(57)【特許請求の範囲】
【請求項１】
ポリオール生産能を有する微生物のうち、トリコスポロノイデス・メガチリエンシスSN-G42株（FERM BP-1430）、オーレオバシデイウム・sp.SN-45株（FERM P-7594)、トリコスポロノイデス・オエドセフアリスTO-241-14 株(FERM BP-5773)、モニリエラ・ポリニスCBS461-67 株、トルロプシス・sp.SN-18株(FERM P-7593）またはブレタノマイセス・sp.SN-88株(FERM P-7595）の死滅菌体を含有することを特徴とするきのこ類の栽培培地。
【請求項２】
栽培培地中の微生物の含有量が、きのこ類の栽培培地の乾燥重量に対して１重量％以上４５重量％未満であることを特徴とする請求項１に記載のきのこ類の栽培培地。
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【発明の属する技術分野】
本発明は、きのこ類の栽培培地に関し、詳しくはポリオール生産能を有する微生物を利用したきのこ類の栽培培地に関するものである。
【０００２】
【従来の技術】
食用きのこの栽培は、従来、原木によるものが主体であったが、季節や天候などの自然条件に収穫量が左右されたり、原木となる良質の木材が不足するなどの問題が生じている。
この原木栽培による問題を解決するため、近年、オガコ等の基材に、米ぬかやフスマ等を配合した培地を用いる菌床栽培法が盛んになり、シイタケ、ヒラタケ、ブナシメジ、マイタケ、エノキタケ、ナメコ等の食用きのこは、年間を通じて安定して収穫できるようになってきた。しかし、菌床栽培法は、培地の栄養成分である米ぬかが近年の米消費量の低下に伴い、供給面が不安視されている。
一方、基材であるオガコについては、広葉樹由来のオガコは、きのこの種類に対し汎用性が高いものの価格が高く、針葉樹由来のオガコは、安価であるが、汎用性が低く、またオガコ成分としてきのこの生育を阻害する樹脂成分を含んでいるため、これらを除去するために３〜６ヶ月間散水し、天日にさらす必要があり、使用までに大変手間がかかっている。そのため、経済的に安価であり、すぐに使用できる基材の代替品が求められている。
【０００３】
これらの菌床栽培法の問題を解決する方法として、栄養的に優れた酵母を培地に添加するきのこ類の栽培方法が提案されている。例えば、特公昭５１−４２０２２号公報では、酵母を配合した排繊維質を主体としたきのこ類培養種駒が開示されている。酵母の配合目的は、排繊維質を種駒に成形するためのバインダーとしての利用であり、酵母は栄養価が高く、栄養源として利用される可能性を示唆しているものの、酵母の配合によるきのこの品質向上や増収効果についての記載はない。
特開平２−１８６９１９号公報では、酵母をきのこ栽培用ノコクズに混合し、きのこの増収およびきのこ栽培日数を短縮させる栽培方法が開示されている。しかしながら、この方法に使用される酵母は、廃水処理工程から得られる余剰酵母あるいはビール製造過程で得られる余剰酵母に限定されている。廃水処理工程から得られる余剰酵母は、食用であるきのこ類の栽培培地の添加物としては、衛生面、安全性の面で問題であり、また、ビール酵母については、出願後提出の手続補正書により追加されたものであり、その有効性は明細書中に示されていない。
【０００４】
さらに、特開平５−２８４８５２号公報では、酵母エキス製造後の副産物である酵母細胞壁を含有するきのこ類の栽培培地が開示されている。酵母細胞壁を添加する目的は、きのこの菌糸伸長と菌糸体濃度のバランスを良好にすることにあるが、培地に酵母自体または酵母細胞壁および酵母エキスを添加すると、菌糸伸長と菌糸体濃度のバランスがくずれてしまうと記載されている。したがって、きのこ菌床の栄養剤や増収剤としては、酵母細胞壁のみが有用であり、酵母自体を直接、きのこ類の栽培培地に使用することができず、酵母エキスを抽出する工程が必要となるため、経済的な栽培方法とは言えない。
その他にも、酵母を使用するきのこの栽培方法が開示されているが、いずれもビール酵母に由来するものであり、培地に対する添加量が少なく、他の栄養成分の代替品だけではなく、基材であるオガコ等の代替品として不十分である。
【０００５】
【発明が解決しようとする課題】
本発明の課題は、きのこ類の栽培において、きのこ類の栽培日数の短縮、高品質化および増収効果を示す栄養剤、増収剤として、特定の微生物を培地成分として添加した栽培培地を提供することである。この微生物は、安全性が確認されており、また従来の培地成分であるオガコや米ぬかの使用量を十分に低減できる素材であるばかりでなく、培地に添加するにあたり、エキス分を抽出する等の特別の工程を必要とせずにそのまま使用できるという特色を有している。
【０００６】
【課題を解決するための手段】
本発明者らは、ポリオールを発酵法で製造する場合に用いた微生物を有効利用する方法について検討した結果、ポリオール生産能を有する微生物のうち、トリコスポロノイデス・メガチリエンシスSN-G42株（FERM BP-1430）、オーレオバシデイウム・sp.SN-45株（FERM P-7594)、トリコスポロノイデス・オエドセフアリスTO-241-14 株(FERM BP-5773)、モニリエラ・ポリニスCBS461-67 株、トルロプシス・sp.SN-18株(FERM P-7593）またはブレタノマイセス・sp.SN-88株(FERM P-7595）の死滅菌体は、該微生物中のエキス分の除去などの特別な処置を必要とせずに、そのままきのこの栽培培地の成分として使用することができ、しかも、きのこ菌床の栄養剤、増収剤となることを見出して本発明を完成した。
【０００７】
即ち、本発明は、ポリオール生産能を有する微生物のうち、トリコスポロノイデス・メガチリエンシスSN-G42株（FERM BP-1430）、オーレオバシデイウム・sp.SN-45株（FERM P-7594)、トリコスポロノイデス・オエドセフアリスTO-241-14 株(FERM BP-5773)、モニリエラ・ポリニスCBS461-67 株、トルロプシス・sp.SN-18株(FERM P-7593）またはブレタノマイセス・sp.SN-88株(FERM P-7595）の死滅菌体を含有することを特徴とするきのこ類の栽培培地に関する。
本発明の好ましい態様によれば、栽培培地中の微生物の含量が、きのこ類の栽培培地の乾燥重量に対して、１重量％以上４５重量％未満の割合であるきのこ類の栽培培地が提供される。
【０００８】
【発明の実施の形態】
以下に本発明を詳細に説明する。
本発明で使用されるポリオール生産能を有する微生物としては、トリコスポロノイデス・メガチリエンシスSN-G42株（FERM BP-1430）、オーレオバシデイウム・sp.SN-45株（FERM P-7594)、トリコスポロノイデス・オエドセフアリスTO-241-14 株(FERM BP-5773)、モニリエラ・ポリニスCBS461-67 株、トルロプシス・sp.SN-18株(FERM P-7593）、ブレタノマイセス・sp.SN-88株(FERM P-7595）が挙げられる。
特に、甘味料として市販されているエリスリトールを生産する微生物を利用すると、安全性も確認されており、コスト的にも非常に有利である。エリスリトール生産菌を得る方法としては、例えば特公平４−６３５号公報に記載の製法に基づきエリスリトールを製造し、これに使用したトリコスポロノイデス・メガチリエンシスSN-G42株（FERM BP-1430)(旧名：オーレオバシデイウム・SN-G42株（FERM P-8940)）を得る方法がある。
【０００９】
本発明に使用される微生物の形状は任意であり、例えばポリオール生産後の培養液、該培養液から水分を除去した泥状菌体、またはこの泥状菌体を乾燥して得た乾燥菌体を使用してもよく、さらに菌体を破砕、粉砕、凝集等の加工をして使用してもよい。特に乾燥菌体を使用すると、他の培地成分と共に栽培培地を調製したときに空隙が生じ、きのこ菌糸の生育が好ましい状態となる。菌体の乾燥方法としては、通風乾燥、通気乾燥、流動層乾燥、気流乾燥、噴霧乾燥、回転乾燥、撹拌乾燥等の熱風による直接乾燥法；常圧乾燥、真空乾燥、付着乾燥等の間接乾燥法または電気乾燥法が使用される。
本発明に使用される微生物の栽培培地への添加量は、培地の乾燥重量に基づいて１重量％以上４５重量％未満、好ましくは４〜３５重量％である。微生物は、培地の基材であるオガコ等の栄養を補助するために添加される米ぬか、フスマ等の栄養剤の１重量％以上１００重量％未満（乾燥重量基準）、好ましくは１０〜７５重量％置換することができる。特に、培地中の全栄養剤の２５〜７５重量％（乾燥重量基準）の範囲で置換することが好ましいが、きのこの種類によって効果的な添加量が異なるので、栽培するきのこの種類に応じて上記の範囲内で最も適した添加量を設定すれば良い。
【００１０】
従来法における栽培培地への酵母の添加量が培地の乾燥重量あたり最大１０％程度であることと比較して、本発明の微生物は多量に添加することができ、品薄感のある米ぬか等の栄養剤の代替品として極めて有用である。また、基材であるオガコの代替品としても利用することができるため培地コストを低減でき、経済面でも有利である。
本発明の微生物を用いてきのこ類の栽培培地を製造する場合、培地の最終的な水分含量は通常、６０〜７０重量％が好ましいので、微生物の水分含量を考慮して、添加する水分量を調整する。
【００１１】
本発明の培地の基材は、きのこ類の栽培に通常利用されるオガコなどの小片であり、これに本発明の微生物を添加するだけでもきのこ類の生育効果は十分に認められるが、必要に応じてさらに、米ぬか、フスマ、酵母、酵母エキス等を適宜培地に加えても良い。基材としては、オガコの他、さとうきびの搾りかす、干し草、わら、廃紙、綿、コーヒー搾りかす等を挙げることができる。
【００１２】
本発明の培地で栽培されるきのこ類としては、菌床栽培法により栽培されているものであれば良く、例えばシイタケ、ヒラタケ、ブナシメジ、マイタケ、エノキタケ、ナメコ等が挙げられる。
きのこ類の栽培方法としては、本発明の培地を各種きのこ類の栽培に適したプラスチック容器や栽培用袋等に充填し、きのこ種菌を接種し、公知の方法（例えば、キノコ栽培の新技術、誠文堂新光社（1988年）、きのこ年鑑、農村文化社（1994年））により培養し、きのこ類を発生させ、収穫することができる。
【００１３】
【実施例】
以下、本発明を実施例により詳しく説明するが、本発明はその要旨を越えない限り、以下の実施例により限定されるものではない。
製造例１
グルコ−ス３０％、酵母エキス１．５％からなる培地１５Ｌを３０Ｌ容の加圧式ジャーファメンターに仕込み、１２１℃で２０分間滅菌したのち３０℃まで冷却し、これをポリオール生産菌用の培地とした。該培地に、予め５００ｍｌ容三角フラスコで前培養しておいた第１表に示した各種ポリオール生産菌を接種し、培養温度３０℃、通気量０．５ｖｖｍ、撹拌回転数２８０ｒｐｍ、缶内圧０．５ｋｇ／ｃｍ2 ・ Ｇの条件で４日間培養を行った。
培養終了後、培養液を８０℃まで加熱してポリオール生産菌を死滅させ、遠心分離を行い、該菌体を回収した。回収した菌体に水を加えて懸濁し、再度遠心分離を行うことにより、付着している培養液や生産したポリオールを洗浄した。この操作を計３回づつ行い、完全に菌体を洗浄した後、凍結乾燥機で乾燥、粉砕して各種ポリオール生産菌の乾燥菌体（含水率３％）を得た。
【００１４】
【表１】
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【００１５】
製造例２
特公平４−６３５号公報に開示されているエリスリトールの製法に従い、グルコース２０％、コーンスチープリカー１．６％、消泡剤３００ｐｐｍを含む培地１５Ｌを３０Ｌ容のジャーファメンターに仕込み、１２１℃で２０分間滅菌し、冷却後、予め種培養で調製したトリコスポロノイデス・メガチリエンシスSN-G42株（FERM BP-1430）の培養液を培地に対し６％接種し、温度３５℃、通気量０．２５ｖｖｍ、回転数２３０ｒｐｍの条件で７日間培養を行った。
培養終了後、培養液を加熱しポリオール生産菌を死滅させ、遠心分離により菌体を回収した。この菌体を洗浄後、再度遠心分離により含水率２７％の湿菌体３００ｇを得た。これを付着乾燥器にて乾燥し、エリスリトール生産菌の乾燥菌体を得た。
【００１６】
実施例１
含水率１１％のブナオガコ１１１．６ｇ、含水率１２％の米ぬか９０ｇ（乾燥重量７９．２ｇ）及び水３０８．４ｇを混合し、培地を作成した（対照区）。
対照区の米ぬか量の２５％（乾燥重量基準）または５０％（乾燥重量基準）を製造例１で得られた各種ポリオ−ル生産菌の乾燥菌体（含水率３％）で置換し、菌体２５％置換区の培地及び菌体５０％置換区の培地を作成した。
作成した培地は、直径７ｃｍのガラスシャーレに４０ｇづつ秤量し、培地表面を平らにならし、蓋をした後、新聞紙に包み１２１℃で３０分間オートクレイブで滅菌した。滅菌後、冷却し、これを菌糸伸長速度測定用の培地として用いた。各種きのこ（ブナシメジ、シイタケ、マイタケ、エノキタケ、ヒラタケ及びナメコ）の菌糸は、あらかじめポテトデキストロース寒天培地で培養を行い、寒天培地ごとコルクボーラーで打ち抜いたものを、菌糸伸長速度測定用のガラスシャーレ中の培地に接種した。接種後２５℃の恒温槽で４日〜１４日間培養し、菌糸伸長速度を対照区と比較した。結果を第２表に示す。
表から明かなように、本発明に係る微生物を添加した培地は、多くのきのこで菌糸伸長速度が早くなり、各種ポリオール生産能を有する微生物は有効なきのこの栄養剤となることがわかった。
【００１７】
【表２】
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【００１８】
実施例２
含水率１１％のブナオガコ１１１．６ｇ、含水率１２％の米ぬか９０ｇ（乾燥重量７９．２ｇ）、水３０８．４ｇを混合し、含水率６５％の培地５１０ｇを作成し、これを８５０ｍｌ容のポリプロピレン製栽培ビンに入れた（対照区）。
対照区の米ぬかの５０％（乾燥重量基準）を製造例２で得られた含水率２％の乾燥菌体４０．４ｇ（乾燥重量３９．６ｇ）で置換し、菌体５０％置換区を作成した。また、同じく対照区の米ぬかの５０％（乾燥重量基準）を含水率２％の乾燥ビール酵母（和光純薬製）４０．４ｇ（乾燥重量３９．６ｇ）で置換したビール酵母５０％置換区を作成した。
【００１９】
各栽培ビンを１２１℃で６０分間殺菌し、冷却した後、ポテトデキストロース培地（DIFCO 社製）で３日間培養したヒラタケ培養液を７ｍｌづつ接種した。次いで、温度２５℃、湿度７０％の培養室で菌糸の培養を行った。菌糸がビン底部まで充分に伸長した（菌まわり）後、各試験区の菌まわりが同一となるように、０〜３日間の熟成期間をおいたのち、ビン上部の菌糸を掻き取り（菌掻き）、注水後、温度１５℃、湿度９５％の発生室に移し、きのこを発生させ、収穫した。収穫したきのこの平均収量を第３表に示す。
表から明らかなように、本発明の菌体５０％置換区では、対照区と比較して、収量で４７．８％もの増収効果が見られた。しかし、ビール酵母５０％置換区は、対照区と比較して、４０．３％の減収となった。これは、ビール酵母の添加量が多すぎたためと考えられ、本発明に係る微生物は、ビール酵母と比較して米ぬかを多量に置換できることがわかった。
【００２０】
【表３】
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【００２１】
実施例３
実施例２で作成した対照区の米ぬか量の乾燥重量あたり１０％、２５％、５０％または７５％を、製造例２で得られた含水率２％の乾燥菌体で置換した菌体置換区を作成し、実施例２と同様にヒラタケ培養液を接種した。次いで、温度２２℃、湿度７０％の培養室で菌糸の培養を行った。菌まわり終了後、熟成期間をおき、ビン上部の菌糸を掻き取り（菌掻き）、注水後、温度１５℃、湿度９５％の発生室に移し、きのこを発生させ、収穫した。収穫したきのこの平均収量を第４表に示す。
表から明らかなように、最も増収効果が認められたのは、菌体５０％置換区であり、対照区と比較して収量で３４．８％の増収効果が認められた。また、菌体７５％置換区においても２２．１％の増収効果が見られ、品薄感のある米ぬかの高品位な代替品となるばかりでなく、本発明に係る微生物は基材のオガコの代替品になる可能性が示された。
【００２２】
【表４】
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【００２３】
実施例４
含水率１１％のブナオガコ３４９．７ｇ、含水率１２％の米ぬか１２３．６ｇ（乾燥重量１０８．８ｇ）、水７２６．７ｇを混合し、含水率６５％の培地１２００ｇを作成し、これをシイタケ栽培用ポリ袋に入れ対照区とした。
また、対照区の米ぬか量の乾燥重量あたり１０％、２５％または５０％を、製造例２で得られた含水率２７％の湿菌体で置換した菌体置換区を作成した。
各栽培用ポリ袋を１２１℃で６０分間殺菌し、冷却した後、シイタケのオガコ種菌を１５ｇづつ接種した。次いで、温度２２℃、湿度７０％の培養室で菌糸の培養を行った。菌糸が袋底部まで充分に伸長し、菌床表面が充分に褐色になるまで９１日間培養を行った。
【００２４】
その後、温度１５℃、湿度９５％の発生室で照明下、ポリ袋を開封し、シイタケを発生させ、収穫した。このようにして収穫したシイタケの１１袋の平均収量を第５表に示す。
表から明らかなように、菌体５０％置換区は、対照区と比較して、収量で３４．６％の増収効果が見られた。また、シイタケの大きさも、かさが直径５．５ｃｍ以上のものが多く得られた。
【００２５】
【表５】
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【００２６】
実施例５
含水率３１．４％のマイタケ栽培用オガコ２１９ｇ、含水率１２％の一般フスマ５０ｇ（乾燥重量４４ｇ）、含水率１２％の増産フスマ１０ｇ（乾燥重量８．８ｇ）、水３０１ｇを混合し、含水率６５％のフスマ培地５８０ｇを作成し、この培地を９５０ｍｌ容ポリプロピレン製栽培ビンに入れ対照区とした。
対照区の一般フスマ及び増産フスマの含有量を、製造例２で得られた含水率３％の乾燥菌体により置換し、第６表に示す組成の培地を作成した。この培地を９５０ｍｌ容ポリプロピレン製栽培ビンに入れ、菌体によるフスマ置換区を作成した。表中の置換率は、乾燥重量あたりで示してある。
【００２７】
【表６】
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【００２８】
各栽培ビンを１２１℃で６０分間殺菌した後、冷却し、これにマイタケのオガコ種菌を１５ｇづつ接種した。次いで、温度２２℃、湿度７０％の培養室で菌糸の培養を行い、菌まわり後、温度２１℃、湿度８５％の芽だし室で８日間芽だしを行った。その後、温度１６℃、湿度９５％の発生室に移し、きのこを発生、生育させ、収穫した。結果を第７表に示す。
表から明かなように、本発明の微生物を含んだ培地は、対照区のフスマ培地に比べ６〜１４．４％の増収効果が見られた。
【００２９】
【表７】
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【００３０】
実施例６
含水率６０％の堆積済みスギオガコ（スギオガコを３〜６ヶ月散水しながら天日にさらして樹脂分（ヤニ）を流出させたもの）１７７．５ｇ、含水率１２％の米ぬか３７．５ｇ（乾燥重量３３．０ｇ）、含水率１２％のフスマ４７．６ｇ（乾燥重量４１．９ｇ）、含水率６％のオカラ１３．３ｇ（乾燥重量１２．５ｇ）、水２０４．１ｇを混合し、含水率６７％の培地４８０ｇを作成し、これを８５０ｍｌ容のポリプロピレン製栽培ビンに入れ、対照区とした。
また、製造例２で得られた乾燥菌体を使用し、第８表に示す培地組成の菌体置換区を作成した。
【００３１】
【表８】
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【００３２】
各栽培ビンを１２１℃で６０分間殺菌し、冷却した後、ヒラタケのオガコ種菌を１５ｇづつ接種した。次いで、温度２５℃、湿度７０％の培養室で菌糸の培養を行った。菌まわり終了後、熟成期間をおき、ビン上部の菌糸を掻き取り（菌掻き）、注水し、余分な水分を排水した後、温度１５℃、湿度９５％の発生室に移し、きのこを発生させ、収穫した。収穫したヒラタケの栽培ビン１６本の平均収量を第９表に示す。
表から明らかなように、菌体のフスマ置換区は、対照区と比較して、収量で３４．６％も増収効果が見られた。また、栄養剤である米ぬか、フスマ、オカラの各々５０％を菌体で置換した５０％置換区でも２３．４％の増収効果が見られ、本発明に係る微生物は米ぬかだけではなく、きのこ栽培に用いられるフスマ、オカラ等の栄養剤の代替品としても有用であることがわかった。
【００３３】
【表９】
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【００３４】
実施例７
含水率１１％のブナオガコ１１１．６ｇ、含水率１２％の米ぬか９０ｇ（乾燥重量７９．２ｇ）、水３０８．４ｇを混合し、含水率６５％の米ぬか培地５１０ｇを作成し、この培地を８５０ｍｌ容ポリプロピレン製栽培ビンに入れて対照区とした。
対照区の米ぬかの２５％を、製造例１で得られた含水率３％の各種ポリオール生産菌の乾燥菌体２０．２ｇで置換し、水を加え含水率６５％とした培地を５１０ｇづつ８５０ｍｌ容ポリプロピレン製栽培ビンに詰め、各種ポリオール生産菌の菌体２５％置換区を作成した。
また、対照区の米ぬかの５０％を、製造例１で得られた含水率３％の各種ポリオール生産菌の乾燥菌体４０．８ｇで置換し、水を加えて含水率６５％とした培地を作成した。このとき米ぬかを５０％置換すると、各種ポリオール生産菌体は米ぬかに比べ粒度が小さく、対照区と比較して容量が小さくなるため、対照区に比べオガコを増量し、栽培ビン１本当たりの培地充填量も６００ｇに増加し、８５０ｍｌ容ポリプロピレン製栽培ビンに詰めた。
【００３５】
各栽培ビンを１２１℃で６０分間殺菌し、冷却した後、予めポテトデキストロース培地（DIFCO 社製）で３日間培養したヒラタケ培養液を７ｍｌづつ接種した。次いで、温度２２℃、湿度７０％の培養室で菌糸の培養を行った。菌糸がビン底部まで充分に伸長した（菌まわり）後、各試験区の菌まわりが同一となるように、０〜３日間の熟成期間をおいたのち、ビン上部の菌糸を掻き取り（菌掻き）、注水後、温度１５℃、湿度９５％の発生室に移し、きのこを発生させ、収穫した。栽培結果を第１０表に示す。
表から明らかなように、本発明に係る各種ポリオール生産能を有する微生物は、きのこの有効な栄養剤・増収剤になりうることがわかる。
【００３６】
【表１０】
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【００３７】
実施例８
本発明に係る微生物についてオガコの代替品としての利用可能性を検討するため、培地の原料として、含水率１１％のブナオガコ、含水率１２％の一般フスマ、製造例１で得られた含水率３％のトリコスポロノイデス・メガチリエンシスSN-G42株（FERM BP-1430) の乾燥菌体及び水を使用し、菌体２０ｇ置換区の培地及び菌体４０ｇ置換区の培地を作成した。また、該菌体で置換していない培地を対照区とした。各培地の組成を第１１表に示す。
【００３８】
【表１１】
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【００３９】
このようにして得た培地４８０ｇを８５０ｍｌ容ポリプロピレン製栽培ビンに入れ、殺菌した後、実施例２と同様の方法によりヒラタケを発生させた。結果を第１２表に示す。
表から明らかなように、基材であるオガコと本発明の微生物とを置換したいずれの置換区においても、３０％以上の増収効果を示した。これらのことから、本発明に係る微生物は、きのこの栄養剤・増収剤となるばかりでなく、きのこ培地中の基材であるオガコの代替品としても利用できることが明らかとなった。したがって、きのこ培地の基材として用いられているオガコの使用量を減少させることができる。
【００４０】
【表１２】
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【００４１】
【発明の効果】
本発明に係る微生物を含有するきのこ類の栽培培地は、使用する微生物が食品由来であることから安全性の面で問題がなく、しかも該微生物を大量に添加しても、きのこ類の高品質化および増収効果を示すことから、従来の培地成分の基材であるオガコや栄養剤である米ぬか等の使用量を十分に低減でき、培地の製造コストの低減を図ることができる。