【誤訳訂正書】
【提出日】平成18年9月1日(2006.9.1)
【誤訳訂正１】
【訂正対象書類名】特許請求の範囲
【訂正対象項目名】全文
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【特許請求の範囲】
【請求項１】
（ａ）配列番号７に示される配列を含む核酸分子、
（ｂ）配列番号８に示されるアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする核酸分子、
（ｃ）配列番号７に示される配列に対して少なくとも９５％配列同一性を有し、植物に対して耐病性を与えるポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む核酸分子、
（ｄ）植物に対して耐病性を与える能力を保持し、かつ配列番号８の少なくとも４０個の隣接したアミノ酸を含む、配列番号８のアミノ酸配列を含むポリペプチドのフラグメントをコードする核酸分子、および
（ｅ）ストリンジェントな条件下でａ）またはｂ）の配列にハイブリダイズし、植物に対して耐病性を与えるポリペプチドをコードする核酸分子であって、該ストリンジェントな条件は、５０％ホルムアミド、１Ｍ  ＮａＣｌ、１％  ＳＤＳ中の３７℃でのハイブリダイゼーション、および０．１×ＳＳＣで６０℃〜６５℃での洗浄を含む、核酸分子、
からなる群から選択される単離された核酸分子。
【請求項２】
前記核酸分子が、植物に対してＢｌａｓｔ耐性を与えるポリペプチドをコードする、請求項１記載の核酸分子。
【請求項３】
植物細胞中での発現を駆動するプロモーターに作動可能に結合する請求項１または２記載のヌクレオチド配列を含むＤＮＡ構築物。
【請求項４】
請求項１記載の核酸分子を含むベクター。
【請求項５】
請求項３記載のＤＮＡ構築物をゲノムに安定的に組み込んだ植物細胞。
【請求項６】
請求項３記載のＤＮＡ構築物をゲノムに安定的に組み込んだ植物。
【請求項７】
植物中で耐病性を生成または増強するための方法であって、該方法は、核酸分子を含むＤＡＮ構築物で該植物を形質転換することと、該植物中で該核酸分子を発現させることとを含み、該核酸分子が
（ａ）配列番号７に示される配列を含む核酸分子、
（ｂ）配列番号８に示されるアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする核酸分子、
（ｃ）配列番号７に示される配列に対して少なくとも９５％配列同一性を有し、植物に対して耐病性を与えるポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む核酸分子、
（ｄ）植物に対して耐病性を与える能力を保持し、かつ配列番号８の少なくとも４０個の隣接したアミノ酸を含む、配列番号８のアミノ酸配列を含むポリペプチドのフラグメントをコードする核酸分子、および
（ｅ）ストリンジェントな条件下でａ）またはｂ）の配列の相補体にハイブリダイズし、植物に対して耐病性を与えるポリペプチドをコードする核酸分子であって、該ストリンジェントな条件は、５０％ホルムアミド、１Ｍ  ＮａＣｌ、１％  ＳＤＳ中の３７℃でのハイブリダイゼーション、および０．１×ＳＳＣで６０℃〜６５℃での洗浄を含む、核酸分子、
からなる群から選択される、方法。
【請求項８】
前記核酸分子が、植物に対してＢｌａｓｔ耐性を与えるポリペプチドをコードする、請求項７記載の方法。
【請求項９】
前記植物が双子葉類である、請求項７または８記載の方法。
【請求項１０】
前記植物が単子葉類である、請求項７または８記載の方法。
【請求項１１】
前記単子葉類がトウモロコシ、モロコシ、オオムギ、イネ、およびコムギからなる群から選択される、請求項１０記載の方法。
【請求項１２】
前記プロモーターが構成性プロモーターである、請求項７または８記載の方法。
【請求項１３】
前記プロモーターが誘導性プロモーターである、請求項７または８記載の方法。
【請求項１４】
植物細胞中でのコード配列の発現を駆動するプロモーターに作動可能に結合する核酸分子を含むＤＮＡ構築物で安定的に形質転換される植物であって、前記核酸分子が
（ａ）配列番号７に示される配列、またはその相補体を含む核酸分子、
（ｂ）配列番号８に示されるアミノ酸配列を含むポリペプチドをコードする核酸分子、
（ｃ）配列番号７に示される配列に対して少なくとも９５％配列同一性を有し、植物に対して耐病性を与えるポリペプチドをコードするヌクレオチド配列を含む核酸分子、
（ｄ）植物に対して耐病性を与える能力を保持し、かつ配列番号８の少なくとも４０個の隣接したアミノ酸を含む、配列番号８のアミノ酸配列を含むポリペプチドのフラグメントをコードする核酸分子、および
（ｅ）ストリンジェントな条件下でａ）またはｂ）の配列にハイブリダイズし、植物に対して耐病性を与えるポリペプチドをコードする核酸分子であって、該ストリンジェントな条件は、５０％ホルムアミド、１Ｍ  ＮａＣｌ、１％  ＳＤＳ中の３７℃でのハイブリダイゼーション、および０．１×ＳＳＣで６０℃〜６５℃での洗浄を含む、核酸分子、
からなる群から選択される、植物。
【請求項１５】
前記核酸分子が、植物に対してＢｌａｓｔ耐性を与えるポリペプチドをコードする、請求項１４記載の植物。
【請求項１６】
前記植物が双子葉類である、請求項１４または１５記載の植物。
【請求項１７】
前記植物が単子葉類である、請求項１４または１５記載の植物。
【請求項１８】
前記単子葉類がトウモロコシ、モロコシ、オオムギ、イネ、およびコムギからなる群から選択される、請求項１７記載の植物。
【請求項１９】
前記プロモーターが構成性プロモーターである、請求項１４または１５記載の植物。
【請求項２０】
前記プロモーターが誘導性プロモーターである、請求項１４または１５記載の植物。
【請求項２１】
請求項１４、１５、１６、１７または１８記載の植物のトランスジェニック種子。
【請求項２２】
Ｂｌａｓｔ菌に感受性の植物またはその一部のゲノムにおけるＰｉ２遺伝子座を検出する方法であって、該方法は、
ａ）該植物または該植物の一部に由来する配列番号１３に示されるＤＮＡフラグメントを増幅する工程であって、該ＤＮＡフラグメントは、配列番号７のゲノム配列に連結される特定の領域を増幅する、工程；および
ｂ）該Ｂｌａｓｔ菌に対する耐性を有する植物を同定する工程
を包含する、方法。
【請求項２３】
前記ＤＮＡフラグメトが、配列番号１３のヌクレオチド５４２０３〜６７３１９である、請求項２２記載の方法。
【請求項２４】
前記ＤＮＡフラグメトが、配列番号１３のヌクレオチド５４２０３〜５６２１６である、請求項２２記載の方法。
【請求項２５】
前記ＤＮＡフラグメトが、配列番号２０または配列番号２１に示される配列を含む一対のプライマーを用いて増幅される、請求項２４記載の方法。
【請求項２６】
前記ＤＮＡフラグメントが、配列番号２２または配列番号２３に示される配列を含む一対のプライマーを用いて増幅される、請求項２４記載の方法。
【請求項２７】
前記植物がイネである、請求項２２記載の方法。
【誤訳訂正２】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】０００６
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【０００６】
（発明の要旨）
病虫害に対する耐性を生成または強化するための組成物および方法を提供する。組成物は、イネからクローニングされた新規Ｐｉ２様耐病性遺伝子ホモログのヌクレオチド配列であり、それによってコードされるタンパク質もしくは部分的長さのタンパク質またはポリペプチドのアミノ酸配列である。本発明の方法は、植物細胞内のヌクレオチド・コード配列の発現を駆動することができるプロモーターに作動可能に結合したこれらの新規耐病性Ｐｉ２様遺伝子ホモログの１つによって、植物を安定的に形質転換させることに関する。新規ヌクレオチド配列の発現は、侵入植物病原菌によって植物体内に放出された相補的な植物病原体非病原性遺伝子産物と相互作用することによって、耐病性が植物に与えられる。本発明の方法は、菌類病原体、ウイルス、線虫、昆虫等を含む病虫害の抑制に用途が見いだされる。
【誤訳訂正３】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】０００９
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【０００９】
本発明は、配列番号１、３、６、７、９、および１１として、ＮＢＳ１〜ＮＢＳ６のそれぞれの核酸配列を開示する。本発明は、また配列番号２、４、６、８、１０、および１２として、ＮＢＳ１〜６のそれぞれに対応するアミノ酸配列も開示する。配列番号１３は、実施例３で得られたＰｉ２領域にある９９，０９０ｂｐの連続した配列を開示する。配列番号１４および１５は、それぞれ実施例６のｃＤＮＡ−４５およびｃＤＮＡ−２１に対応、すなわち終止コドンを過ぎてのびるＮＢＳ４の部分的にシークエンシングされた２つの３’フラグメントに対応し、ＮＢＳ４遺伝子の３’末端に隣接するＤＮＡフラグメントが含まれる。
【誤訳訂正４】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】００１０
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【００１０】
本発明は、単離または実質的に精製された核酸またはタンパク質組成物を含む。「単離（ｉｓｏｌａｔｅｄ）」または「精製（ｐｕｒｉｆｉｅｄ）」された核酸分子またはタンパク質、あるいはその生物学的活性のあるタンパク質は、その天然に生ずる環境で見いだされる核酸分子またはタンパク質と通常伴うまたは相互作用する構成要素を実質的にまたは本質的に含まない。したがって、単離または精製された核酸分子もしくはタンパク質が、組換え技術によって生産された場合、他の細胞物質、あるいは培地を実質的に含まないか、あるいは化学的に合成された他の化学物質または化学物質前駆体を実質的に含まない。好ましくは、「単離」された核酸は、その核酸が由来する生物のゲノムＤＮＡにおいてその核酸に天然に隣接する配列（すなわち、その核酸の５’および３’末端に位置した配列）を含まず、その核酸は、好ましくは、タンパク質コード配列である。例えば、種々の実施形態では、単離された核酸分子は、その核酸が由来する生物のゲノムＤＮＡにおいてその核酸に天然に隣接するヌクレオチド配列の約５ｋｂ、４ｋｂ、３ｋｂ、２ｋｂ、１ｋｂ、０．５ｋｂ、または０．１ｋｂ未満の核酸を含むことができる。細胞物質を実質的に含まないタンパク質として、約３０％、２０％、１０％、５％、または１％（乾燥重量あたり）未満の混入タンパク質を含むタンパク質の製剤が挙げられる。本発明のタンパク質またはその生物学的に活性のあるタンパク質が組換え的に生成された場合、好ましくは、培地は約３０％、２０％、１０％、５％、または１％（乾燥重量あたり）の化学的前駆体または目的とする非タンパク質化学物質を表す。
【誤訳訂正５】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】００４０
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【００４０】
これらの数学的アルゴリズムのコンピューター・インプリメンテーションを配列の比較のために用いて、配列同一性を決定することができる。そのようなインプリメンテーションとしては、限定はされないが、ＰＣ／Ｇｅｎｅプログラム中のＣＬＵＳＴＡＬ（Ｉｎｔｅｌｌｉｇｅｎｅｔｉｃｓ，  Ｍｏｕｎｔａｉｎ  Ｖｉｅｗ，  Ｃａｌｉｆｒｎｉａから入手可能）；ＡＬＩＧＮプログラム（バージョン２．０）、ならびにＷｉｓｃｏｎｓｉｎ  Ｇｅｎｅｔｉｃｓソフトウェア・パッケージ・バージョン８中のＧＡＰ、ＢＥＳＴＦＩＴ、ＢＬＡＳＴ、ＦＡＳＴＡ、およびＴＦＡＳＴＡ（Ｇｅｎｅｔｉｃｓ  Ｃｏｍｐｕｔｅｒ  Ｇｒｏｕｐ  （ＧＣＧ），  ５７５  Ｓｃｉｅｎｃｅ  Ｄｒｉｖｅ，  Ｍａｄｉｓｏｎ，  Ｗｉｓｃｏｎｓｉｎ，  ＵＳＡから入手可能）が挙げられる。これらのプログラムを使用するアラインメントを、デフォルト・パラメータを用いて実行することができる。ＣＬＵＳＴＡＬプログラムについては、Ｈｉｇｇｉｎｓ  ｅｔ  ａｌ．  （１９８８）  Ｇｅｎｅ  ７３：２３７−２４４  （１９８８）；  Ｈｉｇｇｉｎｓ  ｅｔ  ａｌ．  （１９８９）  ＣＡＢＩＯＳ  ５：１５１−１５３；  Ｃｏｒｐｅｔ  ｅｔ  ａｌ．  （１９８８）  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．  １６：１０８８１−９０；  Ｈｕａｎｇ  ｅｔ  ａｌ．  （１９９２）  ＣＡＢＩＯＳ  ８：１５５−６５；およびＰｅａｒｓｏｎ  ｅｔ  ａｌ．  （１９９４）  Ｍｅｔｈ．  Ｍｏｌ．  Ｂｉｏｌ．  ２４：３０７−３３１によって十分に記載されている。ＡＬＩＧＮプログラムは、Ｍｙｅｒｓ  ａｎｄ  Ｍｉｌｌｅｒ  （１９８８）（上掲）のアルゴリズムにもとづく。アミノ酸配列を比較する際、ＰＡＭ１２０加重値留数テーブル、１２のギャップ長さペナルティ、および４のギャップ・ペナルティをＡＬＩＧＮプログラムとともに用いることができる。Ａｌｔｓｃｈｕｌ  ｅｔ  ａｌ  （１９９０）  Ｊ．  Ｍｏｌ．  Ｂｉｏｌ．  ２１５：４０３のＢＬＡＳＴプログラムは、Ｋａｒｌｉｎ  ａｎｄ  Ａｌｔｓｃｈｕｌ  （１９９０）（上掲）のアルゴリズムにもとづく。ＢＬＡＳＴヌクレオチド検索を、ＢＬＡＳＴＮプログラム、スコア＝１００、ワード長さ＝１２で実行して、本発明のタンパク質をコードするヌクレオチド配列に相同なヌクレオチド配列を得ることができる。ＢＬＡＳＴタンパク質検索を、ＢＬＡＳＴＸプログラム、スコア＝５０、ワード長さ＝３で実行して、本発明のタンパク質またはポリペプチドに相同なアミノ酸配列を得ることができる。比較目的のためにギャップがあるアラインメントを得るためには、Ｇａｐｐｅｄ  ＢＬＡＳＴ（ＢＬＡＳＴ  ２．０中の）を、Ａｌｔｓｃｈｕｌ  ｅｔ  ａｌ．  （１９９７）  Ｎｕｃｌｅｉｃ  Ａｃｉｄｓ  Ｒｅｓ．  ２５：３３８９に記載されるように用いることができる。または、ＰＳＩ−ＢＬＡＳＴ（ＢＬＡＳＴ  ２．０中の）を用いて、分子間の隔たった関係を検出する反復検索を実行することができる。Ａｌｔｓｃｈｕｌ  ｅｔ  ａｌ．  （１９９７）（上掲）を参照せよ。ＢＬＡＳＴ、Ｇａｐｐｅｄ  ＢＬＡＳＴ、ＰＳＩ−ＢＬＡＳＴを用いる際、それぞれのプログラムのデフォルト・パラメータ（例えば、ヌクレオチド配列に対してはＢＬＡＳＴＮ、タンパク質に対してはＢＬＡＳＴＸ）���用いることができる。検査によって、アラインメントを手動で実行することも可能である。
【誤訳訂正６】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】００８５
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【００８５】
【表１】
2006507840.tif 000001
Ｐｉ９領域のゲノム配列にもとづいて、５つのプライマー対（ＲＧ６４［４３１：配列番号１７、および４３２：配列番号１８］、ＮＢＳ１［ｐｉ９−ｐ５：配列番号１９、およびｐｉ９−ｐ６：配列番号２０］、ＮＢＳ２［ｐｉ９−ｐ９：配列番号２１、およびｐｉ９−ｐｉ１０：配列番号２２］、ＮＢＳ４［ＮＢＳ６Ｆ１：配列番号２３、およびＮＢＳ４  ｐｉ９−ｐ１２：配列番号２４］、およびＮＢＳ６）（表１）を設計した。初めに、これらのプライマーを用いて、Ｃ１０１Ａ５１とＣＯ３９との間の多型をスクリーニングした。ＮＢＳ１およびＮＢＳ６プライマーは、ＣＯ３９からの特異的なバンドを増幅できず、一方で、ＮＢＳ２プライマーは、Ｃ１０１Ａ５１からの特異的なバンドを増幅できただけであった。ＮＢＳ４プライマーは、Ｃ１０１Ａ５１およびＣＯ３９両方からのバンドを増幅したが、ＰＣＲ産物は異なるサイズであった。ＲＧ６４プライマーについては、多型は、制限酵素ＨａｅＩＩＩでのＰＣＲ産物の消化後のみに２つの親間で認められた（Ｈｉｔｔａｌｍａｎｉ
ｅｔ  ａｌ．  （１９９５）  Ｔｈｅｏｒ．  Ａｐｐｌ．  Ｇｅｎｅｔ．  １００：１１２１−１１２８）。したがって、我々は、ＮＢＳ２、ＮＢＳ４、およびＲＧ６４プライマーを用いて、合計５０５個の感受性植物をスクリーニングした。１５個の組み換え体がＲＧ６４遺伝子座で見出され、これは、該マーカーとＰｉ２遺伝子との間の２．８ｃＭ距離のＲＦＬＰマッピング結果に整合している（Ｙｕ  ｅｔ  ａｌ．  （１９９１）  Ｔｈｅｏｒ．  Ａｐｐｌ．  Ｇｅｎｅｔ．  ８１：４７１−４７６）。ＲＦＬＰマーカーＲ２１３１間の別の４２６個のＦ２植物中で、８つの組み換え体を同定し、Ｐｉ２遺伝子からの２．７ｃＭの距離が示された。５０５個の感受性植物中のＰｉ２とＮＢＳ２またはＮＢＳ４マーカーとの間で見出された組み換え体はなかった。これらの結果は、Ｐｉ２がＮＢＳ２およびＮＢＳ４両方に高度に連鎖することを示す。
【誤訳訂正７】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】００９４
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【００９４】
【表３】
2006507840.tif 000002
（実施例７：より多くのマーカーを持つＰｉ２領域の精密なマッピング）
ＮＢＳ／ＬＲＲ遺伝子アラインメント中の相違がＰｉ２とＰｉ９領域との間で見出された（図４）。Ｐｉ２遺伝子マッピングのために用いた、ＮＢＳ４から設計したプライマーは、Ｐｉ２中のＮＢＳ３に一致することが確認された。Ｐｉ９由来の別のマーカーＢＡＣ３Ｒ末端もＰｉ２中の同じＮＢＳ３遺伝子に一致した。Ｐｉ２領域中には、Ｐｉ９との相違であるＮＢＳ３遺伝子の１つのみのコピーがある。ＰＣＲ法を用いて、５０５個の感受性植物中のＮＢＳ２またはＮＢＳ３とＰｉ２との間で組み換え体は見出されなかった。ハイブリダイゼーション法を用いて、１つの組み換え体が別の４２６個のＦ２植物中のＮＢＳ３とＰｉ２との間で見出された。ＮＢＳ３へのＰｉ２の方向を決定するために、ＮＢＳ１ないしＮＢＳ６領域由来の配列にもとづいて、より多くのＰＣＲプライマー対を設計した。ＢＡＣ６フォワード末端由来の配列にもとづいて設計されたプライマー対を用いて５０５個の感受性植物をスクリーニングした際、３つの組み換え体を同定した。したがって、ＢＡＣ６フォワード末端は、ＮＢＳ３に対して下流であるので、Ｐｉ２遺伝子は、ＮＢＳ３に対する上流にあるべきである。ＮＢＳ１に対して上流の領域に多型が見出されなかったという先の結果とまとめると、これらの結果は、Ｐｉ２が、Ｐｉ２領域中のＮＩＰとＮＢＳ３との間の唯一の２つの遺伝子であるＮＢＳ１またはＮＢＳ２のいずれかであるということを確立した（図２Ａ）。
【誤訳訂正８】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】００９６
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【００９６】
【表４】
2006507840.tif 000003
連続のＤＮＡプローブをハイブリダイゼーション分析のために用いて、Ｃ１０１Ａ５１の感受性突然変異系統中の欠失領域を決定した（表４）。１つの領域は、ＮＢＳ１の３′末端からＮＢＳ２のプロモーター領域へとまたがる４２３６１ｂｐないし４５３０１ｂｐ由来のフラグメントを含有する（図２Ｂ）。ＰＣＲ分析に用いた突然変異植物の同じセットをサザン分析で用いた。ＮＢＳ１フラグメントをプローブとして用いた際、全ての感受性突然変異体および耐性突然変異体は、野生型耐性植物Ｃ１０１Ａ５１と同じハイブリダイゼーション・パターンを示した。２つのハイブリダイジング・バンドのサイズは、配列の制限マップから決定されたものと同一であった。しかし、５３２２１ｂｐおよび５４０２３ｂｐ由来のＮＢＳ２遺伝子の３′領域は、全ての感受性Ｍ２植物で欠失していたが、耐性植物では欠失していなかった（図２Ｂ）。５１８９４ｂｐおよび５４０２３ｂｐ由来の別のＮＢＳ２プローブを用いて、ＮＢＳ２遺伝子領域での欠失部位を決定した（図２Ｂ）。野生型耐性植物Ｃ１０１Ａ５１および突然変異系統由来の耐性植物両方は、同じハイブリダイゼーション・パターンを示した。すなわち、配列の制限マップから決定されたものとサイズで同一のハイブリダイジング・バンドである。突然変異系統由来の感受性植物は、野生型植物Ｃ１０１Ａ５１中の２．８ｋｂのバンド外で、１．６ｋｂのより小さなバンドを示した。ＮＢＳ２遺伝子中の欠失部位が５２８９１ｂｐないし５５６７４ｂｐに局在し、これが２．８ｋｂのバンドが１．６ｋｂになることの理由であることが推定された。インバースＰＣＲを用いて、欠失領域にまたがるフラグメントもクローニングした。欠失接合部の配列から、欠失領域がＮＢＳ２遺伝子の中央で始まることが確認された。ＰＣＲ分析結果とまとめると、既知の突然変異体の欠失領域がＮＢＳ２とＢＡＣ６フォワード末端との間にあり、ＮＢＳ１が全ての感受性突然変異植物中でインタクトであったためＰｉ２候補遺伝子の１つではないことが推定された。
【誤訳訂正９】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】０１３０
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【０１３０】
【図１】図１は、Ｐｉ２遺伝子座の物理的地図を示す。ＴＡＣおよびＢＡＣクローンが棒で示されている。ＢＡＣ７０、ＴＡＣ４０、およびＴＡＣ１０クローンを、シークエンシングに用いた。対応するＢＡＣおよびＴＡＣクローン上でのプライマーＮＩＰ、ＮＢＳ２、ＮＢＳ４、およびＢＡＣ６Ｆを上記ＢＡＣ／ＴＡＣコンティグの上に示す。
【図２】図２のＡおよびＢは、Ｐｉ２遺伝子座の遺伝的地図および物理的地図を示す。Ａ．Ｐｉ２遺伝子のマッピングで使用されるマーカーをボックス内に示す。これらを、対応するゲノム配列に矢印を用いて一致させている。対応するマーカーとＰｉ２との遺伝的距離を上記マーカーの上に示す。Ｂ．Ｐｉ２領域内のＮＢＳ／ＬＲＲ遺伝子クラスター。ＮＢＳ／ＬＲＲ遺伝子クラスターに対して上流にあるＮＩＰ遺伝子を、陰影をつけた最も左側のボックスに示す。６つのＮＢＳ／ＬＲＲ遺伝子（ＮＢＳ１〜ＮＢＳ６）の命名を、ゲノム配列でのそれらの出現順によっておこなった。それぞれ、数字が付けられたＮＢＳ１〜ＮＢＳ６の６つのボックスとして示されている。これらの遺伝子の各々の転写方向を、遺伝子名の下の矢印で示す。遺伝子ＮＢＳ１〜ＮＢＳ６のエクソンを軽く陰影を付けた箱として示す。すなわち、ＮＢＳ３遺伝子の左側部分にある暗く陰影を付けたボックスは、この遺伝子のレトロポゾン・インサートを表す。
【図３】図３は、ＮＢＳ２の完全なコード配列（ＣＤＳ）をクローニングするための構成図である。
【図４】図４は、Ｐｉ９およびＰｉ２遺伝子座の両方にあるＮＢＳ／ＬＲＲ遺伝子のアラインメントを示す。ゲノム配列は、太いストリングで特定し、またＮＢＳ／ＬＲＲ遺伝子はベタ塗りの円によって特定する。Ｐｉ２とＰｉ９との間のオルソロガスな遺伝子を、両方向矢印で示す。
【図５−１】図５は、ＮＢＳ１（配列番号２）、ＮＢＳ２（配列番号４）、ＮＢＳ４（配列番号８）、ＮＢＳ６（配列番号１２）、およびクローン化いもち耐性遺伝子Ｐｉｂ（配列番号１６）の予測アミノ酸配列間のマルチプル・タンパク質アラインメントを示す。
【図５−２】図５は、ＮＢＳ１（配列番号２）、ＮＢＳ２（配列番号４）、ＮＢＳ４（配列番号８）、ＮＢＳ６（配列番号１２）、およびクローン化いもち耐性遺伝子Ｐｉｂ（配列番号１６）の予測アミノ酸配列間のマルチプル・タンパク質アラインメントを示す。
【図５−３】図５は、ＮＢＳ１（配列番号２）、ＮＢＳ２（配列番号４）、ＮＢＳ４（配列番号８）、ＮＢＳ６（配列番号１２）、およびクローン化いもち耐性遺伝子Ｐｉｂ（配列番号１６）の予測アミノ酸配列間のマルチプル・タンパク質アラインメントを示す。
【図６】図６は、ＮＢＳ２（Ｐｉ２）遺伝子内の保守的ＮＢ−ＡＲＣおよびＬＲＲドメインを示す。ＮＢ−ＡＲＣドメインはこの遺伝子内で約アミノ酸１４４から約アミノ酸４６５までに存在し、一方ＬＲＲドメインはこの遺伝子内で約アミノ酸５３４から約アミノ酸９５１に存在する。
【誤訳訂正１０】
【訂正対象書類名】明細書
【訂正対象項目名】配列表
【訂正方法】変更
【訂正の内容】
【配列表】
2006507840000001.app