(57)【要約】【課題】  オフターゲット効果を抑えた、簡便な遺伝子改変方法を提供すること。【解決手段】  二本鎖ＤＮＡの塩基配列に対して少なくとも１か所にミスマッチ塩基を有する少なくとも１つのオリゴヌクレオチドおよびミスマッチエンドヌクレアーゼ活性を有するポリペプチドを組み合わせた二本鎖ＤＮＡの切断方法、当該二本鎖ＤＮＡの切断方法で二本鎖ＤＮＡを切断する工程を包含する遺伝子改変方法、ならびに当該方法のための細胞及びキット。【選択図】なし【特許請求の範囲】
【請求項１】
二本鎖ＤＮＡに、前記二本鎖ＤＮＡの一方のＤＮＡ鎖とハイブリダイズさせた際に少なくとも１個のミスマッチを生じるように設計されたオリゴヌクレオチド及びミスマッチエンドヌクレアーゼ活性を有するポリペプチドを接触させることを特徴とする二本鎖ＤＮＡの切断方法。
【請求項２】
さらに、二本鎖ＤＮＡのもう一方のＤＮＡ鎖とハイブリダイズさせた際に少なくとも１個のミスマッチを生じるように設計されたオリゴヌクレオチドを用いることを特徴とする請求項１記載の二本鎖ＤＮＡの切断方法。
【請求項３】
二本鎖ＤＮＡに、前記二本鎖ＤＮＡの一方のＤＮＡ鎖とハイブリダイズさせた際に少なくとも１個のミスマッチを生じるように設計されたオリゴヌクレオチド、前記オリゴヌクレオチドの５’末端側及び／又は３’末端側に隣接して前記一方のＤＮＡ鎖とハイブリダイズするように設計された少なくとも１つのオリゴヌクレオチド及びミスマッチエンドヌクレアーゼ活性を有するポリペプチドを接触させることを特徴とする請求項１又は２記載の二本鎖ＤＮＡの切断方法。
【請求項４】
さらに、二本鎖ＤＮＡのもう一方のＤＮＡ鎖とハイブリダイズさせた際に少なくとも１個のミスマッチを生じるように設計されたオリゴヌクレオチドの５’末端側及び／又は３’末端側に隣接して前記もう一方のＤＮＡ鎖とハイブリダイズするように設計された少なくとも１つのオリゴヌクレオチドを用いることを特徴とする請求項３記載の二本鎖ＤＮＡの切断方法。
【請求項５】
オリゴヌクレオチドがＤＮＡである請求項１〜４のいずれか１項に記載の二本鎖ＤＮＡの切断方法。
【請求項６】
オリゴヌクレオチドがＤＮＡとＲＮＡのキメラオリゴヌクレオチドである請求項１〜４のいずれか１項に記載の二本鎖ＤＮＡの切断方法。
【請求項７】
細胞内で行われることを特徴とする請求項１〜６のいずれか１項に記載の二本鎖ＤＮＡの切断方法。
【請求項８】
請求項１〜７のいずれか１項に記載の方法で二本鎖ＤＮＡを切断する工程を包含する遺伝子改変方法。
【請求項９】
二本鎖ＤＮＡの切断で生成したＤＮＡ末端に非相同末端結合又は相同組換えによるＤＮＡ鎖の挿入が起こる請求項８記載の遺伝子改変方法。
【請求項１０】
二本鎖ＤＮＡの切断及び／又は遺伝子の改変に使用される細胞であって、外来性のミスマッチエンドヌクレアーゼ活性を有するポリペプチドを当該細胞内で発現する機能を有することを特徴とする細胞。
【請求項１１】
二本鎖ＤＮＡを切断するためのキットであって、
（１）前記二本鎖ＤＮＡの一方のＤＮＡ鎖とハイブリダイズさせた際に少なくとも１個のミスマッチを生じるように設計されたオリゴヌクレオチド、および
（２）ミスマッチエンドヌクレアーゼ活性を有するポリペプチド、または当該ポリペプチドを目的の細胞内で発現するための核酸、を含むことを特徴とするキット。
【請求項１２】
遺伝子改変方法のためのキットであって、
（１）前記遺伝子をコードする二本鎖ＤＮＡの一方のＤＮＡ鎖とハイブリダイズさせた際に少なくとも１個のミスマッチを生じるように設計されたオリゴヌクレオチド、および
（２）ミスマッチヌクレアーゼ活性を有するポリペプチド、または当該ポリペプチドを目的の細胞内で発現する細胞、を含むことを特徴とするキット。
【請求項１３】
さらに、（１）のオリゴヌクレオチドの５’末端側及び／又は３’末端側に隣接して、二本鎖ＤＮＡの一方のＤＮＡ鎖とハイブリダイズするように設計された少なくとも１つのオリゴヌクレオチドを含むことを特徴とする請求項１１又は１２記載のキット。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、二本鎖ＤＮＡの塩基配列に対してミスマッチ塩基を有する少なくとも１つのオリゴヌクレオチド及び当該ミスマッチ部位を認識・切断するミスマッチエンドヌクレアーゼ活性を有するポリペプチドを用いた遺伝子改変方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
最近、ゲノムＤＮＡの特定部位を切断できる人工制限酵素を用いて任意のＤＮＡの塩基配列に対して、置換、挿入あるいは欠失させる、いわゆるゲノム編集と呼ばれる技術が注目されてきている。現在までにすでに、ＺＦＮ（ｚｉｎｃ−ｆｉｎｇｅｒ  ｎｕｃｌｅａｓｅ）法、ＴＡＬＥＮ（ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ  ａｃｔｉｖａｔｏｒ−ｌｉｋｅ  ｅｆｆｅｃｔｏｒ  ｎｕｃｌｅａｓｅ）法、並びにＣＲＩＳＰＲ（ｃｌｕｓｔｅｒｅｄ  ｒｅｇｕｌａｒｌｙ  ｉｎｔｅｒｓｐａｃｅｄ  ｓｈｏｒｔ  ｐａｌｉｎｄｒｏｍｉｃ  ｒｅｐｅａｔｓ）／ＣＡＳ法が提案されている。これらの技術は、ゲノムＤＮＡの特定部位を切断し、非相同末端結合（ｎｏｎ−ｈｏｍｏｌｏｇｏｕｓ  ｅｎｄ  ｊｏｉｎｉｎｇ：ＮＨＥＲ）による塩基の挿入欠失や相同組換え修復（ｈｏｍｏｌｏｇｙ−ｄｉｒｅｃｔｅｄ  ｒｅｐａｉｒ：ＨＤＲ）を引き起こして目的の遺伝子をノックアウト、又はノックインできる。
【０００３】
ＺＦＮ法は、１９９６年に提案された技術であり、ジンクフィンガー（ＺＦ）モジュールと制限酵素ＦｏｋＩのヌクレアーゼドメインを融合させた融合タンパクを二量体で用いることを特徴とする（非特許文献１）。当該技術では、制限酵素ＦｏｋＩのヌクレアーゼドメインは、二量体を形成してＤＮＡを切断するため、二本鎖ＤＮＡのお互いに異なる鎖を認識するＺＦＮをペアで結合させる必要がある。また、ジンクフィンガーのＤＮＡ認識性において、当該ジンクフィンガーは１モジュールで３塩基を認識するが、このモジュールが複数連結すると、お互いの塩基認識に影響を与え、ＤＮＡ認識特異性が低下することが知られている。これは、非特異的なＤＮＡ切断、いわゆるオフターゲット効果として問題となってきている。
【０００４】
ＴＡＬＥＮ法は、２０１０年に提案された技術であり、任意の塩基配列を認識するＤＮＡ結合ドメインにＺＦＮ法と同じ制限酵素ＦｏｋＩのヌクレアーゼドメインを融合させた融合タンパクを二量体で用いることを特徴とする（非特許文献２）。当該技術でも、前記ＺＦＮ法と同様に制限酵素ＦｏｋＩのヌクレアーゼドメインは、二量体を形成してＤＮＡを切断するため、二本鎖ＤＮＡのお互いに異なる鎖を認識するＴＡＬエフェクター（ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ  ａｃｔｉｖａｔｏｒ−ｌｉｋｅ  ｅｆｆｅｃｔｏｒ：ＴＡＬＥ）をペアで結合させる必要がある。また、ＤＮＡ認識性において、当該ＴＡＬＥタンパクのＤＮＡ結合リピートは、１モジュールで１塩基を認識するが、このモジュールが複数連結してもお互いの塩基認識に影響を与えることは少ないことが知られている。しかしながら、オフターゲット効果を完全に解消できるところまでは行っていない。さらに、ＴＡＬＥＮ法におけるＤＮＡ結合ドメインは、３３〜３５アミノ酸の繰り返し配列からなり、当該繰り返し配列を１５〜２０連結する必要があり、作製は操作が煩雑であるという問題点があった。
【０００５】
ＣＲＩＳＰＲ/ＣＡＳ法は、２０１２年に提案された技術であり、標的ＤＮＡと相補的な配列を含む短いＲＮＡ（ｓｉｎｇｌｅ  ｇｕｉｄｅ  ＲＮＡ：ｓｇＲＮＡ）とバクテリア由来の二本鎖ＤＮＡ切断酵素のＣａｓ９タンパクとの組み合わせで任意の塩基配列部位でも特異的に切断できることを特徴としている（特許文献１、非特許文献３）。さらに、２０１３年には、当該技術がヒト細胞やマウス細胞に利用できることを報告している（非特許文献４及び５）。ＣＲＩＳＰＲ/ＣＡＳ法は、ｓｇＲＮＡとＣａｓ９タンパクの組み合わせという非常にシンプルな組み合わせで実施できる方法であるが、切断しようとする塩基配列部位にＰＡＭ（Ｐｒｏｔｏ−ｓｐａｃｅｒ  ａｄｊａｃｅｎｔ  ｍｏｔｉｆ）配列と呼ばれる特定の短い塩基配列が必要である。さらに、二本鎖ＤＮＡを切断するＣａｓタンパクの塩基切断認識が低いことから、ＺＦＮと同様にオフターゲット効果が問題となってきている。
【０００６】
以上のように、現在のゲノム編集方法は、オフターゲット効果による予期せぬ遺伝子改変あるいは人工制限酵素作製の煩雑さなど種々の問題を抱えている。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００７】
【特許文献１】国際公開第２０１３／１７６７７２号パンフレット
【非特許文献】
【０００８】
【非特許文献１】プロシーディング  オブ  ザ  ナショナル  アカデミー  オブ  サイエンシーズ  オブ  ザ  ユナイテッド・ステイツ・オブ・アメリカ（Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ）、第９３巻、１１５６〜１１６０頁（１９９６年）
【非特許文献２】ジェネティクス（Ｇｅｎｅｔｉｃｓ）、第１８６巻、７５７〜７６１頁（２０１０年）
【非特許文献３】サイエンス（Ｓｃｉｅｎｃｅ）、第３３７巻、８１６−８２１頁（２０１２年）
【非特許文献４】サイエンス（Ｓｃｉｅｎｃｅ）、第３３９巻、８１９−８２３頁（２０１３年）
【非特許文献５】サイエンス（Ｓｃｉｅｎｃｅ）、第３３９巻、８２３−８２６頁（２０１３年）
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００９】
本発明の目的は、オフターゲット効果を抑えた、簡便な遺伝子改変方法を提供することにある。
【課題を解決するための手段】
【００１０】
本発明者らは、オフターゲット効果を抑えた、簡便な遺伝子改変方法を提供することを目的に鋭意研究の結果、二本鎖ＤＮＡの塩基配列に対して少なくとも１か所にミスマッチ塩基を有する少なくとも１つのオリゴヌクレオチドおよびミスマッチエンドヌクレアーゼ活性を有するポリペプチドを組み合わせることで、目的の塩基配列部位で正確に切断して、ＤＳＢ（ｄｏｕｂｌｅ−ｓｔｒａｎｄ  ｂｒｅａｋ）を生じさせることができることを見出し、本発明を完成させた。
【００１１】
すなわち、本発明の第一の発明は、二本鎖ＤＮＡに、前記二本鎖ＤＮＡの一方のＤＮＡ鎖とハイブリダイズさせた際に少なくとも１個のミスマッチを生じるように設計されたオリゴヌクレオチド及びミスマッチエンドヌクレアーゼ活性を有するポリペプチドを接触させることを特徴とする二本鎖ＤＮＡの切断方法に関する。
【００１２】
本発明の第一の発明において、さらに、二本鎖ＤＮＡのもう一方のＤＮＡ鎖とハイブリダイズさせた際に少なくとも１個のミスマッチを生じるように設計されたオリゴヌクレオチドを用いてもよい。また、本発明の第一の発明において二本鎖ＤＮＡに、前記二本鎖ＤＮＡの一方のＤＮＡ鎖とハイブリダイズさせた際に少なくとも１個のミスマッチを生じるように設計されたオリゴヌクレオチド、前記オリゴヌクレオチドの５’末端側及び／又は３’末端側に隣接して前記一方のＤＮＡ鎖とハイブリダイズするように設計された少なくとも１つのオリゴヌクレオチド及びミスマッチエンドヌクレアーゼ活性を有するポリペプチドを接触させてもよい。さらに、二本鎖ＤＮＡのもう一方のＤＮＡ鎖とハイブリダイズさせた際に少なくとも１個のミスマッチを生じるように設計されたオリゴヌクレオチドの５’末端側及び／又は３’末端側に隣接して前記もう一方のＤＮＡ鎖とハイブリダイズするように設計された少なくとも１つのオリゴヌクレオチドを用いてもよい。
【００１３】
本発明の第一の発明においては、使用するオリゴヌクレオチドがＤＮＡであってもよく、ＤＮＡとＲＮＡのキメラオリゴヌクレオチドであってもよい。また本発明の第一の発明は、細胞内で行うことができる。
【００１４】
本発明の第二の発明は、本発明の第一の発明の二本鎖ＤＮＡを切断する工程を包含する遺伝子改変方法に関する。本発明の第二の発明では、二本鎖ＤＮＡの切断で生成したＤＮＡ末端に非相同末端結合又は相同組換えによるＤＮＡ鎖の挿入が起こることを特徴とする。
【００１５】
本発明の第三の発明は、二本鎖ＤＮＡの切断及び／又は遺伝子の改変に使用される細胞であって、外来性のミスマッチエンドヌクレアーゼ活性を有するポリペプチドを当該細胞内で発現する機能を有することを特徴とする細胞に関する。
【００１６】
本発明の第四の発明は、二本鎖ＤＮＡを切断するためのキットであって、
（１）前記二本鎖ＤＮＡの一方のＤＮＡ鎖とハイブリダイズさせた際に少なくとも１個のミスマッチを生じるように設計されたオリゴヌクレオチド、および
（２）ミスマッチエンドヌクレアーゼ活性を有するポリペプチド、または当該ポリペプチドを目的の細胞内で発現するための核酸、を含むことを特徴とするキットに関する。
【００１７】
本発明の第四の発明の別態様としては、遺伝子改変方法のためのキットであって、
（１）前記遺伝子をコードする二本鎖ＤＮＡの一方のＤＮＡ鎖とハイブリダイズさせた際に少なくとも１個のミスマッチを生じるように設計されたオリゴヌクレオチド、および
（２）ミスマッチヌクレアーゼ活性を有するポリペプチドを、または当該ポリペプチドを目的の細胞内で発現する細胞、を含むことを特徴とするキットである。
【００１８】
本発明の第四の発明において、さらに、（１）のオリゴヌクレオチドの５’末端側及び／又は３’末端側に隣接して、二本鎖ＤＮＡの一方のＤＮＡ鎖とハイブリダイズするように設計された少なくとも1つのオリゴヌクレオチドを含むことを特徴とするキットであってもよい。
【発明の効果】
【００１９】
本発明により、所望の二本鎖ＤＮＡの塩基配列部位に正確にＤＳＢを発生させ、当該ＤＳＢ部位に対して非相同末端再結合や相同組換え修復を起こさせる遺伝子改変方法が提供される。
【図面の簡単な説明】
【００２０】
【図１】実施例１で調製したサンプルのネイティブポリアクリルアミドゲル電気泳動写真である。
【発明を実施するための形態】
【００２１】
本発明においてミスマッチとは、二本鎖核酸中に存在するワトソン−クリック塩基対とは異なる塩基の対合、すなわちＧ（グアニン塩基）−Ｃ（シトシン塩基）、Ａ（アデニン塩基）−Ｔ（チミン塩基）またはＵ（ウラシル塩基）の塩基対結合以外の組み合わせの塩基対結合を示す。
【００２２】
本発明においてＤＳＢ（ｄｏｕｂｌｅ−ｓｔｒａｎｄ  ｂｒｅａｋ）とは、二本鎖ＤＮＡの切断であって、当該切断部位で非相同末端連結とよばれる切断末端を単純に連結した
ＤＮＡ修復や、相同組換えによるＤＮＡ修復の対象となる切断のことを言う。
【００２３】
以下、さらに詳細に説明する。
【００２４】
（１）本発明の二本鎖ＤＮＡの切断方法
本発明の二本鎖ＤＮＡの切断方法は、二本鎖ＤＮＡに、前記二本鎖ＤＮＡの一方のＤＮＡ鎖とハイブリダイズさせた際に少なくとも１個のミスマッチを生じるように設計されたオリゴヌクレオチド及びミスマッチエンドヌクレアーゼ活性を有するポリペプチドを接触させることを特徴とする。
【００２５】
本発明の二本鎖ＤＮＡの切断方法の対象となる二本鎖ＤＮＡの由来は特に限定はされない。前記ＤＳＢの対象となる二本鎖ＤＮＡとしては、切断しようとする領域の塩基配列が知られているものであればよい。例えば、ヒト、マウス、ラット、ブタ、サルなどの哺乳類、ゼブラフィッシュ、メダカなどの魚類、カイコ、ショウジョウバエなどの昆虫類、ジロイヌナズナなどの植物由来のＤＮＡが好適に使用できる。また、本発明の方法は、生体より取得されたＤＮＡ以外にも培養細胞、ＥＳ細胞、半数体ＥＳ細胞、ｉＰＳ細胞、受精卵などの細胞中のＤＮＡにも利用できる。
【００２６】
本発明では、切断しようとする二本鎖ＤＮＡ（以下、標的二本鎖ＤＮＡと記載することがある）の少なくとも一方のＤＮＡ鎖とハイブリダイズさせた際に少なくとも１個のミスマッチを生じるように設計されたオリゴヌクレオチド（以下、ミスマッチオリゴヌクレオチドと記載することがある）が使用される。当該オリゴヌクレオチドは、切断しようとする二本鎖ＤＮＡの配列に基づいて設計することができる。当該オリゴヌクレオチドは、１本鎖ＤＮＡとの安定したハイブリダイゼーションに寄与するような構造を有していてもよい。また、当該オリゴヌクレオチドは、デオキシリボヌクレオチド（ＤＮＡ）又はそのアナログ、あるいはリボヌクレオチド（ＲＮＡ）又はそのアナログ、あるいはこれらの混成物（例えばＤＮＡとＲＮＡのキメラオリゴヌクレオチド）であってもよい。前記のＤＮＡ又はＲＮＡのアナログとしては、塩基部分にデアザグアノシンやイノシンを含むヌクレオチド、ＬＮＡ（ｌｏｃｋｅｄ  ｎｕｃｌｅｉｃ  ａｃｉｄ）等が挙げられる。
【００２７】
さらに本発明で用いるミスマッチオリゴヌクレオチドの鎖長は、二本鎖ＤＮＡの一方のＤＮＡ鎖とハイブリダイズする部分において、好ましくは１５ｍｅｒ〜４０ｍｅｒさらに好ましくは１７ｍｅｒ〜２５ｍｅｒである。また、当該オリゴヌクレオチドにおける、ミスマッチ塩基対を形成する塩基の位置は、５’末端あるいは３’末端から好ましくは５ｍｅｒ〜２０ｍｅｒの位置、さらに好ましくは６ｍｅｒ〜１０ｍｅｒの位置である。また、本発明のミスマッチオリゴヌクレオチドは、所望の塩基配列部位を含む領域に特異的にかつ安定的にハイブリダイズするために、標的二本鎖ＤＮＡのどちらの鎖ともハイブリダイズしない配列からなるループ構造のような構造をさらに有していてもよい。特に、後述のミスマッチエンドヌクレアーゼ活性を有するポリペプチドの切断特性に応じて、特定の塩基がミスマッチ塩基対を形成するように、当該オリゴヌクレオチドを設計することが好ましい。
【００２８】
本発明の好適な態様では、上記ミスマッチオリゴヌクレオチドの５’末端側及び／又は３’末端側に隣接して標的二本鎖ＤＮＡの一方のＤＮＡ鎖とハイブリダイズするように設計されたオリゴヌクレオチド（以下、補助オリゴヌクレオチドと記載することがある）を組み合わせて使用される。この補助オリゴヌクレオチドは、標的二本鎖ＤＮＡの一方のＤＮＡ鎖上で、前記ミスマッチオリゴヌクレオチドと並列して、その５’末端側の領域及び／又は３’末端側の領域に配置される。さらに、ミスマッチオリゴヌクレオチドの５’末端側の領域又は３’末端側の領域に複数個の補助オリゴヌクレオチドを並列して配置してもよい。補助オリゴヌクレオチドは、１本鎖ＤＮＡとの安定したハイブリダイゼーションに寄与するような立体構造部分をさらに有していてもよい。さらに、補助オリゴヌクレオチドは、デオキシリボヌクレオチド（ＤＮＡ）又はそのアナログ、あるいはリボヌクレオチド（ＲＮＡ）又はそのアナログ、あるいはこれらの混成物であってもよい。
【００２９】
上記ミスマッチ塩基を有するオリゴヌクレオチドの５’末端側及び/又は３’末端側に隣接し、並列に配置されるオリゴヌクレオチドの鎖長は、好ましくは１０ｍｅｒ〜４０ｍｅｒ、さらに好ましくは１５ｍｅｒ〜２５ｍｅｒである。
【００３０】
本発明で使用するミスマッチエンドヌクレアーゼ活性を有するポリペプチド(以下、ミスマッチエンドヌクレアーゼと記載することがある)とは、二本鎖核酸中のミスマッチ部位を認識して切断する活性を有するヌクレアーゼのことをいう。ミスマッチエンドヌクレアーゼとしては、標的二本鎖ＤＮＡの少なくとも一方のＤＮＡ鎖とミスマッチオリゴヌクレオチドがハイブリダイズして生じたミスマッチ塩基対を特異的に認識して切断できる酵素が好ましい。ミスマッチエンドヌクレアーゼ活性は、ミスマッチ塩基対を形成するヌクレオチドに隣接するリン酸ジエステル結合を切断する活性の他、ミスマッチ塩基対から１〜５塩基対、好ましくは１〜３塩基対離れたヌクレオチドに隣接するリン酸ジエステル結合を切断する活性を包含する。本発明においてミスマッチエンドヌクレアーゼは、特定のミスマッチ塩基対を特異的に認識して二本鎖核酸を切断する活性を有するもの（例えばＧＴミスマッチを特異的に認識するものや、ＧＴミスマッチ及びＧＧミスマッチを特異的に認識するもの等）であってもよい。例えば、ＧＴミスマッチを特異的に認識するミスマッチエンドヌクレアーゼを本発明で用いる場合、本発明の方法で用いるミスマッチオリゴヌクレオチドは、ハイブリダイズするＤＮＡ鎖との間にＧＴミスマッチが生成するように設計することが好ましい、同様に、ＧＴミスマッチ及びＧＧミスマッチを特異的に認識するミスマッチエンドヌクレアーゼを使用する場合は、本発明の方法で用いるオリゴヌクレオチドとＤＮＡ鎖の間でＧＴミスマッチ及びＧＧミスマッチを生成するように設計することが好ましい。
【００３１】
本発明の好適な態様では、細胞内でも機能する温度、即ち１０℃から４５℃の範囲、さらに好ましくは２０℃〜４０℃の範囲でミスマッチエンドヌクレアーゼ活性を発揮できる酵素が使用される。ミスマッチエンドヌクレアーゼの起源には特に限定はなく、前記温度範囲で酵素活性を有するものであれば、低温性、常温性、高温性又は超耐熱性生物由来のものでも使用できる。
【００３２】
公知のミスマッチエンドヌクレアーゼとして、Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｆｕｒｉｏｓｕｓ由来のポリペプチド（国際公開第２０１４／１４２２６１号パンフレット）が知られている。また、Ｔｈｅｒｍｏｃｏｃｃｕｓ ｂａｒｏｐｈｉｌｕｓ、Ｍｅｔｈａｎｏｃａｌｄｏｃｏｃｃｕｓ ｊａｎｎａｓｃｈｉｉについて前記ポリペプチドのホモログが見いだされている。本発明を特に限定するものではないが、前記ポリペプチドやそのホモログ、それらの変異体が本発明に使用できる。また、４５℃付近で生育する生物由来としてはＨａｌｏｆｅｒａｘ  ｅｌｏｎｇａｎｓ、３７℃付近で生育する生物由来としてはＨａｌｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｄｅｎｉｔｒｉｆｉｃａｎｓ、Ｍｙｃｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｔｕｂｅｒｃｕｌｏｓｉｓやＮａｔｒｏｎｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ  ｇｒｅｇｏｒｙｉのミスマッチエンドヌクレアーゼ活性を有するポリペプチドやそのホモログが好適に使用できる。さらに、常温性生物由来としては、Ｃａｎｄｉｄａｔｕｓ  Ｈａｌｏｂｏｎｕｍ  ｔｙｒｒｅｌｌｅｎｓｉｓのミスマッチエンドヌクレアーゼ活性を有するポリペプチドやそのホモログが好適に使用できる。
【００３３】
本発明の二本鎖ＤＮＡの切断方法では、標的二本鎖ＤＮＡに少なくとも１つのミスマッチオリゴヌクレオチドとミスマッチエンドヌクレアーゼを作用させる。そうすると、標的二本鎖ＤＮＡのＤＮＡ鎖において、当該ＤＮＡ鎖とミスマッチ塩基対を形成したミスマッチオリゴヌクレオチドは、ミスマッチヌクレアーゼにより両方とも切断される。
【００３４】
また、本発明の好適な態様では、標的二本鎖ＤＮＡの両鎖に対して、それぞれミスマッチオリゴヌクレオチドを作製して使用することができる。この場合、標的二本鎖ＤＮＡの両ＤＮＡ鎖が切断を受ける。さらに、標的二本鎖ＤＮＡの一方の鎖を切断する場合、両鎖を切断する場合のいずれにおいても、ミスマッチヌクレオチドに１以上の補助オリゴヌクレオチドを組み合わせることにより、ミスマッチエンドヌクレアーゼによるＤＮＡ切断の効率を向上させることができる。
【００３５】
本発明の方法の別態様としては、（ａ）二本鎖ＤＮＡの少なくとも一方のＤＮＡ鎖の任意の塩基配列部位の塩基配列に対してミスマッチ塩基を有するオリゴヌクレオチド、（ｂ）当該ミスマッチ塩基を有するオリゴヌクレオチドの５’末端側及び／又は３’末端側に隣接して、並列に配置されるオリゴヌクレオチド、（ｃ）さらに前記（ｂ）のオリゴヌクレオチドの５’末端側及び／又は３’末端側に隣接して、並列に配置されるオリゴヌクレオチドをアニーリングさせることもできる。こうすることにより、二本鎖ＤＮＡの少なくとも一方のＤＮＡ鎖に対してミスマッチ塩基を有するオリゴヌクレオチドのハイブリダイズ効率が促進される。
【００３６】
また、上記別態様においても二本鎖ＤＮＡのもう一方のＤＮＡ鎖について、（ａ）ミスマッチ塩基を有するオリゴヌクレオチド、（ｂ）当該ミスマッチ塩基を有するオリゴヌクレオチドの５’末端側及び／又は３’末端側に隣接して、並列に配置されるオリゴヌクレオチド、（ｃ）さらに前記（ｂ）のオリゴヌクレオチドの５’末端側及び／又は３’末端側に隣接して、並列に配置されるオリゴヌクレオチドを組み合わせて使用することができる。
【００３７】
本発明の方法は、ゲノムＤＮＡやその他の細胞内二本鎖ＤＮＡを対象として細胞内で行われてもよい。この場合、本発明で使用するミスマッチオリゴヌクレオチドや補助オリゴヌクレオチドは外部から細胞内に公知の方法で導入することが好ましい。さらに、これらオリゴヌクレオチドがＲＮＡの場合は、細胞内の転写機構を利用してＲＮＡを生成するような既存のベクターシステム、例えばＲＮＡ  ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ  ＩＩＩ（ｐｏｌ  ＩＩＩ）系のプロモーター（ｈｕｍａｎ  Ｈ１、ｈｕｍａｎ  Ｕ６、またはｍｏｕｓｅ  Ｕ６）を組み込んだ発現レトロウイルスベクター系、レンチウイルスベクター系、アデノウイルスベクター系及びアデノ随伴ウイルスベクター系などが例示される。さらに、Ｔ７／ＳＰ６  ＲＮＡ  ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ転写系とＴ７／ＳＰ６プロモーター配列を有するミスマッチオリゴヌクレオチドや補助オリゴヌクレオチドをウイルス中空粒子、もしくは、ウイルス様粒子などに封入し細胞内に導入することで、ＲＮＡを細胞内で効率的且つ一過的に発現する導入システムであってもよい。
【００３８】
また、本発明で使用するミスマッチエンドヌクレアーゼも、公知の方法で細胞内に導入すればよい。目的細胞内でミスマッチエンドヌクレアーゼを発現するように構築された発現系を用いて導入してもよい。好ましくは、サイトメガロウイルス由来プロモーターを用いたタンパク質発現系、当該サイトメガロウイルス由来プロモーターとＨＩＶ−１由来のＴｒａｎｓ  Ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ  Ｒｅｓｐｏｎｓｉｖｅ  ｒｅｇｉｏｎ（ＴＡＲ）及びＴｒａｎｓ  ＡｃＴｉｖａｔｏｒ（Ｔａｔ）遺伝子を組み合わせたタンパク質高発現系（ＨＩＶ−１由来ＴａｔがＨＩＶ−１  ＲＮＡであるＴＡＲ配列を認識してＲＮＡ転写が促進されるシステム）など、プラスミドのトランスフェクションによる導入システム、もしくは、当該発現系をレトロウイルスベクター、レンチウイルスベクターあるいはアデノ随伴ウイルスベクターに搭載した導入システムが例示される。さらに、タンパク質発現を制御するために、テトラサイクリン誘導発現系や細胞内の目的タンパク質をリガンド依存的かつ可逆調節可能な様式で安定化あるいは分解する発現系と組み合わせてもよい。また、ミスマッチエンドヌクレアーゼをウイルス中空粒子、もしくは、ウイルス様粒子などに封入し細胞内に導入することで、効率的且つ一過的に発現する導入システムであってもよい。
【００３９】
あるいは、細胞内で制御可能な状態で外来性のミスマッチエンドヌクレアーゼが発現するように予め染色体等に組み込まれている細胞内で本発明の二本鎖ＤＮＡの切断方法を実施してもよい。
【００４０】
細胞内における本発明の二本鎖ＤＮＡの切断方法は、生体から分離された細胞で実施できる他、生体内の細胞について実施することもできる。即ち、熱変性等による二本鎖ＤＮＡの一本鎖ＤＮＡ化は特に必要とされない。
【００４１】
（２）本発明の遺伝子改変方法
本発明の二本鎖ＤＮＡの切断方法により切断された細胞内のＤＮＡは、細胞が有するＤＮＡ修復機構により、切断で生じたＤＮＡ末端の再結合が起こる。この際にＤＮＡの塩基配列が切断前と変化することを利用して遺伝子の改変を実施することができる。
【００４２】
本発明の遺伝子改変方法においては、ＤＮＡ末端の再結合に際して非相同末端結合又は相同組換えが生じる。非相同末端結合は、特に限定はされないが、切断で生じたＤＮＡ末端で起こる塩基の置換、欠失、挿入、逆位などの変異とともにＤＮＡの再結合が生じることを言う。元の塩基配列に対して前記の変異が導入される結果、当該配列が含まれる遺伝子の機能破壊（遺伝子欠損、ノックアウト）や当該遺伝子にコードされるポリペプチドのアミノ酸置換が生じる。また、再結合時に切断で生じたＤＮＡ末端と相同性のある配列を有するＤＮＡが共存した場合には、相同組換えによって共存するＤＮＡまたはその一部が切断で生じたＤＮＡ末端の間に挿入される（コンディショナルノックアウト、ノックイン、遺伝子挿入など）。
【００４３】
非相同末端修復を利用する本発明の遺伝子改変方法を実施する場合、細胞内において本発明の方法で遺伝子改変されたかどうかの判断は、ＤＳＢ部位をターゲットとしたＰＣＲ法あるいは、サザンブロッティング解析法などによって解析することができる。
また、本発明の方法で遺伝子改変されたかどうかの判断は、表現型で確認するかもしくは、ＰＣＲ法とシークエンス解析を組み合わせることによって解析することができる。
【００４４】
（３）本発明の細胞
本発明の細胞は、本発明の二本鎖ＤＮＡの切断方法、ならびに本発明の遺伝子改変方法を実施するための細胞であって、細胞内でミスマッチエンドヌクレアーゼを発現する機能を有することを特徴とする。外来性のミスマッチエンドヌクレアーゼをコードする遺伝子を、細胞の種類や使用方法に合わせて適切な発現系に組みこんだうえ、細胞に導入したものが好ましい。当該導入手法としては特に限定はされないが、サイトメガロウイルス由来プロモーターを用いたタンパク質発現系、当該サイトメガロウイルス由来プロモーターとＨＩＶ−１由来のＴｒａｎｓ  Ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ  Ｒｅｓｐｏｎｓｉｖｅ  ｒｅｇｉｏｎ（ＴＡＲ）及びＴｒａｎｓ  ＡｃＴｉｖａｔｏｒ（Ｔａｔ）遺伝子を組み合わせたタンパク質高発現系（ＨＩＶ−１由来ＴａｔがＨＩＶ−１  ＲＮＡであるＴＡＲ配列を認識してＲＮＡ転写が促進されるシステム）など、プラスミドのトランスフェクションによる導入システム、もしくは、当該発現系をレトロウイルスベクター、レンチウイルスベクターあるいはアデノ随伴ウイルスベクターに搭載した導入システムが例示される。さらに、タンパク質発現を制御するために、テトラサイクリン誘導発現系や細胞内の目的タンパク質をリガンド依存的かつ可逆調節可能な様式で安定化あるいは分解する発現系と組み合わせてもよい。また、ミスマッチエンドヌクレアーゼをウイルス中空粒子、もしくは、ウイルス様粒子などに封入し細胞内に導入することで、効率的且つ一過的に発現する導入システムであってもよい。さらに、前記のミスマッチエンドヌクレアーゼ発現系は、予め所望の細胞のゲノムＤＮＡ等に制御可能な状態で組み込んでおいてもよい。
【００４５】
本発明の細胞は、ミスマッチエンドヌクレアーゼを当該細胞内で発現させることができるため、例えば改変のターゲットとなる遺伝子を保持する二本鎖ＤＮＡと、当該ＤＮＡの少なくとも一方のＤＮＡ鎖の任意の部位とハイブリダイズさせた際に少なくとも１個のミスマッチを生じるように設計されたオリゴヌクレオチド（ミスマッチオリゴヌクレオチド）を外部から導入するか、当該細胞内で形成させることにより、所望の遺伝子改変が可能となる。ここでＤＮＡ鎖の任意の塩基配列部位の塩基配列に対して少なくとも１か所にミスマッチ塩基を有するオリゴヌクレオチドとしては、好ましくは１種類以上、さらに好ましくは２種類以上、さらに好ましくは３種類以上である。
【００４６】
本発明の細胞においては、さらに目的の遺伝子改変のターゲットとなる二本鎖ＤＮＡの少なくとも一方のＤＮＡ鎖に、当該ＤＮＡ鎖の任意の塩基配列部位の塩基配列に対して少なくとも１か所にミスマッチ塩基を有する少なくとも１つのオリゴヌクレオチドの５’末端側及び／又は３’末端側に隣接して、並列に配置されるオリゴヌクレオチドを外部から導入するか、当該細胞内で形成させることにより、所望の遺伝子改変が可能となる。必要に応じてさらに当該オリゴヌクレオチドの５’末端側及び／又は３’末端側に隣接して配置されるオリゴヌクレオチドを外部から導入するか、当該細胞内で形成させてもよい。
【００４７】
（４）本発明のキット
本発明は、本発明の二本鎖ＤＮＡの切断方法、本発明の遺伝子改変方法に使用されるキットを提供する。
【００４８】
本発明の二本鎖ＤＮＡの切断方法に使用されるキットとしては、
１．切断しようとする二本鎖ＤＮＡの一方のＤＮＡ鎖とハイブリダイズさせた際に少なくとも１個のミスマッチを生じるように設計されたオリゴヌクレオチド、および
２．ミスマッチエンドヌクレアーゼ活性を有するポリペプチド、または当該ポリペプチドを目的の細胞内で発現するための核酸、を含むことを特徴とする。
【００４９】
また本発明の遺伝子改変方法に使用されるキットとしては、
１．改変しようとする遺伝子をコードする二本鎖ＤＮＡの一方のＤＮＡ鎖とハイブリダイズさせた際に少なくとも１個のミスマッチを生じるように設計されたオリゴヌクレオチド、および
２．ミスマッチエンドヌクレアーゼ活性を有するポリペプチド、または当該ポリペプチドを目的の細胞内で発現する細胞、を含むことを特徴とする。
【００５０】
本発明のキットにおいては、上記（１）のオリゴヌクレオチド（ミスマッチオリゴヌクレオチド）の５’末端側及び／又は３’末端側に隣接して、二本鎖ＤＮＡの一方のＤＮＡ鎖とハイブリダイズするように設計された少なくとも１つのオリゴヌクレオチド（補助ヌクレオチド）をさらに含んでいてもよい。
【００５１】
本発明のキットにおいて、ミスマッチオリゴヌクレオチド及び補助オリゴヌクレオチドは、前記の本発明の二本鎖ＤＮＡの切断方法、本発明の遺伝子改変方法で使用可能なものであればよい。さらに、当該オリゴヌクレオチドを生体や細胞内で発現するように構築されたベクター（核酸構築物）の形態になっているものでもよい。当該ベクターの形態としては、細胞内の転写機構を利用してＲＮＡを生成するような既存のベクターシステム、例えばＲＮＡ  ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ  ＩＩＩ（ｐｏｌ  ＩＩＩ）系のプロモーター（ｈｕｍａｎ  Ｈ１、ｈｕｍａｎ  Ｕ６、またはｍｏｕｓｅ  Ｕ６）を組み込んだ発現レトロウイルスベクター系、レンチウイルスベクター系、アデノウイルスベクター系及びアデノ随伴ウイルスベクター系などが例示される。さらに、Ｔ７／ＳＰ６  ＲＮＡ  ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ転写系とＴ７／ＳＰ６プロモーター配列を有するミスマッチオリゴヌクレオチドや補助オリゴヌクレオチドをウイルス中空粒子、もしくは、ウイルス様粒子などに封入し細胞内に導入することで、ＲＮＡを細胞内で効率的且つ一過的に発現する導入システムが例示される。あるいは、細胞外から核酸の形態で導入してもよい。
【００５２】
また本発明のキットにおいて、外来性のミスマッチエンドヌクレアーゼを目的の細胞内で発現するための核酸は、目的の生体や細胞内で発現するように構築されたベクター（核酸構築物）の形態になっているものが好適である。当該ベクターの形態としては、特に限定はされないが、サイトメガロウイルス由来プロモーターを用いたタンパク質発現系、当該サイトメガロウイルス由来プロモーターとＨＩＶ−１由来のＴｒａｎｓ  Ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ  Ｒｅｓｐｏｎｓｉｖｅ  ｒｅｇｉｏｎ（ＴＡＲ）及びＴｒａｎｓ  ＡｃＴｉｖａｔｏｒ（Ｔａｔ）遺伝子を組み合わせたタンパク質高発現系（ＨＩＶ−１由来ＴａｔがＨＩＶ−１  ＲＮＡであるＴＡＲ配列を認識してＲＮＡ転写が促進されるシステム）など、プラスミドのトランスフェクションによる導入システム、もしくは、当該発現系をレトロウイルスベクター、レンチウイルスベクターあるいはアデノ随伴ウイルスベクターに搭載した導入システムが例示される。さらに、タンパク質発現を制御するために、テトラサイクリン誘導発現系や細胞内の目的タンパク質をリガンド依存的かつ可逆調節可能な様式で安定化あるいは分解する発現系と組み合わせてもよい。また、当該ミスマッチエンドヌクレアーゼをウイルス中空粒子、もしくは、ウイルス様粒子などに封入し細胞内に導入することで、効率的且つ一過的に発現する導入システムであってもよい。
【００５３】
さらに本発明のキットにおいては、本発明の（３）の予め外来性のミスマッチエンドヌクレアーゼ活性を有するポリペプチドを発現する細胞を組み合わせてもよい。
【実施例】
【００５４】
以下、実施例により本発明を更に具体的に説明するが、本発明はこれら実施例に限定されるものではない。
【００５５】
実施例１  
ミスマッチエンドヌクレアーゼ活性を有するポリペプチドとして使用する、Ｐｙｒｏｃｏｃｃｕｓ  ｆｕｒｉｏｓｕｓ由来のミスマッチヌクレオチド特異的二本鎖切断活性を有するポリペプチド（以下、ＮｕｃＳと称す）を、国際公開第２０１４／１４２２６１号パンフレットの調製例１〜３及び実施例１記載の方法で調製した。
【００５６】
次に配列表の配列番号１記載の塩基配列を有する環状Ｃａｓ９  ａｃｔｉｖｉｔｙ  ｓｕｂｓｔｒａｔｅ  ｐｌａｓｍｉｄ  ＤＮＡを常法により人工合成した。次に前記環状Ｃａｓ９  ａｃｔｉｖｉｔｙ  ｓｕｂｓｔｒａｔｅ  ｐｌａｓｍｉｄ  ＤＮＡを鋳型として配列表の配列番号２の領域をＭ１３−Ｍ４プライマーとＭ１３−ＲＶプライマー（いずれもタカラバイオ社製）とＰｒｉｍｅＳＴＡＲ  ＧＸＬ試薬（タカラバイオ社製）を用いてＰＣＲ増幅した。得られた増幅産物は、ＮｕｃｌｅｏＳｐｉｎ  Ｇｅｌ  ａｎｄ  ＰＣＲ  Ｃｌｅａｎ−ｕｐ（マッハライ・ナーゲル社製）を用いて精製した。次に精製したＤＮＡ  １００ｎｇを１×ＬＡ  Ｂｕｆｆｅｒ（タカラバイオ社製）の条件下で、２５０ｎＭまたは５００ｎＭのＮｕｃＳと数種類の配列表の配列番号３〜１２記載の塩基配列のｇｕｉｄｅ  ＤＮＡをそれぞれ５μＭ又は１０μＭを含む容量１０μｌの反応液をＴａｋａｒａ  ＬＡ  Ｔａｑ（タカラバイオ社製）に添付の１０×ＬＡ  ＰＣＲ  Ｂｕｆｆｅｒ  ＩＩを用いて調製し、３７℃で１時間反応した。対照として、ｇｕｉｄｅ  ＤＮＡを添加しないもの、ＮｕｃＳを添加しないものを設定した。また、ポジティブコントロールとして、ＮｕｃＳとｇｕｉｄｅ  ＤＮＡをＳｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ  ｐｙｒｏｇｅｎ  ＳＦ３７０由来の外来ＤＮＡの配列特異的な二本鎖切断酵素Ｃａｓ９（タカラバイオ社製）と配列表の配列番号１３記載のｇｕｉｄｅ  ＲＮＡ組み合わせに置き換えたものも設定した。
【００５７】
上記反応後、１０×Ｌｏａｄｉｎｇ  Ｂｕｆｆｅｒ（タカラバイオ社製）を１／１０量添加して、８０℃、５分加温した後に、ネイティブポリアクリルアミドゲル電気泳動をした。電気泳動後の結果を図１に示す。
【００５８】
即ち図１は、ＮｕｃＳのＤＳＢを示すネイティブポリアクリルアミドゲル電気泳動写真であり、レーン１は２５０ｎＭのＮｕｃＳ存在下で配列表の配列番号３および８記載の塩基配列を有するｇｕｉｄｅ  ＤＮＡを用いた反応、レーン２は２５０ｎＭのＮｕｃＳ存在下で配列表の配列番号３、４、６、８、９および１１記載の塩基配列を有するｇｕｉｄｅ  ＤＮＡを用いた反応、レーン３はＮｕｃＳ非存在下で配列表の配列番号３および８記載の塩基配列を有するｇｕｉｄｅ  ＤＮＡを用いた反応、レーン４はＮｕｃＳ非存在下で配列表の配列番号３、４、６、８、９および１１記載の塩基配列を有するｇｕｉｄｅ  ＤＮＡを用いた反応、レーン５はＮｕｃＳ存在下でｇｕｉｄｅ  ＤＮＡ非存在下における反応、レーン６は５００ｎＭのＮｕｃＳ存在下で配列表の配列番号３、４、６、８、９及び１１記載の塩基配列を有するｇｕｉｄｅ  ＤＮＡを用いた反応、レーン７は５００ｎＭのＮｕｃＳ存在下で配列表の配列番号３、４、６、８、９及び１１記載の塩基配列を有するｇｕｉｄｅ  ＤＮＡを用いた反応、レーン８は２５０ｎＭのＮｕｃＳ存在下で配列表の配列番号３、４、６、８、９及び１１記載の塩基配列を有するｇｕｉｄｅ  ＤＮＡを２倍濃度で用いた反応、レーン９はＣＲＩＳＰＲ−Ｃａｓ９反応系を用いた反応、レーンＭは２０ｂｐラダーＤＮＡ分子量マーカー（タカラバイオ社製）である。なお、ミスマッチオリゴヌクレオチドは、配列表の配列番号３及び８記載の塩基配列を有するｇｕｉｄｅ  ＤＮＡである。即ち、配列番号３のオリゴヌクレオチドは配列番号２のＤＮＡの相補鎖とハイブリダイズし、１つのミスマッチ塩基対を形成する。配列番号８のオリゴヌクレオチドは配列番号２のＤＮＡとハイブリダイズし、１つのミスマッチ塩基対を形成する。それ以外のｇｕｉｄｅ  ＤＮＡは、ミスマッチオリゴヌクレオチド３’末端側に隣接し、配列番号２のＤＮＡ又はその相補鎖に並列にハイブリダイズするオリゴヌクレオチドである。
【００５９】
図１中のレーン２及びレーン６においてＮｕｃＳとｇｕｉｄｅ  ＤＮＡ存在下でＣａｓ９  ａｃｔｉｖｉｔｙ  ｓｕｂｓｔｒａｔｅ  ｐｌａｓｍｉｄ  ＤＮＡのミスマッチ領域にＤＳＢが生じ、切断された断片が確認された。また、ｇｕｉｄｅ  ＤＮＡ非存在下やＮｕｃＳ非存在下でＤＳＢは生じないため、切断された断片は確認されなかった。以上のことより、ミスマッチ塩基を有するオリゴヌクレオチドの存在下でＮｕｃＳは、ＤＳＢが生じることが確認できた。このことから、ミスマッチ塩基を有するオリゴヌクレオチドとミスマッチヌクレオチド特異的二本鎖切断活性を有するポリペプチドの組み合わせが遺伝子改変に使用できることが判明した。
【産業上の利用可能性】
【００６０】
本発明の遺伝子改変方法により、オフターゲット効果の抑えられた、所望の二本鎖ＤＮＡの塩基配列部位にＤＳＢを発生させ、非相同末端再結合や相同組換え修復を伴う遺伝子改変が実施できる。当該方法は、精度の高いノックアウト及びノックイン生物や細胞を取得することができる方法として有用である。
【配列表フリーテキスト】
【００６１】
SEQ ID NO: 1: Synthetic DNA encoding Cas9 activity substrate plasmid.
SEQ ID NO: 2: A portion of Cas9 activity substrate plasmid.
SEQ ID NO: 3: Synthetic DNA that hybridizes to Cas9 activity substrate plasmid.
SEQ ID NO: 4: Synthetic DNA that hybridizes to Cas9 activity substrate plasmid.
SEQ ID NO: 5: Synthetic DNA that hybridizes to Cas9 activity substrate plasmid.
SEQ ID NO: 6: Synthetic DNA that hybridizes to Cas9 activity substrate plasmid.
SEQ ID NO: 7: Synthetic DNA that hybridizes to Cas9 activity substrate plasmid.
SEQ ID NO: 8: Synthetic DNA that hybridizes to Cas9 activity substrate plasmid.
SEQ ID NO: 9: Synthetic DNA that hybridizes to Cas9 activity substrate plasmid.
SEQ ID NO: 10: Synthetic DNA that hybridizes to Cas9 activity substrate plasmid.
SEQ ID NO: 11: Synthetic DNA that hybridizes to Cas9 activity substrate plasmid.
SEQ ID NO: 12: Synthetic DNA that hybridizes to Cas9 activity substrate plasmid.
SEQ ID NO: 13: Synthetic RNA that hybridizes to Cas9 activity substrate plasmid.
【図１】
2016136851.tif 000002
【配列表】
2016136851000001.app