(57)【要約】本発明は、増幅ブロッカー及びＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析を用いたターゲット核酸配列上のヌクレオチド変異の検出に関するものである。本発明は、過量の野生型ＤＮＡ内の少数突然変異の検出に非常に効果的である。【選択図】図５
2017504306.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
下記の工程を含むことを特徴とする増幅ブロッカー及びＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析を用いてターゲット核酸配列上のターゲットヌクレオチド変異を検出する方法：
（ａ）前記ターゲット核酸配列を、前記ターゲット核酸の増幅のためのアップストリームプライマー及びダウンストリームプライマーを含むプライマー対、５’ヌクレアーゼ切断に対して耐性を有する前記増幅ブロッカー、及びＰＴＯ−ＮＶとハイブリッド形成させる工程であって、前記アップストリームプライマー及びダウンストリームプライマーは、それぞれ前記ターゲット核酸配列に相補的なハイブリッド形成ヌクレオチド配列を含み、前記増幅ブロッカーは、前記ターゲット核酸配列上の前記ターゲットヌクレオチド変異とは異なる非ターゲットヌクレオチド変異に対して相補的な配列を含み、前記ＰＴＯ−ＮＶは、（ｉ）前記ターゲット核酸配列に相補的なハイブリッド形成ヌクレオチド配列を含む３’−ターゲッティング部位、（ｉｉ）前記ターゲット核酸配列に非相補的なヌクレオチド配列を含む５’−タギング部位、及び（ｉｉｉ）前記ターゲット核酸上の前記ターゲットヌクレオチド変異に対して相補的な配列を含み、前記３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部に位置するヌクレオチド変異識別サイトを含み、
前記増幅ブロッカーは、前記非ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列にハイブリッド形成され、前記ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列にハイブリッド形成されず、前記ＰＴＯ−ＮＶの３’−ターゲッティング部位は、前記ターゲット核酸配列にハイブリッド形成され、前記ＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位は、前記ターゲット核酸配列にハイブリッド形成されず、
前記アップストリームプライマーは、前記ＰＴＯ−ＮＶのアップストリームに位置し、前記増幅ブロッカーは、前記アップストリームプライマー又はダウンストリームプライマーのダウンストリームに位置し、前記増幅ブロッカー及び前記ＰＴＯ−ＮＶは、前記アップストリームプライマーとダウンストリームプライマーとの間に位置する工程と、
（ｂ）前記ＰＴＯ−ＮＶの切断のための条件下で、５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素に前記工程（ａ）の結果物を接触させる工程であって、前記アップストリームプライマーは、その延長鎖を介して前記５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素による前記ＰＴＯ−ＮＶの切断を誘導し、前記増幅ブロッカーと前記非ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列のハイブリッド形成は、前記増幅ブロッカーのアップストリームに位置した前記プライマーの延長を抑制し、これにより、前記非ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列の増幅をブロッキングし、
前記ＰＴＯ−ＮＶが、前記ヌクレオチド変異識別サイトに対して相補的な前記ターゲットヌクレオチド変異を有する前記ターゲット核酸配列とハイブリッド形成されれば、前記３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部が、前記ターゲット核酸配列と二本鎖を形成して、第１初期切断サイトから切断を誘導し、第１断片が放出され、前記ＰＴＯ−ＮＶが、前記ヌクレオチド変異識別サイトに非相補的な前記非ターゲットヌクレオチド変異を有する前記ターゲット核酸配列とハイブリッド形成されれば、前記３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部が、前記ターゲット核酸配列と二本鎖を形成せず、前記第１初期切断サイトのダウンストリームに位置する第２初期切断サイトから切断を誘導し、第２断片が放出され、前記第２断片は、追加的な３’末端部位を含み、これは、前記第２断片が、前記第１断片と異なるようにする工程と、
（ｃ）前記ＰＴＯ−ＮＶから放出された前記断片とＣＴＯとをハイブリッド形成させる工程であって、前記ＣＴＯは、３’→５’方向に（ｉ）前記ＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位又は５’−タギング部位の一部に相補的なヌクレオチド配列を含むキャプチャリング部位、及び（ｉｉ）前記ＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位及び３’−ターゲッティング部位に非相補的なヌクレオチド配列を含むテンプレーティング部位を含み、前記ＰＴＯ−ＮＶから放出された前記第１断片又は前記第２断片は、前記ＣＴＯのキャプチャリング部位とハイブリッド形成される工程と、
（ｄ）前記工程（ｃ）の結果物及び鋳型−依存的核酸ポリメラーゼを用いて延長反応を実施する工程であって、前記第１断片が、前記ＣＴＯのキャプチャリング部位にハイブリッド形成されれば、前記第１断片は延長されて、前記ＣＴＯのテンプレーティング部位と相補的な延長配列を含む延長鎖を形成し、前記第２断片が、前記ＣＴＯのキャプチャリング部位にハイブリッド形成されれば、前記第２断片は延長されない工程と、
（ｅ）前記延長鎖の存在を検出する工程であって、前記延長鎖の存在は、前記ターゲットヌクレオチド変異の存在を示す工程。
【請求項２】
前記増幅ブロッカーは、５’ヌクレアーゼ活性に耐性のあるバックボーンを有するヌクレオシド／ヌクレオチドを含む請求項１に記載の方法。
【請求項３】
前記増幅ブロッカーは、ペプチド核酸（ＰＮＡ）、ロック核酸（ＬＮＡ）、モルホリノ、グリコール核酸（ＧＮＡ）、トレオース核酸（ＴＮＡ）、ブリッジ核酸（ＢＮＡ）、Ｎ３’−Ｐ５’ホスホルアミダート（ＮＰ）オリゴマー、小溝結合物質が連結されたオリゴヌクレオチド、ホスホロチオエート（ＰＳ）オリゴマー、Ｃ１〜Ｃ４アルキルホスホネートオリゴマー、ホスホルアミダート、β−ホスホジエステルオリゴヌクレオチド、α−ホスホジエステルオリゴヌクレオチド、又はこれらの組合せを含む請求項１に記載の方法。
【請求項４】
前記第２断片が、前記ＣＴＯのキャプチャリング部位にハイブリッド形成される場合、前記ＣＴＯが、前記第２断片の前記追加的な３’末端部位とハイブリッド形成されず、前記第２断片の延長が防止されるように選択された配列を前記ＣＴＯが有する請求項１に記載の方法。
【請求項５】
前記ヌクレオチド変異識別サイトは、前記ＰＴＯ−ＮＶの３’−ターゲッティング部位の５’末端から１０ヌクレオチド以内に離隔して位置する請求項１に記載の方法。
【請求項６】
前記ＰＴＯ−ＮＶの３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部は、前記ヌクレオチド変異識別サイトから１〜５ヌクレオチド以内に離隔して位置する非塩基対部分を含み、前記非塩基対部分は、前記第１初期切断サイト及び前記第２初期切断サイト間の差を増加させる請求項１に記載の方法。
【請求項７】
前記非塩基対部分は、（ｉ）人為的なミスマッチ塩基、塩基対を形成することができないように修飾された非塩基対塩基又はユニバーサル塩基を含むヌクレオチド、（ｉｉ）塩基対を形成することができないように修飾された非塩基対ヌクレオチド、又は（ｉｉｉ）非塩基対形成化合物である請求項６に記載の方法。
【請求項８】
前記ヌクレオチド変異は、置換変異、結実変異又は挿入変異である請求項１に記載の方法。
【請求項９】
前記第１断片の延長鎖と前記ＣＴＯは、前記工程（ｄ）で延長二量体を形成し、前記延長二量体は、（ｉ）前記第１断片の配列及び／又は長さ、（ｉｉ）前記ＣＴＯの配列及び／又は長さ、又は（ｉｉｉ）前記第１断片の配列及び／又は長さと前記ＣＴＯの配列及び／又は長さによって調節可能なＴｍ値を有し、前記延長二量体は、（ｉ）前記第１断片及び／又は前記ＣＴＯに連結された少なくとも１つの標識、（ｉｉ）前記延長反応の間に前記延長二量体内に挿入された標識、（ｉｉｉ）前記第１断片及び／又は前記ＣＴＯに連結された少なくとも１つの標識及び前記延長反応の間に前記延長二量体内に挿入された標識、又は（ｉｖ）インターカレーティング標識によるターゲットシグナルを提供し、前記延長鎖の存在は、前記延長二量体に対するメルティング分析又はハイブリッド形成分析によって、前記延長二量体から前記ターゲットシグナルを測定することで検出される請求項１に記載の方法。
【請求項１０】
前記第１断片の延長鎖と前記ＣＴＯは、前記工程（ｄ）で延長二量体を形成し、前記延長二量体は、（ｉ）前記第１断片の配列及び／又は長さ、（ｉｉ）前記ＣＴＯの配列及び／又は長さ、又は（ｉｉｉ）前記第１断片の配列及び／又は長さと前記ＣＴＯの配列及び／又は長さによって調節可能なＴｍ値を有し、前記延長二量体は、（ｉ）前記第１断片及び／又はＣＴＯに連結された少なくとも１つの標識、（ｉｉ）前記延長反応の間に前記延長二量体内に挿入された標識、（ｉｉｉ）前記第１断片及び／又はＣＴＯに連結された少なくとも１つの標識及び前記延長反応の間に前記延長二量体内に挿入された標識、又は（ｉｖ）インターカレーティング標識によるターゲットシグナルを提供し、前記延長鎖の存在は、前記延長二量体の二本鎖の保持に十分な既定の温度で前記延長二量体からターゲットシグナルを測定することで検出される請求項１に記載の方法。
【請求項１１】
前記第１断片の延長鎖は、シグナリングオリゴヌクレオチド（ＳＯ）を用いて検出され、前記ＳＯは、前記延長鎖に相補的な配列及び少なくとも１つの標識を含み、前記ＳＯは、前記延長鎖との結合又は解離によって検出可能なシグナルを提供する請求項１に記載の方法。
【請求項１２】
前記検出可能なシグナルは、（ｉ）前記ＳＯに連結された標識、（ｉｉ）前記ＳＯに連結された標識及び前記ＰＴＯの断片に連結された標識の組合せ、（ｉｉｉ）前記ＳＯに連結された標識及び前記工程（ｄ）の延長反応の間に延長鎖に挿入される標識の組合せ、又は（ｉｖ）前記ＳＯに連結された標識及びインターカレーティング染料の組合せによって提供される請求項１１に記載の方法。
【請求項１３】
前記方法は、前記延長鎖に相補的な配列を含む追加的なＳＯをもう１つ利用し、前記２つのＳＯは、前記延長鎖に近接してハイブリッド形成され、前記２つのＳＯは、それぞれ相互作用的二重標識のレポーター分子及びクエンチャー分子のうち１つの標識を含む請求項１１に記載の方法。
【請求項１４】
前記第１断片の延長鎖は、ハイブリッド形成オリゴヌクレオチド（ＨＯ）を用いて検出され、前記ＨＯは、前記ＣＴＯに相補的なハイブリッド形成ヌクレオチド配列及び少なくとも１つの標識を含み、前記第１断片の延長は、５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素による前記ＨＯの切断を誘導して、前記標識から検出可能なシグナルを生成する請求項１に記載の方法。
【請求項１５】
前記検出可能なシグナルは、（ｉ）前記ＨＯに連結された相互作用的二重標識、又は（ｉｉ）相互作用的二重標識のうち１つは、前記ＨＯに連結され、他の１つは、前記ＣＴＯに連結されたレポーター分子及びクエンチャー分子を含む相互作用的二重標識によって提供される請求項１４に記載の方法。
【請求項１６】
前記増幅ブロッカー、ＰＴＯ−ＮＶ及び／又はＣＴＯは、その延長が防止されるように３’末端がブロッキングされる請求項１に記載の方法。
【請求項１７】
前記方法は、前記工程（ａ）〜（ｅ）の全部又は一部を繰り返して実施する反復サイクルをさらに含み、前記反復サイクルの間に変性工程を含む請求項１に記載の方法。
【請求項１８】
前記方法は、少なくとも２種のヌクレオチド変異を検出するために実施され、前記アップストリームプライマー及び前記ダウンストリームプライマーは、少なくとも２種のアップストリームプライマー及びダウンストリームプライマーを含み、前記増幅ブロッカーは、少なくとも２種の増幅ブロッカーを含み、前記ＰＴＯ−ＮＶは、少なくとも２種のＰＴＯ−ＮＶを含む請求項１に記載の方法。
【請求項１９】
前記工程（ｂ）は、前記プライマーの延長のために鋳型−依存的核酸ポリメラーゼを用い、前記鋳型−依存的核酸ポリメラーゼは、前記５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素と同じ酵素である請求項１に記載の方法。
【請求項２０】
前記工程（ｂ）は、前記プライマーの延長のために鋳型−依存的核酸ポリメラーゼを用い、前記鋳型−依存的核酸ポリメラーゼは、前記５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素と異なる酵素である請求項１に記載の方法。
【請求項２１】
前記５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素は、５’ヌクレアーゼ活性を有する熱安定性ＤＮＡポリメラーゼ又はＦＥＮヌクレアーゼである請求項１に記載の方法。
【請求項２２】
下記を含むことを特徴とする増幅ブロッカー及びＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析を用いてターゲット核酸配列上のターゲットヌクレオチド変異を検出するためのキット：
（ａ）ターゲット核酸の増幅のためのアップストリームプライマー及びダウンストリームプライマーを含むプライマー対であって、前記アップストリームプライマー及びダウンストリームプライマーのそれぞれは、ターゲット核酸配列に相補的なハイブリッド形成ヌクレオチド配列を含む前記プライマー対と、
（ｂ）５’ヌクレアーゼ切断に対して耐性を有し、前記ターゲット核酸配列上の前記ターゲットヌクレオチド変異とは異なる非ターゲットヌクレオチド変異に対して相補的な配列を含む増幅ブロッカーと、
（ｃ）（ｉ）前記ターゲット核酸配列に相補的なハイブリッド形成ヌクレオチド配列を含む３’−ターゲッティング部位、（ｉｉ）前記ターゲット核酸配列に非相補的なヌクレオチド配列を含む５’−タギング部位、及び（ｉｉｉ）前記ターゲット核酸上の前記ターゲットヌクレオチド変異に対して相補的な配列を含み、前記３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部に位置するヌクレオチド変異識別サイトを含むＰＴＯ−ＮＶと、
（ｄ）３’→５’方向に（ｉ）前記ＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位又は５’−タギング部位の一部に相補的なヌクレオチド配列を含むキャプチャリング部位、及び（ｉｉ）前記ＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位及び３’−ターゲッティング部位に非相補的なヌクレオチド配列を含むテンプレーティング部位を含むＣＴＯであって、前記ＰＴＯ−ＮＶから放出された第１断片又は第２断片は、前記ＣＴＯのキャプチャリング部位とハイブリッド形成されるＣＴＯとを含み、
前記増幅ブロッカーは、前記非ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列にハイブリッド形成され、前記ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列にハイブリッド形成されず、前記ＰＴＯ−ＮＶの３’−ターゲッティング部位は、前記ターゲット核酸配列にハイブリッド形成され、前記ＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位は、前記ターゲット核酸配列にハイブリッド形成されず、
前記アップストリームプライマーは、前記ＰＴＯ−ＮＶのアップストリームに位置し、前記増幅ブロッカーは、前記アップストリームプライマー又はダウンストリームプライマーのダウンストリームに位置し、前記増幅ブロッカー及び前記ＰＴＯ−ＮＶは、前記アップストリームプライマーとダウンストリームプライマーとの間に位置し、
前記アップストリームプライマーは、その延長鎖を介して前記５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素による前記ＰＴＯ−ＮＶの切断を誘導し、前記増幅ブロッカーと前記非ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列のハイブリッド形成は、前記増幅ブロッカーのアップストリームに位置した前記プライマーの延長を抑制し、これにより、前記非ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列の増幅をブロッキングし、
前記ＰＴＯ−ＮＶが、前記ヌクレオチド変異識別サイトに対して相補的な前記ターゲットヌクレオチド変異を有する前記ターゲット核酸配列とハイブリッド形成されれば、前記３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部が、前記ターゲット核酸配列と二本鎖を形成して、第１初期切断サイトから切断を誘導し、第１断片が放出され、前記ＰＴＯ−ＮＶが、前記ヌクレオチド変異識別サイトに非相補的な前記非ターゲットヌクレオチド変異を有する前記ターゲット核酸配列とハイブリッド形成されれば、前記３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部が、前記ターゲット核酸配列と二本鎖を形成せず、前記第１初期切断サイトのダウンストリームに位置する第２初期切断サイトから切断を誘導し、第２断片が放出され、前記第２断片は、追加的な３’末端部位を含み、これは、前記第２断片が、前記第１断片と異なるようにし、
前記第１断片が、前記ＣＴＯのキャプチャリング部位にハイブリッド形成されれば、前記第１断片は延長されて、前記ＣＴＯのテンプレーティング部位と相補的な延長配列を含む延長鎖を形成し、前記第２断片が、前記ＣＴＯのキャプチャリング部位にハイブリッド形成されれば、前記第２断片は延長されない。
【請求項２３】
前記５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素、鋳型−依存的核酸ポリメラーゼ又はその組合せをさらに含む請求項２２に記載のキット。
【請求項２４】
前記第１断片の延長鎖と前記ＣＴＯは、延長二量体を形成し、前記延長二量体は、（ｉ）前記第１断片の配列及び／又は長さ、（ｉｉ）前記ＣＴＯの配列及び／又は長さ、又は（ｉｉｉ）前記第１断片の配列及び／又は長さと前記ＣＴＯの配列及び／又は長さによって調節可能なＴｍ値を有し、前記延長二量体は、（ｉ）前記第１断片及び／又は前記ＣＴＯに連結された少なくとも１つの標識、（ｉｉ）前記延長反応の間に前記延長延長二量体内に挿入された標識、（ｉｉｉ）前記第１断片及び／又は前記ＣＴＯに連結された少なくとも１つの標識及び前記延長反応の間に前記延長二量体内に挿入された標識、又は（ｉｖ）インターカレーティング標識によるターゲットシグナルを提供し、前記延長鎖の存在は、前記延長二量体に対するメルティング分析又はハイブリッド形成分析によって、前記延長二量体から前記ターゲットシグナルを測定することで検出される請求項２２に記載のキット。
【請求項２５】
前記第１断片の延長鎖と前記ＣＴＯは、延長二量体を形成し、前記延長二量体は、（ｉ）前記第１断片の配列及び／又は長さ、（ｉｉ）前記ＣＴＯの配列及び／又は長さ、又は（ｉｉｉ）前記第１断片の配列及び／又は長さと前記ＣＴＯの配列及び／又は長さによって調節可能なＴｍ値を有し、前記延長二量体は、（ｉ）前記第１断片及び／又は前記ＣＴＯに連結された少なくとも１つの標識、（ｉｉ）前記延長反応の間に前記延長二量体内に挿入された標識、（ｉｉｉ）前記第１断片及び／又は前記ＣＴＯに連結された少なくとも１つの標識及び前記延長反応の間に前記延長二量体内に挿入された標識、又は（ｉｖ）インターカレーティング標識によるターゲットシグナルを提供し、前記延長鎖の存在は、前記延長二量体の二本鎖の保持に十分な既定の温度で前記延長二量体からターゲットシグナルを測定することで検出される請求項２２に記載のキット。
【請求項２６】
前記第１断片の延長鎖を検出するためのシグナリングオリゴヌクレオチド（ＳＯ）をさらに含み、前記ＳＯは、前記延長鎖に相補的な配列及び少なくとも１つの標識を含み、前記ＳＯは、前記延長鎖との結合又は解離によって検出可能なシグナルを提供する請求項２２に記載のキット。
【請求項２７】
第１断片の延長鎖を検出するためのハイブリッド形成オリゴヌクレオチド（ＨＯ）をさらに含み、前記ＨＯは、前記ＣＴＯに相補的なハイブリッド形成ヌクレオチド配列及び少なくとも１つの標識を含み、前記ＨＯは、前記第１断片の延長によって検出可能なシグナルを提供する請求項２３に記載のキット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本特許出願は、２０１３年５月２８日に出願された米国仮出願第６１／８２７，９６６号に対して優先権を主張し、前記特許出願の開示事項は、本明細書に参照として挿入される。
【０００２】
本発明は、増幅ブロッカー及びＶＤ−ＰＴＯＣＥ（Ｖａｒｉａｔｉｏｎ  Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ  ｂｙ  ＰＴＯ  Ｃｌｅａｖａｇｅ  ａｎｄ  Ｅｘｔｅｎｓｉｏｎ）を用いたターゲット核酸配列上のヌクレオチド変異の検出に関する。
【背景技術】
【０００３】
ＤＮＡハイブリッド形成（ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ）は、分子生物学の基本的な過程であり、イオン強度、塩基組成、減少した核酸断片の長さ、ミスマッチング程度、及び変性化剤の存在によって影響を受ける。ＤＮＡハイブリッド形成ベースの技術は、特定核酸配列の決定に非常に有用な道具となり、臨床診断、遺伝子研究、及び法医学的な実験分析に明確に役に立つ。
【０００４】
しかし、ハイブリッド形成にのみ主に依存する従来の方法及び過程では、プローブと非ターゲット配列との間の非特異的なハイブリッド形成による擬陽性の結果が発生する可能性が高い。したがって、従来の方法及び過程は、信頼度を改善しなければならない問題点が残っている。
【０００５】
プローブハイブリッド形成過程以外にも、追加的に酵素反応を用いた幾つかの接近法、例えば、ＴａｑＭａｎＴＭプローブ方法が提示された。
【０００６】
ＴａｑＭａｎＴＭプローブ方法で、ターゲット核酸配列にハイブリッド形成された標識プローブは、アップストリームプライマー依存的ＤＮＡポリメラーゼの５’ヌクレアーゼ活性によって切断されて、ターゲット配列の存在を示すシグナルを発生させる（特許文献１〜３）。ＴａｑＭａｎＴＭプローブ方法は、シグナル発生のための２つの接近法を提示する：重合依存的切断（ｐｏｌｙｍｅｒｉｚａｔｉｏｎ−ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ  ｃｌｅａｖａｇｅ）及び重合独立的切断（ｐｏｌｙｍｅｒｉｚａｔｉｏｎ−ｉｎｄｅｐｅｎｄｅｎｔ  ｃｌｅａｖａｇｅ）。重合依存的切断で、アップストリームプライマーの延長は、必ず核酸ポリメラーゼが標識プローブの５’末端に接触する前に発生しなければならない。延長反応が進行しながら、ポリメラーゼは、標識プローブの５’末端を次第に切断する。重合独立的切断で、アップストリームプライマー及び標識プローブは、非常に近接してターゲット核酸配列にハイブリッド形成され、アップストリームプライマーの３’末端と核酸ポリメラーゼの結合は、前記核酸ポリメラーゼを標識プローブの５’末端に接触させて標識を放出する。また、ＴａｑＭａｎＴＭプローブ方法は、その５’末端部位にターゲット配列とハイブリッド形成されない５’−テイル領域を有する標識プローブが切断されて、５’−テイル領域を含む断片が形成されることを開示している。
【０００７】
ターゲット配列に非相補的な５’−テイル領域を有するプローブが、５’ヌクレアーゼによって切断されて、５’−テイル領域を含む断片が放出される幾つかの方法が報告された。
【０００８】
例えば、特許文献４は、ＤＮＡポリメラーゼの５’ヌクレアーゼ活性によって切断される切断構造を開示している。テンプレート（ｔｅｍｐｌａｔｅ）に非相補的な５’部位、及びテンプレートに相補的な３’部位を含むオリゴヌクレオチドがテンプレートにハイブリッド形成され、アップストリームオリゴヌクレオチドは、非常に近接してテンプレートにハイブリッド形成される切断構造が例示されている。前記切断構造は、５’ヌクレアーゼ活性を有するＤＮＡポリメラーゼ、又は減少した合成活性を有する修飾ＤＮＡポリメラーゼによって切断されて、テンプレートに非相補的な５’部位が放出される。次いで、前記放出された５’部位は、ヘアピン構造を有するオリゴヌクレオチドにハイブリッド形成されて切断構造を形成し、これにより、漸進的な切断反応が誘導されてターゲット配列が検出される。
【０００９】
特許文献５は、３’末端がブロッキングされたアップストリームオリゴヌクレオチドを有する切断構造が、５’ヌクレアーゼ活性を有するＤＮＡポリメラーゼ又はＦＥＮヌクレアーゼによって切断されて、非相補的な５’フラップ（ｆｌａｐ）領域が放出され、前記放出された５’フラップ領域が、サイズ分析又は相互作用的二重標識によって検出される過程を開示している。特許文献６は、検出可能な放出されたフラップが核酸合成依存的な、フラップ媒介連続的増幅方法によって生成されることを開示している。この方法では、第１切断構造から放出されたフラップが、核酸合成依存的な方式で第２切断構造を切断して第２切断構造からフラップを放出させ、前記放出されたフラップが検出される。特許文献７は、核酸合成によって生成された放出されたフラップの形成、放出されたフラップの延長、フラップ延長の間にオリゴヌクレオチドの切断及びオリゴヌクレオチドの切断によって生成されたシグナル検出を含む方法を開示している。
【００１０】
液相での蛍光−標識プローブのハイブリッド形成によって、一種の蛍光標識を用いる場合にも、メルティングカーブ分析によって多数のターゲット核酸配列を同時的に検出することができる。しかし、相互作用的二重標識プローブの５’ヌクレアーゼ−媒介切断によってターゲット配列を検出する従来技術は、マルチプレックスターゲット検出において、互いに異なるターゲット配列に対して、互いに異なる種類の蛍光標識を必要とし、このような蛍光標識種類の数の限界のために検出されるターゲット配列の数は制限される。
【００１１】
特許文献８は、ターゲット核酸配列に非相補的な５’部位を有するプローブの切断及びキャプチャー（ｃａｐｔｕｒｅ）プローブのハイブリッド形成を用いたターゲット検出方法を開示している。標識は、非相補的な５’部位に位置する。ターゲット配列にハイブリッド形成された標識プローブは、切断されて断片を放出し、以後、前記断片は、キャプチャープローブにハイブリッド形成されてターゲット配列の存在が検出される。この方法で、非切断された／完全な（ｕｎｃｌｅａｖｅｄ／ｉｎｔａｃｔ）プローブは、キャプチャープローブにハイブリッド形成されないことが必須的である。そのためには、短い長さを有するキャプチャープローブが、固相基質上に固定化されなければならない。しかし、このような制限は、固相基質でのハイブリッド形成の効率を低め、また反応条件の最適化も難しくする。
【００１２】
したがって、より便利かつ信頼性及び再現性のある方式で、ハイブリッド形成だけではなく、５’核酸切断反応（５’ｎｕｃｌｅｏｌｙｔｉｃ  ｒｅａｃｔｉｏｎ）のような酵素反応によって、液相及び固相でターゲット配列、より望ましくは、複数のターゲット配列を検出するための新規な接近法に対する開発要求が台頭しつつある。また、当業界で標識（特に、蛍光標識）種類の数に制限されない新規なターゲット検出方法が要求されている。
【００１３】
一方、ヌクレオチド変異は、研究及び臨床領域で重要である。そのうち、一塩基多型（ｓｉｎｇｌｅ  ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ  ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｓｍ；ＳＮＰ）は、ヒトゲノムで最も多く発見され、疾病関連遺伝子座（ｌｏｃｉ）及び薬物遺伝学（ｐｈａｒｍａｃｏｇｅｎｅｔｉｃｓ）に対するマーカーとして役割を果たす（非特許文献１〜２）。ＳＮＰは、ヒトゲノムで１，０００ｂｐ当たり約１つの比率で発見され、これらの総数字は、約３００万個と推定される。ＳＮＰ、欠損、挿入及び転座（ｔｒａｎｓｌｏｃａｔｉｏｎ）のようなヌクレオチド変異を検出するための多様な対立遺伝子の識別技術が報告されている。
【００１４】
対立遺伝子−特異的ＴａｑＭａｎプローブは、ＰＣＲの延長工程で完璧にマッチングされるターゲット配列にのみハイブリッド形成されるようにデザインされる。ＴａｑＭａｎプローブは、レポーター分子及び前記レポーター分子から蛍光シグナルをクエンチングすることができるクエンチャー分子を有する。ターゲット配列とハイブリッド形成されるＴａｑＭａｎプローブは、Ｔａｑ  ＤＮＡポリメラーゼの５’ヌクレアーゼ活性によって切断され、レポーター分子及びクエンチャー分子は、分離されてターゲットシグナルを生成する。対立遺伝子の識別のために小溝結合物質（Ｍｉｎｏｒ  Ｇｒｏｏｖｅ  Ｂｉｎｄｅｒ；ＭＧＢ）と結合された１３〜２０ｍｅｒのプローブが使われる（非特許文献３）。ＴａｑＭａｎプローブを用いた対立遺伝子の識別方法は、ハイブリッド形成反応だけではなく、５’ヌクレアーゼ活性の酵素反応を用いるために、特異性が増加する。しかし、前記方法は、対立遺伝子−特異的プローブデザインの難点と１つのミスマッチによる差を識別することができる反応条件の最適化の難点のような深刻な問題点を有している。さらに、ＭＧＢとの結合は、対立遺伝子−特異的ＴａｑＭａｎプローブに対する問題解決の方法の１つである。
【００１５】
ＰＮＡ又はＬＮＡクランプ（ｃｌａｍｐ）を用いた突然変異対立遺伝子の選択的増幅によって少数突然変異個体群（ｍｉｎｏｒｉｔｙ  ｍｕｔａｎｔ  ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ）を検出するためのＰＣＲクランピング（ｃｌａｍｐｉｎｇ）方法が公開された。ＰＮＡを用いる代表的なＰＣＲクランピング方法が、非特許文献４〜５に公開されている。しかし、前記ＰＣＲクランピング方法は、野生型対立遺伝子の増幅を完全にブロッキング（ｂｌｏｃｋｉｎｇ）することができない可能性がある。
【００１６】
したがって、従来技術の短所を解消しながら、さらに便利かつ信頼性及び再現性のある方式で、ヌクレオチド変異を検出することができる新規なアプローチに対する開発要求が続けられている。
【００１７】
本明細書の全般に亘って多数の特許及び文献が参照され、その引用がカッコで囲まれている。本発明及び本発明が属する技術分野のレベルをより明確に説明するために、このような特許及び文献の公開は、その全体として本明細書に参照して含まれている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１８】
【特許文献１】米国特許第５，２１０，０１５号公報
【特許文献２】米国特許第５，５３８，８４８号公報
【特許文献３】米国特許第６，３２６，１４５号公報
【特許文献４】米国特許第５，６９１，１４２号公報
【特許文献５】米国特許第７，３８１，５３２号公報
【特許文献６】米国特許第６，８９３，８１９号公報
【特許文献７】米国特許第７，３０９，５７３号公報
【特許文献８】米国出願公開第２００８−０２４１８３８号公報
【非特許文献】
【００１９】
【非特許文献１】Ｌａｎｄｅｇｒｅｎら、１９９８
【非特許文献２】Ｒｏｓｅｓ，２０００
【非特許文献３】Ｌｉｖａｋら、Ｇｅｎｅｔ．Ａｎａｌ．１４：１４３−１４９（１９９９）
【非特許文献４】Ｈｅｎｒｉｋら、Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  ２１：５３３２−５３３６（１９９３）
【非特許文献５】Ｌｕｏら、Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｖｏｌ．３４，Ｎｏ  ２  ｅ１２（２００６）
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００２０】
本発明者らは、より改善された正確性及び便宜性を有し、特に、マルチプレックス方式で少量のターゲット核酸上のターゲットヌクレオチド変異を検出する新規なアプローチを開発するために鋭意研究した。その結果、本発明者らは、本発明者によって開発されたＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析（参考：ＰＣＴ／ＫＲ２０１３／００１４９２）を改善して少量のターゲット核酸上のターゲットヌクレオチド変異を検出するための新規なプロトコルを定立した。本発明のプロトコルは、固相反応だけではなく、液相反応にも優れているように適用され、より改善された正確性及び便宜性で少量の複数のヌクレオチド変異を検出することができる。
【００２１】
したがって、本発明の目的は、増幅ブロッカー及びＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析を用いて、ターゲット核酸配列上のターゲットヌクレオチド変異を検出する方法を提供することである。
【００２２】
本発明の他の目的は、増幅ブロッカー及びＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析を用いて、ターゲット核酸配列上のターゲットヌクレオチド変異を検出するためのキットを提供することである。
【００２３】
本発明の他の目的及び利点は、添付した特許請求の範囲及び図面と共に下記の詳細な説明によってより明確になる。
【図面の簡単な説明】
【００２４】
【図１】図１は、ＰＴＯの切断及び延長分析（ＰＴＯ  ｃｌｅａｖａｇｅ  ａｎｄ  ｅｘｔｅｎｓｉｏｎ  ａｓｓａｙ；ＰＴＯＣＥ  ａｓｓａｙ）に利用されるＰＴＯ（Ｐｒｏｂｉｎｇ  ａｎｄ  Ｔａｇｇｉｎｇ  Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ）及びＣＴＯの図式的な構造を示す。望ましくは、ＰＴＯ及びＣＴＯの３’末端は、その延長が防止されるようにブロッキングされる。ＰＴＯ−ＮＶは、ＰＴＯの修飾であって、ターゲット核酸上のターゲットヌクレオチド変異に対して相補的な配列を含み、３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部に位置するヌクレオチド変異識別サイトをさらに含む。
【図２】図２は、増幅ブロッカーを使うことによって、ターゲットヌクレオチド変異を含むターゲット核酸配列（すなわち、ターゲット変異を含むテンプレート）を選択的に増幅することを図式的に示す。
【図３】図３は、本発明のＡＢ−ＶＤ  ＰＴＯＣＥによるターゲットヌクレオチド変異の選択的検出を図式的に示す。
【図４】図４は、ターゲット核酸配列上のターゲットヌクレオチド変異の検出のための増幅ブロッカー及びＰＴＯ−ＮＶの協同プロセス（ｃｏ−ｗｏｒｋｉｎｇ  ｐｒｏｃｅｓｓ）を図式的に示す。前記増幅ブロッカー及びＰＴＯ−ＮＶは、ターゲット核酸配列の同一鎖に位置するようにデザインされる。
【図５】図５は、相互作用的二重標識で標識されたＣＴＯを使う本発明のＡＢ−ＶＤ  ＰＴＯＣＥによるターゲットヌクレオチド変異の選択的検出を図式的に示す。
【図６】図６は、シグナリングオリゴヌクレオチド（ＳＯ）を使う本発明のＡＢ−ＶＤ  ＰＴＯＣＥによるターゲットヌクレオチド変異の選択的検出を図式的に示す。
【図７】図７は、ハイブリッド形成オリゴヌクレオチド（ＨＯ）を使う本発明のＡＢ−ＶＤ  ＰＴＯＣＥによるターゲットヌクレオチド変異の選択的検出を図式的に示す。
【図８Ａ】図８Ａは、本発明のＡＢ−ＶＤ  ＰＴＯＣＥによる少数検出限界（ｍｉｎｏｒｉｔｙ  ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ  ｌｉｍｉｔ）の改善結果を示す図である。
【図８Ｂ】図８Ｂは、本発明のＡＢ−ＶＤ  ＰＴＯＣＥによる少数検出限界（ｍｉｎｏｒｉｔｙ  ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ  ｌｉｍｉｔ）の改善結果を示す図である。
【図９Ａ】図９Ａは、ＳＯを使う本発明のＡＢ−ＶＤ  ＰＴＯＣＥによる少数検出限界の改善結果を示す図である。
【図９Ｂ】図９Ｂは、ＳＯを使う本発明のＡＢ−ＶＤ  ＰＴＯＣＥによる少数検出限界の改善結果を示す図である。
【図１０Ａ】図１０Ａは、ＨＯを使う本発明のＡＢ−ＶＤ  ＰＴＯＣＥによる少数検出限界の改善結果を示す図である。
【図１０Ｂ】図１０Ｂは、ＨＯを使う本発明のＡＢ−ＶＤ  ＰＴＯＣＥによる少数検出限界の改善結果を示す図である。
【発明を実施するための形態】
【００２５】
本発明の一様態で、本発明は、下記の工程を含む、増幅ブロッカー（ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ  ｂｌｏｃｋｅｒ）及びＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析を用いてターゲット核酸配列上のターゲットヌクレオチド変異を検出する方法を提供する：
（ａ）前記ターゲット核酸配列を、前記ターゲット核酸の増幅のためのアップストリームプライマー及びダウンストリームプライマーを含むプライマー対、５’ヌクレアーゼ切断に対して耐性を有する前記増幅ブロッカー、及びＰＴＯ−ＮＶ（Ｐｒｏｂｉｎｇ  ａｎｄ  Ｔａｇｇｉｎｇ  Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ  ｆｏｒ  Ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ  Ｖａｒｉａｔｉｏｎ）とハイブリッド形成させる工程であって、前記アップストリームプライマー及びダウンストリームプライマーは、それぞれ前記ターゲット核酸配列に相補的なハイブリッド形成ヌクレオチド配列を含み、前記増幅ブロッカーは、前記ターゲット核酸配列上の前記ターゲットヌクレオチド変異とは異なる非ターゲットヌクレオチド変異に対して相補的な配列を含み、前記ＰＴＯ−ＮＶは、（ｉ）前記ターゲット核酸配列に相補的なハイブリッド形成ヌクレオチド配列を含む３’−ターゲッティング部位、（ｉｉ）前記ターゲット核酸配列に非相補的なヌクレオチド配列を含む５’−タギング部位、及び（ｉｉｉ）前記ターゲット核酸上の前記ターゲットヌクレオチド変異に対して相補的な配列を含み、前記３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部に位置するヌクレオチド変異識別サイト（ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ  ｖａｒｉａｔｉｏｎ  ｄｉｓｃｒｉｍｉｎａｔｉｏｎ  ｓｉｔｅ）を含み、
前記増幅ブロッカーは、前記非ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列にハイブリッド形成され、前記ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列にハイブリッド形成されず、前記ＰＴＯ−ＮＶの３’−ターゲッティング部位は、前記ターゲット核酸配列にハイブリッド形成され、前記ＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位は、前記ターゲット核酸配列にハイブリッド形成されず、
前記アップストリームプライマーは、前記ＰＴＯ−ＮＶのアップストリームに位置し、前記増幅ブロッカーは、前記アップストリームプライマー又はダウンストリームプライマーのダウンストリームに位置し、前記増幅ブロッカー及び前記ＰＴＯ−ＮＶは、前記アップストリームプライマーとダウンストリームプライマーとの間に位置する工程と、
（ｂ）前記ＰＴＯ−ＮＶの切断のための条件下で、５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素に前記工程（ａ）の結果物を接触させる工程であって、前記アップストリームプライマーは、その延長鎖を介して前記５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素による前記ＰＴＯ−ＮＶの切断を誘導し、前記増幅ブロッカーと前記非ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列とのハイブリッド形成は、前記増幅ブロッカーのアップストリームに位置した前記プライマーの延長を抑制し、これにより、前記非ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列の増幅をブロッキングし、
前記ＰＴＯ−ＮＶが、前記ヌクレオチド変異識別サイトに対して相補的な前記ターゲットヌクレオチド変異を有する前記ターゲット核酸配列とハイブリッド形成されれば、前記３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部が、前記ターゲット核酸配列と二本鎖を形成して、第１初期切断サイトから切断を誘導し、第１断片が放出され、前記ＰＴＯ−ＮＶが、前記ヌクレオチド変異識別サイトに非相補的な前記非ターゲットヌクレオチド変異を有する前記ターゲット核酸配列とハイブリッド形成されれば、前記３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部が、前記ターゲット核酸配列と二本鎖を形成せず、前記第１初期切断サイトのダウンストリームに位置する第２初期切断サイトから切断を誘導し、第２断片が放出され、前記第２断片は、追加的な３’末端部位を含み、これは、前記第２断片が、前記第１断片と異なるようにする工程と、
（ｃ）前記ＰＴＯ−ＮＶから放出された前記断片とＣＴＯ（Ｃａｐｔｕｒｉｎｇ  ａｎｄ  Ｔｅｍｐｌａｔｉｎｇ  Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ）とをハイブリッド形成させる工程であって、前記ＣＴＯは、３’→５’方向に（ｉ）前記ＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位又は５’−タギング部位の一部に相補的なヌクレオチド配列を含むキャプチャリング部位、及び（ｉｉ）前記ＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位及び３’−ターゲッティング部位に非相補的なヌクレオチド配列を含むテンプレーティング部位を含み、前記ＰＴＯ−ＮＶから放出された前記第１断片又は前記第２断片は、前記ＣＴＯのキャプチャリング部位とハイブリッド形成される工程と、
（ｄ）前記工程（ｃ）の結果物及び鋳型−依存的核酸ポリメラーゼを用いて延長反応を実施する工程であって、前記第１断片が、前記ＣＴＯのキャプチャリング部位にハイブリッド形成されれば、前記第１断片は延長されて、前記ＣＴＯのテンプレーティング部位と相補的な延長配列を含む延長鎖を形成し、前記第２断片が、前記ＣＴＯのキャプチャリング部位にハイブリッド形成されれば、前記第２断片は延長されず、（ｅ）前記延長鎖の存在を検出する工程であって、前記延長鎖の存在は、前記ターゲットヌクレオチド変異の存在を示す工程。
【００２６】
本発明者らは、少量のターゲット核酸上のターゲットヌクレオチド変異を検出する新規なアプローチを開発するために鋭意研究した。その結果、本発明者らは、本発明者によって開発されたＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析（参考：ＰＣＴ／ＫＲ２０１３／００１４９２）を改善して少量のターゲット核酸上のターゲットヌクレオチド変異を検出するための新規なプロトコルを定立した。前記ＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析は、ヌクレオチド変異を検出するための本発明者によって開発されたＰＴＯＣＥ分析（参考：国際公開第２０１２／０９６５２３号）の特定の具現例である。本発明のプロトコルは、固相反応だけではなく、液相反応にも優れているように適用され、より改善された正確性及び便宜性で少量の複数のヌクレオチド変異を検出することができる。
【００２７】
本発明は、増幅ブロッカーを用いた特定配列の選択的増幅をＰＴＯ−ＮＶを用いるＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析に適用することによって、少量のターゲット核酸上のターゲットヌクレオチド変異を効果的に検出することを目的とする。
【００２８】
本発明は、増幅ブロッカー及びＰＴＯ−ＮＶハイブリッド形成、ＰＴＯ−ＮＶの切断及び延長、ヌクレオチド変異−依存的延長鎖の生成、及び延長鎖の検出の連続した工程を用いる。したがって、本発明は、ＰＴＯの切断及び延長による増幅ブロッカー−関与変異検出（Ａｍｐｌｉｆｉｃａｔｉｏｎ  Ｂｌｏｃｋｅｒ−Ｉｎｖｏｌｖｅｄ  Ｖａｒｉａｔｉｏｎ  Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ  ｂｙ  ＰＴＯ  Ｃｌｅａｖａｇｅ  ａｎｄ  Ｅｘｔｅｎｓｉｏｎ：ＡＢ−ＶＤ  ＰＴＯＣＥ）分析と名づけられる。
【００２９】
臨床サンプルは、通常過量の野生型対立遺伝子内に少量の突然変異対立遺伝子を含んでいる。過量の野生型対立遺伝子は、増幅過程で必須試薬を消耗させ、突然変異対立遺伝子のシグナルを覆う傾向がある。このような問題を解消するために、野生型対立遺伝子の増幅は抑制しながら、突然変異対立遺伝子を選択的に増幅するために多様な方法が提示された。
【００３０】
代表的な例として、ＰＮＡ又はＬＮＡを含むオリゴヌクレオチドを増幅ブロッカーとして用いる方法が報告された（米国出願公開第２００４／００１４１０５号、米国特許第７，８０３，５４３号、米国特許第８，２０６，９２９号、Ｈ．Ｏｒｕｍ．，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  ２１：５３３２−５３３６（１９９３），Ａ．Ｓｅｎｅｓｃａｕら、Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｃｌｉｎｉｃａｌ  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，３３０４−３３０８（２００５），Ｙ．Ｎａｇａｉら、Ｃａｎｃｅｒ  Ｒｅｓ  ６５：７２７６−７２８２（２００５），Ｈｅｎｒｉｋら、Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  ２１：５３３２−５３３６（１９９３）及びＬｕｏら、Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｖｏｌ．３４，Ｎｏ  ２  ｅ１２（２００６））。
【００３１】
一般的に、前記増幅ブロッカーは、同一条件下で増幅ブロッカーに完全に相補的な配列を有するテンプレートにのみハイブリッド形成され、１つのミスマッチのみあっても、テンプレートにハイブリッド形成されないようにデザインされる。プライマーアニーリング又は鎖延長を抑制する増幅ブロッカーとハイブリッド形成されたテンプレートは、増幅されず、増幅ブロッカーとハイブリッド形成されていないテンプレートのみ増幅される。ＰＮＡ及びＬＮＡのような核酸類似体は、１つの塩基差のみで著しいＴｍ差を示すことができるという点から増幅ブロッカーとして有用である。
【００３２】
使われたポリメラーゼがヌクレアーゼ活性を有する場合、増幅ブロッカーは、前記ヌクレアーゼ活性に耐性を有することが要求される。
【００３３】
また、前記方法は、一般的にシグナル発生のための追加的なプローブを必要とする。増幅ブロッカーは、標識を有しうる。
【００３４】
ターゲット核酸配列上のヌクレオチド変異領域が、２つの識別される変異を有する場合、増幅ブロッカーは、関心のある変異を有するターゲット核酸配列は増幅するが、他の変異を有するターゲット核酸配列の増幅は抑制することによって、効果的に関心のある変異を検出させる。望ましくは、増幅ブロッカーは、過量の野生型対立遺伝子及び少量の突然変異対立遺伝子を含む臨床サンプルで少量の突然変異対立遺伝子の検出に非常に有用である。
【００３５】
しかし、野生型対立遺伝子の増幅が、増幅ブロッカーによって完全に防止されることができないということは注目すべきことである。２種の技術、すなわち、増幅ブロッカー及びＰＴＯ−ＮＶを用いたＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析を組み合わせた本発明によれば、従来の方法では検出することができなかった非常に少量の突然変異対立遺伝子の検出が可能である。
【００３６】
本発明のＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析は、特定ヌクレオチド変異に対するＰＴＯの選択性のために、３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部に位置するヌクレオチド変異識別サイトを有するＰＴＯ−ＮＶを使う（図１参照）。前記ＰＴＯ−ＮＶが、ヌクレオチド変異識別サイトに対して相補的なヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列（すなわち、マッチテンプレート）とハイブリッド形成されれば、３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部は、マッチテンプレートと二本鎖を形成する。一方、前記ＰＴＯ−ＮＶが、ヌクレオチド変異識別サイトに対して非相補的なヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列（すなわち、ミスマッチテンプレート）とハイブリッド形成されれば、３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部は、ミスマッチテンプレートと二本鎖を形成しない。
【００３７】
本発明で、ＰＴＯ−ＮＶのヌクレオチド変異識別サイトに対して相補的なヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列は、ＰＴＯ−ＮＶに対する“マッチテンプレート（ｍａｔｃｈ  ｔｅｍｐｌａｔｅ）”とも表現される。ＰＴＯのヌクレオチド変異識別サイトに対して非相補的なヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列は、ＰＴＯ−ＮＶに対する“ミスマッチテンプレート（ｍｉｓｍａｔｃｈ  ｔｅｍｐｌａｔｅ）”とも表現される。
【００３８】
取り立てて表示されない限り、本明細書で使われた用語“マッチテンプレート”及び“ミスマッチテンプレート”は、ＰＴＯ−ＮＶと関連して定義される。
【００３９】
関心のあるヌクレオチド変異でのこのような識別されるハイブリッド形成パターンは、ＰＴＯ−ＮＶの初期切断サイトで差を提供し、これにより、２種のＰＴＯ−ＮＶ断片が生成されて、関心のあるヌクレオチド変異の存否によってシグナルの差が発生するということは注目すべきことである。
【００４０】
第１断片は、ＰＴＯ−ＮＶとマッチテンプレートとの間のハイブリッド形成物の切断によって生成される。第２断片は、ＰＴＯ−ＮＶとミスマッチテンプレートとの間のハイブリッド形成物の切断によって生成される。前記第２断片は、３’末端部位に第１断片よりも追加的なヌクレオチドを含む。
【００４１】
第１断片又は第２断片の生成は、ＣＴＯでの延長反応によって識別して検出されうる。
【００４２】
一般的に、厳格条件でプライマーの３’末端の一部とテンプレートとの間のハイブリッド形成は、プライマー延長に非常に重要である。本発明で、第１断片及び第２断片は、それぞれＣＴＯの同じ位置にハイブリッド形成される。上述したように、第１断片と比較して、第２断片は、追加的な３’末端部位を含む。ハイブリッド形成条件及び第２断片の追加的な３’末端部位の対向側のＣＴＯ配列を調節することによって、前記第１断片のみを延長させることができる。
【００４３】
前記第１断片の延長による延長鎖の生成は、多様な方法によって検出されうる。
【００４４】
図２及び図３は、本発明の一具現例を図式的に示す。図２及び図３は、単に本発明の基本となる実施原理の理解のために、本明細書から提供される。図２は、増幅ブロッカーによって非ターゲット変異を含むテンプレートは、増幅されずに、ターゲット変異を含むテンプレートは、選択的に増幅されることを示す。図３は、延長鎖の選択的形成を示す。実際に延長鎖の選択的形成は、ターゲット変異を含むテンプレートの増幅の間にも起こりうる。実施例３に例示されたように、数回の増幅サイクル以後に検出可能なシグナルが観察される。
【００４５】
図２で、アップストリームプライマー及びダウンストリームプライマーは、ターゲット変異を含むテンプレートを増幅させる。しかし、非ターゲットヌクレオチド変異に相補的な配列を含む増幅ブロッカーのために、非ターゲット変異を含むテンプレートは増幅されない。図３で、ＰＴＯ−ＮＶのヌクレオチド変異識別サイトは、ターゲットヌクレオチド変異に対して相補的な配列を含む。前記ＰＴＯ−ＮＶは、ターゲット変異を含むテンプレート（マッチテンプレート）にハイブリッド形成され、アップストリームプライマーが延長されながら、前記ＰＴＯ−ＮＶは、第１初期切断サイトで切断されて第１断片が形成され、これにより、ＣＴＯ上に延長鎖が形成される。一方、非ターゲット変異を含むテンプレート（ミスマッチテンプレート）にハイブリッド形成されたＰＴＯ−ＮＶは、アップストリームプライマーが延長されながら、第２初期切断サイトで切断され、これにより、ＣＴＯ上に延長鎖が形成されない。
【００４６】
図３で示すように、ＰＴＯ−ＮＶは、それぞれ識別される変異を有する２つのターゲット核酸配列にハイブリッド形成されうる。非ターゲット変異を含む変異の量が関心のあるターゲット変異を含む変異の量よりも顕著に高い場合、ＰＴＯ−ＮＶは、不要に切断されて消耗する可能性がある。ＡＢ−ＶＤＰＴＯＣＥ分析は、増幅ブロッカーを適用してＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析を改善することによって、より改善された正確性及び便宜性で、少量で複数のヌクレオチド変異を検出することができる。
【００４７】
前記ＡＢ−ＶＤＰＴＯＣＥ分析をより詳細に説明すれば、次の通りである：
工程（ａ）：プライマー対、増幅ブロッカー及びＰＴＯ−ＮＶとターゲット核酸配列とのハイブリッド形成
本発明によれば、まず、ターゲット核酸配列を、プライマー対、増幅ブロッカー及びＰＴＯ−ＮＶとハイブリッド形成させる。
【００４８】
本明細書で使われる用語”ターゲット核酸”、“ターゲット核酸配列”、又は“ターゲット配列”は、検出しようとする核酸配列を意味し、ハイブリッド形成、アニーリング、又は増幅条件下でプローブ又はプライマーとアニーリング又はハイブリッド形成される。
【００４９】
本明細書で使われる用語“プライマー（ｐｒｉｍｅｒ）”は、核酸鎖（テンプレート）に相補的なプライマー延長産物の合成が誘導される条件下で、すなわち、ヌクレオチドとＤＮＡポリメラーゼのような重合剤の存在時に、そして、適した温度とｐＨとで合成の開始点として作用することができるオリゴヌクレオチドを意味する。
【００５０】
本明細書で使われる用語“プローブ（ｐｒｏｂｅ）”は、ターゲット核酸配列に実質的に相補的な部位（又は、複数の部位）を含む一本鎖核酸分子を意味する。
【００５１】
望ましくは、プローブ及びプライマーは、一本鎖デオキシリボヌクレオチド分子である。本発明で利用されるプローブ又はプライマーは、天然（ｎａｔｕｒａｌｌｙ  ｏｃｃｕｒｒｉｎｇ）ｄＮＭＰ（すなわち、ｄＡＭＰ、ｄＧＭＰ、ｄＣＭＰ、及びｄＴＭＰ）、修飾ヌクレオチド、又は非天然ヌクレオチドを含みうる。また、プローブ又はプライマーは、リボヌクレオチドを含みうる。
【００５２】
プライマーは、重合剤の存在下で延長産物の合成をプライミングさせることができる程度に十分に長くなければならない。プライマーの正確な長さは、例えば、温度、応用分野及びプライマーのソース（ｓｏｕｒｃｅ）を含んだ複数の要素によって決定される。本明細書で使われる用語“アニーリング”又は“プライミング”は、テンプレート核酸にオリゴデオキシヌクレオチド、又は核酸が並置（ａｐｐｏｓｉｔｉｏｎ）されることを意味し、前記並置は、ポリメラーゼがヌクレオチドを重合させて、テンプレート核酸又はその一部に相補的な核酸分子を形成させる。
【００５３】
本明細書で使われる用語“ハイブリッド形成”は、相補的な一本鎖核酸が二本鎖核酸を形成することを意味する。ハイブリッド形成は、完全に一致するか、一部のミスマッチで実質的に一致する２つの核酸鎖間で起こりうる。ハイブリッド形成のための相補性は、ハイブリッド形成条件、特に、温度によって変わりうる。
【００５４】
ターゲット核酸配列とプライマー対、増幅ブロッカー及びＰＴＯ−ＮＶとのハイブリッド形成は、最適化手続きによって一般的に決定される適したハイブリッド形成条件下で実施される。温度、成分の濃度、ハイブリッド形成及び洗浄回数、バッファ成分、及びこれらのｐＨ及びイオン強度のような条件は、オリゴヌクレオチド（プライマー及びＰＴＯ）の長さと、ＧＣ含量及びターゲットヌクレオチド配列を含んだ多様な因子によって変わりうる。例えば、相対的に短いオリゴヌクレオチドを用いる場合、低い厳格条件を選択することが望ましい。ハイブリッド形成のための詳細な条件は、文献［Ｊｏｓｅｐｈ  Ｓａｍｂｒｏｏｋら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ，Ｎ．Ｙ．（２００１）；及びＭ．Ｌ．Ｍ．Ａｎｄｅｒｓｏｎ，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ，Ｓｐｒｉｎｇｅｒ−Ｖｅｒｌａｇ  Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ  Ｉｎｃ．Ｎ．Ｙ．（１９９９）］で確認することができる。
【００５５】
用語“アニーリング”と“ハイブリッド形成”は、差がなく、本明細書で混用されて使われる。
【００５６】
アップストリームプライマー及びダウンストリームプライマーのそれぞれは、ターゲット核酸配列に相補的なハイブリッド形成ヌクレオチド配列を含む。ＰＴＯ−ＮＶの３’−ターゲッティング部位は、ターゲット核酸配列に相補的なハイブリッド形成ヌクレオチド配列を含む。本明細書で使われる用語“相補的”は、所定のアニーリング条件又は厳格条件下でプライマー又はプローブがターゲット核酸配列に選択的にハイブリッド形成されるほど十分に相補的であることを意味し、用語“実質的に相補的（ｓｕｂｓｔａｎｔｉａｌｌｙ  ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｙ）”及び“完全に相補的（ｐｅｒｆｅｃｔｌｙ  ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｙ）”であることをいずれも包括する意味を有し、望ましくは、完全に相補的であることを意味する。
【００５７】
ＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位は、ターゲット核酸配列に非相補的なヌクレオチド配列を有する。ＣＴＯのテンプレーティング部位は、ＰＴＯの５’−タギング部位及び３’−ターゲッティング部位に非相補的なヌクレオチド配列を有する。本明細書で使われる用語“非相補的（ｎｏｎ−ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｙ）”は、所定のアニーリング条件又は厳格条件下でプライマー又はプローブがターゲット核酸配列に選択的にハイブリッド形成されないほど十分に非相補的であることを意味し、用語“実質的に非常補的（ｓｕｂｓｔａｎｔｉａｌｌｙ  ｎｏｎ−ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｙ）”及び“完全に非相補的（ｐｅｒｆｅｃｔｌｙ  ｎｏｎｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔａｒｙ）”であることをいずれも包括する意味を有し、望ましくは、完全に非相補的であることを意味する。
【００５８】
例えば、ＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位と関連して使われる用語“非相補的”は、所定のアニーリング条件又は厳格条件下で前記５’−タギング部位がターゲット核酸配列に選択的にハイブリッド形成されないほど十分に非相補的であることを意味し、用語“実質的に非相補的”及び“完全に非相補的”であることをいずれも包括する意味を有し、望ましくは、完全に非相補的であることを意味する。
【００５９】
増幅ブロッカーは、ターゲット核酸配列上のターゲットヌクレオチド変異と他の非ターゲットヌクレオチド変異に対して相補的な配列を含む。前記増幅ブロッカーは、非ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列にハイブリッド形成され、ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列に混成されず、これにより、増幅ブロッカーは、ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列を選択的に増幅させる。
【００６０】
前記増幅ブロッカーは、アップストリームプライマー又はダウンストリームプライマーのダウンストリームに位置し、前記増幅ブロッカー及びＰＴＯ−ＮＶは、アップストリームプライマーとダウンストリームプライマーとの間に位置する。
【００６１】
ターゲット核酸配列上の変異発生領域（ｖａｒｉａｔｉｏｎ−ｏｃｃｕｒｒｉｎｇ  ｒｅｇｉｏｎ）に存在するヌクレオチド変異と関連して、本明細書で使われる用語“ターゲットヌクレオチド変異（ｔａｒｇｅｔ  ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ  ｖａｒｉａｔｉｏｎ）”は、本発明によって確認されるヌクレオチド変異を意味する。本発明の方法で、ＰＴＯ−ＮＶのヌクレオチド変異識別サイトは、ターゲット核酸上のターゲットヌクレオチド変異に対して相補的な配列を含む。
【００６２】
本明細書で使われる用語“ターゲットヌクレオチド変異を含むテンプレート（ｔａｒｇｅｔ  ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ  ｖａｒｉａｔｉｏｎ  ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ  ｔｅｍｐｌａｔｅ）”又は“ターゲット変異を含むテンプレート（ｔａｒｇｅｔ  ｖａｒｉａｔｉｏｎ  ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ  ｔｅｍｐｌａｔｅ）”は、本発明によって確認されるヌクレオチド変異を含むターゲット核酸分子を意味する。
【００６３】
ターゲット核酸配列上の変異発生領域に存在するヌクレオチド変異と関連して、本明細書で使われる用語“非ターゲットヌクレオチド変異（ｎｏｎ−ｔａｒｇｅｔ  ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ  ｖａｒｉａｔｉｏｎ）”は、ターゲットヌクレオチド変異とは異なるヌクレオチド変異を意味する。
【００６４】
本明細書で使われる用語“非ターゲットヌクレオチド変異を含むテンプレート（ｎｏｎ−ｔａｒｇｅｔ  ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ  ｖａｒｉａｔｉｏｎ  ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ  ｔｅｍｐｌａｔｅ）”又は“非ターゲット変異を含むテンプレート（ｎｏｎ−ｔａｒｇｅｔ  ｖａｒｉａｔｉｏｎ  ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ  ｔｅｍｐｌａｔｅ）”は、ターゲットヌクレオチド変異とは異なるヌクレオチド変異を含むターゲット核酸分子を意味する。
【００６５】
例えば、本発明の方法によって過量の野生型対立遺伝子で少量の突然変異対立遺伝子を検出するに当って、前記野生型対立遺伝子は、非ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸であり、前記突然変異対立遺伝子は、ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸である。用語“ヌクレオチド変異（ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ  ｖａｒｉａｔｉｏｎ）”は、核酸配列の特定位置での野生型及びあらゆる突然変異型を含む。
【００６６】
本発明の方法で、増幅ブロッカーは、非ターゲットヌクレオチド変異に対して相補的な配列を含む。変異発生領域に存在する前記非ターゲットヌクレオチド変異は、１つ又はそれ以上であり得る。このような場合、前記増幅ブロッカーは、非ターゲットヌクレオチド変異に対して相補的な配列を含み、前記非ターゲットヌクレオチド変異の増幅を抑制させる。複数の非ターゲットヌクレオチド変異の増幅を抑制するために、複数の増幅ブロッカーを利用できる。
【００６７】
本明細書で、用語“ターゲットヌクレオチド変異”及び“非ターゲットヌクレオチド変異”は、ＰＴＯ−ＮＶ及び増幅ブロッカーとハイブリッド形成される核酸分子を明確かつ簡潔に表示するために使われる。
【００６８】
増幅が抑制されるように意図された非ターゲットヌクレオチド変異に対して相補的な配列を含む増幅ブロッカーは、非ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列にハイブリッド形成されて増幅ブロッカーのアップストリームに位置したプライマーの延長を抑制し、これにより、ターゲット核酸配列の増幅をブロッキングする。
【００６９】
同じ条件下で、非ターゲットヌクレオチド変異に対して相補的な配列を含む増幅ブロッカーは、ミスマッチ配列の存在のために、ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列にはハイブリッド形成されず、これにより、ターゲット核酸配列の増幅はブロッキングしない。
【００７０】
一具現例によれば、野生型ＤＮＡに相補的な配列を含む増幅ブロッカーは、野生型ＤＮＡにハイブリッド形成されてプライマーの延長を抑制し、これにより、野生型ＤＮＡの増幅を抑制する。野生型ＤＮＡに相補的な配列を含む増幅ブロッカーは、突然変異ＤＮＡにハイブリッド形成されず、突然変異ＤＮＡは増幅される。
【００７１】
本発明は、５’ヌクレアーゼ活性を用いるので、前記増幅ブロッカーは、増幅ブロッカーの切断を防止するために、５’ヌクレアーゼ活性に耐性を有する必要がある。特定の具現例で、５’ヌクレアーゼ活性によって攻撃される増幅ブロッカーの少なくとも１つのサイトは、５’ヌクレアーゼ活性に耐性を有するようにデザインされる。
【００７２】
特定の具現例で、前記増幅ブロッカーは、５’ヌクレアーゼ切断に対して耐性を有する。特定の具現例で、増幅ブロッカーは、核酸配列にハイブリッド形成されるオリゴヌクレオチドである。
【００７３】
一具現例で、前記増幅ブロッカーは、天然（ｎａｔｕｒａｌ）ヌクレオシド／ヌクレオチド、ヌクレオシド／ヌクレオチド類似体又はこれらの組合せを含む。
【００７４】
一具現例で、前記増幅ブロッカーは、副溝（ｍｉｎｏｒ  ｇｒｏｏｖｅ）結合物質のように５’ヌクレアーゼに耐性のある化合物（ｃｏｍｐｏｕｎｄ）を有するオリゴヌクレオチドである。
【００７５】
一具現例によれば、前記増幅ブロッカーは、５’ヌクレアーゼ活性に耐性のあるバックボーンを有するヌクレオシド／ヌクレオチドを含む。
【００７６】
５’ヌクレアーゼ活性に耐性のあるバックボーンを有するヌクレオシド／ヌクレオチドは、当業者に知られている如何なるものも含む。例えば、前記ヌクレオシド／ヌクレオチドは、多様なホスホロチオエート結合、ホスホネート結合、ホスホロアミダート結合、及び２’−カーボーハイドレート修飾を含む。より望ましい一具現例によれば、５’ヌクレアーゼに耐性のあるバックボーンを有するヌクレオチドは、ホスホロチオエート結合、アルキルホスホトリエステル結合、アリールホスホトリエステル結合、アルキルホスホネート結合、アリールホスホネート結合、ハイドロゲンホスホネート結合、アルキルホスホロアミダート結合、アリールホスホロアミダート結合、ホスホロセレネート結合、２’−Ｏ−アミノプロピル修飾、２’−Ｏ−アルキル修飾、２’−Ｏ−アリル修飾、２’−Ｏ−ブチル修飾、α−アノマーオリゴデオキシヌクレオチド、及び１−（４’−チオ−β−Ｄ−リボフラノシル）修飾を含む。
【００７７】
一具現例によれば、前記増幅ブロッカーは、ペプチド核酸（ＰＮＡ）、ロック核酸（ＬＮＡ）、モルホリノ（ｍｏｒｐｈｏｌｉｎｏ）、グリコール核酸（ＧＮＡ）、トレオース核酸（ＴＮＡ）、ブリッジ核酸（ＢＮＡ）、Ｎ３’−Ｐ５’ホスホルアミダート（ＮＰ）オリゴマー、小溝結合物質が連結されたオリゴヌクレオチド（ＭＧＢ−ｌｉｎｋｅｄ  ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ）、ホスホロチオエート（ＰＳ）オリゴマー、Ｃ１〜Ｃ４アルキルホスホネートオリゴマー、ホスホルアミダート、β−ホスホジエステルオリゴヌクレオチド、α−ホスホジエステルオリゴヌクレオチド、又はこれらの組合せを含む。
【００７８】
特定の具現例で、前記増幅ブロッカーは、５’ヌクレアーゼに耐性を有し、１つのミスマッチによっても、著しいＴｍ値の変化を示し、その代表的な例は、ＰＮＡ又はＬＮＡを含む増幅ブロッカーである。
【００７９】
前記増幅ブロッカーは、如何なる長さも有しうる。例えば、前記増幅ブロッカーは、５〜１００ヌクレオチド、５〜８０ヌクレオチド、５〜５０ヌクレオチド、５〜４０ヌクレオチド、５〜３０ヌクレオチド、１０〜１００ヌクレオチド、１０〜８０ヌクレオチド、１０〜５０ヌクレオチド、１０〜４０ヌクレオチド、１０〜３０ヌクレオチド、１５〜１００ヌクレオチド、１５〜８０ヌクレオチド、１５〜５０ヌクレオチド、１５〜４０ヌクレオチド、１５〜３０ヌクレオチド、２０〜１００ヌクレオチド、２０〜８０ヌクレオチド、２０〜５０ヌクレオチド、２０〜４０ヌクレオチド、又は２０〜３０ヌクレオチドの長さを有しうる。
【００８０】
一具現例によれば、前記ブロッカーの３’末端は、その延長が防止されるように“ブロッキング”される。
【００８１】
ターゲット核酸配列上のヌクレオチド変異領域の対向側に位置する増幅ブロッカーのヌクレオチド変異識別サイト（すなわち、非ターゲットヌクレオチド変異に相補的な領域）は、前記増幅ブロッカーが非ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列の増幅を抑制し、ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列の増幅を抑制しない限り、増幅ブロッカーの如何なるサイトにも位置しうる。
【００８２】
特定の具現例で、増幅ブロッカーのヌクレオチド変異識別サイトは、増幅ブロッカーの５’末端部位、中間部位、又は３’末端部位に位置しうる。
【００８３】
前記増幅ブロッカーは、アップストリームプライマー又はダウンストリームプライマーのダウンストリームに位置し、前記アップストリームプライマーとダウンストリームプライマーとの間に位置する。
【００８４】
前記増幅ブロッカーの５’末端と増幅ブロッカーのアップストリームに位置したプライマーの３’末端との距離は、少なくとも３００、２００、１００、５０、３０、２０、１０、５、２、又は１ヌクレオチドであり得る。
【００８５】
特定の具現例で、本発明は、非対称ＰＣＲ（Ｐｉｅｒｃｅ  ＫＥら、Ｍｅｔｈｏｄｓ  Ｍｏｌ  Ｍｅｄ．Ｍｅｔｈｏｄｓ  ｉｎ  Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｍｅｄｉｃｉｎｅ  １３２：６５−８５（２００７））によって実施される。過量のプライマー又は限定されたプライマーが、前記増幅ブロッカーのアップストリームに位置しうる。望ましくは、過量のプライマーが、前記増幅ブロッカーのアップストリームに位置しうる。
【００８６】
前記ＰＴＯ−ＮＶ及び増幅ブロッカーは、ターゲット核酸配列の同一鎖又は他の鎖に位置するようにデザインされうる。
【００８７】
一具現例によれば、本発明によって検出されるヌクレオチド変異は、置換変異、欠損変異又は挿入変異である。
【００８８】
一具現例によれば、本発明によって検出されるヌクレオチド変異（ら）を有するターゲット核酸配列は、次のような遺伝子を含む：Ｋ−ｒａｓ、Ｈ−ｒａｓ、Ｎ−ｒａｓ、ｐ５３（ＴＰ５３）、ＣＤＫＮ２Ａ（ｐ１６）、ＰＩＣ３Ｋ、ＰＴＥＮ、ＲＢ１、上皮成長因子受容体遺伝子、ＢＲＡＦ、ＢＲＣＡ１、ＢＲＣＡ２、ＳＴＫ１１、及びＶＨＬ；ＮＦ１、ＦＢＮ１、ＭＳＨ２、常染色体優性疾病−関連遺伝子（ａｕｔｏｓｏｍａｌ  ｄｏｍｉｎａｎｔ  ｄｉｓｏｒｄｅｒ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ  ｇｅｎｅ；ＭＬＨ１）；ＣＦＴＲ、ヘモグロビンβ遺伝子（Ｈｅｍｏｇｌｏｂｉｎ  ｂｅｔａ  ｇｅｎｅ）、ＨＥＸＡ、ＳＭＮ１、常染色体劣性疾病−関連遺伝子（ａｕｔｏｓｏｍａｌ  ｒｅｃｅｓｓｉｖｅ  ｄｉｓｏｒｄｅｒ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ  ｇｅｎｅ；ＶＡＰＢ）；Ｘ−連関性優性疾病−関連遺伝子（Ｘ−ｌｉｎｋｅｄ  ｄｏｍｉｎａｎｔ  ｄｉｓｏｒｄｅｒ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ  ｇｅｎｅ；ＰＨＥＸ）；ＶＩＩＩ因子（ｆａｃｔｏｒ  ＶＩＩＩ）、ジストロフィン遺伝子（ｄｙｓｔｒｏｐｈｉｎ  ｇｅｎｅ）、ＣＮＧＡ３、ＣＮＧＢ３、ＧＮＡＴ２、男性ホルモン受容体（ａｎｄｒｏｇｅｎ  ｒｅｃｅｐｔｏｒ；ＡＲ）遺伝子（Ｘ−連関性劣性疾病−関連遺伝子；Ｘ−ｌｉｎｋｅｄ  ｒｅｃｅｓｓｉｖｅ  ｄｉｓｏｒｄｅｒ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ  ｇｅｎｅ）；Ｙ−連関性疾病−関連遺伝子（Ｙ−ｌｉｎｋｅｄ  ｄｉｓｏｒｄｅｒ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ  ｇｅｎｅ；ＵＳＰ９Ｙ）；ＭＴ−ＮＤ１、ＭＴ−ＮＤ４、ＭＴ−ＮＤ４Ｌ、ミトコンドリア疾病−関連遺伝子（ｍｉｔｏｃｈｏｎｄｒｉａｌ  ｄｉｓｅａｓｅ−ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ  ｇｅｎｅ；ＭＴ−ＮＤ６）；肺癌治療のための薬物（ｇｅｆｉｔｎｉｂ）と関連してＥＧＦＲを暗号化している上皮成長因子受容体（ＥＧＦＲ）遺伝子、卵巣癌治療のための薬物と関連してＭＲＰを暗号化しているマルチ薬物耐性−関連タンパク質（ＭＲＰ）遺伝子、及び卵巣癌治療のための薬物と関連して肺耐性タンパク質（ＬＲＰ）遺伝子；及びｃａｇＰＡＩ、ｖａｃＡ、ｉｃｅＡ、ｂａｂＡ、ｅｒｐ、ｓｐｖＣ、ｓｐｕＢ、ｃｎｆ１、ｃｎｆ２、ｅａｅＡ、ｅａｇｇ、ｅｉｎｖ、ｓｔｘ１、ｓｔｘ２、及びｖｔ２ｅなど。
【００８９】
本明細書で使われる用語“ＰＴＯ−ＮＶ”は、（ｉ）プローブの役割を行う３’−ターゲッティング部位、（ｉｉ）ターゲット核酸配列に非相補的なヌクレオチド配列を有する５’−タッキング部位、及び（ｉｉｉ）ターゲット核酸上のターゲットヌクレオチド変異に対して相補的な配列を含み、３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部に位置するヌクレオチド変異識別サイトを含むオリゴヌクレオチドを意味する。前記５’−タギング部位は、ターゲット核酸配列とハイブリッド形成された後、ＰＴＯ−ＮＶから核酸切断（ｎｕｃｌｅｏｌｙｔｉｃａｌｌｙ）方式で放出される。前記ＰＴＯ−ＮＶで５’−タギング部位及び３’−ターゲッティング部位は、５’→３’方向に位置しなければならない。前記ＰＴＯ−ＮＶは、図１及び図３に図式的に例示されている。前記ＰＴＯ−ＮＶは、ヌクレオチド変異の検出のためのＰＴＯの１つの適用形態として思われ、３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部にヌクレオチド変異識別サイトを導入することで製作される。
【００９０】
前記ＰＴＯ−ＮＶは、ヌクレオチド変異に対して相補的な配列を含むヌクレオチド変異識別サイトを含み、前記サイトは、３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部に位置する。
【００９１】
前記ＰＴＯ−ＮＶが、変異識別サイトに対して相補的なヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列とハイブリッド形成される場合、３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部は、ターゲット核酸配列と二本鎖を形成する。前記ＰＴＯ−ＮＶが、変異識別サイトに対して非相補的なヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列とハイブリッド形成される場合、３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部は、ターゲット核酸配列と二本鎖を形成しない。関心のあるヌクレオチド変異でのこのような識別されるハイブリッド形成パターンは、ＰＴＯ−ＮＶの切断サイトでの差を提供し、これにより、２種のＰＴＯ−ＮＶ断片が生成されて、関心のあるヌクレオチド変異の存否によってシグナルの差が発生する。また、前記ＰＴＯ−ＮＶの３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部は、変異識別サイトに対して非相補的なヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列とハイブリッド形成される場合に、一本鎖を形成する（ｓｉｎｇｌｅ  ｓｔｒａｎｄ−ｆｏｒｍｉｎｇ）前記ＰＴＯ−ＮＶの３’−ターゲッティング部位の５’末端部分であるとも表現することができる。
【００９２】
前記ＰＴＯ−ＮＶの３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部に位置したヌクレオチド変異識別サイトは、ヌクレオチド変異に対して相補的な配列を含む。
【００９３】
一具現例によれば、前記ヌクレオチド変異識別サイトは、ＰＴＯ−ＮＶの３’−ターゲッティング部位の５’末端から１０ヌクレオチド、より望ましくは、８ヌクレオチド、さらに望ましくは、６ヌクレオチド、最も望ましくは、４ヌクレオチド、３ヌクレオチド、２ヌクレオチド、１ヌクレオチド、又は０ヌクレオチド以内に離隔して位置する。望ましくは、ヌクレオチド変異識別サイトは、ＰＴＯ−ＮＶの３’−ターゲッティング部位の５’末端に位置する。
【００９４】
ヌクレオチド変異識別サイトの位置は、検出される配列、ヌクレアーゼの種類及び反応条件を考慮して決定されうる。
【００９５】
プローブのヌクレオチド変異識別サイト又はターゲット配列上のヌクレオチド変異サイトと関連して、本明細書で使われる用語“サイト（ｓｉｔｅ）”は、単一ヌクレオチドだけではなく、多数のヌクレオチドも含む意味として使われる。
【００９６】
望ましくは、前記工程（ａ）でハイブリッド形成は、３’−ターゲッティング部位はターゲット核酸配列とハイブリッド形成され、５’−タギング部位はターゲット核酸配列とハイブリッド形成されない厳格条件下で実施される。
【００９７】
前記ＰＴＯ−ＮＶは、如何なる特定の長さを有することを要求しない。例えば、ＰＴＯ−ＮＶの長さは、１５〜１５０ヌクレオチド、１５〜１００ヌクレオチド、１５〜８０ヌクレオチド、１５〜６０ヌクレオチド、１５〜４０ヌクレオチド、２０〜１５０ヌクレオチド、２０〜１００ヌクレオチド、２０〜８０ヌクレオチド、２０〜６０ヌクレオチド、２０〜５０ヌクレオチド、３０〜１５０ヌクレオチド、３０〜１００ヌクレオチド、３０〜８０ヌクレオチド、３０〜６０ヌクレオチド、３０〜５０ヌクレオチド、３５〜１００ヌクレオチド、３５〜８０ヌクレオチド、３５〜６０ヌクレオチド、又は３５〜５０ヌクレオチドの長さを有しうる。前記ＰＴＯ−ＮＶの３’−ターゲッティング部位は、それがターゲット核酸配列と特異的にハイブリッド形成される限り、如何なる長さも可能である。例えば、ＰＴＯ−ＮＶの３’−ターゲッティング部位は、１０〜１００ヌクレオチド、１０〜８０ヌクレオチド、１０〜５０ヌクレオチド、１０〜４０ヌクレオチド、１０〜３０ヌクレオチド、１５〜１００ヌクレオチド、１５〜８０ヌクレオチド、１５〜５０ヌクレオチド、１５〜４０ヌクレオチド、１５〜３０ヌクレオチド、２０〜１００ヌクレオチド、２０〜８０ヌクレオチド、２０〜５０ヌクレオチド、２０〜４０ヌクレオチド、又は２０〜３０ヌクレオチドの長さを有しうる。前記５’−タギング部位は、それがＣＴＯのキャプチャリング（ｃａｐｔｕｒｉｎｇ）部位に特異的にハイブリッド形成されて延長される限り、如何なる長さも可能である。例えば、前記ＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位は、５〜５０ヌクレオチド、５〜４０ヌクレオチド、５〜３０ヌクレオチド、５〜２０ヌクレオチド、１０〜５０ヌクレオチド、１０〜４０ヌクレオチド、１０〜３０ヌクレオチド、１０〜２０ヌクレオチド、１５〜５０ヌクレオチド、１５〜４０ヌクレオチド、１５〜３０ヌクレオチド、又は１５〜２０ヌクレオチドの長さを有しうる。
【００９８】
一具現例によれば、前記ＰＴＯ−ＮＶは、その延長が防止されるように３’末端がブロッキングされる。ブロッキングは、従来の方法によって達成されうる。例えば、ブロッキングは、最後のヌクレオチドの３’−ヒドロキシル基に、ビオチン、標識、ホスフェート基、アルキル基、非ヌクレオチドリンカー、ホスホロチオエート、又はアルカンジオールのような化学的部分（ｍｏｉｅｔｙ）を付け加えて実施することができる。択一的に、ブロッキングは、最後のヌクレオチドの３’−ヒドロキシル基を除去するか、又はデオキシヌクレオチドのように３’−ヒドロキシル基のないヌクレオチドを用いて実施することができる。
【００９９】
択一的に、前記ＰＴＯが、ヘアピン構造を有するようにデザインすることができる。
【０１００】
前記アップストリームプライマーは、前記ＰＴＯ−ＮＶのアップストリームに位置する。前記アップストリームプライマーは、その延長鎖を介して５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素によるＰＴＯ−ＮＶの切断を誘導する。
【０１０１】
本発明の方法で、用語“アップストリームプライマー”は、ＰＴＯ−ＮＶの位置と関連して決定され、したがって、前記アップストリームプライマーは、ＰＴＯ−ＮＶのアップストリームに位置する。
【０１０２】
一具現例によれば、前記アップストリームプライマー、ダウンストリームプライマー及び／又はＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位は、本発明者によって開発された二重プライミングオリゴヌクレオチド（Ｄｕａｌ  Ｐｒｉｍｉｎｇ  Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ；ＤＰＯ）構造を有する。前記ＤＰＯ構造を有するオリゴヌクレオチドは、従来のプライマー及びプローブに比べて、非常に改善されたターゲット特異性を示す（参照：国際公開第２００６／０９５９８１号；Ｃｈｕｎら、Ｄｕａｌ  ｐｒｉｍｉｎｇ  ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ  ｓｙｓｔｅｍ  ｆｏｒ  ｔｈｅ  ｍｕｌｔｉｐｌｅｘ  ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ  ｏｆ  ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ  ｖｉｒｕｓｅｓ  ａｎｄ  ＳＮＰ  ｇｅｎｏｔｙｐｉｎｇ  ｏｆ  ＣＹＰ２Ｃ１９  ｇｅｎｅ，Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ，３５：６ｅ４０（２００７））。
【０１０３】
一具現例によれば、前記ＰＴＯ−ＮＶの３’−ターゲッティング部位は、本発明者によって開発された修飾二重特異性オリゴヌクレオチド（ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｄｕａｌ  Ｓｐｅｃｉｆｉｃｉｔｙ  Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ；ｍＤＳＯ）構造を有する。前記修飾二重特異性オリゴヌクレオチド（ｍＤＳＯ）構造は、従来のプローブに比べて、非常に改善されたターゲット特異性を示す（参照：国際公開第２０１１／０２８０４１号）。
【０１０４】
前記ＰＴＯ−ＮＶ及び増幅ブロッカーは、ターゲット核酸配列の同一鎖又は他の鎖に位置するようにデザインすることができる。
【０１０５】
図４で、ＰＴＯ−ＮＶ及び増幅ブロッカーは、ターゲット核酸配列の同一鎖に位置する。前記ＰＴＯ−ＮＶのヌクレオチド変異識別サイトは、ターゲット核酸上のターゲットヌクレオチド変異に対して相補的な配列を含み、前記増幅ブロッカーは、ターゲット核酸上の非ターゲットヌクレオチド変異に対して相補的な配列を含む。前記ＰＴＯ−ＮＶは、ターゲットヌクレオチド変異を含むテンプレートにハイブリッド形成され、アップストリームプライマーが延長されながら、前記ＰＴＯ−ＮＶが切断され、ＣＴＯ上で延長鎖を形成する。一方、前記増幅ブロッカーは、非ターゲットヌクレオチド変異を含むテンプレートにハイブリッド形成され、アップストリームプライマーの延長が増幅ブロッカーによって防止される。また、非ターゲットヌクレオチド変異を含むテンプレート上の増幅ブロッカーの存在は、ＰＴＯ−ＮＶのハイブリッド形成を抑制してＰＴＯ−ＮＶが非ターゲットヌクレオチド変異を含むテンプレートにハイブリッド形成されて、不要に切断されることを防止する。反応条件及び増幅ブロッカーの配列を調整することによって、増幅ブロッカーと野生型ＤＮＡとの間のハイブリッド形成が、ＰＴＯ−ＮＶと野生型ＤＮＡとの間のハイブリッド形成よりもさらに頻繁に起こるようにする。
【０１０６】
択一的に、前記ＰＴＯ−ＮＶ及び前記増幅ブロッカーは、ターゲット核酸配列の互いに異なる鎖に位置するようにデザインすることができる。
【０１０７】
工程（ｂ）：ＰＴＯ−ＮＶから断片の放出
引き続き、ＰＴＯ−ＮＶの切断のための条件下で前記工程（ａ）の結果物を５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素に接触させる。アップストリームプライマーは、その延長を介して５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素によるＰＴＯ−ＮＶの切断を誘導する。
【０１０８】
本明細書で使われる用語“ＰＴＯ−ＮＶの切断のための条件”は、５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素によってターゲット核酸配列にハイブリッド形成されたＰＴＯ−ＮＶが切断されるのに十分な条件、例えば、温度、ｐＨ、イオン強度、バッファ、オリゴヌクレオチドの長さ及び配列、そして、酵素を意味する。例えば、５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素としてＴａｑ  ＤＮＡポリメラーゼが利用される場合、ＰＴＯの切断のための条件は、Ｔｒｉｓ−ＨＣｌバッファ、ＫＣｌ、ＭｇＣｌ２、及び温度を含む。
【０１０９】
非ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列と増幅ブロッカーとのハイブリッド形成は、前記増幅ブロッカーのアップストリームに位置したプライマーの延長を抑制し、これにより、非ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列の増幅がブロッキングされる。
【０１１０】
前記ＰＴＯ−ＮＶが、変異識別サイトに対して相補的なターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列（すなわち、マッチテンプレート）とハイブリッド形成され、前記３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部が、ターゲット核酸配列と二本鎖を形成して第１初期切断サイトから切断を誘導すれば、第１断片が放出される。
【０１１１】
前記ＰＴＯ−ＮＶが、前記変異識別サイトに対して非相補的な非ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列（すなわち、ミスマッチテンプレート）とハイブリッド形成され、前記３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部が、前記ターゲット核酸配列と二本鎖を形成せず、前記第１初期切断サイトのダウンストリームに位置する第２初期切断サイトから切断を誘導すれば、第２断片が放出され、前記第２断片は、追加的な３’末端部位を含み、これは、前記第２断片が、前記第１断片と異なるようにする。
【０１１２】
サンプル内にターゲット核酸配列が存在しない場合、ＰＴＯ−ＮＶの切断は発生しない。
【０１１３】
このように、切断サイト及び生成されたＰＴＯ−ＮＶ断片の種類の差は、ターゲット核酸配列上の関心のあるヌクレオチド変異の存否によって異なる延長パターンを示し、ターゲット核酸配列上のヌクレオチド変異を識別して検出可能にする。
【０１１４】
前記ＰＴＯ−ＮＶの初期切断サイトは、５’ヌクレアーゼの種類、アップストリームプライマーのハイブリッド形成サイト及び切断条件によって影響を受ける。
【０１１５】
前記アップストリームプライマーの延長と共に５’ヌクレアーゼ活性を有する鋳型依存的ポリメラーゼによる初期切断サイトは、一般的に５’→３’方向に一本鎖及び二本鎖を含む構造で二本鎖の初期ヌクレオチド（すなわち、分岐サイト（ｂｉｆｕｒｃａｔｉｏｎ  ｓｉｔｅ））に、又は前記初期ヌクレオチドから１〜２ヌクレオチド離隔して位置する。前記切断反応によって、５’−タギング部位及び３’−ターゲッティング部位の一部を含む断片が生成される。
【０１１６】
ＰＴＯ−ＮＶと関連して使われる用語“第１初期切断サイト（ａ  ｆｉｒｓｔ  ｉｎｉｔｉａｌ  ｃｌｅａｖａｇｅ  ｓｉｔｅ）”は、変異識別サイトに対して相補的なヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列にＰＴＯ−ＮＶがハイブリッド形成される場合、最初に切断されるＰＴＯ−ＮＶの切断サイトを意味する。ＰＴＯ−ＮＶと関連して使われる用語“第２初期切断サイト（ａ  ｓｅｃｏｎｄ  ｉｎｉｔｉａｌ  ｃｌｅａｖａｇｅ  ｓｉｔｅ）”は、変異識別サイトに対して非相補的なヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列にＰＴＯ−ＮＶがハイブリッド形成される場合、最初に切断されるＰＴＯ−ＮＶの切断サイトを意味する。
【０１１７】
本発明で使われる用語“第１断片（ａ  ｆｉｒｓｔ  ｆｒａｇｍｅｎｔ）”は、第１初期切断サイトで切断によって生成された断片を意味する。“第１断片”は、“第１分節（ａ  ｆｉｒｓｔ  ｓｅｇｍｅｎｔ）”及び“ＰＴＯ−ＮＶ第１断片（ａＰＴＯ−ＮＶ  ｆｉｒｓｔ  ｆｒａｇｍｅｎｔ）”と相互交換的に使われる。用語“第２断片（ａ  ｓｅｃｏｎｄ  ｆｒａｇｍｅｎｔ）”は、第２初期切断サイトで切断によって生成された断片を意味する。“第２断片”は、“第２分節（ａ  ｓｅｃｏｎｄ  ｓｅｇｍｅｎｔ）”及び“ＰＴＯ−ＮＶ第２断片（ａＰＴＯ−ＮＶ  ｓｅｃｏｎｄ  ｆｒａｇｍｅｎｔ）”と相互交換的に使われる。
【０１１８】
特に、前記第１断片及び第２断片は、それぞれ５’−タギング部位又は５’−タギング部位の一部を含む。
【０１１９】
前記切断は、利用される切断方法によって前記第１初期切断サイト（又は、第２初期切断サイト）の切断以後にも連続して起こりうる。例えば、アップストリームプライマーの延長と共に５’ヌクレアーゼ切断反応を用いる場合、初期切断サイト及びこれに連続した配列が切断される。
【０１２０】
一具現例によれば、アップストリームプライマー延長に依存的な初期切断サイトは、二本鎖の初期ヌクレオチド（すなわち、分岐サイト）に５’→３’方向に位置しうる。
【０１２１】
本発明の一例として、図３から見るように、前記ヌクレオチド変異識別サイトは、ＰＴＯ−ＮＶの３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部の５’末端に位置する。このような場合に、第１初期切断サイトは、５’→３’方向に３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部にすぐ隣接するように位置する。すなわち、前記第１初期切断サイトは、３’方向にヌクレオチド変異識別サイトにすぐ隣接するように位置する。第２初期切断サイトは、一般的に前記ヌクレオチド変異識別サイトから３’方向に１ヌクレオチド離隔して位置する。
【０１２２】
択一的に、前記ヌクレオチド変異識別サイトは、３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部の５’末端から１ヌクレオチド離隔して位置しうる。このような場合に、第１初期切断サイトは、５’方向に前記ヌクレオチド変異識別サイトにすぐ隣接するように位置する。第２初期切断サイトは、一般的に前記ヌクレオチド変異識別サイトから３’方向に１ヌクレオチド離隔して位置する。
【０１２３】
一具現例によれば、前記ＰＴＯ−ＮＶは、５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素による切断に対して耐性を有する１つのブロッカーを含むブロッカー部位を有し、前記ブロッカー部位は、初期切断サイト及び／又は連続した切断の調節に利用される。
【０１２４】
一具現例によれば、前記ＰＴＯ−ＮＶは、ブロッカーとして５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素による切断に対して耐性を有する少なくとも１つのヌクレオチドを含むブロッカー部位を有する。
【０１２５】
例えば、前記ＰＴＯ−ＮＶのハイブリッド形成部位（３’−ターゲッティング部位）と非ハイブリッド形成部位（５’−タギング部位）との間のジャンクション位置（ｊｕｎｃｔｉｏｎ  ｓｉｔｅ）で切断を誘導するために、ＰＴＯ−ＮＶの３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部は、ブロッカーでブロッキングされうる。
【０１２６】
前記ブロッカー部位に含まれるブロッカーの個数は、制限されず、望ましくは、１〜１０ブロッカー、より望ましくは、２〜１０ブロッカー、さらに望ましくは、３〜８ブロッカー、最も望ましくは、３〜６ブロッカーである。ＰＴＯに存在するブロッカーは、連続的又は不連続的な方式で存在し、望ましくは、連続した方式である。ブロッカーとして５’ヌクレアーゼ活性に対して耐性を有するバックボーンを含むヌクレオチドは、当業界に知られた如何なるものも含む。例えば、前記ヌクレオチドは、多様なホスホロチオエート結合、ホスホネート結合、ホスホロアミダート結合、及び２’−カーボーハイドレート修飾を含む。より望ましい一具現例によれば、５’ヌクレアーゼに対して耐性を有するバックボーンを含むヌクレオチドは、ホスホロチオエート結合、アルキルホスホトリエステル結合、アリールホスホトリエステル結合、アルキルホスホネート結合、アリールホスホネート結合、ハイドロゲンホスホネート結合、アルキルホスホロアミダート結合、アリールホスホロアミダート結合、ホスホロセレネート結合、２’−Ｏ−アミノプロピル修飾、２’−Ｏ−アルキル修飾、２’−Ｏ−アリル修飾、２’−Ｏ−ブチル修飾、α−アノマーオリゴデオキシヌクレオチド、及び１−（４’−チオ−β−Ｄ−リボフラノシル）修飾を含む。
【０１２７】
一具現例によれば、ブロッカーとしてヌクレオチドは、ＬＮＡ（Ｌｏｃｋｅｄ  Ｎｕｌｃｅｉｃ  Ａｃｉｄ）を含む。
【０１２８】
ヌクレオチド変異識別サイトを含む５’末端の一部は、ターゲット核酸配列とハイブリッド形成することができる配列を含みうる。択一的に、５’末端の一部は、部分的に非ハイブリッド形成配列を含みうる。前記ＰＴＯ−ＮＶが、ヌクレオチド変異識別サイトに対して非相補的なヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列とハイブリッド形成される場合、前記５’末端の一部に非ハイブリッド形成配列を導入することは、前記５’末端の一部が一本鎖の形成に非常に有用である。
【０１２９】
一具現例によれば、前記ＰＴＯ−ＮＶの３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部は、ヌクレオチド変異識別サイトから１〜１０ヌクレオチド（さらに望ましくは、１〜５ヌクレオチド）以内に離隔して位置した非塩基対部分（ｎｏｎ−ｂａｓｅ  ｐａｉｒｉｎｇ  ｍｏｉｅｔｙ）を含む。
【０１３０】
前記ＰＴＯ−ＮＶが、変異識別サイトに対して非相補的なヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列とハイブリッド形成される場合、前記非塩基対部分は、３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部がターゲットヌクレオチド配列と二本鎖の形成を防止する。
【０１３１】
一具現例によれば、ヌクレオチド変異識別サイトに対して相補的なヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列にＰＴＯ−ＮＶがハイブリッド形成される場合、非塩基対部分は、５’末端の一部がターゲット核酸配列と二本鎖の形成を抑制しない。
【０１３２】
一具現例によれば、非塩基対部分は、第１初期切断サイトと第２初期切断サイトとの間の差（ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ）を増加させる。例えば、ＰＴＯ−ＮＶの３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部のハイブリッド形成パターンが、差がなくて、変異識別サイトでの差によってマッチテンプレート及びミスマッチテンプレートで切断サイトが識別されない場合、非塩基対部分の使用は、ハイブリッド形成パターンが差が出るよう作る。また、ＰＴＯ−ＮＶの３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部が、変異識別サイトでの差によってマッチテンプレート及びミスマッチテンプレートでハイブリッド形成パターンに差を示す場合にも、非塩基対部分の使用は、第２断片の３’末端部位を第１断片の３’末端部位よりもさらに長く作ってＣＴＯ上で第２断片の延長を完璧に防止することができる。
【０１３３】
非塩基対部分の使用は、ＡＢ−ＶＤＰＴＯＣＥ分析を改善させることができる。
【０１３４】
一具現例によれば、非塩基対部分（例えば、人為的なミスマッチヌクレオチド）の使用は、ヌクレオチド変異に対するＰＴＯ−ＮＶの識別可能性を増加させる。
【０１３５】
一具現例によれば、５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素による第１初期切断サイトと第２初期切断サイトとの間の差の識別は、非塩基対部分によって付与された差によって改善される。前記差は、非塩基対部分による第１初期切断サイトと第２初期切断サイトとの距離によって拡大しうる。一具現例によれば、非塩基対部分は、第１初期切断サイトと第２初期切断サイトとの距離を拡大させる。
【０１３６】
一具現例によれば、非塩基対部分配列の導入によって第２初期切断サイトを調節することができる。
【０１３７】
望ましくは、非塩基対部分は、ヌクレオチド変異識別サイトのダウンストリームに位置する。
【０１３８】
例えば、非塩基対部分としてミスマッチヌクレオチドが、３’方向にヌクレオチド変異識別サイトから２ヌクレオチド離隔した位置に導入される場合、第２初期切断サイトは、ヌクレオチド変異識別サイトから２ヌクレオチド離隔した位置に調整される。ミスマッチヌクレオチドを使わない場合、第２初期切断サイトは、ヌクレオチド変異識別サイトから１ヌクレオチド離隔して位置する。すなわち、非塩基対部分は、第１初期切断サイトと第２初期切断サイトとの距離を拡大させる。
【０１３９】
非塩基対部分は、ターゲット核酸配列間に塩基対を形成しない如何なる部分も含む。望ましくは、非塩基対部分は、（ｉ）人為的なミスマッチ塩基、塩基対を形成することができないように修飾された非塩基対塩基又はユニバーサル塩基を含むヌクレオチド、（ｉｉ）塩基対を形成することができないように修飾された非塩基対ヌクレオチド、又は（ｉｉｉ）非塩基対形成化合物（ｎｏｎ−ｂａｓｅ  ｐａｉｒｉｎｇ  ｃｈｅｍｉｃａｌ  ｃｏｍｐｏｕｎｄ）である。
【０１４０】
例えば、非塩基対部分は、アルキレン基、リボフラノシルナフタレン、デオキシリボフラノシルナフタレン、メタリン酸塩、ホスホロチオエート結合、アルキルホスホトリエステル結合、アリールホスホトリエステル結合、アルキルホスホネート結合、アリールホスホネート結合、ハイドロゲンホスホネート結合、アルキルホスホロアミダート結合、及びアリールホスホロアミダート結合を含む。従来のカーボンスぺーサも、非塩基対部分として利用される。非塩基対部分としてのユニバーサル塩基は、ＰＴＯ−ＮＶの切断サイトの調整に有用である。
【０１４１】
デオキシイノシン、１−（２’−デオキシ−β−Ｄ−リボフラノシル）−３−ニトロピロール及び５’−ニトロインドールのようなユニバーサル塩基を含む塩基対は、天然塩基間の結合力よりも低い結合力を有するので、ユニバーサル塩基は、特定ハイブリッド形成条件下で非塩基対部分として利用される。
【０１４２】
５’末端の一部に導入された非塩基対部分は、望ましくは、１〜５つの部分、より望ましくは、１〜２つの部分を有する。５’末端の一部内の多数の非塩基対部分は、連続的又は不連続的な方式で存在することができる。望ましくは、非塩基対部分は、２〜５つの連続した部分を有する。
【０１４３】
望ましくは、非塩基対部分は、非塩基対形成化合物である。
【０１４４】
一具現例によれば、前記ＰＴＯ−ＮＶのヌクレオチド変異識別サイト及び非塩基対部分は、３’−ターゲッティング部位の５’末端から１０ヌクレオチド（より望ましくは、８ヌクレオチド、７ヌクレオチド、６ヌクレオチド、５ヌクレオチド、４ヌクレオチド、３ヌクレオチド、２ヌクレオチド、又は１ヌクレオチド、さらに望ましくは、１ヌクレオチド）以内に離隔して位置する。
【０１４５】
一具現例によれば、前記ＰＴＯ−ＮＶが、ミスマッチテンプレートにハイブリッド形成される場合、第２初期切断サイトは、一本鎖及び二本鎖を含む構造で二本鎖の初期サイト（すなわち、分岐サイト）を含む。
【０１４６】
一具現例によれば、前記ＰＴＯ−ＮＶは、ブロッカーとして５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素による切断に対して耐性を有する少なくとも１つのヌクレオチドを含むブロッカー部位を有し、前記ブロッカー部位は、初期切断サイトを調節するか、１つのサイト又はサイトでの切断を防止するように位置する。
【０１４７】
本明細書で、ＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位の一部、ＰＴＯ−ＮＶの３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部、及びＣＴＯのキャプチャリング部位の５’末端の一部のように、ＰＴＯ−ＮＶ又はＣＴＯと関連して使われる用語“一部（ｐａｒｔ）”は、１〜４０、１〜３０、１〜２０、１〜１５、１〜１０、又は１〜５ヌクレオチド、望ましくは、１、２、３、又は４ヌクレオチドで構成されたヌクレオチド配列を意味する。
【０１４８】
一具現例によれば、５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素は、５’ヌクレアーゼ活性を有するＤＮＡポリメラーゼ又はＦＥＮヌクレアーゼであり、より望ましくは、５’ヌクレアーゼ活性を有する熱安定性ＤＮＡポリメラーゼである。
【０１４９】
本発明で、５’ヌクレアーゼ活性を有する適したＤＮＡポリメラーゼは、多様なバクテリア種から得た熱安定性ＤＮＡポリメラーゼであり、これは、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ａｑｕａｔｉｃｕｓ（Ｔａｑ）、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ（Ｔｔｈ）、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｆｉｌｉｆｏｒｍｉｓ、Ｔｈｅｒｍｉｓ  ｆｌａｖｕｓ、Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ  ｌｉｔｅｒａｌｉｓ、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ａｎｔｒａｎｉｋｉａｎｉｉ、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｃａｌｄｏｐｈｉｌｕｓ、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｃｈｌｉａｒｏｐｈｉｌｕｓ、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｆｌａｖｕｓ、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｉｇｎｉｔｅｒｒａｅ、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｌａｃｔｅｕｓ、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｏｓｈｉｍａｉ、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｒｕｂｅｒ、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｒｕｂｅｎｓ、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｓｃｏｔｏｄｕｃｔｕｓ、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｓｉｌｖａｎｕｓ、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｓｐｅｃｉｅｓ  Ｚ０５、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｓｐｅｃｉｅｓ  ｓｐｓ  １７、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ、Ｔｈｅｒｍｏｔｏｇａ  ｍａｒｉｔｉｍａ、Ｔｈｅｒｍｏｔｏｇａ  ｎｅａｐｏｌｉｔａｎａ、Ｔｈｅｒｍｏｓｉｐｈｏ  ａｆｒｉｃａｎｕｓ、Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ  ｌｉｔｏｒａｌｉｓ、Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ  ｂａｒｏｓｓｉ、Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ  ｇｏｒｇｏｎａｒｉｕｓ、Ｔｈｅｒｍｏｔｏｇａ  ｍａｒｉｔｉｍａ、Ｔｈｅｒｍｏｔｏｇａ  ｎｅａｐｏｌｉｔａｎａ、Ｔｈｅｒｍｏｓｉｐｈｏａｆｒｉｃａｎｕｓ、Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｗｏｅｓｅｉ、Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｈｏｒｉｋｏｓｈｉｉ、Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ  ａｂｙｓｓｉ、Ｐｙｒｏｄｉｃｔｉｕｍ  ｏｃｃｕｌｔｕｍ、Ａｑｕｉｆｅｘ  ｐｙｒｏｐｈｉｌｕｓ、及びＡｑｕｉｆｅｘ  ａｅｏｌｉｅｕｓを含む。最も望ましくは、熱安定性ＤＮＡポリメラーゼは、Ｔａｑポリメラーゼである。
【０１５０】
一具現例によれば、鋳型−依存的ポリメラーゼは、アップストリーム及びダウンストリームプライマーの延長のために利用される。
【０１５１】
一具現例によれば、プライマーの延長のための鋳型−依存的ポリメラーゼは、５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素と同一であるか、又はプライマーの延長のための鋳型−依存的ポリメラーゼは、５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素と異なる。
【０１５２】
工程（ｃ）：ＰＴＯ−ＮＶから放出された断片とＣＴＯとのハイブリッド形成
ＰＴＯ−ＮＶから放出された断片は、ＣＴＯとハイブリッド形成される。
【０１５３】
前記ＣＴＯは、３’→５’方向に（ｉ）ＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位又は５’−タギング部位の一部に相補的なヌクレオチド配列を含むキャプチャリング部位、及び（ｉｉ）ＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位及び３’−ターゲッティング部位に非相補的なヌクレオチド配列を含むテンプレーティング部位を含む。
【０１５４】
第１断片及び第２断片は、一般的にＣＴＯのキャプチャリング部位とハイブリッド形成することができる配列を含み、したがって、第１断片及び第２断片のうち１つが、ＣＴＯとハイブリッド形成される。
【０１５５】
ミスマッチテンプレートとハイブリッド形成される時、生成される第２断片は、マッチテンプレートとハイブリッド形成される時、生成される第１断片と他の追加的な３’末端部位を含む。
【０１５６】
一具現例によれば、前記第２断片が、前記ＣＴＯのキャプチャリング部位にハイブリッド形成される場合、前記ＣＴＯが、前記第２断片の前記追加的な３’末端部位とハイブリッド形成されず、前記第２断片の延長が防止されるように選択された配列を前記ＣＴＯが有する。例えば、ＣＴＯの配列は、第２断片の追加的な３’末端部位の対向側にＣＴＯがミスマッチヌクレオチドを有するように選択されうる。択一的に、反応条件によってミスマッチヌクレオチドの代わりに、ユニバーサル塩基が使われる。
【０１５７】
第１初期切断サイト（又は、第２初期切断サイト）は、ある条件では固定されずに多数であり得る。例えば、初期切断サイトは、５’→３’方向に一本鎖及び二本鎖を含む構造で二本鎖の初期ヌクレオチド（すなわち、分岐サイト）及び前記初期ヌクレオチドから１〜２ヌクレオチド離隔して位置しうる。このような場合、望ましくは、ＣＴＯの配列は、本発明で第１初期切断によって放出される断片のうち、最も短い断片が選択的に延長されてヌクレオチド変異の存在を示す延長鎖を生成するように選択される。
【０１５８】
前記ＣＴＯのテンプレーティング部位は、ＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位及び３’−ターゲッティング部位に非相補的な配列を有する限り、如何なる配列も含みうる。また、テンプレーティング部位は、ＰＴＯ−ＮＶから放出された第１断片の延長のためのテンプレートとしての役割ができる限り、如何なる配列も含みうる。
【０１５９】
前記ＣＴＯの長さは、多様であり得る。例えば、前記ＣＴＯは、７〜１０００ヌクレオチド、７〜５００ヌクレオチド、７〜３００ヌクレオチド、７〜１００ヌクレオチド、７〜８０ヌクレオチド、７〜６０ヌクレオチド、７〜４０ヌクレオチド、１５〜１０００ヌクレオチド、１５〜５００ヌクレオチド、１５〜３００ヌクレオチド、１５〜１００ヌクレオチド、１５〜８０ヌクレオチド、１５〜６０ヌクレオチド、１５〜４０ヌクレオチド、２０〜１０００ヌクレオチド、２０〜５００ヌクレオチド、２０〜３００ヌクレオチド、２０〜１００ヌクレオチド、２０〜８０ヌクレオチド、２０〜６０ヌクレオチド、２０〜４０ヌクレオチド、３０〜１０００ヌクレオチド、３０〜５００ヌクレオチド、３０〜３００ヌクレオチド、３０〜１００ヌクレオチド、３０〜８０ヌクレオチド、３０〜６０ヌクレオチド、又は３０〜４０ヌクレオチドの長さである。前記ＣＴＯのキャプチャリング部位は、ＰＴＯから放出された断片に特異的にハイブリッド形成される限り、如何なる長さも有しうる。例えば、前記ＣＴＯのキャプチャリング部位は、５〜１００ヌクレオチド、５〜６０ヌクレオチド、５〜４０ヌクレオチド、５〜３０ヌクレオチド、５〜２０ヌクレオチド、１０〜１００ヌクレオチド、１０〜６０ヌクレオチド、１０〜４０ヌクレオチド、１０〜３０ヌクレオチド、１０〜２０ヌクレオチド、１５〜１００ヌクレオチド、１５〜６０ヌクレオチド、１５〜４０ヌクレオチド、１５〜３０ヌクレオチド、又は１５〜２０ヌクレオチドの長さである。前記ＣＴＯのテンプレーティング部位は、ＰＴＯから放出された断片の延長反応でテンプレートとしての役割ができる限り、如何なる長さも有しうる。例えば、前記ＣＴＯのテンプレーティング部位は、１〜９００ヌクレオチド、１〜４００ヌクレオチド、１〜３００ヌクレオチド、１〜１００ヌクレオチド、１〜８０ヌクレオチド、１〜６０ヌクレオチド、１〜４０ヌクレオチド、１〜２０ヌクレオチド、２〜９００ヌクレオチド、２〜４００ヌクレオチド、２〜３００ヌクレオチド、２〜１００ヌクレオチド、２〜８０ヌクレオチド、２〜６０ヌクレオチド、２〜４０ヌクレオチド、２〜２０ヌクレオチド、５〜９００ヌクレオチド、５〜４００ヌクレオチド、５〜３００ヌクレオチド、５〜１００ヌクレオチド、５〜８０ヌクレオチド、５〜６０ヌクレオチド、５〜４０ヌクレオチド、５〜３０ヌクレオチド、１０〜９００ヌクレオチド、１０〜４００ヌクレオチド、１０〜３００ヌクレオチド、１５〜９００ヌクレオチド、１５〜１００ヌクレオチド、１５〜８０ヌクレオチド、１５〜６０ヌクレオチド、１５〜４０ヌクレオチド、又は１５〜２０ヌクレオチドの長さである。
【０１６０】
前記ＣＴＯの３’末端は、３’−ＯＨターミナルを有しうる。一具現例によれば、ＣＴＯは、その延長が防止されるように３’末端がブロッキングされる。ＣＴＯの非延長ブロッキングは、従来の方法によって達成されうる。
【０１６１】
前記ＰＴＯ−ＮＶから放出された第１断片は、ＣＴＯとハイブリッド形成されて、第１断片の延長に適した形態を提供する。また、非切断ＰＴＯ−ＮＶが、その５’−タギング部位を介してＣＴＯのキャプチャリング部位とハイブリッド形成されても、ＰＴＯ−ＮＶの３’−ターゲッティング部位は、ＣＴＯにハイブリッド形成されず、延長二量体の形成が防止される。
【０１６２】
工程（ｃ）でのハイブリッド形成は、前記工程（ａ）でのハイブリッド形成についての説明を参照して詳細に説明される。
【０１６３】
工程（ｄ）：断片の延長
前記工程（ｃ）の結果物及び鋳型−依存的核酸ポリメラーゼを用いて延長反応を実施する。
【０１６４】
第１断片がＣＴＯのキャプチャリング部位とハイブリッド形成されれば、第１断片は、延長されてＣＴＯのテンプレーティング部位に相補的な延長配列を含む延長鎖が形成される。前記第２断片が、ＣＴＯのキャプチャリング部位とハイブリッド形成される場合、第２断片は延長されない。
【０１６５】
本明細書で延長鎖と関連して使われる用語“延長配列（ｅｘｔｅｎｄｅｄ  ｓｅｑｕｅｎｃｅ）”は、延長鎖で第１断片を除いた新たに延長された配列のみを意味する。前記延長鎖は、前記第１断片及び前記延長配列を含む。
【０１６６】
特定の具現例で、第１断片の延長鎖及びＣＴＯは、工程（ｄ）で延長二量体を形成する。
【０１６７】
本明細書で使われる用語“延長二量体（ｅｘｔｅｎｄｅｄ  ｓｔｒａｎｄ）”は、ＣＴＯのキャプチャリング部位にハイブリッド形成された第１断片が鋳型−依存的核酸ポリメラーゼとＣＴＯのテンプレーティング部位をテンプレートとして用いて延長される延長反応によって形成された二量体を意味する。
【０１６８】
前記延長二量体は、非切断ＰＴＯ−ＮＶとＣＴＯとの間のハイブリッド形成物（ｈｙｂｒｉｄ）のＴｍ値と異なるＴｍ値を有する。望ましくは、前記延長二量体は、非切断ＰＴＯとＣＴＯとの間のハイブリッド形成物のＴｍ値よりも高いＴｍ値を有する。
【０１６９】
前記延長二量体のＴｍ値は、（ｉ）第１断片の配列及び／又は長さ、（ｉｉ）ＣＴＯの配列及び／又は長さ、又は（ｉｉｉ）第１断片の配列及び／又は長さとＣＴＯの配列及び／又は長さによって調節される。工程（ｅ）で延長二量体のメルティングによって延長二量体の存在を示すターゲットシグナルが提供されるように延長二量体の調節可能なＴｍ値を使うことができる。
【０１７０】
本明細書で使われる用語“Ｔｍ”は、二本鎖核酸分子の集団（ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ）の半分が一本鎖分子に解離されるメルティング温度を意味する。Ｔｍ値は、ハイブリッド形成されたヌクレオチドの長さ及びＧ／Ｃ含量によって決定される。Ｔｍ値は、Ｗａｌｌａｃｅ  ｒｕｌｅ（Ｒ．Ｂ．Ｗａｌｌａｃｅら、Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ，６：３５４３−３５４７（１９７９））及びｎｅａｒｅｓｔ−ｎｅｉｇｈｂｏｒ方法（ＳａｎｔａＬｕｃｉａ  Ｊ．Ｊｒ．ら、Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，３５：３５５５−３５６２（１９９６））；Ｓｕｇｉｍｏｔｏ  Ｎ．ら、Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．，２４：４５０１−４５０５（１９９６））のような従来の方法によって計算することができる。
【０１７１】
一具現例によれば、Ｔｍ値は、実際に使う反応条件下での実際のＴｍ値を意味する。
【０１７２】
工程（ｄ）で利用される鋳型−依存的核酸ポリメラーゼは、如何なる核酸ポリメラーゼ、例えば、Ｅ．ｃｏｌｉ  ＤＮＡポリメラーゼＩの“クレノウ（Ｋｌｅｎｏｗ）”断片、熱安定性ＤＮＡポリメラーゼ及びバクテリオファージＴ７  ＤＮＡポリメラーゼを含みうる。望ましくは、ポリメラーゼは、多様なバクテリア種から得られる熱安定性ＤＮＡポリメラーゼであり、これは、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ａｑｕａｔｉｃｕｓ（Ｔａｑ）、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ（Ｔｔｈ）、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｆｉｌｉｆｏｒｍｉｓ、Ｔｈｅｒｍｉｓ  ｆｌａｖｕｓ、Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ  ｌｉｔｅｒａｌｉｓ、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ａｎｔｒａｎｉｋｉａｎｉｉ、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｃａｌｄｏｐｈｉｌｕｓ、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｃｈｌｉａｒｏｐｈｉｌｕｓ、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｆｌａｖｕｓ、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｉｇｎｉｔｅｒｒａｅ、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｌａｃｔｅｕｓ、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｏｓｈｉｍａｉ、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｒｕｂｅｒ、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｒｕｂｅｎｓ、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｓｃｏｔｏｄｕｃｔｕｓ、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｓｉｌｖａｎｕｓ、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｓｐｅｃｉｅｓ  Ｚ０５、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｓｐｅｃｉｅｓ  ｓｐｓ  １７、Ｔｈｅｒｍｕｓ  ｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ、Ｔｈｅｒｍｏｔｏｇａ  ｍａｒｉｔｉｍａ、Ｔｈｅｒｍｏｔｏｇａ  ｎｅａｐｏｌｉｔａｎａ、Ｔｈｅｒｍｏｓｉｐｈｏ  ａｆｒｉｃａｎｕｓ、Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ  ｌｉｔｏｒａｌｉｓ、Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ  ｂａｒｏｓｓｉ、Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ  ｇｏｒｇｏｎａｒｉｕｓ、Ｔｈｅｒｍｏｔｏｇａ  ｍａｒｉｔｉｍａ、Ｔｈｅｒｍｏｔｏｇａ  ｎｅａｐｏｌｉｔａｎａ、Ｔｈｅｒｍｏｓｉｐｈｏａｆｒｉｃａｎｕｓ、Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｆｕｒｉｏｓｕｓ（Ｐｆｕ）、Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｗｏｅｓｅｉ、Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｈｏｒｉｋｏｓｈｉｉ、Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ  ａｂｙｓｓｉ、Ｐｙｒｏｄｉｃｔｉｕｍ  ｏｃｃｕｌｔｕｍ、Ａｑｕｉｆｅｘ  ｐｙｒｏｐｈｉｌｕｓ、及びＡｑｕｉｆｅｘ  ａｅｏｌｉｅｕｓを含む。最も望ましくは、鋳型−依存的核酸ポリメラーゼは、Ｔａｑポリメラーゼである。
【０１７３】
一具現例によれば、前記工程（ｂ）で利用される５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素は、工程（ｄ）で利用される鋳型−依存的核酸ポリメラーゼと同一である。望ましくは、前記工程（ｂ）で利用される５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素、アップストリームプライマーの延長のために利用される鋳型−依存的核酸ポリメラーゼ、及び工程（ｄ）で利用される鋳型−依存的核酸ポリメラーゼは、互いに同一である。
【０１７４】
一般的に、プライマーの延長は、プライマーの３’末端の一部とテンプレートとの間のハイブリッド形成によって調節される。プライマー配列及び反応条件（例えば、アニーリング温度）を調節することによって、３’末端の一部に１〜３ミスマッチヌクレオチドを有するプライマーの延長を可能ならしめる。択一的に、プライマーの延長は、プライマーがターゲット配列に完全に相補的な配列を有する時のみ可能ならしめる。
【０１７５】
一具現例によれば、前記ＣＴＯの配列は、第１断片又は第２断片のうち何れか１つが選択的に延長されるように選択される。
【０１７６】
一具現例によれば、前記断片の延長は、断片の３’末端の一部に１つのミスマッチでも存在する場合には、延長されない条件下で実施される。
【０１７７】
工程（ｅ）：延長鎖の検出
延長鎖は、延長反応後に検出される。前記延長鎖の存在は、ＰＴＯ−ＮＶのヌクレオチド識別サイトに対して相補的なヌクレオチド変異の存在を示す。
【０１７８】
本発明で、非切断ＰＴＯ−ＮＶとＣＴＯとの間のハイブリッド形成物又は第２断片とＣＴＯとの間のハイブリッド形成物が形成されうる。下記で説明する非切断ＰＴＯ−ＮＶとＣＴＯとの間のハイブリッド形成物と延長二量体との差は、第２断片とＣＴＯとの間のハイブリッド形成物と延長二量体との差にも適用可能である。
【０１７９】
メルティング又はハイブリッド形成分析による延長二量体の検出
一具現例によれば、工程（ｅ）での検出は、延長鎖とＣＴＯとの間の延長二量体からのシグナルを用いるメルティング分析を含むＰＴＯＣＥ分析によって実施される（参照：国際公開第２０１２／０９６５２３号）。
【０１８０】
一具現例によれば、第１断片の延長鎖及びＣＴＯは、前記工程（ｄ）で延長二量体を形成し、前記延長二量体は、（ｉ）前記第１断片の配列及び／又は長さ、（ｉｉ）前記ＣＴＯの配列及び／又は長さ、又は（ｉｉｉ）前記第１断片の配列及び／又は長さ及び前記ＣＴＯの配列及び／又は長さによって調節可能なＴｍ値を有し、前記延長二量体は、（ｉ）前記第１断片及び／又はＣＴＯに連結された少なくとも１つの標識、（ｉｉ）延長反応の間に前記延長二量体内に挿入された標識、（ｉｉｉ）前記第１断片及び／又はＣＴＯに連結された少なくとも１つの標識及び延長反応の間に前記延長二量体内に挿入された標識、又は（ｉｖ）インターカレーティング標識（ｉｎｔｅｒｃａｌａｔｉｎｇ  ｌａｂｅｌ）によるターゲットシグナルを提供し、前記延長鎖の存在は、延長二量体に対するメルティング分析又はハイブリッド形成分析によって延長二量体からターゲットシグナルを測定することで検出される。
【０１８１】
本明細書で使われる用語“メルティング分析（ｍｅｌｔｉｎｇ  ａｎａｌｙｓｉｓ）”は、延長二量体のメルティングによって延長二量体の存在を示すターゲットシグナルを得る方法を意味し、２種の異なる温度でシグナルを測定する方法、メルティングカーブ分析、メルティングパターン分析、及びメルティングピーク分析を含む。望ましくは、メルティング分析は、メルティングカーブ分析である。
【０１８２】
一具現例によれば、工程（ｅ）で延長鎖の存在の検出は、メルティング分析を介して実施し、メルティング分析で延長二量体は、一定範囲の温度でメルティングされて延長鎖の存在を示すターゲットシグナルを提供する。
【０１８３】
択一的に、工程（ｅ）で延長鎖の存在の検出は、ハイブリッド形成分析を介して実施する。望ましくは、工程（ｅ）で延長鎖の存在の検出は、延長二量体がメルティングされ、その結果物が、一定範囲の温度でハイブリッド形成されて延長鎖の存在を示すターゲットシグナルを提供するハイブリッド形成分析を介して実施する。
【０１８４】
一具現例によれば、工程（ｅ）のメルティング以後にハイブリッド形成を実施して、延長鎖の存在を示すターゲットシグナルを提供する。このような場合、延長二量体の存在は、ハイブリッド形成カーブ分析によって検出される。
【０１８５】
メルティングカーブ又はハイブリッド形成カーブは、例えば、米国特許第６，１７４，６７０号及び第５，７８９，１６７号、Ｄｒｏｂｙｓｈｅｖら、Ｇｅｎｅ  １８８：４５（１９９７）；Ｋｏｃｈｉｎｓｋｙ及びＭｉｒｚａｂｅｋｏｖ，Ｈｕｍａｎ  Ｍｕｔａｔｉｏｎ  １９：３４３（２００２）；Ｌｉｖｅｈｉｔｓら、Ｊ．Ｂｉｏｍｏｌ．Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ  Ｄｙｎａｍ．１１：７８３（１９９４）；及びＨｏｗｅｌｌら、Ｎａｔｕｒｅ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  １７：８７（１９９９）で説明するような従来の技術によって得られる。例えば、メルティングカーブ又はハイブリッド形成カーブは、ハイブリッド形成厳格度（ｓｔｒｉｎｇｅｎｃｙ）のパラメータに対するアウトプットシグナル（ｏｕｔｐｕｔ  ｓｉｇｎａｌ）変化のグラフィックプロット（ｇｒａｐｈｉｃ  ｐｌｏｔ）又はディスプレイ（ｄｉｓｐｌａｙ）で構成することができる。アウトプットシグナルは、ハイブリッド形成パラメータに対して直接にプロッティングすることができる。典型的に、メルティングカーブ又はハイブリッド形成カーブは、例えば、Ｙ軸には、二量体構造の程度（すなわち、ハイブリッド形成程度）を示すアウトプットシグナル、例えば、蛍光がプロッティングされ、Ｘ軸には、ハイブリッド形成パラメータがプロッティングされる。
【０１８６】
蛍光ｖｓ．温度の１次導関数（ｄｅｒｉｖａｔｉｖｅ）のプロット、すなわち、蛍光ｖｓ．温度（ｄＦ／ｄＴ  ｖｓ．Ｔ）又は（−ｄＦ／ｄＴ  ｖｓ．Ｔ）で変化率プロットは、メルティングピークを提供する。
【０１８７】
メルティング又はハイブリッド形成分析によって実施された工程（ｅ）は、次のような多様な標識システムと共に詳細に説明される：
【０１８８】
（ｉ）第１断片及び／又はＣＴＯに連結された標識
一具現例によれば、前記ターゲットシグナルは、第１断片及び／又はＣＴＯに連結された少なくとも１つの標識によって提供される。延長二量体が第１断片とＣＴＯとの間に形成されるので、第１断片又はＣＴＯ上の標識が延長二量体上に存在し、メルティング工程でターゲットシグナルを提供する。
【０１８９】
前記標識は、相互作用的二重標識及び単一標識を含む。
【０１９０】
（ｉ−１）相互作用的二重標識
相互作用的標識システムの代表的な例として、ＦＲＥＴ（Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ  Ｒｅｓｏｎａｎｃｅ  Ｅｎｅｒｇｙ  Ｔｒａｎｓｆｅｒ）標識システムは、蛍光レポーター分子（供与体分子）及びクエンチャー分子（受容体分子）を含む。ＦＲＥＴで、エネルギー供与体は、蛍光性であるが、エネルギー受容体は、蛍光性又は非蛍光性であり得る。相互作用的標識システムの他の形態で、エネルギー供与体は、非蛍光性、例えば、クロモフォア（ｃｈｒｏｍｏｐｈｏｒｅ）であり、エネルギー受容体は、蛍光性である。相互作用的標識システムのさらに他の形態で、エネルギー供与体は、発光性（ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｔ）、例えば、生物発光性、化学発光性、又は電気化学発光性であり、受容体は、蛍光性である。供与体分子及び受容体分子は、本発明でそれぞれレポーター分子及びクエンチャー分子として記述されうる。相互作用的二重標識は、接触−媒介されたクエンチングに基づいて検出可能なシグナルを提供する標識対を含む（Ｓａｌｖａｔｏｒｅら、Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ，２００２（３０）ｎｏ．２１  ｅ１２２及びＪｏｈａｎｓｓｏｎら、Ｊ．ＡＭ．ＣＨＥＭ．ＳＯＣ  ２００２（１２４）ｐｐ６９５０−６９５６）。本発明で、前記相互作用的標識システムは、少なくとも２つ分子（例えば、染料）間の相互作用によるシグナル変化を誘導するあらゆる場合を含む。
【０１９１】
特に、延長二量体の存在（すなわち、ターゲット核酸配列の存在）を示すシグナルは、相互作用的標識システムによって発生し、より望ましくは、ＦＲＥＴ標識システム（すなわち、相互作用的二重標識システム）によって発生する。
【０１９２】
具現例１（鎖内の相互作用的二重標識）
相互作用的二重標識システムの具現例１で、第１断片又はＣＴＯは、レポーター分子及びクエンチャー分子を含む相互作用的二重標識を有し、前記工程（ｅ）での延長二量体のメルティングは、相互作用的二重標識からのシグナル変化を誘導して、工程（ｅ）でターゲットシグナルを提供する。相互作用的二重標識システムの具現例１は、図５で図式的に例示されている。具現例１は、鎖内の相互作用的二重標識と名づけられる。
【０１９３】
具現例１−１（ＣＴＯ上の鎖内の相互作用的二重標識）
例示された具現例は、図５を参考にして説明される。ＣＴＯのテンプレーティング部位は、レポーター分子及びクエンチャー分子を有する。ターゲット核酸配列にハイブリッド形成されたＰＴＯ−ＮＶは、切断されて第１断片を放出し、前記第１断片は、ＣＴＯのキャプチャリング部位にハイブリッド形成され、延長されて延長二量体を形成する。
【０１９４】
前記工程（ｄ）で延長二量体が形成される場合、ＣＴＯ上のレポーター分子及びクエンチャー分子は、構造的（ｃｏｎｆｏｒｍａｔｉｏｎａｌｌｙ）に離隔してクエンチャー分子がレポーター分子からのシグナルをアンクエンチングし、工程（ｅ）で延長二量体がメルティングされる場合、レポーター分子及びクエンチャー分子は、構造的に互いに近接してクエンチャー分子がレポーター分子からのシグナルをクエンチングし、これにより、ターゲットシグナルが提供されて、工程（ｅ）で延長鎖の存在を示す。
【０１９５】
本明細書で使われる表現“レポーター分子及びクエンチャー分子が構造的に近接する”とは、第１断片又はＣＴＯの形態的構造、例えば、ランダムコイル（ｃｏｌｉ）及びヘアピン構造によってレポーター分子及びクエンチャー分子が３次元的に互いに近接することを意味する。
【０１９６】
本明細書で使われる表現“レポーター分子及びクエンチャー分子が構造的に離隔した”とは、二本鎖の形成時に、第１断片又はＣＴＯの形態的構造の変化によってレポーター分子及びクエンチャー分子が３次元的に離隔することを意味する。
【０１９７】
望ましくは、工程（ｅ）から提供されるターゲットシグナルは、前記工程（ｄ）から発生する蛍光シグナルの変化を測定して得るメルティングカーブ、メルティングパターン、又はＴｍ値を含む。
【０１９８】
一具現例によれば、延長二量体のメルティングによってレポーター分子からのシグナルがクエンチングされるか、又はアンクエンチングされる限り、レポーター分子及びクエンチャー分子は、ＣＴＯの如何なる位置にも位置しうる。
【０１９９】
一具現例によれば、レポーター分子及びクエンチャー分子いずれもは、ＣＴＯのテンプレーティング部位又はキャプチャリング部位に連結される。
【０２００】
一具現例によれば、レポーター分子及びクエンチャー分子は、ＣＴＯの５’末端及び３’末端に位置する。
【０２０１】
一具現例によれば、ＣＴＯ上のレポーター分子及びクエンチャー分子のうちの１つは、その５’末端に位置するか、又はその５’末端から１〜５ヌクレオチド離隔して位置し、他の１つは、ＣＴＯの形態によってレポーター分子からのシグナルをクエンチング及びアンクエンチングするように位置する。
【０２０２】
一具現例によれば、ＣＴＯ上のレポーター分子及びクエンチャー分子のうちの１つは、その３’末端に位置するか、又はその３’末端から１〜５ヌクレオチド離隔して位置し、他の１つは、ＣＴＯの形態によってレポーター分子からのシグナルをクエンチング及びアンクエンチングするように位置する。
【０２０３】
一具現例によれば、レポーター分子及びクエンチャー分子は、互いに最大８０ヌクレオチド、より望ましくは、最大６０ヌクレオチド、さらに望ましくは、最大３０ヌクレオチド、最も望ましくは、最大２５ヌクレオチド離隔して位置する。一具現例によれば、レポーター分子及びクエンチャー分子は、少なくとも４ヌクレオチド、より望ましくは、少なくとも６ヌクレオチド、さらに望ましくは、少なくとも１０ヌクレオチド、最も望ましくは、少なくとも１５ヌクレオチド離隔して位置する。
【０２０４】
本発明で、非切断ＰＴＯ−ＮＶとＣＴＯとの間のハイブリッド形成物が形成されうる。
【０２０５】
図５で示すように、ＣＴＯのテンプレーティング部位が相互作用的二重標識で標識される場合、非切断ＰＴＯ−ＮＶとＣＴＯとの間のハイブリッド形成物上の標識からはシグナル変化が誘導されない。したがって、前記ハイブリッド形成物は、非ターゲットシグナルを提供しない。
【０２０６】
ＣＴＯのキャプチャリング部位が相互作用的二重標識で標識される場合、非切断ＰＴＯとＣＴＯとの間のハイブリッド形成物は、メルティング工程で非ターゲットシグナルを提供する。このような場合、延長二量体及び前記ハイブリッド形成物のＴｍ値の差によって延長二量体のターゲットシグナルと前記ハイブリッド形成物の非ターゲットシグナルとを識別することができる。
【０２０７】
具現例１〜２（ＰＴＯ−ＮＶ上の鎖内の相互作用的二重標識）
ＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位は、レポーター分子及びクエンチャー分子を有しうる。ターゲット核酸配列にハイブリッド形成されたＰＴＯ−ＮＶは、切断されて、レポーター分子及びクエンチャー分子のある５’−タギング部位を含む第１断片を放出する。前記第１断片は、ＣＴＯのキャプチャリング部位にハイブリッド形成される。
【０２０８】
前記工程（ｄ）で延長二量体が形成される場合、前記第１断片上のレポーター分子及びクエンチャー分子は、構造的に離隔してクエンチャー分子がレポーター分子からのシグナルをアンクエンチングし、工程（ｅ）で延長二量体がメルティングされる場合、レポーター分子及びクエンチャー分子は、構造的に互いに近接してクエンチャー分子がレポーター分子からのシグナルをクエンチングし、これにより、ターゲットシグナルが提供されて、工程（ｅ）で延長鎖の存在を示す。
【０２０９】
一具現例によれば、延長二量体のメルティングによってレポーター分子からのシグナルがクエンチングされるか、又はアンクエンチングされる限り、レポーター分子及びクエンチャー分子は、第１断片の如何なる位置にも位置しうる。
【０２１０】
一具現例によれば、第１断片上のレポーター分子及びクエンチャー分子のうち１つは、その５’末端に位置するか、又はその５’末端から１〜５ヌクレオチド離隔して位置し、他の１つは、第１断片の形態（ｃｏｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ）によってレポーター分子からのシグナルをクエンチング及びアンクエンチングするように位置する。
【０２１１】
一具現例によれば、レポーター分子及びクエンチャー分子は、互いに最大５０ヌクレオチド、より望ましくは、最大４０ヌクレオチド、さらに望ましくは、最大３０ヌクレオチド、最も望ましくは、最大２０ヌクレオチド離隔して位置する。一具現例によれば、レポーター分子及びクエンチャー分子は、少なくとも４ヌクレオチド、より望ましくは、少なくとも６ヌクレオチド、さらに望ましくは、少なくとも１０ヌクレオチド、最も望ましくは、少なくとも１５ヌクレオチドほど離隔して位置する。
【０２１２】
非切断ＰＴＯ−ＮＶとＣＴＯとの間のハイブリッド形成物は、メルティング工程で非ターゲットシグナルを提供することができる。このような場合、延長二量体及び前記ハイブリッド形成物のＴｍ値の差によって延長二量体のターゲットシグナルと前記ハイブリッド形成物の非ターゲットシグナルとを識別することができる。
【０２１３】
具現例２（鎖内の相互作用的二重標識）
相互作用的標識システムの具現例２で、第１断片は、レポーター分子及びクエンチャー分子を含む相互作用的二重標識のうち１つを有し、ＣＴＯは、相互作用的二重標識の残りの１つを有し、工程（ｅ）での延長二量体のメルティングは、相互作用的二重標識からのシグナル変化を誘導して、工程（ｅ）でターゲットシグナルを提供する。
【０２１４】
例えば、前記工程（ｄ）で延長二量体が形成される場合、ＰＴＯ−ＮＶに連結されたクエンチャー分子によって、ＣＴＯに連結されたレポーター分子からのシグナルがクエンチングされる。工程（ｅ）で前記延長二量体がメルティングされる場合、レポーター分子及びクエンチャー分子は、互いに離隔してクエンチャー分子がレポーター分子からのシグナルをアンクエンチングし、これにより、ターゲットシグナルが提供されて、工程（ｅ）で延長鎖の存在を示す。
【０２１５】
望ましくは、工程（ｅ）から提供されるターゲットシグナルは、相互作用的二重標識からの蛍光シグナルの変化を測定して得るメルティングカーブ、メルティングパターン、又はＴｍ値を含む。
【０２１６】
延長二量体でクエンチャー分子によってレポーター分子からのシグナルがクエンチングされる限り、レポーター分子及びクエンチャー分子は、第１断片及びＣＴＯの如何なる位置にも位置しうる。
【０２１７】
一具現例によれば、ＰＴＯ−ＮＶ断片上のレポーター分子又はクエンチャー分子は、５’−タギング部位の５’末端に位置する。
【０２１８】
一具現例によれば、ＣＴＯ上のレポーター分子又はクエンチャー分子は、その３’末端に位置する。
【０２１９】
非切断ＰＴＯとＣＴＯとの間のハイブリッド形成物がメルティング工程で非ターゲットシグナルを提供することができる。このような場合、延長二量体及び前記ハイブリッド形成物のＴｍ値の差によって延長二量体のターゲットシグナルと前記ハイブリッド形成物の非ターゲットシグナルとを識別することができる。
【０２２０】
本発明で有用なレポーター分子及びクエンチャー分子は、当業界に知られた如何なる分子も含みうる。その例は、次の通りである：Ｃｙ２ＴＭ（５０６）、ＹＯ−ＰＲＯＴＭ−１（５０９）、ＹＯＹＯＴＭ−１（５０９）、Ｃａｌｃｅｉｎ（５１７）、ＦＩＴＣ（５１８）、ＦｌｕｏｒＸＴＭ（５１９）、ＡｌｅｘａＴＭ（５２０）、Ｒｈｏｄａｍｉｎｅ  １１０（５２０）、Ｏｒｅｇｏｎ  ＧｒｅｅｎＴＭ  ５００（５２２）、Ｏｒｅｇｏｎ  ＧｒｅｅｎＴＭ  ４８８（５２４）、ＲｉｂｏＧｒｅｅｎＴＭ（５２５）、Ｒｈｏｄａｍｉｎｅ  ＧｒｅｅｎＴＭ（５２７）、Ｒｈｏｄａｍｉｎｅ  １２３（５２９）、Ｍａｇｎｅｓｉｕｍ  ＧｒｅｅｎＴＭ（５３１）、Ｃａｌｃｉｕｍ  ＧｒｅｅｎＴＭ（５３３）、ＴＯ−ＰＲＯＴＭ−１（５３３）、ＴＯＴＯ１（５３３）、ＪＯＥ（５４８）、ＢＯＤＩＰＹ５３０／５５０（５５０）、Ｄｉｌ（５６５）、ＢＯＤＩＰＹ  ＴＭＲ（５６８）、ＢＯＤＩＰＹ５５８／５６８（５６８）、ＢＯＤＩＰＹ５６４／５７０（５７０）、Ｃｙ３ＴＭ（５７０）、ＡｌｅｘａＴＭ  ５４６（５７０）、ＴＲＩＴＣ（５７２）、Ｍａｇｎｅｓｉｕｍ  ＯｒａｎｇｅＴＭ（５７５）、Ｐｈｙｃｏｅｒｙｔｈｒｉｎ  Ｒ＆Ｂ（５７５）、Ｒｈｏｄａｍｉｎｅ  Ｐｈａｌｌｏｉｄｉｎ（５７５）、Ｃａｌｃｉｕｍ  ＯｒａｎｇｅＴＭ（５７６）、Ｐｙｒｏｎｉｎ  Ｙ（５８０）、Ｒｈｏｄａｍｉｎｅ  Ｂ（５８０）、ＴＡＭＲＡ（５８２）、Ｒｈｏｄａｍｉｎｅ  ＲｅｄＴＭ（５９０）、Ｃｙ３．５ＴＭ（５９６）、ＲＯＸ（６０８）、Ｃａｌｃｉｕｍ  ＣｒｉｍｓｏｎＴＭ（６１５）、ＡｌｅｘａＴＭ  ５９４（６１５）、Ｔｅｘａｓ  Ｒｅｄ（６１５）、Ｎｉｌｅ  Ｒｅｄ（６２８）、ＹＯ−ＰＲＯＴＭ−３（６３１）、ＹＯＹＯＴＭ−３（６３１）、Ｒｐｈｙｃｏｃｙａｎｉｎ（６４２）、Ｃ−Ｐｈｙｃｏｃｙａｎｉｎ（６４８）、ＴＯ−ＰＲＯＴＭ−３（６６０）、ＴＯＴＯ３（６６０）、ＤｉＤ  ＤｉｌＣ（５）（６６５）、Ｃｙ５ＴＭ（６７０）、Ｔｈｉａｄｉｃａｒｂｏｃｙａｎｉｎｅ（６７１）、Ｃｙ５．５（６９４）、ＨＥＸ（５５６）、ＴＥＴ（５３６）、Ｂｉｏｓｅａｒｃｈ  Ｂｌｕｅ（４４７）、ＣＡＬ  Ｆｌｕｏｒ  Ｇｏｌｄ  ５４０（５４４）、ＣＡＬ  Ｆｌｕｏｒ  Ｏｒａｎｇｅ  ５６０（５５９）、ＣＡＬ  Ｆｌｕｏｒ  Ｒｅｄ  ５９０（５９１）、ＣＡＬ  Ｆｌｕｏｒ  Ｒｅｄ  ６１０（６１０）、ＣＡＬ  Ｆｌｕｏｒ  Ｒｅｄ  ６３５（６３７）、ＦＡＭ（５２０）、Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ（５２０）、Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ−Ｃ３（５２０）、Ｐｕｌｓａｒ  ６５０（５６６）、Ｑｕａｓａｒ  ５７０（６６７）、Ｑｕａｓａｒ  ６７０（７０５）、及びＱｕａｓａｒ  ７０５（６１０）。カッコの数字は、ｎｍ単位で表示した最大発光波長である。望ましくは、レポーター分子及びクエンチャー分子は、ＪＯＥ、ＦＡＭ、ＴＡＭＲＡ、ＲＯＸ、及びフルオレセインベースの標識を含む。
【０２２１】
適したレポーター−クエンチャー対は、次のように多様な文献に開示されている：Ｐｅｓｃｅら、ｅｄｉｔｏｒｓ，Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ  Ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｙ（Ｍａｒｃｅｌ  Ｄｅｋｋｅｒ，Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ，１９７１）；Ｗｈｉｔｅら、Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ  Ａｎａｌｙｓｉｓ：Ａ  Ｐｒａｃｔｉｃａｌ  Ａｐｐｒｏａｃｈ（Ｍａｒｃｅｌ  Ｄｅｋｋｅｒ，Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ，１９７０）；Ｂｅｒｌｍａｎ，Ｈａｎｄｂｏｏｋ  ｏｆ  Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ  Ｓｐｅｃｔｒａ  ｏｆ  Ａｒｏｍａｔｉｃ  Ｍｏｌｅｃｕｌｅｓ，２ｎｄ  Ｅｄｉｔｉｏｎ（Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ，Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ，１９７１）；Ｇｒｉｆｆｉｔｈｓ，Ｃｏｌｏｒ  ＡＮＤ  Ｃｏｎｓｔｉｔｕｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｏｒｇａｎｉｃ  Ｍｏｌｅｃｕｌｅｓ（Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ，Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ，１９７６）；Ｂｉｓｈｏｐ，ｅｄｉｔｏｒ，Ｉｎｄｉｃａｔｏｒｓ（Ｐｅｒｇａｍｏｎ  Ｐｒｅｓｓ，Ｏｘｆｏｒｄ，１９７２）；Ｈａｕｇｌａｎｄ，Ｈａｎｄｂｏｏｋ  ｏｆ  Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ  Ｐｒｏｂｅｓ  ａｎｄ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｐｒｏｂｅｓ，Ｅｕｇｅｎｅ，１９９２）；Ｐｒｉｎｇｓｈｅｉｍ，Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ  ａｎｄ  Ｐｈｏｓｐｈｏｒｅｓｃｅｎｃｅ（Ｉｎｔｅｒｓｃｉｅｎｃｅ  Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ，Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ，１９４９）；Ｈａｕｇｌａｎｄ，Ｒ．Ｐ．，Ｈａｎｄｂｏｏｋ  ｏｆ  Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ  Ｐｒｏｂｅｓ  ａｎｄ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ，６ｔｈ  Ｅｄｉｔｉｏｎ（Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｐｒｏｂｅｓ，Ｅｕｇｅｎｅ，Ｏｒｅｇ．，１９９６）；米国特許第３，９９６，３４５号及び第４，３５１，７６０号。
【０２２２】
本発明で、広範囲波長又は特定波長の蛍光をクエンチングすることができる非蛍光ブラッククエンチャー分子が利用されるということは注目すべきことである。非蛍光ブラッククエンチャー分子の例は、ＢＨＱ及びＤＡＢＣＹＬである。
【０２２３】
ＣＴＯに適用されるＦＲＥＴ標識で、レポーターは、ＦＲＥＴの供与体を含み、クエンチャーは、ＦＲＥＴの残りのパートナー（受容体）を含む。例えば、フルオレセイン染料（ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ  ｄｙｅ）は、レポーターとして利用され、ローダミン染料（ｒｈｏｄａｍｉｎｅ  ｄｙｅ）は、クエンチャーとして利用される。
【０２２４】
前記標識は、従来の方法を介してＣＴＯ又はＰＴＯ−ＮＶに連結されうる。望ましくは、前記標識は、炭素原子を含むスぺーサ（例えば、３−カーボンスぺーサ、６−カーボンスぺーサ、又は１２−カーボンスぺーサ）を介してＣＴＯ又はＰＴＯ−ＮＶに連結される。
【０２２５】
（ｉ−２）単一標識
また、本発明は、ターゲット核酸配列の存在を示すシグナルを提供する単一標識システムを用いて優れているように実施される。
【０２２６】
一具現例によれば、第１断片又はＣＴＯは、単一標識を有し、工程（ｅ）で延長二量体のメルティングは、単一標識からのシグナル変化を誘導して、工程（ｅ）でターゲットシグナルを提供する。
【０２２７】
具現例１（単一標識システム）
ＣＴＯのテンプレーティング部位は、単一蛍光標識を有しうる。ターゲット核酸配列にハイブリッド形成されたＰＴＯ−ＮＶは、切断されて第１断片を放出する。第１断片は、ＣＴＯのキャプチャリング部位にハイブリッド形成され、延長されて延長二量体を形成する。延長二量体の形成によって、前記単一蛍光標識からの蛍光強度は増加する。工程（ｅ）で前記延長二量体がメルティングされる場合、前記単一蛍光標識からの蛍光強度は減少し、これにより、ターゲットシグナルが提供されて、工程（ｅ）の延長鎖の存在を示す。
【０２２８】
一具現例によれば、前記単一標識からのシグナルレベルが延長二量体のメルティングによって変化される限り、前記単一標識は、ＣＴＯの如何なる位置にも位置しうる。
【０２２９】
一具現例によれば、前記単一標識は、ＣＴＯのテンプレーティング部位又はキャプチャリング部位に連結される。
【０２３０】
ＣＴＯのテンプレーティング部位が単一標識で標識される場合、非切断ＰＴＯ−ＮＶとＣＴＯとの間のハイブリッド形成物上の標識からのシグナル変化は誘導されない。したがって、ハイブリッド形成物は、非ターゲットシグナルを提供しない。
【０２３１】
ＣＴＯのキャプチャリング部位が単一標識で標識される場合、非切断ＰＴＯ−ＮＶとＣＴＯとの間のハイブリッド形成物は、メルティング工程で非ターゲットシグナルを提供する。このような場合、延長二量体及び前記ハイブリッド形成物間のＴｍ値の差によって延長二量体のターゲットシグナルとハイブリッド形成物の非ターゲットシグナルとを識別することができる。
【０２３２】
具現例２（単一標識システム）
ＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位は、単一蛍光標識を有しうる。ターゲット核酸配列にハイブリッド形成されたＰＴＯ−ＮＶは、切断されて単一蛍光標識のある５’−タギング部位を含む第１断片を放出する。ハイブリッド形成によって、５’−タギング部位上の単一蛍光標識から出るシグナルの強度は増加する。延長二量体が工程（ｅ）でメルティングされる場合、前記単一蛍光標識から出るシグナル強度は減少し、これにより、ターゲットシグナルが提供されて、工程（ｅ）で延長鎖の存在を示す。
【０２３３】
一具現例によれば、延長二量体のメルティングによって、前記単一標識からのシグナルレベルに変化のある限り、前記単一標識は、第１断片の如何なる位置にも位置しうる。
【０２３４】
非切断ＰＴＯ−ＮＶとＣＴＯとの間のハイブリッド形成物は、メルティング工程で非ターゲットシグナルを提供することができる。このような場合、延長二量体及び前記ハイブリッド形成物のＴｍ値の差によって延長二量体のターゲットシグナルと前記ハイブリッド形成物の非ターゲットシグナルとを識別する。
【０２３５】
本明細書で使われる単一標識は、その標識が二本鎖に存在するか、又は一本鎖に存在するかによって、異なるシグナルを提供しなければならない。前記単一標識は、蛍光標識、発光標識、化学発光標識、電気化学標識、及び金属標識を含む。望ましくは、前記単一標識は、蛍光標識を含む。
【０２３６】
本発明で使われる単一蛍光標識の種類及び望ましい結合サイトは、米国特許第７，５３７，８８６号及び第７，３４８，１４１号に開示されており、その教示事項は、本明細書に参照として含まれる。望ましくは、前記単一蛍光標識は、ＪＯＥ、ＦＡＭ、ＴＡＭＲＡ、ＲＯＸ、及びフルオレセインベースの標識を含む。標識されたヌクレオチド残基は、５’末端又は３’末端よりもオリゴヌクレオチド内の内部ヌクレオチド残基に位置することが望ましい。
【０２３７】
本発明で有用な単一蛍光標識は、前記敍述したレポーター及びクエンチャー分子についての説明を参照して説明することができる。
【０２３８】
特に、本発明が、単一標識を用いて固相で実施される場合、一般的な蛍光標識を利用でき、単一標識が二本鎖に存在するか、又は一本鎖に存在するかによって、異なる強度の蛍光シグナルを提供することができる特定蛍光標識を要求しない。固相基質から提供されるターゲットシグナルが測定される。
【０２３９】
固相基質上に固定されたＣＴＯを用いる場合、化学標識（例えば、ビオチン）又は酵素標識（例えば、アルカリホスファターゼ、ぺロキシダーゼ、β−ガラクトシダーゼ、及びβ−グルコシダーゼ）を利用できる。
【０２４０】
“第１断片及び／又はＣＴＯに連結された標識”を用いる標識システムで、非切断ＰＴＯ−ＮＶとＣＴＯとの間のハイブリッド形成物が形成される場合に、前記標識は、前記ハイブリッド形成物が工程（ｅ）から非ターゲットシグナルを提供しない範囲内に位置しうる。択一的に、非切断ＰＴＯ−ＮＶとＣＴＯとの間のハイブリッド形成物が形成される場合に、前記標識は、前記ハイブリッド形成物が工程（ｅ）から非ターゲットシグナルを提供する範囲内に位置し、前記延長二量体のＴｍ値は、非切断ＰＴＯ−ＮＶとＣＴＯとの間のハイブリッド形成物のＴｍ値よりも高い。
【０２４１】
特に、前記標識が、非切断ＰＴＯ−ＮＶとＣＴＯとの間のハイブリッド形成物が非ターゲットシグナルを提供しない範囲内に位置する場合、前記ハイブリッド形成物のＴｍ値を含んでいる区間は、ターゲット核酸配列検出のための延長二量体のＴｍ値の選択に利用される。
【０２４２】
（ｉｉ）延長二量体内に挿入された標識
本発明は、延長二量体の存在を示すターゲットシグナルを提供するために、延長反応の間に延長二量体内に挿入された標識を利用できる。
【０２４３】
たとえ第１断片又はＣＴＯが標識を有さないとしても、延長反応の間に延長二量体内に挿入された標識を用いて成功裏に延長二量体を標識させることができる。
【０２４４】
一具現例によれば、ターゲットシグナルは、延長反応の間に延長二量体内に挿入された単一標識によって提供され、前記挿入された単一標識は、延長反応の間に挿入されるヌクレオチドに連結され、工程（ｅ）での前記延長二量体のメルティングは、単一標識からのシグナル変化を誘導して、工程（ｅ）でターゲットシグナルを提供する。
【０２４５】
例えば、ターゲット核酸配列にハイブリッド形成されたＰＴＯ−ＮＶは、切断されて第１断片を放出する。前記第１断片は、固相基質上に固定化されたＣＴＯのキャプチャリング部位にハイブリッド形成され、単一蛍光標識で標識されたヌクレオチドの存在下に延長されて延長二量体を形成する。延長二量体からの蛍光シグナルは、ＣＴＯが固定化された固相基質のスパッ上で検出することができる。延長二量体がメルティングされる場合、蛍光標識を有する鎖は放出され、スパッ上では、これ以上の蛍光シグナルが検出されない。したがって、延長二量体のメルティングによって、シグナルの変化がスパッ上から提供されうる。すなわち、ターゲットシグナルが提供されて、工程（ｅ）で延長鎖の存在を示す。
【０２４６】
工程（ｅ）から提供されるターゲットシグナルは、ＣＴＯ−固定化スパッ上で蛍光強度の変化を測定して得るメルティングカーブ、メルティングパターン、又はＴｍ値を含む。
【０２４７】
一具現例によれば、延長反応の間に挿入（ｉｎｃｏｒｐｏｒａｔｅｄ）されるヌクレオチドは、ｄｄＮＴＰである。
【０２４８】
一具現例によれば、延長反応の間に挿入されるヌクレオチドは、第１非天然塩基（ｎｏｎ−ｎａｔｕｒａｌ  ｂａｓｅ）を有し、ＣＴＯは、前記第１非天然塩基に対して特異的結合親和性のある第２非天然塩基を有するヌクレオチドを有する。望ましくは、第２非天然塩基を有するヌクレオチドは、ＣＴＯのテンプレーティング部位の如何なるサイトにも位置する。
【０２４９】
本明細書で使われる用語“非天然塩基”は、アデニン（Ａ）、グアニン（Ｇ）、チミン（Ｔ）、シトシン（ｃ）、及びウラシル（Ｕ）のような天然塩基の誘導体を意味し、これらは、水素−結合塩基対を形成しうる。本明細書で使われる用語“非天然塩基”は、母化合物（ｍｏｔｈｅｒ  ｃｏｍｐｏｕｎｄ）として天然塩基と異なる塩基対パターンを有する塩基を含み、例えば、米国特許第５，４３２，２７２号、第５，９６５，３６４号、第６，００１，９８３号、及び第６，０３７，１２０号に記載されている。非天然塩基間の塩基対は、天然塩基と類似に２又は３つの水素結合を含む。また、非天然塩基間の塩基対は、特定の方式でも形成される。
【０２５０】
非天然塩基の特定の例は、塩基対の組合せで次のような塩基を含む：ｉｓｏ−Ｃ／ｉｓｏ−Ｇ、ｉｓｏ−ｄＣ／ｉｓｏ−ｄＧ、Ｋ／Ｘ、Ｈ／Ｊ、及びＭ／Ｎ（参照：米国特許第７，４２２，８５０号）。
【０２５１】
例えば、第１非天然塩基（例えば、ｉｓｏ−ｄＧ）に対して特異的結合親和性のある第２非天然塩基（例えば、ｉｓｏ−ｄＣ）を有するヌクレオチドを含むＣＴＯに第１断片がハイブリッド形成される。単一蛍光標識で標識された第１非天然塩基を有するヌクレオチドの存在下に延長が実施されて、延長二量体を形成する。延長反応で、第１非天然塩基を有するヌクレオチドは、第２非天然塩基を有するヌクレオチドの対向側のサイトに挿入される。
【０２５２】
延長二量体から出る蛍光シグナルは、固定化されたＣＴＯのある固相基質のスパッ上から検出されうる。延長二量体がメルティングされる場合、蛍光標識を有する鎖が放出され、スパッ上では、これ以上の蛍光シグナルが検出されない。したがって、シグナルの変化が延長二量体のメルティングによってスパッ上から提供されうる。すなわち、ターゲットシグナルが提供されて、工程（ｅ）で延長鎖の存在を示す。
【０２５３】
延長反応の間に延長二量体内に挿入された標識を用いる場合、前記標識は、非切断ＰＴＯ−ＮＶとＣＴＯとの間のハイブリッド形成物内に挿入されないが、これは、前記ハイブリッド形成物が延長されないためである。したがって、前記ハイブリッド形成物は、非ターゲットシグナルを提供しない。
【０２５４】
使われる単一標識の種類及び特徴は、本明細書で前述した“第１断片及び／又はＣＴＯに連結された標識”を用いる標識システムについての説明を参照して説明される。
【０２５５】
（ｉｉｉ）延長二量体内に挿入された標識及び第１断片又はＣＴＯに連結された標識
本発明は、延長反応の間に延長二量体内に挿入された標識と第１断片及び／又はＣＴＯに連結された標識との組合せを用いる標識システムを利用できる。
【０２５６】
一具現例によれば、ターゲットシグナルは、延長反応の間に延長二量体内に挿入された標識と第１断片及び／又はＣＴＯに連結された標識とによって提供され、前記挿入された標識は、前記延長反応の間に挿入されたヌクレオチドに連結され、前記２つの標識は、レポーター分子及びクエンチャー分子の相互作用的二重標識であり、工程（ｅ）で延長二量体のメルティングは、相互作用的二重標識からのシグナル変化を誘導して、工程（ｅ）でターゲットシグナルを提供する。
【０２５７】
特に、延長反応の間に挿入されたヌクレオチドは、第１非天然塩基を有し、ＣＴＯは、前記第１非天然塩基に対して特異的結合親和性のある第２非天然塩基を有するヌクレオチドを有する。
【０２５８】
例えば、レポーター又はクエンチャー分子及び第１非天然塩基（例えば、ｉｓｏ−ｄＧ）に対して特異的結合親和性のある第２非天然塩基（例えば、ｉｓｏ−ｄＣ）を有するヌクレオチドを含むＣＴＯに第１断片がハイブリッド形成される。クエンチャー又はレポーター分子で標識された第１非天然塩基を有するヌクレオチドの存在下に延長が実施されて、延長二量体が形成され、レポーター分子からのシグナルがクエンチャー分子によってクエンチングされる。延長反応で、前記第１非天然塩基を有するヌクレオチドは、前記第２非天然塩基を有するヌクレオチドの対向側のサイトに挿入される。
【０２５９】
工程（ｅ）で延長二量体がメルティングされる場合、レポーター分子及びクエンチャー分子は、互いに離隔してクエンチャー分子がレポーター分子からのシグナルをアンクエンチングし、これにより、ターゲットシグナルが提供されて、工程（ｅ）で延長鎖の存在を示す。
【０２６０】
特に、工程（ｅ）から提供されるターゲットシグナルは、相互作用的二重標識からのシグナル変化を測定して得るメルティングカーブ、メルティングパターン、又はＴｍ値を含む。
【０２６１】
ＣＴＯ上の標識サイト及び挿入される標識の挿入サイトは、メルティング工程で前記２つの標識がシグナルの変化を誘導する相互作用的二重標識として作用する範囲内で決定される。
【０２６２】
特に、ＣＴＯのテンプレーティング部位は、レポーター又はクエンチャー分子及び第２非天然塩基を有するヌクレオチドを有する。前記工程（ｄ）で延長反応は、クエンチャー又はレポーター分子及び前記ＣＴＯ内の第２非天然塩基に対して特異的結合親和性のある第１非天然塩基を有するヌクレオチドの存在下で実施される。前記工程（ｄ）で延長二量体の前記２つの非天然塩基は、塩基対を形成し、クエンチャー分子によるレポーター分子からのシグナルをクエンチングしてシグナルの変化を誘導し、これにより、ターゲットシグナルが提供される。択一的に、第１断片は、レポーター又はクエンチャー分子を有し、ＣＴＯのテンプレーティング部位は、第２非天然塩基を有するヌクレオチドを有する。前記工程（ｄ）で延長反応は、クエンチャー又はレポーター分子及び前記ＣＴＯ内の第２非天然塩基に対して特異的結合親和性のある第１非天然塩基を有するヌクレオチドの存在下で実施される。前記工程（ｄ）の延長二量体の前記２つの非天然塩基は、塩基対を形成し、クエンチングによるレポーター分子からのシグナル変化を誘導し、これにより、ターゲットシグナルが提供される。
【０２６３】
さらに他の例として、レポーター又はクエンチャー分子を含む第１断片が、第１非天然塩基（例えば、ｉｓｏ−ｄＧ）に対して特異的結合親和性のある第２非天然塩基（例えば、ｉｓｏｄＣ）を有するヌクレオチドを含むＣＴＯにハイブリッド形成される。クエンチャー又はレポーター分子で標識された第１非天然塩基を有するヌクレオチドの存在下に延長が実施されて、延長二量体が形成され、レポーター分子からのシグナルがクエンチャー分子によってクエンチングされる。延長反応で、前記第１非天然塩基を有するヌクレオチドは、前記第２非天然塩基を有するヌクレオチドの対向側のサイトに挿入される。
【０２６４】
前記工程（ｄ）で延長二量体が形成される場合、レポーター分子及びクエンチャー分子は、構造的に互いに離隔してクエンチャー分子がレポーター分子からのシグナルをアンクエンチングし、工程（ｅ）で延長二量体がメルティングされる場合、レポーター分子及びクエンチャー分子は、構造的に互いに近接してクエンチャー分子がレポーター分子からのシグナルをクエンチングし、これにより、ターゲットシグナルが提供されて、工程（ｅ）で延長鎖の存在を示す。
【０２６５】
特に、工程（ｅ）から提供されるターゲットシグナルは、相互作用的二重標識からのシグナル変化を測定して得るメルティングカーブ、メルティングパターン、又はＴｍ値を含む。
【０２６６】
ＰＴＯ−ＮＶ上の標識サイト及び挿入される標識の挿入サイトは、メルティング工程で前記２つの標識がシグナルの変化を誘導する相互作用的二重標識として作用する範囲内で決定される。
【０２６７】
延長反応の間に延長二量体内に挿入される標識を用いる場合、前記標識は、非切断ＰＴＯ−ＮＶとＣＴＯとの間のハイブリッド形成物内に挿入されないが、これは、前記ハイブリッド形成物が延長されないためである。したがって、前記ハイブリッド形成物は、メルティング工程で非ターゲットシグナルを提供しない。
【０２６８】
（ｉｖ）インターカレーティング標識
本発明は、延長二量体の存在を示すターゲットシグナルを提供するインターカレーティング標識を使うことができる。サンプル内に存在する二本鎖核酸分子が、シグナルを発生させることができるために、インターカレーティング標識は、固定化されたＣＴＯを用いる固相反応でより有用である。
【０２６９】
本発明で、有用なインターカレーティング染料の例は、ＳＹＢＲＴＭ  Ｇｒｅｅｎ  Ｉ、ＰＯ−ＰＲＯＴＭ−１、ＢＯ−ＰＲＯＴＭ−１、ＳＹＴＯＴＭ４３、ＳＹＴＯＴＭ４４、ＳＹＴＯＴＭ４５、ＳＹＴＯＸＴＭＢｌｕｅ、ＰＯＰＯＴＭ−１、ＰＯＰＯＴＭ−３、ＢＯＢＯＴＭ−１、ＢＯＢＯＴＭ−３、ＬＯ−ＰＲＯＴＭ−１、ＪＯ−ＰＲＯＴＭ−１、ＹＯ−ＰＲＯＴＭ１、ＴＯ−ＰＲＯＴＭ１、ＳＹＴＯＴＭ１１、ＳＹＴＯＴＭ１３、ＳＹＴＯＴＭ１５、ＳＹＴＯＴＭ１６、ＳＹＴＯＴＭ２０、ＳＹＴＯＴＭ２３、ＴＯＴＯＴＭ−３、ＹＯＹＯＴＭ３、ＧｅｌＳｔａｒＴＭ、及びチアゾールオレンジ（ｔｈｉａｚｏｌｅ  ｏｒａｎｇｅ）を含む。インターカレーティング染料は、二本鎖核酸分子内に特異的に挿入されてシグナルを発生させる。
【０２７０】
特定の具現例で、固相基質上に固定化されたＣＴＯのキャプチャリング部位に第１断片がハイブリッド形成される。インターカレーティング染料（例えば、ＳＹＢＲＴＭ  Ｇｒｅｅｎ）の存在下に延長を実施して、インターカレーティング染料を含む延長二量体を生成する。固定化されたＣＴＯのある固相基質のスポット上の延長二量体から出る蛍光シグナルは、インターカレーティング蛍光染料を用いて検出されうる。延長二量体がメルティングされる場合、インターカレーティング蛍光染料が放出されて、スパッ上でこれ以上の蛍光シグナルが検出されない。したがって、ターゲットシグナルが提供されて、工程（ｅ）で延長二量体の存在を示す。
【０２７１】
非切断ＰＴＯ−ＮＶとＣＴＯとの間のハイブリッド形成物は、メルティング工程で非ターゲットシグナルを提供する。このような場合、延長二量体及び前記ハイブリッド形成物のＴｍ値の差によって延長二量体のターゲットシグナルと前記ハイブリッド形成物の非ターゲットシグナルとを識別することができる。
【０２７２】
特に、工程（ｅ）から提供されるターゲットシグナルは、工程（ｅ）から発生する蛍光シグナルの変化を測定して得るメルティングカーブ、メルティングパターン、又はＴｍ値を含む。
【０２７３】
既定の温度で延長二量体の検出
一具現例によれば、工程（ｅ）での検出は、延長鎖とＣＴＯとの間の延長二量体からのシグナルを用いた既定の温度での検出を含むＰＴＯＣＥ分析によって実施される（参照：国際公開第２０１２／０９６５２３号）。
【０２７４】
一具現例によれば、第１断片の延長鎖及びＣＴＯは、前記工程（ｄ）で延長二量体を形成し、前記延長二量体は、（ｉ）前記第１断片の配列及び／又は長さ、（ｉｉ）前記ＣＴＯの配列及び／又は長さ、又は（ｉｉｉ）前記第１断片の配列及び／又は長さと前記ＣＴＯの配列及び／又は長さによって調節可能なＴｍ値を有し、前記延長二量体は、（ｉ）第１断片及び／又はＣＴＯに連結された少なくとも１つの標識、（ｉｉ）延長反応の間に前記延長二量体内に挿入される１つの標識、（ｉｉｉ）第１断片及び／又はＣＴＯに連結された少なくとも１つの標識及び延長反応の間に前記延長二量体内に挿入される１つの標識、又は（ｉｖ）インターカレーティング標識によるターゲットシグナルを提供し、前記延長鎖の存在は、延長二量体の二本鎖の保持に十分な既定の温度で延長二量体からターゲットシグナルを測定することで検出される。
【０２７５】
延長二量体は、その自体が延長二量体の形成と非形成とを識別することができるシグナルを提供し、前記シグナルは、延長二量体が二本鎖の形態を保持する既定の温度から検出され、これにより、ターゲット核酸配列の存在が決定される。
【０２７６】
本発明は、ターゲット核酸配列の存在を検出するために、延長二量体の形成と関連したターゲットシグナルを測定することである。
【０２７７】
本発明で、延長二量体は、標識を有し、これにより、前記延長二量体は、ターゲットシグナルを提供する。
【０２７８】
本発明の方法で、メルティング又はハイブリッド形成分析による延長二量体の検出のために使われる標識システムは、ターゲットシグナルを提供することができる。
【０２７９】
延長二量体から出るターゲットシグナルの基本的な作動原理は、次の通りである：（ｉ）第１断片の延長は、標識からのシグナル変化を誘導してターゲットシグナルを提供し、又は（ｉｉ）第１断片及びＣＴＯのハイブリッド形成は、標識からのシグナル変化を誘導してターゲットシグナルを提供し、前記延長二量体は、ターゲットシグナルを保持する。
【０２８０】
例えば、固定化されたＣＴＯを用いる場合、本発明は、より効果的な方式で多数のターゲット核酸配列を検出する。固定化されたＣＴＯのテンプレーティング部位は、レポーター分子及びクエンチャー分子を有する。レポーター分子及びクエンチャー分子は、構造的に互いに近接してクエンチャー分子がレポーター分子からのシグナルをクエンチングする。第１断片がＣＴＯのキャプチャリング部位にハイブリッド形成される場合、クエンチャー分子は、レポーター分子からのシグナルをクエンチングする。前記延長二量体の形成によって、レポーター分子及びクエンチャー分子は、構造的に互いに離隔してクエンチャー分子はレポーター分子からのシグナルをアンクエンチングする。ターゲットシグナルは、延長工程から提供される。
【０２８１】
特定の具現例で、ＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位は、レポーター分子及びクエンチャー分子を有する。レポーター分子及びクエンチャー分子は、構造的に互いに近接してクエンチャー分子がレポーター分子からのシグナルをクエンチングする。ターゲット核酸配列にハイブリッド形成されたＰＴＯ−ＮＶは、切断されて、レポーター分子及びクエンチャー分子を有する５’−タギング部位を含む第１断片を放出し、前記第１断片は、ＣＴＯのキャプチャリング部位にハイブリッド形成される。前記ハイブリッド形成によって、レポーター分子及びクエンチャー分子は、構造的に互いに離隔してクエンチャー分子はレポーター分子からのシグナルをアンクエンチングする。ターゲットシグナルは、断片ハイブリッド形成工程から提供され、延長二量体は、ターゲットシグナルを保持する。
【０２８２】
ＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位がレポーター分子及びクエンチャー分子を有する場合、非切断ＰＴＯ−ＮＶとＣＴＯとの間のハイブリッド形成物は、非ターゲットシグナルを提供し、前記非ターゲットシグナルを除去するために、前記ハイブリッド形成物を解離させることが必要である。したがって、ターゲットシグナルを測定する温度は、前記ハイブリッド形成物が解離される温度で決定される。一具現例によれば、前記温度は、ハイブリッド形成物のＴｍ値を考慮して追加決定される。
【０２８３】
一具現例によれば、前記ハイブリッド形成物が部分的に解離される温度で延長二量体が検出されうる。一具現例によれば、前記ハイブリッド形成物が十分に解離されて非ターゲットシグナルを除去する温度で延長二量体が検出されうる。
【０２８４】
一具現例によれば、既定の温度は、ハイブリッド形成物のＴｍ値から１０℃差し引いた温度よりも高く、望ましくは、ハイブリッド形成物のＴｍ値から５℃差し引いた温度よりも高く、より望ましくは、ハイブリッド形成物のＴｍ値よりも高い温度であり、さらに望ましくは、ハイブリッド形成物のＴｍ値から５℃加算した温度よりも高い。
【０２８５】
シグナリングオリゴヌクレオチドを用いた検出
一具現例によれば、第１断片の延長鎖は、ＰＣＴ／ＫＲ２０１２／００５２８１に開示されたシグナリングオリゴヌクレオチド（Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ  Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ：ＳＯ）を用いて検出されうる。
【０２８６】
延長鎖にハイブリッド形成されるＳＯは、前記延長鎖に相補的な配列を含む。一具現例によれば、前記ＳＯは、延長配列に相補的な配列を含む。
【０２８７】
一具現例によれば、前記ＳＯの少なくとも１つの部位は、延長配列に相補的な配列を含む。延長配列に相補的な配列を含むＳＯの部位は、少なくとも１、２、３、４、５、又は１０つのヌクレオチドの長さである。
【０２８８】
前記ＳＯの一部位が新たに合成された延長配列の一部位に相補的な配列を含むようにデザインされた場合、ＳＯと延長鎖のハイブリッド形成結果物のＴｍ値は、ＳＯと非切断ＰＴＯ−ＮＶとのハイブリッド形成結果物のＴｍ値と異なる。Ｔｍ値の差は、前記２つのハイブリッド形成結果物からのシグナルを識別可能にする。例えば、リアルタイム検出でＴｍ値を考慮して検出温度を調節することによって、又はメルティングカーブ分析でメルティングピークによって非ターゲットシグナルを排除することができる。
【０２８９】
前記ＳＯは、その配列全体として延長配列に相補的な配列を含みうる。択一的に、前記ＳＯは、延長配列に相補的な配列を有する部位を含みうる。例えば、前記ＳＯの一部位は、延長鎖に相補的な配列を含み、他の部位は、断片に相補的な配列を含みうる。望ましくは、前記ＳＯは、その配列全体として延長配列に相補的な配列を含む。
【０２９０】
前記ＳＯは、如何なる長さも有しうる。例えば、５〜１００ヌクレオチド、５〜８０ヌクレオチド、５〜６０ヌクレオチド、５〜４０ヌクレオチド、５〜２０ヌクレオチド、５〜１０ヌクレオチド、１０〜１００ヌクレオチド、１０〜８０ヌクレオチド、１０〜６０ヌクレオチド、１０〜４０ヌクレオチド、１０〜３０ヌクレオチド、１０〜２０ヌクレオチド、１５〜１００ヌクレオチド、１５〜８０ヌクレオチド、１５〜６０ヌクレオチド、１５〜４０ヌクレオチド、１５〜３０ヌクレオチド、１５〜２０ヌクレオチド、２０〜１００ヌクレオチド、２０〜８０ヌクレオチド、２０〜６０ヌクレオチド、２０〜４０ヌクレオチド、又は２０〜３０ヌクレオチドの長さを有しうる。
【０２９１】
前記ＳＯは、ヘアピン構造を有しうる。
【０２９２】
前記ＳＯの３’末端は、その延長が防止されるようにブロッキングされる。択一的に、ブロッキングされていない３’−ＯＨ基を有するＳＯは延長されうる。
【０２９３】
一具現例によれば、前記第１断片の延長鎖は、シグナリングオリゴヌクレオチド（ＳＯ）を用いて検出され、前記ＳＯは、前記延長鎖に相補的な配列及び少なくとも１つの標識を含み、前記ＳＯは、延長鎖との結合（ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ）又は解離（ｄｉｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ）によって検出可能なシグナルを提供する。
【０２９４】
用語“延長鎖との結合又は解離”は、用語“延長鎖とのハイブリッド形成又は変性”と同じ意味を有する。
【０２９５】
一具現例によれば、ターゲット核酸配列の存在を示す検出可能なシグナルは、（ｉ）ＳＯに連結された標識、（ｉｉ）ＳＯに連結された標識及びＰＴＯ−ＮＶの断片に連結された標識の組合せ、（ｉｉｉ）ＳＯに連結された標識及び前記工程（ｄ）の延長反応の間に延長鎖に挿入される標識の組合せ、又は（ｉｖ）ＳＯに連結された標識及びインターカレーティング染料（ｉｎｔｅｒｃａｌａｔｉｎｇ  ｄｙｅ）の組合せによって提供される。
【０２９６】
簡略に、本発明に有用な標識システムは、次のように説明される：
【０２９７】
（ｉ）ＳＯに連結された単一標識
本発明は、単一標識を有したＳＯを用いてターゲットヌクレオチド変異の存在を示す延長鎖の形成に対するシグナルを提供することができる。一具現例によれば、前記ＳＯは、単一標識で標識され、工程（ｅ）で前記ＳＯと延長鎖との間のハイブリッド形成は、単一標識からのシグナル変化を誘導して検出可能なシグナルを提供する。
【０２９８】
特定の具現例で、本明細書で使われた単一標識は、その標識が二本鎖に存在するか、又は一本鎖に存在するかによって、異なるシグナルを提供しなければならない。
【０２９９】
（ｉｉ）ＳＯに連結された鎖内の相互作用的二重標識
一具現例によれば、ＳＯは、レポーター分子及びクエンチャー分子を含む相互作用的二重標識で標識され、工程（ｅ）で前記ＳＯと延長鎖との間のハイブリッド形成は、相互作用的二重標識からのシグナル変化を誘導して検出可能なシグナルを提供する（参照：図６）。前記ＳＯのハイブリッド形成以前に、前記ＳＯ上のレポーター分子及びクエンチャー分子は、互いに構造的に近接してクエンチャー分子がレポーター分子からのシグナルをクエンチングする。ハイブリッド形成になれば、前記ＳＯ上のレポーター分子及びクエンチャー分子は、構造的に離隔してクエンチャー分子がレポーター分子からのシグナルをアンクエンチング（ｕｎｑｕｅｎｃｈｉｎｇ）し、これは、相互作用的二重標識からのシグナル変化を引き起こす。
【０３００】
相互作用的二重標識を有するＳＯを用いる本発明の一具現例によれば、ターゲット核酸配列にハイブリッド形成されたＰＴＯ−ＮＶから放出された第１断片は、ＣＴＯのキャプチャリング部位にハイブリッド形成され、延長されて延長鎖を形成する。前記延長鎖がＳＯにハイブリッド形成されれば、ＳＯ上のレポーター分子及びクエンチャー分子は、構造的に離隔してクエンチャー分子がレポーター分子からのシグナルをアンクエンチングして、相互作用的二重標識からのシグナル変化が起こるようにする（例えば、レポーター分子からのシグナル増加）。ハイブリッド形成に関与していないＳＯ上のレポーター分子及びクエンチャー分子は、互いに構造的に近接してクエンチャー分子がレポーター分子からのシグナルをクエンチングする。
【０３０１】
一具現例によれば、レポーター分子及びクエンチャー分子は、ＳＯの５’末端（又は、３’末端）及び３’末端（又は、５’末端）に位置する。一具現例によれば、前記ＳＯ上のレポーター分子及びクエンチャー分子のうち１つは、ＳＯの５’末端に位置するか、又は５’末端から１〜５ヌクレオチド離隔して位置し、他の１つは、ＳＯの形態によってレポーター分子からのシグナルをクエンチング及びアンクエンチングするように位置する。
【０３０２】
一具現例によれば、前記ＳＯ上のレポーター分子及びクエンチャー分子のうち１つは、ＳＯの３’末端に位置するか、又は３’末端から１〜５ヌクレオチド離隔して位置し、他の１つは、ＳＯの形態によってレポーター分子からのシグナルをクエンチング及びアンクエンチングするように位置する。
【０３０３】
（ｉｉｉ）鎖内の相互作用的二重標識
鎖内の相互作用的二重標識を使う具現例によれば、延長鎖は、レポーター分子及びクエンチャー分子を含む相互作用的二重標識のうち１つを有し、ＳＯは、相互作用的二重標識のうち他の１つを有する。
【０３０４】
鎖内の相互作用的二重標識を使う具現例は、次の３種の方法によって実施される：
【０３０５】
第１方法によれば、前記ＳＯは、相互作用的二重標識のレポーター分子とクエンチャー分子のうち１つの標識を含み、ＰＴＯ−ＮＶの断片は、レポーター分子とクエンチャー分子のうち他の１つの標識を含み、延長鎖は、前記ＰＴＯ−ＮＶの断片で起源した標識を含み、前記ＳＯと延長鎖との間のハイブリッド形成は、相互作用的二重標識から提供されるシグナルの変化を誘導して検出可能なシグナルを提供する。
【０３０６】
前記ＳＯに連結された標識は、レポーター分子又はクエンチャー分子のうち１つであり、前記断片に連結された標識は、クエンチャー分子又はレポーター分子のうち１つであり得る。
【０３０７】
ＰＴＯ−ＮＶ上の標識サイトは、ＰＴＯ−ＮＶの切断サイトを考慮して決定され、これにより、ＰＴＯ−ＮＶ断片が標識を有しうる。
【０３０８】
ＰＴＯ−ＮＶ断片がＳＯとハイブリッド形成される場合、ＳＯに連結された標識と相互作用してシグナル変化を誘導することができる限り、前記標識は、ＰＴＯ−ＮＶ断片の如何なるサイト（例えば、ＰＴＯ−ＮＶのタッキング部位）にも連結されうる。ＳＯがＰＴＯ−ＮＶ断片とハイブリッド形成される場合、ＰＴＯ−ＮＶ断片に連結された標識と相互作用してシグナル変化を誘導することができる限り、前記標識は、ＳＯの如何なるサイト（例えば、ＳＯの５’末端）にも連結されうる。
【０３０９】
第２方法によれば、前記ＳＯは、相互作用的二重標識のレポーター分子とクエンチャー分子のうち１つの標識を含み、ＣＴＯのテンプレーティング部位は、第１非天然塩基を有するヌクレオチドを含み、前記工程（ｄ）の延長反応は、前記第１非天然塩基に特異的結合親和性のある第２非天然塩基及びレポーター分子とクエンチャー分子のうち他の１つをいずれも有するヌクレオチドの存在下で実施され、これにより、標識は、延長鎖内に挿入され、前記ＳＯと延長鎖との間のハイブリッド形成は、相互作用的二重標識から提供されるシグナルの変化を誘導して検出可能なシグナルを提供する。
【０３１０】
望ましくは、延長反応の間に挿入された標識は、ヌクレオチドに連結され、より望ましくは、ヌクレオシドトリホスフェートに連結される。望ましくは、前記標識は、ヌクレオシドトリホスフェートの塩基に結合される。
【０３１１】
前記断片は、非天然塩基（例えば、ｉｓｏ−ｄＧ）に対して特異的結合親和性のある非天然塩基（例えば、ｉｓｏ−ｄＣ）を有するヌクレオチドを含むＣＴＯにハイブリッド形成される。延長は、クエンチャーで標識されたｉｓｏ−ｄＧを有するヌクレオチドの存在下で実施されて延長鎖を形成する。前記延長反応で、クエンチャーと共にｉｓｏ−ｄＧを有するヌクレオチドが、ｉｓｏ−ｄＣを有するヌクレオチドの対向側のサイトに挿入される。クエンチャー−ｉｓｏ−ｄＧを含む延長鎖とレポーターで標識されたＳＯとの間のハイブリッド形成が起こった後、延長鎖上のクエンチャーがＳＯ上のレポーターから提供されるシグナルをクエンチングしてシグナルの変化を誘導し、検出可能なシグナルを提供する。
【０３１２】
相互作用的二重標識のうち１つは、ＳＯに連結され、他の１つは、延長反応の間に反応溶液から延長鎖内に挿入される。
【０３１３】
前記ＳＯに連結された標識は、レポーター分子又はクエンチャー分子のうち１つであり、延長鎖に挿入された標識は、クエンチャー分子又はレポーター分子のうち１つであり得る。
【０３１４】
ＳＯとハイブリッド形成されながら、ＳＯに連結された標識と相互作用してシグナル変化を誘導することができる限り、延長鎖内に挿入される標識は、延長鎖の如何なるサイト（例えば、延長鎖の３’末端）にも連結されうる。延長鎖とハイブリッド形成されながら、延長鎖内に挿入された標識と相互作用してシグナル変化を誘導することができる限り、前記標識は、ＳＯの如何なるサイト（例えば、ＳＯの５’末端）にも連結されうる。
【０３１５】
第３方法によれば、前記ＳＯは、相互作用的二重標識のレポーター分子とクエンチャー分子のうち１つの標識を含み、前記工程（ｄ）の延長反応は、レポーター分子とクエンチャー分子のうち他の１つを有するヌクレオチドの存在下で実施され、これにより、標識が延長鎖内に挿入され、前記ＳＯと延長鎖との間のハイブリッド形成は、相互作用的二重標識から提供されるシグナルの変化を誘導して検出可能なシグナルを提供する。
【０３１６】
ＳＯに連結された標識は、レポーター分子又はクエンチャー分子のうち１つ（望ましくは、レポーター分子）であり、延長鎖内に挿入された標識は、クエンチャー分子又はレポーター分子のうち１つ（望ましくは、クエンチャー分子）であり得る。
【０３１７】
（ｉｖ）２つのＳＯを用いた相互作用的二重標識
２つのＳＯを用いる相互作用的二重標識の具現例で、本発明の方法は、延長鎖に相補的な配列を含む追加的なＳＯを利用し、前記２つのＳＯは、近接した方式で延長鎖にハイブリッド形成され、前記２つのＳＯは、それぞれ相互作用的二重標識のレポーター分子及びクエンチャー分子のうち１つの標識を含み、前記２つのＳＯと延長鎖との間のハイブリッド形成は、相互作用的二重標識から提供されるシグナルの変化を誘導して検出可能なシグナルを提供する。
【０３１８】
特に、前記２つのＳＯのうち少なくとも１つは、延長反応で新たに延長された配列にハイブリッド形成される部位を含む。
【０３１９】
前記２つのＳＯを用いる相互作用的二重標識の具現例を実施する基本的な作動原理は、次の通りである：ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列にハイブリッド形成されたＰＴＯ−ＮＶから放出された第１断片が、ＣＴＯのキャプチャリング部位にハイブリッド形成され、延長されて延長鎖を形成する。以後に、２つのＳＯが延長鎖にハイブリッド形成される。前記ハイブリッド形成で、前記２つのＳＯは、近接して延長鎖とハイブリッド形成されるので、前記２つのＳＯ上のレポーター分子及びクエンチャー分子は、互いに近接して、クエンチャー分子がレポーター分子から提供されるシグナルをクエンチングし、結果的に、相互作用的二重標識から提供されるシグナルの変化（例えば、レポーター分子から提供されるシグナルの増加）を招く。前記ハイブリッド形成に関与していない２つのＳＯ上のレポーター分子及びクエンチャー分子は、互いに離隔してレポーター分子からシグナルを生成する。
【０３２０】
一具現例よれば、２つのＳＯと延長鎖のハイブリッド形成でクエンチャー分子がレポーター分子からのシグナルをクエンチングする限り、前記２つのＳＯは、延長鎖の如何なるサイトにもハイブリッド形成される。望ましくは、前記２つのＳＯは、すぐ近接した方式で位置するか、又は互いに１〜５ヌクレオチド離隔して位置する。
【０３２１】
一具現例によれば、前記２つのＳＯが延長鎖と近接してハイブリッド形成される場合、クエンチャー分子がレポーター分子からのシグナルをクエンチングする限り、レポーター分子及びクエンチャー分子は、２つのＳＯの如何なるサイトにも連結されうる。例えば、レポーター分子又はクエンチャー分子は、１つのＳＯの５’末端に連結されるか、又はその５’末端から１〜５ヌクレオチド離隔して連結され、クエンチャー分子又はレポーター分子は、他の１つのＳＯの３’末端に連結されるか、又はその３’末端から１〜５ヌクレオチド離隔して連結される。
【０３２２】
（ｖ）インターカレーティング染料を用いたＦＲＥＴ標識
本発明によれば、ＦＲＥＴシグナリングは、インターカレーティング染料を用いて達成されうる。
【０３２３】
一具現例によれば、ＳＯは、ＦＲＥＴの受容体を含み、工程（ｅ）でハイブリッド形成は、インターカレーティング染料の存在下で実施され、前記ＳＯと延長鎖との間のハイブリッド形成は、ＳＯの前記受容体から提供されるシグナルの変化を誘導して検出可能なシグナルを提供する。
【０３２４】
インターカレーティング染料を用いるＦＲＥＴ標識の具現例を実施する基本的な作動原理は、次の通りである：ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列にハイブリッド形成されたＰＴＯ−ＮＶから放出された第１断片は、ＣＴＯのキャプチャリング部位にハイブリッド形成され、延長されて延長鎖を形成する。以後に、受容体で標識されたＳＯは、前記延長鎖にハイブリッド形成されて二本鎖核酸分子を形成した後、インターカレーティング染料は、前記二本鎖核酸分子に結合される。供与体の励起（ｅｘｃｉｔａｔｉｏｎ）のための光（ｉｌｌｕｍｉｎａｔｉｏｎ）によって供与体として役割を行うインターカレーティング染料から受容体にエネルギー転移が起こり、これは、受容体から提供されるシグナルの変化を誘導して検出可能なシグナルを提供する。
【０３２５】
一具現例によれば、ＳＯに連結された受容体は、上述したように、多様な単一蛍光標識を含むが、これに限定されるものではない。
【０３２６】
本発明で有用なＳＯは、ハイブリッド形成に依存的なシグナルを提供することができるあらゆるプローブ、例えば、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ｂｅａｃｏｎＴＭ（米国特許第５，９２５，５１７号）、ＨｙｂｅａｃｏｎｓＴＭ（Ｄ．Ｊ．Ｆｒｅｎｃｈら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  ａｎｄ  Ｃｅｌｌｕｌａｒ  Ｐｒｏｂｅｓ（２００１）１３，３６３−３７４、及び米国特許第７，３４８，１４１号）、二重標識された、自己クエンチングプローブ（米国特許第５，８７６，９３０号）、ＬＵＸＴＭ（Ｉ．Ａ．Ｎａｚａｒｅｎｋｏら、Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ  ２００２，３０：２０８９−２０９５．及び米国特許第７，５３７，８８６号）及びハイブリッド形成プローブ（Ｂｅｒｎａｒｄ  ＰＳら、Ｃｌｉｎ  Ｃｈｅｍ  ２０００，４６，１４７−１４８及びＤｅｅｐｔｉ  Ｐａｒａｓｈａｒら、Ｉｎｄｉａｎ  Ｊ  Ｍｅｄ  Ｒｅｓ  １２４，ｒｅｖｉｅｗ  ａｒｔｉｃｌｅ  Ｏｃｔｏｂｅｒ  ２００６，３８５−３９８）を含む。
【０３２７】
一具現例によれば、ＳＯを用いた検出は、リアルタイムに検出可能なシグナルを提供する標識を使ってリアルタイム方式で実施される。
【０３２８】
択一的に、本発明で使われた標識は、ハイブリッド形成結果物のメルティングの間に、又はハイブリッド形成結果物のメルティング及びハイブリッド形成の間に検出可能なシグナルを提供することができるために、ＳＯを用いた検出は、メルティング分析又はハイブリッド形成分析によって実施される。
【０３２９】
一具現例によれば、ＰＴＯ−ＮＶ断片とプライマー対を形成するプライマーを用いて延長鎖をさらに増幅することができる。
【０３３０】
一具現例によれば、ＳＯは、その延長が防止されるように３’末端がブロッキングされる。
【０３３１】
ハイブリッド形成オリゴヌクレオチドを用いた検出
一具現例によれば、第１断片の延長鎖は、ＨＯ（ｈｙｂｒｉｄｉｚｉｎｇ  ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ）を用いて検出され、前記ＨＯは、ＣＴＯに相補的なハイブリッド形成ヌクレオチド配列及び少なくとも１つの標識を含み、前記第１断片の延長は、５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素によるＨＯの切断を誘導して、前記標識から検出可能なシグナルを提供する。
【０３３２】
一具現例によれば、前記ＨＯは、ＣＴＯ上の第１断片のダウンストリームに位置する。
【０３３３】
一具現例によれば、前記ＨＯは、ＣＴＯのテンプレーティング部位に相補的なハイブリッド形成ヌクレオチド配列を含む。
【０３３４】
一具現例によれば、前記断片の延長のために使われた鋳型−依存的核酸ポリメラーゼは、５’ヌクレアーゼ活性を有する。
【０３３５】
前記ＨＯの長さは、多様であり得る。例えば、ＨＯは、５〜１００ヌクレオチド、５〜８０ヌクレオチド、５〜６０ヌクレオチド、５〜４０ヌクレオチド、５〜２０ヌクレオチド、５〜１０ヌクレオチド、１０〜１００ヌクレオチド、１０〜８０ヌクレオチド、１０〜６０ヌクレオチド、１０〜４０ヌクレオチド、１０〜３０ヌクレオチド、１０〜２０ヌクレオチド、１５〜１００ヌクレオチド、１５〜８０ヌクレオチド、１５〜６０ヌクレオチド、１５〜４０ヌクレオチド、１５〜３０ヌクレオチド、１５〜２０ヌクレオチド、２０〜１００ヌクレオチド、２０〜８０ヌクレオチド、２０〜６０ヌクレオチド、２０〜４０ヌクレオチド、又は２０〜３０ヌクレオチドの長さである。
【０３３６】
本発明の一具現例によれば、ＨＯは、その延長が防止されるように３’末端がブロッキングされる。
【０３３７】
簡略に、本発明に有用な標識システムは、次のように説明される：
【０３３８】
（ｉ）ＨＯに連結された単一標識
本発明は、単一標識のあるＨＯを用いてターゲットヌクレオチド変異の存在を示す延長鎖の形成に対するシグナルを提供することができる。
【０３３９】
一具現例によれば、本明細書で使われた単一標識は、その標識が二本鎖に存在するか、又は一本鎖（例えば、ＨＯ及びＨＯの断片）に存在するかによって、異なるシグナルを提供しなければならない。
【０３４０】
一具現例によれば、ＨＯとＣＴＯとの間のハイブリッド形成が可能な温度でシグナルを検出することが必要である。
【０３４１】
（ｉｉ）ＨＯに連結された相互作用的二重標識
一具現例によれば、検出可能なシグナルは、ＨＯに連結された相互作用的二重標識によって提供される。
【０３４２】
図７で図式化したように、ＰＴＯ−ＮＶから放出された第１断片は、ＣＴＯのキャプチャリング部位にハイブリッド形成され、レポーター分子及びクエンチャー分子を含む相互作用的二重標識で標識されたＨＯは、ＣＴＯのテンプレーティング部位にハイブリッド形成される。前記第１断片の延長が、前記ＨＯの切断を誘導してレポーター分子をクエンチャー分子から分離させ、これにより、延長鎖の存在を示すシグナルが提供される。
【０３４３】
このような具現例で、二重標識−連結されたヌクレオチドが互いに相対的に近接する場合、ＨＯ切断前と切断後との間のシグナル変化をシグナル検出のために利用できる。
【０３４４】
二重標識−連結されたヌクレオチドが互いに相対的に距離が遠い場合、ＨＯとＣＴＯとの間のハイブリッド形成は、相互作用的二重標識の構造的離隔を誘導してＨＯが切断されない場合にも、レポーター分子からのシグナルをアンクエンチングし、これにより、シグナルの変化を提供する。このような場合、ＨＯの切断された断片からのシグナルは、ＨＯとＣＴＯとの間のハイブリッド形成を防止することができるより高い温度（例えば、９５℃）から検出されうる。
【０３４５】
一具現例によれば、切断されたＨＯ及び非切断されたＨＯが識別されるシグナルを提供することができる限り、レポーター分子及びクエンチャー分子は、ＨＯの如何なるサイトにも位置しうる。
【０３４６】
特定の具現例で、レポーター分子及びクエンチャー分子は、ＨＯの両末端にそれぞれ位置する。
【０３４７】
（ｉｉｉ）ＨＯ及びＣＴＯに連結された相互作用的二重標識
一具現例によれば、１つは、ＨＯに連結され、他の１つは、ＣＴＯに連結されたレポーター分子及びクエンチャー分子を含む相互作用的二重標識によって検出可能なシグナルが提供される。
【０３４８】
特定の具現例で、ＨＯがＣＴＯにハイブリッド形成される場合、レポーター分子からのシグナルがクエンチャー分子によってクエンチングされるように、レポーター分子及びクエンチャー分子がＨＯ及びＣＴＯ上に位置する。第１断片の延長によって誘導されたＨＯの切断は、ＣＴＯからＨＯを放出させ、レポーター分子をクエンチャー分子から離隔させ、クエンチャー分子がレポーター分子からのシグナルをアンクエンチングさせ、これにより、延長鎖の存在を示すシグナルを提供する。
【０３４９】
一具現例によれば、ＨＯとＣＴＯとの間のハイブリッド形成が可能な温度でシグナルを検出することが必要である。
【０３５０】
一具現例によれば、前記ＨＯは、ヘアピン構造を有するようにデザインされうる。
【０３５１】
特定の具現例で、レポーター分子及びクエンチャー分子のうち１つは、ＨＯの３’末端に連結され、他の１つは、ＣＴＯの５’末端に連結される。
【０３５２】
一具現例によれば、２つのＨＯを使った相互作用的二重標識のような標識システムを、ＨＯを用いる本発明の方法に利用できる。切断されたＨＯ及び非切断されたＨＯが識別されるシグナルを提供することができる限り、相互作用的二重標識は、２つのＨＯの如何なるサイトにも位置しうる。標識の種類及び位置は、前記ＳＯの説明を参考にして説明される。
【０３５３】
一具現例によれば、インターカレーティング染料を使ったＦＲＥＴのような標識システムを、ＨＯを用いる本発明の方法に利用できる。切断されたＨＯ及び非切断されたＨＯが、インターカレーティング染料の存在下で識別されるシグナルを提供することができる限り、ＦＲＥＴ標識は、ＨＯの如何なるサイトにも位置しうる。標識の種類及び位置は、前記ＳＯの説明を参考にして説明される。
【０３５４】
延長鎖のサイズ又は配列による検出
一具現例によれば、第１断片の延長鎖は、延長鎖のサイズ又は配列に基づいて検出されうる。例えば、延長鎖は、電気泳動又は質量分析（例えば、電子衝撃（Ｅｌｅｃｔｒｏｎ  Ｉｍｐａｃｔ；ＥＩ）、化学的イオン化（Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｉｏｎｉｚａｔｉｏｎ；ＣＩ）、場脱着（Ｆｉｅｌｄ  Ｄｅｓｏｒｐｔｉｏｎ；ＦＤ）、２５２Ｃｆ−プラズマ脱着（２５２Ｃｆ−Ｐｌａｓｍａ  Ｄｅｓｏｒｐｔｉｏｎ；ＰＤ）、脱着化学的イオン化（Ｄｅｓｏｒｐｔｉｏｎ  Ｃｈｅｍｉｃａｌ  Ｉｏｎｉｚａｔｉｏｎ；ＤＣＩ）、二重イオン質量分析（Ｓｅｃｏｎｄａｒｙ  Ｉｏｎ  Ｍａｓｓ  Ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ；ＳＩＭＳ）、高速原子衝撃（Ｆａｓｔ  Ａｔｏｍ  Ｂｏｍｂａｒｄｍｅｎｔ；ＦＡＢ）、電子噴霧イオン化（Ｅｌｅｃｔｒｏｓｐｒａｙ  Ｉｏｎｉｚａｔｉｏｎ；ＥＳＩ）、マトリックス補助レーザ脱着イオン化（Ｍａｔｒｉｘ−Ａｓｓｉｓｔｅｄ  Ｌａｓｅｒ  Ｄｅｓｏｒｐｔｉｏｎ  Ｉｏｎｉｚａｔｉｏｎ；ＭＡＬＤＩ）、及び二重質量分析（Ｔａｎｄｅｍ  Ｍａｓｓ  Ｓｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙ））を用いて検出されうる。
【０３５５】
ＰＴＯ−ＮＶ及びＣＴＯは、天然ｄＮＭＰｓで構成することができる。択一的に、ＰＴＯ−ＮＶ及びＣＴＯは、修飾ヌクレオチド又は非天然ヌクレオチド、例えば、ＰＮＡ（Ｐｅｐｔｉｄｅ  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ、国際公開第９２／２０７０２号参照）及びＬＮＡ（Ｌｏｃｋｅｄ  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄ、国際公開第９８／２２４８９号、国際公開第９８／３９３５２号、及び国際公開第９９／１４２２６号参照）を含みうる。ＰＴＯ−ＮＶ及びＣＴＯは、デオキシイノシン、イノシン、１−（２’−デオキシ−β−Ｄ−リボフラノシル）−３−ニトロピロール、及び５−ニトロインドールのようなユニバーサル塩基を含みうる。用語“ユニバーサル塩基（ｕｎｉｖｅｒｓａｌ  ｂａｓｅ）”は、それぞれの天然ＤＮＡ／ＲＮＡ塩基とほぼ識別なしに塩基対を形成できることを意味する。
【０３５６】
一具現例によれば、前記方法は、前記工程（ａ）〜（ｅ）の全部又は一部を繰り返して実施する反復サイクルをさらに含み、前記反復サイクルの間に変性工程を含む。前記反応反復は、ターゲット核酸配列の増幅を伴う。望ましくは、前記増幅は、米国特許第４，６８３，１９５号、第４，６８３，２０２号、及び第４，８００，１５９号に開示されたＰＣＲ（Ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ  Ｃｈａｉｎ  Ｒｅａｃｔｉｏｎ）によって実施する。
【０３５７】
一具現例によれば、前記方法は、前記工程（ａ）〜（ｂ）、（ａ）〜（ｄ）、又は（ａ）〜（ｅ）を繰り返す反復サイクルをさらに含み、前記反復サイクルの間に変性工程を含む工程をさらに含む。例えば、前記方法は、反復サイクルの間に変性工程を含み、前記工程（ａ）〜（ｂ）、（ａ）〜（ｄ）、又は（ａ）〜（ｅ）を数サイクル、例えば、２〜８０サイクル、２〜５０サイクル、２〜４０サイクル、１０〜８０サイクル、１０〜５０サイクル、１０〜４０サイクル、２０〜８０サイクル、２０〜５０サイクル、２０〜４０サイクル、３０〜６０サイクル、又は４０〜６０サイクルの間に繰り返した後、前記工程（ｅ）を実施することで実施される。例えば、また、前記方法は、反復サイクルの間に変性工程を含み、前記工程（ａ）〜（ｂ）を数サイクル、例えば、２〜８０サイクル、２〜５０サイクル、２〜４０サイクル、１０〜８０サイクル、１０〜５０サイクル、１０〜４０サイクル、２０〜８０サイクル、２０〜５０サイクル、２０〜４０サイクル、３０〜６０サイクル、又は４０〜６０サイクルの間に繰り返した後、前記工程（ｃ）〜（ｅ）を実施することで実施される。
【０３５８】
前記変性は、熱、アルカリ、ホルムアミド、ウレア、及びグリコール酸処理、酵素的方法（例、ヘリカーゼ作用）及び結合タンパク質を含む従来の技術を介して実施することができるが、これらに限定されるものではない。例えば、メルティングは、８０〜１０５℃の温度範囲で加熱して達成されうる。このような処理を果たすための一般的な方法は、文献［Ｊｏｓｅｐｈ  Ｓａｍｂｒｏｏｋら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ，Ｎ．Ｙ．（２００１）］に開示されている。
【０３５９】
一具現例によれば、前記工程（ａ）〜（ｅ）は、１つの反応容器又は個別反応容器で実施する。例えば、前記工程（ａ）〜（ｂ）、（ｃ）〜（ｄ）、又は（ｅ）を個別反応容器で実施することができる。
【０３６０】
一具現例によれば、前記工程（ａ）〜（ｅ）は、反応条件（特に、温度）によって１つの反応容器でも同時的又は個別的に進行させうる。例えば、前記工程（ａ）〜（ｂ）及び（ｃ）〜（ｅ）は、反応条件（特に、温度）によって１つの反応容器でも同時的又は個別的に進行させうる。
【０３６１】
一具現例によれば、アップストリームプライマーとダウンストリームプライマーとを含むプライマー対及び増幅ブロッカーを用いる選択的増幅、及びＰＴＯ−ＮＶの切断を用いるターゲットヌクレオチド変異の検出は、反応条件（特に、温度）によって個別反応容器で個別的に実施されるか、又は１つの反応容器でも実施される。
【０３６２】
個別反応容器で実施される場合、ＰＴＯ−ＮＶは、アップストリームオリゴヌクレオチドに独立して切断されるか、又はアップストリームプローブに依存的に切断されうる。
【０３６３】
本発明は、検出及び／又は増幅しようとするターゲット核酸配列が如何なる特定配列又は長さを有することを要求せず、前記ターゲット核酸配列は、あらゆるＤＮＡ（ｇＤＮＡ及びｃＤＮＡ）及びＲＮＡ分子を含む。
【０３６４】
ｍＲＮＡを出発物質として用いる場合、アニーリング工程実施以前に逆転写工程が必須的であり、その詳細な内容は、文献［Ｊｏｓｅｐｈ  Ｓａｍｂｒｏｏｋら、Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ  Ｃｌｏｎｉｎｇ，Ａ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｍａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｐｒｅｓｓ，Ｃｏｌｄ  Ｓｐｒｉｎｇ  Ｈａｒｂｏｒ，Ｎ．Ｙ．（２００１）；及びＮｏｏｎａｎ，Ｋ．Ｆ．ら、Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．１６：１０３６６（１９８８）］に開示されている。逆転写反応のためには、ランダムヘキサマー又はｍＲＮＡにハイブリッド形成可能なオリゴヌクレオチドｄＴプライマーが利用される。
【０３６５】
検出及び／又は増幅することができるターゲット核酸配列は、あらゆる天然原核細胞核酸、眞核細胞（例えば、原生動物と寄生動物、菌類、酵母、高等植物、下等動物、及び哺乳動物とヒトとを含む高等動物）核酸、ウイルス（例えば、ヘルペスウイルス、ＨＩＶ、インフルエンザウイルス、エプスタインバーウイルス、肝炎ウイルス、ポリオウイルスなど）核酸、又はウィロイド核酸を含む。
【０３６６】
本発明によって検出されるターゲット核酸配列は、多様な核酸配列、例えば、ゲノム内の配列、人為的に分離されるか、断片化された配列及び合成配列（例えば、ｃＤＮＡ配列及びバーコード配列）を含む。例えば、ターゲット核酸配列は、Ｉｍｍｕｎｏ−ＰＣＲ（ＩＰＣＲ）のための核酸マーカー配列を含む。ＩＰＣＲは、ＰＣＲと共に核酸マーカー配列及び抗体間のコンジュゲートを用い、これは、タンパク質を含んだ多種のターゲットの検出に幅広く適用される（Ｓａｎｏら、Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２５８  ｐｐ：１２０−１２２（１９９２）、米国特許第５，６６５，５３９号、Ｎｉｅｍｅｙｅｒら、Ｔｒｅｎｄｓ  ｉｎ  Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  ２３  ｐｐ：２０８−２１６（２００５）、米国出願公開第２００５／０２３９１０８号及びＹｅら、Ｊｏｕｒｎａｌ  ｏｆ  Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ  Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２２  ｐｐ：７９６−８００（２０１０））。
【０３６７】
少なくとも２種のヌクレオチド変異を同時に検出（マルチプレックス）するという点で、本発明の利点がさらに注目される。
【０３６８】
一具現例によれば、前記方法は、少なくとも２種（より望ましくは、少なくとも３種、さらに望ましくは、少なくとも５種）のヌクレオチド変異を検出するために実施され、前記アップストリームプライマー及びダウンストリームプライマーは、少なくとも２種（より望ましくは、少なくとも３種、さらに望ましくは、少なくとも５種）のアップストリームプライマー及びダウンストリームプライマーを含み、前記増幅ブロッカーは、少なくとも２種（より望ましくは、少なくとも３種、さらに望ましくは、少なくとも５種）の増幅ブロッカーを含み、前記ＰＴＯ−ＮＶは、少なくとも２種（より望ましくは、少なくとも３種、さらに望ましくは、少なくとも５種）のＰＴＯ−ＮＶを含む。
【０３６９】
固相に固定化されたオリゴヌクレオチドを用いたヌクレオチド変異の検出
本発明は、マイクロアレイのような固相でもヌクレオチド変異の検出に効果的である。
【０３７０】
一具現例によれば、本発明は、固相で実施され、オリゴヌクレオチド（例えば、ＣＴＯ、ＳＯ又はＨＯ）は、その５’末端又は３’末端を介して固相基質上に固定化される。固相では、固相基質上から提供されるターゲットシグナルを測定する。
【０３７１】
前記ＣＴＯ、ＳＯ又はＨＯの固定化は、２種の方法でなされうる。
【０３７２】
第１方法では、固相基質上に既に固定化されたＣＴＯ、ＳＯ又はＨＯが反応工程に関与する。第２方法では、ＣＴＯ、ＳＯ又はＨＯが非固定化された形態で関与した後、反応工程の間に固相基質上に固定化される。
【０３７３】
一具現例によれば、固相反応では、単一標識を有する核酸配列が一本鎖内にあるか、又は二本鎖内にあるかによって、単一標識が異なる強度のシグナルを提供することができる能力を有することを要求しない。単一標識は、化学標識（例えば、ビオチン）、酵素標識（例えば、アルカリホスファターゼ、ぺロキシダーゼ、β−ガラクトシダーゼ、及びβ−グルコシダーゼ）、放射性同位元素標識（例えば、Ｉ１２５及びＣ１４）、蛍光標識、発光標識、化学発光標識、及び金属標識（例えば、金）を含むが、これらに限定されるものではない。
【０３７４】
固相反応のために、前記ＣＴＯ、ＳＯ、又はＨＯは、その５’末端又は３’末端（望ましくは、３’末端）を介して固相基質の表面上に直接的又は間接的に（望ましくは、間接的）固定化される。また、前記ＣＴＯ、ＳＯ、又はＨＯは、共有又は非共有結合方式で固相基質表面上に固定化されうる。固定化されたオリゴヌクレオチドが、固相基質表面上に間接的に固定化される場合、適したリンカーを用いる。本発明で有用なリンカーは、固相基質表面上のプローブ固定化に利用される如何なるリンカーも含みうる。例えば、アミン官能性を有するアルキル又はアリール化合物、又はチオール基官能性を有するアルキル又はアリール化合物が、固定化のためのリンカーとして使われる。また、ポリ（Ｔ）テイル又はポリ（Ａ）テイルがリンカーとして使われ、これは、酵素作用（例えば、酵素の切断反応）の抑制要素である空間妨害要因を顕著に減少させてハイブリッド形成効率を増加させるのに寄与する。リンカーとしてポリ（Ｔ）テイル又はポリ（Ａ）テイルは、プローブの配列で考慮されない。
【０３７５】
一具現例によれば、前記ＣＴＯ、ＳＯ又はＨＯは、結合パートナー（例えば、ビオチン／ストレプトアビジン）間の相互作用を介して固相基質上に固定化されうる。例えば、結合パートナー（ビオチン及びストレプトアビジン）のうち１つを有したＣＴＯ、ＳＯ又はＨＯは、表面が他の結合パートナーに修飾された固相基質上に固定化されうる。
【０３７６】
一具現例によれば、前記ＣＴＯ、ＳＯ又はＨＯは、固定化のためのヌクレオチド配列によって固相基質上に固定化されうる。例えば、固定化のためのヌクレオチド配列に相補的な追加配列を有したＣＴＯ、ＳＯ又はＨＯを固定化するために、表面が固定化のためのヌクレオチド配列に修飾された固相基質が使われる。
【０３７７】
一具現例によれば、本発明で利用される固相基質は、マイクロアレイである。本発明の反応環境を提供するマイクロアレイは、当業界に公知の如何なるものも含みうる。本発明のあらゆる過程、すなわち、ターゲット核酸配列とのハイブリッド形成、切断、延長、メルティング及び蛍光検出は、マイクロアレイ上で実施される。マイクロアレイ上に固定化されたオリゴヌクレオチドは、ハイブリッド形成アレイ要素（ｈｙｂｒｉｄｉｚａｂｌｅ  ａｒｒａｙ  ｅｌｅｍｅｎｔ）として利用される。マイクロアレイを製作するための固相基質は、金属（例えば、金、金と銅との合金、アルミニウム）、金属オキシド、ガラス、セラミック、石英、シリコン、半導体、Ｓｉ／ＳｉＯ２ウェーハ、ゲルマニウム、ガリウムアルセニド、カーボン、炭素ナノチューブ、ポリマー（例えば、ポリスチレン、ポリエチレン、ポリプロピレン、及びポリアクリルアミド）、セファロース、アガロース及びコロイドを含むが、これらに限定されるものではない。前記固相基質は、ディップスティック、プレート、パーティクル（例えば、ビーズ）、親和性カラム、及び膜（ｍｅｍｂｒａｎｅ）の形態であり得る。本発明の多数の固定化されたオリゴヌクレオチドは、固相基質上の１つのアドレサブル（ａｄｄｒｅｓｓａｂｌｅ）領域又は２つ以上のアドレサブル領域に固定化され、固相基質は、２〜１，０００，０００つのアドレサブル部位を含みうる。フォトリソグラフィー、インクジェッティング、機械的マイクロスポッティング、及びその類似方法のような従来の製作技術によって、アレイ又は特定応用のためのアレイを生産するために、固定化されたオリゴヌクレオチドが製作することができる。
【０３７８】
固定化されたオリゴヌクレオチド上の標識が物理的に分離されているために、固相で実施する本発明は、一種の標識を利用するとしても、多数のターゲット核酸配列を同時的に検出することができる。したがって、固相で、本発明によって検出可能なターゲット核酸配列の数は制限されるものではない。
【０３７９】
共焦点検出機器を用いて、液相に残っている標識の影響なしに固相基質上のシグナルのみを検出することができる。
【０３８０】
ターゲットヌクレオチド変異の検出のためのキット
本発明の他の様態で、本発明は、下記を含み、増幅ブロッカー及びＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析を用いてターゲット核酸配列上のターゲットヌクレオチド変異を検出するためのキットを提供する：
（ａ）ターゲット核酸の増幅のためのアップストリームプライマー及びダウンストリームプライマーを含むプライマー対であって、前記アップストリームプライマー及びダウンストリームプライマーのそれぞれは、ターゲット核酸配列に相補的なハイブリッド形成ヌクレオチド配列を含む前記プライマー対と、
（ｂ）５’ヌクレアーゼ切断に対して耐性を有し、前記ターゲット核酸配列上の前記ターゲットヌクレオチド変異とは異なる非ターゲットヌクレオチド変異に対して相補的な配列を含む増幅ブロッカーと、
（ｃ）（ｉ）前記ターゲット核酸配列に相補的なハイブリッド形成ヌクレオチド配列を含む３’−ターゲッティング部位、（ｉｉ）前記ターゲット核酸配列に非相補的なヌクレオチド配列を含む５’−タギング部位、及び（ｉｉｉ）前記ターゲット核酸上の前記ターゲットヌクレオチド変異に対して相補的な配列を含み、前記３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部に位置するヌクレオチド変異識別サイトを含むＰＴＯ−ＮＶと、
（ｄ）３’→５’方向に（ｉ）前記ＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位又は５’−タギング部位の一部に相補的なヌクレオチド配列を含むキャプチャリング部位、及び（ｉｉ）前記ＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位及び３’−ターゲッティング部位に非相補的なヌクレオチド配列を含むテンプレーティング部位を含むＣＴＯであって、前記ＰＴＯ−ＮＶから放出された第１断片又は第２断片は、前記ＣＴＯのキャプチャリング部位とハイブリッド形成されるＣＴＯとを含み、
前記増幅ブロッカーは、前記非ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列にハイブリッド形成され、前記ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列にハイブリッド形成されず、前記ＰＴＯ−ＮＶの３’−ターゲッティング部位は、前記ターゲット核酸配列にハイブリッド形成され、前記ＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位は、前記ターゲット核酸配列にハイブリッド形成されず、
前記アップストリームプライマーは、前記ＰＴＯ−ＮＶのアップストリームに位置し、前記増幅ブロッカーは、前記アップストリームプライマー又はダウンストリームプライマーのダウンストリームに位置し、前記増幅ブロッカー及び前記ＰＴＯ−ＮＶは、前記アップストリームプライマーとダウンストリームプライマーとの間に位置し、
前記アップストリームプライマーは、その延長鎖を介して前記５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素による前記ＰＴＯ−ＮＶの切断を誘導し、前記増幅ブロッカーと前記非ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列のハイブリッド形成は、前記増幅ブロッカーのアップストリームに位置した前記プライマーの延長を抑制し、これにより、前記非ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列の増幅をブロッキングし、
前記ＰＴＯ−ＮＶが、前記ヌクレオチド変異識別サイトに対して相補的な前記ターゲットヌクレオチド変異を有する前記ターゲット核酸配列とハイブリッド形成されれば、前記３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部が、前記ターゲット核酸配列と二本鎖を形成して、第１初期切断サイトから切断を誘導し、第１断片が放出され、前記ＰＴＯ−ＮＶが、前記ヌクレオチド変異識別サイトに非相補的な前記非ターゲットヌクレオチド変異を有する前記ターゲット核酸配列とハイブリッド形成されれば、前記３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部が、前記ターゲット核酸配列と二本鎖を形成せず、前記第１初期切断サイトのダウンストリームに位置する第２初期切断サイトから切断を誘導し、第２断片が放出され、前記第２断片は、追加的な３’末端部位を含み、これは、前記第２断片が、前記第１断片と異なるようにし、
前記第１断片が、前記ＣＴＯのキャプチャリング部位にハイブリッド形成されれば、前記第１断片は延長されて、前記ＣＴＯのテンプレーティング部位と相補的な延長配列を含む延長鎖を形成し、前記第２断片が、前記ＣＴＯのキャプチャリング部位にハイブリッド形成されれば、前記第２断片は延長されない。
【０３８１】
本発明のキットは、前述した本発明の検出方法を実施するように構成されているために、両者間の共通内容は、本明細書の複雑性をもたらす過度な重複を避けるために省略する。
【０３８２】
一具現例によれば、前記キットは、前記５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素、鋳型−依存的核酸ポリメラーゼ、又はその組合せをさらに含む。
【０３８３】
一具現例によれば、前記増幅ブロッカーは、５’ヌクレアーゼ活性に耐性のあるバックボーン（ｂａｃｋｂｏｎｅ）を有するヌクレオシド／ヌクレオチドを含む。
【０３８４】
一具現例によれば、前記増幅ブロッカーは、ペプチド核酸（ＰＮＡ）、ロック核酸（ＬＮＡ）、モルホリノ、グリコール核酸（ＧＮＡ）、トレオース核酸（ＴＮＡ）、ブリッジ核酸（ＢＮＡ）、Ｎ３’−Ｐ５’ホスホルアミダート（ＮＰ）オリゴマー、小溝結合物質が連結されたオリゴヌクレオチド、ホスホロチオエート（ＰＳ）オリゴマー、Ｃ１〜Ｃ４アルキルホスホネートオリゴマー、ホスホルアミダート、β−ホスホジエステルオリゴヌクレオチド、α−ホスホジエステルオリゴヌクレオチド、又はこれらの組合せを含む。
【０３８５】
一具現例によれば、前記第２断片が、前記ＣＴＯのキャプチャリング部位にハイブリッド形成される場合、前記ＣＴＯが、前記第２断片の前記追加的な３’末端部位とハイブリッド形成されず、前記第２断片の延長が防止されるように選択された配列を前記ＣＴＯが有する。
【０３８６】
一具現例によれば、前記ヌクレオチド変異識別サイトは、前記ＰＴＯ−ＮＶの３’−ターゲッティング部位の５’末端から１０ヌクレオチド以内に離隔して位置する。
【０３８７】
一具現例によれば、前記ＰＴＯ−ＮＶの３’−ターゲッティング部位の５’末端の一部は、前記ヌクレオチド変異識別サイトから１〜５ヌクレオチド以内に離隔して位置する非塩基対部分を含み、前記非塩基対部分は、前記第１初期切断サイト及び前記第２初期切断サイト間の差を増加させる。
【０３８８】
一具現例によれば、前記非塩基対部分は、（ｉ）人為的なミスマッチ塩基、塩基対を形成することができないように修飾された非塩基対塩基又はユニバーサル塩基を含むヌクレオチド、（ｉｉ）塩基対を形成することができないように修飾された非塩基対ヌクレオチド、又は（ｉｉｉ）非塩基対形成化合物である。
【０３８９】
一具現例によれば、前記ヌクレオチド変異は、置換変異、欠損変異又は挿入変異である。
【０３９０】
一具現例によれば、前記第１断片の延長鎖と前記ＣＴＯは、延長二量体を形成し、前記延長二量体は、（ｉ）前記第１断片の配列及び／又は長さ、（ｉｉ）前記ＣＴＯの配列及び／又は長さ、又は（ｉｉｉ）前記第１断片の配列及び／又は長さと前記ＣＴＯの配列及び／又は長さによって調節可能なＴｍ値を有し、前記延長二量体は、（ｉ）前記第１断片及び／又は前記ＣＴＯに連結された少なくとも１つの標識、（ｉｉ）前記延長反応の間に前記延長二量体内に挿入された標識、（ｉｉｉ）前記第１断片及び／又は前記ＣＴＯに連結された少なくとも１つの標識及び前記延長反応の間に前記延長二量体内に挿入された標識、又は（ｉｖ）インターカレーティング標識によるターゲットシグナルを提供し、前記延長鎖の存在は、前記延長二量体に対するメルティング分析又はハイブリッド形成分析によって、前記延長二量体から前記ターゲットシグナルを測定することで検出される。
【０３９１】
一具現例によれば、前記第１断片の延長鎖と前記ＣＴＯは、延長二量体を形成し、前記延長二量体は、（ｉ）前記第１断片の配列及び／又は長さ、（ｉｉ）前記ＣＴＯの配列及び／又は長さ、又は（ｉｉｉ）前記第１断片の配列及び／又は長さと前記ＣＴＯの配列及び／又は長さによって調節可能なＴｍ値を有し、前記延長二量体は、（ｉ）前記第１断片及び／又はＣＴＯに連結された少なくとも１つの標識、（ｉｉ）前記延長反応の間に前記延長二量体内に挿入された標識、（ｉｉｉ）前記第１断片及び／又はＣＴＯに連結された少なくとも１つの標識及び前記延長反応の間に前記延長二量体内に挿入された標識、又は（ｉｖ）インターカレーティング標識によるターゲットシグナルを提供し、前記延長鎖の存在は、前記延長二量体の二本鎖の保持に十分な既定の温度で前記延長二量体からターゲットシグナルを測定することで検出される。
【０３９２】
一具現例によれば、前記キットは、前記第１断片の延長鎖を検出するためのシグナリングオリゴヌクレオチド（ＳＯ）をさらに含み、前記ＳＯは、前記延長鎖に相補的な配列及び少なくとも１つの標識を含み、前記ＳＯは、前記延長鎖との結合又は解離によって検出可能なシグナルを提供する。一具現例によれば、前記検出可能なシグナルは、（ｉ）前記ＳＯに連結された標識、（ｉｉ）前記ＳＯに連結された標識及び前記ＰＴＯ−ＮＶの断片に連結された標識の組合せ、（ｉｉｉ）前記ＳＯに連結された標識及び前記延長反応の間に延長鎖に挿入される標識の組合せ、又は（ｉｖ）前記ＳＯに連結された標識及びインターカレーティング染料の組合せによって提供される。一具現例によれば、前記キットは、前記延長鎖に相補的な配列を含む追加的なＳＯをもう１つ利用し、前記２つのＳＯは、前記延長鎖に近接してハイブリッド形成され、前記２つのＳＯは、それぞれ相互作用的二重標識のレポーター分子及びクエンチャー分子のうち１つの標識を含む。
【０３９３】
一具現例によれば、前記キットは、前記第１断片の延長鎖を検出するためのハイブリッド形成オリゴヌクレオチド（Ｈｙｂｒｉｄｉｚｉｎｇ  Ｏｌｉｇｏｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ：ＨＯ）をさらに含み、前記ＨＯは、前記ＣＴＯに相補的なハイブリッド形成ヌクレオチド配列及び少なくとも１つの標識を含み、前記第１断片の延長は、５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素による前記ＨＯの切断を誘導して、前記標識から検出可能なシグナルを生成する。一具現例によれば、前記検出可能なシグナルは、（ｉ）前記ＨＯに連結された相互作用的二重標識、又は（ｉｉ）相互作用的二重標識のうち１つは、前記ＨＯに連結され、他の１つは、前記ＣＴＯに連結されたレポーター分子及びクエンチャー分子を含む相互作用的二重標識によって提供される。
【０３９４】
一具現例によれば、前記増幅ブロッカー、ＰＴＯ−ＮＶ、ＣＴＯ、ＳＯ及び／又はＨＯは、その延長が防止されるようにその３’末端がブロッキングされる。
【０３９５】
一具現例によれば、前記キットは、少なくとも２種のヌクレオチド変異を検出するために実施され、前記アップストリームプライマー及び前記ダウンストリームプライマーは、少なくとも２種のアップストリームプライマー及びダウンストリームプライマーを含み、前記増幅ブロッカーは、少なくとも２種の増幅ブロッカーを含み、前記ＰＴＯ−ＮＶは、少なくとも２種のＰＴＯ−ＮＶを含む。
【０３９６】
一具現例によれば、前記鋳型−依存的核酸ポリメラーゼは、前記５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素と同じ酵素である。
【０３９７】
一具現例によれば、前記５’ヌクレアーゼ活性を有する酵素は、５’ヌクレアーゼ活性を有する熱安定性ＤＮＡポリメラーゼ又はＦＥＮヌクレアーゼである。
【０３９８】
前述した本発明のあらゆるキットは、バッファ、ＤＮＡポリメラーゼ補助因子及びデオキシリボヌクレオチド−５−トリホスフェートのようなターゲット増幅ＰＣＲ反応（例えば、ＰＣＲ反応）の実施に必要な試薬を選択的に含みうる。選択的に、前記キットは、また多様なポリヌクレオチド分子、逆転写酵素、多様なバッファ及び試薬、及びＤＮＡポリメラーゼ活性を抑制する抗体を含みうる。また、前記キットは、陽性対照群及び陰性対照群の反応の実施に必要な試薬を含みうる。特定反応で使われる試薬の最適量は、本明細書に開示事項の利点が分かっている当業者によって容易に決定されうる。典型的に、本発明のキットは、別途の包装又は区画内に前述した構成成分を含むように採択される。
【０３９９】
本発明の特徴及び利点を要約すれば、次の通りである：
（ａ）本発明は、本発明者によって開発されたＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析を改善したものであって、少量の少数対立遺伝子の効果的検出を目的とする。
（ｂ）本発明は、過量の野生型ＤＮＡ内の少数突然変異の検出に非常に効果的である。増幅ブロッカーは、突然変異ＤＮＡの選択的増幅によって野生型ＤＮＡに対するＰＴＯ−ＮＶの消耗を制限することができる。又は、増幅ブロッカーは、野生型ＤＮＡに対するハイブリッド形成でＰＴＯ−ＮＶと競争し、これは、野生型ＤＮＡ上でＰＴＯ−ＮＶの切断を防止する。
（ｃ）本発明によれば、プローブ（ＰＴＯ−ＮＶ）は、関心のあるヌクレオチド変異の存否によって識別される異なるハイブリッド形成パターンを示す。
（ｄ）関心のあるヌクレオチド変異に対するこのような識別されるハイブリッド形成パターンは、ＰＴＯ−ＮＶの初期切断サイトの差を提供し、これにより、２種のＰＴＯ−ＮＶ断片が生成されて、関心のあるヌクレオチド変異の存否によってシグナルの差が発生する。
（ｅ）ＰＴＯ−ＮＶの５’−タッキング部位配列及びＣＴＯの配列をターゲット核酸配列を考慮せずに選択可能であるということは注目すべき点である。これは、ＰＴＯ−ＮＶの５’−タッキング部位及びＣＴＯのための配列プール（ｐｏｏｌ）をあらかじめデザインすることを可能にする。ＰＴＯ−ＮＶの３’−ターゲッティング部位は、必ずターゲット核酸配列を考慮して準備されなければならないが、ＣＴＯは、ターゲット核酸配列に対する考慮や知識なしにあらかじめ製作された方法で準備されうる。このような特徴は、複数のターゲット検出、特に、固相基質上に固定化されたＣＴＯを用いるマイクロアレイ上で著しい利点を提供する。
【実施例】
【０４００】
実施例１：増幅ブロッカーを用いたＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析による少数突然変異の検出
増幅ブロッカーとＶＤ−ＰＴＯＣＥとの組合せで過量の野生型ＤＮＡ内の少数突然変異を確認できるか否かを実験した。
【０４０１】
アップストリームプライマーとダウンストリームプライマーとの延長、ＰＴＯ−ＮＶの切断及びＰＴＯ−ＮＶ断片の延長のために、５’ヌクレアーゼ活性を有するＴａｑ  ＤＮＡポリメラーゼを使った。ＰＴＯ−ＮＶ、増幅ブロッカー及びＣＴＯは、延長を防止するために、その３’末端をカーボンスぺーサ（ｃａｒｂｏｎ  ｓｐａｃｅｒ）でブロッキングした。ＢＲＡＦ（Ｖ６００Ｅ）野生型（Ｔ）及び突然変異（Ａ）ヒトゲノムＤＮＡをターゲット核酸配列として使った。突然変異ＤＮＡは、ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列に該当し、野生型ＤＮＡは、非ターゲットヌクレオチド変異を有するターゲット核酸配列に該当した。増幅ブロッカーの効果を調査するために、互いに異なる比率の突然変異及び野生型ＢＲＡＦ  ＤＮＡを有する一連の混合物を準備した（突然変異１００％、１０％、１％、０．１％、及び０％）。
【０４０２】
ＰＴＯ−ＮＶは、標識を有さない。ＰＴＯ−ＮＶのヌクレオチド変異識別サイトは、センス鎖（ｓｅｎｓｅ−ｓｔｒａｎｄ）の突然変異（Ａ）ＤＮＡに相補的なヌクレオチド（Ｔ）を有する（配列番号：３）。増幅ブロッカーは、ＬＮＡヌクレオチドを含み、増幅ブロッカーのヌクレオチド変異識別サイトは、アンチセンス鎖（ａｎｔｉ−ｓｅｎｓｅ  ｓｔｒａｎｄ）の野生型（Ａ）ＤＮＡに相補的なヌクレオチド（Ｔ）を有する（配列番号：４）。
【０４０３】
本実施例のＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析で、ターゲットヌクレオチド変異（すなわち、突然変異ＤＮＡ）の存在によって生成された延長鎖の存在は、延長鎖とＣＴＯで形成された延長二量体のメルティング分析によって検出した。
【０４０４】
ＣＴＯは、そのテンプレーティング（ｔｅｍｐｌａｔｉｎｇ）部位をクエンチャー分子（ＢＨＱ−２）及び蛍光レポーター分子（Ｃａｌ  Ｆｌｕｏｒ  Ｒｅｄ  ６１０）で標識する（配列番号：５）。
【０４０５】
本実施例で使ったアップストリームプライマー、ダウンストリームプライマー、ＰＴＯ−ＮＶ、増幅ブロッカー、及びＣＴＯの配列は、次の通りである：
ＢＲＡＦ−Ｆ  ５’−ＣＴＴＣＡＴＡＡＴＧＣＴＴＧＣＴＣＴＧＡＴＡＧＧＩＩＩＩＩＧＡＧＡＴＣＴＡＣＴ−３’（配列番号：１）
ＢＲＡＦ−Ｒ  ５’−ＡＴＡＧＣＣＴＣＡＡＴＴＣＴＴＡＣＣＡＴＣＣＡＩＩＩＩＩＴＧＧＡＴＣＣＡＧＡ−３’（配列番号：２）
ＢＲＡＦ−ＰＴＯ−ＮＶ  ５’−ＧＧＴＧＧＡＣＴＴＧＣＧＧＴＣＴＧＴＡＧＣＴＡＧＡＣＣＡＡＡＡＴＣＡＣＣＴＡＴＴＴＴＴＡＣＴＧＴＧ［Ｃ３スぺーサ］−３’（配列番号：３）
増幅ブロッカー  ５’−ＣＡＧＴＧＡＡＡＴＣＴＣＧＡＴＧＧ［Ｃ３スぺーサ］−３’（配列番号：４）
ＢＲＡＦ−ＣＴＯ−１  ５’−［ＢＨＱ−２］ＴＴＴＴＴＴＴＴＧＡＧＣＣＡＧＡＧＴＴＡ［Ｔ（Ｃａｌ  Ｆｌｕｏｒ  Ｒｅｄ  ６１０）］ＧＧＴＣＡＣＣＧＣＡＡＧＴＣＣＡＣＣ［Ｃ３スぺーサ］−３’（配列番号：５）
（Ｉ：デオキシイノシン）
（下線を引いた文字は、ＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位を示す）
（太字は、ヌクレオチド識別サイトを示す）
（ボックス表示した文字は、ＬＮＡヌクレオチドを示す）
【０４０６】
ＢＲＡＦ（Ｖ６００Ｅ）突然変異（Ａ）及び野生型（Ｔ）ヒトゲノムＤＮＡの多様な比率の混合物（突然変異１００％、１０％、１％、０．１％、及び０％）１００ｎｇ、アップストリームプライマー（配列番号：１）１０ｐｍｏｌｅ、ダウンストリームプライマー（配列番号：２）１０ｐｍｏｌｅ、ＰＴＯ−ＮＶ（配列番号：３）５ｐｍｏｌｅ、増幅ブロッカー（配列番号：４）５ｐｍｏｌｅ、ＣＴＯ（配列番号：５）１ｐｍｏｌｅ、及び２×マスターミックス（２．５ｍＭ  ＭｇＣｌ２、２００μＭ  ｄＮＴＰｓ、１．６ｕｎｉｔのＴａｑ  ＤＮＡポリメラーゼ）（Ｓｏｌｇｅｎｔ，Ｋｏｒｅａ）１０μＬを含有した２０μＬの最終体積で反応を実施した。前記反応混合物を含有しているチューブをリアルタイム熱循環器（ＣＦＸ９６，Ｂｉｏ−Ｒａｄ）に位置させた。前記反応混合物を９５℃で１５分間変性させ、９５℃で３０秒間、６０℃で６０秒間の過程を５０サイクル繰り返した。反応後、前記反応混合物を５５℃に冷却させ、５５℃で１０分間保持させた後、５５℃から８５℃に徐々に加熱することによって、メルティングカーブを得た。温度が上昇する間に蛍光を連続して測定して、二本鎖ＤＮＡの解離をモニタリングした。メルティングピークは、メルティングカーブデータから得た。
【０４０７】
図８Ａ及び図８Ｂで示すように、ターゲット核酸配列が存在する場合、増幅ブロッカーのない場合には、ＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析で１０％突然変異比率まで延長二量体の予想Ｔｍ値に該当するピークが検出されたが、増幅ブロッカーのある場合には、０．１％突然変異比率までピークが検出された。ターゲットが存在しない場合には、如何なるピークも検出されていない。
【０４０８】
このような結果は、増幅ブロッカーの使用でＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析の能力を改善して、野生型ＤＮＡが過量で存在する場合にも、少数突然変異を検出することができるということを示す。
【０４０９】
実施例２：増幅ブロッカーと共にシグナリングオリゴヌクレオチドを用いたＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析による少数突然変異の検出
本発明者らは、シグナリングオリゴヌクレオチド（ＳＯ）を用いるＶＤ−ＰＴＯＣＥと増幅ブロッカーとの組合せで過量の野生型ＤＮＡ内の少数突然変異を確認できるか否かを追加的に実験した。
【０４１０】
本実施例のＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析で、ターゲットヌクレオチド変異（すなわち、突然変異ＤＮＡ）の存在によって生成された延長鎖の存在を前記延長鎖と特異的にハイブリッド形成されるシグナリングオリゴヌクレオチド（ＳＯ）を用いて検出した。前記延長鎖と前記ＳＯとの間のハイブリッド形成物をメルティング分析のために使った。
【０４１１】
プライマー、増幅ブロッカー、ＰＴＯ−ＮＶ、ＢＲＡＦヒトゲノムＤＮＡ、及びＴａｑ  ＤＮＡポリメラーゼを実施例１と同様に用いた。
【０４１２】
ＣＴＯは、標識を有さない（配列番号：６）。ＳＯは、その５’末端にクエンチャー分子（ＢＨＱ−２）を有し、３’末端に蛍光レポーター分子（Ｃａｌ  Ｆｌｕｏｒ  Ｒｅｄ  ６１０）を有する（配列番号：７）。
【０４１３】
本実施例で使ったアップストリームプライマー、ダウンストリームプライマー、ＰＴＯ−ＮＶ、増幅ブロッカー、ＣＴＯ、及びＳＯの配列は、次の通りである：
ＢＲＡＦ−Ｆ  ５’−ＣＴＴＣＡＴＡＡＴＧＣＴＴＧＣＴＣＴＧＡＴＡＧＧＩＩＩＩＩＧＡＧＡＴＣＴＡＣＴ−３’（配列番号：１）
ＢＲＡＦ−Ｒ  ５’−ＡＴＡＧＣＣＴＣＡＡＴＴＣＴＴＡＣＣＡＴＣＣＡＩＩＩＩＩＴＧＧＡＴＣＣＡＧＡ−３’（配列番号：２）
ＢＲＡＦ−ＰＴＯ−ＮＶ  ５’−ＧＧＴＧＧＡＣＴＴＧＣＧＧＴＣＴＧＴＡＧＣＴＡＧＡＣＣＡＡＡＡＴＣＡＣＣＴＡＴＴＴＴＴＡＣＴＧＴＧ［Ｃ３スぺーサ］−３’（配列番号：３）
増幅ブロッカー  ５’−ＣＡＧＴＧＡＡＡＴＣＴＣＧＡＴＧＧ［Ｃ３スぺーサ］−３’（配列番号：４）
ＢＲＡＦ−ＣＴＯ−２  ５’−ＴＴＴＴＴＴＴＴＧＡＧＣＣＡＧＡＧＴＴＡＴＧＧＴＣＡＣＣＧＣＡＡＧＴＣＣＡＣＣ［Ｃ３スぺーサ］−３’（配列番号：６）
ＢＲＡＦ−ＳＯ  ５’−［ＢＨＱ−２］ＴＴＴＴＴＴＴＧＡＧＣＣＡＧＡＧＴＴＡＴＧＧＴＣ［Ｃａｌ  Ｆｌｕｏｒ  Ｒｅｄ  ６１０］−３’（配列番号：７）
（Ｉ：デオキシイノシン）
（下線を引いた文字は、ＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位を示す）
（太字は、ヌクレオチド識別サイトを示す）
（ボックス表示した文字は、ＬＮＡヌクレオチドを示す）
【０４１４】
ＢＲＡＦ（Ｖ６００Ｅ）突然変異（Ａ）及び野生型（Ｔ）ヒトゲノムＤＮＡの多様な比率の混合物（突然変異１００％、１０％、１％、０．１％、及び０％）１００ｎｇ、アップストリームプライマー（配列番号：１）１０ｐｍｏｌｅ、ダウンストリームプライマー（配列番号：２）１０ｐｍｏｌｅ、ＰＴＯ−ＮＶ（配列番号：３）５ｐｍｏｌｅ、増幅ブロッカー（配列番号：４）５ｐｍｏｌｅ、ＣＴＯ（配列番号：６）０．１ｐｍｏｌｅ、ＳＯ（配列番号：７）３ｐｍｏｌｅ、及び２×マスターミックス（２．５ｍＭ  ＭｇＣｌ２、２００μＭ  ｄＮＴＰｓ、１．６ｕｎｉｔのＴａｑ  ＤＮＡポリメラーゼ）（Ｓｏｌｇｅｎｔ，Ｋｏｒｅａ）１０μＬを含有した２０μＬの最終体積で反応を実施した。前記反応混合物を含有しているチューブをリアルタイム熱循環器（ＣＦＸ９６，Ｂｉｏ−Ｒａｄ）に位置させた。前記反応混合物を９５℃で１５分間変性させ、９５℃で３０秒間、６０℃で６０秒間の過程を５０サイクル繰り返した。反応後、前記反応混合物を４０℃に冷却させ、４０℃で１０分間保持させた後、４０℃から８５℃に徐々に加熱することによって、メルティングカーブを得た。温度が上昇する間に蛍光を連続して測定して、延長鎖−ＳＯハイブリッド形成物の解離をモニタリングした。メルティングピークは、メルティングカーブデータから得た。
【０４１５】
図９Ａ及び図９Ｂで示すように、ターゲット核酸配列が存在する場合、増幅ブロッカーなしにＳＯを用いるＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析において、１００％突然変異比率で延長鎖／ＳＯハイブリッド形成物の予想Ｔｍ値に該当するピークが検出されたが、１０％突然変異比率では、ピークが検出されていない。しかし、増幅ブロッカーのある場合には、１％突然変異比率でまでピークが検出された。ターゲットが存在しない場合には、如何なるピークも検出されていない。
【０４１６】
このような結果は、増幅ブロッカーの使用でＳＯを用いたＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析の能力を改善して、野生型ＤＮＡが過量で存在する場合にも、少数突然変異を検出することができるということを示す。
【０４１７】
実施例３：増幅ブロッカーと共にハイブリッド形成オリゴヌクレオチドを用いたＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析による少数突然変異の検出
本発明者らは、ハイブリッド形成オリゴヌクレオチド（ＨＯ）を用いるＶＤ−ＰＴＯＣＥと増幅ブロッカーとの組合せで過量の野生型ＤＮＡ内の少数突然変異を確認できるか否かを追加的に実験した。
【０４１８】
本実施例のＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析で、ターゲットヌクレオチド変異（すなわち、突然変異ＤＮＡ）の存在によって生成された延長鎖の存在をＰＴＯ−ＮＶ断片よりもダウンストリーム位置でＣＴＯと特異的にハイブリッド形成されるハイブリッド形成オリゴヌクレオチド（ＨＯ）を使って検出した。ＣＴＯ上でＰＴＯ−ＮＶ断片の延長過程で、ＨＯが切断され、シグナルを提供する。ＨＯの切断によって発生したシグナルを各サイクルで既定の温度でのリアルタイム検出によって検出した。
【０４１９】
プライマー、増幅ブロッカー、ＰＴＯ−ＮＶ、ＢＲＡＦヒトゲノムＤＮＡ、及びＴａｑ  ＤＮＡポリメラーゼを実施例１と同様に用いた。
【０４２０】
ＣＴＯは、標識を有さない（配列番号：８）。ＨＯは、その５’末端にクエンチャー分子（ＢＨＱ−２）を有し、３’末端に蛍光レポーター分子（Ｃａｌ  Ｆｌｕｏｒ  Ｒｅｄ  ６１０）を有する（配列番号：９）。
【０４２１】
本実施例で使ったアップストリームプライマー、ダウンストリームプライマー、ＰＴＯ−ＮＶ、増幅ブロッカー、ＣＴＯ、及びＨＯの配列は、次の通りである：
ＢＲＡＦ−Ｆ  ５’−ＣＴＴＣＡＴＡＡＴＧＣＴＴＧＣＴＣＴＧＡＴＡＧＧＩＩＩＩＩＧＡＧＡＴＣＴＡＣＴ−３’（配列番号：１）
ＢＲＡＦ−Ｒ  ５’−ＡＴＡＧＣＣＴＣＡＡＴＴＣＴＴＡＣＣＡＴＣＣＡＩＩＩＩＩＴＧＧＡＴＣＣＡＧＡ−３’（配列番号：２）
ＢＲＡＦ−ＰＴＯ−ＮＶ  ５’−ＧＧＴＧＧＡＣＴＴＧＣＧＧＴＣＴＧＴＡＧＣＴＡＧＡＣＣＡＡＡＡＴＣＡＣＣＴＡＴＴＴＴＴＡＣＴＧＴＧ［Ｃ３スぺーサ］−３’（配列番号：３）
増幅ブロッカー  ５’−ＣＡＧＴＧＡＡＡＴＣＴＣＧＡＴＧＧ［Ｃ３スぺーサ］−３’（配列番号：４）
ＢＲＡＦ−ＣＴＯ−３  ５’−ＴＣＣＧＴＣＣＧＡＧＣＣＡＧＡＧＴＧＡＴＧＧＴＣＡＣＣＴＣＡＣＣＧＣＡＡＧＴＣＣＡＣＣ［Ｃ３スぺーサ］−３’（配列番号：８）
ＢＲＡＦ−ＨＯ  ５’−［ＢＨＱ−２］ＧＡＣＣＡＴＣＡＣＴＣＴＧＧＣＴＣＧＧＡＣＧＧＡ［Ｃａｌ  Ｆｌｕｏｒ  Ｒｅｄ  ６１０］−３’（配列番号：９）
（Ｉ：デオキシイノシン）
（下線を引いた文字は、ＰＴＯ−ＮＶの５’−タギング部位を示す）
（太字は、ヌクレオチド識別サイトを示す）
（ボックス表示した文字は、ＬＮＡヌクレオチドを示す）
【０４２２】
ＢＲＡＦ（Ｖ６００Ｅ）突然変異（Ａ）及び野生型（Ｔ）ヒトゲノムＤＮＡの多様な比率の混合物（突然変異１００％、１０％、１％、０．１％、及び０％）１００ｎｇ、アップストリームプライマー（配列番号：１）１０ｐｍｏｌｅ、ダウンストリームプライマー（配列番号：２）１０ｐｍｏｌｅ、ＰＴＯ−ＮＶ（配列番号：３）５ｐｍｏｌｅ、増幅ブロッカー（配列番号：４）５ｐｍｏｌｅ、ＣＴＯ（配列番号：８）１ｐｍｏｌｅ、ＨＯ（配列番号：９）３ｐｍｏｌｅ、及び２×マスターミックス（２．５ｍＭ  ＭｇＣｌ２、２００μＭ  ｄＮＴＰｓ、１．６ｕｎｉｔのＨＴａｑ  ＤＮＡポリメラーゼ）（Ｓｏｌｇｅｎｔ，Ｋｏｒｅａ）１０μＬを含有した２０μＬの最終体積で反応を実施した。前記反応混合物を含有しているチューブをリアルタイム熱循環器（ＣＦＸ９６，Ｂｉｏ−Ｒａｄ）に入れた。前記反応混合物を９５℃で１５分間変性させ、９５℃で３０秒間、５５℃で６０秒間の過程を５０サイクル繰り返した。生成されたシグナルは、各サイクルの変性化工程（９５℃）で検出した。変性化温度（９５℃）での検出は、検出されたシグナルがＨＯの切断によって発生した標識された断片から提供されるということを裏付ける。
【０４２３】
図１０Ａ及び図１０Ｂで示すように、ターゲット核酸配列が存在する場合、増幅ブロッカーなしにＨＯを用いたＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析で１０％突然変異比率まで蛍光シグナルが検出されたが、増幅ブロッカーのある場合には、０．１％突然変異比率でまでピークが検出された。ターゲットが存在しない場合には、如何なるピークも検出されていない。
【０４２４】
このような結果は、増幅ブロッカーの使用でＨＯを用いるＶＤ−ＰＴＯＣＥ分析の能力を改善して、野生型ＤＮＡが過量で存在する場合にも、少数突然変異を検出することができるということを示す。
【０４２５】
本発明の望ましい具現例を詳しく記述したところ、本発明の原理による修飾及び修正が可能であるということは、当業者に明白であり、本発明の範囲は、添付の請求項とその均等物とによって定義される。
【図１】
2017504306.tif 000003
【図２】
2017504306.tif 000004
【図３】
2017504306.tif 000005
【図４】
2017504306.tif 000006
【図５】
2017504306.tif 000007
【図６】
2017504306.tif 000008
【図７】
2017504306.tif 000009
【図８Ａ】
2017504306.tif 000010
【図８Ｂ】
2017504306.tif 000011
【図９Ａ】
2017504306.tif 000012
【図９Ｂ】
2017504306.tif 000013
【図１０Ａ】
2017504306.tif 000014
【図１０Ｂ】
2017504306.tif 000015
【配列表】
2017504306000001.app
【国際調査報告】
2017504306.tif 000016
2017504306.tif 000017