(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
式（Ｉ）：
【化１】
0003940179.tif 000022
［式中、Ｒは、炭素数２〜２６個を有する飽和または不飽和の直鎖または分岐鎖アルカノイル(所望により、アルキル部分が炭素数１〜３個のトリアルキルアンモニウム、ジアルキルスルホニウムまたはヒドロキシから選ばれるＲ２基でω−置換されていてもよい)であり；Ｒ１は、所望により、上記Ｒ２基でω−置換されていてもよい炭素数２〜２６個を有する飽和または不飽和の直鎖または分岐鎖アルキルであり；Ｘ−は、医薬上許容される酸のアニオンである］
で示されるアルカノイル−Ｌ−カルニチンのエステルを活性成分として含有することを特徴とする内毒素ショック治療用医薬組成物。
【請求項２】
式（Ｉ）中、Ｒが、ヘプタノイル、オクタノイル、パルミトイルおよびウンデカノイルから選ばれる飽和直鎖アルカノイル；イソブチリル、イソバレリル、イソカプロイルおよび２−メチルヘキサノイルから選ばれる分岐鎖アルカノイル；または１０−ウンデセノイルから選ばれる不飽和アルカノイルであり；Ｒ１が、エチル、ｎ−ペンチル、ｎ−ヘプチル、ｎ−デシルおよびｎ−ウンデシルから選ばれる飽和直鎖アルキル；イソブチル、イソオクチル、ヘキシルメチルカルビル、エチルペンチルカルビル、エチルヘキシルカルビル、デシルメチルカルビル、ジペンチルカルビルおよびメチルノニルカルビルから選ばれる分岐鎖アルキル；ペンチルビニルカルビルおよび１０−ウンデセニルから選ばれる不飽和アルキルであり；Ｒ２が、トリメチルアンモニウムまたはヒドロキシである、請求項１記載の医薬組成物。
【請求項３】
式（Ｉ）中、Ｘ−が、クロリド；ブロミド；ヨージド；アスパルテート、特に酸性アスパルテート；シトレート、特に酸性シトレート；タートレート；ホスフェート、特に酸性ホスフェート；フマレート、特に酸性フマレート；グリセロホスフェート；グルコースホスフェート；ラクテート；マレエート、特に酸性マレエート；オロテート；オキサレート、特に酸性オキサレート；サルフェート、特に酸性サルフェート；トリクロロアセテート；トリフルオロアセテートおよびメタンスルホネートから選ばれる、請求項１または２記載の医薬組成物。
【請求項４】
式（Ｉ）：
【化２】
0003940179.tif 000023
［式中、ＲおよびＲ１は以下の（ａ）〜（ｃ）のいずれかで定義される：
（ａ）Ｒは、炭素数２〜２６個を有する飽和または不飽和の直鎖または分岐鎖アルカノイル（アルキル部分が炭素数１〜３個のトリアルキルアンモニウム、ジアルキルスルホニウムまたはヒドロキシから選ばれるＲ２基でω−置換されている）であり、Ｒ１は、Ｒ２基でω−置換されている炭素数４〜２６個を有する飽和または不飽和の直鎖または分岐鎖アルキルであるが、但し
Ｒが４個を超える炭素数を有し、かつパルミトイル、ステアロイル、リノレイルまたはパントテニルではない場合、Ｒ１は、炭素数２〜３個のアルキルでもよい；
（ｂ）Ｒは、炭素数２〜２６個を有する飽和または不飽和の直鎖または分岐鎖アルカノイルで、Ｒ１が、Ｒ２基でω−置換されている炭素数２〜２６個を有する飽和または不飽和の直鎖または分岐鎖アルキルであるが、但し、Ｒ１がＲ２基でω−置換されている炭素数２個の直鎖アルキルのとき、Ｒは炭素数５〜１７個または１９〜２６個を有する飽和または不飽和の直鎖または分岐鎖アルカノイルである；
（ｃ）Ｒは、Ｒ２基でω−置換されている炭素数２〜２６個を有する飽和または不飽和の直鎖または分岐鎖アルカノイルであり、Ｒ１は炭素数２〜２６個を有する飽和または不飽和の直鎖または分岐鎖アルキルである］
で示されるアルカノイル−Ｌ−カルニチンのエステル。
【請求項５】
パルミトイル−Ｌ−カルニチン−２−トリメチルアンモニウムエチルエステルの医薬上許容される塩。
【請求項６】
ウンデカノイル−Ｌ−カルニチン−２−トリメチルアンモニウムエチルエステルの医薬上許容される塩。
【請求項７】
ヘプタノイル−Ｌ−カルニチン−５−トリメチルアンモニウムペンチルエステルの医薬上許容される塩。
【請求項８】
イソバレリル−Ｌ−カルニチン−１１−ヒドロキシウンデシルエステルの医薬上許容される塩。
【請求項９】
イソバレリル−Ｌ−カルニチン−１０−ヒドロキシデシルエステルの医薬上許容される塩。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【産業上の利用分野】
本発明は、内毒素ショックの治療に適した医薬組成物を製造するためのアルカノイル−Ｌ−カルニチン類のエステルの使用に関する。
【０００２】
以下に詳細に説明するように、これらのエステルのいくつかは新規化合物であり、本発明はまたこれらの新規化合物に関する。
【０００３】
【発明の構成】
本発明の使用に適したエステル類は、式（Ｉ）：
【化３】
0003940179.tif 000002
［式中、Ｒは、炭素数２〜２６個を有する飽和または不飽和の直鎖または分岐鎖アルカノイル(所望により、アルキル部分が炭素数１〜３個のトリアルキルアンモニウム、ジアルキルスルホニウムまたはヒドロキシから選ばれるＲ２基でω−置換されていてもよい)であり；Ｒ１は、所望により、上記Ｒ２基でω−置換されていてもよい炭素数２〜２６個を有する飽和または不飽和の直鎖または分岐鎖アルキルであり；Ｘ−は、医薬上許容される酸のアニオンである］
で示されるエステルである。
【０００４】
アルカノイル−Ｌ−カルニチン類のエステル類は公知である。ＵＳ特許４,４３９,４３８には、前記式（Ｉ）［式中、Ｒは、炭素数２〜４個を有する直鎖または分岐鎖アルカノイル（所望により、ハロゲン原子またはヒドロキシで置換されていてもよい）、またはパントテニルまたはリノレイルであり；Ｒ1は、所望により置換されていてもよい、炭素数１〜５個を有する直鎖または分岐鎖アルキルである］で示される化合物を開示されている。
【０００５】
これらの化合物は、心筋の収縮性低下の治療的処置のためおよび抗うつ剤として使用されている。
【０００６】
式（Ｉ）［式中、Ｒは、炭素数２〜１６個を有する直鎖または分岐鎖アルカノイル、Ｒ1は、炭素数１１〜１６個を有する直鎖アルキルであり、Ｘ~は、医薬上許容される酸のアニオンである］で示されるアルカノイル−Ｌ−カルニチン類のエステル（具体的にはイソバレリル−Ｌ−カルニチン−ウンデシルエステルクロリド（ＳＴ  ７２２))は、いずれも本出願の優先日後に公開されたＥＰ０５５２１３７Ａ２およびＥＰ０５５２１３８Ａ２中に開示されている。
【０００７】
これらのエステルに関して報告された薬理学的活性は、抗菌活性（特に、カムピロバクテルおよびヘリコバクテル属細菌に対する）および特に、酵母様真菌（カンジダ・アルビカンス）および繊維状真菌（アルペルギルス・フミガーツス）のそれぞれに対する抗真菌活性が報告されている。
【０００８】
また、本出願の優先日後の公開であるＥＰ０５５９６２５には、式（Ｉ）［式中、Ｒは、水素または炭素数２〜２６個を有する飽和または不飽和の直鎖または分岐鎖アルカノイルであり、Ｒ1は、炭素数４〜２６個を有する飽和または不飽和の直鎖または分岐鎖アルキル基である］で示されるエステルを開示しており、これは胃腸系に対して選択的に作用する筋弛緩活性を有する。
【０００９】
前述の公知のアルカノイル−Ｌ−カルニチンエステル類全ての薬理学的特性および治療学的利用は、本発明の化合物の活性（内毒素ショックに対する防御作用）とは全くかけ離れており、無関係である。
【００１０】
最後に、本発明に関連する先行技術の記載を完全にするために、ＵＳ特許４,７７１,０７５を引用する。これは、敗血症性のショックを含む種々のショック症状の治療のためのアセチル−Ｌ−カルニチン（すなわち、そのエステルではないアルカノイル−カルニチン）の使用を開示している。アセチル−カルニチンおよび前述のアルカノイル−カルニチンエステル類との間の構造上の相違点に加えて、アセチル−カルニチン以上の式（Ｉ）を有するエステル類の内毒素ショックの治療のための明らかな優越性が示された。
【００１１】
それゆえ、前述の先行技術文献に含まれない式（Ｉ）で示される化合物は新規化合物である。より具体的には、式（Ｉ）［式中、ＲおよびＲ１は以下の（ａ）〜（ｃ）のいずれかで定義される：
（ａ）Ｒは、炭素数２〜２６個を有する飽和または不飽和の直鎖または分岐鎖アルカノイル(アルキル部分が炭素数１〜３個のトリアルキルアンモニウム、ジアルキルスルホニウムまたはヒドロキシから選ばれるＲ２基でω−置換されている)であり、Ｒ１は、Ｒ２基でω−置換されている炭素数４〜２６個を有する飽和または不飽和の直鎖または分岐鎖アルキルであるが、但し
Ｒが４個を超える炭素数を有し、かつパルミトイル、ステアロイル、リノレイルまたはパントテニルではない場合、Ｒ１は、炭素数２〜３個のアルキルでもよい；
（ｂ）Ｒは、炭素数２〜２６個を有する飽和または不飽和の直鎖または分岐鎖アルカノイルで、Ｒ１が、Ｒ２基でω−置換されている炭素数２〜２６個を有する飽和または不飽和の直鎖または分岐鎖アルキルであるが、但し、Ｒ１がＲ２基でω−置換されている炭素数２個の直鎖アルキルのとき、Ｒは炭素数５〜１７個または１９〜２６個を有する飽和または不飽和の直鎖または分岐鎖アルカノイルである；
（ｃ）Ｒは、Ｒ２基でω−置換されている炭素数２〜２６個を有する飽和または不飽和の直鎖または分岐鎖アルカノイルであり、Ｒ１は炭素数２〜２６個を有する飽和または不飽和の直鎖または分岐鎖アルキルである］
で示される新規なこれらのエステル類である。
【００１２】
内毒素ショックは、高い死亡率と結びつき、種々の血流力学、免疫学的および生化学的異常により特徴づけられる臨床的症候群である。
【００１３】
種々の抗生物質の使用にもかかわらず、特に集中治療での院内病理学、外科的ドレナージ、血管作動性の物質および物質代謝支持体の関与においてその発生率が増加している。アメリカ合衆国では、毎年約１００,０００人が内毒素ショックにより死亡していると推定されている。
【００１４】
この型の病理の主な原因は、確かにグラム陰性細菌による重篤な感染であり、その生理病理学的な作用は、ＬＰＳ、すなわち、宿主の免疫系の種々の成分との相互作用により内毒素ショックを引き起こし得る細菌、特にマクロファージの外層成分に起因するものである。
【００１５】
この免疫応答細胞群は、事実、最終的に複雑な病理学的症状に応答し得ることがわかっている種々の内因性媒介物質を放出する。
【００１６】
人における内毒素ショックの死に致る結果は、最近では、種々のサイトカインの実質的な量の全身性分泌に関連づけられている。実際にＩＬ−１、ＩＬ−６、ＴＮＦおよびＩＦＮ−γのようなサイトカインの異常な転形が、重篤な内毒素的症状に密接に関連していることを示す多数の研究がある。
【００１７】
他の炎症媒介物質（ＰＡＦ、ＬＴＤ、ＢＫ、物質Ｐ）もまた、内毒素生理病理学に関連しているようである。
【００１８】
ＴＮＦ（Tumor Necrosis Factor：腫瘍壊死因子）は、とにかくＬＰＳに対して宿主の応答における媒介物質としての主要な役割を果すサイトカインであり、（トレスリー・ケイジェイ、内毒素ショック症候群の生態における腫瘍壊死因子（悪液質）、サーキュレイトリー・ショック（Circulatory Shock）第３５巻第１２３−２８頁（１９９１年)）、その関連性は、ショックの症状を特徴づける種々の代謝異常に示されているから（スターン・エイチケイ、ウォレン・アールエス、ジーバンダム・エムら、腫瘍壊死因子および人における組織傷害に対する急性代謝反応、ジャーナル・オブ・クリニカル・インベスティゲイション（Journal of Clinical Investigation）第８２巻第１３２１頁（１９８８年)）、その否定的な予後は、しばしばＴＮＦの過度の高血清濃度に関連する（デイムズ・ピー、ルター・エイ、ギセン・ピー、デモンティ・ジェイ、レイミー・エム、フランシモント・ピー、腫瘍壊死因子およびヒトにおける重症敗血症におけるインターロイキン−１血漿濃度、クリティカル・ケア・メディシン（Critical Care Medicine）第１７巻第９７５−９７８頁（１９８９年）、デベッツ・ジェイエムエイチ、カンプメイヤー・アール、バン・デル・リンデン・エムピーエムエイチ、バーマン・ダブリューエイ、バンド・デル・リンデン・シージェイ、血漿腫瘍壊死因子および臨症敗血患者の死亡率、クリティカル・ケア・メディシン第１７巻第４８９−４９４頁（１９８９年)）。
【００１９】
実際に、ＴＮＦの高水準が、ＬＰＳで実験的に毒された動物の血清中にＴＮＦの高濃度が見られ、ＴＮＦで直接接種された動物は、内毒素症と区別できない中毒症状を示す（ナタンソン・シー、エイシェンホルズ・ピーダブリュー、ダナー・アールエル、犬における内毒素および腫瘍壊死因子の接種によりヒト内毒素ショックの心臓血管像のシュミレート、ジャーナル・オブ・イクスペリメンタル・メディシン（Journal of Experimental Medicine）第１６９巻第８２３−８３２頁（１９８９年）、ビュートラー・ビー、ミルサク・アイダブリュー、セラミ・エイ、悪液質／腫瘍壊死因子に対する受動免疫による内毒素の致死作用からのマウスの保護、サイエンス（Science）第２２９巻第８６９−８７１頁（１９８５年)）。
【００２０】
従って、ＴＮＦを遮断し、または拮抗する化合物は、内毒素ショックの治療に有用な治療候補物質であるとみなされ得る。
【００２１】
式（Ｉ）を有するエステルは、このような医薬的特性を有することが判明した。
【００２２】
好ましくは、式（Ｉ）［式中、Ｒ、Ｒ1、Ｒ2およびＸ~が次のような条件を充たすものである：Ｒが、好ましくは、ヘプタノイル、オクタノイル、パルミトイルおよびウンデカノイルから選ばれる飽和直鎖アルカノイル；好ましくは、イソブチリル、イソバレリル、イソカプロイルおよび２−メチルヘキサノイルから選ばれる分岐鎖アルカノイル；好ましくは、１０−ウンデセノイルである不飽和アルカノイル；Ｒ2が、好ましくは、トリメチルアンモニウム、ブロムおよびヒドロキシから選ばれ、Ｒ1が、好ましくは、エチル、n−ペンチル、n−ヘプチル、n−デシルおよびn−ウンデシルから選ばれる飽和直鎖アルキル；好ましくは、イソブチル、イソオクチル、ヘキシルメチルカルビル、エチルペンチルカルビル、エチルヘキシルカルビル、デシルメチルカルビル、ジペンチルカルビルおよびメチルノニルカルビルから選ばれる分岐鎖アルキル；好ましくは、ペンチルビニルカルビルおよび１０−ウンデセニルから選ばれる不飽和アルキルである］
で示されるエステルである。
【００２３】
Ｘ~は、好ましくは、クロリド; ブロミド; ヨージド; アスパルテート、特に酸性アスパルテート; シトレート、特に酸性シトレート; タートレート; ホスフェート、特に酸性ホスフェート; フマレート、特に酸性フマレート; グリセロホスフェート; グルコースホスフェート; ラクテート; マレエート、特に酸性マレエート; オロテート; オキサレート、特に酸性オキサレート; サルフェート、特に酸性サルフェート; トリクロロアセテート; トリフルオロアセテートおよびメタンスルホネートから選ばれる。
【００２４】
式（Ｉ）を有するエステルは、以下の２つの異なる合成経路により製造され得る。第一の方法（合成反応式１に示す）は、
(ａ)アルカノイル−カルニチンをアセトニトリルまたは塩化メチレンのような不活性無水有機溶媒中、塩化チオニルまたは塩化オキサリルのようなハロゲン化試剤（モル比が１：１〜１：４である）で、０−３０℃、１−４時間ハロゲン化し、濃縮し粗反応生成物を次の工程に利用し；
(ｂ)アセトニトリルまたは塩化メチレンのような不活性無水有機溶媒中に工程(ａ)の酸クロリドを溶解し、所望により、同一溶媒で希釈したアルコールＲ1ＯＨを、モル比１：０.５−１.２で、０−５０℃にて２−２４時間にわたって加え、得られた反応溶液を濃縮し、所望により、シリカゲル上クロマトグラフィーにより化合物を精製し；
(ｃ)水または有機溶媒中に溶解した工程(ｂ)の生成物を、アンバーライトＩＲＡ４０２（AMBERLITE IRA 402）のような強塩基性イオン交換樹脂または適当な酸ＨＸで活性化させたアンバーリストＡ２１（AMBERLIST A21）弱塩基性樹脂上で溶出させ、凍結乾燥または濃縮により最終生成物を分離する工程を含む。
【００２５】
さらなる工程（合成反応式２に示す）は；
(ａ')不活性無水有機溶媒中、適当なアルキルハロゲン化物（好ましくは、臭化物、ヨウ化物）でカルニチンまたはアルカノイルカルニチン分子内塩を３−６０℃で、８−２４時間反応させ、濃縮により化合物を分離し；
(ｂ')工程(ａ')の出発生成物がカルニチンである場合、工程(ａ')で得られたカルニチンエステルを、公知の方法により適当な酸クロリドでアシル化し；
(ｃ')工程(ａ')または(ｂ')の化合物の水性またはアルコール性溶液を、アンバーライトＩＲＡ４０２（AMBERLITE IRA 402）または適当な酸ＨＸで活性化させたアンバーリストＡ２１（AMBERLIST A21）のようなイオン交換樹脂上に、溶出させる工程を含む。
【化４】
0003940179.tif 000003
【化５】
0003940179.tif 000004
【００２６】
実施例１
パルミトイル−Ｌ−カルニチン−２−トリメチルアンモニウムエチルエステルジクロリド（ＳＴ  １０５８）の製造
パルミトイル−Ｌ−カルニチン（２.５ｇ；０.００６モル）を、無水メチレンクロリド２０ｍｌ中に懸濁させた。オキサリルクロリド（０.９９５ｍｌ；０.０１１モル）を０℃に冷却し得られた混合物に加えた。
混合物を撹拌下室温にて４時間保ち、ついで真空下濃縮乾燥した。残渣を、無水メチレンクロリドで３回洗浄し、ついで真空下濃縮した。
このようにして得られた粗生成物を、メチレンクロリド２０ｍｌ中に溶解し、反応溶液に、２−トリメチルアンモニウムエタノールクロリド（０.５ｇ；０.００３６モル）を加えた。溶液を、室温にて一夜および４０℃にて６時間保った。溶液を室温に冷却し、エチルエーテルを生成物が完全に沈殿するまで加えた。
粗生成物を濾取し、イソプロパノールから結晶化した。標題生成物１.７ｇを得た。
収率５０％
0003940179.tif 000005
ＲF＝０.２
［α］D25＝−９.１°(ｃ＝１％，Ｈ2Ｏ)
Ｋ.Ｆ.（Ｈ2Ｏ含量）１.６％
0003940179.tif 000006
ＨＰＬＣ
カラム：スフェリソルブＣｌ（５μｍ）１.１５ｃｍ×０.４６ｃｍ（直径）
温度  ４５℃
溶出  ＣＨ3ＣＮ−ＫＨ2ＰＯ4  ５０ｍＭ  ６５−３５  ｐＨ５.４５
流速＝１ｍＬ／分
検出器  ＵＶλ＝２０５ｎｍ
Ｒt  １４.４分
ＮＭＲ：Ｄ2Ｏ  δ＝５.７(１Ｈ,ｍ,ＣＨＯＣＯ)；４.７−４.５(２Ｈ,ｍ,Ｎ+ＣＨ2ＣＨ2)；４.０−３.８(４Ｈ,ｍ,ＣＨ2ＣＨ；ＣＯＯＣＨ2)；３.３(１８Ｈ,ｓ,２(ＣＨ3)3Ｎ+)；２.９(２Ｈ,ｄ,ＣＨ2ＣＯＯ)；２.４(２Ｈ,ｔ,ＯＣＯＣＨ2)；１.６(２Ｈ,ｍ,ＣＨ2)；１.３(２４Ｈ,ｓ,(ＣＨ2)12)；０.９(３Ｈ,ｔ,ＣＨ3)
【００２７】
実施例２
ウンデカノイル−Ｌ−カルニチン−２−トリメチルアンモニウムエチルエステルジクロリド（ＳＴ  １０５９）の製造
この化合物を、パルミトイル−Ｌ−カルニチンの代わりにウンデカノイル−Ｌ−カルニチンを用いて実施例１に記載と同様にして製造した。
粗反応生成物を、シリカゲル上クロマトグラフィーによりＣＨＣl3−ＣＨ3ＯＨ混合物  ９０：１０で溶出することにより、精製した。
標題化合物１.２ｇを得た。収率５０％
実施例１記載と同様のＴＬＣ
ＲF＝０.２
［α］D25＝−８.３°(ｃ＝０.２５％，Ｈ2Ｏ)
Ｋ.Ｆ.（Ｈ2Ｏ含量）２.５％
0003940179.tif 000007
実施例１に記載と同様のＨＰＬＣ
Ｒt＝１７.０３
ＮＭＲ：Ｄ2Ｏ  δ＝５.７(１Ｈ,ｍ,ＣＨＯＣＯ)；４.６(２Ｈ,ｍ,Ｎ+ＣＨ2ＣＨ2)；４.０−３.８(４Ｈ,ｍ,Ｎ+ＣＨ2ＣＨ；ＯＣＨ2)；３.３(１８Ｈ,ｄｓ,２(ＣＨ3)3Ｎ+)；２.９(２Ｈ,ｄ,ＣＨ2ＣＯＯ)；２.４(２Ｈ,ｔ,ＣＯＯＣＨ2)；１.６(２Ｈ,ｍ,ＣＨ2)；１.３(１４Ｈ,ｓ,(ＣＨ2)7)；０.８(３Ｈ,ｔ,ＣＨ3)
【００２８】
実施例３
ヘプタノイル−Ｌ−カルニチン−５−トリメチルアンモニウムペンチルエステルジクロリド（ＳＴ  １０７１）の製造
５−トリメチルアンモニウム−１−ペンタノールの製造
５−アミノ−１−ペンタノール（１０.８ｍｌ；０.１モル）を、Ｈ2Ｏ１００ｍｌ、ＣＨ3ＯＨ２５０ｍｌおよび１０％ＮａＯＨ１２０ｍｌ中に希釈した。
この溶液に、ＣＨ3Ｉ（６２ｍｌ；１モル）およびｐＨをはっきりとアルカリ性に保つに十分な１０％ＮａＯＨを加えた。
溶液を撹拌下６５℃で４時間保ち、ついで真空下乾燥させた。粗生成物をＨ2Ｏにとり、Ｃl~型に活性化させたＩＲ  ４０２樹脂上で溶出させた。溶出液を濃縮乾燥し、残渣を酢酸にとり、得られた混合物を濾過し、不溶性物質を除去した。エチルエーテルを完全に沈殿するまで溶液に加えた。生成物１２.５ｇを得、次の工程にそのまま使用した。
【００２９】
ヘプタノイル−Ｌ−カルニチン−５−トリメチルアンモニウムペンチルエステルジクロリド（ＳＴ  １０７１）の製造
この化合物を、ヘプタノイル−Ｌ−カルニチンおよび５−トリメチルアンモニウム−１−ペンタノールを出発物質として使用して、実施例１に記載と同様にして製造した。
粗反応生成物を、ＣＨＣl3−ＣＨ3ＯＨ混合物  ９０：１０から８０：２０を溶出液として使用してシリカゲル上クロマトグラフィーにより精製した。
標題化合物３.６ｇを得た。収率７６％
実施例１に記載と同様のＴＬＣ
ＲF＝０.２５
［α］D25＝−１２.９°(ｃ＝１％，Ｈ2Ｏ)
Ｋ.Ｆ.（Ｈ2Ｏ含量）２.４％
0003940179.tif 000008
ＨＰＬＣ
カラム：リクロソルブＮＨ2（５μｍ）４.０ｍｍ×２５０ｍｍ
温度：２５℃
溶出：ＣＨ3ＣＮ−ＫＨ2ＰＯ4  ５０ｍＭ  ６５−３５  ｐＨ５.４
流速：１ｍｌ／分
検出器：ＵＶλ＝２０５ｎｍ
Ｒt：４.９分
ＮＭＲ：Ｄ2Ｏ  δ＝５.７(１Ｈ,ｍ,ＣＨＯＣＯ)；４.２(２Ｈ,ｔ,ＯＣＨ2)；４.０−３.７(２Ｈ,ｍ,Ｎ+ＣＨ2−ＣＨ)；３.４−３.３(２Ｈ,ｍ,Ｎ+ＣＨ2ＣＨ2)；３.２(９Ｈ,ｓ,(ＣＨ3)3Ｎ+)；３.１(９Ｈ,ｓ,(ＣＨ3)3Ｎ+)；２.９(２Ｈ,ｄｄ,ＣＨ2ＣＯＯ)；２.５(２Ｈ,ｔ,ＯＣＯＣＨ2)；１.９−１.２(１４Ｈ,ｍ,７ＣＨ2)；０.９(３Ｈ,ｔ,ＣＨ3)
【００３０】
実施例４
イソバレリル−Ｌ−カルニチンクロリド−１１−ヒドロキシウンデシルエステル（ＳＴ  １０９５）の製造
イソバレリル−Ｌ−カルニチン分子内塩（１.２ｇ；０.００４モル）を、ＤＭＦ１０ｍｌ中に溶解した。１１−ブロモウンデカノール（５ｇ；０.０２モル）を溶液に加え、撹拌下６０℃にて一夜保った。冷却後、この溶液にエチルエーテルを油状の精製物が完全に沈殿するまで加え、デカンテーションにより分離した。
イソバレリル−Ｌ−カルニチンブロミド−１１−ヒドロキシウンデシルエステル２.３ｇを得た。
化合物を、ＣＨＣl3−ＣＨ3ＯＨ  ９８−２で溶出することにより、シリカゲル上クロマトグラフィーにより精製した。フラクションを集め、濃縮し、水に溶解し、Ｃl~型に活性化させたＩＲＡ  ４０２樹脂上で溶出させた。水溶液を凍結乾燥し、標題化合物１.８ｇを得た。収率７５％
実施例１に記載と同様のＴＬＣ
ＲF＝０.２
［α］D25＝−１３.７°(ｃ＝１％，Ｈ2Ｏ)
Ｋ.Ｆ.（Ｈ2Ｏ含量）２.７％
0003940179.tif 000009
ＨＰＬＣ
カラム：ヌクレオシル５ＳＡ４.０ｍｍ×２００ｍｍ
温度：３０℃
溶出：ＣＨ3ＣＮ／ＫＨ2ＰＯ4  ５０ｍＭ  ６５：３５  ｐＨ３.５
流速：０.７５ｍｌ／分
検出器：ＵＶλ＝２０５ｎｍ
Ｒt：９.９１分
ＮＭＲ：Ｄ2Ｏ  δ＝５.７(１Ｈ,ｍ,ＣＨＯＣＯ)；４.１(２Ｈ,ｔ,ＣＯＯＣＨ2)；４.０−３.７(２Ｈ,ｍ,Ｎ+ＣＨ2)；３.６(２Ｈ,ｔ,ＣＨ2ＯＨ)；３.２(９Ｈ,ｓ,(ＣＨ3)3Ｎ+)；３.０−２.７(２Ｈ,ｍ,ＣＨ2ＣＯＯ)；２.３(２Ｈ,ｄ,ＯＣＯＣＨ2)；２.０(１Ｈ,ｍ,ＣＨ(ＣＨ3)2)；１.６−１.５(４Ｈ,ｄｔ,ＣＨ2ＣＨ2)；１.３(１４Ｈ,ｍ,(ＣＨ2)7)；１.０(６Ｈ,ｄ,(ＣＨ3)2)
【００３１】
実施例５
イソバレリル−Ｌ−カルニチンクロリド−１０−ヒドロキシデシルエステル（ＳＴ  １０９６）の製造
化合物を、実施例４に記載と同様にして製造した。
［α］D25＝−１４.４°(ｃ＝１％，Ｈ2Ｏ)
Ｋ.Ｆ.（Ｈ2Ｏ含量）３.３％
0003940179.tif 000010
実施例４記載と同様のＨＰＬＣ
Ｒt：９.５３分
ＮＭＲ：Ｄ2Ｏ  δ＝５.７(１Ｈ,ｍ,ＣＨＯＣＯ)；４.１(２Ｈ,ｔ,ＣＯＯＣＨ2)；４.０−３.７(２Ｈ,ｍ,Ｎ+ＣＨ2)；３.６(２Ｈ,ｔ,ＣＨ2ＯＨ)；３.２(９Ｈ,ｓ,(ＣＨ3)3Ｎ+)；３.０−２.７(２Ｈ,ｍ,ＣＨ2ＣＯＯ)；２.３(２Ｈ,ｄ,ＯＣＯＣＨ2)；２.０(１Ｈ,ｍ,ＣＨ(ＣＨ3)2)；１.６−１.５(４Ｈ,ｄｔ,ＣＨ2ＣＨ2)；１.３(１２Ｈ,ｓ,(ＣＨ2)6)；１.０(６Ｈ,ｄ,(ＣＨ3)2)
【００３２】
薬理学的検討:ＬＰＳ注射により実験動物に誘発される内毒素ショックモデル
ＬＰＳ注射により実験動物に誘発される実験的内毒素ショックは、グラム陰性菌により誘発される敗血症ショックの臨床治療中に生じる典型的な生理的および免疫学的異常制御を模擬する簡便なモデルと考えられている。この実験的ショックモデルは、従って新規治療薬剤の推定的効果の検討に有用であり、ひとの治療への使用の可能性における有益な情報を提供する(ダン  ＤＬ.、敗血症における内毒素および宿主サイトカインの役割、チェスト(Chest)  １９９１；１００：１６４Ｓ−１６８Ｓ、フローエ  Ｓ、ハインリッヒ  ＰＣ、シュナイダー  Ｊ、ヴェンデル  Ａおよびフローエ  Ｌ、ラットにおける内毒素誘発内毒素耐性におけるＩＬ−６およびＴＮＦαの分泌の時間的経過、バイオケミカル・ファーマコロジー(Biochem.Pharmacol)、１９９１；４１：１６０７−１６１４、ニシジマＨ、ヴァイル  ＭＨ、シュビン  Ｈ、カバニルス  Ｊ、グラム陰性敗血症に関連するショックにおける血行力学および代謝の研究、メディシン(Medicine)  １９７３；５２：２８７−２９４、サフレディニ  ＡＦ、フロム  ＲＥ、パーカーＭＭ、ブレンナー  Ｍ、コヴァクス  ＪＡ、ウェスレー  ＲＡ、パリロ  ＪＥ、内毒素投与に対する正常ヒトの心臓血管反応、ニュー・イングランド・ジャーナル・オブ・メディシン(N.Engl.J.Med)、１９８９；３２１：２８０−２８７)。
【００３３】
この検討において、その内毒素ショックにおける活性が非常によく知られているアセチル−Ｌ−カルニチンクロリド(ＳＴ２００と略称)を対照化合物として使用する。
【００３４】
新規に発明された化合物として、以下の物質を使用する：イソバレリル−Ｌ−カルニチンクロリドウンデシルエステル(ＳＴ７２２)；パルミトイル−Ｌ−カルニチンクロリド−２−トリメチルアンモニウム−エチルエステルクロリド(ＳＴ１０５８)；イソバレリル−Ｌ−カルニチンクロリドドデシルエステル(ＳＴ１０３７)；オクタノイル−Ｌ−カルニチンクロリドウンデシルエステル(ＳＴ１０００)。
【００３５】
実験的内毒素ショックにおけるＳＴ２００および新規に発明されたアルカノイル−Ｌ−カルニチンエステルの防御作用の比較評価の後、得られた結果はこのようなエステルが−生存率の増加および平均生存期間(MST)および健康状態の延長の両方の点で−治療的効果を有し、それは対照化合物のそれより優れていることが示されている。
【００３６】
内毒素ショックの実験モデル：マウスにおけるＬＰＳにより誘発された血清ＴＮＦ濃度および致死に対するＳＴ２００の効果の評価
６−７週令の雄のＣ５７ＢＬ／６近親交配マウス(イファ・クレド(Iffa Credo))を用いる(実験群当たり動物８−１６匹)。
【００３７】
滅菌食塩水に溶解した化合物ＳＴ２００をマウスに、体重(b.w.)１０gr当たり０.１mlの量を腹腔内(i.p.)に投与する。
血清ＴＮＦ測定の実験において、化合物を５０mg／kgの量をそれぞれＬＰＳ注射前６０分(i.p.経路により)および後１０分(静脈内注射(i.v.)経路により)に投与した。
【００３８】
ＬＰＳ−誘発致死における化合物の防御作用を評価するために、最初の実験を上記のＴＮＦについて述べた方法と同様の処置プロトコルに従って行った。
更に、第２の実験は、化合物の、ＬＰＳ注射(０日)に対して−１日から＋３日(０日には１回)の化合物の毎日２回のi.p.投与に基づく処置プロトコルに従って行った。
【００３９】
Ｃ５７ＢＬ／６マウスにおける内毒素ショックモデルは、３０mg／kgのＬＰＳ(E.coli  Ｏ５５：Ｂ５、ディフコ(Difco))のi.p.投与の基づくものである。滅菌食塩水に溶解し記載の濃度で注射(０.１ml／１０gr体重)した場合、ＬＰＳは回により変化するが、処置動物の６０−８０％を死亡させることができた。ＣＯ2−麻酔したマウスは眼窩の後ろの洞を穿刺して出血させ、血液サンプルをＬＰＳ投与１時間後、即ちＴＮＦがその最大濃度(図１)に到達したとき採取した。
【００４０】
血液は室温で２時間凝結させ、血清を分離し、次いで２０分、４０００rpmで遠心分離させた。サンプルを最初に分別し、次いで測定するまで−８０℃で保存した。
【００４１】
ＴＮＦの生物学的分析
血清中のＴＮＦの濃度は、ＴＮＦ細胞毒性活性に非常に感受性の強いＬ９２９細胞系(マウス線維肉腫)を使用して測定した(フリック  ＡＤおよびギフォードＧＥ、腫瘍壊死因子についてのインビトロ細胞細胞毒性分析における比較、ジャーナル・オブ・イムノロジカル・メソッズ(J.Immunol.Met.)、１９８４；６８：１６７−１７５)。詳細には、１０％ＦＣＳを含むＲＰＭＩ−１６４０中の１００μlのＬ９２９細胞(３.２×１０5細胞／ml)を、平底９６ウェルミクロタイタープレート(ファルコン、ベクトン＆ディッキンソン、メイラン・セデックス、フランス)の各々のウェルにまいた。１８−２４時間、３７℃で５％ＣＯ2濃度の高湿度雰囲気下でインキュベーションした後、使用した培地を廃棄し、血清サンプルの２倍連続希釈(ＲＰＭＩ−１６４０、１％ＦＣＳで行う)(０.１ml／ウェル)をトリプリケートで細胞に加えた。次いで、アクチノマイシンＤの２μg／ml溶液の０.１ml量を、各ウェルに加えた。アクチノマイシンＤはＲＮＡ生合成を阻害し、そのためＴＮＦ細胞毒性活性に対するＬ９２９の感受性を増幅する。ミクロタイタープレートを、次いで更に１８時間、３７℃で５％ＣＯ2濃度の高湿度雰囲気下でインキュベーションした。このインキュベーションの後、培地を廃棄し、細胞単層を３回０.９％ＮａＣｌで洗浄し、続いて１５分、室温(ＲＴ)で２０％エタノールおよび８％ホルムアルデヒド中の０.２５％(ｗ／ｖ)クリスタルバイオレットで染色した。着色剤を廃棄した後、ウェルを流水中で穏やかに洗浄し、ＲＴで乾燥させた：付着細胞に取り込まれた色素は３３％酢酸で抽出し、５７０nmにおける相対吸光度をマルチスキャンＭＣＣ／３４０ＥＬＩＳＡリーダー(Multiskan MCC/340 ELISA reader)(フロー・ラボラトリーズ、マックレーン、バージニア州、アメリカ合衆国)で測定した。次いで吸光度の値を、各々のサンプルの連続希釈により作成された回帰曲線と、既知の活性を有するマウス組換えＴＮＦ標準の連続希釈により作成された回帰曲線を直接比較することによる血清サンプルのＴＮＦ活性(単位／mlで示す)の測定のために用いた。
【００４２】
生存率および健康状態の評価
処置動物の総数に対する生存率の評価に加えて、各々の実験グループにおける動物の健康状態を、実験期間中(１０日間)、いくつかの行動および生理学的反応を評価することにより観察した。
【００４３】
ＴＮＦの結果の統計的有意は、スチューデンドｔ検定により評価した。生存データはフィッシャー精密検定(Fisher exact test)により分析し、一方ＭＳＴの変化はマン−ホイットニーＵ検定(Mann-Whitney U test)により評価した。
【００４４】
結果
用いた容量および計画では、ＳＴ２００は血清ＴＮＦ分泌を著しく変化させず(表１)、また動物をＬＰＳ−誘発致死からも保護しなかった(表２)。
さらに、各々の実験(１０日)を通して観察された動物の生理学的反応、即ち内毒素ショックの結果生じる、運動の減少、刺激に対するイポリアクティビティー(iporeavtivity)、食欲不振、ピロエレクション(piloerection)、体温、眼滲出等のある病態生理学的効果について、処置および対照群の間で有意な差を示さなかった。
図１は、Ｃ５７ＢＬ／６マウスにＬＰＳを３０mg／kg i.p.投与した後の血清ＴＮＦの濃度を示す。値は平均（動物４匹／群）±Ｓ.Ｄ.
【００４５】
【表１】
ＬＰＳ(３０mg／kg、i.p.)により誘発された血清ＴＮＦ濃度に対する物質ＳＴ２００の効果。ＳＴ２００は５０mg／kgの投与量で、ＬＰＳ投与後６０分(i.p.経路)および１０分(i.v.経路)にそれぞれ投与した。
0003940179.tif 000011
ａ＝対照群に対する処置群におけるＴＮＦ濃度の平均変化率
ｂ＝スチューデントｔ検定
【００４６】
【表２】
内毒素ショックのマウスモデルにおけるＳＴ２００の防御効果
生存率および平均生存期間(MST)の評価
0003940179.tif 000012
処置は、ＬＰＳ３０mg／kg(０時)にi.p.注射およびＳＴ２００を、指示した量で、プロトコール(１)に従って、即ち−６０分(i.p.)および＋１０分(i.v.)に、またはプロトコール(２)に従って、即ち−１日から＋３日まで、毎日２回(０日は１回)のi.p.注射で投与した。
ａ＝生存数／総数
ｂ＝フィッシャー精密検定
ｃ＝平均生存期間で、かっこ内は変動範囲
ｄ＝マン−ホイットニーＵ検定
【００４７】
内毒素ショックの実験モデル：マウスにおけるＬＰＳにより誘発された血清ＴＮＦ濃度および致死に対するＳＴ７２２の効果の評価
雄の６−８週令のＣ５７ＢＬ／６近親交配マウス(イファ・クレド)を用いた(実験群当たり動物８匹)。滅菌食塩水に溶解した化合物ＳＴ７２２を、マウスに体重(b.w.)１０gr当たり０.１mlの量で腹腔内(i.p.)投与する。
【００４８】
実験は１.２５、２.５、５および１０mg／kgの量のＳＴ７２２およびエシェリキア・コリ(E.coli)由来の内毒素(ＬＰＳ  Ｏ５５：Ｂ５、ディフコ)３０mg／kgを使用した。
血清ＴＮＦ測定の実験において、ＳＴ７２２(１.２５−５mg／kg)がＬＰＳと同時に投与される場合(プロトコールＢ)以外、ＳＴ７２２(２.５−５−１０mg／kg)による処置はi.p.経路でＬＰＳ３０mg／kgのi.p.注射の６０分前(プロトコールＡ)に投与した。
【００４９】
内毒素ショックの間の動物の生存率を評価するために行うこれらの実験に関して、ＳＴ７２２の処置(１.２５−２.５−５mg／kgi.p.)は、ＬＰＳ３０mg／kgのi.p.投与(０日)前６０分、次いで１日に１回、＋１日および＋２日(プロトコール＃１)、＋１、＋２および＋３日(プロトコール＃２)、＋１、＋２、＋３および＋４日(プロトコール＃３)に投与する。
【００５０】
実験法、ＴＮＦ測定、実験的知見および統計的分析
前記の関連する項を参照
【００５１】
結果
ＬＰＳにより誘発される血清ＴＮＦ分泌に対するＳＴ７２２の効果
ＳＴ７２２の１０mg／kgでの処置は、２回の連続した実験でＴＮＦ分泌を有意に阻害し得(それぞれｐ＜０.００１およびｐ＜０.０１)、ＬＰＳにより誘発されるＴＮＦ分泌を約８０％減少させた(表３の実験１および実験２)。
連続した実験により、低濃度のＳＴ７２２を使用した場合でも上記と同程度の血清ＴＮＦ減少がまた達成され得たことを示した。実際、有意(ｐ＜０.００１)な減少がＳＴ７２２の２.５および５mg／kgの投与量で観察され、これは、それぞれ、ＬＰＳ対照の８０および８５％に相当する(表３の実験３)。
【００５２】
最後の実験は、ＳＴ７２２がＬＰＳと同時に投与された場合、ＴＮＦ分泌の有意(ｐ＜０.０１)な減少が、５mg／kgの投与量のみで観察され、１.２５mg／kgの投与量では観察されなかったことを示す(表３の実験４)。
結論として、これらの結果は、物質ＳＴ２００で得られたものより優れており、さらに、ＳＴ２００は著しく高い投与量で投与されたものである。
【００５３】
ＬＰＳ−誘発致死に対するＳＴ７２２の効果
３種の異なった処置プロトコールから得られた全ての結果を表４に示す。特に、ＬＰＳ−誘発致死に対するＳＴ７２２の反復処置の効果の試験を目的とする最初の実験の結果を、図２に詳しく示す。この場合、２.５および５mg／kgのＳＴ７２２処置は、最初、０日に、３０mg／kgのＬＰＳ投与６０分前、次いで＋１日および＋２日に行った。
【００５４】
上記の計画に従って投与した場合、ＳＴ７２２はＬＰＳ−誘発致死から防御しないことは注目できる。しかしながら、もし２.５mg／kgのＳＴ７２２処置が＋３日まで延長された場合、処置動物の生存の増加が観察されたが、統計的有意ではない(図３)。
【００５５】
０日(ＬＰＳ投与前６０分)から＋４日まで毎日１回のＳＴ７２２投与に基づくプロトコールに従って行った最後の実験(図４)では、ＳＴ７２２の５mg／kgで処置された動物の生存は有意に上昇した(ｐ＜０.０２)。多少の、統計的有意ではない防御は、低濃度、即ち１.２５および２.５mg／kgのＳＴ７２２でもまた観察された。これらの反復処置が、動物の健康状態に有益な効果を有することは注目に値する。実際、ＬＰＳを注射し続いてＳＴ７２２で処置した動物群の生存一日当たりの食餌消費量は、ＬＰＳを注射し、次いで食塩水で処置した動物のそれと比較すると高い(表５)。
要約すると、ＳＴ７２２で処置した動物の生存率および健康状態はＳＴ２００で処置した動物と比較して著しく改善されている。
【００５６】
【表３】
ＬＰＳ(３０mg／kgi.p.)により誘発される血清ＴＮＦ濃度に対する種々の濃度におけるＳＴ７２２の効果
ＳＴ７２２は、ＬＰＳ投与前６０分(プロトコールＡ)または同時(プロトコールＢ)に報告した投与量で投与した。
0003940179.tif 000013
ａ＝対照と比較した、ＳＴ７２２処置群における血清ＴＮＦ濃度の平均の変化率
ｂ＝スチューデントｔ検定
【００５７】
【表４】
内毒素ショックのマウスモデルにおけるＳＴ７２２の防御効果
生存および平均生存期間(MST)の評価
0003940179.tif 000014
ａ＝ＳＴ７２２は記載の投与量を、i.p.経路でＬＰＳ投与(０日)前６０分、次いで＋１日および＋２日に投与した。
ｂ＝ＳＴ７２２は記載の量を、i.p.経路でＬＰＳ投与(０日)前６０分、次いで＋１日、＋２日および＋３日に投与した。
ｃ＝ＳＴ７２２は記載の量を、i.p.経路でＬＰＳ投与(日０)前６０分、次いで日＋１、＋２日、＋３日および＋４日に投与した。
ｄ＝生存数／総数
ｅ＝フィッシャー精密検定
ｆ＝平均生存期間で、かっこ内は変動範囲
ｇ＝マン−ホイットニーＵ検定
図２は、ＬＰＳ３０mg／kgのi.p.注射(０日)により誘発される致死におけるＳＴ７２２処置の効果を示す。ＳＴ７２２処置は記載量で、マウス(動物８匹／群)で、０日に最初の投与(ＬＰＳ投与前３０分)を行い、次いで毎日一回、＋１日および＋２日まで投与した。対照およびＬＰＳを注射したマウスは、ＳＴ７２２の代わりに滅菌食塩水で処置した。
図３は、ＬＰＳ３０mg／kgのi.p.注射(日０)により誘発される致死におけるＳＴ７２２処置の効果を示す。ＳＴ７２２処置は記載量で、マウス(動物８匹／群)で、０日(ＬＰＳ投与前３０分)に最初の投与、ついで毎日一回、＋１日、＋２日および＋３日に投与した。対照およびＬＰＳを注射したマウスは、ＳＴ７２２の代わりに滅菌食塩水で処置した。
図４は、ＬＰＳ３０mg／kgのi.p.注射(０日)により誘発される致死におけるＳＴ７２２処置の効果を示す。ＳＴ７２２処置は記載量で、マウス(動物８匹／群)で、０日(ＬＰＳ投与前３０分)に最初の投与および次いで毎日一回、＋１日、＋２日、＋３日および＋４日に投与した。対照およびＬＰＳを注射したマウスは、ＳＴ７２２の代わりに滅菌食塩水で処置した。
【００５８】
【表５】
ＬＰＳ注射しＳＴ７２２で処置した動物の健康状態の評価(１１日の追跡期間中の食餌摂取により判定)
実験条件は図３と同じ
0003940179.tif 000015
ａ＝観察期間中に消費された食餌の全量(ｇ)
ｂ＝観察期間の最後に計算した１群内の動物の生存日数の合計
ｃ＝追跡期間中の１群中各動物の一日当たりの平均食餌消費量
【００５９】
内毒素ショックの実験モデル：マウスにおけるＬＰＳ−誘発致死に対する化合物ＳＴ７２２およびＳＴ１０５８の効果の評価
雄の７週令のＣ５７ＢＬ／６近親交配マウス(イファ・クレド)を用いた(実験群当たり動物７−８匹)。
滅菌食塩水に溶解した化合物ＳＴ７２２およびＳＴ１０５８を、マウスに、１.２５mg／kgの投与量、体重(b.w.)１０gr当たり０.１mlの量でi.p.経路で投与した。
最初の２回の処置は、ＬＰＳi.p.注射(０日)前１時間および後４時間に行い、１日２回、＋３日まで続けた(合計８回投与)。
【００６０】
実験方法および統計的分析
３５mg／kgi.p.経路で使用するＬＰＳの量以外は、上記の対応する項を参照のこと。
動物(簡便な識別標識により分類)は、実験の期間(１０日)の間一匹づつ定期的に調べ、生存および健康状態を全て追跡する。生存率に加えて、平均生存期間(MST)を実験の最後に計算した。動物の健康状態の評価は、食餌消費量の測定および直腸温度の測定により定量的に測定した。前者のパラメーターは、各々の実験群内の動物による、および生存日数当たりの各動物による平均食餌消費量を計算することにより評価した。後者のパラメーターは、結果を食塩水処置動物(対照群)に対する化合物−およびＬＰＳ−処置動物の各群の平均温度変化率として結果を表し得る任意の評価等級(等級点)を使用して評価した。健康状態および記録温度の間の相互関係の正確な理解のために、本実験モデルにおいて、ＬＰＳ−注射動物において著しい異常低体温症が観察されたことは心にとどめておくべきである(図５)。
実験の最後に(ＬＰＳを注射した動物の健康状態を追跡するための客観的評価法の有効性の項(００６５〜００６７)参照)、動物の直腸温度は、動物の健康状態の評価に非常に信頼でき客観的な基準であることを示す強力な実験証拠が得られた。
【００６１】
結果
物質ＳＴ７２２は、ＬＰＳを投与した動物において防御効果をもたらすが、統計的に有意ではないことが判明した：生存率４３％対１５％およびＭＳＴ６対２日(表６、図６)。処置した動物の健康状態は、直腸温度に関する限りＬＰＳ−投与動物よりよい結果であった(図７)。
【００６２】
ＳＴ１０５８の投与は、生存率の緩やかな上昇(３７.５％対２５％)であるが肉体的状態の改善(上昇した体温)(図９)と平行する持続的な平均生存期間の上昇(６.５対２.０日)(表７、図８)を生ぜしめる。全体として、本実験のＳＴ７２２およびＳＴ１０５８で得られた結果は、ＳＴ２００で得られたものより優れているように思える。
図５は、対照（□−□）およびＬＰＳを注射された（■−■）動物の直腸温度の変化を示す。内毒素は３０mg／kgの量をi.p.で投与した（０日）
【００６３】
【表６】
内毒素ショックのマウスモデルにおけるＳＴ７２２の防御効果
生存率およびＭＳＴの評価
0003940179.tif 000016
物質は、記載の量で、ＬＰＳ投与(０日)前１時間および後４時間、および＋１日から＋３日まで毎日２回投与した。
ａ＝生存数／総数
ｂ＝フィッシャー精密検定
ｃ＝平均生存期間で、かっこ内は変化の範囲
ｄ＝マン−ホイットニーＵ検定
図６は、ＬＰＳに感染させ、ＳＴ７２２で処置した動物の生存曲線を示す（詳細は表６参照）。
図７は、動物の健康状態を示す（詳細は表６参照）。ａ）は直腸温度、ｂ）は食餌摂取量を示す。
【００６４】
【表７】
内毒素ショックのマウスモデルにおけるＳＴ１０５８の防御効果
生存率およびＭＳＴの評価
0003940179.tif 000017
物質は、記載の量で、ＬＰＳ投与(日０)前１時間および後４時間、および＋１日から＋３日まで毎日２回投与した。
ａ＝生存数／総数
ｂ＝フィッシャー精密検定
ｃ＝平均生存期間で、かっこ内は変化の範囲
ｄ＝マン−ホイットニーＵ検定
図８は、ＬＰＳに感染させ、ＳＴ１０５８で処置した動物の生存曲線を示す（詳細は表７参照）。
図９は、動物の健康状態を示す（詳細は表７参照）。ａ）は直腸温度、ｂ）は食餌摂取量を示す。
【００６５】
ＬＰＳを注射した動物の健康状態を追跡するための客観的評価法の有効性
本研究は、ＬＰＳ−注射マウスにおけるいくつかの行動パラメーターの変化と直腸温度の相互関係の可能性があるか否かを調べるために行った。これは、内毒素ショックにより生じる多かれ少かれ重篤ないくつかの症状に由来し、しばしば主観的な解釈をしがちな一連の実験的観察を、単一の信頼し得る客観的実験測定値である直腸温度に切り換えることを目的とするものである。これは内毒素ショックを受けている動物の健康状態において物質がおよぼす効果を客観的に評価することを可能とし、症状の重さを十分に述べる努力をするために数多くの実験的観察を行うことを避け得るものである。
【００６６】
この目的のために、ＬＰＳ−誘発ショックの４種の異なった実験に用いた９０匹の６週令の雄の近親交配Ｃ５７ＢＬ／６マウスは、内毒素注射後１０日まで厳密に追跡した。
６種の異なった症状の程度を定義し、各動物を、一連の行動パラメーターの程度、例えば自発的行動の減少、刺激に対する反応減少、食欲不振、ピロエレクション、サークリング(circling)、臓器の下垂、眼の滲出液などを考慮した任意の評価尺度に従ってランク分けした。動物直腸温度測定は、適当なサーミスタの付いた電子体温計(テルミスト、ＴＭＳ)で行った。
【００６７】
各動物の症状の程度と直腸温度の相関関係を示した図１０から、非常に高い統計的有意性のある相関関係の存在に容易に気付くことができる。
従って、我々は、この内毒素ショックのマウスモデルにおける温度測定を、それ自体、内毒素ショックを受けている動物(マウス)の健康状態を十分に評価する有用なパラメーターと見なし得るものと信じる。
図１０は、直腸温度と症状の相互関係を示す。
【００６８】
内毒素ショックの実験モデル：マウスにおけるＬＰＳ誘発致死に対するＳＴ７２２の防御効果の評価
９週年令の雄Ｃ５７ＢＬ／６近親交配マウスを用いた(実験群当たり動物８−１０匹)。滅菌生理食塩水に溶解した化合物ＳＴ７２２を以下の通りにＬＰＳ注射(３５mg／kg、０時)に関し、２種の異なる処置スケジュールに従って投与した。
ａ)最初−６０分に(２.５mg／kgの投与量で腹腔内)、次いで＋１０分に(１.２５mg／kgの投与量で静脈内)
ｂ)−７日から０日まで(ＬＰＳ投与１時間前)、腹腔内経路により１.２５mg／kg／日の投与量
【００６９】
実験方法及び統計的分析
既報の関連項参照
【００７０】
結果
両方の処置プロトコールは、生存率及びＭＳＴに関して、ＬＰＳ(３５mg／kg)により中毒化させた動物の顕著な防御を示す(表８、図１１および図１２)。これらの結果は、ＳＴ２００を高投与量(５０mg／kg)で用いたとしても、これにより得られたものよりも疑いもなく優れている。
【００７１】
【表８】
内毒素ショックのマウスモデルにおける化合物ＳＴ７２２の防御効果
0003940179.tif 000018
処置は、３５mg／kgＬＰＳ腹腔内注射(０時)、および以下のように化合物ＳＴ７２２を投与することにより実施した。
(１)最初−６０分に(２.５mg／kgi.p.の投与量で)次いで＋１０分に(１.２５i.v.の投与量で)：
(２)−７日から０日まで(ＬＰＳ投与１時間前)
ａ＝生存数／総数
ｂ＝フィッシャー精密検定
ｃ＝平均生存期間、カッコ内は変動範囲
ｄ＝マン−ホイットニーＵ検定
図１１は、ＬＰＳ注射および化合物ＳＴ７２２処置（−６０分に２.５mg／kgi.p.および＋１０分に１.２５mg／kgi.v.）動物の生存曲線を示す。
図１２は、ＬＰＳ注射および化合物ＳＴ７２２処置（−７日から０日まで１.２５mg／kg／日i.p.）動物の生存曲線を示す。
【００７２】
内毒素ショックの実験モデル：マウスにおけるＬＰＳ誘発血清ＴＮＦ濃度に対するＳＴ７２２の効果の評価
７週令の雄Ｃ５７ＢＬ／６近親交配マウスを用いた(実験群当たり動物７−１５匹)。滅菌生理食塩水に溶解した化合物ＳＴ７２２を、以下の通り、ＬＰＳ注射(３０mg／kg、０時)に関し、２種の異なる処置スケジュールに従って投与した。
ａ)−６０分に５mg／kgi.p.の投与量
ｂ)最初−６０分に次いで＋１０分に、１.２５又は２.５mg／kgi.p.の投与量
【００７３】
実験方法及び統計的分析
既報の関連項参照
【００７４】
結果
化合物ＳＴ７２２による異なる処置に従って得られたＬＰＳ誘発血清ＴＮＦ濃度の減少(表９)は非常に有意であることを示す。さらにこれらの結果は、ＳＴ２００をたとえ非常に高投与量で用いたとしてもＳＴ２００で得られるものよりもずっと良好である。
【００７５】
【表９】
ＬＰＳ誘発(３０mg／kgi.p.)血清ＴＮＦ濃度に対する物質ＳＴ７２２の効果
0003940179.tif 000019
ａ＝物質ＳＴ７２２は、ＬＰＳ投与に関し−６０分に既報の投与量で腹腔内経路により投与した。
ｂ＝物質ＳＴ７２２は、ＬＰＳ投与に関し、−６０分及び＋１０分に提示の投与量で腹腔内経路により投与した。
ｃ＝ＬＰＳ注射動物に対するＳＴ７２２処置の血清ＴＮＦ濃度の平均変化率
ｄ＝スチューデントｔ検定
【００７６】
内毒素ショックの実験モデル：マウスにおけるＬＰＳ誘発血清ＴＮＦ濃度に対するＳＴ１０３７の効果の評価
７週令の雄Ｃ５７ＢＬ／６近親交配マウス(イファ・クレド)を用いた(実験群当たり動物８匹)。
滅菌生理食塩水に溶解した化合物ＳＴ１０３７をＬＰＳ注射(３０mg／kgi.p.)に関して−６０分ｎｉ静脈内経路(５mg／kg)により、＋１０分に腹腔内経路(１mg／kg)により投与した。
【００７７】
実験方法及び統計的分析
既報の関連項参照。
【００７８】
ＬＰＳ投与の前(−６０分)及び後(＋１０分)にそれぞれ５mg／kgi.p.及び１mg／kgi.v.の投与量で物質ＳＴ１０３７により動物を処置することにより、循環ＴＮＦの有意な減少(ｐ＜０.０５)が得られる(表１０)。この結果は、ＳＴ２００で実験的に見られたものと相違し、内毒素ショック中のマウスの生存に対しても化合物ＳＴ１０３７の防御効果を予想させる。
【００７９】
【表１０】
ＬＰＳ誘発(３０mg／kgi.p.)血清ＴＮＦ濃度に対する物質ＳＴ１０３７の効果
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化合物ＳＴ１０３７は、ＬＰＳ投与(０時)に関し、−６０分で５mg／kgi.p.の投与量で、＋１０分で１mg／kgi.v.の投与量で投与した。
ａ＝ＬＰＳ注射動物に対するＳＴ１０３７処置の血清ＴＮＦの平均変化率
ｂ＝スチューデントｔ検定
【００８０】
内毒素ショックの実験モデル：マウスにおけるＬＰＳ誘発致死に対するＳＴ１０００の防御効果の評価
７週令の雄Ｃ５７ＢＬ／６近親交配マウスを用いた(実験群当たり動物８匹)。
滅菌生理食塩水に溶解した化合物ＳＴ１０００をＬＰＳ注射(３５mg／kgi.p.）に関し−３日から＋４日まで５mg／kg／日の投与量で腹腔内経路により投与した。
防御効果は、生存率及びＭＳＴ並びに健康状態に関して評価し、同時に直腸温度測定により判定した(ＬＰＳを注射した動物の健康状態を追跡するための客観的評価法の有効性の項（００６５〜００６７）参照)。
【００８１】
実験方法及び統計的分析
既報の関連項参照
【００８２】
結果
ＳＴ１０００(−３日から＋４日まで５mg／kg／日i.p.)による処置によりＬＰＳ(１００％致死率)で中毒化させた動物をある程度防御(３７.５％生存)し、ＭＳＴを明らかに延長する(４日対１日：ｐ＜０.００１)(表１１、図１３)。
さらに、直腸温度測定(ＬＰＳを注射した動物の健康状態を追跡するための客観的評価法の有効性の項の実験的結論及び考察参照)により評価された動物の健康状態は、被験物質による処理後著しく改善されたように見える（図１４）。
実験結果の全体から、内毒素の治療に期待される薬剤として、物質ＳＴ１０００は、本実験モデルにおいて、ＳＴ２００によりすでに見い出されたものよりもはるかに良好な治療像を有することが判る。
【００８３】
【表１１】
内毒素ショックのマウスモデルにおけるＳＴ１０００の防御効果
生存およびＭＳＴの評価
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処置は、ＬＰＳ投与(３５mg／kg)の日に関し、−３日から＋４日まで５mg／kg／日の投与量で腹腔内経路により物質ＳＴ１０００を投与することにより行った。
ａ＝生存数／総数
ｂ＝フィッシャー精密検定
ｃ＝平均生存期間、カッコ内は変動範囲
ｄ＝マン−ホイットニーＵ検定
図１３は、ＬＰＳ投与（０日）に関し−３日から＋４日まで５mg／kg／日ＳＴ１０００で処置したＬＰＳ注射動物の生存曲線を示す。
図１４は、直腸温度測定により評価した動物の健康状態を示す。
【図面の簡単な説明】
【図１】  Ｃ５７ＢＬ／６マウスにＬＰＳを投与した後の血清ＴＮＦの濃度を示す折れ線グラフである。
【図２】  ＬＰＳにより誘発される致死におけるＳＴ７２２処置の効果を示すグラフである。
【図３】  ＬＰＳにより誘発される致死におけるＳＴ７２２処置の効果を示すグラフである。
【図４】  ＬＰＳにより誘発される致死におけるＳＴ７２２処置の効果を示すグラフである。
【図５】  対照およびＬＰＳを注射された動物の直腸温度の変化を示すグラフである。
【図６】  ＬＰＳに感染させ、ＳＴ７２２で処置した動物の生存曲線を示すグラフである。
【図７】  動物の健康状態を示す（詳細は表６参照）。
【図８】  ＬＰＳに感染させ、ＳＴ１０５８で処置した動物の生存曲線を示すグラフである。
【図９】  動物の健康状態を示すグラフである。
【図１０】  直腸温度と症状の相互関係を示すグラフである。
【図１１】  ＬＰＳ注射および化合物ＳＴ７２２処置動物の生存曲線を示すグラフである。
【図１２】  ＬＰＳ注射および化合物ＳＴ７２２処置動物の生存曲線を示すグラフである。
【図１３】  ＬＰＳ投与後ＳＴ１０００で処置したＬＰＳ注射動物の生存曲線を示すグラフである。
【図１４】  直腸温度測定により評価した動物の健康状態を示すグラフである。
【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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【図６】
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【図７】
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【図８】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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【図１２】
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【図１３】
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【図１４】
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