皮膚を通じた毒性成分の通過を、少なくとも１つの皮膚撹乱成分が存在しない場合と比較して促進または増強させるように動物の皮膚の撹乱を生じさせるために十分である、使用を含む。
【手続補正５】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００３１
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００３１】
多くの実際上の実施形態において、送達される組成物は、本発明による所定の装置の使用において、組成物中の毒性成分の濃度が、組成物の所定の１回用量または適用によって、要求される致死量の毒性成分が所定の標的動物に送達され、好ましくは致死量を大きく超える量は送達されないように選択されるように製剤化されることが好ましくありうる。このように、所定の標的動物に対して動物を殺傷するために十分な毒性成分の一用量のみが送達され、組成物はその中に含まれる毒性成分の濃度が致死的有効性および経済性の両方について最適化されるように製剤化されうる。
【手続補正６】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００３３
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００３３】
［担体系］
本発明によれば、組成物の担体系は、
（ａ）毒性成分のための少なくとも１つの溶媒または分散媒と、
（ｂ）スルホキシド、アミド、炭化水素、ケトン、エーテルからなる群から選択される１つ以上の物質を含む、少なくとも１つの皮膚撹乱成分と、
を含み、
少なくとも１つの皮膚撹乱成分（ｂ）と、少なくとも１つの溶媒または分散媒（ａ）とは異なる化学種であり、
少なくとも１つの皮膚撹乱成分（ｂ）は、担体系自体の約２０重量％〜約９０重量％の量で組成物中に存在し、前記量の皮膚撹乱成分（ｂ）は、動物の皮膚内へのおよび／または動物の皮膚を通じた毒性成分の通過を、少なくとも１つの皮膚撹乱成分が存在しない場合と比較して促進または増強させるように動物の皮膚の撹乱を生じさせるために十分である。
【手続補正７】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００３４
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００３４】
したがって、本発明の組成物において、少なくとも１つの溶媒または分散媒と、少なくとも１つの皮膚撹乱成分とは、異なる化学種である。
【手続補正８】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００３９
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００３９】
［皮膚撹乱成分］
本発明の組成物で使用される皮膚撹乱成分は、スルホキシド、アミド、炭化水素、ケトン、エーテルからなる群から選択される１つ以上の物質を含む。そのような物質は、毒性成分の動物の皮膚内へのおよび／または皮膚を通じた通過を、そのような皮膚撹乱成分が存在しない場合と比較して促進または増強させるように、動物、好ましくは標的動物の皮膚の物理的および／または化学的性質を遮断または変更するように作用する量で使用される。そのような皮膚撹乱物質は、好ましくは、皮膚に永久的もしくは不可逆的または皮膚細胞の死を生じさせるような方法で損傷を与える意味において動物の皮膚に損傷を与えるものではない。代わりに、そのような皮膚撹乱物質は、本発明の組成物の成分として使用するために定義されるとき、単に皮膚の挙動を変化させ、特に痛み、炎症、皮膚の腫れまたは皮膚の細胞死は実質的に生じさせず、そのため、単に増加した可逆的な層間細胞交換（ｃｅｌｌｕｌａｒ  ｅｘｃｈａｎｇｅ  ｂｅｔｗｅｅｎ  ｌａｙｅｒｓ）とは区別される皮膚の個々の脂質層間で生じるいくつかの不可逆的な細胞交換を生じる。
【手続補正９】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００４０
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００４０】
本発明者らの研究は、本発明に従って使用される皮膚撹乱成分によって生じる、損傷を生じさせるというよりは単に撹乱的な付随する皮膚の性質の変化が、皮膚の細胞を通じた毒性物の動きまたは移動のレベルの増強または延長を生じさせることを示した。結果として、動物の血流への毒性物取込の速度向上および効率改善が達成され、所定の量の毒性物から、増強された毒性作用を生じさせうる。
【手続補正１０】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００４１
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００４１】
本発明者らは、皮膚撹乱成分として使用することが適切でありうる物質の好ましい種が、非プロトン性溶媒であることを見出した。したがって、本発明の組成物における皮膚撹乱成分として本発明に従って使用されるそのような非プロトン性溶媒の好ましい例としては、以下の１つまたは以下の２種以上の組み合わせのいずれかが挙げられうる：
・スルホキシド、例えば、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、デシルメチルスルホキシド、
・アミド、例えば、ジメチルアセトアミド、ジメチルホルムアミド、
・炭化水素、例えば、ヘキサン、トルエン、
・ケトン、例えば、アセトン、
・エーテル、例えば、ジエチルエーテル。
【手続補正１１】
【補正対象書類名】明細書
【補正対象項目名】００４３
【補正方法】変更
【補正の内容】
【００４３】
皮膚撹乱成分は、本発明による組成物の担体系中に、上記の皮膚撹乱効果を生じさせるための適切な量で存在しうる。本発明によれば、この量は、担体系自体の約２０重量％〜約９０重量％である。いくつかの実施形態において、皮膚撹乱成分の量は、より好ましくは担体系自体の３０または４０重量％〜約７０または８０重量％でありうる。
【国際調査報告】
2017502958.tif 000050
2017502958.tif 000051
2017502958.tif 000052