(57)【要約】【課題】本発明の目的は、低精米した原料米を使用してもカプロン酸エチルを高産生できる酵母を提供することである。【解決手段】、酢酸イソアミルを高生産するサッカロマイセス・セレビシエに対して変異処理した後に、セルレニン耐性を示す株を選択することによって、精米歩合７０％という低精米した原料米を使用しても、カプロン酸エチルを高産生できる株が得られる。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
カプロン酸エチルを高産生できるサッカロマイセス・セレビシエであって、
表１に示す条件１で清酒の三段小仕込試験に供した際に、留添１５日に上槽して得られる清酒中のカプロン酸エチル濃度が４ｍｇ／Ｌ以上になり、且つ
表２に示す条件２で清酒の一段仕込試験に供した際に、ＡＴＦ１ ｍＲＮＡ量が、清酒きょうかい１８０１株号よりも１．５倍以上高い、サッカロマイセス・セレビシエ。
【表１】
2017121251.tif 000009
【表２】
2017121251.tif 000010
【請求項２】
前記条件２に示す清酒の一段小仕込試験に供した際に、菌体中のカプロン酸含量が０．０１ｍｇ／ｇ−ｄｒｙ ｃｅｌｌｓ以上になる、請求項１に記載のサッカロマイセス・セレビシエ。
【請求項３】
セルレニン耐性を示す、請求項１又は２に記載のサッカロマイセス・セレビシエ。
【請求項４】
ＦＡＳ２遺伝子の３７４８位のＧがＡに変異したホモ接合型のＦＡＳ２変異体を有する、請求項１〜３のいずれかに記載のサッカロマイセス・セレビシエ。
【請求項５】
請求項１〜４のいずれかに記載のサッカロマイセス・セレビシエを用いて発酵物を製造する工程を含む、発酵物の製造方法。
【請求項６】
前記発酵物が清酒である、請求項５に記載の発酵物の製造方法。
【請求項７】
精米歩合が４０〜９０％の米を使用する、請求項６に記載の発酵物の製造方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、カプロン酸エチルの産生能が高い酵母に関する。更に、本発明は、当該酵母を使用した発酵物、及びその製造方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
近年、食生活の水準の高まりを受けて、消費者の嗜好性の多様化や高級志向が進んでおり、清酒、焼酎、ビール、みそ、醤油、パン等の発酵飲食品の分野でも、豊かな香気を有する製品に対する要望が高まっている。このような消費者の要望に追従するために、発酵飲食品の香気を高める技術が検討されている。
【０００３】
清酒では、カプロン酸エチルが吟醸香の主成分になっており、清酒の香気を左右する重要な成分であることが知られている。そのため、豊かな吟醸香を有する清酒を製造する上で、カプロン酸エチルの含有量を高めることが重要になっている。
【０００４】
従来、カプロン酸エチルの含有量が高い清酒は、精米歩合６０％以下に高精白した原料米を使用して低温で発酵することによって製造できることが知られている。しかしながら、このように高精白した原料米を使用する場合には、コストや製造時間が増大するという問題点がある。
【０００５】
そこで、近年、カプロン酸エチルを高産生する酵母の育種が精力的に検討されている。例えば、特許文献１には、サッカロミセス属に属する酵母の同一起源由来の一倍体同士の細胞の交雑を行うことによって、カプロン酸エチル高生産株が得られることを開示している。また、特許文献２には、酒もろみ中で自然突然変異したサッカロマイセス・セレビシエ１５ＢＹ１６−９株（ＦＥＲＭ  ＡＰ−２１２３５）が、カプロン酸エチルを高産生することを開示している。しかしながら、従来、精米歩合が７０％という低精米した原料米を使用してカプロン酸エチルを高生産する酵母を育種する技術については見出されていないのが現状である。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００６】
【特許文献１】国際公開第９６／２０２７２号
【特許文献２】特開２００８−２２８５８８号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
本発明の目的は、低精白した原料米を使用してもカプロン酸エチルを高産生できる酵母を提供することである。更に、本発明の他の目的は、当該酵母を使用して、清酒を初めとする発酵物の製造方法を提供することである。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明者等は、前記課題を解決すべく鋭意検討を行ったところ、酢酸イソアミルを高生産するサッカロマイセス・セレビシエに対して変異処理した後に、セルレニン耐性を示す株を選択することによって、精米歩合７０％という低精白した原料米を使用しても、カプロン酸エチルを高産生できる株が得られることを見出した。本発明は、これらの知見に基づいて、更に検討を重ねることにより完成したものである。
【０００９】
即ち、本発明は、下記に掲げる態様の発明を提供する。
項１．  カプロン酸エチルを高産生できるサッカロマイセス・セレビシエであって、
表１に示す条件１で清酒の三段小仕込試験に供した際に、留添１５日に上槽して得られる清酒中のカプロン酸エチル濃度が４ｍｇ／Ｌ以上になる、サッカロマイセス・セレビシエ。
【表１】
2017121251.tif 000002
項２．  下記条件２に示す清酒の一段小仕込試験に供した際に、菌体中のカプロン酸含量が０．０１ｍｇ／ｇ−ｄｒｙ ｃｅｌｌｓ以上になる、項１に記載のサッカロマイセス・セレビシエ。
【表２】
2017121251.tif 000003
項３．  セルレニン耐性を示す、項１又は２に記載のサッカロマイセス・セレビシエ。
項４．  ＦＡＳ２遺伝子の３７４８位のＧがＡに変異したホモ接合型のＦＡＳ２変異体を有する、項１〜３のいずれかに記載のサッカロマイセス・セレビシエ。
項５．  ｈｅｃ２株（ＮＩＴＥ  Ｐ−０２１７９）である、項１〜４のいずれかに記載のサッカロマイセス・セレビシエ。
項６．  酢酸イソアミルの産生能が高いサッカロマイセス・セレビシエに、に対して変異処理を施した後に、セルレニン耐性株を選択する工程を含む、カプロン酸エチル高産生酵母の育種方法。
項７．  項１〜５のいずれかに記載のサッカロマイセス・セレビシエを用いて発酵物を製造する工程を含む、発酵物の製造方法。
項８．  前記発酵物が清酒である、項７に記載の発酵物の製造方法。
項９．  精米歩合が４０〜９０％の米を使用する、項８に記載の発酵物の製造方法。
項１０．  項１〜５のいずれかに記載のサッカロマイセス・セレビシエを用いて得られた清酒であって、カプロン酸エチル濃度が６ｍｇ/ｌ以上である、清酒。
項１１．  原料となる米の精米歩合が７０〜９０％である、項１０に記載の清酒。
【発明の効果】
【００１０】
本発明のカプロン酸エチル高産生酵母によれば、低精白した原料米を使用しても、カプロン酸エチルを高産生できるので、カプロン酸エチルの含有量が高く豊かな吟醸香を有する発酵物を効率的に製造することが可能になる。
【図面の簡単な説明】
【００１１】
【図１】実施例１において、オーレオバシジンＡ耐性株（ｈｉａ１〜６）を清酒の三段小仕込試験に供し、香気成分（酢酸イソアミル、イソアミルアルコール）、日本酒度（Ｂｅ'）、総酸度、及びアミノ酸度を測定した結果を示す。
【図２】実施例１において、セルレニン耐性株（ｈｅｃ１〜７）を清酒の三段小仕込試験に供し、香気成分（カプロン酸エチル、酢酸イソアミル）、日本酒度（Ｂｅ'）、総酸度、及びアミノ酸度を測定した結果を示す。
【図３】実施例３において、ｈｉａ１改変体（ＦＡＳ２遺伝子：ホモ型変異）、ｈｅｃ２株（ＦＡＳ２遺伝子：ホモ型変異）、ｈｉａ１株（ＦＡＳ２遺伝子：野生型）、及びＫ１８０１株（ＦＡＳ２遺伝子：ヘテロ型変異）を清酒の三段小仕込試験に供し、香気成分（カプロン酸エチル、酢酸イソアミル）を測定した結果を示す。
【図４】実施例３において、ｈｉａ１改変体（ＦＡＳ２遺伝子：ホモ型変異）、ｈｅｃ２株（ＦＡＳ２遺伝子：ホモ型変異）、ｈｉａ１株（ＦＡＳ２遺伝子：野生型）、及びＫ１８０１株（ＦＡＳ２遺伝子：ヘテロ型変異）を清酒の一段小仕込試験に供し、菌体内のカプロン酸量を測定した結果を示す。
【図５】実施例４において、Ｋｍ９７株、ｈｉａ１株、ｈｅｃ２株、及びＫ１８０１株におけるＦＡＳ１遺伝子及びＦＡＳ２遺伝子の発現量を測定した結果を示す。
【図６】実施例４において、Ｋｍ９７株、ｈｉａ１株、ｈｅｃ２株、及びＫ１８０１株におけるＥＥＢ１遺伝子及びＥＨＴ１遺伝子の発現量を測定した結果を示す。
【図７】実施例４において、Ｋｍ９７株、ｈｉａ１株、ｈｅｃ２株、及びＫ１８０１株におけるＡＴＦ１遺伝子、ＡＴＦ２遺伝子、及びＩＡＨ１遺伝子の発現量を測定した結果を示す。
【図８】実施例５において、Ｋｍ９７株、ｈｉａ１株、ｈｅｃ２株、及びＫ１８０１株におけるアルコールアセチルトランスフェラーゼ活性（ＡＡＴ活性）を測定した結果を示す。
【図９】実施例６において、ｈｅｃ２株を用いて、精米歩合７０％の白米を使用して純米酒の実生産試験を行った際に、醪の上清に含まれる香気成分（カプロン酸エチル、酢酸イソアミル）を経時的に測定した結果を示す。
【図１０】実施例７において、ｈｅｃ２株を使用して得られた清酒と市販の清酒（製品Ａ〜Ｈ）における香気成分（カプロン酸エチル、酢酸イソアミル）を測定した結果を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１２】
１．カプロン酸エチル高産生酵母
本発明のカプロン酸エチル高産生酵母は、カプロン酸エチルを高産生できるサッカロマイセス・セレビシエであって、後述する条件１に示す清酒の三段小仕込試験に供した際に、留添１５日に上槽して得られる清酒中のカプロン酸エチル濃度が４ｍｇ／Ｌ以上になるサッカロマイセス・セレビシエである。以下、本発明のカプロン酸エチル高産生酵母について詳述する。
【００１３】
［カプロン酸エチル高産生酵母の種類］
本発明のカプロン酸エチル高産生酵母の種類については、サッカロマイセス・セレビシエに属することを限度として特に制限されないが、例えば、清酒、ビール、焼酎、ワイン、ウイスキー、醤油、味噌等の製造に使用される醸造酵母、製パンに使用されるパン酵母等されるパン酵母等が挙げられる。これらの中でも、好ましくは醸造酵母、更に好ましくは清酒酵母が挙げられる。
【００１４】
［カプロン酸エチル高産生酵母のカプロン酸エチル産生能］
本発明のカプロン酸エチル高産生酵母は、カプロン酸エチルの産生能が高いという特徴がある。具体的には、本発明のカプロン酸エチル高産生酵母は、下記条件１に示す清酒の三段小仕込試験に供した際に得られる清酒中のカプロン酸エチル濃度が４ｍｇ／Ｌ以上にできる特性を有している。
【００１５】
【表３】
2017121251.tif 000004
【００１６】
従来の酵母では、精米歩合７０％という低精白した原料米を使用すると、カプロン酸エチルの産生量が低下する傾向を示すが、本発明のカプロン酸エチル高産生酵母では、このような低精白の原料米を使用してもカプロン酸エチルを高産生できるという特筆すべき特徴を有している。本発明のカプロン酸エチル高産生酵母の好適な例として、前記条件１に示す清酒の三段小仕込試験に供した際に得られる清酒中のカプロン酸エチル濃度が、好ましくは６〜３０ｍｇ／Ｌ、更に好ましくは９〜３０ｍｇ／Ｌにできる特性を有しているものが挙げられる。
【００１７】
［カプロン酸エチル高産生酵母の菌体内カプロン酸量］
また、本発明のカプロン酸エチル高産生酵母の好適な例として、下記条件２に示す清酒の一段小仕込試験に供した際に、菌体中のカプロン酸含量が０．０１ｍｇ／ｇ−ｄｒｙ ｃｅｌｌｓ以上、好ましくは０．０１〜０．０８ｍｇ／ｇ−ｄｒｙ ｃｅｌｌｓ、更に好ましくは０．０６〜０．０８ｍｇ／ｇ−ｄｒｙ ｃｅｌｌｓとなる特性を有しているものが挙げられる。
【表４】
2017121251.tif 000005
【００１８】
［カプロン酸エチル高産生酵母の生育特性］
また、本発明のカプロン酸エチル高産生酵母の好適な一特性として、セルレニン耐性を備えるもの、具体的には５．０μｇ／ｍｌのセルレニンを含むＳＤ培地で生育可能な特性を備えているものが挙げられる。
【００１９】
［カプロン酸エチル高産生酵母の遺伝的特徴］
本発明のカプロン酸エチル高産生酵母の一態様として、ＦＡＳ２遺伝子の３７４８位のＧがＡに変異したホモ接合型のＦＡＳ２変異体を有するものが挙げられる。ＦＡＳ２とは脂肪酸合成酵素（ＦＡＳ、ｆａｔｔｙ ａｃｉｄ ｓｙｎｔｈａｓｅ）のサブユニットの１つであり、酵母のＦＡＳ２遺伝子は配列番号１に示す塩基配列からなることが知られている。即ち、本発明のカプロン酸エチル高産生酵母の一態様では、配列番号１に示す塩基配列において３７４８位のＧがＡに変異したホモ接合型のＦＡＳ２変異遺伝子を有し、これによって配列番号２に示すアミノ酸配列（ＦＡＳ２の野生型のアミノ酸配列）における１２５０番目のグリシンがセリンに変異したＦＡＳ２を産生する。このようなＦＡＳ２遺伝子の変異体を有することによって、カプロン酸エチルの前駆体であるカプロン酸の生成量が増大し、より一層効率的にカプロン酸エチルの産生能の向上を図ることが可能になると考えられる。
【００２０】
［カプロン酸エチル高産生酵母の遺伝子発現特性］
本発明のカプロン酸エチル高産生酵母の一態様として、ＦＡＳ２遺伝子の発現量が高いことが挙げられる。具体的には、前記条件２に示す清酒の一段小仕込試験に供した際に、ＦＡＳ２ ｍＲＮＡ量が、清酒酵母きょうかい１８０１号の場合に比して、１．５倍以上、好ましくは１．５〜２．０倍、更に好ましくは１．７〜２．０倍になるものが挙げられる。
【００２１】
更に、本発明のカプロン酸エチル高産生酵母の一態様として、ＦＡＳ１遺伝子の発現量が高いことが挙げられる。ＦＡＳ１はＦＡＳのサブユニットの一つである。具体的には、前記条件２に示す清酒の一段小仕込試験に供した際に、ＦＡＳ１ ｍＲＮＡ量が、清酒酵母きょうかい１８０１号の場合に比して、１．３倍以上、好ましくは１．３〜２．０倍、更に好ましくは１．５〜２．０倍になるものが挙げられる。
【００２２】
また、本発明のカプロン酸エチル高産生酵母の一態様として、ＥＥＢ１遺伝子の発現量が高いことが挙げられる。ＥＥＢ１は、エタノールＯ−アシルトランスフェラーゼであり、菌体内でカプロイル−ＣｏＡからカプロン酸エチルを生成する反応を触媒する酵素である。具体的には、本発明のカプロン酸エチル高産生酵母の一態様として、前記条件２に示す清酒の一段小仕込試験に供した際に、ＥＥＢ１ ｍＲＮＡ量が、清酒酵母きょうかい１８０１号の場合に比して、１．８倍以上、好ましくは１．８〜２．２倍、更に好ましくは２．０〜２．２倍になるものが挙げられる。
【００２３】
また、本発明のカプロン酸エチル高産生酵母の一態様として、ＡＴＦ１遺伝子の発現量が高いことが挙げられる。ＡＴＦ１は、アルコールアセチルトランスフェラーゼであり、菌体内でアセチル−ＣｏＡとイソアミルアルコールから酢酸イソアミルを生成する反応を触媒する酵素である。具体的には、本発明のカプロン酸エチル高産生酵母の一態様として、前記条件２に示す清酒の一段小仕込試験に供した際に、ＡＴＦ１ ｍＲＮＡ量が、清酒酵母きょうかい１８０１号の場合に比して、１．５倍以上、好ましくは１．５〜２．２倍、更に好ましくは１．８〜２．２倍になるものが挙げられる。
【００２４】
［カプロン酸エチル高産生酵母の育種方法］
本発明のカプロン酸エチル高産生酵母の育種方法については、前述するカプロン酸エチル産生能を有するものを取得できることを限度として、特に制限されないが、好適な一例として、酢酸イソアミルの産生能が高い酵母（以下、酢酸イソアミル高産生酵母を表記することもある）に対して変異処理を施し、セルレニン耐性株を選択する方法が挙げられる。以下、当該育種方法について、詳述する。
【００２５】
・酢酸イソアミル高産生酵母
酢酸イソアミル高産生酵母とは、通常の酵母（清酒酵母きょうかい１８０１号等）に比して酢酸イソアミルの産生能が高い酵母である。酢酸イソアミル高産生酵母として、具体的には、下記条件３に示す清酒の三段小仕込試験に供した際に得られる上清中の酢酸イソアミル濃度が３５ｍｇ／Ｌ以上、好ましくは３５〜４５ｍｇ／Ｌ、更に好ましくは４０〜４５ｍｇ／Ｌにできる特性を有しているものが挙げられる。
【００２６】
【表５】
2017121251.tif 000006
【００２７】
酢酸イソアミル高産生酵母の好適な一態様として、産生するイソアミルアルコールに対する酢酸イソアミルの比率（重量比、Ｅ／Ａ比）が高いものが挙げられる。具体的には、酢酸イソアミル高産生酵母の好適な一態様として、前記条件３に示す清酒の三段小仕込試験に供した際に得られる上清のＥ／Ａ比が、２０以上、好ましくは２０〜３０、更に好ましくは２５〜３０になる特性を有しているものが挙げられる。
【００２８】
また、酢酸イソアミル高産生酵母の好適な一特性として、オーレオバシジンＡ耐性を備えるもの、具体的には１．０μｇ／ｍｌのオーレオバシジンＡを含むＳＤ培地で生育可能な特性を備えているものが挙げられる。
【００２９】
更に、酢酸イソアミル高産生酵母の好適な一例として、ＡＴＦ１遺伝子の発現量及びＡＴＦ１産生量が高い酵母が挙げられる。具体的には、酢酸イソアミル高産生酵母の一態様として、前記条件２に示す清酒の一段小仕込試験に供した際に、菌体内のＡＴＦ１ ｍＲＮＡ量が、清酒酵母きょうかい１８０１号の場合に比して、１．５倍以上、好ましくは１．５〜２．２倍、更に好ましくは２．０〜２．２倍になるものが挙げられる。また、酢酸イソアミル高産生酵母の他の一態様として、前記条件２に示す清酒の一段小仕込試験に供した際に、菌体内のＡＴＦ１量が、清酒酵母きょうかい１８０１号の場合に比して、２．０倍以上、好ましくは２．０〜３．０倍、更に好ましくは２．５〜３．０倍になるものが挙げられる。
【００３０】
また、酢酸イソアミル高産生酵母の好適な一例として、ＭＧＡ２遺伝子の２１１７位のＣがＡに変異したホモ接合型のＭＧＡ２変異体を有するものが挙げられる。ＭＧＡ２とはＡＴＦ１の転写活性因子であり、配列番号３に示す塩基配列からなることが知られている。ＭＧＡ２遺伝子の２１１７位のＣがＡに変異したホモ接合型のＭＧＡ２変異体では、当該変異によってストップコドンを生じ、Ｃ末端側の１／３程度が欠失した不完全なＭＧＡ２が翻訳される。ＭＧＡ２遺伝子の２１１７位のＣがＡに変異したホモ接合型のＭＧＡ２変異体を有する酵母は、ＭＧＡ２が核内に移行し易くなり、不飽和脂肪酸の影響を受け難くなってＡＴＦ１の発現が抑制されず、その結果、酢酸イソアミル高産生能を獲得できると考えられる。
【００３１】
酢酸イソアミル高産生酵母は、製造する発酵物の風味を良好にするために、必要に応じて尿素を産生しないように改変されているものであってもよい。尿素非生産株への改変は、エチルメタンスルホン酸、亜硝酸、Ｎ−メチル−Ｎ−ニトロ−Ｎ−ニトロソグアニジン、アクリジン系色素等を用いた化学処理；紫外線、放射線等の光線照射処理；自然変異などによって行うことができる。また、尿素非生産株は、通常はアルギナーゼ非資化性を示すので、アルギニンの類似化合物であるカナバニンを含むＣＡＯ培地での生育を指標に選択することができる。
【００３２】
酢酸イソアミル高産生酵母は、公知の酵母から前述する特性を備えるものを選択して使用してもよく、また通常の酵母を育種することにより得たものを使用してもよい。
【００３３】
・酢酸イソアミル高産生酵母の育種法
酢酸イソアミル高産生酵母を育種により得る方法としては、母株となる酵母に対して、変異処理を行った後に、オーレオバシジンＡ耐性株を選択する方法が挙げられる。変異処理としては、具体的には、エチルメタンスルホン酸、亜硝酸、Ｎ−メチル−Ｎ−ニトロ−Ｎ−ニトロソグアニジン、アクリジン系色素等を用いた化学処理；紫外線、放射線等の光線照射処理等が挙げられる。これらの変異処理の中でも、好ましくはエチルメタンスルホン酸を用いた化学処理が挙げられる。
【００３４】
また、前記変異処理を施した酵母からオーレオバシジンＡ耐性株を選択するには、オーレオバシジンＡを含有する培地で培養し、生育した株を単離すればよい。
【００３５】
オーレオバシジンＡを含有する培地におけるオーレオバシジンＡの濃度については、オーレオバシジンＡ非耐性株が生育できない濃度範囲で適宜設定すればよいが、例えば、０．２〜１．０μｇ/ｍｌ、好ましくは０．３〜１．０μｇ/ｍｌ、更に好ましくは０．５〜１．０μｇ/ｍｌが挙げられる。
【００３６】
また、オーレオバシジンＡを含有する培地は、寒天培地又は液体培地のいずれであってもよいが、目的の株の選択のし易さの観点から、寒天培地が好ましい。
【００３７】
オーレオバシジンＡを含有する培地を用いて培養する際の条件については、酵母の生育特性に応じて適宜設定すればよいが、例えば、培養温度が２０〜３０℃、好ましくは２５〜３０℃、更に好ましくは２８〜３０℃で、培養時間が２４〜９６時間、好ましくは２４〜７２時間、更に好ましくは２４〜４８時間が挙げられる。
【００３８】
斯くして得られたオーレオバシジンＡ耐性株には、酢酸イソアミルの産生能が高い変異株が高頻度で含まれており、オーレオバシジンＡ耐性株の中から、酢酸イソアミルの産生能が高い株を選定すればよい。酢酸イソアミルの産生能については、具体的には、前記条件３に示す清酒の三段小仕込試験に供し、上清中の酢酸イソアミル濃度を測定すればよい。
【００３９】
・酢酸イソアミル高産生酵母の変異処理
酢酸イソアミル高産生酵母に対して行われる変異処理の種類については、特に制限されないが、例えば、エチルメタンスルホン酸、亜硝酸、Ｎ−メチル−Ｎ−ニトロ−Ｎ−ニトロソグアニジン、アクリジン系色素等を用いた化学処理；紫外線、放射線等の光線照射処理等が挙げられる。これらの変異処理の中でも、好ましくはエチルメタンスルホン酸を用いた化学処理が挙げられる。
【００４０】
・変異処理を施した酢酸イソアミル高産生酵母からセルレニン耐性株の選択
変異処理を施した酢酸イソアミル高産生酵母からセルレニン耐性株を選択するには、セルレニンを含有する培地で培養し、生育した株を単離すればよい。
【００４１】
セルレニンを含有する培地におけるセルレニンの濃度については、セルレニン非耐性株が生育できない濃度範囲で適宜設定すればよいが、例えば、１〜２０μｇ/ｍｌ、好ましくは２〜１０μｇ/ｍｌ、更に好ましくは３〜１０μｇ/ｍｌが挙げられる。
【００４２】
また、セルレニンを含有する培地は、寒天培地又は液体培地のいずれであってもよいが、目的の株の選択のし易さの観点から、寒天培地が好ましい。
【００４３】
セルレニンを含有する培地を用いて培養する際の条件については、酵母の生育特性に応じて適宜設定すればよいが、例えば、培養温度が２０〜３０℃、好ましくは２５〜３０℃、更に好ましくは２８〜３０℃で、培養時間が２４〜９６時間、好ましくは２４〜７２時間、更に好ましくは２４〜４８時間が挙げられる。
【００４４】
斯くして得られたセルレニン耐性株には、カプロン酸エチルの産生能が高い変異株が高頻度で含まれており、セルレニン耐性株の中から、カプロン酸エチルの産生能が高い株を選定すればよい。カプロン酸エチルの産生能については、具体的には、前記条件１に示す清酒の三段小仕込試験に供し、上清中のカプロン酸エチル濃度を測定すればよい。また、得られたセルレニン耐性株は、必要に応じて、前述するその他の特性の有無についても確認しておいてもよい。
【００４５】
［カプロン酸エチル高産生酵母の具体例］
本発明のカプロン酸エチル高産生酵母は、前述する育種法によって得ることができるが、好適な菌株として、独立行政法人製品評価技術基盤機構 バイオテクノロジーセンター 特許微生物寄託センターにｈｅｃ２株（ＮＩＴＥ  Ｐ−０２１７９）として受託されており、当該受託菌を使用することもできる。
【００４６】
２．カプロン酸エチル高産生酵母の利用
本発明のカプロン酸エチル高産生酵母は、カプロン酸エチルの含有量が高く、豊かな香りがする発酵物の製造に使用することができる。本発明のカプロン酸エチル高産生酵母を使用した発酵物の製造は、目的の発酵物の種類に応じて、原料及び製造条件を適宜設定すればよい。
【００４７】
本発明のカプロン酸エチル高産生酵母を使用して製造される発酵物の種類については、特に制限されないが、例えば、清酒、焼酎、ビール、ワイン等の酒類；みそ、醤油、パン、食酢、パン等の発酵飲食品が挙げられる。これらの発酵物の中でも、酒類、とりわけ清酒は、カプロン酸エチルによる吟醸香が風味の向上に大きく寄与するため、好適な製造対象である。
【００４８】
また、本発明のカプロン酸エチル高産生酵母を使用して清酒を製造する場合、原料として使用する米の精米歩合については、特に制限されないが、例えば、４０〜９０％が挙げられる。また、本発明のカプロン酸エチル高産生酵母では、低精白の原料米であって、カプロン酸エチルを高産生できるという特有の性質がある。かかる本発明の効果を鑑みれば、本発明のカプロン酸エチル高産生酵母を使用して清酒を製造する場合に使用する原料米の精米歩合として、好ましくは７０〜９０％、更に好ましくは７０〜８０％、特に好ましくは７０〜７３％が挙げられる。
【００４９】
また、本発明のカプロン酸エチル高産生酵母を使用して製造される清酒の特性としては、カプロン酸エチルの含有量が高いこと、具体的には、カプロン酸エチル濃度が６ｍｇ/ｌ以上、好ましくは６〜３０ｍｇ/ｌ、更に好ましくは９〜３０ｍｇ/ｌが挙げられる。
【実施例】
【００５０】
以下、実施例を示して本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定して解釈されるものではない。なお、以下の実施例において仕込みに使用した原料米及び麹米の品種は、日本晴である。
【００５１】
香気成分の測定条件
以下の実施例において香気成分（酢酸イソアミル、カプロン酸エチル等）の測定は、ガスクロマトグラフ／水素イオン化検出器（ＧＣ／ＦＩＤ）を用いて、ヘッドスペース法により検出した。具体的には、各香気成分を規定濃度含む標準液５ｍｌに内部標準液を１ｍｌ加えて、検量線を作成した。そして、各サンプル５ｍｌに内部標準液を１ｍｌ加えて測定し、サンプル中の香気成分量を前記で得られた検量線を使用して求めた。なお、内部標準液として、ヘキサン酸メチルを用いた。また、ＧＣ／ＦＩＤによる分析条件は以下の通りである。
【００５２】
（ＧＣ／ＦＩＤによる分析条件）
ＧＣ−ＦＩＤ：ＧＣ２０１０ Ｐｌｕｓ（島津製作所）
カラム      ：ＤＢ−ＷＡＸ（６０ｍ×０．３２ｍｍ、０．５μｍ、Ａｇｉｌｅｎｔ）
昇温条件    ：４０℃、５分→５℃／分→１００℃→２０℃／分→２３０℃、５分
注入方法    ：ヘッドスペースオートサンプラー（Ｔｕｒｂｏ Ｍａｔｒｉｘ ＨＳ４０， Ｐｅｒｋｉｎ Ｅｌｅｍｅｒ）
【００５３】
実施例１：カプロン酸エチル高産生酵母の取得
１．オーレオバシジンＡ耐性株の取得
サッカロマイセス・セレビシエＫｍ９７株を用いて、オーレオバシジンＡ耐性株の取得を行った。サッカロマイセス・セレビシエＫｍ９７株は、きょうかい９号泡なし酵母に対して、変異処理を行わずに、ＣＡＯ培地において生育できるアルギナーゼ資化性を欠損した株を自然変異によって取得した尿酸非産生化株である。
【００５４】
先ず、ＹＰＤ培地を用いてＫｍ９７株を３０℃で１日振盪培養を行った後、５０ｍＭリン酸カリウムバッファー（ｐＨ８．０）で洗浄し、同バッファーに懸濁した。次いで、得られたＫｍ９７株の懸濁液にエチルメタンスルホン酸を４重量％となるように添加し、３０℃で１時間振盪することにより変異処理を行った。その後、５重量％チオ硫酸ナトリウム水溶液で中和してから、変異処理後の酵母を滅菌水に懸濁し、これを１．０μｇ／ｍｌのオーレオバシジンＡを含むＳＤ培地に塗布し、３０℃で培養し、４７５個のコロニーを単離した。
【００５５】
２．酢酸イソアミル高生産株の取得
表６に示す各原料を５５℃で４時間撹拌して液化し、これを水で１．５倍に希釈した後に、乳酸を酸度４．０となるよう添加して米糖化液を作成した。得られた米糖化液を１０ｍｌずつ試験管に分注し、前記で得られたオーレオバシジンＡ耐性株４７５株を１白金耳ずつ植菌して１５℃で１１日間培養した。次いで、培養液から遠心分離にて上清を回収し、上清に含まれる酢酸イソアミル量をＧＣ／ＦＩＤを用いてヘッドスペース法により測定した。その結果、酢酸イソアミルの産生能が高い６株（ｈｉａ１〜６）を選択した。
【００５６】
【表６】
2017121251.tif 000007
【００５７】
次いで、得られた６株（ｈｉａ１〜６）について、前記条件３に示す清酒の三段小仕込試験に供し、上槽後に遠心分離して上清を回収し、上清に含まれる香気成分（酢酸イソアミル、イソアミルアルコール）をＧＣ／ＦＩＤを用いてヘッドスペース法により測定した。また、上清におけるエタノール含量、日本酒度（Ｂｅ'）、総酸度（ＴＡ、０．１Ｎ ＮａＯＨ  ｍｌ）、及びアミノ酸度（ＡＡ、０．１Ｎ ＮａＯＨ  ｍｌ）を測定した。なお、日本酒度（Ｂｅ'）は、振動式密度比重計（DA-510）を用いて測定した。また、総酸度（ＴＡ）は、ＢＴＢ液を添加後、１０ｍｌの液量に対し赤色から緑色に変色する時のＮａＯＨの滴下量によって求めた。更に、アミノ酸度（ＡＡ）は、１０ｍｌの液量にフェノールフタレインを添加後、うすい赤色になるまでＮａＯＨを加えた後、ホルマリンを５ｍｌ添加し、無色になった液が前記うすい赤色になるまで滴下したＮａＯＨ量によって求めた。また、比較のため、Ｋｍ９７株についても、同様に前記条件３に示す清酒の三段小仕込試験に供し、同様に測定を行った。
【００５８】
得られた結果を図１に示す。図１中、Ｅ／Ａ比とは、イソアミルアルコールに対する酢酸イソアミルの比率（重量比）である。この結果、ｈｉａ１、ｈｉａ２、ｈｉａ４及びｈｉａ６の４株において、Ｅ／Ａ比が高く、高い酢酸イソアミルの産生能を有していることが確認された。これらの４株の内、香気等の官能評価が最も高かったｈｉａ１株を選択した。
【００５９】
また、ｈｉａ１株のＭＧＡ２遺伝子の塩基配列の解析を行ったところ、当該株は、ＭＧＡ２遺伝子の２１１７位のＣがＡに変異したホモ接合型のＭＧＡ２変異遺伝子を有していることが確認された。
【００６０】
３．セルレニン耐性株の取得
先ず、ＹＰＤ培地を用いてｈｉａ１株を３０℃で１日振盪培養を行った後、５０ｍＭリン酸カリウムバッファー（ｐＨ８．０）で洗浄し、同バッファーに懸濁した。次いで、得られたｈｉａ１株懸濁液にエチルメタンスルホン酸を４重量％となるように添加し、３０℃で１時間振盪することにより変異処理を行った。その後、５重量％チオ硫酸ナトリウム水溶液で中和してから、変異処理後の酵母を滅菌水に懸濁し、これを５．０μｇ／ｍｌのセルレニンを含むＳＤ培地に塗布し、３０℃で培養し、４４個のコロニーを分離した。
【００６１】
４．カプロン酸エチル高生産株の取得
前記と同様の方法で米糖化液を作成した。得られた米糖化液を１０ｍｌずつ試験管に分注し、前記で得られたセルレニン耐性株４４株を１白金ずつ植菌して１５℃で１１日間培養した。次いで、培養液から遠心分離にて上清を回耳収し、臭覚により香気の評価を行った。その結果、フルーティーな香気が高い７株（ｈｅｃ１〜７）を選択した。
【００６２】
次いで、得られた７株（ｈｅｃ１〜７）について、前記条件１に示す清酒の三段小仕込試験に供し、上槽後に遠心分離して上清を回収し、上清に含まれる香気成分（カプロン酸エチル、酢酸イソアミル）をＧＣ／ＦＩＤを用いてヘッドスペース法により測定した。また、上清におけるエタノール含量、日本酒度（Ｂｅ'）、総酸度（ＴＡ、０．１Ｎ ＮａＯＨ  ｍｌ）、及びアミノ酸度（ＡＡ、０．１Ｎ ＮａＯＨ  ｍｌ）を測定した。また、比較のため、清酒酵母きょうかい１８０１号（以下、１８０１株）についても、同様に前記条件１に示す清酒の三段小仕込試験に供し、同様に測定を行った。
【００６３】
得られた結果を図２に示す。この結果、ｈｅｃ２、ｈｅｃ３及びｈｅｃ６の３株において、高いカプロン酸エチルの産生能が認められた。これらの４株の内、香気等の官能評価が最も高かったｈｉａ１株を選択した。その中で最も官能評価の高かったｈｅｃ２株については、独立行政法人製品評価技術基盤機構 バイオテクノロジーセンター 特許微生物寄託センターにｈｅｃ２株（ＮＩＴＥ  Ｐ−０２１７９）に寄託した。
【００６４】
実施例２：カプロン酸エチル高産生酵母ｈｅｃ２株のＦＡＳ遺伝子の塩基配列の解析
次世代ＤＮＡシーケンサーを使用して、カプロン酸エチル高産生酵母ｈｅｃ２株のＦＡＳ遺伝子の塩基配列の解析を行った。
【００６５】
その結果、カプロン酸エチル高産生酵母ｈｅｃ２株は、ＦＡＳ２遺伝子の３７４８位のＧがＡに変異したホモ接合型のＦＡＳ２変異遺伝子を有していることが確認された。
【００６６】
実施例３：ＦＡＳ２以外におけるｈｅｃ２株とｈｉａ１株との表現型の異同の確認
前記実施例２において、ｈｅｃ２株は、ＦＡＳ２遺伝子の３７４８位のＧがＡに変異したホモ接合型のＦＡＳ２変異遺伝子を有していることが明らかとなった。一方、ｈｉａ１株は野生型のＦＡＳ２遺伝子を有している。そこで、ｈｅｃ２株が有するカプロン酸エチル高産生能が、当該ＦＡＳ２変異遺伝子のみに依拠しているか否かを確かめるために、以下の試験を行った。
【００６７】
以下の方法で、ｈｉａ１株にホモ接合型のＦＡＳ２変異を導入した。先ず、ｈｉａ１株を親株として、Ｇ３７４８Ａを含むＦＡＳ２遺伝子のオープンリーディングフレームの３，７３３〜３，７６２ｂｐ領域の合成ＤＮＡと相補的な合成オリゴDNAをアニーリングした後、形質転換を行い、３７４８位のＧがＡに変異したＦＡＳ２変異をヘテロに持つセルレニン耐性株を取得した。
【００６８】
次いで、得られたセルレニン耐性株を親株とし、前記と同様のオリゴＤＮＡを用いて形質転換を行った。得られた形質転換体を１０μｇ／ｍｌのセルレニンを含むＳＤ培地に塗布し、３０℃で培養することにより、ＦＡＳ２遺伝子の３７４８位のＧがＡに変異したホモ接合型のＦＡＳ２変異遺伝子を有するｈｉａ１株改変体を得た。なお、ｈｉａ１株改変体において、ＦＡＳ２遺伝子の３７４８位のＧがＡに変異したホモ接合型のＦＡＳ２変異遺伝子が存することについては、シーケンス解析により確認した。
【００６９】
次いで、得られたｈｉａ１株改変体について、前記条件１に示す清酒の三段小仕込試験に供し、上槽後に遠心分離して上清を回収し、上清に含まれる香気成分（カプロン酸エチル、酢酸イソアミル）をＧＣ／ＦＩＤを用いてヘッドスペース法により測定した。また、比較のため、ｈｅｃ２株、ｈｉａ１株（野生型）、及びＫ１８０１株についても、同様に段小仕込試験に供した。なお、Ｋ１８０１株は、ＦＡＳ２遺伝子の３７４８位のＧがＡに変異したヘテロ型のＦＡＳ２変異遺伝子を有している。
【００７０】
また、得られたｈｉａ１株改変体について、前記条件２に示す清酒の一段小仕込試験に供し、上槽後に遠心分離して上清と酵母を回収し、上清に含まれる香気成分（カプロン酸エチル、酢酸イソアミル）をＧＣ／ＦＩＤを用いてヘッドスペース法により測定し、酵母の菌体内に含まれるカプロン酸を脂肪酸メチル化・精製キット（ナカライテスク）を用いて測定した。
【００７１】
前記条件１に示す清酒の三段小仕込試験を行った結果を図３に示し、前記条件２に示す清酒の一段小仕込試験を行った結果を図４に示す。ホモ接合型のＦＡＳ２変異遺伝子を有しているｈｉａ１株改変体では、ｈｉａ１株（野生型）に比べて、カプロン酸エチルの産生能が高まっていたが、ｈｅｃ２株よりもカプロン酸エチルの産生能が低かった。また、ｈｅｃ２株における菌体内カプロン酸量は、ｈｉａ１株（野生型）、ｈｉａ１株改変体、及びＫ１８０１株に比べて有意に高い値を示していた。即ち、これらの結果から、ｈｅｃ２株は、ＦＡＳ２遺伝子の変異以外の点でも、ｈｉａ１株とは表現型が異なることが明らかとなった。
【００７２】
実施例４：ｈｅｃ２株の遺伝子発現解析
ｈｅｃ２株の遺伝子発現特性を解析するために以下の試験を行った。ｈｅｃ２株を前記条件２に示す清酒の一段小仕込試験に供し、上槽後に遠心分離して酵母を回収した。回収した酵母から、ＲＮａｓｙ  Ｍｉｎｉ  Ｋｉｔ（ＱＩＡＧＥＮ）を用いて菌体内の総ＲＮＡを抽出し、ＴＦＣ１をリファレンス遺伝子としてＲＴ−ＰＣＲによりＦＡＳ１、ＦＡＳ２、ＥＥＢ１、ＥＨＴ１、ＡＴＦ１、ＡＴＦ２、及びＩＡＨ１の遺伝子の発現量を解析した。また、比較のため、ｈｉａ１株（野生型）、Ｋｍ９７株、及びＫ１８０１株についても、同様に遺伝子発現の解析を行った。
【００７３】
得られた結果を図５〜７に示す。この結果から、ｈｅｃ２株は、ＦＡＳ１、ＦＡＳ２、ＥＥＢ１、及びＡＴＦ１の各遺伝子の発現量が向上していることが明らかとなった。とりわけ、ｈｅｃ２株は、カプロン酸エチルの生成に大きく寄与しているＥＥＢ１遺伝子の発現量がｈｉａ１株に比して格段に高く、ｈｉａ１株には認められない特性を備えていることが確認された。
【００７４】
実施例５：ｈｅｃ２株におけるアルコールアセチルトランスフェラーゼ活性の測定
ｈｅｃ２株におけるアルコールアセチルトランスフェラーゼ活性（ＡＡＴ活性）を測定するために以下の試験を行った。グルコース濃度１０％のＳＤ培地を用いて、３０℃で２４時間静置培養した。培養後の酵母菌体を回収し、ＢｕｆｆｅｒＡ（２５ｍＭイミダゾールＨＣｌ ｐＨ７．５、０．１ＭＮａＣｌ、２０％グリセロール、1ｍＭ  ＤＴＴ，４６mＭイソアミルアルコール、０．１％トリトンＸ―１００）で洗浄後、酵母菌体をＢｕｆｆｅｒＡ  ３ｍｌに溶解し、菌体液１ｍｌ当たりガラスビーズ０．８ｇを加えて酵母を破砕（３０秒ＯＮ／ＯＦＦ  １０分）した。上清を回収後、ガラスビーズをＢｕｆｆｅｒＡ  ０．６ｍｌで洗浄し、上清をまとめた。遠心分離後（１５，０００ｇ×１０分）、上清を回収し、無細胞抽出液を得た。なお、以上の無細胞抽出液の調製は、４℃の温度条件下で行った。
【００７５】
次いで、Ｐｉｅｒｃｅ  ＢＣＡ  Ｐｒｏｔｅｉｎ  Ａｓｓａｙ  Ｋｉｔ（Ｔｈｅｒｍｏ）により、菌体濃度を揃えた後、無細胞抽出液１ｍに１．６ｍMアセチルＣｏＡを含むＢｕｆｆｅｒＡ  １ｍｌを加え、２５℃で６０分間ゆっくりと浸透させながら反応させた。そして、生成した酢酸イソアミル量をＧＣ／ＦＩＤを用いてヘッドスペース法により測定し、得られた無細胞抽出液におけるアルコールアセチルトランスフェラーゼ活性を算出した。また、比較のため、ｈｉａ１株（野生型）、Ｋｍ９７株、及びＫ１８０１株についても、同様に遺伝子発現の解析を行った。
【００７６】
得られた結果を図８に示す。この結果から、ｈｅｃ２株におけるアルコールアセチルトランスフェラーゼは、ｈｉａ１株（野生型）と同程度に高いことが確認された。
【００７７】
実施例６：ｈｅｃ２株を用いた純米酒の実生産
ｈｅｃ２株を用いて、精米歩合７０％の白米を使用して純米酒の実生産を行った。具体的には、表７に示す条件で仕込を行い、上槽後、炭ろ過、火入れ、貯蔵（４カ月）、滓下げ・ろ過、瓶詰め・火入れを順次実施することにより、純米酒を得た。なお、留添４日目〜１４日目まで経時的に醪をサンプリングし、上清に含まれる香気成分（カプロン酸エチル、酢酸イソアミル）をＧＣ／ＦＩＤを用いてヘッドスペース法により測定した。また、得られた純米酒中の香気成分（カプロン酸エチル、酢酸イソアミル）についても、ＧＣ／ＦＩＤを用いてヘッドスペース法により測定した。また、比較のために、市販されている８種の清酒［市販品Ａ（純米酒、精米歩合７０％）、市販品Ｂ（純米酒、精米歩合７０％）、市販品Ｃ（純米酒、精米歩合７０％）、市販品Ｄ（純米酒、精米歩合６５％）、市販品Ｅ（純米酒、精米歩合６５％）、市販品Ｆ（大吟醸、精米歩合５０％）、市販品Ｇ（大吟醸、精米歩合５０％）、及び市販品Ｈ（純米大吟醸、精米歩合３９％）］についても、香気成分（カプロン酸エチル、酢酸イソアミル）の測定を行った。
【００７８】
【表７】
2017121251.tif 000008
【００７９】
醪の上清に含まれる香気成分を経時的に測定した結果を図９に示し、清酒中に含まれる香気成分を測定した結果を図１０に示す。この結果から、ｈｅｃ２株を使用することにより総米６ｔの実製造においても、カプロン酸エチル含有量が高い純米酒が得られることが明らかとなった。また、ｈｅｃ２株を使用して得られた純米酒は、精米歩合７０％の白米を使用していているにも拘らず、精米歩合３９％を使用した純米大吟醸（市販品Ｈ）よりも、カプロン酸エチル含有量が高い値を示していた。また、ｈｅｃ２株を使用して得られた純米酒は、豊かな吟醸香が知覚され、優れた風味を備えていた。
【受託番号】
【００８０】
ＮＩＴＥ  Ｐ−０２１７９
【図１】
2017121251.tif 000011
【図２】
2017121251.tif 000012
【図３】
2017121251.tif 000013
【図４】
2017121251.tif 000014
【図５】
2017121251.tif 000015
【図６】
2017121251.tif 000016
【図７】
2017121251.tif 000017
【図８】
2017121251.tif 000018
【図９】
2017121251.tif 000019
【図１０】
2017121251.tif 000020
【配列表】
2017121251000001.app