(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
野生型ＨＢｓＡｇおよび２種以上のＨＢｓＡｇの変異体に結合するモノクローナル抗体であって、前記変異体が以下からなる群より選択される前記抗体：
（ａ）アミノ酸１３３においてｍｅｔがｉｌｅに、アミノ酸１３４においてｐｈｅがｈｉｓに、アミノ酸１４４においてａｓｐがｖａｌに置換されている突然変異体（ＮＰ  ＨＢｓＡｇ）：
（ｂ）アミノ酸１３３においてｍｅｔがｉｌｅに、アミノ酸１３４においてｐｈｅがａｓｎに、アミノ酸１４２においてｐｒｏがｓｅｒに、アミノ酸１４３においてｓｅｒがｌｅｕに、アミノ酸１４５においてｇｌｙがｌｙｓに置換されている突然変異体（ＭＡＭ  ＨＢｓＡｇ）：および
（ｃ）アミノ酸１４３においてｓｅｒがｍｅｔに置換されている突然変異体（ＳＰ  ＨＢｓＡｇ）。
【請求項２】
受託番号ＥＣＡＣＣ  ９７０４２３３０でＥＣＡＣＣに寄託されているハイブリドーマＭ３Ａ１０によって産生されるモノクローナル抗体Ｍ３Ａ１０。
【請求項３】
受託番号ＥＣＡＣＣ  ９７０４２５１９でＥＣＡＣＣに寄託されているハイブリドーマＭ４Ｆ５によって産生されるモノクローナル抗体Ｍ４Ｆ５。
【請求項４】
受託番号ＥＣＡＣＣ  ９７０４２３３１でＥＣＡＣＣに寄託されているハイブリドーマＰ２Ｄ３によって産生されるモノクローナル抗体Ｐ２Ｄ３。
【請求項５】
ヒト化形態の請求項１から４のいずれかに記載モノクローナル抗体。
【請求項６】
請求項１に記載のモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを生産する方法であって、動物をＮＰ  ＨＢｓＡｇまたはＭＡＭ  ＨＢｓＡｇで免疫し、抗体産生細胞を不死化してハイブリドーマを作製し、野生型ＨＢｓＡｇおよびＮＰ  ＨＢｓＡｇまたはＭＡＭ  ＨＢｓＡｇへの結合についてハイブリドーマ培養液をスクリーニングし、野生型ＨＢｓＡｇおよびＮＰ  ＨＢｓまたはＭＡＭ  ＨＢｓＡｇに結合する抗体を産生するハイブリドーマを選択することを含む前記方法。
【請求項７】
請求項１から５のいずれかに記載のモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ。
【請求項８】
受託番号ＥＣＡＣＣ  ９７０４２３３１でＥＣＡＣＣに寄託されているハイブリドーマＰ２Ｄ３。
【請求項９】
受託番号ＥＣＡＣＣ  ９７０４２３３０でＥＣＡＣＣに寄託されているハイブリドーマＭ３Ａ１０。
【請求項１０】
受託番号ＥＣＡＣＣ  ９７０４２５１９でＥＣＡＣＣに寄託されているハイブリドーマＭ４Ｆ５。
【請求項１１】
請求項１から４のいずれかに記載のモノクローナル抗体を産生する方法であって、ｉｎ  ｖｉｔｒｏ  またはｉｎ  ｖｉｖｏで請求項７から１０のいずれかに記載のハイブリドーマまたは請求項６に記載の方法によって得られるハイブリドーマを培養し、培養液からモノクローナル抗体を得ることを含む前記方法。
【請求項１２】
ＨＢｓＡｇの検出のための免疫測定法であって、試験対象のサンプルを請求項１に記載のモノクローナル抗体と接触させ、得られた抗原抗体複合体を検出することを含む前記免疫測定法。
【請求項１３】
前記モノクローナル抗体を、抗ＨＢｓポリクローナル抗体および別の抗ＨＢｓモノクローナル抗体から選択される１以上の他の抗体と組合わせて用いる請求項１２に記載の免疫測定法。
【請求項１４】
請求項１に記載のモノクローナル抗体およびＨＢｓＡｇの免疫測定の実施に必要な他の試薬を含む免疫測定キット。
【請求項１５】
免疫測定での使用に適した固相であって、その表面に請求項１に記載のモノクローナル抗体が固定されている前記固相。
【請求項１６】
抗ＨＢｓポリクローナル抗体および別の抗ＨＢｓモノクローナル抗体から選択される１以上の更なる抗ＨＢｓが表面に固定されている請求項１５に記載の固相。
【請求項１７】
請求項１に記載のモノクローナル抗体を医薬上許容される担体と混合状態で含む、ＨＢＶに対する受動免疫に対する治療的または予防的な使用に適した組成物。
【請求項１８】
請求項１に記載のモノクローナル抗体に対する抗イデオタイプ抗体。
【発明の詳細な説明】
世界的規模で、Ｂ型肝炎ウイルス（ＨＢＶ）は、慢性的に感染しているヒトの数及び感染の合併症の重篤度の点で最も重要な肝親和性ウイルスである。
Ｂ型肝炎は、非経口治療、集団予防接種運動及び広範囲にわたる血液及びプールされた血液製剤(blood product）の輸血が導入された後に重要な問題として持ち上がった。潜伏期間が長いこと、無症候感染が高頻度で発生すること及び感染性保菌状態が存在することが、ＨＢＶをより血液伝播し易いようにしている。多くの研究者がＨＢＶの性的感染の証拠を発表し、Ｂ型ウイルスの感染は周産期中に保菌者の母親から乳児へ起こり得る。
ＤＮＡウイルスであるＨＢＶはヘパドナウイルス群の１員である。電子顕微鏡検査は、ＨＢＶが「デーン粒子」と称される直径４２ｎｍの二重シェル構造の球形粒子であることを示す。これらのウイルス粒子は、約２２〜２５ｎｍの直径を有する高電子密度の球形内部コアと７ｎｍの厚さを有する外部コートを有する。ウイルスの外部コートは、ウイルス中和抗体に対する表面抗原（本明細書では“ＨＢｓ”または“ＨＢｓＡｇ”と称される）を有している。直径２０ｎｍの球形の内部コア粒子は、ウイルスコア抗原（ＨＢｃＡｇ）及びｅ抗原（ＨＢｅＡｇ）、ウイルスＤＮＡ、ＤＮＡポリメラーゼ活性及びタンパク質キナーゼ活性を有する。
ＨＢｓＡｇは、アミノ酸１２４〜１４７に亘り且つすべてのＨＢＶ単離物に共通である、“ａ”抗原決定基と称されるＨＢＶの主要な中和エピトープを含む。例えば、Ｐｕｇｈら（１９８６）を参照されたい。急性または慢性ＨＢＶ感染後の抗−ＨＢｓの発生は、通常回復及び良好な予後を伴っている。抗−ＨＢｓは予防接種による中和抗体の産生にも関連している。回復期及び予防接種後の血清中に認められる抗−ＨＢｓの大部分は、まだ特定されていない構造を有する“ａ”抗原決定基の領域において結合している。“ａ”抗原決定基が非常に立体配座的であることは明らかである。なぜならば、前記領域がアルキル化または還元により変性されるとＨＢｓＡｇ粒子の抗原性が非常に低下するからである。システィン残基間のジスルフィド架橋が正しい立体構造に関与していると考えられる。“ａ”抗原決定基の１つの考えられる構造は、アミノ酸１２４と１３７の間に第１ループを形成するジスルフィド架橋及びアミノ酸１３９と１４７の間に第２ループを形成する別のジスルフィド架橋を含んでいる。
抗−ＨＢｓは、主として第２ループに結合すると考えられるが、エピトープは１つのループのみに限定されないと考えられる。“ａ”抗原決定基の配列の全体が多分抗原構造に関与している。“ａ”抗原決定基は、ＨＢＶの標準単離物においてある程度のアミノ酸の変動があるが保存されている。推定エピトープの第１ループにより大きな変動があることから、この領域は中和エピトープに余り関与していないことが暗示される。
“ａ”抗原決定基はＨＢＶのすべてのサブタイプで認められ、“ａ”抗原決定基の内部及び周りのアミノ酸の変動によりサブタイプが生ずる。ＨＢｓＡｇはａｄｗ、ａｙｗ、ａｄｒ及びａｙｒの４つの主要な免疫学的サブタイプに分類され得、各々は関連した地理学的分布を有する。ｄ／ｙサブタイプ及びｗ／ｒサブタイプはそれぞれ、アミノ酸１２２及び１６０のリシンをアルギニンで置換することにより決定される。
最近、ＨＢｓＡｇの存在が或る患者の抗−ＨＢｓ血清サンプルにおいて認められた。これらの患者のＨＢｓＡｇは存在する抗−ＨＢｓにより中和され得ないことから、ＨＢｓＡｇ変異体の存在が暗示される。重要な変異体（突然変異体）が、予防接種、モノクローナル抗体治療、ポリクローナル抗体治療、臨床検査で診断するのが困難なＨＢＶ感染の症例に関連づけられている。例えば、Ｃａｒｍｅｎら（１９９２，１９９３）、Ｈａｒｒｉｓｏｎら（１９９３）、Ｈａｗｋｉｎｓら（１９９４）、Ｈｏｗａｒｄら（１９９３）、ＭｃＭａｈｏｎら（１９９２）、Ｏｋａｍｏｔｏら（１９９２）及びＷａｌｌａｃｅら（１９９４）参照。
分析すると、突然変異体は混合集団から選択され、“ａ”抗原決定基においてアミノ酸置換を引き起こす点突然変異を有するようである。突然変異体は、遺伝子型のプールを生ずる遺伝子内のランダム突然変異により生ずると考えられる。今までに記載された突然変異体の場合、免疫応答が突然変異体を選択する際の主要要因であると考えられる。
通常、インビトロでウイルス感染細胞にモノクローナル抗体を添加すると、該抗体で中和されない単離物が選択される。従って、活性ウイルス複製を有する患者にモノクローナル抗体を与えるといわゆる「エスケープ」突然変異体が選択され得ることは驚くことではない。
臨床的に重要ないくつかの別個のエスケープ突然変異体が予防接種された個体で見つけられた。３例では、ＨＢｓＡｇの“ａ”抗原決定基のアミノ酸１４５のコドンが点突然変異され、グリシンからアルギニンへのアミノ酸変化が生じることが知見された。前記突然変異型ウイルスを１つ含む血清をチンパンジーに投与して、前記物質が伝播性であることが判明した。
予防接種された集団における大規模感染に関係する突然変異型ウイルスでは、“ａ”抗原決定基のアミノ酸１４１のリシンからグルタミン酸への突然変異が認められた。それ以来、“ａ”抗原決定基において１個以上のアミノ酸置換を生ずる前記及び他の点突然変異が予防接種した個体で報告された。
エスケープ突然変異体は、幾つかの理由で心配の種である。まず、前記突然変異体はイムノアッセイで検出できない。高選択性及び特異性を得るために診断用アッセイが設計されている。ＨＢｓＡｇに対するアッセイは、被検サンプル中の抗−ＨＢｓ試薬とＨＢｓＡｇの相互反応に基づいている。次いで、生じた抗−ＨＢｓ／ＨＢｓＡｇ複合体を検出する。ＨＢｓＡｇエピトープが明らかに突然変異されており、抗−ＨＢｓで認識されないときには、ＨＢｓＡｇは検出されないか、または前記アッセイが極めて非感応性である。エスケープ突然変異体が検出され得ないと、前記突然変異体を有するヒトに悪影響を及ぼすだけでなく、供血された血液、血液製剤または臓器を介して感染が伝播され得る。あらかじめ免疫付与され抗−ＨＢｓ応答を有する個体であっても、突然変異型ＨＢｓＡｇを有するＨＢＶは個体を冒し得る。
１２２位でのエスケープ突然変異体に対するモノクローナル抗体はＷＯ９４／２６９０４に記載されている。前記抗体は、野生型ＨＢｓＡｇと突然変異型とを区別することができ、よって突然変異体を同定することができる。
本発明は、野生型ＨＢｓＡｇ及び少なくとも２つ、好ましくは３つ以上の突然変異型ＨｂｓＡｇに対して特異的に結合し得るモノクローナル抗体を提供する。
本発明のモノクローナル抗体の野生型及び突然変異型ＨＢｓＡｇに特異的に結合する能力から、該抗体は野生型タンパク質と突然変異型の間で保存される表面抗原の領域に結合することが示唆される。保存領域、よって抗原決定基（エピトープ）は“ａ”抗原決定基内、“ａ”抗原決定基の領域内または非−“ａ”領域内にも存在し得る。
本発明のモノクローナル抗体は、突然変異型ＨＢｓＡｇ及び野生型タンパク質の両方に対して特異的に結合する能力を有しているために、ＨＢｓＡｇの検出、ＨＢＶ感染の臨床診断及び血液スクリーニングのためのイムノアッセイの有効性を改善する際に特に有用である。血液の供給及び血液製剤の供給の安全性が、ＨＢｓＡｇアッセイにおいて本発明のモノクローナル抗体を単独で、すなわち単一の抗−ＨＢｓ抗体として使用するか、或いは特に１つ以上の他の抗−ＨＢｓ抗体と一緒に使用することにより改善され得る。
添付図面の図１ａ及び図１ｂは、“ａ”抗原決定基を包含するＨＢＶ表面領域の部分のアミノ酸及び核酸配列を示す。図１ｂは図１ａをタイプ清書したものである。図１ａ及び図１ｂの各々において、レーン１はサブタイプａｄｙｗの認識されたアミノ酸変異型を示し、レーン２はサブタイプａｄｙｗの共通アミノ酸配列を示し、レーン３はサブタイプａｄｙｗの共通核酸配列を示し、レーン４は認識された核酸変異型を示し、レーン５は突然変異型ＨＢｓＡｇ  II（ＭＡＭ  ＨＢｓＡｇ）をコードする核酸変異を示し、レーン６は突然変異型ＨＢｓＡｇ  Ｉ（ＮＰ  ＨＢｓＡｇ）をコードする核酸変異型を示す。
１４３位での別の認識されたヌクレオチド変異型では、ＴＣＧがＡＣＧに置換され、その結果当該位置でセリンがスレオニンに置換されている。
本発明の推定モノクローナル抗体は、３つ以上の参照抗原、すなわち野生型ＨＢｓＡｇ及び２つ以上の突然変異型ＨＢｓＡｇに対して特異的に結合する能力についてスクリーニングされ得る。当業者は、抗体と抗原間の特異的結合と非特異的結合を容易に区別することができる。３つ以上の前記した参照抗原に対して特異的に結合し得る抗体が本発明のモノクローナル抗体である。前記したスクリーニング方法自体も本発明の一部をなす。本明細書中、用語「結合」は特異的結合を指すことに留意されたい。
本発明のハイブリドーマ及びモノクローナル抗体の作製においてスクリーニングするために及び／または抗原として使用されるＨＢｓＡｇは、完全長タンパク質であるか、または野生型または突然変異型ＨＢｓＡｇの適当な抗原断片もしくは誘導体であり得る。
本発明のモノクローナル抗体は、任意の免疫グロブリンクラス、例えばＩｇＧ、ＩｇＭまたはＩｇＡ及び任意のイソタイプを有し得る。
突然変異型ＨＢｓＡｇは、いわゆる「エスケープ突然変異体」中に存在するような、野生型ＨＢｓＡｇに比して少なくとも１個のアミノ酸置換を誘起する突然変異をもつ突然変異型ウイルス中に存在し得る。突然変異型ＨＢｓＡｇは、“ａ”抗原決定基内または“ａ”抗原決定基の領域内に置換が生じているものでもよく、例えば突然変異は点突然変異であってもよい。突然変異、例えば点突然変異は、ＨＢｓＡｇのアミノ酸１３３〜１４５をコードする配列内で起こり得る。突然変異により、１３３位及び／または１４５位でアミノ酸置換が生じ得る。追加の及び／または別の置換が、例えば１３４、１４１、１４２、１４３及び１４４の１個以上の位置に存在していてもよい。突然変異型ＨＢｓＡｇは、例えば１４３、１４４及び１４５の１個以上の位置で野生型に比してアミノ酸置換を有し得る。前記突然変異は、他の突然変異に加えて“ａ”抗原決定基内または別の領域内に存在し得る。
本発明のモノクローナル抗体は、例えば野生型ＨＢｓＡｇ及び上記した２つ以上の別個の突然変異型ＨＢｓＡｇ（例えば、１３３、１３４、１４１、１４２、１４３、１４４及び１４５の１個以上の位置で突然変異が生じているもの）に対して特異的に結合し得る。或いは、上記した１つの突然変異型ＨｂｓＡｇ及び異なる領域において突然変異を有している突然変異型ＨＢｓＡｇに対して結合することも可能である。
突然変異型ＨＢｓＡｇの例は、“ａ”抗原決定基の領域において野生型に比して以下の置換を有するものである：
突然変異型ＨＢｓＡｇ  Ｉ（“ＮＰ”ＨＢｓＡｇ）
アミノ酸１３３がｍｅｔからｉｌｅに、アミノ酸１３４がｐｈｅからｈｉｓに、アミノ酸１４４がａｓｐからｖａｌに置換されているもの；
突然変異型ＨＢｓＡｇ  II（“ＭＡＭ”ＨＢｓＡｇ）
アミノ酸１３３がｍｅｔからｉｌｅに、アミノ酸１３４がｐｈｅからａｓｎに、アミノ酸１４２がｐｒｏからｓｅｒに、アミノ酸１４３がｓｅｒからｌｅｕに、アミノ酸１４５がｇｌｙからｌｙｓに置換されているもの；
突然変異型ＨＢｓＡｇ  III（“ＳＺ”ＨＢｓＡｇ）
アミノ酸１４５がｇｌｙからａｒｇに置換されているもの；
突然変異型ＨＢｓＡｇ  IV（“ＳＰ”ＨＢｓＡｇ）
アミノ酸１４３がｓｅｒからｍｅｔに置換されているもの。
推定抗体を、例えば野生型ＨＢｓＡｇ及び上記した２つ以上の突然変異型に対してスクリーニングし得る。例えば、本発明の推定モノクローナル抗体を、野生型ＨＢｓＡｇ及び１３３、１３４、１４１、１４２、１４３、１４４及び１４５、特に１４３、１４４及び１４５の１個以上の位置で突然変異を有している２つ以上の別個の突然変異型ＨＢｓＡｇに対してスクリーニングする。或いは、前記した１つの突然変異体を別の領域に突然変異を有する突然変異型ＨＢｓＡｇと一緒に使用し得る。上記した突然変異型Ｉ及びIVをスリーニングのために使用することができる。
本発明は、野生型ＨＢｓＡｇ及びアミノ酸１４３、１４４及び１４５をコードするコドンの１個以上で点突然変異を有する配列によりコードされ得る“ａ”抗原決定基を有する少なくとも１つの突然変異型ＨＢｓＡｇに対して特異的に結合し得るモノクローナル抗体を提供する。前記モノクローナル抗体は、２つ以上の突然変異型ＨＢｓＡｇ及び別の異なる突然変異型ＨＢｓＡｇに結合し得る。
本発明のモノクローナル抗体の例は、Ｐ２Ｄ３、Ｍ３Ａ１０及びＭ４Ｆ５と称されるハイブリドーマより産生される抗体である。前記ハイブリドーマは、特許手続き上の微生物寄託の国際承認に関するブダペスト条約の下に、英国、ウィルトシャー州ＳＰ４  ０ＪＧ、ソールズベリー、ポートンダウンに所在のｔｈｅ  Ｅｕｒｏｐｅａｎ  Ｃｏｌｌｅｃｔｉｏｎ  ｏｆ  Ｃｅｌｌ  Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｓ（ＥＣＡＣＣ），Ｖｉｒｕｓ  Ｒｅｓｅａｒｃｈ  ａｎｄ  Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ，Ｐｕｂｌｉｃ  Ｈｅａｌｔｈ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ  Ｓｅｒｖｉｃｅ，Ｃｕｌｔｕｒｅ  ｆｏｒ  Ａｐｐｌｉｅｄ  Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ  ＆  Ｒｅｓｅａｒｃｈに寄託されている。ハイブリドーマ寄託の受託番号及び受託日は次の通りである。
ハイブリドーマ      受託番号            受託日
Ｐ２Ｄ３          ECACC 97042331      1997/04/23
Ｍ３Ａ１０        ECACC 97042330      1997/04/23
Ｍ４Ｆ５          ECACC 97042519      1997/04/25
本明細書において、モノクローナル抗体は、該抗体を産生するハイブリドーマと同じ呼称で呼ばれ得る。例えば。Ｐ２Ｄ３と称されるモノクローナル抗体はハイブリドーマＰ２Ｄ３（ＥＣＡＣＣ  ９７０４２３３１）より産生される抗体である。ハイブリドーマＰ２Ｄ３（ＥＣＡＣＣ  ９７０４２３３１）、ハイブリドーマＭ３Ａ１０（ＥＣＡＣＣ  ９７０４２３３０）及びハイブリドーマＭ４Ｆ５（ＥＣＡＣＣ  ９７０４２５１９）及びこれらハイブリドーマから産生されるモノクローナル抗体の詳細は、以下の実施例に記載されている。
モノクローナル抗体Ｐ２Ｄ３、Ｍ３Ａ１０及びＭ４Ｆ５の各々は、(ｉ)野生型ＨＢｓＡｇ、(ii)突然変異型ＨＢｓＡｇ  Ｉ（ＮＰ  ＨＢｓＡｇ）及び(iii)突然変異型ＨＢｓＡｇ  II（ＭＡＭ  ＨＢｓＡｇ）に特異的に結合し得る。また、各モノクローナル抗体は、突然変異型ＨＢｓＡｇ  III（ＳＺ  ＨＢｓＡｇ）及び突然変異型ＨＢｓＡｇ  IV（ＳＰ  ＨＢｓＡｇ）にも特異的に結合し得る。モノクローナル抗体Ｐ２Ｄ３及びＭ４Ｆ５はＩｇＧ抗体である。モノクローナル抗体Ｍ３Ａ１０はＩｇＡ抗体である。
野生型ＨＢｓＡｇが多数の血清型を有していることは公知であり、例えばＰｕｇｈら（１９８０）に記載されているように複数の認識された突然変異体が存在することも公知である。本明細書において用語「野生型ＨＢｓＡｇ」には、当業界で野生型として認識されているＨＢｓＡｇまたは野生型であると一般に認知されているＨＢｓＡｇのすべてが含まれる。従って、この用語にはすべての血清型及びすべての認識された変異体を有する野生型ＨＢｓＡｇが含まれる。本明細書で使用する用語「突然変異型ＨＢｓＡｇ」には認識された野生型変異体は含まれない。
適当なスクリーニング試験は当業者には公知であり、交差競合アッセイ及び例えば結合特異性を調べるために放射性標識モノクローナル抗体を用いるアッセイが含まれる。
上記したように、本発明のモノクローナル抗体の野生型及び突然変異型ＨＢｓＡｇに結合する能力から、該抗体は野生型タンパク質及び突然変異型の間で保存されている表面抗原の領域に結合することが示唆される（下記の総括参照）。前記した保存領域及びよって保存エピトープの位置及び配列は、公知の方法により、例えば適宜本発明のモノクローナル抗体を使用するエピトープマッピングにより決定され得る。その後、エピトープペプチド及びポリペプチドは、例えば組換え技術により、化学合成により、または異種方法の組合せにより作製され得る。生じた抗原ペプチドまたはポリペプチドも免疫原性であり得る。本発明のモノクローナル抗体に対するエピトープも本発明の一部をなす。
本発明には、本発明のモノクローナル抗体の断片及び誘導体、例えばＦａｂ及びＦａｂ2断片並びに結合体が包含される。誘導体はヒト化誘導体を含む。断片及び（ヒト化誘導体を含めた）誘導体の作製方法は公知である。例えば、断片及び誘導体は組換え技術により作製され得る。抗体の断片及び誘導体並びにその使用は当業者に公知である。
本発明は、本発明のモノクローナル抗体に対する抗−イディオタイプ抗体をも提供する。本来のエピトープの「内部イメージ」を含む前記抗体は、エピトープ代替物として使用され得、立体配座依存エピトープの場合には特に有用である。なぜならば、前記エピトープをマッピングすることは困難であり、立体配座依存エピトープの場合には合成エピトープペプチドを作製することが不可能であり得るからである。
本発明のモノクローナル抗体は、ＨＢｓＡｇを検出するための、よってＢ型肝炎感染を検出するためのイムノアッセイにおいて、ＨＢＶアッセイにおいて現在使用されている抗−ＨＢｓ抗体の代替物として、或いは現在使用されている抗−ＨＢｓ抗体に加えて使用され得る。前記アッセイは、臨床診断のためまたは血液スクリーニングのために使用され得、本発明には本発明のモノクローナル抗体を含むイムノアッセイを用いて診断する方法及び血液をスクリーニングする方法が包含される。
本発明のモノクローナル抗体は、受動免疫のための抗血清として治療もしくは予防目的で使用され得、及び／または能動免疫におけるワクチンとして使用するためのエピトープを規定するためにも使用され得る。本発明には、前記した抗血清及び免疫方法、並びに前記抗血清により規定されるエピトープも包含される。
本発明のモノクローナル抗体は、野生型または突然変異型ＨＢｓＡｇ、その抗原断片、抗原ペプチドまたは抗−イディオタイプ抗体を精製するためのアフィニティークロマトグラフィーにおいても使用される。
従って、本発明はＨＢｓＡｇを検出するためのイムノアッセイを提供し、該イムノアッセイは被検サンプルを本発明のモノクローナル抗体、その断片もしくは誘導体、またはその２つ以上の組合せと接触させ、生じた抗原−抗体複合体を検出することからなる。
本明細書中で使用される用語「検出」は検出及び／または測定を指し、定性、定量及び半定量方法を含む。
本発明のモノクローナル抗体、その断片もしくは誘導体、またはそれらの組合せを、ポリクローナル抗−ＨＢｓ抗体及び他のモノクローナル抗−ＨＢｓ抗体から選択される１つ以上の抗体と一緒に使用され得る。
本発明のイムノアッセイは、均一系または不均一系フォーマットであり得る。前記フォーマットは捕獲または競合フォーマットであり得る。
Ｂ型肝炎コア抗原に対する抗体（抗−ＨＢｃ）を検出するためのイムノアッセイは、ＨＢｓＡｇに対するアッセイと同時に行ってもよい。組合せＨＢＶ抗−コア／表面抗原アッセイは公知であり、使用されている。
本発明は更に、本発明のモノクローナル抗体、その断片もしくは誘導体、またはその２つ以上の組合せ、ＨＢｓＡｇに対するイムノアッセイを実施するために必要な試薬、及び任意に抗−ＨＢｃ抗体を検出するための試薬を含むイムノアッセイキットを提供する。ポリクローナル抗−ＨＢｓ抗体及び他のモノクローナル抗−ＨＢｓ抗体から選択される他の抗−ＨＢｓ抗体を１つ以上存在させてもよく、他の試薬は洗浄液、希釈剤、標準溶液、コントロール試薬及び標識抗−ＨＢｓ抗体から選択され得る。
本発明は更に、イムノアッセイで使用するために好適な固相をも提供し、該固相上には本発明のモノクローナル抗体、その断片もしくは誘導体、またはその２つ以上の組合せが固定化されている。ポリクローナル抗−ＨＢｓ抗体及び他のモノクローナル抗−ＨＢｓ抗体から選択される別の抗−ＨＢｓ抗体を１つ以上前記固相に固定化させてもよい。更に、抗−ＨＢｃ抗体を捕獲し得る物質を抗−ＨＢｓ抗体に加えて前記固相に固定化させてもよい。
本発明は更に、受動免疫のために治療または予防目的で使用するのに好適な、本発明のモノクローナル抗体、その断片もしくは誘導体、またはその２つ以上の組合せを含む抗血清をも提供する。
本発明は、本発明のモノクローナル抗体、その断片もしくは誘導体、またはその２つ以上の組合せを医薬的に適当な抗体と混合して含む、ＨＢＶに対する受動免疫のために治療または予防目的で使用するのに好適な組成物を提供する。
本発明の抗血清及び組成物は、ポリクローナル抗−ＨＢｓ抗体及び他のモノクローナル抗−ＨＢｓ抗体から選択される他の抗体を１つ以上含み得る。
本発明は更に、本発明のモノクローナル抗体、その断片もしくは誘導体、またはその２つ以上の組合せを治療または予防有効量ヒトに投与することからなる、治療または予防目的のＨＢＶに対する受動免疫化方法を提供する。モノクローナル及びポリクローナル抗−ＨＢｓ抗体から選択される他の抗体を１つ以上投与し得る。
本発明は更に、単離した突然変異型ＨＢｓＡｇ  Ｉ、突然変異型ＨＢｓＡｇ  II、突然変異型ＨＢｓＡｇ  III及び突然変異型ＨＢｓＡｇ  IVを提供する。本発明は、本発明のモノクローナル抗体、またはその断片もしくは誘導体に特異的に結合し得る突然変異型ＨＢｓＡｇの断片もしくは誘導体をも提供する。突然変異型ＨＢｓＡｇの断片もしくは誘導体も免疫原性であり得る。突然変異型ＨＢｓＡｇ、またはその断片もしくは誘導体は、天然ソースからまたは組換え技術により獲得することができる。例えば免疫原として使用するためには、突然変異型ＨＢｓＡｇ、またはその断片もしくは誘導体が部分的にまたは完全にグリコシル化された形態にあることが好ましい。本発明は、化学的に合成された抗原性であり任意に免疫原性のエピトープペプチドをも提供する。
本発明は、本発明の突然変異型ＨＢｓＡｇ、その免疫原性断片もしくは誘導体、またはその２つ以上の組合せ及び医薬的に好適な担体を含むワクチン組成物を提供する。ワクチン組成物が更に１つ以上の免疫原性ペプチドまたはポリペプチド、例えば他の免疫原性ＨＢｓＡｇペプチドまたはポリペプチドを含んでいてもよい。
本発明は、治療有効量の本発明の突然変異型ＨＢｓＡｇ、その免疫原性断片もしくは誘導体、またはその２つ以上の組合せを任意に他の免疫原性ＨＢｓＡｇペプチドまたはポリペプチドの１つ以上と組み合わせてヒトに投与することからなる、ヒトに対するＨＢＶの予防接種方法を提供する。
本発明は、上記した突然変異型ＨＢｓＡｇ  Ｉ、突然変異型ＨＢｓＡｇ  II、突然変異型ＨＢｓＡｇ  IIIまたは突然変異型ＨＢｓＡｇ  IV、または本発明のモノクローナル抗体またはその断片もしくは誘導体に対して特異的に結合し得る前記突然変異型ＨＢｓＡｇの断片または誘導体をコードする単離された核酸をも提供する。突然変異型ＨＢｓＡｇの断片または誘導体が免疫原性であることが好ましい。
本発明は本発明の核酸を含む組成物を提供し、特に哺乳動物に投与したときにコードされるアミノ酸配列を発現させるのに適した形態で本発明の核酸を含むワクチン組成物を提供する。
本発明の用途及び使用に際し、本発明のモノクローナル抗体はモノクローナル抗体Ｐ２Ｄ３、モノクローナル抗体Ｍ３Ａ１０、モノクローナル抗体Ｍ４Ｆ５またはその２つ以上の組合せであり得る。モノクローナル抗体Ｐ２Ｄ３、Ｍ３Ａ１０及びＭ４Ｆ５の１つ以上を本発明の他のモノクローナル抗体及び／または他の抗−ＨＢＶ抗体、特に抗−ＨＢＳ抗体と一緒に投与してもよい。本発明のモノクローナル抗体の断片もしくは誘導体を使用することもできる。
本発明は、本発明のモノクローナル抗体を産生し得るハイブリドーマ、例えばハイブリドーマＰ２Ｄ３（受託番号ＥＣＡＣＣ  ９７０４２３３１）、ハイブリドーマＭ３Ａ１０（受託番号ＥＣＡＣＣ  ９７０４２３３０）及びハイブリドーマＭ４Ｆ５（受託番号ＥＣＡＣＣ  ９７０４２５１９）をも提供する。
本発明は、本発明のモノクローナル抗体を作製し得るハイブリドーマを産生する方法を提供し、該方法は野生型ＨＢｓＡｇまたは突然変異型ＨＢｓＡｇを用いて動物を免疫化し、抗体産生細胞を不死化してハイブリドーマを形成し、生じたハイブリドーマ培養物を野生型ＨＢｓＡｇ及び２つ以上の突然変異型ＨＢｓＡｇについてスクリーニングし、野生型ＨＢｓＡｇ及び２つ以上の突然変異型ＨＢｓＡｇに特異的に結合し得るモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを選択することからなる。
本発明のモノクローナル抗体は、本発明のハイブリドーマをインビトロもしくはインビボで培養し、培地からモノクローナル抗体を獲得することにより得られ得る。インビボで作製する場合、培地は腹水であり得る。
ハイブリドーマ及びモノクローナル抗体を作製及びスクリーニングする方法は当業者に公知である。一般的な方法はＫｏｈｌｅｒ  ＆  Ｍｉｌｓｔｅｉｎ（１９７５）に記載されており、その後この主題に関しては多くの刊行物が存在する。本発明の方法に従ってハイブリドーマ及びモノクローナル抗体を作製及びスクリーニングするために、前記した任意の方法が利用され得る。抗体を作製するために使用される抗原は、野生型ＨＢｓＡｇまたは上記したような突然変異型ＨＢｓＡｇ、例えば上記した突然変異型Ｉ〜IVの１つ以上であり得る。生じたハイブリドーマ及びモノクローナル抗体は、野生型ＨＢｓＡｇ及び選択した突然変異型を使用する慣用の方法により各種型のＨＢｓＡｇに対して特異的に結合する能力についてスクリーニングされ得る。上記したように、スクリーニングは、参照抗原として野生型ＨＢｓＡｇ及び２つ以上の上記したような突然変異型ＨＢｓＡｇ、例えば突然変異型Ｉ〜IVの２つ以上を用いて実施され得る。
スクリーニングのためには、非常に低いバックグラウンド及び大きな動的レンジであり得且つ簡単に設定されるという利点をも有するＩｇＧ逆捕獲ラジオイムノアッセイを使用するのが特に簡便である。
当該抗体に対するＩｇＧ逆捕獲アッセイでは、適切な抗−スピーシスＩｇＧを固相、例えばミクロウェルに固定化する。例えば被検抗体をマウスで作製したときには、固相を抗−マウスＩｇＧでコートする。次いで、被検サンプルを固定化抗−スピーシスＩｇＧとインキュベートすると、サンプル中に存在する総ＩｇＧに相当する量が捕獲される。次いで、固相を適当に標識された抗原と一緒にインキュベートすると、前記抗原は当該捕獲抗体のみと複合体を形成する。次いで、形成された複合体を検出し得る。
本発明の場合、被検サンプル、例えばハイブリドーマ培養由来の組織培養上清または腹水を固定化抗−ＩｇＧと一緒にインキュベートする。捕獲された抗体を、標識野生型ＨＢｓＡｇ及び上記したような標識突然変異型ＨＢｓＡｇ、例えば突然変異型Ｉ〜IVから選択される２つ以上と別々にインキュベートする。野生型ＨＢｓＡｇ及び２つ以上の突然変異型表面抗原に対して特異的に結合し得るサンプルは、本発明の範囲内のモノクローナル抗体を含む。
ＩｇＭまたはＩｇＡモノクローナル抗体を獲得するために逆相ＩｇＭまたはＩｇＡアッセイを同様に使用することもできる。
ＨＢｓＡｇのための市販イムノアッセイは、通常、抗−ＨＢｓが固相、一般にはミクロウェル、微細粒子またはビーズに固定化されている不均一相、すなわち「捕獲」アッセイである。被検サンプル、通常血清を固定化抗−ＨＢｓと接触させるとき、サンプル中に存在するＨＢｓＡｇは固定化抗体に結合しなければならない。次いで、捕獲された抗原を、通常標識抗−ＨＢｓを用いて検出する。慣用のアッセイの場合、捕獲または検出のために使用される抗体はモノクローナルでもポリクローナルであってもよい。
その特性から、ポリクローナル抗体は広範囲の特異性及び選択性を有する。ＨＢＶの場合、これによりエスケープ突然変異体に結合し得る抗体は抗血清中に存在し得る。しかしながら、このことは保証され得ず、バッチ毎に生成物の均一性を得ることに固有の問題が存在する。モノクローナル抗体は特定の特異性及び選択性を有し、従ってエスケープ突然変異体を検出することはできない。
野生型ＨＢｓＡｇ及び突然変異型ＨＢｓＡｇに対して特異的に結合し得る本発明のモノクローナル抗体、その断片もしくは誘導体を含めた前記抗体の組み合わせをＨＢｓＡｇに対するイムノアッセイに使用すると、アッセイの性能が改良され、突然変異型ＨＢｓＡｇが検出される可能性が高くなる。本発明のモノクローナル抗体またはその２つ以上の組み合わせは、抗原捕獲のために及び／または生じた抗体−抗原複合体の検出のために抗−ＨＢｓ抗体単独として使用され、または好ましくはポリクローナル抗−ＨＢｓまたは他のモノクローナル抗−ＨＢｓに加えて使用され得る。本発明のモノクローナル抗体またはその２つ以上の組み合わせは、ＨＢｓＡｇに対する均一相アッセイにおける従来の抗−ＨＢｓと同様に使用され得る。従って、本発明はＨＢｓＡｇを検出するためのイムノアッセイを提供し、該方法はＨＢｓＡｇを含んでいると疑われるサンプルを本発明のモノクローナル抗体、その断片もしくは誘導体、その２つ以上の組み合わせを接触させ、生じた抗原−抗体複合体を検出することからなる。前記モノクローナル抗体、断片、誘導体またはその組み合わせは、単独の抗−ＨＢｓ試薬として使用され得、またはポリクローナル抗−ＨＢｓ及び他の抗−ＨＢｓモノクローナル抗体から選択される１つ以上の他の抗−ＨＢｓ抗体と一緒に使用され得る。
各種異なるフォーマットを有するイムノアッセイ、それを実施するための方法及び適当な試薬は公知であり、いろいろな書物及び論文、例えばＫｅｍｅｎｙ  ＆  Ｃｈａｌｌａｃｏｍｅ（１９８８）及びＴｓｕ  ＆  Ｈｅｒｚｅｎｂｅｒｇ（１９８０）に記載されている。任意の抗原検出方法が本発明で使用され得る。
本発明のアッセイは、いわゆる「サンドイッチ」アッセイ、競合アッセイまたは直接反応であり得る。モノクローナル抗体、断片、誘導体またはその組み合わせは、それ自体を、またはポリクローナル抗−ＨＢｓ抗血清及び／または１つ以上の他の抗−ＨＢｓモノクローナル抗体と混合して固体表面に固定化させることができる。或いは、本発明のモノクローナル抗体またはその組み合わせ及び任意の別の抗体は均一相にあり得る。生じた抗原−抗体複合体は標識抗−ＨＢｓを用いて検出され得る。不均一相アッセイの場合、検出のために使用される抗−ＨＢｓは固体表面をコーティングするために使用したものと同じであっても異なっていてもよい。
その上に抗−ＨＢｓが固定化され得る適当な固体表面は公知であり、微量滴定プレートのウェルの内側ウェル、ビーズ、パーティクル及びいわゆるラテックスを含む。例えばニトロセルロースまたはペーパーの膜及びストリップが使用され得る。膜またはストリップはアッセイデバイスに組み込まれ得る。前記アッセイデバイスも公知である。本発明は、その上に本発明のモノクローナル抗体、その断片もしくは誘導体、またはその２つ以上の組み合わせが固定化されている固相も包含する。
抗原−抗体複合体を検出するために使用される抗−ＨＢｓは、直接または間接的にシグナルを発生し得る任意の物質を用いて標識し得る。前記物質は公知である。直接シグナルを発生し得る物質には放射性標識、色素原標識及び蛍光標識が含まれる。間接的にシグナルを発生し得る物質には、色の変化を生じる反応を触媒し得る酵素が含まれる。
本発明は、本発明のイムノアッセイを実施するのに必要な成分を含むキットをも提供する。前記キットは、例えば固体表面に固定化させた本発明のモノクローナル抗体またはその２つ以上の組み合わせ、及び例えば洗浄液、希釈剤、標準溶液、コントロール試薬、標識抗−ＨＢｓ抗体及び酵素標識抗−ＨＢｓの場合には着色試薬から選択される他の必要な試薬を含む容器と一緒に含む。
Ｂ型肝炎コアタンパク質（ＨＢｃ）に対する抗体のためのイムノアッセイは、しばしば、例えば同じミクロウェルにおいてＨＢｓに対するアッセイと同時に実施される。本発明は、前記アッセイにおける本発明のモノクローナル抗体の使用、キット及び該アッセイに使用されるコートされた固相を包含する。
上記したように、本発明のモノクローナル抗体は、受動免疫のために、例えばＨＢＶ感染患者に対する肝移植中に使用され得る。受動免疫のために、抗体は非経口投与のための抗血清として使用するのに適した形態、例えばヒト化を含めた誘導体化し得る形態とする。使用される抗体の用量は、各患者の特定環境に依存し、ケースバイケースで決定される。
２つ以上の組み合わせ、断片もしくは誘導体を含めた本発明のモノクローナル抗体は、単独で、または他の抗−ＨＢｓポリクローナルまたはモノクローナル抗体に加えて使用され得る。他の抗−ＨＢＶ抗体をも含めることができる。
本発明のモノクローナル抗体が結合する突然変異型ＨＢｓＡｇは、抗原、例えばワクチンとして、モノクローナル抗体の作成に際し、及び本発明の推定抗体をスクリーニングするために使用され得る。前記突然変異型ＨＢｓＡｇは、ＨＢＶエスケープ突然変異体を有していると認められる被験者から獲得され得る。前記した被験者は通常抗−ＨＢｓポジティブであり且つＨＢｓＡｇポジティブである。適当な被験者は、ＨＢＶ感染のためにモノクローナル抗体治療を受けた患者から、予防接種を受けた患者（特に防御突破感染が認められる患者）から、現在の標準試験を用いる臨床検査では診断が困難なＨＢＶ感染の場合に見つけられる。
上記した突然変異型のひとつ、例えば突然変異型Ｉ〜IVの突然変異型ＨＢｓＡｇは、組換えＤＮＡ技術により作製され得る。突然変異体をコードする天然ＤＮＡは、突然変異型ＨＢｓＡｇの発現用の適切な宿主に組み込まれ得る。或いは、野生型ＤＮＡは、例えば位置指定突然変異により修飾され、その後突然変異型の発現を得るために使用され得る。
天然ソース、通常特定の被験者の血液から得られたＨＢｓＡｇは天然グリコシル化を有し、一般に前記ＨＢｓＡｇを抗原として使用するのが通常好ましい。血液からＨＢｓＡｇを精製する方法は公知であり、例えばＣａｍｅｒｏｎら（１９８０）を参照されたい。部分的にもしくは完全にグリコシル化された組換え突然変異型ＨＢｓＡｇを作製することが好ましいこともある。
ＨＢｓＡｇは完全長を有していても、適当な抗原断片を使用することもできる。前記断片は組換え技術により得られ得る。或いは、例えば化学合成により作製される抗原ペプチドである断片を使用することもできる。ワクチンとして使用する場合、抗原は免疫原性、すなわち保護応答を生じ得なければならない。
ワクチンとして使用する場合、（完全長、断片またはペプチドであっても、組換え技術により、合成によりまたは天然ソースから得られたものであっても）所望の抗原は精製され、例えば慣用の担体及び適切な場合には添加剤を使用して適当な形態に加工されなければならない。
ワクチン化のための抗原として使用する代替物として、前記抗原をコードする核酸を使用することができる。インビボで発現し得る形態の核酸を作製する方法は公知である。本発明は核酸ワクチンを包含する。
抗−イディオタイプ抗体を作製する方法は公知である。本発明の場合、本発明のモノクローナル抗体は、抗−イディオタイプ抗体を作製する際に抗原として使用され、生じた抗体は本発明のモノクローナル抗体に対してスクリーニングされ得る。本発明の抗−イディオタイプ抗体は公知の方法でワクチンとして使用され得る。
本発明を非限定的実施例により説明する。
実施例
Ｉ．材料及び方法
１：患者
以下のモノクローナル抗体は、２人の患者の突然変異型ＨＢｓＡｇに対して作製した。前記患者は、相反する血清マーカーの結果として同定された。
患者ＭＡＭはＨＢＶ保菌者であった。血清は、最初１９８６年、ポリクローナルを用いる逆受身赤血球凝集反応アッセイ（ＲＰＨ）でＨＢｓＡｇ陽性であったがモノクローナルエンザイムイムノアッセイ（ＥＩＡ）では陰性であった。１９８８年に患者は腎移植を受けた。再び調べたところ、ＨＢｓＡｇはポリクローナル及びモノクローナル抗体を用いるアッセイで検出され得るようになったが、ポリクローナル抗体アッセイのみで検出可能な状態に戻った。この患者の血清は、フォローアップ期間中抗−ＨＢｃ及びＨＢｓＡｇ陽性であった。
患者ＮＰは１９８５年に腎移植を受けた。１９９０年、患者は抗−ＨＢｃ血清陽性であったが、ＨＢｓＡｇ及び抗−ＨＢｓは検出されなかった。１９９３年から血液透析を始め、その年の後にはＨＢｓＡｇがポリクローナルを用いるアッセイのみで検出された。
いずれの患者に対してもワクチン接種は今まで行っていなかった。
“ａ”抗原決定基の周りのＨＢｓＡｇ抗原の配列を、Ｈａｗｋｉｎｓら（１９９４）に記載されているＰＣＲ産物に対して直接実施した一本鎖配列決定により決定した。
２：モノクローナル抗体の作製
２．１  動物
雌Ｂａｌｂ／ｃマウスを使用した。
２．２  ＨＢｓＡｇの精製
マウスの免疫化に必要なＨＢｓＡｇの精製は、Ｃａｍｅｒｏｎら（１９８０）に記載されている方法に基づいた。
高力価ＨＢｓＡｇ陽性血清は、２０ｍｌ容量ずつＴｒｉｓで緩衝し且つ０．１％アジ化ナトリウムを含む０．９％  ＮａＣｌ  ｐＨ７．６（Ｔｒｉｓ／Ｓａｌ／ＡＺ）で平衡化したセファロース６Ｂ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ  Ｌｔｄ）のカラム（１００×５ｃｍ直径）に流して分画化した。アルブミン及びＩｇＧを含まない富ＨＢｓＡｇ分画を、ＸＭ  １００Ａメンブラン（Ａｍｉｃｏｎ  Ｌｔｄ．）を取り付けた撹拌式２００ｍｌ限外濾過セルを用いて限外濾過することにより９ｍｌ容量まで濃縮した。これに固体ＣｓＣｌ（２．６９ｇ）を添加し、容量を１０ｍｌに調節して密度１．２ｇ／ｃｍ3とした。次いで、材料を２０℃において、ＳＷ５０−Ｌスイングバケットローター（Ｂｅｃｋｍａｎ  ＲＩＩＣ  Ｌｔｄ）において２本の５ｍｌチューブを用いて１２４０００ｇで３日間超遠心すると、自己形成密度勾配で等密度バンドが形成された。
２２ｎｍ小粒子を含む主ＨＢｓＡｇバンドを両チューブから取り出し、プールし、Ｔｒｉｓ／Ｓａｌ／ＡＺ中にＣｓＣｌを含む溶液（２．８８５ｇ＋１０ｍｌ）で５ｍｌとし、最終密度を１．２ｇ／ｃｍ3とした。材料を１本の５ｍｌチューブを用いて前記と同じ条件下で超遠心すると、第２の等密度バンドが形成された。最終ＨＢｓＡｇバンドを取り出し、ＰＢＳ中で透析してＣｓＣｌを除去した。
３：動物の免疫化
等容量のＴｉｔｅｍａｘアジュバント（Ｖａｘｃｅｌ，Ｉｎｃ）中に混合した精製ＮＰ  ＨＢｓＡｇ（５０μｌ）を、雌Ｂａｌｂ／Ｃマウスに皮下注射した。約２ヶ月後、３０μｌ用量を腹腔内（ｉ．ｐ．）投与し、３ヶ月後７５μｌ用量をｉ．ｐ．投与した。最後に、融合の３日前にサリン中２５μｌのＨＢｓＡｇを静脈投与した。
マウスにＭＡＭ  ＨＢｓＡｇを用いて免疫化するときに同じプロトコルを用いた。
４：ミエローマ細胞の培養
Ｐ３−Ｘ６３−Ａｇ８６５３（Ｋｅａｒｎｅｙら、１９７９）由来のＪＫ細胞を、３７℃、空気中５％ＣＯ2の雰囲気、１００％湿度で完全培地（試薬参照）において培養した。
細胞を１週間に約３回１：２にスプリットし、２×１０5〜２×１０6細胞／ｍｌの濃度で維持した。指数的成長相にある細胞のみを脾細胞への融合のために使用した。
融合のために、ミエローマ細胞を１，５００ｇで１０分間スピンし、同容量の不完全培地（試薬参照）で３回洗浄した。再懸濁させたＪＫ細胞を不完全培地中に１：１０希釈し、細胞の生存能力及び濃度をＮｅｕｂａｕｅｒチャンバーにて細胞を計数することにより測定した。ＪＫ細胞の濃度は約５．８７×１０7細胞／ｍｌであることが判明した。
４．１：支持細胞の作製
マウス腹腔滲出細胞をハイブリッド細胞に対する支持細胞層として使用した。これらの細胞を融合を行う前の日に作製した。ヒポキサンチン、アミノプテリン及びチミジンを含有する低温完全培地（ＨＡＴ培地、試薬参照）を、支持細胞の作製のために使用した。培地５ｍｌを殺したばかりのＢａｌｂ／ｃマウスの腹腔に注入し、緩やかに撹拌した後、滲出細胞を含有する培地に無菌的に取り出した。細胞１００μｌを、無菌の９６ウェルプレートの各ウェルに加えた（融合される脾臓につき４〜５枚のプレートが必要であった）。融合日に、プレートが細菌もしくは真菌で目に見える程度汚染されていないことを確認するために全てのプレートを試験した。
４．２：脾臓細胞の作製
ＭＡＭ  ＨＢｓＡｇで免疫化されたマウス及びＮＰ  ＨＢｓＡｇで免疫化されたマウス由来の脾臓細胞を同様にして作製した。
脾臓を殺したばかりのマウスから注意深く取り出し、低温完全培地５ｍｌを含むペトリ皿に入れた。脾臓を小刀の尖っていない面を用いて注意深くばらばらにすることにより、脾臓結合組織から細胞をそぎ離した。次いで、細胞懸濁液を無菌の万能容器に移し、破片を底に沈降せしめた。上清を注意深く取り出し、細胞を１５０ｇで１０分間ペレット化した。細胞を不完全培地１０ｍｌで３回洗浄し、最終細胞ペレットを不完全培地１０ｍｌに再懸濁させた。脾臓細胞の収量及び生存能力をＮｅｕｂａｕｅｒチャンバーを用いて測定した。ＮＰ脾臓からは約７×１０7個の細胞が収集され、一方第１のＭＡＭ脾臓からは１０×１０7個の細胞、第２のＭＡＭ脾臓からは２．５×１０7個の細胞が収集された。
４．３：細胞融合
脾細胞をミエローマ細胞と４：１の比率で混合し、混合物を１５００ｇで１０分間遠心した。上清を取り出すと、容器の底に細胞のドライペレットが残った。容器を３７℃の湯浴に入れた。予めオートクレーブ滅菌したポリエチレングリコール１５４０（ＰＥＧ）も３７℃の湯浴で加温した。細胞ペレットは容器の底でほぐれ、容器を緩やかに撹拌しながらＰＥＧ溶液１ｍｌを滴下した。細胞／ＰＥＧ混合物を３７℃で１分間放置した後、加温した不完全培地２ｍｌを添加した。更に、不完全培地２５ｍｌが添加されるまで不完全培地を１分ごとに容量が２倍になるようにゆっくり添加した。次いで、融合細胞を１５００ｇで１０分間遠心し、ペレットをＨＡＴ培地１０ｍｌに再懸濁させた。細胞懸濁液を５枚の支持細胞プレート上に均等に分配し、次いでＣＯ2インキュベーターに入れた。
４．４：ハイブリッド細胞の培養
約１週間後に増殖融合細胞のクラスターが現れた。この段階で、古い培地１００μｌを新鮮なＨＡＴ培地で交換することにより細胞を再供給した。融合から約１４日後、融合に成功した細胞クラスターが認められた各ウェルから上清液１００μｌを取り出し、抗−ＨＢｓの存在についてアッセイした。上清をヒポキサンチン及びチミジンを含む完全培地（ＨＴ培地、試薬参照）で置換した。
４．５：抗−ＨＢｓ分泌型ハイブリドーマを検出するための逆捕獲ＲＩＡ
生存ハイブリドーマ培養物からの上清を逆捕獲アッセイに基づいて抗−ＨＢｓについて試験した。
丸底Ｎｕｎｃミクロウェルを、家兎抗−マウスＩｇＧのＩｇＧ分画のＴｒｉｓ緩衝液中１：１０００希釈物１００μｌでコートした。室温で２日後、ウェルをツイーンサリンで洗浄し、トリス緩衝液中０．５％ウシ血清アルブミン（Ｔｒｉｓ  ＢＳＡ緩衝液、試薬参照）を用いて１時間クエンチした。次いで、ウェルをシールし、湿気を含んだ４℃で保存した。洗浄はすべてツイーンサリンで行った。
アッセイを行う前に、Ｔｒｉｓ  ＢＳＡ緩衝液を除去した。融合に成功した細胞クラスターが認められた各ウェルからの上清のリン酸緩衝液中１：１０希釈物１００μｌをアッセイウェルに加え、３７℃で１時間インキュベートした。洗浄後、精製125Ｉ−野生型ＨＢｓＡｇ１００μｌを添加し、湿ったボックス中に室温で一晩放置した。次いで、アッセイウェルを洗浄し、結合放射能を１６チャンネルガンマカウンターを用いて測定した。抗−ＨＢｓを含む上清は、標識の高い結合を示した。次いで、ハイブリドーマを、125Ｉ−野生型ＨＢｓＡｇの代わりに125Ｉ−ＭＡＭ標識及び125Ｉ−標識を用いて同じアッセイで再試験した。実施した各アッセイにはポジティブコントロール及びネガティブコントロールを含めた。使用したポジティブコントロールは野生型ＨＢｓＡｇに対するモノクローナルＤ２Ｈ５及びＨ３Ｆ５であった。抗−ＨＩＶ  ｇａｇモノクローナル抗体３Ｄ３Ｆ２及びリン酸緩衝食塩液をネガティブコントロールとして使用した。
アッセイの結果から、抗−ＨＢｓを分泌するコロニーを含有する親ウェルを更なるスクリーニング及びクローニングのために選択した。
細胞が十分増殖したら、細胞をガラスパスツールピペットを用いて吸引し、ＨＴ培地中にマウス腹腔滲出細胞（ＰＥＣ）の層を含む２４ウェル無菌プレートに無菌的に移した。
４．６：限界希釈法によるクローニング
抗−ＨＢｓ陽性と同定されたハイブリドーマを限界希釈法によりクローニングした。これは、分泌された抗体が均質であり単一特異性であることを確認するために実施する。各ハイブリッド培養物について、１００個の細胞を含有する細胞懸濁液の容量を計算し、この容量を完全培地１０ｍｌに添加した。この細胞懸濁液１００μｌを、完全培地中に支持細胞を含む９６ウェルプレートの４８ウェルの各ウェルに添加した。１００個以上の細胞を完全培地の残り５ｍｌに添加し、このより濃厚な細胞懸濁液１００μｌをプレートの２４ウェルに添加した。最後に、更に１００個の細胞を残りの細胞懸濁液に添加し、これを最後の２４ウェルに分配した。幾つかの培養物の不正確な細胞数及び低生存能力を考慮して、各プレートに対して細胞濃度に変化を付けた。選択した親ハイブリドーマのそれぞれについてこの手順を繰り返した。
クローニングから約５日後、単一コロニーのみが生存しているウェルについてプレートを調べた。これらのウェルから上清１００μｌを取り出し、上記した逆捕獲アッセイを用いて抗−ＨＢｓについて再試験した。
次いで、抗−ＨＢｓを分泌するクローンを上記したように増殖させ、必要により組織培養上清１００μｌを除去し、新鮮な完全培地で置換することにより再供給した。
４．７：ハイブリッドクローンの培養
コロニーがウェルを十分に覆うほど大きくなったら、コロニーを支持細胞を含む１２ｃｍ2組織培養フラスコで増殖させ、さらに２５ｃｍ2フラスコ及び７５ｃｍ2フラスコで増殖させた。細胞をほぼ２〜３日毎に新鮮な完全培地で１：２にスプリットした。
良好な増殖が確立されたら、数個の細胞を凍結し、１０％ジメチルスルホキシド及び５０％ウシ胎仔血清を補充した不完全培地において液体窒素下で保存した。
４．８：腹水の作製
１２〜２０週令の雌Ｂａｌｂ／ｃマウスをプリスタン０．５ｍｌでプライムした。プライムから１〜４週間後、不完全培地に再懸濁させたクローン化ハイブリドーマ細胞１ｍｌを腹腔内注射した。それから１〜３週間後腹水を吸引し、３０００ｇで１０分間遠心することにより細胞から腹水を分離した。その後腹水を−２０℃で保存した。
II．野生型及び突然変異型ＨＢｓＡｇに対するモノクローナル抗体のキャラクタリゼーション
１：モノクローナル抗体のイソタイピング
モノクローナル抗体のイソタイピングを、組織培養上清中のモノクローナル抗体のクラス及びサブクラスを同定すべく特別に設計されたＳｅｒｏｔｅｃ（Ｓｅｒｏｔｅｃｈ  Ｌｉｍａｉｔｅｄ，２２  Ｂａｎｋｓｉｄｅ  Ｓｔａｔｉｏｎ  Ａｐｐｒｏａｃｈ,Ｋｉｄｌｉｎｇｔｏｎ,Ｏｘｆｏｒｄｓ  ＯＸ５  １ＢＲ）のキットを用いて実施した。製造業者の推奨に従って使用すると、マウスモノクローナル抗体の特性が容易に決定づけられる。
２：血清タンパク質電気泳動
血清タンパク質電気泳動（ＳＰＥ，Ｐａｒａｇｏｎ電気泳動システム，Ｂｅｃｋｍａｎ  Ｌｔｄ．）によりモノクローナルタンパク質バンドの存在について各クローンからの腹水を調べた。提供されているプロトコルに従って、キットによって前記腹水が高レベルでモノクローナル免疫グロブリンを含むことが簡便に同定された。
Ｐａｒａｇｏｎ血清タンパク質電気泳動キットは、緩衝アガロースゲルにてタンパク質を電気泳動により分離するものである。電気泳動後、ゲル中のタンパク質を固定液で固定し、ゲルをフィルムになるまで乾燥した。タンパク質パターンを、フィルムをタンパク質特異的染色剤で染色して可視化し、パターンを目視で分析した。
３：免疫グロブリンＧ調製
免疫グロブリンＧを各種腹水からイオン交換クロマトグラフィーにより調製した。
予め膨潤状態で供給されるＤＥ５２ゲル（Ｗｈａｍａｎ  Ｌｔｄ）を０．２Ｍリン酸緩衝液（ｐＨ８．０）に再懸濁させた。その後、ゲルを蒸留水に分散させて１０ｍＭ緩衝液濃度とした。
ＤＥ５２ゲルを、ゲル対サンプルの容量比が５：１となるようにＫ９カラム（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）に充填した。全てのカラムを等容量の１０ｍＭリン酸緩衝液（ＰＢ、試薬参照）で平衡化した。１０ｍＭ  ＰＢを用いて４℃で一晩透析させた後、サンプルをカラムの上部に重層し、３０分間にわたり吸収させた。
腹水からの免疫グロブリンＧを、１０ｍＭ、３０ｍＭ及び６０ｍＭ  ＰＢを用いて段階溶出させて回収した。各緩衝液をカラムに流し、溶離液の光学密度を２８０ｎｍでモニターし、記録した（紫外線分光光度計，ＬＫＢ  Ｌｔｄ．）。３種の溶離液を別個に集め、逆捕獲ＲＩＡを用いて抗−ＨＢｓ活性についてアッセイした。大量の抗−ＨＢｓ反応性を含む溶離液を同定できた。
腹水ＩｇＧのタンパク質濃度を、分光光度計にて１．４のＥ１％  １ｃｍ値を用いて２８０ｎｍの吸光度を測定することにより計算した。
４：免疫グロブリンＡ調製
ＩｇＧと同様に、ＩｇＡをイオン交換クロマトグラフィーを用いて調製した。しかしながら、分離にはＳｅｐｈａｃｒｙゲルを用いた。ＤＥ５２と同様に、ゲルを１０ｍＭリン酸緩衝液で平衡化した。サンプルをカラムの上部に重層し、３０分間にわたり吸収させた。前記したように、腹水を段階溶出により分離した。溶離液をモニターし、抗−ＨＢｓ反応性について試験した。
５：放射性標識方法
免疫グロブリン分画をヨードゲン法（Ｓａｌａｃｉｎｓｋｉら、１９７９）により標識した。
清潔な７．５×１０ｃｍガラス管をまずクロロホルム５μｇでコートした。ヨードゲン管に、ＰＢＳ中タンパク質１５μｇを添加した。最後にＮａ125Ｉ（０．５ｍｉＣｉ，Ａｍｅｒｓｈａｍ  Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ  Ｐｌｃ）を添加し、管中での反応を氷上で１０分間進行させた。ヨードゲンはＮａ125Ｉに対する穏和な酸化剤として作用し、タンパク質上のチロシン残基に結合する。
次いで、Ｋ９カラムにＳｅｐｈａｄｅｘ  Ｇ−２５を充填し、Ｔｒｉｓ  ＢＳＡ緩衝液で平衡化した。ＰＢＳ中の非放射性ヨウ素（ＫＩ／ＮａＩ）は遊離125Ｉがカラムに粘着する傾向を減ずるので、ＫＩ／ＮａＩをＧ２５カラムに添加した。次いで、反応混合物をヨードゲン管から取り出し、カラムに移した。このＢＳＡ緩衝液を溶出のために使用し、溶離液をモニターした。第１のピークから125Ｉ標識タンパク質分画を集め、ピークが先細りし始めたら中止した。その後、標識タンパク質を５％  ＢＳＡ含有トリス食塩緩衝液中で４℃で保存した。
遊離125Ｉが完全に溶出されるまで（第２ピーク）溶出を続けた。このピークの高さと第１ピークの高さとの比較から結合125Ｉのパーセンテージを概算した。
III．結果
１：患者
ＭＡＭ患者及びＮＰ患者からの血清を、ＨＢｓＡｇに対する一連のアッセイで試験した。モノクローナル抗体及びポリクローナル抗体を用いる方法を比較した結果を下表１に示す。
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配列決定の結果から、両患者の“ａ”抗原決定基中に幾つかの点突然変異があることが判った。突然変異は、患者ＮＰ由来の増幅されたＨＢＶ  ＤＮＡ（サブタイプａｙｗ）において、表面抗原のアミノ酸１３３、１３４及び１４４をコードするコドンで認められた。突然変異は、患者ＭＡＭ由来の増幅されたＨＢＶ  ＤＮＡ（サブタイプａｙｗ）においてアミノ酸１３３、１３４、１４２、１４４及び１４５をコードするコドンでも認められた。上記した突然変異は、移植前も移植後でも検出された。ＨＢｓＡｇがモノクローナル及びポリクローナルの両抗体を使用するアッセイで検出可能なときに比べて、ＨＢｓＡｇがポリクローナル抗体を用いるアッセイのみで検出可能な間には、配列に違いはなかった。突然変異を表２に示す。
ＭＡＭ  ＨＢｓＡｇは突然変異型ＨＢｓＡｇ  Ｉであり、ＮＰ  ＨＢｓＡｇは突然変異型ＨＢｓＡｇ  IIである。ＨＢｓＡｇの完全アミノ酸配列及びＨＢｓＡｇをコードするヌクレオチド配列はＶａｌｅｎｚｕｅｌａら（１９７９）に記載されている。
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２：抗−ＨＢｓ分泌型モノクローナル抗体の同定及び分布
抗−ＨＢｓを分泌するハイブリドーマは最初逆捕獲アッセイを用いて同定された（セクションII，４．５参照）。融合から約１週間後、増殖細胞のクラスターを含むウェルすべてについて抗−ＨＢｓ活性を試験した。実施したアッセイにはすべてネガティブコントロール及びポジティブコントロールを含めた。
ＭＡＭ融合から生じた細胞をまず125Ｉ  ＭＡＭ  ＨＢｓＡｇを用いてＲＩＡで試験し、ＮＰ融合から生じた細胞を125Ｉ  ＮＰ  ＨＢｓＡｇを用いて試験した。アッセイの結果は、クローンがそれぞれの表面抗原に対する抗体を産生することを示した。７５０ｃｐｍを越えるカウントを与えるハイブリドーマをポジティブと見做した。試験した３２０個のＭＡＭクローンのうち１０％がポジティブであり、試験した２００個のＮＰクローンのうち８％がポジティブであることが判明した。
野生型（ＷＴ）ＨＢｓＡｇに対する反応性を調べるために、前アッセイでポジティブを示したかに関わらず、ＮＰ融合及びＭＡＭ融合由来のクローンを125Ｉ  ＷＴ  ＨＢｓＡｇ標識を用いて逆捕獲ＲＩＡで試験した。上記したように、標識の結合が増加したら結果はポジティブとする。６５０ｃｐｍを越えるカウントを与えるハイブリドーマはポジティブと見做された。試験した３２０個のＭＡＭクローンのうち６％がポジティブな結果を示し、ＮＰクローンのうち４％が125Ｉ  ＷＴ  ＨＢｓＡｇに結合することが判明した。
これまでに得られた結果から、ＭＡＭ、ＮＰまたはＷＴ  Ｂ型肝炎表面抗原を特異的に認識し、よって該抗原に結合する抗−ＨＢｓを分泌するクローンを同定することが可能であった。
上記したハイブリドーマ間に交差反応性があるかを調べるために、ＮＰクローンは125Ｉ  ＭＡＭ  ＨＢｓＡｇを用いて、ＭＡＭクローンは125Ｉ  ＮＰ  ＨＢｓＡｇを用いて試験した。ＭＡＭクローンのうち４個がＮＰ標識を認識し、ＮＰクローンのうち５個がＭＡＭ標識により認識されることが判った。
そこで、クローンをすべての標識の組合せを用いて試験した。こうして、125Ｉ  ＭＡＭ、125Ｉ  ＮＰまたは125Ｉ  ＷＴ  ＨＢｓＡｇを用いて常にポジティブな結果を与えるハイブリドーマを同定することが可能であった。モノクローナル抗体は以下のカテゴリーに分類され得る。すなわち、１）ＭＡＭ特異的；２）ＮＰ特異的；３）ＭＡＭ／ＮＰ特異的；４）ＭＡＭ／ＷＴ特異的；５）ＮＰ／ＷＴ特異的；６）ＮＰ／ＷＴ／ＭＡＭ特異的。
上記したカテゴリーのひとつに属する８個のＮＰ親ハイブリドーマ及び１０個のＭＡＭ親ハイブリドーマを選択した。これらのハイブリドーマは、良好な細胞増殖を示し、また抗−ＨＢｓ活性について試験したときに繰り返しポジティブであったことから選択された。
次いで、選択された１８個のハイブリドーマを限界希釈法によりクローン化した。クローニングから約１４日後、単一のコロニーを含むウェルを３個すべての標識を用いて逆捕獲アッセイで試験した。８個のＮＰハイブリドーマのうち６個はクローン化に成功し、抗−ＨＢｓ活性は依然としてポジティブであることが判明した。
しかしながら、ＭＡＭクローンの場合、選択した１０個のハイブリドーマのうち６個のみがクローン化された。それぞれの親クローンからハイブリドーマを再クローニングする試みは、各プレートに添加する細胞の濃度を増加させたにも関わらず不成功に終わった。単一コロニーを含むうまくクローン化した６個のハイブリドーマについて抗−ＨＢｓ活性を試験した。６個のうち、Ｍ３Ｃ９及びＭ３Ａ１０の２つのハイブリドーマ（これらは３方向に交差反応する）は抗−ＨＢｓに関して依然としてポジティブであることが判明した。ＭＡＭ融合に由来するハイブリドーマは、継代させると非常に不安定であることが判明した。
増殖のために少なくとも３個のポジティブクローンを各ハイブリドーマから選択した。クローンを培養中で増殖させ、２週間後に再試験した。ＮＰクローンはすべて抗−ＨＢｓ分泌に関して依然ポジティブであった。しかしながら、ＭＡＭクローンのうちＭ３Ｃ９は非常に不安定であり、ＲＩＡでネガティブな結果を示すことが判明した。
各融合からの最終的ポジティブ分泌型ハイブリドーマを下表３に示す。表には、モノクローナル抗体特異性及び最も近い５００ｃｐｍに概算したＲＩＡ値をも示す。
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第２のＭＡＭ融合を試みた。融合は上記したように実施した。しかしながら、脾臓細胞の収量は、第１のＭＡＭ融合で記録した収量の２５％にすぎなかった。それから１週間後、増殖細胞のクラスターを含むウェルすべてについて、逆捕獲ＲＩＡを用いて抗−ＨＢｓ活性を試験した。上記したように、各アッセイにはネガティブコントロール及びポジティブコントロールを含めた。融合により生じたすべての細胞について125Ｉ  ＭＡＭ  ＨＢｓＡｇ、125Ｉ  ＮＰ  ＨＢｓＡｇ及び125Ｉ  ＷＴ  ＨＢｓＡｇの各標識を用いて試験した。
試験した６８個のクローンのうち、３個のみがポジティブな結果を示した、１個のクローンはＭＡＭ特異性であり、Ｍ４Ｈ２及びＭ４Ｆ５の他の２個のクローンはＷＴ／ＮＰ／ＭＡＭ交差反応性であることが判明した（表４）。しかし、以下により詳細に記載するように、Ｍ４Ｈ２は、第１のＭＡＭ融合に由来する幾つかのハイブリドーマと同様に不安定であることが判った。このクローンは最終的にはＭＡＭ特異性クローンとして安定化された。
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３個のハイブリドーマはすべて良好な細胞増殖を示し、限界希釈法によりクローン化された。この時点でのクローニングは成功したことが判明し、単一コロニーを含むウェルすべてについて３種の標識を用いて逆捕獲ＲＩＡで試験した。クローンは抗−ＨＢｓ活性に関して依然としてポジティブであることが判った。
増殖のために、５個のポジティブクローンを選択した。培養で更に増殖させた後、クローンをスクリーニングし、抗−ＨＢｓ産生に関して依然としてポジティブであることが判った。
ＮＰ融合及び２回のＭＡＭ融合により得られたポジティブ親ハイブリドーマの最終数、その抗体特異性及び交差反応性を表５に示す。
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更に、抗体Ｐ２Ｄ３、Ｍ４Ｆ５及びＭ３Ａ１０とＷＴ、ＮＰ及びＭＡＭ  ＨＢｓＡｇを用いて交差競合試験を行った。これらの各抗体は相互に交差競合したが、生じた他のモノクローナル抗体とは交差競合しなかった。この段階でＭ２Ｈ４は依然として３通り交差反応性であるようであった。
上記した結果は、本発明のモノクローナル抗体が別個のエピトープに結合することをも示す。
各親ハイブリドーマから１個のポジティブクローンを選択し、このクローンを予めプリスタンを投与したＢａｌｂ／ｃマウスに注入した。腹腔内接種から１〜３週間後、マウスから腹水を採取した。すべてのクローンによりマウスにおいて明らかに腹水腫瘍が生じた。各マウスから採取した腹水の量は１〜５ｍｌであった。
各種抗体のそれぞれとＷＴ、ＭＡＭ及びＮＰ  ＨＢｓＡｇを用いてより詳細な交差競合試験を行った。この試験は、上記した逆捕獲ＲＩＡプロトコルに従って、ただしミクロウェルをヤギポリクローナル抗−ＨＢｓ抗体をコートして実施した。各試験で、抗原１００μｌを加え、一晩インキュベート後、125Ｉ標識及び非標識モノクローナルを各５０μｌを加え、結合を調べた。下表６ａ、６ｂ及び６ｃには、標識抗体を横欄に、非標識抗体を縦欄にリストした。
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表６ａ、６ｂ及び６ｃに示す結果から、３方向交差反応性の抗体Ｍ４Ｆ５及びＰ２Ｄ３は共通のエピトープに結合することが確認される。
Ｍ３Ａ１０は、すでに３方向交差反応性抗体であることが判明している（表４参照）。Ｍ３Ａ１０がＩｇＡ抗体であるという事実（以下のセクションIII．４参照）から、この種の抗体（ＩｇＡ）は精製しにくいので表６ａに示す結合が乏しいという結果が説明づけられ得る。
上記したように、第２のＭＡＭ融合で産生されたハイブリドーマＭ４Ｈ２は最初３方向交差反応性であることが判明した（表４参照）。しかしながら、培養で更に増殖させると前記ハイブリドーマの125Ｉ  ＷＴ  ＨＢｓＡｇ及び125Ｉ  ＮＰ  ＨＢｓＡｇに対する結合が低くなることが判明した。ＷＴ及びＮＰ  ＨＢｓＡｇに対する抗−ＨＢｓ活性を或る期間再試験したところ、ネガティブな結果が得られた。しかしながら、Ｍ４Ｈ２は125Ｉ  ＭＡＭ  ＨＢｓＡｇを認識し、強く結合し続けた。従って、クローンの特異性は最初不安定であったが、経時的にＭＡＭ特異性抗体を分泌するハイブリドーマになったと考えられる。
125Ｉ標識抗体の各種ＨＢｓＡｇに対する結合を、固相（ミクロウェル）上にコートしたポリクローナルヤギ抗−ＨＢｓを介してＨＢｓＡｇをミクロウェルに固定化させたＲＩＡを用いて調べた。使用したＨＢｓＡｇは、上記したＷＴ、ＭＡＭ及びＮＰ  ＨＢｓＡｇ、ＳＰ  ＨＢｓＡｇ並びにＳＺ  ＨＢｓＡｇであった。血清型ａｄｗであるＳＰ  ＨＢｓＡｇでは、アミノ酸１４３のコドンが突然変異されており、ｓｅｒがｍｅｔで置換されている。血清型ａｄｒであるＳＺ  ＨＢｓＡｇでは、１４５のｇｌｙがａｒｇで置換されてなる突然変異を示す。（ＳＰ  ＨＢｓＡｇは突然変異型ＨＢｓＡｇ  IVであり、ＳＺ  ＨＢｓＡｇは突然変異体ＨＢｓＡｇ  IIIである。）予め試験してＢ型肝炎マーカーフリー（ＮＨＳ）であることが判明している正常ヒト血清のプールをコントロールとして使用した。これは本発明のイムノアッセイの例である。結果を下表７に示す。
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上記した結果は、３方向交差反応性抗体は、野生型ＨＢｓＡｇのみならず、抗体のスクリーニングに用いたものとは異なる突然変異型ＨＢｓＡｇを含めた各種突然変異体に由来するＨＢｓＡｇをも検出することを示す。これらの結果から、３方向交差反応性抗体が野生型タンパク質及び突然変異型タンパク質に共通のエピトープに結合することも確認され、ＨＢｓＡｇアッセイにおける抗体の有用性が証明された。上記した抗体を用いるとエスケープ突然変異体の存在を検出することが可能である。
３：モノクローナル抗体のイソタイピング
モノクローナル抗体のイソタイピングをＳｅｔｏｔｅｃのキットを用いて実施した。各イソタイピング試薬は、免疫グルブリンの単一クラス−サブクラスに対して特異的な精製ラットモノクローナル抗体を羊赤血球細胞に結合させたものを含んだ。結合させたラット抗体は、マウス免疫グロブリンの重鎖部分を認識した。試験系の原理は、高特異性抗体が該抗体に対する特定のイソタイプを認識し結合するときにポジティブな凝集結果が生ずる赤血球凝集に基づいていた。結合は、微量滴定プレートウェルの底に格子を形成した。試薬細胞が認識しない抗体のクラスを含む上清に該試薬細胞を入れたときにはネガティブな結果が生じた。試薬細胞はウェルの底に落ち、小さな“ボタン”が形成された。
モノクローナル抗体のイソタイプを表８に示す。
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４：腹水からの抗−ＨＢｓのＳＰＥ分析及び精製
モノクローナルタンパク質は、血清タンパク質電気泳動によりすべてのクローンの腹水中に認められた。モノクローナルタンパン質バンドの電気泳動移動度はモノクローナル腹水毎に僅かに異なったが、同一クローンから得られた腹水の各種バッチでは同一であった。クローン間の泳動距離の違いはモノクローナルタンパク質のイオン電荷が違うためであった。ＳＰＥモノクローナルバンドで見られる染色強度は、存在するモノクローナルタンパク質の量の指標を与えた。異なるクローンから得た腹水では染色強度に違いが生じた。しかしながら、ＳＰＥバンドは、ＭＡＭ特異性モノクローナル抗体のＭ４Ｂ１２では見られなかった。回収した腹水の抗−ＨＢｓ活性をＲＩＡで試験したところ、ネガティブな結果が生じた。他のすべての腹水については予測されたようにポジティブな結果が生じた。上記したように、ＭＡＭ特異性モノクローナル抗体は不安定であり、ポジティブ分泌型ハイブリドーマからネガティブハイブリドーマに変化することが明らかとなった。（その後Ｍ４Ｂ１２親ハイブリドーマを再度クローン化し、再試験する。）
腹水からの免疫グロブリンは上記したセクションIII，３及びIII，４に記載されているように作製した。免疫グロブリンＧはＤＥ５２を用いるイオン交換クロマトグラフィーにより作製し、ＩｇＡはＳｅｐｈａｃｒｙｌカラムを用いて分離した。各モノクローナル腹水につきイオン強度を１０ｍＭから３０ｍＭに上昇させ、最後に６０ｍＭ  ＰＢとすると３個の別々のタンパク質ピークが得られた。ピークの大きさはモノクローナル抗体により異なった。各ピークの溶離液を集めた。次いで、緩衝液濃度を変えて抗−ＨＢｓ  ＩｇＧ／ＩｇＡを125Ｉ  ＭＡＭ  ＨＢｓＡｇ、125Ｉ  ＮＰ  ＨＢｓＡｇ及び125Ｉ  ＷＴ  ＨＢｓＡｇを用いる逆捕獲アッセイで測定した。このアッセイにより、異なる緩衝液分画を直接比較することができた。このアッセイから、最高の抗−ＨＢｓ活性を示す分画を選択することができた。選択した分画のタンパク質濃度を測定した（表９）。各モノクローナル抗体から得たＩｇＧ／ＩｇＡの量は集めた腹水のバッチ毎に異なった。
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ＳＰＥにおけるモノクローナルバンドの染色強度は、表７に示すタンパク質濃度と強いポジティブな相関関係を示した。例えば、Ｐ４Ｃ１１はＳＰＥにおいて非常に暗く染色されたバンドを示し且つ高いタンパク質濃度を有していたが、Ｐ２Ｈ９はかすかに染色されたバンドを示し且つ低いタンパク質濃度を有していた。
総括
ＨＢｓＡｇ検出アッセイの結果から、突然変異の結果として、血清中のＨＢｓＡｇは幾つかのモノクローナル抗体を用いるシステムにより検出され得ないことが確認された。前記突然変異により、捕獲抗体または結合検出抗体の結合が生じなくなり得る。これらの結果から、ＨＢＶ感染が疑われる症例においてＨＢｓＡｇに関する初期スクリーニング試験がネガティブであるとき第２マーカーを試験することが重要であることが判る。ＮＰ及びＭＡＭは、モノクローナル抗体を用いるアッセイでＨＢｓＡｇについて試験したときには抗−ＨＢｃ単独プロフィールを示した。サンプル中のＨＢｓＡｇの存在は、ポリクローナル抗体を用いるシステムにより試験したとき明らかになった。
アミノ酸１４５での突然変異（グリシンからリシン）が患者ＭＡＭで検出された。この突然変異はワクチンエスケープ突然変異体で既に記載されている突然変異（グリシンからアルギニン）とは異なっていたが、アミノ酸置換は抗原構造に対する予期される効果が類似であるようなものであった。
患者ＮＰの場合、コドン１４５は突然変異していなかったが、患者ＭＡＭの場合のように複数の突然変異が見られた。いずれの突然変異が検出可能性の喪失に関与しているかは不明であった。興味深いことに、患者ＭＡＭではＨＢｓＡｇ検出アッセイにおけるＨＢｓＡｇ特異性の変化によってヌクレオチド配列は変化しなかった。これは、存在する野生型ウイルスの発生率が直接配列分析による検出限界である総ウイルス負荷の１５〜２５％未満であるためであった。
突然変異型Ｂ型肝炎抗原に対するモノクローナル抗体の作製は成功した。ＮＰおよび第１ＭＡＭ融合で産生されたクローン数及び生じた抗体の特異性の相対分布は良好であった。抗−ＨＢｓ分泌型ハイブリドーマを同定するために、感受性であり迅速なスクリーニングアッセイが要求された。ＩｇＧ逆捕獲ラジオイムノアッセイが選択された。このアッセイは簡単にセットされるが、非常に低いバックグラウンド及び大きな動的レンジを有し得る。標識された野生型及び突然変異型ＨＢｓＡｇのポジティブクローンによる相対結合は、明白に高く且つ一定であって、信頼できる結果が得られた。
ハイブリドーマのスクリーニングは、最初、ＭＡＭ融合に由来するＭＡＭクローンを125Ｉ  ＭＡＭ  ＨＢｓＡｇを用いて、ＮＰクローンを125Ｉ  ＮＰ  ＨＢｓＡｇを用いて実施した。このアッセイの結果は、これらのクローンはＭＡＭ  ＨＢｓＡｇまたはＮＰ  ＨＢｓＡｇを認識し、これに結合する抗−ＨＢｓを特異的に産生することを示した。次いで、２つの融合の結果として産生されたクローンすべてを125Ｉ  ＷＴ  ＨＢｓＡｇで試験した。ＷＴ  ＨＢｓＡｇのみにポジティブな反応を示す単一クローンはなかった。ＭＡＭ／ＷＴ交差反応性もＮＰ／ＷＴ交差反応性も見られなかった。
従って、ＭＡＭ  ＨＢｓＡｇまたはＮＰ  ＨＢｓＡｇを認識するクローンを同定することが可能であった。ＮＰ及びＷＴ  ＨＢｓＡｇにも結合するクローンも同定された。ハイブリドーマ間の交差反応性を試験するために、ＭＡＭ融合により産生されたクローンを125Ｉ  ＮＰ  ＨＢｓＡｇを用いて、或いはその逆で試験した。スクリーニングアッセイの結果、結果のセクションにリストしたようにクローンを分類することができた。
上記アッセイに含めたポジティブコントロールは２つの公知のＷＴ  ＨＢｓＡｇモノクローナル抗体、すなわちＨ３Ｆ５及びＤ２Ｈ５であり、ネガティブコントロールは抗−ＨＢＶ  ｇａｇモノクローナル抗体であるＰＢＳ及び３Ｄ３Ｆ２であった。125Ｉ  ＷＴ  ＨＢｓＡｇ  ＲＩＡで使用したときに予測されたように、Ｈ３Ｆ５及びＤ２Ｈ５は強いポジティブ結果を示した。しかしながら、125Ｉ  ＭＡＭ  ＨＢｓＡｇに対して試験したときＨ３Ｆ５のみがポジティブリーディングを示し、125Ｉ  ＮＰ  ＨＢｓＡｇを用いて試験したときにはネガティブであった。Ｄ２Ｈ５は125Ｉ  ＮＰ  ＨＢｓＡｇを用いたときポジティブシグナルを生じたが、125Ｉ  ＭＡＭ  ＨＢｓＡｇに対して試験したときには非常に弱かった。ＭＡＭ  ＨＢｓＡｇにおける突然変異によりＤ２Ｈ５に対するエピトープが排除され、ＮＰ  ＨＢｓＡｇにおける突然変異によりＨ３Ｆ５エピトープが排除された。
ＳＰ及びＳＺ突然変異型ＨＢｓＡｇを用いた試験で得た結果から、３方向交差反応性抗体はスクリーニング過程で使用した突然変異型ＨＢｓＡｇに加えて他の突然変異形態のＨＢｓＡｇを検出できることが判明した。このことから、抗体が野生型タンパン質及び突然変異体の間で保存されるエピトープに結合することが確認され、よってＨＢｓＡｇアッセイにおいて前記抗体を含める重要性が確認された。
ＭＡＭ融合に由来するハイブリドーマの幾つかは不安定であることが判明したが、３方向交差反応性がＭＡＭ融合及びＮＰ融合から容易に得られた。ＭＡＭ及びＮＰ形態以外の突然変異体型のＨＢｓＡｇは、上記したプロトコルに従ってモノクローナル抗体を産生及び／またはスクリーニングするために使用され得る。
注：図１ｂは図１ａをタイプ清書したものである。図１ａと図１ｂとの間に何らかの不一致がある場合には図１ａを真正図面と見做す。
試薬
完全培地
Ｈｅｐｅｓ緩衝液５ｍＭ、Ｌ−グルタミン２ｍＭ、２−メルカプトエタノール０．０５Ｍ、ウシ胎仔血清２０％ｖ／ｖ、フンジゾン２５μｇ／ｍｌ、ペニシリン１０２単位／ｍｌ及びストレプトマイシン１００μｇ／ｍｌを補充したＲＰＭＩ。
不完全培地
Ｈｅｐｅｓ緩衝液５ｍＭ及びＬ−グルタミン２ｎＭを補充したＲＰＭＡ。
ＨＡＴ培地
ヒポキサンチン５×１０-5Ｍ、アミノプテリン２×１０-3Ｍ及びチミジン８×１０-4Ｍを加えた完全培地。
ＨＴ培地
ヒポキサンチン５×１０-5Ｍ及びチミジン８×１０-4Ｍを加えた完全培地。
０．０２Ｍ  トリス緩衝液、ｐＨ７．６（Ｔｒｉｓ緩衝液）
アジ化ナトリウム１．００ｇ、トリス（ヒドロキシメチル）メチルアミン２．４２ｇ及び蒸留水９００ｍｌ。
濃ＨＣｌでｐＨを７．６に調節し、前記緩衝液で１Ｌとする。
０．０２Ｍ  Ｔｒｉｓ  ＢＳＡ緩衝液
０．０２Ｍ  トリス緩衝液（ｐＨ７．６）に０．５％  ＢＳＡを添加する。
０．２Ｍリン酸緩衝液（ＰＢ）
溶液Ａ＝０．２Ｍ  ＫＨ2ＰＯ4
溶液Ｂ＝０．２Ｍ  Ｎａ2ＨＰＯ4
溶液Ｂを２００ｍｌ取り、溶液ＡでｐＨ８．０に調節する。
１０、２０、３０及び６０ｍＭ  ＰＢ
１０ｍＭ  ＰＢの場合、０．２Ｍ  ＰＢを蒸留水で１：２０に希釈する。
３０ｍＭ  ＰＢの場合、０．２Ｍ  ＰＢを蒸留水で１：６．６に希釈する。
６０ｍＭ  ＰＢの場合、０．２Ｍ  ＰＢを蒸留水で１：３．３に希釈する。
参考文献
0004118955.tif 000013
【図１ａ】
0004118955.tif 000014
【図１ｂ】
0004118955.tif 000015