(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
HLA−A2.1分子に結合することができる長さ８〜11残基の免疫原性ペプチドを含むHPVウイルス感染の予防、治療又は診断用組成物であって、当該免疫原性ペプチドは、以下の：
0003908271.tif 000076
から成る群から選ばれる少なくとも１つの配列を含む、前記組成物。
【請求項２】
医薬として許容される担体、及びHLA−A2.1分子に結合することができ、かつ、哺乳動物において免疫応答を誘導することができる請求項１に記載の免疫原性ペプチドの治療的有効量を含む、HPVウイルス感染の予防、治療又は診断用医薬組成物。
【請求項３】
Ｔヘルパー・ペプチドをさらに含む、請求項２に記載の医薬組成物。
【請求項４】
前記ヘルパー・ペプチドが、以下の：
0003908271.tif 000077
｛式中、ａは、Ｄ−アラニンであり、かつ、Ｘは、シクロヘキシルアラニンである。｝の式により表される、請求項３に記載の医薬組成物。
【請求項５】
脂質をさらに含む、請求項２に記載の医薬組成物。
【請求項６】
前記ペプチドを取り込んだリポソームをさらに含む、請求項２に記載の医薬組成物。
【発明の詳細な説明】
発明の背景
本発明は、ある数の病理学的状態、例えば、ウイルス病および癌を予防、処置または診断する組成物および方法に関する。とくに、本発明は選択した主要な組織適合複合体（MHC）分子に結合しそして免疫応答を誘発することができる新規なペプチドを提供する。
MHC分子はクラスＩまたはクラスIIの分子として分類される。クラスIIのMHC分子は免疫応答を開始しかつ持続することに関係する細胞、例えば、Ｔリンパ球、Ｂリンパ球、マクロファージなどの上に主として発現される。クラスIIのMHC分子はヘルパーＴリンパ球により認識され、そしてヘルパーＴリンパ球の増殖および表示される特定の免疫原性ペプチドに対する免疫応答の増幅を誘発する。クラスＩのMHC分子はほとんどすべての有核細胞上で発現され、そして細胞障害性Ｔリンパ球（CTLs）により認識され、次いでこれらは抗原を有する細胞を破壊する。CTLsは腫瘍の拒絶およびウイルスの感染と闘争するときとくに重要である。CTLは無傷の外来抗原それ自体よりむしろMHCクラスＩ分子に結合したペプチドの形態の抗原を認識する。抗原は通常細胞により内因的に合成されなくてはならず、そしてタンパク質抗原の一部分は細胞質中で小さいペプチド断片に分解される。これらの小さいペプチドのあるものは前ゴルジ（Pre-Golgi）区画の中に移行し、そしてクラスＩ重鎖と相互作用して適切なフォルディングおよびサブユニットβ２マイクログロブリンとの連合を促進する。次いでペプチド−MHCクラスＩ複合体は特定のCTLsによる発現および潜在的認識のために細胞表面に送られる。
ヒトMHCクラスＩ分子、HLA-A2.1の結晶構造の研究において、ペプチド結合溝はクラスＩ重鎖のα１およびα２ドメインのフォルディングによりつくられることが示された（Bjorkmanら、Nature 329：506（1987）。しかしながら、これらの研究において、溝に結合したペプチドの同一性は決定されなかった。
Buusら、Science 242：1065（1988）は、結合したペプチドをMHCから酸溶離する方法を最初に開示した。引き続いて、Rammenseeおよび彼の共同研究者ら（Falkら、Nature 351：290）は、クラスＩ分子に結合した自然に処理されたペプチドを特性決定するアプローチを開発した。他の研究らはＢ型（Jardetzkyら、Nature 353：326（1991）およびA2.1型のクラスＩ分子のクラスＩ分子から溶離されたペプチドの普通の自動化配列決定による種々のHPLC画分における、豊富なペプチドの直接アミノ酸配列決定を質量スペクトル（Huntら、Science 225：1261（1992）により首尾よく達成した。MHCクラスＩ中の自然に処理されたペプチドの特性決定の概観は、
0003908271.tif 000002
およびFalkにより提供された
0003908271.tif 000003
およびFalk，Immunol.Today 12：447（1991）。
Setteら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 86：3296（1989）は、MHCアレレ特異的モチーフを使用してMHC結合能力を予測することができることを示した。Schaefferら、Proc.Natl.Acad.Sci.USA 86：4649（1989）は、MHCの結合が免疫原性に関係することを示した。幾人かの著者ら（De Bruijnら、Eur.J.Immunol.，21：2963-2970（1991）；Parmerら、991 Nature 353：852-955（1991））は、クラスＩ結合のモチーフを動物モデルにおける潜在的な免疫原性ペプチドの同定に適用できるという予備的証拠を提供した。所定のクラスＩアイソタイプある数のヒトアレレに対して特異的なクラスＩモチーフはまだ記載すべきである。これらの異なるアレレの組み合わせられた頻度は、ヒト異系交配集団の大きい区画あるいは多分大部分をカバーするために十分に高くあるべきことが望ましい。
この分野における発展にかかわらず、先行技術はこの研究に基づく有用なヒトペプチドに基づくワクチンまたは治療剤をまだ提供しなくてはならない。本発明はこれらおよび他の利点を提供する。
発明の要約
本発明は、HLA-A2.1分子のための結合モチーフを有する免疫原性ペプチドからなる組成物を提供する。免疫原性ペプチドは、適当なヒグロマイシンアレレに結合し、好ましくは９〜10残基の長さでありそしてある位置、例えば、位置２および９に保存された残基を含む。そのうえ、ペプチドは他の位置、例えば、長さ９アミノ酸のペプチドの場合において位置１，３，６および／または７および長さ10アミノ酸のペプチドの場合において位置１，３，４，５，７，８および／または９にここに定義するような陰性の結合残基を含まない。本発明は、HLA-A2.1に効率よく結合するペプチドの選択を可能とするモチーフ内の位置を定める。
ある数の免疫原性標的タンパク質上のエピトープは、本発明のペプチドを使用して同定することができる。適当な抗原の例は、前立腺癌特異抗原（PSA）、Ｂ型肝炎のコアおよび表面抗原（HBVc，HBVs）、Ｃ型肝炎抗原、エプスタイン−バー−ウイルス抗原、ヒト免疫不全１型ウイルス（HIV１）および乳頭腫ウイルス抗原を包含する。こうして、ペプチドは生体内および半ビボの両方の治療および診断の応用のための製剤組成物において有用である。
定  義
用語「ペプチド」は、この明細書において、典型的には隣接するアミノ酸のアルファ−アミノ基およびカルボニル基の間のペプチド結合により一方が他方に接続された、一連の残基、典型的にはＬ−アミノ酸を表示するために、「オリゴヌクレオチド」と互換的に使用する。本発明のオリゴヌクレオチドは、長さが約15残基より小さく、そして通常約８〜約11残基、好ましくは９または10残基から成る。
「免疫原性ペプチド」は、そのペプチドがMHC分子と結合しそしてCTL応答を誘発するように、対立遺伝子特異モチーフからなるペプチドである。本発明の免疫原性ペプチドは、適当なHLA-A2.1分子に結合しそして免疫原性ペプチドを誘導する抗原に対する細胞障害性Ｔ細胞の応答を誘発することができる。
免疫原性ペプチドは便利には本発明のアルゴリズムを使用して同定される。アルゴリズムは、免疫原性ペプチドの選択を可能とするスコアを生成する数学的手順である。典型的には、あるアフィニティーで結合する高い可能性を有しそして引き続いて免疫原性であるペプチドの選択を可能とする「結合限界値」をもつアルゴリズムのスコアを使用する。アルゴリズムはペプチドの特定の位置における特定のアミノ酸のMHC結合への作用に基づくか、あるいはモチーフ含有ペプチドにおける特定の置換の結合への作用に基づく。
「保存された残基」は、ペプチド中の特定の位置におけるランダムな分布により期待されるより有意にいっそう高い頻度で存在するアミノ酸である。典型的には、保存された残基はMHC構造が免疫原性ペプチドとの接触点を提供できる残基である。規定された長さのペプチド内の１〜３、好ましくは２つの、保存された残基は免疫原性ペプチドのモチーフを定める。これらの残基はペプチド結合溝と密接に接触しており、それらの側鎖は溝それ自体のポケットの中に埋もれている。典型的には、免疫原性ペプチドは３つまでの保存された残基、より通常２つの保存された残基を含む。
ここにおいて使用するとき、「陰性の結合残基」は、ある位置（例えば、９マーのうちの位置１，３および／または７）に存在する場合、非結合体または劣った結合体でありそして引き続いて免疫原性とならない、すなわち、CTL応答を誘発できないペプチドを生ずるアミノ酸である。
用語「モチーフ」は、特定のMHCアレレにより認識される、規定した長さ、通常約８〜約11アミノ酸のペプチド中の残基のパターンを意味する。ペプチドのモチーフは典型的には各ヒトMHC対立遺伝子について異なり、そして高度に保存された残基および陰性の残基パターンが異なる。
対立遺伝子について結合モチーフは正確さの程度の増加で定義することができる。１つの場合において、保存された残基のすべてはペプチドの中に正しい位置に依存し、そして位置１，３および／または７に陰性残基は存在しない。
句「単離された」または「生物学的に純粋な」は、その天然の状態で見出されるように通常付随する成分を実質的にまたは本質的に含有しない物質を呼ぶ。こうして、本発明のペプチドはそれらの原位置の環境に通常関連する物質、例えば、抗原提示細胞上のMHCＩ分子を含有しない。タンパク質が均質なまたは優勢なバンドに単離された場合でさえ、所望のタンパク質と同時に精製する天然のタンパク質の５〜10％の範囲の微量の汚染物質が存在する。本発明の単離されたペプチドはこのような内因性同時精製されたタンパク質を含有しない。
用語「残基」は、アミド結合または偽アミド結合（amide bond mimetic）によりオリゴペプチドの中に組み込まれたアミノ酸または偽アミノ酸（amino acid mimetic）を呼ぶ。
【図面の簡単な説明】
図１は、HLA-A精製の計画のフローダイヤグラムである。
図２は、９マーのペプチドのための「グループにした比」に対してプロットした相対結合の対数の散布図を示す。
図３は、９マーのペプチドのための平均の「結合の対数」のアルゴリズムのスコアに対してプロットした相対結合の対数の散布図を示す。
図４および第５図は、「グループにした比」および「結合の対数」のアルゴリズムによりスコアにした、位置２および10に好ましい残基を含有する１組の10マーのペプチドの散布図を示す。
好ましい態様の説明
本発明は、ヒトクラスＩMHC（時にはHLAと呼ぶ）アレレサブタイプについての対立遺伝子特異ペプチドのモチーフ、とくにHLA-A2.1対立遺伝子により認識されるペプチドのモチーフの決定に関する。次いで、これらのモチーフを使用して、潜在的抗原または自己抗原の標的のアミノ酸配列が知られている、任意の所望の抗原、とくにヒトのウイルス病、癌または自己免疫病に関連する抗原を定める。
ある数の潜在的標的タンパク質上のエピトープはこの方法で同定することができる。適当な抗原の例は、前立腺特異抗原（PSA）、Ｂ型肝炎のコアおよび表面の抗原（HBVc，HBVs）、Ｃ型肝炎抗原、エプスタイン−バー−ウイルス抗原、黒色腫抗原（例えば、MAGE-1）、ヒト免疫不全ウイルス（HIV）抗原およびヒト乳頭腫ウイルス（HPV）抗原を包含する。
本発明のペプチドは、また、自己免疫病の症状を軽減し、その発生または再発生を処置または予防するために使用できる。このような疾患は、例えば、次のものを包含する：多発性硬化症（MS）、慢性関節リウマチ（RA）、ショーグレン症候群、強皮症、多発性筋炎、皮膚筋炎、全身性エリトマトーデス、若年性関節リウマチ、強直性脊椎炎、重症筋無力症（MG）、水疱性類天疱瘡（皮膚−表皮接合部における基底膜に対する抗体）、天疱瘡（ムコ多糖タンパク質複合体または細胞内セメント物質）、糸球体腎炎（糸球体基底膜に対する抗体）、グッドパスチャー症候群、自己免疫性溶血性貧血（赤血球に対する抗体）、橋本病（甲状腺に対する抗体）、悪性貧血（固有因子に対する抗体）、特発性血小板減少性紫斑病（血小板に対する抗体）、甲状腺機能亢進症、およびアジソン病（チログロブリンに対する抗体）など。
ある数のこれらの病気に関連する自己抗原は同定されてきている。例えば、実験的に誘発された自己免疫病において、病因に関係する抗原が特徴づけられた：ラットおよびマウスの関節炎において、天然のII型コラーゲンがコラーゲン誘発関節炎、およびアジュバント関節炎におけるマイコバクテリアの熱ショックタンパク質において同定された；チログロブリンはマウスにおける実験的アレルギー性甲状腺炎において同定された；アセチルコリンレセプター（AChR）は実験的アレルギー性重症筋無力症（EAMG）において同定された；そしてミエリン塩基性タンパク質（MBP）およびプロテオリピドタンパク質（PLP）はマウスおよびラットにおける実験的アレルギー性脳脊髄炎（EAE）において同定された。さらに、標的抗原はヒトにおいて同定された：ヒト慢性関節リウマチにおけるII型コラーゲン；および重症筋無力症におけるアセチルコリンレセプター。
これらの抗原からのエピトープからなるペプチドを合成し、次いで、精製したクラスＩ分子および放射性ヨウ素化ペプチドおよび／または空のクラスＩ分子を発現する細胞を使用するアッセイにおいて、例えば、免疫蛍光染色およびフロー・マイクロフルオロメトリー、ペプチド依存性クラスＩアセンブリーのアッセイ、およびペプチド競合によるCRL認識の阻害により、適当なMHC分子に結合するペプチドの能力について試験する。クラスＩ分子に結合するペプチドを、感染または免疫化した個体から誘導されたCTLsの標的として働くそれらの能力について、ならびに潜在的治療剤としてウイルス感染した標的細胞または腫瘍細胞と反応することができるCTL集団を発生できる、一次の生体外または生体内CTL応答を誘発するそれらの能力について評価する。
MHCクラスＩ抗原はHLA-A，Ｂ、およびＣ遺伝子座によりコード化される。HLA-AおよびＢ抗原は細胞表面においてほぼ等しい密度で発現されるが、HLA-Cの発現は有意に低い（多分10倍程度に低い）。これらの遺伝子座の各々はある数の対立遺伝子を有する。本発明のペプチド結合モチーフは各対立遺伝子のサブタイプに対して比較的特異的である。
ペプチドに基づくワクチンについて、本発明のペプチドは好ましくはヒト集団において広い分布を有するMHCＩ分子により認識されるモチーフからなる。MHC対立遺伝子は異なるエシン基（ethnic groups）および系統内で異なる頻度で存在するので、標的MHC対立遺伝子の選択は標的集団に依存することがある。表１は異なる系統の間のHLA-A遺伝子座における種々の対立遺伝子の頻度を示す。例えば、白色人種の集団の大部分は４つのHLA-A対立遺伝子サブタイプ、詳しくはHLA-A2.1，A1，A3.2、およびA24.1に結合するペプチドによりカバーされることができる。同様に、アジア人の大部分は第５のHLA-A11.2に結合するペプチドの付加により包含される。
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表はB.DuPont，Immunobiology of HLA，Vol.I，Histocompatibility Testing 1987，Sparinger-Verlag、ニューヨーク1989、から編集された。
＊Ｎ−ネグロイド；Ａ＝アジア人；Ｃ＝白色人種。括弧内の数字は分析に含めた個体の数を表す。
ペプチド化合物を記載するために使用した名称は普通の慣例に従い、ここでアミノ基は各アミノ酸残基の左（Ｎ−末端）に対して表しそしてカルボキシル基は右（Ｃ−末端）に対して表わす。本発明の選択した特定の態様を表す式において、アミノ−およびカルボキシル−末端基は、特別に示されていないが、特記しない限り、生理学的pH値において執る形態である。アミノ酸の構造式において、各残基は標準の３文字または１文字の表示により一般に表わされている。アミノ酸残基のＬ−型は３文字の記号の１大文字または最初の大文字により表され、そしてＤ−型を有するアミノ酸のＤ−型は下のケースの１文字または下のケースの３文字の記号により表される。グリシンは不斉炭素原子を有し、そして単に「Gly」またはＧと呼ぶ。
本発明のペプチドを同定するために使用する手順は、一般に、Falkら、Narure 351：290（1991）（これをここに引用によって加える）に開示されている方法に従う。簡単に述べると、この方法は、適当な細胞または細胞系からの、典型的には免疫沈澱またはアフィニティークロマトグラフィーによる、MHCクラスＩ分子の大規模の単離を包含する。等しく当業者によく知られている所望のMHC分子の単離の他の方法の例は、イオン交換クロマトグラフィー、レクチンクロマトグラフィー、大きさ排除（size exclusion）、高性能液体クロマトグラフィー、および上の技術のすべての組み合わせを包含する。
典型的な場合において、免疫沈澱を使用して所望のアレレを単離する。例えば、アレレ特異mAb試薬をHLA-A，HLA-B1、およびHLA-C分子のアフィニティー精製について使用することができる。HLA-A分子の単離のためのいくつかのmAb試薬は入手可能である。モノクローナルBB7.2はHLA-A2分子の単離のために適当である。標準の技術を使用してこれらのmAbで調製されたアフィニティーカラムは、それぞれのHLA-A対立遺伝子生成物の精製に首尾よく使用される。
対立遺伝子特異mAbに加えて、広く反応性の抗HLA-A，B，C mAb、例えば、W6／32およびB9.12.1、および１つの抗HLA-B，C mAb，B1.23.2を下の実施例の節に記載されているような別のアフィニティー精製プロトコールにおいて使用できるであろう。
単離されたMHC分子のペプチド結合溝に結合したペプチドは、典型的には酸処理を使用して溶離される。ペプチドは、また、種々の標準の変性手段、例えば、熱、pH、洗浄剤、塩類、カオトロピズム剤、またはそれらの組み合わせによりクラスＩ分子から解離させることができる。
ペプチドの画分をMHC分子から逆相高性能液体クロマトグラフィー（HPLC）によりさらに分離しそして配列決定する。ペプチドは当業者によく知られている種々の他の標準の技術、例えば、濾過、限外濾過、電気泳動、大きさクロマトグラフィー、特異的抗体を使用する沈澱、イオン交換クロマトグラフィー、等電点電気泳動などにより分離することができる。
単離されたペプチドの配列決定は、標準の技術、例えば、エドマン分解法に従い実施することができる（Hunkapiller，M.W.ら、Methods Enzymol. 91，399〔1983〕）。配列決定に適当な他の方法は、従来記載されているように個々のペプチドの質量分析の配列決定を包含する（Huntら、Science 225：1261（1992）、これをここに引用によって加える）。異なるクラスＩ分子からの大量の異種ペプチド（例えば、プールしたHPLC画分）のアミノ酸配列決定は、典型的には、各クラスＩ対立遺伝子のための特性配列モチーフを明らかにする。
異なるクラスＩ対立遺伝子に対して特異的なモチーフの定義は、そのアミノ酸配列が知られている抗原性タンパク質の同定を可能とする。典型的には、潜在的ペプチドのエピトープの同定を最初にコンピューターを使用して実施して、所望の抗原のアミノ酸配列をモチーフの存在について走査する。エピトープの配列を次いで合成する。MHCクラスの分子に結合する能力を種々の異なる方法で測定する。１つの手段は、下の実施例４に記載するようなクラスＩ分子結合アッセイである。文献に記載されている他の別法は、抗原提示の阻害（Setteら、J.Immunol. 141：3893（1991）、生体外アセンブリーのアッセイ（Townsendら、Cell 62：285（1990）、および突然変異細胞、例えば、RMS.Sを使用するFACSに基づくアッセイ（Meliefら、Eur.J.Immunol. 21：2963（1991））を包含する。
次に、MHCクラスＩ結合アッセイにおいて陽性と試験されるペプチドを、生体外で特異的CTL応答を誘発するペプチドの能力についてアッセイする。例えば、ペプチドとインキュベーションした抗原提示細胞を、レスポンダー（responder）細胞集団においてCTL応答を誘発する能力についてアッセイすることができる。抗原提示細胞は正常細胞、例えば、末梢血単核細胞または樹枝状細胞であることができる（Inabaら、J.Exp.Med. 166：182（1987）；Boog，Eur.J.Immunol. 18：219〔1988〕）。
あるいは、クラスＩ分子に内部的に処理されたペプチドを負荷する能力を欠く突然変異の哺乳動物細胞系、例えば、マウス細胞系RMA-S
0003908271.tif 000005
およびヒト体Ｔ細胞ハイブリッド、T-2（Cerundoloら、Nature 345：449-452（1990））および適当なヒトクラスＩ遺伝子でトランスフェクションされた前記細胞系は、ペプチドをそれらに添加したとき、生体外の一次のCTL応答を誘発するペプチドの能力について試験するために便利に使用される。使用できる他の真核細胞系は、種々の昆虫細胞系、例えば、カの幼虫（ATCC細胞系CCL 125，126，1160，1591，6585，6586）、カイコ（ATCC CRL 8851）、アワヨトウ（ATCC CRL 1711）、ガ（ATCC CCL 80）およびショウジョウバエ細胞系、例えば、シュナイダー（Schneider）細胞系（参照、Schneider J.Embyrol.Exp.Morphol. 27：353-365〔1927〕）を包含する。
末梢血リンパ球は、正常のドナーおよび患者の簡単な静脈穿刺または白血球搬出に従い便利に単離され、そしてCTL前駆体のレスポンダー細胞源として使用される。１つの態様において、適当な抗原提示細胞を血清不含培地中で10〜100μＭのペプチドと適当な培養条件下に４時間インキュベーションする。次いで、ペプチド負荷抗原提示細胞をレスポンダー細胞集団と生体外で最適化された培養条件下にインキュベーションする。陽性のCTL活性化は、特定のペプチドパルスド標的、ならびにペプチドの配列を誘導した関係するウイルスまたは腫瘍抗原の内因的に処理された形態を発現する標的細胞の両方を、放射性標識化標的細胞を殺すCTLsの存在についてアッセイすることによって、決定することができる。
CTLの特異性およびMHC制限は、適当なまたは不適当なヒトMHCクラスＩを発現する標的細胞を異なるペプチドに対して試験することによって、決定される。MHC結合アッセイにおいて陽性と試験されそして特定のCTL応答を発生するペプチドを、ここにおいて、免疫原性ペプチドと呼ぶ。
免疫原性ペプチドは、合成的に、あるいは組換えDNA技術により、あるいは天然源、例えば、全ウイルスまたは腫瘍から製造することができる。ペプチドは好ましくは他の天然に見出される宿主細胞のタンパク質およびそれらの断片を実質的に含有しないが、ある態様においてペプチドは天然の断片または粒子に合成的に接合することができる。
ポリペプチドまたはペプチドは種々の長さを有し、中性（非帯電）の形態または塩である形態であり、そして修飾、例えば、グリコシル化、側鎖の酸化、またはリン酸化を含まないか、あるいは修飾がここに記載するポリペプチドの生物学的活性を破壊しないという条件に従う場合、これらの修飾を含有することができる。
望ましくは、ペプチドはできるだけ小さいであろうが、なお大きいペプチドの生物学的活性の実質的にすべてを維持するであろう。可能なとき、本発明のペプチドを約８〜約10アミノ酸残基の長さに最適化することが望ましく、この長さは細胞表面上のMHCクラスＩ分子に結合した、内因的に処理されたウイルスのペプチドまたは腫瘍細胞のペプチドの長さと釣り合う。
所望の活性を有するペプチドを必要に応じて修飾してある種の所望の属性を提供すると同時に、所望のMHC分子に結合しかつ適当なＴ細胞を活性化する未修飾のペプチドの生物学的活性を増加するか、あるいは生物学的活性の実質的にすべてを少なくとも保持することができる。例えば、ペプチドを種々の変化、例えば、保存的または非保存的置換に付すことができ、ここでこのような変化はそれらの使用においてある種の利点を提供する、例えば、MHCの結合を改良することができる。保存的置換とは、アミノ酸残基を生物学的および／または化学的に類似する他の残基と置換すること、例えば、１つの疎水性残基を他の残基と、あるいは極性残基を他の残基と置換することを意味するを意味する。置換基は、組み合わせ、例えば、Gly，Ala；Val，Ile，Leu，Met；Asp，Glu；Asn，Gln；Ser，Thr；Lys，Arg；およびPhe，Tyrを包含する。単一のアミノ酸の置換の効果は、また、Ｄ−アミノ酸を使用してプロービングすることができる。このような修飾は、例えば、次の文献に記載されているような、よく知られているペプチドの合成法を使用して行うことができる：Merrifield，Science 232：341-347（1986），BaranyおよびMerrifield，The Peptides，GrossおよびMeienhofer、編、（ニューヨーク、Academic Press）、pp.1-284（1979）；およびStewartおよびYoung，Solid Phase Peptide Synthesis，（Rockford，I11.，Pierce）、第２版（1984）、ここで引用によって加える。
ペプチドは、また、化合物のアミノ酸配列を、例えば、アミノ酸の付加または欠失により、延長または減少することによって修飾することができる。本発明のペプチドまたは類似体は、また、ある種の残基の順序または組成を変更することによって修飾することができ、容易に理解されるように、生物学的活性のために必須なある種のアミノ酸残基、例えば、決定的な接触部位または保存された残基は生物学的活性に悪い作用を与えないで一般に変更することができない。非決定的なアミノ酸はタンパク質の中に天然に見出される、例えば、Ｌ−α−アミノ酸またはそれらのＤ−異性体に限定されず、天然以外のアミノ酸、例えば、β−γ−δ−アミノ酸、ならびにＬ−α−アミノ酸の多数の誘導体を包含することができる。
典型的には、単一のアミノ酸置換をもつ１系列のペプチドは結合への静電荷、疎水性などの作用を決定するために使用される。例えば、１系列の正に帯電した（例えば、LysまたはArg）または負に帯電した（例えば、Glu）アミノ酸の置換基をペプチドの長さに沿って行って、種々のMHC分子およびＴ細胞のレセプターに向かう感度の異なるパターンを現わす。さらに、小さい、比較的中性の部分、例えば、Ala，Gly，Pro、または同様な残基を使用することができる。置換基はホモ−オリゴマーまたはヘテロ−オリゴマーであることができる。置換基または付加される残基の数および型は、本質的接触点の間に必要な間隔および探求するある種の機能的属性（例えば、疎水性／親水性）に依存する。MHC分子またはＴ細胞のレセプターのための増加した結合アフィニティーは、また、親ペプチドのアフィニティーと比較して、このような置換により達成することができる。いずれの場合においても、このような置換は、例えば、結合を崩壊させうる立体的または電荷の妨害を回避するように選択したアミノ酸残基または他の分子断片を使用すべきである。
アミノ酸の置換基は典型的には単一の残基である。置換、欠失、挿入またはそれらの任意の組み合わせを組み合わせて最終のペプチドに到達することができる。置換基の変異型は、ペプチドの少なくとも１つの残基が除去されそして異なる残基がその位置に挿入されたものである。このような置換は、一般に、ペプチドの特性を最終的に変調することを望むとき、次の表２に従いなされる。
0003908271.tif 000006
機能（例えば、MHC分子またはＴ細胞のレセプターに対するアフィニティー）における実質的な変化は、表２におけるものよりも低い保存性である置換基を選択することによって、すなわち、（ａ）置換区域におけるペプチドの主鎖の構造、（ｂ）標的部位における分子の電荷または疎水性または（ｃ）側鎖の嵩を維持することへのそれらの作用がいっそう有意に異なる残基を選択することによってなされる。一般にペプチドの性質の最大の変化を生成することが期待される置換基は、（ａ）親水性残基、例えば、セリルが疎水性残基、例えば、ロイシル、イソロイシル、フェニルアラニル、バリルまたはアラニルで置換されている；（ｂ）電気陽性側鎖を有する残基、例えば、リスル、アルギニル、またはヒスチジルが電気陰性残基、例えば、グルタミルまたはアスパルチルで置換されている；あるいは（ｃ）嵩の側鎖を有する残基、例えば、フェニルアラニンが側鎖をもたないもの、例えば、グリシンで置換されている；ものである。
ペプチドは、また、免疫原性ペプチド中の２またはそれ以上の残基のアイソスターからなることができる。ここにおいて定義するアイソスターは、第１配列の立体的コンフォメーションが第２配列に対して特異的である結合部位に適合するために、第２配列と置換することができる２またはそれ以上の置換基である。この用語は詳しくは等業者によく知られているペプチド主鎖の修飾を包含する。このような修飾は、アミド窒素、α−炭素、アミドのカルボニルの修飾、アミド結合の完全な置換、延長、欠失または主鎖の架橋を包含する。参照、一般的に、Spatola，Chemistry and Biochemistry of Amino Acids，peptides and Poteins，Vol.VII（Weinstein編、1983）。
種々の偽アミノ酸または天然に見出されされないアミノ酸によるペプチドの修飾は、生体内のペプチドの安定性を増加するときとくに有用である。安定性はある数の方法でアッセイすることができる。例えば、ペプチダーゼおよび種々の生物学的媒質、例えば、ヒトの血漿および血清は安定性を試験するために使用されてきている。参照、例えば、Verhoefら、Eur.J.Drug Metab.Pharmacokin．11：291-302（1986）。本発明のペプチドの半減期は25％ヒト血清（ｖ／ｖ）のアッセイを使用して便利に決定される。プールしたヒト血清（AB型、加熱不活性化されていない）を、使用前に、遠心により脂質を除去する。次いで血清をRPMI組織培養培地で25％に希釈し、そしてペプチドの安定性の試験に使用する。前もって決定した時間間隔において、少量の反応溶液を取り出し、そして６％水性トリクロロ酢酸またはエタノールに添加する。曇った反応試料を15分間冷却（４℃）し、次いで回転して沈澱した血清タンパク質をペレットにする。次いで、安定性−特異的クロマトグラフィーの条件を使用する逆相高性能液体クロマトグラフィーによりペプチドの存在を決定する。
本発明のペプチドまたはCTL刺激活性を有するそれらの類似体を修飾して、改良された血清半減期以外の属性を得ることができる。例えば、CTL活性を誘発するペプチドの能力は、Ｔヘルパー細胞の応答を誘発できる少なくとも１つのエピトープを含有する配列への連鎖により、増強することができる。
ある態様において、Ｔヘルパーのペプチドは集団の大部分においてＴヘルパー細胞により認識される。これはMHCクラスII分子の多数、大部分、またはすべてに結合するアミノ酸配列を選択することによって達成することができる。これらは「ゆるくMHC制限された」Ｔヘルパー配列として知られている。ゆるくMHC制限されたアミノ酸配列の例は、抗原、例えば、次の抗原からの配列を包含する：位置830−843における破傷風トキソイド（QYIKANSKFIGITE）、位置378−398における熱帯熱マラリア原虫（Plasmodium falciparum）CSタンパク質（DIEKKIAKMEKASSVFNVVNS）、および位置１−16における連鎖球菌属（Streptococcus）18kDタンパク質（YGAVDSILGGVATYGAA）。
あるいは、天然に見出されないアミノ酸配列を使用して、ゆるくMHC制限された方式で、Ｔヘルパーリンパ球を刺激できる合成ペプチドを製造することができる。パン−DR−結合エピトープ（Pan-DR-binding epitope）（PADRE）と呼ばれる合成化合物を、ほとんどの、HLA-DR（ヒトMHCクラスII）分子へのそれらの結合活性に基づいてデザインされる（参照、同時継続米国出願第08／121,101）。
とくに好ましい免疫原性ペプチド／Ｔヘルパー接合体はスペーサー分子により連鎖される。このスペーサーは、生物学的条件下に実質的に変化しない、典型的には比較的小さい、中性分子、例えば、アミノ酸またはアミノ酸模倣体から構成される。スペーサーは、典型的には、例えば、Ala，Gly、あるいは非極性アミノ酸または中性の極性アミノ酸の他の中性スペーサーから選択される。理解されるように、必要に応じて存在するスペーサーは同一残基からなる必要はなく、こうしてヘテロ−またはホモ−オリゴマーであることができる。存在するとき、スペーサーは通常少なくとも１または２つの残基、通常３〜６残基であろう。あるいは、CTLペプチドはスペーサーなしにＴヘルパーペプチドに連鎖することができる。
免疫原性ペプチドはＴヘルパーペプチドに直接に連鎖するか、あるいはCTLペプチドのアミノまたはカルボキシ末端におけるスペーサーを介して連鎖することができる。免疫原性ペプチドまたはＴヘルパーペプチドのアミノ末端をアシル化することができる。典型的なＴヘルパーペプチドは、破傷風トキソイド830−843、インフルエンザ307−319、マラリアのサーカムスポロゾイト（circumsporozoite）382−398および378−389を包含する。
ある態様において、本発明の製剤組成物の中にCTLを活性化する少なくとも１種の成分を含めることが望ましいことがある。脂質はCTLを生体内でウイルス抗原に対して活性化する因子として同定された。例えば、パルミチン酸残基をLys残基のアルファおよびイプシロンアミノ基に取り付け、次いで、例えば、１または２以上の連鎖残基、例えば、Gly，Gly-Gly-，Ser，Ser-Serなどを介して免疫原性ペプチドに連鎖することができる。次いで脂質化ペプチドをミセルの形態で直接注入し、リポソームの中に組み込むか、あるいはアジュバント、例えば、不完全フロインドアジュバントの中に乳化することができる。好ましい態様において、特別に有効な免疫原は、連鎖、例えば、Ser-Serを介して免疫原性ペプチドのアミノ末端に取り付けられたLysのアルファおよびイプシロンアミノ基に取り付けられたパルミチン酸からなる。
CTL応答の脂質のプライミングの他の例として、大腸菌（E．coli）リポタンパク質、例えば、トリパルミトイル−Ｓ−グリセリルシステイニル−セリン（P3CSS）を使用して、適当なペプチドに共有結合で取り付けられたとき、ウイルス特異CTLを活性化（prime）することができる。参照、Dereら、Nature 342：561-564（1989）、ここに引用によって加える。本発明のペプチドは、例えば、P3CSSにカップリングすることができ、そしてこのリポペプチドを個体に投与して標的抗原に対するCTL応答を特異的に活性化することができる。さらに、中和性抗体の誘発を、また、適当なエピトープを表示するペプチドに接合されたP3CSSで活性化することができるので、２つの組成物を組み合わせて、感染に対する体液および細胞仲介の両方の応答を効果的に誘発することができる。
さらに、追加のアミノ酸をペプチドの末端に付加して、互いとのペプチドの連鎖を容易にし、キャリヤー支持体、またはより大きいペプチドへカップリングし、ペプチドまたはオリゴペプチドの物理的または化学的性質を変更するなどをすることができる。アミノ酸、例えば、チロシン、システイン、リジン、グルタミン酸またはアスパラギン酸などをペプチドまたはオリゴペプチドのＣ−またはＮ−末端に導入することができる。ある場合におけるＣ末端の修飾はペプチドの結合特性を変更することができる。さらに、ペプチドまたはオリゴペプチドの配列は、末端のNH2のアシル化、例えば、アルカノイル（Ｃ1−Ｃ20）またはチオグリコリルのアシル化、末端のカルボキシルのアミド化、例えば、アンモニア、メチルアミンなどにより、天然の配列と異ならせることができる。ある場合において、これらの修飾は支持体または他の分子への連鎖のための部位を提供することができる。
本発明のペプチドは広範な種類の方法で製造することができる。それらの大きさは比較的小さいために、ペプチドは普通の技術に従い溶液中で、あるいは固体の支持体上で合成することができる。種々の自動化合成装置は商業的に入手可能であり、そして既知のプロトコールに従い使用できる。参照、例えば、StewartおよびYoung，Solid Phase Peptide Synthesis、第２版、Pierce Chemical Co.（1984）前掲。
あるいは、組換えDNA技術を使用することができ、ここで問題のペプチドをエンコードするヌクレオチド配列を発現ベクターの中に挿入し、適当な宿主細胞の中に形質転換またはトランスフェクションし、そして発現のために適当な条件下に培養する。これらの手順は、一般にSambrookら、Molecular Cloning：A Laboratory Manual，Cold Spring Harbor Press、コールド・スプリング・ハーバー，ニューヨークに記載されているように、一般にこの分野において知られている。こうして、本発明の１または２以上のペプチド配列からなる融合タンパク質は適当なＴ細胞のエピトープを提示するために使用できる。
ここにおいて考える長さのペプチドについてコーディング配列は化学技術、例えば、Matteucciら、J.Am.Chem.Soc. 103：3185（1981）のホスホトリエステル法により合成できるので、天然のペプチド配列をエンコードする塩基を適当な１または２以上の塩基で単に置換することによって修飾を行うことができる。次いで、コーディング配列に適当なリンカーを付与し、そしてこの分野において商業的に入手可能な発現ベクターの中に結合し、そしてベクターを使用して適当な宿主を形質転換して所望のタンパク質を生成することができる。ある数のこのようなベクターおよび適当な宿主系は現在入手可能である。融合タンパク質について発現のために、コーディング配列に作用可能に連鎖された開始コドンおよび停止コドン、プロモーターおよびターミネーター領域および通常複製系を付与して、所望の細胞宿主中の発現のための発現ベクターを得る。例えば、所望のコーディング配列の挿入のために便利な制限部位を含有するプラスミドの中に、細菌宿主と適合性のプロモーター配列を設ける。生ずる発現ベクターを適当な細菌宿主の中に形質転換する。もちろん、適当なベクターおよび抑制配列を用いて、酵母または哺乳動物細胞の宿主をまた使用することができる。
本発明のペプチドおよび製剤組成物およびワクチン組成物は、哺乳動物、とくにヒトに投与して、ウイルスの感染および癌を処置および／または予防するために有用である。本発明の免疫原性ペプチドを使用して処理できる病気の例は、前立腺癌、Ｂ型肝炎、Ｃ型肝炎、後天性免疫欠損症候群、腎臓癌、頸部癌、リンパ腫、CMVおよび尖圭コンジロームを包含する。
製剤組成物について、本発明の免疫原性ペプチドを既に癌に悩まされるか、あるいは問題のウイルスで感染した個体に投与する。感染の潜伏期または急性期における個体は、適当ならば、免疫原性ペプチドで別々にあるいは他の処置と組み合わせて処置することができる。治療的応用において、組成物は患者にウイルスまたは腫瘍抗原に対する有効なCTL応答ゐ誘発しかつ症状および／または合併症を治療するか、あるいは少なくとも部分的に阻止するために十分な量で投与する。これを達成するために適切な量は「治療的に有効な投与量」と定義する。この使用に有効な量は、例えば、ペプチドの組成、投与の方法、処置する疾患の段階および程度、患者の体重および全体的状態、および主治医の判断に依存するであろうが、一般に70kgの患者について0.1μｇ〜約5000μｇのペプチドの初期免疫化（すなわち、治療または予防の投与）、引き続く患者の血液の中の比CRL活性を測定することによって患者の応答および状態に依存して数週〜数カ月にわたる追加免疫の養生法に従う約1.0μｇ〜約1000μｇのブースター量の範囲である。本発明のペプチドおよび組成物は一般に重大な疾患状態、すなわち、生命を脅かすか、あるいは潜在的に生命を脅かす場合に使用できることを心に留めなくてはならない。このような場合において、外来物質の最小化およびペプチドの相対的無毒の特質にかんがみて、実質的に過剰のこれらのペプチド組成物を投与することができそして処置の医師は望ましいと感じることがある。
治療の使用のために、投与はウイルス感染の最初の徴候あるいは腫瘍の検出または外科的において、あるいは急性感染の場合において診断のすぐ後に開始すべきである。次いで、少なくとも症状が実質的に消滅しそしてその後ある期間の間追加免疫の投与を行う。慢性感染の場合において、負荷投与および引き続くブースターの投与が要求されることがある。
本発明の組成物を使用する感染した個体の処置は、急性的に感染した個体における感染の消散を速めることができる。進展する慢性感染に対して感受性（または病気にかかりやすくなった）個体について、急性から慢性の感染への進化を防止する方法において組成物はとくに有用である。感受性の個体が感染の前にまたはその間に同定された場合、例えば、ここに記載するように、組成物はそれらに対してターゲッティングされ、より大きい集団への投与の必要性を最小にすることができる。
ペプチド組成物は、また、慢性感染の処置のためにそして免疫系を刺激して保菌者におけるウイルス感染した細胞を排除することができる。細胞障害性Ｔ細胞の応答を効果的に刺激するために十分な量の免疫増強性ペプチドを配合物および投与のモードにおいて提供することが重要である。こうして、慢性感染の処置のために、代表的な投与量は70kgの患者について約1.0μｇ〜約5000mg、好ましくは約５μｇ〜1000μｇ／投与の範囲である。免疫化投与および引き続く維持およびブースターの投与は、確立された間隔で、例えば、１〜４週間、個体を効果的に免疫化するために多分延長した期間の間、要求される。慢性感染の場合において、少なくとも臨床的症状または実験室の試験がウイルスの感染が排除されたか、あるいは実質的に排除されてしまうまでおよびその後ある期間の間、投与を続けるべきである。
治療的処置のための製剤組成物は、非経口的、局所的、経口的または局所の投与のために意図される。好ましくは、製剤組成物は、非経口的に、例えば、静脈内、皮下、皮内、または筋肉内に投与される。こうして、本発明は、許容できる担体、好ましくは水性担体の中に溶解または懸濁した免疫原性ペプチドの溶液からなる非経口的投与のための組成物を提供する。種々の水性担体、例えば、水、緩衝化水、0.8％の生理食塩水、0.3％のグリシン、ヒアルロン酸などを使用することができる。これらの組成物は普通の、よく知られた滅菌技術により滅菌することができるか、あるいは滅菌濾過することができる。生ずる水溶液はそれ自体使用のために包装するか、あるいは凍結乾燥することができ、凍結乾燥した調製物を無筋の溶液と投与前に組み合わせる。組成物は必要に応じて生理学的状態に近似させるために製剤学的に許容される補助物質、例えば、pH調節剤および緩衝剤、張度調節剤、湿潤剤など、例えば、酢酸ナトリウム、乳酸ナトリウム、塩化ナトリウム、塩化カリウム、塩化カルシウム、ソルビタンモノラウレート、トリエタノールアミンオレエートなどを含有することができる。
製剤組成物の中に本発明のCTL刺激ペプチドの濃度は、広く、すなわち、約0.1重量％より低い、通常約２重量％または少なくとも約２重量％からから20〜50重量％またはそれ以上の程度に高く変化することができ、そして主として流体体積、粘度などにより、選択した投与の特定のモードに従い選択されるであろう。
本発明のペプチドは、また、リポソームを介して投与することができ、このようなリポソームはペプチドを特定の組織、例えば、リンパ系組織にターゲッティングするか、あるいは感染した細胞を選択的に標的化し、ならびにペプチド組成物の半減期を増加するために使用できる。リポソームは、乳濁液、フォーム、ミセル、不溶性単層、脂質結晶、リン脂質分散液、層状層などを包含する。これらの調製物において、送り出すべきペプチドはリポソームの部分として、単独であるいは、例えば、リンパ系細胞の間で優勢なレセプターに結合する分子、例えば、CD45抗原に結合するモノクローナル抗体と組み合わせるか、あるいは他の治療または免疫原性組成物と組み合わせて組み込まれる。こうして、本発明の所望のペプチドを充填または装飾したリポソームはリンパ系の部位に向けられることができ、ここでリポソームは次いで選択した治療／免疫原性ペプチド組成物を送り出す。本発明において使用するリポソームは標準の賞胞形成脂質から形成され、脂質は一般に中性または負に帯電したリン脂質およびステロール、例えば、コレステロールを包含する。脂質の選択は一般に、例えば、リポソームの大きさおよび血流中のリポソームの酸不安定性および安定性の考察により案内される。リポソームを製造する種々の方法は利用可能であり、例えば、次の文献に記載されている：Szokaら、Ann.Rev.Biophys.Bioeng． 9：467（1980）、米国特許第4,235,871号、米国特許第4,501,728号、米国特許第4,837,028号、および米国特許第5,019,369号、ここに引用によって加える。
免疫細胞への標的化のためには、リポソームの中に組み込むべきリガンドは、例えば、所望の免疫系細胞の細胞表面の決定基に対して特異的な抗体またはその断片を包含することができる。ペプチドを含有するリポソームの懸濁液は、静脈内、局所に、局所的などに投与することができ、ここで投与量は、なかでも、投与の方法、送り出されるペプチド、処置する疾患の段階などに従い変化する。
固体の組成物のために、普通の無毒の固体の担体を使用することができ、これらは、例えば、製剤学的等級のマンニトール、ラクトース、澱粉、ステアリン酸マグネシウム、ナトリウムサッカリン、タルク、セルロース、グルコース、スクロース、炭酸マグネシウムなどを包含する。経口的投与のために、製剤学的に許容される無毒の組成物は任意の通常使用される賦形剤、例えば、前述の担体、および一般に10〜95％の活性成分、すなわち、本発明の１種または２種以上のペプチド、およびより好ましくは25％〜75％の濃度で組み込むことによって形成される。
エアゾールの投与のために、免疫原性ペプチドは好ましくは微粉砕した形態で界面活性剤および噴射剤と一緒に供給される。ペプチドの典型的な百分率は0.01〜20重量％、好ましくは１〜10重量％である。界面活性剤は、もちろん、無毒であり、そして好ましくは噴射剤の中に可溶性である。このような剤の代表例は、６〜22個の炭素原子を含有する脂肪酸、例えば、カプロン酸、オクタン酸、ラウリン酸、パルミチン酸、ステアリン酸、リノール酸、リノレン酸、オレステリン酸およびオレイン酸と脂肪族多価アルコールまたはその環状無水物とのエステルまたは部分的エステルである。混合エステル、例えば、混合または天然のグリセリドを使用することができる。界面活性剤は組成物の0.1〜20重量％、好ましくは0.25〜５重量％を構成することができる。組成物の残部は通常噴射剤である。また、担体、例えば、鼻内の送り出しのためにレシチンを必要に応じて含むことができる。
他の面において、本発明は活性成分として免疫原的に有効量のここに記載する免疫原性ペプチドを含有するワクチンに関する。１種または２種以上のペプチドをヒトを包含する宿主の中にそれ自身の担体に連鎖させて、あるいは活性ペプチド単位のホモポリマーまたはヘテロポリマーとして導入することができる。このようなポリマーは増加した免疫学的反応の利点を有しそして、異なるペプチドを使用してポリマーを構成する場合、ウイルスまたは腫瘍細胞の異なる抗原決定基と反応する抗体および／またはCTLsを誘発する能力を有する。有用な担体はこの分野においてよく知られており、そして、例えば、チログロブリン、アルブミン、例えば、ヒト血清アルブミン、破傷風トキソイド、ポリアミノ酸、例えば、ポリ（リジン：グルタミン酸）、インフルエンザ、Ｂ型肝炎ウイルスのコアタンパク質、Ｂ型肝炎ウイルスの組換え体のワクチンなどを包含する。ワクチンは、また、生理学的に耐性の（許容できる）希釈物、例えば、水、リン酸塩緩衝生理食塩水、または生理食塩水を含有し、そしてさらに典型的にはアジュバントを含む。アジュバント、例えば、不完全フロインドアジュバント、リン酸アルミニウム、水酸化アルミニウム、または明礬はこの分野においてよく知られている物質である。そして、前述したように、CTL応答は本発明のペプチドを脂質、例えば、P3CSSに接合することによって活性化することができる。ここに記載するように注射、エアゾール、経口的、経皮的または他のルートを経てペプチド組成物で免疫化すると、宿主の免疫系は所望の抗原に対して特異的な細胞障害性Ｔリンパ球を大量に生産することによってワクチンに対して応答し、そして、宿主は後の感染に対して少なくとも部分的に免疫となるか、あるいは発生する慢性感染に対して耐性となる。
本発明のペプチドを含有するワクチン組成物は、ウイルスの感染に対して感受性であるか、あるいはそうでなければウイルスの感染または癌の危険にある患者に投与して患者自身の免疫応答能力を増強することができる。このような量を「免疫原的に有効量」と定義する。この用途において、正確な量は再び患者の健康状態および体重、投与のモード、配合物の特質などに依存するが、一般に約1.0μｇ〜約5000μｇ／70kgの患者、より普通には約10μｇ〜約200μｇ／70kgの患者の範囲である。
ある場合において、本発明のペプチドのワクチンを問題のウイルス、とくにウイルスのエンベロープ抗原に対する中性化抗体の応答を誘発するワクチンと組み合わせることが望ましいことがある。
治療および免疫化の目的で、本発明のペプチドは、また、弱毒化ウイルス宿主、例えば、ワクシニアまたは鶏痘により発現することができる。このアプローチは、本発明のペプチドをエンコードするヌクレオチド配列を発現するベクターとしてワクシニアウイルスを使用することを包含する。急性的または慢性的に感染した宿主の中に、あるいは非感染宿主の中に導入するとき、組換えワクシニアウイルスは免疫原性ペプチドを発現し、これにより宿主CTL応答を誘発する。免疫化プロトコールにおいて有用なワクシニアのベクターおよび方法は、例えば、米国特許第4,722,848号（ここに引用によって加える）に記載されている。他のベクターはBCG（Bacille Calmette Guerin）である。BCGベクターはStoverら（Nature 351：456-460（1991））（ここ引用によって加える）に記載されている。本発明のペプチドの治療的投与または免疫化のために有用である広範な種類の他のベクター、例えば、チフス菌（Salmonella typhi）のベクターなどはここにおける記載から当業者にとって明らかであろう。
免疫原性ペプチドは半ビボでCTLを同様によく誘発するために使用できる。生ずるCTLは、他の普通の形の治療に対して応答しないか、あるいは治療のペプチドのワクチンのアプローチに対して応答しない患者において慢性の感染（ウイルスまたは細菌の）または腫瘍を処置するために使用できる。特定の病原体（感染因子または腫瘍抗原）に対する半ビボのCTL応答は、組織培養において、患者のCTL前駆体細胞（CTLp）を抗原提示細胞（APC）源および適当な免疫原性ペプチドと一緒にインキュベーションすることによって誘発される。適当なインキュベーション時間（典型的には１〜４週）後、ここでCTLpは活性化されかつ成熟しておりそしてエフェクターCTLに拡張されており、細胞を宿主に注入し戻し、ここで細胞はそれらの特異的標的細胞（感染した細胞または腫瘍細胞）を破壊するであろう。
また、ペプチドは診断試薬としての用途を見出すことができる。例えば、本発明のペプチドを使用してそのペプチドまたは関係するペプチドを使用する処置の養生法に対する特定の個体の感受性を決定することができ、こうして現存する処置のプロトコールを変更するか、あるいは影響を受けた個体についての予後を決定するとき助けとなることができる。さらに、ペプチドは、また、どの個体が発生する慢性の感染について実質的に危険であるかを予測するために使用することができる。
以下の実施例は例示のために提供され、本発明を限定しない。
実施例１
クラスＩ抗原の単離
HLA-A抗原精製の計画のフローダイヤグラムは第１図に表されている。簡単に述べると、適当なアレレを有する細胞を大きいバッチ（約５×109細胞を生ずる６〜８リットル）で成長させ、遠心により収穫し、そして洗浄した。すべての細胞系は10％の胎児ウシ血清（FBS）および抗生物質を補充したRPMI 1640培地（Sigma）中で維持した。大規模の培養のために、細胞を回転びんの中で10％ FBSおよび10％ウマ血清および抗生物質を含有するRPMI 1640中で成長させた。細胞を259ローターを有する。IEC-CRU5000遠心機により1500RPMで遠心により収穫し、そしてリン酸塩緩衝生理食塩水（PBS）（0.01ＭのPO4、0.154ＭのNaCl、pH 7.2）で３回洗浄した。
細胞を沈降させ、そして−70℃において貯蔵するか、あるいは洗浄剤溶解溶液で処理して洗浄剤リゼイトを調製した。原洗浄剤溶液〔１％ NP-40（Sigma）またはRenex30（Accurate Chem.Sci.Corp.，ウェストバリー，ニューヨーク州 11590）、150mMのNaCl、50mMのTris、pH 8.0〕を細胞のペレット（前もって計数した）に50〜100×106細胞／ml洗浄剤溶液の比で添加することによって、細胞リゼイトを調製した。細胞ペレットの添加直前に、プロテアーゼインヒビターのカクテルを前もって測定した体積の原洗浄剤溶液に添加した。プロテアーゼインヒビターのカクテルの添加は次の最終濃度を生成した：フェニルメチルスルホニルフルオライド（FMSF）、２mM；アプロチニン、５μｇ／ml；ロイペプチン、10μｇ／ml；ペプスタチン、10μｇ／ml；ヨードアセタミド、100mＭ；およびEDTA、３ng／ml。細胞の溶解を４℃において１時間周期的に混合しながら進行させた。日常的に５〜10×109細胞を50〜100mlの洗浄剤溶液中で溶解した。リゼイトを４℃において30分間15,000×ｇで遠心により清浄化し、そして引き続いて上澄み液画分を0.2μのフィルターユニット（Nalgene）に通過させた。
mAb接合セファローズ（Sepharose）ビーズを使用して調製したアフィニティーカラムを使用して、HLA-A抗原の精製を達成した。抗体の生産のために、大きい組織培養フラスコ（Cornig 25160-225）の中の10％ FBS含有RPMI中で細胞を成長させた。抗体を清浄化組織培養培地から、硫酸アンモニウム分画および引き続くプロテインＡ−セファローズ（Sigma）のアフィニティークロマトグラフィーにより精製した。簡単に述べると、飽和硫酸アンモニウムを撹拌しながら組織培養の上澄み液に45％（体積／体積）に一夜４℃においてゆっくり付加して、免疫グロブリンを沈澱させた。沈澱したタンパク質を10,000×ｇにおいて30分間遠心により収穫した。次いで沈澱を最小体積のPGS中に溶解し、そして透析管（Spectro／Por 2、分子量のカットオフ12,000〜14,000、Spectum Medical Ind.）に移した。透析はPBS（タンパク質溶液の体積の≧20倍）に対して４〜６回透析緩衝液を交換しながら４℃において24〜48時間かけて実施した。透析したタンパク質溶液を遠心（10,000×ｇ、30分間）により清浄化し、そして溶液のpHを１Ｎ NaOHでpH 8.0に調節した。プロテインＡ−セファローズ（Sigma）を製造業者の使用説明書に従い水和し、そしてプロテインＡ−セファローズのカラムを調製した。10mlのベッド体積のカラムは典型的には50〜100mgのマウスIgGに結合する。
大きい負荷体積について蠕動ポンプを使用するか、あるいはより小さい体積（＜100ml）について重力により、タンパク質試料をプロテインＡ−セファローズのカラム上に負荷した。カラムを数体積のPBSで洗浄し、そして分光光度計中で基線に到達するまで溶出液をA280に維持した。0.1Ｍのクエン酸を適当なpH（１Ｎ NaOHを使用して適当なpHに調節した）において使用して、結合した抗体を溶離した。マウスIgG-1について、pH 6.5を使用し、IgG2aについてpH 4.5を使用しそしてIgG2bおよびIgG3についてpH 3.0を使用した。２ＭのTris塩基を使用して溶出液を中和した。抗体を含有する画分（A280により監視した）をプールし、PBSに対して透析し、そしてアミコン撹拌セル系（Amicon Stirred Cell system）（Amicon 8050型、YM30膜を有する）を使用して濃縮した。抗A2 mAb，BB7.2はアフィニティー精製のために有用であった。
mAb接合セファローズビーズを使用して調製したアフィニティーカラムを使用して、HLA-A抗原を精製した。プロテインＡ−セファローズのビーズ（Sigma）をアフィニティー精製したmAbと前述したようにインキュベーションすることによって、アフィニティーカラムを調製した。５〜10mgのmAb／mlのビーズは好ましい比である。洗浄が基線においてA280を示すまで、mAb結合ビーズをホウ酸塩緩衝液（ホウ酸塩緩衝液：100mMのナトリウムテトラボレート、154mMのNaCl、pH 8.2）で洗浄した。200mMのトリエタノールアミン中のジメチルピメリミデート（20mM）を添加して、結合mAbをプロテインＡ−セファローズに共有結合させた（Schneiderら、J.Biol.Chem. 257：10766（1982）。回転器上で室温において45分間インキュベーションした後、ビーズを10〜20mlの20mMのエタノールアミン、pH8.2で２回洗浄することによって、過剰の架橋剤を除去した。各洗浄の間に、スラリーを回転器上に室温において５分間配置した。ビーズをホウ酸塩緩衝液で洗浄し、そしてPBS＋0.02％アジ化ナトリウムで洗浄した。
次いで細胞リゼイト（５〜10×109細胞同等体）を５〜10mlのアフィニティーカラム上にゆっくり通させて（0.1〜0.25／分の流速）抗原を免疫化抗体に結合させた。リゼイトをカラムに通過させた後、カラムを20カラム体積の洗浄剤原溶液＋0.1％ドデシル硫酸ナトリウム、20カラム体積の0.5ＭのNaCl、20mMのTris、pH 8.0、および10カラム体積の20mMのTris、pH 8.0で順次に洗浄した。mAbに結合したHLA-A抗原を塩基性緩衝液（水中の50mMのジエチルアミン）で溶離した。別法として、酸性溶液、例えば、0.15〜0.25Ｍの酢酸を、また、使用して結合した抗原を溶離した。比色アッセイ（BCAアッセイ、Pierce）を使用するか、あるいはSDS-PAGEによるか、あるいは両方によるたんぱく質の定量のために、溶出液のアリコート（１／50）を取り出した。SDS-PAGE分析は、Laemmli（Laemmli，U．K.，Nature 227：680（1970））により記載されているように、タンパク質標準として既知量のウシ血清アルブミン（Sigma）を使用して実施した。アレレ特異抗体を使用して特異的MHC分子を精製した。HLA-A2の場合において、mAb BB7.2を使用した。
実施例２
天然に処理されたペプチドの単離および配列決定
塩基（50mMのジエチルアミン）溶離のプロトコールから誘導されたHLA-A調製物のために、溶出液を直ちに１Ｎ酢酸でpH7.0〜7.5に中和した。中和した溶出液をアミコン撹拌セル〔8050型、YM３膜（Amicon）を有する〕中で１〜２mlに濃縮した。10mlの酢酸アンモニウム（0.01Ｍ、pH 8.0）を濃縮装置に添加して非揮発性塩類を除去し、そして試料をほぼ１mlに濃縮した。小さい試料（１／50）を前述したようにタンパク質の定量のために取り出した。残部を15mlのポリプロピレンの円錐形遠心管（Falcon，2097）（Becton Dickinson）の中に回収した。氷酢酸を添加して10％酢酸の最終濃度を得た。酸性化試料を沸騰する水浴中に５分間入れて、結合したペプチドを溶解させた。試料を氷上で冷却し、濃縮装置に戻し、そして濾液を集めた。10％酢酸の追加のアリコート（１〜２ml）を濃縮装置に添加し、そしてこの濾液をもとの濾液とともにプールした。最後に、１〜２mlの蒸留水を同様によくプールした。
保持物質は大量のHLA-A重鎖およびβ2−マイクログロブリンを含有するが、濾液は天然に処理されたペプチドおよび約3000より小さい分子量をもつ他の成分を含有する。プールした濾液物質を凍結乾燥してペプチド画分を濃縮した。次いで、試料はそれ以上の分析される状態にあった。
ペプチド画分のHPLC（高性能液体クロマトグラフィー）のために、分離のために、凍結乾燥した試料を50μｌの溶解の中に、あるいは水中の0.1％のトリフルオロ酢酸（TFA）（Applied Biosystems）の中に溶解し、そしてStoneおよびWilliamsが記載する勾配系を使用して、Ｃ18逆相の狭い孔のカラム（Beckman C18 Ultrasphere、10×250mm）に注入した（Stone，K.L．およびWilliams，K.R.，Macromolecular Sequencing and Synthesis；Selected Methods and Applications, A.R.Liss、ニューヨーク、1988、pp.7-24。緩衝液Ａは水中の0.06％ TFA（Burdick-Jackson）でありそして緩衝液Ｂは80％アセトニトリル中の0.025％ TFA（Burdick-Jackson）であった。流速は0.250ml／分であり、勾配は次の通りであった：０〜60分、２〜37.5％Ｂ；60〜95分、37.5〜75％Ｂ；95〜105分、75〜98％Ｂ。ギルソン（Gilson）の狭い孔のHPLCの立体配置はこの目的にとくに有用であるが、他の立体配置は等しくよく働く。
多数のピークを214nmにおける呼吸により検出し、それらの多くは低い吸収を有するように思われる。所定のピークが単一のペプチドまたはペプチドの混合物を表すかどうかを決定した。次いで、後述するように、プールした画分を配列決定して各アレレに対して特異的なモチーフを決定した。
前述したように調製した、プールしたペプチドの画分を、自動化エドマン（Edman）配列決定によりアプライド・バイオシステムス（Applied Biosystems）477A型自動化配列決定装置を使用して分析した。この配列決定法は、構成成分の酢酸の配列を決定するためにタンパク質およびペプチドの順次の分解について1950年代にぺール・エドマン（Pehr Edman）が開発した技術に基づく。
配列決定すべきタンパク質またはペプチドを、加熱された、アルゴンパージした反応チャンバーの中の直径12mmのガラスフィルターにより保持した。フィルターを一般にバイオブレン・プラス（BioBrene PlusR）で前処理し、次いでエドマン反応の１または２以上の反復を通して循環して汚染物質を減少しそして引き続く試料の配列決定の効率を改良した。フィルターの前処理後、試料のタンパク質またはペプチドの溶液（10pmol〜５nmolの範囲）をガラスフィルター上に負荷しそして乾燥させた。こうして、試料を前処理したディスクのフィルムの中に埋め込まれたままにした。フィルターへの試料の共有結合の取り付けは通常不必要であった。なぜなら、エドマン化学はタンパク質およびペプチドがそれほど可溶性でない、比較的無極性の溶媒を利用したからである。
簡単に述べると、エドマン分解反応は３工程有する：カップリング、切断、および変換。カップリング工程において、フェニルイソチオシアネート（PITC）を添加する。PITCはタンパク質の遊離アミノ末端の酢酸と定量的に反応して、塩基性環境の中でフェニルチオカルバミル−タンパク質を形成する。カップリング工程のある期間後、過剰の化学的物質を抽出しそして高度に揮発性の有機酸、トリフルオロ酢酸、TFA、を使用してPITCカップリングしたアミノ酸残基をタンパク質のアミノ末端から切断して、アミノ酸のアニリノチアゾリノン（ATZ）誘導体を生成する。残りのタンパク質／ペプチドは新しいアミノ末端をもったままであり、そして次のエドマンサイクルのためにすぐに使用される状態にある。ATZアミノ酸を抽出しそして変換フラスコに移し、ここで水中の25％ TFAを添加すると、ATZアミノ酸はいっそう安定なフェニルチオヒダントイン（PTH）アミノ酸に変換され、これは分析のために微小孔のＣ−18逆相HPLCカラムを使用する120PTH型分析装置の中に自動的に注入した後、同定しそして定量することができる。
この手順において、ペプチド混合物をガラスフィルター上に負荷した。こうして、単一のアミノ酸配列は通常生じない。むしろ、異なる収率のアミノ酸の混合物が見出される。特定の残基が配列決定されるペプチドの間に保存されるとき、そのアミノ酸について増加した収率が観察される。
実施例３
A2.1特異モチーフの定義
１つの場合において、上の実施例２に記載するように調製したプールしたペプチドの画分をHLA-A2.1ホモ接合の細胞系、例えば、JYから得た。プールした画分は７％〜45％のCH3CNに相当するHPLC画分であった。このクラスＩ分子について、クロマトグラムのこの領域はペプチドにおいて最も豊富であった。独立の実験からのデータを後述するように平均した。
４つの独立の実験からのアミノ酸配列の分析データを分析し、そして結果を表３に示す。第１の位置を除外した各位置について、データはFalkら、前掲、に記載されている方法を変更することによって分析して、異なるHLA型からの実験を比較できるようにした。この変更した手順は定量でありしかも標準化された値を生成すると同時に同一のHLA型を含む異なる実験からのデータの平均を可能とした。
セクエネーター（sequenator）の生データを10行（各々は１つのエドマン分解法のサイクルを表す）および16列（各々は12アミノ酸の１つを表す；Ｗ，Ｃ，ＲおよびＨは技術的理由のために排除した。第１行（第１サイクル）に相当するデータはそれ以上考慮しなかった。なぜなら、このサイクルは通常遊離アミノ酸によりひどく汚染されていたからである）の簡単なマトリックスに変換した。各行の値を合計して、その特定のサイクルのための合計のpmol値を生成した。各行について、各アミノ酸についての値を対応する合計の収率の値で割って、合計のシグナルのどの小部分が各サイクルにおける各アミノ酸に帰属されるかを決定した。そのように実施することによって、「絶対頻度」の表を発生させた。この絶対頻度の表は各サイクルの低下する収率についての補正を可能とする。
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絶対頻度の表から出発して、次いで「相対頻度」の表を作成して異なるアミノ酸の間の比較をできるようにした。そのようにするために、各列からのデータを合計し、次いで平均した。次いで、各値を次に平均の列の値で割って相対頻度の値を得る。これらの値は、標準化された方法で、異なる16のアミノ酸の種類の各々について、増加および減少／サイクルを定量する。こうして、異なる実験からのデータから作成した表は一緒に加えて、相対頻度の値（およびそれらの標準偏差）を発生することができる。次いですべての標準偏差を平均して、各表からの試料に適用可能な標準偏差値を推定する。３以上の標準偏差により1.00を越える特定の値は、有意な増加に相当する考える。
実施例４
定量的結合アッセイ
上の実施例２に記載するように調製された、単離されたMHC分子を使用して、定量的結合アッセイを実施した。簡単に述べると、上で単離されたMHCの示した量を約５nMの放射性標識化ペプチドを含む0.05％ NP40-PBS中で１〜３μＭのβ2Mおよびプロテアーゼインヒビターのカクテル（最終濃度１mMのPMSF、1.3mMの1.10フェナントロリン、73μＭのペプスタチンＡ、８mMのEDTA、200μＭのＮ−α−ｐ−トシル−Ｌ−リジンクロロメチルケトン）の存在下にインキュベーションした。種々の時間後、遊離のペプチドおよび結合したペプチドを、A.Setteら、J.Immunol. 148：844（1992）（これをここに引用によって加える）に従来記載されているように、TSK2000ゲル濾過により分離した。クロルアミンＴ法  Buusら、Science 235：1352（1987）（これをここに引用によって加える）を使用して、ペプチドを標識化した。
HBc18-27ペプチドHLA結合ペプチドを放射性標識化してそして１μＭの精製HLA A2.1に提供（５〜nM）した。23℃においてプロテアーゼインヒビターのカクテルおよび１〜３μＭの精製ヒトβ2Mの存在下に２日後、クラスIIペプチドについてSetteら、Seminars in Immunology，Vol.3，Gefter編（W.B.Saunders、フィラデルフィア、1991）pp.195-202（これをここに引用によって加える）に従来記載されているように、大きさ排除クロマトグラフィーによりMHCクラスＩ結合放射能の百分率を測定した。このプロトコールを使用して、高い結合（95％）はすべてのクラスにおいて精製HLA A2.1分子の存在下に検出された。
結合の特異性を探索するために、結合が過剰の非標識化ペプチドにより阻害可能であるかどうかを決定し、もしそうである場合、50％の阻害濃度（IC50％）がなんであるかを決定した。この実際のための原理的説明は３要素であった。第１に、このような実験は特異性を証明するためにきわめて重要である。第２に、感受性阻害アッセイは高い処理量の結合アッセイのために最も有効な別法である。第３に、スキャッチャード分析にかけた阻害データは相互作用の平衡定数（Ｋ）の定量推定およびリガンドに結合できるレセプター分子の分数（占有％）を与えることができる。例えば、ペプチドHBc18-27とA2.1との相互作用についての阻害曲線の分析において、IC50％は25nMであると決定された。それ以上の実験を実施してスキャッチャードプロットを得た。HBc18-27／A2.1について、６つの異なるMHC調製物を使用する６つの異なる実験は、15.5±9.9×10-9のＫDおよび6.2％（±1.4）の占有値を生じた。
何件かの報告が証明しているように、クラスＩ分子は、クラスIIと異なり、それらが認識するペプチドのエピトープの大きさに関して高度に選択的である。13残基程度に長いMHC結合ペプチドが同定されたが、最適な大きさは異なるペプチドおよび異なるクラスＩ分子について８〜10残基の間で変化する。厳格な大きさの要件を評価するために、ペプチドHBc18-27の１系列のＮ−末端およびＣ−末端の切形／延長類似体を合成しそしてA2.1の結合について試験した。従来の研究が証明しているように、このペプチドのCTL認識は10マーであった（Setteら、前掲）。この分子のＣ末端における残基の除去または付加は結合能力を30〜100倍減少させることが発見された。他の残基のそれ以上の除去または付加は結合を完全に消滅させた。同様に、この分子のＮ−末端において、最適なHBc18-27ペプチドからの１残基の除去または欠失はA2.1の結合を完全に妨害した。
この開示を通じて、結果はIC50で表されている。われわれのアッセイを実施する条件（MHCおよび標識化ペプチドの濃度の限定）が与えられると、これらの値はＫD値に近似する。アッセイの条件を変化させる場合、および使用する特定の試薬（例えば、クラスＩの調製など）に依存して、IC50値は劇的に変化であることがあることに注意すべきである。例えば、MHCの過剰の濃度は所定のリガンドの見掛けの測定されたIC50増加するであろう。
これらの不確実性を回避するために、結合データを表す別の方法は、参照ペプチドに対する相対値としてである。参照ペプチドをすべてのアッセイに含める。特定のアッセイが多少感受性となるとき、試験するペプチドのIC50は多少変化することがある。しかしながら、参照ペプチドに関する結合は変化しないであろう。例えば、参照ペプチドのIC50が10倍増加するような条件下に実施されるアッセイにおいて、すべてのIC50値はまたほぼ10倍シフトするであろう。したがって、不明確さを回避するために、ペプチドがすぐれた、中間の、弱いか、あるいは陰性のバインダーであるかどうかの評価は、標準のペプチドのIC50に関する、そのIC50に基づくべきである。
ここに記載するHLA-A2.1アッセイのための参照ペプチドは、FLPSDYFPSVの配列を有する941.01と呼ぶ。利用したアッセイ条件下に、５（nM）の平均が観測された。
特定のアッセイにおいて測定された標準のペプチドのIC50が表に報告するそれと異なる場合、すぐれた、中間の、弱いか、あるいは陰性のバインダーを決定するために使用した限界値は対応する因子により変更すべきであることを理解すべきである。例えば、A2.1結合アッセイにおいて、A2.1標準のIC50（941.01）を５nM代わりに８nMとして測定すべき場合、ペプチドのリガンドは、それが50nMの通常カットオフ値代わりに80nMより小さい（すなわち、８nM×0.1）のIC50を有した場合にのみ、すぐれたリガンドと呼ばれるであろう。
実施例５
HLA-A2.1結合のモチーフおよびアルゴリズム
A2.1に結合するペプチドのための構造的要件は、９マーおよび10マーのペプチドの両方について定義された。「ポリ−Ａアプローチ」と呼ぶ第１のアプローチは９マーのプロトタイプのポリ−Ａバインダー（ALAKAAAAV）の単一のアミノ酸置換基のパネルを使用し、これは上の実施例４の方法を使用してA2.1の結合について試験して、アンカー−位置のデジェネラシーの程度およびA2.1の結合への非アンカー位置の可能な影響を検査する。
第２アプローチ、すなわち、「モチーフ−ライブラリーのアプローチ」は、ウイルスおよび腫瘍由来の潜在的標的分子の配列から選択されそして上の実施例４における方法を使用してA2.1の結合について試験したペプチドの大きいライブラリーを使用する。異なるアミノ酸がすぐれたバインダーおよび非バインダー中の各位置に存在する頻度を分析して、９マーおよび10マー中の非アンカー位置の役割を定めた。
ペプチド９マーのA2.1の結合
ポリ−Ａアプローチ  A2.1モチーフＬ（Leu）を位置２に含有しそしてＶ（Val）を位置９に含有する、ポリ−Ａ９マーペプチドを位置４に含めて可溶性を増加した。プロトタイプの親の９マーの91の単一のアミノ酸置換の類似体のパネルを合成し、そしてA2.1の結合について試験した（表４）。陰影をつけた区域は、親のペプチドに関する結合能力の減少が10倍より大きい類似体を示す。100倍より大きい結合の減少はハイフンで示されている。
ポリ−Ａ類似体中のアンカー位置２および９  アンカー位置２および９における単一のアミノ酸の置換基の効果をまず検査した。これらの位置におけるほとんどの置換基は結合能力に対する強い悪い作用を有し、こうして結合のためのそれらの役割を確証した。さらに詳しくは、位置２において、ＬおよびＭのみが10倍の範囲で結合した（「好ましい残基」）。同様な特性をもつ残基、例えば、Ｉ，Ｖ，Ａ、およびＴは許容されるが、親のペプチドよりも10〜100倍低い強さで結合した。すべての残りの置換基（残基Ｓ，Ｎ，Ｄ，Ｆ，Ｃ，Ｋ，Ｇ、およびＰ）は許容されず、そして100倍より大きく結合を減少させた。比較的厳格な要件が位置９について観察され、ここでＶ，ＬおよびＩは好ましくそしてＡおよびＭは許容されるが、残基Ｔ，Ｃ，Ｎ，Ｆ、およびＹは結合を事実上壊滅させた。この組のペプチドに従い、最適な２〜９モチーフは位置９におけるＬ，Ｍおよび位置９におけるＶ，Ｉ、またはＬで定めることができた。
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ポリ−Ａ類似体における非アンカー位置１および３〜８  すべての非アンカー位置は、アンカー位置２および９よりも異なる置換基に対して許容性であった、すなわち、大部分の残基は許容された。結合の有意な減少は明確な位置におけるいくつかの置換基について観察された。さらに詳しくは、位置１において、負電荷（残基ＤおよびＥ）またはＰは結合能力を大きく減少させた。残基Ｋを除外して大部分の置換基は位置３において許容された。負電荷（Ｄ，Ｅ）または正に帯電した残基（Ｒ）を導入したとき、有意な減少はまた位置６において見られた。異なる単一のアミノ酸置換基によるこれらの作用を表５に要約する。
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モチーフ−ライブラリーのアプローチ  結合のための非アンカー位置の重要性をさらに評価するために、ウイルスおよび腫瘍由来の潜在的標的分子のペプチドを最適な２〜９のアンカーのモチーフを含有する配列の存在について走査した。位置２にＬまたはＭおよび位置９にＶ，ＬまたはＩを含有する161のペプチドの組を選択し、合成しそして結合について試験した（参照、実施例６）。これらのペプチドの11.8％のみが高いアフィニティーで結合する（比≧0.10；22.4％は中間のバインダーであった（比≧0.1）。36％程度に多くは弱いバインダーであり（比＜0.01〜0.0001）、そして31％は非バインダーであった（比＜0.0001）。最適なアンカー−モチーフを含有する非バインダーの大きい数は、この組のペプチドにおいて、２〜９アンカー以外のペプチド位置がA2.1の結合能力に影響を及ぼすことを示す。追加１は、この分析のために使用した２〜９モチーフを有するペプチドのすべておよびそれらのペプチドについての結合データを記載する。
非アンカー位置への影響をいっそう詳しく定めるために、一方においてすぐれたおよび中間のバインダーおよび他方において非バインダーについて、非アンカー位置の各々における各アミノ酸の存在頻度を計算した。同様な化学的特性をもつアミノ酸を一緒にグループにした。弱いバインダーは次の分析のために考慮しなかった。非アンカー位置の各々における各アミノ酸の存在頻度を、すぐれたバインダーおよび非バインダーについて計算した（表６）。
いくつかの顕著な傾向が明らかとなる。例えば、位置１において、A2.1のバインダーのわずかに3.6％および非バインダーの35％程度に多くは負電荷（残基ＤおよびＥ）を有した。この観察はポリ−Ａ類似体の組における前の発見とよく相関関係をもち、ここでＤまたはＥ置換基は結合に大きい影響を与える。同様に、残基Ｐはすぐれたバインダーにおけるより非バインダーにおいて８倍の頻度を有する。逆に、芳香族残基（Ｙ，Ｆ，Ｗ）の頻度は非バインダーに比較してA2.1のバインダーにおいて大きく増加した。
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このアプローチ後、同様に構造的特性を有するアミノ酸を一緒にグループにした。次いで、各位置における各アミノ酸基の頻度をバインダー／非バインダーについて計算した（表７）。最後に、バインダーのグループにおける頻度を非バインダーにおける頻度で割って「頻度の比」を得た。この比は、所定のアミノ酸または残基の群がすぐれたバインダー（比＞１）または非バインダー（比＜１）において優先的に所定の位置に存在するかどうかを示す。
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異なる残基はA2.1の結合に影響を及ぼす  A2.1の結合へのある種の残基の最も顕著な影響を分析するために、表７に記載する比について限界レベルを設定した。すぐれたバインダーにおいて４倍より大きい頻度を示す残基は好ましい残基（＋）と見なした。非バインダーにおけるよりA2.1の結合において４倍より低い頻度を示す残基を好ましくない残基（−）と見なした。このアプローチ後、バインダーに最も卓越した作用を示す残基を表８に列挙する。
この表は、非アンカー位置の各々において最も有意に結合に影響を及ぼすアミノ酸基を識別する。一般に、最も陰性の作用は帯電したアミノ酸で観察された。位置１において、負に帯電したアミノ酸はすぐれたバインダーにおいて観察されなかった。すなわち、それらのアミノ酸は位置１において陰性の結合残基であった。この反対は位置６において真実であり、ここで塩基性アミノ酸のみが結合に有害であった、すなわち、陰性の結合残基であった。そのうえ、酸性および塩基性の両方のアミノ酸はA2.1バインダー中で位置３および７において観察されなかった。Ｐが位置１存在するとき、非バインダーの４倍より大きい頻度の増加が発見された。
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芳香族残基は一般にいくつかのアンカー位置、とくに位置１，３、および５において好適であった。Ｓ，Ｔ、およびＣのような小さい残基は位置４において好適であり、そしてＡは位置７において好適であった。
改良されたA2.1の９マーのモチーフ  前述のデータを使用して厳格なA2.1モチーフを誘導した。このモチーフは有意な部分において非アンカー位置１および３〜８の作用に基づく。異なる位置におけるアミノ酸の不均一な分布は、結合アフィニティーへの、ある種の残基、すなわち、帯電した残基の特別に優勢の陰性の結合作用を反映する。位置２および９における適当なアンカー残基および位置１および３〜８における陰性の結合残基を同定して、高いアフィニティーの結合免疫原性ペプチドを選択できるように、一連のルールを誘導した。これらのルールを表９に要約する。
上で同定しそして表９に示すモチーフを確認するために、天然に処理されかつA2.1分子により提示されたペプチドの発表された配列を分析した（表10）。２〜９つのアンカー残基を含有する９マーのペプチドのみを考察した。
これらのペプチドの頻度を分析するとき、一般にそれらは表９に要約したルールに従うことが発見された。さらに詳しくは、酸性アミノ酸またはＰのいずれも位置１に見出された。１つのみの酸性アミノ酸が位置３に見出されたが、塩基性アミノ酸は見出されたなかった。位置６および７は帯電した残基を示さなかった。しかしながら、酸性アミノ酸は位置８に頻繁に見出され、ここでそれらはA2.1モチーフのわれわれの定義に従い許容される。したがって、天然に処理されたペプチドの配列の分析は、ペプチドの＞90％は完全なモチーフのための定義されたルールに従ったことを明らかにする。
こうして、データはA2.1の結合についてアンカー位置２および９以外の位置の役割を確証する。結合への悪い作用の大部分は非アンカー位置の帯電したアミノ酸、すなわち、位置１，３，６または７を占有する陰性の結合残基により誘発される。
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A.2.1.1 ペプチド10−マーの結合
「モチーフライブラリ」アプローチ：前述のデータは明らかに、10−マーが同様に、９−マーよりも幾分か低い親和力を伴ってであれ、HLA分子に対し結合できるということを示している。このような理由から、我々は、我々の分析を10−マーペプチドにまで拡大した。
従って、最適なモチーフ組合せを含む170のペプチド10−mersの「モチーフライブラリ」セットを、ウイルス及び腫瘍由来の既知の標的分子配列から選択し、９−マーについて上述した通りにこれを分析した。このセット中に、我々は5.9％の優良なバインダー、17.1％の中間バインダー、41.2％の弱いバインダーそして35.9％の非バインダーを発見した。このペプチドセットの実際の配列、由来及び結合能力は補遺２として含まれている。10−マーのこのセットは、ａ）A2.1に対する10−マーペプチド結合についての法則、ｂ）９−マーについて定義された法則との類似性又は差異、及びｃ）９−マー及び10−マーについての重複可能な共通モチーフを可能にする１つの挿入点を識別することができるか否か、を決定するために使用された。
各々の位置についてのさまざまなアミノ酸基のアミノ酸頻度及び頻度比率を、９−マーペプチドについて上述したとおり生成した。これも又それぞれまとまった残基について表11及び12に示されている。
好ましい残基と好ましくない残基の関係及び９−mersについて用いられたものと類似の要領で10−マーについて誘導された法則の要約も同じくそれぞれ表13及び表14に列挙されている。
異なる位置におけるバインダ及び非バインダの中の異なるアミノ酸基の頻度比率を分析し９−マーについての対応する比率に比較した場合、驚く程の類似性及び大幅な差異の両方が現われた（表15）。９−マー及び10−マーのＮ末端及びＣ末端においては、類似性が際立っている。例えば位置１において、10−マー内でも、Ｐ残基及び酸性アミノ酸は許容されなかった。さらに10−マー中の位置１では、芳香族残基が、A2.1バインダー中に往々にして観察された。位置３では、酸性アミノ酸は往々にして、９−マー及び10−マーの両方で弱結合能力と結びついていた。
しかしながら興味深いことに、位置３において、９−マーでは芳香族残基が好まれるのに対して、10−マーでは脂肪族残基（Ｌ，Ｖ，Ｉ，Ｍ）が好まれた。
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ペプチドのＣ末端では、10−マーについて位置７で塩基性アミノ酸が好まれず、位置８で酸性及び塩基性の両方のアミノ酸が好まれない。このことは、９−マーにおいて位置６及び７で同じパターンが見られたという観察と著しく一致している。興味深いことに、ここでも好まれる残基は２つのペプチドサイズ間で異なっている。10−マーにおいては位置８で芳香族（Ｙ，Ｆ，Ｗ）又は脂肪族（Ｌ，Ｖ，Ｉ，Ｍ）残基が好まれ、一方９−マーでは対応する位置７でＡ残基が好まれた。
これとは対照的に、ペプチドの中心では10−マーにおける位置４，５及び６で、又９−マーにおける位置４及び５で、頻度の優先性の類似性は全く見られなかった。
最も興味深いことに、残基のうち試験対象のペプチドの中心において最も好まれたものは、位置４及び５においてＧであり、位置５におけるＰは、バインダー中に観察されなかった。これらの残基の全てがペプチドの２次構造全体に劇的な影響を及ぼすことが知られており、特に、10−マーの性向に強く影響を及ぼして「キンク」又は「バルジ」付きコンホーメーションを採用することになると予想される。
帯電した残基は、結合にとって卓越して有害であり、往々にして９−マー及び10−マーの非バインダーの中に観察される。
しかしながら好ましい残基は、９−マーと10−マーについて異なっている。10−マーペプチドの中心においてはグリシンが好まれるがプロリンは好まれず、９−マーについてはそうではない。
これらのデータは、９−マー内の２つの位置（４，５）及び10−マー内の３つの位置（４，５，６）にまたがる「挿入部域」の存在を立証している。この挿入部域は、９−マー及び10−マー抗原ペプチドの間にほとんど残基類似性が見られない、より許容性の高い領域である。その上、きわめて保存度の高いアンカー位置２及び９に加えて、９−マー及び10−マーの両方についてＮ末端で位置１及び３において、又10−マー及び９−マーについてＣ末端でそれぞれ位置７〜10又は６〜９において、好まれない残基のための「アンカー部域」が存在する。
実施例６
HLA-A2.1に対する９−マーペプチドの結合を予測するためのアルゴリズム
前述の例で示した通り、2.9モチーフにより同定される潜在的なA2.1結合ペプチドの母集団の中で、実際に優良又は中間バインダであり従って潜在的に免疫原性であるペプチドはわずかしかない。前述のデータから、２及び９以外の位置に存在する残基がペプチドの結合親和力に対し、往々にして深く影響を及ぼしうるということが明らかである。例えば、A2.1ペプチドに関し位置１の酸性残基は許容されると思われない。従って、より正確な結合予測因子は、位置２及び９に加えてペプチド配列の各々の位置での異なる残基の効果を考慮に入れることにより、生成できるだろう。
より特定的に言うと、我々は、１つのペプチドに沿って各々の位置で各アミノ酸について１つの得点を割当てるアルゴリズムを開発するため、９−マーペプチドを含むA2.1モチーフの我々のコレクションのスクリーニングの間に得られたデータバンクを利用した。各残基に対する得点は、優良及び中間バインダ内のその残基の頻度と非バインダ内のその残基の出現頻度の比としてとられる。
この「グループ比」アルゴリズムにおいては、残基は類似性によりまとめられた。こうして、統計学的に有意な比率を得るには出現率が少なすぎる、トリプトファンといったようないくつかの稀な残基で遭遇する問題点が回避される。表16は完全な２／９モチーフを含む９−merペプチドについて１つの位置につき20のアミノ酸を各々についてまとめることによって得られる得点のリストである。１つのペプチドは「グループ比」アルゴリズムの中で、その残基の各々の得点の積として得点付けされる。２及び９以外の位置の場合においては、得点は、位置２及び９に好ましい残基のみを含む一組のペプチドを用いて導かれた。「グループ比」アルゴリズムを、２及び９に好ましい残基以外の残基を有しうるペプチドにまで拡大できるようにするため、２及び９に対する得点を、位置２及び９における単一のアミノ酸置換であるペプチドのセットから導いた。図２は、前述の例からの我々の９−マーペプチドコレクションについての「グループ比」アルゴリズム得点に対してプロットされた相対的結合の対数の散布図を示している。
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この「グループ比」アルゴリズムは、最高の優良バインダ出現率をもつペプチドの母集団を予測するのに使用することができる。例えば、A2.1結合９−マーペプチドを予測するために２（Ｌ，Ｍ）及び９（Ｖ）だけに頼らなくてはならないとすれば、我々のデータベース内の160のペプチドは全て優良なバインダとなると予測されただろう。実際には、すでに記述されてきたとおり、これらのペプチドのうちわずか12％のみが優良なバインダとして、わずか22％のみが中間バインダーとして記述されてきており、このような2.9モチーフにより予測されたペプチドの66％が弱又は非結合ペプチドのいずれかである。これとは対照的に、上述の「グループ比」アルゴリズムを用い閾値として1.0の得点を選定することにより41のペプチドが選定された。このセットのうち、27％が優良なバインダで、49％が中間バインダであり、一方20％のみが弱いバインダであり５％が非バインダである（表17）。
このアルゴリズム例では、１つのペプチドの各位置で特定の残基の衝撃を測定するためにバインダ／非バインダーの比を使用した。当業者にとっては、類似のアルゴリズムを作成する代替的方法が存在するということが直ちに明らかである。
或る位置での或る１つのアミノ酸（又はアミノ酸タイプ）をもつ全てのペプチドの平均的結合親和力を用いたアルゴリズムには、優良な／中間バインダ及び非バインダーだけではなく、全てのペプチドを分析に含み入れるという利点がある。その上、より単純な「グループ比」アルゴリズムに比べてより数量的な親和力の尺度を与えてくれる。我々は、位置毎に各々のアミノ酸について、2.9モチーフを含む160のペプチドの我々のセットの中にその特定の残基が出現した時点の平均結合対数を計算することによって、このような１つのアルゴリズムを作成した。これらの値は表18に示されている。このとき、１つのペプチドについてのアルゴリズム得点は、各々の残基に対する位置毎の得点の合計としてとられる。図３は、平均「結合対数」アルゴリズム得点に対する相対的結合対数の散布図を示す。表17は、使用されたカットオフ得点の関数としての、さまざまなレベルでのペプチド結合を予測する２つのアルゴリズムの能力を示している。参考として、同じペプチドセット内の結合を予測する2.9モチーフの能力も同様に示されている。この比較から、本発明の両方のアルゴリズムが、2.9モチーフ単独よりも高い優良バインダー頻度で母集団を予測するより大きい能力を有する、ということは明白である。「グループ比」アルゴリズムと「結合対数」アルゴリズムの間の差はここで分析されたペプチドセットにおいては小さいが、「グループ比」アルゴリズムよりも「結合対数」アルゴリズムの方がごくわずかではあるものの優れた予測を行なうものであるということをまさに示唆している。
結合対数アルゴリズムは、２つの方法でさらに修正された。まず第１に、大きいペプチドライブラリをスクリーニングすることによって得られるデータが利用可能でない拡張されたモチーフ内に含まれた残基のためのアンカー位置において、アルゴリズム内にポリアラニン（poly-A）データが組み込まれた。第２に、アルゴリズム内に「アンカー必要条件スクリーニングフィルター」が組み込まれた。ポリ−Ａアプローチは以上で詳細に記述されている。「アンカー必要条件スクリーニングフィルター」というのは、アンカー位置で残基が得点付けされかくして、アンカー位置に好ましい又は許容された残基をもたないペプチドをふるい落とす能力を提供する方法のことである。これは、該当する残基の含有ペプチドを潜在的結合体としてみなすことができるようにする全体的得点をそのペプチドが達成するのを妨げるほどに高い得点を、アンカー位置にあるこれらの受容不可能な残基に対して割当てることによって達成される。
９−マー及び10−マーについての結果は、以下の表26及び27に示されている。これらの表において、値は、表中に記載のないかぎり、Ａ；Ｇ；Ｐ；Ｄ，Ｅ；Ｒ，Ｈ，Ｋ；Ｌ，Ｉ，Ｖ，Ｍ；Ｆ，Ｙ，Ｗ；Ｓ，Ｔ，Ｃ；及びＱ，Ｎといったグループ値である。
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実施例７
HLA-A2.1に対する10−マーペプチドの結合を予測するアルゴリズムの使用
前述の例で記述された方法を利用して、10−マーペプチドの結合を予測するために類似のアルゴリズムセットが開発された。表19は、10−マーペプチドについての「グループ比率」アルゴリズムの中で使用される得点を示し、表20は「結合対数」アルゴリズムの得点を示す。表21は、結合ペプチドを選択するための２つの異なるアルゴリズム方法の応用の比較を示す。図４及び５はそれぞれ、「グループ比」及び「結合対数」アルゴリズムにより得点づけされたとおりの、位置２及び10において好ましい残基を含む10−マーペプチドのセットの散布図を示している。
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実施例８
A2.1アルゴリズムで予測されたペプチドの結合
例６及び７の結果は、免疫原性である高い確率を有するのに充分なほどにHLA-A2.1に対して結合するペプチドを選択するためにアルゴリズムを使用することができるということを表わしている。
この結果をテストするため、我々は、さまざまな供給源から誘導されたペプチドの大きく（1300以上）非冗長的な独立したセットについて、我々のアルゴリズムを試験した。我々は、我々のアルゴリズムでこのセットを得点づけした後、合成のため41のペプチド（表21）を選定し、A2.1結合についてこれらを試験した。このペプチドセットは高いアルゴリズム得点を伴う21のペプチドと低いアルゴリズム得点を伴う20のペプチドで構成されていた。
結合データ及びカテゴリー化プロファイルはそれぞれ表22及び23に示されている。結合及びアルゴリズム得点の間の相関は0.69であった。表23から高いアルゴリズム得点をもつペプチドと低いアルゴリズム得点をもつペプチドの間の著しい差が直ちに明らかとなる。それぞれに、高得点ペプチドの76％及び低得点ペプチドの０％が、優良又は中間バインダのいずれかであった。このデータは、本発明のアルゴリズムの効用を実証している。
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実施例９
細胞障害性Ｔリンパ球（CTL）の半ビボ誘発
（必要とされるCTLpの初期量に応じて）静脈穿刺又はアフェレーシスのいずれかによってHLA型別された患者から末梢血単核細胞（PBMC）を分離し、フィコール−パーク（Phar-macia）を用いて勾配遠心分離によりこれを精製する。標準的には、末梢血１mlにつき100万のPBMCを得ることができ、又代替的には、標準的なアフェレーシス処置により、最高で合計１〜10×1010のPBMCを得ることができる。
分離し精製したPBMCを、（問題の抗原の配列及びHLA結合モチーフを含む）適当な量の合成ペプチドを用いて予めインキュベート（「パルス」）した適当な数の抗原提供細胞（APC）と共に同時培養させる。PBMCは通常、RPMI-1640（自己由来の血清又は血漿を伴う）又は無血清培地AIM-V（Gi-bco）といったような培地の中で１−２×106細胞／mlの割合でインキュベートされる。
APCは通常、使用される細胞のタイプに応じて１×104〜２×105細胞／mlの範囲の濃度で使用される。APCの供給源として考えられるのは、１）PBMCから分離され、記述通り（Inaba et al.，J.Exp.Med．166：182（1987））精製された自己由来の樹状細胞（DC）；及び２）マウスRMA-S細胞系統又はヒトＴ２細胞系統といった（患者の独立HCA形質に対し同系の〔遺伝子的に同じ〕ものである）「空の」HLA分子を発現する突然変異体又は遺伝子工学処理を受けた哺乳動物の細胞、である。空のHLA分子を含むAPCは、CTL応答を誘発する可能性があるものとして知られているが、これは恐らくは、ペプチドが、その他のペプチドに占有されているMHC分子とよりも空のMHC分子とより容易に結びつくことができるためであると考えられる。（DeBruijn et al.，Eur J.Immunol．21：2963〜2970（1991））。
使用されるAPCが自己由来でない場合には、細胞は、半ビボでそしてそれが患者に再度導入された時点での両方においてその増殖を妨げるため、適切な線量で（例えば放射性セリウム又はコバルトを用いて）ガンマ照射を受けなくてはならないだろう。
PBMC，APC及びペプチドを含む混合培養は、プラスチック製Ｔ字形フラスコ、通気性プラスチック袋又はローラーボトルといったような適切な培養容器に入れて、湿潤空気／CO2インキュベータ内で37℃に保たれる。最初の３〜５日の間に通常起こる培養の活性化段階の後、結果として得られたエフェクターCTLを、培養に対してインターロイキン−２（IL-2）、インターロイキン−４（IL-4）又はインターロイキン−７（IL-7）といった組換え型DNA誘導の成長因子を付加することによって、さらに拡張させることが可能である。特定の患者について必要とされるエフェクターCTLの数に応じて、さらに５日〜12日間拡張培養を保つことができる。さらに、より多数の細胞（最高１×1011）を維持することのできる中空繊維人工毛細血管系（Cellco）を用いて、拡張培養を行なうこともできる。
患者に細胞を注入する前に、活性、生存度、毒性及び無菌性についてこれらを試験する。結果として得られたCTLの細胞障害活性は、免疫原性ペプチドの存在下及び不在下で適当なHLA分子を発現する標的細胞を用いて、標準的51Cr−放出検定（Biddison，W.E．1991、免疫学における現在のプロトコル、p7，17.1〜7.17.5、編集者：J.Colligan et al.，J.Wiley and Sons．New York）によって決定され得る。生存度は、生きた細胞によるトリパンブルー染料の排除によって決定される。従来の技術によって内毒素の存在について細胞を試験する。最後に、細菌又は真菌汚染の存在は、適切な微生物方法（チョコレート寒天など）によって決定される。細胞が全ての品質検査及び安全試験にひとたび合格したならば、これらの細胞を洗浄し適切な注入溶液（リンゲル／乳酸グルコース）の中に入れ、患者に静脈内注入する。
実施例10
CTL活性についての検定
１．ペプチド合成：標準Fmonカップリングサイクル（ソフトウェア−ヴァージョン1.40）を用いてApplied Biosystems（Foster City，CA）の430Aペプチド合成装置上で、Ｎ−α−Fmoc−防御アミノ酸の順次カップリングによってペプチド合成を行なった。全てのアミノ酸、試薬及び樹脂は、Applied Biosystems又はBachemから得たものであった。溶剤はBurdick & Jacksonから得た。適切に置換したFmoc−アミノ酸−Sasrin樹脂から固相合成を開始した。出発樹脂の負荷は、ポリスチレン0.5〜0.7mmol／ｇであり、各々の合成において0.1又は0.25meqを使用した。標準的な反応サイクルは、以下の通りに進行した：１）５分間、ジメチルホルムアミド（DMF）中の25％のピペリジンを用いてＮ末端Fmoc基を除去し、それに続いて15分間DMF中の25％のピペリジンでのもう１つの処理を行なった。樹脂をDMFで５回洗浄した。樹脂に対して適切なFmoc−アミノ酸の予め形成された１−ヒドロキシベンゾトリアゾールエステルの４〜10倍余剰分のＮ−メチルピロリドン（NMP）溶液を樹脂に付加して、混合物を30〜90分間反応させた。次の伸長サイクルの準備としてDMFで樹脂を洗浄した。完全に防御され、樹脂結合したペプチドを、ピペリジンサイクルに付して末端Fmoc基を除去した。ジクロロメタンで生成物を洗浄し乾燥させた。次に樹脂を20℃で60分間適切なカスベンジャー〔例：５％（ｖ／ｖ）の水〕の存在下でトリフルオロ酢酸で処理した。余剰のトリフルオロ酢酸の蒸発後、ジメチルエーテルで粗製ペプチドを洗浄し、水中に溶解させ凍結乾燥させた。Vydacの300A孔径のＣ−18前処理カラム上で0.2％のTFA変更因子を含むH2O／CH3CN勾配を用いた逆相HPLCにより、95％を超える均質度に至るまでペプチドを精製した。合成ペプチドの純度を分析用逆相カラム上で検定し、その組成をアミノ酸分析及び／又は配列決定により確認した。ペプチドを20mg／mlの濃度でDMSO中に型通り溶解させた。
２．媒質：培地としては、10％の胎児ウシ血清（FCS）２mMのグルタミン、50μｇ／mlのゲンタマイシン及び５×10-5Ｍの２−メルカプトエタノールを含むRPMI-1640を用いた。これを以下Ｒ10培地と呼ぶ。
細胞洗浄用媒質として、25mMのヘペス緩衝液を含み２％のFCSで補足されたRPMI-1640を使用した。
３．ラットコンカナバリンＡ上清：ルイスラット（Spragne-Dawley）から得た脾細胞を、75cm2入り組織培養フラスコ中の５μｇ／mlのConAで補足されたＲ10培地内で５×106細胞／mlの濃度にて再懸濁させた。37℃で48時間後、上清を収集し、１％のα−メチル−Ｄ−マンノシドで補足しフィルター滅菌した（0.45μｍのフィルター）。アリコートを−20℃で保存した。
４．LPS活性化を受けたリンパ芽球：75cm2入り組織培養フラスコ内で25μｇ／mlのLPS及び７μｇ／mlの硫酸デキストランが補足されたＲ10培地中１〜1.5×106mlの濃度でマウスの脾細胞を再懸濁させた。37℃で72時間後、リンパ芽球を遠心分離により使用を目的として収集した。
５．リンパ芽球のペプチドコーティングを、37℃で１時間Ｒ10培地１ml中で100μｇのペプチドを用いて30×106のリンパ芽球をインキュベートすることによって達成した。次に細胞を一度洗浄し、インビトロCTL活性化において使用する目的で望ましい濃度でＲ10培地内でこれを再懸濁させた。
６．Jurkat A2／Ｋb細胞のペプチドコーティング、37℃で１時間１mlのＲ10培地中で20μｇのペプチドを用いて10×106の照射を受けた（20000ラド）Jurkat A2.1／Ｋb細胞をインキュベートすることによって、ペプチドコーティングを達成した。細胞を３回洗浄し、Ｒ10培地内で所要濃度で再懸濁させた。
７．インビトロCTL活性化：初回免疫から１〜４週間後、脾細胞（５×106細胞／ウェル又は30×106細胞／Ｔ25フラスコ）を、Ｒ10培地中の同系の照射を受けた（3000ラド）ペプチドコーティングされたリンパ芽球（２×106細胞／ウェル又は10×106細胞／Ｔ25フラスコ）と共に37℃で対抗培養させて、24ウェルのプレート中２ml、又はＴ25フラスコ中10mlの最終体積を得た。
８．エフェクタ細胞の再刺激：上述の段落７で記した初期インビトロ活性化から７〜10日後、最適なエフェクタ細胞の成長に必要とされるサイトカインを全て提供するのを助けるべく５％のラットConA上清で補足されたＲ10培地中の３×106の「フィーダー細胞」／ウェル（C57B1／６照射済み脾細胞）の存在下で、照射を受けた（20000ラド）ペプチドコーティングされたJurkat A2／Ｋb細胞（0.2×106細胞／ウェル）でエフェクタ細胞の一部分を再刺激した。
９．細胞障害性活性についての検定：標的細胞（３×106）を、200μｌのクロム酸ナトリウム51Crの存在下で37℃でインキュベートした。60分後、細胞を３回洗浄し、Ｒ10培地内で再懸濁させた。所要濃度でペプチドを付加した。検定のため、Ｕ字底面の96-2311プレート内で異なるエフェクター細胞濃度（最終体積200μｌ）に至るまで、104の51Cr標識づけされた標的細胞を付加した。37℃での６時間のインキュベーション期間の後、上清の0.1mlアリコートを各ウェルから除去し、Micromedic自動ガンマ計数器の中で放射能を測定した。次の公式により、％特異的溶解を決定した：％特異的放出＝100×（実験的放出−自然的放出）／（最大放出−自然的放出）。ペプチド滴定が行なわれた場合、一定の与えられたペプチド（比較を目的としたもの）の抗原性は、一定の与えられたＥ：Ｔにおいて40％特異的51Cr放出を誘発するのに必要とされるペプチド濃度として表わされた。
A2.1モチーフを含む推定上のCTLエピトープ50nMとＢ型肝炎コアＴヘルパーエピトープ50nMを含む不完全フロイントアジュバントエマルジョンを用いて、トランスジェニックマウスの尾のつけ根に皮下注射を行なった。８〜20日後、マウスを安楽死させ、脾細胞をインビトロで、推定上のCTLエピトープでコーティングされた同系のLPSリンパ芽球を用いて再刺激した。最終濃度５％に至るまで検定６日目にIL-2供給源（ラットconA上清）を付加し、CTL活性を７日目に測定した。A2KB分子（Jurkat A2KB）を発現するペプチドコーティングされた標的細胞を溶解するこれらのエフェクターＴ細胞の能力を、溶解単位として測定した。結果は表24に示されている。
この実験の結果は、少なくとも0.01の結合をもつペプチドがCTLを誘発できるということを表わしている。少なくとも約0.01の結合をもつ補遺１及び２内のペプチドの全てが免疫原性となる。
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実施例11
免疫原性ペプチドの識別
腫瘍関連タンパク質からのHLA-A2.1対立遺伝子について以上で同定したモチーフを用いて、これらのモチーフの存在について黒色腫抗原−１（MAGE-1）を分析した。標的抗原についての配列はGen Bankデータベース（公開番号71.0：３／92）から得られる。モチーフの同定は、「FINDRATTERNS」プログラムを用いて行なわれる（Devereux et al.，Nuclic Acid Research12：387〜395（1984））。
これらのモチーフの存在についてその他のウイルス及び腫瘍関連タンパク質も分析することが可能である。アミノ酸配列又はヌクレオチド配列コーディング産物は、ヒト乳頭腫ウイルス（HPV）、前立腺特異的抗原（PSA）、ｐ53がん遺伝子、エプスタイン−バー核抗原−１（EBNA-1）及びc-erb2がん遺伝子（HER-2／neuとも呼ばれる）の場合、Gen Bankデータベースから得られる。
Ｂ型肝炎ウイルス（HBV）、Ｃ型肝炎ウイルス（HCV）及びヒト免疫不全症ウイルス（HIV）の場合には、いくつかの菌株／分離株が存在し、多くの配列がGen Bankに寄託されている。
HBVについては、結合モチーフは、adr，adw及びayw型について同定されている。同一の配列の複製を避けるため、adrモチーフの全てと、adr内に存在しないadw及びaywからのモチーフのみがペプチドリストに付加される。
CHVの場合、残基１から残基782までのコンセンサス配列が９つのウイルス分離株から誘導される。９つの分離株の間で全く又はきわめてわずかしか（１つの残基）変動のないような領域上でモチーフが同定される。５つのウイルス分離株からの残基783〜3010の配列も同様に分析された。全ての分離株に共通のモチーフが同定されペプチドリストに付加される。
最後に、北米産ウイルス分離株（10〜12のウイルス）についてのHIV １型のコンセンサス配列がLos Alamos国立研究所のデータベース（1991年５月公開）から得られ、大部分のウイルス分離株全体を通して一定であるモチーフを同定するべく分析された。低レベルの変動しか受けていないモチーフ（２形態で１つの残基）も同じくペプチドリストに加えられた。
追加１及び２は、cERB2，EBNA1，HBV，HCV，HIV，HPV，MAGE，p53及びPSAといった抗原の探求の結果を提供している。例５に記されている検定における標準ペプチドと比較して少なくとも１％の結合親和力をもつペプチドのみが紹介されている。標準ペプチドに比べた場合の結合が右端の欄に示されている。「Ros」と標識のついた欄は、配列が起こる抗原タンパク質内の位置を示している。
実施例12
免疫原性ペプチドの同定
ここで開示されているモチーフを用いて、さまざまな抗原からのアミノ酸配列を、さらなるモチーフについてスクリーニングした。スクリーニングは、例11内に記述されている通りに行なわれた。表25及び26は、cERB2，CMV、インフルエンザＡ、HBV，HIV，HPV，MAGE，p53，PSA，HuS3リポソームタンパク室、LCMV及びPAPといった抗原の探求の結果を提供している。例５に記されている検定における標準ペプチドに比べて少なくとも１％の結合親和力をもつペプチドのみが提示されている。各々のペプチドについて、標準ペプチドと比べての結合が示されている。
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実施例13
自己抗原における免疫原性ペプチドの同定
上記のように、本発明の特徴はまた、自己免疫疾患に関連する抗原においてスクリーンされ得る。HLA-A2.1対立遺伝子について上記に同定される特徴を用いて、ミエリンプロテオリピド（PLP）、ミエリン塩基性タンパク質（MBP）、グルタミン酸デカルボキシラーゼ（GAD）、及びヒトコラーゲンタイプII及びIVからのアミノ酸を、それらの特徴の存在について分析した。抗原についての配列は、Trifilieffなど.，C.R.Sceances Acad.Sci．300：214（1985）；Eylerなど.，J.Biol.Chem．246：5770（1971）；Yamashitaなど.，Biochiem.Biophys.Res.Comm．192：1347（1993）；Suなど.，Nucleic Acids Res．17：9473（1989）及びPihlajaniemiなど.，Proc.Natl.Acad.Sci．USA 84：940（1987）から得られた。特徴の同定は、例５に記載されるアプローチ及び例６及び７のアルゴリズムを用いて行なわれた。表27は、それらの抗原の研究の結果を提供する。
例４の定量結合アッセイを用いて、次にそのペプチドをMHC分子を結合する能力について試験する。自己反応性Ｔ細胞における増殖応答を抑制するペプチドの能力は、Ｔ細胞増殖についての標準のアッセイを用いて実施される。たとえば、Millerなど．Proc.Natl.Acad.Sci．USA，89：421（1992）に記載される方法が適切である。
さらなる研究のために、自己免疫疾患の動物モデルを用いて、本発明のペプチドの効能を示すことができる。たとえば、HLAトランスジェニックマウスにおいては、自己免疫モデル疾患は、MBP，PLP又は脊髄ホモジネート（MSについて）、コラーゲン（関節炎について）の注入により誘発され得る。さらに、いくつかのマウスは自己免疫疾患（たとえば糖尿病におけるNODマウス）により自発的に影響されるようになる。本発明のペプチドは、好ましいペプチドを同定するために、適切な動物中に注入される。
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実施例14
A2.1トランスジェニックマウスにおけるHPVペプチドの免疫原性
14個のHPVペプチド、たとえば９個の可能性あるエピトープ＋３個の低結合性及び１つの非結合性ペプチド（対照としての）のグルプを例10に記載される方法を用いて、HLA-A2.1トランスジェニックマウスにおける免疫原性についてスクリーンした。ペプチドの免疫原性能力を試験するために、HLA A2.1トランスジェニックマウスを、50μｇの個々のHPLペプチド／マウス及び140μｇのヘルパーペプチド／マウス（HBVコア128-140（TPPAYRPPNAPIL）により注入した。ペプチドは、１：１のエマルジョンIFAで尾のつけ根に注入された。グループ当たり３匹のマウスを用いた。陽性対照として、前もっての実験において強いCTL応答を誘発したHBVポリメラーゼ561-570ペプチドを用いた。
それらの結果に基づけば（表28）、４個の無関係なペプチド、すなわちTLGIVCPI，LLMGTLGIV，YMLDLQPETT及びTIHDIILECVが、最とも免疫原性であると思われた。TLGIVCPI及びYMLDLQPETTは、良好なHLA-A2.1バインダーであることが見出され、そしてLLMGTLGIV及びTIHDIILECVは、前の結合アッセイにおいて中間のバインダーであることが見出された。
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選択されたHPVエピトープの混合物
CTLペプチド及びヘルパーペプチドの組合せを、高められた免疫応答を提供する能力について試験した。４種の単一ペプチドを、２種の良好なバインダー又は２種の中間バインダーのみを含む注入物に対してそれらの免疫原性を比較するために別々に注入した。さらに、すべての４種のペプチドを一緒に注入した。異なった結合親和性底下を有するペプチドの組合せの免疫原性をさらに評価するために、他の対照をこの実験において導入した。２種の良好なバインダーの混合物を、２種の中間バインダーの混合物よりも異なった部位において同じマウスの尾のつけ根中に注入した。CTLエピトープのすべてのグループを、HBVヘルパーエピトープと共に注入し、但し、２種のグループを除き、ここですべての４種のHPVが２種の異なった用量のPADREヘルパーペプチド（aKXVAAWTLKAAa、ここでａはα−アラニンであり、そしてＸはシクロヘキシルアラニンである）と共に、マウス当た１μｇ又は0.05μｇで同時注入された。
すべての４種のペプチドは、単独で注入される場合、強いCTL応答を誘発し、そして適切なペプチドによりラベルされた標的細胞を用いて試験された（表29）。TLGIVCPIは最強のエピトープであることがわかった。観察により上記結果が確認された。すべての４種のペプチドの混合物が注入され、そしてその応答がインビトロで刺激され、そして個々のシグナルペプチドによりパルスされた標的細胞により試験される場合、すべての組合せは強いCTL応答を示した。２種のヘルパーエピトープが比較される場合、有意な差異は観察されなかった。これは、この実験において使用される最高量のPADREがHBVヘルパーペプチドについての量よりも140倍低かった事実に一部よるものである。
２種の良好なバインダーの混合物又は２種の中間バインダーの混合物の注入は、たとえ単一のペプチドがひじょうに効果的であっても、両者においてひじょうに低いCTL応答をもたらした。しかしながら、これらは、６日間の脾臓細胞培養の後、ひじょうに低い細胞回収率によるものであり、そして従って、予備試験として見なされる。
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ペプチドを50％  DMSO／H2Oに溶解し、20mg／mlの原濃度を達成し、そしてさらに、滅菌PBSに溶解した。A2.1トランスジェニックマウスの尾のつけ根における皮下注射に関しては、ペプチド溶液はIFAと１：１で混合された。注入された量のHPV-CTLペプチド50μｇ／マウスが、140μｇ／マウスのHBVコア−ペプチド875.23又は示される量のPADREと共に同時注入された（３匹のマウス／グループ）。脾臓が11日目に除去され、脾臓細胞を、１μｇ／mlで示されるHPV-CTLエピトープによりパルスされた、照射されたLPS-Blastsによりインビトロで再刺激された。６日後、細胞毒性アッセイを、適切なHPVエピトープペプチドの存在又は不存在下で、51Crによりラベルされた標的細胞としてJurkat JA2Kb細胞（Ａ）又はMBB17（Ｂ）を用いて行なった。
上記例は、本発明を例示するものであって、請求の範囲を限定するものではない。本発明の他の変更は、当業者に明らかである。本明細書に引用されるすべての出版物、特許及び特許出願は、引用により組込まれる。
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【図１】
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【図２】
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【図３】
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【図４】
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【図５】
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