(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
テンダイウヤクの葉からアルコールで抽出したエキスを含んで成ることを特徴とする抗菌性組成物。
【請求項２】
エキス中の葉緑素をアルカリ加水分解により除去して得られた請求項１に記載の抗菌性組成物。
【請求項３】
テンダイウヤクの葉からアルコールでエキスを抽出する１次抽出工程と、エキス中の葉緑素をアルカリ加水分解する加水分解工程と、加水分解工程で得られた反応液中に含まれている有効成分を非極性溶媒で抽出する２次抽出工程とを備えて成ることを特徴とする抗菌性組成物の製造方法。
【請求項４】
加水分解工程におけるアルカリ濃度を０．４規定度以上０．６規定度以下にしてエキス中の葉緑素をアルカリ加水分解する請求項３に記載の抗菌性組成物の製造方法。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、例えば食品、食器、包装体、装飾体、練り歯磨、入浴剤などに好適に用いられる抗菌性組成物およびその製造方法に関するものである。
【０００２】
【従来の技術】
食品は多くの栄養分を含んでいて、微生物による腐敗が起こりやすい状態にある。そのため、腐敗を抑制するための様々な保存料や抗菌剤が製品化されている。ところが、これらの保存料の多くは化学的合成品であり、人体への影響が明確にされていないものも少なくない。
そこで、天然物で特に食品として用いているものの中から、抗菌効果が高く、かつ、安全な防腐効果のあるものを開発する目的で検討がなされてきた。
【０００３】
一方で、漢方薬の原料として知られるテンダイウヤク（天台烏薬）は、烏薬と称される槐根が芳香性健胃薬などに使用されている。また、特公平１−５９２４８号公報にはテンダイウヤクを用いた漢方薬（抗肝炎剤）が開示されている。この抗肝炎剤としては、テンダイウヤクの「根」をメタノールで抽出してエキスを得、このエキスを水蒸気蒸留して得た精油分が用いられる。他方、テンダイウヤクの「葉」は、蒸して乾燥させたのち茶葉などと混合されることにより、烏薬茶あるいは徐福茶と称して飲用されているだけである。
【０００４】
【発明が解決しようとする課題】
前述のように、テンダイウヤクの葉に含まれる抗菌性有効成分を利用した素材は開発されていないのが実情である。
本発明は、上記した従来の問題点に鑑みてなされたものであって、常用しても安全であり、抗菌性の高い抗菌性組成物およびその製造方法の提供を目的とする。
【０００５】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは、古来より使用されて安全性が周知となっている生薬用植物のエキスに着目し、その抗菌性について鋭意検討した結果、特定種類の植物の特定部位から抽出したエキスが抗菌性を発揮することを見出し、本発明を完成するに至ったのである。
すなわち、本発明に係る抗菌性組成物は、テンダイウヤクの葉からアルコールで抽出したエキスを含んで成ることを要旨としている。
また、エキス中の葉緑素をアルカリ加水分解により除去して得た抗菌性組成物も要旨とする。
【０００６】
本発明に用いるテンダイウヤク（天台烏薬）は、Lindera strychnifolia F.Villars(Lauraceae)の学名で知られるクスノキ科の植物であり、その葉部が本発明に用いられる。当該葉部は、摘み取ったままのもの、それを細かく千切ったもの、乾燥させたもの、乾燥させて粉砕したもの、その他の形態のものをアルコール抽出に供することができる。
【０００７】
本発明に用いるアルコールとしては、テンダイウヤクの葉のエキスを効率よく抽出できるものであれば特に限定されないが、例えばメタノール、エタノール、イソプロパノールなどが挙げられる。なかでも、エタノールまたはエタノール水溶液を用いるのが、生体への安全性の観点から最も好ましい。
本発明に用いるアルカリとしては、例えば水酸化ナトリウム、水酸化カリウムなどが挙げられる。
本発明に用いる非極性溶媒としては、加水分解工程で得た反応液中の有効成分を収率よく抽出できるものであれば特に限定されないが、かかる非極性溶媒としては、例えばｎ−ヘキサン、ヘプタン、オクタンなどが挙げられる。
【０００８】
【発明の実施の形態】
本発明の抗菌性組成物を製造するには、まず１次抽出工程として、テンダイウヤクの葉からアルコールによりエキスが抽出される。この抽出操作は適当温度に加熱した条件下、あるいは室温下でも構わない。続く加水分解工程においては、アルコール抽出されたエキスにアルカリが所定濃度まで加えられて、エキス中の葉緑素（クロロフィル）がアルカリ加水分解される。そうして、２次抽出工程では、加水分解工程で得られた反応液に非極性溶媒が加えられ、反応液中に含まれている有効成分が抽出されるのである。
尚、有効成分の抽出効率を上げるためには、非極性溶媒による抽出操作の際に適当量の非極性溶媒を用いるとともに、適当量の水を添加するのが好ましい。
【０００９】
「抗菌性組成物の抗菌性評価方法」
前述のようにして製造される本発明の抗菌性組成物に係る抗菌性は、以下に述べる「（１）最小発育阻止濃度による抗菌活性評価」と、「（２）揮発性成分の抗菌試験（生育菌数測定）」により評価した。
【００１０】
「使用した被検菌株▲１▼〜▲８▼」
菌株▲１▼  バチルス・サブチリス（細菌類、Bacillus subtilis  IAM 12118）、菌株▲２▼  スタフィロコッカス・オーレウス（細菌類、Staphylococcus aureus  IAM 1011)、  菌株▲３▼  ビブリオ・パラヘモリティカス（細菌類、Vibrio parahaemolyticus  IFO 12711）、  菌株▲４▼  アスペルギルス・ニガー（黒コウジカビ、Aspergillus niger  IAM 2561)、  菌株▲５▼  アスペルギルス・オリザエ（コウジカビ、Aspergillus oryzae IAM 2630)、  菌株▲６▼  サッカロミセス・セレビッセ（酵母、Saccharomyces cerevisiae  IAM 4919) 、  菌株▲７▼  梅汚染菌１（梅干しに付着して生育した微生物群から分離培養した酵母）、  菌株▲８▼  梅汚染菌２（梅干しに付着して生育した微生物群から分離培養した酵母）
【００１１】
（１）最小発育阻止濃度による抗菌活性評価
〔試験法〕
試料毎に、菌株に対する最小発育阻止濃度（以下、ＭＩＣと略称する）を測定し、抗菌力を評価する。このＭＩＣは、ポテト・デキストロース・寒天培地（栄研化学社製）、またはミューラー・ヒントン・Ｓ寒天培地（栄研化学社製）を用いた寒天培地希釈法により測定される。
試験は、日本化学療法学会標準法による最小発育阻止濃度（ＭＩＣ）の試験方法に準じて行った。すなわち、試料を量り取り、２倍希釈列の試料溶液をそれぞれ調製する。これらを測定用培地（３ｍＬ）に加え、１０００μｇ／ｍＬの濃度からの寒天平板（５．５ｃｍ径）を作製する。この寒天平板に被検菌液（生菌数＝約１０6 ＣＦＵ／ｍＬ）１００μＬを塗沫する。細菌は３７℃、酵母は３０℃、カビは２５℃でそれぞれ４８時間培養した後、菌の生育の有無を判定し、完全に発育が阻止された最小濃度をＭＩＣとした。
【００１２】
（２）揮発性成分の抗菌試験
〔試験法〕
直径５．５ｃｍのシャーレ（容積２０ｃｍ3 ）に、菌数を調整したポテト・デキストロース・寒天培地３ｍＬ（試験菌株：S.cerevisiae（酵母）、５０個／３ｍＬ）を入れて上下を逆さまにする。蓋部分には、試料溶液を含んだペーパーディスク（直径８ｍｍ）を貼り付ける。このペーパーディスクの溶媒を風乾した後、シャーレの周囲をパラフィルムで被って密閉し、有効成分の蒸気を菌体に直接あてるようにして、３０℃で４８時間培養し、生育した菌数を測定して判定する。
【００１３】
「テンダイウヤクにおける抗菌性の高い部位の選択」
テンダイウヤクを葉、根、茎に分断してそれぞれを乾燥させたのち、乾燥重量の１０倍量のメタノールを加え室温・暗所でそれぞれを２４時間抽出させた。それぞれの抽出液を濾過後、濾液を濃縮して試料溶液とした。それぞれの試料溶液を最小発育阻止濃度（ＭＩＣ）試験の方法で抗菌試験を行った。使用菌株は▲６▼の酵母（S. cerevisiae ）である。そのときの試験結果を次の表１に示す。
【００１４】
〔表１〕
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【００１５】
表１から明らかなように、テンダイウヤクの根と茎については、ＭＩＣが１０００μｇ／ｍＬを超えていて抗菌活性は認められない。これに対し、葉には相当の抗菌活性が認められた。そこで、本発明では葉の部分を使用したのである。
【００１６】
「加水分解工程におけるアルカリ濃度の検討」
反応させる試料濃度を固形分で１００ｍｇ／ｍＬとし、反応液中の水酸化ナトリウム濃度が０．１，  ０．２，  ０．３，  ０．４，  ０．５，  ０．６，  ０．８，  １．０Ｎ（Ｎは規定度を示し、モル／Ｌ濃度である）となるように、それぞれを調製して加水分解処理を行った。
試料（固形分として５００ｍｇ）をメタノールに溶解させた試料溶液４ｍＬに更にメタノール０．５ｍＬを加え、上記した各濃度になるように１０倍濃度の水酸化ナトリウム水溶液を０．５ｍＬ加えて、時々振り混ぜながら室温・暗所で２４時間放置した。加水分解反応の終了後に水５ｍＬを加えたのち、ｎ−ヘキサン５ｍＬで抽出した。前記した水とｎ−ヘキサンによる抽出操作は合計３回繰り返される。各抽出段階で得たｎ−ヘキサン層をひとつに混ぜ合わせ、合一したｎ−ヘキサン層を１ｍＬの水で３回洗浄した後、ｎ−ヘキサン層を濃縮乾固し、ｎ−ヘキサン４ｍＬに溶解して試料とした。その試料の０．５ｍＬをペーパーディスク（直径１０ｍｍ）に吸収させ、乾燥後、抗酵母試験（寒天平板法）に供し、菌株の増殖が阻止されて生じる阻止円を確認した。使用菌株は▲６▼の酵母（S. cerevisiae ）である。試験結果を表２に示す。
【００１７】
〔表２〕
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【００１８】
表２において阻止円直径の数値が大きいほど、抗酵母活性が高いことを意味している。この表２から明らかなように、前記した「加水分解工程」においては、アルカリ濃度を０．４規定度以上０．６規定度以下にして葉緑素を加水分解させるのが好ましい。アルカリ濃度が０．４規定度未満では阻止円の直径は大きいが葉緑素が十分に加水分解されないまま大量に残るので、結果として有効成分の含有量が低くなったり、液が緑色のままであるため、最終的に得られた抗菌性組成物の用途が限定される欠点がある。他方、アルカリ濃度が０．６規定度を超えると加水分解が過度に進み或る種の有効成分まで分解されるため、阻止円形成試験で示される抗菌性が小さすぎるか、あるいは殆ど有しないので好ましくない。結論として、０．４〜０．６Ｎのアルカリ濃度範囲が、抗酵母活性を残しつつ、かつ、葉緑素の除去を行える濃度範囲と言うことができる。
【００１９】
「加水分解反応後における水の添加量と非極性溶媒の添加量の検討」
水酸化ナトリウム溶液によるアルカリ加水分解処理を０．4 規定度、２４時間に設定した場合、反応後の水と非極性溶媒をうまく分配するために必要な水の添加量と非極性溶媒の添加量を検討した。
(1) 水添加量の検討
〔試料調製〕
試料溶液４ｍＬ（固形分５００ｍｇ）にメタノール０．５ｍＬを加え、４規定度の水酸化ナトリウム水溶液を０．５ｍＬ加えて、時々振り混ぜながら放置（室温、暗所）。その反応液量の１／５，  ２／５，  ３／５，  ４／５，  １倍となるように水を加え、反応液量に対し１／２量のｎ−ヘキサン（非極性溶媒）を加え、３回分配を行った。そのｎ−ヘキサン層を１ｍＬの水で３回洗浄したのち濃縮乾固し、ｎ−ヘキサン４ｍＬに溶解させて試料とした。その試料の０．５ｍＬをペーパーディスクに吸収させ、乾燥後、抗酵母試験（寒天平板法）に供し、阻止円の形成を確認した。菌株は▲６▼の酵母（S. cerevisiae ）を使用した。
【００２０】
試験結果として、水の添加量が少なくなるとエマルジョンが激しく発生するが、水の添加量を増やすことにより、ｎ−ヘキサンとの分配がスムーズに行えた。抗酵母試験は、いずれの条件でも活性が同じ（阻止円の直径１３ｍｍ）であった。
結論として、分配が最もスムーズに行えた「反応液量と等量（１倍）」の水を添加することが最も好ましく、後述の実施例において適用した。
(2) ｎ−ヘキサン添加量の検討
〔試料調製〕
前述した(1) 水添加量検討の場合と同様の操作を行い、(1) で決定した量の水を加えた後、加えた水の１／２，  １，  ２，  ４倍量のｎ−ヘキサンを加え、それぞれについて１回目，２回目，３回目の分配を行った。それぞれで分配したｎ−ヘキサン層を１ｍＬの水で３回洗浄したのち濃縮乾固し、ｎ−ヘキサン４ｍＬに溶解して試料とした。その試料の０．5 ｍＬをペーパーディスク（直径１０ｍｍ）に吸収させ、乾燥後、抗酵母試験（寒天平板法）に供し、阻止円の形成確認と、阻止円を形成した場合は円直径を測定した。菌株は▲６▼の酵母（S. cerevisiae ）を使用した。試験結果を表３に示す。
【００２１】
〔表３〕
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【００２２】
尚、表３中で（＊）印を付した数値データは、殆ど活性がないと判断できる。すなわち、表３から判るように、４倍量で行った場合は、３回の分配操作で殆ど全ての活性成分を回収することができた。結論として、「加える水の量の４倍量」のｎ−ヘキサンを加えて３回分配する方法がもっとも良好であり、後述の実施例で適用した。
【００２３】
「活性成分（有効成分）の同定」
メタノールで抽出したエキスにおいて、抗酵母活性が強く認められる部分を、各種クロマトグラフィーを使用して分取した。それらの活性成分を薄層クロマトグラフィー（以下、ＴＬＣと略称する：担体としてシリカゲルを使用）上で分離した後、ＴＬＣバイオオートグラフィーにより活性スポットの特定を行った。
前記のＴＬＣバイオオートグラフィーは、菌を塗布した寒天培地上に、ＴＬＣの、成分を展開させた面をスタンプして培養するようにしたものである。活性のあるスポットと接触した部分（寒天培地）だけが増殖阻害を受けて透明な状態になり、その他の部分は菌が増殖するようになっている。
そこで、ＴＬＣバイオオートグラフィーにより強い抗酵母活性が確認された部分（後述する表４中の試料１，２，３）と、弱い抗酵母活性が認められた部分（表４中の試料４，５，６）とをそれぞれ分取し、ガスクロマトグラフィー・マススペクトル分析装置（以下、ＧＣ−ＭＳ分析装置と略称する）による成分の同定を試みた。
【００２４】
ＧＣ−ＭＳ分析装置による分析結果を次の表４に示す。
〔表４〕
0003978299.tif 000005
【００２５】
表４から明らかなように、弱い抗酵母活性を示す試料４，５，６の中に、イソフラノゲルマクレンとその類縁体（類似の化学構造を持つ化合物）と思われる成分が含まれていることが明らかになった。一方、強い抗酵母活性を示す試料２，３の中には、まだ複数の成分が含まれていると考えられるが、それぞれの成分については同定不可能であった。但し、それらの分子量から推測して、イソフラノゲルマクレンを含むフラノセスキテルペン類であると考えられる。
【００２６】
「活性成分についての発色試薬による検討」
強い抗酵母活性を示す成分が、フラン環をもつセスキテルペン（フラノセスキテルペン）である可能性がＧＣ−ＭＳ分析装置により示唆されたことから、フラン環を検出する発色試薬を用いてＴＬＣ上で呈色反応させた。
フラン環をもつ化合物の呈色反応としては、（ａ）エールリッヒ反応、（ｂ）シーア反応、（ｃ）カール・プライス反応が知られている。これらの反応を利用した呈色試験法（参考書籍：実験化学講座２２、天然物有機化合物取り扱い法（日本化学会）ｐ．６７〜６８）をＴＬＣ板に応用した方法を次に示す。
【００２７】
（ａ）エールリッヒ呈色試験法
ｐ−ジメチルアミノベンズアルデヒド 5ｇを濃塩酸５０ｍＬと水５０ｍＬに溶解した溶液を調製して噴霧試薬とし、噴霧試薬をＴＬＣに噴霧した後に放置して発色させる。
【００２８】
（ｂ）シーア呈色試験法
濃塩酸−アニリン混合物（１：１５）を調製して噴霧試薬とし、噴霧試薬をＴＬＣに噴霧した後に１００℃で１０分間加熱して発色させる。
【００２９】
（ｃ）カール・プライス呈色試験法
３塩化アンチモン３０ｇをクロロホルム１００ｍＬに溶かし、１％のアルコールを加えた溶液を噴霧試薬とし、先ず無水酢酸をＴＬＣに噴霧した後、更に噴霧試薬をＴＬＣに噴霧し、放置して発色させる。
【００３０】
強い抗酵母活性を示した部分（試料１，２，３）は、いずれの呈色試験によっても発色することが確認できた。このことから、有効成分の分子構造内にフラン環を有していることが推測される。
【００３１】
尚、葉緑素およびその分解生成物を抽出せず有効成分だけを抽出する方法としては、上記したアルカリ加水分解後に非極性溶媒を用いて抽出するものの他に、試料を直接「水蒸気蒸留」する方法が考えられるが、水蒸気蒸留によっては有効に抽出できなかった。また、抽出時にアルコールの代わりに「熱水」だけを用いた場合は葉緑素を抽出せず、且つ、「有効成分」も抽出しない。更に、葉緑素の加水分解を行う場合は「アルカリ」だけでなく「酸」も有効であるが、多量に必要であり後処理に手間がかかるため不適である。
【００３２】
【実施例】
実施例１．
まず、テンダイウヤクの葉を乾燥させたものを粉砕する。粉砕品（１００ｇ）をメタノール（あるいはエタノール）１Ｌに２４時間浸漬し、時々振り混ぜて抽出した後、濾過する。残留物は更にメタノール（エタノール）で洗浄して濾過し、このときの濾液は先の濾液と合せたのち、減圧濃縮して暗緑色の試料溶液Ａ（エキス）を得る。
【００３３】
実施例２．
実施例１で得た試料溶液Ａに対し、０．４Ｎ（葉緑素を除去でき、かつ、有効成分を壊さない規定度）となるように水酸化ナトリウム溶液を加えた（常温下で葉緑素のエステル部分を分解して酸に変え水溶性とする）後、室温・暗所に２４時間放置して葉緑素を加水分解させる。反応後、反応液（試料濃度１００ｍｇ／ｍＬ）と等量の水を加えたのち、加えた水の４倍量のｎ−ヘキサンを加えて混合する。静置したのちｎ−ヘキサン層を分取する。更に、加えた水の４倍量のｎ−ヘキサンを添加して混合し、静置したのちｎ−ヘキサン層を分取する抽出操作を２回（合計３回）繰り返す。３回分のｎ−ヘキサン層をひとつに混合して濃縮することにより、固形分（約３．５ｇ）を含むｎ−ヘキサン溶液として、黄色味を帯びた試料溶液Ｂを得た。
【００３４】
実施例３．
実施例２で得た試料溶液Ｂ（ｎ−ヘキサン溶液）をオクタデシルシリルカラム（以下、ＯＤＳカラムと略称する）に通して吸着保持させた後、カラム保持物を７００ｍＬの９０％メタノールで溶出する。次に、この溶出液に３００ｍＬのｎ−ヘキサンを加えて振り混ぜ、無色透明なｎ−ヘキサン層を分取し濃縮して、試料溶液Ｃ（固形分  約１．２５ｇ）を得た。
【００３５】
比較例．
従来汎用のソルビン酸を抗菌剤として用い、既述のＭＩＣ試験に供した。
【００３６】
（１）−１  試料溶液Ａの抗菌活性判定評価
ＭＩＣの試験結果を次の表５に示す。尚、表５および後述の表６における菌株欄の○数字は既述した○数字の菌株に対応している。
〔表５〕
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実施例１（試料溶液Ａ）および比較例（ソルビン酸）については、ポテト・デキストロース・寒天培地（栄研化学社製）を用い、菌株は▲６▼の酵母（S. cerevisiae ）を使用した。
【００３７】
表５に示されたＭＩＣ試験結果から明らかなように、実施例１の試料溶液Ａは菌株▲６▼の（S.cerevisiae）に対して比較例（ソルビン酸）よりも強い抗菌活性が認められた。
【００３８】
（１）−２  試料溶液ＢおよびＣの抗菌活性判定評価
〔表６〕
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全ての菌株▲１▼〜▲８▼の培養時間はいずれも４８時間である。培養温度は菌株▲１▼〜▲３▼が３７℃、菌株▲４▼と▲５▼が２５℃、菌株▲６▼〜▲８▼が３０℃である。使用した培地は菌株▲１▼〜▲３▼がミューラー・ヒントン（Mueller Hintone)・Ｓ寒天培地（栄研化学社製）であり、菌株▲４▼〜▲８▼がポテト・デキストロース・寒天培地（栄研化学社製）である。
【００３９】
表６に示されたＭＩＣ試験結果から明らかなように、実施例２の試料溶液Ｂおよび実施例３の試料溶液Ｃは菌株▲３▼（V.parahaemolyticus）を除く、細菌類（▲１▼，▲２▼）に対し比較例よりも強い抗菌活性が認められた。但し、菌株▲３▼（V.parahaemolyticus）についても比較例と同等あるいは若干弱い抗菌活性が認められている。また、試料溶液Ｂおよび試料溶液Ｃは酵母である菌株▲６▼（S.cerevisiae）あるいは菌株▲７▼（梅汚染菌１）に対して比較例の１／８量あるいは１／４量で抗菌活性があり、非常に強い抗菌活性を認められる。試料溶液Ｂおよび試料溶液Ｃはカビである菌株▲４▼，▲５▼（Aspergillus 属）に対しても比較例より強い抗菌活性が認められた。
以上より、試料溶液Ｂおよび試料溶液Ｃについては、細菌、カビ、酵母類に対して抗菌活性があることを確認できた。また、試料溶液Ａについても抗菌作用を確認できた。
【００４０】
（２）揮発性成分の抗菌試験
既述した生育菌数測定試験法により、実施例２（試料溶液Ｂ）および実施例３（試料溶液Ｃ）に係る有効成分の蒸気をシャーレ内で菌体に直接あてながら３０℃で４８時間培養し、生育した菌数を測定した。生育菌数測定結果は、次の表７に示す。
【００４１】
〔表７〕
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【００４２】
表７から明らかなように、試料溶液Ｂは試料重量４０ｍｇ以上で抗菌活性が出現し始めた。試料溶液Ｃは試料重量５ｍｇ以上で抗菌効果が出現し始め、試料重量６０ｍｇでは全ての菌が生育しなかった。因みに、試料溶液Ｂおよび試料溶液Ｃは特有の香気を発している。すなわち、室温下でも有効成分が蒸発していることが判る。
以上より、試料溶液Ｂの揮発物および試料溶液Ｃの揮発物は酵母などに対して抗菌活性のあることが認められた。
【００４３】
「各実施例に係る抗菌性組成物の用途」
前記の抗菌性組成物は以下に例示した用途に応用できる。
▲１▼  テンダイウヤクの葉のメタノールエキス（試料溶液Ａ）を含んだシートを製造することができる。例えば、もともと緑色を呈する試料溶液Ａをシート原料に練り込めば、抗菌活性のある緑色シートの葉蘭代替品あるいは袋（水切り袋）を製造できる。
▲２▼  試料溶液Ｂ、Ｃを合成樹脂シートに練り込んで抗菌シート（微黄色〜無色）を製造することができる。
▲３▼  試料溶液Ｂ、Ｃは食品に添加して使用できるので、食品添加物として好適である。
▲４▼  試料溶液Ｂ、Ｃをデキストリン、無水ケイ酸、シクロデキストリン、デンプン、乳糖などの賦形剤と混和して粉末や錠剤などの固形物とすることにより、抗菌成分を徐々に揮発させて使用することができる。
▲５▼  試料溶液Ａ、Ｂ、Ｃを練り歯磨きに混入して使用できる。安全であり、虫歯菌や歯肉炎菌などの口内菌の殺菌に有用である。
▲６▼  試料溶液Ａ、Ｂ、Ｃはカビ類によく効くので、これらを浴剤として使用すると、人体につく水虫、疥（はたけ）、疥癬、カンジダなどを入浴により殺菌することができる。
【００４４】
【発明の効果】
以上述べたように、本発明によれば、天然物から産出されて安全な抗菌性組成物が提供される。因みに、テンダイウヤクの葉のエキスを利用して製品化した抗菌性組成物はこれまでに知られず、それを利用した抗菌素材も開発されていなかった。
【００４５】
また、エキス中に多量に含まれている葉緑素をアルカリ加水分解により除去して得た抗菌性組成物は、有効成分を多量に含むこととなり、広範囲の分野で利用できる。
【００４６】
そして、本発明に係る抗菌性組成物の製造方法によれば、高い抗菌性を発現する有効成分を多量に含む抗菌性組成物を得ることができる。
【００４７】
この製造方法において、加水分解工程におけるアルカリ濃度を０．４規定度以上０．６規定度以下にしておくと、エキス中の葉緑素だけを除去して有効成分は残される。従って、有効成分を収率よく得ることができる。