(57)【要約】【課題】本発明は、対象物の表面と候補者の皮膚における皮膚常在菌の菌株遺伝子型の構成比率を解析することで、対象物の使用者を判定する方法を提供することを目的とする。【解決手段】対象物の表面と候補者の皮膚における皮膚常在菌の菌株遺伝子型の構成比率を解析することで、対象物の使用者を判定する。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
以下の工程（Ａ）〜（Ｄ）を含む、対象物の使用者を判定する方法。
（Ａ）前記対象物の表面から採取した１又は２種以上の細菌の遺伝子、及び候補者の皮膚から採取した前記１又は２種以上の細菌の遺伝子を、それぞれ増幅する工程；
（Ｂ）前記工程（Ａ）で得られた増幅産物のヌクレオチド配列を決定し、前記ヌクレオチド配列の多型に基づいて、前記対象物の表面から採取した前記１又は２種以上の細菌の菌株遺伝子型の構成比率Ｍ、及び前記候補者の皮膚から採取した前記１又は２種以上の細菌の菌株遺伝子型の構成比率Ｎをそれぞれ決定する工程；
（Ｃ）前記構成比率ＭとＮとを比較して、前記構成比率ＭとＮの類似度を決定する工程；
（Ｄ）前記類似度に基づいて、前記候補者が前記対象物の使用者であるかを判定する工程；
【請求項２】
１又は２種以上の細菌が、プロピオニバクテリウム属細菌、スタフィロコッカス属細菌、ラルストニア属細菌、コリネバクテリウム属細菌及びストレプトコッカス属細菌から選択される細菌である、請求項１に記載の方法。
【請求項３】
１又は２種以上の細菌が、プロピオニバクテリウム属細菌である、請求項１又は２に記載の方法。
【請求項４】
１又は２種以上の細菌が、アクネ菌（Propionibacterium acnes）である、請求項１〜３のいずれかに記載の方法。
【請求項５】
１又は２種以上の細菌の遺伝子がアクネ菌の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子であり、１又は２種以上の細菌の菌株遺伝子型がアクネ菌の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子型である、請求項１〜４のいずれかに記載の方法。
【請求項６】
アクネ菌の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子型が、アクネ菌基準株であるＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子における９５０位〜１３３５位に対応する領域の遺伝子型である、請求項５に記載の方法。
【請求項７】
アクネ菌の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子型が、アクネ菌基準株であるＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子の９７６位、９８１位、９９６位、１０１２位、１０３４位、１０４１位、１０４４位、１０４５位、１０４７位、１０４９位、１０５０位、１０５２位、１０５４位、１０５６位、１０５７位、１０５９位、１０６０位、１０６４位、１０６５位、１０７５位、１０７６位、１０７７位、１０７９位、１０８１位、１０８９位、１０９０位、１０９５位、１０９７位、１０９９位、１１００位、１１０４位、１１０７位、１１０８位、１１１０位、１１１１位、１１１２位、１１１３位、１１２１位、１１２２位、１１２３位、１１２５位、１１２７位、１１３０位、１１４２位、１１４４位、１１４５位、１１４７位、１１５１位、１１５４位、１１６４位、１１６９位、１１７５位、１１７６位、１１７７位、１１８６位、１１８７位、１１８９位、１１９９位、１２０６位、１２１０位、１２１３位、１２１５位、１２１９位、１２２２位、１２２６位、１２２７位、１２２９位、１２３２位、１２３６位、１２４２位、１２４３位、１２４４位及び１２４８位にそれぞれ対応する部位からなる群から選択される１又は２以上の部位の遺伝子多型に基づく遺伝子型である、請求項５又は６に記載の方法。
【請求項８】
アクネ菌の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子を増幅する工程が、以下の工程（ａ）及び（ｂ）を含むネステッドＰＣＲ法を用いて行われる、請求項５〜７のいずれかに記載の方法。
（ａ）配列番号１及び配列番号２のオリゴヌクレオチドをプライマーとして用いて、第一段階のＰＣＲを行う工程；
（ｂ）配列番号３及び配列番号４のオリゴヌクレオチドをプライマーとして用いて、第二段階のＰＣＲを行う工程；
【請求項９】
ヌクレオチド配列を、超並列シークエンサーを用いて決定する、請求項１〜８のいずれかに記載の方法。
【請求項１０】
比較が、１又は２種以上の細菌の菌株遺伝子型のうち上位９０個〜上位１１０個について行われる、請求項１〜９のいずれかに記載の方法。
【請求項１１】
比較が、機械学習によって行われる、請求項１〜１０のいずれかに記載の方法。
【請求項１２】
機械学習が、教師あり機械学習である、請求項１１に記載の方法。
【請求項１３】
教師あり機械学習が、ランダムフォレストアルゴリズムを用いた、教師あり機械学習である、請求項１２に記載の方法。
【請求項１４】
アクネ菌基準株であるＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子（GenBankアクセッション番号NR_074675.1：配列番号１０９）の９５０位〜１３３５位の領域に対応する領域のポリヌクレオチドを増幅可能なプライマーセットを含む、アクネ菌の１６Ｓ  ｒＲＮＡ遺伝子の菌株遺伝子型の構成比率に基づいて、対象物の使用者を判定するためのキット。
【請求項１５】
プライマーセットが、配列番号１に示されるヌクレオチド配列からなるプライマー、及び、配列番号２に示されるヌクレオチド配列からなる１段階目のＰＣＲ用のプライマーセット；と、
配列番号３に示されるヌクレオチド配列からなるプライマー、及び、配列番号４に示されるヌクレオチド配列からなる２段階目のＰＣＲ用のプライマーセット；
を含む請求項１４に記載のキット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、皮膚常在菌の菌株遺伝子型の構成比率に基づいて、対象物の使用者（所有者を含む）を判定するための方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
犯罪捜査において、遺留品等からの使用者の特定は、ＤＮＡ鑑定、化学鑑定、筆跡鑑定、指紋鑑定等や、警察犬による臭気選別能力によって行われる。このうち、一般的に行われる方法である指紋鑑定は、人や指ごとに指紋が全て異なり、終生不変であるという特徴に着目したものであり、近年のバイオメトリクスの発達により、別人の指紋にも拘らず同一指紋であると誤認識してしまう率（誤受入率）は実測で１０万分の１程度となっている。また、指紋認証は、ＡＴＭ等の多くの分野で、個人識別の方法として用いられている。
【０００３】
ところで、ヒトの皮膚には１兆個もの細菌（皮膚常在菌）が生息している。近年、皮膚常在菌叢の組成は経時的な変化が少なく、個人差が大きいことが明らかになってきた（非特許文献１）。したがって、上記指紋鑑定と同様に、皮膚常在菌叢の組成によって、個人の特定が可能であると考えられる。
【０００４】
先行研究では、パソコンのキーボードの細菌叢とその使用者の指の細菌叢が類似していることが明らかとなっており、皮膚常在菌叢によって使用者の特定が出来る可能性を示唆している（非特許文献１）。該先行研究において、著者らは、パソコンのキーボード及びその使用者の指先をスワブで拭き取り、採取した細菌試料の１６Ｓ  ｒＲＮＡをコードする遺伝子をユニバーサルプライマーを用いて増幅し、その配列に基づいて細菌叢の組成（細菌叢に含まれる細菌の種類の構成比率）を同定することによって、キーボードとその使用者の指先の細菌叢の組成が類似することを明らかにした。かかる教示は、細菌叢の組成の類似度に基づいて、キーボードの使用者を判定し得る可能性を示唆するものであるが、皮膚から採取可能な細菌由来のＤＮＡ量は微量であるため、多種多様な細菌が生息している日常環境では、コンタミネーションの影響が大きくなり、精度の高い解析は不可能である。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００５】
【非特許文献１】Fierer,N., Lauber,C.L., et al. Forensic identification using skin bacterial communities. Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A., 107, 6477-6481 (2010)
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
本発明の課題は、対象物の表面と候補者の皮膚における皮膚常在菌の菌株遺伝子型の構成比率を解析することで、対象物の使用者を判定する方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
本発明者らは、前記課題を解決すべく鋭意研究を重ねた結果、対象物の表面から採取したアクネ菌の菌株遺伝子型の構成比率及び候補者の皮膚から採取したアクネ菌の菌株遺伝子型の構成比率を決定し、前記対象物及び前記候補者から取得した前記構成比率を機械学習により比較して、前記対象物及び前記候補者から取得した前記構成比率の類似度を算出することで、前記候補者が前記対象物の使用者か否かを判定することができることを見いだし、本発明を完成するに至った。
【０００８】
すなわち本発明は以下のとおりである。
（１）以下の工程（Ａ）〜（Ｄ）を含む、対象物の使用者を判定する方法。
（Ａ）前記対象物の表面から採取した１又は２種以上の細菌の遺伝子、及び候補者の皮膚から採取した前記１又は２種以上の細菌の遺伝子を、それぞれ増幅する工程；
（Ｂ）前記工程（Ａ）で得られた増幅産物のヌクレオチド配列を決定し、前記ヌクレオチド配列の多型に基づいて、前記対象物の表面から採取した前記１又は２種以上の細菌の菌株遺伝子型の構成比率Ｍ、及び前記候補者の皮膚から採取した前記１又は２種以上の細菌の菌株遺伝子型の構成比率Ｎをそれぞれ決定する工程；
（Ｃ）前記構成比率ＭとＮとを比較して、前記構成比率ＭとＮの類似度を決定する工程；
（Ｄ）前記類似度に基づいて、前記候補者が前記対象物の使用者であるかを判定する工程；
（２）１又は２種以上の細菌が、プロピオニバクテリウム属細菌、スタフィロコッカス属細菌、ラルストニア属細菌、コリネバクテリウム属細菌及びストレプトコッカス属細菌から選択される細菌である、上記（１）に記載の方法。
（３）１又は２種以上の細菌が、プロピオニバクテリウム属細菌である、上記（１）又は（２）に記載の方法。
（４）１又は２種以上の細菌が、アクネ菌（Propionibacterium acnes）である、上記（１）〜（３）のいずれかに記載の方法。
（５）１又は２種以上の細菌の遺伝子がアクネ菌の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子であり、１又は２種以上の細菌の菌株遺伝子型がアクネ菌の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子型である、上記（１）〜（４）のいずれかに記載の方法。
（６）アクネ菌の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子型が、アクネ菌基準株であるＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子における９５０位〜１３３５位の領域に対応する領域の遺伝子型である、上記（５）に記載の方法。
（７）アクネ菌の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子型が、アクネ菌基準株であるＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子の９７６位、９８１位、９９６位、１０１２位、１０３４位、１０４１位、１０４４位、１０４５位、１０４７位、１０４９位、１０５０位、１０５２位、１０５４位、１０５６位、１０５７位、１０５９位、１０６０位、１０６４位、１０６５位、１０７５位、１０７６位、１０７７位、１０７９位、１０８１位、１０８９位、１０９０位、１０９５位、１０９７位、１０９９位、１１００位、１１０４位、１１０７位、１１０８位、１１１０位、１１１１位、１１１２位、１１１３位、１１２１位、１１２２位、１１２３位、１１２５位、１１２７位、１１３０位、１１４２位、１１４４位、１１４５位、１１４７位、１１５１位、１１５４位、１１６４位、１１６９位、１１７５位、１１７６位、１１７７位、１１８６位、１１８７位、１１８９位、１１９９位、１２０６位、１２１０位、１２１３位、１２１５位、１２１９位、１２２２位、１２２６位、１２２７位、１２２９位、１２３２位、１２３６位、１２４２位、１２４３位、１２４４位及び１２４８位にそれぞれ対応する部位からなる群から選択される１又は２以上の部位の遺伝子多型に基づく遺伝子型である、上記（５）又は（６）に記載の方法。
（８）アクネ菌の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子を増幅する工程が、以下の工程（ａ）及び（ｂ）を含むネステッドＰＣＲ法を用いて行われる、上記（５）〜（７）のいずれかに記載の方法。
（ａ）配列番号１及び配列番号２のオリゴヌクレオチドをプライマーとして用いて、第一段階のＰＣＲを行う工程；
（ｂ）配列番号３及び配列番号４のオリゴヌクレオチドをプライマーとして用いて、第二段階のＰＣＲを行う工程；
（９）ヌクレオチド配列を、超並列シークエンサーを用いて決定する、上記（１）〜（８）のいずれかに記載の方法。
（１０）比較が、１又は２種以上の細菌の菌株遺伝子型のうち上位９０個〜上位１１０個について行われる、上記（１）〜（９）のいずれかに記載の方法。
（１１）比較が、機械学習によって行われる、上記（１）〜（１０）のいずれかに記載の方法。
（１２）機械学習が、教師あり機械学習である、上記（１１）に記載の方法。
（１３）教師あり機械学習が、ランダムフォレストアルゴリズムを用いた、教師あり機械学習である、上記（１２）に記載の方法。
（１４）アクネ菌基準株であるＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子（GenBankアクセッション番号NR_074675.1：配列番号１０９）の９５０位〜１３３５位（好ましくは９６８位〜１３１４位）の領域に対応する領域のポリヌクレオチドを増幅可能なプライマーセットを含む、アクネ菌の１６Ｓ  ｒＲＮＡ遺伝子の菌株遺伝子型の構成比率に基づいて、対象物の使用者を判定するためのキット。
（１５）プライマーセットが、配列番号１に示されるヌクレオチド配列からなるプライマー、及び、配列番号２に示されるヌクレオチド配列からなる１段階目のＰＣＲ用のプライマーセット；と、
配列番号３に示されるヌクレオチド配列からなるプライマー、及び、配列番号４に示されるヌクレオチド配列からなる２段階目のＰＣＲ用のプライマーセット；
を含む上記（１４）に記載のキット。
【発明の効果】
【０００９】
本発明の方法によれば、皮膚常在菌叢の菌種組成（皮膚細菌叢に含まれる細菌の種類の構成比率）を解析する場合と比較して高精度で、対象物の使用者を判定すること等ができる。
【図面の簡単な説明】
【００１０】
【図１−１】ＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子（GenBankアクセッション番号NR_074675.1：配列番号１０９）の９６８位〜１０２７位の領域に対応する領域のアラインメントを、アクネ菌ＭＴ１〜ＭＴ５０について示す。なお、背景が白色のヌクレオチドは、ＭＴ１（ＫＰＡ１７１２０２）の対応するヌクレオチドと異なるヌクレオチド（多型）を表す。
【図１−２】ＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子（GenBankアクセッション番号NR_074675.1：配列番号１０９）の９６８位〜１０２７位の領域に対応する領域のアラインメントを、アクネ菌ＭＴ５１〜ＭＴ１００について示す。なお、背景が白色のヌクレオチドは、ＭＴ１（ＫＰＡ１７１２０２）の対応するヌクレオチドと異なるヌクレオチド（多型）を表す。
【図１−３】ＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子（GenBankアクセッション番号NR_074675.1：配列番号１０９）の１０２８位〜１０８７位の領域に対応する領域のアラインメントを、アクネ菌ＭＴ１〜ＭＴ５０について示す。なお、背景が白色のヌクレオチドは、ＭＴ１（ＫＰＡ１７１２０２）の対応するヌクレオチドと異なるヌクレオチド（多型）を表す。
【図１−４】ＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子（GenBankアクセッション番号NR_074675.1：配列番号１０９）の１０２８位〜１０８７位の領域に対応する領域のアラインメントを、アクネ菌ＭＴ５１〜ＭＴ１００について示す。なお、背景が白色のヌクレオチドは、ＭＴ１（ＫＰＡ１７１２０２）の対応するヌクレオチドと異なるヌクレオチド（多型）を表す。
【図１−５】ＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子（GenBankアクセッション番号NR_074675.1：配列番号１０９）の１０８８位〜１１４７位の領域に対応する領域のアラインメントを、アクネ菌ＭＴ１〜ＭＴ５０について示す。なお、背景が白色のヌクレオチドは、ＭＴ１（ＫＰＡ１７１２０２）の対応するヌクレオチドと異なるヌクレオチド（多型）を表す。
【図１−６】ＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子（GenBankアクセッション番号NR_074675.1：配列番号１０９）の１０８８位〜１１４７位の領域に対応する領域のアラインメントを、アクネ菌ＭＴ５１〜ＭＴ１００について示す。なお、背景が白色のヌクレオチドは、ＭＴ１（ＫＰＡ１７１２０２）の対応するヌクレオチドと異なるヌクレオチド（多型）を表す。
【図１−７】ＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子（GenBankアクセッション番号NR_074675.1：配列番号１０９）の１１４８位〜１２０７位の領域に対応する領域のアラインメントを、アクネ菌ＭＴ１〜ＭＴ５０について示す。なお、背景が白色のヌクレオチドは、ＭＴ１（ＫＰＡ１７１２０２）の対応するヌクレオチドと異なるヌクレオチド（多型）を表す。
【図１−８】ＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子（GenBankアクセッション番号NR_074675.1：配列番号１０９）の１１４８位〜１２０７位の領域に対応する領域のアラインメントを、アクネ菌ＭＴ５１〜ＭＴ１００について示す。なお、背景が白色のヌクレオチドは、ＭＴ１（ＫＰＡ１７１２０２）の対応するヌクレオチドと異なるヌクレオチド（多型）を表す。
【図１−９】ＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子（GenBankアクセッション番号NR_074675.1：配列番号１０９）の１２０８位〜１２６７位の領域に対応する領域のアラインメントを、アクネ菌ＭＴ１〜ＭＴ５０について示す。なお、背景が白色のヌクレオチドは、ＭＴ１（ＫＰＡ１７１２０２）の対応するヌクレオチドと異なるヌクレオチド（多型）を表す。
【図１−１０】ＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子（GenBankアクセッション番号NR_074675.1：配列番号１０９）の１２０８位〜１２６７位の領域に対応する領域のアラインメントを、アクネ菌ＭＴ５１〜ＭＴ１００について示す。なお、背景が白色のヌクレオチドは、ＭＴ１（ＫＰＡ１７１２０２）の対応するヌクレオチドと異なるヌクレオチド（多型）を表す。
【図１−１１】ＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子（GenBankアクセッション番号NR_074675.1：配列番号１０９）の１２６８位〜１３１４位の領域に対応する領域のアラインメントを、アクネ菌ＭＴ１〜ＭＴ５０について示す。なお、背景が白色のヌクレオチドは、ＭＴ１（ＫＰＡ１７１２０２）の対応するヌクレオチドと異なるヌクレオチド（多型）を表す。
【図１−１２】ＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子（GenBankアクセッション番号NR_074675.1：配列番号１０９）の１２６８位〜１３１４位の領域に対応する領域のアラインメントを、アクネ菌ＭＴ５１〜ＭＴ１００について示す。なお、背景が白色のヌクレオチドは、ＭＴ１（ＫＰＡ１７１２０２）の対応するヌクレオチドと異なるヌクレオチド（多型）を表す。
【図２】実施例３において得られた各ＰＣＲ産物の電気泳動写真を示す図である。
【図３】実施例７の、最も類似性の高かった種がアクネ菌であるＯＴＵの構成比率を、ＭＴ１〜ＭＴ３６までについて区分けして示した図である。
【図４】実施例７において、ＭＴ１〜１０に着目して構成比率を示した図である。
【図５】実施例８における主座標分析（ＰＣｏＡ）の結果を表す図である。図５左パネル：細菌叢組成について主座標分析を行った結果を表す図である。図５右パネル：アクネ菌株遺伝子型組成について主座標分析を行った結果を表す図である。なお、Ｓ１〜Ｓ１０はそれぞれ１０名の対象者（被験者）を表す。
【図６】実施例８の主座標分析の結果からユークリッド距離を算出して作成した系統樹を表す図である。図６左パネル：細菌叢組成について作成した系統樹を表す図である。図６右パネル：アクネ菌株遺伝子型組成について作成した系統樹を表す図である。なお、Ｓ１〜Ｓ１０はそれぞれ１０名の対象者（被験者）を表す。
【図７】３名（Ｓ１、Ｓ３、Ｓ５）の対象者の両手、すなわち、６種の手の間で、アクネ菌株遺伝子型組成又は細菌叢組成の類似度（ピアソンの相関係数）を算出した結果を示す図である。左上から右下を結ぶ点線の右上の部分がアクネ菌遺伝子型組成の相関係数ｒを表し、点線の左下の部分が細菌叢組成の相関係数ｒを表す。ｒ＞０．９９の場合は濃い灰色、０．８０＜ｒ＜０．９９の場合は中程度の灰色、ｒ＜０．８０の場合は薄い灰色で示す。Ｓ１ ＲＨはＳ１の右手を表し、Ｓ１ ＬＨはＳ１の左手を表し、Ｓ３ ＲＨはＳ３の右手を表し、Ｓ３ ＬＨはＳ３の左手を表し、Ｓ５ ＲＨはＳ５の右手を表し、Ｓ５ ＬＨはＳ５の左手を表す。例えば、Ｓ１ ＲＨとＳ１ ＬＨの、アクネ菌遺伝子型組成の相関係数ｒは、Ｓ１ ＲＨという表示のすぐ右側で、Ｓ１ ＬＨのすぐ上のパネルに０．９９８９と示され、Ｓ１ ＲＨとＳ５ ＬＨのアクネ菌遺伝子型組成の相関係数ｒは、Ｓ１ ＲＨという表示から右方向の列と、Ｓ５ ＬＨという表示から上方向の列が交わる部分のパネルに０．３４５９と示される。また、Ｓ１ ＲＨとＳ５ ＬＨの細菌叢組成の相関係数ｒは、Ｓ１ ＲＨという表示から下方向の列と、Ｓ５ ＬＨという表示から左方向の列が交わる部分のパネルに０．７４３１と示される。
【図８】実施例１１において、機械学習のアルゴリズムの一つであるランダムフォレストを用いて対象物の使用者の判定試験を行った結果を示す図である。図８左上パネル：アクネ菌株遺伝子型組成を用いた判定試験の結果を示す図である。縦軸の数値は正答率（％）を表し、横軸の数値は判定の解析に用いたアクネ菌株の種類数を表す。図８左下パネル：細菌叢組成を用いた判定試験の結果を示す図である。縦軸の数値は正答率（％）を表し、横軸の数値は判定の解析に用いた細菌の種類数を表す。図８右パネル：アクネ菌株遺伝子型組成と細菌叢組成の両方を用いた判定試験の結果を示す図である。縦軸の数値は正答率（％）を表し、横軸の数値は用いた細菌叢組成の細菌の種類数を表す。
【図９】実施例１２において、対象者におけるアクネ菌株遺伝子型組成や細菌叢組成の経時的変化を解析した結果を示す図である。図９左上パネル：１回目のサンプルと２回目のサンプルの細菌叢組成について行った主座標分析のＰＣ１の結果を表す図である。図９右上パネル：１回目のサンプルと２回目のサンプルのアクネ菌株遺伝子型組成について行った主座標分析のＰＣ１の結果を表す図である。図９左下パネル：１回目のサンプルと２回目のサンプルの類似度（Yue-Clayton theta similarity Index）を示す図である。P. acnesはアクネ菌株遺伝子型組成を用いた場合の類似度を表し、Microbiomeは細菌叢組成を用いた場合の類似度を表す。図９右下パネル：１回目のサンプリングのデータを教師データとし、２回目のサンプリングのデータをテストデータとして、ランダムフォレストを行った結果を表す図である。P. acnesはアクネ菌株遺伝子型組成を用いた場合の正答率（％）を表し、Microbiomeは細菌叢組成を用いた場合の正答率（％）を表す。
【発明を実施するための形態】
【００１１】
本発明の対象物の使用者を判定する方法は、（Ａ）対象物の表面から採取した１又は２種以上の細菌の遺伝子、及び候補者の皮膚から採取した前記１又は２種以上の細菌の遺伝子を、それぞれ増幅する工程；（Ｂ）前記工程（Ａ）で得られた増幅産物のヌクレオチド配列を決定し、前記ヌクレオチド配列の多型に基づいて、前記対象物の表面から採取した前記１又は２種以上の細菌の菌株遺伝子型の構成比率Ｍ、及び前記候補者の皮膚から採取した前記１又は２種以上の細菌の菌株遺伝子型の構成比率Ｎをそれぞれ決定する工程；（Ｃ）前記構成比率ＭとＮとを比較して、前記構成比率ＭとＮの類似度を決定する工程；及び、（Ｄ）前記類似度に基づいて、前記候補者が前記対象物の使用者であるかを判定する工程；を含む方法である。
【００１２】
本明細書において「対象物の使用者」には、その対象物に皮膚が接触した経験のある者が含まれ、好適には、皮膚の表面に存在する細菌をその対象物の表面に付着させた者が含まれる。対象物の使用者には、その対象物の所有者も含まれる。かかる所有者は、その対象物の法律上の所有権を持つ者であってもよいし、持たない者であってもよい。
【００１３】
本発明において、１又は２種以上の細菌としては、皮膚の表面から採取できる細菌種であれば特に制限されるものではなく、いわゆる皮膚常在菌が含まれ、具体例としては、プロピオニバクテリウム属細菌、スタフィロコッカス属細菌、ラルストニア属細菌、コリネバクテリウム属細菌、ストレプトコッカス属細菌を挙げることができる。また、前記細菌の中でもプロピオニバクテリウム属細菌、特にアクネ菌プロピオニバクテリウム・アクネス（Propionibacterium acnes）は、皮膚常在菌の中でもその存在量が多いため、コンタミネーションの影響を受けにくく、より高精度での判定が可能となるため、好適に挙げることができる。
【００１４】
本発明における対象物としては、固体部分を少なくとも含む物である限り特に制限されないが、対象物の使用者を判定する観点から、候補者の皮膚が接触する可能性がある物が好ましく、具体的には、パソコンのキーボード、パソコンのマウス、スマートホン、タブレット、鞄、ペン、鉛筆、箸、携帯電話、ドアノブ、鍵、リモコン、腕時計、定期入れなどが含まれる。
【００１５】
本発明の判定方法に利用する１又は２種以上の細菌は、１種の細菌であってもよいし、２種以上の細菌であってもよいが、作業や解析の簡便性の観点から、１種の細菌（同属同種の細菌）であることが好ましい。かかる１種の細菌として、前述のアクネ菌プロピオニバクテリウム・アクネスを好適に使用することができる。
【００１６】
上記工程（Ａ）において、対象物の表面から１又は２種以上の細菌を採取する方法としては、対象物の表面から細菌を採取できる方法である限り特に制限されず、例えば溶媒を含む多孔質材料で対象物の表面をこすり、その多孔質材料を別に用意した溶媒に浸して、細菌を回収する方法を好ましく挙げることができる。かかる溶媒としては、ＴＥ１０バッファー（１〜１００ｍＭ（好ましくは１０ｍＭ）  Ｔｒｉｓ，１〜１００ｍＭ（好ましくは１０ｍＭ）  ＥＤＴＡ）等の緩衝液や、水を挙げることができ、中でも、緩衝液を好ましく挙げることができ、中でも、ＴＥ１０バッファーをより好ましく挙げることができる。上記の多孔質材料としては、脱脂綿、布、スポンジ、ペーパーなどを挙げることができ、中でも、脱脂綿を好ましく挙げることができ、中でも、綿棒をより好ましく挙げることができる。なお、これらの多孔質材料は、コンタミネーションを回避する観点から、滅菌処理された多孔質材料であることが好ましい。
【００１７】
上記工程（Ａ）において、候補者の皮膚から１種又は２種以上の細菌（好ましくはアクネ菌）を採取する時期は、対象物の表面から１種又は２種以上の細菌（好ましくはアクネ菌）を採取する時期、及び／又は、対象物の使用者の皮膚が対象物に接触する時期より前であっても後であってもよいが、本発明の意義をより多く享受する観点から、候補者の皮膚から１種又は２種以上の細菌（好ましくはアクネ菌）を採取する時期と、対象物の表面から１種又は２種以上の細菌（好ましくはアクネ菌）を採取する時期、及び／又は、対象物の使用者の皮膚が対象物に接触する時期との間が、好ましくは１ヶ月間以上、より好ましくは２ヶ月間以上、さらに好ましくは３ヶ月間以上、より好ましくは４ヶ月間以上、さらに好ましくは５ヶ月間以上であることが好適に挙げられ、かかる期間の上限として例えば２４ヶ月間以下、１８ヶ月間以下、１２ヶ月以下、１０ヶ月以下などが挙げられる。なお、上記期間が一定期間以上であると本発明の意義をより多く享受できるのは、本発明の判定方法に用いる１種又は２種以上の細菌（好ましくはアクネ菌）の菌株遺伝子型の構成比率は、従来の判定方法に用いられる２種以上の細菌叢組成（細菌の種類の構成比率）よりも、期間の経過による変化が少ないからである。
【００１８】
本明細書において、上記工程（Ａ）にて増幅する「遺伝子」には、遺伝子をコードするポリヌクレオチド（好ましくはＤＮＡ）及び／又はその相補的なポリヌクレオチド（好ましくはＤＮＡ）が含まれ、該遺伝子には、全長の遺伝子のほか、遺伝子の一部の領域（以下、「遺伝子領域」と表示する。）も便宜上含まれる。上記工程（Ａ）において増幅する遺伝子の種類としては、多型を含む遺伝子である限り特に制限されないが、多型を多く含む遺伝子が好ましく、中でも、１６Ｓ  ｒＲＮＡ遺伝子が特に好ましい。上記の「多型を多く含む遺伝子（遺伝子領域を含む）」としては、多型のバリエーションを２種類以上、好ましくは５種類以上、より好ましくは１０種類以上、さらに好ましくは１５種類以上含む遺伝子（遺伝子領域を含む）が挙げられる。多型のバリエーションの上限は特に制限されないが例えば３００種類、２００種類、１００種類などが挙げられる。
【００１９】
本発明の判定方法に利用する細菌がアクネ菌である場合、上記工程（Ａ）において増幅する遺伝子としては、１６Ｓ  ｒＲＮＡ遺伝子が好ましく挙げられ、中でも、アクネ菌基準株であるＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子（配列番号１０９）の９５０位〜１３３５位の領域に対応する領域を含む領域がより好ましく挙げられ、ＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子の９６８位〜１３１４位の領域に対応する領域を含む領域が特に好ましく挙げられる。ＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子の９５０位〜１３３５位（好ましくは９６８位〜１３１４位）の領域に対応する領域における具体的な変異としては、ＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子の９７６位、９８１位、９９６位、１０１２位、１０３４位、１０４１位、１０４４位、１０４５位、１０４７位、１０４９位、１０５０位、１０５２位、１０５４位、１０５６位、１０５７位、１０５９位、１０６０位、１０６４位、１０６５位、１０７５位、１０７６位、１０７７位、１０７９位、１０８１位、１０８９位、１０９０位、１０９５位、１０９７位、１０９９位、１１００位、１１０４位、１１０７位、１１０８位、１１１０位、１１１１位、１１１２位、１１１３位、１１２１位、１１２２位、１１２３位、１１２５位、１１２７位、１１３０位、１１４２位、１１４４位、１１４５位、１１４７位、１１５１位、１１５４位、１１６４位、１１６９位、１１７５位、１１７６位、１１７７位、１１８６位、１１８７位、１１８９位、１１９９位、１２０６位、１２１０位、１２１３位、１２１５位、１２１９位、１２２２位、１２２６位、１２２７位、１２２９位、１２３２位、１２３６位、１２４２位、１２４３位、１２４４位及び１２４８位にそれぞれ対応する部位からなる群から選択される１又は２以上の部位のヌクレオチドにおける一塩基置換を挙げることができる。なお、ＫＰＡ１７１２０２以外のアクネ菌の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子のどの領域が、ＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子の９５０位〜１３３５位（好ましくは９６８位〜１３１４位）の領域に対応する領域であるかは、ＣＬＵＳＴＡＬＷ等の配列解析ソフトウェアでアラインメントを作成するなどして、特定することができる。
【００２０】
上記工程（Ａ）で遺伝子を増幅する細菌が１種である場合、その遺伝子又は遺伝子領域は１種類であってもよいし、２種類以上であってもよいが、作業や解析の簡便性の観点から、１種類であることが好ましい。また、上記工程（Ａ）で遺伝子を増幅する細菌が２種以上である場合、増幅する遺伝子又は遺伝子領域は細菌種によらず同じであってもよいし、細菌種によって異なる場合があってもよいし、細菌種によってすべて異なっていてもよいが、作業や解析の簡便性の観点から、増幅する遺伝子又は遺伝子領域は細菌種によらず同じであるか、細菌種によって異なる場合があることが好ましく、増幅する遺伝子又は遺伝子領域は細菌種によらず同じであることがより好ましい。
【００２１】
上記工程（Ａ）において、細菌の遺伝子の増幅は、公知のいかなる手法を用いて行ってもよいが、例えば、ＴＥバッファーに対象物の表面又は候補者の皮膚の表面に擦り付けた綿棒を入れて撹拌し、該バッファーを鋳型として用いたポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）を挙げることができる。ＰＣＲに用いるプライマーは、増幅対象とする遺伝子領域の両端の塩基配列に基づいて任意に設計することができ、１組のプライマー対を用いてＰＣＲを行ってもよいが、非特異的な増幅を減らし、最終的な判定制度を高めるために、２組以上のプライマー対を用いたネステッドＰＣＲ法により行うことが好ましい。また、増幅した遺伝子は、アガロースゲル電気泳動を行い、切り出したバンドから抽出してもよく、また、公知のＰＣＲ産物精製方法（ＧＥヘルスケア社製「NAP Columns」、「MicroSpin Columns」、ベックマンコールター社製「Agencourt AMPure XP」等）を用いて精製してもよい。
【００２２】
上記工程（Ａ）において、アクネ菌基準株であるＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡ遺伝子の９５０位〜１３３５位（好ましくは９６８位〜１３１４位）の領域に対応する領域を含む領域を、前述のネステッドＰＣＲ法により増幅する好適な方法として、（ａ）配列番号１に示されるヌクレオチド配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号２に示されるヌクレオチド配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーとを用いて、第一段階のＰＣＲを行う工程；（ｂ）配列番号３に示されるヌクレオチド配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号４に示されるヌクレオチド配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーとを用いて、第二段階のＰＣＲを行う工程；を含むネステッドＰＣＲ法が挙げられる。かかるネステッドＰＣＲ法を用いると、アクネ菌ＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡ遺伝子の９５０位〜１３３５位（好ましくは９６８位〜１３１４位）の領域に対応する領域を特に効率良く増幅することができる。したがって、以下の第一のプライマーセット及び第二のプライマーセットを含むキットは、アクネ菌の菌株遺伝子型の構成比率に基づいて、対象物の使用者を判定するためのキットとして好適に用いることができる。
配列番号１に示されるヌクレオチド配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号２に示されるヌクレオチド配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーとからなる第一のプライマーセット；
配列番号３に示されるヌクレオチド配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーと、配列番号４に示されるヌクレオチド配列からなるオリゴヌクレオチドプライマーとからなる第二のプライマーセット；
【００２３】
上記工程（Ｂ）において、工程（Ａ）で得られた増幅産物のヌクレオチド配列の決定は、公知のいかなる手法を用いて行ってもよいが、超並列シーケンサーを用いた配列決定が、きわめて多数のヌクレオチド配列を一度に決定することができるという点でより好ましい。超並列シーケンサーとしては、例えばイルミナ社製のMiSeq、HiSeq2000、Genome Analyzer IIx（GAIIx）や、ロシュ社製のGenome Sequencer-FLX（GS-FLX）を挙げることができる。超並列シーケンサーは、１度に決定できる配列数（リード数）が１億〜数十億の機器もあり、きわめて多数の増幅産物のヌクレオチド配列を迅速かつ簡便に決定することができる。
【００２４】
上記工程（Ｂ）において、１又は２種以上の細菌の菌株遺伝子型は、遺伝子のヌクレオチド配列の多型に基づいて決定される。前記ヌクレオチド配列の多型とは、ヌクレオチドの特定の位置での塩基の型が複数あることを意味し、塩基置換、一塩基以上の挿入、欠失等が例示される。かかる多型は、工程（Ｂ）で決定した複数種の増幅産物のヌクレオチド配列間の配列の相違点をＣＬＵＳＴＡＬＷ等の配列解析ソフトウェアで解析すること等により、特定することができる。
【００２５】
本発明者らは、後述の実施例の実験において、アクネ菌基準株であるＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子における９６８位〜１３１４位の領域に対応する領域の遺伝子型を１００種類特定した。この遺伝子領域の１００種類の遺伝子型（ＭＴ１〜ＭＴ１００）を、それぞれ配列番号９〜１０８のヌクレオチド配列として示す。ＭＴ１〜ＭＴ１００の上記遺伝子領域のヌクレオチド配列のアラインメントを図１−１から図１−１２に示す。なお、ＭＴ１の遺伝子型（配列番号９）がこの遺伝子領域の野生型の遺伝子型として位置づけられる。
【００２６】
また、対象物の表面から採取した前記１又は２種以上の細菌の菌株遺伝子型の構成比率Ｍ、及び候補者の皮膚から採取した前記１又は２種以上の細菌の菌株遺伝子型の構成比率Ｎは、決定したヌクレオチド配列のうち存在比率が多いものから順に、上位１０個〜上位１０００個、好ましくは上位１０個〜上位５００個、より好ましくは上位１０個〜上位３００個、さらに好ましくは上位２０個〜上位６０個、特に好ましくは上位３０個〜上位５０個（より好ましくは上位３０個）について決定することができる。また、２種以上の細菌の菌株遺伝子型の構成比率を利用する場合、前記構成比率Ｍ及びＮは、２種以上の細菌全体についてまとめて決定しても、個々の細菌種について個別に決定してもよい。ただし、作業や解析の簡便性の観点から、１種の細菌（同属同種の細菌）の遺伝子型の構成比率を利用することが好ましい。かかる１種の細菌として、アクネ菌が好ましく挙げられる。
【００２７】
上記工程（Ｃ）：前記構成比率ＭとＮとを比較して、前記構成比率ＭとＮの類似度を決定する工程、並びに上記工程（Ｄ）：前記類似度に基づいて、前記候補者が前記対象物の使用者であるかを判定する工程としては、公知のいかなる手法を用いることができ、機械学習やデータマイニングを例示することができるが、中でも機械学習、より好ましくは教師あり機械学習、さらに好ましくはランダムフォレストアルゴリズムを用いた教師あり機械学習や、サポートベクターマシンを用いた教師あり機械学習が適用される。かかる機械学習やデータマイニング等には、主座標分析（Principal Coordinate Analysis：  ＰＣｏＡ）や、主成分分析（Principal Component Analysis：  ＰＣＡ）等の多変量解析を併用することが好ましい。類似度は、例えばユークリッド距離などの数値として算出することが好ましい。類似度がどの程度である場合に、候補者が対象物の使用者であると判定するかは、当業者であれば状況に応じて決定することができるが、例えば、構成比率ＭとＮの類似度をユークリッド距離に換算したときに、該ユークリッド距離が、０．１以下、好ましくは０．０５以下である場合にその候補者が対象物の使用者であると判定することができる。ユークリッド距離は、例えば、ソフトウェア「Ｒ」を用いて算出することができる。
【００２８】
本発明の判定方法は、前述したように、細菌の菌株遺伝子型の構成比率の類似度を利用して対象物の使用者を判定する方法であるが、その判定の際に、細菌叢組成の類似度を併用することが、より高精度の判定を行う観点から好ましい。細菌叢組成の類似度を併用する場合としては、例えば、
上記工程（Ａ）〜（Ｄ）を含むことに加えて、
（Ｉ）対象物の表面から採取した１又は２種以上の細菌の遺伝子、及び候補者の皮膚から採取した前記１又は２種以上の細菌の遺伝子を、それぞれ増幅する工程；
（Ｊ）前記工程（Ｉ）で得られた増幅産物のヌクレオチド配列に基づいて、前記対象物の表面から採取した前記１又は２種以上の細菌の種類の構成比率Ｖ、及び前記候補者の皮膚から採取した前記１又は２種以上の細菌の種類の構成比率Ｗをそれぞれ決定する工程；
（Ｋ）前記構成比率ＶとＷとを比較して、前記構成比率ＶとＷの類似度を決定する工程；
を含み、
上記工程（Ｄ）が、
（Ｄ’）前記工程Ｃで決定された類似度と、前記工程Ｋで決定された類似度に基づいて、前記候補者が前記対象物の使用者であるかを判定する工程；
である、対象物の使用者を判定する方法が挙げられる。
【００２９】
上記工程（Ｄ’）としては、前記工程Ｃで決定された類似度と、前記工程Ｋで決定された類似度に基づいて、前記候補者が前記対象物の使用者であるかを判定する工程である限り特に制限されないが、例えば、上記工程Ｃで決定された菌株遺伝子型の構成比率の類似度と、上記工程Ｋで決定された細菌組成の類似度との平均値を類似度として用いて、前記候補者が前記対象者の使用者であるかを判定する方法が好ましく挙げられる。なお、あるサンプルの細菌叢組成を求める方法としては、非特許文献２に記載の方法を使用することができる。
【００３０】
本発明の態様には、アクネ菌の１６Ｓ  ｒＲＮＡ遺伝子の菌株遺伝子型の構成比率に基づいて、対象物の使用者を判定するためのキットも含まれる。かかるキットは、アクネ菌基準株であるＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子（GenBankアクセッション番号NR_074675.1：配列番号１０９）の９５０位〜１３３５位（好ましくは９６８位〜１３１４位）の領域に対応する領域のポリヌクレオチドを増幅可能なプライマーセットを含んでいる限り特に制限されない。上記キットは、アクネ菌ＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡ遺伝子の９５０位〜１３３５位（好ましくは９６８位〜１３１４位）の領域に対応する領域における多型を検出するためのキットでもある。
【００３１】
上記のプライマーセットにおけるフォワードプライマー及びリバースプライマーのヌクレオチド配列は、当業者であれば、配列番号１０９に示されるヌクレオチド配列に基づいて設計することができる。例えば、プライマーのヌクレオチド配列は、上記の９５０位〜１３３５位（好ましくは９６８位〜１３１４位）の領域に対応する領域の外側のヌクレオチド配列にハイブリダイズし得るヌクレオチド配列から選択することができる。プライマーのヌクレオチド数は、好ましくは１７〜２５個である。プライマーのＴｍ値はフォワードプライマーとリバースプライマーで概ね揃えて、５５〜６５℃くらいに設定することが好ましい。プライマー同士がアニールしないように、プライマー間の相補性が少ないプライマーペアを選択することが好ましい。特にプライマーダイマーの形成による増幅効率の低下を防ぐため、各プライマーの３’末端同士がヌクレオチド３個以上連続して相補的にならないように設計することが好ましい。また、通常、プライマー内の二次構造形成を避けるために、ヌクレオチド４個以上の自己相補配列を含まないようにすることが好ましい。ＧＣ含量は４０〜６０％前後とし、部分的にＧＣリッチあるいはＡＴリッチにならないようにすることが好ましい。また、プライマーの３’末端と鋳型ＤＮＡが安定して結合するように、特にプライマーの３’側がＡＴリッチ又はＧＣリッチにならないようにすることが好ましい。
【００３２】
アクネ菌基準株であるＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子（GenBankアクセッション番号NR_074675.1：配列番号１０９）の９６８位〜１３１４位の領域に対応する領域を含む領域のポリヌクレオチドを増幅し得る好適なプライマーセットとして、１段階目のＰＣＲ用のプライマーセット（配列番号１に示されるヌクレオチド配列からなるプライマー、及び、配列番号２に示されるヌクレオチド配列からなるプライマー）と、２段階目のＰＣＲ用のプライマーセット（配列番号３に示されるヌクレオチド配列からなるプライマー、及び、配列番号４に示されるヌクレオチド配列からなるプライマー）とを含むプライマーセットが挙げられる。
【００３３】
本発明の態様には、以下の工程（Ｅ）〜（Ｈ）を含む、被験者が、Ｘ人（ただし、Ｘは１以上の任意の整数を表す。）の候補者のいずれかであるかを判定する方法も含まれる。（Ｅ）前記被験者の皮膚から採取した１又は２種以上の細菌の遺伝子を増幅する工程；
（Ｆ）前記工程（Ｅ）で得られた増幅産物のヌクレオチド配列を決定し、前記ヌクレオチド配列の多型に基づいて、前記被験者の皮膚から採取した前記１又は２種以上の細菌の菌株遺伝子型の構成比率Ｐを決定する工程；
（Ｇ）前記Ｘ人の候補者の皮膚から採取した前記１又は２種以上の細菌の菌株遺伝子型の構成比率Ｑ１〜Ｑｘ（ただし、Ｘは１以上の任意の整数を表す。）と、前記構成比率Ｐとを比較して、前記構成比率Ｐと前記構成比率Ｑ１〜Ｑｘの類似度を決定する工程；
（Ｈ）前記類似度に基づいて、前記被験者が前記Ｘ人の候補者のいずれかであるかを判定する工程；
【００３４】
上記候補者における上記構成比率Ｑ１〜Ｑｘ（ただし、Ｘは１以上の任意の整数を表す。）は、被験者における上記構成比率Ｐを決定するよりも前に決定してもよいし、後に決定してもよいが、被験者における上記構成比率Ｐを決定するよりも前に決定しておくことが好ましく、あらかじめ複数の候補者における上記構成比率Ｑ２〜Ｑｘ（ただし、Ｘは１以上の任意の整数を表す。）を決定して、その構成比率Ｑ２〜Ｑｘをデータベース化するなどしておくことがより好ましい。
【００３５】
候補者Ｘ人としては、１人であっても２人以上であってもよいが、好ましくは３人以上、より好ましくは１０人以上、さらに好ましくは５０人以上を挙げることができる。Ｘ人の上限に特に制限はないが、例えば１０００人、５００人などを挙げることができる。
【００３６】
被験者がＸ人の候補者のいずれかであるかを判定する方法の各工程における方法は、前述の「使用者の判定方法」と同様の方法を利用することができる。
【００３７】
以下、実施例により本発明をより具体的に説明するが、本発明の技術的範囲はこれらの例示に限定されるものではない。
【実施例１】
【００３８】
１．サンプル採取及びＤＮＡ抽出
アクネ菌（Propionibacterium acnes）の菌株遺伝子型の構成比率に基づいて使用者特定が可能か否かを検討するにあたり、３名の６カ所（左右指先５本、キーボード左右、ＰＣパッド、スマートフォン画面）を研究対象とした。ＴＥ１０バッファー（１０ｍＭ  Ｔｒｉｓ，１０ｍＭ  ＥＤＴＡ）に浸した滅菌綿棒を各部位に３０秒間こすりつけ、５００μＬのＴＥ１０バッファーに浸したものをサンプルとし、−８０℃で冷凍保存した。これらのサンプルから、以下の手順でＤＮＡ抽出を行った。
〔１〕サンプルに２５μＬのリゾチーム（３００ｍｇ／ｍＬ）を加え、３７℃でオーバーナイトインキュベートした。
〔２〕１５μＬのアクロモペプチダーゼ（２０，０００ｕｎｉｔｓ／ｍＬ）を加え、３７℃で８時間インキュベートした後に、５０μＬの１０％ＳＤＳと１５μＬのプロテイナーゼＫ（２５ｍｇ／ｍＬ）を加え、５５℃でオーバーナイトインキュベートした。その後、６００μＬのフェノール／クロロホルム／イソアミルアルコール混合液を加え、Ｍｉｃｒｏ  Ｓｈａｋｅｒを用いて３分間撹拌し、１７，８００×ｇ、２０℃の条件で１０分間の遠心分離を行った。
〔３〕上清に再度６００μＬのフェノール／クロロホルム／イソアミルアルコール混合液を加え、Ｍｉｃｒｏ  Ｓｈａｋｅｒを用いて１，５００ｒｐｍで３分間撹拌し、１７，８００×ｇ、２０℃の条件で１０分間の遠心分離を行った。
〔４〕水層を回収し、６０μＬの３Ｍ酢酸ナトリウム緩衝液（ｐＨ５．２）を加えた後、１．２ｍＬの１００％エタノールを加えて−８０℃で１時間冷却した。
〔５〕１７，８００×ｇ、４℃の条件で１０分間の遠心分離をした後、上清を除去して７０％エタノールを５００μＬ加えた。
〔６〕１７，８００×ｇ、４℃の条件で５分間遠心分離した後、上清を除去して５０μＬの１×ＴＥバッファーを加え、Ｍｉｃｒｏ  Ｓｈａｋｅｒを用いて５分間撹拌し、ＤＮＡを溶解した。
【実施例２】
【００３９】
２．アクネ菌のＤＮＡ断片増幅を目的としたＰＣＲ及びＰＣＲ産物の精製
本発明者らが設計したアクネ菌１６Ｓ  ｒＲＮＡ特異的なプライマー（４１４Ｆ：5’-GGGTTGTAAACCGCTTTCGCCT-3’（配列番号１）、１４４５Ｒ：5’-GTTGTGGGGGAGCCGTCGAA-3’（配列番号２））を用いて、実施例１で得られたＤＮＡ抽出物の１６Ｓ  ｒＲＮＡ遺伝子を増幅した。その際のＰＣＲ条件は以下のとおりである。
初期変性反応：９４℃で５分間
９６℃  １０秒間、６４℃  １５秒間、６８℃  １分間の３ステップを３０回繰り返す
最終伸長反応：６８℃で２分間
ポリメラーゼはTks Gflex DNA Polymerase（タカラバイオ株式会社製）を用いた。その後、ＰＣＲ産物２０μＬに対して３６μＬのAgencourt AMPure XP試薬（ベックマンコールター社製）を加え、添付マニュアルにしたがって精製を行った。
【実施例３】
【００４０】
３．株判別領域増幅を目的としたＰＣＲ、ＰＣＲ産物の精製及び濃度定量
本発明者らが設計した株判別用のプライマー（９５０Ｆ：5’-AGAACCTTACCTGGGTTTGA-3’（配列番号３）、１３３４Ｒ：5’-GATCTGCGATTACTAGCGAC-3’（配列番号４））を用いて、１６Ｓ  ｒＲＮＡ遺伝子の増幅を行った。実施例２で得られたＰＣＲ産物を３００倍希釈し、それらをテンプレートとした。ＰＣＲ条件は以下のとおりである。
初期変性反応：９４℃で２分間
９６℃  １０秒間、６４℃  １５秒間、６８℃  ３０秒間の３ステップを２０回繰り返す
最終伸長反応：６８℃で２分間
ポリメラーゼはTks Gflex DNA Polymerase（タカラバイオ株式会社製）を用いた。その後、ＰＣＲ産物２０μＬに対して３６μＬのAgencourt AMPure XP試薬（ベックマンコールター社製）を加え、添付マニュアルにしたがって精製を行った。精製後、１．５％アガロースゲルにて１５分間電気泳動を行い、Gel Red（和光純薬工業株式会社製）を用いて染色し、泳動写真を撮影した。その結果を図２に示す。図２から分かるように、ネステッドＰＣＲにより目的のバンドが増幅されたことが示された。また、ＰＣＲ産物のシーケンス結果を確認したところ、増幅産物のうち、９９％がアクネ菌のＤＮＡ断片であった。このことから、上記のプライマーを用いたネステッドＰＣＲにより、アクネ菌特異的に目的のＤＮＡ断片を増幅できることが示された。なお、得られたＰＣＲ産物の溶液は、Picogreen（サーモフィッシャーサイエンティフィック株式会社製）を用いて二本鎖ＤＮＡの濃度定量を行った。これらの結果をもとにＰＣＲ産物の体積モル濃度を算出した。実施例４のＰＣＲで用いるテンプレートの濃度が終濃度４ｎＭになるよう、各サンプルを希釈した。
【実施例４】
【００４１】
４．ユニバーサルプライマー配列付加のためのＰＣＲ、ＰＣＲ産物の精製及び濃度定量
超並列シーケンサーMiSeq（イルミナ社製）で用いるＩｎｄｅｘ配列をＤＮＡ断片に付加するため、ユニバーサルプライマーの配列（２７Ｆ＿ｍｏｄ、３３８Ｒ）を前もって付加させる必要がある。そこで、株判別用プライマーに２７Ｆ＿ｍｏｄと３３８Ｒの配列が付加されたプライマー（２７＿９５０Ｆ：5’-AGRGTTTGATYMTGGCTCAGAGAACCTTACCTGGGTTTGA-3’（配列番号５）、３３８＿１３３４Ｒ：5’-TGCTGCCTCCCGTAGGAGTGATCTGCGATTACTAGCGAC-3’（配列番号６））を用いて、ＰＣＲを行った。ＰＣＲ条件は以下のとおりである。
初期変性反応：９４℃で２分間
９６℃  １０秒間、６４℃  １５秒間、６８℃  ３０秒間の３ステップを５回繰り返す
最終伸長反応：６８℃で２分間
ポリメラーゼはTks Gflex DNA Polymerase（タカラバイオ株式会社製）を用いた。その後、ＰＣＲ産物５０μＬに対して９０μＬのAgencourt AMPure XP試薬（ベックマンコールター社製）を加え、添付マニュアルにしたがって精製を行った。精製後は、Bioanalyzer 2100（Agilent Technologics社製）を用いて濃度定量を実施した。これらの結果をもとに、実施例５のＰＣＲで使用するためのテンプレート量を決定し、終濃度が１ｎＭになるよう希釈を行った。
【実施例５】
【００４２】
５．Ｉｎｄｅｘ  ＰＣＲ及び濃度定量
超並列シーケンサーMiSeq（イルミナ社製）でシークエンスをする際に必要なアダプター配列及びＩｎｄｅｘ配列を付加するため、Ｉｎｄｅｘ  ＰＣＲを行った。プライマーは、Index F: 5'-AATGATACGGCGACCACCGAGATCTACAC-NNNNNNNN-TATGGTAATTGTAGRGTTTGATYMTGGCTCAG-3'（配列番号７）及びIndex R: 5’-CAAGCAGAAGACGGCATACGAGAT-NNNNNNNN-AGTCAGTCAGCCTGCTGCCTCCCGTAGGAGT-3’（配列番号８）を用いた。なお、上記においてNで記載した塩基配列がＩｎｄｅｘ配列であり、サンプルごとに異なる配列を用いた。ＰＣＲ条件は以下のとおりである。
初期変性反応：９８℃で１分間
９８℃  １０秒間、５５℃  １５秒間、６８℃  ３０秒間の３ステップを８回繰り返す
最終伸長反応：６８℃で３分間
ポリメラーゼはTks Gflex DNA Polymerase（タカラバイオ株式会社製）を用いた。その後、ＰＣＲ産物５０μＬに対して９０μＬのAgencourt AMPure XP試薬（ベックマンコールター社製）を加え、添付マニュアルにしたがって精製を行った。Ｉｎｄｅｘ  ＰＣＲ産物の濃度定量を、ｑＰＣＲ、Picogreen（サーモフィッシャーサイエンティフィック株式会社製）、Bioanalyzer 2100（Agilent Technologics社製）を用いて実施した。これらの結果をふまえ、それぞれのサンプルを４ｎＭに希釈した。
【実施例６】
【００４３】
６．MiSeqによるシークエンシング
４ｎＭに希釈したサンプルを混合し、MiSeqを用いてシークエンスを実施した。シークエンスはイルミナ社が示すプロトコールどおりに行った。
【実施例７】
【００４４】
７．データ解析
まず初めに、ペアエンドでシークエンスされた塩基配列をＦＬＡＳＨ（Version 1.2.11）によってアセンブルした。平均Ｑ−ｖａｌｕｅが２５以下の塩基配列は解析の対象から除いた。その後シークエンスされた塩基配列から９５０Ｆ及び１３３４Ｒのプライマー配列を除去した。得られたデータを、Ｑｉｉｍｅ（Version 1.8.0）を用いて解析した。その後サンプルごとに完全に一致する塩基配列の出現回数を数え、その上で重複する塩基配列は除去した（相同性１００％を閾値としたOperational Taxonomic Units（ＯＴＵ）を作成した）。Ribosomal Database Project（ＲＤＰ）をデータベースとして相同性検索を行い、最も類似性の高かった種がアクネ菌であるＯＴＵをその後の解析に用いた。ＲＤＰでの菌種特定ができなかったＯＴＵについては、ＮＣＢＩのＢＬＡＳＴを用いて、Nucleotide collectionをデータベースとして相同性検索を行い、最も類似性の高かった種がアクネ菌であるＯＴＵをその後の解析に用いた。最も類似性の高かった種がアクネ菌であるＯＴＵをリード数の多い順に並べ、株番号を振り分けた（最も存在量が多い株をＭＴ１として、存在量が多い順にＭＴ１（配列番号９）〜ＭＴ１００（配列番号１０８）まで番号を付した。）。なお、ＭＴ１〜ＭＴ１００の遺伝子領域（ＫＰＡ１７１２０２の１６Ｓ  ｒＲＮＡの遺伝子（配列番号１０９）の９６８位〜１３１４位の領域に対応する領域）のヌクレオチド配列のアラインメントを図１−１から図１−１２に示す。個人判別が可能か否かを検討するにあたり、ランダムフォレストアルゴリズムを用いた。ランダムフォレストによる解析は、ソフトウェア「Ｒ」(Version 3.1.2)に、ランダムフォレスト解析用の「random forest」というパッケージを実装させたソフトウェアにて行い、教師データとして所有物データ（キーボード左右、ＰＣパッド、スマートフォン画面をまとめて算出した、ＭＴ１〜ＭＴ１００の構成比率）、テストデータとして使用者データ（左右指先５本をまとめて算出した、ＭＴ１〜ＭＴ１００の構成比率）を用いた。
【００４５】
図３は、最も類似性の高かった種がアクネ菌であるＯＴＵの構成比率を、ＭＴ１〜ＭＴ３６までについて区分けして示した図である。また、図４は、ＭＴ１〜１０に着目して、構成比率を示した図である。いずれの図からも、対象物とその使用者の菌株遺伝子型の構成比率が類似していることがわかり、該構成比率が対象物の使用者判定に用いられ得ることが示された。また、ランダムフォレストによる解析結果を以下に示す。
Type of random forest: classification
Number of trees: 5000
No. of variables tried at each split: 5
OOB estimate of error rate: 0%
Confusion matrix:
S1 S2 S3 class.error
S1 2 0 0 0
S2 0 2 0 0
S3 0 0 2 0
【００４６】
この解析結果により、試験した３名いずれについても、対象物（キーボード左右、ＰＣパッド、スマートフォン画面）から採取したアクネ菌の菌株遺伝子型に基づいて使用者を判定することができた。すなわち、本発明における対象物の使用者の判定方法は正答率１００％（エラー率０％）であり、かかる判定方法が優れた精度であることが示された。なお、この解析ではＭＴ１〜ＭＴ１００の構成比率を用いたが、ＭＴ１〜ＭＴ２０の構成比率を用いた解析でも、正答率１００％の結果が得られた。
【００４７】
なお、非特許文献１（Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A., 107, 6477-6481 (2010)）には、パソコンのキーボード及びその使用者の指先をスワブで拭き取り、採取した細菌試料の１６Ｓ  ｒＲＮＡをコードする遺伝子をユニバーサルプライマーを用いて増幅し、その配列に基づいて細菌叢の組成（細菌叢に含まれる細菌の種類の構成比率）を同定したところ、キーボードとその使用者の指先の細菌叢の組成が類似していたことが開示されている。本発明者らは、この知見を利用して、細菌叢組成により対象物の使用者を判定する方法を比較実験として行った。この方法は、本発明の判定方法のように、「ある細菌種の菌株間」の遺伝子型の相違に着目するのではなく、「細菌種間」の遺伝子型の相違に着目する点で本発明の方法とは明確に異なる。
【００４８】
上記実施例１の対象物と対象者（３名）について、公知の先行技術である上記の比較実験（細菌叢組成により対象物の使用者を判定する方法を用いた実験）を行ったところ、３つの対象物のうち、１つの対象物の使用者を誤って判定した。すなわち、比較実験の正答率は６６．７％（エラー率３３．３％）であった。このことから、前述の本発明の判定方法が優れた精度であることが示された。
【実施例８】
【００４９】
８．細菌叢組成（細菌叢に含まれる細菌の種類の構成比率）についての主座標分析（Principal Coordinate Analysis： ＰＣｏＡ）と、アクネ菌遺伝子型組成についての主座標分析
１０名（Ｓ１〜Ｓ１０）の対象者（被験者）のそれぞれについて、６カ所（左手の指先５本、右手の指先５本、キーボードの左側、キーボードの右側、ＰＣパッド、スマートフォン画面）のサンプリング（サンプル採取）を行った。アクネ菌遺伝子型組成については、上記実施例１〜７に記載の方法で、測定及び分析を行った。ただし、分析については、公知の主座標分析を用いた。その結果を図５の右パネルに示す。
【００５０】
また、比較実験として、非特許文献１（Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A., 107, 6477-6481 (2010)）の方法にしたがって、前述の１０名の対象者について、前述の６カ所のサンプリングを行い、細菌叢組成について、測定及び分析を行った。ただし、分析については、公知の主座標分析を用いた。その結果を図５の左パネルに示す。同じマーク（例えば「○」）のサンプルは、同じ対象者のサンプルであることを表す。
【００５１】
主座標分析では、相関の高いサンプル同士が近い配置になるようにプロットがなされる。細菌叢組成の方の分析結果では、同種のマーク（例えば「○」）の６個のプロットの位置が比較的大きくばらついていた、すなわち、ある特定の対象者の６カ所のサンプルの各プロット位置は比較的大きくばらついていた（図５の左パネル）。それに対し、アクネ菌遺伝子型組成の方の分析では、同種のマーク（例えば「○」）の６個のプロットの位置が細菌叢組成分析の場合よりも互いに近くにまとまっており、すなわち、ある特定の対象者の６カ所のサンプルの各プロット位置は比較的近かった（図５の右パネル）。図５の結果から、細菌叢組成分析よりも、アクネ菌遺伝子型組成分析の方が、個人個人を識別する感度が高く、ある物の使用者を特定するために非常に優れていることが示された。
【実施例９】
【００５２】
９．細菌叢組成及びアクネ菌遺伝子型組成の系統樹
上記実施例８の各測定結果について、ソフトウェア「Ｒ」を用いて、ユークリッド距離を算出し、系統樹を作成した。その結果を図６に示す。図６の左側には、細菌叢組成を測定及び分析し、そして作成した系統樹を示し、図６の右側にはアクネ菌遺伝子型組成を測定及び分析し、そして作成した系統樹を示す。
【００５３】
これらの系統樹では、類似したサンプル同士が近い配置になるようにプロットした。系統樹においてあるサンプル同士をつなぐ枝の長さは、そのサンプル間のユークリッド距離を表す。系統樹において、同じマークのサンプルは、同じ対象者のサンプルであることを表す。図６から分かるように、細菌叢組成の系統樹では、同種のマーク（例えば「○」）の６個のプロットの位置が比較的大きくばらついていた、すなわち、ある特定の対象者の６カ所のサンプルの各プロット位置は比較的大きくばらついていた（図６の左パネル）。それに対し、アクネ菌遺伝子型組成の系統樹では、同種のマーク（例えば「○」）の６個のプロットの位置が細菌叢組成分析の場合よりも互いに近くにまとまっており、すなわち、ある特定の対象者の６カ所のサンプルの各プロット位置は比較的近かった（図６の右パネル）。図６の結果から、細菌叢組成分析よりも、アクネ菌遺伝子型組成分析の方が、個人個人を識別する感度が高く、ある物の使用者を特定するために非常に優れていることが示された。
【実施例１０】
【００５４】
１０．細菌叢組成及びアクネ菌遺伝子型組成における類似度
上記実施例８及び９における１０名の対象者のうち、３名（Ｓ１、Ｓ３、Ｓ５）の対象者の両手（Ｓ１ ＲＨ（Ｓ１の右手）、Ｓ１ ＬＨ（Ｓ１の左手）、Ｓ３ ＲＨ（Ｓ３の右手）、Ｓ３ ＬＨ（Ｓ３の左手）、Ｓ５ ＲＨ（Ｓ５の右手）、Ｓ５ ＬＨ（Ｓ５の左手））の組成をピックアップし、６種の手の組成について、総当たりで相関値を算出した。その結果を図７に示す。なお、相関係数には、ピアソンの相関係数を用いた。左上から右下を結ぶ点線の右上の部分がアクネ菌遺伝子型組成の相関係数を表し、点線の左下の部分が細菌叢組成の相関係数を表している。
【００５５】
図７の結果から分かるように、細菌叢組成の相関値では、Ｓ１ ＲＨとＳ１ ＬＨの相関係数は高く、また、Ｓ５ ＲＨとＳ５ ＬＨの相関係数もある程度高かったが、Ｓ３ ＲＨとＳ３ ＬＨの相関係数は比較的低く、Ｓ３ ＲＨとＳ１ ＬＨとの相関係数の方が高かった。それに対し、アクネ菌遺伝子型組成の相関係数では、同一対象者間のサンプル（Ｓ１ ＲＨとＳ１ ＬＨ、Ｓ３ ＲＨとＳ３ ＬＨ、Ｓ５ ＲＨとＳ５ ＬＨ）の相関係数が非常に高い（ｒ＞０．９９）一方、異なる対象者間のサンプルの相関係数が低いことが示された。図７の結果から、図７の結果から、細菌叢組成分析よりも、アクネ菌遺伝子型組成分析の方が、個人個人を識別する感度が高く、ある物の使用者を特定するために非常に優れていることが示された。
【実施例１１】
【００５６】
１１．ランダムフォレストを用いた、対象物の使用者の判定試験
上記実施例１〜７と同様の方法により、１０名（Ｓ１〜Ｓ１０）の対象者について、対象物（キーボードの左側、キーボードの右側、ＰＣパッド、スマートフォン画面）の使用者を判定する試験を行った。
【００５７】
アクネ菌遺伝子型組成を用いた解析方法では、存在量の多い方のアクネ菌株から何種類のアクネ菌株を解析に用いるかで正答率が異なるかを調べるために、その種類を１０種類、３０種類、５０種類、１００種類、３００種類、５００種類、１０００種類に変更して解析を行った。これらの結果を図８の左上のパネルに示す。
【００５８】
また、細菌叢組成を用いた解析方法でも、存在量の多い方の細菌から何種類の細菌を解析に用いるかで正答率が異なるかを調べるために、その種類を５０種類、１００種類、１３０種類、１５０種類、３００種類、５００種類、７００種類に変更して解析を行った。これらの結果を図８の左下のパネルに示す。
【００５９】
図８の左上パネル及び左下パネルの結果から分かるように、細菌叢組成を用いた判定では、正答率が最も高い場合でも５３．１５％であったのに対し（図８左下パネル）、アクネ菌遺伝子型組成を用いた判定では、正答率が最も高い場合で７９．４９％、最も低い場合でも６０％を超えている。このことから、アクネ菌遺伝子型組成を用いた判定は、従来の細菌叢組成を用いた判定と比較して、高精度であることが示された。
【００６０】
なお、図８の左上パネルの結果から分かるように、アクネ菌遺伝子型組成を用いた判定では、多種のアクネ菌株のうち、存在量の多い方から３０種のアクネ菌株を解析に用いた場合の正答率が最も高く、次いで、５０種のアクネ菌株を用いた場合の正答率が高かった。このことから、細菌の菌株遺伝子型組成を用いる本発明の判定方法において、解析に用いる細菌の菌株の種類は、好ましくは２０〜６０種、より好ましくは３０〜５０種であることが分かった。
【００６１】
また、本発明者らは、アクネ菌遺伝子型組成を用いた判定で正答率が最も高かった方法（多種のアクネ菌株のうち、存在量の多い方から３０種のアクネ菌株を解析に用いた方法）と、細菌叢組成（１３０種類、１５０種類又は７００種類の細菌の組成）を用いた判定方法を組み合わせた方法（Mix）を試みた。これらの方法は、判定に際して、アクネ菌株遺伝子型組成と、細菌叢組成の両方を解析する方法である。これら組み合わせた方法の結果を図８右パネルに示す。図８右パネルの結果から分かるように、正答率はさらに向上した。中でも、アクネ菌株遺伝子型組成と、１３０種類の細菌叢組成を組み合わせた方法は、正答率が最も高く、９５．７％であった。これらの結果から、細菌の菌株遺伝子型組成に加えて、細菌叢組成を用いると、より高精度の判定が可能になることが示された。
【実施例１２】
【００６２】
１２．対象者におけるアクネ菌株遺伝子型組成や細菌叢組成の経時的変化
対象者におけるアクネ菌株遺伝子型組成や細菌叢組成に経時的変化があるか否か、すなわち、一定期間経過することにより、対象者のアクネ菌株遺伝子型組成や細菌叢組成が変化するか否かを調べるために、以下の実験を行った。
【００６３】
３名（Ｓ１〜Ｓ３）の対象者のそれぞれについて、６カ所（左手の指先５本、右手の指先５本、キーボードの左側、キーボードの右側、ＰＣパッド、スマートフォン画面）のサンプリング（サンプル採取）を行った。サンプリングは２回行い、２回目のサンプリングは１回目のサンプリングから５ヶ月間経過後に行った。得られたサンプルのアクネ菌遺伝子型組成は、上記実施例１〜７に記載の方法で、測定及び分析を行った。ただし、分析については、公知の主座標分析を用いた。また、比較実験である、細菌叢組成を用いた判定法（非特許文献１）のサンプリングについても、２回目のサンプリングは１回目のサンプリングから５ヶ月間経過後に行った。
【００６４】
アクネ菌株遺伝子型組成について行った主座標分析（ＰＣｏＡ）のＰＣ１（Weighted）の結果を図９の左上パネルに示し、細菌叢組成について行った主座標分析のＰＣ１（Weighted）の結果を図９の右上パネルに示す。１回目のサンプリングのサンプルは黒丸で示し、２回目のサンプリングのサンプルは白丸で示す。また、１回目のサンプリングの結果と、２回目のサンプリングの結果の類似度は、Yue-Clayton theta similarity Indexで評価した。また、アクネ菌株遺伝子型組成の群（P. acnes）と、細菌叢組成の群（Microbiome）の２群間を、Mann-Whitney のＵ検定で比較した。その結果を図９の左下パネルに示す。図９の左下パネルの結果から分かるように、アクネ菌株遺伝子型組成を用いた判定法では、細菌叢組成を用いた判定法と比較して、１回目のサンプリングの結果と、２回目のサンプリングの結果の類似度が有意に（ｐ＜０．０１）高かった。
【００６５】
また、１回目のサンプリングのデータを教師データとし、２回目のサンプリングのデータをテストデータとして、ランダムフォレストを行った結果を図９右下パネルに示す。図９右下パネルから分かるように、細菌叢組成を用いた判定法では、正答率４０％程度であったのに対し、アクネ菌株遺伝子型組成を用いた判定法では、正答率１００％であった。
【００６６】
図９の４つのパネルの結果から、アクネ菌株遺伝子型組成は、細菌叢組成と比較して、経時的変化が少なく、サンプリングの時期の影響が少ないことが示された。そのため、使用者が触れてから比較的長い期間が経過した対象物であっても比較的高い精度で使用者を特定することができる。
【産業上の利用可能性】
【００６７】
本発明の方法によれば、皮膚常在菌叢の菌種組成（皮膚細菌叢に含まれる細菌の種類の構成比率）を解析する場合と比較して高精度で、対象物の使用者を判定することができ、犯罪捜査等の対象物の使用者判定が必要な分野における産業上の有用性は高い。また、ある対象者の皮膚から採取した細菌の菌株遺伝子型の構成比率をあらかじめ登録するなどしておき、被験者における該構成比率と比較することで、前記対象者の本人確認としても用いることが可能となることが考えられる。
【図１−１】
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【図１−２】
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【図１−３】
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【図１−４】
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【図１−５】
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【図１−６】
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【図１−７】
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【図１−８】
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【図１−９】
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【図１−１０】
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【図１−１１】
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【図１−１２】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【配列表】
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