(57)【要約】【課題】生体組織への移植に適した細胞群シートを作製することが可能な細胞培養床、細胞培養床の製造方法及び細胞培養方法を提供すること。【解決手段】本発明に係る細胞培養床は、金属酸化物からなり、第１の主面と、その反対側の第２の主面を有し、立体形状に形成され、上記第１の主面と上記第２の主面に連通する複数の貫通孔を備える。【選択図】図２
2017055687.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
金属酸化物からなり、第１の主面と、その反対側の第２の主面を有し、立体形状に形成され、前記第１の主面と前記第２の主面に連通する複数の貫通孔を備える
細胞培養床。
【請求項２】
請求項１に記載の細胞培養床であって、
前記金属酸化物は、酸化アルミニウムである
細胞培養床。
【請求項３】
立体形状を有する金属箔の酸化により形成され、第１の主面と、その反対側の第２の主面を有し、前記第１の主面と前記第２の主面に連通する複数の貫通孔を備える
細胞培養床。
【請求項４】
金属箔を立体形状に形成し、
前記金属箔を酸性溶液中で陽極酸化して、複数の細孔を形成し、
前記複数の細孔を開口させて複数の貫通孔を形成する
細胞培養床の製造方法。
【請求項５】
金属酸化物からなり、第１の主面と、その反対側の第２の主面を有し、立体形状に形成され、前記第１の主面と前記第２の主面に連通する複数の貫通孔を備える細胞培養床を準備し、
前記第１の主面に細胞を配置し、前記第２の主面を培養液に浸漬させ、前記細胞を培養する
細胞培養方法。
【請求項６】
請求項５に記載の細胞培養方法であって、
前記細胞培養床を準備するステップでは、
移植対象の形状を計測し、
計測された形状に応じて型を作製し、
前記型を用いて金属箔を立体形状に形成し、
前記金属箔を酸性溶液中で陽極酸化して、複数の細孔を形成し、
前記複数の細孔を開口させて複数の貫通孔を形成し、前記細胞培養床を作製する
細胞培養方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、生体組織の作製に利用可能な細胞培養床、細胞培養床の製造方法及び細胞培養方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
従来から、細胞培養は培地を満たしたシャーレ等の中で行われてきた。培地上で培養された細胞は二次元的に増殖し、シート状の細胞シートが得られる。また、細胞培養に適した培養床も開発されており、培養床を利用して細胞シートを作製することも行われている（例えば特許文献１及び２）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００３】
【特許文献１】特開２０１０−２２６９７５号公報
【特許文献２】特開２０１０−１８７５８５号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００４】
一方、近年では、ＥＳ細胞やｉＰＳ細胞等の幹細胞の培養による生体組織の作製も研究されている。しかしながら、作製した細胞シートを生体組織に移植する場合、細胞シートが移植先の形状に合わず余剰を生じることが多い。また、余剰となった細胞は癌化する等の問題もあり改善が求められている。
【０００５】
以上のような事情に鑑み、本発明の目的は、生体組織への移植に適した細胞シートを作製することが可能な細胞培養床、細胞培養床の製造方法及び細胞培養方法に関する。
【課題を解決するための手段】
【０００６】
上記目的を達成するため、本発明の一形態に係る細胞培養床は、金属酸化物からなり、第１の主面と、その反対側の第２の主面を有し、立体形状に形成され、上記第１の主面と上記第２の主面に連通する複数の貫通孔を備える。
【０００７】
この構成によれば、培養対象の細胞を第１の主面に配置し、第２の主面を培養液に浸漬させることにより、貫通孔を介して培養液が第１の主面に均等に供給され、細胞の培養が促進される。また、細胞培養床が立体形状に形成されているため、当該立体形状に沿った形状を有する細胞シートを作製することが可能である。
【０００８】
上記金属酸化物は、酸化アルミニウムであってもよい。
【０００９】
金属アルミニウムの陽極酸化によって形成される酸化アルミニウムは、自己組織化により孔径数十〜数百ｎｍ程度の細孔を形成する。このため、この細孔を開口させることにより、細胞培養床として利用することが可能である。
【００１０】
上記目的を達成するため、本発明の一形態に係る細胞培養床は、立体形状を有する金属箔の酸化により形成され、第１の主面と、その反対側の第２の主面を有し、上記第１の主面と上記第２の主面に連通する複数の貫通孔を備える。
【００１１】
金属箔は立体形状の形成が容易であるため、金属箔の段階で所定の立体形状を形成し、金属箔を酸化して金属酸化物とすることにより、立体形状を有する細胞培養床を得ることが可能である。
【００１２】
上記目的を達成するため、本発明の一形態に係る細胞培養床の製造方法は、金属箔を立体形状に形成し、上記金属箔を酸性溶液中で陽極酸化して、複数の細孔を形成し、上記複数の細孔を開口させて複数の貫通孔を形成する。
【００１３】
上記目的を達成するため、本発明の一形態に係る細胞培養方法は、金属酸化物からなり、第１の主面と、その反対側の第２の主面を有し、立体形状に形成され、上記第１の主面と上記第２の主面に連通する複数の貫通孔を備える細胞培養床を準備し、上記第１の主面に細胞を配置し、上記第２の主面を培養液に浸漬させ、上記細胞を培養する。
【００１４】
上記細胞培養床を準備するステップでは、移植対象の形状を計測し、計測された形状に応じて型を作製し、上記型を用いて金属箔を立体形状に形成し、上記金属箔を酸性溶液中で陽極酸化して、複数の細孔を形成し、上記複数の細孔を開口させて複数の貫通孔を形成し、上記細胞培養床を作製する。
【発明の効果】
【００１５】
以上のように本発明によれば、生体組織への移植に適した細胞シートを作製することが可能な細胞培養床、細胞培養床の製造方法及び細胞培養方法を提供することが可能である。
【図面の簡単な説明】
【００１６】
【図１】本発明の実施形態に係る細胞培養床の斜視図である。
【図２】同細胞培養床の断面図である。
【図３】同細胞培養床の拡大図である。
【図４】同細胞培養床の元となる金属箔の斜視図である。
【図５】同細胞培養床の元となる、立体形状に形成された金属箔の斜視図である。
【図６】同細胞培養床の製造方法を示す模式図である。
【図７】同細胞培養床の製造プロセスを示す模式図である。
【図８】同細胞培養床の製造プロセスを示す模式図である。
【図９】同細胞培養床を利用した細胞培養方法を示す模式図である。
【図１０】同細胞培養床の利用方法を示す模式図である。
【発明を実施するための形態】
【００１７】
本発明の実施形態に係る細胞培養床について説明する。
【００１８】
［細胞培養床の構成］
図１は、本実施形態に係る細胞培養床１００の斜視図であり、図２は細胞培養床１００の断面図、図３は細胞培養床１００の一部の斜視図である。
【００１９】
これらの図に示すように、細胞培養床１００は立体形状に形成されている。細胞培養床１００の厚みは８０μｍ以上２００μｍ以下程度であり、その大きさは数ｃｍ〜数十ｃｍ程度である。
【００２０】
細胞培養床１００は凹部１０１を有し、凹部１０１によって立体形状に形成されている。なお、凹部１０１は細胞培養床１００の立体形状の一例である。細胞培養床１００の立体形状は、作製を所望する細胞シートの形状に応じて適宜変更可能であり、細胞培養床１００は、湾曲面や凸部、凹凸構造等の各種立体形状を有するものとすることができる。
【００２１】
立体形状の大きさ（平坦面からの変形程度）は特に限定されないが、微視的な程度ではなく、少なくとも肉眼で視認可能な程度である。また、図１及び図２では、凹部１０１は細胞培養床１００のうち一部に形成されているが、細胞培養床１００の全体にわたって立体形状が形成されていてもよい。
【００２２】
図１及び図２に示すように、細胞培養床１００の表裏面を第１主面１０１ａと第２主面１０１ｂとする。図２及び図３に示すように細胞培養床１００は、第１主面１０１ａと第２主面１０１ｂに連通する複数の貫通孔１０２を有する。貫通孔１０２は、第１主面１０１ａと第２主面１０１ｂに対して垂直方向（細胞培養床１００の厚み方向）に伸長するが、同方向に対して多少傾斜する方向に伸長してもよい。なお、図１では貫通孔１０２の図示は省略されている。
【００２３】
貫通孔１０２の孔径は３０ｎｍ以上２５０ｎｍ以下とすることができる。また、貫通孔１０２は、孔径が漸減するテーパー形状を有するものであってもよく、例えば、第１主面１０１ａにおける孔径が８０ｎｍ程度の場合、第２主面１０１ｂにおける孔径は５０ｎｍ程度となるようなテーパー形状とすることができる。なお、図２及び図３における貫通孔１０２は模式的なものであり、細胞培養床１００に対する比率やアスペクト比（孔長さ／孔径）は実際のものとは異なる。
【００２４】
貫通孔１０２は、細胞培養床１００の元となる金属箔に対して陽極酸化を実施すると、金属酸化物の自己組織化作用によって形成される細孔を利用して形成することができ、この詳細については後述する。
【００２５】
細胞培養床１００の構成材料は、陽極酸化によって自己組織化による細孔を形成することが可能な金属酸化物であり、典型的には酸化アルミニウム（Ａｌ２Ｏ３）である。また、この他にもＴａ、Ｎｂ、Ｔｉ、Ｚｒ、Ｈｆ、Ｚｎ、Ｗ又はＳｂの酸化物を細胞培養床１００の構成材料とすることができる。
【００２６】
［細胞培養床の製造方法］
細胞培養床１００の製造方法について説明する。図４は、細胞培養床１００の元となる金属箔２００の斜視図である。金属箔２００は、上述のような陽極酸化によって自己組織化による細孔が形成される金属からなる箔であり、一般的な金属箔を利用することができる。
【００２７】
まず、金属箔２００を立体形状に加工する。図５は、立体形状に加工した金属箔２００の斜視図であり、金属箔２００に凹部２０１が形成されている。凹部２０１は立体形状の一例である。金属箔２００の立体形状への加工方法は特に限定されない。例えば、所望する立体形状に沿った型を作製し、真空成型等によって金属箔２００を型に押し当てて立体形状を形成することができる。
【００２８】
続いて、金属箔２００に陽極酸化処理を施す。図６は、陽極酸化処理の態様を示す模式図である。同図に示すように、酸性電解液Ｌ中に金属箔２００及び対向電極Ｅを浸漬させ、金属箔２００及び対向電極Ｅの間に電源Ｐを接続する。
【００２９】
酸性電解液Ｌは、酸性の電解液であり、硫酸、シュウ酸又はマロン酸等の水溶液を利用することができる。電源ＰはＤＣ（Direct Current）電源を利用することができる。電源Ｐによって、金属箔２００と対向電極Ｅの間に電圧を印加すると、金属箔２００の陽極酸化が生じる。なお、印加電圧は数十〜数百Ｖである。
【００３０】
図７及び図８は、陽極酸化及びその後の製造プロセスを示す模式図である。図７（ａ）は、金属材料Ｓ１からなる金属箔２００の模式図である。金属箔２００は上記のように、立体形状に形成されているが、ここでは立体形状の図示は省略する。
【００３１】
金属箔２００を図６に示すように酸性電解液Ｌに浸漬させ、対向電極Ｅと金属箔２００の間に所定の電圧を印加する。これにより、金属材料Ｓ１の陽極酸化が進行し、図７（ｂ）に示すように、金属酸化物Ｓ２と自己組織化による細孔Ｈ１が形成される。さらに電圧の印加を継続すると、図７（ｃ）に示すように金属箔２００の大部分が金属酸化物Ｓ２となる。
【００３２】
続いて、図８（ａ）に示すように、残留する金属材料Ｓ１を除去する。金属材料Ｓ１は、酸性溶液による溶解によって除去することができる。例えば、金属材料Ｓ１がアルミニウムの場合、塩化銅塩酸溶液（塩化銅（ＩＩ）濃度０．２ｍｏｌ／Ｌ、塩酸濃度６ｍｏｌ／Ｌ）に浸漬させることにより金属材料Ｓ１を除去することができる。
【００３３】
なお、反応熱によって塩化銅塩酸水溶液の温度が上昇するが、温度上昇に伴って反応性も上昇し、金属酸化物Ｓ２が溶解するため、塩化銅塩酸水溶液を水冷等によって保温することが望ましい。また、これ以外の方法によって残留する金属材料Ｓ１を除去してもよい。
【００３４】
続いて、図８（ｂ）に示すように、細孔Ｈ１を開口し、貫通孔Ｈ２を形成する。細孔Ｈ１の開口は、酸又はアルカリによる溶解や、エッチングによって行うことができる。具体的には、水酸化ナトリウム水溶液等のアルカリ性溶液や塩酸又はリン酸等の酸性水溶液に金属酸化物Ｓ２を浸漬させることにより、細孔Ｈ１を開口することができる。また、塩素系ガスによる反応性イオンエッチング（ＲＩＥ）によって金属酸化物Ｓをエッチングし、貫通孔Ｈ２を形成してもよい。また、これ以外の方法によって細孔Ｈ１を開口してもよい。
【００３５】
以上のようにして、細胞培養床１００が形成される。なお、金属箔２００の立体的形状はそのまま細胞培養床１００においても維持される。このため、金属箔２００を任意の立体的形状に形成し、上記製造プロセスを施すことにより、任意の立体的形状を有する細胞培養床１００を作製することが可能である。一方、陽極酸化によって形成される金属酸化物は柔軟性がほとんどなく、金属酸化物を生じさせた後に立体的形状に形成することは困難である。
【００３６】
なお、酸性電解液Ｌの種類や印加電圧によって、細孔Ｈ１（及び貫通孔Ｈ２）の孔径を調整することが可能である。具体的には濃度任意、温度任意の硫酸水溶液中で定電圧２５Ｖを印加することにより、孔径２５ｎｍ程度の細孔Ｈ１が形成され、濃度任意、温度任意のシュウ酸水溶液中で定電圧４０Ｖを印加することにより、孔径３０〜５０ｎｍ程度の細孔Ｈ１が形成される。
【００３７】
また、濃度任意、温度任意のマロン酸水溶液中で定電圧１００〜１２０Ｖを印加することにより、孔径１００〜１５０ｎｍ程度の細孔Ｈ１が形成される。さらに、細孔Ｈ１の形成前に予め金属材料Ｓ１上に酸化皮膜を形成させてもよい。
【００３８】
具体的には、金属材料Ｓ１をホウ酸アンモニウム水溶液中に浸漬させ、定電圧を印加することにより、金属材料Ｓ１上に酸化皮膜が形成される。この後、上記各酸性電解液中で陽極酸化を施すことにより、細孔Ｈ１を形成することができる。この処理は、特に印加電圧が高い（１００Ｖ程度以上）場合に金属材料Ｓ１の表面に生じるヤケと呼ばれる溶解反応を防止するために有効である。
【００３９】
［細胞培養床による細胞培養］
細胞培養床１００を利用した細胞の培養方法について説明する。図９は細胞の培養方法を示す模式図である。図９（ａ）に示すように、細胞培養床１００の第１主面１０１ａに培養対象の細胞Ｃを載置する。細胞Ｃの種類は特に限定されないが、例えばＥＳ細胞やｉＰＳ細胞である。また、細胞培養床１００の第２主面１０１ｂを培養液Ｂに浸漬させる。培養液Ｂの種類は特に限定されない。
【００４０】
そうすると、貫通孔１０２の毛細管現象によって培養液Ｂが貫通孔１０２内に染み込み、図９（ｂ）に示すように、第１主面１０１ａに到達する。細胞培養床１００の全体にわたって貫通孔１０２が形成されているため、培養液Ｂは第１主面１０１ａにおいて均等に染み出す。なお、細胞Ｃを細胞培養床１００に載置する前に細胞培養床１００を培養液Ｂに浸漬させてもよい。
【００４１】
この状態で培養を継続すると、図９（ｃ）に示すように、細胞Ｃは増殖し、細胞群からなる細胞シートＴが形成される。上記のように、細胞培養床１００は凹部１０１のような立体形状が形成されているため、細胞シートＴはその立体形状に沿って成長する。
【００４２】
細胞シートＴを細胞培養床１００から剥がすと、細胞培養床１００に応じた形状を有する細胞シートＴを得ることが可能である。また、貫通孔１０２によって第１主面１０１ａに均等に培養液Ｂが供給されるため、培養液Ｂの供給量の差異による細胞成長の不均衡が生じす、細胞培養床１００の立体形状に係わらずに良好に細胞シートＴを作製することができる。なお、細胞培養床１００が生物育成阻害要因を有しないことは、大腸菌培養試験によって確認されている。
【００４３】
以上のように、細胞培養床１００を利用することにより、任意の立体形状を有する細胞シートＴを作製することができる。細胞培養床１００の立体形状は金属箔２００の立体形状によって決まるため、予め移植対象（臓器等）の形状に合わせて金属箔２００に立体形状を形成しておくことにより、移植が容易で、かつ余剰が生じない細胞シートＴを作製することが可能である。
【００４４】
なお、上記説明では、培養液Ｂは貫通孔１０２による毛細管現象によって第１主面１０１ａに供給されるとしたが、必ずしも毛細管現象によるものでなくてもよい。例えば、培養液Ｂから第２主面１０１ｂに対して液圧を印加してもよく、第１主面１０１ａ側を負圧にしてもよい。いずれであっても、貫通孔１０２を介して培養液Ｂが第１主面１０１ａに供給されればよい。
【００４５】
［細胞培養床の利用方法］
細胞培養床１００の利用方法について説明する。図１０は、細胞培養床１００の利用方法を示すフローチャートである。
【００４６】
同図に示すように、医療機関において、移植対象（臓器等）の画像測定が実施される（Ｓｔ１０１）。画像測定は例えば、ＣＴ（computed tomography）、ＭＲＩ(magnetic resonance imaging)、超音波イメージング又はＸＰ（X‐ray photograph）等によって行うことが可能であるが、移植対象の立体形状の測定が可能な測定方法であればよい。
【００４７】
測定されたデータは編集され（Ｓｔ１０２）、移植対象の立体形状データが作製される。編集は例えば、医療用ワークステーションによって実施することができる。立体形状データは工業機関に送られ、工業機関において編集（Ｓｔ２０１）がなされる。編集は例えば３ＤＣＡＤ（computer aided design）を利用して行われる。
【００４８】
続いて、工業機関は、造型を行い（Ｓｔ２０２）、移植対象の立体形状を作製する。造型は例えば、３Ｄプリンタによって行うことができる。この工程では、移植対象の全体の立体形状を造型してもよく、移植対象の一部の立体形状を造形してもよい。
【００４９】
続いて、工業機関は、前ステップで作製された型を利用して金属箔２００の立体形状を形成する（Ｓｔ２０３）。立体形状の形成は例えば、負圧によって型に金属箔２００を押圧する真空成型によって行うことができる。
【００５０】
続いて、工業機関は、細胞培養床１００の作製を行う（Ｓｔ２０４）。細胞培養床１００は上述のように、金属箔２００に陽極酸化処理等を施すことによって作製することができる。
【００５１】
また、医療機関は、採取（Ｓｔ１０３）を実施する。採取では、移植対象の体細胞やＤＮＡ（deoxyribonucleic acid）等が採取される。これらの採取物は細胞培養機関に送られる。
【００５２】
細胞培養機関は、医療機関から遅れられた採取物を元に、培養対象の細胞を作成（Ｓｔ３０１）する。この作成では例えば、ｉＰＳ細胞の初期化や分化がなされる。続いて細胞培養機関は培養対象の細胞を培養して増殖させ（Ｓｔ３０２）、さらに培養を継続して生体組織を形成する（Ｓｔ３０３）。細胞培養機関は、この細胞増殖や生体組織の形成に細胞培養床１００を利用することが可能である。なお、細胞培養床１００は、Ｓｔ３０２とＳｔ３０３のいずれか一方又は両方で細胞培養床１００を利用することができる。
【００５３】
上記のように、細胞培養床１００の利用によって、立体形状に形成された細胞シートが得られる。作成された細胞シートは医療機関に送られ、医療機関によって移植対象に移植される（Ｓｔ２０４）。細胞シートは予め移植対象の立体形状に形成されているため、細胞シートの余剰が発生せず、移植に適している。
【００５４】
なお、ここに示した細胞培養床１００の利用方法は一例であって、細胞培養床１００は他の方法で利用されてもよい。
【実施例】
【００５５】
［実施例１］
０．３ｍｏｌ／Ｌシュウ酸水溶液中でアルミニウム板を陽極に、ＳＵＳ３０４（ステンレス）板を陰極にして定電圧４０Ｖを印加し、孔径５０ｎｍ、細孔間隔１００ｎｍ程度のポーラス構造を有したアルミナ（酸化アルミニウム）を形成した。ここで得られたポーラスアルミナは黄色を帯びた半透明であった。
【００５６】
［実施例２］
５．０ｍｏｌ／Ｌマロン酸水溶液中でアルミニウム板を陽極に、ＳＵＳ３０４板を陰極にして定電圧１１５Ｖを印加し、孔径１０００ｎｍ、細孔間隔２５０ｎｍ程度のポーラス構造を有したアルミナを形成した。ただし、アルミニウム板に何の処理もせずに１１５Ｖを印加すると局所的にヤケと呼ばれる溶解反応が起きてしまい、板の表面全体を陽極酸化する事はできなかった。この為、０．１ｍｏｌ／Ｌホウ酸アンモニウム水溶液中で１２３Ｖを印加する事により予めバリアの役目を果たす酸化皮膜を形成し、その後にマロン酸による処理を行う事で安定した陽極酸化が可能となった。ここで得られたポーラスアルミナは不透明の褐色であった。
【００５７】
［実施例３］
０．３ｍｏｌ／Ｌリン酸水溶液中でアルミニウム板を陽極に、ＳＵＳ３０４板を陰極にして定電圧１８５Ｖを印加し、孔径１５０ｎｍ、細孔間隔４６０ｎｍ程度のポーラス構造を有したアルミナを形成した。但し、アルミニウム板に何の処理もせずに１８５Ｖを印加すると局所的にヤケと呼ばれる溶解反応が起きてしまい、板の表面全体を陽極酸化する事はできなかった。この為、０．１ｍｏｌ／Ｌホウ酸アンモニウム水溶液中で１２３Ｖを印加する事により予めバリアの役目を果たす酸化皮膜を形成し、その後にリン酸による処理を行う事で安定した陽極酸化が可能となった。ここで得られたポーラスアルミナは不透明の白色であった。
【００５８】
［実施例４］
０．３ｍｏｌ／Ｌシュウ酸水溶液中で、押し型に当てる等して予め突起や凹み等の立体的形状を形成したアルミニウム板を陽極に、ＳＵＳ３０４板を陰極にして定電圧４０Ｖを印加し、陽極酸化を行った。直径７．６ｃｍのアルミニウム板を使用した場合、１００００Ｃまでの印加で約１００μｍの厚みのアルミナが形成された。陽極酸化の後、表面にアルミナが形成されたアルミニウム板を、６ｍｏｌ／Ｌの塩酸に０．２ｍｏｌ／Ｌ程度となる様に塩化銅を溶解させた液に浸漬して余剰のアルミニウムを溶解除去した。得られたポーラスアルミナは予め与えられたアルミニウム板の立体的形状を維持した。
【００５９】
余剰のアルミニウムが付いていた面は細孔の先端となり、アルミナによって閉じられている。これを開口させる為に乾式または湿式にてエッチングを行った。乾式では塩素系のガス、主にＢＣＬ３導入によるＲＩＥ（Reactive Ion Etching）にて処理を行った。湿式では水酸化ナトリウム水溶液、塩酸水溶液、又はリン酸水溶液を使用した。
【００６０】
ＲＩＥにて開口させたポーラスアルミナを、液体培地を満たした円筒の上に置き、更にその上へ薬包紙を置いた状態で暫く放置した。その後、薬包紙に液体培地の滲みが認められ、毛細管現象により液体培地が吸い上げられた事を確認した。"
【符号の説明】
【００６１】
１００…細胞培養床
１０１…凹部
２００…金属箔
２０１…凹部
【図１】
2017055687.tif 000003
【図２】
2017055687.tif 000004
【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図８】
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【図１０】
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【図７】
2017055687.tif 000011
【図９】
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