(57)【要約】【課題】担体表面への嫌気性微生物の付着性を高めることができる担体処理方法と、この方法で処理された担体を用いる有機性排水の生物処理方法とを提供する。【解決手段】流動床担体方式の嫌気性生物処理装置に用いられる担体に対し、嫌気性生物処理装置の起動時又は起動前に嫌気性微生物の付着性を向上させるための処理を施す担体処理方法であって、嫌気性微生物の存在下で担体と下記Ａ又はＢの凝集剤水溶液とを接触させることを特徴とする嫌気性生物処理担体の処理方法。  凝集剤水溶液Ａ：カチオン系高分子凝集剤の水溶液  凝集剤水溶液Ｂ：無機凝集剤及び両性高分子凝集剤の水溶液【選択図】図１
2017087182.tif 000002
【特許請求の範囲】
【請求項１】
流動床担体方式の嫌気性生物処理装置に用いられる担体に対し、嫌気性生物処理装置の起動時又は起動前に嫌気性微生物の付着性を向上させるための処理を施す生物担体の処理方法であって、
嫌気性微生物の存在下で担体と下記Ａ又はＢの凝集剤水溶液とを接触させることを特徴とする生物処理担体の処理方法。
凝集剤水溶液Ａ：カチオン系高分子凝集剤の水溶液
凝集剤水溶液Ｂ：無機凝集剤及び両性高分子凝集剤の水溶液
【請求項２】
請求項１において、前記嫌気性微生物を前記凝集剤を介して前記担体に３００ｍｇ−ＶＳＳ／Ｌ以上付着させることを特徴とする生物処理担体の処理方法。
【請求項３】
請求項１又は２において、前記嫌気性微生物が、種グラニュール又はその破砕物であることを特徴とする生物処理担体の処理方法。
【請求項４】
請求項１ないし３のいずれか１項において、
前記担体及び水を容器に収容し、該容器内に凝集剤を添加する方法であって、該水の量が、該担体の見掛け体積に対して４０〜１００体積％であることを特徴とする生物処理担体の処理方法。
【請求項５】
請求項４において、
前記凝集剤水溶液が凝集剤水溶液Ａである場合、前記担体との接触時のカチオン系高分子凝集剤濃度が２５〜２５０ｍｇ／Ｌであり、
前記凝集剤水溶液が凝集剤水溶液Ｂである場合、前記担体との接触時の無機凝集剤濃度が２５〜２５０ｍｇ／Ｌであり、両性高分子凝集剤濃度が２５〜２５０ｍｇ／Ｌであることを特徴とする生物処理担体の処理方法。
【請求項６】
請求項１ないし３のいずれか１項において、処理前の担体を生物処理装置に収容した後、前記凝集剤水溶液を該生物処理装置にＬＶ０．５〜２０ｍ／ｈで通水することを特徴とする生物処理担体の処理方法。
【請求項７】
請求項６において、凝集剤がカチオン系高分子凝集剤の場合、前記凝集剤水溶液の濃度が３〜３０ｍｇ／Ｌであり、凝集剤が無機凝集剤と両性高分子凝集剤の場合、前記凝集剤水溶液の無機凝集剤の濃度は２５０〜１０００ｍｇ／Ｌであり、両性高分子凝集剤の濃度は３〜３０ｍｇ／Ｌであることを特徴とする生物処理担体の処理方法。
【請求項８】
請求項１ないし７のいずれか１項に記載の生物処理担体の処理方法で処理された担体を用いて有機性排水を嫌気性生物処理する有機性排水の生物処理方法。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、生物処理担体への嫌気性微生物の付着性を向上させるための処理方法と、この方法で処理された担体を用いる有機性排水の生物処理方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
ＵＡＳＢ法に代表される嫌気性処理方法は、嫌気性細菌を自己造粒化させてグラニュールとよばれる微生物の塊を形成させ、これを槽内に高い濃度で保持することで、高い槽負荷を達成しようとする方法である。しかし、この方法は、グラニュールを造粒するのが困難である条件、例えば難分解性有機物を含む排水、グラニュールを解体させ得る物質、例えば硫黄を多く含む排水やＣＯＤＣｒ３，０００ｍｇ／Ｌ以下の希薄排水に対しては、その適用が困難であった。
【０００３】
グラニュールの強度を高めるために、グラニュール表面を高分子凝集剤で被覆することが特許文献１，２に記載されている。しかし、この方法は常に高濃度、例えば１５０ｍｇ／Ｌの高分子凝集剤を利用するため、薬品コストが、運転費用の多くの割合、例えば２０％〜５０％を占めてしまう。
【０００４】
グラニュール法の適用が困難な排水に対しては、流動床式嫌気処理法と呼ばれる、槽内に嫌気性細菌を保持するための担体を添加し、嫌気性細菌を担体に保持させる方法が有効である。
【０００５】
流動床式嫌気処理装置の有機物除去性能、すなわち容積負荷は、担体に付着した菌体の総量、特に酸生成菌と比較して増殖が遅いとされているメタン菌の総量に依存する。
【０００６】
担体に対する菌体の付着速度を増加させるためには、担体に対する菌体の初期付着量をできるだけ増加させることが効果的である。
【０００７】
通常、菌体は通水の継続とともに担体に付着し、それにともない容積負荷が上昇する。しかし、装置の立ち上げ時は、担体に付着する菌体が少ないため、数カ月間、例えば少なくとも３ヵ月間は容積負荷が低い。
【０００８】
一般的に使用されている担体、例えばポリプロピレン、ポリエチレン、ポリビニルクロライドなどの表面はマイナスに帯電しているため、菌体表面が同じくマイナスに帯電している嫌気性微生物は、担体表面に付着しにくい。
【０００９】
流動床式嫌気処理装置の立ち上げ速度を向上させるために、ＵＡＳＢリアクター等から採取したグラニュールを装置内に添加し、立ち上げ期間を短縮する方法が実施されている。ただし、排水種によっては、添加したグラニュールが速やかに解体し、槽外に流出するため、担体に対して十分な菌体を付着させるためには、例えば槽内容積に対して少なくとも２０％程度の大量のグラニュールを添加するか、グラニュールを繰り返し槽内に添加する必要があった。また、このような方法でも、排水種や水面積負荷によっては、汚泥の流出によって、立ち上げが困難である場合があった。また、上記方法をもってしても依然として担体への菌体付着に長時間を要していた。
【先行技術文献】
【特許文献】
【００１０】
【特許文献１】特開昭６２−２７９８８７号公報
【特許文献２】特開平３−２５４８９５号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【００１１】
本発明は、担体表面への嫌気性微生物の付着性を高めることができる担体処理方法と、この方法で処理された担体を用いる有機性排水の生物処理方法とを提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【００１２】
本発明者は、担体への菌体付着の律速となるのは初期段階であり、担体に所定濃度以上（例えば３００ｍｇ−ＶＳＳ／Ｌ以上好ましくは６００ｍｇ−ＶＳＳ／Ｌ以上）の菌体が生えるまでに１ヶ月前後もしくはそれ以上を要するケースもあることから、担体処理の初期に凝集剤を用いて担体に菌体を強制的に付着させ、担体と菌体との接触時間が長くなるようにしてその後菌体が短時間で担体に生えるように促すことを見出した。またこのとき、用いる凝集剤は、担体や菌体の表面電荷が影響していると推定され、好ましく使用できる凝集剤種が限定されることを見出した。
本発明はかかる知見に基づくものであり、その要旨は以下の通りである。
【００１３】
［１］  流動床担体方式の嫌気性生物処理装置に用いられる担体に対し、嫌気性生物処理装置の起動時又は起動前に嫌気性微生物の付着性を向上させるための処理を施す生物担体の処理方法であって、嫌気性微生物の存在下で担体と下記Ａ又はＢの凝集剤水溶液とを接触させることを特徴とする生物処理担体の処理方法。
凝集剤水溶液Ａ：カチオン系高分子凝集剤の水溶液
凝集剤水溶液Ｂ：無機凝集剤及び両性高分子凝集剤の水溶液
【００１４】
［２］  ［１］において、前記嫌気性微生物を前記凝集剤を介して前記担体に３００ｍｇ−ＶＳＳ／Ｌ以上付着させることを特徴とする生物処理担体の処理方法。
【００１５】
［３］  ［１］又は［２］において、前記嫌気性微生物が、種グラニュール又はその破砕物であることを特徴とする生物処理担体の処理方法。
【００１６】
［４］  ［１］ないし［３］のいずれかにおいて、
前記担体及び水を容器に収容し、該容器内に凝集剤を添加する方法であって、該水の量が、該担体の見掛け体積に対して４０〜１００体積％であることを特徴とする生物処理担体の処理方法。
【００１７】
［５］  ［４］において、
前記凝集剤水溶液が凝集剤水溶液Ａである場合、前記担体との接触時のカチオン系高分子凝集剤濃度が２５〜２５０ｍｇ／Ｌであり、
前記凝集剤水溶液が凝集剤水溶液Ｂである場合、前記担体との接触時の無機凝集剤濃度が２５〜２５０ｍｇ／Ｌであり、両性高分子凝集剤濃度が２５〜２５０ｍｇ／Ｌであることを特徴とする生物処理担体の処理方法。
【００１８】
［６］  ［１］ないし［３］のいずれかにおいて、
処理前の担体を生物処理装置に収容した後、前記凝集剤水溶液を該生物処理装置にＬＶ０．５〜２０ｍ／ｈで通水することを特徴とする生物処理担体の処理方法。
［７］  ［６］において、凝集剤がカチオン系高分子凝集剤の場合、前記凝集剤水溶液の濃度が３〜３０ｍｇ／Ｌであり、凝集剤が無機凝集剤と両性高分子凝集剤の場合、前記凝集剤水溶液の無機凝集剤の濃度は２５０〜１０００ｍｇ／Ｌであり、両性高分子凝集剤の濃度は３〜３０ｍｇ／Ｌであることを特徴とする生物処理担体の処理方法。
【００１９】
［８］  ［１］ないし［７］のいずれかに記載の生物処理担体の処理方法で処理された担体を用いて有機性排水を嫌気性生物処理する有機性排水の生物処理方法。
【発明の効果】
【００２０】
一般的に用いられている担体の表面はマイナスに帯電しており、嫌気性微生物の表面もマイナスに帯電している。担体とカチオン系高分子凝集剤、または、無機凝集剤および両性高分子凝集剤の水溶液を接触させることにより、荷電が中和され、担体への嫌気性微生物の付着性を向上させることができるものと推定される。
また、担体、嫌気性微生物と凝集剤を接触させる条件を最適化することにより、担体への付着性をさらに向上させることができる。これにより、流動床式嫌気性生物処理装置の立ち上げ速度を向上させることができる。
【図面の簡単な説明】
【００２１】
【図１】実施例の説明図である。
【発明を実施するための形態】
【００２２】
以下、本発明についてさらに詳細に説明する。
【００２３】
本発明の生物処理担体の処理方法では、担体と下記Ａ又はＢの凝集剤水溶液とを接触させることによって担体に凝集剤を介して嫌気性微生物を付着させ、担体への嫌気性微生物の付着性を向上させる。
凝集剤水溶液Ａ：カチオン系高分子凝集剤の水溶液
凝集剤水溶液Ｂ：無機凝集剤及び両性高分子凝集剤の水溶液
【００２４】
担体の形状は、球状、ペレット状、中空筒状、糸状、板状等任意であり、大きさも０．１〜１０ｍｍ程度の径で良い。また、担体の材料は、高分子系や無機系が知られており、これらは一般に負に帯電していることが知られている。
高分子系としては例えば、ポリオレフィン、ポリプロピレン、ポリビニルアルコール、ポリエチレン、アクリロニトリルブタジエンスチレン、ポリウレタン、ポリスチレン、ＰＶＣ（ポリ塩化ビニール）、ポリカーボネート、ポリメチルメタクリレート、フッ素化高分子、ニトロセルロース、セルロースアセテート、ポリエチレンテレフタレート等のプラスチック材料や、アクリルアミド／メチレンビスアクリルアミドゲル、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）プレポリマー、ポリエチレングリコール、ポリビニルアルコール（ＰＶＡ）、アクリルアミド、ポリビニルホルマール、光硬化性樹脂、カラギーナン、アルギン酸ソーダ等をゲル化した高分子ゲル材料、などが挙げられる。
また、無機系としては例えば、活性炭、ゼオライト、セラミック、多孔質ガラス、ケイ酸カルシウム、シリカ、鹿沼土、などが挙げられる。
【００２５】
カチオン系高分子凝集剤としては、ポリエチレンイミン、エチレンジアミンエピクロルヒドリン重縮合物、ポリアルキレンポリアミン、ジアリルジメチルアンモニウムクロリドやジメチルアミノエチル（メタ）アクリレートの四級アンモニウム塩を構成モノマーとする重合体等が挙げられる。カチオン系高分子凝集剤の重量平均分子量は、例えば５００，０００〜３０，０００，０００の範囲である。これらは１種を単独で用いても良く、２種以上を併用しても良い。
【００２６】
無機凝集剤としては、塩化第二鉄、ポリ硫酸鉄などの鉄系凝集剤、硫酸アルミニウム、塩化アルミニウム、ポリ塩化アルミニウムなどのアルミニウム系凝集剤などを用いることができる。これらは１種を単独で用いても良く、２種以上を併用しても良い。
【００２７】
両性高分子凝集剤としては、例えばアニオン性のモノマー成分とカチオン性のモノマー成分の共重合体、アニオン性のモノマー成分、カチオン性のモノマー成分及びノニオン性のモノマー成分の共重合体、あるいはアニオン性のモノマー成分とノニオン性のモノマー成分の共重合体のマンニッヒ変性物又はホフマン分解物などを挙げることができる。これらは１種を単独で用いても良く、２種以上を併用しても良い。
【００２８】
ここでアニオン性のモノマー成分としては、例えばアクリル酸（ＡＡ）、アクリル酸ナトリウム（ＮａＡ）、メタクリル酸、メタクリル酸ナトリウムなどを挙げることができる。
【００２９】
カチオン性のモノマーの成分としては、例えばジメチルアミノエチルアクリレート、ジメチルアミノエチル（メタ）アクリレート（ＤＡＭ），ジメチルアミノプロピル（メタ）アクリレート、及びそれらの四級化物などを挙げることができる。四級化物としては、具体的にはジメチルアミノエチルアクリレート四級化物（ＤＡＡ）などを挙げることができる。また、ジメチルアミノプロピルアクリルアミドの塩酸塩（ＤＡＰＡＡｍ）を用いても良い。
【００３０】
ノニオン性のモノマー成分としては、例えばアクリルアミド（ＡＡｍ)、メタアクリルアミド、Ｎ，Ｎ−ジメチル（メタ）アクリルアミドなどを挙げることができる。
【００３１】
また、これらの共重合体として、具体的にはＤＡＡ／ＡＡ／ＡＡｍ共重合体、ＤＡＭ／ＡＡ／ＡＡｍ共重合体、ＤＡＰＡＡｍ／ＡＡ／ＡＡｍ共重合体、ＤＡＡ／ＡＡ共重合体、ＮａＡ／ＡＡｍ共重合体のマンニッヒ変性物などを挙げることができる。
【００３２】
本発明の一態様では、容器に担体及び水を収容し（水量は好ましくは担体の見掛けの体積に対する体積割合で１００％以下、例えば４０〜１００％、好ましくは４０〜８０％、特に好ましくは４０〜６０％）、これに対し、カチオン系高分子凝集剤又は無機凝集剤と両性高分子凝集剤とを添加して均一になるよう混合する。凝集剤は水溶液の形態にて添加することが好ましい。
【００３３】
凝集剤添加後の水中における好ましい凝集剤濃度は次の通りである。
【００３４】
凝集剤としてカチオン系高分子凝集剤を添加した場合、２５ｍｇ／Ｌ以上、例えば２５〜３００ｍｇ／Ｌ、特に２５〜２５０ｍｇ／Ｌとりわけ１００〜２５０ｍｇ／Ｌが好ましい。
【００３５】
凝集剤として無機凝集剤と両性高分子凝集剤とを添加した場合、無機凝集剤は２５ｍｇ／Ｌ以上、例えば２５〜２５０ｍｇ／Ｌが好ましく、両性高分子凝集剤は２５ｍｇ／Ｌ以上、例えば２５〜３００ｍｇ／Ｌ、特に２５〜２５０ｍｇ／Ｌとりわけ１００〜２５０ｍｇ／Ｌが好ましい。
【００３６】
その後、嫌気性微生物の好ましくは種グラニュール又はその破砕物の含有液を添加して、少なくとも５分間混合する。水中の嫌気性微生物濃度は５０００〜１０００００ｍｇ−ＶＳＳ／Ｌ、特に１００００〜５００００ｍｇ−ＶＳＳ／Ｌ程度が好ましい。混合時間を長くしても特に問題はないが、処理の短縮化の観点から２０日以内程度とするのが好ましい。混合中、または混合後に種グラニュール又はその破砕物を補充してもよい。また、本態様では、嫌気性微生物の添加を凝集剤添加の後に行ったが、添加順は特に限定されず、担体と凝集剤と嫌気性微生物とが混合状態になればよい。
【００３７】
なお、混合の強度を高くしすぎると、凝集体同士が剪断力で崩れてしまう恐れがあるので、ある程度緩い混合が好ましく、例えば、撹拌による混合の場合、撹拌強度Ｇ値は２．９〜５ｓｅｃ−１程度が好ましい。
【００３８】
この処理により、担体に嫌気性微生物が付着するので、担体を容器から取り出し、嫌気性処理槽又はカラムに収容し、有機性排水を通水して有機性排水の嫌気性生物処理を行う。
【００３９】
本発明の別の一態様では、カラム内に担体及び水を収容し、凝集剤と嫌気性微生物の混合液を該カラムに通水する。混合液中の嫌気性微生物濃度は５０００〜１０００００ｍｇ−ＶＳＳ／Ｌ特に１００００〜５００００ｍｇ−ＶＳＳ／Ｌ程度が好ましい。
【００４０】
混合液中の凝集剤の好ましい濃度は次の通りである。
【００４１】
カチオン系高分子凝集剤の場合、３〜３０ｍｇ／Ｌが好ましく、無機凝集剤と両性高分子凝集剤の場合、無機凝集剤は、２５０ｍｇ／Ｌ以上、例えば２５０〜１０００ｍｇ／Ｌが好ましく、両性高分子凝集剤は、３〜３０ｍｇ／Ｌが好ましい。
【００４２】
カラムへの混合液の通水は一過式で行ってもよく、循環通水でもよい。通水は上向流でもよく下向流でもよい。ただし、混合液のカラムへの通水は、好ましくは上向流にて行い、好ましくは循環通水する。上向流のＬＶは０．５ｍ／ｈ以上特に０．５〜２０ｍ／ｈとりわけ２〜２０ｍ／ｈ程度が好ましい。系を均一に混合するために、ＬＶを０．５ｍ／ｈ以上とすることが好ましい。ただし、ＬＶが大きすぎると担体と嫌気性微生物の接触時間が短くなり、また剪断力が大きくなりかえって付着性が下がるので、ＬＶを２０ｍ／ｈ以下とすることが好ましい。通水時間は少なくとも３０分間が必要で、長くとも２０日以内程度とするのが好ましい。
【００４３】
この処理により担体に嫌気性微生物が付着するので、その後カラムへ有機性排水を通水し、有機性排水の嫌気性生物処理を行う。
【実施例】
【００４４】
以下、実施例及び比較例について説明する。以下の実施例及び比較例で用いた担体、凝集剤及び種グラニュールは次の通りである。
【００４５】
担体：直径約２ｍｍ、高さ約３ｍｍの円柱形状のポリプロピレン製のもの（沈降速度３００ｍ／ｈ）
カチオン系高分子凝集剤：栗田工業製クリファームＰＣ−８９２
両性高分子凝集剤：栗田工業製クリフューチャーＰＦ−５１２
無機凝集剤：塩化第二鉄
種グラニュール：ビール工場排水を処理しているＵＡＳＢリアクター内のグラニュールを１．０ｍｍの金属製ふるいですり潰したもの（濃度５００００ｍｇ−ＶＳＳ／Ｌ）
【００４６】
［実施例１（Ｎｏ．１〜６）］
担体１０ｍＬを５０ｍＬのビーカーに収容し、表１に示す所定濃度のカチオン系高分子凝集剤の水溶液４ｍＬをビーカーに注入した後、スターラーで均一になるまで撹拌した。
【００４７】
その後、種グラニュール２．５ｇを撹拌しながら添加し、さらに１０秒撹拌した。
【００４８】
ビーカー内の担体への種グラニュールの担体への付着状況の観察結果を表１に示す。
【００４９】
なお、付着状況の評価結果は、○：著しく良、△：良、×：不良である。
【００５０】
担体の種グラニュールの付着量については、以下のように算出した。
試験後の担体を１０粒採取し、１００℃のＮａＯＨ水溶液に１０分間浸漬してタンパク質を溶出させ、次いでブラッドフォード法によりタンパク質濃度を定量し、これをグラニュール付着量とした。
【００５１】
【表１】
2017087182.tif 000003
【００５２】
表１の通り、カチオン系高分子凝集剤の添加後濃度が１０ｍｇ／Ｌ（Ｎｏ．２）では、ブランク（Ｎｏ．１）に対して付着性の向上はわずかであったが、２５ｍｇ／Ｌ以上（Ｎｏ．３〜６）であれば、グラニュールの付着性が十分に向上することが認められた。特に１００ｍｇ／Ｌ以上（Ｎｏ．５，６）であれば、グラニュール付着量が１０００ｍｇ−ＶＳＳ／Ｌ程度まで向上するため著しく良好であることが認められた。
【００５３】
［実施例２（Ｎｏ．２１〜３０）］
まず、予備試験として実施例１において、カチオン系高分子凝集剤の代りに無機凝集剤を表２に示す濃度及び添加量にて添加したこと以外は実施例１と同様にして試験を行った。種グラニュールのフロック形成状況の観察結果を表２に示す。
【００５４】
【表２】
2017087182.tif 000004
【００５５】
表２の通り、無機凝集剤濃度が２５０ｍｇ／Ｌ以上のＮｏ．２２〜２５では、細かいフロックが形成されると共に、これらが沈降し、上澄み液が透明になった。
【００５６】
そこで、無機凝集剤の添加後濃度を２５０ｍｇ／Ｌとして以下の試験を行った。
【００５７】
凝集剤として無機凝集剤及び両性高分子凝集剤を用いた。実施例１と同じく５０ｍＬのビーカーに担体１０ｍＬを収容し、濃度２５０ｍｇ／Ｌの無機凝集剤水溶液を４ｍＬ添加し、カセイソーダによってｐＨ７に調整した。
【００５８】
次いで、表３に示す濃度の両性高分子凝集剤水溶液を添加し、均一になるまで撹拌した。その後、実施例１と同一条件で種グラニュールを添加してさらに１０秒撹拌した。種グラニュールの担体への付着状況の観察結果を表３に示す。
なお、付着状況の評価結果については実体顕微鏡で判定し、担体表面の半分以上が付着物で覆われていれば○、少しでも種グラニュールが付着していれば△、全く付着していなければ×で評価した。
【００５９】
【表３】
2017087182.tif 000005
【００６０】
表３の通り、両性高分子凝集剤の添加後濃度が１０ｍｇ／Ｌ（Ｎｏ．２６）では、無凝集（表１のＮｏ．１）に対して付着性の向上が不十分であったが、２５ｍｇ／Ｌ以上（Ｎｏ．２７〜３０）であれば、グラニュールの付着性が十分に向上することが認められ、特に１００ｍｇ／Ｌ以上（Ｎｏ．２９，３０）であれば、グラニュール付着性が著しく良好になることが認められた。
【００６１】
［実施例３（Ｎｏ．３１〜３７）］
実施例１において、容器内への収容水量とカチオン系高分子凝集剤の濃度を表４の通りとし、撹拌強度Ｇ値＝２．９ｓｅｃ−１としたこと以外は同様の試験を行った（種グラニュール投入量も実施例１と同じく２．５ｇである）。結果を表４に示す。
【００６２】
また、担体へのグラニュール付着量を測定し、結果を表４に示した。担体へのグラニュール付着量の測定方法は実施例１と同様である。
【００６３】
【表４】
2017087182.tif 000006
【００６４】
表４の通り、水量（担体体積比）が４０％のとき（Ｎｏ．３２）に、最も顕著に菌体が付着し、４０〜１００％（Ｎｏ．３２〜３５）であれば担体への付着は十分に促進されることが確認された。一方、Ｎｏ．３６，３７の通り、水量（担体体積比）が１００％を超えると凝集フロックは良好に形成されるものの、担体への接触効率が低いため、自己造粒やフロック同士での塊状化が起こり、担体への付着促進が不十分であった。なお、Ｎｏ．３１のように水量（担体体積比）が３０％では水量が足りず、ポンプでの移送が困難であった。
【００６５】
［実施例４（Ｎｏ．４１〜４４）］
図１（ａ）のように、内径５ｃｍ、高さ約５０ｃｍの１Ｌカラムに担体を４００ｍＬ（体積比で４０％）投入し、その後表５に示す所定濃度のカチオン系高分子凝集剤水溶液をＬＶ＝７ｍ／ｈで５分間で一過式にて通水した（第１次通水）（ただし、Ｎｏ．４４ではこの第１次通水を行わず、水道水の通水を行った。）。その後、種グラニュール分散液（グラニュール濃度約５００００ｍｇ−ＶＳＳ／Ｌ）を上向流にて５分間、ＬＶ＝７ｍ／ｈで通水した（第２次通水）。
【００６６】
その後、図１（ｂ）の通り、凝集剤・グラニュール混合液（カチオン系高分子凝集剤濃度、種グラニュール濃度は上記と同条件）を上向流にてＬＶ＝７ｍ／ｈで３０分、循環通水した（第３次通水）。担体へのグラニュール付着状況の観察結果及びグラニュール付着量の測定結果を表５に示す。
【００６７】
【表５】
2017087182.tif 000007
【００６８】
表５の通り、カチオン系高分子凝集剤を添加したＮｏ．４１〜４３では担体へのグラニュール付着量は３００ｍｇ−ＶＳＳ／Ｌであったが、第１次通水（カチオン系高分子凝集剤水溶液通水）を行わず、水道水の通水を行ったＮｏ．４４ではグラニュールは担体にほとんど付着しなかった。
【００６９】
［実施例５（Ｎｏ．５１〜５８）］
実施例４のＮｏ．４３の条件において、第３次通水のＬＶと通水時間のみを変更した試験を実施した。結果を表６に示す。
本実施例は、通水時間ごとの担体への付着状況を評価したものであり、グラニュール付着量が３００ｍｇ−ＶＳＳ／Ｌに達したものは○、未達のものは×で評価した。
【００７０】
【表６】
2017087182.tif 000008
【００７１】
表６の通り、ＬＶが低いＮｏ．５１，５２では、菌体の担体への付着が促進されたものの、菌体が十分に付着するまで１日以上を要することが認められた。一方、Ｎｏ．５３〜５７であれば、菌体の担体への付着は十分に促進されることが確認された。ただし、ＬＶが過度に高いＮｏ．５８は、かえって付着性が下がった。担体と菌体との接触時間が短くなることや剪断力が大きくなることが原因と推定される。
【図１】
2017087182.tif 000009