(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
発達期の幼弱なヒトを除く動物に、上皮細胞成長因子（Epidermal Growth factor ）を頸部皮下に複数回投与又は持続投与する過程より成る方法により作製したヒトを除く動物の、精神分裂病様の持続的な認知行動異常のモデルとしての使用方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、精神分裂病様の認知行動異常を示す事を特徴とする疾患モデル動物及びその作製方法に関するものである。
【０００２】
【従来の技術】
精神分裂病は、人口の０．７−１．０％の人に発症し、日本でも数十万人に及ぶ長期入院患者を生み出している極めて重大な慢性疾患である。本疾患の主な症状は、妄想、幻覚、幻聴といった陽性症状に加えて、知覚異常といった認知障害や、引きこもりや鬱症状といった陰性症状に至るまで、多様な精神的異常を伴うものである。現在のところ、その発症原因の解明はおろか、生物学的な病態の理解さえはっきりしていない。
【０００３】
精神分裂病は青年期から壮年期にかけて知覚・思考・感情・行動面に特徴的な症状で発病し、多くは慢性に経過し、社会適応にさまざまな困難を生じる精神障害である。精神症状について陽性症状（幻覚、妄想、減弱思考、緊張症状、奇異な行動など）と、陰性症状（感情の平板化、意欲低下、社会的引きこもりなど）の分類がある社会的には、本疾患の病態の特殊性から早期発見、治療、社会復帰活動、再発予防といった一貫した包括的治療体系の確立が望まれている。
【０００４】
唯一、精神分裂病の陽性症状を改善する治療薬として、神経伝達物質、ドパミンやセロトニンと拮抗する薬物が有用だとされている。多くは年余にわたるこれらの薬物の長期投与が不可欠であり、具体的にはフェノチアジン系化合物、チオキサンチン系化合物、ブチロフェノン系化合物、ベンザアミド系化合物が患者に多用されている。
【０００５】
これらの薬物の作用機序の研究にくわえて、実際、アンフェタミンを代表とする覚せい剤が、人において精神分裂病の陽性症状を誘起することから、ドパミンの作用異常により精神分裂病が発症するとの仮説が提唱されている。また、これらの事実より、アンフェタミンを慢性投与した動物を精神分裂病のモデルとして使用していることがある。同様に、ヒトにおいて幻覚誘発作用のある薬物も、動物に投与することで精神分裂病モデル動物として利用されることがある。その例として、記憶や学習の脳生理機能に関連するといわれているグルタミン酸受容体の阻害剤であるフェンサイクリジンを投与した動物が挙げられる。
【０００６】
これら従来の精神分裂病動物モデルでは、薬物の投与に依存した一過性の脳機能異常を呈するものが多く、ヒトでみられるような、慢性的な精神分裂病の病態を必ずしも再現しているとはいえなかった。また、ドパミン拮抗薬の作用も、陽性症状の改善が主たるもので、陰性症状の治療薬は極めて限られていた。その原因としては、適切な精神分裂病の動物モデルが存在しなかったことによると考えられる。
【０００７】
これまで、精神分裂病の発症機構について、実にさまざまな仮説か提唱されてきている。その中のひとつに、Ｗｉｎｂｅｒｇｅｒを主とする研究者によって提唱されている神経発達障害仮説（文献１）があるが、実際にどのような生体因子が、どのようなメカニズムで脳神経発達に異常を引き起こすのかまったく不明であった。本発明は、その仮説を科学的に具現化するモデル動物をはじめて提供するものである。
【０００８】
【発明が解決しようとする課題】
そこで本発明の目的は、精神分裂病の機構解明と治療薬の開発に使用するために、精神分裂病と極めて類似した持続的な認知行動学的異常性を示す動物モデルを提供することである。
【０００９】
【課題を解決するための手段】
前記課題を解決するために、本発明者らは上記の神経発達障害仮説に注目した。即ち、本発明者らは脳機能発達を阻害する特定のタンパク因子を投与することにより、もしくはそれらタンパク因子をコードする遺伝子を発現させることにより、精神分裂病と極めて類似した持続的な認知行動学的異常性を示す動物モデルを作製した。
以下、本発明を詳しく説明するが、これら好適形態の詳細な説明及び実施例は本発明の有効範囲を限定または制限することを何ら意味するものではない。
【００１０】
【発明の実施の形態】
本発明は発達期の幼弱動物に、脳機能発達を阻害する特定のタンパク質因子を投与することにより作製した、精神分裂病様の認知行動異常を示すモデル動物、及び当該動物を作製する方法である。前記のタンパク質因子のみならず、それらタンパク因子をコードする遺伝子を発現させることによっても、本発明の動物を作製することができる。ここで用いるタンパク因子としては、上皮細胞成長因子、腫瘍成長因子・アルファ、ヘパリン結合性上皮細胞成長因子及びアンフィレグリンが好ましい。上皮細胞成長因子により引き起こされる認知行動異常の実例を、下記の実施例において示す。腫瘍成長因子・アルファ、ヘパリン結合性上皮細胞成長因子及びアンフィレグリンの３つのタンパク質因子は同様の立体構造を有しており、全て上皮細胞成長因子受容体分子に結合し、同様の生物活性を有することが認知されている（文献５）。上記のタンパク質因子が脳機能の発達を阻害する詳細な機構はまだ明らかではないが、これらのタンパク質因子は、細胞の情報伝達経路において、ＳＴＡＴ（ｓｉｇｎａｌ  ｔｒａｎｓｄｕｃｅｒｓ  ａｎｄ  ａｃｔｉｖａｔｏｒｓ  ｏｆ  ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ）の一連の経路を活性化する事が知られているために、ＳＴＡＴの経路が本発明のモデル動物の認知行動異常に関与している可能性が考えられる。本発明において使用するタンパク質因子は、上記のタンパク質因子に限られるものではなく、神経生化学的に同等の作用を有する他のタンパク質因子も、本発明の目的に使用することができる。
【００１１】
これらのタンパク因子を投与、もしくは発現させる時期は、これらの動物の発達期である必要があり、妊娠中の胎児か、もしくは生後のできる限り早い期間であるべきである。本願明細書において発達期の幼弱動物とは、神経系統が発達途中であり、まだ完了していない時期の動物を示す。神経の発達が完了していない幼弱動物では、脳機能発達を阻害するタンパク因子の効果は顕著である。例えばネズミの場合、重量でみた脳の発達は生後の２０−３０日後にはほぼ終了するので、その期間以前のネズミを示す。本発明においては、それまでにタンパク因子の投与もしくは発現をさせておく必要がある。
【００１２】
また、本発明のモデル動物に用いる動物種として、ヒトを除く哺乳類であればいずれも本発明の手法を適用することが可能である。好ましい動物種としてはサル、チンパンジー、イヌ、ネコ、ウサギ、モルモット、ラット、マウスなどが挙げられる。これまでに多くのデータの蓄積があるラット、マウス、チンパンジーやサルは、特に好ましい動物種である。
【００１３】
これらのタンパク質因子を投与、もしくは発現させる手段としては、大きく２つの方法が考えられる。そのひとつは、これらタンパク因子を直接、動物の腹腔か皮下等に注射する方法である。タンパク質因子は消化管内で分解されやすいために、経口投与には適さない。タンパク質因子の投与量は当該タンパク質因子の種類、動物の種類や投与方法により異なるが、１日あたり通常は０．０１ｍｇ／ｋｇ〜１００ｍｇ／ｋｇ、好ましくは０．１ｍｇ／ｋｇ〜１０ｍｇ／ｋｇである。タンパク質因子として投与する方法においては、体内における当該タンパク因子が代謝分解されるために、その体内濃度がすぐ低下するので、何日間かに渡って複数回、注射する必要がある。これらのタンパク因子として、遺伝子組替え法により細菌内で大量生成されたものや、動物細胞から精製されたもの等を用いることができる。
【００１４】
もうひとつの方法は、これらのタンパク因子をコードする遺伝子を用いて、当該タンパク質因子を過剰発現させる方法である。上皮細胞成長因子、腫瘍成長因子・アルファ、ヘパリン結合性上皮細胞成長因子及びアンフィレグリンについては、それらをコードする遺伝子は既に知られており、本技術分野において汎用されている種々の方法を用いて、当該タンパク質因子を過剰発現させることができる。即ち、動物の目的とする部位、例えば脳室等に上記のタンパク因子をコードする遺伝子を注入し、当該タンパク質因子を強制的に過剰発現させることにより、本発明の認知行動異常のモデル動物を作製することができる。これら遺伝子の局所発現を実施するには、組換えウイルスベクターによる方法、ＤＮＡをリン酸カルシウムで微小な結晶として細胞に貪食させるリン酸カルシウム共沈殿法、瞬時の高電圧で細胞膜に微小な孔を開けるエレクトロポレーション法（電気穿孔法）、ＤＥＡＥデキストラン法、人工脂質膜内にＤＮＡを封じ込めて細胞膜と融合させるリポフェクション法などを用いる事ができる。また、金粒子にＤＮＡを結合して特殊な銃で組織に撃ち込む粒子銃の方法も用いられている。これらの方法は遺伝子を注入しているが、結果として当該タンパク因子の投与と同様の結果を達成させるものである。
【００１５】
また、動物の発生初期胚又は受精卵を操作して、動物の遺伝形質を転換して上記のタンパク質因子を過剰発現させることにより、本発明のモデル動物を作製することができる。その様な目的を達成する手段として、微小ガラス管で顕微鏡下で受精卵に直接ＤＮＡを注入するマイクロインジェクション法や、胎児性胚細胞（ＥＳ細胞）に目的とするＤＮＡを組み込みそのＥＳ細胞を初期胚に戻す方法が一般的に用いられている。これらの方法によると、一度、その遺伝子導入動物を作製すれば、その動物を系統維持するだけで、そのまま精神分裂病のモデル動物となりうる。
【００１６】
本発明のモデル動物は、精神分裂病や類似の病態を示す精神疾患の治療薬又は診断薬の開発に用いるツールとして、また精神分裂病や類似の病態を示す精神疾患の機構を解析するツールとして、特に有用である。既に述べた様に、精神分裂病の治療薬開発の現状は、必ずしも満足行くものではない。特に陰性症状の改善に顕著な効果を示す薬物はまだ開発されていないが、その原因として良いモデル動物が存在しない事が挙げられる。よって、本発明のモデル動物は、その様な問題を解決するのに大きな役割を果たすと思われる。また、神経発達障害仮説に基づいて作製された本発明のモデル動物は、精神分裂病の生化学的な機構を解明する目的に非常に有用であると思われる。本願明細書において、本発明の方法により作製した動物の、認知行動異常のモデルとしての使用方法とは、本発明の方法により作製した動物を、精神分裂病や類似の病態を示す精神疾患の治療薬又は診断薬の開発に用いるツールとして使用する方法及び精神分裂病の生化学的な機構を解明するツールとして使用する方法を意味する。しかしそれに限定されるものではなく、本発明の認知行動異常動物を用いる事によって可能な他の有用な用途に使用する方法もまた本発明の範囲内である。
【００１７】
本手法により作製された精神分裂病の動物モデルは、その神経発達が終了した成長後に、精神分裂病患者に見られるような認知行動異常を、持続的に呈するようになる。それは、精神分裂病が思春期又はそれ以降に多く発症する現象に対応していると考えられる。本発明のモデル動物の認知行動異常を評価する方法を、以下に述べる。尚、本願明細書中において認知行動異常が持続的であるとは、認知行動異常が一過性でなく、少なくとも十日以上の長期にわたり、認知行動異常を示すことを言う。
【００１８】
認知行動異常を評価する方法として、驚愕反応におけるプレパルスインヒビション、ラテントインヒビション、ソウシャルインタラクション、動物運動量などの行動学的測定が挙げられる。驚愕反応におけるプレパルスインヒビションとは，ヒトと動物で共通に評価が可能な驚愕反応を指標とする知覚−運動反応能力のテストである。このテストでは、精神分裂病の病態の中心を成すと考えられている注意力と脳内情報処理力の異常性が、科学的に、客観的に評価できる特徴を有する。テスト自身は、１２０デシベル程度の大きな音でびっくり驚愕反応をおこす前、３０−１５０ミリ秒に、それ自身はびっくり驚愕反応を起こし得ない弱い音刺激（プレバルス）をあらかじめ聴かせておくと、本来の大きな音でびっくり驚愕反応が減少することを測定する。このプレパルスによる減少分をプレパルスインヒビションと呼び、これは、精神分裂病患者と精神分裂病のモデル動物でプレパルスインヒビションが異常な減少を示すことが知られている（文献２）。
【００１９】
ラテントインヒビションとは、一連の学習テストにおいてのテスト事前の「慣れ」による学習阻害性を評価するもので、上に挙げたプレパルスインヒビションとテストの構図は似通っている（文献３）。例えばパブロフ型のコンデイショニング学習において、あらかじめ餌提示（ＵＳ）なしのベル（ＣＳ）に慣れていると、ベル（ＣＳ）＝餌提示（ＵＳ）の学習が阻害されるというものである。通常、精神分裂病患者やそのモデルでは、注意の配分や「慣れ」の学習が少ないため、事前提示のＣＳによる学習阻害、ラテントインヒビションがかかりにくいといわれている（文献３）。
【００２０】
ソウシャルインタラクションとは、精神分裂病患者が、ヒトとの接触をいやがり、社会から引きこもる現象を指標化できるテストである。一般に、動物では、新規の動物に初対面したときの臭い嗅ぎ行動等を測定している（文献４）。一般に分裂病患者とその動物モデルにおいて、この指標は低下することが知られている。
【００２１】
【実施例１】
上皮細胞成長因子の投与によるプレパルスインヒビションの持続的異常
動物は，ＳＤラット（日本ＳＬＣ）生後２日齢より使用した。試薬は、ヒト組替え上皮細胞成長因子（ＥＧＦ；ヒゲタ醤油）とチトクローム−Ｃ（シグマ）を生理食塩水に７０μｇ／ｍＬで溶解させた。生後２日目より１日おきに計５回（生後１０目まで）、頚部にラット体重１ｇ当たり２５μＬ（それぞれ１．７５ｍｇ／ｋｇ）皮下投与した。生後２１日より小動物驚愕反応測定装置（Ｓａｎ  Ｄｉｅｇｏ  Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔｓ）にて、驚愕反応強度およびプレパルスインヒビションを測定した。すなわち、驚愕反応を誘発する感覚刺激としては音刺激を用い、プレパルス刺激として環境騒音（バックグラウンドノイズ）レベルより５から１５デシベル高い音圧の刺激を与え、その１００ミリセコンド後に音圧が１２０デシベルのパルス刺激を与えた。１２０デシベル単独の時の驚愕反応に対する、プレパルスを組み合わせた時の反応比（％）を１００からひいた減少分を、プレパルスインヒビション（ＰＰＩ）とした。プレパルスインヒビション（ＰＰＩ）を求める計算式を、以下に示す。
【数１】
0004102875.tif 000002
【００２２】
生後３０日（Ｐ３０）、生後３３日（Ｐ３３）、生後３７日（Ｐ３７）の時点において、プレパルスインヒビション（ＰＰＩ）を計測した（図１）。図１において、図１Ａは生後３０日（Ｐ３０）におけるプレパルスインヒビション、図１Ｂは生後３３日（Ｐ３３）におけるプレパルスインヒビション、図１Ｃは生後３７日（Ｐ３７）におけるプレパルスインヒビションの結果を、それぞれ示す。Ｐ３０においては８０デシベルと８５デシベルのプレパルス強度において、コントロールのチトクローム−Ｃ投与群（Ｃｏｎｔ  Ｖ）と比べて、上皮細胞成長因子投与群（ＥＧＦ  Ｖ）では、プレパルスインヒビションの有意な低下（＊ｐ＜０．０５）を示した。Ｐ３３においても、８０デシベルと８５デシベルのプレパルス強度において、上皮細胞成長因子投与群（ＥＧＦ  Ｖ）では、プレパルスインヒビションの有意な低下（＊ｐ＜０．０５）を示した。Ｐ３７においては７５デシベル、８０デシベル、８５デシベルのいずれのプレパルス強度においても、上皮細胞成長因子投与群（ＥＧＦ  Ｖ）では、プレパルスインヒビションの有意な低下（＊ｐ＜０．０５）を示した。
プレパルスインヒビション（図２Ａ）と驚愕反応（図２Ｂ）の程度を、生後の日数により解析した結果を図２に示す。図２において、○はコントロールのチトクローム−Ｃ投与群（ｎ＝１０）における結果を示し、上向き黒三角は上皮細胞成長因子投与群（ｎ＝１０）における結果を示す。図２Ａのプレパルスインヒビションの測定は、７５デシベルのプレパルスにおいて、生後２１，２８，３０，３７，４６，５１，６０，９０日に行った。示した値は平均±ＳＥＭであり、星印は２群の有意差を示す（＊ｐ＜０．０５、＊＊ｐ＜０．０１）。図２Ｂの驚愕反応は１２０デシベルの音に対する、コントロールラットとＥＧＦラットにおける差を示す（コントロールの％）。図２の結果において、生後２８日以降に有意差が認められた。
【００２３】
【実施例２】
クロザピンによるプレパルスインヒビション異常の改善効果
ヒトでの精神分裂病の治療薬として認知されている８−Ｃｈｌｏｒｏ−１１−（４−ｍｅｔｈｙｌ−１−ｐｉｐｅｒａｚｉｎｙｌ）−５Ｈ−ｄｉｂｅｎｚｏ［ｂ，ｅ］［１，４］−ｄｉａｚｅｐｉｎｅ（クロザピン：Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ  Ｆｉｎｅ  Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ社）の本モデル動物に対する薬効を評価することで、モデルの妥当性を検討した。クロザピンは、プレパルスインヒビションの慢性的異常が、初めて見られる生後２１日目より、ヒト組替え上皮細胞成長因子投与群とコントロール群（チトクローム−Ｃ投与）に対し、２．５ｍｇ／ｋｇの用量で腹腔内投与を、毎日継続的に行った。生後３０日（Ｐ３０）、生後３３日（Ｐ３３）、生後３７日（Ｐ３７）の時点において、プレパルスインヒビション（ＰＰＩ）を計測した（図３）。生後３０日（Ｐ３０）における結果を図３Ａに、生後３３日（Ｐ３３）における結果を図３Ｂに、生後３７日（Ｐ３７）における結果を図３Ｃに、それぞれ示す。クロザピン治療を始めて９日後の生後３０日（Ｐ３０）の時点においては、まだ、上皮細胞成長因子投与群（ＥＧＦ  ＣＺＰ）ではチトクローム−Ｃ投与群（Ｃｏｎｔ  ＣＺＰ）に比べ、プレパルスインヒビションの有意な異常が認められるが（図３Ａ）、生後３３日（Ｐ３３）、生後３７日（Ｐ３７）の時点においては、上皮細胞成長因子投与群（ＥＧＦ  ＣＺＰ）ではチトクローム−Ｃ投与群（Ｃｏｎｔ  ＣＺＰ）間のプレパルスインヒビションの有意な差は、消失していた（図３Ｂ、図３Ｃ）。
【００２４】
更に、やはり精神分裂病の治療薬として用いられている４−（４−［ｐ−Ｃｈｌｏｒｏｐｈｅｎｙｌ］−４−ｈｙｄｒｏｘｙｐｉｐｅｒｉｄｉｎｏ）−４’−ｆｌｕｏｒｏｂｕｔｙｒｏｐｈｅｎｏｎｅ（ハロペリドール：Ｓｉｇｍａ−Ａｌｄｒｉｃｈ  Ｆｉｎｅ  Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ社）も加えて評価を行った。ハロペリドールは、０．３ｍｇ／ｋｇの用量で腹腔内投与を行った。図４において、ベヒクルとして生理食塩水を投与したコントロールラット群（ＣＯＮ／ＶＥＨ）、生理食塩水を投与した上皮細胞成長因子投与群（ＥＧＰ／ＶＥＨ，ｎ＝１０）、クロザピンを投与した上皮細胞成長因子投与群（ＥＧＦ／ＣＬＺ，ｎ＝１０）およびハロペリドールを投与した上皮細胞成長因子投与群（ＥＧＦ／ＨＰＤ，ｎ＝６）の４群につき検討した。生理食塩水、クロザピン、ハロペリドールの投与は一週間行った。最終投与を行って２３時間後、各々の群のラットの試験を行った。図４Ａは７５デシベルのプレパルス強度におけるプレパルスインヒビションのデータであり、星印は、ＣＯＮ／ＶＥＨの群と比較しての有意差を示す（＊ｐ＜０．０５、＊＊ｐ＜０．０１）。図４Ａより、クロザピン投与はプレパルスインヒビションの顕著な改善を示した。しかし、ハロペリドールにはそのような効果は認められなかった。図４Ｂは１２０デシベルの音に対する各群の驚愕反応の大きさ（ＣＯＮ／ＶＥＨ群に対する％）を示す。ＣＯＮ／ＶＥＨ群と比較して、上皮細胞成長因子投与群においては驚愕反応が有意に高いことが示されたが、上記の抗精神病薬は１２０デシベルにおける驚愕反応には無効であった。
【００２５】
【実施例３】
上皮細胞成長因子の投与による運動量の持続的異常
動物の運動量を生後２４日および５２日目に測定した。方法は、生後２４日目においては運動量測定装置（ニューロサイエンス）にて自動測定した。５２日目においては１７ｃｍおきに線が引かれた５１×５１×８０ｃｍの箱内における１０分間の線を横切った回数（水平運動）および立上り回数（垂直運動）を測定した。
【００２６】
生後２４日（Ｐ２４）と生後５２日（Ｐ５２）における水平運動（Ｌｉｎｅ  Ｃｒｏｓｓ）および垂直運動（Ｒｅａｒｉｎｇ）の回数の平均値（±ＳＥＭ）を図５に示す。図５Ａは生後２４日における結果（ｎ＝１５、オス８匹、メス７匹）であり、図５Ｂは生後５２日における結果（ｎ＝１０、オス５匹、メス５匹）である。図５において左側の縦軸は水平運動の回数を、右側の縦軸は垂直運動の回数である。左半分のカラムが線を横切った回数を、右半分のカラムが立上り回数を、それぞれ示す。そして、白抜きのカラムがコントロール投与群（ＣＯＮ）、黒抜きのカラムが上皮細胞成長因子投与群（ＥＧＦ）を、それぞれ示す。
【００２７】
生後２４日の時点では、上皮細胞成長因子投与群（ＥＧＦ）はチトクローム−Ｃ投与群（ＣＯＮ）と比較して、水平、垂直、両運動量において有意な差は無かった（図５Ａ）。更に成長させて、生殖能を獲得するころの生後５２日の時点になると、チトクローム−Ｃ投与群と比較して上皮細胞成長因子投与群の垂直運動の回数において有意差が認められた（図５Ｂ）。これは、ヒトの精神分裂病の発症が思春期以後に頻発することと合致する。
【００２８】
また、運動量に対する抗精神病薬の効果についても生後５２日のラットを用いて検討を行った。ベヒクルである生理食塩水を投与したコントロール群（ＣＯＮ／ＶＥＨ）、生理食塩水を投与した上皮細胞成長因子投与群（ＥＧＦ／ＶＥＨ，ｎ＝１０）、クロザピンを投与した上皮細胞成長因子投与群（ＥＧＦ／ＣＬＯＺ，ｎ＝１０）、およびハロペリドールを投与した上皮細胞成長因子投与群（ＥＧＦ／ＨＡＬ，ｎ＝６）の４群において検討を行った結果を図６に示す。各群においてオスとメスの数は同じである。生理食塩水、ハロペリドール、クロザピンの投与は３週間行い、最終投与を行ってから４８時間後に各群について試験を行った。また、星印（＊）とシャープ印（＃）はＣＯＮ／ＶＥＨの群、およびＥＧＦ／ＶＥＨの群と比較しての有意差を、それぞれ示す（＊ｐ＜０．０５、＃ｐ＜０．０５）。図６に示す様に、ハロペリドールとクロザピンの慢性投与により、ＥＧＦラット群の垂直運動は有意に減少した。一方、これらの薬剤の投与は、水平運動に対しては無効であった。
【００２９】
【実施例４】
上皮細胞成長因子の投与によるソウシャルインタラクションの異常
更に、Ｆｉｌｅらの方法により、上皮細胞成長因子を投与したラットのソウシャルインタラクションの異常につき検討を行った。５２日齢のラットを２匹用いて、２匹のラット間の臭い嗅ぎ行動を観察して臭い嗅ぎ行動を示した時間を不安感の指標とした。ソウシャルインタラクションの評価の実験においては、コントロールラット群と上皮細胞成長因子投与群ラット群の両群に回避行動を引き起こさせるような条件を採用した。具体的には、強い光がある慣れない環境において、開放された場所における臭い嗅ぎ行動を観察した。両群の動物をビデオテープで撮影し、パートナーとなった動物に対する臭い嗅ぎ行動を記録した（図７）。
【００３０】
図７において、縦軸は臭い嗅ぎ行動の時間の平均値（±ＳＥＭ）を示す。ベヒクルである生理食塩水を投与したコントロールラット群（ＣＯＮ／ＶＥＨ）、生理食塩水を投与した上皮細胞成長因子投与群（ＥＧＦ／ＶＥＨ，ｎ＝１０）、クロザピンを投与した上皮細胞成長因子投与群（ＥＧＦ／ＣＬＯＺ，ｎ＝１０）、およびハロペリドールを投与した上皮細胞成長因子投与群（ＥＧＦ／ＨＡＬ，ｎ＝６）の４群について検討を行った。ＥＧＦ処理されたラットを、クロザピンまたはハロペリドールで３週間前処理を行い、最終投与の４８時間後に各群について試験を行った。星印は、ＣＯＮ／ＶＥＨの群と比較しての有意差を示す（＊＊ｐ＜０．０１）。コントロールラットと比較して、上皮細胞成長因子投与群においては、見知らぬパートナーに対する臭い嗅ぎ行動が顕著に減少した（ＥＧＦ／ＶＥＨ）。また、上皮細胞成長因子投与群において減少した臭い嗅ぎ行動は、クロザピン投与により回復した（ＥＧＦ／ＣＬＯＺ）。一方、ハロペリドールは臭い嗅ぎ行動の回復に無効であった（ＥＧＦ／ＨＡＬ）。
【００３１】
【実施例５】
能動回避反応による学習能の検討
更に、能動回避反応により学習能について検討を行った。能動回避試験は、５１−６０日齢のラットを用いてシャトルボックス中において行った（１日あたり１０回の試行）。ここでの条件ずけ刺激（ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｉｎｇ  ｓｔｉｍｕｌｕｓ：ＣＳ）は、８０デシベルの音と室内光による５秒間の刺激である。条件ずけ刺激（ＣＳ）が作動した時に、その刺激を止めて、下記の条件ずけしていない刺激（ｕｎｃｏｎｄｉｔｉｏｎｅｄ  ｓｔｉｍｕｌｕｓ：ＵＳ）を回避するためには、試験動物はシャトルボックス装置の他方に移動しなければならない（回避行動）。ここで、条件ずけしていない刺激（ＵＳ）として、０．６ｍＡの強度の定電流を１０秒間流すという電気的ショックによる刺激を使用し、学習により試験動物が電気的ショックを回避できるか検討を行った。
【００３２】
図８に、各試行回数において回避反応を示すパーセンテージの平均値（±ＳＥＭ）を示す。図８において、○はチトクロームｃで処理されたコントロール群（ＣＯＮ：ｎ＝１０）を、上向き黒三角は上皮細胞成長因子投与群（ＥＧＦ：ｎ＝１０）を、それぞれ示す。電気的ショックを回避する能力は、両群とも訓練の間に顕著に改善され、電気的ショックを回避する能力について、両群の間で差は認められなかった。また、反応する時間またはシャトルボックスの中の両側を横切る回数に関しても、両群の間で差は認められなかった。成長した段階においてＥＧＦ処理された動物の学習能は正常であり、全ての脳機能が損なわれているという可能性は除外されると考えられる。
【００３３】
【発明の効果】
本発明により、脳機能発達を阻害する特定のタンパク質因子を投与する事により作製した、精神分裂病様の認知行動異常のモデル動物が与えられた。本発明の動物を用いることにより、精神分裂病の治療薬、診断薬を開発、評価することが可能である。
【００３４】
（参考文献）
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５．Ｍｏｒｒｉｓｏｎ  Ｒ；”Ｎｅｕｒｏｔｒｏｐｈｉｃ  Ｆａｃｔｏｒｓ”Ｌｏｕｇｈｌｉｎ  ＳＥ  ａｎｄ  Ｆａｌｌｏｎ  ＪＨ  ｅｄｓ．Ａｃａｄｅｍｉｃ  Ｐｒｅｓｓ，Ｃｈａｐｔｏｒ１１；３３９−３５７（１９９３）
【図面の簡単な説明】
【図１】図１は、コントロール投与群とＥＧＦ投与群において、プレパルスインヒビションを測定したグラフである。
【図２】図２は、出生後の日数による、プレパルスインヒビションと驚愕反応の変化を測定したグラフである。
【図３】図３は、コントロール投与群とＥＧＦ投与群における、プレパルスインヒビションに対するクロザピン投与の効果を測定したグラフである。
【図４】図４は、コントロール投与群とＥＧＦ投与群において、プレパルスインヒビションと驚愕反応に対して、クロザピン投与とハロペリドール投与が及ぼす効果を測定したグラフである。
【図５】図５は、５２日齢と２４日齢のラットおいて、上皮細胞成長因子の投与による運動量の異常を測定したグラフである。
【図６】図６は、５２日齢のラットにおいて、上皮細胞成長因子の投与による運動量の異常、及びクロザピンとハロペリドールによる運動量異常の改善効果を測定したグラフである。
【図７】図７は、上皮細胞成長因子の投与によるソウシャルインタラクションの異常を、臭い嗅ぎ行動を指標として測定したグラフである。
【図８】図８は、上皮細胞成長因子の投与がラットの学習能に及ぼす影響を、能動回避反応により測定したグラフである。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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