(57)【要約】【課題】血液由来検体中のこれらの肝疾患の新たな診断マーカーの提供。【解決手段】血液由来検体中のインポーチンα４、インポーチンβ又は１４−３−３ζ／δを測定することを特徴とする肝疾患の判定方法。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
血液由来検体中のインポーチンα４、インポーチンβ又は１４−３−３ζ／δを測定することを特徴とする肝疾患の判定方法。
【請求項２】
肝疾患が、オートファジー機能障害関連肝疾患又は非アルコール性脂肪性肝疾患である請求項１記載の判定方法。
【請求項３】
血液由来検体中のインポーチンα４、インポーチンβ又は１４−３−３ζ／δの濃度が、健常者の血液由来検体中の濃度に比べて高い場合に、肝疾患であると判定する請求項１又は２記載の方法。
【請求項４】
血液由来検体中のインポーチンα４、インポーチンβ又は１４−３−３ζ／δの測定試薬を含有する肝疾患診断薬。
【請求項５】
肝疾患が、オートファジー機能障害関連肝疾患又は非アルコール性脂肪性肝疾患である請求項４記載の診断薬。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、オートファジー機能障害関連肝疾患や非アルコール性脂肪性肝疾患等の肝疾患の判定方法及び診断薬に関する。
【背景技術】
【０００２】
細胞内蛋白分解機能の一つであるオートファジーは、細胞保護的に作用し、オートファジー機能の破錠は種々の疾病の発症に関与している。
【０００３】
非アルコール性脂肪性肝疾患（ＮＡＦＬＤ）は肥満人口増加に伴って増えてきている。ＮＡＦＬＤの中には肝炎症や線維化を伴った非アルコール性脂肪性肝炎（ＮＡＳＨ）という病態が含まれる。ＮＡＳＨは肝硬変や肝癌に移行する病態であるため、早期の診断や治療介入が必要と思われるが、確定診断のためには侵襲的な検査である肝生検を行い、病理学的に診断する必要がある。
ＮＡＳＨ患者の肝組織では蛋白凝集体であるＭａｌｌｏｒｙ−Ｄｅｎｋ  ｂｏｄｙが観察され、この蛋白凝集体形成にはオートファジーによって特異的に分解されるｐ６２が関与しておりオートファジー機能異常がＮＡＳＨ病態形成に関与するものと考えられている（非特許文献１）。
【０００４】
一方、核マトリクス蛋白の変性、量的変化は細胞増殖や核内シグナル伝達に影響を与え発癌に関与すると考えられている。細胞死において核マトリクス蛋白の非可溶成分が血中に放出されることから、変性した核マトリクス蛋白の検出は新規腫瘍マーカーとして有望視されている（非特許文献２〜４）。
【先行技術文献】
【非特許文献】
【０００５】
【非特許文献１】Ｈｅｐａｔｏｌ  Ｒｅｓ．２０１４  Ｓｅｐ；４４（９）：１０２６−３６
【非特許文献２】ＣＡＮＣＥＲ  ＲＥＳＥＡＲＣＨ  ５２，４２２−４２７，１９９２
【非特許文献３】Ｐｒｏｃ  Ｎａｔｌ  Ａｃａｄ  Ｓｃｉ  ＵＳＡ．８７（１２）：４６０５−９，１９９０
【非特許文献４】Ｊ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｃｈｅｍ．１；９１（２）：３６５−７４，２００４
【非特許文献５】Ｅｘｐ．Ｃｅｌｌ  Ｒｅｓ．，ＩＳＯ：４６０−４６６，１９８９．
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
オートファジー機能障害関連肝疾患やＮＡＦＬＤ等の肝疾患は、肝生検による確定診断が必要であり、血液由来検体を用いた新たな診断手段の開発が望まれている。従って、本発明の課題は、血液由来検体中のこれらの肝疾患の新たな診断マーカーを提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
そこで本発明者は、オートファジー欠損肝組織及び脂肪肝モデルマウスより核マトリクス蛋白を単離し、それらの核マトリクス蛋白とオートファジー欠損肝組織及び脂肪肝の関係を検討したところ、オートファジー欠損肝組織と脂肪肝で特異的に発現が増加している核マトリクス蛋白を多数見出した。さらに、それらの核マトリクス蛋白のうち、インポーチンα４、インポーチンβ１及び１４−３−３ζ／δは、血液中でも検出されるものであることから、これらの３成分の血液中の濃度を測定すれば、オートファジー機能障害関連肝疾患又は非アルコール性脂肪性肝疾患が判定できることを見出し、本発明を完成した。
【０００８】
すなわち、本発明は次の〔１〕〜〔５〕の発明を提供するものである。
【０００９】
〔１〕血液由来検体中のインポーチンα４、インポーチンβ又は１４−３−３z／δを測定することを特徴とする肝疾患の判定方法。
〔２〕肝疾患が、オートファジー機能障害関連肝疾患又は非アルコール性脂肪性肝疾患である〔１〕記載の判定方法。
〔３〕血液由来検体中のインポーチンα４、インポーチンβ又は１４−３−３z／δの濃度が、健常者の血液由来検体中の濃度に比べて高い場合に、肝疾患であると判定する〔１〕又は〔２〕記載の方法。
〔４〕血液由来検体中のインポーチンα４、インポーチンβ又は１４−３−３ζ／δの測定試薬を含有する肝疾患診断薬。
〔５〕肝疾患が、オートファジー機能障害関連肝疾患又は非アルコール性脂肪性肝疾患である〔４〕記載の診断薬。
【発明の効果】
【００１０】
本発明方法によれば、血液中のインポーチンα４、インポーチンβ又は１４−３−３z／δの濃度を測定することにより、オートファジー機能障害関連肝疾患又は非アルコール性脂肪性肝疾患が診断でき、早期治療が可能となる。
【図面の簡単な説明】
【００１１】
【図１】Ａｔｇ７  ＫＯ、野生マウス、ＫＫ−Ａｙ及びＣ５７ＢＬ／６Ｊの肝臓中の核膜蛋白の二次元電気泳動像を示す。
【図２】２０種の核マトリクス蛋白のウェスタンブロット結果を示す。
【図３】インポーチンβの免疫染色像を示す。
【図４】血液中のインポーチンβ、インポーチンα４及び１４−３−３ζ／δの濃度を示す。
【発明を実施するための形態】
【００１２】
本発明の測定対象、すなわち肝疾患マーカーであるインポーチンα４及びインポーチンβは、核局在信号（ｎｕｃｌｅａｒ  ｌｏｃａｌｉｚａｔｉｏｎ  ｓｉｇｎａｌ．ＮＬＳ）に結合してタンパク質を細胞核の中に運び込む役割を担う輸送タンパク質である。しかし、これらのマーカーが肝疾患に関与していることは知られていない。
また、１４−３−３z／δは、細胞内でのシグナル伝達に関与するタンパク質であり、Ｃｒｅｕｔｚｆｅｌｄｔ−Ｊａｋｏｂ病患者の脳脊髄液に増加することが知られている。しかし、１４−３−３z／δと肝疾患の関係は全く知られていない。
【００１３】
本発明で用いる検体は、肝組織ではなく、血液由来検体である。血液由来検体としては、インポーチンα４、インポーチンβ及び１４−３−３z／δが存在していればよく、血清、血漿が好ましい。
【００１４】
血液由来検体中のインポーチンα４、インポーチンβ又は１４−３−３z／δの測定手段としては、免疫学的測定法、液体クロマトグラフィー等が挙げられるが、定量性、簡便性の点から免疫学的測定法が好ましい。
免疫学的測定法としては、酵素標識免疫学的測定（ＥＩＡ）、放射性同位元素標識免疫学的測定（ＲＩＡ）、蛍光標識免疫学的測定、凝集法、比濁法、ウェスタンブロット法等が挙げられる。
免疫学的測定には、抗インポーチンα４抗体、抗インポーチンβ抗体又は抗１４−３−３z／δ抗体が用いられるが、これらは市販品を使用することができる。
【００１５】
本発明の具体的な免疫学的測定方法としては、ＥＬＩＳＡ（酵素免疫測定法）、ＣＬＥＩＡ（化学発光酵素免疫測定法）、ＲＩＡ（ラジオイムノアッセイ）、ＬＴＩＡ（ラテックス免疫比濁法）などの公知の方法を使用することができる。ＥＬＩＳＡの場合、例えば、インポーチンα４、インポーチンβ又は１４−３−３z／δを認識する抗体を結合させた不溶性担体と酵素標識抗体を組み合せる方法が挙げられる。
【００１６】
ＥＬＩＳＡやＬＴＩＡに使用される不溶性担体としては、通常の免疫学的測定試薬に使用され工業的に大量生産可能な有機系の不溶性担体が使用される。ＥＬＩＳＡにおいては抗体の吸着性に優れかつ生物学的活性を長期間安定的に保持できるポリスチレン等の９６穴のマイクロプレート、ＬＴＩＡにおいてはポリスチレン系のラテックス粒子が好ましい。
【００１７】
上記不溶性担体の表面に抗体を担持させる手法は種々知られており、本発明において適宜利用できる。例えば、担持（感作）方法として不溶性担体表面に抗体を物理的に吸着させる方法や、官能基を有する不溶性担体表面に既知の方法である物理結合法や化学結合法により抗体を効率的に感作する方法が挙げられる。
【００１８】
反応は、例えば、ｐＨを制御するためのリン酸緩衝液、グリシン緩衝液、トリス緩衝液、グッド緩衝液等の緩衝成分、非特異反応を回避するための界面活性剤や塩化ナトリウムなど、安定化剤としてのウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）、ショ糖、高分子多糖類など、反応性を制御する前記物質の他にデキストランなどの水溶性多糖類、酵素の阻害剤等の添加剤を適宜溶解させても良い。
【００１９】
ＥＬＩＳＡにおける酵素標識抗体は、公知の方法によって調製することができる。例えば、石川らの方法（マレイミド法：「酵素免疫測定法    第３版    医学書院」）等に従い、抗体をそのまま、あるいは必要に応じて抗体を適当なプロテアーゼで限定分解してＦ（ａｂ’）２又はＦａｂ’とした後、酵素で標識することができる。標識に使用する酵素としてはペルオキシダーゼ、アルカリフォスファターゼ、β−Ｄ−ガラクトシダーゼ、グルコースオキシダーゼなどが挙げられる。さらに、酵素活性を測定するために基質、必要により発色剤が用いられる。酵素としてペルオキシダーゼを用いる場合には、基質として過酸化水素を用い、発色剤としてｏ−フェニレンジアミン、３，３’，５，５’−テトラメチルベンチジン、２，２’−アジノジ−（３−エチルベンズチアゾリンスルホン酸）アンモニウム塩等を用いることができ、酵素にアルカリフォスファターゼを用いる場合は、基質としてｐ−ニトロフェニルフォスフェート等を、酵素にβ−Ｄ−ガラクトシダーゼを用いる場合は、基質としてβ−Ｄ−ガラクトピラノシド等を、酵素にグルコースオキシダーゼを用いる場合は、ペルオキシダーゼの共存下で、グルコースオキシダーゼの基質としてβ−Ｄ−グルコース、発色剤として酵素がペルオキシダーゼである場合に使用した発色剤等を用いることができる。
【００２０】
ＥＬＩＳＡにおける酵素標識抗体の酵素活性に由来する基質と酵素の反応生成物を測定する方法は特に限定されない。例えば、酵素がペルオキシダーゼ、基質が過酸化水素、発色剤がｏ−フェニレンジアミンの場合、酵素反応生成物固有の波長、４９２ｎｍにおける吸光度として９６穴マイクロプレートリーダーで読み取ることが可能である。
【００２１】
ＬＴＩＡにおける不溶性担体の凝集程度を測定する方法は特に限定されない。例えば、凝集を定性的ないし半定量的に測定する場合は、既知濃度試料の濁度程度と測定試料の濁度程度との比較から、凝集の程度を目視によって判定することも可能である。また、該凝集を定量的に測定する場合は、簡便性及び精度の点からは、光学的に測定することが好ましい。凝集の光学的測定法としては、公知の方法が利用可能である。より具体的には、例えば、いわゆる比濁法（凝集塊の形成を濁度の増加として捕らえる）、粒度分布による測定法（凝集塊の形成を粒度分布ないしは平均粒径の変化として捕らえる）、積分球濁度法（凝集塊の形成による前方散乱光の変化を積分球を用いて測定し、透過光強度との比を比較する）などの種々の方式が利用可能である。
【００２２】
血液由来検体中のインポーチンα４、インポーチンβ又は１４−３−３z／δの濃度が、健常者のその濃度に比べて高い場合には、肝疾患、特にオートファジー機能障害関連肝疾患又はＮＡＦＬＤであると判定できる。
オートファジー機能障害関連肝疾患には、α１−アンチトリプシン欠損症、肝癌、アルコール性肝炎、肝癌が含まれる。またＮＡＦＬＤには、ＮＡＳＨが含まれる。
【００２３】
本発明の血液由来検体中のインポーチンα４、インポーチンβ又は１４−３−３z／δの測定試薬としては、前記のインポーチンα４、インポーチンβ又は１４−３−３z／δの免疫学的測定試薬が挙げられる。インポーチンα４、インポーチンβ又は１４−３−３z／δの免疫学的測定試薬には、インポーチンα４、インポーチンβ又は１４−３−３z／δを認識する抗体及び酵素標識抗体が含まれる。
【００２４】
本発明の判定方法によれば、オートファジー機能障害関連肝疾患、ＮＡＦＬＤ等が非侵襲的に判定できるので、早期に治療方針が決定できる。
【実施例】
【００２５】
次に実施例を挙げて本発明を詳細に説明する。
【００２６】
実施例１
（方法）
（１）オートファジー欠損肝組織（Ａｔｇ７  ＫＯ）の作製
肝特異的Ａｔｇ７Ｆ／Ｆ，：Ａｌｂ−Ｃｒｅマウス（Ｊ  Ｃｅｌｌ  Ｂｉｏｌ．２００５  ９；１６９（３）：４２５−３４．）を全身麻酔下で開腹し、下大静脈にカテーテルを挿入し、下大静脈から門脈に逆行的にリン酸緩衝生理食塩水を還流し、肝内の血球成分除去を行った。その後、肝組織を採取し、液体窒素を用いて凍結保存した。
（２）脂肪肝モデルマウスから肝組織の採取
肥満モデルマウスＫＫＡｙマウスを全身麻酔下で開腹し、下大静脈にカテーテルを挿入し、下大静脈から門脈に逆行的にリン酸緩衝生理食塩水を還流し、肝内の血球成分除去を行った。その後、肝組織を採取し、液体窒素を用いて凍結保存した。
（３）上記のＡｔｇ７  ＫＯ及びＫＫＡｙマウスならびにそれぞれのコントロールとなる野生マウス及びＣ５７ＢＬ／６Ｊマウスの肝組織からＱプロテオーム核蛋白キット（ＱＩＡＧＥＮ社  Ｑ−ｐｒｏｔｅｏｍｅ  ｎｕｃｌｅａｒ  ｐｒｏｔｅｉｎ  ｋｉｔ  ｃａｔ．ＮＯ  ３７５８２）を用いて核蛋白不溶性画分を抽出した。核蛋白１５μｇ  １ＰＧ  Ｂｕｆｆｅｒ  ｐＨ３〜１０のストリップ上に分離し、７．５％ＳＤＳ−ＰＡＧＥに付し、次いで銀染色した。
【００２７】
（結果）
二次元電気泳動像を図１に示す。図１から、コントロール群では検出されない核マトリクス蛋白が、Ａｔｇ７  ＫＯ及びＫＫ−Ａｙでは複数あることがわかる。
【００２８】
オートファジー欠損肝組織（Ａｔｇ７  ＫＯ）及び脂肪肝モデル（ＫＫ−Ａｙ）で発現増加が観察された核マトリクス蛋白のスポットを質量分析器によって同定した。その結果を表１に示す。
【００２９】
【表１】
2017067718.tif 000002
【００３０】
実施例２
実施例１で得られた核マトリクス蛋白とマウス肝組織薄切切片を用いてインポーチンα４、インポーチンβ及び１４−３−３ζ／δの一次抗体（ａｂｃａｍ社）によるウェスタンブロット及び免疫染色した。その結果を図２及び図３に示す。
図２及び図３より、野生マウス、Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウスからの核マトリクス蛋白よりもＡｔｇ７  ＫＯ及びＫＫＡｙマウスからの核マトリクス蛋白でインポーチンα４、インポーチンβ及び１４−３−３ζ／δはより多く発現しており、さらにこれらの蛋白はＡｔｇ７  ＫＯ及びＫＫＡｙマウス肝細胞の核に局在していた。
【００３１】
実施例３
インポーチンα４、インポーチンβ及び１４−３−３ζ／δの一次抗体を用いて、ウェスタンブロット法により、Ｃ５７ＢＬ／６Ｊマウス血清中及びＫＫＡｙマウス血清中のインポーチンα４、インポーチンβ及び１４−３−３ζ／δ濃度を測定した。その結果を図４に示す。
図４より、脂肪肝モデルＫＫＡｙマウス血清中のインポーチン４α、インポーチンβ及び１４−３−３ζ／δの濃度は、ＢＬ６（正常マウス）に比べて有意に高いことが判明した。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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