(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
有効量の２０−ＨＥＴＥアゴニストを含む、血管直径を減少させる薬学的製剤であって、前記２０−ＨＥＴＥアゴニストが、［１］２１−ヒドロキシヘンエイコサ−５（Ｚ），８（Ｚ），１１（Ｚ），１４（Ｚ）−テトラエン酸、［２］２０−ヒドロキシエイコサ−５（Ｚ），１４（Ｚ）−ジエン酸、及び［３］２０，２０−ジメチル−２０−ヒドロキシエイコサテトラエン酸からなる群から選択される少なくとも１つの化合物である、血管直径を減少させる薬学的製剤。
【請求項２】
利尿効果を引き起こすに十分な量の２０−ＨＥＴＥアゴニストを含む、鬱血性心不全、肺水腫、肝腎症候群または高血圧症の治療のための薬学的製剤であって、前記２０−ＨＥＴＥアゴニストが、［１］２１−ヒドロキシヘンエイコサ−５（Ｚ），８（Ｚ），１１（Ｚ），１４（Ｚ）−テトラエン酸、［２］２０−ヒドロキシエイコサ−５（Ｚ），１４（Ｚ）−ジエン酸、及び［３］２０，２０−ジメチル−２０−ヒドロキシエイコサテトラエン酸からなる群から選択される少なくとも１つの化合物である、鬱血性心不全、肺水腫、肝腎症候群または高血圧症の治療のための薬学的製剤。
【請求項３】
疾患症状を軽減させるために、ナトリウム排泄を促進するに十分な量の２０−ＨＥＴＥアゴニストを含む、塩感受性型の高血圧症の治療のための薬学的製剤であって、前記２０−ＨＥＴＥアゴニストが、［１］２１−ヒドロキシヘンエイコサ−５（Ｚ），８（Ｚ），１１（Ｚ），１４（Ｚ）−テトラエン酸、［２］２０−ヒドロキシエイコサ−５（Ｚ），１４（Ｚ）−ジエン酸、及び［３］２０，２０−ジメチル−２０−ヒドロキシエイコサテトラエン酸からなる群から選択される少なくとも１つの化合物である、塩感受性型の高血圧症の治療のための薬学的製剤。
【請求項４】
疾患症状を軽減させるに十分な量の２０−ＨＥＴＥアゴニストを含む、喘息の治療のための薬学的製剤であって、前記２０−ＨＥＴＥアゴニストが、［１］２１−ヒドロキシヘンエイコサ−５（Ｚ），８（Ｚ），１１（Ｚ），１４（Ｚ）−テトラエン酸、［２］２０−ヒドロキシエイコサ−５（Ｚ），１４（Ｚ）−ジエン酸、又は［３］２０，２０−ジメチル−２０−ヒドロキシエイコサテトラエン酸である、喘息の治療のための薬学的製剤。
【請求項５】
前記製剤が喘息に適用され、前記化合物が吸入療法として送達される、請求項４の薬学的製剤。
【請求項６】
２０−ＨＥＴＥアゴニストを含み、２０−ＨＥＴＥアゴニストを注入して肺性循環を拡張する、肺性高血圧症の症状を軽減するための薬学的製剤であって、前記２０−ＨＥＴＥアゴニストが、［１］２１−ヒドロキシヘンエイコサ−５（Ｚ），８（Ｚ），１１（Ｚ），１４（Ｚ）−テトラエン酸、［２］２０−ヒドロキシエイコサ−５（Ｚ），１４（Ｚ）−ジエン酸、及び［３］２０，２０−ジメチル−２０−ヒドロキシエイコサテトラエン酸からなる群から選択される少なくとも１つの化合物である、肺性高血圧症の症状を軽減するための薬学的製剤。
【請求項７】
前記化合物が２０−ヒドロキシエイコサ−５（Ｚ），１４（Ｚ）−ジエン酸であり、かつ薬学的に許容される担体を含む、請求項１〜６のいずれか１項に記載の薬学的製剤。
【請求項８】
有効量の２０−ＨＥＴＥアンタゴニストを含む、２０−ＨＥＴＥが血管直径を減少させるのを防ぐ薬学的製剤であって、前記２０−ＨＥＴＥアンタゴニストが、［１］５（Ｓ）−ＨＥＴＥ、［２］１５（Ｓ）−ＨＥＴＥ、［３］１９（Ｓ）−ＨＥＴＥ、［４］１９−ヒドロキシノナデカ−５（Ｚ），８（Ｚ），１１（Ｚ），１４（Ｚ）−テトラエン酸、及び［５］２０−ヒドロキシエイコサ−６（Ｚ），１５（Ｚ）−ジエン酸からなる群から選択される少なくとも１つの化合物である、２０−ＨＥＴＥが血管直径を減少させるのを防ぐ薬学的製剤。
【請求項９】
血管における過度の２０−ＨＥＴＥ形成の血管収縮神経作用を遮断するに十分な量の２０−ＨＥＴＥアンタゴニストを含む、高血圧症、糖尿病、妊娠中毒症、肝腎症候群、脳血管痙攣またはシクロスポリン誘導腎毒性の治療のための薬学的製剤であって、前記２０−ＨＥＴＥアンタゴニストが、［１］５（Ｓ）−ＨＥＴＥ、［２］１５（Ｓ）−ＨＥＴＥ、［３］１９（Ｓ）−ＨＥＴＥ、［４］１９−ヒドロキシノナデカ−５（Ｚ），８（Ｚ），１１（Ｚ），１４（Ｚ）−テトラエン酸、及び［５］２０−ヒドロキシエイコサ−６（Ｚ），１５（Ｚ）−ジエン酸からなる群から選択される少なくとも１つの化合物である、高血圧症、糖尿病、妊娠中毒症、肝腎症候群、脳血管痙攣またはシクロスポリン誘導腎毒性の治療のための薬学的製剤。
【請求項１０】
疾患症状を軽減させるに十分な量の２０−ＨＥＴＥアンタゴニストを含む、敗血症ショックの治療のための薬学的製剤であって、前記２０−ＨＥＴＥアンタゴニストが、［１］５（Ｓ）−ＨＥＴＥ、［２］１５（Ｓ）−ＨＥＴＥ、［３］１９（Ｓ）−ＨＥＴＥ、［４］１９−ヒドロキシノナデカ−５（Ｚ），８（Ｚ），１１（Ｚ），１４（Ｚ）−テトラエン酸、及び［５］２０−ヒドロキシエイコサ−６（Ｚ），１５（Ｚ）−ジエン酸からなる群から選択される少なくとも１つの化合物である、敗血症ショックの治療のための薬学的製剤。
【請求項１１】
疾患の症状を軽減させるに十分な量の２０−ＨＥＴＥアンタゴニストを含む、新生物組織の成長または血管新生を防ぐための薬学的製剤であって、前記２０−ＨＥＴＥアンタゴニストが、［１］５（Ｓ）−ＨＥＴＥ、［２］１５（Ｓ）−ＨＥＴＥ、［３］１９（Ｓ）−ＨＥＴＥ、［４］１９−ヒドロキシノナデカ−５（Ｚ），８（Ｚ），１１（Ｚ），１４（Ｚ）−テトラエン酸、及び［５］２０−ヒドロキシエイコサ−６（Ｚ），１５（Ｚ）−ジエン酸からなる群から選択される少なくとも１つの化合物である、新生物組織の成長または血管新生を防ぐための薬学的製剤。
【請求項１２】
血流を増加させ、かつ症状を軽減するに有効な量の２０−ＨＥＴＥアンタゴニストを含む、脳血管損傷、血管痙攣、片頭痛または群発性頭痛、卒中またはコカイン誘導血管痙攣の治療のための薬学的製剤であって、前記２０−ＨＥＴＥアンタゴニストが、［１］５（Ｓ）−ＨＥＴＥ、［２］１５（Ｓ）−ＨＥＴＥ、［３］１９（Ｓ）−ＨＥＴＥ、［４］１９−ヒドロキシノナデカ−５（Ｚ），８（Ｚ），１１（Ｚ），１４（Ｚ）−テトラエン酸、及び［５］２０−ヒドロキシエイコサ−６（Ｚ），１５（Ｚ）−ジエン酸からなる群から選択される少なくとも１つの化合物である、脳血管損傷、血管痙攣、片頭痛または群発性頭痛、卒中またはコカイン誘導血管痙攣の治療のための薬学的製剤。
【請求項１３】
前記化合物が２０−ヒドロキシエイコサ−６（Ｚ），１５（Ｚ）−ジエン酸であり、かつ薬学的に許容される担体を含む、請求項８〜１２のいずれか１項に記載の薬学的製剤。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
（連邦後援研究または開発に関する供述）
本研究は、その一部は、国立保健研究所（ＮＩＨ）からの許可ＨＬ−２９５８７、ＨＬ−３６２７９およびＧＭ３１２７８により支援された。米国政府は、本発明に対して所定の権利を有するものである。
【０００２】
（発明の背景）
近年の研究により、様々な血管床の血管平滑筋細胞が、２０−ヒドロキシエイコサテトラエン酸（２０−ＨＥＴＥ）の形成を触媒する酵素である、シトクロムＰ４５０  ４Ａおよび関連ファミリー（ＣＹＰ  ４Ａ）の酵素を発現することが示されている。２０−ＨＥＴＥは、腎、脳および骨格筋の細動脈の強力な収縮剤（ＥＣ５０＜１０−８Ｍ）である。それは、ＫＣａチャネルの遮断に続きＶＳＭ細胞を脱分極させることにより、およびＬ型Ｃａ２＋チャネルのコンダクタンスを増加させることにより、Ｃａ２＋侵入を促進する（ハーダー・デー、Ｊ．Ｖａｓｃ．Ｒｅｓｅａｒｃｈ  ３４：２３７−２４３、１９９７；ローマン・アール、Ｎｅｗｓ  ｉｎ  Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ  Ｓｃｅｉｎｃｅｓ、１９９９、印刷中）。腎臓では、２０−ＨＥＴＥはまた、腎尿細管細胞により産生され、ここで、それは、近位尿細管および厚いヘンレ係蹄上行脚でのナトリウム輸送の調節に関与している。ヒトおよびウサギの肺では（ローマン・アール、上記、１９９９）、２０−ＨＥＴＥはまた、気道により産生され、ここで、それは、強力な内因産生気管支拡張剤として作用する（ズー・デー、Ａｍ．Ｊ．Ｒｅｓｐ．Ｃｅｌｌ  Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．１９：１２１−１２８、１９９８；ヤコブズ・イー・アール、Ａｍ．Ｊ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．１９９９、印刷中）。
【０００３】
血管緊張、腎機能、および気道抵抗の調節における２０−ＨＥＴＥの重要性にも関わらず、その作用メカニズムはほとんど知られていない。近年の研究により、２０−ＨＥＴＥに対する血管収縮神経応答およびそのナトリウム輸送に対する阻害作用は、ＰＫＣおよびＭＡＰキナーゼシグナル伝達カスケードの活性化に関連していることが示された（サン・シー・‐ダブリュー、Ｈｙｐｅｒｔｅｎｓｉｏｎ  ３３：４１４−４１８、１９９９）。これらの経路の活性化は、通常、受容体媒介事象により引き起こされるが、現在、２０−ＨＥＴＥ受容体の証拠は全くない。現在までに、２０−ＨＥＴＥが膜かサイトゾルタンパク質に結合するのかどうかを決定する、または、血管収縮神経応答が２０−ＨＥＴＥに特異的であるのか、それとも非常に近い関連した類似体により模倣できるかどうかを決定する研究は全く発表されていない。
【０００４】
（発明の簡単な要約）
本発明は、ラット腎から顕微解剖した小葉間動脈における血管収縮神経応答の構造決定基を決定するために、一連の２０−ＨＥＴＥ類似体を用いた構造活性研究を実施するために設計された研究を起源とする。
【０００５】
１つの実施形態において、本発明は、患者に有効量の２０−ＨＥＴＥアゴニストまたはアンタゴニストを供給する段階を含む、患者の血管直径を減少させるか、または２０−ＨＥＴＥが血管直径を減少させるのを防ぐ方法。
【０００６】
好ましくは、該化合物は、以下の式で示される：
【０００７】
【化２】
0003921583.tif 000002
【０００８】
Ｒ１は、カルボン酸；フェノール；アミド；イミド；スルホンアミド；スルホンイミド；活性メチレン；１，３−ジカルボニル；アルコール；チオール；アミン；テトラゾールまたは他のヘテロアリールからなる群から選択される。
【０００９】
Ｒ２は、カルボン酸；フェノール；アミド；イミド；スルホンアミド；スルホンイミド；活性メチレン；１，３−ジカルボニル；アルコール；チオール；アミン；テトラゾールまたは他のヘテロアリールからなる群から選択される。
【００１０】
Ｗは、炭素鎖（Ｃ１〜Ｃ２５）であり、直鎖、環式、または枝分れ鎖であってよく、Ｓ、Ｏ、ＮまたはＳｅなどのヘテロ原子を含んでよい。
【００１１】
Ｙは、炭素鎖（Ｃ１〜Ｃ２５）であり、直鎖、環式、または枝分れ鎖であってよく、Ｓ、Ｏ、ＮまたはＳｅなどのヘテロ原子を含んでよい。
【００１２】
ｓｐ＜３中心は、ビニル；アリール；ヘテロアリール；シクロプロピル；およびアセチレン部分からなる群から選択される。
【００１３】
Ｘは、ヘテロ原子を有するまたは有さないアルキル（直鎖、枝分れ鎖、環式または多環式）基；またはビニル；アリール；ヘテロアリール；シクロプロピル；またはアセチレン基である。
【００１４】
ｍ＝０、１、２、３、４または５であり、ｎ＝０、１、２、３、４、または５である。
【００１５】
該方法の好ましい実施形態において、該化合物はアゴニストであり、血管直径が減少するか、または細気管支平滑筋が拡張する。この実施形態において、該化合物は２０−ＨＥＴＥアゴニストである。好ましくは、該アゴニスト化合物は、２１−ヒドロキシヘンエイコサ−５（Ｚ），８（Ｚ），１１（Ｚ），１４（Ｚ）−テトラエン酸；２０−ヒドロキシエイコサ−５（Ｚ），１４（Ｚ）−ジエン酸；およびジメチル２０−ＨＥＴＥからなる群から選択される。
【００１６】
該方法の別の実施形態において、該化合物は２０−ＨＥＴＥアンタゴニストであり、血管直径は内因性２０−ＨＥＴＥによる減少から防がれる。好ましくは、該化合物は、５（Ｓ）−ＨＥＴＥ；１５（Ｓ）−ＨＥＴＥ；１９（Ｓ）−ＨＥＴＥ；１９−ヒドロキシノナデカ−５（Ｚ），８（Ｚ），１１（Ｚ），１４（Ｚ）−テトラエン酸（Ｃ１９類似体）；および２０−ヒドロキシエイコサ６（Ｚ），１５（Ｚ）−ジエン酸（Ｐｓ逆２０−ＨＥＴＥ）からなる群から選択される。
【００１７】
別の実施形態において、本発明は、有効量の２０−ＨＥＴＥアゴニストまたはアンタゴニストを供給する段階を含む、患者の治療法である。
【００１８】
別の実施形態において、該患者は、糖尿病、妊娠中毒症（子癇前症）、肝腎症候群、シクロスポリン誘導腎毒性、脳血管痙攣、卒中、および高血圧症の群から選択された疾患を有し、該患者の過度の内因産生２０−ＨＥＴＥの血管収縮神経作用は、２０−ＨＥＴＥアンタゴニストで処置すると緩和される。
【００１９】
別の実施形態において、該患者は、敗血症ショックまたは一酸化窒素シンターゼの誘導に関連した他の炎症性疾患を有し、症状を軽減させるに十分な量の２０−ＨＥＴＥアンタゴニストで処置する。
【００２０】
別の実施形態において、患者を、顆粒または新生物組織の血管新生を防ぐために、２０−ＨＥＴＥアンタゴニストで処置する。この処置により、血液供給は減少し、腫瘍の成長は防がれる。
【００２１】
別の実施形態において、該患者は、鬱血性心不全、肺水腫、肝腎症候群および高血圧症の群から選択された状態を有し、患者を、利尿効果が得られ、血液量を減少させ、水腫を防ぐに十分な量の２０−ＨＥＴＥアゴニストで処置する。
【００２２】
別の実施形態において、該患者は喘息を有し、２０−ＨＥＴＥアゴニストは、収縮した気道を拡張させるために、吸入療法として送達される。
【００２３】
別の実施形態において、該患者は肺性高血圧症を有してよく、２０−ＨＥＴＥまたは２０−ＨＥＴＥアゴニストを、肺循環を拡張させるために注入する。
【００２４】
別の実施形態において、患者は、脳血管損傷、血管痙攣、片頭痛または群発性頭痛、卒中またはコカイン誘導血管痙攣を有してよく、患者を、血流を増加させ症状を軽減させるために２０−ＨＥＴＥアンタゴニストで処置する。
【００２５】
本発明はまた、２０−ＨＥＴＥアゴニストおよびアンタゴニストの群から選択される化合物および薬学的に許容される担体を含む、薬学的製剤である。該製剤は、好ましくは、１９−ヒドロキシノナデカ−５（Ｚ），８（Ｚ），１１（Ｚ），１４（Ｚ）−テトラエン酸、２０−ヒドロキシエイコサ  ６（Ｚ），１５（Ｚ）−ジエン酸、２０ヒドロキシエイコサ−５（Ｚ），１４（Ｚ）−ジエン酸、ジメチル  ２０−ＨＥＴＥ  ２１−ヒドロキシヘンエイコサ−５（Ｚ），８（Ｚ），１１（Ｚ），１４（Ｚ）−テトラエン酸、Ｎ−メチルスルホニル−２０−ヒドロキシエイコサ−５（Ｚ），１４（Ｚ）−ジエンアミド、またはＮ−メチルスルホニル−２０−ヒドロキシエイコサ−６（Ｚ），１５（Ｚ）−ジエンアミドおよび薬学的に許容される担体からなる群から選択される。
【００２６】
本発明の特徴は、２０−ＨＥＴＥアゴニストおよびアンタゴニストが提供されることである。２０−ＨＥＴＥアゴニストおよびアンタゴニストを記載した一般式もまた提供される。
【００２７】
本発明の別の特徴は、２０−ＨＥＴＥアゴニストおよびアンタゴニストの治療使用が記載されることである。
【００２８】
本発明の他の特徴、目的および利点は、明細書、特許請求の範囲および図面の検討後に明らかになろう。
【００２９】
（発明の詳細な説明）
１つの実施形態において、本発明は、患者に有効量の２０−ＨＥＴＥアンタゴニストまたはアゴニストを供給する段階を含む、患者の血管直径を減少させるか、または２０−ＨＥＴＥが血管直径を減少させるのを防ぐ方法である。
【００３０】
本発明の好ましい実施形態において、該化合物は以下の式で示される：
【００３１】
【化３】
0003921583.tif 000003
【００３２】
Ｒ１は、好ましくは、カルボン酸；フェノール；アミド；イミド；スルホンアミド；スルホンイミド；活性メチレン；１，３−ジカルボニル；アルコール；チオール；アミン；テトラゾールおよび他のヘテロアリール基からなる群から選択される。
【００３３】
Ｒ２は、好ましくは、カルボン酸；フェノール；アミド；イミド；スルホンアミド；スルホンイミド；活性メチレン；１，３−ジカルボニル；アルコール；チオール；アミン；テトラゾールおよび他のヘテロアリールからなる群から選択される。
【００３４】
Ｗは、炭素鎖（好ましくはＣ１〜Ｃ２５）であり、直鎖、環式、または枝分れ鎖であってよい。Ｗは、Ｓ、Ｏ、ＮおよびＳｅなどのヘテロ原子を含み得るか、またはアリールまたはヘテロアリール部分を含み得る。
【００３５】
Ｙは、炭素鎖（好ましくはＣ１〜Ｃ２５）であり、直鎖、環式、または枝分れ鎖であってよい。Ｙは、Ｓ、Ｏ、ＮまたはＳｅなどのヘテロ原子を含んでよく、アリールまたはへテロアリール部分を含み得る。
【００３６】
ｓｐ＜３中心は、好ましくは、ビニル；アリール；ヘテロアリール；シクロプロピル；およびアセチレン基から選択される。
【００３７】
Ｘは、アルキル（および直鎖、枝分れ鎖、または環式であってよい）、多環式；ビニル；アリール；ヘテロアリール；シクロプロピル；またはアセチレン部分であり、ヘテロ原子を含み得る。
【００３８】
ｍは、０、１、２、３、４または５であり、およびｎは、０、１、２、３、４、または５である。
【００３９】
全ての我々の具体的な例において、最初の炭素はカルボキシル基であった。しかし、これは、我々の一般的な構造で詳述したように、別の型のイオン化可能な基で置換できる（図６Ａ）。該化合物は、一対の二重結合、および鎖の２０〜２１炭素上にヒドロキシル基があれば、アゴニストであった。（イオン化可能な基Ｃ１と、Ｃ２０またはＣ２１上の反応基の間の全距離は、２０〜２１炭素長の炭素鎖の距離に等しいが、鎖は、Ｏ、ＳまたはＮなどの他の原子を含み得る。）この位置にヒドロキシル基がなければアンタゴニストであった。
【００４０】
これらの構造活性研究から、我々は、図６Ａに示した２０−ＨＥＴＥ作用のアゴニストおよびアンタゴニストの構造についての一般的なスキームを提唱する。アゴニストおよびアンタゴニストは両方共、推定上の受容体とのアンカー点として貢献する、カルボキシルまたは他のイオン化可能な基を、分子の一端に必要とする。それらはまた、アクセプター部位で分子を安定化させるためにπ結合を形成できる、Ｃ１から１４〜１５炭素に等しい距離にある二重結合または他の官能基（カルボキシルまたはイオン化可能な基）を必要とする。アゴニストはまた、受容体と相互作用する、ヒドロキシル、または、水素結合可能な他のイオン化可能なすなわち官能基を、炭素１上のイオン化可能な基から２０または２１炭素に等価な距離に有する。アンタゴニストは類似した構造を有するが、２０〜２１炭素上に反応基がない。
【００４１】
さらに、我々の原型例により、鎖の１９炭素上に位置するヒドロキシルまたは他の官能基は、アンタゴニスト活性を増強させることが示される。
【００４２】
下記の実施例は、ラット腎から顕微解剖した小葉間動脈における血管収縮神経応答の構造決定基を調べるために、我々が合成し試験した様々な類似体化合物を特徴づけている。これらの研究から、我々はまた、２０−ＨＥＴＥに対する特異的なアゴニストおよびアンタゴニストを発見した。
【００４３】
１つの実施形態において、本発明は、該化合物が、２０−ＨＥＴＥのアゴニストまたはアンタゴニストのいずれかである、上記の式の様々な化合物の使用法である。
【００４４】
１つの実施形態において、該化合物はアゴニストであり、血管直径は減少する。好ましくは、該化合物は、二重結合から５〜６炭素にヒドロキシル基を有し、２１−ＨＥＴＥ、ｐｓ２０−ＨＥＴＥおよびジメチル２０−ＨＥＴＥからなる群から選択される。
【００４５】
別の実施形態において、該化合物は、２０−ＨＥＴＥアンタゴニストであり、血管直径は、２０−ＨＥＴＥによる減少から防がれる。好ましくは、該化合物は、二重結合から５〜６炭素に位置しないＯＨ基を有し、５（Ｓ）−ＨＥＴＥ、１５（Ｓ）−ＨＥＴＥ、１９（Ｓ）−ＨＥＴＥ、１９−ヒドロキシノナデカ−５（Ｚ），８（Ｚ），１１（Ｚ），１４（Ｚ）−テトラエン酸および２０−ヒドロキシエイコサ  ６（Ｚ），１５（Ｚ）−ジエン酸からなる群から選択される。
【００４６】
本発明の化合物は、例において下記した化合物合成の記載と類似して作製できる。
【００４７】
下記の例を参照として、化合物が２０−ＨＥＴＥアゴニストであるか、あるいはアンタゴニストであるかを最も容易に決定し得る。化合物が患者の血管直径を減少させる場合、該化合物は２０−ＨＥＴＥアゴニストである。
【００４８】
「患者の血管直径を減少させる」により、出願人は、方法において下記した減少を意味する。出願人は、血管をガラスマイクロピペット上にのせ、様々な試験化合物に曝露させる、単離血管の試験系を記載した。我々は、少なくとも２０％の血管直径の減少が、化合物が２０−ＨＥＴＥアゴニストであることを示すものと信じる。
【００４９】
我々はまた、２０−ＨＥＴＥアンタゴニスト活性試験を以下に開示する。この分析において、試験化合物は、試験化合物の添加前および後に作成した２０−ＨＥＴＥに対する累積用量応答曲線により分析した。５−ＨＥＴＥまたは１５−ＨＥＴＥなどの、あるアンタゴニストの添加により、２０−ＨＥＴＥに対する血管収縮神経応答は遮断された。我々は、適切なアンタゴニストは、同じように血管収縮神経応答を遮断すると考える。
【００５０】
我々は、２０−ＨＥＴＥのアゴニストおよびアンタゴニストを、インビボ（iｎ  ｖｉｖｏ）でヒト患者の治療的に使用することを提唱する。インビトロで単離血管の直径を減少させる薬物は、インビボでも作用することは当分野では公知である。ゾウ・エー・ピー（Ｚｏｕ, Ａ.Ｐ.）、Ａｍ．Ｊ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．２７０：Ｒ２２６−Ｒ２３７、１９９６；ゾウ・エー・ピー、Ａｍ．Ｊ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．２６６：Ｆ２７５−Ｆ２８２、１９９４；ハーダー・デー・アール、上記、１９９７；アロンソ−ガリシア・エム（Ａｌｏｎｓｏ−Ｇａｌｉｃｉａ，Ｍ.）、Ｈｙｐｅｒｔｅｎｓｉｏｎ  ２９：３２０−３２５、１９９７。）
別の実施形態において、本発明は、ある治療的適用における、２０−ＨＥＴＥアゴニストおよびアンタゴニストの使用である。好ましくは、２０−ＨＥＴＥアンタゴニストおよびアゴニストは、上記した式で示される。
【００５１】
我々は、２０−ＨＥＴＥアンタゴニストは、例において下記したように、患者の２０−ＨＥＴＥの内因産生の増加を緩和するために使用され得ると考える。この調節は、冠動脈疾患、糖尿病、妊娠中毒症（子癇前症）、肝腎症候群、シクロスポリン誘導腎毒性、脳血管痙攣、卒中、または高血圧症を有する患者に有用であり得る。
【００５２】
我々はまた、２０−ＨＥＴＥアンタゴニストは、例において下記したように、敗血症ショックまたは一酸化窒素合成誘導に関連した他の炎症性疾患を有する患者の処置に有用であり得ると考える。
【００５３】
別の実施形態において、我々は、２０−ＨＥＴＥアンタゴニストは、新生物組織顆粒の血管新生を防ぎ得、例において下記したように癌の処置に有用であり得ると考える。
【００５４】
我々はまた、２０−ＨＥＴＥアゴニストは、例において下記したある治療的使用を有すると考える。１つの実施形態において、アゴニストは、利尿効果を提供し得、鬱血性心不全、肺水腫、肝腎症候群および高血圧症の患者に有用であり得る。
【００５５】
別の実施形態において、２０−ＨＥＴＥアゴニストは、喘息患者に有用であり得る。好ましくは、該化合物は、例において下記したように吸入療法として送達される。
【００５６】
別の実施形態において、患者は、肺性高血圧症を有してよく、２０−ＨＥＴＥまたは２０−ＨＥＴＥアゴニストを、肺循環を拡張させるために注入する。
【００５７】
別の実施形態において、患者は、脳血管損傷、血管痙攣、片頭痛または群発性頭痛、卒中またはコカイン誘導血管痙攣を有し得、血流を増加させ症状を軽減させるために２０−ＨＥＴＥアンタゴニストで処置する。
【００５８】
別の実施形態において、本発明は、以下の化合物の１つおよび薬学的に許容される担体を含む薬学的製剤である：
２０−ヒドロキシエイコサン酸Ｓ（２０−ＨＥＴＥ）、
１９−ヒドロキシノナデカン酸（ｓＣ１９類似体）、
１９Ｓ−ＨＥＴＥ、
２０，２０  ジメチル−２０−ＨＥＴＥ、
２０−ヒドロキシエイコサ−５（Ｚ），１４（Ｚ）−ジエン酸（ｐｓ  ２０−ＨＥＴＥ）、
２０−ヒドロキシエイコサ  ６（Ｚ），１５（Ｚ）−ジエン酸（ｐｓ逆２０−ＨＥＴＥ）、
１９−ヒドロキシ−ノナデカ−５（Ｚ），８（Ｚ），１１（Ｚ），１４（Ｚ）−テトラエン酸（Ｃ１９類似体）、
２１−ヒドロキシヘンエイコサ−５（Ｚ），８（Ｚ），１１（Ｚ），１４（Ｚ）−テトラエン酸（２１−ＨＥＴＥ）、
Ｎ−メチルスルホニル−２０−ヒドロキシエイコサ−５（Ｚ），１４（Ｚ）−ジエンアミド、および
Ｎ−メチルスルホニル−２０−ヒドロキシエイコサ−６（Ｚ），１５（Ｚ）−ジエン酸。
【００５９】
例
総論
近年の研究により、アラキドン酸（ＡＡ）は、主に、腎臓および末梢血管系において、Ｐ４５０４Ａ依存性経路により、２０−ヒドロキシエイコサテトラエン酸（２０−ＨＥＴＥ）に代謝されること、および、２０−ＨＥＴＥは、腎臓および末梢血管緊張の調節、腎機能および動脈圧の長期制御における重要な二次メッセンジャーとして貢献することが示された。これに関し、２０−ＨＥＴＥは、血管平滑筋細胞におけるＣａ＋＋−活性化Ｋ＋チャネルの開口を阻止する強力な血管収縮剤である。それは、ＫＣａチャネルの遮断に続きＶＳＭ細胞を脱分極させることにより、およびＬ型Ｃａ２＋チャネルのコンダクタンスを増加させることにより、Ｃａ２＋侵入を促進する（ハーダー・デー・アール、上記、１９９７；ローマン・アール・ジェイ（Ｒｏｍａｎ，Ｒ.Ｊ.）、上記、１９９９）。２０−ＨＥＴＥ形成阻害剤は、経壁圧上昇に対する、腎、脳および末梢細動脈の筋原性応答およびインビボでの腎および脳血流の自己調節を遮断する（ハーダー・デー・アール等、上記、１９９７；ゾウ・エー等、上記、１９９６；ゾウ・エー・ピー等、上記、１９９４）。それらはまた、血管収縮神経応答エンドセリン、ＡＩＩおよびＮＯシンターゼ阻害剤（オエカン・エー・オー（Ｏｙｅｋａｎ，Ａ.Ｏ.）、Ａｍ．Ｊ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．２７４：Ｒ５２−Ｒ６１、１９９８；サン・デー・‐ダブリュー等、Ｃｉｒｃ．Ｒｅｓ．８３：１０６９−１０７９、１９９８）、組織ＰＯ２の上昇に対する血管収縮神経応答、（ハーダー・デー・アール、Ｃｉｒｃ．Ｒｅｓ．７９：５４−６１、１９９６；ロンバード・ジェイ・エイチ（Ｌｏｍｂａｒｄ，Ｊ.Ｈ.）、Ａｍ．Ｊ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．２７６：Ｈ５０３−Ｈ５０７、１９９９）、血管平滑筋および腎メサンギウム細胞における成長因子の分裂促進作用（リン（Ｌｉｎ）等、Ａｍ．Ｊ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．２６９：Ｆ８０６−Ｆ８１６、１９９５；ウディン（Ｕｄｄｉｎ）等、Ｈｙｐｅｒｔｅｎｓｉｏｎ  ３１：２４２−２４７、１９９８）、および自然発症高血圧症ラットおよび他の高血圧症実験モデルにおける高血圧症の発達（ローマン等、Ａｍ．Ｊ．Ｈｙｐｅｒｔｅｎｓｉｏｎ  １０：６３８−６７８、１９９７）を減弱させる。
【００６０】
腎臓において、２０−ＨＥＴＥはまた、腎尿細管細胞により産生され、ここで、それは、近位尿細管および厚いヘンレ係蹄上行脚においてナトリウム輸送の調節に関与している。（ローマン・アール・エス、上記、１９９９）。２０−ＨＥＴＥはまた、ヒトおよびウサギの肺の気道により産生され、ここで、それは、強力な内因産生気管支拡張剤として貢献する（ズー等、上記、１９９８；ヤコブズ等、上記、１９９９）。
【００６１】
腎機能、血管緊張、および気道抵抗の調節における２０−ＨＥＴＥの重要性にも関わらず、その作用メカニズムはほとんど知られていない。近年の研究により、２０−ＨＥＴＥの分裂促進作用および血管緊張およびナトリウム輸送に対するその効果が、ＰＫＣおよびＭＡＰキナーゼシグナル伝達カスケードの活性化と関連していることが示された。（サン・シー・‐ダブリュー等、上記、１９９９）。これらの経路の活性化は、通常、受容体媒介事象により引き起こされる。しかし、現在、２０−ＨＥＴＥ受容体の証拠は以前に全く発表されていない。２０−ＨＥＴＥが、膜タンパク質に結合するか、または、２０−ＨＥＴＥの血管収縮神経特性は、他の類似体により模倣できるかどうかを決定する研究は以前に全くなかった。
【００６２】
従って、本研究の目的は、ラット腎から顕微解剖した小葉間動脈における血管収縮神経応答の構造決定基を調べるために、一連の合成２０−ＨＥＴＥ類似体を用いて構造活性研究を実施することであった。
【００６３】
方法
総論
実験は、ハーラン  スプラーギュ−ダウレー（Ｓｐｒａｇｕｅ−Ｄａｗｌｅｙ）研究所（インディアナポリス、インディアナ）から購入した１０〜１２週令の老雄スプラーギュ−ダウレーラットで実施した。ラットは、ウィスコンシン医科大学の動物ケア施設で飼い、これは、米国実験動物ケア認定協会により承認されている。動物が自由に食物および水に近づけるようにした。動物を含む全プロトコルが、ウィスコンシン医科大学の動物ケア委員会による承認を受けた。
【００６４】
単離血管の研究
小葉間細動脈（内径７０〜１２０μｍ）を、ラット腎から顕微解剖した。血管を、９５％Ｏ２−５％ＣＯ２ガス混合物で平衡化し３７℃に維持した生理学的食塩水を含む灌流チャンバー中のガラスマイクロピペット上にのせた。血管を、ピペットに固定し、側枝を、１０〜０の絹の縫合糸で縛った。流入ピペットを、腔内の灌流圧を制御する加圧貯蔵所に接続し、これを、トランスデューサーを使用して監視したコーベ（Ｃｏｂｅ）、レークウッド（Ｌａｋｅｗｏｏｄ）、コロラド）。血管は、顕微解剖の前に測定したインビボの長さに伸ばした。流出カニューレをはずし、腔内圧を、実験中９０ｍｍＨｇに維持した。血管直径は、立体顕微鏡（カール  ツアイス（Ｃａｒｌ  Ｚｅｉｓｓ），Ｉｎｃ．、ドイツ）、ＣＣＴＶテレビカメラ（ＫＰ−１３０ＡＵ、日立、日本）、ビデオカセットレコーダー（ＡＧ−７３００、パナソニック、日本）、テレビモニタ（ＣＶＭ−１２７１、ソニー、日本）およびビデオ測定システム（ＶＩＡ−１００、ボッケラー  インストゥルメント（Ｂｏｅｃｋｅｌｅｒ  Ｉｎｓｔｒｕｍｅｎｔ）  Ｃｏ．、トゥーソン（Ｔｕｃｓｏｎ）、アリゾナ）からなるビデオシステムで測定した。
【００６５】
灌流液および浴の組成物は、（ｍＭ単位で）１１９ＮａＣｌ、４．７ＫＣｌ、１．１７ＭｇＳＯ４、１．６ＣａＣｌ２、１２ＮａＨＣＯ３、１．１８ＮａＨ２ＰＯ４、０．０３ＥＤＴＡおよび１０グルコース、ｐＨ７．４であった。インドメタシン（５μＭ）、バイカレイン（ｂａｉｃａｌｅｉｎ）（０．５μＭ）および１７−ＯＤＹＡ（１μＭ）を、浴に加え、シクロオキシゲナーゼ、リポキシゲナーゼおよびシトクロムＰ４５０経路を介した、エイコサノイドの内因性形成および代謝を遮断した。平衡期間後、累積用量応答曲線を、各２０−ＨＥＴＥ類似体について作成した。
【００６６】
２０−ＨＥＴＥへの血管収縮神経応答に対する、ヒドロキシル基の位置の効果
これらの実験は、単離加圧ラット腎小葉間動脈の直径に対する、５（Ｓ）−、８（Ｓ）−、１２（Ｓ）−、１５（Ｓ）−、および１９（Ｓ）−ＨＥＴＥの増加濃度の効果を調べた。これら全ての類似体が、２０−ＨＥＴＥと同数の炭素、二重結合および分子量を有する（図１）。これらの化合物と２０−ＨＥＴＥの間の主な違いは、炭素鎖に沿ったＯＨ基の位置である。追加の実験を、アラキドン酸および２０−カルボキシアラキドン酸、これは、２０−ＨＥＴＥとは構造的に類似しているが、２０番目の炭素上にヒドロキシル基を欠失しており、および保存された１番目および２０番目の炭素上のカルボキシ−およびヒドロキシ−部分を有する２０−ヒドロキシエイコサ−６，１５−ジエン酸（逆２０−ＨＥＴＥ）を用いて実施した。累積用量応答曲線は、インドメタシン、バイカレイン、および１７−ＯＤＹＡの存在下で、各化合物（１０−８〜１０−６Ｍ）について作成した。血管直径は、浴に化合物を添加した２〜３分後に記録した。
【００６７】
２０−ＨＥＴＥへの血管収縮神経応答に対する二重結合および炭素鎖長の効果
我々は、次に、２０−ＨＥＴＥへの血管収縮神経応答に対する、二重結合および炭素鎖長の重要性を調べた。これらの研究において、２０−ＨＥＴＥ分子の二重結合を除去して、部分的および飽和２０−ＨＥＴＥ誘導体（２０−ヒドロキシエイコサ−６（Ｚ），１５（Ｚ）ジエン酸；２０−ヒドロキシエイコサン酸、図１）を作製した。２０−ＨＥＴＥはまた、１個の炭素分を短くして、１９−炭素類似体（１９−ヒドロキシノナデカ−５（Ｚ），８（Ｚ），１１（Ｚ），１４（Ｚ）−テトラエン酸、図１）を作製し、また、二重結合を除去し、飽和１９−炭素類似体（１９ヒドロキシノナデカン酸、図１）を作製した。さらに、１個の炭素を２０−ＨＥＴＥ分子に加え、２１−炭素類似体（２１−ヒドロキシヘンエイコサ−５（Ｚ），８（Ｚ），１１（Ｚ），１４（Ｚ）−テトラエン酸、図１）を作製し、最後に２０番目の炭素上の水素原子を、メチル基で置換した（２０，２０−ジメチル−２０−ＨＥＴＥ）。平衡化期間後、これらの類似体に対する累積用量応答曲線（１０−８〜１０−６Ｍ）を、インドメタシン、バイカレイン、および１７−ＯＤＹＡの存在下で作成した。血管直径を、これらの化合物を浴に添加した２〜３分後に記録した。
【００６８】
２０−ＨＥＴＥアンタゴニスト活性
２０−ＨＥＴＥの不活性類似体を、さらに、アンタゴニスト活性について試験した。これらの実験において、２０−ＨＥＴＥに対する累積用量応答曲線（１０−８〜１０−６Ｍ）を、５（Ｓ）−ＨＥＴＥ（０．５μＭ）、８（Ｓ）−ＨＥＴＥ（１μＭ）、１２（Ｓ）−ＨＥＴＥ（０．５μＭ）、１５（Ｓ）−ＨＥＴＥ（１μＭ）、１９（Ｓ）―ＨＥＴＥ（１μＭ）、Ｃ１９−類似体（１μＭ）、アラキドン酸（１μＭ）、２０−カルボキシ−アラキドン酸（１μＭ）、逆２０−ＨＥＴＥ（１μＭ）、飽和２０−ＨＥＴＥ（１μＭ）、および飽和Ｃ１９−類似体（１μＭ）を浴に添加する前および後に作成した。血管直径を、各用量の２０−ＨＥＴＥを浴に添加した２〜３分後に記録した。
【００６９】
薬物および化学物質
全ての化学物質は、分析グレードであった。インドメタシンは、シグマケミカルズ（Ｓｉｇｍａ  Ｃｈｅｍｉｃａｌｓ）（セントルイス、ミズーリ）から得た。５（Ｓ）−、８（Ｓ）−、１２（Ｓ）、１５（Ｓ）、および１９（Ｓ）−ＨＥＴＥ、バイカレインおよび１７−ＯＤＹＡは、バイオモル  コーポレーション（Ｂｉｏｍｏｌ  Ｃｏｒｐ．）（プリモウス  ミーティング）（Ｐｌｙｍｏｕｔｈ  Ｍｅｅｔｉｎｇ）、ペンシルヴェニア）から購入した。２０−ＨＥＴＥ、逆２０−ＨＥＴＥ、１９−炭素類似体、ジメチル２０−ＨＥＴＥ、２１−ＨＥＴＥ、２０−カルボキシアラキドン酸、および飽和および部分飽和Ｃ１９および２０−ＨＥＴＥ類似体は、全て下記のように合成した。
【００７０】
２０−ＨＥＴＥおよび類似体の化学合成
以下の製剤は、図１、８Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ、ＥおよびＦに関する。
【００７１】
２０−ＨＥＴＥ（９ｂ）の調製：激しく撹拌している、−４０℃のメチル  １４，１５−ジヒドロキシエイコサトリエノエート（１）（７００ｍｇ、１．９８ｍｍｏｌ）の無水ＣＨ２Ｃｌ２（３０ｍＬ）溶液に、Ｐｂ（ＯＡｃ）４（８９０ｍｇ、２．００ｍｍｏｌ）を２分間かけて滴下して加えた（スキーム１；図８Ａ）。３０分後、反応混合物を、シリカゲルのパッドを通して、無機塩を除去した。フィルターケーク（ｆｉｌｔｅｒ  ｃａｋｅ）をＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：１、３０ｍＬ）で洗浄し、合わせた濾液を真空で蒸発させると、アルデヒド２（４３５ｍｇ、８７％）が不安定な無色油状物として得られ、これは次の段階に直ちに使用した。１Ｈ  ＮＭＲ（２５０ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：δ１．６０−１．７８（ｍ、２Ｈ）、２．００−２．１５（ｍ、２Ｈ）、２．３０（ｔ、Ｊ〜７．４Ｈｚ、２Ｈ）、２．７０−２．８５（ｍ、４Ｈ）、３．１８−３．２８（ｍ、２Ｈ）、３．６５（ｓ、３Ｈ）、５．２８−５．７５（ｍ、６Ｈ）、９．６５（ｔ、Ｊ〜１．８Ｈｚ、１Ｈ）；ＴＬＣ：ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：１）、Ｒｆ〜０．５。
【００７２】
水素化ホウ素ナトリウム（１３９ｍｇ、３．６５ｍｍｏｌ）を、粗２（４３５ｍｇ、１．７６ｍｍｏｌ）のＭｅＯＨ／ＣＨ２Ｃｌ２（１：２、１０ｍＬ）撹拌溶液に滴下して加えた。４５分後、混合物を減圧下で濃縮し、残渣を、ＳｉＯ２  カラムクロマトグラフィーにより、ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（２：３）を使用して精製すると、アルコール３（３５０ｍｇ、８０％）が無色油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（２５０ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：δ１．６０−１．７５（ｍ、２Ｈ）、２．０４−２．１５（ｍ、２Ｈ）、２．２５−２．３８（ｍ、４Ｈ）、２．７２−２．８５（ｍ、４Ｈ）、３．６５（ｔ、Ｊ〜７．２Ｈｚ、２Ｈ）、３．６８（ｓ、３Ｈ）、５．２８−５．６０（ｍ、６Ｈ）；ＴＬＣ：ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：１）、Ｒｆ〜０．３９。
【００７３】
トリフェニルホスフィン（４９５ｍｇ、１．８９ｍｍｏｌ）を、撹拌している０℃の３（３４０ｍｇ、１．３５ｍｍｏｌ）および四臭化炭素（５８５ｍｇ、１．７５ｍｍｏｌ）の乾燥ＣＨ２Ｃｌ２（１５ｍＬ）溶液に滴下して加えた。４０分後、溶媒を真空で除去し、残渣を、ＳｉＯ２カラムクロマトグラフィーにより、溶出液としてＣＨ２Ｃｌ２を使用して精製すると、ブロミド４（３７５ｍｇ、８８％）が流動性無色油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（２５０ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：δ１．６４−１．７５（ｍ、２Ｈ）、２．０４−２．１５（ｍ、２Ｈ）、２．２５−２．３６（ｍ、２Ｈ）、２．６０−２．７０（ｍ、２Ｈ）、２．７５−２．８４（ｍ、４Ｈ）、３．３８（ｔ、Ｊ〜７．２Ｈｚ、２Ｈ）、３．６５（ｓ、３Ｈ）、５．３０−５．６０（ｍ、６Ｈ）；ＴＬＣ：ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：１）、Ｒｆ〜０．６１。
【００７４】
ＬｉＯＨ水溶液（２ｍＬの１Ｍ溶液）を０℃の４（３７５ｍｇ、１．１９ｍｍｏｌ）のテトラヒドロフラン（ＴＨＦ）／Ｈ２Ｏ（５：１、２０ｍＬ）溶液に滴下して加えた。周囲温度で１２時間撹拌した後、ｐＨを、１Ｍシュウ酸水溶液を使用して４．５に調整し、ＴＨＦを減圧下で蒸発させた。残渣をＨ２Ｏ（１５ｍＬ）で希釈し、ＥｔＯＡｃ（３×１０ｍＬ）で抽出した。合わせた有機抽出物を、Ｈ２Ｏ（１５ｍＬ）で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、蒸発させると、ブロモ酸５（３１８ｍｇ、８９％）が無色油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（２５０ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：δ１．６３−１．７６（ｍ、２Ｈ）、２．０８−２．１６（ｍ、２Ｈ）、２．４０（ｔ、Ｊ〜７．１Ｈｚ、２Ｈ）、２．６０−２．７０（ｍ、２Ｈ）、２．７５−２．８６（ｍ、４Ｈ）、３．４０（ｔ、Ｊ〜７．２Ｈｚ、２Ｈ）、５．３０−５．５５（ｍ、６Ｈ）；ＴＬＣ：ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（３：１）、Ｒｆ〜０．３４。
【００７５】
トリフェニルホスフィン（５２４ｍｇ、２ｍｍｏｌ、３．５当量）とブロモ酸５（３０５ｍｇ、１ｍｍｏｌ）の混合物の乾燥ＣＨ３ＣＮ（６ｍＬ）溶液を、封管中８５℃で６０時間加熱した。溶媒蒸発およびＭｅＯＨ／ＣＨ２Ｃｌ２（５：９５）を使用したＳｉＯ２クロマトグラフィー精製により、ホスホニウム塩６（５３０ｍｇ、９２％）が粘性の吸湿性油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（２５０ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：δ１．５５−１．７０（ｍ、２Ｈ）、１．９６−２．１０（ｍ、２Ｈ）、２．４０（ｔ、Ｊ〜７．１Ｈｚ、２Ｈ）、２．４２−２．６０（ｍ、２Ｈ）、２．６２−２．７０（ｍ、４Ｈ）、３．７５−３．８８（ｍ、２Ｈ）、５．２０−５．５０（ｍ、６Ｈ）、７．６５−７．８０（ｍ、１５Ｈ）；ＴＬＣ：ＭｅＯＨ／ＣＨ２Ｃｌ２（１：７）、Ｒｆ〜０．２１。
【００７６】
リチウムビス（トリメチルシリル）アミド（０．３２ｍＬの１Ｍ  ＴＨＦ溶液）を、６（９０ｍｇ、０．１６ｍｍｏｌ）のＴＨＦ／ヘキサメチルホスホルアミド（ＨＭＰＡ）（４：１、２．５ｍＬ）の−７８℃溶液に滴下して加えた。混合物は次第にイリドに特徴的な濃黄色の呈色を発達させた。反応混合物を、−４０℃で１時間保ち、−７８℃に再度冷却し、アルデヒド１２ｂ（３０ｍｇ、０．１３３ｍｍｏｌ）の無水ＴＨＦ（１ｍＬ）溶液を滴下して加えた。さらに１．５時間後、反応物を、５０％ＮＨ４ＯＡｃ水溶液でクエンチし、ＥｔＯＡｃ（３×１０ｍＬ）で抽出し、合わせた有機抽出物を、Ｈ２Ｏ（２×５ｍＬ）、食塩水（５ｍＬ）で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、溶媒を真空で蒸発させた。残渣を、ＭｅＯＨ／Ｅｔ２Ｏ（１：５、４ｍＬ）に再度溶解し、過剰のエーテル性のジアゾメタンを用いて０℃で０．５時間処理した。全ての揮発性物質の除去、およびＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：１０）を使用して得られた油状物をＳｉＯ２クロマトグラフィー精製することにより、シリル−エステル７ｂおよびΔ１４，１５−トランス−７ｂ（８：１、７３％）の混合物が得られ、これは、より簡便には次の段階後に分割した。７ｂ／Δ１４，１５−トランス−７ｂの混合物の１Ｈ  ＮＭＲ（２５０ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：δ０．８４（ｓ、９Ｈ）、１．２０−１．７５（ｍ、８Ｈ）、２．００−２．１８（ｍ、４Ｈ）、２．３０（ｔ、Ｊ〜７．５Ｈｚ、２Ｈ）、２．７２−２．８５（ｍ、６Ｈ）、３．６０（ｔ、Ｊ〜７．３Ｈｚ、２Ｈ）、３．６５（ｓ、３Ｈ）、５．３０−５．４０（ｍ、８Ｈ）、７．３８−７．４５（ｍ、６Ｈ）、７．５９−７．６８（ｍ、４Ｈ）；ＴＬＣ：ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：２）、Ｒｆ〜０．６２。
【００７７】
７ｂ／Δ１４，１５−トランス−７ｂ（６３ｍｇ、０．１１ｍｍｏｌ）およびｎ−テトラブチルアンモニウムフルオライド（０．２２ｍｍｏｌ、５当量）のＴＨＦ（８ｍＬ）溶液を、室温で３時間維持した。溶媒を蒸発させ、残渣をＥｔＯＡｃ（１０ｍＬ）に溶解し、その後、Ｈ２Ｏ（２×５ｍＬ）、食塩水（８ｍＬ）で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、真空で濃縮した。Ｅｔ２Ｏ／ヘキサン（７：３）を使用した残渣のカラムクロマトグラフィー（ＳｉＯ２）により、エステル８ｂおよびそのΔ１４，１５−トランス−異性体（７７％）の混合物が無色油状物として得られ、これは、ヘキサン／ＥｔＯＨ（９９．４：０．６）を用いて無勾配で６ｍＬ／分で溶出したバリアン（Ｖａｒｉａｎ）マイクロソーブ（Ｍｉｃｒｏｓｏｒｂ）  Ｓｉ  ５μ（１０×２５０ｍｍ）カラム上でＨＰＬＣにより分割し、２０５ｎｍで監視した（８ｂ：Ｒｔ〜３２．４分；Δ１４，１５−トランス−８ｂ：Ｒｔ〜３４．８分）。１Ｈ  ＮＭＲ（２５０ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：δ１．２５−１．７５（ｍ、８Ｈ）、２．００−２．２０（ｍ、５Ｈ）、２．３０（ｔ、Ｊ〜７．５Ｈｚ、２Ｈ）、２．７２−２．８５（ｍ、６Ｈ）、３．６５（ｔ、Ｊ〜７．３Ｈｚ、２Ｈ）、３．７０（ｓ、３Ｈ）、５．３０−５．５０（ｍ、８Ｈ）。
【００７８】
ＮａＯＨ水溶液（０．１４９ｍＬの１Ｍ溶液、０．１４９ｍｍｏｌ）を、０℃の８ｂ（１２．４ｍｇ、０．０３７ｍｍｏｌ）のＴＨＦ／Ｈ２Ｏ（３：１、２ｍＬ）溶液に加えた。周囲温度で一晩撹拌した後、反応混合物をＨ２Ｏ（３ｍＬ）で希釈し、１Ｍシュウ酸水溶液を滴下して加えることによりｐＨ６．５に調整し、その後、ＥｔＯＡｃ（３×３ｍＬ）で抽出した。合わせた有機抽出物を、Ｈ２Ｏ（１０ｍＬ）で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、蒸発させると、２０−ＨＥＴＥ（９ｂ）（８．５ｍｇ、７２％）が、標準サンプルと全ての点で一致する無色油状物として得られた。１ＨＰＬＣ：Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ  Ｎｕｃｌｅｏｓｉｌ  ５μ  Ｃ１８（４．６×２５０ｍｍ）カラムは、ＣＨ３ＣＮ／Ｈ２Ｏ／ＨＯＡｃ（４９．９５：４９．９５：０．１）からＣＨ３ＣＮ／ＨＯＡｃ（９９．９：０．１）まで、４０分間かけて１ｍＬ／分で線形溶出し、２０５ｎｍで監視した（Ｒｔ〜１８分）。ＴＬＣ：ＭｅＯＨ／ＣＨ２Ｃｌ２（１：１０）、Ｒｆ〜０．４５。
【００７９】
アルデヒド１２ｂの調製：ｔｅｒｔ−ブチルクロロジフェニルシラン（４００ｍｇ、１．４５ｍｍｏｌ）およびＡｇＮＯ３（２５０ｍｇ、１．４７ｍｍｏｌ）を、１，６−ヘキサンジオール（１０ｂ）（３４３ｍｇ、２．９０ｍｍｏｌ）のＴＨＦ／ピリジン（１５：１、３２ｍＬ）（ｅｑ．１）の溶液に加えた。１２時間暗闇で撹拌した後、反応混合物を、セライト床を通して濾過し、フィルターケークをＴＨＦ（１０ｍＬ）で洗浄した。合わせた濾液を蒸発させ、残渣を、ＳｉＯ２カラムクロマトグラフィーにより、ＭｅＯＨ／ＣＨ２Ｃｌ２（１：４９）を使用して精製すると、１１ｂ（４９５ｍｇ、シリル化剤に基づき９６％）が得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（２５０ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：δ１．０４（ｓ、９Ｈ）、１．１６−１．７０（ｍ、８Ｈ）、３．４８−３．７６（ｍ、４Ｈ）、７．３８−７．４４（ｍ、６Ｈ）、７．６１−７．６６（ｍ、４Ｈ）；ＴＬＣ：ＭｅＯＨ／ＣＨ２Ｃｌ２（５：９５）、Ｒｆ〜０．４９。
【００８０】
新しく蒸留した塩化オキサリル（３５３ｍｇ、２．７８ｍｍｏｌ）を、−７８℃のメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）（５４３ｍｇ、６．９５ｍｍｏｌ）の無水ＣＨ２Ｃｌ２（５ｍＬ）溶液に加えた。１０分後、シリルエーテル１１ｂ（４９５ｍｇ、１．３９ｍｍｏｌ）のＣＨ２Ｃｌ２（３ｍＬ）溶液を、滴下して加え、混合物をさらに１．５時間撹拌した。トリエチルアミン（７０２ｍｇ、６．９５ｍｍｏｌ）を加え、混合物を２０℃まで３０分間かけて加温し、その後、飽和ＮａＨＣＯ３水溶液に注ぎ、層を分離した。水層をさらにＣＨ２Ｃｌ２（２×１０ｍＬ）で抽出した。合わせた有機抽出物を食塩水（１５ｍＬ）で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、蒸発させ、残渣を、ＳｉＯ２カラムクロマトグラフィーにより、ＣＨ２Ｃｌ２を使用して精製すると、アルデヒド１２ｂ（４５０ｍｇ、９２％）が得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（２５０ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：δ１．０４（ｓ、９Ｈ）、１．３６−１．８０（ｍ、８Ｈ）、２．２４−２．５２（ｍ、２Ｈ）、３．６４（ｔ、Ｊ〜６Ｈｚ、２Ｈ）、７．３２−７．４４（ｍ、６Ｈ）、７．６３−７．７０（ｍ、４Ｈ）、９．７２（ｔ、Ｊ〜１．８Ｈｚ、１Ｈ）；ＴＬＣ：ＭｅＯＨ／ＣＨ２Ｃｌ２（１：４９）、Ｒｆ〜０．７１。
【００８１】
１９−ヒドロキシノナデカ−５（Ｚ），８（Ｚ），１１（Ｚ），１４（Ｚ）−テトラエン酸（９ａ）および２１−ヒドロキシヘンエイコサ−５（Ｚ），８（Ｚ），１１（Ｚ），１４（Ｚ）−テトラエン酸（９ｃ）の調製：Ｃ１９−相同体９ａおよびＣ２１−相同体９ｃを、それぞれ、ウィッティヒ塩６およびアルデヒド１２ａおよび１２ｃ（ｅｑ．１）を使用して、９ｂ（スキーム１）に記載したのと同じ方法および同等な収率で調製した。積分以外の、９ａおよび９ｃのＴＬＣ特徴およびＮＭＲスペクトルは、ほとんど９ｂと同一であった。
【００８２】
２０，２０−ジメチル−２０−ＨＥＴＥ（１９）の調製：
アルゴン下、ＭｅＬｉ（１．４Ｍ  Ｅｔ２Ｏ溶液、１０．４ｍＬ、１４．６ｍｍｏｌ）を、撹拌している室温のメチル６−ヘプテノエート（１３）（９４６ｍｇ、６．６５ｍｍｏｌ）の無水Ｅｔ２Ｏ（３０ｍＬ）溶液に滴下して加えた（スキーム２；図８Ｂ）。１２時間後、反応混合物を、５％塩酸の添加によりｐＨ４に調整し、ＥｔＯＡｃ（３×１０ｍＬ）で抽出した。合わせた有機抽出物をＮａ２ＳＯ４で乾燥させ、全ての揮発性物質を真空で除去すると、次段階に直接使用するのに十分純粋なアルコール１４（９５０ｍｇ、１００％）が得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、２５０ＭＨｚ）：δ１．２２（ｓ、６Ｈ）、１．２６−１．４６（ｍ、６Ｈ）、２．０３−２．１８（ｍ、２Ｈ）、４．９２−５．０８（ｍ、２Ｈ）、５．７２−５．９０（ｍ、１Ｈ）；ＴＬＣ：ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：４）、Ｒｆ〜０．３８。
【００８３】
アルコール１４（８７０ｍｇ、６．１ｍｍｏｌ）、３，４−ジヒドロ−２Ｈ−ピラン（ＤＨＰ）（１．１２ｍＬ、１２．２ｍｍｏｌ）およびピリジニウムｐ−トルエンスルホネート（ＰＰＴＳ）（１５３ｍｇ、０．６１ｍｍｏｌ）の混合物のＣＨ２Ｃｌ２（４３ｍＬ）溶液を、周囲温度で１２時間撹拌し、その後、Ｅｔ２Ｏ（５０ｍＬ）で希釈し、濾過した。濾液を真空で蒸発させ、残渣をＥｔＯＡｃ／ヘキサン（５：９５）を使用してＳｉＯ２上クロマトグラフィーにかけると、ＴＨＰエーテル１５（１．１３ｇ、８２％）が無色油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（２５０ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：δ１．１９（ｓ、３Ｈ）、１．２１（ｓ、３Ｈ）、１．３０−１．４２（ｍ、４Ｈ）、１．４２−１．５８（ｍ、６Ｈ）、１．６０−１．６８（ｍ、１Ｈ）、１．７５−１．９０（ｍ、１Ｈ）、２．０１−２．１２（ｍ、２Ｈ）、３．３８−３．４４（ｍ、１Ｈ）、３．９０−３．９９（ｍ、１Ｈ）、４．６７−４．７０（ｍ、１Ｈ）、４．９２−５．０８（ｍ、２Ｈ）、５．７２−５．９０（ｍ、１Ｈ）；ＴＬＣ：ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１５：８５）、Ｒｆ〜０．６４。
【００８４】
０℃のＴＨＰエーテル１５（５６５ｍｇ、２．５ｍｍｏｌ）のＣＨ２Ｃｌ２（１０ｍＬ）溶液を、１０分間連続的なＯ３流で飽和させた。アルゴンを用いて過剰のＯ３をパージした後、ニート（ｎｅａｔ）Ｍｅ２Ｓ（１ｍＬ）を加え、混合物を室温で２時間撹拌した。全揮発性物質を真空で蒸発させ、溶出液としてＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１５：８５）を使用してＳｉＯ２上で残渣をクロマトグラフィー精製すると、アルデヒド１６（３９０ｍｇ、６８％）が無色油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、２５０ＭＨｚ）：δ１．１８（ｓ、３Ｈ）、１．２１（ｓ、３Ｈ）、１．４０−１．８０（ｍ、１２Ｈ）、２．４３（ｄｔ、Ｊ〜１．５および６．４Ｈｚ、２Ｈ）、３．４０−３．５２（ｍ、１Ｈ）、３．９０−４．００（ｍ、１Ｈ）、４．６８−４．７４（ｍ、１Ｈ）、９．７８（ｔ、Ｊ〜１．５Ｈｚ、１Ｈ）；ＴＬＣ：ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：９）、Ｒｆ〜０．１９。
【００８５】
アルゴン下、リチウムビス（トリメチルシリル）アミド（０．３ｍＬの１Ｍ溶液、０．３０ｍｍｏｌ）を、−７８℃のホスホニウム塩６（８２ｍｇ、０．１５ｍｍｏｌ）のＴＨＦ／ＨＭＰＡ（４：１、５ｍＬ）懸濁液にゆっくりと加えた。反応混合物を、−７８℃でさらに３０分間撹拌し、−４０℃まで１時間加温し、その後、−７８℃に再度冷却した。アルデヒド１６（４３ｍｇ、０．１９ｍｍｏｌ）のＴＨＦ（１．５ｍＬ）溶液を、上記の黄色のイリド溶液に−７８℃で滴下して加えた。１．２時間後、反応物を、５０％ＮＨ４ＯＡｃ水溶液でクエンチし、ＥｔＯＡｃ（３×２０ｍＬ）で抽出した。合わせた有機抽出物を、Ｈ２Ｏ（５ｍＬ）、食塩水（５ｍＬ）で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、真空で蒸発させた。残渣をＥｔ２Ｏに溶解し、過剰のエーテル性のＣＨ２Ｎ２で１５分間処理した。全揮発性物質を真空で蒸発させ、残渣をＰＴＬＣ［ＳｉＯ２：Ｅｔ２Ｏ／ヘキサン（７：３）、Ｒｆ〜０．５６］を介して精製すると、ＴＨＰ−エステル１７（３５ｍｇ、５３％）が無色油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（２５０ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：δ１．２０（ｓ、３Ｈ）、１．２３（ｓ、３Ｈ）、１．２３−１．８５（ｍ、１２Ｈ）、１．９５−２．２０（ｍ、４Ｈ）、２．３４（ｔ、Ｊ〜７．６Ｈｚ、２Ｈ）、２．７０−２．９０（ｍ、６Ｈ）、３．３５−３．５０（ｍ、１Ｈ）、３．６８（ｓ、３Ｈ）、３．８５−４．００（ｍ、１Ｈ）、４．６８−４．７４（ｍ、１Ｈ）、５．２０−５．４５（ｍ、８Ｈ）。
【００８６】
ＴＨＰ−エステル１７（３５ｍｇ、０．０８ｍｍｏｌ）とＰＰＴＳ（２ｍｇ）の混合物のＭｅＯＨ（１ｍＬ）溶液を、室温で１時間撹拌した。溶媒を真空で蒸発させ、残渣をＰＴＬＣ［ＳｉＯ２：Ｅｔ２Ｏ／ヘキサン（７：３）、Ｒｆ〜０．３８］を介して精製すると、ヒドロキシ−エステル１８（２３ｍｇ、８０％）が無色油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、２５０ＭＨｚ）：δ１．２３（ｓ、６Ｈ）、１．３１−１．５２（ｍ、６Ｈ）、１．７１（五重線、Ｊ〜７．２Ｈｚ、２Ｈ）、２．０２−２．２０（ｍ、４Ｈ）、２．３５（ｔ、Ｊ〜７．４Ｈｚ、２Ｈ）、２．７４−２．９０（ｍ、６Ｈ）、３．６７（ｓ、３Ｈ）、５．２５−５．４６（ｍ、８Ｈ）。
【００８７】
エステル１８（１１ｍｇ、０．０３ｍｍｏｌ）とＬｉＯＨ水溶液（０．１７ｍＬの１Ｍ溶液、０．１７ｍｍｏｌ）の混合物のＴＨＦ／Ｈ２Ｏ（４：１、２．５ｍＬ）溶液を、室温で１２時間撹拌した。反応物のｐＨを、１Ｍシュウ酸水溶液の添加により４に調整し、酸性化した溶液を、ＥｔＯＡｃ（３×５ｍＬ）で抽出した。合わせた有機抽出物をＨ２Ｏ（１０ｍＬ）、食塩水（１０ｍＬ）で洗浄し、真空で蒸発させると、酸２０，２０−ジメチル−２０−ＨＥＴＥ（１９）（９．８ｍｇ、９３％）が無色油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、２５０ＭＨｚ）：δ１．２１（ｓ、６Ｈ）、１．３０−１．５２（ｍ、６Ｈ）、１．７１（五重線、Ｊ〜７．３Ｈｚ、２Ｈ）、２．０３−２．２０（ｍ、４Ｈ）、２．３３（ｔ、Ｊ〜７．６Ｈｚ、２Ｈ）、２．７２−２．８７（ｍ、６Ｈ）、５．２５−５．４５（ｍ、８Ｈ）。
【００８８】
１４，１５−デヒドロ−２０−ＨＥＴＥ（２６）の調製：エステル７ｂ（１．０ｇ、１．７４ｍｍｏｌ）とＬｉＯＨ（９ｍＬの１Ｍ溶液、９ｍｍｏｌ）の混合物のＴＨＦ／Ｈ２Ｏ（４：１、２０ｍＬ）溶液を室温で１２時間撹拌し、その後、有機溶媒を真空で蒸発させた（スキーム３；図８Ｂ）。残渣をＨ２Ｏ（１０ｍＬ）で希釈し、１Ｍシュウ酸でｐＨ５．５に酸性化し、ＥｔＯＡｃ（３×５０ｍＬ）で抽出した。合わせた有機抽出物をＨ２Ｏ（５０ｍＬ）、食塩水（５０ｍＬ）で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、真空で蒸発させると酸２０（９６０ｍｇ、９８％）が無色油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、２５０ＭＨｚ）：δ１．０３（ｓ、９Ｈ）、１．２０−１．４２（ｍ、４Ｈ）、１．４４−１．６０（ｍ、２Ｈ）、１．６７（五重線、Ｊ〜７．１Ｈｚ、２Ｈ）、１．９２−２．１８（ｍ、４Ｈ）、２．３４（ｔ、Ｊ〜７．２Ｈｚ、２Ｈ）、２．６８−２．８８（ｍ、６Ｈ）、３．６３（ｔ、Ｊ〜７．４Ｈｚ、２Ｈ）、５．２５−５．４６（ｍ、８Ｈ）、７．２８−７．４７（ｍ、６Ｈ）、７．５５−７．７０（ｍ、４Ｈ）；ＴＬＣ：ＳｉＯ２、ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：４）、Ｒｆ〜０．１５。
【００８９】
酸２０（９６０ｍｇ、１．７２ｍｍｏｌ）と１，１’−カルボニルジイミダゾール（Ｉｍ２ＣＯ）（４１８ｍｇ、２．５８ｍｍｏｌ）の混合物の乾燥ＣＨ２Ｃｌ２（３５ｍＬ）溶液を、４０分間室温で撹拌し、その後、カニューレを介して、撹拌している、触媒性の量のイミダゾールリチウムを含む、０℃のエーテル  ３．５Ｍ  Ｈ２Ｏ２溶液（２０ｍＬ、６９ｍｍｏｌ）に移した。５分後、反応混合物をＣＨ２Ｃｌ２（２５ｍＬ）で希釈し、粉末ＫＨ２ＰＯ４（１．４ｇ、１０．３２ｍｍｏｌ）を加え、０℃でさらに５分間撹拌し続けた。得られた懸濁液を、綿栓を通して、無水Ｎａ２ＳＯ４（３ｇ）のＣＨ２Ｃｌ２（３０ｍＬ）懸濁液を含むアルゴンを流したフラスコに濾過した。反応混合物を室温でアルゴン雰囲気下で１２時間貯蔵し、濾過し、食塩水（４０ｍＬ）で、試験した水層が、過酸化水素のためのデンプン−Ｉ２紙で陰性になるまで洗浄した。有機層を真空で蒸発させ、残渣をＥｔ２Ｏ／ＭｅＯＨ（３：１、１５ｍＬ）に溶解し、これに、過剰のエーテル性のＣＨ２Ｎ２をゆっくりと、黄色の呈色が１５分間持続するまで加えた。真空で溶媒を除去し、残渣をＳｉＯ２カラム上でクロマトグラフィー精製すると、回収された７ｂ（２００ｍｇ）を伴って、エポキシド２１（６５０ｍｇ、６５％）が無色油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、２５０ＭＨｚ）：δ１．０５（ｓ、９Ｈ）、１．２９−１．６５（ｍ、８Ｈ）、１．７３（五重線、Ｊ〜７．２Ｈｚ、２Ｈ）、２．１２（ｄｔ、Ｊ〜６．３および１２．５Ｈｚ、２Ｈ）、２．１８−２．４７（ｍ、２Ｈ）、２．３４（ｔ、Ｊ〜７．４Ｈｚ、２Ｈ）、２．６７−３．００（ｍ、６Ｈ）、３．６４（ｓ、３Ｈ）、３．６６（ｔ、Ｊ〜７．１Ｈｚ、２Ｈ）、５．２８−５．５８（ｍ、６Ｈ）、７．３０−７．５０（ｍ、６Ｈ）、７．６０−７．７４（ｍ、４Ｈ）；ＴＬＣ：ＳｉＯ２、ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：４）、Ｒｆ〜０．３９。
【００９０】
アルゴン下、エポキシド２１（６５０ｍｇ、１．１ｍｍｏｌ）のペルオキシド非含有ＴＨＦ（５ｍＬ）の溶液を、撹拌している０℃のＡｃＯＨ／ＴＨＦ／飽和ＫＢｒ水溶液（２０：４：３、２７ｍＬ）の混合物に滴下して加えた。１０時間後、反応混合物を真空で４分の１の容量までに減らし、Ｈ２Ｏ（１０ｍＬ）で希釈し、３回Ｅｔ２Ｏで抽出した。合わせたエーテル抽出物を、１０％ＮａＨＣＯ３水溶液、Ｈ２Ｏ、食塩水で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、真空で乾燥させるため蒸発させた。残渣を短いＳｉＯ２カラムに通すと、ブロモヒドリン２２（７００ｍｇ、９４％）が分離不可能な位置異性体混合物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、２５０ＭＨｚ）：δ１．０５（ｓ、９Ｈ）、１．１６−１．４８（ｍ、４Ｈ）、１．４９−１．６４（ｍ、２Ｈ）、１．７１（五重線、Ｊ〜７．３Ｈｚ、２Ｈ）、１．８０−２．０７（ｍ、２Ｈ）、２．１３（ｄｔ、Ｊ〜６．５および１３．３Ｈｚ、２Ｈ）、２．３５（ｔ、Ｊ〜７．３Ｈｚ、２Ｈ）、２．４２（ｔ、Ｊ〜６．５Ｈｚ、１Ｈ、Ｄ２Ｏ交換可能）、２．６６−２．９５（ｍ、４Ｈ）、３．４１−３．５７（ｍ、１Ｈ）、３．６４（ｔ、Ｊ〜７．２Ｈｚ、２Ｈ）、３．６５（ｓ、３Ｈ）、４．００−４．１５（ｍ、１Ｈ）、５．２７−５．６１（ｍ、６Ｈ）、７．２７（ｍ、６Ｈ）、７．５９−７．７０（ｍ、４Ｈ）；ＴＬＣ：ＳｉＯ２、ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：４）、Ｒｆ〜０．３９。
【００９１】
ブロモヒドリン２２（７００ｍｇ、１．０５ｍｍｏｌ）のアセトン（４ｍＬ）溶液を、−２０℃のジョーンズ試薬（０．７ｍＬの２Ｍ溶液、１．５７ｍｍｏｌ）のアセトン（１５ｍＬ）溶液に滴下して加えた。反応物を、過剰のｉ−ＰｒＯＨのゆっくりとした添加により３０分後にクエンチし、濾過して、クロム塩を除去し、濾液を真空で蒸発させた。残渣をＨ２Ｏ（１０ｍＬ）とＥｔ２Ｏ（８ｍＬ）の間に分配した。層を分離し、水性画分をＥｔ２Ｏでさらに２回抽出した。合わせたエーテル抽出物を食塩水（１０ｍＬ）で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、真空で蒸発させた。残渣をＳｉＯ２カラム上で精製すると、ブロモ−ケトン２３（５００ｍｇ、７２％）が無色油状物として得られ、これは次段階に直ちに使用した。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、２５０ＭＨｚ）：δ１．０７（ｓ、９Ｈ）、１．２０−１．８０（ｍ、８Ｈ）、２．０２−２．１７（ｍ、２Ｈ）、２．３４（ｔ、Ｊ〜７．４Ｈｚ、２Ｈ）、２．６４−２．９１（ｍ、４Ｈ）、３．４０−３．５４（ｍ、２Ｈ）、３．６４（ｓ、３Ｈ）、３．６６（ｔ、Ｊ〜６．１Ｈｚ、２Ｈ）、４．１７−４．８５（ｍ、１Ｈ）、５．２５−５．７０（ｍ、６Ｈ）、７．３０−７．４８（ｍ、６Ｈ）、７．６０−７．７８（ｍ、４Ｈ）；ＴＬＣ：ＳｉＯ２、ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：４）、Ｒｆ〜０．４６。
【００９２】
ブロモ−ケトン２３（４００ｍｇ、０．５９９ｍｍｏｌ）、トシルヒドラジン（２２４ｍｇ、１．１９９ｍｍｏｌ）およびヒドロキノン（７ｍｇ、０．０６ｍｍｏｌ）の混合物を、ＣＨ２Ｃｌ２／ＨＯＡｃ（２：１、９ｍＬ）中、室温でアルゴン雰囲気下で３２時間撹拌し、その後、Ｈ２Ｏ（２０ｍＬ）で希釈し、Ｅｔ２Ｏ（３×５０ｍＬ）で抽出した。合わせたエーテル抽出物をＨ２Ｏ、食塩水で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、真空で蒸発させた。ＳｉＯ２カラムクロマトグラフィーにより精製すると、アセチレン２４（１４０ｍｇ、４１％）が無色油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、２５０ＭＨｚ）：δ１．０５（ｓ、９Ｈ）、１．４１−１．６０（ｍ、６Ｈ）、１．７２（五重線、Ｊ〜７．２Ｈｚ、２Ｈ）、１．９７−２．１９（ｍ、４Ｈ）、２．３１（ｔ、Ｊ〜７．３Ｈｚ、２Ｈ）、２．６８−２．８４（ｍ、４Ｈ）、２．８５−２．９８（ｍ、２Ｈ）、３．６３（ｔ、Ｊ〜７．１Ｈｚ、２Ｈ）、３．６５（ｓ、３Ｈ）、５．２９−５．５０（ｍ、６Ｈ）、７．３３−７．４８（ｍ、６Ｈ）、７．６３−７．７２（ｍ、４Ｈ）；ＴＬＣ：ＳｉＯ２、Ｅｔ２Ｏ／ヘキサン（１：１）、Ｒｆ〜０．５３。
【００９３】
シリルメチルエステル２４（１４０ｍｇ、０．２４５ｍｍｏｌ）とｎ−テトラブチルアンモニウムフルオライド（１．２ｍＬの１Ｍ溶液、１．２ｍｍｏｌ）の混合物の無水ＴＨＦ（５ｍＬ）溶液を、０℃でアルゴン雰囲気下で１２時間撹拌し、その後、真空で乾燥させるため蒸発させた。残渣をＥｔＯＡｃ（５０ｍＬ）に溶解し、Ｈ２Ｏ（３０ｍＬ）、食塩水（３０ｍＬ）で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、真空で蒸発させた。残渣をＳｉＯ２カラムクロマトグラフィーにより精製すると、ヒドロキシ−エステル２５（５０ｍｇ、６２％）が不安定な無色油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、２５０ＭＨｚ）：δ１．３６−１．６７（ｍ、６Ｈ）、１．７２（五重線、Ｊ〜７．３Ｈｚ、２Ｈ）、２．０２−２．２４（ｍ、４Ｈ）、２．３３（ｔ、Ｊ〜７．５Ｈｚ、２Ｈ）、２．７５−２．８８（ｍ、４Ｈ）、２．８９−３．００（ｍ、２Ｈ）、３．６５（ｔ、Ｊ〜６．８Ｈｚ、２Ｈ）、３．６７（ｓ、３Ｈ）、５．３０−５．５３（ｍ、６Ｈ）；ＴＬＣ：ＳｉＯ２、ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：３）、Ｒｆ〜０．１４。
【００９４】
エステル２５（４．８ｍｇ、０．０１４ｍｍｏｌ）およびＬｉＯＨ（７２μｌの１Ｍ溶液、０．０７２ｍｍｏｌ）を、室温で、ＴＨＦ／Ｈ２Ｏ（５：２、１．５ｍＬ）中、アルゴン雰囲気下で１２時間撹拌した。反応混合物を１Ｍシュウ酸でｐＨ６．５に調整し、３回ＥｔＯＡｃで抽出した。合わせた有機抽出物を、Ｈ２Ｏ、食塩水で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、真空で蒸発させると、アセチレン酸２６（４．７ｍｇ、＞９５％）が不安定な無色油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、２５０ＭＨｚ）：δ１．３５−１．６５（ｍ、６Ｈ）、１．７１（五重線、Ｊ〜７．３Ｈｚ、２Ｈ）、２．０２−２．２４（ｍ、４Ｈ）、２．３７（ｔ、Ｊ〜７．３Ｈｚ、２Ｈ）、２．７０−２．８８（ｍ、４Ｈ）、２．８９−２．９９（ｍ、２Ｈ）、３．６７（ｔ、Ｊ〜６．４Ｈｚ、２Ｈ）、５．２８−５．５４（ｍ、６Ｈ）；ＴＬＣ：ＳｉＯ２、ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（３：７）、Ｒｆ〜０．１５。
【００９５】
１９（Ｓ）−ＨＥＴＥ（３４）および１９（Ｒ）−ＨＥＴＥ（３６）の調製：４−ブロモブテン（１．３１ｇ、９．７６ｍｍｏｌ）のエーテル溶液（２ｍＬ）を、０℃で、新しく活性化したマグネシウム削り屑（２３８ｍｇ、９．７９ｍｍｏｌ）のＥｔ２Ｏ（７ｍＬ）懸濁液に滴下して加えた（スキーム４；図８Ｄ）。反応物は室温まで加温し、３時間維持した。得られた均一の淡黄色のグリニャール溶液２８を、カニューレを介して、正の窒素圧下、ＣｕＣＮ（８８ｍｇ、０．９８ｍｍｏｌ）の乾燥ＴＨＦ（１０ｍＬ）撹拌懸濁液に−２０℃で移した。２０分後、（Ｓ）−（−）−プロピレンオキシド（２７）（９４．６ｍｇ、１．６２ｍｍｏｌ）を、手際よく均一な銅塩溶液に加え、その後、０℃で１２時間撹拌した。反応物を飽和ＮＨ４Ｃｌ水溶液でクエンチし、ＥｔＯＡｃ（３×１０ｍＬ）で抽出した。合わせた有機抽出物を、Ｈ２Ｏ（２×１０ｍＬ）、食塩水（５０ｍＬ）で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、真空で蒸発させた。残渣をＳｉＯ２カラムクロマトグラフィーにより精製すると、アルコール２９（６２３ｍｇ、８１％）が無色油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、２５０ＭＨｚ）：δ１．２０（ｄ、Ｊ〜６．７Ｈｚ、３Ｈ）、１．３２−１．３７（ｍ、４Ｈ）、１．９１−２．１２（ｍ、２Ｈ）、３．８０−３．８２（ｍ、１Ｈ）、４．９３−５．０５（ｍ、２Ｈ）、５．７９−５．８８（ｍ、１Ｈ）；ＴＬＣ：ＳｉＯ２、Ｅｔ２Ｏ／ヘキサン（１：１）、Ｒｆ〜０．５２。
【００９６】
ＡｇＮＯ３（５４３ｍｇ、３．２１ｍｍｏｌ）およびｔｅｒｔ−ブチルクロロジフェニルシラン（８４０ｍｇ、３．０５ｍｍｏｌ）を、アルコール２９（３１７ｍｇ、２．７８ｍｍｏｌ）のＴＨＦ／ピリジン（１４：１、１０ｍＬ）の室温溶液に連続的に加えた。１２時間後、反応混合物を、セライトパッドを通して濾過し、フィルターケークをＥｔ２Ｏ（１０ｍＬ）で洗浄した。濾液水層を分離し、Ｅｔ２Ｏ（２×１０ｍＬ）で抽出し、合わせたエーテル抽出物を飽和ＣｕＳＯ４水溶液、Ｈ２Ｏ（２×５０ｍＬ）、食塩水（５０ｍＬ）で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、全ての揮発性物質を減圧下で除去した。残渣をＳｉＯ２カラムクロマトグラフィー（５％Ｅｔ２Ｏ／ヘキサン）により精製すると、シリルエーテル３０（８２０ｍｇ、８４％）が流動性無色油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、４００ＭＨｚ）：δ１．０５（ｓ、９Ｈ）、１．０８（ｄ、Ｊ〜６．４Ｈｚ、３Ｈ）、１．３２−１．６０（ｍ、４Ｈ）、１．９２−２．０１（ｍ、２Ｈ）、３．８０−３．９２（ｍ、１Ｈ）、４．９１−５．００（ｍ、２Ｈ）、５．７０−５．８１（ｍ、１Ｈ）、７．３３−７．４８（ｍ、６Ｈ）、７．６４−７．７５（ｍ、４Ｈ）；ＴＬＣ：ＳｉＯ２、ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：９）、Ｒｆ〜０．９。
【００９７】
オゾンを、０℃の３０（５００ｍｇ、１．４２ｍｍｏｌ）の乾燥ＣＨ２Ｃｌ２（５ｍＬ）溶液に１５分間泡立て、その時点に、ＴＬＣ分析により出発物質は残っていないことが判明した。反応混合物に簡潔にアルゴンを流し、その後、過剰のＭｅ２Ｓ（２ｍＬ）を撹拌しながら加え、その際混合物を室温にまで加温した。１２時間後、全ての揮発性物質を真空で除去し、残渣をＳｉＯ２カラムクロマトグラフィーにより精製すると、アルデヒド３１（３８７ｍｇ、７７％）が無色油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、２５０ＭＨｚ）：δ１．０５（ｓ、９Ｈ）、１．０８（ｄ、Ｊ〜６．２Ｈｚ、３Ｈ）、１．３９−１．５０（ｍ、２Ｈ）、１．５１−１．７０（ｍ、２Ｈ）、２．２９（ｄｔ、Ｊ〜１．８および７．１Ｈｚ、２Ｈ）、３．７８−３．９５（ｍ、１Ｈ）、７．３２−７．４９（ｍ、６Ｈ）、７．６２−７．７３（ｍ、４Ｈ）、９．６７（ｔ、Ｊ〜１．８Ｈｚ、１Ｈ）；ＴＬＣ：ＳｉＯ２、ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：９）、Ｒｆ〜０．３９。
【００９８】
アルデヒド３１（１．８１ｍｇ、０．５０７ｍｍｏｌ）とイリド６（２２０ｍｇ）のウィッティヒ縮合、および１２から７への変換（スキーム１）で記載したようにジアゾメタンを使用した付加物のエステル化により、付加物３２（１４４ｍｇ、６６％）が、ＰＴＬＣ精製［ＳｉＯ２：ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：４）、Ｒｆ〜０．６４］後に、無色油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、２５０ＭＨｚ）：δ１．０５（ｓ、９Ｈ）、１．０７（ｄ、Ｊ〜６．３Ｈｚ、３Ｈ）、１．３０−１．４９（ｍ、４Ｈ）、１．７２（五重線、Ｊ〜７．３Ｈｚ、２Ｈ）、１．９０−２．０３（ｍ、２Ｈ）、２．０５−２．１５（ｍ、２Ｈ）、２．３３（ｔ、Ｊ〜７．４Ｈｚ、２Ｈ）、２．６４−２．８９（ｍ、６Ｈ）、３．６７（ｓ、３Ｈ）、３．７５−３．９０（ｍ、１Ｈ）、５．２０−５．４７（ｍ、８Ｈ）、７．２８−７．４９（ｍ、６Ｈ）、７．６２−７．７１（ｍ、４Ｈ）。
【００９９】
ヒドロキシ−エステル３３（２１０ｍｇ、７８％）が得られる３２（４５０ｍｇ）の脱シリル化は、７から８への変換（スキーム１）に記載した方法に従った。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、２５０ＭＨｚ）：δ１．２０（ｄ、Ｊ〜６．３Ｈｚ、３Ｈ）、１．４０−１．５３（ｍ、４Ｈ）、１．７１（五重線、Ｊ〜７．４Ｈｚ、２Ｈ）、２．０６−２．１７（ｍ、４Ｈ）、２．３３（ｔ、Ｊ〜７．４、２Ｈ）、２．７４−２．８８（ｍ、６Ｈ）、３．６８（ｓ、３Ｈ）、３．７５−３．８６（ｍ、１Ｈ）、５．３２−５．４９（ｍ、８Ｈ）；ＴＬＣ：ＳｉＯ２、ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：３）、Ｒｆ〜０．２３。
【０１００】
アルゴン雰囲気下、ジエチルアゾジカルボキシレート（ＤＥＡＤ）（６８ｍｇ、０．３８７ｍｍｏｌ）を、手際よく、撹拌している室温のアルコール３３（１００ｍｇ、０．２９９ｍｍｏｌ）、Ｐｈ３Ｐ（１０２ｍｇ、０．３８９ｍｍｏｌ）、および安息香酸（４８ｍｇ、０．３８９ｍｍｏｌ）の乾燥ベンゼン（３ｍＬ）溶液に加えた。２時間後、全ての揮発性物質を真空除去し、残渣をＳｉＯ２カラムクロマトグラフィーにより精製すると、ベンゾエート３５（１０９ｍｇ、８３％）が無色油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、２５０ＭＨｚ）：δ１．３７（ｄ、Ｊ〜６．２Ｈｚ、３Ｈ）、１．４１−１．５３（ｍ、２Ｈ）、１．６１−１．７９（ｍ、４Ｈ）、２．１０（ｑ、Ｊ〜７．３Ｈｚ、４Ｈ）、２．３２（ｔ、Ｊ〜７．４Ｈｚ、２Ｈ）、２．７５−２．９０（ｍ、６Ｈ）、３．６９（ｓ、３Ｈ）、５．１８（ｍ、１Ｈ）、５．３４−５．４６（ｍ、８Ｈ）、７．４５（ｔ、Ｊ〜７．１Ｈｚ、２Ｈ）、７．５６（ｔ、Ｊ〜７．１Ｈｚ、１Ｈ）、８．０４（ｄ、Ｊ〜７．１Ｈｚ、２Ｈ）；ＴＬＣ：ＳｉＯ２、ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：３）、Ｒｆ〜０．５４。
【０１０１】
エステル３３および３５の、それぞれ、対応する１９（Ｓ）−ＨＥＴＥ（３４）および１９（Ｒ）−ＨＥＴＥ（３６）への加水分解は、１８から１９への変換（スキーム２；図８Ｂ）に記載したように行った。
【０１０２】
２０−ヒドロキシエイコサ−５（Ｚ），１４（Ｚ）−ジエン酸（５０）の調製：アルゴン下、５−ヘキシン酸（３７）（３．４ｇ、３０．３５ｍｍｏｌ）のＥｔ２Ｏ（６ｍＬ）溶液を、撹拌している０℃のＬｉＡｌＨ４（８６０ｍｇ、２２．７ｍｍｏｌ）のＥｔ２Ｏ（２０ｍＬ）溶液に滴下して加えた（スキーム５；図８Ｅ）。反応混合物を室温にし、３時間維持し、その後、０℃に冷却し、飽和Ｎａ２ＳＯ４水溶液でクエンチした。得られた懸濁液をセライト床を通して濾過し、フィルターケークをＥｔ２Ｏで洗浄した。合わせたエーテル濾液を、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、真空で蒸発させると、さらに精製せずに次段階で使用するのに十分純粋な無色油状物として５−ヘキシン−１−オール（３８）（３．０２ｇ、９１％）が得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、４００ＭＨｚ）：δ３．６７−３．６９（ｍ、２Ｈ）、２．２５（ｄｔ、Ｊ〜２．４および６．４Ｈｚ、２Ｈ）、１．９６（ｔ、Ｊ〜２．４Ｈｚ、１Ｈ）、１．５７−１．７２（ｍ、４Ｈ）；ＴＬＣ：ＳｉＯ２、ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（３：７）、Ｒｆ〜０．３８。
【０１０３】
ｔｅｒｔ−ブチルクロロジフェニルシラン（１０．１ｇ、３６．９７ｍｍｏｌ）を、５分間かけて、室温のアルコール３８（３．０２ｇ、３０．８１ｍｍｏｌ）およびイミダゾール（２．５１ｇ、３６．９７ｍｍｏｌ）のＣＨ２Ｃｌ２（２５ｍＬ）溶液に加えた。１２時間後、反応混合物を、ＣＨ２Ｃｌ２（７０ｍＬ）で希釈し、Ｈ２Ｏ、食塩水で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、真空で蒸発させた。残渣をＳｉＯ２カラム（５％ＥｔＯＡｃ／ヘキサン）により精製すると、シリルエーテル３９（８．４ｇ、８６％）が淡黄色の油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、４００ＭＨｚ）：δ７．６５（ｄｄ、Ｊ〜１．６および７．６Ｈｚ、４Ｈ）、７．３５−７．４２（ｍ、６Ｈ）、３．６５（ｔ、Ｊ〜６．８Ｈｚ、２Ｈ）、２．１９−２．２２（ｍ、２Ｈ）、１．９２−１．９４（ｍ、１Ｈ）、１．５５−１．７１（ｍ、４Ｈ）、１．１０（ｓ、９Ｈ）；ＴＬＣ：ＳｉＯ２、ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１５：８５）、Ｒｆ〜０．５６。
【０１０４】
ｎ−ＢｕＬｉ（０．６６ｍＬの１．６Ｍヘキサン溶液、１．０５ｍｍｏｌ）を、−４０℃のシリルエーテル３９（３２０ｍｇ、０．９６ｍｍｏｌ）のＴＨＦ（６ｍＬ）溶液に滴下して加え、その後、無水ＨＭＰＡ（１．５ｍＬ）を添加した。１時間後、１−ブロモ−７−（テトラヒドロピラニルオキシ）ヘプタン（ニーランド（Ｎｅｅｌａｎｄ）等、Ｊ．Ｏｒｇ．Ｃｈｅｍ．５９：７３８３−７３９４、１９９４）（４０）（２９１ｍｇ、１．０５ｍｍｏｌ）のＴＨＦ（２ｍＬ）溶液を、ゆっくりと加えた。反応混合物を２時間かけて室温にし、その温度で１２時間維持し、その後、飽和ＮＨ４Ｃｌ水溶液を使用して０℃でクエンチした。混合物を３回Ｅｔ２Ｏで抽出し、合わせたエーテル抽出物を、Ｈ２Ｏ、食塩水で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、真空で蒸発させた。残渣をＳｉＯ２カラムクロマトグラフィー（５％ＥｔＯＡｃ／ヘキサン）により精製すると、付加物４１（３１０ｍｇ、６３％）が流動性油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、４００ＭＨｚ）：δ７．６６（ｄｄ、Ｊ〜１．６および７．６Ｈｚ、４Ｈ）、７．３５−７．４２（ｍ、６Ｈ）、４．５６−４．５８（ｍ、１Ｈ）、３．８３−３．８８（ｍ、１Ｈ）、３．７１−３．７５（ｍ、１Ｈ）、３．６７（ｔ、Ｊ〜６Ｈｚ、２Ｈ）、３．４６−３．５０（ｍ、１Ｈ）、３．３４−３．３９（ｍ、１Ｈ）、２．１１−２．１６（ｍ、４Ｈ）、１．７８−１．８８（ｍ、２Ｈ）、１．４２−１．７７（ｍ、１２Ｈ）、１．２９−１．４１（ｍ、６Ｈ）、１．０８（ｓ、９Ｈ）；ＴＬＣ：ＳｉＯ２、ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１５：８５）、Ｒｆ〜０．７０。
【０１０５】
アセチレン４１（２．０１ｇ、３．９３ｍｍｏｌ）とピリジニウムｐ−トルエンスルホネート（９８ｍｇ、０．３９３ｍｍｏｌ）の混合物のＭｅＯＨ（１２ｍＬ）溶液を室温で１２時間撹拌し、その後、真空で濃縮した。残渣をＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：９）を使用してＳｉＯ２カラムクロマトグラフィーにより精製すると、アルコール４２（１．６１ｇ、９２％）が無色油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、４００ＭＨｚ）：δ７．６６（ｄｄ、Ｊ〜１．６および７．６Ｈｚ、４Ｈ）、７．３５−７．４１（ｍ、６Ｈ）、３．６７（ｔ、Ｊ〜６．４Ｈｚ、２Ｈ）、３．５９−３．６５（ｍ、２Ｈ）、２．１１−２．１７（ｍ、４Ｈ）、１．６２−１．６８（ｍ、２Ｈ）、１．５２−１．６０（ｍ、４Ｈ）、１．４１−１．４９（ｍ、２Ｈ）、１．３２−１．３９（ｍ、６Ｈ）、１．０４（ｓ、９Ｈ）；ＴＬＣ：ＳｉＯ２、ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（２：３）、Ｒｆ〜０．３３。
【０１０６】
四臭化炭素（１２４ｍｇ、０．３７３ｍｍｏｌ）、ＰＰｈ３（９８ｍｇ、０．３７３ｍｍｏｌ）、およびピリジン（３１μｌ、０．３７３ｍｍｏｌ）を、連続的に、０℃のアルコール４２（１４０ｍｇ、０．３１１ｍｍｏｌ）のＣＨ２Ｃｌ２（５ｍＬ）溶液に加えた。３時間後、全ての揮発性物質を真空で除去し、残渣をＳｉＯ２カラムクロマトグラフィー（２％ＥｔＯＡｃ／ヘキサン）により精製すると、ブロミド４３（１４８ｍｇ、９１％）が無色油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、４００ＭＨｚ）：δ７．６６（ｄｄ、Ｊ〜１．６および８Ｈｚ、４Ｈ）、７．３５−７．４１（ｍ、６Ｈ）、３．６７（ｔ、Ｊ〜６．２Ｈｚ、２Ｈ）、３．３８（ｔ、Ｊ〜６．４Ｈｚ、２Ｈ）、２．１１−２．１６（ｍ、４Ｈ）、１．８４（五重線、Ｊ〜７．４Ｈｚ、２Ｈ）、１．６２−１．６７（ｍ、２Ｈ）、１．５５−１．６１（ｍ、２Ｈ）、１．３１−１．４８（ｍ、８Ｈ）、１．０４（ｓ、９Ｈ）；ＴＬＣ：ＳｉＯ２、ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：９）、Ｒｆ〜０．５８。
【０１０７】
アルゴン雰囲気下、ｎ−ＢｕＬｉ（０．４５ｍＬの１．６Ｍヘキサン溶液、０．７２ｍｍｏｌ）を、−４０℃の７−（テトラヒドロピラン−２−イルオキシ）−１−ヘプチン（ベストマン・エイチ・ジェイ（Ｂｅｓｔｍａｎｎ，Ｈ.Ｊ.）等、Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ  １２３９−１２４１、１９９２）（４４）（６０ｍｇ、０．６５ｍｍｏｌ）のＴＨＦ（８ｍＬ）およびＨＭＰＡ（２ｍＬ）溶液に滴下して加えた。１時間後、ブロミド４３（３７６ｍｇ、０．７２ｍｍｏｌ）のＴＨＦ（１ｍＬ）溶液を導入し、その後、反応混合物を１時間かけて室温まで加温した。周囲温度でさらに１６時間後、反応物を、飽和ＮＨ４Ｃｌ水溶液でクエンチし、Ｅｔ２Ｏ（３×６ｍＬ）で抽出した。合わせた有機抽出物を、Ｈ２Ｏ、食塩水で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、真空で蒸発させた。残渣を、溶出液として５％ＥｔＯＡｃ／ヘキサンを使用して、ＳｉＯ２カラムクロマトグラフィーにより精製すると、ビス−アセチレン４５（８４ｍｇ、６１％）が淡黄色油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、４００ＭＨｚ）：δ７．６６（ｄｄ、Ｊ〜１．６および８Ｈｚ、４Ｈ）、７．３５−７．４１（ｍ、６Ｈ）、４．５５−４．５７（ｍ、１Ｈ）、３．８４−３．８９（ｍ、１Ｈ）、３．７０−３．７６（ｍ、１Ｈ）、３．６７（ｔ、Ｊ〜６．２Ｈｚ、２Ｈ）、３．４７−３．５２（ｍ、１Ｈ）、３．３５−３．４１（ｍ、１Ｈ）、２．１０−２．１７（ｍ、８Ｈ）、１．８８−１．９２（ｍ、１Ｈ）、１．４１−１．６５（ｍ、１９Ｈ）、１．２８−１．４０（ｍ、６Ｈ）、１．０４（ｓ、９Ｈ）；ＴＬＣ：ＳｉＯ２、ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：９）、Ｒｆ〜０．７。
【０１０８】
水素雰囲気下、ＮａＢＨ４（３２ｍｇ、０．８ｍｍｏｌ）を、ニッケル（ＩＩ）アセテートテトラヒドレート（２００ｍｇ、０．８ｍｍｏｌ）のＥｔＯＨ（６００ｍＬ）撹拌溶液に滴下して加えた。３０分後、４５（５．８０ｇ、１６ｍｍｏｌ）のＥｔＯＨ（５０ｍＬ）溶液を、続いて、新しく蒸留したエチレンジアミン（４．８ｇ）を加えた。不均一な混合物を室温で水素下（１ａｔｍ）で３時間維持し、その後、Ｅｔ２Ｏ（６００ｍＬ）で希釈し、ＳｉＯ２のパッドを通して濾過した。濾液を真空で濃縮すると、ジエン４６（４．４０ｇ、８４％）が無色油状物として得られ、これは、さらに精製する必要がなかった。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、４００ＭＨｚ）：δ．６６（ｄｄ、Ｊ〜１．６および８Ｈｚ、４Ｈ）、７．３５−７．４１（ｍ、６Ｈ）、５．３０−５．３５（ｍ、４Ｈ）、４．５５−４．５７（ｍ、１Ｈ）、３．７０−３．７６（ｍ、１Ｈ）、３．６５（ｔ、Ｊ〜６．４Ｈｚ、２Ｈ）、３．４７−３．５０（ｍ、１Ｈ）、３．３５−３．４０（ｍ、１Ｈ）、１．９６−２．０９（ｍ、８Ｈ）、１．８０−１．９１（ｍ、１Ｈ）、１．６５−１．７９（ｍ、１Ｈ）、１．５１−１．６２（ｍ、８Ｈ）、１．２１−１．４２（ｍ、１６Ｈ）、１．０４（ｓ、９Ｈ）；ＴＬＣ：ＳｉＯ２、ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：９）、Ｒｆ〜０．７５。
【０１０９】
４６（１９６ｍｇ、０．３１１ｍｍｏｌ）とｎ−テトラブチルアンモニウムフルオライド（１．５５ｍＬの１Ｍ  ＴＨＦ溶液、１．５５ｍｍｏｌ）の混合物のＴＨＦ（４ｍＬ）溶液を、室温で３時間撹拌し、その後、真空で蒸発させて乾燥させた。残渣を、溶出液として１０％ＥｔＯＡｃ／ヘキサンを使用して、ＳｉＯ２カラムクロマトグラフィーにより精製すると、アルコール４７（１０２ｍｇ、８４％）が淡黄色の油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、４００ＭＨｚ）：δ５．３４−５．４０（ｍ、４Ｈ）、４．５６−４．５８（ｍ、１Ｈ）、３．８４−３．８９（ｍ、１Ｈ）、３．７０−３．７６（ｍ、１Ｈ）、３．６２−３．６５（ｍ、２Ｈ）、３．４７−３．５２（ｍ、１Ｈ）、３．３５−３．４１（ｍ、１Ｈ）、１．９６−２．０９（ｍ、８Ｈ）、１．７９−１．９０（ｍ、１Ｈ）、１．６２−１．７８（ｍ、１Ｈ）、１．５１−１．６１（ｍ、８Ｈ）、１．２２−１．４３（ｍ、１６Ｈ）；ＴＬＣ：ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（３：７）、Ｒｆ〜０．５２。
【０１１０】
アルコール４７（１１．４ｍｇ、０．０３６ｍｍｏｌ）およびピリジニウムジクロメート（ＰＤＣ）（８１ｍｇ、０．２１６ｍｍｌ）の乾燥ＤＭＦ（１．５ｍＬ）溶液を、室温で２０時間撹拌し、その後、Ｈ２Ｏ（２ｍＬ）で希釈し、ＥｔＯＡｃ（３×５ｍＬ）で抽出した。合わせた有機抽出物を、Ｈ２Ｏ、食塩水で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、蒸発させた。残渣をＥｔ２Ｏ／ＭｅＯＨ（４：１、３ｍＬ）に溶解し、過剰のＣＨ２Ｎ２に０℃で３０分間曝露させた。全ての揮発性物質を真空で除去し、残渣をＰＴＬＣ［ＳｉＯ２、ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（２：３）、Ｒｆ〜０．６５］により精製すると、エステル４８（７ｍｇ、６２％）が無色油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、４００ＭＨｚ）：δ５．３５−５．４１（ｍ、４Ｈ）、４．５６−４．５８（ｍ、１Ｈ）、３．８４−３．８９（ｍ、１Ｈ）、３．７０−３．７６（ｍ、１Ｈ）、３．６６（ｓ、３Ｈ）、３．４７−３．５２（ｍ、１Ｈ）、３．３５−３．４１（ｍ、１Ｈ）、２．３１（ｔ、Ｊ〜７．６Ｈｚ、２Ｈ）、１．９４−２．０９（ｍ、８Ｈ）、１．７８−１．９０（ｍ、１Ｈ）、１．６４−１．７８（ｍ、１Ｈ）、１．４５−１．６２（ｍ、６Ｈ）、１．２１−１．４２（ｍ、１６Ｈ）。
【０１１１】
上記のＴＨＰ−エステル４８（７ｍｇ、０．０１６ｍｍｏｌ）およびＰＰＴＳ（１ｍｇ）の溶液を、ＭｅＯＨ（１ｍＬ）中室温で撹拌した。１２時間後、溶媒を真空で除去し、残渣をＥｔＯＡｃ（４ｍＬ）に溶解し、Ｈ２Ｏ、食塩水で洗浄し、乾燥し、蒸発させて乾燥させた。残渣をＰＴＬＣ（ＳｉＯ２、ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（２：３）、Ｒｆ〜０．４２）により精製すると、ヒドロキシ−エステル４９（４．３ｍｇ、８０％）が無色油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、４００ＭＨｚ）：δ５．３６−５．４２（ｍ、４Ｈ）、３．６７（ｓ、３Ｈ）、３．６６（ｔ、Ｊ〜６．８Ｈｚ、２Ｈ）、２．３１（ｔ、Ｊ〜７．２Ｈｚ、２Ｈ）、１．９９−２．０８（ｍ、８Ｈ）、１．６８（五重線、Ｊ〜７．２Ｈｚ、２Ｈ）、１．５５−１．６１（ｍ、２Ｈ）、１．２８−１．３９（ｍ、１５Ｈ）。
【０１１２】
ヒドロキシ−エステル４９（１１ｍｇ、０．０３４ｍｍｏｌ）の加水分解は、室温で一晩、ＴＨＦ／Ｈ２Ｏ（５：１、２ｍＬ）中ＮａＯＨ（Ｈ２Ｏ中０．１３４ｍＬの１Ｍ水溶液）を使用して達成された。ＴＨＦは、真空で除去し、残りの水性混合物は１Ｍシュウ酸を使用してｐＨ４に酸性化した。得られた濁った懸濁液は、ＥｔＯＡｃ（３×５ｍＬ）で抽出し、合わせた抽出物は、Ｈ２Ｏ、食塩水で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、真空で蒸発させた。残渣をＰＴＬＣ［ＳｉＯ２：ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：１）、Ｒｆ〜０．３］により精製すると、２０−ヒドロキシエイコサ−５（Ｚ），１４（Ｚ）−ジエン酸（５０）（８ｍｇ、７８％）が淡黄色の油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、３００ＭＨｚ）：δ５．３６−５．４２（ｍ、４Ｈ）、３．６６（ｔ、Ｊ〜６．８Ｈｚ、２Ｈ）、２．３５（ｔ、Ｊ〜７．５Ｈｚ、２Ｈ）、１．９８−２．１１（ｍ、８Ｈ）、１．６９（五重線、Ｊ〜７．５Ｈｚ、２Ｈ）、１．５６−１．６０（ｍ、２Ｈ）、１．２８−１．３９（ｍ、１５Ｈ）。
【０１１３】
２０−ヒドロキシエイコサ−６（Ｚ），１５（Ｚ）−ジエン酸（５４）の調製：ジエン４６（９２ｍｇ、０．１４６ｍｍｏｌ）とＰＰＴＳ（１０ｍｇ）の混合物のＭｅＯＨ（４ｍＬ）溶液を、室温で一晩維持し、真空で濃縮してメタノールを除去し、ＥｔＯＡｃ（２０ｍＬ）で希釈し、Ｈ２Ｏ、食塩水で洗浄し、Ｎａ２ＳＯ４で乾燥させ、真空で蒸発させて乾燥させた（スキーム６）。残渣をＳｉＯ２カラムクロマトグラフィーにより精製すると、アルコール５１（６２ｍｇ、７９％）が無色油状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、４００ＭＨｚ）：δ７．６６（ｄｄ、Ｊ〜１．６および８Ｈｚ、４Ｈ）、７．３５−７．４１（ｍ、６Ｈ）、５．３６−５．４２（ｍ、４Ｈ）、３．６１−３．６７（ｍ、４Ｈ）、１．９６−２．０９（ｍ、８Ｈ）、１．５５−１．６６（ｍ、６Ｈ）、１．２２−１．４１（ｍ、１５Ｈ）、１．０４（ｓ、９Ｈ）；ＴＬＣ：ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（２：３）、Ｒｆ〜０．４５。
【０１１４】
アルコール５１（６２ｍｇ）を、４７から４８への転換（スキーム５）に記載したようにエステル５２（６５％）に変換した。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、４００ＭＨｚ）：δ７．６６（ｄｄ、Ｊ〜１．６および８Ｈｚ、４Ｈ）、７．３５−７．４１（ｍ、６Ｈ）、５．３５−５．４２（ｍ、４Ｈ）、３．６６（ｓ、３Ｈ）、３．６３−３．６６（ｍ、２Ｈ）、２．３１（ｔ、Ｊ〜７．６Ｈｚ、２Ｈ）、１．９４−２．０６（ｍ、８Ｈ）、１．６０−１．６５（ｍ、２Ｈ）、１．５５−１．６０（ｍ、２Ｈ）、１．２６−１．４８（ｍ、１４Ｈ）、１．０４（ｓ、９Ｈ）；ＴＬＣ：ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：１）、Ｒｆ〜０．６２。
【０１１５】
シリル−エステル５２（２８ｍｇ）を、４６から４７への転換（スキーム５；図８Ｅ）に記載したように、アルコール５３（１１ｍｇ、８０％）に脱シリル化した。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、４００ＭＨｚ）：δ５．３５−５．４２（ｍ、４Ｈ）、３．６６（ｓ、３Ｈ）、３．６２−３．６５（ｍ、２Ｈ）、２．３１（ｔ、Ｊ〜７．６Ｈｚ、２Ｈ）、１．９８−２．０８（ｍ、８Ｈ）、１．５１−１．６９（ｍ、４Ｈ）、１．２２−１．４９（ｍ、１５Ｈ）；ＴＬＣ：ＳｉＯ２：ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（２：３）、Ｒｆ〜０．４５。
【０１１６】
エステル５３（１０ｍｇ）を、４９から５０への転換（スキーム５；図８Ｅ）に記載したように、酸５４（８ｍｇ、７８％）に変換した。１Ｈ  ＮＭＲ（ＣＤＣｌ３、３００ＭＨｚ）：δ５．３０−５．４２（ｍ、４Ｈ）、３．６６（ｄｔ、Ｊ〜０．９および６．３Ｈｚ、２Ｈ）、２．３５（ｔ、Ｊ〜７．２Ｈｚ、２Ｈ）、１．９８−２．０９（ｍ、８Ｈ）、１．５４−１．６７（ｍ、４Ｈ）、１．２４−１．５０（ｍ、１５Ｈ）；ＴＬＣ：ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（１：１）、Ｒｆ〜０．３。
【０１１７】
２０−ヒドロキシエイコサン酸（５５）および１９−ヒドロキシノナデカン酸（５６）の調製：エステル８ｂ（５ｍｇ）と１０％Ｐｄ／Ｃ（２ｍｇ）の混合物のＥｔＯＨ／ＥｔＯＡｃ（９：１、３ｍＬ）溶液を、水素圧（１ａｔｍ）下で８時間撹拌した。等容積のＥｔ２Ｏで希釈した後、反応混合物をセライトパッドを通して濾過し、フィルターケークをＥｔ２Ｏ（４ｍＬ）で洗浄した。合わせた濾液の蒸発により、メチル２０−ヒドロキシエイコサノエート（５ｍｇ、９８％）が無色ゴム状物として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（２５０ＭＨｚ、ＣＤＣｌ３）：（１．２０−１．４２（ｍ、３０Ｈ）、１．５１−１．６８（ｍ、４Ｈ）、２．３２（ｔ、Ｊ〜７．３Ｈｚ、２Ｈ）、３．６５（ｔ、Ｊ〜６．６Ｈｚ、２Ｈ）、３．６８（ｓ、３Ｈ）；ＴＬＣ：ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（３：７）、Ｒｆ〜０．３７。
【０１１８】
ＬｉＯＨ（４５μｌの１Ｍ水溶液）を、撹拌している室温の、上記のエステル（５．２ｍｇ、０．０１５ｍｍｏｌ）のＴＨＦ／Ｈ２Ｏ（５：１、１．５ｍＬ）溶液に加えた。１０時間後、ｐＨを、１Ｍシュウ酸を使用して４に調整し、反応混合物をＥｔＯＡｃ（３×４ｍＬ）で抽出した。合わせた有機抽出物を真空で蒸発させると、２０−ヒドロキシエイコサン酸（５５）（４．５ｍｇ、９２％）が固体（融点８６℃）として得られた。１Ｈ  ＮＭＲ（２５０ＭＨｚ、ＣＤ３ＯＤ）：δ１．２０−１．４５（ｍ、３０Ｈ）、１．４５−１．６３（ｍ、４Ｈ）、２．２８（ｔ、Ｊ〜７．４Ｈｚ、２Ｈ）、３．５５（ｔ、Ｊ〜６．５Ｈｚ、２Ｈ）；ＴＬＣ：ＥｔＯＡｃ／ヘキサン（３：７）、Ｒｆ〜０．０８。１９−ヒドロキシノナデカン酸（５６）は、エステル８ａから類似の方法で調製した。
【０１１９】
エイコサテトラエン−１，２０−二酸：エス・マンナ（Ｓ.Ｍａｎｎａ）等、Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ  Ｌｅｔｔ．２４：３３−３６、１９８３に記載のように、２０−ＨＥＴＥ（９ａ）から８４％収率で調製。
【０１２０】
統計
平均値±１  ＳＥＭを提示する。グループ間およびグループ内での平均値の差異の有意性は、反復測定の分散分析、続いて、ダンカン多重範囲試験を使用して決定した。両側試験を使用してＰ値が＜０．０５を、有意であると考えた。
【０１２１】
結果
２０−ＨＥＴＥへの血管収縮神経応答における、ヒドロキシル基の位置の効果
２０−ＨＥＴＥ誘導体に対する血管収縮神経応答を、図２に提示する。腎小葉間細動脈において、２０−ＨＥＴＥ（１０−８〜１０−６Ｍ）は、濃度依存的な直径の減少を引き起こした（−４．３±０．８〜−２２．５±１．５μｍ、ｎ＝７）（図２Ａ）。血管直径を減少させた２０−ＨＥＴＥの閾値濃度は、１０ｎＭであった。これに対し、５（Ｓ）−、８（Ｓ）−、１２（Ｓ）、１５（Ｓ）、および１９（Ｓ）−ＨＥＴＥは、１μＭの濃度でさえ、腎小葉間動脈の直径に対して全く有意な効果を及ぼさなかった（図２Ａ）。
【０１２２】
２０−ＨＥＴＥへの血管収縮神経応答における他の構造特徴の重要性
２０−ＨＥＴＥへの血管収縮神経応答における、炭素鎖長を変化させることの効果は、図２Ｂに提示する。２１−炭素およびジメチル誘導体は、２０−ＨＥＴＥと全く同様に強力な血管収縮剤であった。しかし、２０−炭素上にヒドロキシル基がないアラキドン酸、２０−ＨＥＴＥの１９−炭素類似体および２０−カルボキシ−アラキドン酸は、血管直径に対して全く有意な効果を及ぼさなかった。同様に、分子の三次構造を変化させるために二重結合を削除した飽和２０−ＨＥＴＥ誘導体は、血管直径に対して全く効果を及ぼさなかった（図２Ｂ）。これに対し、４個中２個のみ二重結合を除去した部分飽和２０−ＨＥＴＥ誘導体は、２０−ＨＥＴＥと同様に強力な収縮剤であった（図２Ｂ）。興味深いことに、部分飽和逆２０−ＨＥＴＥ類似体における炭素１および２０上のヒドロキシル−およびカルボキシ−基の位置を逆転させることにより、アゴニスト活性は消失した（図２Ｂ）。
【０１２３】
２０−ＨＥＴＥアンタゴニスト活性の決定基
我々はまた、不活性２０−ＨＥＴＥ類似体が、２０−ＨＥＴＥに対する血管収縮神経応答のアンタゴニストとして貢献し得るかどうかについて研究した。２０−ＨＥＴＥに対する用量応答曲線を、浴に０．５〜１ｍＭの異なる類似体を添加する前および後に、単離灌流腎血管で作成した。対照条件下で、２０−ＨＥＴＥ（１０−８〜１０−６Ｍ）は、用量依存的な内径の減少を引き起こした（−６．４±１．２から−２１．８±１．０μｍ、ｎ＝１０）（図３Ａ）。５−（ｎ＝５）または１５−ＨＥＴＥ（ｎ＝５）を浴に添加することにより、２０−ＨＥＴＥに対する血管収縮神経応答は完全に遮断された（図３Ａ）。同様に、１９−ＨＥＴＥの添加後、Ｃ１９−類似体（ｎ＝６）または部分飽和逆２０−ＨＥＴＥ（ｎ＝３）を浴に添加すると、２０−ＨＥＴＥに対する応答は完全に消失した（図３Ｂ）。
【０１２４】
他の実験では、ヒドロキシル基を、２０−ＨＥＴＥの疎水性頭部の近くに移動することの、アンタゴニスト活性に対する効果を調べた。この研究では、２０−ＨＥＴＥ（１０−８〜１０−６Ｍ）は、対照条件下で、−５．３±０．６から−１９．２±１．９μｍ（ｎ＝７）へと血管直径の減少を引き起こした（図４Ａ）。８（Ｓ）−または１２（Ｓ）−ＨＥＴＥ（１μＭ）の添加は、２０−ＨＥＴＥへの血管収縮神経応答に対して有意な効果を及ぼさなかった（図４Ａ）。８（Ｓ）−ＨＥＴＥの存在下で、２０−ＨＥＴＥ（１０−８〜１０−６Ｍ）は、依然として、これらの血管直径を、−２．８±０．７から−１６．９±０．２μｍ（ｎ＝３）へと減少させた。同様に、１２（Ｓ）−ＨＥＴＥの存在下で、２０−ＨＥＴＥ（１０−８〜１０−６Ｍ）は、依然として、血管直径の、−５．５±１．７から−１６．２±２．９μｍ（ｎ＝５）への減少を引き起こした（図４Ａ）。
【０１２５】
ヒドロキシル基のない２０−ＨＥＴＥ類似体は、２０−ＨＥＴＥへの血管収縮神経応答の真の競合的アンタゴニストとして貢献することを示す。例えば、アラキドン酸（１μＭ）は、期待された通り、１μＭの２０−ＨＥＴＥに対する血管収縮神経応答を５０％減少させた（図４Ｂ）。しかし、２０−カルボキシ−ＡＡには、有意なアンタゴニスト特性が全くなかった（図４Ｂ）。
【０１２６】
我々は、次に、２０−ＨＥＴＥアンタゴニスト活性に対する二重結合の重要性について評価した。これらの実験において、２０−ＨＥＴＥ（１０−８〜１０−６Ｍ）は、これらの血管の直径を−５．１±０．５から−１８．９±０．８μｍ（ｎ＝１０）に減少させた（図４Ｂ）。飽和１９−炭素類似体を浴に添加することにより、２０−ＨＥＴＥに対する血管収縮神経応答は約５０％減少した（図４Ｂ）。同様に、飽和２０−ＨＥＴＥ誘導体もまた、競合的アンタゴニスト活性を示した（図４Ｂ）。この化合物の存在下で、２０−ＨＥＴＥ（１０−８〜１０−６Ｍ）のみが、血管直径を、−０．９±１．３から−７．０±２．９μｍ（ｎ＝５）へと減少させた（図４Ｂ）。
【０１２７】
我々がアゴニストまたはアンタゴニスト活性を実証した具体的な化合物の例の要約は、図５に提示する。図５から理解されるように、既知のアゴニストおよびアンタゴニスト特性を有する本明細書で記載した全ての化合物が、非極性頭部と２０−ＨＥＴＥのようなループ構造を必要とし、また、２０−炭素の近くにヒドロキシル基またはいくつかの他の反応基を必要とする。化合物が、二重結合から５〜６炭素に等価な距離にヒドロキシル基または反応基を有する場合、それはアゴニストである。ＯＨ基が二重結合から僅か４炭素またはいずれかに位置する場合、それはアンタゴニストである。これらの具体例から、我々は、図６に、アゴニストおよびアンタゴニスト活性に必要とされるより一般的な構造の記載を導いた。また、本明細書で記載したアッセイを使用してアゴニストまたはアンタゴニスト活性を示す、本明細書で提示した情報に基づき予測される、関連した構造の具体例も示す（図７）。
【０１２８】
議論
本研究で、一連の２０−ＨＥＴＥ類似体の血管効果を、この化合物に対する血管収縮神経応答の構造決定基を決定するために調べた。我々の結果により、２０−炭素上にヒドロキシル基がないことにより、２０−ＨＥＴＥとは異なるアラキドン酸は、腎小葉間動脈を収縮しないことが示される。同様に、ヒドロキシル基が他の炭素上に位置する、５−、８−、１２−、１５−および１９−ＨＥＴＥは、血管直径に対して全く効果を及ぼさない。さらに、２０−ＨＥＴＥの１９−炭素誘導体もまた、血管緊張に対して全く効果を及ぼさなかった。これに対し、２１−ＨＥＴＥおよびジメチル２０−ＨＥＴＥは、２０−ＨＥＴＥと同等に強力な収縮剤である。これらの結果により、２０−ＨＥＴＥに対する血管収縮神経応答は、２０または２１炭素上のヒドロキシル基の存在に決定的に依存していることが示される。
【０１２９】
我々はまた、血管収縮神経特性に対する２０−ＨＥＴＥの三次構造の重要性を調べた。２０−ＨＥＴＥおよび他のエイコサノイドの特徴的なループ構造は、分子の二重結合間の相互作用により決定される。それ故、飽和および部分飽和２０−ＨＥＴＥ類似体に対する血管応答を、天然化合物のものと比較した。我々は、飽和２０−ＨＥＴＥ類似体は、血管緊張に対して全く効果を及ぼさないが、５、６および１４、１５−炭素間の二重結合が損なわれていない部分飽和類似体は、血管収縮神経活性を保持することを発見した。これらの知見により、２０−ＨＥＴＥのループ構造もまた、その血管収縮神経特性に重要であることが示される。
【０１３０】
本研究でおそらく最も感極まる知見は、血管収縮神経活性のない２０−ＨＥＴＥ類似体がアンタゴニストとして貢献できるということであろう。これに関して、アラキドン酸、５−、１５−、１９−ＨＥＴＥおよび１９−ＨＥＴＥおよびＣ１９類似体は全て、２０−ＨＥＴＥに対する血管収縮神経応答の非常に効果的なアンタゴニストであった。また、アンタゴニスト活性の予測構造決定基もあった。従って、２０−ＨＥＴＥのループ構造の疎水性性質を保持することは、アンタゴニスト活性に重要であることが示される。例えば、分子の頭部近くにヒドロキシル基を有する、１２−または８−ＨＥＴＥのような分子は、推定上の２０−ＨＥＴＥ結合部位と相互作用できず、２０−ＨＥＴＥに対する血管収縮神経応答に拮抗しなかった。このことから、１１（Ｓ）−および７（Ｓ）−ＨＥＴＥおよび８、９−および１１、１２−ＥＥＴｓおよびＤｉＨｅｔｅｓは、２０−ＨＥＴＥアンタゴニストとして効果がないことが予測される。
【０１３１】
我々はまた、２０−ＨＥＴＥ類似体の二重結合および損なわれていないループ構造は、アンタゴニスト活性の重要な決定基であることを発見した。これに関して、２０−ＨＥＴＥの飽和Ｃ１９−およびＣ２０−類似体は、２０−ＨＥＴＥに対する血管収縮神経応答の拮抗において、親化合物ほど効果的ではなかった。アゴニスト活性をもつ類似体についての我々の知見と類似して、我々は、唯一対の二重結合が、アンタゴニスト活性の維持に必要であることを発見した。これに関して、部分飽和逆２０−ＨＥＴＥ類似体は、２０−ＨＥＴＥに対する血管収縮神経応答を完全に遮断した。この化合物は特に興味深い。なぜなら、それは、８、９−および１１、１２−炭素の二重結合の除去により、シクロオキシゲナーゼおよびリポキシゲナーゼ酵素によるこの化合物の代謝が遮断されるために、他の類似体よりも生物学的により安定であるからである。この化合物の安定性は、β酸化およびエステル化による代謝を遮断する、イオン化可能なスルホンイミド基の添加により増強できる。この基の添加は、近年、インビボ生物学的利用能を増強し、２０−ＨＥＴＥ、ＥＥＴｓ、およびメカニズムに基づく、２０−ＨＥＴＥ合成阻害剤の生物活性を変化させないと報告されている（イミグ（Ｉｍｉｇ）等、Ｈｙｐｅｒｔｅｎｓｉｏｎ  ３３（第２部）：４０８−４１３、１９９９）。
【０１３２】
２０−ＨＥＴＥの血管収縮神経作用には明確な構造要求があり、密接に関連した不活性類似体は２０−ＨＥＴＥアンタゴニストとして貢献するという本知見は、２０−ＨＥＴＥ受容体の最初の証拠を提供する。しかし、この受容体の性質は、依然として決定されていない。古典的な受容体は、一般に、膜の細胞外表面と結合し、７トランスメンブランドメインファミリータンパク質のメンバーである。２０−ＨＥＴＥの、カリウムチャネル活性、血管緊張および成長、並びに腎尿細管におけるナトリウム輸送に対する効果は、ＰＫＣおよび／またはＭＡＰキナーゼチロシンキナーゼ活性の活性化に関連している（サン等、上記、１９９９）。２０−ＨＥＴＥは、細胞外受容体に作用するホルモンまたは傍分泌ホルモンではなくむしろ、キナーゼ活性の細胞内脂質アクチベーターとしてＤＡＧのように作用するようである。
【０１３３】
近年の研究により、２０−ＨＥＴＥは、腎血流、尿細管糸球体フィードバック、腎ナトリウム輸送、肺機能、および数多くの血管作用性ホルモンおよび成長因子に対する分裂促進応答および血管収縮神経応答の自己調節に、二次メッセンジャーとして重要な役割を果たすことが示されている（ローマン、上記、１９９９）。ＡＡのＰ４５０代謝物の形成は、遺伝および実験モデルの高血圧症（ステック・デー・イー（Ｓｔｅｃ，Ｄ.Ｅ.）等、Ｈｙｐｅｒｔｅｎｓｉｏｎ  ２７１：１３２９−１３３６、１９９６；サセルドチ・デー（Ｓａｃｅｒｄｏｔｉ，Ｄ.）等、Ｓｃｉｅｎｃｅ  ２４３：３８８−３９０、１９８９；ステック・デー・イー等、Ｈｙｐｅｒｔｅｎｓｉｏｎ  ２７：５６４−５６８、１９９６）、糖尿病（イマオカ・エス（Ｉｍａｏｋａ，Ｓ.）等、Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｂｉｏｐｈｙｓ．Ｒｅｓ．Ｃｏｍｍ．１５２：６８０−６８７、１９８８）、肝腎症候群（サセルドチ・デー等、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．１００：１２６４−１２７０、１９９７）および妊娠中毒症で変化する。２０−ＨＥＴＥはまた、アンギオテンシンＩＩ、エンドセリン、および一酸化窒素シンターゼ阻害剤の血管収縮神経作用、およびＰＴＨ、ドーパミン、ＡＩＩ、ブラジキニン、エンドセリン、バソプレッシンおよびＴＮＦの、腎のナトリウム輸送に対する阻害効果に寄与する（ローマン・アール・ジェイ、上記、１９９９）。腎および肺機能の調節、血管緊張および動脈圧の制御にこの物質は重要な役割を果たしていることから、２０−ＨＥＴＥアンタゴニストおよび安定な類似体は、これらの疾患のいくつかの処置における治療効力を有し得るようである。少なくとも、これらの類似体は、研究者に、２０−ＨＥＴＥシグナル伝達経路、並びに腎および心血管機能の制御におけるこの物質の役割を調査するための非常に重要で新しいツールを提供する。
【０１３４】
類似体およびアンタゴニストの使用
シトクロムＰ４５０酵素によるアラキドン酸の腎代謝
長年、シクロオキシゲナーゼおよびリポキシゲナーゼ酵素は、アラキドン酸（ＡＡ）を代謝し、また、形成された産物は、腎機能と血管緊張の両方に影響を及ぼすことが認識されてきた（マクギフ・ジェイ・シー（ＭｃＧｉｆｆ，Ｊ.Ｃ.）、Ａｎｎ．Ｒｅｖ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．Ｔｏｘｉｃｏｌ．３１：３３９−３６９、１９９１）。しかし、ここ１０年で新規なＡＡ代謝経路が出現した。実際、近年の研究により、身体中の小血管、腎の糸球体および尿細管、および肺血管系および気道において、ＡＡは、主に、シトクロムＰ４５０酵素により、エポキシエイコサトリエン酸（ＥＥＴｓ）、ジヒドロキシエイコサトリエン酸（ＤｉＨＥＴＥｓ）および１９−および２０−ヒドロキシエイコサテトラエン酸（１９−および２０ＨＥＴＥ）に代謝されることが示されている。また現在、これらの代謝物は、血管緊張、腎機能、肺機能の調節に、二次メッセンジャーとして中心的な役割を果たし、また、様々な疾患状態の血管および腎臓に対する、マイトジェンの有害な効果を媒介することが明らかになっている（ハーダー・デー・アール等、Ｊ．Ｖａｓｃ．Ｒｅｖ．３２：７９−９２、１９９５；ラーマン・エム（Ｒａｈｍａｎ，Ｍ.）等、Ａｍ．Ｊ．Ｈｙｐｅｒｔｅｎｓ．１０：３５６−３６５、１９９７；マクギフ・ジェイ・シー、上記、１９９１）。
【０１３５】
シトクロムＰ４５０  ４Ａファミリーの酵素（ＣＹＰ  ４Ａ）は、２０−ＨＥＴＥの形成を触媒する。この酵素のファミリーの１３個の異なるアイソフォームをコード化するｃＤＮＡが、現在、様々な種で同定されている。ＣＹＰ  ４Ａ１１およびＣＹＰ  ４Ｆ２は、ヒト腎で発現され、ＣＹＰ  ４Ｆ２は、人間の２０−ＨＥＴＥの形成に主に関与するアイソフォームであることが示されている（シンプソン・エー・イー・シー・エム（Ｓｉｍｐｓｏｎ，Ａ.Ｅ.Ｃ.Ｍ）、Ｇｅｎ．Ｐｈａｒｍａｃ．２８：３５１−３５９、１９９７）。ＣＹＰ  ４Ａ１、４Ａ２、４Ａ３、および４Ａ８の４個のアイソフォームが、ラット腎からクローン化されている。ＣＹＰ  ４Ａ８を除く全てが、アラキドン酸と共にインキュベートした場合に２０−ＨＥＴＥを産生する。ＣＹＰ  ４Ａ２および４Ａ３アイソフォームのメッセージは、身体中の小細動脈、腎の糸球体および尿細管および気道および肺の血管系に発現される。同様に、ＣＹＰ  ４Ａタンパク質は、腎および脳動脈、腎および気道および肺の血管系に検出できる（ズー等、上記、１９９８；ヤコブズ等、上記、１９９９）。小血管、腎および肺組織は全て、ＡＡとインキュベートした場合に２０−ＨＥＴＥを産生する。
【０１３６】
多くの因子が、シトクロムＰ４５０酵素の発現を調節する。ＣＹＰ  ４Ａ１および４Ａ３  ｍＲＮＡおよびタンパク質は、新生児ラット腎では高度に発現されているが、成体期になりレベルは下降する。これに対し、ＣＹＰ  ４Ａ２タンパク質は、新生児腎では発現されていないが、年齢と共にレベルは増加し、成体ラット腎に発現される主なアイソフォームとなる（オマタ・ケー（Ｏｍａｔａ，Ｋ.）等、Ａｍ．Ｊ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．２６２：Ｆ８−Ｆ１６、１９９２）。近位尿細管において、アンギオテンシンＩＩ（ＡＩＩ）は、ＥＥＴｓの形成を増加させるが、上皮成長因子（ＥＧＦ）、ドーパミンおよび副甲状腺ホルモン（ＰＴＨ）は、２０−ＨＥＴＥの形成を増加させる（リン・エフ、上記、１９９５；オミナト・エム（Ｏｍｉｎａｔｏ，Ｍ.）、Ｊ．Ｍｅｍｂｒａｎｅ  Ｂｉｏｌ．１５２：２３５−２４３、１９９６；ラーマン・エム等、上記、１９９７）。ＴＡＬＨでは、様々なペプチドホルモンが、２０−ＨＥＴＥの形成を増加させる（フレーザー・エル・ダブリュー（Ｆｒａｚｉｅｒ，Ｌ.Ｗ.）およびティー・ヨリオ（Ｔ.Ｙｏｒｉｏ）、Ｐｒｏｃ．Ｓｏｃ．Ｅｘｐ．Ｂｉｏｌ．Ｍｅｄ．２０１：２２９−２４３、１９９２；マクギフ・ジェイ・シー、上記、１９９１）。腎および血管系におけるＣＹＰ  ４Ａタンパク質の発現は、高塩分食餌を与えたラットにおいてダウンレギュレートされており、これは、循環ＡＩＩレベルが静脈内注入により維持される場合、防ぐことができる。これに対し、高塩分摂取は、腎におけるＣＹＰ  ２Ｃ２３の発現およびＥＥＴｓの形成を増加させる（マキタ・ケー（Ｍａｋｉｔａ，Ｋ.）等、ＦＡＳＥＢ  Ｊ．１０：１４５６−１４６３、１９９６）。
【０１３７】
腎ＣＹＰ  ４Ａ活性は、グルココルチコイド、鉱質コルチコイド、およびプロゲステロンにより増加する。クロフィブラートなどの抗脂血症剤は、肝および腎において、ＣＹＰ  ４Ａ１および３の発現および２０−ＨＥＴＥの合成を誘導する（マクギフ・ジェイ・シー、上記、１９９１；シンプソン・エー・イー・シー・エム、上記、１９９７）。フェノバルビトール、３−メチルクロロアンテレン、および３，４ベンゾ（ア）ピレンなどの他のＰ４５０酵素誘導物質は、腎ＣＹＰ  ４Ａ活性を変化させない（シンプソン・エー・イー・シー・エム、上記、１９９７）。ＡＩＩ、バソプレッシン、およびエンドセリンなどの様々な重要な心血管ホルモンが、ホスホリパーゼを活性化し、２０−ＨＥＴＥの合成および放出を増加させ、２０−ＨＥＴＥはこれらのアゴニストに対する血管収縮神経応答に寄与する（シンプソン・エー・イー・シー・エム、上記、１９９７）。
【０１３８】
ＣＹＰ  ４Ａ活性は、糖尿病、妊娠中毒症、肝腎症候群、シクロスポリン誘導腎毒性において、および様々なモデルの高血圧症において上昇している（マキタ・ケー等、上記、１９９６；ラーマン・エム等、上記、１９９７）。妊娠中毒症、肝腎症候群、シクロスポリン誘導腎毒性および高血圧症は全て、血管での２０−ＨＥＴＥの過産生により媒介され得る、強力な腎および末梢血管収縮を特徴とする疾患である。２０−ＨＥＴＥの過産生はまた、血管壁の肥大を生じ、管腔を狭窄する成長因子として作用し得る。これにより最終的に、全てこれらの疾患の長期の結果である、心臓発作、卒中または腎不全がもたらされる。これらの観察により、２０−ＨＥＴＥの合成阻害剤またはその作用のアンタゴニストは、最終的には死亡率および罹患率の多くを説明する腎および血管機能に対する、これらの疾患の有害な影響を防ぐ上で治療効果を有するであろうことが示唆される。
【０１３９】
我々は、血圧を下げ、血管の狭窄を防ぐために、毎日の基礎として、経口で活性な長時間作用する２０−ＨＥＴＥアンタゴニストで患者を処置することを提唱する。
【０１４０】
血管緊張調節における２０−ＨＥＴＥ
身体中の小血管は、ＣＹＰ  ４Ａ２  ｍＲＮＡおよびタンパク質を発現し、ＡＡと共にインキュベートした場合に２０−ＨＥＴＥをよく産生する。２０−ＨＥＴＥは、血管平滑筋細胞の強力な収縮剤である（ＥＣ５０＜１０−８Ｍ）。それは、ＫＣａチャネルの遮断に続き腎ＶＳＭ細胞を脱分極させることにより、およびＬ型Ｃａ２＋チャネルのコンダクタンスを増加させることにより、Ｃａ２＋侵入を促進する（ハーダー・デー・アール等、上記、１９９５）。２０−ＨＥＴＥ形成阻害剤は、ＶＳＭ細胞のＫＣａチャネルを活性化する。この効果は、ｎＭ濃度の２０−ＨＥＴＥにより逆転できる。これらの知見により、２０−ＨＥＴＥは、通常、身体中の小血管で産生され、ここで、それは、ＫＣａチャネルの活性を調節する細胞内二次メッセンジャーとして貢献することが示される（ゾー・エー・ピー等、上記、１９９６）。
【０１４１】
血管緊張調節における２０−ＨＥＴＥの役割の要約は、図９に提示する。膜伸展、血管作用性ホルモンおよびマイトジェンは、ホスホリパーゼＣを活性化し、続くＩＰ３の上昇により、細胞内Ｃａ２＋貯蔵の放出が引き起こされる。しかし、細胞内Ｃａ２＋濃度の上昇は、ＫＣａチャネルを活性化し、膜過分極が生じ、電位感受性チャネルを通るＣａ２＋流入は制限される。これは、逆効果であり、血管収縮に対抗する。それ故、細胞内Ｃａ２＋貯蔵の放出後にＶＳＭのＫＣａチャネルの活性化に対して緩衝するいくつかのメカニズムが存在するに違いない。これが、２０−ＨＥＴＥが重要な役割を果たしていると考えられる場所である。細胞内Ｃａ２＋濃度の上昇により、Ｃａ２＋感受性ホスホリパーゼＡおよびＤＡＧリパーゼは活性化され、アラキドン酸を放出する。アラキドン酸は、腎ＶＳＭ細胞のＫＣａチャネルを遮断する２０−ＨＥＴＥに変換され、膜脱分極、Ｃａ２＋流入増強、血管収縮神経応答の延長が生じる。このスキームによると、２０−ＨＥＴＥは、ホスホリパーゼを活性化し、細胞内カルシウムを放出する、膜伸展および全ての他の血管作用性ホルモンおよび成長因子に対する血管収縮神経応答を調節する、重要な二次メッセンジャーとして貢献する。
【０１４２】
２０−ＨＥＴＥは、インビボおよびインビトロ（ｉｎ  ｖｉｔｒｏ）の両方において、血管緊張の調節にこの役割を果たすという考慮すべき証拠が現在ある。これに関して、アラキドン酸は、単離灌流動脈の、経壁圧上昇に対する筋原性応答を増強させ、２０−ＨＥＴＥ形成阻害剤は、この応答を完全に遮断する（ハーダー・デー・アール等、上記、１９９５）。２０−ＨＥＴＥ形成阻害剤は、インビボで、腎および脳血流の自己調節を遮断する（ゾー・エー・ピー等、上記、１９９４）。それらはまた、バソプレッシン、アンギオテンシンＩＩ、エンドセリンおよびノルエピネフリンに対する血管収縮神経応答を、インビボおよびインビトロの両方で減弱する。
【０１４３】
２０−ＨＥＴＥはまた、腎の尿細管糸球体フィードバック（ＴＧＦ）応答のメディエータまたはモジュレーターである。この結論は、２０−ＨＥＴＥの形成に関与する酵素は、腎の密集斑で発現され（イトウ・オー（Ｉｔｏ，Ｏ．）等、Ａｍ．Ｊ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．２７４：Ｆ３９５−Ｆ４１４、１９９８）、また、２０−ＨＥＴＥは、腎導入細動脈の強力な収縮剤である（ゾー・エー・ピー等、上記）という知見に基づく。ヘンレ係蹄を灌流する液体にＡＡを添加することにより、インビボでのラットのＴＧＦ応答が増強され、また、ＴＧＦ応答は、尿細管灌流液へのＰ４５０阻害剤の添加により遮断されるという観察はさらにこの仮説を支持する。さらに、２０−ＨＥＴＥ含有溶液を用いてヘンレ係蹄を灌流することにより、インビボでのラットにおける化合物の内因性形成の遮断後にＴＧＦ応答は回復する。これらの研究により、２０−ＨＥＴＥは、ＴＧＦのメディエータとして貢献するか、または、密集斑により放出されるいくつかの他のメディエータに対する血管収縮神経応答を伝達するための、導入細動脈のレベルでの二次メッセンジャーとして作用することが示唆される（ゾー・エー・ピー等、上記、１９９４）。
【０１４４】
より近年の研究により、２０−ＨＥＴＥはまた、血管酸素センサーとして貢献し得、組織への酸素送達の変化に関連した血管緊張の変化を媒介し得ることが示された。この結論は、腎および脳細動脈の２０−ＨＥＴＥの産生は、インキュベート培地の酸素張力に決定的に依存しているという我々の知見に基づく（ハーダー・デー・アール等、上記、１９９６）。この反応のＫｍは、５０トルであり、これは、身体中の組織に見られるＰＯ２の次元である。さらに、近年の我々のグループの研究により、２０−ＨＥＴＥ形成阻害剤および本明細書で記載したいくつかの２０−ＨＥＴＥ受容体アンタゴニストは、組織ＰＯ２の上昇に対する血管収縮神経応答、および、高血圧症の用量依存的モデルの発達の中心である組織酸素送達の上昇に対する全身自己調節応答を遮断することが示された。これらの知見により、２０−ＨＥＴＥアンタゴニストは、塩感受性型の高血圧症の治療に治療価値を有することが示唆される。
【０１４５】
これに関して、経口活性２０−ＨＥＴＥアンタゴニストを用いた患者の処置により、身体中の血管に対する２０−ＨＥＴＥの血管収縮神経効果が遮断され、血圧は下がる。それはまた、血管壁に対する２０−ＨＥＴＥの成長促進効果も遮断し、よって、心臓発作、卒中および他の腎不全をもたらす、腎、脳および冠動脈の狭窄は軽減する。
【０１４６】
血管緊張の制御における２０−ＨＥＴＥ一酸化窒素相互作用
数多くの研究により、ＮＯの緊張性放出は、身体中の血管収縮神経の緩衝に重要な役割を果たしていることが示されている。一般には、ＮＯに対する血管拡張応答は、ｃＧＭＰの上昇により媒介されると考えられているが、ＮＯが、ｃＧＭＰ非依存性であるＫ＋チャネルおよび血管緊張に対して効果を及ぼすという証拠が増加している。ＮＯは、シトクロムＰ４５０  ４Ａ酵素のヘムに結合し、腎および脳細動脈の２０−ＨＥＴＥの形成を阻害する（サン等、上記、１９９８；アロンソ−ガリシア・エム等、Ａｍ．Ｊ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．２７５：Ｆ３７０−Ｆ３７８、１９９８）。また、２０−ＨＥＴＥ形成阻害は、腎および脳循環の両方においてＮＯのｃＧＭＰ非依存性効果を媒介するという証拠がある。これに関して、ＮＯは、ＶＳＭ細胞のＫＣａチャネルを活性化し、小血管を拡張させる。しかし、これらの効果は、グアニリルシクラーゼまたはＰＫＧの阻害剤により遮断できないので、ｃＧＭＰ非依存性である（サン・シー・ダブリュー等、上記、１９９８）。Ｋ＋チャネルおよび血管緊張に対するＮＯの効果は、浴に外因性２０−ＨＥＴＥを添加することにより、ＮＯ誘導２０−ＨＥＴＥレベル下降を防ぐことにより完全に遮断できる（サン・シー・ダブリュー等、上記、１９９８）。これらの知見により、ＮＯは、２０−ＨＥＴＥの形成を阻害し、これは、腎ＶＳＭ細胞のＫＣａチャネルを活性化することにより、ＮＯに対する血管拡張応答のｃＧＭＰ非依存性成分を媒介することが示される（アロンソ−ガリシア・エム等、上記、１９９８；サン・シー・ダブリュー、Ｃｉｒｃ．Ｒｅｓ．８３：１−１１、１９９８）。
【０１４７】
他の研究において、２０−ＨＥＴＥ形成阻害剤は、腎および脳循環において一酸化窒素に対する血管拡張応答および無傷動物の血圧の下降を遮断することが判明した（アロンソ−ガリシア・エム等、上記、１９９７）。それらはまた、敗血症ショックモデルの一酸化窒素シンターゼの誘導に関連した血圧下降および脳血流充血を防ぐ。これらの知見により、２０−ＨＥＴＥ受容体アンタゴニストは、一酸化窒素シンターゼの誘導に関連した敗血症ショックおよび他の炎症疾患モデルの治療に治療効果を有することが示される。
【０１４８】
これに関して、一酸化窒素は、ショックで過産生され、血圧を器官機能を維持できないレベルにまで下げることが知られている。２０−ＨＥＴＥアンタゴニストは、ＮＯの作用を遮断するので、２０−ＨＥＴＥアンタゴニストの静脈内投与で敗血症ショック患者を処置することにより、一酸化窒素の影響は軽減し、正常な血圧および心臓、腎臓および脳の灌流が回復する。この処置は、おそらく、毒性剤または感染が消失するまでの短期（１−３日間）である。
【０１４９】
一酸化窒素シンターゼ阻害剤ではなくむしろ２０−ＨＥＴＥアンタゴニストを使用する利点は、該アンタゴニストが、効果部位で一酸化窒素の作用を遮断することであり、よって、すでに患者がショックとなった後に使用できる。さらに、一酸化窒素シンターゼ阻害剤とは異なり、２０−ＨＥＴＥアンタゴニストは、基線組織血流を下げない。実際、ＮＯシンターゼ阻害剤により生じる著名な血管収縮神経は、著名な虚血性終末器官傷害を生じ、ショックの治療にこれらの薬剤を使用できない。
【０１５０】
腎臓機能の調節におけるＰ４５０エイコサノイド
腎臓の様々なネフロン区域のナトリウム輸送の調節における、二次メッセンジャーとしてのＡＡのＰ４５０代謝物の役割はまた、近年、動的な新しい分野として出現した。近位尿細管のナトリウム再吸収に対するこれらの化合物の効果の要約は、ローマン等、上記、１９９９に提示される。いくつかの研究所により、２０−ＨＥＴＥは、近位尿細管により産生されるＡＡの一次代謝物であり、２０−ＨＥＴＥは、Ｎａ−Ｋ−ＡＴＰアーゼのαサブユニットのＰＫＣ誘導リン酸化を増強することにより、このネフロン区域のＮａ−Ｋ−ＡＴＰアーゼ活性を阻害することが報告されている（アペリア・エー（Ａｐｅｒｉａ，Ａ.）等、Ａｄｖ．Ｐｈａｒｍａｃｏｌ．４２：８７０−８７６、１９９８；オミナト・エム等、上記、１９９６）。
【０１５１】
続く研究により、ドーパミンおよびＰＴＨの、近位尿細管のＮａ−Ｋ−ＡＴＰアーゼ活性およびナトリウム輸送に対する阻害効果は、ＰＬＡ２の活性化および２０−ＨＥＴＥの形成増強に関与することが示された。また、Ｐ４５０阻害剤は、近位尿細管再吸収に対するＡＩＩの阻害効果を遮断できるという証拠がある。この効果は、５、６ＥＥＴの増強された形成と関連し、これは、近位尿細管細胞の頂端膜へのＮＨ３、Ｎａ＋−Ｈ＋交換体の転位に影響を及ぼす（ラーマン・エム等、上記、１９９７）。
【０１５２】
２０−ＨＥＴＥはまた、ＴＡＬＨのクロライド輸送の調節に主な役割を果たす。エスカランテ（Ｅｓｃａｌａｎｔｅ）およびマギフ（マギフ・ジェイ・シー、上記、１９９１）は、初めて、２０−ＨＥＴＥは、ＴＡＬＨ細胞で産生されるＡＡの主要な代謝物であり、それは、このネフロン区域でＮａ＋−Ｈ＋−２Ｃｌ−共輸送を阻害することを報告した。その後のパッチクランプ研究により、２０−ＨＥＴＥは、ＴＡＬＨ細胞の頂端膜の７０−ｐＳ  Ｋ＋チャネルを遮断することが判明した（ワング（Ｗａｎｇ）等、Ｊ．Ｇｅｎ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．１０６：７２７−７４３、１９９５）。このチャネルの遮断は、Ｎａ＋−Ｈ＋−２Ｃｌ−輸送体を介した輸送におけるＫ＋利用能を制限し、ＴＡＬＨにおけるカチオン（Ｎａ＋、Ｋ＋、Ｃａ２＋およびＭｇ２＋）の受動再吸収の主な駆動力として貢献する管腔の正の経上皮電位を減少させる。この見解と一致して、インビトロで灌流した単離ＴＡＬＨの経上皮電位およびクロライド輸送を、Ｐ４５０阻害剤は、増加させ、２０−ＨＥＴＥは減少させる。より近年の研究により、Ｐ４５０阻害剤がまた、ＡＩＩ、ブラジキニン、エンドセリン、バソプレッシンおよびＴＡＬＨのナトリウム輸送に対する細胞内Ｃａ２＋濃度上昇の阻害効果を遮断することが示されている。腎でのナトリウム輸送調節における２０−ＨＥＴＥの重要性から、安定な２０−ＨＥＴＥ類似体は利尿剤であり、従って、鬱血性心不全、肺水腫、肝腎症候群および高血圧症などのナトリウム保持状態の治療に治療効果があるようである。
【０１５３】
水腫および細胞外容量増大を特徴とするこれらのナトリウム保持状態では、経口活性で安定な２０−ＨＥＴＥ類似体の投与により、２０−ＨＥＴＥは通常、近位尿細管およびＴＡＬＨでのナトリウム輸送を阻害するため、腎で蓄積され、ナトリウムおよび水の尿細管再吸収を阻害することが期待される。このプロセスは、最初の炭素上へのグルクロニド基の添加により薬物の尿への排泄を促進するために、カルボン酸基上に基を添加することにより促進され得る。尿細管再吸収阻害は、ナトリウム排泄を増加させ、血液および細胞外容量を減少させ、これらの状態の水腫の重度を減少させる。
【０１５４】
高血圧症の病理発生における２０−ＨＥＴＥの役割
いくつかの観察により、２０−ＨＥＴＥの腎形成の変化が、遺伝および実験モデルの高血圧症の発達に役割を果たすことが示唆される。これに関して、Ｐ４５０４Ａ２遺伝子は、自然発症高血圧症ラット（ＳＨＲ）の腎で選択的に過剰発現され（サデロチ・デー（Ｓａｄｅｒｏｔｉ，Ｄ.）等、上記、１９８９；ステック・デー等、上記、１９９６）、これは、腎における２０−ＨＥＴＥの産生と関連し、増強させる。２０−ＨＥＴＥ産生阻害剤の投与は、ＳＨＲの動脈圧を下げ、高血圧症の発達を防ぐことができる（サデロチ・デー等、上記、１９８９）。２０−ＨＥＴＥは、強力な血管収縮剤であるので（ハーダー・デー・アール等、上記、１９９５；ゾー・エー・ピー等、上記、１９９６）、２０−ＨＥＴＥは、腎血管抵抗およびＴＧＦ応答を上昇させることにより、ＳＨＲの圧力ナトリウム利尿関係の再設定に寄与し得る（ローマン・アール・ジェイ、Ａｍ．Ｊ．Ｈｙｐｅｒｔｅｎｓｉｏｎ、３：８９３−９００、１９９０）。２０−ＨＥＴＥ形成阻害剤はＳＨＲの上昇した腎血管緊張を逆転するという知見は、この仮説を支持する（イミグ・ジェイ等、Ａｍ．Ｊ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．２６６：Ｈ１８７９−Ｈ１８８５、１９９４）。より近年に、我々はまた、Ｐ４５０４Ａ遺伝型が、この集合において、基線平均動脈圧と同時分離するかどうかを決定するために、遺伝連鎖分析を完了した（スティー・デー・エフ（Ｓｔｅｅ，Ｄ.Ｆ.）等、上記、１９９６）。しかし、高い塩分摂取に曝露させたＦ２ラットのＰ４５０４Ａ遺伝型と動脈圧の変化の間に、有意な連鎖が検出された。これらの研究により、２０−ＨＥＴＥは、ＳＨＲの腎および末梢血管緊張の上昇に寄与し、Ｐ４５０４Ａ遺伝子型は、このモデルの塩感受性決定基を現すことが示される。これらの研究により、２０−ＨＥＴＥアンタゴニストは、抗高血圧症作用を有し、このモデルの高血圧症に関連した虚血糸球体損傷のいくつかを防ぐことを助けることが示唆される。
【０１５５】
ダール塩感受性（Ｓ）ラットは、正常圧ラットと同じ量のナトリウムおよび水を排泄するために、高い腎灌流圧を必要とし（ローマン・アール・ジェイ等、Ａｍ．Ｊ．Ｈｙｐｅｒｔｅｎｓｉｏｎ、１９９７）、これは、主に、厚いヘンレ係蹄上行脚のＣｌ−輸送の上昇に起因する（イトウ等、Ｈｙｐｅｒｔｅｎｓｉｏｎ  ３３（第２部）：４１９−４２３、１９９９）。Ｐ４５０４Ａファミリーの酵素によるＡＡの腎代謝における異常性は、ダールＳラットにおけるループＣｌ−輸送の増加および高血圧症の発達に寄与し得ることが示唆される５系統の証拠が現在ある。これに関して、２０−ＨＥＴＥの形成およびＰ４５０４Ａタンパク質レベルは、ダールＳラットのヘンレ係蹄で減少している（ステック・デー・イー等、上記、１９９６）。外因性２０−ＨＥＴＥの投与は、ループＣｌ−輸送を規格化する（ローマン・アール・ジェイ等、上記、１９９７）。Ｐ４５０４Ａ２遺伝子の遺伝マーカーは、ダールＳラットの高血圧症の発達と同時分離し、クロフィブラートを用いた２０−ＨＥＴＥ腎産生の誘導により、ダールＳラットの高血圧症の発達が防がれ（ステック・デー・イー等、上記、１９９６）、２０−ＨＥＴＥ腎形成の阻害は、高塩分食餌を投与した正常圧ラット株の高血圧症を引き起こす（ステック・デー・イー等、Ｈｙｐｅｒｔｅｎｓｉｏｎ、２９：３１５−３２０、１９９７）。
【０１５６】
これらの結果は、Ｐ４５０４Ａ２遺伝子座を、ダールＳラットにおける腎機能の変化および高血圧症の発達に寄与する候補遺伝子として関係づけ、２０−ＨＥＴＥアゴニストを用いた補充療法は、塩感受性高血圧症に治療効果を有することを示唆する。これに関して、安定な経口活性２０−ＨＥＴＥアゴニストの経口投与により、ナトリウムの尿細管再吸収は阻害され、ナトリウム排泄は増加し、血液量および血圧は下降する。
【０１５７】
また、２０−ＨＥＴＥは、実験モデル高血圧症に関連した血管緊張上昇および終末器官傷害に寄与するという証拠がある。これに関して、２０−ＨＥＴＥ形成遮断により、アンギオテンシンＩＩの慢性投与、エンドセリンおよび一酸化窒素シンターゼ遮断により生じる動脈圧の上昇は減弱する。（ローマン等、上記、１９９９）。また、２０−ＨＥＴＥ形成の遮断により、鉱質コルチコイド高血圧症の発達は減弱し、このモデルの高血圧症に関連した腎傷害および心肥大も防がれる。オエカン・エー・デー等、Ａｍ．Ｊ．Ｐｈｙｓｉｏｌ．２７６：Ｒ０００−Ｒ０００、１９９９（印刷中）。これらの研究により、２０−ＨＥＴＥ受容体アンタゴニストが、高血圧剤としての効力を有し、様々なモデルの高血圧症における腎および心末端器官傷害の防止において有益な効果を提供し得ることが示唆される。
【０１５８】
肺機能の調節における２０−ＨＥＴＥの役割
ウサギおよびヒトの肺において、２０−ＨＥＴＥの効果は、末梢血管系で見られるものとは反対である。ヤコブ・イー・エー等、上記、１９９９は、近年、ヒト、ウサギ、およびイヌ肺動脈および気管支環は全て、アラキドン酸とインキュベートした場合に２０−ＨＥＴＥをよく産生することを報告している。２０−ＨＥＴＥは、肺動脈および細気管支環の強力な拡張剤である。２０−ＨＥＴＥに対する血管拡張応答は、無傷内皮に依存し、シクロオキシゲナーゼ依存性である。２０−ＨＥＴＥは、肺組織から血管拡張性シクロオキシゲナーゼ産物の放出を刺激するか、または、２０−ＨＥＴＥ自身が、シクロオキシゲナーゼを介して、拡張性産物に代謝される。これらの研究により、２０−ＨＥＴＥおよび２０−ＨＥＴＥアゴニストは、肺性高血圧症患者の肺血管系の拡張に有用であることが示される。
【０１５９】
ヒト細気管支組織において、２０−ＨＥＴＥアゴニストは、強力な気管支拡張剤である。ヤコブ・イー・エー等、上記、１９９９。ナノモル濃度のこれらのアゴニストにより、喘息の標準的な臨床試験である、カルバコールにより産生される細気管支緊張の上昇は完全に遮断される。これらの研究により、安定な２０−ＨＥＴＥアゴニストは、喘息の治療の吸入気管支拡張剤として有用であることが示される。それらは、喘息吸入器に使用する他の薬剤（β−アゴニスト、ステロイド）の気管支拡張効果に耐性のある患者に特に有用であり得る。
【０１６０】
２０−ＨＥＴＥの分裂促進作用
血管緊張および腎ナトリウム輸送の調節以外に、２０−ＨＥＴＥが、腎および血管組織の両方において、血管作用性剤および成長因子の分裂促進作用を媒介する証拠が増加している。これに関して、ＥＥＴｓおよび２０−ＨＥＴＥは、様々な細胞型においてチミジン取込みを増加させる。Ｐ４５０阻害剤は、培養糸球体メサンギアム細胞において、血清、バソプレッシン、ＥＧＦおよびホルボールエステルに対する成長応答を減弱させる。２０−ＨＥＴＥ（１０−９Ｍ）は、培養したＬＬＣ−ＰＫ１およびＯＫ細胞の成長を促進し、Ｐ４５０阻害剤は、これらの細胞におけるＥＧＦの分裂促進作用を遮断する（リン・エフ等、上記、１９９５）。最後に、２０−ＨＥＴＥは、ＭＡＰキナーゼシグナルトランスダクションカスケードを活性化し、２０−ＨＥＴＥ産生の上昇は、培養大動脈ＶＳＭ細胞におけるＥＧＦの分裂促進効果を媒介する。（ウディン等、上記、１９９８）。これらの観察により、２０−ＨＥＴＥは、メサンギアム細胞の増殖、および高血圧症、糖尿病および免疫損傷に関連した糸球体硬化症の発達に重要な役割を果たし得ることが示唆される。これに関して、２０−ＨＥＴＥアンタゴニストは、糖尿病、高血圧症、シクロスポリン腎毒性および様々な腎炎症性疾患に関連した卒中、心疾患および腎傷害の発症を増加させる血管の狭窄を防ぐ治療効力を有する。さらに、２０−ＨＥＴＥは、腫瘍形成に関与する様々な成長因子の分裂促進作用および血管形成作用を媒介するので、２０−ＨＥＴＥアンタゴニストは、新生物組織の血管新生およびまたは成長を防ぐことにより、抗癌剤として有用であるようである。
【０１６１】
我々は、患者に、血管成長および肥大を制限し、心臓、腎臓および脳における虚血器官傷害（心臓発作、卒中および腎疾患）を防ぐ、経口活性で安定な２０−ＨＥＴＥアンタゴニストを投与することを考える。癌療法において、２０−ＨＥＴＥ経路の遮断により、腫瘍への血管成長は制限され得る。
【０１６２】
要約
腎機能および血管緊張の調節におけるＡＡのＰ４５０代謝物の役割は、急速に拡張している分野であるが、いくつかの一般的な概念はすでに出現している。第一に、ＶＳＭ細胞は２０−ＨＥＴＥを産生し、この物質は、筋原性応答、ＴＧＦ、血管肥大、Ｋ＋チャネル活性の調節による血管収縮剤および拡張剤に対する血管応答において重要な役割を果たす二次メッセンジャーとして貢献する。第二に、ＡＡのＰ４５０代謝物は、近位尿細管およびＴＡＬＨにおいてよく産生され、ナトリウム輸送調節の二次メッセンジャーとして貢献する。最後に、ＡＡのＰ４５０代謝物の腎形成は、高血圧症、糖尿病、肝腎症候群および妊娠において変化する。腎および血管機能の調節および様々なマイトジェンの成長促進効果の媒介におけるこの経路の重要性から、ＡＡのＰ４５０代謝物は、これらの疾患に関連した腎機能の変化および血管緊張に寄与するようである。また、２０−ＨＥＴＥ受容体アンタゴニストは、敗血症ショック、高血圧症、糖尿病、喘息、糸球体疾患および癌などの様々な状態の治療に広範な治療効力を有するようである。
【図面の簡単な説明】
【図１】  図１は、本明細書で記載した様々な２０−ＨＥＴＥ類似体のいくつかの一連の構造である。
【図２Ａ】  図２ＡおよびＢは、単離腎小葉間動脈の直径に対する、様々な２０−ＨＥＴＥ類似体の効果を比較したグラフである。
【図２Ｂ】  図２ＡおよびＢは、単離腎小葉間動脈の直径に対する、様々な２０−ＨＥＴＥ類似体の効果を比較したグラフである。
【図３Ａ】  図３ＡおよびＢは、単離腎小葉間動脈における２０−ＨＥＴＥへの血管収縮神経応答に対する、様々な類似体のアンタゴニスト活性のグラフである。
【図３Ｂ】  図３ＡおよびＢは、単離腎小葉間動脈における２０−ＨＥＴＥへの血管収縮神経応答に対する、様々な類似体のアンタゴニスト活性のグラフである。
【図４Ａ】  図４ＡおよびＢは、単離腎小葉間動脈における２０−ＨＥＴＥへの血管収縮神経応答に対する、他の類似体のアンタゴニスト活性のグラフである。
【図４Ｂ】  図４ＡおよびＢは、単離腎小葉間動脈における２０−ＨＥＴＥへの血管収縮神経応答に対する、他の類似体のアンタゴニスト活性のグラフである。
【図５】  図５は、本明細書で記載した具体的な２０−ＨＥＴＥアゴニストおよびアンタゴニストの構造の模式図である。
【図６】  図６は、一般的な２０−ＨＥＴＥアゴニスト／アンタゴニストの図であり、アゴニストおよびアンタゴニストの合成スキームを提供する。
【図７Ａ】  図７Ａ、Ｂは、一連の適切な化合物の例である。
【図７Ｂ】  図７Ａ、Ｂは、一連の適切な化合物の例である。
【図８Ａ】  図８Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ、ＥおよびＦは、２０−ＨＥＴＥアゴニストおよびアンタゴニストの一連の合成スキームである。
【図８Ｂ】  図８Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ、ＥおよびＦは、２０−ＨＥＴＥアゴニストおよびアンタゴニストの一連の合成スキームである。
【図８Ｃ】  図８Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ、ＥおよびＦは、２０−ＨＥＴＥアゴニストおよびアンタゴニストの一連の合成スキームである。
【図８Ｄ】  図８Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ、ＥおよびＦは、２０−ＨＥＴＥアゴニストおよびアンタゴニストの一連の合成スキームである。
【図８Ｅ】  図８Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ、ＥおよびＦは、２０−ＨＥＴＥアゴニストおよびアンタゴニストの一連の合成スキームである。
【図８Ｆ】  図８Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ、ＥおよびＦは、２０−ＨＥＴＥアゴニストおよびアンタゴニストの一連の合成スキームである。
【図９】  図９は、血管における２０−ＨＥＴＥの作用を記載したスキームである。
【図１０】  図１０は、腎近位尿細管における２０−ＨＥＴＥの作用を記載したスキームである。
【図１１】  図１１は、腎の厚い上行ヘンレ係蹄における２０−ＨＥＴＥの作用を記載したスキームである。
【図１】
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【図２Ａ】
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【図２Ｂ】
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【図３Ａ】
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【図３Ｂ】
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【図４Ａ】
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【図４Ｂ】
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【図５】
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【図６】
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【図７Ａ】
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【図７Ｂ】
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【図８Ａ】
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【図８Ｂ】
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【図８Ｃ】
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【図８Ｄ】
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【図８Ｅ】
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【図８Ｆ】
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【図９】
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【図１０】
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【図１１】
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