(57)【要約】【課題】生体に対する安全性に優れ、止血時間が短く、生体から容易に除去することが可能であり、機械的強度及び柔軟性に優れる止血材を提供する。【解決手段】タンパク質換算分子量が１１０，０００〜３１０，０００であるフィブロインを含有してなるフィブロイン多孔質体を用いた止血材である。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
タンパク質換算分子量が１１０，０００〜３１０，０００であるフィブロインを含有してなるフィブロイン多孔質体を用いた止血材。
【請求項２】
前記フィブロインのタンパク質換算分子量が１８０，０００〜３１０，０００である、請求項１に記載の止血材。
【請求項３】
前記フィブロイン多孔質体がシルクフィブロイン多孔質体である、請求項１又は２に記載の止血材。
【請求項４】
前記フィブロイン多孔質体の引張ひずみが５２〜６７％である、請求項１〜３のいずれか１項に記載の止血材。
【請求項５】
前記フィブロイン多孔質体の引裂き強さが２０〜４５Ｎ／ｍｍである、請求項１〜４のいずれか１項に記載の止血材。
【請求項６】
前記フィブロイン多孔質体の２５％圧縮応力が２０〜２５ｋＰａである、請求項１〜５のいずれか１項に記載の止血材。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、フィブロイン多孔質体を用いた止血材に関する。
【背景技術】
【０００２】
医療現場において止血は極めて重要な処置の１つであり、出血による患者の負担の軽減、予後改善、外科医の負担軽減等の観点から、止血に要する時間の短縮化、及び止血に至るまでの出血量を最小限に抑え、確実に止血することが要求される。
従来から、出血箇所に止血材を押し当てる方法、いわゆる圧迫法に用いられる止血材として、脱脂綿、コットンのガーゼ等を用いた製品が使用されてきた。
【０００３】
止血効果を有する材料として、ウシ又は豚由来のアテロコラーゲンを原料としたコラーゲンのほか、ゼラチン、酸化セルロース、キチン誘導体等が知られている。
コラーゲンは血液と接触して血小板を活性化し、該活性化された血小板がコラーゲンに付着し、凝集塊を形成することで止血を可能とするものである（例えば、特許文献１参照）。また、ゼラチンは血液のような水分存在下においてゲルを形成し、出血部位の形状に沿って密着し得る柔軟性と、生体組織に対する高い接着性を示すことで、局所を圧迫して止血を可能とする止血材として用い得ることが知られている（例えば、特許文献２参照）。酸化セルロースは血液中のヘモグロビンと強い親和性を有するため、体内及び体外の創傷患部に施用することにより血液凝固作用、細胞拡張作用を促して自然治癒を図ることができ（例えば、特許文献３参照）、キチン誘導体は、血小板を活性化し、血液凝集を促すことで止血効果を発現することが知られている（例えば、特許文献４参照）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００４】
【特許文献１】特開平７−３１６０７０号公報
【特許文献２】特開平７−１６３８６０号公報
【特許文献３】特開２０００−２５６９５８号公報
【特許文献４】特開昭６３−２１１２３２号公報
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００５】
しかしながら、脱脂綿、ガーゼ等の従来から汎用される止血材は、多量の出血を即時止血できない上に、創傷部に対する固着性が大きいため、剥離するときに使用部位に多くの繊維を残してしまい、これらの繊維を取り除く必要があった。
また、特許文献１及び２に記載のコラーゲン、ゼラチンを用いた止血材は、生体内分解性及び吸収性に優れる一方で、抗原性を有するテロペプチド部分の除去が困難であるという問題があり、また、プリオン混入等の動物由来の感染症の危険性があるため、生体に使用することは避けたほうがよいことが分かってきている。
【０００６】
特許文献３に記載の酸化セルロースを用いた止血材は、材料が生体由来の材料ではないため、異物反応を誘発する問題があると共に、水溶性であるため取り扱い性にも問題がある。また、特許文献４に記載のキチン誘導体を用いた止血材は、血液を吸液することにより膨潤ゲル化するため、生体内で使用する場合に周辺組織を圧迫する危険性があると共に、ゲル化したときに機械的強度が低下するという問題もあった。
また、これらの止血材は、生体に対する固着力が大きいため、止血部が治癒した後、又は止血部を再処理するため該止血材を剥離しようとすると、その固着力に起因して、脆弱な新生組織を傷つける二次損傷が生じてしまい、生体に損傷を与えることなく止血材を除去することが困難であった。
【０００７】
本発明は、このような課題を解決するためになされたものであり、生体に対する安全性に優れ、止血時間が短く、生体から容易に除去することが可能であり、機械的強度及び柔軟性に優れる止血材を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００８】
本発明者らは、前記課題を達成するために鋭意研究を重ねた結果、下記の発明により当該課題を解決できることを見出した。
すなわち、本発明の要旨は、以下の［１］〜［６］のとおりである。
［１］タンパク質換算分子量が１１０，０００〜３１０，０００であるフィブロインを含有してなるフィブロイン多孔質体を用いた止血材。
［２］前記フィブロインのタンパク質換算分子量が１８０，０００〜３１０，０００である、上記［１］に記載の止血材。
［３］前記フィブロイン多孔質体がシルクフィブロイン多孔質体である、上記［１］又は［２］に記載の止血材。
［４］前記フィブロイン多孔質体の引張ひずみが５２〜６７％である、上記［１］〜［３］のいずれかに記載の止血材。
［５］前記フィブロイン多孔質体の引裂き強さが２０〜４５Ｎ／ｍｍである、上記［１］〜［４］のいずれかに記載の止血材。
［６］前記フィブロイン多孔質体の２５％圧縮応力が２０〜２５ｋＰａである、上記［１］〜［５］のいずれかに記載の止血材。
【発明の効果】
【０００９】
本発明によれば、生体に対する安全性に優れ、止血時間が短く、生体から容易に除去することが可能であり、機械的強度及び柔軟性に優れる止血材を提供することができる。
【図面の簡単な説明】
【００１０】
【図１】クロマトグラムのピークトップの保持時間をタンパク質換算分子量に変換するための較正曲線である。
【発明を実施するための形態】
【００１１】
［止血材］
本発明の止血材は、タンパク質換算分子量が１１０，０００〜３１０，０００であるフィブロインを含有してなるフィブロイン多孔質体を用いてなるものである。
以下、本発明に用いるフィブロイン多孔質体について詳述する。
【００１２】
＜フィブロイン多孔質体＞
本発明に用いるフィブロイン多孔質体は、タンパク質換算分子量が１１０，０００〜３１０，０００であるフィブロインを含有してなるフィブロイン多孔質体である。
本明細書において、タンパク質換算分子量とは、高速液体クロマトグラフ（ＨＰＬＣ）を用いて得られる評価試料のクロマトグラムを、分子量マーカーとしてグルタミン酸脱水素酵素（分子量：２９０，０００）、豚心筋乳酸脱水素酵素（分子量：１４２，０００）、酵母エノラーゼ（分子量：６７，０００）を使用して作成した較正曲線を用いて、タンパク質の分子量に換算した分子量を意味し、実施例に記載の方法により測定することができる。本明細書において「分子量」は、特に断らない限り「タンパク質換算分子量」を意味する。
【００１３】
フィブロイン多孔質体に含まれるフィブロインのタンパク質換算分子量は１１０，０００〜３１０，０００であり、１４０，０００〜３１０，０００であることが好ましく、１８０，０００〜３１０，０００であることがより好ましい。この範囲の分子量のフィブロインを含有するフィブロイン多孔質体は、機械的強度及び柔軟性に優れ、止血材として取り扱いが容易である。
【００１４】
フィブロイン多孔質体中に含まれるフィブロインの含有量は、好ましくは８０質量％以上、より好ましくは９０質量％以上、さらに好ましくは９５質量％以上、特に好ましくは実質的に１００質量％である。
【００１５】
フィブロイン多孔質体の平均細孔径は、１〜５００μｍが好ましく、５〜３００μｍがより好ましく、１０〜１００μｍがさらに好ましい。平均細孔径が上記範囲内であると、優れた機械的強度と止血効果とを両立することができる。
ここで、フィブロイン多孔質体の平均細孔径は、多孔質体断面の走査型電子顕微鏡写真を５枚撮影し、さらに異なる日に作製した多孔質体断面の走査型電子顕微鏡写真を５枚撮影し、それら１０枚の走査型電子顕微鏡写真を画像解析ソフトを用いて画像処理し、算出した細孔径の平均値である。
【００１６】
フィブロイン多孔質体の大きさ、厚さに特に制限はなく、止血材の適用箇所等に応じて適切な大きさ、厚さのものを使用すればよい。また、加工によって所望の形状のフィブロイン多孔質体を得ることもできる。加工の方法に特に制限はなく、トムソン刃を使用した打ち抜き、バンドソーでのスライス加工等が挙げられる。
【００１７】
フィブロイン多孔質体の２５％圧縮応力は、２０〜２５ｋＰａであることが好ましく、２０〜２３ｋＰａであることがより好ましい。２５％圧縮応力がこの範囲のフィブロイン多孔質体は、柔軟性に優れている。
フィブロイン多孔質体の引裂き強さは、２０〜５０Ｎ／ｍｍであることが好ましく、２５〜４５Ｎ／ｍｍであることがより好ましい。引裂き強さがこの範囲のフィブロイン多孔質体は、機械的強度、伸縮性及び柔軟性のバランスに優れる。
フィブロイン多孔質体の引張強さは、３５〜７５ｋＰａであることが好ましく、４０〜７０ｋＰａであることがより好ましい。引張強さがこの範囲のフィブロイン多孔質体は、機械的強度、伸縮性及び柔軟性のバランスに優れている。
フィブロイン多孔質体の引張ひずみは、５２〜６７％であることが好ましく、５６〜６５％であることがより好ましい。引張ひずみがこの範囲のフィブロイン多孔質体は、伸縮性に優れている。
なお、本明細書における引張強さ及び引張ひずみとは、試験片を万能試験機等で引っ張った際に、試験片が破断したときの応力及びひずみを意味し、引張ひずみ（％）の値は、［〔（変形後の長さ−変形前の長さ）／（変形前の長さ）〕×１００］で表される比率の値を意味する。
フィブロイン多孔質体の２５％圧縮応力、引裂き強さ及び引張ひずみは実施例に記載の方法により測定することができる。
【００１８】
フィブロイン多孔質体の血液凝固時間は、速やかな止血を可能とする観点から、２５分以下であることが好ましく、２０分以下であることがより好ましく、１５分以下であることがさらに好ましい。
なお、本発明において血液凝固時間は、下記の方法により測定された時間を意味し、具体的には、実施例に記載の方法により測定することができる。
３００ｍｍ３のフィブロイン多孔質体を投入した試験管を２本用意し、これらを３７℃に加温した後、採血直後の血液を１．５ｍＬ（２００ｍｍ３／ｍＬ）添加した。次いで、１本目の試験管を３０秒毎に傾け、血液の流動性を目視にて観察し、該１本目の試験管で血液凝固が観察された後、２本目の試験管を３０秒毎に傾け、血液の流動性を目視にて確認し、採血開始から２本目の試験管で血液凝固が観察されるまでの時間を血液凝固時間とした。
【００１９】
また、本発明の止血材は、創傷治癒の促進、浸出液の発生する創への固着の抑制効果が期待できるため、出血を伴う創のみでなく、浸出液の発生する創の被覆材としても好適に使用することができる。このため、出血の伴う創を本発明の止血材で止血した後に、適宜交換しながら本発明の止血材を創部に貼付し続けることで、止血効果だけでなく、創部への固着を抑制しながら、創傷治癒促進の効果も期待できる。
フィブロイン多孔質体の、浸出液が発生する創部に対する平均固着強さは、生体から容易に除去することを可能とする観点から、１５ｇ以下であることが好ましく、１２ｇ以下であることがより好ましく、１０ｇ以下であることがさらに好ましい。
なお、本発明において平均固着強さは、下記の方法により測定された時間を意味し、具体的には、実施例に記載の方法により測定することができる。
被験物質の創部に対する固着強さは、褥瘡を作製したラットの褥瘡を被験物質で被覆した後固定し、吊り秤（天衡商事、高精度光デジタルフォースゲージ）で該被覆物質を垂直に引っ張って被検物質を剥がしたときの重さの最大値を読み取ることで測定することができる。本発明においては、被検物質は褥瘡が完全に治癒するまでの間、２日ごとに新しいものに交換し、褥瘡が治癒するまでの各被検物質交換時に吊り秤が示した重さの最大値から、下記式により求められる値を平均固着強さとした。
平均固着強さ（ｇ）＝（褥瘡が治癒するまでの各被検物質交換時に吊り秤が示した重さの最大値の合計（ｇ））／（各被検物質の交換回数）
なお、褥瘡が完全に治癒した状態とは、創部が完全に上皮化した状態を意味する。
【００２０】
次に、フィブロイン多孔質体の製造に用いられるフィブロイン原料、及びフィブロイン多孔質体の製造方法について説明する。
【００２１】
（フィブロイン原料）
フィブロイン多孔質体の原料として用いられるフィブロイン原料は、フィブロインに加え、セリシンを含む繭、生糸等の絹原料を精練し、セリシンを除去することで得られる。
使用する絹原料に特に制限はなく、繭、切繭、生糸等を使用することができる。蚕の品種にも特に制限はなく、例えば、家蚕、野蚕、天蚕等の天然蚕、トランスジェニック蚕などから産生されるシルクフィブロインなどを使用することができる。本発明においては、乾燥状態でも柔らかく、乾燥後の外観、スライス加工性に優れるフィブロイン多孔質体を得る観点から、シルクフィブロインを原料とすることが好ましい。
【００２２】
通常、絹原料の精練は、アルカリ剤を溶解した水溶液中に絹原料を入れ、加熱するという工程で行われる。精練の方法に特に制限はなく、吊練り、機械練り、袋練り、泡練り等の手法を用いることができる。
精練に用いるアルカリ剤に特に制限はなく、マルセル石鹸、炭酸ナトリウム、重曹等を使用することができるが、石鹸の残留が懸念されることから、炭酸ナトリウム、重曹を用いることが好ましく、分子量の制御が容易なことから、炭酸ナトリウムを用いることがより好ましい。
水溶液中のアルカリ剤の濃度は、１５％ｏｗｆ〜２５％ｏｗｆであることが好ましい。アルカリ剤の濃度をこの範囲に設定することで、効率良くセリシンを除去することができると共に、フィブロイン多孔質体の形成に適した分子量のフィブロイン原料を得ることができる。
精練時の浴比（フィブロイン原料の質量に対するアルカリ剤を溶解した水溶液の質量の比）は、２０〜１００倍であることが好ましい。精練時の浴比をこの範囲に設定することで、効率良くセリシンを除去することができる。
精練時の加熱温度は、セリシンを十分に除去可能であれば特に制限はないが、常圧の場合、８５〜１００℃が好ましい。温度をこの範囲に設定することで、効率良くセリシンを除去することができる。
精練の時間はセリシンを十分除去可能であれば特に制限はないが、３時間〜５時間であることが好ましい。精練の時間をこの範囲に設定することで、効率良くセリシンを除去することができると共に、フィブロイン多孔質体の形成に適した分子量のフィブロイン原料を得ることができる。
精練後はフィブロイン原料に付着したアルカリ及びセリシンを除去するため、湯洗浄、水洗浄を行った後、脱水、乾燥することが好ましい。
【００２３】
フィブロイン原料は、タンパク質換算分子量が１６０，０００〜４１０，０００であることが好ましく、２００，０００〜３６０，０００であることがより好ましく、２４０，０００〜３１０，０００であることがさらに好ましい。この範囲の分子量のフィブロイン原料を使用してフィブロイン多孔質体を作製することで、機械的強度及び柔軟性に優れるフィブロイン多孔質体が得られる。
フィブロイン原料のタンパク質換算分子量は、実施例に記載の方法で測定することができる。
【００２４】
（フィブロイン多孔質体の製造方法）
以下、フィブロイン原料として好ましいシルクフィブロインを例にとって、フィブロイン多孔質体の製造方法について説明する。
シルクフィブロイン多孔質体は、その製造方法は問わないが、例えば、シルクフィブロイン水溶液を急速冷凍した後、結晶化溶媒に浸漬し、融解と結晶化を同時進行することによって得る方法（例えば、特開平８−４１０９７号公報参照）、シルクフィブロイン水溶液を冷凍した後に長時間凍結状態を維持することで多孔質体を作製する手法（例えば、特開２００６−２４９１１５号公報参照）、シルクフィブロイン水溶液に対して少量の水溶性液状有機物質を添加した後に、一定時間冷凍して融解することによって多孔質体を得る手法（例えば、特許第３４１２０１４号公報参照）等が挙げられる。
【００２５】
〔シルクフィブロイン水溶液〕
シルクフィブロイン多孔質体の製造に用いるシルクフィブロイン水溶液を得る方法としては、公知のいかなる手法を用いてもよいが、シルクフィブロインは水に対する溶解性が低いため、例えば、前記シルクフィブロインを溶解液に溶解した後、溶解に使用した薬剤を除去する方法が好適である。具体的には、例えば、臭化リチウム水溶液、塩化カルシウム／エタノール水溶液等の中性塩溶液に溶解し、透析により脱塩する手法、過酸化水素水に溶解後、乾熱乾燥し、過酸化水素を除去する方法、銅エチレンジアミンに溶解し、銅イオン乖離剤を添加した後に透析する手法等を使用することができる。これらの中でも、後処理及び分子量調節の容易さから、中性塩溶液に溶解し、脱塩する手法が好ましい。
【００２６】
使用する中性塩溶液としては、臭化リチウム水溶液、塩化カルシウム／エタノール水溶液が好ましい。中性塩溶液中の中性塩の濃度は、臭化リチウム水溶液の場合、８〜１０ｍｏｌ／Ｌであることが好ましい。また、塩化カルシウム／エタノール水溶液の場合、塩化カルシウムとエタノールと水とをモル比１：２：８で混合した溶液を使用することが好ましい。中性塩の濃度をこの範囲に設定することで、シルクフィブロインを効率良く溶解することができる。
【００２７】
シルクフィブロインの溶解温度は、シルクフィブロインが溶解する温度であれば特に制限はないが、臭化リチウム水溶液の場合、１０〜４０℃であることが好ましい。また、塩化カルシウム／エタノール水溶液の場合、７０〜９０℃であることが好ましく、７５〜８５℃であることがより好ましい。溶解温度をこの範囲に設定することで、効率良くシルクフィブロインを溶解可能であると共に、シルクフィブロイン多孔質体の形成に適した分子量のシルクフィブロイン水溶液を得ることができる。
【００２８】
シルクフィブロインの溶解時間に特に制限はないが、臭化リチウム水溶液の場合、３時間〜２４時間であることが好ましく、５時間〜１８時間であることがより好ましい。また、塩化カルシウム／エタノール水溶液の場合、１０分〜６０分であることが好ましく、１５分〜４０分であることがより好ましい。溶解時間をこの範囲に設定することで、シルクフィブロインが十分に溶解すると共に、シルクフィブロイン多孔質体の形成に適した分子量のシルクフィブロイン水溶液を得ることができる。
【００２９】
シルクフィブロイン水溶液中におけるシルクフィブロインの濃度は、溶解液に溶解可能な濃度であれば特に制限はないが、５０ｇ／Ｌ〜２００ｇ／Ｌであることが好ましく、１００ｇ／Ｌ〜１５０ｇ／Ｌであることがより好ましい。シルクフィブロインの濃度をこの範囲に設定することで、シルクフィブロイン多孔質体の作製に適した濃度のシルクフィブロイン水溶液が得られる。シルクフィブロイン水溶液中のシルクフィブロインの濃度調整の方法としては、風乾による濃縮を経る手法が簡便で好ましい。
シルクフィブロインの濃度は、シルクフィブロイン水溶液を容器に入れて完全に乾燥し、その質量減少から次式のように求めることができる。
（シルクフィブロイン濃度（ｇ／Ｌ））＝（シルクフィブロイン水溶液の乾燥後質量（ｇ））／（乾燥前のシルクフィブロイン水溶液の体積（Ｌ））
【００３０】
脱塩の手法に特に制限はなく、透析膜を使用した透析、限外ろ過等により脱塩することができる。透析膜又は限外ろ過膜の分画分子量は５，０００〜４０，０００であることが好ましく、５，０００〜１０，０００であることがより好ましい。この範囲の分画分子量の透析膜又は限外ろ過膜を使用することで、脱塩効率とシルクフィブロインのロスの少なさとを両立することができる。
【００３１】
シルクフィブロイン水溶液中のシルクフィブロインのタンパク質換算分子量は、１６０，０００〜４１０，０００であることが好ましく、２００，０００〜３５０，０００であることがより好ましく、２４０，０００〜３１０，０００であることがさらに好ましい。この範囲の分子量のシルクフィブロインを含むシルクフィブロイン水溶液を使用してシルクフィブロイン多孔質体を作製することで、機械的強度及び柔軟性に優れるシルクフィブロイン多孔質体が得られる。
シルクフィブロイン水溶液中のシルクフィブロインのタンパク質換算分子量は、実施例に記載の方法で測定することができる。
【００３２】
また、シルクフィブロイン多孔質体は、シルクフィブロイン水溶液に特定の添加剤を加えて、該水溶液を凍結させ、次いで、融解させることにより製造することが好ましい。
【００３３】
（添加剤）
前記添加剤としては、カルボン酸類、アミノ酸、水溶性液状有機物質等が好ましく挙げられる。また、シルクフィブロイン多孔質体の製造において用いられるカルボン酸類としては、ｐＫａが、５．０以下のものが好ましく、３．０〜５．０のものがより好ましく、３．５〜５．０のものがさらに好ましい。
【００３４】
カルボン酸類としては、少なくとも分子中に一つのカルボキシ基を有する有機酸であれば特に制限はないが、例えば、モノカルボン酸、ジカルボン酸、トリカルボン酸等が挙げられる。カルボン酸類としては、脂肪族カルボン酸類が好ましく、炭素数１〜６の脂肪族カルボン酸がより好ましく、炭素数２〜５の脂肪族カルボン酸がさらに好ましい。これらの脂肪族カルボン酸は飽和であってもよく、不飽和であってもよい。このようなカルボン酸として、具体的には、例えば、蟻酸、酢酸、プロピオン酸、酪酸、乳酸、アクリル酸、２−ブテン酸等のモノカルボン酸；シュウ酸、マロン酸、コハク酸、マレイン酸等のジカルボン酸などが好ましく挙げられる。これらは単独で、又は複数種を組み合わせて用いることができる。人体への安全性を考慮すると、酢酸、乳酸及びコハク酸がより好ましい。
【００３５】
前記アミノ酸としては、特に制限はなく、例えば、バリン、ロイシン、イソロイシン、グリシン、アラニン、セリン、スレオニン、メチオニン等のモノアミノカルボン酸、アスパラギン酸、グルタミン酸等のモノアミノジカルボン酸（酸性アミノ酸）などの脂肪族アミノ酸；フェニルアラニン等の芳香族アミノ酸；ヒドロキシプロリン等の複素環を有するアミノ酸などが好ましく挙げられ、中でも形状の調整が容易な観点から、酸性アミノ酸、及びヒドロキシプロリン、セリン、スレオニン等のオキシアミノ酸が好ましい。同様の観点から、酸性アミノ酸の中でもモノアミノカルボン酸がより好ましく、アスパラギン酸及びグルタミン酸が特に好ましく、オキシアミノ酸の中でもヒドロキシプロリンがより好ましい。これらのアミノ酸は、いずれか１種を単独で、又は２種以上組み合わせて使用することができる。
なお、アミノ酸には、Ｌ型とＤ型の光学異性体があるが、Ｌ型とＤ型を用いた場合に、得られる多孔質体に違いが見られないため、どちらのアミノ酸を用いてもよい。
【００３６】
前記水溶性液状有機物質は、常温（２０℃）で液状であり、常温（２０℃）で水と混合した際に、分離せずに溶解、又は混和するものをいう。水溶性液状有機物質としては、例えば、メタノール、エタノール、イソプロパノール、ブタノール等のアルコール類；グリセリン、プロピレングリコール等の多価アルコール類；ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）、ピリジン、アセトン、アセトニトリルなどが好ましく挙げられる。これらは単独で、又は複数種を組み合わせて用いることができる。人体への安全性を考慮すると、エタノール、ジメチルスルホキシド、グリセリン及びアセトンが好ましく、エタノール及びグリセリンがより好ましい。
【００３７】
シルクフィブロイン水溶液に添加剤を用いる場合の添加剤の含有量は、０．１〜１８体積％であることが好ましく、０．１〜５．０体積％であることがより好ましく、０．５〜４．０体積％であることがさらに好ましい。添加剤の含有量をこの範囲内に設定することで、十分な機械的強度を有するシルクフィブロイン多孔質体を製造することができる。
【００３８】
シルクフィブロイン多孔質体は、例えば、前記シルクフィブロイン水溶液を型又は容器に流し込み、一定時間凍結した後に融解することで好適に得られる。
凍結温度としては、−１０〜−３０℃が好ましく、−１５〜−２５℃がより好ましい。凍結時間としては、添加剤を加えたシルクフィブロイン水溶液が十分に凍結し、かつ凍結状態を一定時間保持できるよう、４時間以上であることが好ましく、６時間以上であることがより好ましい。また、特に−１５〜−２５℃の温度条件下、６時間から１００時間保持して凍結することが機械的強度に優れるシルクフィブロイン多孔質体を再現良く形成する観点から好ましい。
【００３９】
ここで、前記シルクフィブロイン水溶液を一気に凍結温度まで下げて凍結してもよいが、凍結の前に過冷却状態を経ることが、均一な構造のシルクフィブロイン多孔質体を得る上で好ましい。例えば、添加剤を加えたシルクフィブロイン水溶液を一旦、−５℃で２時間保持して、その後、凍結温度まで下げて凍結することで、均一な構造のシルクフィブロイン多孔質体を得ることができる。
【００４０】
上記の手法でシルクフィブロイン水溶液を凍結させた後、次いで、融解することによって、シルクフィブロイン多孔質体が得られる。融解の方法としては、特に制限はなく、自然融解、恒温槽での保管等の方法が好ましく挙げられる。
【００４１】
上記のようにして得られたシルクフィブロイン多孔質体には添加剤が残存する。残存する添加剤は用途に応じてそのままの状態としてもよいし、除去してもよい。添加剤をシルクフィブロイン多孔質体から除去する方法としては、例えば、シルクフィブロイン多孔質体を純水中に浸漬して除去することが最も簡便な方法として挙げられる。
【００４２】
このようにして得られたシルクフィブロイン多孔質体は吸水した状態である。乾燥状態のシルクフィブロイン多孔質体が必要な場合、吸水状態のシルクフィブロイン多孔質体を乾燥すればよい。シルクフィブロイン多孔質体の乾燥の手法としては特に制限はないが、収縮を抑えるという意味で凍結乾燥が好ましい。凍結乾燥の場合、水分を完全に昇華させずに乾燥を終えると、残った氷が融解して水になり、その表面張力の影響で空孔が潰れてしまうため、水分が完全に昇華するまで乾燥することが好ましい。
【００４３】
また、凍結乾燥の際、予めシルクフィブロイン多孔質体をグリセリン水溶液に浸漬することが、乾燥時のひび割れを防止すると共に、乾燥後にも柔軟な多孔質体が得られる観点から好ましい。
この場合、シルクフィブロイン多孔質体を浸漬するグリセリン水溶液におけるグリセリンの濃度は、０．５〜１０体積％が好ましく、１〜８体積％がより好ましく、１．５〜６体積％がさらに好ましい。グリセリン濃度をこの範囲に設定することで、質感が良く、ひび割れの無い乾燥シルクフィブロイン多孔質体を得ることができる。このようにして得られる乾燥シルクフィブロイン多孔質体はグリセリンを含有することを特徴とする。
【００４４】
乾燥シルクフィブロイン多孔質体中のグリセリンの含有量は、２０〜７０質量％であることが好ましく、２５〜６０質量％であることがより好ましく、３０〜５０質量％であることがさらに好ましい。グリセリンの含有量をこの範囲とすることで、乾燥シルクフィブロイン多孔質体に適度な柔軟性を付与することができる。
乾燥シルクフィブロイン多孔質体中のグリセリンの含有量（質量％）は、乾燥シルクフィブロイン多孔質体に導入されたグリセリンの質量を、グリセリンが導入された後の乾燥シルクフィブロイン多孔質体の質量で割ったものとし、以下の式で算出した。
（乾燥シルクフィブロイン多孔質体中のグリセリンの含有量（質量％））＝（（グリセリンを導入した乾燥シルクフィブロイン多孔質体の質量）−（グリセリンを未導入の乾燥シルクフィブロイン多孔質体の質量））／（グリセリンを導入後の乾燥シルクフィブロイン多孔質体の質量）×１００
【００４５】
上記のようにして得られた乾燥シルクフィブロイン多孔質体は、水分を実質的に含まないものである。シルクフィブロイン多孔質体は、シルクフィブロイン水溶液を凍結し、融解して得られるので、通常、細孔部に水分等が存在した状態となっている。通常のシルクフィブロイン多孔質体と乾燥シルクフィブロイン多孔質体とは、細孔部に存在する水等の量の点で状態は異なるものとなる。
【００４６】
シルクフィブロイン多孔質体は、シルクフィブロイン水溶液を流し込む容器を適宜選択することにより、シート状、ブロック状、管状等、目的に応じた形状とすることができる。
また、原料として用いるシルクフィブロイン及び添加剤の種類及び添加量を調節することで、シルクフィブロイン多孔質体の内部構造と固さを調整することができ、種々の固さを有するゲル状、シート状又はブロック状のシルクフィブロイン多孔質体を得ることができる。
【００４７】
本発明の止血材は、必要な大きさに加工したフィブロイン多孔質体をそのまま用いてもよく、シート状のフィブロイン多孔質体を、ドレッシングフィルム、包帯、粘着テープ等で固定する形態で用いてもよい。
フィブロイン多孔質体は、乾燥状態でも柔らかいため、そのまま用いることもできるし、また、保湿剤を含ませて用いることもできる。保湿剤としては、グリセリン、ポリビニルピロリドン、ポリビニルアルコール、ポリエチレングリコール等を使用することができる。なお、保湿剤を含ませた状態の場合には、使用直前まで、水分量を保った状態で、乾燥を防ぐように密閉状態にしておくことが好ましい。
【００４８】
本発明の止血材として、フィブロイン多孔質体からなる多孔質層と、その一方の面のみに細孔を有しないフィルム層を有するフィブロイン多孔質体を用いてもよい。その場合、止血部に多孔質層が接し、止血部とは反対側の対向面にフィルム層が存在する状態で使用することが好ましい。このような方法で使用することにより、多孔質層による止血効果と機械的強度とを高度に両立させることができる。なお、フィルム層の細孔の数は制御することができ、必要に応じて少量の細孔を有するフィルム層とすることもできる。
【実施例】
【００４９】
以下に、本発明を実施例によりさらに具体的に説明するが、本発明は、これらの実施例によってなんら限定されるものではない。
なお、以下の実施例において、フィブロイン原料のタンパク質換算分子量を測定するために調製したフィブロイン水溶液を「フィブロイン水溶液（Ａ）」と称し、フィブロイン多孔質体の作製に用いるフィブロイン水溶液を「フィブロイン水溶液（Ｂ）」と称し、フィブロイン多孔質体に含まれるフィブロインのタンパク質換算分子量を測定するために調製したフィブロイン水溶液を「フィブロイン水溶液（Ｃ）」と称する。
また、フィブロインのタンパク質換算分子量は以下の方法により測定した。
【００５０】
〔フィブロイン原料の分子量測定準備〕
フィブロイン原料のタンパク質換算分子量を測定するために、まず下記の手法でフィブロイン水溶液（Ａ）を調製した。
フィブロイン原料を２０℃の９ｍｏｌ／Ｌ臭化リチウム水溶液に濃度が１００ｇ／Ｌになるよう投入し、１０時間攪拌することで完全に溶解した。次いで、溶解液を遠心分離（回転数：１２，０００ｍｉｎ−１、５分間）して、デカンテーションで沈殿物を除去した後、透析チューブ（Ｓｐｅｃｔｒｕｍ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．製、商品名：Ｓｐｅｃｔｒａ／Ｐｏｒ  １  Ｄｉａｌｙｓｉｓ  Ｍｅｍｂｒａｎｅ、ＭＷＣＯ６，０００−８，０００）に注入し、超純水製造装置（ＰＲＯ−０５００及びＦＰＣ−０５００（以上、型番）、オルガノ株式会社製）から採水した超純水５Ｌに対して１２時間の透析を５回繰り返して脱塩した。次に、得られた溶液を再度遠心分離（回転数：１２，０００ｍｉｎ−１、３０分間）することで、フィブロイン水溶液（Ａ）を得た。フィブロイン水溶液（Ａ）中におけるフィブロイン濃度を前述の方法により測定した。得られたフィブロイン水溶液（Ａ）をフィブロイン原料の分子量測定溶液とした。
【００５１】
〔フィブロイン水溶液（Ｂ）のタンパク質換算分子量の測定準備〕
フィブロイン水溶液（Ｂ）は、後述の実施例に記載の方法により調製し、分子量測定溶液とした。
【００５２】
〔フィブロイン多孔質体に含まれるフィブロインの分子量測定準備〕
フィブロイン多孔質体に含まれるフィブロインの分子量を測定するために、下記の手法でフィブロイン水溶液（Ｃ）を調製した。
フィブロイン多孔質体を２０℃の９ｍｏｌ／Ｌ臭化リチウム水溶液に濃度が１００ｇ／Ｌになるよう投入し、１０時間攪拌することで完全に溶解した。次いで、溶解液を遠心分離（回転数：１２，０００ｍｉｎ−１、５分間）して、デカンテーションで沈殿物を除去した後、透析チューブ（Ｓｐｅｃｔｒｕｍ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．製、商品名：Ｓｐｅｃｔｒａ／Ｐｏｒ  １  Ｄｉａｌｙｓｉｓ  Ｍｅｍｂｒａｎｅ、ＭＷＣＯ６，０００−８，０００）に注入し、超純水製造装置（ＰＲＯ−０５００及びＦＰＣ−０５００（以上、型番）、オルガノ株式会社製）から採水した超純水５Ｌに対して１２時間の透析を５回繰り返して脱塩した。次に、得られた溶液を再度遠心分離（回転数：１２，０００ｍｉｎ―１、３０分間）することでフィブロイン水溶液（Ｃ）を得た。フィブロイン水溶液（Ｃ）中におけるフィブロイン濃度を前述の方法により測定した。得られたフィブロイン水溶液（Ｃ）をフィブロイン多孔質体に含まれるフィブロインの分子量測定溶液とした。
【００５３】
〔移動相の調製〕
ガラスビーカーに超純水を７００ｍＬ入れ、そこに硫酸ナトリウム（無水物、和光純薬工業株式会社製、試薬特級）１４．２ｇと尿素（和光純薬工業株式会社製、試薬特級）１２０．１ｇを加えて得た溶液をビーカーごと超音波洗浄機に漬けて超音波処理し、完全に溶解させた。この溶液にさらにリン酸緩衝剤粉末（１．１５ｍｏｌ／Ｌ、ｐＨ７．０、和光純薬工業株式会社製、生化学用）２０ｇを加え、再度超音波処理をして溶解した。次いで、溶解後の溶液をメスフラスコに移し、１Ｌにメスアップした後に攪拌して均一な溶液とした。この溶液を分子量測定に使用する移動相とした。
【００５４】
〔タンパク質換算分子量の測定〕
フィブロイン原料のタンパク質換算分子量を測定する場合はフィブロイン水溶液（Ａ）を、フィブロイン水溶液（Ｂ）に含まれるフィブロインのタンパク質換算分子量を測定する場合はフィブロイン水溶液（Ｂ）自体を、フィブロイン多孔質体に含まれるフィブロインのタンパク質換算分子量を測定する場合はフィブロイン水溶液（Ｃ）を用いて、下記の方法により、それぞれのタンパク質換算分子量を測定した。
以下、フィブロイン水溶液（Ａ）〜（Ｃ）を「分子量測定溶液」と称する。
分子量測定溶液にフィブロイン濃度が１０ｇ／Ｌになるよう超純水を加えて混合し、続いてそこに移動相を加えて５倍に希釈し、得られた溶液を０．４５μｍのフィルタ（東洋濾紙株式会社製、商品名：２５ＨＰ０４５ＡＮ）に通してろ過し、クロマトグラフ評価試料とした。
測定には高速液体クロマトグラフ（ＨＰＬＣ）本体（株式会社日立ハイテクノロジーズ製、商品名：Ｃｈｒｏｍａｓｔｅｒ（登録商標））と、そのオプションであるＵＶ検出器（株式会社日立ハイテクノロジーズ製、型番：５４１０）、ポンプ（株式会社日立ハイテクノロジーズ製、型番：５１１０）、オートサンプラ（株式会社日立ハイテクノロジーズ製、型番：５２１０）、カラムオーブン（株式会社日立ハイテクノロジーズ製、型番：５３１０）に加え、カラム（昭和電工株式会社製、商品名：ＳＨＯＤＥＸ（登録商標）  ＰＲＯＴＥＩＮ  ＫＷ−８０４）を組み合わせたＨＰＬＣ装置を使用した。測定条件は移動相流量０．５ｍＬ／ｓｅｃ、カラム温度３０℃、検出波長ＵＶ２２０ｎｍとした。
得られたクロマトグラムをタンパク質分子量に換算するための較正曲線の作成には、分子量マーカーとしてＨＰＬＣ用分子量マーカータンパク質である酵母由来グルタミン酸脱水素酵素（分子量：２９０，０００、Ｏｒｉｅｎｔａｌ  Ｙｅａｓｔ  Ｃｏ．，ＬＴＤ．製、商品名：ＭＷ−Ｍａｒｋｅｒ（ＨＰＬＣ））、豚心筋由来乳酸脱水素酵素（分子量：１４２，０００、Ｏｒｉｅｎｔａｌ  Ｙｅａｓｔ  Ｃｏ．，ＬＴＤ製、商品名：ＭＷ−Ｍａｒｋｅｒ（ＨＰＬＣ））、酵母由来エノラーゼ（分子量：６７，０００、Ｏｒｉｅｎｔａｌ  Ｙｅａｓｔ  Ｃｏ．，ＬＴＤ製、商品名：ＭＷ−Ｍａｒｋｅｒ（ＨＰＬＣ））を使用した。
ＨＰＬＣ装置に移動相を１時間流しベースラインが安定するのを待った。ベースライン安定後に、各分子量マーカーが水溶液中でそれぞれ０．０５質量％となるように溶解した分子量マーカー水溶液を２２μＬ注入して、得られたクロマトグラムのピークトップと分子量マーカーの分子量から較正曲線を作成した。較正曲線を図１に示す。次いで、クロマトグラフ評価試料を２２μＬ注入して得られるクロマトグラムのピークトップの位置から較正曲線を使用してフィブロインのタンパク質換算分子量を測定した。
【００５５】
［フィブロイン多孔質体の製造］
実施例１
（アルカリ精練）
炭酸ナトリウム水溶液２Ｌを精練液として使用し、表１に記載の条件で切繭の精練を行った。精練容器には３Ｌのガラスビーカーを使用し、精練の加熱はホットスターラー（アズワン株式会社製、商品名：ＣＴ−５ＨＴ）をＫ熱電対で温度制御しながら行い、攪拌はガラス棒で適宜行った。得られた精練後の切繭を６０℃のお湯で十分に洗浄した後に、純水でも洗浄を行った。洗浄後の切繭を２４℃の室内で２週間かけて自然乾燥し、完全に乾燥させて、フィブロイン原料とした。次いで、練減率を下記式に従って算出した。結果を表１に示す。
練減率（質量％）＝（精練前質量−精練後質量）÷精練前質量×１００
また、得られたフィブロイン原料を用いて、前述の方法でフィブロイン水溶液（Ａ）を調製し、フィブロイン原料のタンパク質換算分子量を測定した結果を表１に示す。
【００５６】
（フィブロイン水溶液（Ｂ）の調製）
フィブロイン水溶液（Ｂ）を調製するにあたって、まず、上記のアルカリ精練を行って得られたシルクフィブロイン原料を、２０℃の９ｍｏｌ／Ｌ臭化リチウム水溶液１Ｌに濃度が１００ｇ／Ｌになるよう投入し、１０時間攪拌することで完全に溶解した。次いで、溶解液を遠心分離（回転数：１２，０００ｍｉｎ−１、５分間）して、デカンテーションで沈殿物を除去した後、透析チューブ（Ｓｐｅｃｔｒｕｍ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．製、商品名：Ｓｐｅｃｔｒａ／Ｐｏｒ（登録商標）  １  Ｄｉａｌｙｓｉｓ  Ｍｅｍｂｒａｎｅ、ＭＷＣＯ６，０００−８，０００）に注入し、超純水製造装置（ＰＲＯ−０５００及びＦＰＣ−０５００（以上、型番）、オルガノ株式会社製、）から採水した超純水５Ｌに対して１２時間の透析を５回繰り返して脱塩した。次に、得られた溶液を再度遠心分離（回転数：１２，０００ｍｉｎ−１、３０分間）することでフィブロイン水溶液（Ｂ）を得た。フィブロイン水溶液（Ｂ）中におけるフィブロイン濃度を前述の方法により測定した。
また、前述の方法でフィブロイン水溶液（Ｂ）中のフィブロインのタンパク質換算分子量を測定した結果を表１に示す。
【００５７】
（フィブロイン多孔質体の作製）
フィブロイン水溶液（Ｂ）に、フィブロイン濃度３０ｇ／Ｌ、酢酸濃度２．０％（ｖ／ｖ）となるように酢酸及び超純水を加えた。次に、得られた溶液をアルミ板で作製した型（内側サイズ；４００ｍｍ×３００ｍｍ×１０ｍｍ）に流し込み、予め−５℃に冷却しておいた液冷式低温恒温槽（株式会社前川製作所製）に入れて−５℃で２時間静置した。冷媒としてはナイブライン（登録商標）Ｚ１（株式会社ＭＯＲＥＳＣＯ製、商品名）を使用した。その後、−３℃／時間の速度で−２０℃まで冷却し、そのままの温度で５時間保持して凍結した。
凍結した試料を自然解凍で室温に戻し、型から取り出した後、超純水に浸漬し、超純水を１日２回、３日間交換することによって、使用した酢酸を除去し、フィブロイン多孔質体を得た。得られたフィブロイン多孔質体に含まれるフィブロインのタンパク質換算分子量を前述の方法で測定した結果を表１に示す。
【００５８】
実施例２〜５、比較例１及び２
実施例１において精練時間を、表１に示すとおりに変えた以外は実施例１と同様にして、フィブロイン多孔質体を得た。得られたフィブロイン原料、フィブロイン水溶液（Ｂ）及びフィブロイン多孔質体に含まれるフィブロインのタンパク質換算分子量を前述の方法で測定した結果を表１に示す。
【００５９】
実施例６
フィブロイン水溶液（Ｂ）の調製方法を以下に記載した方法とした以外は実施例１と同様にして、フィブロイン多孔質体を得た。得られたフィブロイン原料、フィブロイン水溶液（Ｂ）及びフィブロイン多孔質体に含まれるフィブロインのタンパク質換算分子量を前述の方法で測定した結果を表１に示す。
【００６０】
（フィブロイン水溶液（Ｂ）の調製−２）
フィブロイン水溶液（Ｂ）は、アルカリ精練を行って得られたシルクフィブロイン原料を２０℃の塩化カルシウムとエタノールと水とをモル比１：２：８で混合した溶液１Ｌにフィブロインの濃度が１００ｇ／Ｌになるよう投入し、８０℃で４０分間加熱、攪拌することで完全に溶解した。次いで、溶解液を遠心分離（回転数：１２，０００ｍｉｎ−１、５分間）して、デカンテーションで沈殿物を除去した後、透析チューブ（Ｓｐｅｃｔｒｕｍ  Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ，Ｉｎｃ．製、商品名：Ｓｐｅｃｔｒａ／Ｐｏｒ  １  Ｄｉａｌｙｓｉｓ  Ｍｅｍｂｒａｎｅ、ＭＷＣＯ６，０００−８，０００）に注入し、超純水製造装置（ＰＲＯ−０５００及びＦＰＣ−０５００（以上、型番）、オルガノ株式会社製）から採水した超純水５Ｌに対して１２時間の透析を５回繰り返して脱塩した。次に、得られた溶液を再度遠心分離（回転数：１２，０００ｍｉｎ−１、３０分間）することでフィブロイン水溶液（Ｂ）を得た。フィブロイン水溶液（Ｂ）中におけるフィブロイン濃度を前述の方法により測定した。
【００６１】
［機械特性の評価］
上記で得られたフィブロイン多孔質体について、以下の条件により２５％圧縮応力、引裂き強さ、引張強さ及び引張ひずみを測定した。結果を表１に示す。
【００６２】
（２５％圧縮応力の測定）
フィブロイン多孔質体について、万能試験機（型番：ＥＺ−（Ｎ）Ｓ、株式会社島津製作所製）を用い、ロードセルは５０Ｎ、治具として直径８ｍｍの円形の圧縮板を用いて、圧縮速度１ｍｍ／ｍｉｎ、室温２２℃の条件下で、材料の厚さの２５％を圧縮板で押し込んだときのロードを測定し、以下の式により算出した値を２５％圧縮応力（ｋＰａ）とした。
２５％圧縮応力（ｋＰａ）＝材料の厚さの２５％を圧縮板で押し込んだときのロード／圧縮板の面積（ｍｍ２）×１０００
【００６３】
（引裂き強さの測定）
１００ｍｍ×１５ｍｍの大きさで、かつ長さ４０ｍｍの切込みを入れた、トラウザ形に打ち抜いたフィブロイン多孔質体の試験片について、万能試験機（型番：ＥＺ−（Ｎ）Ｓ、株式会社島津製作所製）を用い、ロードセルは５０Ｎ、つかみ具は引張試験用の冶具を用い、引裂き速度２００ｍｍ／ｍｉｎ、初期つかみ具間距離４０ｍｍ、室温２２℃の条件下で、引裂き力の中央値を測定し、以下の式により算出した値を引裂き強さとした。
引裂き強さ＝引裂き力の中央値（Ｎ）／試験片の厚さ（ｍｍ）
【００６４】
（引張強さ及び引張ひずみの測定）
５０ｍｍ×５ｍｍの大きさに打ち抜いたフィブロイン多孔質体の試験片について、万能試験機（型番：ＥＺ−（Ｎ）Ｓ、株式会社島津製作所製）を用い、ロードセルは５０Ｎ、つかみ具は引張試験用の冶具を用い、引張速度５ｍｍ／ｍｉｎ、初期つかみ具間距離３０ｍｍ、室温２２℃の条件下で試験片を引張り、試験片が破断した時の応力とひずみをそれぞれ引張強さ、引張ひずみとした。
【００６５】
【表１】
2017080115.tif 000002
【００６６】
表１より、実施例１から６においてはいずれも練減率は３１質量％前後であり、セリシンがほぼ完全に除去されていることが分かった。
表１より、実施例１から６においてフィブロイン多孔質体の２５％圧縮応力は、分子量が高すぎる比較例２と比べて低く、柔軟性に優れていることが分かった。
表１より、実施例１から６においてはフィブロイン多孔質体の引裂き強さは、分子量が低すぎる比較例１と比べて高く、機械的強度に優れていることが分かった。
表１より、実施例１から６においてはフィブロイン多孔質体の引張強さは、分子量が低すぎる比較例１と比べて高く、機械的強度に優れていることが分かった。
表１より、実施例１から６においてはフィブロイン多孔質体の引張ひずみは、適切な分子量でない比較例１、比較例２と比べて高く、伸縮性に優れていることが分かった。
表１より、実施例１から６においてはフィブロイン原料及びフィブロイン水溶液のタンパク質換算分子量は１６８，０００〜４０３，０００であったが、精練時間の長い比較例１では１２６，０００、精練時間の短い比較例２では７３１，０００であり、精練時間が長くなるにつれ分子量が低下していることが分かった。
表１より、実施例１から６においてはフィブロイン多孔質体のタンパク質換算分子量は１１９，０００〜３０８，０００であったが、精練時間の長い比較例１では９２，０００、精練時間の短い比較例２では５９２，０００であり、精練時間が長くなるにつれ分子量が低下していることが分かった。
以上より、タンパク質換算分子量が１６０，０００〜４１０，０００のフィブロイン原料を使用して作製したフィブロイン水溶液のタンパク質換算分子量は１６０，０００〜４１０，０００であり、また、そのフィブロイン水溶液を使用して作製したフィブロイン多孔質体のタンパク質換算分子量は１１０，０００〜３１０，０００であり、これらのフィブロイン多孔質体は、いずれも機械的強度、伸縮性及び柔軟性に優れていることが分かった。このように、本発明の止血材は、優れた機械的強度を有するため、取り扱いが容易であり、止血部の圧迫等にも利用できる。また、十分な柔軟性を有するため、出血部位の形状に沿って密着させることが可能であり、止血を効果的に行うことができる。
【００６７】
［血液凝固時間の測定］
実施例７、比較例３〜６
（１）乾燥フィブロイン多孔質体の調製
実施例４で作製したフィブロイン多孔質体を３体積％グリセリン水溶液に４８時間浸漬した後、−２５℃の冷凍庫中で１０時間静置して完全に凍結させた。凍結したフィブロイン多孔質体の水分を凍結乾燥機を用いて完全に昇華させ、乾燥フィブロイン多孔質体を作製した。
（２）被検物質
被検物質として、上記で作製した乾燥フィブロイン多孔質体（多孔質体Ａ）、ゼラチンスポンジ（アステラス製薬株式会社製、商品名：スポンゼル）、キチンスポンジ（ニプロ株式会社製、商品名：ベスキチンＦ（Ｎ））、アルギン酸塩不織布（スミスアンドネフュー社製、商品名：アルゴダームトリオニック）を準備した。
（３）試料血液
インフォームドコンセントを行い、健常者３人から、抗凝固剤の非存在下で約４０ｍｌの血液を採取し、採取された血液をそれぞれ血液Ａ、Ｂ及びＣとした。試料血液は保存せず、採血直後、速やかに使用した。
（４）血液凝固時間の測定
はじめに、４種類の被験物質から、それぞれ３００ｍｍ３の試料２セットを切り出し、シリコナイズ処理をした試験管２本に、それぞれの被験物質を１セットずつ入れた。また、空の試験管２本をブランクとして用いた。
あらかじめ、それぞれの試験管を３７℃で加温した後、それぞれの試験管に採血直後の血液Ａを１．５ｍＬ（２００ｍｍ３／ｍＬ）添加し、タイマーをスタートさせた。それぞれの被験物質１本目の試験管を３０秒毎に傾け、血液の流動性を目視にて観察した。さらに１本目の試験管で血液凝固が観察された後、２本目の試験管を３０秒毎に傾け、血液の流動性を目視にて確認した。
採血開始から２本目の試験管で血液凝固が観察されるまでの時間を血液凝固時間とした。血液Ｂ及びＣについても同様の操作を繰り返し、血液凝固時間を測定した。血液Ａ〜Ｃの平均値を、各被験物質の血液凝固時間とした。結果を表２に示す。
【００６８】
【表２】
2017080115.tif 000003
【００６９】
表２より、フィブロイン多孔質体を用いた本発明の止血材は、止血材を使用しなかった比較例３に比べて血液凝固時間を短縮できており、止血効果を有することが分かる。また、本発明の止血材は、既存の止血材として知られるゼラチンスポンジより血液凝固時間が短く、キチンスポンジ、アルギン酸不織布と同等の止血効果を有することが分かる。
【００７０】
［生体への固着力測定］
実施例８、比較例７〜１１
（１）被検物質
被検物質として、実施例７で作製した乾燥フィブロイン多孔質体、ウレタンスポンジ（スミスアンドネフュー社製、商品名：ハイドロサイトプラス）、アルギン酸塩不織布（スミスアンドネフュー社製、商品名：アルゴダームトリオニック）、非固着性ガーゼ（スミスアンドネフュー社製、商品名：メロリン（滅菌済））及びハイドロコロイドドレッシング（３Ｍ社製、商品名：テガダームハイドロコロイド）を準備した。
（２）試験方法
（２−１）褥瘡モデルの作製
ラット（Ｓｌｃ：ＳＤ（ＳＰＦ）８週齢、日本エスエルシー株式会社）を試験に用いた。予め右第三転子上の皮膚を広範囲に電気バリカン（大東電機工業株式会社製、商品名：ＥＬＥＣＴＲＩＣ  ＣＬＩＰＰＥＲ  ＭＯＤＥＬ５５００）及び電気シェーバー（セイコーエスヤード株式会社製、商品名：Ｃｌｅａｎｃｕｔ  ＥＳ−４１２）を用いて除毛した上記ラットに、ペントバルビタールナトリウム５０ｍｇ／ｋｇを腹腔内投与し、更に、アロバルビタール２０ｍｇ／ｋｇを腹腔内投与して麻酔し、木製固定板上に腹位に固定した。大腿部と前記固定板との間にクッションとして脱脂綿を入れ、右第三転子上の皮膚に、ゴム栓（直径１２ｍｍ）をつけた１．０２〜１．０３ｋｇのステンレス棒（直径１９ｍｍ、長さ５０ｃｍ）をのせて２４時間圧負荷（９０２．３〜９１１．２ｇ／ｃｍ２）した。圧負荷時間中、ペントバルビタールナトリウム及びアロバルビタールの追加麻酔を施した。２４時間後に圧負荷を解除し、５％ブドウ糖水溶液を経口投与した後、圧負荷解除２日後にイソフルラン麻酔下にて壊死した皮膚を外科的に除去し、褥瘡モデルとした。
（２−２）創部の処置及び被験物質の投与
ラットに作製した褥瘡に２ｃｍ角に裁断した被検物質を被せ、その上から３ｃｍ角に裁断したガーゼ（白十字株式会社製）で覆い、４ｃｍ角に裁断したドレッシングフィルム（スミスアンドネフュー社製、商品名：オプサイトジェントルロール）で固定した。更に、５ｃｍ角に裁断した伸縮性包帯エラストポアＮｏ．５０（ニチバン株式会社製）２枚を交叉して貼り、伸縮性包帯エラストポアＮｏ．１２（ニチバン株式会社製、１．２×６０ｃｍ）で固定した。ハイドロコロイドドレッシングについては、離型紙を剥がし粘着面が創傷面に当たるように投与し、その上からガーゼを被せ、更に、伸縮性包帯で固定した。被検物質は褥瘡が完全に治癒するまでの間、２日ごとに新しいものに交換した。被検物質交換時には、以下の方法で創部への固着の強さを測定した。また、新しい被検物質を貼付する前には、生理食塩液（株式会社大塚製薬工場製）に浸した脱脂綿で創部を清拭した。また、創部が完全に上皮化したタイミングを治癒と判定した。
（２−３）創部への固着の強さの測定
被験物質の創部に対する固着の強さを、吊り秤（天衡商事、高精度光デジタルフォースゲージ）で測定した。被験物質交換時に被検物質を剥がさないように固定している伸縮性包帯類を除去した後に、吊り秤で被検物質を垂直に引っ張って被検物質を剥がした。その時の重さの最大値を読み取って記録し、以下の式に従って、各被検物質の交換時の創部に対する平均固着強さを算出した。
平均固着強さ（ｇ）＝（褥瘡が治癒するまでの各被検物質交換時に吊り秤が示した重さの最大値の合計（ｇ））／（各被検物質の交換回数）
結果を表３に示す。なお、治癒に要した日数とは、各被検物質の貼付を始めた日から、創部が完全に上皮化した日までの日数を表す。
【００７１】
【表３】
2017080115.tif 000004
【００７２】
表３より、フィブロイン多孔質体を用いた本発明の止血材は、創部に対する固着力が小さく、生体から容易に除去することが可能であることが分かる。
本発明の止血材を貼付した場合には、ガーゼ類を創部に貼付した場合と比較して治癒に要する日数が短いことが確認された。また、比較例８、９及び１１の既存の湿潤療法向け創傷被覆材として知られる材料と比較しても遜色ないことが分かった。このように。本発明の止血材は、止血のみならず、創部に貼付することで、創傷治癒促進効果が期待できる。
【図１】
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