(57)【要約】【課題】新たなパーキン活性化剤のスクリーニング法の提供。【解決手段】パーキンとレポーター融合ミトフシン１に被検物質を作用させ、レポーター活性量の変化を測定することを特徴とするパーキン活性化剤のスクリーニング法。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
パーキンとレポーター融合ミトフシン１に被検物質を作用させ、レポーター活性量の変化を測定することを特徴とするパーキン活性化剤のスクリーニング法。
【請求項２】
レポーター活性量低下が、パーキンの活性量増加である請求項１記載のスクリーニング法。
【請求項３】
レポーターが、ルシフェラーゼである請求項１又は２記載のスクリーニング法。
【請求項４】
パーキンとレポーター融合ミトフシン１に被検物質を作用させる工程が、パーキンとレポーター融合ミトフシン１の発現細胞株に被検物質を作用させる工程である請求項１〜３のいずれか１項記載のスクリーニング法。
【請求項５】
前記発現細胞株に被検物質を作用させた後、細胞数及びレポーター活性を測定し、細胞あたりのレポーター活性量の変化を測定する請求項４記載のスクリーニング法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、パーキンソン病に代表されるミトコンドリア機能が関与する疾患の治療薬として利用可能なパーキン活性化剤のスクリーニング法に関する。
【背景技術】
【０００２】
若年性パーキンソン病原因遺伝子であるパーキン（Ｐａｒｋｉｎ）とピンク１（ＰＩＮＫ１）は、それぞれユビキチンリガーゼとミトコンドリア局在性キナーゼをコードし、損傷したミトコンドリアを選択的に排除するマイトファジー（ミトコンドリアのオートファジー）に関与する。すなわちピンク１−パーキンによるミトコンドリア品質管理が障害されることにより、パーキンソン病の発症へとつながることが示唆されている。またパーキンに機能喪失変異のあるパーキンソン病患者では耐糖能が低下しており、筋肉、膵β細胞などのミトコンドリア機能も低下していると考えられる。パーキンを活性化しミトコンドリア機能を高めることは、パーキンソン病のみならず、糖尿病、サルコペニア、心肥大、筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ）などミトコンドリアが関わるすべての疾患や病態を改善する可能性があり、幅広いターゲットにむけた創薬となりうる。
【０００３】
本発明者らは、２０１２〜２０１４年にピンク１がパーキンのユビキチン様領域をリン酸化すること、そのリン酸化がパーキンのユビキチンリガーゼを活性化することを報告した（非特許文献１〜３）。さらに、ピンク１がユビキチンおよびユビキチン鎖をリン酸化することにより、パーキンのユビキチンリガーゼが活性化することが明らかとなった。
定常時、パーキンは細胞質で不活性な状態としてコンパクトに折り畳まれている。ミトコンドリア機能障害により膜電位が低下するとピンク１が活性化する。活性化ピンク１によりリン酸化されたユビキチンがパーキンのＲＩＮＧ１−ＩＢＲ領域に入り込むことによりパーキンの構造が緩み、次にピンク１がパーキンのユビキチン様領域をリン酸化する。これによりユビキチンリガーゼ活性中心が露出し、パーキンが活性型ユビキチンリガーゼとなる。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００４】
【非特許文献１】Shiba-Fukushima et al., Sci Rep 2012; 2:1002. doi: 10.1038/srep01002.
【非特許文献２】Shiba-Fukushima et al., PLoS Genet 2014a; 10(6):e1004391. doi: 10.1371/journal.pgen.1004391.
【非特許文献３】Shiba-Fukushima et al., PLoS Genet 2014b; 10(12):e1004861. doi: 10.1371/journal.pgen.1004861.
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
前記のように、パーキンの活性化メカニズムは明らかにされたが、パーキン活性化剤の簡便なスクリーニング法は未だ開発されていない。
本発明の課題は、パーキン活性化剤の簡便なスクリーニング法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
そこで本発明者は、パーキンのユビキチン化基質であるミトコンドリア外膜タンパク質ミトフシン１（Ｍｉｔｏｆｕｓｉｎ １（Ｍｆｎ １））に着目した。ミトフシン１は、パーキン活性化により速やかにユビキチン化され分解される。かかる機能を考慮した上で、レポーター融合ミトフシン１存在下、パーキン活性化作用を有する被検物質をパーキンに作用させれば、パーキンの活性化によりミトフシン１がユビキチン化され分解される結果、レポーターの活性が低下することから、パーキン活性化剤がスクリーニングできることを見出し、本発明を完成した。
【０００７】
すなわち、本発明は、次の〔１〕〜〔５〕を提供するものである。
【０００８】
〔１〕パーキンとレポーター融合ミトフシン１に被検物質を作用させ、レポーター活性の変化量を測定することを特徴とするパーキン活性化剤のスクリーニング法。
〔２〕レポーター活性の低下がミトフシン１の減少である〔１〕記載のスクリーニング法。
〔３〕融合したレポーターが、ルシフェラーゼである〔１〕又は〔２〕記載のスクリーニング法。
〔４〕パーキンとレポーター融合ミトフシン１に被検物質を作用させる工程が、パーキンとレポーター融合ミトフシン１の発現細胞株に被検物質を作用させる工程である〔１〕〜〔３〕のいずれか１項記載のスクリーニング法。
〔５〕前記発現細胞株に被検物質を作用させた後、細胞数及びレポーター活性量を測定し、細胞あたりのレポーター活性量の変化を測定する〔４〕記載のスクリーニング法。
【発明の効果】
【０００９】
本発明方法によれば、簡便な操作でパーキン活性化剤がスクリーニングできる。パーキン活性化剤は、パーキンソン病、糖尿病、サルコペニア、心肥大、筋萎縮性側索硬化症などの予防治療薬として有用であるから、本発明のスクリーニング法によればこれらの疾患の予防治療薬のスクリーニングも可能である。
【図面の簡単な説明】
【００１０】
【図１】被検物質としてバリノマイシンを用いた本発明方法による結果を示す（単一株化前の細胞での結果）。
【図２】被検物質としてバリノマイシンを用いた本発明方法による結果を示す（単一株化細胞の結果）。
【発明を実施するための形態】
【００１１】
本発明のパーキン活性化剤のスクリーニング法は、パーキンとレポーター融合ミトフシン１に被検物質を作用させ、レポーター活性の変化量を測定することを特徴とする。
【００１２】
パーキンは、前述のように若年性パーキンソン病原因遺伝子産物として知られており、ユビキチンリガーゼ活性をもつ。パーキンは損傷したミトコンドリアを選択的に排除するマイトファジーに関与するタンパク質である。
一方、ミトフシン１は、ミトコンドリア外膜タンパク質であり、パーキンのユビキチン化基質である。
【００１３】
本発明で使用されるパーキンとレポーター融合ミトフシン１は、例えば、パーキン遺伝子、及びレポーター遺伝子とミトフシン１遺伝子との融合遺伝子を有する発現ベクターを、パーキン遺伝子を産生しない哺乳類細胞株に導入することにより産生させることができる。より具体的には、レトロウイルスベクターｐＭＸｓ−ｎｅｏにパーキン遺伝子を、レトロウイルスベクターｐＭＸｓ−ｐｕｒｏにレポーター融合ミトフシン１を挿入する。このレトロウイルスベクターをパッケージング細胞に導入し、レトロウイルス液を調製する。その後、レトロウイルス液を哺乳類細胞に添加し、次に抗生物質ネオマイシン、ピューロマイシン添加により耐性細胞を選抜する。以上の工程を経て、安定発現株を得る。哺乳類細胞株としては、ＨｅＬａ細胞、マウス線維芽細胞等、パーキンを発現しない細胞が用いられる。結果のバラツキが最低限に抑えられるよう安定発現株は、単一株化細胞が好ましい。
【００１４】
ミトフシン１に融合するレポーターとしては、定量的に測定することができるものであればよく、例えばルシフェラーゼ、蛍光タンパク質、共有結合する蛍光リガンドとそれに対応するタンパク質タグを用いることができる。ルシフェラーゼとしては、生細胞を使って計測ができる高感度のものが好ましい。市販品としてはＮａｎｏＬｕｃ（プロメガ社製  次世代ルシフェラーゼ）を用いることができる。
【００１５】
本発明においては、試験管内でパーキンとレポーター融合ミトフシン１に直接被検物質を作用させてもよいが、その場合、ユビキチン活性化酵素 (E1)、ユビキチン結合酵素 (E2)、ユビキチン、プロテアソーム、ATP、MgCl2などの添加が必要になる。簡便かつ安定な結果を得るためには、パーキンとレポーター融合ミトフシン１の発現細胞株に被検物質を作用させるのが好ましい。
ここで、前記発現細胞株としては、前記の遺伝子導入細胞株が挙げられる。
【００１６】
この発現細胞株を用いる方法では、生細胞数を蛍光シグナルとして測定でき、被検物質作用後のレポーター活性の変化を発光シグナルとして測定できるので、細胞あたりの活性量の変化を測定することができる。
【００１７】
本発明方法において、パーキンの活性化によりミトフシン１がユビキチン化され、その後プロテアソームによって分解されるので、レポーター活性量の低下がパーキン活性化として測定できる。
【００１８】
より具体的な手法としては、パーキンとルシフェラーゼ融合ミトフシン１を安定的に発現する細胞株を培養し、被検物質を添加して一定期間培養後、生細胞数を蛍光シグナルとして測定し、次にルシフェラーゼ活性を発光シグナルとして測定する。蛍光と発光を同一プレート上で順次測定すれば、数多くの被検物質を同時にスクリーニングできる。低濃度のミトコンドリア膜イオノホアにより、パーキン活性化因子ピンク１を軽度に活性化した状態での被検物質のスクリーニングも本発明方法に含まれる。
【実施例】
【００１９】
次に実施例を挙げて本発明を更に詳細に説明する。
【００２０】
参考例（パーキンとＮａｎｏＬｕｃ融合ミトフシン１の安定的細胞株の作製）
（１）ＮａｎｏＬｕｃをヒトミトフシン１のＮ末端側に融合した遺伝子をレトロウイルスベクターｐＭＸｓ−ｐｕｒｏに挿入し、レトロウイルスベクターｐＭＸｓ−ｐｕｒｏ−ＮａｎｏＬｕｃ−Ｍｆｎ１を作製する。
（２）ヒトパーキン遺伝子をレトロウイルスベクターｐＭＸｓ−ｎｅｏに挿入し、レトロウイルスベクターｐＭＸｓ−ｎｅｏ−Ｐａｒｋｉｎを作製する。
（３）上記２種類のレトロウイルスベクターをパッケージング細胞ＰＬＡＴ−Ｅにリポソーム法にてトランスフェクションする。ＰＬＡＴ−Ｅ細胞は、ＤＭＥＭ，ｈｉｇｈ  ｇｌｕｃｏｓｅ(Sigma, D5796)＋10%FBS(GIBCO, 11360-070)、1×Penicillin-Streptomycinで培養する。
（４）翌日、培地交換し、２４時間培養する（この間、レトロウイルスが産生される）。
（５）ＰＬＡＴ−Ｅ培養液を回収、０．４５μｍフィルターで濾し、ｐｏｌｙｂｒｅｎｅ液を添加して混合する。
（６）予め前日にｐｃＤＮＡ３Ｈｙｇ−ｍＳｌｃ７ａ１−ＶＳＶＧとｐｃＤＮＡ３Ｈｙｇ−ｍＳｌｃ７ａ１−ＦＬＡＧを導入したＨｅＬａ細胞に、（５）で調製したウイルス培養液を添加し、２４時間培養する。ＨｅＬａ細胞は、ＤＭＥＭ，ｈｉｇｈ  ｇｌｕｃｏｓｅ(Sigma, D5796)＋10%FBS(GIBCO, 11360-070)、1×Penicillin-Streptomycinで培養する。
（７）培地交換し、翌日から抗生物質ネオマイシン（１０００μｇ／ｍＬ）、ピューロマイシン（２μｇ／ｍＬ）を添加した上記培地で選択培養する。
（８）抗生物質耐性細胞が樹立されるまで（約２週間）、培地交換を２〜３日に一回行う。この間に、染色体に遺伝子導入された細胞は増殖する。また、細胞に取り込まれなかったレトロウイルスは消滅する。
（９）得られた抗生物質耐性細胞は、限界希釈法により単一細胞株を樹立する。
（１０）抗パーキン抗体、抗ミトフシン１抗体、抗ＮａｎｏＬｕｃ抗体を用いたウエスタンブロット法によりパーキン、ＮａｎｏＬｕｃ融合ミトフシン１の発現レベルを確認するとともに、ＮａｎｏＬｕｃを用いたレポーターアッセイを実施し、最適な細胞株を選択し樹立する。
（１１）陰性コントロール細胞株としては、（２）でレトロウイルスベクターｐＭＸｓ−ｎｅｏ−Ｐａｒｋｉｎの代わりにｐＭＸｓ−ｎｅｏを用い、（１０）までの工程を経て、パーキンを発現しないＮａｎｏＬｕｃ融合ミトフシン１安定的細胞株を樹立する。
【００２１】
実施例１
（方法）
使用細胞株：HeLa cells harboring Nano-Luc-Mfn1, Parkin（参考例）、
HeLa cells harboring NanoLuc-Mfn1 and an empty vector（参考例（１１））
使用培地：DMEM, high glucose(Sigma, D5796)＋10%FBS(GIBCO, 11360-070)、1×GlutaMAX(GIBCO, 35050-061)、1mM Sodium Pyruvate(GIBCO)、1×NEAA(GIBCO, 11140-050)、1×Penicillin-Streptomycin
【００２２】
（１）細胞をＮｕｎｃマイクロウェルポリマー底９６ウェルオプティカルボトムプレートへ細胞濃度１〜２×１０5ｃｅｌｌｓ／ｍＬにて５０μＬずつ播種し、２４時間培養する。
（２）ＤＭＳＯに溶かしたミトコンドリア膜イオノホアバリノマイシン（Ｗａｋｏ）を２０μＭになるよう培地に溶解。５０μＬずつ、処理時間が３０、６０、１８０分になるよう順次加えていく（バリノマイシンの終濃度は１０μＭとなる）。バリノマイシン処理０分はＤＭＳＯのみを加えた培地を用いる。
（３）ＣｅｌｌＴｉｔｅｒ−Ｆｌｕｏｒ細胞生存アッセイ（Ｐｒｏｍｅｇａ，Ｇ６０８０）を用い、細胞濃度を測定する。
ＧＦ−ＡＦＳ基質及びＡｓｓａｙ  ｂｕｆｆｅｒ  Ｍｉｘｔｕｒｅを２０μＬずつ加え、３７℃で３０分インキュベーションする。
Ｍｉｔｈｒａｓ2  ＬＢ９４３（Ｂｅｒｔｈｏｌｄ）にて蛍光測定（３８０ｎｍEx／５０５ｎｍEm、計測時間０．５秒／ウェル）。蛍光シグナルを特異的に拾うため黒い下敷きをプレート底面に置き測定する。
（４）Ｎａｎｏ−Ｇｌｏルシフェラーゼアッセイシステム（Ｐｒｏｍｅｇａ，Ｎ１１１０）を用い、ＮａｎｏＬｕｃ−ミトフシン１量を測定する。
Ｎａｎｏ−Ｇｌｏルシフェラーゼアッセイ基質及びＢｕｆｆｅｒ  Ｍｉｘｔｕｒｅを１００μＬずつ加え、室温で５分インキュベーションする。
Ｍｉｔｈｒａｓ2  ＬＢ９４３にて発光を測定する（計測時間０．５秒／ウェル）。
（５）発光／蛍光の値で、細胞あたりのＮｏｎｏ−Ｌｕｃ−ミトフシン１の発現レベルを見積もることにより、パーキンの活性化度合いを評価する。
【００２３】
（結果）
ピンク１を活性化するバリノマイシンを用いてパーキンを活性化し、ルシフェラーゼ（ＮａｎｏＬｕｃ）活性を測定した。測定はマルチプレートリーダー（ベルトールド社Ｍｉｔｈｒａｓ2  ＬＢ９４３）にて、蛍光（インキュベーションに３０分）、発光（インキュベーションに３〜５分程度）を１枚のプレートで順次測定し、発光（Ｍｆｎ１レベル）／蛍光（細胞数）を求めた。その結果、パーキンの活性依存的なルシフェラーゼ（ＮａｎｏＬｕｃ）活性の低下が観察された（図１）。
【００２４】
また、単一株化した安定発現細胞株を用いて、前記同様に行った結果を図２に示す。ＤＭＳＯのみを３時間加えた結果、及び終濃度１０μＭのバリノマイシンを３時間加えた結果をグラフとして示す。Ｖｅｃｔｏｒ＃１は単一株化したHeLa cells harboring NanoLuc-Mfn1 and an empty vector、Ｐａｒｋｉｎ＃１１は単一株化したHeLa cells harboring Nano-Luc-Mfn1, Parkinを表す。
【図１】
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【図２】
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