(57)【要約】【課題】電気穿孔法を用いて、電気的ダメージを抑制して導入物質を対象細胞に導入する物質導入方法を提供する。【解決手段】対象細胞の内部に導入物質を導入する物質導入方法は、正負に極性が変化する間に一定電位値レベルを所定時間維持してなる非対称の基準パルスが同一周期で繰り返されるバーストパルスを、導入物質を含有する溶液中に浸漬された対象細胞に対して、印加するバーストパルス印加工程と、前記バーストパルス印加工程による印加後、前記対象細胞に対して、前記バーストパルスを構成する基準パルスよりも高電圧且つ短時間の高電圧パルスを、１オン時間分印加する高電圧パルス印加工程とを含み、電気的ダメージを抑制して導入物質を対象細胞に導入する。【選択図】図１
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【特許請求の範囲】
【請求項１】
対象細胞の内部に導入物質を導入する物質導入方法において、
正負に極性が変化する間に一定電位値レベルを所定時間維持してなる非対称の基準パルスが同一周期で繰り返されるバーストパルスを、導入物質を含有する溶液中に浸漬された対象細胞に対して、印加するバーストパルス印加工程と、
前記バーストパルス印加工程による印加後、前記対象細胞に対して、前記バーストパルスを構成する基準パルスよりも高電圧且つ短時間の高電圧パルスを、１オン時間分印加する高電圧パルス印加工程とを含むことを特徴とする
物質導入方法。
【請求項２】
請求項１に記載の物質導入方法において、
前記バーストパルスを構成する基準パルスが、正負極性間で異なる波高値を有することを特徴とする
物質導入方法。
【請求項３】
請求項１又は請求項２に記載の物質導入方法において、
前記バーストパルスを構成する基準パルスが、正負極性間で異なるデューティ比を有することを特徴とする
物質導入方法。
【請求項４】
請求項１ないし請求項３のいずれかに記載の物質導入方法において、
前記バーストパルスが、各基準パルスの印加電荷量を順次減衰させて構成されることを特徴とする
物質導入方法。
【請求項５】
請求項１ないし請求項４のいずれかに記載の物質導入方法において、
前記高電圧パルスが、前記バーストパルスを構成する各正負の基準パルスのうち、印加電荷量の少ない極性の側と同極性で印加することを特徴とする
物質導入方法。
【請求項６】
請求項１ないし請求項５のいずれかに記載の物質導入方法において、
前記バーストパルスを構成する基準パルスが、マイクロ秒オーダーのオン時間、且つ数十〜数百Ｖオーダーの印加電圧を有し、
前記高電圧パルスが、ナノ秒オーダーのオン時間、且つｋＶオーダーの印加電圧を有することを特徴とする
物質導入方法。
【請求項７】
請求項１ないし請求項６のいずれかに記載の物質導入方法において、
前記バーストパルスを構成する各正負の基準パルスの印加電荷量が、各正負間で１０：１〜１：１０の比率を有することを特徴とする
物質導入方法。
【請求項８】
請求項１ないし請求項７のいずれかに記載の物質導入方法において、
前記高電圧パルス印加工程により前記高電圧パルスが印加された後、正負に極性が変化する間に一定電位値レベルを所定時間維持してなる非対称の基準パルスが同一周期で繰り返されるバーストパルスを、前記対象細胞に対して印加する後段バーストパルス印加工程とを含むことを特徴とする
物質導入方法。
【請求項９】
請求項８に記載の物質導入方法において、
前記後段バーストパルス印加工程により印加されるバーストパルスを構成する最初の基準パルスの波高値が、前記前段に相当するバーストパルス印加工程により印加されたバーストパルスを構成する最後の基準パルスの波高値以下であることを特徴とする
物質導入方法。
【請求項１０】
対象細胞の内部に導入物質を導入する物質導入装置において、
前記導入物質を含有する溶液及び前記対象細胞を収容する収容手段と、
前記収容手段の周囲に配設される一対の対向電極と、
前記対向電極間に印加する電圧を生成する直流電流を供給する直流電源と、
前記直流電源から供給される直流電流に基づいて、正負に極性が変化する間に一定電位値レベルを所定時間維持してなる非対称の基準パルスが同一周期で繰り返されるバーストパルス、及び、前記バーストパルスを構成する基準パルスよりも高電圧且つ短時間の高電圧パルスを、前記対象細胞に対して印加する制御を行うパルス制御手段とを備えることを特徴とする
物質導入装置。
【請求項１１】
請求項１０に記載の物質導入装置において、
前記パルス制御手段が、
前記バーストパルスを生成するバーストパルス生成部と、
前記高電圧パルスを生成する高電圧パルス生成部と、
前記バーストパルス及び前記高電圧パルスを印加するタイミングを調整するタイミング調整部を備えることを特徴とする
物質導入装置。
【請求項１２】
請求項１０又は請求項１１に記載の物質導入装置において、
前記対向電極の少なくとも一方が、他の電極と対向する側に、ピン形状又はレール形状の突起物を備えることを特徴とする
物質導入装置。
【発明の詳細な説明】
【技術分野】
【０００１】
本発明は、対象細胞内部への導入物質の導入方法に関し、特に、電場を用いた導入物質の導入方法に関する。
【背景技術】
【０００２】
近年、生体細胞に導入物質を導入する技術のニーズは高まっている。例えば、化学物質の生体影響評価を目的としてメダカ等の受精卵へ被検物質を導入することや、遺伝子治療の実験として動物の生体細胞に遺伝子を導入すること等、その応用は医薬分野からバイオ分野まで多岐に渡っている。このような導入物質の導入技術としては、従来からマイクロインジェクション法が知られている。マイクロインジェクション法は、ガラス針を対象細胞に突き刺して導入物質の導入を行う方法であるが、その操作上、物理的な力を加えることから、対象細胞に負荷をかけることや対象細胞を破壊する場合が生じ得る。
【０００３】
このような問題を解決する方法として、電気的な力を用いることによって、対象細胞内に対象物質を導入することが提案されている。例えば、電極間に電気パルスを印加して電場を形成し、当該電場により導入物質の電気泳動が誘引されることによって、導入物質を対象細胞内に導入する方法がある（特許文献１参照）。また、細胞内に薬剤を導入するための電気穿孔法（エレクトロポレーション）として、方形波パルスや指数波パルス等の電界パルスを印加して、細胞内に薬剤を導入する方法（特許文献２参照）や、ポリヌクレオチドを植物細胞に導入することによって、遺伝的に改変された植物を生産する方法も開示されている（特許文献３参照）。また、生体内電気穿孔療法（ＥＰＴ法）として、低電圧長パルス長を利用して細胞を死滅させる方法も開示されている（特許文献４参照）。
【０００４】
さらに、本発明者らも、これまで主にメダカの受精卵に対して、電気パルスを印加する電気穿孔法により、対象物質の導入を試みている。例えば、電気パルスによるメダカ卵への物質導入における分子量と導入効率についての関連性の調査（非特許文献１）や、当該印加する電気パルスについて、パルス幅５０〜３００ｎｓの電気パルスを用いること（非特許文献２）や、パルス幅１５ｎｓ、電圧値６ｋＶの電気パルスを用いること（非特許文献３）や、高電界矩形波パルスを用いること（非特許文献４、５）を開示している。また、２種類の電気パルスを連続して印加する方法も開示しており（非特許文献６、７）、このうち、パルス幅が100ナノ秒の高電圧矩形波パルスの印加と、2パルス分の低電圧減衰波パルスの印加を組み合わせる構成も開示している（非特許文献８）。
【先行技術文献】
【特許文献】
【０００５】
【特許文献１】特開２００４−０４１０２３号広報
【特許文献２】特表２００１−５１７９９８号広報
【特許文献３】特表平１１−５１１９７４号広報
【特許文献４】特表２０００−５０３５８６号広報
【非特許文献】
【０００６】
【非特許文献１】山口明美、今村泰隆、河野晋、冨永伸明著「高電界パルスによるメダカ卵への物質導入;分子量と導入効率についての検討」電気関係学会九州支部連合大会講演論文集(CD-ROM)、2011年9月16日、Vol.64th Page.ROMBΜNNO.04-1P-16
【非特許文献２】NAKAMITSΜ S., KANG D.K., YAMANAKA M., HOSSEINIS.H.R.,SHIRAISHI E., SAKUGAWA T., KATSΜKI S., AKIYAMA H., KONO S., TOMINAGA N. 著「パルス電界印加後のOryziaslatipes(メダカ)の胚発生」電気学会パルスパワー研究会資料、2009.年10月23日、Vol.PPT-09 No.102-107 Page.27-31
【非特許文献３】田邉貴志、山口明美、冨永伸明、河野晋著「ナノ秒パルスパワ-を用いたメダカ卵への高効率物質導入に関する基礎研究」電気学会パルスパワー研究会資料、2010年1月7日、Vol.PPT-10 No.1-10 Page.1-5
【非特許文献４】中嶋楓、山口明美、田邊貴志、河野晋、冨永伸明著「極短高電界パルスを用いたメダカの卵への物質導入」日本農芸化学会西日本支部大会およびシンポジウム講演要旨集、2010年9月17日、Vol.2010 Page.38
【非特許文献５】山口明美、河野晋、田邉貴志、冨永伸明著「異なる高電界矩形波パルスによるメダカ受精卵への物質導入について」電気学会全国大会講演論文集、2011年3月5日、Vol.2011 No.1 Page.239
【非特許文献６】河野晋、山口明美、冨永伸明著「メダカ卵内への化学物質導入量の増加を目的とした2種類の電圧パルスの連続印加実験」電気学会基礎・材料・共通部門大会講演論文集(CD-ROM)、2011年9月21日、Vol.2011 Page.ROMBΜNNO.B-7
【非特許文献７】河野晋、山口明美、田邉貴志、冨永伸明著「異なる2種類のパルス電圧の連続印可によるメダカ受精卵への物質導入」電気学会全国大会講演論文集、2011年3月5日、Vol.2011 No.1 Page.240
【非特許文献８】久保貴博、山口明美、今村泰隆、冨永伸明、河野晋著「パルスパワ-を用いたメダカ受精卵への物質導入実験におけるパラメ-タの検討」電気学会パルスパワー研究会資料、2012年3月8日、Vol.PPT-12 No.1-4.6-8 Page.5-8
【発明の概要】
【発明が解決しようとする課題】
【０００７】
しかし、従来の電気的な力を利用する物質導入方法では、電圧印加の際に最適となり得る様々な電圧値や印加方法が模索されているものの、依然として、電圧印加に伴って対象細胞に及ぶ電気的ダメージが大きく、対象細胞自体が損傷を受けてしまい、電圧によっては、対象細胞（例えば、受精卵等の生体細胞等）自体を破壊してしまうという課題がある。また、上記非特許文献３に示されているように、２種類の異なる電圧印加を組み合わせるという構成も提案されているが、対象細胞に物質を導入することに対する顕著な効果は確認されていない。さらには、対象細胞に対して、プラスミドをはじめとする遺伝子を導入することは、未だ報告されていない。
【０００８】
本発明は、上記課題を解決すべく、電気穿孔法を用いて、電気的ダメージを抑制して導入物質を対象細胞に導入する物質導入方法を提供することを目的とする。
【課題を解決するための手段】
【０００９】
本願に開示する物質導入方法は、対象細胞（例えば、受精卵等の生体細胞等）の内部に導入物質を導入する物質導入方法において、正負に極性が変化する間に一定電位値レベルを所定時間維持してなる非対称の基準パルスが同一周期で繰り返されるバーストパルスを、導入物質を含有する溶液中に浸漬された対象細胞（例えば、受精卵等の生体細胞等）に対して、印加するバーストパルス印加工程と、前記バーストパルス印加工程による印加後、前記対象細胞に対して、前記バーストパルスよりも高電圧且つ短時間の高電圧パルスを、１オン時間分印加する高電圧パルス印加工程を含むものである。
【００１０】
このように、本願に開示する物質導入方法は、正負に極性が変化する間に一定電位値レベルを所定時間維持してなる非対称の基準パルスが同一周期で繰り返されるバーストパルスを、導入物質を含有する溶液中に浸漬された対象細胞に対して、印加した後、前記対象細胞に対して、前記バーストパルスを構成する基準パルスよりも高電圧且つ短時間の高電圧パルスを、１オン時間分印加することから、非対称の基準パルスが同一周期で繰り返されるバーストパルス（非対称バーストパルス）によって、対象細胞（例えば、受精卵の対象生体等）の外膜（例えば、卵膜や細胞膜等）に対して、正負極のいずれか一方に極性が偏った電荷が連続してチャージされることがないため、電気的なダメージを抑制しつつ、一方で、溶液中に浸漬された導入物質が正負極のいずれか一方の方向に移動させられることで，導入物質が導入され易い状況が形成されることとなり、当該状況下において、高電圧パルスが短時間印加されることによって、対象細胞（例えば、受精卵の対象生体等）の外膜（例えば、卵膜や細胞膜等）に一時的な穴を形成し，その影響を最小限に抑えることで外膜内にある組織等を損傷することなく、導入物質を対象細胞（例えば、受精卵の対象生体等）の内部に導入することができる。
【００１１】
本願に開示する物質導入方法は、必要に応じて、前記バーストパルスを構成する基準パルスが、正負極性間で異なる波高値を有するものである。このように、本願に開示する物質導入方法は、正負極性間における波高値の違いにより、前記対象細胞に印加されるパルスの強度を、経時的に交互に変えることから、外膜にチャージされる電荷量を調整することで電気的ダメージを抑制しつつ、一方で、溶液中に浸漬された導入物質が正負極のいずれか一方の方向に移動させることで、導入物質がさらに導入され易い状況が形成されることとなり、当該状況下において、高電圧パルスが短時間印加されることによって、対象細胞を損傷することなく、さらに大量の導入物質を一気に対象細胞に導入することができる。
【００１２】
本願に開示する物質導入方法は、必要に応じて、前記バーストパルスを構成する基準パルスが、正負極性間で異なるデューティ比を有するものである。このように、本願に開示する物質導入方法は、正負極性間におけるデューティ比の違いにより、前記対象細胞に印加されるパルスの印加タイミングが、経時的に交互に変わることから、外膜にチャージされる電荷量を調整することで電気的ダメージを抑制しつつ、一方で，溶液中に浸漬された導入物質が正負極のいずれか一方の方向に移動させることで，導入物質がさらに導入され易い状況が形成されることとなり、当該状況下において、高電圧パルスが短時間印加されることによって、対象細胞を損傷することなく、さらに大量の導入物質を一気に対象細胞に導入することができる。
【００１３】
本願に開示する物質導入方法は、必要に応じて、前記バーストパルスが、各基準パルスの印加電荷量を順次減衰させて構成されるものである。このように、本願に開示する物質導入方法は、後続する高電圧パルスが印加される直前には、前記バーストパルスの強度が、前記バーストパルス印加初期の基準パルスよりも小さくなることから、前記高電圧パルスと前記バーストパルスの波高値との差異が高められ、対象細胞に対して導入物質をより受け入れ易い状況が形成されることとなり、当該状況下で前記高電圧パルスが印加されることによって、対象細胞を損傷することなく、対象細胞に対してより多くの導入物質を導入することができる。
【００１４】
本願に開示する物質導入方法は、必要に応じて、前記バーストパルスを構成する基準パルスが、マイクロ秒オーダーのオン時間、且つ数十〜数百Ｖオーダーの印加電圧を有し、前記高電圧パルスが、ナノ秒オーダーのオン時間、且つｋＶオーダーの印加電圧を有するものである。このように、本願に開示する物質導入方法は、マイクロ秒オーダーのオン時間、且つ数十〜数百Ｖオーダーの印加電圧を有し、前記高電圧パルスが、ナノ秒オーダーのオン時間、且つｋＶオーダーの印加電圧を有することから、当該バーストパルスと高電圧パルスの最適な組み合わせによって、前記バーストパルスにより効率よく溶液中に浸漬された導入物質が正負極のいずれか一方の方向に移動し、対象細胞が導入物質を受容しやすい状況が形成されることとなり、後続する前記高電圧パルスの印加によって、対象細胞を損傷することなく、より多くの導入物質を対象細胞の内部に導入することができる。
【００１５】
本願に開示する物質導入方法は、必要に応じて、前記高電圧パルスが、前記バーストパルスを構成する各正負の基準パルスのうち、印加電荷量の少ない極性の側と同極性で印加するものである。このように、前記高電圧パルスが、前記バーストパルスにより対象細胞内にチャージされた電荷の極性と異なる極性で印加されることから、前記バーストパルスにより対象細胞にチャージされた電荷と同じ極性の電荷を前記高電圧パルスが重畳することに起因して対象細胞に余分なダメージを与えることが抑制されることとなり、当該高電圧パルスの印加によって、さらに対象細胞を損傷することなく、より多くの導入物質を対象細胞の内部に導入することができる。
【００１６】
本願に開示する物質導入方法は、必要に応じて、前記バーストパルスを構成する各正負の基準パルスの印加電荷量が、各正負間で１０：１〜１：１０の比率を有するものである。このように、本願に開示する物質導入方法は、前記バーストパルスを構成する各正負の基準パルスの印加電荷量が、各正負間で１０：１〜１：１０の比率を有することから、外膜にチャージされる電荷量を調整することで電気的ダメージを抑制しつつ，一方で，溶液中に浸漬された導入物質が正負極のいずれか一方の方向に移動させることで，対象細胞が導入物質を受容しやすい最適な状況が形成され、後続する前記高電圧パルスの印加によって、対象細胞を損傷することなく、大量の導入物質を対象細胞の内部に導入することができる。
【００１７】
本願に開示する物質導入方法は、必要に応じて、前記高電圧パルス印加工程により前記高電圧パルスが印加された後、正負に極性が変化する間に一定電位値レベルを所定時間維持してなる非対称の基準パルスが同一周期で繰り返されるバーストパルスを、前記対象細胞に対して印加する後段バーストパルス印加工程とを含むものである。このように、前記高電圧パルスの印加によって前記導入物質が導入された前記対象細胞に対して、さらに、後段バーストパルス印加工程によって、前記高電圧パルスよりも微弱なバーストパルスが印加されることから、前記対象細胞に対してさらなる電気的な刺激によって前記導入物質の導入が促進されることとなり、前記対象細胞に対する前記導入物質の導入をより確実化させることができる。
【００１８】
本願に開示する物質導入方法は、必要に応じて、前記後段バーストパルス印加工程により印加されるバーストパルスを構成する最初の基準パルスの波高値が、前記前段に相当するバーストパルス印加工程により印加されたバーストパルスを構成する最後の基準パルスの波高値以下であるものである。このように、前記導入物質が導入された前記対象細胞に対して、前記後段バーストパルス印加工程によって、より穏やかな電気的な刺激が与えられることから、前記対象細胞に対する前記導入物質の導入が安定化されることとなり、前記対象細胞に対する前記導入物質の導入をより確実に行うことができる。
【００１９】
本願に開示する物質導入装置は、対象細胞の内部に導入物質を導入する物質導入装置において、前記導入物質を含有する溶液及び前記対象細胞を収容する収容手段と、前記収容手段の周囲に配設される一対の対向電極と、前記対向電極間に印加する電圧を生成する直流電流を供給する直流電源と、前記直流電源から供給される直流電流に基づいて、正負に極性が変化する間に一定電位値レベルを所定時間維持してなる非対称の基準パルスが同一周期で繰り返されるバーストパルス、及び、前記バーストパルスを構成する基準パルスよりも高電圧且つ短時間の高電圧パルスを、前記対象細胞に対して印加する制御を行うパルス制御手段とを備えるものである。
【００２０】
このように、前記導入物質を含有する溶液及び前記対象細胞を収容する収容手段と、前記収容手段の周囲に配設される一対の対向電極と、前記対向電極間に印加する電圧を生成する直流電流を供給する直流電源と、前記直流電源から供給される直流電流に基づいて、正負に極性が変化する間に一定電位値レベルを所定時間維持してなる非対称の基準パルスが同一周期で繰り返されるバーストパルス、及び、前記バーストパルスを構成する基準パルスよりも高電圧且つ短時間の高電圧パルスを、前記対象細胞に対して印加する制御を行うパルス制御手段とを備えることから、非対称の基準パルスが同一周期で繰り返されるバーストパルスによって、対象細胞に対して、正負極のいずれか一方に極性が偏ったパルスが印加されることから、当該極性の偏りによって対象細胞の外膜にチャージされる電荷量を調整することで電気的ダメージを抑制しつつ、一方で、溶液中に浸漬された導入物質が正負極のいずれか一方の方向に移動させることで、対象細胞が導入物質を受容しやすい最適な状況が形成され、後続する前記高電圧パルスの印加によって、対象細胞を損傷することなく、大量の導入物質を対象細胞の内部に導入することができる。
【００２１】
本願に開示する物質導入装置は、必要に応じて、前記対向電極の少なくとも一方が、他の電極と対向する側に、ピン形状又はレール形状の突起物を備えるものである。このように、本願に開示する物質導入装置は、前記対向電極の少なくとも一方が、他の電極と対向する側に、ピン形状又はレール形状の突起物を備えることから、当該突起物において放電位置の集中性（局所性）が高まることとなり、溶液中に浸漬された導入物質の集中性が高まり，また，対象細胞の外膜にチャージされる電荷量が調整されることによって、対象細胞を損傷することなく、一気に大量の導入物質を対象細胞の内部に導入することができる。
【図面の簡単な説明】
【００２２】
【図１】本発明の第１の実施形態に係る物質導入装置の概要図、及び物質導入方法のフローチャートを示す。
【図２】本発明の第１の実施形態に係る非対称なバーストパルスの波形例を示す。
【図３】本発明の第１の実施形態に係る非対称なバーストパルス及び高電圧パルスの波形例、及び、本発明の第１の実施形態に係る物質導入装置の回路構成例を示す。
【図４】本発明の第２の実施形態に係る物質導入装置の突起物の説明図を示す。
【図５】本発明の第３及び第４の実施形態に係る物質導入方法のフローチャート、及び、非対称なバーストパルス及び高電圧パルスの波形例を示す。
【図６】本発明に係る物質導入装置を用いた物質導入の実験結果を示す。
【図７】本発明に係る物質導入装置を用いたアクチノマイシンＤの導入結果、及び各々の化学物質の物質導入についての発生異常率を示す。
【図８】本発明に係る物質導入方法によるＧＦＰベクターの導入から１日経過後及び２日経過後の受精卵に対して撮影した可視写真及び蛍光顕微鏡写真を示す。
【図９】本発明に係る物質導入方法によるＧＦＰベクターの導入から１日経過後の受精卵に対して撮影した可視写真及び蛍光顕微鏡写真を示す。
【図１０】本発明に係る物質導入方法によるＧＦＰベクターの導入実験結果であって、導入実験後３日目にＧＦＰによる蛍光が確認された受精卵の割合を示す。
【図１１】本発明に係る物質導入方法による受精当日卵及び受精翌日卵に対して行ったアクチノマイシンＤの導入結果を示す。
【図１２】本発明に係る物質導入方法によるワルファリンナトリウムの導入実験結果を示す。
【図１３】本発明に係る物質導入方法によるロキソプロフェンナトリウム2水和物の導入後の受精卵に対して撮影した可視写真を示す。
【発明を実施するための形態】
【００２３】
（第１の実施形態）
本実施形態に係る物質導入装置は、図１(a)に示すように、対象細胞１００及び導入物質１１０を含有する溶液１２０を収容する収容手段２１と、この収容手段２１の周囲に配設される一対の対向電極２２及び対向電極２３と、この対向電極２２及び対向電極２３間に印加する電圧（後述のバーストパルス及び高電圧パルス）を生成（例えば、後述のバーストパルス生成部４１及び高電圧パルス生成部４２により生成）する直流電流を供給する直流電源３と、この直流電源３から供給される直流電流に基づいて、正負に極性が変化する間に一定電位値レベルを所定時間維持してなる非対称の基準パルスが同一周期で繰り返されるバーストパルス、及び、前記バーストパルスよりも高電圧且つ短時間の高電圧パルスを、対象細胞１００に対して印加する制御を行うパルス制御手段４とを備える構成である。
【００２４】
対象細胞１００は、生物の受精卵に限らず、各種細胞，小動物，植物等が挙げられる。導入物質１１０は、シクロヘキシミド（ＣＸ）やアクチノマイシンＤ（ＡＤ）等のタンパク質合成を阻害する各種の阻害剤、各種タンパク質，遺伝子（ＤＮＡやＲＮＡ）などが挙げられる。この他、医薬用途として、細胞標識試薬（細胞染色用蛍光標識試薬、酸化ストレス標識試薬等）を対象細胞１００内に導入することもできる。また、例えば、化学物質（例えば、ビスフェノールＡ、エストラジオール等）の生体に対する影響評価にも用いることができる。前記溶液１２０は、導入物質１１０を溶解する媒体であれば、特に制限されず、例えば、水溶液、懸濁液、ゲルなどの形態とすることができる。
【００２５】
前記収容手段２１は、プラスティック製の容器を用いることができる。対向電極２２及び対向電極２３は、一般に用いられている電極素材であれば特に限定されず、例えば、ステンレス，デュラルミン，銅やプラチナが挙げられる。
【００２６】
前記直流電源３は、前記対向電極にバーストパルスと高電圧パルスを供給するパルス電源として、後述するバーストパルス生成部４１及び高電圧パルス生成部４２を充電する。即ち、この直流電源３は、例えば、図１(a)に示すように、バーストパルスを生成するためのバーストパルス用電源３１と、高電圧パルスを生成するための高電圧パルス用電源３２とから構成される。
【００２７】
前記パルス制御手段４は、直流電源３の直流電圧のオン時間、デューティ比、及び／又は極性を制御することによって、対向電極２２及び対向電極２３間に、前記バーストパルス又は高電圧パルスを発生させる。このパルス制御手段４は、例えば、図１(a)に示すように、前記バーストパルスを生成するバーストパルス生成部４１と、前記高電圧パルスを生成する高電圧パルス生成部４２と、前記バーストパルス及び前記高電圧パルスを印加するタイミング（前記バーストパルス及び前記高電圧パルスを構成する正負パルスの印加電荷量（パルス幅を含む）、パルス数、前記バーストパルス及び前記高電圧パルス間の出力間隔）を調整するタイミング調整部４３と、対向電極２２及び対向電極２３間に前記バーストパルス及び前記高電圧パルスを出力する出力制御部４４を備える構成とすることができる。
【００２８】
上記の物質導入装置を用いた物質導入方法を、図１（ｂ）のフローチャートに沿って、以下説明する。
【００２９】
先ず、前記収容手段２１の内部で、導入物質１１０を含有する溶液１２０中に対象細胞１００を浸漬させる。この導入物質１１０を含有する溶液１２０中に浸漬された対象細胞１００に対して、正負に極性が変化する間に一定電位値レベルとして零レベルを所定時間維持してなる非対称の基準パルスが同一周期で繰り返されるバーストパルス（非対称バーストパルスともいう）を印加する（Ｓ１：バーストパルス印加工程）。このように、非対称の基準パルスが同一周期で繰り返されるバーストパルスによって、対象細胞１００に対して、正負極のいずれか一方に極性が偏った電荷が連続してチャージされることがないため，生体の外膜に対する電気的ダメージを抑制しつつ、一方で，溶液中に浸漬された導入物質が正負極のいずれか一方の方向に移動させられることで，導入物質が導入され易い状況が形成されることとなる。
【００３０】
この本実施形態に係る非対称なバーストパルスは、例えば、図２（ａ）に示すように、正極側の基準パルス（図中のＡ）と負極側の基準パルス（図中のＢ）とが異なる波高値をもつように構成することができる。
【００３１】
波高値としては、例えば、正極側の電圧（Ｖｐ）（波高値）を２０Ｖとして、負極側の電圧（Ｖｎ）（波高値）を−１０Ｖとすることができる。本実施形態に係る非対称なバーストパルスの周期の数（ｎ）は、１〜４００とすることができるが、対象細胞１００に対する電気的ダメージを抑制するという点から、好ましくは１００〜２００であり、例えば、１００とすることができる。
【００３２】
このような構成により、正負極性間における波高値の違いによって、対象細胞１００に印加されるパルスの強度が、経時的に交互に変わることから、正負極のいずれか一方に極性が偏った電荷が連続してチャージされることがないため，電気的なダメージを抑制しつつ、一方で，溶液中に浸漬された導入物質が正負極のいずれか一方の方向にさらに移動させられることで，導入物質１１０がさらに導入され易い状況が形成されることとなり、当該状況下において、高電圧パルスが短時間印加されることによって、対象細胞１００を損傷することなく、さらに大量の導入物質１１０を一気に対象細胞に導入することができる。
【００３３】
上述したように、本実施形態に係る非対称なバーストパルスは、前記バーストパルスを構成する基準パルスが正負極側で異なる波高値を有する構成とすることができるが、同図（ｂ）に示すように、正負極側のパルスにおけるデューティ比を異ならせる構成とすることもできる。
【００３４】
オン時間及びオフ時間は、数マイクロ秒〜数秒とすることができる。オン時間については、例えば、正極側のオン時間（Ｔｐ）を３００マイクロ秒（μｓ）として、負極側のオン時間（Ｔｎ）を３０マイクロ秒（μｓ）以上３００マイクロ秒（μｓ）未満とすることができる。オフ時間については、例えば、正極側のオフ時間（Ｔｐｎ）を１００マイクロ秒（μｓ）、負極側のオン時間（Ｔｎ）を１００マイクロ秒（μｓ）とすることができる。印加される電圧については、例えば、±５０Ｖとすることができ、例えば、正極側の電圧（Ｖｐ）を２０Ｖとして、負極側の電圧（Ｖｎ）を−２０Ｖとすることができる。
【００３５】
この場合には、正負極側でデューティ比が異なることから、対象細胞１００に与えられるパルス電圧のタイミングが正負極側で異なることにより、パルス電圧が印加されない時間が長短交互に変動することとなり、正負極のいずれか一方に極性が偏った電荷が対象細胞１００に連続してチャージされることがないため，電気的なダメージを抑制しつつ，より効率的に導入物質が移動しさらに導入され易い状況が形成されることとなる。
【００３６】
すなわち、前記基準パルスの極性が正極又は負極で連続して構成されるバーストパルスの場合では、対象細胞１００に与えられるパルス電圧によるエネルギーが増幅され、電気的なダメージが発生し易くなることに対して、本実施形態に係る非対称なバーストパルスでは、基準パルスの極性が正極・負極と交互に繰り返して構成されることによって、対象細胞１００に与える電気的なダメージが抑制され、より効率的に導入物質が導入され易い状況が形成されることとなる。
【００３７】
また、上記の本実施形態に係る非対称なバーストパルスは、同図（ｃ）に示すように、各基準パルスの印加電荷量を順次減衰させて構成することができる。この場合には、対象細胞１００に与えられるバーストパルスの大きさが経時的に減衰することにより、後続する高電圧パルスが印加される直前には、前記バーストパルスの強度が、バーストパルス印加初期の基準パルスよりも小さくなることから、本実施形態に係るバーストパルスが対象細胞１００及び導入物質１１０に与える上述した作用を維持しつつも、前記高電圧パルスと前記バーストパルスの波高値との差異が高められ、対象細胞に対して導入物質をより受け入れ易い状況が形成されることとなる。
【００３８】
次に、このバーストパルスを印加後、対象細胞１００に対して、このバーストパルスよりも、高電圧且つ短時間の高電圧パルスを、１オン時間分印加する（Ｓ１：高電圧パルス印加工程）。この高電圧パルスは、前記バーストパルスを構成する各正負の基準パルスのうち、印加電荷量の少ない極性の側と同極性で印加することが好ましい。このように、この高電圧パルスが、前記バーストパルスにより対象細胞１００内にチャージされた電荷の極性と異なる極性で印加されることから、前記バーストパルスにより対象細胞１００の外膜にチャージされた電荷と逆の極性の電荷を前記高電圧パルスが重畳することに起因して対象細胞に余分なダメージを与えることが抑制されることとなり、この高電圧パルスの印加によって、さらに対象細胞を損傷することなく、より多くの導入物質を対象細胞の内部に導入することができる。
【００３９】
本実施形態に係る高電圧パルスのオン時間は、特に制限されないが、好ましくは、１５ナノ秒（ｎｓ）〜２００ナノ秒（ｎｓ）であり、例えば、１００ナノ秒（ｎｓ）とすることができる。また、本実施形態に係る高電圧パルスの電圧値は、特に制限されないが、好ましくは、１ｋＶ〜１０ｋＶであり、例えば、３ｋＶとすることができる。
【００４０】
本実施形態に係る非対称なバーストパルス及び高電圧パルスは、例えば、図３（ａ）に示すように、バーストパルスの印加後、時間間隔（ΔＴ）を空けた後に、高電圧パルスを正極側又は負極側のいずれかの極側で１オン時間分印加する。この時間間隔（ΔＴ）としては、特に制限されないが、好ましくは、１０マイクロ秒以上であり、より好ましくは、１ミリ〜数百ミリ秒であり、例えば、１００ミリ秒（ｍｓ）とすることができる。１ミリ秒以下では電気ダメージが増加する傾向が強くなる。
【００４１】
本実施形態に係るバーストパルス及び高電圧パルスは、上記のように、対象細胞１００に対して、前記バーストパルスを印加後、前記高電圧パルスが印加されることによって、対象細胞１００を損傷することなく、一気に大量の導入物質１１０を対象細胞１００の内部に導入することができる。この顕著な効果を奏するメカニズムは未だ詳細には解明されていないが、非対称なバーストパルスによって、正負極のいずれか一方に極性が偏った電荷が連続してチャージされることがないため，対象生体（の外膜）に対する過度な電気的なダメージが抑制され、一方で，溶液中に浸漬された導入物質が正負極のいずれか一方の方向に移動させられることで，導入物質が導入され易い状況が形成されることになり、当該状況下において、高電圧パルスが短時間印加されることによって、非対称なバーストパルスによる重さのある導入物質１１０を動かす作用とこの高電圧パルスによる外膜に対する一時的な穴の形成が相俟って、対象細胞１００を損傷することなく、一気に導入物質１１０が対象細胞１００の内部に導入されるものと推察される。
【００４２】
尚、本実施形態において、このようなバーストパルス及び高電圧パルスという２つの異なるパルスを発生させることは、例えば、図３（ｂ）のような回路構成のシステムを構築することにより、実現することができる。即ち、パルス制御手段４が、２つの異なる極性の出力を持つＲＣ放電回路（同極性、逆極性）の切換制御によって、直流電源３１から供給される電源を元にバーストパルスを生成するバーストパルス生成部４１と、直流高電圧電源３２から供給される電源によって、複数のブルームライン線路から成るブルームラインジェネレータで高電圧矩形波パルスを生成する高電圧パルス生成部４２と、遅延パルス発生器の制御によって、これらバーストパルス及び高電圧パルスを上記の時間間隔（ΔＴ）だけ遅延させて発生させるタイミング調整部４３と、バーストパルス生成部４１と高電圧パルス生成部４２から出力されるバーストパルス及び高電圧パルスを出力する出力制御部４４とを備える構成とすることができる。尚、高電圧パルスを発生させるための電気パルスを遅延パルス発生器からブルームラインジェネレータに伝送する際には、ブルームラインジェネレータが動作するときに発生する電気的な外部影響を抑えるために、Ｅ／Ｏコンバーター等を使用して光ファイバー伝送を用いることが好ましい。
【００４３】
（第２の実施形態）
第２の実施形態に係る物質導入装置は、上記第１の実施形態における対向電極２２及び対向電極２３の少なくとも一方が、他の電極と対向する側に、ピン形状又はレール形状の突起物を備えるものである。この突起物は、例えば、図４に示されるように、ピン形状のピン型突起物２２ａ、又は、レール形状のレール型突起物２２ｂである。この突起物によって、バーストパルス及び高電圧パルスによる放電位置の集中性（局所性）がこの突起物において高まることとなり、溶液中に浸漬された導入物質の集中性が高まり，また，対象細胞の外膜にチャージされる電荷量を調整されることによって、対象細胞を損傷することなく、一気に大量の導入物質を対象細胞の内部に導入することができる。
【００４４】
尚、上記各実施形態において、バーストパルス（非対称バーストパルス）は、正負に極性が変化する間に零レベルを所定時間維持する構成としたが、所定時間維持される電位値レベルは、零レベルに限定されず、当該変化する正負の極性の中間値であれば、任意の電位値レベルを用いることができる。
【００４５】
（第３の実施形態）
第３の実施形態に係る物質導入装置は、上記第１の実施形態又は第２の実施形態において、高電圧パルスを印加した後、さらに、後段のバーストパルスを印加するものである。すなわち、図５（b）で示されるように、前段のバーストパルス（前段バーストパルス）が印加（Ｓ１）された後に、前記高電圧パルス印加工程により前記高電圧パルスが印加（Ｓ２）された後、正負に極性が変化する間に一定電位値レベルを所定時間維持してなる非対称の基準パルスが同一周期で繰り返される後段のバーストパルスを、前記対象細胞に対して印加するものである（Ｓ３：後段バーストパルス印加工程）。
【００４６】
このように、前段バーストパルス及び高電圧パルスの印加によって導入物質が導入された前記対象細胞に対して、さらに、後段バーストパルス印加工程を加えることによって、前記高電圧パルスの後工程として微弱なバーストパルスが継続して印加されることから、対象細胞に対してさらなる電気的な刺激が継続して与えられて導入物質の導入が促進されることとなり、対象細胞に対する導入物質の導入をより確実化させることができる。
【００４７】
なお、本実施形態では、図５（b）で示されるように、前段バーストパルス及び後段バーストパルスの２段階のバーストパルスを用いたが、これに限定されず、３段階、４段階と多段階のバーストパルスを用いることができる。例えば、前段バーストパルスを２以上の複数段階として、後段バーストパルスを１段階とすることもできるし、この逆に、前段バーストパルスを１段階として、前段バーストパルスを２以上の複数段階とすることもできる。さらには、前段バーストパルス及び後段バーストパルス共に、２以上の複数段階とすることもできる。このように、前段バーストパルス及び後段バーストパルスの構成を自在に設定できることから、導入物質の種類に応じて最適となるバーストパルスの構成を選定できることとなり、導入物質の導入をより効率化することができる。
【００４８】
（第４の実施形態）
第３の実施形態に係る物質導入装置は、上記第３の実施形態において、図５（c）で示されるように、前記後段バーストパルス印加工程により印加されるバーストパルスを構成する最初の基準パルスの波高値が、前記前段バーストパルスを構成する最後の基準パルスの波高値以下であるものである。
【００４９】
このように、前記導入物質が導入された後の対象細胞に対して、前記後段バーストパルスによって、前記前段バーストパルスよりも穏やかな電気的な刺激が継続して与えられることから、前記対象細胞に対する導入物質の導入がさらに安定化されることとなり、前記対象細胞に対する前記導入物質の導入をより確実に行うことができる。
【００５０】
尚、上記各実施形態において、バーストパルス（非対称バーストパルス）は、正負に極性が変化する間に零レベルを所定時間維持する構成としたが、所定時間維持される電位値レベルは、零レベルに限定されず、当該変化する正負の極性の中間値であれば、任意の電位値レベルを用いることができる。
【００５１】
以下に、本発明の特徴をさらに具体的に示すために実施例を記すが、本発明は以下の実施例によって制限されるものではない。
【００５２】
（実施例１）
上記の第１の実施形態で示した物質導入装置を用いて、導入物質をシクロヘキシミド（CX）、アクチノマイシンD （AD）として、これらをそれぞれ混合した溶液中に設置された産卵後のメダカ卵に対して，非対称なバーストパルスと高電圧パルスを印加し，同溶液中に約2時間静置した後，洗浄し，その後の様子を観測した。正極側のパルス幅TP(オン時間（Ｔｐ）) （=300us）と負極側のパルス幅TN(オン時間（Ｔｎ）)  （30us〜300us，印加なし）の比による生存率と死亡率の変化を確認した。実験条件を以下に示す（パラメタは上記の図３（ａ）に記載されたものと同じ）。
【表１】
2016106526.tif 000003
【００５３】
上記の実験条件のうち、TP:TN=300μs:150μs、TP:TN=300μs:60μs、TP(300μs)のみ：TN無し、の各場合のバーストパルス及び高電圧パルスの波形を、各々、図４（ｂ）〜（ｄ）に示す。得られた結果を、図６（ａ）に示す。
【００５４】
図６では、バーストパルス及び高電圧パルスを印加後，3日までに死亡が確認された卵の割合（死亡）、パルス印加後，3日目において，死亡・発生の遅れなどの異常が確認されなかった卵の割合（正常）、バーストパルス及び高電圧パルスを印加後，3日目において発生遅れなどの異常が確認された卵の割合（異常）を各々示す（サンプル数： 12個/ 条件）。また、図中、“control”は導入物質が混合されていない溶液中のメダカ卵にバーストパルスと高電圧パルスを印加しただけのもの（比較例）を示し、“CX”はシクロヘキシミド、“AD”はアクチノマイシンD、“TP:TN ＝ ”は図３（a）で上述した各極側のオン時間を示す。また、“VN無し”は，VPのみを100回印加したものである。
【００５５】
この結果から、コントロール（control）では、正極側のパルスのみ［VP（Vp）のみ（VN（Vn）無し）］の場合、正常な個体の割合は8％と低かったことから，電気的ダメージによる影響が大きかったことがわかった。これは、個体の外膜の片側に対するチャージ（蓄積）の電荷量が大きくなることに起因するものと考えられる。また、バーストパルスにおいて、正極側と負極側のパルスを同じ比率にした場合（TP:TN=300μs:300μs）には、個体の死亡はほとんど発生しなかったことから、固体に対して電気的な影響はほとんど与えられなかったことがわかった。これは，バーストパルスの印加によって個体の外膜に生じるチャージ（蓄積）とディスチャージ（放電）の電荷量が同量であったことに起因するものと考えられる。負極側の基準パルス（VN（Vn））を加えた場合には，正常な個体の割合は平均78 ％（67%〜92%）となり，電気的ダメージの影響が抑制された。
【００５６】
シクロヘキシミド（CX）の導入については、正常な個体の割合は0 ％で，すべての個体で主にCX導入による異常(発生遅れ)または死亡が発生した。さらに負極側のパルス（負極性パルス）のオン時間（パルス幅；TN（Tn））が短いほど，死亡率が上昇する傾向が見られた（300μs では8%の死亡率が，30μsでは75 %に上昇した）。これは，CXの導入量増加に起因するものと考えられる。これは、非対称なバーストパルス（TP≠TN）の印加によって、個体の外膜で電荷のチャージ（蓄積）とディスチャージ（放電）が各々異なる電荷量で生じ、個体に与える電気的ダメージが抑えられるとともに、当該バーストパルスにより比較的低電圧且つ長時間の電気的エネルギーが印加されることによって、導入物質（ＣＸ）が溶液中で一方向に動かされ、後続する高電圧パルスの印加によって、個体に導入される導入物質（CX）の増加（CXによる死亡率の増加）が引き起こされたものと考えられる。
【００５７】
アクチノマイシンD（AD）の導入については、78％〜92 ％の個体にAD導入による異常（発生遅れ）または死亡が発生した。負極側のパルス（負極性パルス）のオン時間（パルス幅；TN（Tn））が短い（100μs、60μs 、30μs）場合に死亡率が50%を超えた。これらの結果より、非対称なバーストパルスは，導入物質に対する電気的なダメージを抑制しており、導入物質の導入量を増加することができた。
【００５８】
（実施例２）
上記の第１の実施形態で示した物質導入装置を用いて、産卵後のメダカ卵を、溶液中にシクロヘキシミド（ＣＸ）の有無のケースで、非対称なバーストパルス及び高電圧パルスを印加後、同溶液に2時間静置後、洗浄し、その後の様子を観測した。正極側の電圧（Ｖｐ）（波高値）、負極側の電圧（Ｖｎ）（波高値）を、１２Ｖとし、バーストパルスの数（ｎ）を、１００、２００、４００とした結果を図６（ｂ）に示す。この結果から、非対称なバーストパルスにおけるバーストパルスの数（ｎ）は、１００〜２００の範囲において良好な結果が得られることがわかった。
【００５９】
（実施例３）
上記の第１の実施形態で示した物質導入装置を用いて、産卵後のメダカ卵を、非対称なバーストパルス及び高電圧パルスの有無のケースで、濃度５μＭ、５０μＭのビスフェノールA（ＢＰＡ）および０．３７ｎＭのエストラジオールに2時間暴露後，洗浄した。以下の表に、外液５０μＭでビスフェノールAを取り込ませた場合の卵内液中のビスフェノールＡのガスクロマトグラフ質量分析計（ＧＣ／ＭＳ）による実測値を示す。５０μＭのビスフェノールAにメダカ卵を2時間浸漬しただけでは，取り込み量は極めて少なく、卵内液濃度は約２μＭ程度であったが、非対称なバーストパルス及び高電圧パルスを印加することにより、約９０μＭと飛躍的に内液濃度は上がっており，外液の濃度と同じかそれ以上の濃度になるようにビスフェノールＡをメダカ卵内部に取り込むことができた。
【表２】
2016106526.tif 000004
【００６０】
（実施例４）
上記の第１の実施形態で示した物質導入装置を用いて、導入物質アクチノマイシンD （AD）を、それぞれ混合した溶液中に設置された産卵後のメダカ卵（受精当日卵（０日目））に対して，非対称なバーストパルスと高電圧パルスを印加し，同溶液中に約2時間静置した後，洗浄し，その後の様子を観測した。比較例として、バーストパルスの有無、アクチノマイシンD （AD）の有無、さらに、基準パルスが正極側のみのバーストパルスの場合も実施し、各々について、実験１日後の生存率と死亡率の変化を確認した。実験条件を以下に示す（パラメタは上記の図３（ａ）に記載されたものと同じ）。
【表３】
2016106526.tif 000005
【００６１】
得られた結果を、図７（ａ）に示す。図７（ａ）では、アクチノマイシンＤ（ＡＤ）を混合していない溶液中の受精卵にパルス印加したものを”-ＡＤ“，アクチノマイシンＤ（ＡＤ）を混合した溶液中の受精卵にパルス印加したものを”+ＡＤ“としており、すなわち、以下の結果について、左側から順に示している。
（ＡＤ無し、非対称バーストパルスのみ）
（ＡＤ無し、前処理：非対称バーストパルス、後処理：高電圧パルス）
（ＡＤ無し、正極側の基準パルスのみからなるバーストパルスのみ）
（ＡＤ有り、非対称バーストパルスのみ）
（ＡＤ有り、前処理：非対称バーストパルス、後処理：高電圧パルス）
（ＡＤ有り、正極側の基準パルスのみからなるバーストパルスのみ）
【００６２】
得られた結果から、（ＡＤ有り、前処理：非対称バーストパルス、後処理：高電圧パルス）のサンプルでは、有意にアクチノマイシンＤの導入がなされたことが確認された。なお、正極側の基準パルスのみからなるバーストパルスのみの例では、受精卵に与える電気的ダメージが大きいことが示唆された。これに対して、比較例である（ＡＤ有り、非対称バーストパルスのみ）のサンプルでは、アクチノマイシンＤの導入が不十分であったことが確認された。
【００６３】
（実施例５）
さらに、上記の第１の実施形態で示した物質導入装置を用いて、ジメチルスルホキシドに溶解したビスフェノールA（ＢＰＡ）をNaCl溶液で希釈し、濃度５μＭのビスフェノールA（ＢＰＡ）溶液を作成して、産卵後のメダカ卵を浸漬し、非対称なバーストパルス及び高電圧パルスによって、ビスフェノールA（ＢＰＡ）をメダカ受精卵に導入した。同手順で、以下の各々の化学物質について、メダカ受精卵に導入してから6日以内に異常が発生した割合を確認した。参照例として、化学物質の導入無し（control：パルスのみ印加）のケースも合わせて実施した。
ビスフェノールA（BPA）：5μM
ビスフェノールS（BPS）：5μM
ビスフェノールC（BPC）：5μM
ビスフェノールAF（BPAF）：5μM
エストラジオール（E2）：0.37nM
エクイリン（equilin）：0.037nM
【００６４】
上記の物質導入装置は、以下の電気的条件で用いた。
正極側のパルス幅TP(オン時間（Tp））：300μs
負極側のパルス幅TN(オン時間（Tn）)：30μs
正極側の電圧（Vp）：6V
負極側の電圧（Vn）：6V
バーストパルスの基準パルスの正極側のオフ時間（Tpn）：100μｓ
バーストパルスの基準パルスの負極側のオフ時間（Tnp）：100μｓ
バーストパルスの周期の数（n）：100
バーストパルスと高電圧パルスとの時間間隔（ΔT1）：100ms
高電圧パルスの印加電圧：3 kV
高電圧パルスの印加時間：100 ns
【００６５】
得られた結果を図７（ｂ）に示す。図７（ｂ）の結果から、パルスのみ印加したグループ（control）の発生異常率は8.8%であることが確認された。その一方で、化学物質を導入したグループは、controlグループに比べて、発生異常率において増加が見られた。さらに、化学物質を導入したグループでは、導入された化学物質ごとに、メダカ受精卵の発生異常率には明確な差異が確認された。このように、導入した化学物質ごとにメダカ受精卵の初期発生に対する影響が異なっていたことからも、メダカ受精卵の内部に確かに各種の化学物質が導入されていることが確認された。また、導入した化学物質ごとにメダカ受精卵の影響が異なっていたことから、この物質導入方法を用いることによって、種々の化学物質の影響評価として利用できることが確認された。
【００６６】
（実施例６）
次に、上記の第１の実施形態で示した物質導入装置を用いて、メダカ受精卵に対して、GFP（Green Fluorescent Protein：緑色蛍光タンパク質）の導入を行った。使用したベクターは濃度 300μg/mlのpEGFP-N3（クローンテック社）を用いた。精卵当日の受精卵を、ベクター溶液に浸漬し、以下の実施条件にてパルス印加を行った（実施時刻：AM9:20-AM10：27）。
【００６７】
正極側のパルス幅TP(オン時間（Tp））：300μs
負極側のパルス幅TN(オン時間（Tn）：30μs
正極側の電圧（Vp）：10.4 V
負極側の電圧（Vn）：12.1 V
バーストパルスの基準パルスの正極側のオフ時間（Tpn）：100μｓ
バーストパルスの基準パルスの負極側のオフ時間（Tnp）：100μｓ
バーストパルスの周期の数（n）：800
バーストパルスと高電圧パルスとの時間間隔（ΔT1）：100ms
高電圧パルスの印加電圧：3 kV
高電圧パルスの印加時間：100 ns
【００６８】
ＧＦＰベクターを導入してから１日経過後及び２日経過後の受精卵に対して撮影した可視写真及び蛍光顕微鏡写真を、図８（a）に示す。蛍光顕微鏡写真の結果から、１日後には、明確な蛍光が見られなかったものの、２日後には明確な蛍光が現れたことから、GFPが受精卵に確かに導入されたことが確認された。
【００６９】
（実施例７）
次に、上記の第４の実施形態で示した物質導入装置（前段及び後段バーストパルスを含むもの）を用いて、メダカ受精卵に対して、GFPの導入を行った（実施時刻：AM11:30-AM12：30）。上記実施例６との実施条件の相違点を以下に示す。
【００７０】
正極側の電圧（Vp）：11 V
負極側の電圧（Vn）：26 V
前段バーストパルスの周期の数（m）：400
後段バーストパルスの周期の数（n）：400
バーストパルスと高電圧パルスとの時間間隔（ΔT1）：100ms
バーストパルスと高電圧パルスとの時間間隔（ΔT2）：100ms
【００７１】
ＧＦＰベクターを導入してから１日経過後及び２日経過後の受精卵に対して撮影した可視写真及び蛍光顕微鏡写真を、図８（ｂ）に示す。蛍光顕微鏡写真の結果から、１日後から、明確な蛍光が見られ、さらに２日後にはより明確な蛍光が現れた。このことから、後段バーストパルスの印加を追加で行うことによって、受精卵にGFPが導入されたことが確認された。
【００７２】
（実施例８）
次に、上記の第４の実施形態で示した物質導入装置（前段及び後段バーストパルスを含むもの）を用いて、メダカ受精卵に対して、GFPの導入を行った（実施時刻：AM9:20-AM10：27）。実施例６との実施条件の相違点を以下に示す。
【００７３】
正極側の電圧（Vp）：10.1 V
負極側の電圧（Vn）：12.1 V
【００７４】
ＧＦＰベクターを導入してから１日経過後の受精卵に対して撮影した可視写真及び蛍光顕微鏡写真を、図９に示す。蛍光顕微鏡写真の結果から、１日経過後で既に明確な蛍光が現れた。このことから、前段バーストパルスよりも穏やかな後段バーストパルスの印加を行うことによって、確実に受精卵にGFPが導入されたことが確認された。
【００７５】
図１０は、以下の各パルス条件によるＧＦＰベクターの導入実験結果で、導入実験後１日目にＧＦＰによる蛍光が確認された受精卵の割合を示す。
【００７６】
導入物質：ＧＦＰベクター
対象：メダカ受精卵  受精当日卵，１グループ４８サンプル
パルス条件  以下の３パターン
・高電圧パルスのみ（３．２ｋＶ、１００ｎｓ）
・高電圧パルス（３．２ｋＶ、１００ｎｓ）＋非対称バーストパルス後段４００発[(＋８Ｖ、３００μｓ)＋(−８Ｖ、３０μｓ)]
・非対称バーストパルス前段２００発[(＋８Ｖ、３００μｓ)＋(−８Ｖ、３０μｓ)]＋高電圧パルス（３．２ｋＶ、１００ｎｓ）＋非対称バーストパルス後段２００発[(＋８Ｖ、３００μｓ)＋(−８Ｖ、３０μｓ)]
【００７７】
実験結果よりＧＦＰの導入を行うには、高電圧パルスの前段と後段にバーストパルスを加えた物質導入（上記第４の実施形態）が有効であることが分かった。
【００７８】
（実施例９）
次に、上記の第４の実施形態で示した物質導入装置（前段及び後段バーストパルスを含むもの）を用いて、メダカ受精卵に対して、アクチノマイシンＤ（ＡＤ）の導入を行った。実施条件は、非対称バーストパルス前段４００発[(＋5Ｖ、３００μｓ)＋(−5Ｖ、３０μｓ)]＋高電圧パルス（３．６ｋＶ、１００ｎｓ）である。
【００７９】
受精当日卵（０日目）及び受精翌日卵（１日目）のパルス印加によるアクチノマイシンＤ（ＡＤ）の導入実験後、３日目の各受精卵の状況を図１１に示す。アクチノマイシンＤ（ＡＤ）を混合していない溶液中の受精卵にパルス印加したものを”-ＡＤ“、アクチノマイシンＤ（ＡＤ）を混合した溶液中の受精卵にパルス印加したものを”+ＡＤ“とした。結果より、本物質導入装置を用いることで、受精当日卵（０日目）と受精翌日卵（１日目）に対して、受精卵への電気的影響を抑えつつ、アクチノマイシンＤ（ＡＤ）が導入されたことが確認された。
【００８０】
（実施例１０）
以下の条件で、本物質導入装置を用いてワルファリンナトリウムの導入実験を行った。
【００８１】
導入物質：抗凝固薬成分  ワルファリンナトリウム（0，1，10，100 ppm）
対象；メダカ受精卵  受精当日卵，１グループ12サンプル
パルス条件  以下の1パターン
・非対称バーストパルス前段100発[(＋7Ｖ、３００μｓ)＋(−7Ｖ、３０μｓ)]＋高電圧パルス（3 ｋＶ、100ｎｓ）]
【００８２】
図１２は、本物質導入装置を用いて行われたワルファリンナトリウムの導入実験結果である。パルス印加6日後（孵化前）や孵化後を観察した結果、孵化前の個体では血液不循環や血液停滞、孵化後の個体では腹部（心臓）肥大や背骨の湾曲などの発生異常を示すものが確認された。これらの異常が確認された割合を見るとワルファリンナトリウム100ppmの溶液中でパルス印加された受精卵での発生異常率が約82％と突出して高くなっており、有意にワルファリンナトリウムの導入がなされたことが確認された。
【００８３】
（実施例１１）
上記実施例１０と同条件で、ワルファリンナトリウムの替わりに、以下のロキソプロフェンナトリウム2水和物の導入実験を行った。
【００８４】
導入物質：非ステロイド系抗炎症薬成分  ロキソプロフェンナトリウム2水和物（0，0.1，1，10，100 ppm）
【００８５】
ロキソプロフェンナトリウム2水和物の導入後の受精卵に対して撮影した可視写真を図１３に示す。このように、孵化前には血管形成異常(血液の不循環)、孵化後には腹部（心臓）肥大や背骨の湾曲などの発生異常を示す個体が複数確認された。
【符号の説明】
【００８６】
１００  対象細胞
１１０  導入物質
１２０  溶液
２１  収容手段
２２  対向電極
２２ａ  ピン型突起物
２２ｂ  レール型突起物
２３  対向電極
３    直流電源
３１  バーストパルス用電源
３２  高電圧パルス用電源
４    パルス制御手段
４１  バーストパルス生成部
４２  高電圧パルス生成部
４３  タイミング調整部
４４  出力制御部 
【図１】
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【図２】
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【図５】
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【図７】
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【図３】
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【図４】
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【図６】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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