(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
有効成分として、（Ｓ）−３，４−［Ｎ，Ｎ’−１，１’−（（２”−エトキシ）−３”’（Ｏ）−４”’−（Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノ）−ブタン）−ビス−（３，３’−インドリル）］−１（Ｈ）−ピロール−２，５−ジオンまたはその薬剤的に許容しうる酸塩を含む、糖尿病性黄斑浮腫を処置するための薬剤。
【請求項２】
有効成分がメシラート塩である請求項１に記載の薬剤。
【発明の詳細な説明】
本出願は、１９９６年５月１日に提出された米国仮出願第６０／０１６，６５８号の優先権の利益を主張する。
発明の背景
１．発明の分野
本発明は、広範には、血管内皮増殖因子（vascular endothelial growth factor）（ＶＥＧＦ）と関連する内皮細胞の増殖および毛細血管透過性、例えばＶＥＧＦによって誘導される細胞増殖の増加および透過性を、プロテインキナーゼＣ（ＰＫＣ）のβアイソザイムの阻害剤を用いて、阻害する方法に関係する。これらのＶＥＧＦを誘導する条件は、様々な目の血管障害と密接に関連している。
特に、本発明は、黄斑変性、黄斑浮腫、血管網膜障害、網膜静脈閉塞、虹彩の新生血管形成、ヒストプラスマ症、および虚血性網膜疾病を含む目の血管障害を治療するための、プロテインキナーゼＣ（ＰＫＣ）のβアイソザイムの阻害剤の使用に関する。
２．関連技術の説明
ＶＰＦ／ＶＥＧＦは、グリコシル化された多機能サイトカインである。ＶＰＦ／ＶＥＧＦの過剰発現は、様々な目の血管障害と関連する。
ＶＰＦ／ＶＥＧＦは、輸送、移動（migration）およびアクチンの認識を仲介する、形態変化およびルフリング（ruffling）を伴う、小水泡性（vesicular）−空砲状（vacuolar）の細胞小器官の活性化を通して、内皮細胞の増殖、過剰な透過性を誘導する。それは、内皮細胞の遺伝子発現を変化させ、介在性コラゲナーゼ、ウロキナーゼ様活性化剤および組織プラスミノーゲン活性化剤を含む、組織因子ならびに様々なプロテアーゼの生成を増加に導く。これら同一遺伝子の大部分は、ＰＫＣの活性化を刺激するホルボルミリステートアセテート（ＰＭＡ）によって誘導される。
血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）は、繊維芽細胞増殖因子（fibroblast growth factors）（ＦＧＦｓ）および形質転換増殖因子（transforming growth factor）（ＴＧＦβ）と一緒に、虚血性網膜疾病の患者の眼内新生血管形成の活性化を仲介する、主要な部分を演じると考えられている（Ａｉｅｌｌｏら、Ｎｅｗ  Ｅｎｇｌａｎｄ  Ｊｏｕｒ．Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，３３１（２２）：１４８０−１４８７、１９９４；Ａｍｉｎら、Ｉｎｖｅｓｔ．Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌ  Ｖｉｓ．Ｓｃｉ．，３５，３１７８−３１８８、１９９４）。
ＶＥＧＦ発現の増加と関連する目の血管障害の一つは、黄斑変性である。加齢に関連する黄斑変性は、年配の人が盲目になる主な原因である。黄斑変性は、８５歳およびそれより年上の人々の１６％より多く、６５歳と７４歳の間の人々の６％を苦しめていると考えられる。７５歳以上の患者の２０％より多くが、黄斑変性を伴う。疾病は、女性により頻繁に起こる（Ｌｉｅｂｏｗｉｔｚ  ＨＭ，Ｋｒｕｅｅｒ  ＤＥ，Ｍａｕｎｄｅｒ  ＬＥら、”Ｔｈｅ  Ｆｒａｍｉｎｇｈａｍ  Ｅｙｅ  Ｓｔｕｄｙ；ＶＩ  Ｍａｃｕｌａｒ  Ｄｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ”，Ｓｕｒｖ，Ｏｐｔｈａｌｍｏｌ．２４（増補１０）、４２８−４５７，１９８０；Ｋｌｅｉｎら、”Ｐｒｅｖａｌｅｎｃｅ  ｏｆ  Ａｇｅ  Ｒｅｌａｔｅｄ  Ｍａｃｕｌｏｐａｔｈｙ：Ｔｈｅ  Ｂｅａｖｅｒ  Ｄａｍ  Ｓｔｕｄｙ”，Ｏｐｈｔｈａｏｍｏｌｏｇｙ，９９（６），９３３−９４３、１９９２）。黄斑変性は、乾燥または湿潤型に分けることができ、乾燥型は１０倍でより一般的であるが、一般的には、その臨床的発現はより少ない。より重い湿潤性、または滲出性の黄斑変性は、網膜下色素上皮または網膜下腔内の脈絡膜血管の異常な増殖（脈絡膜新生血管形成）と関連し、時折、重い視覚損傷を起こす。
黄斑変性は、網膜色素上皮（retinal pigment epithelial）（ＲＰＥ）層内で異常な組織沈積物を示すドレーゼンの出現という病理学的病変を最初に示し、二次的に血管不全症を起こすと考えられる。次に、新しい血管は、ＲＰＥおよび脈絡毛細管板の間にあるブルーフ膜を通して増殖し、網膜を侵す。この網膜侵略は、光受容体の破壊の原因となり、視力を減少させる出血を導く可能性がある。
黄斑変性の治療の最も一般的な形の一つは、レーザー治療である。レーザー治療は、黄斑中央領域（窩）（fovea）内に拡大しない新生血管形成領域を治療するのに用いられる。しかしながら、レーザー治療後の病気の再発は、一般的である（ＭＰＳ  Ｇｒｏｕｐ，Ａｒｃｈ  Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌ．，１０９，１２３２−１２４１、１９９１）。さらに、レーザー治療は、結果として暗点を残す可能性があり、それ故、黄斑中央領域の新生血管形成の最適な治療法ではない。主として、共通に認められる脈絡膜新生血管形成は病気が限定されるか、または不顕性の性質のため、限定された数の患者のみが、この治療形の適正診断基準に合致した（Ｆｒｅｕｎｄら、Ａｍｅｒ．Ｊｏｕｒ．Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌ．，１１５，７８６−７９１、１９９３）。インターフェロンもまた、病的脈管形成を刺激する繊維芽細胞増殖因子のような増殖因子の既知の活性を基にして、治療薬剤として試行されたことがある。しかしながら、一貫した効果は認められなかった（Ｋｉｒｋｐａｔｒｉｃｋら、Ｂｒ．Ｊ．Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌ．，７７，７６６−７７０、１９９３；Ｃｈａｎら、Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌｏｇｙ，１０１，２８９−３００、１９９４）。より最近では、黄斑変性を治療するための、形質転換増殖因子（transforming growth factor）（ＴＧＦ）β−２を用いた試みが、不成功に終わった（Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ  Ｎｅｗｓｗａｔｃｈ、１９９６年１月１日）。
人口の急速な加齢に伴い、黄斑変性は、実質上の公衆健康問題を提起する。現在のところ、治療法はなく、レーザー治療で得られた満足できる結果のより少ない治療法が唯一の受け入れうる治療法であるが、最近、ＦＤＡは、ヒト患者での臨床研究に用いるために、サリドマイドを公認した（”Ｒｅｓｅａｒｃｈｅｒ  Ｆｏｃｕｓ  ｏｎ  Ｍａｃｕｌａｒ  Ｄｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ；Ｃｏｍｍｏｎ  Ｅｙｅ  Ｐｒｏｂｌｅｍｓ，Ｃａｕｓｅ  ａｎｄ  Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ  Ｇｅｔ  Ｎｅｗ  Ａｔｔｅｎｔｉｏｎ”，Ｓｔｅｖｅｎ  Ｓｔｅｒｎｂｅｒｇ，Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ  Ｐｏｓｔ  Ｈｅａｌｔｈ、１９９５年１０月３１日）。黄斑変性を有効な薬剤で治療するための技術の必要性が強く残る。
黄斑浮腫は、色素性網膜炎、糖尿病性網膜症、扁平部炎、網膜静脈閉塞症、老年性硝子体炎の様な、目の血管障害の多くの型、および眼内手術法と関連する（Ｈｅｎｋｉｎｄ，Ｓｕｒｖ．Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌ．，２８，４３１−２、１９８４；Ｂｉｒｄ，Ｓｕｒｖ．Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌ．，２８，４３３−６、１９８４；Ｃｕｎｈａ−Ｖａｚ，Ｓｕｒｖ．Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌ．，２８，４８５−９２、１９８４）。類襄胞黄斑浮腫は、白内障手術に続いて起こる最も共通の合併症であり（Ｙａｎｎｕｚｚｉ，Ｓｕｒｖ．Ｏｐｈｔｈａｍｏｌ．，２８，５４０−５３、１９８４）、そして、多分、レンズ摘出を受けた患者の視力損失の最も共通の原因でもある（Ｊａｍｐｏｌら、Ｓｕｒｖ．Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌ．，２８，５３５−９、１９８４）。類襄胞黄斑浮腫は、通常自己限定性であり、慢性の場合でも自発的に改善される可能性がある（Ｙａｎｎｕｚｚｉ，Ｓｕｒｖ．Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌ．，２８，５４０−５３、１９８４）。しかしながら、患者の内のわずかな割合（１から１５％）は、回復不能の損傷および終身の視覚障害に進行する可能性がある（Ｙａｎｎｕｚｚｉら、Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌｏｇｙ，８８，８４７−５４、１９８１）。
また、黄斑浮腫は、フォークト−小柳−原田（ＶＫＨ）症候群の患者が後に視覚損傷を起こす原因となる（Ｒｕｔｚｅｎら、Ｊ．Ｒｅｔ．ａｎｄ  Ｖｉｔ．Ｄｉｓ．，１５（６），４７５−４７９、１９９５）。黄斑浮腫は、糖尿病性網膜症の微細動脈瘤および鎌状赤血球貧血、分枝静脈閉塞、頸動脈病、または重い高血圧症を持つ糖尿病でない人々の微細動脈瘤と密接に関連している（Ｋｌｅｉｎ，Ｍｅｄ．Ｃｌｉｎ．Ｎ．Ａｍ．，７２，１４１５−１４３７、１９８９）。微細動脈瘤は、時として、リポタンパク質素材を漏らし、結果として硬い浸出物を形成する。このような浸出物は、散乱した、凝集した、またはリング様の形状を示す。浸出物および液体が網膜の後方部分に集まる場合、その結果、視覚の有意のかすみの原因となり、視力の損失を導く可能性のある、黄斑浮腫が生ずる可能性がある。
病巣の光凝固と言われる、レーザー法を用いて、微細動脈瘤に隣接する網膜腫張領域を治療する。病巣の光凝固は、臨床的に有意な黄斑浮腫の患者の６０％の視力の悪化の発生率を減少させることを示したが、光凝固の恩恵は、軽症から中程度の黄斑浮腫の患者では示されなかった（Ｒａｓｋｉｎら、Ａｎｎ．Ｉｎｔ．Ｍｅｄ．，１１７（３），２２６−２３３、１９９２）。硝子体手術は、異常な硝子体−黄斑の境界と関連する糖尿病性黄斑浮腫の場合にのみ、視覚の予後を改善することができる（Ｖａｎｅｆｆｅｎｔｅｒｒｅら、Ｊ．Ｆｒａｎｃａｉｓ．Ｄ．Ｏｐｈｔｈａｌｍｏｌ．，１６（１１），６０２−６１０、１９９３）。経口および局所のインドメタシン（Ｍｉｗａ，Ｄｒｕｇ  Ｉｎｔｅｌｌ．Ｃｌｉｎ．Ｐｈａｒｍ．，２０，５４８−５５０、１９８６）ならびにエリスロポイエチン（Ｆｒｉｅｄｍａｎら、Ａｍｅｒ．Ｊ．Ｋｉｄｎｅｙ  Ｄｉｓ．，２６（１），２０２−２０８、１９９５）の様な薬剤治療を、黄斑浮腫について評価したが、有意の効果は認められなかった。黄斑浮腫に有効な薬剤療法についての技術が必要とされる。
ＶＥＧＦは、ある種の目の血管障害の病理にある種の役割を演ずることが知られているが、ＶＥＧＦによって提供される機能を阻害することが、そのような目の血管障害の治療に治療上の恩恵を提供するか否かを決定することが残された。本発明は、ＶＥＧＦの活性を阻害することによって、様々なこれらの目の血管障害の病理を改善することができることを、示している。
発明の概要
本発明の目的は、目の血管障害の治療方法を提供することにある。
本発明のもう一つの目的は、哺乳動物の黄斑浮腫（macular edema）と関連する毛細血管の透過性を阻害する方法を提供することにある。
本発明のさらなるもう一つの目的は、血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）に誘導される新生血管形成を阻害する方法を提供することにある。
本発明のこれらのおよびその他の目的は、以下に記載する実施態様の一つまたはそれより多くによって提供される。
本発明の一つの実施態様では、目の血管障害を治療する方法であって、そのような治療を必要とする哺乳動物に、治療上有効な量のプロテインキナーゼＣのβ−アイソマーの阻害剤を投与することを含む、上記の治療方法が提供される。
本発明のもう一つの実施態様では、哺乳動物の黄斑変性を治療する方法であって、前記哺乳動物に治療上有効な量のプロテインキナーゼＣのβアイソザイムの阻害剤を投与することを含む、上記の治療方法が提供される。
本発明のさらなるもう一つの実施態様では、哺乳動物の黄斑浮腫に関連する毛細血管透過性を阻害する方法であって、前記の哺乳動物に毛細血管透過性を阻害する量のプロテインキナーゼＣのβアイソザイムの阻害剤を投与することを含む、上記の阻害方法が提供される。
本発明のもう一つの実施態様では、血管内皮増殖因子（ＶＥＧＦ）を阻害する方法であって、前記の哺乳動物にＶＥＧＦを阻害する量のプロテインキナーゼＣのβアイソザイムの阻害剤を投与することを含む、上記の阻害方法が提供される。
本発明は、様々な目の血管障害の治療に予防的および効果的である化合物の同定技術を提供する。
【図面の簡単な説明】
図１は、ＰＫＣ阻害剤、（Ｓ）−３，４−［Ｎ，Ｎ’−１，１’−｛（２”−エトキシ）−３”’（Ｏ）−４”’−（Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノ）−ブタン｝−ビス−（３，３’−インドリル）］−１（Ｈ）−ピロール−２，５−ジオンの、ヒト組換ＶＥＧＦに刺激された内皮細胞の増殖への阻害効果について示している。
図２は、ＰＫＣ阻害剤、（Ｓ）−３，４−［Ｎ，Ｎ’−１，１’−｛（２”−エトキシ）−３”’（Ｏ）−４”’−（Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノ）−ブタン｝−ビス−（３，３’−インドリル）］−１（Ｈ）−ピロール−２，５−ジオンの、ヒト組換ＶＥＧＦに刺激された内皮細胞の増殖への、阻害効果についてさらに説明している。
図３は、低酸素状態下での網膜血管周囲細胞の培養時に発現する内因性のＶＥＧＦ活性へのＰＫＣ阻害剤の影響について示している。
図４は、ヒトの組換ＶＥＧＦに刺激された内皮細胞の増殖へのＰＫＣ阻害剤の阻害効果についてさらに説明している。
図５Ａ、５Ｂは、ＶＥＧＦ誘導された網膜透過性の時間経過について示している。
図６は、フルオレセイン網膜透過性のＶＥＧＦへの応答について示している。
図７は、硝子体内のＰＫＣ阻害剤および刺激の網膜透過性への影響について示している。
図８Ａ、８Ｂは、プロテインキナーゼＣβ阻害剤を経口投与することによる、ＶＥＧＦに応答する網膜透過性の阻害について示している。
発明の詳細な記載
本発明の発見は、特定のクラスのプロテインキナーゼＣ阻害剤、即ち、プロテインキナーゼＣのβアイソザイムの阻害剤、および特にＰＫＣのβアイソザイム選択的阻害剤、の治療への使用がＶＥＧＦの影響を妨害することである。特に、本発明の発見は、この特定のクラスのプロテインキナーゼＣ阻害剤の使用が内皮細胞の増殖および毛細血管の透過性、特に増殖因子ＶＥＧＦによって刺激される内皮細胞の増殖および毛細血管の透過性、を妨害することである。それ故、そのような化合物を治療に用いると、ＶＥＧＦと関連する障害、特に様々な目の血管障害、を治療することができる。
本発明の方法は、好ましくは、βアイソザイムを効果的に阻害するそのようなプロテインキナーゼＣ阻害剤を用いる。化合物の一つの適当なグループは、一般的には、ビス−インドリルマレイミドまたはマクロサイクリックビス−インドリルマレイミドとして先行技術に記載されている。先行技術でよく認識されているビス−インドリルマレイミドは、合衆国特許５６２１０９８、５５５２３９６、５５４５６３６、５４８１００３、５４９１２４２および５０５７６１４（そのすべてをここに参照として採用する）に記載されたそのような化合物を含む。特に、マクロサイクリックビス−インドリルマレイミドは、式Ｉの化合物によって表される。これらの化合物およびそれらの製造方法は、合衆国特許第５，５５２，３９６号に開示されており、ここに参照として採用する。これらの化合物は、治療上有効な量で哺乳動物に投与されて、ＶＥＧＦと関連する内皮細胞の増殖または毛細血管の透過性を阻害し、さらに目の障害と関連するＶＥＧＦの影響を阻害する。また、これらの化合物は、予防目的で上記の疾病状態の危険性のある患者に投与することができる。
本発明の方法に用いる一つの好ましいクラスの化合物は、式（Ｉ）
0004122060.tif 000002
［式中、
Ｗは、−Ｏ−、−Ｓ−、−ＳＯ−、−ＳＯ2−、−ＣＯ−、Ｃ2−Ｃ6アルキレン、置換アルキレン、Ｃ2−Ｃ6アルケニレン、−アリール−、−アリール（ＣＨ2）mＯ−、−複素環−、−複素環−（ＣＨ2）mＯ−、−縮合二環式−、−縮合二環式−（ＣＨ2）mＯ−、−ＮＲ3−、−ＮＯＲ3−、−ＣＯＮＨ−、または−ＮＨＣＯ−であり；
ＸおよびＹは、独立的に、Ｃ1−Ｃ4アルキレン、置換アルキレンであるか、またはＸ、ＹおよびＷは共に合わせて−（ＣＨ2）m−ＡＡ−を形成し；
Ｒ1は、水素であるか、またはハロ、Ｃ1−Ｃ4アルキル、ヒドロキシ、Ｃ1−Ｃ4アルコキシ、ハロアルキル、ニトロ、ＮＲ4Ｒ5または−ＮＨＣＯ（Ｃ1−Ｃ4アルキル）から独立的に選択された最大で４つの所望の置換基であり；
Ｒ2は、水素、ＣＨ3ＣＯ−、ＮＨ2またはヒドロキシであり；
Ｒ3は、水素、（ＣＨ2）mアリール、Ｃ1−Ｃ2アルキル、−ＣＯＯ（Ｃ1−Ｃ4アルキル）、−ＣＯＮＲ4Ｒ5、−（Ｃ＝ＮＨ）ＮＨ2、−ＳＯ（Ｃ1−Ｃ4アルキル）、−ＳＯ2（ＮＲ4Ｒ5）または−ＳＯ2（Ｃ1−Ｃ4アルキル）であり；
Ｒ4およびＲ5は、独立的に、水素、Ｃ1−Ｃ4アルキル、フェニル、ベンジルであるか、または窒素と結合して飽和または不飽和の５あるいは６員環を形成し；
ＡＡは、アミノ酸残基であり；
ｍは、独立的に、０、１、２または３であり；そして、
ｎは、独立的に、２、３、４または５である］
を持つか、またはその薬剤的に許容しうる塩、プロドラッグまたはエステルである。
本発明での使用により好ましいクラスの化合物は、式Ｉ（式中、−Ｘ−Ｗ−Ｙ−部分が４から８の原子を含み、置換されていても非置換であっても良い）によって表される。最も好ましくは、部分−Ｘ−Ｗ−Ｙ−は、６つの原子を含む。
本発明の方法に用いるその他の好ましい化合物は、式Ｉ（式中、Ｒ1およびＲ2は水素であり、そして、Ｗは、置換されたアルキレン、−Ｏ−、−Ｓ−、−ＣＯＮＨ−、−ＮＨＣＯ−または−ＮＲ3である）のそのような化合物である。本発明での使用に特に好ましい化合物は、式Ｉａ：
0004122060.tif 000003
（式中、Ｚは、−（ＣＨ2）p−または−（ＣＨ2）p−Ｏ−（ＣＨ2）p−であり；Ｒ4は、ヒドロキシ、−ＳＨ、Ｃ1−Ｃ4アルキル、（ＣＨ2）mアリール、−ＮＨ（アリール）、−Ｎ（ＣＨ3）（ＣＦ3）、−ＮＨ（ＣＦ3）または−ＮＲ5Ｒ6であり；Ｒ5は、水素またはＣ1−Ｃ4アルキルであり；Ｒ6は、水素、Ｃ1−Ｃ4アルキルまたはベンジルであり；ｐは、０，１または２であり；そして、ｍは、独立的に２または３である）：
の化合物、またはその薬剤的に許容しうる塩、プロドラッグあるいはエステルである。式Ｉａの最も好ましい化合物は、式中、ＺがＣＨ2であり；そして、Ｒ4が−ＮＨ2、−ＮＨ（ＣＦ3）または−Ｎ（ＣＨ3）2である化合物、またはその薬剤的に許容しうる塩、プロドラッグあるいはエステルである。
本発明の方法に用いるに好ましいその他の化合物は、式Ｉ中、Ｗが−Ｏ−であり、Ｙが置換アルキレンであり、そしてＸがアルキレンである、化合物である。これらの好ましい化合物は、式Ｉｂ
0004122060.tif 000004
［式中、Ｚは−（ＣＨ2）p−であり；Ｒ4は、−ＮＲ5Ｒ6、−ＮＨ（ＣＦ3）または−Ｎ（ＣＨ3）（ＣＦ3）であり；Ｒ5およびＲ6は、独立的に、ＨまたはＣ1−Ｃ4アルキルであり；ｐは、０、１または２であり；そして、ｍは、独立的に２または３である］で表されるか、またはその薬剤的に許容しうる塩、プロドラッグあるいはエステルである。式Ｉｂの最も好ましい化合物は、式中、ｐが１であり、そしてＲ5およびＲ6がメチルである、化合物である。
それらは塩基性部分を含むので、式Ｉ、ＩａおよびＩｂの化合物は、また、医薬として許容しうる酸付加塩としても存在できる。そのような塩を形成するために一般的に用いられる酸には、塩酸、臭化水素酸、ヨウ化水素酸、硫酸およびリン酸の様な無機酸、ならびにパラ−トルエンスルホン酸、メタンスルホン酸、シュウ酸、パラ−ブロモフェニルスルホン酸、カルボン酸、コハク酸、クエン酸、安息香酸、酢酸ような有機酸、および関連する無機酸および有機酸が含まれる。従って、そのような医薬として許容しうる塩には、硫酸塩、ピロ硫酸塩、重硫酸塩、亜硫酸塩、重亜硫酸塩、リン酸塩、リン酸一水素塩、リン酸二水素塩、メタリン酸塩、ピロリン酸塩、塩化物、臭化物、ヨウ化物、酢酸塩、プロピオン酸塩、デカン酸塩、カプリル酸塩、アクリル酸塩、ギ酸塩、イソ酪酸塩、ヘプタン酸塩、プロピオル酸塩、シュウ酸塩、マロン酸塩、コハク酸塩、スベリン酸塩、セバシン酸塩、フマル酸塩、マレイン酸塩、２−ブチン−１，４−ジオエート、３−ヘキシン−２，５−ジオエート、安息香酸塩、クロロ安息香酸塩、ヒドロキシ安息香酸塩、メトキシ安息香酸塩、フタル酸塩、キシレンスルホン酸塩、フェニル酢酸塩、フェニルプロピオン酸塩、フェニル酪酸塩、クエン酸塩、乳酸塩、馬尿酸塩、β−ヒドロキシ酪酸塩、グリコール酸塩、マレイン酸塩、酒石酸塩、メタンスルホン酸塩、プロパンスルホン酸塩、ナフタレン−１−スルホン酸塩、ナフタレン−２−スルホン酸塩、マンデル酸塩およびその類似体が含まれる。特に塩酸塩及びメシレート塩が用いられる。
薬剤的に許容しうる塩に加えて、その他の塩もまた存在できる。それらは、化合物精製における、その他の塩の製造に於ける、または化合物あるいは中間体の同定および特徴付けに於ける、中間体として供与することができる。
また、式Ｉ、ＩａおよびＩｂの化合物の医薬として許容しうる塩は、水、メタノール、エタノール、ジメチルホルムアミド、酢酸エチルおよびその類似体のような様々な溶媒和物（solvate）として存在できる。また、そのような溶媒和物の混合物を調製することもできる。そのような溶媒和物の起源は、調製または結晶化溶媒に固有、またはそのような溶媒に対して外来の結晶化溶媒から、であることができる。
式Ｉ、ＩａおよびＩｂの化合物の様々な立体異性型（例えば、Ｗは置換されたアルキレン部分にキラルの炭素原子を含むことができる）が存在できることが、認められている。化合物は、一般的にはラセミ体として合成され、好都合にもそのまま用いることができる。代わりに、そのように所望するのならば、両鏡像異性体のそれぞれを、慣用の技術によって単離または合成することもできる。そのようなラセミ体ならびに個々の鏡像異性体およびその混合物は、本発明の方法に用いられる化合物の部分を形成する。
また、本発明に利用される化合物は、式Ｉ、ＩａおよびＩｂの化合物の医薬として許容しうるプロドラッグを含む。プロドラッグとは、化学的に修飾されてその作用部位で生物学的に不活性であることができるが、一つまたはそれより多くの酵素あるいはその他のインビボでのプロセスによって親の生物活性型に分解または修飾することのできる、薬剤である。多分、このプロドラッグは、親とは異なる薬物動態学的プロフィールを持つことができ、粘膜上皮を通してのより容易な吸収、よりよい塩の型あるいは溶解性、および／または全身での安定性の改善（例えば、血漿半減期の増加）を可能にする。典型的には、そのような化学修飾には、以下の：
１）  エステラーゼまたはリパーゼによって切断することのできるエステルまたはアミド誘導体；
２）  特異的または非特異的プロテアーゼによって認識されることのできるペプチド；
３）  プロドラッグの型または修飾されたプロドラッグの型の膜選択を通して作用部位に蓄積する誘導体；または上記の１から３の任意の組み合わせ：を含む。適当なプロドラッグ誘導体を選択および製造する慣用的方法は、例えば、Ｈ．Ｂｕｎｄｇａａｒｄ，「プロドラッグのデザイン」（Ｄｅｓｉｇｎ  ｏｆ  Ｐｒｏｄｒｕｇｓ）、１９８５、に記載されている。
様々なビス−インドール−Ｎ−マレイミド誘導体の合成は、Ｄａｖｉｓら、合衆国特許第５，０５７，６１４号に記載されており、本発明での使用に適当な好ましい化合物の合成は、前記と同一の合衆国特許第５，５５２，３９６号およびＦａｕｌら、欧州特許０  ６５７  ４１１  Ａ１に記載されており、そのすべてをここに参照として採用する。
本発明の方法に用いる一つの特に好ましいタンパク質キナーゼ−β阻害剤は、前述の合衆国特許第５，５５２，３９６号の実施例：５ｇの（Ｓ）−３，４−［Ｎ，Ｎ’−１，１’−｛（２”−エトキシ）−３”’（Ｏ）−４”’−（Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノ）ブタン｝−ビス−（３，３’−インドリル）］−１（Ｈ）−ピロール−２，５−ジオン塩酸塩：に記載された化合物である。この化合物は、強力なプロテインキナーゼＣ阻害剤である。この化合物は、他のキナーゼ以上にプロテインキナーゼｃに選択的であり、より高いアイソザイム−選択的である、即ちβ−１およびβ−２アイソザイムに関して選択的である。また、この化合物のその他の塩は、特にメシレート塩を好むであろう。
好ましいメシレート塩は、式II
0004122060.tif 000005
の化合物を、メタンスルホン酸と共に、非反応性有機溶媒、好ましくは、有機／水混合物であり、最も好ましくは水−アセトン、中で反応させることによって製造することができる。メタノール、アセトン、酢酸エチルおよびその混合物のようなその他の溶媒が、実行可能である。溶媒：水の比率は重要ではなく、一般的には、試薬の溶解性によって決められる。好ましい溶媒：水の比率は、一般的に容量で０．１：１から１００：１の溶媒：水である。好ましくは、比率は１：１から２０：１であり、最も好ましくは５：１から１０：１である。最適の比率は、選択された溶媒に依存し、好ましくは、アセトンでは、９：１の溶媒：水の比率である。
通常、反応には、おおよそ等モル量の２種類の試薬が含まれるが、その他の比率、特にメタンスルホン酸が過剰に存在するような比率、でも実施可能である。メタンスルホン酸の付加率は、反応には重要でなく、すばやく（＜５分）またはゆっくりと６またはそれより多くの時間をかけて加えることもできる。反応は、０℃から還流までの範囲の温度で行われる。反応混合物は、Ｘ線粉末解析によって測定して塩の形成が完了するまで攪拌する、５分から１２時間を要する。
本発明の塩は、結晶型で製造されるのが好ましくそして容易である。三水和物型の塩は、乾燥させるかまたは２０−６０％の相対湿度に晒した場合に容易に一水和物に転化させることができる。塩は、実質的には、明確な融点、複屈折、およびＸ線解析パターンを示す結晶である。一般的には、結晶は、１０％より少ない無定形固体、好ましくは５％より少なく、最も好ましくは１％より少ない無定形固体を持つ。
メシレート塩は、ろ過またはその他の分離技術によって単離され、反応混合物から直接的に５０％から１００％の範囲の収率で得られるとこの技術分野では理解されている、。この技術分野で既知の再結晶化およびその他の精製技術を用いて、所望されるのであればさらに塩を精製することもできる。
ＶＥＧＦのような増殖因子によって刺激される組織培養した内皮細胞は、基準となる細胞増殖速度よりより大きい増殖速度を示す。本発明で行った実験では、インビトロでプロテインキナーゼＣ阻害剤である（Ｓ）−３，４−［Ｎ，Ｎ’−１，１’−｛（２”−エトキシ）−３”’（Ｏ）−４”’−（Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノ）−ブタン｝−ビス−（３，３’−インドリル）］−１（Ｈ）−ピロール−２，５−ジオン酸塩を約０．１から１００ｎＭの濃度で投与した場合に、（ＶＥＧＦの様な）増殖因子によって刺激された本来のものではない細胞の増殖を有意に阻害することが示された。
重要なことに、組織培養での正常な内皮細胞の増殖は、正常酸素状態培地内ではＶＥＧＦによって刺激されていない内皮細胞の増殖を阻害しなかったことによって示されるように、この化合物によって阻害されないことが、その他のテストから証明された。低酸素状態培地内では、細胞増殖速度は、低酸素細胞によって生成される内因性増殖因子であるＶＥＧＦ含有量の増加により、増加する。再び、プロテインキナーゼＣ阻害剤である（Ｓ）−３，４−［Ｎ，Ｎ’−１，１’−｛（２”−エトキシ）−３”’（Ｏ）−４”’−（Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノ）−ブタン｝−ビス−（３，３’−インドリル）］−１（Ｈ）−ピロール−２，５−ジオン酸塩は、そのような低酸素状態によって誘導された細胞増殖を正常化する。
本発明に提供される実験は、毛細血管透過性もまたＶＥＧＦのような増殖因子によって影響を受けることを、示している。動物モデルでは、ＶＥＧＦは毛細血管透過性を最大で３倍に有意に増加させることが、テストから示された。このＶＥＧＦに依存する毛細血管透過性の増加もまた、投与量に依存する。インビボでの動物試験では、ＶＥＧＦの挑戦前にプロテインキナーゼＣ阻害剤を約２５ｍｇ／ｋｇ／日の濃度で投与することは、ＶＥＧＦによって誘導される毛細血管透過性を大きく阻害した。１ｎＭから５ｍＭの濃度での使用、好ましくは１ｎＭから５００ｎＭでの使用が特に期待される。阻害は、最大で８０％であり、一般的には、毛細血管透過性を誘導する増殖因子に特異的である。毛細血管透過性は、フルオレセイン血管造影法によって測定することができる。特に黄斑浮腫では、フルオレセイン血管造影法は、血流内へのフルオレセイン染料を注入し網膜内の漏出領域を検出することを含む、網膜撮影法である。
如何なる技術的説明も制限されることを望まないが、出願人らは、血流の減少、網膜毛細血管の損失、末梢血管系欠損あるいは閉塞、または網膜からの脈絡膜血液供給の分離から起こる網膜灌流の変化はすべて、結果として、関連する網膜虚血を起こす、と考えている。この虚血は、網膜血管周辺細胞、内皮細胞、網膜色素上皮、神経膠細胞およびその他の可能な細胞型内のＶＥＧＦのような増殖因子の合成および分泌を刺激し、それに続いて、網膜新生血管形成を導き、そして毛細血管透過性を増加させる。このような状態は、様々な目の血管障害と関連する。
本発明に記載されたＰＫＣのβアイソザイムの阻害剤は、内皮細胞増殖および毛細血管透過性と関連する疾病状態、特に様々な目の血管障害を治療するために用いることができる。
本発明の化合物によって治療可能な目の血管障害には、限定するつもりはないが、黄斑変性、黄斑浮腫、血管網膜症、網膜静脈閉塞、虹彩の新生血管形成、ヒストプラスマ症および虚血性網膜疾病が含まれる。黄斑変性は、年齢に関連する。黄斑浮腫は、糖尿病または網膜中央閉塞と関連する可能性がある。本明細書中で用いられるように、フレーズ血管網膜症は、糖尿病網膜症を含まないが、鎌状赤血球貧血、未熟児、および角または小柱網の新生血管形成と関連する血管網膜症を含む。虹彩の新生血管形成は、糖尿病関連であるか、または非糖尿病関連である可能性がある。
当業者は、本発明に従って、治療的に有効なプロテインキナーゼＣのβアイソザイムの阻害剤の量は、ＶＥＧＦを阻害することによって内皮細胞の増殖または毛細血管透過性の増加を阻害するに充分な量であり、この量は、とりわけ、影響を受ける組織の大きさ、治療調合物中の化合物の濃度、および患者の体重に依存して変化することを、認識しているであろう。一般的には、目の血管障害を治療するための治療薬として投与されるプロテインキナーゼＣのβアイソザイムの阻害剤の量は、担当医によるケースバイケースの基本方針で決定されるであろう。指針として、新生血管形成、患者の体重および年齢が、適当な投与量を設定する際に考慮されるであろう。
一般的には、適当な投与量は、結果として治療部位に０．５ｎＭから２００μＭ、より一般的には、０．５ｎＭから２００ｎＭの範囲のプロテインキナーゼＣのβアイソザイムの阻害剤の濃度になる量である。０．５ｎＭから１００ｎＭの血清濃度は、ほとんどの環境下に充分であると期待される。
これらの治療濃度を得るために、治療を必要とする患者は、多分、約０．００１ｍｇ／日／ｋｇ体重および５０．０ｍｇ／日／ｋｇの間で投与されるであろう。通常、約１．０から１０．０ｍｇ／日／ｋｇ体重より多くないプロテインキナーゼＣ  β阻害剤が必要とされるはずである。上記のように、上記の量は、ケースバイケースの基本方針で変えることができる。
式Ｉの化合物ならびに式ＩａおよびＩｂの好ましい化合物は、投与前に調合されることが好ましい。適当な医薬調合物は、周知のおよび容易に入手可能な成分を用いた既知の方法によって、製造される。本発明の方法での使用に適当な組成物の作成に於いて、活性成分は、通常、キャリヤーと混合されるか、またはキャリヤーで希釈されるか、またはキャリヤーと共に、カプセル、小袋（sachet）、紙またはその他の容器の形の内に封入されるであろう。キャリヤーを希釈剤として提供する場合、それは、活性成分のベヒクル、補助剤あるいは中間体として作用する、固体、半固体または液体物質であることができる。従って、組成物は、錠剤、ピル、粉末、ロゼンジ、カシェ剤、小袋、エリキシル、懸濁液、エマルジョン、溶液、シロップ、（固体または液体培地中の）エアロゾル、柔らかいおよび硬いゼラチンカプセル、坐薬、無菌の注入可能溶液ならびに経口または局所適用のための無菌のパッケージ粉末、の形であることができる。
適当なキャリヤー、補助剤および希釈剤のいくつかの例には、ラクトース、デキストロース、スクロース、ソルビトール、マンニトール、デンプン、ゴムアカシア、リン酸カルシウム、アルギネート、トラガカント、ゼラチン、ケイ酸カルシウム、微小結晶セルロース、ポリビニルピロリドン、セルロース、シロップ水、メチルセルロース、メチルおよびプロピルヒドロキシベンゾエート、タルク、ステアリン酸マグネシウムならびに鉱油が含まれる。調合物は、さらに、潤滑剤、湿潤剤、乳化剤および懸濁剤、防腐剤、スイートニング剤または香味剤を含むことができる。患者に投与後に活性成分を、敏速に、持続性にまたは遅滞性で放出する様に、本発明の組成物を調合することができる。好ましくは、組成物を、投与量単位形で調合することができ、それぞれの投与量は、約０．０５ｍｇから約３ｇの間、より一般的には、約７５０ｍｇの活性成分、を含む。しかしながら、投与される治療投与量は、治療される状態の厳しさ、投与される化合物の選択および投与形路の選択を含む、関連する環境にかんがみて、医者が決定することを理解するであろう。それ故、上記の投与範囲は、如何なる点に於いても本発明の範囲を制限するつもりはない。用語「投与量単位形」とは、ヒトの患者およびその他の哺乳動物へのユニタリー投与量として適当な、物理的に別個の単位をさし、それぞれの単位には、適当な薬剤用キャリヤーと関連して、好ましい医薬効果を作り出すように計算された前もって決定した量の活性物質が含まれる。
その大部分が経口投与することのできる、上記の調合物に加えて、本発明の方法に用いられる化合物は、また、局所投与することもできる。局所調合物には、軟膏、クリームおよびゲルが含まれる。
一般的に、軟膏は、（１）油性基剤、即ち、白色ワセリンまたは鉱油のような、固定油または炭化水素からなる油性基剤、または、（２）吸収基剤、即ち、水を吸収できる無水の物質（単数または複数）、例えば、無水ラノリンからなる吸収基剤のいずれかを用いて製造される。通例、油性または吸収性のいずれかの基剤の形成に続いて、所望の濃度を与える量で、活性成分（化合物）を加える。
クリームは、油／水のエマルジョンである。それらは、典型的には、ワックス、ワセリン、鉱油、およびその類似物のような、固定油、炭化水素およびその類似物を含む油相（内部相）、ならびに、水および付加塩のような任意の水溶性物質を含む水相（連続相）からなる。二つの相は、乳化剤、例えば、ラウリル硫酸ナトリウムの様な表面活性剤；アカシアコロイド状粘度、ビーガム（veegum）、およびその類似物のような親水性コロイド、の使用によって安定化される。エマルジョン形成時、活性成分（化合物）は、通例、所望の濃度を達成する量、加えられる。
ゲルは、油性基剤、水、または乳化−懸濁基剤、から選択される基剤を含む。基剤に、基剤内でマトリックスを形成し、その粘度を増加させるゲル化剤を加える。ゲル化剤の例としては、ヒドロキシプロピルセルロース、アクリル酸ポリマーおよびその類似体があげられる。通例、活性成分（化合物）は、ゲル化剤を付加する前の時点で、所望の濃度で調合物に加えられる。
局所調合物内に採用する化合物の量は、重要ではない；濃度は、所望する量の化合物を所望の治療部位に配達するであろう量で、冒された組織領域に調合物の適用を容易に許すに充分な範囲内であるべきである。
影響を受ける組織に適用される局所調合物の通常量は、冒された組織の大きさおよび調合物中の化合物の濃度に依存するであろう。一般的に、調合物は、冒された組織のｃｍ2当たり約１から約５００μｇの化合物を供給する量で、冒された組織に適用されるであろう。好ましくは、化合物の適用量は、約３０から約３００μｇ／ｃｍ2、より好ましくは約５０から約２００μｇ／ｃｍ2、最も好ましくは、約６０から約１００μｇ／ｃｍ2、の範囲であろう。
以下の調合例は、実例としてもに提供されるものであり、如何なる点に於いても本発明の範囲を制限するつもりのものではない。
製剤例１
硬いゼラチンカプセルは、以下の成分を用いて製造される。
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上記成分を混合し、硬ゼラチンカプセル内に４６０ｍｇ量を充填する。
製剤例２
錠剤は、以下の成分を用いて製造する。
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成分を混合し、圧縮して、それぞれ６６５ｍｇ重量の錠剤を形成する。
製剤例３
それぞれ６０ｍｇの活性成分を含む錠剤を、以下のように作成する。
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活性成分、デンプンおよびセルロースは、Ｎｏ．４５メッシュＵ．Ｓ．シーブを通過させ、徹底的に混合する。、次に、Ｎｏ．１４メッシュＵ．Ｓ．シーブを通過させた得られた粉末とポリビニルピロリドン溶液を混合する。そのようにして作成された顆粒は、５０℃で乾燥させ、Ｎｏ．１８メッシュＵ．Ｓ．シーブを通過させる。次いで、あらかじめＮｏ．６０メッシュＵ．Ｓ．シーブを通過させておいたカルボキシメチルナトリウムデンプン、ステアリン酸マグネシウムおよびタルクを顆粒に加え、その後混合して、錠剤機械で圧縮すると、それぞれ１５０ｍｇ重量の錠剤が得られる。
実施例
これらの実施例は、すべて、インビトロで内皮細胞増殖を阻害する、およびインビボでＶＥＧＦによって刺激された毛細血管透過性の増加を阻害するために、（Ｓ）−３，４−［Ｎ，Ｎ’−１，１’−｛（２”−エトキシ）−３”’（Ｏ）−４”’−（Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノ）−ブタン｝−ビス−（３，３’−インドリル）］−１（Ｈ）−ピロール−２，５−ジオン塩酸塩を用いることを説明している。
実施例１
この実施例では、ＶＥＤＦで刺激された内皮細胞増殖への注目の化合物の阻害効果を、ヒト組換ＶＥＧＦを用いて試験した。
ウシの網膜内皮細胞を新鮮な子牛の目から均一化および一連のろ過段階によって単離した。５．５ｍＭグルコース、１０％血漿−誘導ウマ血清（Ｗｈｅａｔｏｎ，Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を含むＤｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ  ｍｏｄｉｆｉｅｄ  Ｅａｇｌｅ’ｓ  ｍｅｄｉｕｍ（ＤＭＥＭ）を含むフィブロネクチン（ＮＹＢｅｎ  Ｒｅａｇｅｎｔｓ，Ｎｅｗ  Ｙｏｒｋ  Ｂｌｏｏｄ  Ｃｅｎｔｅｒ）−コート皿（Ｃｏｓｔａｒ）内で、内皮細胞の初代培養を増殖させた。５０ｍｇのヘパリン／ｌおよび５０ユニットの内皮細胞増殖因子／ｌ（Ｂｏｅｈｒｉｎｇｅｒ  Ｍａｎｎｈｅｉｍ）。細胞がコンフルエントに到達した後、５％のウシ胎児血清（ＨｙＣｌｏｎｅ）を含む培地に変えた。培地を３日毎に変えた。内皮細胞の均一性を、抗−因子ＶIII抗体で確認した。
インビトロでのＶＥＧＦ作用への注目のＰＫＣ阻害剤の効果は、ＶＥＧＦ付加時に増殖が刺激される、ウシ網膜微小血管内皮細胞を薄く塗布した培地を用いて評価される。ウシの網膜内皮細胞を２４穴の皿（Ｃｏｓｔａｒ）内に薄く塗布（−２５００細胞／穴）し、一晩、１０％の子牛血清（Ｇｉｂｃｏ）を含むＤＭＥＭ内でインキュベートした。培地は、次の日に交換した。
内皮細胞の増殖への注目のＰＫＣ阻害剤の影響を試験するため、対照として活性薬剤を何も含まない細胞増殖を供給した一組の実験を行い、次に、ＶＥＧＦ存在下（２５ｎｇ／ｍｌ；Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ）およびＶＥＧＦ非存在下の両方での注目のＰＫＣ阻害剤の付加効果について試験した。３７℃で４日間インキュべーションの後、細胞を０．１％のドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）内で溶解し、ＤＮＡ含有量を、Ｈｏｅｃｈｓｔ３３２５８染料およびフルオロメーター（ｍｏｄｅｌ  ＴＫＯ−１００：Ｈｏｅｆｅｒ）を用いて測定した。
すべての定量は、少なくとも三重に行なわれ、実験は、最少で３回繰り返された。結果は、実験のすべてについて、平均±ＳＤで表わされる。インビトロでの結果の分析は、ペア化されていないＳｔｕｄｅｎｔのｔ試験によって行われた。＜０．０５０のＰ値は、十分に有意であると考えられた。
図１は、組換ＶＥＧＦを用いて得られた結果について説明している。図の左側３本のほとんどのカラムに示されるように、注目のＰＫＣ阻害剤の内皮細胞培養液への付加は基礎的な増殖速度に本質的な影響を与えなかった（カラム１）。増殖速度は、ＶＥＧＦ付加時に実質的に増加した（カラム４）。この増殖速度は、＞０．５ｎＭの注目のＰＫＣ阻害剤の付加時に、有意に縮小された（最も右側４本のカラム）。
実施例２
本実施例は、図１に報告した仕事と類似しており、さらに、ＶＥＧＦ刺激された内皮細胞増殖への注目のＰＫＣ阻害剤の阻害効果を、ヒトの組換ＶＥＧＦを用いて、説明している。
実施例１に記載の方法を用いて、ウシの網膜内皮細胞を単離、増殖し；そして薄く塗布した培地を調製した。再び、実施例１に記載した方法を用いて、注目のＰＫＣ阻害剤の内皮細胞増殖への影響を、ＶＥＧＦの存在下（２５ｎｇ／ｍｌ；Ｇｅｎｅｔｅｃｈ）およびＶＥＧＦの非存在下で、試験した。３７℃で４日間インキュベーションの後、細胞を０．１％のドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）に溶解し、そして、ＤＮＡ含有量を、Ｈｏｅｃｈｓｔ３３２５８染料およびフルオロメーター（ｍｏｄｅｌＴＫＯ−１００；Ｈｏｅｆｅｒ）を用いて、測定した。
図２は、この仕事の結果について説明している。レジェンド−ＶＥＧＦの上のカラムが示すように、内皮細胞培養物に注目のＰＫＣ阻害剤を０．１ｎＭから１００ｎＭで付加しても、細胞の基礎増殖速度に本質的な影響を与えなかった。ヒトの組換ＶＥＧＦ（２５ｎｇ／ｍｌ）での内皮細胞の刺激は、刺激されなかった細胞と比較すると（０の−ＶＥＧＦを０の＋ＶＥＧＦと比較のこと）、４日後の細胞内ＤＮＡ含有量が有意も増加し、このことは増殖速度の増加を示している。この増殖速度は、注目のＰＫＣ阻害剤の付加時に有意に遅くなった（レジェンド＋ＶＥＧＦ上の最右側４本のカラム）。特に、ＶＥＧＦ刺激能は、０．１ｎＭのＰＫＣ阻害剤存在下でわずかに減少し、１ｎＭおよびそれより多いＰＫＣ阻害剤の同時付加により、実質上完全に消滅した。
実施例３
本実施例は、低酸素状態下で網膜血管周辺細胞を培養した時に発現した内因性ＶＥＧＦの活性への注目のＰＫＣ阻害剤の影響について試験する。
ウシ網膜内皮細胞および網膜血管周辺細胞を、新たに子牛の目から、均一化および一連のろ過段階により単離した。内皮細胞を増殖させ、実施例１記載の方法を用いて、プレート上に薄く塗布し培養した。類似の技術を用いて、ウシ網膜血管周辺細胞を、２０％のウシ胎児血清を含むＤＭＥＭ／５．５ｍＭグルコースで、培養した。
内因性ＶＥＧＦを発現させるための低酸素条件下の培地および正常酸素条件下の対照培地をそれぞれ、以下の方法に従って調製した。コンフルエントの網膜血管周辺細胞の単層を、Ｌａｂ−Ｌｉｎｅ  Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓのコンピューター制御付、低酸素に制御した赤外線水ジャケット付のＣＯ2インキュベーター（ｍｏｄｅｌ  ４８０）を用いて、２％ Ｏ2／５％ ＣＯ2／９３％ Ｎ2に２４時間晒した。すべての細胞は、３７℃に維持され、光学顕微鏡による形態的変化を示さず、トリパンブルー染料を排除し（＞９８％）、そして、続いて正常に継代することができた。正常酸素条件下（９５％空気／５％  ＣＯ2）でインキュベートした、同一のバッチおよび継代からの細胞を、対照として用いた。次に、培地を集め、使用前にろ過（Ｎａｌｇｅｎｅ；０．２２μｍ）した。
本実施例では、内皮細胞の増殖への注目のＰＫＣ阻害剤の影響を正常酸素条件培地または低酸素条件培地のいずれかの存在下で試験する、実験を行った。前の実施例で行った方法に従って、３７℃で４日間インキュベーションの後、細胞を０．１％のドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）中で溶解し、Ｈｏｅｃｈｓｔ３３２５８染料およびフルオロメーター（ｍｏｄｅｌ  ＴＫＯ−１００；Ｈｏｅｆｅｒ）を用いて、ＤＮＡ含有量を測定した。
図３に報告した試験では、注目のＰＫＣ阻害剤を１０ｎＭの濃度で用いた。図３に示すように、網膜内皮細胞の増殖は、ＶＥＧＦの発現を誘導することが知られている低酸素条件下で培養した網膜周辺血管細胞からの馴化培地で刺激した（図３のカラム１とカラム３を比較のこと）。この増殖の刺激は、ＰＫＣ阻害剤である（Ｓ）−３，４−［Ｎ，Ｎ’−１，１’−｛（２”−エトキシ）−３”’（Ｏ）−４”’−（Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノ）−ブタン｝−ビス−（３，３’−インドリル）］−１（Ｈ）−ピロール−２，５−ジオンの塩酸塩の存在下で抑制（正常化）された（カラム３と４を比較のこと）。
実施例４
本実施例は、図１および２で報告した仕事と類似しており、ヒトの組換ＶＥＧＦを用いたＶＥＧＦ刺激内皮細胞増殖への注目のＰＫＣ阻害剤の阻害効果を、さらに説明する。
実施例１に記載の方法を用いて、ウシの網膜内皮細胞を分離、増殖し；次いで、薄く塗布した培養物を調製した。再び、実施例１記載の方法を用いて、ＶＥＧＦ存在下（＋ＶＥＧＦ）（２５ｎｇ／ｍｌ；Ｇｅｎｅｎｔｅｃｈ）およびＶＥＧＦ不在下（−ＶＥＧＦ）の両方での内皮細胞増殖への注目のＰＫＣ阻害剤の影響を試験する、実験を行った。上記のように、３７℃で４日間インキュベーションの後、細胞を０．１％のドデシル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）中で溶解し、ＤＮＡ含有量を、Ｈｏｅｃｈｓｔ  ３３２５８およびフルオロメーター（ｍｏｄｅｌ  ＴＫＯ−１００；Ｈｏｅｆｅｒ）を用いて測定した。
図４は、この仕事の結果を説明している。−ＶＥＧＦのカラムで示されるように、内皮細胞培養物への注目のＰＫＣ阻害剤を濃度１０ｎＭで加えても、細胞の基礎増殖速度に本質的には影響を与えなかった。ヒトの組換ＶＥＧＦ（２５ｎｇ／ｍｌ）での内皮細胞の刺激は、細胞内ＤＮＡ含有量を有意に増加させ、刺激されていない細胞と比較して増殖速度の増加が示された（−ＶＥＧＦ対照を＋ＶＥＧＦ対照と比較のこと）。この増殖速度は、注目のＰＫＣ阻害剤を１０ｎＭ濃度で付加した場合に、有意に消滅した。
これらの結果から、開示されたクラスのＰＫＣ阻害剤および特に（Ｓ）−３，４−［Ｎ，Ｎ’−１，１’−｛（２”−エトキシ）−３”’（Ｏ）−４”’−（Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノ）−ブタン｝−ビス−（３，３’−インドリル）］−１（Ｈ）−ピロール−２，５−ジオンは、外因性−誘導ＶＥＧＦおよび低酸素−誘導ＶＥＧＦの両方による、網膜内皮細胞の増殖刺激をインビトロで妨害することが、示された。ＶＥＧＦの発現は、黄斑変性と関連する新生血管形成と密接に結びつくので、これらの結果は、黄斑変性の治療における治療法として、これらのＰＫＣ阻害剤を用いることを支持する。
実施例５
本実施例は、ＶＥＧＦの誘導する網膜透過性の時間経過について、説明している。
それぞれのラットの片方の目に、２．０ｎｇのＶＥＧＦの硝子体内注入を受けた（最終濃度２５ｎｇ／ｍｌと概算される）。反対側の目には、同様の容量の対照溶液を注入した。１０分後、３０μｌのフルオレセインを、右頸静脈内にカテーテルを通して注入した。硝子体のフルオロフォトメトリーを、フルオレセイン注入後の指示された時間に行った。
図５Ａに示したように、ＶＥＧＦで処理した目の中の硝子体内へのフルオレセインの透過性は、明らかに増加する。このことは、フルオレセイン血管造影注入１０分で、充分有意になり、少なくとも３０分間維持された。図５Ｂは、％対照で表したこの刺激を示しており、ＶＥＧＦで処理した目へのさらなるフルオレセインの漏出を時間毎に示している。
実施例６
本実験は、ＶＥＧＦに応答するフルオレセインの網膜透過性の投与量応答について示している。
それぞれの動物の片方の目に、対照を注入し、反対側の目には、様々な投与量のＶＥＧＦを注入した。１０分後に、静脈内にフルオレセインを注射し、硝子体への漏出量を３０分後に分析した。図６に示すように、網膜透過性は、ＶＥＧＦ投与量に依存して増加した。刺激は、１４から２０ｎｇ／ｍｌで、ヒトで得られることが知られている最高値に達した。
実施例７
本実施例は、硝子体内のＰＫＣ阻害剤である（Ｓ）−３，４−［Ｎ，Ｎ’−１，１’−｛（２”−エトキシ）−３”’（Ｏ）−４”’−（Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノ）−ブタン｝−ビス−（３，３’−インドリル）］−１（Ｈ）−ピロール−２，５−ジオン塩酸塩の効果および網膜透過性へのその刺激について説明している。
図７に示すように、ラットの目に、目当たり２．０ｎｇのＶＥＧＦ、１０ｎＭのＰＫＣβ阻害剤または１μｇのＰＤＢＵ（ＰＫＣアゴニスト）のいずれかを注射した。ＰＫＣβ阻害剤は、ＶＥＧＦ付加前１５分に注入された。ＶＥＧＦ付加後１０分、静脈内にフルオレセインを注射し、硝子体内のフルオレセインを３０分後に評価した。
図７に示すように、ＶＥＧＦを硝子体内に注入すると、予想通りの網膜透過性の刺激が示された。ＶＥＧＦ注入前１５分のＰＫＣβ阻害剤の硝子体内注入は、大部分の透過性応答を消滅させた。ＰＤＢＵの注入によってプロテインキナーゼＣを直接刺激すると、ＶＥＧＦに非常に類似した透過性の増加を示した。
実施例８
本実施例は、プロテインキナーゼＣβ阻害剤である（Ｓ）−３，４−［Ｎ，Ｎ’−１，１’−｛（２”−エトキシ）−３”’（Ｏ）−４”’−（Ｎ，Ｎ−ジメチルアミノ）−ブタン｝−ビス−（３，３’−インドリル）］−１（Ｈ）−ピロール−２，５−ジオン塩酸塩を経口投与することによる、ＶＥＧＦに応答する網膜透過性の阻害を示している。
ラットには、図８Ａおよび８Ｂに示される投与量のプロテインキナーゼＣβ阻害剤を混合した食餌を与えた。この食餌を１週間与えた後、硝子体内に注入した２．０ｎｇのＶＥＧＦに応答する網膜透過性を、前述の方法に従って、定量した。本発明のＰＫＣβ阻害剤の経口投与を一週間続けると、ＶＥＧＦに応答する網膜透過性が減少した。このことは、より高い投与量で最も注目される。
本発明の原理、好ましい実施態様および操作様式は、前述の明細書に記載されている。しかしながら、それらは制限と言うよりむしろ説明として考えられるべきものなので、ここに保護するつもりの本発明は、開示された具体的形に限定するものとして解釈されるべきものではない。当業者らは、本発明の精神から離れることなく、変更および変化を作り出すことができる。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５Ａ】
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【図５Ｂ】
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【図６】
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【図７】
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【図８Ａ】
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【図８Ｂ】
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