(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
スチレン‐ブタジエンゴムを分解するエンテロバクター（Enterobacter）属に属する微生物であって、
下記の菌学的性質を有する、エンテロバクター クロアカエ（Enterobacter cloacae）ＭＯＥ−１株であることを特徴とする、
微生物。
Ａ．形態的性質
（１）細胞の形              桿菌
（２）細胞の大きさ（μｍ）  0.8×1.5×２
（３）運動性                ＋
（４）鞭毛                  周鞭毛
（５）胞子                  −
Ｂ．培養的性質
（１）肉汁寒天培地          円形、全縁なめらか、低凸状、光沢、淡黄色
（２）肉汁液体培養          懸濁
（３）リトマス・ミルク      アルカリ
0004106530.tif 000009
【請求項２】
請求項１記載の微生物でスチレン‐ブタジエンゴムを処理することを特徴とする、
ゴムの分解方法。
【請求項３】
請求項１記載の微生物をスチレン‐ブタジエンゴムを主炭素源とする培地に培養し、且つ、該培地を所要量ずつ新しい培地と交換しながらゴムを半連続的または連続的に分解することを特徴とする、
ゴムの分解方法。
【請求項４】
空気を通気しながら、培地を撹拌することを特徴とする、
請求項３記載のゴムの分解方法。
【請求項５】
請求項１記載の微生物を用いたゴム分解装置であって、
該微生物を培養する培地を収容する培養槽と、
分解によってゴム表面に生じたまたは生成した物質を除去する手段と、
を備えていることを特徴とする、
ゴム分解装置。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は新規微生物、該微生物によるゴムの分解方法及びゴム分解装置に関する。
詳しくは、スチレン‐ブタジエンゴム（以下、「ＳＢＲ」と称することもある）を分解する新規な微生物、該微生物によるゴムの分解方法及びゴム分解装置を提供することにある。
【０００２】
【従来技術】
ゴムは、日常生活において様々な用途に使用され、欠かすことのできない材料となっている。例えば天然ゴムは、ゴム手袋などの衛生用品や大型車用タイヤを中心に年間６０万トン生産されている。また、合成ゴムに関しては、乗用車用タイヤなどに大量に使われるＳＢＲを中心に、年間１００万トン以上生産されている。
【０００３】
現在、それらの廃ゴム製品は、主に焼却または埋め立てによって処理されている。しかしながら、焼却や埋め立てによる処理では、ゴミ問題、有毒ガスの発生、高温で炉を痛めるなどの様々な問題がある。
このような事情から、より効率的な廃ゴム製品の処理法を開発し、リサイクルシステムを確立させることが要望されている。
【０００４】
そこで、廃ゴム製品の新たな処理法として近年注目されているのが、微生物を用いた分解法である。微生物による分解法では、焼却ゴミが発生したり、炉を傷めたり、あるいは有害なガスが発生したりする等の諸問題はなく、且つ、比較的安価な設備で処理できるといった多くの面で優れており、近年では工業化への研究も進められている。
【０００５】
【発明が解決しようとする課題】
現在、ゴムを分解する菌は数種類確認されている。しかしながら、確認された菌の多くは天然ゴムを分解するものであり、乗用車用タイヤなどに大量に使用されているＳＢＲを分解する菌については報告がない。
【０００６】
本発明者らは、天然から分離した種々の微生物についてその性質、作用を検索した結果、天然ゴムの中から得られたEnterobacter属に属する微生物がＳＢＲを分解することを見い出し、本発明を完成した。
【０００７】
（発明の目的）
本発明の目的は、ＳＢＲを分解する新規な微生物、該微生物によるゴムの分解方法を提供することにある。
本発明の他の目的は、ゴムを効率的に分解させることができるようにしたゴム分解装置を提供することにある。
その他の本発明の目的は、以下の説明によって明らかになるであろう。
【０００８】
【課題を解決するための手段】
上記目的を達成するために講じた本発明の手段は次のとおりである。
第１の発明にあっては、
ゴムを分解するエンテロバクター（Enterobacter）属に属する微生物である。
【０００９】
第２の発明にあっては、
エンテロバクター クロアカエ（Enterobacter cloacae）ＭＯＥ−１株であることを特徴とする、
第１の発明に係る微生物である。
【００１０】
第３の発明にあっては、
ゴムは、天然ゴムまたは／及びスチレン‐ブタジエンゴムであることを特徴とする、
第１または第２の発明に係る微生物である。
【００１１】
第４の発明にあっては、
第１，２または第３の発明に係る微生物でゴムを処理することを特徴とする、
ゴムの分解方法である。
【００１２】
第５の発明にあっては、
第１，２または第３の発明に係る微生物をスチレン‐ブタジエンゴムを主炭素源とする培地に培養し、且つ、該培地を所要量ずつ新しい培地と交換しながらゴムを半連続的または連続的に分解することを特徴とする、
ゴムの分解方法である。
【００１３】
第６の発明にあっては、
空気を通気しながら、培地を撹拌することを特徴とする、
第５の発明に係るゴムの分解方法である。
【００１４】
第７の発明にあっては、
第１，２または第３の発明に係る微生物を用いたゴム分解装置であって、
該微生物を培養する培地を収容する培養槽と、
分解によってゴム表面に生じたまたは生成した物質を除去する手段と、
を備えていることを特徴とする、
ゴム分解装置である。
【００１５】
本発明に使用される微生物としては、菌株ＭＯＥ−１を例示することができる。
この菌株ＭＯＥ−１の菌学的性質を以下の表１〜表３に示す。
【００１６】
【表１】
0004106530.tif 000002
【００１７】
【表２】
0004106530.tif 000003
【００１８】
【表３】
0004106530.tif 000004
【００１９】
菌株ＭＯＥ−１は、カタラーゼが陽性、オキシダーゼが陰性を示し、ブドウ糖を醗酵的に分解するグラム陰性桿菌であることから、腸内細菌であると判断される。
【００２０】
生理性状的には、インドールが陰性、ＶＰテストが陽性、クエン酸の利用性が陽性を示し、且つ、運動性も有することから、Enterobacter属に属すると判断される。更に、リジンカルボキシラーゼが陰性、アルギニンジヒドロラーゼ及びオルニチンデカルボキシラーゼが陽性を示し、白糖から酸産生が認められることから、Enterobacter cloacae と Enterobacter sakazakiiが示唆される。
【００２１】
菌株ＭＯＥ−１は、黄色色素を生成せず、またソルビトールからの酸を産生することから、myo-イノシトールから酸を産生する点がEnterobacter cloacaeの定型性状とは異なる。しかしながら、Enterobacter cloacaeのmyo-イノシトール酸産生陽性率が15％であることを考慮すると、本菌株はEnterobacter cloacaeに属する新菌株であると判断される。
【００２２】
そこで、本発明者らは、この新菌株をEnterobacter cloacaeＭＯＥ−１（以下、「本菌株」等と称することもある）と命名した。
【００２３】
なお、菌株ＭＯＥ−１の分類学的位置は、「バーギース・マニュアル・オブ・デターミネイテブ・バクテリオロジィ（Bergey's Manual of Determinative Bacteriology),第９巻（1994）」と、「坂崎利一他, 腸内細菌 下巻, 近代出版（1992）」を参考にして調べた。
【００２４】
本菌株は、バイオセイフティーレベル２の菌であるため、添付の平成13年11月21付証明書にあるように、独立行政法人 産業技術総合研究所 特許生物寄託センターに寄託することができないものであった。したがって、本菌株は、国立 久留米工業高等専門学校 生物応用化学科（所在地；福岡県久留米市小森野一丁目１番１号、電話番号；０９４２−３５−９４０７）において保存されており、必要に応じて第三者が入手することができるようになっている。
【００２５】
本菌株の一般生育培地としては、例えば硫酸アンモニウム、リン酸カリウムのような無機塩類からなる合成培地が用いられる。また、必要に応じて、栄養補助成分である食塩を添加することもできる。このように、本菌株は、比較的簡単な培地で培養することができる。
【００２６】
本菌株は、培養に際して夾雑菌の影響が少なく、生育の阻害が見受けられない。
【００２７】
本菌株は、天然ゴムの他、ＳＢＲやシリコンゴムに代表される合成ゴムを分解する分解活性を有する。例えばＳＢＲについての分解活性とは、スチレン‐ブタジエン分子鎖中の二重結合を酸化的に切断する活性を示すものと思われる。
【００２８】
本菌株は好気性菌であるため、ゴムの分解反応を行う際は、培養液中に空気を通気させることが好ましい。
【００２９】
分解したゴムの表面には、反応生成物が生じまたは生成して、更なるゴムの分解反応が阻害される可能性が高い。よって、ゴム表面の反応阻害物質を除去しながら、分解反応を進行させることが望ましい。その方法としては、例えば撹拌翼によってゴムを加えた培養液を撹拌したり、該培養液にフッ素樹脂製ビーズなどの摩擦材を加える方法などを挙げることができるが、これらに特に限定されない。
【００３０】
ゴム分解反応における微生物の培養温度は25〜40℃であり、好ましくは30〜37℃である。pHは7〜10が好ましく、より好ましくはpH9〜10である。
【００３１】
【実施例】
以下、本発明を実施例により説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
【００３２】
［実施例１］
本菌株の培地として、表４に記載した組成の無機培地を使用した。培地は、窒素源及び硫黄源である硫酸アンモニウム（(NH4)2SO4）、リン源およびpH調整剤であるリン酸カリウム(K2HPO4、KH2PO4）、及び栄養補助成分である塩化ナトリウムから構成した。また、炭素源およびエネルギー源とＳＢＲを使用した。
【００３３】
【表４】
0004106530.tif 000005
【００３４】
Ｌ型試験管中に表４記載の無機培地を5mL入れ、オートクレーブで滅菌処理（121℃、20分間）を行い、この中に予めオートクレーブで滅菌処理したＳＢＲ試料を0.5g加えた。更に、冷蔵保存しておいた本菌株200μLをＬ型試験管中に接種後、37℃の振とう培養機（100strokes/min）で24時間培養を行った。
【００３５】
一方、坂口フラスコに無機培地を300mL入れ、オートクレーブで滅菌処理（121℃、20分間）を行い、この中に予めオートクレーブで滅菌処理したＳＢＲ試料50gを加えた。この坂口フラスコ中に、Ｌ型試験管で前培養した菌液を加え、37℃の振とう培養機（160strokes/min）で3〜7日間培養し、得られた培養液を種菌として調製した。なお、培養液のpHは7である。
【００３６】
図１は半連続式のゴム分解装置の一実施の形態を示す概略構成図である。
図１に示す小型のゴム分解装置で、夾雑菌が混入しないように滅菌状態での半連続式培養を行い、ゴムの分解率と分解状態を検討した。使用したゴム分解装置は、以下のような構成である。
【００３７】
ゴム分解装置は、1L容量の培養槽１を有している。培養槽１の上部には蓋（符号省略）が設けてあり、ゴム分解装置は半密閉の状態になっている。
【００３８】
また、本菌株は好気性菌である。よって、培養液内に酸素を供給できるように、エアポンプ（図示省略）からチューブ２を介して空気供給用の管３（以下、空気供給管と称することもある）を培養槽１内に導き入れた。更に、空気を培養槽１全体に行き渡らせるため、空気供給管３の先端側は円形状とし、その円形部分の全体に渡って空気を供給する孔３１を多数設けた。
【００３９】
また更に、空気供給管３から供給された空気をより小さな気泡にするため、モーター４で回転する撹拌翼５を培養槽の中央位置に設けた。撹拌翼５は、図１で上下方向に複数の長孔（符号省略）を有している。
【００４０】
符号６１は培養液の供給管を示し、符号６２は培養液の排出管を示している。
符号６３は除菌フィルターを示している。なお、図示はしていないが、培養槽１内部には、ヒーターと温度センサーが設けてある。
【００４１】
一方、ＳＢＲは、プレス機でシート状に薄く延ばし、そのシートとシートの間にステンレス製の網を挟み込んで加圧接着した後、円形状の培養槽１の内周面に合わせて湾曲させたものを使用した。このＳＢＲ試料７は、オートクレーブで滅菌処理(121℃、20分間)した。なお、使用したＳＢＲの重量は63.85gである。
【００４２】
ゴム分解装置の運転条件は、撹拌速度60〜100r.p.m.、通気量毎分500mL、培養温度37℃である。培養液は10日毎に100mLの割合で置換した。60日間の分解反応後、ＳＢＲ試料７を取り出し、十分に水洗いした後、約30℃の恒温乾燥機で数日間乾燥して、ＳＢＲの重量の減少を測定した。
また、比較例として、本菌株を培養液に加えない状態で分解反応を行った。
表５にその実験結果を示す。
【００４３】
【表５】
0004106530.tif 000006
【００４４】
表５に示すように、半連続式のゴム分解装置を使用することで、4.67％の重量減少が認められた。また、試験後のＳＢＲ試料表面の色は、薄黄色から薄橙色に変化しており、試料表面は触るとべたべたした感触を有していた。
【００４５】
更に、試験後のＳＢＲ試料をトルエンに溶解させてみたところ、培養液と接しなかった内部は溶解したが、分解反応が行われたと思われる表面は全く溶解しなかった。
以上のことから、反応後のＳＢＲ試料の表面に、ある種の反応生成物（阻害物質）が形成されていることが確認された。
【００４６】
一方、本菌株を培養液に加えない状態で分解反応を行った比較例では、ゴムの重量変化はなく、分解が行われていないことが確認された。なお、後述する実施例２でも同様に、本菌株を加えない状態で分解反応を行ったが、実施例１と同様に、ゴムの分解は行われていなかった。
【００４７】
ところで、図２に示すように、ＳＢＲは分解することによって、スチレン‐ブタジエン分子鎖中の二重結合が酸化的に切断され、アルデヒドを生成するものと思われる。そこで、ＳＢＲ試料表面の反応生成物と反応後の培養液を採取し、試料中にアルデヒドが含まれるか否かを分析した。
【００４８】
分析方法は、以下の通りである。
即ち、各試料を1mLずつ（ＳＢＲ試料の場合、蒸留水1mLに0.5g）小試験管に採取し、1.2NのHClを用いて2.5mM/L濃度で調製した2,4ジニトロフェニルヒドラジン溶液を0.5mL加えた。次いで、30〜37℃で5〜10分放置し、1.7NのNaOH溶液を3.5mL加えた。そして、15分以内（放置時間は常に一定）に、試料溶液の吸光度を分光光度計を用いて測定した。なお、測定波長は416nmである。
【００４９】
各試料を測定することによって得られたアルデヒドの量を＋＋＋、＋＋、＋、±、−の五段階で概略的に評価した。
なお、比較例として、反応後の培養液を加えていない試料をブランクとし、その評価を−とした。また、試料にベンズアルデヒドを用い、その評価を＋＋＋とした。
測定結果を表６に示す。
【００５０】
【表６】
0004106530.tif 000007
【００５１】
この結果、ＳＢＲ試料表面の反応生成物と反応後の培養液の何れにも、アルデヒドが検出された。
【００５２】
また、反応後の培養液を溶媒抽出後、ＬＣ−ＭＳを用いて分析、同定を行った。図３に分析データであるＬＣ−ＭＳスペクトルを示す。この分析データから、ＳＢＲ分解後の生成物にブタジエン由来の炭化水素基を備えた化合物が含まれることが明らかとなった。なお、分析に用いたＬＣ−ＭＳは、ネガティブモードで測定しており、実際の分子量より1低い値で出力されている。
以上、ＩＲスペクトル及びＬＣ−ＭＳスペクトルの分析データから、図２に示したＳＢＲの分解反応が起こっているものと示唆された。
【００５３】
［実施例２］
図４は連続式のゴム分解装置の一実施の形態を示す概略構成図である。
図４に示す小型のゴム分解装置で連続式培養を行った。
ゴム分解装置は、基本的には実施例１で説明した半連続式のゴム分解装置とほぼ同じような構成であるが、撹拌翼の代わりにマグネティックスターラー８を使用している。なお、実施例１と同様に撹拌翼を使用しても良い。
【００５４】
一方、ＳＢＲは、重量当たりの反応面積を大きくするため、以下のように処理したものを使用した。
即ち、まずＳＢＲをトルエンに溶かし、その溶解液をガラス板表面に流した後、トルエンを蒸発させてゴムの薄膜を成形した。そして、実施例１とは相違して、ステンレス製の網でＳＢＲを両側から挟み込んで加圧接着した。その後、ステンレス製の網で挟み込んだＳＢＲ試料７ａを、円形状の培養槽１の内周面に合わせて湾曲させた。
【００５５】
ゴム分解装置の運転条件は、実施例１と同様、撹拌速度60〜100r.p.m.、通気量毎分500mL、培養温度37℃である。
【００５６】
培養液は、実施例１で種菌として調製したものを使用した。ただし、実施例１と相違して、置換する培養液の流量は10mL／hrとし、培養液をその流量で抜き取り、更に同じ流量で新しい培養液を加えて連続的に培養を行った。60日間の分解反応後、ＳＢＲを取り出し、十分に水洗いした後、約30℃の恒温乾燥機で数日間乾燥して、重量の減少を測定した。
表７にその実験結果を示す。
【００５７】
【表７】
0004106530.tif 000008
【００５８】
表７に示すように、連続式のゴム分解装置を使用することで、7.19％の重量減少が認められた。なお、試験後のＳＢＲ試料表面の色、手触り、トルエンへの溶解性については、実施例１と同じであるため、説明を省略する。
【００５９】
［実施例３〜６］
図５は連続式のゴム分解装置の他の実施の形態を示す概略構成図である。
工業的利用を踏まえ、大量のＳＢＲを処理することができる大型のゴム分解装置を使用して連続式培養を行った。
【００６０】
培養槽１ａの容量は8Lである。また、撹拌効率を向上させると共に、後述する1cm角のＳＢＲ試料（図示省略）に負荷をかけるため、プラスチック製で細長い邪魔板９,・・・を撹拌翼５を囲むように三箇所配置した。
その他の構成は、実施例１で説明したゴム分解装置と同じか大体同じであるため、説明を省略する。なお、符号１１はヒーターを示し、符号１２は温度センサーを示している。
【００６１】
ＳＢＲ試料は、作業工程の簡略化と表面に加わる摩擦抵抗を増加させるため、1cm角に刻んだものを用いた。なお、使用したＳＢＲ試料の重量は800gである。
【００６２】
ゴム分解装置の運転条件は、実施例１と同様、撹拌速度約300r.p.m.、通気量毎分3.5L、培養温度37℃である。
【００６３】
無機培地は、表４で示した組成で、濃度を５倍に調製したものを使用した。
また培養液は、容量当たりの菌体数を増加させて培養時間を短縮するため、実施例１で種菌として調製したものを遠心分離器にかけ、20Lを100mLに濃縮したものを用いた。詳しくは、遠心分離を行って菌体を遠心管底部に沈降させ、次いで上澄み液を捨てることで、培養液の濃縮を行った。
【００６４】
置換する培養液の量を50mL／hrとし、培養液をその流量で抜き取り、更に同じ流量で新しい培養液を加えて連続的に培養を行った。20日間の分解反応後、ＳＢＲを取り出し、十分に水洗いした後、約30℃の恒温乾燥機で数日間乾燥して重量の減少を測定し、ＳＢＲの分解率を求めた。これを実施例３とした。
【００６５】
なお、本菌株は夾雑菌の影響が少ないことから、本実施例では作業の簡略化を図り、末滅菌状態で分解実験を行った。
【００６６】
実施例４として、培養液に空気を供給しない状態で分解反応を行った。
実施例５として、撹拌翼による撹拌をせずに分解反応を行った。
実施例６として、ヒーターの電源を切り、培養液の温度管理をしない状態で分解反応を行った。なお、培養液の温度は、室温と同じ27℃である。
実施例７として、培養液をpH9に調製して分解反応を行った。
実施例８として、80日間の長期培養を行った。
【００６７】
比較例として、本菌株を培養液に加えない状態で分解反応を行った。
なお、実施例４ないし８及び比較例については、上記した相違点以外は実施例３と同じ条件の下、分解反応を行った。
図６に実験結果であるＳＢＲの分解率のグラフを示す。
【００６８】
図６を参照する。
本菌株を加えない状態で分解反応を行った比較例では、分解率が0％で、分解が行われていないことが確認された。
【００６９】
これに対し、実施例３では、12.39％の重量減少が確認された。試験開始後2日目から7日間程の間、分解反応が進行していると思われるＳＢＲの濃い黄色の泡が観察できた。
【００７０】
また、反応中のＳＢＲ試料を取り出して調べたところ、分解途中の反応物と思われるものが生成していた。この反応物は摩擦を加えることで試料表面から剥離し、その反応物の下から未反応と思われるＳＢＲの表面が現れた。
【００７１】
更に、反応中の流出液や反応終了後の培養槽に、上記したＳＢＲの分解物と思われる微粒子が多量に沈殿していた。このことから分解反応はＳＢＲの表面で行われており、ＳＢＲを効率的に分解させるためには、何らかの方法で反応物質を表面から取り除く必要があると思われる。
【００７２】
培養液に空気を供給しない状態で分解反応を行った実施例４では、空気の供給を行った実施例３に比べ、分解率が1.39％と低い。
また、空気の供給を行った実施例３に比べ、反応の初期に確認された泡が殆ど見られなかった。しかしながら、撹拌翼による撹拌によって、多少の空気が培養液に供給されたものと見られ、少量の泡と沈殿物からいくらかの分解反応は行われたと推定される。
このようなことから、ＳＢＲの分解反応には空気の供給が必要であると思われる。
【００７３】
撹拌翼による撹拌をせずに分解反応を行った実施例５では、実施例４と同様に、分解率が0.61％と低い。
また、撹拌翼による撹拌を行った実施例３と比べ、反応の初期に見られた泡が少なく、分解反応が進行していると思われるＳＢＲの濃い黄色の泡も確認できなかった。更に、反応物が殆ど沈殿せず、ＳＢＲの表面に生成したままであった。
このようなことから、ＳＢＲを効率的に分解するためには、実施例３のように、撹拌翼及び邪魔板によって物理的に摩擦やせん断応力を加え、ＳＢＲの表面から反応物質を取り除く必要があると思われる。
【００７４】
室温27℃下で分解反応を行った実施例６では、実施例４及び実施例５と比べ、高い分解率が得られたが、実施例３と比べると分解率が6.67％と低い。このことから、分解反応を行うための温度は、37℃がより好ましいことが確認できた。
なお、本実施例以外に、培養温度を変えて実験を行った結果、培養液の好ましい温度は、30〜37℃であることを確認した。
【００７５】
培養液をpH9に調製した実施例７では、培養液がpH7である実施例３と比較して、少しではあるが13.90%という高い分解率が得られた。
なお、本実施例以外に、培養液のpHを変えて実験を行った結果、培養液の好ましいpHは、9〜10であることが確認した。
【００７６】
80日間の長期培養を行った実施例８では、20日間の培養を行った比較例３に比べ、23.20%という高い分解率が得られた。しかしながら、比較例３と比べ、4倍の長期培養を行っても、分解率は4倍の値を得られなかった。
また、実験開始から7日間で泡は殆ど出なくなり、また流出液から確認されるＳＢＲの分解物と思われる微粒子の量も同様に減少した。
更に、実験後のＳＢＲ試料の体積を測ってみたところ、分解前は798.76mLあった体積が620.37mLと減少していた。
【００７７】
これらのことから、ＳＢＲが分解して体積が減ることにより、ＳＢＲ試料同士の接触率（衝突率）が減少して、試料表面の反応生成物が剥離できず、結果的に分解反応が阻害されたものと思われる。
【００７８】
なお、本明細書で使用している用語と表現はあくまで説明上のものであって、限定的なものではなく、上記用語、表現と等価の用語、表現を除外するものではない。
【００７９】
【発明の効果】
（ａ）本発明によれば、新規な微生物を用いることによってＳＢＲを分解することが可能である。
【００８０】
（ｂ）本発明に係る微生物は、比較的簡単な培養液中で高いゴム分解能を示すので、工業化に際し材料コストを抑えることができる。
【００８１】
（ｃ）本発明に係る微生物は、培養に際して夾雑菌の影響が少なく、生育の阻害が見受けられないので、ゴムを分解させる際に減菌処理を施す必要がない。したがって、減菌処理に必要な機器類をゴム分解装置に付帯させる必要がないので、装置の生産コストを抑えることができる。
【００８２】
（ｄ）本発明に係るゴム分解装置によれば、分解によってゴム表面に生じたまたは生成した物質を除去しながら、分解反応を進行させることができるので、ゴムを効率的に分解させることができる。
【図面の簡単な説明】
【図１】  半連続式のゴム分解装置の一実施の形態を示す概略構成図。
【図２】  本菌株によるＳＢＲの分解反応を示す図。
【図３】  ＳＢＲの分解反応後の培養液のＬＣ−ＭＳスペクトルを示す図。
【図４】  連続式のゴム分解装置の一実施の形態を示す概略構成図。
【図５】  連続式のゴム分解装置の他の実施の形態を示す概略構成図。
【図６】  ＳＢＲの分解率を示すグラフ。
【符号の説明】
１，１ａ  培養槽
２  チューブ
３  空気供給管
３１  孔
４  モータ
５  撹拌翼
６１  培養液の供給管
６２  培養液の排出管
６３  除菌フィルター
７，７ａ  ＳＢＲ試料
８  マグネティックスターラー
９  邪魔板
１１  ヒーター
１２  温度センサー
【図１】
0004106530.tif 000010
【図２】
0004106530.tif 000011
【図３】
0004106530.tif 000012
【図４】
0004106530.tif 000013
【図５】
0004106530.tif 000014
【図６】
0004106530.tif 000015