(57)【要約】【課題】γδＴ細胞を標的組織に効率よく遊走させることのできる薬剤を提供すること、およびそれを用いた骨破壊疾患治療薬などの医薬を提供すること。【解決手段】CCL3、CCL5、CCL7、CCL8およびCCL26からなる群より選択される2種類以上のケモカインを有効成分とするγδＴ細胞遊走促進剤および該γδＴ細胞遊走促進剤を含む骨破壊疾患治療薬などの医薬。【選択図】図３−３
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
CCL3、CCL5、CCL7、CCL8およびCCL26からなる群より選択される2種類以上のケモカインを有効成分とする、γδＴ細胞遊走促進剤。
【請求項２】
前記2種類以上のケモカインが、CCL3とCCL5、CCL5とCCL8、CCL5とCCL26、CCL7とCCL8、またはCCL8とCCL26である、請求項１に記載のγδＴ細胞遊走促進剤。
【請求項３】
請求項１または２に記載のγδＴ細胞遊走促進剤を含む、医薬。
【請求項４】
骨破壊疾患の治療薬である、請求項３に記載の医薬。
【請求項５】
骨破壊疾患が歯周病である、請求項４に記載の医薬。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明はγδＴ細胞遊走促進剤およびそれを含む骨破壊疾患治療薬などの医薬に関する。
【背景技術】
【０００２】
γδT細胞は、γδ鎖のＴ細胞受容体（ＴＣＲ）を発現しているＴ細胞であり、末梢血中
に含まれるＴリンパ球の数%を占める。γδＴ細胞はＭＨＣ分子の拘束は受けず、直接タ
ーゲット抗原を認識するという特徴を有し、IFN-γ、IL-4、IL-17などのサイトカインを
産生して感染防御などに関わっていることが知られている。
また、γδＴ細胞は腫瘍細胞に対して優れた認識性と攻撃性を有していることから、肺癌や多発性骨髄腫などの治療に応用されている。
また、特許文献１ではMEP経路の中間体を用いることでγδＴ細胞を活性化させることが
開示されており、喘息、クローン病、潰瘍性大腸炎、多発性硬化症、慢性気管支炎、自己免疫疾患、アレルギーおよび骨疾患に使用し得ることが開示されている。
【０００３】
さらに、γδＴ細胞の遊走に関する検討もなされており、特許文献２や３ではリンパ球が産生するケモカインCCL-21によりγδＴ細胞が誘引されることが開示され、非特許文献１では、別名RANTESとも呼ばれるCCL5によりγδＴ細胞が誘引されることが開示されている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００４】
【特許文献１】特表2004-531264号公報
【特許文献２】特開2011-250711号公報
【特許文献３】特表2008-509683号公報
【非特許文献】
【０００５】
【非特許文献１】The Journal of Immunology, 2002, 168: 4920-4929
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００６】
上記の通り、γδＴ細胞は様々な疾患に対して治療効果が期待されるが、生体内での存在量は少なく、γδＴ細胞を末梢血から回収しインビトロで増殖させることは可能であるが、治療に必要な量の細胞を得るための培養に長期間を要するという問題があった。また、γδＴ細胞の遊走を促進させるという研究もなされてはいたが、末梢血などに含まれるγδＴ細胞を標的組織に遊走させ、治療効果を発揮させるには不十分であった。
そこで、本発明は、γδＴ細胞を効率よく標的組織に遊走させ、標的組織において治療効果を発揮させるための薬剤を提供することを課題とする。
【課題を解決するための手段】
【０００７】
上記課題を解決するため、本発明者らは鋭意検討を行った。その結果、特定のケモカインの組み合わせによりγδＴ細胞を効率よく遊走させることができることを見出し、これにより、骨破壊疾患などの治療にも効果を発揮させることができることを見出し、本発明を完成させた。
【０００８】
すなわち、本発明は以下のとおりである。
（１）CCL3、CCL5、CCL7、CCL8およびCCL26からなる群より選択される2種類以上のケモカインを有効成分とする、γδＴ細胞遊走促進剤。
（２）前記2種類以上のケモカインが、CCL3とCCL5、CCL5とCCL8、CCL5とCCL26、CCL7とCCL8、またはCCL8とCCL26である、（１）に記載のγδＴ細胞遊走促進剤。
（３）（１）または（２）に記載のγδＴ細胞遊走促進剤を含む、医薬。
（４）骨破壊疾患の治療薬である、（３）に記載の医薬。
（５）骨破壊疾患が歯周病である、（４）に記載の医薬。
【発明の効果】
【０００９】
本発明により、ケモカインの投与により、局所にγδＴ細胞を効率よく遊走させることが可能となった。これにより、γδＴ細胞をインビトロで増殖させる作業が必須ではなくなり、早期の治療効果が期待できる。また、インビトロで増殖させたγδＴ細胞を用いる場合でも高効率に組織へ遊走させることが可能となる。
本発明のγδＴ細胞遊走促進剤はγδＴ細胞が標的とし得る様々な疾患の治療に使用できるが、歯周病などの骨破壊疾患の治療に好適に使用し得る。歯周病の治療は化学療法が中心であり、耐性菌が問題になりうるが、本発明のγδＴ細胞遊走促進剤を用いる場合は耐性菌を生じさせないという利点がある。また、骨粗鬆症もターゲットとなる可能性が有り、ビスホスホネートによる顎骨壊死などの副作用を予防できるという利点がある。
【図面の簡単な説明】
【００１０】
【図１】γδＴ細胞でのケモカイン受容体発現をreal-time PCRで調べた結果を示す図。
【図２】αβＴ細胞とγδＴ細胞の細胞表面におけるケモカイン受容体の発現をフローサイトメトリーで調べた結果を示す図。(A)αβＴ細胞におけるCCR1とCCR3の発現。(B) γδＴ細胞におけるCCR1とCCR3の発現。 (C)αβＴ細胞におけるCCR4とCCR5の発現。(D)γδT細胞におけるCCR4とCCR5の発現。(E)αβＴ細胞におけるCCR6とCCR8の発現。(F)γδＴ細胞におけるCCR6とCCR8の発現。(G)αβＴ細胞におけるCCR9とCXCR1の発現。(H)γδＴ細胞におけるCCR9とCXCR1の発現。(I) αβＴ細胞におけるCXCR7の発現。(J)γδＴ細胞におけるCXCR7の発現。
【図３−１】Ｔ細胞の遊走アッセイ系を示す模式図。
【図３−２】全Ｔ細胞の遊走に対する各ケモカインの影響を示す図。
【図３−３】αβＴ細胞またはγδＴ細胞の遊走に対する各ケモカインの影響を示す図。
【図４】野生型マウスまたはＴ細胞受容体δ鎖ノックアウトマウス（γδＴ細胞欠損マウス）由来の破骨細胞の分化に対するγδＴ細胞の影響を示す図（写真）。
【図５】野生型マウス、γδＴ細胞欠損マウスまたはγδＴ細胞を移植されたγδＴ細胞欠損マウスの大腿骨の海綿骨μＣＴ画像（写真）。
【発明を実施するための形態】
【００１１】
本発明のγδＴ細胞遊走促進剤は、CCL3、CCL5、CCL7、CCL8およびCCL26からなる群より
選択される2種類以上のケモカインを有効成分とする。有効成分のケモカインは3種類以上でもよい。より好ましいケモカインの組み合わせとしては、CCL3とCCL5、CCL5とCCL8、CCL5とCCL26、CCL7とCCL8、またはCCL8とCCL26が挙げられる。２種類のケモカインの組み合わせを投与する場合、ケモカインのモル比は、遊走促進効果の高いモル比を適宜定めればよいが、例えば、１：９〜９：１とすることができ、さらには、４：６〜６：４とすることができ、１：１としてもよい。
【００１２】
γδＴ細胞は、本発明のケモカインの組み合わせによって標的組織に遊走するものであれば特にその由来や種類は限定されないが、哺乳動物由来の細胞が好ましく、ヒト由来の細胞がより好ましく、ヒト末梢血の大部分を占めるVγ9/Vδ2 Ｔ細胞がより好ましい。γδＴ細胞は生体内に存在する細胞でもよいし、インビトロで培養された細胞でもよい。後者の場合、標的組織にケモカインを投与すると同時、または、ケモカイン投与後、遅滞なく
インビトロで培養されたγδＴ細胞を投与することで、インビトロで培養されたγδＴ細胞が標的組織に対し、効率よく遊走する。
【００１３】
上記ケモカインとしては、遊走させるγδＴ細胞と同じ哺乳動物由来のものが好ましく、ヒト由来のものがより好ましい。ケモカインは、公知のアミノ酸配列を有するケモカインを使用することができるが、γδＴ細胞を遊走させることができる限り、公知の配列に対し、１または数個、例えば、１〜５個または１〜２個のアミノ酸が置換、欠失、挿入または付加されたアミノ酸配列を有するものでもよい。ケモカインは化学合成されたものでもよいし、組み換え生産されたものでもよいし、生体や細胞から精製されたものでもよい。
【００１４】
γδＴ細胞のケモカイン受容体（CCR3、CCR5など）が上記ケモカインを標的とし、ケモカインの存在する部位に遊走する。ケモカインがγδＴ細胞の遊走を促進させることは、例えば、Boyden chamber assayのようなアッセイ系を用いて確認することができる。
【００１５】
上記２種類以上のケモカインを標的組織に投与することにより、γδＴ細胞は標的組織に遊走し、標的組織に対し、治療効果をもたらす。したがって、本発明のγδＴ細胞遊走促進剤は、γδＴ細胞を標的組織に遊走させてγδＴ細胞の活性により疾患を治療するための医薬として使用することができる。対象疾患としては、γδＴ細胞が治療効果を発揮することのできる疾患であれば特に制限されないが、例えば、癌、炎症性疾患、自己免疫疾患、アレルギー性疾患および骨疾患などが挙げられる。特に、骨破壊疾患が好ましく、癌の骨転移、骨粗鬆症、関節リウマチ、歯周病、骨ページェット病などが挙げられる。
【００１６】
上記２種類以上のケモカインは直接、標的組織に投与してもよいが、薬学的に許容される担体を含む医薬組成物の形態で投与されることが好ましい。「薬学的に許容され得る担体」とは、賦形剤、希釈剤、増量剤、崩壊剤、安定剤、保存剤、緩衝剤、乳化剤、芳香剤、着色剤、甘味剤、粘稠剤、矯味剤、溶解補助剤あるいはその他の添加剤等が挙げられる。そのような担体の１種以上を用いることにより、注射剤、液剤、カプセル剤、懸濁剤、乳剤あるいはシロップ剤等の形態の医薬組成物を調製することができる。
【００１７】
上記２種類以上のケモカインを有効成分とする医薬は、経口あるいは非経口的に投与することができるが、標的組織に局所投与されることが好ましく、例えば、標的組織に注射によって投与される。注射剤の場合には、生理食塩水又は市販の注射用蒸留水等の薬学的に許容される担体中に溶解または懸濁することにより製造することができる。
【００１８】
また、上記２種類以上のケモカインを有効成分とする医薬はケモカインの生体内の安定性を高めたり、特定の臓器、組織又は細胞へケモカインを効率的に輸送したり、徐放性を持たせたりするために、生体適合性ポリマーのマトリクスやリポソームなどの小胞に内包させて投与させてもよい。例えば、ポリエチレングリコール、高分子複合体、高分子凝集体、ナノカプセル、ミクロスフェア、ビーズ、水中油系の乳化剤、ミセル、混合ミセル、リポソームなどを用いる製剤が例示される。なお、生体適合性ポリマーとしては、例えば、ポリエステル、ハイドロゲル、ポリヒドロキシ酪酸、エチレン酢酸ビニル共重合体、ポリグリコール酸、コラーゲン、ポリ乳酸などが挙げられる。
なお、リポソームなどの小胞には、標的組織にターゲッティングするために、標的組織の表面で発現するマーカータンパク質に対する抗体を表面に結合させてもよい。
【００１９】
また、上記２種類以上のケモカインを有効成分とする医薬は、ケモカインを吸収または封入した膜、ハイドロゲル、スポンジ、多孔質体または他の適切な材料の埋込みにより局所投与することもできる。埋込みデバイスを用いる態様においては、デバイスを適切な組織または臓器内に移植することができる。ハイドロゲルを構成する材料としては、ハイドロキシプロピルメチルセルロースなどのセルロース誘導体、ゼラチン、アルギン酸、アガロ
ース、デキストランなどの天然高分子の化学架橋体、ポリグリコール酸、ポリ乳酸、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、ポリエチレングリコールなどの合成高分子の化学架橋体などが挙げられる。スポンジとしては、例えばセルロース、アガロース、キトサンやコラーゲンのスポンジが挙げられる。多孔質体を構成する材料としては、ゼラチン、シリコーン、アパタイトなどが挙げられる。
【００２０】
本発明のγδＴ細胞遊走促進剤およびそれを含む医薬の投与量は、有効成分である２種類以上のケモカインがγδＴ細胞を標的組織に遊走させ、治療効果を発揮させられる量であればよく、対象動物（ヒト又は非ヒト動物を含む各種哺乳動物、好ましくはヒト）の年齢、性別、体重及び症状、治療効果、治療部位の面積、投与方法、処理時間などに応じて適宜調節される。例えば、ケモカインの総量として、一回につき100μg〜5000mgの範囲で投与することができる。
【実施例】
【００２１】
以下、実施例を挙げて本発明を具体的に説明するが、本発明は以下の態様に限定されない。
【００２２】
1.Ｔ細胞の回収
健常者の末梢血を回収し等量のPBSで希釈した後、ヒトリンパ球分離用Histopaque-1077(Sigma-Aldrich)にて遠心分離を行い、リンパ球に富む分画を回収した。その後、磁気ビー
ズ法であるTCRγ/δ+T  Cellアイソレーションキット(Miltenyi Biotec)を使用してγδ
Ｔ細胞を回収した。同様に、磁気ビーズ法であるPan T CellアイソレーションキットとAnti-TCRγ/δ マイクロビーズキット  (Miltenyi Biotec)を使用して抗体非標識のαβＴ
細胞を回収した。
【００２３】
2.real-time PCRによるγδＴ細胞ケモカイン受容体発現
回収したγδＴ細胞、αβＴ細胞それぞれからRNeasy Mini Kit(QIAGEN) を用いてプロトコールに従いRNAの抽出・精製を行った。その後、抽出したtotal RNAの純度と濃度を微量分光光度計NanoDrop(Thermo Scientific)で測定した。total RNAを鋳型とし、cDNAを合成した(iScript Advanced cDNA synthesis Kit for RT-qPCR BIO RAD)。real-time PCRはSsoAdvanced Univesal SYBR Green Supermix(BIO RAD)を用いてプロトコールに従い行った
。目的遺伝子はCC受容体(CCR1、CCR2、CCR3、CCR4、CCR5、CCR6、CCR7、CCR8、CCR9、CCR10)、CXC受容体(CXCR1、CXCR2、CXCR3、CXCR4、CXCR5、CXCR6、CXCR7)、XC受容体(XCR1)
、CX3C(CX3CR1)受容体とした。内在性コントロールとしてGAPDHを使用した。
【００２４】
3.フローサイトメトリーによるＴ細胞表面ケモカイン受容体発現
回収したヒトリンパ球を使用してγδＴ細胞、αβＴ細胞それぞれのケモカイン受容体の発現をフローサイトメトリーにより確認した。real-time PCRの結果に基づき、αβＴ細
胞よりγδＴ細胞の方が発現量が多く、Ｔ細胞の遊走に関わることが知られているケモカイン受容体を対象とした。解析にはPE/Cy7-αβTCR, PerCP/Cy5.5-γδTCR, Alexa Flour
488-CCR1, PE-CCR3、PE-CCR4、Alexa Flour 488-CCR5、Alexa Flour 488-CCR6、 PE-CCR8、PE-CCR9、FITC-CXCR1、PE-CXCR7 (Bio Legend) の各抗体を使用した。
【００２５】
4.Ｔ細胞走化性実験
Pan T Cellアイソレーションキットにて回収したＴ細胞を走化性実験に使用した。24wellの培養プレートにポアサイズ5μmの細胞培養用インサート(Merck)を装着し、上層には1×105個のＴ細胞を100μlの0.1%BSA含有RPMI1640培地に播種した（図３−１）。下層にはケモカインを組み合わせて培養液に添加し、２時間培養した(CCL5;10ng/ml、 CCL3; 50ng/ml、 CCL7;75mg/ml、CCL8; 100ng/ml、 CCL26; 200ng/ml)。その後、下層に移動した細胞
を回収し細胞数を測定した。陽性コントロールは10%FBS添加RPMI1640培地、陰性コントロ
ールは0.1%BSA添加RPMI1640培地とした。
【００２６】
結果１：αβＴ細胞とγδＴ細胞におけるケモカイン受容体のmRNA発現
real-time PCRによりケモカイン受容体のmRNA量を測定した。また、内在性コントロール
のGAPDHで各細胞におけるケモカイン受容体遺伝子の発現量を標準化した。その結果、図
１に示すように、CCR1、CCR3、CCR4、CCR5、CCR6、CCR8、CCR9、CXCR1、CXCR7においてγδＴ細胞の方がαβＴ細胞より有意に遺伝子発現が多かった。
【００２７】
結果２：αβＴ細胞とγδＴ細胞の細胞表面におけるケモカイン受容体の発現
フローサイトメトリーの結果、図２に示すように、CCR3、CCR5においてγδＴ細胞の方がαβＴ細胞より受容体タンパク質の発現量が多かった。
【００２８】
CCR3およびCCR5結合ケモカイン
CCR3にはCCL5、CCL7、CCL11、CCL13、 CCL15、CCL24、CCL26が結合することが知られている。CCL5およびCCL7はリンパ球の走化性に関わっている。
CCL11、CCL 24およびCCL 26は好酸球活性化に関与している。またCCL26はリンパ球の走化性にも関わっている。CCL13の作用はCCL7に類似し、CCL15は主にCCR1に結合する。そこでCCR3結合ケモカインとしてCCL5、CCL7およびCCL26をケモタキシス候補のケモカインとし
た。
CCR5にはCCL3、CCL4、CCL5およびCCL8が結合することが知られているCCL3、CCL 4、CCL 5およびCCL 8はリンパ球の走化性に関わっている。そこでCCR5結合ケモカインとしてCCL3
、CCL4、CCL5およびCCL8をケモタキシス候補のケモカインとした。
これらのケモタキシス候補のケモカインおよびその組み合わせでγδＴ細胞の遊走能を確認した。
【００２９】
結果３
図３−１に示すように培養プレートを上下２層に分離上層にαβＴ細胞とγδＴ細胞の両方を含むＴ細胞を播種し下層にケモカイン添加培地を加え培養を行い、遊走した細胞を回収し、顕微鏡下にて測定した。図３−２は下層に遊走した全てのＴ細胞数に対するケモカインの影響を示し、図３−３は下層に遊走したαβＴ細胞またはγδＴ細胞に対するケモカインの影響を示す。
図３−２より、全Ｔ細胞(αβＴ細胞とγδＴ細胞)遊走に対するケモカインの影響については、CCL3+CCL5、CCL5+CCL8、CCL5+CCL26、CCL7+CCL8、CCL8+CCL26の組み合わせにおい
て全Ｔ細胞を効果的に遊走させることができることがわかった。
また、図３−３より、γδＴ細胞遊走に対するケモカインの影響については、CCL5を単独で添加した場合、γδＴ細胞の遊走能はコントロールに対して約3倍上昇するが、さらにCCL3を添加することで約6倍まで上昇する(CCL3+CCL5)ことがわかった。また、CCL5+CCL8の組み合わせにおいても約4.5倍上昇し、CCL8+CCL26の組み合わせにおいても約3.5倍上昇することがわかった。
【００３０】
参考例１：破骨細胞分化に対するγδＴ細胞の影響
野生型またはＴ細胞受容体δ鎖ノックアウトマウス（γδＴ細胞欠損マウス）の骨髄由来細胞（BM）を24wellの細胞培養用プレートに6×105 cells/wellの密度で播種し、20 ng/ml M-CSFと50 ng/ml sRANKL（オリエンタル酵母）を添加した10%FBS含有α-MEM中で培養し破骨細胞に分化させた。ここに、1×105 cells/wellの密度でγδＴ細胞を添加し、破骨
細胞分化に対する影響を検討した。破骨細胞への分化は破骨細胞マーカーTRAPで染色することにより評価した。
その結果、図４に示すように、野生型（WT）マウス、γδKOマウスいずれにおいても野生型由来のγδＴ細胞と共培養すると破骨細胞の分化が抑制された。（また、2×104cells/wellの密度で γδＴ細胞を添加しても同様の結果が得られている。）
このようにγδＴ細胞は破骨細胞への分化を抑制できるので、γδＴ細胞を骨破壊部位に遊走させることで、骨破壊疾患の治療の可能性を示すものである。
【００３１】
参考例２：骨密度に対するγδＴ細胞の影響
マウス大腿骨骨密度をμCTにて比較した結果、図５に示すように、γδＴ細胞欠損マウスでは大腿骨の海綿骨の骨密度がワイルドタイプマウスに比べ優位に低いが、γδＴ細胞欠損マウスにワイルドタイプマウス由来のγδＴ細胞を移植（1×106cells/mouse）すると
骨密度の回復が見られる。これはγδＴ細胞が骨密度のコントロールに関与していることを示しており、骨破壊疾患の治療の可能性を示すものである。
【図１】
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【図２】
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【図３−１】
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【図３−２】
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【図３−３】
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【図４】
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【図５】
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