(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
高度不飽和脂肪酸エステルに顕著に作用するリパーゼ活性を有する蛋白質の遺伝情報を有する配列表の配列番号：２に記載の遺伝子配列又は遺伝子コードの縮重に基づいて、配列表の配列番号：２に記載の遺伝子配列の塩基の１個又は２個以上が他の塩基に置換された遺伝子配列を含むＤＮＡ断片。
【請求項２】
高度不飽和脂肪酸エステルに顕著に作用するリパーゼ活性を有する蛋白質のＤＮＡ断片がシュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）属由来である請求項１記載のＤＮＡ断片。
【請求項３】
配列表の配列番号：３に記載のアミノ酸配列をコードする請求項１または２に記載のＤＮＡ断片。
【請求項４】
請求項１乃至３のいずれかに記載のＤＮＡ断片とそのＤＮＡの発現調節を行う機能を有するＤＮＡとを含有する発現ベクター。
【請求項５】
請求項４に記載の発現ベクターによって形質転換された形質転換体。
【請求項６】
請求項５に記載の形質転換体を栄養培地で培養して、得られる培養物から高度不飽和脂肪酸エステルに顕著に作用するリパーゼ活性を有する蛋白質を採取することを特徴とする高度不飽和脂肪酸エステルに顕著に作用するリパーゼ活性を有する蛋白質の製造法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【産業上の利用分野】
本発明は高度不飽和脂肪酸（以下、PUFAと略す）エステルに顕著に作用するリパーゼ活性を有する蛋白質の遺伝情報を有するＤＮＡ断片、該ＤＮＡ断片を含有する発現ベクター、該発現ベクターで形質転換された形質転換体及び該形質転換体を培養することによる、PUFAエステルに顕著に作用するリパーゼの製造法に関する。
【０００２】
より詳細には、シュードモナス・フルオレッセンス（Pseudomonas fluorescens）3-80株（FERM P-14166）由来のPUFAエステルに顕著に作用するリパーゼをコードする遺伝子のDNA配列、該DNA配列を含む組み換え体DNA及び該組み換え体DNAによって形質転換された宿主菌を培養してリパーゼを製造する方法に関する。
【０００３】
【従来の技術】
リパーゼは脂質を加水分解する酵素として、消化薬、臨床検査薬、油脂の加工、洗剤など医薬・食品の分野のみならず、近年は、有機化合物その中でも特に光学活性化合物の不斉合成及び分解等の医薬、食品外の工業分野でも広く利用されている。
【０００４】
しかしながら、従来発見されているリパーゼは、エイコサペンタエン酸、ドコサヘキサエン酸、アラキドン酸等のPUFA含有トリグリセリドには、作用し難いと言われている。即ち、既存のリパーゼのPUFA含有油脂に対する作用は、極めて微弱であり、魚油などのPUFA含有油脂の加水分解や改質、PUFAのエステル交換反応、アシドリシス及びアルコリシス等を、既存のリパーゼを用いて効率的に行うことは極めて困難であり、PUFA含有油脂により高い活性を示す新たなリパーゼが求められていた。
【０００５】
そこで、本発明者らは、PUFAエステルに顕著に作用するリパーゼについて研究を重ね先にシュードモナス属に属する菌株が産生するリパーゼが、PUFAエステルに顕著に作用し、該リパーゼを用いてPUFA含有油脂およびエステルの分解、改質あるいは調製が可能であることを見いだし、既に特許出願した（特願平7-70589）。
【０００６】
しかしながら当該リパーゼの工業的利用をさらに飛躍的に拡大するには、このシュードモナス属菌株のリパーゼの生産性を向上する必要があった。
【０００７】
【発明が解決しようとする課題】
本発明の目的は、PUFA含有油脂およびエステルの分解、改質あるいは調製が可能である当該リパーゼを効率よく生産し、かつ将来的に基質特異性あるいは熱・有機溶媒に対する安定性等の点でいっそう利用価値の高いものへ誘導することを目的として当該リパーゼ活性を有する蛋白質の遺伝情報を有するＤＮＡ断片を提供することである。更に本発明は、PUFA含有油脂に対して顕著に作用するリパーゼに特有の一次構造画分を明らかにし、提供するものである。
【０００８】
該ＤＮＡ断片は、高い生産効率にて高純度のPUFAエステルに顕著に作用するリパーゼ活性をもつ蛋白質を取得するのに有用である。また、本発明は該ＤＮＡ断片を用いることを特徴とするPUFAエステルに顕著に作用するリパーゼ活性を有する蛋白質の製造法を提供することを目的とする。
【０００９】
【課題を解決するための手段】
本発明は、下記▲１▼〜▲５▼の構成を有する。
▲１▼PUFAエステルに顕著に作用するリパーゼ活性を有する蛋白質の遺伝情報を有  するＤＮＡ断片。
▲２▼前記ＤＮＡ断片を含有する発現ベクター。
▲３▼前記発現ベクターによって形質転換された形質転換体。
▲４▼前記形質転換体を栄養培地で培養して、得られる培養物からPUFAエステルに  顕著に作用するリパーゼ活性を有する蛋白質を採取することを特徴とするPU  FAエステルに顕著に作用するリパーゼ活性を有する蛋白質の製造法。
更に、
▲５▼PUFAエステルに顕著に作用する基質特異性の遺伝情報を担うと推定されるアミノ酸配列及び塩基配列。
【００１０】
本発明者らは上述したような課題を解決するため、PUFAエステルに顕著に作用するリパーゼ活性を有する蛋白質をコードする遺伝子のＤＮＡ配列について検討した結果、シュードモナス属菌株からPUFAエステルに顕著に作用するリパーゼ遺伝子のクローニングに成功し、該遺伝子のＤＮＡ配列を決定することができた。
【００１１】
そして、該ＤＮＡ配列を有する発現ベクターを導入せしめた形質転換体によれば、PUFAエステルに顕著に作用するリパーゼ活性を有する蛋白質が高い生産効率で製造できることを見出し、本発明を完成した。
【００１２】
以下、本発明を詳細に説明する。
▲１▼  リパーゼ遺伝子のクローニング
本発明におけるリパーゼを産生するシュードモナス属細菌の染色体ＤＮＡは次のようにして分離することができる。例えば斉藤、三浦の方法［Biochim. Biophys. Acta., 72巻, 619-629(1963)］等、公知の方法を利用して調製することができる。
【００１３】
リパーゼ遺伝子のクローニングは、SaikiらのPolymerase Chain Reaction（PCR）法［R. K. Saiki et al., Science, 230, 1350-1354(1985)］を用いて行うことができる。
【００１４】
リパーゼ遺伝子のクローニングに用いるプライマーは、シュードモナス属細菌の培養ろ液より精製したリパーゼのＮ−末端及び内部ペプチドのアミノ酸配列をもとに設計し合成したものを用いることができる。
【００１５】
そして、PCR法で得たリパーゼ遺伝子の一部を含むDNA断片をスクリーニング用プローブとして使用することにより、シュードモナス属細菌の染色体DNAライブラリーよりリパーゼ遺伝子を含む組み換え体DNAを得ることができる。
【００１６】
リパーゼ遺伝子のDNA配列は、ジデオキシ（dideoxy）法［F. Sanger et al., Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A., 74, 5463- (1977)］等の公知の手法にて決定することができる。
【００１７】
▲２▼  大腸菌でのリパーゼの生産
上記のようにして得られたリパーゼ遺伝子を含むDNA断片を大腸菌で複製可能な異種遺伝子の生産用に開発されたプラスミドベクターに導入することにより、リパーゼ遺伝子発現用組み換え体DNAを構築することができる。
【００１８】
この様なプラスミドベクターとしてはpBluescreptプラスミド（東洋紡績社製）、pKK223-3プラスミド（ファルマシヤ社製）、pETシステムプラスミド（タカラ社製）などが挙げられる。
【００１９】
この様にして、リパーゼ遺伝子発現用組み換え体DNAにて大腸菌JM109株等の宿主大腸菌を塩化カルシウム法等の公知の方法にて形質転換し、リパーゼ生産能を有する組み換え体大腸菌を得た。
【００２０】
この組み換え体大腸菌をLB培地等の栄養培地にて培養し、菌体内に可溶性あるいは不溶性の沈殿としてリパーゼを生産する。また、不溶性の沈殿として生産したリパーゼは尿素あるいは塩酸グワニジン等の変性剤にて沈殿を可溶化し、希釈などの手法を用いることによりリパーゼ蛋白質の巻き戻しを行いリパーゼ活性を回復させ、高度に精製されたリパーゼを得ることができる。
【００２１】
当該技術分野においては、上述したように操作して得られた配列は、遺伝子コードの縮重により、コードするアミノ酸配列を変えることなく、ＤＮＡにおける塩基の１個又は２個以上を他の塩基で置換することができる。
【００２２】
これにより、例えば本発明のＤＮＡ断片は配列表における配列番号：２に示す塩基配列をそのまま有するもののみならず、それが配列表における配列番号：３に示されるアミノ酸配列を有する酵素若しくはその相同変異体をコードするものである限り、遺伝子コードの縮重に基づいて、塩基の１個又は２個以上が他の塩基の置換されたものも包含する。
【００２３】
同様に、特異な基質特異性を示す遺伝情報を担うと推定される配列表の配列番号：４に示す塩基配列又はその一部の塩基配列についても、その縮重においてシュードモナス・フルオレッセンス3-80株（FERM P-14166）における特徴であるPUFAエステルに顕著に作用する性質を有するリパーゼに特有な配列である場合には塩基の１個又は２個以上が他の塩基の置換されたものも包含する。
【００２４】
以下、実施例を挙げて本発明を更に具体的に説明するが、本発明はそれら実施例に限定されるものではない。
【００２５】
【実施例】
実施例１
▲１▼  染色体DNAの調整法
シュードモナス・フルオレッセンス3-80株（FERM P-14166）を栄養培地（グリセロール １％、ポリペプトン １％、酵母エキス 0.2％、リン酸２カリウム 0.2％、硫酸マグネシウム 0.05％、pH7.0）で、28℃にて35時間好気的に培養する。
【００２６】
菌体を集菌後、斉藤、三浦の方法［Biochim. Biophys. Acta., 72巻, 619-629(1963)］を利用して染色体DNAを抽出、精製し、染色体DNA 0.8mgを得た。
【００２７】
▲２▼  リパーゼ遺伝子のクローニング
PCR法によるリパーゼ遺伝子のクローニングに使用したプライマーは、図１に示すアミノ酸に対応するDNA配列を選んだ。PCR法は、東洋紡績社製PCR法専用試薬キットを使用し以下の条件で行った。
【００２８】
0003872539.tif 000002
【００２９】
0003872539.tif 000003
【００３０】
この様にして増幅したDNA断片を回収し、末端をブランティングキット（東洋紡績社製）を用いて平滑化し、ファージベクターM13mp18（東洋紡績社製）のSmaIサイトにサブクローニングした後、DNAシークエンサー373A［アプライド・バイオシステムズ(Applied Biosystems)社製］にてDNA配列を決定し、リパーゼ遺伝子の一部をコードしていることを確認した。
【００３１】
次に、PCR法で得られたDNA断片をランダムプライマーDNAラベリングシステム（Amersham社製）を用いて［α-32P］dCTP（Amersham社製）で標識し、これをプローブとして、制限酵素PstIで消化したシュードモナス・フルオレスセンス3-80株染色体DNAに対してサザンハイブリダイゼーション［E. M. Sourthern, J. Mol. Biol., 98, 503(1975)］を行った。
【００３２】
その結果、約3.5kbpの位置にプローブに相補的なDNA断片を検出した。次に、シュードモナス・フルオレスセンス3-80株染色体DNAを制限酵素PstIで消化し、アガロースゲル電気泳動を行い、その3.5kbp断片をDNA回収用ガラスパウダーEASYTRAPTM Ver.２（タカラ社製）を用いて回収した。
【００３３】
この回収DNA断片をプラスミドベクターpBluscript SK+（東洋紡績社製）のPstI部位に連結し、塩化カルシウム法にて大腸菌JM109株を形質転換した。
【００３４】
この形質転換株を50μg/mlのアンピシリンを含むLB培地にプレーティングし、37℃で一夜培養して得たコロニーに対し、上記サザンハイブリダイゼーションで用いた標識プローブを使ってコロニーハイブリダイゼーション法を用いたスクリーニングを行い、陽性クローンを得た。こうして得られた組み換えプラスミドを図２に示しpLP101とした。
【００３５】
▲３▼  塩基配列の決定
上記組み換えプラスミドpLP101の挿入DNA断片の塩基配列をDNAシークエンサー373［アプライド・バイオシステムズ（Applied Biosystems）社製］を使用して決定した。その塩基配列は配列表の配列番号：１に示される。
【００３６】
そして、このDNA断片中にリパーゼ遺伝子（配列表の配列番号：２）の含まれることが判明し、推定されるリパーゼのアミノ酸配列は、配列表の配列番号：３に示される。
【００３７】
以上の実施例における菌体からのプラスミドの調製、制限酵素などを用いた反応およびDNA断片の処理等の操作は、特に指定されている以外は、モレキュラークローニング  ラボラトリーマニュアル  セカンドエディション［Molecular Cloning A LABORATORY MANUAL SECOND EDITION, J. Sambrook, E. F. Fritsch, and T. Maniatis, Cold Spring Harbor Laboratory Press(1989)］に記載されている方法で行った。
【００３８】
なお、リパーゼ活性の測定は、「工業用リパーゼの活性測定法」乳化剤添加法による測定法（Ｂ法 、37℃, pH7.0）に準じた。
【００３９】
▲４▼  大腸菌でのリパーゼの生産
前記リパーゼ遺伝子を含むプラスミドpLP101で大腸菌JM109株を形質転換し、得られた形質転換体をアンピシリン100μg/ml、IPTG 0.1mMを含むLB培地にて37℃で10時間振とう培養し、遠心分離により菌体を得、この菌体を超音波破砕装置INSONATOR 201M（KUBOTA社製）にて破砕し、破砕液の遠心上清を可溶部液、沈殿を沈殿部とした。
【００４０】
可溶部液のリパーゼ活性は培地当たり4.6u/mlのリパーゼ活性が認められた。次に沈殿部を８Ｍ尿素、５％グリセロールを含む50mMリン酸緩衝液（pH7.0）に溶解した後、尿素濃度が１Ｍとなるように５％グリセロールを含む50mMリン酸緩衝液（pH7.0）にて希釈し、４℃にて一晩ゆっくり攪拌した。
【００４１】
この溶液を５％グリセロールを含む50mMリン酸緩衝液（pH7.0）にて透析し、限外濃縮して可溶化リパーゼを得た。可溶化リパーゼのリパーゼ活性は培地当たり158u/mlであった。本活性は親株のリパーゼ生産能の約４倍であった。
【００４２】
実施例２
本発明のシュードモナス・フルオレッセンス3-80株（FERM P-14166）由来のリパーゼ遺伝子と公知のシュードモナス・フルオレッセンスに同定された菌株より得られたリパーゼ遺伝子を比較する。
【００４３】
その結果を図３及び図４に示す。その結果より、シュードモナス・フルオレッセンス3-80株（FERM P-14166）由来のリパーゼ遺伝子には、公知のシュードモナス・フルオレッセンスに分類される各種リパーゼ遺伝にには存在しない配列が挿入されていることがわかる。即ち、この挿入されている配列表の配列番号：４に示す塩基配列がPUFAエステルに顕著に作用する遺伝情報を担うＤＮＡ配列であると考えられ、アミノ酸配列は配列表の配列番号：５と推定される。
【００４４】
尚、公知のシュードモナス・フルオレッセンスに同定された菌株より得られたリパーゼ遺伝子としては各々以下に示したものを比較した。
▲１▼  シュードモナス・フルオレッセンス3-80株（FERM P-14166）
▲２▼  シュードモナス・フルオレッセンス B52
［Tan.Y. and Miller K.J., Apppl. Environ. Microbiol., 58,
1402-1407(1992)］
▲３▼  シュードモナス・フルオレッセンス LS107d2
［Loreena A. Johnson, Ifor R. Beacham, Ian C. Macrae, and Miranda
L. Free, Apppl. Environ. Microbiol., 58, 1776-1779(1992)］
▲４▼  シュードモナス・フルオレッセンス SIK W1
［Chung.G.H., Lee Y.P., Jeohn G.H., Yoo D.J., and Rhee J.S.,
Agric. Biol. Chem., 55, 2359-2365(1991)］
【００４５】
実施例３
実施例２で述べたように、シュードモナス・フルオレッセンス3-80株（FERM P-14166）に特有に挿入されている配列がリパーゼの性質にどのような影響を示すかについて検討した。
【００４６】
即ち、他のリパーゼに欠失したＤＮＡ領域を持たない本酵素の変異型ＤＮＡ断片を得るために、本リパーゼ蛋白質のＮ末端側とＣ末端側のＤＮＡ配列をそれぞれPCR法を用いて合成し、それらを連結することにより変異型リパーゼＤＮＡ断片を得た。
【００４７】
リパーゼ遺伝子を含むPatI断片3.5kbpを鋳型として図６に示すセンスプライマー１とアンチセンスプラオマー１及びセンスプライマー２とアンチセンスプライマー２のそれぞれを実施例１のPCR条件にて増幅させ、Original TA Cloning Kit（Invitrogen社製）を用いてpCRTMIIベクターにクローニングし、それぞれの挿入ＤＮＡ断片約1.2kbpと約0.3kbpの塩基配列をＤＮＡシークエンサー373A（アプライド・バイオシステムズ社製）を使用して決定し、目的とするＤＡＮ断片が挿入されていることを確認した。
【００４８】
そして、センスプライマー１とアンチセンスプライマー１で増幅しpCRTMIIベクターにクローニングしたＤＮＡ断片をSspIとEcoRI、センスプライマー２とアンチセンスプライマー２で増幅しpCRTMIIベクターにクローニングしたＤＮＡ断片をScaIとSalIでそれぞれ消化し、アガロースゲル電気泳動して分離し、それぞれのＤＮＡ断片をＤＮＡ回収用ガラスパウダーEASYTRAPTM Ver.2（タカラ社製）を用いて回収、EcoRI、SalIで消化し脱リン酸化したpUC18ベクターとの３断片をＤＮＡライゲーションキット（タカラ社製）にて連結した。
【００４９】
こうして得られた変異型リパーゼ遺伝子を含むプラスミドをpLPD101とし、挿入ＤＮＡ断片約1.5kbpの塩基配列をＤＮＡシークエンサー373Aを使用して決定し、配列番号：６に示す塩基配列を確認した。
【００５０】
そして、このプラスミドpLPD101を用いて大腸菌JM109株を形質転換し、実施例１と同様の方法にてリパーゼを生産させ可溶化リパーゼを調製した。
【００５１】
プラスミドpLPD101を保持する大腸菌JM109株より生産されたリパーゼは実施例１で生産されたリパーゼと比較し、EPAを含有する油脂を加水分解した場合、低加水分解率下においてEPAを遊離する量が減少し、配列番号：５に示したアミノ酸配列に対応する塩基配列を削除することによって、EPAに対する作用性が低下することが明らかとなり、この欠失したアミノ酸配列がリパーゼがPUFAによく作用する為に重要な構造であることがわかった。
【００５２】
実施例４
シュードモナス・フルオレッセンス3-80株（FERM P-14166）由来の酵素、実施例１記載の組換体より得られた酵素、実施例３記載の組換体より得られた酵素、クロモバクテリウム由来のリパーゼ（Chromobacterium viscosum,旭化成社製）及びシュードモナス由来のリパーゼ（Pseudomonas sp.,商品名：リパーゼ−AK，天野製薬社製）を用いてエステル交換反応について比較した。
【００５３】
▲１▼  固定化リパーゼの調製
精製した各酵素を2000単位/mlになるように10mMリン酸緩衝液（pH7.0）にて希釈し、この酵素液２mlにセライト545（和光純薬工業社製）２gを加え乳鉢を用いてスラリー状にし、室温にて20時間真空乾燥した。
【００５４】
▲２▼  反応１  水分量の検討
各酵素を用いて同一条件にてトリオレインとEPAエチルエステルとでエステル交換反応を行いエステル交換反応における水分量の影響を調べた。
【００５５】
トリオレイン（和光純薬工業社製）100μmole、EPAエチルエステル（日本化学飼料社製）100μmole、固定化リパーゼ100mg、ｎ−ヘキサン３ml、水０，１，３，５，10，30μlをそれぞれ30ml容サンプル瓶（内径2.5cm、高さ5.5cm）にいれ、窒素ガスにて空気を置換後密栓し、30℃にて振盪して（振幅３cm、150ストローク）24時間反応を行った。
【００５６】
反応後、反応液の300μlを取りシリカゲル薄層クロマトグラフィー（20cm×20cm、展開溶媒  ｎ−ヘキサン：ジエチルエーテル：ギ酸＝80：20：１  V/V）にて展開し、トリグリセリド画分をかきとり10％塩酸−メタノールにてメチルエステル化して、トリグリセリド画分中のEPAの含量をガスクロマトグラフィーにより定量し、トリオレインへのEPAの取り込み量を検討した。ガスクロマトグラフィーの条件は以下のように設定した。
【００５７】
装置        ：島津GC-17Aガスクロマトグラム
カラム      ：ULBON HR-SS-10（信和化学社製）0.25mm×50m
カラム温度  ：220℃
注入口温度  ：250℃
検出器      ：FID
キャリアガス：He
【００５８】
シュードモナス・フルオレッセンス3-80株（FERM P-14166）由来の酵素及び実施例１の組換体より得られた酵素は、どの水分量においてもトリオレインとEPAエチルエステルとではエステル交換反応が非常に速やかに進行した。一方、実施例３記載の組換体より得られた酵素、クロモバクテリウム由来のリパーゼ及びシュードモナス由来のリパーゼの結果では、何れの水分量においてもほとんど反応は進行しなかった。
【００５９】
即ち、実施例３の組換体より得られた酵素はPUFAに対する反応性が欠如し、従来のシュードモナス・フルオレッセンス株由来のリパーゼと同様の性質を示すことが確認された。
【００６０】
【発明の効果】
以上、説明したように、本発明は、PUFAエステルに顕著に作用するリパーゼを組換えＤＮＡ技術により大規模且つ効率的に生産する道を拓くものである。しかも、この発明による形質転換体より生産される酵素は、全アミノ酸配列まで明らかにされた酵素であり、基質特異性あるいは熱・有機溶媒に対する安定性等の点でいっそう利用価値の高いものへ誘導することも可能となる。
【００６１】
【配列表】
0003872539.tif 000004
0003872539.tif 000005
0003872539.tif 000006
【００６２】
【配列表】
0003872539.tif 000007
0003872539.tif 000008
【００６３】
【配列表】
0003872539.tif 000009
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【００６４】
【配列表】
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【００６５】
【配列表】
0003872539.tif 000012
【００６６】
【配列表】
0003872539.tif 000013
【図面の簡単な説明】
【図１】PCR法によるリパーゼ遺伝子のクローニングに使用したプライマーを示す。
【図２】本発明の実施例で得られた組み換えプラスミド（pLP101）の構造を示す。
【図３】シュードモナス・フルオレッセンス3-80株（FERM P-14166）由来のリパーゼ遺伝子のＤＮＡ配列と公知のシュードモナス・フルオレッセンス菌株より得られたリパーゼ遺伝子のＤＮＡ配列とを比較する図である。
【符号の説明】
図中の▲１▼はシュードモナス・フルオレッセンス3-80（FERM P-14166）由来の酵素、▲２▼はシュードモナス・フルオレッセンス B52由来の酵素、▲３▼はシュードモナス・フルオレッセンス LS107d2由来の酵素、▲４▼はシュードモナス・フルオレッセンス SIK W1由来の酵素を示す。
【図４】図３に続き、シュードモナス・フルオレッセンス3-80株（FERM P-14166）由来のリパーゼ遺伝子のＤＮＡ配列と公知のシュードモナス・フルオレッセンス菌株より得られたリパーゼ遺伝子のＤＮＡ配列とを比較する図である。
【符号の説明】
図中の▲１▼はシュードモナス・フルオレッセンス3-80（FERM P-14166）由来の酵素、▲２▼はシュードモナス・フルオレッセンス B52由来の酵素、▲３▼はシュードモナス・フルオレッセンス LS107d2由来の酵素、▲４▼はシュードモナス・フルオレッセンス SIK W1由来の酵素を示す。
【図５】シュードモナス・フルオレッセンス3-80株（FERM P-14166）由来のリパーゼ遺伝子のアミノ酸配列と公知のシュードモナス・フルオレッセンス菌株より得られたリパーゼ遺伝子のアミノ酸配列とを比較する図である。
【符号の説明】
図中の▲１▼はシュードモナス・フルオレッセンス3-80（FERM P-14166）由来の酵素、▲２▼はシュードモナス・フルオレッセンス B52由来の酵素、▲３▼はシュードモナス・フルオレッセンス LS107d2由来の酵素、▲４▼はシュードモナス・フルオレッセンス SIK W1由来の酵素を示す。
【図６】実施例３のPCR法によるリパーゼ遺伝子のクローニングに使用したプライマーを示す。
【図１】
0003872539.tif 000014
【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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