(57)【要約】単一の肝細胞培養物を使用して化学実体の胆汁中排泄を特徴付けるｉｎ  ｖｉｔｒｏの方法。少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む細胞培養物を提供するステップ；細胞培養物を第１の化学実体と、培養物の肝細胞による化学実体の取り込みを可能にするのに十分な時間、接触させるステップ；肝細胞を溶解させることなく少なくとも１つの胆細管を破壊し、少なくとも１つの胆細管によって放出される第１の化学実体および／またはその代謝産物の量（あるならば）を検出するステップ；ならびに肝細胞を溶解させ、肝細胞によって放出される第１の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出するステップを含む。
2017527283.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
化学実体の胆汁中排泄を特徴付けるｉｎ  ｖｉｔｒｏの方法であって、
ａ）少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む細胞培養物を提供するステップ、
ｂ）前記細胞培養物を第１の化学実体と、前記培養物の肝細胞による前記化学実体の取り込みを可能にするのに十分な時間、接触させるステップ、
ｃ）前記肝細胞を溶解させることなく前記少なくとも１つの胆細管を破壊し、前記少なくとも１つの胆細管によって放出される前記第１の化学実体および／またはその代謝産物の量（あるならば）を検出するステップ、ならびに
ｄ）前記肝細胞を溶解させ、前記肝細胞によって放出される前記第１の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出するステップ
を含む方法。
【請求項２】
前記細胞培養物が、固体基材の表面に配置される肝細胞および間質細胞を含む肝細胞−間質細胞共培養物である、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
ステップｃ）で前記少なくとも１つの胆細管によって放出される前記第１の化学実体および／またはその代謝産物の量が、ステップｄ）で前記肝細胞によって放出される前記第１の化学実体および／またはその代謝産物の量より多い、請求項１に記載の方法。
【請求項４】
ステップｃ）で前記少なくとも１つの胆細管によって放出される前記第１の化学実体および／またはその代謝産物の量が、ステップｄ）で前記肝細胞によって放出される前記第１の化学実体および／またはその代謝産物の量より少ない、請求項１に記載の方法。
【請求項５】
ステップｃ）および／またはｄ）における前記第１の化学実体および／またはその代謝産物の量が、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳを使用して検出される、請求項１に記載の方法。
【請求項６】
前記第１の化学実体が標識を含まない、請求項１に記載の方法。
【請求項７】
前記少なくとも１つの胆細管が、ラトランクリンＡ（ＬａｔＡ）を含む、および／またはカルシウムを含まない培地で前記培養物をインキュベートすることによって、前記培養物の肝細胞を溶解させることなく破壊される、請求項１に記載の方法。
【請求項８】
前記細胞培養物で前記第１の化学実体について、固有の胆管クリアランス（ＣＬｂｉｌｅ）および／または胆汁中排泄指数（ＢＥＩ）を決定するステップをさらに含む、請求項１に記載の方法。
【請求項９】
前記第１の化学実体のＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを対照化学実体のＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩと比較し、前記比較に基づいて前記第１の化学実体の胆汁中排泄を特徴付けるステップをさらに含む、請求項８に記載の方法。
【請求項１０】
少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質の活性が前記肝細胞で阻害される、請求項１に記載の方法。
【請求項１１】
ステップｂ）で前記細胞培養物を第２の化学実体と接触させることをさらに含む、請求項１に記載の方法。
【請求項１２】
ステップｃ）で前記少なくとも１つの胆細管によって放出される前記第２の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出することをさらに含む、請求項１１に記載の方法。
【請求項１３】
ステップｄ）で前記肝細胞によって放出される前記第２の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出することをさらに含む、請求項１２に記載の方法。
【請求項１４】
化学実体の胆汁中排泄を特徴付けるｉｎ  ｖｉｔｒｏの方法であって、
ａ）少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む第１の細胞培養物を提供するステップであって、少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質の活性が前記第１の細胞培養物の肝細胞で阻害されるステップ、
ｂ）前記第１の細胞培養物を第１の化学実体と接触させるステップ、
ｃ）前記第１の細胞培養物の肝細胞を溶解させることなく前記第１の細胞培養物の前記少なくとも１つの胆細管を破壊し、前記少なくとも１つの胆細管によって放出される前記第１の化学実体および／またはその代謝産物の量（あるならば）を検出するステップ、
ｄ）前記第１の細胞培養物の肝細胞を溶解させ、前記肝細胞によって放出される前記第１の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出するステップ、
ｅ）少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む第２の細胞培養物を提供するステップであって、前記少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質の活性が前記第２の細胞培養物の肝細胞で阻害されないステップ、
ｆ）前記第２の細胞培養物を前記第１の化学実体と接触させるステップ、
ｇ）前記第２の細胞培養物の肝細胞を溶解させることなく前記第２の細胞培養物の前記少なくとも１つの胆細管を破壊し、前記少なくとも１つの胆細管によって放出される前記第１の化学実体および／またはその代謝産物の量（あるならば）を検出するステップ、ならびに
ｈ）前記第２の細胞培養物の肝細胞を溶解させ、前記肝細胞によって放出される前記第１の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出するステップ
を含む方法。
【請求項１５】
前記第１および第２の細胞培養物が、固体基材の表面に配置される肝細胞および間質細胞を含む肝細胞−間質細胞共培養物である、請求項１４に記載の方法。
【請求項１６】
前記第１の細胞培養物で前記第１の化学実体についてＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを決定するステップ、ならびに前記第２の細胞培養物で前記第１の化学実体についてＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを決定するステップをさらに含む、請求項１４に記載の方法。
【請求項１７】
前記第１の化学実体のＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩが、前記第２の細胞培養物におけるより前記第１の細胞培養物で低く、これにより、前記第１の化学実体の胆管クリアランスが前記少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質によって少なくとも一部媒介されることが示される、請求項１６に記載の方法。
【請求項１８】
前記第１の化学実体のＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩが、前記第２の細胞培養物におけるより前記第１の細胞培養物で低くなく、これにより、前記第１の化学実体の胆管クリアランスが前記少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質によって少なくとも一部媒介されるわけではないことが示される、請求項１６に記載の方法。
【請求項１９】
ステップｃ）および／またはｄ）および／またはｅ）および／またはｈ）における前記第１の化学実体および／またはその代謝産物の量が、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳを使用して検出される、請求項１４に記載の方法。
【請求項２０】
ステップｂ）および／またはｆ）における前記第１の化学実体および／またはその代謝産物が標識を含まない、請求項１４に記載の方法。
【請求項２１】
前記少なくとも１つの胆細管が、ラトランクリンＡ（ＬａｔＡ）を含む、および／またはカルシウムを含まない培地で前記細胞培養物をインキュベートすることによって、前記細胞培養物の肝細胞を溶解させることなく前記第１および第２の細胞培養物において破壊される、請求項１４に記載の方法。
【請求項２２】
ステップｂ）および／またはｆ）で前記第１および／または第２の細胞培養物を第２の化学実体と接触させることをさらに含む、請求項１４に記載の方法。
【請求項２３】
ステップｃ）および／またはｇ）で前記少なくとも１つの胆細管によって放出される前記第２の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出することをさらに含む、請求項２２に記載の方法。
【請求項２４】
ステップｄ）および／またはｈ）で前記肝細胞によって放出される前記第２の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出することをさらに含む、請求項２３に記載の方法。
【請求項２５】
試験化学実体の胆汁中排泄を特徴付けるｉｎ  ｖｉｔｒｏの方法であって、
ａ）少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む細胞培養物を提供するステップ、
ｂ）前記細胞培養物をマーカー化学実体および試験化学実体と同時に接触させるステップであって、前記マーカー化学実体が、決定されたＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを有する少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質の公知の基質であるステップ、
ｃ）前記肝細胞を溶解させることなく前記少なくとも１つの胆細管を破壊し、前記少なくとも１つの胆細管によって放出される前記マーカー化学実体および／またはその代謝産物の量を検出するステップ、ならびに
ｄ）前記肝細胞を溶解させ、前記肝細胞によって放出される前記マーカー化学実体および／またはその代謝産物の量を検出するステップ
を含む方法。
【請求項２６】
前記細胞培養物が、固体基材の表面に配置される肝細胞および間質細胞を含む肝細胞−間質細胞共培養物である、請求項２５に記載の方法。
【請求項２７】
前記試験化学実体の存在下において肝細胞−間質細胞共培養物で前記マーカー化学実体についてＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを決定するステップをさらに含む、請求項２５に記載の方法。
【請求項２８】
前記マーカー化学実体のＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩが、前記試験化学実体の非存在下においてより前記試験化学実体の存在下において低く、これにより、前記試験化学実体の胆管クリアランスが前記少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質によって少なくとも一部媒介されることが示される、請求項２７に記載の方法。
【請求項２９】
前記マーカー化学実体のＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩが、前記試験化学実体の非存在下においてより前記試験化学実体の存在下において低くなく、これにより、前記試験化学実体の胆管クリアランスが前記少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質によって少なくとも一部媒介されるわけではないことが示される、請求項２７に記載の方法。
【請求項３０】
ステップｃ）および／またはｄ）における前記マーカー化学実体および／またはその代謝産物の量が、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳを使用して検出される、請求項２５に記載の方法。
【請求項３１】
前記少なくとも１つの胆細管が、ラトランクリンＡ（ＬａｔＡ）を含む、および／またはカルシウムを含まない培地で前記細胞培養物をインキュベートすることによって、前記細胞培養物の肝細胞を溶解させることなく前記細胞培養物において破壊される、請求項２５に記載の方法。
【請求項３２】
少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質の活性が前記細胞培養物の肝細胞で阻害される、請求項２５に記載の方法。
【発明の詳細な説明】
【背景技術】
【０００１】
治療的な化学実体は、望ましくないことに肝臓での初回通過代謝によって動物の循環系からしばしば除去される。化学実体が肝細胞によって取り込まれ、胆細管を通して胆汁に排泄されるならば、その化学実体はその治療標的に決して到達しない。肝細胞に内因性である輸送タンパク質は、基質を、肝細胞の類洞膜を越えさらに胆細管の中へと移動させる役割を担う。胆細管は、肝細胞からの排泄成分を受け取り、動物体内からの除去のために胆汁を総胆管に輸送する、肝臓組織の中の構造である。したがって、基質の胆汁中排泄は、類洞膜を越える移行、細胞質を通る移動および細管膜を越える輸送が関与する複雑な過程である。
【０００２】
親薬物またはそれらの代謝産物の肝胆汁性排泄が薬物の全体的クリアランスでしばしば重要な役割を演ずることが分かったため、製薬業界は、この方式のクリアランスを予測するためのより良いｉｎ  ｖｉｔｒｏツールを探求せざるをえなくなった。この理由で、医薬としての使用のための化学実体の適合性の重要な決定因子は、それが胆汁中排泄を受ける程度、および他の化学実体の胆汁中排泄にそれが及ぼす影響の両方である。
【０００３】
当技術分野は、化学実体の胆管クリアランスについてのｉｎ  ｖｉｔｒｏアッセイの２つの一般的なタイプを教示している。第１のアッセイタイプは、肝細胞の２つの並行培養物を利用する２培養物アッセイフォーマットである（BI,  Yi-anら、「Use  of  cryopreserved  human  hepatocytes  in  sandwich  culture  to  measure  hepatobiliary  transport」、Drug  Metab  Dispos.、３４巻、９号、１６５８〜６５頁（２００６年）；ANSEDE,  John  H.ら、「An  In  Vitro  Assay  to  Assess  Transporter-Based  Cholestatic  Hepatotoxicity  Using  Sandwich-Cultured  Rat  Hepatocytes」、Drug  metabolism  and  Disposition、３８巻、２７６〜２８０頁（２０１０年））。第１の培養物では、肝細胞は正常な培養培地に曝露され、細管を形成し維持する。第２の培養物では、肝細胞は、カルシウムおよびマグネシウムを含まない培養培地などの、細管を破壊するように設計された培養培地に曝露される。次に化学実体を各培養物に曝露し、培養期間中、肝細胞と相互作用させる。次に、培養物を洗浄し、各培養物で細胞に会合している化学実体の量を評価する。第１の培養物では、細胞に会合している化学実体は、胆汁中排泄の後に細胞質に局在化するかまたは細管に存在する可能性がある。第２の培養物では、インタクトな細管がなく、したがって細胞に会合している化学実体はすべて細胞質に存在していなければならない。細胞質および細管（第１の培養物）に存在する化学実体の量から細胞質（第２の培養物）に存在する化学実体の量を引き算することによって、第１の細胞培養物の胆汁に排泄される化学実体の量を決定することが可能である。
２培養物アッセイフォーマットは、いくつかの欠点を有する。第１の欠点は、このアッセイフォーマットを使用して単一の胆汁中排泄データポイントを作成することが、初代肝細胞の２つの培養物を必要とするという単純な現実である。初代肝細胞は手に入れるのが困難であり、したがって、非常に高価である。したがって、より少ない初代肝細胞を使用して化学実体の胆汁中排泄を特徴付ける方法の必要性が、当技術分野にある。明らかに、１培養物方法はアッセイのために必要とされる初代肝細胞の数の５０％の低減を達成し、したがって、非常に望ましい。第２の欠点は、２培養物アッセイフォーマットでは、胆管蓄積でない２つの値、すなわち全細胞蓄積（細胞質および胆汁）および細胞質蓄積を測定し、次にこれらの値の間の差を計算することによって、化学実体の胆管蓄積が必然的に計算されることである。この２培養物方法を利用して行われる測定は、胆管蓄積の単一の直接測定よりも多くの固有の変動性を必然的に有する。胆管蓄積の直接測定は、２培養物アッセイフォーマットでは可能でない。
当技術分野は、化学実体の胆管クリアランスのための単一培養物ｉｎ  ｖｉｔｒｏアッセイも教示している（米国特許第７，６０４，９３４号）。しかし、以前に教示されたアッセイは間接的である。具体的には、それは、単一の培養物をマーカー化合物（放射標識化合物など）に曝露し、試験化学実体の存在下および非存在下での放射性マーカーの胆管蓄積を比較することに頼る。そのようなアッセイは、試験化学実体の存在下でのマーカーの胆管蓄積の低下は、試験化学実体がマーカー化合物によって使用されるものと類似の経路によって排泄されることを示すと仮定する。このアッセイフォーマットは、低い精度を含むいくつかの欠点を有する。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００４】
【特許文献１】米国特許第７，６０４，９３４号
【非特許文献】
【０００５】
【非特許文献１】BI,  Yi-anら、「Use  of  cryopreserved  human  hepatocytes  in  sandwich  culture  to  measure  hepatobiliary  transport」、Drug  Metab  Dispos.、３４巻、９号、１６５８〜６５頁（２００６年）
【非特許文献２】ANSEDE,  John  H.ら、「An  In  Vitro  Assay  to  Assess  Transporter-Based  Cholestatic  Hepatotoxicity  Using  Sandwich-Cultured  Rat  Hepatocytes」、Drug  metabolism  and  Disposition、３８巻、２７６〜２８０頁（２０１０年）
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
上の全てのおよび他の理由のために、候補治療剤などの化学実体の胆汁中排泄を評価する、新しくて効率的な方法の必要性が当技術分野にある。本発明は、これらのおよび他の必要性を満たす、新しくて自明でない方法を提供する。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明は、化学実体の胆汁中排泄を特徴付ける、新しくて改善されたｉｎ  ｖｉｔｒｏの方法を提供する。第１の態様では、本方法は、ａ）少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む細胞培養物を提供するステップ；ｂ）細胞培養物を第１の化学実体と、培養物の肝細胞による化学実体の取り込みを可能にするのに十分な時間、接触させるステップ；ｃ）肝細胞を溶解させることなく少なくとも１つの胆細管を破壊し、少なくとも１つの胆細管によって放出される第１の化学実体および／またはその代謝産物の量（あるならば）を検出するステップ；ならびにｄ）肝細胞を溶解させ、肝細胞によって放出される第１の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出するステップを含む。一部の実施形態では、少なくとも１つの洗浄ステップがステップａ）とｂ）の間、ステップｂ）とｃ）の間および／またはステップｃ）とｄ）の間に含まれる。
【０００８】
開示される方法の１つの特徴は、化学実体の胆管蓄積および化学実体の細胞質蓄積の両方が単一の肝細胞培養物、例えば組織培養プレートの単一のウェルを使用して測定されることである。驚くべきことに、および下で考察され、実施例で実証されるように、このアッセイフォーマットは精度が高く、再現性がある。
【０００９】
本方法の一部の実施形態では、細胞培養物は、固体基材の表面に配置される肝細胞および間質細胞を含む肝細胞−間質細胞共培養物である。
【００１０】
本方法の一部の実施形態では、ステップｃ）で少なくとも１つの胆細管によって放出される第１の化学実体および／またはその代謝産物の量は、ステップｄ）で肝細胞によって放出される第１の化学実体および／またはその代謝産物の量より多い。
【００１１】
本方法の一部の実施形態では、ステップｃ）で少なくとも１つの胆細管によって放出される第１の化学実体および／またはその代謝産物の量は、ステップｄ）で肝細胞によって放出される第１の化学実体および／またはその代謝産物の量より少ない。
【００１２】
本方法の一部の実施形態では、ステップｃ）および／またはｄ）における第１の化学実体および／またはその代謝産物の量は、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳを使用して検出される。
【００１３】
本方法の一部の実施形態では、第１の化学実体は、標識を含まない。
【００１４】
本方法の一部の実施形態では、少なくとも１つの胆細管は、ラトランクリンＡ（ＬａｔＡ）を含む、および／またはカルシウムを含まない培地で培養物をインキュベートすることによって、培養物の肝細胞を溶解させることなく破壊される。
【００１５】
一部の実施形態では、本方法は、細胞培養物で第１の化学実体について、固有の胆管クリアランス（ＣＬｂｉｌｅ）および／または胆汁中排泄指数（ＢＥＩ）を決定するステップをさらに含む。
【００１６】
一部の実施形態では、本方法は、細胞培養物で第１の化学実体について、固有の胆管クリアランス（ＣＬｂｉｌｅ）および／または胆汁中排泄指数（ＢＥＩ）を決定するステップをさらに含み；第１の化学実体のＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを対照化学実体のＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩと比較し、この比較に基づいて第１の化学実体の胆汁中排泄を特徴付けるステップをさらに含む。
【００１７】
本方法の一部の実施形態では、少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質の活性が、肝細胞で阻害される。
【００１８】
一部の実施形態では、本方法は、ステップｂ）で細胞培養物を第２の化学実体と接触させることをさらに含む。
【００１９】
一部の実施形態では、本方法は、ステップｂ）で細胞培養物を第２の化学実体と接触させることをさらに含み；本方法は、ステップｃ）で少なくとも１つの胆細管によって放出される第２の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出することをさらに含む。
【００２０】
一部の実施形態では、本方法は、ステップｂ）で細胞培養物を第２の化学実体と接触させることをさらに含み；本方法は、ステップｃ）で少なくとも１つの胆細管によって放出される第２の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出することをさらに含み；本方法は、ステップｄ）で肝細胞によって放出される第２の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出することをさらに含む。
【００２１】
第２の態様では、本方法は、ａ）少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む第１の細胞培養物を提供するステップであって、少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質の活性が第１の細胞培養物の肝細胞で阻害されるステップ；ｂ）第１の細胞培養物を第１の化学実体と接触させるステップ；ｃ）第１の細胞培養物の肝細胞を溶解させることなく第１の細胞培養物の少なくとも１つの胆細管を破壊し、少なくとも１つの胆細管によって放出される第１の化学実体および／またはその代謝産物の量（あるならば）を検出するステップ；ｄ）第１の細胞培養物の肝細胞を溶解させ、肝細胞によって放出される第１の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出するステップ；ｅ）少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む第２の細胞培養物を提供するステップであって、少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質の活性が第２の細胞培養物の肝細胞で阻害されないステップ；ｆ）第２の細胞培養物を第１の化学実体と接触させるステップ；ｇ）第２の細胞培養物の肝細胞を溶解させることなく第２の細胞培養物の少なくとも１つの胆細管を破壊し、少なくとも１つの胆細管によって放出される第１の化学実体および／またはその代謝産物の量（あるならば）を検出するステップ；ならびにｈ）第２の細胞培養物の肝細胞を溶解させ、肝細胞によって放出される第１の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出するステップを含む。一部の実施形態では、少なくとも１つの洗浄ステップがステップａ）とｂ）の間、ステップｂ）とｃ）の間および／またはステップｃ）とｄ）の間に含まれる。一部の実施形態では、少なくとも１つの洗浄ステップがステップｅ）とｆ）の間、ステップｆ）とｇ）の間および／またはステップｇ）とｈ）の間に含まれる。
【００２２】
本方法の一部の実施形態では、第１および第２の細胞培養物は、固体基材の表面に配置される肝細胞および間質細胞を含む肝細胞−間質細胞共培養物である。
【００２３】
一部の実施形態では、本方法は、第１の細胞培養物で第１の化学実体についてＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを決定するステップ、ならびに第２の細胞培養物で第１の化学実体についてＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを決定するステップをさらに含む。
【００２４】
一部の実施形態では、本方法は、第１の細胞培養物で第１の化学実体についてＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを決定するステップ、ならびに第２の細胞培養物で第１の化学実体についてＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを決定するステップをさらに含み；第１の化学実体のＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩは第２の細胞培養物におけるより第１の細胞培養物で低く、これにより、第１の化学実体の胆管クリアランスが少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質によって少なくとも一部媒介されることが示される。
【００２５】
一部の実施形態では、本方法は、第１の細胞培養物で第１の化学実体についてＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを決定するステップ、ならびに第２の細胞培養物で第１の化学実体についてＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを決定するステップをさらに含み；第１の化学実体のＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩは第２の細胞培養物におけるより第１の細胞培養物で低くはなく、これにより、第１の化学実体の胆管クリアランスが少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質によって少なくとも一部媒介されるわけではないことが示される。
【００２６】
本方法の一部の実施形態では、ステップｃ）および／またはｄ）および／またはｅ）および／またはｈ）における第１の化学実体および／またはその代謝産物の量は、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳを使用して検出される。
【００２７】
本方法の一部の実施形態では、ステップｂ）および／またはｆ）における第１の化学実体および／またはその代謝産物は、標識を含まない。
【００２８】
本方法の一部の実施形態では、少なくとも１つの胆細管は、ラトランクリンＡ（ＬａｔＡ）を含む、および／またはカルシウムを含まない培地で細胞培養物をインキュベートすることによって、細胞培養物の肝細胞を溶解させることなく第１および第２の細胞培養物において破壊される。
【００２９】
一部の実施形態では、本方法は、ステップｂ）および／またはｆ）で第１および／または第２の細胞培養物を第２の化学実体と接触させることをさらに含む。
【００３０】
一部の実施形態では、本方法は、ステップｂ）および／またはｆ）で第１および／または第２の細胞培養物を第２の化学実体と接触させることをさらに含み；ステップｃ）および／またはｇ）で少なくとも１つの胆細管によって放出される第２の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出することをさらに含む。
【００３１】
一部の実施形態では、本方法は、ステップｂ）および／またはｆ）で第１および／または第２の細胞培養物を第２の化学実体と接触させることをさらに含み；ステップｃ）および／またはｇ）で少なくとも１つの胆細管によって放出される第２の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出することをさらに含み；ステップｄ）および／またはｈ）で肝細胞によって放出される第２の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出することをさらに含む。
【００３２】
第３の態様では、本方法は、ａ）少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む細胞培養物を提供するステップ；ｂ）細胞培養物をマーカー化学実体および試験化学実体と同時に接触させるステップであって、マーカー化学実体が、決定されたＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを有する少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質の公知の基質であるステップ；ｃ）肝細胞を溶解させることなく少なくとも１つの胆細管を破壊し、少なくとも１つの胆細管によって放出されるマーカー化学実体および／またはその代謝産物の量を検出するステップ；ならびにｄ）肝細胞を溶解させ、肝細胞によって放出されるマーカー化学実体および／またはその代謝産物の量を検出するステップを含む。一部の実施形態では、少なくとも１つの洗浄ステップがステップａ）とｂ）の間、ステップｂ）とｃ）の間および／またはステップｃ）とｄ）の間に含まれる。
【００３３】
本方法の一部の実施形態では、細胞培養物は、固体基材の表面に配置される肝細胞および間質細胞を含む肝細胞−間質細胞共培養物である。
【００３４】
一部の実施形態では、本方法は、試験化学実体の存在下において肝細胞−間質細胞共培養物でマーカー化学実体についてＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを決定するステップをさらに含む。
【００３５】
一部の実施形態では、本方法は、試験化学実体の存在下において肝細胞−間質細胞共培養物でマーカー化学実体についてＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを決定するステップをさらに含み；マーカー化学実体のＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩは試験化学実体の非存在下においてより試験化学実体の存在下において低く、これにより、試験化学実体の胆管クリアランスが少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質によって少なくとも一部媒介されることが示される。
【００３６】
一部の実施形態では、本方法は、試験化学実体の存在下において肝細胞−間質細胞共培養物でマーカー化学実体についてＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを決定するステップをさらに含み；マーカー化学実体のＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩは試験化学実体の非存在下においてより試験化学実体の存在下において低くはなく、これにより、試験化学実体の胆管クリアランスが少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質によって少なくとも一部媒介されるわけではないことが示される。
【００３７】
本方法の一部の実施形態では、ステップｃ）および／またはｄ）におけるマーカー化学実体および／またはその代謝産物の量は、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳを使用して検出される。
【００３８】
本方法の一部の実施形態では、少なくとも１つの胆細管は、ラトランクリンＡ（ＬａｔＡ）を含む、および／またはカルシウムを含まない培地で細胞培養物をインキュベートすることによって、細胞培養物の肝細胞を溶解させることなく細胞培養物において破壊される。
【００３９】
本方法の一部の実施形態では、少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質の活性が、細胞培養物の肝細胞で阻害される。
【図面の簡単な説明】
【００４０】
【図１】図１は、胆汁中のタウロコール酸塩の蓄積を示す。グラフは、胆汁に分泌される基質だけを含有する収集物４試料から得られたタウロコール酸塩の濃度を示す。バーは、Ｃａ−緩衝液またはＬａｔＡ緩衝液で細管を破壊することによって得られた試料を表す。全ての濃度は、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳを使用して決定した。
【００４１】
【図２】図２は、細胞中のタウロコール酸塩の蓄積を示す。グラフは、細胞に蓄積される基質だけを含有する収集物５試料から得られたタウロコール酸塩の濃度を示す。バーは、収集物４においてＣａ−緩衝液またはＬａｔＡ緩衝液で細管を破壊した後に得られた試料を表す。全ての濃度は、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳを使用して決定した。
【００４２】
【図３】図３は、ＣＳＡによる阻害後の胆汁中のタウロコール酸塩の蓄積を示す。グラフは、輸送体阻害剤ＣＳＡとのインキュベーションの後の胆汁に蓄積される基質だけを含有する収集物４試料から得られたタウロコール酸塩の濃度を示す。バーは、収集物４において、Ｃａ−緩衝液もしくはＬａｔＡ緩衝液で細管を破壊した後、またはＣＳＡとのインキュベーションおよびＣａ−緩衝液による破壊の後に得られた試料を表す。全ての濃度は、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳを使用して決定した。
【００４３】
【図４】図４は、肝細胞−間質細胞共培養物で成長させた初代ヒト肝細胞によるタウロコール酸塩の胆管取り込みを示す。胆汁中の蓄積および細胞中の蓄積は、共培養プレートの単一のウェルで別々に測定した。胆汁蓄積および細胞蓄積の測定値は、グラフの左側のバーの別々に陰影をつけた部分として示し、グラフの右側のバーに示す測定した胆汁蓄積と比較する。タウロコール酸塩の６７％のＢＥＩを計算するために、測定値を使用した。
【００４４】
【図５】図５は、培養したヒト肝細胞によるエストラジオール−グルクロニドの胆管取り込みを示す。胆汁中の蓄積および細胞中の蓄積は、共培養プレートの単一のウェルで別々に測定した。胆汁蓄積および細胞蓄積の測定値は、グラフの左側のバーの別々に陰影をつけた部分として示し、グラフの右側のバーに示す測定した胆汁蓄積と比較する。エストラジオール−グルクロニドの４０％のＢＥＩを計算するために、測定値を使用した。
【００４５】
【図６】図６は、培養したヒト肝細胞によるジゴキシンの胆管取り込みを示す。胆汁中の蓄積および細胞中の蓄積は、共培養プレートの単一のウェルで別々に測定した。胆汁蓄積および細胞蓄積の測定値は、グラフの左側のバーの別々に陰影をつけた部分として示し、グラフの右側のバーに示す測定した胆汁蓄積と比較する。ジゴキシンの４１％のＢＥＩを計算するために、測定値を使用した。
【００４６】
【図７】図７は、培養したヒト肝細胞によるロスバスタチンの胆管取り込みを示す。胆汁中の蓄積および細胞中の蓄積は、共培養プレートの単一のウェルで別々に測定した。胆汁蓄積および細胞蓄積の測定値は、グラフの左側のバーの別々に陰影をつけた部分として示し、グラフの右側のバーに示す測定した胆汁蓄積と比較する。ロスバスタチンの５２％のＢＥＩを計算するために、測定値を使用した。
【００４７】
【図８】図８は、培養したヒト肝細胞によるプラバスタチンの胆管取り込みを示す。胆汁中の蓄積および細胞中の蓄積は、共培養プレートの単一のウェルで別々に測定した。胆汁蓄積および細胞蓄積の測定値は、グラフの左側のバーの別々に陰影をつけた部分として示し、グラフの右側のバーに示す測定した胆汁蓄積と比較する。プラバスタチンの１４％のＢＥＩを計算するために、測定値を使用した。
【００４８】
【図９】図９は、培養したラット肝細胞によるタウロコール酸塩の胆管取り込みを示す。胆汁中の蓄積および細胞中の蓄積は、共培養プレートの単一のウェルで別々に測定した。胆汁蓄積および細胞蓄積の測定値は、グラフの左側のバーの別々に陰影をつけた部分として示し、グラフの右側のバーに示す測定した胆汁蓄積と比較する。タウロコール酸塩の６０％のＢＥＩを計算するために、測定値を使用した。
【００４９】
【図１０】図１０は、培養したラット肝細胞によるロスバスタチンの胆管取り込みを示す。胆汁中の蓄積および細胞中の蓄積は、共培養プレートの単一のウェルで別々に測定した。胆汁蓄積および細胞蓄積の測定値は、グラフの左側のバーの別々に陰影をつけた部分として示し、グラフの右側のバーに示す測定した胆汁蓄積と比較する。ロスバスタチンの７２％のＢＥＩを計算するために、測定値を使用した。
【００５０】
【図１１】図１１は、培養したラット肝細胞によるエストラジオール−グルクロニドの胆管取り込みを示す。胆汁中の蓄積および細胞中の蓄積は、共培養プレートの単一のウェルで別々に測定した。胆汁蓄積および細胞蓄積の測定値は、グラフの左側のバーの別々に陰影をつけた部分として示し、グラフの右側のバーに示す測定した胆汁蓄積と比較する。エストラジオール−グルクロニドの４５％のＢＥＩを計算するために、測定値を使用した。
【００５１】
【図１２】図１２は、培養したラット肝細胞によるジゴキシンの胆管取り込みを示す。胆汁中の蓄積および細胞中の蓄積は、共培養プレートの単一のウェルで別々に測定した。胆汁蓄積および細胞蓄積の測定値は、グラフの左側のバーの別々に陰影をつけた部分として示し、グラフの右側のバーに示す測定した胆汁蓄積と比較する。ジゴキシンの６７％のＢＥＩを計算するために、測定値を使用した。
【００５２】
【図１３】図１３は、培養したラット肝細胞によるプラバスタチンの胆管取り込みを示す。胆汁中の蓄積および細胞中の蓄積は、共培養プレートの単一のウェルで別々に測定した。胆汁蓄積および細胞蓄積の測定値は、グラフの左側のバーの別々に陰影をつけた部分として示し、グラフの右側のバーに示す測定した胆汁蓄積と比較する。プラバスタチンの５８％のＢＥＩを計算するために、測定値を使用した。
【００５３】
【図１４】図１４は、タウロコール酸塩のＢＳＥＰ媒介輸送のシクロスポリンＡによる阻害を示す。データは、この系における０．４６ｍＭのＩＣ５０値を示す。
【００５４】
【図１５】図１５は、ロスバスタチンのＢＣＲＰ媒介輸送のリトナビルによる阻害を示す。データは、この系における０．５０ｍＭのＩＣ５０値を示す。
【００５５】
【図１６】図１６は、タウロコール酸塩のＢＳＥＰ媒介輸送およびロスバスタチンのＢＣＲＰ媒介輸送のエリスロマイシン−エストレートによる阻害を示す。この実験では、ＢＳＥＰは完全に阻害された。
【００５６】
【図１７】図１７は、肝細胞−間質細胞共培養物で成長させた初代ヒト肝細胞によるタウロコール酸塩の胆管取り込みを測定した、３つの独立した実験の結果を比較する。胆汁中の蓄積および細胞中の蓄積は、共培養プレートの単一のウェルで別々に測定した。胆汁蓄積および細胞蓄積の測定値は、単一のバーの別々に陰影をつけた部分として示す。エラーバーは、単一の標準偏差を表す。実験のあらゆるペアワイズ組合せの分析は、結果の変動が統計的に有意でないことを示した。
【００５７】
【図１８】図１８は、肝細胞−間質細胞共培養物で成長させた初代ヒト肝細胞によるプラバスタチンの胆管取り込みを測定した、３つの独立した実験の結果を比較する。胆汁中の蓄積および細胞中の蓄積は、共培養プレートの単一のウェルで別々に測定した。胆汁蓄積および細胞蓄積の測定値は、単一のバーの別々に陰影をつけた部分として示す。エラーバーは、単一の標準偏差を表す。実験のあらゆるペアワイズ組合せの分析は、結果の変動が統計的に有意でないことを示した。
【発明を実施するための形態】
【００５８】
本発明のｉｎ  ｖｉｔｒｏの方法は、少なくとも１つの毛細胆管を形成した培養肝細胞を利用する。本方法の特徴は、本発明の方法での肝細胞の単一の培養物から２つの異なる直接的な測定が得られることである。第１に、培養物の毛細胆管に排泄される化学実体の量が、直接的に測定される。次に、肝細胞の細胞質に移入されるが、毛細胆管に排泄されない化学実体の量が直接的に測定される。直接的な測定および両方の測定のための単一の培養物の使用の特徴は、本発明の方法を先行技術の方法と区別し、この開示を考慮すると当業者に明らかになるいくつかの利点を提供する。
Ａ．単一培養物胆汁中排泄アッセイ
【００５９】
ある特定の実施形態では、本発明の方法は、ａ）少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む細胞培養物を提供するステップ；ｂ）細胞培養物を第１の化学実体と、培養物の肝細胞による化学実体の取り込みを可能にするのに十分な時間、接触させるステップ；ｃ）肝細胞を溶解させることなく少なくとも１つの胆細管を破壊し、少なくとも１つの胆細管によって放出される第１の化学実体および／またはその代謝産物の量（あるならば）を検出するステップ；ならびにｄ）肝細胞を溶解させ、肝細胞によって放出される第１の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出するステップを含む。本方法一部の実施形態では、少なくとも１つの洗浄ステップがステップａ）とｂ）の間、ステップｂ）とｃ）の間および／またはステップｃ）とｄ）の間に含まれる。
【００６０】
一般的に、ステップｂ）は、培養培地で第１の化学実体を希釈し、ステップａ）で使用した培養培地を希釈した第１の化学実体を含む培地で置き換えることによって実行される。取り込みを可能にするのに十分な時間の後、ステップｂ）の培養培地を培養物から除去する。肝細胞は一般的に基質に接着しているので、これは、培養培地を除去し、次に新しい培地を加えるために、標準の組織培養吸引およびピペット操作技術または同等物を使用して一般的に達成される。当然ながら、当業者は、任意の適する方法を使用することができることを理解する。本方法のこのステージで、第１の化学実体を含まない培養培地の１回または複数回の交換によって、例えば１回の洗浄によって、２回の洗浄によってまたは３回の洗浄によって肝細胞培養物を洗浄することができる。
【００６１】
一部の実施形態では、ステップｂ）に続いて、培養期間の間、少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む細胞培養物を新鮮な培地でインキュベートし、次に培養培地を収集する。この培養培地は、培養培地中の第１の化学実体の蓄積について分析することができる。この培養条件下で蓄積する第１の化学実体は、肝細胞の基底面輸送過程から生じるものであり、したがって、本方法の実施形態へのこのステップの組入れは、少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む単一の細胞培養物で、化学実体の基底面輸送、胆管蓄積および細胞質蓄積の測定を可能にする。
【００６２】
ステップｃ）では、少なくとも１つの胆細管は、当技術分野で公知の任意の適する技術によって破壊される。例示的な方法は、培養培地を、カルシウムを含まないまたはカルシウムおよびマグネシウムを含まない培地と交換することによる。カルシウムを含まないまたはカルシウムおよびマグネシウムを含まない培地でのインキュベーションは密着結合を破壊して、胆細管の内容物を培養培地に放出させる。別の例示的な方法は、培養培地をＬａｔＡの有効濃度を含む培地と交換することによる。ＬａｔＡの有効濃度を含む培地でのインキュベーションは密着結合を破壊して、胆細管の内容物を培養培地に放出させる。ステップｃ）での検出は、一般的に、細管の破壊の後に培地を収集すること、および収集した培地に存在する第１の化学実体の特徴付けによる。検出は、定性的および／または定量的であってよい。好ましい実施形態では、検出方法は、第１の化学実体を検出するためにＬＣ−ＭＳ／ＭＳの使用を含む。一部の実施形態では、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳは、少なくとも１つの胆細管の破壊の後に培地に存在する第１の化学実体の量を測定するために使用される。一部の実施形態では、細管から放出される物質を含む培地は、例えば、濾過、クロマトグラフィー、遠心分離および蒸発の少なくとも１つを含むことができるステップを使用して、望ましくない成分を除去するように処理される。
【００６３】
ステップｄ）では、残りの細胞は、当技術分野で公知の任意の適する技術によって溶解される。例示的な方法は、脱イオン水への曝露による。ステップｄ）での検出は、一般的に、残りの細胞の溶解の後に培地を収集すること、および収集した培地に存在する第１の化学実体の特徴付けによる。検出は、定性的および／または定量的であってよい。好ましい実施形態では、検出方法は、第１の化学実体を検出するためにＬＣ−ＭＳ／ＭＳの使用を含む。一部の実施形態では、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳは、細胞溶解の後に培地に存在する第１の化学実体の量を測定するために使用される。一部の実施形態では、溶解細胞から放出される物質を含む培地は、例えば、濾過、クロマトグラフィー、遠心分離および蒸発の少なくとも１つを含むことができるステップを使用して、望ましくない成分を除去するように処理される。
【００６４】
少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む細胞培養物は、任意の適する肝細胞培養物であってよい。一般的に、少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む細胞培養物は、肝臓スライスを含まない培養物構成である。少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む例示的な細胞培養物は、本開示のこの発明を実施するための形態のセクションのセクションＤ：「胆細管を形成している肝細胞を含む培養物」に記載される。この開示の方法では、胆細管を形成している肝細胞を含む任意の培養物を使用することができる。
【００６５】
本方法の一部の実施形態では、細胞培養物は、固体基材の表面に配置される肝細胞および間質細胞を含む肝細胞−間質細胞共培養物である。
【００６６】
本方法の一部の実施形態では、ステップｃ）で少なくとも１つの胆細管によって放出される第１の化学実体および／またはその代謝産物の量は、ステップｄ）で肝細胞によって放出される第１の化学実体および／またはその代謝産物の量より多い。
【００６７】
本方法の一部の実施形態では、ステップｃ）で少なくとも１つの胆細管によって放出される第１の化学実体および／またはその代謝産物の量は、ステップｄ）で肝細胞によって放出される第１の化学実体および／またはその代謝産物の量より少ない。
【００６８】
本方法の一部の実施形態では、ステップｃ）および／またはｄ）における第１の化学実体および／またはその代謝産物の量は、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳを使用して検出される。本方法の一部の実施形態では、ステップｃ）およびｄ）における第１の化学実体および／またはその代謝産物の量は、同等のＬＣ−ＭＳ／ＭＳ技術を使用して検出される。
【００６９】
本方法の一部の実施形態では、第１の化学実体は、標識を含まない。本明細書で使用する場合、「標識」は、アッセイで検出することができるシグナルを放出する部分である。例示的な標識は、蛍光性部分および放射性部分である。
【００７０】
一部の実施形態では、本方法は化学実体の標識部分からのシグナルを検出するステップを含まない。
【００７１】
本方法の一部の実施形態では、少なくとも１つの胆細管は、ラトランクリンＡ（ＬａｔＡ）を含む、および／またはカルシウムを含まない培地で培養物をインキュベートすることによって、培養物の肝細胞を溶解させることなく破壊される。
【００７２】
一部の実施形態では、本方法は、細胞培養物で第１の化学実体について、固有の胆管クリアランス（ＣＬｂｉｌｅ）および／または胆汁中排泄指数（ＢＥＩ）を決定するステップをさらに含む。
【００７３】
一部の実施形態では、本方法は、細胞培養物で第１の化学実体について、固有の胆管クリアランス（ＣＬｂｉｌｅ）および／または胆汁中排泄指数（ＢＥＩ）を決定するステップをさらに含み；第１の化学実体のＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを対照化学実体のＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩと比較し、この比較に基づいて第１の化学実体の胆汁中排泄を特徴付けるステップをさらに含む。
【００７４】
本方法の一部の実施形態では、少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質の活性が、肝細胞で阻害される。一部の実施形態では、少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質は、少なくとも１つの類洞膜輸送タンパク質および少なくとも１つの胆膜輸送タンパク質から選択される。一部の実施形態では、少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質は、ＮＴＣＰ、ＯＡＴＰ１Ａ１、ＯＡＴＰ１Ａ２、ＯＡＴＰ１Ａ４、ＯＡＴＰＢ２、ＯＡＴＰ１Ｂ１、ＯＡＴＰ１Ｂ３、ＯＡＴＰ２Ｂ１、ＯＡＴ２、ＯＡＴ３、ＯＡＴ４、ＯＣＴ１、ＯＣＴ３、ＯＣＴＮ１、ＯＣＴＮ２、ＢＳＥＰ、ＭＲＰ１、ＭＲＰ２、ＭＲＰ３、ＭＲＰ４、ＭＲＰ５、ＭＲＰ６、ＭＲＰ７、ＭＲＰ８、ＭＲＰ９、ＭＤＲ１、ＭＤＲ１Ａ／Ｂ、ＭＤＲ２、ＭＤＲ３、ＢＣＲＰ、ＡＢＣＧ５、ＡＢＣＧ８およびＦＩＣ−１から選択される。
【００７５】
一部の実施形態では、本方法は、ステップｂ）で細胞培養物を第２の化学実体と接触させることをさらに含む。
【００７６】
一部の実施形態では、本方法は、ステップｂ）で細胞培養物を第２の化学実体と接触させることをさらに含み；本方法は、ステップｃ）で少なくとも１つの胆細管によって放出される第２の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出することをさらに含む。
【００７７】
一部の実施形態では、本方法は、ステップｂ）で細胞培養物を第２の化学実体と接触させることをさらに含み；本方法は、ステップｃ）で少なくとも１つの胆細管によって放出される第２の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出することをさらに含み；本方法は、ステップｄ）で肝細胞によって放出される第２の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出することをさらに含む。
Ｂ．肝細胞輸送体阻害による単一培養物胆汁中排泄アッセイ
【００７８】
ある特定の実施形態では、本発明の方法は、第１の化学実体の胆汁中排泄に及ぼす少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質の阻害の影響を特徴付けるために、（１）少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質の活性が肝細胞で阻害される培養肝細胞での第１の化学実体の胆汁中排泄を、（２）少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質の活性が肝細胞で阻害されない培養肝細胞での第１の化学実体の胆汁中排泄を比較するステップを含む。例えば、そのような方法は、ａ）少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む第１の細胞培養物を提供するステップであって、少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質の活性が第１の細胞培養物の肝細胞で阻害されるステップ；ｂ）第１の細胞培養物を第１の化学実体と接触させるステップ；ｃ）第１の細胞培養物の肝細胞を溶解させることなく第１の細胞培養物の少なくとも１つの胆細管を破壊し、少なくとも１つの胆細管によって放出される第１の化学実体および／またはその代謝産物の量（あるならば）を検出するステップ；ｄ）第１の細胞培養物の肝細胞を溶解させ、肝細胞によって放出される第１の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出するステップ；ｅ）少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む第２の細胞培養物を提供するステップであって、少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質の活性が第２の細胞培養物の肝細胞で阻害されないステップ；ｆ）第２の細胞培養物を第１の化学実体と接触させるステップ；ｇ）第２の細胞培養物の肝細胞を溶解させることなく第２の細胞培養物の少なくとも１つの胆細管を破壊し、少なくとも１つの胆細管によって放出される第１の化学実体および／またはその代謝産物の量（あるならば）を検出するステップ；ならびにｈ）第２の細胞培養物の肝細胞を溶解させ、肝細胞によって放出される第１の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出するステップを含むことができる。一部の実施形態では、少なくとも１つの洗浄ステップがステップａ）とｂ）の間、ステップｂ）とｃ）の間および／またはステップｃ）とｄ）の間に含まれる。一部の実施形態では、少なくとも１つの洗浄ステップがステップｅ）とｆ）の間、ステップｆ）とｇ）の間および／またはステップｇ）とｈ）の間に含まれる。
【００７９】
一般的に、ステップｂ）およびｆ）は、培養培地で第１の化学実体を希釈し、ステップａ）またはｅ）で使用した培養培地を希釈した第１の化学実体を含む培地で置き換えることによって実行される。取り込みを可能にするのに十分な時間の後、ステップｂ）またはｆ）の培養培地を培養物から除去する。肝細胞は一般的に基質に接着しているので、これは、培養培地を除去し、次に新しい培地を加えるために、標準の組織培養吸引およびピペット操作技術または同等物を使用して一般的に達成される。当然ながら、当業者は、任意の適する方法を使用することができることを理解する。本方法のこのステージで、第１の化学実体を含まない培養培地の１回または複数回の交換によって、例えば１回の洗浄によって、２回の洗浄によってまたは３回の洗浄によって肝細胞培養物を洗浄することができる。
【００８０】
一部の実施形態では、ステップｂ）および／またはｆ）に続いて、培養期間の間、少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む細胞培養物を新鮮な培地でインキュベートし、次に培養培地を収集する。この培養培地は、培養培地中の第１の化学実体の蓄積について分析することができる。この培養条件下で蓄積する第１の化学実体は、肝細胞の基底面輸送過程から生じるものであり、したがって、本方法の実施形態へのこのステップの組入れは、少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む単一の細胞培養物で、化学実体の基底面輸送、胆管蓄積および細胞質蓄積の測定を可能にする。
【００８１】
ステップｃ）およびｆ）では、少なくとも１つの胆細管は、当技術分野で公知の任意の適する技術によって破壊される。例示的な方法は、培養培地を、カルシウムを含まないまたはカルシウムおよびマグネシウムを含まない培地と交換することによる。カルシウムを含まないまたはカルシウムおよびマグネシウムを含まない培地でのインキュベーションは密着結合を破壊して、胆細管の内容物を培養培地に放出させる。別の例示的な方法は、培養培地をＬａｔＡの有効濃度を含む培地と交換することによる。ＬａｔＡの有効濃度を含む培地でのインキュベーションは密着結合を破壊して、胆細管の内容物を培養培地に放出させる。ステップｃ）およびｆ）での検出は、一般的に、細管の破壊の後に培地を収集すること、および収集した培地に存在する第１の化学実体の特徴付けによる。検出は、定性的および／または定量的であってよい。好ましい実施形態では、検出方法は、第１の化学実体を検出するためにＬＣ−ＭＳ／ＭＳの使用を含む。一部の実施形態では、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳは、少なくとも１つの胆細管の破壊の後に培地に存在する第１の化学実体の量を測定するために使用される。一部の実施形態では、細管から放出される物質を含む培地は、例えば、濾過、クロマトグラフィーおよび遠心分離の少なくとも１つを含むことができるステップを使用して、望ましくない成分を除去するように処理される。
【００８２】
ステップｄ）およびｈ）では、残りの細胞は、当技術分野で公知の任意の適する技術によって溶解される。例示的な方法は、脱イオン水への曝露による。ステップｄ）およびｈ）での検出は、一般的に、残りの細胞の溶解の後に培地を収集すること、および収集した培地に存在する第１の化学実体の特徴付けによる。検出は、定性的および／または定量的であってよい。好ましい実施形態では、検出方法は、第１の化学実体を検出するためにＬＣ−ＭＳ／ＭＳの使用を含む。一部の実施形態では、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳは、細胞溶解の後に培地に存在する第１の化学実体の量を測定するために使用される。一部の実施形態では、溶解細胞から放出される物質を含む培地は、例えば、濾過、クロマトグラフィーおよび遠心分離の少なくとも１つを含むことができるステップを使用して、望ましくない成分を除去するように処理される。
【００８３】
少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む細胞培養物は、任意の適する肝細胞培養物であってよい。一般的に、少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む細胞培養物は、肝臓スライスを含まない構成の培養物である。少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む例示的な細胞培養物は、本開示のこの発明を実施するための形態のセクションのセクションＤ：「胆細管を形成している肝細胞を含む培養物」に記載される。この開示の方法では、胆細管を形成している肝細胞を含む任意の培養物を使用することができる。
【００８４】
本方法の一部の実施形態では、第１および第２の細胞培養物は、固体基材の表面に配置される肝細胞および間質細胞を含む肝細胞−間質細胞共培養物である。
【００８５】
一部の実施形態では、本方法は、第１の細胞培養物で第１の化学実体についてＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを決定するステップ、ならびに第２の細胞培養物で第１の化学実体についてＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを決定するステップをさらに含む。
【００８６】
一部の実施形態では、本方法は、第１の細胞培養物で第１の化学実体についてＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを決定するステップ、ならびに第２の細胞培養物で第１の化学実体についてＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを決定するステップをさらに含み；第１の化学実体のＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩは第２の細胞培養物におけるより第１の細胞培養物で低く、これにより、第１の化学実体の胆管クリアランスが少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質によって少なくとも一部媒介されることが示される。
【００８７】
一部の実施形態では、本方法は、第１の細胞培養物で第１の化学実体についてＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを決定するステップ、ならびに第２の細胞培養物で第１の化学実体についてＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを決定するステップをさらに含み；第１の化学実体のＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩは第２の細胞培養物におけるより第１の細胞培養物で低くはなく、これにより、第１の化学実体の胆管クリアランスが少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質によって少なくとも一部媒介されるわけではないことが示される。
【００８８】
本方法の一部の実施形態では、ステップｃ）および／またはｄ）および／またはｅ）および／またはｈ）における第１の化学実体および／またはその代謝産物の量は、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳを使用して検出される。本方法の一部の実施形態では、ステップｃ）およびｄ）およびｇ）およびｈ）における第１の化学実体および／またはその代謝産物の量は、同等のＬＣ−ＭＳ／ＭＳ技術を使用して検出される。
【００８９】
本方法の一部の実施形態では、ステップｂ）および／またはｆ）における第１の化学実体および／またはその代謝産物は、標識を含まない。本明細書で使用する場合、「標識」は、アッセイで検出することができるシグナルを放出する部分である。例示的な標識は、蛍光性部分および放射性部分である。
【００９０】
一部の実施形態では、本方法は化学実体の標識部分からのシグナルを検出するステップを含まない。
【００９１】
本方法の一部の実施形態では、少なくとも１つの胆細管は、ラトランクリンＡ（ＬａｔＡ）を含む、および／またはカルシウムを含まない培地で細胞培養物をインキュベートすることによって、細胞培養物の肝細胞を溶解させることなく第１および第２の細胞培養物において破壊される。
【００９２】
一部の実施形態では、本方法は、ステップｂ）および／またはｆ）で第１および／または第２の細胞培養物を第２の化学実体と接触させることをさらに含む。
【００９３】
一部の実施形態では、本方法は、ステップｂ）および／またはｆ）で第１および／または第２の細胞培養物を第２の化学実体と接触させることをさらに含み；ステップｃ）および／またはｇ）で少なくとも１つの胆細管によって放出される第２の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出することをさらに含む。
【００９４】
一部の実施形態では、本方法は、ステップｂ）および／またはｆ）で第１および／または第２の細胞培養物を第２の化学実体と接触させることをさらに含み；ステップｃ）および／またはｇ）で少なくとも１つの胆細管によって放出される第２の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出することをさらに含み；ステップｄ）および／またはｈで肝細胞によって放出される第２の化学実体および／またはその代謝産物の量を検出することをさらに含む。
【００９５】
本方法の一部の実施形態では、少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質は、少なくとも１つの類洞膜輸送タンパク質および少なくとも１つの胆膜輸送タンパク質から選択される。一部の実施形態では、少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質は、ＮＴＣＰ、ＯＡＴＰ１Ａ１、ＯＡＴＰ１Ａ２、ＯＡＴＰ１Ａ４、ＯＡＴＰＢ２、ＯＡＴＰ１Ｂ１、ＯＡＴＰ１Ｂ３、ＯＡＴＰ２Ｂ１、ＯＡＴ２、ＯＡＴ３、ＯＡＴ４、ＯＣＴ１、ＯＣＴ３、ＯＣＴＮ１、ＯＣＴＮ２、ＢＳＥＰ、ＭＲＰ１、ＭＲＰ２、ＭＲＰ３、ＭＲＰ４、ＭＲＰ５、ＭＲＰ６、ＭＲＰ７、ＭＲＰ８、ＭＲＰ９、ＭＤＲ１、ＭＤＲ１Ａ／Ｂ、ＭＤＲ２、ＭＤＲ３、ＢＣＲＰ、ＡＢＣＧ５、ＡＢＣＧ８およびＦＩＣ−１から選択される。
Ｃ．マーカー化学実体による単一培養物胆汁中排泄アッセイ
【００９６】
ある特定の実施形態では、この開示の方法は、少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む細胞培養物をマーカー化学実体および試験化学実体に同時に曝露するステップ、ならびに試験化学実体の胆汁中排泄を特徴付けるために試験化学実体の存在下でマーカー化学実体の胆汁中排泄を特徴付けるステップを含む。特に、これらの方法は、マーカー化学実体および試験化学実体による一般的な輸送体の使用の検出を可能にする。
【００９７】
例えば、そのような方法は、ａ）少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む細胞培養物を提供するステップ；ｂ）細胞培養物をマーカー化学実体および試験化学実体と同時に接触させるステップであって、マーカー化学実体が、決定されたＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを有する少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質の公知の基質であるステップ；ｃ）肝細胞を溶解させることなく少なくとも１つの胆細管を破壊し、少なくとも１つの胆細管によって放出されるマーカー化学実体および／またはその代謝産物の量を検出するステップ；ならびにｄ）肝細胞を溶解させ、肝細胞によって放出されるマーカー化学実体および／またはその代謝産物の量を検出するステップを含むことができる。一部の実施形態では、少なくとも１つの洗浄ステップがステップａ）とｂ）の間、ステップｂ）とｃ）の間および／またはステップｃ）とｄ）の間に含まれる。
【００９８】
一般的に、ステップｂ）は、培養培地でマーカー化学実体および試験化学実体を希釈し、ステップａ）で使用した培養培地を希釈したマーカー化学実体および試験化学実体を含む培地で置き換えることによって実行される。取り込みを可能にするのに十分な時間の後、ステップｂ）の培養培地を培養物から除去する。肝細胞は一般的に基質に接着しているので、これは、培養培地を除去し、次に新しい培地を加えるために、標準の組織培養吸引およびピペット操作技術または同等物を使用して一般的に達成される。当然ながら、当業者は、任意の適する方法を使用することができることを理解する。本方法のこのステージで、マーカー化学実体および試験化学実体を含まない培養培地の１回または複数回の交換によって、例えば１回の洗浄によって、２回の洗浄によってまたは３回の洗浄によって肝細胞培養物を洗浄することができる。本方法の一部の実施形態では、試験化学実体による輸送体のプレロードを可能にするために、ステップｂ）は、培養物を試験化学実体と接触させ、マーカー化学実体と接触させないステップの後にくる。
【００９９】
ステップｃ）では、少なくとも１つの胆細管は、当技術分野で公知の任意の適する技術によって破壊される。例示的な方法は、培養培地を、カルシウムを含まないまたはカルシウムおよびマグネシウムを含まない培地と交換することによる。カルシウムを含まないまたはカルシウムおよびマグネシウムを含まない培地でのインキュベーションは密着結合を破壊して、胆細管の内容物を培養培地に放出させる。別の例示的な方法は、培養培地をＬａｔＡの有効濃度を含む培地と交換することによる。ＬａｔＡの有効濃度を含む培地でのインキュベーションは密着結合を破壊して、胆細管の内容物を培養培地に放出させる。ステップｃ）での検出は、一般的に、細管の破壊の後に培地を収集すること、および収集した培地に存在するマーカー化学実体の特徴付けによる。検出は、定性的および／または定量的であってよい。好ましい実施形態では、検出方法は、第１の化学実体を検出するためにＬＣ−ＭＳ／ＭＳの使用を含む。一部の実施形態では、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳは、少なくとも１つの胆細管の破壊の後に培地に存在するマーカー化学実体の量を測定するために使用される。一部の実施形態では、細管から放出される物質を含む培地は、例えば、濾過、クロマトグラフィーおよび遠心分離の少なくとも１つを含むことができるステップを使用して、望ましくない成分を除去するように処理される。
【０１００】
ステップｄ）では、残りの細胞は、当技術分野で公知の任意の適する技術によって溶解される。例示的な方法は、脱イオン水への曝露による。ステップｄ）での検出は、一般的に、残りの細胞の溶解の後に培地を収集すること、および収集した培地に存在するマーカー化学実体の特徴付けによる。検出は、定性的および／または定量的であってよい。好ましい実施形態では、検出方法は、マーカー化学実体を検出するためにＬＣ−ＭＳ／ＭＳの使用を含む。一部の実施形態では、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳは、細胞溶解の後に培地に存在するマーカー化学実体の量を測定するために使用される。一部の実施形態では、溶解細胞から放出される物質を含む培地は、例えば、濾過、クロマトグラフィーおよび遠心分離の少なくとも１つを含むことができるステップを使用して、望ましくない成分を除去するように処理される。
【０１０１】
少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む細胞培養物は、任意の適する肝細胞培養物であってよい。一般的に、少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む細胞培養物は、肝臓スライスを含まない培養物構成である。少なくとも１つの胆細管を形成している肝細胞を含む例示的な細胞培養物は、本開示のこの発明を実施するための形態のセクションのセクションＤ：「胆細管を形成している肝細胞を含む培養物」に記載される。この開示の方法では、胆細管を形成している肝細胞を含む任意の培養物を使用することができる。
【０１０２】
本方法の一部の実施形態では、細胞培養物は、固体基材の表面に配置される肝細胞および間質細胞を含む肝細胞−間質細胞共培養物である。
【０１０３】
一部の実施形態では、本方法は、試験化学実体の存在下において肝細胞−間質細胞共培養物でマーカー化学実体についてＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを決定するステップをさらに含む。
【０１０４】
一部の実施形態では、本方法は、試験化学実体の存在下において肝細胞−間質細胞共培養物でマーカー化学実体についてＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを決定するステップをさらに含み；マーカー化学実体のＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩは試験化学実体の非存在下においてより試験化学実体の存在下において低く、これにより、試験化学実体の胆管クリアランスが少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質によって少なくとも一部媒介されることが示される。
【０１０５】
一部の実施形態では、本方法は、試験化学実体の存在下において肝細胞−間質細胞共培養物でマーカー化学実体についてＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩを決定するステップをさらに含み；マーカー化学実体のＣＬｂｉｌｅおよび／またはＢＥＩは試験化学実体の非存在下においてより試験化学実体の存在下において低くはなく、これにより、試験化学実体の胆管クリアランスが少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質によって少なくとも一部媒介されるわけではないことが示される。
【０１０６】
本方法の一部の実施形態では、ステップｃ）および／またはｄ）におけるマーカー化学実体および／またはその代謝産物の量は、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳを使用して検出される。本方法の一部の実施形態では、ステップｃ）およびｄ）におけるマーカー化学実体および／またはその代謝産物の量は、同等のＬＣ−ＭＳ／ＭＳ技術を使用して検出される。
【０１０７】
本方法の一部の実施形態では、マーカー化学実体は、標識を含まない。本明細書で使用する場合、「標識」は、アッセイで検出することができるシグナルを放出する部分である。例示的な標識は、蛍光性部分および放射性部分である。
【０１０８】
一部の実施形態では、本方法は化学実体の標識部分からのシグナルを検出するステップを含まない。
【０１０９】
本方法の一部の実施形態では、少なくとも１つの胆細管は、ラトランクリンＡ（ＬａｔＡ）を含む、および／またはカルシウムを含まない培地で細胞培養物をインキュベートすることによって、細胞培養物の肝細胞を溶解させることなく細胞培養物において破壊される。
【０１１０】
本方法の一部の実施形態では、少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質の活性が、肝細胞で阻害される。一部の実施形態では、少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質は、少なくとも１つの類洞膜輸送タンパク質および少なくとも１つの胆膜輸送タンパク質から選択される。一部の実施形態では、少なくとも１つの肝細胞輸送タンパク質は、ＮＴＣＰ、ＯＡＴＰ１Ａ１、ＯＡＴＰ１Ａ２、ＯＡＴＰ１Ａ４、ＯＡＴＰＢ２、ＯＡＴＰ１Ｂ１、ＯＡＴＰ１Ｂ３、ＯＡＴＰ２Ｂ１、ＯＡＴ２、ＯＡＴ３、ＯＡＴ４、ＯＣＴ１、ＯＣＴ３、ＯＣＴＮ１、ＯＣＴＮ２、ＢＳＥＰ、ＭＲＰ１、ＭＲＰ２、ＭＲＰ３、ＭＲＰ４、ＭＲＰ５、ＭＲＰ６、ＭＲＰ７、ＭＲＰ８、ＭＲＰ９、ＭＤＲ１、ＭＤＲ１Ａ／Ｂ、ＭＤＲ２、ＭＤＲ３、ＢＣＲＰ、ＡＢＣＧ５、ＡＢＣＧ８およびＦＩＣ−１から選択される。
Ｄ．胆細管を形成している肝細胞を含む培養物
【０１１１】
胆細管は、肝細胞によって分泌される胆汁を収集する細いチューブである。胆細管は併合して胆小管を形成し、それは最終的に総肝管になる。肝細胞は形状が多面体であり、類洞に面する表面（類洞面と呼ばれる）および他の肝細胞に接触する表面（側面と呼ばれる）を有する。胆細管は、隣接肝細胞の側面の一部の上の溝によって形成される。適当な条件下で、培養肝細胞は細管を形成する能力を有する。
【０１１２】
この開示の方法は、少なくとも１つの胆細管を形成した肝細胞を含むｉｎ  ｖｉｔｒｏ細胞培養物を利用する。肝細胞は、初代肝細胞、肝細胞の細胞株および幹細胞（胚性幹細胞、成人幹細胞または誘導多能性幹細胞など）を肝細胞に分化させることによって形成される肝細胞を限定なしに含む、任意のタイプの肝細胞であってよい。肝細胞は、任意の哺乳動物からのものであってよい。一部の実施形態では、肝細胞は、ヒト、非ヒト霊長類（カニクイザルなど）、畜産動物（ブタ、ウマ、ウシおよびヒツジなど）、家畜哺乳動物（イヌ、ネコ、モルモットおよびウサギなど）および齧歯類（マウスおよびラットなど）から選択される哺乳動物からのものである。一部の実施形態では、肝細胞−間質細胞共培養物は、複数の哺乳動物種からの肝細胞を含む。
【０１１３】
好ましい実施形態では、肝細胞は初代肝細胞である。初代肝細胞は、低温保存された形態で供給される必要がないことがある。低温保存されたヒト肝細胞は、Ｌｉｆｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ  Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎから得ることができる。低温保存された非ヒト霊長類肝細胞は、Ｌｉｆｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ  Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎから得ることができる。低温保存されたイヌ肝細胞は、ＩＶＴ  Ｂｉｏｒｅｃｌｅｍａｔｉｏｎから得ることができる。低温保存されたラット肝細胞は、Ｌｉｆｅ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ  Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎから得ることができる。
【０１１４】
一部の実施形態では、培養物は、３次元生体印刷構成で存在する肝細胞を含む。一部の実施形態では、培養物は、球状構成で存在する肝細胞を含む。一部の実施形態では、培養物は、ゲルサンドウィッチ構成で存在する肝細胞を含む。一部の実施形態では、培養物は毛細管床を含む。一部の実施形態では、培養物は、肝臓スライスを製作することを含まない方法によって作製される。一部の実施形態では、培養物は肝臓スライスを含まない。
【０１１５】
一部の実施形態では、培養物は、固体基材の表面に配置される肝細胞および少なくとも１つの間質細胞型を含む肝細胞−間質細胞共培養物である。肝細胞−間質細胞共培養物の一部の実施形態では、肝細胞および単一の間質細胞型は、共培養物の細胞の少なくとも約９５％、少なくとも約９６％、少なくとも約９７％、少なくとも約９８％、少なくとも約９９％、少なくとも約９９．５％、少なくとも約９９．９％または少なくとも約９９．９９％に相当する。
【０１１６】
一般的に、肝細胞および間質細胞は、１：１０から１０：１の比で共培養物中に存在する。一部の実施形態では、肝細胞および間質細胞は、２：１０から１０：２の比で共培養物中に存在する。一部の実施形態では、肝細胞および間質細胞は、２：１０から４：１０の比で共培養物中に存在する。一部の実施形態では、肝細胞および間質細胞は、４：１０から６：１０の比で共培養物中に存在する。一部の実施形態では、肝細胞および間質細胞は、６：１０から８：１０の比で共培養物中に存在する。一部の実施形態では、肝細胞および間質細胞は、８：１０から１：１の比で共培養物中に存在する。一部の実施形態では、肝細胞および間質細胞は、１：１から１０：８の比で共培養物中に存在する。一部の実施形態では、肝細胞および間質細胞は、１０：８から１０：６の比で共培養物中に存在する。一部の実施形態では、肝細胞および間質細胞は、１０：６から１０：４の比で共培養物中に存在する。一部の実施形態では、肝細胞および間質細胞は、１０：４から１０：２の比で共培養物中に存在する。一部の実施形態では、肝細胞および間質細胞は、約１０：１、１０：２、１０：３、１０：４、１０：５、１０：６、１０：７、１０：８、１０：９、１：１、９：１０、８：１０、７：１０、６：１０、５：１０、４：１０、３：１０、２：１０または１：１０の比で共培養物中に存在する。
【０１１７】
一部の実施形態では、肝細胞−間質細胞共培養物は、少なくとも２つの間質細胞型を含む。一部の実施形態では、肝細胞−間質細胞共培養物は、共培養物の細胞の少なくとも約０．０１％、少なくとも約０．１％、少なくとも約０．５％、少なくとも約１％、少なくとも約２％、少なくとも約３％、少なくとも約４％、少なくとも約５％または少なくとも約１０％に各々相当する２つの間質細胞型を含む。
【０１１８】
一部の実施形態では、間質細胞型は、肝細胞と同じ種類の哺乳動物からのものである。一部の実施形態では、間質細胞型は、肝細胞と異なる種類の哺乳動物からのものである。
【０１１９】
一部の実施形態では、肝細胞−間質細胞共培養物は、第３の細胞型を含む。一部の実施形態では、第３の細胞型は、間質細胞である。一部の実施形態では、第３の細胞型は、間質細胞ではない。一部の実施形態では、第３の細胞型は、実質細胞である。一部の実施形態では、第３の細胞型は、非実質細胞ではない。一部の実施形態では、第３の細胞型は、伊東細胞、内皮細胞、胆管細胞、免疫媒介性細胞および幹細胞から選択される。一部の実施形態では、免疫媒介性細胞は、マクロファージ、Ｔ細胞、好中球、樹状細胞、肥満細胞、好酸球および好塩基球から選択される。
【０１２０】
一部の実施形態では、第３の細胞型は、クッパー細胞である。一部の実施形態では、クッパー細胞は、共培養物の細胞の少なくとも約０．０１％、少なくとも約０．１％、少なくとも約０．５％、少なくとも約１％、少なくとも約２％、少なくとも約３％、少なくとも約４％、少なくとも約５％または少なくとも約１０％に相当する。
【０１２１】
一部の実施形態では、間質細胞型は、内皮細胞である。一部の実施形態では、間質細胞型は、線維芽細胞である。一部の実施形態では、間質細胞は、初代細胞である。一部の実施形態では、間質細胞は、細胞株から得られる。一部の実施形態では、間質細胞は、形質転換細胞である。一部の実施形態では、間質細胞は、ｉｎ  ｖｉｔｒｏで幹細胞、例えば胚性幹細胞、成人幹細胞または誘導多能性幹細胞から分化する。線維芽細胞などの間質細胞の多数の供与源が当技術分野で公知であり、肝細胞−間質細胞共培養物で利用することができる。一例は、ＮＩＨ  ３Ｔ３−Ｊ２細胞株である（例えば、ＵＳ２０１３／０２６６９３９Ａ１を参照）。
【０１２２】
細胞性島構成の第１ステップで肝細胞が基質に付着するように、固体基材の上に肝細胞および間質細胞を配置することによって、培養物での肝細胞機能の一部の態様が改善されることを当技術分野は教示する（ＵＳ２０１３／０２６６９３９Ａ１を参照）。具体的には、そのような方法は、基材の上での肝細胞の細胞性島、間質細胞型などの非実質細胞型に囲まれた肝細胞島の形成に頼る。肝細胞島は、最初に島パターンの固体基材の上に細胞外マトリックス成分または誘導体を置き、次に、肝細胞を細胞外マトリックス成分または誘導体に接着させることによって形成される。非実質細胞型を次に加え、肝細胞を含有しない基質の部分を「充填」させる。そのような系の基本的な特徴は、肝細胞が基材表面全体に分散していないことである。
【０１２３】
一部の実施形態では、本発明は、例えばＵＳ２０１３／０２６６９３９Ａ１に記載されているような細胞性島構成で分布している肝細胞を含む肝細胞−間質細胞共培養物を利用する。しかし、好ましい実施形態では、肝細胞は固体基材の表面全体に実質的に分散している。
【０１２４】
本明細書で使用する場合、肝細胞−間質細胞共培養物において固体支持体の上の肝細胞の配置に関して「表面全体に分散している」は、以下の基準の少なくとも１つが共培養物に適用されることを意味する：１）固体基材の表面の少なくとも約２０％、少なくとも約３０％、少なくとも約４０％または少なくとも約５０％が少なくとも１つの肝細胞によって覆われる；２）共培養物の肝細胞の少なくとも約２％、少なくとも約５％または少なくとも約１０％が、固体基材と接触している間質細胞の上部に位置する；および３）肝細胞は、固体基材に付着した肝細胞の島を製作するために少なくとも１つの細胞外マトリックス成分の島を含む固体基材に肝細胞を加えることによって固体基材の上に播種されなかった。単一の肝細胞が基準１および基準２を満たすとみなすことができることに、注意すべきである。
【０１２５】
本発明の方法で使用するために、共培養物は少なくとも１つの胆細管を含む。一部の実施形態では共培養物は単一の胆細管だけを含み、他の実施形態では共培養物は複数の細管を含む。
【０１２６】
好ましい実施形態では、肝細胞−間質細胞共培養物の代謝機能は、培養期間全体にわたって長く持続する。一部の実施形態では、培養期間は、少なくとも１日、少なくとも２日、少なくとも３日、少なくとも５日、少なくとも７日、少なくとも１０日、少なくとも１４日、少なくとも２１日または少なくとも２８日間である。一部の実施形態では、肝細胞−間質細胞共培養物の代謝機能は、共培養物の肝細胞の、遺伝子発現、細胞機能、代謝活性、形態およびそれらの組合せから選択される活性を測定することによって決定される。一部の実施形態では、肝細胞−間質細胞共培養物の代謝機能は、少なくとも１つのＣＹＰ４５０酵素の発現および／または活性のレベルを測定することによって決定される。少なくとも１つのＣＹＰ４５０酵素の発現および／または活性のレベルは、ＣＹＰ４５０酵素のｍＲＮＡの発現の測定によって、ＣＹＰ４５０酵素タンパク質の発現の測定によって、またはＣＹＰ４５０酵素活性の機能的アッセイによって測定することができる。一部の実施形態では、代謝活性はＣＹＰ４５０酵素活性である。一部の実施形態では、ＣＹＰ４５０酵素は、ＣＹＰ１Ａ２、ＣＹＰ１Ｂ１、ＣＹＰ２Ａ６、ＣＹＰ２Ｂ６、ＣＹＰ２Ｃ、ＣＹＰ２Ｄ６、ＣＹＰ２Ｅ１、ＣＹＰ２Ｆ１、ＣＹＰ２Ｊ２、ＣＹＰ３Ａ４、ＣＹＰ４ＡおよびＣＹＰ４Ｂから選択されるＣＹＰ４５０酵素である。
【０１２７】
共培養物の代謝機能が対照肝細胞単一培養物の代謝機能より肝細胞−間質細胞共培養物で長く持続する場合は、肝細胞−間質細胞共培養物の代謝機能は長く持続すると考えられる。一部の実施形態では、共培養物の代謝機能は、少なくとも７日間持続する。一部の実施形態では、共培養物の代謝機能は、少なくとも１４日間持続する。一部の実施形態では、共培養物の代謝機能は、少なくとも２１日間持続する。一部の実施形態では、共培養物の代謝機能は、少なくとも２８日間持続する。
【０１２８】
一部の実施形態では、共培養物は、無血清または本質的に無血清の培地で培養される。一部の実施形態では、共培養物は、血清を含有する培地で培養される。一部の実施形態では、培地は、約０．１％の血清、約０．２％の血清、約０．３％の血清、約０．４％の血清、約０．５％の血清、約０．６％の血清、約０．７％の血清、約０．８％の血清、約０．９％の血清、約１％の血清、約２％の血清、約３％の血清、約４％の血清、約５％の血清、約６％の血清、約７％の血清、約８％の血清、約９％の血清または約１０％の血清を含む。一部の実施形態では、培地は、少なくとも約０．１％の血清、少なくとも約０．２％の血清、少なくとも約０．３％の血清、少なくとも約０．４％の血清、少なくとも約０．５％の血清、少なくとも約０．６％の血清、少なくとも約０．７％の血清、少なくとも約０．８％の血清、少なくとも約０．９％の血清、少なくとも約１％の血清、少なくとも約２％の血清、少なくとも約３％の血清、少なくとも約４％の血清、少なくとも約５％の血清、少なくとも約６％の血清、少なくとも約７％の血清、少なくとも約８％の血清、少なくとも約９％の血清または少なくとも約１０％の血清を含む。一部の実施形態では、培地は、約０．１％もしくはそれ未満の血清、約０．２％もしくはそれ未満の血清、約０．３％もしくはそれ未満の血清、約０．４％もしくはそれ未満の血清、約０．５％もしくはそれ未満の血清、約０．６％もしくはそれ未満の血清、約０．７％もしくはそれ未満の血清、約０．８％もしくはそれ未満の血清、約０．９％もしくはそれ未満の血清、約１％もしくはそれ未満の血清、約２％もしくはそれ未満の血清、約３％もしくはそれ未満の血清、約４％もしくはそれ未満の血清、約５％もしくはそれ未満の血清、約６％もしくはそれ未満の血清、約７％もしくはそれ未満の血清、約８％もしくはそれ未満の血清、約９％もしくはそれ未満の血清または約１０％もしくはそれ未満の血清を含む。
Ｅ．輸送体
【０１２９】
本発明の方法の一部の実施形態では、類洞膜輸送体および細管輸送体から選択される少なくとも１つの肝細胞輸送体が阻害される。多数の輸送体が当技術分野で公知であり、当業者は、任意の公知のまたはその後発見された輸送体を本発明の方法で使用することができることを理解する。例示的な輸送体には、これらに限定されないが、Ｎａ＋−タウロコール酸塩同時輸送ポリペプチド（ＮＴＣＰ）または肝胆汁酸輸送体（ＬＢＡＴ）としても知られるナトリウム／胆汁酸共輸送体、ヒトにおいてＳＬＣ１０Ａ１（溶質担体ファミリー１０のメンバー１）遺伝子によってコードされるタンパク質；有機アニオン輸送ポリペプチド、例えば、ＯＡＴＰ１Ａ１、ＯＡＴＰ１Ａ２、ＯＡＴＰ１Ａ４、ＯＡＴＰＢ２、ＯＡＴＰ１Ｂ１、ＯＡＴＰ１Ｂ３およびＯＡＴＰ２Ｂ１から選択されるもの；有機アニオン輸送体、例えば、ＯＡＴ２、ＯＡＴ３、ＯＡＴ４から選択されるもの；有機カチオン輸送タンパク質、例えば、ＯＣＴ１、ＯＣＴ３、ＯＣＴＮ１およびＯＣＴＮ２から選択されるもの；胆汁酸塩搬出ポンプ（ＢＳＥＰ）タンパク質、ヒトのＡＢＣＢ１１遺伝子によってコードされるＡＴＰ結合性カセット、サブファミリーＢメンバー１１（ＡＢＣＢ１１）としても知られる；多剤耐性関連のタンパク質、例えば、ＭＲＰ１、ＭＲＰ２、ＭＲＰ３、ＭＲＰ４、ＭＲＰ５、ＭＲＰ６、ＭＲＰ７、ＭＲＰ８およびＭＲＰ９から選択されるもの；Ｐ糖タンパク質、例えば、ＭＤＲ１、ＭＤＲ１Ａ／Ｂ、ＭＤＲ２およびＭＤＲ３から選択されるもの；ＡＴＰ結合性カセットサブファミリーＧメンバー２（ＡＢＣＧ２）、ＢＣＲＰとしても知られる、ヒトにおいてＡＢＣＧ２遺伝子によってコードされるタンパク質；ＡＢＣＧ５およびＡＢＣＧ８から選択されるＡＢＣタンパク質；ならびに、おそらく、リン脂質輸送ＡＴＰアーゼＩＣ（ＡＴＰ８Ｂ１）、ＦＩＣ−１としても知られる、ヒトにおいてＡＴＰ８Ｂ１遺伝子によってコードされる酵素が含まれる。
【０１３０】
これらの輸送体タンパク質の多数の阻害剤が当技術分野で公知であり、本発明の方法で使用することができる。Ｐｇｐタンパク質の例示的な阻害剤には、これらに限定されないが、リトナビル、シクロスポリン、ベラパミル、エリスロマイシン、ケトコナゾール（ketocoanzole）、イトラコナゾールおよびキニジンが含まれる。ＢＣＲＰの例示的な阻害剤には、これらに限定されないが、エラクリダール、イマチニブおよびフミトレモルギンＣが含まれる。Ｍａｔｅ  １の例示的な阻害剤には、これに限定されないが、シメチジンが含まれる。ＢＳＥＰの例示的な阻害剤には、これらに限定されないが、アトルバスタチン、セリバスタチン、クロファジミンおよびグリブリドが含まれる。ＭＲＰ２の例示的な阻害剤には、これらに限定されないが、シクロスポリン、プロベネシド、フロセミドおよびラミブジンが含まれる。
【実施例】
【０１３１】
（実施例１）
肝細胞−間質細胞共培養物
低温保存されたヒト肝細胞を液体窒素から取り出して、解凍した。解凍後、細胞を培地に再懸濁し、トリパンブルー排除を使用して細胞数および細胞生存率を決定した。実験的なプレーティングのために使用するまで、間質細胞をＣＯ２インキュベーターの中で育てた。プレーティング当日に、細胞をプレートから剥がし、洗浄し、培地に再懸濁した。細胞数および生存率は、トリパンブルー排除を使用して決定した。
【０１３２】
コラーゲンでコーティングされた９６ウェルプレートに、１ウェルにつき３０，０００個の肝細胞の密度で肝細胞および間質細胞を播種した。播種の前に、間質細胞の成長を停止させた。任意の胆汁中排泄アッセイの開始の前に、培養物を７日間維持した。実験を開始する前に、細管の形成を確実にするために、７日目に細胞をＣＤＦＤＡで染色した。
（実施例２）
肝細胞−間質細胞共培養物における胆細管への試験化合物の排泄
【０１３３】
この実験では、実施例１により調製された肝細胞−間質細胞共培養物における胆細管の存在を評価した。共培養物を、５μＭの５−（および−６）−カルボキシ−２’，７’−ジクロロ−フルオレセインジアセテート（ＣＤＦＤＡ）と２０分間インキュベートした。肝細胞によって取り込まれるＣＤＦＤＡは肝細胞によって蛍光性の５−（および−６）−カルボキシ−２’，７’−ジクロロ−フルオレセイン（ＣＤＡ）に加水分解され、次にＭｒｐ２輸送体を通してこの蛍光性の形態で細管に分泌される。共培養物は、顕微鏡の下で直ちに明らかであるいくつかの細管を含んでいた（データ示さず）。シクロスポリンＡ（ＣＳＡ）は、Ｍｒｐ２輸送体の公知の阻害剤である。以降の実験では、５０μＭのＣＳＡの存在下で共培養物をＣＤＦＤＡと２０分間インキュベートした。ＣＳＡの存在下でのＣＤＦＤＡとのインキュベーションの後に、蛍光性細管は見えなかった（データ示さず）。この結果は、実施例１により調製される共培養物中に胆細管が存在することを実証し、細管への化学実体の輸送体依存性排泄をこの系で評価することができることを実証する。
（実施例３）
細管の破壊
【０１３４】
肝細胞−間質細胞共培養物で胆汁中への化学実体の排泄を評価するには、共培養物の細管に存在する化学実体と共培養物の細胞の細胞質に存在し得る化学実体とを区別する方法が必要である。細管破壊の２つの方法を、試験した。第１の方法では、無カルシウム（Ｃａ−）緩衝液に培養物を曝露した。カルシウムの欠乏は、細胞が密着結合を形成する能力を阻害し、細管に存在する胆汁を流出させる。細胞は、まずＣａ＋のＨＢＳＳ緩衝液で２回洗浄した。次に、細胞を、Ｃａ−なしのＨＢＳＳ緩衝液中の５μＭのＣＤＦＤＡと２０分間インキュベートした。次に、細胞をＣａ−なしのＨＢＳＳ緩衝液で２回洗浄した。Ｃａ−緩衝液への曝露の後に、蓄積されたＣＤＦが細管から流出したので、ＣＤＦ染色は明瞭でなかった（データ示さず）。
【０１３５】
第２の方法では、ラトランクリンＡ（ＬａｔＡ）を含有する緩衝液に培養物を曝露した。ＬａｔＡは、密着結合の形成における鍵となるステップであるマイクロフィラメント組織を破壊する働きをし、細管に存在する胆汁を流出させる。細胞は、まずＣａ＋のＨＢＳＳ緩衝液で２回洗浄した。次に、細胞を、Ｃａ＋のＨＢＳＳ緩衝液中の５μＭのＣＤＦＤＡおよび１０μＭのＬａｔＡと２０分間インキュベートした。次に、細胞をＣａ＋のＨＢＳＳ緩衝液で２回洗浄した。ＬａｔＡ含有緩衝液への曝露の後に、蓄積されたＣＤＡが細管から流出したので、ＣＤＡ染色は明瞭でなかった（データ示さず）。
（実施例４）
胆汁中排泄アッセイ
【０１３６】
実施例２および３で報告されるデータは、機能的細管を形成する肝細胞−間質細胞共培養系の能力、細管を破壊する能力、ならびにＭｒｐ２およびＢＳＥＰ輸送体系の機能を阻害する能力を定性的に実証する。この実施例は、タウロコール酸塩（taurcholate）の肝胆汁性排泄を定量的に測定するこの系の能力を実証する。１つの共培養コンパートメントで肝胆輸送を評価するために、２μＭのタウロコール酸塩を細胞培地に導入して、２０分間インキュベートした。培地を次に取り出し（収集物＃１）、残留タウロコール酸塩の分析のために保存した。培養物を緩衝液で２回洗浄し（収集物＃２および＃３）、各洗浄液を残留タウロコール酸塩の分析のために保存した。次に、培養物中に存在する細管を破壊する働きをするが共培養物の細胞を溶解しないＣａ−緩衝液またはＬａｔＡ緩衝液に、細胞を３０分間曝露した（収集物＃４）。これにより、細管の胆汁に蓄積されていたタウロコール酸塩が放出される。次に、細胞膜を破壊して細胞コンパートメントに蓄積していた化合物を放出する働きをする脱イオン水に、細胞を曝露した（収集物＃５）。細管に存在するタウロコール酸塩はすべて収集物＃４に既に収集されているので、収集物＃５は、細胞に存在するタウロコール酸塩はすべて含有するが、細管に存在するタウロコール酸塩は一切含まない。収集物＃４（図１）および収集物５（図２）中のタウロコール酸塩の濃度は、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳを使用して決定した。実験は、３反復で実行した。ＬａｔＡについて図１に示す基礎データは、１１７．６ｎＭ、１１５．４ｎＭおよび１５８．６ｎＭであった。Ｃａ−について図１に示す基礎データは、２０４ｎＭ、１５０．２ｎＭおよび１５８ｎＭであった。ＬａｔＡについて図２、収集物＃５に示す基礎データは、１９９ｎＭ、１４４．４ｎＭおよび２３４ｎＭであった。Ｃａ−数について図２、収集物＃５に示す基礎データは、１４１ｎＭ、９５．４ｎＭおよび１２０．８ｎＭであった。
【０１３７】
試料を１０００×ｇで１０分間遠心分離し、上清のアリコート（１０ｍＬ）をＬＣ−ＭＳ／ＭＳによって分析した。ＬＣ−ＭＳ／ＭＳ系は、Ｓｈｉｍａｄｚｕ  ＬＣ−１０ＡＤｖｐポンプ（Ｓｈｉｍａｄｚｕ、Ｃｏｌｕｍｂｉａ、ＭＤ）、ＨＴＳ  ＰＡＬ  ＣＴＣオートサンプラー（Ｌｅａｐ  Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、Ｃａｒｂｏｒｏ、ＮＣ）およびＴｕｒｂｏ  Ｉｏｎ  Ｓｐｒａｙプローブを備えたＡＰＩ  ４０００質量分析計（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ／ＭＤＳ  ＳＣＩＥＸ、Ｏｎｔａｒｉｏ、Ｃａｎａｄａ）で構成された。化合物の分離は、逆相定常相（Ｓｙｎｅｒｇｉ  Ｈｙｄｒｏ、Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ）を使用して達成した。移動相は、水中の０．１５ｇｍの酢酸アンモニウムによる０．１％ギ酸（Ａ）およびアセトニトリル中の０．１５ｇｍの酢酸アンモニウムによる０．１％ギ酸（Ｂ）による勾配であり、流量は０．５ｍＬ／分であった。移動相の最初の組成は２％のＢで０．３分間であり、続いて１．３分間にわたる１００％のＢまでの直線濃度勾配、および０．２分間で２％のＢに戻り、２％のＢをさらに０．２分間維持した。陰イオンモードでの多反応モニタリング（ＭＲＭ）を使用して、タウロコール酸を検出した。分析物対内部標準の面積比は、Ａｎａｌｙｓｔ１ソフトウェアｖ．１．４．１（Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ）を使用して計算した。この系におけるタウロコール酸塩について、固有の胆管クリアランス（ＣＬｂｉｌｅ）［式１］および胆汁中排泄指数（ＢＥＩ）［式２］を計算するために、胆汁中および細胞中のタウロコール酸塩の濃度を次に使用した。細管を破壊するためにＣａ−緩衝液を使用した方法のＢＥＩは６６．９％であり、細管を破壊するためにＬａｔＡ緩衝液を使用した方法のＢＥＩは４０．４％であった。他も、タウロコール酸塩のＢＥＩについて４１〜６３％の範囲の、類似の範囲を報告している。BI,  Yi-anら、「Use  of  cryopreserved  human  hepatocytes  in  sandwich  culture  to  measure  hepatobiliary  transport」、Drug  Metab  Dispos.、３４巻、９号、１６５８〜６５頁（２００６年）。
【数１】
2017527283.tif 000003
【０１３８】
この方法を使用して、タウロコール酸塩の胆管クリアランスに及ぼすＣＳＡの影響を次に評価した。細胞培地へのタウロコール酸塩の添加の前に共培養物を阻害剤ＣＳＡに曝露したこと以外は、同じプロトコールに従った。２μＭのタウロコール酸塩の添加の前に、５０μＭシクロスポリンＡを有するＨＢＳＳ緩衝液に細胞を２０分間曝露した。次に、実施例３のように実験を続けた。この実験では、細管を破壊するためにＣａ−緩衝液を使用した。図３に示すデータによって実証されるように、ＣＳＡとのインキュベーションは胆汁中に蓄積するタウロコール酸塩の濃度を激減させた。
（実施例５）
ヒト肝細胞共培養物での取り込みおよび胆汁中排泄
【０１３９】
５つの化合物：２μＭのタウロコール酸（タウロコール酸塩）、２μＭのエストラジオール−グルクロニド、２μＭのジゴキシン（digonxin）、２μＭのロスバスタチンおよび５μＭのプラバスタチンの取込み速度を測定するために、実施例１による肝細胞−間質細胞共培養物を使用した。本発明の胆管クリアランスを評価する単一ウェル方法を使用した。
【０１４０】
培養培地中の指示濃度の各試験化合物に、共培養物を２０分の間曝露した。培地を次に取り出し（収集物＃１）、残留化合物の分析のために保存した。培養物を緩衝液で２回洗浄し（収集物＃２および＃３）、各洗浄液を残留タウロコール酸塩の分析のために保存した。次に、培養物中に存在する細管を破壊する働きをするが、共培養物の細胞を溶解しない、５μＭの濃度のラトランクリンを含有するＨＥＰＥＳ緩衝液に、細胞を３０分間曝露した。これにより、細管の胆汁に蓄積していたタウロコール酸塩が放出される。インキュベーション期間の終わりに、培養培地を収集した（収集物＃４）。次に、細胞膜を破壊して細胞コンパートメントに蓄積していた化合物を放出する働きをする脱イオン水に、細胞を曝露した（収集物＃５）。細管に存在する化合物はすべて収集物＃４に既に収集されているので、収集物＃５は、細胞に存在する化合物をすべて含有するが、細管に存在する化合物は一切含まない。収集物＃４および収集物５の中の化合物の濃度は、実施例４のように、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳを使用して決定した。
【０１４１】
この分析の結果は、図４〜８に示す。各図で、胆汁中の化合物の測定量および細胞質中の化合物の測定量は、図の左側の単一のバーの２つの部分として一緒に提示される。胆汁の測定値も、図の右側のバーとして示す。右のバー（胆汁）の高さを複合の左バー（細胞質＋胆汁の合計）の高さと比較することにより、胆汁に蓄積した化合物の部分を可視化できる。タウロコール酸（タウロコール酸塩）の結果を図４に示し、エストラジオール−グルクロニドの結果を図５に示し、ジゴキシンの結果を図６に示し、ロスバスタチンの結果を図７に示し、プラバスタチンの結果を図８に示す。この系で各化合物のＢＥＩを計算するために、式２を使用した。各試験化合物の胆管クリアランス（式１）およびＢＥＩ（式２）を計算するために、データを使用した。データを、表１に示す。
【０１４２】
タウロコール酸（タウロコール酸塩）、エストラジオール−グルクロニド、ジゴキシンおよびロスバスタチンについて得られた結果は、表１に示すように、２つの培養方法を使用して生成されYi-an  BIら、「Use  of  Cryopreserved  Human  Hepatocytes  in  Sandwich  Culture  to  Measure  Hepatobiliary  Transport」、Drug  Metabolism  and  Disposition、３４巻、９号、１６５８〜６５頁（２００６年）により報告されている公開データの範囲内である。
【表１−１】
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【表１−２】
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（実施例６）
ラット肝細胞共培養物での取り込みおよび胆汁中排泄。
【０１４３】
初代ラット肝細胞（Ｌｉｆｅｔｅｃｈ（登録商標））を使用して、実施例１による肝細胞−間質細胞共培養物を調製し、５つの化合物：タウロコール酸（タウロコール酸塩）、エストラジオール−グルクロニド、ジゴキシン、ロスバスタチンおよびプラバスタチンの取込み速度を測定するために使用した。本発明の胆管クリアランスを評価する単一ウェル方法を使用した。
【０１４４】
２μＭのタウロコール酸（タウロコール酸塩）、２μＭのエストラジオール−グルクロニド、２μＭのジゴキシン、２μＭのロスバスタチンおよび５μＭのプラバスタチンの濃度の培養培地中の各試験化合物に、共培養物を２０分間曝露した。培地を次に取り出し（収集物＃１）、残留化合物の分析のために保存した。培養物を緩衝液で２回洗浄し（収集物＃２および＃３）、各洗浄液を残留タウロコール酸塩の分析のために保存した。次に、培養物中に存在する細管を破壊する働きをするが、共培養物の細胞を溶解しない、５μＭの濃度のラトランクリンを含有するＨＥＰＥＳ緩衝液に、細胞を３０分間曝露した。これにより、細管の胆汁中に蓄積されていたタウロコール酸塩が放出される。インキュベーション期間の終わりに、培養培地を収集した（収集物＃４）。次に、細胞膜を破壊して細胞コンパートメントに蓄積していた化合物を放出する働きをする脱イオン水に、細胞を曝露した（収集物＃５）。細管に存在する化合物はすべて収集物＃４に既に収集されているので、収集物＃５は、細胞に存在する化合物はすべて含有するが、細管に存在する化合物は一切含まない。収集物＃４および収集物５の中の化合物の濃度は、実施例４のように、ＬＣ−ＭＳ／ＭＳを使用して決定した。データは、図４〜８で使用したのと同じフォーマットを使用して、図９〜１３に示す。
【０１４５】
タウロコール酸（タウロコール酸塩）の結果を図９に示し、ロスバスタチンの結果を図１０に示し、エストラジオール−グルクロニドの結果を図１１に示し、ジゴキシンの結果を図１２に示し、プラバスタチンの結果を図１３に示す。この系で各化合物のＢＥＩを計算するために、式２を使用した。タウロコール酸（タウロコール酸塩）の測定したＢＥＩは６０％（図９）であり、ロスバスタチンの測定したＢＥＩは７２％（図１０）であり、エストラジオール−グルクロニドの測定したＢＥＩは４０％（図１１）であり、ジゴキシンの測定したＢＥＩは６７％（図１２）であり、プラバスタチンの測定したＢＥＩは５８％（図１３）であった。
【０１４６】
これらのデータを、表２に要約する。ｉｎ  ｖｉｔｒｏのＣＬｂｉｌｅについて提供された値は、２００ｍｇタンパク質／ｇ肝臓および４０ｇ肝臓／ｋｇに基づいて、固有のＣｌｉｎｔ、ｂｉｌｅ値をｍｌ／分／ｋｇに変換することによって計算された（Seglen、１９７６年を参照）。興味深いことに、ｉｎ  ｖｉｖｏデータが利用できる化合物については、この実施例の結果は、一方の化合物については４倍以内であり、他方については２倍以内である。これは、スケーリングされた数値にしてはｉｎ  ｖｉｖｏとｉｎ  ｖｉｔｒｏとの相関が良好であり、本方法のｉｎ  ｖｉｖｏ妥当性を実証する。
【表２】
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（実施例７）
輸送体阻害アッセイ
【０１４７】
後天性胆汁うっ滞および薬物性肝臓損傷（ＤＩＬＩ）につながる生体異物または薬物による流出輸送体の直接阻害は、薬物開発の主要な障害である。したがって、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ試験に基づく化合物の潜在的薬物−薬物相互作用の傾向を理解することが望ましい。この実験では、ＢＳＥＰおよびＢＣＲＰ阻害を特徴付けるために、実施例１により作製されたヒト初代肝細胞共培養物を、本発明の直接測定１培養物アッセイフォーマットで使用した。使用したプローブ基質は、２μＭのタウロコール酸（ＢＳＥＰ流出輸送体）および２μＭのロスバスタチン（ＢＣＲＰ流出輸送体）であった。シクロスポリンＡは公知のＢＳＥＰ阻害剤であり、０〜２０μＭで使用した。リトナビルは公知のＢＣＲＰ阻害剤であり、０〜１００μＭで使用した。エリスロマイシンエストレートは公知の広域スペクトル阻害剤であり、５０μＭで使用した。阻害を評価するために、培養物をまず、示された阻害剤で２０分間プレインキュベートし、次に基質および阻害剤の存在下でさらに２０分間インキュベートした。次に、過剰な基質および阻害剤を除去するために培養物を２回洗浄し、実施例５のようにプロトコールを進めた。シクロスポリンＡによるＢＳＥＰ阻害に関するデータを、図１４に示す。シクロスポリンＡは、０．４６μＭのＩＣ５０で、タウロコール酸塩のＢＳＥＰ媒介輸送を阻害した。リトナビルによるＢＣＲＰ阻害に関するデータを、図１５に示す。リトナビルは、０．５０μＭのＩＣ５０で、リトナビルのＢＣＲＰ媒介輸送を阻害した。基質タウロコール酸塩およびリトナビルを一緒に加えたこと以外は、エリスロマイシンエストレートによる阻害を同様に実行した。図１６に示すように、エリスロマイシンエストレートはタウロコール酸塩のＢＳＥＰ媒介輸送を完全に阻害し、リトナビルのＢＣＲＰ媒介輸送を有意に阻害した。合わせて考えると、これらのデータは、生体異物または薬物による流出輸送体の阻害を特徴付けるための本発明の直接測定１培養物アッセイフォーマットの有用性を実証する。［ＥＮ：任意の追加の結論または解明を加えて下さい。］
（実施例８）
再現性
【０１４８】
従来技術の方法と対照的に、本発明の方法は、１培養物アッセイフォーマットでの化学実体の胆汁中排泄の直接測定を含む。このアッセイフォーマットの精度および再現性は、タウロコール酸塩およびプラバスタチンの各々について、実施例１によるヒト肝細胞間質細胞共培養物を使用する３つの独立したアッセイを実行することによって実証された。タウロコール酸のデータを、表３および図１７に示す。プラバスタチンのデータは、表４および図１８に示す。表５に示す統計分析は、各化合物の反復アッセイ結果の結果に統計的に有意な変動（Ｐ＜０．０５）がないことを示す。
【表３】
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【表４】
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【表５】
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【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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【図１５】
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【図１６】
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【図１７】
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【図１８】
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【国際調査報告】
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