(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
以下のタンパク質をコードするＤＮＡが、発現可能な形態で導入され、かつ、Ｌ−リジン又はＬ−アルギニン生産能を有するメチロバチラス属細菌。
（Ａ）配列番号１０に記載のアミノ酸配列からなるタンパク質。
（Ｂ）配列番号１０に記載のアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸の置換、欠失、挿入又は付加を含むアミノ酸配列からなり、かつ、メタノール資化性菌においてＬ−リジンもしくはＬ−アルギニン又はこれらの両方のアミノ酸の細胞外への排出を促進する活性を有するタンパク質。
【請求項２】
請求項１に記載のメチロバチラス属細菌を培地に培養し、該培養物中にＬ−リジン又はＬ−アルギニンを生産蓄積させ、該培養物からＬ−リジン又はＬ−アルギニンを採取することを特徴とするＬ−リジン又はＬ−アルギニンの製造法。
【請求項３】
前記培地がメタノールを主たる炭素源とすることを特徴とする請求項２記載のＬ−リジン又はＬ−アルギニンの製造法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は微生物工業に関連したものであり、詳しくは、発酵法によるＬ−リジン又はＬ−アルギニンの製造法、および同製造法に用いる微生物に関するものである。
【０００２】
【従来の技術】
Ｌ−リジン、Ｌ−グルタミン酸、Ｌ−スレオニン、Ｌ−ロイシン、Ｌ−イロソイシン、Ｌ−バリン及びＬ−フェニルアラニン等のＬ−アミノ酸は、ブレビバクテリウム属、コリネバクテリウム属、バチルス属、エシェリヒア属、ストレプトミセス属、シュードモナス属、アースロバクター属、セラチア属、ペニシリウム属、キャンディダ属等に属する微生物を用いた発酵法により工業生産されている。これらの微生物は、生産性を向上させるために、自然界から分離した菌株または該菌株の人工変異株が用いられている。また、組換えDNA技術によりＬ−アミノ酸の生合成酵素を増強することによって、Ｌ−アミノ酸の生産能を増加させる種々の技術が開示されている。
【０００３】
上記のような微生物育種や製造法の改良により、Ｌ−アミノ酸の生産性はかなり高まってはいるが、今後の需要のいっそうの拡大に応えるためには、さらに安価かつ効率的なＬ−アミノ酸の製造法の開発が求められている。
【０００４】
ところで、従来、安価に大量に入手可能な発酵原料であるメタノールから発酵法によりＬ−アミノ酸を製造する方法としては、アクロモバクター属およびシュードモナス属（特許文献１）、プロタミノバクター属（特許文献２）、プロタミノバクター属及びメタノモナス属（特許文献３）、ミクロサイクラス属（特許文献４）、メチロバチルス属（特許文献５）、バチルス属（特許文献６）などに属する微生物を用いる方法が知られている。本発明者らはこれまで、人工変異による育種および組換えDNA技術を使って、メチロフィラス属細菌を用いたＬ−アミノ酸製造法の開発を行ってきた（特許文献７）。
【０００５】
近年、Ｌ−アミノ酸を特異的に微生物の菌体の外部に排出する機能を持つタンパク質および遺伝子が同定され、特にVrljicらは、コリネバクテリウム属細菌からＬ−リジンの菌体外への排出に関与する遺伝子を同定した（非特許文献１）。この遺伝子はlysEと名付けられ、同遺伝子をコリネバクテリウム属細菌において増強させることによって、コリネバクテリウム属細菌のＬ−リジン生産能が向上することが報告されている（特許文献８）。また、lysEはＬ−リジンだけでなくＬ−アルギニンも排出することが示されている（非特許文献２）。また、エシェリヒア・コリにおいてアミノ酸排出タンパク質の発現量を上昇させることにより、いくつかのＬ−アミノ酸の生産性を向上させることができることが知られている（特許文献９）。例えば、エシェリヒア・コリにおいては、ORF306遺伝子の発現を増強することによって、シスチン、システイン等の生産性が向上することが報告されている(特許文献１０)。
しかし、これまでメタノール資化性菌を用いたメタノールからの発酵法によるアミノ酸製造に、アミノ酸の排出過程が、大きな障壁であることを示した例はない。また、メタノール資化細菌で、排出活性を発揮できる、アミノ酸排出遺伝子についての報告はない。
【０００６】
【特許文献１】
特公昭45-25273号公報
【特許文献２】
特開昭49-125590号公報
【特許文献３】
特開昭50-25790号公報
【特許文献４】
特開昭52-18886号公報
【特許文献５】
特開平4-91793号公報
【特許文献６】
特表平3-505284号公報
【特許文献７】
国際公開パンフレット第00/61723号
【特許文献８】
国際公開パンフレット第97/23597号
【特許文献９】
特開平2000-189180号
【特許文献１０】
欧州特許公開第885962号公報
【非特許文献１】
Vrljic M., Sahm H., Eggeling L. Molecular Microbiology 22:815-826(1996)
【非特許文献２】
Bellmann A., Vrljic M., Patek M., Sahm H., Kramer R., Eggeling L. Microbiology 147:1765-1774(2001)
【０００７】
【発明が解決しようとする課題】
本発明は、安価に大量に入手可能なメタノールを用いて、効率良く、Ｌ−リジン又はＬ−アルギニンを製造する方法を提供することを課題とする。
【０００８】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意検討を重ねた結果、メタノール資化性菌、とりわけメチロバチラス属細菌を利用してＬ−アミノ酸を製造する場合、Ｌ−アミノ酸の菌体外への排出過程が一つの障壁であること、そして、この障壁を打破する因子として、特にこの微生物にてアミノ酸の排出活性を発揮する遺伝子を取得することに成功し、これを利用することで効率の良いアミノ酸生産ができることを見いだした。
【０００９】
本発明者らは、既に知られているコリネバクテリウム属細菌由来のlysE遺伝子を、メタノール資化性菌に導入し、そのアミノ酸生産に及ぼす効果を調べたが、導入したlysE遺伝子には変異や欠損が生じ、lysEを機能させることはできなかった。排出を司るようなタンパク質は、細胞膜に組み込まれてその機能を発揮するため、タンパク質と膜の脂質組成などの状態とが両者で適切なものである必要がある。したがって、異種の生物に由来する膜タンパク質を、その機能を発揮する形で発現させることは困難であると考えられ、上述した結果は、それを裏付けるものであった。
【００１０】
本発明者らは、上記のＬ−アミノ酸の排出遺伝子に関する研究の過程において、偶然にもメタノール資化性菌において機能し得る変異遺伝子を取得した。また、同変異遺伝子を利用することで、メタノール資化性菌を用いたアミノ酸製造において、顕著な効果を見出した。
【００１１】
本発明は、上記のようにして完成するに至ったものであり、その要旨は以下のとおりである。
【００１２】
（１）ループ領域と、６個の疎水性ヘリックスとを有し、かつ、Ｌ−リジンの細胞外への排出に関与するタンパク質の改変体をコードするＤＮＡであって、野生型タンパク質が持つループ領域を持たない変異型タンパク質をコードし、かつ、メタノール資化性菌に導入したときにＬ−リジンもしくはＬ−アルギニン又はこれらの両方のＬ−アミノ酸の細胞外への排出を促進するＤＮＡが、発現可能な形態で導入され、かつ、Ｌ−リジンもしくはＬ−アルギニン生産能を有するメチロバチラス属細菌。
（２）前記変異タンパク質が実質的に疎水性ヘリックスのみからなる（１）記載のメチロバチラス属細菌
（３）前記変異タンパク質が６個の疎水性ヘリックスのすべてを有する（１）又は（２）に記載のメチロバチラス属細菌
（４）前記変異タンパク質がＮ末端から１番目〜３番目の疎水性ヘリックスを含むペプチドと、４番目〜６番目の疎水性ヘリックスを含むペプチドとの複合体である（１）〜（３）のいずれか一項に記載のメチロバチラス属細菌
（５）前記タンパク質がＬｙｓＥタンパク質である（１）〜（４）のいずれか一項に記載のメチロバチラス属細菌
（６）前記ＬｙｓＥタンパク質がコリネ型細菌のＬｙｓＥタンパク質である（５）記載のメチロバチラス属細菌
（７）以下のタンパク質をコードするＤＮＡが、発現可能な形態で導入され、かつ、Ｌ−リジン又はＬ−アルギニン生産能を有するメチロバチラス属細菌
（Ａ）配列番号１０に記載のアミノ酸配列を有するタンパク質。
（Ｂ）配列番号１０に記載のアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸の置換、欠失、挿入又は付加を含むアミノ酸配列からなり、かつ、メタノール資化性菌においてＬ−リジンもしくはＬ−アルギニン又はこれらの両方のアミノ酸の細胞外への排出を促進する活性を有するタンパク質。
（８）（１）〜（７）のいずれかに記載のメチロバチラス属細菌を培地に培養し、該培養物中にＬ−リジン又はＬ−アルギニンを生産蓄積させ、該培養物からＬ−リジン又はＬ−アルギニンを採取することを特徴とするＬ−リジンまたはＬ−アルギニンの製造法。
（９）前記培地がメタノールを主たる炭素源とすることを特徴とする（８）記載のＬ−リジン又はＬ−アルギニンの製造法。
【００１３】
本発明において、「Ｌ−リジンもしくはＬ−アルギニン又はこれらの両方のＬ−アミノ酸の細胞外への排出を促進する」とは、本発明のＤＮＡを保持しないメタノール資化性菌に比べて、本発明のＤＮＡを保持するメタノール資化生菌を培養したときに培地中に排出されるＬ−リジンもしくはＬ−アルギニン又はこれらの両方のＬ−アミノ酸の量を増大させることをいう。Ｌ−アミノ酸の細胞外への排出の促進は、その結果として、本発明のＤＮＡを保持しないメタノール資化性菌に比べて、本発明のＤＮＡを保持するメタノール資化生菌を培養したときに培地中に蓄積するＬ−アミノ酸濃度が高くなることによって観察される。また、Ｌ−アミノ酸の細胞外への排出の促進は、本発明のＤＮＡをメタノール資化性菌に導入したときに、細胞内のＬ−アミノ酸濃度が低下することによっても観察され得る。
【００１４】
【発明の実施の形態】
以下、本発明を詳細に説明する。
【００１５】
＜１＞本発明のＤＮＡ
本発明のＤＮＡは、メタノール資化性菌に導入したときにＬ−リジンもしくはＬ−アルギニン又はこれらの両方のＬ−アミノ酸の細胞外への排出を促進するＤＮＡであり、微生物のＬ−リジンの細胞外への排出に関与するタンパク質の改変体をコードするＤＮＡである。
【００１６】
本発明のメチロバチラス属細菌とは、メチロバチラス属に属し、メタノールを主たる炭素源として生育することができる細菌であって、本発明のＤＮＡを導入することによってＬ−リジン又はＬ−アルギニン等のＬ−アミノ酸の細胞外への排出が促進される細菌である。具体的には、メチロバチラス・グリコゲネス（Methylobacillus glycogenes）、メチロバチラス・フラゲラタム(Methylobacillus flagellatum)等が挙げられる。メチロバチラス・グリコゲネスとしては、T-11株（NCIMB 11375）、ATCC 21276株、 ATCC 21371株、ATR80株(Appl. Microbiol. Biotechnol., (1994)、42巻, p67-72に記載）、A513株（Appl. Microbiol. Biotechnol., (1994)、42巻, p67-72に記載）等が挙げられる。メチロバチラス・グリコゲネスNCIMB 11375株は、ナショナル・コレクション・オブ・インダストゥリアル・アンド・マリン・バクテリア（National Collections of Industrial and Marine Bacteria、住所 NCIMB Lts., Torry Research Station 135, Abbey Road, Aberdeen AB9 8DG, United Kingdom）から入手可能である。また、メチロバチラス・フラゲラタムとしては、KT株(Arch. Microbiol., (1988), 149巻、p441-446に記載)等が挙げられる。
【００１７】
本発明のメチロバチラス属細菌は、ループ領域と、６個の疎水性ヘリックスとを有し、かつ、Ｌ−リジンの細胞外への排出に関与するタンパク質をコードするＤＮＡに変異を導入し、前記タンパク質がループ領域を持たないように、あるいは実質的に疎水性ヘリックスのみからなるように改変されたDNAを導入することによって、取得することができる。「実質的に疎水性ヘリックスのみからなる」とは、変異型LysEがループ領域を完全に欠失しているか、あるいは一部を有していても、変異型LysEの機能に影響しない程度にループ領域のほとんどを欠失していることをいう。
【００１８】
本発明のメチロバチラス属細菌の一形態は、後記実施例に示すlysE24と名付けられたＤＮＡが導入されたメチロバチラス属細菌である。lysE24は、コリネバクテリウム属細菌で報告されているlysE遺伝子のホモログとして、ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタムから単離された遺伝子の変異体である。したがって、本発明のメチロバチラス属細菌に導入されたＤＮＡを、便宜的に「変異型lysE」と称することがある。
【００１９】
lysE遺伝子がコードするLysEタンパク質は、６個の疎水性へリックス領域を有している。それらの疎水性へリックス領域のいくつかは膜貫通領域であると推定される。また、Ｎ末端から３番目と４番目の疎水性へリックス領域の間の領域は親水性であり、ループ構造をとると推定される。この親水性領域を本願発明においてはループ領域と呼ぶ。ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタムの野生型lysEの塩基配列及びLysEタンパク質のアミノ酸配列を、配列番号７及び８に示す。同アミノ酸配列において、疎水性へリックス領域は、５〜２０、３７〜５８、６７〜９３、１４６〜１６８、１８１〜２０３、２１１〜２３２に相当する。また、ループ領域は９４〜１４５に相当する。
【００２０】
本発明者らは、lysE遺伝子はメタノール資化性菌においては致死的に働くが、ループ領域を持たない、あるいは実質的に疎水性ヘリックスのみからなるLysEタンパク質の改変体をコードするＤＮＡは、メタノール資化性菌のＬ−リジン及び／又はＬ−アルギニンの細胞外への排出を促進することを見い出した。本発明のＤＮＡは、このような野生型LysEタンパク質が持つループ領域を持たない変異型LysEタンパク質、又は実質的に疎水性ヘリックスのみからなる変異型LysEタンパク質をコードする。
【００２１】
上記のような変異型lysEとしては、少なくとも一つ又は二つ以上の疎水性ヘリックスを有し、メタノール資化性菌に導入したときにＬ−リジンもしくはＬ−アルギニン又はこれらの両方のＬ−アミノ酸の細胞外への排出を促進するものであれば特に制限されないが、具体的にはＮ末端から１番目〜６番目の疎水性ヘリックスのすべてを有する変異型LysEをコードするＤＮＡが挙げられる。より具体的には、Ｎ末端から１番目〜３番目の疎水性ヘリックスを含むペプチドと、４番目〜６番目の疎水性ヘリックスを含むペプチドとをコードするＤＮＡが挙げられる。前記lysE24は、このような１番目〜３番目の疎水性ヘリックスを含むペプチドと、４番目〜６番目の疎水性ヘリックスを含むペプチドとをコードする変異型lysEの一例である。lysE24遺伝子には、３番目の疎水性ヘリックスをコードする領域の下流に終止コドンが変異により導入されているが、後期実施例に示すように、この終止コドンよりも下流の領域を欠失させると、lysE24遺伝子を導入したメチロバチラス・グリコゲネスNCIMB 11375株はＬ−リジンを培地中に蓄積しなかった。このことから、１番目〜３番目の疎水性ヘリックスを含むペプチドと、４番目〜６番目の疎水性ヘリックスを含むペプチドがそれぞれ別個に翻訳され、メチロバチラス・グリコゲネス株中で機能しているものと推定される。いずれにしても、lysE24遺伝子をメチロバチラス属細菌に導入すれば、Ｌ−リジン又はＬ−アルギニンの生産量が向上する。
【００２２】
前記のようなＬ−リジンの細胞外への排出に関与するタンパク質をコードするＤＮＡ、すなわちlysE遺伝子またはその相同遺伝子の供与微生物としては、それらの遺伝子の改変体がメタノール資化性菌中でＬ−リジン排出活性を発現することができるものを保持する微生物であれば、いかなる微生物でも利用できる。具体的には、コリネバクテリウム・グルタミカム、ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム等のコリネ型細菌、エシェリヒア・コリ等のエシェリヒア属細菌、シュードモナス・アエルジノーサ等のシュードモナス属細菌、マイコバクテリウム・ツベルクロシス等のマイコバクテリウム属細菌等が挙げられる。
【００２３】
メチロバチラス属細菌においてアミノ酸の排出遺伝子を増強する場合は、その遺伝子断片を、メチロバチラスで機能するベクター、好ましくはマルチコピー型ベクターと連結して、組換えDNAを作製し、これをメチロバチラス属細菌の宿主に導入して形質転換すればよい。あるいは、トランスポゾンに搭載し、染色体への組み込みにより、また、メチロバチラス属細菌内で強力転写を誘導するようなプロモーターを、その遺伝子の上流に連結させることも可能である。
【００２４】
lysEを開示している文献（WO 97/23597）には、コリネ型細菌のlysE遺伝子をコリネ型細菌に導入した場合のみを提示している。そして、LysEを含む新しい排出系のタンパク質の構造体として、膜横断へリックスが６個のものを開示している。しかし、本発明者らは、メタノール資化性細菌においては、コリネ型細菌に由来するようなLysEは全く機能しないことを確認した。更に、取得できた因子は、膜横断ヘリックス６個を１本のポリペプチドで構成しているコリネ型細菌の野生型LysEとは基本的な構造が異なる、新しい型の排出活性を発揮する因子であり、この因子は、先のlysE特許明細書からは全く類推できるものではない。
【００２５】
＜２＞本発明のメチロバチラス属細菌
本発明のメチロバチラス属細菌は、前記本発明のＤＮＡが発現可能な形態で導入され、かつ、Ｌ−リジン又はＬ−アルギニン生産能を有するメチロバチラス属細菌である。Ｌ−リジン又はＬ−アルギニン生産能を有するメチロバチラス属細菌に本発明のＤＮＡを導入することによって得られる。また、本発明のＤＮＡが導入されたメチロバチラス属細菌に、Ｌ−リジン又はＬ−アルギニン生産能を付与することによっても、本発明のメチロバチラス属細菌を得ることができる。また、本発明のメチロバチラス属細菌は、本発明のＤＮＡが発現可能な形態で導入されたことによってＬ−リジン又はＬ−アルギニン生産能が付与されたものであってもよい。
【００２６】
Ｌ−リジン又はＬ−アルギニン生産能を有するメチロバチラス属細菌は、メチロバチラス属細菌の野生株にＬ−リジン又はＬ−アルギニン生産能を付与することにより取得され得る。Ｌ−リジン又はＬ−アルギニン生産能を付与するには、栄養要求性変異株、アナログ耐性株、又は代謝制御変異株の取得、Ｌ−リジン又はＬ−アルギニンの生合成系酵素が増強された組換え株の創製等、従来、コリネ型細菌又はエシェリヒア属細菌等の育種に採用されてきた方法を適用することができる（アミノ酸発酵、（株）学会出版センター、1986年５月30日初版発行、第７７〜１００頁参照）。Ｌ−リジン又はＬ−アルギニン生産菌の育種において、付与される栄養要求性、アナログ耐性、代謝制御変異等の性質は、単独でもよく、２種又は３種以上であってもよい。また、増強されるＬ−アミノ酸生合成系酵素も、単独であっても、２種又は３種以上であってもよい。さらに、栄養要求性、アナログ耐性、代謝制御変異等の性質の付与と、生合成系酵素の増強が組み合わされてもよい。
【００２７】
例えば、Ｌ−リジン生産菌は、Ｌ−ホモセリン、又はＬ−スレオニン及びＬ−メチオニンを要求する変異株（特公昭48-28078号、特公昭56-6499号）、イノシトールまたは酢酸を要求する変異株（特開昭55-9784号、特開昭56-8692号）、又はオキサリジン、リジンハイドロキサメート、Ｓ−（２−アミノエチル）−システイン、γ−メチルリジン、α−クロロカプロラクタム、ＤＬ−α−アミノ−ε−カプロラクタム、α−アミノ−ラウリルラクタム、アスパラギン酸−アナログ、スルファ剤、キノイド、又はＮ−ラウロイルロイシンに耐性を有する変異株として育種することができる。
【００２８】
また、Ｌ−アルギニン生産菌は、サルファ剤、２−チアゾールアラニン又はα−アミノ−β−ヒドロキシ吉草酸等の薬剤に耐性を有する変異株；２−チアゾールアラニン耐性に加えて、Ｌ−ヒスチジン、Ｌ−プロリン、Ｌ−スレオニン、Ｌ−イソロイシン、Ｌ−メチオニンまたはＬ−トリプトファン要求性を有する変異株（特開昭５４−４４０９６号）；ケトマロン酸、フルオロマロン酸又はモノフルオロ酢酸に耐性を有する変異株（特開昭５７−１８９８９号）；アルギニノールに耐性を有する変異株（特開昭６２−２４０７５号）；Ｘ−グアニジン（Ｘは脂肪酸又は脂肪鎖の誘導体）に耐性を有する変異株（特開平２−１８６９９５号）、５−アザウラシル、６−アザウラシル、２−チオウラシル、５−フルオロウラシル、５−ブロモウラシル、５−アザシトシン、６−アザシトシン等に耐性な変異株、アルギニンヒドロキサメート、２−チオウラシルに耐性な変異株、アルギニンヒドロキサメート及び６−アザウラシルに耐性な変異株（特開昭57-150381号参照）、ヒスチジンアナログ又はトリプトファンアナログに耐性な変異株（特開昭52-114092号参照）、メチニオン、ヒスチジン、スレオニン、プロリン、イソロイシイン、リジン、アデニン、グアニンまたはウラシル（またはウラシル前駆体）の少なくとも一つに要求性を有する変異株（特開昭52-99289号参照）、アルギニンヒドロキサメートに耐性な変異株（特公昭51-6754号参照）、コハク酸要求性又は核酸塩基アナログに耐性な変異株（特開昭58-9692号）、アルギニン分解能を欠損し、アルギニンのアンタゴニスト及びカナバニンに耐性を有し、リジンを要求する変異株（特開昭52-8729号参照）、アルギニン、アルギニンヒドロキサメート、ホモアルギニン、Ｄ−アルギニン、カナバニン耐性、アルギニンヒドロキサメート及び６−アザウラシル耐性の変異株（特開昭53-143288号参照）、及び、カナバニン耐性の変異株（特開昭53-3586号参照）として育種することができる。
【００２９】
次に、Ｌ−アミノ酸生合成系酵素遺伝子の増強によってＬ−アミノ酸生産能を付与又は増強する方法を、以下に例示する。
【００３０】
Ｌ−リジン生産能は、例えば、ジヒドロジピコリン酸合成酵素活性及びアスパルトキナーゼ活性を増強することによって付与することができる。
メチロバチラス属細菌のジヒドロジピコリン酸合成酵素活性及びアスパルトキナーゼ活性を増強するには、ジヒドロジピコリン酸合成酵素をコードする遺伝子断片及びアスパルトキナーゼをコードする遺伝子断片を、メチロバチラス属細菌で機能するベクター、好ましくはマルチコピー型ベクターと連結して組み換えＤＮＡを作製し、これをメチロバチラス属細菌の宿主に導入して形質転換すればよい。形質転換株の細胞内のジヒドロジピコリン酸合成酵素をコードする遺伝子及びアスパルトキナーゼをコードする遺伝子のコピー数が上昇する結果、これらの酵素の活性が増強される。以下、ジヒドロジピコリン酸合成酵素をDDPS、アスパルトキナーゼをAK、アスパルトキナーゼIIIをAKIIIと略すことがある。
【００３１】
DDPSをコードする遺伝子及びAKをコードする遺伝子の供与微生物としては、メチロバチラス属に属する微生物中でDDPS活性及びAK活性を発現することができる微生物であれば、いかなる微生物でも使用できる。微生物は、野生株及びそれから誘導した変異株のいずれでもよい。具体的にはE. coli（エシェリヒア・コリ(Escherichia coli)）K-12株及びメチロバチラス・グリコゲネスNCIMB 11375株等が挙げられる。エシェリヒア属細菌由来のDDPSをコードする遺伝子（dapA、Richaud, F. et al. J. Bacteriol., 297(1986)）及びAKIIIをコードする遺伝子（lysC、Cassan, M., Parsot, C., Cohen, G.N. and Patte, J.C., J. Biol. Chem., 261, 1052(1986)）は、いずれも塩基配列が明らかにされているので、これらの遺伝子の塩基配列に基づいてプライマーを合成し、E. coli K-12等の微生物の染色体ＤＮＡを鋳型とするＰＣＲ法により、これらの遺伝子を取得することが可能である。以下、E. coli由来のdapA及びlysCを例として説明するが、本発明に用いる遺伝子は、これらに限定されるものではない。
【００３２】
本発明に用いるDDPS及びAKは、Ｌ−リジンによるフィードバック阻害を受けないものであることが好ましい。E. coli由来の野生型DDPSはＬ−リジンによるフィードバック阻害を受けることが知られており、E. coli由来の野生型AKIIIはＬ−リジンによる抑制及びフィードバック阻害を受けることが知られている。したがって、メチロバチラス属細菌に導入するdapA及びlysCは、それぞれＬ−リジンによるフィードバック阻害が解除される変異を有するDDPS及びAKIIIをコードするものであることが好ましい。以下、Ｌ−リジンによるフィードバック阻害が解除される変異を有するDDPSを「変異型DDPS」、変異型DDPSをコードするＤＮＡを「変異型dapA、又はdapA*」と呼ぶことがある。また、Ｌ−リジンによるフィードバック阻害が解除される変異を有するE. coli由来のAKIIIを「変異型AKIII」、変異型AKIIIをコードするＤＮＡを「変異型lysC」と呼ぶことがある。
【００３３】
尚、本発明においては、DDPS及びAKは必ずしも変異型である必要はない。例えば、コリネバクテリウム属細菌由来のDDPSはもともとＬ−リジンによるフィードバック阻害を受けないことが知られている。
【００３４】
E. coli由来の野生型dapAの塩基配列を配列番号１３に、同塩基配列によってコードされる野生型DDPSのアミノ酸配列を配列番号１４に例示する。
【００３５】
Ｌ−リジンによるフィードバック阻害を受けない変異型DDPSをコードするＤＮＡとしては、118位のヒスチジン残基がチロシン残基に置換された配列を有するDDPSをコードするＤＮＡが挙げられる。また、Ｌ−リジンによるフィードバック阻害を受けない変異型AKIIIをコードするＤＮＡとしては、352位のスレオニン残基がイソロイシン残基に置換された配列を有するAKIIIをコードするＤＮＡが挙げられる。
【００３６】
遺伝子のクローニングに使用されるプラスミドとしては、エシェリア属細菌等の微生物において複製可能なものであればよく、具体的には、pBR322、pTWV228、pMW119、pUC19等が挙げられる。
【００３７】
また、メチロバチラス属細菌で機能するベクターとは、例えばメチロバチラス属細菌で自律複製出来るプラスミドである。具体的には、広宿主域ベクターであるRSF1010及びその誘導体、例えばpAYC32（Chistorerdov, A.Y., Tsygankov, Y.D. Plasmid, 1986, 16, 161-167）、あるいはpMFY42（gene, 44, 53(1990)）、pRP301、pTB70（Nature, 287, 396, (1980)）等が挙げられる。
【００３８】
dapA及びlysCとメチロバチラス属細菌で機能するベクターを連結して組み換えＤＮＡを調製するには、dapA及びlysCを含むＤＮＡ断片の末端に合うような制限酵素でベクターを切断する。連結は、Ｔ４ ＤＮＡリガーゼ等のリガーゼを用いて行うのが普通である。dapA及びlysCは、それぞれ別個のベクターに搭載してもよく、同一のベクターに搭載してもよい。
【００３９】
変異型DDPSをコードする変異型dapA及び変異型AKIIIをコードする変異型lysCを含むプラスミドとして、広宿主域プラスミドRSFD80が知られている（WO95/16042号）。同プラスミドで形質転換されたE. coli JM109株は、AJ12396と命名され、同株は1993年10月28日に通産省工業技術院生命工学工業技術研究所（現 独立行政法人 産業技術総合研究所 特許生物寄託センター）に受託番号FERM P-13936として寄託され、1994年11月1日にブダペスト条約に基づく国際寄託に移管され、FERM BP-4859の受託番号のもとで寄託されている。RSFD80は、AJ12396株から、公知の方法によって取得することができる。
【００４０】
上記のように調製した組換えＤＮＡをメチロバチラス属細菌に導入するには、十分な形質転換効率が得られる方法ならば、いかなる方法を用いてもよいが、例えば、エレクトロポレーション法（Canadian Journal of Microbiology, 43. 197(1997)）が挙げられる。
【００４１】
DDPS活性及びAK活性の増強は、dapA及びlysCをメチロバチラス属細菌の染色体ＤＮＡ上に多コピー存在させることによっても達成できる。メチロバチラス属細菌の染色体ＤＮＡ上にdapA及びlysCを多コピーで導入するには、染色体ＤＮＡ上に多コピー存在する配列を標的に利用して相同組換えにより行う。染色体ＤＮＡ上に多コピー存在する配列としては、レペッティティブＤＮＡ、転移因子の端部に存在するインバーティッド・リピートが利用できる。あるいは、特開平2-109985号公報に開示されているように、dapA及び／又はlysCをトランスポゾンに搭載してこれを転移させて染色体ＤＮＡ上に多コピー導入することも可能である。いずれの方法によっても形質転換株内のdapA及lysCのコピー数が上昇する結果、DDPS活性及びAK活性が増幅される。
【００４２】
DDPS活性及びAK活性の増幅は、上記の遺伝子増幅による以外に、dapA及lysCのプロモーター等の発現調節配列を強力なものに置換することによっても達成される（特開平1-215280号公報参照）。たとえば、ｌａｃプロモーター、ｔｒｐプロモーター、ｔｒｃプロモーター、ｔａｃプロモーター、ラムダファージのＰＲプロモーター、ＰＬプロモーター、ｔｅｔプロモーター、ａｍｙＥプロモーター、ｓｐａｃプロモーター等が強力なプロモーターとして知られている。これらのプロモーターへの置換により、dapA及lysCの発現が強化されることによってDDPS活性及びAK活性が増幅される。発現調節配列の増強は、dapA及lysCのコピー数を高めることと組み合わせてもよい。
【００４３】
遺伝子断片とベクターを連結して組換えＤＮＡを調製するには、遺伝子断片の末端に合うような制限酵素でベクターを切断する。連結は、Ｔ４ＤＮＡリガーゼ等のリガーゼを用いて行うのが普通である。ＤＮＡの切断、連結、その他、染色体ＤＮＡの調製、ＰＣＲ、プラスミドＤＮＡの調製、形質転換、プライマーとして用いるオリゴヌクレオチドの設定等の方法は、当業者によく知られている通常の方法を採用することができる。これらの方法は、Sambrook, J., Fritsch, E. F., and Maniatis, T., "Molecular Cloning A Laboratory Manual, Second Edition", Cold Spring Harbor Laboratory Press,  (1989)等に記載されている。
【００４４】
DDPS及びAKの増強に加えて、他のＬ−リジン生合成に関与する酵素を増強してもよい。そのような酵素としては、ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ、ジアミノピメリン酸脱炭酸酵素、ジアミノピメリン酸デヒドロゲナーゼ（以上、WO96/40934号参照）、ホスホエノールピルビン酸カルボキシラーゼ（特開昭60-87788号）、アスパラギン酸アミノトランスフェラーゼ（特公平6-102028号）、ジアミノピメリン酸エピメラーゼ遺伝子、アスパラギン酸セミアルデヒド脱水素酵素等のジアミノピメリン酸経路の酵素、あるいはホモアコニット酸ヒドラターゼ遺伝子等のアミノアジピン酸経路の酵素等が挙げられる。
【００４５】
また、メタノール資化性菌としてメチロフィラス・メチロトロファス由来のアスパルトキナーゼ、アスパラギン酸セミアルデヒド脱水素酵素、ジヒドロジピコリン酸合成酵素、ジヒドロジピコリン酸レダクターゼ、及び、ジアミノピメリン酸脱炭酸酵素は、WO 00/61723に開示されている。
【００４６】
さらに、本発明の微生物は、Ｌ−リジンの生合成経路から分岐してＬ−リジン以外の化合物を生成する反応を触媒する酵素の活性が低下または欠損していてもよい。Ｌ−リジンの生合成経路から分岐してＬ−リジン以外の化合物を生成する反応を触媒する酵素としては、ホモセリンデヒドロゲナーゼがある（WO 95/23864参照）。
【００４７】
上記のＬ−リジン生合成に関与する酵素の活性を増強する手法は、Ｌ−アルギニンについても同様に適用することができる。
Ｌ−アルギニンは、例えば、アセチルオルニチンデアセチラーゼ活性、Ｎ−アセチルグルタミン酸−γ−セミアルデヒドデヒドロゲナーゼ活性、Ｎ−アセチルグルタモキナーゼ活性、及びアルギニノサクシナーゼ活性を増強することによって付与することができる（特公平５−２３７５０号）。
【００４８】
また、グルタミン酸デヒドロゲナーゼ（EP 1 057 893 A1）、アルギニノコハク酸シンターゼ（EP 0 999 267 A1）、カルバモイルリン酸シンセターゼ（EP 1 026 247 A1）、もしくはＮ−アセチルグルタミン酸シンターゼ（特開昭57-5693号参照）の活性を増強すること、又は、アルギニンリプレッサーをコードする遺伝子（argR）を破壊することによって、Ｌ−アルギニン生産能を向上させることができる。
【００４９】
＜３＞Ｌ−リジン又はＬ−アルギニンの製造
上記にようにして得られるＬ−リジン又はＬ−アルギニン生産能を有するメチロバチラス属細菌を培地に培養し、該培養物中にＬ−リジン又はＬ−アルギニンを生産蓄積させ、該培養物からＬ−リジン又はＬ−アルギニンを採取することにより、Ｌ−リジン又はＬ−アルギニンを製造することができる。
【００５０】
本発明で用いられる微生物は、通常メタノール資化性微生物の培養に用いられる方法で培養することができる。本発明で用いられる培地は、炭素源、窒素源、無機イオン及び必要に応じてその他の有機微量成分を含む培地であれば、天然培地、合成培地のいずれでも用いられる。
【００５１】
メタノールを主たる炭素源として用いると、Ｌ−リジン又はＬ−アルギニンを安価に製造することができる。メタノールは、主たる炭素源として用いる場合は、培地中に0.001〜30%添加する。窒素源としては硫酸アンモニウムなどを培地に添加して用いる。これらの他に、通常、リン酸カリウム、リン酸ナトリウム、硫酸マグネシウム、硫酸第一鉄、硫酸マンガンなどの微量成分が少量添加される。
【００５２】
培養は、振とう培養又は通気撹拌培養などの好気条件下、pH5〜9、温度20〜45℃に保持して行われ、通常24〜120時間で終了する。
培養物からのＬ−リジン又はＬ−アルギニンの採取は、通常イオン交換樹脂法、沈殿法、その他の公知の方法を組み合わせることにより実施できる。
【００５３】
【実施例】
以下、本発明を実施例によりさらに具体的に説明する。
試薬は、特記しない限り和光純薬、又はナカライテスク社製のものを用いた。各実施例で用いる培地の組成は以下に示すとおりである。いずれの培地もpHはNaOHまたはHClで調整した。
【００５４】
(LB培地)
バクト・トリプトン（ディフコ社製）    10g/L
酵母エキス（ディフコ社製）             5g/L
NaCl                                  10g/LpH7.0
[120℃、20分間蒸気滅菌を行った。]
【００５５】
(LB寒天培地)
LB培地
バクトアガー            15g/L
[120℃、20分間蒸気滅菌を行った。]
【００５６】
（SEII培地）（Journal of gneneral microbiology(1989) 125, 135, 3153-3164 Silman N. J., Carver M. A. & Jones C. W.参照。但し、若干の改変を加えた。）
K2HPO4               1.9g/L
NaH2PO4              1.56g/L
MgSO4・7H2O           0.2g/L
(NH4)2SO4            5g/L
CuSO4・5H2O           5μg/L
MnSO4・5H2O          25μg/L
ZnSO4・7H2O          23μg/L
CaCl2・2H2O          72mg/L
FeCl3・6H2O           9.7mg/L
CaCO3（関東化学製） 30g/L
メタノール           2％(vol/vol)
pH7.0
[メタノール以外は121℃、15分間蒸気滅菌を行った。良くさめてからメタノールを添加した。]
【００５７】
(SEII寒天培地)
K2HPO4                      1.9g/L
NaH2PO4                     1.56g/L
MgSO4・7H2O                 0.2g/L
(NH4)2SO4                   5g/L
CuSO4・5H2O                 5μg/L
MnSO4・5H2O                25μg/L
ZnSO4・7H2O                23μg/L
CaCl2・2H2O                72mg/L
FeCl3・6H2O                 9.7mg/L
メタノール                  0.5％（vol/vol）
pH7.0
バクトアガー(ディフコ社製)  15g/L
[メタノール以外は121℃、15分間蒸気滅菌を行った。良くさめてからメタノールを添加した。]
【００５８】
【実施例１】
＜１＞ブレビバクテリウム属細菌由来のlysE遺伝子のメチロフィラス属細菌への導入
【００５９】
コリネバクテリウム属細菌で知られているＬ−リジンの排出を促進する遺伝子の相同遺伝子であるlysE遺伝子をブレビバクテリウム属細菌よりクローニングし、メチロフィラス属細菌での発現を試みた。
【００６０】
（１）pRSlysEの構築
メチロフィラス属細菌にlysEを導入するために、公知のプラスミドpRS（特表平3-501682号公報参照）を用いて、lysE発現用プラスミドpRSlysEを構築した。pRSは、RSF1010の誘導体である広宿主域ベクタープラスミドpAYC32（Chistorerdov, A.Y., Tsygankov, Y.D. Plasmid, 1986, 16, 161-167）に由来するpVIC40プラスミド（WO90/04636国際公開パンフレット、特表平3-501682号公報）より、同プラスミドが持つスレオニンオペロンをコードするDNA領域を削除してベクター部分のみを持つプラスミドである。
【００６１】
まず、pRSより、tacプロモーターを持つプラスミドpRStacを図１に示す方法で構築した。pRStacプラスミドは、pRSベクターを制限酵素EcoRIおよびPstIで消化し、フェノール・クロロホルム溶液を加えて混合し、反応を停止させた。反応液を遠心分離した後、上層を回収し、エタノール沈殿にてDNAを回収後、0.8%アガロースゲルにて分離し、約8キロベースペア（以下、「kbp」と記載）のDNA断片をEASY TRAP Ver.2（DNA回収キット、宝酒造社製）を用いて回収した。一方、tacプロモーター領域を、pKK223-3プラスミド（発現用ベクター、Pharmacia社製）を鋳型とし、配列番号１および２に示すプライマーを用いて、PCRにより増幅した（変性94℃-20秒、アニーリング55℃-30秒、伸長反応72℃-60秒のサイクルを30サイクル行った）。PCR反応にはPyrobest DNA polymerase（宝酒造社製）を使用した。増幅されたtacプロモーターを含むDNA断片をPCRprep（Promega社製）にて精製した後、あらかじプライマー中にデザインしておいた制限酵素サイト、すなわちEcoRIおよびEcoT22Iで消化し、フェノール・クロロホルム溶液を加えて混合し、反応を停止させた。反応液を遠心分離した後、上層を回収し、エタノール沈殿にてDNAを回収した後、0.8%アガロースゲルにて分離し、約0.15kbpのDNA断片をEASY TRAP Ver.2を用いて回収した。
【００６２】
上記のように調製したpRSベクター消化物と、tacプロモーター領域断片を、DNA Ligation Kit Ver.2（宝酒造製）を用いて連結させた。この連結反応溶液でエシェリヒア・コリ（E.coli JM109 competent cells、宝酒造製）を形質転換し、20mg/Lのストレプトマイシンを含むLB寒天培地に塗布し、37℃で一晩保温した。寒天培地上に出現したコロニーを20mg/Lのストレプトマイシンを含むLB液体培地に接種し、37℃で8時間振盪培養した。アルカリ−SDS法にて各培養液からプラスミドDNAを抽出し、制限酵素で消化して構造を確認し、pRStacを得た。pRSベクター上のストレプトマイシン耐性遺伝子の転写方向とtacプロモーターの転写方向が同じ向きになっているものを、pRStacとして選択した。
【００６３】
上記のようにして得たpRStacを、Sse8387I（宝酒造製）およびSapI（ニューイングランドバイオラボ社製）で消化し、フェノール・クロロホルム溶液を加えて混合し、反応を停止させた。反応液を遠心分離した後、上層を回収し、エタノール沈殿にてDNAを回収後、0.8%アガロースゲルで分離し、約9.0kbpのDAN断片を回収した。
【００６４】
また、ブレビバクテリウム・ラクトファーメンタム２２５６株（ATCC13869）より抽出した染色体を鋳型として、配列番号５および６に示すプライマーを用いたPCR法（変性94℃-20秒、アニーリング55℃-30秒、伸長反応72℃-90秒）によりlysE遺伝子断片を増幅した。PCR反応には、Pyrobest DNA polymerase（宝酒造社製）を使用した。このとき、lysE遺伝子がメチロフィラス属細菌中で発現可能となるように、lysE遺伝子の翻訳開始コドンより9〜15bp塩基を、メチロフィラス属細菌で機能することがわかっている配列（Wyborn, N. R., Mills, J., Williamis, S. G. and Jones, C.W., Eur.J.Biochem., 240, 314-322(1996)）に変更するようにプライマーをデザインした。得られた断片をPCRprep（Promega社製）にて精製した後、制限酵素Sse8387IおよびSapIで消化した。フェノール・クロロホルム溶液を加えて混合し、反応を停止させた。反応液を遠心分離した後、上層を回収し、エタノール沈殿にてDNAを回収し、0.8%アガロースゲルで回収した。
【００６５】
上記のように調製したpRStacベクター消化物と、lysE遺伝子領域断片を、DNA Ligation Kit Ver.2（宝酒造製）を用いて連結させた。この連結反応溶液でエシェリヒア・コリ（E.coli JM109 competent cells、宝酒造製）を形質転換し、20mg/Lのストレプトマイシンを含むLB寒天培地に塗布し、37℃で一晩保温した。寒天培地上に出現したコロニーを20mg/Lのストレプトマイシンを含むLB液体培地に接種し、37℃で8時間振盪培養した。アルカリ−SDS法にて各培養液からプラスミドDNAを抽出し、制限酵素での消化および塩基配列の決定により構造を確認して、pRSlysEを得た（図１）。pRSlysEは、tacプロモーターの転写方向に対して、lysE遺伝子の転写方向が同じ向きになるように配置されている。
【００６６】
（２）メチロフィラス属細菌へのpRSlysEの導入
上記のようにして得られたpRSlysEを、エレクトロポレーション法（Canadian Journal of Microbiology, 43. 197 (1997)）によりメチロフィラス・メチロトロファスAS1株（NCIMB10515）に導入した。なお、対照として、pRSをpRSlysEと同様にしてAS1株に導入した。その結果、対照として用いたpRSでは1μgのDNAあたり数千個のコロニーを得たが、それに対してpRSlysEでは数個のコロニーしか得られなかった。
【００６７】
pRSlysEが導入されたと思われる形質転換株よりプラスミドを抽出して塩基配列を調べたところ、調べたすべてのプラスミドにおいて、lysEをコードする領域内に自然変異が導入され、それらの変異のうちいくつかは、アミノ酸をコードするコドンが翻訳を停止させる停止コドンに置き換わるナンセンス変異が導入されていた。また、別のプラスミドではlysE遺伝子に欠失がみられた。これらのプラスミドに搭載されているlysEは、いずれも、機能が失われていることが考えられた。また、このlysE遺伝子の機能を失わせるような形でlysEをコードする領域の一部を意図的に欠失させたプラスミド(pRSlysEΔ1)を作製し、メチロフィラス・メチロトロファスに導入を試みたところ、対照として用いたpRSベクターと同等の頻度で導入できた。
前記pRSlysEΔ1は、lysEをコードする領域内に存在するPvuI（配列番号７の203-209位のCGATCGを認識）からMluI（同485-491位のACGCGT）までの領域を欠失させたプラスミドであり、以下のようにして構築した。具体的には、pRSlysEをPvuIおよびMluI(宝酒造製)にて消化し、フェノール・クロロホルム溶液を加えて、混合し反応を停止させた。反応液を遠心分離した後、上層を回収し、エタノール沈殿にてDNAを回収後、0.8%アガロースゲルで分離し、約10kbpのDNA断片を回収した。このDNA断片をDNA Blunting Kit（宝酒造製）にて末端を平滑化した。これをDNA ligation kit Ver2(宝酒造製)にて自己連結（セフルファイゲーション）させた。
上記の連結反応溶液でエシェリヒア・コリ（E.coli JM109 competent cells、宝酒造社製)を形質転換し、20mg/Lのストレプトマイシンを含むLB寒天培地に塗布し、37℃で一晩保温した。寒天培地上に出現したコロニーを20mg/Lのストレプトマイシンを含むLB液体培地に接種し、37℃で8時間振盪培養した。アルカリ−SDS法にて各培養液からプラスミドDNAを抽出し、制限酵素での消化により構造を確認して、pRSlysEΔ1プラスミドを得た。
【００６８】
以上のように、全長のlysE遺伝子を搭載するpRSlysEのメチロフィラス・メチロトロファスへの導入頻度は極めて低く、また機能を失わせるような変異が導入されたlysE変異遺伝子を持つプラスミドのみが導入できたことと併せて考えると、メチロフィラス・メチロトロファスにlysE遺伝子を導入することは致死的であると考えられた。このことは、lysE遺伝子が異種の細菌においてＬ−リジンの排出に関して万能に機能するものではないことを示している。
【００６９】
変異が導入されたpRSlysEを持つメチロフィラス・メチロトロファスAS1株を、20mg/Lのストレプトマイシンを含むSEIIプレートに塗り広げ、３７℃にて１晩培養したのち、培地表面約0.3cm2の菌体をかきとって２０mg/Lのストレプトマイシンを含むSEII生産培地(20ml)に植菌し、37℃にて34時間振盪培養した。培養終了後、菌体を遠心分離により除去し、培養上清に含まれるＬ−リジン濃度をアミノ酸分析計（日本分光製、高速液体クロマトグラフィー）で定量した。その結果、変異型lysE遺伝子が導入されてもＬ−リジンの排出が促進されたと思われる株はほとんど得られなかった。
【００７０】
＜２＞メチロフィラス属細菌でＬ−リジン排出活性を示す遺伝子の取得
前項で述べたように、既知のlysE遺伝子はメチロフィラス属細菌中では致死的であることが示唆され、機能が失われたような変異型遺伝子が多く得られた。
【００７１】
変異が導入されたpRSlysEの解析を行ううちに、メチロフィラス属細菌中で機能する変異型lysE遺伝子を取得することができた。
【００７２】
この変異型lysE遺伝子をlysE24遺伝子と命名した。lysE24遺伝子の塩基配列を解析したところ、この変異は、アミノ酸置換が起こる変異ではなく、lysEの翻訳領域内のほぼ中央に終止コドンが導入されるナンセンス変異であることがわかった。コリネバクテリウム属細菌のlysE遺伝子は6個の疎水性ヘリックスを持つ膜タンパク質であることが報告されている（Vrlijc M., Sahm H., Eggeling L. Molecular Microbiology 22:815-826(1996)）が、このlysE24遺伝子は終止コドンが導入されているため、同遺伝子がコードするタンパク質は、野生型lysE遺伝子がコードするLysEタンパク質とは異なる構造を有し、この構造によってメチロフィラス属細菌中で機能することがわかった。
【００７３】
lysE24の塩基配列を決定した結果を配列番号９に示す。対照として野生型のlysEの塩基配列を配列番号７に示した。lysE24では、配列番号７の355位のG（グアニン）のあとにT（チミン）が挿入されていた。このlysE24を持つプラスミドをpRSlysE24と命名した（図１）。pRSlysE24をあらためてAS1株に導入したところ、pRSとほぼ同頻度でプラスミドが導入できた。プラスミド導入株について、＜１＞（２）と同様の方法で培養上清中のＬ−リジン濃度を測定した結果を、表１に示す。
【００７４】
【表１】
0004120364.tif 000002
【００７５】
pRSlysE24で形質転換されたE.coli JM109株はAJ13830と命名され、同株は2001年６月４日に、独立行政法人 産業技術総合研究所 特許生物寄託センターに受託番号FERM P-18369として寄託され、平成１４年５月１３日にブダペスト条約に基づく国際寄託に移管され、FERM BP-8040の受託番号のもとで寄託されている。
【００７６】
尚、lysE24遺伝子から、前記変異により生成した終止コドンよりも下流の領域をさせたプラスミドすなわち、＜１＞（１）に記載のpRSlysEΔ1プラスミドを導入したAS1株はＬ−リジンを培地中に蓄積しなかった。このことから、lysE24遺伝子では前半部分のペプチドだけでなく、後半部分のペプチドも発現し、複合体を形成しているものと考えられる。
【００７７】
【実施例２】
以上のようにコリネバクテリウム属細菌で知られているＬ−リジンの排出を促進する遺伝子の相同遺伝子であるlysE遺伝子は、メチロフィラス属細菌中では全く機能しないが、lysE24という改変体はメチロフィラス属細菌で機能することがわかった。そこで、次にメチロバチラス属細菌において、コリネバクテリウム属細菌のlysE遺伝子が機能するかどうか、また実施例１で得られたlysE24が機能するかどうかを調べた。
【００７８】
（１）pRSlysE-Tcの構築
メチロバチラス属細菌にコリネバクテリウム属細菌由来の野生型lysEを導入するために、まず実施例１にて構築したpRSlysEの薬剤耐性マーカーを、ストレプトマイシン耐性遺伝子からテトラサイクリン耐性遺伝子へと変更することにした。これは、使用したメチロバチラス属細菌はストレプトマイシンにもともと耐性を示すため、ストレプトマイシ耐性をマーカーとして使用することができないためである。
【００７９】
具体的には、まずpRSlysEを制限酵素EcoRIで消化し、フェノール・クロロホルム混合溶液を加えて混合し、消化反応を停止させた。反応液を遠心分離した後、上層の溶液を回収し、エタノール沈殿法にてDNA断片を回収した。これを0.8%アガロースゲル電気泳動にて分離し、約１０kbpのDNA断片をEASY TRAP ver.2 (DNA回収キット、宝酒造社製)を用いて回収した。
【００８０】
一方、テトラサイクリン耐性遺伝子領域は、pRK310（Journal of Molecular Biology (1994) 239: 623-663に記載）を鋳型DNAとして、配列番号１１および１２に示すDNAプライマーを用いてPCRにより増幅した（変性工程94℃-20秒、アニーリング工程55℃-30秒、伸長反応工程72℃-60秒の反応サイクルを30サイクル実施した。）。PCR反応には、Pyrobest DNA polymerase(宝酒造社製)を使用した。増幅されたテトラサイクリン耐性遺伝子を含むDNA断片はPCRprep(Promega社製)にて精製後、エタノール沈澱法にて回収した。これを更に、あらかじプライマー中にデザインしておいた制限酵素サイト、すなわちEcoRIで消化し、フェノール・クロロホルム混合液を加え、反応を停止させた。次に、この反応液を遠心分離し上層を回収し、エタノール沈澱法にてDNAを回収した後、0.8%アガロースゲル電気泳動にて目的DNA断片を分離し、約1.5kbpのDNA断片を回収した。
尚、テトラサイクリン耐性遺伝子は、pRK310に代えて他のプラスミド、例えば、pRK310の親プラスミドであるpRK2プラスミド（NICMBからNICMB11968として入手可能。Science(1975)  190. 1226-1228 または  Plasmid(1981) 5. 10-19）を鋳型とし、上記と同様のPCR反応によっても、取得することができる。
【００８１】
上記のように調製したpRSlysEに由来するDNA断片と、テトラサイクリン耐性遺伝子領域を含むDNA断片を、DNA Ligation kit ver.2(宝酒造社製)を用いて連結させた。この反応液で、E.coli JM109株のコンピテントセル(宝酒造社製)を形質転換し、20mg/Lのストレプトマイシンおよび15mg/Lのテトラサイクリンを含むLB寒天培地に塗布し、37℃で一晩培養した。寒天培地上に出現したコロニーを、20mg/Lのストレプトマイシンおよび15mg/Lのテトラサイクリンを含むLB液体培地に接種し、37℃で８時間振とう培養した。この培養液から、アルカリ-SDS法にてプラスミドDNAを抽出し、制限酵素で消化して、そのプラスミドの構造を確認し、pRSlysE-Tcを取得した。
【００８２】
（２）メチロバチラス属細菌へのpRSlysE-Tcの導入
上記のようにして得られたpRSlysE-Tcを、エレクトロポレーション法（Canadian Journal of Microbiology, 43. 197 (1997)）によりメチロバチラス・グリコゲネスNCIMB11375株に導入した。なお、対照として、pRK310をpRSlysE-Tcと同様にしてNCIMB11375株に導入した。その結果、対照として用いたpRK310では1μgのDNAあたり数千個のコロニーを得たが、それに対してpRSlysE-Tcでは数個のコロニーしか得られなかった。このことから、メチロフィラス属細菌と同様に、メチロバチラス属細菌においてもコリネバクテリウム属細菌由来のlysE遺伝子は機能しないことがわかった。
【００８３】
（３）pRSlysE24-Tcの構築
次に、メチロバチラス属細菌においてlysE24が機能するかどうかを確かめるために、実施例１にて構築したpRSlysE24プラスミドの薬剤耐性マーカーを、ストレプトマイシン耐性遺伝子からテトラサイクリン耐性遺伝子へと変更することにした。
具体的には、まずpRSlysE24を制限酵素EcoRIで消化し、フェノール・クロロホルム混合溶液を加えて混合し、消化反応を停止させた。反応液を遠心分離した後、上層の溶液を回収し、エタノール沈殿法にてDNA断片を回収した。これを0.8%アガロースゲル電気泳動にて分離し、約１０kbpのDNA断片をEASY TRAP ver.2 (DNA回収キット、宝酒造社製)を用いて回収した。
【００８４】
一方、テトラサイクリン耐性遺伝子断片は、前記と同様にして、配列番号１１及び１２のプライマーを用いたPCRによりpRK310から同遺伝子領域を増幅し、EcoRIで消化することによって取得した。
【００８５】
上記のように調製したpRSlysE24に由来するDNA断片と、テトラサイクリン耐性遺伝子領域を含むDNA断片を、DNA Ligation kit ver.2(宝酒造社製)を用いて連結させた。この反応液で、E.coli JM109株のコンピテントセル(宝酒造社製)を形質転換し、20mg/Lのストレプトマイシンおよび15mg/Lのテトラサイクリンを含むLB寒天培地に塗布し37℃で一晩培養した。寒天培地上に出現したコロニーを、20mg/Lのストレプトマイシンおよび15mg/Lのテトラサイクリンを含むLB液体培地に接種し、37℃で８時間振とう培養した。この培養液から、アルカリ-SDS法にてプラスミドDNAを抽出し、制限酵素で消化して、そのプラスミドの構造を確認し、pRSlysE24-Tcを取得した。
【００８６】
（４）メチロバチラス属細菌へのpRSlysE24-Tcの導入
上記のようにして得られたpRSlysE24-Tcを、エレクトロポレーション法（Canadian Journal of Microbiology, 43. 197 (1997)）によりメチロバチラス・グリコゲネスNCIMB11375株に導入した。なお、対照として、pRK310をNCIMB11375株に導入した。その結果、対照として用いたpRK310とほぼ同頻度でpRSlysE24-Tcが導入できた。プラスミド導入株について＜１＞（２）と同様の方法で培養上清中のＬ−リジン濃度を測定した結果を、表２に示す。
【表２】
0004120364.tif 000003
【００８７】
lysE24遺伝子をメチロバチラス・グリコゲネスNICMB11375株に導入することによって、培地中にＬ−リジンが蓄積することがわかった。これは、Ｌ−リジンの排出が促進されたことによると考えられた。また、培養上清中の他のＬ−アミノ酸の濃度も調べたところ、NCIMB11375/pRSlysE24-Tc株では、Ｌ−アルギニンが蓄積しており、lysE24はＬ−リジンだけでなく、Ｌ−アルギニン排出活性も持っていることがわかった。
【００８８】
以上の検討から、メチロフィラス属細菌で機能するlysE24は、メチロバチラス属細菌でも機能することがわかった。
【００８９】
【実施例３】
メチロバチラス・グリコゲネスへのＬ−リジン生合成系酵素遺伝子及びlysE24遺伝子の導入
lysE24遺伝子をメチロバチラス・グリコゲネスNCIMB11375株に導入することによって、培地中にＬ−リジンが蓄積することがわかった。これは、Ｌ−リジンの排出が促進されたことによると考えられた。
【００９０】
そこで、Ｌ−リジン生合成遺伝子が増強されたメチロバチラス・グリコゲネスにおけるlysE24遺伝子導入の効果を調べた。
【００９１】
＜１＞dapA*遺伝子を持つプラスミドpRSdapAの構築
Ｌ−リジン生合成系酵素遺伝子として、Ｌ−リジンによるフィードバック阻害を受けないジヒドロジピコリン酸合成酵素をコードする遺伝子（dapA*）を持つプラスミドを作製した。
【００９２】
実施例１で作製したpRStacをSse8387IおよびXbaIで消化し、フェノール・クロロホルム溶液を加えて混合し、反応を停止させた。反応液を遠心分離した後、上層を回収し、エタノール沈殿にてDNAを回収後、0.8%アガロースゲルで分離し、約8kbpのDNA断片を回収した。
【００９３】
dapA*遺伝子断片は、同遺伝子を含む公知のプラスミドRSFD80(WO90/16042号参照)を鋳型として、配列番号３および４に示すプライマーを用いたPCR法（変性94℃-20秒、アニーリング55℃-30秒、伸長反応72℃-60秒）により増幅した。PCR反応には、Pyrobest DNA polymerase（宝酒造社製）を使用した。得られたdapA*断片をPCRprep（Promega社製）にて精製した後、制限酵素Sse8387IおよびXbaIで消化した。フェノール・クロロホルム溶液を加えて混合し、反応を停止させた。反応液を遠心分離した後、上層を回収し、エタノール沈殿にてDNAを回収し、0.8%アガロースゲルで分離後、約0.1kbpのDNA断片を回収した。
【００９４】
上記のように調製したpRStacベクター消化物と、dapA*遺伝子領域断片を、DNA Ligation Kit Ver.2（宝酒造製）を用いて連結させた。この連結反応溶液でエシェリヒア・コリ（E.coli JM109 competent cells、宝酒造社）を形質転換し、20mg/Lのストレプトマイシンを含むLB寒天培地に塗布し、37℃で一晩保温した。寒天培地上に出現したコロニーを、20mg/Lのストレプトマイシンを含むLB液体培地に接種し、37℃で8時間振盪培養した。アルカリ−SDS法にて各培養液からプラスミドDNAを抽出し、制限酵素での消化および塩基配列の決定により構造を確認して、pRSdapAプラスミドを得た。pRSdapAプラスミドは、tacプロモーターの転写方向に対して、dapA*遺伝子の転写方向が同じ向きになるように配置されている。
【００９５】
pRSdapAプラスミドで形質転換されたE.coli JM109株はAJ13831と命名され、同株は2001年６月４日に、独立行政法人 産業技術総合研究所 特許生物寄託センターに受託番号FERM P-18370として寄託され、平成１４年５月１３日にブダペスト条約に基づく国際寄託に移管され、FERM BP-8041の受託番号のもとで寄託されている。
【００９６】
＜２＞lysE24及びdapA*を持つプラスミドpRSlysE24-dapA-Tcの構築
lysE24とdapA*の組み合わせ効果を評価するために、pRSlysE24プラスミドにdapA*遺伝子を挿入したプラスミドを、図２に示した方法で構築した。
実施例１で作製したpRSlysE24を制限酵素SapIで消化し、DNA Blunting Kit（宝酒造社製）にて末端を平滑化した。また、dapA＊を持つプラスミドpRSdapAを制限酵素EcoRIおよびSapIで消化し、0.8%アガロースゲルにより約1kbpのtacプロモーターおよびdapA＊領域を含む断片を分離し、同断片をEASY TRAP Ver2(宝酒造製)にて回収した。この断片を前記と同様に平滑化し、前記のpRSlysE24の消化物とDNA Ligation Kit Ver2(宝酒造製)にて連結した。
【００９７】
上記の連結反応溶液でエシェリヒア・コリ（E.coli JM109 competent cells、宝酒造社製）を形質転換し、20mg/Lのストレプトマイシンを含むLB寒天培地に塗布し、37℃で一晩保温した。寒天培地上に出現したコロニーを20mg/Lのストレプトマイシンを含むLB液体培地に接種し、37℃で8時間振盪培養した。アルカリ−SDS法にて各培養液からプラスミドDNAを抽出し、制限酵素での消化および塩基配列の決定により構造を確認して、pRSlysEdapAプラスミドを得た。
pRSlysEdapAプラスミドで形質転換されたE.coli JM109株はAJ13832と命名され、同株は2001年６月４日に、独立行政法人 産業技術総合研究所 特許生物寄託センターに受託番号FERM P-18371として寄託され、平成１４年５月１３日にブダペスト条約に基づく国際寄託に移管され、FERM BP-8042の受託番号のもとで寄託されている。
【００９８】
次に、pRSlysEdapAプラスミドの薬剤耐性マーカー遺伝子を、ストレプトマイシン耐性遺伝子からテトラサイクリン耐性遺伝子へと変更した。まず、pRSlysEdapAプラスミドをEcoRIで消化し、フェノール・クロロフォルム混合溶液を加えて混合し、消化反応を停止させた。反応液を遠心分離した後、上層の溶液を回収し、エタノール沈殿法にてDNA断片を回収した。これを0.8%アガロースゲル電気泳動にて分離し、約１１kbpのDNA断片をEASY TRAP ver.2 (DNA回収キット、宝酒造社製)を用いて回収した。
【００９９】
一方、テトラサイクリン耐性遺伝子断片は、実施例１と同様にして、配列番号１１及び１２のプライマーを用いたPCRによりpRK310から同遺伝子領域を増幅し、EcoRIで消化することによって取得した。
【０１００】
上記のように調製したpRSlysEdapAに由来するDNA断片と、テトラサイクリン耐性遺伝子領域を含むDNA断片を、DNA Ligation kit ver.2(宝酒造社製)を用いて連結させた。この反応液で、E.coli JM109株のコンピテントセル(宝酒造社製)を形質転換し、20mg/Lのストレプトマイシンおよび15mg/Lのテトラサイクリンを含むLB寒天培地に塗布し37℃で一晩培養した。寒天培地上に出現したコロニーを、20mg/Lのストレプトマイシンおよび15mg/Lのテトラサイクリンを含むLB液体培地に接種し、37℃で16時間振とう培養した。この培養液から、アルカリ-SDS法にてプラスミドDNAを抽出し、制限酵素で消化して、そのプラスミドの構造を確認し、pRSlysE-dapA-Tcを取得した。
【０１０１】
（２）メチロバチラス・グリコゲネスNCIMB111375株へのpRSlysE-dapA-Tcの導入とアミノ酸の製造
上記の方法で得られたpRSlysE-dapA-Tcプラスミドを、エレクトロポレーション法によりメチロバチラス・グリコゲネスNCIMB111375株に導入した。得られた形質転換株（以下、「NCIMB111375/pRSlysE-dapA-Tc」ともいう）、前記のpRSlysE24-Tcが導入された株（以下、「NCIMB111375/pRSlysE-Tc」ともいう）、および対照としてpRK310を導入した株（以下、「NCIMB111375/pRK310」ともいう）について、以下のように培養し、培養液上清中のＬ−アミノ酸濃度を調べた。
【０１０２】
各形質転換株を、１５mg/Lのテトラサイクリンを含むSEIIプレートに塗り広げ、３０℃にて２晩培養したのち、培地表面約１０cm2の菌体をかきとって１５mg/Lのテトラサイクリンを含むSEII生産培地(20ml)に植菌し、３０℃にて６０時間振盪培養した。培養終了後、菌体を遠心分離により除去し、培養上清に含まれるＬ−リジン濃度をアミノ酸分析計（日本分光製、高速液体クロマトグラフィー）で定量した。結果を表３に示す。NCIMB/pRSlysE-dapA-Tc株では、pRSlysE24-Tcを導入した株と比較して、培地中のＬ−リジン蓄積量はさらに向上する事がわかった。つまり、lysE24遺伝子の導入により、排出における律速が解除され、dapA*遺伝子増強効果が相乗的に表れたと考えられる。
【０１０３】
【表３】
0004120364.tif 000004
【０１０４】
【発明の効果】
本発明により、メタノール資化性菌のＬ−アミノ酸生産性、特にＬ−リジン及びＬ−アルギニンの生産性を向上させることができる。
【０１０５】
【配列表】
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【図面の簡単な説明】
【図１】  tacプロモーターを持つプラスミドpRStac、及びpRStacにlysE遺伝子又はlysE24遺伝子が挿入されたプラスミドpRSlysE及びpRSlysE24の構築を示す図。
【図２】  lysE24遺伝子とdapA*遺伝子を持つプラスミドpRSlysEdapAの構築を示す図。
【図１】
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【図２】
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